ads:
CHRISTIANO DEMÉTRIO DE LIMA RIBEIRO
DESCRIÇÃO ESPERMÁTICA DO SÊMEN DE
RÃ-PIMENTA
(Leptodactylus labyrinthicus)
Dissertação apresentada à Universidade
Federal de Viçosa, como parte das
exigências do Programa de Pós-Graduação
em Biologia Animal, para obtenção do
título de Magister Scientiae.
VIÇOSA
MINAS GERAIS – BRASIL
2009
ads:
Livros Grátis
http://www.livrosgratis.com.br
Milhares de livros grátis para download.
CHRISTIANO DEMÉTRIO DE LIMA RIBEIRO
DESCRIÇÃO ESPERMÁTICA DO SEMEN DE RÃ-PIMENTA
(Leptodactylus labyrinthicus)
Dissertação apresentada à Universidade
Federal de Viçosa, como parte das
exigências do Programa de Pós-Graduação
em Biologia Animal, para obtenção do
título de Magister Scientiae.
APROVADA: 25 de setembro de 2009
Prof. José Cola Zanuncio
(Coorientador)
Prof. Luiz Carlos dos Santos
(Coorientador)
Prof. José Teixeira de Seixas Filho
Dr. Rodrigo Diana Navarro
Prof. Oswaldo Pinto Ribeiro Filho
(Orientador)
ads:
ii
A Deus, que na sua infinita misericórdia me fez
conhecer o seu plano profético. Toda glória e honras
sejam dadas a Ele!
Aos meus pais Marcelo e Aparecida e meus irmãos
Gustavo e Tiara, pelo carinho e exemplo.
À minha amada esposa Jesyane e ao meu amado filho
Ezequiel, companheiros de todas as horas, pelo amor,
pelo carinho, pelo exemplo, pela paciência e pela
perseverança. Amo vocês!
À minha sogra, D. Ângela, pelo carinho, pela
dedicação, pelo incentivo, pelo exemplo e pela
disposição em sempre ajudar.
Ao Prof. Hélio Barbosa e esposa Sra. Marília, pelo
carinho e pela assistência recebida.
Ao amigo Prof. João Luis Lani, pelos conselhos
espirituais e acadêmicos.
Ao amigo José Mauro Torres, pelo carinho e prontidão
sempre presentes.
Dedico
iii
“O coração do entendido adquire o conhecimento,
e o ouvido dos sábios busca a sabedoria”.
Provérbios 18:15
iv
AGRADECIMENTOS
Ao Departamento de Biologia Animal (DBA), do Centro de Ciências
Biológicas e da Saúde (CCB) da Universidade Federal de Viçosa.
Ao amigo e Professor Oswaldo Pinto Ribeiro Filho, pela orientação,
pelos conselhos, pela amizade, pelo incentivo e pelo apoio na realização
deste e de outros trabalhos, também a paciência.
Aos Professores Luiz Carlos dos Santos, Luis David Solis Murgas e
Jose Cola Zanuncio, pela coorientação e pelas sugestões na realização
deste trabalho.
Ao Professor Paulo Cecon, pelas orientações estatísticas.
Aos Professores José Teixeira de Seixas Filho e Dr. Rodrigo Diana
Navarro, por fazerem parte da banca examinadora e pelas suas
contribuições para o aperfeiçoamento deste trabalho.
Ao querido amigo e Professor Marcelo José Vilela (in memorian),
pelo apoio e incentivo na minha vida acadêmica.
Ao amigo Professor José Emílio Zanzirolani de Oliveira, pelas
sugestões dadas e pela oportunidade de um crescimento profissional.
Aos amados irmãos da Igreja Cristã Maranata, pelas constantes
orações e pela assistência recebida. Um corpo só, um só espírito!
Aos amigos Leonardo e Lúcio, responsáveis pelo Maanaim de
Timóteo, por terem aberto as portas para a coleta de alguns exemplares de
rã-pimenta.
Ao Colégio Carmo de Viçosa, em especial ao diretor e amigo Gilton
Natan Soares de Almeida e à pedagoga e amiga Isabel Miranda Milagres,
pela compreensão, pelos ensinamentos e pela cooperação no dia-a-dia.
Aos meus cunhados Ronaldo, Ronildo e Jesylaine, pela cooperação
nas coletas e nos experimentos.
Aos amigos e colegas do Ranário Experimental, Marcelo, meu
“coorientador”, Ronaldeira, meu “braço direito”, Cláudio "lagartixa", Ângela,
Emanuel e Calado, pelo convívio e pela ajuda na realização do trabalho.
Aos funcionários do Ranário Experimental da UFV, Everaldo, Álvaro,
José Antônio, Carlos Roberto e Raimundo, pelo convívio e auxílio durante
a execução deste trabalho.
v
Aos funcionários da Piscicultura, Paulo e João "Pindóia", pelo auxílio
e pela amizade.
Ao amigo Márcio Dionísio, pelas contribuições científicas e pela
disposição contínua.
Ao Sr. Antônio Iria, pelo auxílio na coleta e pela troca de
experiências.
Ao amigo José Roberto, pela contribuição na formatação deste
trabalho.
Ao Professor Nelson Coeli, pela revisão ortográfica deste trabalho.
vi
BIOGRAFIA
Christiano Demétrio de Lima Ribeiro, filho de Marcelo Vieira Ribeiro
e Geralda Aparecida de Lima Ribeiro, nasceu em 7 de novembro de 1979,
em Caratinga, Minas Gerais.
Em janeiro de 2005, graduou-se no curso de Ciências Biológicas
pela Universidade Federal de Viçosa - UFV.
Em agosto de 2007, ingressou no Curso de Pós-Graduação em
Biologia Animal, em nível de mestrado, na Universidade Federal de Viçosa.
Em 25 de setembro de 2009, submeteu-se aos exames finais de
defesa de dissertação.
vii
ÍNDICE
Páginas
LISTA DE FIGURAS ........................................................................ ix
LISTA DE TABELAS........................................................................ xi
RESUMO ........................................................................................ xii
ABSTRACT ..................................................................................... xiv
1. INTRODUÇÃO ............................................................................ 1
2. REVISÃO DE LITERATURA......................................................... 3
2.1 A rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus) ............................... 3
2.2 Características reprodutivas da rã-pimenta (Leptodactylus
labyrinthicus).......................................................................... 3
2.3 Fatores abióticos que influenciam a reprodução em anuros .... 4
2.4 Mecanismos neuroendócrinos da reprodução de anuros ......... 5
2.5 Hormônios utilizados na reprodução artificial de rãs ............... 5
2.6 Biologia seminal de anuros ................................................... 7
2.7 Espermatogênese de anuros.................................................. 7
2.8 Morfologia dos espermatozoides de anuros ............................ 9
3. MATERIAL E MÉTODOS ............................................................. 11
3.1 Coleta dos animais ................................................................ 11
3.2 Manutenção dos animais em laboratório ................................. 16
3.3 Preparo e aplicação do GnRHa nos exemplares de rã-pimenta 20
3.4 Coleta do sêmen.................................................................... 21
3.5 Análise microscópica do sêmen.............................................. 22
3.6 Características seminais de rã-pimenta (Leptodactylus
labyrinthicus)............................................................................ 22
3.6.1 Volume e cor ................................................................... 22
3.6.2 Vigor, motilidade e concentração espermática .................. 23
3.7 Comprimentos totais, da cabeça, da membrana ondulante que
envolve a cabeça, da área da cabeça e da cauda do
espermatozoide de rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus)...... 23
viii
3.8 Análise dos dados.................................................................. 23
4. RESULTADOS E DISCUSSÃO..................................................... 24
4.1 Resposta dos exemplares de rã-pimenta (Leptodactylus
labyrinthicus) à indução à espermiação com acetato de buserelina . 24
4.2 Análise do sêmen .................................................................. 25
4.2.1 Volume e cor .................................................................... 25
4.2.2 Vigor, motilidade e concentração espermática ..................... 26
4.3 Análise da morfologia externa e da morfometria do
espermatozoide de rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus) ...... 27
5. CONCLUSÕES............................................................................ 34
6. CONSIDERAÇÕES GERAIS ........................................................ 35
7. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS .............................................. 36
APÊNDICE...................................................................................... 41
ix
LISTA DE FIGURAS
FIGURA 1. Membro anterior desenvolvido de macho de rã-pimenta
(Leptodactylus labyrinthicus)............................................. 14
FIGURA 2. Acúleos na região ventral superior de machos de rã-
pimenta (Leptodactylus labyrinthicus) . ............................ 14
FIGURA 3. Vista geral das baias utilizadas para alojar os machos
de rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus). A: vista
externa superior; B: vista interna frontal........................... 15
FIGURA 4. Abertura da cavidade bucal para início da alimentação
induzida utilizando uma toalha de mão para vendar os
olhos da rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus). ........... 17
FIGURA 5. Peso dos exemplares de rã-pimenta (Leptodactylus
labyrinthicus) durante a alimentação induzida com tilápia
(Oreochromis niloticus). ................................................. 18
FIGURA 6. Comprimento rostro-cloacal (CRC) dos exemplares de
rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus) durante a
alimentação induzida com tilápia (Oreochromis
niloticus). ....................................................................... 19
FIGURA 7. Aplicação hormonal na cavidade celomática de rã-
pimenta (Leptodactylus labyrinthicus). ............................ 20
FIGURA 8. Coleta do sêmen de rã-pimenta (Leptodactylus
labyrinthicus), dentro da baia individual, utilizando-se
pipeta de vidro de 2 mL.. ................................................ 22
FIGURA 9. Fotomicrografia de luz de espermatozoides de rã-
pimenta Leptodactylus labyrinthicus (destacados pela
seta). Obj 40, zoom 2. .................................................... 28
FIGURA 10. Fotomicrografia de luz de espermatozoides de rã-
pimenta Leptodactylus labyrinthicus (destacados pela
seta). Obj 40, zoom 2, corada com azul de metileno. ...... 29
FIGURA 11. Fotomicrografia de luz de espermatozoides de rã-
pimenta Leptodactylus labyrinthicus evidenciando a
forma da cabeça e a cauda bifurcada. Obj 40, zoom 2,
corada com azul de metileno......................................... 31
x
FIGURA 12. Fotomicrografia de luz de espermatozoides de rã-
pimenta Leptodactylus labyrinthicus analisada pelo
programa IMAGE PRO PLUS
®
. Obj 40, zoom 2, corada
com azul de metileno 1%. L1–L3=comprimento da cabeça;
T2=área da cabeça; L5–L11=comprimento da cauda; L12–
L13=raios da Membrana ondulatória. ................................ 32
xi
LISTA DE TABELAS
TABELA 1. Identificação das áreas predeterminadas para coleta de
rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus), com datas das
coletas, temperatura do local no momento das coletas,
municípios, local e coordenadas...................................... 13
TABELA 2. Fotoperíodos de cada baia onde estavam
acondicionados os exemplares de rã-pimenta (Leptodactylus
labyrinthicus). ................................................................. 16
TABELA 3. Peso (g) dos exemplares de rã-pimenta (Leptodactylus
labyrinthicus) durante a alimentação induzida com tilápia
(Oreochromis niloticus). .................................................. 18
TABELA 4. Comprimento rostro-cloacal (CRC) dos exemplares de
rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus) durante a
alimentação induzida com tilápia (Oreochromis niloticus). . 19
TABELA 5. Tempo de aplicação x dose hormonal (acetato de
buserelina) nos exemplares de rã-pimenta (Leptodactylus
labyrinthicus) ................................................................. 21
TABELA 6. Análise da presença de espermatozoides de rã-pimenta
(Leptodactylus labyrinthicus) nos oito tempos de coleta .. 24
TABELA 7. Volume de sêmen coletado na cloaca de rã-pimenta
(Leptodactylus labyrinthicus) em oito tempos de coleta ... 26
TABELA 8. Comprimentos totais, da cabeça, área da cabeça (µm2)
e comprimento da cauda do espermatozoide de rã-
pimenta (Leptodactylus labyrinthicus), em µm. ................ 30
TABELA 9. Área da cabeça (A), comprimento total (CT), da cabeça
(CC) e da cauda (CCA) dos espermatozoides de alguns
anuros. .......................................................................... 33
xii
RESUMO
RIBEIRO, Christiano Demétrio de Lima M. Sc. Universidade Federal de
Viçosa. Setembro de 2009. Descrição espermática do sêmen de rã-
pimenta (Leptodactylus labyrinthicus). Orientador: Oswaldo Pinto
Ribeiro Filho. Coorientadores: Luiz Carlos dos Santos, Luis David Solis
Murgas e José Cola Zanuncio.
