( PDF ) RT-PCR quantitativo em tempo real para análise do receptor de EGF em complexos cumulus-oócito colhidos por laparoscopia em cabras canindé submetidas à estimulação hormonal ovariana

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UNIVERSIDADE ESTADUAL DO CEARÁ

PRÓ-REITORIA DE PÓS-GRADUAÇÃO E PESQUISA

FACULDADE DE VETERINÁRIA

PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM CIÊNCIAS VETERINÁRIAS

KARLLIELY DE CASTRO ALMEIDA

RT-PCR QUANTITATIVO EM TEMPO REAL PARA ANÁLISE DO

RECEPTOR DE EGF EM COMPLEXOS CUMULUS-OÓCITO

COLHIDOS POR LAPAROSCOPIA EM CABRAS CANINDÉ

SUBMETIDAS À ESTIMULAÇÃO HORMONAL OVARIANA

FORTALEZA

2009

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KARLLIELY DE CASTRO ALMEIDA

RT-PCR QUANTITATIVO EM TEMPO REAL PARA ANÁLISE DO

RECEPTOR DE EGF EM COMPLEXOS CUMULUS-OÓCITO COLHIDOS

POR LAPAROSCOPIA EM CABRAS CANINDÉ SUBMETIDAS À

ESTIMULAÇÃO HORMONAL OVARIANA

FORTALEZA

2009

Dissertação apresentada ao Programa de Pós-

Graduação em Ciências Veterinárias da Faculdade de

Veterinária da Universidade Estadual do Ceará, como

requisito parcial para a obtenção do grau de Mestre

em Ciências Veterinárias.

Área de Concentração: Reprodução e Sanidade Animal

Linha de Pesquisa: Reprodução e sanidade de

pequenos ruminantes.

Orientador: Prof. Dr. Vicente José de Figueirêdo Freitas

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KARLLIELY DE CASTRO ALMEIDA

RT-PCR QUANTITATIVO EM TEMPO REAL PARA ANÁLISE DO RECEPTOR DE

EGF EM COMPLEXOS CUMULUS-OÓCITO COLHIDOS POR LAPAROSCOPIA EM

CABRAS CANINDÉ SUBMETIDAS À ESTIMULAÇÃO HORMONAL OVARIANA

Aprovada em: ___/___/___

BANCA EXAMINADORA

_____________________________

Prof. Dr. Vicente José de Figueirêdo Freitas

Universidade Estadual do Ceará

Orientador

Dissertação apresentada ao Programa de Pós-

Graduação em Ciências Veterinárias da Faculdade de

Veterinária da Universidade Estadual do Ceará, como

requisito parcial para a obtenção do grau de Mestre

em Ciências Veterinárias.

_____________________________

Prof. Dr. José Luiz Rodrigues

Universidade Federal do Rio Grande do Sul

Examinador

_____________________________

Prof. Dra. Luciana Relly Bertolini

Universidade de Fortaleza

Examinadora

_____________________________

Dra. Luciana Magalhães Melo

Universidade Estadual do Ceará

Co-orientadora

À Deus pelo dom da vida.

À família pelo mais puro e incondicional amor.

À vida por toda sua plenitude.

AGRADECIMENTOS

À Universidade Estadual do Ceará (UECE) através da Faculdade de Veterinária e ao

Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinárias (PPGCV) pela oportunidade de

realizar um mestrado de nível reconhecido e de qualidade e seriedade inquestionáveis.

À Fundação Cearense de Apoio ao Desenvolvimento Científico e Tecnológico (FUNCAP)

pela concessão da bolsa de mestrado, sem a qual este trabalho não poderia ser realizado.

À Financiadora de Estudos e Projetos (FINEP) e ao Conselho Nacional de Desenvolvimento

Científico e Tecnológico (CNPq) pelo apoio financeiro indispensável na realização de todas

as etapas desse projeto de pesquisa.

Ao Laboratório de Fisiologia e Controle da Reprodução (LFCR) pela acolhida e pelos

grandes ensinamentos gerados. Obrigada por me proporcionar conhecer a pesquisa e me

ensinar a ser aluna de iniciação científica, seguir o caminho e hoje me tornar mestre.

À Deus, ser indescritível que conhece o mais íntimo do nosso ser. Aquele que nos protege,

ampara e principalmente guia pelos caminhos mais corretos simplesmente pelo grande amor

que nos dedica em todos os momentos de nossas vidas.

Minha eterna gratidão aos meus amados pais Adalgisa de Castro de Almeida e José Almeida

da Silva por tudo de bom que me ensinaram, por cada momento de dedicação na educação e

principalmente por reafirmarem em meu ser a que caráter e educação é a maior das heranças

que se pode deixar para um filho. Por vocês o mais sublime e indescritível amor!

Aos meus queridos irmãos William, Nathaly, Davison, Michelly, Jerusa e Emanuelle pela

amorosa convivência, pela troca de experiências, pelo grande crescimento adquirido de vocês

durante todos os anos de caminhada. Sem vocês eu jamais seria tão completa!

Agradeço imensamente aos meus queridos avós Terezinha Ferreira, Gerson Rabelo (in

memorian), Maria Batista (in memorian) e Otávio Barbosa (in memorian) por tanto amor e

carinho, pelas doces recordações da infância e pelos grandes ensinamentos eternizados.

Aos meus queridos familiares Dennis, Enya Mellize, Azenete, Paulo, Rayanne, Rarisson,

Jonny, Eucilene, Danielle, Gerson, Gefferson, Geremias, Gerciana, Ivna, Cláudia, Rafaele,

Mayra, Diana, Iara, César, César Filho, Layra, Pedro, Aurélio, Graça, David, Dalisson. Davi,

Eder e os demais que aqui não foram citados, obrigada pela alegre e indispensável

convivência e pelo apoio nos momentos difíceis provando que família é a base de tudo.

Agradeço imensamente ao Dr. Vicente José de Figueirêdo Freitas por todos os ensinamentos,

pela orientação e confiança em mim depositada. Obrigada pela convivência agradável e por

me mostrar que um homem e um grande pesquisador se constrói a cada dia, com trabalho,

dedicação e diplomacia. Sempre levarei comigo grandes conhecimentos adquiridos, suas

lições de ética e seu grande caráter.

À Dra. Luciana Magalhães Melo, dedico um agradecimento especial. Uma mulher que se

dedica à pesquisa. Uma pesquisadora na essência da palavra, pessoa que dedicou suas idéias,

seu tempo, seu trabalho e sua sabedoria na orientação e execução desse trabalho. Muito

obrigada pelos grandes ensinamentos e sincera dedicação!

Aos Professores Marcelo Bertolini e Luciana Bertolini, pela amizade, respeito, colaboração e

contribuições científicas importantes e necessárias durante o período de agradável

convivência junto ao LFCR. Obrigada pelo grande empenho na tradução do artigo.

À grande e fiel amiga Alexsandra Fernandes Pereira pessoa que sempre me apoiou, cuidou,

respeitou e colaborou em todas as fases dessa caminhada. Obrigada por todos os

ensinamentos profissionais e principalmente pela amizade dedicada todos esses anos. Amiga-

irmã podes contar comigo, estarei sempre ao seu dispor. Somos eternamente responsáveis

pelo que cativamos!

Minha eterna gratidão aos amigos Suely Avelar, Emanuel Maia, Dárcio Ítalo e Elizabeth

Saraiva por mostrarem que a amizade surge e perdura para sempre quando nos dedicamos a

cuidar dela com carinho e respeito. Obrigada pelo amor, carinho e grande companheirismo.

Agradeço em especial aos membros da banca examinadora Dra. Luciana Magalhães Melo,

Dr. José Luiz Rodrigues, Dra. Luciana Relly Bertolini, pela disposição em contribuir no

engrandecimento desse trabalho.

Aos amigos Pós-Graduandos do LFCR Victor Hugo, Francisco Carlos, Raylene e João

Batista pela colaboração, coleguismo e profissionalismo e por me mostrarem a cada dia que

sempre é necessário estender a mão e que sempre temos algo a ensinar e aprender na

convivência diária. Obrigada pelos inesquecíveis momentos e grandes ensinamentos.

Aos queridos alunos de iniciação científica do LFCR Agostinho, Érica, Cláudia, Carlos

Henrique, Antônio Carlos, Talles, Jefferson, Hayanne, Eudislane, Maiara, Igor os outros

amigos que passaram pelo LFCR durante a realização do mestrado. Obrigada pela alegre

convivência, pelo carinho, amizade, respeito e dedicação. Sem a grande colaboração de todos

a execução desse trabalho teria sido muito mais difícil.

