( PDF ) Avaliação da fungemia, resposta imune celular/humoral e citocinas na infecção experimental de camundongos com isolado clínico Candida parapsilosis (cp 1)

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CENTRO DE CIÊNCIAS BIOLÓGICAS

DEPARTAMENTO DE CIÊNCIAS PATOLÓGICAS

Programa de Pós-Graduação em Patologia Experimental

AVALIAÇÃO DA FUNGEMIA, RESPOSTA IMUNE

CELULAR/HUMORAL E CITOCINAS NA INFECÇÃO

EXPERIMENTAL DE CAMUNDONGOS COM ISOLADO

CLÍNICO Candida parapsilosis (Cp 1)

Mestranda: Paula Cesar Leonello

Orientadora: Prof

. Dr

. Eiko Nakagawa Itano

Londrina

2010

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PAULA CESAR LEONELLO

AVALIAÇÃO DA FUNGEMIA, RESPOSTA IMUNE

CELULAR/HUMORAL E CITOCINAS NA INFECÇÃO

EXPERIMENTAL DE CAMUNDONGOS COM ISOLADO

CLÍNICO Candida parapsilosis (Cp 1)

Dissertação apresentada ao Programa

de Curso de Pós-Graduação em

Patologia Experimental, da Universidade

Estadual de Londrina, como requisito à

obtenção do título de Mestre.

COMISSÃO EXAMINADORA

__________________________________________

Profª. Drª. Elisa Yoko Hirooka

Universidade Estadual de Londrina

__________________________________________

Prof. Dr. Mario Augusto Ono

Universidade Estadual de Londrina

__________________________________________

Prof

. Dr

. Eiko Nakagawa Itano

Universidade Estadual de Londrina

Londrina, 18 de Fevereiro de 2010

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Catalogação elaborada pela Divisão de Processos Técnicos da Biblioteca Central da

Universidade Estadual de Londrina.

Dados Internacionais de Catalogação-na-Publicação (CIP)

L583a Leonello, Paula Cesar.

Avaliação da fungemia, resposta imune celular/humoral e citocinas na

infecção experimental de camundongos com isolado clínico Candida

parapsilosis (Cp 1) / Paula Cesar Leonello. – Londrina, 2010.

45 f. : il.

Orientador: Eiko Nakagawa Itano.

Dissertação (Mestrado em Patologia Experimental)  Universidade

Estadual de Londrina, Centro de Ciências Biológicas, Programa de Pós-

Graduação em Patologia Experimental, 2010.

Inclui bibliografia.

1. Citocinas – Teses. 2. Resposta imune – Teses. 3. Candida

parapsilosis – Teses. 4. Fungos patogênicos – Teses. 5. Teste

imunoenzimático – Teses. I. Itano, Eiko Nakagawa. II. Universidade

Estadual de Londrina. Centro de Ciências Biológicas. Programa de

Pós-Graduação em Patologia Experimental. III. Título.

CDU 616.993

Este trabalho foi realizado no Laboratório de Imunologia

Aplicada do Departamento de Ciências Patológicas da

Universidade Estadual de Londrina sob a orientação da

Profª. Drª. Eiko Nakagawa Itano e contou com o apoio da

Coordenadoria de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível

Superior (CAPES), Fundação Araucária, FINEP, SETI/PR e

PROPPG/UEL.

Aos meus pais, Roberto e Sonia, pela vida, amor, dedicação e incentivo;

À meu esposo Ricardo, pelo amor, compreensão e apoio.

DEDICO.

AGRADECIMENTOS

A Deus, meu guia e protetor, que sempre me protege e me ilumina em todos os passos da

minha vida, por Ele ser tão bom comigo;

À minha família, meu tudo na vida, pelo amor eterno e incondicional. Pelo carinho e pela

preocupação; pelo colo e pelas broncas; pela educação e pela disciplina; pelos princípios

morais, pelas alegrias, pela compreensão; por sempre estar ao meu lado, por sempre me

apoiar, sempre me guardar, me ensinar, não importa o esforço e o sacrifício;

À minha orientadora, Professora Doutora Eiko Nakagawa Itano, pela oportunidade e pela

confiança depositada em mim, pelos ensinamentos, incentivos e pela amizade;

Aos professores doutores Mário Augusto Ono e Elisa Yoko Hirooka, por aceitarem

prontamente participar da banca de defesa e pelas contribuições para este trabalho e pela

dedicação, e ainda a Profª. Drª. Ivete Conchon Costa pela contribuição na banca de

qualificação.

Aos técnicos e amigos Mári Sumigawa Kaminami e Nilson de Jesus Carlos, pela amizade,

disposição, por tudo o que me ensinaram e por todo o apoio sempre que precisei;

A todos do Laboratório de Imunologia Aplicada: Audrey de Souza Marquez, Carina Harumi

Takahama, Carla Cristine Crude dos Santos, Carlos Eduardo de Oliveira Lima, Cauê

Zortéa Fernandes Costa, Fabiana Felipin Rigobello, Franciele Ayumi Semêncio Chiyoda,

Francisco José de Abreu Oliveira, Juliana Elisa Lima , Lilian Cristina Raia De Dio, Maria

Cláudia Noronha Dutra de Menezes, Nadia Hizuru Kamiji, Tânia Maris Pedrini Soares da

Costa, Thiago Yuiti Castillho Massuda, Wander Rogerio Pavanelli e Wilson Candido

Junior. Àqueles que não somente me ajudaram no trabalho de alguma forma, mas que

também se tornaram amigos. Especialmente às colegas e amigas: Fernanda Akemi

Nakanishi, Kátia Key Oshiro e Rosália Hernandes Fernandes-Vivan, que têm minha

sincera amizade.

À minha querida amiga Luciene Airy Nagashima, que me acompanhou inteiramente neste

trabalho, sempre com disposição para me ajudar, seja em qual hora fosse, e que sempre

me incentivou e me apoiou.

À Coordenação do Programa de Pós-graduação em Patologia Experimental, pelo suporte

e ajuda. Em especial a Profª. Drª. Maria Angélica Ehara Watanabe, pelo carinho, apoio e

atenção.

As professoras doutoras Ângela Maria Ferreira Falleiros e Sheila Michele Levy do

departamento de histologia, pelos ensinamentos e ajuda com o histopatológico.

A todos os professores e funcionários do Centro de Ciências Biológicas que, de alguma

forma, ajudaram na minha formação e por todo o apoio, em especial aos funcionários

Jesus Antônio Vargas (Zui) e Pedro S. R. Dionizio Filho;

À Universidade Estadual de Londrina (UEL), pela oportunidade de realizar o curso e pela

infra-estrutura;

À Coordenadoria de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior – CAPES, pela

concessão de bolsa e por tratar a pesquisa de forma séria e profissional;

ENFIM, A TODOS QUE DIRETA OU INDIRETAMENTE

CONTRIBUÍRAM PARA A REALIZAÇÃO DESTE

TRABALHO.

