( PDF ) Levantamento florístico e colonização micorrízica em dois remanescentes de cerrado típico e em plantas ruderais no município de Três Lagoas-MS.

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Campus de Ilha Solteira

PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM AGRONOMIA

“Levantamento Florístico e Colonização Micorrízica em dois

Remanescentes de Cerrado Típico e em Plantas Ruderais no

Município de Três Lagoas-MS”

MARIA JOSÉ NETO

Orientador: Profa. Dra. Ana Maria Rodrigues Cassiolato

Tese apresentada à Faculdade de Engenharia -

UNESP – Campus de Ilha Solteira, para

obtenção do título de Doutor em Agronomia.

Especialidade: Sistemas de Produção

Ilha Solteira – SP

agosto/2010

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FICHA CATALOGRÁFICA

Elaborada pela Seção Técnica de Aquisição e Tratamento da Informação

Serviço Técnico de Biblioteca e Documentação da UNESP - Ilha Solteira.

Neto, Maria José.

N469L Levantamento florístico e colonização micorrízica em dois remanescentes

de cerrado típico e em plantas ruderais no município de Três Lagoas-MS /

Maria José Neto. -- Ilha Solteira : [s.n.], 2010

145 f. : il.

Tese (doutorado) - Universidade Estadual Paulista. Faculdade de

Engenharia de Ilha Solteira. Especialidade: Sistemas de Produção, 2010

Orientador: Ana Maria Rodrigues Cassiolato

1. Vegetação urbana. 2. Origem geográfica. 3. Plantas invasoras.

4. Flora dos cerrados. 5. Micorriza.

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A Dra. Ana Maria Rodrigues Cassiolato,

DEDICO.

Ao meu irmão Dr. Aparecido José Neto, que era um homem da lei, mas que amava a terra,

OFEREÇO.

“in memorian”

“A terra é a mãe de todos nós – plantas, animais e homens. O

fósforo e o cálcio da terra constroem nossos esqueletos e sistema

nervoso. Tudo o que os nossos corpos necessitam, exceto ar e sol,

vem da terra”.

(Henry Wallace, 1938)

Agradecimentos

Agradeço à minha Instituição, a Universidade Federal de Mato Grosso do Sul pela liberação,

e, principalmente, à Pró-Reitoria de Pesquisa e de Pós-graduação e o Departamento de

Enfermagem e Biotecnologia pelo apoio técnico-administrativo durante o período em que

permaneci afastada.

Agradeço à Universidade Estadual Paulista – Campus de Ilha Solteira, que me aceitou como

discente e possibilitou a aspiração do título de doutor e, principalmente, a Doutora Ana

Maria Rodrigues Cassiolato que encarou a árdua tarefa de me orientar.

Agradeço à Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior-CAPES, pelo

auxílio concedido.

Agradeço ao Exército Brasileiro, principalmente a 2ª Companhia de Infantaria do Exército

de Três Lagoas – MS, por permitir minha entrada em sua reserva estratégica e realizar uma

parte de minha pesquisa.

Agradeço às “irmãs” de Ciência, Márcia Helena Scabora e Adriana Avelino Santos, pela

ajuda no laboratório de Microbiologia.

Agradeço aos funcionários da UFMS, Adalto Wagner Stherrutes Martins e Rony Carlos

Barcelos Blini, pela ajuda durante as pesquisas, principalmente quando as observações eram

no Parque das Capivaras, e a Natália Tano Portela e Tatiane Cristina de Oliveira Lopes

pelas dicas valiosas.

Agradeço ao técnico em informática Juliano Ferreira, pela colaboração.

Agradeço à minha amiga Helena de Cássia Brassaloti Otsubo, pelo apoio logístico e moral.

Enfim, agradeço a todos que contribuíram de alguma forma para que esse trabalho fosse

concluído.

Levantamento florístico e colonização micorrízica em dois remanescentes de Cerrado

típico e em plantas ruderais no Município de Três Lagoas-MS.

RESUMO GERAL: Este trabalho foi realizado em dois remanescentes de Cerrado sentido

restrito conhecidos por Reserva do Exército e Parque Municipal Capivaras; e numa área

urbanizada denominada Vila Piloto, localizados no Município de Três Lagoas - MS. Nesta

última foi realizado o levantamento de plantas ruderais. Nas três áreas fez-se o levantamento

da diversidade florística e coletou-se amostras de plantas em fase jovem para verificação de

colonização micorrízica arbuscular. Amostras compostas de solo também foram coletadas

para contagem de esporos e análise das características químicas do solo. A área de Reserva do

Exército mostrou um total de 397 espécies, distribuídas em 241 gêneros e 70 famílias. Das 44

espécies submetidas à análise de colonização micorrízica, 17 tiveram muito alta, 18 alta, oito

baixa e uma ausente. O Parque Capivaras exibiu 449 espécies, distribuídas em 277 gêneros e

96 famílias. Das 44 espécies submetidas à análise de colonização micorrízica, 22 tiveram

muito alta, 15 alta, uma baixa e seis ausente. Para a Vila Piloto foram identificadas 344

espécies distribuídas em 201 gêneros e 61 famílias, três espécimes determinados apenas em

nível de gênero, das 344 espécies 281 são nativas do Brasil e 76 são típicas de cerrado ou

cerradão. Das 50 espécies de plantas ruderais escolhidas para verificação da colonização

micorrízica, 27 exibiram colonização muito alta, três alta, duas média, onze baixa e sete

espécies não apresentaram colonização micorrízica. Os solos das áreas estudadas se

apresentam com teores médios para alumínio e matéria orgânica. A média de esporos por

100g de solos foi de 53 para o Exército e 48 para o Parque Capivaras, permitindo sugerir que

as áreas estão em equilíbrio. Para a Vila Piloto os resultados da amostragem do solo para os

dois pontos coletados revelaram uma fertilidade que pode ser considerada mais alta que os de

Cerrado típico e que a média do número de esporos de FMA foi 152 por 100 g de solo

-1

seco,

não podendo o mesmo ser considerado degradado.

Palavras-chaves: Diversidade florística. Vegetação urbana. Origem geográfica. Plantas

invasoras. Cerrado. Micorrizas arbusculares.

Floristic survey and Mychorhizal colonization in two typical Cerrado remnants and in

ruderal plants in Três Lagoas-MS County

GENERAL SUMMARY: This research was accomplished in two restricted sense cerrado

remnants, one of them known as the Military Reserve and the other the Municipal Park of

Capivaras. The other area was in an urbanized region named Vila Piloto, located in Três

Lagoas - MS County, where a floristic survey of ruderal plants was made. In all three areas, a

survey of floristic biodiversity was done and samples of young plants were collected to verify

arbuscular mychorhizal colonization. Soil samples were also taken for counting spores and for

analyzing its chemical characteristics. The Military Reserve displayed a total of 397 species,

distributed in 241 genera and 70 families. Of the 44 species submitted to mychorrhizal

colonization analyses, 17 were very high, 18 high, eight low and one absent. The Capivaras

Park displayed 449 species, distributed in 277 genera and 96 families. Of the 44 species

submitted to the mychorhizal colonization analysis, 22 had very high, 15 high, one had low

and six had no colonization. For Vila Piloto, 344 species were identified and distributed in

201 genera and 61 families, and three specimens determined only in the genus level. Of the

344 species, 281 are natives to Brazil and 76 are typical of Cerrado or Cerradão. Fifty species

from ruderal plants were chosen for verification of the mychorhizal colonization, of which 27

species displayed very high colonization, three high, two medium, eleven low and seven

species did not present mychorhizal colonization. The soil of the studied area has medium

content for aluminum and organic material. The average number of spores per 100g of soil

was 53 for the Reserve and 48 for the Park, suggesting that the areas were in equilibrium. The

results from Vila Piloto soil samples collected from two points revealed a fertility that can be

considered higher than the typical Cerrado and an average number of FMA spores of 152 per

100g of dry soil, which indicates that the soil cannot be considered degraded.

Key words: Floristic diversity. Urban vegetation. Geographic origin. Invasive plants.

Cerrado. Arbuscular micorrizas.

ÍNDICE DE TABELAS E FIGURAS

CAPÍTULO 1 ................................................................................................................. página

Tabela 1. Listagem das famílias e espécies das plantas reconhecidas, hábito e potencial

agronômico das mesmas, da área do Exército .......................................................................041

Tabela 2. Listagem das famílias e espécies das plantas reconhecidas, fitofisionomia em que

são encontradas, hábito e potencial agronômico das mesmas, da área do Parque Capivaras 054

Tabela 3. Espécies coletadas na área do Exército, para verificação de colonização micorrízica.

Famílias e espécies, nomes populares, porcentagem e índice de colonização observadas ...069

Tabela 4. Espécies coletadas no Parque capivaras, para verificação de colonização

micorrízica. Famílias e espécies, nomes populares, porcentagem e índice de colonização

observadas .............................................................................................................................071

Tabela 5. Características químicas e número de esporos de FMA do solo do Exército e do

Parque capivaras ....................................................................................................................075

Figura 1. Mapa de localização e imagem de satélite das três área sob estudo ......................073

Figura 2. Fotografia representativa da área da Reserva do Exército, Cerrado Sentido Restrito-

Cerrado Típico .......................................................................................................................074

Figura 3. Fotografias representativas da área do Parque Capivaras, Cerrado Sentido Restrito-

Cerrado Denso e Veredas ......................................................................................................074

CAPÍTULO 2 ................................................................................................................. Página

Tabela 1. Listagem das famílias e espécies de plantas identificadas, nomes populares e origem

geográfica ..............................................................................................................................114

Tabela 2. Distribuição do número de espécies e porcentagem quanto a origem geográfica .125

Tabela 3. Espécies coletadas para verificação de colonização micorrízica. Famílias e espécies,

porcentagem e índice da colonização observadas .................................................................126

Figuras 1-5. Fotomicrografias de colonização micorrízicas em espécies ruderais .........128-132

Tabela 4. Resultados para caracteística química do solo e número de esporos de FMA para

Vila Piloto e seus arredores ...................................................................................................133

Figura 6. Fotos ruderais .........................................................................................................134

SUMÁRIO

Página

INTRODUÇÃO GERAL ......................................................................................................013

REFERÊNCIA ......................................................................................................................014

CAPÍTULO 1

LEVANTAMENTO FLORÍSTICO E COLONIZAÇÃO MICORRÍZICA, EM DOIS

REMANESCENTES DE CERRADO, NO MUNICÍPIO DE TRÊS LAGOAS-MS.

RESUMO ..............................................................................................................................015

SUMMARY ..........................................................................................................................016

1. INTRODUÇÃO .................................................................................................................017

2. REVISÃO DE LITERATURA

2.1. O Cerrado .......................................................................................................................019

2.2. O Cerrado, os problemas da fragmentação e a importância da conservação .................022

2.3. O Cerrado e as Micorrizas Arbusculares ........................................................................024

3. MATERIAL E MÉTODOS

3.1. A área de Reserva do Exército .......................................................................................030

3.2. O Parque Natural Municipal Capivaras ..........................................................................031

3.3.1. Levantamento florístico ...............................................................................................031

3.3.2. Colonização micorrízica ..............................................................................................032

3.3.3. Características químicas e número de esporos de FMA do solo .................................032

4. RESULTADOS E DISCUSSÃO ......................................................................................034

5. CONCLUSÕES E CONSIDERAÇÕES FINAIS .............................................................039

6. ANEXOS DO CAPÍTULO 1 .............................................................................................040

7. REFERÊNCIAS ................................................................................................................076

CAPÍTULO 2

A FLORA RUDERAL DA VILA PILOTO EM TRÊS LAGOAS - MS, BRASIL E SEU

POTENCIAL PARA COLONIZAÇÃO MICORRÍZICA.

RESUMO ..............................................................................................................................093

SUMMARY ..........................................................................................................................094

1. INTRODUÇÃO .................................................................................................................095

2. REVISÃO DE LITERATURA

2.1. Plantas ruderais ...............................................................................................................097

2.2. Plantas ruderais e micorrização ......................................................................................099

3. MATERIAL E MÉTODOS

3.1. Caracterização do Município de Três Lagoas – MS ......................................................102

3.2. Levantamento florístico ..................................................................................................103

3.3. Presença de colonização micorrízica em amostras de plantas ruderais ..........................104

3.3.1. A coleta de plantas ruderais ........................................................................................104

3.3.2. Quantificação da colonização micorrízica ...................................................................104

3.3.3. Característica química do solo e número de esporos de FMA ....................................105

4. RESULTADOS E DISCUSSÃO ......................................................................................107

5. CONCLUSÕES E CONSIDERAÇÕES FINAIS .............................................................112

6. ANEXOS DO CAPÍTULO 2 ...........................................................................................113

7. REFERÊNCIAS ................................................................................................................135

INTRODUÇÃO GERAL

O Cerrado é um dos tipos de vegetação florística com maior diversidade no mundo,

estima-se que existam mais de 10.000 espécies de plantas, das quais metade são endêmicas,

destas, pelo menos 200 apresentam algum valor econômico, seja forrageiro, madeireiro,

medicinal e ornamental. Esta vegetação dá suporte à ocorrência de uma imensa fauna,

também endêmica, principalmente de invertebrados, vertebrados e fungos com especialidade

de hospedeiro, os quais devem ter co-evoluído ao longo de dezenas de milhões de anos. Como

é de amplo conhecimento, a vegetação nativa do cerrado tem sofrido enorme destruição ao

longo dos últimos anos, principalmente devido à expansão da agricultura.

Como um “hotspot” para a conservação em escala global, antes de começar a ser

destruído, o Cerrado brasileiro tinha 204 milhões de hectares, hoje, 57% não existe mais

(MYERS et al., 2000). O problema é ainda maior porque a taxa de devastação da cobertura

vegetal deste bioma continua muito alta. Estima-se que até 2030, o pouco que resta desse

domínio de vegetação pode desaparecer sem ao menos ter sido estudada. Além do que, a

regeneração natural é comprometida pela presença de gramíneas africanas e fogo. Em áreas

fragmentadas e ou antropizadas, a vegetação retirada dá lugar a um outro tipo de vegetação, a

ruderal. Estas plantas, durante o processo evolutivo adaptaram-se aos ambientes humanos,

ocupando beiras de calçadas, terrenos baldios e outros tipos de ambientes urbanos, que são

áreas com grande concentração de nitrogênio; algumas são invasoras, a maioria é empregada

na medicina caseira, outras são tóxicas ou têm propriedades inseticidas, muitas vezes, são

tratadas como invasoras de culturas, mas em muitos casos, a cultura principal é inexistente.

Os microrganismos participam da ciclagem de nutrientes e podem ser utilizados como

bioindicadores para aferição da sustentabilidade dos ecossistemas. Dentre as inúmeras

relações biológicas encontradas no solo destacam-se as simbioses mutualistas entre fungos e

raízes, como os fungos micorrízicos arbusculares denominadas micorrizas, que trazem

benefícios à nutrição das plantas e abrangem cerca de 90% das plantas vasculares.

Este trabalho teve como objetivo conhecer a composição florística de dois

remanescentes de Cerrado e verificar a presença de colonização micorrízica por fungos

micorrízicos arbusculares em plântulas de 44 espécies para cada remascente; quanto à flora

ruderal, caracterizar a composição florística e sua origem e verificar a colonização micorrízica

em 50 espécies de uma área urbana (Vila Piloto e seus arredores) no município de Três

Lagoas-MS; além de estabelecer relações com condições ambientais e sua degradação, com

vistas a ampliar e divulgar o conhecimento sobre a vegetação nativa e introduzida.

REFERÊNCIA

MYERS, N.; MITTERMEIER, R.A.; MITTERMEIER, C.G.; FONSECA, G.A.B.; KENT, J.

Biodiversity hotspots for conservation priorities. Nature, London, v.403, n.6772, p.853-858,

2000.

CAPÍTULO 1:

LEVANTAMENTO FLORÍSTICO E COLONIZAÇÃO

MICORRÍZICA, EM DOIS REMANESCENTES DE CERRADO, NO MUNICÍPIO DE

TRÊS LAGOAS-MS.

RESUMO: Este trabalho foi realizado em dois remanescentes de Cerrado sentido restrito,

conhecidos como Reserva do Exército e Parque Municipal Capivaras, localizados no

Município de Três Lagoas-MS. Para as duas áreas o objetivo foi realizar o levantamento da

diversidade florística, com amostragem de espécies em fase jovem para verificação da

ocorrência de colonização micorrízica arbuscular. A Reserva do Exército exibiu um total de

397 espécies, distribuídas em 239 gêneros e 70 famílias. As famílias com dez ou mais

espécies foram Fabaceae, Asteraceae, Poaceae, Euphorbiaceae, Myrtaceae, Bignoniaceae,

Caesalpiniaceae, Mimosaceae, Malpighiaceae, Rubiaceae, Apocynaceae, Malvaceae e

Annonaceae. Das 397 espécies pelo menos 78% somam ervas e arbustos, aproximadamente

22% são árvores ou arvoretas e mais de 75% apresentam alguma possibilidade de uso

econômico. Das 44 espécies submetidas à análise micorrízica, 17 apresentaram muito alta

colonização, 18 alta, oito baixa e uma ausente. No Parque Municipal Capivaras foram

encontradas 449 espécies, distribuídas em 275 gêneros e 96 famílias, onde aproximadamente

20% são árvores ou arvoretas e 80% somam ervas ou arbustos. Destas, 26,5% se encontram

na parte úmida e 73,5% no restante da área estudada. As famílias com dez ou mais espécies

foram Fabaceae, Cyperaceae, Poaceae, Asteraceae, Euphorbiaceae, Caesalpiniaceae

Melastomataceae, Mimosaceae, Bignoniaceae, Rubiaceae, Malpighiaceae, Apocynaceae e

Malvaceae. Das 44 espécies submetidas à análise micorrízica, 22 apresentaram muito alta

colonização, 15 alta, uma baixa e seis ausente. Os solos das áreas em estudo apresentam

teores médios de alumínio e de matéria orgânica. A média de esporos de fungos micorrízicos

arbusculares por 100 g de solos seco foi de 53 para a área da Reserva do Exército e de 48 para

o Parque Municipal Capivaras, permitindo sugerir que as áreas estão em equilíbrio.

Palavras-chave: Diversidade florística. Cerrado. Micorrizas arbusculares.

CHAPTER 1:

FLORISTIC SURVEY AND MYCHORHIZAL COLONIZATION IN

TWO CERRADO REMNANTS IN TRÊS LAGOAS-MS COUNTY

SUMMARY: This research was accomplished in two restricted sense cerrado remnants

known as Military Reserve and Municipal Capivara Park, located in Três Lagoas-MS County.

In these two areas, the aim was to make floristic diversity survey to verify the occurrence of

arbuscular mychorhizal in samples of young plants species. The Military Reserve displayed a

total of 397 species, distributed in 239 genera and 70 families. The families with ten or more

species were Fabaceae, Asteraceae, Poaceae, Euphorbiaceae, Myrtaceae, Bignoniaceae,

Caesalpiniaceae, Mimosaceae, Malpighiaceae, Rubiaceae, Apocynaceae, Malvaceae and

Annonaceae. Of the 397 species, at least 78% were weeds and shrubs, approximately 22%

were trees or sapling and more than 75% showed some possibility of economic use. Of the 44

species submitted to the mychorhizal analysis, 17 presented a very high colonization, 18 high,

eight low and one absent. The Capivaras Park displayed 449 species, distributed in 275 genera

and 96 families, where around 20% are trees or sapling and 80% sum weeds or shrubs. The

26,5% of these occupies the humid part and 73,5% the rest of the studied area. The families

with ten or more species were Fabaceae, Cyperaceae, Poaceae, Asteraceae, Euphorbiaceae,

Caesalpiniaceae Melastomataceae, Mimosaceae, Bignoniaceae, Rubiaceae, Malpighiaceae,

Apocynaceae and Malvaceae. Of the 44 species submitted to the mychorhizal colonization

analysis, 22 were very high, 15 high, one was low and 6 were absent. The soil of the studied

area has medium content for aluminum and organic material. The average number of spores

per 100g of soil was 53 for the Reserve and 48 for the Park, suggesting that the areas were in

equilibrium.

Key words: Floristic diversity. Cerrado. Arbuscular micorrizas.

1. INTRODUÇÃO

A vegetação do Cerrado, com cerca de 2 milhões de km

no Brasil, corresponde a 23%

da superfície do país e é excedida apenas pela Floresta Amazônica, que cobre cerca de 3,5

milhões de km

do território brasileiro. Todavia, diferentemente da Floresta Amazônica, o

Cerrado é um tipo de vegetação confinado ao Brasil, com apenas poucas extensões que

alcançam os vizinhos Paraguai e Bolívia. Trata-se de uma vegetação savânica muito antiga,

que provavelmente já existia em uma forma prototípica há cerca de 70 ou 80 milhões de anos

antes da separação dos continentes.

No Cerrado, um dos tipos de vegetação florística com maior diversidade no mundo,

estima-se que existam mais de 10.000 espécies de plantas, das quais metade são endêmicas.

Esta riqueza, que só é superada pela Amazônia, apresenta pelo menos 200 espécies com

algum valor econômico (forrageiro, madeireiro, medicinal e ornamental), dá suporte à

ocorrência de uma imensa fauna, também endêmica, principalmente de invertebrados,

vertebrados e fungos com especificidade de hospedeiro, os quais devem ter co-evoluído ao

longo de dezenas de milhões de anos. Em síntese, o Cerrado consiste em um rico bioma

arquetípico, endêmico do Brasil.

Como é de amplo conhecimento, a vegetação nativa do cerrado tem sofrido enorme

destruição ao longo dos últimos anos, principalmente devido à expansão da agricultura

brasileira. As áreas convertidas para uso agrícola têm sido pelo menos duas, ou talvez três,

vezes maiores do que as áreas exploradas da Floresta Amazônica, mas até recentemente o

interesse mundial tem focalizado exclusivamente a conservação deste último bioma e pouca

atenção tem sido dada à dramática situação do bioma vizinho, o Cerrado.

Com o desenvolvimento agrícola acelerado, aspectos técnicos de sustentabilidade de

ecossistemas são muitas vezes ignorados e ocasionam desequilíbrios ecológicos como erosão

do solo, poluição ambiental, redução de mananciais e fragmentação, principalmente a do tipo

antrópica. Áreas contínuas estão cada vez mais restritas, são fragmentadas em partes menores

denominadas remanescentes, os quais geralmente perdem a conectividade entre si e, como

consequência, pode comprometer a integridade biológica, por vezes em velocidade tão

elevada que dificulta estudos em longo prazo.

Campanhas de conscientização conservacionista têm sido eficazes em motivar pessoas

a proteger as florestas, principalmente árvores, mas pouco se fala em proteção de ervas e

arbustos, que muitas vezes são vistos com menor importância e se forem eliminados as

consequências serão menores. Engano, pois para cada espécie de planta arbórea ou arbustiva,

existem três ou mais espécies herbáceo-arbustivas. Muitas frutíferas do Cerrado são

arbustivas e o estrato herbáceo tem fundamental importância na contenção da erosão do solo.

Ademais, o Cerrado pode deter parentes silvestres de plantas cultivadas, daí a importância de

conservar fragmentos deste bioma.

Recuperar um ecossistema é uma denominação que se tem atribuído ao árduo desafio

de, por meio de interferências planejadas, reconstruir a estrutura e criar condições para que

processos ecológicos naturais se estabeleçam. Neste processo, uma relação que se destaca é a

simbiose micorrízica, que ocorre entre fungos simbiotróficos obrigatórios e raízes da maioria

das espécies de plantas terrestres. Esta simbiose proporciona aumento de nutrientes do solo

para as plantas, principalmente de fósforo. Trabalhos vêm focando a importância das

micorrizas para a recuperação de áreas degradadas, mas poucos estudaram a colonização

micorrízica das espécies no seu habitat natural, como os Cerrados.

Pelo exposto, os objetivos do presente trabalho foram: conhecer a diversidade

florística de dois fragmentos preservados de Cerrado, com amostragem de espécies em fase

jovem para verificação da ocorrência de colonização micorrízica arbuscular.

2. REVISÃO DE LITERATURA

2.1. O Cerrado

Em se tratando de divisões fitogeográficas do território brasileiro, elas têm uma longa

história que vem desde Martius (1943) até Rizzini (1997), passando pelos mais renomados

autores. Todas guardam alguma semelhança com a primeira, modificando-se apenas em

alguns detalhes (RIBEIRO; WALTER, 2008). Pelo mapa do Instituto Brasileiro de Geografia

e Estatística- IBGE (2004), seis biomas podem ser verificados: Campos Sulinos, Florestas

Atlântica e de Araucária, Caatinga, Floresta Amazônica, Pantanal e Cerrado. Fatores

climáticos, principalmente, e substrato em menor grau, condicionam a existência de cada um

dos biomas supracitados, também chamados de “províncias vegetacionais” (EITEN, 1993).

Na compreensão de Ab’ Saber (1977), estes espaços geográficos são conhecidos como

Domínios Morfoclimáticos e Fitogeográficos. No espaço do Domínio do Cerrado, nem tudo

que ali se encontra é Bioma de Cerrado; Veredas, Matas Galeria, Matas Mesófilas de

Interflúvio, são alguns exemplos de representantes de outros tipos de Bioma, distintos do de

Cerrado, que ocorrem em meio àquele mesmo espaço (COUTINHO, 2002). Ainda, segundo

Coutinho (2006), escrito na forma Cerrado, significa “cerrado sensu lato”.

O Cerrado, objeto de estudo deste trabalho, caracteriza-se por altitude variando entre

300, 900 até 1600 m e duas estações bem definidas: inverno seco e verão chuvoso, com

temperatura média do mês mais frio, acima de 18 °C (NIMER, 1989); pela média anual

pluviométrica em torno de 1.500 mm (ADÁMOLI et al., 1987), e só ocorre onde o fenômeno

das geadas não se faz presente, ou são leves e de curta duração (EITEN, 1972).

O efeito do clima sobre o cerrado é indireto, por meio de sua ação sobre o solo, pois o

mesmo clima no Brasil Central sustenta a floresta mesofítica de interflúvio, em solos

profundos bem drenados, com pouco alumínio, como sustenta várias densidades de cerrado,

onde o solo é mais pobre, arenosos ou argilosos e com quantidades consideráveis de alumínio

(EITEN, 1993).

Localiza-se essencialmente no Planalto Central do Brasil, ocupando mais de 2.000.000

de extensão, onde predominam os Latossolos (Ab’ SABER, 1983). Abrange os estados

de Goiás, Tocantins, parte dos estados da Bahia, Maranhão, Ceará, Mato Grosso do Sul, Mato

Grosso, Minas Gerais, Rondônia, Piauí e São Paulo, em áreas contínuas. Em manchas,

encontra-se nos Estados de Amapá, Roraima, Amazonas, Pará e em pequenas ilhas no Estado

do Paraná, nestes casos, entremeando-se à Mata Atlântica, Caatinga e Floresta Amazônica.

Os principais tipos fisionômicos encontrados no Cerrado são: as formações florestais

como a Mata Ciliar, a Mata de Galeria, a Mata Seca e o Cerradão onde predominam as

espécies arbóreas com formação de dossel contínuo; as formações savânicas como o Cerrado

sentido restrito, o Parque de Cerrado e o Palmeiral caracterizados pela presença de estratos

arbóreos e arbustivo-herbáceos definidos, onde as árvores são distribuídas aleatoriamente; as

Veredas e, finalmente as formações campestres de Campos Sujo, Limpo e Rupestre

(RIBEIRO; WALTER, 2008; RIBEIRO et al., 1993).

O Cerrado sentido restrito é o tipo de vegetação que se caracteriza pela presença de

árvores baixas, tortuosas, com ramificações irregulares e retorcidas. Os troncos destas plantas,

de modo geral, possuem cascas com cortiça grossa e as gemas apicais de muitas espécies são

protegidas por densa pilosidade. As folhas, em geral, são coriáceas e rígidas. Arbustos e

subarbustos se encontram espalhados, algumas espécies apresentando órgãos subterrâneos

perenes denominados xilopódios, que por ocasião de corte ou queimada, permite a rebrota

(SILVA; NOGUEIRA, 1999). Essas características sugerem adaptação às condições de seca

(RIBEIRO; WALTER, 2008), mas as plantas arbóreas não sofrem restrições hídricas durante

a mesma, pelo menos para os indivíduos de espécies que possuem raízes profundas (FERRI,

1955; GOODLAND; FERRI; 1979). No entanto plantas arbóreas quando jovens têm que

superar o estresse hídrico, semelhante às herbáceas (CARREIRA; ZAIDAN, 2002).