Aos funcionários César, Selmar, e Cícero pelos momentos agradáveis vividos no laboratório.

Agradeço o coleguismo, a dedicação e a colaboração em cuidar do nosso ambiente de

trabalho e dos animais. Obrigada pelas lições de vida ensinadas a cada dia.

Agradeço aos amigos Hermeson, Eliene, Iran, Leonel, Conceição, Larissa, Valesca, Érika,

Davyson, Sabrina, Suyanne, Camilla, Greta, Lucilene (in memorian), Isabelle e Genário Jr.

pelo carinho e consideração dedicados. Por me ensinarem que amizade é jamais deixar cair!

A todos os amigos da turma de mestrado, em especial Almir, Antônio Filho, Michelle,

Natalie, Petrônio, Luduina, Gleidson e Liliane pelas alegrias, aprendizado e pelos grandes

momentos compartilhados durante o curso.

Aos professores do Programa de Pós-Graduação em Ciências Veterinárias por toda a

dedicação e preocupação em formar novos mestres com dignidade e respeito.

Agradeço a todos os amigos e colegas que de maneira direta ou indireta estiveram torcendo

por mim e que colaboraram na conquista dessa etapa da minha caminhada.

À vontade de sempre querer ir além, de desistir jamais!

RESUMO

A estimulação ovariana com hormônio folículo estimulante (FSH) exógeno tem sido

utilizada para aumentar o número de oócitos viáveis para a colheita de oócitos por

laparoscopia (COL) em cabras. O objetivo desse estudo foi determinar o efeito de dois

protocolos de estimulação ovariana sobre a expressão do receptor de EGF (EGFR) em

complexos cumulus-oócito (CCOs), recuperados por COL em caprinos. Após análise por

qRT-PCR em tempo real, o perfil de expressão de CCOs classificados morfologicamente foi

comparado antes e após a maturação in vitro (MIV), nos distintos protocolos de FSH. A

utilização do protocolo com maior número de injeções de FSH a um curto intervalo de tempo

resultou em CCOs GI/GII com um maior nível de expressão de EGFR nas células do

cumulus, mas não no oócito, que foi correlacionado com a maior competência meiótica após

a MIV. Com base no perfil de maturação e padrão de expressão do EGFR observado entre os

grupos, a seleção morfológica dos CCOs antes da MIV não foi um bom parâmetro para

prever a competência meiótica do oócito. Portanto, o EGFR pode ser um bom candidato a

marcador por mostrar indiretamente a qualidade oocitária em caprinos. O processo de MIV

de CCOs caprinos aumentou a expressão de EGFR em oócitos e células do cumulus, o que

pareceu estar associado com a retomada da meiose. Em resumo, a expressão diferencial de

EGFR em células do cumulus de caprinos foi associada com o processo de pré-maturação in

vivo, e por sua vez, o aumento da regulação no CCO foi associado com a maturação. A

relação de causa e efeito entre os níveis de expressão aumentados, particularmente no oócito,

e a competência do mesmo necessitam ainda ser investigados.

Palavras-chave: Receptor de EGF. qRT-PCR em tempo real. Caprino. Oócito. Células do

cumulus.

ABSTRACT

Ovarian stimulation with exogenous Follicle Stimulating Hormone (FSH) has been used to

increase the number of viable oocytes for laparoscopic oocyte recovery (LOR) in goats. The

aim of this study was to evaluate the effect of two FSH protocols for ovarian stimulation in

goats on the expression pattern of EGF receptor (EGFR) in cumulus-oocyte complexes

(COCs) recovered by LOR. After real-time qRT-PCR analysis, expression profiles of

morphologically graded COCs were compared prior to and after in vitro maturation (IVM) in

the different FSH protocols. The use of a protocol with higher number of FSH injections at a

shorter interval resulted in GI/GII COCs with a higher level of EGFR expression in cumulus

cells, but not in the oocyte, which was correlated with an elevated meiotic competence

following IVM. Based on the maturation profile and EGFR expression patterns observed

between groups, the morphological selection of COCs prior to IVM was not a good predictor

of oocyte meiotic competence. Therefore, EGFR may be a good candidate marker for

indirect prediction of goat oocyte quality. The IVM process of goat COCs increased the

EGFR expression in oocytes and cumulus cells, which seemed to be strongly associated with

the resumption of meiosis. In summary, differential EGFR expression in goat cumulus cells

was associated with the in vivo prematuration process, the up regulation in the entire COC

was associated with IVM. Cause-and-effect relationships between such increased expression

levels, particularly in the oocyte, and oocyte competence itself still need to be further

investigated.

Keywords: EGF receptor. Real-time qRT-PCR. Goat. Oocyte. Cumulus cells.

LISTA DE FIGURAS

REVISÃO BIBLIOGRÁFICA

Figura 1- Desenho esquemático da distribuição das organelas citoplasmáticas

durante a maturação e formação do zigoto...........................................................

Figura 2 - Dinâmica dos filamentos no citoesqueleto durante a maturação

citoplasmática e nuclear........................................................................................

Figura 3 - Desenvolvimento oocitário durante a oogênese..................................

Figura 4 - Mecanismo molecular de maturação através da interação oócito-

células do cumulus após o pico pré-ovulatório de gonadotrofinas. Células do

cumulus (azul).......................................................................................................

Figura 5 - Perfil oscilatório do fator promotor de maturação (MPF) durante a

retomada da meiose e alcance da metáfase II.......................................................

CAPÍTULO 1

Figure 1- Specificity, linearity and efficacy of EGFR and GAPDH qRT-PCR

amplifications in oocytes and cumulus cells. Derivative melting curves of

EGFR and GAPDH amplicons in oocytes (A) and cumulus cells (B). Negative

controls (arrows) were constituted of mRNA templates without reverse

transcriptase. The inserts in panels A and B show the eletroforetic analysis of

the products. M: 100 bp DNA ladder. Standard curves for EGFR (upper line)

and GAPDH (lower line) amplifications in COCs (C). The curve slopes,

efficiency values (E) and square of Pearson correlation coefficients (R

) were

plotted……………………………………………………………………………

Figure 2 - Real-time qRT-PCR analysis of EGFR expression in goat (A)

oocytes and (B) cumulus cells from graded COCsobteined from the five-dose

or three-dose FSH treatment groups for ovarian stimulation. Shown are the

fold differences in mRNA expression after normalization to the internal

standard (GAPDH). The mRNA levels in GI/GII oocytes and cumulus cells,

both for the five-dose FSH treatment, were arbitrarily set to one-fold for oocyte

and cumulus cells groups, respectively. Lower panels in A and B show the

eletroforetic analysis of the EGFR and GAPDH amplicons. Histograms with

columns with distinct superscripts differ, for p<0.05 in A and p<0.01 in B…….

Figure 3 - Real-time qRT-PCR analysis of EGFR expression in goat (A)

oocytes and (B) cumulus cells from pre- and post-IVM COCs obtained from

the five-dose or three-dose FSH treatment groups for ovarian stimulation.

Shown are the fold differences in mRNA expression in the immature (OI),

mature (MII) and non-competent (NC) oocytes, and in cumulus cells from pre-

and post-IVM COCs, after normalization to the internal standard (GAPDH).

The mRNA levels in OI and pre-IVM cumulus cells, both for the five-dose

treatment, were arbitrarily set to one-fold for oocyte and cumulus cells groups,

respectively. Lower panels in A and B show the eletroforetic analysis of the

EGFR and GAPDH amplicons. Histograms with columns with distinct

superscripts differ, for p<0.001 in A and p<0.05 in B…………………………..

LISTA DE TABELAS

CAPÍTULO 1

Table 1 - Oligonucleotides used for quantitative real-time polymerase chain

reaction analysis of gene expression in goat oocytes and cumulus cells………..

Table 2 - Cumulus-oocyte complexes (COCs) recovered from goats after five-

dose or three-dose hormonal treatments for ovarian stimulation………………..