O presente trabalho foi desenvolvido no Ranário Experimental da
Universidade Federal de Viçosa, Viçosa (MG), de 6/4/2009 a 7/6/2009, onde
avaliaram as características seminais e a morfologia do espermatozóides da rã-
pimenta. Oito machos de rãs-pimenta, aptos à reprodução, de Viçosa, Cajuri,
Timóteo e Governador Valadares foram coletados. A temperatura adotada foi
de 25,0 ± 1,5 °C, com dois fotoperíodos: 12:12 LD (LD = Light Dark) e
14:10 LD. Utilizou-se o hormônio análogo acetato de buserelina (GnRHa) na
dosagem de 0,4 µg (= 0,1 mL) para indução a espemiação, aplicado na
cavidade celomática do animal com uma seringa hipodérmica com agulha de
25,0 x 0,7 mm. Esse procedimento foi realizado durante dois dias consecutivos:
cinco doses no primeiro dia, com intervalo de uma hora entre doses, e três
doses no segundo, com a primeira dose no mesmo horário do dia anterior e
com intervalo de 1 h entre doses. No primeiro dia cinco coletas do sêmen dos
exemplares de rã-pimenta (uma, duas, três, quatro e cinco horas após a
primeira aplicação do hormônio) foram realizadas. O efeito do tratamento
foi avaliado com microscópio óptico de luz com campo claro (aumento de
400x), onde se analisaram lâminas com sêmen. Foi considerado como
positivo as lâminas com presença de espermatozoides. Uma alíquota do
sêmen in natura de cada animal, correspondente ao valor de uma gota
(aproximadamente 0,05 mL), foi colocada sobre uma lâmina de vidro e,
sobre a alíquota, uma lamínula. O vigor, motilidade e concentração
espermática foram avaliados. Hormônio induziu somente no segundo dia (5
h de tratamento no primeiro dia e, após 24 h, mais duas horas de
tratamento), totalizando 26 h para coletar o sêmen, com fotoperíodo
de14:10 LD. Um fotomicroscópio Olympus BX-40 foi utilizado no
Laboratório de Anatomia Vegetal da Universidade Federal de Viçosa,e
realizou-se a captura de imagem, de 28 espermatozóides com auxílio do
xiii
programa de análises de imagem IMAGE PRO PLUS
®
, obtendo-se a área
da cabeça e comprimentos total, da cabeça, cauda e membrana que
envolve a cabeça. Os intervalos mínimos-máximos (médias) foram: área da
cabeça: 15,57 – 50,15 (29,83) µm
2
, comprimento total: 26,89 –76,06
(51,202) µm e da membrana que envolve a cabeça.
xiv
ABSTRACT
RIBEIRO, Christiano Demétrio de Lima M. Sc. Universidade Federal de Viçosa.
September 2009. Descripcion of semen of sperm-pepper frog
(Leptodactylus labyrinthicus). Adviser: Oswaldo Pinto Ribeiro Filho.
Coadvisers: Luiz Carlos dos Santos, Luis David Solis Murgas and José Cola
Zanuncio.
This study was developed at Ranário Experimental in Universidade
Federal de Viçosa, Viçosa (MG) from April 6
th
, 2009 to June 7
th,
2009, and aimed
to assess the seminal characteristics and analyze the morphology of semen and
sperm peppermint frog (Leptodactylus labyrinthicus). We collected eight male rã-
pimenta, suitable for reproduction, in Viçosa, Cajuri, Timóteo and Governador
Valadares. The assumed temperature was 25.0 ± 1.5 Cº with two photoperiods:
LD 12:12 (LD = Light Dark) and 14:10 LD. For induction of spermiogenesis, we
used the hormone analogue buserelin acetate (GnRHa) at a dose of 0.4 mg (=
0.1 mL), charged in the coelomic cavity of the animal with the aid of a
hypodermic needle 25, 0 x 0.7 mm. This procedure was performed for two
consecutive days: five doses on the first day with an hour interval between
doses, and three doses in the second, with the first dose at the same time the
day before and 1 h interval between doses. On the first day were collected five
of the semen specimens of frog pepper (one, two, three, four and five hours after
the first hormone application). To verify the effect of treatment was used an
optical microscope with bright field (400x increase), which examined slides with
semen. It was considered positive the slides with the presence of spermatozoa.
An aliquot of fresh semen from each animal, corresponding to a value of one
drop (approximately 0.05 mL) was placed on a glass slide and the tax rate, a
cover slip. Force, motility and sperm concentration were avaluated. The animals
responded positively to the hormone only the second day (5 h of treatment the
first day and after 24 h, two more hours of treatment), totaling 26 h to collect
semen, photoperiod of 14: 10 LD. In Plant Anatomy Laboratory, Universidade
Federal de Viçosa, we used the light microscope Olympus BX-40 and held
image capture, which was used for the analysis of 28 sperm, with the help of the
program analyzes the image IMAGE PRO PLUS
®
, the head area and total
length, head, tail and the membrane surrounding the head. The relevant time
xv
minimum-maximum (average) were: the head area: 15.57 to 50.15 (29.80) µm
2
,
total length: 26.89 -76.06 (21.21) µm and the membrane surrounding the head.
1
1. INTRODUÇÃO
A rã-pimenta, Leptodactylus labyrinthicus (Spix, 1824),
(Leptodactilidae), ocorre da Venezuela ao sudeste do Brasil e leste do
Paraguai e sua biologia reprodutiva é pouco conhecida (AGOSTINHO,
1988). Esta espécie é somente menor que a rã-gigante-africana (Conraua
goliath).
A rã-pimenta é geralmente encontrada durante a noite, nas margens
de brejos e locais de água corrente onde há formação de remanso com
vegetação. Durante o dia, procura local protegido, como buracos, pedras
ou pedaços de madeira, onde permanece até o anoitecer.
Características externas como dorso vermelho ou marrom-claro, com
manchas; superfícies ventrais da coxa amarela, com pequenas manchas
podem identificar a rã-pimenta. Seu nome popular é devido a secreções na
pele, com cheiro característico de pimenta que em contato com os olhos ou
com a mucosa da pele, causam irritação.
Os girinos de rã-pimenta são onívoros, mas o adulto é carnívoro,
podendo se alimentar de outros anfíbios, répteis, pequenos pássaros e
mamíferos (SANTANA, 1998).
A população da rã-pimenta, no Brasil, vem diminuindo e podem estar
ocorrendo pela constante degradação dos ecossistemas naturais
especialmente por ações antrópicas, caça predatória, e a introdução de
espécimes exótica.
O período reprodutivo da rã-pimenta é sazonal, iniciando-se em
agosto e terminando em janeiro, com picos mais acentuados em setembro,
outubro e novembro. O pico de desovas é influenciado pela temperatura e
umidade (AGOSTINHO, 1988).
A desova compreendem um ninho de espuma geralmente
encontrada nas margens de poças d´água. Cerca de 85% dos ovócitos
depositados não são fecundados, quais juntamente com a albumina são
fonte inicial de alimentos para os girinos. Isto garante a sobrevivência por
um longo período dentro do ninho, até a ocorrência de chuvas, quando são
levados para o corpo d’água e encontram alimento disponível (PRADO et
al., 2005).
2
A dispersão de vertebrados depende da adaptação de seus ciclos
reprodutivos ao ambiente. O controle dos ciclos reprodutivos requer que os
organismos detectem as mudanças no ambiente e ajustem seus
parâmetros fisiológicos com as condições necessárias, através do sistema
neuroendócrino. O conhecimento do ciclo reprodutivo é fundamental para
se compreender as estratégias do ciclo de vida, para preservação da rã-
pimenta e fornecem subsídios para análises filogenéticas dessa espécie.
A importância da rã-pimenta para o ecossistema brasileiro e a falta
de estudos sobre o sêmen, justificam o desenvolvimento desse trabalho.
Foi realizado este trabalho com objetivo de avaliar as características
do sêmen e dos espermatozóides de rã-pimenta.
3
2. REVISÃO DE LITERATURA
2.1 A rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus)
Leptodactylus labyrinthicus (Spix, 1824) (Amphibia, Anura,
Leptodactilidae), cuja denominação mais comum é rã-pimenta ou gia, foi
descrita como Rana labyrinthica por Spix, em 1824, e redefinida em novo
gênero (Leptodactylus labyrinthicus) (CEI, 1980). A população de girinos
dessa espécie não forma agregados, e os animais pós-metamórficos
distribuem em baixa densidade (JIM, 1980).
Adultos de rã-pimenta possuem dorso manchado ou barrado, mais
ou menos uniforme; lábio com barras verticais claras; superfície posterior
da coxa raramente uniforme, com marcas claras raramente constrastando
sobre o fundo escuro; porção superior da tíbia distintamente barrada ou
não; duas pregas dorso laterais de contorno escuro ou não, contínuas ou
interrompidas, estendendo-se de um quarto à metade da distância do olho
até a cloaca; prega de contorno escuro, do olho até acima do tímpano,
contínua ou não, até a clavícula; e prega interrompida de contorno escuro,
do tímpano até a lateral do corpo (HEYER (1979). Adultos de rã-pimenta se
alimentam de pássaros e cobras (CEI, 1980) e sapos (CARDOSO;
SAZIMA, 1972).