Grande parte deste tipo de vegetação ocorre sobre solos das classes Latossolo

Vermelho e Latossolo Vermelho-Amarelo, os quais geralmente são ácidos, carentes de

fósforo e nitrogênio, com altas taxa de alumínio e baixo teor de matéria orgânica susceptível à

erosão quando a vegetação é retirada (Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária-

EMBRAPA, 1999).

Fatores condicionantes complexos podem dar origem às subdivisões fisionômicas para

o Cerrado sentido restrito, ou seja: o Cerrado Denso com predominância da vegetação arbórea

em 50 a 70 %; o Cerrado Típico com predominância do estrato arbóreo-arbustivo, onde a

cobertura arbórea fica entre 20 a 50 %; o Cerrado Ralo, onde a cobertura arbórea fica entre 5 e

20% e o Cerrado Rupestre que ocorre em ambientes rochosos, com 5 a 20% de cobertura

arbórea e apresenta alguns elementos florísticos presentes no campo rupestre (RIBEIRO;

WALTER, 1998).

A flora do Cerrado é diferenciada dos demais biomas, mas muitas espécies são

compartilhadas (HERINGER et al., 1977: 1977; OLIVEIRA FILHO; FONTES, 2000) e a

riqueza florística é relativamente bem conhecida. Uma listagem pioneira foi elaborada em

1892 por Warming a partir de um estudo na região de Lagoa Santa, Minas Gerais,

posteriormente, outros autores reuniram dados sobre a flora do Cerrado, destacando-se as

tentativas de Rizzini (1963), que apresentou 537 espécies entre árvores e arbustos; Heringer et

al. (1977), com 774 espécies arbustivas e arbóreas; Filgueiras; Pereira (1994), que listaram

2264 espécies vasculares nativas para o Distrito Federal; Castro (1994) compilou 1753

espécies vasculares para o Cerrado lato sensu, excluindo lianas e herbáceas, enquanto Ratter

et al. (1973) produziram listagens para o norte do Mato Grosso. Listagens isoladas, revisões,

catálogos são muitos, mas o maior número de espécies foram compiladas por Mendonça et al.

(2008) que reuniram um total de 12.356 espécies de ocorrência espontânea.

Originalmente o Mato Grosso do Sul possuia vastas extensões de Cerrado que

ocuparam mais da metade de seu território, mas é o Estado com menor índice de coleta por

quilômetro quadrado, ou seja, quando o ideal de coleta deveria estar em torno de uma exsicata

por km

, a realidade é de 0,25 espécimes (PEIXOTO, 2003). Este panorama dificulta o

conhecimento da composição florística. O bioma Cerrado, neste Estado, tem sido alvo de

intensa ação antrópica, o que pode ter resultado em grandes perdas de diversidade biológica,

além de ter fragmentado a paisagem natural. O reduzido número de áreas protegidas do

Cerrado não é suficiente para garantir a conservação adequada de tão importante bioma que,

além de recobrir 23% do território nacional (RIBEIRO; WALTER, 1998), recobre 65% de

Mato Grosso do Sul. Recentemente, Pott et al. (2006) elaboraram uma lista de 1.579 espécies

no Complexo Aporé-Sucuriú e Dourado (2008), em uma etapa preliminar, listou 292 espécies

para o Parque Municipal Capivaras.

Quanto à vegetação arbustivo-arbórea, Ratter et al. (2003) listaram e analisaram 376

áreas e registraram 951 espécies. Levando-se em conta árvores e arbustos grandes, apenas 38

destas foram registradas como ocorrentes em 50% das áreas: Acosmium dasycarpum, Annona

coriacea, Aspidosperma tomentosum, Astronium fraxinifolium, Brosimum gaudichaudii,

Bowdichia virgilioides, Byrsonima coccolobifolia, B. crassa, B. verbascifolia, Caryocar

brasiliense, Casearia sylvestris, Connarus suberosus, Curatella americana, Davilla elliptica,

Diospyrus híspida, Eriotheca gracilipes, Erythroxylum suberosum, Hancornia speciosa,

Himatanthus obovatus, Hymenaea stigonocarpa, Kielmeyera coriacea, Lafoensia pacari,

Machaerium acutifolium, Ouratea hexasperma, Pouteria ramiflora, Plathymenia reticulata,

Qualea grandiflora, Q. multiflora, Q. parviflora, Roupala montana, Salvertia

convallariaeodora, Sclerolobium aureum, Tabebuia aurea, T. ochracea, Tocoyena formosa,

Vataira macrocarpa e Xylopia aromática. Outras espécies também foram citadas com

frequência, na mesma referência.

2.2. O Cerrado, os problemas da fragmentação e a importância da conservação.

Um processo que promova a divisão de uma área relativamente grande em partes

menores denomina-se de fragmentação de habitat. O fragmento resultante é denominado

remanescente (WILCOVE et al., 1986) e a fragmentação pode ter causas antrópicas ou

naturais (AQUINO; MIRANDA, 2008). Levando-se em conta a expansão humana, o tipo de

fragmentação mais frequente e relevante é o de origem antrópica. Quando a fragmentação é

tanta a ponto da conectividade da vegetação ser perdida, a integridade biológica pode ficar

comprometida (NOSS; CSUTI, 1997).

Em se tratando de Cerrado, não se conhece bem o que e quanto pode ser perdido com

a fragmentação antrópica. Em apenas quatro décadas, mais da metade da paisagem natural do

Cerrado já foi modificada (SANO et al., 2001). A taxa da expansão agropecuária nas áreas

nativas de Cerrado é de 3% ao ano (HENRIQUES, 2003). Na previsão de Machado et al.

(2004), em 2030 as áreas nativas de Cerrado podem estar restrita às áreas protegidas. Embora

as áreas objetivo deste trabalho sejam fragmentos antrópicos, é interessante citar que os

fragmentos naturais têm maior possibilidade de apresentar espécies endêmicas, uma vez que o

tempo de isolamento pode ser muito maior (AQUINO; MIRANDA, 2008). As conseqüências

da fragmentação antrópica estão relacionadas com o tamanho do fragmento: fragmentos

grandes podem ter mais espécies arbóreas que os de pequeno ou médio porte; fragmentos

pequenos ainda sofrem influência de fogo, invasão de espécies alóctones, etc. (TURNER,

1996; SCARIOT et al., 2005).

Quando se trata de espécies vegetais raras, que apresentam distribuição restrita, a

eliminação ou diminuição do habitat podem afetar bastante suas chances de sobrevivência,

por exemplo, plantas de ocorrência restritas ao Cerrado; espécies de distribuição mais ampla

podem ter maiores chances (AQUINO; MIRANDA, 2008). Espécies mais comuns e de

distribuição mais ampla, também podem se tornar raras com a diminuição e eliminação de

habitats. O movimento de polinizadores pode ser modificado pelas barreiras e isolamentos

(HOBBIE et al., 1993). Desta forma, o fluxo de pólen e de diásporos pode ser reduzido entre

populações fragmentadas, reduzindo o fluxo gênico, aumentando as chances de deriva

genética e de endogamia (KAGEYAMA et al., 1998).

Quanto mais fragmentada a área, mais facilitada fica a introdução de espécies

alóctones (SAUNDERS et al., 1991). No Cerrado, a presença de gramíneas exóticas pode

representar riscos à biodiversidade local. A presença de Melinis minutiflora pode reduzir a

regeneração arbórea e facilitar as queimadas devido ao acúmulo de combustível

(HOFFMANN et al., 2004). A espécie Brachiaria decumbens também invade o Cerrado,

geralmente pelas bordas e se espalham por grandes extensões (PIVELLO et al., 1999a, b).

A borda é uma área de transição entre unidades de paisagem (METZGER, 2001), pode

ser natural, como limites entre diferentes formações vegetais e pode surgir decorrente de ação

antrópica. A área nuclear do fragmento permanecerá sadia ou representativa, dependendo do

grau do efeito dessa borda (LAURANCE; YESEN, 1991). Segundo diversos autores, a

vegetação responde ao ambiente de borda modulada por mudanças climáticas (LAURANCE

et al., 1998a); com maior número de espécies (GEHLHAUSEN et al., 2000), rápido

recrutamento de plantas adaptadas aos distúrbios (LAURANCE et al., 1998b), invasão de

plantas adaptadas aos distúrbios (BIERREGAARD et al., 1992) e aumento do número de

espécies exóticas (LAURANCE, 1991; BROTHERS; SPINGARN, 1992; FRAVER, 1994).

Vale destacar que os trabalhos sobre efeitos de borda foram realizados em florestas

densas, para o Cerrado pouco se sabe sobre efeitos de borda sobre os organismos (AQUINO;

MIRANDA, 2008). Paralelamente, espécies exóticas de gramíneas, principalmente as de

origem africana, como o capim-gordura, o capim-jaraguá, a braquiária, estão invadindo estas

unidades de conservação e substituindo rapidamente as espécies nativas do seu riquíssimo

estrato herbáceo/subarbustivo. Dentro de alguns anos, ou décadas que seja, estas unidades

transformar-se-ão em verdadeiros pastos de gordura, jaraguá ou braquiária e terão perdido,

assim, toda a sua enorme riqueza de espécies de outrora (PIVELLO et al., 1999a, b).

As plantas de Cerrado dificilmente podem ser conservadas fora de seu habitat natural,

assim como é difícil restaurar essa vegetação onde tenha sido completamente destruída. Por

essa razão, preservar amostras do que existe talvez seja o único caminho para assegurar a

sobrevivência de remanescentes com sua diversidade e fisionomias (DURIGAN et al., 2004).

A substituição de uma vegetação rica em espécies como a do Cerrado, por uma

vegetação graminosa, mais pobre, ou na forma de monocultura, trará grandes alterações

ecológicas, principalmente no funcionamento do sistema. As gramíneas, por apresentarem

sistema radicular pouco profundo, extraem água das camadas mais superficiais do solo, e

tornam-se inativas durante a estação seca e grande parte da biomassa aérea morre e seca. Já as

espécies arbóreas e arbustivas extraem água de grandes profundidades, o que ajuda a manter o

processo de evapotranspiração, mesmo durante os meses de seca. Evidencia-se, desta forma,

alterações substanciais no sistema quando da substituição de uma vegetação pela outra

(GONZALES et al., 2010).

A manutenção de raízes profundas também permite que o Cerrado acumule biomassa e

matéria orgânica no solo. O total de 24 t

-1

ha de raízes, determinado para a vegetação do

Cerrado, é superior ao de muitas florestas tropicais (CASTRO; KAUFFMAN, 1998). A

remoção da vegetação nativa de áreas tropicais resulta em uma diminuição da entrada de

carbono nos solos profundos, via reposição de raízes. Para a Amazônia, estima-se que após a

transformação da floresta em pastagem plantada, cerca de 15% do carbono armazenado no

sistema subterrâneo da floresta esteja sendo gradualmente liberado para a atmosfera na forma

de CO

(NEPSTAD et al., 1994).

As culturas agrícolas das diversas regiões do mundo são, em verdade, plantas

domesticadas a partir de espécies silvestres. Muitas das espécies a partir das quais foram

selecionadas as plantas cultivadas atualmente, bem como suas espécies silvestres afins,

continuam sobrevivendo em condições naturais. Esse agrupamento de espécies silvestres

constitui o que se denomina “parentes silvestre” das plantas cultivadas. O Cerrado detém

plantas conhecidas como parentes silvestres de plantas cultivadas, como Arachis, Manihot e

Passiflora, entre outras (Ministério do Meio Ambiente-MMA, 2006).

2.3. O Cerrado e as micorrizas arbusculares

Em termos de perdas, depois da Mata Atlântica, o Cerrado é o ecossistema brasileiro

que mais foi destruído com a ocupação humana (EMBRAPA, 1999), principalmente devido à

expansão da agricultura brasileira. Contemplando este tipo de vegetação, Durigan et al. (2004)

e Myers et al. (2000) já alertaram o mundo para perdas da biodiversidade. Não bastasse a

destruição, a invasão de gramíneas africanas proporciona uma cobertura que impede o

crescimento e a auto-recuperação das plantas típicas de cerrado, além de, por ocasião da

estiagem, facilitar a propagação do fogo (COUTINHO, 1990). Dentre as espécies de Cerrado

pelo menos 200 espécies têm algum valor econômico, seja forrageiro, madeireiro, medicinal

(RODRIGUES; RODRIGUES, 2001), ornamental (HARLEY; GIULIETTI, 2004) ou

alimentício (SILVA et al., 2001). Fragmentos destas florestas são muito importantes como

reserva de germoplasma das espécies nativas e, onde a sucessão natural não pode ser

estabelecida devido à distância das fontes de propágulos, o plantio sustentável de árvores

nativas pode ser uma alternativa promissora (ZANGARO, 1997), como os obtidos por

Scabora (2007).

As mudanças na vegetação trazem consequências ecológicas e ambientais, as quais

geram ações em diversos setores da sociedade, em busca de alternativas e tecnologias que

promovam a revegetação (CARNEIRO et al., 1996), cujo sucesso vai depender da capacidade

da plântula em capturar os recursos necessários no início de seu desenvolvimento, obter fonte

contínua de nutrientes e possuir vigor necessário para resistir a estresses climáticos (PERRY

et al., 1987). O rápido declínio da fertilidade do solo, com deterioração das propriedades

físicas, químicas e biológicas, tem sido um grande obstáculo para a regeneração natural da

floresta e para os programas de revegetação (BROW; LUGO, 1994). É preciso selecionar

espécies aptas às novas condições edáficas, que sejam capazes de acelerar a estruturação e a

formação dos horizontes mais superficiais do solo (CARPANEZZI et al., 1990), pois além de

servir como suporte físico, o solo garante, por meio do ciclo hidrológico, os processos

biológicos e bioquímicos, o fluxo de água, nutrientes e energia e o estabelecimento de

relações ecológicas diversas, importantes para a biodiversidade da vida macro e microscópica

do ecossistema (SIQUEIRA et al., 1994).

Os organismos do solo interferem em diferentes níveis na formação de agregados do

mesmo, que influenciam por sua vez nas propriedades físicas, químicas e biológicas. Os

microrganismos são os principais agentes da estabilização de agregados do solo, por meio da

deposição de polissacarídeos extracelulares e pela formação de materiais aromáticos húmicos,

degradados, que formam complexos organo-minerais. Em alguns microssítios do solo, a

matéria orgânica pode estar suficientemente protegida da ação de microrganismos, o que pode

levar a uma estabilização dos conteúdos de carbono orgânico e contribuir para a formação e a

estabilização de agregados existentes (ASSAD, 1997).

A associação entre o desenvolvimento vegetal e a atividade microbiana é um fator

importante na recuperação dos solos degradados, pois mesmo quando profundamente

alterados, eles podem manter uma comunidade microbiana ativa (MARTINS et al., 1999). Os

fungos micorrízicos arbusculares (FMA) são predominantes em solos tropicais, podem estar

associados a uma grande variedade de plantas, e contribuem para agregação do solo,

principalmente onde há limitação nutricional (RODGE, 2004).

Os fungos que formam as micorrizas arbusculares integram o filo Glomeromycota

(SCHÜBLER et al., 2001), distribuídos na classe dos Glomeromycetes (REDECKER, 2005).

Todas as espécies de FMA estão compreendidas em três famílias, Acaulosporaceae,

Glomeraceae e Gigasporaceae, todas reunidas em uma única ordem, a Glomerales

(MORTON; BENNY, 1990). Os fungos são membros importantes do sistema solo-planta,

uma vez que a própria diversidade destes está intimamente ligada à diversidade e à

produtividade de comunidades vegetais.

As micorrizas são consideradas fenômenos de ocorrência generalizada, resultantes da

união orgânica entre raízes e o fungo, com dependência fisiológica íntima e recíproca, seguida

pelo crescimento dos simbiontes (SIQUEIRA; FRANCO, 1988). Para compensar a

transferência de nutrientes minerais à planta, os fungos simbiontes recebem carbono da planta

hospedeira para o seu crescimento celular do córtex, região onde ocorre a formação dos

arbúsculos, principal sítio de transferência (GIANINAZZI-PEARSON; GIANINAZZI, 1983).

O carbono passa através da interface fungo-planta, onde os carboidratos, predominantemente

a sacarose, são liberados pelas células do hospedeiro, hidrolisados na interface apoplástica por

invertases, a hexoses, e absorvidas ativamente pelos fungos (SIQUEIRA; FRANCO, 1988). O

conteúdo de fosfolipídios das células das raízes regula a simbiose, via fuga de carbono pela

membrana, para manter a atividade do fungo (GRAHAM; EISSENSTANT, 1994).

Nesta simbiose (SMITH; READ, 1997), a planta supre o fungo com energia para

crescimento e reprodução via fotossintatos, e o fungo provê a planta e o solo com uma gama

de serviços. O principal desses, ou pelo menos o mais evidente até o momento, é realizado

pelo micélio extra-radicular do fungo e consiste na absorção de nutrientes obtidos de áreas

localizadas além da zona de depleção da raiz, em especial fósforo, e translocação e

disponibilização desses nutrientes para células do córtex de raízes de plantas micotróficas

(SOUZA et al., 2008).

Estudos em raízes fossilizadas indicam presença das micorrizas há cerca de 400

milhões de anos, período que coincide com o aparecimento das plantas terrestres. No entanto,

os fungos, como saprofíticos, surgiram há cerca de um bilhão de anos, tiveram longo período

para evoluir estratégias elaboradas para colonizar os tecidos vegetais e estabelecer simbiose

com as plantas (MOREIRA; SIQUEIRA, 2006). As micorrizas estocam carbono no solo,

favorecendo desta forma o sequestro de carbono da atmosfera (RILLIG et al., 2001;

OLSSON; WILLELMSSON, 2000).

As simbioses com os FMA trazem benefícios à comunidade vegetal e ao ambiente,

fornecendo nutrientes e água às plantas, assim como, favorecendo a retenção de umidade, a

agregação e estabilidade dos solos (SYLVIA, 1992; AUGÉ et al., 2001). A importância dos

FMA para recuperação de áreas degradadas e para agricultura sustentável é consenso entre a

comunidade científica, apontada em diversos trabalhos (JASPER, 1994; SOUZA; SILVA,

1996; JEFFRIES, 1997; JEFRIES et al., 2003). O sucesso das interações entre micro e macro

simbiontes, depende da disponibilidade de fósforo, da oferta de carbono e das características

ambientais (BEVER, 2002, 2003; MOREIRA; SIQUEIRA, 2006; BERBARA et al., 2006).

Os agregados de solo têm sua formação favorecida pela presença das micorrizas,

devido a uma substância pegajosa, a glomalina (WRIGHT et al., 1996). Estima-se que

toneladas de fósforo poderiam ser economizadas, na cultura de soja, por exemplo, se

aumentassem em 15% a eficiência de absorção por meio de micorriza arbuscular (LOPES;

SIQUEIRA, 1991). No entanto, existem um número menor de trabalhos abordando a ecologia

e a diversidade das espécies vegetais e fúngicos (HART; KLIRONOMOS, 2002).

Para que ocorra a colonização micorrízica são necessárias três fases: a de crescimento

lento que engloba a germinação dos esporos, o crescimento do tubo germinativo e a

penetração das hifas no córtex da raiz; a de crescimento intensivo, caracterizada pelo amplo

desenvolvimento do micélio externo e intenso dentro da raiz, envolve a epiderme, o córtex e

pode ser intra e extra-celular, nesta fase formam-se hifas internas, vesículas e arbúsculos; e,

finalmente a fase estável, quando a proporção de raízes colonizadas e não colonizadas

permanece constante (MIRANDA, 2008).

Os arbúsculos consistem em hifas muito ramificadas, se desenvolvem entre parede e

membrana celular vegetal, em cujo sítio ocorre troca de nutrientes entre os simbiontes; as

vesículas funcionam como órgão de estocagem para o fungo, contém principalmente lipídeos

e glicogênio (STÜRMER; SIQUEIRA, 2008). A sobrevivência e a dispersão dos fungos

micorrízicos dependem dos esporos assexuados. A sua estrutura, principalmente de paredes, é

básica para a taxonomia do grupo, quando se baseia em morfologia (MORTON; BENNY,

1990).

O número de espécies identificadas para os ecossistemas brasileiros somam 99

espécies, o que representa 51% do total de espécies formalmente descritas na literatura de

acordo com Stürmer; Siqueira (2008), que fazendo um levantamento das áreas mais

estudadas, destacam que as regiões Norte e Centro-Oeste necessitam de estudos urgentes.

Stürmer et al. (2006), fazendo um levantamento em solo destas áreas, relataram 79 espécies

de FMA, destas, pelo menos 67% foram registradas para solos de Cerrado.

Quanto ao potencial micorrízico de algumas espécies, a maior parte das áreas

destinadas à revegetação é constituída de solos com baixa fertilidade e baixo potencial de

inóculo de microrganismos benéficos para as plantas, como as micorrizas arbusculares

(JANOS, 1996). Essas aumentam o crescimento e as chances de sobrevivência das plântulas

em campo, por meio do aumento na absorção de nutrientes minerais e água, além de

promover proteção às plantas de possíveis patógenos (ABBOTT; ROBSON, 1991).

A inoculação de fungos micorrízicos em mudas utilizadas para revegetação de solos

degradados é importante, pois pode auxiliar e acelerar os processos de recuperação.

Associações micorrízicas podem ajudar no estabelecimento das mudas no campo,

contribuindo para a absorção de nutrientes e água, além de atuar na proteção contra os

patógenos radiculares (NEWAHAM et al., 1995). No entanto, a inoculação com FMA atua na

sucessão vegetal ao favorecer o estabelecimento de espécies de plantas próprias de etapas

sucessionais intermediárias e avançadas, acelerando a recuperação para uma cobertura vegetal

clímax (GUERRERO et al., 1996). As espécies arbóreas com crescimento rápido, de acordo

com Zangaro et al. (2003; 2007), são mais susceptíveis aos FMA que as espécies de

crescimento lento, devido às características morfológicas da raiz, mais apropriadas para

interceptar os propágulos dos simbiontes, e também por causa do alto metabolismo desta

espécies, com demanda alta para sustentar altas taxas de crescimento.

A micorrização é inibida, geralmente, em condições de elevada fertilidade, sendo que

dentre os macronutrientes o nitrogênio e o fósforo exercem maior influência; tais elementos

agem indiretamente via metabolismo da planta hospedeira, estabelecendo mecanismo de auto-

regulação. Devido ao fato das raízes se desenvolverem de modo muito emaranhado, sugeriu-

se que a colonização destas por hifas seria, nesse caso, mais eficiente para a garantia do fluxo

de nutrientes (FRANCIS et al., 1986).

Além dos efeitos no crescimento inicial e na qualidade das mudas (SCHULTZ et al.,

1981; JANOS, 1980), evidências indicam que a colonização micorrízica afeta as futuras fases

sucessionais das espécies (HERRERA et al., 1991) e a estruturação das comunidades vegetais

(MILLER; JASTROW, 1992; JANOS, 1983). Desse modo, as micorrizas são importantes

para o desenvolvimento vegetal (PERRY et al., 1987), especialmente em solos de baixa

fertilidade, onde elas poderão reduzir os requerimentos externos de nutrientes das espécies, os

custos de implantação e garantir sucessão vegetal no ecossistema em restauração (JANOS,

1983; JASPER, 1994; SIQUEIRA, 1994).

Estudos sobre inoculação de micorrizas para recuperação de áreas degradadas têm sido

promissores, mas não são abundantes os que mostram resultados da micorrização em

formações naturais. No início da década de 70, no século passado, Thomazini (1974) estudou

processos micorrízicos em plantas de Cerrado, enquanto St John (1980) listou 131 espécies

naturalmente infectadas com FMA para Amazônia e costa da Bahia. Carneiro et al. (1998)

relataram a ocorrência de micorriza arbuscular (MA) em 101 espécies arbóreas e arbustivas

nativas do sudeste brasileiro em condições de casa de vegetação, viveiro, campo em

condições de Cerrado (Brasilândia-MG) e na Mata Semidecídua, localizada no campus da

UFLA. Os autores concluíram que em amostras de raízes de Mata foi elevada a colonização

em 90% das espécies, sendo verificado o contrário nas plantas de Cerrado e nas amostras

coletadas no viveiro, evidenciando a ocorrência generalizada das micorrízicas arbusculares

nas espécies arbóreas tropicais. Zangaro et al. (2002), avaliando a colonização micorrízica em

espécies arbóreas ocorrendo em um parque preservado, em Maringá, relataram a ocorrência

de índices de colonização altos e médios para espécies pioneiras e secundárias iniciais e muito

baixa para as consideradas secundárias tardias e clímaces.

3. MATERIAL E MÉTODOS

As áreas sob estudo, localizadas no Município de Três Lagoas-MS, são conhecidas por

“Reserva do Exército” e Parque Natural Municipal Capivaras e estão sob as coordenadas

geográficas 20°47’34” S e 51°41’27” O, e 20°44’24” S e 51°39’38” O, respectivamente.

Figura 1, página 73. A primeira situa-se na área urbana do referido município, na Avenida

Olinto Mancini n° 1317, com 30 hectares e a segunda à margem direita da represa da CESP,

onde o Rio Sucuriú encontra o Rio Paraná, com 841 hectares, nesta coletou-se em 70% da

área.

3.1. Área de “Reserva do Exército”

A história da 2ª Companhia de Infantaria está intimamente ligada aos fatos históricos

da Guarnição Militar de Três Lagoas-MS. A chegada de tropas para mobiliar a Guarnição de

Três Lagoas-MS iniciou-se com a Revolução de 1924. As tropas que chegaram ao município

de Três Lagoas-MS tinham por missão garantir a passagem sobre o Rio Paraná na região de

Jupiá, permitindo o livre acesso entre os Estados do Mato Grosso e São Paulo, assegurando a

movimentação de tropas da Circunscrição Militar do então Estado de Mato Grosso até o

Estado Bandeirante (São Paulo), caso isso fosse necessário. Após mudanças administrativas, a

Companhia continuou com as principais missões de defender o complexo de Urubupungá,

manter a ligação rodoferroviária da divisa MS/SP, através das rodovias BR-262, SP 300

(Marechal Rondon) e ferrovia Novoeste. Em 20 de maio de 2003, a Portaria Nr 006-Res.

criou a 2ª Companhia de Infantaria sediada em Três Lagoas-MS, por transformação da 3ª

Companhia de Infantaria do 47º Batalhão de Infantaria, subordinando-a diretamente ao

Comando Militar do Oeste. A atividade-fim do Exército desenvolve-se normalmente no

campo, onde são preparadas e adestradas as tropas.

A vegetação e os recursos locais são muito importantes para as operações. Assim, o

militar, desde os primeiros dias na caserna, aprende a respeitar e preservar a natureza, como

uma aliada do combatente e do ser humano. Cooperando com os órgãos que cuidam da

preservação ambiental, o Exército tem feito acordos e convênios com o IBAMA, com polícias

especializadas e outros diversos órgãos, para o fornecimento de apoio logístico, nas atividades

de fiscalização ambiental. Merece destaque a preservação da área de Cerrado existente em

pleno centro urbano, em Três Lagoas. Informações podem ser encontradas em:

www.exército.gov.br/060MS/2ciainf/.

3.2. O Parque Natural Municipal Capivaras.

O Parque das Capivaras, no Município de Três Lagoas-MS, distribui-se por 841

hectares na margem direita do Rio Paraná. A unidade de conservação foi criada pela CESP

(Companhia Energética de São Paulo) e durante os muitos anos sob administração da

concessionária, o acesso à área era controlado e ocorria apenas com permissão prévia. Já na

fase de privatização daquela empresa em 2001, a área foi repassada para a Prefeitura

Municipal de Três Lagoas-MS. A área destinada à futura Unidade de Conservação Capivaras

é imediata à calha do Rio Paraná, drenagem que constitui o eixo deposicional (depocentro) da

Bacia Sedimentar do Paraná, sinéclise que se inclui entre os mais importantes depósitos

sedimentares brasileiros. Tal atributo decorre da magnitude da unidade geológica, mas

principalmente por ser a referida unidade, a bacia-sede da maior reserva de água doce

subsuperficial do planeta (Aquíferos Guarani e Bauru).

