( PDF ) Diatomáceas fitoplanctônicas de dois diferentes ambientes costeiros da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil

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Universidade Federal de Santa Catarina

Departamento de Botânica

Laboratório de Ficologia

Programa de Pós-Graduação em Biologia Vegetal

DÁVIA MARCIANA TALGATTI

Florianópolis, SC

2009

Diatomáceas fitoplanctônicas de dois diferentes ambientes

costeiros da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil

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DÁVIA MARCIANA TALGATTI

Diatomáceas fitoplanctônicas de dois diferentes ambientes costeiros da Ilha

de Santa Catarina, SC, Brasil

Orientadora: Dra. Roselane Laudares-Silva

Co-orientadora: Dra. Marinês Garcia

Florianópolis, SC

2009

Dissertação apresentada ao Programa de

Pós-

Graduação em Biologia Vegetal da

Universidade Federal de Santa Catarina,

como requisito parci

al para obtenção do

título de Mestre em Biologia Vegetal.

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iii

Talgatti, Dávia Marciana

Diatomáceas fitoplanctônicas de dois diferentes ambientes costeiros da Ilha de

Santa Catarina, SC, Brasil

f. 151, figs, tabs.

Orientador: Dra. Roselane Laudares-Silva

Co-orientador: Dra. Marinês Garcia

Dissertação (Mestrado) – Universidade Federal de Santa Catarina, Centro de

Ciências Biológicas, Departamento de Botânica, Programa de Pós-Graduação

em Biologia Vegetal.

Bibliografia: f. 151

1. Diatomáceas marinhas; 2. Thalassiosira; 3. Skeletonema; 4.

Coscinodiscus

wailesii; 5. Sudoeste do Atlântico; 6. Ilha de Santa Catarina.

À Roseli Souza-Mosimann,

pelo incansável esforço destinado ao estudo

das diatomáceas de Santa Catarina,

Com carinho e admiração, dedico.

Agradecimentos

Agradeço, primeiramente à Professora Doutora Roselane Laudares-Silva pela

orientação, paciência, incentivo, confiança e pela acolhida em Santa Catarina. Também,

por me ensinar que, acima de tudo, cada trabalho deve ser realizado com dedicação e

ética.

À Professora Doutora Marinês Garcia, pela co-orientação, por ter aceitado

participar novamente de minha vida científica e pelo fundamental auxílio no

desenvolvimento deste trabalho. Por ser exemplo de profissionalismo e determinação.

À Professora Roseli Souza-Mosimann, pela carinhosa acolhida no mundo

diatomológico de Santa Catarina. Pela valiosa contribuição ao estudo das diatomáceas

no Brasil e pelo exemplo de dedicação e amor ao trabalho.

À Professora Doutora Maria Terezinha Paulilo pela confiança, incentivo, pela

dedicação ao curso de Pós-Graduação em Biologia Vegetal e por sempre procurar

resolver os problemas técnico-científicos dos alunos.

Ao curso de Pós-Graduação em Biologia Vegetal pela infra-estrutura para a

realização deste trabalho. Ao coordenador Professor Doutor Paulo Horta pelas

incansáveis visitas à Pró-Reitoria de Pós-graduação em busca recursos financeiros e

pelo incentivo dado através das prorrogações. Também pelos auxílios ficológicos.

À Professora Doutora Zenilda Bouzon por me apresentar ao Laboratório Central

de Microscopia Eletrônica (LCME), que foi imprescindível para realização deste

trabalho. Também pela confiança, acolhida, incentivo e por estar sempre disposta a

ajudar.

Ao técnico do LCME e operador do Microscópio Eletrônico de Varredura

Américo Cruz, pela paciência, pelo exemplo de persistência, pela dedicação ao trabalho,

e pela fundamental contribuição ao desenvolvimento desta dissertação.

Ao José Carlos Simonassi e à Mariana Coutinho Hennemann, por terem me

acolhido nos projetos de doutorado e conclusão de curso, respectivamente. Pelo auxílio

nas coletas das amostras e pela amizade.

À Professora Doutora Clarice Loguercio-Leite, pelo incentivo, pelo exemplo de

dedicação à Ciência, profissionalismo e pelas conversas científicas.

Aos professores do curso da Pós-Graduação, pelas disciplinas e ensinamentos

sobre Biologia Vegetal. Aos meus colegas e amigos de mestrado da turma de 2007,

Adriano Darosci, Bárbara Neves, Carla Treiber, Fabiana Amorim, Jader Pereira,

Luciane Pereira, Morgana Vailatti, Rafael Kamke e Roberta Pereira.

À Vera Zapellini, secretária do Curso de Pós-Graduação em Biologia Vegetal,

pelos auxílios burocráticos, pela paciência e por estar sempre disposta a ajudar.

À CAPES e à Pró-Reitoria de Pós-Graduação pela bolsa de Mestrado.

Agradeço, aos meus pais, Eolo e Melânia, pelo incentivo, amparo e confiança,

também pelos ensinamentos não científicos, mas tão ou mais importantes que estes.

Pois, sem ética, trabalho e respeito não há como desenvolver estudo sério algum. À

minha avó Josefa Prichua, tios e demais familiares. Aos meus irmãos Otaviano Luis e

Táliston Davi pelo apoio e confiança.

Aos meus fiéis amigos de longa data, Alessandra Martins da Rocha, João Iganci

e Michelli W. Ataíde pelo incentivo e amizade.

À minha amiga Taciane Finatto, pelo exemplo de perseverança e dedicação, pelo

incentivo e por estar sempre por perto, mesmo quando a distância é de um oceano.

Ao Roberto A. Finatto, pelo apoio, incentivo, pela prazerosa convivência e pelas

produtivas e relaxantes discussões sobre a terra, a água e o ar.

À Julia W. Reisser por provar, por a + b, a importância da ecologia, pela

amizade e produtivas discussões.

Ao Fernando Scherner, pelo auxílio nas traduções, companhia nos almoços no

Restaurante Universitário e amizade.

Às ficólogas mais importantes da minha vida, Bianca Vettorato, Débora Cabral,

Josimeire Leandrini e Julyana Farias. Agradeço pela amizade incondicional, ajuda,

pelos momentos de descontração e dialéticos e por terem tornado esse tempo, aqui em

Florianópolis, um dos mais felizes que já vivi.

À Bianca Vettorato, minha irmã de orientação, agradeço pela ajuda na

construção deste trabalho, pela amizade e companheirismo.

Aos ficólogos do LAMAR, Lidiane Scariot, Ticiane Rover, Carmem Zitta e

Éder, pelo incentivo, amizade e discussões ficológicas.

Às grandes e certamente inesquecíveis amigas que conheci em terras

catarinenses, Caroline H. Voltolini, Marisa C. Santana, Jóice Konrad, Thaysi Ventura

de Souza e Rafaella Tavares. Agradeço, cada segundo de convivência, cada palavra de

alento e cada momento de descontração. Também pelo incentivo, apoio e paciência.

À todos que direta ou indiretamente contribuíram para o desenvolvimento deste

trabalho e para minha formação acadêmica e social.

vii

“O verde do tapete que recobre

a maior parte dos continentes

e das algas que povoam os oceanos imensos

é símbolo de fartura

e a garantia da continuidade

da vida no planeta”

Alarich R. Schultz

viii

Resumo Geral

As diatomáceas são citadas como sendo o grupo dominante na costa brasileira.

Portanto, estudos relacionados à taxonomia e distribuição dos gêneros são bastante

relevantes para o entendimento do local onde são registrados e para subsidiar futuros

estudos ecológicos. A Ilha de Santa Catarina está localizada no sudoeste do oceano

Atlântico, em umas das regiões mais complexas, com relação à influência de massas

d’água, do mundo, conhecida como zona de Confluência Brasil-Malvinas. O objetivo do

presente estudo foi inventariar as diatomáceas marinhas (Capítulo 1), descrever e

ilustrar as espécies de Thalassiosira Cleve emend. Hasle (Capítulo 2) e Skeletonema

Greville emend. Sarno et Zingone (Capítulo 3), e ainda, analisar a distribuição anual e

densidade celular de Coscinodiscus wailesii Gran & Angst (Capítulo 4) em dois

diferentes locais estudados na costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil. As coletas

foram mensais (janeiro/2007 a janeiro/2008) e realizadas em três estações de coleta:

duas no centro-oeste da Ilha (Baia Norte: Estação Ratones Grande e Estação Guarás) e

uma no sudeste da Ilha (Estação Pântano do Sul). As amostras foram analisadas em

Microscopia Óptica e Microscopia Eletrônica de Varredura. Foram identificados 139

táxons de diatomáceas. A classe mais representativa foi Coscinodiscophyceae (73

táxons). Foram encontrados 23 táxons do gênero Thalassiosira. Thalassiosira exigua, T.

mala e T. visurgis são primeiros registros para a costa brasileira e T. visurgis para o

sudoeste do Atlântico. A espécie que apresentou a maior freqüência relativa durante a

amostragem foi T. eccentrica (Ehrenberg) Cleve. As maiores freqüências relativas

registradas para o gênero foram observadas na primavera. O gênero Skeletonema foi

representado por três espécies: S. grethae Zingone et Sarno, S. pseudocostatum Medlin

emend. Zingone et Sarno e S. tropicum Cleve. Skeletonema grethae e S. pseudocostatum

ocorreram concomitantemente nos meses de maio, agosto, novembro e janeiro/08,

sendo as que apresentaram maior freqüência relativa de valvas. Enquanto que S.

tropicum foi registrado somente nos meses de janeiro/07 e maio, apresentando uma

baixa freqüência relativa de ocorrência. Na amostragem não foi encontrada S. costatum,

indicando que a espécie é menos comum no Sul do Brasil que as demais componentes

do complexo S. costatum “sensu lato”. Coscinodiscus wailesii foi observada nos meses

de janeiro/07, fevereiro, março, abril, julho, dezembro e janeiro/08. A densidade celular

variou entre 193,05 e 2316,6 cels.L

-1

. Houve correlação positiva significativa entre o

número de células e a salinidade na Estação Ratones Grande. Os resultados mostraram

que os dois locais estudados são semelhantes, considerando-se o número de espécies

registradas. Contudo, foram observadas diferenças quando a freqüência relativa de cada

espécie foi analisada. A costa da Ilha de Santa Catarina mostrou-se como um local

bastante diverso em relação ao número de táxons de diatomáceas registrados. Portanto,

precisa ser alvo de mais estudos e merece atenção, considerando-se o alto nível de

degradação ambiental que a região vem sofrendo.

Palavras-chave: Diatomáceas marinhas, Thalassiosira, Skeletonema, Coscinodiscus

wailesii, Sudoeste do Atlântico, Ilha de Santa Catarina.

General Abstract

The group of diatoms is referred as dominant along the Brazilian coast, therefore

studies related to the taxonomy and distribution of the genera are very relevant for

understanding the area where they are registered and to subsidise future ecological

studies. The Santa Catarina Island is located in the southwest of the Atlantic Ocean, one

of the most complex regions in the world regarding the water masses influence, known

as Confluence Zone Brazil-Malvines. The present study inventoried the marine diatoms

(Chapter 1), described and illustrated the Thalassiosira Cleve emend. Hasle (Chapter 2)

and Skeletonema Greville emend. Sarno et Zingone (Chapter 3), and finally analyzed

the annual distribution and cell density of Coscinodiscus wailesii Gran & Angst

(Chapter 4) in two different areas on the coast of the Santa Catarina Island, SC, Brazil.

The samples were collected monthly (January/2007 to January/2008) in three sampling

stations: two in the central west of the Island (North Bay: Ratones Grande station and

Guaras station) and one in the southeast of the island (Pantano do Sul station). The

samples were analyzed using optical microscopy and scanning electron microscopy. 139

diatoms taxa were identified. The most representative class was Coscinodiscophyceae

(73 taxa). 23 taxa of the genera Thalassiosira were found. Thalassiosira exigua, T. mala

and T. visurgis were the first register for the Brazilian coast and T. visurgis for the

south-western Atlantic. The species that presented the highest relative frequency during

the sampling period was T. eccentrica (Ehrenberg) Cleve. The highest relative

frequencies registered for the genera were observed in the spring. The genus

Skeletonema was represented by three species: S. grethae Zingone et Sarno, S.

pseudocostatum Medlin emend. Zingone et Sarno and S. tropicum Cleve. Skeletonema

grethae and S. pseudocostatum occurred concomitantly in May, August, November and

January/08, and presented the highest relative frequency of valves while S. tropicum

was registered only in January/07 and May, presenting a low relative frequency of

occurrence. S. costatum was not found, indicating that the species is less common in the

south of Brazil than the other components of the complex S. costatum “sensu lato”.

Coscinodiscus wailesii was observed in January/07, February, March, April, July,

December and January/08. The cell density varied between 193,05 and 2316,6 cels.L

-1

There was significant positive correlation between the number of cells and the salinity

at the Ratones Grande station. The results showed that the two studied areas are similar

considering the number of species registered. However, differences were observed when

the relative frequency of each species was analysed. The Santa Catarina Island coast

presented a very diverse number of diatoms taxa registered. Therefore more studies and

attention should be given for the referred coast, considering the high level of

environmental degradation that has been occurring in the region.

Keywords: Marine diatoms, Thalassiosira, Skeletonema, Coscinodiscus wailesii,

Southwestern Atlantic, Santa Catarina Island.

Sumário

Introdução Geral

.....................................................................................................11

Capítulo 1.

Diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha de Santa Catarina, SC,

Brasil: lista de espécies e distribuição ............................................................................15

1.1 Introdução............................................................................................................16

1.2 Metodologia.........................................................................................................18

1.3 Resultados e Discussão........................................................................................21

1.4 Bibliografia..........................................................................................................48

Capítulo 2.

Espécies do gênero Thalassiosira Cleve emend. Hasle (Diatomeae) na

costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil ....................................................................51

2.1 Introdução...........................................................................................................52

2.2 Metodologia........................................................................................................54

2.3 Resultados...........................................................................................................57

2.4 Discussão..........................................................................................................105

2.5 Bibliografia.......................................................................................................109

Capítulo 3.

Espécies do gênero Skeletonema Greville emend. Sarno et Zingone

(Diatomeae) na costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil.........................................115

3.1 Introdução........................................................................................................116

3.2 Metodologia.....................................................................................................118

3.3 Resultados........................................................................................................121

3.4 Discussão.........................................................................................................134

3.5 Bibliografia......................................................................................................137

Capítulo 4.

Coscinodiscus wailesii Gran & Angst (Coscinodiscaceae - Diatomeae) na

costa da Ilha de Santa Catarina, sudoeste do oceano Atlântico: caracterização e

distribuição ...................................................................................................................140

4.1 Introdução........................................................................................................141

4.2 Metodologia.....................................................................................................142

4.3 Resultados........................................................................................................145

4.4 Discussão.........................................................................................................148

4.5 Bibliografia......................................................................................................150

Introdução Geral

A maior parte das espécies de diatomáceas vive como células simples livres na água

ou substrato (areia ou silte), outras vivem presas ao substrato através de “pedúnculos de

mucilagem”, formando colônias, que apresentam uma ampla variação de formas, tubos ou

ainda massas mucilaginosas (Cupp 1943). O grupo é considerado o mais importante com

relação a produção primária mundial (aproximadamente 25%) e apresenta a maior riqueza

de espécies, quando comparado com outros grupos de algas (Willén 1991).

As diatomáceas, como os outros organismos fitoplanctônicos marinhos, são

suscetíveis e influenciadas pelas condições oceanográficas, portanto, podem ser indicadores

de massas d’água, estado trófico do ambiente e ressurgências (Gaeta & Brandini 2006)

contribuindo para o conhecimento da hidrografia do local onde são estudadas.

Nas regiões estuarinas, além da influência dos fenômenos oceanográficos, a

dinâmica e composição do fitoplâncton é afetada por trocas nas condições do ambiente

acompanhadas por variações na mistura da água doce com a salgada, as quais apresentam

diferença de turbidez, substâncias orgânicas dissolvidas e nutrientes (Smayda 1983).

As diatomáceas são o maior componente de muitas teias alimentares. Portanto,

estimar a abundância, biomassa e taxa de crescimento do grupo, tem sido e será essencial

para o entendimento do ambiente marinho (Montagnes & Franklin 2001). Contudo, o

conhecimento ecológico do grupo nos ambientes aquáticos precisa ser reforçado com dados

relacionados à taxonomia, tendo em vista que sem a identificação correta dos táxons os

estudos ecológicos se tornam incompletos e perdem credibilidade.

Nas diatomáceas, apesar do avanço da biologia molecular (Medlin 2009), o estudo

taxonômico ainda é baseado essencialmente na morfologia da frústula silicosa, fato que

torna a Microscopia Eletrônica uma ferramenta indispensável na elucidação de caracteres

inconspícuos em Microscopia Óptica.

Os primeiros estudos com diatomáceas fitoplanctônicas no Brasil foram os de

Zimmermann, a partir de 1913. De 1913, até aproximadamente 1940, todos os estudos

realizados no fitoplâncton costeiro foram relacionados às diatomáceas (Villac, Cabral-

Noronha & Pinto 2008). No estado de Santa Catarina, os estudos foram iniciados por Cunha

& Fonseca (1918), posteriormente continuados, principalmente, pelos pesquisadores

Moreira Filho, Valente Moreira, Souza-Mosimann, Felício-Fernandes, Fernandes e

Laudares-Silva, que publicaram seus estudos entre os anos de 1967 e 2005.

Apesar do grande número de estudos realizados no estado de Santa Catarina, o uso

de Microscopia Eletrônica tem sido restrito a poucos trabalhos. O pioneiro foi o de

Fernandes (2003).

A Ilha de Santa Catarina, local escolhido para o desenvolvimento do presente estudo,

está localizada no sudoeste do Oceano Atlântico, em umas das regiões mais complexas do

mundo, com relação a influência de massas d’água, conhecida como zona de Confluência

Brasil-Malvinas (Souza & Robinson 2004). Outro fator atuante na região, de evidente

importância é a pluma do rio da Prata, que fertiliza as águas uruguaias e sul - brasileiras, é

rica principalmente em silicato e atua dependendo dos ventos (Piola et al. 2008).

A importância desta região tem levado os pesquisadores a levantar várias hipóteses à

respeito do funcionamento deste ecossistema, dentre as quais aquelas relacionadas a

produção primária e ciclagem de Carbono. O estudo aqui apresentado, foi desenvolvido

paralelamente com o projeto intitulado “Ciclagem de carbono e populações fitoplanctônicas

na região costeira da Ilha de Santa Catarina, SC”, de José Carlos Simonassi (Programa de

Pós-Graduação em Biologia Marinha, UFF/RJ), dando subsídios para este.

Considerando-se a representatividade das diatomáceas na composição do

fitoplâncton marinho, o conhecimento insuficiente desse grupo à luz da Microscopia

Eletrônica, a contribuição desses organismos na produção primária de ambientes costeiros e

a importância oceanográfica da região onde se localiza a Ilha de Santa Catarina, o objetivo

principal deste trabalho foi listar as diatomáceas registradas na costa da Ilha de Santa

Catarina, SC, Brasil, identificar e descrever morfologicamente as espécies do gênero

Thalassiosira Cleve emend. Hasle e Skeletonema Greville emend. Sarno et Zingone, bem

como contribuir com o aumento do conhecimento relacionado a distribuição anual de

Coscinodiscus wailesii Gran & Angst, uma espécie potencialmente produtora de Florações

Algais Nocivas.

O presente estudo será apresentado em capítulos, os quais estão organizados em

forma de artigo científico, formatados segundo as normas apresentadas para submissão de

manuscritos ao periódico “Diatom Research” (Journal of the International Society for

Diatom Research).

O Capítulo 1, intitula-se “Diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha de Santa

Catarina, SC, Brasil: lista de espécies e distribuição”. Neste, será apresentada a lista e a

distribuição das diatomáceas registradas em três estações de coleta na costa da Ilha de Santa

Catarina. Apresentará, também a citação dos principais trabalhos realizados na região e a

comparação destes com os resultados encontrados no presente estudo.

O Capítulo 2, intitula-se “Espécies do gênero Thalassiosira Cleve emend. Hasle

(Diatomeae) na costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil”. Neste, serão apresentadas as

espécies identificadas do gênero Thalassiosira, seguidas da descrição, distribuição, chave de

identificação e ilustrações.

O Capítulo 3, intitula-se “Espécies do gênero Skeletonema Greville emend. Sarno et

Zingone (Diatomeae) na costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil”. Semelhante ao

Capítulo 2, neste serão apresentadas as espécies do gênero Skeletonema, seguidas da

descrição, distribuição e ilustrações.

Finalizando, será apresentado o Capítulo 4, intitulado “Coscinodiscus wailesii Gran

& Angst (Coscinodiscaceae - Diatomeae) na costa da Ilha de Santa Catarina, sudoeste do

oceano Atlântico: caracterização e distribuição”. Neste, será mostrado a distribuição anual e

densidade celular registrada em três estações amostradas.

Bibliografia

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Capítulo 1

Diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha de Santa Catarina, SC,

Brasil: lista de espécies e distribuição

Resumo

O acompanhamento da dinâmica e a identificação taxonômica específica das

diatomáceas nas zonas costeiras é bastante relevante para o entendimento da

comunidade fitoplanctônica, considerando-se que a biomassa de produtores primários

influencia diretamente a economia pesqueira e pode ser potencialmente indicadora de

alterações ambientais ocorridas no local. Este trabalho teve como objetivo inventariar as

espécies de diatomáceas registradas no fitoplâncton de três estações de coleta

localizadas na costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil. As coletas foram realizadas

em duas estações localizadas no centro-oeste da Ilha: Ratones Grande (27º28’30.52”S -

48º33’27.27”W) e Guarás (27º33’20.09”S - 48º33’27.50”W) e em uma no sudeste:

Pântano do Sul (27º47’24.97”S - 48º30’39.31”W). A triagem realizada em lâminas

permanentes resultou no registro de 139 táxons de diatomáceas. A classe melhor

representada foi a Coscinodiscophyceae. As espécies que apresentaram maior

freqüência relativa de valvas foram Paralia sulcata, Psammodyctyon panduriforme,

Actinocyclus octonarius, Skeletonema pseudocostatum, Thalassiosira eccentrica,

Coscinodiscus wailesii, Thalassionema synedriforme e Pleurosigma affine. Os

resultados mostraram que os dois locais estudados são semelhantes, considerando-se a

riqueza de espécies registradas. Contudo, foram observadas diferenças quando a

freqüência relativa de cada espécie foi analisada. Não foram observadas diferenças com

relação a riqueza de espécies registradas durante as estações do ano, sugerindo que esse

fato pode estar relacionado ao aporte de nutrientes, pluviosidade e regime de ventos,

que à mudança de temperatura de acordo com a época do ano. A costa da Ilha de Santa

Catarina mostrou-se como um local bastante diverso em relação ao número de táxons de

diatomáceas registrados. Portanto, precisa ser alvo de mais estudos e merece atenção,

considerando-se o alto nível de degradação ambiental que a região vem sofrendo.

Palavras-chave: Diatomáceas fitoplanctônicas, Baia Norte, Pântano do Sul,

Florianópolis.

1.1 Introdução

Os principais componentes taxonômicos do fitoplâncton marinho são as

diatomáceas, dinoflagelados, cocolitoforídeos e alguns outros flagelados (Zyitzschel

1978). As diatomáceas, como os outros organismos fitoplanctônicos marinhos são

suscetíveis e influenciadas pelas condições oceanográficas, portanto podem ser

indicadores de massas d’água, estado trófico do ambiente e ressurgências (Gaeta &

Brandini 2006) contribuindo para o conhecimento da hidrografia do local onde são

estudadas.

As diatomáceas do estado de Santa Catarina vêm sendo estudadas desde 1918. O

trabalho pioneiro foi o de Cunha & Fonseca (1918). Neste, foram citados, além das

diatomáceas, outros grupos fitoplanctônicos. O primeiro trabalho relacionado,

exclusivamente, às diatomáceas fitoplanctônicas no Estado de Santa Catarina, foi o de

Moreira Filho, Maruo & Valente Moreira (1967), neste os autores estudaram as

diatomáceas da enseada de Porto Belo e encontraram 104 espécies, sendo a maioria

pertencente ao plâncton nerítico.

Em 1971, Corte-Real & Aguiar publicaram um estudo sobre as diatomáceas

planctônicas da Baia Norte e Palhoça. Neste os autores identificaram 64 espécies e

evidenciaram a influência das correntes frias, das Malvinas e quente, do Brasil na

formação da flora estudada. Também observaram que o local apresentou espécies

comuns aos estados do Paraná e Rio Grande do Sul sendo poucas exclusivas de Santa

Catarina.

Valente Moreira & Moreira Filho (1978) estudaram as diatomáceas litorâneas e

planctônicas de dezessete estações localizadas entre Ubatuba e Florianópolis, neste os

autores identificaram 180 táxons, entre espécies e variedades, distribuídos em 65

gêneros, com predominância de Coscinodiscus, Nitzschia, Cocconeis, Navicula,

Rhizosolenia e Pleurosigma.

Souza-Mosimann (1984) estudando a região da Ilha de Anhatomirim, próximo a

Florianópolis identificou 83 táxons com predomínio de espécies marinhas litorais sobre

planctônicas neríticas e oceânicas de águas temperadas e quentes, ocorrendo também

espécies de águas salobras, doces, bentônicas e epifíticas.

Na Baia Norte, Ilha de Santa Catarina, Souza-Mosimann (1985) utilizando rede

de plâncton de 50 µm, encontrou 97 táxons dentre os quais 6 foram novas citações para

o Estado de Santa Catarina.

Moreira Filho, Valente Moreira & Souza-Mosimann (1985) publicaram um

catálogo das diatomáceas marinhas e estuarinas do estado de Santa Catarina com base

em estudos realizados na região no período de 1918 a 1985. Os dados biológicos foram

relacionados com dados ecológicos.

Souza-Mosimann (1988), continuando seus trabalhos sobre as Baías da Ilha de

Santa Catarina publicou um estudo preliminar das diatomáceas da Baía Sul. Neste, em 6

estações de coleta, foram observadas 143 táxons sendo que destes 27 foram novas

citações para o estado de Santa Catarina.

