( PDF ) Revisão do genero Neomuscina Townsend (Diptera, Muscidae) no Brasil

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ALESSANDRE PEREIRA COLAVITE

Revisão do gênero Neomuscina

Townsend (Diptera, Muscidae) no Brasil

CURITIBA

2009

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ALESSANDRE PEREIRA COLAVITE

Revisão do gênero Neomuscina Townsend (Diptera, Muscidae) no Brasil

Dissertação apresentada à Coordenação do

Curso de Pós-Graduação em Ciências

Biológicas, Área de Concentração em

Entomologia, do Departamento de Zoologia

da Universidade Federal do Paraná, como

requisito parcial para a obtenção do título

de Mestre em Ciências Biológicas.

Orientador: Prof. Dr. Claudio José Barros

de Carvalho.

CURITIBA

2009

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iii

Para cada coisa que acredito saber,

dou-me conta de nove outras que ignoro.

(Provérbio árabe)

Essa é uma prova da confiança que colocaram em mim.

Abigail, Silvio, Clayton e Gabriela,

à vocês meu muito obrigado!

AGRADECIMENTOS

Há quem diga que esta parte seja, em todo trabalho, talvez a mais difícil. Árdua

esta tarefa! Espero lembrar-me de todos que foram importantes e que comigo

possibilitaram a construção desse trabalho. Agradeço:

Primeiramente ao Prof. Dr. Claudio José Barros de Carvalho, pela confiança,

formação e paciência. E por naquela tarde fria e chuvosa de Julho de 2006 ter resolvido

dar uma oportunidade para aquele “cara cabeludo”.

Ao Programa de Pós-Graduação em Ciências Biológicas, Área de Concentração

em Entomologia, do Departamento de Zoologia da Universidade Federal do Paraná,

pela oportunidade para o desenvolvimento do trabalho, pelos técnicos, funcionários e

professores, tanto quanto pela infra-estrutura física e intelectual imprescindíveis.

À Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES) pela

concessão da bolsa de estudos durante o período de Mestrado, sem a qual este não seria

possível.

À Dra. Márcia Souto Couri (MNRJ) e Dr. Carlos José Einicker Lamas (MZSP)

por abrirem suas portas (e gavetas!) para análise de material. Também ao Dr. Uwe

Kallweit (SMT) e Dr. Wayne Mathis (USNM) pelo empréstimo de espécimes para

análise e verificação.

À Dra. Márcia Souto Couri e Dr. Carlos José Einicker Lamas por aceitarem

participar da banca examinadora desta tese e contribuir com suas críticas e sugestões

para a melhora do trabalho.

Aos colegas da „Turma‟: André, Antônio “Caíto”, Antônio “Netão do gás”,

Carol, Cecília, Danilo, Elaine, Fernando, Gabriel “Knight”, Luís Anderson, Marina,

Mauro, Milehna, Vanuza e Thiago. Épicas nossas reuniões!

Aos colegas de laboratório: Aninha, Beatriz, Cecília, Danilo, Diana, Elaine,

Jaime, Jéssica, Karine, Lica, Melise, Mírian e Peter pelas conversas, opiniões e

convivência! E pelo „Chá das 5‟, claro!

Aos colegas da Sala 3 do Anexo (que foram e ficaram): Alberto, Danilo,

Éverton, Jéssica, Leandro “Pepê”, Luís Anderson, Mário, Mauro (que nunca apareceu!)

e Olívia.

vii

Aos que possibilitaram uma vivência mais agradável em Curitiba: demais

colegas da Entomologia, Futsaleiros e Sociedade Brasileira de Medicina Estética.

À minha família, em especial minha mãe e meu pai, Abigail e Silvio, por sempre

terem acreditado em mim e incentivarem esse filho maluco que sempre adorou insetos!

Ao meu irmão Clayton, pelos momentos de diversão e companheirismo, e por

ter sempre me ajudado nas horas de necessidade!

À minha namorada Gabriela, pelo conjunto da obra! Sempre esteve ao meu lado

nos momentos tristes e felizes nesses quatro anos e oito meses. E especialmente pelo

seu incentivo e contribuição para a realização desse trabalho. Amo-te!

Às coisas supérfluas da vida, mas que sem elas esses dois anos seriam uma

penintência: CS, DN, DS, GH, MK, NWN, TDFG, VdR, BM e CC (sim... abreviaturas

são necessárias!).

E para todos outros que aqui esqueci, mas que contribuíram de alguma forma

para tudo isso!

E claro, aos dípteros! Vejo vocês na ponta do meu alfinete!

viii

SUMÁRIO

LISTA DE FIGURAS ..............................................................................................

RESUMO .................................................................................................................

xvi

ABSTRACT .............................................................................................................

xvii

INTRODUÇÃO ........................................................................................................

Tabela 1: Espécies de Neomuscina de ocorrência para o Brasil e suas

respectivas localidades ...........................................................................

Histórico das espécies de Neomuscina no Brasil ............................................

MATERIAL E MÉTODOS ......................................................................................

Material Examinado ........................................................................................

Procedimento e análise ....................................................................................

Terminologia ...................................................................................................

RESULTADOS ........................................................................................................

Taxonomia .......................................................................................................

Neomuscina Townsend, 1919 ...................................................................................

Chave de identificação para espécies de Neomuscina do Brasil .....................

Revisão das espécies .......................................................................................

N. atincta Snyder, 1949 ...................................................................................

N. atincticosta Snyder, 1949 ...........................................................................

N. capalta Snyder, 1949 ..................................................................................

N. currani Snyder, 1949 ..................................................................................

N. douradensis Lopes & Khouri, 1996 ...........................................................

N. goianensis Lopes & Khouri, 1995 ..............................................................

N. inflexa (Stein, 1918) ...................................................................................

N. instabilis Snyder, 1949 ...............................................................................

N. mediana Snyder, 1949 ................................................................................

N. mimosa Lopes & Khouri, 1996 ..................................................................

N. neosimilis Snyder, 1949 .............................................................................

N. nigricosta Snyder, 1949 .............................................................................

N. paramediana Lopes & Khouri, 1995 ..........................................................

N. pictipennis pictipennis (Bigot, 1878) .........................................................

N. ponti Lopes & Khouri, 1995 .......................................................................

N. sanespra Snyder, 1949 ...............................................................................

N. schadei Snyder, 1949 .................................................................................

N. similata Snyder, 1949 .................................................................................

N. stabilis (Stein, 1911) ...................................................................................

N. transporta Snyder, 1949 .............................................................................

N. vitoriae Lopes & Khouri, 1996 ..................................................................

N. zosteris (Shannon & Del Ponte, 1926) .......................................................

Neomuscina sp. nov. 1 ....................................................................................

Neomuscina sp. nov. 2 ....................................................................................

Neomuscina sp. nov. 3 ....................................................................................

CONCLUSÕES ........................................................................................................

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS .....................................................................

FIGURAS .................................................................................................................

LISTA DE FIGURAS

Figuras 1-4: Neomuscina atincticosta ♂: (1) esternito V, vista dorsal; (2) placa

cercal, vista posterior; (3) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda; (4)

edeago; vista lateral esquerda ...................................................................................

Figuras 5-8: Neomuscina atincticosta ♀: (5) terminália, vista ventral; (6)

terminália, vista dorsal; (7) ápice da terminália, vista ventral; (8) ápice da

terminália, vista dorsal ..............................................................................................

Figuras 9-12: Neomuscina capalta ♂: (9) esternito V, vista dorsal; (10) placa

cercal, vista posterior; (11) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda; (12)

edeago, vista lateral esquerda ...................................................................................

Figuras 13-16: Neomuscina capalta ♀: (13) terminália, vista ventral; (14)

terminália, vista dorsal; (15) ápice da terminália, vista ventral; (16) ápice da

terminália, vista dorsal ..............................................................................................

Figuras 17-20: Neomuscina currani ♂: (17) esternito V, vista dorsal; (18) placa

cercal, vista posterior; (19) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda; (20)

edeago, vista lateral esquerda ...................................................................................

Figuras 21-24: Neomuscina currani ♀: (21) terminália, vista ventral; (22)

terminália, vista dorsal; (23) ápice da terminália, vista ventral; (24) ápice da

terminália, vista dorsal ..............................................................................................

Figuras 25-28: Neomuscina douradensis ♂: (25) esternito V, vista dorsal; (26)

placa cercal, vista posterior; (27) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda;

(28) edeago, vista lateral esquerda ...........................................................................

Figuras 29-32: Neomuscina douradensis ♀: (29) terminália, vista ventral; (30)

terminália, vista dorsal; (31) ápice da terminália, vista ventral; (32) ápice da

terminália, vista dorsal ..............................................................................................

Figuras 33-36: N. goianensis ♂: (33) esternito V, vista dorsal; (35) placa cercal,

vista posterior; (34) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda; (36) edeago,

vista lateral esquerda ................................................................................................

Figuras 37-40: N. goianensis ♀: (37) terminália, vista ventral; (38) terminália,

vista dorsal; (39) ápice da terminália, vista ventral; (40) ápice da terminália, vista

dorsal ........................................................................................................................

Figuras 41-44: N. inflexa ♂: (41) esternito V, vista dorsal; (42) placa cercal, vista

posterior; (43) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda; (44) edeago, vista

lateral esquerda .........................................................................................................

Figuras 45-48: N. inflexa ♀: (45) terminália, vista ventral; (46) terminália, vista

dorsal; (47) ápice da terminália, vista ventral; (48) ápice da terminália, vista

dorsal ........................................................................................................................

Figuras 49-52: N. instabilis ♂: (49) esternito V, vista dorsal; (50) placa cercal,

vista posterior; (51) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda; (52) edeago,

vista lateral esquerda ................................................................................................

Figuras 53-56: N. instabilis ♀: (53) terminália, vista ventral; (54) terminália,

vista dorsal; (55) ápice da terminália, vista ventral; (56) ápice da terminália, vista

dorsal ........................................................................................................................

Figuras 57-60: N. mediana ♂: (57) esternito V, vista dorsal; (58) placa cercal,

vista posterior; (59) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda; (60) edeago,

vista lateral esquerda ................................................................................................

100

Figuras 61-64: N. mediana ♀: (61) terminália, vista ventral; (62) terminália, vista

dorsal; (63) ápice da terminália, vista ventral; (64) ápice da terminália, vista

xii

dorsal ........................................................................................................................

101

Figuras 65-68: N. mimosa ♂: (65) esternito V, vista dorsal; (66) placa cercal,

vista posterior; (67) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda; (68) edeago,

vista lateral esquerda ................................................................................................

102

Figuras 69-72: N. mimosa ♀: (69) terminália, vista ventral; (70) terminália, vista

dorsal; (71) ápice da terminália, vista ventral; (72) ápice da terminália, vista

dorsal ........................................................................................................................

103

Figuras 73-76: N. neosimilis ♂: (73) esternito V, vista dorsal; (74) placa cercal,

vista posterior; (75) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda; (76) edeago,

vista lateral esquerda ................................................................................................

104

Figuras 77-80: N. neosimilis ♀: (77) terminália, vista ventral; (78) terminália,

vista dorsal; (79) ápice da terminália, vista ventral; (80) ápice da terminália, vista

dorsal ........................................................................................................................

105

Figuras 81-84: N. nigricosta ♂: (81) esternito V, vista dorsal; (82) placa cercal,

vista posterior; (83) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda; (84) edeago,

vista lateral esquerda ................................................................................................

106

Figuras 85-88: N. nigricosta ♀: (85) terminália, vista ventral; (86) terminália,

vista dorsal; (87) ápice da terminália, vista ventral; (88) ápice da terminália, vista

dorsal ........................................................................................................................

107

Figuras 89-92: N. paramediana ♂: (89) esternito V, vista dorsal; (90) placa

cercal, vista posterior; (92) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda; (92)

edeago, vista lateral esquerda ...................................................................................

108

Figuras 93-96: N. paramediana ♀: (93) terminália, vista ventral; (94) terminália,

vista dorsal; (95) ápice da terminália, vista ventral; (96) ápice da terminália, vista

xiii

dorsal ........................................................................................................................

Figuras 97-100: N. pictipennis pictipennis ♂: (97) esternito V, vista dorsal; (98)

placa cercal, vista posterior; (99) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda;

(100) edeago, vista lateral esquerda .........................................................................

110

Figuras 101-104: N. pictipennis pictipennis ♀: (101) terminália, vista ventral;

(102) terminália, vista dorsal; (103) ápice da terminália, vista ventral; (104) ápice

da terminália, vista dorsal .........................................................................................

111

Figuras 105-108: N. sanespra ♂: (105) esternito V, vista dorsal; (106) placa

cercal, vista posterior; (107) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda;

(108) edeago, vista lateral esquerda .........................................................................

112

Figuras 109-112: N. sanespra ♀: (109) terminália, vista ventral; (110) terminália,

vista dorsal; (111) ápice da terminália, vista ventral; (112) ápice da terminália,

vista dorsal ................................................................................................................

113

Figuras 113-116: N. schadei ♂: (113) esternito V, vista dorsal; (114) placa

cercal, vista posterior; (115) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda;

(116) edeago, vista lateral esquerda .........................................................................

114

Figuras 117-120: N. schadei ♀: (117) terminália, vista ventral; (118) terminália,

vista dorsal; (119) ápice da terminália, vista ventral; (120) ápice da terminália,

vista dorsal ................................................................................................................

115

Figuras 121-124: N. similata ♂: (121) esternito V, vista dorsal; (122) placa

cercal, vista posterior; (123) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda;

(124) edeago, vista lateral esquerda .........................................................................

116

Figuras 125-128: N. similata ♀: (125) terminália, vista ventral; (126) terminália,

vista dorsal; (127) ápice da terminália, vista ventral; (128) ápice da terminália,

xiv

vista dorsal ................................................................................................................

117

Figuras 129-132: N. stabilis ♂: (129) esternito V, vista dorsal; (130) placa cercal,

vista posterior; (131) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda; (132)

edeago, vista lateral esquerda ...................................................................................

118

Figuras 133-136: N. stabilis ♀: (133) terminália, vista ventral; (134) terminália,

vista dorsal; (135) ápice da terminália, vista ventral; (136) ápice da terminália,

vista dorsal ................................................................................................................

119

Figuras 137-140: N. transporta ♂: (137) esternito V, vista dorsal; (138) placa

cercal, vista posterior; (139) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda;

(140) edeago, vista lateral esquerda .........................................................................

120

Figuras 141-144: N. vitoriae ♂: (141) esternito V, vista dorsal; (142) placa

cercal, vista posterior; (143) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda;

(144) edeago, vista lateral esquerda .........................................................................

121

Figuras 145-148: N. vitoriae ♀: (145) terminália, vista ventral; (146) terminália,

vista dorsal; (147) ápice da terminália, vista ventral; (148) ápice da terminália,

vista dorsal ................................................................................................................

122

Figuras 149-152: N. zosteris ♂: (149) esternito V, vista dorsal; (150) placa

cercal, vista posterior; (151) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral esquerda;

(152) edeago, vista lateral esquerda .........................................................................

123

Figuras 153-156: N. zosteris ♀: (153) terminália, vista ventral; (154) terminália,

vista dorsal; (155) ápice da terminália, vista ventral; (156) ápice da terminália,

vista dorsal ................................................................................................................

124

Figuras 157-160: Neomuscina sp. nov. 1 ♂: (157) esternito V, vista dorsal; (158)

placa cercal, vista posterior; (159) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral

esquerda; (160) edeago, vista lateral esquerda .........................................................

125

Figuras 161-162: Neomuscina sp. nov. 1 ♀: (161) terminália, vista ventral; (162)

terminália, vista dorsal; (163) ápice da terminália, vista ventral; (164) ápice da

terminália, vista dorsal ..............................................................................................

126

Figuras 165-168: Neomuscina sp. nov. 2 ♂: (165) esternito V, vista dorsal; (166)

placa cercal, vista posterior; (167) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral

esquerda; (168) edeago, vista lateral esquerda .........................................................

127

Figuras 169-172: Neomuscina sp. nov. 2 ♀: (169) terminália, vista ventral; (170)

terminália, vista dorsal; (171) ápice da terminália, vista ventral; (172) ápice da

terminália, vista dorsal ..............................................................................................

128

Figuras 173-176: Neomuscina sp. nov. 3 ♂: (173) esternito V, vista dorsal; (174)

placa cercal, vista posterior; (175) epândrio, surstilo e cerco, vista lateral

esquerda; (176) edeago, vista lateral esquerda .........................................................

129

xvi

RESUMO

Neomuscina Townsend compreende atualmente 38 espécies, de distribuição

predominantemente neotropical, à exceção de duas espécies ocorrendo também no sul

da Região Neártica e uma coletada na costa ocidental da África. Neste trabalho são

redescritas 22 espécies de ocorrência para o Brasil: N. atincta Snyder, N. atincticosta

Snyder, N. capalta Snyder, N. currani Snyder, N. douradensis Lopes & Khouri

[material-tipo], N. goianensis Lopes & Khouri [material-tipo], N. inflexa (Stein), N.

instabilis Snyder [material-tipo], N. mediana Snyder, N. mimosa Lopes & Khouri

[material-tipo], N. neosimilis Snyder, N. nigricosta Snyder, N. paramediana Lopes &

Khouri [material-tipo], N. pictipennis pictipennis (Bigot), N. ponti Lopes & Khouri

[material-tipo], N. sanespra Snyder [material-tipo], N. schadei Snyder, N. similata

Snyder, N. stabilis (Stein), N. transporta Snyder [material-tipo], N. vitoriae Lopes &

Khouri [material-tipo] e N. zosteris (Shannon & Del Ponte). N. nigricosta e N.

transporta são novas ocorrências para o Brasil. São apresentadas também as descrições

de três novas espécies de Neomuscina. As espécies N. arcuata (Wiedemann), N.

dorsipuncta (Stein), N. nudistigma Snyder, N. sparsiplumata (Stein) e N. tinctinervis

(Stein), cuja literatura também registra para o Brasil, não foram analizadas. Uma chave

de identificação para as espécies brasileiras, baseada em caracteres morfológicos de

indivíduos adultos machos e fêmeas, também é apresentada.

Palavras-chave: chave de identificação, Muscidae, Neomuscina, Região Neotropical,

revisão, taxonomia.

xvii

ABSTRACT

Neomuscina Townsend contains at present 38 species, predominantly neotropical,

except by two species occurring also in the south of the Nearctic Region and one

collected in the western coast of Africa. In this work 22 species occurring in Brazil are

revisioned: N. atincta Snyder, N. atincticosta Snyder, N. capalta Snyder, N. currani

Snyder, N. douradensis Lopes & Khouri [type material], N. goianensis Lopes & Khouri

[type material], N. inflexa (Stein), N. instabilis Snyder [type material], N. mediana

Snyder, N. mimosa Lopes & Khouri [type material], N. neosimilis Snyder, N. nigricosta

Snyder, N. paramediana Lopes & Khouri [type material], N. pictipennis pictipennis

(Bigot), N. ponti Lopes & Khouri [type material], N. sanespra Snyder [type material],

N. schadei Snyder, N. similata Snyder, N. stabilis (Stein) [type material], N. transporta

Snyder [type material], N. vitoriae Lopes & Khouri [type material] e N. zosteris

(Shannon & Del Ponte). N. nigricosta e N. transporta are new occurrences for Brazil.

Also are presented the descriptions of three new Neomuscina species. The species N.

arcuata (Wiedemann), N. dorsipuncta (Stein), N. nudistigma Snyder, N. sparsiplumata

(Stein) e N. tinctinervis (Stein), recorded in the literature on Brazil, weren‟t analyzed.

An identification key for the Brazilian species based in morphological characters of

adults males and females also is presented.

Key words: identification key; Muscidae, Neomuscina, Neotropical Region, revision,

taxonomy.

INTRODUÇÃO

Muscidae constituem uma das maiores famílias dentre os Diptera, contando

atualmente com mais de 4.500 espécies descritas em cerca de 180 gêneros (de Carvalho

et al. 2005). Distribuídos por todas as regiões biogeográficas, os muscídeos ocorrem nos

mais variados habitats, à exceção de ambientes muito áridos (de Carvalho et al. 2005).

A família possui representantes com os mais diversos hábitos. As larvas podem

ser coprófagas, saprófagas e carnívoras (Skidmore 1985) enquanto adultos geralmente

alimentam-se de matéria orgânica vegetal e animal em decomposição (de Carvalho &

Couri 2002; de Carvalho et al. 2005). Muitas espécies de Muscidae possuem

considerável importância econômica: há aquelas que representam importantes pragas

veterinárias; muitas espécies de hábitos saprófagos são potenciais vetores mecânicos de

doenças, despertando interesse médico e sanitário; algumas espécies possuem larvas

atuando como pragas agrícolas ou de grãos armazenados (de Carvalho & Couri 2002; de

Carvalho et al. 2005); e há ainda espécies de interesse no âmbito forense (de Carvalho

& Mello-Patiu 2008).

Na Região Neotropical, os muscídeos estão representados por 843 espécies em

84 gêneros distribuídas em sete subfamílias (de Carvalho et al. 2005). Embora haja um

bom número de espécies neotropicais conhecidas, grande parte do real estado

taxonômico permanece conhecido apenas em níveis incipientes (de Carvalho & Couri

2002).