Desde a década de 1960, cumpre o papel de planície de inundação, situação decorrente

da edificação da Usina Hidrelétrica Engenheiro Souza Dias (Jupiá), cujo lago-reservatório fez

submergir as áreas montantes-proximais à original foz do Rio Sucuriú. A cobertura vegetal da

área pode ser dividida em Cerrado sentido restrito e uma porção úmida denominada vereda.

As fitofisionomias locais, Cerrados e Várzeas, transicionam para Matas Ciliares ou para

coberturas de áreas abertas (LORENZ-SILVA; NETO, 2008).

3.3.1. Levantamento florístico

Para o levantamento florístico foi realizada pelo menos uma excursão a cada semestre,

em cada área, durante o período de 2007 a 2009. Para a descrição da fitofisionomia das duas

áreas, utilizou-se o método de observação direta e registros fotográficos. Informações básicas

sobre a estrutura das áreas foram anotadas em cadernetas escolhidas para esta finalidade, e a

terminologia usada baseou-se em Ribeiro; Walter (2008). Durante as excursões, procedeu-se

observação dos espécimes em fase de reprodução; material estéril também foi fotografado

para posteriores observações, quando a identificação no campo não era possível. Durante as

coletas foram verificadas e anotadas informações sobre o hábito das plantas, como árvore,

arbusto, erva, subarbusto, liana e arvoreta. Utilizou-se o método de caminhamento

(FILGUEIRAS et al., 1994) para fotografar e coletar as espécies. Os espécimes coletados

foram herborizados de acordo com procedimento convencional e serão depositados no

herbário CEUL da Universidade Federal do Mato Grosso do Sul. Espécies facilmente

reconhecidas por serem comuns em Cerrado, foram apenas fotografadas, alternativa sugerida

por Judd et al. (2009). Nas duas áreas foram observadas espécies nativas e ruderais, pois estas

últimas podem ter influência na dinâmica da vegetação.

As plantas foram identificadas por meio de chaves de identificação, bibliografias

especializadas e comparação com materiais do herbário-CEUL. As espécies de

Magnoliophyta (Angiopermae) foram classificadas de acordo com Cronquist (1981), mas

constam entre parênteses na coluna correspondente às famílias botânicas, as classificações

feitas com base na proposta do Angiosperm Phylogeny Group II (2003), e Pteridophyta

segundo Tryon; Tryon (1982). Os dados obtidos foram organizados em planilhas, a partir das

quais foram obtidas tabelas contendo famílias, espécies, porte das plantas, e outros atributos

como: distribuição em diferentes fitofisionomias para a área do Parque Capivaras e qualidades

agronômicas para as duas áreas.

3.3.2. Colonização micorrízica

Para verificação de ocorrência de colonização micorrízica foram coletados indivíduos

de 44 espécies para cada área. A decisão sobre que espécies coletar baseou-se na plena

disponibilidade de plantas jovens. Algumas espécies são as mesmas para as duas áreas, mas é

coincidência, pois o objetivo foi o de verificar a presença do processo de micorrização e não o

de estabelecer parâmetros comparativos. Plantas muito jovem foram evitadas, pois a

quantidade de raízes era insuficiente.

Para estimativa de colonização por FMA, um grama de raiz de cada espécie foi

clarificada em KOH 10% e H

5%, acidificado com HCl 1% e coradas com azul de tripano

(KORMANIK; McGRAW, 1982). O método de interseção de quadrantes foi utilizado para

cálculo da porcentagem de colonização de FMA (GIOVANNETTI; MOSSE, 1980). Para a

categorização quanto à colonização, as espécies foram classificadas em muito alta, alta,

média, baixa e ausente, quando apresentavam grau de colonização > 80 %, 79-50 %, 49-20 %,

19-1 % e 0 %, respectivamente, segundo Carneiro et al. (1998).

3.3.3. Características químicas e número de esporos de FMA do solo

Para análise das características químicas do solo e número de esporos de FMA, foram

coletadas quatro amostras compostas, de 10 amostras simples cada, de solo, na profundidade

de 0-0,15 m. Os pontos foram georeferenciados e a localização e coordenadas da área da

Reserva do Exército foram: E1 (20°47’29,2” S e 51°41’33,8 O) e E2 (20°47’29,5” S e

51°41’39,2 O), em área plana com vegetação típica; E3 (20° 47’26,5” S e 51°41’33,5” O), em

áreas com seixos e E4 (20°47’38,5 S e 51°41’14,1” O), onde foi retirada a vegetação original.

No Parque Capivaras os pontos coletados representam dois pontos na área de Cerrado Denso

(20°44’85” S e 51°39’51,7” O; 20°44’34,2” S e 51°39’51,7” O) denominados C1 e C2, um

ponto próximo à Vereda denominado C4, nas coordenadas 20°44’28” S e 51°39’50,3” O, e

um ponto na área de manutensão de rede elétrica C3, em 20°44’32” S e 51°39’48,5 O. Todos

os pontos citados foram compostos por dez amostras simples.

As amostras coletadas foram secas ao ar, peneiradas e parte delas enviada para o

Laboratório de Fertilidade do Solo do Departamento de Fitossanidade, Engenharia Rural e

Solos da UNESP, Campus de Ilha Solteira, onde foram analisadas. Para tanto, o pH foi

determinado em CaCl

, P, K, Ca

e Mg

foram extraído com resina trocadora de íons, na

relação solo: água: resina de 1:10:1; e o Al

extraído com KCl 1N. O P foi determinado por

colorimetria; o K por fotometria de chama e Ca

e Mg

por espectrometria de absorção

atômica; H+Al

empregando o ph SMP; o Al

por titulação com NaOH 0,025 N e a matéria

orgânica por colorimetria, de acordo com Raij; Quaggio (1983).

A outra parte das amostras foi utilizada para o procedimento de contagem de esporos

de FMA autóctones. Para a referida análise, 100 g de cada amostra composta foi

homogeneizada e processada segundo uma associação dos métodos de decantação e

peneiramento úmido (GERDEMANN; NICOLSON, 1963) e de centrifugação e flutuação em

sacarose (JENKINS, 1964). A quantificação foi realizada em placas de acrílico com anéis

concêntricos, sob microscópio estereoscópio (40x).

4. RESULTADOS E DISCUSSÃO

O presente trabalho representou esforços, no sentido de publicar uma listagem de

espécies, dar idéia dos tipos fitofisionômicos, da composição da biodiversidade vegetal e de

hábitos de crescimento da flórula das áreas estudadas. Buscou-se contemplar tanto as espécies

nativas como aquelas consideradas ruderais, como também algumas introduzidas pelo

homem. A inclusão destas últimas teve por objetivo dar uma idéia dos recursos vegetais

efetivamente existentes nas áreas, para que possam servir de subsídios para solução de

problemas evidentes, como a invasão de comunidades de vegetação nativas por espécies

exóticas.

As áreas estudadas formam grupos distintos de fitofisionomias: a Reserva do Exército

apresenta terreno bem drenado, sem presença direta de corpos d’água, a vegetação pode ser

denominada de vegetação de interflúvio, e o Parque Capivaras está associado a terrenos

úmidos, situada em áreas de influência de drenagem, aqui chamada de vegetação associada

aos cursos de água. Historicamente, as duas áreas estão, há pelo menos dez anos, sem sofrer

incêndios.

Na Reserva do Exército, o estrato arbóreo é formado por espécies típicas de Cerrado,

tendo a maioria dos indivíduos porte intermediário (com altura média na faixa de 4 - 5

metros) e conformação mais tortuosa. Devido à menor densidade da cobertura arbórea, os

seus estratos inferiores mostram-se densos e, geralmente, ricos em espécies arbustivas e

herbáceas. Pode ser classificado como Cerrado Sentido Restrito - Cerrado típico. Figura 2,

página 74.

As espécies identificadas para a referida área, com seus respectivos hábitos e sempre

que possível suas qualidades agronômicas estão apresentadas na Tabela 1, página 41. Nestas

são citadas 397 espécies, distribuídas em 241 gêneros e 70 famílias. As famílias mais

representadas, com 10 ou mais espécies, foram Fabaceae (44 spp.), Asteraceae, Poaceae e

Euphorbiaceae (24 spp.), Myrtaceae (20 spp.), Bignoniaceae (18 spp.), Caesalpiniaceae (17

spp.), Mimosaceae ( 16 spp.), Malpighiaceae (15 spp.), Rubiaceae (14 spp.), Apocynaceae (13

spp.), Malvaceae (11 spp.) e Annonaceae (10 spp.). Essas 13 famílias contribuíram com 250

espécies, representando, aproximadamente, 63 % do total; 21 famílias contribuíram com uma

única espécie e 11 com apenas um gênero. Mais de 200 espécies possuem algum valor

econômico (RODRIGUES; RODRIGUES, 2001; HARLEY; GIULIETTI, 2004; SILVA et

al., 2001). Quatro espécimes foram idetificados até o nível de gênero.

Das 397 espécies identificadas, pelo menos 78% somam ervas e arbustos,

aproximadamente 22% são árvores ou arvoretas e mais de 75% apresentam alguma

possibilidade de uso econômico, além de representantes consideradas parentes silvestres de

plantas cultivadas, dos gêneros Arachis, Passiflora e Manihot. A totalidade das espécies está

distribuída em uma única formação, Cerrado sentido restrito (Tabela 1).

As 44 espécies coletadas para verificação de colonizações micorrízica (Tabela 3,

página 69), distribuem-se em 24 famílias e 42 gêneros. Destas, 17 tiveram colonização muito

alta, 18 alta, 08 baixa e uma espécie (Diptychandra aurantiaca) não apresentou colonização.

De acordo com Moreira; Siqueira (2006), mesmo naquelas famílias onde é comum o processo

de micorrização, pode haver diferenças dentre gêneros e espécies, o que foi constatado em

Caesalpiniaceae, com uma espécie com índice zero e as demais com alto e muito alto. Nesta

área nenhuma família com mais de uma espécie analisada apresentou homogeneidade quanto

ao índice de colonização. Das famílias tidas como não micorrizadoras, a Amaranthaceae

apresentou micorrização confirmando os dados de Moreira; Siqueira (2006) que afirmam que

as espécies ou gêneros não se comportam de modo idêntico dentro das famílias.

Na contagem de esporos de FMA foram encontrados 39, 38, 66 por 100 g de solo

-1

seco, respectivamente, para áreas mais preservadas e 70 por 100g de solo

-1

na área que teve a

vagetação original removida. No presente trabalho, os resultados sugerem que a relação

número de esporos com o grau de preservação é inversa, e os resultados podem ser vistos na

Tabela 5, página 75.

O Parque Capivaras, na sua formação florestal, apresenta um estrato arbóreo formado

por associações de espécies típicas de Cerrado com elementos próprios de formações

florestais. Como há muito tempo não sofre incêndios, o estrato arbóreo dessa comunidade

mostra-se denso e mais rico em espécies de florestas, como jatobá-do-mato e copaíba,

indicando que, quando protegidos, os Cerrados densos tendem a transformar-se em floresta do

tipo Cerradão. Nesta porção da área, o estrato graminoso é praticamente inexistente. Esta

porção pode ser classificada em Cerrado sentido restrito-Cerrado denso. Figura 3, página 74.

A porção úmida, alagável, de acordo com Ferreira (1996), é recoberta de vegetação

onde predominam espécies de Poaceae e Melastomataceae. Pelas espécies ocorrentes

(MEIRELLES et al., 2004), esta porção do parque pode ser classificada como Vereda que,

ainda de acordo com Eiten (1993), seria um “brejo graminoso permanente com buritis”. Na

compreensão de Araújo et al. (2002), poderia ser incluída parcialmente na formação

campestre: bordas e meios com buritis ao fundo (Figura 3), página 74.

Entre as áreas, úmida e a de Cerrado preservada, fica um a faixa de manutenção de

rede elétrica, composta apenas de ervas e arbustos, que neste trabalho foi denominada de

borda.

Na porção oeste da referida área, denominada de entorno no presente trabalho, é onde

se vê plantas típicas de cerrado misturadas aos eucaliptos. A lista de todas as espécies

registradas para a referida área, com seus respectivos hábitos, fitofisionimias e possível uso

agronômico, estão apresentadas na Tabela 2, página 54. Nesta são citadas 449 espécies,

distribuídas em 277 gêneros e 96 famílias. As famílias com dez ou mais espécies foram

Fabaceae (39 spp.), Cyperaceae (32 spp.), Poaceae (28 spp.), Asteraceae (26 spp.),

Euphorbiaceae (20 spp.), Caesalpiniaceae e Melastomataceae (18 spp.), Mimosaceae (17

spp.), Bignoniaceae (15 spp.), Rubiaceae (14 spp.), e Malpighiaceae, Apocynaceae e

Malvaceae (10 spp.). Essas 13 famílias contribuíram com 57,24% do total de espécies, 39

contribuíram com uma única espécie e 11 com apenas um gênero.

Das 449 espécies, aproximadamente 20% são árvores ou arvoretas e 80% somam

ervas ou arbustos, 26,5% ocupam a parte úmida e 73,5% o restante da vegetação. Nos gêneros

Arachis, Passiflora e Manihot estão representantes dos parentes silvestres de plantas

cultivadas (Tabela 2), também nesta área, encontram-se mais de 200 espécies com algum

valor econômico (RODRIGUES; RODRIGUES, 2001; HARLEY; GIULIETTI, 2004; SILVA

et al., 2001). Um espécime da família Poaceae foi identificado até o nível de gênero.

As 44 espécies coletadas para verificação da colonização micorrízica (Tabela 4, página

71) podem ser distribuídas em 24 famílias e 40 gêneros. Dentre estas, 22 tiveram colonização

muito alta, 15 alta, uma baixa e seis espécies não apresentaram colonização, 84% das plantas

analisadas tiveram alta e muito alta colonização micorrízica. As espécies que não

apresentaram colonização micorrízica são das famílias Apocynaceae, Bromeliaceae,

Fabaceae, Moraceae e Proteaceae. Destas, a única citada por Moreira; Siqueira (2006) como

não micorrízica foi a família Proteaceae. Das espécies analisadas por Thomazini (1974),

resultados semelhantes foram encontrados para Annona coriacea e Jacaranda decurrens.

Ainda de acordo com Moreira; Siqueira (2006), mesmo naquelas famílias onde é

comum o processo de micorrização pode haver diferenças dentre gêneros e espécies, o que

pode ser constatado em todas as famílias com mais de uma espécie analisadas, com índices de

zero a muito altos, para as duas áreas analisadas. Zangaro et al. (2002) encontraram baixos

índices de colonização para Anadenanthera, médios para Astronium, elevados para Tabebuia

e Casearia, muito baixos para Copaifera e ausentes para Aspidosperma e Hymenaea. No

presente trabalho, observaram-se índices muito altos para Anadenanthera, Hymenaea e

Copaifera, altos a muito altos para Astronium e Tabebuia, baixos para Casearia e baixo a

ausente para Aspidosperma, valendo destacar que as plantas de Cerrado não estão divididas

em categorias ecológicas que vão de pioneiras até espécies clímaces.

Nas duas áreas, mais de 50% das espécies tiveram índices altos ou muito altos de

micorrização, o que pode ser um indicador de disponibilidade de inóculo de FMA no campo,

embora a concentração de esporos encontrada tenha sido relativamente baixa. Para Gange et

al. (1993) este pode ser um índice confiável para prognóstico de colonização destas espécies

em campo e o possível uso das mesmas para recuperação de áreas degradadas. Ademais, de

acordo com Janos (1996), plantas colonizadas com FMA têm maiores chances de instalação e

crescimento em solos poucos férteis e são de muita importância para programas de

reabilitação de solos degradados.

A contagem de esporos de FMA por 100 g de solo foi 58 e 31 esporos para área de

Cerrado típico, 69 esporos para parte manejada e 36 esporos na porção úmida (Tabela 5).

Índices considerados baixos, o que se relaciona com áreas em equilíbrio. O grau de micotrofia

das plantas e o conhecimento da quantidade de esporos no solo são de suma importância para

o sucesso de áreas revegetadas (PFLEGER et al., 1994).

Os resultados da caracterização química dos solos das duas áreas (Tabela 5), indicam

carência de fósforo e nitrogênio, taxas médias de alumínio, baixo pH e médio teor de matéria

orgânica (Embrapa, 1999). Essas características do substrato estão relacionadas com o

raleamento ou a densidade da vegetação, como os baixos teores dos elementos químicos

requeridos pelas plantas e os altos teores de alumínio, a profundidade e o encharcamento

(EITEN, 1972, 1993). De acordo com Spera et al. (1999), características químicas, físicas de

solo e hídricas, não podem ser associadas isoladamente com o tipo de vegetação, haja visto,

que em Latossolos Vermelho-Amarelos podem ser encontrados desde formações campestres

como Campo Sujo até formações florestais como Cerradão.

As duas áreas sob estudo podem ser consideradas remanescentes (WILCOVE et al.,

1986) e a fragmentação é do tipo antrópica (AQUINO; MIRANDA, 2008). O número de

espécies de plantas observadas na área total da Reserva do Exército e na área arborizada do

Parque Capivaras, deve-se ao fato de que pelo menos um fator determinante para

características de cerrado, o fogo, tem sido controlado, o que de acordo com Miranda et al.

(1996), tornaria a vegetação mais densa ao longo prazo.

A flora do Cerrado é diferenciada dos demais biomas (HERINGER et al., 1997); das

38 espécies citadas por Ratter et al. (2003), como comuns às várias áreas de Cerrado, 35 spp.

ocorrem na Reserva do Exército e 34 spp. no Parque Capivaras. Das espécies consideradas na

literatura como em risco de extinção, foram encontradas nas duas áreas estudadas, Duguetia

furfuracea, Annona dioica, Bauhinia rufa e Cochlospermum regium e na Reserva do Exército

a Gomphrena macrocepala. Estes dados reforçam a importância de preservar remanescentes,

pois as plantas de cerrado são de difícil conservação fora de seu habitat natural (DURIGAN et

al., 2004). O Cerrado detém parentes silvestres de plantas cultivadas (MMA, 2006), nas duas

áreas estudadas foram encontrados os gêneros Arachis, Manihot e Passiflora. De acordo com

Ribeiro et al. (1983), a abundância da composição florística parece estar relacionada com a

latitude, uma vez que varia de local para local, não havendo homogeneidade plena para a flora

de Cerrado, e sim interações de parâmetros bióticos e abióticos que modulam a riqueza

florística de cada local. Plantas de outros biomas também são encontradas como Cyperus

laxus, Diospyrus brasiliensis, Jacaranda caroba, entre outras.

Nos dois remanescentes sob estudo, a presença de Brachiaria decumbens poderá se

tornar um problema de grandes proporções, semelhante aos causados por Melinis minutiflora

em outras áreas (PIVELLO et al., 1999 a, b). O efeito de borda pode atuar de diferentes

formas nos remanescentes estudados: na área do Exército a borda é delimitada pelo núcleo

urbano, enquanto no Parque Capivaras é natural e decorrente de ação antrópica. Qualquer que

seja a causa do efeito de borda a consequência não difere, pois nas duas áreas há plantas

exóticas (LAURANCE, 1991; BROTHERS; SPINGARN, 1992; FRAVER, 1994) como:

eucalipto e coco-da-baía em menor escala, na Reserva do Exército e pinheiro no Parque

Capivaras. Plantas ruderais ou adaptadas aos distúrbios (BIERREGAARD et al., 1992) como

Emilia fosbergii, Eupatorium maximilianii, Pyrostegia venusta, Merremia cissoides,

Phyllanthus orbiculatus Richardia grandiflora, Solanum lycocarpum, Waltheria indica entre

outras, também ocorrem em ambos locais.

Somente futuros estudos poderão trazer a verdadeira dimensão do comprometimento

das plantas típicas de Cerrado destes remanescentes, no que tange a presença de espécies de

outras formações, ruderais, exóticas ou mesmo cultivadas, uma vez que as populações podem

intercruzar-se.

5. CONCLUSÕES E CONSIDERAÇÕES FINAIS

-A flora da Reserva do Exército está representada por 397 espécies, 241 gêneros e 70 famílias,

enquanto a do Parque Municipal Capivaras por 449 espécies, 277 gêneros e 96 famílias;

-Para a área do Parque Capivaras nem todo material foi identificado, tornando possível que

novidades venham a ser descobertas à medida que mais materiais sejam examinados;

-Há necessidade de mais coletas sistemáticas, pois certos ambientes de difícil acesso como a

Vereda, parte do Parque Municipal Capivaras, podem conter espécies ainda não descritas pela

ciência;

-Nas duas áreas foram encontradas plantas ruderais, cultivadas e exóticas, tolerantes ao uso

humano e que podem comprometer as plantas típicas de Cerrado, uma vez que as populações

podem intercruzar-se;

-Mais de 50% das espécies apresentam índices altos ou muito altos de micorrização, com

maiores chances de instalação e crescimento em solos poucos férteis, de muita importância na

indicação de programas para reabilitação de solos degradados;

-Não há relação direta entre as categorias taxonômicas superiores e as espécies colonizadas

por FMA.

ANEXOS DO CAPÍTULO 1

Tabela 1 – Listagem das famílias e espécies das plantas identificadas, porte e potencial

agronômico das mesmas, da área da Reserva do Exército, entre os anos 2007 a 2009.

Família/Espécie Porte Potencial agronômico

Acanthaceae

Ruellia geminiflora Kunth erva ornamental

Ruellia tweediana Grisebach erva ornamental

Amaranthaceae

Froelichia procera (Seub.) T.M. Pedersen erva ornamental

Gomphrena celosioides Mart. erva ornamental

Gomphrena macrocephala A.St.-Hil. subarbustiva ornamental

Anacardiaceae

Anacardium humile A.St.-Hil. arbustiva medicinal

Anacardium occidentale L. arbustiva frutífera

Astronium fraxinifolium Schott árvore florestal

Myracrodruon urundeuva (Engl.) Fr.All. árvore florestal

Annonaceae

Annona coriacea Mart. árvore frutífera

Annona crassiflora Mart. árvore florestal, med. e alim.

Annona dioica A.St.-Hil. subarbusto medicinal

Annona nutans R.E.Fr. subarbusto

Annona tomentosa R.E.Fr. subarbusto

Annona warmingiana Mello-Silva & Pirani subarbusto

Duguetia furfuracea (A.St.-Hil.) Benth. & Hook. arbusto frutífera e medicinal

Duguetia lanceolata A.St.-Hil. arbusto frutífera

Xylopia aromatica (Lam.) Mart. árvore medicinal

Xylopia sericea A.St.-Hil. árvore

Apocynaceae

Aspidosperma macrocarpon Mart. árvore florestal

Aspidosperma tomentosum Mart. árvore florestal

Forsteronia pubescens D.C.

Hancornia speciosa Gomes árvore frutífera

Himatantus obovatus (Müll.Arg.) Woodson arvoreta ornamental

Macrosiphonia longiflora (Desf.) (Müll.Arg. erva/xilopódio orn. e medicinal

Mandevilla coccinea (Hook & Arn.) Woodson erva/xilopódio ornamental

Mandevilla illustris (Vell.) Woodson erva/xilopódio ornamental

Odontadenia lutea (Vell.) Marckgr. trepadeira ornamental

Odontadenia nitida (Vell.) Müll.Arg. trepadeira ornamental

Prestonia tomentosa R.Br. trepadeira ornamental

Rhodocalyx rotundifolius Müll.Arg. subarbusto/xilopódio ornamental

Continua

Continuação

Família/Espécie Porte Potencial agronômico

Secondatia densiflora D.C. trepadeira ornamental

Arecaceae

Acrocomia aculeata (Jacq.) Lodd. palmeira alimentícia

Allagoptera campestris (Mart.) Kuntze palm/folhas basais ornamental

Cocos nucifera L. palmeira alimentícia

Aristolochiaceae

Aristolochia esperanzae Kze. trepadeira medicinal

Aristolochia sp. trepadeira ornamental

Asclepiadaceae (Apocynaceae)

Blepharodon bicuspidatum E. Fourn. trepadeira

Blepharodum nitidum J.F.Macbr trepadeira

Oxipetalum sp. trepadeira

Asteraceae

Acanthospermum australe (Loefl.) Kuntze erva medicinal

Aspilia foliacea (Spreng.) Baker erva ornamental

Bidens gardneri Baker erva orn. e medicinal

Bidens subalternans DC. erva medicinal

Blainvillea biaristata DC. subarbusto

Eclipta alba (L.) Hassk. erva

Elephantopus mollis Kunth herbácea medicinal

Emilia fosbergii Nicolson erva medicinal

Erechtites hieraciifolius (L.) Raf. erva

Eupatorium maximilianii Schrad. arbusto medicinal

Eupatorium pauciflorum Kunth erva

Eupatorium squalidum DC. subarbusto

Gochnatia barrosii Cabrera arbusto grande medicinal

Gochnatia polymorpha (Less.) Cabrera arvoreta

Gochnatia pulchra (Spreng.) Cabrera arbusto

Parthenium hysterophorus L. erva

Piptocarpha rotundifolia Baker arbusto

Porophyllum ruderale (Jacq.) Cass. erva medicinal

Pterocaulon virgatum (L.) DC. erva ornamental

Synedrellopsis grisebachii Hieron. erva

Trichogonia sp. arbusto ornamental

Tridax procumbens L. erva

Vernonia scabra Pers. arbusto medicinal

Vernonia chamaedrys Less. subarbusto ornamental

Continua

Continuação

Família/Espécie Porte Potencial agronômico

Bignoniaceae

Amphilophium paniculatum (L.) Humb., Bonpl. & Kunthtrepadeira ornamental

Anemopaegma arvense (Vell.) Stellfeld ex de Souza. subarbusto medicinal

Anemopaegma glaucum Mart. Ex DC. subarbusto medicinal

Arrabidaea brachypoda (DC.) Bureau arbusto ornamental

Cybistax antisyphilitica Mart. árvore florestal

Distictella elongata (Vell.) Ueb. trepadeira ornamental

Fridericia florida (DC.) L. G. Lohmann trepadeira ornamental

Jacaranda caroba (Vell.) A.DC. arbusto medicinal

Jacaranda cuspidifolia Mart. árvore ornamental

Jacaranda decurrens Cham. subarbusto orn. e medicinal

Jacaranda oxiphilla Cham. arbusto ornamental

Jacaranda rufa Silva Manso subarbusto ornamental

Melloa quadrivalvis (Jacq.) Gentry. trepadeira ornamental

Paragonia pyramidata (Rich.) Bur. trepadeira

Pyrostegia venusta Miers trepadeira orn. e medicinal

Tabebuia aurea (Silva Manso). B. & H. F. ex S. Moore. árvore medicinal e florestal

Tabebuia ochracea (Cham.) Stdl. árvore medicinal e florestal

Zeyera montana Mart. arbusto ornamental

Bombacaceae (Malvaceae)

Eriotheca gracilipes (K.Schum.) A.Robyns árvore florestal

Boraginaceae

Heliotropium procumbens Mill. erva

Bromeliaceae

Ananas ananassoides (Baker) L.B.Sm. erva rosulada ornamental

Bromelia balansae Mez erva rosulada ornamental

Dyckia tuberosa* (Vell.) Beer erva rosulada ornamental

Tillandsia duratii Vis. epífita ornamental

Tillandsia usneoides (L.) L. epífita ornamental

Burseraceae

Protium ovatum Engl. arbusto medicinal

Cactaceae

Cereus hildmanianus K. Schum ereta orn. e alimentícia

Praecereus euchlorus (F.A.C.Weber) N.P.Taylor ereta orn. e alimentícia

Caesalpiniaceae (Fabaceae)

Bauhinia pentandra (Bong.) Vog. arbusto medicinal

Bauhinia rufa (Bong.) Steud. arbusto medicinal

Continua

Continuação

Família/Espécie Porte Potencial agronômico

Chamaecrista campestris (Benth.) H.S.Irwin & Barneby erva ornamental

Chamaecrista desvauxii (Collad.) Killip subarbusto forrageira

Chamaecrista flexuosa (L.) Greene subarbusto forrageira

Chamaecrista nictitans Collad. erva forrageira

Chamaecrista rotundifolia (Pers.) Greene erva medicinal

Chamaecrista serpens (L.) Greene erva forrageira

Copaifera langsdorffii Desf. árvore florestal e med.