Em 1990, Fernandes, Souza-Mosimann & Felício-Fernandes estudaram as

diatomáceas do Rio Ratones (baixo curso e estuário), Florianópolis. Neste, foram

inventariados 283 táxons infragenéricos.

Felício Fernandes, Souza-Mosimann & Moreira Filho (1994) estudaram o

manguezal do rio Tavares, Florianópolis. Neste, foram registrados 41 táxons.

Souza-Mosimann, Laudares-Silva & Roos-Oliveira (2001) publicaram uma nova

contribuição sobre as diatomáceas da Baía Sul, neste trabalho, o segundo realizado na

Baía Sul, foram identificados 108 táxons, destes Aulacodiscus margaritaceus Ralfs,

Coscinodiscus perikompson Rattray, Surirella armoricana Peragallo foram novas

citações para Santa Catarina.

O último levantamento de diatomáceas fitoplanctônicas foi publicado em 2005

por Souza-Mosimann & Laudares-Silva. Neste, foi estudado o complexo Lagunar do sul

do Estado de Santa Catarina. No estudo foram identificados 125 táxons infragenéricos.

O acompanhamento da dinâmica e a identificação taxonômica específica das

diatomáceas nas zonas costeiras é bastante relevante para o entendimento da

comunidade fitoplanctônica, considerando-se que a biomassa de produtores primários

influencia diretamente a economia pesqueira e pode ser potencialmente indicadora de

alterações ambientais ocorridas no local.

O presente estudo teve como objetivo inventariar as espécies de diatomáceas

registradas no fitoplâncton de três estações de coleta localizadas na costa da Ilha de

Santa Catarina, SC, Brasil.

1.2 Metodologia

A Ilha de Santa Catarina localiza-se na região sul do Brasil (27°10’S e 27°50’S-

48°25’W e 48°35’W), no município de Florianópolis e é banhada pelo Oceano Atlântico

(Fig. 1). Para a realização do presente estudo, as amostras de água, foram coletadas em

duas estações no centro-oeste da ilha: Ratones Grande (ERG) (27º28’30.52”S -

48º33’27.27”W) e Guarás (EG) (27º33’20.09”S - 48º33’27.50”W) e uma no sudeste:

Pântano do Sul (EPS) (27º47’24.97”S - 48º30’39.31”W). As estações ERG e EG

localizam-se em uma baía fechada (Baía Norte) sofrendo influência de rios e dos

manguezais do Rio Ratones e Itacorubi (Pagliosa et al. 2005; Pagliosa et al. 2006). A

EG encontra-se localizada mais internamente na baía. A EPS localiza-se em mar aberto,

com menor influência continental.

Os locais onde foi realizada a amostragem na Baía Norte apresentam menor

profundidade que na EPS. Na ERG a profundidade coletada foi de aproximadamente 9

metros, na EG é de 3,5 metros e na EPS é de 13 metros. As coletas foram mensais no

período de janeiro/07 a janeiro/08.

As amostras foram concentradas com auxílio de rede de fitoplâncton com malha

de 25 µm, fixadas com formol a 4% e acondicionadas em refrigerador. Para a melhor

visualização das estruturas da frústula das diatomáceas foram confeccionadas 2 lâminas

permanentes por amostra, seguindo-se a técnica de Simonsen (1974). As lâminas foram

montadas utilizando-se a resina Naphrax (índice de refração 1,7). As lâminas

permanentes foram tombadas no Herbário FLOR do Departamento de

Botânica/CCB/UFSC e encontram-se registradas entre os números 13.004 e 13.039.

As lâminas foram analisadas em microscópio óptico da marca Olympus modelo

BX 50. As fotomicrografias foram feitas com câmara Olympus acoplada no mesmo

microscópio.

A fim de obter-se dados com relação a freqüência relativa do gênero, (após o

processo de oxidação) foram contadas nas lâminas permanentes de 400 a 500 valvas

(Schoeman 1973).

Para a observação do material em microscopia eletrônica de varredura (MEV), o

material foi colocado em suportes de alumínio (stubs), após seco foi recoberto com ouro

(~300 Angstrons) utilizando-se o metalizador Baltec, modelo CED030. O microscópio

utilizado foi o do Laboratório Central de Microscopia Eletrônica da Universidade

Federal de Santa Catarina, marca JEOL 6390 LV com distância de trabalho de 10 mm, a

20 KvO e spot size entre 25 e 30.

A classificação utilizada para enquadramento até Subfilo será a apresentada por

Cavalier-Smith (1998) e a partir de Classe, a apresentada por Round, Crawford & Mann

(1990).

As principais obras utilizadas para a identificação dos táxons foram Hasle &

Syvertsen (1996), Hendey (1964), Hustedt (1927-66, 1930, 1955, 1985), Cleve-Euler

(1953), Krammer & Lange-Bertalot (1986, 1988, 1991), Metzeltin & Lange-Bertalot

(1998), Navarro (1981, 1982), Patrick & Reimer (1966), Peragallo & Peragallo (1897 -

1908), Schmidt (1874-1959).

A distribuição e ilustração das espécies dos gêneros Thalassiosira e Skeletomena

será apresentada detalhadamente nos Capítulos 2 e 3, respectivamente. No presente

estudo os táxons serão somente citados. Coscinodiscus wailesii será ilustrado no

Capítulo 4.

Fig. 1. Localização das estações de coleta amostradas na costa da Ilha de Santa Catarina, Santa Catarina, Brasil. ERG:

Estação Ratones Grande, EG: Estação Guarás e EPS: Estação Pântano do Sul.

1.3 Resultados e Discussão

Os táxons encontrados serão listados a seguir, seguidos da distribuição, bem

como dos meses em que foram registrados.

COSCINODISCOPHYCEAE

THALASSIOSIROPHYCIDAE

THALASSIOSIRALES

Thalassiosira angulata (Gregory) Hasle

T. decipiens (Grunow) E.G. Jørgensen

T. eccentrica (Ehrenberg) Cleve

T. endoseriata Hasle & Fryxell

T. exigua Fryxell & Hasle

T. hendeyi Hasle & Fryxell

T. leptopus (Grunow ex Van Heurck) Hasle & G. Fryxell

T. lundiana Fryxell

T. mala Takano

T. minima Gaarder

T. nanolineata (Mann) Hasle et Fryxell

T. oceanica Hasle

T. oestrupii var. oestrupii (Ostenfeld) Hasle

T. oestrupii var. venrickae Fryxell & Hasle

T. proschkinae Makarov

T. punctigera (Castracane) Hasle

T. rotula Meunier

T. simonsenii Hasle & Fryxell

T. tealata Takano

T. tenera Proshkina-Lavrenko

T. visurgis Hustedt

T. cf. partheneia

Thalassiosira sp.

Minidiscus sp.1

Ocorrência: ERG, EG

Estação do ano/Mês: inverno e primavera (agosto, novembro).

Skeletonema grethae Zingone et Sarno

S. pseudocostatum Medlin emend. Zingone et Sarno

S. tropicum Cleve

Detonula pumila (Castracane) Schutt Figs. 70 - 72

Ocorrência: EG

Estação do ano/Mês: primavera (novembro).

Cyclotella litoralis Lange & Syvertsen Figs. 1, 73 – 77

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses.

Cyclotella stylorum Brightwell Fig. 2

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses, exceto agosto.

Cyclotella striata (Kützing) Grunow Figs. 80 - 81

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses.

Cyclotella sp. Fig. 78 - 79

Ocorrência: ERG, EG

Estação do ano/Mês: outono, verão (março, janeiro/08).

COSCINODISCOPHYCIDAE

MELOSIRALES

Podosira stelliger (Bailey) Mann Fig. 3

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (janeiro/07, fevereiro, março, abril, julho, agosto,

setembro, outubro, dezembro).

PARALIALES

Paralia fenestrata Sawai & Naguno Fig. 83

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses.

Paralia sulcata (Ehrenberg) Kützing Fig. 4

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses.

COSCINODISCALES

Coscinodiscus asteromphalus Ehrenberg

Ocorrência: ERG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (janeiro/07, fevereiro, março, agosto, setembro).

Coscinodiscus granii Gough

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: verão (janeiro/07).

Coscinodiscus jonesianus (Greville) Ostenfeld Fig. 5

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, outono, primavera (janeiro/07, março, maio, setembro,

dezembro, janeiro/08).

Coscinodiscus oculusiridis Ehrenberg

Ocorrência: EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, outono, primavera (janeiro/07, maio, setembro, dezembro,

janeiro/08).

Coscinodiscus radiatus Ehrenberg Fig. 6, 84

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses.

Coscinodiscus gigas Ehrenberg

Ocorrência: ERG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, outono, primavera (janeiro/07, fevereiro, março, setembro).

Coscinodiscus wailesii Gran & Angst

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (janeiro/07, fevereiro, março, abril, maio, julho,

outubro, novembro, dezembro, janeiro/08).

Palmeria hardmaniana Greville

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: outono (março).

Hemidiscus cuneiformis Wallich

Ocorrência: EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, outono (janeiro/07, fevereiro, março, abril, maio).

Actinocyclus octonarius Ehrenberg Fig. 7

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses.

Actinocyclus octonarius var. crassuss (William Smith) Hustedt

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses.

Actinocyclus octonarius var. tenellus (William Smith) Hustedt Fig. 85

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações do ano (janeiro/07, abril, julho agosto, setembro,

outubro, dezembro, janeiro/08).

Actinocyclus cf. curvatulus Janisch Fig. 8

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: primavera (setembro).

Actinoptychus campanulifer Schmidt Fig. 86

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (janeiro/07, fevereiro, abril, maio, julho,

setembro, outubro, novembro, dezembro).

Actinoptychus senarius Ehrenberg Fig. 87

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (janeiro/07, fevereiro, abril, julho, setembro,

utubro, novembro, dezembro, janeiro/08).

Actinoptychus splendens (Shadbolt) Ralfs Fig. 9

Ocorrência: ERG, EG

Estação do ano/Mês: outono, primavera (abril, novembro).

Roperia tesselata (Roper) Grunow ex Pelletan Figs. 10, 88

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (fevereiro, maio, julho, agosto, setembro,

novembro).

Asteromphalus flabellatus (Brébisson) Greville Fig. 11

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: verão (janeiro/07, fevereiro).

Asteromphalus hookerii Ehrenberg Fig. 12

Ocorrência: EG

Estação do ano/Mês: primavera, verão (novembro, dezembro).

BIDDULPHIOPHYCIDAE

TRICERATIALES

Triceratium favus Ehrenberg Fig. 13

Ocorrência: ERG, EG

Estação do ano/Mês: primavera (setembro, outubro).

Odontella aurita (Lyngbye) Agardh Figs. 14 – 15,

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses.

Eupodiscus radiatus Bailey Fig. 16

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (janeiro/07, fevereiro, março, abril, julho, agosto,

setembro, outubro, novembro, dezembro).

Cerataulus smithii Ralfs Fig. 17

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, outono, primavera (janeiro/07, maio, setembro, novembro).

Auliscus punctatus Bailey Fig. 18

Ocorrência: ERG

Estação do ano/Mês: primavera (outubro).

Auliscus sculptus (William Smith) Ralfs Fig. 19

Ocorrência: ERG

Estação do ano/Mês: primavera (outubro).

Plagiogramma sp.

Ocorrência: ERG, EPS

Estação do ano/Mês: outono, primavera (março, outubro).

Dimeregramma minor (Gregory) Ralfs Fig. 20

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: inverno, primavera (julho, agosto, setembro/2007).

HEMIAULALES

Hemiaulus sinensis Greville (Fig. 90)

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, inverno, primavera (janeiro/07, agosto, novembro).

LITHODESMIOPHYCIDAE

LITHODESMIALES

Ditylum brightwelli (West) Grunow Fig. 21

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (janeiro/07, maio, julho, setembro, outubro).

CYMATOSIROPHYCIDAE

CYMATOSIRALES

Cymatosira sp.

Ocorrência: EG

Estação do ano/Mês: verão, inverno, primavera (agosto, outubro, novembro, dezembro,

janeiro/08).

RHIZOSOLEBIOPHYCIDAE

RHIZOSOLENIALES

Rhizosolenia setigera Brightwell

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, outono, inverno, primavera (janeiro/07, abril, maio, agosto,

outubro, janeiro/08).

Pseudosolenia calcaravis (Schultz) Sunds Fig. 22

Ocorrência: ERG, EG

Estação do ano/Mês: verão, outono (janeiro/07, abril).

CHAETOCEROTOPHYCIDAE

CHAETOCEROTOALES

Chaetoceros affinis Lauder Fig. 23

Ocorrência: ERG, EG

Estação do ano/Mês: primavera (setembro).

Chaetoceros decipiens Cleve Fig. 24

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: inverno, primavera (agosto, setembro, outubro, novembro).

Chaetoceros didymus Ehrenberg Fig. 25 – 26

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, inverno, primavera(janeiro/07, fevereiro, agosto, setembro,

outubro, novembro, janeiro/08).

Chaetoceros muelleri Lemmermann

Ocorrência: ERG

Estação do ano/Mês: primavera (novembro).

Chaetoceros peruvianus Brightwell Fig. 27

Ocorrência: ERG

Estação do ano/Mês: primavera (outubro).

Chaetoceros cf. lorenzianus Grunow Fig. 28

Ocorrência: ERG

Estação do ano/Mês: outono (maio).

Chaetoceros sp.1

Ocorrência: ERG

Estação do ano/Mês: outono, inverno (maio, agosto).

Bacterisatrum hyalinum Lauder Fig. 29

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: outono, inverno, primavera (maio, julho, outubro, novembro).

FRAGILARIOPHYCEAE

FRAGILARIOPHYCIDAE

FRAGILARIALES

Fragilaria gaillonii (Bory) Lange-Bertalot Fig. 30

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: primavera (setembro).

Fragilaria tabulata var. tabulata (C. A. Ag.) Lange Bertalot

Ocorrência: ERG

Estação do ano/Mês: verão, outono, inverno (janeiro/07, fevereiro, abril, maio, julho,

agosto).

Staurosira construens Ehrenberg

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: outono (maio).

Synedra goulardi Brébisson

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: primavera (outubro).

Opephora sp.

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, primavera (janeiro/08, outubro).

Trachysphenia acuminata Peragallo ex Tempère et Peragallo

Ocorrência: ERG, EG

Estação do ano/Mês: todas as estações (fevereiro, março, maio, agosto, outubro,

novembro, dezembro).

Asterionellopsis glacialis (Castracane) Round Figs. 31 - 32, 91

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: outono, inverno, primavera, verão (maio, agosto, novembro,

janeiro/07).

RHAPHONEIDALES

Perissonoë cruciata (Janisch & Rabenhorst) G. W. Andrews & V. A. Stoelzel Fig. 33

Ocorrência: ERG

Estação do ano/Mês: verão (fevereiro).

Rhaphoneis nodulifera (E. Grove & G. Sturt) A.W.F. Schmidt

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: inverno (agosto).

Delphineis surirella (Ehrenberg) Andrews Fig. 34

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (janeiro/07, fevereiro, março, abril, julho,

setembro, outubro, novembro, janeiro/08).

Delphineis surirella var. australis (Petit) Navarro Fig. 35

Ocorrência: EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, outono (fevereiro, maio).

Neodelphineis pelagica Takano Figs. 36, 92 - 94

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses.

Psammodiscus nitidus (Gregory) Round & Mann Fig. 37

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, outono, primavera (fevereiro, março, abril, maio, setembro,

outubro, novembro)

THALASSIONEMATALES

Thalassionema frauenfeldii (Grunow) Tempère & Peragallo Figs. 95 - 97

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses

Thalassionema nitzschioides (Grunow) Van Heurck

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações do ano (janeiro/07, abril, maio, julho, outubro,

novembro, dezembro, janeiro/08).

Thalassionema synedriforme (Greville) Hasle Fig. 38, 98 - 100

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (janeiro/07, fevereiro, abril, maio, julho, agosto,

outubro, novembro, dezembro).

Thalassiothrix cf. longissima Cleve & Grunow

Ocorrência: ERG

Estação do ano/Mês: primavera (outubro).

STRIATELLALES

Grammatophora oceanica Ehrenberg Fig. 39

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (fevereiro, maio, julho, setembro, outubro,

dezembro).

BACILLARIOPHYCEAE

EUNOTIOPHYCIDAE

EUNOTIALES

Eunotia incisa Gregory Fig. 40

Ocorrência: ERG, EPS

Estação do ano/Mês: outono, verão (março, dezembro).

LYRELLALES

Lyrella clavata (Greville) Mann Fig. 41

Ocorrência: EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, primavera (janeiro/08, fevereiro, setembro, outubro,

novembro, dezembro).

BACILLARIOPHYCIDAE

CYMBELLALES

Encyonema sp.

Eixo apical: 48µm. Eixo transapical: 20µm Estrias/10µm: 12

Ocorrência: EG

Estação do ano/Mês: verão (janeiro/08).

ACHNANTHALES

Achnanthes cf. longipes Agardh

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: inverno, primavera (julho, agosto, setembro).

Cocconeis placentula Ehrenberg

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: primavera (setembro).

Cocconeis cf. scutellum Ehrenberg

Ocorrência: EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (janeiro/07, maio, julho, setembro, dezembro,

janeiro/08).

Cocconeis cf. disrupta Gregory Fig. 42

Ocorrência: ERG

Estação do ano/Mês: inverno (julho).

Cocconeis sp. Fig. 43

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (janeiro/07, março, abril, julho, setembro,

outubro).

Anorthoneis eurystoma Cleve Fig. 44

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: verão, primavera (janeiro, fevereiro, setembro).

Achnanthidium exiguum (Grunow) Czarnecki

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: outono (maio).

NAVICULALES

Cosmioneis grossepunctata (Hustedt) Mann Fig. 45

Ocorrência: ERG, EPS

Estação do ano/Mês: primavera, verão (setembro, dezembro).

Luticola inserata (Hustedt) Mann

Ocorrência: ERG, EG

Estação do ano/Mês: outono, primavera (março, setembro).

Sellaphora pupula (Kützing) Mereschkovsky

Ocorrência: EG, EPS

Estação do ano/Mês: outono (maio).

Fallacia nummularia (Greville) D.G. Mann Fig. 46

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, outono, primavera (janeiro/07, fevereiro, abril, maio,

setembro, outubro).

Diploneis bombus (Ehrenberg) Ehrenberg ex Cleve Fig. 47

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, outono, primavera (janeiro/07, fevereiro, março, maio,

novembro, dezembro).

Diploneis crabro (Ehrenberg) Ehrenberg Fig. 48

Ocorrência: EG, EPS

Estação do ano/Mês: outono, verão (abril, janeiro/08).

Diploneis interrupta (Kützing) Cleve Fig. 49

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: verão (dezembro).

Diploneis papula (Schmidt) Cleve Fig. 50

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses.

Diploneis weissflogii (Schmidt) Cleve Figs. 101 - 102

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses, exceto novembro.

Navicula cryptocephala Kützing

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: outono (abril, maio).

Navicula pennata A. Schmidt Fig. 51, 103 - 10

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (março, maio, julho, agosto, setembro, outubro,

dezembro, janeiro/08).

Trachyneis antillarum Cleve Figs. 52 – 53

Ocorrência: EG, EPS

Estação do ano/Mês: outono, primavera, verão (abril, outubro, janeiro/08).

Pleurosigma affine Grunow Fig. 54, 105 – 106

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses.

Pleurosigma angulatum (Quekett) William Smith

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações do ano (janeiro/07, fevereiro, março, abril, julho,

agosto, setembro, outubro, novembro, janeiro/08).

Pleurosigma diversestriatum Meister Fig. 55, 107

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses.

Pleurosigma cf. elongatum William Smith Figs. 56 - 57

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, inverno, primavera (janeiro/07, agosto, novembro,

dezembro, janeiro/08).

Pleurosigma cf. strigosum William Smith

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: verão (janeiro/07, fevereiro).

Pleurosigma sp. Fig. 109

Ocorrência: EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, primavera (janeiro/07, fevereiro, setembro, janeiro/08).

Gyrosigma acuminatum (Kützing) Rabenhorst Fig. 58

Ocorrência: ERG, EG

Estação do ano/Mês: inverno, verão (julho, janeiro/08).

Gyrosigma balticum (Ehrenberg) Rabenhorst

Ocorrência: EG

Estação do ano/Mês: primavera (outubro, novembro).

THALASSIOPHYSALES

Catenula adhaerens (Mereschkowsky) Mereschkowsky

Ocorrência: ERG, EPS

Estação do ano/Mês: verão e outono (janeiro/07, maio).

Amphora sp.1

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, outono, inverno (fevereiro, março, julho, agosto).

BACILLARIALES

Bacillaria sp. Fig. 59

Ocorrência: EG, EPS

Estação do ano/Mês: primavera, verão (setembro, outubro, janeiro/07).

Psammodyctyon panduriforme (Grunow) D. G. Mann Fig. 60, 110

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses.

Triblionela sp.

Ocorrência: ERG

Estação do ano/Mês: verão (Fevereiro).

Nitzschia brevissima Grunow

Ocorrência: ERG

Estação do ano/Mês: primavera (setembro).

Nitzschia lorenziana Grunow Figs. 61 - 62

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses.

Nitzschia sigma (Kützing) William Smith Fig. 63

Ocorrência: EPS

Estação do ano/Mês: outono (maio).

Nitzschia sp.1 (foto filme 90)

Ocorrência: ERG

Estação do ano/Mês: janeiro/07 (verão).

Nitzschia sp.2

Ocorrência: ERG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, outono, primavera (janeiro/07, março, abril, setembro).

Nitzschia sp.3

Ocorrência: ERG

Estação do ano/Mês: outono, inverno (março, agosto).

SURIRELLALES

Entomoneis alata (Ehrenberg) Ehrenberg Fig. 65

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações e todos os meses, exceto maio.

Surirella fastuosa var. recedens (A. Schmidt) Cleve Fig. 64, 111

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: verão, outono, primavera (janeiro/07, fevereiro, março, setembro,

outubro, dezembro, janeiro/08).

Espécies não inclusas no sistema de classificação proposto por Round et al. (1990)

Giffenia cocconeiformis (Grunow) Round et Basson, P. W.

Ocorrência: ERG, EPS

Estação do ano/Mês: verão (janeiro/07, janeiro/08).

Pseudo-nitzschia sp. Figs. 66 - 67

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: todas as estações (fevereiro, março, abril, maio, julho, agosto,

novembro).

Margaritum terebro (Leuduger- Fortmerel) H-Moreira Figs. 68 - 69

Ocorrência: ERG, EG, EPS

Estação do ano/Mês: outono, inverno, primavera (março, agosto, outubro, dezembro).

Durante o período estudado foram registrados 139 táxons de diatomáceas,

distribuídos nas classes: Coscinodiscophyceae (73), Fragilariophyceae (18) e

Bacillariophyceae (44). Quatro táxons não foram enquadrados no sistema apresentado

por Round, Crawford & Mann (1990), portanto, não foram contabilizados nas classes.

Os gêneros que apresentaram maior número de táxons foram Thalassiosira (23),

Chaetoceros (7) e Coscinodiscus (7).

Os táxons que apresentaram maior freqüência relativa de valvas durante os

meses amostrados na ERG, foram Paralia spp., Psammodyctyon panduriforme,

Thalassionema synedriforme, Actinocyclus octonarius, Skeletonema pseudocostatum e

Pleurosigma affine. Na EG foram, Psammodyctyon panduriforme, Paralia spp. e

Pleurosigma affine. E na EPS foram, Actinocyclus octonarius, Paralia spp.,

Coscinodiscus wailesii e Psammodyctyon panduriforme.

Skeletonema pseudocostatum e Coscinodiscus wailesii apresentaram alta

frequência relativa. Contudo, não apresentaram distribuição uniforme durante a

amostragem, ocorrendo em picos, provavelmente influenciados por fatores abióticos

como nutrientes e temperatura.

Poucos táxons apresentaram exclusividade de distribuição (34%). A grande

maioria das espécies foi encontrada em mais de uma estação de coleta amostrada (65%).

Esses dados sugerem que não há flora específica da Baia Norte (ERG e EG) e do

Pântano do Sul (EPS). Portanto, a diferença entre os locais é observada na quantidade

de células encontradas de cada espécie e não no número de espécies.

Comparando-se o presente estudo aos trabalhos realizados no plâncton da costa

da Ilha de Santa Catarina (Souza-Mosimann 1984, Souza Mosimann 1985, Souza

Mosimann 1988, Fernandes, Souza-Mosimann & Felício Fernandes 1990, Felício

Fernandes, Souza-Mosimann & Moreira Filho 1994 e Souza Mosimann, Laudares-Silva

& Roos-Oliveira 2001) observou-se que os resultados foram semelhantes, considerando-

se o número de espécies encontradas, exceto quando comparou-se o presente estudo ao

trabalho de Fernandes, Souza-Mosimann & Felício Fernandes (1990) realizado no Rio

Ratones. Neste, o número de espécies encontradas pelos autores foi maior. Contudo, a

diferença é justificada pelo fato da adição de espécies dulciaquícolas encontradas no

curso do rio que não foram registradas no presente estudo.

As espécies encontradas nos trabalhos anteriores foram semelhantes às

registradas neste estudo. As principais diferenças se concentraram no maior número de

espécies identificadas nos gêneros Thalassiosira, Skeletonema e Thalassionema, por

estes, terem sido estudados detalhadamente em Microscopia Eletrônica de Varredura.

Considerando-se a distribuição das espécies durante as estações do ano, não

foram observadas diferenças marcantes. O que notou-se foram picos de algumas

espécies e gêneros em determinados meses (Skeletonema pseudocostatum,

Asterionellopsis glacialis, Pseudo-nitzschia sp. na ERG; Coscinodiscus wailesii na

EPS). Contudo, esse fato pode estar relacionado mais ao regime de chuvas, ventos e

aporte de nutrientes que a temperatura característica de cada estação do ano.