Neomuscina Townsend, 1919 compreende 38 espécies distribuídas por toda a

Região Neotropical, à exceção de N. tripunctata (Wulp, 1896) e N. rufoscutella Dodge,

1955 ocorrendo ao sul da Região Neártica (de Carvalho et al. 2005) e N. transporta

Snyder, 1949 coletada em um avião proveniente da América do Sul recém

desembarcado em Gana, na costa ocidental africana (Snyder 1949). Embora conte com

um grande número de espécies, há mais de dez anos não são descritas novas espécies

para o gênero.

A Tabela 1 reúne as espécies e suas distribuições geográficas cuja literatura

registra para o Brasil (Snyder 1949; Snyder 1954; d‟Almeida 1992; d‟Almeida 1993;

Costacurta et al. 2003; Rodriguéz-Fernandéz et al. 2006).

Tabela 1 – Espécies de Neomuscina de ocorrência para o Brasil e suas respectivas

localidades.

Espécie

Distribuição geográfica

N. arcuata (Wiedemann)

“Brasil”

N. atincta Snyder

Brasil (Rio de Janeiro), Costa Rica, Panamá

N. atincticosta Snyder

Brasil (Minas Gerais, Paraná, Rio de Janeiro,

Santa Catarina)

N. capalta Snyder

Brasil (Rio de Janeiro), Panamá, Trindad e

Tobago

N. currani Snyder

Brasil (Rio de Janeiro), Panamá

N. dorsipuncta (Stein)

“Brasil”, Costa Rica, México, Panamá, Venezuela

N. douradensis Lopes & Khouri

Brasil (Goiás, Mato Grosso do Sul)

N. goianensis Lopes & Khouri

Brasil (Bahia, Ceará, Goiás, Rio de Janeiro, São

Paulo)

N. inflexa (Stein)

Brasil (Paraná, Rio de Janeiro, São Paulo)

N. instabilis Snyder

Brasil (Rio de Janeiro), Panamá, Trindad e

Tobago

N. mediana Snyder

Brasil (Rio de Janeiro)

N. mimosa Lopes & Khouri

Brasil (Goiás)

N. neosimilis Snyder

Brasil (Rio de Janeiro, Santa Catarina), Paraguai

N. nudistigma Snyder

Brasil (Paraná), Venezuela

N. paramediana Lopes & Khouri

Brasil (Goiás, Mato Grosso do Sul, Rio de

Janeiro, Rio Grande do Sul, São Paulo)

N. pictipennis pictipennis (Bigot)

Brasil (Paraná), Paraguai, Venezuela

N. ponti Lopes & Khouri

Brasil (São Paulo)

N. sanespra Snyder

Brasil (Espírito Santo)

N. schadei Snyder

Brasil (Paraná), Paraguai

N. similata Snyder

Brasil (Rio de Janeiro), Guiana, Trindad e

Tobago, Venezuela

N. sparsiplumata (Stein)

Brasil (Rio Grande do Sul)

N. stabilis (Stein)

Brasil (Rio de Janeiro), Peru

N. tinctinervis (Stein)

Brasil (Paraná, Santa Catarina, São Paulo)

N. vitoriae Lopes & Khouri

Brasil (Minas Gerais, Rio de Janeiro)

N. zosteris (Shannon & Del Ponte)

Argentina, Brasil (Paraná)

Os adultos caracterizam-se por possuírem olhos nus; arista plumosa; parede pós-

alar nua; borda supra e infra-escamal nua; acrosticais 0:1, 1:1 ou 2:1; calcar ausente;

porção apical da veia tronco com cerdas dorsais e ventrais; ápice da veia M fortemente

curva, dirigindo para R

4+5

e terminando próximo ao ápice da asa; veia R

4+5

ligeiramente

curva para baixo e terminando antes de se encontrar com o ápice da asa (Snyder 1949;

Couri & de Carvalho 2002).

As Neomuscina possuem um discreto interesse em saúde pública (Snyder 1949)

e entomologia forense (de Carvalho & Mello-Patiu 2008), já que algumas espécies são

muito comuns em ambientes urbanos (de Carvalho et al. 1984; d‟Almeida 1992;

d‟Almeida 1993). Adultos e larvas podem ser coletados sobre fezes e qualquer outro

tipo de material orgânico vegetal (Snyder 1949) ou animal (Wells & Greenberg 1992)

em decomposição. Pouco se sabe sobre os hábitos das espécies do gênero. Townsend

(1919) menciona que os indivíduos adultos comumente adentram em cavernas e tendas

durante o calor do dia. Muchmore (2001) reporta que a existência de uma caverna em

Fremont County, Colorado popularmente conhecida como “Fly Cave”, abrigo de

milhares de indivíduos de N. tripunctata. Há ainda outras duas cavernas em Eddy

County, Novo México onde Cokendolpher & Polyak (2004) relatam a existência da

mesma espécie. Acreditava-se existir alguma relação entre indivíduos de Neomuscina e

formigas do gênero Formes – devido a um erro de leitura de etiqueta por Snyder (1949).

Confirmou-se posteriormente que alguns indivíduos foram coletados sobre fungos do

gênero Fomes (Snyder 1954).

A primeira revisão do gênero com chave de identificação foi realizada por

Snyder (1949). Posteriormente o próprio autor reviu sua chave, incluindo e

sinonimizando algumas espécies (Snyder 1954). Lopes & Khouri (1995; 1996) foram as

últimas autoras a descrever novas espécies para Neomuscina, acrescentando seis

espécies ao gênero.

Neste trabalho é proposta a revisão das espécies de Neomuscina de ocorrência

no Brasil, que conta atualmente com um conhecimento escasso e fragmentado. A

identificação das espécies do gênero é de grande dificuldade, sobretudo devido à antiga

tendência dentro do grupo de se separar as espécies baseando-se fortemente em

caracteres de coloração. Pretende-se aqui dar subsídios que contribuam para a

compreensão da diversidade do grupo e possibilitem trabalhos subseqüentes que visem

determinar a validade e relação de tais táxons.

Histórico das espécies de Neomuscina no Brasil

Townsend (1919) propôs o gênero Neomuscina, com base em indivíduos

coletados no Arizona e Novo México, Estados Unidos da América. Apenas uma espécie

foi descrita, Neomuscina cavicola. Embora Townsend não tenha explicitado o porquê

do epíteto genérico, provavelmente este se deve à semelhança com espécies do gênero

Muscina, diferindo em alguns aspectos. Segue a descrição do gênero Neomuscina,

segundo Townsend (1919:541-542):

Differs from Muscina as follows: Clypeous strongly dished. Arista much

longer than antennae, thinly plumose. Female frontalia without convergent

pair of bristles in front of ocelli. Cheeks not as wide as epistoma. Only one

preacrostichal bristle. Scuttelum subpointed behind. Basal segment of

abdomen well shortned, the anal segment little longer than preceding

segment. Third segment with a marginal row of erect bristles.

Malloch (1921) transferiu Spilogaster apicata Stein, 1904 para Spilopteromyia –

um novo gênero, futuramente classificado como subgênero de Neomuscina por Snyder

(1949).

Snyder (1949) realizou uma revisão para o gênero, propondo novas espécies e

novas combinações. N. fulvifrons, N. mediana, N. neosimilis e N. sanespra foram as

primeiras espécies descritas para o Brasil. Três outras espécies registradas para o Brasil

foram transferidas por Snyder para Neomuscina: Cyrtoneurina inflexa Stein, 1918,

Mydaea sparsiplumata Stein, 1918 e Mydaea tinctinervis Stein, 1918. Snyder não

encontrou diferenças entre Neomuscina e Spilopteromyia, à exceção do segundo

apresentar cerdas ventralmente na veia R

4+5

, conforme segue:

“… Spilopteromyia is more closely allied to Neomuscina, and it is my opinion

that it should be treated at most a subgenus of it. The only character that I

have been able find that may be of value in distinguishing Spilopteromyia

from Neomuscina, sensu stricto, is the presence of hairs on the ventral surface

of the third wing vein beyond the node.” (Snyder 1949:4).

Assim, Snyder propôs Spilopteromyia como subgênero de Neomuscina,

descrevendo uma espécie para o Brasil, Neomuscina (Spilopteromyia) atincticosta.

Snyder (1954), em seu trabalho revisional sobre Cyrtoneurina fez um breve

adendo a respeito de Neomuscina, propondo novas sinonímias e transferências de

espécies para o gênero. N. fulvifrons Snyder, 1949 foi sinonimizada com Neomuscina

zosteris (Shannon & Del Ponte, 1926).

Pont (1972) em seu catálogo de muscídeos neotropicais transfere Mydaea

dorsipuncta Stein, 1918 para Neomuscina. No mesmo trabalho Pont aboliu o uso do

subgênero Spilopteromyia.

Linhares (1981), em seu trabalho sobre dípteros sinatrópicos de Campinas,

reconheceu como nova ocorrência para o Brasil N. similata Snyder, 1949. d‟Almeida

(1992; 1993), em seus estudos sobre dípteros sinantrópicos do Rio de Janeiro,

identificou as espécies N. atincta Snyder, 1949, N. capalta Snyder, 1949, N. currani

Snyder, 1949, N. instabilis Snyder, 1949, N. pictipennis pictipennis (Bigot, 1878) como

novas ocorrências para o Brasil.

No catálogo de Muscidae e Faniidae neotropicais, de Carvalho et al. (1993)

transferiram Mydaea arcuata (Wiedemann, 1830) para Neomuscina.

Lopes & Khouri (1995) descreveram três novas espécies de Neomuscina: N.

goianensis, N. ponti e N. vitoriae. Posteriormente, Lopes & Khouri (1996) descreveram

mais três novas espécies: N. douradensis, N. mimosa e N. paramediana.

Costacurta et al. (2003), no trabalho sobre a fauna do Estado do Paraná,

registraram N. schadei Snyder, 1949 para o Brasil. Rodriguéz-Fernández et al. (2006),

no estudo de assembléias de Muscidae do Paraná, identificaram N. nudistigma Snyder,

1949, sendo esta o último registro de uma espécie de Neomuscina para o Brasil.

Este trabalho pretende revisionar as espécies do gênero Neomuscina de

ocorrência para o Brasil, através da análise morfológica de indivíduos machos e fêmeas

adultos. Especificamente pretende-se:

1) Redescrever de forma completa, detalhada e padronizada todas as espécies

encontradas e examinadas;

2) Descrever as possíveis novas espécies encontradas durante o estudo;

3) Confeccionar uma chave de identificação para as espécies de Neomuscina de

ocorrência no Brasil, baseada em caracteres morfológicos de indivíduos machos e

fêmeas adultos.

MATERIAL E MÉTODOS

Material examinado

Os exemplares examinados foram provenientes das instituições listadas abaixo,

com seus respectivos curadores e acrônimos, segundo de Carvalho et al. (2005):

DZUP

Coleção Entomológica “Pe. Jesus Santiago Moure”, Departamento de

Zoologia da Universidade Federal do Paraná – Curitiba, PR, Brasil (Dr.

Claudio José Barros de Carvalho);

MNRJ

Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro – Rio de Janeiro,

RJ, Brasil (Dra. Marcia Souto Couri);

MZSP

Museu de Zoologia da Universidade de São Paulo – São Paulo, SP, Brasil

(Dr. Carlos José Einicker Lamas);

SMT

Staatliches Museum für Tierkunde – Dresden, Alemanha (Dr. Uwe

Kallweit);

USNM

United States Natural Museum – Washington, D.C., Estados Unidos da

América (Dr. Wayne Mathis).

Examinou-se o material-tipo das seguintes espécies: N. douradensis Lopes &

Khouri, 1996, N. goianensis Lopes & Khouri, 1995, N. instabilis Snyder, 1949, N.

mimosa Lopes & Khouri, 1996, N. paramediana Lopes & Khouri, 1995, N. ponti Lopes

& Khouri, 1995, N. sanespra Snyder, 1949, N. schadei Snyder, 1949, N. stabilis (Stein,

1911), N. transporta Snyder, 1949 e N. vitoriae Lopes & Khouri, 1996. As demais

espécies foram identificadas com base nas três chaves de identificação disponíveis na

literatura para o gênero (Snyder 1949; Snyder 1954; Couri & de Carvalho 2002). Para

análise de terminálias, procurou-se estabeler um universo de seis indivíduos por espécie,

sendo três machos e três fêmeas. No entanto este número apresenta-se menor para

algumas espécies, em virtude da quantidade de material disponível para análise.

Procurou-se manter as informações de etiquetas de coleta assim como estão nos

exemplares. Machos e fêmeas estão indicados antes da descrição de sua etiqueta,

representados por número de indivíduos e símbolos de gênero (♂ e ♀); símbolos de

aspas (“ e ”) indicam o início e término de uma etiqueta; barras (/) indicam quebra de

linha numa mesma etiqueta; barras verticais (|) indicam tratar-se de outra etiqueta em

um mesmo indivíduo; barras invertidas (\) indicam separação entre indivíduos que

difiram em pelo menos um item em uma etiqueta; o acrônimo do museu de procedência

do material está indicado após a etiqueta do mesmo, entre colchetes ([ e ]). Para locais e

coletores iguais, mencionou-se apenas a quantidade de indivíduos, sexo e data,

juntamente com a expressão “mesmo local e coletor(es)”. Adicional a estas

informações, todo material está indicado por país (caixa alta e negrito), estado de

ocorrência (itálico e negrito) e se pertence à série tipo, além de estar organizado por

local e data de coleta.

Procedimento e análise

Todos os espécimes analisados estavam preservados em via seca e alfinetados.

Esses exemplares foram examinados em microscópio estereoscópico Wild Heerbrugg

M8 com aumento de até 50x para verificação de caracteres morfológicos externos.

Terminálias masculinas e femininas foram examinadas em microscópio Zeiss Standard

2.0, com aumento entre 32 e 400x, equipados com câmara clara para desenhos. Para isso

o abdômen foi removido e clareado a frio com Hidróxido de Potássio (KOH) 10%,

durante um período de 24-30 horas em placas de porcelana escavadas; após esse

período, as terminálias passaram por um banho de álcool 70%, ácido acético

(CH

COOH) 95% e novamente álcool 70% por 20 minutos cada, para se neutralizar por

completo o efeito básico do KOH. Após esses banhos, as estruturas foram levadas para

lâminas escavadas com glicerina e manipuladas com microalfinetes, de forma que

fossem limpas e melhor posicionadas para visualização. Após o estudo, todo material

dissecado foi acondicionado em microtubos plásticos com glicerina, sendo então

afixados juntamente ao alfinete do exemplar original (Gurney et al. 1964).

Os desenhos provenientes das observações foram feitos em papel sulfite formato

A4. Posteriormente foram repassados à nanquim em papel vegetal, digitalizados através

de um scanner e tratados digitalmente no computador.

Terminologia

A terminologia adotada neste trabalho, quanto às estruturas e posicionamento de

cerdas, baseia-se no trabalho de McAlpine (1981), com as sugestões propostas por

Carvalho (1989) e Nihei & de Carvalho (2007).

RESULTADOS

Taxonomia

Neomuscina Townsend, 1919

Neomuscina Townsend 1919:541-542 (designação da espécie-tipo Neomuscina cavicola, sinonímia de

Muscina tripunctata Wulp, 1896); Curran 1934:399 (chave para espécies Neárticas); Snyder 1949

(revisão, chave); Snyder 1954 (revisão, chave); Pont 1972:50 (catálogo); Albuquerque & Lopes

1982:56 (próxima a Neomuciniopsis); de Carvalho & Couri 1991:37-38 (spp. coletadas); de

Carvalho et al. 1993:57 (catálogo); Moura et al. 1997 (listada, forense); Couri & de Carvalho

2002:149 (chave); de Carvalho et al. 2005:92 (catálogo); de Carvalho & Mello-Patiu 2008:395

(chave forense).

Spilopteromyia Malloch 1921:422 (descrição). Espécie tipo, Spilogaster apicata Stein (designação

original); Snyder 1949 (subgênero de Neomuscina; chave); Snyder 1954 (subgênero de

Neomuscina; chave).

Diagnose: olhos nus; acrosticais 0:1 ou 1:1, raramente 2:1; dorsocentrais 2:3 ou 2:4;

intra-alares 1 ou 2; anepímero com cílios discais; bordas supra e infra-escamal nuas;

parede pós-alar nua; ápice da veia tronco com cerdas ventrais e dorsais; algumas

espécies apresentando cerdas ventrais na base da veia R

4+5

; demais veias, exceto a C,

nuas;

4+5

curvando-se ligeiramente para baixo e dirigindo-se ao ápice, mas terminando

antes de atingir o mesmo; veia M fortemente curvada após sua metade, dirigindo-se ao

ápice da asa, mas terminando após este; calcar ausente.

Para se evitar descrições e redescrições longas e redundantes, todos os caracteres

mencionados a seguir estão presentes em todas as espécies de Neomuscina mencionadas

neste trabalho: machos holópticos; fêmeas dicópticas; cerdas paraverticais pequenas,

paralelas e direcionadas para trás; facetas ântero-internas dilatadas; antenas não

atingindo o epístoma e inseridas pouco abaixo da metade dos olhos, quando em vista

lateral; arista plumosa, sendo os cílios dorsais maiores que os ventrais, e com pequenos

cílios na região interna; epístoma não saliente; palpos falciformes; duas cerdas supra-

alares; cerda pré-alar presente; duas cerdas notopleurais; duas cerdas umerais, sendo a

cerda interna reduzida; cerdas pós-umeral e pré-sutural presentes; um par de cerdas

escutelares basais pequenas; um par de cerdas escutelares laterais grandes; dois pares de

cerdas escutelares pré-apicais, sendo o para interior menor que o exterior; um par de

cerdas escutelares apicais fortes; sem cerda para-umeral e pós-supra-alar; cílios

escutelares intrometendo-se lateralmente na região basal ventral do escutelo; pró-

episterno e pró-epímero com duas cerdas destacadas cada; catepisternais 1:2; fêmur

anterior com uma completa fileira de cerdas nas faces dorsal, póstero-dorsal e póstero-

ventral; tíbia média com uma fileira de cerdas fortes e fracas intercaladas, partindo da

região submediana anterior da face posterior e dirigindo-se para a face póstero-ventral,

terminando próximo do pré-ápice tibial; fêmur posterior com uma cerda póstero-dorsal

pré-apical; esternito V masculino com ápice côncavo e extensões digitiformes; cercos,

em vista posterior, fusiformes; ápice do cercos com duas ou três laterais e internas;

surstilos com cerdas internas; parâmeros com cerdas; três espermatecas de aspecto

rugoso.

As espécies N. atincta Snyder, N. atincticosta Snyder, N. capalta Snyder, N.

currani Snyder, N. douradensis Lopes & Khouri, N. goianensis Lopes & Khouri, N.

inflexa (Stein), N. instabilis Snyder, N. mediana Snyder, N. mimosa Lopes & Khouri, N.

neosimilis Snyder, N. paramediana Lopes & Khouri, N. pictipennis pictipennis (Bigot),

N. ponti Lopes & Khouri, N. sanespra Snyder, N. schadei Snyder, N. similata Snyder,

N. stabilis (Stein), N. vitoriae Lopes & Khouri e N. zosteris (Shannon & Del Ponte) cuja

literatura lista para o Brasil, são redescritas. N. nigricosta Snyder e N. transporta

Snyder são apresentadas como novos registros para o país. Não foram analisadas as

espécies N. arcuata (Wiedemann), N. dorsipuncta (Stein), N. nudistigma Snyder, N.

sparsiplumata (Stein) e N. tinctinervis (Stein). São descritas também três novas espécies

para o gênero.

A chave de identificação proposta procura incluir caracteres simples e relevantes

para a determinação das espécies. Embora alguns caracteres não sejam de fácil

visualização – requerindo montagem de terminálias, sua utilização é imprescindível

para o discernimento e acuracidade da chave. Dentro do possível, mais de um caráter foi

utilizado para os passos, possibilitando assim mais informações para a identificação em

caso de perda ou impossibilidade de visualização de estruturas. Espécies não analisadas

não estão inclusas na chave.

Chave de identificação para espécies de Neomuscina do Brasil

1. Asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos (com

formato semelhante a um S), com cerdas internas curtas [Figura 10]; ovipositor com

tamanho variando entre 1,5 a 2,5 mm, com esclerotinização destacada apenas nos

tergitos e esternitos ........................................................................................................... 2

1‟. Asas com R

4+5

com cerdas na superfície ventral; surstilos estreitos e não sinuosos

(apenas o ápice é curvo), com cerdas internas longas [Figura 3]; o ovipositor pode ser

longo (aproximadamente 3,0 mm de comprimento) e bem esclerotinizado [Figuras 5 e

6] ou curto (aproximadamente 1,0 mm de comprimento) e pouco esclerotinizado

[Figuras 21 e 22] ............................................................................................................. 27

2 (1). Sem cerdas acrosticais pré-suturais distintas (acrosticais 0:1) ............................... 3

2‟. Com cerdas acrosticais pré-suturais distintas (acrosticais 1:1 ou 2:1) ...................... 22

3 (2). Dorsocentrais 2:3 .................................................................................................... 4

3‟. Dorsocentrais 2:4 ........................................................................................................ 6

4 (3). Fêmur médio com duas cerdas pré-apicais; calípteras com as margens

escurecidas; machos com a base dos cercos mais dilatada que o ápice dos mesmos,

quando em vista posterior [Figura 11]; epiprocto feminino com quatro cerdas, dispostas

2:2 da base para o ápice [Figura 16] ............................................ N. capalta Snyder, 1949

4‟. Fêmur médio com três cerdas pré-apicais; calípteras com as margens branco-

amareladas; machos com a base e o ápice dos cercos equivalentes em espessura, quando

em vista posterior [Figura 11]; epiprocto feminino com uma configuração de cerdas

diferente de 2:2 ................................................................................................................. 5

5 (4‟). Machos com intra-alar 1; epiprocto feminino com cinco cerdas, dispostas 2:1:2

da base para o ápice [Figura 48] ................................................... N. inflexa (Stein, 1918)

5‟. Machos com intra-alar 2; epiprocto feminino com sete cerdas, dispostas 2:1:4 da

base para o ápice [Figura 164] ....................................................... Neomuscina sp. nov. 1

6 (3‟). Fêmur médio com duas cerdas pré-apicais ............................................................ 7

6‟. Fêmur médio com três cerdas pré-apicais ................................................................. 14

7 (6). Tíbia posterior com uma cerda mediana ântero-dorsal ........................................... 8

7‟. Tíbia posterior com duas cerdas medianas ântero-dorsais ........................................ 13

8 (7). Coloração geral castanho-escura; esternito V masculino com uma forte projeção

basal [Figura 57]; ápice dos cercos masculinos rombudos [Figura 58] .............................