LISTA DE SÍMBOLOS, ABREVIATURAS E SIGLAS

Ags .............................................. Antígenos

AIDS ............................................ Acquired Immunodeficiency Syndrome

CFA.............................................. Cell-free Antigens

CFU.............................................. Colony-forming Unit

DAB ............................................. Diaminobenzidina

D.O. ............................................. Densidade Óptica

ELISA........................................... Enzyme Linked Immunosorbent Assay

EUA ............................................. Estados Unidos da América

°C.................................................. Graus Celsius

HE................................................. Hematoxilina-Eosina

IFN-γ................................................... Interferon gama

IgG................................................ Imunoglobulina G

IL-4................................................ Interleucina 4

IL-6................................................ Interleucina 6

IL-10.............................................. Interleucina 10

IL-12.............................................. Interleucina 12

IL-17.............................................. Interleucina 17

i.v. …............................................. Intravenosa

µg.................................................. Micrograma

μL.................................................. Microlitro

nm................................................. Nanômetro

OPD............................................. Orto-Feniletilenodiamino Diidrocloreto

PBS............................................... Tampão Fosfato Salina

PCR.............................................. Reação da Cadeia da Polimerase

PMSF........................................... Phenylmethanesulfonyl Fluoride

RNA ............................................. Ácido Ribonucléico

SNC ............................................. Sistema Nervoso Central

Th1................................................ Linfócito T auxiliar ou helper 1

Th2................................................ Linfócito T auxiliar ou helper 2

TGF-β............................................ Transforming Growth Factor beta

TNF-α............................................ Fator de Necrose Tumoral alfa

UEL.............................................. Universidade Estadual de Londrina

LISTA DE FIGURAS

Figura 1 – Análise quantitativa da fungemia pela contagem de unidade formadora de

colônia (CFU) do baço e fígado....................................................................................... 26

Figura 2 – Análise quantitativa da fungemia pela contagem de unidade formadora de

colônia (CFU) do cérebro dos animais com 7, 14, 28 e 56 dias de infecção e animais

controle. ..................................................................................................................... …. 27

Figura 3 – Resultado de teste de hipersensibilidade tardia (DTH) no decorrer de

infecção de camundongos swiss com C. parapsilosis.................................................... 28

Figura 4 – Análise dos níveis de IgG anti-CFA de C. parapsilosis presentes no plasma

dos camundongos........................................................................................................... 29

Tabela 1 - Alterações histopatológicas em baço e fígado de camundongos Swiss

infectados com Candida parapsilosis...............................................................................30

Figura 5 - Análise histopatológica do baço dos animais infectados com 7, 14, 28 e 56

dias de infecção............................................................................................................... 31

Figura 6 - Análise histopatológica do fígado dos animais infectados com 7, 14, 28 e 56

dias de infecção............................................................................................................... 32

Figura 7 – Análise quantitativa das citocinas (IL-4, IL-10, TNF-α e INF-γ) presentes no

plasma dos camundongos infectados e grupo controle.................................................. 34

Figura 8 – Alteração comportamental de camundongo Swiss infectados com C.

parapsilosis por via endovenosa................................................................................ …. 36

Tabela 2 - Alterações histopatológicas em cérebro de camundongos Swiss infectados

com Candida parapsilosis................................................................................................36

Figura 9 – Análise histopatológica do cérebro dos animais infectados com 7, 14, 28, 56

dias de infecção e animal controle.................................................................................. 37

Figura 10 - Nível de IgG anti-mielina humana em plasmas de camundongos infectados

com C. parapsilosis......................................................................................................... 39

Figura 11 - Dosagem de níveis de IL-17 em amostra de cérebro dos animais infectados

com C. parapsilosis e controle sem infecção.................................................................. 40

Sumário

1.1. RESUMO .......................................................................................................................... 12

1.2. ABSTRACT ...................................................................................................................... 14

1.3. INTRODUÇÃO ................................................................................................................ 15

1.4. OBJETIVOS...................................................................................................................... 19

1.4.1. Objetivo geral ........................................................................................................19

1.4.2. Objetivos específicos.............................................................................................19

1.5. MATERIAL E MÉTODOS ............................................................................................... 20

1.5.1. Microrganismo.......................................................................................................20

1.5.2. Animais..................................................................................................................20

1.5.3. Obtenção de Cell Free Antigen (CFA) ..................................................................20

1.5.4. Infecção experimental em camundongos Swiss....................................................21

1.5.5. Unidade formadora de colônia (CFU)...................................................................21

1.5.6. Reação de hipersensibilidade cutânea tardia (DTH) .............................................21

1.5.7. Análise histopatológica dos órgãos........................................................................22

1.5.8. ELISA para determinação de nível de IgG total anti-CFA de C. parapsilosis.......23

1.5.9. ELISA para determinação de nível de IgG anti-mielina no plasma ......................23

1.5.10. Determinação do nível de citocinas em amostras de plasma de camundongos...24

1.5.11. Determinação do nível de IL-17 em amostras de macerado de cérebro de

camundongos...................................................................................................................24

1.5.12. Análise estatística ................................................................................................24

1.6. RESULTADOS.................................................................................................................. 25

1.6.1. Identificação de isolado clínico .............................................................................25

1.6.2. Unidade formadora de colônia (CFU)...................................................................25

1.6.3. Reação de hipersensibilidade cutânea tardia (DTH) ............................................27

1.6.4. ELISA para determinação de nível de IgG total anti-CFA de C. parapsilosis.......28

1.6.5. Análise histopatológica do baço e fígado ..............................................................29

1.6.6. Determinação do nível de citocinas em amostras de plasma de camundongos.....33

1.6.7. Análise histopatológica do cérebro........................................................................35

1.6.8. ELISA para determinação de nível de IgG anti-mielina no plasma ......................39

1.6.9. Determinação do nível de IL-17 em amostras de cérebro no decorrer da infecção39

1.7. DISCUSSÃO .................................................................................................................... 41

1.8. CONCLUSÕES................................................................................................................. 45

1.9. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS.............................................................................. 46

AVALIAÇÃO DA FUNGEMIA, RESPOSTA IMUNE CELULAR/HUMORAL E CITOCINAS

NA INFECÇÃO EXPERIMENTAL DE CAMUNDONGOS COM ISOLADO CLÍNICO

Candida parapsilosis (Cp 1)

1.1. RESUMO

Em pacientes imunocomprometidos é comum a infecção concomitante por diversos

patógenos. O presente trabalho identificou um isolado fúngico como Candida parapsilosis

proveniente de paciente com histoplasmose. Considerando que estudos sobre a virulência

e a patogenicidade experimental desta espécie são poucos, o objetivo do trabalho foi

caracterizar o fungo, inicialmente confirmando como C. parapsilosis por biologia molecular

(PCR) e avaliar a fungemia pela contagem de unidade formadora de colônia (CFU) no

baço, fígado e cérebro, as respostas imune celular e humoral específicas, nível de

citocinas plasmáticas (INF-γ, TNF-α, IL-4 e IL-10) e no macerado do cérebro (IL-17) no

decorrer de infecção experimental em camundongos Swiss. Adicionalmente foi realizada a

análise de nível plasmático de anticorpos anti-mielina, considerando os dados

preliminares de alterações comportamentais em camundongos infectados pelo referido

isolado. A identificação do fungo foi realizada por PCR utilizando primer ITS-5 e ITS-4,

seguida de outro PCR com os primers: ITS-5, ITS-4, ITS-2 e ITS-3. Esse fungo,

confirmado como C. parapsilosis, foi inoculado em camundongos por via endovenosa

(1x10

leveduras/animal) e divididos em grupos de 7, 14, 28 e 56 dias de infecção. Como

controle, inoculou-se PBS estéril. A resposta imune celular foi avaliada por teste

intradérmico (DTH) e a resposta imune humoral por ELISA, utilizando como antígeno

preparado livres de células (CFAg) de C. parapsilosis. Os resultados obtidos

demonstraram aumento significativo de CFU apenas no grupo de camundongos com 7

dias de infecção em relação aos demais grupos (p<0.05) e aumento de resposta de DTH

no grupo de 56 dias em relação ao controle (p<0.05) e nível elevado de IgG total anti-

CFAg nos grupos de 28 e 56 dias em relação aos demais (p<0.05). Foi observado

aumento no nível de citocina INF-γ no plasma em grupo de 28 e 56 dias pós-infecção em

relação aos demais grupos (p<0.05) e níveis similares de demais citocinas entre os

grupos (p>0.05). Após 28 e 56 dias de infecção, foi confirmada a alteração

comportamental. Todavia a contagem do CFU no cérebro foi significativamente maior

somente no grupo de 7 dias, sendo negativo após 14 dias de infecção, mas com presença

de lesões teciduais no cérebro dos grupos de camundongos com 28 e 56 dias pós-

infecção. Não foram observadas alterações no nível plasmático de IgG anti-mielina.