O levantamento taxonômico é de extrema relevância porque subsidia trabalhos

futuros relacionados à ecologia das espécies típicas dos locais estudados. O presente

estudo contribuirá para a elaboração da lista das diatomáceas marinhas e estuarianas de

Santa Catarina que está em desenvolvimento.

A costa da Ilha de Santa Catarina mostrou-se como um local bastante diverso

com relação ao número de táxons de diatomáceas registrados. Portanto, precisa ser alvo

de mais estudos e merece atenção, considerando-se o alto nível de degradação ambiental

que a região vem sofrendo.

Figuras 1

–

. Diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil.

Fig 1:

Cyclotella litoralis. Fig. 2: C. stylorum. Fig. 3: Podosira stelliger. Fig. 4: Paralia sulcata. Fig. 5:

Coscinodiscus jonesianus. Fig. 6: C. radiatus. Fig. 7: Actinocyclus octonarius. Fig. 8: A. cf.

curvatulus.

Fig. 9: Actinoptychus splendens. Escala (barra): 10 µm.

Figuras 10

–

. Diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil.

Fig. 10:

Roperia tesselata. Fig. 11: Asteromphalus flabellatus. Fig. 12: A. hookerii. Fig. 13:

Triceratium favus.

Fig. 14 - 15: Odontella aurita. Fig. 16: Eupodiscus radiatus. Fig. 17: Cerataulus smithii. Fig. 18:

Auliscus punctatus. Escala (barra): 10 µm.

Figuras 19

–

. Diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil.

Fig. 19:

Auliscus sculptus. Fig. 20: Dimeregramma minor. Fig. 21: Ditylum brightwelli. Fig. 22:

Pseudosolenia

calcaravis. Fig. 23 Chaetoceros affinis. Fig. 24: C. decipiens. Fig. 25: C. didymus.

Escala (barra): 10

µm.

Figuras 26

–

. Diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil.

Fig. 26:

Chaetoceros didymus. Fig. 27: C. peruvianus. Fig. 28: Chaetoceros cf. lorenzianus. Fig. 29:

Bacterisatrum hyalinum. Fig. 30: Synedra goulardi. Fig. 31 - 32: Asterionellopsis glacialis. Fig. 33:

Perissonoë cruciata. Escala (barra): 10 µm.

Figuras 34

–

. Diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil.

Fig. 34:

Delphineis surirella. Fig. 35: Delphineis surirella var. australis. Fig. 36: Neodelphineis pelagica.

Fig.

37: Psammodiscus nitidus. Fig. 38: Thalassionema synedriforme. Fig. 39:

Grammatophora oceanica.

Fig. 40: Eunotia incisa. Fig. 41: Lyrella clavata. Fig. 42: Cocconeis cf. disrupta (valva com rafe).

Fig.

43: Cocconeis sp.. Escala (barra): 10 µm.

Figuras 44

–

. Diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil.

Fig. 44:

Anorthoneis eurystoma (valva sem rafe). Fig. 45: Cosmioneis grossepunctata. Fig. 46:

Fallacia

nummularia. Fig. 47: Diploneis bombus. Fig. 48: D. crabro. Fig. 49: D. interrupta. Fig. 50: D.

papula.

Fig. 51: Navicula pennata. Fig. 52: Trachyneis antillarum. Escala (barra): 10 µm.

Figuras 53

–

. Diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil.

Fig. 53:

Trachyneis antillarum. Fig. 54: Pleurosigma affine. Fig. 55: Pleurosigma diversestriatum. Fig. 56 - 57:

Pleurosigma cf. elongatum. Fig. 58: Gyrosigma acuminatum. Fig. 59: Bacillaria sp.. Fig.

60:

Psammodyctyon panduriforme. Escala (barra): 10 µm.

Figuras 61

–

. Diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil.

Fig. 61

62: Nitzschia lorenziana. Fig. 63: Nitzschia sigma. Fig. 64: Surirella fastuosa var. recedens. E

scala

(barra): 10 µm.

Figuras 65

–

. Diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil.

Fig. 65:

Entomoneis alata. Fig. 66 - 67: Pseudo-nitzschia sp.. Figs. 68 – 69: Margaritum terebro.

5µm 5µm 5µm

5µm

1µm

10µm

5µm10µm

5µm 1µm

1µm

73 74 75

2µm

Figuras 70

81:

Microscopia Eletrônica d

e Varredura das diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha

de Santa Catarina, SC, Brasil. Fig: 70 - 72: Detonula pumila. Figs. 73 – 77: Cyclotella litoralis.

Figs. 78

– 79: C. striata.. Figs. 80 – 81: Cyclotella sp..

5µm

10µm

5µm

2µm

5µm 1µm

5µm

82 83 84

85 86

2µm

Figuras 82

93:

Microscopia Eletr

ônica de Varredura das diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha

de Santa Catarina, SC, Brasil. Fig. 82: Cyclotella sp. Fig. 83: Paralia sulcata. Fig. 84:

Coscinodiscus

radiatus. Fig. 85: Actinocyclus octonarius var. tenellus. Fig. 86: Actinoptychus campanulifer.

Fig. 87:

A. senarius. Fig. 88: Roperia tesselata. Fig. 89: Odontella aurita. Fig. 90: Hemiaulus sinensis.

Fig. 91:

Asterionellopsis glacialis. Fig. 92 - 93: Neodelphineis pelagica.

1µm

1µm 1µm 1µm

5µm

2µm

10µm

2µm 10µm

94 95 96

100

101

102

103 104

105

Figuras 94

105:

Microscopia Eletrônica de Varredura das di

atomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha

de Santa Catarina, SC, Brasil. Fig. 94: Neodelphineis pelagica. Fig. 95 - 97: Thalassionema frauenfeldii

Fig. 98 - 100: T. synedriforme. Fig. 101 - 102: Diploneis weissflogii. Fig. 103 - 104: Navicula pennata

Fig. 105: Pleurosigma affine.

20µm

1µm

20µm

50µm

5µm

10µm

106

107

111

108

109

110

Figuras

106

111

Microscopia Eletrônica de Varredura das diatomáceas fitoplanctônicas da costa da Ilha

de Santa Catarina, SC, Brasil. Fig. 106: Pleurosigma affine. Fig. 107: P.

diversestriatum

. Fig. 108:

Pleurosigma cf. elongatum

. Fig. 109:

Pleurosigma sp.

Fig. 110:

Psammodyctyon panduriforme

Fig. 111:

Surirella fastuosa var. recedens.

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Capítulo 2

Espécies do gênero Thalassiosira Cleve emend. Hasle (Diatomeae) na

costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil

Resumo

Thalasssiosira Cleve emend. Hasle é um gênero de diatomácea, marinho e

planctônico. A contribuição deste gênero nas regiões temperadas é bastante relevante. No

entanto, é pouco estudado em regiões tropicais e substropicais, principalmente no

continente americano. Visando aumentar o conhecimento das espécies de Thalassiosira na

região sudoeste do Atlântico, foram amostradas três estações de coleta na costa da Ilha de

Santa Catarina, SC, Brasil. As coletas foram realizadas em duas estações localizadas no

centro-oeste da Ilha: Ratones Grande (27º28’30.52”S - 48º33’27.27”W) e Guarás

(27º33’20.09”S - 48º33’27.50”W) e em uma no sudeste: Pântano do Sul (27º47’24.97”S -

48º30’39.31”W). As amostras de água foram concentradas com uma rede de plâncton (25

µm de abertura) e foram coletas mensalmente durante o ano de 2007 e 2008. Estas, foram

oxidadas e clarificadas. Logo após, foram montadas lâminas permanentes para a contagem

das 400 valvas, identificação e para as fotomicrografias. Uma alíquota do material foi

separada para a visualização em Microscopia Eletrônica de Varredura (JEOL 6390). Foram

registrados 23 táxons de Thalassiosira. Thalassiosira exigua, T. mala e T. visurgis são

primeiros registros para a costa brasileira e T. visurgis para o sudoeste do Atlântico. A

espécie que apresentou a maior freqüência relativa durante a amostragem foi T. eccentrica.

As maiores freqüências relativas registradas para o gênero foram observadas na primavera.

O local estudado apresentou um elevado número de espécies quando comparado com

outros inventários feitos em outros locais do mundo. Esses dados reiteram a importância do

estudo de Thalassiosira no Brasil e fundamentam a importância da costa da Ilha de Santa

Catarina na distribuição do gênero.

Palavras-chave: Taxonomia, Fitoplâncton, Sudoeste do Atlântico.

2.1 Introdução

Thalassiosira Cleve é o gênero tipo de Thalassiosiraceae Hasle, que além deste,

inclui Lauderia Cleve, Porosira Jörg., Skeletonema Grev., Stephanodiscus Ehrenb.,

Planktoniella Schütt, Detonula Schütt, Minidiscus Hasle, Bacterosira Gran e Cyclotella

Kütz (Hasle, 1973). Thalassiosira foi descrito por Cleve em 1873 e tem como espécie tipo

T. nordenskioeldii (Fryxell & Hasle, 1977).

As espécies de Thalassiosira são principalmente marinhas planctônicas, com

exceção de poucas que ocorrem na água doce e em águas estuarinas (Hasle 1973). O gênero

apresenta mais de 100 espécies e provavelmente é o melhor estudado com técnicas

modernas de análise (Microscopia Eletrônica e Biologia Molecular entre outras) na

atualidade (Hallegraeff 1984, Hasle & Syvertsen 1996).

Hasle (1973) emendou a descrição de Thalassiosira citando que as células formam

colônias ligadas por fios de mucilagem expelidos de tubos estruturados (fultopórtulas)

localizados na região central da valva; células raramente solitárias ou colônias usualmente

vastas. Sempre apresentam um ou mais anéis marginais de fultopórtulas, às vezes, estes se

localizam entre o centro da valva e a margem. A autora ainda cita a presença de um ou

muitos processos estruturados próximos a aréola central, quando muitos tubos estão

presentes, estes são agrupados em um regular ou irregular anel, em linha ou podem ser

irregularmente agrupados. Notifica ainda a presença de um ou mais processos labiados

localizados na região marginal, no centro ou entre eles. O padrão de areolação pode ser

radial, em secções, lineares ou curvadas tangencialmente ou ainda pode apresentar a

integração desses padrões de areolação. Finalizando a emenda, Hasle (1973), cita que a

estrutura da parede difere de espécie para espécie dependendo do grau de silicificação dos

indivíduos.

As espécies podem ser diferenciadas pela forma, número de fultopórtulas e

rimopórtulas (processos labiados) na valva, densidade de aréolas em 10 µm na face valvar e

no manto e ainda pela morfologia das bandas conectivais. (Hasle 1973).

Thalassiosira é um dos maiores e mais amplamente distribuído gênero de

diatomácea do mundo (Sar et al. 2002). A contribuição do gênero na composição do

fitoplâncton marinho é bastante relevante nas regiões temperadas e polares (Fryxell &

Hasle 1979). Hoppenrath et al. (2007) citam que Thalassisoria é, depois de Chaetoceros

Ehrenber, o gênero pelágico marinho mais diverso na comunidade fitoplanctônica desses

locais. No entanto, em regiões tropicais e subtropicais pouco se sabe com relação à

diversidade e biologia de Thalassiosira. Os estudos sobre o gênero nessas regiões, no

continente americano, são, na maioria da América do Norte (Fryxell 1975; Fryxell & Hasle

1980; Hasle 1983a; Mahood et al. 1986; Hernández-Becerril & Tapia Pena 1995; Aké-

Castillo et al. 1999), existindo poucos específicos da América Central e do Sul. Alguns

trabalhos utilizaram amostras vindas de locais do Atlântico Sul, como o de Hasle (1983a),

que mostra estudos com material coletado na costa brasileira (Ubatuba e Cananéia). No

entanto, esses trabalhos exploram somente algumas espécies, não apresentam inventários,

nem chaves de identificação regionais de Thalassiosira.

Para o estado de Santa Catarina são citadas somente seis espécies de Thalassiosira,

são elas: T. eccentrica (Ehrenberg) Cleve, T. leptopus (Grunow ex Van Heurck) Hasle & G.

Fryxell, T. nanolineata (Mann) Hasle et Fryxell, T. oestrupii var. oestrupii (Ostenfeld)

Hasle, T. oestrupii var. venrickae Fryxell & Hasle, T. punctigera (Castracane) Hasle.

Destas, as espécies mais freqüentemente encontradas na bibliografia são T. eccentrica e T.

oestrupii var. oestrupii.

A Ilha de Santa Catarina está localizada no sudoeste do Oceano Atlântico, em umas

das regiões mais complexas, com relação a influência de massas d’água, do mundo,

conhecida como zona de Confluência Brasil-Malvinas (Souza & Robinson 2004). Outro

fator atuante na região, de evidente importância é a pluma do rio La Plata, que fertiliza as

águas uruguaias e sul- brasileiras, é rica principalmente em silicato e atua dependendo dos

ventos (Piola et al. 2008).

Apesar da importância hidrográfica do sudoeste do oceano Atlântico e de

Thalassiosira na composição do fitoplâncton marinho e costeiro, poucos estudos foram

realizados com relação ao gênero neste local. Os trabalhos que abordaram taxonomia,

estrutura ou distribuição de Thalassiosira foram os de Lange et al. (1983), Sar & Ferrario

(1987), Ferrario (1988), Ferrario & Sar (1988), Torgan & Santos (2006), Torgan & Santos

(2007), Sar et al. (2002), Garcia & Odebrecht (2009a), Garcia & Odebrecht (2009b).

O objetivo do presente estudo foi descrever e ilustrar em Microscopia Óptica e

Microscopia Eletrônica de Varredura espécies do gênero Thalassiosira encontradas em três

estações de coleta na costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil.

2.2 Metodologia

A Ilha de Santa Catarina localiza-se na região sudoeste do oceano Atlântico, sul do

Brasil (27°10’S e 27°50’S-48°25’W e 48°35’W), no município de Florianópolis (Fig. 1).

Para a realização do presente estudo, as amostras de água, foram coletadas em duas

estações no centro-oeste da Ilha: Ratones Grande (ERG) (27º28’30.52”S -48º33’27.27”W)

e Guarás (EG) (27º33’20.09”S - 48º33’27.50”W) e uma no sudeste: Pântano do Sul (EPS)

(27º47’24.97”S - 48º30’39.31”W). As estações ERG e EG localizam-se em uma baía

fechada rasa (Baía Norte), sofrem influência dos rios Ratones e Itacorubi e de seus

manguezais. A EG encontra-se localizada mais internamente na baía que a ERG. A EPS

sofre menor influência continental que as outras estações estudas, localiza-se em uma

enseada, porém, em mar aberto. A localização das estações de coleta está representada na

Figura 1.

Na ERG a profundidade coletada foi de aproximadamente 9 metros, na EG foi de

3,5 metros e na EPS foi de 13 metros. As coletas foram mensais no período de janeiro/07 a

janeiro/08.

As amostras foram concentradas com auxílio de rede de plâncton com abertura de

25 µm, fixadas com formoldeído com concetração final de 1,6%. Foram montadas 2

lâminas permanentes por amostra, seguindo-se a técnica de Simonsen (1974) para a

oxidação (limpeza das frústulas) e utilizando-se a resina Naphrax (índice de refração 1, 7).

As lâminas permanentes foram tombadas no Herbário FLOR do Departamento de

Botânica/CCB/UFSC e encontram-se registradas entre os números 13.004 e 13.039.

As lâminas foram analisadas em microscópio óptico da marca Olympus modelo BX

50. As fotomicrografias foram feitas com câmara Olympus acoplada no mesmo

microscópio. Para as fotomicrografias em contraste de fase foi utilizado o Microscópio

Óptico Olympus modelo BX41, equipado com câmara para captura de imagem digital

colorida com 3.3 mpixel QColor 3C da Q-imaging (BEG/CCB/UFSC).

A fim de obter-se dados com relação a freqüência relativa do gênero, (após o

processo de oxidação) foram contadas nas lâminas permanentes de 400 a 500 valvas

(Schoeman 1973). A contagem das valvas das espécies de Thalassiosira em Microscopia

Óptica (MO) não é segura, porque estas não são facilmente reconhecíveis, por isso optou-se

pela contagem geral a nível de gênero. No entanto, algumas espécies são facilmente

distinguíveis em MO, possibilitando a obtenção de dados de freqüência relativa. Os dados

específicos da contagem relativa serão apresentados no comentário das espécies e na

discussão do presente estudo.

Para a observação do material em microscopia eletrônica de varredura (MEV) o

material foi colocado em suportes de alumínio (stubs). Após a secagem foi recoberto com

ouro (~300 Angstrons) utilizando-se o metalizador Baltec, modelo CED030. O microscópio

utilizado foi o do Laboratório Central de Microscopia Eletrônica da Universidade Federal

de Santa Catarina, marca JEOL 6390 LV com distância de trabalho de 10 mm, a 20 KvO e

spot size entre 25 e 30.

A temperatura foi obtida com a utilização de um termômetro de Mercúrio e a

salinidade mensurada com Refratômetro Shibuya.

Para o cálculo do número de fultopórtulas em 10µm foi utilizado a fórmula

(n.10/π.d) apresentada por Hasle (1983b), onde “n” é o número de fultopórtulas da valva e

“d” o diâmetro.

Para a descrição das estruturas morfológicas das frústulas foi utilizada a

nomenclatura apresentada por Hasle & Syvertsen (1996) e por Round, Crawford & Mann

(1990).

A classificação utilizada para enquadramento até Subfilo foi a apresentada por

Cavalier-Smith (1998) e a partir de Classe, a apresentada por Round, Crawford & Mann

(1990).

A descrição das espécies de Thalassiosira seguirá ordem alfabética.

Figura. 1

. Localização das estações de coleta amostradas na costa da Ilha de Santa Catarina, Santa Catarina,

Brasil. ERG: Estação Ratones Grande, EG: Estação Guarás e EPS: Estação Pântano do Sul.

2.3 Resultados

O gênero Thalassiosira Cleve emend. Hasle foi registrado em todos os meses e

estações de coleta amostradas na Ilha de Santa Catarina (Figs. 93a - b). As figuras 93a - b

mostram os resultados das análises da salinidade e temperatura da água durante a

amostragem, relacionando-as com a frequência relativa do gênero.

Durante o período estudado foram encontradas 22 espécies e uma variedade do

gênero Thalassiosira. A Tabela 1 apresenta os táxons e os caracteres diagnósticos mais

importantes de cada um.

Abaixo, será apresentada a chave de identificação das espécies de Thalassiosira

encontradas durante o período amostrado nas três estações de coleta estudadas, a descrição

de cada uma e as ilustrações.

Chave para a identificação das espécies de Thalassiosira encontradas na costa da Ilha de

Santa Catarina, SC, Brasil. Descrições das estruturas morfológicas marcadas em negrito

indicam a necessidade de Microscopia Eletrônica de Varredura para visualização.

I. Espécies com diâmetro menor que 10 µm...........................................................................1

1 Anel de fultupórtulas marginal proeminente......................................................2

2 Anel de fultupórtulas marginal com tubos complexos formando uma

estrutura em forma de “T” (vista externa)...................................T. tealata

(Figs. 78 - 81).

2’ As fultopórtulas do anel marginal, abrem-se no ápice de projeções

cônicas silicosas (vista externa)...................................................... T. exigua

(Figs. 11 e 46).

1’ Anel de fultopórtulas marginal não proeminente.... ........................................2’

2’ Presença de uma fultopórtula na face valvar............................3’

3’ Fultopórtula localizada excentricamente na face

valvar............................................................................T. mala

(Figs. 17, 55 - 56).

5’ Uma fultopórtula central.........................T. proschkinae

(Figs. 67 - 70)

2” Presença de duas fultopórtulas no centro da face

valvar....................................................................................T. minima

(Figs. 57 - 58).

II. Espécies com diâmetro maior que 10 µm..........................................................................1

1 Padrão de areolação linear....................................................................................... 2

2 Presença de duas rimopórtulas bem evidentes entre a face valvar e

o manto, distantes 180º uma da outra..................................................3

3’ Face valvar ondulada, linha marginal silicosa

entre a face valvar e o manto......................T. hendeyi

(Figs. 12 -13, 47 - 50)

3” Face valvar plana, linha marginal

ausente......................................................T. simonsenii

(Figs. 28, 72 – 77)

2’ Presença de uma rimopórtula evidente na margem da

valva...................................................................................................3’

3’ Aréola central diferenciada das demais..................4’

4’ Anel de fultopórtulas marginal evidente,

regularmente espassadas incluídas em

deposições silicosas em forma de

cunha...................................................T. tenera

(Fig. 29 – 30, 82 - 85)

5’ Anel de fultopórtulas com deposição de

camada de sílica ausente e areolação

delicada.............................................T. leptopus

(Figs. 14).

3” 1-6 fultopórtulas sobre a parede da aréola

central, anel de fultopórtulas evidente com camada

de sílica a redor da abertura externa do tubo....

.................................................................T. nanolineata

(Figs. 59).

3’” 6 fultopórtulas sobre a parede da aréola

central, costelas marginais presentes, sem anel de

fultopórtulas marginais e presença de aréolas

modificadas próximo a

aréola central....................................Thalassiosira sp.

(Figs. 32 – 33, 89 – 92).

3 Padrão de areolação excêntrico ..................................................................4

4 Uma fultopórtula e uma rimopórtula proeminentes localizadas

subcentralmente na face valvar..........................................................5

5 Rimopórtula distante 2-3 areolas da fultopórtula

...................................................T. oestrupii var. oestrupii

(Figs. 18 – 19, 61 – 63)

5’ Rimopórtula distante 4 aréolas da

fultopórtula..............................T. oestrupii var. venrickae

(Figs. 20 – 24, 64 - 66)

4’ Uma rimopórtula localizada na região marginal ...........................5’

5’ Presença de um anel irregular de espinhos entre a face

valvar e o manto............................................T. eccentrica

(Figs. 7 – 9 e 40 - 42).

6’ Uma rimopórtula marginal com tubo externo proeminente

localizada entre duas

fultopórtulas...........................................................T. decipiens

(Figs. 6 e 39).

7’ Um anel de fultopórtulas marginal com tubos longos em

forma de taça, uma rimopórtula com tubo longo

localizada entre duas fultopórtulas

marginais...............................................................T. angulata

(Figs. 1 -5, 34 - 38).

4 Padrão de areolação fasciculado...................................................................5

5 Um anel de fultopórtulas e uma rimopórtula

marginal...................................................................................6

6 Muitas fultopórtulas com tubos curtos espalhadas

sobre a superfície da valva, 20 a 30 estrias/10µm

fracamente silicificadas e diâmetro < 45

µm................................................................T. lundiana

(Figs. 15 – 16, 51 - 54).

8 10 a 15 estrias/10 µm bastante silicificadas e

diâmetro > 50 µm............................T. punctigera

(Figs. 25 – 26, 71).

5’ Um anel de fultopórtulas localizado próximo ao centro da

valva (6 – 7), uma rimopórtula localizada entre a margem

da valva e o anel central de

fultopórtulas......................................................T. endoseriata

(Figs. 10, 43 – 45).

6” Uma fultopórtula subcentral, tubos das fultopórtulas

marginais (vista interna) longos.................T. cf. partheneia

(Figs. 86 - 88).

5 Padrão de areolação radial...........................................................................6

6 Um grupo de fultopórtulas localizado no centro da valva,

fultopórtulas espalhadas sobre a face valvar e uma rimopórtula

proeminente localizada entre a face valvar e o manto, estrias pouco

evidentes..................................................................................T. rotula

(Fig. 27)

7 Uma fultopórtula central, um anel de fultopórtulas marginal

sem tubos internos e uma rimopórtula próxima de uma

fultopórtula

marginal.............................................................................T. oceanica

(Fig. 60).

6 Padrão de areolação irregular.......................................................................7

7 Duas rimopórtulas proeminentes localizadas entre o manto e a face

valvar e uma fultopórtula central..................................T. visurgis

(Fig. 31)

OCHROPHYTA Cavalier-Smith 1998

DIATOMEAE Cavalier-Smith 1998

COSCINODISCOPHYCEAE Round & Crawford 1990

THALASSIOSIRALES Glezer & Makarova 1986

THALASSIOSIRACEAE Lebour 1930 emend. Hasle 1973

Thalassiosira Cleve 1873 emend. Hasle 1973

1. Thalassiosira angulata (Gregory) Hasle, Norw. J. Bot., 25: 93, figs. 4, 41, 70 - 99, 1978.

Basiônimo: Orthosira angulata Gregory, Transactions of the Royal Society of Edinburgh

21: 498., pl. 10. figs. 43 e 43b, 1857.

Figuras 1 – 5, 34 - 38

Referências: Hasle (1978), Harris et al. (1995), Muylaert & Sabbe (1996), Sar, Sunesen &

Castaños (2001), Hoppenrath et al. (2007).

Diâmetro: 16 - 34,6 µm. Aréolas/10 µm: 11-14. Fultopórtulas/10 µm: 1,96 - 2,29.

A estriação é excêntrica, com aréolas convergindo da margem para o centro da

valva (Figs. 5 e 38). As estrias são bem evidentes, em MEV e em MO. Possui um anel

marginal de fultopórtulas com tubos externos longos (Figs. 34 e 38), formando na região

distal desses tubos uma estrutura silicosa em forma de taça que a envolve (Figs 36 – 37). As

fultopórtulas do anel distam 3 a 4 aréolas da margem da valva (Fig. 36). Na região central

alguns espécimes apresentaram uma fultopórtula central (Fig. 34). Apresenta uma

rimopórtula marginal, com tubo longo, localizada entre duas fultopórtulas, no entanto mais

próxima de uma que de outra (Figs. 4, 5, 34, 35 e 38).

