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UVV – CENTRO UNIVERSITÁRIO VILA VELHA
PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM CIÊNCIA ANIMAL
EFEITOS DO USO TÓPICO DE ÓLEO DE SEMENTE DE
GIRASSOL (Helianthus annus) EM FERIDAS CUTÂNEAS
EXPERIMENTALMENTE INDUZIDAS EM EQUINOS
Luiz Antonio Trindade de Oliveira Junior
VILA VELHA – ESPÍRITO SANTO
Julho de 2010
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UVV – CENTRO UNIVERSITÁRIO VILA VELHA
EFEITOS DO USO TÓPICO DE ÓLEO DE SEMENTE DE
GIRASSOL (Helianthus annus) EM FERIDAS CUTÂNEAS
EXPERIMENTALMENTE INDUZIDAS EM EQUINOS
Luiz Antonio Trindade de Oliveira Junior
Orientador: Profa. Dra. Clarisse Simões Coelho
Dissertação apresentada ao Programa de
Mestrado em Ciência Animal do Centro
Universitário Vila Velha, para obtenção do
titulo de Mestre em Ciência Animal.
VILA VELHA – ESPÍRITO SANTO
Julho de 2010
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Catalogação na publicação elaborada pela Biblioteca Central / UVV-ES
O48e Oliveira Junior, Luiz Antonio Trindade de.
Efeitos do uso tópico de óleo de semente de girassol
(Helianthus annus) em feridas cutâneas experimentalmente
induzidas em equinos / Luiz Antônio Trindade de Oliveira Júnior.
– 2010.
62 f. : il.
Orientadora: Clarisse Simões Coelho.
Dissertação (mestrado em Ciência Animal) - Centro
Universitário Vila Velha, 2010.
Inclui bibliografias.
1. Equinos – Lesões - Tratamento. 2. Cicatrização de
feridas. 3. Óleo de girassol – Tratamento alternativo. I. Coelho,
Clarisse Simões. II. Centro Universitário Vila Velha. III. Título
.
CDD 636.1089714
UVV – CENTRO UNIVERSITÁRIO VILA VELHA
CERTIFICADO DE APROVAÇÃO
Efeitos do uso tópico de óleo de semente de girassol (Helianthus annus)
em feridas cutâneas experimentalmente induzidas em equinos
Autor: Luiz Antonio Trindade de Oliveira Junior
Orientador: Profa. Dra. Clarisse Simões Coelho
Vila Velha, 29 de julho de 2010
Banca examinadora
PROF. DRA. CLARISSE SIMÕES COELHO
PROF. DRA. BETÂNIA SOUZA MONTEIRO
PROF. DRA. CARLA BRAGA MARTINS
“DEDICO ESSE TRABALHO A TODOS OS ANIMAIS, E PEÇO
DESCULPA SE ALGUM DIA OS FIZ SOFRER”.
AGRADECIMENTOS
AGRADEÇO A DEUS POR ESTAR EM TODOS MOMENTOS JUNTO DE
MIM, ME DANDO FORÇA PARA VENCER TODAS AS DIFICULDADES.
AGRADEÇO AOS MEUS PAIS LUIZ ANTONIO E MARTA GREGÓRIO
PELO APOIO E POR ACREDITAREM NO MEU POTENCIAL. MUITO
OBRIGADO, AMO VOCES.
A MINHA IRMÃ JULIANA E MEU AFILHADO JOÃO PEDRO PELOS BONS
MOMENTOS QUE VIVEMOS JUNTOS O QUE ME TRAZ ALEGRIA E FORÇA.
A MINHA ESPOSA ÉRICA, MEU FILHO LUIZ FERNANDO E MINHA
FILHA MARIA FERNANDA, POR TODO APOIO E PELA COMPREENSÃO
PELOS MOMENTOS DE AUSÊNCIA E DE NERVOSISMO.
AO MEU SOGRO FERNANDO E MINHA SOGRA RUSIANE PELO APOIO E
POR ACREDITAREM EM MIM.
UM AGRADECIMENTO MUITO ESPEIAL A MINHA ORIENTADORA PROF.
DRª CLARISSE SIMÕES COELHO POR TODO APOIO E PELA EXCELENTE
ORIENTAÇÃO, CARINHO E COMPREENSÃO. MUITO OBRIGADO.
A PROFESSORA PROF. DRª DENISE COUTINHO ENDRINGER PELA
PRONTA DISPONIBILIDADE UM REALIZAR A ANÁLISE DO ÓLEO E
COLABORAR COM A DISSERTAÇÃO, MUITO OBRIGADO.
A PROF. DRª MARIA CARMEN SANTOS POR TER SE
DISPONIBILIZADO A REALIZAR A LEITURA DAS LÂMMINAS DO MEU
EXPERIMENTO. OBRIGADO POR TUDO.
AO FUNCIONÁRIO CARLOS ROBERTO MARCOS DO LABORATÓRIO
DE HISTOPATOLOGIA DA UVV- RESPONSÁVEL PELA CONFECÇÃO DAS
LÂMINAS DE BIÓPSIA.
AOS PROFESSORES PROF. DRº VINICIUS R. C. DE SOUZA E O PROF.
DRº EDUARDO RAPOSO PELA COLABORAÇÃO NA FASE INICIAL DO
EXPERIMENTO.
A TODOS OS DOCENTES DO PROGRAMA DO MESTRADO EM CIÊNCIA
ANIMAL PELOS CONHECIMENTOS PASSADOS.
A TODOS AQUELES QUE DIRETA OU INDIRETAMENTE ME DERAM
FORÇA PARA VENCER MAIS UMA ETAPA DESSA VIDA.
LISTA
DE
APÊNDICES
Apêndice A: Avaliação clínica do Eqüino 1 nos momentos antes e com 3, 7, 14
e 21 dias depois a indução experimental de feridas na região do
dorso e metacarpiana........................................................................
57
Apêndice B: Avaliação clínica do Eqüino 2 nos momentos antes e com 3, 7, 14
e 21 dias depois a indução experimental de feridas na região do
dorso e metacarpiana........................................................................
58
Apêndice C : Avaliação clínica do Eqüino 3 nos momentos antes e com 3, 7, 14
e 21 dias depois a indução experimental de feridas na região do
dorso e metacarpiana........................................................................
59
Apêndice D: Avaliação clínica do Eqüino 4 nos momentos antes e com 3, 7, 14
e 21 dias depois a indução experimental de feridas na região do
dorso e metacarpiana........................................................................
60
Apêndice E: Avaliação clínica do Eqüino 5 nos momentos antes e com 3, 7, 14
e 21 dias depois a indução experimental de feridas na região do
dorso e metacarpiana........................................................................
61
Apêndice F: Avaliação clínica do Eqüino 6 nos momentos antes e com 3, 7, 14
e 21 dias depois a indução experimental de feridas na região do
dorso e metacarpiana........................................................................
62
LISTA DE FIGURAS
Figura 1 : Girassol (Helianthus annus). Fonte: campossalles.worldpress.com..... 23
Figura 2 : Gráfico comparativo do tempo médio de cicatrização entre feridas
lombares tratadas com óleo de semente de girassol e feridas
controles, ambas induzidas experimentalmente em eqüinos.................
32
Figura 3 : Imagens fotográficas digitais ilustrando o aspecto macroscópico das
feridas lombares tratadas com óleo de semente de girassol (A, B, C,
D e E) e feridas controles (F, G, H, I e J), ambas induzidas
experimentalmente em eqüinos, respectivamente nos dias 0, 3, 7, 14
e 21........................................................................................................
33
Figura 4 : Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das
biópsias das feridas lombares tratadas com óleo de semente de
girassol (A) e feridas controles (B), ambas obtidas no dia da indução
experimental das mesmas (dia 0), e apresentando as mesmas
características básicas. Presença de folículo piloso (seta verde),
glândulas sebáceas (seta azul), pele integra (seta amarela) e hemácias
provenientes do ato cirúrgico (seta vermelha). (Aumento de 40x).......
36
Figura 5: Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das
biópsias das feridas lombares tratadas com óleo de semente de
girassol (A) e feridas controles (B), ambas obtidas no dia 3 do
acompanhamento das mesmas, não demonstrando diferenças entre os
grupos. No destaque, áreas de necrose celular (Aumento de 100 x
para A e 40 x para B)............................................................................
36
Figura 6: Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das
biópsias das feridas lombares tratadas com óleo de semente de
girassol (A) e feridas controles (B), ambas obtidas no dia 7 do
acompanhamento das mesmas. Destacam-se a presença de colágeno
frouxo (seta verde) e tecido de granulação (infiltrado celular) com
neovascularização (seta vermelha) e infiltrado de polimorfonucleares
(seta preta). (Aumento de 100x)............................................................ 37
Figura 7: Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das
biópsias das feridas lombares tratadas com óleo de semente de
girassol (A) e feridas controles (B), ambas obtidas no dia 14 do
acompanhamento das mesmas. Destaca-se a fase de transição entre
granulação e remodelação, porém com predomínio de remodelação
(seta verde) no corte do grupo experimental (A). No corte das feridas
controle (B) destaca-se a mesma fase de transição, porém, com fibras
de colágeno ainda frouxas e não organizadas (seta amarela).
(Aumento de 100x)................................................................................
37
Figura 8: Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das
biópsias das feridas lombares tratadas com óleo de semente de
girassol (A) e feridas controles (B), ambas obtidas no dia 21 do
acompanhamento das mesmas. Destaca-se a fase de remodelação
com colágeno organizado (seta verde) no corte do grupo
experimental (A). No corte das feridas controle destaca-se a fase de
remodelação, porém com colágeno ainda frouxo (seta amarela).
(Aumento de 100x)................................................................................
38
Figura 9: Gráfico comparativo do tempo médio de cicatrização entre feridas
metacarpianas tratadas com óleo de semente de girassol e feridas
controles, ambas induzidas experimentalmente em eqüinos.................
39
Figura 10: Imagens fotográficas digitais ilustrando o aspecto macroscópico das
feridas metacarpianas tratadas com óleo de semente de girassol (A,
B, C, D e E) e feridas controles (F, G, H, I e J), ambas induzidas
experimentalmente em eqüinos, respectivamente nos dias 0, 3, 7, 14
e 21........................................................................................................
40
Figura 11: Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das
biópsias das feridas metacarpianas tratadas com óleo de semente de
girassol (A) e feridas controles (B), ambas obtidas no dia da indução
experimental das mesmas (dia 0), não demonstrando diferenças entre
os grupos. Destaca-se a presença de pele normal (seta verde), com
glândulas sebáceas (seta vermelha), folículo piloso (seta azul) e
hemácias provenientes do procedimento (seta preta). (Aumento de
40x)........................................................................................................
42
Figura 12: Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das
biópsias das feridas metacarpianas tratadas com óleo de semente de
girassol (A) e feridas controles (B), ambas obtidas no dia 3 do
acompanhamento das mesmas, não demonstrando diferenças entre os
grupos. Destaca-se a fase inflamatória, com presença de necrose
celular (seta verde) e infiltrado de polimorfonucleares (seta amarela).
(Aumento de 100x)................................................................................
42
Figura 13: Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das
biópsias das feridas metacarpianas tratadas com óleo de semente de
girassol (A) e feridas controles (B), ambas obtidas no dia 7 do
acompanhamento das mesmas, não demonstrando diferenças entre os
grupos. Destaca-se a fase de tecido de granulação, com presença de
polimorfonucleares (seta verde) e neovascularização abundante (seta
amarela). (Aumento de 100x)................................................................