A rã-pimenta criada em cativeiro ingeriu carne crua sem de estímulo
(LIMA E AGOSTINHO, 1985).
2.2 Características reprodutivas da rã-pimenta (Leptodactylus
labyrinthicus)
Machos de rã-pimenta apresentam polegar com acúleo nupcial e
acúleos na região ventral superior, que auxiliam aderir à fêmea durante
amplexo nupcial durante o período reprodutivo (Figura 2), durante o
amplexo nupcial ocorrem a eliminação de ovócitos pela fêmea para o meio
externo e a eliminação de espermatozoides pelo macho, ocorrendo assim a
fecundação (SANTANA, 1998).
A fêmea de rã-pimenta põe seus ovócitos em ninhos de espuma,
construindo com o macho em lama próxima a áreas alagadas e somente 3
a 11% dos ovócitos são fertilizados. Os demais são chamados de ovócitos
4
tróficos, destinados à alimentação dos girinos e provavelmente foram
postos pela fêmea após a partida do macho. Esses ovócitos tróficos são
importantes no crescimento e desenvolvimento dos girinos que nascem dos
ovócitos fertilizados. O ninho é carregado para lagoa, porém a escassez de
chuva pode forçar os girinos a permanecerem dias sem alimentação, e,
portanto, os ovócitos não fertilizados podem ser sua única fonte de
alimento (PRADO et al., 2005).
2.3 Fatores abióticos que influenciam a reprodução em anuros
A pluviosidade e a temperatura são vitais para a reprodução na
maioria das espécies de Anuras (AICHINGER, 1987) e determinam a
época favorável do ano e a duração em que se mantêm ativos,
determinando sua distribuição estacional. Padrões cíclicos estão
correlacionados e ajustados às mudanças sazonais, sendo a temperatura o
fator mais importante. A temperatura regula os ciclos reprodutivos de rãs e
sapos (HUANG et al., 1997).
A reprodução de rã-touro é influenciada por fatores climáticos
(RIBEIRO FILHO et al., 1998). (EASLEY et al., 1979) enfocam a
importância dessas influências ambientais na espermiação de rã-touro.
A temperatura ambiente e o fotoperíodo foram os fatores abióticos
que influenciam a reprodução de rã-touro, sendo a temperatura ótima para
a reprodução em torno de 20 °C (FONTANELLO et al., 1984).
A maturação sexual de rã-touro pode ser controlada pela
temperatura, obtendo-se o melhor desenvolvimento gonadal entre 26 e
29 °C (FIGUEIREDO et al., 2001).
A temperatura em regiões tropicais e subtropicais raramente é um
fator limitante, pois são quase constantes e ótimas. No entanto em regiões
temperadas afetam a secreção de gonadotrofina pela hipófise na maioria
das espécies e alteram a sensibilidade do epitélio germinal aos hormônios
gonadotrópicos no outono e no inverno (SALTHE E MECHAM, 1974).
Diferenças sazonais no metabolismo dos anfíbios representam a
transição entre a utilização de energia para a reprodução (nos adultos a
energia é dirigida para um esforço reprodutivo, com a produção de ovócitos
e esperma, além do comportamento das rãs em época de acasalamento) e
5
a preparação de reservas suficientes para que as rãs suportarem os
invernos mais rigorosos (BRATTSTROM, 1979).
2.4 Mecanismos neuroendócrinos da reprodução de anuros
Os sistemas nervoso e o endócrino atuam em conjunto na
reprodução com de diferentes grupos de hormônios produzidos por órgãos
ao longo do eixo hipotalâmico-hipofisário-gonadal (HAFEZ, 2004).
A atividade gametogênica em rã-manteiga é controlada pela secreção
gonadotrófica do lóbulo anterior da hipófise. O ciclo reprodutivo dessa
espécie nas fases da gametogênese e do período de ovulação,
correspondem, às esferas da ação dos hormônios gonadotrópicos
(gonadotrofina A e gonadotrofina B) (CEI, 1949,1950).
2.5 Hormônios utilizados na reprodução artificial de rãs
O GnRH (hormônio liberador de gonadotrofina) tem peso molecular
de 1.183 dáltons sendo sintetizado e armazenado no hipotálamo basal
médio e fornece uma ligação humoral entre os sistemas endócrino e
nervoso. Pulsos de GnRH são liberados no sistema porta-hipotálamo-
hipofisário em resposta à estimulação nervosa e promovem a liberação de
LH e FSH da hipófise-anterior (HAFEZ, 2004).
O efeito de análogos do hormônio GnRH sobre a desova e
espermiação de rã-touro pode ter aplicações práticas importantes para
estimulação da atividade gonadal e a aquisição de gametas nessa espécie.
Estes consistem em modificações na molécula do GnRH ativo, necessárias
para o aumento do desempenho desse peptídeo. Em geral, modificações
como 'Pro POT.9' (NHEt), substituições com D-aminoácidos e a
combinação dessas modificações produzem moléculas resistentes à
degradação enzimática, estáveis na conformação biologicamente ativa e
caracterizadas, portanto, por uma maior afinidade e potência (ALONSO,
1997).
A rã-touro portadora de micobacteriose foi induzida com hormônio
acetato de buserelina à espermiação, após foi realizada coleta do sêmen e
determinou-se concentração espermática (AFONSO, 2004).
6
Ambiente controlado (luz e temperatura) pode alterar os níveis de
andrógenos circulantes nos machos de rãs-verde (Rana esculenta)
tratadas em diferentes fases do ciclo testicular, embora esses animais
possuam potencialmente um tipo de espermatogênese contínua. Esses
autores verificaram também que a atividade gonadotrópica da hipófise,
somada à resposta dos testículos às gonadotrofinas e à resposta de
órgãos periféricos, alvos do andrógeno, não é igualmente sensível à
temperatura (IELA et al., 1980).
Desovas de Leptodactylus labyrinthicus foram obtidas após a
aplicação de extratos de duas hipófises diluídas em solução fisiológica e
para as fêmea foi estabelecida dosagem em função do peso (AGOSTINHO,
1988).
Rã-touro induzida ao acasalamento com 7mg/Kg de extrato de
hipófise de rã-touro apresentaram desova com 24.310 ovos (RIBEIRO
FILHO et al., 1998).
O extrato bruto hipofisário (EBH) de rã-touro deve ser utilizado em
animais com características sexuais secundárias para resposta positiva ao
tratamento (RIBEIRO FILHO, 1994; AGOSTINHO, 1995), o mesmo para
acetato de buserelina (GnRHa) (ALONSO, 1997; AFONSO, 2004;
TORTELLY NETO, 2006).
A rã-manteiga e rã-touro, quando induzidas à espermiação por
gonadotropina coriônica humana (hCG), não dependem de esteróides
sintéticos complementares para a indução à espermiação (ROSEMBLIT et
al., 2006) e outras espécies de anfíbios também foram induzidos por hCG
(POZZI e CEBALLOS, 2000; KOBAYASHI et al. 1993).
Machos de rã-manteiga e de rã-touro espermiaram após 97,5 horas
e 1 hora após serem induzidos por acetato de buserelina, ambos
apresentavam características sexuais secundárias especifica e a utilização
de hormônios na reprodução é uma ferramenta importante para a
criopreservação de gametas (PEREIRA, 2009).
7
2.6 Biologia seminal de anuros
Os espermatozóides são células únicas em forma e função, sendo os
maduros produtos finais de processos complexos de desenvolvimento sem
passar por divisões ou diferenciações. O exame do sêmen é o método-
padrão de avaliação da fertilidade de reprodutores (HAFEZ, 2004).
O sêmen de anuros apresenta semelhanças com o de peixes e a
motilidade espermática é a principal característica em comum e a sua
iniciação depende da interação com o meio aquático. Os espermatozóides
são imóveis no trato reprodutivo, mas ao entrar em contato com o meio
circundante, modificações na concentração osmótica ou iônica ocorrem e
alteram a polarização do cálcio da membrana, dando início à motilidade
(COSSON, 2004; MORISAWA et al., 1983).
O decréscimo da osmolaridade dos espermatozóides de anuros
inicia sua motilidade, enfatizando o emprego de metodologias de coleta de
sêmen sem a contaminação das amostras seminais (HOLLINGER;
CORTON, 1980).
A concentração dos espermatozóides é o número de espermatozóides
por volume de sêmen, é importante para sua utilização. Rã-touro portadora de
micobacteriose espermiou após aplicação do hormônio acetato de buserelina
na região peritoneal do animal (AFONSO, 2004).
A motilidade espermática é a principal variável para avaliar a qualidade
do sêmen. Sendo necessário para sêmen de rã-touro portadora de
micobacteriose três horas para realizar coletas após aplicação do hormônio
acetato de buserelina e os espermatozóides de anfíbios anuros são coletados
com motilidade (TORTELLY NETO, 2006).
2.7 Espermatogênese de anuros
O ciclo espermatogênico de anuros apresentou três períodos
dezembro a março, repouso total da atividade gametogênica; abril a
setembro, atividade degenerativa; e outubro a dezembro,
espermatogênese. No último período ocorrem a expulsão de grandes
massas de espermatozoides e o maior desenvolvimento dos caracteres
sexuais secundários. No entanto, temperaturas ótimas em laboratório
podem favorecer o processo espermatogênico durante o período de
8
inverno. Fatores genéticos diferenciam a regulação hormonal do ciclo
sexual de duas raças de Leptodactylus ocellatus na Argentina. Na primeira,
reticulata, os machos apresentam espermatogênese contínua, e na
segunda, típica, há interrupção estacional da atividade espermatogênica
(CEI, 1950).
Os testículos de anuros são descritos como órgãos pares,
arredondados, compactos, geralmente amarelados, esbranquiçados ou
branco-leitosos. Provavelmente, apresentam variações anatômicas de
forma e peso de acordo com o período reprodutivo (DUELLMAN e TRUEB,
1994), e outras alterações morfofuncionais associadas à reprodução
(LOFTS, 1974), como descrito para algumas espécies (MONTERO e
PISANÓ, 1990, 1992; LAMPO e MEDIALDEA, 1996; HUANG et al., 1997;
OLIVEIRA; VICENTEINI, 1998). Os testículos são revestidos pela túnica
albugínea com parênquima testicular constituído por tecido germinativo
arranjado em lóbulos seminíferos delimitados por tecido conjuntivo frouxo
(OLIVEIRA e VICENTINI, 1998; OLIVEIRA et al., 2002; OLIVEIRA et al.,
2003; OLIVEIRA e ZIERI, 2005).
A caracterização dos estádios de desenvolvimento do aparelho
reprodutor masculino é importante para o aprimoramento das técnicas de
manejo da rã-touro. A morfologia dos estádios de desenvolvimento do
aparelho reprodutor masculino dessa espécie mostrou em nível de
microscopia de campo de luz, um testículo com diferentes fases
morfológicas. Túbulos seminíferos, estruturas enoveladas e envoltas por
tecido conjuntivo, foram observadas em seu interior cujo lume varia de
diâmetro com o desenvolvimento. O processo de espermatogênese ocorre
continuamente nos indivíduos adultos de rã-touro (COSTA et al., 1998).