Comentário: Nas descrições apresentadas na literatura (Hasle 1978; Harris et al. 1995; Sar,

Sunesen & Castaños 2001; Sar, Sunesen & Lavigne 2002) é citada a presença de uma

fultopórtula junto da aréola central. No entanto, no presente trabalho foi encontrado

espécimes sem a fultopórtula central (Fig. 36). Essa observação poderia embasar a hipótese

que de que esses espécimes, sem a fultopórtula central, não formariam colônias ligadas por

fios centrais de mucilagem que se originariam dessa fultopórtula, mas por ligação direta

entre faces valvares, outro tipo de formação de colônias observado nessa espécie (Hasle

1978). A maioria dos estudos realizados no Atlântico Sul (Lange 1985; Lange & Mostajo

1985; Sar, Sunesen & Castaños 2001; Sar, Sunesen & Lavigne 2002; Procopiak, Fernandes

& Moreira-Filho 2006; Garcia & Odebrecht) registraram a T. angulata, indicando que a

espécie é amplamente distribuída e importante no fitoplâncton do Atlântico Sul ocidental.

Hasle (1978) aponta o Atlântico Norte como principal área de distribuição de Thalassiosira

angulata.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Lange 1985; Lange & Mostajo 1985;

Sar, Sunesen & Castaños 2001; Sar, Sunesen & Lavigne 2002); Brasil (Procopiak,

Fernandes & Moreira-Filho 2006; Garcia & Odebrecht 2009a).

2. Thalassiosira decipiens (Grunow) JØrgensen, Bergens Mus. Skr. 1905: 96, fig. 3, 1905

Basiônimo: Coscinodiscus eccentricus var.? decipiens Grunow in Schneider, pg. 128, pl. 4,

fig.18, 1878

Figuras 6 e 39

Referências: Hasle (1979); Mahood, Fryxell & McMillan (1986), Hernández-Becerril &

Tapia Peña (1995), Muylaert & Sabbe (1996), Sar, Sunesen & Castaños (2001),

Hoppenrath et al. (2007), Tremarin, Ludwig & Moreira Filho (2008), Garcia & Odebrecht

(2009a).

Diâmetro: 10 - 18 µm. Aréolas/10 µm: 14-16. Fultopórtulas/10 µm: 8

A estriação é excêntrica, com aréolas arranjadas em curvas tangenciais, visíveis ao

MEV e ao MO (Figs. 6 e 39). Possui um anel de fultopórtulas no manto, com tubos

externos curtos (Fig. 38). Uma rimopórtula proeminente com tubo externo mais longo que

os das fultopórtulas (Figs. 6 - 39), localizada na margem da valva, entre duas fultopórtulas.

No entanto, levemente deslocada do anel de fultopórtulas, em direção ao centro da valva.

Apresenta uma fultopórtula na região central da valva (Fig. 39).

Comentário: O caracter diagnóstico da espécie, em MEV e MO, é a rimopórtula

proeminente na margem da valva. Thalassiosira decipiens foi encontrada com maior

freqüência relativa nas estações de coleta com maior influência de rios (tipicamente

estuarina) e com baixa profundidade: ERG (22%) e EG (11%), localizadas na Baia Norte.

Enquanto que na EPS, a que apresenta menor influência continental e maior profundidade,

a frequência relativa foi de apenas 3%. Na literatura é amplamente citado que T. decipiens é

encontrada principalmente em regiões estuarinas ou em águas com salinidade variável

(Hasle 1979; Mahood, Fryxell & McMillan 1986; Hernández-Becerril & Tapia Peña 1995)

como o observado no presente estudo.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Lange 1985; Lange & Mostajo 1985;

Sar, Sunesen & Castaños 2001), Brasil (Procopiak, Fernandes & Moreira-Filho 2006;

Villac, Cabral-Noronha & Oliveira Pinto 2008; Tremarin, Ludwig & Moreira Filho 2008;

Garcia e Odebrecht 2009a).

3. Thalassiosira eccentrica (Ehrenberg) Cleve, Conseil Permanent pour I'Exploration de

la Mer, Bulletin des Resultats aquit pendant les courses pdriodiques, 1903-1904: 216,

1904.

Basiônimo: Coscinodiscus excentricus Ehrenberg, Abh. Akad. Wiss. Ber., 1839: 146, 1839;

p. 371, pl. 3, fig. 5, 1841 (1843).

Figuras 7 – 9 e 40 - 42

Referências: Fryxell & Hasle (1972), Hallegraeff (1984), Mahood, Fryxell & McMillan

(1986), Harris et al. (1995), Hernández-Becerril & Tapia Peña (1995), Hasle & Syvertsen

(1996), Muylaert & Sabbe (1996), Sar, Sunesen & Castaños (2001), Hoppenrath et al.

(2007), Tremarin, Ludwig & Moreira Filho (2008), Garcia e Odebrecht (2009a).

Diâmetro: 19 – 61,11 µm. Estrias/10 µm: 6-8. Espinhos/10 µm: 1,4. Fultopórtulas/10 µm: 4

A estriação é fortemente excêntrica com estrias tangenciais arqueadas da margem

para o centro. Aréola central rodeada por 7 aréolas (Figs. 8 e 40). Junto da aréola central

está presente uma fultopórtula sem tubo externo (Fig. 40). Apresenta fultopórtulas sem

tubos externos espalhadas por toda face valvar (Figs. 40 - 41). Uma rimopórtula

proeminente, principalmente em MEV (Figs. 40 – 41) , na margem da valva. Em MO a

rimopórtula pode ser confundida com espinhos. Possui 2-3 anéis de fultopórtulas marginais

(Figs. 41 – 42). Apresenta um anel irregular de espinhos piramidais entre o manto e a face

valvar (Figs. 7, 9, 40 e 42).

Comentário: Os espinhos são visíveis em MEV e frequentemente em MO e são, juntamente

com a estriação fortemente excêntrica, características diagnósticas da espécie. Em vista

conectival, a ornamentação da valvocópula e os espinhos proeminentes na extremidade do

manto (Fig. 7) diagnosticam a espécie. Thalassiosira eccentrica foi encontrada em todos os

meses amostrados na ERG e EPS. Na EG não foi registrada nos meses de fevereiro, março

e janeiro/08. A espécie apresentou as maiores frequências relativas registras dentre as

espécies do gênero para a ERG e EPS. Na EPS, a espécie foi responsável pelo pico de

valvas do gênero em outubro (Fig. 93a). Sar, Sunesen & Castaños (2001) citam que na

Argentina, a espécie foi abundante no final do verão e Hoppenrath et al. (2007), em estudo

feito no mar do Norte, observaram que a espécie alcança a máxima freqüência no inverno,

diminuindo os valores de maio a julho. No presente estudo foi observado que T. eccentrica

apresentou a maior freqüência relativa na primavera (Fig. 93c), diferente do apresentado na

literatura.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Lange, Negri & Benavides 1983; Lange

1985; Lange & Mostajo 1985; Ferrario & Sar 1988; Sar, Sunesen & Castaños 2001; Sar,

Sunesen & Lavigne 2002). Brasil (Aguiar & Corte-Real 1973 (como Coscinodiscus

excentricus Ehrenberg); Rosa & Aguiar 1975; Souza-Mosimann 1984; Souza-Mosimann

1985; Moreira Filho, Valente Moreira & Souza-Mosimann 1985; Souza-Mosimann 1988;

Fernandes, Souza-Mosimann & Felício Fernandes 1990; Torgan & Biancamano 1991;

Souza-Mosimann, Felício-Fernandes, Laudares-Silva & Fernandes 1993; Felício-

Fernandes, Souza-Mosimann & Moreira Filho 1994; Souza-Mosimann & Roos-Oliveira

1998; Souza-Mosimann; Fernandes, Brandini, Gutseit, Fonseca & Pellizari 1999; Souza-

Mosimann, Laudares-Silva & Roos-Oliveira 2001; Souza-Mosimann & Laudares-Silva

2005; Procopiak, Fernandes & Moreira-Filho 2006; Villac, Cabral-Noronha & Oliveira

Pinto 2008; Tremarin, Ludwig & Moreira Filho 2008; Garcia e Odebrecht 2009a; Garcia e

Odebrecht 2009b).

4. Thalassiosira endoseriata Hasle & Fryxell, Nova Hedwigia, Beih., 54: 78 – 79. Figs. 45

– 49, 1977.

Figuras 10, 43 - 45

Referências: Fryxell & Hasle (1977), Hasle & Syvertsen (1996), Sar, Sunesen & Castaños

(2001), Garcia & Odebrecht (2009a), Garcia & Odebrecht (2009b).

Diâmetro: 26,81 – 46,25µm. Aréolas/10 µm: 11 – 15. Fultopórtulas/10 µm: 5

A estriação é fasciculada, visível em MO. Apresenta um anel de fultopórtulas (7 - 8)

sem tubo externo, entre a margem e o centro da valva, mais próximo desta (Figs.10, 43 –

44). A rimopórtula é única, não apresenta tubo externo e está localizada entre o anel central

de fultopórtulas e a margem da valva (Fig.43). Apresenta anel de fultopórtulas marginal

sem tubo externo com 5 – 6 fultopórtulas em 10 µm (Fryxell & Hasle 1977).

Comentário: O anel de fultopórtulas, localizado entre a margem e a região central, é uma

das principais características que diagnosticam a espécie e pode ser facilmente visto em

MO. O anel marginal não foi visualizado nos espécimes encontrados. As fultopórtulas do

anel marginal não apresentam tubo externo (Sar, Sunesen & Castaños 2001), sendo a

principal causa da dificuldade de visualização das estruturas. A freqüência relativa da

espécie foi baixa: ERG (0,23%), EG (0,24%) e EPS (não foi encontrada).

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Lange, Negri & Benavides 1983; Lange

1985; Sar, Sunesen & Castaños 2001; Lange 1985). Brasil (Garcia & Odebrecht 2009a;

Garcia & Odebrecht 2009b).

5. Thalassiosira exigua Fryxell & Hasle, Nova Hedwigia, Beih., 54: 30, Figs. 66 - 73,

1977.

Figuras 11 e 46

Referências: Hasle & Fryxell (1977), Hernández-Becerril & Tapia Pena (1995).

Diâmetro: 5,8 – 6,8 µm. Aréolas/10 µm: 20 – 22. Fultopórtulas/10 µm: 5, 09 - 5, 49

A estriação é linear visível em MEV e MO (Figs. 11 e 46). Apresenta um anel de

fultopórtulas marginal. Em vista externa, essas fultopórtulas se abrem no ápice de uma

deposição silicosa porosa irregular em forma de de cone (Fig. 46). A aréola central

apresenta-se em relevo quando comparada às demais da face valvar (Fig. 46). A

rimopórtula é única e marginal, localizada entre duas fultopórtulas (Fig. 46).

Comentário: Thalassiosira exigua é semelhante morfologicamente a T. tenera. No entanto,

a primeira apresenta menor diâmetro (Hasle & Fryxell 1977) e maior densidade de aréolas

que a segunda. Apesar do tamanho reduzido, T. exigua pode ser facilmente reconhecida em

MO, devido à areolação marcante e fultopórtulas marginais evidentes (Fig. 11). A espécie

foi rara durante a amostragem.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Lange 1985); Primeira citação para o

Brasil.

6. Thalassiosira hendeyi Hasle & Fryxell, Nova Hedwigia, Beih., 54: 25 – 26, Figs. 35 –

45, 1977.

Sinônimo: Coscinodiscus hustedtii Müller-Melchers; Thalassiosira hustedtii Poretzky &

Anisimova

Figuras 12 – 13, 47 - 50

Referências: Hasle & Fryxell (1977), Mahood, Fryxell & McMillan (1986), Muylaert &

Sabbe (1996), Sar, Sunesen & Castaños (2001) Sar, Sunesen & Lavigne (2002),

Hoppenrath et al. (2007), Garcia e Odebrecht (2009a), Garcia e Odebrecht (2009b).

Diâmetro: 53 - 76 µm. Estrias/10 µm: 5 – 6. Fultopórtulas/10 µm: 4

O padrão de areolação é linear. As aréolas apresentam forame externo que pode ser

visto em MEV (Fig. 48). A valva apresenta aspecto ondulado ou levemente côncavo em

MO (Fig. 12 e 13). A região central da valva apresenta uma fultopórtula levemente elevada,

sem tubo (Fig. 47). Em MEV, observa-se a presença de uma linha marginal silicosa (Fig.

48), sendo esta a continuação da face valvar, e consiste em um anel de pequenas aréolas

cercadas por uma costela fortemente silicificada (Hasle & Fryxell 1977). Na margem

valvar ainda se localizam fultopórtulas irregularmente distribuídas (Fig. 48). Apresenta

duas rimopórtulas com tubos externos proeminentes, distantes 180º uma da outra e

localizadas sobre a linha marginal silicosa (Figs. 47 e 50).

Comentário: Os principais caracteres diagnósticos para identificação da espécie são as

rimopórtulas proeminentes distantes 180º e a ondulação da face valvar. O anel de

fultopórtulas marginal foi de difícil visualização. Thalassiosira hendeyi apresentou

freqüência relativa semelhante nas três estações amostradas: ERG: 3,54%, EG: 4,36% e

EPS: 3,25%. No entanto, as maiores frequências relativas foram registradas no inverno e na

primavera (Fig. 93d). Happenrath et al. (2007) citam que, no Mar do Norte, a espécie

ocorre de agosto a maio, mostrando a grande flexibilidade de T. hendeyi com relação à

temperatura.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Lange 1985; Lange & Mostajo 1985;

Sar, Sunesen & Castaños 2001; Sar, Sunesen & Lavigne 2002), (Muller-Melchers 1953

(como Coscinodiscus hustedtii); Villac, Cabral-Noronha & Oliveira Pinto 2008), Uruguay

(Muller-Melchers 1953 (como Coscinodiscus hustedtii); Hasle & Fryxell 1977). Brasil

(Garcia & Odebrecht, 2009a; Garcia & Odebrecht, 2009b).

7. Thalassiosira leptopus (Grunow) Hasle & Fryxell, Nova Hedwigia, 54: 20 – 21, Figs. 1 –

14, 1977.

Basiônimo: Coscinodiscus (lineatus var.?) leptopus Grunow in Van Heurck. Pl. 131, Figs. 5

– 6, 1883.

Sinônimo: Coscinodiscus lineatus Ehrenberg

Figura 14

Referências: Fryxell & Hasle (1977), Hallegraeff (1984), Hernández-Becerril & Tapia

Peña (1995).

Diâmetro: 26 – 56,6 µm. Estrias/10 µm: 6 – 11. Fultopórtulas/10 µm: --

O padrão de estriação é linear, com aréolas visíveis ao MO. A aréola central é

distinta das outras da face valvar, sendo maior que as demais. A estriação da face valvar é

diferenciada da do manto, que é finamente areolada. A rimopórtula é única, com tubo

externo proeminente (Fig. 14) e está presente na margem da valva.

Comentário: Não foi possível registrar essa espécie em MEV. No entanto, o conjunto de

características analisadas em MO, tais como: a rimopórtula marginal proeminente, a aréola

central diferenciada das demais (maior) e o anel marginal de processos ocluídos, que

aparecem como pontos escuros em MO, possibilitaram a identificação da espécie. Embora

não sendo possível a visualização dos processos ocluídos em MEV, Hasle e Fryxell (1977)

os descreve como estruturas que apresentam 5 poros satélites em vista interna, tubo com

alas e são constrictos na parte distal. Possui 2-3 anéis de fultopórtulas marginais arranjadas

em zig-zag e um anel de processos ocluídos marginais irregularmente espaçados (Hasle &

Fryxell 1977). Thalassiosira leptopus, em MO, pode ser facilmente confundida com T.

tenera Proschkina-Lavrenko. Contudo, algumas estruturas as separam, a principal em MO é

a rimopórtula marginal proeminente (Fig. 14) em T. leptopus. Enquanto que em T. tenera a

rimopórtula está localizada entre duas fultopórtulas marginais e ela não é evidente em MO,

é confundida com uma das fultopórtulas.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Brasil (Aguiar & Corte-Real 1973 (como C. lineatus

forma minor); Rosa 1982 (como C. lineatus); Souza-Mosimann 1985; Moreira Filho,

Valente Moreira & Souza-Mosimann 1985; Torgan & Biancamano 1991 (como C.

lineatus); Rosevel da Silva et al. 2005; Souza-Mosimann & Laudares-Silva 2005;

Procopiak, Fernandes & Moreira-Filho 2006; Villac, Cabral-Noronha & Oliveira Pinto

2008; Tremarin, Ludwig & Moreira Filho 2008).

8. Thalassiosira lundiana Fryxell, Nova Hedwigia, Beih., 53: Figs. 12 – 24, 1975.

Figuras 15 – 16, 51 - 54

Referências: Fryxell (1975), Mahood et al. (1986), Sar, Sunesen & Castaños (2001),

Hoppenrath et al. (2007).

Diâmetro: 12,08 – 28,12 µm. Estrias/10µm: 38 - 40. Fultopórtulas/10 µm: 10

O padrão de estriação é fasciculado, com estrias delicadas, dificilmente

visualizáveis em MO (Figs. 15 – 16). Possui um anel de fultopórtulas marginal em zig-zag,

com tubos externos curtos (Figs. 52 - 53). Apresenta fultopórtulas espalhadas pela face

valvar com tubos externos curtos (Figs. 51, 53 – 55). Na região marginal, possui um anel

irregular de processos ocluídos (Figs. 16, 51 - 52) e costelas (Fig. 51).

Comentário: A rimopórtula de T. lundiana, de acordo com a descrição original (Fryxell

1975), é marginal e apresenta um tubo externo. No presente estudo, nos espécimes

analisados, não foi possível distinguir a rimopórtula dos processos ocluídos. Thalassiosira

lundiana é uma espécie próxima de T. punctigera (Castr.) Hasle (ver item 16) e estas são

facilmente confundidas. No entanto, a primeira apresenta um diâmetro menor e um maior

número de estrias em 10 µm. Além disso, a presença de fultopórtulas espalhadas pela face

valvar diagnostica T. lundiana. Em MO, a espécie pode ser facilmente distinguida.

Contudo, por apresentar estriação delicada pode passar despercebida na visualização em

MO.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Sar, Sunesen & Castaños 2001). Brasil

(Garcia & Odebrecht, 2009a; Garcia & Odebrecht, 2009b).

9. Thalassiosira mala Takano, Bull. Tokai Reg. Fish. Res. Lab., 42: 1 – 4, Figs. 1 (a – m),

Pl. I, Figs. 1 – 8, 1965.

Figuras 17, 55 - 56

Referências: Takano (1965), Takano (1976), Hallegraeff (1984), Hernández-Becerril &

Tapia Peña (1995), Sar, Sunesen & Lavigne (2002).

Diâmetro: 4,70 - 5 µm. Aréolas/10µm: 40. Fultopórtulas/10 µm: 8,28 - 10

O padrão de areolação é linear a excêntrico, visível somente em MEV. Possui um

anel marginal de fultopórtulas, sem tubos externos e internos. Apresenta uma fultopórtula

excentricamente localizada (Fig. 55 - 56). As fultopórtulas marginais apresentam 4 poros

satélites, enquanto que a fultopórtula subcentral, 3 poros (Fig. 55). A rimopórtula é única,

não apresenta tubo, está localizada na margem da valva, entre duas fultopórtulas (Fig. 55 -

56).

Comentário: A espécie forma colônias mucilaginosas, que podem ser identificadas, antes

do processo de oxidação, pelo tamanho e forma dos plastos, principalmente antes da

divisão (Takano 1965). No presente estudo, na contagem das 400 valvas T. mala foi

encontrada agrupada mesmo após o processo de limpeza das frústulas (Fig. 17). A

identificação foi possível devido a forma da célula em vista conectival e presença de um

ponto brilhante que seria a fultopórtula excentricamente localizada (Fig. 17). A maior

freqüência relativa registrada foi no mês de novembro (27%, EG). Nos outros meses a

espécie foi encontrada. No entanto, a freqüência relativa foi menor que 10% (Fig. 93e).

Takano (1965), quando descreveu T. mala, citou que as colônias mucilaginosas foram

encontradas com maior freqüência em estações frias. No presente estudo, diferentemente, a

maior freqüência relativa foi registrada na primavera e em menor quantidade no outono.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Sar, Sunesen & Lavigne 2002). Primeira

citação para o Brasil.

10. Thalassiosira minima Gaarder, Rep. Sars N. Atl. Deep Sea Exped., 2: 31, Fig. 18, 1951

Sinônimos: Coscinosira floridana Cooper; Thalassiosira floridana (Cooper) Hasle.

Figuras 57 - 58

Referências: Hasle (1980), Belcher & Swale (1986), Ferrario & Sar (1988), Harris et al.

(1995), Sar, Sunesen & Lavigne (2002), Hoppenrath et al. (2007), Tremarin, Ludwig &

Moreira Filho (2008).

Diâmetro: 6,54 – 7,6 µm. Estrias/10µm: --. Fultopórtulas/10 µm: 4,38.

O padrão de estriação é radial. Apresenta um anel marginal de fultopórtulas sem

tubos internos e externos (Figs. 57 - 58). No centro da valva, estão localizadas duas

fultopórtulas sem tubos internos e externos (Fig. 57 - 58). A rimopórtula é única e se

localiza na margem da valva, entre duas fultopórtulas do anel. Porém, não pode ser

visualizada em MEV porque provavelmente estava recoberta por detritos (Fig. 58).

Comentário: A presença das duas fultopórtulas centrais é o principal caractere diagnóstico

da espécie em MEV. Contudo, em MO, é difícil distinguir rimopórtulas e fultopórtulas

centrais tornando arriscada a identificação segura sem o auxílio do MEV. Em MO, T.

minima pode ser confundida com T. proschkinae, que apresenta uma fultopórtula e uma

rimopórtula central (ver item 15). As medidas dos espécimes do presente estudo estiveram

de acordo com as apresentadas por Hasle (1980). No entanto, um pouco inferiores às

registradas por Ferrario e Sar (1988) em um estudo feito com amostras do Atlântico Sul.

Porém, a descrição dos caracteres distintivos foi idêntica em ambos os estudos.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Ferrario & Sar 1988; Sar, Sunesen &

Lavigne 2002), Brasil (Tremarin, Ludwig & Moreira Filho 2008).

11. Thalassiosira nanolineata (Mann) Fryxell & Hasle, Nov. Hedw., Beih., 54: 32,33, Figs:

74 – 80, 1977.

Basiônimo: Coscinodiscus nanolineatus Mann, Pg. 68, Pl. 14, Fig. 68, 1925

Figura 59

Referências: Fryxell & Hasle (1977), Hallegraeff (1984), Souza-Mosimann & Felício

Fernandes (1990), Sar, Sunesen & Castaños (2001), Sar, Sunesen & Lavigne (2002),

Souza-Mosimann & Laudares-Silva (2005), Tremarin, Ludwig & Moreira Filho (2008).

Diâmetro: 18 µm. Estrias/10µm: 8. Fultopórtulas/10 µm: 3,71.

O padrão de estriação é linear e as estrias são bem visíveis em MO. Possui um anel

marginal de fultopórtulas com tubos externos longos e expandidos na região distal (Fig.

59). A aréola central é diferenciada das demais por possuir na parede de 1 a 5 fultopórtulas

(Fig. 59). As fultopórtulas do anel distam 2 a 3 aréolas uma da outra (Fig. 59). O manto da

valva termina em costelas marginais (Fig. 59). Apresenta uma rimopórtula marginal,

localizada entre duas fultopórtulas (Fig. 59).

Comentário: As principais características que diagnosticam T. nanolineata são as

fultopórtulas sobre a parede da aréola central e o anel de fultopórtulas marginal com tubos

longos e expandidos na região distal. No presente estudo, foram encontrados espécimes, em

MO e MEV, com fultopórtulas centrais semelhantes a T. nanolineata. Contudo, as

fultopórtulas marginais não foram visíveis e a identificação não pode ser segura. Portanto,

optou-se por chamar esses espécimes de Thalassiosira sp.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Lange 1985; Lange & Mostajo 1985;

Sar, Sunesen & Castaños 2001; Sar, Sunesen & Lavigne 2002); Brasil (Fernandes, Souza-

Mosimann & Felício Fernandes 1990; Souza-Mosimann, Felício-Fernandes, Laudares-Silva

& Fernandes 1993; Souza-Mosimann & Roos-Oliveira 1998; Fernandes, Brandini, Gutseit,

Fonseca & Pellizari 1999; Souza-Mosimann, Laudares-Silva & Roos-Oliveira 2001; Souza-

Mosimann & Laudares-Silva 2005; Procopiak, Fernandes & Moreira-Filho 2006; Tremarin,

Ludwig & Moreira Filho 2008).

12. Thalassiosira oceanica Hasle, J. Phycol., 19: 220 – 223, Figs. 1 – 18, 1983.

Figura 60

Referências: Hasle (1983), Hallegraeff (1984), Harris et al. (1995). Garcia & Odebrecht

(2009a), Garcia & Odebrecht (2009b)

Diâmetro: 12,24 µm. Estrias/10µm: --. Fultopórtulas/10 µm: 2,34.

A estriação é radial e não é visível em MO. Possui um anel de fultopórtulas

marginais regularmente distantes entre si e uma fultopórtula central (Fig. 60). A

rimopórtula é única, marginal, de posição radial, localiza-se próxima de uma das

fultopórtulas marginais (Fig. 60).

Comentário: No presente estudo não foi encontrado, a valva em vista externa, em MEV. Os

caracteres diagnósticos foram a fultopórtula central, a localização da rimopórtula e o

número de fultopórtulas marginais em 10 µm. O padrão de estriação não foi visualizado em

MO e em MEV. A inclusão de T. oceanica no grupo das espécies com padrão de estriação

radial, na chave de identificação, foi de acordo com a literatura (Hasle 1983). A espécie é

de difícil visualização em MO, e portanto, não pôde ser quantificada nas lâminas

permanentes.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (não foi encontrada nos trabalhos

acessados); Brasil (Garcia & Odebrecht 2009a).

13. Thalassiosira oestrupii var. oestrupii (Ostenfeld) Hasle, Taxon, 21: 543 e 544, 1972.

Basiônimo: Coscinosira oestrupii Ostenfeld, in Knudsen & Ostenfeld 1900: 52

Sinônimos: Porosira (?) n. sp. Ostenfeld; Thalassiosira antiqua var. septada Proshkina-

Lavrenko

Figuras 18 – 19, 61 - 63

Referências: Fryxel & Hasle (1980), Hasle & Syvertsen (1996), Sar, Sunesen & Lavigne

(2002), Tremarin, Ludwig & Moreira Filho (2008), Souza-Mosimann & Laudares-Silva

(2005), Garcia & Odebrecht (2009a).