43
Figura 14: Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das
biópsias das feridas metacarpianas tratadas com óleo de semente de
girassol (A) e feridas controles (B), ambas obtidas no dia 14 do
acompanhamento das mesmas, não demonstrando diferenças entre os
grupos. Destaca-se a fase de transição com término da granulação e
início da fase de remodelação, porém ainda com colágeno frouxo
(seta verde). (Aumento de 100x)...........................................................
43
Figura 15: Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das
biópsias das feridas metacarpianas tratadas com óleo de semente de
girassol (A) e feridas controles (B), ambas obtidas no dia 21 do
acompanhamento das mesmas. Destaca-se no corte histológico
referente ao grupo experimental (A) a fase exclusivamente de
remodelação, presença de grande quantidade de fibras colágenas
organizadas e colágeno denso (seta verde). No corte histológico do
grupo controle, destacam-se a fase de transição (granulação x
remodelação), ainda com grande presença de células
polimorfonucleares (seta preta) e vasos sanguíneos (seta vermelha).
(Aumento de 100x)................................................................................
44
LISTA DE QUADROS
Quadro 1: Principais achados macroscópicos encontrados na avaliação clínica
das feridas lombares tratadas com óleo de semente de girassol
(protocolo experimental) e feridas controles, ambas induzidas
experimentalmente em equinos, nos momentos antes e com 3, 7, 14
e 21 dias depois....................................................................................
34
Quadro 2: Principais achados histopatológicos encontrados nos cortes das
biópsias obtidas das feridas lombares tratadas com óleo de semente
de girassol (protocolo experimental) e feridas controles, ambas
induzidas experimentalmente em equinos, nos momentos antes e
com 3, 7, 14 e 21 dias depois..............................................................
35
Quadro 3: Principais achados macroscópicos encontrados na avaliação clínica
das feridas metacarpianas tratadas com óleo de semente de girassol
(protocolo experimental) e feridas controles, ambas induzidas
experimentalmente em equinos, nos momentos antes e com 3, 7, 14
e 21 dias depois....................................................................................
40
Quadro 4: Principais achados histopatológicos encontrados nos cortes das
biópsias obtidas das feridas metacarpianas tratadas com óleo de
semente de girassol (protocolo experimental) e feridas controles,
ambas induzidas experimentalmente em equinos, nos momentos
antes e com 3, 7, 14 e 21 dias depois...................................................
41
LISTA DE TABELAS
Tabela 1: Valores médios e desvios-padrão das áreas das feridas lombares
tratadas com óleo de semente de girassol (protocolo experimental) e
das feridas controles, ambas experimentalmente induzidas.................
32
Tabela 2: Valores médios e desvios-padrão das áreas das feridas
metacarpianas tratadas com óleo de semente de girassol (protocolo
experimental) e das feridas controles, ambas experimentalmente
induzidas...............................................................................................
39
SUMÁRIO
Página
1
.
INTRODUÇÃO
........................................................................................................
14
2.
OBJETIVOS
.............................................................................................................
16
3.
REVISÃO
DE
LITERATURA
................................................................................
17
3
.1
.
Pele
.........................................................................................................................
17
3
.2
.
Ferida
.....................................................................................................................
18
3.3. Cicatrização
...........................................................................................................
19
3.4. Utilização de plantas medicinais
..........................................................................
21
3.5. Óleo de girassol (
Helianthus annus
)
....................................................................
23
4. MATERIAL E MÉTODOS
....................................................................................
27
4
.1. Animais
..................................................................................................................
27
4.2. Procedimento cirúrgico
........................................................................................
27
4.2.1. Indução das feridas..............................................................................................
27
4.2.2. Obtenção das amostras de biópsias cutâneas para avaliação histopatológica..... 28
4.2.3. Protocolo experimental........................................................................................
29
4.3. Acompanhamento dos pacientes
......................................................................... 29
4.3.1. Avaliação das funções vitais................................................................................
29
4.3.2. Avaliação das feridas experimentalmente induzidas...........................................
29
4.4. Análise Estatística
.................................................................................................
30
5. RESULTADOS
........................................................................................................
31
5.1. Avaliação clínica dos eqüinos
.............................................................................. 31
5.2. Avaliação macroscópica das feridas lombares
...................................................
31
5.3. Avaliação microscópica das feridas lombares
....................................................
34
5.4. Avaliação macroscópica das feridas
metacarpianas
.........................................
38
5.5. Avaliação microscópica das feridas metacarpianas
.........................................
41
6. DISCUSSÃO
............................................................................................................ 45
7. CONCLUSÕES
........................................................................................................
50
REFERÊNCIAS
....................................................................................................... 51
APÊNDICES
........................................................................................................... 57
OLIVEIRA Jr. L.A.T. Efeitos do uso tópico de óleo de semente de girassol
(Helianthus annus) em feridas cutâneas experimentalmente induzidas em equinos.
[Dissertação de Mestrado]. Vila Velha-ES: Pós-Graduação em Ciência Animal, UVV –
Centro Universitário Vila Velha, 2010.
RESUMO
O objetivo do presente trabalho foi demonstrar os efeitos do uso tópico do óleo de
semente de girassol (Helianthus annus) no tratamento de feridas cutâneas
experimentalmente induzidas, buscando novas alternativas para a cicatrização de feridas
por segunda intenção em equinos. Para tal, foram usados seis equinos adultos, sem raça
definida, nos quais foram realizadas duas lesões de cada lado da região lombar e outras
duas em cada superfície lateral do metacarpo, sendo que as realizadas do lado direito
foram destinadas à análise histopatológica e do lado esquerdo à avaliação macroscópica.
As lesões foram tratadas diariamente com o óleo de girassol e a solução fisiológica foi
usada como controle. Registros da avaliação macroscópica e coleta de amostras para
avaliação histopatológica foram feitos nos dia da cirurgia e com 3, 7, 14 e 21 dias,
sendo registrado também o tempo até a cicatrização total das feridas. Nas feridas
lombares observou-se contração da área em 90,78% para as feridas tratadas com óleo
contra 79,27% das feridas controle após 21 dias de tratamento. Em menor magnitude no
mesmo período de tratamento, nas feridas metacarpianas observou-se contração da área
em 47,63% para as feridas tratadas com óleo contra 30,21% das feridas controle. O
tratamento com o óleo de girassol levou microscopicamente a um aumento de células
polimorfonucleares e angiogênese na fase inflamatória e ao maior alinhamento das
fibras colágenas na fase de remodelação. Foi possível concluir que a aplicação tópica do
óleo de girassol nas feridas beneficiou o processo de cicatrização.
Palavras-chave: equinos, óleo de girassol, cicatrização, feridas.
OLIVEIRA Jr. L.A.T. Effects of topical application of sunflower-seed oil
(Helianthus annus) on experimental cutaneous wounds induced in horses.
[Dissertação de Mestrado]. Vila Velha-ES: Pós-Graduação em Ciência Animal, UVV –
Centro Universitário Vila Velha, 2010.
ABSTRACT
The aim of this research was demonstrate the effects of topical application of sunflower-
seed oil (Helianthus annus) on surgically induced wounds trying to establish new
alternatives for the healing by second intention in horses. Six adult mixed breeds horses
were used. Two lesions were performed in each side of lumbar area and two more were
performed at the lateral aspect of metacarpus, the ones in the left side for macroscopic
observations and the ones on the right side for histopathologic analysis.
The lesions
were daily treated with sunflower-seed oil and saline solution was used as control.
Records of macroscopic evaluation and samples obtained for histopathologic analysis
were done at the surgery day and after 3, 7, 14 and 21 days, also recording the time for
complete healing. On the lumbar area, a wound contraction of 90.78% was recorded for
those treated with the oil and 79.27% of wound contraction was registered for the
controls after 21 days of treatment. In a lesser magnitude and after the same period, a
wound contraction of 47.63% was recorded for metacarpus wounds treated with the oil
and 30.21% was registered for the controls. The sunflower-seed oil treatment leaded
microscopically to an elevation of polymorphonuclear cells and newly formed vascular
bed on inflammatory phase and a better alignment of collagen fibers on remodelation
phase. It was possible to conclude that the topical application of sunflower-seed oil
displayed a beneficial effect in the healing process.
Key-words: equine, sunflower-seed oil, healing, wounds.
14
1. INTRODUÇÃO
Segundo Araújo et al. (1998) e Garros et al. (2006), uma ferida pode ser definida como
qualquer alteração na integridade anatômica da pele, resultante de qualquer tipo de trauma,
sendo este intencional (incisões cirúrgicas) ou acidental. Na rotina clínica da medicina equina,
esta lesão é relativamente frequente (FERREIRA et al., 2006). Todas as feridas, independente
de sua etiologia, geram prejuízo ao fluxo de sangue, à sensibilidade, geram acúmulo de debris
inflamatórios e podem apresentar diferentes graus de contaminação (com ou sem infecção)
(MAGALHÃES et al., 2008). As áreas mais acometidas são os membros e a região do
peitoral, podendo apresentar lesões extensas que impõem sérios riscos à vida do animal
(WILMINK et al., 2002).
A cicatrização é um processo dinâmico que consiste de uma sequência perfeita e
coordenada de eventos celulares e moleculares que interagem reparando e reconstituindo o
tecido (BANKS, 1992; ORTONNE e CLÉVY, 1994), restabelecendo a integridade da pele.
Sendo assim, o fenômeno da cicatrização de feridas permite que as intervenções cirúrgicas
sejam realizadas em humanos e animais (MAGALHÃES et al., 2008).
O processo de cicatrização começa imediatamente após a lesão, compreendendo fases
inflamatória, proliferativa e maturação. A fase inflamatória é caracterizada pelo recrutamento
de leucócitos (neutrófilos e macrófagos) para o local da lesão. Na fase proliferativa, a
migração de queratinócitos, fibroblastos e células endoteliais resultam na nova epitelização
com formação de tecido de granulação e neovascularização. Finalmente, na fase de
maturação, o excesso de colágeno é degradado e várias enzimas proteolíticas levam ao reparo
tecidual (BERTONE, 1989; MORI, 2004).
A cicatrização pode ocorrer por primeira ou segunda intenção ou pelo fechamento
primário retardado, dependendo do tipo de ferida, localização, contaminação e viabilidade do
tecido (KENT LLOYD, 1992).
Em equinos, os ferimentos de pele são relativamente frequentes, além da cicatrização
de feridas cutâneas ocorrer de forma mais exuberante do que o observado nas outras espécies
domésticas, prejudicando assim a função do animal (STASHAK, 1994; COCHRANE, 1997).
Fatores ambientais e fisiológicos exercem grande impacto na evolução da cicatrização,
podendo influenciar na qualidade da cicatriz, no tempo de cicatrização e na ocorrência de
complicações. Muitas substâncias são utilizadas visando interferir neste processo, como é o
caso das plantas medicinais (fitoterápicos) que podem ser usadas como protocolo principal ou
15
complemento terapêutico. O Brasil é um viveiro inesgotável de plantas medicinais e de
grande aceitação pela população. Segundo a OMS (Organização Mundial de Saúde), 80 % da
população mundial usam plantas medicinais. Entretanto muitas destas não possuem sua
eficácia comprovada cientificamente. Vários estudos são realizados na tentativa de detectar a
eficácia da fitoterapia na cicatrização de feridas em humanos e diversas espécies animais
(FORO et al., 1988; COELHO et al., 2001; CARPO et al., 2004), sendo possível destacar as
pesquisas com óleo de copaíba (EURIDES e MAZZANTI, 1995; POSSA et al., 2007),
papaína (SANCHEZ NETO et al., 1993), açúcar (PRATA et al., 1988), barbatimão
(EURIDES et al., 1996) e maracujá (GARROS, et al., 2006). Aloe vera, confrey, eucalipto,
jojoba, própolis (STASHAK et al., 2004).