Espécies de anfíbios anuros que habitam regiões tropicais e
subtropicais, em que a temperatura ambiental não é sujeitam a grandes
flutuações sazonais apresentam produção contínua de espermatozoides
durante todo o ciclo reprodutivo anual (LOFTS, 1974).
Os testículos e ovários das três ordens de anfíbios estão conectados
por meio de ductos genitais próprios, constituindo a via gametogênica
representada pelos ductos eferentes e de Wolff, nos machos, e pelos
ovidutos ou ducto de Müller, nas fêmeas. Estruturas vestigiais, que
9
permanecem como não funcionais como órgão de Bidder, que ocorrem em
machos. (OLIVEIRA et al., 2003, 2007)
A análise da anatomia e histologia testicular de Dendropsophus
minutus, concluiu que o ciclo gametogênico é contínuo (OLIVEIRA et al.
2007).
Os machos de rã-touro com peso acima de 45 g encontravam em
processo de maturação e animais com peso médio de 240,42 g já
poderiam ser considerados reprodutores em potencial. Pode-se afirmar que
os machos de rã-touro apresentam precocidade sexual (LIMA et al.,1998),
2.8 Morfologia dos espermatozoides de anuros
Poucos trabalhos estudaram biologia reprodutiva e a morfologia externa
do espermatozóide de anuros.
Os espermatozóides dos anfíbios são, geralmente, células alongadas e
modificadas para nadar, tendo cabeça e cauda com peça intermediária e
principal (DUELLMAN e TRUEB, 1994). A formação desses gametas envolve
um processo extenso e complexo, iniciando com a proliferação e diferenciação
das espermatogônias, passando pela meiose e terminando com a
espermiogênese (RASTOGI et al., 1988), alterações morfológicas e
bioquímicas que transformam as espermátides em espermatozóides (PHILIPS,
1974).
De 11 espécies de anuros da Índia de Sri Lanka, três do gênero
Limnonectes e a Euphlyctis hexadactylus apresentaram espermatozoides com
cabeça cilíndrica e cauda fina. Os tamanhos dos espermatozoides em sete
espécies do gênero indiano Rana (Limnonectes, Euphlyctis, e Hoplobatrachus),
praticamente tiveram mesmo tamanho e não evidenciaram qualquer
divergência na morfologia de seus espermatozóides (KURAMOTO E JOSHY,
2000, 2001).
Análises ultra estruturais da espermiogênese de Eupemphix nattareri
(Anura, Leiuperidae), mostraram a vesícula acrossômica alongada e cônica, o
perfuration é uma estrutura cônica alongada, fibrilar e eletrodensa. A peça
intermediária apresenta dois centríolos perpendiculares embebidos no material
periocentriolar, onde se encontra o centríolo distal, responsável pelo
desenvolvimento do flagelo. A cauda consiste de um axonema, uma fibra
10
justaxonemal, e na região mediana da cauda se encontra uma extensa
membrana ondulante (ZIERI et al., 2008).
Os espermatozoides de Rhacophorus chenfui, R. dugritei, R. dugritei e
R. omeimontis são semelhantes(QIN et AL., 2008) e para R. viridis
amamiensis, R. owstoni e R. moltrecht, possuem cabeça e cauda fina enrolada
(KURAMOTO, 1996).
Espermatozóides anormais cauda enrolada, macroencefalia,
microencefalia, gota proximal, cabeça isolada normal, gota distal e cauda
dobrada foram encontrados no sêmen de rã-manteiga e rã-touro (Pereira,
2009).
11
3. MATERIAL E MÉTODOS
O trabalho foi executado no Ranário Experimental do Departamento
de Biologia Animal da Universidade Federal de Viçosa, de 6/4 a 7/6/2009.
3.1 Coleta dos animais
A coleta dos animais, autorizada pelo Instituto Brasileiro do Meio
Ambiente e dos Recursos Naturais Renováveis (IBAMA/SISBIO 17.152-1),
foi realizada no período de fevereiro a abril de 2008 e fevereiro a abril de
2009, nos municípios mineiros de Viçosa, Cajuri, Timóteo e Governador
Valadares (Tabela 1). As coordenadas dos locais visitados foram aferidas
com GPS, modelo GARMIN 12, com precisão de 3 m.
Os animais foram coletados com o puçá e de uma lanterna de mão,
das 18h 30 às 23h. Após a captura, foram individualmente marcados com
fios coloridos amarrados no membro posterior direito, todos com uma
numeração pré estabelecida (CAMARGO FILHO, 2009), e acondicionada
em sacos plásticos transparentes. Um termômetro digital infravermelho
para verificação foi utilizado da temperatura da água onde os exemplares
foram coletados. Esses dados foram anotados em um caderno de campo.
13
TABELA 1. Identificação das áreas predeterminadas para coleta de rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus), com data das
coletas, temperatura do local no momento das coletas, municípios, local e coordenadas
Animais
1 2 3 4 5 6 7 8
Datas da coleta 10/02/08 28/02/08 17/03/08 05/04/08 08/02/09 02/03/09 03/04/09 18/04/09
Temperatura (°
C)
no momento da
coleta
24 27 20 21 25 20 21 26
Município/MG Timóteo
Governador
Valadares
Viçosa Cajuri Timóteo Cajuri Viçosa Timóteo
Local da coleta Sítio Maanaim
Sítio
Valadares
Nova Viçosa
Sítio do Grilo
Sítio do Clube Sítio Maanaim Sítio do Clube Fruticultura UFV
Sítio Maanaim
Coordenadas
S19° 34' 57''
W 42° 38' 40''
S18° 51' 04''
W41° 56' 58''
S 20° 46' 18,9''
W 42° 53' 56,1”
S 20° 47' 26''
W 42° 47' 48''
S19° 34' 57''
W42° 38' 40''
S 20° 47' 26''
W 42° 47' 48''
S 20° 45' 27,1''
W42° 52' 07,9''
S19° 34' 57''
W42° 38' 40''
Número de animais/município – Viçosa: 2; Cajuri: 2; Timóteo: 3; Governador Valadares: 1.
14
Os exemplares coletados eram todos machos, aptos à reprodução
(Figura 1), localizados pela vocalização. Foi encontrado no polegar de cada
pata anterior um acúleo nupcial proeminente e alguns deles apresentaram
acúleos na região ventral superior da cintura escapular (Figura 2). Os animais
responderam ao estímulo sexual (massagem com os dedos na região da
cintura escapular) com um amplexo vigoroso.
FIGURA 1. Membro anterior desenvolvido de macho de rã-pimenta
(Leptodactylus labyrinthicus).
FIGURA 2. Acúleos na região ventral superior de machos de rã-pimenta
(Leptodactylus labyrinthicus).
15
Os animais coletados foram transportados em caixas de polietieleno
(45 x 25 x 35 cm) para o laboratório do Ranário Experimental da Universidade
Federal de Viçosa, onde se foi feita a biometria. Eles foram pesados em
balança digital com precisão de 0,01 g e medidos com paquímetro digital de
0,001 cm de precisão. Logo após, os exemplares foram levados para baias
individuais, com 1,54 m² cada, identificadas por números, onde havia dois
comedouros e um pequeno reservatório de água (Figura 3). A temperatura de
cada baia foi controlada por com termostato, a 25,0 ± 1,5 °C.
FIGURA 3. Vista geral das baias utilizadas para alojar os machos de rã-
pimenta (Leptodactylus labyrinthicus). A- vista externa superior
e B – vista interna frontal.
Os fotoperíodos adotados foram de 12:12 LD para quatro e de
14:10 LD para as outras quatro, com lâmpadas incandescentes de 100 W,
controladas por um temporizador (Tabela 2).
Grades sobre cada baia foram colocadas para evitar fugas.
Cinco animais morreram (baias 1, 2, 4, 5 e 7) Durante o período de
adaptação e por isto, trabalhou-se com três animais (baias 3, 6 e 8).
16
TABELA 2. Fotoperíodos de cada baia onde estavam acondicionados os
exemplares de rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus)
Número da baia Fotoperíodo
3 12:12 LD
6 12:12 LD
8 14:10 LD
3.2 Manutenção dos animais em laboratório
O manejo diário das baias com os exemplares de rã-pimenta, aptos
à reprodução, era realizado pela manhã; quando a água do reservatório
interno de cada baia era trocada, para eliminação das impurezas: fezes,
urina e girinos e imagos de rã-touro.
Girinos e imagos de rã-touro ad libitum foram fornecidos aos
exemplares, todas as manhãs. Essa alimentação foi ofertada de fevereiro
de 2008 a março de 2009. Entretanto, esse alimento não foi bem aceito
pelos animais, o que pode ter prejudicado o desenvolvimento gonadal, dos
mesmos. Por isto a partir de abril de 2009, a alimentação induzida com filé
de tilápia (Oreochromis niloticus) na proporção de 5% do peso vivo (PV)
dos animais. O alimento era pesado e cortado, com uma tesoura, em
pedaços de aproximadamente 9 cm
2
e colocado na cavidade bucal dos
animais, onde o próprio animal deglutia-o aos poucos. Esperavam-se
alguns instantes para que o alimento era ingerido em sua totalidade
(CAMARGO FILHO, 2009). Esse procedimento ocorria nas baias onde os
animais se encontravam. Estes foram capturados com uma toalha de mão,
a qual cobria os olhos, a fim de diminuir o estresse (Figura 4).
17
FIGURA 4. Abertura da cavidade bucal para início da alimentação induzida
utilizando uma toalha de mão para vendar os olhos da rã-
pimenta (Leptodactylus labyrinthicus).
Esse procedimento foi realizado a cada 24 h. O alimento foi ofertado
duas vezes ao dia quando os animais atingiam um PV de 500 g, na
proporção de 2,5% do PV pela manhã e 2,5% do PV à tarde. Esse manejo
foi utilizado para se evitar o regurgitamento do alimento.
Semanalmente, os animais eram retirados das baias para limpeza e
desinfecção do piso e das paredes, especialmente do reservatório de água.
Os animais foram pesados, em balança digital com precisão de 0,01 g, e
medidos com paquímetro digital de 0, 001 cm de precisão (Tabelas 3 e 4 e
Figuras 5 e 6), para se ajustar o alimento a ser fornecido.
18
TABELA 3. Peso (g) dos exemplares de rã-pimenta (Leptodactylus
labyrinthicus) durante a alimentação induzida com tilápia
(Oreochromis niloticus)
Peso (animal) g
1 2 3 4 5 6 7 8
_________________________________________________
g
_________________________________________________
Dia Coleta 354,33 283,25 405,68 351,25 276,98 288,12 633,67
516,72
06/04/2009
350,40 281,03 401,25 292,36 260,23 278,52 613,33
499,63
13/04/2009
383,65 303,54 430,69 322,14 395,63 315,24 641,20
528,87
20/04/2009
443,33 399,93 500,68 480,77 351,55 368,50 728,50
650,09
27/04/2009
540,69 461,40 617,12 576,12 395,05 409,05 860,60
704,44
04/05/2009
577,60 524,03 705,88 657,25 439,12 438,48 939,03
775,73
11/05/2009
634,60 578,15 769,60 719,40 509,50 496,62 994,50
829,00
18/05/2009
679,20 645,84 797,29 776,93 521,46 514,22 1.137,38
857,53
M: mortalidade.