Copaifera martii Hayne arvoreta medicinal

Dimorphandra mollis Benth árvore florestal e ornamental

Diptychandra aurantiaca Tul. árvore florestal

Hymenaea stigonocarpa Mart. Ex Hayne árvore florestal, alim. e med.

Senna occidentalis (L.) Link arbusto medicinal

Senna rugosa (G. Don) H.S.Irwin & Barneby arbusto medicinal

Senna silvestris (Vell.) H.S.Irwin & Barneby arbusto ornamental

Senna velutina (Vogel) H.S.Irwin & Barneby arbusto ornamental

Capparidaceae (Brassicaceae)

Cleome affinis DC erva

Caryocaraceae

Caryocar brasiliense Cambess. árvore florestal, alim. e med.

Caryophyllaceae

Polycarpaea corymbosa (L.) Lam. erva ornamental

Celastraceae

Austroplenckia populnea Reissek (Plenckia) árvore medicinal

Salacia crassifolia L. arbusto

Tontelea micrantha (Raddi) Endl. arbusto

Chrysobalanaceae

Couepia grandiflora (Mart. & Zucc.) Benth. & Hook.f. árvore florestal

Licania humilis Cham. & Schltdl. árvore florestal

Parinari obtusifolia Hook. subarbusto

Clusiaceae

Kielmeyera coriacea Mart. árvore florestal, orn. e med.

Kielmeyera grandiflora (Wawra) Saddi árvore florestal, orn. e med.

Cochlospermaceae (Bixaceae)

Cochlospermum regium (Schrank) Pilg. arbusto med. e ornamental

Combretaceae

Buchenavia tomentosa Eichl. árvore florestal

Terminalia argentea Mart. árvore florestal

Continua

Continuação

Família/Espécie Porte Potencial agronômico

Terminalia glabrescens Mart. árvore florestal

Commelinaceae

Commelina benghalensis L. erva

Commelina erecta L. erva med. e ornamental

Commelina nudiflora L. erva medicinal

Connaraceae

Connarus suberosus Planch. arbusto florestal

Rourea induta Planch. arbusto medicinal

Convolvulaceae

Ipomoea procumbens Mart.ex Choisy erva ornamental

Jacquemontia tamnifolia (L.) Griseb. erva ornamental

Merremia cissoides (Lam.) Hallier f. erva ornamental

Cucurbitaceae

Momordica charantia L. erva

Melancium campestre Naudin erva

Cyperaceae

Bulbostylis paradoxa Nees erva

Bulbostylis capillaris (L.) C.B.Clarke erva

Cyperus difformis L. erva

Cyperus meyenianus Kunth erva

Cyperus laxus Lam. erva

Fuirena umbellata Rottb. erva

Kyllinga odorata Vahl erva

Rhynchospora corymbosa (L.) Britton erva

Rhynchospora nervosa (Vahl) Boeck. erva

Dilleniaceae

Curatella americana L. árvore florestal

Davilla elliptica A.St.-Hil. arbusto med. e ornamental

Ebenaceae

Diospyros brasiliensis Mart. arvoreta alimentícia

Diospyros hispida DC. arvoreta alimentícia

Erythroxylaceae

Erythroxylum campestre A.St.-Hil. arbusto medicinal

Erythroxylum suberosum A.St.-Hil. arbusto/arvoreta

Erythroxylum tortuosum Mart. arbusto/arvoreta medicinal

Euphorbiaceae

Chamaesyce hirta (L.) Millsp. erva

Continua

Continuação

Família/Espécie Porte Potencial agronômico

Chamaesyce hyssopifolia (L.) Small erva

Chamaesyce prostrata (Aiton) Small erva

Cnidoscolus albomaculatus (Pax) I.M.Johnst. subarbusto medicinal

Cnidoscolus apendiculatus (P.et H.) P.et H. subarbusto medicinal

Cnidoscolus sp. subarbusto medicinal

Croton antisyphiliticus Mart. subarbusto medicinal

Croton bonplandianus Baill. erva

Croton campestris A.St.-Hil. arbusto

Croton glandulosus L. erva

Croton goyazensis Müell. Arg. subarbusto

Croton lobatus L. erva

Euphorbia heterophylla L. erva

Jatropha elliptica (Pohl) Müll. Arg. subarbusto medicinal

Mabea fistulifera Mart. árvore florestal

Manihot caerulescens Pohl. arbusto recurso genético

Manihot gracilis R.W.Pohl. subarbusto recurso genético

Manihot tripartida Müll.Arg. arbusto recurso genético

Maprounea guianensis Aubl. árvore florestal

Phyllanthus orbiculatus L.C. Rich. (Phyllanthaceae) erva medicinal

Ricinus communis L. arbusto

Sapium haematospermum (M. Arg.) Hub. árvore

Sebastiania corniculata (Vahl) Müll. Arg. erva

Sebastiania hispida (Mart.) Pax subarbusto

Fabaceae

Abrus precatorius L. arb trepador

Acosmium dasycarpum (Vogel) Yakovlev arvoreta florestal

Acosmium subelegans (Mohlenbr.) Yakovlev arvoreta florestal

Aeschynomene histrix Poir. subarbusto forrageira

Aeschynomene paniculata Willd ex Vogel subarbusto forrageira

Aeschynomene rudis Benth. subarbusto forrageira

Alysicarpus vaginalis (L.) DC. erva forrageira

Andira cuyabensis Benth. árvore florestal e medicinal

Andira humilis Mart. ex Benth. subarbusto ornamental

Andira inermis H.B.K. árvore florestal

Andira vermifuga Mart. ex Benth. árvore florestal

Arachis hypogaea L. erva recurso genético

Arachis repens Handro erva recurso genético

Continua

Continuação

Família/Espécie Porte Potencial agronômico

Bowdichia virgilioides Kunth árvore florestal e medicinal

Centrosema angustifolium (Kunth) Benth. erva forrageira e ornamental

Centrosema pubescens Benth. erva forrageira e ornamental

Copaifera langsdorffii Desf. árvore florestal e medicinal

Copaifera martii Hayne arbusto ornamental

Crotalaria incana L. subarbusto forrageira

Crotalaria longifolia Lam. subarbusto forrageira

Crotalaria micans Link subarbusto forrageira

Crotalaria pallida Aiton subarbusto forrageira

Crotalaria stipularia Desv. erva forrageira

Desmodium adscendens (Sw.) DC. subarbusto medicinal

Desmodium incanum DC. erva medicinal

Desmodium tortuosum (Sw.) DC. subarbusto medicinal

Eriosema crinitum (Kunth) G.Don erva forrageira

Eriosema hirtum Benth. subarbusto ornamental

Galactia eriosematoides Harms. subarbusto medicinal

Indigofera hirsuta L. subarbusto forrageira

Indigofera suffruticosa Mill. subarbusto forrageira e medicinal

Machaerium acutifolium Vogel árvore florestal

Macroptilium atropurpureum Urb. erva forrageira

Stylosanthes acuminata M.B.Ferreira & Sousa Costa subarbusto forrageira

Stylosanthes guianensis (Aubl.) Sw. subarbusto forrageira

Stylosanthes leiocarpa Vogel erva forrageira

Stylosanthes viscosa (L.) Sw. subarbusto forrageira

Teramnus volubilis Sw. erva forrageira

Vatairea macrocarpa (Benth.) Ducke árvore florestal

Vigna peduncularis (Kunth) Fawc. & Rendle erva forrageira

Zornia crinita (Mohlenbr.) Vanni erva forrageira

Zornia glochidiata Reichb. ex DC. erva

Zornia latifolia Sm. erva forrageira

Zornia reticulata Sm. erva forrageira

Flacortiaceae (Salicaceae)

Casearia sylvestris Sw. arbusto medicinal

Hippocrateaceae (Celastraceae)

Peritassa campestris (Cambess.) A.C.Sm. arbusto

Iridaceae

Cipura paludosa Aubl. erva ornamental

Continua

Continuação

Família/Espécie Porte Potencial agronômico

Lamiaceae

Amasonia campestris (Aubl.) Moldenke subarbusto ornamental

Hyptis mutabilis (Rich.) Briq. subarbusto medicinal

Hyptis suaveolens (L.) Poit. subarbusto medicinal

Hyptis villosa Pohl ex Benth. subarbusto medicinal

Peltodon tomentosus Pohl subarbusto medicinal

Lecythidaceae

Eschweilera nana (Berg) Miers arb até árvore florestal, alim. e orn.

Loganiaceae

Strychnos brasiliensis (Spreng.) Mart. arbusto medicinal

Strychnos pseudoquina A.St.-Hil. arb até árvore medicinal

Lythraceae

Cuphea carthagenensis (Jacq) J.F.Macbr. erva medicinal

Lafoensia pacari A.St.-Hil. árvore florestal e medicinal

Malpighiaceae

Banisteriopsis campestris (A.Juss.) Little arbusto ornamental

Byrsonima coccolobifolia Kunth árvore flor. e ornamental

Byrsonima coriacea (Sw.) Kunth arbusto ornamental

Byrsonima guilleminiana A.Juss. arbusto ornamental

Byrsonima intermedia A.Juss. arbusto medicinal

Byrsonima subterranea Brade & Markgr. subarbusto ornamental

Byrsonima verbascifolia (L.) DC. arvoreta medicinal

Camarea affinis A.St.-Hil. erva com xilopódio ornamental

Diplopterys pubipetala (A.Juss.) W.R.And. & C.Cav. D. arbusto ornamental

Galphimia australis Chodat erva com xilopódio ornamental

Heteropterys aphrodisiaca O.Mach. arbusto medicinal

Heteropterys byrsonimifolia A.Juss. arbusto ornamental

Peixotoa cordistipula A.Juss. arbusto

Peixotoa reticulata Griseb. liana ornamental

Tetrapterys salicifolia (A.Juss.) Nied. erva com xilopódio

Malvaceae

Abutilon bedfordianum (Hook) (St. Hil.) & Naud. subarbusto ornamental

Malvastrum coromandelianum (L.) Garcke erva a subarbusto

Pavonia cancellata (L.) Cav. erva ornamental

Pavonia guerkeana R.E.Fr. subarbusto ornamental

Pavonia sidifolia Kunth erva ornamental

Sida cerradoensis Krap. erva

Continua

Continuação

Família/Espécie Porte Potencial agronômico

Sida glaziovii K. Schum erva

Sida linifolia Juss. ex Cav. erva

Sidastrum paniculatum (L.) Fryxell subarbusto

Urena lobata L subarbusto medicinal

Melastomataceae

Miconia albicans (Sw.) Tr. arvoreta ornamental

Mouriri elliptica Mart. arvoreta alimentícia

Menispermaceae

Cissampelos ovalifolia DC. subarbusto medicinal

Mimosaceae (Fabaceae)

Albizia lebbeck (L.) Benth. árvore exot

Anadenanthera falcata (Benth.) Speg. árvore florestal

Enterolobium contortisiliquum (Vell.) Morong árvore florestal

Enterolobium gummiferum (Mart.) J.F.Macbr. árvore florestal

Inga laurina (Sw.) Willd. árvore

Mimosa adenocarpa Benth. arbusto ornamental

Mimosa debilis Humb.& Bonpl. subarbusto ornamental

Mimosa hebecarpa Benth. arvoreta ornamental e florestal

Mimosa nuda Benth. arbusto ornamental

Mimosa polycarpa Kunth arbusto ornamental

Mimosa quadrivalvis L. erva ornamental

Mimosa xanthocentra (Benth.) Barneby subarbusto ornamental

Plathymenia reticulata Benth. árvore florestal

Stryphnodendron adstringens (Mart.) Coville árvore florestal e medicinal

Stryphnodendron obovatum Benth. árvore florestal e medicinal

Stryphnodendron polyphyllum Mart. árvore florestal e medicinal

Molluginaceae

Mollugo verticillata L erva

Moraceae

Brosimum gaudichaudii Trécul arbusto alim. e medicinal

Myrtaceae

Campomanesia adamantium (Cambess.) O. Berg arbusto alimentícia

Campomanesia sessiliflora (Berg.) Mattos arbusto alimentícia

Eucalyptus citriodora Hook. f. árvore florestal

Eugenia aurata O.Berg. arvoreta alimentícia

Eugenia bimarginata DC. arbusto alimentícia

Eugenia calycina Camb. subarbusto alimentícia

Continua

Continuação

Família/Espécie Porte Potencial agronômico

Eugenia dysenterica DC arbusto alimentícia

Eugenia egensis DC. arbusto alimentícia

Eugenia lutescens Camb. subarbusto alimentícia

Eugenia obversa O.Berg. arbusto alimentícia

Eugenia pitanga Kiaersk. arbusto alimentícia

Eugenia punicifolia (Humb.,Bonpl. & Kunth) DC. arbusto alim. e medicinal

Eugenia tapacumensis Berg. arbusto alimentícia

Myrcia bella Cambess. arvoreta alimentícia

Myrcia linearifolia* Cambess. arbusto peq. orn. e alimentícia

Myrciaria cuspidata O.Berg. arbusto alimentícia

Psidium gragiflorum Mart. Ex DC. arbusto peq. alimentícia

Psidium guajava L. árvore alimentícia

Psidium guineense Sw. arbusto alimentícia

Psidium sp. arbusto alimentícia

Nictaginaceae

Boerhavia diffusa L. erva

Guapira noxia (Netto) Lundell arvoreta florestal

Neea theifera Oerst. arvoreta florestal

Ochnaceae

Ouratea spectabilis (Mart.) Engl. árvore flor. e ornamental

Ouratea floribunda (A.St.-Hil.) Engl. arbusto ornamental

Ouratea hexasperma (St. Hil.) Baill. árvore flor. e ornamental

Opiliaceae

Agonandra brasiliensis Benth. & Hook.f. árvore florestal

Orchidaceae

Catasetum barbatum (Lindl.) Lindl.* epífita ornamental

Passifloraceae

Passiflora cincinnata Mast. trepadeira alimentícia

Passiflora foetida L. trepadeira recurso genético

Passiflora pohlii Mast. trepadeira recurso genético

Poaceae

Andropogon bicornis L. erva forrageiro

Axonopus pressus (Steud.) Parodi erva forrageiro

Cenchrus echinatus L. erva

Chloris barbata (L.) Sw. erva forrageiro

Cynodon dactylon (L.) Pers. erva forrageiro

Dactyloctenium aegyptium (L.) P. Beauv. erva forrageiro

Continua

Continuação

Família/Espécie Porte Potencial agronômico

Digitaria ciliaris (Retz.) Koel. erva forrageiro

Digitaria insularis (L.) Fedde erva forrageiro

Echinolaena inflexa (Poir.) Chase. erva forrageiro

Eleusine indica (L.) Gaertn. erva forrageiro

Eragrostis pilosa (L.) P.Beauv. erva forrageiro

Eustachys distichophylla (Lag.) Nees erva forrageiro

Gymnopogon foliosus (Willd.) Nees erva forrageiro

Hyparrhenia rufa (Nees) Stapf erva forrageiro

Loudetiopsis chrysothrix (Nees) Conert erva forrageiro

Melinis minutiflora P. Beauv. erva forrageiro

Panicum maximum L. erva forrageiro

Panicum sellowii Nees erva forrageiro

Paspalum notatum Flüggé erva forrageiro

Pennisetum setosum (Sw.) Rich. erva forrageiro

Rhynchelytrum repens (Willd) C.E.Hubb. erva forrageiro

Sporolobus indicus (L.) R. Br. erva forrageiro

Urochloa brizantha (Hochst. ex A. Rich.) Stapf erva forrageiro

Urochloa decumbens Stapf erva forrageiro

Polygalaceae

Bredemeyera floribunda Willd. arbusto medicinal

Monnina richardiana A.St.-hil. & Moq. subarbusto

Polygala violacea Aubl. erva medicinal

Polygonaceae

Coccoloba mollis Casar. árvore florestal

Portulacaceae

Portulaca fluvialis Legr. erva ornamental

Portulaca oleracea L. erva

Proteaceae

Roupala montana Aubl. árvore florestal

Rubiaceae

Alibertia edulis (Rich.) A.Rich. Ex DC. arbusto alimentícia

Alibertia elliptica Schum. subarbusto alimentícia

Alibertia sessilis (Vell.) K.Schum. arbusto medicinal

Borreria capitata DC. erva a subarbusto ornamental

Declieuxia fruticosa (Willd. ex R. & S.) Kuntze subarbusto ornamental

Diodella teres (Walter) Small erva

Guettarda viburnoides Cham. & Schltdl. arvoreta

Continua

Continuação

Família/Espécie Porte Potencial agronômico

Palicourea rigida Kunth subarbusto ornamental

Richardia brasilensis Gomes erva

Richardia grandiflora (Cham. & Schltdl.) Steud. erva

Spermacoce latifolia Aubl. erva

Staelia thymoides Cham. & Schltdl. erva

Tocoyena brasiliensis Mart. arbusto ornamental

Tocoyena formosa (Cham. & Schltdl.) K.Schum. arbusto ornamental

Rutaceae

Citrus limonia Osbeck arvoreta alim. e medicinal

Sapindaceae

Allophylus edulis (A.St.-Hil.) Radlk. arvoreta florestal

Magonia pubescens A.St.-Hil. árvore florestal

Matayba elaeagnoides Radlk. arbusto

Serjania caracasana (Jacq.) Willd. trepadeira len.

Serjania erecta Radlk. arbusto

Serjania lethalis A.St.Hil. trepadeira len.

Sapotaceae

Pouteria ramiflora (Mart.) Radlk. árvore florestal e alimentícia

Pouteria subcaerulea Pierre ex Dubard arbusto

Pouteria torta (Mart.) Radlk. árvore florestal e alimentícia

Pradosia brevipes (Pierre) T.D.Penn. arbusto alimentícia

Scrophulariaceae (Plantaginaceae)

Scoparia dulcis L. erva

Smilacaceae

Smilax brasiliensis Spreng. subarbusto medicinal

Smilax cissoides Martius ex Grisebach subarbusto medicinal

Smilax fluminensis Steud. subarbusto medicinal

Smilax goyazana DC. subarbusto medicinal

Smilax polyantha Grisebach subarbusto medicinal

Solanaceae

Solanum americanum Mill. erva medicinal

Solanum lycocarpum A.St.-Hil. arbusto medicinal

Solanum palinacanthum Dunal erva

Solanum paniculatum L. arbusto medicinal

Solanum sisymbrifolium Lam. erva

Sterculiaceae (Malvaceae)

Ayenia tomentosa L. erva

Continua

Continuação

Família/Espécie Porte Potencial agronômico

Melochia parvifolia H.B.K. arbusto ornamental e fibras

Melochia pilosa (Mill.) Fawe & Rendl. subarbusto ornamental

Melochia spicata (L.) Fryxell

Waltheria douradinha St. Hill. subarbusto medicinal

Waltheria indica L. subarbusto medicinal

Tiliaceae (Malvaceae)

Corchorus argutus H.B.K. erva ornamental

Turneraceae

Piriqueta rosea (Cambess.) Urb. erva ornamental

Piriqueta cistoides (L.) Gris. erva ornamental

Turnera melochioides Camb. erva ornamental

Verbenaceae

Aegiphila lhotszkyana Cham. (Lamiaceae) arvoreta

Lantana camara L. arbusto med. e ornamental

Lantana trifolia L. arbusto ornamental

Lippia balansae Briq. arbusto ornamental

Lippia lasiocalycina Cham. arbusto ornamental

Lippia lupulina Cham. suarbusto c/ xilopódio ornamental

Lippia velutina Schauer. arbusto ornamental

Stachytarpheta cayennensis (Rich.) Vahl subarbusto

Vochysiaceae

Qualea grandiflora Mart. árvore florestal e ornamental

Qualea multiflora Mart. árvore florestal e ornamental

Qualea parviflora Mart. árvore florestal e ornamental

Vochysia cinnamomea Pohl árvore florestal e ornamental

Abreviaturas utilizadas: med.=medicinal, orn.=ornamental e flor.=florestal.

Tabela 2 – Listagem das famílias e espécies de plantas identificadas, fitofisionomia, porte e

potencial agronômico das mesmas, do Parque Capivaras, entre os anos de 2007 a 2009.

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Acantaceae

Ruellia geminiflora Kunth cerrado erva ornamental

Adiantaceae

Pityrogramma calomelanos L. vereda erva ornamental

Adiantum trapeziforme L. cerrado erva ornamental

Alismataceae

Echinodorus longipetalus Micheli vereda erva

Echinodorus macrophyllus (Kunth) Micheli vereda erva

Echinodorus paniculatus Micheli vereda erva

Sagittaria guayanensis H.B.K. vereda erva

Sagittaria rhombifolia Cham. vereda erva

Amaranthaceae

Alternanthera philoxeroides (Mart.) Griseb. vereda erva

Froelichia procera (Seub.) Pedersen cerrado erva

Anacardiaceae

Anacardium humile St.-Hill. cerrado subarbusto frutífera

Astronium fraxinifolium Schott cerrado árvore florestal

Myracrodruon urundeuva (Engl.) Fr.Al. cerrado árvore florestal

Tapirira guianensis Aubl. cerrado árvore

Annonaceae

Annona coriacea Mart. cerrado árvore frutífera

Annona crassiflora Mart. cerrado árvore frutífera

Annona dioica St.-Hill. cerrado arbusto frutífera

Annona nutans R.E.Fr. cerrado arbusto frutífera

Annona phaeoclados Mart. cerrado arbusto frutífera

Duguetia furfuracea (A. St.-Hil.) Benth & Hook. cerrado arbusto frutífera

Duguetia lanceolata A. St.-Hil. cerrado arbusto frutífera

Xylopia aromatica (Lam.) Mart. cerrado árvore medicinal

Apiaceae

Eryngium ebracteatum Lam. vereda erva

Eryngium elegans Cham. & schltdl. vereda erva

Apocynaceae

Aspidosperma macrocarpon Mart. cerrado árvore florestal

Aspidosperma tomentosum Mart. cerrado árvore florestal

Forsteronia pubescens DC. cerrado liana

Hancornia speciosa Gomes cerrado árvore frutífera

Continua

Continuação

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Himatanthus obovatus (M. Arg.) Woods. cerrado arvoreta ornamental

Macrosiphonia petraea (A. St.-Hil.) Schum. cerrado erva ornamental

Odontadenia lutea (Vell.) Marckgr. cerrado liana ornamental

Odontadenia nitida (Vell.) Müll. Arg. cerrado liana ornamental

Prestonia tomentosa R.Br. cerrado liana ornamental

Secondatia densiflora DC. cerrado liana ornamental

Aquifoliaceae

Ilex affinis Gardn. mata ciliar arvoreta

Arecaceae

Acrocomia aculeata (Jacq.) Lodd. ex Mart. cerrado árvore frutífera

Allagoptera campestris (Mart.) Kuntze cerrado arbusto ornamental

Mauritia flexuosa L.f. várzea árvore frutífera

Aristolochiaceae

Aristolochia esperanzae Kze. cerrado liana medicinal

Asclepiadaceae (Apocynaceae)

Blepharodon bicuspidatum E. Fourn. cerrado liana

Blepharodum nitidum J.F.Macbr. cerrado liana

Oxypetalum pachyglossum Decne. borda liana

Asteraceae

Acilepdopsis echitifolia (Mart.ex DC.) H.Rob. vereda subarbusto

Bidens gardneri Baker cerrado erva ornamental

Clibadium armanii (Balb.) Sch.Bip. ex Baker

Dasyphyllum brasiliense (Spreng.) Cabrera cerrado arbusto

Eclipta prostrata L. vereda erva

Emilia fosbergii Nicolson cerrado erva medicinal

Enidra radicans (Willd.) Lack vereda erva

Erechtites hieraciifolius (L.) Raf. Ex DC. vereda erva

Eupatorium macrocephalum Less. cerrado arbusto melífera

Eupatorium maximilianii Schrd. cerrado arbusto melífera

Eupatorium squalidum DCL. cerrado subarbusto melífera

Gochnatia barrosii Cabrera borda arbusto medicinal

Lessingianthus glabratus (Less.) H.Rob. vereda subarbusto

Melanthera latifolia (Gard.) Cabrera cerrado subarbusto

Mikania capricorni Rob cerrado liana

Mikania micrantha Kunth vereda subarbusto

Piptocarpha rotundifolia Baker cerrado arbusto

Porophyllum ruderale (Jacq.) Cass. cerrado erva medicinal

Continua

Continuação

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Spagneticola trilobata DC cerrado erva

Tilesia baccata (L.) Pruski vereda arbusto

Vernonia scabra Pers. cerrado arbusto melífera

Vernonia beyrichii Less. vereda subarbusto melífera

Vernonia brevifolia Less. cerrado subarbusto melífera

Vernonia chamaedrys Less. cerrado subarbusto melífera

Vernonia grandiflora Less. vereda subarbusto melífera

Vernonia rubricaulis H. et B. cerrado arbusto

Bignoniaceae

Anemopaegma arvense (Vell.) Stellfeld ex de Souza cerrado subarbusto medicinal

Arrabidaea cinnamomea (A.DC.) Sandwith cerrado liana ornamental

Arrabidaea brachypoda (DC.) Bureau cerrado arbusto ornamental

Cybistax antisyphilitica Mart. cerrado árvore florestal

Distictella elongata (Vell) Urb. cerrado liana ornamental

Fridericia florida (DC.) L.G. Lohmann cerrado liana ornamental

Jacaranda caroba (Vell.) A. DC. cerrado arbusto medicinal

Jacaranda cuspidifolia Mart. cerrado árvore florestal

Melloa quadrivalvis (Jacq.) Gentry cerrado liana ornamental

Memora peregrina (Miers) Sandwith cerrado arbusto

Pithecoctenium crucigerum (L.) Gentry cerrado liana

Pyrostegia venusta Miers cerrado liana ornamental

Tabebuia aurea (Manso) B. et H. cerrado árvore florestal

Tabebuia ochracea (Cham.) Stdl. cerrado árvore florestal

Zeyhera montana Mart. cerrado arbusto

Bombacaceae (Malvaceae)

Eriotheca gracilipes (Schum.) Robyns cerrado árvore florestal

Pseudobombax longiflorum (Mart. & Zucc.) Rob. cerrado árvore florestal

Pseudobombax marginatum (A.St.-Hil.,) A.Robyns cerrado árvore florestal

Boraginaceae

Cordia sellowiana Cham. cerrado árvore florestal

Bromeliacae

Ananas ananassoides (Bak.) L.B. Smith cerrado erva rosulada ornamental

Bromelia balansae Mez cerrado erva rosulada orn. e med.

Burmanniaceae

Burmannia flava Mart. vereda erva

Burseraceae

Protium heptaphyllum (Aubl.) March. mata ciliar árvore florestal

Continua

Continuação

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Protium ovatum Engl. cerrado arbusto

Protium spruceanum (Benth.) Engl. mata ciliar arvoreta florestal

Cabombaceae

Cabomba furcata Schult. & Schult. F. vereda erva

Caesalpiniaceae (Fabaceae)

Bauhinia mollis (Bong.) Dietr. cerrado arbusto medicinal

Bauhinia pentandra (Bong.) Vog. cerrado arbusto medicinal

Bauhinia rufa (Bong.) Steud. cerrado arbusto medicinal

Bauhinia ungulata L. cerrado arbusto medicinal

Chamaecrista campestris (Benth.) H.S.Irwin & Barneby cerrado erva ornamental

Chamaecrista desvauxii (Collad.) Killip cerrado subarbusto forrageira

Chamaecrista flexuosa (L.) Greene cerrado subarbusto forrageira

Chamaecrista nictitans Collad. cerrado erva forrageira

Chamaecrista rotundifolia (Pers.) Greene cerrado erva forrageira

Chamaecrista serpens (L.) Greene cerrado erva forrageira

Copaifera langsdorffii Desf. cerrado árvore flor. e med.