Concluímos pelos resultados que o referido isolado por si só apresenta baixa virulência e

que a resposta imune induzida possivelmente controle a infecção. Todavia as respostas

imunes específicas devem participar nas lesões do cérebro, alterando o comportamento

dos camundongos infectados, o que requer estudos adicionais.

Palavras-chave: Candida parapsilosis, resposta imune, citocinas.

ANALYSIS OF FUNGEMIA, CELLULAR/HUMORAL IMMUNE RESPONSE AND

CYTOKINES IN EXPERIMENTAL INFECTION OF MICE WITH Candida parapsilosis

CLINICAL ISOLATE

1.2. ABSTRACT

In immunocompromised patients, the concomitant infection of various microorganisms is

common. This work introduces a fungal isolate identified as Candida parapsilosis in a

patient with histoplasmosis. Whereas studies on the virulence and pathogenicity trial of

this kind are few, the goal of the study was to characterize the fungus, initially confirmed as

C. parapsilosis by molecular biology (PCR) and then evaluating the fungemia by colony

forming unit (CFU) in spleen and liver, the cellular and humoral specifics immune

responses, level of plasmatic cytokines (INF-γ, TNF-α, IL-4 and IL-10) in the course of

experimental infection in mice. In addition the brain CFU and histopathology lesions

analysis, as well as local IL-17 and plasma levels of IgG anti-myelin, were included

considering the preliminary data of behavioral changes in infected mice by the actual

isolate. The identification of the fungus was performed by PCR using primer ITS-5 and

ITS-4, followed by another PCR with primers: ITS-5, ITS-4, ITS-2 and ITS-3. This fungus,

confirmed as C. parapsilosis, was inoculated into mice intravenously (1x10

yeast/animal)

and divided into groups of 7, 14, 28 and 56 days of infection. As control, it was inoculated

sterile PBS. The cellular immune response was assessed by intradermal test (DTH) and

humoral immune response by ELISA, using as antigen cell-free antigens (CFAg) of C.

parapsilosis. The results showed a significant increase of CFU only in the group of mice

with 7 days of infection compared to other groups (p <0.05) and increased DTH response

in the 56 days group compared to control (p <0.05) and high level of anti-CFAg IgG in 28

and 56 days groups compared to the others (p <0.05). After 28 and 56 days of infection, it

was confirmed a behavioral change. However, brain CFU was significantly higher only in

the 7 days group, and being negative after 28 days of infection, but with presence of brains

tissue lesions in mice groups with 28 and 56 days post-infection. There were no alterations

in plasmatic anti-myelin IgG level. From the results, we conclude that this isolated itself

has low virulence and that the immune induced response may control the infection.

However the specific immune responses may be involved in the brain lesions, altering the

behavior of the infected mice, which requires further study.

Key-words: Candida parapsilosis, imune response, citokynes.

1.3. INTRODUÇÃO

Devido ao aumento do número de pacientes susceptíveis em função de

imunodepressão, nas últimas décadas tem ocorrido um aumento das infecções sistêmicas

hospitalares; destacando-se as infecções fúngicas (PFALLER, 1996; FRIDKIN & JARVIS,

1996; KAO et al., 1999).

Dentre essas infecções fúngicas, a mais frequente é a candidíase, causada pelo

fungo Candida ssp., patógeno oportunista frequentemente isolado das superfícies

mucosas de indivíduos normais, mas que pode levar ao desenvolvimento de lesões

superficiais até infecções disseminadas (ALVARES, 2007).

Em 1963, eram conhecidas como causadoras de doenças em humanos, C.

albicans, C. parapsilosis, C. tropicalis, C. stellatoidea (C. albicans var stellatoidea) e C.

guilliermondii. Atualmente, são conhecidas cerca de dezessete espécies de Candida

causadoras de micoses superficiais ou invasivas em seres humanos (DIGNANI et al.,

2003).

C. albicans ainda é a espécie mais isolada, entretanto é cada vez mais frequente o

isolamento de espécies Candida não-albicans, que estão sendo consideradas patógenos

emergentes de grande importância (LUNEL, 1999; KAO et al.,1999; KRCMERY &

BARNES, 2002). Dentre as espécies consideradas emergentes destaca-se C. parapsilosis

(LEVY et al., 1998; LEVIN et al., 1998).

C. parapsilosis apresenta-se como um importante patógeno hospitalar, sendo

responsável por 7% a 15% das candidemias na maioria das publicações nos EUA e

Europa (PFALLER, 1996; VOSS et al., 1996).

Estudos experimentais sobre a virulência e a patogenicidade desta espécie são

poucos (BISTONI et al., 1984; CASSONE et al., 1995). Pouco se sabe a respeito de C.

parapsilosis, apesar de ser uma espécie comumente isolada das mãos dos trabalhadores

saudáveis dos hospitais e estar relacionada com a disseminação exógena de candidíase

em recém nascidos internados em UTI neo natal (BONASSOLI, 2004).

C. parapsilosis foi isolada pela primeira vez por Ashford a partir de fezes de um

paciente com diarreia em Porto Rico, em 1928.

Quando cultivadas em ágar Sabouraud dextrose, apresenta colônias brancas,

cremosas, brilhantes, lisas e/ou enrugadas. Quando comparada a C. albicans e C.

tropicalis, que podem existir em múltiplas formas morfogenéticas, C. parapsilosis não

forma hifas verdadeiras e existe em qualquer fase de levedura ou pseudohifas. (TROFA et

al., 2008).

Algumas características gerais são que C. parapsilosis prolifera-se em soluções

contendo glicose, tem grande capacidade de produzir biofilme e frequentemente coloniza

a pele (COLOMBO & GUIMARÃES, 2003).

Há uma associação bem documentada entre infecção por C. parapsilosis e a

presença de um dispositivo intravascular (WEEMS et al., 1992; GIRMENIA et al., 1996;

LEVY et al., 1998).

Experimentalmente, a virulência de C. parapsilosis é menor que C. albicans e

outras especies de C. não-albicans, devido à sua menor aderência a células epiteliais

(ABI SAID et al., 1998). Por outro lado, C. parapsilosis tem capacidade de aderir de forma

mais eficiente em material estranho (WEEMS et al., 1992). Infecções por C. parapsilosis é

comumente associada à nutrição parenteral, catéteres intravenosos, dispositivos ou

próteses implantadas (COLEMAN et al., 1998).

Estas características explicam a associação com cateteres e também a mortalidade

significativamente menor quando comparado com outras espécies de C. não-albicans

(GIRMENIA et al., 1996; LEVY et al., 1998; KRCMERY, 1998; VISCOLI et al., 1999;

KRCMERY, 1999).

Biofilmes são facilmente formados por C. parapsilosis quando as células crescem

em meio contendo alta concentrações de glicose e lipídios, que está associado com

aumento da prevalência de infecções da corrente sanguínea em pacientes que recebem

nutrição parenteral (NOSEK et al., 2009).

Em contraste com C. albicans, a formação do bio-filme de C. parapsilosis é mais

fino, menos estruturado, não apresenta hifas verdadeiras, e consistem exclusivamente de

agregado de blastosporos (KUHN et al. 2002).

Em relação a sua susceptibilidade a antifungicos, C. parapsilosis é relativamente

sensível à maioria dos antifúngicos sistêmicos, incluindo cetoconazol, itraconazol,

fluconazol, anfotericina B e 5-FC (REX et al., 1995).

