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Maurício Alves de Campos
Riqueza de espécies de poríferos (Porifera,
Demospongiae) coletados pelo
Programa Antártico Brasileiro – PROANTAR
(1983–1991)
Universidade Federal do Rio Grande do Sul
Porto Alegre
2007
Dissertação de Mestrado apresentada ao Programa de Pós-
Graduação em Biologia Animal, Instituto de Biociências da
Universidade Federal do Rio Grande do Sul, como requisito à
obtenção do Título de Mestre em Biologia Animal.
Área de Concentração: Biodiversidade
Orientadora: Prof. Dra. Inga Ludmila Veitenheimer-Mendes
Co-orientadora: Dra. Beatriz Mothes
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ii
Riqueza de espécies de poríferos (Porifera,
Demospongiae) coletados pelo
Programa Antártico Brasileiro – PROANTAR
(1983–1991)
Maurício Alves de Campos
Aprovada em ________/_________/________
Banca examinadora:
___________________________________________________________________
Dr. Edmundo Ferraz Nonnato
___________________________________________________________________
Dra. Cléa Beatriz Lerner
___________________________________________________________________
Dra. Norma Würdig
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iii
AGRADECIMENTOS
Aos meus pais, por terem estimulado, apoiado e acreditado em meu trabalho desde o
início, em especial ao meu pai por ter, com sua paixão pela Agronomia, inspirado meu
caminho através da Biologia. À minha família por ter compreendido as ausências e
valorizado os momentos de folga, com carinho e constante suporte. À minha namorada
Mariane Leonardo dos Santos, por dividir o fascínio pela Biologia e talvez por essa razão
compreender o que uma pesquisa demanda. Aos meus amigos pelo incentivo diário.
À Dra. Beatriz Mothes por ter sido a incansável orientadora, mas principalmente
agradeço por ter sido muito mais que isso: a amiga de todas as horas, a professora paciente,
a incentivadora vigorosa, a colega entusiasta e a mestra inesquecível.
À Dra. Inga Ludmila Veitenheimer Mendes pela gentil acolhida e pela honra de ter
aceitado orientar-me; sinto-me eternamente grato pela amizade, carinho, apoio e pelos
ensinamentos que levarei para a vida toda.
Aos meus queridos colegas do Setor de Poríferos Marinhos do MCN/FZB; dedico
parte dos meus esforços para todos aqueles com quem divido até hoje o prazer de fazer
parte do mesmo grupo de pesquisa; o auxílio de todos vocês foi imprescindível em todas as
etapas deste trabalho: à Dra. Cléa Beatriz Lerner, por todo o incentivo e também pela sua
sabedoria a qual sempre utilizei como referência; ao mestrando João Luís Carraro, pelo
longo de tempo em que trabalhamos juntos sempre com seu companheirismo e dedicação;
ao biólogo Rafael Antônio Eckert e ao estagiário Gustavo Leite Kasper, também pelo
tempo em que dividimos o mesmo setor; aos bolsistas Alexandre Bondan Dias, Gabriel
Souza, Elenara Véras dos Santos e Maurício Correia Martins, pelo apoio e colaboração, e
também a antigos bolsistas e estagiários que colaboraram em alguma etapa deste trabalho:
iv
Julyana Beheregaray dos Santos, Rachel de Miranda Furtado Gomes e André Luís Ferraz
de Souza.
Aos colegas do Programa de Pós-Graduação em Biologia Animal da UFRGS, pelo
carinho, incentivo e amizade; tive a felicidade de compartilhar o curso com pessoas de
grande capacidade e que certamente enriqueceram meu conhecimento. Agradeço por todos
os momentos compartilhados durante as disciplinas do curso.
Aos professores do Programa de Pós-Graduação em Biologia Animal da UFRGS
pela generosidade em propagar seus conhecimentos em nome do saber.
Aos colegas do Laboratório de Malacologia, Departamento de Zoologia da UFRGS,
pela acolhida e companheirismo durante a realização do curso; em especial à bióloga M.
Sc. Helena Nussbaum de Jongh, ao doutorando Fábio Wiggers e à mestranda Aline Leite da
Silva, pela convivência durante diversas etapas do trabalho.
A todos os funcionários do Museu de Ciências Naturais da Fundação Zoobotânica
do Rio Grande do Sul; presto aqui meus sinceros agradecimentos pelo carinho,
companheirismo e amizade.
Ao Sr. Cleodir Mansan pela metalização dos ‘stubs’ para Microscopia Eletrônica.
À Ruth Desqueyroux-Faúndez, do Muséum d'Histoire Naturelle de Genebra, Suíça e
Dr. Eduardo Hajdu, do Museu Nacional da Universidade Federal do Rio de Janeiro, pelo
envio de material bibliográfico.
Às bibliotecárias Maria de Jesus Pureza, do Instituto Oceanográfico da USP, e
Cláudia Melo, do Museu de Zoologia da USP, pelo excelente serviço prestado a partir da
pesquisa, cópia e envio de obras raras.
v
Ao Programa de Pós-Graduação em Biologia Animal, pelo auxilio financeiro às
sessões de Microscopia Eletrônica de Varredura e pelo aporte por ocasião de minha
participação em um evento internacional.
À amiga Annie Schmaltz Hsiou, por ter me indicado para integrar a equipe de
Poríferos Marinhos do MCN/FZB; a sinceridade de sua amizade e a certeza de sua
confiança certamente me permite estar realizado com minha escolha em estudar e
compreender o mundo dos poríferos.
À Clare Valentine, do British Museum of Natural History, Inglaterra, ao Dr. Carsten
Lüter, do Museum für Naturkunde, Humboldt-Universität zu Berlin, Alemanha, e à Dra.
Barbara Calcinai, da Universitá di Ancona, Itália, pelo empréstimo de material para estudo
comparativo.
Ao Dr. Edmundo Ferraz Nonnato, pela doação e envio de todo o material de
Porífera coletado pelo PROANTAR para a Coleção de Porifera do MCN/FZB.
vi
SUMÁRIO
RESUMO ........................................................................................................................... ix
ABSTRACT ....................................................................................................................... xi
CAPÍTULO 1
Introdução ................................................................................................................. 1
Histórico - Filo Porifera ................................................................................ 1
O Continente Antártico e o Projeto PROANTAR ........................................ 3
Pesquisas com o Filo Porifera no Continente Antártico ............................... 5
Área estudada ............................................................................................... 8
Objetivos ................................................................................................................ 11
Síntese dos Resultados ........................................................................................... 12
Referências Bibliográficas ..................................................................................... 13
CAPÍTULO 2
Material e Métodos ................................................................................................. 20
Material estudado .............................................................................................. 20
Métodos laboratoriais ......................................................................................... 20
Metodologia empregada para o estudo das escleras ........................................ 21
Dissociação espicular em tubo de ensaio ................................................... 21
Dissociação espicular em lâmina ................................................................ 21
Cortes perpendiculares e tangenciais do esqueleto ..................................... 22
Preparação de suportes para microscopia eletrônica de varredura ................. 22
Técnicas com microscópio ...................................................................................... 23
vii
Observação do conjunto espicular ................................................................... 23
Observação da arquitetura esqueletal .............................................................. 23
Observação da superfície ................................................................................. 23
Mensurações micrométricas ............................................................................ 23
Fotografias ............................................................................................................... 24
Fotografias das amostras .................................................................................. 24
Fotografias das arquiteturas esqueletais .......................................................... 24
Fotomicrografias das escleras ao Microscópio Óptico ................................... 24
Fotografias das escleras ao Microscópio Eletrônico de Varredura ................ 25
Siglas utilizadas no texto ................................................................................... 25
Referências Bibliográficas ................................................................................ 29
CAPÍTULO 3
Sponges (Porifera, Demospongiae) of Brazilian Antarctic Program –
PROANTAR. Bransfield Strait, off Joinville Island .............................................. 30
Figuras .................................................................................................................... 52
CAPÍTULO 4
First report for Antarctica of three sponge species collected by the
Brazilian Antarctic Program – PROANTAR (Demospongiae,
Poecilosclerida, Halichondrida, Haplosclerida) …................................................. 78
Figuras .................................................................................................................... 89
viii
CAPÍTULO 5
Contribution to the knowledge of Antarctic sponges (Porifera,
Demospongiae). Part I. Spirophorida, Astrophorida, Hadromerida
and Haplosclerida …............................................................................................... 97
Tabelas .................................................................................................................. 132
Figuras .................................................................................................................. 135
CAPÍTULO 6
Contribution to the knowledge of Antarctic sponges (Porifera,
Demospongiae). Part II. Poecilosclerida .............................................................. 155
Tabelas .................................................................................................................. 198
Figuras .................................................................................................................. 201
CAPÍTULO 7
Conclusões ............................................................................................................ 235
Considerações zoogeográficas ........................................................................ 235
Considerações finais ........................................................................................ 248
Referências Bibliográficas .............................................................................. 251
ANEXOS
Normas para publicação na Revista Brasileira de Zoologia
Normas para publicação no “Proceedings of the 7
th
International
Sponge Conference”
Glossário
Espécies de Demospongiae presentes no Complexo Antártico Faunístico
ix
RESUMO
Estudos com o Filo Porifera na Antártica apresentam uma grande quantidade de
registros, a partir das diversas expedições já realizadas. Neste continente, onde as esponjas
ocorrem em abundância significativa, existem algumas áreas ainda não completamente
estudadas, como as Ilhas Shetland do Sul e áreas vizinhas, onde se concentra a área
pesquisada, objeto do presente trabalho. O Brasil, país atuante em pesquisas antárticas,
possibilita através de seu Programa Antártico Brasileiro (PROANTAR) o desenvolvimento
de diversos tipos de pesquisas. O presente estudo tem por objetivo o estudo taxonômico das
amostras coletadas pelo PROANTAR, bem como ampliar a diagnose das espécies
identificadas com ilustrações completas e fotomicrografias ao MEV. As Demospongiae
foram coletadas nas Ilhas Shetland do Sul (Ilha Low, Ilha Livingston, Ilha Rei George e Ilha
Elephant), Ilha Joinville e Estreito de Bransfield, entre as latitudes de 61°02’-63°44’ S e as
longitudes de 54°16’-62°31’ W, em profundidades de 20 a 460 metros, por meio de dragas e
mergulho autônomo. O material estudado encontra-se depositado na Coleção de Porifera do
Museu de Ciências Naturais da Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, e o estudo
taxonômico foi realizado com base na morfologia externa, arquitetura do esqueleto e forma e
tamanho das escleras, estas últimas fotografadas ao Microscópio Eletrônico de Varredura. Os
86 espécimes estudados correspondem a 17 famílias, 26 gêneros e 40 espécies. Constituem-
se em novos registros para: as Ilhas Shetland do Sul – Ancorinidae Schmidt, 1870,
Iotrochotidae Dendy, 1922, Tethyopsis Stewart, 1870, Acanthorhabdus Burton, 1929,
Iotroata Ridley, 1884, Tethyopsis longispinum (Lendenfeld, 1907), Suberites montiniger
Carter, 1880 sensu Topsent, 1915, Acanthorhabdus fragilis Burton, 1929, Iophon
x
terranovae Calcinai & Pansini, 2000, Iotroata somovi (Koltun, 1964), Myxilla
(Ectyomyxilla) mariana Ridley & Dendy, 1886, Tedania (Tedaniopsis) vanhoeffeni
Hentschel, 1914 e Latrunculia (Latrunculia) brevis (Ridley & Dendy, 1886); para a
Antártica – Hymedesmia (Hymedesmia) laevis Thiele, 1905, Halichondria (Eumastia)
attenuata (Topsent, 1915) e Haliclona (Soestella) chilensis (Thiele, 1905). Em relação à
distribuição batimétrica, 10 espécies (25%) apresentam novos limites a partir dos dados
registrados. São comentados os padrões de distribuição detectados. É adicionada uma
listagem das espécies de Demospongiae conhecidas até o presente para o Complexo
Antártico Faunístico.