FIGURA 5. Peso dos exemplares de rã-pimenta (Leptodactylus
labyrinthicus) durante a alimentação induzida com tilápia
(Oreochromis niloticus).
Média Peso
0,00
100,00
200,00
300,00
400,00
500,00
600,00
700,00
800,00
900,00
1
2
3
4
5
6
7
8
M
é
d
i
a
P
e
s
o
19
TABELA 4. Comprimento rostro-cloacal (CRC) dos exemplares de rã-
pimenta (Leptodactylus labyrinthicus) durante a alimentação
induzida com tilápia (Oreochromis niloticus)
CRC (animal) cm
Coleta
1 2 3 4 5 6 7 8
_________________________________________________________________________
cm
____________________________________________________________________
06/04/2009
16,50 17,00 18,00 18,00 15,00 17,00 19,00 18,00
13/04/2009
16,50 17,00 18,00 18,00 15,00 17,00 19,00 18,00
20/04/2009
16,50 17,00 18,00 18,00 15,00 17,00 19,50 18,00
27/04/2009
16,50 17,50 18,50 19,00 15,00 17,00 19,50 18,50
04/05/2009
17,00 17,50 18,50 19,00 15,50 17,50 20,00 18,50
11/05/2009
17,00 17,50 18,50 19,00 15,50 17,50 20,00 18,50
18/05/2009
17,50 17,50 19,00 19,50 15,50 17,50 20,50 18,50
25/05/2009
17,50 17,50 19,00 M M 18,00 20,50 18,50
01/06/2009
M M 19,00 - - 18,00 M 18,50
07/06/2009
- - 19,00 - - 18,00 - 18,50
M: mortalidade.
FIGURA 6. Comprimento rostro-cloacal (CRC) dos exemplares de rã-
pimenta (Leptodactylus labyrinthicus) durante a alimentação
induzida com tilápia (Oreochromis niloticus).
Média do CRC
0,00
5,00
10,00
15,00
20,00
25,00
1
2
3
4
5
6
7
8
Número do exemplar
M
é
d
i
a
C
R
C
20
3.3 Preparo e aplicação do GnRHa nos exemplares de rã-pimenta
Os animais permaneceram em jejum durante 48 h, para expurgo do
conteúdo intestinal e foram submetidos à biometria. O peso foi obtido com
balança digital com precisão de 0,01 g, e o comprimento rostro cloacal
(CRC) foi medido com paquímetro digital de 0,001 cm de precisão. Logo
após, os animais foram induzidos com o hormônio, na cavidade celomática,
utilizando-se uma seringa hipodérmica com agulha de 25 x 0,7 mm
(PEREIRA, 2009). O animal era segurado pelas patas posteriores, com
auxílio de uma toalha de mão para facilitar a aplicação hormonal (Figura 7).
Esse trabalho foi realizado em cada baia, para que o animal permanecesse
no seu ambiente e não sofresse variações de temperatura e de ambiente.
FIGURA 7. Aplicação hormonal na cavidade celomática de rã-pimenta
(Leptodactylus labyrinthicus).
A aplicação foi realizada com cinco doses de 0,1 mL (0,4 µg) do
hormônio no primeiro dia, no intervalo de uma hora; No segundo dia, após
24 h da primeira aplicação do primeiro dia, três doses de 0,1 mL (0,4 µg)
do mesmo hormônio foram aplicadas, cada uma no intervalo de uma hora
(Tabela 5). Esse número de doses no segundo dia se deveu ao fato de se
21
ter observada, na terceira dose, a presença de espermatozóides, e, por
isso, a partir daí, foi feita a análise espermática do sêmen. Esse
procedimento foi repetido após sete dias.
TABELA 5. Tempo de aplicação x dose hormonal (acetato de buserelina)
nos exemplares de rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus)
Aplicação
Primeiro dia
Dose hormonal
Aplicação
Segundo dia
Dose hormonal
T0 – 0 hora 0,1 mL T24 – 24ª hora 0,1 mL
T1 – 1ª hora 0,1 mL T25 – 25ª hora 0,1 mL
T2 – 2ª hora 0,1 mL T26 – 26ª hora 0,1 mL
T3 – 3ª hora 0,1 mL
T4 – 4ª hora 0,1 mL
T5 – 5ª hora 0,1 mL
3.4 Coleta do sêmen
Cinco coletas do sêmen dos exemplares de rã-pimenta foram
realizadas, no primeiro dia, com intervalos de uma hora; com uma pipeta
de vidro de 2 mL, introduzida na cloaca dos animais para retirada do
volume seminal. Ao mesmo tempo, foi feita com os dedos uma massagem
na cavidade celomática próxima à região pélvica, para facilitar a coleta do
sêmen (PEREIRA, 2009). Esse procedimento foi realizado dentro de cada
baia, para se evitar variações bruscas de temperatura e ambiente
(Figura 8).
22
FIGURA 8. Coleta do sêmen de rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus),
dentro da baia individual, utilizando-se pipeta de vidro de 2 mL.
3.5 Análise microscópica do sêmen
Um microscópio de campo claro (aumento de 400x) foi utilizado para
verificar a ação do tratamento (presença de espermatozoides). Uma
alíquota, correspondente ao valor de uma gota do sêmen
(aproximadamente 0,05 mL), era colocada na lâmina, sobre a qual
depositava-se uma lamínula para ser analisada com coloração in natura.
As lâminas com espermatozoides foram coradas com solução 1% de
azul de metileno, (sal designado de cloreto de azul de metileno) após essa
análise inicial, para evidenciar os espermatozoides, obtendo-se a cor azul
das células, melhorando assim a sua visualização.
3.6 Características seminais de rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus)
3.6.1 Volume e cor
O volume de sêmen coletado na cloaca do animal foi colocado em
uma proveta graduada de vidro transparente de 10 mL onde foi aferido o
volume. A cor do sêmen foi classificada em transparente (nota 1) e turva
(nota 2) (PEREIRA, 2009).
23
3.6.2 Vigor, motilidade e concentração espermática
O vigor foi classificado de 0 a 5, e a motilidade espermática,
estimada em porcentagem média de espermatozoides móveis, com
aumento de 400x. A concentração espermática foi estimada em uma
câmara de Neubauer. Uma gota de sêmen foi diluída em formol 10% na
proporção de 1:1. A solução obtida foi colocada na câmara de Neubauer, e
os espermatozoides contados sobre cinco quadrados do campo de 1 mm
2
de acordo com a fórmula a seguir:
número médio de espermatozoides x 25............. 0,0001 cm
3
x espermatozoides............................................. 1 cm
3
(= 1 mL)
Foi obtida, assim, a quantidade de espermatozoides por mL (SPTZ/mL).
3.7 Comprimentos totais da cabeça, da membrana ondulante que
envolve a cabeça, da área da cabeça e comprimentos da cauda
do espermatozoide de rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus).
Os espermatozóides que ofereciam o melhor foco para visualização,
em um total de 28 espermatozóides e seu comprimento total, da cabeça,
da membrana ondulante que envolve a cabeça, da área da cabeça e
comprimentos da cauda do espermatozoide de rã-pimenta foram
mensurados, com auxilio do programa de análises de imagem IMAGE PRO
PLUS
®
. A membrana que envolve a cabeça só foi medida em algumas
células, devido à dificuldade de sua visualização.
A medição da peça intermediária dos espermatozoides de rã-pimenta
não foi mediada, devido ao grau de dificuldade em determinar o ponto
exato de seu início e fim.
3.8 Análise dos dados
As análises estatísticas foram feitas de acordo com o programa
Microsoft Office Excel
®
, para estatísticas descritivas.
24
4. RESULTADOS E DISCUSSÃO
4.1 Resposta dos exemplares de rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus) à
indução à espermiação com acetato de buserelina
Um dos três animais induzidos com o hormônio, 33,33% (animal 8),
apresentou espermatozóides no sêmen. Os demais animais, não
responderam ao estímulo hormonal (66,67%) (Tabela 6).
A sazonalidade e abundância de alimentos, além de fatores
comportamentais, hormonais e fisiológicos são corresponsáveis pelo
sucesso reprodutivo. Alterações de fatores ambientais, como o fotoperíodo
e a temperatura, são detectadas por receptores específicos transmitidos ao
cérebro e ao hipotálamo, alterando a produção e liberação de hormônios.
O controle de luz e temperatura pode alterar os níveis de andrógenos
circulantes nos animais. O animal com resposta positiva à presença de
espermatozóides, estava nas mesmas condições de temperatura e
umidade que os demais animais, apresentou as mesmas características
sexuais secundárias, e recebeu o mesmo manejo em condições de
fotoperíodo (14:10 LD) mais propícias para o seu desenvolvimento
reprodutivo.
TABELA 6. Análise da presença de espermatozoides de rã-pimenta
(Leptodactylus labyrinthicus) nos oito tempos de coleta
Presença (+) ausência (-) de espermatozoides
Parâmetros/animais
T1 T2 T3 T4 T5 T24 T25 T26
3 - - - - - - - -
6 - - - - - - - -
8 - - - - - - -
+
T1: Tempo 1=1h após a primeira aplicação; T2: Tempo 2=2h após a primeira aplicação; T3: Tempo
3=3h após a primeira aplicação; T4: Tempo 4=4h após a primeira aplicação; T5: Tempo 5=5h após
a primeira aplicação; T24: Tempo 24=24h após a primeira aplicação; T25: Tempo 25=25h após a
primeira aplicação; T26: Tempo 26=26h após a primeira aplicação.
25
A resposta positiva ao tratamento de 33,33% é menor aos 100%
encontrado para rã-touro e a quantidade de espermatozoide foi uniforme e
o tempo de espermiação prolongado (ALONSO 1997), espécie (PEREIRA,
2009) e habitat natural pode ser resposta para diferença.
O valor encontrado para rã-pimenta é inferior aos 42,9% dos machos
de rã-manteiga que espermiaram (PEREIRA, 2009). A espécie pode
explicar a diferença.
Resposta positiva para outras espécies de anuros submetidos à
indução espermática pelo hormônio (hCG) foi encontrado para Rana
nigromaculata (KOBAYASHI et al., 1993) e Bufo arenarum (POZZI e
CEBALLOS, 2000). O GnRH e o hCG induziram anuros a espermiação.
A presença de espermatozóides no sêmen de rã-pimenta foi
observado após 26 h da primeira indução, o hormônio pode ter sido
insuficiente para liberar espermatozóides.
