( PDF ) ANGIOGÊNESE E FIBROSE HEPÁTICA EXPERIMENTAL

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INSTITUTO OSWALDO CRUZ

Doutorado em Biologia Celular e Molecular

ANGIOGÊNESE E FIBROSE HEPÁTICA EXPERIMENTAL

QUELI TEIXEIRA LEMOS

Rio de Janeiro

2008

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Livros Grátis

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iii

Instituto Oswaldo Cruz

Pós-Graduação em Biologia Celular e Molecular

QUELI TEIXEIRA LEMOS

ANGIOGÊNESE E FIBROSE HEPÁTICA EXPERIMENTAL

Tese apresentada ao Instituto Oswaldo Cruz

como parte dos requisitos para obtenção do

título de Doutor em Biologia Celular e

Molecular.

Orientador: Dr. Zilton de Araújo Andrade

RIO DE JANEIRO

2008

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Instituto Oswaldo Cruz

Pós-Graduação em Biologia Celular e Molecular

QUELI TEIXEIRA LEMOS

ANGIOGÊNESE E FIBROSE HEPÁTICA EXPERIMENTAL

ORIENTADOR (ES): Prof. Dr. Zilton de Araújo Andrade

Aprovada em: 25/08/2008

EXAMINADORES:

Prof. Dr. Mitermayer Galvão dos Reis - Presidente

Prof. Dr. Fausto Edmundo Lima Pereira

Prof. Dr

. Márcia Maria de Souza

Prof. Dr. Raimundo Paraná Filho

Prof. Dr. Arion Barbosa Almeida Junior

Rio de Janeiro, 25 de agosto de 2008

As coisas que os olhos não viram,

e os ouvidos não ouviram, e não

chegaram ao coração do homem,

são as que Deus preparou para os

que o amam.

I Corintios 2:9

Ao meu Senhor Jesus, minha fortaleza,

socorro presente em todos os

momentos.

Ao meu amado esposo Kleber, pelo

incentivo, exemplo de determinação e

paciência.

Aos meus filhos: Kleber e Kevin,

minhas maiores realizações na vida.

A minha mãe, família e amigos pelo

apoio e confiança.

vii

AGRADECIMENTOS

Ao Dr. Zilton A. Andrade, um grande exemplo de pesquisador e profissional para

todas as pessoas que tiveram a honra de tê-lo como orientador, pela confiança,

disponibilidade e carinho o qual trata a todos sem distinção. Minha grande

admiração, respeito e gratidão. Estará sempre em minhas orações. Muito obrigada

À Professora Dr. Sônia G. Andrade, pela revisão do trabalho e pelo exemplo de

pesquisadora que tanto nos inspira. Muito obrigada.

Ao Coordenador do Curso de Biologia Celular e Molecular, Dr. Milton Ozório Moraes,

pelo apoio institucional. Muito obrigada.

Ao Diretor do Centro de Pesquisa Gonçalo Moniz, Dr. Mitermayer Galvão dos Reis,

pelo apoio institucional, atenção e exemplo de determinação que muito me inspirou.

Muito obrigada.

Ao CPqGM, como órgão facilitador para o desenvolvimento de todo o trabalho

experimental.

À Bióloga Elisângela Trindade do Laboratório de Patologia Experimental, pelo

auxílio, amizade e disponibilidade. Muito obrigada.

À Bióloga e Mestre Ana Cristina pela cooperação nas imuno-histoquímicas, pela

atenção e carinho a mim dispensado. Muito obrigada.

À Doutora Márcia Maria de Souza, pelo auxilio, incentivo e preciosa amizade. Muito

obrigada.

À Mestre, Bárbara Cristina Alves de Assis, pela cooperação na realização do modelo

com soro de porco, disponibilidade, amizade e grande exemplo de determinação e

competência. Obrigada.

viii

Ao Sr. Antônio Carlos S. Santos, Técnico do Laboratório de Patologia Experimental

pelo auxilio com o manuseio dos animais no laboratório e disponibilidade. Muito

obrigada.

Aos Amigos do Laboratório de Patologia Experimental, pela ajuda e amizade a mim

dispensada. Que Deus os abençoe. Muito obrigada.

Aos Amigos do Laboratório de Chagas Experimental Autoimunidade e Imunologia

Celular pelo incentivo. Muito obrigada.

Às Técnicas do Laboratório de Histopatologia do Centro de Pesquisa Gonçalo

Moniz, pela competência com a qual realizaram os cortes e colorações histológicas

deste trabalho. Muito obrigada

Às Secretárias da pós-graduação do Instituto Oswaldo Cruz, pela disponibilidade,

paciência e atenção. Muito obrigada.

À Secretária da pós-graduação do Centro de Pesquisa Gonçalo Moniz, Taíse

Coutinho Caíres, pela disponibilidade, simpatia e atenção. Muito obrigada

A Rejane Márcia Chaves de Menezes, chefe da experimentação do Biotério do

Centro de Pesquisa Gonçalo Moniz pelo cuidado e organização dos animais no

biotério, eficiência e agilidade com que desempenha seu trabalho. Muito obrigada.

À Bibliotecária Ana Maria Fiscina Sampaio, do Centro de Pesquisa Gonçalo Moniz

pela ajuda na organização das referências bibliográficas, correções e pela

disponibilidade e simpatia. Muito obrigada.

A Todas as pessoas que contribuíram de forma direta ou indireta para a realização

desse trabalho, muito obrigada.

Apoio Financeiro: CNPq

SUMÁRIO

LISTA DE ABREVIATURAS

RESUMO

ABSTRACT

1 INTRODUÇÃO 01

2 JUSTIFICATIVA 02

3.1

3.2

OBJETIVO

Objetivo Geral

Objetivos Específicos

4 HIPÓTESE 03

5 REVISÃO BIBLIOGRAFICA 04

5.1 Angiogênese 04

5.2 Fibrose hepática

5.2.1 Aspectos Morfológicos da fibrose hepática 12

5.2.2 Modelos Experimentais 13

5.2.2-1

Modelo de indução de fibrose septal por Soro de Porco 13

5.2.2-2

Modelo de indução de fibrose septal por Capillaria hepática

5.2.2-3

Modelo de Indução de fibrose septal por Tetracloreto de

Carbono(CCl

)

5.2.2-4

Modelo de indução de fibrose pela Ligadura do Colédoco 19

5.2.2-5

Modelo de indução de fibrose pela Infecção por S. mansoni

6 MATERIAIS E MÉTODOS 24

6.1 Animais

6.2 Grupos Experimentais 24

6.2.1 Grupo Experimental com Esquistossomose murina

6.2.2

Grupo Experimental com Capillaria hepatica

6.2.3 Grupo Experimental com Soro de Porco 24

6.2.4 Grupo Experimental com CCl

6.2.5 Grupo Experimental com Ligadura do colédoco 25

6.3 Anestesia 25

6.4 Eutanásia 25

6.5 Histopatologia 25

6.6 Imuno-histoquímica 26

6.6.1 Imuno-fluorescência 26

6.6.2 Imuno-peroxidase 26

7 RESULTADOS 27

7.1 Generalidades 27

7.2

Modelos

7.2.1 Grupo Experimental com Esquistossomose murina 28

7.2.2

Grupo Experimental com Capillaria hepatica

7.2.3 Grupo Experimental com Soro de Porco 30

7.2.4 Grupo Experimental com CCl

7.2.5 Grupo Experimental com Ligadura do colédoco 32

8 DISCUSSÃO

8.1 Generalidade 43

8.2 Peculiaridades 47

9 CONCLUSÕES 56

10 PERSPECTIVAS FUTURAS 56

11 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS 57

LISTA DE ABREVIATURAS

VEGF.....................Fator de crescimento do endotélio Vascular

Fator VIII.............. Fator de Von Willenbrand

Ang1......................Angiopoetina 1

FGFb......................Fator de crescimento de fibroblasto beta,

TGF-β1...................Fator de crescimento transformador de

crescimento beta-1

PDGF......................Fator de crescimento derivado de plaqueta

TNF-α......................Fator de necrose tumoral alfa

HGF.........................Fator de crescimento do hepatócito

IGF-1........................Fator de crescimento semelhante a insulina-1

MCP-1......................Proteína quimiotática para monócito-1

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INSTITUTO OSWALDO CRUZ

ANGIOGÊNESE E FIBROSE HEPÁTICA EXPERIMENTAL

RESUMO

TESE DE DOUTORADO

Queli Teixeira Lemos

Na cicatrização dos ferimentos a fase de intensa proliferação vascular (tecido de

granulação) constitui um aspecto crucial indicativo da formação do tecido fibroso do

reparo. Vários trabalhos recentes têm chamado a atenção para a semelhança deste

processo com a patogênese da fibrose hepática. De fato, tem sido demonstrado que

a proliferação vascular (angiogênese) ocorre como uma alteração proeminente em

várias doenças crônicas fibrosantes do fígado. Os modelos experimentais de fibrose

septal induzida pela infecção por Capillaria hepatica no rato, por ligadura do ducto

biliar do rato, e pela esquistossomose no camundongo foram recentemente

utilizados para demonstrar a estreita relação entre angiogênese e fibrose hepática.

O presente trabalho procura investigar, comparativamente, a presença de

angiogênese, suas características evolutivas, intensidade e peculiaridades nos

modelos experimentais de fibrose hepática mais comumente utilizados. Para tal,

cinco modelos diferentes e bem padronizados de fibrose hepática foram escolhidos:

a) Fibrose septal induzida pela infecção com o helminto Capillaria hepatica no rato;

b) Fibrose septal induzida pelo tratamento repetido com soro de porco em ratos; c)

Fibrose com cirrose, provocada pelo tratamento crônico com o tetracloreto de

carbono (CCl

); d) fibrose biliar provocada pela ligadura total do colédoco de ratos; e

e) fibrose granulomatosa e periportal produzida em camundongos pela infecção

crônica pelo Schistosoma mansoni. A primeira etapa do trabalho consistiu na

produção experimental de cada tipo de fibrose hepática. A segunda etapa consistiu

na avaliação dos resultados através do estudo qualitativo com técnicas histológicas

e imuno-histoquímicas, tendo sido avaliadas: as características dos elementos

celulares, matriciais e vasculares. Além da atenção dada ao comportamento do

endotélio (fator VIII), da membrana basal vascular (laminina, fibronectina, colágeno

tipo IV), paredes vasculares (actina, elastina) e da participação do fator de

crescimento do endotélio vascular VEGF, uma atenção especial foi dada ao

comportamento dos pericitos, elementos celulares cruciais na fibrogênese e

possivelmente a razão de ser da angiogênese, em virtude do seu papel na formação

e remodelamento do tecido conjuntivo fibroso.

O comportamento da angiogênese, sua intensidade, sua relação sequencial com o

depósito de matriz extracelular, foram particularmente consideradas em cada modelo

per se, e depois analisada comparativamente. Todos os modelos exibiram

angiogênese associada com fibrogênese, sendo que a inter-relação patogenética

mais evidente foi sugerida nos modelos da capilaríase e da ligadura do ducto biliar.

xiii

ANGIOGENESIS AND EXPERIMENTAL HEPATIC FIBROSIS

ABSTRACT

DOCTORAL THESIS

Queli Teixeira Lemos

During wound healing the development of marked vascular proliferation (granulation

tissue) represents a crucial phase of the repair process. Recent publications call

attention to the main characteristics of this process being present during the

pathogenesis of hepatic fibrosis. As a matter of fact, prominent vascular proliferation

(angiogenesis) appears associated with fibrosis in chronic hepatic diseases. The

experimental models of hepatic fibroses, such as that induced by Capillaria hepatica

infection in rats, bile-duct ligation and murine schistosomiasis have been recently

used to demonstrate the close relationship between angiogenesis and hepatic

fibrosis.

The present investigation concerns a qualitative and comparative study on the

presence, evolution, prominence, and peculiarities of angiogenesis in the most

common experimental rat models of hepatic fibrosis: a) Capillaria hepatica-induced

septal fibrosis; b) pig-serum-induced fibrosis; c) carbon tetrachloride (CCl

)-induced

fibrosis with cirrhosis; d) main bile duct ligation, and e) the murine model of chronic

granulomatous and periportal fibrosis caused by Schistosoma mansoni infection.

First step was concerned with the characterization of cells, vessels, and extra cellular

matrix by histological and immuno-histochemical techniques, being specifically

observed the behavior of the endothelium (factor VIII), vascular basement membrane

(laminin, fibronectin, type IV collagen), the vascular walls (actin, elastin), and the

presence of the vasculo-endothelium growth factor - VEGF). Special attention was

paid to the presence of pericytes, a key-element in fibrogenesis, and probably a

rational explanation for the role of angiogenesis in hepatic fibrosis, considering the

role pericytes are known to play during formation and remodeling of connective

fibrous tissue.

After analyzing the angiogenesis behavior and intensity, and its sequential

relationship with fibrosis production in each model, a comparative study was made.

All models studied exhibited prominent angiogenesis, the most evident relationship

with hepatic fibrosis formation being exhibited by the Capillaria hepatica and the bile-

duct ligation models.

1- INTRODUÇÃO

A fibrose representa um achado comum nas doenças crônicas do fígado, sendo

considerada como uma tendência para a cicatrização das lesões inflamatórias

crônicas ou degenerativas. Ela é caracterizada por mudanças quantitativas e

qualitativas nos componentes da matriz extracelular, principalmente pelo aumento da

síntese e acúmulo do colágeno fibrilar dos tipos I e III. Representa um quadro de

comprometimento funcional em muitas doenças hepáticas, tendo grande valor

prognóstico, podendo estar associada com a cirrose ou até mesmo o câncer

hepático, o que torna o seu estudo de grande relevância.

RAPAPPORT et al. (1983) chamaram a atenção para o fato do desenvolvimento da

cicatrização na cirrose hepática vir invariavelmente acompanhado por uma intensa

proliferação vascular, sugerindo que o remodelamento tecidual e o reparo fibroso

poderiam representar a construção do caminho para o fluxo sanguíneo anormal na

cirrose. Contudo, o mecanismo que disparava essa intensa proliferação vascular

permaneceu por ser determinado.

Até pouco tempo a angiogênese era vista apenas no contexto do processo de

reparo, onde naturalmente, após processo inflamatório crônico, o tecido lesado inicia

um depósito de material conjuntivo na tentativa de reparar os danos causados ao

tecido. Nesse momento ocorre uma formação local de novos vasos que vão se

ramificando a fim de levar aporte de oxigênio e nutrientes para o tecido novo,

denominado de tecido de granulação.

A fibrose e a angiogenese eram até então estudadas como processos distintos.

Entretanto, descobertas recentes têm chamado a atenção para a participação desse

processo na fibrose hepática. ROSMORDUC et al. (1999) estudando a angiogênese

na cirrose biliar experimental do rato demonstraram que a hipóxia hepatocelular

induzia o aumento da síntese do fator de crescimento do endotélio vascular (VEGF),

e que este poderia ser o promotor da proliferação micro-vascular associada à fibrose

hepática. Esse fato chamou a atenção para a estreita relação entre os dois

processos.

A proliferação de células vasculares hepáticas ou “remodelamento vascular” tem

sido firmemente associado à fibrose (UENO et al, 2006). Artigos recentes vêm

demonstrando a relação entre citocinas e moléculas da matriz envolvidas na fibrose,

que também são importantes na formação de novos vasos, como por exemplo: O

TGF-β, que indiretamente induz à formação de novos vasos sanguíneos in vivo,

principalmente quando associado com o fator de crescimento de fibroblasto (FGF)

(KALLURI & SUKHATMA, 2000).

Estudo da fibrose induzida pelo parasito Capillaria hepatica, realizada em nosso

laboratório, permitiu observar uma proeminente angiogênese ocorrendo no início do

depósito do colágeno no processo fibroso (SOUZA et al, 2006). Este fato nos

despertou o interesse em pesquisar a partir de outros modelos experimentais a

participação da neovascularização na fibrose hepática, em vista da importância do

entendimento de cada passo da cascata fibrosante, desde a agressão hepática até a

síntese do excesso de matrix extracelular, que poderia trazer dados de grande

potencial para o entendimento da patogenia e para aplicações terapêuticas.