LISTA DE ABREVIATURAS E SIGLAS

AMPc - AMP cíclico

CIV - Cultivo in vitro

CCOs - Complexos cumulus-oócito

COCs - cumulus-oocyte complexes

COL - Colheita de oócitos por laparoscopia

Ct - Threshold cycle

Cx-43 – Conexina 43

DNA- Ácido desoxirribonucléico

EGF - Fator de Crescimento Epidermal

EGFR - Receptor para Fator de Crescimento Epidermal

eCG - Gonadotrofina Coriônica eqüina

FIV - Fecundação in vitro

FSH - Hormônio Folículo Estimulante

GVBD - Vesícula Germinativa Rompida

LH - Hormônio Luteinizante

LOR - Laparoscopic Oocyte Recovery

MAPK - Proteína quinase ativada por mitógenos

MIV - Maturação in vitro

MPF - Fator Promotor de Maturação

M I - Metáfase I

M II - Metáfase II

mg - Miligrama

mL - Mililitro

mm - Milímetro

μg - Micrograma

μM - Micromolar

PCR - Reação em Cadeia da Polimerase

PDE3 – Fosfodiesterase 3

PIV - Produção in vitro

PIK3 – Fosfatidil-inositol 3 kinase

PKA - Proteína kinase A

PKB – Proteína kinase B

PKC – Proteína kinase C

qPCR - PCR quantitativo

RNA - Ácido ribonucléico

RNAm - RNA mensageiro

TCM - Meio de cultivo de tecido

VG - Vesicular Germinativa

UI - Unidades Internacionais

SUMÁRIO

1 INTRODUÇÃO.........................................................................................................

2 REVISÃO DE LITERATURA................................................................................

2.1. PRODUÇÃO IN VITRO (PIV) DE EMBRIÕES CAPRINOS...........................

2.1.1 FONTE DE OÓCITOS..............................................................................

2.1.2 MATURAÇÃO IN VITRO.........................................................................

2.1.2.1 MATURAÇÃO CITOPLASMÁTICA.........................................

2.1.2.2 MATURAÇÃO NUCLEAR.........................................................

2.1.2.3 ASPECTOS MOLECULARES E INTERAÇÃO OÓCITO-

CÉLULAS DO CUMULUS......................................................................

2.1.3 EGF E MATURAÇÃO OOCITÁRIA......................................................

2.2. PCR QUANTITATIVO EM TEMPO REAL......................................................

2.2.1 PRINCÍPIOS...............................................................................................

2.2.2 APLICAÇÃO EM EXPRESSÃO GÊNICA...............................................

3 JUSTIFICATIVA......................................................................................................

4 HIPÓTESE CIENTÍFICA.......................................................................................

5 OBJETIVOS..............................................................................................................

5.1 GERAL...............................................................................................................

5.2. ESPECÍFICOS...................................................................................................

6 CAPÍTULO 1.............................................................................................................

7 CONCLUSÕES.........................................................................................................

8 PERSPECTIVAS......................................................................................................

9 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS....................................................................

APÊNDICE..................................................................................................................

APÊNDICE A...............................................................................................................

APÊNDICE B................................................................................................................

1 INTRODUÇÃO

A produção in vitro de embriões (PIV) em pequenos ruminantes é uma ferramenta para

a obtenção de embriões a um baixo custo para pesquisas visando compreender os processos

fisiológicos bem como para aplicações em biotecnologias emergentes como a transferência

nuclear e a transgênese (BALDASSARE et al., 2002). Além disso, a aplicação da PIV e da

transferência de embriões inter-espécie têm sido propostas como uma estratégia para salvar

espécies ameaçadas de extinção (PTAK et al., 2002).

A técnica de PIV envolve as etapas de colheita de oócitos, maturação in vitro (MIV),

fecundação in vitro (FIV) e cultivo in vitro (CIV). Tais etapas ainda não se encontram

totalmente elucidadas em caprinos. Investigações são necessárias para se conhecer mais

profundamente quais os melhores meios e as condições ideais para o sucesso das diferentes

etapas, a fim de se obter resultados satisfatórios com a referida técnica. Assim, diversos

fatores podem influenciar de forma direta ou indireta durante esse processo e interferir no

sucesso desta biotecnologia tornando-a pouco eficiente.

Desde o nascimento de cabritos a partir de embriões produzidos in vitro, avanços

foram obtidos no que concerne a maturação final dos gametas (MERMILLOD et al., 1999),

pesquisas sobre as condições de cultivo adequadas para a maturação do oócito (COGNIÉ et

al., 2003) e o desenvolvimento embrionário (THOMPSON, 2000) mostraram saldo positivo

na PIV de embriões em caprinos.

Para obter melhorias na produção de embriões in vitro, torna-se necessário

compreender uma das etapas mais importantes do processo, a qual é denominada maturação

do oócito. Assim, elucidar os mecanismos que regem e influenciam esse processo é um

desafio para a reprodução animal.

A maturação oocitária é um longo processo durante o qual o oócito adquire a

habilidade para a fecundação e suportar os estágios de desenvolvimento culminando com a

ativação do genoma embrionário. Diferentes fatores podem influenciar o sucesso da

maturação, dentre eles destacam-se o processo de estimulação ovariana, a qualidade dos

oócitos bem como a composição do meio utilizado nessa etapa. Assim, estudar os métodos de

estimulação ovariana e verificar a influência destes sobre a competência oocitária à

maturação in vitro bem como as alterações moleculares envolvidas nesse processo funciona

como uma ferramenta para desvendar como esse processo ocorre.

Os caprinos da raça Canindé estão dentre as principais raças naturalizadas do

Nordeste do Brasil. Acredita-se sua origem tenha sido no vale do Canindé, no Estado do

Piauí e que em sua formação tenha a participação da raça Grisone Negra da Suíça

(MARIANTE et al., 2003). A raça Canindé destaca-se dentre outras raças pela sua superior

produção leiteira, chegando a produzir aproximadamente 1,5 litros de leite por dia

(SANTANA et al., 2000). Em virtude do cruzamento com raças exóticas visando à obtenção

de animais com maior potencial leiteiro, houve uma redução do número de animais dessa

raça. Nesse sentido, a utilização de tecnologias e programas visando à recuperação dos

recursos genéticos naturais bem como o correto manejo do germoplasma a ser conservado é

considerada como uma medida necessária para evitar possíveis perdas genéticas ou mesmo

extinção de raças (EGITO et al., 2002). Desta forma, a utilização de oócitos obtidos de

cabras Canindé após estimulação ovariana pode funcionar como uma ferramenta para

desvendar os processos fisiológicos nesses animais tão pouco estudados quanto aos aspectos

reprodutivos.

No que se refere aos estudos de biologia molecular, diversos trabalhos tem utilizado a

avaliação de expressão gênica correlacionando com os processos fisiológicos e patológicos

visando compreender como estes ocorrem. Nesse sentido, é conhecido que o fator de

crescimento epidermal (EGF) pode estar envolvido na regulação do crescimento folicular e

na maturação de oócitos caprinos (GALL et al., 2004). Estudos anteriores mostraram que o

estudo do receptor de EGF (EGFR) permitiu correlacionar como o EGF influencia no

desenvolvimento final do oócito (GALL et al., 2004; PROCHAZKA et al., 2003).

2 REVISÃO DE LITERATURA

2.1. PRODUÇÃO IN VITRO (PIV) DE EMBRIÕES CAPRINOS

A PIV de embriões é uma biotécnica bastante utilizada atualmente em aplicações

comerciais na propagação de animais de alto valor genético bem como para a realização de

estudos em biotecnologias emergentes como a transferência nuclear (SCHURMANN et al.,

2006) e a transgênese (FREITAS et al., 2007).

Essa biotecnologia envolve as etapas de colheita de oócitos, maturação, fecundação e

cultivo in vitro. Contudo, para a realização destas faz-se necessário compreender e dominá-

las a fim de se obter resultados satisfatórios. Diversos fatores podem influenciar no sucesso

da PIV, tais como a fonte e a qualidade do oócito, o momento da realização da FIV bem

como as condições de cultivo utilizadas (COGNIÉ et al., 2003). Estas variáveis apresentam

um papel importante para a obtenção de embriões com qualidade e viabilidade desejáveis.

2.1.1 FONTE DE OÓCITOS

A colheita de oócitos de boa qualidade é o primeiro passo para o sucesso da PIV. Em

mamíferos, o gameta feminino encontra-se no folículo ovariano, a unidade básica funcional e

estrutural do ovário, podendo a colheita oocitária ser realizada por diferentes métodos.

Em pequenos ruminantes, os métodos mais utilizados são: aspiração de folículos a

partir de ovários colhidos post mortem ou por ovariectomia (BORMANN et al., 2003) ou

aspiração de folículos após exposição de ovários por laparotomia ou por laparoscopia

(BALDASSARRE et al., 2002; GIBBONS et al., 2007).

Ovários de abatedouro são uma fonte barata e abundante de oócitos que permite a

aspiração e obtenção de um número considerável de folículos por animal (KATSKA-

KSIAZKIEWICZ et al., 2007). O procedimento de aspiração é simples e rápido, e embora o

número de oócitos obtidos após aspiração in vivo seja reduzido, este método passou a ser o

de eleição para a obtenção de oócitos de fêmeas após o abate.