Em equinos são várias as preparações tópicas usadas, sendo muitas ineficientes, quando
não prejudiciais à cicatrização, por serem irritantes ou estimularem a formação de tecido de
granulação exuberante (WHITE, 1995). Dentre os experimentos descritos em equinos
destacam-se as citações de Souza et al. (2006) que estudou a aplicação de creme à base de
Triticum vulgare na cicatrização de feridas cutâneas e de Martins et al. (2003), que
compararam o uso de barbatimão, calêndula e confrey na cicatrização de pele.
O girassol (Helianthus annus) é cultivado como planta ornamental e medicinal na
Europa do século XVIII. Relatos sobre sua utilização no tratamento de feridas datam desde
1929 (BURN e BURN, 1930; SINCLAIR e BASNAYEKE, 1954; VANTORP, 1974). Na
medicina humana é descrito seu uso tópico para tratamento de feridas cutâneas como
queimaduras (ZANOSCHI et al., 1991) e úlceras de pressão (VASCONCELOS, 1997). Já na
medicina veterinária, Marques et al. (2004), trabalhando com cordeiros, e Rocha et al. (2004)
e Magalhães et al. (2008), trabalhando com ratos, demonstraram a ação benéfica do uso do
óleo de semente de girassol no processo de cicatrização.
16
2. OBJETIVOS
Considerando-se a limitada literatura disponível em relação aos efeitos do uso do óleo
de semente de girassol no tratamento de feridas e as particularidades na espécie eqüina quanto
ao manejo das mesmas, o propósito do presente estudo foi avaliar a eficácia do uso tópico do
óleo de semente de girassol (Helianthus annus) na cicatrização de feridas experimentalmente
induzidas nas regiões lombar e metacarpiana de equinos hígidos.
17
3. REVISÃO DE LITERATURA
3.1. Pele
A pele é o maior e um dos mais complexos órgãos do organismo, constituindo-se numa
adequada superfície de contato com o meio ambiente e recobrindo a superfície corporal.
Apresenta-se constituída por uma porção epitelial de origem ectodérmica, a epiderme, e uma
porção conjuntiva de origem mesodérmica, a derme; abaixo, e em continuidade com a derme,
está a hipoderme, que não faz parte da pele, apenas serve de suporte e união com os órgãos
subjacentes ( PAVLETIC, 1993; JUNQUEIRA e CARNEIRO, 1999).
Este tipo de epitélio é um envoltório impermeável que funciona como uma barreira
seletiva entre o corpo e o meio exterior, inibindo a entrada de microorganismos indesejáveis e
toxinas enquanto previne a perda de fluídos, eletrólitos e calor (FITCH e SWAIM, 1995).
Embora a absorção não seja uma função principal do epitélio estratificado pavimentoso
da pele, está bem estabelecido que muitas substâncias podem atravessar a barreira epidérmica
(DELLMANN e BROWN, 1982). A derme contém uma rede de capilares cutâneos, linfáticos,
componentes nervosos, músculos eretores dos pêlos, folículos pilosos e estruturas glandulares
derivadas do ectoderma. Consiste de fibras colágenas, reticulares e elásticas, circundadas por
uma substância basal fundamental amorfa. Esta substância amorfa é composta de ácido
hialurônico e sulfato de condroitina e constitui o principal componente da derme. Noventa por
cento das fibras dérmicas se compõem de colágeno. Fibroblastos, macrófagos, plasmócitos e
mastócitos estão presentes por toda a derme, sendo mais numerosos na camada superficial.
Durante a cicatrização de feridas, aparece uma célula diferenciada chamada de miofibroblasto
com característica própria e intermediária entre o fibroblasto e a célula muscular lisa. Essa
célula tem a morfologia de fibroblasto, mas contém maior quantidade de actina e de miosina,
e os miofibroblastos participam do fechamento dos ferimentos pela contração da cicatriz
formada (JUNQUEIRA e CARNEIRO, 1999).
18
3.2. Ferida
Ferida é uma palavra de origem latina (ferire) e representa a separação dos tecidos do
corpo ou qualquer lesão tecidual, seja epitelial, mucosas ou órgãos com prejuízo de suas
funções básicas. As feridas podem ser produzidas por fatores extrínsecos, como a incisão
cirúrgica e as lesões acidentais, p.ex. corte ou trauma, ou por fatores intrínsecos, como
aquelas produzidas por infecção e as úlceras crônicas, causadas por alterações vasculares,
defeitos metabólicos ou neoplasias (CENTRE FORMEDICAL EDUCATION, 1994). Uma
ferida é uma lesão caracterizada pela ruptura da continuidade normal da estrutura do corpo.
Os cuidados com as feridas são conhecidos desde a antigüidade, como é relatado no papiro
cirúrgico de Edwin Smith, datado de 1.700 a.C., cujo documento descreve o tratamento que
cirurgiões egípcios aplicavam em feridas, consistindo na combinação de mel e unguento
aplicados diariamente na lesão com ataduras de pano fino (HADDAD et al., 1983).
Estudiosos mencionam que desde tempos remotos diversos produtos de origem animal,
vegetal e mineral têm sido largamente usados na terapêutica das feridas. O papiro de Elbers,
referente ao ano de 1.500 a.C., que se encontra na Alemanha, na Universidade de Leipzig,
recomenda manter as bordas das feridas unidas/aproximadas por meio de bandagens de linho
embebidas em mirra e mel e removidas/retiradas após quatro dias (DEALEY, 2001).
Celsius fez a compilação histórica e detalhada da prática médica, desde a época de
Hipócrates até o ano de 100 d.C. Este estudioso classificou os tipos das feridas, os
tratamentos, as técnicas de debridamento e descreveu os quatro sinais clássicos da inflamação,
tal como, dor, calor, rubor e tumor. Ainda, preconizou a limpeza e a remoção de corpos
estranhos antes do fechamento primário de lesões por meio de sutura (DEALEY, 2001).
Ainda, na época medieval, a “spezieria”, considerada a farmácia de manipulação na
atualidade, preparava produtos naturais provenientes de ervas, venenos ou pele de cobras. Na
farmacopéia medieval, o óleo de oliva, era empregado no tratamento de feridas e úlceras,
misturado com vinho. No final do século XVI, Ambroise Pare, passou a defender o princípio
da intervenção mínima, afirmando que o processo de cicatrização ocorreria naturalmente e
ainda verificou que com a instilação de terebentina em feridas por arma de fogo obtinha-se
uma cicatrização melhor do que a produzida com auxílio de óleo fervente (UTYAMA, 2003).
No final do século XIX e início do século XX, Halsted e Carrel, mostraram a importância da
limpeza da ferida por meio de debridamento meticuloso e a possibilidade de aproximação das
bordas por meio de sutura. Por outro lado, Lister, Pasteur e Semmelweis mudaram
inteiramente o panorama da área de saúde neste século demonstrando a importância de
19
controle da infecção por meio da limpeza, higienização, antissepsia, desinfecção e
esterilização de instrumentos cirúrgicos (FERRAZ, 1982).
Dealey (2001) afirmou que por milhares de anos tem-se aplicado substâncias naturais
para ajudar na cicatrização de feridas. Ainda hoje o cuidado com feridas é realizado de
maneira ritualística, algumas vezes sem fundamentação científica.
No entanto, na década de 1960, um novo conceito no cuidado com a ferida foi
introduzido, ou seja, a manutenção do leito da ferida limpo e úmido acelerava a cicatrização.
O estudo realizado por Winter (1962), utilizando modelo animal, verificou que a epitelização
foi duas vezes mais rápida nas feridas cobertas. Posteriormente, Eaglstein e Mertez (1981) e
Dealey (2001) verificaram a diminuição da dor local com curativo úmido. Os mesmos autores
detectaram que os processos autolíticos aumentavam no meio úmido, provocando a lise dos
tecidos necróticos, iniciando a revolução dos curativos.
3.3. Cicatrização
A cicatrização da pele é alvo de estudo pelos interesses clínico, científico e econômico,
especialmente devido à grande ocorrência de feridas causadas por trauma na espécie equina
(KENT LLOYD, 1992; COCKBILL e TURNER, 1995).
A cicatrização pode ocorrer por primeira, segunda intenção ou ainda por fechamento
primário tardio, na dependência do tipo de ferida, localização, contaminação e viabilidade do
tecido envolvido (KENT LLOYD, 1992).
A cicatrização das feridas é um processo dinâmico envolvendo fenômenos bioquímicos
e fisiológicos que se comportam harmoniosamente a fim de garantir a restauração tissular. A
cicatrização de feridas é um processo fisiológico que se inicia a partir da perda de integridade
da pele, gerando uma solução de continuidade com resposta inflamatória caracterizada pelo
aumento do fluxo sanguíneo, permeabilidade capilar e migração de leucócitos para a região
lesada (KENT LLOYD, 1992). A permeabilidade capilar promove extravasamento de plasma
e seus componentes formando o exsudato inflamatório (MODOLIN e BEVILACQUA, 1985).
Inicialmente, a ferida é preenchida por coágulos, fibrina e exsudato formando uma crosta que
a isola do meio ambiente quase que imediatamente (COTRAN, 1989). Os neutrófilos e
macrófagos são as primeiras células à migrarem para a região lesada em resposta do
organismo à invasão bacteriana (RUNNELS et al., 1976) e ao fagocitarem as bactérias se
degeneram formando o pus com os tecidos necróticos (GUYTON, 1991). A cicatrização por
20
segunda intenção, sem o uso de suturas e com maior quantidade de tecido de granulação, tem
sido descrita com diferentes fases e características; inicia-se com a hemorragia e formação de
coágulo e crosta, continua com a limpeza da ferida decorrente da exsudação fibrinosa
formadora de crosta por ressecamento e contendo leucócitos ativos para eliminação de
microrganismos e corpos estranhos. Ocorre então a formação do tecido de granulação
composto por fibroblastos, neovascularização e miofibroblastos, sendo estes últimos
responsáveis pela retração da ferida. Apoiando-se no tecido de granulação e a partir de
diversos pontos, há a epitelização da lesão e deposição colágena no tecido formador da
cicatriz (BAXTER, 1988; KNOTTENBELT, 1997; SWAIM, 1997). Observa-se ainda a
importância de aspectos locais como a localização das lesões (JACOBS et al., 1984;
KNOTTENBELT, 1997).
A cicatrização classicamente esta dividida em quatro fases: inflamação, debridação,
reparação e maturação (ORGILL e DEMLING, 1988; BERTONE, 1989a; KENT LLOYD,
1992; FITCH e SWAIM, 1995). A fase inflamatória é caracterizada pelo recrutamento de
leucócitos (neutrófilos e macrófagos) que migram para a área de lesão, sendo importantes
para liberação de substâncias biologicamente ativas (WILMINK, 2004). Na fase proliferativa,
a migração de queratinócitos, fibroblastos e células endoteliais resultam na nova epitelização,
formação de tecido de granulação e angiogenese. Os fibroblastos são responsáveis pela
construção da matriz extracelular com a formação de coágulos de fibrina e com os vasos
sanguíneos para fornecimento de oxigênio e nutrientes para os fibroblastos, com posterior
substituição da rede de fibrina com glicoproteinas (fibronectina e laminina) em proteoglicanos
(ácido hialurônico) e colágeno (tipo III). Finalmente na fase de maturação, o excesso de
colágeno é degradado e várias enzimas proteolíticas levam ao reparo tecidual (BERTONE,
1989; MORI, 2004). A contração da ferida é feita através da ação dos fibroblastos
diferenciados (miofibroblastos) no tecido de granulação, que contem filamentos de actina do
músculo liso, ocorrendo de maneira mais pronunciada nas feridas do corpo do que dos
membros (WILMINK, 2004).