.................................................................................................... N. mediana Snyder, 1949

8‟. Coloração geral amarela ou castanho-amarelada, não escura; esternito V masculino

sem projeção na base [ex. Figuras 81 e 149], mas se esta ocorrer, então a concavidade

apical do esternito é sulcada no centro [Figura 137]; ápice dos cercos masculinos

afilados [ex. Figuras 138 e 150] ....................................................................................... 9

9 (8‟). Calípteras com as margens escuras ..................................................................... 10

9‟. Calípteras com as margens brancas ou amareladas ................................................... 11

10 (9). Asas com uma mancha castanha estendendo-se do ápice da Sc até a R

2+3

; veias

rm e dm-cu com manchas castanhas ao redor; base superior do epândrio fortemente

pronunciada anteriormente (em vista lateral) [Figura 175] ........... Neomuscina sp. nov. 3

10‟. Asas hialinas com uma fraca mancha ao redor da veia rm; base superior do

epândrio fracamente pronunciada anteriormente (em vista lateral) [Figura 151] ..............

.......................................................... N. zosteris (Shannon & Del Ponte, 1926) [em parte]

11 (9‟). Asas com uma mancha castanha ininterrupita estendendo-se do ápice da veia Sc

até o ápice da veia R

2+3

........................................................... N. nigricosta Snyder, 1949

11‟. Asas hialinas (o espaço entre as veias Sc e R

2+3

, quando preenchido, é em tom

esparso) ........................................................................................................................... 12

12 (11‟). Veias tranversais com manchas castanhas ao redor; machos com intra-alares 2;

esternito V masculino sem projeção basal e sulco na concavidade apical [Figura 125] ....

............................................................................... N. douradensis Lopes & Khouri, 1996

12‟. Veias tranversais sem manchas castanhas ao redor; machos com intra-alares 1;

esternito V masculino com projeção basal e sulco na concavidade apical [Figura 137] ....

............................................................................... N. transporta Snyder, 1949 [em parte]

13 (7‟). Asas hialinas; machos com intra-alares 1; pró-epímero com três cerdas

destacadas .....................................................................................N. atincta Snyder, 1949

13‟. Asas com manchas; machos com intra-alares 2; pró-epímero com duas cerdas

destacadas ............................................................. N. transporta Snyder, 1949 [em parte]

14 (6‟). Espiráculo posterior com destacadas cerdas negras adjacentes na região póstero-

inferior ............................................................................................................................ 15

14‟. Espiráculo posterior sem cerdas negras adjacentes ................................................. 16

15 (14). Comprimento da região superior do epândrio igual à região inferior, em vista

lateral [Figura 35]; esternito VI das fêmeas com uma esclerotinização em formato

triangular [Figura 37]; tergitos VII das fêmeas quase se tocando [Figura 38]; fêmeas

com muitas cerdas ventrais nos segmentos abdominais VII e VIII [Figura 37] .................

................................................................ N. goianensis Lopes & Khouri, 1995 [em parte]

15‟. Comprimento da região superior do epândrio maior do que a região inferior, em

vista lateral [Figura 99]; esternito VI das fêmeas sem esclerotinização [Figura 101];

tergitos VII das fêmeas afastados [Figura 102]; fêmeas com muitas cerdas ventrais nos

segmentos abdominais VII e VIII [Figura 101] ..................................................................

............................................................................. N. pictipennis pictipennis (Bigot, 1878)

16 (14‟). Asas hialinas .................................................................................................... 17

16‟. Asas com ao menos uma mancha em sua extensão ................................................ 21

17 (16). Tíbia anterior com uma destacada cerda mediana ântero-dorsal; machos com

intra-alares 1 ................................................................................................................... 18

17‟. Tíbia anterior sem uma destacada cerda mediana ântero-dorsal; machos com intra-

alares 2 ........................................................................................ N. schadei Snyder, 1949

18 (17). Pró-epímero e pró-episterno com sétulas negras adjacentes .................................

.......................................................................................................N. stabilis (Stein, 1911)

18‟. Pró-epímero e pró-episterno sem sétulas negras adjacentes ................................... 19

19 (18‟). Catepisterno com sétulas negras adjacentes na região posterior .........................

...................................................................................... N. mimosa Lopes & Khouri, 1995

19‟. Catepisterno com sétulas negras adjacentes na região posterior ............................. 20

20 (19‟). Coloração em geral amarelada; esternito V masculino com projeção basal

[Figura 89]; região superior do epândrio igual em comprimento à região inferior, em

vista lateral [Figura 91]; epiprocto com formato arredondado, sem reentrância na base

[Figura 96] .......................................................... N. paramediana Lopes & Khouri, 1996

20. Coloração em geral castanha; esternito V masculino sem projeção basal [Figura 49];

região superior do epândrio maior em comprimento do que a região inferior, em vista

lateral [Figura 51]; epiprocto com formato moderadamente triangular, com reentrância

na base [Figura 56] ................................................................... N. instabilis Snyder, 1949

21 (16‟). Esternito VIII das fêmeas com espinhos curtos [Figura 127]; machos com

intra-alar 2; esternito V masculino com pronunciada projeção basal [Figura 121] ............

..................................................................................................... N. similata Snyder, 1949

21. Esternito VIII das fêmeas com espinhos longos [Figura 79]; machos com intra-alar

1; esternito V masculino com fraca projeção basal [Figura 73] .........................................

................................................................................................. N. neosimilis Snyder, 1949

22 (2‟). Acrosticais 1:1 ................................................................................................... 23

22‟. Acrosticais 2:1 ...........................................................N. ponti Lopes & Khouri, 1995

23 (22). Fêmur médio com duas cerdas pré-apicais; fêmeas com duas fileiras de cerdas

dorsais no meio dos segmentos abdominais VI e VII [Figura 154] ...................................

.......................................................... N. zosteris (Shannon & Del Ponte, 1926) [em parte]

23‟. Fêmur médio com três cerdas pré-apicais; fêmeas com uma simples fileira de

cerdas ventrais no meio dos segmentos abdominais VI e VII ........................................ 24

24 (23‟). Calo pós-alar com uma distinta mácula castanho-escura lateralmente; esternito

V dos machos em formato quadrngular [Figura 165]; fêmeas com muitas cerdas

reunidas logo acima do ápice do esternito VI, numa região mais esclerotinizada [Figura

170] ................................................................................................ Neomuscina sp. nov. 2

24‟. Calo pós-alar sem mácula; esternito V dos machos em formato não quadrangular;

fêmeas com poucas cerdas reunidas logo acima do ápice do esternito VI, sem região

esclerotinizada ................................................................................................................ 25

25 (24‟). Espiráculo posterior com destacadas cerdas negras adjacentes na região

póstero-ventral; asas com manchas castanhas nas extremidades de R

, R

2+3

e veias

transversais ............................................ N. goianensis Lopes & Khouri, 1995 [em parte]

25‟. Espiráculo posterior sem cerdas negras adjacentes na região póstero-ventral; asas

hialinas, ou somente com uma mancha castanha circundando a veia rm ....................... 26

26 (25‟). Asas hialinas; bordas das calípteras brancas; machos com intra-alar 1;

hipoprocto feminino em formato arredondado [Figura 147] ..............................................

...................................................................................... N. vitoriae Lopes & Khouri, 1995

26‟. Asas com uma fraca mancha circundando a veia rm; bordas da calípteras

escurecidas; machos com intra-alar 2; hipoprocto feminino em formato losangular, com

a base bilobada [Figura 111] .................................................... N. sanespra Snyder, 1949

27 (1‟). Dorsocentrais 2:3; R

4+5

com uma simples cerda na região ventral; esternito V

masculino com projeção bilobada na base [Figura 17]; cercos com duas cerdas apicais,

laterais e internas [Figura 18]; parâmeros com uma cerda longa e destacada [Figura 20];

ovipositor curto e pouco esclerotinizado [Figuras 21 e 22]; epiprocto feminino com

cinco cerdas, dipostas 2:1:2 da base para o ápice [Figura 24] ..... N. currani Snyder, 1949

27‟. Dorsocentrais 2:4; R

4+5

com mais de uma cerda na região ventral; esternito V

masculino com fraca projeção na base [Figura 1]; cercos com três cerdas apicais,

laterais e internas [Figura 2]; parâmeros com cerdas curtas [Figura 4]; ovipositor longo

e muito esclerotinizado [Figuras 5 e 6]; epiprocto feminino com quatro cerdas, dipostas

1:2:1 da base para o ápice [Figura 8] .................................... N. atincticosta Snyder, 1949

Revisão das espécies

Neomuscina atincta Snyder, 1949

Neomuscina atincta Snyder 1949:27 (descrição, chave); Snyder 1954:425 (chave); Pont 1972:50

(catálogo); d‟Almeida 1992:381–386 (listada); d‟Almeida 1993:7–16 (sinantropia); de Carvalho et

al. 1993:57 (catálogo); Couri & de Carvalho 2002:153 (chave); Couri & de Carvalho 2005:9

(listada).

Diagnose: asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos,

com cerdas internas curtas; acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; fêmur médio com duas

cerdas pré-apicais; tíbia posterior com duas cerdas medianas ântero-dorsais; asas

hialinas; machos com intra-alares 1; pró-epímero com três cerdas destacadas.

Coloração: em geral castanho; noto com quatro listras castanho-escuras e com

polinosidade cinzenta; ápice da fronte escurecida e região anterior amarelo-acastanhada;

parafrontália amarela; faciália e parafaciália branco-amareladas; antenas e palpos

amarelos; calo umeral e ápice do escutelo amarelos; pernas castanho-escuras; calípteras

e halteres amarelos; asas hialinas.

Macho: 6,1 mm de comprimento; asas 6,4 mm de comprimento.

Cabeça: olhos afastados por uma distância de 0,8 mm à altura do primeiro ocelo; cerdas

frontais de 13-14 pares, sendo o 2º par maior que os demais; cerdas ocelares pequenas e

convergentes; cerdas pós-ocelares pequenas e divergentes; cerdas verticais internas e

cerdas verticais externas pequenas e divergentes.

Tórax: acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; intra-alares 2; pró-epímero com três cerdas;

tíbia anterior com uma distinta cerda submediana ântero-ventral; ápice da tíbia anterior

com cerdas nas faces ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal e póstero-ventral; fêmur

médio com um fileira de cerdas na face póstero-ventral até a metade; fêmur médio com

duas cerdas pré-apicais, posicionadas nas faces póstero-dorsal e posterior; ápice da tíbia

média com cerdas nas faces anterior, dorsal, póstero-dorsal, póstero-ventral, ventral e

ântero-ventral; fêmur posterior com uma completa fileira de cerdas nas faces ântero-

dorsal, póstero-ventral e ântero-ventral; tíbia posterior com duas cerdas mediana ântero-

dorsais e de cinco a seis cerdas medianas ântero-ventrais; asas com uma cerda dorsal e

uma a duas cerdas ventrais no ápice da veia tronco; R

4+5

com duas a três cerdas ventrais

na base.

Material analisado:

PANAMÁ: Holótipo: ♂, Etiqueta de identificação: etiqueta vermelha, manuscrita

“Holotype ♂ / Neomuscina / atincta / Snyder”; etiqueta branca, letras impressas “Barro

Colorado Is. / Canal Zone / October, 1942 / J. Zetek”. Depositado no USNM.

Localidade-tipo: Panamá (localidade tipo).

Distribuição geográfica: Brasil (Rio de Janeiro), Costa Rica e Panamá (localidade tipo).

Comentários: A espécie N. atincta foi listada ocorrente para o Brasil através dos

trabalhos de sinatropia e atratividade de d‟Almeida (1992; 1993) no Rio de Janeiro. A

coleção do MNRJ, embora possua uma boa represetação de material coletado no Estado

do Rio de Janeiro, não possui nenhum representante dessa espécie. O DZUP e o MZSP

também não possuem nenhum indivíduo, o que poderia indicar um possível erro de

identificação nos trabalhos acima citados. Distingue-se principalmente pelas duas cerdas

medianas ântero-dorsais na tíbia posterior. Aqui está representada apenas a redescrição

do holótipo, sem desenhos de terminálias dissecadas.

Neomuscina atincticosta Snyder, 1949

(Figs. 1-8)

Neomuscina atincticosta Snyder 1949:37 (descrição, chave); Snyder 1954:424 (chave); Pont 1972:50

(catálogo); d‟Almeida 1993:7–16 (sinantropia); de Carvalho et al. 1993:57 (catálogo); Couri & de

Carvalho 2002:154 (chave); Costacurta et al. 2003:393 (coletada); Maia et al. 2002:109–117

(coletada); de Carvalho et al. 2005:93 (catálogo); Rodríguez-Fernández et al. 2006:98 (listada).

Diagnose: asas com R

4+5

com cerdas na superfície ventral; surstilos estreitos e não

sinuosos, com cerdas internas longas; dorsocentrais 2:4; R

4+5

com mais de uma cerda na

região ventral; esternito V masculino com fraca projeção na base; cercos com três

cerdas apicais, laterais e internas; parâmeros com cerdas curtas; ovipositor longo e

muito esclerotinizado; epiprocto feminino com quatro cerdas, dipostas 1:2:1 da base

para o ápice.

Coloração: em geral castanho-claro; noto com quatro listras castanho-escuras e com

polinosidade cinzenta; calo umeral e ápice do escutelo amarelos; ápice da fronte

escurecida e região anterior amarelo-acastanhada; parafrontália amarela; faciália e

parafaciália brancas; antenas e palpos amarelos; pernas amarelas; calípteras e halteres

amarelos; magens das calípteras escurecidas; asas hialinas com uma pequena mancha

castanha na veia rm.

Macho: 5,4-6,1 mm de comprimento; asas 5,5-6,1 mm de comprimento.

Cabeça: olhos afastados por uma distância de 0,1-0,12 mm à altura do primeiro ocelo;

cerdas frontais de 11-12 pares, sendo o 2º par maior que os demais; cerdas ocelares

pequenas e convergentes; cerdas pós-ocelares pequenas e divergentes; cerdas verticais

internas e cerdas verticais externas pequenas e divergentes.

Tórax: acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; intra-alares 2; pró-epímero com três cerdas;

anepímero com cílios discais negros; catepisterno com sétulas negras acessórias; ápice

da tíbia anterior com cerdas nas faces ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal e póstero-

ventral; fêmur médio com um fileira de cerdas na face póstero-ventral até a metade;

fêmur médio com três cerdas pré-apicais, posicionadas nas faces dorsal, póstero-dorsal e

posterior; ápice da tíbia média com cerdas nas faces anterior, dorsal, póstero-dorsal,

póstero-ventral, ventral e ântero-ventral; fêmur posterior com uma completa fileira de

cerdas nas faces ântero-dorsal, póstero-ventral e ântero-ventral; tíbia posterior com uma

cerda mediana ântero-dorsal e de cinco a seis cerdas medianas ântero-ventrais; asas com

uma cerda dorsal e uma a duas cerdas ventrais no ápice da veia tronco; R

4+5

com duas a

três cerdas ventrais na base.

Abdômen: esternito V com cerdas grandes e destacadas; esternito V mais largo que

comprido e com formato próximo ao circular; extensões digitiformes destacadas;

epândrio, susrtilos e cercos formando uma espécie de cápsula; epândrio arredondado em

vista lateral; cercos afilados e sinuosos, em vista posterior; cercos com três cerdas

apicais, laterais e internas; surstilos não sinuosos, com ápice curvo e muitas cerdas

grandes na face interior; parâmeros e ápodema do edeago largos, em vista lateral.

Fêmea (diferindo no que segue): 5,5-6,1 mm de comprimento; asas 5,5-6,1 mm de

comprimento; olhos afastados por uma distância de 0,27-0,31 mm à altura do primeiro

ocelo; dez pares de cerdas frontais convergentes, exceto pelos dois pares superiores, que

são divergentes; cerdas ocelares e pós-ocelares grandes e divergentes; cerdas verticais

internas grandes e divergentes; cerdas verticais externas grandes e convergentes;

ovipositor grande, bem esclerotinizado; cerdas dorsais no centro do segmento VI de

aspecto espinháceo, atingindo a região ventral; três cerdas ventrais nos segmentos VI e

VII; tergitos VII atingindo a região ventral; esternito VIII com cerdas espinháceas

grandes; epiprocto, hipoprocto e cercos muito unidos; epiprocto com quatro cerdas,

posicionadas em forma losangular, da base para o ápice (1:2:1).

Material analisado:

Holótipo (não examinado): American Museum of Natural History (AMNH), Nova

York, Estados Unidos da América. Localidade-tipo: Nova Teutônia, Santa Catarina,

Brasil.

BRASIL: Paraná: 1 ♂ ”Curitiba – PR / BR 26.VI.1984 / R. Zonta; M. Santos” [DZUP]

\ 4 ♂ e 1 ♀, mesmo local e coletores, 28-29.VI.1984, [DZUP] \ 1 ♀ “Colombo – PR/

EMBRAPA BR476 km20 / BRASIL 04.VIII.1986 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”

[DZUP] \ 1 ♂ e 1 ♀, mesmo local e coletor, 15.IX.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e

coletor, 01.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♂ “Guarapuava – Paraná / Est. Água Sta. Clara /

BRASIL 01.IX.1986 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise” [DZUP] \ 1 ♂ “S. José

Pinhais – PR / Ser. Mar BR277 km54 / BRASIL 15.IX.1986 / Lev. Ent. PROFAUPAR /

Malaise” [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 22.IX.1986, [DZUP] \ 1 ♀ “P. Grossa

(V. Velha) PR / Reserva IAPAR BR376 / BRASIL 13.X.1986 / Lev. Ent.

PROFAUPAR / Malaise” \ 1 ♂ “Telêmaco Borba – PR / Res. Samuel Klabin / BRASIL

20.X.1986 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise” \ São Paulo: 1 ♂ “Quaraí – SP /

21.XI.1985 / J.R. Lure leg”.

Distribuição geográfica: Brasil (Minas Gerais, Paraná, Rio de Janeiro, Santa Catarina e

São Paulo [nova localidade]).

Comentários: o exame das terminálias masculinas e femininas de N. atincticosta, cujas

asas possuem R

4+5

com cerdas na superfície ventral, apresenta caracteres claramente

distintos em relação aos outros Neomuscina. Por hora, não se pretende aqui adotar uma

nova classificação ou reposicionamento dessa espécie dentro do grupo. A análise das

demais espécies de Neomuscina com cerdas na veia R

4+5

faz-se necessário para

determinar o verdadeiro posicionamento destas em relação a elas mesmas tanto quanto

em relação aos outros Neomuscina.

Neomuscina capalta Snyder, 1949

(Figs. 9-16)

Neomuscina capalta Snyder 1949:17 (descrição, chave); Snyder 1954:424 (chave); Pont 1972:50

(catálogo); d‟Almeida 1993:7–16 (sinantropia); de Carvalho et al. 1993:57 (catálogo); Couri & de

Carvalho 2002:152 (chave); de Carvalho et al. 2005:93 (catálogo); Rodríguez-Fernández et al.

2006:98 (listada).

Diagnose: asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos,

com cerdas internas curtas; acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:3; fêmur médio com duas

cerdas pré-apicais; calípteras com as margens escurecidas; machos com a base dos

cercos mais dilatada que o ápice dos mesmos, quando em vista posterior; epiprocto

feminino com 4 cerdas, dispostas 2:2 da base para o ápice.

Coloração: em geral amarelo-acastanhado; região anterior da fronte amarela, ápice

castanho; faciália, parafaciália, gena, antenas e palpos amarelos; tórax levemente

amarelo-acastanhado, com polinosidade cinzenta; calípteras branco-acastanhadas, com

as margens escurecidas; balancins amarelos; asas com manchas distintas entre o ápice

da Sc até o ápice da R

estendendo-se fracamente e tornando-se forte no ápice da veia

2+3

; veia rm e dm-cu com manchas.

Macho: 5,8-6,1 mm de comprimento; asas 6,0-6,1 mm de comprimento.

Cabeça: olhos separados na altura do ocelo por uma distância de 0,07-0,11 mm; 14-15

pares de cerdas frontais convergentes, sendo o 2º par maior que os demais; cerdas

ocelares grandes e convergentes; cerdas pós-ocelares grandes e divergentes; cerdas

verticais internas pequenas e convergentes; cerdas verticais externas pequenas e

divergentes; ápice dos palpos levemente dilatados.