Em comparação com outras espécies de Candida, C. parapsilosis tem uma ampla

distribuição na natureza. Ao contrário da C. albicans e C. tropicalis, C. parapsilosis não é

um patógeno humano obrigatório, tendo sido isolada a partir de fontes não-humanos,

como animais domésticos, insetos, solo e ambientes marinhos (FELL & MEYER, 1967;

WEEMS, 1992).

Em pacientes imunocomprometidos é comum a infecção concomitante por diversos

patógenos (NETO et al., 1995), existem casos de infecção concomitante com Histoplasma

capsulatum (DIÓGENES et al., 1990; PEREIRA et al., 2002). No presente trabalho foi

isolado um fungo de paciente com histoplasmose, micose sistêmica causada pelo fungo

dimórfico Histoplasma capsulatum var. capsulatum, sendo esse isolado identificado por

biologia molecular como C. parapsilosis.

Embora o fungo C. parapsilosis seja considerado tipicamente um comensal da pele

humana sendo a sua patogenicidade limitada ao tegumento intacto, e ser frequentemente

considerado menos virulento do que C. albicans (TROFA et al., 2008) existem casos de

infecções de rins, pulmão, coração, articulações, ossos e sistema nervoso central (LACAZ

et al., 2002), sendo que as formas clínicas mais severas têm sido associadas com

pacientes imunocomprometidos, neutropênicos e transplantados (COLOMBO &

GUIMARÃES, 2003).

A candidíase sistêmica em camundongos se assemelha à doença humana.

Envolvimento no cérebro e renal é comum em infecções disseminada por Candida em

humanos (PARKER, 1976; ODDS, 1988), e também em camundongos, estes órgãos são

um foco primário de infecção (LOURIA, 1985; PAPADIMITRIOU & ASHMAN, 1986).

O envolvimento de sistema nervoso central ocorre frequentemente em prematuros

que desenvolvem candidemia. Entretanto, segundo dados obtidos em necropsia,

pacientes que desenvolveram sepse por Candida que evoluem a óbito, apresentam

lesões fúngicas no sistema nervoso central (SNC) em até 20% dos casos (DIGNANI et al.,

2003; FILLER et al, 2003).

A imunidade protetora a Candida envolve respostas imunes inata e adaptativa. A

presença de uma imunidade inata ativa, tais como a capacidade das células fagocíticas

para inibir crescimento de fungos, é necessária para a indução de células CD4

Th1

(MENCACCI et al., 1998).

No entanto, um sistema imunológico inato ativado nem sempre é suficiente, por si,

para eliminar a infecção. Assim, uma integração adequada entre o sistema imune inato e

o adaptativo é necessário para o controle eficiente das infecções por Candida (ROMANI,

2000).

As citocinas tem demonstrado uma papel importante na modulação da resposta

imune a infecção por Candida (ASHMAN & PAPADIMITRIOU, 1995; ROMANI, 2000).

Estudos em camundongos mostraram que o desenvolvimento da respostas Th1

exige ações de diversas citocinas, como o IFN-γ (ROMANI et al., 1992; CENCI et al.,

1998), TGF-β (SPACCAPELO et al., 1995), IL-6 (ROMANI et al., 1992), TNF-α

(MENCACCI et al., 1998), e IL-12 (ROMANI et al., 1994), a ausência de citocinas Th2,

como IL-4 e IL-10, que inibem o desenvolvimento de respostas Th1 (TONNETTI et al.,

1995).

Assim, considerando a possibilidade do fungo causar uma infecção sistêmica e

considerando a existência de poucos estudos sobre a sua virulência e especialmente

nenhum conhecimento sobre o isolado, no presente trabalho foi proposto induzir infecção

sistêmica por isolado de C. parapsilosis em camundongos e, avaliar a fungemia de

órgãos, a resposta imune celular e humoral e, nível de citocinas no decorrer da infecção

de camundongos.

1.4. OBJETIVOS

1.4.1. Objetivo geral

No presente trabalho foi proposto induzir infecção sistêmica por isolado fúngico C.

parapsilosis em camundongos, avaliar a fungemia em órgãos, a resposta imune celular e

humoral e nível de citocinas no decorrer da infecção de camundongos.

1.4.2. Objetivos específicos

1.4.1.1. Identificar isolado clínico de Candida de paciente com histoplasmose;

1.4.1.2. Obter Cell free antigen (CFA) do fungo C. parapsilosis;

1.4.1.3. Detectar níveis de IgG total anti-CFA no plasma de camundongos infectados

experimentalmente com C. parapsilosis;

1.4.1.5. Analisar fungemia, resposta imune humoral e celular especificas na infecção

experimental murina;

1.4.1.6. Detectar anticorpos anti-mielina no plasma na infecção experimental murina;

1.4.1.7. Detectar nível de citocinas dos camundongos na infecção experimental murina;

1.4.1.8. Analisar o histopatológico dos órgãos (baço, figado e cérebro).

1.5. MATERIAL E MÉTODOS

1.5.1. Microrganismo

Foi utilizado isolado Cp1, fungo C. parapsilosis de paciente com histoplasmose, atendido

no Hospital Universitário de Londrina - HU/UEL e identificado inicialmente por cultivo em

meio seletivo, Chromagar Candida (CA221, Paris, França), seguida de confirmação por

reação da cadeia da polimerase (PCR), utilizando como primeiro primer ITS-5 e ITS-4 e

segundo primer ITS-5,ITS-4, ITS-2 e ITS-3, em dois PCRs consecutivos e análise por

sequenciamento (Applied Biosystens) na Universidade de Chiba, Chiba, Japão.

1.5.2. Animais

Neste estudo foram utilizados camundongos Swiss, alojados no Biotério do Departamento

de Ciências Patológicas da UEL, com fornecimento de água e ração peletizada ad libitum.

Este projeto foi aprovado pelo Comitê de Ética em Experimentação Animal da

Universidade Estadual de Londrina sob n

100/09.

1.5.3. Obtenção de Cell Free Antigen (CFA)

Após o cultivo de 24 horas do fungo Cp1, a massa fúngica foi removida e suspendida em

solução salina tamponada com fosfato (PBS), adicionado timerosal e fluoreto de

fenilmetilsulfonil (PMSF), homogeneizada em aparelho vórtex (5 ciclos de 2 minutos) e

deixado em repouso no gelo por uma hora e trinta minutos. Após o repouso o tubo com a

suspenssão foi levado ao aparelho vórtex (1 ciclo de 2 minutos) e depois centrifugado em

centrifuga refrigerada 4ºC, a 1005 x g (Eppendorf Centrifuge 5804R, Hamburg, Germany)

por 15 minutos. Após a centrifugação o sobrenadante foi centrifugado novamente a 4ºC e

12870 x g por 30 minutos. Amostra de sobrenadante foi coletada e a concentração

protéica do CFA obtido foi dosada pelo método Folin (Lowry et al., 1951). A seguir, o CFA

foi aliquotado e armazenado em freezer –80

C até a utilização.

1.5.4. Infecção experimental em camundongos Swiss

Os camundongos foram divididos em cinco grupos de 10 animais: G1 – infectado e

eutanasiado no 7º dia, G2 – infectado e eutanasiados no 14º dia G3 – infectado e

eutanasiado no 28º dia, G4 – infectado e eutanasiados no 56º dia e G5- Controle sem

infecção e eutanasiados em 7, 14, 28 e 56 dias (2 animais cada). Os animais infectados

(G1-G4) foram inoculados (i.v.) com 1x10

leveduras de C. parapsilosis, enquanto o grupo

G5 com solução salina tamponada (PBS) estéril.