Segundo Wilmink (2004), a fase inflamatória de ferida em pôneis ocorre de forma mais
rápida com relação aos equinos, visto que nos cavalos o tecido de granulação permanece
irregular com presença de secreção e exsudado fibrinoso. Adicionalmente, o influxo de
leucócitos nas feridas dos pôneis é mais rápido do que nos cavalos, fazendo com que a parte
inicial do processo de cicatrização, a fase inflamatória, seja mais curta porém mais eficiente
na cura das feridas (WILMINK, 2004). Este mesmo autor descreve que a formação do tecido
de granulação exuberante foi maior nos cavalos quando comparado aos pôneis, pois se
21
verificou que histologicamente a proliferação de fibroblastos nos equinos é maior.
Finalmente, a epitelização ocorre na fase final do processo de cicatrização e é um processo
muito lento, avançando aproximadamente um milimetro a cada 10 dias no cavalo
(WILMINK, 2004).
Os cavalos sofrem frequentemente feridas traumáticas e a cura destas com frequência
são tardias e complicadas com relação a outras espécies, principalmente no que se refere a
formação de tecido de granulação exuberante (OLIVEIRA, 1992). Muitas das vezes ocorre
perda excessiva de tecido ou um dano vascular severo, o que faz da cicatrização por segunda
intenção ser a única solução. Estas complicações são mais comuns nos membros locomotores
do animal, visto que as feridas extensas do corpo curam-se relativamente bem. Estas
complicações supracitadas conduzem a um desperdício significativo porque um número
considerável de cavalos não pode prosseguir em sua carreira atlética por apresentarem
membros inchados e cicatrizes extensas que comprometem muitas das vezes sua locomoção
(WILMINK, 2004).
3.4. Utilização de Plantas Medicinais
Planta medicinal é todo vegetal que contém em um ou vários de seus órgãos
substâncias que podem ser empregadas para fins terapêuticos ou precursores de substâncias
utilizadas para tais fins. Chama-se de parte usada do vegetal, os órgãos vegetais nos quais
estas substâncias ocorrem em quantidades maiores, e, por esta razão, são empregadas como
matéria-prima do medicamento. Define-se como princípios ativos, as substâncias
quimicamente definidas presentes nas matérias-primas e nos fitoterápicos responsáveis pela
atividade farmacodinâmica, ou seja, pelos efeitos terapêuticos desses materiais. Chama-se
produto fitoterápico a todo medicamento obtido e elaborado empregando-se exclusivamente
matérias-primas vegetais ativas com finalidade curativa ou profilática, com benefício para o
usuário (OLIVEIRA e AKISUE, 1997). A história da utilização de vegetais pelo homem é tão
antiga quanto sua própria existência. O primeiro uso era para a nutrição, mas a seguir as
propriedades medicinais das ervas foram descobertas. Diversas ervas, tais como a lavanda e a
calêndula, foram introduzidas na agricultura para a retirada de seus óleos essenciais ou seus
compostos medicinais (DI STADI, 1996).
As plantas medicinais correspondem, incontestavelmente, às mais antigas armas
empregadas no tratamento de enfermidades humanas e de animais. Houve época, entretanto,
22
em que a fitoterapia parecia estar desaparecendo. A indústria químicofarmacêutica produzia
os mais diversos tipos de fármacos, que se mostravam eficazes no tratamento de diversos
tipos de enfermidades. Entretanto, o custo desses medicamentos era cada vez mais alto.
Grande parte da população mundial permanecia marginalizada e sem acesso a esses
benefícios. Por outro lado, efeitos colaterais decorrentes do uso de medicamentos obtidos por
síntese eram cada vez mais freqüentes. Não existia vantagem em se tratar rápida e
eficientemente um mal introduzindo-se outro. Os medicamentos precisam ser ao mesmo
tempo eficazes, seguros e de custo acessível a todos. Em 1978, a Assembléia Geral da
Organização Mundial de Saúde (OMS) deu início a um programa em que se dava ênfase ao
uso de plantas medicinais. O objetivo maior da OMS era alcançar a meta “Saúde para Todos
no Ano 2000”. O estudo de plantas medicinais começou a ser incentivado. No Brasil, a
Central de Medicamentos (CEME) elaborou a lista de plantas destinadas a serem pesquisadas
em suas propriedades medicinais. A grande variedade de espécies vegetais, atributo da flora
brasileira, fez com que a atenção de pesquisadores do mundo inteiro se voltasse para o Brasil.
No Brasil, muito ainda há por ser feito. O grande problema da fitoterapia parece ainda, ser a
identificação da planta medicinal e da droga vegetal utilizada. As panacéias, isto é, plantas
medicinais que se acredita servirem para todos os males, têm igualmente contribuído para o
desprestígio da fitoterapia. Outro problema não menos importante é a crendice popular que
“se é vegetal é natural, é bom, se não fizer bem mal não faz”. Muitas plantas possuem
princípios tóxicos e o uso indiscriminado de plantas pode trazer problemas. Portanto, o
controle de qualidade dos fitoterápicos é necessário. Desde que os problemas mencionados
sejam resolvidos, a fitoterapia poderá contribuir muito a favor da saúde, tanto humana como
animal (OLIVEIRA e AKISUE, 1997).
Sabe-se que fatores ambientais e fisiológicos interferem na evolução da cicatrização,
influenciando na qualidade da cicatriz, no tempo de cicatrização e na ocorrência de
complicações. Apesar da predominância, no arsenal terapêutico, de substâncias sintéticas,
inclusive as antiinflamatórias, nos últimos anos têm-se verificado retomada a valorização de
práticas terapêuticas consideradas por muitos profissionais de saúde como populares ou não
científicas, inclusive a lenta reincorporação das ervas medicinais como alternativa ou
complemento terapêutico. Tendo vários fitoterápicos testados e usados no processo de
cicatrização de feridas que se mostraram promissores (GARROS et al., 2006).
Vários estudos são realizados na tentativa de detectar a eficácia da fitoterapia na
cicatrização de feridas em humanos e diversas espécies animais (FORO et al., 1988;
COELHO et al., 2001; CARPO et al., 2004), sendo possível destacar as pesquisas com óleo
23
de copaíba (EURIDES e MAZZANTI, 1995; POSSA et al., 2007), papaína (SANCHEZ
NETO et al., 1993), açúcar (PRATA et al., 1988), barbatimão (EURIDES et al., 1996) ,
maracujá (GARROS, et al. 2006), aloe vera, confrey, eucalipto, jojoba, própolis (STASHAK
et al., 2004) e aloe vera, açúcar e mel (DART et al., 2005).
Em equinos são várias as preparações tópicas usadas, sendo muitas ineficientes, quando
não prejudiciais à cicatrização, por serem irritantes ou estimularem a formação de tecido de
granulação exuberante (WHITE, 1995). Destaca-se o trabalho de Souza et al. (2006) com
creme à base de Triticum vulgare na cicatrização de feridas cutâneas em equinos, no qual as
feridas tratadas apresentaram menor tempo de cicatrização em relação as não tratadas, e de
Martins et al. (2003), que compararam o uso de barbatimão, calêndula e confrey na
cicatrização de pele em equinos, observando que o barbatimão apresentou melhores
resultados.
3.5. Óleo de girassol (Helianthus annus)
Originário dos Estados Unidos e México, o girassol (Helianthus annus) foi introduzido
na Europa no século XVI, inicialmente na Espanha e depois na Inglaterra e França (Figura 1).
Até o século XVIII, cultivava-se como planta ornamental e medicinal (TESKE, 1997).
Figura 1. Girassol (Helianthus annus). Fonte: campossalles.worldpress.com
24
Foi na Rússia que o girassol começou a ser utilizado como fonte de óleo comestível,
tornando-se no início do século XX a principal cultura desses países. No Brasil, os estados de
São Paulo e Paraná são os que possuem maior potencial para sua cultura, precisando de muito
sol e umidade para o seu desenvolvimento (TESKE, 1997).
Suas sementes possuem em seu óleo o ácido oléico e uma grande abundância de ácidos
graxos insaturados, especialmente o ácido linoléico (WENDT, 2005). Os ácidos graxos são
divididos de acordo com a localização das ligações químicas, incluindo os n-3 ou ômega-3
(ácido alfa-linoléico, ácido eicosapentanóico) e os n-6 ou ômega-6 (ácido linoléico e ácido
aracdônico). Estes compostos não são sintetizados por organismos animais e, assim, a
obtenção tem que vir de uma fonte dietética. As principais fontes dietéticas de ômega 6 são o
milho, óleo de girassol e gordura animal (MARQUES et al., 2004).
A utilização dos ácidos graxos em problemas de pele é estudada desde 1929 quando foi
observado lesões de pele provocadas pela redução dos mesmos na alimentação (BURN e
BURN, 1930; SINCLAIR e BASNAYEKE, 1954). Linn e Shephed, em 1936, e Vantorp, em
1974, observaram cura de feridas de pele com a aplicação tópica, respectivamente, de ácidos
graxos e do óleo de semente de girassol.
O ácido linoléico é um ácido graxo essencial de 18 carbonos, precursor do ácido
aracdônico (20 carbonos). Este, por sua vez, é metabolizado pelas vias da lipoxigenase e
cicloxigenase em leucotrienos, prostaglandinas e tromboxanos por células
polimorfonucelares. Estas substâncias apresentam propriedades inflamatórias (ORTONNE e
CLÉVY, 1994; MARQUES et al., 2004), podendo estimular a neovascularização local,
migração celular e proliferação e diferenciação fibroblástica assim como a síntese de matriz
extracelular (CORSI et al., 1994). Também foi demonstrado que o ácido linoléico participa na
proliferação celular e processo inflamatório pelos seus efeitos de quimiotaxia e estimulação
de neutrófilos (WENDT, 2005), além do efeito antibacteriano (MARQUES et al., 2004;
MAGALHÃES et al., 2008). Glasgow e Eling (1990) citaram que o ácido linoléico estimula
alguns fatores de crescimento celular, como fator de crescimento de plaquetas, fator de
crescimento fibroblástico, fator de crescimento epidérmico e fator de crescimento semelhante
à insulina, mas inúmeros experimentos ainda pesquisam a precisa ação de cada um destes.
Os fatores de crescimento são substâncias biologicamente ativas que parecem atuar
como recursos extremamente promissores na cicatrização. Suas ações já foram comprovadas
em modelos experimentais, mas ainda são necessários mais estudos que evidenciem sua
aplicação clínica. Segundo Mandelbaum et al. (2003), “inúmeras pesquisas em andamento
visam a identificação precisa da ação de cada um desses fatores, sendo os mais investigados o
25
fator de crescimento derivado de plaquetas (PDGF), o fator transformador (TFG-beta), o fator
de crescimento fibroblástico (FGF), o fator de crescimento semelhante à insulina (IGF) e o
fator de crescimento epidérmico (EGF)”. Agem na membrana celular, ativando a
tirosinaquinase, que entra em contato com o DNA, estimulando a divisão e proliferação
celular. Como benefícios ativam macrófagos e fibroblastos acelerando a granulação tecidual e
estimulando a divisão e proliferação celular (MANDELBAUM et al., 2003).