Tórax: acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:3; intra-alares 1; ápice da tíbia anterior com

cerdas nas faces ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal e ventral; fêmur médio com uma

fileira de cerdas na face ântero-ventral até a metade, reaparecendo fracamente quando

próximas ao ápice; fêmur médio com um fileira de cerdas até a metade nas faces

anterior e póstero-ventral; fêmur médio com duas cerdas pré-apicais, posicionadas nas

faces póstero-dorsal e posterior; ápice da tíbia média com cerdas nas faces anterior,

póstero-dorsal, póstero-ventral, ventral e ântero-ventral; fêmur posterior com uma

completa fileira de cerdas nas faces dorsal e ântero-ventral; tíbia posterior com uma

cerda mediana ântero-dorsal e de duas a três cerdas medianas ântero-ventrais; ápice da

tíbia posterior com cerdas nas faces anterior, ântero-dorsal, dorsal e ântero-ventral;

ápice da veia tronco com uma cerda dorsal e de uma a duas cerdas ventrais.

Abdômen: epândrio levemente projetado na base; base dos cercos mais dilatada que o

ápice.

Fêmea (diferindo no que segue): 5,8-6,0 mm de comprimento; asas 6,1-6,2 mm de

comprimento; olhos separados por uma distância variando de 0,28-0,3 mm à altura do

primeiro ocelo; nove a dez pares de cerdas frontais convergentes, exceto pelos dois

pares superiores, que são paralelos; cerdas ocelares e pós-ocelares grandes, ambas

divergentes; cerdas verticais internas grandes e convergentes; cerdas verticais externas

grandes e divergentes; intra-alares 2; numerosas cerdas ventrais nna metade dos

segmentos abdominais VI e VII; esternito VIII com cerdas espinhosas fracas; epiprocto

com quatro cerdas, dispostas 2:2.

Material analisado:

Holótipo (não examinado): American Museum of Natural History (AMNH), Nova

York, Estados Unidos da América. Localidade-tipo: Porto de Espanha, Trinidad e

Tobago.

BRASIL: Minas Gerais: 1 ♀ “Parque Florestal do Rio Doce, Minas, BRASIL, H. Ebert

/ II-73”, [MNRJ] \ Paraná: 2 ♂ “P. Grossa (V. Velha) – PR / Reserva IAPAR BR376 /

BRASIL 11.VIII.1986 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise” [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local

e coletor, 18.VIII.1986, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 06.X.1986, [DZUP] \ 2

♀, mesmo local e coletor, 13.X.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 27.X.1986,

[DZUP] \ 1 ♂ e 1 ♀, mesmo local e coletor, 17.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e

coletor, 24.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♂ “Colombo – PR / EMBRAPA BR476 km20 /

BRASIL 13.X.1986 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e

coletor, 20.X.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 29.VI.1987, [DZUP] \ 1 ♀,

mesmo local e coletor, 20.VII.1987, [DZUP] \ 1 ♀ “Guarapuava – Paraná / Est. Águas

Sta. Clara / BRASIL 09.III.1987 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise” \ 1 ♂ e 1 ♀,

mesmo local e coletor, 06.VII.1987, [DZUP] \ 1 ♂ “BRASIL PR Jundiaí do Sul /

Fazenda Monte Verde / 01.VIII.1988 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \

Rio de Janeiro: 1 ♀ “Repr. Rio Grande, Rio de Janeiro, BRASIL / M. Alvarenga, III-

70”, [MNRJ] \ 1 ♂ “BRASIL – RJ, Teresópolis / P. do Ingá / P.P. Baptista, 3-VII-88”,

[MNRJ] \ Rio Grande do Sul: 1 ♀ “BRASIL RS / Morro Redondo / 31º40‟22” S,

52º35‟32” W / 11.X.2002 Malaise / R.F. Krüger leg”, [DZUP] \ 1 ♀ “BRASIL RS /

Arroio Grande / Distrito Mauá / 13.XII.2002 / Malaise / P.B. Ribeiro leg.”, [DZUP].

Distribuição geográfica: Brasil (Minas Gerais [nova localidade], Paraná, Rio de Janeiro,

Rio Grande do Sul [nova localidade]), Panamá e Trindad e Tobago (localidade-tipo).

Comentários: os indivíduos machos aqui descritos combinam em muito com a descrição

de Snyder (1949). No entanto, as fêmeas coespecíficas aos machos apresentam intra-

alares 2, ao contrário das fêmeas com intra-alares 1 dos descritas por Snyder. A análise

do material-tipo faz-se necessária para a confirmação da identidade dos indivíduos aqui

descritos. Essa espécie também é conhecida por ter sido coletada sobre fungos do

gênero Fomes.

Neomuscina currani Snyder, 1949

(Figs. 17-24)

Neomuscina currani Snyder 1949:35 (descrição, chave); Snyder 1954:424 (chave); Pont 1972:50

(catálogo); d‟Almeida 1993:7–16 (sinantropia); de Carvalho et al. 1993:57 (catálogo); Couri & de

Carvalho 2002:152 (chave); de Carvalho et al. 2005:93 (catálogo); Rodríguez-Fernández et al.

2006:98 (listada).

Diagnose: asas com R

4+5

com cerdas na superfície ventral; surstilos estreitos e não

sinuosos, com cerdas internas longas; dorsocentrais 2:3; R

4+5

com uma simples cerda na

região ventral; esternito V masculino com projeção bilobada na base; cercos com duas

cerdas apicais, laterais e internas; parâmeros com uma cerda longa e destacada;

ovipositor curto e pouco esclerotinizado; epiprocto feminino com cinco cerdas, dipostas

2:1:2 da base para o ápice.

Coloração: em geral amarelo-acastanhado; região anterior da fronte amarela, ápice

castanho; faciália, parafaciália brancas; gena, antenas e palpos amarelos; tórax

levemente amarelo-acastanhado com duas fracas listras castanho-claras vistas a certa luz

e ângulação e com polinosidade cinzenta; calípteras branco-amareladas; balancins

amarelos; asas com manchas distintas entre o ápice da Sc até o ápice da R

e nas veias

rm e dm-cu.

Macho: 5,3-5,8 mm de comprimento; asas 6,0-6,1 mm de comprimento.

Cabeça: olhos separados na altura do ocelo por uma distância de 0,07-0,08 mm; 12-14

pares de cerdas frontais convergentes, sendo o 2º par maior que os demais; cerdas

ocelares grandes e paralelas; cerdas pós-ocelares grandes e divergentes; cerdas verticais

internas pequenas e convergentes; cerdas verticais externas pequenas e divergentes.

Tórax: acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:3; intra-alares 2; ápice da tíbia anterior com

cerdas nas faces ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal e póstero-ventral; fêmur médio

com uma fileira de cerdas na face póstero-ventral até a metade, reaparecendo

fracamente quando próximas ao ápice; fêmur médio com um fileira de cerdas até a

metade nas faces anterior e ântero-ventral; fêmur médio com três cerdas pré-apicais,

posicionadas nas faces dorsal, póstero-dorsal e posterior; ápice da tíbia média com

cerdas nas faces anterior, dorsal, póstero-dorsal, posterior, póstero-ventral, ventral e

ântero-ventral; fêmur posterior com uma completa fileira de cerdas nas faces dorsal e

póstero-ventral; fêmur posterior com fortes cerdas no ápice da face ântero-ventral; tíbia

posterior com uma cerda mediana ântero-dorsal e três cerdas medianas ântero-ventrais;

ápice da tíbia posterior com cerdas nas faces anterior, ântero-dorsal, dorsal, ventral e

ântero-ventral; ápice da veia tronco com uma cerda dorsal e duas cerdas ventrais; veia

4+5

com uma cerda na base.

Abdômen: epândrio estreito em vista lateral e pronunciado na base; esternito V com

projeção lobada na base; surstilos não sinuosos, com grandes cerdas internas; região

interna do ápice dos cercos pronunciadamente escavada, com duas grandes cerdas;

cercos estreitos, em vista lateral; parâmero com uma grande e pronunciada cerda;

apódema do edeago e epifalo formando um ângulo reto.

Fêmea (diferindo no que segue): 5,5-6,0 mm de comprimento; asas 5,8-6,0 mm de

comprimento; olhos separados por uma distância variando de 0,27-0,3 mm à altura do

primeiro ocelo; nove a dez pares de cerdas frontais convergentes, exceto pelos dois

pares superiores, que são paralelos; cerdas ocelares e pós-ocelares grandes, ambas

divergentes; cerdas verticais internas grandes e convergentes; cerdas verticais externas

grandes e divergentes; ovipositor curto; tergito VI ausente, VII atrofiadoe e VIII com as

margens bem esclerotinizadas; esternito VI e VII atrofiados, com formato semelhante a

um triângulo, e VIII reduzido com poucas cerdas espinhosas; epiprocto com cinco

cerdas, dispostas 2:1:2, da base para o ápice.

Material analisado:

Holótipo (não examinado): American Museum of Natural History (AMNH), Nova

York, Estados Unidos da América. Localidade-tipo: Ilha Barro Colorado, Panamá.

BRASIL: Espírito Santo: 1 ♀ “Linhares, Espírito Santo, BRASIL / P.C. Elias, VII-72”

[MNRJ] \ Mato Grosso: 1 ♂ “Chap. Guimarães – MT / 24.XI.1983 / Exc. Dep. Zool. –

UFPR / (POLONOROESTE) | DPTO. ZOOL. / UF-PARANÁ” [DZUP] \ 1 ♂, mesmo

local e coletor, 25.XI.1983, \ 1 ♂ e 1 ♀, mesmo local e coletor, 01.XII.1983, [DZUP] \

2 ♂ e 1♀, mesmo local e coletor, 02.XII.1983, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor,

03.XII.1983, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 21.XI.1984, [DZUP] \ 1 ♂

“Cáceres, MT / 01.XII.1984 / C. Elias leg / POLONOROESTE | DPTO. ZOOL. / UF-

PARANÁ” \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 03.XII.1984, [DZUP] \ 1 ♀ “BRASIL PR

Antonina / Reserva Biol. Sapitundava / 09.XI.1987 / Lev. Ent. PROFAUPAR /

Malaise”, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 16.V.1988, [DZUP] \ 1 ♂ “BRASIL

PR Fênix / Reserva Estad. Vilha Rica / 21.III.1988 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”

[DZUP] \ Mato Grosso do Sul: 1 ♂ “Mun. Dourados, Mato Grosso, BRASIL /

Alvarenga & Roppa, III-74” \ Rio de Janeiro: 1 ♂ “BRASIL, RJ, Nova Iguaçu /

Reserva Biológica do Tinguá, 22º34‟37” S 43º26‟06,6” W / Malaise – Ponto 1 – Bosque

/ 5-8.III.2002, S.T.P. Amarante e eq. col.” [DZUP] \ 1 ♂ “BRASIL, RJ, Nova Iguaçu /

Reserva Biológica do Tinguá, 22º34‟30” S 43º26‟07” W / Malaise – Ponto 4 – Trilha /

8.III.2002, S.T.P. Amarante e eq. col.” [DZUP] \ São Paulo: 1 ♂ e 1 ♀ “BRASIL, SP,

Ubatuba / Parque Estadual Serra do Mar, 23º21‟43” S 44º49‟22” W / Malaise 3 – Trilha

/ 21.I.2002, N.W. Perioto & eq. cols.” [DZUP] \ 1 ♂ “BRASIL, SP, Ubatuba / Parque

Estadual Serra do Mar, 23º21‟43” S 44º49‟22” W / Malaise 8 – Bosque / 21.I.2002,

N.W. Perioto & eq. cols.” [DZUP].

Distribuição geográfica: Brasil (Espírito Santo [nova localidade], Mato Grosso [nova

localidade], Mato Grosso do Sul [nova localidade], Paraná, Rio de Janeiro e São Paulo

[nova localidade), Panamá (localidade-tipo).

Comentários: assim como N. atincticosta, N. currani apresenta caracteres muito

diferentes em relação aos outros Neomuscina. As fêmeas são bem características pelo

ovipositor curto e pouco esclerotinizado. É a única espécie já descrita para o gênero que

possui apenas uma simples cerda ventral na base da veia R

4+5

veia. Uma análise

conjunta com as demais espécies do gênero faz-se necessária para estabelecer-se o

verdadeiro posicionamento desta espécie dentro do gênero.

Neomuscina douradensis Lopes & Khouri, 1996

(Figs. 25-32)

Neomuscina douradensis Lopes & Khouri, 1996:953 (descrição); de Carvalho et al., 2005 (catálogo).

Diagnose: asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos,

com cerdas internas curtas; acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; fêmur médio com duas

cerdas pré-apicais; tíbia posterior com uma cerda mediana ântero-dorsal; coloração

geral amarela ou castanho-amarelada; esternito V masculino sem projeção na base;

ápice dos cercos masculinos afilados; calípteras com as margens não escurecidas; asas

hialinas, com veias tranversais apresentando manchas castanhas ao redor; machos com

intra-alares 2.

Coloração: em geral amarela; tórax dorsalmente amarelo, com uma listra acastanhada e

com polinosidade cinzenta; frontália e parafrontália amareladas; faciália e parafaciália

esbranquiçadas; antenas e palpos amarelos; pernas amarelas; calípteras e halteres

amarelos; asas com uma mancha castanha contínua de R

até R

2+3

, como também com

manchas nas transversais rm e dm-cu.

Macho: 6,2 mm de comprimento; asas 6,4 mm de comprimento.

Cabeça: cerdas frontais de nove a dez pares, sendo o 2º par maior que os demais, e a

partir do 6º são ciliformes; cerdas ocelares paralelas e direcionadas anteriormente; ceras

pós-ocelares divergentes; cerdas verticais internas e cerdas verticais externas

divergentes;

Tórax: acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; intra-alares 2; tíbia anterior com uma

destacada cerda mediana ântero-dorsal, e com uma pequena, quase inconspícua cerda

submediana posterior da mesma face; ápice da tíbia anterior com cerdas nas faces

ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal, póstero-ventral e ventral; fêmur médio com um

fileira de cerdas anterior e póstero-ventral até a metade; fêmur médio com duas cerdas

pré-apicais, posicionadas nas faces póstero-dorsal e posterior; ápice da tíbia média com

cerdas em todas as faces; fêmur posterior com uma completa fileira de cerdas nas faces

dorsal e ântero-ventral, uma fileira de cerdas na face ântero-dorsal até o segundo terço e

uma fileira de cerdas na face póstero-ventral até a metade; tíbia posterior com uma

cerda mediana ântero-dorsal e duas cerdas medianas ântero-ventrais; ápice da tíbia

média com cerdas nas faces anterior, ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal, ventral e

ântero-ventral; asas com uma a duas cerdas dorsais e uma cerda ventral no ápice da veia

tronco.

Abdômen: esternito V com uma leve pronunciação basal; epândrio tão largo quando

comprido.

Fêmea (diferindo no que segue): nove a dez pares de cerdas frontais convergentes,

exceto pelos dois pares superiores, que são paralelos; cerdas ocelares e pós-ocelares

grandes e divergentes; cerdas verticais internas grandes e convergentes; cerdas verticais

externas grandes e divergentes; esternito VIII com cerdas espinhosas pronunciadas;

epiprocto com quatro cerdas, dispostas 2:2.

Material analisado:

BRASIL: Holótipo: ♂; quetotaxia incompleta; perna anterior esquerda e mediana

esquerda em triângulo; perna mediana direita e posteriores desaparecidas; asa direita

rompida próximo à base; abdômen dissecado e guardado em tubo com glicerina junto ao

exemplar; etiqueta de localidade: “BRASIL, Mato Grosso do Sul, Dourados / III-1974,

M. Alvarenga & O. Roppa leg.”; Etiqueta vermelha com a inscrição HOLOTYPE junto

ao espécime. Exemplar depositado no Museu Nacional (MNRJ). Localidade-tipo: Mato

Grosso do Sul.

BRASIL: Mato Grosso do Sul: 1 ♂ e 3 ♀ parátipos “Mun. Dourados, Mato Grosso,

Brasil / Alvarenga & Roppa, III-74”, [MNRJ].

Distribuição geográfica: Brasil (Mato Grosso do Sul – Localidade-tipo).

Comentários: N. douradensis pode ser facilmente distinguida dos outros Neomuscina

pela sua coloração amarela, de forte intensidade, diferente de todas as outras espécies

analisada aqui neste trabalho. Os machos possuem esternito V com uma conformação

bem característica, como um triângulo invertido.

Neomuscina goianensis Lopes & Khouri, 1995

(Figs. 33-40)

Neomuscina goianensis Lopes & Khouri 1996:45 (descrição); de Carvalho et al. 2005:93 (catálogo);

Rodríguez-Fernández et al. 2006:98 (listada).

Diagnose: dorsocentrais 2:4; acrosticais 0:1 ou 1:1; fêmur médio com três cerdas pré-

apicais; espiráculo posterior com destacadas cerdas negras adjacentes na região póstero-

inferior; VI esternito das fêmeas com uma esclerotinização em formato triangular; VII

tergitos abdominais das fêmeas quase se tocando; asas com manchas castanhas nas

extremidades de R

, R

2+3

e veias transversais.

Coloração: em geral castanho-amarelado; região anterior da fronte amarela, ápice

castanho; faciália, parafaciália e gena castanho-amarelados; antenas e palpos amarelos;

tórax com quatro listras castanhas vistas à certa luz e angulação, com polinosidade

cinzenta; calípteras brancas; balancins amarelos; asas com manchas castanhas nas

extremidades de R

, R

2+3

, e transversais.

Macho: 5,8 – 6,0 mm de comprimento; asas 6,2-6,5 mm de comprimento.

Cabeça: cerdas frontais de 11-12 pares, sendo o 2º par maior que os demais; olhos

separados por uma 0,1-0,13 mm de distância à altura do primeiro ocelo; cerdas frontais

convergentes, exceto pelos dois pares superiores, que são paralelos; cerdas ocelares

paralelas e direcionadas para frente; cerdas pós-ocelares divergentes.

Tórax: acrosticais 0:1 ou 1:1; dorsocentrais 2:4; intra-alares 1; espiráculo torácico

posterior com cílios adjacentes na região póstero-ventral; ápice da tíbia anterior com

cerdas nas faces ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal, póstero-ventral e ventral; fêmur

médio com uma fileira de cerdas ventrais até a metade; fêmur médio com três cerdas

pré-apicais, posicionadas nas faces dorsal, póstero-dorsal e posterior; ápice da tíbia

média com cerdas nas faces dorsal, póstero-dorsal, posterior, póstero-ventral, ventral e

ântero-ventral; fêmur posterior nas com uma completa fileira de cerdas na face dorsal e

póstero-ventral; tíbia posterior com uma cerda submediana ântero-dorsal e três cerdas

submedianas ântero-ventrais; ápice da tíbia posterior com cerdas nas faces ântero-

dorsal, dorsal, póstero-dorsal, ventral e ântero-ventral; ápice da veia tronco com uma

cerda dorsal e de uma a duas cerdas ventrais.

Abdômen: epândrio com altura superior à largura, sem pronunciação basal.

Fêmea (diferindo no que segue): 5-8-6,1 mm de comprimento; asas 6,2-6,5 mm de

comprimento; olhos separados por uma 0,29-0,34 mm de distância à altura do primeiro

ocelo; 9 pares de cerdas frontais; cerdas frontais convergentes, exceto pelos dois pares

superiores, que são paralelos; cerdas ocelares e pós-ocelares grandes e divergentes;

cerdas verticais internas convergentes; cerdas verticais externas divergentes; ápice da

tíbia anterior com cerdas nas faces ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal, póstero-ventral;

tíbia posterior com duas cerdas submedianas ântero-ventrais; muitas cerdas ventrais nos

segmentos VI e VII; esclerotinização ventral no segmento VI semelhante a um

triângulo, logo após as cerdas; tergitos VII muito esclerotinizados, tocando-se; Esternito

VIII com cerdas espinhosas não pronunciadas; epiprocto com quatro cerdas, dispostas

2:2.

Material analisado:

BRASIL: Holótipo: ♂, quetotaxia incompleta, sem pernas médias, asa direita rompida

na base, abdômen dissecado e guardado em tubo com glicerina junto ao exemplar;

Etiqueta de localidade: “Brasil, Goiás, Jataí / XII-72, F.M. Oliveira col.”; Etiqueta

vermelha com a inscrição HOLOTYPE junto ao espécime. Localidade-tipo: Goiás.

BRASIL: Bahia: 2 ♀ parátipos “Encruzilhada, Bahia, Brasil / Seabra & Roppa, XI-72”

[MNRJ] \ Ceará: 4 ♂ parátipos “Pacatuba, Ceará / 350m, Brasil / H.S. Lopes, VII-73”

[MNRJ] \ Goiás: 2 ♂ e 2 ♀ parátipos “Jataí, Goyas, Brasil / F.M. Oliveira, VII-72”

[MNRJ] \ Mato Grosso: 1 ♀ “Chap. Guimarães – MT / 30.XI.1983 / Exc. Dep. Zool. –

UFPR / POLONOROESTE | DPTO. ZOOL / UF-PARANÁ” [DZUP] \ 3 ♂ e 1 ♀,

mesmo local e coletores, 01.XII.1983, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletores,

02.XII.1983, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletores, 03.XII.1983, [DZUP] \ Paraná: 1

♀ “BRASIL PR Jundiaí do Sul / Fazenda Monte Verde / 10.VIII.1987 / Lev. Ent.