xi
ABSTRACT
Studies with Phyllum Porifera in Antarctica present a great amount of records, from
the several until then carried through expeditions. In this continent, where the sponges
occur in significant abundance, there are some not yet completely studied areas, like the
South Shetland Islands and neighboring areas, where is concentrated the researched area,
object of the present work. Brazil, operating country in Antarctic research, makes possible
through its Brazilian Antarctic Program (PROANTAR) the development of several kinds of
research. The aim of the present work is the taxonomic study of the samples collected by
PROANTAR, as well as to extend the diagnosis of the identified species with complete
illustrations and SEM photomicrographs. The Demospongiae were collected at South
Shetland Islands (Low Island, Livingston I., King George I. e Elephant I.), Joinville Island
and Bransfield Strait, between latitudes of 61°02’-63°44’ S and longitudes of 54°16’-62°31’
W, in depths from 20 to 460 meters, by means of dredges and scuba diving. The studied
material is deposited in Porifera Collection of Museu de Ciências Naturais, Fundação
Zoobotânica do Rio Grande do Sul, and the taxonomic study was carried out based on the
external morphology, skeletal architecture and size and shape of the spicules, which were
undertaken by Scanning Electronic Microscope. The 86 studied specimens are represented by
17 families, 26 genera and 40 species. New records: South Shetland Islands – Ancorinidae
Schmidt, 1870, Iotrochotidae Dendy, 1922, Tethyopsis Stewart, 1870, Acanthorhabdus
Burton, 1929, Iotroata Ridley, 1884, Tethyopsis longispinum (Lendenfeld, 1907), Suberites
montiniger Carter, 1880 sensu Topsent, 1915, Acanthorhabdus fragilis Burton, 1929,
Iophon terranovae Calcinai & Pansini, 2000, Iotroata somovi (Koltun, 1964), Myxilla
xii
(Ectyomyxilla) mariana Ridley & Dendy, 1886, Tedania (Tedaniopsis) vanhoeffeni
Hentschel, 1914 and Latrunculia (Latrunculia) brevis (Ridley & Dendy, 1886); for
Antarctica – Hymedesmia (Hymedesmia) laevis Thiele, 1905, Halichondria (Eumastia)
attenuata (Topsent, 1915) and Haliclona (Soestella) chilensis (Thiele, 1905). In regard to
bathymetric distribution, 10 species (25%) present new limits from the registered data. The
detected distribution patterns are commented. A list of the Demospongiae species known
until the present for the Antarctic Faunistic Complex is added.
CAPÍTULO 1
INTRODUÇÃO
Histórico - Filo Porifera
Esponjas (Filo Porifera) são organismos dominantes tanto em biodiversidade como
em biomassa nas comunidades bentônicas dos ecossistemas marinhos de todos os oceanos.
Apresentam considerável variedade de tipos taxonômicos, morfológicos, reprodutivos e
ecológicos, de acordo com sua excepcional qualidade adaptativa. São metazoários sésseis e
filtradores que possuem um eficiente sistema aqüífero para bombear correntes de água por
todo seu corpo (BERGQUIST 1978). Os eventos geológicos do Pré-Cambriano foram
importantes na evolução dos poríferos, e no Cambriano inferior-médio todos os grupos
atuais já eram representados e bem distribuídos (FINKS 1970). Algumas espécies de
esponjas possuem relativa importância na produção primária, em recifes de coral a partir de
simbioses com cianobactérias e dinoflagelados (RÜTZLER 1990), e ainda conhecidas como
principais agentes da bioerosão dos substratos calcários e como bioindicadores de
qualidade ambiental (MURICY et al. 1991).
As esponjas possuem como elementos esqueletais espículas de sílica ou carbonato
de cálcio, bem como fibras de espongina que, em conjunto, constituem importantes
ferramentas taxonômicas. Encontram-se poríferos em praticamente todo o tipo de substrato,
desde rochas até solos finamente arenosos, com especializações para sua fixação.
Atualmente, o filo divide-se em três classes: Hexactinellida, conhecida como “esponja-de-
2
vidro”, é encontrada principalmente em águas frias e profundas; Calcarea, a única que
apresenta espículas calcárias, é restrita a águas mais rasas; e Demospongiae que é a mais
representativa, englobando acima de 85% das espécies conhecidas para a ciência (HOOPER
& VAN SOEST 2002). Quanto às relações filogenéticas, vários estudos têm sido feitos com
base na biologia molecular; sugerindo que o filo Porifera é parafilético, indicando inclusive
que as três classes poderiam ser tratadas como filos em separado (BORCHIELLINI et al.
2004).
Sua condição filtradora corresponde a uma dieta com a captura de partículas
inferiores a 50 µm, filtrando uma grande quantidade de água e retendo as partículas de
forma muito eficiente. O hábito carnívoro também já foi descrito, embora em uma família
apenas, sendo esta estratégia possivelmente empregada com alguma freqüência em
ambientes profundos com pouco alimento (VACELET & BOURY-ESNAULT 1995). A
organização celular de uma esponja é de certa forma simples, sem a formação de órgãos ou
tecidos; porém, a totipotência de suas células e a eficiência de um tipo especializado de
células flageladas (coanócitos) que geram o fluxo de água permite a realização dessas
funções mais complexas, o que se comprova pela adaptabilidade dos poríferos em relação
às mudanças ambientais.
Os poríferos, como vários outros organismos marinhos, constituem importante fonte
alternativa de produtos naturais bioativos (KELECOM 1991). Pesquisas com metabólitos
extraídos de esponjas têm respondido favoravelmente na obtenção de substâncias antivirais,
antitumorais, citotóxicas, antiinflamatórias e vasodilatadoras (MONKS et al. 2002). O alto
potencial encontrado em poríferos, como fornecedores de substâncias de uso
farmacológico, tem sido muito explorado atualmente, e acredita-se que em breve as
3
pesquisas que ainda estão em andamento resultarão em importantes conquistas para a
medicina (BERLINCK et al. 2004).
O Continente Antártico e o Projeto PROANTAR
A Antártica constitui-se como o continente mais isolado, frio, ventoso, elevado e
seco do planeta, situado na região polar austral, formado por uma massa continental
localizada quase que inteiramente no círculo polar antártico. É circundado pelo Oceano
Antártico, formado, com limites imprecisos, pelo encontro das águas dos Oceanos
Atlântico, Pacífico e Índico, a chamada confluência antártica.
O continente corresponde em torno de 10% da área continental do planeta; cerca de
98% do seu território está coberto de gelo e neve durante o ano todo, e no inverno, devido
ao congelamento dos Oceanos à sua volta, sua área aumenta consideravelmente. Quanto às
condições climáticas, observam-se na Antártica freqüentes e rápidas alterações no tempo,
podendo inclusive oscilar entre extremos em poucas horas.
O estudo de rochas e fósseis de vegetais e animais evidencia uma similaridade entre
a Antártica e outras áreas, como África, América do Sul, Austrália e Ásia (Índia), as quais
já estiveram justapostas formando um “supercontinente” conhecido como Gondwana, até o
início do processo de movimentação das placas litosféricas que levou à dispersão global
dos continentes há 150-180 milhões de anos. Mais precisamente se tratando da Península
Antártica, a mesma é geologicamente uma continuação direta da cordilheira dos Andes da
América do Sul. Nesta região a maior parte das terras são depósitos vulcânicos da Era
4
Mesozóica, do fim do Período Cretáceo e início do Período Jurássico, há praticamente 180
milhões de anos atrás. (HANSON & GORDON 1998).
Em 1957 foi estabelecido o Ano Geofísico Internacional, responsável pela
realização de um programa científico em larga escala, com a participação de pesquisadores
de diversos países, possibilitando a assinatura, em 1959, do Tratado da Antártica, em vigor
desde 1961. Este Tratado foi definido para que essa região fosse utilizada somente para fins
pacíficos, com liberdade de pesquisa científica, com a proibição de qualquer atividade
militar, explosões nucleares, deposição de resíduos radioativos e reivindicações territoriais,
prevalecendo a preservação do ecossistema antártico.
Em 1975 o Brasil aderiu ao Tratado, e com o objetivo de alcançar a condição de
membro pleno com direito a voto, elaborou em 1982 o seu programa antártico
(PROANTAR), iniciando no mesmo ano suas atividades científicas. Em 1983, com a
instalação da Estação Brasileira Comandante Ferraz, o Brasil finalmente integrou o grupo
de países da Parte Consultiva do Tratado da Antártica.
As pesquisas brasileiras relativas aos organismos bentônicos na Península Antártica
tiveram início durante a 1ª expedição em 1983, e a partir da 4ª expedição teve inicio o
subprojeto “Bionomia da Fauna Bentônica Antártica”. Até a 6ª expedição o material
coletado a bordo do “Navio Oceanográfico Prof. Wladimir Besnard” permitiu estudos de
taxonomia e zoogeografia de vários grupos de animais bentônicos. Ainda na 6ª expedição
foram incorporadas ao projeto atividades de mergulho autônomo, com o objetivo de
ampliar o conhecimento das comunidades bentônicas de águas rasas (até 30 m de
profundidade).
5
Desde a primeira operação científica do Brasil no continente Antártico até os dias de
hoje, os projetos de pesquisa desenvolvidos na região mantém-se funcionando de forma
ininterrupta, com o PROANTAR obtendo o reconhecimento da comunidade científica
internacional (SCHUCH 1998).
Pesquisas com o Filo Porifera no Continente Antártico
Esponjas constituem-se em um importante elemento da biota antártica, por sua
significativa diversidade específica e pela presença de comunidades predominantemente
constituídas por esponjas em várias áreas do continente antártico. Poríferos são um dos
grupos mais característicos da fauna bentônica presente no continente antártico, juntamente
com Bryozoa e Echinodermata, sendo provavelmente este o único local onde as esponjas
podem ser encontradas em uma abundância constante dentro de uma área muito extensa
(KOLTUN 1969).
Nos ambientes bênticos, em profundidades em torno de 100 m, as esponjas podem
alcançar valores de biomassa comparáveis aos maiores níveis observados em áreas tropicais
(SARÀ et al. 1992). KOLTUN (1970) afirma que a abundância em áreas antárticas,
juntamente com a ampla distribuição das espécies, se deve à fatores tróficos e físicos
favoráveis, à presença de substratos ideais para a fixação e desenvolvimento dos indivíduos
e também pela ausência, na Antártica, da descarga de águas continentais, com águas
oceânicas banhando regularmente as faixas litorâneas. O fato de existir um ambiente
estável e uniforme possibilita tal sucesso na adaptação destes organismos nesta região; o
ambiente mostra-se tão constante que praticamente não há como observar uma distinção na
6
distribuição vertical de muitas espécies, em grande parte da plataforma continental e na
porção superior do talude, em profundidades entre 100 e 900 m.
Outra particularidade desta fauna é a quase completa ausência de esponjas
“keratosas” (demospongias desprovidas de escleras), e também a reduzida ocorrência de
famílias como Geodiidae e Tethyidae (KOLTUN 1969). Ao contrário da rara ocorrência dos
grupos supracitados, esponjas da Classe Hexactinellida são bastante abundantes nos
ambientes antárticos, destacando-se por suas grandes dimensões, indicando a existência de
um ambiente muito apropriado para seu desenvolvimento.
Uma tentativa de traçar padrões biogeográficos para a fauna de esponjas da
Antártica foi realizada por BURTON (1932), o qual encontrou um alto grau de afinidade
entre a fauna antártica e de outras localidades próximas ao continente, entre as quais a
América do Sul. Do ponto de vista ecológico, certas espécies podem ter requerimentos
muito específicos em relação à qualidade do substrato, tamanho e densidade das partículas
alimentares e intensidade de luz e corrente, e diferentes espécies de esponjas antárticas são
utilizadas por outros organismos como abrigo e alimento (BARTHEL & GUTT 1992).
KOLTUN (1970) realizou um estudo mais aprofundado nesta área, investigando
dados de cerca de 300 amostras e, dessa forma, concluiu que nesta região há um alto nível
de endemismo específico aliado a uma insignificante taxa de endemismo genérico; além
disso, registrou que muitas esponjas apresentam uma distribuição circumpolar, com poucas
espécies de distribuição restrita, e comentou também que há uma relação faunística muito
mais próxima entre a Antártica e a América do Sul e as Ilhas Malvinas do que com a
Austrália e a Nova Zelândia.