2- JUSTIFICATIVA

Uma vez constatada a participação da angiogênese como um processo geral,

precursor da fibrose, a utilização de drogas anti-angiogênicas, poderia ser

considerada como uma medida terapêutica adicional.

3- OBJETIVOS

3.1- Objetivo Geral

Investigar a participação da angiogênese na patogenia da fibrose utilizando diversos

modelos de indução de fibrose hepática.

3.2- Objetivos Específicos

3.2.1. Investigar se há uma uniformidade geral no comportamento dos vasos

sanguíneos e dos fatores de angiogênese no processo de fibrogênese hepática em

diferentes modelos experimentais, quais sejam: Fibrose induzida pela administração

do Soro de Porco, pela infecção com a Capillaria hepatica, pela administração

repetida do tetracloreto de carbono (CCl

), pela ligadura do canal colédoco em ratos,

e pela infecção com o Schistosoma mansoni em camundongos.

3.2.2. Avaliar a partir de análises histológicas, com técnicas de imuno-fluorescência

indireta e de imuno-histoquímica, os componentes vasculares: Endotélio (fator VIII),

membrana basal (laminina, fibronectina, colágeno tipo IV), parede vascular (actina,

elastina) e o fator angiogênico (VEGF).

4- HIPÓTESE

1. A angiogênese é um processo geral que antecede a formação da fibrose e está

relacionada ao desenvolvimento do processo fibroso. Os vasos que proliferam

trazem consigo células especializadas responsáveis pelo excesso do depósito da

matriz extracelular.

2. Como os modelos experimentais diferem na etiologia e na dinâmica do processo

fibroso, o comportamento da angiogênese poderia também exibir características

peculiares para cada caso.

5- REVISÃO BIBLIOGRÁFICA

5.1- Angiogênese

A formação de novos vasos pode ocorrer por diferentes processos. No início do

desenvolvimento embrionário os vasos são formados pelo processo conhecido como

vasculogênese, em que as células endoteliais progenitoras se diferenciam e

proliferam dentro de um tecido avascular e se juntam para formar uma rede tubular

primitiva, denominada de plexo vascular primitivo (UENO et al, 2006). A

angiogênese refere-se ao processo pelo qual esta trama inicial é modificada,

compreendendo a formação de novos vasos via brotamento de células endoteliais

maduras de vasos pré-existentes (YANCONPOULOS et al, 2000).

A angiogênese normalmente ocorre durante o período embrionário, porém ao longo

da vida permanesce quiescente, sendo observada apenas em alguns processos

fisiológicos como na cicatrização dos ferimentos e ciclo ovariano, e em algumas

doenças como: a psoríase, o diabetis, o câncer e as doenças inflamatórias. A

formação de novos vasos é de suma importância para a regularização do fluxo

sanguíneo e aporte de oxigênio e nutrientes bem como para o transporte de células

de defesa para tecidos lesados (WALSH & PEARSON, 2001).

O controle da angiogênese é feito por um balanço entre fatores endógenos:

promotores e inibidores. Vários fatores solúveis, proteínas da matriz, e diferentes

tipos celulares participam da regulação desse complexo processo in vivo (UENO et

al, 2006). Quando os mecanismos de controle falham a angiogênese, seja excessiva

ou deficiente, torna-se patológica.

A angiogênese, portanto, compreende um processo complexo que envolve desde

mediadores solúveis, interações célula-célula e célula-matriz extracelular, bem como

forças biomecânicas, podendo ser resumida nas seguintes etapas: aumento da

permeabilidade vascular e depósito de fibrina extra-vascular; desarranjo da parede

vascular, com remoção dos pericitos; degradação da membrana basal e da matriz

extracelular; migração da célula endotelial através da matriz extracelular

remodelada; proliferação da célula endotelial; formação de estruturas tubulares;

inibição da proliferação e migração da célula endotelial; reconstituição da membrana

basal; maturação dos complexos juncionais; construção da parede vascular, através

do recrutamento e diferenciação de células murais, pericitos e células de músculo

liso; estabelecimento de fluxo sanguíneo no novo vaso.

Dentre os diversos fatores descritos como angiogênicos, um dos mais importantes é

o fator de crescimento do endotélio vascular (VEGF). O VEGF tem um papel central

na divisão, migração e formação tubular das células endoteliais vasculares, além de

regular a vasculogênese (MUSTONEN & ALITALO, 1995; SHIBUYA, 1995; BROWN

et al, 1997; FERRARA & DAVIS-SMYTH, 1997). Acredita-se que também apresente

um papel essencial na sobrevivência dessas células uma vez que inibe a apoptose e

a regressão de capilares. O VEGF possui uma potente habilidade de aumentar a

permeabilidade vascular e a vasodilatação. O aumento da vasodilatação promove o

aumento do fluxo sangüíneo que precede a angiogênese (NAGY et al, 2007).

ROSMORDUC et al. (1999) sugeriram que a angiogênese é primariamente

estimulada pelo VEGF em resposta a hipóxia hepatocelular.

O VEGF é uma glicoproteína ligada à heparina, peso molecular de 45 Kda, que

possui dois receptores: o FLT-1 (Fms-Like tirosina quinase) e FLK-1(fígado fetal

quinase), ambos tirosina quinase transmembrana, regulados pela hipóxia.

Acreditava-se que os receptores VEGFR tirosina quinase eram específicos de

células endoteliais, atualmente sabe-se que várias células expressam ambos os

receptores. Estudos mostram que o VEGF tem ação autócrina via receptores, tanto

em células endoteliais, quanto em não endoteliais.

O fator de crescimento derivado de plaqueta (PDGF) e o fator de crescimento de

fibroblasto (FGF) também participam ativamente do processo de angiogênese

(FOLKMAN & KLAGSBRUN, 1997; GOSPODAROWICZ et al, 1987; LEVEEN et al,

1994). O FGF produzido em células tumorais e também em vários tipos de células

normais, inclusive endoteliais promove a angiogênese por um efeito direto ou

indireto nas células endoteliais, induzindo a replicação e a migração dessas células,

ou regulando a expressão do VEGF. Esse fator demonstrou ter um efeito sinérgico

na indução da angiogênese in vitro.

Múltiplos fatores têm sido descritos como responsáveis pela expressão aumentada

do VEGF na angiogênese patológica. Tem-se sugerido que a isquemia, assim como

o aumento de certos fatores de crescimento são os responsáveis pelo aumento da

expressão do VEGF na inflamação crônica e na cicatrização (NAGY et al, 2007).

BROGI et al. (1994) demonstraram in vitro que a hipóxia estimula a expressão de

genes de VEGF, tanto em células endoteliais quanto em células do músculo liso

vascular e fibroblastos. Como tecido inflamado freqüentemente é tecido em hipóxia,

a inflamação pode promover a angiogênese induzindo a liberação de diversos

fatores angiogênicos.

A relação entre inflamação e angiogênese é evidenciada também quando muitos

fatores que são angiogênicos mostram-se como fatores pró-inflamatórios, e muitos

agentes designados especificamente como inibidores angiogênicos podem também

inibir a inflamação (WALSH & PEARSON, 2001).

A angiogênese prolongada e excessiva é uma característica dos processos

inflamatórios em muitos órgãos, inclusive no fígado. As células inflamatórias:

monócitos, macrófagos, plaquetas, mastócitos e outros leucócitos liberam

numerosos fatores angiogênicos incluindo fator de crescimento endotelial vascular

(VEGF), angiopoetina (Ang1), fator de crescimento de fibroblasto beta (FGFβ), fator

transformador de crescimento beta 1(TGF-β1), fator de crescimento derivado de

plaqueta (PDGF), fator de necrose tumoral alfa (TNF-α), fator de crescimento do

hepatócito (HGF), fator de crescimento semelhante a insulina-1 (IGF-1), proteína

quimiotática para monócito-1(MCP-1), entre muitas outras (PINEDO et al, 1998;

SELJELID et al, 1999). Alguns desses fatores também atraem células em estado de

degeneração que, por outro lado, liberam fatores angiogênicos adicionais

(SCHAPER et al, 1996; COUSSENS et al, 1999).

Os estudos sobre angiogênese concentravam-se apenas nos componentes

endoteliais, principalmente quando o primeiro fator angiogênico foi descoberto.

Contudo, os capilares sangüíneos são constituídos por dois tipos celulares, as

células endoteliais e os pericitos. Atualmente, os pericitos têm despertado grande

interesse dos pesquisadores, principalmente como contribuinte funcional da

angiogênese tumoral. Os pericitos são células perivasculares que estão

mergulhadas na membrana basal dos microvasos em contato íntimo com as células

endoteliais, compartilhando pequenas moléculas, íons, e servindo também como

suporte para as mesmas. São células de origem mesenquimal que foram descritas

inicialmente por Charles Rouget como célula de músculo liso devido à presença de

actina. Estudos recentes vêm chamando a atenção para a participação dessas

células no processo fibroso, pelo seu potencial em se transformar em miofibroblasto

(RAJKUMAR et al, 2005).

Estudar a participação do processo angiogênico e tentativas de inibi-los pode

representar no mínimo uma forma de reduzir a inflamação, ajudando a restaurar a

estrutura e função tecidual após doenças inflamatórias crônicas.

Atualmente tem-se utilizado inibidores de angiogênese a fim de se observar o papel

da mesma em alguns processos. Existem duas classes de inibidores de

angiogênese: os diretos e os indiretos. Os inibidores de angiogênese diretos tais

como a vitaxina, a angiostatina e outros, evitam que as células dos endotélios

vasculares proliferem e migrem em resposta a um espectro de proteínas pró-

angiogênicas, como VEGF, FGFβ, IL-8, PDGF e fator de crescimento endotelial

derivado de plaqueta (PD-EGF). Os inibidores diretos da angiogênese praticamente

não induzem resistência porque agem mais em células endoteliais geneticamente

estáveis, do que em células neoplásicas instáveis mutantes (KERBEL,1991).

Os inibidores angiogênicos indiretos geralmente previnem a expressão ou bloqueiam

a atividade de uma proteína neoplásica que ativa a angiogênese ou bloqueia a

expressão de receptores em células endoteliais (RAK et al., 2000 e 2002; KERBEL

et al, 1998).

Alguns pacientes têm sido tratados com inibidores de angiogênese diretos, tais como

interferon-alfa (IFN-α), por até 7 anos (FOLKMAN et al, 1997) e com endostatina por

mais de 1 ano (FOLKMAN, 2001). Foi demonstrado que essas drogas têm muita

baixa toxicicidade (MARLER et al, 2002) e a resistência adquirida à droga foi

raramente vista em animais que foram tratados por longos períodos de tempo com

angiostatina ou endostatina (BOEHM et al, 1997).

D'AMATO e colaboradores (1994), demonstraram que a droga anti-inflamatória

talidomida pode inibir a angiogênese induzida por FGFβ ou VEGF em ensaios

realizados utilizando córneas de coelho (GIMBRONE et al, 1974). A talidomida inibe

a formação de novos vasos sangüíneos em coelhos e camundongos

independentemente da habilidade destes em suprimir a infiltração de células

inflamatórias hospedeiras (D'AMATO et al, 1994). O tratamento com talidomida

suprime a produção de fator de necrose tumoral alfa (TNF-α) que tem sido

demonstrado como anti-angiogênico (SETTLES et al, 2001; BAUDITZ et al, 2002;

D'AMATO et al, 2001). Contudo, outros mais potentes inibidores de TNF-α, tais

como pentoxifilina e dexametasona, têm pouca ou nenhuma atividade em ensaios

de angiogênese de córnea (FOLFMAN, 2001). A supressão de TNF-α não deve ser

encarada como o fator principal da atividade anti-angiogênica da talidomida.

Pacientes com mieloma múltiplo ou síndromes mielodisplásicas tratados com

talidomida, apresentaram níveis plasmáticos de proteínas pró-angiogênicas VEGF e

FGFβ significantemente diminuídos comparados aos níveis pré-tratamento. Esta

diminuição esteve relacionada com a eficácia da terapia com talidomida

(BERTOLINE et al, 2001). A talidomida não tem um efeito antiproliferativo em células

de mieloma múltiplo in vitro (D'AMATO et al, 2001), embora altas concentrações de

talidomida (acima de 100µM) sejam requeridas para tal efeito.

Trabalho recente demonstrou que a talidomida não revelou capacidade para inibir a

angiogênese que se desenvolve na esquistossomose experimental do camundongo

(LIMA et al, 2007).

O IFN-α tem sido largamente usado não apenas como um agente antiviral para o

tratamento de hepatite crônica, mas também, como um agente citotóxico para o

tratamento de certas leucemias e alguns cânceres de bexiga (FOLKMAN et al,

1997). A primeira evidência de que o IFN- α tem atividade anti-endotelial foi

verificada em 1980 quando se demonstrou que as células endoteliais tinham a sua

motilidade inibida in vitro em uma maneira dose-dependente e reversível (BROUTY

& ZETTER, 1980), e subseqüentemente foi demonstrada a inibição da angiogênese

in vivo (SIDKY & BORDEN, 1987; DVORAK & GRESSER, 1989). Estudos

experimentais em camundongos mostraram que a eficácia anti-angiogênica do IFN-α

é ótima em baixas doses e tende a cair em altas doses (SLATON et al,1999).

Em recente Editorial do Journal of Hepatology foi sugerido que o uso de drogas anti-

angiogênicas poderá vir a se constituir no meio mais eficaz para o tratamento das

doenças crônicas do fígado, já que os tratamentos hoje disponíveis para tal estão

longe de serem satisfatórios (LAI & ADAMS, 2005).

5.2- Fibrose hepática

A fibrose hepática ocorre como conseqüência de muitas formas de doenças crônicas

do fígado, sendo um processo dinâmico e complexo que envolve a ativação de

vários tipos celulares e a participação de muitas moléculas levando à produção

excessiva de proteínas da matriz extracelular (BURT, 1993; DAY, 1996; FRIEDMAN,

1999).

A patogênese da fibrose em doenças crônicas do fígado em humanos ainda tem

aspectos pouco conhecidos (FRIEDMAN, 2004). Entretanto fica bem evidente sua

associação com dois fatores: a inflamação crônica e a necrose hepatocelular

repetida.

O avanço no conhecimento do metabolismo do colágeno tem ajudado no

entendimento da cinética da fibrose no parênquima hepático. Três aspectos têm

destaque nesse processo: 1) a ativação de fibroblastos e células relacionadas; 2) a

maturação das fibras extracelulares; 3) e a degradação (catabolismo) dessas fibras

(POPPER & UDENFRIEND, 1970; MCGREE & PATRICK, 1972). Normalmente, o

fígado mantém um equilíbrio entre as quantidades relativas de parênquima e

estroma, através da produção concomitante das proteínas de depósito, com as

enzimas proteolíticas específicas, responsáveis pela degradação da matriz

extracelular (MARTINEZ-HERNANDES & CHUNG, 1984).

A principal fonte das proteínas da matriz extracelular (MEC) do fígado são as células

perisinusoidais denominadas de células estreladas ou células de Ito (ARESON et al,

1988). Elas são consideradas as chaves efetoras da resposta fibrótica, sendo o

principal alvo das citocinas fibrogênicas (FRIEDMAN, 1993). Os estudos

demonstram que após necrose de hepatócitos, populações de células

perisinusoidais são ativadas. Uma vez ativadas essas células proliferam e passam a

produzir aproximadamente 5 vezes mais colágenos fibrilares tipos I e III e

glicoproteínas associadas (STENGER, 1966). Em lesões agudas este fenômeno é

transitório. Contudo em doenças crônicas a ativação das células perisinusoidais

ocorre associada a uma modulação fenotípica para miofibroblastos, adquirindo um

formato alongado com um proeminente retículo endoplasmático, aumentando a

expressão de RNA para vários componentes da matriz extracelular, diminuindo

consideravelmente a quantidade de vitamina A intracelular e passando a exibir

marcadores para alfa actina de músculo liso (BURT, 1993; FRIEDMAN, 1999). Em

muitas espécies, as células perisinusoidais são os principais sítios de estocagem de

vitamina A. São lipócitos que, em estado de quiescência, expressam o citoesqueleto

de proteína desmina e contêm citoplasma largamente composto por gotículas

lipídicas de ésteres de retinol. Elas normalmente são responsáveis pela produção da

matriz extracelular, secretando predominantemente colágeno tipo IV, fibronectina,

cadeias específicas de laminina e pequenas quantidades de colágenos fibrilares tipo

I e III (DAY, 1996; CABALLERO-MENDONZA et al, 1999).