Dimorphandra mollis Bth. cerrado árvore florestal

Diptychandra aurantiaca (Mart.) Tul. cerrado árvore florestal

Hymenaea courbaril L. próximo à vereda árvore flor. e alim.

Hymenaea stigonocarpa (Mart.) Hayne cerrado árvore flor. e alim.

Senna occidentalis (L.) Link cerrado subarbusto medicinal

Senna rugosa (G. Don) H.S.Irwin & Barneby cerrado arbusto ornamental

Senna silvestris H.S.Irwin & Barneby cerrado arbusto ornamental

Caryocaraceae

Caryocar brasiliense Camb. cerrado árvore flor. e alim.

Caryophyllaceae

Drymaria cordata (L.) Willd. ex Roem & Schult. vereda erva

Cecropiaceae

Cecropia pachystachya Trec. vereda árvore ecológica

Celastraceae

Austroplenckia populnea Reissek (Plenckia) cerrado árvore florestal

Chrysobalanaceae

Couepia grandiflora (Mart. & Zucc.) Bth. cerrado árvore florestal

Licania humilis Cham. & Schltdl cerrado árvore florestal

Parinari obtusifolia Hooker f. cerrado arbusto

Clusiaceae

Clusia criuva Cambess. vereda arvoreta

Continua

Continuação

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Kielmeyera coriacea Mart. cerrado árvore flor, orn. e med.

Cochlospermaceae (Bixaceae)

Cochlospermum regium (Mart. & Schl.) Pilg. cerrado arbusto orn. e med.

Combretaceae

Buchenavia tomentosa Eichl. cerrado árvore florestal

Terminalia argentea Mart. cerrado árvore florestal

Terminalia brasiliensis Camb. cerrado árvore florestal

Terminalia glabrescens Mart. cerrado árvore florestal

Commelinaceae

Commelina ereta L. cerrado erva medicinal

Connaraceae

Connarus suberosus Planch. cerrado arvoreta florestal

Rourea induta Planch. cerrado arbusto medicinal

Convolvulaceae

Ipomoea asarifolia (Desr.) Roem. & Schult. cerrado liana ornamental

Ipomoea procumbens Mart.ex Choisy cerrado liana ornamental

Merremia macrocalyx (Ruiz & Pav.) O'Donell cerrado liana

Merremia cissoides (Lam.) Hallier f. cerrado liana

Cyperaceae

Ascolepis brasiliensis (Kunth) Benth. ex C.B. Clarke vereda erva

Bulbostylis capillaris (L.) C.B.Clarke. vereda erva

Calyptrocarya longifolia (Rudge) Kunth vereda erva

Cyperus esculentus L. vereda erva

Cyperus flavus J. Presl & C. Presl vereda erva

Cyperus haspan L. vereda erva

Cyperus iria L. vereda erva

Cyperus laetus J. Presl & C. Presl vereda erva

Cyperus lanceolatus Poir. vereda erva

Cyperus laxus Lam. cerrado erva

Cyperus luzulae (L.) Rottb. ex. Retz. vereda erva

Cyperus odoratus L. vereda erva

Cyperus reflexus Vahl vereda erva

Cyperus surinamensis Rottb. vereda erva

Eleocharis capillacea Kunth vereda erva

Eleocharis elegans (Kunth) Roem. & Schult. vereda erva

Eleocharis filiculmis Kunth vereda erva

Eleocharis geniculata (L.) Roem. & Schult vereda erva

Continua

Continuação

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Eleocharis interstincta (Vahl) Roem. & Schult. vereda erva

Eleocharis minima Kunth vereda erva

Eleocharis montana (Kunth) Roem. & Schult. vereda erva

Eleocharis sellowiana Kunth vereda erva

Fimbristylis autumnalis (L.) Roem. & Schult. vereda erva

Fimbristylis squarrosa Vahl vereda erva

Fuirena umbellata Rottb. vereda erva

Kyllinga odorata Vahl vereda erva

Kyllinga vaginata Lam. vereda erva

Oxycaryum cubense (Poepp. & Kunth) Palla vereda erva

Rhynchospora corymbosa (L.) Britton vereda erva

Rhynchospora trispicata (Nees) Steud vereda erva

Rhynchospora velutina (Kunth) Boeck. vereda erva

Scleria melaleuca Rchb. Ex Schltdl. & Cham vereda erva

Dilleniaceae

Curatella americana L. cerrado árvore florestal

Davilla elliptica St.-Hil. cerrado arbusto ornamental

Doliocarpus dentatus (Aubl) Standl. cerrado liana

Dioscoreaceae

Dioscorea trifida L. cerrado liana

Ebenaceae

Diospyrus hispida DC. cerrado arvoreta frutífera

Diospyrus obovata DC. cerrado arvoreta frutífera

Eriocaulaceae

Syngonanthus gracilis Mart. vereda erva ornamental

Erythroxylaceae

Erythroxylum deciduum St.-Hil. cerrado arbusto

Erythroxylum campestre A.St.-Hil. cerrado arbusto

Erythroxylum suberosum A.St.-Hil. cerrado arvoreta

Euphorbiaceae

Caperonia palustris (L.) A. St.-Hil. vereda erva

Cnidosculus albomaculatus (Pax) I.M.Johnst. cerrado subarusto medicinal

Cnidosculus appendiculatus P. & H. cerrado subarusto medicinal

Croton bonplandianus Baill. cerrado erva

Croton campestris A.St.-Hil. cerrado subarusto

Croton glandulosus L. cerrado erva

Croton lobatus L. cerrado erva

Continua

Continuação

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Croton lundianus (Didr.) Müll. Arg. cerrado erva

Dalechampia micromeria Baill mata ciliar liana

Dalechampia scandens L. mata ciliar liana

Jatropha elliptica (Pohl) Müll. Arg. cerrado subarusto medicinal

Mabea fistulifera Mart. cerrado árvore

Manihot caerulescens Pohl cerrado subarbusto recurso genético

Manihot gracilis R.W.Pohl cerrado subarbusto recurso genético

Manihot tripartida Müll. Arg. cerrado subarbusto

Maprounea guianensis Aubl. cerrado árvore

Phyllanthus orbiculatus L.C. Rich. (Phyllanthaceae) cerrado erva medicinal

Sapium hasslerianum Huber cerrado arbusto

Sebastiania corniculata (Vahl) Müll. Arg. cerrado erva

Sebastiania hispida (Mart.) Pax cerrado subarbusto

Fabaceae

Acosmium subelegans (Mohlenbr.) Yakovlev cerrado arvoreta florestal

Aeschynomene americana L. cerrado erva forrageira

Aeschynomene histrix Poir cerrado erva forrageira

Aeschynomene paniculata WilldexVogel cerrado subarbusto forrageira

Aeschynomene rudis Benth. cerrado erva forrageira

Andira cuyabensis Benth cerrado árvore florestal

Andira humilis Mart. Ex Benth cerrado subarbusto ornamental

Andira vermifuga Mart. Ex Benth cerrado árvore florestal

Arachis hypogaea L. cerrado erva recurso genético

Arachis kuhlmannii Krap. et Greg. cerrado erva recurso genético

Arachis repens Handro cerrado erva recurso genético

Bowdichia virgilioides Kunth cerrado árvore flor. e med.

Calopogonium caeruleum (Bth.) Sauv. cerrado erva trep. forrageira

Camptosema ellipticum (Desv.) Burkart cerrado arbusto ornamental

Centrosema angustifolium (Kunth) Benth. cerrado erva trep. forrageira

Centrosema pubescens Benth. cerrado erva trep. forrageira

Centrosema virginianum (L.) Benth. cerrado erva trep. forrageira

Crotalaria micans Link cerrado erva forrageira

Crotalaria pilosa Mill. várzea subarbusto forrageira

Crotalaria stipularia Desv. cerrado erva forrageira

Dalbergia miscolobium Benth. entorno árvore flor. e orn.

Desmodium barbatum (L.) Benth. vereda erva forrageira

Desmodium incanum DC. cerrado erva forrageira

Continua

Continuação

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Desmodium incinatum (Jacq.) DC. cerrado erva forrageira

Desmodium tortuosum (Swartz DC.) cerrado subarbusto forrageira

Dioclea violacea Mart. ex Benth. cerrado liana forrageira

Eriosema platycarpon Mich. cerrado subarbusto forrageira

Galactia eriosematoides Harms. cerrado arbusto medicinal

Machaerium acutifolium Vogel cerrado árvore florestal

Machaerium villosum Vogel entorno árvore florestal

Platypodium elegans Vogel cerrado árvore florestal

Riedeliella graciliflora Harms cerrado arbusto

Sesbania exasperata H. B. K. cerrado arbusto

Stylosanthes acuminata M.B.Ferreira & Sousa Costa cerrado subarbusto forrageira

Stylosanthes guianensis (Aubl.) Sw. cerrado subarbusto forrageira

Stylosanthes viscosa (L.) Sw. cerrado subarbusto forrageira

Vatairea macrocarpa (Benth.) Ducke cerrado árvore florestal

Zornia crinita (Mohlenbr.) Vanni cerrado erva forrageira

Zornia reticulata Sm. cerrado erva forrageira

Flacourtiaceae (Salicaceae)

Casearia sylvestris Sw. cerrado arbusto medicinal

Gentianaceae

Irlbachia alata (Mart.) J.Pers. & Maas vereda erva ornamental

Gesneriaceae

Sinningia elatior (Kunth) Chautems vereda erva ornamental

Heliconiaceae

Heliconia psittacorum L. f. mata ciliar erva ornamental

Hippocrateaceae (Celastraceae)

Peritassa campestris (Cambess.) A.C.Sm. cerrado arbusto

Hydrocharitaceae

Egeria najas Planch. vereda erva

Limnobium laevigatum (Humb. & Bonpl. ex Willd.) Heine vereda erva

Icacinaceae

Casimirella lanata Howard entorno arvoreta

Juncaceae

Juncus densiflorus Kunth vereda erva

Lacistemataceae

Lacistema hasslerianum Chodat cerrado arbusto

Lamiaceae

Hyptis brevips Poit borda erva medicinal

Continua

Continuação

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Hyptis lagenaria A.St.-Hil. ex. Benth. borda erva medicinal

Hyptis lorentziana O. Hoffm. vereda erva medicinal

Hyptis suaveolens (L.) Poit. cerrado subarbusto medicinal

Hyptis villosa Pohl ex Benth cerrado erva medicinal

Peltodon tomentosus Pohl cerrado subarbusto medicinal

Lauraceae

Cassyta filiformes L. vereda erva

Nectandra cuspidata Nees cerrado árvore florestal

Lecythidaceae

Eschweilera nana (Berg) Miers cerrado arvoreta ornam. e alim.

Lentibulariaceae

Utricularia breviscapa Wright ex Griseb. várzea erva

Utricularia breviscapa foliosa L. várzea erva

Utricularia gibba L. várzea erva

Lycopodiaceae

Lycopodiella camporum B. Ollg. & P.G. Windisch vereda erva ornamental

Limnocharitaceae

Hydrocleys parviflora Seub. vereda erva

Loganiaceae

Strychnos pseudoquina A.St.-Hil. cerrado árvore florestal

Lythraceae

Cuphea ingrata Cham. & Schltdl. borda erva medicinal

Cuphea linarioides Cham. & Schltdl. cerrado erva medicinal

Lafoensia pacari A.St.-Hil. cerrado árvore med e orn.

Malpighiaceae

Banisteriopsis campestris (A.Juss.) Little cerrado arbusto ornamental

Diplopteris pubipetala (A.Juss.) W.R. And. & C. Cav. D. cerrado liana ornamental

Byrsonima coccolobifolia Kunth cerrado árvore ornamental

Byrsonima intermedia A.Juss. cerrado arbusto ornamental

Byrsonima subterranea Brade & Markgr. cerrado subarbusto ornamental

Heteropterys aphrodisiaca O.Mach. cerrado arbusto medicinal

Heteropterys byrsonimifolia A.Juss. cerrado arbusto ornamental

Heteropterys hypericifolia A.Juss. cerrado arbusto ornamental

Heteropterys umbellata A.Juss. cerrado arbusto ornamental

Tetrapterys salicifolia (A.Juss.) Nied. cerrado subarbusto ornamental

Malvaceae

Abutilon bedfordianum (Hook) (St. Hil.) & Naud. cerrado subarbusto ornamental

Continua

Continuação

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Abutilon ramiflorum St.-Hill. cerrado subarbusto

Pavonia communis A.St.-Hil. vereda erva ornamental

Pavonia guerkeana R.E.Fr. cerrado arbusto ornamental

Pavonia sessiliflora Kunth cerrado erva ornamental

Pavonia sidifolia Kunth cerrado erva ornamental

Peltaea polymorpha (A.St.-Hil.) Krapv. & Cristóbal cerrado subarbusto ornamental

Sida glaziovii K. Schum vereda erva

Sida linifolia Juss. ex Cav. cerrado erva

Sidastrum paniculatum (L.) Fryxell cerrado subarbusto

Marantaceae

Thalia geniculata L. várzea erva

Melastomataceae

Acisanthera alsinaefolia (DC.) Triana vereda erva ornamental

Acisanthera variabilis (Mart.) Triana vereda erva ornamental

Desmoscelis villosa (Aubl.) Naudin vereda subarbusto ornamental

Leandra scabra DC. borda arbusto ornamental

Macairea radula (Bonpl.) DC. vereda arbusto ornamental

Miconia albicans (Sw.) Triana cerrado arbusto ornamental

Miconia chamissois Naudin vereda arbusto ornamental

Miconia fallax DC. mata ciliar arbusto ornamental

Miconia stenostachya DC. cerrado arbusto ornamental

Microlicia isophylla DC. vereda subarbusto ornamental

Mouriri elliptica Mart. cerrado arbusto frutífera

Pterolepis glomerata (Rottb.) Miq. vereda arvoreta ornamental

Rhynchanthera cordata DC. vereda arbusto ornamental

Rhynchanthera dichotoma (Desr.) DC. vereda arbusto ornamental

Rhynchanthera hispida Naudin vereda arbusto ornamental

Tibouchina gracilis (Bonpl.) Cogn. vereda subarbusto ornamental

Tibouchina herbacea (DC.) Cogn. vereda subarbusto ornamental

Tibouchina sebastianopolitana (Raddi) Cogn. vereda subarbusto ornamental

Menispermaceae

Cissampelos ovalifolia DC. cerrado subarbusto

Mimosaceae (Fabaceae)

Anadenanthera colubrina (Vell.) Brenan cerrado árvore florestal

Calliandra parviflora Bth. cerrado arbusto

Enterolobium contortisiliquum (Vell.) Morong cerrado árvore florestal

Enterolobium gummiferum (Mart.) J.F.Macbr. cerrado árvore florestal

Continua

Continuação

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Leucochloron incuriale (Vell.) Barneby & J.W.Grimes cerrado árvore florestal

Mimosa debilis Humb.&Bonpl. ex Willd. cerrado arbusto ornamental

Mimosa invisa Mart. cerrado subarbusto ornamental

Mimosa nuda Benth. cerrado subarbusto ornamental

Mimosa polycarpa Kunth cerrado subarbusto ornamental

Mimosa rixosa Mart. cerrado subarbusto ornamental

Mimosa setosa Benth. várzea arbusto

Mimosa somnians Willd. cerrado arbusto ornamental

Mimosa xanthocentra (Benth.) Barneby cerrado subarbusto ornamental

Plathymenia reticulata Benth. cerrado árvore florestal

Stryphnodendrum adstringens (Mart.) Coville cerrado árvore flor. e med.

Stryphnodendrum obovatum Benth. cerrado árvore flor. e med.

Stryphnodendrum polyphyllum Mart. cerrado árvore flor. e med.

Molluginaceae

Mollugo verticillata L. borda erva

Monimiaceae

Siparuna guianensis Aubl. mata ciliar arbusto medicinal

Moraceae

Brosimum gaudichaudii Trécul. cerrado arbusto med. e alim.

Myristicaceae

Virola sebifera Aubl. cerrado e mata ciliar árvore florestal

Myrtaceae

Campomanesia adamantium (Cambess.) O. Berg cerrado arbusto frutífera

Campomanesia sessiflora (O. Berg) Mattos cerrado arbusto frutífera

Eugenia dysenterica DC. entorno arbusto frutífera

Eugenia pitanga Kiaersk. cerrado subarbusto frutífera

Myrcia bella Cambess. cerrado arvoreta frutífera

Myrcia linearifolia Cambess. cerrado subarbusto ornamental

Myrcia lingua (O. Berg) Mattos cerrado arvoreta frutífera

Myrcia fallax (Rich.) DC. mata ciliar arbusto frutífera

Myrciaria cuspidata O.Berg. cerrado subarbusto frutífera

Nyctaginaceae

Guapira noxia (Netto) Lundell cerrado arvoreta florestal

Neea theifera Oerst. cerrado arvoreta florestal

Ochnaceae

Ouratea floribunda (A.St.-Hil.) Engl. cerrado arbusto ornamental

Ouratea nana (A.St.-Hil.) Engl. entorno arbusto ornamental

Continua

Continuação

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Ouratea spectabilis (Mart.) Engl. entorno árvore ornamental

Sauvagesia ereta L. vereda erva ornamental

Onagraceae

Ludwigia lagunae (Morong) Hara vereda subarbusto

Ludwigia longifolia (DC.) Hara vereda subarbusto

Ludwigia octovalvis (Jacq.) P.H. raven vereda arbusto

Orchidaceae

Cyrtopodium paludiculum Hoehne. vereda erva grande ornamental

Habenaria glazioviana Kraenzl. ex Cogn. vereda erva ornamental

Oeceoclades maculata (Lindl.) Lindl. cerrado erva ornamental

Oxalidaceae

Oxalis grisea A.St.-Hil. & Naudin cerrado erva

Passifloraceae

Passiflora cincinnata Mast. cerrado liana frutífera

Passiflora foetida L. cerrado liana recurso genético

Passiflora giberti N.E.Brown cerrado liana recurso genético

Passiflora pohlii Mast. cerrado liana recurso genético

Passiflora tricuspis Mast cerrado liana recurso genético

Pinaceae

Pinus elliottii Engel. exótica árvore

Piperaceae

Piper tuberculatum Jacq. vereda erva

Poaceae

Andropogon bicornis L. vereda erva forrageira

Andropogon leucostachyus Kunth vereda erva forrageira

Axonopus pressus (Nees ex Steud.) Parodi. cerrado erva forrageira

Echinochloa polystachya (Kunth) Hitchc. vereda erva forrageira

Eragrostis pilosa (L.) P.Beauv. borda erva forrageira

Eragrostis rufescens Schrad. ex Schult. borda erva forrageira

Eryocrysis cayennensis P. Beauv. vereda erva forrageira

Gymnopogon foliosus (Willd.) Nees cerrado erva forrageira

Hymenachne amplexicaulis (Rudge) Nees vereda erva forrageira

Hyparrhenia rufa (Nees) Stapf borda erva forrageira

Imperata tenuis Hackel vereda erva forrageira

Leersia hexandra Sw. vereda erva forrageira

Loudetiopsis chrysothrix (Nees) Conert cerrado erva forrageira

Melinis minutiflora P. Beauv. borda erva forrageira

Continua

Continuação

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Panicum aquaticum Poir. vereda erva forrageira

Panicum laxum Sw. vereda erva forrageira

Panicum mertensii Roth vereda erva forrageira

Panicum pernambucense (Spreng.) Mez vereda erva forrageira

Panicum sellowii Nees cerrado erva forrageira

Panicum sp. cerrado erva forrageira

Paspalum acuminatum Raddi várzea erva forrageira

Paspalum repens Berg. vereda erva forrageira

Pennisetum setosum (Sw.) Rich. borda erva forrageira

Rhynchelytrum repens (Willd) C.E.Hubb. borda erva forrageira

Setaria parviflora (Poir.) Kerguélen vereda erva forrageira

Sporolobus indicus (L.) R. Br. borda erva forrageira

Urochloa decumbens Stapf borda erva forrageira

Urochloa humidicola (Rend.) vereda erva forrageira

Polygalaceae

Bredemeyera floribunda Willd. cerrado arbusto medicinal

Monnina richardiana A.St.-Hil. & Moq. vereda erva

Coccoloba mollis Casar borda árvore florestal

Polygonaceae

Rumex palustris Sm. borda erva

Portulacaceae

Portulaca striata Poelln. borda erva ornamental

Proteaceae

Roupala montana Aubl. cerrado árvore florestal

Rhamnaceae

Gouania latifolia Reissek borda liana

Rhamnidium elaeocarpum Reissek mata ciliar árvore florestal

Rubiaceae

Alibertia concolor (Cham.) K.Schum. cerrado arbusto frutífera

Alibertia edulis (Rich.) A.Rich. Ex DC. cerrado arbusto frutífera

Alibertia sessilis (Vell.) K.Schum cerrado arbusto medicinal

Coccocyoselum lanceolatum (Ruiz & Pav.) Pers. vereda erva ornamental

Declieuxia fruticosa (Willd. Ex Roem. & Schult.) Kuntze cerrado subarbusto

Galianthe dichasia (Sucre & Costa) E.L. Cabral borda erva

Guetarda viburnoides Cham. & Schltdl. cerrado arbusto

Palicourea rigida Kunth cerrado arvoreta

Richardia grandiflora (Cham. & Schltdl.) Steud. borda erva

Continua

Continuação

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Sipanea hispida Benth. ex Wernham vereda erva ornamental

Spermacoce latifolia Aubl. borda e várzea erva

Staelia thymoides C.et S. borda erva

Tocoyena brasiliensis Mart. cerrado arbusto ornamental

Tocoyena formosa (Cham. & Schltdl.) K.Schum. cerrado arbusto ornamental

Sapindaceae

Cardiospermum grandiflorum Sw. cerrado liana

Dilodendron bipinnatum Radlk. cerrado árvore florestal

Magonia pubescens A.St.-Hil. cerrado árvore florestal

Matayba elaeagnoides Radlk. cerrado arvoreta

Matayba guianensis Aubl. cerrado arvoreta

Serjania caracasana (Jacq.) Willd. borda liana

Serjania erecta Radlk. cerrado arbusto

Serjania lethalis A.St.Hil. borda liana

Sapotaceae

Pouteria ramiflora (Mart.) Radlk. cerrado árvore florestal

Pouteria torta (Mart.) Radlk. cerrado árvore florestal

Pradosia brevipes (Pierre) T.D.Penn. cerrado subarbusto orn. e alim.

Scrophulariaceae

Buchnera longifolia H.B.K. (Orobanchaceae) borda erva

Scoparia dulcis L. (Plantaginaceae) borda erva

Verbascum nigrum L. vereda erva

Smilacaceae

Smilax brasiliensis Spreng. cerrado liana medicinal

Smilax cissoides Martius ex Grisebach cerrado liana medicinal

Smilax fluminensis Steud. cerrado liana medicinal

Smilax japicanga Griseb. mata ciliar liana medicinal

Smilax goyazana DC. cerrado liana medicinal

Smilax polyantha Griseb. cerrado liana medicinal

Smilax campestris Grisebach cerrado liana medicinal

Solanaceae

Solanum lycocarpum A.St.-Hil. cerrado arbusto medicinal

Solanum paniculatum L. borda arbusto med. e alim.

Schwenckia micrantha Benth. borda subarbusto

Sterculiaceae (Malvaceae)

Ayenia tomentosa L. cerrado erva

Helicteres lhotzkyana (Schott & Endl.) K.Schum. cerrado subarbusto ornamental

Continua

Continuação

Família/Espécie Fitofisionomia Porte Pot. agronômico

Melochia pyramidata L. mata ciliar subarbusto fibras

Melochia simplex A.St.- Hill. vereda erva

Melochia tomentosa L. vereda erva

Waltheria douradinha St. Hill. cerrado erva medicinal

Waltheria indica L. cerrado erva

Tiliaceae (Malvaceae)

Luehea grandiflora Mart. cerrado árvore florestal

Corchorus argutus H.B.K. borda subarbusto

Turneraceae

Piriqueta corumbensis Moura borda erva ornamental

Piriqueta rosea (Cambess.) Urb. cerrado erva ornamental

Turnera melochioides Camb. borda erva ornamental

Typhaceae

Typha domingensis Pers. vereda erva

Typha angustifolia L. vereda erva

Verbenaceae

Aegiphila lhotzkyana Cham. (Lamiaceae) cerrado arbusto

Lippia lasiocalycina Cham. cerrado arbusto ornamental

Lippia lupulina Cham. cerrado subarbusto ornamental

Violaceae

Hybanthus calceolaria (L.) borda erva ornamental

Vochysiaceae

Qualea grandiflora Mart. cerrado árvore florestal

Qualea multiflora Mart. cerrado árvore florestal

Qualea parviflora Mart. cerrado árvore florestal

Xyridaceae

Xyris jupicai L.C.Rich. vereda erva

Xyris savanensis Miq. vereda erva

Abreviaturas utilizadas: med.=medicinal, orn.=ornamental e flor.=florestal.

Tabela 3 - Espécies coletadas na área do Exército, para verificação de colonização

micorrízica. Famílias e espécies, nomes populares, porcentagem e índice de colonização

observadas.

Famílias/ espécies nomes populares % índice

Amaranthaceae

Gomphrena macrocephala perpétua 10 baixa

Anacardiaceae

Anacardium humile cajuzinho 79 alta

Astronium fraxinifolium gonçalo 89 muito alta

Myracrodruon urundeuva aroeira 80 muito alta

Annonaceae

Duguetia furfuracea marolinho 08 baixa

Duguetia lanceolata pindaíba-vermelha 70 alta

Xylopia aromatica pindaíba 82 muito alta

Apocynaceae

Aspidosperma tomentosum guatambu-do-cerrado 09 baixa

Arecaceae

Acrocomia aculeata macaúba 90 muito alta

Allagoptera campestris buri-do-campo 84 muito alta

Bignoniaceae

Anemopaegma arvense carobinha 73 alta

Cybistax antisyphilitica ipê-verde 80 muito alta

Jacaranda decurrens caroba-rasteira 89 muito alta

Jacaranda rufa caroba-nova 74 alta

Tabebuia ochracea ipê-amarelo 84 muito alta

Bombacaceae

Eriotheca gracilipes paininha 70 alta

Bromeliaceae

Bromelia balansae caraguatá 90 muito alta

Burseraceae

Protium ovatum protium 70 alta

Cactaceae

Praecereus euchlorus xique-xique 80 muito alta

Caesalpiniaceae

Dimorphandra mollis fava-de-anta 70 alta

Diptychandra aurantiaca balsemim zero ausente

Hymenaea stigonocarpa jatobá 86 muito alta

Caryocaraceae

Continua

Continuação

Famílias/ espécies nomes populares % índice

Caryocar brasiliense pequi 68 alta

Clusiaceae

Kielmeyera coriacea pau-santo 80 muito alta

Dilleniaceae

Davilla elliptica cipó-caboclo 72 alta

Fabaceae

Andira humilis angelim-do-campo 85 muito alta

Arachis hypogaea amendoim 08 baixa

Bowdichia virgilioides sucupira-preta 82 muito alta

Galactia eriosematoides galactia 79 alta

Flacortiaceae

Casearia sylvestris guaçatonga 08 baixa

Lecythidaceae

Eschweilera nana sapucaia 09 baixa

Mimosaceae

Anadenanthera falcata angico 82 muito alta

Enterolobium gummiferum orelha-de-macaco 70 alta

Mimosa hebecarpa angico-rosa 10 baixa

Plathymenia reticulata vinhático 70 alta

Stryphnodendron adstringens barbatimão 73 alta

Myrtaceae

Eugenia bimarginata eugenia 76 alta

Myrcia linearifolia alecrim-do-cerrado 70 alta

Rubiaceae

Palicourea rigida douradinha 96 muito alta

Sapindaceae

Serjania erecta cipó-timbó 70 alta

Sapotaceae

Pouteria ramiflora abiu-do-cerrado 80 muito alta

Pradosia brevipes tatu 10 baixa

Turneraceae

Piriqueta rosea piriqueta 76 alta

Vochysiaceae

Qualea grandiflora pau-terra 72 alta

Tabela 4 - Espécies coletadas no Parque Capivaras, para verificação de colonização

micorrízica. Famílias e espécies, nomes populares, porcentagem e índice de colonização

observadas.