1.5.5. Unidade formadora de colônia (CFU)

Parte do baço, fígado e do cérebro de cada camundongo foram retirados assepticamente

e macerados em PBS estéril e ajustado a 0,2 g órgão/mL. O homogenato foi diluído 1:10,

sendo 30 uL de cada diluição submetido à determinação do CFU em placas de petri em

Agar Saboraud. As placas foram incubadas em estufa de 35

C por 4 dias para

determinação do número de unidades formadoras de colônia (CFU) de C. parapsilosis.

1.5.6. Reação de hipersensibilidade cutânea tardia (DTH)

Para determinar o DTH, de 18 a 24 h antes da eutanásia, os camundongos receberam

uma inoculação subcutânea com 50 µl na concentração de 7,5 µg de CFA de C.

parapsilosis no coxim da pata traseira esquerda. Como controle, foi inoculado PBS estéril

nas patas traseira direita. A extensão do infiltrado inflamatório foi avaliado através de

medida do raio da pata utilizando especímetro (Mitotoyo, draper 0-25 mm Micrometer,

Tokyo, Japan) e a porcentagem relativa de aumento da pata foi calculada pela fórmula A=

π.d

/4 (onde A= área de um círculo plano; π= 3,14; d= medida obtida no especímetro) e

avaliada comparando-se com o controle.

1.5.7. Análise histopatológica dos órgãos

Após eutanásia, parte do baço, fígado e do cérebro foi removido e fixado em solução de

formalina tamponada (0,05M NaH

0,05M Na

HPO

, água destilada e 10% de formol

37%, pH 7.0) por no mínimo 24 h e submetidos à desidratação em álcool 70% por 30 min,

álcool 90% por 30 min, álcool absoluto por 30 min e 3 passagens de 15 min por xilol. A

seguir, foram submetidos a 3 inclusões de 30 min em parafina. Secções de 5 mm foram

fixadas em lâminas de microscopia e sucessivamente hidratadas em xilol, álcool e xilol,

álcool absoluto, álcool 90 e álcool 70% (5 min em cada solução). A coloração foi feita com

hematoxilina (15 s) e eosina (30 s) e lavagem em água corrente por 10 min. Os cortes

corados foram então desidratados em álcool e xilol e as lamínulas fixadas com bálsamo.

Essa coloração foi realizada para análise morfológica do tecido. Algumas secções de 5

mm, fixadas em lâminas de microscopia, foram coradas também pela técnica de Grocott

(methenamina) para detecção de fungos ou parte de fungos. Após hidratação em água, as

lâminas foram oxidadas em ácido crômico 5%, por 1 h, e lavadas em água corrente por 10

min. Depois de tratadas em bissulfito de sódio 1%, durante 1 min, as lâminas foram

novamente lavadas e incubadas em solução de nitrato de prata (5% nitrato de prata, 3%

hexamine), à 60 ºC. Após nova lavagem, as lâminas foram tratadas com 0,1% de cloreto

de ouro, por 5 min. Os resíduos não oxidados foram removidos com 2% de tiosulfato de

sódio, por 2 min, e a coloração de fundo realizada com Light Green stain. Foi utilizado

também a técnica de coloração Picrosírius, para evidenciar o colágeno e avaliação do

grau de fibrose tecidual, onde secções de 5 mm foram desparafinadas e os cortes foram

hidratados e deixados em uma solução de ácido fosfomolíbdico por 1 min, apos incubado

por 90 min com solução de picrosírius (Direct red Sigma®), após corado com ácido

clorídrico por 2 min, depois desidratadas e clarificadas e montadas. As lâminas foram

avaliadas em microscopia óptica, a 4x10, 10x10 e 100x10 de aumento.

1.5.8. ELISA para determinação de nível de IgG total anti-CFA de C. parapsilosis

As placas de ELISA foram sensibilizadas com 100 μl/orifício, contendo 25 µg/mL de CFA

de C. parapsilosis diluído em tampão carbonato-bicarbonato, e incubada por 1 hora a

37ºC e overnight a 4ºC, seguido de bloqueio e lavagens. Para detecção de IgG total, foi

adicionado 100 ul/orifício das amostras de plasma dos camundongos diluídas 1:10 e

conjugado peroxidase anti-IgG de camundongo 1:4000 (A8924, Sigma, St. Louis, MO,

USA). A revelação foi feita com OPD e H

(100 μL/orifício) e a reação, bloqueada com

50 μL de H

4 N. A leitura foi feita em aparelho Multiskan EX (Uniscience –

Labsystems, Helsinki, Finland) em 492 ηm.

1.5.9. ELISA para determinação de nível de IgG anti-mielina no plasma

As placas de ELISA foram sensibilizadas com mielina humana, 50μg diluído em tampão

carbonato-bicarbonato, incubada por 1 hora a 37ºC e overnight a 4ºC, seguido de

bloqueio e lavagens. Para detecção de IgG anti-mielina, foi adicionado 100 ul/orifício das

amostras de plasma puro dos camundongos, seguida de 1hora e 30min de incubação a

37ºC, seguido de lavagens e adição do conjugado peroxidase anti-IgG de camundongo

1:4000 (A8924, Sigma, St. Louis, MO, USA), incubado bor 1 hora a 37ºC. A revelação foi

feita com OPD e H

(100 μL/orifício) e a reação, bloqueada com 50 μL de H

4 N. A

leitura foi feita em aparelho Multiskan EX (Uniscience – Labsystems, Helsinki, Finland) em

492 ηm.

1.5.10. Determinação do nível de citocinas em amostras de plasma de camundongos

Para análise de IFN-γ, IL-4, IL-10, e TNF-α foram utilizados “kits” de ELISA comercial

(Biosource INVITROGEN) e o nível de citocinas foi calculado baseando-se na curva

padrão de concentração conhecida de citocinas, de acordo com instruções do fabricante.

1.5.11. Determinação do nível de IL-17 em amostras de macerado de cérebro de

camundongos

O cérebro foi retirado assepticamente e macerado em PBS estéril e congelado a -80ºC.

Antes de análise da citocina, a amostra foi descongelada e centrifugada a 4ºC e 12000

rpm por 5 min. Para análise de IL-17 foi utilizado kit de ELISA comercial (Biosource

INVITROGEN) e o nível de citocinas foi calculado baseando-se na curva padrão de

concentração conhecida de citocinas, de acordo com instruções do fabricante.

1.5.12. Análise estatística

Foi realizada análise de variância (ANOVA) teste de Tukey-Kramer. Os valores foram

descritos pela média ± desvio padrão, e os resultados, considerados significativos quando

p< 0,05.

1.6. RESULTADOS

1.6.1. Identificação de isolado clínico

O fungo isolado foi inicialmente identificado como C. parapsilosis por meio de cultivo em

meio seletivo e confirmado por PCR. Após realização da técnica de PCR e

sequenciamento resultando na sequência de identificação:

TGGAAGTAAAAAAGTCGTAACAAGGTTTCCGTAGGTGAACCTGCGGAAGGATCATTAC

AGAATGAAAAGTGCTTAACTGCATTTTTTCTTACACATGTGTTTTTCTTTTTTTGAAAACT

TTGCTTTGGTAGGCCTTCTATATGGGGCCTGCCAGAGATTAAACTCAACCAAATTTTATT

TAATGTCAACCGATTATTTAATAGTCAAAACTTTCAACAACGGATCTCTTGGTTCTCGCA

TCGATGAAGAACGCAGCGAAATGCGATAAGTAATATGAATTGCAGATATTCGTGAATCAT

CGAATCTTTGAACGCACATTGCGCCCTTTGGTATTCCAAAGGGCATGCCTGTTTGAGC

GTCATTTCTCCCTCAAACCCTCGGGTTTGGTGTTGAGCGATACGCTGGGTTTGCTTGA

AAGAAAGGCGGAGTATAAACTAATGGATAGGTTTTTTCCACTCATTGGTACAAACTCCA

AAACTTCTTCCAAATTCGACCTCAAATCAGGTAGGACTACCCGCTGAACTTAAGCATAT

CAATAACGGAGGAA, que apresenta 99% de homologia com o microrganismo como C.

parapsilosis, retirado do banco de dados NCBI blast.