Sugere-se que a ativação das células perisinusoidais é mediada, em parte pela

alteração na composição dos elementos da matriz extracelular que ocorre durante a

lesão do fígado, e por várias citocinas fibrosantes, sendo o fator de crescimento

tumoral (TGF-β) e o fator de crescimento plaquetário (PDGF) as principais (BURT,

1993 ).

Dois outros tipos celulares parecem exercer grande influência no processo

fibrogênico, as células endoteliais residentes nos sinusóides, as quais, quando

lesadas sintetizariam isoformas de fibronectina que estimulariam a ativação das

células estreladas; e também as células de Kupffer, macrófagos residentes, que

quando ativados são componentes críticos na cascata da fibrogênese hepática

(ALCOLADO et al, 1997). Tem-se sugerido uma estimulação parácrina entre as

células de Kupffer e as células estreladas uma vez que, foi observado logo após a

ativação das células estreladas a presença de um grande número de células de

Kupffer (FRIEDMAN, 1999). Algumas das citocinas fibrosantes têm origem nessas

células ativadas e também provêem das plaquetas e da própria matriz.

Estudos imuno-histoquímicos in vivo de lesões agudas (indução de zonas de

necrose) e crônicas (ligação do ducto biliar do fígado), têm mostrado que expansões

de populações de monócitos/macrófagos precedem populações de lipócitos, e

ambos os tipos celulares acumulam-se exclusivamente dentro de áreas de necrose

(IKEDA et al, 1993). Também revelaram a transformação dos lipócitos para células

transitórias, após lesões agudas, e para miofibroblastos após as lesões crônicas.

Trabalhos in vitro demonstraram que, uma vez ativadas, as células de Kupffer

liberam numerosas citocinas/fatores de crescimento, com efeito na ativação e

proliferação dos lipócitos (TGF-α e β e TNFα), e na fibrogênese (TGFβ) (LOREAL et

al, 1993; WINWOOD & ARTHUR, 1993).

A célula de Kupffer é provavelmente o centro da resposta do fígado a muitas

agressões. Dentre as várias citocinas fibrosantes liberadas por esta célula, o TGFβ

é a principal. O TGFβ é uma citocina multifuncional que tem um papel central em

torno da cicatrização e reparo tecidual. Quando um tecido é lesado um processo de

reparo se inicia com um grande aumento na secreção do TGFβ juntamente com

várias proteínas da matriz (ALCOLADO et al., 1997). Essa citocina pode promover o

acúmulo da matriz extracelular pela indução de inibidores das metaloproteinases e

do ativador do plasminogênio. Além das células parenquimais, outras células

também podem produzir o TGFβ, as células de infiltrado inflamatório tais como

linfócitos, monócitos/macrófagos e plaquetas (BRANTON & JEFFREY, 1999). Outras

citocinas como as interleucinas 1 e 4 (IL-1 e IL-4), tem sido implicadas na

fibrogênese hepática. Contudo, nenhuma tão consistente como o TGFβ.

Recentemente um peptídeo vasoativo denominado de endotelina-1 foi observado

como estimulador hepático para síntese de colágeno. Segundo os pesquisadores

esse peptídeo também promove a ativação e proliferação das células estreladas,

contribuindo desta forma para a fibrogênese pelo aumento do número dessas

células no fígado (MAHER, 1999).

O acúmulo excessivo do colágeno no fígado no processo fibrogênico envolve além

dos macrófagos e células perisinusoidais, a síntese de proteínas específicas, as

metaloproteinases e seus inibidores. Esse acúmulo decorre também do fato do

colágeno depositado no meio extracelular, organizado em fibrilas e protofibrilas,

estabelecerem ligações dissulfídicas, chamadas de “cross-links”, que resultam em

uma maior coesão e resistência dos feixes que vão se formando, tornando as fibras

colágenas mais resistentes à ação das colagenases (PEREZ-TAMAYO et al, 1987).

A degradação das proteínas da matriz é catalisada por várias famílias de enzimas

incluindo as plasminas e as metaloproteinases da matriz (MMP), das quais 23 já

foram bem descritas (BRANTON & JEFFREY, 1999).

A família das metaloproteinases que está subdividida em 3 grupos é composta pelas

colagenases, que degradam colágeno intersticial, particularmente os tipos I, II, e III;

por gelatinases que também degradam colágeno do tipo IV e V, desnaturando o

colágeno e a elastina; e a estromelisina que degrada as proteínas da membrana

basal como o colágeno IV e V e outras proteínas como: gelatina, fibronectina

lamininas e proteoglicanos. A atividade extracelular dessas enzimas é regulada por

vários mecanismos que incluem desde alterações na transcrição gênica e sínteses

proenzimáticas, quanto na inibição específica de formas ativadas por inibidores

teciduais de metaloproteinases (TIMPS) (BRANTON & JEFFREY, 1999; ARTHUR,

2000).

Algumas evidências correntes indicam que as células estreladas ativadas e as

células de Kupffer tenham também um papel central na síntese das

metaloproteinases da matriz. Em condições definidas essas células sintetizam

colagenase tipo IV/gelatinase (72KDa e 95KDa respectivamente) e possivelmente

estromelisinas. As células estreladas estariam também contribuindo para a

regulação da atividade extracelular dessas enzimas pela secreção de inibidores

teciduais de metaloproteinases as alfa 1-antitripisina e alfa 2- macroglobulina. Essas

células apresentam, portanto, ambas as habilidades, tanto para degradar, quanto

para regular a degradação da matriz no fígado normal e do colágeno intersticial

fibrilar depositado durante o processo de fibrose do fígado (ARTHUR, 1994).

As células estreladas são pericitos especiais que têm a propriedade de armazenar

vitamina A no fígado. Essas células chegam a comportar até 80% de toda vitamina A

do corpo (SATO et al. 2003). Diferentemente dos pericitos capilares, estas células

estão em contato íntimo com as células endoteliais, não existindo uma membrana

basal entre elas, apenas fibras colágenas intersticiais e alguns componentes da

membrana basal (BERGERS & SONG, 2005). Atualmente, muitos autores acreditam

que a ênfase dada anteriormente à participação dessas células na fibrogênese

hepática tenha sido exagerada (RAMADORI, 2004; SANCHO-BRU et al. 2005).

Como a vitamina A é lipossolúvel, a gordura associada facilita o isolamento de tais

células através de gradientes de separação, permitindo o seu isolamento e cultivo,

facilitando assim o seu estudo in vitro.

Estudos derivados de observações in vivo, sobretudo feitos na esquistossomose

murina (FONSECA et al, 2005) e humana (ANDRADE et al, 1999) e na capilaríase

do rato (SOUZA et al, 2006) têm chamado a atenção para outros elementos

celulares dos espaços porta na fibrogênese hepática.

5.2.1- Aspectos Morfológicos da fibrose hepática

A fibrose no fígado pode ocorrer sob várias designações: a) Fibrose portal - onde

os espaços porta aparecem ampliados, muito maiores do que se pode esperar,

considerando o calibre de seus vasos e ductos. Este tipo de fibrose aparece em

vários processos, sobretudo nas hepatites crônicas e na forma hépatoesplênica da

esquistossomose (CHEEVER & ANDRADE, 1970). b) Fibrose septal – que aparece

como finos e longos cordões de tecido fibroso dissecando o parênquima ao longo da

zona I do ácino, fazendo geralmente conexão entre espaços porta; entre estes e as

veis centrais ou terminando abruptamente no interior do parênquima (septos

incompletos) (FERREIRA & ANDRADE, 1993); c) Fibrose peri-sinusoidal – que

consiste no depósito de colágeno na região para-sinusoidal exibindo um quadro de

reforço da trama reticular do fígado, sendo um dos componentes da capilarização

dos sinusóides (SOUZA et al, 2000). Denota a ativação de um sistema sinusoidal

relacionado com a formação da fibrose hepática, e que inclui as células sinusoidais

de Kupffer e as células estreladas hepáticas; d) Fibrose peri-central - representada

pela fibrose que se desenvolve em torno das veias centrais, comuns no alcoolismo

crônico; e) Fibrose difusa - caso em que a fibrose parece envolver e isolar células

hepáticas entre si ou em pequenos grupos, por todo o fígado; f) Fibrose focal – que

consiste na formação de um pequeno nódulo, densamente colagenizado, resultante

da cicatrização de uma lesão focal, geralmente um abcesso ou granuloma.

Como o fígado tem uma enorme capacidade de reserva funcional, a presença de

fibrose per se não representa a causa direta de insuficiência hepática. Na realidade

são as alterações vasculares presentes no interior do tecido fibroso que determinam

a insuficiência hepática, bem como a hipertensão portal.

5.2.2- Modelos Experimentais

Os modelos experimentais têm sido propostos a fim de se entender os mecanismos

patogênicos da fibrose hepática, contudo é importante ressaltar que nenhum deles

reproduz exatamente a fibrose do fígado humano (BHUNCHET & WAKE, 1992;

CHOJKIER et al, 1988; YOKOI et al, 1988; WU & NORTON, 1996). Entretanto têm

trazido importantes contribuições para o entendimento do mecanismo celular e

molecular implícito no processo. Achados em comum, observados nos modelos

experimentais têm sido de grande importância para o entendimento de vários

processos patológicos, como exemplo, tem-se o extenso uso de modelos in vitro

para a investigação das células estreladas do fígado, de onde tem partido a maioria

dos dados sobre fibrogênese hepática e o estudo em modelos animais

experimentais demonstrando o papel desempenhado pelo TGF- β na fibrogênese do

fígado (TSUKAMOTO et al, 1990). Os modelos experimentais de indução de fibrose

em animais são categorizados de acordo com o fator etiológico como: tóxico,

nutricional, alcoólico, genético ou imunológico (TSUKAMOTO et al, 1990).

5.2.2- 1. Modelo de indução de fibrose septal por Soro de Porco

A fibrose septal induzida por soro de porco foi descrita inicialmente por

PARONETTO & POPPER (1966) quando tentavam a indução de um modelo

imunológico de hepatite com a injeção de soros heterólogos em ratos. Consiste em

uma fibrose fina, formada após repetidas injeções intraperitoniais de soro de porco

(PARONETTO & POPPER, 1966; RUBIN et al, 1968). Sabe-se que o elemento do

soro que desencadeia o processo está ligado à sua fração albumina. Entretanto tem

se demonstrado que a reprodutibilidade é relativamente baixa uma vez que, apenas

40 a 70% dos animais submetidos ao tratamento desenvolvem o quadro fibrótico

(SOUZA et al, 2000).

Nesse modelo a fibrose parece se iniciar na zona perisinusoidal, onde se acredita

que as células estreladas proliferam e secretam o excesso de matriz. As porções do

tecido hepático, isoladas pelos septos fibrosos mantêm a estrutura lobular ou acinar

normal (RUBIN et al, 1968; ANDRADE, 1991).

A via de administração do soro parece ser de grande importância no sucesso da

obtenção da fibrose nesse modelo, pois quando se substitui a via peritoneal pela

subcutânea a fibrose septal hepática não se forma (ANDRADE & GODOY, 1996).

Apesar da fibrose estar associada à inflamação crônica e contínuas reações de

reparo a lesões teciduais (ALCOLADO et al, 1997; ANDRADE, 1991), acredita-se

que nesse caso trata-se de um modelo onde a fibrose ocorre na ausência de

inflamação crônica e necrose, ou seja, uma forma “pura” de se produzir fibrose sem

degeneração ou regeneração hépato-celular. Entretanto, NAKANO em 1986,

utilizando a microscopia eletrônica, observou danos em vasos e hepatócitos antes

do desenvolvimento da fibrose. Uma leve, mas distinta necrose de hepatócitos nos

estágios mais recentes levou o autor a sugerir que esta fibrose poderia ser resultante

de danos hepáticos causados possivelmente por distúrbios das veias portais.

SHIGA et al. (1997) após 16 semanas de inoculações de ratos com o soro de porco,

obtiveram um grau de fibrose avançada e uniforme em quase todos os casos e

observaram mudanças hepatocelulares tais como necrose, apoptose e proliferação

dos ductos biliares freqüentemente. Os autores também observaram abundantes

fibras elásticas em áreas de avançada fibrose, presença de células musculares lisas

alfa-actina, desmina-positivas e macrófagos ao redor de veias centrolobulares e em

septos fibrosos, o que interpretaram como resultado do processo de necrose hépato-

celular. Os autores sugeriram que a necrose e a apoptose de hepatócitos

observadas nesse trabalho poderiam representar lesões hepatocelulares devido à

hipóxia ou ao desenvolvimento secundário de vasos intrahepáticos para o

remodelamento, após mudanças hemodinâmicas na circulação intrahepática. Em

1998 eles publicaram que a fibrose nesse modelo se desenvolve ao longo das

paredes de vasos neoformados entre as veias centrolobulares vizinhas, sugerindo

que um processo de capilarização e venularização de sinusóides paralelo ao

desenvolvimento da fibrose, possivelmente ocorre como um processo de adaptação

para a manutenção do fluxo sangüíneo para os lóbulos.

Nos trabalhos publicados até o presente, não há referências específicas sobre a

participação de elementos vasculares ou de fatores de angiogênese na patogenia da

fibrose neste modelo.

5.2.2- 2. Modelo de indução de fibrose septal por Capillaria hepatica

A capilaríase em ratos é um excelente modelo para o estudo da patogenia da fibrose

considerando-se que a reprodutibilidade dos aspectos morfológicos ocorre em 100%

dos animais, e que a mortalidade é mínima ou nula (FERREIRA & ANDRADE,

1993). Este processo de fibrose hepática é muito parecido, morfológica e

patogeneticamente, com a do modelo anterior.

O primeiro relato de fibrose septal como manifestação da capilaríase hepática foi

feito por FERREIRA & ANDRADE (1993). Esses autores observaram o

desenvolvimento de septos fibrosos finos e longos, formando conexões porta-porta,

em ratos infectados experimentalmente com ovos embrionados do parasito.

Acreditava-se que, quando as lesões inflamatórias focais de origem parasitária direta

mostravam evidências de involução, começavam a aparecer os septos fibrosos em

torno das lesões parasitárias focais e ao mesmo tempo, em várias outras áreas do

fígado, sem aparente continuidade direta com as lesões parasitárias. Pouco a pouco

todo o fígado vem a ficar septado pelos tratos fibrosos, que tendem a delimitar

porções, por vezes nodulares (SOUZA et al, 2000).

Ratos infectados com esse helminto, regularmente desenvolvem fibrose septal em

um pequeno espaço de tempo. Atualmente sabe-se que a formação da fibrose

septal inicia-se após aproximadamente 17-20 dias de infecção tornando-se mais

evidente após os 30 dias. Aparentemente essa fibrose não tem uma relação direta

com as lesões causadas pelo parasito porque aparecem em áreas bem distantes

dos nódulos parasitários (FERREIRA & ANDRADE, 1993), levando a crer que esta

tenha uma base imunológica (LEMOS et al, 2002).

A C. hepatica é um nematódeo que parasita várias espécies de mamíferos, sendo

que os roedores assumem um importante papel, por se constituírem no principal

reservatório natural da Capillaria. Esse parasito apresenta uma distribuição

geográfica cosmopolita, já tendo sido encontrado em todas as regiões do mundo de

climas e condições ambientais diversos (FERREIRA & ANDRADE, 1993).