PROFAUPAR / Malaise” [DZUP]. Rio de Janeiro: 1 ♂ parátipos “Angra dos Reis, E.

do Rio / H.S. Lopes, VII-72” [MNRJ] \ São Paulo: 1 ♀ parátipos “Araçatuba – SP / Rio

Jacareatinga / X-1961, Lane & Rebello col.” [MNRJ].

Distribuição geográfica: Brasil (Bahia, Ceará, Goiás – Localidade-tipo, Mato Grosso

[nova localidade], Paraná [nova localidade], Rio de Janeiro e São Paulo).

Comentários: N. goianensis possui variação na quantidade de cerdas acrosticais,

apresentando as configurações 0:1 ou 1:1. Há ainda uma grande facilidade para perda

das cerdas póstero-inferiores do espiráculo posterior, uma vez que estas são bem frágeis.

N. goianensis aparenta ser muito parecida com a descrição de N. pictipennis nudinervis

(Stein), registrada desde o México até o Peru. Até que se verifique o tipo da espécie

descrita por Stein, N. goianensis será considerada aqui como uma espécie distinta.

Neomuscina inflexa (Stein, 1918)

(Figs. 41-48)

Cyrtoneurina inflexa Stein 1918:224 (descrição, designação original); Stein 1919:127 (catálogo); Séguy,

1937:351 (catálogo).

Neomuscina inflexa Snyder 1949:18 (nova combinação, redescrição, chave); Snyder 1954:460 (chave);

Pont 1972:50 (catálogo); d‟Almeida 1993:7–16 (sinantropia); de Carvalho et al., 1993:58

(catálogo); Couri & de Carvalho 2002:152 (chave).; Costacurta et al. 2003:393 (coletada); de

Carvalho et al. 2005:94 (catálogo); Rodríguez-Fernández et al. 2006:98 (listada).

Diagnose: asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos,

com cerdas internas curtas; acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:3; fêmur médio com três

cerdas pré-apicais; calípteras com as margens branco-amareladas; machos com a base e

o ápice dos cercos equivalentes em espessura, quando em vista posterior; machos com

intra-alar 1; epiprocto feminino com cinco cerdas, dispostas 2:1:2 da base para o ápice.

Coloração: em geral castanho-amarelado; região anterior da fronte amarelo-escuro,

ápice castanho; faciália e parafaciália brancas; gena castanha; antenas e palpos

amarelos; noto castanho-claro, com quatro listras castanho-escuras e com polinosidade

cinzenta; ápice dos fêmures médio e posteriores castanhos; calípteras e balancins

amarelos; asas hialinas.

Macho: 6,0-6,2 mm de comprimento; asas 6,2-6,5 mm de comprimento.

Cabeça: olhos separados na altura do ocelo anterior por uma distância de 0,07-0,11

mm; 14-15 pares de cerdas frontais convergentes, sendo o 2º par maior que os demais;

cerdas ocelares grandes e paralelas; cerdas pós-ocelares grandes e divergentes; cerdas

verticais internas pequenas e convergentes; cerdas verticais externas pequenas e

divergentes.

Tórax: acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:3; intra-alares 1; muitas sétulas negras

acessórias aos escleritos torácicos laterais; ápice da tíbia anterior com cerdas nas faces

dorsal, póstero-dorsal e póstero-ventral; fêmur médio com uma fileira de cerdas na face

póstero-ventral até a metade, reaparecendo fracamente quando próximas ao ápice;

fêmur médio com uma sutil fileira de cerdas na face anterior até a metade e uma na

face ântero-ventral até o terço basal; fêmur médio com três cerdas pré-apicais,

posicionadas nas faces dorsal, póstero-dorsal e posterior; ápice da tíbia média com

cerdas nas faces anterior, dorsal, póstero-dorsal, posterior, póstero-ventral, ventral e

ântero-ventral; fêmur posterior com uma completa fileira de cerdas nas faces dorsal,

póstero-ventral e ântero-ventral; fêmur posterior com muitas cerdas distintas, mas não

ordenadas em fileira, se estendendo até a metade da face ântero-dorsal; tíbia posterior

com uma cerda mediana ântero-dorsal e quatro cerdas medianas ântero-ventrais; ápice

da tíbia posterior com cerdas nas faces anterior, ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal,

ventral e ântero-ventral; ápice da veia tronco com uma cerda dorsal e duas cerdas

ventrais.

Abdômen: epândrio pronunciado na base; ápice dos cercos escavados.

Fêmea (diferindo no que segue): 6-0-6,2 mm de comprimento; asas 6,2-6,5 mm de

comprimento; olhos separados por uma distância variando de 0,28-0,3 mm à altura do

primeiro ocelo; nove a dez pares de cerdas frontais convergentes, exceto pelos dois

pares superiores, que são paralelos; cerdas ocelares e pós-ocelares grandes, ambas

divergentes; cerdas verticais internas grandes e convergentes; cerdas verticais externas

grandes e divergentes; intra-alares 2; esternito VIII com cerdas espinhosas

pronunciadas; epiprocto com cinco cerdas, dispostas 2:1:2.

Material analisado:

Holótipo (não examinado): Museo Civico di Storia Naturale (MCSM), Milão, Itália.

Localidade-tipo: São Paulo.

BRASIL: Paraná: 1 ♀ “BRASIL, PR. Antonina / Reserva Biol Sapitundava /

18.VII.1988, [DZUP] \ 1 ♀ “Morro Redondo - PR / 01.XI.2002 / RF Krüger col.”

[DZUP] \ 1 ♀ “Curitiba - PR / C. Imbuia / 15.II.1985 / Malkowski, SR / FIG-AZU”,

[DZUP] \ 1 ♂ “Curitiba - PR / 17.V.1985 / CJB Carvalho”, [DZUP] \ 2 ♂ ”Colombo –

PR / EMBRAPA BR476 km20 / BRASIL 04.VIII.1986, [DZUP] \ 2 ♂ e 1 ♀, mesmo

local e coletor, 11.VIII.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 25.VIII.1986,

[DZUP] \ 2 ♂, mesmo local e coletor, 01.IX.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e

coletor, 08.IX.1986, [DZUP] \ 2 ♂, mesmo local e coletor, 22.IX.1986, [DZUP] \ 1 ♂,

mesmo local e coletor, 29.IX.1986, [DZUP] \4 ♂, mesmo local e coletor, 06.X.1986,

[DZUP] \ 2 ♂, mesmo local e coletor, 13.X.1986, [DZUP] \ 2 ♂, mesmo local e

coletor, 20.X.1986, [DZUP] \1 ♂, mesmo local e coletor, 03.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♂ e

1 ♀, mesmo local e coletor, 10.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor,

15.XII.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 12.I.1987, [DZUP] \ 2 ♂, mesmo

local e coletor, 02.II.1987, [DZUP] \ 2 ♂, mesmo local e coletor, 09.II.1987, [DZUP] \

2 ♂ e 1 ♀, mesmo local e coletor, 23.III.1987, [DZUP] \ 3 ♂, mesmo local e coletor,

13.VII.1987, [DZUP] \ 2 ♂, mesmo local e coletor, 20.VII.1987, [DZUP] \ 1 ♀,

mesmo local e coletor, 27.VII.1987, [DZUP] \ 2 ♂ ”Guarapuava - Paraná / Est. Águas

Sta. Clara / BRASIL 01.IX.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 20.X.1986,

[DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 10.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e

coletor, 25.V.1987, [DZUP] \1 ♀, mesmo local e coletor, 13.VII.1987, [DZUP] \ 1 ♂

“Fênix - Paraná / Reserva Est. - ITCF / BRASIL 08.IX.1986, [DZUP] \ 1 ♂. Mesmo

local e coletor, 18.IV.1988, [DZUP] \ 2 ♂ “Jundiaí do Sul - PR / Fazenda Monte Verde

/ BRASIL 18.VIII.1986, [DZUP] \ 1 ♂ e 1 ♀, mesmo local e coletor, 07.IX.1987,

[DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 26.X.1987, [DZUP] \ 4 ♂ e 1 ♀ “P. Grossa (V.

Velha) – PR / Reserva IAPAR BR376 / BRASIL 11.VIII.1986, [DZUP] \ 2 ♂ e 1 ♀,

mesmo local e coletor, 18.VIII.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor,

25.VIII.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 15.IX.1986, [DZUP] \ 2 ♂ e 2 ♀,

mesmo local e coletor, 06.X.1986, [DZUP] \ 1 ♂ e 1 ♀, mesmo local e coletor,

20.X.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 27.X.1986, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo

local e coletor, 03.XI.1986, [DZUP] \1 ♀, mesmo local e coletor, 17.XI.1986, [DZUP]

\ 1 ♀, mesmo local e coletor, 29.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor,

01.XII.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 05.I.1987, [DZUP] \ 2 ♂ e 2 ♀,

mesmo local e coletor, 12.I.1987, [DZUP] \ 6 ♂, mesmo local e coletor, 19.I.1987,

[DZUP] \ 3 ♂ e 2 ♀, mesmo local e coletor, 26.I.1987, [DZUP] \ 2 ♀, mesmo local e

coletor, 09.II.1987, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 23.III.1987, [DZUP] \ 1 ♂ e

2 ♀, mesmo local e coletor, 13.IV.1987, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor,

18.V.1987, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 25.V.1987, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo

local e coletor, 08.VI.1987, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 06.VII.1987,

[DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 13.VII.1987, [DZUP] \ 2 ♀, mesmo local e

coletor, 20.VII.1987, [DZUP] \ 1 ♀ “P. Grossa, PR, BRASIL / (V. Velha – IAPAR) /

Ganho & Marinoni / 04.X.1999 Malaise 4” [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor,

06.IX.1999, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 27.IX.1999, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo

local e coletor, 17.I.2000, [DZUP] \ 1 ♂ e 1 ♀ “S. José Pinhais - PR / Ser. Mar BR277

km54 / BRASIL 27.X1986, [DZUP] \ 1 ♂ “Telêmaco Borba - PR / Res. Samuel Klabin

/ BRASIL 25.VIII.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 01.IX.1986, [DZUP] \

1 ♂, mesmo local e coletor, 20.X.1986, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor,

10.XI.1986, [DZUP] \ Rio de Janeiro: 1 ♀ “Retiro, Petrópolis / E. do Rio, Brasil / 17-

I-77”, [MNRJ] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 18-I-77”, [MNRJ] \ 1 ♂ “Alto da Boa

Vista, Rio de Janeiro, Brasil / on rotten banana / H. Guimarães, 7-VII-84”, [MNRJ] \

Santa Catarina: 1 ♀ “Brasilien, Nova Teutonia / Fritz Plaumann / 27º 11‟ B 52º 23‟ L,

V-70”, [MNRJ].

Distribuição geográfica: Argentina, Brasil (Paraná, Rio de Janeiro, Santa Catarina [nova

localidade] e São Paulo – Localidade-tipo).

Comentários: N. inflexa caracteriza-se pelo seu padrão de coloração e dorsocentrais 2:3.

Os machos possuem esternito V em formato próximo ao quadrangular, quase

semelçhantes a Neomuscina sp. nov. 2 e as fêmeas possuem epiprocto com

configuração de cerdas 2:1:2.

Neomuscina instabilis Snyder, 1949

(Figs. 49-56)

Neomuscina instabilis Snyder 1949:30 (descrição, chave); Snyder 1954:424, 425 (chave); Pont 1972:50

(catálogo); d‟Almeida 1993:7–16 (sinantropia); de Carvalho et al., 1993:58 (catálogo); Couri & de

Carvalho 2002:153 (chave); de Carvalho et al. 2005:94 (catálogo); Rodríguez-Fernández et al.

2006:98 (listada).

Diagnose: asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos

com cerdas internas curtas; acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; fêmur médio com três

cerdas pré-apicais; espiráculo posterior sem cerdas negras adjacentes na região póstero-

inferior; asas hialinas; tíbia anterior sem uma destacada cerda mediana ântero-dorsal;

machos com intra-alares 2; pró-epímero e pró-episterno sem sétulas negras adjacentes;

catepisterno com sétulas negras adjacentes na região posterior.

Coloração: em geral castanho; região anterior da fronte amarelo-escuro, ápice

castanho-escuro; faciália e parafaciália amarelas; gena castanha; antenas e palpos

amarelos; noto castanho-escuro e com polinosidade cinzenta; calo umeral e ápice do

escutelo castanhos; ápice dos fêmures médio e posteriores castanho-escuros; calípteras

e balancins amarelos; asas hialinas.

Macho: 5,0-5,3 mm de comprimento; asas 5,8-5,9 mm de comprimento.

Cabeça: olhos separados na altura do ocelo anterior por uma distância de 0,08-0,11

mm; 12-13 pares de cerdas frontais convergentes, sendo o 2º par maior que os demais;

cerdas ocelares grandes e paralelas; cerdas pós-ocelares grandes e divergentes; cerdas

verticais internas pequenas e convergentes; cerdas verticais externas pequenas e

divergentes.

Tórax: acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; intra-alares 1; tíbia anterior com uma distinta

cerda submediana ântero-dorsal; ápice da tíbia anterior com cerdas nas faces dorsal,

póstero-dorsal e póstero-ventral; fêmur médio com uma fileira de cerdas na face

póstero-ventral até a metade, reaparecendo fracamente quando próximas ao ápice;

fêmur médio com três cerdas pré-apicais, posicionadas nas faces dorsal, póstero-dorsal

e posterior; ápice da tíbia média com cerdas nas faces anterior, dorsal, póstero-dorsal,

posterior, póstero-ventral, ventral e ântero-ventral; fêmur posterior com uma completa

fileira de cerdas nas faces dorsal, póstero-ventral e ântero-ventral; fêmur posterior com

muitas cerdas distintas, mas não ordenadas em fileira, se estendendo até a metade da

face ântero-dorsal; tíbia posterior com uma cerda mediana ântero-dorsal e quatro

cerdas medianas ântero-ventrais; ápice da tíbia posterior com cerdas nas faces anterior,

ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal, ventral e ântero-ventral; ápice da veia tronco com

uma cerda dorsal e duas cerdas ventrais.

Abdômen: epândrio levemente achatado, em vista posterior.

Fêmea (diferindo no que segue): 5,2-5,5 mm de comprimento; asas 5,8-5,9 mm de

comprimento; olhos separados por uma distância variando de 0,3-0,33 mm à altura do

primeiro ocelo; nove a dez pares de cerdas frontais convergentes, exceto pelos dois

pares superiores, que são paralelos; cerdas ocelares e pós-ocelares grandes, ambas

divergentes; cerdas verticais internas grandes e convergentes; cerdas verticais externas

grandes e divergentes; intra-alares 2; esternito VIII cerdas espinhosas pronunciadas;

epiprocto com quatro cerdas, dispostas 2:2.

Material analisado:

Holótipo (não examinado): American Museum of Natural History (AMNH), Nova

York, Estados Unidos da América. Localidade-tipo: David District, Panamá.

BRASIL: Bahia: 1 ♀ “Encruzilha, Bahia, BRASIL / Seabra & Roppa, XI-72”, [MNRJ]

\ Espírito Santo: 1 ♀ “Linhares, Espírito Santo, Brasil / P.C. Elias, X-72”, [MNRJ] \

Minas Gerais: 1 ♀ “Belo Horizonte, Minas, BRASIL / Paulo Iide, 12-16-II-74”,

[MNRJ] \ Mato Grosso: 15 ♂ e 18 ♀ “Cáceres, MT / 13.XI.1984 / Buzzi, Mielke, Elias

/ Casagrande leg / Proj. POLONOROESTE”, [DZUP] \ 1 ♂ e 10 ♀, mesmo local e

coletor, 21.XI.1984, [DZUP] \ 1 ♂ e 4 ♀, mesmo local e coletor, 01.XII.1984, [DZUP] \

3 ♂ e 6 ♀, mesmo local e coletor, 03.XII.1984, [DZUP] \ 7 ♂ e 5 ♀, mesmo local e

coletor, 09.XII.1984, [DZUP] \ Mato Grosso do Sul: 3 ♂ e 3 ♀ “Mun. Dourados, Mato

Grosso, BRASIL / Alvarenga & Roppa, III-74”, [MNRJ] \ Paraná: 1 ♂ “BRASIL, PR,

Morretes / Parque Estadual do Pau Oco / Malaise – Ponto T5 / 10-13.IV.2002, M.T.

Tavares & eq. col.”, [MZSP] \ Rio de Janeiro: 8 ♂ e 17 ♀ “Jacarepaguá, Rio de Janeiro

/ peixe e fígado / S.M.O. Cordello col., I-89”, [MNRJ] \ Rio Grande do Norte: 1 ♂

parátipo: “Natal, BRASIL / Feb. 5-24-1943 / F.M. Snyder” [MNRJ] \ Sergipe: 1 ♀

“BRASIL, SE, Santa Luzia do Itanhy Crasto / 11º22‟31,4” S 37º24‟53,9 W / Malaise –

Armadilha – Bosque 4 / 29.VII-1-VIII.2001, M.T. Tavares & eq. col.”, [MZSP] \ 1 ♂ e

1 ♀ “BRASIL, SE, Santa Luzia do Itanhy Crasto / 11º22‟32,8” S 37º25‟ W / Malaise –

Armadilha Bosque 2 / 30.VII-2-VIII.2001, M.T. Tavares & eq. col.”, [MZSP] \ 1 ♀

“BRASIL, SE, Santa Luzia do Itanhy Crasto / 11º22‟39,6” S 37º25‟04,4 W / Malaise –

Armadilha – Trilha 1 / 1-4.VIII.2001, M.T. Tavares & eq. col.”, [MZSP] \ PANAMÁ: 1

♀ “El Cermeno, Pan. / VII-39-I-40 | fruit fly trap / Zetek No 4621 – Lot. No. 40.4789”.

Distribuição geográfica: Brasil (Bahia [nova localidade], Espírito Santo [nova

localidade], Mato Grosso [nova localidade], Mato Grosso do Sul [nova localidade],

Minas Gerais [nova localidade], Paraná, Rio de Janeiro, Rio Grande do Norte [nova

localidade], Sergipe [nova localidade] e São Paulo), Panamá (Localidade-tipo) e

Trindad e Tobago.

Comentários: Snyder (1949) descreveu esta espécie, acreditando poder tratar-se um

exemplar de N. stabilis (Stein), cujo holótipo não havia visto. No entanto, a análise do

parátipo de N. instabilis e do holótipo de N. stabilis demonstrou que são espécies

distintas. N. instabilis apresenta uma coloração muito mais suave, além de

características morfológicas em relação ao posicionamento de cerdas e diferenças na

genitália masculina e feminina em relação à N. stabilis.

Neomuscina mediana Snyder, 1949

(Figs. 57-64)

Neomuscina mediana Snyder 1949:19 (descrição, chave); Snyder 1954:424 (chave); Pont 1972:50

(catálogo); d‟Almeida 1993:7–16 (sinantropia); de Carvalho et al. 1993:58 (catálogo); Lopes &

Khouri 1996:959 (próxima a N. paramediana Lopes & Khouri); Couri & de Carvalho 2002:152

(chave); de Carvalho et al. 2005:94 (catálogo).

Diagnose: asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos,

com cerdas internas curtas; acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; fêmur médio com duas

cerdas pré-apicais; tíbia posterior com uma cerda mediana ântero-dorsal; coloração

geral castanho-escura; esternito V masculino com uma forte projeção basal; ápice dos

cercos masculinos rombudos.

Coloração: em geral castanho-escuro, próximo ao negro; região anterior da fronte

amarela, ápice negro; faciália, parafaciália, gena, antenas e palpos amarelos; tórax com

quatro listras negras vistas a certa luz e angulação, com polinosidade cinzenta; calo

umeral e ápice do escutelo amarelos; calípteras branco-amareladas; balancins amarelo-

escuros; fêmur anterior com o terço basal castanho-escuro, restante amarelo; fêmur

médio e posterior com os dois terços basais castanho-escuro, ápice amarelo; asas com

uma distinta mancha negra entre o ápice da Sc até o ápice da R

, estendendo-se para

baixo e confluindo com uma distinta mancha na veia rm; uma distinta mancha no ápice

da veia R

2+3

e uma fraca mancha na veia dm-cu.

Macho: 4,2-6,0 mm de comprimento; asas 4,5-5,2 mm de comprimento.

Cabeça: olhos separados na altura do ocelo por uma distância de 0,08-0,16 mm (em

certos machos, distingue-se claramente a fronte); 10-11 pares de cerdas frontais

convergentes, sendo o 2º par maior que os demais (nos machos onde distingue-se a

fronte, as cerdas são destacadas e não ciliformes); cerdas ocelares grandes e paralelas;

cerdas pós-ocelares grandes e divergentes; cerdas verticais internas pequenas e

convergentes; cerdas verticais externas pequenas e divergentes.

Tórax: acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; intra-alares 1; alguns machos não apresentam

cerdas intra-alares; ápice da tíbia anterior com cerdas nas faces ântero-dorsal, dorsal,

póstero-dorsal e póstero-ventral; fêmur médio com uma fileira de cerdas na face

póstero-ventral até a metade, reaparecendo fracamente quando próximas ao ápice;

fêmur médio com duas cerdas pré-apicais, posicionadas nas faces póstero-dorsal e

posterior; ápice da tíbia média com cerdas nas faces anterior, dorsal, póstero-dorsal,

posterior, póstero-ventral, ventral e ântero-ventral; fêmur posterior com uma completa

fileira de cerdas nas faces dorsal, póstero-ventral e ântero-ventral; tíbia posterior com

uma cerda mediana ântero-dorsal e de duas a três cerdas medianas ântero-ventrais; ápice

da tíbia posterior com cerdas nas faces anterior, ântero-dorsal, dorsal, ventral e ântero-

ventral; ápice da veia tronco com uma cerda dorsal e de uma a duas cerdas ventrais.