SARÀ et al. (1992), ao analisarem a relação de ausência e presença do elenco de
espécies registradas para a Antártica e áreas circumantárticas (ou subantárticas),
7
registraram a existência do “Complexo Antártico Faunístico”, o qual compreende a
Antártica continental, grande parte das ilhas antárticas e circumantárticas e a região do
Estreito de Magalhães, no extremo sul do continente americano. Investigações de padrões
biogeográficos indicaram que o continente apresenta uma fauna bastante homogênea, com
relações muito próximas às localidades que compõe o Arco de Scotia (ilhas Geórgia do Sul,
Sandwich do Sul e Órcades do Sul).
Desde o século XIX espécimes de poríferos da Antártica vêm sendo coligidos por
numerosas expedições, entre as quais se destacam: “Belgica” (1897–1899); “Gauss” (1901–
1903); “Antarctique” (1901–1903); “Discovery” (1901–1903; 1925–1927); “Français”
(1903–1905); “Terra Nova” (1910) e “Aurora” (1911–1914). Ao longo do século XX,
outras expedições fizeram intensos estudos, como as realizadas pela Rússia (1955–1958);
Chile (1965; 1969–1970); Itália (1987–1998) e Espanha (1994). O Brasil também vem
participando com pesquisas no continente, através do Programa Antártico Brasileiro –
PROANTAR, o qual coletou amostras de bentos no período de 1983–1991.
Os resultados taxonômicos das expedições supracitadas, bem como outras
produções bibliográficas pertinentes ao estudo de poríferos no continente antártico,
encontram-se em: TOPSENT (1901, 1907, 1908, 1913, 1915, 1916, 1917), HENTSCHEL
(1914), LENDENFELD (1907), BURTON (1929, 1932, 1934, 1938), KIRKPATRICK (1907,
1908), KOLTUN (1964, 1976), VACELET & ARNAUD (1972), DESQUEYROUX (1972; 1975),
DESQUEYROUX-FAÚNDEZ (1989), BARTHEL et al. (1990, 1997), SARÀ et al. (1992), PANSINI
et al. (1994), MOTHES & LERNER (1995), GUTT & KOLTUN (1995), CATTANEO-VIETTI et al.
(1999), CALCINAI & PANSINI (2000) e RÍOS et al. (2004).
Em regiões subantárticas, diversas obras forneceram também importantes registros
para o estudo da fauna ocorrente neste complexo faunístico, as quais foram possibilitadas
8
por expedições e/ou coletas pontuais principalmente na porção mais ao sul da América do
Sul, tanto no Oceano Atlântico como no Pacífico, e também em ilhas do Oceano Índico,
sem desconsiderar registros de outras localidades que reportaram a ocorrência de espécies
pertencentes ao complexo supracitado; tais registros são encontrados principalmente em
RIDLEY (1881), RIDLEY & DENDY (1887), SOLLAS (1888), THIELE (1905), BURTON (1940),
LÉVI (1956, 1964) SARÀ (1978), BOURY-ESNAULT & VAN BEVEREN (1982), DESQUEYROUX
& MOYANO (1987), CUARTAS (1994) e PANSINI & SARÀ (1999).
Conforme CALCINAI & PANSINI (2000), esponjas antárticas são relativamente bem
conhecidas, porém o continente é tão extenso que qualquer novo estudo, mesmo em áreas
pequenas, virá a colaborar enormemente com suas informações. Por outro lado, mesmo o
fato de inúmeras expedições científicas terem sido realizadas desde o século XIX, existem
áreas que ainda têm sua fauna espongológica pouco conhecida, como é o caso das Ilhas
Shetland do Sul e proximidades (RÍOS et al. 2004).
Objetiva-se na presente dissertação proporcionar uma primeira contribuição
taxonômica abrangente com relação aos poríferos coletados na faixa oceânica explorada
pelo Programa Antártico Brasileiro e incluídos na Coleção de Porifera do Museu de
Ciências Naturais da Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul.
Área estudada
A área de estudo abrange as seguintes localidades: Ilha Rei George, Ilha Livingston
e Ilha Elephant (as quais compõem as Ilhas Shetland do Sul), Ilha Joinville e também ao
longo do Estreito de Bransfield.
9
A amostragem biológica, incluindo coletas de fundo, foi realizada inicialmente ao
largo da I. Elephant e na região entre as Is. Shetland do Sul e a Península Antártica,
concentrando-se posteriormente na I. Rei George, mais precisamente na Baía do
Almirantado, onde está instalada a Estação Brasileira Comandante Ferraz.
Com relação às condições climáticas da área de estudo e do próprio continente da
Antártica, as seguintes informações são fornecidas por BRIGGS (1974):
As condições climáticas da área de estudo são bastante peculiares, com o fundo do
mar apresentando depressões abruptas e profundidades acima de 1000 m ao largo da I.
Elephant. A temperatura da água de superfície não supera 2° C no verão, mantendo-se
raramente ao redor de 0,5° C na água de fundo; massas de gelo flutuante (icebergs)
oriundas das geleiras das ilhas e da Península são freqüentes, mesmo nos meses de verão,
quando são realizadas as expedições brasileiras. O clima é instável, com variações intensas
e extremamente rápidas.
Na região antártica, as águas são conduzidas por uma corrente circumpolar, em
sentido horário (“West Wind Drift”); há também uma contracorrente chamada “East Wind
Drift”, porém relativamente fraca e irregular, esta não considerada circumpolar. A região
subantártica é afetada pela “West Wind Drift”, a qual atua como importante agente de
dispersão dos organismos.
A ponta extrema da América do Sul alcança a faixa que engloba a região
circumantártica, e dessa forma grande parte da sua costa oeste está exposta à corrente
“West Wind Drift”, a qual é responsável pela presença de águas frias temperadas na costa
do Chile. Outra porção da “West Wind Drift” flui pelo Estreito de Drake entre a América
10
do Sul e a Antártica; e a outra porção, chamada de Corrente das Malvinas, flui em direção
ao norte entre a Terra do Fogo e as Is. Malvinas. A Corrente das Malvinas flui
paralelamente à costa da Argentina, até a desembocadura do Rio da Prata; tal Corrente tem
um significante desvio em direção ao leste, e novamente encontrando a extensa “West
Wind Drift”.
Os ventos, o relevo e as correntes submarinas, bem como as diferenças de
temperatura da água produzem circulações verticais da água do mar. Essa movimentação
faz com que as águas superficiais (0 a 150 m) sejam continuamente removidas e
substituídas por águas ricas em nutrientes, os quais são provenientes das profundezas
oceânicas. Próximo ao limite norte da Corrente Antártica Circumpolar, as águas antárticas
(-1 a 3,5° C no verão; -1,8 a 0,5° C no inverno) encontram as águas quentes do sul dos
Oceanos Atlântico, Índico e Pacífico e nelas mergulham, dando origem à chamada
Convergência Antártica (também conhecida como “Polar Front”), onde a água sofre um
acréscimo de 2 a 3° C. Ao sul desta Convergência, abrangendo 10% dos mares do planeta,
está localizada a corrente marítima mais nutritiva da Terra, onde prolifera o krill, um
crustáceo de grande importância econômica o qual é considerado a base da cadeia alimentar
da Antártica.
11
OBJETIVOS
Objetivo Geral
Realizar estudo taxonômico de poríferos coletados pelo PROANTAR (1983–1991),
depositados na Coleção de Poríferos Marinhos do Museu de Ciências Naturais da Fundação
Zoobotânica do Rio Grande do Sul, ampliando o conhecimento da riqueza de espécies da
Antártica, bem como sua distribuição geográfica e batimétrica.
Objetivos Específicos
- Identificar, registrar, caracterizar e ilustrar as espécies de esponjas coletadas nas
Ilhas Shetland do Sul, I. Joinville e Estreito de Bransfield (61º02’–63º44’ S / 54º16’–62º31’
W);
- Complementar as descrições de espécies já conhecidas com o auxílio de
Microscopia Eletrônica de Varredura.
12
SÍNTESE DOS RESULTADOS
A identificação das amostras resultou em 40 espécies, possibilitando a produção de
quatro artigos científicos, os quais já foram encaminhados para publicação: o primeiro
artigo contempla as espécies que foram coletadas na Ilha Joinville e o segundo destaca três
espécies que correspondem a registros de nova ocorrência para o continente antártico; o
terceiro artigo reúne espécies das Ordens Astrophorida, Spirophorida, Hadromerida e
Haplosclerida; e o quarto artigo contempla espécies da Ordem Poecilosclerida.
13
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CAPÍTULO 2
MATERIAL E MÉTODOS
Material estudado
As amostras foram coletadas no continente antártico (Fig. 1) pelo Navio
Oceanográfico “Professor Besnard”, proveniente das seguintes expedições: PROANTAR I
(1983); III (1985); IV (1986); V (1987); VI (1988); VIII (1989–1990) e IX (1991). Os
locais de coleta encontram-se entre as coordenadas 61º02’–63º44’ S / 54º16’–62º31’ W
(Fig. 2; Tab. I); profundidades variaram desde 20 até 460 metros. Metodologia de coleta
amplamente descrita por NONNATO et al. (1992a, 1992b).
No total 86 amostras foram estudadas; as mesmas encontram-se depositadas na
Coleção de Porifera do Museu de Ciências Naturais da Fundação Zoobotânica do Rio Grande
do Sul, conservadas em álcool etílico 96º GL, acondicionadas em frascos de vidro e
devidamente etiquetadas.
Métodos laboratoriais
As descrições das amostras estudadas concentraram-se nas seguintes características:
forma, tamanho da esponja (ou fragmentos da mesma), consistência, coloração,
ornamentação da superfície, arquitetura do esqueleto, forma e tamanho das escleras.
21
Sempre que houve mais de uma amostra de uma mesma espécie, a descrição referiu-se à de
maior dimensão ou que se encontrava em melhor estado de preservação.
Nos anexos deste trabalho se oferece um glossário, contendo os termos específicos
utilizados para descrever as espécies.
A taxonomia foi realizada com base no estudo das escleras silicosas e da arquitetura
esqueletal (arranjo e disposição dos elementos esqueletais) presentes em cada amostra.
Metodologia empregada para o estudo das escleras (adaptado de MOTHES et al. 2004)
Dissociação espicular em tubo de ensaio
Retirou-se um pequeno fragmento da esponja, o qual foi colocado em um tubo de
ensaio com algumas gotas de ácido nítrico (65%) e fervido sobre lamparina a álcool, até a
completa dissociação da matéria orgânica. Na etapa seguinte, o material foi lavado quatro
vezes com água destilada e quatro vezes com álcool 96° GL, centrifugando-se a preparação,
entre uma e outra lavagem. Ao concluir-se este processo, o material foi pipetado e colocado
sobre lâminas, as quais foram mantidas sobre uma chapa de aquecimento para evaporação do
álcool. Após a secagem completa, foi adicionado Entellan
®
em cada lâmina e cobertas por
lamínula.
Dissociação espicular em lâmina
Retirou-se um fragmento da esponja, depositando-o sobre uma lâmina e deixando-o
até a completa evaporação do álcool. A seguir foram adicionadas algumas gotas de ácido
nítrico, e a lâmina foi flambada até a completa dissociação da matéria orgânica. Após, pingou-
se quatro vezes algumas gotas de água destilada sobre a preparação, deixando-a secar sobre
22
uma chapa de aquecimento. Repetiu-se este processo com álcool 96°. A seguir, a preparação
foi coberta com Entellan
®
e lamínula. Esta técnica foi empregada para a observação de
grandes escleras, as quais se quebram facilmente no processo de centrifugação.
Cortes perpendiculares e tangenciais do esqueleto
Retirou-se um fragmento perpendicular ou tangencial à superfície da esponja,
deixando-o uma hora em xilol para diafanizar. Após, incluiu-se o fragmento em parafina
líquida purificada com ponto de fusão de 56ºC a 58ºC, em estufa com temperatura em torno de
60ºC, por aproximadamente 48 horas. Para a confecção de blocos cilíndricos, foi derramada a
parafina líquida sobre o recipiente do Micrótomo de Ranvier. Após a solidificação, os blocos
foram cortados com bisturi, visando à obtenção de cortes com a menor espessura possível,
sendo colocados sobre lâmina de vidro para microscopia. A seguir, a lâmina com os cortes foi
mergulhada em xilol dentro de placa de Petri visando a desparafinização. Nesta etapa foi
trocado o xilol a cada 24 horas, durante aproximadamente três dias. Quando os cortes
mostraram-se bem clarificados a lâmina foi retirada do xilol e coberta com Entellan
®
e
lamínula.