O método de colheita oocitária por laparoscopia (COL) permite recuperar um maior

número de estruturas para a PIV de embriões a partir de doadoras estimuladas com um

tratamento gonadotrófico para desenvolvimento folicular (BALDASSARRE et al., 2007).

Desta maneira, em programas de PIV, faz-se necessário desenvolver protocolos eficientes de

estimulação ovariana que possibilitem obter um maior número de oócitos viáveis para a

maturação in vitro.

A COL é considerada uma ferramenta menos invasiva que permite utilizar uma fêmea

como doadora por um período mais prolongado. A colheita laparoscópica permite utilizar

fêmeas com estado sanitário controlado, o que torna viável sua utilização na PIV de

embriões. A utilização de técnicas e equipamentos apropriados para a aspiração folicular

pode minimizar traumas no trato reprodutivo das fêmeas evitando a formação de aderências

(BALDASSARE et al., 2003b).

Na tentativa de otimizar a COL, as fêmeas têm o ciclo estral sincronizado através de

esponjas vaginais, impregnadas com progestágeno, além de receberem uma injeção

luteolítica e o tratamento subseqüente de estimulação ovariana (BALDASSARRE et al.,

2004; BALDASSARRE, 2007; KOEMAN et al., 2003).

Estudos anteriores verificaram que as gonadotrofinas são criticamente importantes para

o crescimento folicular, sendo o hormônio folículo-estimulante (FSH) considerado um

hormônio chave nesse processo. A estimulação ovariana com FSH resultou no crescimento e

diferenciação de folículos a partir de 2,5 mm de diâmetro (EVANS, 2003). Desta forma,

investigações são necessárias para relacionar os mecanismos pelos quais os hormônios

controlam o desenvolvimento nos estádios finais de desenvolvimento oocitário in vivo. Tais

estudos podem fornecer informações importantes que podem levar a melhorias nos

tratamentos hormonais e assim obtenção de oócitos de melhor competência e

conseqüentemente melhorar a maturação in vitro de oócitos caprinos.

O FSH é geralmente administrado em doses fracionadas, duas vezes ao dia, durante os

últimos três ou quatro dias do tratamento progestágeno de 9 a 11 dias. Isto é necessário em

virtude da meia-vida curta desta gonadotrofina. Alguns protocolos de superestimulação

ovariana combinam FSH e gonadotrofina coriônica eqüina (eCG), administradas num mesmo

momento, produzindo desenvolvimento folicular e quantidade de oócitos colhidos similar

àqueles obtidos em resposta a múltiplas injeções de FSH isoladamente (KATSKA-

KSIAZKIEWICZ et al., 2004). A alta dose de FSH é capaz de recrutar, mas não de sustentar

o desenvolvimento de um grupo de folículos FSH-responsivos (BALDASSARRE et al.,

2003b). Assim a associação de FHS e eCG parece afetar positivamente a estimulação

ovariana, uma vez que o eCG apresenta uma meia-vida longa (HAFEZ, & HAFEZ, 2004) e

possibilita a continuação do crescimento folicular iniciado pelo FSH. A superestimulação em

dose única é preferível ao tratamento de doses múltiplas pela praticidade e promove um

resultado final semelhante.

Estudos realizados por Baldassare et al., (2003b), verificaram que a estimulação

ovariana com FSH em cabras submetidas a diferentes sessões de COL resultou na

disponibilidade de 15,7 ± 9 folículos por doadora e uma recuperação média de 13,4 ± 8

oócitos por animal. Em cabras tratadas com 180 mg de pFSH a intervalos de 12 horas foram

obtidos 24,5 ± 8,6 oócitos disponíveis por doadora (KATSKA-KSIAZKIEWICZ et al.,

2004). Segundo Baldassarre et al., (2002), a estimulação ovariana associando eCG e FSH 36

horas antes da COL mostrou resultados semelhantes aos obtidos pela aplicação de FSH em

múltiplas doses. Os resultados obtidos por Baldassarre et al., (2003b) mostraram que a COL

permite a melhor utilização das fêmeas doadoras de oócitos a partir da realização de várias

sessões em um mesmo animal, mantendo um número de folículos e oócitos semelhante ao

passar sessões de colheita.

2.1.2. MATURAÇÃO IN VITRO

A MIV é considerada uma das etapas mais importantes da produção in vitro de

embriões. Durante essa fase, diversas alterações são observadas no oócito. Essa etapa

consiste em proporcionar, sob condições artificiais, o desenvolvimento dos oócitos para a

fecundação e o subseqüente desenvolvimento embrionário. Contudo, mesmo apresentando

elevada heterogeneidade, os oócitos imaturos destinados à PIV sofrem influência das

condições de cultivo durante a MIV (COGNIÉ & POULIN, 2006). Assim, torna-se

necessário realizar a MIV em condições favoráveis ao oócito uma vez que o

desenvolvimento embrionário é influenciado por eventos que ocorrem durante o processo de

maturação oocitária.

A MIV é um conjunto de alterações sofridas pelo oócito que o torna apto à fecundação.

Dois eventos definem o sucesso do processo, a maturação nuclear e citoplasmática (TIBARY

et al., 2005). Somente uma pequena proporção de oócitos maturados in vitro pode completar

a maturação citoplasmática, conferindo a habilidade para suportar o desenvolvimento

embrionário inicial (CROZET et al., 1995). Nesse sentido, a qualidade oocitária é

considerada o fator chave que influencia a PIV de embriões (KATSKA-KSIAZKIEWICZ et

al., 2007).

A competência ao desenvolvimento durante a MIV é determinada por fatores como

protocolos de estimulação ovariana, o folículo de origem e das condições de maturação

utilizadas nesse processo.

No que se refere aos meios utilizados para a MIV, muitos protocolos já foram

desenvolvidos com elevadas taxas de maturação ao final do processo (COGNIÉ & POULIN,

2006; KATSKA-KSIAZKIEWICZ et al., 2007).

Os protocolos de MIV desenvolvidos utilizam soro no meio de maturação, pois este é

considerado uma fonte de hormônios e fatores de crescimento. A proporção desses fatores na

composição no soro é desconhecida, o que dificulta a mimetização completa do processo de

MIV (TAJIK & ESFANDABADI, 2003).

Rodríguez-Dorta et al. (2007) utilizaram para a espécie caprina o meio TCM 199

suplementado com 10 ng/mL de EGF, acrescido de 100 μM de cisteamina, obtendo sucesso

na PIV de embriões desta espécie. Além da composição do meio de maturação utilizado

fatores tais como, temperatura, atmosfera gasosa e período de incubação apresentam

importância fundamental nos resultados finais do processo (COGNIÉ & POULIN, 2006).

Contudo, há muito ainda a se elucidar sobre as condições ideais para a realização da MIV na

espécie caprina, necessitando-se verificar o sistema de cultivo mais adequado para suportar a

maturação oocitária.

O processo de maturação oocitária envolve além da maturação nuclear, a maturação

citoplasmática e molecular, nas quais ocorre rearranjo nas organelas (FAIR et al., 1995) e

síntese de RNA mensageiro (WU et al., 1996) pontos considerados igualmente importantes

para a posterior fecundação e o subsequente desenvolvimento embrionário.

2.1.2.1. MATURAÇÃO CITOPLASMÁTICA

A maturação citoplasmática é um processo pelo qual diversas mudanças ultra-

estruturais ocorrem em termos de morfologia e redistribuição de organelas no citoplasma do

oócito (FERREIRA et al., 2009). A primeira evidência da competência a maturação

citoplasmática encontra-se nas alterações ultra-estruturais, onde se observa o fim da fase de

preparação (síntese de RNA e proteínas), por modificações nos processos de transcrição e

tradução (FAIR et al., 1995). Tais modificações ocorrem inicialmente durante a oogênese e

encontram-se altamente correlacionadas a competência oocitária (HYTELL et al., 1997). O

processo de maturação citoplasmática inclui ainda o acúmulo de moléculas específicas

importantes que preparam o oócito para fecundação e subseqüente desenvolvimento

embrionário (HUMBLOT et al., 2005).

Durante essa fase de desenvolvimento, o oócito aumenta de tamanho, acompanhado do

acúmulo de RNAm, proteínas, substratos e nutrientes, os quais são pré-requisitos para o

oócito tornar-se competente (SIRARD et al., 2006). Dentre as outras mudanças, durante a

fase de maturação citoplasmática, observa-se a redistribuição das organelas celulares

(FERREIRA et al., 2009).