Diâmetro: 14,28 – 16,47 µm. Estrias/10µm: 5 - 10. Fultopórtulas/10 µm: 1,91

O padrão de areolação é excêntrico, com aréolas grosseiras e decrescendo de

diâmetro em direção a margem, facilmente visualizadas em MO (Figs. 18 - 19). Apresenta

um anel de fultopórtulas marginal com tubos longos em vista interna (Fig. 63). Possui uma

fultopórtula subcentral com três poros satélites (fig. 63). A rimopórtula é única e está

localizada 2 a 3 aréolas da fultopórtula central (Fig. 18 – 19, 61 – 63).

Comentário: Na bibliografia consultada (Fryxell & Hasle 1980; Sar, Sunesen & Lavigne

2002) a espécie não é citada com padrão de areolação excêntrico. No entanto, no presente

estudo os espécimes apresentaram padrão de areolação excêntrico (Figs. 18 - 19). As

características que diagnosticam a espécie são a rimopórtula e fultopórtula subcentrais

distantes 2 a 3 aréolas uma da outra e a presença de aréolas grosseiras, que diminuem de

tamanho do centro para as extremidades da valva (Fig. 61 - 62). A espécie é facilmente

reconhecida em MO. As maiores freqüências relativas foram registradas no outono e no

inverno (Fig. 93f), nos meses de março, maio e julho (Fig. 94g). Nesses meses as

temperaturas registradas foram as mais baixas ou se apresentaram em declínio (Fig. 93a). T.

oestrupii var. oestrupii foi registrada durante todo o ano na costa da Ilha de Santa Catarina,

em pelo menos uma das estações amostradas (Fig. 94g), mostrando-se como uma espécie

bem distribuída e representativa no grupo das diatomáceas do local.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Lange 1985; Lange & Mostajo 1985);

Brasil (Souza-Mosimann 1988; Fernandes, Souza-Mosimann & Felício Fernandes 1990;

Felício-Fernandes, Souza-Mosimann & Moreira Filho 1994; Souza-Mosimann & Roos-

Oliveira 1998; Fernandes, Brandini, Gutseit, Fonseca & Pellizari 1999; Procopiak,

Fernandes & Moreira-Filho 2006; Tremarin, Ludwig & Moreira Filho 2008; Souza-

Mosimann & Laudares-Silva 2005; Garcia & Odebrecht 2009a).

14. Thalassiosira oestrupii var. venrickae Fryxell & Hasle, Amer. J. of Bot., 67 (5): 810,

813, Figs. 11 – 19, 1980.

Figuras 20 – 24, 64 - 66

Referências: Fryxel & Hasle (1980), Aké-Castillo et al. (1999), Sar, Sunesen & Castaños

(2001), Garcia & Odebrecht (2009a).

Diâmetro: 19,28 – 31,25µm. Estrias/10µm:5 - 8. Fultopórtulas/10 µm: 1,65 – 2,8.

O padrão de areolação é excêntrico, facilmente visível ao MO (Figs. 20 - 24). As

aréolas diminuem o tamanho do centro, em direção a margem da valva. Apresenta um anel

marginal de fultopórtulas com tubos internos longos (Fig. 65). Possui uma fultopórtula

próxima da região central com três poros satélites (Fig. 66). A rimopórtula é única e

localizada a 4 (esporadicamente 3) aréolas de distância da fultopórtula central (Figs. 22, 64

- 66).

Comentário: A espécie é bastante característica me MEV. No entanto, em MO, quando não

são visualizadas a fultopórtula e a rimopórtula centrais pode ser confundida com T.

eccentrica. Isso se deve ao padrão de areolação de T. oestrupii var. venrickae ser

fortemente excêntrico. Thalassiosira oestrupii var. oestrupii e T. oestrupii var. venrickae

são semelhantes, tanto em MO como em MEV, por apresentarem uma fultopórtula e uma

rimpórtula centrais. No entanto, a distância entre essas estruturas é uma característica que

pode ser usada para a diferenciar as variedades. Outro caractere diagnóstico para

diferenciá-las é a areolação mais grosseira, com aréolas grandes que diminuem do centro

para a margem da valva, em T. oestrupii var. oestrupii. A maior freqüência relativa de T.

oestrupii var. venrickae foi registrada na EPS (7,36%) no mês de setembro (Fig. 94h). A

espécie apresentou uma distribuição e uma freqüência relativa uniformes durante a

amostragem, exceto nos meses de setembro e outubro, nos quais apresentou um maior

número de valvas contadas, na EPS (Fig. 94h). Thalassiosira oetrupii var. venrickae

apresentou as maiores freqüências relativas, principalmente na EPS, na primavera (Fig.

94i), diferente de T. oestrupii var. oetrupii que o maior número de valvas contadas foi no

outono e inverno (Fig. 93f), principalmente nas estações localizadas na Baía Norte (ERG e

EG).

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Lange & Mostajo 1985; Sar, Sunesen &

Castaños 2001), Brasil (Souza-Mosimann 1988; Souza-Mosimann & Roos-Oliveira 1998;

Procopiak, Fernandes & Moreira-Filho 2006; Garcia & Odebrecht 2009a).

15. Thalassiosira proschkinae Makarova, Bot. Zhurn., 64:922, Pl. 1, Figs. 1 – 7, 1979.

Figuras 67 - 70

Referências: Belcher & Swale (1986), Muylaert & Sabbe (1996), Sar, Sunesen & Castaños

2001, Hoppenrath et al. (2007), Tremarin, Ludwig & Moreira Filho (2008).

Diâmetro:3,5 – 4,09 µm. Aréolas/10µm: 31,84 – 36. Fultopórtulas/10 µm: --.

A estriação varia de excêntrica a irregular. Possui um anel de fultopórtulas

marginais sem tubo externo e interno. Apresenta uma fultopórtula central com quatro poros

satélites e rodeada por 6 a 7 aréolas (Fig. 68 e 70). A rimopórtula é única e está localizada

no centro da valva, distante, geralmente, uma aréola da fultopórtula, também central (Figs.

67 e 70).

Comentário: Thalassiosira proschkinae não foi encontrada em MO. Na bibliografia

consultada (Sar, Sunesen & Castaños 2001; Sunesen & Lavigne 2002) a variação de

diâmetro e de densidade de aréolas/10 µm é maior que o registrado nos espécimes

encontrados no presente estudo. A morfologia externa das fultopórtulas em T. proschkinae

é um caractere importante na identificação da espécie. A abertura das fultopórtulas,

principalmente a central, é circundada por um anel de sílica interrompido, levemente

elevado e descontínuo (Figs. 67 e 68).

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Sar, Sunesen & Castaños 2001; Sar,

Sunesen & Lavigne 2002), Brasil (Tremarin, Ludwig & Moreira Filho 2008).

16. Thalassiosira punctigera (Castr.) Hasle, Nord. J. Bot. 3, Phycol., 22: 602 – 604. Figs. 1

– 45, 1983.

Basiônimo: Ethmodiscus punctiger Castracane 1886: 176, Pl. 3, Fig. 1.

Sinônimos: Coscinodiscus punctiger (Castr.) H. Perag.; Ethmodiscus japonicus Castracane;

Coscinodiscus verecundus Mann; Coscinodiscus angstii Gran; Coscinodiscus angstii var.

granulomarginatus Gran & Angst; Thalassiosira japonica Kiselev.

Figuras 25 – 26, 71

Referência: Ferrario & Sar (1988), Mahood, Fryxell & McMillan (1986), Harris et al.

(1995), Hasle & Syvertsen (1996), Muylaert & Sabbe (1996), Sar, Sunesen & Castaños

(2001), Sar, Sunesen & Lavigne (2002), Hoppenrath et al. (2007), Tremarin, Ludwig &

Moreira Filho (2008), Garcia e Odebrecht (2009a).

Diâmetro: 70 - 75 µm. Aréolas/10µm: 12 - 15. Fultopórtulas/10 µm: 4,67 - 5,09.

O padrão de areolação é fasciculado. Possui um anel de fultopórtulas marginal com

tubos curtos (Fig. 26 e 71). Na margem está localizado, além do anel de fultopórtulas, um

anel de costelas achatadas, que são facilmente visíveis em MO e MEV (Figs. 26 e 71),

processos ocluídos, com tubos externos longos, irregularmente distribuídos (Fig. 25) e uma

rimopórtula, com tubo externo longo, localizada próxima das fultopórtulas do anel.

Comentário: A rimopórtula de T. punctigera não é de difícil visualização, porque pode ser

confundida com um dos processos ocluídos. Portanto esta, não foi ilustrada no presente

estudo. A espécie é de fácil identificação e visualização em MO devido ao grande diâmetro.

No entanto, pode ser confunidade com T. lundiana por, ambas apresentarem, padrão de

areolação evidentemente fasciculado, costelas marginais e processos ocluídos com tubos

externos longos. Contudo, se diferenciam com relação ao tamanho e presença, em T.

lundiana, de fultopórtulas espalhadas na face valvar (ver descrição de T. lundiana).

Thalassiosira punctigera apresentou maior freqüência relativa nos meses de inverno (Fig.

94j). A maior frequência relativa registrada foi na EPS (2,08%), no mês de julho (Fig. 95k).

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Lange, Negri & Benavides 1983 (como

Thalassiosira angstii); Lange 1985; Lange & Mostajo 1985; Ferrario & Sar 1988; Sar,

Sunesen & Castaños 2001; Sar, Sunesen & Lavigne 2002), Brasil (Aguiar & Corte-Real

1973 (Coscinodiscus punctiger); Hasle 1983; Fernandes, Souza-Mosimann & Felício

Fernandes 1990; Torgan & Biancamano 1991 (Coscinodiscus punctiger); Souza-

Mosimann, Felício-Fernandes, Laudares-Silva & Fernandes 1993; Tenenbaum et al. 2004;

Procopiak, Fernandes & Moreira-Filho 2006; Villac, Cabral-Noronha & Oliveira Pinto

2008 (como Coscinodiscus punctiger); Tremarin, Ludwig & Moreira Filho 2008; Garcia &

Odebrecht 2009a).

17. Thalassiosira rotula Meunier, Duc d’Orleans Campagne Arctique de 1907: 264, Pl., 29.

Figs. 67 – 70, 1910

Figura 27

Referência: Lange, Negri & Benavides (1983), Mahood, Fryxell & McMillan (1986),

Muylaert & Sabbe (1996), Sar, Sunesen & Castaños (2001), Hoppenrath et al. (2007),

Garcia e Odebrecht (2009a).

Diâmetro: 31 - 42µm. Aréolas/10µm:-- . Fultopórtulas/10 µm: --

O padrão de estriação é radial, pouco visível em MO. Apresenta um agrupamento de

fultopórtulas no centro da valva e muitas outras espalhadas irregularmente sobre a face

valvar (Fig. 27). A rimpórtula é única e se localiza entre a face valvar e o manto (Fig. 27).

Comentário: A espécie é delicadamente silicificada. Contudo, é facilmente reconhecível em

MO. Os pontos claros na face valvar em MO, que são as fultopórtulas, são mais visíveis

que as estrias (Fig. 27). A espécie não apresentou uma distribuição uniforme durante os

meses amostrados. A maior freqüência relativa registrada foi no mês de maio (12%), na

ERG (Fig. 94 l). Nesse mês a temperatura apresentou um declínio visível (Fig. 93a) e a

salinidade foi uma das mais altas registradas para esta estação de coleta (Fig. 93b).

Mahood, Fryxell & McMillan (1986) citam que a espécie foi restrita a porção mais salina

das estações amostradas. Hoppenrath et al. (2007) registraram as mais altas freqüências

relativas no outono (março, abril) e na primavera (outubro), coincidindo com o presente

estudo, no qual as mais altas freqüências relativas foram registradas outono e primavera,

em maio e novembro, respectivamente.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Lange, Negri & Benavides 1983; Lange

1985; Lange & Mostajo 1985; Ferrario & Sar 1988; Sar, Sunesen & Lavigne 2002), Brasil

(Tenenbaum et al. 2004; Procopiak, Fernandes & Moreira-Filho 2006; Villac, Cabral-

Noronha & Oliveira Pinto 2008; Garcia & Odebrecht 2009a).

18. Thalassiosira simonsenii Hasle & Fryxell, Beihetft 54 Nov. Hedw., Beih., 54: 23 – 24.

Figs. 26 – 34, 97, 1977.

Figuras 28, 72 - 77

Referências: Hasle & Fryxell (1977), Mahood, Fryxell & McMillan (1986), Ferrario & Sar

(1988); Fryxel & Hasle (1980), Aké-Castillo et al. (1999), Sar, Sunesen & Castaños (2001),

Sar, Sunesen & Lavigne (2002), Garcia e Odebrecht (2009a)

Diâmetro: 22,7 – 36,42 µm. Aréolas/10µm: 6 – 8. Fultopórtulas/10 µm: 5 - 5,6.

O padrão de estriação é linear e facilmente visualizado em MO (Fig. 28). Possui

dois anéis de fultopórtulas marginais com tubos externos longos, alternando-se entre si

(Fig. 74 e 76). Na margem da valva localizam-se, além dos anéis de fultopórtulas,

processos ocluídos irregularmente distribuídos e em número variável (Fig. 73) e duas

rimopórtulas com tubos externos longos distantes 180º uma da outra (Figs. 72, 75 - 76).

Possui costelas marginais que são facilmente vistas em MO (Fig. 28) e em MEV (Fig. 73).

Na região central da valva está localizada uma fultopórtula com tubo externo curto (Fig.

72).

Comentário: Os principais caracteres que distinguem a espécie são as fultopórtulas

distantes 180º uma da outra, as costelas marginais e os processos ocluídos. A espécie é

facilmente reconhecida em MO. Thalassiosira simonsenii foi bem distribuída, tanto nas

estações de coleta, como nos meses amostrados (Fig. 95n). A maior freqüência relativa foi

registrada na EPS, no mês de maio. Neste mês, a temperatura registrada foi de 18,5 ºC e a

salinidade de 34,5 psu. Sar, Sunesen & Castaños (2001) citam que na Argentina a espécie é

mais comum no final do inverno e menos comum na primavera e verão. No entanto, no

presente estudo, esses resultados não se confirmam, a espécie foi encontrada com maior

freqüência relativa e melhor distribuída, nas estações de coleta, no outono e na primavera

(Fig. 95m).

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Lange, Negri & Benavides 1983; Lange

1985; Lange 1985; Lange & Mostajo 1985; Ferrario & Sar 1988; Gayoso & Podestd 1996;

Sar, Sunesen & Castaños 2001; Sar, Sunesen & Lavigne 2002), Brasil (Procopiak,

Fernandes & Moreira-Filho 2006; Garcia & Odebrecht 2009a)

19. Thalassiosira tealata Takano, Bull. Tokai Reg. Lab., 103: 55 – 58, Figs. 1 – 17, 1980.

Figuras 78 - 81

Referências: Takano (1980), Harris et al. (1995), Aké-Castillo et al. (1999), Tremarin,

Ludwig & Moreira Filho (2008).

Diâmetro: 8,28 µm. Aréolas/10µm: 40. Fultopórtulas/10 µm: 3

O padrão de areolação é radial. Possui um anel marginal de fultopórtulas, com tubos

externos longos, apresentando duas asas opostas, na parte distal, tendo o conjunto uma

forma de “T” (Figs. 78 - 80). Na região central da valva está presente uma futlopórtula,

com tubo externo curto (Fig. 81). A fultopórtula central se localiza junto da aréola central,

que é diferenciada das demais aréolas (Fig. 81). A rimopórtula é única, apresenta tubo

externo longo e está localizada na margem da valva, entre duas fultopórtulas (Figs. 78 e

80).

Comentário: A espécie não foi encontrada em MO. Contudo, a identificação com MEV foi

bastante segura, devido principalmente a morfologia dos tubos externos das fultopórtulas

do anel marginal. As medidas do diâmetro, do número de aréolas e do número de

fultopórtulas em 10 µm correspondeu às medidas apresentadas por Takano (1980), quando

descreveu a espécie. Thalassiosira tealata foi rara durante a amostragem. No entanto, é

considerada comum, no Japão, em águas quentes.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Brasil (Tremarin, Ludwig & Moreira Filho 2008).

Segunda citação para o Brasil.

20. Thalassiosira tenera Proschikina-Lavrenko, Notul. Syst. Inst. Crystog. URSS 10: 33.

Pl. 1 Figs. 1 – 4, Pl. 2, Figs. 5 -7, 1961.

Sinônimo: Coscinodiscus lineatus var. ? Schimidt; C. lineatus var. tenera Truan & Witt

Figuras 29 - 30, 82 - 85

Referências: Hasle & Fryxell (1977), Mahood, Fryxell & McMillan (1986), Harris et al.

(1995), Hasle & Syvertsen (1996), Sar, Sunesen & Castaños (2001), Sar, Sunesen &

Lavigne (2002).

Diâmetro: 20 - 32µm. Aréolas/10µm: 11 -12. Fultopórtulas/10 µm: 3,2 - 3,6

O padrão de estriação é linear, facilmente visível em MO (Figs. 29 - 30). Apresenta

um anel de fultopórtulas marginais, cada uma delas incluída em uma deposição de sílica em

forma de cunha, com abertura no manto (Figs. 82 - 83). Entre as fultopórtulas marginais, as

aréolas diminuem de tamanho abruptamente (Fig. 85). A aréola central é diferenciada das

demais (Fig. 29). Apresenta, na região central, uma fultopórtula (Fig. 83). A rimopórtula é

única e está localizada entre duas fultopórtulas marginais (Fig. 82).

Comentário: Thalassiosira tenera, em MEV, pode ser confundida com T. exigua (ver

descrição no item 5), devido a semelhança da morfologia dos processos que envolvem as

das fultopórtulas marginais, em vista externa. Porém, a segunda apresenta um diâmetro

menor e uma maior densidade de aréolas que T. tenera. Em MO, pode ser confundidada

com T. leptopus (ver descrição no item 7). O principal motivo que colabora para a

dificuldade em diferenciá-las é o padrão de estriação bastante semelhante nas duas e o anel

de processos ocluídos proeminentes em T. leptopus, que se torna refringente como o anel de

fultopórtulas marginais com deposição de sílica em T. tenera. A maior freqüência relativa

de T. tenera foi no mês de maio, na EG (1,7%). A espécie ocorreu ininterruptamente entre

os meses de maio a dezembro (outono, inverno, primavera e verão). Hoppenrath et al.

(2007) registraram a maior frequência da espécie entre os meses de outubro e fevereiro,

outono e inverno, respectivamente. No presente estudo, a maioria das ocorrências foi

registrada nas estações localizadas com maior influência costeira (Fig. 1) como citado por

Hasle & Fryxell (1977). Apesar de ser bem distribuída durante o ano nas estações

analisadas na costa da Ilha de Santa Catarina, a frequência relativa foi baixa quando

comparada com outras espécies (Fig. 95o). A baixa freqüência relativa da espécie já foi

citada por Sar, Sunesen & Castaños (2001), indicando que a espécie é mais rara na América

do Sul que na Europa e Japão, por exemplo, onde foi registrada como abundante (Hasle &

Fryxell 1977; Hoppenrath et al. 2007).

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (Lange 1985; Lange & Mostajo 1985;

Sar, Sunesen & Castaños 2001; Sar, Sunesen & Lavigne 2002), Brasil (Tremarin, Ludwig

& Moreira Filho 2008). Segunda citação para o Brasil.

21. Thalassiosira visurgis Hustedt, Die Diatomeen Flora dês Fluss-systems der weser im

gabiel Hansestadt Bremen, 34 (3), 1957

Figura 31

Referência: Mahood, Fryxell & McMillan (1986), Aké-Castillo et al. (1999).

Diâmetro: 11 - 15µm. Aréolas/10µm: 12 - 14. Fultopórtulas/10 µm: --

O padrão de areolação é irregular. As aréolas são visíveis no MO (Fig. 31). Possui

um anel de fultopórtulas marginal e uma fultopórtula central. Apresenta duas rimopórtulas

marginais proeminentes em MO e distantes 180º uma da outra (Fig. 31).

Comentário: A espécie não foi encontrada em MEV. No entanto, pode ser identificada em

MO, por apresentar duas rimopórtulas com tubos externos longos evidentes na margem da

valva. Thalassiosira visurgis é bastante semelhante a T. decipiens. Contudo, a última

apresenta somente uma rimopórtula evidente na margem da valva. A estriação de ambas é

parecida, porém T. visurgis apresenta padrão de areolação mais irregular que T. decipiens.

Thalassiosira visurgis foi rara durante toda a amostragem, nas estações de coleta

estudadas.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (não há citação), Brasil (1ª citação).

22. Thalassiosia cf. partheneia Schrader, “Meteor” Forsch-Ergebnisse, D, 10: 59. Pl. 1 – 2,

1975.

Figuras 86 - 88

Referências: Hasle (1983), Fryxell, Gould & Watkins (1984), Hallegraeff (1984).

Diâmetro: 11,4 µm. Aréolas/10µm: --. Fultopórtulas/10 µm: 1,67.

O padrão de areolação é fasciculado. Apresenta um anel marginal de fultopórtulas

com tubos longos (vista interna) e com dois poros satélites (Fig. 87). No centro da valva

possui uma fultopórtula com tubo curto (vista interna) e com quatro poros satélites (Fig.

88).

Comentário: Thalassiosira cf. partheneia foi encontrada somente uma vez em MEV (ERG,

novembro/07) e nenhuma em MO. Os caracteres diagnóstico foram os tubos longos, em

vista interna, das fultopórtulas marginais e a fultopórtula central com 4 poros satélites.

Contudo, não foi visualizado a rimopórtula marginal, esta pode estar na região da valva

quebrada ou estar ausente e segundo a literatura (Hasle 1983b) o número de poros satélites

das fultopórtulas marginais é três. No espécime encontrado são somente dois poros

marginais (Fig. 87). Contudo, Aké-Castillo et al. (1999) citam que o número de poros

satélites não é uma característica taxonomicamente importante em Thalassiosira. Para a

identificação segura seria necessário a observação de um maior número de indivíduos.

Porém, a sugestão de espécie é válida para a comparação com futuros estudos que serão

realizados no local.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Argentina (não há citação), Brasil (não há citação).

23. Thalassiosira sp.

Figuras 32 – 33, 89 - 92

Diâmetro: 23,3 – 31,3 µm. Aréolas/10µm: 4 - 5. Fultopórtulas/10 µm: --

O padrão de areolação é linear a excêntrico (Figs. 32 e 89). Apresenta a margem do

manto expandida, terminado em costelas (Fig. 90). A “rimopórtula” é única e está

localizada na margem da valva (Fig. 91). Na parede da aréola central estão localizadas seis

fultopórtulas (?) e três “aréolas” modificas (Figs. 32 – 33, 92).

Comentário: A espécie foi encontrada em MEV e em MO. Contudo, os caracteres

evidenciados não conduziram a nenhuma espécie conhecida. A espécie mais próxima é

Thalassiosira nanolineata (ver item 11). As costelas na terminação do manto, a região

central e as medidas (diâmetro e aréolas/10 µm) são bastante semelhantes ao que é descrito

para a espécie citada acima. Porém, a ausência do anel marginal de fultopórtulas evidentes

em MEV e MO não permitiu a identificação como T. nanolineata. A espécie foi rara

durante a amostragem. Souza-Mosimann (1984) ilustra Coscinodiscus marginatus Ehr.

(Prancha IV, Fig. 27) com uma imagem semelhante a imagem de MO do presente estudo

(Fig. 33) indicando que a espécie foi encontrada anteriormente, próximo a Baía Norte, local

de coleta do presente estudo.

Tabela 1. Tabela comparativa das espécies de Thalassiosira

Cleve encontradas nas estações amostradas na costa da Ilha de Santa Catarina. ERG: Estação Ratones Grande; EG: Estação

Guarás e EPS: Estação Pântano do Sul.