Preparação de suportes para microscopia eletrônica de varredura
Retirou-se um fragmento da esponja, procedendo-se à dissociação espicular em tubo
como descrito em “Dissociação espicular em tubo de ensaio”, sendo que para a lavagem das
escleras foi utilizada somente água destilada. Sobre o suporte, fixou-se uma lamínula com
esmalte incolor, sobre a qual se adicionou uma ou duas gotas da dissociação espicular,
deixando secar em temperatura ambiente. Após a secagem, a preparação foi metalizada com
23
ouro-paládio pelo método de “sputtering”, no Setor de Microscopia Eletrônica do Museu de
Ciências Naturais da Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul.
Técnicas com microscópio
Observação do conjunto espicular
Lâminas de dissociação espicular foram observadas ao microscópio óptico Zeiss
Axiovision
®
, objetivando a identificação do conjunto espicular de cada amostra.
Observação da arquitetura esqueletal
Lâminas da arquitetura esqueletal foram observadas ao microscópio óptico,
objetivando a identificação do ectossoma e do coanossoma e a observação dos seus
respectivos detalhes.
Observação da superfície
Os caracteres microscópicos da superfície das amostras foram observados através do
microscópio estereoscópico IMPAC
®
, objetivando visualizar a morfologia e características da
superfície e presença de poros e ósculos; estes últimos não foram citados nas descrições
quando não observados.
Mensurações micrométricas
Ao microscópio óptico, dotado de micrômetro ocular, realizaram-se medidas de
comprimento e largura de cada categoria de esclera. Mensurações referem-se ao comprimento
24
mínimo, média, máxima, expressas em µm, largura citada após a barra (/); N=50, exceto
quando indicado. As escleras de mesmo nome, separadas em diferentes categorias, foram
consideradas como tipo I e II de acordo com as suas dimensões, sendo as escleras do tipo I as
maiores.
Foram também obtidas mensurações da arquitetura esqueletal; quando possível (ou
pertinente), espessura do córtex e das fibras e abertura de malhas forma mensuradas, bem
como o número de escleras presentes nas fibras.
Fotografias
Fotografias das amostras
Foram obtidas fotografias das amostras, por meio de câmara fotográfica digital Sony
®
DSC-P73 4.1 megapixels.
Fotomicrografias das arquiteturas esqueletais
A disposição do esqueleto de cada espécie foi fotomicrografada a partir de máquina
fotográfica digital acoplada ao microscópio óptico.
Fotomicrografias das escleras ao Microscópio Óptico
As megascleras de amostras pertencentes às Ordens Spirophorida e Astrophorida
foram fotomicrografadas a partir de máquina fotográfica digital acoplada ao microscópio
óptico, devido às grandes dimensões das mesmas.
25
Fotomicrografias das escleras ao Microscópio Eletrônico de Varredura
O conjunto espicular de cada espécie foi fotografado em microscopia eletrônica de
varredura, através do Microscópio Eletrônico de Varredura modelo JEOL - JSM 6060, no
Centro de Microscopia Eletrônica da Universidade Federal do Rio Grande do Sul.
Siglas utilizadas no texto
BMNH, British Museum of Natural History, Londres, Inglaterra.
FZB, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, Brasil.
MCN, Museu de Ciências Naturais, FZB, Porto Alegre, Brasil.
MCNPOR, Coleção de Porifera do MCN.
ME, Microscópio Estereoscópico.
MEV, Microscópio Eletrônico de Varredura.
MSNG, Museo Civico di Storia Naturale ‘Giacomo Doria’, Genova, Itália.
MO, Microscópio Óptico.
ZMB, Zoologische Museum für Naturkunde an der Universität Humboldt zu Berlin,
Berlim, Alemanha.
26
Tabela I: Dados de coleta de Porifera nas Is. Shetland do Sul, I. Joinville e Estreito de
Bransfield, na Antártica (conforme NONNATO et al. 1992a; 1992b)
Estação
Coordenadas Prof. (m)
Data Local Exp. Coletor
4381 62º 48' S - 54º 20' W
280 18.I.1983 Estreito de Bransfield I beam-trawl
4743 62º 30' S - 54º 16' W
412 28.I.1985 Estreito de Bransfield III beam-trawl
4756 62º 58' S - 57º 10' W
70 02.II.1985 Estreito de Bransfield III beam-trawl
Ferraz 62º 05' S - 58º 23' W
20 03.II.1985 I. Rei George III armadilha
4860 61º 08' S - 55º 52' W
112 31.I.1986 I. Elephant IV beam-trawl
4861 61º 02' S - 54º 55' W
362 01.II.1986 I. Elephant IV beam-trawl
4862 61º 08' S - 54º 34' W
240 01.II.1986 I. Elephant IV beam-trawl
4864 63º 01' S - 54º 49' W
275 02.II.1986 I. Joinville IV beam-trawl
4865 62º 55' S - 55º 16' W
82 03.II.1986 I. Joinville IV beam-trawl
4866 62º 53' S - 56º 27' W
194 03.II.1986 I. Joinville IV beam-trawl
4867 62º 57' S - 56º 50' W
95 03.II.1986 I. Joinville IV beam-trawl
4869 63º 33' S - 59º 15' W
240 08.II.1986 Estreito de Bransfield IV beam-trawl
4870 63º 26' S - 59º 32' W
135 08.II.1986 Estreito de Bransfield IV beam-trawl
4871 63º 16' S - 59º 55' W
264 08.II.1986 Estreito de Bransfield IV beam-trawl
4872 63º 28' S - 62º 31' W
168 13.II.1986 Estreito de Bransfield IV beam-trawl
4873 63º 25' S - 62º 05' W
66 13.II.1986 Estreito de Bransfield IV beam-trawl
4874 63º 25' S - 62º 19' W
135 14.II.1986 Estreito de Bransfield IV beam-trawl
4875 63º 17' S - 62º 30' W
157 14.II.1986 Estreito de Bransfield IV beam-trawl
5062 61º 12' S - 55º 40' W
98 26.II.1987 I. Elephant V otter-trawl
5062 61º 12' S - 55º 40' W
98 26.II.1987 I. Elephant V otter-trawl
C 62º 40' S - 59º 33' W
270 08.III.1987 I. Livingston V otter-trawl
5254 63º 44' S - 60º 25' W
108 25.I.1988 Estreito de Bransfield VI otter-trawl
C 62º 06' S - 58º 22' W
28 06.III.1988 I. Rei George VI mergulho
D 62º 05' S - 58º 23' W
25 23.II.1988 I. Rei George VI mergulho
D 62º 05' S - 58º 23' W
20 26.II.1988 I. Rei George VI mergulho
D 62º 05' S - 58º 23' W
21 08.XII.1989
I. Rei George VIII mergulho
D 62º 05' S - 58º 23' W
25 05.I.1990 I. Rei George VIII mergulho
D 62º 05' S - 58º 23' W
25 21.I.1991 I. Rei George IX mergulho
27
Figura 1: Mapa do continente antártico.
28
Figura 2: Mapa das Is. Shetland do Sul (I. Rei George em destaque), I. Joinville e Estreito de
Bransfield, Antártica, com a indicação das estações de coleta de Porifera (
•
).
29
REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
MOTHES, B.; M.A. CAMPOS; C.B. LERNER & FERREIRA-CORREIA, M.M. 2004. Esponjas
(Demospongiae, Halichondrida) da costa do Maranhão, Brasil. Iheringia, Série
Zoologia, Porto Alegre, 94 (2): 149–154.
NONNATO, E.F.; M.A.V. PETTI; P.C. DE PAIVA & T.A.S. BRITO. 1992a. Programa Antártico
Brasileiro: amostragem de organismos bentônicos realizadas nas seis primeiras
expedições (1982 a 1988), com a participação do N/Oc. “Prof. W. Besnard”. Relatório
Interno do Instituto Oceanográfico, São Paulo, 32: 1-12.
NONNATO, E.F.; T.A.S. BRITO; P.C. DE PAIVA & M.A.V. PETTI. 1992b. Programa Antártico
Brasileiro: projeto “Bionomia da fauna bentônica Antártica”. Atividades subaquáticas
realizadas na Baía do Almirantado a partir da VI Expedição (1988). Relatório Interno
do Instituto Oceanográfico, São Paulo, 33: 1-12.
CAPÍTULO 3
Sponges (Porifera, Demospongiae) of Brazilian Antarctic Program –
PROANTAR. Bransfield Strait, off Joinville Island.
ARTIGO ENVIADO PARA PUBLICAÇÃO: PROCEEDINGS OF THE
7
th
INTERNATIONAL SPONGE CONFERENCE
31
Original paper
Sponges (Porifera, Demospongiae) of Brazilian Antarctic Program - PROANTAR.
Bransfield Strait, off Joinville Island.
Maurício Campos(1,2*); Beatriz Mothes(1); Cléa Lerner(1); João Luís Carraro(1,3);
Inga Ludmila Veitenheimer-Mendes(2)
1 - Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul. Rua
2 - Programa de Pós-Graduação em Biologia Animal, Universidade Federal do Rio Grande
do Sul. Av. Bento Gonçalves 9500, 91501-970 Porto Alegre-RS, Brazil.
3 - Programa de Pós-Graduação em Ecologia, Universidade Federal do Rio Grande do Sul.
Av. Bento Gonçalves 9500, 91501-970 Porto Alegre-RS, Brazil.
Abstract
The present study offers an increase for the knowledge of sponge fauna from
antarctic region and also for its respective occurrence and distribution, based on some
material collected by Brazilian antarctic expedition off Joinville I., near to Bransfield Strait.
Amongst the identified species, Iophon terranovae Calcinai & Pansini, 2000 and Myxilla
(Ectyomyxilla) mariana (Ridley & Dendy, 1886) are recorded for the first time for this
continental region, besides presenting new bathymetric limits; Haliclona (Rhizoniera)
32
dancoi (Topsent, 1901) also possesses its first record for this region, while that for
Haliclonissa verrucosa Burton, 1932 and Microxina phakelloides (Kirkpatrick, 1907)
extend it their bathymetry. For the first time Joinville I. has its sponge fauna widely
studied.
Keywords. Antarctica, Demospongiae, Distribution, Taxonomy.
Introduction
Porifera from Antarctica have many records, which were yielded by diverse works carried
through with material collected by several expeditions since more than 100 years ago,
highlighting the works of Topsent (1901, 1907, 1908, 1913, 1915, 1916, 1917), Lendenfeld
(1907), Kirkpatrick (1907, 1908), Hentschel (1914), Burton (1929, 1932, 1934, 1938),
Koltun (1964, 1976), Vacelet and Arnaud (1972) and Desqueyroux (1972, 1975). More
recently had been supplied some registers by Desqueyroux-Faúndez (1989), Pansini et al.
(1994), Mothes and Lerner (1995), Gutt and Koltun (1995), Barthel et al. (1990; 1997),
Calcinai and Pansini, 2000 and Ríos et al. (2004). Other important contributions for the
study of this fauna originates from works with the fauna of subantartic regions, which
composes the Antarctic Faunistic Complex proposed by Sarà et al. (1992); such records are
found in Ridley (1881), Ridley and Dendy (1887), Sollas (1888), Thiele (1905), Burton
(1940), Sarà (1978), Boury-Esnault and Van Beveren (1982) and Desqueyroux and
Moyano (1987).
Although so many researches has been carried through, some areas are not yet
completely studied, like some islands from south Atlantic Ocean and another places near to
Antarctic Peninsula, like South Shetland Is. and neighbor areas (Ríos et al. 2004). The
33
achievement of new faunistic surveys in that continent will be greatly important, in order to
associate its abundance with the environmental conditions, their annual changes and also to
extend geographic and bathymetric records (Desqueyroux-Faúndez 1989), besides
describing possible new species.
Materials and methods
It was gathered some sponge samples through “Programa Antártico Brasileiro”
(PROANTAR) in the course of 1980’s decade, near to Joinville I., which the present study
is concentrated. The samples are coming from the IV expedition, collected at 62º53’S-
56º27’W / 63º01’S-54º49’W (Fig. 1), between depths from 82 to 274 m, by using “beam-
trawl” dredge. The specimens are deposited in Porifera collection of Museu de Ciências
Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Brazil.
[insert figure 1]
Taxonomic identification was made being based on the spicules, through spicule
mounts and thick sections from skeletal architecture, both following the techniques
described respectively by Mothes-de-Moraes (1978) and Mothes et al. (2004); preparations
for SEM study according to Silva and Mothes (1996). It was complemented with
macroscopical observations of taxonomic features referring to the morphologic external
characteristics from each specimen.
Abbreviations used are BMNH (British Museum of Natural History, London,
England); MCNPOR (Porifera Collection, Museu de Ciências Naturais, Fundação
Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Brazil); MSNG (Museo Civico di Storia Naturale
“Giacomo Doria”, Genova, Italy); ZMB (Zoologische Museum für Naturkunde an der
Universität Humboldt zu Berlin, Berlin, Germany).
34
Results
Order Poecilosclerida
Suborder Microcionina
Family Acarnidae
Iophon terranovae Calcinai & Pansini, 2000
Figs. 2A-G
MCNPOR 1951, Est. 4865: 62º55' S - 55º16' W, 82 m, 03.II.1986.
Comparative material. MSNG 31 - Iophon terranovae Calcinai & Pansini, 2000.
Description. Cylindrical specimen (Fig. 2A); dimensions: 6.7 x 3.4 cm. Preserved material
extremely friable consistency, colour dark brown.
Skeleton. (Fig. 2B) Ectosome with styles I, perpendicular to the surface and protruding it.
Choanosome a confuse reticulation, styles I and II arranged in multispicular tracts or
dispersed between the same ones. Anisoquelas and bipocillas occur all over the skeleton.
Spicules. Megascleres: styles I: 350–450.6–550 / 12.5–18.1–21.3 µm (Figs. 2C-D); styles
II: 330–409.6–520 / 2.5–4.8–8.8 µm (Fig. 2E); anisochelas: 47.5–55.3–62.5 µm (Fig. 2F);
bipocillas: 7.5–10–12.5 µm (Fig. 2G).
Remarks. Styles I with slight deformations, occurring in compared material, were not
observed in the studied material.
Distribution. Antarctica (Victoria Land, Bransfield Strait, Joinville I.). Bathymetry: 82-
135 m.
[insert figure 2]
35
Family Microcionidae
Artemisina apollinis (Ridley & Dendy, 1886)
(Figs. 3A-I)
MCNPOR 1999, Est. 4866: 62º53' S - 56º27' W, 194 m, 03.II.1986.
Comparative material. BMNH 1908.2.5.166d - Artemisina apollinis (Ridley & Dendy,
1886).
Description. Massive specimen (Fig. 3A); dimensions: 7.5 x 4.5 x 3.2 cm; surface hispid to
the touch with ramified conules; oscules 0.3–0.4 cm diameter. Preserved material fragile
and brittle consistency, colour light brown.
Skeleton. (Fig. 3B) Ectosome without specialization. Choanosome formed by
multispicular tracts with no direction at inner body, near to the surface such tracts are
perpendicularly organized, producing the superficial hispidation. Isochelas dispersed along
the skeleton.
Spicules. Megascleres: styles I: 550–663.4–730 / 30–34.4–38.8 µm (Figs. 3C-D); styles II:
320–412.2–530 / 5.0–6.3–8.8 µm (Figs. 3E-F); isochelas: 2.5–13.6–16.3 µm (Fig. 3G);
toxas I: 340–520.2–740 µm (Fig. 3H); toxas II: 117.5–156.7–195 µm (Fig. 3I).
Remarks. Measurements are different in regard to the studied material; comparative
material has thinner styles I and smaller toxas, not separated in different size classes.
Distribution. Kerguelen I., South Georgia, Antarctica (Wilhelm II Land, Graham Land,
Victoria Land, South Shetland Is.; Bransfield Strait; Joinville I.). Bathymetry: 7-380 m.
[insert figure 3]
Suborder Myxillina
36
Family Hymedesmiidae
Phorbas areolata (Thiele, 1905)
(Figs. 4A-G)
MCNPOR 1971, Est. 4866: 62º53' S - 56º27' W, 194 m, 03.II.1986.
Comparative material. Holotype ZMBPOR 3305 - Hymedesmia areolata Thiele, 1905.
Description. Globular specimen (Fig. 4A); dimensions: 7.8 x 5.1 cm; surface areolated
(opening <0.1–0.6 cm diameter), some of them are covered by a fine membrane. Preserved
material compressible and slightly elastic consistency, colour light grey to light brown.
Skeleton. (Fig. 4B) Composed by multispicular and compact tracts of tornotes, which
running to the surface. Acanthostyles were rarely visualized near to the surface, where
tornotes are densely arranged in criss-cross. Isochelas and abundant sigmas distributed
along all the skeletal arrangement.
Spicules. Megascleres: acanthostyles: 190–244.7–370.5 / 11.5–13.5–18.4 µm (Figs. 4C-D);
tornotes: 437–511.7–551 / 10.4–13.3–16.1 µm (Figs. 4E-F); isochelas: 19.6–23–25.3 µm
(Fig. 4G).
Remarks. The holotype has smaller spicules, with the exception of isochelas, and also a
different skeletal arrangement. Thiele’s original description differs from the others,
however Burton (1931) justified that skeleton and external morphology varies in according
to the corporal growth in this species.
Distribution. Chile, Argentina, South Georgia, Shag Rocks, Antarctica (Graham Land,
Victoria Land, Wilhelm II Land, Adelie Land, Weddell Sea, Joinville I., South Shetland
Is.). Bathymetry: 19-970 m.
[insert figure 4]
37
Family Myxillidae
Myxilla (Myxilla) mollis (Ridley & Dendy, 1886)
(Figs. 5A-I)
MCNPOR 1960, Est. 4867: 62º57' S - 56º50' W, 95 m, 03.II.1986.
Comparative material. BMNH 1935.10.26.248 - Myxilla mollis (Ridley & Dendy, 1886).
Description. (Fig. 5A) Erect specimen with digitiform projections; dimension: 14.2 x 10.5
x 3.4; conulous surface, with grooves covered by a fine membrane, which forms the oscules
at the top of the digitiform projections; oscules 0.2–0.4 cm diameter. Preserved material
compressible consistency, brittle, colour light brown.
Skeleton. (Fig. 5B) Ectosome with tylotes arranged in bouquets. Choanosome with
longitudinal multispicular tracts. Between the tracts there are abundant spongin and
membranous regions with a great amount of sigmas; some styles are located in varied
angles, forming a discrete equination.
Spicules. Megascleres: styles: 220–374.4–500 / 15–19.1–27.5 µm (Figs. 5C-D); tylotes:
200–243.6–300 / 6.3–8.9–11.3 µm (Figs. 5E-F); isochelas: 17.5–20.8–23.8 µm (Fig. 5G);
sigmas I: 45–51.8–57.5 µm (Fig. 5H); sigmas II: 16.3–19.3–23.8 µm (Fig. 5I).
Remarks. M. mollis has some variation in the spicules, when analyzing the studied sample,
bibliography data and the comparative material, where it observes differences in regard to
styles (mainly in relation to the absence of spines in the basal extremity), and the two
categories of sigmas with great dimensions, in the same way that the isochelas.
Distribution. Kerguelen I., Argentina, Chile, Falkland Is.; South Georgia, Shag Rocks,
Antarctica (Palmer Archipelago, Graham Land, Victoria Land, Wilhelm II Land, Adelie
38
Land, McRobertson Land, Enderby Land, Weddell Sea, Brabant I., Joinville I., South
Shetland Is.). Bathymetry: 7-1098 m.
[insert figure 5]
Myxilla (Ectyomyxilla) mariana Ridley & Dendy, 1886
(Figs. 6A-J)
MCNPOR 1962, Est. 4865: 62º55' S - 55º16' W, 82 m, 03.II.1986.
Comparative material. BMNH 1887.5.2.108 - Myxilla mariana Ridley & Dendy, 1886.
Description. (Fig. 6A) Fragment; dimensions: 7.7 x 4.5 cm; surface rugous, with discrete
ridges and grooves; several oscules scattered through the surface (<0.1–0.2 cm diameter),
randomly distributed. Preserved material lightly compressible and fragile consistency,
colour light brown.
Skeleton. (Fig. 6B) Ectosome made by megascleres in confusion. Choanosome has some
reticulation with multispicular tracts transversed by free spicules, without an evident
orientation, sometimes forming triangular meshes.
Spicules. Megascleres: acanthostyles I: 342–438.5–494 / 12.7–16.6–19.6 µm (Figs. 6C-D);
acanthostyles II: 75.9–104.5–142.6 / 3.5–4.7–5.8 µm (Figs. 6E-F); tylotes: 237.5–271.3–
304 / 6.9–9.4–11.5 µm (Figs. 6G-H); isochelas: 20.7–25.1–29.9 µm (Fig. 6I); sigmas: 41.4–
50.1–71.3 µm (Fig. 6J).
Remarks. In the studied sample occurs tylotes bearing blunted ends, some of them with
spines absents. Isochelas are smaller in comparison with measurements supplied by RIDLEY
& DENDY (1887) and HENTSCHEL (1914). It was also observed in the present study an
39
insignificant amount of acanthostyles II. Comparative material has spicules that seem to be
identical to the material of the present study, presenting little significant differences.
Distribution. Marion I., Chile, Antarctica (Wilhelm II Land, Queen Mary Land, Joinville
I.). Bathymetry: 82-385 m
[insert figure 6]
Suborder Mycalina
Family Mycalidae
Mycale (Oxymycale) acerata (Kirkpatrick, 1907)
(Figs. 7A-H)
MCNPOR 1983, Est. 4864: 63º01' S - 54º49' W, 275 m, 02.II.1986.
Comparative material. BMNH 1908.2.5.171b - Mycale acerata Kirkpatrick, 1907.
Description. (Fig. 7A) Erect and ramified specimen; dimensions: 9.0 x 7.0 x 9.5 cm;
surface partially destroyed. Preserved material hard consistency and little flexible, colour
white, some regions with light brown tonalities.
Skeleton. Ectosome a tangential reticulation composed by multispicular tracts, forming
triangular meshes (Fig. 7B). Choanosome with thick and compact multispicular tracts,
connected by secondary tracts (Fig. 7C). Both types of anisochelas, as well as the raphids,
are positioned along the entire tracts.
Spicules. Megascleres: oxeas: 650–806.4–890 / 12.5–17.1–20 µm (Figs. 7D-E); raphids:
25–31–35 µm (Fig. F); anisochelas I: 87.5–104.6–117.5 µm (Fig. 7G); anisochelas II: 30–
44.8–52.5 µm (Fig. 7H).
40
Remarks. Comparative material only differs by the absence of smaller anisochelas. It
corroborates with the affirmations of Burton (1934; 1938) in regarding to the occurrence of
these microscleres, which can also vary in size and in their presence.
Distribution. Macquarie I., Kerguelen I., Chile, Argentina, Falkland Is., Shag Rocks, South
Georgia, South Orkneys, Antarctica (Victoria Land, Graham Land, Adelie Land, Wilhelm
II Land, Banzare Land; McRobertson Land; Princess Ragnhild Land, Enderby Land,
Weddell Sea, South Shetland Is., Joinville I.). Bathymetry: 0-731 m.
[insert figure 7]
Family Isodictyidae
Isodictya erinacea (Topsent, 1916)
(Figs. 8A-E)
MCNPOR 1961, Est. 4865: 62º55' S - 55º16' W, 82 m, 02.II.1986.
Description. (Fig. 8A) Ramose fragment; dimensions: 14 x 3.5 x 2.0 cm; spiny surface,
ramified from the central axis. Preserved material stiffly consistency, colour light brown.
Skeleton. (Fig. 8B) Ectosome absent. Choanosome constituted by thick longitudinal
multispicular tracts (400–820 µm thickness), irregularly connected by megascleres in criss-
cross, forming rounded to polygonal meshes (370–810 µm diameter). Isoquelas dispersed
along the tracts.
Spicules. Megascleres: oxeas: 600–718.4–800 / 18.8–27.1–31.3 µm (Figs. 8C-D);
isochelas: 42.5–52.7–57.5 µm (Fig. 8E).
41
Remarks. Desqueyroux-Faúndez (1989) shown in the spicules of your samples a second
category of smaller isochelas; in the samples of Ríos et al. (2004), as well as in the present
study, such spicules were observed, however it must be considered as a growth stage.
Distribution. South Georgia, Burdwood Bank, Antarctica (Graham Land, Palmer
Archipelago, Victoria, Banzare Land; McRobertson Land, Enderby Land, Adelie Land,
Weddell Sea, Joinville I., South Shetland Is., Bransfield Strait. Bathymetry: 20-920 m.
[insert figure 8]
Order Haplosclerida
Suborder Haplosclerina
Family Chalinidae
Haliclona (Gellius) rudis (Topsent, 1901)
(Figs. 9A-G)
MCNPOR 1984, Est. 4866: 62º53' S - 56º27' W, 194 m, 03.II.1986.
Description. (Fig. 9A) Digitiform specimen; dimensions: 8.0 x 5.5 cm; surface hispid to
the touch, with ridges and grooves; oscules 0.1–0.2 cm diameter, positioned in coniform
elevations; on the surface small pores had been observed (<0.1 cm diameter). Preserved
material friable consistency, colour light brown.
Skeleton. (Fig. 9B) Ectosome without specialization. Choanosome formed by a dense
arrangement of multispicular tracts, interconnected by isolated megascleres. Part of the
skeleton is organized in confused and irregular way, with tracts oriented in several
directions. Sigmas are present at the nodes of megascleres.
42
Spicules. Megascleres: oxeas I: 330–439.6–530 / 12.5–17.4–20 µm (Figs. 9C-D); oxeas II:
240–322–420 / 2.5–5.5–8.8 µm (Figs. 9E-F); sigmas: 17.5–32.5–55 µm (Fig. 9G).
Remarks. The spicules possesses some variation in comparing to previous records, mainly
in regard to measurements related for the oxeas; in the present study it was possible to
identify oxeas in two size classes; such distinction was only observed by Boury-Esnault and
Van Beveren (1982).
Distribution. Kerguelen I., Antarctica (Bellingshausen Sea, Graham Land, Victoria Land,
Weddell Sea, Joinville I., South Shetland Is., Bransfield Strait. Bathymetry: 20-500 m.
[insert figure 9]
Haliclona (Rhizoniera) dancoi (Topsent, 1901)
(Figs. 10A-D)
MCNPOR 1986, Est. 4867: 62º57' S - 56º50' W, 95 m, 03.II.1986.
Description. (Fig. 10A) Partially unbroken specimen, arborescent; dimensions: 5.2 x 1.2 x
1.4 cm; surface hispid to the touch, with protruding spicules; oscules 0.1–0.2 cm diameter.
Preserved material friable consistency, colour beige.
Skeleton. (Fig. 10B) Ectosome formed by the ends of primary tracts, arranged or not in
discrete bouquets. Choanosomal network composed by multispicular primary tracts (65–
140 µm thickness), connected by secondary tracts, uni to paucispicular, forming polygonal
to triangular meshes.
Spicules. Megascleres: oxeas: 380–468.2–590 / 16.3–23.6–30 µm (Figs. 10C-D).
Remarks. Comparing the measurements of spicules from previous records (Topsent 1901b;
1908; Kirkpatrick 1908; Hentschel 1914; Koltun 1964; 1976) with measurements obtained
43
in the present study, it can be observed some variation in dimensions. Such variation
presented by the oxeas seems to be constant.
Distribution. South Orkneys Is., Antarctica (Bellingshausen Sea, Graham Land, Victoria
Land, Wilhelm II Land, Princess Elisabeth Land, McRobertson Land, Enderby Land,
Adelie Land, Sabrina Land, Weddell Sea, Joinville I., South Shetland Is.). Bathymetry: 18-
2267 m.
[insert figure 10]
Family Niphatidae
Haliclonissa verrucosa Burton, 1932
(Figs. 11A-F)
MCNPOR 1990, Est. 4866: 62º53' S - 56º27' W, 194 m, 03.II.1986.
Comparative material. BMNH 1928.2.15.723a - Haliclonissa verrucosa Burton, 1932.
Description. (Fig. 11A) Cylindrical sponge; dimensions: 5.0 x 1.9 x 1.2 cm; surface
verrucose and hispid to the touch. Oscular vents 0.1-0.3 cm diameter. Preserved material
very friable consistency, colour beige.
Skeleton. (Fig. 11B) Ectosome formed by the ends of choanosomal tracts, in varied
positions. Choanosome composed by longitudinal multispicular tracts, which protrude the
surface, irregularly connected by secondary tracts. Both types of oxeas are forming the
tracts, although few oxeas II are present in the studied specimen.
Spicules. Megascleres: oxeas I: 351.5–412.1–503.5 / 10.4–12.4–15 µm (Figs. 11C-D);
oxeas II: 256.5–288.2–323 / 2.5–4.3–6.9 µm (Figs. 11E-F).
44
Remarks. Desqueyroux-Faúndez and Valentine (2002) added new information concerning
the spicular conjunct referring to the species, recording a second category of oxeas, what it
was also observed in the present study.
Distribution. Uruguay, Argentina, Antarctica (Palmer Archipelago, Victoria Land,
Weddell Sea, Joinville I., South Shetland Is.). Bathymetry: 25-194 m.
[insert figure 11]
Microxina benedeni Topsent, 1901
(Figs. 12A-E)
MCNPOR 1982, Est. 4866: 62º53' S - 56º27' W, 194 m, 03.II.1986.
Description. (Fig. 12A) Cylindrical specimen; dimensions: 7.3 x 2.2 x 2.4 cm; surface
densely spiny, due to the presence of stiffly conules; oscules <0.1–0.3 cm diameter.
Preserved material very firm and incompressible consistency, colour light brown.
Skeleton. (Fig. 12B) Ectosome without tangential specialization. Choanosome composed
by longitudinal multispicular tracts (320–700 µm thickness), forming tufts which
characterizes the superficial texture; between the tracts the spicules occurs in an irregular
arrangement which can bear discrete meshes.
Spicules. Megascleres: oxeas: 408.5–804.1–902.5 / 27.5–30.3–55 µm (Figs. 12C-D);
sigmas: 20–30.4–55 µm (Fig. 12E).
Remarks. The sample of the present study presents only sigmas as microscleres, which
occurs with low frequency.
Distribution. Falkland Is., South Georgia, Antarctica (Bellingshausen Sea, Graham Land,
Victoria Land, Palmer Archipelago, Banzare Land; Princess Elisabeth Land, McRobertson
45
Land, Enderby Land, Weddell Sea, Joinville I., South Shetland Is.). Bathymetry: 81-1266
m.
[insert figure 12]
Microxina phakelloides (Kirkpatrick, 1907)
(Figs. 13A-F)
MCNPOR 2046, Est. 4865: 62º55' S - 55º16' W, 82 m, 03.II.1986.
Description. (Fig. 13A) Massive and amorphous specimen; dimensions: 7.8 x 6.3 x 1.1 cm;
surface conulous; oscules 0.1 cm diameter. Preserved material friable consistency, colour
light brown.
Skeleton. (Fig. 13B) Ectosome formed by thick multispicular tracts, perpendicular to the
surface, where megascleres are positioned in tufts which characterize the superficial
hispidation. Choanosome with uni to paucispicular tracts forming polygonal meshes,
diameter 300–380 µm. Sigmas and toxas between the meshes.
Spicules. Megascleres: oxeas: 627–707–779 / 25.3–32.7–36.8 µm (Figs. 13C-D); sigmas:
52.9–83.9–128.8 / 2.5–3.9–5.0 µm (Fig. 13E); toxas: 94.3–130–184 / 2.5–3.9–5.0 µm (Fig.
13F).
Remarks. In comparing to previous records (Kirkpatrick, 1908, Hentschel, 1914 and
Koltun, 1964), the sample of the present study presents bigger oxeas.
Distribution. Antarctica (Victoria Land, Knox Land, Banzare Land, Wilhelm II Land,
Weddell Sea, South Shetland Is., Joinville I., Bransfield Strait). Bathymetry: 66-550 m.
[insert figure 13]
46
Concluding remarks
The composition of species detected at Joinville I. had provided an addition of 100
% to the faunistic stock of local sponge fauna known until the present.
With the new occurrences of Iophon terranovae Calcinai & Pansini, 2000, Myxilla
(Ectyomyxilla) mariana (Ridley & Dendy, 1886) and Haliclona (Rhizoniera) dancoi
(Topsent, 1901) the register of these species for the study area is extended. Are also known
in this study new bathymetric records for I. terranovae, M. (Ectyomyxilla) mariana,
Haliclonissa verrucosa Burton, 1932 and Microxina phakelloides (Kirkpatrick, 1907).
This new panorama of the sponges in Antarctica also comes to corroborate
Desqueyroux-Faúndez (1989) and Ríos et al. (2004), in the sense of still have necessity of
the accomplishment of new collections, mainly in the region that encloses the Graham Land
and Palmer Archipelago, together with South Shetland Is, South Orkneys, South Sandwich
and vicinities, making possible a better understanding of the real geographic and
bathymetric distribution of the species belonging to antarctic complex.
Acknowledgements
We thank Clare Valentine (BMNH), Dr. Barbara Calcinai (Dipartimento di Scienze
del Mare, Università di Ancona, Ancona, Italy) and Dr. Carsten Lüter (ZMB) for the loan
of comparative material; Dr. Eduardo Hajdu (Museu Nacional, Universidade Federal do
Rio de Janeiro, Brazil) and Dr. Ruth Desqueyroux-Faúndez (Museum d’Histoire Naturelle
de Genève, Geneva, Switzerland) for help in bibliography. We also thank CAPES and
CNPq (Brazil) for research grants.
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52
Figure 1. Map showing the studied area; marked points indicates the specific collecting
places.
53
54
Figure 2. Iophon terranovae Calcinai & Pansini, 2000. A, specimen. B, skeleton. C, styles
I. D, extremities of styles I. E, styles II. F, anisochelas. G, bipocillas.
55
56
Figure 3. Artemisina apollinis (Ridley & Dendy, 1886). A, specimen. B, skeleton. C, styles
I. D, extremities of styles I. E, styles II. F, extremities of styles II. G, isochelas. H, toxas I.
I, detail of extremity of toxas I. J, toxas II.
57
58
Figure 4. Phorbas areolata (Thiele, 1905). A, specimen. B, skeleton. C, acanthostyles. D,
extremities of acanthostyles. E, tornotes. F, extremities of tornotes. G, isochelas.
59
60
Figure 5. Myxilla (Myxilla) mollis (Ridley & Dendy, 1886). A, specimen. B, skeleton. C,
styles. D, extremities of styles. E, tylotes. F, extremities of tylotes. G, isochelas. H, sigmas
I. I, sigmas II.
61
62
Figure 6. Myxilla (Ectyomyxilla) mariana Ridley & Dendy, 1886. A, specimen. B, skeleton.
C, acanthostyles I. D, extremities of acanthostyles I. E, acanthostyles II. F; extremities of
acanthostyles II. G, tylotes. H, extremities of tylotes. I, isochelas. J, sigmas.
63
64
Figure 7. Mycale (Oxymycale) acerata (Kirkpatrick, 1907). A, specimen. B, ectosome. C,
choanosome. D, oxeas. E, extremities of oxeas. F, raphids. G, anisochelas I. H, anisochelas
II.
65
66
Figure 8. Isodictya erinacea (Topsent, 1916). A, specimen. B, skeleton. C, oxeas. D,
extremities of oxeas. E, isochelas.
67
68
Figure 9. Haliclona (Gellius) rudis (Topsent, 1901). A, specimen. B, skeleton. C, oxeas I.
D, extremities of oxeas I. E, oxeas II. F, extremities of oxeas II. G, sigmas.
69
70
Figure 10. Haliclona (Rhizoniera) dancoi (Topsent, 1901). ). A, specimen. B, skeleton. C,
oxeas. D, extremities of oxeas.
71
72
Figure 11. Haliclonissa verrucosa Burton, 1932. A, specimen. B, skeleton. C, oxeas I. D,
extremities of oxeas I. E, oxeas II. F, extremities of oxeas II.
73
74
Figure 12. Microxina benedeni Topsent, 1901. A, specimen. B, skeleton. C, oxeas. D,
extremities of oxeas. E, sigmas.
75
76
Figure 13. Microxina phakelloides (Kirkpatrick, 1907). A, specimen. B, skeleton. C, oxeas.
D, extremities of oxeas. E, sigmas. F, toxas.
77
78
CAPÍTULO 4
First report for Antarctica of three sponge species collected
by the Brazilian Antarctic Program – PROANTAR
(Demospongiae, Poecilosclerida, Halichondrida, Haplosclerida)
ARTIGO ENVIADO PARA PUBLICAÇÃO: REVISTA BRASILEIRA
DE ZOOLOGIA, PROTOCOLO Nº 207/2006
79
First report for Antarctica of three sponge species collected by the Brazilian Antarctic
Program - PROANTAR (Demospongiae, Poecilosclerida, Halichondrida, Haplosclerida)
Maurício Campos
1, 2
, Beatriz Mothes
1
& Inga L. Veitenheimer-Mendes
2
1 Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul. Rua Salvador
França 1427, 90690-000 Porto Alegre-RS, Brazil. E-mail: [email protected];
2 Programa de Pós-Graduação em Biologia Animal, Universidade Federal do Rio Grande
do Sul. Av. Bento Gonçalves 9500, 91501-970 Porto Alegre-RS, Brazil. E-mail:
ABSTRACT. Three species of Demospongiae are recorded for the first time for the
Antarctic continent: Hymedesmia (Hymedesmia) laevis (Thiele, 1905), Halichondria
(Eumastia) attenuata (Topsent, 1915) and Haliclona (Soestella) chilensis (Thiele, 1905),
the two first ones also presenting a new bathymetric limit. Previously, these species
presented restricted distribution to the localities in the southernmost South America.
KEY WORDS: Porifera, Demospongiae, taxonomy, distribution, PROANTAR.
RESUMO. Primeiro registro para a Antártica de três espécies de esponjas coletadas
pelo Programa Antártico Brasileiro - PROANTAR (Demospongiae, Poecilosclerida,
Halichondrida, Haplosclerida). Três espécies de Demospongiae são registradas pela
primeira vez para o continente Antártico: Hymedesmia (Hymedesmia) laevis (Thiele,
1905), Halichondria (Eumastia) attenuata (Topsent, 1915) and Haliclona (Soestella)
80
chilensis (Thiele, 1905), as duas primeiras também apresentando um novo limite
batimétrico. Anteriormente estas espécies apresentavam distribuição restrita a
localidades na porção mais ao sul da América do Sul.
PALAVRAS-CHAVE: Porifera, Demospongiae, taxonomia, distribuição, PROANTAR.
The Antarctic sponge fauna is well known, mainly between Victoria to Enderby
Land, and also at areas near to Graham Land and Weddell Sea. In the panorama about the
specific knowledge of demosponges from Antarctic and subantarctic regions provided by
SARÀ et al. (1992) such reality can be observed, where one evidences that at South
Georgia, South Sandwich, South Orkneys and South Shetland Is. this fauna still presents
few records. Such situation in regard to the supracited insular region was also pointed out
by RÍOS et al. (2004).
The aim of this work is to increase the knowledge of species richness of
demosponges from South Shetland Is., based on samples collected in 1986 and 1988
through Brazilian Antarctic Program (PROANTAR), IV and VI expeditions, respectively.
MATERIAL AND METHODS
The samples were collected in areas near to South Shetland Is., at Bransfield Strait and
King George Is. (Fig. 1), by means of “beam-trawl” dredge and scuba diving. They are
preserved in 96°
GL alcohol and deposited in the Porifera Collection of Museu de Ciências
Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, RS, Brazil.
The methodology employed for taxonomic study was made based on the spicules,
through dissociated spicule slides and thick sections from the skeleton, following
techniques described respectively by MOTHES-DE-MORAES (1978) and MOTHES et al.
81
(2004). Preparations for SEM study according to SILVA & MOTHES (1996). Spicule
measurements comprised minimum, mean, and maximum sizes, width after the bar (/),
N=50.
Abbreviations used in the text are: MCNPOR (Porifera Collection, Museu de
Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, RS, Brazil),
PROANTAR (Programa Antártico Brasileiro), SEM (Scanning Eletronic Microscope) and
ZMBPOR (Porifera Collection, Zoologische Museum für Naturkunde an der Universität
Humboldt zu Berlin, Berlin, Germany).
RESULTS
Class Demospongiae Sollas, 1888
Order Poecilosclerida Topsent, 1928
Suborder Myxillina Hajdu, Van Soest & Hooper, 1994
Family Hymedesmiidae Topsent, 1928
Genus Hymedesmia Bowerbank, 1864
Subgenus Hymedesmia Bowerbank, 1864
Hymedesmia (Hymedesmia) laevis (Thiele, 1905)
(Figs. 2-11)
Hymedesmia laevis Thiele, 1905: 453, pl. 31, figs. 69a-f (type-locality: Calbuco, Chile);
Burton, 1932: 326; Desqueyroux & Moyano, 1987: 50.
82
Material. MCNPOR 1998, St. 4874, Bransfield Strait, near to Low I.: 63º25' S - 62º19' W,
135 m, 14.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Comparative material. Hymedesmia (Hymedesmia) laevis Thiele, 1905. Place of
collection: Calbuco, Chile. Collector: no records. Slide ZMBPOR 3306 (holotype).
Description. (Fig. 2) Thinly encrusting fragment, overgrowing on coralline
material; dimensions: 0.7 x 0.9 cm, 0.1 cm width; on magnified glass it was observed a
conulose surface, with some protruding spicules. Preserved material apparently friable
consistency, colour beige.
Skeleton. (Fig. 3) Ectosome not specialized. Basal specialization not observed, due
to the degree of fragmentation of the sample. Choanosome formed by thick tracts,
composed by tornotes which are crossed by acanthostyles I and II. Between the tracts there
are megascleres in confusion. Microscleres dispersed in the choanosome.
Spicules. Megascleres: acanthostyles I - microspines more concentrated on basal
portion (08–12), distributed in irregular and random way along the shaft, where are always
curved in direction to the base (Fig. 4), apical extremity slightly blunted (Fig. 5),
measurements: 197.5–234.7–282.5 / 10–11.7–13.8 µm; acanthostyles II - morphology very
similar to acanthostyles I, with the exception of a major concentration of microspines on
apical portion (12–16), well developed (Figs. 6, 7), measurements: 97.5–116.9–140 / 5.0–
7.1–8.8 µm; tornotes - smooth (Fig. 8), both extremities slightly swelled, conical ends,
slightly mucronate (Fig. 9), measurements: 147.5–167.8–197.5 / 2.5–3.3–5.0 µm.
Microscleres: isochelas - with three fused alae in each basal portion (Fig. 10),
measurements: 13.8–20.8–32.5 µm; sigmas - slightly unequal extremities, as in regard to
the expansion as in its morphology (Fig. 11), measurements: 17.5–19.9–25 µm.
83
Remarks. A new bathymetric limit is recorded for the species, previously only
known from <25 m (DESQUEYROUX & MOYANO 1987). Illustrations of spicules are here
improved, which were initially undertaken by SEM and subsequently illustrating details of
the microspines of the acanthostyles and the morphology of isochelas.
Tornotes resemble observations made by BURTON (1932), which cited such spicule
with mucronated ends; THIELE (1905) has described tornotes with rounded ends
(“amphityle”). Acanthostyles I from holotype bears well developed microspines, whereas in
the material here studied such spicules bear discrete microspines. However these variations
are here considered as intraspecific differences.
Spicules from the holotype have been remeasured, extending their reported size
range and mean dimensions (measurements in µm): acanthostyles I 163.3–197.1–223.1 /
11.5–13.4–16.1; acanthostyles II 75.9–87.7–105.8 / 5.8–7.7–9.2; tornotes 135.7–149–158.7
/ 2.3–2.6–3.5; isochelas 9.2–20.2–36.8; sigmas 18.4–25.2–33.4. Verified values are close to
those obtained in the studied material.
Distribution. South America: Chile (THIELE 1905; DESQUEYROUX & MOYANO
1987); Falkland Is. (BURTON 1932). Antarctica: Antarctica: Bransfield Strait (present
study). Bathymetry: 1 m (BURTON 1932) to 135 m (present study).
Order Halichondrida Gray, 1867
Family Halichondriidae Gray, 1867
Genus Halichondria Fleming, 1828
Subgenus Eumastia Schmidt, 1870
Halichondria (Eumastia) attenuata (Topsent, 1915)
(Figs. 12-15)
84
Eumastia attenuata Topsent, 1915: 35-37, figs. 1, 2a-b (type-locality: Port Stanley,
Falkland Is.); Burton, 1932: 335; 1934: 44.
Material. MCNPOR 5484, St. 4874, Bransfield Strait, near to Low I.: 63º25' S - 62º19' W,
135 m, 14.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Description. (Fig. 12) Irregular fragment; dimensions: 2.0 x 1.6 cm, 0.9 cm thick;
slightly rugose surface, due to the presence of several ridges, some of them are bigger
forming discrete papillae, not exceeding 0.1 cm height. The sample bears a very
conspicuous cortex, detachable, slightly translucent, <0.1 cm width; openings can be seen
at the top of bigger conules (<0.1 cm diameter). Preserved material lightly compressible
consistency, colour grayish white (cortical region), light brown internally.
Skeleton. (Fig. 13) Ectosome formed by a cortical region, constituted by a palisade
of spicules, which protrude the surface, 530–870 µm width. Below the cortex subectosomal
openings or canals were observed, disposed in regular way. In the choanosome spicules are
positioned perpendicularly to the surface in some regions; in direction to the inner body
spicules are more concentrated and arranged in confusion.
Spicules. Megascleres: oxeas - straight, smooth (Fig. 14), extremities varying from
acerate to conical, with predominance of latter form (Fig. 15), measurements: 350–429.2–
480 / 12.5–15.6–17.5 µm.
Remarks. Bathymetric record of this species is increased in the present study from
intertidal to 13 m depths. Skeletal architecture and spicules are well illustrated for the first
time (the latter using SEM analysis), better details for specific identification.
85
TOPSENT (1915) recorded the presence of well developed papillae over the sponge
surface, however in the present study the papillae are reduced in size, probably representing
a young specimen. Measurements of the oxeas are very similar to those related by TOPSENT
(op. cit.), differing only by the presence of thicker spicules.
Distribution. South America: Falkland Is. (TOPSENT, 1915; BURTON 1932; 1934);
South Georgia (BURTON 1934). Antarctica: Bransfield Strait (present study). Bathymetry:
0–2 m (BURTON 1932) to 135 m (present study).
Order Haplosclerida Topsent, 1928
Suborder Haplosclerina Topsent, 1928
Family Chalinidae Gray, 1867
Genus Haliclona Grant, 1836
Subgenus Soestella de Weerdt, 2000
Haliclona (Soestella) chilensis (Thiele, 1905)
(Figs. 16-20)
Reniera chilensis Thiele, 1905: 467, pl. 27, fig. 5, pl. 32, fig. 84 (type-locality: Calbuco,
Chile).
Haliclona chilensis; Burton, 1932: 265; 1934: 11; Desqueyroux & Moyano, 1987: 50.
Material. MCNPOR 3139, St. ‘C’, King George I.: 62º06' S - 58º22' W, 28 m, 06.III.1988,
PROANTAR VI, scuba diving coll.
Description. (Fig. 16) Partially entire sample, composed unequal tubular
projections bonded by the same base; dimensions (in a whole): 5.2 x 3.6 cm, 4.0 cm height
86
since the base; tubes ranging from 2.0–3.0 cm height, 1.2–1.8 cm width; optically smooth
surface, slightly hispid to the touch; oscular openings at the apex of each tubular projection,
0.25–0.4 cm diameter. Preserved material with slightly compressible consistency, colour
brown.