Segundo Hytell et al. (1997), inicialmente as mitocôndrias ocupam regiões mais

periféricas do citoplasma e a medida que a maturação acontece e alcança a metáfase II, estas

organelas ocupam a posição central do oócito. Dentre as alterações dos grânulos corticais,

estes, anteriormente dispersos no citoplasma passam a ocupar a periferia do oócito

(FERREIRA et al., 2009), sendo esta a mudança mais aparente da maturação citoplasmática

(HYTELL et al., 1997). Após o pico de LH ocorre o rompimento da vesícula germinativa, o

oócito se desenvolve até MII e apresenta os grânulos corticais alinhados com a membrana

plasmática, as gotas de lipídios e as mitocôndrias adquirem uma posição mais central do

oócito deixando uma zona periférica sem organelas. O espaço perivitelínico se desenvolve

para evitar a poliespermia e o complexo de Golgi praticamente desaparece (HYTELL et al.,

1997) (Figura 1).

Figura 1 - Desenho esquemático da distribuição das organelas citoplasmáticas durante a

maturação e formação do zigoto. (GVBD) vesícula germinativa rompida. Adaptado de

Ferreira et al., 2009.

Além das organelas citoplasmáticas, os microfilamentos do citoesqueleto apresentam-

se dinâmicos e as mudanças ocorrem de acordo com a necessidade da célula (FERREIRA et

al., 2009). As alterações na conformação desses filamentos são responsáveis pela segregação

dos cromossomos durante a mitose e meiose, pela divisão celular durante a citocinese e pelo

tráfego de moléculas e organelas no interior da célula. Durante a fase de transição de vesícula

germinativa a anáfase I, os filamentos de actina encontram-se abundantes e distribuídos na

região cortical do oócito, Durante a metáfase I os microtúbulos se associam as tubulinas

formando o fuso meiótico e a placa metafásica é formada. O oócito em metáfase II mostra

Vesícula

Germinativa

GVBD

Metáfase I

Telófase I

Metáfase II

Zigoto

Vesícula Germinativa

GVBD

Mitocôndria

Grânulos corticais

Ribossomos

Fuso meiótico em Metáfase

Fuso meiótico em Telófase

Complexo de Golgi

Retículo Endoplasmático

Pró-núcleos

uma abundância em filamentos de actina que se encontram na região cortical do oócito

(FERREIRA et al., 2009) (Figura 2).

Figura 2 - Dinâmica dos filamentos no citoesqueleto durante a maturação citoplasmática e

nuclear. (A) Detalhe do fuso meiótico em metáfase I e centríolos/estrutura do centrossomo.

(B) Detalhe do fuso meiótico em telófase I mostrando os microtúbulos. (GVBD) vesícula

germinativa rompida. Adaptado de Ferreira et al., 2009.

Outro parâmetro morfológico que avalia a maturação citoplasmática é a expansão das

células do cumulus (KRUIP et al., 1983). A análise microscópica de oócitos maturados in

vitro mostrou que as células do cumulus de expandem, o citoplasma é morfologicamente

normal e uma grande de complexo de Golgi é observada (DIEZ et al., 2005). Assim, a

ausência ou reduzido número de células do cumulus mostrou um efeito negativo sobre a

produção de embriões (BLONDIN & SIRARD, 1995) e estas células contribuem de forma

efetiva na aquisição da competência do oócito. Por outro lado, Zhang et al., (1995)

verificaram que oócitos desnudos são capazes de alcançar MII, no entanto são incompetentes

para a fecundação e desenvolvimento embrionário normais.

2.1.2.2. MATURAÇÃO NUCLEAR

Durante desenvolvimento folicular o oócito deve ser capaz de adquirir a competência

meiótica de forma progressiva. Assim, na enquanto a oogênese ocorre a ovogônia passa por

uma fase de crescimento e então ocorre a parada do desenvolvimento em prófase I da meiose.

Vesícula

Germinativa

GVBD

Metáfase I

Telófase I

Metáfase II

Vesícula Germinativa

GVBD

Complexo de Golgi

Mitocôndria

Microtúbulos

Filamentos de Actina

Fuso meiótico em Metáfase

Fuso meiótico em Telófase

Centríolo ou Centrossomo

Cromossomos

A retomada do desenvolvimento do oócito ocorre durante a foliculogênese onde inicialmente

ocorre o rompimento da vesícula germinativa (GVBD), seguido pela progressão do oócito até

metáfase I e finalmente alcançando a metáfase II onde se observa a extrusão do primeiro

corpúsculo polar (FARIN et al., 2007), onde ocorre a segunda parada da meiose. A retomada

da meiose ocorrerá apenas após a fecundação onde este finalizará a meiose II, ocorrendo

assim a extrusão do segundo corpúsculo polar (Figura 3).

Figura 3 – Desenvolvimento oocitário durante a oogênese.

A influência da qualidade do oócito no desenvolvimento potencial do embrião tem sido

reconhecida em diversas espécies. Assim, conceitos como competência oocitária, maturação

do oócito, diferenciação folicular tem sido vistos como fatores que atuam conjuntamente na

qualidade do embrião (SIRARD et al., 2006).

A competência meiótica é conhecida como uma cascata de eventos que é induzida pelo

pico do LH e pela remoção do oócito do ambiente folicular. Tais eventos são programados

para ocorrer mediante a formação do Fator Promotor da Maturação (MPF), o qual é uma

proteína composta pela ciclina B1 e P32cdc2, esta é sintetizada e/ou ativada atuando sobre o

oócito que evolui e termina a metáfase I e conseqüentemente a extrusão do primeiro

Ovogônia

Mitose

Crescimento

Ovócito primário

(Prófase I da Meiose)

1° Corpúsculo

Polar

Ovócito secundário

(Metáfase II)

Ovulação

Ovócito concluindo

Meiose II

2° Corpúsculo

Polar

corpúsculo polar completando a primeira divisão meiótica (SIRARD et al., 2006). No

entanto, apenas o oócito em metáfase II encontra-se apto ao subseqüente processo de

fecundação.

Na retomada da maturação e ativação do MPF, c-mos kinases e MAP kinases dirigem e

controlam o ciclo celular bem como a condensação dos cromossomos e quebra da vesícula

germinativa. Esse processo requer a reorganização do citoesqueleto e a expressão de fatores

chaves que dirigem o desenvolvimento (EICHENLAUB-RITTER & PESCHKE, 2002).

Tem sido descrito que a condensação da cromatina requer uma ativação parcial do

fator promotor de maturação, sendo este processo considerado um pré-requisito para o

rompimento da vesícula germinativa. Assim, para que esse processo ocorra, inicialmente

verifica-se um aumento nos níveis de LH e FSH. No entanto, contrariamente da maturação

nuclear, a maturação citoplasmática não parece ser afetada durante a superovulação com

gonadotrofinas (KUMAR et al., 1992).

2.1.2.3. ASPECTOS MOLECULARES E INTERAÇÃO OÓCITO-CÉLULAS DO

CUMULUS

Durante o desenvolvimento folicular, ocorre proliferação, diferenciação e alterações

nas secreções das células foliculares. Estes eventos são regulados por ações autócrinas,

parácrinas e endócrinas. Os mecanismos endócrinos relacionados ao processo já se

encontram bem estabelecidos, no entanto, as ações que regulam a ação intraovariana ainda

necessitam muitos estudos. Tais estudos são realizados principalmente por meio de cultivo

celular in vitro (SIRARD et al., 2006).

A cada avanço obtido com estudos dos processos relacionados à maturação do oócito,

verifica-se que as alterações nesta célula são de grande importância para a obtenção da

competência oocitária. Assim, torna-se necessário compreender como a sincronia da

maturação nuclear e citoplasmática contribui para a aquisição dessa competência e quais

processos moleculares encontram-se envolvidos. A maturação molecular é ainda muito

indefinida, no entanto acredita-se que envolva a síntese e estoque de proteínas e RNAs

(ácidos ribonucléicos) mensageiro dias antes da ovulação (SIRARD et al., 2006). A diferença

entre um oócito competente ao desenvolvimento e um incompetente pode estar relacionado

com o estado de diferenciação no folículo de origem. Acredita-se que a maturação molecular

envolva a associação de fatores intrínsecos de capacidade do oócito refletindo no

desenvolvimento embrionário até o estádio de blastocisto.

Assim, através do crescimento e maturação do oócito, a associação deste com as

células do cumulus é essencial para manter a funcionalidade do folículo e do CCO em

desenvolvimento (KRISHER, 2004).