Famílias/ espécies nomes populares % índice

Anacardiacae

Astronium fraxinifolium gonçalo-alves 78 alta

Annonaceae

Annona coriacea marolo 91 muito alta

Duguetia furfuracea marolinho 82 muito alta

Duguetia lanceolata pindaíba-vermelha 83 muito alta

Xylopia aromatica pindaíba 100 muito alta

Apocynaceae

Aspidosperma tomentosum guatambú zero ausente

Hancornia speciosa mangaba 96 muito alta

Himatanthus obovatus tiborna 93 muito alta

Arecaceae

Allagoptera campestris buri-do-campo 72 alta

Bignoniaceae

Cybistax antisyphilitica ipê-verde 10 baixa

Jacaranda cuspidifolia jacaranda 78 alta

Tabebuia ochracea ipê-amarelo 72 alta

Bombacaceae

Eriotheca gracilipes paininha 71 alta

Bromeliaceae

Ananas ananassoides bromélia zero ausente

Caesalpiniaceae

Copaifera langsdorffii copaíba 89 muito alta

Hymenaea courbaril jatobá-do-mato 86 muito alta

Hymenaea stigonocarpa jatobá 78 alta

Caryocaraceae

Caryocar brasiliense pequi 75 alta

Cochlospermaceae

Cochlospermum regium algodãozinho 90 muito alta

Dilleniaceae

Davilla elliptica cipó-de-caboclo 97 muito alta

Doliocarpus dentatus cipó-de-fogo 72 alta

Fabaceae

Arachis hypogaea amendoim 70 alta

Continua

Continuação

Famílias/ espécies nomes populares % índice

Desmodium barbatum desmodio zero ausente

Vatairea macrocarpa amarelinho zero ausente

Galactia eriosematoides desconhecido zero alta

Hippocratiaceae

Peritassa campestris bacupari 91 muito alta

Lecythidaceae

Eschweilera nana sapucaia 71 alta

Mimosaceae

Anadenanthera colubrina angico 86 muito alta

Plathymenia reticulata vinhático 96 muito alta

Miristicaceae

Virola sebifera bicuíba 68 alta

Moraceae

Brosimum gaudichaudii mama-cadela zero ausente

Myrtaceae

Myrcia linearifolia alecrim-do-cerrado 92 muito alta

Orchidaceae

Oeceoclades maculata orquídea terrestre 83 muito alta

Proteacae

Roupala montana roupala zero ausente

Rubiaceae

Palicourea rigida douradinha 83 muito alta

Sapindaceae

Cardiospermum grandiflorum cardiospermo 87 muito alta

Dilodendron bipinnatum maria-pobre 83 muito alta

Magonia pubescens timbó 89 muito alta

Serjania erecta cipó-timbó 91 muito alta

Serjania lethalis serjania 83 muito alta

Sapotaceae

Pouteria ramiflora abiu-do-cerrado 70 alta

Pradosia brevipes tatu 70 alta

Vochysiaceae

Qualea grandiflora pau-terra-amarelo 79 alta

Qualea multiflora pau-terra-pintado 71 alta

Figura 1- Mapa de localização e imagem de satélite das três áreas sob estudo.

Figura 2-Fotografia representativa da área da Reserva do Exército, Cerrado Sentido Restrito-

Cerrado Típico. Fonte: Neto (2009).

Figura 3-Fotografias representativas da área do Parque Capivaras,Cerrado Sentido Restrito-

Cerrado Denso e Veredas. Fonte: Neto (2009).

Tabela 5 – Características químicas do solo e número de esporos de fungos micorrízicos arbusculares, das áreas da Reserva do Exército e do

Parque Capivaras.

Fósforo Mat. Org. pH Potássio Cálcio Mg Ac.Potencial Al SB CTC V

P - resina MO pH K Ca Magnésio H+Al Alumínio Soma Bases

Cap.Troca

Cat Sat. Bases N° de esporos/

mg dm

-3

g dm

-3

CaCl

mmol

-3

mmol

-3

mmol

-3

mmol

-3

mmol

-3

mmol

-3

mmol

-3

% 100g de solo

3 10 5.0 0.4 3 2 13 1 5.4 18.4 29 39

3 12 4.0 0.2 1 1 22 7 2.2 24.2 9 38

3 12 3.9 0.2 1 1 25 7 2.2 27.2 8 70

3 11 3.9 0.2 1 1 24 8 2.2 26.2 8 66

8 13 4.3 0.4 2 3 31 6 5.4 36.4 15 58

11 11 4.1 0.8 1 1 25 5 2.8 27.8 10 31

4 10 4.1 0.1 1 1 20 5 2.1 22.1 10 69

13 10 4.0 0.1 1 1 20 6 2.1 22.1 10 36

Índices dos elementos, comparados com os dados de Raig; Quaggio (1983). E1 e E2 representam pontos amostrais de Cerrado Típico da área do Exército; E3 de

pontos onde foi retirada a vegetação original e E4 Cerrado com presença de seixos. C1 e C2 representam pontos amostrais de Cerrado Denso da área do Parque Capivaras; C3

pontos onde a área é usada para manuteção de rede elétrica e C4 pontos próximos das Veredas. As cores representam: vermelho índices baixos e azul índices médios dos

elementos em questão.

6. REFERÊNCIAS

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Universidade de São Paulo, São Paulo, v.52, n.1, p.1-22, 1997.

AB’SABER, A.N. O domínio dos cerrados: introdução ao conhecimento. Revista do Serviço

Público, Brasília, v.111, n.4, p.41-55, 1983.

ABBOTT, L.K.; ROBSON, A.D. Factors influencing the ocurrence of vesicular-arbuscular

mycorrhizas. Agriculture Ecosystems Enviroment, Amsterdan, v.35, n.1, p.121-150, 1991.

ADÁMOLI, J.; MACÊDO, J.; AZEVEDO, L.G.; NETTO, J.M. Caracterização da região dos

cerrados. In: GOEDERT, W.J. (Ed.). Solos dos cerrados: tecnologias e estratégias de

manejo. [Planaltina: Embrapa-CPAC] São Paulo: Nobel, 1987. p.33-98.

ANGIOSPERM PHYLOGENY GROUP II. An update of the angyosperm phylogeny group

classification for the orders and families of flowering plants: APG II. Botanical Journal of

the Linnean Society, London, v.41, n.11, p.399-436, 2003.

AQUINO, F.G.; MIRANDA, G.H.B. Conseqüências ambientais da fragmentação de habitats

no Cerrado. In: SANO, S.M.; ALMEIDA, S.P.; RIBEIRO, J.F. (Ed.). Cerrado: ecologia e

flora. Brasília: Embrapa Cerrados/Embrapa Informação Tecnológica, 2008. 2 v. Cap 13,

p.383-395.

ARAÚJO, G.M.; BARBOSA, A.A.A.; ARANTES, A.A.; AMARAL, A.F. Composição

florística de veredas no Município de Uberlândia, MG. Revista Brasileira de Botânica, São

Paulo, v.25, n.4, p.475-493, 2002.

ASSAD, M.L.L. Fauna do solo. In: VARGAS, M.A.T.; HUNGRIA, M. Biologia dos solos

dos cerrados. Planaltina: EMBRAPA, 1997. 524p.

AUGÉ, R.M.; STODOLA, A.J.W.; TIMS, J.E.; SAXTON, A.M. Moisture retention

properties of a mycorrhizal soil. Plant and Soil, The Hague, v.230, n.1, p.87-97, 2001.

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CAPÍTULO 2: A FLORA RUDERAL DA VILA PILOTO EM TRÊS LAGOAS - MS,

BRASIL E SEU POTENCIAL PARA COLONIZAÇÃO MICORRÍZICA.

RESUMO-As plantas que crescem espontaneamente em terrenos baldios, frestas de calçadas

e muros, beiras de caminhos, em áreas urbanas são chamadas ruderais. Muitas destas plantas

são cultivadas como alimentícias, medicinais, ornamentais ou aparecem como invasoras em

hortas e jardins, enquanto outras são remanescentes da flora local. Independente da origem, as

plantas ruderais podem servir como excelente material para estudos em Botânica e Ecologia.

Este trabalho teve como objetivo identificar a composição florística e a origem da flora

ruderal, e sua colonização por fungos micorrízicos arbusculares (FMA), em área urbana (Vila

Piloto e seus arredores) no município de Três Lagoas-MS. A pesquisa foi realizada no período

compreendido entre agosto de 2007 e julho de 2009, por meio de observações mensais,

considerando os períodos reprodutivos das plantas. Foram encontradas 344 espécies

distribuídas em 202 gêneros e 61 famílias, três espécimes determinados apenas em nível de

gênero. Os dados obtidos permitiram concluir que a flora ruderal da Vila Piloto é composta de

plantas nativas e exóticas, sendo no contexto da totalidade das espécies, 280 nativas do

Continente Americano, 59 do Velho Mundo e quatro são consideradas cosmopolitas ou

pantropicais. Considerando a posição geoclimática do Brasil, as 281 espécies podem ser

consideradas nativas no Brasil e, dentre estas, 76 são típicas de Cerrado ou Cerradão. No

contexto geral, a maioria da flora encontrada é nativa do Brasil. Das 50 espécies escolhidas

para verificação da colonização micorrízica, 27 exibiram colonização muito alta, três alta,

duas média, 11 baixa e sete espécies não apresentaram colonização micorrízica, permitindo

concluir que a maioria das plantas ruderais estudadas apresentou colonização micorrízica. Os

resultados da amostragem do solo para os dois pontos coletados revelaram uma fertilidade que

pode ser considerada mais alta que a do cerrado típico e a média do número de esporos de

FMA foi 152 por 100g de solo

-1

seco, não podendo o mesmo ser considerado degradado.

Palavras-chave: Vegetação urbana. Origem geográfica. Ervas-daninhas. Micorriza

arbuscular.

CHAPTER 2: RUDERAL FLORA OF VILA PILOTO IN TRÊS LAGOAS - MS,

BRAZIL AND ITS POTENTIAL FOR MYCHORHIZAL COLONIZATION

SUMMARY- Plants which grow spontaneously in empty lands, on wall and pavement

openings or on roadsides in urban areas are called ruderal. Many of these plants are cultivated

as food, medicinal, ornamental or they appear as invaders in gardens, while others are

remnants of the local flora. Regardless of the origin, the ruderal plants serve as excellent

material for botanical and ecological studies. The goal of this research was to identify a

floristic composition and the origin of the ruderal flora, and also its colonization by arbuscular

mychorrizal fungi (FMA) in an urban area (Vila Piloto and its surroundings) in Três Lagoas-

MS County. The research was carried out between August 2007 and July 2009, through

monthly observations, considering the reproductive periods of the plants. Three hundred and

fourty four species were identified and distributed in 202 genera and 61 families, three

specimens determined only in genus level. The ruderal flora of Vila Piloto was composed by

native and exotic plants, and from the species total, 280 are native to the American Continent,

59 from the Old World and four are considered cosmopolitans or pantropical. Considering

Brazil’s geoclimatic location, the 281 are probably native species to Brazil, and among these,

76 are typical of cerrado or cerradão. In a general context, most of the flora found is native to

Brazil. Of the 50 species chosen for mychorhizal colonization verification, 27 had very high

colonization, three high, two medium, eleven low and seven species did not present any

colonization, indicating that the majority of the ruderal plants studied here had mychorhizal

colonization. The results from Vila Piloto soil samples collected from two points revealed a

fertility that can be considered higher than the typical Cerrado and an average number of

FMA spores of 152 per 100g of dry soil, which indicates that the soil cannot be considered

degraded.

Key words: Urban vegetation. Geographic origin. Weed. Arbucular micorizza.

1. INTRODUÇÃO

As plantas que crescem ou aparecem espontaneamente em vãos de calçadas, terrenos

baldios, beiras de muros e caminhos, podem ser consideradas ruderais. Apresentam elevado

grau de rusticidade e adaptação; portanto, devem ser dotadas de mecanismos muito eficientes

de competição, dispersão de propágulos e capacidade de utilização máxima de nutrientes.

É importante ressaltar que estas plantas são tratadas, muitas vezes, como invasoras de

culturas, mas há casos, como no presente trabalho, em que a cultura principal é inexistente. O

caráter invasor pode estar relacionado, mas não é exatamente igual ao caráter daninho ou

ruderal. As ervas daninhas são geralmente definidas como espécies não cultivadas, que se

proliferam em ambientes agrícolas, interferindo na produção da lavoura, embora o termo

tenha sido usado ocasionalmente em um contexto mais amplo.

As plantas ruderais, usualmente, são espécies exóticas, mas às vezes são nativas e

prosperam em condições de alta disponibilidade de nutrientes, luz e perturbação frequentes no

solo, aspectos típicos de campos cultivados. As espécies ruderais possuem atributos que

permitem seu sucesso em habitats temporários, incluindo campos cultivados e beiras de

estrada, bem como em áreas sujeitas a perturbações, como deslizamentos de terra ou

enchentes repentinas.

A palavra “ruderal” deriva de “rudere” no sentido de “selvagem” ou “grosseiro” ou

“ruínas”. Embora “daninha” e “ruderal” sejam termos usualmente empregados como

sinônimos, o primeiro é tipicamente utilizado na agricultura e o último, em ecologia

(GUREVITCH et al., 2009). Algumas espécies fazem parte da medicina caseira, outras

“escapam” de hortas, jardins ou pomares, e outras ainda não têm conhecidas suas utilidades.

Independente de seu uso, a flora ruderal serve como material de estudo para qualquer

subárea da Botânica, como em morfologia, anatomia, taxonomia e fisiologia, pois grande

parte delas é anual e de crescimento rápido, o que facilita seu estudo. Outro aspecto que pode

reforçar ainda mais a importância destas plantas é a sua ecologia: vegetam, florescem e

frutificam com tanta eficiência e tão pouca exigência, que poderiam ser solução para

recuperação de áreas degradadas, por meio das atividades antrópicas, e que, em muitos casos,

ainda sem solução.

A revegetação pode recompor as características originais do solo a um nível mínimo

que permita a atividade microbiana, e o desenvolvimento de espécies vegetais nativas. Os

microrganismos participam da ciclagem de nutrientes e podem ser utilizados como

bioindicadores para aferição da sustentabilidade dos ecossistemas. Dentre as inúmeras

relações biológicas encontradas no solo destacam-se as simbioses mutualistas entre fungos

micorrízicos arbusculares (FMA) e raízes, denominadas micorrizas, que abrangem cerca de

90% das plantas vasculares para as quais trazem benefícios à nutrição.

Particularmente, na área urbana de Três Lagoas-MS, muitas plantas que podem ser

classificadas como ruderais são típicas de Cerrado, uma vez que o Município está encravado

neste Bioma carente de atenções, reconhecida a enorme destruição que o afeta ao longo dos

últimos anos, principalmente devido à expansão agrícola brasileira. Desta forma, este trabalho

teve como objetivo identificar a composição florística e a origem da flora ruderal, e sua

colonização micorrízica, em área urbana (Vila Piloto e seus arredores) no município de Três

Lagoas-MS; e estabelecer relações com condições ambientais, com vistas a ampliar o

conhecimento sobre a vegetação nativa e introduzida, as quais poderiam ser utilizadas na

recuperação de áreas degradadas, fruto das mais diversas atividades antrópicas.

2. REVISÃO DE LITERATURA

2.1. Plantas ruderais

Desde o advento da agricultura e da urbanização há, aproximadamente 9000 anos

(TIVY, 1993), que a flora vem se especializando em viver no meio antropizado,

principalmente nos novos ecossistemas, criados devido ao acelerado crescimento

populacional e a ocupação de extensos espaços na superfície do planeta (CARNEIRO;

IRGANG, 2005).

O processo de urbanização é, possivelmente, uma das atividades humanas que mais se

desenvolveram no último século e, provavelmente, uma das principais causas de perturbação

do habitat e de mudança na diversidade de espécies em nível mundial (BERTIN, 2002) e,

consequentemente, pode atuar como promotor do estabelecimento de espécies não nativas

(KOWARIK, 1995). Todas essas alterações podem ser ameaças à singularidade biológica dos

ecossistemas locais (BLAIR, 2001; McKINNEY, 2006), pois promovem alterações das mais

variadas: retirada da vegetação nativa, alteração do solo pela adição de restos de construção,

pavimentação, compactação (CARNEIRO, 1998), e a retirada total da camada de solo.

O processo de urbanização está fortemente condicionado em cada caso pela história

local de uso de seu território e, seja em países desenvolvidos ou em desenvolvimento, as

cidades estão em processo de crescimento contínuo (GARCILLÁN et al., 2008). Os centros

urbanos e seus arredores podem apresentar uma diversidade florística, devido ao movimento

humano que transporta consigo propositadamente ou não, propágulos das mais diferentes

espécies (RAPOPORT et al., 1983), ainda podem ser importantes para a biodiversidade

(SUKOPP et al., 2003).

Esse ambiente artificial possui características especiais, comuns às aglomerações

urbanas. A cobertura de parte do solo com construções, pavimentação e saneamento, e a

atividade urbana implicam em várias alterações: na temperatura, que tende a ser mais alta nas

áreas urbanizadas que nos seus arredores; na radiação solar; na provisão da água, pois a

cobertura e compactação do solo fazem diminuir a percolação e aumentar o escoamento

superficial, além do tempo de iluminação que sofre um aumento devido à ação de luzes

artificiais (HAIG, 1980; MIESS, 1979). O período noturno iluminado artificialmente pode

alterar significativamente o fotoperíodo das plantas (RAPOPORT et al., 1983). A acidez do

solo pode ser elevada pela deposição de restos de construção, e a adição de excrementos

animais, restos de plantas e lixo fazem aumentar o conteúdo de fosfatos e nitrogênio

(SUKOPP et al., 1979).

Para pioneiros no reconhecimento da importância da conservação da

natureza, nos aglomerados humanos, pode haver condições para a conservação da natureza e da

paisagem (SUKOPP; WERNER, 1991).

A existência de grande heterogeneidade de micro-habitats pode afetar positivamente a

riqueza florística no ambiente urbano, principalmente levando-se em conta os diferentes usos

da terra e densidade de construções, incrementados pelas bordas, micro-habitats e pelos

micro-relevos criados pelo homem. O distúrbio contínuo das áreas urbanas desestabiliza o

meio, devido ao movimento de pessoas e veículos, operações de limpeza e mudanças no uso

da terra, acompanhadas pela destruição e edificação, de novas áreas urbanas. Condições

ambientais alteradas podem favorecer a sobrevivência de espécies fisiologicamente

semelhantes, em localidades geograficamente distantes (TIVY, 1993).

A facilidade dos meios de transportes e o contínuo movimento de pessoas quebram

barreiras geográficas, que seriam fatores impeditivos à dispersão das espécies (RAPOPORT,

1976). Os fatores já citados, juntamente com a adição de espécies de origem não nativa e ou

cosmopolita, dão condições para formação de uma nova vegetação, a ruderal, que de acordo

com Galvão et al., (2003) são aquelas que durante o processo evolutivo adaptaram-se a

ambientes humanos, ocupando beiras de calçadas, terrenos baldios e outros tipos de ambientes

urbanos, que são áreas com grande concentração de nitrogênio; algumas são invasoras, a

maioria é empregada na medicina caseira, outras são tóxicas ou têm propriedades inseticidas,

o que denota a importância do estudo dessa comunidade vegetal, especialmente do ponto de

vista sistemático, fitoquímico e fisiológico.

O termo ruderal abrange as plantas que vivem no meio criado pela habitação humana e

construções anexas, e que no significado mais amplo do termo inclui a vegetação viária e

arvense (FONT QUER, 1993). Importante ressaltar que, muitas vezes, são tratadas como

invasoras de culturas, mas em muitos casos, a cultura principal é inexistente. Algumas fazem

parte da medicina caseira, outras ainda não têm conhecidas suas utilidades ou ainda

“escapam” de hortas, jardins ou pomares. Independente de seu uso específico, a flora ruderal

serve como material de estudo para qualquer subárea da botânica, em morfologia, anatomia,

taxonomia e fisiologia, pois grande parte destas plantas é anual e de crescimento rápido, o que

facilita estudos sobre desenvolvimento vegetal (GRIMMING, 1995).

Outro aspecto que pode reforçar, ainda mais, a importância destas plantas é a sua

ecologia: vegetam, florescem e frutificam com tanta eficiência, que podem ser solução para

recuperação de áreas degradas, um problema que tanto cresce atualmente. Ademais, a

vegetação urbana pode quebrar a monotonia do concreto, adicionar interesse pela

biodiversidade e até preservar espécies em vias de extinção (CARNEIRO; IRGANG, 2005).

Elas são relevantes pela frequência em que são encontradas no bioma e por terem importância

nos estádios sucessionais das suas formações vegetais (MENDONÇA et al., 2008).

Apesar do grande impacto ecológico que causa a urbanização, estudos desse impacto

sobre a flora ou a fauna, não são muitos, entre eles destacam-se: Kuhlmann et al. (1947),

Pereira; Agarez (1974; 1977), Haig (1980), Rapoport et al. (1976; 1983; 1993), Cervi et al.

(1988), Gavilanes; D’Angieri Filho (1991), Valente et al. (1991), Franceschi (1996), Carneiro

(1998), Pedrotii; Guarim-Neto (1998), Carneiro; Irgand (1999; 2005), Schneider; Irgand

(2005), Pauchard et al. (2006), Schneider (2007) e Garcillán et al. (2008).

2.2. Plantas ruderais e micorrização

Os microrganismos são responsáveis pela maior parte da biodiversidade dos

ecossistemas, com representantes nos domínios Archae, Bacteria e Eucarya (MARGULIS;

SCHUWARTZ, 2001). Dentre estes, os fungos micorrízicos arbusculares (FMA), do filo

Glomeromycota (SCHÜßLER et al., 2001), formam simbiose mutualistas, denominadas

micorrizas arbusculares, com cerca de 90% das plantas vasculares, abrangendo quase todos os

gêneros de Gimnospermas e Angiopermas, além de alguns representantes de Briófitas e

Pteridófitas. Mesmo dentre as famílias botânicas citadas como não formadoras de micorrizas

(Brassicaceae, Amaranthaceae, Commelinaceae, Juncaceae, Cyperaceae, Proteaceae,

Poligonaceae e Chenopodiaceae) a não ocorrência não é em 100% dos gêneros (MOREIRA;

SIQUEIRA, 2006).

Estes fungos constituem um dos componentes importantes da biota dos solos, onde são

encontrados na forma de esporos, hifas ou infectando fragmentos de raízes (SYLVIA;

JARSTFER, 1994). Muitos são os benefícios desta simbiose, sendo os mais evidentes o

nutricional (SIQUEIRA; SAGGIN JÚNIOR, 1995). Estas associações mutualísticas permitem

às plantas explorarem mais eficientemente os recursos do solo, o que aumenta a produtividade

primária (KLIRONOMOS, 2000).

A modificação da estrutura do solo, tanto por processos erosivos como por ações

mecânicas, a remoção da vegetação e a perda da camada superficial orgânica, podem

promover a eliminação parcial ou total dos propágulos dos FMA. Quando tais processos

100

ocorrem numa determinada área, a capacidade infectiva é reduzida, o que pode afetar a

sucessão de plantas pela limitação de espécies capazes de crescerem sem estabelecer simbiose

com estes fungos (SOUZA; SILVA, 1996).

A relação entre a biodiversidade e o funcionamento dos ecossistemas tem recebido

especial atenção devido à aceleração da perda de espécies decorrente das atividades humanas

(LOREAU, 2001). Diversos estudos experimentais demonstraram uma relação positiva entre

a estabilidade dos processos ecossistêmicos e a biodiversidade (TILMAN; DOWNING,

1994). No entanto, muitos desses estudos se limitam à manipulação da diversidade de

produtores e não abordam o papel da diversidade de microrganismos como um dos fatores

limitantes na relação existente entre a biodiversidade e os processos ecossistêmicos.

A diversidade de microrganismos do solo como um determinante da diversidade de

plantas foi demonstrado por Heijden et al. (1998), em experimentos com manipulação de

diversidade de FMA. O autor relatou que o aumento da diversidade fúngica aumenta a

diversidade de plantas e a consequente manutenção das mesmas, devido ao maior fluxo de

nutrientes do solo para as plantas. Ademais, as diferentes espécies de FMA beneficiam

preferencialmente algumas espécies de plantas. Dessa forma, um solo com alta diversidade

fúngica possui um número maior de espécies de plantas, cuja produtividade aumenta em

relação aos solos pobres em micorrizas. O aumento da diversidade de plantas e da

produtividade pode ocorrer com a complementação de espécies FMA.

Frequentemente, estudos visando estabelecer relações entre plantas e microrganismos

são realizados com poucas espécies e generalizados para uma gama maior de organismos

(FRANCIS; READ, 1995). Ainda de acordo com esses autores, os FMA são ditos como

simbiontes mutualísticos das plantas, pressuposto testado para algumas espécies de plantas,

muitas das quais de interesse econômico e em sua maioria em laboratório.

As micorrizas podem influenciar de tal modo a estrutura de uma comunidade de

plantas, que padrões antes interpretados como decorrentes de características do ciclo de vida e

da fisiologia da planta, podem ser decorrentes de interações planta x fungos, como por

exemplo, as plantas ruderais prejudicadas por tal interação (FRANCIS; READ, 1994; 1995).

Os autores sugerem que a ocorrência de espécies em ambientes perturbados pode ser

decorrente das interações com as micorrizas. Além disso, as micorrizas podem formar redes

de micélios que podem interconectar diferentes espécies de plantas, translocando compostos

orgânicos de uma espécie para outra (HARTNETT; WILSON, 1999).

Alguns autores, no entanto, apontam efeitos deletérios das micorrizas arbusculares

sobre algumas plantas e não em outras (ALLEN et al., 1989, FRANCIS; READ, 1994). Estes

101

efeitos deletérios foram constatados principalmente em espécies ruderais e seriam decorrentes

de danos diretos causados por fungos micorrízicos, tais como a produção de substâncias

alelopáticas e destruição de tecidos da raiz (FRANCIS; READ, 1994).

Quando se trata de áreas agrícolas, a presença de plantas ruderais é vista como fator de

diminuição de produtividade, mas se manejadas adequadamente podem aumentar a

produtividade das lavouras fornecendo alimento para muitas espécies de polinizadores,

predadores e parasitóides, principalmente em lavouras de cultivo orgânico. Patricio et al.

(2009) identificando fontes alternativas de pólen e néctar, acompanharam a variação na

disponibilidade desses recursos ao longo do ano para abelhas visitantes de flores em lavoura

de tomate. Entre as plantas que tiveram suas flores visitadas destacam-se Bidens pilosa e

Emilia fosbergii, permitindo concluir que essas plantas podem constituir importantes fontes

de alimento em períodos de escassez geral. Os autores sugerem que a redução de capinas,

queima e aração, poderia resultar em habitats de forragem mais ricos para abelhas silvestres e

polinizadores de modo geral.

Os FMA predominam em solos pobres em fósforo, contudo as concentrações muito

baixas deste elemento poderiam, em solos de cerrado, tornar a associação desvantajosa para

plantas. Para testar esta hipótese, Reis (1999), utilizando as espécies Chamaecrista

rotundifolia e Solanum lycocarpum, dentre outras, inoculadas com FMA nativos, verificou

que, para o quesito comprimento de raiz, quem respondeu com sucesso foi a S. lycocarpum.

Os autores concluíram que a baixa concentração de fósforo não limita a colonização

micorrízica para plantas de cerrado, mas contribuía para melhorar o desenvolvimento das

plantas hospedeiras devido à acumulação de nutrientes na biomassa aérea. O aumento

moderado de concentração de fósforo ampliou as respostas das plantas à inoculação e a

associação micorrízica foi eficiente para plantas nativas do estrato arbustivo-arbóreo do

cerrado. Finalmente, FMA nativos podem ser recomendados para recuperação de áreas de

plantas nativas.