1.6.2. Unidade formadora de colônia (CFU)

Os números de CFUs recuperados do baço foram: 7 dias de infecção = 8,000 ± 11,57; 14

dias de infecção = 3,000 ± 4,830; 28 dias de infecção não detectado (ND); 56 dias de

infecção ND e controle ND (Figura 1a). Os números de CFU recuperados do fígado foram:

7 dias de infecção = 11,000 ± 15,04; 14 dias de infecção = 3,000 ± 6,749; 28 dias de

infecção ND; e 56 dias de infecção ND e controle ND. Baço 7 dias de infecção x 14, 28,

56 dias e controle negativo = p<0.05. Fígado 7 dias de infecção x 14, 28, 56 dias e

controle negativo = p<0.05 (Figura 1b).

Os números de CFUs recuperadas de cérebro demonstraram uma redução significativa

(p<0,05) no número de colônias dos camundongos com 14 (3,000 ± 6,749), 28 (3,000 ±

4,830) e 56 dias de infecção (ND) comparadas com camundongos com 7 dias de

infecção (116,0 ± 83,69) (Figura 2).

CFU baço

con

ole

7 dia

dias

grupos

nº de colônias

CFU figado

contro

7 dias

8 dias

56 dias

grupos

nº de colônias

Figura 1. Análise quantitativa da fungemia pela contagem de unidade formadora de

colônia (CFU) em baço e fígado. Camundongos swiss infectados com C. parapsilosis

durante 7, 14, 28 e 56 dias de infecção (n=40) e grupo controle (n=10). a) Baço: diferença

estatística significativa entre 7 dias de infecção x controle, 14, 28 e 56 dias de infecção

(p<0.05). b) Fígado: diferença estatística significativa entre 7 dias de infecção x controle,

14, 28 e 56 dias de infecção (p<0.05).

)

CFU

CFU cerebro

controle

7 dias

14 dias

8 dias

dias

100

150

grupos

CFU

Figura 2. Análise quantitativa da fungemia pela contagem de unidade formadora de

colônia (CFU) do cérebro dos animais com 7, 14, 28 e 56 dias de infecção (n=40) e

animais controle (n=10). No CFU do cérebro nossos resultados apresentaram diferença

significativa entre 7 dias de infeção comparado com os demais.

1.6.3. Reação de hipersensibilidade cutânea tardia (DTH)

O teste de hipersensibilidade cutânea tardia utilizado para avaliar a reposta imune celular

demonstrou aumento da resposta em diâmetro no decorrer da infecção, sendo

significativo após 28 e 56 dias (p<0.05). Os resultados (figura 3) apresentaram diferença

significativa (p<0,05) entre camundongos controle (0,132 ± 0,086) e 56 dias de infecção

(0,343 ± 0,210), 7 dias de infecção (0,096 ± 0,056) comparado com 56 dias de infecção e

14 dias de infecção (0,159 ± 0,099) comparado com 56 dias de infecção (n=10).

DTH

ntrole

7 dias

28 dias

56 dias

0.0

0.1

0.2

0.3

0.4

0.5

grupos

Figura 3 – Resultado de teste de hipersensibilidade tardia (DTH) no decorrer de

infecção de camundongos swiss com C. parapsilosis. Pós 7, 14, 28 e 56 dias de

infecção e grupo controle. Diferença significativa entre controle, 7 dias e 14 dias de

infecção em relação a 56 dias de infecção (p<0.05).

1.6.4. ELISA para determinação de nível de IgG total anti-CFA de C. parapsilosis

Os resultados (figura 4) do ELISA para detecção de níveis de IgG anti-CFA de C.

parapsilosis, foram maiores em 28 e 56 dias de infecção (56dias de infecção: 0,480 ±

0,180; 28 dias de infecção: 0,296 ± 0,168), comparados com controle, 7 e 14 dias de

infecção (controle: 0,103 ± 0,028; 7 dias de infecção: 0,117 ± 0,043; 14 dias de infecção:

0,123 ± 0,035). Diferença significativa do controle entre 28 e 56 dias de infecção.

Diferença de 7 dias de infecção entre 28 e 56 dias de infecção. Diferença de 14 dias de

infecção entre 28 e 56 dias de infecção. Diferença entre 28 dias de infecção e 56 dias de

infecção (p < 0,05) (n=10).

ELISA classico

ole

ias

4 dias

8 dias

56 dias

0.0

0.2

0.4

0.6

grupos

D.O. 492nm

Figura 4 – Resultado de análise dos níveis de IgG anti-CFA de C. parapsilosis

presentes no plasma dos camundongos. Grupo de camundongos swiss infectados

durante 7, 14, 28 e 56 dias com C. parapsilosis (n=40) e grupo controle (n=10). Controle,

7, 14 e 28 dias de infecção x 56 dias de infecção (p<0.05). Controle, 7 e 14 dias de

infecção x 28 dias de infecção (p<0.05).

1.6.5. Análise histopatológica do baço e fígado

Nos camundongo de 7 e 14 dias observou-se a presença de células fúngicas, com inicio

de lesão tecidual. No baço dos camundongos com 28 dias de infecção foi observado um

aumento de lesão tecidual. Nos camundongos com 56 dias de infecção a lesão tecidual

foi mais evidente, apresentando resquícios de células fúngicas mortas (tabela 1). Nos

controles sem infecção foi observado ausência de fungo e de lesão. Resultados

histopatológico baço (figura 5) e fígado (figura 6).

Tabela 1. Alterações histopatológicas em baço e fígado de camundongos Swiss

infectados com Candida parapsilosis.

Alterações grupos

Baço Fígado

7 dias

Presença de leveduras, início de

alterações;

Sem alterações teciduais, presença de

leveduras;

14 dias

Desorganização tecidual, presença de

hifas;

Presença de hifas, tecido desorganizado;

28 dias

Aumento do numero de células do baço; Aumento no numero de hepatócitos;

56 dias

Resquícios de células fúngicas. Hepatócitos com aspecto de esponja.

HE – 100x Grocott – 100x Picrosírius - 100x

14d

28d

56d

Figura 5 - Análise histopatológica do baço dos animais infectados com 7, 14, 28 e 56

dias de infecção.

HE – 100x Grocott – 100x

Picrosírius – 100x

14d

28 d

56d

Figura 6 - Análise histopatológica do fígado dos animais infectados com 7, 14 e 56

dias de infecção.

1.6.6. Determinação do nível de citocinas em amostras de plasma de camundongos

Os resultados demonstraram um aumento de níveis de INF-γ com 28 e 56 dias de

infecção (28 dias de infecção: 7,062 ± 0,989; 56 dias de infecção: 7,214 ± 0,753), o

mesmo ocorrendo com os níveis de TNF-α com 28 dias de infecção (653,9 ± 765,0). Os

resultados mostraram que os níveis de IL-4 tiveram um aumento com 14 dias de infecção

(796,3 ± 134,9) e uma diminuição desses níveis com 28 e 56 dias de infecção (28 dias de

infecção: 633,7 ± 42,86; 56 dias de infecção: 591,5 ± 72,38). Os níveis de IL-10 seguiram

os padrões de IL-4, apresentando um leve aumento dos níveis de IL-10 com 14 dias de

infecção (2174 ± 286,6) e uma diminuição significativa desses níveis com 28 e 56 dias de

infecção (28 dias de infecção: 1697 ± 89,73; 56 dias de infecção: 1729 ± 128,6). O perfil

de citocinas no plasma dos animais demostraram um leve aumento significativo de

citocinas do tipo Th2 com 14 dias de infecção (p<0.05). Com 28 e 56 dias de infecção

teve uma diminuição dos níveis de citocinas Th2 e um aumento significativo de citocinas

Th1 comparado com os demais grupos (p<0.05). Resultados foram expressos em pg/ml

(Figura 7).