Espécies Padrão de

estriação

Diâmetro

(µm)

Aréola/

10µm

Fultopórtulas Fultopórtulas/

10µm

Rimopórtulas Características

distintivas

local

Thalassiosira angulata

(Gregory) Hasle

excêntrico 16 – 34,6 11 - 14

1 anel marginal com tubos

longos;

uma central (alguns

espécimes não apresentaram);

1,96 - 2,29 1 localizada na

margem da

valva, entre duas

fultopórtulas;

- anel de fultopórtulas

marginal;

- tubos das fultopórtulas

(vista externa) em forma

de taça;

ERG,

EG, EPS

T. decipiens (Grunow) E.G.

Jørgensen

excêntrico 10 - 18

14 - 16 1 anel marginal;

uma central;

8 1 na margem da

valva;

- rimopórtula proeminente

na margem da valva;

ERG,

EG, EPS

T. eccentrica (Ehrenberg)

Cleve

excêntrico 19 – 61,11 6 - 7 2 - 3 anéis marginais;

várias espalhadas pela face

valvar;

uma no centro da valva, junto

da aréola central;

4 1 na margem da

valva;

- estriação fortemente

excêntrica;

- 7 aréolas ao redor da

aréola central

- 1 anel de espinhos

marginais (1,4/10µm)

ERG,

EG, EPS

T. endoseriata Hasle &

Fryxell

fasciculado 26,81 – 46,25 11 – 15 1 anel marginal;

1 anel central irregular

próximo da região valvar (7 –

8);

5 1 localizada

entre o anel

central de

fultopórtulas e a

margem da

valva;

- anel central irregular de

fultopórtulas;

- estriação fasciculada;

ERG,

T. exigua Fryxell & Hasle linear 5,8 – 6,8 20 – 22 1 anel marginal;

uma central;

5,09 - 5, 49 1 marginal; - fultopórtulas marginais

em elevações cônicas;

- aréola central elevada;

ERG

T. hendeyi Hasle & Fryxell linear 53 - 76 5 - 6

2 anéis marginais;

uma central;

4 2 marginais,

distantes 180º

uma da outra;

- 2 rimopórtulas

marginais proeminentes;

- face valvar ondulada;

ERG,

EG, EPS

Espécies Padrão de

estriação

Diâmetro

(µm)

Aréola/

10µm

Fultopórtulas Fultopórtulas/

10µm

Rimopórtulas Características

distintivas

local

T. leptopus (Grunow ex Van

Heurck) Hasle & G. Fryxell

linear 26 – 40 6 - 11 2 -3 anéis marginais

-- 1 na margem

valvar;

- estriação linear;

- aréola central distinta

das demais;

ERG,

EG, EPS

T. lundiana Fryxell fasciculado 12,08 – 28,12 38 - 40 1 anel marginal em zig-zag;

várias espalhadas pela face

valvar;

10 1 na margem da

valva;

- estrias delicadas em

MO;

- processos ocluídos com

tubos externos longos

- fultopórtulas espalhadas

pela face valvar;

ERG,

EG, EPS

T. mala Takano linear a

excêntrico

4,70 - 5 40 1 anel marginal;

uma excentricamente

localizada;

8,28 - 10

1 entre duas

fultopórtulas

marginais;

- forma colônias

mucilaginosas;

- fultopórtula localizada

excentricamente;

ERG,

EG, EPS

T. minima Gaarder radial 6,54 - 7,6 --

1 anel marginal;

duas localizadas no centro da

valva;

4,38

1 entre duas

fultopórtulas do

anel marginal;

- duas fultopórtulas

centrais

ERG

T. nanolineata (Mann) Hasle

et Fryxell

Linear 18 8 1 anel marginal;

uma a 6 sobre a parede da

aréolas central;

3,71 1 localizada na

margem valvar

entre duas

fultopórtulas;

- anel de fultopórtulas

marginal evidente

- fultopórtulas sobre a

parede da aréola central;

ERG

T. oceanica Hasle radial 12,24 -- 1 anel marginal;

uma fultopórtula central

2,34 1 localizada

próximo de uma

das fultopórtulas

do anel marginal;

- fultopórtula central;

- rimopórtula entre duas

fultopórtulas, porém mais

próxima de uma delas;

ERG

T. oestrupii var. oestrupii

(Ostenfeld) Hasle

excêntrico 14,28 – 16,47 5 - 10 1 anel marginal;

uma na região central valva;

1,91 1 próxima a

região central da

valva;

- estriação grosseira;

- rimopórtula distante 2 –

3 aréolas da fultopórtula

central;

ERG,

EG, EPS

Continuação Tabela 1.

Espécies Padrão de

estriação

Diâmetro

(µm)

Aréola/

10µm

Fultopórtulas Fultopórtulas/

10µm

Rimopórtulas Características

distintivas

local

T. oestrupii var. venrickae

Fryxell & Hasle

excêntrico 19,28 – 31,25 5 - 8 1 anel marginal;

uma na região central valva;

1,65 – 2,8 1 próxima a

região central da

valva;

- estriação excêntrica;

- rimopórtula distante 4

(3) aréolas da fultopórtula

central;

ERG,

EG, EPS

T. proschkinae Makarov excêntrico

a irregular

3,5 – 4,09 31,8 - 36 1 anel marginal;

uma na região central da

valva;

-- 1 na região

central, distante

uma aréola da

fultopórtulas;

- distância entre

fultopórtula e rimopórtula

centrais é de uma aréola;

ERG

T. punctigera (Castracane)

Hasle

fasciculado 70 - 75 12 - 15 1 anel marginal 4,67 - 5,09 1 na margem da

valva

- estriação fasciculada;

- presença de costelas

marginais acahatadas;

ERG,

EG, EPS

T. rotula Meunier radial 31 - 42 -- Um grupo localizado no

centro da valva;

Várias espalhadas pela face

valvar;

-- 1 localizada

entre a face

valvar e o manto;

- estriação delicada em

MO;

- gurpo de fultopórtulas

localizadas no centro da

valva;

- fultopórtulas espalhadas

pela face valvar (pontos

refringentes em MO);

ERG,

EG, EPS

T. simonsenii Hasle & Fryxell linear 22,7 – 36,42 6 – 8 2 anéis marginais;

uma na região central;

5 - 5,6 2 na margem

valvar, distantes

180º uma da

outra;

- rimopórtulas distantes

180º uma da outra;

-costelas marginais

evidentes;

- fultopórtulas dos anéis

marginais alternadas;

ERG,

EG, EPS

T. tealata Takano radial 8,28 40 1 anel marginal;

uma na região central da

valva;

3 1 na região

marginal, entre

duas fulopórtulas

do anel;

- tubos externos das

fultopórtulas do anel

marginal com alas

laterais, em forma de “T”;

ERG

Espécies Padrão de

estriação

Diâmetro

(µm)

Aréola/

10µm

Fultopórtulas Fultopórtulas/

10µm

Rimopórtulas Características

distintivas

local

T. tenera Proshkina-Lavrenko linear 20 - 32 11 -12 1 anel marginal;

3.2 - 3,6 1 localizada

entre duas

fultopórtulas do

anel marginal

- fultopórtulas do anel

marginal incluídas em

uma estrutura silicosa em

forma de cunha;

ERG,

EG, EPS

T. visurgis Hustedt irregular 11 - 15 12 -14 1 anel marginal;

uma na região central

-- 2 localizadas na

margem da

valva, distantes

180º uma da

outra;

- rimopórtulas marginais

proeminentes, distantes

180º uma da outra;

ERG,

T. cf. partheneia fasciculado 11,4 -- 1 anel marginal;

uma na região central

1,67 -- - tubos longos, em vista

interna, das fultopórtulas

do anel marginal;

- fultopórtula central com

4 poros satélites;

ERG

Thalassiosira sp. linear a

excêntrico

23,3 – 31,3 4 - 5 - seis (?) localizadas sobre a

parede da aréola central

-- 1 (?) localizada

na margem da

valva;

- fultopórtulas localizadas

sobre a parede da aréola

central;

- “aréolas” modificadas

localizadas junto da

aréola central;

ERG

Continuação Tabela 1.

Figuras 1

–

. Fotomicrografias de espécies de Thalassiosira

da costa da Ilha de Santa Catarina em

Microscopia Óptica. Figs. 1 – 5: Thalassiosira angulata (cabeça de seta:

fultopórtulas do anel

marginal). Fig. 6: T. decipiens, MO em contraste de fase (seta: rimo

pórtula com tubo externo

longo). Figs. 7 – 9: T. eccentrica (setas: espinhos marginais observados em vista conectival (Fig.

e em vista valvar (Fig. 9); cabeça de seta preta: 7 aréolas que circundam a aréola central). Fig. 10:

endoseriata (cabeça de seta: fultopórtulas do anel localizado entre o centro e a margem da valva).

Fig. 11: T. exigua, MO em contraste de fase (cabeça de seta: fultopórtulas do anel marginal).

Figs.

12 – 13: T. hendeyi (seta: rimopórtulas marginais). Escala (barra): 10 µm.

Figuras 14

–

. Fotomicrografias de espécies de Thalassiosira

da costa da Ilha de Santa Catarina em

Microscopia Óptica. Fig. 14: Thalassiosira leptopus (se

ta preta: rimopórtula marginal; seta branca: aréola

central diferenciada). Figs. 15 – 16: T. lundiana

(cabeça de seta preta: fultopórtulas espalhadas na face

valvar; cabeça de seta branca: processo ocluído marginal com tubo longo). Fig. 17: T. mala, esp

écimes

agrupados mesmo após o processo de limpeza das frústulas (cabeça de seta: fultopórtula localizada

excentricamente na valva. Figs. 18 – 19: T. oestrupii var. oestrupii

(seta preta: rimopórtula da face

valvar; cabeça de seta: fultopórtula da face valvar, distante duas aréolas da rimopórtula). Fig. 20 – 23:

oestrupii var. venrickae

(seta preta: rimopórtula da face valvar; cabeça de seta: fultopórtula da face

valvar, distante 3 a 4 aréolas da rimopórtula). Escala (barra): 10 µm.

Figuras 24

–

. Fotomicrografias de espécies de Thalassiosira da costa da Ilha de Santa Catarina

, SC,

Brasil em Microscopia Óptica (MO). Figs. 24: T. oestrupii var. venrickae; Fig. 25 – 26: T. punctigera

Fig. 25: MO em contraste de fase (cabeça de seta branca: processos ocluídos); Fig. 26:

(seta preta:

costelas marginais achatadas; cabeça de seta: anel marginal de fultopórtulas). Fig. 27: T. rotula,

MO em

contraste de fase (seta branca: rimopórtula marginal; cabeça de seta branca: fultopórtula

s espalhadas na

face valvar) Figs. 28: T. simonsenii

(setas pretas: rimopórtulas marginais com tubo longo e distantes

180º uma da outra. Figs. 29 - 30: T. tenera (cabeça de seta: aréola central diferenciada). Fig. 31:

visurgis (seta branca: rimopórtulas marginais). Figs. 31 – 33: Thalassiosira

sp. (cabeça de seta:

“aréolas” modificadas circundando a aréola central. Escala (barra): 10 µm.

Figuras 34 – 39. Microscopia Eletrônica de Varredura de espécies de Thalassiosira

da costa da Ilha de

Santa Catarina, SC, Brasil. Figs. 34 – 38: Thalassiosira angulata Fig. 34: (seta preta:

rimopórtula;

cabeça de seta: fultopórtula central), Fig. 35 (seta preta: rimopórtula; cabeça de seta: fultopó

rtula do anel

marginal). Fig. 36 (cabeça de seta: fultopórtulas do anel marginal com fultopórtula em forma de taça)

Fig. 37 (cabeça de seta: detalhe da dupla região distal da fultopórtula do anel marginal). Fig. 38 (seta

rimopórtula). Fig. 39: T. decipiens (seta preta: rimopórtula marginal; cabeça de seta preta: fultop

órtula

do anel marginal; cabeça de seta branca: fultopórtula central).

Figura

s 40

–

. Microscopia Eletrônica de Varredura de espécies de Thalassiosira

da costa da Ilha de

Santa Catarina, SC, Brasil. Figs. 40 – 42: Thalassiosira eccentrica, Fig. 40: (seta preta:

rimopórtula

marginal; cabeça de seta branca: fultopórtulas espalhadas pela face valvar; cabeça de seta preta:

fultopórtula central; seta branca: sete aréolas que circundam a aréola central). Fig 41: Vista interna (seta:

rimopórtula; cabeça de seta branca: fultopórtulas espalhadas pela face valvar; cabeça de seta preta

fultopórtulas dos anéis marginais), Fig. 42: (seta: espinhos marginais; cabeça se seta branca:

fultopórtulas

da face valavar; cabeça se seta preta: fultopórtulas dos anéis marginais). Figs. 43 – 45:

T. endoseriata,

Fig. 43: (seta: rimpórtula; cabeça de seta: fultopórtulas do anel central). Fig. 44: (cabeça de seta

fultopórtulas do anel central), Fig. 45: (cabeça se seta: fultopórtula do anel central).

Figuras 46

–

51.

Microscopia Eletrônica de Varredura de espécies de Thalassiosira

da costa da Ilha de

Santa Catarina, SC, Brasil. Fig. 46: Thalassiosira exigua (seta branca: rimopórtula; cabeça de seta:

fultopórtulas do anel marginal; seta preta: aréola central diferenciada); Figs. 47 – 50: T. hendeyi,

Fig.

47: (seta: rimopórtulas marginais distantes 180º uma da outra; cabeça de seta: fultopórtula central).

Fig.

48: (seta: linha marginal silicosa; cabeça de seta branca: fultopórtula da margem valvar; seta preta

forame externo). Fig. 49: (cabeça de seta: fultopórtula central). Fig. 50: (seta: rimopórtula); Fig. 51:

lundiana (seta: costelas marginais; cabeça de seta preta: fultopórtulas marginais; cabeça de seta branca

fultopórtulas espalhadas pela face valvar).

Figuras 52

–

Microscopia Eletrônica de Varredura de espécies de Thalassiosira

da costa da Ilha de

Santa Catarina, SC, Brasil. Figs. 52 – 54: T. lundiana. Fig. 52: (cabeça de seta

: fultopórtulas marginais;

seta preta: processo ocluído). Fig. 53: (cabeça de seta preta:

detalhe das fultopórtulas espalhadas sobre a

face valvar; cabeça de seta branca: detalhe das fultopórtulas marginais). Fig. 54: (cabeça de seta:

detalhe

das fultopórtulas da face valvar). Figs. 55 – 56: T. mala. Fig. 55: (seta: rimopórtula; cabeça de seta

fultopórtula localizada excentricamente e os 3 poros satélites caracterísiticos da espécie). Fig. 56: (seta

rimopórtula; cabeça de seta branca: fultopórtula excentricamente localizada; cabeça de seta preta:

fultopórtula do anel marginal). Fig. 57: T. minima, (cabeça de seta preta: duas fultpórtulas centrais).

Figuras 58

–

Microscopia Eletrônica de Varredura de espécies de Thalassiosira

da costa da Ilha

de Santa Catarina, SC, Brasil. Fig. 58: Thalassiosira minima, (cabeça de seta preta: fultopórt

ulas

centrais; cabeça de seta branca: fultopórtula do anel marginal). Fig. 59: T. nanolineata (seta:

rimopórtula; cabeça de seta: fultopórtulas do anel marginal e a fultopórtula localizada so

bre a parede

da aréola central). Fig. 60: T. oceanica, (seta: rim

opórtula próxima a uma fultopórtula central; cabeça

de seta: fultopórtula central); Figs. 61 – 63: T. oestrupii var. oestrupii, (seta:

rimopórtula; cabeça de

seta: fultopórtula).

Figuras 64

–

Microscopia Eletrônica de Varredura de espécies de Thalassiosira

da costa da Ilha de

Santa Catarina, SC, Brasil. Figs. 64 – 66: Thalassiosira oestrupii var. venrickae (seta

: rimopórtula;

cabeça de seta: fultopórtula). Figs. 67 – 69: T. proschkinae, Fig. 67: (seta: rimopórtula

; cabeça de seta

preta: fultopórtula central; cabeça de seta branca: fultopórtula do anel marginal). Fig. 68: (seta preta:

rimopórtula; seta branca: 6 aréolas que circundam a aréola central). Fig. 69: (cabeça de seta:

fultopórtulas do anel marginal).

Figuras 70

–

Microscopia Eletrônica de Varredura de espécies de Thalassiosira

da costa da Ilha de

Santa Catarina, SC, Brasil. Fig. 70: Thalassiosira proschkinae

(seta: rimopórtula; cabeça de seta:

fultopórtula). Fig. 71: T. punctigera, (cabeça de seta preta: fultopórtulas do anel marginal;

cabeça de

seta branca: costelas marginais achatadas). Figs. 72 – 75: T. simonsenii, Figs. 72, 73, 75:

(seta branca:

rimopórtulas distantes 180º uma da outra; seta preta indica: costelas marginais; cabeça de seta branca:

fultopórtula central; cabeça de seta

preta: fultopórtulas dos anéis marginais que se intercalam entre si;

cabeça de seta preta: processos ocluídos).

Figuras 76

–

Microscopia Eletrônica de Varredura de espécies de Thalassiosira

da costa da Ilha de

Santa Catarina, SC, Brasil. Fig. 76 - 77: Thalassiosira simonsenii. Fig. 76:

(seta: rimopórtula marginal;

cabeça de seta: fultopórtula de um dos anéis marginais). Fig. 77:

Vista interna (cabeça de seta:

fultopórtula central); Figs. 78 – 81: T. tealata, (seta: rimopórtula; cabeça de seta preta: f

ultopórtulas em

forma de “T”; cabeça de seta branca: indica a fultopórtula central).

100

Figuras 82

Microscopia Eletrônica de Varredura de espécies de Thalassiosira

da costa da Ilha de

Santa Catarina, SC, Brasil. Fig. 82 - 85 : Thalassiosira tenera, (seta preta:

rimopórtula; cabeça de seta

preta: fultopórtulas marginais recobertas por sílica; seta branca: fultopórtula central; cabeça de

seta

branca: abertura de uma fultopórtula marginal). Figs. 86 – 87: Thalassiosira cf. partheneia

, vista interna

(cabeça de seta branca: fultopórtula do anel marginal; cabeça de seta preta:

indica a fultopórtula

subcentral).

101

Figuras 88

–

92.

Microscopia Eletrônica de Varredura de espécies de Thalassiosira

da costa da Ilha de

Santa Catarina, SC, Brasil. Fig. 88: Thalassiosira cf. partheneia,

(cabeça de seta: detalhe da fultopórtula

central); Figs. 89 – 92: Thalassiosira sp., Fig. 90: (seta branca: costelas marginais). Fig. 91:

(seta preta:

“rimopórtula”). Fig. 92: (seta branca: “aréola” diferenciada; cabeça de seta: fultop

órtula sobre a parede

da aréla central).

102

Figura 93

–

f):

Frequência relativa (%) do gênero e das espécies de Thalassiora

nas estações amostradas

durante os doze meses do ano estudados na costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil. ERG: Estação Ratone

Grande; EG: Estação Guarás e EPS: Estação Pântano do Sul. Fig. a: Freqüência relativa de Thalassiosira

(barras) e temperatura da água (linhas). Fig. b: Freqüência relativa de Thalassiosira

(barras) e salinidade (ups)

da água (linhas); Fig. c: Freqüência relativa de T. eccentrica. Fig. d: Freqüência relativa de T. hendeyi. Fig. e

Freqüência relativa de T. mala. Fig. f: Freqüência relativa de T. oestrupii var. oestrupii.

103

gura 94 (g

–

Frequência relativa (%) do gênero e das espécies de Thalassiora

nas estações amostradas,

durante os doze meses estudados na costa da Ilha de Santa Catarina

, SC, Brasil. ERG: Estação Ratones

Grande; EG: Estação Guarás e EPS: Estação Pântano do Sul. Fig. g: Freqüência relativa de Thalassiosira

oestrupii var. oestrupii. Fig. h: Freqüência relativa de T. oestrupii var. venrickae; Fig. i:

Freqüência relativa

de T. oestrupii var. venrickae (estações do ano). Fig. j: Freqüência relativa de T. punctigera (estações do ano)

Fig. k: Freqüência relativa de T. punctigera (meses amostrados); Fig. l: Freqüência relativa de T. rotula.

104

gura 95 (m

–

Frequência relativa (%) do gênero e das espécies de Thalassiora

nas estações amostradas,

durante os doze meses estudados na costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil. Fig. m:

Freqüência relativa de

T.simonsenii (estações do ano); Fig. o: Freqüência relativa de T. tenera.

ERG: Estação Ratones Grande; EG:

Estação Guarás e EPS: Estação Pântano do Sul.

105

2.4 Discussão

Alverson, Kang & Theriot (2006) publicaram um estudo relacionado à descrição

de um novo gênero de Thalassiosirales. O gênero proposto é Shionodiscus e este,

agruparia as espécies de Thalassiosira do grupo “B” (Hasle & Syvertsen 1996), que

possuem a rimopórtula distante da margem valvar, portanto sobre a face valvar, tubos

internos das fultopórtulas longos e os externos não visíveis. Essas características

descritas transfeririam para o novo gênero as espécies como T. oestrupii var. oestrupii

(Ostenfeld) Hasle, T. oestrupii var. venrickae Fryxell & Hasle e T. endoseriata Hasle &

Fryxell. Contudo, no presente estudo optou-se por não seguir a nova combinação, tendo

em vista que é recente e ainda não está sendo amplamente utilizada pelos pesquisadores.

O gênero Thalassiosira foi bastante representativo na costa da Ilha de Santa

Catarina. Foi registrado em todas as estações e meses amostrados. Dentre as

diatomáceas, a freqüência relativa de ocorrência variou entre 1,2% (ERG, jan/2008) e

79,6% (EPS, out/2007). O mês de janeiro/2008 foi o mês que o gênero foi menos

importante na contribuição das diatomáceas para o fitoplâncton (Fig. 93a - b). Neste

mês as diatomáceas mais representativas foram Skeletonema pseudocostatum Medlin

(43,47%, ERG), Psammodictyon panduriformis (W. Gregory) D. G. Mann (45, 7%,

EG) e Coscinodiscus wailesii Gran & Angst (59,7%, EPS).

A baixa freqüência relativa observada em janeiro/2008 coincidiu com o aumento

da temperatura (Fig. 93a). Durbin (1974) observou, em análise do crescimento de

Thalassiosira em laboratório, que este é inibido em alta luminosidade e temperatura,

explicando o sucesso do gênero na primavera e outono. Contudo, outros fatores

certamente contribuem para tal distribuição, mas a temperatura, no caso de

Thalassiosira, é um fator bastante relevante.

A maior freqüência relativa para o gênero foi registrada no mês de outubro (Fig.

93a - b) na EPS (79,6%). As espécies responsáveis pelo pico de Thalassiosira neste mês

foram T. angulata e T. eccentrica, com freqüência relativa de 31,9% e 30,25%,

respectivamente. A ocorrência de T. angulata com grande número de células na

primavera foi registrada por Hoppenrath et al. (2007) para o Mar do Norte, formando as

florações de primavera. Para o Atlântico Sul, a espécie é citada como amplamente

106

distribuída. No entanto, não é registrada como formadora de florações ou encontrada

com grande acumulação de células (Sar, Sunesen & Castaños 2001).

Thalassiosira eccentrica, na literatura, é apresentada como uma espécie que

apresenta ampla distribução e encontrada em regiões estuarinas, bem como em águas

com elevada salinadade (Fryxell & Hasle 1972; Hasle 1976; Mahood et al. 1986; Harris

et al. 1995; Torgan & Biancamano 1991; Hernández-Becerril & Tapia Peña 1995). No

entanto, poucos estudos abordam a frequência relativa ou abundância da espécie no

fitoplâncton marinho.

Hoppenrath et al. (2007), registraram, para o hemisfério norte, a maior

abundância de T. eccentrica no inverno. Contudo, para o Atlântico Sul, Sar, Sunesen &

Castaños (2001), citaram que a espécie foi abundante no verão e outono. No presente

estudo, no entanto, T. eccentrica foi registrada com maior representatividade na

primavera (Fig. 93c). Os dados observados indicam que T. eccentrica possui ampla

faixa de tolerância à temperatura e portanto, o seu crescimento potencial para formação

de florações, pode ser influenciado por outros fatores, que não somente temperatura e

salinidade, mas pela concentração de nutrientes ligados a fenômenos oceanográficos,

como ressurgências (Brandini et al. 1997) e pela localização das estações de coleta,

mais próximas das regiões costeiras ou mais distantes da linha de costa. Na EPS a

frequência relativa desta espécie foi, aproximadamente o dobro das demais estações

amostradas (Fig. 93c). Embora a EPS, apresente menor influência de águas

continentais, esta sofre maior enriquecimento de nutrientes trazidos pelo ressurgimento

da ACAS e pela pluma do Rio da Prata.

Com relação ao número de espécies encontrado (Tabela 1), este trabalho

representa uma grande contribuição para o conhecimento da biodiversidade do gênero

para o estado de Santa Catarina, para o Brasil e para a região sudoeste do oceano

Atlântico. Para a costa brasileira, na literatura, são citadas 44 espécies de Thalassiosira.

Contudo, poucos apresentam ilustrações ou informações sobre dados morfométricos

(Garcia & Odebrecht 2009a), tornando os trabalhos que possuem essas informações

fundamentais para o conhecimento do gênero no país.

Dos 23 táxons registrados no presente estudo, 17 já foram encontrados

anteriormente na costa brasileira (T. angulata, T. decipiens, T. eccentrica, T.

endoseriata, T. hendey, T. leptopus, T. lundiana, T. minima, T. nanolineata, T.

oceânica, T. oestrupii var. oestrupii, T. oestrupii var. venrickae, T. proschkinae, T.

punctigera, T. rotula, T. simonsenii, T. tealata e T. tenera) e 3 são primeiras citações

107

(T. exigua, T. mala e T. visurgis). No entanto, dos 3 primeiros registros para o Brasil, T.

exigua e T. mala já foram citadas para a Argentina (Lange 1985; Sar, Sunesen &

Lavigne 2002). Enquanto que T. visurgis é nova citação para o sudoeste do oceano

Atlântico.

Comparando-se o número de espécies aqui registrados com as principais

trabalhos florísticos, que priorizam Thalassiosira no mundo, pode-se observar que a

região estudada apresenta um elevado número de táxons do gênero. Para o sudoeste do

Atlântico Sar, Sunesen & Castaños (2001), econtraram 20 espécies, Sar, Sunesen &

Lavigne (2002),18 espécies, Tremarin, Ludwig & Moreira Filho (2008), 13 espécies e

Garcia & Odebrecht (2009a), registraram 17 espécies. Para o nordeste do pacífico,

América do Norte, Mahood, Fryxell & McMillan (1986), encontraram 20 espécies,

Hernández-Becerril & Tapia Peña (1995), 21 espécies e Aké-Castillo, Hernández-

Becerril & Castillo (1999), 23 espécies. Para a Europa Harris et al. (1995), registraram

18 espécies, Muylaert & Sabbe (1996), 13 espécies e Hoppenrath et al. (2007),

encontraram 27 espécies. Para a Austrália, Hallegraeff (1984), registrou 23 espécies.

Os dados expostos acima reiteram a importância do estudo de Thalassiosira na

costa brasileira e fundamentam a relevância da diversidade presente na costa da Ilha de

Santa Catarina na distribuição do gênero.

A maioria das espécies de Thalassiosira encontradas (56%) pertence ao grupo

do microplâncton (20 – 200 µm): Thalassiosira angulata, T. eccentrica, T. endoseriata,

T. hendey, T. leptopus, T. lundiana, T. nanolineata, T. oestrupii var. venrickae, T.

punctigera, T. rotula, T. simonsenii, T. tenera e Thalassiosira sp.

As espécies pertencentes ao nanoplâncton (2 – 20 µm) são: Thalassiosira

decipiens, T. exigua, T. mala, T. minima, T. oceanica, T. oestrupii var. oestrupii, T.

proschkinae, T. tealata, T. visurgis, T. cf. partheneia). Contudo, a diferença do número

de espécies encontradas, que compõem cada grupo do plâncton, foi baixa. Portanto

essas observações podem indicar que na região estudada, a diversidade não é alterada

pelas condições ambientais, maior ou menor aporte de nutrientes, por exemplo. Mas,

essas condições podem influenciar no número de indivíduos de cada espécie, na

freqüência de ocorrência. Levando-se em consideração as estratégias do fitoplâncton

observa-se que as espécies menores tendem a se benificiar com os aportes de nutrientes

mais rapidamente, enquanto que nas maiores o processo é mais lento. A grande

contribuição de espécies pertencentes ao nanoplâncton em regiões estuarinas foi citada

por Fryxell, Gould & Watkins (1984).

108

Comparando-se as três estações amostradas na costa da Ilha de Santa Catarina,

foi possível constatar que a distribuição das espécies foi uniforme, não apresentando um

número expressivo de espécies exclusivas de cada estação. As estações localizadas na

Baía Norte (Fig.1) apresentaram maior número de espécies que a EPS. As espécies

encontradas na ERG e EG e não observadas na EPS foram T. endoseriata, T. tealata e

T. visurgis.

As três espécies encontradas nessas estações, que sofrem maior influência

continental, são citadas na literatura como espécies estuarinas, costeiras ou de águas

menos salobras (Takano 1980; Mahood, Fryxell & McMillan 1986).

Os resultados do presente estudo mostraram que o gênero Thalassiosira está

bem representado na costa da Ilha de Santa Catarina, considerando-se a alta diversidade

de espécies encontrada, e comparando-se com outros inventários realizados em regiões

tradicionalmente conhecidas pela alta produtividade e grande diversidade

fitoplanctônicas, como o Golfo da Califórnia, Região do rio La Plata, na Argentina e

Austrália.

A relação das espécies de Thalassiosira com os fatores abióticos está

principalmente vinculada ao aporte de água doce dos rios, que se localizam próximo aos

locais de coleta, carreando água doce para o estuário, movimentando a coluna da água,

ressuspendendo o sedimento e trazendo um grande aporte de nutrientes como fósforo e

nitrogênio para as regiões adjacentes a costa (Pagliosa et al. 2005; Pagliosa et al. 2006).

Os trabalhos de levantamento de espécies, que compõem o fitoplâncton de

regiões costeiras, são muito relevantes, porque futuramente, subsidiarão estudos

ecológicos relacionados a dinâmica desses locais.

Glossário

Fultopórtula sem tubo em vista externa: Fultopórtulas quase que imperceptíveis

mesmo em MEV. Ex: Thalassiosira oestrupii var. oestrupii (Fig. 61), T. oestrupii var.

venrickae (Fig. 64) e T. endoseriata (Fig. 43).

Fultopórtula com tubo externo ou interno curto : Fultopórtulas cujo tubo não

ultrapassa 0,9µm de comprimento. Ex: T. decipiens (Fig. 39), T. lundiana (Fig. 52), T.

nanolineata (Fig. 59) e Thalassiosira cf. partheneia (Fig. 87).

Fultopórtula com tubo externo longo: Fultopórtulas cujo tubo é maior que 1µm de

comprimento. Ex: T. angulata (Fig. 36).

Fultopórtula com tubo interno longo: Fultopórtulas cujo tubo é maior que 1µm de

comprimento. Ex: T. oestrupii var. venrickae (Fig. 65).

109

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Capítulo 3

115

Espécies do gênero Skeletonema Greville emend. Sarno et Zingone

(Diatomeae) na costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil

Resumo

O gênero Skeletonema Greville emend. Sarno et Zingone foi descrito por Greville

em 1865 e tem como espécie tipo Skeletonema costatum (Greville) Cleve. Skeletonema está

representado atualmente por aproximadamente 13 espécies. Destas, a melhor estudada e

mais citada em inventários e trabalhos sobre o gênero é S. costatum. Atualmente, estudos

estão mostrando que S. costatum sensu lato congrega um complexo de espécies que diferem

morfologicamente e geneticamente. O objetivo do presente estudo foi identificar e analisar

a distribuição de espécies de Skeletonema em três estações de coleta amostradas na costa da

Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil. As coletas foram realizadas em duas estações localizadas

no centro-oeste da Ilha: Ratones Grande (27º28’30.52”S - 48º33’27.27”W) e Guarás

(27º33’20.09”S - 48º33’27.50”W) e uma no sudeste: Pântano do Sul (27º47’24.97”S -

48º30’39.31”W). As amostras de água foram concentradas com uma rede de plâncton (25

µm de abertura) e foram coletas mensalmente durante o ano de 2007 e 2008. Estas, foram

oxidadas e clarificadas. Estudos com Microscopia Óptica e Microscopia Eletrônica de

Varredura mostraram que o gênero, no local estudado, está representado por três espécies:

S. grethae Zingone et Sarno, S. pseudocostatum Medlin emend. Zingone et Sarno e S.

tropicum Cleve. Skeletonema grethae e S. pseudocostatum ocorreram concomitantemente

nos meses de maio, agosto, novembro e janeiro/08, sendo as que apresentaram maior

freqüência relativa de valvas. Enquanto que S. tropicum foi registrado somente nos meses

de janeiro e maio, apresentando um baixa freqüência relativa de ocorrência. Na amostragem

não foi encontrada S. costatum, indicando que a espécie é menos comum no Sul do Brasil

que as demais componentes do complexo S. costatum “sensu lato”. A identificação das três

espécies de Skeletonema, as ilustrações e as descrições, subsidiarão estudos futuros de

inventários realizados no fitoplâncton da região e trabalhos de cunho ecológico, envolvendo

o gênero.

Palavras-chave: Skeletonema grethae, Skeletonema grethae, Skeletonema tropicum, Santa

Catarina.

116

3.1 Introdução

O gênero Skeletonema foi descrito por Greville em 1865 e tem como espécie tipo

Skeletonema costatum (Greville) Cleve. Skeletonema costatum foi descrita inicialmente por

Greville como Melosira costata em 1866 que, posteriormente foi transferida para

Skeletonema.

A espécie tipo de Skeletonema, antes de 1996 era Skeletonema barbadensis

Greville. Contudo, Sims (1994) publicou o gênero fóssil Skeletonemopsis, que incluía

Skeletonema barbadensis Greville, tranferindo a última para o novo gênero. Ross et al.

(1996) sugeriram a tipificação de Skeletonema costatum para substituir Skeletonema

barbadensis, que foi transferida para o gênero fóssil.

Em 2005, Sarno et Zingone emendaram a descrição de Skeletonema adicionando

informações relacionadas a dados de microscopia eletrônica e biologia molecular

(subunidades de rDNA).

Segundo, Sarno et Zingone (Sarno et al. 2005) em geral, o gênero é caracterizado

por apresentar células com formato cilíndrico, coloniais ou solitárias. As células

apresentam um, dois ou muitos cloroplastos. O diâmetro das células varia entre 2 e 32 µm.

As valvas são planas ou levemente convexas. O manto é obliquo ou perpendicular em

direção a face valvar. As fultopórulas estão localizadas em um anel marginal, com dois ou

três poros satélites. Em vista externa, as fultopórtulas apresentam tubos longos, abertos ou

fechados. Essas fultopórtulas marginais, de uma célula, conectam-se com as de outra célula,

através de terminações próprias de cada espécie. Cada fultopórtula pode se conectar a uma

ou duas fultopórtulas opostas.

Sobre a morfologia da rimopórtula, as mesmas autoras comentam que cada valva

possui uma única, localizada na região marginal, nas valvas intercalares da colônia, e sub-

central ou marginal nas valvas terminais. Estas apresentam tubos externos longos nas

valvas terminais e curtos ou longos nas valvas intercalares.

Skeletonema está representado atualmente por aproximadamente 13 espécies.

Destas, a melhor estudada e mais citada em inventários e trabalhos sobre o gênero é S.

costatum (Sarno et al. 2005; Zingone et al. 2005). A espécie é ainda indicada como uma das

117

mais representativas do fitoplâncton marinho em muitas regiões do mundo (Sarno et al.

2007).

No Brasil, S. costatum é amplamente citada em estudos de inventários e de ecologia

do fitoplâncton (Brandini et al. 1997, Tenenbaum et al. 2004; Gaeta & Brandini 2006,

Procopiak, Fernandes & Moreira-Filho 2006; Torgan, Pillar & Niencheski 2006; Villac,

Cabral-Noronha & Oliveira Pinto 2008). No estado de Santa Catarina a espécie foi

registrada pela primeira vez por Cunha & Fonseca (1918). Desde esse estudo, S. costatum,

vem sendo corriqueiramente citada em inventários realizados na região (Müller-Melchers,

F. C. 1957; Moreira-Filho et al. 1967; Corte Real & Aguiar 1971; Valente Moreira &

Moreira-Filho 1978; Souza-Mosimann 1984; Souza-Mosimann, 1985; Moreira-Filho,

Valente Moreira & Souza-Mosimann 1985; Souza-Mosimann 1988; Fernandes, Souza-

Mosimann & Felício Fernandes 1990; Souza-Mosimann, Felício-Fernandes, Laudares-Silva

& Fernandes 1993; Felício-Fernandes, Souza-Mosimann & Moreira Filho 1994; Souza-

Mosimann & Roos-Oliveira 1998; Souza-Mosimann, Laudares-Silva & Roos-Oliveira

2001; Souza-Mosimann & Laudares-Silva 2005).

Atualmente, estudos estão mostrando que S. costatum sensu lato congrega um

complexo de espécies que diferem morfologicamente e geneticamente (Kooistra et al.

2007). O estudo desse complexo é de extrema relevância no Brasil, considerando-se que no

país estão registrados na base de dados da Plataforma Lattes (a base de dados de

pesquisadores mais importante do país), 62 pesquisadores que tem no título de sua pesquisa

o gênero Skeletonema, sendo que destes, 48 citam a S. costatum. Observado-se a produção

destes pesquisadores, constata-se que o gênero e a espécie são utilizados em estudos como

bioindicação de ambientes eutrofizados, toxicologia, aqüicultura e produtividade primária.

A distinção entre as espécies de Skeletonema é difícil, porque é necessário

observação de detalhes morfológicos relacionados a fina estrutura, que somente podem ser

elucidados com o uso de Microscopia Eletrônica de Varredura e Microscopia Eletrônica de

Transmissão (Cheng et al. 2008). Contudo, entre os principais caracteres a serem analisados

com a utilização destas ferramentas estão o número de fultopórtulas marginais, distância

entre elas, tamanho e forma dos tubos externos das fultopórtulas terminais e intercalares,

localização e tamanho da rimopórtula intercalar e terminal, areolação do manto e da face

valvar e ainda tipo de junção entre as células.

118

A Ilha de Santa Catarina está localizada na Plataforma Continental Sudeste, que

possui características dinâmicas típicas de plataformas continentais de latitudes médias,

sendo local de importantes fenômenos oceanográficos como as ressurgências (Castro et al.

2006).

A Plataforma Continental Sudeste, está contida, por sua vez, em uma das regiões

mais complexas do mundo com relação a produtividade primária e características

hidrológicas, conhecida como zona de Confluência Brasil-Malvinas (Souza & Robinson

2004).

Entre os fatores que tornam a região importante e relevante para o estudo da

biomassa e diversidade fitoplanctônica está a pluma do Rio da Prata. Esta, fertiliza as águas

uruguaias e sul-brasileiras, é rica principalmente em silicato e atua dependendo dos ventos

(Piola et al. 2008).

Considerando-se a importância da região sudoeste do Atlântico, da Plataforma

Continental Sudeste, do gênero na composição da comunidade fitoplanctônica estuarina e

marinha desses locais e da ampla utilização econômica e ecológica de S. costatum “sensu

lato” no Brasil, o presente estudo teve como objetivo identificar e descrever as espécies de

Skeletonema, bem como registrar a distribuição destas em três estações de coleta

localizadas na costa da Ilha de Santa Catarina, SC, Brasil.

3.2 Metodologia

A Ilha de Santa Catarina localiza-se na região sudoeste do oceano Atlântico, sul do

Brasil (27°10’S e 27°50’S-48°25’W e 48°35’W), no município de Florianópolis (Fig. 1).

Para a realização do presente estudo, as amostras de água, foram coletadas em duas

estações no centro-oeste da Ilha: Ratones Grande (ERG) (27º28’30.52”S -48º33’27.27”W)

e Guarás (EG) (27º33’20.09”S - 48º33’27.50”W) e uma no sudeste: Pântano do Sul (EPS)

(27º47’24.97”S - 48º30’39.31”W). As estações ERG e EG localizam-se em uma baía

fechada rasa (Baia Norte), sofrem influência dos rios Ratones e Itacorubi e de seus

manguezais. A EG encontra-se localizada mais internamente na baía que a ERG. A EPS

119

sofre menor influência continental, localiza-se em uma enseada, porém, em mar aberto. A

localização das estações de coleta está representada na Figura 1.

Na ERG a profundidade coletada foi de aproximadamente 9 metros, na EG foi de

3,5 metros e na EPS foi de 13 metros. As coletas foram mensais no período de janeiro/07 a

janeiro/08.

As amostras foram concentradas com auxílio de rede de plâncton com abertura de

25 µm e fixadas com formoldeído a 4%. Foram montadas 2 lâminas permanentes por

amostra, seguindo-se a técnica de Simonsen (1974) para a oxidação (limpeza das frústulas)

e utilizando-se a resina Naphrax (índice de refração 1, 7). As lâminas permanentes foram

tombadas no Herbário FLOR do Departamento de Botânica/CCB/UFSC e encontram-se

registradas entre os números 13.004 e 13.039.

As lâminas foram analisadas em microscópio óptico da marca Olympus modelo BX

50. As fotomicrografias foram feitas com câmara Olympus acoplada no mesmo

microscópio. Para as fotomicrografias em contraste de fase foi utilizado o Microscópio

Óptico Olympus modelo BX41, equipado com câmara para captura de imagem digital

colorida com 3.3 mpixel QColor 3C da Q-imaging (BEG/CCB/UFSC).

A fim de obter-se dados com relação a freqüência relativa do gênero, (após o

processo de oxidação) foram contadas nas lâminas permanentes de 400 a 500 valvas

(Schoeman 1973).

Para a observação do material em Microscopia Eletrônica de Varredura (MEV), o

material foi colocado em suportes de alumínio (stubs), após seco foi recoberto com ouro

(~300 Angstrons) utilizando-se o metalizador Baltec, modelo CED030. O microscópio

utilizado foi o do Laboratório Central de Microscopia Eletrônica da Universidade Federal

de Santa Catarina, marca JEOL 6390 LV com distância de trabalho de 10 mm, a 20 KvO e

spot size entre 25 e 30.

A temperatura foi obtida com a utilização de um termômetro de Mercúrio e a

salinidade mensurada com Refratômetro Shibuya.

A classificação utilizada para enquadramento até Subfilo será a apresentada por

Cavalier-Smith (1998) e a partir de Classe, a apresentada por Round, Crawford & Mann

(1990).

120

Legenda: F: Fultopórtulas; FT: Fultopórtulas das valvas terminais da cadeia; FI:

Fultopórtulas das valvas intercalares da cadeia; RT: Rimopórtulas das valvas terminais da

cadeia; RI: Rimopórtulas das valvas intercalares da cadeia.

Figura 1

. Localização das estações de coleta amostradas na costa da Ilha de Sa

nta Catarina, Santa Catarina, Brasil.

ERG: Estação Ratones Grande, EG: Estação Guarás e EPS: Estação Pântano do Sul.

121

3.3 Resultados

O gênero Skeletonema foi encontrado em cinco dos doze meses estudados (Fig. 2).

Apresentou a maior freqüência relativa de valvas no mês de janeiro/2008, quando a

temperatura apresentou-se em elevação e a salinidade em declínio (Fig. 2a, 2b).

Somente no mês de novembro o gênero foi registrado nas três estações de coletas

amostradas (Fig. 2a). A ERG foi a única em que o gênero ocorreu em todos os meses

dentre os cinco onde Skeletonema foi encontrado na costa da Ilha de Santa Catarina (Fig.

2).

Os demais dados de temperatura, salinidade e frequência relativa de Skeletonema

durante a amostragem podem ser visualizados nas figuras 2a e 2b.

Durante o período de estudo Skeletonema foi representado por três espécies, que

serão descritas e ilustradas abaixo.

Os dados morfométricos das espécies encontradas no presente estudo, comparados

com os dados da literatura estão apresentados nas tabelas 1, 2 e 3.

OCHROPHYTA Cavalier-Smith 1998

DIATOMEAE Cavalier-Smith 1998

COSCINODISCOPHYCEAE Round & Crawford 1990

THALASSIOSIRALES Glezer & Makarova 1986

SKELETONEMATACEAE Lebour 1930

Skeletonema Greville emend. Sarno et Zingone 2005

1. Skeletonema grethae Zingone et Sarno, J. Phycol, 41: 156, fig. 3 (A-I), 2005

Figuras 3 – 7, 17 - 22

Referências: Sarno et al. (2005), Kooistra et al. (2007), Bergesch, Garcia & Odebrecht

(2009).

O diâmetro da valva variou entre 4 e 9,6 µm. MEV: As aréolas são arredondadas e

regularmente organizadas (Fig. 18). As fultopórtulas são alongadas e apresentam tubos

122

completamente abertos nas células intercalares e nas terminais (Figs. 18, 19 e 22). A

abertura começa próximo da região basal da fultopórtula (Fig. 22). O ápice das

fultopórtulas não apresenta espinhos longos e a estrutura apical lembra a letra “u” (Fig. 18).

A conexão entre as fultopórtulas intercalares é feita através da junção frontal dos ápices,

formando, entre uma fultopórtula e outra, um encaixe alinhado (Figs. 20, 21). A

rimopórtula das valvas intercalares está localizada próximo ao anel de fultopórtulas e

apresenta tubo externo curto e reto (Fig. 22). A rimopórtula da valva terminal apresenta

tubo longo, fechado e levemente expandido na região apical (Fig. 18). MO: As células

apresentaram um cloroplasto (Fig. 3). As cadeias são delicadas e retilíneas (Fig.4). O manto

é estreito e a areolação é inconspícua.

Comentário: A espécie somente pode ser identificada com auxílio de microscopia

eletrônica e posteriormente, relacionada as imagens de microscópio óptico. Sarno et al.

(2005) descreve que a S. grethae pode apresentar junção entre as fultopórtulas de 1:1 e

esporadicamente 1:2. Porém, nunca apresentando junção do tipo “zig-zag”, característico

de S. costatum. A espécie foi registrada para as três estações de coleta amostradas (Fig. 2c),

nos meses de maio, agosto, novembro e janeiro/2008. A maior freqüência relativa foi

encontrada em novembro, na EPS (39,4%). Portanto, S. grethae foi registrada nas quatro

estações do ano, com maior representatividade, em número de valvas, na primavera. A

espécie foi responsável pelo pico de valvas do gênero que ocorreu em novembro (Fig. 2a,

2b).

Distribuição no sudoeste do Atlântico: 2ª citação para a região leste da América do Sul.

Brasil (Bergesch, Garcia & Odebrecht 2009).

1. Skeletonema pseudocostatum Medlin, J. Phycol. 27: 522, figs. 3 - 4, 9 – 17, 1991

emend. Zingone et Sarno, J. Phycol, 41: 162, fig. 7 (A – I), 2005

Figuras 8 – 12, 23 – 34

Referências: Aké-Castillo et al. (1995), Sarno et al. (2005), Kooistra et al. (2007),

Bergesch, Garcia & Odebrecht (2009).

123

O diâmetro da valva variou entre 3,05 e 5,2 µm. MEV: As aréolas são hexagonais e

irregularmente organizadas (Figs. 29, 34). As fultopórtulas apresentam tubos longos e

completamente abertos nas valvas intercalares (Fig. 33) e fechados na base nas valvas

terminais (Figs. 26, 27, 28). A região terminal (apical) das fultopórtulas apresenta espinhos

proeminentes nas valvas terminais (Fig. 30). A junção entre os tubos das fultopórtulas pode

ser 1:1 e menos freqüente 1:2, formando uma forquilha (Fig. 25). A maioria das valvas é

fortemente convexa. A rimopórtula das valvas intercalares apresenta tubo curto e levemente

curvado para fora (Fig. 33). A rimopórtula da valva terminal apresenta tubo externo longo

fechado e com uma pequena expansão abrupta (Figs. 26, 27). MO: As cadeias são bastante

delicadas, sendo quase imperceptíveis em MO desprovido de contraste de fase (Fig. 8). As

fultopórtulas não são lineares, apresentam-se curvadas, provavelmente porque os tubos

destas, são exageradamente compridos em relação ao tamanho da valva (Fig.9, 11). As

aréolas são do manto são inconspícuas.

Comentário: A principal característica que diferencia S. pseudocostatum de S. grethae é a

presença, no primeiro, de base fechada nas fultopórtulas das células terminais e ausência

desse tubo nas fultopórtulas das células intermediares (Sarno et al. 2005). O número de

cloroplastos por célula não foi registrado, porque no material sem o processo de limpeza

das frústulas não foi encontrada a espécie. Skeletonema pseudocostatum foi registrada para

as três estações de coleta amostradas nos meses de maio, agosto, novembro, e janeiro/2008

(Fig. 2d) A maior freqüência relativa de valvas foi encontrada em janeiro/2008, na ERG

(43,47%). A espécie foi encontrada, portanto, em todas as estações do ano, com maior

freqüência relativa de valvas registrada para verão.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Brasil (Kooistra et al. 2007; Bergesch, Garcia &

Odebrecht 2009).

3. Skeletonema tropicum Cleve, Kongl. Svensk Vetensk. Arad. Handl., 1900

Figuras 13 - 16

124

Referências: Aké-Castillo et al. (1995), Sarno et al. (2005), Kooistra et al. (2007),

Bergesch, Garcia & Odebrecht (2009).

A espécie foi encontrada somente em Microscopia Óptica. O diâmetro das valvas

variou entre 6,6 e 14,8 µm. As células apresentaram de 2 a 4 cloroplastos (Fig.13). As

valvas são fortemente silicificadas (Fig. 14, 15) e as cadeias são retilíneas (Fig. 13). As

fultopórtulas formam ângulo reto com a valva. A areolação é grosseira e as aréolas são

visíveis em MO (Fig. 16).

Comentário: Skeletonema tropicum é facilmente reconhecida em MO, devido a areolação

conspícua. É comumente confundida com S. costatum por apresentar células fortemente

silicificadas. Contudo, se diferencia desta por não apresentar junção entre fultopórtulas em

“zig-zag” e por possuir maior número de cloroplastos por células (mais que dois).

Skeletonema tropicum foi encontrada em duas das três estações amostradas: ERG e EG, nos

meses de janeiro/2007 e maio (Fig. 2e). A maior freqüência relativa foi registrada no mês

de maio, na ERG (1,55%). A espécie ocorreu somente no verão e outono. Portanto, foi

menos freqüente e apresentou uma distribuição mais restrita que S. grethae e S.

pseudocostatum.

Distribuição no sudoeste do Atlântico: Brasil (Kooistra et al. 2007; Bergesch, Garcia &

Odebrecht 2009).

125

Tabela 1.

Dados morfométricos de S. grethae,

registrada na costa da Ilha de Santa Catarina e os

apresentados na literatura.

Tabela 2.

Dados morfométricos de S. pseudocostatum,

registrada na costa da Ilha de Santa Catarina e

os apresentados na literatura.

* Bergesch, Garcia & Odebrecht (2009)

: trabalho realizado

no sul do Brasil.

* Bergesch,

Garcia & Odebrecht (2009)

: trabalho realizado no sul do Brasil.

Variáveis morfométricas Presente estudo Sarno et al.

(2005)

Bergesch et al.

(2009)*

Diâmetro da célula (µm) min-max

méd

4-9,6

6,8

2-10,5

4,1

(6,6-9,4)

Aréolas/10 µm min-max

méd

30-42

37,33

33-48

41,7

30-40

33,3

Distância entre Fs (µm) min-max

méd

0,9-1,03

0,97

0,2-1,0

0,7

0,8-1

0,93

Nº de Fs (µm) min-max

méd

10-14

14-19

16,5

12-16

16(?)

Comprimento FTs (µm) min-max

méd

8-8,3

8,15

1,4-4,7

3,4

4,2-4,6

4,4

Comprimento RTs (µm) min-max

méd

8 1,8-3,6

2,9

4,4

Comprimento FIs (µm) min-max

méd

6,8-8,6

7,57

2,0-4,5

3,5

4,7-6,8

Comprimento RIs (µm) min-max

méd

0,5-0,8

0,65

0,3-0,3

0,3

0,4

Variáveis morfométricas Presente estudo Sarno et al.

(2005)

Bergesch et al.

(2009)*

Diâmetro da célula (µm) min-max

méd

3,05-5,2

3,47

2-9

4,7

3,8-7,5

6,1

Aréolas/10 µm min-max

méd

30-45

38,75

30-44

35,9

15(?) – 25 (?)

21,6 (?)

Distância entre Fs (µm) min-max

méd

0,7-0,9

0,83

0,4-1,3

0,7

Nº de Fs (µm) min-max

méd

6-9

7,2

7-18

6-8

Comprimento FTs (µm) min-max

méd

6,7-8,9

7,6

1,1-4.1

2,5

6,2-6,9

6.6

Comprimento RTs (µm) min-max

méd

6,08-7,8

6,9

0,6-2,9

1,5

4,3

Comprimento FIs (µm) min-max

méd

5,8-6,46

6,09

5,6- 10

2,6

4,8-7,8

6,3

Comprimento RIs (µm) min-max

méd

0,51-0,52

0,51

0,2-0,6

0,4

0,8-1,6

1,1

126

Tabela 3

. Dados morfométricos de S. tropicum,

registrada na costa da Ilha de Santa Catarina e os

apresentados na literatura.

* Bergesch, Garcia & Odebrecht (2009)

: trabalho realizado no sul do Brasil.

Variáveis morfométricas Presente estudo Sarno et al.

(2005)

Bergesch et al.

(2009)*

Diâmetro da célula (µm) min-max

méd

6,6 – 14,8

9,3

5,3-10

5,8-16,7

9,8

Distância entre Fs (µm) min-max

méd

-- --

Nº de Fs (µm) min-max

méd

-- -- --

Comprimento FTs (µm) min-max

méd

-- -- --

Comprimento RTs (µm) min-max

méd

-- -- --

Comprimento FIs (µm) min-max

méd

5-6,9

5,68

1,2-4,1

2,6

3,6-8,2

5,7

Comprimento RIs (µm) min-max

méd

-- -- --

127

Figura 2.

–

: Freqüência relativa do gênero e das espécies de Skeletonema

registradas da costa da Ilha

de Santa Catarina e dados abióticos obtidos durante a amostragem. Fig. a:

Freqüência relativa de

Skeletonema e dados de temperatura registrados durante a amostragem. Fig. b: Freqüê

ncia relativa de

Skeletonema e dados de salinidade registrados durante a amostragem. Fig. c: Freqüência relativa de

grethae. Fig. d: Freqüência relativa de S. pseudocostatum. Fig. e: Freqüência relativa de S. tropicum.

128

Figuras 3

–

Fotomicrografias em Microscopia Óptica (MO) de Skeletonema grethae.

Fig.

amostra não oxidada. Figs. 4, 5, 6, 7: MO em contraste de fase de amostras oxidadas. Escala (barra): 10 µm.

129

Figuras 8

–

12:

Fotomicrografias em Microscopia Óptica (MO) de Skeletonema pseudocostatum.

Figs. 9,

10, 11, 12: MO em contraste de fase. Imagens de amostras oxidadas. Escala (barra): 10 µm.

130

Figuras 13

–

16:

Fotomicrografias em Microscopia Óptica

(MO)

Skeletonema

tropicum.

Fig. 13:

de amostra não oxidada. Fig. 14: MO em contraste de fase. Escala (barra): 10 µm.

131

Figuras 23

–

28.

Imagens em Microscopia Eletrônica de Varredura (MEV) de Skeletonema pseudocostatum.

Figs. 23, 24: vista geral de valvas intercalares da cadeira. Fig. 25: junção 1:2 entre duas FIs. Fig. 26: valva

terminal da cadeia, (seta: espinho presente na FT, cabeça de seta: RT). Fig. 27:

valva terminal da cadeia

(seta preta: tubo na base da FT, seta branca: espinho da FT, cabeça de seta: RT. Fig. 28:

detalhe da valva

terminal da cadeia (seta: região basal da FT fechada).

132

2µm

1µm

0,5µ m

1µm

1µ m

1µm

Figuras 29

–

34.

Imagens em Microscopia Eletrônica de Varredura de

Skeletonema

pseudocostatum

Fig

29: valva terminal da cadeia (seta: tubo na região basal da FT). Fig. 30:

valva terminal da cadeia (note os

espinhos das FTs). Fig. 31: detalhe do nó da junção 1:1entre duas FIs. Fig. 32:

detalhe do espinhos em

forma de garra. Fig. 33: valva intercalar da cadeia (cabeça de seta: RI). Fig. 34

: conectivo de valva

intercalar, note que a base das FIs é aberta.

133

3.4 Discussão

Taxonomia

Sarno et al. (2005) classificou as espécies de Skeletonema em quatro grupos

morfológicos. No presente trabalho, as espécies encontradas pertencem ao mesmo grupo, o

grupo 1. As características morfológicas distintivas desse grupo, ressaltadas pelos autores

são: a forma das FTs (com a região distal (apical) estreita e truncada, com espinho ou com a

margem em forma de garra); a parte distal das FIs estreitas com junção apresentando

forquilha com nó e presença de uma estrutura silicosa na junção das Fs (morfologia

variável).

Contudo, as principais características que diferenciaram as espécies registradas no

presente estudo, foram o número de cloroplastos, diâmetro da valva, grau de silicificação e

forma das fultopórtulas intercalares e terminais. Skeletonema tropicum foi reconhecido e

diferenciado de S. grethae e S. pseudocostatum por apresentar mais de dois cloroplastos por

célula, areolação visível ao MO e forte silicificação das células. Skeletonema

pseudocostatum foi distinto de S. grethae por apresentar a região basal das FTs fechadas,

formando um tubo e pela presença de espinhos proeminentes nas FTs.

Skeletonema grethae, S. pseudcostatum e S. tropicum foram diferenciadas de S.

costatum, que não foi encontrada, por não apresentarem junção das fultopórtulas em “zig-

zag”, tubos nas FIs (achatados) e poro na base das FIs, entre outros (para descrição

completa da morfologia de S. costatum consultar Sarno et al. 2007).

As espécies registradas na costa da Ilha de Santa Catarina, apresentaram

discordâncias com a literatura, principalmente, relacionadas a morfometria (Ver Tabs. 1, 2

e 3). Em S. grethae o diâmetro da valva, areolação, distância entre Fs e número de Fs foram

semelhantes ao apresentado por Sarno et al. (2005). Contudo, o comprimento das FTs, FIs,

RTs e RIs apresentaram diferenças relevantes (Tab. 1). Em S. pseudocostatum as

diferenças se concentram, como em S. grethae, no comprimento das Fs e Rs intercalares e

terminais. O número de fultopórtulas por valva foi diferenciado, nos espécimes do presente

estudo foram registrados menos fultopórtulas por valva (Tab. 2).

134

As diferenças morfométricas são menos evidentes quando se compara os resultados

deste estudo aos dados mostrados por Bergesch, Garcia & Odebrecht (2009), em trabalho

realizado com amostras do estuário da Lagoa dos Patos (32º09’S e 52º06’W) e da praia do

Cassino (32º12’S e 52º10’W). Os dados morfométricos foram semelhantes aos registrados

para a costa da Ilha de Santa Catarina para S. grethae, S. pseudocostatum e S. tropicum.

Com diferenças menos marcantes (Tabs. 1, 2 e 3), principalmente entre o comprimento das

Fs intercales e terminais e para o diâmetro da valva.

No entanto, as diferenças na morfometria entre os espécimes do Brasil e das regiões

estudadas por Sarno et al. (2005) não impossibilitaram a identificação das espécies.

Considerando-se que outras características são diagnósticas (ver descrição das espécies),

sendo estas em conformidade com a literatura. As hipóteses que poderiam estar envolvidas

na explicação das diferenças morfométricas encontradas entre o material do Brasil e o de

outros estudos, são principalmente, as relacionadas com as diferenças biogeográficas, de

estações do ano (Aké-Castillo et al. 1995, Kooistra et al. 2007) e o fato do uso de material

ser proveniente de cultivo, como os usados por Sarno et al. (2005) e Medlin et al. (1991).

Ecologia

Skeletonema grethae e S. pseudocostatum apresentaram uma ocorrência e

distribuição semelhante (maio, agosto, novembro e janeiro). Foram registradas nas três

estações amostradas nestes meses (Figs.2c, 2d). Enquanto, que S. tropicum apresentou

distribuição restrita a janeiro/2007 e maio (Fig.2e), sendo registrada somente nas estações

da Baía Norte (ERG e EG).

A distribuição mundial de S. grethae, segundo Kooistra et al. (2007) seria a mais

restrita dentre as espécies de Skeletonema, ocorrendo somente na costa leste dos Estados

Unidos. Contudo, no presente estudo a espécie apresentou uma ocorrência e distribuição

ampla, sem apresentar um padrão definido, sendo registrada em temperaturas entre 16 e 28

ºC e salinidades entre 30 e 34 ups, ocorrendo concomitante com S. pseudocostatum. Estas

observações sugerem que S. grethae pode estar sendo confundida com S. pseudocostatum

ou que há lacunas no conhecimento de sua distribuição geográfica, indicando a necessidade

de mais estudos relacionados a levantamento de espécies do gênero e revisões taxonômicas.

135

A ocorrência de S. pseudocostatum em todas as estações do ano e em diferentes

temperaturas e salinidades, reitera o que é citado na literatura, relacionado a ampla

distribuição e a ocorrência dessa espécie predominantemente em regiões estuarinas e em

diferentes estações do ano (Aké-Castillo et al. 1995, Sarno et al. 2005, Bergesch, Garcia &

Odebrecht 2009).

Skeletonema tropicum é citada como a mais oceânica das espécies do gênero,

ocorrendo em salinidades altas (>29 ups), sendo restrita a ambientes tropicais e subtropicais

(Aké-Castillo et al. 1995, Kooistra et al. 2007). No presente estudo, a espécie foi a que

apresentou a menor freqüência relativa em número de valvas, ocorreu em altas salinidades

(> 34 ups), no verão e outono e em temperaturas entre 17 e 23 ºC (Fig.2e), concordando,

dessa forma, com os dados apresentados por Hulburt & Guillard (1968), Aké-Castillo et al.

(1995) e Kooistra et al. (2007).

Bergesch, Garcia & Odebrecht (2009), justificando o registro de cinco espécies de

Skeletonema encontradas em amostras do estuário da Lagoa dos Patos e Praia do Cassino,

apontam, como responsáveis, a proximidade do local com a Zona de Convergência

Subtropical e a influência da água doce da Lagoa do Patos e do rio La Plata.

A Ilha de Santa Catarina também sofre a influência da pluma do Rio da Prata, da

Zona de Confluência Brasil-Malvinas e de fenômenos oceanográficos, como ressurgências

(Piola et al. 2008, Souza & Robinson 2004, Matsuura 1986). Tais fatores justificam a

presença das espécies registradas e podem ter influenciado na distribuição e freqüência

relativa de cada uma.

A identificação das três espécies de Skeletonema, as ilustrações e as descrições,

subsidiarão estudos futuros de inventários realizados no fitoplâncton da região, trabalhos de

cunho ecológico, envolvendo o gênero e embasarão o esclarecimento do complexo “S.

costatum sensu lato”, amplamente citado no Brasil.

136

3.5 Bibliografia

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Capítulo 4

140

Coscinodiscus wailesii Gran & Angst (Coscinodiscaceae - Diatomeae)

na costa da Ilha de Santa Catarina, sudoeste do oceano Atlântico:

caracterização e distribuição

Resumo

Coscinodiscus wailesii Gran & Angst é frequentemente encontrada em altas

concentrações de células no fitoplâncton marinho. A espécie é considerada

potencialmente tóxica por produzir grande quantidade de mucilagem que prejudica a

atividade pesqueira, além de, devido a grande número de células e a rápida divisão,

causar depleção de oxigênio e nutrientes prejudicando o cultivo de mariscos e

macroalgas. O objetivo deste estudo foi caracterizar e discutir a distribuição de

Coscinodiscus wailesii na costa da ilha de Santa Catarina, relacionando-a com as

variáveis temperatura e salinidade. Na amostragem a espécie foi observada nos meses

de janeiro, fevereiro, março, abril, julho, dezembro e janeiro/2008. A densidade celular

variou entre 193,05 e 2316,6 cels.L

-1

. Houve correlação positiva significativa entre o

número de células e a salinidade na Estação Ratones Grande. Na costa de Ilha de Santa

Catarina o ciclo de vida de C. wailesii parece ser contínuo devido a formação de células

de repouso durante a estação desfavorável como apontado em estudos anteriores.

Palavras-chave: Fitoplâncton marinho, densidade de células, potencialmente tóxico,

América do Sul, Brasil.

141

4.1 Introdução

Coscinodiscus wailesii Gran et Angst é uma espécie considerada invasora, que

vem ocupando oceanos e regiões costeiras de todo mundo. Foi encontrada inicialmente

no Oceano Pacífico, onde foi descrita (Hasle & Lange 1992). Esta espécie é

frequentemente registrada em altas concentrações celulares no fitoplâncton, podendo ser

encontrada como organismo dominante, com densidades maiores que 90% (Dürselen &

Rick 1999; Edwards et al. 2001).

No Brasil, a espécie é considerada invasora por ter sido registrada somente em

trabalhos recentes como os de Valente-Moreira (1987), Moreira-Filho et al. (1990),

Souza-Mosimann et al. (1993), Fernandes et al. (2001) e Tenenbaum et al. (2004). A

primeira citação da espécie para Santa Catarina foi feita por Souza-Mosimann et al.

(1993). Supõe-se que C. wailesii tenha sido introduzida no país por água de lastro

(Fernandes et al. 2001). Para Santa Catarina, a introdução juntamente com as matrizes

de organismos aquáticos cultiváveis, é uma hipótese plausível, já que possui cultivos de

ostras do Pacífico.

Coscinodiscus wailesii estabeleceu-se na costa francesa na década de 70, quando

as matrizes de ostras, até então cultivadas, foram substituídas por espécies do Oceano

Indo-Pacífico, resistentes à infecções (Rincé & Plaumier, 1986 apud Dürselen &

Rick,1999).

Como organismo invasor, C. wailesii substitui os organismos fitoplanctônicos

nativos por competição reduzindo, dessa forma, a biodiversidade (Edwards et al. 2001).

O sucesso da espécie perante os outros componentes fitoplanctônicos é atribuído à

tolerância a diferentes temperaturas e salinidades, alta tolerância a metais pesados

quando comparado a espécies nativas e, devido ao grande tamanho das células, ser

impalatável para os herbívoros planctônicos (Dürselen & Rick 1999).

Coscinodiscus wailesii é considerada uma espécie potencialmente nociva por

produzir grandes quantidades de mucilagem insolúvel, que prejudica a atividade

pesqueira (Edwards et al. 2001). A espécie forma grande biomassa, devido à rápida

divisão, ocasionando depleção do oxigênio e nutrientes, o que prejudica os cultivos de

mariscos e macroalgas (Fernandes et al. 2001; Proença & Fernandes 2004). A depleção

do nitrogênio inorgânico, em locais onde cultiva-se Porphyra (Nori), produz

142

branqueamento de seus talos, com grande prejuízo econômico (Nishikawa &

Yamaguchi 2008).

Tendo em vista a importância ecológica de C. wailesii nas regiões estuarinas e

costeiras, especialmente em Santa Catarina, onde desenvolvem-se grandes projetos de

maricultura, este trabalho teve como objetivo caracterizar e discutir sua distribuição na

costa da Ilha de Santa Catarina, relacionando-a com as variáveis temperatura e

salinidade.

4.2 Metodologia

A Ilha de Santa Catarina localiza-se na região sudoeste do oceano Atlântico, sul

do Brasil (27°10’S e 27°50’S-48°25’W e 48°35’W), no município de Florianópolis

(Fig. 1). Para a realização do presente estudo, as amostras de água, foram coletadas em

duas estações no centro-oeste da Ilha: Ratones Grande (ERG) (27º28’30.52”S -

48º33’27.27”W) e Guarás (EG) (27º33’20.09”S - 48º33’27.50”W) e uma no sudeste:

Pântano do Sul (EPS) (27º47’24.97”S - 48º30’39.31”W). As estações ERG e EG

localizam-se em uma baía fechada rasa (Baía Norte), sofrem influência dos rios Ratones

e Itacorubi e de seus manguezais. A influência desses rios e manguezais está

principalmente relacionada ao aporte de nutrientes, tais como fósforo e nitrogênio

trazidos através da drenagem de água doce das áreas continentais adjacentes (Pagliosa et

al. 2005; Pagliosa et al. 2006). A EG encontra-se localizada mais internamente na baía

que a ERG. A EPS sofre menor influência continental, localiza-se em uma enseada,

porém, em mar aberto. A localização das estações de coleta está representada na Figura

As amostras foram coletadas com frasco de 100 mL, na subsuperfície da água. A

amostragem foi mensal, durante 12 meses, no período de janeiro de 2007 a janeiro de

2008.

A temperatura e a salinidade da água foram medidas in situ, utilizando-se

termômetro de Mercúrio e refratômetro Shibuya.

As células de Coscinodiscus wailesii foram quantificadas pelo método de

Utermöhl, em microscópio invertido Leitz Diavert. Uma câmara completa de 5 ml foi

contada para cada amostra.

143

As amostras foram oxidadas de acordo com a técnica de Simonsen (1974), e

preparadas para observação em microscópio eletrônico de varredura (MEV) da marca

JEOL 6390 LV. Para isto, o material oxidado foi colocado em suportes (stubs) de

alumínio e deixado secar naturalmente. Após seco, foi metalizado com ouro em

metalizador da marca Baltec CED030.

As medidas das frústulas e as fotomicrografias foram feitas em Microscópio

Óptico (MO) da marca Olympus BX 50.

Para verificar a correlação entre os fatores bióticos e abióticos (salinidade e

temperatura) foi aplicado o Coeficiente de Correlação de Spearman. O programa

utilizado para essa análise foi o BioEstat 5.0.

144

Fig

ura

Localização das estações d

e coleta amostradas na costa da Ilha de Santa Catarina, Santa Catarina,

Brasil. ERG: Estação Ratones Grande, EG: Estação Guarás e EPS: Estação Pântano do Sul.

145

4.3 Resultados

Coscinodiscus wailesii Gran & Angst apresentou como caracteres distintivos a

altura do manto, ângulo reto entre o manto e parte marginal da face valvar e a área

central hialina com contorno irregular. O diâmetro das células variou entre 208 µm

(EPS em janeiro/08) e 362,5 µm (ERG em abril/07). A média dos diâmetros no outono

(301,5 µm) foi maior que na primavera (245,4 µm). O número de estrias variou entre 4

a 6/ 10 µm (n= 71).

O tamanho das aréolas aumenta do centro para a margem, diminuindo na junção

da face valvar com o manto. Coscinodiscus wailesii tem dois anéis de rimopórtulas: um

localizado na zona de junção vertical entre o manto e a face valvar e o outro na região

mediana do manto, este inclui duas macrorimopórtulas (Fig. 2e), apresenta também

pequenas rimopórtulas espalhadas na face valvar (Fig. 2c e 2f), sendo que estas

localizam-se no final de algumas estrias que iniciam-se no na região central (Fig. 2d).

9A região central apresentou descrição semelhante a apresentada por Fernandes et al.

2001).

Os cloroplastos são discóides, numerosos e distribuídos irregularmente pela

célula. Nas amostras analisadas foram encontradas células de repouso que se

caracterizam por terem citoplasmas descolados da frústula e concentrados no centro das

células, de acordo com Nagai et al. (1996).

A espécie foi quantificada nos meses de janeiro, fevereiro, março, abril, maio,

julho, dezembro e janeiro/2008 na ERG e EPS. Na EG, não foram encontradas células

de C. wailesii nas análises quantitativas .

A Figura 4 apresenta a distribuição e o número de células

de Coscinodiscus

wailesii durante a amostragem, bem como os dados de temperatura e salinidade da água.

Observou-se a ausência de crescimento nos meses mais frios. A densidade variou de

193,05 a 2316,6. Os maiores picos de crescimento foram verificados em abril/2007 com

2316,6 cels.L

-1

na ERG e dez/2007 com 1158,3 cels.L

-1

na EPS. A temperatura da água

apresentou uma amplitude de variação de 10,5

C entre o mês mais frio e o mais quente

na ERG e de 5,5

C na EPS. A salinidade apresentou uma amplitude maior de variação

em ERG (6,5) que na EPS (2,2) variando de 29,05 a 36.

Foi encontrada correlação positiva significativa entre densidade de C. wailesii e

e salinidade na ERG (Tabela 1).

146

Tabela 1.

Coeficientes de Correlação de Spearman entre Coscinodiscus wailesii (Cel.L

), temper

atura e

salinidade. *p>0.05.

A B

10 µm

10µm

20µm

2µ m

2µm

5µm

Figura 2.

Imagens em Microscopia Óptica (Figs. a - b) e em Microscopia Eletrônica de Varredura (Figs.c -

de Coscinodiscus wailesii. Fig. a: vista valvar. Fig. b: vista conectival. Fig. c

: vista geral da face valvar

mostrando as microrimopórtulas espalhadas pela valva (setas). Fig. d:

região central com interestrias variando

de tamanho e microrimopórtulas (setas). Fig. e: macrorimopórtula, vista interna (seta). Fig. f:

microrimopórtula da face valvar, vista interna (seta).

Locais amostrados Fator abiótico Correlação de Sperman

Ratones Grande (ERG) Temperatura

Salinidade

-0,1693

0,592*

Pântano do Sul (EPS) Temperatura

Salinidade

0,0132

-0,2049

147

(

)

Coscin

Salin

EPS

500

1000

1500

2000

2500

j f m a m j a s o n d j

Meses

Cel.L

-1

Temperatura (ºC)

Coscinodiscus wailesii

Temperature

(

)

ERG

500

1000

1500

2000

2500

j f m a m j a s o n d j

Meses

(

)

Temperatura

Salinidade

Figura 3.

Densidade de Coscinodiscus wailesii (Cels.L

)

e dados abióticos da ERG e EPS, entre

janeiro/2007 e janeiro/2008. Fig 3a: Densidade de células e temperatura da ERG. Fig. 3b

: Densidade de

células e salinidade da ERG. Fig. 3c: Densidade de células e temperatura da EPS. Fig. 3d

: Densidade de

células e salinidade na EPS.

148

4.4 Discussão

A morfologia da frústula de Coscinodiscus wailessii está de acordo com as

descrições apresentadas na literatura (Schmid & Volcani 1983; Hasle & Lange 1992;

Fernandes et al. 2001). No entanto, as dimensões de diâmetro estão mais próximas dos

limites registrados por Fernandes et al. (2001) (195-385 µm), não atingindo o diâmetro

de 500 µm citado por Schmid & Volcani (1983).

A ocorrência de dois grupos distintos de diâmetros de frústulas, que ocorreram

nas amostras analisadas, pode indicar a presença de células de resistência, que têm

diâmetro menor que as células vegetativas, segundo Nagai et al. (1996).

A análise da dinâmica temporal de C. wailesii mostrou que os maiores picos de

crescimento da população ocorreram no outono (ERG) e dois picos na EPS no outono

também e final de primavera, com densidades da ordem de 10

cels.L

-1

. Estes valores

são da mesma ordem das florações de C. wailesii registradas para a Baia de Paranaguá e

adjacências (Fernandes et al., 2001) e para a costa da Alemanha (Dürselen & Rick,

1999). Para a costa do Japão, Nagai et al. (1996), registraram florações da ordem de 10

cels.L

-1

Nagai et al. (1996), em trabalhos realizados em Harima-Nada (Japão),

concluíram que células vegetativas de C. wailesii diferenciam-se em células de repouso,

permanecendo no sedimento, quando a coluna d’água está estratificada. A mistura das

camadas da coluna da água é o fator responsável pela ressuspensão das células bênticas

de resistência que, encontrando condições favoráveis de temperatura, salinidade,

nutrientes e luminosidade, crescem garantindo a continuidade do ciclo de vida de C.

wailesii (Nagai et al. 1996; Nishikawa & Yamaguchi, 2008). Desta forma, as florações

ocorrem no outono e primavera nesta região, quando ocorre desestratificação.

Em Harima-nada, Nagai et al.(1996) observaram que a ocorrência ou não de

florações de outono depende da quantidade de células de repouso presentes no

sedimento.

Sugere-se que na costa da Ilha de Santa Catarina o ciclo de vida de C. wailesii

tenha continuidade através da formação de células de repouso, durante a estação

desfavorável. As florações ocorreram no início de outono, e final de primavera. No

entanto, não foi observado correlação positiva entre a ocorrência de C. wailesii e

temperatura (Tabela 1), indicando que o ciclo de vida da espécie, nesse período, não é

influenciado pela temperatura. Outros fatores abióticos, como ventos, nutrientes e

149

luminosidade parecem interferir mais efetivamente na dinâmica da espécie que a

temperatura típica de cada estação do ano. A tolerância de C. wailesii à ampla variação

da temperatura (1

C a 30,9

C) é citado na literatura (Nagai et al. 1996, Dürselen &

Rick, 1999; Fernandes et al. 2001).

Na ERG, região estuarina e com salinidade variável, detectou-se uma correlação

positiva entre a densidade de C. wailesii e a salinidade (Tabela 1). O aumento de

salinidade, provavelmente, indicou a entrada de águas mais salinas ou a mistura da

coluna d’água, com aporte de mais nutrientes, que estimulou o crescimento da

população. Acredita-se que a pequena variação da salinidade não teria efeito direto

sobre o crescimento da população, uma vez que ela apresenta grande tolerância à

variação de salinidade (8 a 35 ups) (Fernandes et al. 2001).

Os dados do presente estudo demonstram que a espécie, na costa da Ilha de

Santa Catarina, apresenta uma dinâmica diferente da apresentada no estado do Paraná

(local, no Brasil, onde foi estudada em detalhe por Fernandes et al., 2001). Na Baía de

Paranaguá (PR), C. wailesii foi encontrado durante todos os meses do ano e

esporadicamente produzindo florações. A diferença entre o observado no estado do

Paraná, por Fernandes et al. (2001), e os resultados apresentados no presente estudo,

indicam que mesmo próximas as regiões apresentam condições oceanográficas

diferentes, reiterando a importância dos fatores abióticos como luminosidade,

salinidade, nutrientes, ventos e fenômenos oceanográficos no ciclo de vida de C.

wailesii.

O registro recente de C. wailesii em águas brasileiras, somente a partir de 1987,

pode também ser o resultado de problemas de diferenciação entre C. wailesii e C.

concinnus Wm. Smith., como foi enfatizado por Wiltshire & Dürselen (2004), pois

ambas espécies co-existem no Mar do Norte e apresentam dimensões similares. Este

fato indica que esta troca pode ter acontecido em trabalhos realizados no Brasil,

portanto, sendo possível a presença de C. wailesii em águas brasileiras bem antes da

citação da espécie em publicações.

Futuros estudos sobre a dinâmica populacional de C. wailesii deverão ser

acompanhados do estudo de variação do perfil térmico e salino da coluna d’água, da

análise de nutrientes, da quantificação de células vegetativas e células de repouso no

sedimento e do biovolume, que dará uma avaliação mais precisa da biomassa, por tratar-

se de células muito volumosas, comparadas com as demais células do fitoplâncton. A

quantificação de células de repouso no sedimento é imprescindível nos monitoramentos,

150

uma vez que estes dados, somados aos dados abióticos indicam, com antecipação, a

ocorrência de florações, possibilitando a tomada de medidas preventivas contra seus

efeitos nocivos.

4.5 Bibliografia

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