Abdômen: esternito V com acentuada projeção basal; epândrio com projeção basal

moderada; cercos com ápice rombudo.

Fêmea (diferindo no que segue): 5,4-6,5 mm de comprimento; asas 4,4-5,8 mm de

comprimento; olhos separados por uma distância variando de 0,29-0,33 mm à altura do

primeiro ocelo; nove a dez pares de cerdas frontais convergentes, exceto pelos dois

pares superiores, que são paralelos; cerdas ocelares grandes e pós-ocelares pequenas,

ambas divergentes; cerdas verticais internas grandes e convergentes; cerdas verticais

externas grandes e divergentes; intra-alares 2; microtriquias ventrais no segmento VIII;

esternito VIII com cerdas espinhosas pronunciadas; epiprocto com quatro cerdas,

dispostas 2:2.

Material analisado:

Holótipo (não examinado): American Museum of Natural History (AMNH), Nova

York, Estados Unidos da América. Localidade-tipo: Rio de Janeiro, Rio de Janeiro.

Mato Grosso: 4 ♂ e 2 ♀ “Chap. Guimarães – MT / 30.XI.1983 / Exc. Dep. Zool. –

UFPR / (POLONOROESTE) | DPTO. ZOOL. / UF-PARANÁ”, [DZUP] \ 1 ♂ e 2 ♀,

mesmo local e coletor, 01.XII.1983, [DZUP] \ 7 ♂ e 6 ♀, mesmo local e coletor,

02.XII.1983, [DZUP] \ 1 ♂ e 1 ♀, mesmo local e coletor, 03.XII.1983, \ 1 ♂, mesmo

local e coletor, 17.XII.1984, [DZUP] \ 1 ♀ “Cáceres – MT / 08.III.1985 / C. Elias. Leg /

POLONOROESTE”, [DZUP] \ Paraná: 1 ♂ “Telêmaco Borba – PR / Res. Samuel

Klabin / BRASIL 06.X.1986, / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♀,

mesmo local e coletor, 29.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♂ “BRASIL PR Jundiaí do Sul /

Fazenda Monte Verde / 01.VIII.1988 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \

Rio de Janeiro: 15 ♂ e 13 ♀ “Angra dos Reis, E. do Rio, BRASIL / H.S. Lopes, 1-10-

72”, [MNRJ] \ São Paulo: 1 ♂ “Brasil, SP, Ubatuba / Parque Estadual Serra do Mar /

23º21‟43” S 44º49‟22” W / Malaise 6 – Bosque / 21.I.2002, N.W. Perioto & eq. cols.”,

[MZSP] \ 1 ♂ e 2 ♀ “Brasil, SP, Peruíbe / Estação Ecológica Juréia-Itatins / 24º31‟06”

S 47º12‟06” W / Malaise 3 – Trilha / 6.V.2002, N.W. Perioto & eq. col.”, [MZSP].

Distribuição geográfica: Brasil (Mato Grosso [nova localidade], Paraná [nova

localidade], Rio de Janeiro – Localidade-tipo e São Paulo [nova localidade]).

Comentários: N. mediana distingue-se principalmente por sua coloração castanho-

escura, muito próxima do negro; certos machos apresentam uma considerável variação

em relação à distância entre os olhos, podendo ser a fronte visível em muito indivíduos;

o ápice dos cercos, em vista posterior, apresentam-se de forma rombuda, sendo essa

característica única dentre as espécies analisadas. Alguns indivíduos machos são

característicos pois não apresentam cerdas intra-alares destacadas.

Neomuscina mimosa Lopes & Khouri, 1996

(Figs. 65-72)

Neomuscina mimosa Lopes & Khouri 1996:955 (descrição); de Carvalho et al. 2005:94 (catálogo).

Diagnose: asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos,

com cerdas internas curtas; acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; fêmur médio com três

cerdas pré-apicais; asas hialinas; tíbia anterior com uma destacada cerda mediana

ântero-dorsal; machos com intra-alares 1; pró-epímero e pró-episterno sem sétulas

negras adjacentes; catepisterno com sétulas negras adjacentes na região posterior.

Coloração: em geral castanho-amarelado; tórax dorsalmente castanho-amarelado, com

quatro listras castanho escuras vistas a certa luz e angulação, com polinosidade

cinzenta; frontália e parafrontália amareladas; faciália e parafaciália esbranquiçadas;

antenas e palpos amarelos; pernas amarelas; calípteras e halteres amarelos; asas hialinas.

Macho: 5 mm de comprimento; 5,5 mm de comprimento.

Cabeça: 12 pares de cerdas frontais convergentes, sendo o 2º par maior que os demais;

olhos separados por uma 0,09 mm de distância à altura do primeiro ocelo; cerdas

ocelares paralelas e direcionadas anteriormente; cerdas pós-ocelares divergentes; cerdas

verticais internas e verticais externas divergentes;

Tórax: acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; intra-alares 1; catepisterno com cílios negros

adjacentes na região posterior; tíbia anterior com uma destacada cerda mediana ântero-

dorsal; ápice da tíbia anterior com cerdas nas faces ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal,

póstero-ventral e ventral; fêmur médio com uma fileira de cerda na região póstero-

ventral até a metade, enfraquecendo-se então e ressurgindo no ápice; fêmur médio com

uma pequena fileira ântero-ventral no quarto basal; fêmur médio com três cerdas pré-

apicais, posicionadas nas faces dorsal, póstero-dorsal e posterior; ápice da tíbia média

com cerdas nas faces anterior, póstero-dorsal, póstero-ventral, ventral e ântero-dorsal;

fêmur posterior com uma completa fileira de cerdas nas faces dorsal e ântero-ventral, e

uma fileira de cerdas na face ventral até a metade; tíbia posterior com uma cerda

mediana ântero-dorsal e duas cerdas medianas ântero-ventrais; ápice da tíbia média com

cerdas nas faces anterior, ântero-dorsal, dorsal e ventral; asas com uma a duas cerdas

dorsais e uma cerda ventral no ápice da veia tronco.

Abdômen: epândrio levemente pronuciado.

Fêmea (diferindo no que segue): nove pares de cerdas frontais convergentes, exceto

pelos dois pares superiores, que são paralelos; olhos separados por uma 0,28 mm de

distância à altura do primeiro ocelo; cerdas ocelares e pós-ocelares grandes e

divergentes; cerdas verticais internas convergentes; cerdas verticais externas

divergentes; intra-alares 2; esternito VIII com cerdas espinhosas pronunciadas;

epiprocto com quatro cerdas, dispostas 2:2.

Material analisado:

BRASIL: Holótipo: ♂; quetotaxia em bom estado; pernas mediana direita e posteriores

desaparecidas; asas danificadas; abdômen dissecado e guardado em tubo com glicerina

junto ao exemplar; Etiqueta de localidade: “BRASIL, Goiás, Goianésia / 06-XI-1969 /

H. Ebert leg.”; Etiqueta vermelha com a inscrição HOLOTYPE junto ao espécime.

Localidade-tipo: Brasil.

BRASIL: Goiás: 1 ♂ e 2 ♀ parátipos “Goianésia, Goiaz, Brasil / H. Ebert, 6-IX-69”

[MNRJ].

Distribuição geográfica: Brasil (Goiás – Localidade-tipo).

Comentários: N. mimosa pode ser distinguida facilmente das outras espécies de

Neomuscina pelo catepisterno com muitas e destacadas sétulas negras adjacentes em sua

região posterior, assim como pela morfologia das terminálias masculina e feminina.

Neomuscina neosimilis Snyder, 1949

(Figs. 73-80)

Neomuscina neosimilis Snyder 1949:33 (descrição, chave); Snyder 1954:425 (chave); Pont 1972:50

(catálogo); d‟Almeida 1993:7–16 (sinantropia); de Carvalho et al. 1993:58 (catálogo); Couri

1998:597–603 figura 12 (estruturas da espermateca); Couri & de Carvalho 2002:154 (chave); de

Carvalho et al. 2005:94 (catálogo); Rodríguez-Fernández et al. 2006:98 (listada).

Diagnose: asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos,

com cerdas internas curtas; acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; machos com intra-alar 1;

fêmur médio com três cerdas pré-apicais; asas hialinas, com uma distinta mancha na R

que se estende para baixo até a tranversal rm; ápice de R

2+3

com uma mancha castanha,

como também nas tranversais rm e dm-cu; esternito VIII das fêmeas com espinhos

longos.

Coloração: em geral castanho-amarelado; tórax dorsalmente castanho-amarelado, com

quatro listras castanho escuras vistas à certa luz e angulação, com polinosidade

cinzenta; fronte e parafrontália com a região superior negra e a região anterior amarelo-

escura; faciália e parafaciália esbranquiçadas; antenas e palpos amarelos; pernas

castanho-amareladas; calípteras e halteres brancos; asas hialinas, com uma distinta

mancha na R

que se estende para baixo até a tranversal rm; ápice de R

2+3

com uma

mancha castanha, como também nas tranversais rm e dm-cu.

Macho: 6-6,2 mm de comprimento; asas 6,5-6,7 mm de comprimento.

Cabeça: 11 pares de cerdas frontais convergentes, sendo o 2º par maior que os demais;

olhos separados por uma 0,09-0,12 mm de distância à altura do primeiro ocelo; cerdas

ocelares paralelas e direcionadas anteriormente; cerdas pós-ocelares divergentes; cerdas

verticais internas e verticais externas pequenas e divergentes;

Tórax: acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; intra-alares 1; tíbia anterior com uma

destacada cerda mediana ântero-dorsal; ápice da tíbia anterior com cerdas nas faces

ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal e póstero-ventral; fêmur médio com um fileira de

cerda na região ventral até a metade; fêmur médio com três cerdas pré-apicais,

posicionadas nas faces dorsal, póstero-dorsal e posterior; ápice da tíbia média com

cerdas nas faces anterior, póstero-dorsal, póstero-ventral, ventral e ântero-dorsal; fêmur

posterior com uma completa fileira de cerdas nas faces dorsal e ântero-ventral, e uma

fileira de cerdas na face póstero-ventral até a metade; tíbia posterior com uma cerda

mediana ântero-dorsal e três cerdas medianas ântero-ventrais; ápice da tíbia média com

cerdas nas faces anterior, ântero-dorsal, dorsal e ventral; asas com uma a duas cerdas

dorsais e uma cerda ventral no ápice da veia tronco.

Abdômen: esternito V com projeção moderada na base; epândrio levemente

pronunciado; cercos com ápice levemente rombudo.

Fêmea (diferindo no que segue): 6,2-6,3 mm de comprimento; olhos separados por uma

0,3-0,31 mm de distância à altura do primeiro ocelo; 10-11 pares de cerdas frontais

convergentes, exceto pelos dois pares superiores, que são divergentes; cerdas ocelares e

pós-ocelares grandes e divergentes; cerdas verticais internas grandes e convergentes;

cerdas verticais externas grandes e divergentes; intra-alares 2; esternitos VI e VII bem

esclerotinizados; esternito VIII com cerdas espinhosas pronunciadas; epiprocto com

quatro cerdas, dispostas 2:2.

Material analisado:

Holótipo (não examinado): American Museum of Natural History (AMNH), Nova

York, Estados Unidos da América. Localidade-tipo: Nova Teutônia, Santa Catarina.

BRASIL: Alagoas: 1 ♂ “Brasil, AL, Quebrângulo / Reserva Biológica Pedra Talhada /

Arm. Malaise – 4ª Trilha / 11-14.IX.2002 / Penteado-Dias & eq. col., Refugo” [MZSP] \

Bahia: 1 ♂ “Brasil, BA, Mata de São João / Reserva de Sapiranga / 12º33‟35” S

38º02‟48,8 W” / Malaise, Ponto B5 / 19-22.VII.2001 / M.T. Tavares & eq. col.”

[MZSP] \ 1 ♂ “Brasil, BA, Mata de São João / Reserva de Sapiranga / 12º33‟38,5” S

38º02‟57,2 W” / Malaise, Ponto T6 / 22-25.VII.2001 / M.T. Tavares & eq. col.”

[MZSP] \ Espírito Santo: 1 ♂ “Brasil, ES, Santa Teresa / Estação Biológica Santa Lúcia

- 755m / 19º58‟21,1” S 40º32‟05,5” W / Varredura – Ponto 19 / 7.IV.2001 / C.O.

Azevedo & eq. col.” [MZSP] \ 1 ♂ “Brasil, ES, Santa Teresa / Estação Biológica Santa

Lúcia - 867m / 19º58‟39,2” S 40º32‟06,2” W / Varredura – Ponto 19 / 8.IV.2001 / C.O.

Azevedo & eq. col.” [MZSP] \ 1 ♂ “Brasil, ES, Santa Teresa / Estação Biológica Santa

Lúcia - 755m / 19º58‟14,9” S 40º32‟05,8” W / Arm. Moerick – Ponto 1 – Bosque / 9-

12.IV.2001 / C.O. Azevedo & eq. col.” [MZSP] \ Mato Grosso: 1 ♂ “DPTO ZOOL /

UF-PARANÁ | Chap. Guimarães – MT / 18.XI.1983 / Exc. Dep. Zool. –UFPR /

POLONOROESTE”, [DZUP] \ 1 ♂ e 2 ♀, mesmo local e coletor, 30.XI.1983, [DZUP]

\ 9 ♂ e 7 ♀, mesmo local e coletor, 01.XII.1983, [DZUP] \ 9 ♂ e 7 ♀, mesmo local e

coletor, 02.XII.1983, [DZUP] \ 2 ♂ e 3 ♀, mesmo local e coletor, 03.XII.1983, [DZUP]

\ 1 ♂ “DPTO ZOOL / UF-PARANÁ | Cáceres – MT / 27.III.1984 / C. Elias leg. /

POLONOROESTE” \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 21.XI.1984, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo

local e coletor, 24.XI.1984, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 01.XII.1984, [DZUP]

\ 1 ♂, mesmo local e coletor, 03.XII.1984, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor,

06.XII.1984, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 10.XII.1984, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo

local e coletor, 17.XII.1984, [DZUP] \ Minas Gerais: 1 ♂ “Brasil, MG, Cabo Verde /

Fazenda da Cata – 598m / 21º27‟11,04” S 37º24‟50,4” W / Malaise – 2 Mata / 10-

23.IX.2006 / Amorin, Ribeiro, Falaschi & Oliveira col.” [MZSP] \ Paraná: 1 ♀

“Colombo – PR / EMBRAPA BR476 km20 / BRASIL 13.IV.1987 / Lev. Ent.

PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♀ “Colombo – PR / EMBRAPA BR476 km20 /

BRASIL 13.X.1986, [DZUP] \ 1 ♀ “ Fênix – Paraná / Reserva Est. – ITCF / Brasil

04.VIII.1986 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♂ “Jundiaí do Sul – PR

/ Fazenda Monte Verde / BRASIL 20.X.1986, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor,

03.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 24.XI.1986, [DZUP] \ 2 ♀ “P.

Grossa (V. Velha) PR / Reserva IPAR BR376 / BRASIL 01.VII.1986, Lev. Ent.

PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 01.VII.1986, \ 1 ♂,

mesmo local e coletor, 13.X.1986, [DZUP] \ 2 ♀, mesmo local e coletor, 12.I.1987,

[DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 24.XI.1986, [DZUP] \ 2 ♂, mesmo local e

coletor, 19.I.1987, \[DZUP] 1 ♀, mesmo local e coletor, 26.I.1987, [DZUP] \ 1 ♀,

mesmo local e coletor, 16.II.1987, [DZUP] \ 2 ♀, mesmo local e coletor, 09.III.1987,

[DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 16.III.1987, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e

coletor, 23.III.1987, [DZUP] \ 1 ♀ “S. José dos Pinhais – PR / Ser. Mar BR277 km54 /

BRASIL, 13.X.1986, / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♂ “Brasil, PR,

Morretes / Parque Estadual do Pau Oco / Malaise – Ponto T5 / 07-10.IV.2002 / M.T.

Tavares & eq. col.” [MZSP] \ Santa Catarina: 1 ♀ “Brasil, SC, São Francisco do Sul /

Capa – Vila da Glória / Malaise – B6 – Bosque / 17-20-X-2001” \ 1 ♀ “Brasil, SC, São

Bento do Sul / 5ª Malaise – Bosque” [MZSP] \ Sergipe: 1 ♀ “Brasil, SE, Santa Luzia do

Itanhy Crasto / 11º22‟42,7” S 37º24‟58,1” W / Moericke – Trilha 3 / 30.VII-2-

VIII.2001 / M.T. Tavares & eq. col.” [MZSP].

Distribuição geográfica: Brasil (Alagoas [nova localidade], Bahia [nova localidade],

Espírito Santo [nova localidade], Mato Grosso [nova localidade], Minas Gerais [nova

localidade], Rio de Janeiro, Paraná [nova localidade], Santa Catarina – Localidade-tipo,

Sergipe [nova localidade]), Trinidad e Tobago.

Comentários: N. neosimilis apresenta machos com esternito V levemente estreito e

placa cercal também estreita, em vista posterior. As fêmeas caracterizam-se com cerdas

longas e bem destacadas no ovipositor. A espécie possui uma distribuição bastante

ampla pelo Brasil.

Neomuscina nigricosta Snyder, 1949

(Figs. 81-88)

Neomuscina nigricosta Snyder 1949:22 (descrição, chave); Snyder 1954:425 (chave); Pont 1972:50

(catálogo); de Carvalho et al. 1993:58 (catálogo); Couri & de Carvalho 2002:152 (chave); de

Carvalho et al. 2005:95 (catálogo).

Diagnose: asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos,

com cerdas internas curtas; acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; fêmur médio com duas

cerdas pré-apicais; tíbia posterior com uma cerda mediana ântero-dorsal; asas com uma

mancha castanha ininterrupita estendendo-se do ápice da veia Sc até o ápice da veia

2+3

Coloração: em geral castanho-amarelado; região anterior da fronte amarela, ápice

castanho; faciália e parafaciália brancas; gena, antenas e palpos amarelos; tórax com

quatro listras castanhas vistas a certa luz e angulação, com polinosidade cinzenta;

calípteras e balancins amarelos; asas com uma distinta mancha estendendo-se

ininterruptamente do ápice da Sc até o ápice da R

2+3

, e a metade posterior da asa é

distintamente mais escurecida que a metade anterior.

Macho: 6,6-7,1 mm de comprimento; asas 6,4-7,0 mm de comprimento.

Cabeça: olhos separados na altura do ocelo por uma distância de 0,14-0,17 mm; seis

pares de cerdas frontais, sendo o 2º par maior que os demais; cerdas frontais

convergentes, exceto pelos pares ciliformes, que são paralelos; cerdas ocelares grandes

e paralelas; cerdas pós-ocelares grandes e divergentes; cerdas verticais internas

pequenas e convergentes; cerdas verticais externas pequenas e divergentes.

Tórax: acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; intra-alares 2; tíbia anterior com uma distinta

cerda mediana ântero-dorsal; ápice da tíbia anterior com cerdas nas faces anterior,

póstero-dorsal e póstero-ventral; fêmur médio com uma fileira de cerdas na face ventral

até a metade; fêmur médio com duas cerdas pré-apicais, posicionadas nas faces póstero-

dorsal e posterior; ápice da tíbia média com cerdas nas faces anterior, dorsal, póstero-

dorsal, póstero-ventral, ventral e ântero-ventral; fêmur posterior com uma completa

fileira de cerdas nas faces dorsal e ântero-ventral e uma fileira até a metade na póstero-

ventral; tíbia posterior com uma cerda mediana ântero-dorsal e duas cerdas medianas

ântero-ventrais; ápice da tíbia posterior com cerdas nas faces anterior, ântero-dorsal,

dorsal, póstero-dorsal, ventral e ântero-ventral; ápice da veia tronco com 1 cerda dorsal

e 2 cerdas ventrais.

Abdômen: epândrio pronuciado na base; ápice dos cercos levemente escavados, em

vista posterior.

Fêmea (diferindo no que segue): 6,6-7,2 mm de comprimento; asas 6,4-7,2 mm de

comprimento; olhos separados por uma 0,28-0,31 mm de distância à altura do primeiro

ocelo; nove a dez pares de cerdas frontais convergentes, exceto pelos dois pares

superiores, que são paralelos; cerdas ocelares grandes e pós-ocelares pequenas, ambas

divergentes; cerdas verticais internas grandes e convergentes; cerdas verticais externas

grandes e divergentes; escleritos VI e VII bem esclerotinizados; muitas cerdas dorsais e

ventrais no meio dos segmentos VI e VII; esternito VIII sem cerdas espinhosas

pronunciadas; epiprocto com quatro cerdas, dispostas 2:2.

Material analisado:

Holótipo (não examinado): American Museum of Natural History (AMNH), Nova

York, Estados Unidos da América. Localidade-tipo: Porto de Espanha, Trinidad e

Tobago.