A esteroidogênese refere-se ao processo pelo qual células especializadas sintetizam

hormônios esteróides (STOCCO, 2001) a partir de um precursor comum, o colesterol, sendo

a disponibilidade deste determinante para a produção hormonal. O folículo ovariano produz

através das células da teca e granulosa, hormônios esteróides cuja concentração e atividade

biológica variam de acordo com o estágio de desenvolvimento folicular. O conceito clássico

de regulação ovariana, no entanto tem sido expandido incluindo um sistema complexo que

envolve regulação parácrina e autócrina de fatores de crescimento. Dentre esses, encontra-se

o fator de crescimento epidermal (EGF).

Do ponto de vista funcional, a interação entre os fatores de crescimento e os CCOs

pode resultar em mudanças na produção de esteróides pelas células foliculares, e assim

indiretamente afetar a maturação in vitro (LORENZO et al., 1997).

Na transcrição, a formação do estoque de RNA e proteínas ocorre durante o

crescimento folicular e cessa quando ocorre o rompimento da vesícula germinativa e

retomada da meiose, onde os cromossomos encontram-se condensados e “inativos”

(GANDOLFI & GANDOLFI, 2001). Segundo esses autores, a atividade transcricional leva a

formação de um estoque citoplasmático de moléculas mensageiras que poderão ser

traduzidas posteriormente. O armazenamento dessas moléculas é essencial para promover

cascatas para a ativação do genoma embrionário e conseqüentemente o desenvolvimento

embrionário inicial. Assim, o oócito desenvolveu uma série de estratégias para estoque

moléculas na forma quiescente e seu uso no momento da maturação ou desenvolvimento

embrionário.

Segundo Eichenlaub-Ritter & Peschke (2002), a fase mais ativa da expressão gênica

está na oogênese quando ocorre a proliferação das células foliculares e crescimento do oócito

preparando-o para ovulação em metáfase II. Fatores autócrinos, parácrinos e endócrinos são

essenciais para a foliculogênese normal e formação de um oócito com elevada competência

ao desenvolvimento. A fase de crescimento relativo do oócito, aumento no tamanho do

folículo e proliferação de células foliculares difere entre as espécies.

No que se refere ao início do processo de maturação esta ocorre pela remoção do

oócito do folículo ovariano, o que leva a luteinização das células da granulosa e retomada da

meiose. Assim, a retirada do CCO do folículo ovariano leva a perda do contato com as

células murais da granulosa, antes estabelecido pelas junções tipo gap.

As junções gap são canais compostos por 6 subunidades chamadas conexinas

(NEMCOVA et al., 2006), as quais são arranjadas de maneira a formar um poro central que

permita a transferência de metabólitos tais como nucleotídeos, aminoácidos, açúcares e sinais

que regulam a maturação meiótica (EPPIG, 2001). Assim, o rompimento dessa barreira leva

a condensação da cromatina e quebra da vesícula germinativa, fazendo com que o oócito que

encontrava-se em prófase I progrida até metáfase II. Nemcova et al. (2006) verificaram que a

abundância relativa das conexinas contribuiu para produção in vitro de embriões bovinos e

ainda que estas podem servir como um marcador da competência do oócito.

Estudos realizados por Richard & Sirard (1996a), mostraram que esse bloqueio do

oócito em vesícula germinativa é realizado pelas células da teca atuando sobre as células do

cumulus. Nesse processo o AMP cíclico (AMPc) foi identificado como bloqueador da

meiose. Existe a hipótese de que o AMPc gerado pelas células somáticas do folículo seja

transmitido ao oócito via junções gap (Figura 4). Após produzido, o AMPc liga-se a

subunidade I ou II reguladora da proteína quinase (PKA). A subunidade I encontra-se

localizada no oócito e a subunidade II nas células do cumulus. O aumento do AMPc na

células do cumulus induz a retomada da meiose pela quebra de vesícula germinativa e o

aumento deste no oócito leva a ativação da PKA que fosforila proteínas específicas do

oócito, mantendo-o imaturo (BILODEAU et al., 1993).

Durante a fase de reativação do oócito que se encontrava bloqueado em metáfase I, as

gonadotrofinas ligam-se aos receptores presentes nas células do cumulus resultando no

aumento da produção do AMPc. Durante a fase gonadotrófica, observa-se uma maior

disponibilidade de AMPc nas células do cumulus levando a ativação de proteínas tais como a

proteína kinase A II (PKA II), proteína kinase C (PKC) e proteínas kinases ativadoras de

mitógenos (MAPK). Assim, a ativação da MAPK e Fosfatidil-inositol 3 kinase (PI3K)/PKB

(via sistema EGF) reduz o nível de AMPc dentro do oócito pela fosforilação da conexina 43

(cx-43) e fosfodiesterase 3 (PDE3). O processo de fosforilação obtido leva a ativação do

MPF e consequentemente ao rompimento da vesícula germinativa e assim o oócito pode

retomar a meiose (ZHANG et al., 2009) (Figura 4).

Figura 4 – Mecanismo molecular de maturação através da interação oócito-células do

cumulus após o pico pré-ovulatório de gonadotrofinas. Células do cumulus (azul).

O mecanismo pelo qual o AMPc atua é pela inibição da ação do MPF. Esse processo

previne a desfosforilação MPF e reprime também a síntese de ciclina B, diminuindo assim a

quantidade disponível de pré-MPF. O padrão oscilatório da ativação do MPF em oócitos de

rata maturados espontaneamente mostrou que a atividade quinase é elevada imediatamente

após a retomada da meiose (antes da quebra da vesícula germinativa). A atividade do MPF

alcança níveis máximos na MI, declina antes da formação do primeiro corpúsculo polar

voltando a aumentar antes do oócito iniciar a meiose II (JOSEFSBERG et al., 2003) (Figura

Figura 5 - Perfil oscilatório do fator promotor de maturação (MPF) durante a retomada da

meiose e alcance da metáfase II.

Outra quinase envolvida na maturação oocitária é pertencente à família das proteínas

quinases ativadas por mitógenos (MAPKs). Estas respondem a estímulos extracelulares

regulando várias atividades tais como a expressão gênica, divisão, diferenciação e

sobrevivência celular (PEARSON et al., 2001). A ativação das MAPKs em bovinos ocorre

juntamente com o MPF, pouco tempo antes da quebra da vesícula germinativa, sendo a

atividade das MAPKs progressivamente aumentada durante as 24 h de maturação in vitro

(GORDO et al., 2001). Esse estudo revelou ainda que a MAPK promove a estabilidade do

MPF e que esta também é responsável pela organização microtubular que irá fazer a

configuração cromossômica correta no estágio de metáfase II.

A competência ao desenvolvimento está também associada ao acúmulo de p34 no fim

do desenvolvimento oocitário e quantidade suficiente de ciclina B para haver matéria-prima

necessária para o pré-MPF (ANGUITA et al., 2007). Além disso, os efeitos da

deficiência/atividade de MAPK na competência meiótica não são conhecidos, porém níveis

inadequados desta proteína podem afetar alguns eventos de ativação oocitária (GORDO et

al., 2001).

Apesar dos conhecimentos gerados com o passar dos anos sobre os mecanismos de

desenvolvimento do oócito, fatores que determinam a qualidade do oócito ainda não foram

desvendados. Assim, para a PIV de embriões, fatores como a qualidade oocitária são de

fundamental importância e esta é indicada como um fator chave que pode atuar

Diplóteno

Metáfase I

Metáfase II

Estímulo Hormonal

Citocinese

Parada em Metáfase I I

negativamente no sucesso desta biotécnica (MACHALKOVA et al., 2004). Esse fato gera

indícios que os oócitos oriundos de folículos em diferentes estádios de desenvolvimento leva

a formação de uma população diferentemente competente ao desenvolvimento in vitro. De

acordo com Assey et al., (1994), as alterações pré-maturacionais ocorrem em virtude da

responsividade do folículo a pulsatilidade do LH antes do pico ovulatório, sendo estas

modificações pré-requisitos para o oócito alcançar a competência ao desenvolvimento.

2.1.3. EGF E MATURAÇÃO OOCITÁRIA

A maturação é o processo pelo qual o oócito sofre alterações importantes que conferem

competência ao subseqüente desenvolvimento embrionário. Diversos estudos sugerem que a

expansão das células do cumulus é regulada por fatores de crescimento produzidos pelo

ovário. O papel crucial da regulação da maturação e expansão das células do cumulus tem

sido atribuído ao EGF. Este fator de crescimento é um polipeptídeo constituído por 53

aminoácidos e apresenta seu papel comprovadamente positivo sobre o processo de maturação

in vitro (FARIN et al., 2007; GRAZUL-BILSKA et al., 2003)

O EGF e seu receptor (EGFR) foram encontrados no ovário e segundo Prochazka et

al., (2003) estes parecem ser espécie-específicos. Ambos EGF e EGFR foram identificados

em células da granulosa e células do cumulus (GALL et al., 2004). A expressão e função do

receptor de EGF nas células do cumulus indicam seu papel significante no processo de

maturação via células do cumulus (GALL et al., 2005).