Ono et al. (2001) relataram a importância de citocinas e fatores de crescimento no
processo de reparação tecidual. Muitos desses fatores (EGF, FGF, PDGF, TGF-beta) e
interleucinas (IL-6) são citocinas que estimulam a proliferação queratinócita. Os fatores de
crescimento são produzidos por muitas células, incluindo plaquetas, macrófagos, linfócitos,
neutrófilos, fibroblastos e células epiteliais. O uso tópico de fatores de crescimento sobre
feridas não só facilita a migração de monócitos, neutrófilos, macrófagos e fibroblastos, como
também estimula a proliferação de tecido de granulação (LIPTAK, 1997).
O óleo de semente de girassol pode ser produzido industrialmente ou artesanalmente. É
importante, porém, que em ambos os processos se utilize grãos com alto teor de óleo (cascas
pretas) e não o girassol empregado na alimentação de pássaros (grãos maiores e com cascas
rajadas) (PORTAS, 2001).
De uma forma geral, o óleo bruto pode ser usado em saladas, como parte da dieta de
pacientes, e em formulações tópicas para tratamento de feridas cutâneas como queimaduras
(ZANOSCHI et al., 1991) e úlceras de pressão (VASCONCELOS, 1997).
Marques et al. (2004) estudaram os efeitos do uso do óleo de semente de girassol no
tratamento de feridas cutâneas em 18 carneiros da raça Santa Inês divididos em três grupos,
de acordo com período de observação pós-cirurgia (7, 14 e 21 dias). Segundo os autores, a
aceleração do processo inflamatório gerado pelo uso do óleo de semente de girassol, levando
a rápida formação do tecido de granulação e epitelização nas feridas de cordeiros, pode ser
explicada pelas características biológicas e bioquímicas do ácido linoléico. Sabe-se que o
ácido linoléico constituiu um importante mediador pró-inflamação, sendo essencial na
regulação dos eventos bioquímicos que precedem a fibroplasia além do estimular os fatores de
crescimento e neovascularização.
Estudo comparativo do processo de cicatrização com o uso do óleo de semente de
girassol e triglicérides de cadeia média foi feito por Rocha et al. (2004) em ratos. Os
resultados obtidos demonstraram que tanto os triglicérides de cadeia media quanto o óleo
alteraram o processo de formação de cicatriz de forma benéfica.
26
Wendt (2005) comparou o uso de óleo de girassol, calêndula e suas associações na
cicatrização de feridas experimentalmente induzidas em 27 coelhos da raça Nova Zelândia.
Segundo o autor, apesar da análise histológica revelar que o tecido de granulação foi menos
exuberante e a fibrose menos intensa nas feridas tratadas com o óleo, não foram observadas
diferenças na velocidade de cicatrização entre os tratamentos testados, diferente de Marques
et al. (2004).
De forma semelhante, Magalhães et al. (2008) estudaram os efeitos de uma combinação
de triglicérides de cadeia média, ácido linoléico, lecitina de soja e vitaminas A e E na
cicatrização de feridas em 45 ratos. Os animais foram divididos em três grupos, controle
(solução salina), referência (composto de clostebol associado a sulfato de neomicina) e teste, e
foram avaliados antes e com 3, 7 e 12 dias de pós-operatório. Segundo os autores, o composto
em teste não acelerou o processo de reparação tecidual por segunda intenção quando
comparado às feridas controles e às feridas tratadas de forma convencional.
27
4. MATERIAL E MÉTODOS
4.1. Animais
Foram selecionados seis animais, da espécie equina, hígidos, sem raça definida, sendo
três machos e três fêmea, com idade variando entre sete e 12 anos e peso variando entre 350 e
420 Kg. Os animais foram alojados no Clube do Cavalo de Alfredo Chaves – Espirito Santo,
Brasil, onde foram adaptados por um período de aproximadamente duas semanas antes do
início da fase experimental.
Cada cavalo foi vermifugado com pasta oral a base de ivermectina 1% (Equalan),
vacinados contra influenza equina, tétano e encefalomielite (Tri-Equi® - Hertap) e foi
realizado a profilaxia oral para remoção de pontas dentárias. A alimentação dos animais foi
baseada no relato de Ralston (1988) e os mesmos foram alimentados com feno de tifton e
coast-cross e sal mineral ad libitum e com ração comercial com 18% de proteína de marca
Purina®, na proporção de 1% de peso vivo, sendo mantidos em baias individuais durante o
período de avaliação. A água também foi fornecida ad libitum. Todos procedimentos
supracitados foram realizados a fim de padronizar todas as amostras para que não houvesse
interferência.
Os animais utilizados não apresentavam histórico anterior de dermatopatias e todos
foram submetidos a exames clínicos prévios, conforme preconizado por Rose e Hodgson
(2000).
4.2. Procedimento cirúrgico
4.2.1. Indução das feridas
Os equinos foram submetidos a jejum alimentar de 12 horas, deixando água disponível.
A tranquilização foi feita usando cloridrato de xilazina a 10% na dose de 1mg/kg/IV. A
anestesia local na região do dorso foi feita em “U” invertido usando cloridrato de lidocaína a
2% sem vasoconstrictor. O bloqueio anestésico da região metacarpiana direita e esquerda foi
realizado com bloqueio em anel na região da epífise proximal dos metacarpianos utilizando
cloridrato de lidocaína a 2% sem vasoconstrictor, mantendo o animal em posição quadrupedal
em tronco de contenção.
28
Realizou-se tricotomia da região do dorso e face lateral metacarpiana, ambos do lado
direito e esquerdo. A antissepsia do campo operatório foi realizada com iodo povidona e
álcool 70% para retirada de qualquer resíduo do iodo. Com utilização de material cirúrgico
estéril e luvas estéreis, e auxiliados pelo paquímetro (STARRETT 727 – 6/150), foram
realizadas duas feridas cutâneas de 1,7 x 1,7 cm no aspecto lateral de cada região
metacarpiana e duas feridas cutâneas de 2,5 x 2,5 cm em cada lado da região lombar, com
auxílio de bisturi com lâmina número 10, totalizando oito feridas / equino. A excisão
abrangeu a pele e tecido subcutâneo subjacente. Todas feridas foram mensuradas para sua
padronização com auxílio do paquímetro digital da marca Starrett® 727 – 6/150. Após o
procedimento, todos os seis animais receberam antiinflamatório não esteroidal (fenilbutazona)
na dose de 4,4 mg/kg/IV, SID, por 3 dias, visando principalmente controlar edema e dor.
Protocolo este usado como rotina no tratamento de feridas acidentais e cirúrgicas conforme
ROSE, F.R.; HODGSON, R.D., 2000.
4.2.2. Obtenção das amostras de biópsias cutâneas para avaliação histopatológica
As biópsias de pele foram obtidas nos momentos 0 (logo após o procedimento
cirúrgico) e com 3, 7, 14 e 21 dias após, abrangendo os limites da ferida e tecido íntegro
usando punch de 6 mm de diâmetro. Para o procedimento, foi feito previamente a limpeza da
ferida e tranquilização do equino com cloridrato de xilazina a 10% na dose de 0,5 mg/kg/IV.
Após a remoção, os fragmentos foram imersos em frascos contendo formol a 10% e
identificados com o dia da retirada, número do animal e localização da ferida (metacarpiana
ou lombar), incluindo ainda se era cranial ou caudal, em se tratando das feridas lombares, e
proximal ou distal, em se tratando das feridas metacarpianas, sendo encaminhados ao
laboratório de Patologia Veterinária do Centro Universitário de Vila Velha para confecção das
lâminas. Tal identificação foi feita por meio de códigos a fim de proceder exame às cegas, ou
seja, sem conhecimento do patologista responsável pela leitura das lâminas.
As peças histológicas foram processadas e os cortes em parafina foram realizados na
espessura de 4 µm com auxílio de um micrótomo (LEICA RM 2125 RT). Posteriormente os
mesmos foram corados com Hematoxilina Eosina (HE).
As lâminas foram lidas no laboratório de Patologia no Hospital das Clínicas de Vitória
– Espírito Santo sob supervisão da Dr.ª Maria Carmen Lopes Ferreira Silva Santos – Médica
Patologista Professora do Centro Universitário Vila Velha e da Universidade Federal do
Espírito Santo, utilizando um microscópio da marca Olympus DX51 com objetiva de 40X
29
para fragmentos menores e de 20X para fragmentos maiores, com auxilio de papel
milimetrado para medida das lesões.
4.2.3. Protocolo Experimental
O início do tratamento ocorreu 12 horas após a indução cirúrgica das lesões e foi
mantido diariamente, duas vezes ao dia, até a cicatrização total das feridas. Para as feridas
lombares, bilateralmente, foi feita a aplicação no sentido crânio-caudal em três equinos
escolhidos aleatoriamente e no sentido caudo-cranial nos outros três cavalos, os seguintes
tratamentos: (1) Solução isotônica de cloreto de sódio (controle) e (2) Óleo de semente de
girassol (marca Sinhá lote L 0410 GRP 201468). Para as feridas metacarpianas foi feita a
aplicação no sentido proximal-distal e bilateralmente (1) Solução isotônica de cloreto de sódio
(controle) e (2) Óleo de semente de girassol (marca Sinhá lote L 0410 GRP 201468).
Inicialmente foi feita a limpeza das feridas com solução isotônica de cloreto de sódio
(NaCl a 0,9%) seguida da aplicação usando uma gaze da mesma solução usada na limpeza
(NaCl a 0,9%) nas feridas controle e de gaze embebida em óleo de semente de girassol nas
feridas em teste. Após cada tratamento, uma bandagem foi colocada mantendo as feridas
fechadas.
4.3. Acompanhamento dos pacientes
4.3.1. Avaliação das funções vitais
Diariamente os animais foram submetidos ao exame clínico onde eram registrados
freqüência cardíaca (FC) e respiratória (FR), temperatura retal (TºC), tempo de preenchimento
capilar (TPC), coloração das mucosas oral, conjuntival e vaginal, motilidade intestinal,
freqüência de defecação e micção, apetite e avaliação da ferida experimentalmente induzida.
4.3.2. Avaliação das feridas experimentalmente induzidas
As feridas metacarpianas e lombares localizadas no lado esquerdo de cada equino
foram destinadas à avaliação macroscópica (observação da presença de edema, hiperemia,
exsudação, tecido de granulação e crostas), à mensuração de área (medidas do maior raio, R, e
do menor raio, r, usando um paquímetro, marca (STARRETT 727 – 6/150) e ao registro
30
fotográfico (usando uma câmera digital, SONY CYBERSHOT 7.2 MEGA PIXELS, a uma
distância de cerca de 30 cm para obtenção de um bom foco, conforme descrito por Magalhães
et al. em 2008). Tais avaliações foram realizadas nos momentos 0 (logo após o procedimento
cirúrgico) e com 3, 7, 14 e 21 dias após.
As medidas obtidas na mensuração foram usadas para estimar a área das feridas
conforme descrito por Prata et al. (1988) e Magalhães et al. (2008), usando a seguinte
equação:
A = π x R x r, onde A representa a área, R representa o eixo maior e r representa o eixo
menor.
O grau de contração das feridas foi calculado por equação proposta por Ramsey et al.
(1995):
Percentagem de contração = 100 x (F
0
– F
A
) / F
0
, onde F
0
representa a área original da
ferida e F
A
representa a área no momento da avaliação.