A associação micorrízica proporciona um aumento na absorção de nutrientes do solo

pelas plantas, principalmente do fósforo, e um melhor aproveitamento do fertilizante

fosfatado utilizado, especialmente nos solos de baixa fertilidade. A inoculação micorrízica

não substitui a adubação fosfatada, mas aumenta a eficiência de utilização pelas plantas do

fósforo natural disponível, ou do adicionado (MIRANDA, 2008).

102

3. MATERIAL E MÉTODOS

3.1. Caracterização do Município de Três Lagoas - MS

O Município de Três Lagoas-MS, escolhido para trabalho, tem uma área de 10.235,8

, com uma área urbana de aproximadamente 50 km

. O núcleo urbano encontra-se

posicionado sob as coordenadas 20°45’04” de latitude Sul e 51°40’42” de longitude Oeste,

com altitude variando entre 315 e 325 m (BRASIL, 1985). Figura 1, página 73, dentro do

anexo do capítulo 1.

O substrato local compreende pacotes aluvionares depositados no âmbito da Bacia

Hidrográfica do Paraná e das sub-bacias dos Rios Pardo, Verde e Sucuriú. Em contexto

geográfico mais amplo, a região inclui-se no depocentro da Bacia Sedimentar do Paraná

(LORENZ-SILVA, 2004).

O clima é tropical com duas estações bem definidas (úmida no verão e seca no

inverno), Aw, de acordo com a classificação de Köppen, sob o domínio de massas de ar

tropicais e equatoriais (NIMER, 1979; ZAVATINI, 1992). A temperatura média é de 23,7°C,

sendo que há registros de temperaturas absolutas acima de 40°C, com evidências de “ilhas de

calor” na área urbana e temperaturas mais baixas próximo às áreas verdes (SALVI et al.,

2007). A precipitação média anual é de 1300 mm (Instituto Nacional de Metereologia-

INMET, 1992). O município de Três Lagoas situa-se numa vasta planície com ondulações

leves, e a região foi originalmente coberta por campos limpos, florestas perenifólias ou

mesofólias e, principalmente, cerrados (MOREIRA, 2006). O núcleo urbano está encravado

em área de Cerrado típico.

A maior parte da área municipal foi desmatada para plantio de pastagens. Mais

recentemente, em conseqüência de instalação de empreendimentos na área de celulose e

papel, a dinâmica tem sido entre as coberturas vegetais e eucaliptos (MOREIRA, 2006). A

construção da estrada de ferro no início do século XX, a instalação de usina hidrelétrica na

década de 1960, a passagem de gasoduto no final década de 1990, e uma economia

agropecuária, que aos poucos vem sendo substituída por complexos industriais, são alguns

impactos que podem ter afetado a vegetação.

103

3.2. Levantamento florístico

O levantamento florístico foi realizado na zona urbana e periférica de Três Lagoas-

MS, concentrado em um complexo habitacional denominado Vila Piloto e seus arredores.

Esta vila, centralizada nas coordenadas 20°47’25” S e 51°39’49” O, teve sua construção

iniciada em junho de 1961, em pleno Cerrado, na margem direita do Rio Paraná, distanciada 6

km do centro urbano de Três Lagoas, obedecendo a um traçado radiocêntrico, e concluída em

1962. Com 76 hectares de área, edificações de madeira com pilares de alvenaria e telhas

cerâmicas, chegaram a abrigar 15.000 habitantes, entre eles trabalhadores indistintamente

chamados de barrageiros, vindos de diferentes regiões do país, no período de construção da

Usina Jupiá, parte do Complexo Hidrelétrico Urubupungá.

A partir de 1969, iniciou-se a demolição da então Vila Piloto de Jupiá, a população foi

gradativamente transferida para o núcleo urbano de Ilha Solteira-SP e os operadores alojados

na Vila dos Operários de Jupiá. Dois dias antes da virada de 1970, a Administração entregou a

Vila Piloto de Jupiá ao comando do Exército, quando pouco restava em se tratando de

construções (FIGUEIRA, 2009). Do que existia na época, restou o que é hoje um clube de

propriedade do Exército, uma área poliesportiva recuperada e um prédio que correspondente a

uma parte da sede do Campus de Três Lagoas da Universidade Federal de Mato Grosso do

Sul. Nos meados da década de 80, a vila começa ser reconstruída com nome de Vila Piloto,

abrigando moradias populares em alvenaria (ALVES; MOURA, 2000). Em se tratando de

perturbações, esse local foi impactado ambientalmente por duas vezes, e para surpresa de

quem observa a vegetação, quatro décadas depois, ainda existe algum verde para contemplar.

O período de estudo foi de março de 2007 a dezembro de 2009, com observações

mensais e coletas de dados taxonômicos nos períodos reprodutivos, com auxílio de fotografias

digitais. Para o presente trabalho, levou-se em conta a comunidade vegetal vascular,

englobando as espécies encontradas em frestas de calçadas, beiras de muros e cercas, terrenos

baldios, trilhas, caminhos e lixos abandonados. Foram considerados como terrenos baldios

aqueles que apresentavam características típicas de alterações devidas às atividades humanas,

como abandono, presença de restos de construções, etc., não se levou em conta áreas típicas

de remanescentes de cerrados.

As amostras foram fotografadas, coletadas e herborizadas para posterior identificação,

o que foi realizado com auxílio de literatura especializada: Pio Corrêa (1926-1978), Filgueiras

(1985), Andreata (1987), Prance; Mori (1991), Pott; Pott (1994), Ribeiro et al. (1999),

Lorenzi (2000),

Longhi-Wagner

et al. (2001), Lorenzi; Abreu Matos (2002), Durigan et al.

(2004), Pott et al. (2006), Boldrini et al. (2005) e Amaral et al. (2008).

104

As espécies de Magnoliophyta (Angiopermae) foram classificadas de acordo com

Cronquist (1981), mas consta entre parênteses na coluna correspondente às famílias botânicas,

as classificações feitas com base na proposta do Angiosperm Phylogeny Group II (2003), e

Pteridophyta, segundo Tryon e Tryon (1982).

As espécies também foram classificadas segundo as origens, levando-se em

consideração a posição geográfica do País e a flora característica da região.

3.3. Presença de colonização micorrízica em algumas plantas ruderais

A fase de observação e coleta de plantas para verificar a presença da colonização

micorrízica foi desenvolvida em condições de campo. Para a escolha das plantas, levou-se em

conta se estavam no início de floração, garantido que a fase vegetativa estaria no auge do

desenvolvimento.

3.3.1. A coleta das plantas ruderais

Após percorrer a área portando câmera fotográfica e caderneta de anotação,

verificou-se que entre as plantas já identificadas, pelo menos 50 espécies, estavam nas

condições pré-estabelecidas para a coleta. As raízes foram obtidas arrancando-se as plantas

inteiras, com ajuda de um pequeno enxadão. Após a coleta, foram condicionadas em sacos

plásticos e conduzidas até o Laboratório de Microbiologia e Fitopatologia da Faculdade de

Engenharia da Unesp/Campus de Ilha Solteira. O número de plantas coletadas por espécie

variou entre três e cinco.

3.3.2. Quantificação da colonização micorrízica

Para a quantificação da colonização micorrízica, o sistema radicular foi separado da

parte aérea, que neste caso era desprezada, lavado em água corrente até eliminar todo o

resíduo de solo e preservado temporariamente em solução de álcool etílico diluído em água na

proporção de 1:1. Posteriormente, as raízes, equivalentes a um grama de raiz seca para cada

espécie, cortadas em seguimentos de aproximadamente um cm (TOTH, 1982; TOTH et al.,

1990), foram clarificadas por aquecimento a 90 °C em solução de KOH a 10% durante uma

hora, lavadas em água corrente, acidificadas com HCl 1% por 30 minutos na mesma

temperatura e coradas com azul de tripano a 0,05% (PHILLIPS; HAYMAN, 1970;

RAJAPAKSE; MILLER, 1992).

Durante os procedimentos observou-se que a metodologia utilizada deixava os tecidos

das raízes bastante dilacerados, muito provavelmente por serem provenientes de plantas

105

herbáceas ou subarbustivas, que mesmo na fase adulta, não se tornam lenhosas. Mediante o

ocorrido, modificou-se a metodologia descrita experimentando mudanças na temperatura e

concentração de KOH, estabelecendo como parâmetros ideais, 45 °C de temperatura e 5% de

KOH.

Para estimativa da colonização total das raízes por FMA, um grama de segmentos de

raízes finas devidamente tratadas foi distribuído em placa de Petri sobre papel quadriculado

centimétrico (GIOVANNETTI; MOSSE, 1980) e observado sob microscópio estereoscópico.

A contagem de segmentos colonizados foi feito com auxílio de um contador de células. Entre

os segmentos colonizados, 10 foram colocados entre lâminas e lamínulas e observados ao

microscópio óptico, sendo fotografados com câmera digital. Devido às diferenças ambientais

nas áreas de coleta, a colonização micorrízica foi abordada de modo qualitativo, uma vez que

a finalidade deste trabalho foi relatar a ocorrência ou não, de colonização micorrízica

arbuscular em ruderais.

Para a categorização quanto à colonização, as espécies foram classificadas em muito

alta, alta, média, baixa e ausente, quando apresentavam grau de colonização > 80 %, 79–50

%, 49–20 %, 19–1 % e 0 %, respectivamente (CARNEIRO et al., 1998).

3.3.3. Característica química do solo e número de esporos de FMA

Para as análises do solo, duas amostras compostas de dez amostras simples foram

coletadas onde havia apenas plantas tipicamente ruderais (20°47’03” S e 51°39’48” O) e onde

havia uma mistura de plantas ruderais e plantas de Cerrado (20°47’12” S e 51°39’57” O).

Estas foram secas ao ar, peneiradas, parte foi enviada para a análise das características

químicas do solo, no Laboratório de Fertilidade do Solo do Departamento de Fitossanidade,

Engenharia Rural e Solos da UNESP, Campus de Ilha Solteira. Para tanto, o pH foi

determinado em CaCl

, P, K

, Ca

e Mg

foi extraído com resina trocadora de íons, na

relação solo: água: resina de 1:10:1; e o Al

extraído com KCl 1N. O P foi determinado por

colorimetria; o K por fotometria de chama e Ca+2 e Mg

por espectrometria de absorção

atômica; H + Al

empregando o ph SMP; o Al

por titulação com NaOH 0,025 N e matéria

orgânica por colorimetria, de acordo com Raij; Quaggio (1983).

A outra parte destas amostras foi preservada para a contagem do número de esporos

de FMA autóctones. Para a referida análise, 100 g de cada amostra composta foram

homogeneizados e processados segundo uma associação dos métodos de decantação e

peneiramento úmido (GERDEMANN; NICOLSON, 1963) e de centrifugação e flutuação em

106

sacarose (JENKINS, 1964). A quantificação foi realizada em placas de acrílico com anéis

concêntricos, sob microscópio estereoscópico (40x).

107

4. RESULTADOS E DISCUSSÃO

Os trabalhos de campo permitiram o registro de 344 espécies, distribuídas em 61

famílias e em duas divisões: três de Pteridophyta (três gêneros e três famílias), 341 de

Magnoliophyta (202 gêneros e 58 famílias) e três determinadas apenas em nível de gênero.

Dentre as famílias mais numerosas, isto é, com mais de dez espécies, estão: Fabaceae com 48

spp., Poaceae com 37 spp., Asteraceae com 30 espécies, Euphorbiaceae com 20 spp.,

Malvaceae com 18 spp., Convolvulaceae com 17 spp., Mimosaceae com 15 spp. e

Caesalpiniaceae com 11 spp. Os gêneros mais numerosos foram Mimosa com 13 spp.,

Ipomoea com 10 spp., Sida com 7 spp., Chamaecrista, Urochloa e Crotalaria, com 6 spp., e

Merremia, Cyperus, e Solanum com 5 spp. cada. As demais famílias contribuíram com menos

de dez espécies cada uma, sendo que 25 estão presentes com uma única espécie, incluindo as

três Pteridófitas. As espécies com suas respectivas famílias, seguidas de origens geográficas,

são listadas na Tabela 1, página 114.

Da totalidade das espécies, 281 são nativas do Continente Americano, 59 do Velho

Mundo e quatro são consideradas cosmopolitas ou pantropicais. Considerando a posição

geoclimática do Brasil, as 281 espécies podem ser consideradas nativas no Brasil, e dentre

estas 76 são típicas de Cerrado ou Cerradão. No contexto geral, a maioria da flora encontrada

em Três Lagoas é nativa do Brasil, conforme pode ser observado na Tabela 2, página 125.

Muitas espécies nativas registradas em Três Lagoas-MS apresentam distribuição ao

longo do Continente Americano. Isso se deve à falta de barreiras entre o norte e o sul (GOOD,

1974). Da mesma forma, fica difícil determinar a origem destas espécies, mas grande parte

pode ser considerada nativa em toda sua área de permanência.

A ocorrência de muitas espécies nativas em áreas urbanas pode estar relacionada com

a existência de ambientes nativos ou nativos alterados, próximos ou até dentro destas áreas,

que servem como fonte de dispersão, por exemplos: Passiflora foetida, Smilax brasiliensis,

Serjania lethalis, Richardia grandiflora, entre outras. A possibilidade de dada espécie atingir

outros habitats depende de sua distribuição na vizinhança (MUELLER-DAMBOIS;

ELLENBERG, 1974). Nas áreas em estudo, ambientes nativos são comuns praticamente em

toda superfície não ocupada, o que representa muita relevância, pois são remanescentes de

Cerrados. Levando-se em conta que o Cerrado pode desaparecer em poucas décadas devido

108

ao avanço de atividades agrícolas, e que plantas típicas desse domínio como Duguetia

furfuracea, Eschweilera nana, Odotadenia lutea, Myrcia linearifolia, Gomphrena

macrocephala, Anemopaegma glaucum, entre outras, dificilmente podem ser conservadas fora

do seu hábitat natural (DURIGAN et al., 2004), a ocorrência destas plantas é relevante e

promissora.

A maioria das espécies introduzidas é de origem africana, euroasiática e, algumas,

mexicanas. Uma explicação seria que a maioria das espécies que colonizam estes locais,

teriam sido pré-adaptadas como resultado de séculos de distúrbios antropogênicos ou natural

nas suas regiões de origem (SUKOPP; TREPL, 1987). A agricultura e a urbanização tiveram

início no Velho Mundo, muito antes que nas Américas, exceto o México (TIVY, 1993),

havendo, então, tempo suficiente para estas espécies se adaptarem às condições de

perturbação, e serem competitivamente superiores (RAPOPORT, 1991; CROSBY, 1993).

Muitas espécies encontradas como ruderais (Zinnia elegans, Portulaca oleracea e

Solidago chilensis) são cultivadas como ornamentais, alimentícias ou medicinais, escapam ao

cultivo e se adaptam a condições agronômicas adequadas ou não. Muitas espécies alimentícias

se tornaram ruderais e cosmopolitas (ASFAW; TADESSE, 2001), e a relação entre espécies

utilizadas por nossos antepassados e sua adaptação próxima à habitação humana, está ligada à

história dos povos com as plantas cultivadas (BRIGGS; WALTERS, 1984).

Algumas espécies como Ricinus communis e Argemone mexicana são consideradas

tóxicas e, na maioria das vezes, são desconhecidas pela população humana, o que pode

ocasionar riscos de acidentes, principalmente com crianças e animais domésticos (LORENZI,

2002).

A família Poaceae é a que apresenta mais espécies africanas. Muitas devem ter

chegado ao Brasil junto com navios negreiros, e outras podem ter sido introduzidas como

forrageiras. Na área em questão, é muito séria a invasão, principalmente de braquiárias, que

formam uma cobertura que impede a regeneração de plantas típicas de cerrado, e por ocasião

de estiagem facilitam a propagação de fogo. As gramíneas africanas, segundo Parsons (1972),

tiveram grande expansão nos trópicos, pois co-evoluíram com grandes herbívoros, estando

mais aptas a viver em ambientes perturbados. Por outro lado, a herbivoria pode ser um fator

de mudança na vegetação, espécies palatáveis podem ser eliminadas, enquanto que as não

palatáveis levam vantagem nesta competição (BURRWS, 1990).

O cosmopolitismo e a homogeneização da biota mundial estão tornando o mundo

biológico mais simples (ELTON, 1958), no entanto, a área estudada apresenta uma

109

porcentagem vantajosa de plantas nativas, sobre as introduzidas, o que permite sugerir que o

local merece especial atenção.

No contexto, a presença de 268 espécies não típicas de Cerrado, formação vegetal

original, não está associada à agricultura, como sugerido por Tivy (1993), e sim à ocupação

humana de extensos espaços (CARNEIRO; IRVING, 2005) e pode ameaçar a singularidade

biológica, como sugerido por Blair (2001) e por Mckinney, (2006), a exemplo de Duguetia

furfuracea, Annona dioica, Bauhinia rufa, Cochlospermum regium, Gomphrena

macrocepala, presentes em lista de espécies ameaçadas de extinção, conforme Machado et al

(2005).

O movimento de pessoas e meios de transporte pode ser uma forma de quebra de

barreiras (RAPOPORT, 1976), o que se comprova pela presença de Derris amazônica e

Centrosema pascuorum, plantas típicas das regiões Amazônica e Nordeste, respectivamente.

As condições ambientais alteradas podem sim favorecer a sobrevivência de espécies

fisiologicamente semelhantes, em localidades geograficamente distantes (TIVY, 1993).

O ambiente urbano sem planejamento ou quando não segue parâmetros comuns, como

medidas simples de construção de calçadas, por exemplo, promove ambientes muito variados

para o crescimento de plantas, como o aumento de nitrogênio por causa do acúmulo de

matéria orgânica, aumento do pH devido aos restos de construções (SUKOPP, 1979), criando

condições para testar a capacidade de adaptação das plantas, como plantas típicas de Cerrado

onde o pH do solo é muitas vezes, muito ácido.

Tudo isso acaba por gerar uma vegetação muito heterogênea, com plantas das mais

diferentes origens, vivendo ou sobrevivendo em um mesmo espaço, comprovando a tese de

Tivy (1993) quanto à heterogeneidade de micro-habitats. Essa nova comunidade vegetal

abriga espécies das mais variadas utilidades, como ornamentais, alimentícias, medicinais,

tóxicas e até plantas para as quais ainda não se conhecem aplicações e que merecem atenção

como sugerido por estudos (GALVÃO, 2003), especialmente do ponto de vista sistemático,

fitoquímico e fisiológico. Pela heterogeneidade de espécies, os períodos fenológicos são

igualmente variados, concordando com as aplicações sugeridas por Grimming (1995).

As 50 espécies coletadas para verificação de colonizações micorrízicas (Tabela 3,

página 126) distribuem-se em 14 famílias e 35 gêneros. Destas, 27 tiveram colonização muito

alta, três altas, duas médias, 11 baixas e sete espécies não apresentaram colonização.

Das famílias cujas espécies foram analisadas, Brassicaceae e Amaranthaceae não

apresentaram micorrização o que está de acordo com Moreira e Siqueira (2006), o que não

ocorreu com as espécies de Commelinaceae que contrariando dados de literatura,

110

apresentaram micorrização, muito alta. Ainda de acordo com estes autores, mesmo naquelas

famílias onde é comum o processo de micorrização pode haver diferenças dentre gêneros e

espécies, o que pode ser constatado em Fabaceae com espécies com índices de zero a muito

altos, em Poaceae, Euphorbiaceae e Asteraceae com índices variando de baixos a muito altos.

As micorrizas presentes podem ser vistas nas Figuras de 1-5, páginas 128-132.

As variações entre espécies ou gêneros podem, também, estar relacionadas com o grau

de degradação do meio, e a consequente eliminação parcial ou total de propágulos de fungos

micorrízico de determinados locais (SOUZA; SILVA, 1996), ou pelo fato do

desenvolvimento das plantas dependerem de uma série de condições, como de outros

decompositores que podem estar presentes em locais ricos em matéria orgânica

(BARDGETT; SHINE, 1999).

A flora ruderal da área estudada é rica em espécies, e as escolhidas, ao acaso, para

verificação de micorrização, apresentaram mais de 50% com alto grau de micorrização, o que

pode ser relacionado com a diversidade de espécies. Segundo Heijden et al. (1998), tem como

determinante a relação com microrganismos, bem como a manutenção dos mesmos, devido ao

maior fluxo de nutrientes no solo.

Ainda, a fertilidade e o número de esporos presentes na área podem interferir. O

número médio de esporos foi de 152 esporos por 100 g de solo seco, o que está compatível

para a área de estudo, quando comparados com os resultados obtidos por Bonfim et al. (2003),

que estudaram a dinâmica de densidade de esporos em cafeeiros e afirmam que a mesma pode

ser afetada pelo manejo e a época do ano; com Martins et al. (1999) que ao compararem áreas

degradadas com área de Cerrado encontraram maior número de esporos em período chuvoso e

em áreas degradadas e, finalmente, com os resultados de Cordeiro et al. (2005), o qual revela

maior número de esporos em áreas colonizadas por gramíneas.

As micorrizas arbusculares predominam em solos pobres em fósforo (REIS, 1999),

mas no presente trabalho, em se tratando de área alterada, se constata alternância de pontos

muito degradados com restos de construção, pedregulhos e outros com muita matéria

orgânica. De modo geral, os níveis de fósforo e de matéria orgânica são médios e o pH varia

de 5,0 a 6,2 (Tabela 4, página 133). Corroborando estes dados, Sukopp et al. (1979) apontam

que a adição de excrementos animais, restos de plantas e lixo faz aumentar o conteúdo de

fosfatos e nitrogênio. Nos pontos amostrados nível de K está baixo e Ca e Mg variam de

médio para alto índice. A soma de bases e a capacidade de troca iônica estão em níveis

médios. As áreas que ainda apresentam algumas características típicas de cerrado conservam

111

do ponto de vista químico, essas características, já nos pontos das áreas mais alterados, as

características químicas estão modificadas, mas o solo não se encontra degradado.

Desta forma, pela heterogeneidade dos dados obtidos acerca das espécies

identificadas, pode-se sugerir que as plantas ruderais constituem substitutos vantajosos para

substituir gramados mantidos com alto custo. Devido à maior diversidade de espécies, as

plantas ruderais cumpre melhor as funções ecológicas para a fauna local, e apresentam em

muitos casos, rara beleza como pode ser visto na Figura 6, página 134.

112

5. CONCLUSÕES E CONSIDERAÇÕES FINAIS

- A flora ruderal de Três Lagoas-MS é composta por um conjunto diversificado de espécies

nativas e introduzidas, proveniente dos mais diversos lugares do mundo, sendo a maioria

representante da flora nativa do Brasil e das Américas (Sul, Tropical e Subtropical);

- Pelo menos 20% das espécies são típicas de Cerrado ou de Cerradão, e podem ser

provenientes de remanescentes naturais próximos ou mesmo dentro das áreas urbanas. Estas

espécies, embora façam parte da flora ruderal, não são consideradas ruderais;

- As espécies exóticas são provenientes de diversas regiões do mundo, porém a maioria vem

da África, Europa e Ásia. Algumas são cosmopolitas ou pantropicais, as quais, mesmo em

minoria, encontram-se bem adaptadas em ambientes perturbados;

- Existir em ambientes adversos não garante às ruderais sobrevivência, pois espécies como

Centratherum punctatum, Eragrostis ciliaris, Sida spinosa e Dorstenia sp., vistas no início da

pesquisa, não foram encontradas no final da mesma;

- Pelo menos 50% das plantas coletadas apresentam altas porcentagens de colonização

micorrízica;

- Os resultados analíticos, dos solos em questão mostraram que apesar dos quase 40 anos de

ação antrópica, a área não está totalmente degrada;

- De um modo geral, a vegetação urbana contribui para preservação ambiental.

113

ANEXOS DO CAPÍTULO 2

114

Tabela 1 – Listagem das famílias e espécies das plantas, nomes populares e origem

geográfica, identificadas na Vila Piloto e seus arredores, Três Lagoas-MS entre 2007 a 2009.

Família/Espécie Nomes populares Origem geográfica

Adiantaceae

Pityrogramma calomelanos samambaia-do-brejo Brasil/Africa/Am Trop

Amaranthaceae

Alternanthera dentata (Moench) Stuchlik roxinha Nativa do Brasil

Alternanthera tenella Colla perpétua-do-campo Nativa do Brasil

Amaranthus deflexus L. caruru-rasteiro Continente Europeu

Celosia argentea Linn crista-de-galo Índia

Celosia cristata L. crista-de-galo América Tropical

Gomphrena celosioides Mart. perpétua América do Sul

Gomphrena macrocephala A.St.-Hil. para-tudo Cerrado

Pfaffia glomerata (Spreng.) Pedersen fáfia Nativa do Brasil

Annonaceae

Annona dioica A.St.-hil. araticum Cerrado

Duguetia furfuracea (A. St.-Hil.) Benth.& Hook. marolinha Cerrado

Apiaceae

Apium leptophyllum (Pers.) F. Muell. ex Benth. aipo-bravo Euroasiática

Hydrocotyle bonariensis Lam. falsa-centela Continente Americano

Apocynaceae

Allamanda polyantha Müll. Arg. alamanda Nativa do Brasil

Cataranthus roseus G.Don vinca Cosmopolita

Odontadenia lutea (Vell.) Marckgr. cipó-cururu Cerrado

Odontadenia nitida (Vell.) Müll.Arg. desconhecido Cerrado

Prestonia tomentosa R.Br. cipó-carneiro Cerrado

Arecaceae

Acrocomia aculeata (Jacq.) Lodd. ex. Mart. bocaiúva América do Sul e México

Aristolochiaceae

Aristolochia esperanzae Kze. jarrinha Cerrado

Aristolochia gigantea Mart & Zucc. papo-de-peru Nativa do Brasil

Asclepiadaceae(Apocynaceae)

Blepharodon bicuspidatum Fourn. desconhecido Nativa do Brasil

Blepharodum nitidum J.F.Macbr. desconhecido Cerrado

Calotropis procera (Aiton) R.Br. ciumeira Origem Indiana

Oxypetalum sp. cipó-de-leite. Nativa do Brasil

Asteraceae

Acanthospermum australe (Loeft.) Kuntze carrapicho-miúdo América Tropical

Acanthospermum hispidum DC. carrapicho-de-carneiro América Tropical

Continua

115

Continuação

Família/Espécie Nomes populares Origem geográfica

Bidens gardneri Baker picão-do-pantanal Cerrado

Bidens subalternans DC. picão-preto América do Sul

Bidens sulphurea (Cav.) Sch. Bip. picão-grande México

Blainvillea biaristata DC. picão-grande Nativa do Brasil

Centratherum punctatum Cass. perpétua-do-mato América Tropical

Conyza bonariensis (L.) Cronquist buva Continente Americano

Conyza canadensis (L.) Cronquist voadeira Continente Americano

Crepis japonica (L.) Benth. Oriental

Eclipta alba (L.) Hassk. erva-botão Asiática

Elephantopus mollis Kunth língua-de-vaca Américas

Emilia coccinea (Sims) G. Don serralhinha Africana

Emilia fosbergii Nicolson emília Asiática

Erechtites hieraciifolius (L.) Raf. Ex DC. capiçoba Nativa do Brasil

Eupatorium maximilianii Schrad. mata-pasto Continente Americano

Eupatorium pauciflorum Kunth botão-azul Nativa do Brasil

Eupatorium squalidumum DC. cambará-roxo Nativa do Brasil

Parthenium hysterophorus L. botão-branco Continente Americano

Pluchea sagittalis (Lam.) Cabrera lucera Continente Americano

Porophyllum ruderale (Jacq.) Cass. arnica-paulista Nativa do Brasil

Pterocaulon virgatum (L.) DC. branqueja Cerrado

Solidago chilensis Meyen arnica América do Sul

Synedrellopsis grisebachii Hieron. agriãozinho América do Sul

Tithonia diversifolia A.Gray girassol mexicano México

Tridax procumbens L. erva-de-touro América Central

Unxia kubitzkii H.Rob. botão-de-ouro Nativa do Brasil

Vernonia chamaedrys Less. vassoura-branca Nativa do Brasil

Vernonia scabra Pers. assa-peixe Nativa do Brasil

Zinnia elegans Jacq. capitão México

Begoniaceae

Begonia cucullata Willd. begônia Nativa do Brasil

Bignoniaceae

Adenocalymma bracteatum (Cham.) DC. Nativa do Brasil

Anemopaegma glaucum Mart. ex DC. catuaba Cerrado

Arrabidaea brachypoda (DC.) Bureau cipó-una Cerrado

Callichlamys latifolia (L.Rich.) cipó América do Sul

Fridericia florida (DC.) L.G. Lohmann cipó-neve Cerrado

Macfadyena unguis-cati (L.) Gentry unha-de-gato Nativa do Brasil

Continua

116

Continuação

Família/Espécie Nomes populares Origem geográfica

Memora peregrina (Miers) Sandw ciganinha Cerradão

Pithecoctenium crucigerum (L.) Gentry pente-de-macaco América do Sul

Pyrostegia venusta L. flor-de-são-joão Nativa do Brasil

Bixaceae

Bixa orellana L. urucum Nativa do Brasil

Boraginaceae

Heliotropium indicum L. escorpião Asiática

Heliotropium procumbens Mill. borragem América Tropical

Brassicaceae

Coronopus didymus (L.) SM. mastruz verdadeiro América Tropical

Lepidium virginicum L. mastruz Continente Americano

Raphanus raphanistrum L. nabo-bravo Europa

Cactaceae

Nopalea cochenillifera (L.)Lyons. palma-doce México

Pereskia sacharosa Gris. ora-pro-nobis América do Sul

Caesalpiniaceae(Fabaceae)