Figura 7 – Análise quantitativa das citocinas (IL-4, IL-10, TNF-alfa e INF-gama)

presentes no plasma dos camundongos infectados (n=40) e grupo controle (n= 10).

a) IL-4: diferença significativa (p<0.05) entre 14 dias de infecção e 28 dias de infecção; e

entre 14 dias de infecção e 56 dias de infecção. b) IL-10: diferença significativa (p<0.05)

entre 14 dias de infecção e 28 dias de infecção; e entre 14 dias de infecção e 56 dias de

infecção. c) INF-γ: diferença significativa entre controle e 28 dias de infecção; controle e

56 dias de infecção; 7 dias de infecção entre 28 e 56 dias de infecção; 14 dias de infecção

entre 28 e 56 dias de infecção. d) TNF-α: diferença significativa entre 7 dias de infecção e

28 dias de infecção.

IL 4

ole

7 dias

14 d

28 dias

ias

200

400

600

800

1000

grupos

pg/mL

IL 10

controle

7 dia

14 dias

28 d

56 di

500

1000

1500

2000

2500

grupos

pg/mL

interferon gama

ole

14 dias

ias

grupos

D.O. 492nm

TNF alfa

tro

7 dias

4 dias

28 dias

6 dias

2000

4000

6000

8000

grupos

pg/mL

1.6.7. Análise histopatológica do cérebro

Considerando que os animais com 28 e 56 dias de infecção apresentaram alteração

comportamental, sugerindo algum distúrbio neurológico (Figuras 8b e 8c), foi realizada

análise histopatológica do cérebro observando-se nos camundongo de 7 e 14 dias a

presença de células fúngicas com formação de hifas septadas, com inicio de lesão

tecidual em 7 dias e maior alteração de vasos e tecido em 14 dias. Nos camundongos

com 28 dias de infecção também foi observado alterações. Nos camundongos com 56

dias de infecção as alterações começam a diminuir, é encontrado resquícios de células

fúngicas mortas (tabela 2). O resultado de CFU apresentou negatividade aos 28 dias pós-

infecção, porém, na análise histopatológica foi possível observar a presença de alguns

fungos. Considerando que aos 56 dias não foi observada a presença de fungos íntegros,

possivelmente os mesmos não estavam mais viáveis aos 28 dias. Nos controles sem

infecção foi observado ausência de fungo e de lesão. Resultados histopatológico (figura

9).

Figura 8 – Alteração comportamental de camundongo Swiss infectados com C.

parapsilosis por via endovenosa. a) controle negativo, sem infecção por C. parapsilosis.

b) Camundongo Swiss com 28 dias de infecção com C. parapsilosis apresentando

alteração comportamental, c) com 56 dias de infecção com Candida parapsilosis.

Apresentando alteração comportamental e controle sem alteração comportamental.

Tabela 2. Alterações histopatológicas em cérebro de camundongos Swiss

infectados com Candida parapsilosis.

grupos Alterações

7 dias

Início de desorganização tecidual; presença de leveduras e hifas do fungo.

14 dias

Desorganização tecidual acentuada;

presença de hifas; alteração de vasos (vasculite); aumento do conjuntivo q reveste

(meninges).

28 dias

Presença de hifas e início de resquícios de células fúngicas mortas; necrose ;

56 dias

Presença de hifas e resquícios de células fúngicas mortas; tecido em processo de

cicatrização.

HE – 100x Grocott – 100x Picrosírius - 100x

a) b)

C-

14d

28d

)

56d

Figura 9 – Análise histopatológica do cérebro dos animais infectados com 7, 14, 28,

56 dias de infecção e animal controle.

1.6.8. ELISA para determinação de nível de IgG anti-mielina no plasma

Os resultados obtidos não demonstraram diferenças significativas entre todos os grupos

analisados (p>0.05), animais controle (2,358 ± 0,7482) e infectados com 7 (2,216 ±

0,5593), 14 (3,086 ± 1,330), 28 (2,126 ± 0,4915) e 56 dias de infecção (2,664 ± 0,3384)

(Figura 10).

mielina

contro

ias

14 dias

dia

ias

grupos

D.O. 492nm

Figura 10 – Nível de IgG anti-mielina humana em plasmas de camundongos

infectados com C. parapsilosis. Resultado de ELISA em DO a 492nm em grupo de

animais controle, 7, 14, 28 e 56 dias de infecção. Resultados não apresentam diferença

significativa (p>0.05).

1.6.9. Determinação do nível de IL-17 em amostras de cérebro no decorrer da infecção

Os resultados obtidos demonstraram diferença significativa apenas entre grupo controle

(186,3 ± 63,77) e grupo 56 dias de infecção (75,51 ± 56,50). Os demais grupos não

demonstraram diferenças significativas (p>0.05), animais infectados com 7 (110,0 ±

85,59), 14 (99,68 ± 56,18) e 28 dias de infecção (189,0 ± 95,48) (Figura 11).

IL-17

ontr

ole

7 d

ias

56 dias

100

150

200

250

grupos

pg/mL

Figura 11 – Dosagem de níveis de IL-17 em amostra de cérebro dos animais

infectados com C. parapsilosis (n=40) e controle sem infecção (n=10). Resultados

apresentam diferenças significativas apenas no grupo controle comparado com grupo

com 56 dias de infecção(p> 0.05).

1.7. DISCUSSÃO

No presente trabalho foi observada fungemia significativa em baço e fígado de

camundongos infectados com C. parapsilosis por via endovenosa somente no período de

7 dias pós-infecção e não nos períodos posteriores, sugerindo a eliminação do fungo por

sistema imune. Possivelmente a eliminação do fungo no período posterior seja devido a

indução de resposta imune especifica, não excluindo a possibilidade também da atuação

da imunidade inata na fase inicial. Esse resultado é esperado se considerarmos que se

trata de espécie de microrganismo de baixa virulência, segundo Trofa (2008).

Considerando que o microrganismo apresenta vida intracelular, a principal resposta

protetora deve ser a imunidade celular envolvendo a sub população de linfócitos Th1. Os

nossos resultados de avaliação de resposta imune celular por teste de DTH

demonstraram resposta significativa a partir de 14 dias de infecção aumentando no

decorrer dos dias, apresentando a maior resposta celular no grupo de 56 dias de infecção

e coincidente com o período de negativação de CFU dos órgãos portanto concordante

com a importância da resposta celular.

Embora o resultado de CFU tenha sido negativo aos 28 dias pós-infecção, na análise

histopatológica foi possível observar a presença de alguns fungos, principalmente na

forma de hifas-septadas. Considerando que aos 56 dias não foi observada a presença de

fungos íntegros, possivelmente os mesmos não estavam mais viáveis aos 28 dias.

Avaliação de resposta imune celular demonstrou níveis plasmáticos elevados de INF-γ

nos animais com 28 e 56 dias de infecção, sugerindo a indução de resposta imune celular

de padrão Th1, resposta mais relevante na proteção.

Trabalhos recentes demonstram também a importância de anticorpos nas infecções

fungicas como por Criptococcus neoformas e C. albicans (NETO et al., 2000; SILVA et al.,

2008). Assim foi realizada a avaliação de nível de IgG anti-CFA de C. parapsilosis e os

resultados demonstraram aumento significativo nos grupos de 28 e 56 dias de infecção

em relação aos demais grupos (p<0.05). Portanto embora a imunidade celular seja o

principal mecanismo de defesa, os anticorpos produzidos também devem apresentar

atividade complementar no controle da fungemia.