O tempo de 26 h é inferior ao encontrado para rã-touro, onde se
levou 1 h (AGOSTINHO, 2000; PEREIRA, 2009), 2 h (AFONSO, 2004) e
3 h (TORTELLY NETO, 2006), e superior as 97,5 h para rã-manteiga
(PEREIRA, 2009), os resultados revelam diferentes respostas para as
espécies de rã-pimenta, rã-touro e rã-manteiga, e a causa pode ser a
concentração hormonal existente em cada espécie e a especificidade da
ação do hormônio. Os resultados afirmam que a espermatogênese de
anfíbios é dependente dos hormônios andrógenos (CALLARD, 1992).
4.2 Análise do sêmen
4.2.1 Volume e cor
A análise do volume do sêmen coletados nos exemplares de rã-
pimenta encontrou média de 0,19 mL (tabela 7), valor inferior aos 0,40 mL
para rã-manteiga (PEREIRA, 2009) e 5,76 mL para rã-touro (PEREIRA,
2009), pode estar relacionada ao comportamento reprodutivo dessa
espécie, onde a fêmea de rã-pimenta põe ovócitos em ninhos e durante o
acasalamento ocorre batimento das patas posteriores do macho, formando
uma camada de espuma. O reduzido espaço e o fato da desova não estar
26
diretamente em contato com a água e desnecessário grande volume de
sêmen.
TABELA 7. Volume do sêmen coletado na cloaca de rã-pimenta
(Leptodactylus labyrinthicus) em oito tempos de coleta
Volume
Parâmetros/animais
T1 T2 T3 T4 T5 T24 T25 T26
________________________________________
mL
3 0,1 0,4 0,4 0,2 0,1 0,1 0,1 0,1
6 0,2 0,3 0,1 0,1 0,1 0,1 0,2 0,1
8 1,0 0,2 0,1 0,2 0,1 0,1 0,3 0,1
MÉDIA 0,43 0,30 0,20 0,16 0,10 0,10 0,20 0,10
MÉDIA TOTAL 0,19
T1: Tempo 1=1h após a primeira aplicação; T2: Tempo 2=2h após a primeira aplicação; T3: Tempo
3=3h após a primeira aplicação; T4: Tempo 4=4h após a primeira aplicação; T5: Tempo 5=5h após
a primeira aplicação; T24: Tempo 24=24h após a primeira aplicação; T25: Tempo 25=25 h após a
primeira aplicação; T26: Tempo 26=26 h após a primeira aplicação.
A cor do sêmen de rã-pimenta com presença ou ausência de
espermatozóide permanecendo sempre transparente. Portanto, a cor do
sêmen de rã-pimenta não serve para indicar presença de espermatozóides.
Resposta é diferente da cor turva encontrada para rã-manteiga e rã-touro
(PEREIRA, 2009) indicando assim, para essas espécies, que a cor pode
indicar presença de espermatozóide.
4.2.2 Vigor, motilidade e concentração espermática
O valor do vigor espermático encontrado foi de 1,0 para rã-pimenta
revela baixo vigor espermático. Observações no microscópio óptico de
campo claro mostraram que os espermatozóides possuem movimento
retilíneo, com leves dobras da cabeça de um lado para o outro e lento, mas
de velocidade constante. Isso pode estar ligado ao fato de que, o vigor
espermático e o gasto energético diretamente proporcionais. Os
espermatozóides têm de ter reserva de energia para vencerem a barreira
natural criada pela espuma de albumina, considerada densa, e fecundem
os poucos ovócitos viáveis. Essa característica pode também ser devido ao
fato do movimento das patas posteriores dos machos para formar a
27
espuma de albumina, auxilia o deslocamento e distribuição dos
espermatozóides por toda a desova durante ao acasalamento.
O vigor espermático de 1,0 é inferior aos 2,55 encontrados para rã-
touro portadora de micobacteriose (AFONSO, 2004), aos 3,71 para rã-
manteiga e aos 4,80 para rã-touro (PEREIRA, 2009). A espécie pode
explicar a diferença.
A motilidade espermática de 25%, ou seja, 25 células móveis para
cada 100 células vivas ou viáveis. Esta avaliação subjetiva pode
apresentar variações entre observadores, a análise da motilidade é
importante para a avaliação da qualidade do sêmen. O sêmen de rã-
pimenta apresenta baixo valor, mas não pode concluir que seja de baixa
qualidade. A fêmea de rã-pimenta desova aproximadamente 2.000
ovócitos, dos quais cerca de 85% são tróficos, ou seja, destinados à
alimentação dos girinos no ninho (PRADO et al., 2005).
A motilidade espermática encontrada em rã-pimenta de 25% é
inferior aos 67% encontrado para rã-touro portadora de micobacteriose
(TORTELLY NETO, 2006), aos 93% para rã-touro e 77,14% para rã-
manteiga (PEREIRA, 2009), a espécie pode explicar a diferença.
A concentração espermática encontrada para rã-pimenta foi de 1,1 x
10
6
SPTZ/mL é inferior aos 14,24 x 10
6
SPTZ/mL encontrados para rã-
touro e aos 6,60 x 10
6
SPTZ/mL rã-manteiga (PEREIRA, 2009) e também
foi inferior a 5,09 x 10
6
SPTZ/mL para rã-touro portadora de micobacteriose
(TORTELLY NETO, 2006).
Os valores de volume, vigor, motilidade e concentração espermática
são inferiores aos encontrados para outras espécies de rãs, uma explicação
pode ser a estratégia reprodutiva de cada espécie.
4.3 Análise da morfologia externa e da morfometria do espermatozoide
de rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus)
O espermatozóide de rã-pimenta (Figuras 9 e 10) possui cabeça
alongada com pequena concavidade na parte inicial (região acrossômica)
(figura 12) e é mais delgada, parte final (região de inserção da cauda),
mais espessa. Portanto, a largura da cabeça aumenta em pequena
28
proporção da região acrossômica até a região de inserção da cauda,
tornando-a bem mais densa do que esta, o que o deixa quase que
fusiforme.
Área total da cabeça (sem mensurar a membrana ondulatória) de
29,80 µm
2
, comprimento de 13,31 µm e largura de 2,23 µm do
espermatozóide de rã-pimenta, o que a faz destacar-se na visualização ao
microscópio de luz de campo claro.
O comprimento da cauda do espermatozóide de rã-pimenta de 35,64
µm é quase um terço do seu comprimento total (Tabela 8).
FIGURA 9. Fotomicrografia de luz de espermatozoides de rã-pimenta
Leptodactylus labyrinthicus (destacados pela seta). Obj 40,
zoom 2.
29
FIGURA 10. Fotomicrografia de luz de espermatozóides de rã-pimenta
Leptodactylus labyrinthicus (destacados pela seta). Obj 40, zoom
2, corada com azul de metileno.
A cauda do espermatozóide de rã-pimenta insere-se na região
posterior à peça intermediária e se alonga em um único filamento até
aproximadamente um terço de seu comprimento total, onde bifurca-se em
dois flagelos finos e alongados, tornando-se biflagelada (Figura 11). Esses
flagelos possuem o mesmo comprimento e a mesma largura, vistos ao
microscópico de campo de luz. A largura do flagelo não foi medida, devido
ao grau de dificuldade para delimitá-la.
O movimento da cauda é ondulatório; cada flagelo movimenta-se
independentemente, mas de forma sincronizada, formando-se ondas
contínuas com movimentos simultâneos. Esses dois flagelos, juntos,
provavelmente impulsionam e proporcionam mais força e capacidade para
o espermatozóide romper a barreira de espuma de albumina que circunda
os ovócitos.
30
TABELA 8. Comprimentos totais, da cabeça, área da cabeça (µm
2
) e
comprimento da cauda do espermatozóide (SPTZ) de rã-
pimenta (Leptodactylus labyrinthicus), em µm
SPTZ
Comprimento
Total
Comprimento
da Cabeça
Área da
Cabeça (µm
2
)
Comprimento
da Cauda
___________________________
µm
___________________________
1 61,97 14,62 33,12 28,85
2 72,12 14,33 34,02 38,10
3 64,88 15,29 34,23 30,64
4 61,67 14,89 33,01 28,65
5 35,81 7,82 19,98 15,82
6 26,89 7,88 17,00 9,89
7 45,26 12,87 28,11 17,15
8 54,74 15,34 36,28 18,45
9 58,17 13,39 28,51 29,65
10 35,00 8,72 17,18 17,81
11 34,35 9,02 17,86 16,49
12 33,69 7,83 19,76 13,92
13 26,83 8,02 16,92 9,91
14 32,67 6,49 15,57 17,10
15 28,36 9,17 19,80 8,56
16 50,68 16,78 35,00 15,68
17 74,84 22,89 48,74 26,10
18 76,06 22,74 50,15 25,91
19 56,34 15,41 36,35 19,99
20 45,47 15,84 32,78 12,69
21 61,65 15,07 34,26 27,38
22 30,08 12,86 29,43 17,21
23 63,21 14,14 33,83 29,38
24 61,80 12,49 27,91 33,89
25 54,06 13,28 35,52 18,53
26 60,88 17,55 37,70 23,17
27 56,10 14,72 31,58 24,51
28 64,99 15,95 34,30 30,69
Média 51,02 13,31 29,80 21,31
DP 15,45 4,16 9,1200 7,8600
O número de flagelos na cauda de rã-pimenta difere de flagelos de
Phyllomedusa sp. (COSTA et al., 2005), Epipedobates hahneli (AGUIAR JR. et
al., 2004) e Colostethus stepheni, os quais possuem uma cauda com único
31
flagelo, porém é semelhante ao de Colostethus brunneus, que possui dois
flagelos (VEIGA-MENOCELLO et al., 2006).
FIGURA 11. Fotomicrografia de luz de espermatozoides de rã-pimenta
Leptodactylus labyrinthicus, evidenciando a forma da cabeça e a
cauda bifurcada. Obj 40, zoom 2, corada com azul de metileno.
O filamento caudal pode ser diferente entre anfíbios, de acordo com
seu modo de reprodução (ZIERI, 2008).
O espermatozóide de rã-pimenta possui membrana ondulante na
região da cabeça, que tem o formato de circunferência e está inserida,
inicialmente, na região da inserção da cauda, até aproximadamente o terço
distal da região posterior acrossômica (Figura 12). A área da circunferência
de 15,91 µm
2
, com raios de 2,85 e 1,42 µm, e aproximadamente 53% da
área da cabeça do espermatozoide.
32
FIGURA 12. Fotomicrografia de luz de espermatozoides de rã-pimenta
Leptodactylus labyrinthicus analisada pelo programa IMAGE
PRO PLUS
®
. Obj 40, zoom 2, corada com azul de metileno
1%. L1–L3=comprimento da cabeça; T2=área da cabeça; L5–
L11=comprimento da cauda; L12–L13=raios da Membrana
ondulatória.