Bauhinia pentandra (Bong.) Vog. pata-de-vaca Nativa do Brasil

Bauhinia rufa (Bong.) Steud. pata-de-vaca Nativa do Brasil

Chamaecrista campestris (Bth.) H.S.Irwin & Barneby sene-do-campo Cerrado

Chamaecrista desvauxii (Collad.) Killip sene Cerrado

Chamaecrista flexuosa (L.) Greene mimosa Cerrado

Chamaecrista nictitans Collad. peninha Nativa do Brasil

Chamaecrista rotundifolia (Pers.) Greene erva-de-coração Nativa do Brasil

Chamaecrista serpens (L.) Greene desconhecido América Tropical

Senna obtusifolia (L.) H.S. Irwin & Barneby fedegoso Continente Americano

Senna occidentalis (L.) Link fedegoso-verdadeiro América Tropical

Senna rugosa (G. Don) H.S.Irwin & Barneby boi-gordo Cerrado

Capparidaceae(Brassicaceae)

Cleome affinis DC mussambê Nativa do Brasil

Cecropiaceae(Urticaceae)

Cecropia pachystachya Trec. embaúba Américas

Chenopodiaceae(Amaranthaceae)

Chenopodium ambrosioides L. erva-de-santa-maria América Tropical

Cochlospermaceae(Bixaceae)

Cochlospermum regium (Mart et Schl.) Pilg. algodãozinho Cerrado

Commelinaceae

Commelina benghalensis L. trapoeraba Asiática

Continua

117

Continuação

Família/Espécie Nomes populares Origem geográfica

Commelina erecta L. santa-luzia Cerrado

Tradescantia pallida (Rose) D.R. Hunth trapoeraba-roxa Mexicana

Convolvulaceae

Evolvulus pusillus Choisy gota-de-orvalho Nativa-do Brasil

Ipomoea alba L. abre-noite-fecha-dia América do Sul

Ipomoea asarifolia (Desr.) Roem. & Schult. jetirana América Tropical

Ipomoea batatas (L.) Lam. batata-doce Américas

Ipomoea cairica (L.) Sweet. campainha América do Sul

Ipomoea carnea Jacq. algodão-bravo América do Sul

Ipomoea nil (L.) Roth. corda-de-viola Continente Americano

Ipomoea procumbens Mart.ex Choisy ipoméia Cerrado

Ipomoea quamoclit L. corda-de-viola-vermelha América Tropical

Ipomoea ramosissima (Poir.) Choisy campainha América Tropical

Ipomoea rubens Choisy cipó-de-leite América do Sul

Jacquemontia tamnifolia (L.) Griseb. azulzinha América Tropical

Merremia aegyptia (L.) Urb. jitirana América Tropical

Merremia cissoides (Lam.) Hallier f. campainha América Tropical

Merremia dissecta (Jacq.) Hallier f. campainha América Tropical

Merremia macrocalyx (Ruiz & Pav.) O'Donell jitirana América Tropical

Merremia umbellata (L.) Hallier f. jetirana Continente Americano

Cucurbitaceae

Citrullus lanatus (Thunb.) Matsum. & Nakai melancia Africana

Luffa aegyptiaca Mill. bucha-orgânica Asiática

Momordica charantia L. melão-de-são-caetano Africana

Cyperaceae

Cyperus iria L. tiririca-do-brejo. Euroasiática

Cyperus luzulae (L.) Rottb. ex. Retz. capim-de-botão Continente Americano

Cyperus meyenianus Kunth tiririca-de-três-quinas. Continente Americano

Cyperus rotundus L. tiririca Cosmopolita

Cyperus surinamensis Rottb. tiririca América Tropical

Killinga odorata Vahl junquinho Pantropical

Euphorbiaceae

Chamaesyce hirta (L.) Millsp. erva-de-cobre América Tropical

Chamaesyce prostrata (Aiton) Small erva-andorinha América Tropical

Chamaesyce hyssopifolia (L.) Small erva-de-santa-luzia América Central

Croton bonplandianus Baill. Nativa do Brasil

Croton campestris A.St.-Hil. curraleira. Cerrado

Continua

118

Continuação

Família/Espécie Nomes populares Origem geográfica

Croton glandulosus L. gervão-branco Cerrado e cerradão

Croton lobatus L. mandioquinha Cerrado e cerradão

Dalechampia micromeria Baill cipó-urtiga Cerrado

Dalechampia scandens L. coça-coça Nativa do Brasil

Euphorbia heterophylla L. amendoim-bravo Nativa das Américas

Euphorbia sp Amazonia

Jatropha gossypiifolia L. pinhão-roxo América Tropical

Phyllanthus niruri L. (Phyllanthaceae) quebra-pedra Continente Americano

Phyllanthus orbiculatus L.C. Rich. quebra-pedra Continente Americano

Phyllanthus tenellus Roxb. quebra-pedra Continente Americano

Ricinus communis L. mamona África

Sapium haematospermum (M. Arg.) Hub. sarã-de-leite Nativa do Brasil

Sebastiania corniculata (Vahl) Müll. Arg. guanxuma-de-leite Continente Americano

Sebastiania hispida (Mart.) Pax mercúrio Cerrado

Synadenium grantii Hook tiborna África

Fabaceae

Abrus precatorius L. olho-de-cabra Nativa do Brasil

Aeschynomene histrix Poir sensitiva América Tropical

Aeschynomene paniculata Willd. ex Vogel sensitiva-mansa Nativa do Brasil

Aeschynomene rudis Benth. pinheirinho América do Sul

Alysicarpus vaginalis (L.) DC. amendoinzinho Índia

Arachis hypogaea L. amendoim América do Sul

Arachis kuhlmannii Krap. et Greg. amendoim Nativa do Brasil

Arachis repens Handro amendoim-rasteiro Nativa do Brasil

Cajanus cajan L. Millsp. feijão-guandu

Calopogonium caeruleum (Bth.) Sauv. calopogônio Ámérica Tropical

Camptosema ellipticum (Desv.) Burkart favinha-do-campo Cerradão

Canavalia brasiliensis Mart.ex Benth. feijão-de-porco Nativa do Brasil

Centrosema angustifolium (Kunth) Benth. feijão-bravo Cerrado

Centrosema brasilianum (L.) Benth. Nativa do Brasil

Centrosema pascuorum Mart. ex Benth. América Tropical

Centrosema pubescens Benth. jequitirana Cerrado

Clitoria ternatea L. cunhã Ásia

Crotalaria incana L. chocalho América do Sul

Crotalaria longifolia Lam. guiso-de-cascavel Cerrado

Crotalaria micans Link crotalária Cerrado

Crotalaria pallida Aiton guiso-de-cascavel. África

Continua

119

Continuação

Família/Espécie Nomes populares Origem geográfica

Crotalaria spectabilis Roth chocalho Índia

Crotalaria stipularia Desv. xique-xique América do Sul

Derris amazonica Killip Nativa do Brasil

Desmodium adscendens (Sw.) DC. carrapicho-beiço-de-boi. América Tropical

Desmodium barbatum (L.) Benth. desmódio América Tropical

Desmodium incanum DC. pega-pega América Tropical

Desmodium tortuosum (Sw.) DC. carrapicho América Tropical

Dioclea violacea Mart. ex Benth. olho-de-boi Nativa do Brasil

Galactia eriosematoides Harms. Cerrado

Gliricidia sepium (Jacq.) Steud. gliricídia México

Indigofera hirsuta L. anileira Nativa do Brasil

Indigofera sabulicola Bth. Nativa do Brasil

Indigofera suffruticosa Mill. anileira Nativa do Brasil

Macroptilium atropurpureum (DC.) Urb. siratro México

Macroptilium lathyroides (L.) Urb. feijão-de-rola. América Tropical

Rhynchosia minima (L.) DC. Nativa do Brasil

Riedeliella graciliflora Harms falsa-ciganinha Cerrado e Cerradão

Stylosanthes acuminata M.B.Ferreira & Sousa Costa meladinho Cerrado

Stylosanthes guianensis (Aubl.) Sw. alfafa-do-campo Nativa do Brasil

Stylosanthes leiocarpa Vogel estilosante Nativa do Brasil

Stylosanthes viscosa (L.) Sw. meladinho Cerrado

Tephrosia purpurea (L.) Pers. Nativa do Brasil

Teramnus volubilis Sw. caramanchão Nativa do Brasil

Vigna peduncularis (Kunth) Fawc. & Rendle feijão-do-mato Cerrado

Vigna unguiculata (L.) Walp. feijão-miúdo África

Zornia crinita (Mohlenbr.) Vanni carrapicho Cerrado

Zornia reticulata Sm. erva-de-ovelha Nativa do Brasil

Iridaceae

Cipura paludosa Aubl. azuladinha Nativa do Brasil

Lamiaceae

Amasonia campestris (Aubl.) Moldenke Cerrado

Hyptis mutabilis (Rich.) Briq. cheirosa Continente Americano

Hyptis suaveolens (L.) Poit. alfazema-de-caboclo Cerrado

Leonotis nepetifolia (L.) W.T.Aiton cordão-de-são-francisco África

Ocimum basilicum L. manjericão Ásia

Ocimum gratissimum L. alfavacão Nativa do Brasil

Ocimum micranthum Willd alfavaca Nativa do Brasil

Continua

120

Continuação

Família/Espécie Nomes populares Origem geográfica

Peltodon tomentosus Pohl papoula-do-campo Cerrado

Plectranthus barbatus Andrews boldo-brasileiro Índia

Lecythidaceae

Eschweilera nana (Berg) Miers. sapucaia-de-três-lagoas Cerrado

Liliaceae

Herreria salsaparilha Mart. (Agavaceae) salsaparrilha-verdadeira América do Sul

Sansevieria cylindrica Bojer (Ruscaceae) lança África

Sansevieria trifasciata Prain espada-de-são-jorge África

Lithraceae

Cuphea carthagenensis (Jacq) J.F.Macbr. sete-sangrias Cerrado

Malvaceae

Abutilon bedfordianum (Hook) (St.-Hil.) & Naud. Nativa do Brasil

Abutilon ramiflorum A.St.-Hill. Nativa do Brasil

Gossypium hirsutum L. algodão Continente Americano

Hibiscus acetosella Welw. quiabo-roxo África

Hibiscus sabdariffa L. quiabo-azedo África

Malvastrum coromandelianum (L.) Garcke falsa-guanxuma. América Tropical

Pavonia communis A.St.-Hil. tira-estrepe. América do Sul

Pavonia guerkeana R.E.Fr. guaxima Cerradão

Pavonia sessiliflora Kunth malva-rasteira. Cerrado

Pavonia sidifolia Kunth vassoura Cerrado

Sida cerradoensis Krap. malva Cerrado

Sida cordifolia L. guanxuma América Tropical

Sida glaziovii K. Schum guanxuma-branca Américas

Sida linifolia Juss. ex Cav. língua-de-tucano. Cerrado

Sida rhombifolia L. mata-pasto Continente Americano

Sida santaremensis H. Monteiro guanxuma Nativa do Brasil

Sida spinosa L. malvinha Continente Americano

Sidastrum paniculatum (L.) Fryxell malva-roxa Cerrado

Urena lobata L. rosinha Ásia

Wissadula subpeltata (Kuntze) R.E.Fr. malva-estrela Nativa do Brasil

Menispermaceae

Cissampelos ovalifolia DC. orelha-de-onça Cerrado

Cissampelos pareira L. buta Nativa do Brasil

Mimosaceae(Fabaceae)

Albizia lebbeck (L.) Benth coração-de-negro Ásia

Leucaena leucocephala (Lam.) R. de Wit leucena Ámerica Tropical

Continua

121

Continuação

Família/Espécie Nomes populares Origem geográfica

Mimosa adenocarpa Benth. espinheiro Cerrado

Mimosa caesalpiniaefolia Benth. sanção-do-campo Nativa do Brasil

Mimosa debilis Humb. & Bonpl. dorme-dorme Cerrado

Mimosa dolens Vell. juquiri Cerrado

Mimosa invisa Mart. Ex Colla sensitiva Nativa do Brasil

Mimosa nuda Benth. juquiri Cerrado e Cerradão

Mimosa pellita Humb. & Bonpl. espinheiro Nativa do Brasil

Mimosa polycarpa Kunth dorme-dorme Cerrado

Mimosa quadrivalvis L. Nativa do Brasil

Mimosa rixosa Mart. mimosa Cerrado

Mimosa setosa Benth. arranhadeira Nativa do Brasil

Mimosa somnians Willd. juquiri Cerrado e Cerradão

Mimosa xanthocentra (Benth.) Barneby mimosa Cerrado

Molluginaceae

Mollugo verticillata L molugo Cerrado

Moraceae

Brosimum gaudichaudii Trécul mama-cadela Cerrado

Dorstenia sp. carapiá Nativa do Brasil

Ficus insipida Willd. figueira Nativa do Brasil

Myrtaceae

Campomanesia adamantium (Cambess.) O. Berg guavira Cerrado

Eugenia dysenterica DC. cagaita Cerrado

Eugenia pitanga Kaersk. pitanga-do-cerrado Cerrado

Eugenia uniflora L. pitanga Nativa do Brasil

Myrcia linearifolia Cambess. alecrim-do-cerrado Cerrado

Nictaginaceae

Boerhavia diffusa L. pega-pinto América Tropical

Mirabilis jalapa L. jalapa México

Onagraceae

Ludwigia octovalvis (Jacq.) P.H. Raven cruz-de-malta América Tropical

Oxalidaceae

Oxalis corniculata L. azedinha Mediterâneo

Oxalis cratensis Oliver ex Hook. Nativa do Brasil

Papaveraceae

Argemone mexicana L. papoula-do-méxico América Tropical

Passifloraceae

Passiflora alata Curtis maracujá Nativa do Brasil

Continua

122

Continuação

Família/Espécie Nomes populares Origem geográfica

Passiflora cincinnata Mast. maracujá Cerrado e Cerradão

Passiflora foetida L. maracujá Cerrado

Passiflora pohlii Mast. maracujá Cerrado e Cerradão

Pedaliaceae

Sesamum orientale L. gergelim Oriente

Poaceae

Andropogon bicornis L. rabo-de-burro. Américas

Andropogon leucostachyus Kunth capim-membeca Continente Americano

Cenchrus echinatus L. capim mal-casado. América Tropical

Chloris barbata (L.) Sw. capim-pé-de-galinha. Regiões Tropicais

Cymbopogon winterianus Jowitt. citronela Índia

Cynodon dactylon (L) Pers. grama-seda África Tropical

Dactyloctenium aegyptium (L.) P. Beauv. pé-de-galo. África

Digitaria ciliaris (Retz.) Koel. capim-colchão Ásia

Digitaria insularis (L.) Fedde capim-amargoso América do Sul

Echinochloa colona (L) Link capim-arroz. Cosmopolita

Eleusine indica (L.) Gaertn. pé-de-galinha. Ásia

Eragrostis airoides Nees capim-névoa América do Sul

Eragrostis ciliaris (L.) R. Br. capim-fino América do Sul

Eragrostis pilosa (L.) P.Beauv. capim-panasco Europa

Eustachys distichophylla (Lag.) Nees capim-branco América do Sul

Hyparrhenia rufa (Nees) Stapf capim-mimoso África

Leptochloa filiformes (Lam.) P. Beauv. capim-mimoso Ásia

Loudetiopsis chrysothrix (Nees) Conert brinco-de-princesa Cerrado

Melinis minutiflora P. Beauv. capim gordura África

Panicum maximum L. capim-colonião África

Panicum pernambucensis (Spreng.) Mez ex Pilg.) palha-branca Velho Mundo

Panicum sellowii Nees bambuzinho Américas

Paspalum notatum Flüggé grama-batatais Continente Americano

Pennisetum americanum (L.) Leeke milheto Continente Americano

Pennisetum purpureum Schumach. capim-napier África

Pennisetum setosum (Sw.) Rich. capim-oferecido Nativa do Brasil

Rhynchelytrum repens (Willd) C.E.Hubb. capim-favorito África

Setaria parviflora (Poir.) Kerguélen rabo-de-cahorro Continente Americano

Sorghum arundinaceum (Desv.) Stapf sorgo-selvagem África

Sorghum bicolor L. sorgo África

Sporolobus indicus (L.) R. Br. capim-morão América Tropical

Continua

123

Continuação

Família/Espécie Nomes populares Origem geográfica

Urochloa brizantha (Hochst. ex A. Rich.) Stapf braquiarião África

Urochloa decumbens Stapf braquiária África

Urochloa humidicola (Rendle) Morrone & Zuloaga umidícola África

Urochloa mutica (Forsk.) Stapf. capim-angola África

Urochloa plantaginea (Link) Hitchc. capim-marmelada África

Urochloa ruziziensis R.Germ. & Evrard braquiária-peluda África

Polygalaceae

Bredemeyera floribunda Willd. cipó-gemada Cerrado

Polygala violacea Aubl. roxinha Continente Americano

Portulacaceae

Portulaca fluvialis Legr. onze-horas América do Sul

Portulaca oleracea L. beldroega África

Talinum paniculatum (Jacq.) Gaertn. maria-gorda Continente Americano

Talinum triangulare (Jacq.) Willd. beldroega-graúda Ámérica Tropical

Pteridaceae

Pteris vittata L. samambaia-de-burro Velho Mundo

Rhamnaceae

Gouania latifolia Reiss. cipó-mole Nativa do Brasil

Rubiaceae

Borreria capitata DC. vassourinha Nativa do Brasil

Diodia teres Walter mata-pasto. Nativa das Américas

Richardia brasilensis Gomes poaia-branca. Nativa das Américas

Richardia grandiflora (Cham. & Schltdl.) Steud. poaia-rósea. Nativa do Brasil

Spermacoce latifolia Aubl. poaia-do-campo. Nativa do Brasil

Staelia thymoides Cham. & Schltdl. tomilho América do Sul

Sapindaceae

Matayba elaeagnoides Radlk. caboatá Cerrado e Cerradão

Serjania caracasana (Jacq.) Willd. Cerrado e Cerradão

Serjania erecta Radlk. cipó-timbó Cerrado e Cerradão

Serjania lethalis A.St.Hil. timbó Cerrado e Cerradão

Scrophulariaceae(Plantaginaceae)

Scoparia dulcis L. vassourinha América Tropical

Smilacaceae

Smilax brasiliensis Spreng. japecanga Cerrado

Smilax cissoides Martius ex Grisebach salsaparrilha Cerrado

Smilax fluminensis Steud. japecanga Cerrado

Smilax japicanga Griseb. japecanga Nativa do Brasil

Continua

124

Continuação

Família/Espécie Nomes populares Origem geográfica

Solanaceae

Cestrum nocturnum L. flor-da-noite Antilhas

Datura metel L. saia-roxa Ásia

Solanum americanum Mill. maria-pretinha. Américas

Solanum lycocarpum A.St.-Hil. fruta-do-lobo. Nativa do Brasil

Solanum palinacanthum Dunal joá-bravo. Nativa do Brasil

Solanum paniculatum L. jurubeba Nativa do Brasil

Solanum sisymbrifolium Lam. joá Américas

Sterculiaceae (Malvaceae)

Ayenia tomentosa L. Cerrado e Cerradão

Melochia spicata (

Fryxell

malvinha Nativa do Brasil

Melochia simplex A.St.-Hil. malva-do-brejo Nativa do Brasil

Waltheria douradinha St.-Hil. douradinha Cerrado

Waltheria indica L. malva-branca América Tropical

Thelypteridaceae

Thelypteris dentata (Forssk.) E.P. St. John rabo-de-gato América Tropical

Tiliaceae (Malvaceae)

Corchorus argutus H.B.K. Nativa do Brasil

Triumfetta bartramia L. barba-de-boi América Tropical

Trigoniaceae

Trigonia nivea Cambess. falso-cipo´-prata. Nativa do Brasil

Turneraceae

Piriqueta cistoides (L.) Gris. guanxuma Nativa das Américas

Piriqueta corumbensis Moura Nativa do Brasil

Turnera melochioides Camb. guanxuma América do Sul

Turnera subulata Sm. operária América Tropical

Urticaceae

Phenax sonneratii (Poir.) Wedd. parietária Nativa do Brasil

Verbenaceae

Lantana camara L. cambará-de-espinho. América Tropical

Lantana canescens Kunth cambarazinho. América do Sul

Lantana trifolia L. milho-de-grilo. Nativa do Brasil

Lippia alba (Mill.) N.E.Brown cidreira-do-campo. Nativa do Brasil

Stachytarpheta cayennensis (Rich.) Vahl gervão Continente Americano

Violaceae

Hybanthus calceolaria (L.) Schulze violeta-do-mato. América do Sul

125

Tabela 2. Distribuição do número de espécies e porcentagem quanto a origem geográfica.

Origem Número de espécies %

Velho Mundo 59 17,15

Cosmopolita/Pantropical 4 1,16

Continente Americano 281 81,69

Cerrado/Cerradão 76 27,04/22,09

Total 344 100

As 76 espécies de cerrado e cerradão estão incluídas nas 281 espécies do Continente Americano,

correspondendo a 27,04% das nativas deste continente e 22,09% do total de 341 espécies.

126

Tabela 3 - Espécies coletadas para verificação de colonização micorrízica. Famílias e

espécies, porcentagem e índice de colonização observado.

Família e Espécie % de colonização índice

Amaranthaceae

Gomphrena celosioides zero ausente

Asteraceae

Bidens subalternans 92 muito alta

Porophyllum ruderale 73 alta

Tridax procumbens 01 baixa

Brassicaceae

Coronopus didynamus zero ausente

Caesapiniaceae

Chamaecrista campestris 88 muito alta

Chamaecrista desvauxii 20 média

Chamaecrista flexuosa zero ausente

Chamaecrista nictitans 98 muito alta

Chamaecrista rotundifolia 80 muito alta

Chamaecrista serpens 100 muito alta

Senna obtusifolia 01 baixa

Senna occidentalis 01 baixa

Capparidaceae

Cleome affinis 90 muito alta

Commelinaceae

Commelina benghalensis 88 muito alta

Commelina erecta 92 muito alta

Euphorbiaceae

Chamaesyse hyssopifolia 82 muito alta

Croton lobatus 90 muito alta

Euphorbia heterophylla 80 muito alta

Phyllanthus tenellus 01 baixa

Sebastiania corniculata 88 muito alta

Fabaceae

Aeschynomene histrix 90 muito alta

Aeschynomene paniculata 99 muito alta

Aeschynomene rudis 99 muito alta

Alysicapus vaginalis 98 muito alta

Arachis hypogaea 90 muito alta

Crotalaria micans 78 alta

Continua

127

Continuação

Família e Espécie % de colonização índice

Desmodium adscendens 01 baixa

Desmodium tortuosum 90 muito alta

Galactia eriosematoides 01 baixa

Indigofera hirsuta 98 muito alta

Indigofera sabulicola 01 baixa

Indigofera suffruticosa 01 baixa

Stylosanthes guianensis 01 baixa

Zornia crinita zero ausente

Zornia reticulata 80 muito alta

Lamiaceae

Hyptis suaveolens 90 muito alta

Mimosaceae

Mimosa adenocarpa zero ausente

Mimosa debilis zero ausente

Mimosa nuda zero ausente

Onagraceae

Ludwigia tomentosa 20 média

Poaceae

Cenchrus echinatus 96 muito alta

Chloris barbata 90 muito alta

Dactyloctenium aegyptium 75 alta

Digitaria ciliaris 92 muito alta

Eleusine indica 01 baixa

Eragrostis pilosa 10 baixa

Rhynchelytrum repens 90 muito alta

Polygalaceae

Polygala violacea 90 muito alta

Rubiaceae

Richardia brasilensis 88 muito alta

Considerando: muito alta > 80%, alta 50-79%, média 20-49%, baixa 01-19% e ausente zero.

128

Figura 1 – Fotos das espécies com suas respectivas colonizações: 01-Aeschynomene paniculata, 02-

Aeschynomene rudis, 03-Alysicapus vaginalis, 04-Arachis hypogaea, 05-Bidens subalternans, 06-Cenchrus

echinatus ,07-Chamaecrista campestris, 08-Chamaecrista desvauxii e 09-Chamaecrista nictitans.

129

Figura 2 - Fotos das espécies com suas respectivas colonizações: 10-Chamaecrista rotundifolia, 11-

Chamaecrista serpens, 12-Chamaesyse hyssopifolia, 13-Chloris barbata, 14-Cleome affinis, 15-Commelina

benghalensis ,16-Commelina erecta, 17-Crotalaria micans e 18-Croton lobatus.

130

Figura 3 - Fotos das espécies com suas respectivas colonizações: 19-Dactyloctenium aegyptium, 20-

Desmodium adscendens, 21-Desmodium tortuosum, 22-Digitaria ciliaris, 23-Euphorbia heterophylla, 24-Hyptis

suaveolens, 25-Indigofera hirsuta, 26-Indigofera sabulicola e 27-Phyllanthus tenellus.

131

Figura 4 - Fotos das espécies com suas respectivas colonizações: 28-Polygala violácea, 29-Porophyllum

ruderale, 30-Richardia brasilensis, 31-Senna obtusifolia, 32-Senna occidentalis, 33-Stylosanthes guianensis,

34-Tridax procumbens , 35-Rhynchelytrum repens e 36-Sebastiania corniculata.

132

Figura 5 - Fotos das espécies com suas respectivas colonizações: 37-Zornia reticulata, 38-Aeschynomene

histrix e 39-Ludwigia tomentosa.

133

Tabela 4 – Resultados para característica química do solo e número de esporos de FMA para Vila Piloto e seus arredores.

Fósforo Mat. Org. pH Potássio Cálcio Mg Ac.Potencial Al SB CTC V

P - resina MO pH K Ca Magnésio H+Al Alumínio Soma Bases

Cap.Troca

Cat Sat. Bases N° de esporos/

mg dm

-3

g dm

-3

CaCl

mmol

-3

mmol

-3

mmol

-3

mmol

-3

mmol

-3

mmol

-3

mmol

-3

% 100g de solo

Amostra

25 22 6.2 1.3 26 12 10 0 39.3 49.3 80 52

Amostra

19 25 5.0 1.1 6 7 31 4 14.1 45.1 31 253

Índices dos elementos, comparados com os dados de Raig; Quaggio (1983). As cores representam: vermelho índices baixos, azul índices médios e verde índices altos

dos elementos em questão.

134

Figura 6-Fotos de algumas espécies de plantas ruderais. 1-Heliotropium indicum, 2-

Commelina erecta, 3-Ipomoea purpúrea, 4-Derris amazônica, 5-Urochloa decumbens, 6-

Crotalaria spectabilis, 7-Odontadenia nítida, 8-Memora peregrina, 9-Macroptilium

lathyroides, 10-Pyrostegia venusta, 11-Emilia fosbergii, 12-Abutilon bedfordianum. Fonte:

Neto (2009).

135

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