( PDF ) Taxonomia dos Prosekiini com base em material da Amazônia brasileira (Isopoda, Oniscidea, "Philosciidae")

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UNIVERSIDADE FEDERAL DA PARAÍBA – UFPB

CENTRO DE CIÊNCIAS EXATAS E DA NATUREZA – CCEN

CURSO DE PÓS-GRADUAÇÃO EM CIÊNCIAS BIOLÓGICAS

ÁREA DE CONCENTRAÇÃO EM ZOOLOGIA

DANIELA CORREIA GRANGEIRO

Taxonomia dos Prosekiini com base em material da Amazônia

brasileira (Isopoda, Oniscidea, "Philosciidae")

JOÃO PESSOA, PARAÍBA

FEVEREIRO DE 2009

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DANIELA CORREIA GRANGEIRO

Taxonomia dos Prosekiini com base em material da Amazônia

brasileira (Isopoda, Oniscidea, "Philosciidae")

ORIENTADOR: Martin Lindsey Christoffersen

JOÃO PESSOA, PARAÍBA

FEVEREIRO DE 2009

Dissertação apresentada ao Programa

de Pós-Graduação em Ciências

Biológicas da Universidade Federal da

Paraíba (UFPB), como requisito

parcial para obtenção do título de

Mestre em Zoologia.

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Ficha catalográfica

Grangeiro, Daniela C.

Taxonomia dos Prosekiini com base em material da

Amazônia brasileira (Isopoda, Oniscidea, "Philosciidae")

/ Daniela Correia Grangeiro. – João Pessoa, 2009.

122 p.

Orientador: Martin Lindsey Christoffersen

Dissertação (Mestrado) – UFPB/CCEN

1. Zoologia. 2.Crustácea. 3. Taxonomia. 4. Região

Amazônica

UFPB/BC

Daniela Correia Grangeiro

Taxonomia dos Prosekiini com base em material da Amazônia

brasileira (Isopoda, Oniscidea, "Philosciidae")

Banca Examinadora

______________________________

Dr. Martin Lindsey Christoffersen (Orientador)

DSE/CCEN/UFPB

______________________________

Dra. Leila Aparecida Souza (Examinador externo)

LACAR/UECE

______________________________

Dr. Douglas Zeppelini Filho (Examinador interno)

UEPB

______________________________

Dr. Antonio José Creão Duarte (Suplente)

DSE/CCEN/UFPB

JOÃO PESSOA, PARAÍBA

FEVEREIRO DE 2009

Agradecimentos

Em especial, a Deus, por tudo de bom que Ele fez e faz sempre na minha vida e

na vida dos meus.

Aos meus pais, Joaquim Grangeiro e Cleide Correia, por tudo que me ensinaram,

pelo amor que nunca deixaram de me dedicar e por confiarem sempre na minha

capacidade.

Ao meu Orientador, Dr. Martin L. Christoffersen, pela confiança, paciência e

auxílio em todo o decorrer deste trabalho.

À Dra. Leila Aparecida Souza pelos ensinamentos, amizade e apoio à minha

formação que, por muitas vezes, excedeu o âmbito desta dissertação.

Aos meus segundos pais, Manoel Minervino e Rita Ferreira, por todas as vezes

que foram “meus pais” e por tudo que fizeram e fazem por mim.

Ao Programa de Pós-Graduação em Ciências Biológicas-Zoologia da UFPB pelo

apoio e incentivo a realização deste trabalho.

Ao Dr. Joachim Adis (in memoriam) pela coleta e empréstimo de todo o material

estudado.

À CAPES, pela bolsa de estudo.

Ao colega doutorando Kleber Vieira pela elaboração dos mapas e sugestões

durante as fases mais críticas.

Aos meus inesquecíveis amigos, Socorro Siqueira e Ailton Felipe, por todo o

carinho e apoio no início dessa jornada.

Aos professores da UFPB, Robson Tamar, Celso Martins, Ricardo Rosa,

Alexandre Pecerquilo, Adelmar Bandeira, por todo conhecimento adquirido por mim

em suas aulas.

Ao secretário e ao auxiliar da secretária, Saulo e Oscar, pelas dezenas de vezes

em que me ajudaram.

À Dra. Carmen Alonso pela atenção, preocupação, incentivo e amizade nos

momentos da conclusão.

À Professora Célia Maria de Souza Sampaio, Laboratório de Carcinicultura

(LACAR) da UECE, por permitir o uso de material óptico e espaço físico.

Aos amigos do Laboratório de Invertebrados Paulo Young (LIPY), Andressa

Cabral, Dimitri Araújo, Felipe Ferreira, por todos os momentos proveitosos dentro e

fora do LIPY.

Aos colegas do LIPY, André Souza, Anne Isabelley, Bruna, Lívia, Varinha,

Pablo Riul, Telma Dias, Samara, por entenderem as minhas ausências nas coletas e

triagens.

Aos amigos de todas as horas, Eriberto de Assis, Bruno Belline, Joafrâncio

Pereira e Alysson Kennedy pelas inúmeras ajudas e incentivos ao longo de todo o

trabalho.

As amigas, Ludmila Nascimento, Fabíolla Rodrigues e Ana Paloma Tavares,

pelo carinho, momentos divertidos, discussões, amizade, companheirismo e ajuda

durante o mestrado.

Aos amigos Everlânia Andrade, Valcemir Araújo, Rosimere Viot, Clebio Paula,

Daniella Souza, Maurício Maia, por estarem sempre prontos a me ajudar.

Aos meus irmãos de coração, Rafael de Souza Leal, Rodolfo de Souza Leal,

Ricardo de Souza Leal e Rachell de Souza Leal, por vibrarem a cada vitória minha.

Ao meu namorado, Amaral Floresta, por todo o bem que fez a minha vida, pelo

carinho, atenção e compreensão nos momentos finais.

A todos os amigos da pós-graduação que conviveram e/ou sofreram comigo

durante este período, em especial Roberta Ferreira e Leonardo Viera.

A todos os meus amigos da Igreja Presbiteriana dos Bancários, por entenderem

as minhas ausências e orarem sempre por mim.

A todos que de uma forma ou de outra contribuíram para a realização deste

trabalho.

RESUMO

O presente estudo trata da taxonomia de três gêneros da tribo Prosekiini

Leistikow, 2001. A tribo pertence à família “Philosciidae:” da Subordem Oniscidea,

Ordem Isopoda, Classe “Crustacea”. São apresentadas caracterizações para as espécies

novas, sendo 8 do gênero Androdeloscia Leistikow, 1999 e uma do gênero Xiphoniscus,

Vandel, 1968. É feito um novo registro para o gênero Xiphoniscus, antes encontrado

apenas na localidade tipo, Puyo, no Equador. Também é registrada a espécie,

Androdeloscia escalonai Schmidt & Leistikow, 2005, antes amostrada apenas na

Venezuela. Através de uma análise filogenética o gênero Alboscia Schultz, 1995, foi

incluído na tribo Prosekiini. Destaca-se a necessidade de um novo nome para a espécie

descrita por LEISTIKOW (1999) como sendo Androdeloscia silvatica (Lemos de Castro

& Souza, 1986). Duas chaves dicotômicas são fornecidas, uma para os gêneros de

Prosekiini e outra para as espécies de Prosekiini da América do Sul. A atual distribuição

de todas as espécies de Prosekiini é exibida em dois mapas de pontos. A análise do

material examinado proveniente da Amazônia brasileira contribuiu para aprimorar o

estado da arte dos Prosekiini no Brasil.

ABSTRACT

This study deals with the taxonomy of three genus of the tribe Prosekiini

Leistikow, 2001. The tribe belongs to the family “Philosciidae”, а Suborder of

Oniscidea, Order Isopoda, Class Crustacea. A characterization is presented for new

species, 8 of genus Androdeloscia Leistikow, 1999 and one of genus Xiphoniscus,

Vandel 1968. A new record is established for the genus Xiphoniscus, found only in type

locality, Puyo in Ecuador. The species Androdeloscia escalonai Schmidt & Leistikow,

2005, is being registered, only sampled before in Venezuela. In the phylogenetic

analysis of the genus Alboscia Schultz, 1995 was included. There is a need for a new

name for the species described by Leistikow (1999) as Androdeloscia silvatica (Lemos

de Castro & Souza, 1986). Two dicotomic keys are provided, one for the genera of

Prosekiini and another for the species of Prosekiini of South America. Current

distribution of species of Prosekiini is displayed in two maps. The analysis of the

material examined from the Brazilian Amazonia, contributed to improve the state of the

art of Prosekiini in Brazil.

LISTA DE FIGURAS

Pág.

Fig. 1 – Sistema condutor de água do tipo “Ligia” ........................................................... 2 2

Fig. 2 – Marsúpio do tipo “anfíbio” .................................................................................. 2

Fig. 3 – Marsúpio do tipo “terrestre” ................................................................................ 3

Fig. 4 – Espécie “rastejadora” de Androdeloscia sp. n. 7 ................................................. 4

Fig. 5 – Vista dorsal da cabeça de um Oniscidea (A) e lateral (B) ................................... 6

Fig. 6 – Vista dorsal de um Oniscidea .............................................................................. 6

Fig. 7 – Vista ventral de um Oniscidea ............................................................................. 7

Fig. 8 – Peças bucais de Androdeloscia sp. n. 7 ............................................................... 7

Fig. 9 – Antena de Androdeloscia sp. n. 1 ........................................................................ 8

Fig. 10 – Pereiópode I de Androdeloscia sp. n. 7 ............................................................. 9 2

Fig. 11 – Habitus de Xiphoniscus Vandel, 1968 ............................................................... 9

Fig. 12 – Placas coxais de Androdeloscia hamigera Leistikow, 1999 ........................... 10

Fig. 13 – Antênula de Androdeloscia sp n. 1 .................................................................. 15

Fig. 14 – Mapa de localização das áreas de coleta ......................................................... 18 2

Fig. 15 – Representação esquemática das medidas do corpo ......................................... 26

Fig. 16 – Representação esquemática das medidas dos noduli laterales ........................ 27

Fig. 17 – Androdeloscia sp. n. 1: ♂ holótipo – habitus dorsal; ♂ parátipo – antenas .... 43

Fig. 18 – Androdeloscia sp. n. 1: ♂ parátipo – peças bucais .......................................... 44 24

Fig. 19 – Androdeloscia sp. n. 1: ♂ parátipo – pleópodes; pereiópodes ........................ 45

Fig. 20 – Androdeloscia sp. n. 1: ♀ parátipo – exópodes dos pleópodes; pereiópodes .. 46

Fig. 21 – Androdeloscia sp. n. 2: ♂ holótipo – habitus dorsal; ♂ parátipo – antenas .... 50

Fig. 22 – Androdeloscia sp. n. 2: ♂ parátipo – peças bucais .......................................... 51

Fig. 23 – Androdeloscia sp. n. 2: ♂ parátipo – pleópodes; pereiópodes ........................ 52

Fig. 24 – Androdeloscia sp. n. 2: ♀ parátipo – exópodes dos pleópodes; pereiópodes .. 53

Fig. 25 – Androdeloscia sp. n. 3: ♂ holótipo – habitus dorsal; ♂ parátipo – antenas .... 57

Fig. 26 – Androdeloscia sp. n. 3: ♂ parátipo – peças bucais .......................................... 58

Fig. 27 – Androdeloscia sp. n. 3: ♂ parátipo – pleópodes; pereiópodes ........................ 59

Fig. 28 – Androdeloscia sp. n. 3: ♀ parátipo – exópodes dos pleópodes; pereiópodes .. 60

Fig. 29 – Androdeloscia sp. n. 4: ♂ holótipo – habitus dorsal; ♂ parátipo – antenas .... 64

Fig. 30 – Androdeloscia sp. n. 4: ♂ parátipo – peças bucais .......................................... 65

Fig. 31 – Androdeloscia sp. n. 4: ♂ parátipo – pleópodes; pereiópodes ........................ 66

Fig. 32 – Androdeloscia sp. n. 4: ♀ parátipo – exópodes dos pleópodes; pereiópodes .. 67

Fig. 33 – Androdeloscia sp. n. 5: ♂ holótipo – habitus dorsal; ♂ parátipo – antenas .... 71

Fig. 34 – Androdeloscia sp. n. 5: ♂ parátipo – peças bucais .......................................... 72

Fig. 35 – Androdeloscia sp. n. 5: ♂ parátipo – pleópodes; pereiópodes ........................ 73

Fig. 36 – Androdeloscia sp. n. 5: ♀ parátipo – exópodes dos pleópodes; pereiópodes .. 74

Fig. 37 – Androdeloscia sp. n. 6: ♂ holótipo – habitus dorsal; ♂ parátipo – antenas .... 79

Fig. 38 – Androdeloscia sp. n. 6: ♂ parátipo – peças bucais .......................................... 80

Fig. 39 – Androdeloscia sp. n. 6: ♂ parátipo – pleópodes; pereiópodes ........................ 81

Fig. 40 – Androdeloscia sp. n. 6: ♀ parátipo – exópodes dos pleópodes; pereiópodes .. 82

Fig. 41 – Androdeloscia sp. n. 7: ♂ holótipo – habitus dorsal; ♂ parátipo – antenas .... 85

Fig. 42 – Androdeloscia sp. n. 7: ♂ parátipo – peças bucais .......................................... 86

Fig. 43 – Androdeloscia sp. n. 7: ♂ parátipo – pleópodes; pereiópodes ........................ 87

Fig. 44 – Androdeloscia sp. n. 7: ♀ parátipo – exópodes dos pleópodes; pereiópodes .. 88

Fig. 45 – Androdeloscia sp. n. 8: ♂ holótipo – habitus dorsal; ♂ parátipo – antenas .... 93

Fig. 46 – Androdeloscia sp. n. 8: ♂ parátipo – peças bucais .......................................... 94

Fig. 47 – Androdeloscia sp. n. 8: ♂ parátipo – pleópodes; pereiópodes ........................ 95

Fig. 48 – Androdeloscia sp. n. 8: ♀ parátipo – exópodes dos pleópodes; pereiópodes .. 96

Fig. 49 – Xiphoniscus sp. n.: ♂ holótipo – habitus dorsal; ♂ parátipo – antenas ......... 100

Fig. 50 – Xiphoniscus sp. n.: ♂ parátipo – peças bucais ............................................... 101

Fig. 51 – Xiphoniscus sp. n.: ♂ parátipo – pleópodes; pereiópodes ............................. 102

Fig. 52 – Xiphoniscus sp. n.: ♀ parátipo – exópodes dos pleópodes; pereiópodes ...... 103

Fig. 53 – Cladograma da tribo Prosekiini ..................................................................... 105

Fig. 54 – Mapa de distribuição das espécies dos gêneros Alboscia, Prosekia,

Andenoniscus, Androdeloscia spp. n. na América do Sul ............................................ 108

Fig. 55 – Mapa de distribuição das espécies dos gêneros Androdeloscia, Erophiloscia,

Mataprosekia, Xiphoniscus na América do Sul ............................................................ 109

LISTA DE TABELAS

Pág.

Tabela I – Classificação dos oniscídeos ......................................................................... 11

Tabela II – Relação dos lotes examinados da coleção Max-Planck/INPA .................... 19

Tabela III – Classificação resumida da tribo Prosekiini ................................................. 29

Tabela IV – Relação dos lotes identificados da coleção de Oniscidea da Amazônia ..... 30

LISTA DE ABREVIATURAS

A1 – antena 1 ou antênula

A2 – antena 2 ou antena

col. – coletor(a)

cols. – coletores

e.g. – por exemplo

et al. – e outros autores

Exoplp – exópode do pleópode

F– flagelo

Figs. – Figuras

Mde – mandíbula esquerda

Mddr – mandíbula direita

Mx1 – maxila 1 ou maxílula

Mx2 – maxila 1 ou maxila

Mxp – maxilípede

Sp. n. – espécie nova

P– pedúnculo

PE– pereonito

Pe – pereópode

Plp – pleópode

sp. – espécie

spp. – espécies

LISTA DE SIGLAS

AM– Amazonas

CCEN – Centro de Ciências Exatas e da Natureza

DSE – Departamento de Sistemática e Ecologia

ICZN – Código Internacional de Nomenclatura Zoológica

LACAR – Laboratório de Carcinicultura

LIPY – Laboratório de Invertebrados Paulo Young

UECE– Universidade Estadual do Ceará

UEPB – Universidade Estadual da Paraíba

UFPB – Universidade Federal da Paraíba

SUMÁRIO

Pág.

Agradecimentos ............................................................................................................... vi v

Resumo .......................................................................................................................... viii vi

Abstract ............................................................................................................................ ix ix

Lista de Figuras ................................................................................................................. x xii

Lista de Tabelas .............................................................................................................. xii

Lista de Abreviaturas ..................................................................................................... xiii xv

Lista de Siglas ............................................................................................................... xiv

1 Introdução ...................................................................................................................... 1 9

1.1 Taxonomia e oniscídea ........................................................................................ 1 11

1.2 Morfologia externa do corpo ............................................................................... 5

2 Revisão de literatura .................................................................................................... 11 8

2.1 Posição Sistemática da tribo Prosekiini ............................................................. 11 11

3 Objetivos ...................................................................................................................... 16 9

4 Material e Métodos ...................................................................................................... 17 11

4.1 Áreas de procedência dos espécimes ................................................................. 17 11

4.2 Material examinado ........................................................................................... 19 16

4.3 Identificação dos espécimes ............................................................................. 25 13

4.4 Dissecções .......................................................................................................... 25 13

4.5 Ilustrações .......................................................................................................... 25 13

4.6 Medidas .............................................................................................................. 26 13

4.7 Inclusão e posicionamento do gênero Alboscia Schultz, 1995 em Prosekiini ... 27 13

4.8 Construções de chaves dicotômicas ................................................................... 28 13

4.9 Confecções de mapas de pontos da América do Sul ......................................... 28 13

5 Resultados .................................................................................................................... 29 14

5.1 Sistemática ......................................................................................................... 29 14

5.2 Relação dos lotes analisados e identificados determinação do sexo ................. 30

5.3 Caracterização de novas espécies ...................................................................... 40 14

5.4 Taxonomia de Androdeloscia silvatica (Lemos de Castro & Souza, 1986) ... 104 14

5.5 Novos registros ................................................................................................ 104 14

5.6 Inclusão e posicionamento do gênero Alboscia Schultz, 1995 em Prosekiini . 104 13

5.7 Chave dicotômica para os gêneros de Prosekiini ............................................ 106 14

5.8 Chave dicotômica para as espécies de Prosekiini da Amazônia brasileira ...... 106 14

5.9 Distribuição geográfica das espécies de Prosekiini na América do Sul (Mapas

de Pontos) ..................................................................................................................... 108 17

6 Discussão ................................................................................................................... 109 17

7 Conclusão ................................................................................................................... 114 17

Referências .................................................................................................................... 115 20

1 Introdução

1.1 Taxonomia e oniscídea

O conhecimento da biodiversidade está baseado, em um primeiro tempo, na

taxonomia essencialmente descritiva e entendida como a prática de reconhecer, nomear

e ordenar os táxons em uma classificação consistente com algum tipo de parentesco

entre os mesmos. O estudo sistemático mais teórico e de escopo mais abrangente trata

da transformação da forma através do espaço e do tempo, integrando a perspectiva

transformacional com a perspectiva predominantemente “táxica” da taxonomia (ver e.g.

CHRISTOFFERSEN, 1995). A sistemática está ligada em grande parte ao conhecimento

evolutivo e este faz parte do conhecimento descritivo. AMORIM (2003) diz “o

conhecimento descritivo é fundamental para qualquer inferência e é a única base de

dados para recuperar a informação histórica dos grupos. Não haveria cosmologia sem

uma boa descrição dos corpos celestes e de sua dinâmica”.

Oniscidea é a única subordem de Isopoda que inclui representantes terrestres.

SCHMALFUSS (2003) relatou que as espécies já conhecidas de isópodes terrestres chegam

a 3637. Atualmente a subordem é considerada monofilética com base nos trabalhos de

SCHMALFUSS (1974, 1989), WAGELE (1989), BRUSCA & WILSON (1991) e SCHMIDT

(2008). Hipóteses filogenéticas para grandes grupos de Oniscidea, baseadas em

morfologia, vêm sendo propostas por alguns autores (EHRARD, 1995, 1998; TABACARU

& DANIELOPOL, 1996; SCHMIDT, 2002, 2003, 2008). Análises cladísticas baseadas em

seqüências de DNA têm mostrado resultados parcialmente congruentes com os das

análises morfológicas (MICHAEL-SALZAT & BOUCHON, 2000; MATTERN & SCHLEGEL,

2001).

Para SCHMALFUSS (1974) O grupo-irmão de Oniscidea seria composto de todos

os outros Isopoda, exceto Microcerberidea + Aselota (proposta mais aceita) e as

autapomorfias seriam: 1) redução extrema da antênula; 2) simplificação da maxila; 3)

alteração das relações de tamanho das partes do maxilípede; 4) presença de um sistema

condutor de água complexo. Para BRUSCA & WILSON (1991) o grupo-irmão seria

Calabozoidea e as autapomorfias de Oniscídea seriam: 1) presença de extensões

cuticulares inervadas complexas (sensilla) nas antenas e urópodes e 2) antênulas

inseridas no mesmo plano das antenas e diretamente entre elas. Em SCHMIDT (2008)

existem duas hipóteses, uma de Oniscidea não ser um grupo monofilético e outra de ser.

Levando em consideração o conhecimento do monofiletismo do grupo e as inúmeras

sinapomorfias que o suportam, aqui serão comentadas apenas as hipóteses para a

monofilía. ...

Como exemplo de uma dessas autapomorfias, segue-se a explicação sobre o

sistema condutor de água: existem dois tipos de sistema condutor de água nos

Oniscidea, o do tipo “Ligia” e o do tipo “Porcellio”. No primeiro a água é absorvida por

capilaridade a partir do sexto e sétimo pereópodes em pequenas poças d‟água no chão.

Essa água é utilizada para respiração (nos pleópodes), e para beber. A água do sistema

condutor (Fig. 1) também penetra no marsúpio e através de corantes é possível observar

que não há corrente forte; a água dentro do marsúpio flui muito lentamente da parte de

trás para a frente. As espécies que têm o sistema condutor do tipo “Ligia” estão

confinadas a ambientes com disponibilidade de água. O marsúpio alimentado pela água

do sistema condutor é do tipo “anfíbio” (Fig. 2). A maioria dos oniscídeos não vive

perto da água, a umidade sendo obtida do ar, e a água ingerida com o alimento é

suficiente para a sua sobrevivência. Essas espécies possuem o sistema condutor de água

do tipo “Porcellio”. Este tipo é separado morfologicamente do marsúpio, e a água para o

marsúpio, assim como o oxigênio e as substâncias orgânicas necessárias para o

desenvolvimento dos ovos, são fornecidos por secreção dos cotilédones (oostegitos) que

penetram no marsúpio, do tipo “terrestre” (Fig. 3).

Figura 1 – Sistema condutor de água o do tipo “Ligia”.

Fonte: Hoese (1984).

Esses isópodes adotam uma estratégia de imobilizar e armazenar os metais

pesados, mais do que prevenir a absorção ou aumentar a eficiência da excreção, eles

agem como bioacumuladores de metais pesados. De acordo com RAESSLER, et al.

(2004) os oniscídeos podem acumular níveis altos de metais pesados, como zinco (Zn),

chumbo (Pb), cádmio (Cd) e especialmente cobre (Cu), que são armazenados em

vesículas como os lisossomos. Durante o processo de muda, os tatuzinhos eliminam

parte dos metais pesados, retornando ao ambiente tanto os metais benéficos aos

organismos, como cobre (Cu) e zinco (Zn), como os tóxicos para o ambiente, como o

cádmio (Cd) e o chumbo (Pb).

Os Oniscidea são predados por inúmeros invertebrados e vertebrados. Esse

acúmulo de materiais tóxicos pode ter ramificações perigosas para os níveis tróficos

mais altos da cadeia alimentar. Eles realizam um papel ecológico de fundamental

importância ao se alimentarem de matéria orgânica, pois aceleram o processo de

Figura 2 – Marsúpio do tipo “anfíbio”.

Fonte: Hoese & Janssen (1989).

Figura 3 – Marsúpio do tipo “terrestre”.

Fonte: Hoese & Janssen (1989).

decomposição, o que ajuda no retorno dos nutrientes ao solo. Quando ocorrem altos

níveis de poluição eles respondem rapidamente à contaminação e ao impacto ambiental

com aumento da mortalidade, perda de biomassa, diminuição do número de espécies e

podem ainda ser utilizados como bioindicadores (HOPKIN, 1991).

No Brasil, os Oniscidea, são conhecidos como “baratinhas de praia”, quando

ocorrem no costão rochoso (gênero Ligia Fabricius, 1798); são chamados também de

“baratinhas” principalmente os que ocorrem nas florestas úmidas; também são

chamados de “tatuzinhos”, em especial aquelas espécies que enrolam o corpo como os

tatus; finalmente as espécies sinantrópicas que vivem em estreita proximidade com o

homem, são conhecidas como “tatuzinhos de jardim”. Estão distribuídos em todos os

continentes e ocorrem em habitats variados como: as bainhas de folhas de bromélias,

sob cascas de árvores e, comumente, debaixo de madeiras, folhas caídas e em buracos

no chão. Também vivem nos nossos quintais, jardins, vasos de plantas, mesmo os

dentro da nossa casa, e simbionticamente em ninhos de formigas e cupins. Habitam

também as regiões litorâneas, as florestas e os meios endógeo e hipógeo.

SCHMALFUSS (1984) propôs categorias eco-morfológicas para as espécies de

Oniscidea. São elas: 1- “Corredoras”, as que vivem sobre o solo, têm o corpo estreito e

pereópodes longos, adaptados para correr, como as espécies de Philosciidae (família

tratada nesse trabalho) e Trichoniscinae; 2- “Volvacionais”, as que têm um corpo

convexo, com mecanismos de encaixe de suas partes que possibilitam o enrolamento do

mesmo, tornando-as camufladas no meio em que vivem como nas espécies de

Armadillidae, Armadillidiidae e Eubelidae; 3- "Rastejadoras", que são normalmente

Figura 4 – Espécie “rastejadora” de Androdeloscia sp. n. 1.

muito pequenas, possuem uma cutícula revestida por cerdas escamosas, que impedem a

aderência de partículas, vivem em substrato inconsolidado, como por exemplo, espécies

de Trichoniscidae, Philosciidae (Fig. 4), Platyarthridae e Oniscidae; 4- “Aderentes”, que

são achatadas e com os tergitos largos e pereópodes curtos, agarram-se ao substrato para

proteger-se de predadores, assim como nas espécies de Trachelipus, Nagarus e

Porcellio; 5- "Espinhosas", que possuem grandes espinhos para defesa, como por

exemplo, espécies de Eubelidae e Armadillidae; e 6- "Não-conformistas", as que não se

encaixam nas categorias anteriores, sendo algumas delas classificadas como cavadoras,

por exemplo, espécies de Leptotrichus e Hemilepistus. Incluem-se ainda nesta categoria

os comensais de ninhos de formigas, por exemplo, espécies de Platyarthrus, e de

cupins, por ex. Schoeblia.

A subordem Oniscidea está composta por duas infraordens, Diplocheta e

Holoverticata. A seção Synocheta está composta por 5 famílias e a seção Crinocheta

abrange a grande maioria das famílias de Oniscidea, 26, de um total de 34, incluindo

“Philosciidae” (aspas como convenção para o não-monofiletismo) (ERHARD, 1998;

HOLDICH et al. 1984; LEISTIKOW, 2001; SCHMIDT, 2002, 2003; SCHMALFUSS, 2003 e

SCHOTTE, et al. 1995).

Os oniscídeos são muito diversos na fauna da América do Sul, principalmente

os incluídos na família “Philosciidae” (LEISTIKOW, 2001). Segundo SCHMIDT &

LEISTIKOW (2005), existem cerca de 450 espécies agrupadas nessa família, geralmente

caracterizada pelos seguintes caracteres: 1) o pleon mais estreito que o pereon; 2)

antenas com três artículos; 3) superfície dorsal lisa; 4) pernas e antenas longas e 5)

corpo delgado. Dos quase 100 gêneros pertencentes à família somente seis estão

incluídos dentro do grupo Prosekia, ou seja, o táxon Prosekiini. Segundo LEISTIKOW

(2001), este agrupamento é monofilético.

1.2 Morfologia externa do corpo

Para uma melhor utilização das chaves de identificação e compreensão das

descrições das espécies fornecidas nesse trabalho, serão apresentadas algumas

características importantes relacionadas à morfologia corpórea dos Oniscidea.

O corpo (habitus) dos Oniscidea (Figs. 5 e 6) está dividido em três partes:

cefalotórax (cabeça), pereon (tórax) e pleon (abdome). A cabeça pode estar ou não

encaixada no primeiro segmento torácico. Os olhos são sésseis e estão localizados

lateralmente podendo variar de 1 a centenas (como nas “lígias”). Existem algumas

espécies (por ex. cavernícolas, endógeas, termitófilas) que são anoftalmas. O vértex é a

parte dorsal do cefalotórax e a sua forma é arqueada na maioria dos táxons de

Crinocheta. No cefalotórax podem ou não estar presentes as linhas frontal e supra-

antenal (Fig. 7).

Figura 5- Exemplo de morfologia corpórea de Oniscidea (vista dorsal). (H) cabeça, (PeI-VII)

pereonitos, (Plp1-5) pleópodes, (P1-5) segmentos do pedúnculo, (F1-2) flagelo, (Pe1-7)

pereópodes.

Modificado de Hopkin, 1991.

Endópode do

Urópode

Exópode do

Urópode

Télson

Flagelos

antenais

Olho

composto

Placa coxal

Pe I

Pe II

Pe III

Pe IV

Pe V

Pe VI

Pe VII

Pereon

Pleon

Plp1

Plp2

Plp3

Plp5

Plp4

As peças bucais (Fig.8 A-D) estão localizadas ventralmente na cabeça. Elas

sempre ocorrem aos pares (direita/esquerda) e constituem as mandíbulas (assimétricas),

segundas maxilas ou maxílulas, primeiras maxilas e maxilípedes.

Figura 6 - Vista ventral de um Oniscidea. (A) endópodes do macho; endópodes da

fêmea (B).

Modificado de Hopkin, 1991.

Figura 7 - Cabeça de um Oniscidea. (A) Vista frontal; lateral (B).

Modificado de Vandel, 1943.

Linha frontal

Linha supra-antenal

Local de inserção

da antena

Local de inserção

da antênula

Omatídeos

Endópode do pleópode I

Figura 9 - Antena de Androdeloscia sp. n. 1.

O primeiro par de apêndices são as antênulas ou antenas 1 (ver Fig. 13), que

são minúsculas, passando despercebidas a olho nu e muito menores que as antenas 2 ou

simplesmente antenas (Fig. 9). Ambas são formadas por uma parte denominada

pedúnculo e outra flagelo. As antênulas possuem três segmentos diminutos, devido à

regressão pela mudança de habitat (aquático para terrestre) (VANDEL, 1943). As antenas

possuem cinco segmentos fixos no pedúnculo. Entretanto, o número de flagelos pode

variar de apenas alguns a inúmeros. Esses últimos são utilizados na taxonomia.

Aumento do

tufo apical

0,1mm

0,2mm

Pedúnculo

antenal

Flagelo

antenal

Figura. 8 - Peças bucais de Androdeloscia sp. n. 7. (A) maxilípede (Mxp); (B) maxílula

(Mx1); (C) endito da maxílula; (D) maxila (Mx2).

Modificado de Souza (in prep.).

0,05m

0.05mm

0,05m

0,05mm

O pleon (Fig. 6) é formado por cinco segmentos, os pleonitos. Na parte ventral

encontram-se os pleópodes, que são birremes (endópodes e exópodes), reduzidos e têm

função respiratória (nesse caso chamados de pulmões pleopodais). O número de

exópodes dos pleópodes, adaptados à respiração, varia de acordo com a família. O

télson (Fig. 6), porção mais posterior do corpo, pode apresentar formas variadas que

também são usadas para a identificação das espécies. Localizados lateralmente ao télson

estão os urópodes: endópode do urópode (parte interna) e exópode do urópode (parte

externa), ambos com a base no pedúnculo (ver Fig. 6).

O tegumento de um Oniscidea pode ser liso com poucas ou muitas cerdas, às

vezes sem ornamentações, e com pigmentação ou despigmentados. O pereon é dividido

em sete segmentos (pereionitos) e na parte ventral encontram-se sete pares de

pereópodes que são utilizados para a locomoção. Cada pereiópode possui seis artículos:

baso, ísquio, mero, carpo, própodo e dáctilo (Fig. 10).

A extremidade lateral de cada segmento torácico é chamada de epímero ou

placa coxal. E em alguns gêneros estas podem servir para diferenciar as espécies. Por

exemplo, dentro de Prosekiini existe um gênero, Xiphoniscus Vandel, 1968 que possui a

segunda placa coxal caudalmente alongada (Fig. 11).

Figura 10 - Pereiópode I de Androdeloscia sp. n. 7.

Modificado de Souza (in prep.).

Baso

Ísquio

Mero

Carpo

Própodo

Dáctilo

0,1mm

Algumas espécies apresentam nodulus laterali que é uma seta sensorial

diferenciada que ocorre normalmente em número de um par por pereonito (Fig. 12). A

posição relativa dos noduli laterales é frequentemente usada como característica

diagnóstica para distinção das espécies (ver e.g. SCHMIDT, 2002). Elas podem ser longas

ou curtas; uma placa coxal pode apresentar mais de um nodulus em cada lado; podem se

localizar em posições diferentes ou numa mesma posição em cada segmento, como

acontece em Metaprosekia nodilinearis Leistikow, 2000.

Figura 12 - Placas coxais de Androdeloscia hamigera Leistikow, 1999.

Modificado de Leistikow, 1999.

Figura 11 - Habitus de Xiphoniscus Vandel, 1968.

Modificado de Leistikow, 2000.

L. A. Souza (in prep.)

0.5mm

2 Contexto Histórico dos “Philosciidae”

A classificação resumida da subordem Oniscidea (Tabelas I e III), está baseada

em ERHARD (1998), HOLDICH et al., (1984), SCHMIDT (2002, 2003), SCHMALFUSS

(2003) e na lista mundial de isópodes terrestres disponível no website

http://invertebrates.si.edu/isopod/ do National Museum of Natural History, Smithsonian

Institution.

2.1 Posição sistemática da tribo

Tabela I- Classificação dos oniscídeos.

Ordem Isopoda Latreille, 1817

Subordem ONISCIDEA Latreille, 1829

Infraordem Diplocheta Vandel, 1957

Família Ligiidae Brandt & Ratzeburg, 1831

Infraordem Holoverticata Erhard, 1998

Super-seção Tylida Erhard, 1998

Família Tylidae H. Milne Edwards, 1840

Super-seção Orthogonopoda Tabacuru & Danielopol, 1996

Superfamília Microcheta Schmalfuss, 1989

Família Mesoniscidae Verhoeff, 1908

Superfamília Euoniscoida Vandel, 1943

Seção Synocheta Legrand, 1946

Seção Crinocheta Legrand, 1946

Família “Philosciidae” Kinahan, 1857

Tribo Prosekiini Leistikow, 2001

No começo do século XX, o gênero Philoscia Latreille, 1804 reunia as espécies

que tinham pelo menos o pleon estreito em comum. BUDDE-LUND (1893) e DOLFFUS

(1890, 1893) adicionaram mais espécies da Venezuela e do Chile a Philoscia. DANA

Fig. 19- Vista dorsal da cabeça de um Oniscidea (A) e lateral (B).

Modificado de Vandel, 1943.

(1853) descreveu algumas espécies do Chile, como fez NICOLET (1849). MIERS (1877)

descreveu Philougria nitida da Nicarágua, sendo esta a primeira espécie do táxon agora

conhecido como Ischioscia Verhoeff, 1928. Foi mérito de VERHOEFF (1938, 1939,

1941) estabelecer os primeiros gêneros novos de “Philosciidae” para a fauna

neotropical. VERHOEFF (1908a, b) contribuiu para a sistemática no nível supra-

específico do grupo, mas enfocou principalmente representantes europeus de Philoscia.

BUDDE-LUND (1904, 1908) fez algumas tentativas para incluir esse gênero dentro de

grupos mais naturais, o que levou ao estabelecimento de diferentes subgêneros,

elevados subsequentemente a um nível genérico, por exemplo, Aphiloscia Budde-Lund,

1908, e Benthana Budde-Lund, 1908. VAN NAME (1936) adotou a divisão em

subgêneros para Philoscia, mas apesar de reconhecer as diferenças entre esses táxons,

hesitou em elevá-los à categoria de gênero. Novas espécies foram descritas como

pertencentes a Philoscia. Os trabalhos de VANDEL sobre a fauna da Venezuela

(VANDEL, 1952), Equador (VANDEL, 1968) e Colômbia (VANDEL, 1972) aumentaram o

conhecimento sobre os Philosciidae da América do Sul. Entretanto, alguns gêneros são

descritos superficialmente.

Muitas das informações sobre a fauna de Isopoda da América do Sul foram

fornecidas por LEMOS DE CASTRO (1958a) numa revisão de algumas espécies de

“Philosciidae”. Este autor também estabeleceu um novo gênero, Benthanoscia Lemos

de Castro (1958c), reconheceu o parentesco entre os gêneros Benthana Budde-Lund,

1908 e Benthanoscia (LEMOS DE CASTRO 1958b e 1958c, respectivamente), descrevem

e redescrevem espécies (LEMOS DE CASTRO 1958b, 1976, 1985). Os últimos gêneros

adicionados à fauna neotropical de “Philosciidae” foram Pulmoniscus Leistikow 2001,

da Venezuela, e Yaerikima Leistikow 2001, da Guiana (SCHMALFUSS, 2003). Algumas

espécies de Prosekia Vandel, 1968 foram descritas por LEMOS DE CASTRO (1984),

LEMOS DE CASTRO & SOUZA (1986) e LIMA (1996), enquanto ARAÚJO & BUCKUP

(1994) descreveram novas espécies de Benthana Budde-Lund, 1908. Para as espécies

dos gêneros citados, VANDEL (1943), criou o termo “Oniscidae inférieurs”, que coincide

com a subfamília Philosciinae de Oniscidae estabelecida por ele próprio em uma década

mais tarde (VANDEL, 1952). E ao invés de explicar o termo “Philosciinae”, ele

simplesmente menciona o termo em umas de suas chaves taxonômicas para subfamílias

com os seguintes caracteres: flagelo antenal tri-articulado, papila genital não bifurcada

no ápice, pleurepímeros pequenos ou médios e pleon mais estreito que o pereon. Em um

trabalho sobre Oniscidea da França, VANDEL (1962), estabeleceu uma pequena

definição de Philosciinae. A subfamília Philosciinae foi estabelecida primeiramente por

MACCAGNO (1933), para substituir Halophilosciinae. Esta foi a primeira vez que o

termo “Philosciinae” foi usado.

A evolução dos Philosciinae é interpretada por LEISTIKOW (2001) como uma

regressão, de muitos caracteres, como a linha frontal e os lobos laterais do cefalotórax,

redução dos penicílios molares da mandíbula, das cerdas dos pereiópodes ou a redução

das pleurepímeros dos pereiópodes 3-5. Este autor ignorou que essas reduções

pudessem ser encontradas também em outras famílias. VANDEL (1968), separou os

gêneros Ischioscia Verhoeff, 1928, Proischioscia Vandel, 1968 e Oreades Vandel, 1968

em um “groupe ischioscien”, devido à forma do cefalotórax e composição dos olhos.

Todas as outras formas foram agrupadas dentro de um “groupe philoscien proprement

dit” quando o mesmo foi considerado homogêneo, mas reconheceu que mais pesquisas

seriam necessárias. Os seguintes grupos foram estabelecidos por VANDEL (1973a): 1.

“groupe rennelloscien”, com noduli laterales excêntricos nas placas coxais II, IV e VII;

2. “groupe plymophiloscien”, para os representantes que não possuem nenhum caráter

particular; 3. “groupe chaetophiloscien”, com uma posição excêntrica dos noduli

laterales na placa coxal IV (herdado de seus ancestrais, os Oniscidae); 4. “groupe

paraphiloscien”, com corpo estreito e alongado, noduli laterales próximos à margem

lateral, redução de dentes da maxílula para 3+2; 5. “groupe eurygastorien”, considerado

como intermediário entre os Oniscidae e Philosciidae (tipo de Philoscia com cefalotórax

e apêndices bucais e neopleuros proeminentes). Do ponto de vista de VANDEL (1973a),

o grupo mais primitivo foi o “groupe eurygastorien”, da Austrália. Onde, ele admitiu

que a família se originou. Essa hipótese jamais foi contestada por outros autores.

Entretanto, o monofiletismo de “Philosciidae” foi questionado por WÄGELE (1989).

Uma nova definição para a subfamília, dada por VANDEL (1973a), compreende

os seguintes caracteres: cefalotórax com linha supra-antenal, linha frontal somente em

espécies primitivas, pleon mais estreito que o pereon, pleurepímeros proeminentes

presentes nas espécies primitivas, flagelo antenal tri-articulado, endito do maxilípede

com penicílios nas formas primitivas e papila genital simples.

Os Philosciinae foram elevados a família devido à abundância e variações

deles nos habitats tropicais e subtropicais e com a definição de que os mesmos tiveram

uma evolução regressiva e ininterrupta VANDEL (1973b). TAITI & FERRARA (1980),

estabeleceram um conjunto de critérios que pareciam apropriados para reorganizar os

gêneros, como a posição dos noduli laterales, a presença de linhas cefálicas ou a

estrutura das partes bucais.Estes caracteres são importantes para as investigações

taxonômicas e explicação da filogenia. Em outras palavras, a família “Philosciidae” é

um grupo parafilético de gêneros, com habitus plesiomórfico (WÄGELE, 1989), que tem

sido revisada por alguns autores para esclarecer os parentescos atuais. SCHMALFUSS

(1990), discutiu uma relação próxima entre Philoscia Latreille, 1804 e Oniscus Linné,

1758 com base nos caracteres dos pulmões. Mas recentemente FERRARA et al. (1994),

demonstraram que a evolução da estrutura dos pulmões pode ser encontrada em outros

membros de “Philosciidae”. No entanto, esses caracteres não podem ser usados como

critério exclusivo em taxonomia. Há muitos caracteres que contêm informações

plausíveis para a filogenia, como a estrutura dos pereiópodes, a papila genital e a

antena, que não foram investigadas em estudos anteriores (LEISTIKOW, 2001). Como

outras famílias de Crinocheta, a maioria dos filociídeos provavelmente teve origem no

antigo continente Gondwânico (VANDEL, 1946). Eles são distribuídos amplamente na

Austrália, Sul da Ásia e África. A fauna de Crinocheta com “philosciid facies” da

América do Sul é especialmente rica. Cerca de cento e vinte e nove espécies dentro de

quarenta e dois gêneros foram descritas até 1997 (LEISTIKOW & WÄGELE, 1999).

Algumas contribuições e revisões sobre os mesmos foram feitas por LEISTIKOW (1998,

1999a, 1999b, 2000a, 2000b, 2001a, 2001b e 2001c) e SCHMALFUSS (2003).

LEISTIKOW (2001b), realizou uma análise filogenética para os “Philosciidae” e

concluiu que a família e o gênero Philoscia são parafiléticos. Também concluiu que a

diversidade estimada para o grupo é muito maior que a conhecida e que estudos

posteriores da América do Sul, bacia do Amazonas e Andes e poderão revelar um

número maior de espécies. Nesse mesmo trabalho o autor instituiu, dentre outros, o

grupo Prosekia, ou seja, o táxon Prosekiini que inclui os gêneros Andenoniscus

Verhoeff, 1941, Xiphoniscus Vandel, 1968, Erophiloscia Vandel, 1972, Androdeloscia

Leistikow, 1999, Prosekia Leistikow, 2000 e Metaprosekia Leistikow, 2000.

O monofilétismo deste táxon é apoiado pelas seguintes autapomorfias: antênula

com um tufo de estetascos apical e outro subapical, os grupos de estetascos são

separados por um grande espaço; e pela presença de uma lamela hialina no ápice do

pleópode 1 do macho. No entanto, SCHMIDT & LEISTIKOW (2005) trazem como única

autapomorfia a forma característica da antênula (Fig. 13), pois a lamela hialina não é

encontrada em todos os representantes do grupo.

Figura. 13 - Antênula de Androdeloscia sp. n. 1.

Estetascos

apicalis

Estetascos

subapicalis

0,1mm

3 Objetivos

3.1 Geral

Contribuir para o conhecimento da taxonomia e diversidade dos Prosekiini da

Amazônia brasileira.

3.2 Específicos

 Identificar e caracterizar as espécies de Prosekiini da coleção Max Planck/INPA;

 Resolver problemas taxonômicos de Androdeloscia silvatica (Lemos de Castro

& Souza, 1986);

 Ampliar a distribuição geográfica das espécies para a Amazônia;

 Incluir e posicionar o gênero Alboscia Schultz, 1995 na hipótese filogenética de

LEISTIKOW (2001) para os Prosekiini;

 Elaborar chaves para as espécies de Prosekiini da Amazônia brasileira e para os

gêneros de Prosekiini;

 Confeccionar mapas de pontos da América do Sul com plotagens para as

espécies de Prosekiini.

4 Material e Métodos

4.1 Áreas de Procedência dos Espécimes

- Reserva Florestal Adolpho Ducke

A Reserva Florestal Adolpho Ducke (RFAD) abrange uma área de 10 x 10km

(10.000ha), pertence ao Instituo Nacional de Pesquisas da Amazônia (INPA) e está

localizada entre 2°55‟ e 03°01‟ (latitude S) e entre 59°53‟ e 59°59‟ (longitude W), na

periferia de Manaus, AM (DRUCKER, 2005).

- Rio Tarumã Mirim e Lago Januari

Localiza-se no baixo curso do igarapé Tarumã-Mirim, um afluente da margem

esquerda do rio Negro (03º02‟S, 60º17‟W) a cerca de 20km a nordeste de Manaus,

Amazonas (FERREIRA & ALMEIDA, 2005). A vegetação é caracterizada como floresta

tropical de terra-firme, com estrutura e composição florística bastante diversificada e

definida pelo tipo de solo e relevo de platô, vertente, campinarana e baixio (NODA et al.

2007). O clima é quente e a temperatura media anual é de 27°C. A umidade relativa do

ar tem média anual em torno de 80%. A precipitação média anual é de

aproximadamente 2.300mm. O período chuvoso vai de novembro a junho e o período

seco vai julho a outubro (PROAMBIENTE, 2002). O Lago Januari situa-se numa península

entre os rios Negro e Solimões, cerca de 10km de Manaus, transversalmente aos rios,

com as mesmas coordenadas.

- Ilha da Marchataria

A ilha localiza-se 15km a montante da confluência entre o rio Negro e Solimões,

sendo formada por depósitos arenosos que se acumulam na proximidade daquela

confluência e se organizam em forma de restingas. Durante o período de vazante, estes

depósitos são expostos e colonizados por vegetação pioneira (LEITE et al. 1996).

Figura 14 - Mapa de localização das três áreas de coleta. (RFAD) Reserva A. Ducke, rio Tarumã Mirim, Lago Januari e Ilha da Marchantaria.

4.2 Material examinado

O material de estudo foi coletado em quatro ambientes diferentes da bacia

Amazônica pelo Dr. Joachim Adis, na década de 80. Foram usados foto-eclector de

árvore para cima e para baixo, assim como extrações de solo de 0-7cm. A maioria do

material foi conservado em ácido pícrico. O material pertence à coleção amazônica do

Max- Planck/INPA. A tabela II contém a relação dos lotes do material.

Tabela II- Relação dos lotes da coleção de Oniscidea do Max-Planck/INPA.

N °

Lote

Localidade

Data

Coleta

Coletor

N°

Espécimes

001

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

16.05.88

Adis et al.

colls.

002

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

16.05.88

Adis et al.

colls.

003

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

16.05.88

Adis et al.

colls.

004

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

16.05.88

Adis et al.

colls.

005

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

16.05.88

Adis et al.

colls.

110

006

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

31.05.88

Adis et al.

colls.

007

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

12.04.88

Adis et al.

colls.

008

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

31.05.88

Adis et al.

colls.

009

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

16.05.88

Adis et al.

colls.

010

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

31.05.88

Adis et al.

colls.

011

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

31.05.88

Adis et al.

colls.

012

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

31.05.88

Adis et al.

colls.

013

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

28.03.83

Adis et al.

colls.

014

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

08.12.82

Adis et al.

colls.

015

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

16.05.88

Adis et al.

colls.

016

Brasil/AM – Rio Solimões -

Ilha da Marchantaria 3º15‟S,

59º58‟W(Várzea)

29.04.88

Adis J.

017

Brasil/AM – Rio Solimões -

Ilha da Marchantaria 3º15‟S,

59º58‟W(Várzea)

03.05.82

Adis et al.

colls.

018

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

30.06.88

Adis et al.

colls.

019

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

12.07.88

Adis et al.

colls.

020

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

16.05.88

Adis et al.

colls.

021

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

31.05.88

Adis et al.

colls.

022

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

31.05.88

Adis et al.

colls.

023

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

15.06.88

Adis et al.

colls.

024

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

29.04.88

Adis et al.

colls.

025

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

12.02.83

Adis et al.

colls.

026

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

08.12.82

Adis et al.

colls.

027

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

10.05.83

Adis et al.

colls.

028

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

12.02.83

Adis et al.

colls.

029

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

10.11.83

Adis et al.

colls.

030

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

08.09.82

Adis et al.

colls.

031

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

09.08.83

Adis et al.

colls.

032

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

13.10.82

Adis et al.

colls.

033

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

10.11.82

Adis et al.

colls.

034

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

10.05.83

Adis et al.

colls.

035

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

13.03.83

Adis et al.

colls.

036

Terra firme Reserva Florestal

A. Ducke 2º55‟S, 59º59‟W

08.09.82

Adis et al.

colls.

037

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

12.01.83

Adis et al.

colls.

038

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

12.01.83

Adis et al.

colls.

039

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

12.01.83

Adis et al.

colls.

040

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

06.09.83

Adis et al.

colls.

041

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

06.09.83

Adis et al.

colls.

042

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

12.02.83

Adis et al.

colls.

043

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

01.03.98

S. Golovatch

leg.

044

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

01.03.98

S. Golovatch

leg.

045

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

01.03.98

S. Golovatch

leg.

046

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

01.03.98

S. Golovatch

leg.

047

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

14.03.98

S. Golovatch

leg.

048

Brasil /AM – Rio Solimões -

Ilha da Marchantaria 3º15‟S,

59º58‟W(Várzea)

03.05.82

J. Adis leg.

049

Brasil /AM – Rio Solimões -

Ilha da Marchantaria 3º15‟S,

59º58‟W(Várzea)

03.03.82

J. Adis leg.

050

Brasil /AM – Rio Solimões -

Ilha da Marchantaria 3º15‟S,

59º58‟W(Várzea)

17.02.81

J. Adis leg.

051

Brasil /AM – Rio Solimões -

Ilha da Marchantaria 3º15‟S,

59º58‟W(Várzea)

26.02.81

J. Adis leg.

052

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

28.03.83

Adis et al.

colls.

053

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

23.11.82

Adis et al.

colls.

054

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

01.02.82

Adis et al.

colls.

055

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

30.12.81

Adis et al.

colls.

056

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

11.12.82

Adis et al.

colls.

057

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

11.03.82

Adis et al.

colls.

058

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

01.02.82

Adis et al.

colls.

059

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

30.12.81

Adis et al.

colls.

060

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

17.02.82

Adis et al.

colls.

061

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

06.04.82

Adis et al.

colls.

062

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

06.04.82

Adis et al.

colls.

063

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

21.01.82

Adis et al.

colls.

064

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

12.02.82

Adis et al.

colls.

065

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

17.02.82

Adis et al.

colls.

066

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

21.01.82

Adis et al.

colls.

067

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

01.02.82

Adis et al.

colls.

068

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

29.12.82

Adis et al.

colls.

60º17‟W: Floresta Secundária

069

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

09.08.83

Adis et al.

colls.

070

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

23.11.82

Adis et al.

colls.

071

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

30.01.83

Adis et al.

colls.

072

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

06.09.83

Adis et al.

colls.

073

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

28.03.83

Adis et al.

colls.

074

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

27.06.83

Adis et al.

colls.

075

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

28.02.83

Adis et al.

colls.

076

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

24.08.83

Adis et al.

colls.

077

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

28.03.83

Adis et al.

colls.

078

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

24.08.83

Adis et al.

colls.

079

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

27.06.83

Adis et al.

colls.

080

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

16.05.88

Adis et al.

colls.

081

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

30.01.83

Adis et al.

colls.

082

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

26.10.82

Adis et al.

colls.

083

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

27.06.83

Adis et al.

colls.

084

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

30.01.83

Adis et al.

colls.

085

Brasil/AM – Capoeira do rio

Adis et al.

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

30.01.83

colls.

086

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

26.10.82

Adis et al.

colls.

087

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

26.05.83

Adis et al.

colls.

088

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

25.08.82

Adis et al.

colls.

089

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

30.01.83

Adis et al.

colls.

090

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

27.06.83

Adis et al.

colls.

091

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

28.02.83

Adis et al.

colls.

092

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

10.11.82

Adis et al.

colls.

093

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta Secundária

12.02.83

Adis et al.

colls.

094

Brasil/AM – Rio Solimões -

Ilha da Marchantaria 3º15‟S,

59º58‟W(Várzea)

17.02.81

Adis et al.

colls.

095

Brasil/AM – Rio Solimões -

Ilha da Marchantaria 3º15‟S,

59º58‟W(Várzea)

26.02.81

Adis et al.

colls.

096

Brasil/AM – Rio Solimões -

Ilha da Marchantaria 3º15‟S,

59º58‟W(Várzea)

03.03.82

Adis et al.

colls.

4.3 Identificação dos espécimes

A identificação dos espécimes foi baseada nos trabalhos de LEISTIKOW (1998,

1999a, 1999b, 2000a, 2000b, 2001a, 2001b, 2001c) e SCHMIDT & LEISTIKOW (2005) e

através de comparação com as ilustrações disponíveis nos trabalhos de LEMOS DE

CASTRO (1984), LEMOS DE CASTRO & SOUZA (1986), LIMA (1996) e LEISTIKOW (1998,

1999a, 1999b, 2000a, 2000b, 2001a, 2001b). Para reconhecer as autapomorfias das

espécies novas foram analisados como os caracteres ocorrem em Erophiloscia Vandel,

1972, que é o grupo irmão de Androdeloscia Leistikow, 1999. A fim de entender os

caracteres das espécies de Androdeloscia, foi feita uma “matriz de caracteres”, que

serviu de base para todas as análises.

4.4 Dissecções

Foi utilizado um microscópio estereoscópico (ZEISS 47 52 00 – 9901) para

dissecção e montagem dos fragmentos estruturais de cada espécime que foram

confeccionados em lâminas permanentes. Para conservação das mesmas foi utilizada

solução de Hoyer. A composição e concentração utilizada foram: 50ml de água

destilada, 30g de goma arábica, 200g de hidrato de cloral e 20g de glicerina. As peças

montadas e estudadas foram: antenas, antênulas, peças bucais (maxilípedes, maxilas,

maxílulas e mandíbulas), pereonitos I-VII, pereiópodes I-VII, pleópodes I-V, télson e

urópodes dos exemplares machos; das fêmeas só algumas peças foram dissecadas e

montadas a fim de comparação com as peças correspondentes dos machos para detecção

de dimorfismos sexuais.

4.5 Ilustrações

Os desenhos das peças corporais foram feitos com auxílio de uma câmara

clara acoplada ao microscópio óptico (OLYMPUS BX 41) com ocular micrométrica. Os

habitus foram ilustrados com o microscópio estereoscópico (OLYMPUS SZ 40), com

câmara clara acoplada. Os desenhos foram refeitos em papel vegetal com canetas

nanquim e depois escaneados. Em duas espécies a maior parte dos desenhos foram

editados no programa computacional CorelDRAW X4.

4.6 Medidas

Para a morfologia externa dos espécimes foram utilizadas réguas no microscópio

estereoscópico (ZEISS 47 52 00 – 9901). A largura máxima (LM) considerada foi

observada na altura do IV pereonito e o comprimento total (CT) a partir da margem

anterior do vértex da cabeça até a ponta do télson (Fig. 15), em exemplares machos e

fêmeas de cada espécie. As medidas dos noduli laterales (NL) dos pereonitos I-VII

também foi realizada com auxílio do microscópio óptico com ocular micrométrica

(OLYMPUS BX 41), e de acordo com VANDEL (1960): c = (comprimento total), b =

(distância do NL à margem posterior do pereonito) e d = (distância do NL à margem

lateral do pereonito) (Fig. 16), mas só para espécimes machos. Os noduli laterales

foram ilustrados através de gráficos e utilizados para a identificação das espécies.

Figura 15 - Representação esquemática das medidas do corpo. (CT) comprimento

total; (LM) largura máxima.

4.7 Inclusão e posicionamento do gênero Alboscia Schultz, 1995

em Prosekiini

Ao realizar uma análise detalhada de Alboscia, com base nos trabalhos de

SCHULTZ (1995), ARAUJO (1999) e ARAUJO & QUADROS (2005), percebeu-se que este

deveria ser incluído em Prosekiini de acordo com as sinapomorfias estabelecidas por

LEISTIKOW (2001) e SCHMIDT (2008). Os caracteres usados na análise, exceto a

autapomorfia de Alboscia, foram estabelecidos por LEISTIKOW (2001). Foi utilizado o

programa NEXUS Date Editor 0.5.0 (PAGE, 2001). A análise de parcimônia foi

realizada através do programa PAUP 3.1.1 (SWOFFORD, 1993), sem pesagem sucessiva

nem ordenação de caracteres. Ainda se forneceu a análise dos seguintes parâmetros:

adição de sequência simples; troca de algoritmo TBR; opção de efeito COLLAPSE e

MULPARS.

Figura 16- Representação esquemática das medidas dos noduli laterales: c, b e d.

Modificado de Araújo, 2008.

4.8 Construções de chaves dicotômicas

A primeira chave dicotômica, para os gêneros de Prosekiini, foi elaborada com

caracteres extraídos da filogenia dos Prosekiini feita por LEISTIKOW (2001). Uma

segunda chave, para as espécies de Prosekiini da Amazônia brasileira, foi construída de

acordo com os caracteres diagnósticos observados nos trabalhos correspondente a cada

espécie já descrita e nos espécimes analisados neste estudo.

4.9 Confecções de mapas de pontos da América do Sul

Os mapas foram gerados a partir do software ArcMap (ArcGis, 2007) e

editados no Adobe Photoshop CS2 (2005). Neste mapa plotou-se as coordenadas das

localidades onde as espécies de Prosekiini são encontradas. A informação utilizada nos

mapas foi obtida a partir de pontos de coleta e dos dados da literatura.

5 Resultados

5.1 Sistemática

A tribo Prosekiini estava representada por 6 espécies e 2 gêneros na Amazônia

brasileira. Após análise, encontra-se representada por 15 espécies e 3 gêneros. Abaixo, a

classificação resumida da tribo.

Tabela III- Classificação resumida da tribo Prosekiini Leistikow (2001).

Ordem Isopoda Latreille, 1817

Subordem ONISCIDEA Latreille, 1829

Infraordem Holoverticata Erhard, 1998

Super-seção Orthogonopoda Tabacuru & Danielopol, 1996

Superfamília Euoniscoida Vandel, 1943

Seção Crinocheta Legrand, 1946

Família “Philosciidae” Kinahan, 1857

Tribo Prosekiini Leistikow, 2001

Alboscia Schultz, 1995*

Androdeloscia Leistikow, 1999**

Andenoniscus Verhoeff, 1941

Erophiloscia Vandel, 1972

Metaprosekia Leistikow, 2000

Prosekia Leistikow, 2001**

Xiphoniscus Vandel, 1968**

* Gênero incluído após análise.

** Gêneros encontrados no material estudado.

Tribo Prosekiini Leistikow, 2001

Diagnose: Antênula com um tufo de estetascos medial, direcionado mais ou menos

médio-distalmente no artículo; um espaço transverso entre o tufo de estetascos, com

artículo distal apicalmente côncavo; Endópode do pleópode I do macho com lamela

hialina próximo ao ápice.

5.2 Relação dos lotes analisados e identificados determinação do

sexo

Nº

Lote

Procedência

Data

Coleta

Coletor

Nº

exemplares

(♂,♀)

Classificação

001

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

16.05.88

Adis et al.

colls.

117♂, 264♀

sp. n. 1

002

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

31.05.88

Adis et al.

colls.

28♂, 54♀

sp. n. 1

003

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

16.05.88

Adis et al.

colls.

19♂, 23♀

sp. n. 2

004

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

31.05.88

Adis et al.

colls.

8♂, 17♀

sp. n. 2

005

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

colls.

1♂

sp. n. 6

006

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

15.06.88

Adis et al.

colls.

30♂, 50♀

sp. n. 2

007

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

12.04.88

Adis et al.

colls.

3♂, 1♀

sp. n. 1

008

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

colls.

7♂

sp. n. 8

009

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

colls.

6♂

sp. n. 6

010

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.08.82

Adis et al.

colls.

1♂, 1♀ e 7

jovens

sp. n. 6

011

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.07.83

Adis et al.

colls.

2♂, 5♀

sp. n. 8

012

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

31.05.88

Adis et al.

colls.

5♂, 12♀

sp. n. 4

013

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.03.83

Adis et al.

colls.

11♂, 7♀

sp. n. 2

014

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

16.05.88

Adis et al.

colls.

65♂

sp. n. 2

015

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

30.01.83

Adis et al.

colls.

2♂, 6♀

sp. n. 6

Tabela IV: Relação dos lotes examinados da coleção Max- Planck/INPA.

60º17‟W: Floresta secundária

016

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

29.04.88

Adis et al.

colls.

4♂, 4♀

sp. n. 1

017

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

29.04.88

Adis et al.

colls.

1♂, 10♀

sp. n. 2

018

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

30.06.88

Adis et al.

colls.

1♂

sp. n. 5

019

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

colls.

1♂

sp. n. 8

020

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.10.82

Adis et al.

colls.

1♂

sp. n. 6

021

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.10.82

Adis et al.

colls.

1♂

sp. n. 8

022

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

29.12.82

Adis et al.

colls.

2♂, 2♀

sp. n. 6

023

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

29.12.82

Adis et al.

colls.

1♂, 1♀

sp. n. 8

024

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

15.06.88

Adis et al.

colls.

14♂, 48♀

sp. n. 2

025

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.08.82

Adis et al.

colls.

2♂, 2♀

sp. n. 6

026

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.10.82

Adis et al.

colls.

1♂, 2♀ e 2

jovens

sp. n. 6

027

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.08.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

Xiphoniscus sp.

028

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

29.12.82

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 8

029

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

29.12.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 2♀

sp. n. 6

030

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

15.06.88

Adis et al.

Colls.

15♂, 24♀

sp. n. 1

031

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

20.12.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 4♀

Xiphoniscus sp.

032

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

17.02.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

Xiphoniscus sp.

033

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

15.06.88

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 5

034

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

06.09.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 5

2º55‟S, 59º59‟W

035

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

09.06.83

Adis et al.

Colls.

3♂, 7♀

sp. n. 3

036

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

01.02.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 3♀

sp. n. 6

037

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

09.08.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 3

038

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

09.08.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 3

039

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

23.11.82

Adis et al.

Colls.

4♂, 2♀

sp. n. 2

040

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

15.05.88

Adis et al.

Colls.

3♂, 10♀

sp. n. 1

041

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

13.10.82

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 3

042

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

23.11.82

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 8

043

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

06.11.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

P. silvatica

Leistikow, 2001

044

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 3♀

sp. n. 8

045

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

18.12.81

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 3

046

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.12.81

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

Xiphoniscus sp.

047

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

01.02.82

Adis et al.

Colls.

1♂

Xiphoniscus sp.

048

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.08.82

Adis et al.

Colls.

4♂

sp. n. 8

049

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

09.06.83

Adis et al.

Colls.

1♂

P. silvatica

Leistikow, 2001

050

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

21.01.82

Adis et al.

Colls.

2♂, 1♀

sp. n. 6

051

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.08.82

Adis et al.

Colls.

2♂, 16♀

sp. n. 6

052

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

30.01.83

Adis et al.

Colls.

2♂, 2♀

sp. n. 6

60º17‟W: Floresta secundária

053

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

30.01.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

sp. n. 8

054

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

6-11.03.98

Golovatch

leg.

7♂, 5♀

P. silvatica

Leistikow, 2001

055

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

09.08.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 4♀

sp. n. 3

056

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.08.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 3♀

sp. n. 6

057

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

12.01.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 3♀

sp. n. 5

058

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

06.09.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

A. escalonai

Schmidt &

Leistikow, 2005

059

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

12.02.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

P. silvatica

Leistikow, 2001

060

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

10.11.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 2♀

P. silvatica

Leistikow, 2001

061

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

18.12.81

Adis et al.

Colls.

1♂, ?♀

P. silvatica

Leistikow, 2001

062

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

10.11.82

Adis et al.

Colls.

1♂, ?♀

sp. n. 5

063

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

06.09.83

Adis et al.

Colls.

1♂

P. silvatica

Leistikow, 2001

064

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

06.09.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 3

065

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

6-11.03.98

Golowatch

leg.

1♂, 3♀

sp. n. 3

066

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.07.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 6

067

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.02.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 6

068

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

23.03.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 3♀

sp. n. 6

069

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.03.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 8

070

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

28.03.83

Adis et al.

Colls.

9♂

sp. n. 6

60º17‟W: Floresta secundária

071

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.04.83

Adis et al.

Colls.

4♂, 1♀

sp. n. 8

072

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.04.83

Adis et al.

Colls.

3♂, 3♀

sp. n. 6

073

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.03.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 8

074

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.03.83

Adis et al.

Colls.

2♂, 1♀

sp. n. 6

075

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

27.06.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 2♀

sp. n. 6

076

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

27.06.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 2♀

sp. n. 6

077

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

27.06.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 8

078

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

27.06.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 4

079

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

23.11.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 2♀

sp. n. 6

080

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

29.09.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 2♀

sp. n. 6

081

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.02.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 8

082

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.02.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 6

083

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

24.08.83

Adis et al.

Colls.

2♂, 1♀

sp. n. 8

084

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

24.08.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 6

085

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

24.08.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 8

086

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.03.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 6

087

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.03.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

sp. n. 6

088

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.04.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

sp. n. 8

089

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

23.11.82

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 6

090

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.05.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

sp. n. 6

091

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

24.08.83

Adis et al.

Colls.

2♂, 2♀

sp. n. 6

092

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

24.08.83

Adis et al.

Colls.

2♂, 3♀

sp. n. 8

093

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

23.02.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

sp. n. 8

094

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.04.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 5

095

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

27.06.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 3♀

sp. n. 6

096

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

27.06.83

Adis et al.

Colls.

2♂, 5♀

sp. n. 6

097

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

27.06.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 6♀

sp. n. 8

098

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.07.83

Adis et al.

Colls.

3♂, 12♀

sp. n. 8

099

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

16.05.88

Adis et al.

Colls.

2♂

sp. n. 9

100

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

16.05.88

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 2

101

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

16.05.88

Adis et al.

Colls.

3♂

sp. n. 5

102

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 6

103

Brasil/AM Terra firme

Reserva Florestal A. Ducke

2º55‟S, 59º59‟W

16.05.88

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 4

104

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 10 jovens

sp. n. 2

105

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 4♀

sp. n. 6

106

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.05.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

sp. n. 8

107

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.10.82

Adis et al.

Colls.

3♂

sp. n. 5

108

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.10.82

Adis et al.

Colls.

2♂, 6♀

sp. n. 8

109

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

23.11.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

sp. n. 6

110

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

27.06.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 3♀

sp. n. 8

111

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

27.06.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 8

112

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

Colls.

2♂

sp. n. 5

113

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

Colls.

2♂

sp. n. 6

114

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

Colls.

8♂

sp. n. 6

115

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

Colls.

3♂

sp. n. 8

116

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

Colls.

2♂, 6♀

sp. n. 6

117

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.07.82

Adis et al.

Colls.

2♂, 2♀

sp. n. 6

118

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.10.82

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 8

119

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.07.83

Adis et al.

Colls.

2♂

sp. n. 6

120

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.10.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 3♀

sp. n. 8

121

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.10.82

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 6

122

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.07.82

Adis et al.

Colls.

2♂, 3♀

sp. n. 8

123

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.10.82

Adis et al.

Colls.

2♂, 3♀

sp. n. 8

124

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.10.82

Adis et al.

Colls.

1♂

Xiphoniscus sp.

125

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.10.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 2♀

sp. n. 8

126

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.10.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 12♀

sp. n. 8

127

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.02.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 8

128

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

29.12.82

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 8

129

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.10.82

Adis et al.

Colls.

2♂

sp. n. 5

130

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

29.09.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 4♀

sp. n. 8

131

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.10.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 4♀

sp. n. 8

132

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.02.83

Adis et al.

Colls.

4♂, 6♀

sp. n. 8

133

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.05.83

Adis et al.

Colls.

2♂, 2♀

sp. n. 8

134

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.05.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 3♀

sp. n. 8

135

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

29.12.82

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 8

136

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.08.83

Adis et al.

Colls.

4♂, 2♀

sp. n. 6

137

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.10.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 8

138

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.05.83

Adis et al.

Colls.

2♂, 2♀

sp. n. 6

139

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

colls.

2♂, 1♀

sp. n. 6

140

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.08.82

Adis et al.

Colls.

2♂, 4♀

sp. n. 8

141

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

23.11.82

Adis et al.

Colls.

2♂, 3♀

sp. n. 6

142

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.08.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 5♀

sp. n. 8

143

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

25.08.82

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 6

144

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

27.06.83

Adis et al.

Colls.

6♂, 10♀

sp. n. 6

145

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

Colls.

5♂, 2♀

sp. n. 6

146

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 2♀

sp. n. 8

147

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.03.83

Adis et al.

Colls.

3♂, 4♀

sp. n. 8

148

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

Colls.

2♂

sp. n. 6

149

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

Colls.

2♂, 1♀

sp. n. 8

150

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

30.01.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 6♀

sp. n. 9

151

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

24.08.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 6

152

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

27.06.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 2♀

sp. n. 6

153

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

27.06.83

Adis et al.

Colls.

2♂, 3♀

sp. n. 8

154

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

27.06.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 3♀

sp. n. 6

155

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.05.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 2♀

sp. n. 8

156

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.07.83

Adis et al.

Colls.

3♂, 3♀

sp. n. 8

157

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.02.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

sp. n. 8

158

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.03.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 2♀

sp. n. 6

159

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

28.02.83

Adis et al.

Colls.

2♂, 3♀

sp. n. 8

160

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

26.07.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 1♀

sp. n. 8

161

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

10.11.82

Adis et al.

Colls.

2♂, 4♀

P. silvatica

Leistikow, 2001

162

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

12.02.83

Adis et al.

Colls.

3♂, 6♀

sp. n. 3

163

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

06.09.83

Adis et al.

Colls.

1♂, 2♀

sp. n. 3

164

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

12.02.83

Adis et al.

Colls.

1♂

sp. n. 3

165

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

13.10.82

Adis et al.

Colls.

1♂, 4♀

sp. n. 3

166

Brasil/AM – Capoeira do rio

Tarumã Mirim 03º02‟S,

60º17‟W: Floresta secundária

10.11.83

Adis et al.

Colls.

3♂, 7♀

sp. n. 3

167

Brasil/AM – Rio Solimões -

Ilha da Marchantaria 3º15‟S,

59º58‟W(Várzea)

29.04.88

Adis J. leg.

8♂, 8♀

sp. n. 7

168

Brasil/AM Lago Januari

03º20‟S, 60º17‟W: água mista

15.06.88

Adis et al.

Colls.

15♂

sp. n. 5

169

Brasil/AM – Rio Solimões -

Ilha da Marchantaria 3º15‟S,

59º58‟W(Várzea)

03.05.82

Adis J. leg.

3♂

sp. n. 7

170

Brasil/AM – Rio Solimões -

Ilha da Marchantaria 3º15‟S,

59º58‟W(Várzea)

03.03.82

Adis J. leg.

7♀

sp. n. 7

171

Brasil/AM – Rio Solimões -

Ilha da Marchantaria 3º15‟S,

59º58‟W(Várzea)

17.02.81

Adis J. leg.

26♂

sp. n. 7

172

Brasil/AM – Rio Solimões -

Ilha da Marchantaria 3º15‟S,

59º58‟W(Várzea)

26.02.81

Adis J. leg.

22♀

sp. n. 7

5.3 Caracterização de novas espécies

Androdeloscia sp. n. 1

(Figs. 17–20)

Material tipo: HOLÓTIPO: (MNRJ) 1♂, BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J.

Adis et al., 16/V/1988. PARÁTIPOS: (MNRJ) 14♂, 24♀, BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 16/V/1988; (MNRJ) 28♂, 54♀, BRASIL, Lago Januari: água mista,

03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 31/V/1988; (MNRJ) 3♂, 1♀, BRASIL, Lago Januari: água

mista, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 12/IV/1988; (MNRJ) 4♂, 4♀, BRASIL, Capoeira do

rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 29/IV/1988; (MNRJ)

15♂, 24♀, BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 15/VI/1988;

(MNRJ) 3♂, 10♀, BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

15/V/1988.

Diagnose: Pigmentação do corpo castanha escuro com manchas mais claras e

ovaladas na ponta dos pereonitos I-VII. Olhos com 9 omatídeos de cor marrom escuro.

Artículo distal da antênula com 11 estetascos subapicalis, 2 apicalis. Noduli laterales

bem visíveis e o IV mais dorsalmente inserido do que os outros. Margem da maxílula na

parte central da franja lateral apresenta uma entrada seguida de uma conspícua elevação.

Pereiópode VII do macho com lobo bem discreto no mero e carpo do pereiópode I com

uma escova de cerdas finas (mais abrangente que na fêmea). Endópode I do macho com

ápice em forma de gancho, portando no ápice interno e externamente cerca de 6

projeções em forma espinhos. Exópode I do macho arredondado. Exópode II do macho

triangular com duas cerdas na borda interna.

Descrição:

Dimensões – Macho com 4mm de comprimento e 1mm de largura; maior fêmea

não ovígera com 3mm de comprimento e 1mm de largura.

Coloração – Castanha, com pequenas machas ovais na cabeça, outras maiores,

médias e pequenas na parte distal dos pereonitos e dorso-medianas partindo da cabeça

até o pereiopode VII. Pleonitos com algumas manchas e no télson cinco: dois pares

laterais e uma em forma de gota no centro.

Tegumento – Tegumento liso recoberto por pequenas cerdas simples e noduli

lateralis flageliformes e bem visíveis. Posição dos Noduli laterales como ilustrado na

fig. 20.

Cefalotórax – Apenas ligeiramente envolvido pelo primeiro pereonito; lobos

frontal e lateral poucos desenvolvidos; linha frontal tênue demarcada pela curvatura do

vértice; linha supra-antenal bem marcada; olhos compostos por nove omatídeos.

Pleon – Ventralmente bem encaixado no pereon; ligeiramente estreitado em

relação ao pereon; apresenta algumas cerdas pequenas e esparsas.

Télson – Triangular com ponta arredonda e lados retos.

Antênula – Artículo distal mais curto, proximal e mediano com cerca do mesmo

comprimento; artículo distal com 2 estetascos apicalis e 11 estetascos subapicalis.

Antena – com cerdas curtas e espinhos simples e com ápice desfiado; flagelo

triarticulado, artículo distal mais longo, proximal e mediano subiguais e juntos medem

quase ultrapassam o distal; órgão apical tão longo quanto o artículo distal, com sensilas

livres curtas.

Mandíbulas – Com uma lacinia mobilis portando muitas cerdas e 1 penicílio

entre as partes molares e incisiva. Mandíbula esquerda com 6 penicílios no processo

molar; direita com 7 penicílios no processo molar e um espinho na lacinia mobilis.

Maxílula – Endito com ápice arredondado e com dois penicílios iguais e

totalmente contornados de cerdas; exito da maxílula com 4 + 4 dentes; franja de cerdas

laterais do tipo comum e 1 lobo na parte mediana; margem da maxílula na parte central

da franja lateral apresenta uma entrada seguida de uma conspícua elevação.

Maxila – Lobo lateral maior que o lobo mediano, este último com poucas cerdas;

lobo mediano com 10 estruturas delgadas e alongadas com ápice em forma de cúspide

próximo a extremidade; evidenciam-se algumas cerdas pequenas na lateral do lobo

medial.

Maxilípede – Basepodito portando cerca de nove cerdas e algumas cerdas

simples na margem superior; endito com dois espinhos, um na base e outro

intermediário; palpo com dois tufos de cerdas; endito com a porção distal arredonda,

com cerdas e com um espinho entre elas.

Pereiópodes – Com cerdas simples curtas e longas e espinhos simples; cerda

dactilar longa; carpo dos pereiópodes, exceto III, com tufo de cerdas laterais.

Pereiópode I robusto; carpo com cerda carpal bem evidente e com cerdas sensoriais com

o ápice com duas franjas laterais a um eixo central e uma com ápice cerdoso.

Caracteres sexuais do macho – Carpo do pereiópode I com duas cerdas

ornamentais e uma escova de cerdas finas (mais abrangente que na fêmea); própodo e

mero I com muitos espinhos. Pereiópode VII com lobo região distal externa do mero

(ausente na fêmea).

Pleópodes – Ausência de áreas respiratórias. Exópode do pleópode I tem a forma

de gancho. Pleópode II com endópode longo, mais longo que largo; exópode com forma

triangular e portanto duas cerdas subapicalis na borda interna. Pleópode V com exópode

com 2 cerdas longas na borda externa, uma fileira de cerdas pectinadas na porção

medial e muitas contornando toda a borda externa; porta ainda uma fenda para encaixe

do endópode II, autapomorfia do gênero Androdeloscia.

Caracteres sexuais do macho – Endópode do pleópode I tem a forma de gancho

ou entalhe transverso, portando no ápice interna e externamente cerca de 6 projeções em

forma espinhos; parte interna, do ápice até a parte mediana do endópode, com uma

fileira de cerdas curtas; exópode do pleópode I oval (na fêmea o exópode tem a forma

aproximadamente quadrangular). Endópode do pleópode II mais longo que largo;

exópode do pleópode II com forma triangular. Exópode do pleópode V do macho com

uma fenda ou entalhe para encaixe do endópode do pleópode II do macho (ausente na

fêmea) e um ápice alongado em alguma extensão. Observou-se que os machos são

menores que as fêmeas.

Description. Measurements. Male length: 4 mm, width: 1 mm. Body surface cor

marrom escuro com machas mais claras ovaladas na parte distal dos pleonitos e dorso

medianas partindo da cabeça até o pereiopode VII (Fig. 1A). Cephalotorax ovalado e

não envolvido pelo primeiro pereonite, a well marked supra-antennary line and uma

superficial linha frontal; eyes with 8 dark brown ommatidia (Fig. 1B). Cephalic lateral

lobes slightly ahead of median lobe which has apex rounded (Fig. 1C). Pleon com

manchas claras mais evidentes no I e II pleonito. Coordinates of noduli lateralis as in

Fig. 6. Pleon is narrower than the pereion; a ponta do VII pereionito alcança o II

pleonito. Telson com forma triangular e algumas manchinas claras. Endopodes e

exopodes do uropod bem visíveis. Distal article of antennula with about 11 sub-apical

and 2 apical aesthetascs (Fig. 1D). Antenna (Fig. 1E) with distal article of flagellum

longer than second and third juntos, with a long apical seta. Ela possui cerdas curtas e

alguns espinhos longos. Mandibles with a hairy lobe with 1 penicil between the pars

molaris and the pars incisive. Mandible left with 6 molar penicils and a spine between

incisor and molar process (Fig. 2J); right with 7 molar penicils and a spine in hairy lobe

(Fig. 2I). Maxillula outer ramus with 4 full + 4 bifid teeth (Fig. 2F). Exito da maxilula

as in Fig. 2H. Maxilla as in Fig. 2G. Palp of maxilliped with apical and medial setal tuft;

endite of maxilliped with 2 spines e inumeras cerdas curtas na margem interna; base do

maxilliped with muitos espinhos e longas cerdas finas nas margens (Fig. 2K).

Male. Pereopods I with a robust carpus. Carpus I with antennal-gromming brush

and ornamental sensory spine serrate (Fig. 3L). Pereopod VII (Fig. 4R) with lobe on the

merus. Pleopod I with exopod rouded and endopod with forma de gancho ou entalhe

transverso, portando no ápice interna e externamente cerca de 6 projeções em forma

espinhos; parte interna, do ápice até a parte mediana do endópode, com uma fileira de

cerdas curtas (Fig. 5S). Pleopod II with endopod long, more long than wide (Fig. 5T);

exopod with forma triangular e tem duas cerdas subapicais na inner border (Fig. 5T).

Pleópode V com exópode com 2 cerdas longas na borda externa, uma fileira de cerdas

pectinadas na porção medial e muitas contornando toda a borda externa; com um ápice

alongado em alguma extensão, autapomorfia do gênero Androdeloscia (Fig. 5W).

Figura 17- Androdeloscia sp. n. 1: ♂ holótipo, habitus dorsal; ♂ parátipo, antenas.

0,0025m

0,1mm

0,005mm

0,01mm

Figura 18 - Androdeloscia sp. n. 1: ♂ parátipo, peças bucais.

0,0025m

Mdl

Mdr

Mx1

Mx2

Mxp

Figura 19 - Androdeloscia sp. n. 1: ♂ parátipo, pleópodes; pereiópodes.

Plp I

Plp II

Pe VII

Pe I

Exo V

0,01mm

0,005mm

Figura 20 - Androdeloscia sp. n. 1: ♀ parátipo, exópodes dos pleópodes; pereiópodes.

Gráfico com as coordenadas b/c e d/c dos noduli laterales do macho.

Exo I

Exo V

Pe I

Pe VII

0,01mm

0,0025mm

Androdeloscia sp. n. 2

(Figs. 21–24)

Material tipo: HOLÓTIPO: (MNRJ) 1♂, BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º20‟S, 60º17‟W, leg. J.

Adis et al., 16/V/1988. PARÁTIPOS: (MNRJ) 18♂, 23♀, BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º20‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 16/V/1988; (MNRJ) 8♂, 17♀, BRASIL, Lago Januari: água mista,

03º20‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 31/V/1988; (MNRJ) 45♂, 50♀, BRASIL, Lago Januari: água

mista, 03º20‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 15/VI/1988; (MNRJ) 65♂, BRASIL, Capoeira do rio

Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al., 16/V/1988; (MNRJ) 1♂, 10♀,

BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al.,

29/IV/1988; (MNRJ) 14♂, 48♀, BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al.

colls., 15/VI/1988; (MNRJ) 4♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária,

03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al., 23/XI/1982; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Reserva Florestal A. Ducke:

Terra firme, 2º55‟S, 59º59‟W, leg. J. Adis et al., 16/V/1988; (MNRJ) 1♂, 10 jovens, BRASIL, Capoeira

do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al., 30/I/1983; (MNRJ) 11♂,

7♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al.,

28/III/1983.

Diagnose: Pigmentação do corpo castanha escura com manchas mais claras em todo o

habitus. Lobos laterais bem desenvolvidos e as linhas frontal e supra-antenal bem

marcadas. Olhos com 13 omatídeos de cor marrom escuro, separados por massa de

pigmentação. Poros glandulares presentes. Pereiópode VII do macho com um espinho

na região distal externa do mero. Pleópode I do macho com o ápice pontudo e

bifurcado.

Descrição:

Dimensões – Maior macho com 3mm de comprimento e 1mm de largura; maior

fêmea não ovígera com 3,9mm de comprimento e 1,2mm de largura.

Coloração – Castanha, com machinhas claras na cabeça, nos pereionitos e nos

distal dos pereonitos e nos pleonitos I e II, mas em menor número. O télson apresenta

cinco manchas, seguindo o padrão de Androdeloscia sp. n. 1.

Tegumento – Liso com poucas e esparsas cerdas. Apresenta poros glandulares.

Os noduli lateralis não são flageliformes. Posição dos Noduli laterales como ilustrado

na fig. 24.

Cefalotórax – Não envolvido pelo primeiro pereonito; lobos laterais bem

desenvolvidos; linhas frontal e supra-antenal bem marcadas; olhos compostos por treze

omatídeos.

Pleon – Estreitado em relação ao pereon. Pleonito II menor com relação aos

demais.

Télson – Triangular com lados arredondados e ponta reta.

Antênula – Artículo mediano mais curto, proximal e distal com cerca do mesmo

tamanho; artículo distal com 2 estetascos apicalis e 5 subapicalis, sendo os apicalis mais

robustos que os subapicalis.

Antena – Com cerdas curtas e poucos espinhos simples e longo; flagelo

triarticulado, artículo distal mais longo, proximal e mediano subiguais; órgão apical

cerca de tão longo quanto o artículo distal, com sensilas livres curtas; terceiro artículo

sem espinho.

Mandíbulas – Penicílio molar com quatro ramos; dois penicílios, dois espinhos e

algumas cerdas curtas lacinia mobilis da mandíbula esquerda e um espinho entre o

processo incisivo e o molar (Fig. 13); mandíbula direita com um penicílio e uma cerda

curta na lacinia mobilis, um penicílio entre o processo incisivo e o molar e dois

espinhos (bem próximos) medialmente na borda externa.

Maxílula – Endito com dois penicílios iguais no ápice de um lado e uma

pontinha do outro; exito da maxílula com 4 + 4 dentes, dentes do grupo interno,

ligeiramente mais delgados que os do grupo externo. Franja de cerdas laterais do tipo

comum.

Maxila – Lobo lateral cerca de metade da largura do lobo mediano, este último

densamente coberto por cerdas pectinadas na parte superior; lobo lateral completamente

coberto por cerdas e portando na parte central sete estruturas delgadas e alongadas com

ápice em forma de cúspide; no limite dos lobos evidenciam-se duas cerdas longas.

Maxilípede – Basepodito portando alguns espinhos; palpo com dois tufos de

cerdas e alguns espinhos; endito com a porção distal arredonda e com algumas cerdas

na margem lateral, com dois espinhos grandes, um na base e outro perto do ápice.

Pereiópodes – Com cerdas simples curtas e longas, espinhos simples ou com

ápice desfiado e com tufos de cerdas laterais. Pereiópode I robusto com cerda carpal

com cerdas sensoriais com o ápice com duas franjas laterais a um eixo central e uma

com ápice cerdoso; pereiópode VII maior que o pereiópode I.

Caracteres sexuais do macho – Carpo do pereiópode I com uma escova de cerdas

(mais abrangente na fêmea). Pereiópode VII com um espinho na região distal externa do

mero (dois na fêmea). Ísquio do pereiópode VII sem espinhos (um na fêmea).

Pleópodes – Ausência de áreas respiratórias. Exópode I sem cerdas simples ou

pectinadas. Exópode V portando cerdas pectinadas na região mais apical e duas cerdas

bífidas próximas a borda externa.

Caracteres sexuais do macho – Endópode do pleópode I tem o ápice pontudo e

bifurcado; tem apicalmente em um dos lados projeções parecidas com escamas,

algumas dessas projeções e cerdas pequenas estão presentes na parte medial do mesmo;

exópode do pleópode I é arredondado (na fêmea o exópode tem a forma

aproximadamente ovalar). Endópode do pleópode II com terço distal afilado e portando

uma lamela hialina; exópode do pleópode II com forma triangular e com cerdas

pectinadas em toda a margem interna. Exópode do pleópode V do macho com uma

fenda ou entalhe para encaixe do endópode do pleópode II do macho (ausente na

fêmea). Exópode do pleópode V do macho com margem forte para suportar o pleópode

II.

Figura 21 - Androdeloscia sp. n. 2: ♂ holótipo, habitus dorsal; parátipo, antênula; antena.

0,1mm

0,0025mm

0,1mm

Figura 22 - Androdeloscia sp. n. 2: ♂ parátipo, peças bucais.

0,0025mm

Mdl

Mdr

Mx1

Mx2

Mxp

0,0025mm

Pe VII

Figura 23 - Androdeloscia sp. n. 2: ♂ parátipo, pleópodes; pereiópodes.

Plp I

Plp II

Pe I

Exo V

0,01mm

0,0025mm

0,01mm

Pe VI I

Figura 24 - Androdeloscia sp. n. 2: ♀ parátipo, exópodes dos pleópodes; pereiópodes.

Gráfico com as coordenadas b/c e d/c dos noduli laterales do macho.

Exo I

Exo V

Pe I

Pe VII

0,01mm

0,0025mm

Androdeloscia sp. n. 3

(Figs. 25–28)

Material tipo: HOLÓTIPO: (MNRJ) 1♂, BRASIL, Reserva Florestal A. Ducke: Terra firme, 2º55‟S,

59º59‟W, leg. J. Adis et al., 09/VI/1983; PARÁTIPOS: (MNRJ) 3♂, 7♀, BRASIL, Reserva Florestal A.

Ducke: Terra firme, 2º55‟S, 59º59‟W, leg. J. Adis et al., 09/VI/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Reserva

Florestal A. Ducke: Terra firme, 2º55‟S, 59º59‟W, leg. J. Adis et al., 09/VIII/1983; (MNRJ) 1♂,

BRASIL, Reserva Florestal A. Ducke: Terra firme, 2º55‟S, 59º59‟W, leg. J. Adis et al., 09/VIII/1983;

(MNRJ) 1♂, BRASIL, Reserva Florestal A. Ducke: Terra firme, 2º55‟S, 59º59‟W, leg. J. Adis et al.,

13/X/1982; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Reserva Florestal A. Ducke: Terra firme, 2º55‟S, 59º59‟W, leg. J.

Adis et al., 18/XII/1981; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Reserva Florestal A. Ducke: Terra firme, 2º55‟S,

59º59‟W, leg. J. Adis et al., 06/IX/1983; (MNRJ) 1♂, 3♀, BRASIL, Reserva Florestal A. Ducke: Terra

firme, 2º55‟S, 59º59‟W, S. Golowatch leg., 06-11/XI/1998; (MNRJ) 1♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio

Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al., 06/IX/1983; (MNRJ) 1♂,

BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al.,

12/II/1983; (MNRJ) 1♂, 4♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al., 13/X/1982; (MNRJ) 3♂, 7♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al., 10/XI/1983.

Diagnose: Pigmentação do corpo castanha clara. Olhos com 8 omatídeos de cor marrom

escuro, separados por massa de pigmentação. Noduli laterales longos e flageliformes.

Endópode I com ápice com ponta recurvada e portando pequenos espinhos na borda

externa, com uma fileira de dobras na borda interna e algumas projeções em forma de

escamas na parte ventral. Exópode II triangular com duas cerdas na borda interna e

muitas cerdas pectinadas na borda externa.

Descrição:

Dimensões – Maior macho com 3mm de comprimento e 1mm de largura; maior

fêmea não ovígera com 3,5mm de comprimento e 1mm de largura.

Coloração – Castanha clara com omatídeos marrom escuro.

Tegumento – Revestimento de cerdas na cabeça e em todo o corpo. Noduli

laterales longos e flageliformes e o IV mais dorsalmente inserido do que os outros.

Posição dos Noduli laterales como ilustrado na fig. 28.

Cefalotórax – Não envolvido pelo primeiro pereonito; lobos frontais e laterais

poucos desenvolvidos; linha frontal e supra-antenal bem marcadas; olhos compostos por

oito omatídeos; tubérculos antenais sem exceder lateralmente o cefalotórax.

Pleon – Estreitado em relação ao pereon. Os três primeiros segmentos do pleon

subiguais e menores que os outros dois.

Télson – Triangular com ponta e lados arredondados.

Antênula – Artículo proximal duas vezes maior que o mediano; artículo distal

com 2 apicalis e 6 estetascos subapicalis.

Antena – com cerdas curtas, longas, espinhos simples e com ápice desfiado;

flagelo triarticulado, todos com tamanhos aproximadamente iguais; órgão apical, cerca

de tão longo quanto dois dos artículos, com sensilas livres curtas; flagelo da antena com

muitos espinhos no artículo distal.

Mandíbulas – Dois espinhos na lacinia mobilis; um penicílio localizado entre a

região molar e a incisiva; mandíbula esquerda com quatro penicílios molares e dois

penicílios na lacinia mobilis; mandíbula direita com cinco penicílios molares e um

penicílio na lacinia mobilis.

Maxílula – Endito com ápice arredondado e dois penicílios na parte apical,

iguais e completamente cobertos por cerdas; exito da maxílula com 4 + 4 dentes (Fig.

15), o segundo dente do grupo externo, com metade do tamanho dos outros. Franja de

cerdas laterais do tipo comum e dividida em dois grupos.

Maxila – Lobo lateral bem evidente e com cerca de metade da largura do lobo

mediano, este último portando cerdas na borda posterior; ambos sem escamas

pectinadas; lobo lateral completamente coberto de cerdas simples e portando na parte

central oito estruturas delgadas e alongadas com ápice em forma de cúspide; no limite

dos lobos evidenciam-se três cerdas longas.

Maxilípede – Basepodito portando alguns espinhos; palpo com dois tufos de

cerdas e portando na base uma cerda grande; endito com a porção distal arredonda e

cerdosa, com dois espinhos pequenos e sem penicílio e escamas pectinadas aparentes.

Pereiópodes – Com cerdas curtas e longas, espinhos longos simples e com ápice

desfiado; cerda dactilar longa. Carpo do pereiópode I com cerdas sensoriais e

ornamentais com o ápice com duas franjas laterais a um eixo central e uma com ápice

cerdoso.

Caracteres sexuais do macho – Carpo do pereiópode I com uma escova de cerdas

finas (na fêmea mais abrangente). Própodo I e VII com muitos espinhos médios e

grandes; pereiópode VII com dois espinhos na região distal externa do carpo (um na

fêmea).

Pleópodes – Sem áreas respiratórias. Exópode do pleópode V com cerdas

pectinadas na região medial e duas cerdas na borda externa.

Caracteres sexuais do macho – Endópode do pleópode I com ápice com ponta

recurvada; exópode do pleópode I triangular (na fêmea quadrangular). Endópode do

pleópode II mais longo que largo e portando uma lamela hialina; exópode do pleópode

II triangular com duas cerdas na borda interna e muitas cerdas pectinadas na borda

externa. Exópode do pleópode V alongado no ápice e com uma fileira de cerdas

pectinadas na região medial e logo acima, na borda externa 2 cerdas (na fêmea as cerdas

são bifurcadas e existem duas fileiras de cerdas pectinadas, uma medial e uma mais

distal). Exópode do pleópode V do macho com uma fenda ou entalhe para encaixe do

endópode do pleópode II do macho II.

Figura 25 - Androdeloscia sp. n. 3: ♂ holótipo, habitus dorsal; parátipo, antênula; antena.

0,2mm

0,01mm

0,0025m

Figura 26 - Androdeloscia sp. n. 3: ♂ parátipo, peças bucais.

Mdl

Mdr

Mx1

Mx2

Mxp

0,0025mm

0,005mm

0,0025mm

0,01mm

Figura 27 - Androdeloscia sp. n. 3: ♂ parátipo, pleópodes; pereiópodes.

Plp I

Plp II

Pe VII

Pe I

Exo V

0,01mm

0,005mm

Figura 28 - Androdeloscia sp. n. 3: ♀ parátipo, exópodes dos pleópodes; pereiópodes.

Gráfico com as coordenadas b/c e d/c dos noduli laterales do macho.

Exo I

Exo V

Pe I

Pe VII

0,01mm

0,005mm

Androdeloscia sp. 4

(Figs. 29–32)

Material tipo: HOLÓTIPO: (MNRJ) 1♂, BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º20‟S, 60º17‟W, leg. J.

Adis et al., 31/V/1988. PARÁTIPOS: (MNRJ) 4♂, 12♀, BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º20‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 31/V/1988; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 27/VI/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL,

Reserva Florestal A. Ducke: Terra firme, 2º55‟S, 59º59‟W, leg. J. Adis et al., 16/V/1988.

Diagnose: Pigmentação do corpo castanha escura com omatídeos pretos. Olhos com 8

omatídeos de cor preta. com pigmentação parcial nos segundo, terceiro e quarto artículo

do flagelo. Noduli laterales não tão visíveis. Cefalotórax não envolvido pelo primeiro

pereionito; lobos laterais mais desenvolvidos que o lobo frontal Endópode do pleópode

I tem o ápice ligeiramente recurvado para região interna. Exópode do pleópode II

triangular com três cerdas na borda interna. Fêmeas maiores que os machos.

Descrição:

Dimensões – Maior macho com 3,5mm de comprimento e 1mm de largura;

maior fêmea não ovígera com 5,1mm de comprimento e 2mm de largura.

Coloração – Castanho escuro com omatídeos pretos.

Tegumento – Revestimento de por pequenas cerdas simples no cefalotórax,

pereon e pleon. Posição dos noduli laterales como ilustrado na fig. 32.

Cefalotórax – Não envolvido pelo primeiro pereionito; lobos laterais mais

desenvolvidos que o lobo frontal; linha frontal tênue na região medial e linha supra-

antenal bem marcada; olhos compostos por oito omatídeos; tubérculos antenais

excedem lateralmente o cefalotórax.

Pleon – Estreito em relação ao pereon. Pleonito V maior que os demais.

Télson – Triangular com ponta e lados um pouco arredondados.

Antênula – Artículo mediano e distal com cerca do mesmo comprimento;

artículo proximal maior que os dois; artículo distal com 2 estetascos robustos na parte

apical e 6 delgados na parte subapical.

Antena – com poucas cerdas e espinhos pequenos; flagelo triarticulado, artículo

distal mais longo, proximal e mediano subiguais; órgão apical menor que o artículo

distal, com sensilas livres curtas; com pigmentação parcial nos segundo, terceiro e

quarto artículo do flagelo.

Mandíbulas – Muitas cerdas simples na lacinia mobilis e seis penicílios molares;

um penicílio localizado entre a região molar e a incisiva; mandíbula esquerda com dois

penicílios e dois espinhos pequenos na lacinia mobilis e dois espinhos (não próximos)

na parte inferior borda externa; mandíbula direita um penicílio e um espinho na lacinia

mobilis.

Maxílula – Endito da maxílula com dois penicílios e oposto a eles um espinho

pequeno destaca-se no ápice; exito da maxílula com 5 + 5 dentes, com 1 dente de cada

grupo menor que os demais; grupo interno com dentes muito fendidos. Franja de cerdas

laterais do tipo comum e com uma margem externa que se assemelha a Androdeloscia

sp. n. 1, sendo a elevação bem menos conspícua.

Maxila – Lobo lateral cerca de metade da largura do lobo mediano, este último

densamente coberto por cerdas simples e portando na parte central sete estruturas

delgadas e alongadas com ápice em forma de cúspide; lobo lateral com algumas cerdas

simples, mas a maior parte dele é coberta por cerdas pectinadas; no lobo lateral próximo

ao limite com o lobo mediano evidenciam-se duas cerdas, uma robusta e a outra

delgada.

Maxilípede – Basepodito portando alguns espinhos na parte externa e cerdas

contornando a borda superior; palpo com dois tufos de cerdas e um espinho pequeno na

base; endito com a porção distal arredonda e cerdosa, com dois espinhos, um grande na

base e um menor perto do ápice.

Pereiópodes – Com cerdas curtas e longas, espinhos simples, curtos e longos;

carpo com tufo de cerdas laterais e com cerdas sensoriais com o ápice com duas franjas

laterais a um eixo central e uma com ápice cerdoso. Pereiópodes VII maiores

proporcionalmente que os pereiópodes I.

Caracteres sexuais do macho – Carpo do pereiópode I do macho com uma

escova de cerdas finas mais abrangentes que a da fêmea e com menos espinhos que o da

fêmea. Pereiópode VII com um espinho na região distal externa do carpo (quatro na

fêmea); dáctilo com três espinhos (na fêmea seis).

Pleópodes – Ausência de áreas respiratórias. Exópode V triangular com cerdas

pectinadas na região medial.

Caracteres sexuais do macho – Endópode do pleópode I tem o ápice

ligeiramente recurvado para região interna; exópode I arredondado (na fêmea tem a

forma aproximadamente quadrangular). Endópode do pleópode II mais longo que largo

e portando uma lamela hialina; a ponta do endópode II foi quebrada; exópode do

pleópode II triangular com três cerdas na borda interna e sem cerdas pectinadas na

borda externa. Exópode do pleópode V do macho com uma fenda ou entalhe para

encaixe do endópode do pleópode II do macho (ausente na fêmea); na borda externa 2

cerdas bifurcadas (na fêmea uma).

Figura 29 - Androdeloscia sp. n. 4: ♂ holótipo, habitus dorsal; ♂ parátipo, antenas.

0,1mm

0,005mm

0,01mm

Figura 30 - Androdeloscia sp. n. 4: ♂ parátipo, peças bucais.

Mx1

Mxp

Mdl

Mdr

Mx2

0,0025mm

0,005mm

Figura 31 - Androdeloscia sp. n. 4: ♂ parátipo, pleópodes; pereiópodes.

Plp I

Plp II

Pe VII

Exo V

0,01mm

0,0025mm

0,005mm

Pe I

Figura 32 - Androdeloscia sp. n. 4: ♀ parátipo, exópodes dos pleópodes; pereiópodes.

Gráfico com as coordenadas b/c e d/c dos noduli laterales do macho.

Exo I

Exo V

Pe I

Pe VII

0,01mm

0,005mm

Androdeloscia sp. 5

(Figs. 33–36)

Material tipo: HOLÓTIPO: (MNRJ) 1♂, BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º20‟S, 60º17‟W, leg. J.

Adis et al., 15/VI/1988. PARÁTIPOS: (MNRJ) 14♂, BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º20‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 15/VI/1988; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º20‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 30/VI/1988; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º20‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 15/VI/1988; (MNRJ) 1♂, 3♀, BRASIL, Reserva Florestal A. Ducke:

Terra firme, 2º55‟S, 59º59‟W, leg. J. Adis et al., 12/I/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Reserva Florestal A.

Ducke: Terra firme, 2º55‟S, 59º59‟W, leg. J. Adis et al., 10/XI/1982; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do

rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 25/IV/1983; (MNRJ)

3♂, BRASIL, Reserva Florestal A. Ducke: Terra firme, 2º55‟S, 59º59‟W, leg. J. Adis et al., 16/V/1988;

(MNRJ) 3♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J.

Adis et al. colls., 26/X/1982; (MNRJ) 2♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária,

03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 30/I/1983; (MNRJ) 2♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã

Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/X/1982.

Diagnose: Pigmentação do corpo castanha escura e com pigmentação na antena que vai

ficando fraca à medida que se aproxima da ponta, ficando pigmentado até a base do

quinto artículo do pedúnculo. Olhos com 8 omatídeos de cor preta. Noduli laterales

visíveis, mas não flageliformes. Cefalotórax parcialmente envolvido pelo primeiro

pereionito. Endópode do pleópode I com ápice pontiagudo numa extremidade e na outra

arredondada com cerca de 5 cerdas simples contornando. Exópode do pleópode II

triangular com uma cerda bífida na borda interna e muitas cerdas contornando a borda

externa

Descrição:

Dimensões – Maior macho com 3mm de comprimento e 1mm de largura; maior

fêmea não ovígera com 3mm de comprimento e 1mm de largura.

Coloração – Castanha escura, exceto pelos omatídeos que têm pigmentação

preta.

Tegumento – Revestimento por poças cerdas simples sobre o cefalotórax, pereon

e pleon. Noduli laterales visíveis, mas não flageliformes. Posição dos noduli laterales

como ilustrado na fig. 36.

Cefalotórax – Parcialmente envolvido pelo primeiro pereionito; lobos frontal e

laterais pouco desenvolvidos; linha frontal e linha supra-antenal bem marcadas; olhos

compostos por oito omatídeos; tubérculos antenais sem exceder o cefalotórax.

Pleon – Estreitado em relação ao pereon. Pleonito II menor que os demais.

Télson – Triangular com ponta e lados retos arredondados.

Antênula – Artículo mediano menor que o distal e o proximal, este último duas

vezes maior que o distal; artículo distal com 2 estetascos apicalis e 7 estetascos

subapicalis; os dois grupos de estetascos são bem delgados.

Antena – com cerdas muito curtas e alguns espinhos simples; flagelo

triarticulado, artículo distal mais longo, proximal e mediano subiguais; órgão apical tão

longo quanto o artículo distal, com sensilas livres curtas; com pigmentação que vai

ficando fraca à medida que se aproxima da ponta, ficando pigmentado até a base do

quinto artículo do pedúnculo.

Mandíbulas – Penicílio molar com cerca de cinco ramos; um penicílio localizado

entre a região molar e a incisiva e muitas cerdas localizadas na lacinia mobilis; dois

penicílios na lacinia mobilis da mandíbula esquerda, um penicílio na lacinia mobilis da

mandíbula direita.

Maxílula – Endito da maxílula com dois penicílios no ápice arredondado; exito

da maxílula com 5 + 6 dentes, com 1 e 2 dentes, respectivamente, de cada grupo

menores que os demais; franja de cerdas laterais do tipo comum.

Maxila – Lobo lateral cerca de três vezes maior que o lobo mediano, este último

densamente coberto por cerdas simples e portando na parte central seis estruturas

delgadas e alongadas com ápice em forma de cúspide; lobo lateral com algumas cerdas

simples na região mais apical; no lobo lateral próximo ao limite com o lobo mediano

evidenciam-se duas cerdas iguais.

Maxilípede – Basepodito portando poucas cerdas escamosas na parte externa e

um espinho na interna; com cerdas contornando toda a borda superior; palpo com dois

tufos de cerdas; endito com a porção distal arredonda e com dois espinhos grandes, um

na base e um perto do ápice.

Pereiópodes – Com cerdas simples curtas e longas, espinhos simples ou com

ápice desfiado, com tufos de cerdas laterais com o ápice com duas franjas laterais a um

eixo central e uma com ápice cerdoso e com cerda carpal nos pereiópodes I.

Caracteres sexuais do macho – Carpo do pereiópode I com uma escova de cerdas

finas (na fêmea menos abrangente). Carpo do pereiópode VII sem tufo de cerdas laterais

(presente na fêmea). Sem maiores diferenciações.

Pleópodes – Sem áreas respiratórias. Exópode do pleópode I sem cerdas simples

ou pectinadas. Exópode do pleópode V com cerdas pectinadas na região medial, duas

cerdas bífidas próximas a borda externa, muitas cerdas pequenas contornando todo o

exópode.

Caracteres sexuais do macho – Endópode do pleópode I com ápice pontiagudo

numa extremidade e na outra arredondada com cerdas simples contornando; exópode do

pleópode I quadrangular (na fêmea arredondado). Endópode II mais longo que largo e

portando a lamela hialina; exópode do pleópode II triangular com uma cerda bífida na

borda interna e muitas cerdas contornando a borda externa. Exópode do pleópode V do

macho com uma fenda ou entalhe para encaixe do endópode do pleópode II do macho

(ausente na fêmea).

Figura 33 - Androdeloscia sp. n. 5: ♂ holótipo, habitus dorsal; ♂ parátipo, antenas.

0,1mm

0,0025mm

0,005mm

Figura 34 - Androdeloscia sp. n. 5: ♂ parátipo, peças bucais.

Mdr

Mx1

Mxp

Mdl

Mx2

0,0025mm

0,01mm

0,0025mm

0,005mm

Figura 35 - Androdeloscia sp. n. 5: ♂ parátipo, pleópodes; pereiópodes.

Plp I

Plp II

Pe VII

Exo V

0,01mm

0,005mm

0,01mm

Pe I

Figura 36 - Androdeloscia sp. n. 5: ♀ parátipo, exópodes dos pleópodes; pereiópodes.

Gráfico com as coordenadas b/c e d/c dos noduli laterales do macho.

Exo I

Exo V

Pe I

Pe VII

0,01mm

Androdeloscia sp. n. 6

(Figs. 37–40)

Material tipo: HOLÓTIPO: (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária,

03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 27/VII/1983. PARÁTIPOS: (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira

do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 30/I/1983; (MNRJ)

6♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al.

colls., 30/I/1983; (MNRJ) 1♂, 1♀ e 7 jovens, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta

secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 25/VIII/1982; (MNRJ) 2♂, 6♀, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

30/I/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W,

leg. J. Adis et al. colls., 26/X/1982; (MNRJ) 2♂, 2♀ e 7 jovens, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã

Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 29/XII/1982; (MNRJ) 2♂, 2♀ e 7

jovens, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et

al. colls., 25/VIII/1982; (MNRJ) 1♂, 2♀ e 2 jovens, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta

secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/X/1982; (MNRJ) 1♂, 2♀, BRASIL, Capoeira

do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 29/XII/1982;

(MNRJ) 1♂, 3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J.

Adis et al. colls., 01/II/1982; (MNRJ) 2♂, 1♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta

secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 21/I/1982; (MNRJ) 2♂, 16♀, BRASIL, Capoeira

do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 25/VIII/1982;

(MNRJ) 2♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J.

Adis et al. colls., 30/I/1983; (MNRJ) 1♂, 3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta

secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 25/VIII/1982; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do

rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/VII/1983; (MNRJ)

1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al.

colls., 28/II/1983; (MNRJ) 1♂, 3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária,

03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 23/III/1983; (MNRJ) 9♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã

Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 28/III/1983; (MNRJ) 3♂, 3♀,

BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

25/IV/1983; (MNRJ) 2♂, 1♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 28/III/1983; (MNRJ) 1♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã

Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 27/VI/1983; (MNRJ) 1♂, 2♀,

BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

27/VI/1983; (MNRJ) 1♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 23/XII/1982; (MNRJ) 1♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã

Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 29/IX/1982; (MNRJ) 1♂,

BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

28/II/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 24/VIII/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 28/III/1983; (MNRJ) 1♂, 1♀, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

28/III/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 23/XI/1982; (MNRJ) 1♂, 1♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã

Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/V/1983; (MNRJ) 2♂, 2♀,

BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

24/VIII/1983; (MNRJ) 1♂, 3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 27/VII/1983; (MNRJ) 1♂, 5♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã

Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 27/VII/1983; (MNRJ) 1♂,

BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

30/I/1983; (MNRJ) 1♂, 4♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 30/I/1983; (MNRJ) 1♂, 4♀, BRASIL, Lago Januari: água mista,

03º20‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al., 23/XI/1982; (MNRJ) 2♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 30/I/1983; (MNRJ) 8♂, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

30/I/1983; (MNRJ) 2♂, 6♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 30/I/1983; (MNRJ) 2♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/VII/1982; (MNRJ) 2♂, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

26/VII/1982; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/X/1982; (MNRJ) 4♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 25/VIII/1983; (MNRJ) 2♂, 2♀, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

26/V/1983; (MNRJ) 2♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 30/I/1983; (MNRJ) 2♂, 3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 23/XII/1982; (MNRJ) 1♂, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

25/VIII/1982; (MNRJ) 6♂, 10♀, BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º20‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al.

colls., 27/VI/1983; (MNRJ) 5♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária,

03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 30/I/1983; (MNRJ) 2♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã

Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 30/I/1983; (MNRJ) 2♂, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

24/VIII/1983; (MNRJ) 1♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 27/VI/1983; (MNRJ) 1♂, 3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã

Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 27/VI/1983; MNRJ) 1♂, 2♀,

BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

28/III/1983.

Diagnose. Espécime completamente despigmentado. Olhos compostos por 8 omatídeos

da cor do corpo. Noduli laterales visíveis, mas não flageliformes. Cefalotórax não

envolvido pelo primeiro pereionito e com forma ovalada. Antena sem cerdas, com dois

espinhos, um no quarto artículo e outro no quinto artículo do pedúnculo. Carpo do

pereiópode VII com uma cerda ornamental. Endópode do pleópode I com uma

chanfradura no ápice e uma fileira de quatro dentes pequenos na extremidade.

Descrição:

Dimensões – Maior macho com 3,95mm de comprimento e 0,5mm de largura;

maior fêmea não ovígera com 3,2mm de comprimento e 1mm de largura; fêmea ovígera

com 3,5mm de comprimento e 0,7mm de largura.

Coloração – Espécime completamente despigmentado. Devendo-se levar em

consideração que os espécimes foram mantidos em álcool e alguns no ácido pícrico e

que isso certamente influenciou na pigmentação dos mesmos.

Tegumento – Revestimento de cerdas simples pequenas o cefalotórax, pereon e

pleon. Noduli laterales visíveis, mas não flageliformes. Posição dos noduli laterales

como ilustrado na fig. 40.

Cefalotórax – Não envolvido pelo primeiro pereionito e com forma ovalada;

lobos laterais e frontal poucos desenvolvidos; tubérculos antenais sem exceder

lateralmente o cefalotórax; linha frontal tênue e linha supra-antenal bem marcada; olhos

compostos por oito omatídeos da cor do corpo.

Pleon – Estreitado em relação ao pereon. Pleonitos I com a metade do tamanho

dos outros.

Télson – Triangular com ponta e lados arredondados.

Antênula – Artículo proximal mais longo, distal e mediano com cerca do mesmo

comprimento; artículo distal com 2 estetascos apicalis e 5 subapicalis delgados.

Antena – sem cerdas; com dois espinhos, um no quarto e outro no quinto artículo

do pedúnculo; flagelo triarticulado, artículo distal mais longo, proximal e mediano

subiguais; órgão apical cerca de tão longo quanto o artículo distal, com sensilas livres

curtas; último artículo do pedúnculo com pequena protuberância na região distal.

Mandíbulas – Mandíbula esquerda com quatro penicílios molares; dois

penicílios e algumas cerdas localizadas na lacinia mobilis. Mandíbula direita com sete

penicílios molares; um penicílio localizado entre a região molar e a incisiva.

Maxílula – Endito da maxílula com dois penicílios (um mais robusto que o

outro) e com o lado oposto pontiagudo; exito da maxílula com 4 + 4 dentes; franja de

cerdas laterais do tipo comum.

Maxila – Lobo lateral cerca de três vezes maior que o lobo mediano, este último

com algumas cerdas simples e portando na parte central sete estruturas delgadas e

alongadas com ápice em forma de cúspide; lobo lateral com algumas cerdas simples

contornando apicalmente; no lobo lateral próximo ao limite com o lobo mediano

evidenciam-se duas cerdas iguais.

Maxilípede – Basepodito sem cerdas ou espinhos; palpo com dois tufos de

cerdas e algumas contornando a porção externa; endito com a porção distal arredonda e

cerdosa e com dois espinhos pequenos perto do ápice.

Pereiópodes – Com cerdas curtas e longas, espinhos simples ou com ápice

desfiado. Pereiópode I robusto e com cerdas sensoriais, ornamentais com o ápice com

duas franjas laterais a um eixo central e uma com ápice cerdoso e com cerda carpal nos

pereiópodes I.

Caracteres sexuais do macho – Carpo do pereiópode I com uma escova de cerdas

finas (na fêmea mais abrangente). Pereiópode VII robusto (na fêmea mais delgado);

carpo do pereiópode VII com uma cerda ornamental.

Pleópodes – Ausência de áreas respiratórias. Pleonito II menor que os outros

segmentos. Exópode V com cerdas pectinadas próximas ao ápice e duas cerdas maiores

bífidas acima das pectinadas.

Caracteres sexuais do macho – Endópode do pleópode I com uma chanfradura

no ápice e uma fileira de quatro dentes pequenos na extremidade; exópode do pleópode

I triangular (na fêmea quadrangular). Endópode II mais longo que largo e portando a

lamela hialina; exópode do pleópode II triangular com duas cerdas na borda interna e

cerdas contornando a borda externa. Exópode do pleópode V do macho com uma fenda

ou entalhe para encaixe do endópode do pleópode II do macho (ausente na fêmea); com

a fileira de cerdas pectinadas maior que a da fêmea.

Figura 37 - Androdeloscia sp. n. 6: ♂ holótipo, habitus dorsal; ♂ parátipo, antenas.

0,1mm

0,0025mm

0,01mm

Figura 38 - Androdeloscia sp. n. 6: ♂ parátipo, peças bucais.

Mdl

Mdr

Mx2

Mxp

Mx1

0,005mm

0,0025mm

0,005mm

Figura 39 - Androdeloscia sp. n. 6: ♂ parátipo, pleópodes; pereiópodes.

Plp I

Plp II

Pe VII

Pe I

Exo V

0,005mm

0,0025mm

0,005mm

Figura 40 - Androdeloscia sp. n. 6: ♀ parátipo, exópodes dos pleópodes; pereiópodes.

Gráfico com as coordenadas b/c e d/c dos noduli laterales do macho.

Exo I

Exo V

Pe I

Pe VII

0,01mm

0,005mm

Androdeloscia sp. n. 7

(Figs. 41–44)

Material tipo: HOLÓTIPO: (MNRJ 15064) 1♂, BRASIL, Ilha da Marchantaria: várzea, 3°15‟S -

59º58‟W, leg. J. Adis et al., 3/III/1982. PARÁTIPOS: (MNRJ 15065) 2♂, 7♀, BRASIL, Ilha da

Marchantaria: várzea, 3°15‟S - 59º58‟W, leg. J. Adis et al., 3/III/1982; (MNRJ 4113) 26♂, BRASIL (rio

Solimões) - Ilha da Marchantaria: Várzea, 59º58‟W, 03º15‟S, leg. J. Adis 17/II/1981; (MNRJ 4114) 22♀,

BRASIL (rio Solimões) - Ilha da Marchantaria: Várzea, 59º58‟W, 03º15‟S, leg. J. Adis 26/II/1981;

(MNRJ 4115) 5♂, BRASIL (rio Solimões) - Ilha da Marchantaria: Várzea, 59º58‟W, 03º15‟S, leg. J.

Adis, 03/V/1982; (MNRJ 4116) 8♀, BRASIL (rio Solimões) - Ilha da Marchantaria: Várzea, 59º58‟W,

03º15‟S, leg. J. Adis, 03/III/1982.

Diagnose: Pigmentação do corpo amarela. Olhos com 8 omatídeos amarelados da cor do

corpo. Corpo revestido por poucas cerdas, minúsculas e lisas. Antênula com 3

estetascos subapicalis. Antena com um lobo na região proximal do segundo artículo do

pedúnculo da antena. Noduli laterales bem visíveis. Endópode de pleópode I do macho

com o ápice truncado e portando alguns espinhos pequenos e um bem longo.

Descrição:

Dimensões – Maior macho com 4mm de comprimento e 1mm de largura; maior

fêmea não ovígera com 4mm de comprimento e 1mm de largura.

Coloração – Superfície do corpo sem pigmentação e omatídeos amarelados.

Tegumento – Liso com pequenas cerdas esparsas nas bordas dos pereonitos.

Posição dos noduli laterales como ilustrado na fig. 44.

Cefalotórax – Não envolvido pelo primeiro pereonito, sem uma linha frontal

definida e com uma linha supra-antenal bem marcada; Olhos com 8 omatídeos .

Pleon – Mais estreito que o pereon. Pleópode II com metade do tamanho dos

demais.

Télson – Caudalmente com margens fortes e ápice obtuso.

Antênula – Artículo distal da antênula com 2 estetascos apicalis e 3 subapicalis;

artículo distal maior que o mediano e o proximal juntos; o mediano é o menor deles.

Antena – Com cerdas curtas e espinhos simples ou com ápice desfiado; flagelo

triarticulado, artículo distal do flagelo mais longo que o primeiro e o segundo; com uma

longa cerda apical; o segundo é o menor; o segundo artículo do pedúnculo tem um lobo

na região proximal.

Mandíbulas – Um penicílio localizado entre a região molar e a incisiva, dois

penicílios e muitas cerdas localizadas na lacinia mobilis. Mandíbula esquerda com sete

molares e quatro na mandíbula direita.

Maxílula – Endito da maxílula com dois penicílios; exito da maxílula com 5 + 4

dentes; franja de cerdas laterais do tipo comum.

Maxila – Lobo lateral cerca de duas vezes maior que o lobo mediano, este último

com algumas cerdas simples e com quatro estruturas delgadas e alongadas com ápice

em forma de cúspide na parte central.

Maxilípede – Palpo com dois tufos de cerdas e um espinho na base; endito com

dois espinhos na porção distal arredonda e cerdosa e com um espinho perto do ápice.

Pereiópodes – Com cerdas curtas e longas, espinhos simples ou com ápice

desfiado. Pereiópode I robusto, cerdas sensoriais com o ápice com duas franjas laterais a

um eixo central e uma com ápice cerdoso e uma escova carpal.

Caracteres sexuais do macho – Pereiópode I do macho com menos espinhos que

na fêmea. Carpo do pereiópode I com uma escova de cerdas finas (na fêmea menos

abrangente). Pereiópode VII do macho mais delgado que o da fêmea. Ísquio do

pereiópode VII do macho portando mais cerdas e espinhos que o da fêmea; carpo do

pereiópode VII do macho sem um tufo de cerdas laterais (na fêmea presente).

Pleópodes – Ausência de áreas respiratórias. Pleonito II menor que os outros.

Exópode V com cerdas bífidas próximas a borda externa.

Caracteres sexuais do macho – Endópode do pleópode I com ápice truncado e

portando alguns espinhos pequenos e um grande; exópode do pleópode I arredondado

(triangular na fêmea). Endópode do pleópode II longo, com a metade distal estreita e

portando uma lamela hialina; exópode do pleópode II mais longo que largo, com três

espinhos e algumas cerdas caudalmente na margem externa. Exópode do pleópode V do

macho com uma fenda ou entalhe para encaixe do endópode do pleópode II do macho

(ausente na fêmea); sem a fileira de cerdas pectinadas (presente na fêmea). O exópode

V possui logo abaixo do ápice duas protrusões, uma pontuda e uma mais plana.

Figura 41 - Androdeloscia sp. n. 7: ♂ holótipo, habitus dorsal; ♂ parátipo, antenas.

0,1mm

0,005mm

0,01mm

Figura 42 - Androdeloscia sp. n. 7: ♂ parátipo, peças bucais.

Mdl

Mdr

Mx2

Mxp

Mx1

0,0025mm

0,05mm

Figura 43 - Androdeloscia sp. n. 7: ♂ parátipo, pleópodes; pereiópodes.

Plp I

Plp II

Pe VII

Pe I

Exo V

0,02mm

0,01mm

0,02mm

0,05mm

0,02mm

Exo I

Exo V

Pe I

Pe VII

0,01mm

0,005mm

Figura 44 - Androdeloscia sp. n. 7: ♀ parátipo, exópodes dos pleópodes; pereiópodes.

Gráfico com as coordenadas b/c e d/c dos noduli laterales do macho.

Androdeloscia sp. n. 8

(Figs. 45–48)

Material tipo: HOLÓTIPO: (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária,

03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 25/IV/1983. PARÁTIPOS: (MNRJ) 3♂, 1♀, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

25/IV/1983; (MNRJ) 7♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 30/I/1983; (MNRJ) 2♂, 5♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/VII/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

30/I/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W,

leg. J. Adis et al. colls., 26/X/1982; (MNRJ) 1♂, 1♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta

secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 29/XII/1982; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do

rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 29/XII/1982; (MNRJ)

1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al.

colls., 23/XI/1982; (MNRJ) 1♂, 3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária,

03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 30/I/1983; (MNRJ) 4♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã

Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 25/VIII/1982; (MNRJ) 1♂, 1♀,

BRASIL, Lago Januari: água mista, 03º20‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 30/I/1983; (MNRJ) 1♂,

BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

28/III/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 28/III/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 27/VI/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

28/II/1983; (MNRJ) 2♂, 1♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 24/VIII/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 24/VIII/1983; (MNRJ) 1♂, 1♀, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

25/IV/1983; (MNRJ) 2♂, 3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 24/VIII/1983; (MNRJ) 1♂, 1♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã

Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 23/II/1983; (MNRJ) 1♂, 6♀,

BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

27/VI/1983; MNRJ) 3♂, 12♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/VII/1983; (MNRJ) 1♂, 1♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã

Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/V/1983; (MNRJ) 2♂, 6♀,

BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

26/X/1982; (MNRJ) 1♂, 3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 27/VI/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 27/VI/1983; (MNRJ) 3♂, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

30/I/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W,

leg. J. Adis et al. colls., 26/X/1982; (MNRJ) 1♂, 3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta

secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/X/1982; (MNRJ) 2♂, 3♀, BRASIL, Capoeira

do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/VII/1982;

(MNRJ) 2♂, 3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J.

Adis et al. colls., 26/X/1982; (MNRJ) 1♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta

secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/X/1982; (MNRJ) 1♂, 12♀, BRASIL, Capoeira

do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/X/1982;

(MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J.

Adis et al. colls., 28/II/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária,

03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 29/XII/1982; (MNRJ) 1♂, 4♀, BRASIL, Capoeira do rio

Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 29/IX/1982; (MNRJ) 1♂,

4♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al.

colls., 25/X/1983; (MNRJ) 4♂, 6♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária,

03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 28/II/1983; (MNRJ) 2♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio

Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/V/1983; (MNRJ) 1♂,

3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al.

colls., 26/V/1983; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 29/XII/1982; (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 25/X/1983; (MNRJ) 2♂, 4♀, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

25/VIII/1982; (MNRJ) 1♂, 5♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 25/VIII/1982; (MNRJ) 1♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã

Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 30/I/1983; (MNRJ) 3♂, 4♀,

BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

28/III/1983; (MNRJ) 2♂, 1♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 30/I/1983; (MNRJ) 2♂, 3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 27/VI/1983; (MNRJ) 1♂, 2♀, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

26/V/1983; (MNRJ) 1♂, 2♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/V/1983; (MNRJ) 3♂, 3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/VII/1983; (MNRJ) 1♂, 1♀, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls.,

28/II/1983; (MNRJ) 2♂, 3♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S,

60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 28/II/1983; (MNRJ) 1♂, 1♀, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim:

Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al. colls., 26/VII/1983.

Diagnose. Superfície do corpo sem pigmentação. Olhos com 8 omatídeos da cor do

corpo. Noduli laterales visíveis, mas não flageliformes. Cefalotórax não envolvido pelo

primeiro pereionito e com forma ovalada. Antena sem cerdas, com dois espinhos, um no

quarto artículo e outro no quinto artículo do pedúnculo. Carpo do pereiópode VII com

uma cerda ornamental. Endópode do pleópode I com uma chanfradura no ápice e uma

fileira de quatro dentes pequenos na extremidade.

Descrição:

Dimensões – Maior macho com 3,5mm de comprimento e 1mm de largura;

maior fêmea não ovígera com 4mm de comprimento e 1mm de largura.

Coloração – Espécime completamente despigmentado. Devendo-se levar em

consideração que os espécimes foram mantidos em álcool e alguns no ácido pícrico e

que isso certamente influenciou na pigmentação dos mesmos.

Tegumento – Liso com pequenas cerdas esparsas sobre o cefalotórax, pereon e

pleon. Posição dos noduli laterales como ilustrado na fig. 48.

Cefalotórax – Metade envolvido pelo primeiro pereonito; lobos frontal e laterais

poucos desenvolvidos; linha frontal e linha supra-antenal bem marcadas; olhos

compostos por oito omatídeos da cor do corpo; tubérculos antenais excedem o

cefalotórax.

Pleon – Estreitado em relação ao pereon. Pleonitos I e II menores que os demais.

Télson – Triangular com ponta arredonda e lados retos.

Antênula – Artículo distal da antênula com 2 estetascos apicalis (quebrados no

processo de montagem) e 7 subapicalis; artículo proximal maio que o mediano e o

proximal; o mediano é o menor deles.

Antena – com cerdas curtas e espinhos simples; flagelo triarticulado, artículo

mediano mais curto que o proximal e o distal, este último sendo o maior de todos; órgão

apical cerca de tão longo quanto o artículo distal, com sensilas livres curtas.

Mandíbulas – Sem penicílio localizado entre a região molar e a incisiva.

Mandíbula esquerda com seis penicílios molares e muitas cerdas e dois penicílios na

lacinia mobilis. Mandíbula direita com cinco penicílios molares e muitas cerdas

pequenas e um penicílio na lacinia mobilis.

Maxílula – Endito mediano com dois penicílios, numa das extremidades do

ápice, o interno mais delgado que o externo; a outra extremidade é pontiaguda; endito

lateral com 4 + 4 dentes e mais 1 curto na parte externa. Franja de cerdas laterais do tipo

comum.

Maxila – Lobo lateral cerca de três vezes maior que o lobo mediano, este último

com algumas cerdas simples e com sete estruturas delgadas e alongadas com ápice em

forma de cúspide na parte central Lobo lateral com cerdas contornando a borda

superior; próximo ao limite com o lobo mediano evidenciam-se duas cerdas.

Maxilípede – Basepodito com um espinho e com cerdas contornando a borda

superior; palpo com dois tufos de cerdas e algumas contornando a porção externa;

endito com a porção distal arredonda e cerdosa e com dois espinhos próximos ao ápice,

um grande e um pequeno.

Pereiópodes – Com cerdas simples curtas e longas, espinhos simples ou com

ápice desfiado. Pereiópode I robusto, carpo com escova carpal, cerdas sensoriais e

ornamentais com o ápice com duas franjas laterais a um eixo central e uma com ápice

cerdoso.

Caracteres sexuais do macho – Carpo do pereiópode I com uma escova carpal de

cerdas finas (na fêmea com cerdas mais grossas). Pereiópode VII com dáctilo

apresentando espinhos e cerdas (em menor número nas fêmeas).

Pleópodes – Ausência de áreas respiratórias. Pleonitos I, II e III de tamanhos

iguais e menores que os outros dois. Exópode I quadrangular. Exópode V portando

próximo à margem externa duas cerdas bífidas e sem cerdas pectinadas.

Caracteres sexuais do macho – Endópode do pleópode I com ápice dando uma

volta e meia, tipo espiral; exópode I quadrangular (igual na fêmea). Endópode II mais

longo que largo e portando a lamela hialina; exópode do pleópode II triangular com

uma cerda simples na borda interna. Exópode do pleópode V do macho com uma fenda

ou entalhe para encaixe do endópode do pleópode II do macho (ausente na fêmea).

Figura 45 - Androdeloscia sp. n. 8: ♂ holótipo, habitus dorsal; ♂ parátipo, antenas.

0,2mm

0,005mm

0,01mm

Figura 46 - Androdeloscia sp. n. 8: ♂ parátipo, peças bucais.

Mdl

Mdr

Mx2

Mxp

Mx1

0,0025mm

0,005mm

0,0025mm

Figura 47 - Androdeloscia sp. n. 8: ♂ parátipo, pleópodes; pereiópodes.

Plp I

Plp II

Pe VII

Pe I

Exo V

0,005mm

0,01mm

0,005mm

0,0025mm

Figura 48 - Androdeloscia sp. n. 8: ♀ parátipo, exópodes dos pleópodes; pereiópodes.

Gráfico com as coordenadas b/c e d/c dos noduli laterales do macho.

Exo I

Exo V

Pe I

Pe VII

0,005mm

0,01mm

Xiphoniscus sp. n.

(Figs. 49–52)

Material examinado: HOLÓTIPO: (MNRJ) 1♂, BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta

secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al., 17/II/1982. PARÁTIPO: (MNRJ) 1♀, BRASIL,

Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al., 17/II/1982; 1♂,

BRASIL, Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária, 03º02‟S, 60º17‟W, leg. J. Adis et al.,

01/II/1982.

Diagnose. Espécime despigmentado. olhos compostos por seis omatídeos. Penicílio

molar com seis ramos. Pereionito II com placa coxal alongada caudalmente, alcançando

o III pereionito. Endópode do pleópode I com ápice pontiagudo nas laterais, truncado

apicalmente e três projeções em forma de espinho.

Descrição:

Dimensões – Maior macho com 3mm de comprimento e 0,9mm de largura;

maior fêmea não ovígera com 2,7mm de comprimento e 0,89mm de largura; fêmea

ovígera com 3mm de comprimento e 1mm de largura.

Coloração – Espécime despigmentado.

Tegumento – Revestimento de cerdas pequenas sobre o cefalotórax, pereon e

pleon, direcionadas para a região anterior do corpo. Posição dos noduli laterales como

ilustrado na fig. 52.

Cefalotórax – Parcialmente envolvido pelo primeiro pereonito; lobo frontal

pouco desenvolvido e lobos laterais ausentes; linha frontal bem tênue; linha supra-

antenal fortemente marcada nas extremidades e fracamente em direção ao centro; olhos

compostos por seis omatídeos; tubérculos antenais excedendo lateralmente o

cefalotórax.

Pleon – Estreitado em relação ao pereon. Pleonito I maior que os demais.

Télson – Triangular com ponta arredonda e lados retos.

Antênula – Artículo mediano mais curto, proximal maior que o distal; artículo

distal com 2 estetascos apicalis e 5 estetascos subapicalis.

Antena – com cerdas curtas e espinhos simples; flagelo triarticulado, artículo

distal mais longo, proximal e mediano subiguais; órgão apical mais longo que o artículo

distal, com sensilas livres curtas.

Mandíbulas – Penicílio molar com seis ramos. Mandíbula esquerda com dois

penicílios e muitas cerdas pequenas localizadas na lacinia mobilis. Mandíbula direita

com dois penicílios e muitas cerdas localizadas na lacinia mobilis e um penicílio na

região entre a parte molar e a incisiva.

Maxílula – Endito mediano com dois penicílios iguais; endito lateral com 3 + 5

dentes, com 1 pequeno na parte inteira. Franja de cerdas laterais do tipo comum.

Maxila – Lobo lateral cerca de duas vezes maior que o lobo mediano, este último

com algumas cerdas simples e com seis estruturas delgadas e alongadas com ápice em

forma de cúspide na parte central; no lobo lateral próximo ao limite com o lobo

mediano evidenciam-se duas cerdas.

Maxilípede – Basepodito com espinhos e cerdas, algumas contornando a borda

superior; palpo com dois tufos de cerdas, com um espinho na base; endito com a porção

distal arredonda e cerdosa e com dois espinhos próximos ao ápice, um grande e um

pequeno, além de muitas cerdas pequenas.

Pereiópodes – Com cerdas curtas e longas, espinhos simples ou com ápice

desfiado; carpo do pereiópode VII com tufo de cerdas laterais e com cerda carpal.

Pereiópode I robusto, carpo com cerdas sensoriais com o ápice com duas franjas laterais

a um eixo central e uma com ápice cerdoso.

Caracteres sexuais do macho – Carpo do pereiópode I com uma escova de cerdas

finas (na fêmea poucas cerdas e cerca de cinco espinhos). Pereiópode VII com um

espinho na região distal externa do baso (cinco na fêmea). Pereionito II com placa coxal

alongada caudalmente, alcançando o III pereionito.

Pleópodes – Ausência de áreas respiratórias. Exópode do pleópode V com forma

triangular e duas cerdas na borda externa.

Caracteres sexuais do macho – Endópode do pleópode I com ápice pontiagudo

nas laterais, truncado apicalmente e três projeções em forma de espinho; exópode I

triangular (na fêmea quadrangular). Endópode II mais longo que largo e portando a

lamela hialina; exópode do pleópode II triangular com duas cerdas simples e pequenas

na borda interna. Exópode do pleópode V do macho com uma fenda ou entalhe para

encaixe do endópode do pleópode II do macho (ausente na fêmea); exópode V sem uma

fileira de cerdas pectinadas (presente na fêmea).

Figura 49 - Xiphoniscus sp.: ♂ holótipo, habitus dorsal; vista lateral; ♂ parátipo, antenas.

0,01mm

0,005mm

0,01mm

0,005mm

Figura 50 - Xiphoniscus sp.: ♂ parátipo,.peças bucais.

Mdl

Mx2

Mxp

Mx1

0,0025mm

0,05mm

0,0025mm

Mdr

Figura 51 - Xiphoniscus sp: ♂ parátipo, pleópodes; pereiópodes.

Plp I

Plp II

Pe VII

Pe I

Exo V

0,05mm

0,005mm

Figura 52 - Xiphoniscus sp: ♀ parátipo, exópodes dos pleópodes; pereiópodes. Gráfico

com as coordenadas b/c e d/c dos noduli laterales do macho.

Exo I

Exo V

Pe I

Pe VII

0,005mm

0,01mm

5.4 Taxonomia de Androdeloscia silvatica (Lemos de Castro &

Souza, 1986)

Depois de algumas análises, utilizando-se a literatura e alguns exemplares da

coleção Amazônica, foi possível observar que a espécie Prosekia silvatica Lemos de

Castro & Souza, 1986 e Androdeloscia silvatica (Lemos de Castro & Souza, 1986)

tratam-se de espécies diferentes. Contrastando com a hipótese de LEISTIKOW (1999),

conclui-se que se trata de um caso de homonímia, segundo o Código Internacional de

Nomenclatura Zoológica (ICZN).

5.5 Novos registros

Registraram-se duas novas ocorrências: 1) do gênero Xiphoniscus Vandel,

1968, para Capoeira do rio Tarumã Mirim: Floresta secundária (03º02‟S, 60º17‟W). O

gênero era registrado anteriormente somente para sua localidade tipo, Puyo no Equador

(LEISTIKOW, 2000b). Xiphoniscus sp. n., caracterizada neste trabalho, tornou um gênero

não monotípico; e 2) Androdeloscia escalonai Schmidt & Leistikow, 2005, que antes

era registrada apenas na Venezuela, agora possui registro na Reserva Florestal Adolpho

Ducke: Terra firme (2º55‟S, 59º59‟W).

5.6 Inclusão e posicionamento do gênero Alboscia Schultz, 1995

em Prosekiini

Após a análise de parcimônia, o gênero Alboscia Schultz, 1995 foi incluído na

tribo, na proposta filogenética de LEISTIKOW (2001), por possuir uma antênula com dois

tufos de estetascos separados por um espaço. Essa autapomorfia está presente em todos

os gêneros de Prosekiini. Alboscia é constituído pelas espécies A. elongata Schultz,

1995 com distribuição para a província de Concepción no Paraguai; por A. ornata

Araujo, 1999, A. silveirensis Araujo, 1999 e A. itapuensis Araujo & Quadros, 2005 no

Rio Grande do Sul, Brasil, estando estritamente relacionado ao gênero

Andenoniscus, ambos compartilham uma única sinopomorfia: redução da linha supra-

antenal (Fig. 53).

A tribo passa a ser constituída por 7 gêneros e tem um acréscimo de 4 espécies.

Todas as espécies compartilham uma única sinapomorfia, os dentes ctenados.

Figura 53 - Cladograma de Prosekiini. Apomorfias: 1) antênula com

artículo distal separado do artículo subapical por um espaço; 2) tamanho

reduzido ao máximo em 5mm e olhos com 8 omatídeos; 3) noduli laterales

com a mesma distância da borda lateral das placas coxais; 4) noduli

laterales flageliformes e exópode do pleópode I do macho arredondado; 5)

placa coxal II alongada caudalmente; 6) endópode do pleópode II do macho

mais longo que largo; 7) exópode do pleópode V do macho com margem

forte para suportar o pleópode II; 8) linha supra-antenal reduzida; 9)

exópode do pleópode V do macho com o ápice puxado pra fora

mediodistalmente; 10) exópode do pleópode V do macho com um sulco

médio-caudal delimitado por cerdas pectinadas; 11) lobos laterais

proeminentes presentes; 12) dentes pectinados.

Alboscia

Ero

philoscia

drodeloscia

Xiphoniscus

Metaprosekia

Prosekia

outgroup

5.7 Chave dicotômica para os gêneros de Prosekiini

1. Nodulus lateralis com a mesma distância da margem lateral das placas

coxais...........................................................................................................Metaprosekia

1‟. Nodulus lateralis 4 inserido mais dorsalmente na placa coxal....................................2

2. Linha supra-antenal reduzida........................................................................................3

2‟. Linha supra-antenal bem marcada.............................................................................4

3. Dentes da maxila ctenados...............................................................................Alboscia

3‟. Dentes da maxila não ctenados................................................................Andenoniscus

4. Placas coxais sem alongamentos..................................................................................5

4‟. Placa coxal II alongada caudalmente..........................................................Xiphoniscus

5. Olhos compostos por mais de 20 omatídeos....................................................Prosekia

5‟. Olhos compostos de 7 a 10 omatídeos.........................................................................6

6. Exópode 5 do macho com uma fenda na margem medial.......................Androdeloscia

6‟. Exópode 5 do macho extraordinariamente puxado para cima...................Erophiloscia

5.8 Chave dicotômica para as espécies de Prosekiini da Amazônia

brasileira:

1. Pereiópode VII do macho portando lobo no mero.......................................................2

1‟.Pereiópode VII do macho sem diferenciação no mero.................................................3

2. Mero com lobo simples e pequeno.................................................Androdeloscia sp. 1

2‟.Mero com lobo grande, chegando a alcançar a metade do própodo..............A. digitata

3. Olhos compostos de 6 a 9 omatídeos............................................................................7

3‟. Olhos compostos por 10 ou mais omatídeos................................................................4

4. Endito da maxila com 4+5 dentes................................................................ A. silvatica

4‟.Endito da maxila com 4+4 dentes ................................................................................5

5. Penicílio molar composto por 4 ramos.............................................................. A. sp. 2

5‟. Penicílio molar composto por mais de 4 ramos...........................................................6

6. Penicílio molar composto por 6 ramos......................................Prosekia albamaculata

6‟. Penicílio molar composto por 6 ramos........................................................P. insularis

7. Olhos compostos por 8 omatídeos................................................................................9

7‟. Olhos compostos por menos de 8 omatídeos...............................................................8

8. Olhos compostos por 7 omatídeos..............................................................A. escalonai

8‟. Olhos compostos por 6 omatídeos........................................................Xiphoniscus sp.

9. Antênula com 3 estetascos subapicalis...................................................................10

9‟. Antênula com mais de 3 estetascos subapicalis........................................................11

10. Endito da maxila com 4+4 dentes................................................................ P. lejeuni

10‟.Endito da maxila com 5+5 dentes................................................................... A. sp. 7

11. Antênula com 5 estetascos subapicalis............................................................ A. sp. 6

11‟.Antênula com mais de 5 estetascos subapicalis.......................................................12

12. Antênula com 7 estetascos subapicalis............................................................ A. sp. 8

12‟.Antênula com 6 estetascos subapicalis.....................................................................13

13. Número de dentes na maxílula igual a 4+4...............................................................14

13‟.Número de dentes na maxílula diferente de a 4+4...................................................15

14.Penicílios molares direito e esquerdo composto por 4 e 6 ramos,

respectivamente...................................................................................................... A. sp. 3

14‟.Penicílios molares direito e esquerdo composto por 4 e 6 ramos,

respectivamente................................................................................................ A. tarumae

15. Penicílio molar composto por 5 ramos............................................................. A. sp. 5

15‟.Penicílio molar composto por 6 ramos............................................................ A. sp. 4

Androdeloscia silvatica (Lemos de Castro & Souza, 1986) que consta na chave

trata-se da espécie descrita por Lemos de Castro & Souza. A descrita por LEISTIKOW,

1999 não foi incluída na chave.

5.9 Distribuição geográfica das espécies de Prosekiini na América do

Sul (Mapas de pontos)

Figura 54 - Mapa de distribuição das espécies dos gêneros Alboscia, Andenoniscus,

Prosekia e Androdeloscia spp. n. na América do Sul.

Figura 55 - Mapa de distribuição das espécies dos gêneros Androdeloscia,

Erophiloscia, Metaprosekia e Xiphoniscus sp. n. na América do Sul.

. sp.n

6 Discussão

Até então existiam 37 espécies descritas na tribo Prosekiini, sendo 7 registradas

para o Brasil e só 4 para a região da Amazônia brasileira (SCHUMALFUSS, 2003;

SCHMIDT & LEISTIKOW, 2005). Após esse estudo, os Prosekiini possuem um total de 46

espécies, sendo 13 para Amazônia brasileira. Anteriormente, registravam-se 2 gêneros,

Androdeloscia Leistikow, 1999 e Prosekia Leistikow, 2001. Depois das análises

taxonômicas registram-se 3, o gênero Xiphoniscus Vandel, 1968 que teve sua

distribuição ampliada para a Amazônia brasileira. O gênero deixou o status de

monotípico, devido a caracterização de Xiphoniscus sp.

As espécies abaixo foram descritas no gênero Androdeloscia por

compartilharem o seguinte caracter apomórfico: exópode do pleópode V do macho com

uma fenda ou entalhe para encaixe do endópode do pleópode II do macho, única

apomorfia do gênero segundo SCHMIDT & LEISTIKOW (2005). As espécies também

apresentam a inserção do nodulus lateralis na IV placa coxal LEISTIKOW (2000). Segue

a descrição das mesmas:

Androdeloscia sp. n. 1

Ela se distingue das demais espécies do gênero, principalmente: 1) pela forma

do endópode do pleópode 1 do macho; 2) pela forma da maxílula e do endito da

maxílula; 3) diferencia-se de Androdeloscia digitata, A. ferrarai, A. formosa, A.

longiunguis, A. merolobata, A. pseudosilvatica e A. silvatica, portadoras de lobo no

mero, por apresentar um único e pequeno lobo; 4) pela posição do nodulus lateralis IV

que localiza-se próximo a borda anterior.

Androdeloscia sp. n. 2

Ela difere das demais espécies do gênero por: 1) endópode do pleópode 1 do

macho; 2) exópode II com algumas fileiras de cerdas pectinadas da parte medial da

borda interna quase chegando na altura das cerdas na borda externa; 3) exópode V da

fêmea que possui no ápice uma fileira de cerdas pectinadas; 4) pela posição do nodulus

lateralis I que localiza-se próximo a borda anterior que os demais.

Androdeloscia sp. n. 3

Ela se distingue das demais espécies do gênero por: 1) endópode 1 do macho;

2) dois espinhos medialmente na borda externa da mandíbula direita; 3) endito da

maxílula com uma pontinha em um dos lados da extremidade apical; 4) pela posição do

nodulus lateralis IV que apresenta uma sobreposição nas coordenadas b/c e d/c.

Androdeloscia sp. n. 4

Ela difere das outras espécies do gênero por: 1) endópode do pleópode 1 do

macho; 2) fêmeas com tamanho de 5,0mm; 3) dois espinhos (não próximos) na parte

inferior da borda externa da mandíbula esquerda; 4) franja de cerdas laterais do tipo

comum e com uma margem externa que se assemelha a Androdeloscia sp. n. 1, sendo a

elevação bem menos conspícua; 5) exópode do pleópode II triangular com três cerdas

na borda interna; 6) pela posição dos noduli laterales que formam quase uma curva com

as coordenadas b/c.

Androdeloscia sp. n. 5

Ela difere das outras espécies do gênero por: 1) endópode do pleópode 1 do

macho; 2) pigmentação que vai ficando fraca à medida que se aproxima da ponta,

ficando pigmentado até a base do quinto artículo do pedúnculo; 3) pela posição dos

noduli laterales que formam uma curva com as coordenadas b/c, diferente da

Androdeloscia sp. n. 4 que não forma completamente.

Androdeloscia sp. n. 6

Ela difere das outras espécies do gênero por: 1) endópode do pleópode I com

uma chanfradura no ápice e uma fileira de quatro dentes pequenos na extremidade; 2)

macho maior com 3,95mm de comprimento e 0,05mm de largura; 3) com a fileira de

cerdas pectinadas do pleópode V do macho maior que a da fêmea; 4) pela posição dos

noduli laterales que se localizam mais próximos às bordas.

Androdeloscia sp. n. 7

Ela difere das outras espécies do gênero por: 1) endópode do pleópode 1 do

macho com ápice truncado; 2) número de 3 estetascos subapicalis; 3) um lobo na região

proximal do segundo artículo do pedúnculo da antena; 3) pela posição dos noduli

laterales II e III que se localizam mais próximos à borda anterior que os demais.

Androdeloscia sp. n. 8

Ela difere das outras espécies do gênero por: 1) endópode do pleópode 1 do

macho e 2) exópode do pleópode II triangular com uma cerda simples na borda externa.

Xiphoniscus sp. n.

A espécie foi descrita no gênero Xiphoniscus por compartilhar o seguinte

caracter apomórfico: a placa coxal II alongada chegando a alcançar o final do pereionito

III.

Ela difere da outra espécie do gênero por: 1) endópode do pleópode 1 do

macho; 2) penicílio molar com seis ramos; 3) por apresentar 6 omatídeos; 4) endito

lateral com 3 + 5 dentes, com 1 pequeno na parte inteira; 5) maxila sem cerdas

pectinadas; 6) número de estetascos subapicais; 7) sem cerdas pectinadas na maxila; 8)

antena mais robusta.

LEISTIKOW (1999) fez uma nova combinação entre as espécies Prosekia

silvatica Lemos de Castro & Souza, 1986 e Androdeloscia silvatica Leistikow, 1999,

mas não examinou os tipos. Para confirmar as nossas hipóteses, o pedido do material

tipo foi feito ao Museu Nacional do Rio de Janeiro, mas se encontrava em péssimas

condições. Mesmo assim, foram feitas observações e comparações minuciosas com as

peças de P. silvatica e as ilustrações de A. silvatica. Notou-se que existem algumas

diferenças como: o número de estetascos subapicalis das antênulas, o número de

penicílios molares das mandíbulas direita, o pereiópode VII de P. silvatica que não

apresenta lobo no mero e pela forma do endópode do pleópode I do macho.

Outra observação é que P. silvatica, como foi feito por LEISTIKOW (1999),

pertence ao gênero Androdeloscia, mas a espécie descrita por ele não. Trata-se de um

caso de homonímia. E de acordo com o princípio da prioridade do ICZN a espécie

válida é a mais antiga, Androdeloscia silvatica (Lemos de Castro & Souza, 1986). E a

espécie mais nova, o homônimo junior, deve receber um nome novo, Androdeloscia sp.

O material tipo da espécie mais nova será pedido para confirmar esta proposta.

Através dessas análises, foi possível reconhecer uma espécie já conhecida para

a ciência: Androdeloscia escalonai Schmidt & Leistikow, 2005. A espécie só tinha

registro para localidade tipo, Venezuela (11°09.17‟N / 68°36.27‟W).

LEISTIKOW (2001) já relatava que possivelmente Alboscia pertencesse à tribo

Prosekiini, mas não o fez. Ele também afirmou que os dentes ctenados seriam uma

aquisição do gênero. Analisando as ilustrações e descrições das espécies do gênero foi

possível observar que todas apresentam a autapomorfia compartilhada pela tribo,

antênula com 2 grupos de estetascos LEISTIKOW (2001) e segundo SCHMIDT (2008),

com o ápice côncavo. A presença dessa autapomorfia nas espécies dá embasamento

para incluí-lo. Mas uma análise do material tipo será feita a fim de confirmar a inclusão

Os Prosekiini estão bem distribuição na Venezuela, Bolívia, mas nas outras

localidades mostram-se com poucos registros. No Brasil a distribuição era ainda menor,

após esse estudo foi possível ampliar a distribuição da tribo. Primeiro com as novas

espécies e segundo com a inclusão de Alboscia aos Prosekiini.

7 Conclusão

1. O estudo do material da Coleção contribuiu para que novas espécies fossem

caracterizadas, aumentando o número de registro para a tribo Prosekiini e para a

Amazônia;

2. Observou-se que a combinação entre as espécies Prosekia silvatica Lemos de Castro

& Souza, 1986 e Androdeloscia silvatica (Lemos de Castro & Souza, 1986) não é

válida, pois se trata de espécies diferentes;

3. Destaca-se a necessidade de um nome novo para a espécie Androdeloscia sp. descrita

por LEISTIKOW (1999) como sendo Androdeloscia silvatica (Lemos de Castro & Souza,

1986), levando em consideração o Princípio da Prioridade do ICZN;

4. A espécie Androdeloscia silvatica (Lemos de Castro & Souza, 1986) deve ser

redescrita para que um maior número de caracteres seja ilustrado e descrito;

5. O gênero Alboscia foi incluído na tribo Prosekiini por apresentar uma das

sinapomorfias que é compartilhada por todos os gêneros da tribo;

6. É necessária uma análise mais detalhada para assegurar a inclusão de Alboscia na

tribo;

7. As chaves são importantes para comparar a diversidade de espécies e para

identificação dos táxons, além de facilitar o trabalho dos taxonomistas;

8. Os mapas apontam para uma escassez de amostragens dos Prosekiini nas regiões

central, sudeste e nordeste do Brasil. Faz-se necessário um esforço de coleta para o

aumento do conhecimento sobre os Prosekiini destas áreas.

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