A infecção por C. hepatica se dá pela ingestão pelo hospedeiro de ovos

embrionados, que vão eclodir ao nível do ceco. As larvas liberadas desses ovos

migram pelo sistema porta para o fígado onde se desenvolvem até a fase adulta, 15

dias pós-infecção. Após 20 dias, as fêmeas liberam os ovos que vão permanecer no

parênquima hepático até a morte do hospedeiro. Quando o animal ingere ovos de

Capillaria não embrionados, esses são transportados via sistema digestório, sendo

eliminados nas fezes, caracterizando assim a infecção espúria (GALVÃO, 1976).

São raros os casos de infecção humana por C. hepatica, sendo até o momento

registrado, apenas 40 casos, quatro dos quais no Brasil (PIAZZA et al, 1963;

SAWAMURA et al, 1998; JUNKER-VOSS et al, 2000). Contudo, suspeita-se que a

freqüência de seres humanos infectados seja muito maior devido à alta prevalência

de ratos infectados encontrados em muitas regiões, aliado ao fato de grande número

destes roedores serem encontrados nos locais onde habitam as pessoas das

camadas mais desfavorecidas da nossa sociedade, onde as condições de higiene

também são precárias. Além disso, existe uma grande dificuldade em se

diagnosticar a infecção no homem, tendo em vista que o ciclo de vida do parasito no

mesmo ocorre sem a liberação dos ovos nas fezes.

NASCIMENTO (1986) sugeriu que o homem apresenta uma resistência natural a

essa doença, tendo em vista que os casos de contaminação relatados na espécie

humana ocorreram durante períodos de queda de imunidade. Ressaltou ainda o fato

de que quase todos os casos graves ocorreram em crianças com menos de cinco

anos de idade vivendo em péssimas condições sócio-econômicas ou em pacientes

com algumas condições patológicas concomitantes.

As lesões produzidas pela infecção por C. hepatica em humanos estão presentes

em pleno parênquima hepático, podendo ser descritas como reações

granulomatosas em torno de ovos e fragmentos de vermes, acompanhadas de

infiltrado inflamatório constituído por: eosinófilos, linfócitos, plasmócitos, macrófagos

e por vezes, células gigantes do tipo corpo estranho seguindo-se a fibrose.

Não existe ainda tratamento específico para esta parasitose e o método único para

diagnóstico é a ultra-sonografia, seguida de biopsia hepática, sendo muitas vezes

necessário utilizar a laparotomia ou laparoscopia devido aos ovos se concentrarem

em focos, podendo não ser alcançados pela biópsia de agulha. Contudo, GALVÃO

(1976) sugeriu a possibilidade de diagnóstico destes casos através de testes

imunológicos, após resultados positivos dos testes pela imunofluorescência, em

cortes em parafina de material de necrópsia humana que mostravam uma área de

necrose no fígado circundada por um halo de fibrose. Os cortes foram tratados com

soro de camundongos infectados pela C. hepatica.

SOUZA et al. (2006) observaram que na fibrose induzida pela C. hepatica ocorria

uma proeminente proliferação de vasos antes mesmo da formação dos septos

fibrosos. Os autores sugeriram que esses vasos neoformados precedendo o

depósito de colágeno, poderiam estar contribuindo para o desenvolvimento do

processo fibroso.

5.2.2-3. Modelo de indução de fibrose septal por Tetracloreto de Carbono (CCl

)

O modelo de fibrose induzida pelo Tetracloreto de Carbono (CCl

) é dos mais

estudados. Resulta de uma lesão química que induz fibrose e cirrose hepática,

representando um protótipo de lesão tóxica que é compartilhado por muitos

compostos químicos semelhantes (ROBBINS & CONTRAN, 1983). O CCl

responsável por causar necrose de hepatócitos nas áreas centro-lobulares levando

ao desenvolvimento da fibrose (ROSA et al, 1991; MARTINEZ-HERNANDES, 1985).

Foi inicialmente usado por Simpson (1849) como anestésico, mas logo foi

descartado devido à sua toxicidade. Hoje é largamente empregado na indústria

química como reagente e solvente (HALL, 1916).

Sabe-se que a hepatotoxicidade do tetracloreto de carbono se dá pela conversão do

mesmo para um metabólito altamente reativo e tóxico o radical triclorometil, o CCl

, o

qual é ativado por um sistema de oxidase de função mista - citocromo P-450, que

está presente no retículo endoplasmático liso dos hepátocitos e de outras células

(GOLBEY et al, 1994). O tetracloreto tem sido utilizado para induzir lesões agudas

em fígado de animais de laboratório, especialmente em espécies de roedores

(KANTA et al, 1992). Myren (1989) demonstrou que injeções subcutâneas de CCl

em camundongos são seguidas por uma extensa necrose centrolobular, com

diminuição da atividade enzimática oxidativa em 24 horas. Contudo apesar de ser o

modelo de hepatotoxidade mais estudado, não reproduz uma resposta necrogênica

em todas as espécies (PEREZ-TAMAYO et al, 1987).

Em ratos, as lesões hepatocelulares inicialmente se manifestam por alterações do

metabolismo lipídico, tornando-se evidentes dentro de 30 minutos após a

administração intragástrica de CCl

, levando a um desencadeamento de distúrbios

patológicos hepáticos como: alterações bioquímicas e estruturais do retículo

endoplasmático liso, atividade reduzida das enzimas dos microssomas e síntese

diminuída das proteínas hepáticas, as quais tornam-se evidentes nas primeiras

horas de intoxicação. No intervalo de 2 a 4 horas ocorre o aumento de cálcio nas

mitocôndrias, alterações eletrolíticas, aumento do volume dos hepatócitos e uma

seqüência de distúrbios como: depleção do glicogênio hepático, ruptura dos

lisossomos e perda de enzimas intracelulares. Com 24 horas, as lesões mais

extensas são evidenciadas e caracterizadas por lesão mitocondrial e intensa

necrose centrolobular (SHI et al, 1998).

PROCTOR & CHATAMARA (1983) utilizaram o CCl

para criarem um dos métodos

mais interessantes, simples e bem padronizado de produção controlada de cirrose

em ratos. Administrando o CCl

por via digestiva e ajustando a dose de acordo com

o peso do animal, esses investigadores conseguiram induzir cirrose micronodular até

a fase descompensada com uma baixa taxa de mortalidade. Posteriormente ROSA

et al. (1991) estabeleceram os níveis críticos de variação de peso, acima ou abaixo

do qual as dose de CCl

seriam modificadas.

Segundo MCGREE & PATRICK (1972) com uma única dose de CCl

a taxa de

síntese de componentes do tecido conjuntivo pode aumentar de 4 a 8 vezes

demonstrando que se trata de um bom modelo para a identificação das células

sinusoidais que possuem atividade fibrogênica.

Recentemente, tem sido demonstrado que as células estreladas hepáticas (CEHs)

podem expressar VEGF e receptores para VEGF no fígado após intoxicação com

CCl

in vitro (ISHIKAWA et al, 1999; ANKOMA-SEY et al, 2000).

A cirrose hepática é caracterizada pela coexistência de necrose, regeneração

nodular e septos fibróticos, que levam à insuficiência hepática progressiva e

irreversível. A despeito das extensas investigações funcionais e morfológicas, os

mecanismos responsáveis pela falha progressiva do fígado cirrótico são ainda

debatidos (MACSWEEN et al, 1987; SCHIFF & SCHIFF, 1993). Alguns autores

acreditam que a insuficiência hepática na cirrose é causada pelo desarranjo da

estrutura hepática (VAUBOURDOLLE et al, 1989; MARTINEZ-HERNANDEZ &

MARTINEZ, 1991). Sendo assim, o papel principal pode ser atribuído às alterações

patológicas da microvasculatura. SCHAFFNER & POPPER (1963), descreveram a

presença de uma membrana basal nos sinusóides do fígado cirrótico, sendo esse

fenômeno conhecido como capilarização dos sinusóides hepáticos.

Subseqüentemente outros trabalhos sugeriram que a modificação dos sinusóides

pode contribuir para impedir a troca de nutrientes entre os hepatócitos e o sangue

que perfunde o fígado (MARTINEZ-HERNANDEZ, 1984 e 1985).

Estudo realizado em nosso Laboratório permitiu verificar que durante todo o

processo de instalação da fibrose hepática e evolução da mesma para cirrose

causada pela administração intragástrica de CCl

em ratos, ocorre uma grande

produção de vasos que tendem a circunscrever os nódulos fibróticos recém

formados. Quando realizadas técnicas de imunofluorescência indireta em secções

hepáticas representativas das fases iniciais da intoxicação, conseguiu demonstrar a

expressão de laminina e colágeno IV nos septos nodulares. Após a suspensão do

tratamento, quando ocorre clara redução do teor de colágeno, comprovada

microscópica e bioquimicamente, ainda se conseguiu demonstrar a expressão de

vasos nos septos o que atesta que, pelo menos parte das alterações

microvasculares, permanece inalterada após a regressão parcial da fibrose.

5.2.2- 4. Modelo de indução de fibrose pela ligadura do Colédoco

O modelo de fibrose hepática induzida por ligadura do ducto biliar representa um

modelo experimental da cirrose biliar humana (GRESSNER, 1991; BURT, 1993;

FRIEDMAN, 1993). A obstrução biliar extra-hepática por ligadura e secção do

colédoco em ratos é o modelo favorito para observação da colestase extra-hepática.

O colédoco, também conhecido por ducto biliar extra-hepático, recebe a bile

secretada no fígado e canaliza para o duodeno. A ligadura desse canal leva ao

aparecimento da colestase, ou seja, estase biliar por diminuição ou ausência de

fluxo pelas vias biliares, levando aos sintomas característicos como a icterícia e

algumas alterações patológicas (ORELLANA et al, 1999).

VIRCHOW (1857) relatou pela primeira vez uma possível relação entre lesão do

ducto biliar principal e cirrose no fígado, o que foi comprovado mais tarde com os

trabalhos de LEGG (1873) e OGATA (1913).

CARLSON et al, (1977) demonstraram que a ligadura do ducto biliar resultava no

aumento imediato da pressão intraductular seguida de um aumento significativo da

velocidade de síntese de colágeno e da ativação da prolil hidroxilase. Após 2

semanas, período quando os níveis dessa enzima estavam bastante elevados, a

resposta fibro-proliferativa então se acentuava.

As alterações histológicas mais comuns observadas em muitos animais após a

obstrução biliar é a dilatação do ducto biliar, proliferação ductular, necrose de células

hepáticas, severa inflamação e fibrose portal e lobular (POPPER, 1977; KOEPPEL

et a, 1997; ORELLANA et al, 1999).

Variado grau de fibrose hepática é observada na obstrução biliar extra-hepática,

mais precisamente em áreas portais, em torno de hepatócitos e de ductus biliares

proliferados (DESMET, 1995).

A necrose celular hepática tem sido indicada como uma das mais freqüentes

alterações na obstrução ductular, iniciando poucas horas após o processo.

Acreditava-se que a necrose ocorria devido à ação tóxica da bile. Atualmente sabe-

se que se dá em decorrência da ação tóxica de substâncias derivadas da estase

biliar; mecânica e da elevação da pressão no sistema biliar.

Segundo KOEPPEL et al. (1997) o déficit na perfusão microvascular e aumento da

infiltração leucocitária observadas 3 a 7 dias pós-ligadura do colédoco, poderia

representar uma fonte em potencial de lesão hepática durante a obstrução biliar. Os

neutrófilos antes de migrarem para os tecidos aderem às células endoteliais dos

sinusoides podendo contribuir para lesões teciduais pela liberação de citocinas

inflamatórias e radicais tóxicos de oxigênio e promover lesões de células endoteliais

contribuindo para os distúrbios microcirculatórios nos sinusóides hepáticos.

Apesar da atenção que tem sido dada às células estreladas hepáticas, como as

principais produtoras das proteínas de matriz extracelular, no modelo de ligadura de

ducto biliar, outras células mesenquimais podem estar envolvidas nos estágios

recentes de desenvolvimento da fibrose. Os fibroblastos intersticiais, incluindo as

chamadas células da segunda camada encontradas nas proximidades imediatas das

paredes das veias centrais e da cápsula do fígado, e fibroblastos do trato portal, têm

sido identificados como potencialmente fibrogênicos como demonstrado em estudos

de fibrose hepática induzida em animais por ligadura do ducto biliar (ABDEL-AZIZ et

al, 1991; BHUNCHET & WAKE, 1992; MIYAZAKI et al., 1993). Os achados de

TUCHWEBER et al. (1996) indicam que nas fases recentes da ligadura do ducto

biliar existe uma marcante proliferação das células epiteliais, associadas com a

proliferação dos fibroblastos periductulares portais que rapidamente expressam alfa

actina de músculo liso (α-SM). Acrescenta-se ainda, que esta população fibroblástica

pode ter um papel dominante no início da fibrose portal após a ligadura.

5.2.2- 5. Modelo de Indução da fibrose pela infecção por S. mansoni

A fibrose periportal hepática representa uma característica das lesões patológicas na

forma hepato-esplenica na esquistossomose humana e consiste na fibrose portal

ampliando e inter-conectando os espaços porta. Ela foi inicialmente descrita por

SYMMERS (1904) que a denominou de fibrose pipestem, por uma comparação que

ele fez com um fígado que tivesse sido atravessado por inúmeros cabos de

cachimbos de porcelana e depois fosse examinado na sua superfície de secção

(clay-pipe stem cirrhosis).

Na fibrose pipestem, apesar do fígado apresentar inflamação portal, granulomas

periovulares, obstrução vascular devido à deposição maciça de ovos e expansão do

espaço porta pela fibrose com total ou parcial destruição dos ramos da veia portal, o

parênquima hepático mostra uma arquitetura normal (BOGLIOLO, 1957). A estrutura

do ducto biliar e os ramos da arteria hepática também se mantêm preservados.

Alguns modelos têm sido usados para reprodução dessa patologia. O modelo

experimental utilizando babuínos tem demonstrado sucesso devido à semelhança

anatômica, genética e imunológica à doença humana. Contudo os custos com a

aquisição e manutenção desses animais tornam o modelo inviável (NYINDO &

FARAH, 1999). Um outro modelo usando chimpanzés infectados com S. mansoni

também tem sido utilizado para reproduzir experimentalmente a fibrose, entretanto

esta não ocorre por hipertensão portal como em humanos (SADUN et al, 1970).

Granulomas periovulares e a fibrose periportal que se formam no fígado de

camundongos infectados pelo S. mansoni têm se constituído em um modelo

importante para o estudo da patogenia da fibrose e da sua degradação. Os ovos

chegam continuamente ao fígado e, desta maneira, lesões em diferentes etapas de

evolução podem ser estudadas.

Camundongos infectados com S. mansoni desenvolvem fibrose portal devido ao

acúmulo de ovos na área periportal, semelhante à fibrose pipestem observada em

pacientes humanos (ANDRADE & CHEEVER, 1993; ANDRADE, 1987).

A maciça infecção em camundongos produz uma hipertensão portal, relacionada ao

número e tamanho dos granulomas, os quais provavelmente não são relevantes

para o mecanismo de hipertensão portal em humanos (CHEVEER, 1969). Contudo

camundongos também partilham das lesões obstrutivas venosas portais

aparentemente responsáveis pela hipertensão portal em humanos.

Este modelo foi descrito inicialmente por WARREN (1966) e confirmado mais tarde

por ANDRADE (1987). Atualmente tem sido um dos modelos mais utilizados para o

estudo experimental da fibrose hepática não só por reproduzir em vários aspectos a

doença humana, mas também por apresentar um baixo custo, uma vez que os

reagentes para camundongos encontram-se mais disponíveis no mercado e a

facilidade de manipulação dispensa maiores cuidados. O modelo tem similaridades e

diferenças com a fibrose pipestem humana. Contudo, pelo desenvolvimento da

fibrose e distribuição preferencial dos ovos no espaço periportal, o modelo reproduz

os principais aspectos desse tipo de fibrose (ANDRADE et al, 1998).