As lesões metacarpianas e lombares do lado direito de cada equino foram destinadas à
biópsia, realizadas nos momentos 0 (logo após o procedimento cirúrgico) e com 3, 7, 14 e 21
dias após, seguindo procedimento descrito anteriormente. Conforme também já descrito, a
avaliação histológica foi feita sem o conhecimento do tratamento que o animal recebeu. Desta
forma, evita-se a indução de resultados (WENDT, 2005).
Nas lâminas foram analisados a presença de células predominantes na reação
inflamatória (infiltrado de células polimorfonucleares), formação de tecido de granulação
exuberante, neovascularização , necrose e disposição das fibras de colágeno.
4.4. Análise estatística
Os resultados obtidos na avaliação da área das feridas tratadas com o óleo de girassol e
das feridas controle, ambas induzidas experimentalmente da região lombar e na região
metacarpiana dos equinos foram submetidas a análise de variância(ANOVA) e comparação
entre médias pelo teste t, com nível de significância adotado de 5%.
Toda a análise estatística foi realizada usando programa estatístico GRAPHPAD
INSTAT®.
31
5. RESULTADOS
5.1. Avaliação clínica dos equinos
Os resultados obtidos no exame clínico dos equinos usados no presente experimento
estão apresentados individualmente nos apêndices (Apêndices A a F) nos dias
predeterminados para avaliação macroscópica das feridas. É possível observar que todos os
valores referentes à freqüências cardíaca e respiratória, temperatura retal, tempo de
preenchimento capilar e coloração de mucosas mostravam-se dentro dos valores de
normalidade para a espécie (ROSE e HODGSON, 2000).
5.2. Avaliação macroscópica das feridas lombares
Na Tabela 1 estão apresentados os valores médios e desvios-padrão das feridas ao
longo do período experimental, onde é possível observar a redução significativa da área da
ferida para ambos os grupos (p < 0,0001 para as feridas controle e também para o grupo
experimental). Na comparação entre os momentos para os diferentes tratamentos, houve
diferença estatística (p = 0,0216) na área das feridas somente no dia 21 da avaliação, onde é
possível constatar o menor valor para o grupo tratado com óleo de girassol. Nos demais
momentos não houve diferença significativa (p > 0,05). O grau de contração registrado nas
feridas do grupo experimental foi de 90,78% e nas feridas controle foi de 79,27% ao final do
período experimental. A Figura 2 ilustra o evolução da cicatrização em ambos os grupos,
controle e experimental, destacando uma evolução bem parecida, porém com menor redução
de área, conforme supracitado, para o grupo tratado com o óleo de girassol.
32
Tabela 1. Valores médios e desvios-padrão das áreas das feridas lombares tratadas com óleo
de semente de girassol (protocolo experimental) e das feridas controles, ambas
experimentalmente induzidas.
Dia 0 Dia 3 Dia 7 Dia 14 Dia 21
Controles
19,63
±
0,00
a*
16,81
±
2,81
abA
14,96
±
3,46
bA
8,36
±
2,89
cA
4,07
±
1,70
dA
Protocolo
experimental
19,63
±
0,00
a
15,76
±
2,31
bA
12,45
±
3,27
bcA
5,10
±
2,18
dA
1,81
±
1,12
dB
* Letras minúsculas diferentes na mesma linha denotam diferença estatística significativa entre as medias (p <
0,05) obtido pelo teste ANOVA. / Letras maiúsculas diferentes na mesma coluna denotam diferença estatística
significativa entre as medias (p < 0,05) obtido pelo teste-t.
Figura 2. Gráfico comparativo do tempo médio de cicatrização entre feridas lombares tratadas
com óleo de semente de girassol e feridas controles, ambas induzidas experimentalmente em
equinos.
Além da mensuração da área foram avaliados os aspectos macroscópicos das feridas,
apresentados no Quadro 1 e ilustrados na Figura 3. A principal diferença entre os grupos foi
observada no dia 21 de acompanhamento. O grupo tratado com o óleo de girassol revelou
uma cicatrização quase completa da ferida, enquanto que no grupo controle ainda havia a
presença de tecido de granulação.
33
Figura 3. Imagens fotográficas digitais ilustrando o aspecto macroscópico das feridas
lombares tratadas com óleo de semente de girassol (A, B, C, D e E) e feridas controles (F, G,
H, I e J), ambas induzidas experimentalmente em equinos, respectivamente nos dias 0, 3, 7,
14 e 21.
F A
B
G
H
C
D
I
E J
34
Quadro 1. Principais achados macroscópicos encontrados na avaliação clínica das feridas
lombares tratadas com óleo de semente de girassol (protocolo experimental) e feridas
controles, ambas induzidas experimentalmente em equinos, nos momentos antes e com 3, 7,
14 e 21 dias depois.
Momentos Controles Protocolo experimental
Dia 0 Coágulos de sangue
Fibrina
Coágulos de sangue
Fibrina
Dia 3 Secreção serosa Secreção serosa
Dia 7 Secreção serosa
Crostas nas bordas de ferida
Tecido de granulação
Secreção serosa
Crostas nos bordos da lesão
Dia 14 Tecido granulação exuberante
Crostas nas bordas da ferida
Crostas nos bordos de ferida
Dia 21 Tecido de granulação Contração quase completa da
ferida cirúrgica
5.3. Avaliação histológica das feridas lombares
As principais alterações encontradas na avaliação histopatológica das biópsias de pele
das feridas cutâneas experimentalmente induzidas no dorso dos equinos, tanto do grupo
controle quanto do grupo experimental, submetido ao tratamento com óleo de semente de
girassol, estão apresentadas no Quadro 2 e ilustradas nas Figuras 4 a 8.
É possível destacar que as diferenças mais evidentes foram observadas a partir dos
cortes histológicos obtidos no 14º dia de avaliação, onde foi observado em ambos uma fase de
transição tecido de granulação e remodelação, porém uma maior quantidade de
polimorfonucleares e aparecimento de fibras colágenas ainda não organizadas na ferida
controle.
Na avaliação feita no 21
o
dia, a ferida controle apresentava ainda a presença de tecido
de granulação enquanto que as feridas tratadas com óleo de semente de girassol já se
encontravam cicatrizadas, com uma melhor organização das fibras colágenas.
35
Quadro 2. Principais achados histopatológicos encontrados nos cortes histológicos obtidas das
feridas lombares tratadas com óleo de semente de girassol (protocolo experimental) e feridas
controles, ambas induzidas experimentalmente em equinos, nos momentos antes e com 3, 7,
14 e 21 dias depois.
Momentos
Controles Protocolo experimental
Dia 0
Colágeno original
Folículo piloso
Glândulas sebáceas
Colágeno original
Folículo piloso
Glândulas sebáceas
Dia 3 Fase inflamatória da ferida
Necrose celular
Infiltrado de polimorfonucleares
neovascularização
Angiogenese
Necrose celular
Infiltrado de polimorfonucleares
Dia 7 Tecido de granulação
Fase de transição com remodelação
Colágeno frouxo
Células inflamatórias
Neovascularização
Infiltrado de polimorfonucleares
Fase transição com remodelação
Matriz colágena frouxa
Neovascularização
Dia 14 Fibras de colágeno
Tecido de transição com remodelação
Colágeno frouxo
Tecido de remodelação
Poucas células polimorfonucleares
Dia 21 Neovascularização
Polimorfonucleares
Colágeno frouxo
Inicio tecido remodelação(transição)
Fibras colágenas organizadas
Cicatriz
36
Figura 4. Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das biópsias das
feridas lombares tratadas com óleo de semente de girassol (A) e feridas controles (B), ambas
obtidas no dia da indução experimental das mesmas (dia 0), e apresentando as mesmas
características básicas. Presença de folículo piloso (seta verde), glândulas sebáceas (seta azul),
pele integra (seta amarela) e hemácias provenientes do ato cirúrgico (seta vermelha).
(Aumento de 40x)
Figura 5. Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das biópsias das
feridas lombares tratadas com óleo de semente de girassol (A) e feridas controles (B), ambas
obtidas no dia 3 do acompanhamento das mesmas, não demonstrando diferenças entre os
grupos. No destaque, áreas de necrose celular (Aumento de 100 x para A e 40 x para B).
A B
A
B
37
Figura 6. Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das biópsias das
feridas lombares tratadas com óleo de semente de girassol (A) e feridas controles (B), ambas
obtidas no dia 7 do acompanhamento das mesmas. Destacam-se a presença de colágeno
frouxo (seta verde) e tecido de granulação (infiltrado celular) com neovascularização (seta
vermelha) e infiltrado de polimorfonucleares (seta preta). (Aumento de 100x)
Figura 7. Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das biópsias das
feridas lombares tratadas com óleo de semente de girassol (A) e feridas controles (B), ambas
obtidas no dia 14 do acompanhamento das mesmas. Destaca-se a fase de transição entre
granulação e remodelação, porém com predomínio de remodelação (seta verde) no corte do
grupo experimental (A). No corte das feridas controle (B) destaca-se a mesma fase de
transição, porém, com fibras de colágeno ainda frouxas e não organizadas (seta amarela).
(Aumento de 100x)
A
B
A B
38
Figura 8. Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das biópsias das
feridas lombares tratadas com óleo de semente de girassol (A) e feridas controles (B), ambas
obtidas no dia 21 do acompanhamento das mesmas. Destaca-se a fase de remodelação com
colágeno organizado (seta verde) no corte do grupo experimental (A). No corte das feridas
controle destaca-se a fase de remodelação, porém com colágeno ainda frouxo (seta amarela).
(Aumento de 100x)
5.4. Avaliação macroscópica das feridas metacarpianas
Na Tabela 2 estão apresentados os valores médios e desvios-padrão das feridas ao
longo do período experimental, onde é possível observar a redução significativa da área da
ferida para ambos os grupos (p < 0,0001 para as feridas do grupo experimental e p = 0487
para o grupo controle). Na comparação entre os momentos para os diferentes tratamentos, não
houve diferença estatística (p > 0,05) na área das feridas, apesar da tendência a uma menor
contração observado nos valores registrados para o grupo experimental em relação ao grupo
controle no dia 21 de observação. O grau de contração registrado nas feridas do grupo
experimental foi de 47,63% e nas feridas controle foi de 30,21%. A Figura 8 ilustra o avançar
da cicatrização em ambos os grupos, controle e experimental, destacando uma evolução bem
parecida, porém com tendência a menor redução de área, conforme supracitado, para o grupo
tratado com o óleo de girassol.
A B
39
Tabela 2. Valores médios e desvios-padrão das áreas das feridas metacarpianas tratadas com
óleo de semente de girassol (protocolo experimental) e das feridas controles, ambas
experimentalmente induzidas.
Dia 0 Dia 3 Dia 7 Dia 14 Dia 21
Controles
9,07
±
0,00
a*
8,60
±
0,29
abA
8,41
±
2,22
abA
8,23
±
1,76
abA
6,33
±
1,96
bA
Protocolo
experimental
9,07
±
0,00
a
7,90
±
0,83
abA
7,20
±
0,75
bA
6,60
±
0,58
bA
4,75
±
1,31
cA
* Letras minúsculas diferentes na mesma linha denotam diferença estatística significativa entre as medias (p <
0,05) obtido pelo teste ANOVA. / Letras maiúsculas diferentes na mesma coluna denotam diferença estatística
significativa entre as medias (p < 0,05) obtido pelo teste-t.
Figura 9. Gráfico comparativo do tempo médio de cicatrização entre feridas metacarpianas
tratadas com óleo de semente de girassol e feridas controles, ambas induzidas
experimentalmente em equinos.
Analisou-se ainda, as características macroscópicas das feridas da região metacarpiana.