BRASIL: Mato Grosso: 1 ♂ e 1 ♀ “DPTO ZOOL / UF-PARANÁ | Chap. Guimarães –

MT / 22.XI.1983 / Exc. Dep. Zool. – UFPR / POLONOROESTE”, [DZUP] \ 2 ♂ e 1 ♀,

mesmo local e coletor, 23.XI.1983, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 24.XI.1983,

[DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 30.XI.1983, [DZUP] \ 3 ♂ e 3 ♀, mesmo local e

coletor, 01.XII.1983, [DZUP] \ 6 ♂ e 14 ♀, mesmo local e coletor, 02.XII.1983,

[DZUP] \ 2 ♂, mesmo local e coletor, 03.XII.1983, [DZUP] \ Roraima: 1 ♂ “BRASIL,

Roraima / Rio Uraricoera / Ilha de Maraca / 02-13.V.1987 | Armadilha / de Shannon |

J.A. Rafael / J.E.R. Brasil / L.S. Aquino”, [DZUP].

Distribuição geográfica (Brasil): nova ocorrência para o Brasil (Roraima e Mato

Grosso), Guiana, Trinidad e Tobago (Localidade-tipo).

Comentários: N. nigricosta é facilmente distinguida das outras espécies do gênero pela

presença de uma forte mancha castanha e ininterrupita, que se estendende do ápice da

veia Sc até o ápice da veia R

2+3

. Este é o primeiro registro desta espécie para o Brasil.

Neomuscina paramediana Lopes & Khouri, 1996

(Figs. 89-96)

Neomuscina paramediana Lopes & Khouri 1996:957 (descrição); de Carvalho et al. 2005:95 (catálogo).

Diagnose: asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos,

com cerdas internas curtas; acrosticais 0:1, dorsocentrais 2:4; machos com intra-alares

1; fêmur médio com três cerdas pré-apicais; asas hialinas; tíbia anterior com uma

destacada cerda mediana ântero-dorsal; pró-epímero e pró-episterno sem sétulas negras

adjacentes; catepisterno com sétulas negras adjacentes na região posterior.

Coloração: em geral castanho; tórax dorsalmente castanho, com quatro listras castanho

escuras vistas à certa luz e angulação, com polinosidade cinzenta; calo umeral e ápice

do escutelo amarelos; região superior da fronte escurecida, torando-se amarela na região

anterior; parafrontália, faciália, parafaciália, antenas e palpos amarelos; ápice do

fêmures amarelos; calípteras e halteres branco-amarelados; asas hialinas.

Macho: 6,0-6,2 mm de comprimento; asas 6,5-6,8 mm de comprimento.

Cabeça: 10-12 pares de cerdas frontais convergentes, sendo o 2º par maior que os

demais; olhos separados por uma 0,09-0,1 mm de distância à altura do primeiro ocelo;

cerdas ocelares paralelas e direcionadas anteriormente; cerdas pós-ocelares divergentes;

cerdas verticais internas e verticais externas divergentes;

Tórax: acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; intra-alares 1; tíbia anterior com uma

destacada cerda mediana ântero-dorsal; ápice da tíbia anterior com cerdas nas faces

ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal e póstero-ventral; fêmur médio com uma fileira de

cerda na região póstero-ventral até a metade, enfraquecendo-se então e ressurgindo no

ápice; fêmur médio com uma pequena e fraca fileira ântero-ventral no quarto basal;

fêmur médio com três cerdas pré-apicais, posicionadas nas faces dorsal, póstero-dorsal e

posterior; ápice da tíbia média com cerdas nas faces anterior, dorsal, póstero-dorsal,

póstero-ventral, ventral e ântero-dorsal; fêmur posterior com uma completa fileira de

cerdas nas faces ântero-dorsal, dorsal e ântero-ventral; tíbia posterior com uma cerda

mediana ântero-dorsal e duas cerdas medianas ântero-ventrais; ápice da tíbia média com

cerdas nas faces anterior, ântero-dorsal, dorsal, ventral e ântero-ventral; asas com uma a

duas cerdas dorsais e uma cerda ventral no ápice da veia tronco.

Abdômen: esternito V com a base levemente pronuciada; epândrio levemente

pronuciado na base.

Fêmea (diferindo no que segue): 6,0-6,3 mm de comprimento; asas 6,5-6,9 mm de

comprimento; olhos separados por uma 0,28-0,3 mm de distância à altura do primeiro

ocelo; nove a dez pares de cerdas frontais convergentes, exceto pelos dois pares

superiores, que são paralelos; cerdas ocelares e pós-ocelares grandes e divergentes;

cerdas verticais internas convergentes; cerdas verticais externas divergentes; intra-alares

2; Esternito VIII com cerdas espinhosas pronunciadas; epiprocto com quatro cerdas,

dispostas 2:2.

Material analisado:

BRASIL: Holótipo: ♂; exemplar em bom estado; abdômen dissecado e guardado em

tubo com glicerina junto ao exemplar; Etiqueta de localidade: branca, letras impressas

“BRASIL, Goiás, Goianésia / XII-1972, Alvarenga leg.”; Etiqueta vermelha com a

inscrição HOLOTYPE junto ao espécime; exemplar depositado no Museu Nacional,

Rio de Janeiro (MNRJ). Localidade-tipo: Goiás.

BRASIL: Bahia: 5 ♀ parátipos “Encruzilhada, Divisa, 960m / Bahia, Brasil / Seabra &

Roppa, XI-72” [MNRJ] \ 17 ♂ e 19 ♀ parátipos “Goianésia, Goiaz, Brasil / H. Ebert, 6-

IX-69” [MNRJ] \ 1 ♀ parátipo “Goiânia, Goiaz, Brasil / H. Ebert, 6-IX-69” [MNRJ] \ 1

♀ parátipo “Angra dos Reis, E. do Rio, Brasil / H.S. Lopes, 12-XII-72” [MNRJ] \

Goiás: 1 ♀ parátipo “Goianésia, Goiaz, Brasil / H. Ebert, 6-IX-69” [MNRJ] \ Mato

Grosso: 1 ♀ parátipo “Salobra, 30-8-40 / Mato Grosso, Com. I.O.C.” [MNRJ] \ Paraná:

1 ♂ “Curitiba- PR / Mata Cebola / 07.II.1982 / C.B. Jesus col” \ 1 ♂ “Curitiba- PR /

Cidade Cebola / 07.II.1982 / C.B. Jesus col” [DZUP] \ Rio de Janeiro: 1 ♂ e 1 ♀

parátipos “Angra dos Reis, E. do Rio, Brasil / H.S. Lopes, 14-XII-72” [MNRJ] \ Rio

Grande do Sul: 1 ♀ parátipo “Rio Grande do Sul / S. Fco. de Paula, I-59” [MNRJ] \

São Paulo: 1 ♀ parátipo “Araçatuba – SP / Rio Jacareatinga / X-196, Lane & Rebello

col.” [MNRJ].

Distribuição geográfica: Brasil (Bahia, Goiás – Localidade-tipo, Mato Grosso, Paraná

[nova localidade], Rio de Janeiro, Rio Grande do Sul, São Paulo.)

Comentários: Assim como apontado por Lopes & Khouri (1996), N. paramediana

possui características muito semelhantes quando comparada a N. mediana, diferindo

principalmente pelas asas hialinas. A análise das terminálias de machos e fêmeas

revelou as características únicas para esta espécie.

Neomuscina pictipennis pictipennis (Bigot, 1878)

(Figs. 97-104)

Curtonevra pictipennis Bigot 1878 (descrição, designação original).

Cyrtoneurina pictipennis Stein 1919:127 (catálogo, nova combinação); Séguy 1937:351 (catálogo).

Neomuscina pictipennis Iriarti 1943:195 (listada); Snyder 1954:425 (chave); Hennig 1965:figura 50

(ovipositor); Pont 1972:50 (catálogo); d‟Almeida 1992:381–386 (listada); d‟Almeida 1993:7–16

(sinantropia); de Carvalho et al. 1993:59 (catálogo); Pont 2000:22–23 (notas sobre o tipo); Couri

& de Carvalho 2002:153 (chave); Costacurta et al. 2003:393 (coletada); de Carvalho et al. 2005:95

(catálogo); Rodríguez-Fernández et al. 2006:98 (listada).

Neomuscina nudinervis fulva Snyder 1949:29 (descrição, como subespécie de nudinervis Stein, chave);

Snyder 1954:428 (sinonímia com nudinervis ssp. pictipennis; chave).

Diagnose: asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos,

com cerdas internas curtas; acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; intra-alares 1; fêmur

médio com três cerdas pré-apicais; espiráculo posterior com destacadas cerdas negras

adjacentes na região póstero-inferior; fêmeas com muitas cerdas ventrais no VII e VIII

segmento abdominal.

Coloração: em geral amarelada; tórax dorsalmente amarelo-acastanhado, com quatro

listras castanho-claras vistas à certa luz e angulação, com polinosidade cinzenta; fronte

e parafrontália com a região superior castanha e a região anterior amarela; faciália e

parafaciália esbranquiçadas; antenas e palpos amarelos; pernas amarelas; calípteras e

halteres brancos; asas hialinas, com uma distinta mancha na R

que se estende para

baixo até a tranversal rm; ápice de R

2+3

com uma mancha castanha; tranversais rm e

dm-cu.

Macho: 4,8-6,2 mm de comprimento; asas 5,5-6,9 mm de comprimento.

Cabeça: 13-15 pares de cerdas frontais convergentes, sendo o 2º par maior que os

demais; olhos separados por uma 0,07-0,11 mm de distância à altura do primeiro ocelo;

cerdas ocelares paralelas e direcionadas anteriormente; cerdas pós-ocelares divergentes;

cerdas verticais internas e verticais externas pequenas e divergentes;

Tórax: acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; intra-alares 1; espiráculo torácico posterior

com cílios negros adjacentes na região póstero-ventral; ápice da tíbia anterior com

cerdas nas faces ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal e póstero-ventral; fêmur médio

com uma fileira de cerdas na região ventral até a metade; fêmur médio com três cerdas

pré-apicais, posicionadas nas faces dorsal, póstero-dorsal e posterior; ápice da tíbia

média com cerdas nas faces anterior, póstero-dorsal, póstero-ventral, ventral e ântero-

dorsal; fêmur posterior com uma completa fileira de cerdas nas faces dorsal e ântero-

ventral, e uma fileira de cerdas na face póstero-ventral até a metade; tíbia posterior com

uma cerda mediana ântero-dorsal e três cerdas medianas ântero-ventrais; ápice da tíbia

média com cerdas nas faces anterior, ântero-dorsal, dorsal e ventral; asas com uma a

duas cerdas dorsais e uma cerda ventral no ápice da veia tronco.

Abdômen: esternito V com leve projeção basal; epândrio pronunciado na base; ápice

dos cercos levemente rombudos.

Fêmea (diferindo no que segue): 4,6-6,3 mm de comprimento; asas 5,1-6,8 mm de

comprimento; 9-11 pares de cerdas frontais convergentes, exceto pelos dois pares

superiores, que são divergentes; olhos separados por uma 0,25-0,33 mm de distância à

altura do primeiro ocelo; cerdas ocelares e pós-ocelares grandes e divergentes; cerdas

verticais internas grandes e convergentes; cerdas verticais externas grandes e

divergentes; intra-alares 2; esternito VIII com cerdas espinhosas pronunciadas;

epiprocto com quatro cerdas, dispostas 2:2.

Material analisado:

Holótipo (não examinado): British Museum of Natural History (BMNH), Londres,

Inglaterra. Localidade-tipo: „Brasil‟.

BRASIL: Alagoas: 1 ♂ e 1 ♀ “Brasil, AL, Quebrângulo / Reserva Biológica Pedra

Talhada / Arm. Malaise – 1º Bosque / 8-11.IX.2002 / Penteado-Dias & eq. col. ,

Refugo” \ 4 ♂ “Brasil, AL, Quebrângulo / Reserva Biológica Pedra Talhada / Arm.

Malaise – 4ª Trilha / 11-14.IX.2002 / Penteado-Dias & eq. col., Refugo”, [MZSP] \

Bahia: 2 ♂ e 1 ♀ “Anajé, Bahia / BRASIL 15-24.V.1975 / C. & P. Elias leg” \ 1 ♂ e 1

♀ “Brasil, BA, Mata de São João / Reserva de Sapiranga / 12º33‟37,4” S 38º02‟46,8”

W / Malaise – Ponto 4 – Bosque / 22-25.VII.2001 / M.T. Tavares & eq. cols.”, [MZSP]

\ Espírito Santo: 98 ♂ e 80 ♀ “Linhares, Espírito Santo, Brasil / VI-72, P.C. Elias”

[MNRJ] \ 13 ♂ e 15 ♀, mesmo local e coletor, VII-72, [MNRJ] \ 3 ♀ “Brasil, ES,

Linhares / Reserva Ecológica Sooretama – 23m / 18º58‟02,7” S 40º08‟06,8” W /

Malaise – Ponto 5 – Trilha / 21-24.III.2002 / C.O. Azevedo & eq. col., RESTO”,

[MZSP] \ Mato Grosso: 1 ♀ “Chap. Guimarães – MT / 21.XI.1983, [DZUP] \ 2 ♀,

mesmo local e coletor, 23.XI.1983, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 24.XI.1983,

[DZUP] \ 1 ♂ e 3 ♀, mesmo local e coletor, 30.XI.1983, [DZUP] \ 7 ♀, mesmo local e

coletor, 01.XII.1983, [DZUP] \ 3 ♂ e 11 ♀, mesmo local e coletor, 02.XII.1983,

[DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 03.XII.1983, [DZUP] \ 2 ♂ “Cáceres, MT /

13.XI.1984 / Buzzi, Mielke, Elias / Casagrande / Proj. POLONOROESTE | DPTO.

ZOOL. / UF-PARANÁ”, [DZUP] \ 1 ♂ “Cáceres, MT / 10.XII.1984 / C. Elias leg /

POLONOROESTE | DPTO. ZOOL. / UF-PARANÁ”, [DZUP] \ 2 ♂ e 1 ♀, mesmo

local e coletor, 24.XII.1984, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 14.I.1985, [DZUP] \

Minas Gerais: 8 ♂ e 10 ♀ “Viçosa – MG / 15.VIII.1984 / O. Francisco & P.S. Fiuza [1

♂ sem cabeça]”, [DZUP] \ 17 ♂ e 8 ♀ “Brasil, MG, Botelhos / Córrego da Onça /

21º40‟90” S 46º22‟05” W / Shannon – Mata / 16-20.VI.2007 / Amorim, Oliveira,

Capellari & Ricardi col.”, [MZSP] \ 1 ♂ e 3 ♀ “Brasil, MG, Botelhos / Córrego da Onça

/ 21º40‟90” S 46º22‟05” W / Shannon / 15-19.VI.2007 / Amorim, Oliveira & Capelari

col.”, [MZSP] \ 1 ♂ “Brasil, MG, Presidente Olegário / Fazenda São Zeferino / Malaise

Preta / 26.VII-07.VIII.2007 / G.C. Ribeiro”, [MZSP] \ Santa Catarina: 1 ♀ “Brasil, SC,

São Francisco do Sul / Cepa – Vila da Glória / Malaise – B6 – Bosque / 17-20.X.2001”,

[MZSP] \ Paraná: 1 ♀ “Antonina – PR / Reserva Sapitanduva / BRASIL 22.XII.1986 /

Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♀ “Curitiba – PR / C. Imbuia /

14.III.1985 / Malkowski, SR / CEB-VERD”, [DZUP] \ 1 ♂ “BRASIL, PR, Curitiba,

Parque / Regional do Iguaçu / 13.II.2001 M. Chrestani & S.S Nihei, Leg” \ 1 ♂ e 1 ♀

“Jundiaí do Sul - PR / Fazenda Monte Verde / BRASIL 18.VIII.1986 / Lev. Ent.

PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 25.VIII.1986, [DZUP]

\ 1 ♂, mesmo local e coletor, 13.X.1986, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor,

20.X.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 03.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo

local e coletor, 24.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 03.VIII.1987,

[DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 15.VIII.1987, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e

coletor, 17.VIII.1987, [DZUP] \ 1 ♂ e 1 ♀, mesmo local e coletor, 14.IX.1987, [DZUP]

\ 1 ♀, mesmo local e coletor, 05.X.1987, [DZUP] \ 2 ♂ e 1 ♀, mesmo local e coletor,

12.X.1987, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 19.X.1987, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo

local e coletor, 16.XI.1987, \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 23.XI.1987, [DZUP] \ 1 ♀

“Morretes – PR / BR-25.X.1983 / Mata de Galeria”, [DZUP] \ 1 ♂ “Fênix – Paraná /

Reserva Est. ITCF / BRASIL 08.IX.1986 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP]

\ 1 ♀, mesmo local e coletor, 20.X.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor,

05.X.1987, [DZUP] \ 1 ♂ “BRASIL PR Fênix / Reserva Estad. Vilha Rica / 19.X.1987,

Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 02.XI.1987, \

1 ♂, mesmo local e coletor, 15.II.1988, [DZUP] \ 2 ♂, mesmo local e coletor,

18.IV.1988, [DZUP] \ 3 ♂, mesmo local e coletor, 25.IV.1988, [DZUP] \ 2 ♂, mesmo

local e coletor, 02.V.1988, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 13.VI.1988, [DZUP] \

2 ♂, mesmo local e coletor, 04.VII.1988, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor,

18.VII.1988, [DZUP] \ 2 ♂ “BRASIL PR Fênix / Reserva Sapitundava / 08.II.1988,

Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 3 ♂ e 2 ♀, mesmo local e coletor,

04.IV.1988, [DZUP] \ 5 ♂ e 2 ♀, mesmo local e coletor, 11.IV.1988, [DZUP] \ 1 ♂,

mesmo local e coletor, 16.V.1988, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 06.VI.1988,

[DZUP] \ 1 ♀ “P. Grossa PR BRASIL / (V. Velha – IAPAR) / Ganho & Marinoni /

08.XI.1999 Malaise 4” \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 03.I.2000, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo

local e coletor, [DZUP] \ São Paulo: 1 ♀ “Campinas – SP BRASIL / Data: 12.12.1977 /

Isca: camundongo (mesa [?]) / A.X. Linhares (mesa [?])”, [DZUP] \ 1 ♂ “Assis – SP /

Horto Florestal / 12.II.1993 / Silva, V.C.” \ 2 ♀ “Brasil, SP, Ubatuba / Parque Estadual

Serra do Mar / 23º21‟43” S 44º49‟22” W / Malaise 3 – Trilha / 21.I.2002 / N.W. Perioto

& eq. cols.”, [MZSP] \ 2 ♀ “Brasil, SP, Peruíbe / Estação Ecológica Juréia-Itatins /

24º31‟06” S 47º12‟06” W / Malaise 3 – Trilha / 6.V.2002 / N.W. Perioto & eq. col.”,

[MZSP] \ 1 ♀ “Brasil, SP, Peruíbe / Estação Ecológica Juréia-Itatins / 24º31‟06” S

47º12‟06” W / Malaise 4 – Trilha / 6.V.2002 / N.W. Perioto & eq. col.”, [MZSP] \ 1 ♂

“Brasil, SP, Peruíbe / Estação Ecológica Juréia-Itatins / 24º31‟06” S 47º12‟06” W /

Malaise 5 – Trilha / 6.V.2002, N.W. Perioto & eq. col.”, [MZSP] \ 1 ♂ “Brasil, SP,

Florinea / Borda do Rio Paranapanema / 22º54‟45” S 56º47‟11” W / 350m, Mata –

Varredura / 30.IV.2007 / D.S. Amorim col.”, [MZSP] \ Sergipe: 3 ♂ “Brasil, SE, Santa

Luzia do Itanhy Crasto / 11º22‟31,2 S 37º24‟50,9” W / Malaise – Armadilha – Bosque 5

/ 1-4.VIII.2001 / M.T. Tavares & eq. col.”, [MZSP].

Distribuição geográfica: Brasil (Alagoas [nova localidade], Bahia [nova localidade],

Espírito Santo [nova localidade], Mato Grosso [nova localidade], Minas Gerais [nova

localidade], Paraná, Rio de Janeiro, Santa Catarina [nova localidade], São Paulo [nova

localidade] e Sergipe [nova localidade].)

Comentários: apontada como única subespécie de ocorrência para o Brasil, N.

pictipennis pictipennis distingue-se facilmente dos outros representantes do gênero

principalmente pela coloração amarelada característica, cerdas póstero-inferiores no

espiráculo posterior e o padrão de manchas nas asas. Alguns indivíduos coletados

demonstram um padrão de coloração levemente mais infuscado, sobretudo espécimes

coletados na região do Mato Grosso. A identificação destes indivíduos mostra-se muito

dificultosa, uma vez que as chaves de identificação e mesmo a descrição levam a crer

que possam ser indivíduos de N. pictipennis nudinervis (Stein). Por hora, estes serão

mantidos nesta espécie, até que se examine o holótipo da espécie de Stein.

Neomuscina ponti Lopes & Khouri, 1995

Neomuscina ponti Lopes & Khouri 1995:48 (descrição); Couri & de Carvalho 2002:150 (chave); de

Carvalho et al. 2005:96 (catálogo).

Diagnose: acrosticais 2:1, dorsocentrais 2:4; intra-alares 2; fêmur médio com duas

cerdas pré-apicais, posicionadas nas faces póstero-dorsal e posterior asas hialinas.

Coloração: em geral castanho-amarelado; região anterior da fronte amarela, ápice

castanho; faciália, parafaciália e gena castanho-amarelados; antena e palpo amarelo-

escuro; tórax com quatro listras castanhas vistas à certa luz e angulação, com

polinosidade cinzenta; calípteras brancas, com as margens escurecidas; balancins

amarelos; asas hialinas.