Para se obter uma fibrose sistematizada em camundongos infectados com S.

mansoni é fundamental que a infecção seja leve e acompanhada por mais de 16

semanas, que é o período de estabelecimento da fibrose, período crônico da

doença. Infecções pesadas (150 cercárias), geralmente não reproduzem o modelo,

podendo levar a ocorrência de uma distorção da vascularização portal até a morte

do hospedeiro antes da fibrose poder se desenvolver (ANDRADE & CHEEVER,

1993).

ANDRADE & WARREN (1964), observando a evolução do granuloma hepático em

torno dos ovos maduros de S. mansoni no modelo murino, verificaram que a

intensidade da resposta inflamatória vai reduzindo com o progresso da infecção. Os

ovos que são depositados mais tarde sofrem uma reação menos intensa, os

granulomas são mais delimitados, com muitos macrófagos e proliferação

fibroblástica e ocorre a diminuição do número de eosinófilos, caracterizando o

processo imunomodulatório.

Acredita–se que as lesões hepáticas graves na esquistossomose não dependem só

dos ovos, mas de uma série de fatores, culminando em alterações vasculares,

proliferação de miofibroblastos e a produção de quantidades excessivas de matriz

extracelular (GRIMAUD & BOROJEVIC, 1977; 1986).

Segundo AL ADMANI (1985), na fase inicial da infecção, os granulomas

esquistossomóticos humanos contém principalmente fibronectina. Na fase

intermediária além da fibronectina encontra-se também o colágeno tipo III. Na fase

crônica o colágeno tipo I predomina. Técnicas imuno-histoquímicas demonstraram

que na matriz do granuloma hepático esquistossomótico murino, em estágios

recentes da infecção encontra-se grande quantidade de colágeno tipo III e pouco

tipo I. A laminina e o colágeno tipo IV são encontrados somente em vasos

neoformados na periferia do granuloma (WU et al, 1982).

Como a fibronectina é encontrada abundantemente durante o estágio mais ativo do

granuloma, sugeriu-se que a mesma poderia servir como marcador para o estágio

do granuloma (AL ADMANI, 1985).

O tecido elástico é achado em abundância em lesões fibróticas hepáticas

associadas apenas com a esquistossomose hépato-esplênica em humanos.

Observa-se uma hiperplasia elástica formando uma matriz compacta no espaço

porta alargado e ao longo dos finos e longos septos radiados do espaço porta.

Contudo, em camundongos, as fibras elásticas estão praticamente ausentes da

periferia do granuloma periovular e da fibrose portal (ANDRADE & GRIMAUD, 1986;

ANDRADE & FREITAS, 1991), sendo observada apenas dentro do granuloma,

provavelmente oriunda da parede de vasos destruídos.

ANDRADE & BRITO (1981), usando moldes plásticos da veia portal mostraram

numerosos vasos colaterais brotando dos ramos da veia porta intra-hepática dos

camundongos cronicamente infectados com S. mansoni, o que explicaria a curiosa

distribuição dos ovos ao longo dos espaços periportais. Esta mudança vascular

permite que os ovos sejam distribuídos ao longo do tecido periportal por pequenos

vasos (Andrade, 1987).

LOEFFLER et al. (2002) demonstraram em seus estudos in vitro, que antígeno

solúvel de ovos de S. mansoni tem a capacidade de indução da expressão do fator

de crescimento endotelial (VEGF) em células endoteliais humanas, sugerindo que

esta proteína pode ter um importante papel na indução da angiogênese no

granuloma esquistossomótico. Outros fatores têm sido citados na angiogênese do

granuloma como as alterações nas condições do microambiente como a hipóxia, o

pH acido, e baixa concentração de glicose que podem induzir a neovascularização,

em parte também pelo aumento de VEGF.

SILVA et al. (2006) demonstraram através de moldes plásticos do sistema de veias

portais de camundongos Swiss webster e BALB-c infectados com S. mansoni, que

camundongos com fibrose periportal apresentam marcantes mudanças vasculares

não observadas em camundongos com apenas lesões granulomatosas isoladas,

sugerindo que a interação entre os ovos e as mudanças vasculares portais são

fatores importantes para o desenvolvimento da fibrose pipestem. A fibrose periportal

é acompanhada por um processo de neovascularização evidente, demonstrado

através de marcações imunohistoquímicas contra colágeno tipo IV e laminina,

marcadores de membrana basal vascular. Brotamento de vasos colaterais do

principal ramo portal, amputação da ramificação periférica e distorções dos ramos

médios e pequenos foram observados. Essa proliferação vascular tem sido

interpretada como uma possível resposta do organismo a hipóxia causada pela

obstrução dos vasos portais pelos ovos de S. mansoni, na tentativa de manter o

equilíbrio da microcirculação hepática.

6- MATERIAIS E MÉTODOS

6.1- Animais

Foram utilizados camundongos da linhagem Swiss Webster para o modelo de

indução de fibrose por infecção com S. mansoni e ratos da linhagem Wistar

(Mammalia Rodentia, Muridae, Rattus Norvegicus Albinus) para compor os outros

quatro grupos experimentais. Os animais foram mantidos no Biotério do Centro de

Pesquisa Gonçalo Moniz/FIOCRUZ sob dieta e água padrão ad libitum e tratados de

acordo com as normas da Comissão de Ética no Uso de Animais (CEUA-FIOCRUZ).

6.2- Grupos Experimentais

Foram organizados os grupos experimentais de acordo com os métodos propostos

nos objetivos para estudo de diferentes modelos de fibrogênese e papel da

angiogênese.

6.2.1-Grupo Experimental com Esquistossomose murina

Vinte camundongos

foram infectados com 50 cercárias do S. mansoni por via transcutânea. Após 35 dias

de infecção, e a confirmação pelo exame de fezes da positividade dos animais para

a infecção, procedeu-se a eutanásia de dois animais experimentais e um controle, a

cada cinco dias.

6.2.2- Grupo Experimental com Capillaria hepatica

Dez ratos Wistar, de ambos os

sexos, pesando entre 150-200g foram infectados por via gástrica por meio de

entubação com agulha de ponta romba com 800 ovos embrionados de C. hepatica.

Dois animais experimentais e um controle foram submetidos à eutanásia com 20, 30,

40 e 50 dias após infecção.

6.2.3- Grupo Experimental com Soro de Porco

Dez ratos Wistar adultos, de

ambos os sexos, com peso variando entre 200-250g receberam duas injeções

intraperitoneais de soro de porco (1ml) semanais, até perfazerem 32 injeções (16

semanas). O animal controle foi injetado com 1 ml de salina. No dia seguinte após a

última dose do soro procedeu-se a eutanásia.

6.2.4- Grupo Experimental com CCl

Dez ratos Wistar machos pesando entre 150-

200g foram submetidos à administração gástrica de 0,5ml da solução de CCl

a 8 %

em óleo mineral, por meio de entubação com agulha de ponta romba, duas vezes

por semana. Após completarem 12 semanas de tratamento foram submetidos à

eutanásia.

6.2.5- Grupo Experimental com ligadura do colédoco

Dez ratos Wistar, de ambos

os sexos, pesando entre 250-300g foram submetidos à ligadura do colédoco. Uma

laparatomia com uma incisão longitudinal da pele na linha mediana, desde o

apêndice xifóide até a cicatriz umbilical, expôs os órgãos abdominais. O duodeno foi

retraído permitindo a identificação do ducto biliar. Após a identificação do ducto duas

ligaduras foram realizadas e uma ressecção da porção comum entre as duas

ligaduras foi feita para a interrupção total do fluxo. Após 4, 7, 14, 30 e 40 dias da

ligadura dois animais foram submetidos a eutanásia em cada ponto.

6.3- Anestesia

Como anestésico foi usado uma mistura de ketamina (2,5ml), xilasina (0,5ml) e

salina (1ml) administrada 0,2 ml/100g de peso.

6.4-Eutanásia

Para a eutanásia foram usadas doses letais da mistura do anestésico descrito

acima. Após a eutanásia foram removidos fragmentos de fígado para

criopreservação e preservação em formol para realização de técnicas histológicas e

de imuno-histoquímica.

6.5-Histopatologia

Fragmentos de fígado fixados em formol Millonig (pH 7.4), foram incluídos em

parafina e cortados em micrótomo. Secções de 5µm de espessura foram coradas

pelos métodos de Hematoxilina-Eosina, picrosírius vermelho para fibras colágenas

contrastado com verde luz e orceína para fibras elásticas. As secções foram

examinadas em microscópio óptico.

5.6-Imuno-histoquímica

5.6.1-Imuno-fluorescência

Fragmentos de tecido hepático foram imediatamente criopreservados em nitrogênio

líquido e estocados em freezer a -70

C. Posteriormente foram realizadas secções de

aproximadamente 5 micra de espessura em um criostato a -20

C. As secções

obtidas foram posteriormente fixadas em acetona gelada por cinco minutos e

acondicionadas em freezer; em seguida hidratadas com PBS (pH7,4) por cinco

minutos. O bloqueio das reações inespecíficas foi realizado com leite em pó Molico,

diluído a 10% em PBS pH 7,4, sendo realizada posteriormente a marcação com os

seguintes anticorpos primários: Colágeno tipo IV (1:20), fibronectina (1:25) e

laminina (1:100) a 37°C por 30’ em câmara úmida. Os anticorpos para colágeno IV

(Ref. 20451, Lot. 240), laminina (Ref. 24851, Lot. 188) e fibronectina (Ref.24911, lot.

194) foram produzidos em coelho no Instituto Pasteur em Lyon (França) e cedido

pelo Dr. Jean Aléxis-Grimaud. Após a marcação com os anticorpos primários as

lâminas foram lavadas com PBS pH 7,4, e adicionado o anticorpo secundário anti

IgG de coelho (SIGMA,USA) conjugado com isocianato de fluoresceína, diluído em

PBS (1:20) e azul de Evans, sendo as lâminas acondicionadas em câmara úmida a

37°C por 30’. Os cortes marcados foram examinados em microscópio Zeiss,

Axioskop, com epiiluminação provida de lâmpada HBO de vapor de mercúrio

potência 50w, com filtro de barreira e excitador apropriados para fluorescência.

5.6.2- Imuno-peroxidase

Para a imuno-peroxidase foram usados fragmentos de fígado criopreservados, para

marcação do fator de Von Willebrand (fator VIII - Santa Cruz biotechnology, Sc-

14014) e VEGF (Santa Cruz biotechnology, Sc-152), e fixados em formol para a

marcação de alfa-actina de músculo liso (α-SM-Dako, Clone 1A4, Lot. M0851).

Para criopreservação os fragmentos de tecido hepático foram mergulhados em

Tissue-teck (OCT compound-Miles Inc. Diagnostic Division, Elkhart, USA),

imediatamente congelados em nitrogênio líquido e estocados em freezer a -70

C até

o momento do uso.

Foram obtidas secções de 5µm de espessura dos fragmentos de fígado

criopreservados e parafinados que foram montadas em lâminas tratadas com Poly-L-

Lisine a 10% (SIGMA ST.Louis, Mo. USA).

As secções obtidas dos fragmentos de fígado criopreservados foram fixadas em

acetona por 5 minutos e conservadas no freezer a -20°C. No dia seguinte, foram

retiradas do freezer e deixadas à temperatura ambiente por 1 hora para estabilizar.

Após a hidratação com PBS por 5 minutos foi feito o bloqueio da peroxidase

endógena usando o bloqueador de peroxidase endógena (DAKO Envision Sistem) 2

vezes por 10 minutos. Os cortes foram lavados em água destilada e hidratados com

PBS/BSA 2 vezes de 5 minutos cada. Em seguida foi feita a inibição das ligações

inespecíficas usando leite desnatado a 10% em PBS, por 20 minutos, à temperatura

ambiente. As secções então foram incubadas em câmara úmida com o anticorpo

primário produzido em coelho, diluído com a solução do Kit DAKO (VEGF 1:100 e

Fator VIII 1:50) e deixadas na geladeira (4°C) overnight. No dia seguinte após

equilibrar a temperatura por 1 hora, as secções foram lavadas com PBS por 3 vezes

de 5 minutos cada e colocado o anticorpo secundário produzido em cabra, anti-

camundongo e anti-coelho conjugado à peroxidase (Kit DAKO Envision Sistem-

Labelled polymer). Após 30 minutos o material foi lavado com PBS por 3 vezes de 5

minutos e procedeu-se a revelação também feita com o Kit da DAKO. Os cortes

foram contra-corados com Hematoxilina.

Para a marcação de alfa-actina de músculo liso (α-SM) foi usado um anticorpo

monoclonal anti-alfa actina humano produzido em camundongos (Dako, Clone 1A4,

Lot. M0851) seguindo o mesmo protocolo anterior, contudo as lâminas antes

passaram pelo processo de desparafinização e a recuperação antigênica foi

realizada com tampão citrato pH 6,0 em banho – maria por trinta minutos.

7-RESULTADOS

7.1 Generalidades

A fibrose hepática foi reproduzida em todos os cinco modelos de indução propostos

nesse trabalho. O início do processo pôde ser observado com a histologia para

picrosírius-vermelho, específica para fibras colágenas, as quais se mostram coradas

em vermelho em contraste com o parênquima em verde (PRANCHA 2-A).

As imunomarcações para os elementos da membrana basal vascular, colágeno IV e

laminina, revelaram marcante angiogênese, aparentemente precedendo o processo

de depósito do colágeno em todos os modelos estudados, portanto

independentemente do agente etiológico. Nos modelos de indução de fibrose com

os parasitos S. mansoni e C. hepatica, a angiogênese se mostrou ainda mais

proeminente, sendo observada até mesmo com a coloração de rotina, como a H&E.

Em todos os modelos estudados, até mesmo naqueles onde as alterações hepáticas

são mais características de áreas centrolobulares, como no modelo do CCl

, pode-

se observar a ocorrência da fibrose nos espaços-porta.

7.2 Modelos

7.2.1 Grupo Experimental com Esquistossomose murina

Como os camundongos só passaram a liberar os ovos do parasito nas fezes após 35

dias de infecção, os sacrifícios foram realizados após esse período, dois animais a

cada cinco dias. Todos os vinte camundongos infectados desenvolveram fibrose

hepática. Os dois primeiros animais, sacrificados com aproximadamente cinco

semanas de infecção, já apresentavam uma grande quantidade de reações

granulomatosas ao redor de ovos íntegros ou em degradação. Nesse período, como

os granulomas se desenvolviam em pequenos espaços-porta, dava a impressão de

estarem distribuídos isoladamente no interior do parênquima. A expansão dos

espaços-porta, em conseqüência da concentração dos granulomas periovulares, foi

observada nas secções do fígado dos animais sacrificados mais tardiamente,

caracterizando a fibrose de tipo “pipestem”. Tanto a fibrose focal granulomatosa,

quanto à fibrose periportal característica da esquistossomose humana avançada

foram observadas com a coloração de H&E (PRANCHA 1-A) e com o picrosírius-

vermelho para fibras colágenas.

O grande depósito de colágeno alargando o espaço periportal na fase mais

avançada também foi marcante quando usado o anti-colágeno IV. Asreações de

imuno-fluorescências para o colágeno IV e para laminina (elementos da membrana

basal vascular) demonstraram bem a proliferação vascular nos espaços porta e nos

granulomas periovulares isolados (PRANCHA 1-B).

Os granulomas mais recentes, identificados pela presença de ovos íntegros no seu

interior, apresentaram uma maior quantidade de células inflamatórias

mononucleares e alguns polimorfonucleares eosinófilos, os quais formavam um

grande halo ao seu redor, sendo que os vasos se mostravam distribuídos de

maneira mais uniforme (PRANCHA 1-C). À medida que os granulomas iam se

tornando mais fibrosos, maduros, a população celular aparecia mais reduzida e os

vasos passavam a se concentrar mais na periferia.