Apenas a delimitação de seu corpo pode-ser visualizado, ao
microscópio óptico de campo de luz. Isso pode estar diretamente
relacionado ao formato delgado do corpo, com aparência de um pequeno
véu, que em meio à albumina provavelmente tem auxilio no deslocamento
do espermatozóide em direção aos ovócitos. Não houve possibilidade de
mensurar a sua espessura por ser delgada.
A membrana inserida na cabeça pode ser exclusiva dessa espécie, e
pode ser uma característica importante para identificação do
espermatozoide dessa espécie.
O espermatozoide de rã-pimenta, exceto pela membrana ondulatória,
assemelha-se aos de outros anfíbios anuros, como Colostethus brunneus
(VEIGA-MENOCELLO et al., 2006), Phyllomedusa sp. (COSTA et al.,
2004), Crossodactylus sp. e Epipedobates hahneli (AGUIAR JR. et al.,
2004).
33
A área da cabeça, comprimento total, da cabeça, cauda e membrana
do espermatozoide de rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus) e de alguns
anuros foram comparados (tabela 9).
TABELA 9. Área da cabeça (A), comprimento total (CT), da cabeça (CC) e
da cauda (CCA) dos espermatozóides de alguns anuros
Medidas/animais A CT CC CCA
_______________________________
µm
_______________________________
Leptodactylus labyrinthicus
29,80 35,64 13,31 21,31
Leptodactylus ocellatus
( PEREIRA, 2009)
NC 14,15 5,78 8,37
Colostethus brunneus
(VEIGA-MENOCELLO et al. 2006)
NC 19,20 NC NC
Phyllomedusa sp.
(COSTA et al. 2004)
NC 60,62 NC NC
Epipedobates hahneli
(AGUIAR-JR et al. 2004)
NC NC 23,20 32,00
Lithobates catesbeianus
(PEREIRA, 2009)
NC 13,49 7,21 6,27
NC: não consta na literatura.
O espermatozóide de rã-pimenta é um dos maiores entre dos
anuros, e pode ser usado para sua identificação, sendo o segundo em
comprimento total, da cabeça e da cauda e menor, apenas, que o de
Phyllomedusa sp. (COSTA et al., 2004).
34
5. CONCLUSÕES
A cor do sêmen de rã-pimenta não é parâmetro para indicar a presença
de espermatozoides.
O espermatozoide de Leptodactylus labyrinthicus possui cauda com
dois flagelos e uma membrana ondulante que envolve a parte inicial da
região da inserção da cauda, até aproximadamente o terço distal da região
posterior acrossômica da sua cabeça, a qual é exclusiva dessa espécie.
A descrição morfológica do espermatozóide poderá contribuir para
estudos de sistemática filogenética de rãs.
35
6. CONSIDERAÇÕES GERAIS
O acetato de buserelina pode ser utilizado como indutor a espermiação
de rã-pimenta, ocorrendo a mesma na vigésima sexta hora após a sua
aplicação. Quanto aos valores de vigor, motilidade e concentração espermática
de Leptodactylus labyrinthicus são inferiores ao de Lithobates catesbeianus.
O comprimento total, da cabeça e da cauda do espermatozóide de rã-
pimenta é maior que o de rã-manteiga e de rã-touro. O mesmo possui cauda
com dois flagelos.
A dificuldade na coleta de campo e na criação em cativeiro pode
interferir na realização de trabalhos com Leptodactylus labyrinthicus. Devido a
este fato, faz-se necessária a realização de mais pesquisas para a criação em
cativeiro, bem como a extração, diluição e criopreservação de sêmen extraído
in vivo.
36
7. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
AFONSO, A.F. Efeito do acetato de buserelina na indução á reprodução de rã-
touro (Rana catesbeiana Shaw, 1802) naturalmente portadora de
micobacteriose. 2004. 86f. Dissertação (Mestrado em Patologia e Reprodução
Animal) – Universidade Federal Fluminense, Niterói, 2004.
AGOSTINHO, C.A.; WECHSLER, F.S.; NICTEROY, P.E.O.; PINHEIRO, D.F.
Indução à ovulação pelo uso de LHRH análogo e fertilização em rã-touro (Rana
catesbeiana). Revista Brasileira de Zootecnia, 29 (5): 1261-1265, 2000.
AGOSTINHO, C.A. Estimativas dos parâmetros genéticos e fenotípicos de
características e produção em rã-pimenta, Leptodactylus labyrinthycus (Spix,
1824). 85f. Dissertação (Mestrado em Genética) – Universidade Federal de
Viçosa, Viçosa, MG. 1988.
AGUIAR-JR, O., LIMA, A.P., BAÓ, S.N., RECCO-PIMENTEL, S.M. Sperm
Ultraestucture of the Brazilian Amazon Poison frogs Epipedobates trivittatus
and Epipedobate hahneli (Anura, Dendrobatidae). Acta Zoologica, 85 (1): 21-
28, 2004.
AICHINGER, M. Annual activity patterns of anurans in a seasorial neotropical
environment. Oecologia, 71 (1): 583-592, 1987.
ALONSO, M. Uso de análogos do GnRH para indução de desova e
espermiação em rã-touro, Rana catesbeiana, Shaw, 1802. 136f. Tese
(Doutorado) - Universidade de São Paulo, São Paulo, SP. 1997.
BRATTSTROM, B.H. Amphibiam temperature regulation studies in the field and
laboratory. American Zoologica,19 (1): 345-356, 1979.
CALLARD, G.V. Autocrine and Paracrine role of esteroids during
spermatogenesis: Studies in Squalus acanthias and Necturus maculosus.
Journal Experimental Zoologica, 26 (1): 132-142, 1992.
CAMARGO FILHO, C.B. Características alimentares e potencial impactante da
rã-touro Lithobates catesbeianus (Shaw, 1802).
61f. Dissertação (Mestrado em Biologia Animal) – Universidade Federal de
Viçosa,Viçosa, MG. 2009.
CARDOSO, A.J.; SAZIMA, I. Batracofagia na fase adulta e larvária da rã-
pimenta. Leptodactylus labyrinthicus (Spix, 1824) – ANURA
LEPTODACTYLIDAE. Ciência e Cultura, 29 (1): 1130-1132, 1972.
CEI, J.M. Amphibians of Argentina. Monitore Zoológico Italiano. 609p. 1980.
CEI, J.M. Fatores genético-raciales que diferencian La regulacion hormonal Del
ciclo sexual en Leptodactylus ocellatus de La argentina. Acta zoologica
Lilloana, 9 (1): 395-426, 1949.
37
CEI, J.M. Leptodactylus chaquensis N. SP. Y El valor sistemático realde La
espécie Linneana Leptodactylus ocellatus em La argentina. Acta zoologica
Lilloana, 9 (1): 395-426, 1950.
COSTA, C.L.S.; LIMA, S.L.; ANDRADE, D.R.; AGOSTINHO, C.A.
Caracterização morfólogica dos estágios de desenvolvimento do aparelho
reprodutor masculino da rã-touro, Rana catesbeiana, no sistema anfigranja de
criação intensiva. Revista Brasileira de Zootecnia, 27 (4): 651-657, 1998.
COSTA, C.L.S.; LIMA, S.L.; ANDRADE, D.R.; AGOSTINHO, C.A.
Caracterização morfólogica dos estágios de desenvolvimento do aparelho
reprodutor feminino da rã-touro, Rana catesbeiana, no sistema anfigranja de
criação intensiva. Revista Brasileira de Zootecnia, 27 (4): 642-650, 1998.
COSTA, G. C., GARDA, A. A.; TEIXEIRA, R. D., COLLI, G.R., BÁO, S.N.
Copmparative Analysis of the estructure of three species, of Phyllomedusa
(Anura, Hilidae). Acta Zoologica, 85 (1):257-262. 2004
COSSON, J. The ionic and osmotic factors controlling motility of fish
spermatozoa. Aquaculture International, 12 (1): 69-85, 2004.
DUELLMAN, W.E.; TRUEB, L. Biology of amphibians. New York: McGraw-
Hill. 1994.
EASLEY, K.A.; CULLEY JR. D.D.; HORSEMAN, N.D. et al. Environmental
influences on hormonally induced spermiation of the bullfrog, Rana
catesbeiana. Journal Experimental Zoologica, v.207, n.3, p.407 - 416, 1979.
FIGUEIREDO, M.R.C.; LIMA, S.L.; AGOSTINHO. C.A.; BAÊTA, F.C. Efeito da
temperatura e do fotoperíodo sobre o desenvolvimento da aparelho reprodutor
de rã-touro (Rana catebeiana Shaw, 1802). Revista Brasileira de Zootecnia,
30 (3): 916-923, 2001.
FONTANELLO, D.; SOARES, H.A.; MANDELLI JR., J.; SANTOS, L.E.;
PENTEADO, L.A.; CAMPOS, B.E.S.; REIS, J.M. Estação de reprodução da
Rana catesbeiana Shaw, 1802, criadas em ranário e a influência de fatores
climáticos sobre o número de desova. Boletim Instituto Pesca, 11 (1): 123-
130, 1984.
HAFEZ, E.S.E. Reprodução animal. 7. ed. Barueri: Manole, 2004. 513p.
HEYER, W.R. Systematicsof the species group of the froggenus Leptodactylus
pentadactylus, (Amphibia, Leptodactydae). Smithsonian Contribuitions to
Zoology, 301 (1): 43, 1979.
HOLLINGER, T.G.; CORTON, G.L. Artificial fertilization of gametes from the
South African clawed frog, Xenopus laevis. Gamete Research, 3 (1): 45-57,
1980.
HUANG, W. S.; LIN, J. Y.; YU, J. Y. L. Male reproductive cycle of the toad Bufo
menalostictus in Taiwan. Zoologica Science, 14 (3): 497-503, 1997.
38
IELA, L.; PIERANTONI, R.E.; RASTOGI, R.K. Effect of temperature and light on
the production of androgens in the male Rana esculenta. Experientia, 36 (1):
256-257, 1980.
JIM, J. Aspectos ecológicos dos anfíbios registrados na região de Botucatu,
São Paulo (Amphibia, Anura). 332f. Tese Doutorado. Instituto de Biociências
da Universidade de São Paulo, Botucatu-SP. 1980.
KOBAYAHI, T.; SAKAI, N.; ADACHI, K.; IWASAWA, H.; NAGAHAMA, Y. 17-
alpha, 20-alpha-Dihidroxy-4-pregnen-3-onne is the naturally occuring
spermiation-inducing hormone in the testis of a frog Rana nigromaculata.
Endocrinology, 133 (1): 321-327, 1993.
KURAMOTO, M. Generic Differentiation of sperm morphology in tree frogs from
Japan and Taiwan. Journal of Herpetology, 30 (3): 437-443, 1996.
KURAMOTO, M.; JOSHY, S.H. Scanning electron microscopic studies on
spermatozoa of anurans from Índia and Sri Lanka. Amphibia-Reptilia, 22 (2):
303-308, 2001.
KURAMOTO, M.; JOSHY, S.H. Sperm morphology of some Indian.