Os principais achados estão apresentados no Quadro 3 e ilustrados na Figura 10, onde se
destaca que a diferença entre os grupos foi observada a partir do 7
o
dia de acompanhamento.
O grupo tratado com o óleo de girassol revelou a tendência a retração da ferida, enquanto que
no grupo controle destacava-se a presença de tecido de granulação exuberante.
40
Quadro 3. Principais achados macroscópicos encontrados na avaliação clínica das feridas
metacarpianas tratadas com óleo de semente de girassol (protocolo experimental) e feridas
controles, ambas induzidas experimentalmente em equinos, nos momentos antes e com 3, 7,
14 e 21 dias depois.
Momentos Controles Protocolo experimental
Dia 0 Coágulos de sangue
Fibrina
Coágulos de sangue
Fibrina
Dia 3 Secreção serosa Secreção serosa
Dia 7 Tecido de granulação exuberante Tecido de granulação
Dia 14 Tecido de granulação exuberante Crostas
Dia 21 Tecido de granulação exuberante Crostas
Retração ferida cirúrgica
Figura 10. Imagens fotográficas digitais ilustrando o aspecto macroscópico das feridas
metacarpianas tratadas com óleo de semente de girassol (A, B, C, D e E) e feridas controles
(F, G, H, I e J), ambas induzidas experimentalmente em equinos, respectivamente nos dias 0,
3, 7, 14 e 21.
C
D
E
H I
J F
A
G
B
41
5.5. Avaliação microscópica das feridas metacarpianas
As principais alterações encontradas na avaliação histopatológica das biópsias de pele
das feridas cutâneas experimentalmente induzidas na face lateral da região metacárpica dos
equinos, tanto do grupo controle quanto do grupo experimental submetido ao tratamento com
óleo de girassol, estão apresentadas no Quadro 4 e ilustradas nas Figuras 11 a 15. É possível
destacar que as principais diferenças foram observadas a partir dos cortes histológicos obtidos
no 21º dia de avaliação, onde na ferida experimental destaca-se a presença da formação de
colágeno denso com fibras organizadas.
Quadro 4. Principais achados histopatológicos encontrados nos cortes das biópsias obtidas das
feridas metacarpianas tratadas com óleo de semente de girassol (protocolo experimental) e
feridas controles, ambas induzidas experimentalmente em equinos, nos momentos antes e com
3, 7, 14 e 21 dias depois.
Momentos Controles Protocolo experimental
Dia 0 Folículo piloso
Presenças de hemácias
Folículo piloso
Dia 3 Neovascularização
Polimorfonucleares
Necrose celular
Fase inflamatória da úlcera
Tecido de granulação
Necrose celular
Infiltrado inflamatório
Dia 7 Angiogenese e polimorfonucleares
Inicio da fase de remodelação com
colágeno desorganizado
Angiogenese/
polimorfonucleares
Colágeno frouxo
Dia 14 Neovascularização / polimorfonucleraes
Inicio formação do colágeno
Colágeno denso organizado
Fase final da granulação
Dia 21 Colágeno frouxo
Neovascularização / polimorfonucleares
Colágeno organizado
42
Figura 11. Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das biópsias das
feridas metacarpianas tratadas com óleo de semente de girassol (A) e feridas controles (B),
ambas obtidas no dia da indução experimental das mesmas (dia 0), não demonstrando
diferenças entre os grupos. Destaca-se a presença de pele normal (seta verde), com glândulas
sebáceas (seta vermelha), folículo piloso (seta azul) e hemácias provenientes do procedimento
(seta preta). (Aumento de 40x).
Figura 12. Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das biópsias das
feridas metacarpianas tratadas com óleo de semente de girassol (A) e feridas controles (B),
ambas obtidas no dia 3 do acompanhamento das mesmas, não demonstrando diferenças entre
os grupos. Destaca-se a fase inflamatória, com presença de necrose celular (seta verde) e
infiltrado de polimorfonucleares (seta amarela). (Aumento de 100x)
A
B
A B
43
Figura 13. Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das biópsias das
feridas metacarpianas tratadas com óleo de semente de girassol (A) e feridas controles (B),
ambas obtidas no dia 7 do acompanhamento das mesmas, não demonstrando diferenças entre
os grupos. Destaca-se a fase de tecido de granulação, com presença de polimorfonucleares
(seta verde) e neovascularização abundante (seta amarela). (Aumento de 100x)
Figura 14. Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das biópsias das
feridas metacarpianas tratadas com óleo de semente de girassol (A) e feridas controles (B),
ambas obtidas no dia 14 do acompanhamento das mesmas, não demonstrando diferenças entre
os grupos. Destaca-se a fase de transição com término da granulação e início da fase de
remodelação, porém ainda com colágeno frouxo (seta verde). (Aumento de 100x)
A
B
B A
44
Figura 15. Imagens fotográficas digitais ilustrando os cortes histológicos das biópsias das
feridas metacarpianas tratadas com óleo de semente de girassol (A) e feridas controles (B),
ambas obtidas no dia 21 do acompanhamento das mesmas. Destaca-se no corte histológico
referente ao grupo experimental (A) a fase exclusivamente de remodelação, presença de
grande quantidade de fibras colágenas organizadas e colágeno denso (seta verde). No corte
histológico do grupo controle, destacam-se a fase de transição (granulação x remodelação),
ainda com grande presença de células polimorfonucleares (seta preta) e vasos sanguíneos
(seta vermelha). (Aumento de 100x)
A B
45
6. DISCUSSÃO
Para melhor interpretação dos possíveis efeitos do uso tópico do óleo de semente de
girassol sobre a área de retração das feridas cutâneas experimentalmente induzidas em
equinos, foi necessária a padronização das mesmas, tanto as lombares quanto na região
metacarpiana. Para tal, o tamanho das feridas foi previamente estabelecido, em conduta
semelhante a realizada por Martins et al. (2003) e Souza et al. (2006), que trabalharam com
equinos, tendo ainda Marques et al. (2004), Wendt (2005) e Magalhães et al. (2008), que
avaliaram feridas em outras espécies tais como cordeiros e coelhos, respectivamente. Por
nossa decisão as feridas metacarpianas foram menores do que as feridas lombares, em virtude
da menos área disponível para execução das mesmas. Todas as comparações entre feridas
metacarpianas e lombares foram feitas de forma qualitativa. A profundidade da lesão criada,
envolvendo pele e tecido celular subcutâneo, também foi semelhante à descrita por Rocha et
al. (2004) e Magalhães et al. (2008), que utilizaram ratos no seu experimento, Marques et al.
(2004), utilizando cordeiros, Souza et al.(2006) e Martins et al. (2003), estudando equinos.
De uma forma geral, a ferida realizada na região lombar já seria suficiente para a
avaliação dos efeitos cicatrizantes do uso tópico do óleo de girassol como citado por Marques
et al. (2004), porém, como já supracitado na revisão de literatura e que será melhor discutido a
seguir, os equinos apresentam características únicas na cicatrização de lesões nas regiões
distais dos membros, alem do fato estas serem relativamente freqüentes na rotina clínica. Em
conseqüência disto, também foi avaliado na presente pesquisa o efeito do óleo de girassol
sobre feridas metacarpianas, seguindo protocolo descrito por Souza et al.(2006).
Segundo também citam Martins et al. (2003) e Souza et al. (2006), um lado do equino
foi usado para avaliação macroscópica e o outro para a coleta de biópsias para evitar que tais
coletas influenciassem na mensuração da área e cálculo posterior do grau de retração da
ferida, tanto metacarpiana quanto lombar. Vale ressaltar que conforme descreve Wendt
(2005), o patologista não teve nenhum acesso ao tipo de tratamento e local da ferida, tornando
o ensaio cego e aumentando a confiabilidade dos resultados.
Visando minimizar o edema e a possível dor provenientes do procedimento cirúrgico
eliminando possíveis interferências no processo de cicatrização, foi feita a utilização de
antiinflamatório não esteroidal (Equipalazone®, princípio ativo fenilbutazona), conforme
recomendação de todos os livros textos envolvendo clínica de equinos que descrevem
protocolos pós cirúrgico envolvendo antiinflamatório não esteroidal. Tal procedimento
46
também foi realizado por Souza et al. (2006/comunicação pessoal). Por ter sido aplicado por
via parenteral teve influência tanto nas feridas controle quanto nas experimentais. Os animais
usados não demonstraram dor, fato comprovado nas mensurações das freqüências cardíaca e
respiratória, as quais não apresentaram alterações significativas (Apêndices A a F), pois na
presença de dor, por ação adrenérgica, seria possível detectar um aumento desses parâmetros
clínicos. Importante também ressaltar que nem as feridas lombares nem as feridas
metacarpianas, experimental e controle, apresentaram edema ao seu redor.
O óleo de semente de girassol tem sido amplamente estudado na cicatrização de feridas
em animais, conforme descrições de Linn e Shephed. (1936), Vantorp (1974), Marques et al.
(2004) e Magalhães et al. (2008). Na medicina humana, é amplamente utilizado em escaras de
decúbito, sendo o princípio ativo de uma medicação conhecida como Dersani® (composição:
ácido caprilico, ácido cáprico, ácido láurico, lecitina de soja, vitaminas A e E, ácido capróico
e óleo de girassol). Os resultados são satisfatórios e atribuídos a presença do ácido linoléico
(presente no óleo de girassol), composto esse que não é produzido pelo organismo animal,
tendo-se que ser adicionado a dieta (MARQUES et al., 2004). O ácido linoléico age na
proliferação celular e processo inflamatório, estimulando a quimiotaxia de neutrófilos
(WENDT, 2005), além de apresentar efeito antibacteriano (MARQUES et al., 2004;
MAGALHÃES et al., 2008). Ainda, Glasgow e Eling (1990) citam que o ácido linoléico
estimula alguns fatores de crescimento celular. Porém, os resultados satisfatórios da presente
pesquisa foram atribuídos, de uma forma geral, ao uso do óleo de girassol; para precisar qual
de seus constituintes seria o maior responsável pelos efeitos observados, seria necessário uma
nova pesquisa estudando individualmente a ação individual de cada um deles.
Marques et al. (2004) e Wendt (2005) testaram o óleo de girassol em feridas de,
respectivamente, cordeiros e coelhos. Marques et al. (2004) descreverem uma aceleração no
processo de cicatrização com redução da área de ferida e contração mais rápida dos bordos,
bem como o desenvolvimento do tecido de granulação de uma forma mais precoce nas feridas
tratadas quando comparada às controles. Segundo estes mesmos autores, o grau de contração
foi de 93,02% para as feridas controles e de 97,74% para as feridas tratadas com o óleo após
21 dias de terapia. Tais achados foram semelhantes aos obtidos na presente pesquisa quando
comparado aos valores das feridas lombares tratadas (90,78%) e superiores aos encontrados
para as feridas lombares usadas como controle (79,27%), também após 21 dias de tratamento.
Entretanto, ambos os resultados supracitados foram superiores aos observados nas feridas
induzidas no metacarpo da presente pesquisa (30,21% para o controle e 47,63% para a
47
experimental). Isto se deve provavelmente ao processo inflamatório diferenciado da espécie
eqüina, principalmente relacionada à feridas distais em membros, que será discutida a seguir.