A disposição dos vasos nos granulomas foi demonstrada também com a marcação

para fator de crescimento do endotélio vascular (VEGF) (PRANCHA 1-D) e fator VIII

de células endoteliais (PRANCHA 1-E), que acompanhou a cinética descrita acima,

confirmando a rica vascularização dos espaços porta e dos granulomas periovulares

esquistossomóticos.

Muitas células actina-positivas foram identificadas ocupando os espaços porta e o

derredor dos granulomas.

A marcação para fibras elásticas pela coloração por orceína demonstrou apenas os

vasos centrais e espaços-porta, semelhantemente ao grupo controle.

A presença de fibronectina foi observada no interstício das lesões em correlação

com o grau de inflamação presente, mas sem outras características especiais

(PRANCHA 1-F).

7.2.2 Grupo Experimental com Capillaria hepatica

Comparando com os outros modelos estudados, a Capilaríase em ratos foi o modelo

mais constante e regular de indução de fibrose, onde 100% dos animais infectados

desenvolveram a fibrose hepática uniformemente.

Os animais sacrificados após o 20° dias de infecção apresentaram lesões focais

representadas por uma intensa reação inflamatória granulomatosa com

predominância de células mononucleares, rodeando vermes e ovos imaturos e

isolando esse material do resto do parênquima, o qual aparentemente manteve a

estrutura normal. A formação dos septos fibrosos, também iniciando a partir dos

espaços porta foi observada mesmo na coloração por H&E, septos estes que não

mostravam sinais de continuidade imediata com as lesões focais diretamente

causadas pelos parasitos.

A presença e disposição das fibras colágenas nas lesões focais e na formação dos

septos nos espaços portais foram observadas nas lâminas coradas com o

picrosírius-vermelho (PRANCHA 2-A).

A proliferação vascular, nos espaços-porta e nos septos, foi revelada pelas

marcações da membrana basal vascular para colágeno IV e com laminina

(PRANCHA 2-B e C). Seguindo o mesmo padrão de distribuição, as

imunomarcações para Fator VIII e VEGF, revelaram a presença de células reativas

no espaço porta e dentro dos septos fibrosos ainda em formação (PRANCHA 2-E e

F). A fibronectina de matriz extracelular foi bem evidenciada nos septos e na

periferia das reações inflamatórias parasitárias focais.

No fígado dos animais sacrificados após 30 dias de infecção os septos fibrosos se

estendiam por todo o parênquima, ligando espaços porta a espaços porta e

eventualmente, às veias centrais, dando um aspecto trabecular ao fígado. As lesões

focais apresentaram-se com uma cápsula fibrosa mais espessa, em torno de restos

de vermes, vermes íntegros, e ovos. O parênquima manteve a arquitetura normal.

Nos espaços porta se observava um discreto infiltrado inflamatório. Os vasos

apareciam em toda a extensão do septo fibroso. Células α-actina-positivas foram

observadas ao longo dos septos e rodeando as lesões inflamatórias focais

(PRANCHA 2-D). As células positivas para fator VIII e VEGF apareciam formando

um halo ao redor dos nódulos fibrosos.

Aos 40 e 50 dias pós-infecção o quadro histológico não diferia muito do que foi

observado aos 30 dias. Alguns vermes exibiam necrose de coagulação já com início

de calcificação.

A orceína marcou apenas fibras elásticas dos vasos portais e veia central.

7.2.3 Grupo Experimental com Soro de Porco

Dos ratos inoculados com o soro de porco, apenas 40% dos animais desenvolveram

uma fibrose septal fina e disseminada. A coloração do picrosírius-vermelho

demonstrou o depósito de colágeno, iniciando a formação dos septos fibrosos a

partir do espaço porta (PRANCHA 3-A).

A fibrose se mostrou como septos finos e longos partindo do espaço porta e se

irradiando por todo o parênquima. Os septos conectavam os espaços porta e

raramente as veias centrais formando uma teia que delimitava por vezes porções

nodulares do parênquima, simulando um fígado cirrótico. Não se observou necrose

celular precedendo a fibrose, e os espaços-portais mostraram um leve infiltrado

inflamatório crônico.

As imunomarcações para colágeno IV (PRANCHA 3-B) e laminina (PRANCHA 3-C)

demonstraram a proliferação vascular iniciando-se no espaço porta e a aparente

migração desses vasos formando os septos. Células actina-positivas foram

marcadas especificamente ao redor dos vasos (PRANCHA 3-D).

Células positivas para Fator VIII e VEGF delimitaram bem os septos fibrosos

confirmando a forte vascularização dos septos (PRANCHA 3-E e F).

7.2.4 Grupo Experimental com CCl

Apesar da taxa de mortalidade de aproximadamente 15%, o modelo utilizado

correspondeu às expectativas na indução da fibrose hepática. Apesar de todos os

animais terem sido sacrificados após 12 semanas de inoculação, o modelo permitiu

avaliar a fibrose em vários estágios de desenvolvimento uma vez que, a

reprodutibilidade da fibrose não ocorre de maneira uniforme entre os animais. O

fígado dos animais tratados apresentou desde fibrose em estágio inicial até cirrose

dentro do período do experimento.

No momento do sacrifício, todos os animais apresentaram o fígado com aspecto

macroscópico enrijecido e rugoso. No estudo histopatológico as marcações para

picrosírius-vermelho revelaram grau variado de fibrose entre eles. Nas secções dos

fígados dos animais em estágio inicial da fibrose foram observados discreto infiltrado

inflamatório e início da formação de septos finos partindo tanto de regiões

centrolobulares, quanto do espaço porta. Também uma intensa esteatose nos

hepatócitos foi observada (PRANCHA 4-A). Nos casos considerados intermediários,

os septos finos já tomavam grande parte do parênquima ligando espaços porta e

veias centrais; e nos casos mais avançados, onde já se observavam septos mais

espessos circulando nódulos bem definidos no parênquima, os espaços porta se

mostraram bem dilatados devido ao depósito da matriz extracelular. Algumas vezes

a fibrose portal se iniciava antes mesmo de haver indícios de fibrose nas regiões

centrolobulares.

Nos casos considerados iniciais e intermediários, a coloração para orceína marcou a

periferia dos vasos portais e centrais. Nos casos mais avançados, onde a cirrose já

estava estabelecida, se observou a marcação positiva dos vasos rodeando os

nódulos cirróticos.

A proliferação de vasos nos espaços porta, observada no início da formação dos

septos fibrosos, foi evidenciada nas secções marcadas para laminina e para

colágeno IV (PRANCHA 4-B e C). Células positivas para anti-fator VIII e VEGF foram

observadas nos septos oriundos dos espaços-porta e vasos centrais e mais tarde,

também ao redor dos nódulos cirróticos (PRANCHA 4-D e E).

Células actina-positivas foram observadas na periferia do espaço porta, veias

centrais, e nos septos fibrosos que pareciam migrar tanto da veia central quanto dos

espaços porta (PRANCHA 4-F).

7.2.5- Grupo Experimental com ligadura do colédoco

Os animais submetidos à ligadura do ducto biliar, sacrificados 4 dias pós-obstrução,

ainda não mostravam alterações macroscópicas acentuadas, apenas uma leve

dilatação do coto proximal do ducto e fígado com aspecto granular. Após o sétimo

dia a icterícia era notada através das orelhas, patas e urina amarelada dos animais.

O coto proximal do ducto biliar apresentava-se bastante dilatado e o fígado

levemente aumentado.

No trigésimo e quadragésimo dias, o côto proximal já se mostrava altamente dilatado

em todos os animais, com uma dimensão média de 6,5cm. Todos os animais

apresentavam um quadro de icterícia e hépato-esplenomegalia. O fígado aumentado

mostrava-se com aspecto superficial rugoso.

Os estudos histopatológicos demonstraram que, após os quatro dias da ligadura do

ducto biliar, já ocorria moderada reação ductular nos espaços-porta. Com as

secções coradas com H&E já se observava a proliferação de células ductulares nos

espaços-porta acompanhada de um infiltrado inflamatório de polimorfosnucleares

rodeando os ductos (PRANCHA 5-A). Células actina-positivas também foram

observadas na periferia do espaço porta (PRANCHA 5-B) As marcações para

laminina e colágeno IV de membrana basal se mostraram positiva, tanto revelando a

presença desses elementos nos ductos biliares, como nos vasos proliferados nos

espaços porta (PRANCHA 5-C). Nesse mesmo período a marcação positiva intensa

já ocorria para VEGF na periferia dos espaços-porta.

Após sete dias a proliferação de células ductulares foi acentuada e se estendia de

um a outro espaço-porta vizinho (PRANCHA 5-D). Nesse período as marcações

para VEGF e fator VIII foram positivas e bem delimitadas nos espaços porta,

revelando a proliferação vascular acompanhando a ductular (PRANCHA 5-E e F).

Aos 14 dias, o fígado mostrou os espaços-porta bem mais alargados devido à

intensa proliferação ductular. Também ocorreu maior infiltrado inflamatório de

polimorfonucleares e linfócitos. Após os 30 dias uma extensa fibrose, com septos

conjuntivos contendo os ductos e vasos proliferados, conectava os espaços-porta

entre si.

Aos 40 dias pós-ligadura o fígado apresentava a arquitetura lobular hepática

altamente alterada, os espaços porta alargados, e uma intensa proliferação de

ductos por todo o parênquima chegando a isolar áreas de hepatócitos.

PRANCHA 1

Schistosoma mansoni

Fig. A – Fígado com estrutura do parênquima conservada, mostrando alguns

granulomas periovulares esparsos (a) e ampliação fibrosa dos espaços porta

(b), onde aparecem granulomas confluentes. H & E, 40X.

Fig. B – Espaço porta mostrando fibrose evidente e numerosos vasos

sanguíneos, característico da forma avançada da esquistossomose (fibrose de

tipo pipestem). Imuno-fluorescência indireta para laminina. 100X

Fig. C – Vasos sanguíneos distribuídos nos granulomas revelados pela

marcação da membrana basal vascular pela imuno-fluorescência indireta para

colágeno IV. 200X.

Fig. D – A proliferação dos pequenos vasos sanguíneos, distribuídos de

maneira difusa, bem evidenciada nesta secção de um granuloma periovular

recente, marcado histoquimicamente para VEGE. 400X.

Fig. E – Granuloma periovular mais antigo, com proliferação vascular mais

evidente na sua periferia. Imuno-histoquímica para anti-Fator VIII. 200X.

Fig. F – Intensa marcação para fibronectina na matriz extracelular do espaço

porta e do granuloma esquistosomótico. 100X.

Schistosoma mansoni

PRANCHA 2

Capillaria hepatica

Fig. A – Aspecto característico da fibrose septal induzida pela infecção por C.

hepática no rato após 20 dias de infecção. Finos septos fibrosos aparecem

ligando os espaços porta. Picrosírius vermelho, 40X

Fig. B – Presença de numerosos vasos no espaço porta no início do processo

fibroso. Imunofluorescência indireta para colágeno IV. 200X.

Fig. C – A marcação da membrana basal vascular revela bem evidente a

presença de numerosos vasos desde os espaços porta até os finos septos

fibrosos daí irradiados. Imunofluorescência indireta para laminina. 100X

Fig. D – Células actina-positivas nos espaços porta aparecem no seio dos

finos septos fibrosos. Anti-α

αα

α-actina, 100X

Fig. E – Presença de células positivas para Fator VIII nos espaços porta e nos

septos ainda no início de sua formação. 400X.

Fig. F – Marcação positiva para VEGF nos espaços porta, o que aparece

também ao longo dos septos fibrosos. 400X.

Capillaria hepatica

PRANCHA 3

Soro de Porco

Fig. A – Secção de fígado de animais inoculados com soro de porco

demonstrando a deposição de colágeno na formação dos finos septos fibrosos

que conectam os espaços porta entre si. Picrosírius-vermelho. 100X.

Fig. B – Evidencia dos vasos nos espaços porta marcados pelo anti-colágeno

IV ainda no início da formação dos septos. 100X.

Fig. C – Proliferação dos vasos nos espaços porta e na direção dos septos,

numa fase bem inicial da formação dos mesmos. Imunofluorescência para

Laminina. 200X.

Fig. D – Imunohistoquímica para α-actina marcando especificamente a parede

muscular do vaso porta principal. Anti-α

αα

α-actina. 100X.

Fig. E – Presença de células que expressam reatividade para Fator VIII dentro

dos septos fibrosos. 100X.

Fig. F – Marcação positiva para VEGF também delimitando bem os septos

fibrosos. Anti-VEGF. 100X.

Laminina

Soro de Porco

PRANCHA 4

CCl

Fig. A – Secção de fígado de animais inoculados com CCl

apresentando

processo inflamatório, esteatose e fibrose. Coloração em H&E. 200X.

Fig. B – Presença de vasos nos septos fibrosos, bem evidenciado pela

marcação da sua membrana basal pela anti-laminina. Imunofluorescência

indireta. 200X.

Fig. C – As paredes vasculares aparecem bem evidentes tanto nos espaços

porta, como nos septos fibrosos. Imunofluorescência para colágeno IV. 200X.

Fig. D – Positividade para Fator VIII dentro dos septos fibrosos. 200X

Fig. E – A marcação para VEGF também evidencia a proliferação vascular ao

redor dos nódulos da cirrose. Anti-VEGF. 200X

Fig. F – Células α-actina positivas ao redor dos vasos hepáticos, evidenciando

parede muscular, e células migrando para os septos fibrosos (pericitos-

miofibroblastos?).

CCL

PRANCHA 5

Ligadura do Colédoco

Fig. A – Fígado de rato com ligadura do colédoco há 4 dias, exibindo sinais de

proliferação ductular em torno de um ducto mediano e um infiltrado de células

mononucleares. 200X.

Fig. B – Aspecto semelhante ao anterior mostrando que a maior parte das

células peri-ductais proliferadas são α-actina-positivas, que aparecem também

rodeando os vasos nos espaços periportais. 400X.

Fig. C – Início da proliferação ductular e vascular já demonstrando a presença

de fibras colágenas aos 4 dias pós-ligadura. Imunofluorescência para

colágeno IV. 200X

Fig. D – Proliferação ductular e vascular se irradiando para o interior do

parênquima aos7 dias após a ligadura do colédoco. Anti-laminina. 400X

Fig. E – Presença de reatividade para VEGE em torno de vasos e ductos

proliferados 7 dias após a ligadura do colédoco. Anti-VEGF. 200X

Fig. F – Presença de células positivas para fator VIII nos espaços periportais

aos 7 dias da ligadura do colédoco. 400X.

Ligadura do

Colédoco

Ligadura do colédoco

Colédoco

8 – DISCUSSÃO

8.1 - GENERALIDADES

Foi possível observar e documentar neste trabalho, através das marcações para os

componentes vasculares do endotélio (fator VIII); membrana basal (laminina,

fibronectina, colágeno tipo IV); parede vascular (actina, elastina) e fator pró-

angiogênico (VEGF) a participação da angiogênese no desenvolvimento da fibrose

nos cinco modelos experimentais propostos. Uma proeminente proliferação de vasos

no início da formação dos septos fibrosos em todos os modelos foi observada com a

marcação para laminina e colágeno IV de membrana basal vascular e confirmada

com as marcações para VEGF (fator de crescimento do endotélio vascular) e fator

VIII, que já se faziam presentes antes mesmo do aumento do colágeno. Estes

achados sugerem que a angiogênese, de fato, exerce um papel importante no

desencadeamento do processo fibroso como sugerido no estudo com o modelo da

Capillaria hepatica realizado por SOUZA et al. (2006).

A participação da angiogênese já está bem estabelecida no processo de

cicatrização. Atualmente um maior interesse tem sido dado à ocorrência destas

alterações em condições patológicas. Na cicatrização, após lesão tecidual uma

intensa proliferação de vasos ocorre, formando um tecido designado como tecido de

granulação devido ao aspecto granuloso de sua superfície. Há muitos anos esse

evento tem sido interpretado como um recurso da natureza para fornecer aporte de

oxigênio e nutrientes ao tecido cicatricial que está sendo formado. Após a

cicatrização, o excesso de vasos é reabsorvido, deixando o novo tecido mais firme,

esbranquiçado e compacto. Estudos recentes têm chamado a atenção para a

importância da angiogênese relacionada à fibrose e outras doenças hepáticas como

o câncer e a hepatite (CARMELIET & JAIN, 2002). Essa importante associação foi

observada neste estudo uma vez que, tanto nos modelos de indução por infecções

parasitárias (C. hepatica e S. mansoni), quanto nos modelos de indução por

substância tóxica (CCl

), soro de porco e ligadura do colédoco, a angiogênese

esteve presente. A intensa proliferação de vasos demonstrada no início do

desenvolvimento do processo fibroso pode realmente estar representando a

formação de um arcabouço para um posterior depósito de material conjuntivo como

sugerido por RAPAPPORT et al. (1983).

O aumento da expressão de VEGF demonstrada em associação com a intensa

proliferação vascular e principalmente nos locais de posterior depósito do colágeno,

precedendo o processo fibroso, ressalta a importância deste, como fator promotor da

angiogênese na fibrogênese hepática. O VEGF pode ser produzido por vários tipos

de células hepáticas inclusive pelas próprias células endoteliais. Segundo

BEAUSSIER et al (2005), a hipóxia é o maior estímulo para a expressão do VEGF

nesses diferentes tipos de células. Estudo in vitro demonstrou que a hipóxia pode

induzir a expressão de VEGF em hepatócitos e também a produção de VEGF,

receptores Flt-1 e colágeno I em células estreladas ativas (UENO et al, 2006).

A progressão da fibrose tem sido ligada às lesões associadas com a hipóxia e a

neovascularização. CORPECHOT et al. (2002), após estudo com modelo

experimental de indução de cirrose por dietilnitrosamina em ratos, também

sugeriram que a hipóxia pode estar envolvida na progressão das doenças hepáticas

crônicas através da participação tanto na angiogênese, quanto na fibrogênese,

tendo demonstrado que apenas a hipóxia era suficiente para aumentar a expressão

de VEGF e de colágeno I no fígado.

A estreita relação entre os dois processos é sugerida, dentre outros aspectos, devido

ao fato de que fatores de crescimento que são atuantes no desenvolvimento do

processo fibroso, também têm se revelado como potentes fatores pró-angiogênicos

(KALLURI & SUKHATME, 2000).

Muitas células positivas para α-actina migrando para formarem

os septos foram

observadas e marcadas no início do desenvolvimento do tecido fibroso.

Provavelmente se tratavam dos miofibroblastos, já descritos por outros autores como

células imuno-reativas para α-actina de músculo liso responsáveis pelo excesso de

depósito da matriz extracelular na fibrose. Eles são produzidos apenas após

ativação de células precursoras em resposta à lesão tecidual, não estando

presentes no fígado normal. Entretanto, a origem desses miofibroblastos ainda é um

enigma a ser determinado.

Muitos trabalhos têm sido realizados com a finalidade de identificar a origem celular

da síntese aumentada da matriz extracelular na fibrose hepática. O maior destaque

tem sido dado às células estreladas hepáticas. No início do ano de 1970, essas

células foram consideradas como as células de maior contribuição para o depósito

da matriz na fibrogênese hepática. Muitos artigos vinham enfatizando que a ativação

destas células era um evento fundamental para promover a fibrose. Foi demonstrado

que em condições patológicas de estresse e lesão tecidual as células estreladas

eram ativadas e adquiriam um fenótipo de miofibroblastos e essa ativação incluía

desde a síntese de colágeno fibrilar, atividade contrátil, secreção de fatores

vasoativos, quanto a secreção de metaloproteinase e seus inibidores (GRIKO et al,

1995).

Acreditava-se que as células estreladas juntamente com os macrófagos residentes

no fígado conhecidos como células de Kupffer formavam o eixo da resposta

fibrogênica. Contudo, as células estreladas são células hepáticas perisinusoidais

residentes nos espaços de Disse, localizado entre a lamina endotelial e os

hepatócitos, o que justificaria a sua participação na fibrose perisinusoidal.

Entretanto, estariam realmente estas células participando da fibrose que se

estabelece em outras áreas do fígado, como observada nos modelos de ligadura do

colédoco e CCl

onde a fibrose se inicia nos espaços porta e veias centrolobulares?

Segundo RAMADORI (1991), essas células possuem a capacidade de proliferação e

migração, que explicaria a sua atuação na resposta fibrogênica tanto na região

centrolobular, septal, quanto portal. Entretanto FONSECA et al. (2005) estudando a

participação dessas células na fibrogênese portal hepática na capilaríase,

demonstrou que, apesar da capacidade dessas células migrarem para essa região, a

sua presença não ocorreu de forma relevante durante o desenvolvimento do

processo. Este achado reforçou a idéia da possível participação de outros tipos

celulares na fibrose hepática.

Atualmente acredita-se que o fato das células estreladas armazenarem uma grande

quantidade de lipídios no seu citoplasma, possivelmente facilitou o seu isolamento

por gradiente de solução e conseqüentemente permitiu o seu estudo in vitro,

destacando a sua importância em detrimento de outras possíveis células

fibrogênicas (GUYOT et al, 2006; RAMADORI, 2004). De acordo com SANCHO-

BRU et al. (2005) o modelo de ativação de células estreladas em cultura não

reproduz exatamente o fenótipo ativado achado no fígado humano cirrótico,

sugerindo que estas células estreladas podem ter um papel importante na

fibrogênese, mas que o dogma de que são as únicas células responsáveis pelo

excesso da matriz nesse processo é algo a ser revisto (GUYOT et al, 2006).

Outras células atualmente têm sido implicadas no processo fibroso, como sendo

capazes de se diferenciarem em miofibroblastos e possuindo a capacidade de

síntese das proteínas do tecido conjuntivo (STATON, 2004). Dentre elas estão os

fibroblastos do trato portal, residente do tecido conjuntivo que rodeia os vasos e

ductos biliares; as células do músculo liso da parede dos vasos, os fibroblastos da

segunda camada da veia centrolobular; as células endoteliais e as células

perivasculares denominadas de pericitos, que atualmente têm despertado o

interesse de muitos pesquisadores pelo fato de se tratar de células mesenquimais

que atuam como células tronco, tendo a capacidade de se diferenciarem, assumindo

fenótipos variados conforme as circunstâncias (RAMADORI, 2004). Segundo

GUYOT et al. (2006) a variação na distribuição da fibrose justamente decorre do fato

de que diferentes células com potencial fibrogênico podem estar envolvidas no

processo, ou diferentes tipos celulares podem predominar em diferentes modelos.

A proliferação de vasos precedendo a fibrose, observada em todos os modelos aqui

estudados, chama a atenção para a provável participação das células vasculares no

processo fibroso. Os vasos sanguíneos podem estar servindo como um suporte para

o transporte de pericitos residentes na sua periferia. Como atualmente sabe-se que

essas células têm a capacidade de se diferenciarem em fibroblastos ou

miofibroblastos, poderiam estar representando uma conexão entre os processos

angiogênico e fibrogênico. Contudo, as marcações realizadas neste trabalho não

permitiram essa afirmação, uma vez que os pericitos são células que estão

presentes em vários órgãos e a depender da sua localização e função, expressam

moléculas diferentes, não exibindo apenas um único marcador específico.

Entretanto, atualmente uma combinação de marcações para desmina, α-actina,

receptor de PDGF e regulador da proteína G têm sido sugeridos para a sua possível

identificação (GERHARDT & BETSHOLTZ, 2003).

Adicionalmente tem sido postulado que miofibroblastos hepáticos também podem

surgir da transição epitelial mesenquimal e de células progenitoras multipotentes e

migratórias, originárias da medula óssea (IREDALE, 2007). Essas células

apresentam ampla distribuição em diferentes órgãos e estão presentes nos vasos

sanguíneos, tornando-se uma fonte para obtenção de diferentes tipos célulares.

Após lesão hepática grave, onde a capacidade funcional e/ou proliferativa dos

hepatócitos se acha comprometida, evidências indicam que também células

progenitoras multipotentes conhecidas como células ovais podem ser recrutadas

para proliferação e diferenciação em várias linhagens hepatocelulares. Células ovais

consistem em uma população de células não parenquimatosas de pequeno porte,

com citoplasma escasso e núcleo ovóide, que proliferam a partir da tríade portal e

invadem o parênquima durante as etapas iniciais da carcinogênese experimental,

humana e regeneração hepática pós lesão por agentes tóxicos. Acredita-se que

essas células tenham origem em um compartimento de células progenitoras,

possivelmente localizadas nos canalículos biliares terminais, designados canais de

Hering e/ou regiões periductulares (NAVES & MORENO 2000).

Para uma possível identificação da origem destes miofibroblastos, se faz necessário

um estudo imuno-histoquímico complementar com outros marcadores, juntamente

com um estudo ultra-estrutural para a caracterização das células mesenquimais

presentes no tecido fibroso. De posse do perfil imunológico e morfológico

possivelmente a identificação e avaliação do papel das mesmas no processo poderá

vir a ser melhor analisado.

Um outro aspecto observado no presente estudo foi o padrão de distribuição da

fibrose. Com exceção do modelo induzido pelo CCl

, onde as lesões fibrosas

evidentes ocorrem também na zona acinar 3, nos demais modelos aqui estudados, a

fibrose parece se iniciar e se propagar predominantemente nas zonas periportais

(zona acinar 1). O espaço porta é uma área de drenagem de todo o parênquima

hepático onde os espaços de Disse funcionam como os capilares linfáticos iniciais

convergindo para os espaços porta e se dirigindo progressivamente para o hilo

hepático e, finalmente canal torácico. Assim os produtos gerados nas lesões que

afetam o parênquima podem acabar como mediadores da inflamação e da fibrose se

concentrando nos espaços porta, onde podem estimular várias estruturas e tipos

celulares.

8.2 - PARTICULARIDADES

O modelo da Capillaria hepatica, seguido pelos modelos da Ligadura do Colédoco e

da Esquistossomose, foram os que apresentaram angiogênese mais proeminente.

O modelo da C. hepatica nos permitiu acompanhar melhor a evolução das lesões

uma vez que 100% dos animais infectados desenvolveram a fibrose de maneira

uniforme. Um outro aspecto favorável no estudo utilizando esse modelo foi o fato de

que, devido a estudos prévios, sabia-se o período exato do início do processo, o que

dava uma certeza de que o material obtido dos animais sacrificados aos 20 dias pós-

infecção permitiria se observar realmente as lesões iniciais. Nessa fase,

documentamos uma intensa proliferação de células α-actina-positivas juntamente

com células reativas para fator VIII e VEGF nas regiões portais migrando para os

septos, sugerindo uma intensa proliferação vascular. Contudo, a partir da análise

das secções marcadas para laminina e colágeno IV de membrana basal vascular,

comparadas com as secções do fígado do mesmo período submetidas à coloração

pelo picrosírius-vermelho para colágeno, confirmamos a ocorrência da angiogênese

nos espaços periportais no início da formação dos septos fibrosos. Esses achados

corroboram o relato de SOUZA et al. (2006) em seu estudo ultrastrutural onde

descreve uma intensa proliferação de células mesenquimais que se enfileiravam

formando os septos que até então, 25°dias pós-infecção, apresentavam raras fibrilas

colágenas. Segundo os autores citados acima, nessa fase se observa

predominância de células endoteliais e fibroblastos e raras células estreladas foram

observadas. Desta forma, as células α-actinas positivas que foram observadas

podem representar células mesenquimais que foram transportadas com os vasos.

No modelo de indução da fibrose pela ligadura do colédoco, as marcações para

colágeno IV e laminina não nos permitiram diferenciar proliferação ductular da

vascular pelo fato dessas estruturas compartilharem esses dois elementos. No

material obtido aos 4 dias pós-ligadura não foi observado positividade para Fator VIII

de células endoteliais, contudo a presença de células reativas para VEGF já era

abundante na periferia dos espaços portais, não permitindo confirmar a ocorrência

de proliferação vascular nesse período, mas sugerindo que o processo já estava se

iniciando, uma vez que esse fator de crescimento atua justamente na proliferação da

células endoteliais vasculares. Aos 7 dias as marcações específicas para fator VIII

juntamente com VEGF revelaram uma intensa proliferação de células endoteliais

demonstrando um ativo processo angiogênico ocorrendo nesse período, onde já se

observa o depósito do material conjuntivo juntamente com a intensa proliferação de

ductos biliares e processo inflamatório moderado. Esses achados condizem com o

que foi observado por ROSMORDUC et al (1999) que ressaltaram não ter observado

uma proliferação acentuada de células endoteliais, através de marcações para Ki67,

antes de uma semana.

MEDINA (2005) observou o aumento do número de estruturas vasculares no trato

portal na cirrose biliar primária humana, contudo sugeriu que essa angiogênese era

estimulada por fatores pró-angiogênicos liberados na região periportal pela

inflamação crônica e fibrose, ou seja, acreditavam que a angiogênese ocorria em um

estágio mais avançado do processo.

Nesse modelo as reações se iniciam com a degeneração de hepátocitos devido à

retenção de ácido biliar; ocorre estase no ácino 1 devido às lesões nas membranas

provocadas por esses ácidos, eventual infarto periportal e reação ductular

progressiva. Segundo DESMET (1995) essa multiplicação de ductos pré-existentes,

metaplasia de hepatócito periportal juntamente com a ativação de células

progenitoras é que estariam associadas à fibrose periductular, sendo o passo para o

aumento do depósito da matriz que resultaria na fibrose biliar e eventualmente em

cirrose biliar verdadeira.

Segundo ROSMORDUC et al (1999) a angiogênese que ocorre no modelo de

ligadura é primariamente estimulada pelo VEGF em resposta a hipóxia

hepatocelular. Eles observaram um aumento de 95% da expressão do VEGF após 2

semanas de hipóxia nos hepatócitos. E relataram que nesse período ocorria o

aumento da proliferação de células endoteliais vasculares periportais, seguida por

um aumento significativo da densidade do fator de Von Willenbrand nas áreas

fibróticas.

O desenvolvimento de shunts e capilarização de sinusóides devido à diminuição da

perfusão microvascular, que é uma característica bem estabelecida em casos de

cirrose e outras doenças hepáticas que restringe o acesso do soluto sanguíneo aos

hepatócitos, promovem a hipóxia e assim estimulam a produção do VEGF. A

estimulação da produção e liberação desses promotores angiogênicos vão estimular

a migração e proliferação de células endoteliais de vasos pré-existentes (UENO et

al., 2006).

Foram observadas muitas células positivas para α-actina na periferia dos espaços

portais, rodeando as estruturas vasculares e ductulares, e também migrando para o

interior dos septos. O acúmulo de miofibroblastos juntamente com a matriz

extracelular ao redor de ductos proliferados tem sido investigado na montagem da

lesão colestática (KINMAN & HOUSSET, 2002). Contudo apesar do principal alvo da

inflamação e destruição tecidual nesse modelo, ocorrer primariamente no ducto

biliar, os vasos presentes ali na periferia também são afetados. Assim as células α-

actinas positivas, poderiam tratar-se tanto de miofibroblastos originários das células

periductulares como sugerido por alguns autores, como também de pericitos

presentes na periferia dos vasos.

KINNMAN et al. (2000) acreditavam que mesmo nesse modelo onde as reações

ocorrem na região periportal, as células estreladas hepáticas estariam envolvidas no

depósito da matriz extracelular devido à sua capacidade de migração e proliferação.

Entretanto, esses autores mais tarde relataram ter observado nos estágios mais

recentes do processo, o envolvimento dos fibroblastos que rodeavam as estruturas

biliares do trato portal, chegando à conclusão de que seriam essas células as

responsáveis pelo excesso da matriz nesse modelo. Entretanto sugeriram que

células estreladas possivelmente teriam uma participação no processo, contudo

apenas quando a área portal, aumentada de tamanho, invadisse o parênquima

(KINNMAN et al., 2003).