Herpetology, 19 (1): 63-70, 2000.
LAMPO, M.; MEDIALDEA, V. Energy allcation patte marinus from two habitats
in Venezuela. Journal Troppical Ecology, 12 (3): 321-331, 1996.
LIMA, S.L.; AGOSTINHO, C.A. Hábito carnívoro em rã-manteiga (Leptodactylus
ocellatus) e rã-pimenta (Leptodactylus labyrinthicus). In: CONGRESSO
BRASILEIRO DE ZOOLOGIA, 12. , Campinas, São Paulo RESUMOS.
Campinas, SP. UNICAMP. 223 p. 1985.
LIMA, S.L.; COSTA, C.L.S,; AGOSTINHO, C.A.; ANDRADE, D.R.; PEREIRA
FILHO, H.P. Estimativa do tamanho da primeira maturação sexual da rã-touro,
Rana catesbeiana, no sistema anfigranja de criação intensiva. Revista
Brasileira de Zootecnia, 27 (3): 416-420, 1998.
LOFTS, B. Physiology of the amphibian. New York: Academic Press, v.2. 592
p.1974.
MONTERO, R.; PISANÓ, A. Ciclo espermatogênico de dos espécies de
Telmatobius del noroeste argentino. Amphib-Reptilia, v.11, p.97-110, 1990.
MONTERO, R.; PISANÓ, A. El ciclo espermatogénico anual de Hyla putchella
andina: um análisis numérico. Acta Zoologica Lilloana, 41 (1): 173-180, 1992.
MORISAWA, M.; SUZUKI, R.; SHIMIZU, H.; MORISAWA, S.; YASUDA, K.,
Effect of osmolarity and potassium on motility of spermatozoa from freshwater
cyprinid fishes. Journal Experimental Biology, 187 (1): 95-103, 1983.
39
OLIVEIRA, C.; SANTANA, A.C.; OMENA, P.M.; SANTOS, L.R.S.; ZIERI, R.
Morphological considerations on the seminiferous structures and testes of
anuran amphibians: Bufo crucifer, Physalaemus cuvieri and Scinax
fuscovarius. Biociências, 11 (1): 39-46, 2003.
OLIVEIRA, C.; SANTOS L.R.S.; ZIERI, R. Variações anatômicas no aparelho
reprodutor masculino de Chaunus ornatus (Wied-Neuwied, 1821) (Anura,
Bufonidae) Biota Neotropica, 7 (1):m234-240. 2007.
OLIVEIRA, C.; VICENTINI, C.A. Descrição anatômica dos testículos e corpos
adiposos de Scinanax fuscovaruis (Anura, Hylidade), Biociências, 6 (1): 79-88,
1998.
OLIVEIRA, C.; ZANETONI, C.; ZIERI, R. Morphology observations on the
testes of Physalaemus cuvieri (Amphibia, Anura). Ver. Chillena Anatomya., 20
(3): 263-268, 2002.
OLIVEIRA, C.; ZIERI, R. Pigmentação testicular em Physalaemus nattereri
(Steindachner) (Amphibia, Anura) com observações anatômicas sobre o
sistema pigmentar extracutâneo. Revista Brasileira Zoologia. 22 (2): 454-460.
2004.
PEREIRA, M.M. Indução à espermiação e características do Anuro nativo rã-
manteiga (Leptodactylus ocellatus) e do exótico (Lithobates catesbeianus). 74
f.
Dissertação (Mestrado em Biologia Animal) – Universidade Federal de Viçosa,
Viçosa, MG. 2009.
PHILLIPS, D. M. Spermiogenesis. New York: London Academic. 1974.
POZZI, A.G.; CEBALLOS, N.R. Human Chorionic Gonadotropini-induced
spermation in Bufo anenarum is not mediated by steriod biosynthesis. General
Comportamental Endocrinol. 119 (1): 164-171, 2000.
PRADO, C.P.A.; TOLEDO, L.F.; ZINA, J.; HADDAD, C.F.B. Trophic eggs in
foam nests of Leptodactylus labyrinthicus (Anura, Leptodactylidae): an
experimental approach. Herpetological Journal, 15 (1): 279-284, 2005.
QIN, L. M.; ZHENG, Z. H.; JIANG, J. P.; XIE, F.; NO, Y. M. Sperm Morphology
of Five Rhacophorus (Amphibia: Anura: Rhacophoridae) Species from China.
Asiatic Herpetological Research, 11 (1): 105-109, 2008.
RASTOGI, R. K.; BAGNARA, J. T.; IELA, L.; KRASOVICH, M. A. Reproduction
in the Mexican leaf frog, Pchymedusa dacnicolor. IV Spermatogenesis: a ligth
and ultrasonic study. Journal of Morphology, 197 (1): 277-302, 1988.
RIBEIRO FILHO, O.P.R.; LIMA, S.L.; ANDRADE, D.R.; SEIXAS FILHO, J.T.
Estudo da desova de Rã-touro, Rana catesbeiana, mediante indução do
acasalamento. Revista Brasileira Zootecnia. 27 (2): 216-233, 1998.
RIBEIRO FILHO, O.P. Uso de extrato bruto de hipófise na indução da desova
de rã-touro. Rana catesbeiana (Shaw, 1802). 50f. Dissertação (Mestrado),
Universidade Federal de Viçosa, Viçosa, MG. 1994.
40
RIBEIRO FILHO, O.P.; ANDRADE, D.R.; LIMA, S.L.; SEIXAS FILHO, J.T.;
GONÇALVES, S. Reprodução induzida de rã-touro (Rana catesbeiana, Shaw,
1802) com uso de extrato bruto hipofisário. Revista Brasileira de Zootecnia,
27 (4): 658-663, 1998.
ROSEMBLIT, C.; POZZI, A.G.; CEBALLOS, N.R. Relationship between
steroidogenesis and spermiation in Rana catesbeiana and Leptodactylus
ocellatus. Journal of Comparative Physiology B, 176 (1): 559–566, 2006.
SALTHE, S.N.; MECHAM, J.S. Reproductive and courtship patterns. In:
LOFTS, B. (ed.). Physiology of the amphibian. New York: Academic Press,
p.310-521. 1974.
SANTANA, M.A. Estudo Anátomo-Histológico e morfométrico doTubo Digestivo
de Girinos de Rã-Pimenta, Leptodactylus labyrinthicus (Spix, 1824). 61f.
Dissertação (Mestrado em Zootecnia), Universidade Federal de Viçosa.
Viçosa, MG. 1998.
TORTELLY NETO, R. Tempos de coleta, avaliação espermática e
histopatologia de machos de rã-touro (Rana catesbeiana Shaw, 1802). 37f.
Dissertação (Mestrado em Patologia e Reprodução Animal), Universidade
Federal Fluminense, Niterói, RJ. 2006.
VEIGA-MANOCELLO, A.C.; LIMA, A.P.; RECCO-PIMENTEL, S.M. Sperm
morphology of five species of Colestethus (Anura, Dendrobatidade) from Brazil,
with phylogenetic comments. Acta Zoologica, 87 (1): 147-157, 2006.
ZIERI, R.; TABOGA, S.R.; OLIVEIRA, C. Espermiogênese em Eupemphix
nattareri (Anura, Leiuperidae): aspectos ultra-estruturais. Iheringia, Serie
Zoologica., 98 (2): 193-199, 2008.
41
APÊNDICE
Valores de comprimento rostro-cloacal (CRC) e peso de cada exemplar de rã-
pimenta (Leptodactylus labyrinthicus)
CRC (animal) – cm
1 2 3 4 5 6 7 8
Média Total
16,5
17 18 18 15 17 19 18
16,5
17 18 18 15 17 19 18
16,5
17 18 18 15 17 19,5
18
16,5
17,5
18,5
19 15 17 19,5
18,5
17 17,5
18,5
19 15,5
17,5
20 18,5
17 17,5
18,5
19 15,5
17,5
20 18,5
17,5
17,5
19 19,5
15,5
17,5
20,5
18,5
17,5
17,5
19 M M 18 20,5
18,5
M
M
19 -
-
18 M 18,5
-
-
19 -
-
18 -
18,5
Média
16,88
17,31
18,55
18,64
15,21
17,45
19,75
18,35
17,77
Peso (animal) – g
1 2 3 4 5 6 7 8
Média Total
354,33
283,25
405,68
351,25
276,98
288,12
633,67
516,72
350,40
281,03
401,25
292,36
260,23
278,52
613,33
499,63
383,65
303,54
430,69
322,14
395,63
315,24
641,20
528,87
443,33
399,93
500,68
480,77
351,55
368,50
728,50
650,09
540,69
461,40
617,12
576,12
395,05
409,05
860,60
704,44
577,60
524,03
705,88
657,25
439,12
438,48
939,03
775,73
634,60
578,15
769,60
719,40
509,50
496,62
994,50
829,00
679,20
645,84
797,29
776,93
521,46
514,22
1137,38
857,53
685,13
645,91
817,53
M M 519,64
1.259.63
901,16
M
M
819,18
-
-
521,02
M 910,57
-
-
821,02
-
-
523,58
-
912,35
Média 516,55
458,12
644,17
522,03
393,69
424,82
818,53
735,10
564,13
Desv.Padrão
2,45
149,36
103,88
75,21
61,61
54,19
49,47
46,14
67,78875
M: mortalidade.
Livros Grátis
( http://www.livrosgratis.com.br )
Milhares de Livros para Download:
Baixar livros de Administração
Baixar livros de Agronomia
Baixar livros de Arquitetura
Baixar livros de Artes
Baixar livros de Astronomia
Baixar livros de Biologia Geral
Baixar livros de Ciência da Computação
Baixar livros de Ciência da Informação
Baixar livros de Ciência Política
Baixar livros de Ciências da Saúde
Baixar livros de Comunicação
Baixar livros do Conselho Nacional de Educação - CNE
Baixar livros de Defesa civil
Baixar livros de Direito
Baixar livros de Direitos humanos
Baixar livros de Economia
Baixar livros de Economia Doméstica
Baixar livros de Educação
Baixar livros de Educação - Trânsito
Baixar livros de Educação Física
Baixar livros de Engenharia Aeroespacial
Baixar livros de Farmácia
Baixar livros de Filosofia
Baixar livros de Física
Baixar livros de Geociências
Baixar livros de Geografia
Baixar livros de História
Baixar livros de Línguas
Baixar livros de Literatura
Baixar livros de Literatura de Cordel
Baixar livros de Literatura Infantil
Baixar livros de Matemática
Baixar livros de Medicina
Baixar livros de Medicina Veterinária
Baixar livros de Meio Ambiente
Baixar livros de Meteorologia
Baixar Monografias e TCC
Baixar livros Multidisciplinar
Baixar livros de Música
Baixar livros de Psicologia
Baixar livros de Química
Baixar livros de Saúde Coletiva
Baixar livros de Serviço Social
Baixar livros de Sociologia
Baixar livros de Teologia
Baixar livros de Trabalho
Baixar livros de Turismo