Estudos anteriores verificaram a presença do EGFR em oócitos e nas células do

cumulus (GALL et al., 2004; PROCHAZKA et al., 2003). No entanto, foi visto que os fatores

de crescimento semelhantes ao EGF exercem efeito sobre a maturação de CCOs, mas não em

oócitos desnudos (PARK et al., 2004). Estudos realizados por HILL et al., (1999) levaram a

hipótese de que as células do cumulus são o maior sítio de ação do EGF e que este fator de

crescimento geram sinais para o oócito via junções gap.

A qualidade do oócito exerce influência significante sobre o desenvolvimento e

sobrevivência do embrião. Assim, sabe-se que a atividade ovariana é regulada não apenas por

hormônios de forma endócrina como também por fatores autócrinos e parácrinos de fatores

de crescimento locais (VAN DEN HURK & ZHAO, 2005). A respeito destes fatores, o EGF

parece ser o mais importante regulador da fisiologia ovariana (SILVA et al., 2004).

O EGF influencia a maturação oocitária e a produção de blastocistos em diversas

espécies de mamíferos (GRAZUL-BILSKA et al., 2003). Alguns estudos realizados

mostraram que o EGF pode estar envolvido na regulação do crescimento folicular e na

maturação de oócitos caprinos (GALL et al., 2004).

Assim, com o objetivo de melhorar esses processos in vitro, diversos protocolos estão

sendo desenvolvidos visando mimetizar as condições in vivo de maturação oocitária. Nesse

contexto, os fatores de crescimento identificados no ovário têm sido vistos como reguladores

da função ovariana. Desta forma, meios de cultivo suplementados com fatores de

crescimento tais como o EGF tem sido utilizado para estudar seu o papel potencial na

maturação e desenvolvimento embrionário in vitro. Para mimetizar esse processo in vitro é

necessário compreender os fatores que estão envolvidos na maturação. Segundo Hatoya et

al., (2009), é aceito que as células do cumulus em mamíferos suportam a diferenciação

meiótica e oocitária, no entanto essa afirmativa ainda encontra-se sob investigação.

A presença de RNAm para o EGFR tem sido identificado no fluido folicular e em

oócitos em espécies como em caprinos (SILVA et al., 2006), suínos (SINGH et al., 1995) e

humanos (QU et al., 2000). O EGF regula o crescimento do oócito e pode ser responsável por

estimular a maturação nuclear e citoplasmática. Estudos recentes verificaram que os fatores

de crescimento ligantes de EGF são mediadores parácrinos de sinalização do LH durante a

ovulação (HSIEH et al., 2007; PARK et al., 2004). Adicionalmente, efeito positivo da adição

de EGF em meio de maturação foi verificado em espécies incluindo a canina (HATOYA et

al., 2009) e suína (AKAKI et al., 2009).

Em felinos foi demonstrado que o EGF apenas como suplemento no meio de MIV

levou ao desenvolvimento do oócito até metáfase II e que o EGF é requerido pelo FSH para a

progressão meiótica do oócito (FARIN et al., 2007).

A adição de FSH e EGF em meio de MIV induziu a maturação do oócito e expansão

das células do cumulus bem como melhorou a competência ao desenvolvimento em bovinos

(LONERGAN et al., 1996) e em cães ((HATOYA et al., 2009). Similarmente, os fatores de

crescimento semelhantes ao EGF amfiregulina, epiregulina e betacelulina também induzem a

maturação in vitro de CCOs murinos (PARK et al., 2004).

Em ovinos meio de MIV suplementado com EGF alterou a morfologia dos CCOs e

levou a uma maior expansão das células do cumulus se comparado ao grupo controle sem

EGF (GRAZUL-BILSKA et al., 2003). O EGF causa a expansão das células do cumulus pela

síntese de ácido hialurônico, um glicosaminoglicano que interage especificamente com

componentes da matriz extracelular (TIRONE et al., 1997). O EGF provavelmente exerce

efeito direto sobre as células do cumulus através de receptores de EGF nestas células

detectado em diversas espécies incluindo a suína (YOSHIDA et al., 1998) e humana (QU et

al., 2000).

Diversos trabalhos têm demonstrado o processo pelo qual o EGF atua sobre a

maturação de CCOs. Assim, Akaki et al., (2009) mostraram que ambos EGF e o AMPc são

necessários para a retomada da meiose em suínos e verificaram ainda que a atividade do EGF

sobre a maturação in vitro é provavelmente mediada pela proteína kinase.

Estudos realizados em camundongo revelaram que o FSH induziu a produção de

estrógeno estimulando o desenvolvimento folicular para o estádio pré-ovulatório e o

surgimento do LH induzindo a atuação de fatores secundários como a progesterona, PGE

ligantes do EGF que mediam a expansão do cumulus e maturação do oócito. De acordo com

Park et al., (2004), o LH induz em folículos pré-ovulatórios a produção de crescimento

semelhantes ao EGF que atuam sobre a expansão do COC e retomada da meiose.

Eichenlaub-Ritter & Peschke (2002) verificaram que após GVBD a expressão gênica

está sob controle pós-transcricional, que envolve degradação, estabilização e estoque de

transcritos para posterior utilização nos processos celulares traducionais. Sob aspecto

molecular, foi verificado em bovinos que o EGF pode acelerar o tempo de extrusão do

primeiro corpúsculo polar através do aumento da atividade do fator promotor de maturação

(MPF) e MAP kinase (SAKAGUCHI et al., 2000). Estudos realizados por Gall et al., (2004)

demonstraram que o receptor de EGF aumentou a expressão durante o crescimento do oócito

e que seguiu padrões semelhantes ao observado pelo P34

cdc2

(HUE et al., 1997), ciclina B

(DEDIEU et al., 1998) e Cdc25 (GALL et al., 2002), sugerindo que a competência meiótica

pode estar correlacionada com a expressão do EGFR. Apesar dos diversos estudos

envolvendo este fator de crescimento, ainda não foi estabelecido se o EGF atua diretamente

sobre o oócito ou via células do cumulus ou por ambos. Alguns estudos realizados em

bovinos (LONERGAN et al., 1996) e em camundongos (DAS et al., 1991) mostraram que a

atuação do EGF ocorre diretamente sobre oócitos desnudos como em COCs. Esses dados

sugerem que o efeito do EGF pode estar em parte independente das células do cumulus e que

o EGF pode ainda atuar diretamente sobre o oócito via EGFR.

2.2. PCR QUANTITATIVO EM TEMPO-REAL

2.2.1. PRINCÍPIOS

O PCR quantitativo (qPCR) em tempo real é uma técnica desenvolvida através do

refinamento da Reação em Cadeia da Polimerase (PCR) convencional, originalmente

desenvolvida por Kary Mullis e seu grupo (SAIKI et al., 1985) na metade da década de 80.

Através do PCR, essencialmente qualquer seqüência de ácido nucléico presente em uma

amostra complexa pode ser amplificada em um processo cíclico para gerar um grande

número de cópias idênticas as quais podem ser prontamente analisadas. Isso torna possível,

por exemplo, manipular o DNA para propósitos de clonagem, engenharia genética e

seqüenciamento. No entanto, o método de PCR original (end-point PCR) apresenta forte

restrição como técnica analítica quantitativa. Isso ocorre porque a quantidade de produto de

amplificação gerado é essencialmente o mesmo, independente da quantidade original de

moléculas-molde de DNA presente na amostra. Assim, o PCR convencional permite apenas a

distinção entre amostras positivas e negativas para determinado molde de DNA (KUBISTA

et al., 2006).

Diferentemente do PCR original a técnica de PCR em tempo real apresenta como

principal importância determinar de forma rápida e exata as mudanças de expressão gênica

resultantes de fenômenos patológicos ou fisiológicos. Assim, o uso do PCR em tempo real

possibilita correlacionar a fisiopatologia com os eventos moleculares e assim compreender

melhor os processos biológicos (LEJONA et al., 2006).

A limitação da técnica original foi resolvida pelo desenvolvimento do PCR em tempo

real por Higuchi et al. (1992), o qual acrescentou brometo de etídio à reação de amplificação.