A total cicatrização das feridas em coelhos tratadas com o óleo de semente de girassol
foi observada com 18,9 dias, segundo Wendt (2005). Apesar deste resultado favorável, o autor
não detectou diferença na velocidade cicatricial, diferente de Marques et al. (2004) e da
presente pesquisa e concordando com Magalhães et al. (2008), que descreveram que o tempo
de cicatrização em ratos foi de 12 dias, com grau de contração para as feridas controle,
tratadas e referencia de, respectivamente, 77,95%, 83,49% e 78,40%, sem diferença
estatística. O tempo de cicatrização descrito por Wendt (2005) foi próximo ao encontrado na
presente pesquisa na avaliação das feridas lombares, que levaram cerca de 21 dias para
cicatrizar e bem abaixo do tempo que levou as feridas metacarpianas (31 dias). É possível
sugerir que isto reflete a dificuldade do óleo, em sua apresentação líquida, de permanecer em
concentrações terapêuticas no local da lesão induzida no metacarpo e da própria característica
da espécie eqüina relacionada à dificuldade de cicatrização de membros. Vale ressaltar que
em ambas as pesquisas as feridas foram mantidas fechadas para permitir que o fármaco
ficasse em maior contato com as lesões, além de proteger as mesmas de agentes externos e
manter a umidade (HENDRICKSON, 2006).
O uso de fitoterápicos em equinos, principalmente referente ao uso em feridas cutâneas,
é amplamente realizado, porém, em sua maioria, seguindo crenças populares, ou seja, sem a
comprovação científica dos efeitos benéficos dos referidos medicamentos. Algumas podem
ser irritantes ou estimulam o tecido de granulação exuberante podendo prejudicar a vida
atlética desse animal (OLIVEIRA, 1992). Em relação aos efeitos do uso do óleo de semente
de girassol em feridas de equinos, ainda não existem descrições na literatura especializada.
Porém, existem outras descrições na literatura nacional, tais como Martins et al. (2003),
avaliando barbatimão (Stryphnodendron barbatiman), calêndula (Calendula officinalis) e
confrey (Symphytum officinale), e Souza et al. (2006), avaliando Triticum vulgare, ambos
testando em feridas cutâneas. Souza et al. (2006) descreveram um tempo de cicatrização para
feridas lombares de aproximadamente 35 dias e para feridas metacarpianas de 34 dias. Já
Martins et al. (2003) citaram aproximadamente 21 dias para barbatimão e confrei e 26 dias
para calêndula induzirem a retração das feridas lombares para uma área final de 0,5 mm². Tais
valores foram próximos aos observados na presente pesquisa (21 dias para as feridas lombares
e 31 dias para as feridas metacarpianas), o que corrobora com a afirmação de que o óleo de
girassol beneficiou o processo de cicatrização, da mesma forma que os demais fitoterápicos
citados. Outra vantagem do uso destes medicamentos é o baixo custo e fácil acesso, como
48
descreve Wendt (2005). Os achados histopatológicos encontrados na presente pesquisa foram
semelhantes aos descritos por Souza et al. (2006), principalmente relacionada à fase
inflamatória, com aumento do número de células polimorfonucleares e angiogênese, e à fase
final, com maior alinhamento das fibras colágenas nas feridas tratadas.
No processo de cicatrização em equinos, temos uma grande diferença de evolução
relacionada à localização das mesmas, segundo Jacobs et al. (1984) e Knottenbelt (1997). Este
fato também foi comprovado no presente estudo, onde, de uma forma geral, as feridas
lombares cicatrizaram mais rapidamente do que as feridas metacarpianas, com uma contração
centrípeta maior, um tecido de granulação mais delgado e uma formação de crostas mais
rápida. Macroscopicamente foi observado que nas feridas dos membros ocorreu a formação
de um tecido de granulação mais exuberante e que permaneceu por um tempo mais
prolongado, determinando um retardo na cicatrização (31 dias). Nas feridas lombares, o
resultado foi mais satisfatório, com as feridas tratadas completando sua cicatrização em torno
dos 21 dias, valor próximo ao citado por Wendt (2005). Esta diferença de tempo na
cicatrização de feridas lombares / metacarpianas, também foram descritas por Sousa et al.
(2006), conforme supracitado. Além disto, as feridas tratadas com o óleo apresentaram melhor
aspecto na inspeção destacando a presença de secreção serosa úmida, que acelera a migração
de polimorfonucleares, conforme cita Kent Lloyd (1992). O exame microscópico confirmou
tal achado, onde foi possível notar, principalmente nos primeiro dias de lesão (até o 7º dia) um
elevado numero do referido grupo de células, conforme descreve Wilmink (2004) na fase tida
como inicial da cicatrização. Nesta fase, a chamada inflamatória, estas células são
responsáveis pela fagocitose dos microorganismos e remoção dos restos celulares, facilitando
o crescimento do tecido de granulação a partir das bordas (STASHAK, 1994). Ainda sob o
aspecto macroscópico das feridas foi observado um aparecimento precoce do tecido de
granulação exuberante nas feridas tratadas, tanto as metacarpianas como as feridas lombares,
quando comparadas com as feridas controle. O tecido de granulação se desenvolveu mais
rápido nas feridas tratadas comparada com as feridas controle, demonstrando que
possivelmente o uso tópico do óleo acelerou o processo de cicatrização por promover a
aceleração da formação do tecido de granulação e epitelização, corroborando com Rocha et al.
(2004).
Histologicamente no presente estudo, foi possível destacar que as principais diferenças
relacionadas ao tratamento testado para as feridas lombares foram observadas a partir dos
cortes histológicos obtidos no 14º dia de avaliação, enquanto que para as feridas
metacarpianas foi possível destacar que as principais diferenças foram observadas mais
49
tardiamente, a partir dos cortes histológicos obtidos no 21º dia de avaliação. Reforçando o que
foi já citado anteriormente, o óleo foi usado em apresentação liquida e isto pode ter
prejudicado sua ação nas feridas metacapianas, o que poderia justificar o maior retardo no
tempo de cicatrização. Segundo Stashak (1991), outro fator que possivelmente poderia
retardar este tempo de cicatrização é o fato de que o processo inflamatório nos membros ser
diferenciado em equinos, com a taxa de contração da ferida variando conforme o local da
lesão. Lesões de pele de 400 cm² no flanco contraem em média 0,8 a 1 mm/dia, enquanto
feridas similares nas partes distais dos membros contraem em média 0,2 mm/dia. Wilmink
(2004) relata que a contração da ferida é feita através da ação dos fibroblastos diferenciados
(miofibroblastos) no tecido de granulação, ocorrendo de maneira mais pronunciada nas
feridas do corpo do que dos membros.
50
7. CONCLUSÕES
A análise dos resultados obtidos nesta pesquisa nos permitiram concluir que:
1- O uso tópico do óleo de semente de girassol mostrou-se eficiente no processo de
cicatrização das feridas cutâneas experimentalmente induzidas nos equinos usados;
2- A resposta cicatricial satisfatória ao tratamento testado foi maior nas feridas lombares
do que nas feridas metacarpianas.
51
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57
APÊNDICES
Apêndice A: Avaliação clínica do Equino 1 nos momentos antes e com 3, 7, 14 e 21 dias
depois a indução experimental de feridas na região do dorso e metacarpiana.
Dia 0 Dia 3 Dia 7 Dia 14 Dia 21
Freqüência cardíaca (bpm) 24
32
28
32
36
Freqüência respiratória (mpm) 16
18
14
16
18
Temperatura corpórea (
o
C) 38,2 37,8 38,4 38,4 38,6
Tempo de preenchimento
capilar (segundos)
2 2 2 2 2
Coloração de mucosas Rosa claro Rosa claro Rosa claro Rosa claro Rosa claro
Motilidade intestinal Normal Normal Normal Normal Normal
Apetite Normal Normal Normal Normal Normal
Defecação / micção Normal Normal Normal Normal Normal
58
Apêndice B: Avaliação clínica do Equino 2 nos momentos antes e com 3, 7, 14 e 21 dias
depois a indução experimental de feridas na região do dorso e metacarpiana.
Dia 0 Dia 3 Dia 7 Dia 14 Dia 21
Freqüência cardíaca (bpm) 32 28
36
28
28
Freqüência respiratória (mpm) 16 14
18
16
14
Temperatura corpórea (
o
C) 38,4 38,2 38,2 38,2 38,3
Tempo de preenchimento
capilar (segundos)
2 2 2 2 2
Coloração de mucosas Rosa claro Rosa claro Rosa claro Rosa claro Rosa claro
Motilidade intestinal Normal Normal Normal Normal Normal
Apetite Normal Normal Normal Normal Normal
Defecação / micção Normal Normal Normal Normal Normal
59
Apêndice C: Avaliação clínica do Equino 3 nos momentos antes e com 3, 7, 14 e 21 dias
depois a indução experimental de feridas na região do dorso e metacarpiana.
Dia 0 Dia 3 Dia 7 Dia 14 Dia 21
Freqüência cardíaca (bpm) 28 28
28
32
32
Freqüência respiratória (mpm) 12 16
14
18
18
Temperatura corpórea (
o
C) 38,2 38,4 38,0 38,2 38,3
Tempo de preenchimento
capilar (segundos)
2 2 2 2 2
Coloração de mucosas Rosa claro Rosa claro Rosa claro Rosa claro Rosa claro
Motilidade intestinal Normal Normal Normal Normal Normal
Apetite Normal Normal Normal Normal Normal
Defecação / micção Normal Normal Normal Normal Normal
60
Apêndice D: Avaliação clínica do Equino 4 nos momentos antes e com 3, 7, 14 e 21 dias
depois a indução experimental de feridas na região do dorso e metacarpiana.
Dia 0 Dia 3 Dia 7 Dia 14 Dia 21
Freqüência cardíaca (bpm) 32 32
34
32
34
Freqüência respiratória (mpm) 18 18
20
20
18
Temperatura corpórea (
o
C) 38,6 38,5 38,2 38,2 38,3
Tempo de preenchimento
capilar (segundos)
2 2 2 2 2
Coloração de mucosas Rosa claro Rosa claro
Rosa claro Rosa claro Rosa claro
Motilidade intestinal Normal Normal Normal Normal Normal
Apetite Normal Normal Normal Normal Normal
Defecação / micção Normal Normal Normal Normal Normal
61
Apêndice E: Avaliação clínica do Equino 5 nos momentos antes e com 3, 7, 14 e 21 dias
depois a indução experimental de feridas na região do dorso e metacarpiana.
Dia 0 Dia 3 Dia 7 Dia 14 Dia 21
Freqüência cardíaca (bpm) 28 28
32
32
30
Freqüência respiratória (mpm) 14 14
18
18
16
Temperatura corpórea (
o
C) 38,3 37,8 38,2 38,2 38,0
Tempo de preenchimento
capilar (segundos)
2 2 2 2 2
Coloração de mucosas Rosa claro Rosa claro Rosa claro Rosa claro Rosa claro
Motilidade intestinal Normal Normal Normal Normal Normal
Apetite Normal Normal Normal Normal Normal
Defecação / micção Normal Normal Normal Normal Normal
62
Apêndice F: Avaliação clínica do Equino 6 nos momentos antes e com 3, 7, 14 e 21 dias
depois a indução experimental de feridas na região do dorso e metacarpiana.
Dia 0 Dia 3 Dia 7 Dia 14 Dia 21
Freqüência cardíaca (bpm) 32 32
32
30
32
Freqüência respiratória (mpm) 18 16
18
16
18
Temperatura corpórea (
o
C) 37,8 37,8 37,5 38,2 38,4
Tempo de preenchimento
capilar (segundos)
2 2 2 2 2
Coloração de mucosas Rosa claro Rosa claro Rosa claro Rosa claro Rosa claro
Motilidade intestinal Normal Normal Normal Normal Normal
Apetite Normal Normal Normal Normal Normal
Defecação / micção Normal Normal Normal Normal Normal
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