Macho: 5 mm de comprimento; asas 6,2 mm de comprimento.

Cabeça: cerdas frontais de dez pares, sendo o 2º par maior que os demais; olhos

separados por uma 0,08 mm de distância à altura do primeiro ocelo; cerdas frontais

convergentes, exceto pelos dois pares superiores, que são paralelos; cerdas ocelares

paralelas e direcionadas para frente; cerdas pós-ocelares divergentes; cerdas verticais

internas e verticais externas divergentes.

Tórax: acrosticais 2:1; dorsocentrais 2:4; intra-alares 2; ápice da tíbia anterior com

cerdas nas faces ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal e póstero-ventral; fêmur médio

com uma fileira de cerdas na face póstero-ventral até a metade, reaparecendo próximas

ao ápice; fêmur médio com duas cerdas pré-apicais, posicionadas nas faces póstero-

dorsal e posterior; tíbia média com uma fileira de cerdas fortes e fracas intercaladas na

face póstero-dorsal; ápice da tíbia média com cerdas nas faces dorsal, póstero-dorsal,

posterior, póstero-ventral, ventral e ântero-ventral; fêmur posterior com uma completa

fileira de cerdas nas faces ântero-dorsal, dorsal e ântero-ventral; tíbia posterior com uma

cerda submediana ântero-dorsal e duas cerdas submedianas ântero-ventrais; ápice da

tíbia posterior com cerdas nas faces anterior, ântero-dorsal, dorsal, ventral e ântero-

ventral.

Abdômen: abdômen e terminália perdidos.

Fêmea: desconhecida até o momento.

Material analisado:

BRASIL: Holótipo: ♂, em bom estado de conservação, tubo de glicerina vazio junto ao

espécime [terminália perdida]; Etiqueta de localidade: branca, letras impressas

“BRASIL, São Paulo, Campinas / XII-77, A.X. Linhares col.”; Etiqueta vermelha com a

inscrição HOLOTYPE junto ao espécime. Espécime depositado no Museu Nacional da

Universidade Federal do Rio de Janeiro [MNRJ]. Localidade-tipo: São Paulo.

Distribuição geográfica: Brasil (São Paulo – Localidade-tipo).

Comentários: N. ponti pode ser distinguida dos outros exemplares do gênero pelas

acrosticais 2:1. Aparenta-se em muitos aspectos com N. zosteris. No entanto, a

terminália do holótipo está perdida, e até que se coletem novos exemplares para

comparação, as duas espécies serão aqui mantidas separadas.

Neomuscina sanespra Snyder, 1949

(Figs. 105-112)

Neomuscina sanespra Snyder 1949:12 (descrição, chave); Snyder 1954:424 (chave); Pont 1972:51

(catálogo); de Carvalho et al. 1993:59 (catálogo); Couri & de Carvalho 2002:151 (chave); de

Carvalho et al. 2005:96 (catálogo); Rodríguez-Fernández et al. 2006:98 (listada).

Diagnose: asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos,

com cerdas internas curtas; acrosticais 1:1; dorsocentrais 2:4; machos com intra-alar 2;

fêmur médio com três cerdas pré-apicais; asas com uma fraca mancha circundando a

veia rm; bordas da calípteras escurecidas; esternito V dos machos em formato não

quadrangular; fêmeas com uma simples fileira de cerdas ventrais no meio do VI e VII

segmentos abdominais VI e VII.

Coloração: em geral castanho-amarelado; região anterior da fronte amarela, ápice

castanho; faciália branco-amarelado, parafaciália, gena, antenas e palpos castanho-

amarelados; tórax castanho-amarelado com quatro listras castanho-escuras vistas à certa

luz e angulação, e com polinosidade cinzenta; calípteras amarelo-acastanhadas, com as

margens escurecidas; balancins castanho-amarelados; asas com uma fraca mancha em

torno da veia rm.

Macho: 6,6-7,0 mm de comprimento; asas 6,9-7,1 mm de comprimento.

Cabeça: olhos separados na altura do ocelo por uma distância de 0,08 mm; 11-13 pares

de cerdas frontais convergentes, sendo o 2º par maior que os demais; cerdas ocelares

grandes e paralelas; cerdas pós-ocelares grandes e divergentes; cerdas verticais internas

pequenas e convergentes; cerdas verticais externas pequenas e divergentes.

Tórax: acrosticais 1:1; dorsocentrais 2:4; intra-alares 2; pró-epímero e pró-episterno

com uma ou duas cerdas cada; tíbia anterior com uma distinta cerda submediana ântero-

dorsal; ápice da tíbia anterior com cerdas nas faces ântero-dorsal, dorsal, posterior e

ventral; fêmur médio com uma fileira de cerdas na face ântero-ventral e póstero-ventral

até a metade, reaparecendo fracamente quando próximas ao ápice; fêmur médio com um

fileira de cerdas até a metade nas faces anterior e póstero-ventral; fêmur médio com três

cerdas pré-apicais, posicionadas nas faces dorsal, póstero-dorsal e posterior; ápice da

tíbia média com cerdas nas faces anterior, dorsal, póstero-dorsal, posterior, póstero-

ventral, ventral e ântero-ventral; fêmur posterior com uma completa fileira de cerdas nas

faces póstero-ventral e ântero-ventral; tíbia posterior com uma cerda mediana ântero-

dorsal e de três cerdas medianas ântero-ventrais; ápice da tíbia posterior com cerdas nas

faces anterior, ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal, ventral e ântero-ventral; ápice da

veia tronco com uma cerda dorsal e de uma a duas cerdas ventrais.

Abdômen: epândrio sem projeção basal.

Fêmea (diferindo no que segue): 6,6-7,0 mm de comprimento; asas 6,9-7,0 mm de

comprimento; olhos separados por uma distância variando de 0,28-0,32 mm à altura do

primeiro ocelo; nove a dez pares de cerdas frontais convergentes, exceto pelos dois

pares superiores, que são paralelos; cerdas ocelares e pós-ocelares grandes, ambas

divergentes; cerdas verticais internas grandes e convergentes; cerdas verticais externas

grandes e divergentes; esternito VIII com cerdas espinhosas pronunciadas; epiprocto

com quatro cerdas, dispostas 2:2.

Material analisado:

BRASIL: Holótipo: ♂, em bom estado; Etiqueta de identificação: etiqueta vermelha,

manuscrita “Holotype ♂ / Neomuscina / sanespra / Snyder”; branca, manuscrita

“Morellia sp.”; branca, letras impressas “Espírito Santo / Brasil”. Espécime depositado

no United States Natural Museum (USNM). Localidade-tipo: Espírito Santo.

BRASIL: Alagoas: 1 ♂ “BRASIL, AL, Quebrângulo / Reserva Biológica Pedra

Talhada / Arm. Malaise – 4ª Trilha / 11-14.IX.2002 / Penteado-Dias & eq. col., Refugo”

, [MZSP] \ Bahia: 1 ♂ “BRASIL, BA, Mata de São João / Reserva de Sapiranga,

11º22‟31,2” S 37º24‟50” W / Malaise – Armadilha, Bosque 5 / 01-04.VIII.2001 / M.T.

Tavares eq. col.”, [MZSP] \ 1 ♂ “BRASIL, BA, Mata de São João / Reserva de

Sapiranga, 12º33‟37” S 38º02‟46,8” W / Malaise – Armadilha, Bosque 5 / 19-

22.VIII.2001 / M.T. Tavares eq. col.”, [MZSP] \ Mato Grosso: 1 ♂ “Cáceres, MT /

03.XII.1984 / C. Elias leg / POLONOROESTE” \ Paraná: 1 ♂, “BRASIL PR Antonina

/ Reserva Sapitundava / 21.III.1988, Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♂,

mesmo local e coletor, 18.VI.1988, [DZUP] \ 1 ♂ “Colombo – PR / EMBRAPA BR476

km20 / BRASIL 03.XI.1986, Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 3 ♂,

mesmo local e coletor, 02.II.1987, [DZUP] \ 2 ♂, mesmo local e coletor, 09.II.1987,

[DZUP] \ 2 ♂, mesmo local e coletor, 16.II.1987, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor,

20.VII.1987, 1 ♀ “Guarapuava – Paraná / Est. Águas Sta. Clara / BRASIL 02.III.1986,

Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♂ “Guarapuava – Paraná / Est. Águas

Sta. Clara / BRASIL 18.VIII.1986, \ 1 ♂ “Jundiaí do Sul – PR / Fazenda Monte Verde /

BRASIL 01.IX.1986, Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♂ “Jundiaí do

Sul – PR / Fazenda Monte Verde / BRASIL 17.XI.1986, Lev. Ent. PROFAUPAR /

Malaise”, [DZUP] \ 1 ♂ “P. Grossa (V. Velha) PR / Reserva IAPAR BR376 / BRASIL

11.VIII.1986, Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e

coletor, 10.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 17.XI.1986, [DZUP] \ 2 ♂,

mesmo local e coletor, 19.I.1987, [DZUP] \ 2 ♂, mesmo local e coletor, 26.I.1987,

[DZUP] \ 1 ♂ “P. Grossa (V. Velha) PR / Reserva IAPAR BR376 / BRASIL

23.III.1987, \ 2 ♂, mesmo local e coletor, 30.III.1987, 1 ♂, mesmo local e coletor,

13.VI.1987, 1 ♂, mesmo local e coletor, 23.II.1987, [DZUP] \ Rio Grande do Sul: 1 ♂

“BRASIL RS / Morro Redondo / 31º40‟22” S 52º35‟30” W / 30.VIII.2002 – Malaise /

R.F Krüger leg” \ 1 ♂ “BRASIL RS / Morro Redondo / 31º40‟22” S 52º35‟30” W /

30.V.2003 – Malaise / R.F Krüger leg” \ São Paulo: 1 ♂ “BRASIL, SP, Ubatuba /

Parque Estadual Serra do Mar / 23º21‟43” S 44º49‟22” W / Malaise 6 – Bosque /

21.I.2002 / N.W. Perioto & eq. cols.”, [MZSP] \ Sergipe: 2 ♀ “BRASIL, SE, Santa

Luzia do Itanhy Crasto / 11º22‟33,6” S 37º24‟53,2” W / Malaise – Armadilha, Trilha 3 /

29.VII-01.VIII.2001 / M.T. Tavares eq. col.”, [MZSP] \ 1 ♂ “BRASIL, SE, Santa

Luzia do Itanhy Crasto / 11º22‟33,9” S 37º24‟56,8” W / Malaise – Armadilha, Trilha 4 /

01-04.VIII.2001 / M.T. Tavares eq. col.”, [MZSP] \ 1 ♂ e 1 ♀ “BRASIL, SE, Santa

Luzia do Itanhy Crasto / 11º22‟33,6” S 37º24‟53,2” W / Malaise – Armadilha, Trilha 5 /

01-04.VIII.2001 / M.T. Tavares eq. col.”, [MZSP].

Distribuição geográfica: Brasil (Alagoas [nova localidade], Bahia [nova localidade],

Espírito Santo – Localidade-tipo, Mato Grosso [nova localidade] e Rio Grande do Sul

[nova localidade]).

Comentários: N. sanespra foi descrita por Snyder, no entanto com uma dúvida sobre

suas características morfológicas. O holótipo estava com a perna média e posterior

esquerda perdida e com a perna média direita quebrada no ápice do fêmur, o que

impossibilitou determinar o verdadeiro número de cerdas pré-apicais no fêmur médio –

determinado com três pelo citado autor. Através da análise do holótipo com indivíduos

coespecíficos, pode-se verificar que realmente esta espécie possui três cerdas pré-

apicais no fêmur médio, distinguindo-a assim de N. zosteris, além das características de

terminálias masculinas e femininas.

Neomuscina schadei Snyder, 1949

(Figs. 113-120)

Neomuscina schadei Snyder 1949:32 (descrição, chave); Snyder 1954:425 (chave); Pont 1972:51

(catálogo); de Carvalho et al. 1993:59 (catálogo); Lopes & Khouri 1996:959 (citada como próxima

a N. paramediana); Couri & de Carvalho 2002:154 (chave); Costacurta et al. 2003:394 (coletada);

de Carvalho et al. 2005:96 (catálogo); Rodríguez-Fernández et al. 2006:98 (listada).

Diagnose: asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos,

com cerdas internas curtas; acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; machos com intra-alares

2; fêmur médio com três cerdas pré-apicais; asas hialinas.

Coloração: em geral amarelo-acastanhado; região anterior da fronte amarela, ápice

castanho; faciália, parafaciália, gena amarelos; antenas e palpos castanhos; noto

castanho-claro, com quatro listras castanho-escuras e com polinosidade cinzenta; ápice

dos fêmures médio e posteriores castanhos; calípteras e balancins amarelos; asas

hialinas.

Macho: 5,5-6,0 mm de comprimento; asas 6,3-6,8 mm de comprimento.

Cabeça: olhos separados na altura do ocelo anterior por uma distância de 0,1 mm; 14-

15 pares de cerdas frontais convergentes, sendo o 2º par maior que os demais; cerdas

ocelares grandes e convergentes; cerdas pós-ocelares grandes e divergentes; cerdas

verticais internas pequenas e convergentes; cerdas verticais externas pequenas e

divergentes.

Tórax: acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:3; intra-alares 2; ápice da tíbia anterior com

cerdas nas faces ântero-dorsal, dorsal, póstero-dorsal e póstero-ventral; fêmur médio

com uma fileira de cerdas na face póstero-ventral até a metade, reaparecendo

fracamente quando próximas ao ápice; fêmur médio com três cerdas pré-apicais,

posicionadas nas faces dorsal, póstero-dorsal e posterior; ápice da tíbia média com

cerdas nas faces anterior, póstero-dorsal, póstero-ventral, ventral e ântero-ventral;

fêmur posterior com uma completa fileira de cerdas nas faces dorsal, póstero-ventral e

ântero-ventral; tíbia posterior com uma cerda mediana ântero-dorsal e de uma a três

cerdas medianas ântero-ventrais; ápice da tíbia posterior com cerdas nas faces anterior,

ântero-dorsal, dorsal, ventral e ântero-ventral; ápice da veia tronco com uma cerda

dorsal e de uma a duas cerdas ventrais.

Abdômen: epândrio não pronuciado na base.

Fêmea (diferindo no que segue): 5,6-6,0 mm de comprimento; asas 6,0-6,3 mm de

comprimento; olhos separados por uma distância variando de 0,3-0,33 mm à altura do

primeiro ocelo; 11-12 pares de cerdas frontais convergentes, exceto pelos dois pares

superiores, que são divergentes; cerdas ocelares e pós-ocelares grandes, ambas

divergentes; cerdas verticais internas grandes e convergentes; cerdas verticais externas

grandes e divergentes; esternito VIII sem cerdas espinhosas pronunciadas; epiprocto

com quatro cerdas, dispostas 2:2.

Material analisado:

Holótipo (não examinado): American Museum of Natural History (AMNH), Nova

York, Estados Unidos da América. Localidade-tipo: Villarica, Paraguai.

BRASIL: Minas Gerais: 5 ♂ “Paraopeba, Minas, BRASIL / H. Ebert, 10-IX-69”,

[MNRJ] \ Paraná: 1 ♀ “BRASIL PR Antonina / Reserva Biol. Sapitundava / 05.X.1987

/ Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise” \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 12.X.1987, [DZUP] \

1 ♂ e 1 ♀, mesmo local e coletor, 19.X.1987, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor,

26.X.1987, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 02.XI.1987, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo

local e coletor, 16.V.1988, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 16.V.1988, [DZUP] \

1 ♂ e 1 ♀ “Colombo - PR / EMBRAPA BR476 Km20 / BRASIL 03.XI.1986 / Lev.

Ent. PROFAUPAR / Malaise” \ 3 ♂ e 2 ♀, mesmo local e coletor, 10.XI.1986, [DZUP]

\ 1 ♂ e 1 ♀, mesmo local e coletor, 17.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor,

24.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 19.I.1987, [DZUP] \ 7 ♂ e 1 ♀,

mesmo local e coletor, 09.II.1987, [DZUP] \ 2 ♂, mesmo local e coletor, 16.II.1987,

[DZUP] \ 2 ♂ e 1 ♀, mesmo local e coletor, 23.II.1987, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e

coletor, 18.V.1987, [DZUP] \ 1 ♂ “BRASIL PR Fênix / Reserva Estad. Vilha Rica /

16.XI.1987 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor,

13.VI.1988, [DZUP] / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise”, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local

e coletor, 27.VI.1988, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 04.VII.1988, [DZUP] \ 1

♀, mesmo local e coletor, 11.VII.1988, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor,

18.VII.1988, [DZUP] \ 1 ♀ “Guarapuava - Paraná / Est. Águas Sta. Clara / BRASIL

20.VI.1986 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise” \ 1 ♀, mesmo local e coletor,

11.VIII.1986, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 13.X.1986, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo

local e coletor, 10.XI.1986, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 23.II.1987, [DZUP] \

1 ♀, mesmo local e coletor, 23.III.1987, [DZUP] \ 1 ♂, mesmo local e coletor,

27.V.1987, [DZUP] \ 1 ♀ “BRASIL PR Jundiaí do Sul / Fazenda Monte Verde /

18.I.1988 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise” \ 1 ♂, mesmo local e coletor, 23.V.1988,

[DZUP] \ 1 ♀ “P. Grossa (V. Velha) PR / Reserva IAPAR BR376 / BRASIL

11.VIII.1986 / Lev. Ent. PROFAUPAR / Malaise” \ 1 ♀, mesmo local e coletor,

06.X.1986, [DZUP] \ 4 ♂ e 1 ♀, mesmo local e coletor, 26.I.1987, [DZUP] \ 2 ♂,

mesmo local e coletor, 09.II.1987, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 23.II.1987,

[DZUP] \ 3 ♀, mesmo local e coletor, 02.III.1987, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e

coletor, 06.IV.1987, [DZUP] \ 1 ♀, mesmo local e coletor, 29.XII.1986, [DZUP] \ 2 ♀,

mesmo local e coletor, 05.I.1987, [DZUP] \ 5 ♀, mesmo local e coletor, 12.I.1987,

[DZUP] \ 1 ♂ e 2 ♀, mesmo local e coletor, 19.I.1987, [DZUP] \ 1 ♂ “S. José Pinhais –

PR / Ser. Mar BR277 Km54 / BRASIL 01.XII.1986 / Lev. Ent. PROFAUPAR /

Malaise” \ Rio de Janeiro: 4 ♂ e 1 ♀ “Petrópolis, Estado do Rio / La Vallon Alt.

Mosèlla / Albuquerque, 1-II-8-III-57”, [MNRJ] \ Petrópolis, Estado do Rio, La Vallon

Alt. Mosèlla, D‟Albuquerque, 24-1-23-2-58”, [MNRJ] \ PARAGUAI: 1 ♂ e 1 ♀

parátipos “Villarica, Paraguay / VI 1937, F. Schade coll.”, [MNRJ].

Distribuição geográfica: Brasil (Minas Gerais [nova localidade], Paraná e Rio de Janeiro

[nova localidade]), Paraguai (Localidade-tipo).

Comentários: Essa espécie pode ser facilmente reconhecida pelas asas ligeiramente

estreitas, o que dá um aspecto de serem mais compridas. Snyder (1949) menciona que

N. schadei se parece em muito com N. dorsipuncta (Stein). Como já mencionado pelo

autor, até que se analisem juntamente os dois tipos, N. schadei será classificada como

uma espécie à parte.

Neomuscina similata Snyder, 1949

(Figs. 91-96)

Neomuscina similata Snyder 1949:33 (descrição, chave); Snyder 1954:428 (chave); Pont 1972:51

(catálogo); Linhares 1981:231 (sinantropia); d‟Almeida 1993:7–16 (sinantropia); de Carvalho et

al. 1993:59 (catálogo); Couri & de Carvalho 2002:154 (chave); de Carvalho et al. 2002:107–114

(chave para espécies sinatrópicas); de Carvalho et al. 2005:97 (catálogo); Couri & de Carvalho

2005:9 (listada).

Diagnose: asas com R

4+5

sem cerdas na superfície ventral; surstilos largos e sinuosos,

com cerdas internas curtas; acrosticais 0:1; dorsocentrais 2:4; machos com intra-alar 2;

fêmur médio com três cerdas pré-apicais; asas com uma distinta mancha entre as veias

Sc e R

, no ápice da veia R

2+3

, e nas veias tranversais rm e dm-cu; esternito VIII das

fêmeas com espinhos curtos; esternito V masculino com pronunciada projeção basal.

Coloração: em geral castanho-amarelado; região anterior da fronte amarela, ápice

castanho-escuro; faciália e parafaciália, gena, antenas e palpos amarelos; tórax com

quatro listras castanhas vistas a certa luz e angulação, com polinosidade cinzenta; ápice

dos fêmures médio e posterior escurecidos; calípteras e balancins amarelos; asas com

uma distinta mancha castanha entre as veias Sc e R

, no ápice da veia R

2+3

, e nas veias

tranversais rm e dm-cu.

Macho: 6,6-7,1 mm de comprimento; asas 6,4-7,0 mm de comprimento.

Cabeça: olhos separados na altura do ocelo por uma distância de 0,1 mm; 12 pares de

cerdas frontais, sendo o 2º par maior que os demais; cerdas frontais convergentes,

exceto pelos pares ciliformes, que são paralelos; cerdas ocelares grandes e paralelas;