KINMAN & HOUSSET (2002), evidenciaram que as células estreladas hepáticas

submetem-se a uma transição para miofibroblastos após a ligadura do ducto e

mostram quimioatração para ductos biliares na colestase hepática. Contudo também

sugeriram que a origem dos miofibroblastos peribiliares pode ser atribuída à ativação

e proliferação de fibroblastos portais. De acordo com os autores as células epiteliais

do ducto biliar também demonstraram contribuir ativamente para a promoção e

regulação dessa fibrogênese, através da síntese e liberação de inúmeros

mediadores tais como: fator transformador de crescimento beta (TGF-β), fator de

aumento do tecido conjuntivo, fator de crescimento derivado de plaquetas e

endotelina-1, que têm como alvo diferentes tipos de células hepáticas, incluindo

células estreladas e fibroblastos portais. Acredita-se que a fibrose periportal se

desenvolva na colestase e provavelmente também em outros tipos de doenças

hepáticas através da interação entre células epiteliais do ducto e miofibroblastos

peribiliares.

De acordo com relatos de KINMAN et al (2003), quando ocorre à redução do fluxo

biliar na cirrose colestática, a intensa proliferação ductular leva à destruição dos

hepatócitos que estão mais próximos do campo portal e consequentemente

desencadearia a ativação de fibroblastos periductulares.

Sabe-se que o principal fator responsável pela indução das lesões no modelo da

ligadura do colédoco além da composição da bile, é o aumento da pressão na região

portal. O recrutamento de células inflamatórias que chegam a esta região em

resposta as lesões teciduais promove a destruição dos ductos biliares e da primeira

camada de hepatócitos levando ao aumento desse campo. Este fato poderia

justificar a ativação dos fibrobrastos portais, uma vez que já foi demonstrado que

para os mesmos assumirem um fenótipo de miofibroblastos necessitaria serem

submetidos a grandes pressões. Contudo, uma vez que os pericitos também estão

próximos aos nos ductos biliares, esses também poderiam estar contribuindo para o

depósito da matriz extracelular no espaço porta nesse modelo.

No modelo de indução de fibrose com a infecção com S. mansoni, a participação dos

fibroblastos portais também tem sido sugerida. A ativação dessas células poderia ser

justificada pelo alargamento dessa área devido ao constante depósito de ovos e

também proliferação ductular, que podem promover um aumento de pressão nessa

região.

O modelo murino de esquistossomose nos permitiu estudar tanto a fibrose

granulomatosa, quanto a fibrose periportal. Camundongos infectados com o S.

mansoni podem desenvolver as duas formas de esquistossomose observadas em

humanos: A forma hépato-intestinal, caracterizada pela presença de granulomas

periovulares e a forma mais grave, hepatoesplênica, caracterizada pela grande

concentração de granulomas e intensa fibrose periportal, conhecida como fibrose

tipo pipestem.

Após infecção, vermes adultos instalam-se nos vasos sanguíneos mesentéricos e no

sistema portal hepático do hospedeiro. Nesse local ocorre a postura dos ovos que

serão carreados pelo sistema circulatório até os capilares hepáticos. A contínua

chegada de ovos nos capilares promovendo lesões obstrutivas nos vasos e abertura

de vasos colaterais nos espaços portais aonde os ovos irão se acumular, juntamente

com fatores liberados pelos mesmos após amadurecimento, irão desencadear

intensa reação granulomatosa e depósito de matriz nos espaços portais, revelando

um quadro de fibrose periportal.

Dos camundongos que infectamos poucos apresentaram a fibrose periportal. O

tempo de infecção dos animais foi de grande importância para a obtenção desse tipo

de fibrose, uma vez que só foram vistas nos animais que foram sacrificados após os

60 dias de infecção. A maioria apresentou apenas granulomas periovulares isolados,

distribuídos pelo parênquima hepático, preservando a arquitetura normal do fígado.

No passado acreditava-se que camundongos infectados por longos períodos

desenvolveriam sistematicamente uma fibrose periportal devido a um depósito

maciço de ovos ao longo das veias periportais intra-hepáticas. Mais tarde foi

demonstrado que até mesmo, em camundongos isogênicos infectados, apenas 30-

50% desenvolvem esse tipo de lesão (Andrade & Cheever, 1993). Hoje se sabe que

o período de infecção não é o único fator determinante para o desenvolvimento

desse tipo de fibrose, outros fatores parecem estar envolvidos. Grimaud & Borojevic

(1977,1986) baseado em estudos estruturais sugeriram que lesões hepáticas

severas na esquistossomose dependem de uma série de fatores que culminam em

danos vasculares, proliferação de miofibroblastos e produção excessiva de matriz

por essas células e não apenas dos ovos do parasito.

Alterações vasculares são reconhecidamente proeminentes na forma hépato-

esplênica da doença. Andrade & Cheever (1971) já haviam descrito a ocorrência de

distorções nos pequenos e médios capilares e brotamento de vasos a partir da veia

porta, promovido pela embolização de grande número de ovos na fase crítica da

infecção. Andrade (1987) havia relatado que a presença desses ovos no interior de

veias e capilares dilatados precedia a concentração de granulomas periportais, o

que indicava que as mudanças vasculares que precedem à fibrose periportal eram

realmente importantes para o seu desenvolvimento. Entretanto na fibrose focal, os

granulomas isolados eram até pouco tempo conhecidos e descritos em livros de

texto como estruturas avasculares. SILVA et al. (2006) também os descreveram em

seus estudos como estruturas avasculares que apresentavam apenas uma corôa de

vasos sanguíneos na sua periferia. Contudo é de se estranhar desde o início do

processo a ocorrência de infiltração celular, proliferação fibroblástica e depósito de

colágeno sem a participação dos vasos sanguíneos.

Diferentemente do que foi observado por esses autores, utilizando as marcações

para os elementos vasculares, pudemos observar intensa vascularização tanto nos

espaços periportais fibrosos, quanto nos granulomas periovulares isolados.

Possivelmente a descrição de SILVA et al (2006) decorreu do fato de terem avaliado

secções de fígado de animais sacrificados em períodos mais tardios, uma vez que,

apesar do depósito de ovos ocorrer de forma contínua, nessa fase da infecção, se

observa uma predominância de granulomas maduros que são mais fibrosos e pouco

vascularizados.

As marcações para fator VIII, laminina e colágeno IV confirmaram a intensa

proliferação vascular observada nos espaços portais e nos granulomas

esquistossomóticos registrados nesse trabalho. A dilatação do espaço porta ocorre

tanto pelo agregado de granulomas periovulares, devido à maciça deposição de

ovos, quanto pela formação de um tecido de granulação. Essas evidências de

proliferação vascular nesse modelo indicam que a angiogenêse tem um papel na

formação do tecido de granulação que precede a fibrose periportal. A distribuição

dos vasos na fibrose granulomatosa esquistossomótica se assemelha ao tecido de

granulação que antecede o processo de reparo. Granulomas recentes identificados

pela presença de ovos íntegros no interior, apresentavam grande número de vasos

distribuídos de maneira mais uniforme e, à medida que iam se tornando mais

maduros, ou seja, mais compactamente fibrosos, os vasos tendiam a se

posicionarem na periferia desses granulomas. Essas observações corroboram o que

foi publicado por BAPTISTA & ANDRADE (2005), os quais concluíram que a

associação do tecido conjuntivo neo-formado e diferenciação com proliferação

vascular é bem representada durante a formação do granuloma esquistossomótico.

Nesse modelo também se pôde verificar muitas células α-actinas positivas presentes

tanto nos granulomas periovulares, no início do processo, quanto no denso tecido

fibroso periportal. Segundo estudo experimental realizado por BARBOSA et al.

(1993) miofibroblastos derivados de células estreladas participariam da formação de

granulomas periovulares nos espaços-portais. Entretanto na fibrose periportal

ANDRADE et al. (1999) em estudo ultrastrutural em humanos, não evidenciaram

importância das células estreladas, demonstrando a participação de células do

músculo liso vascular, que gradualmente tendiam a desaparecer.

Como após infecção os ovos do parasito migram para o fígado através do sistema

porta, ficando retidos nas porções mais estreitas dos vasos portais, possivelmente a

obstrução dos microvasos dos espaços periportais promovem lesões

microvasculares como demonstrado por ANDRADE (1987) que, conseqüentemente,

estimulariam as células endoteliais a proliferarem e a migrarem a fim de restabelecer

o fluxo sanguíneo normal, promovendo também a liberação de vários fatores tanto

fibrogênicos (TGF-b) quanto angiogênicos (VEGF e PDGF) antes mesmo de uma

reação inflamatória crônica, levando à ativação de células fibrogênicas ali presentes.

Diferentemente dos dois modelos anteriores, nos animais tratados com CCl

lesões hepáticas se concentraram principalmente ao redor dos vasos centrais. Pode-

se observar necrose hepatocelular, reação inflamatória e grande concentração de

células α-actina-positivas ao redor das veias centrolobulares. Essas células,

provavelmente são as responsáveis pelo depósito da grande quantidade da matriz e

inicio da formação dos septos nessa região. Alguns autores acreditam tratar-se de

células da segunda camada dos vasos centrais que teriam um importante papel

nesse tipo de fibrose (fibrose pericentral). Outros acreditam tratar-se das células

estreladas, devido à proximidade do local em que residem (REEVES & FRIEDMAN

2004).

O aumento da expressão de VEGF foi observado nessa região provavelmente

devido à redução do oxigênio comprometido pelo tratamento com o CCl

. Tem-se

demonstrado que após intoxicação com tetracloreto de carbono, além dos

hepatócitos, as células estreladas hepáticas também expressam VEGF e seus

receptores (ISHIKAWA et al., 1999). Seguindo o aumento do VEGF foi observada

uma intensa proliferação de células positivas para fator VIII.

Paralelo às reações na região centrolobular, a coloração do picrosírius-vermelho

para colágeno nos revelou concomitante desenvolvimento de fibrose também nos

espaços periportais e proliferação de células endoteliais visualizadas pela

positividade para fator VIII. Como nos outros modelos, a participação da

angiogênese no início dessa fibrose periportal foi confirmado também com as

marcações para colágeno IV e laminina.

Na fibrose induzida por CCl

foi observado que o TFGβ pode diretamente ou através

de outras células, induzir a formação de novos vasos sanguíneos in vivo,

principalmente quando associado com o fator de crescimento de fibroblasto (FGF). O

TGFβ é uma citocina identificada durante o estágio inicial da resposta fibrótica antes

mesmo dos sinais de inflamação e aumento de número de fibroblastos. Ele é

expresso em células perisinusoidais estreladas, em miofibroblastos e em fibroblastos

portais durante processo fibroso. Acredita-se que essa citocina também exerça um

papel importante na maturação das células da periferia dos vasos, os pericitos

(KALLURI & SUKHATMA, 2000). O TGFβ estimularia a expressão de colágeno I e III

em células mesenquimais (RAMADORI, 2004).

No modelo do Soro de Porco, assim como no modelo de indução de fibrose pelo

CCl

, a fibrose também se desenvolveu tanto na região centrolobular quanto nas

zonas periportais. Os septos se irradiavam das zonas portais para as centrolobulares

resultando na formação de pseudolóbulos. O depósito de colágeno tipo IV foi

demonstrado por ser predominante na matriz da fibrose principalmente nos estágios

mais recentes, juntamente com a intensa proliferação de células positivas para fator

VIII e VEGF que se iniciava nos espaços periportais e migravam para os septos,

sugerindo a participação das células endoteliais sinusoidais na produção do

colágeno nesse modelo. Estes achados corroboram o que foi descrito por SHIGA et

al (1998) que demonstraram que desde o início até o período mais avançado do

processo se observa deposição de colágeno tipo I, III e IV, com predominância do

colágeno IV nas fases mais iniciais.

Segundo SHIGA et al (1997), a fibrogênese neste modelo segue as mudanças

vasculares ou hemodinâmicas da circulação hepática. Alterações hemodinâmicas da

circulação intrahepática induziriam necrose, apoptose e degeneração hepatocelular

e estas mudanças teriam um importante papel na patogênese da fibrose induzida

pelo soro de porco, contudo não detectadas muitas vezes devido ao pequeno

número de células lesadas e rápida fagocitose pelos macrófagos. Estes autores

demonstraram a presença de macrófagos e de células desmina e α-actina positivas

rodeando as veias centrolobulares e os septos fibrosos e também proliferação de

fibras elásticas nos septos em estágios mais avançados indicando uma gradual

ocorrência de necrose hepatocelular. Em nossas secções não observamos necrose

e apoptose de hepatócitos, só moderado processo inflamatório nas áreas

periportais.

BHUNCHET et al (1992) acreditavam que a resposta imune aos antígenos era

realmente o fator decisivo para a indução da fibrose. Através dessa resposta,

macrófagos incluindo células de Kupffer seriam ativados e estimulariam as células

estreladas perisinusoidais e fibroblastos intersticiais (portais, capsular e células da

segunda camada da parede da veia portal) iniciando o processo fibroso. Mais tarde

esses mesmos autores (BHUNCHET et al, 1996) demonstraram que ratos neonatos

tolerizados com soro de porco não desenvolviam fibrose quando submetidos na fase

adulta. Eles acreditavam que a necrose de hepátocitos pode ser ignorada como fator

da fibrogênese nesse modelo.

A gênese da fibrose induzida por soro de porco é ainda bastante controversa.

PARONETO & POPPER (1966), foram os primeiros a considerarem o modelo como

a forma de se obter fibrose, sem precedentes de necrose e inflamação crônica,

possivelmente induzida por complexos imunes, contudo não esclarecendo como

esses complexos atuariam para desencadear o processo. Entretanto, esses mesmos

autores também observaram uma grande proliferação de ductos biliares na rota dos

septos periportais, sugerindo que os mesmos poderiam ter um papel no

desenvolvimento da cirrose nesse modelo. Essa proliferação ductular foi confirmada

nos trabalhos de SHIGA et al. (1997), que também demonstraram em estudo

estrutural a presença de células endoteliais expressando Fator VIII nos septos

fibrosos, sugerindo o aumento do fluxo sanguíneo no início do processo. A

positividade para laminina e para colágeno IV que foi demonstrada nesse trabalho

rodeando os espaços periportais e veias centrolobulares, poderia representar tanto

uma proliferação ductular, quanto vascular uma vez que, como já mencionado,

esses elementos estão presentes nas duas estruturas, e assim, como nos outros

modelos, a proliferação de muitas células positivas para fator VIII e VEGF foi

observada nos septos.

NAKANO (1986) após observarem um espessamento da parede da veia portal

levando a um estreitamento do lúmen do vaso, alterações de hepatócitos e restos de

células antes do início da fibrose, sugeriu que a fibrose resultava de lesões

hepáticas que poderiam ter sido causadas por distúrbio da veia portal.

O fato de a angiogênese ter se mostrado presente em todos os modelos,

precedendo o depósito da matriz conjuntiva, chama a atenção para a sua

importância no desenvolvimento do processo fibroso. Entretanto, um estudo mais

profundo tanto dos elementos celulares, quanto dos fatores envolvidos no processo

fibrogênico, se faz necessário para uma maior compreensão do papel da mesma no

processo fibroso.

9- CONCLUSÕES

1. A angiogênese se mostrou como um importante fator no desenvolvimento do

processo fibroso, uma vez que precedeu o depósito do colágeno, em todos os

modelos estudados, independente do agente etiológico.

2. A angiogênese se apresentou mais proeminente nos modelos da Capilaríase

hepática do rato, na ligadura do colédoco e na Esquistossomose murina.

3. O espaço porta se revelou como foco da resposta fibrosa em todos os modelos,

independente do estímulo usado para indução da fibrose.

10- PERSPECTIVA FUTURA

• Realizar estudo ultra-estrutural e análise imuno-histoquímica para identificar os

elementos celulares envolvidos na fibrogênese hepática experimental.

• Avaliar a resposta fibrogênica após a utilização de drogas anti-angiogênicas.

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