De forma interessante, no período tardio mesmo com a negatividade de CFU no baço e

fígado foi observada alteração comportamental nessa fase. Portanto foi adicionada a

analise de carga fúngica e histopatológica em amostras de cérebro. Concordando com os

dados de CFU de baço e fígado, foi observada também carga fúngica elevada no cérebro

somente no período de 7 dias. O que sugere que o referido isolado apresenta tropismo

cerebral todavia com a geração de respostas imunes especificas deve ocorrer controle de

infecção no cérebro. Também concordando com as alterações comportamentais, foi

observado aumento de lesões cerebrais no período tardio, sugerindo que componentes

de fungos mortos e ou as respostas imunes especificas geradas participarem nesse efeito

patológico tardio no cérebro.

A acessibilidade do sistema imunitário ao SNC é diferente devido à três grandes maneiras

(FURTADO et al.; 2009). A presença de uma barreira hemato-encefálica; a ausência de

vasos linfáticos, e a ausência de parênquima as células (CROSS et al., 1990;

RANSOHOFF et al., 2003; ALOISI et al., 2000).

No entanto, diversas patologias no SNC são acionados por perturbações neste equilíbrio

com o acúmulo de células T e desenvolvimento de inflamação (FURTADO et al.; 2009).

Como resultado da inflamação, a mielina e micróglia são fagocitados por macrófagos

ativados (KWIDZINSKI & BECHMANN, 2007), o que poderia também ocorrer danos

devido a atuação de anticorpos autoimunes a mielina. O presente trabalho analisou nível

plasmático de IgG anti-mielina e os resultados obtidos demonstraram nível similar de IgG

anti-mielina nos grupos de animais infectados, independentemente de período, com o

controle não infectado, sugerindo que a destruição tecidual do cérebro não se deve a

indução de auto anticorpos anti-mielina.

A citocina IL-17 pode mediar a proteção contra patógenos extracelulares no recrutamento

de neutrófilos, mas também pode causar imunopatologia em vários modelos de

autoimunidade (WEAVER et al., 2007; GAFFEN, 2008). Várias evidência indicam que o

TH-17 está envolvido no aparecimento e manutenção de encefalomielite autoimune

experimental (EAE) (STEINMAN, 2007). EAE é uma doença do SNC mediada por células

TCD4

, que é usado como um modelo da esclerose múltipla, uma doença inflamatória,

desmielinizante do SNC humano (REBOLDI et al., 2009). Considerando que a IL-17

apresenta papel regulador da resposta imune celular e considerando a possibilidade de

participação de forma indireta modulando resposta imune local contribuindo na lesão

cerebral, o presente trabalho determinou nível de IL-17 no tecido cerebral. No entanto não

foi observada alteração significativa.

A citocina pró-inflamatórias IFN-γ induz a expressão de indoleamine 2,3-dioxigenase

(IDO) em diversos tipos celulares, incluindo macrófagos, células dendríticas (DC), e

fibroblastos (CARLIN et al., 1989), sendo que essa expressão representa um importante

mecanismo de resistência antimicrobiana aos parasitas (KWIDZINSKI & BECHMANN,

2007; PFEFFERKORN, 1984; SANNI et al., 1998; SILVA et al., 2002) e de bactérias

(NETTELNBREKER, 1998; BEATTY et al., 1994; MACKENZIE et al., 1998). A expressão

de IDO pode ocorrer no cérebro e micróglia de murinos e humanos sob o tratamento com

IFN-γ (ALBERATI-GIANI et al., 1996; HEYES et al.; 1996). A indução de IDO no SNC é

delicada porque vários metabólitos da via kynurenine apresentam ter efeitos neurotóxicos

bem estabelecidos (SCHWARCZ et al,; 1983).

IDO representa a primeira taxa de enzima limitante da via kynurenine em tecidos extra-

hepáticos (KWIDZINSKI & BECHMANN, 2007) e a indução dessa via pode estar

envolvido em down modulation de uma infecção fúngica do trato gastrintestinal com a C.

albicans (BOZZA, 2005).

Os metabolitos dessa via kynurenine no cérebro, apresenta dois produtos de degradação

do triptofano (Trp), ácido quinolínico (Quin) e ácido 3-hidroxiantranílico (3-HAA), que

apresentam propriedades neurotóxicas. (STONE & PERKINS, 1981).

Em concentrações micromolares, o efeito citotóxico de Quin pode ser observada em

culturas de células do córtex neuronal (CHIARUGI et al., 2001). O mesmo efeito é

encontrado in vivo, onde injeção intracerebral de Quin induz lesões citotóxicas

(SCHWARCZ et al., 1983).

O segundo metabolito neurotóxico do Trp é 3-HAA, que é instável sob condições

fisiológicas. Após auto-oxidação espontânea, 3-HAA produz radicais reativos, que por sua

vez, induzir estresse oxidativo e apoptose em neurônios (EASTMAN & GUILARTE, 1990;

OKUDA et al., 1996; CHIARUGI et al., 2001).

Por isso, KWIDZINSKI & BECHMANN (2007) sugerem que o trauma induzido pela

ativação IDO induz dano neuronal secundário através acúmulo de metabólitos

neurotóxicos.

Assim, durante a infecção, a indução de IDO pode exercem efeitos divergentes: por um

lado, limita o crescimento do agente infeccioso, mas também potencializa a resposta

imune (KWIDZINSKI & BECHMANN, 2007).

Embora o nível elevado de INF tenha sido observado no plasma, uma hipótese seria que

esse aumento poderia induzir a expressão de IDO e ativando a via Kynurenine, poderia

causar uma neuroinflamação mediada por metabolitos neurotóxicos da degradação do

triptofano (Trp), explicando o distúrbio neurológico apresentado pelos animais, o que

requer estudos adicionais.

Concluímos pelos resultados obtidos que o isolado fúngico C. parapsilosis apresenta

afinidade pelos tecidos analisados (baço, fígado e cérebro), com potencial de causar

alterações comportamentais em camundongos e o mesmo agente é capaz de induzir a

resposta imune celular, possivelmente Th1, além de resposta humoral no decorrer da

infecção. Essa resposta imune poderia estar participando tanto na proteção, quanto

causando uma resposta exacerbada e levando a uma lesão a nível de SNC, o que requer

estudos adicionais.

1.8. CONCLUSÕES

1.8.1. Isolado identificado como C. parapsilosis apresenta tropismo por tecido hepático,

esplênico e cerebral de camundongos.

1.8.2. A permanência do fungo apenas no período inicial de 7 e 14 dias pós infecção

sugere que o isolado C. parapsilosis apresenta baixa virulência em camundongos swiss.

1.8.3. O isolado clínico C. parapsilosis apresenta a capacidade de induzir resposta imune

celular, possivelmente com desvio para Th1 em camundongos swiss infectados.

1.8.4. No decorrer de infecção de camundongos swiss por isolado C. parapsilosis ocorre

aumento na resposta imune celular e humoral, ocorrendo no mesmo período diminuição e

negativaçao de fungemia, o que poderia sugerir a importância da imunidade na

resistência murina à infecção.

1.8.5. O isolado C. parapsilosis apresenta a capacidade de induzir alteração

comportamental no período tardio de infecção, levando a lesões no tecido cerebral.

1.8.6. Se esse distúrbio neurológico pode ser causado pelo aumento dos níveis da

citocina inflatória INF-γ, causando a ativação da via kynurenine e neuroinflamação

mediada por metabolitos neurotóxicos da degradação do triptofano, requer estudos

adicionais.

1.9. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

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