No PCR em tempo real, a quantidade de produto formado é monitorado no decorrer da

reação através da fluorescência de moléculas intercalantes de dupla-fita de DNA (ZIPPER et

al., 2004; BENGTSSON et al., 2003) ou oligonucleotídeos marcados (HOLLAND et al.,

1991). O sinal de fluorescência é proporcional à quantidade de produto e o número de ciclos

térmicos necessários para a obtenção de uma quantidade particular de moléculas de DNA é

registrado. Assumindo uma certa eficiência de amplificação, a qual é tipicamente relacionada

à duplicação do número de moléculas por ciclo, é possível calcular o número original de

moléculas da seqüência amplificada presente na amostra (RUTLEDGE & COTE, 2003)

O qPCR é uma técnica amplamente utilizada para a quantificação de expressão gênica

(PABINGER et al., 2009). Com o passar dos anos, maior disponibilidade de aparelhos,

acessibilidade de preços e reagentes a técnica de PCR em tempo real passou a ser mais

utilizada e difundida (GINZINGER, 2002).

Tendo em vista a detecção altamente eficiente imposta pelos modernos reagentes

químicos e pela sensível instrumentação, além dos ensaios otimizados que estão disponíveis

atualmente, o número de moléculas de DNA de uma seqüência específica em uma amostra

complexa pode ser determinado com uma exatidão sem precedentes e com sensibilidade

suficiente para a detecção de uma única molécula (KUBISTA et al., 2006).

Várias plataformas têm sido propostas para aumentar a acurácia do qPCR em tempo

real para essa aplicação, sendo baseadas no método de curva padrão externa (quantificação

absoluta ou relativa) ou no Ct comparativo (INGHAM et al., 2001; BALLESTER et al.,

2004). A realização da construção de uma curva padrão baseada em diluição em série é

recomendado para o PCR quantitativo, pois representa um controle adicional da eficiência da

amplificação (RAEYMAEKERS et al., 2000).

Pela técnica de PCR em tempo real é possível ver a dinâmica das curvas de

amplificação devido à presença dos fluorocromos unidos as sondas de hibridização que são

detectadas e analisados mediante um programa de informática (WONG & MEDRANO,

2005).

É possível estabelecer com exatidão que o sinal de fluorescência de uma determinada

amostra ultrapassa um nível mínimo basal, sendo denominado ponto de cruz da curva (Ct-

crosing point o threshold cycle). Este princípio estabelece a base de quantificação do PCR

em tempo real. A detecção da fluorescência para um determinado gene é proporcional a

quantidade desse gene na amostra, assim quanto maior a quantidade de gene mais

precocemente será detectada a fluorescência (VELASCO et al., 2006).

Existem dois métodos fundamentais para a quantificação do PCR em tempo real. Na

quantificação absoluta emprega-se o uso da curva-padão onde se leva em consideração o

valor de Ct do gene de estudo. Já a quantificação relativa emprega-se uma amostra que

recebe um valor de 100% e sobre este valor quantifica-se de forma relativa a amostra de

estudo (KLEIN, 2002). No entanto, independentemente da quantificação utilizada o estudo

deve considerar simultaneamente o gene de interesse e um gene de referência que deve se

expressar de maneira constante nas células (AROCHO et al., 2006).

2.2.2. APLICAÇÃO EM EXPRESSÃO GÊNICA

PCR em tempo real tem sido um método padrão para mensurar e verificar mudanças na

expressão gênica através da avaliação da quantidade de mRNA (ONG & IRVINE, 2002).

Assim, esse método de avaliação tem sido cada vez mais difundido na comunidade científica

em virtude da praticidade e por levar a uma avaliação mais precisa do perfil de mudança na

expressão no momento em que está sendo executado.

Dentre as utilizações típicas do PCR em tempo real incluem detecção de patógenos

(MACKYA, 2004), análise de expressão gênica (LEVSKY et al., 2002), de SNPs (single

nucleotide polymorphism) (MHLANGA & MALMBERG, 2001), de aberrações

cromossômicas (MATTARUCCHI et al., 2005), de organismos transgênicos (SONG et al.,

2002; SAKURAI et al., 2008), expressão gênica na determinação de polimorfismos

causadores de enfermidades genéticas (LUALDI et al., 2006; TRAN et al., 2006),

mensuração do número de cópias no genoma (GINZINGER et al., 2000) e detecção pré-natal

de trissomia cromossômica (GINZINGER, 2002).

A técnica de PCR quantitativo em tempo real mostra elevada sensibilidade e

especificidade, sendo esta utilizada com eficiência no diagnóstico de doenças em medicina

veterinária (GARCÍA et al., 2007) e aplicações em estudos sobre reprodução animal (CHEN

et al., 2009; NEMCOVA et al., 2006).

No que se refere a aplicabilidade dessa técnica em reprodução, cada vez mais tem-se

estudado as mudanças na expressão correlacionadas com processos fisiológicos. Com relação

ao estudo dos processos in vitro tem-se estudado as alterações de expressão gênica em

oócitos e células do cumulus durante o desenvolvimento final (KAWASHIMA et al., 2008) e

folicular (CHEN et al., 2009), MIV e desenvolvimento embrionário inicial (BEBBERE et al.,

2008; NEMCOVA et al., 2006), bem como viabilidade embrionária após criopreservação

(LEONI et al., 2009). Realizar estudos de expressão gênica é de fundamental importância

para compreender os processos fisiológicos e através destes realizar melhorias nas diferentes

etapas de produção in vitro de embriões e assim alcançar resultados mais eficientes na

referida técnica.

3 JUSTIFICATIVA

A produção in vitro (PIV) de embriões envolve as etapas de colheita de oócitos,

maturação, fecundação e cultivo in vitro dos embriões. Em caprinos, assim como em outras

espécies, a etapa de MIV é considerada uma das mais importantes e críticas para o sucesso da

PIV de embriões. Compreender os mecanismos que regem esse processo é considerado de

extrema importância uma vez que dele depende o sucesso da fecundação bem como o

desenvolvimento embrionário inicial. Os processos moleculares que envolvem a maturação

in vitro de oócitos são pouco elucidados. A complexidade desse processo envolve desde o

desenvolvimento do oócito dentro do folículo ovariano até os meios utilizados na etapa de

maturação. Além disso, estudar os mecanismos moleculares que influenciam a diferenciação

do oócito dentro do folículo é um caminho para compreender a complexidade desse processo

e alcançar melhorias significantes nos programas de reprodução assistida em animais.

Assim, estudar a maturação de oócitos caprinos em nível molecular pode fornecer

novas informações sobre esse mecanismo. Em adição, avaliar os efeitos que diferentes

tratamentos de estimulação ovariana possam ter sobre a qualidade oocitária e a posterior

competência meiótica torna-se importante para alcançar melhorias no sistema de maturação

in vitro conseqüentemente na produção in vitro de embriões caprinos.

Aliado a isso, a utilização da raça naturalizada Canindé permitirá elucidar respostas

inerentes aos processos fisiológicos relacionados a essa raça no que diz respeito à maturação

oocitária. Além disso, estudar especificamente o receptor de EGF em oócitos e células do

cumulus permitirá compreender o mecanismo pelo qual o EGF atua sobre a foliculogênese

terminal após estimulação hormonal ovariana com FSH.

Finalmente, o uso uma ferramenta moderna e precisa como a técnica de PCR

quantitativo em tempo real adicionará informações inexistentes até o momento para a espécie

caprina, em geral, e as raças naturalizadas, em particular.

4 HIPÓTESE CIENTÍFICA

A administração de FSH em três ou cinco doses aumenta a expressão de EGFR em

oócitos e células do cumulus colhidos por laparoscopia em cabras da raça Canindé.

5 OBJETIVOS

5.1 OBJETIVO GERAL

Avaliar o efeito de dois tratamentos hormonais de estimulação ovariana distintos na

expressão de EGFR em oócitos e células do cumulus obtidos de cabras Canindé, utilizando o

método de RT-PCR quantitativo em tempo real.

5.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS

- Verificar o nível de expressão do EGFR em oócitos e células do cumulus de cabras Canindé

previamente tratadas para estimulação ovariana em três ou cinco doses;

- Avaliar a influência da qualidade do oócito (GI/GII e GIII) sobre a expressão do EGFR em

oócitos e células do cumulus;

- Verificar se existe diferença na expressão do EGFR em oócitos e células do cumulus após o

processo de maturação in vitro.

6 CAPÍTULO 1

Análise por qRT-PCR em tempo real do receptor de EGR em complexos cumulus-oócito

colhidos por laparoscopia em caprinos tratados hormonalmente

(Real-time qRT-PCR analysis of EGF receptor in cumulus-oocyte complexes recovered by

laparoscopy in hormonally treated goats)

Periódico: Zygote (Submetido em Outubro de 2009)

Fator de impacto: 1,067

Resumo: