( PDF ) Respostas bioquímicas e moleculares no peixe Poecilia vivipara exposto à fração de óleo diesel acomodada em água

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UNIVERSIDADE FEDERAL DE SANTA CATARINA

CENTRO DE CIÊNCIAS BIOLÓGICAS

PÓS-GRADUAÇÃO EM BIOQUÍMICA

RESPOSTAS BIOQUÍMICAS E MOLECULARES NO PEIXE

Poecilia vivipara EXPOSTO À FRAÇÃO DE ÓLEO DIESEL

ACOMODADA EM ÁGUA

JACÓ JOAQUIM MATTOS

Dissertação apresentada ao

Programa de Pós-Graduação em

Bioquímica da Universidade

Federal de Santa Catarina como

requisito parcial à obtenção do

título de Mestre.

Orientador: Prof. Dr. Afonso Celso Dias Bainy

Florianópolis 2010

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Livros Grátis

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Milhares de livros grátis para download.

Catalogação na fonte pela Biblioteca Universitária da

Universidade Federal de Santa Catarina

AGRADECIMENTOS

Aos meus pais e irmã pelo apoio aos meus estudos e apoio

incondicional nas minhas decisões.

Aos integrantes do LABCAI: Karim, Marília, Ninna, Mister

Tarquin, Guilherme, Fabrício, Isabel, Ana, Juliana, Talita,

Daniela, Maya, Pedrão, Christiely (que até agora não sei como

escrevo o nome), Juliano, Mariana e aos mais novos integrantes

do laboratório, cujos nomes não decorei ainda devido a pouca

convivência. Agradeço a todos pelas batalhas que lutamos

juntos, pelo verdadeiro trabalho em equipe nos momentos de

adversidade (mudança de laboratório), pelas conversas

esclarecedoras quando a convivência estava difícil e pelas lições

de vida compartilhadas na bancada central.

M444r Mattos, Jacó Joaquim

Respostas bioquímicas e moleculares no peixe Poecilia

vivipara exposto à fração de óleo diesel acomodada

em água [dissertação] / Jacó Joaquim Mattos ; orientador,

Afonso Celso Dias Bainy. - Florianópolis, SC, 2010.

120 p.: grafs., tabs.

Dissertação (mestrado) - Universidade Federal de Santa

Catarina, Centro de Ciências Biológicas. Programa de Pós-

Graduação em Bioquímica.

Inclui referências

1. Bioquímica. 2. Barrigudinho - Metabolismo. 3.

Combustíveis diesel. 4. Expressão gênica. I. Bainy, Afonso

Celso Dias. II. Universidade Federal de Santa Catarina.

Programa de Pós-Graduação em Bioquímica. III. Título.

CDU 577

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Agradeço ao Fabio Daura Jorge (Fabão) pela

disponibilidade e paciência em pescar Poecílias na Barra da

Lagoa em diversas ocasiões. Ao seu apoio com a estatística

multivariada na reta final do projeto.

Agradeço à Karim, Lila e Ninna. Sem elas não seria

possível a realização deste e outros projetos no laboratório.

Verdadeiras guerreiras que aceitavam todo tipo de trabalho

(pescaria, trabalhos hidráulicos, elétricos e mecânicos para

montar a sala de bioensaios e serviços administrativos), além

disso, trabalhavam também nas análises enzimáticas

moleculares e design de projetos. Está pouco ou quer mais?

Agradeço a todos por serem tolerantes quando eu estava

de mau humor.

Ao Prof. Dr. Afonso por ter me aceitado no laboratório e

fornecido o essencial para realização desse projeto. Pela

confiança no meu trabalho e dedicação.

Agradeço ao Instituto Oceanográfico da Universidade de

São Paulo, especialmente a Satie Taniguchi, pelas análises

químicas das amostras de peixes.

Agradeço ao Prof. Dr. Alcir, Trevisan, Flesch, Marcela pela

convivência e a possibilidade de participar de duas aventuras de

campo.

Agradeço a Prof. Dr. Maria Risoleta Marques pela

possibilidade de usar o equipamento de PCR em tempo real e

pelas boas aulas de Toxicologia Molecular.

Agradeço à Patricia Hermes Stoco e ao Prof. Dr. Edmundo

Carlos Grisard do Laboratório de Protozoologia da Universidade

Federal de Santa Catarina pelos sequenciamentos.

Agradeço à CAPES pela bolsa e ao CNPq pelo auxílio

financeiro ao projeto.

Agradeço antecipadamente à banca por ler e criticar

construtivamente esse trabalho.

Agradeço ao monge tântrico Dada Jinanananda pelos

sábios conselhos. Baba nam kevalam, Dada.

Agradeço a ADNI por ter me guiado silenciosamente desde

o Princípio.

RESUMO

O óleo diesel é um potencial contaminante de estuários e

mangues, especialmente porque ele é o principal combustível

utilizado em embarcações. Além disso, a exploração de petróleo

e transporte causam sérios riscos ao ambiente marinho. No

capítulo 1, foram estudados aspectos químicos e bioquímicos no

peixe Poecilia vivipara expostos a fração do óleo diesel

acomodada em água (FAD). Os peixes expostos à concentração

de 20% de FAD apresentaram um aumento na atividade GST,

GR e EROD no fígado. As brânquias apresentaram um aumento

na atividade GST nas concentrações de 10% e 20% da FAD,

enquanto a atividade EROD aumentou nas concentrações de

2,5%, 10% e 20%. Esse aumento indica uma adaptação do

sistema de biotransformação desses organismos para

detoxificação dos hidrocarbonetos alifáticos e aromáticos

tipicamente encontrados no óleo diesel. No capítulo 2, foram

estudados os aspectos moleculares e químicos no peixe Poecilia

vivipara exposto a 10% FAD. Os resultados mostraram 27 genes

diferencialmente expressos, sendo 12 induzidos e 15 reprimidos.

Os resultados de qPCR confirmaram a indução dos genes

Citocromo P4501A (CYP1A), Citocromo P4502P2 (CYP2P2),

Metiltransferase (MET), Glutationa S-transferase (GST), Uridina

Difosfato Glicoronosil Transferase (UDPGT1B) e a repressão do

gene Vitelogenina A (VgA) em machos. A maioria dos genes

induzidos validados por qPCR está envolvida nas duas primeiras

etapas de biotransformação, enquanto o gene validado como

reprimido, VgA, está envolvido com a vitelogênese. Juntos, os

resultados mostram significativas mudanças bioquímicas e

moleculares que são potenciais biomarcadores para compostos

presentes na FAD.

Palavras-chave: biotransformação, óleo diesel, Poecilia vivipara,

expressão gênica

ABSTRACT

Diesel oil is a potential contaminant of estuarine and mangrove

areas, especially, because it is the main fuel used in vessels. In

addition, offshore oil exploration, production and transport pose

serious risks to the marine environment. In the chapter 1,

biochemical and chemical aspects were studied in the fish

Poecilia vivipara exposed to Diesel Oil Water Accommodated

Fraction (FAD). Fish exposed to 20% of FAD showed an increase

in the GST, GR and EROD enzymatic activity in liver. The gills

showed an increase in GST activity in the 10% and 20% FAD

concentrations, while EROD activity increased in the 2.5%, 10% e

20% FAD concentrations. These increases indicate a

biotransformation system adaptation of these organisms to

detoxify the aliphatic and aromatic hydrocarbons typically found in

the diesel oil. In the chapter 2, molecular and chemical aspects

were studied in the fish Poecilia vivipara exposed to 10% FAD.

The SSH results showed 27 differentially expressed genes, 12

upregulated and 15 downregulated. The qPCR results confirmed

the Cytochrome P4501A (CYP1A), Cytochrome P4502P2

(CYP2P2), Methyltransferase (MET), Glutathione S-transferase

(GST), Uridine Diphosphate Glucuronosil Transferase

(UDPGT1B) gene induction and Vitelogenin A (VgA) gene

repression in male fish. The majority of the upregulated genes

validated by qPCR is involved with the two biotransformation

phases, while the gene validated as downregulated, VgA, is

involved with vitellogenesis. Together, the results show significant

biochemical and molecular changes that are potential biomarkers

for FAD compounds.

Keywords: biotransformation, diesel oil, Poecilia vivipara, gene

expression

LISTA DE ABREVIATURAS

ABCC4 ATP Binding Cassete C4 (família de

glicoproteínas transmembranas)

ACBP Proteína ligante de AcilCoA

AChE Acetilcolinesterase

AHR Aryl Hidrocarbon Receptor (receptor de

hidrocarboneto aromático)

AMBP Precursor da Alfa microglobilina/bicunina

ANOVA Análise de variância (teste estatístico)

APOAI Precursor da Apolipoproteína AI

ARE Antioxidante response element (Elemento de

resposta antioxidante)

ARNT Translocador nuclear do receptor de

hidrocarboneto aromático

-NAC Complexo associado ao polipeptídeo nascente

alfa

ATP Trifosfato de adenosina

BLAST Basic Local Alignment Search Tool (algoritmo

para comparação de sequências biológicas

utilizando alinhamento local )

BNF Beta-naftoflavona

C1 Inibidor C1

C3 Proteína do sistema complemento

CAT Catalase

COMT Catecol-O-Metiltransferase

cDNA Sequência nucleotídica complementar de DNA

CONAMA Comissão Nacional do Meio Ambiente

COXI Citocromo c oxidase subunidade I

CYP450 Citocromo P450

DNA Ácido desoxirribonucléico

ER Estrogen receptor (receptor de estrógeno)

EROD Etóxi-resorufina-O-deetilase

FAD Fração do óleo diesel acomodada em água

G6PDH Glicose-6-fosfato desidrogenase

GenBank Banco de genes público que possui os dados

produzidos pelo NCBI

GPx Glutationa peroxidase

GR Glutationa redutase

GSH Glutationa reduzida

GSSG Glutationa dissulfídica

GST Glutationa S-transferase

HPA Hidrocarboneto policíclico aromático

HSP90 Proteína de choque térmico 90

ITM2B Proteína integral de membrana 2B

MET Metiltransferase

NADP+ Nicotinamida adenina dinucleotídeo fosfato

oxidada

NADPH Nicotinamida adenina dinucleotídeo fosfato

reduzida

NCBI National Center for Biotechnology Information

(Centro Nacional de Informação Biotecnológica

dos EUA)

NRF2 NF-E2-related factor 2

OATP2 Transportador de ânions orgânicos membro 1c1

PCR Reação em cadeia da polimerase

PEN2 Presenilina 2

qPCR Reação em Cadeia da Polimerase em Tempo

Real

RNA Ácido ribonucléico

RNAm RNA mensageiro

RNAr RNA ribossomal

SOD Superóxido dismutase

SSH Hibridação subtrativa supressiva

TCDD Tetraclorodibenzodioxina

TF Transferrina

UDPGP Uridina difosfato glicose pirofosforilase

UDPGT Uridina difosfato glicuronosil transferase

VgA Vitelogenina A

VgB Vitelogenina B

VgC Vitelogenina C

XRE Xenobiotic response element (elemento de

resposta a xenobióticos)

SUMÁRIO

INTRODUÇÃO GERAL ___________________________ 13

1.1

Contaminação Aquática _____________________ 13

1.2

O óleo diesel ______________________________ 15

1.3

Os biomarcadores de contaminação aquática ___ 17

1.4

Os programas de biomonitoramento __________ 20

OBJETIVOS GERAIS _____________________________ 22

CAPÍTULO 1 ____________________________________ 23

INTRODUÇÃO __________________________________ 27

OBJETIVOS ____________________________________ 31

MATERIAIS E MÉTODOS _________________________ 32

6.1

Coleta dos Peixes Poecilia vivipara ___________ 32

6.2

Preparação da fração do óleo diesel acomodada

em água (FAD) __________________________________ 33

6.3

Exposição dos peixes Poecilia vivipara a diversas

concentrações da FAD____________________________ 33

6.4

Análise Química ___________________________ 34

6.5

Biomarcadores bioquímicos _________________ 36

6.5.1

Preparação das amostras _________________ 36

6.5.2

Determinação da concentração de proteínas _ 37

6.5.3

Superóxido dismutase (SOD) ______________ 37

6.5.4

Catalase (CAT) __________________________ 38

6.5.5

Glutationa redutase (GR) __________________ 38

6.5.6

Glutationa peroxidase (GPx) _______________ 38

6.5.7

Glutationa S-transferase (GST) _____________ 39

6.5.8

Glicose 6-fosfato desidrogenase (G6PDH) ____ 39

6.5.9

Etóxi-resorufina O-Deetilase (EROD) ________ 39

6.5.10

Análises estatísticas ____________________ 40

RESULTADOS __________________________________ 41

7.1

Análise química de hidrocarbonetos alifáticos em

P. vivipara ______________________________________ 41

7.2

Análise química de hidrocarbonetos aromáticos

em P. vivipara ___________________________________ 46

7.3

Biomarcadores bioquímicos em P. vivipara _____ 48

DISCUSSÃO ____________________________________ 52

8.1

Análise Química ___________________________ 52

8.2

Biomarcadores Bioquímicos em P. vivipara _____ 53

CONCLUSÕES E PERSPECTIVAS __________________ 61

CAPÍTULO 2 ____________________________________ 62

INTRODUÇÃO __________________________________ 67

OBJETIVOS ____________________________________ 70

MATERIAIS E MÉTODOS _________________________ 71

13.1

Exposição de peixes à FAD 10% para avaliação

das respostas moleculares ________________________ 71

13.2

Análise química ____________________________ 72

13.3

Extração de RNA total _______________________ 74

13.4

Extração RNA mensageiro (mRNA) ____________ 74

13.5

Hibridização Subtrativa Supressiva (SSH) ______ 75

13.6

Clonagem _________________________________ 75

13.7

PCR para seqüenciamento ___________________ 76

13.8

Comparação de seqüências __________________ 76

13.9

Padronização das reações de PCR quantitativo

(qPCR) _________________________________________ 76

13.10

Validação de potenciais biomarcadores

moleculares por PCR quantitativo (qPCR) ____________ 77

13.11

Quantificação Relativa por RT-PCR quantitativo

(qPCR) _______________________________________ 78

13.12

Análises estatísticas _____________________ 80

RESULTADOS __________________________________ 81

14.1

Análise química____________________________ 81

14.2

Biomarcadores moleculares em P. vivipara _____ 83

DISCUSSÃO ____________________________________ 88

15.1

Análise Química ___________________________ 88

15.2

Biomarcadores Moleculares em peixes Poecilia

vivipara ________________________________________ 89

15.2.1

Sistema de Biotransformação Fase I e

Vitelogênese __________________________________ 89

15.2.2

Sistema de Biotransformação Fase II e III __ 92

15.2.3

Genes Envolvidos no sistema Imune Inato e

Metabolismo de Carboidratos e Lipídeos ___________ 97

15.2.4

Apoptose _____________________________ 99

15.2.5

Transporte de Oxigênio ________________ 100

15.2.6

Chaperonas e Coativadores da Transcrição100

15.2.7

Proteínas ribossomais e Mitocondriais ___ 102

CONCLUSÕES FINAIS E PERSPECTIVAS __________ 103

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS _________________ 105

1 INTRODUÇÃO GERAL

1.1 Contaminação Aquática

A indústria petrolífera é de fundamental importância na

economia mundial, pois esse recurso pode ser utilizado como

fonte de energia ou fonte de matéria-prima para outros tipos de

indústria. Apesar de sua importância econômica, a atividade da

indústria petrolífera pode gerar impactos ambientais seja por

derramamentos acidentais de petróleo ou por descargas crônicas

de combustíveis utilizados nas cidades (FILHO, 2006).

Acidentes ambientais, como derrames de petróleo e seus

derivados, constituem a principal fonte de contaminação aguda e

estão relacionados a danos na biota e nos ecossistemas como

um todo (KENNISH, 1992). Em escala mundial, destaca-se o

rompimento do tanque Prestige na costa da Espanha em 2002

derramando mais de 60.000 toneladas de óleo, cujos efeitos

mais dramáticos foram observados na região da Galícia,

afetando também a costa inglesa (CAJARAVILLE et al., 2006;

CARRO; COBAS; MANEIRO, 2006; SORIANO et al., 2006). No

Brasil, destacam-se: o derrame de 1,3 milhão de litros de óleo na

Baía da Guanabara, Rio de Janeiro, em janeiro de 2000; o

vazamento de 4 milhões de litros de óleo nos rios Barigüi e

Iguaçu, no estado do Paraná em julho do mesmo ano; e em

novembro de 2004, o vazamento de mais de 6 milhões de litros

de diferentes tipos de óleo em Paranaguá (PR). Em todos estes

eventos foram observados impactos em diversos ecossistemas

(MENICOM et al., 2002; FILHO, 2006).

Apesar dos efeitos tóxicos na biota serem aparentes nesse

tipo de derrame, alguns ecossistemas aquáticos estão

submetidos a uma contaminação crônica. Esses ecossistemas

recebem um aporte contínuo de efluentes do petróleo como

resultado do consumo de combustíveis ou por lixiviação do solo

em áreas urbanas. (KENNISH, 1992; FILHO, 2006). De acordo

com Filho (2006), a contaminação crônica provocada pelo

consumo de petróleo e seus derivados, seja por carros, barcos,

navios, lixiviação de solo em áreas urbanas, vazamentos em

postos de combustível corresponde a maior parcela de petróleo

introduzida no mar.

No Brasil, de acordo com a Resolução nº. 273 do Conselho

Nacional do Meio Ambiente (CONAMA, 2000), toda instalação e

sistemas de armazenamento de derivados de petróleo e outros

combustíveis configuram-se como empreendimentos

potencialmente ou parcialmente poluidores e geradores de

acidentes ambientais.

No Estado de São Paulo, no período 1984 a 2001, os

vazamentos em postos de combustíveis foram responsáveis por

cerca de 10% de todas as emergências ambientais atendidas.

Sobre as causas desses acidentes, constatou-se que 25%

estavam relacionadas a vazamentos em tanques, 20% a

vazamentos nas tubulações e 10% devido a uma contaminação

de solo ou água subterrânea remanescente de outros eventos.

Entretanto, esses números não refletem a realidade dos

vazamentos ocorridos, pois muitos casos não são comunicados à

Companhia de Tecnologia de Saneamento Ambiental (CETESB,

2005).

1.2 O óleo diesel

Dentre os derivados do petróleo, o óleo diesel merece

destaque em termos de risco ambiental por ser continuamente

lançado nos ambientes costeiros em função de seu uso como

combustível de embarcações, veículos rodoviários e máquinas

em geral (KENNISH, 1992; FILHO, 2006). No Brasil, o óleo diesel

é o derivado propulsor do refino e corresponde a 34% do volume

do barril de petróleo. Na maioria dos outros países do mundo,

esta demanda situa-se entre 15 e 25% do volume do barril de

petróleo (Portal BR, 2005).

De acordo com Neff (2002), o óleo diesel, também

chamado de óleo n

2, é considerado um óleo de densidade

média, composto basicamente por hidrocarbonetos alifáticos

(HAs), principalmente parafinas, além de apresentar uma

pequena porcentagem de hidrocarbonetos aromáticos. Dentre os

aromáticos, os monocíclicos, que apresentam apenas um anel

benzeno, são os mais abundantes, seguidos pelos policíclicos

(HPAs), principalmente os compostos por 2 a 4 anéis (WANG et

al., 2003; NEFF; STOUT; GUNSTER, 2005). Dentre os HPAs, o

naftaleno e seus derivados metilados são os mais

frequentemente encontados no óleo diesel (VANZELLA;

MARTINEZ; CÓLUS, 2007).

Embora pouco representativos em relação aos HAs, os

HPAs têm sido identificados como os principais componentes do

óleo que apresentam elevado risco ao ambiente, sendo

diretamente relacionados a processos carcinogênicos (AAS et

al., 2000), dentre outros efeitos em organismos marinhos

(GAGNON; HOLDWAY, 1999; AKCHA et al., 2000; MACHELLA;

REGOLI; SANTELLA, 2005; BARŠIENĖ et al., 2006;

CARAJAVILLE et al., 2006; FROUIN et al., 2007).

Estudos realizados em Prochilodus lineatus expostos à

fração do óleo diesel acomodada em água mostrou a ocorrência

de lesões em brânquias e fígado, redução na hemoglobina e

anormalidades nos eritrócitos como micronúcleos e quebras no

DNA (SIMONATO; GUEDES; MARTINEZ, 2008; VANZELLA;

MARTINEZ; CÓLUS, 2007). Um outro estudo, realizado com

Carassius auratus expostos à fração acomodada em água do

óleo diesel, mostrou um aumento nas defesas antioxidantes

(ZHANG et al., 2004). Essas pesquisas foram realizadas em

laboratório com espécies de peixes dulciaquícolas, contudo a

literatura carece de informações a respeito dos efeitos biológicos

da fração do óleo diesel acomodada em água em espécies

nativas que ocorrem no ambiente estuarino e marinho.

Os peixes da família Poecilidae, conhecidos popularmente

como barrigudinho, são abundantes e habitam regiões

dulciaquícolas e estuarinas desde os Estados Unidos até a

Argentina (NEVES; MONTEIRO, 2003). Além disso, muitas

espécies desta família são conhecidas por sua resistência à

contaminação orgânica, sendo comumente encontradas em

regiões limpas e em córregos contendo resíduos de esgotos

domésticos e pluviais (ARAÚJO et al., 2009). A espécie Poecilia

vivipara foi utilizada em experimentos que visavam avaliar os

efeitos do cádmio e a tolerância térmica (AMARAL; BONECKER;

ORTIZ, 2001) e efeitos da salinidade nas proteínas sódio-

potássio ATPase e magnésio ATPase (AMARAL; BONECKER;

ORTIZ, 2001).

Kraus e colaboradores (1998) sugeriram o uso da Poecilia

vivipara em testes de toxicidade após experimentos que

verificavam a sensibilidade desta espécie às substâncias

dicromato de potássio, duodecilsulfato de sódio, cobre e zinco.

Além disso, P. vivipara é uma espécie filogeneticamente próxima

ao Fundulus heteroclitus, estabelecido há aproximadamente três

décadas como o primeiro peixe modelo para estudos ambientais

na América do Norte, o que possibilita a realização de estudos

comparativos com esta espécie (ZANETTE, 2009). Devido a

estes fatos, o peixe P. vivipara é um bom candidato a peixe

modelo para estudos ecotoxicológicos no Brasil, podendo ser

utilizado em estudos que visem a determinação dos efeitos do

óleo diesel.

Tendo em vista o potencial do óleo diesel em causar danos

ao ambiente aquático e a necessidade de estudos com

organismos nativos, é imprescindível o desenvolvimento de

metodologias que possibilitem a avaliação e previsão dos efeitos

biológicos nos organismos aquáticos expostos ao óleo diesel ou

outros derivados do petróleo.

1.3 Os biomarcadores de contaminação aquática

Técnicas bioquímicas clássicas associadas à técnicas de

biologia molecular vêm auxiliando na descoberta de ferramentas

promissoras para o biomonitoramento ambiental em

ecossistemas contaminados por efluentes da indústria de

petróleo (BOUTET; TANGUY; MORAGA, 2004; CAJARAVILLE et

al., 2006). No entanto, existe uma carência de informações sobre

os efeitos biológicos destes contaminantes na biota,

especialmente quando se trata de misturas complexas como o

óleo diesel (SINGER et al., 2000).

Uma das técnicas de biologia molecular aplicada em

organismos monitores, cujo genoma permanece desconhecido, é

a de hibridação subtrativa supressiva (SSH). Essa técnica

possibilita a construção de bibliotecas subtrativas de cDNAs que

podem ser comparadas às disponíveis em bancos de genes. Os

genes, após a identificação, podem ter sua expressão avaliada

quantitativamente por reação em cadeia da polimerase (PCR).

Dessa forma, a análise da expressão do RNA mensageiro de

diferentes genes em organismos expostos a um determinado

contaminante pode ser utilizada em estudos mecanísticos e

servir como um potencial marcador dos efeitos tóxicos (SEWALL

et al., 1999).

Os biomarcadores são definidos por Walker (1996) como

alterações biológicas em nível molecular, celular ou fisiológico

que expressam os efeitos tóxicos causados pelos contaminantes

nos organismos expostos. Os biomarcadores podem indicar tanto

a exposição dos organismos aos contaminantes (biomarcadores

de exposição), como a magnitude da perturbação causada em

resposta a poluentes (biomarcadores de efeito) (CAJARAVILLE

et al., 2000). Dentre os biomarcadores de exposição, estão: as

enzimas de biotransformação de xenobióticos, as

metalotioneínas e as defesas antioxidantes (enzimáticas e não

enzimáticas) entre outros; Dentre os biomarcadores de efeito

estão: os níveis de dano no DNA e de oxidação de lipídios e

proteínas (RAND et al., 1995; CAJARAVILLE et al., 2000).

As defesas antioxidantes atuam protegendo as células

contra os efeitos deletérios de espécies reativas de oxigênio

(EROs), que podem ser geradas pelos contaminantes ou no

processo de biotransformação desses contaminantes. As

defesas antioxidantes podem ser não enzimáticas como por

exemplo, o tripeptídeo glutationa reduzida (GSH), ou

enzimáticas, como as enzimas superóxido dismutase (SOD),

catalase (CAT), glutationa peroxidase (GPx), glutationa redutase

(GR) e glicose 6-fosfato desidrogenase (G6PDH) (BRAY; LEVY,

2000).

O processo de biotransformação de fase I (reações de

oxidação) de compostos orgânicos, tais como os hidrocarbonetos

planares encontrados no petróleo, é realizado pelo sistema de

oxigenases de função mista (MFO), constituído pelo sistema

citocromo P450 (NIYOGI et al., 2001). Este sistema desempenha

papel central no metabolismo de muitos xenobióticos, catalisando

tanto reações de detoxificação quanto de bioativação

(TERAMITSU et al., 2000). Após as reações mediadas pelos

Citocromos P450, os produtos lipofílicos podem ser conjugados

com o tripeptídeo endógeno glutationa reduzida (GSH) através

da atividade da enzima glutationa S-transferase (GST), formando

produtos mais solúveis e, portanto, mais fáceis de serem

excretados (FITZPATRICK et al., 1997). Além da GST, outras

enzimas como as Uridina Difosfato glicoronosil Transferases

(UDPGT), Sulfotransferases (SULT) e Metiltransferases (MET)

são importantes no processo de biotransformação de fase II, que

é caracterizada por reações de conjugação (ZAMEK-

GLISZCZYNSKI et al., 2006).

A indução da síntese das proteínas de estresse ou

proteínas de choque térmico (Heat Shock Protein, HSP) também

está incluída entre os biomarcadores bioquímicos para avaliação

de contaminação. Sob condições normais na célula, as HSPs

podem atuar como chaperonas, estabilizando os intermediários

de polipeptídeos recém sintetizados. Estas proteínas atuam

contra o efeito proteotóxico causado por uma grande variedade

de contaminantes, incluindo o petróleo e seus derivados

(WERNER; KLINE; HOLLIBAUGH, 1998; WOLFE et al., 1999;

BIERKENS, 2000; SNYDER; GIRVETZ; MULDER, 2001).

1.4 Os programas de biomonitoramento

Os biomarcadores bioquímicos e moleculares atuam como

sinalizadores da degradação ambiental causada pelos

contaminantes, antecipando possíveis danos nas populações e

comunidades biológicas (RAND, 1995). A inclusão dos

biomarcadores nos programas de biomonitoramento ambiental

possui a vantagem de representar um menor custo, maior

facilidade e rapidez do que as análises químicas convencionais

(GALLOWAY et al., 2004). Apesar destas vantagens, na maioria

das vezes a especificidade das respostas dos biomarcadores

para as diferentes classes de contaminantes não é muito clara

(GALLOWAY et al., 2004).

Em razão da necessidade de métodos mais precisos e

sensíveis na avaliação do risco ambiental das atividades

antrópicas, o International Council for the Exploration of the Sea

(ICES, 2004) aconselha que programas de biomonitoramento

ambiental sejam realizados com o intuito de alertar e prevenir

impactos irreversíveis nos ecossistemas. Nestes programas,

recomenda-se: o uso de organismos sentinela, bioindicadores e

monitores de contaminação; a realização de análises químicas,

que determinam analiticamente a concentração dos

contaminantes; a utilização dos biomarcadores de contaminação

aquática, que refletem os impactos destes contaminantes nos

organismos (ICES, 2004). Além desses monitoramentos em

campo, pesquisas em laboratório são realizadas com o intuito de

entender a toxicidade de diferentes hidrocarbonetos presentes no

petróleo (BADO-NILLES et al., 2009).

Seguindo essa nova tendência nos programas de

biomonitoramento, o uso de biomarcadores foi incorporado em

diversos programas de monitoramento de poluição na Europa e

EUA, como o North Sea Task Force Monitoring Master Plan e o

NOAA’s National Status and Trends Program (CAJARAVILLE et

al., 2000). Na região costeira do Brasil, podem ser citados o

projeto MOMAM (Monitoramento do Ambiente Marinho)

estabelecido em 1997 e coordenado pelo Instituto de Estudos do

Mar Almirante Paulo Moreira (IEAPM – Ministério da Marinha)

(VENTURA et al., 2004) e o projeto RECOS (Uso adequado dos

Recursos Costeiros Qualidade Ambiental e Biodiversidade;

Institutos do Milênio, Ministério da Ciência e Tecnologia)

(ZANETTE; MONSERRAT; BIANCHINI, 2006).

A Norwegian Oil Industry Association (OLF, 2005) sugere o

uso de biomarcadores bioquímicos na determinação dos efeitos

biológicos em organismos aquáticos expostos a derivados de

petróleo. Dentre alguns biomarcadores de uso freqüente

destacam-se: as enzimas superóxido dismutase (SOD) e

catalase (CAT), pertencentes ao sistema de defesa antioxidante;

a enzima de fase I de biotransformação Etóxi-resorufina-O-

deetilase (EROD) e de fase II de biotransformação glutationa S-

transferase (GST).

Tendo em vista o risco ambiental associado à atividade da

indústria petrolífera e a necessidade de programas de

biomonitoramento eficazes na avaliação da qualidade ambiental,

o presente estudo identificou biomarcadores bioquímicos e

moleculares sensíveis aos contaminantes provenientes da

atuação da indústria petrolífera em peixes Poecilia vivipara

expostos à fração do óleo diesel acomodada em água.

2 OBJETIVOS GERAIS

1. Avaliar a bioacumulação de hidrocarbonetos nos tecidos

de Poecilia vivipara expostas à fração do óleo diesel acomodada

em água (FAD);

2. Analisar a atividade de enzimas pertencentes a defesa

antioxidante e as fases I, II de biotransformação de xenobóticos

no fígado e brânquias de peixes Poecilia vivipara expostos a

FAD;

3. Construir uma biblioteca subtrativa de Poecilia vivipara

com genes diferencialmente expressos para a FAD;

4. Relacionar os resultados da bioacumulação com as

respostas bioquímicas e moleculares encontradas em Poecilia

vivipara.

3 CAPÍTULO 1

RESPOSTAS BIOQUÍMICAS NO PEIXE Poecilia vivipara

(BARRIGUDINHO) EXPOSTO À FRAÇÃO DE ÓLEO DIESEL

ACOMODADA EM ÁGUA

RESUMO

O óleo diesel é um potencial contaminante de estuários e

mangues, especialmente porque ele é o principal combustível

utilizado em embarcações. Além disso, a exploração de petróleo

e transporte causam sérios riscos ao ambiente marinho. O

objetivo desse estudo foi identificar os efeitos de diferentes

concentrações da fração do óleo diesel acomodada em água

(FAD) no sistema de biotransformação e no sistema de defesa

antioxidante enzimático de peixes Poecilia vivipara. Para verificar

os efeitos nas enzimas de biotransformação e antioxidantes, os

peixes foram separados em 5 grupos; um deles foi mantido como

grupo controle e os demais expostos a 2,5%, 5%, 10%, e 20% da

FAD. Após 96 horas, todos os peixes foram dissecados e tiveram

seus fígados e brânquias removidos para análises da atividade

enzimática da CYP1A (EROD), glutationa S-transferase (GST),

glutationa redutase (GR), glutationa peroxidase (GPx), glicose 6-

fosfato desidrogenase (G6PDH), superóxido dismutase (SOD),

catalase (CAT). Os peixes expostos à concentração de 20% de

FAD apresentaram um aumento na atividade GST, GR e EROD

no fígado. As brânquias apresentaram um aumento na atividade

GST nas concentrações de 10% e 20% da FAD, enquanto a

atividade EROD aumentou nas concentrações de 2,5%, 10% e

20%. Esse aumento indica uma adaptação do sistema de

biotransformação desses organismos para detoxificação dos

hidrocarbonetos alifáticos e aromáticos tipicamente encontrados

no óleo diesel. O aumento da atividade EROD concomitante com

atividade GST sugere um sinergismo entre a fase I e II de

biotransformação para detoxificar os hidrocarbonetos. O aumento

da atividade GR no fígado pode ser um mecanismo

compensatório devido a um estado pró – oxidante promovido

durante fase I de biotransformação. Entretanto, as enzimas SOD

e CAT, que podem indicar um possível estresse oxidativo, não

apresentaram mudanças na atividade enzimática.

Palavras-chave: biotransformação, óleo diesel, Poecilia vivipara

ABSTRACT

Diesel oil is a potential contaminant of estuarine and mangrove

areas, especially, because it is the main fuel used in vessels. In

addition, offshore oil exploration, production and transport pose

serious risks to the marine environment. The aim of this study

was identify the effects of different concentrations of Diesel Oil

Water Accommodated Fraction (FAD) in the biotransformation

and enzymatic antioxidant defense system in the fish Poecilia

vivipara. To verify the effects in the biotransformation and

antioxidant enzymes, the fishes were separated in five groups;

one group was maintained as control e the others were exposed

to 2,5%, 5%, 10% e 20% of FAD. After 96 hours, all fishes were

dissected and livers and gills were separated for analysis of

CYP1A (EROD), Glutathione S-transferase (GST), Glutathione

Reductase (GR), Glutathione Peroxidase (GPx), Glucose 6-

phosphate dehydrogenase (G6PDH), Superoxide dismutase

(SOD), Catalase (CAT) enzymatic activity. Fish exposed to 20%

of FAD showed an increase in the GST, GR and EROD

enzymatic activity in liver. The gills showed an increase in GST

activity in the 10% and 20% FAD concentrations, while EROD

activity increased in the 2.5%, 10% e 20% FAD concentrations.

These increases indicate a biotransformation system adaptation

of these organisms to detoxify the aliphatic and aromatic

hydrocarbons typically found in the diesel oil. The concomitant

increase in EROD and GST activity suggest a synergism between

phase I and II of biotransformation to detoxify the hydrocarbons.

The GR activity in the liver can be a compensatory mechanism

against a pro-oxidant state promoted by the first step of

biotransformation. However, the enzymes SOD and CAT, that

can indicate oxidative stress, did not show any change in

enzymatic activity.

Keywords: biotransformation, diesel oil, Poecilia vivipara

4 INTRODUÇÃO

A poluição marinha é definida como a introdução de

substâncias tóxicas ou de energia oriundos da atividade

antrópica em um ambiente marinho, incluindo estuários,

resultando em um efeito deletério para os recursos vivos e danos

para a saúde humana (GESAMP, 1991).

As substâncias tóxicas, por não comporem a bioquímica

usual de um organismo, são também denominadas xenobióticos.

Os xenobióticos estão em constante aumento no ambiente, tanto

em sua quantidade, quanto em sua variedade (LIVINGSTONE,

1993; WALKER et al., 1996).

Dentre os diferentes tipos de xenobióticos, os derivados de

petróleo são alguns dos mais relevantes para a ecotoxicologia

aquática (PACHECO; SANTOS, 2001a) e têm causado bastante

preocupação, tanto pela freqüência dos eventos de

contaminação como pelo elevado potencial poluidor dos seus

compostos. Embora grandes vazamentos de petróleo sejam

preocupantes e ocupem grande espaço na mídia, estima-se que

a principal fonte de contaminação por petróleo e seus derivados

seja causada por pequenos e contínuos vazamentos de

combustíveis em postos de distribuição devido ao

envelhecimento dos tanques de combustíveis (TIBURTIUS et al.,

2005).

Dentre os derivados do petróleo, o óleo diesel merece

destaque em termos de risco ambiental por ser continuamente

lançado nos ambientes costeiros em função de seu uso como

combustível de embarcações, veículos rodoviários e máquinas

em geral (KENNISH, 1992; FILHO, 2006).

O óleo diesel é composto basicamente por hidrocarbonetos

alifáticos (HAs), principalmente parafinas, além de apresentar

uma pequena porcentagem de hidrocarbonetos policíclicos

aromáticos (HPAs) (NEFF, 2002). Embora pouco representativos

em relação aos HAs, os HPAs têm sido identificados como os

componentes do óleo que apresentam elevado risco ao

ambiente, sendo diretamente relacionados a processos

carcinogênicos (AAS et al., 2000). Estudos realizados em

Prochilodus lineatus expostos à Fração do óleo diesel

acomodada em água mostraram a ocorrência de lesões em

brânquias e fígado, redução na hemoglobina e anormalidades

nos eritrócitos como micronúcleos e quebras no DNA

(SIMONATO; GUEDES; MARTINEZ, 2008; VANZELLA;

MARTINEZ; CÓLUS, 2007). Um outro estudo, realizado com

Carassius auratus expostos à fração acomodada em água do

óleo diesel, mostrou mudanças na atividade de enzimas

pertencentes às defesas antioxidantes e na enzima glutationa S-

transferase (GST) (ZHANG et al., 2004).

Em peixes, a biotransformação de HPAs ocorre

principalmente no fígado e envolve enzimas do retículo

endoplasmático como as oxigenases de função mista (MFOs) e

Citocromos P450 (CYPs) associados a atividade Etoxiresorufina

O-deetilase (EROD). Os metabólitos resultantes da fase I de

biotransformação se tornam substratos mais adequados para

reações de conjugação com sulfato, ácido glicorônico, glutationa

ou aminoácidos que compõem a fase II de biotransformação

(INSAUSTI et al., 2009; ZAMEK-GLISZCZYNSKI et al., 2006).

Essas reações de conjugação aumentam a hidrosolubilidade, a

carga negativa e o peso molecular dos xenobióticos, reduzindo

sua permeabilidade a membrana plasmática. Dessa forma, é

necessário a existência de proteínas carreadoras de membrana

que transportem essas substâncias para o sangue sinosoidal,

para posterior excreção via urina, ou para os canalículos

(excreção via bile) (ZAMEK-GLISZCZYNSKI et al., 2006). O

processo de transporte de xenobióticos pelas proteínas de

membrana é denominado como fase III de biotransformação

(KEPPLER; RINGWOOD, 2001).

Além das fases I, II, III de biotransformação, existe um

importante conjunto de enzimas e moléculas responsáveis pelas

defesas antioxidantes celulares. As defesas antioxidantes atuam

protegendo as células contra os efeitos deletérios de espécies

reativas de oxigênio (EROs), que podem ser geradas pelos

contaminantes ou no processo de biotransformação desses

contaminantes. As defesas antioxidantes podem ser não

enzimáticas como por exemplo, o tripeptídeo glutationa reduzida

(GSH), ou enzimáticas, como as enzimas superóxido dismutase

(SOD), catalase (CAT), glutationa peroxidase (GPx), glutationa

redutase (GR) e glicose 6-fosfato desidrogenase (G6PDH)

(BRAY; LEVY, 2000).

A atividade enzimática e expressão gênica das enzimas do

sistema de biotransformação e antioxidantes podem ser

utilizadas como biomarcadores. Os biomarcadores são definidos

por Walker et al. (1996) como alterações biológicas em nível

molecular, celular ou fisiológico que expressam os efeitos tóxicos

causados pelos contaminantes nos organismos expostos.

A inclusão dos biomarcadores nos programas de

biomonitoramento ambiental possui a vantagem de representar

um menor custo, maior facilidade e rapidez do que as análises

químicas convencionais (GALLOWAY et al., 2004). Nestes

programas, recomenda-se o uso de organismos sentinela,

bioindicadores e monitores de contaminação; a realização de

análises químicas, que determinam analiticamente a

concentração dos contaminantes; a utilização dos biomarcadores

de contaminação aquática, que refletem os impactos destes

contaminantes nos organismos (ICES, 2004).

Entre os programas de biomonitoramento realizados na

região costeira do Brasil podem ser citados: o projeto MOMAM

(Monitoramento do Ambiente Marinho) estabelecido em 1997 e

coordenado pelo Instituto de Estudos do Mar Almirante Paulo

Moreira (IEAPM – Ministério da Marinha) (VENTURA et al., 2004)

e o projeto RECOS-QIABO (Recursos Costeiros – Qualidade

Ambiental; Institutos do Milênio, Ministério da Ciência e

Tecnologia) (ZANETTE et al., 2006).

Apesar das vantagens no uso de biomarcadores nos

programas de biomonitoramento, na maioria das vezes a

especificidade das respostas dos biomarcadores para as

diferentes classes de contaminantes não é muito clara

(GALLOWAY et al., 2004). Desta forma, são necessários mais

estudos para definir a especificidade dos biomarcadores, bem

como elucidar os mecanismos de toxicidade de diferentes

classes de contaminantes em espécies nativas para seu uso em

programas de biomonitoramento.

Tendo em vista o risco ambiental associado à atividade da

indústria petrolífera e a necessidade de programas de

monitoramento eficazes na avaliação da qualidade ambiental,

esse estudo avaliou biomarcadores bioquímicos clássicos para

verificar os efeitos biológicos no peixe Poecilia vivipara expostos

à fração do óleo diesel acomodada em água (FAD).

5 OBJETIVOS

1. Avaliar a bioacumulação de hidrocarbonetos no peixe

Poecilia vivipara exposto à fração do óleo diesel acomodada em

água (FAD).

2. Analisar a atividade de enzimas pertencentes a defesa

antioxidante e as fases I, II de biotransformação no fígado e

brânquias de peixes Poecilia vivipara expostos a FAD.

3. Relacionar os resultados da bioacumulação nos tecidos

com as respostas bioquímicas encontradas no peixe Poecilia

vivipara exposto a FAD.

6 MATERIAIS E MÉTODOS

6.1 Coleta dos Peixes Poecilia vivipara

Os exemplares de P. vivipara (Bloch; Schneider, 1801)

foram coletados nos tanques de cultivo de peixes do laboratório

de Piscicultura Marinha, Departamento de Aqüicultura, localizado

na Barra da Lagoa, Florianópolis, SC, em local onde foram

encontrados em grande abundância. Para a coleta dos animais,

foi utilizada uma armadilha (Minnowtrap) utilizando ração para

peixe como atrativo.

Os peixes foram transportados ao Laboratório de

Biomarcadores de Contaminação Aquática e Imunoquímica

(LABCAI), CCB, UFSC. Neste laboratório, os animais foram

aclimatados por 60 dias em água do mar filtrada (0,45µm), a

21°C, com salinidade 25, com aeração constante e submetidos a

um fotoperíodo de 12:12 horas. Durante este período, os peixes

receberam ração peletizada para peixes duas vezes ao dia e

50% da água dos aquários foi renovada diariamente. Os

procedimentos adotados para coleta, transporte e aclimatação

dos peixes seguiu protocolo CEUA PP00266 no qual está

anexada a autorização do IBAMA.

6.2 Preparação da fração do óleo diesel acomodada em

água (FAD)

Amostras de óleo diesel comercial foram obtidas junto a

postos de abastecimento de combustíveis.

A Fração do óleo diesel acomodada em água (FAD) foi

obtida conforme metodologia descrita por Singer e colaboradores

(2000). Em um frasco de vidro (mariote) com capacidade para 14

litros foi preparada uma solução óleo diesel:água do mar filtrada

na proporção de 1:9. Ao frasco foi acoplado um homogeneizador

de tecidos (Glas-Col) modificado, no qual um pistilo de aço

inoxidável de 47cm de altura atuou como uma “pá

homogeneizadora”. Para obtenção da FAD, este frasco foi

envolto com papel alumínio para evitar a penetração de luz e a

rotação do homogeneizador foi ajustada para 140rpm durante 23

horas a 21°C. Depois de cessar a agitação, o frasco foi deixado

pelo período de 1 hora para estabilização.

A solução aquosa obtida foi imediatamente utilizada nos

testes de exposição à Fração do óleo diesel acomodada em

água (FAD).

6.3 Exposição dos peixes Poecilia vivipara a diversas

concentrações da FAD

Após a obtenção da FAD, foi conduzido um teste de

toxicidade aguda por 96 horas a fim de selecionar as

concentrações da FAD que apresentassem efeitos na atividade

das enzimas analisadas neste estudo. Após selecionada essa

concentração, uma nova exposição foi realizada para obtenção

de tecidos visando à identificação de novos biomarcadores

moleculares de contaminação em P. vivipara (Capítulo 2).

Os testes foram realizados em aquários de vidro com

capacidade para 15 litros, em duplicata, com 10 animais em cada

aquário (um peixe por litro de água). Foram testadas quatro

concentrações de FAD: 2,5%, 5%, 10% e 20%, conforme

sugerido pelo Prof. Dr. Charrid Resgalla (Univali).

Um grupo controle também foi utilizado, no qual os animais

foram expostos somente à água do mar. Durante o teste, os

animais foram mantidos em jejum com temperatura e aeração

constantes e com um fotoperíodo de 12:12 horas.

Ao término das 96 horas de exposição, não foi observada

letalidade para os peixes em nenhuma das concentrações

utilizadas. Dessa forma, amostras de fígados e brânquias de

todos os animais foram dissecadas e armazenadas. O restante

dos tecidos foi acondicionado em papel alumínio e armazenado

em freezer -80°C para análise química.

6.4 Análise Química

O procedimento metodológico descrito a seguir foi baseado

em Macleod et al. (1986) com algumas modificações.

Aproximadamente 5 g das amostras dos peixes inteiros foram

secos e macerados com sulfato de sódio anidro (J.T. Baker), que

foi calcinado por 4 h a uma temperatura de 440

C. Esse

homogenato foi colocado em cartucho de vidro com placa

sinterizada e extraído em soxhlet durante 8 h com n-hexano e

diclorometano 50% (v/v). O grau de pureza dos solventes

utilizado foi “grau para análise de resíduos orgânicos”, ambos da

J. T. Baker (Estados Unidos). Antes da extração foram

adicionados 100 µL de uma mistura de naftaleno-d

, acenafteno-

, fenantreno-d

, criseno-d

e perileno-d

(5 ng µL

-1

) e n-

hexadeceno e n-eicoseno (50 ng µL

-1

) como padrões internos em

cada uma das amostras e no branco.

O extrato evaporado foi submetido a uma coluna

cromatográfica contendo 8 gramas de sílica gel sobre 16 g de

alumina (ambas da Merck), 5% desativadas com água pré-

extraída 5 vezes com n-hexano, e 1 g de sulfato de sódio. A

eluição foi feita com 40 mL de n-hexano para análise dos

hidrocarbonetos alifáticos e uma mistura de n-hexano e

diclorometano (50%) para análise dos hidrocarbonetos

policíclicos aromáticos (HPAs). Para purificação complementar, o

eluato da F2 foi concentrado a 0,5 mL e injetado no cromatógrafo

líquido de alto desempenho (HPLC) (Perkin Elmer) equipado com

duas colunas de exclusão (permeação em gel). A fase móvel

utilizada foi o diclorometano. Os padrões internos tetradeceno e

benzo(b)fluoranteno-d12 foram adicionados nos eluatos

concentrados F1 e F2 com volume de 1 mL, respectivamente.

Uma alíquota da F1 foi injetada no cromatógrafo a gás

equipado com detector de ionização de chama (GC-FID), (Agilent

Technologies) para hidrocarbonetos alifáticos. Os HPAs foram

analisados no cromatógrafo a gás equipado com espectrômetro

de massas (GC-MS), 6890/5973N (Agilent Technologies).

As temperaturas do injetor e detector do GC-FID foram de

300

C e 325

C, respectivamente. O gás de arraste foi o

hidrogênio ultrapuro e o gás auxiliar foi o nitrogênio. A coluna

cromatográfica era de 30 metros de comprimento, diâmetro

interno de 0,25 mm e espessura do filme de 5% fenilmetilsiloxana

de 0,5 µm (J&W Scientific). As temperaturas do GC-MS foram de

280, 280 e 300

C no injetor e na interface e na fonte de íons,

respectivamente. A coluna cromatográfica utilizada foi da J&W

Scientific com 30 metros de comprimento, 0,25 mm de diâmetro

interno e 0,25 µm de espessura de filme de 5%’fenilmetilsiloxana.

O modo de aquisição foi o SIM (monitoramento seletivo de íons).

A rampa de temperatura para PCBs foi: início a 75

C durante 3

min, aumento a uma taxa de 15

C até 150

C e a 2

C até 260

e a 20

C até 300

C permanecendo constante durante 1 min. A

rampa tanto para os AHs quanto para os HPAs teve início em

C com aumento a taxa de 20

C até 60

C e a 5

C min até

290

C onde permaneceu por 5 min e aumento a 10

C até 300

onde permaneceu constante durante 10 min.

A identificação AHs e HPAs foi feita por comparação dos

tempos de retenção com padrões de referência da Accustandard,

EUA. Os compostos analisados no GC-MS também foram

identificados através do espectro de massas. A quantificação foi

feita por razões entre os padrões internos e os compostos de

interesse, baseada nas curvas analíticas montadas com pelo

menos 05 concentrações diferentes de cada grupo de

compostos.

6.5 Biomarcadores bioquímicos

6.5.1 Preparação das amostras

As amostras de fígados e brânquias de peixes expostos às

diferentes concentrações de FAD foram descongeladas sobre

gelo, pesadas e homogeneizadas em quatro vezes o volume de

tampão de homogeneização, utilizando o homogeneizador tipo

Potter (Glas-Col), e centrifugadas a 9.000 x g a 4°C por 30 min.

O sobrenadante foi então submetido a uma nova centrifugação a

39.000g por 90 min. O sobrenadante (fração citosólica),

resultante dessa última centrifugação, foi separado em alíquotas

e congelado em -80°C para análise do biomarcadores

bioquimicos, enquanto o pellet contendo as microssomas (fração

microssomal) foi ressuspendido em tampão para microssoma

(citrato de sódio 0,1M pH 7,6 contendo KCl 0,1M, glicerol 30%

(v/v) e ditiotreitol 1mM), separado em alíquotas e estocado em

freezer -80°C, para a análise da atividade EROD

6.5.2 Determinação da concentração de proteínas

A concentração de proteínas totais presentes na fração

citosólica e microssomal foi determinada de acordo com Lowry

modificado por Peterson (1977), utilizando-se soro albumina

bovina como padrão. O ensaio foi realizado em microplaca. Os

resultados dessa análise foram utilizados para normalizar os

dados da atividade enzimática.

6.5.3 Superóxido dismutase (SOD)

A atividade da SOD foi determinada segundo a

metodologia descrita por Mccord e Fridovich (1969), que se

baseia na inibição da redução do citocromo c pelo O

-·

, produzida

pelo sistema xantina/xantina oxidase. Esta inibição é medida

através do aumento de absorbância em 550nm, a 25°C.

6.5.4 Catalase (CAT)

A atividade da catalase foi analisada de acordo com o

método descrito por Beutler (1975). Nesta metodologia, o

decréscimo de absorbância associado à velocidade de

degradação do peróxido de hidrogênio (H

) em água e

oxigênio molecular foi registrado a 240 nm.

6.5.5 Glutationa redutase (GR)

A atividade da glutationa redutase baseou-se no método

descrito por Carlberg e Mannervik (1985). Ao reduzir o substrato

glutationa dissulfidica (GSSG), a GR oxida NADPH, que pode ser

monitorado pelo decréscimo de absorbância no comprimento de

onda de 340nm. Assim, a velocidade de consumo de NADPH

expressa a atividade desta enzima.

6.5.6 Glutationa peroxidase (GPx)

A atividade desta enzima foi acompanhada indiretamente

pelo desaparecimento do NADPH. A GPx utiliza glutationa

reduzida (GSH) para reduzir um peróxido orgânico, como o

peróxido de cumeno (Cu-OOH), originando glutationa

dissulfidica (GSSG) no final da reação. A GSSG é reduzida pela

enzima glutationa redutase (GR) utilizando elétrons doados pelo

NADPH. A taxa de oxidação de NADPH foi acompanhada

espectrofotometricamente a 340nm (WENDEL, 1981).

6.5.7 Glutationa S-transferase (GST)

A atividade de GST foi determinada de acordo com Keen,

Habig e Jakoby (1976) por um ensaio que utiliza o 1-cloro-2,4-

dinitrobenzeno (CDNB) como substrato. O CDNB, após a

glutationação, sofre uma mudança nas suas propriedades

espectrofotométricas que foi monitorado em 340nm por 2

minutos.

6.5.8 Glicose 6-fosfato desidrogenase (G6PDH)

A atividade da G6PDH foi determinada através do aumento

de absorbância em 340nm provocado pela redução de NADP

NADPH (GLOCK; MCLEAN, 1953).

6.5.9 Etóxi-resorufina O-Deetilase (EROD)

A atividade da EROD foi analisada

espectrofluorimetricamente medindo o aumento da fluorescência

da resorufina (Ex/Em 530/585). As concentrações no ensaio

foram: NADPH 1,67 mM; Etóxi-resorufina 2 uM; TRIS 50 mM,

pH7,8. A atividade da EROD foi analisada na fração

microssomal.

6.5.10 Análises estatísticas

Os dados obtidos foram analisados estatisticamente quanto

a normalidade dos dados e homocedacidade das variâncias. O

teste de hipótese utilizado foi o teste paramétrico One-way

ANOVA (5%), seguido do pós teste de Dunett (5%), quando

necessário. Todas as análises estatísticas foram realizadas com

os software Statistica 6.1. e para a apresentação dos gráficos foi

utilizado o software GraphPad Prism 5.0. Todos os dados estão

apresentados na forma de média e desvio padrão.

7 RESULTADOS

7.1 Análise química de hidrocarbonetos alifáticos em P.

vivipara

A Tabela 1 mostra as concentrações de hidrocarbonetos

alifáticos em amostras de P.vivipara submetidas a diferentes

porcentagens da FAD durante 96 horas. As concentrações de

hidrocarbonetos alifáticos variaram de 3,91 a 390 µg.g

-1

(Tabela

1). A interpretação da presença de hidrocarbonetos alifáticos

requer o auxílio de alguns parâmetros úteis para distinguir se são

provenientes de origem biogênica ou antropogênica. Os

parâmetros estão apresentados na Tabela 1; são eles: n-alcanos

totais, razão pristano/fitano e mistura complexa não resolvida

(MCNR).

As concentrações de n-alcanos totais nos peixes expostos

apresentaram um intervalo de 1,55 a 14,3 µg g

-1

e uma amostra

controle com 1,10 µg g

-1

. A amostra exposta a 5% da FAD

apresentou uma contaminação que impossibilitou a análise de

hidrocarbonetos (Tabela 1).

As Figuras 1 e 2 mostram semelhanças quando se

compara o perfil de distribuição de n-alcanos da amostra controle

e da amostra exposta 2,5% da FAD. Apesar das baixas

concentrações, é possível observar que existe uma

predominância de n-alcanos ímpares tanto leves (n-C

e n-C

)

quanto pesados (n-C

, n-C

Tabela 1. Concentração de hidrocarbonetos alifáticos (µg.g

-1

peso

seco): n-alcanos, pristano e fitano, Alifáticos totais e resolvidos, alcanos

totais, razão pristano/fitano e MCNR em amostras de Poecilia vivipara

expostas por a fração do óleo diesel acomodada em água (FAD).

Legenda: n.d.(não detectado); n.c. (não foi possível medir devido a

contaminação).

HAs Controle

2,5% 5,0% 10% 20%

C12

n.d. n.d. n.c. n.d. 0,369

C13

n.d. n.d. n.c. 0,171 0,919

C14

n.d. 0,184 n.c. 0,32 1,264

C15

0,105 0,143 n.c. 0,447 1,578

C16

n.d. 0,362 n.c. 0,525 1,416

C17

0,137 0,145 n.c. 0,343 1,462

C18

n.d. n.d. n.c. 0,096 1,021

C19

n.d. n.d. n.c. 0,21 1,095

C20

n.d. 0,261 n.c. 0,355 0,855

C21

n.d. n.d. n.c. 0,145 0,888

C22

n.d. n.d. n.c. 0,121 0,702

C23

n.d. n.d. n.c. 0,093 0,507

C24

n.d. n.d. n.c. n.d. 0,417

C25

0,181 0,117 n.c. n.d. 0,306

C26

n.d. n.d. n.c. n.d. 0,288

C27

n.d. n.d. n.c. 0,109 0,29

C28

n.d. n.d. n.c. n.d. 0,214

C29

0,191 0,158 n.c. 0,274 0,378

C30

n.d. n.d. n.c. n.d. n.d.

C31

0,272 0,181 n.c. 0,249 0,244

C32

n.d. n.d. n.c. n.d. n.d.

C33

0,215 n.d. n.c. 0,161 0,131

C34

n.d. n.d. n.c. n.d. n.d.

Pristano

0,271 0,825 n.c. 1,71 4,22

Fitano

0,241 0,487 n.c. 0,972 2,42

Alifaticos Totais

3,91 9,05 n.c. 29,1 390

Alifaticos Resolvidos

3,91 9,05 n.c. 29,1 88,8

Alcanos Totais

1,1 1,55 n.c. 3,62 14,3

pristano/fitano

1,1 1,7 n.c 1,8 1,7

MCNR

n.d. n.d. n.c. n.d. 301

Figura 1. Perfil de distribuição dos n-alcanos em peixes

Poecilia vivipara controle. O gráfico mostra a presença de n-alcanos

ímpares de cadeia leve (n-C

e n-C

) e pesada (n-C

, n-C

, n-

, n-C

Figura 2. Perfil de distribuição dos n-alcanos em amostra de

peixes Poecilia vivipara expostos durante 96 horas a 2,5% da FAD. O

gráfico mostra a presença de n-alcanos ímpares de cadeia leve (n-C

n-C

), pesada (n-C

, n-C

) e alcanos pares n-C

n-C

Os peixes expostos a 10 e 20% da FAD mostraram

ausência de predominância de n-alcanos de cadeia par ou ímpar

(Figura 3 e 4).

Além dos n-alcanos, pode-se avaliar a presença

individual de alguns hidrocarbonetos alifáticos ramificados como

o pristano e fitano. As amostras expostas durante 96 horas

apresentaram razões pristano/fitano de 1,1 (controle), 1,7 (2,5%),

1,8 (10%) e 1,7 (20%) (Tabela 1).

Figura 3. Perfil de distribuição dos n-alcanos em amostra de peixes

Poecilia vivipara expostos durante 96 horas a 10% da FAD. O gráfico

mostra ausência de predominância de n-alcanos de cadeia par ou

impar.

Figura 4. Perfil de distribuição dos n-alcanos em amostra de peixes

Poecilia vivipara expostos durante 96 horas a 20% da FAD. O gráfico

mostra ausência de predominância de n-alcanos de cadeia par ou

impar.

Um indicador muito importante da presença de

hidrocarbonetos do petróleo na análise por cromatografia em fase

gasosa é a elevação na linha de base do cromatograma causada pela

Mistura Complexa Não Resolvida (MCNR) (FARRINGTON et al.,

1977). Foi detectada a presença de Mistura Complexa Não Resolvida

(MCNR) somente na amostra exposta a 20% da FAD (Figura 5), que

se apresenta diferente da amostra controle (Figura 6)

FID1 A, (AFONSO\ORGAN_P.D)

C12

C13

Tetradeceno

C14

C15

Hexadeceno

C16

C17

pristano

C18

fitano

C19

Eicoseno

C20

C21

C22

C23

C24

C25

C26

C27

C28

C29

C30

C31

C32

C33

Figura 5. Cromatograma da amostra de peixe Poecilia vivipara exposto

durante 96 horas a uma concentração contendo 20% da FAD. O gráfico

mostra uma elevação na linha base do cromatograma.

FID1 A, (AFONSO\ORGAN_H.D)

C12

C13

Tetradeceno

C14

C15

Hexadeceno

C16

C17

pristano

C18

fitano

C19

Eicoseno

C20

C21

C22

C23

C24

C25

C26

C27

C28

C29

C30

C31

C32

C33

Figura 6. Cromatograma da amostra de peixe Poecilia vivipara controle. O

gráfico mostra a estabilidade da linha base do cromatograma.

7.2 Análise química de hidrocarbonetos aromáticos em P.

vivipara

A Tabela 2 mostra as concentrações de hidrocarbonetos

policíclicos aromáticos (HPAs) nas amostras de peixes expostos

a diversas concentrações da FAD. O controle do experimento

apresentou uma concentração mais alta de HPAs totais do que

os peixes expostos a 2,5% da FAD (tabela 2). Considerando

todas as concentrações da FAD, os HPAs mais abundantes no

tecido de peixes P. vivipara continham 2 ou 3 anéis aromáticos,

sendo representados pelas formas metiladas e etiladas do

naftaleno, seguidas pelo bifenil, fluoreno e fenantreno. A análise

de correlação (tabela 3) mostrou correlações entre a FAD e as

enzimas EROD, GST no fígado e GST na brânquia. Além disso,

existe correlação entre a FAD e os HPA total.

Tabela 2. Concentração de hidrocarbonetos aromáticos (ng.g

-1

peso

seco) em amostras de Poecilia vivipara expostos durante 96 horas a

diferentes concentrações da fração do óleo diesel acomodada em água

(FAD). Legenda: n.d (não detectado).

HPAs Controle

2,5%

5,0%

10% 20%

Naftaleno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Σmetilnaftalenos

198,3 67 213 656 1883

Bifenil

n.d. 11,1 34,8 229 487

Σetilnaftalenos

8,49 37,9 118 404,9

924

Σdimetilnaftalenos

117 52,5 368 1631 3784

Acenaftileno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Acenafteno

n.d. n.d. 9,86 30,8 73,5

Σtrimetilnaftalenos

16,5 65,7 218 689 914

Fluoreno

9,89 n.d. 17,2 64,3 185

Σmetilfluorenos

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Dibenzotiofeno

2,67 n.d. n.d. 11,5 34,3

Fenantreno

10,8 n.d. 5,03 26,4 108

Antraceno

n.d. n.d. n.d. 7,8 n.d.

Σdimetilfluorenos

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Σmetildibenzotiofenos

n.d. n.d. 3,14 6,86 17

Σdimetilfenantrenos

n.d. n.d. n.d. 25,8 90

Σmetilfenantrenos

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Fluoranteno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Pireno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Σmetilfluorantenos

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Reteno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Σmetilpireno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Benzo(c) Fenantreno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Benzo(a)Antraceno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Criseno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Σmetilcriseno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Dimetilcriseno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Benzo(b)fluoranteno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Benzo(j)fluoranteno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Benzo(k)fluoranteno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Benzo(e)pireno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Benzo(a)pireno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Perileno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Indeno [1,2,3-c,d]pireno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Dibenzo(a,h)antraceno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Benzo(b)criseno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Benzo(g,h,i)perileno

n.d. n.d. n.d. n.d. n.d.

Σ HPAs 364 234 986 3783 8499

Tabela 3. Correlação entre a FAD, HPA total e as análises bioquímicas

em peixes Poecilia vivipara expostos durante 96 horas a diferentes

concentrações da fração do óleo diesel acomodada em água (FAD). Os

valores em negrito mostram o coeficiente de Pearson com significância

de p<0,05. Os parâmetros bioquímicos ausentes não atingiram a

significância estatística de p<0,05.

FAD HPA GST fig GST bra

EROD fig

FAD

0,99

0,97

0,93

0,92

HPA

0,99

0,96

0,89

GST fig

0,97

0,96

0,89

0,98

GST bra

0,93

0,89

0,86

EROD fig

0,92

0,89

0,98

0,86

7.3 Biomarcadores bioquímicos em peixe P. vivipara

Peixes da espécie P. vivipara foram expostos a quatro

diferentes concentrações de FAD (2,5%, 5%, 10% e 20%) por 96

horas e nenhuma letalidade foi observada. Dessa forma, 10

amostras de peixes de cada concentração foram utilizadas para

avaliação dos biomarcadores bioquímicos. Nesses ensaios foram

analisadas a atividade da enzima superóxido dismutase (SOD),

catalase (CAT), glutationa peroxidase (GPx), glutationa redutase

(GR), glicose-6-fosfato desidrogenase (G6PDH), glutationa S-

transferase (GST) e Etóxi-resorufina O-deetilase (EROD) na

brânquia e fígado dos peixes.

Na brânquia a atividade das enzimas GST e EROD foram

as únicas que apresentaram diferenças significativas em relação

ao grupo controle (Figura 8). A atividade da GST apresentou um

aumento nos grupos expostos a 10% e 20% da FAD (Figura 8),

enquanto a atividade EROD aumentou nas concentrações de

2,5% 10% e 20% da FAD (Figura 9).

Figura 7. Atividade das enzimas superóxido dismutase (SOD), catalase

(CAT), glutationa peroxidase (GPx), glutationa redutase (GR), glicose-6-

fosfato desidrogenase (G6PDH) e glutationa S-transferase (GST) em

brânquias de peixes Poecilia vivipara expostos a diferentes

concentrações da fração do óleo diesel acomodada em água (FAD) por

96 h. As barras demonstram diferenças significativas (p<0,05) em

relação ao grupo controle e os dados estão apresentados na forma de

média e desvio padrão.

No fígado, a atividade GR, GST e EROD apresentou um

aumento significativo na concentração de 20% da FAD em

relação ao grupo controle (Figura 8 e 10).

As demais enzimas não apresentaram alterações

significativas na atividade enzimática.

Figura 8. Atividade das enzimas superóxido dismutase (SOD), catalase

(CAT), glutationa peroxidase (GPx), glutationa redutase (GR), glicose-6-

fosfato desidrogenase (G6PDH) e glutationa S-transferase (GST) em

fígado de peixes Poecilia vivipara expostos a diferentes concentrações

da fração do óleo diesel acomodada em água (FAD) por 96 h. As barras

demonstram diferenças significativas (p<0,05) em relação ao grupo

controle e os dados estão apresentados na forma de média e desvio

padrão.

Figura 9. Atividade EROD na brânquia (esquerda) e fígado (direita) de

peixes Poecilia vivipara expostos a diferentes concentrações da fração

do óleo diesel acomodada em água (FAD) por 96 h. As barras

demonstram diferenças significativas (p<0,05) em relação ao grupo

controle e os dados estão apresentados na forma de média e desvio

padrão.

8 DISCUSSÃO

8.1 Análise Química

Os diferentes tipos de petróleo apresentam em sua

composição uma gama de n-alcanos variando de 1 a 40 átomos

de carbono, caracterizados pela ausência de uma dominância

ímpar ou par no número de carbonos nas cadeias moleculares

(SIMONEIT, 1993). Segundo Bishop (1983), os produtos

derivados do petróleo caracterizam-se pela presença de n-

alcanos dentro de uma faixa mais restrita de peso molecular, em

decorrência dos processos de refino.

A predominância de n-alcanos ímpares leves e pesados

nas amostras controle e exposta a 2,5% da FAD (Figura 2 )

sugere que P. vivipara pode ter ingerido fitoplâncton (n-C

e n-

), bem como de plantas superiores (n-C

, n-C

n-C

) do ambiente onde foram coletadas (VOLKMAN et al.,

1992).

Os peixes expostos a 10 e 20% da FAD mostraram perfis

típicos da influência do óleo diesel. A ausência de predominância

de hidrocarbonetos alifáticos de cadeia par ou impar nas

amostras de peixe mostra que houve acumulação da FAD nos

peixes expostos a 10 e 20% da FAD (Figura 3 e 4).

Quanto a Mistura Complexa Não Resolvida (MCNR), a

amostra exposta a 20% da FAD apresentou um aumento na linha

base do cromatograma em relação ao controle (Figura 5 e 6),

mostrando que os organismos expostos acumularam os

hidrocarbonetos dessa mistura. Essa elevação é caracterizada

por uma mistura de compostos ramificados e cíclicos presentes

no petróleo e que não podem ser separados pela técnica

utilizada nesse estudo. A MCNR está associada a compostos do

óleo que são resistentes à degradação. Enquanto os compostos

com estruturas mais simples degradam-se mais facilmente, essa

mistura tende a acumular-se principalmente nos sedimentos

(VOLKMAN et al., 1992), mas já foi observado também em

alguns organismos como macrófitas e bivalves.

O pristano e o fitano são os isoprenóides mais abundantes

no óleo diesel e podem ser encontrados em sedimentos

contaminados, pois são mais resistentes a biodegradação que os

alcanos lineares correspondentes (ROSA, 2001). As

concentrações de pristano e fitano aumentaram conforme

aumentava a concentração de FAD utilizada (Tabela 1) ,

indicando que os peixes bioacumularam esses compostos. Além

disso, a amostra controle também apresentou contaminação por

esses isoprenóides, mostrando que o ambiente onde os peixes

foram coletados apresentava a presença desses compostos,

mesmo que em baixa concentração.

A correlação positiva entre a concentração de HPAs totais

no tecido dos peixes e concentração de FAD utilizada no

tratamento (Tabela 3), indica que houve acumulação de HPAs

pelos peixes. A amostra controle apresentou níveis de HPAs

similares às dos peixes do grupo exposto a 2,5%, o que sugere

que o ambiente onde os peixes foram coletados possivelmente

possuía um aporte destes compostos.

8.2 Biomarcadores Bioquímicos em P. vivipara

A natureza lipofílica dos hidrocarbonetos encontrados no

óleo diesel possibilita uma rápida absorção destes pelos

organismos aquáticos através das membranas lipídicas das

brânquias, pele e trato digestivo. Após a absorção, a ação destes

compostos vai depender de sua susceptibilidade à

biotransformação (ZANETTE, 2009).

Compostos dificilmente biotransformados tendem a ser

acumulados nos tecidos, em especial o tecido adiposo. Aqueles

passíveis de biotransfomação serão convertidos a um metabólito

mais hidrossolúvel que o parental, facilitando assim o processo

de excreção (NEBERT; KARP, 2008). Embora o processo de

biotransformação geralmente resulte em detoxificação do

contaminante, a ação das enzimas do complexo Citocromo P450

(CYP450) também podem gerar metabólitos tóxicos que

contribuem para o aumento do risco de câncer, deformações

embrionárias e outros efeitos tóxicos (NEBERT; KARP, 2008).

Esse é o caso de alguns HPAs como o benzo(a)pireno, que após

ser biotransformado pelo CYP450, principalmente CYP1A, gera

metabólitos reativos potencialmente mutagênicos. O HPA

Naftaleno, após o processo de biotransformação de fase I pelo

CYP1A, gera intermediários reativos (naftoquinonas), podendo

causar estresse oxidativo, danos a DNA e lipoperoxidação no

cérebro e no fígado em mamíferos (BAGCHI et al., 2002). Em

peixes, a atividade catalítica do CYP1A (EROD) tem sido

amplamente utilizada como um marcador da exposição a

contaminantes há mais de três décadas (ZANETTE, 2009).

Neste estudo, a brânquia apresentou um aumento na

atividade EROD nas concentrações de 2,5% 10% e 20% da FAD

(Figura 9), enquanto no fígado o aumento foi significativo apenas

na concentração de 20% da FAD (Figura 9). Esse resultado foi

semelhante ao aumento na atividade EROD observado no fígado

de enguias (Anguilla anguilla) expostas a FAD (PACHECO;

SANTOS, 2001a).

O aumento na atividade EROD possivelmente está

relacionado com a modulação transcricional do gene CYP1A pelo

Receptor de Hidrocarboneto Aromático (AHR) ativado pelos

HPAs encontrados na FAD. Resumidamente, a via de ativação

do AHR pode ser descrita assim: 1) a ativação do AHR por um

agonista (HPAs); 2) interação com o translocador nuclear do

receptor AHR (ARNT); 3) translocação do AHR para o núcleo; 4)

ligação nos elementos de resposta a xenobióticos (XRE); 5) a

iniciação da transcrição de inúmeros genes das fases de

biotransformação I (CYPs450) e II (TIMME-LARAGY et al.,

2007). Os HPAs encontrados na FAD deste estudo que podem

se ligar ao receptor AHR são derivados metilados do fenantreno

(VONDRACEK et al., 2007; BARRON; HEINTZ; RICE, 2004).

Outro resultado encontrado nesta dissertação (Capítulo 2),

que corrobora para hipótese de indução da expressão do gene

CYP1A, é a evidência direta da ativação transcricional do gene

CYP1A verificada por Reação em Cadeia da Polimerase

Quantitativa (Q-PCR). Contudo, nada impede que mecanismos

pós-traducionais também estejam envolvidos na modificação da

atividade catalítica do CYP1A (EROD). Esses resultados

reforçam a utilização da atividade EROD e expressão de CYP1A

em programas de biomonitoramento, uma vez que esses

parâmetros já são amplamente utilizados como biomarcadores

da contaminação ambiental por 2,3,7,8-tetraclorodibenzo-p-

dioxina (TCDD), bifenilas policloradas coplanares (PCBs) e HPAs

(GOKSØYR; FÖRLIN, 1992).

O receptor AHR, além de modular a expressão de diversos

genes da fase I de biotransformação, também modula genes da

fase II como a Glutationa S- transferase (GST) e Uridina difosfato

glicoronosil transferase (UDPGT) (ARUKWE; NORDBØ, 2008).

Neste estudo, a atividade GST aumentou em ambos tecidos

(Figura 7 e 8). Outros estudos em peixes dulciaqüícolas expostos

a FAD mostraram um aumento na atividade GST no fígado

(ZHANG et al., 2004; SIMONATO; GUEDES; MARTINEZ, 2008).

Além disso, a GST foi considerada um bom biomarcador para os

compostos presentes no óleo diesel (SIMONATO, GUEDES,

MARTINEZ, 2008). A hipótese de modulação de genes de

biotransformação de fase II pelo receptor AHR pode ser utilizada

para explicar o aumento da atividade GST. Isso porque no

presente estudo também foi encontrado um aumento na

expressão gênica de uma isoforma de GST e de UDPGT após 24

h de exposição a uma concentração de 10% da FAD (Capítulo

2). Apesar da expressão gênica nem sempre significar um

aumento na expressão e atividade de proteínas, os resultados

obtidos sugerem fortemente a modulação da expressão gênica

pelo receptor AHR. O aumento na atividade das enzimas EROD

e GST, inclusive mostrando uma correlação entre essas enzimas

e a concentração de HPA total (Tabela 3), indica uma maior

capacidade de biotransformação das células contra os HPAs

presentes no tecido dos peixes expostos a FAD, uma vez que

estes compostos são potenciais substratos dessas enzimas

(PACHECO; SANTOS, 2001b; ZHANG et al., 2004; SIMONATO;

GUEDES; MARTINEZ, 2008; ARUKWE; NORDBØ, 2008;

NAHRGANG et al., 2009).

O CYP1A durante o processo de biotransformação de

xenobióticos pode produzir espécies reativas de oxigênio e,

dependendo da situação, pode gerar uma situação de estresse

oxidativo (VAN DER OOST; BEYER; VERMEULEN, 2003).

Alguns HPAs encontrados neste estudo, como o naftaleno, após

ser biotransformado pelo CYP1A forma naftoquinonas. As

quinonas são uma classe de moléculas capazes de doar ou

receber elétrons facilmente. Dessa forma, as quinonas podem

participar de reações de oxidoredução, ou seja, são capazes de

se modificar entre uma forma oxidada e outra reduzida em um

ciclo redox. Durante o ciclo redox as quinonas podem receber

elétrons do NADPH e doar esses elétrons para o oxigênio,

formando ânion superóxido. Assim, as quinonas são capazes de

estabelecer um estado pró- oxidativo (FORMAN; ZHANG;

RINNA, 2009). A avaliação de enzimas do sistema de defesa

antioxidante como a Catalase (CAT), Glutationa Peroxidase

(GPx) e Superóxido Dismutase (SOD) é comum em programas

de monitoramento (NAHRGANG et al., 2009).

Neste estudo as atividades das enzimas antioxidantes

SOD, CAT e GPx não foram alteradas pela exposição a FAD

(Figura 7 e 8). Os estudos com peixes expostos a FAD durante

96 horas encontrados na literatura são contraditórios quanto as

alterações na atividade das enzimas antioxidantes. Um estudo

realizado com peixes Carassius auratus expostos a FAD mostrou

um aumento na atividade SOD e diminuição na atividade CAT no

fígado (ZHANG et al., 2004), enquanto outro trabalho realizado

com o peixe Prochilodus lineatus mostrou ausência de alteração

na atividade CAT (SIMONATO; GUEDES; MARTINEZ, 2008). A

discrepância entre esses estudos pode ser atribuída às

diferenças nas concentrações de FAD utilizadas, ou ao uso de

espécies diferentes, sendo P. vivipara uma espécie estuarina e

os demais peixes (Carassius auratus e Prochilodus lineatus)

espécies dulciaquicolas.

Apesar da ausência de alteração na atividade da enzima

SOD, CAT e GPx, a atividade de outra enzima antioxidante, a

Glutationa Redutase (GR), aumentou no fígado na concentração

de 20% da FAD (Figura 9). Embora a GR não esteja diretamente

envolvida na defesa antioxidante, como as enzimas previamente

descritas (CAT, GPx e SOD), essa enzima é responsável pela

manutenção da homeostase do balanço entre glutationa reduzida

e dissulfídica (GSH/GSSG) em situações normais e de estresse

oxidativo. A GR catalisa a transformação da glutationa

dissulfídica (GSSG) para sua forma reduzida (GSH) com a

concomitante oxidação do NADPH para NADP (VAN DER

OOST; BEYER; VERMEULEN, 2003). Quando há deficiência no

suprimento de NADPH, a função antioxidante da glutationa

também é comprometida, pois a GSSG não pode ser

regenerada, causando sérios danos ao metabolismo celular.

Neste sentido, a G6PDH também pode ser considerada uma

enzima antioxidante co-adjuvante, pois produz NADPH na via

das pentose fosfato (SLEKAR; KOSMAN; CULOTTA, 1996).

Entretanto, neste experimento a atividade G6PDH não foi

alterada com o tratamento em ambos tecidos (Figura 7 e 8).

O aumento na atividade GR é um potencial biomarcador

para estresse oxidativo (STEPHENSEN; STURVE; FÖRLIN,

2002). Contudo, a hipótese de estresse oxidativo não pôde ser

confirmada nem refutada, pois nenhum método foi utilizado para

medir a produção de espécies reativas de oxigênio, níveis de

glutationa total, reduzida e dissulfídica, que poderiam indicar um

possível estado pró-oxidante. Além disso, as atividades das

enzimas antioxidantes CAT e SOD não foram alteradas em

relação ao grupo controle como poderia ocorrer em um estado de

estresse oxidativo.

Por outro lado, as atividades EROD e GST, neste estudo,

foram de 3 a 10 vezes maiores no fígado do que na brânquia.

Dessa forma, o fígado se torna um orgão mais suscetível do que

a brânquia ao estresse oxidativo, tanto pela maior produção de

espécies reativas de oxigênio devido à atividade EROD, quanto

pela depleção de glutationa promovida pela atividade GST.

Sendo assim, o aumento da atividade GR no fígado poderia ser

um mecanismo compensatório para restabelecer a razão

GSH/GSSG alterada por um potencial estresse oxidativo

hepático.

O mecanismo pelo qual a atividade GR aumentou pode

envolver modulação gênica. Em mamíferos, a modulação do

gene da Glutationa redutase envolve a interação do fator de

transcrição NRF2 com o elemento de resposta antioxidante

(ARE) localizado na região promotora deste gene. O fator de

transcrição NRF2, ao contrário do AHR, não é ativado por

ligantes. Sob condições normais o NRF2 está associado a uma

proteína inibitória KEAP1. Na presença de endo ou xenobióticos

que reagem com tióis ou aumentam a formação espécies

reativas de oxigênio (por exemplo, quinonas) a KEAP1 é

inativada. Uma vez livre de KEAP1, o NRF2 é translocado para o

núcleo onde pode ativar a transcrição de vários genes que

possuem ARE em suas regiões promotoras como: Glutamato-

cisteína ligase, glutationa redutase, glutationa peroxidase,

tioredoxina redutase (HAYES; DINKOVA-KOSTOVA;

McMAHON, 2009).

Um trabalho realizado com Carassius auratus expostos a

fenantreno mostrou um aumento na produção de radicais hidroxil

e uma redução nos níveis de glutationa reduzida (YIN et al.,

2007). Um estudo em células epiteliais e macrófagos humanos

expostos a partículas de óleo diesel após a combustão mostrou

que o NRF2 foi ativado (principalmente devido às quinonas),

conduzindo a expressão de seus genes alvo (LI et al., 2004).

Juntos, esses estudos sugerem que os HPAs e quinonas são

capazes de gerar estresse oxidativo e promover a ativação de

NRF2, culminando no aumento da expressão de seus genes

alvo, entre eles a GR.

Em resumo, este estudo mostra uma modificação na fase I

e II do sistema de biotransformação e, em menor grau, no

sistema de defesa antioxidante. Essas modificações podem ser

atribuídas, em parte, aos efeitos dos hidrocarbonetos aromáticos

da FAD. O mecanismo proposto para o aumento da atividade

EROD e GST envolve a modulação gênica do CYP1A e GST

pelo AHR. O aumento na atividade GR pode estar associado à

modulação gênica exercida pelo NRF2 na região promotora

deste gene. Contudo, mais estudos são necessários para

confirmar a hipótese de estresse oxidativo e modulação do gene

GR pelo NRF2 em peixes Poecilia vivipara.

Baseado nos resultados encontrados nesse estudo, pode-

se sugerir o uso de uma metodologia abrangente que envolva a

análise da atividade de enzimas pertencentes ao sistema de

defesa antioxidante e das fases I e II de biotransformação no

planejamento de programas de monitoramento ambiental.

Sugere-se ainda a utilização de mais de um tecido nas análises,

pois nesse estudo a brânquia foi mais sensível que o fígado para

detectar alterações na atividade GST e EROD. Os resultados dos

biomarcadores bioquímicos e o comportamento dos peixes nos

aquários durante a exposição permitiram a escolha da

concentração de 10% da FAD para os próximos experimentos.

Nessa concentração os peixes no aquário estavam

comportamentalmente saudáveis, enquanto na concentração de

20% os peixes estavam letárgicos e com dificuldades de

natação, além disso os resultados da atividade enzimática na

brânquia e no fígado mostram que a concentração mais baixa

que mostra efeitos na atividade enzimática é 10% da FAD.

9 CONCLUSÕES E PERSPECTIVAS

• Este estudo mostrou que peixes expostos a FAD

apresentaram um aumento na atividade das enzimas envolvidas

nas fase I e II de biotransformação. No entanto, somente

algumas alterações foram observadas nas enzimas envolvidas

no sistema de defesa antioxidante.

• Os HPAs mais abundantes nos tecidos de peixes P.

vivipara continham 2 ou 3 anéis aromáticos, sendo

representados pelas formas metiladas e etiladas do naftaleno,

seguidas pelo bifenil, fluoreno e fenantreno. As formas metiladas

do fenantreno são ligantes do AHR e possivelmente estão

relacionadas ao aumento na atividade das enzimas EROD e GST

observado na brânquia e fígado desses peixes. Estas enzimas se

mostraram bons biomarcadores de exposição a FAD, assim

como observado em outros estudos.

• Nesse estudo a brânquia foi mais sensível que o

fígado para detectar alterações na atividade GST e EROD.

• Estudos avaliando parâmetros que permitem

evidenciar o estresse oxidativo (GSH total, reduzida, dissulfídica,

tióis proteicos, tióis não proteicos, Caspase 3, Carbonilação de

proteínas, Ensaio do cometa) deverão ser conduzidos para

confirmar ou rejeitar a hipótese de um estado pró oxidante em

peixes expostos a FAD.

10 CAPÍTULO 2

RESPOSTAS MOLECULARES NO PEIXE Poecilia vivipara

(BARRIGUDINHO) EXPOSTO À FRAÇÃO DE ÓLEO DIESEL

ACOMODADA EM ÁGUA

RESUMO

O óleo disel é um potencial contaminante de estuários e

mangues, especialmente, porque ele é o principal combustível

utilizado em embarcações. Além disso, a exploração de petróleo

e transpote causam sérios riscos ao ambiente marinho.O objetivo

desse estudo foi identificar as mudanças na expressão gênica

hepática de peixes Poecilia vivipara expostos a 10% da Fração

do óleo diesel acomodada em água (FAD) através da técnica de

hidridização subtrativa supressiva (SSH) e PCR quantitativo

(qPCR). Os resultados da SSH mostraram 27 genes

diferencialmente expressos, sendo 12 induzidos e 15 reprimidos.

Os resultados de qPCR confirmaram a indução dos genes

Citocromo P4501A (CYP1A), Citocromo P4502P2 (CYP2P2),

Metiltransferase (MET), Glutationa S-transferase (GST), Uridina

Difosfato Glicoronosil Transferase (UDPGT1B) e a repressão do

gene Vitelogenina A (VgA) em machos. A maioria dos genes

induzidos validados por qPCR está envolvida nas duas primeiras

etapas de biotransformação, enquanto o gene validado como

reprimido, VgA, está envolvido com a vitelogênese. Os demais

genes não foram validados e desempenham múltiplas funções

biológicas como: sistema imune, apoptose, metabolismo de

lípídeos e carboidratos, transporte de oxigênio, Vitelogênese e

fase III de biotransformação. A maioria dos genes induzidos pode

ter sido modulada através da ativação do Receptor Aril

Hidrocarboneto (AHR) pelos hidrocarbonetos policíclicos

aromáticos (HPAs) identificados nos tecidos dos peixes. A

repressão do gene VgA pode estar relacionada a um mecanismo

de sinalização cruzada entre AHR e Receptor de Estrógeno (ER).

Uma análise integrada destes resultados mostra uma resposta

molecular no sentido de detoxificar os hidrocarbonetos presentes

no óleo diesel, por outro lado, algumas respostas moleculares a

longo prazo podem aumentar suscetibilidade dos organismos a

patógenos ou mesmo afetar a reprodução. Além disso, os genes

diferencialmente expressos apresentados nesse estudo são

candidatos a biomarcadores de ativadores do receptor AHR.

Palavras-chave: biotransformação, expressão gênica, óleo

diesel, Poecilia vivipara

ABSTRACT

Diesel fuel is a potential contaminant of estuarine and mangrove

areas, specially, because it is the main fuel used in vessels. In

addition, offshore oil exploration, production and transport pose

serious risks to the marine environment. The aim of this work was

identify changes in hepatic gene expression of Poecilia vivipara

fishes exposed to 10% of diesel fuel water accommodated

fraction (FAD), employing the subtractive suppressive

hybridization (SSH) and quantitative PCR (qPCR) method. The

SSH results showed 27 differentially expressed genes, 12

upregulated and 15 downregulated. The qPCR results confirmed

the Cytochrome P4501A (CYP1A), Cytochrome P4502P2

(CYP2P2), Methyltransferase (MET), Glutathione S-transferase

(GST), Uridine Diphosphate Glucuronosil Transferase

(UDPGT1B) gene induction and Vitelogenin A (VgA) gene

repression in male fish. The majority of the upregulated genes

validated by qPCR is involved with the two biotransformation

phases, while the gene validated as downregulated, VgA, is

involved with vitellogenesis. The remaining genes were not

validated and play several functions like: immune system,

apoptosis, carbohydrate and lipid metabolism, oxygen transport,

vitellogenesis and biotransformation phase III. The modulation

mechanism proposed for the upregulated genes can involve the

activation of aryl hydrocarbon receptor (AHR) by the polycyclic

aromatic hydrocarbons (HPAs) identified in fish tissue. The VgA

downregulation can be associated to a cross-talk mechanism

between AHR and the Estogen Receptor (ER). An integrated

analysis of these results show a molecular response to detoxify

the hydrocarbons found in diesel oil, in the other hand, some long

term molecular responses can increase the pathogen

susceptibility or affect the reproduction. In addition, the

differentially expressed genes found in this study are candidates

to biomarkers of AHR activators.

Keywords: biotransformation, diesel oil, gene expression,

Poecilia vivipara

11 INTRODUÇÃO

A poluição marinha é definida como a introdução de

substâncias tóxicas ou de energia oriundos da atividade

antrópica em um ambiente marinho, incluindo estuários,

resultando em um efeito deletério para os organismos e danos

para a saúde humana (GESAMP, 1991). As substâncias tóxicas,

também denominadas xenobióticos, estão em constante

aumento no ambiente, tanto em sua quantidade, quanto em sua

variedade (WALKER et al., 1996; LIVINGSTONE, 1993).

Dentre os diferentes tipos de xenobióticos, os derivados de

petróleo são um dos mais relevantes para a ecotoxicologia

aquática e têm causado bastante preocupação, tanto pela

freqüência dos eventos de contaminação como pelo elevado

potencial poluidor dos seus compostos (PACHECO; SANTOS,

2001a). Embora grandes vazamentos de petróleo sejam

preocupantes e ocupem grande espaço na mídia, estima-se que

a principal fonte de contaminação por petróleo e seus derivados

é resultado de contínuos vazamentos em postos de distribuição

de combustíveis, causados pelo envelhecimento dos tanques de

combustíveis (TIBURTIUS et al., 2005).

Nesse contexto de crescente preocupação com os efeitos

de xenobióticos no ambiente surgiu a ecotoxicologia, uma ciência

multidisciplinar que lida com as interações entre contaminantes

lançados no ambiente e a biota, analisando os efeitos adversos

causados nos diferentes níveis de organização biológica (FENT,

2004). Entre os efeitos adversos no nível bioquímico estão

alterações na atividade de enzimas pertencentes ao sistema de

biotransformação e ao sistema de defesas antioxidante (RAND

1995).

Essas alterações bioquímicas têm sido muito utilizadas

como biomarcadores para indicar a exposição e os efeitos de

poluentes ambientais (BURGEOT et al., 1996). Dessa forma, os

biomarcadores moleculares e bioquímicos servem como sinais

precoces da degradação ambiental causadas pelos

contaminantes (RAND, 1995).

A principal vantagem do uso de biomarcadores na

avaliação ambiental sobre as análises químicas se deve ao fato

de serem obtidas informações a respeito dos efeitos biológicos

causados pelas substâncias tóxicas. Na maioria dos casos a

análise destes biomarcadores apresenta menor custo, maior

facilidade e rapidez do que as análises químicas convencionais

(GALLOWAY et al., 2004).

Apesar das vantagens no uso de biomarcadores nos

programas de biomonitoramento, na maioria das vezes a

especificidade das respostas dos biomarcadores para as

diferentes classes de contaminantes não é muito clara

(GALLOWAY et al., 2004). Desta forma, são necessários mais

estudos na tentativa de descobrir novos biomarcadores, bem

como elucidar os mecanismos de toxicidade de diferentes

classes de contaminantes.

O uso de técnicas de biologia molecular na ecotoxicologia

permitiu ampliar o conhecimento dos mecanismos de ação dos

contaminantes nos organismos, pois os padrões de expressão

gênica podem fornecer informações sobre a interação entre os

estressores ambientais e o genoma (BRULLE et al., 2008).

A pesquisa contemporânea no campo da ecotoxicologia

tenta elucidar de que maneira a regulação gênica é modulada

pelos estímulos ambientais e estabelecer as diferenças nos

níveis de expressão gênica nos diferentes tipos celulares e

estágios de desenvolvimento. Considerando que a transcrição é

um dos passos iniciais na regulação gênica, a determinação dos

níveis de abundância dos transcritos em resposta aos

contaminantes representa uma informação necessária para

responder tais questões. As tecnologias que permitem estudar a

expressão gênica diferencial são relativamente recentes na

genômica funcional e visam a compreensão das mudanças

globais no padrão de expressão dos organismos expostos a

variados estressores e poluentes ambientais. Assim, no esforço

de interpretar tais resultados, foi desenvolvido um novo campo

da ciência denominado toxicogenômica (KOSKINEN et al., 2004).

Os estudos de expressão gênica diferencial podem ser

divididos basicamente em duas tecnologias: sistemas abertos e

fechados. Para a utilização de sistemas fechados é necessário

que seja conhecido o genoma ou os genes de estudo da espécie

em questão; como exemplo de sistema fechado temos os

microarranjos. Por outro lado, as técnicas de sistema aberto,

como por exemplo as técnicas differential display e hibridização

subtrativa supressiva (SSH), apresentam a vantagem de

dispensarem a necessidade de conhecimento prévio do genoma

da espécie (BULTELLE et al., 2002). A SSH é um dos mais

poderosos métodos para isolar transcritos diferencialmente

expressos (HE; LI; XU, 2004) e vem sendo utilizada nos mais

variados campos da ciência moderna (WINSTANLEY, 2008).

Tendo em vista o risco ambiental associado à atividade da

indústria petrolífera e a necessidade de programas de

monitoramento ambiental eficazes na avaliação da qualidade dos

ecossistemas, esse estudo avaliou a expressão diferencial de

genes através da técnica da SSH, a fim de descobrir novos

biomarcadores sensíveis aos contaminantes provenientes da

atuação da indústria petrolífera em peixes P. vivipara expostos à

fração do óleo diesel acomodada em água (FAD).

12 OBJETIVOS

Clonar e seqüenciar fragmentos de cDNA expressos

diferencialmente no fígado de peixes P. vivipara expostos à

fração do óleo diesel acomodada em água (FAD);

2. A partir das seqüências de cDNA identificadas, desenhar

e validar o uso de pares de iniciadores, através da técnica de

PCR quantitativo, para avaliar alterações na expressão gênica no

fígado de peixes P. vivipara expostas FAD;

3. Identificar, através de análises químicas, os

componentes da FAD mais abundantes nos tecidos dos peixes

após exposição a FAD;

4. Relacionar as mudanças na expressão gênica com os

hidrocarbonetos bioacumulados nos tecidos de peixes P. vivipara

expostos a 10% da FAD;

5. Construir uma biblioteca subtrativa de P. vivipara com

genes diferencialmente expressos após exposição a FAD;

13 MATERIAIS E MÉTODOS

13.1 Exposição de peixes à FAD 10% para avaliação das

respostas moleculares

A exposição foi realizada em duplicata, em aquários com

capacidade para 40 litros, com 40 peixes em cada aquário,

durante 24 horas sob as mesmas condições de temperatura,

salinidade e fotoperíodo apresentadas anteriormente (Capitulo

1). Um grupo controle também foi utilizado, no qual os animais

foram expostos somente à água do mar (salinidade 25ppm). A

concentração escolhida para esse experimento já foi

devidamente justificada no capítulo 1 dessa dissertação.

Após o período de exposição, os fígados de 30 peixes de

cada réplica foram coletados e agrupados por sexo em pools de

2 fígados por microtubo (n=15 por réplica) e imediatamente

congelados em nitrogênio líquido, para posterior análise de

biomarcadores moleculares. Outro grupo de 10 peixes foi

imediatamente congelado em nitrogênio líquido e armazenado

em freezer -80°C até a sua utilização nas análises químicas.

Estes procedimentos foram aplicados para o grupo controle e

exposto.

13.2 Análise química

O procedimento metodológico descrito a seguir foi baseado

em Macleod et al. (1986) com algumas modificações.

Aproximadamente 5 g das amostras dos peixes inteiros foram

secos e macerados com sulfato de sódio anidro (J.T. Baker), que

foi calcinado por 4 h a uma temperatura de 440

C. Esse

homogenato foi colocado em cartucho de vidro com placa

sinterizada e extraído em soxhlet durante 8 h com n-hexano e

diclorometano 50% (v/v). O grau de pureza dos solventes

utilizado foi “grau para análise de resíduos orgânicos”, ambos da

J. T. Baker (Estados Unidos). Antes da extração foram

adicionados 100 µL de uma mistura de naftaleno-d

, acenafteno-

, fenantreno-d

, criseno-d

e perileno-d

(5 ng µL

-1

) e n-

hexadeceno e n-eicoseno (50 ng µL

-1

) como padrões internos em

cada uma das amostras e no branco.

O extrato evaporado foi submetido a uma coluna

cromatográfica contendo 8 gramas de sílica gel sobre 16 g de

alumina (ambas da Merck), 5% desativadas com água pré-

extraída 5 vezes com n-hexano, e 1 g de sulfato de sódio. A

eluição foi feita com 40 mL de n-hexano para análise dos

hidrocarbonetos alifáticos e uma mistura de n-hexano e

diclorometano (50%) para análise dos hidrocarbonetos

policíclicos aromáticos (HPAs). Para purificação complementar, o

eluato da F2 foi concentrado a 0,5 mL e injetado no cromatógrafo

líquido de alto desempenho (HPLC) (Perkin Elmer) equipado com

duas colunas de exclusão (permeação em gel). A fase móvel

utilizada foi o diclorometano. Os padrões internos tetradeceno e

benzo(b)fluoranteno-d12 foram adicionados nos eluatos

concentrados F1 e F2 com volume de 1 mL, respectivamente.

Uma alíquota da F1 foi injetada no cromatógrafo a gás

equipado com detector de ionização de chama (GC-FID), (Agilent

Technologies) para hidrocarbonetos alifáticos. Os HPAs foram

analisados no cromatógrafo a gás equipado com espectrômetro

de massas (GC-MS), 6890/5973N (Agilent Technologies).

As temperaturas do injetor e detector do GC-FID foram de

300

C e 325

C, respectivamente. O gás de arraste foi o

hidrogênio ultrapuro e o gás auxiliar foi o nitrogênio. A coluna

cromatográfica era de 30 metros de comprimento, diâmetro

interno de 0,25 mm e espessura do filme de 5% fenilmetilsiloxana

de 0,5 µm (J&W Scientific). As temperaturas do GC-MS foram de

280, 280 e 300

C no injetor e na interface e na fonte de íons,

respectivamente. A coluna cromatográfica utilizada foi da J&W

Scientific com 30 metros de comprimento, 0,25 mm de diâmetro

interno e 0,25 µm de espessura de filme de 5%’fenilmetilsiloxana.

O modo de aquisição foi o SIM (monitoramento seletivo de íons).

A rampa de temperatura para PCBs foi: início a 75

C durante 3

min, aumento a uma taxa de 15

C até 150

C e a 2

C até 260

e a 20

C até 300

C permanecendo constante durante 1 min. A

rampa tanto para os AHs quanto para os HPAs teve início em

C com aumento a taxa de 20

C até 60

C e a 5

C min até

290

C onde permaneceu por 5 min e aumento a 10

C até 300

onde permaneceu constante durante 10 min.

A identificação AHs e HPAs foi feita por comparação dos

tempos de retenção com padrões de referência da Accustandard,

EUA. Os compostos analisados no GC-MS também foram

identificados através do espectro de massas. A quantificação foi

feita por razões entre os padrões internos e os compostos de

interesse, baseada nas curvas analíticas montadas com pelo

menos 05 concentrações diferentes de cada grupo de

compostos.

13.3 Extração de RNA total

O RNA total foi extraído de 6 pools de fêmeas controle e 6

pools de fêmeas expostas a 10% da FAD para realizar o

experimento de SSH. Para a validação dos genes encontrados

como potencialmente diferencialmente expressos pela técnica de

SSH, o RNA total foi extraído de 8 pools controle (4 pools de

machos e 4 pools de fêmeas) e 8 pools expostos a 10% da FAD

(4 pools de machos e 4 pools de fêmeas).

A extração de RNA total foi realizada de acordo com o

protocolo para o reagente TRIzol (Invitrogen).

13.4 Extração RNA mensageiro (mRNA)

O RNA mensageiro foi extraido apenas para os pools de

fêmeas selecionados para a técnica de SSH, usando o

MicropoliA mRNA kit (Ambion), de acordo com instruções do

fabricante. A concentração e pureza do RNA total e mRNA foram

verificadas em espectrofotômetro Nanodrop, a 260, 280 e 320

nm e através do perfil eletroforético das amostras de peixes

extraídas e separadas em gel de agarose 2%. O mRNA foi

utilizado para técnica de SSH

13.5 Hibridização Subtrativa Supressiva (SSH)

A partir do mRNA foi realizada a síntese do DNA

complementar (cDNA) para posterior realização da hibridização

subtrativa supressiva utilizando-se o kit PCR Select cDNA

Subtraction Kit (Clontech). Este kit permite a hibridização dos

fragmentos de cDNA comuns a dois grupos (controle X exposto à

10 % da FAD), enquanto os fragmentos diferencialmente

expressos são amplificados por reações de PCR ao final do

procedimento. Dessa forma, obtêm-se os genes diferencialmente

expressos no grupo exposto. O procedimento foi realizado de

acordo com as instruções do fabricante.

13.6 Clonagem

Após a hibridização subtrativa, os fragmentos

diferencialmente expressos foram ligados em vetores pGEM-T

Easy (Promega), que possuem no sítio de clonagem uma

seqüência para clivagem com a enzima de restrição EcoRI.

Células competentes JM109 foram transformadas com a

reação de ligação e, posteriormente, plaqueadas em LB agar

contendo ampicilina. As células, contendo o vetor e o inserto,

foram transferidas para um meio líquido e cultivadas em agitador

a 240 rpm a 37ºC por 18 h. Após este período, o DNA foi

purificado utilizando o kit Qiagen Miniprep (Qiagen).

13.7 PCR para seqüenciamento

A incorporação do corante fluorescente BigDye Terminator

para o seqüenciamento dos fragmentos foi realizada através de

uma reação de PCR utilizando os iniciadores M13F ou M13R que

se alinham a uma região localizada próxima ao inserto no vetor

pGEM-T



Easy (Promega). A reação de PCR foi então aplicada

no seqüenciador ABI PRISM DNA Sequencer (Applied

Biosystems) para determinação das seqüências gênicas

expressas durante o experimento.

13.8 Comparação de seqüências

As seqüências obtidas dos fragmentos clonados foram

comparadas com o banco de dado disponível (GeneBank),

através do software BLAST (www.ncbi.nih.gov/blast), para

identificação dos genes.

13.9 Padronização das reações de PCR quantitativo (qPCR)

A validação dos genes diferencialmente expressos no

fígado de P. vivipara foi feita através da técnica de PCR em

tempo-real ou RT-PCR quantitativo. Para esse método é

necessário o desenho de iniciadores específicos para cada um

dos genes que se pretende estudar. O desenho dos iniciadores

específicos foi realizado no programa PrimerQuest (Integrated

DNA Technology). Esse programa possibilita o desenho de

iniciadores adequados para o uso em reações de PCR em tempo

real.

Os ensaios foram realizados no aparelho Rotor Gene 6000

(Corbett Lifesciences) com o rotor de 36 poços. Os programas de

ciclagem de cada gene incluiam ativação da enzima a 95°C por

15 min, em seguida 40 ciclos de 10 s de desnaturação a 95°C,

15 s de anelamento com a temperatura conforme Tabela 4, e 20

s de extensão a 72°C, fase onde ocorreu a aquisição de

fluorescência. Posteriormente a curva de dissociação foi

realizada através do aumento de 1°C a cada 5 s, partindo de

50°C e terminando a 99°C, para analisar o perfil dos produtos

formados (especificidade dos iniciadores).

Uma curva contendo 10 ng, 100 ng, 200 ng, 400ng 1000 ng

de cDNA por reação de RT-PCR quantitativo foi realizada para

calcular a eficiência da reação, onde uma curva padrão ótima

apresenta valor de eficiência de 100% (duplica a quantidade de

cDNA a cada ciclo). O programa disponível no aparelho Rotor

Gene 6000 transformou os valores brutos de fluorescência em

uma escala logarítmica, e assim o ciclo limiar (Ct) foi delimitado

baseando-se no coeficiente de correlação (R

) e na eficiência da

curva, calculada pelo próprio aparelho.

13.10 Validação de potenciais biomarcadores moleculares

por PCR quantitativo (qPCR)

A extração do RNA total foi realizada nos peixes do grupo

controle (n=8 pools, sendo 4 pools de fêmeas e 4 pools de

machos) e do grupo exposto a FAD (n=8 pools, sendo 4 pools de

fêmeas e 4 pools de machos), utilizando o método do Trizol. A

partir de 2 µg de RNA total foi realizado o tratamento com DNAse

(SIGMA) e a síntese de cDNA utilizando o kit Omniscrit RT kit

(Qiagen) de acordo com as instruções do fabricante. A pureza e

a concentração do RNA e cDNA obtidos foram determinadas

utilizando-se o Nanodrop a 260, 280 e 320 nm. Com base na

padronização foi realizado o qPCR para cada um dos genes

sempre com uma curva padrão em paralelo.

Os programas de ciclagem de cada gene incluiam ativação

da enzima a 95°C por 15 min, em seguida 40 ciclos de 10 s de

desnaturação a 95°C, 15 s de anelamento com a temperatura

conforme Tabela 4, e 20 s de extensão a 72°C, fase onde

ocorreu a aquisição de fluorescência. Posteriormente a curva de

dissociação foi realizada através do aumento de 1°C a cada 5 s,

partindo de 50°C e terminando a 99°C, para analisar o perfil dos

produtos formados.

O programa disponível no aparelho Rotor Gene 6000

transformou os valores brutos de fluorescência em uma escala

logarítmica, e assim o Ct foi delimitado baseando-se no

coeficiente de correlação (R

) e na eficiência da curva, calculada

pelo próprio aparelho.

13.11 Quantificação Relativa por RT-PCR quantitativo (qPCR)

Para a quantificação relativa da expressão de cada gene

estudado foi utilizado o método de comparação de Ct ou Delta

Delta Ct (∆∆CT). O Ct (cycle threshold - ciclo limiar) é definido

como o número de ciclos requerido para a fluorescência da

reação atingir níveis superiores aos da fluorescência basal da

reação (background) e apresentar uma amplificação exponencial.

Esse método tem como premissa a semelhança entre a

eficiência de amplificação do gene de interesse e do gene

normalizador, ambos devem ficar entre 80% e 120%

(SCHMITTGEN; LIVAK, 2008). Para utilizar o método, os valores

de expressão para cada gene de interesse são normalizados por

um gene normalizador (β-Actina). Após esse processo é feita a

relativização do grupo exposto em relação ao grupo controle.

Tabela 4. Sequência dos iniciadores senso (F) e anti-senso (R) dos

genes de Poecilia vivipara selecionados pela hibridação subtrativa

supressiva (SSH): Citocromo P450 1A (CYP1A), Uridina difosfato

glicoronosil transferase 1B (UDPGT), Citocromo P450 2P2 (CYP2P2),

Glutationa S-transferase (GST), Metiltransferase (MET), proteína do

sistema complemento C3 (C3), Transferrina (TF),Vitelogenina A (VGA)

e β-Actina e suas respectivas temperaturas de anelamento utilizadas

nos experimentos de PCR quantitativo (qPCR).

Gene Iniciador

Seqüência Ta (oC)

CYP1A

F acacaaacgctgctacctgggagt

R cacagtcaacacaggccaccttcaga

UDPGT1B

F tcaacaggctgctttcaggcacca

R aaggtgctggttatgcccgtggatg

CYP2P2

F agtcccaaaccttaccgcctctgtg

R tgtcttgattgtgcatctgctctaccagc

GST

F aacatcaccctgaacgagtcctacggc

R ggtgtcagcttgtttccttggccct

MET

F atccacatcgcctgcaacaacgct

R ccagccacctgacagcacatgaaca

F ccaatcagtgggaggctgttggtttgaaca

R aggtgctacttccatgactagcccacaca

VGA

F caatggaagctgttgggtggcggtaa

R ccgcacaggactgcactgatgaactg

F tctggtagagggtgctggtgacgtt

R gcagaattcacaccacgagcccagt

β-Actina

F aaagccaacagggagaagatgaccca

R tgacaccgtctccagagtccatcacaat

13.12 Análises estatísticas

Os dados obtidos foram analisados estatisticamente por

meio do teste t de student (5%). Todas as análises estatísticas

foram realizadas com os software Statistica 6.1. e para a

apresentação dos gráficos foi utilizado o software GraphPad

Prism 5.0. Todos os dados estão apresentados na forma de

média e desvio padrão.

14 RESULTADOS

14.1 Análise química

A concentração de hidrocarbonetos alifáticos (HAs) totais

nas amostras de P. vivipara após exposição a 10% da FAD

durante 24 h foi de 19,2 µg.g

-1

para o grupo controle e 34,0 µg.g

-1

para o grupo exposto (Tabela 5 ). As concentrações totais de n-

alcanos em tecido de peixe que foram expostos durante 24 horas

a 10% da FAD foram de 3,04 µg g

-1

e nos controles foram de

3,11 µg g

-1

(Tabela 5). As Figuras 3 e 4 mostram que os perfis da

distribuição de n-alcanos são similares para amostra controle e

exposta ao óleo durante 24 horas. Não houve a presença de

MCNR e a concentrações de pristano diminuiu, enquanto a

concentração de fitano aumentou (Tabela 5).

A concentração de hidrocarbonetos aromáticos totais nas

amostras de P. vivipara após exposição a 10% FAD durante 24

horas foi de 12.467 ng.g

-1

para o grupo controle e 42.658 ng.g

-1

para o grupo exposto (Tabela 5). Todos os HPAs, exceto o bifenil

e trimetilnaftalenos, apresentaram uma maior concentração no

grupo exposto a 10% da FAD (Tabela 5). Os hidrocarbonetos de

2 e 3 anéis aromáticos (naftaleno, fenantreno, antraceno,

fluoreno) e seus derivados metilados foram mais abundantes no

grupo exposto. Entre os HPAs mais representativos nesse

estudo estão: o naftaleno, o fenantreno e os derivados metilados

desses HPAs. Esses HPAs juntos perfazem cerca de 94% de

todos os hidrocarbonetos aromáticos acumulados no tecido dos

peixes expostos a 10% da FAD (Tabela 5).

Tabela 5. Hidrocarbonetos alifáticos (HAs) e hidrocarbonetos

policiclicos aromáticos (HPAs) em amostras de peixe Poecilia vivipara

controle e exposta a 10% da fração do óleo diesel acomodada em água.

Os valores estão apresentados em µg.g

-1

de peso seco para HAs e em

ng.g

-1

de peso seco para os HPAs. Apenas estão apresentados os

hidrocarbonetos detectados pela metodologia. Legenda: C (controle), E

(Exposto).

HAs C E HPAs C E

C15

0,653 0,459

Naftaleno

1396 6920

C16

0,239 0,23

metil

naftalenos

4537 21858

C17

0,594 0,49

Bifenil

587 303

C18

0,127 0,174

etil

naftalenos

585 775

C19

0,128 0,152

dimetil

naftalenos

3339 9953

C20

0,178 0,181

Acenafteno

89,4 209,6

C21

0,093 0,084

trimetil

naftalenos

1517 573

C25

0,088 0,075

Fluoreno

145 588

C27

0,244 0,256

Dibenzotiofeno

21,5 131

C29

0,434 0,4

Fenantreno

154 895

C31

0,214 0,374

Antraceno

12 40,6

C33

0,113 0,163

Σmetildibenzo

tiofenos

10,4 50,1

pristano

1,114 0,812

Σdimetil

fenantrenos

73,2 351

fitano

0,169 0,201

Σmetil

fenantrenos

n.d. n.d.

Alifaticos

Totais

19,2 34

Fluoranteno

n.d. 2,7

Alifaticos

Resolvidos

19,2 34

Pireno

n.d. 6,8

Alcanos Totais

3,11 3,04

Σ HPAs 12467 42658

pristano/fitano

6,6 4

14.2 Biomarcadores moleculares em P. vivipara

A eficiência da reação no ciclo limiar (Ct) foi de 100%

para o Citocromo P450 1A (CYP1A), Uridina difosfato glicoronosil

transferase 1B (UDPGT1B), Glutationa S-transferase (GST),

Vitelogenina A VGA, Transferrina (TF), β-Actina. A eficiência foi

de 99% para Metiltransferase (MET) e 98% para a proteína do

sistema complemento C3 (C3) e Citocromo P450 2P2 (CYP2P2)

(Tabela 7). A eficiência das reações ficou entre 80 e 120%,

permitindo o uso do método de comparação de Ct ou Delta Delta

Ct (∆∆CT) (SCHMITTGEN; LIVAK, 2008).

Tabela 6. Sequência dos iniciadores senso (F) e anti-senso (R) dos

genes de Poecilia vivipara selecionados para validação da técnica de

hibridização subtrativa supressiva e a eficiencia do par de iniciadores no

ciclo limiar (Ct).

Gene

Iniciador

Sequencia

Eficiência

CYP1A

F acacaaacgctgctacctgggagt

100%

R cacagtcaacacaggccaccttcaga

UDPGT1B

F tcaacaggctgctttcaggcacca

100%

R aaggtgctggttatgcccgtggatg

CYP2P2

F agtcccaaaccttaccgcctctgtg

98%

R tgtcttgattgtgcatctgctctaccagc

GST

F aacatcaccctgaacgagtcctacggc

100%

R ggtgtcagcttgtttccttggccct

MET

F atccacatcgcctgcaacaacgct

99%

R ccagccacctgacagcacatgaaca

F ccaatcagtgggaggctgttggtttgaaca

98%

R aggtgctacttccatgactagcccacaca

VGA

F caatggaagctgttgggtggcggtaa

100%

R ccgcacaggactgcactgatgaactg

F tctggtagagggtgctggtgacgtt

100%

R gcagaattcacaccacgagcccagt

β-Actina

F aaagccaacagggagaagatgaccca

100%

R tgacaccgtctccagagtccatcacaat

Foram isolados e seqüenciados 106 fragmentos de cDNA.

Dentre essas sequências, 90 foram identificadas, resultando em

27 genes diferencialmente expressos (Tabelas 7 e 8). Os 12

genes induzidos em fígado de peixes expostos a 10% de FAD de

óleo diesel foram identificados como genes envolvidos em

diferentes funções metabólicas como: Fase I de

biotransformação (Citocromo P4501A, Citocromo P4502P2);

Fase II (Glutationa-S-transferase, Uridina Difosfato Ácido

Glicurônico Transferase 1B, O-Metiltransferase); transportadores

de membrana de Fase III (Proteína ligadora de ATP C4), sistema

imune (Apoliproteína A1 e α-microglobulina/bicunina) e genes

envolvidos em funções diversas (Tabela 7).

Os 15 genes identificados por terem a sua expressão

reduzida nesse experimento estão associados com o sistema

imune (Componente do complemento C3 e inibidor C1),

reprodução (Vitelogenina A, B e C) e outras funções metabólicas

(Tabela 8).

Não houve diferença na expressão do gene β-Actina após

a exposição a FAD, por isso todos os genes induzidos e

reprimidos foram normalizados por β-Actina (Figura 10). A

expressão dos genes induzidos CYP1A; CYP2P2; GST; UDPGT;

MET aumentou, respectivamente 72,1; 2,1; 17,0; 40,8; 1,8 vezes

em relação ao grupo controle (Figura 10). A expressão do gene

reprimido VgA em machos diminuiu 7,14 vezes em relação ao

grupo controle. Os demais genes não apresentaram diferenças

na expressão gênica, sendo falsos positivos da técnica da SSH

(Figura 10).

Tabela 7. Lista gerada pela SSH de genes induzidos pela exposição à 10% da fração do óleo diesel acomodada em

agua durante 24 h, em fígado do peixe P. vivipara.Na tabela estão dispostas informações sobre a função biológica do

gene e probabilidade de identificação imprecisa do gene (e-value).

Função biológica Homólogo (proteína ou DNA) Espécie comparada e-value

Fase I de Biotransformação Citocromo P450 1A (CYP1A) Fundulus heteroclitus 1,00E-76

Citocromo P450 2P2 (CYP2P2) Fundulus heteroclitus 3,00E-04

Fase II de Biotransformação Glutationa S-transferase R1 (GST) Pagrus major 1,00E-47

UDP glicoronosil transferase 1 familia B (UDPGT1B) Platichthys flesus 8,00E-45

O-methyltransferase (MET) Danio rerio 6,00E-118

Fase III de biotransformação Proteína ligadora de ATP CC4 (ABCC4) Danio rerio 5,00E-39

Cadeia transportadora de elétrons Citocromo c oxidase subunidade I (COXI) Cubiceps paradoxus 9,00E-154

Sinalização celular Presenilina – enhancer 2 (PEN2) Oreochromis mossambicus 9,00E-36

Apoptose Proteína integral de membrana 2B (ITM2B) Epinephelus coioides 1,00E-17

Chaperona Complexo associado ao polipeptídeo nascente alfa (a-NAC) Oreochromis mossambicus 3,00E-20

Efluxo de Colesterol e sistema imune Precursor da Alfa microglobilina/bicunina (AMBP) Danio rerio 7,00E-29

Precursor da Apolipoproteína AI (APOAI) Platichthys flesus 4,00E-32

Tabela 8. Lista gerada pela SSH de genes reprimidos pela exposição à 10% da fração do óleo diesel acomodada em

agua durante 24 h, em fígado do peixe P. vivipara.Na tabela estão dispostas informações sobre a função biológica do

gene e probabilidade de identificação imprecisa do gene (e-value).

Função biológica Homólogo (proteína ou DNA) Espécie comparada e-value

Vitelogênese Vitelogenina A (VgA) Poecilia reticulata 9,00E-115

Vitelogenina B (VgB) Poecilia reticulata 7,00E-25

Vitelogenina C (VgC) Gambusia affinis 4,00E-43

Sistema imune Proteína do sistema complemento C3 (C3) Paralichthys olivaceus 4,00E-65

Inibidor C1 (C1) Oncorhynchus mykiss 1,00E-59

Chaperona Proteina de choque térmico 90 (HSP90) Solea senegalensis 4,00E-61

Transporte transmembrana Transportador de ânions orgânicos membro 1c1 (OATP2) Mus musculus 5,00E-23

Metabolismo do ferro e sistema imune Transferrina (TF)

Acanthopagrus

schlegelii 4,00E-32

Metabolismo do Glicogênio UDP glicose pirofosforilase(UDPGP) Salmo salar 2,00E-27

Transporte de Oxigênio Hemoglobina Salmo salar 8,00E-48

Alfa hemoglobina A Seriola quinqueradiata 5,00E-48

Metabolismo de ácidos graxos Proteína ligante de AcilCoA (ACBP) Oryzias latipes 1,00E-39

Sinalização celular Integrina beta 1 Danio rerio 7,00E-34

Figura 10. Expressão do gene normalizador β-Actina e validação, por

RT-PCR quantitativo, dos genes identificados pela SSH como induzidos

e reprimidos no grupo de peixes P. vivipara expostos a 10% da fração

do óleo diesel acomodada em água após 24 h. O asterisco (*)

representa diferença significativa (p < 0,05) em relação ao grupo

controle. O eixo Y representa quantas vezes a expressão

do gene

aumentou ou diminuiu em relação ao seu respectivo grupo controle. Os

dados estão representados na forma de média e desvio padrão.

15 DISCUSSÃO

15.1 Análise Química

Os peixes P. vivipara expostos a 10% da FAD

apresentaram maiores concentrações de hidrocarbonetos

alifáticos e aromáticos que o grupo controle, mostrando uma

bioacumulação desses compostos nos organismos expostos. O

parâmetro MCNR que corresponde aos hidrocarbonetos

ramificados e cíclicos não apresentou variação expressiva. A

concentração de pristano diminuiu e a de fitano aumentou no

grupo exposto, esse resultado pode estar relacionado, em parte,

pela maior suscetibilidade de biodegradação do pristano em

relação ao fitano (ROSA, 2001). Outra hipótese para esse

resultado é que o tempo de exposição não foi suficiente para a

bioacumulação desses isoprenóides (pristano e fitano) e a

variação na concentração dessas substâncias corresponde a

uma variação natural proveniente de uma contaminação no local

de coleta.

Dentre os HPAs mais representativos nesse estudo estão:

o naftaleno, o fenantreno e os derivados metilados desses

HPAs. Esses HPAs juntos perfazem cerca de 94 % de todos os

hidrocarbonetos aromáticos acumulados no tecido dos peixes e,

provavelmente, são os responsáveis pelas mudanças na

expressão gênica observadas neste estudo (BAGCHI et al.,

2002; BARRON; HEINTZ; RICE, 2004; VONDRACEK et al.,

2007; TINTOS et al., 2007; MONTEIRO; REIS-HENRIQUES;

COIMBRA, 2000; FORMAN; ZHANG; RINNA, 2009; YIN et al.,

2007).

15.2 Biomarcadores Moleculares em peixes Poecilia

vivipara

15.2.1 Sistema de Biotransformação Fase I e

Vitelogênese

Nesse trabalho foi observada uma ativação da expressão

de genes correspondentes as 3 fases do processo de

biotransformação (CYP1A, CYP2P2, GST, UDPGT1B, MET e

ABCC4) (Tabela 7). A ativação da transcrição desse conjunto de

genes envolvidos no processo de biotransformação sugere um

sinergismo entre as diferentes etapas da biotransformação para

a detoxificação dos hidrocarbonetos.

Embora o processo de biotransformação geralmente

resulte na detoxificação do contaminante, a ação das enzimas do

complexo CYP450 também pode gerar metabólitos tóxicos que

contribuem para o aumento do risco de câncer, deformações

embrionárias e outros efeitos deletérios (NEBERT; KARP, 2008).

O HPA Naftaleno, após o processo de biotransformação de fase I

pelo CYP1A, gera intermediários reativos (naftoquinonas),

podendo causar estresse oxidativo, danos a DNA e

lipoperoxidação no cérebro e no fígado de mamíferos (BAGCHI

et al., 2002).

A expressão de CYP1A em mamíferos e peixes é bastante

induzida por HPAs, via ativação do receptor AHR (HAHN, 2002).

Esta característica permitiu o amplo uso da expressão de genes

CYP1A como marcadores de exposição ambiental aos agonistas

do receptor AHR em humanos e em outras espécies animais

(FUJITA et al., 2001; LAMBERT et al. 2006).

Em camundongos, além de modular o CYP1A e o CYP1A2,

o receptor AHR também modula os genes CYP1B1, GST alfa 1

(GSTA1), UDP-glicoronosil transferase1A6 (UDPGT1A6)

(HAYES; DINKOVA-KOSTOVA; MCMAHON, 2009). Algumas

evidências mostram que o conjunto de genes modulados por

AHR em peixes é semelhante àquele documentado para

camundongos (ARUKWE; NORDBO, 2008). Dessa forma, pode-

se sugerir que o AHR está sendo ativado pelos HPAs

encontrados na FAD, conduzindo a expressão de seus genes

alvo. Os possíveis ativadores do receptor AHR neste estudo são:

os derivados metilados do fenantreno, fluoranteno e pireno

(VONDRACEK et al., 2007; BARRON; HEINTZ; RICE, 2004)

(Tabela 5).

Nesse estudo, um outro gene pertencente aos CYP450 foi

identificado como CYP2P2 (Tabela 7). A família CYP2 inclui

cerca de 25 subfamílias que metabolizam uma ampla gama de

subtratos endógenos e exógenos, contudo as funções

fisiológicas dessa família de CYPs ainda é obscura para a

maioria das espécies de mamíferos. O gene identificado nesse

estudo como CYP2P2 é muito similar ao CYP2P3, que mostrou

capacidade de catalisar a oxidação do ácido araquidônico

(OLEKSIAK et al., 2003).

Um resultado interessante da SSH foi a indução na

expressão do gene CYP1A com a concomitante inibição de

diferentes genes de Vitelogeninas (VgA, VgB, VgC). Muitos

estudos realizados em animais coletados no campo e expostos

em laboratório revelam que contaminantes orgânicos são

capazes de reduzir a concentração plasmática de estradiol e

assim reduzir a expressão do gene vitelogenina via receptor de

estrógeno (ER) (NICOLAS, 1999). Entre os HPAs encontrados

nesse estudo que podem causar essa redução nos níveis de

estradiol estão o naftaleno e o fenantreno (TINTOS et al., 2007;

MONTEIRO; REIS-HENRIQUES; COIMBRA, 2000).

O mecanismo pelo qual os HPAs promovem a redução de

estradiol no plasma pode envolver um aumento no catabolismo

do estradiol devido a um aumento na atividade de enzimas de

fase I (CYP1A2) e II de biotransformação em organismos

expostos a HPAs (NICOLAS, 1999). Por outro lado, Kawahara e

colaboradores (2009) mostraram que a inibição da vitelogenina

não depende do aumento da fase I de biotransformação

(atividade EROD), mas depende da ligação de agonistas no

receptor AHR.

A participação do receptor AHR na inibição do gene da

Vitelogenina foi confirmada em estudos in vitro usando cultura

primária de hepatócitos de Truta arco-íris (Oncorhynchus

mykiss). Esse estudo revelou uma proporcionalidade entre a

inibição da síntese de vitelogenina e a ativação do gene CYP1A,

dependendo da potência dos agonistas do AHR utilizados

(NAVAS; SEGNER, 2000). Apesar disso, o mecanismo de

inibição da vitelogenina por AHR permanece desconhecido em

peixes.

Em mamíferos, os mecanismos propostos para

antiestrogeniciade dos HPAs envolvem: 1) a ligação do

heterodímero (AHR/ARNT) em elementos de resposta a

xenobióticos inibitórios (XREi) presentes nos genes regulados

pelo receptor de estrógeno (ER); 2) aumento da degradação

proteossomal do receptor ER mediada pelo AHR; 3) alteração no

catabolismo do estrógeno pelos CYPs450 (MATTHEWS;

GUSTAFSSON, 2006).

É importante ressaltar que os resultados do PCR

quantitativo (Figura 10) mostram uma inibição da vitelogenina A

(VgA) apenas para os machos. O motivo para essa diferença

pode envolver os baixos níveis plasmáticos de estradiol em

machos e fêmeas em estágio inicial da vitelogênese. Anderson e

colaboradores (1996) mostraram que a administração de β-

Naftoflavona (BNF), um agonista do AHR, em peixes com baixa

concentração de estradiol causava a inibição da síntese de

vitelogenina, enquanto altas concentrações de estradiol e BNF

causavam um aumento na síntese de vitelogenina. Esses

resultados sugerem que os níveis de estradiol determinam o

quanto agonistas de AHR podem suprimir, não ter efeito ou

potenciar a síntese de vitelogenina no fígado. Ou seja, os

estágios mais precoces da vitelogênese (baixos níveis de

estradiol) são mais sensíveis a inibição da síntese de

vitelogenina por HPAs.

Dessa forma, o motivo para diferença na expressão da

vitelogenina entre machos e fêmeas neste experimento pode

envolver dois fatores: 1) o pequeno “n” amostral e 2) os

diferentes estádios da vitelogênese (níveis de estradiol variáveis)

das fêmeas utilizadas no experimento. Esses fatores associados

podem ter contribuído para o alto desvio padrão e ausência de

significância estatística em fêmeas. Por outro lado, a ausência de

estádios de vitelogênese e baixos níveis de estradiol em machos

contribuiram para uma maior homogeneidade da amostra,

permitindo uma maior nível de significância estatística.

15.2.2 Sistema de Biotransformação Fase II e III

Após a fase I de biotransformação, os xenobióticos se

tornam substratos mais adequados para reações de conjugação

que compõem a fase II de biotransformação (INSAUSTI et al.,

2009; ZAMEK-GLISZCZYNSKI et al., 2006). O aumento na

expressão gênica da GST e UDPGT1B neste estudo pode indicar

uma maior capacidade de biotransformação por conjugação com

glutationa e ácido glicurônico, respectivamente. Um resultado

que corrobora essa hipótese foi o aumento na atividade GST em

fígado e brânquia de peixes expostos a 20% da FAD (Capítulo

1).

A formação de glicuronídeos é a principal via de

biotransformação de compostos endógenos e xenobióticos

orgânicos potencialmente tóxicos em mamíferos. Entre os

substratos das UDPGTs estão: esteróides, sais biliares,

bilirubina, fenóis e uma ampla gama de contaminantes

ambientais. Estudos em linguado (Platichthys flesus) mostraram

uma indução do gene UDPGT1B e CYP1A após tratamento com

os agonistas do AHR, Aroclor e benzo(a)pireno, sugerindo que

ambos genes são regulados por AHR nessa espécie (LEAVER et

al., 2007). Nesse mesmo estudo foi demonstrado que os

subtratos da UDPGT1B são o 1-naftol, estradiol e testosterona

(LEAVER et al., 2007). Dessa forma, um aumento na atividade

UDPGT1B, devido a uma indução do gene UDPGT1B (Figura

10), poderia potencialmente aumentar a biotransformação de

metabólitos do naftaleno (1-naftol) e promover um aumento na

excreção de hormônios esteróides.

As glutationa S-transferases (GSTs) são uma família de

enzimas envolvidas na detoxificação de uma grande variedade

de substratos xenobióticos. Essas enzimas catalisam a adição do

tripeptídeo Glutationa (GSH) em substratos que possuem centros

eletrofílicos, aumentando a hidrosolubilidade e facilitando a

excreção (KONISHI et al., 2005). Os genes de GSTs possuem

tanto elementos de resposta antioxidante (ARE) quanto

elementos de resposta a xenobióticos (XRE) e, sendo assim,

esses genes podem ser modulados pelo receptor AHR e/ou o

fator de transcrição NRF2 (KONISHI et al., 2005). O aumento na

expressão dos genes GST e UDPGT1B encontrados nesse

estudo (Figura 10), assim como para o CYP1A, pode estar

associado aos HPAs detectados nos tecidos dos animais

expostos, uma vez que são agonistas do AHR.

O gene que codifica para enzima Metiltransferase (MET),

outra enzima de fase II, foi identificado como gene induzido neste

estudo (Tabela 7). Estudos por similaridade com a sequência de

Danio rerio sugerem que o gene MET codifica para uma proteína

com atividade Catecol-O-Metiltransferase (COMT). A COMT

catalisa a transferência de um grupo metil da S-Adensil-

metionina para uma grupo hidroxil catecólico presente no

composto aceptor (YASUDA et al., 2009). A COMT inativa

hormônios, neurotransmissores e xenobióticos que possuem um

grupo catecol (TENHUNEN, 1994). Estudos em humanos

mostram que o gene COMT é reprimido por β-estradiol via

receptor de estrógeno (ER) (JIANG et al., 2003). Nos peixes

expostos a FAD, pode-se sugerir que o aumento na

biotransformação de fase I e II (Capitulo I) acelerou a

biotransformação de β-estradiol, permitindo a supressão da

repressão do gene COMT e, consequentemente, o aumento da

expressão deste gene. A redução nos níveis de β-estradiol

também pode ser provocada pelo naftaleno através de uma

desregulação em múltiplos locais no eixo hipotalâmico-

hipofisário-gonadal ou pelo fenantreno através da inibição de

enzimas esteroidogênicas (THOMAS; BUDIANTARA, 1995;

TINTOS et al., 2007; MONTEIRO; REIS-HENRIQUES;

COIMBRA, 2000).

As reações de conjugação aumentam a hidrosolubilidade, a

carga negativa da molécula e seu peso molecular. Essas

mudanças nas propriedades fisico-químicas dos xenobióticos

reduzem sua permeabilidade à membrana plasmática. Dessa

forma, é necessária a existência de proteínas carreadoras de

membrana que transportem essas substâncias para o sangue

sinusoidal, para eventual excreção via urina, ou para os

canalículos (excreção via bile) (ZAMEK-GLISZCZYNSKI et al.,

2006). O processo de transporte de xenobióticos pelas proteínas

de membrana foi caracterizado como fase III de

biotransformação (KEPPLER; RINGWOOD, 2001).

A proteína de resistência a multidrogas ABCC4 medeia o

efluxo de ânions orgânicos para fora dos hepatócitos. Estudos

em humanos mostraram que essa proteína está localizada na

membrana sinusoidal dos hepatócitos e medeia o co-transporte

de glutationa (GSH) com ácidos biliares ou outros substratos.

Entre os substratos estão: Monofosfato de Adenosina e

Monofosfato de Guanosina cíclicos (AMPc e GMPc), ácidos

biliares, eicosanoides, urato, Dehidroepiandrosterona-sulfato,

Estradiol-17-D-glicuronídeo, α-naftil-β-D-glicuronídeo, Glutationa-

S-conjugados (AUBEL et al., 2002; BAI et al., 2004; CHEN;

KLAASSEN, 2004; RUSSEL; KOENDERINK; MASEREEUW,

2008). Tendo em vista os substratos da ABCC4, sugere-se que a

possível indução desse gene nesse estudo (Tabela 7) pode

aumentar o efluxo de metabólitos sulfatados, glicuronídeos e

glutationa-S-conjugados de hormônios e do naftaleno (α-naftil-β-

D-glicuronídeo), garantindo a manutenção da homeostase

celular. Outra possível conseqüência é a depleção de glutationa

(GSH) hepática devido ao seu co-transporte com ânions

orgânicos. Contudo, deve-se ressaltar o fato que o conhecimento

sobre os substratos e a modulação gênica dessa proteína é

recente e somente estabelecida em mamíferos.

Em mamíferos, a modulação do gene ABCC4 envolve a

ativação e ligação do NRF2 no elemento de resposta

antioxidante (ARE) localizado na região promotora do gene

ABCC4 (CHEN; KLAASSEN, 2004; RUSSEL; KOENDERINK;

MASEREEUW, 2008). O fator de transcrição NRF2, ao contrário

do AHR, não é ativado por ligantes. Sob condições normais, o

NRF2 está associado a uma proteína inibitória chamada KEAP1.

Na presença de endo ou xenobióticos que reagem com tióis ou

aumentam a formação espécies reativas de oxigênio (por

exemplo, quinonas) a KEAP1 é inativada. Uma vez livre de

KEAP1, o NRF2 é translocado para o núcleo onde pode ativar a

transcrição de vários genes que possuem ARE em suas regiões

promotoras.

A biotransformação do naftaleno e fenantreno gera

espécies reativas de oxigênio (FORMAN; ZHANG; RINNA, 2009;

YIN et al., 2007). Dessa forma, sugere-se que a indução do

gene ABCC4 seja resultado de um estresse oxidativo hepático

que ativou a via do NRF2. Outro resultado que corrobora com

essa hipótese é o aumento da atividade Glutationa redutase

(gene regulado por NRF2) em peixes expostos durante 96H a

FAD (Capitulo 1). No entanto, vale ressaltar que: 1) Exceto as

enzimas antioxidantes, nenhum parâmetro indicador de estresse

oxidativo foi medido nesse estudo; 2) o aumento da atividade GR

pode ter explicações alternativas que envolvem modificações

pós-traducionais na proteína; 3) A expressão gênica da ABCC4

não foi validada por PCR quantitativo, podendo ser um falso

positivo da técnica de SSH.

Uma outra proteína transportadora de membrana

encontrada nesse estudo como gene inibido pela técnica de SSH

foi a OATP2 (Tabela 8). Estudos em ratos mostraram que os

níveis da proteína e da expressão gênica da OATP2 diminuiram

após o tratamento com agonistas do receptor AHR (GUO;

CHOUDHURI; KLAASSEN, 2002). Mais uma vez, pode-se

atribuir a mudança na expressão gênica aos HPAs agonistas do

AHR contidos na FAD. No entanto, vale ressaltar que a

expressão gênica da OATP2 não foi validada por PCR

quantitativo, podendo também ser um falso positivo da técnica de

SSH.

15.2.3 Genes Envolvidos no sistema Imune Inato e

Metabolismo de Carboidratos e Lipídeos

Os resultados da SSH (Tabela 7 e 8) apresentaram

diversos genes envolvidos no sistema imune inato tais como:

Componente C3 e o Inibidor C1, pertencentes ao sistema

complemento, e os genes Transferrina, α-microglobulina/bicunina

(AMBP), Apolipoproteína AI (ApoAI), que além de participarem

na regulação do sistema imune inato, também possuem outras

funções no metabolismo de carboidratos e lipídeos.

Os resultados do PCR quantitativo mostram que o

Componente C3 e a Transferina são falsos positivos da técnica

de SSH. Os demais genes não foram validados por PCR

quantitativo e serão discutidos apenas em função de sua

possível alteração pela técnica de SSH.

O Inibidor C1 é um inibidor de serina proteases que regula

a ativação do sistema complemento. A regulação do sistema

complemento ocorre através da inativação da via clássica das

proteases (C1r e C1s) e inibição da via alternativa através da

interação reversível com a proteína C3b (DAVIS, 2004). A

inibição do gene Inibidor C1 neste estudo poderia permitir a

autoativação do sistema complemento com possíveis efeitos

negativos no sistema imune inato.

Outros genes envolvidos no sistema imune e metabolismo

de carboidratos e lipídeos que aumentaram a expressão no

grupo exposto a FAD foram a Apolipoproteína AI (ApoAI) e a

alfa-1-Microglobulina/bicunina (AMBP). A Apolipoproteína AI

(ApoAI) promove o efluxo de colesterol, associa-se a lipídeos,

ativa a lecitina/colesterol aciltransferase e forma o HDL (FRANK;

MARCEL, 2000). A ApoAI também pode agir como um inibidor do

complexo de ataque a membrana C5b-9 ao interagir com o

componente C3 do sistema complemento (MAGNADÓTTIR;

LANGE, 2004). O gene AMBP é responsável por codificar duas

glicoproteínas do plasma: a alfa-1-Microglobulina (A1M) e

bicunina. A A1M funciona como um carreador de pequenas

moléculas hidrofóbicas e pode ter um papel chave na regulação

da resposta imune. A bicunina é uma serina protease que parece

participar do controle de células endoteliais e estabilização da

matrix extracelular (TYAGI, 2002). Estudos in vitro mostram que

bicunina previne invasão de células tumorais e metástase

(KOBAYASHI et al., 1994).

Outros genes reprimidos envolvidos no metabolismo de

carboidratos e lipídeos neste estudo foram: a UDP-glicose

pirofosforilase (UDPGP) e a Proteína ligante de Acil-CoA

(ACBP). A UDP-glicose pirofosforilase é uma das enzimas

envolvidas na glicogênese e síntese de uridina difosfato ácido

glicurônico (UDPGA) (VANHULLE et al., 2001). A possível queda

na expressão desse gene pode comprometer a produção do

substrato UDPGA e, consequentemente, no processo de

glicuronidação por UDPGT. A proteína ligante de acil-CoA

(ACBP) liga-se seletivamente a ésteres de Acil-CoA de cadeia

média e longa (C14-C22). Entretanto, o exato papel da ACBP no

metabolismo de lipídeos é ainda desconhecido (SANDBERG et

al., 2005). Estudos em leveduras mostram que ACBP é

importante no correto endereçamento de proteínas e no tráfego

vesicular (BURTON et al., 2005). Estudos sugerem que a

expressão de ACBP de mamíferos é regulada pela dieta. O jejum

reduz a expressão, enquanto uma dieta rica em lipídeos aumenta

a expressão de ACBP (BHUIYAN et al., 1995). A explicação para

redução na expressão de ACBP poderia envolver um aumento

na demanda energética durante o processo de biotransformação

no grupo exposto. A maior demanda energética acentuaria os

efeitos do jejum, promovendo uma redução nos estoques de

glicogênio e na expressão de ACBP.

15.2.4 Apoptose

A presenilina 2 (PEN-2), cujo gene foi encontrado como

induzido pela SSH (Tabela 7), é um membro do complexo da γ-

secretase que possui uma função essencial na proteção contra a

apoptose dependente de caspases em Danio rerio.

(ZETTEMBERG et al., 2006). Estudos com embriões de Danio

rerio mostram que o “knockdown” do gene PEN-2 nos tecidos

dos peixes causava apoptose em todo o embrião (CAMPBELL et

al., 2006). O complexo da γ-secretase também é responsável

pela clivagem da proteína integral de membrana tipo I (APP),

gerando os peptídeos β-amilóides. A agregação desses

peptídeos em humanos tem sido relacionada a doença

neurodegenerativa de Alzheimer e azoospermia (RENGARAJ et

al., 2008).

A proteína integral de membrana 2B (ITM2B), também

encontrada como induzida pela SSH (Tabela 7), possui diversas

funções. Uma dessas funções é reduzir os níveis de peptideos β-

amilóides tóxicos formados pela atividade do complexo da γ-

secretase (RENGARAJ et al., 2008). Outra função atribuída a

essa proteína é a indução de apoptose pela ativação da via

mitocondrial dependente de caspases (FLEISCHER; AYLLON;

REBOLLO, 2002).

É importante ressaltar que as funções dessas duas

proteínas (PEN2 e ITM2B) na apoptose são antagônicos. A

PEN2 promove a sobrevivência celular enquanto a ITM2B é pró-

apoptótica. Por outro lado, essas duas proteínas também podem

interagir, reduzindo os níveis dos peptideos β-amilóides formados

pela atividade do complexo γ-secretase.

100

15.2.5 Transporte de Oxigênio

Duas sequências neste estudo foram identificadas como

Hemoglobina e Alfa Hemoglobina A (Tabela 8). Estudos em

peixes (Paralichthys olivaceus) expostos a fração solúvel em

água do petróleo mostraram uma redução na expressão do gene

Alfa Hemoglobina nos rins e redução na contagem de células

vermelhas (NAKAYAMA et al., 2008). Além disso, um declínio na

concentração de hemoglobina foi observado em peixes

(Paralichthys olivaceus) expostos a fenantreno (JEE; KIM;

KANG, 2004), em peixes (Prochilodus lineatus) expostos a FAD

(SIMONATO; GUEDES; MARTINEZ, 2008) e em peixes

(Pleuronectes americanus) coletados em locais contaminados

por HPAs e bifenilas policloradas. Dessa forma, a diminuição na

expressão dos genes da hemoglobina neste estudo pode estar

relacionada com os HPAs presentes na FAD.

15.2.6 Chaperonas e Coativadores da Transcrição

O Complexo associado a polipetídeos nascentes alfa ( -

NAC) possui função de coativador transcricional. O -NAC

também pode interagir com polipetídeos recém sintetizados nos

ribossomos, evitando interações inadequadas entre os

polipeptídeos nascentes e as proteínas citosólicas. Além disso,

essa proteína ajuda no correto endereçamento das proteínas

recém sintetizadas. (WIEDMANN et al. 1994). Neste estudo o

gene

-NAC foi identificado como um dos genes induzidos nos

animais expostos a FAD (Tabela 7). Pode-se sugerir que este

101

aumento esteja relacionado à alteração no padrão de expressão

gênica celular e a necessidade de -NAC no processo de

tradução subsequente.

A proteína de choque térmico 90 (HSP90) têm sido

utilizada como marcador em diversos tipo de estresse celular

(VAN DER OOST; BEYER; VERMEULEN, 2003). A HSP90

parece estar envolvida no enovelamento dos receptores AHR

recém sintetizados, estabilização da conformação ativa do AHR e

inibição da dimerização constitutiva com ARNT (PETRULIS;

PERDEW, 2002). A associação do receptor AHR e HSP90 é

crucial para sinalização mediada pelo AHR, enquanto a

desestabilização dessa interação conduz a degradação

proteossomal do receptor (WISEMAN; VIJAYAM, 2007). A

HSP90 também interage com outros receptores nucleares como

o receptor de estrógeno (ER) e o receptor de glicocorticóide,

sendo importante para a ativação do ER por estrógenos em

peixes (OSBORNE et al., 2007).

Em mamíferos, a HSP90 é um componente do complexo

molecular de chaperonas citosólico. A desestabilização desse

complexo libera o fator de choque térmico 1 (HSF1), que após

um processo de trimerização, translocação nuclear e interação

com a região promotora do gene HSP90, promove a transcrição

da HSP90 (OSBORNE et al., 2007). Esse mecanismo de

modulação da transcrição do gene HSP90 foi descrito em

mamíferos; não há, até o momento, informações para peixes.

No presente estudo a SSH mostrou uma redução na

expressão da HSP90 nos peixes expostos a FAD durante 24H

(Tabela 8); a diminuição na expressão da HSP90 também foi

descrita em um trabalho realizado com peixes Danio rerio

expostos a água produzida. As consequências fisiológicas de

uma redução na expressão proteica da HSP90 pode envolver

desregulação endócrina, devido a sua interação com os

receptores nucleares, e até mesmo apoptose, uma vez que essa

102

proteína interfere no processo de apoptose inibindo a formação

do apoptossomo (CHIOSIS et al., 2004).

15.2.7 Proteínas ribossomais e Mitocondriais

Nesse estudo houve um aumento na expressão do gene

citocromo c oxidase (COXI). A enzima citocromo C oxidase, ou

complexo IV, é um grande complexo protéico transmembrana

encontrado em bactérias e nas mitocôndrias. É a última enzima

da cadeia transportadora de elétrons. Contribui na formação da

diferença de potencial transmembrana utilizado pela ATP sintase

para sintetizar o ATP (VOET; VOET, 2004).

Alguns genes que codificam proteínas ribossomais foram

identificados como possivelmente reprimidos neste estudo

(Tabela 8). Estas proteínas são componentes integrais da

maquinaria celular basal envolvida na síntese de proteínas.

Contudo, existem evidências mostrando a participação dessas

proteínas nas vias de sinalização de crescimento.

103

16 CONCLUSÕES FINAIS E PERSPECTIVAS

• Os genes envolvidos no processo de

biotransformação de fase I e II validados por qPCR como CYP1A

e GST foram induzidos no grupo exposto, mostrando que, de

forma semelhante ao Capitulo 1, esses genes e as proteínas

codificadas por eles podem ser bons biomarcadores de

exposição a FAD;

• Outros genes de fase I e II de biotransformação

(CYP2P2, UDPGT1B, MET) foram identificados e validados por

qPCR. Esses genes são candidatos a biomarcadores de

exposição aos componentes da FAD;

• A fase III de biotransformação também apresentou

genes identificados como induzidos e reprimidos pela SSH

(ABCC4 e OATP2) que não foram validados por qPCR. Os

substratos das proteínas codificadas por esses genes ainda não

foram investigados em peixes. Entre os possíveis substratos

estão glicuronídeos e Glutationa S-conjugados;

• A VgA foi identificada como gene reprimido na SSH,

mas a validação por qPCR mostrou repressão gênica apenas em

machos;

• Outros genes foram identificados por SSH e

potencialmente codificam produtos envolvidos em diversas

funções biológicas como: sistema imune, metabolismo de

carboidratos e lipídeos, apoptose, transporte de oxigênio,

enovelamento de proteínas, regulação da transcrição entre

outras;

• O processo de ativação na expressão dos genes

CYP1A, GST, UDPGT1B possivelmente está associado a uma

ativação do AHR pelos seus agonistas encontrados na FAD;

104

• Estudos posteriores envolvendo a clonagem

completa dos genes validados por qPCR são necessários para a

identificação final dos genes;

• Estudos focados na identificação dos receptores

nucleares que modulam os genes validados por qPCR são

necessários. Essa informação permitirá identificar as classes de

xenobióticos capazes de desencadear a ativação transcricional

desses genes, ajudando a delimitar a especificidade de um gene

e seu produto como biomarcador.

105

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