Skeleton. Ectosome formed by a tangential reticulation (Fig. 17), where it has round
meshes, 100–420 µm diameter. Choanosome (Fig. 18) composed by a network of primary
ascending tracts, paucispicular (02–05 spicules diameter), 10–50 µm width, connected by
secondary tracts, uni-paucispicular, 8.0–20 µm width; network bearing irregular meshes,
rounded to triangular and/or polygonal, 80–180 µm diameter. Along the skeletal
arrangement diverse rounded openings are observed. Scarce spongin, more visible at the
nodes of the spicules.
Spicules. Megascleres: oxeas - smooth, with a slight central bent, rarely fusiform
(Fig. 19), extremities often acerate (Fig. 20), but rounded, conical and hastate forms may
occur, measurements: 137.5–163.9–180 / 2.5–8.9–12.5 µm.
Remarks. The present sample is quite similar to original description of THIELE
(1905), with tubular projections bearing an oscular opening at the apex of the framework.
Together with such characteristics, the inclusion of this species in Soestella is corroborated
by the presence of a tangential ectosome composed by rounded apertures, in addition to
possession of a choanosome with subanisotropic network of paucispicular primary lines,
irregularly connected by secondary ones, and spongin at the nodes of the spicules.
Dimensions of oxeas are very similar to those described by THIELE (op. cit.);
conversely, BURTON (1932) recorded smaller oxeas. THIELE (op. cit.) observed oxeas with
blunted ends, but in the present study extremities are more often pointed. These
particularities are all interpreted as intraespecific variations.
87
Confirmation of the presence of a tangential ectosome with rounded meshes
supports the allocation of this species to the subgenus Soestella.
Distribution. South America: Chile (THIELE 1905; DESQUEYROUX & MOYANO
1987); Falkland Is. (BURTON 1932; 1934). Antarctica: South Shetland Is., King George I.
(present study). Bathymetry: 15 m (BURTON 1934) to 75 m (BURTON 1932).
ACKNOWLEDGEMENTS
We thank Dr. Carsten Lüter (ZMB) for the loan of comparative material; Dr. Eduardo
Hajdu (Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Brazil) and Dr. Ruth
Desqueyroux-Faúndez (Museum d’Histoire Naturelle de Genève, Geneva, Switzerland) for
help in bibliography and loan material. We also thank CAPES and CNPq (Brazil) for
research grants.
REFERENCES
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BURTON, M. 1934. Sponges. Further Zoological Results of the Swedish Antarctic
Expedition 1901-1903, Stockholm, 3 (2): 1-58.
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Zoologia, Porto Alegre, 94 (2): 149–154.
88
MOTHES-DE-MORAES, B. (1978) Esponjas tetraxonidas do litoral sul-brasileiro: II. Material
coletado pelo N/Oc. “Prof. W. Besnard” durante o programa RS. Boletim do Instituto
de Oceanografia, São Paulo, 27 (2): 57–78.
RÍOS, P.; F.J. CRISTOBO & V. URGORRI. 2004. Poecilosclerida (Porifera, Demospongiae)
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SARÀ, M; A. BALDUZZI; M. BARBIERI; G. BAVESTRELLO & B. BURLANDO. 1992.
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SILVA, C.M.M. & B. MOTHES. 1996. SEM analysis: an important instrument in the study of
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THIELE, J. 1905. Die Kiesel- und Hornschwämme der Sammlung Plate. Zoologische
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Transactions of the Royal Society of Edinburgh (Supplément), Edinburgh, 51: 35-
43.
89
Figure 1. Map showing the collecting area; marked points indicate the specific place of
collection.
90
91
Figures 2-11. Hymedesmia (Hymedesmia) laevis (Thiele, 1905). (2) preserved specimen,
indicated by the arrow; (3) skeletal arrangement; (4) acanthostyle I; (5) detail of
acanthostyle I extremities; (6) acanthostyle II; (7) detail of acanthostyle II extremities; (8)
tornotes; (9) detail of tornotes extremities; (10) isochelas; (11) sigma. Scale bars: (2) 0.3
cm; (3) 500 µm; (4) 50 µm; (5) 20 µm; (6) 50 µm; (7) 10 µm; (8) 50 µm; (9) 10 µm; (10) 5
µm; (11) 10 µm.
92
93
Figures 12-15. Halichondria (Eumastia) attenuata (Topsent, 1915). (12) preserved
specimen; (13) skeletal arrangement; (14) oxea; (15) detail of oxea extremities. Scale bars:
(12) 0.5 cm; (13) 600 µm; (14) 10 µm; (15) 20 µm.
94
95
Figures 16-20. Haliclona (Soestella) chilensis (Thiele, 1905). (16) preserved specimen;
(17) tangential view of ectosome; (18) perpendicular section of choanosome; (19) oxea;
(20) detail of oxea extremities. Scale bars: (16) 1 cm; (17), (18) 500 µm; (19) 50 µm; (20)
10 µm.
96
97
CAPÍTULO 5
Contribution to the knowledge of Antarctic sponges (Porifera,
Demospongiae). Part I. Spirophorida, Astrophorida, Hadromerida
and Haplosclerida.
ARTIGO ENVIADO PARA PUBLICAÇÃO: REVISTA BRASILEIRA
DE ZOOLOGIA, PROTOCOLO Nº 206/2006
98
Contribution to the knowledge of Antarctic sponges (Porifera, Demospongiae). Part I.
Spirophorida, Astrophorida, Hadromerida and Haplosclerida.
Maurício Campos
1,2
, Beatriz Mothes
1
& Inga L. Veitenheimer Mendes
2
1 Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul. Rua Salvador
2 Programa de Pós-Graduação em Biologia Animal, Universidade Federal do Rio Grande
do Sul. Av. Bento Gonçalves 9500, 91501-970 Porto Alegre-RS, Brazil. E-mail:
ABSTRACT. The present research aims to give continuity to the knowledge of the species
richness of sponges collected at Antarctica by the Brazilian Antarctic Program, at South
Shetland Is and neighboring areas. The description of 09 species is emended, distributed in
the orders Spirophorida, Astrophorida, Hadromerida and Haplosclerida, supplying an ample
illustration of all the morphologic characteristics. Three species are recorded for the first
time for this sector of the continent: Tethyopsis longispinum (Lendenfeld, 1907), Suberites
montiniger Carter, 1880 sensu Topsent, 1915 and Hemigellius bidens (Topsent, 1901), with
the former extending their bathymetric limit.
KEY WORDS. Porifera, Demospongiae, taxonomy, Antarctica, PROANTAR.
RESUMO. Contribuição ao conhecimento de esponjas da Antártica (Porifera,
Demospongiae). Parte I. Spirophorida, Astrophorida, Hadromerida e Haplosclerida.
99
A presente pesquisa visa dar continuidade ao conhecimento da riqueza de espécies de
esponjas coletadas na Antártica pelo Programa Antártico Brasileiro, nas Is. Shetland do Sul
e áreas próximas. Amplia-se a descrição de 09 espécies, distribuídas nas ordens
Spirophorida, Astrophorida, Hadromerida e Haplosclerida, fornecendo ampla ilustração de
todas as características morfológicas. Três espécies são pela primeira vez registradas para
este setor do continente: Tethyopsis longispinum (Lendenfeld, 1907), Suberites montiniger
Carter, 1880 sensu Topsent, 1915 e Hemigellius bidens (Topsent, 1901), onde a primeira
tem o limite de seu registro batimétrico ampliado.
PALAVRAS CHAVE. Porifera, Demospongiae, taxonomia, Antártica, PROANTAR.
Antarctic sponges possess numerous records, which were yielded by several works
carried through with material collected by diverse expeditions, highlighting the works of
TOPSENT (1901a, b, 1907, 1908, 1913, 1915, 1916, 1917), LENDENFELD (1907),
KIRKPATRICK (1907, 1908), HENTSCHEL (1914), BURTON (1929, 1932, 1934, 1938),
KOLTUN (1964, 1976), VACELET & ARNAUD (1972) and DESQUEYROUX (1972, 1975). More
recently some records had been provided by DESQUEYROUX-FAÚNDEZ (1989), PANSINI et
al. (1994), MOTHES & LERNER (1995), GUTT & KOLTUN (1995), BARTHEL et al. (1990;
1997), CATTANEO-VIETTI et al. (1999), CALCINAI & PANSINI (2000) and RÍOS et al. (2004).
Other important contributions for the study of this fauna originates from works on the fauna
of subantartic regions, which composes the Antarctic Faunistic Complex proposed by SARÀ
et al. (1992); such records can be found in RIDLEY (1881), RIDLEY & DENDY (1887),
SOLLAS (1888), THIELE (1905), BURTON (1940), LÉVI (1956, 1964), SARÀ (1978), BOURY-
ESNAULT & VAN BEVEREN (1982), DESQUEYROUX & MOYANO (1987) and PANSINI & SARÀ
(1999).
100
Although so many researches has been carried through, some areas are not yet
completely studied, like some islands from south Atlantic Ocean and another places near to
Antarctic Peninsula, like South Shetland Is. and neighbor areas (RÍOS et al. 2004). The
achievement of new faunistic surveys in that continent will be greatly important, in order to
associate its abundance with the environmental conditions, their annual changes and also to
extend geographic and bathymetric records (DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989).
MATERIAL AND METHODS
The samples were collected through Brazilian Antarctic Program, at South Shetland Is. and
Bransfield Strait (Fig. 1), by means of “beam-trawl” and “otter-trawl” dredges, scuba
diving and some kind of traps which had collected sponges indirectly, between depths from
20 to 412 m. They are preserved in 96°
GL alcohol and deposited in the Porifera Collection
of Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Porto
Alegre, RS, Brazil.
The methodology employed for taxonomic study was made based on the spicules,
through dissociated spicule slides and thick sections from the skeleton, following
techniques described respectively by MOTHES-DE-MORAES (1978) and MOTHES et al.
(2004). Preparations for SEM study according to SILVA & MOTHES (1996). Spicule
measurements comprised minimum, mean, and maximum sizes, width after the bar (/),
N=50.
Abbreviations used in the text are: BMNH (British Museum of Natural History,
London, England) and MCNPOR (Porifera Collection, Museu de Ciências Naturais,
Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, RS, Brazil).
101
RESULTS
Class Demospongiae Sollas, 1885
Order Spirophorida Bergquist & Hogg, 1969
Family Tetillidae Sollas, 1886
Genus Cinachyra Sollas, 1886
Cinachyra antarctica (Carter, 1872)
(Figs. 2-11; Tab. I)
Tethya antarctica CARTER 1872: 412, pl. XX, figs. 1–10.
Cinachyra antarctica; BURTON 1932: 264; 1938: 5; KOLTUN 1976: 167; DESQUEYROUX
1975: 55, pl. I, figs. 10–12; DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989: 104, pl. 1, figs. 3a-c, pl. 6,
figs. 33–34; BARTHEL et al. 1990: 122; 1997: 47; GUTT & KOLTUN 1995: 230.
Further synonym see DESQUEYROUX (1975).
Studied material. MCNPOR 1959, St. 4873, Bransfield Strait: 63º25' S - 62º05' W, 66 m,
13.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.; MCNPOR 1978, 1980, Est. 4874,
Bransfield Strait: 63º25' S - 62º19' W, 135 m, 14.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl”
coll.
Examined material for comparison. Cinachyra antarctica (Carter, 1872),
collected by Mawson Antarctic Expedition, no records from the place of collection, slide
BMNH 1935.10.26.53.
102
Description. (MCNPOR 1959) (Fig. 2) Oval specimen; dimensions, in cm: 4.8
diameter, 7.0 height; surface with protruding spicules in long bundles; oscules not
observed; abundant pores (<0.1 cm in diameter), mainly in the lateral portion. Preserved
material firm consistency, colour beige.
Skeleton. Ectosome constituted by oxeas II densely disposed, perpendicular to the
surface (Fig. 3). Choanosome formed by thick radial tracts of protriaenes I, anatriaenes e
oxeas I (420–810 µm thickness), which protrude at the surface (Fig. 4); between the tracts it
can be observed oxeas I, II, protriaenes II and spinispiras randomly arranged.
Spicules. Megascleres: protriaenes I - cladome with clads of varied length,
rhabdome long, straight and sinuous, filiform at terminal portion (Fig. 5); protriaenes II -
cladome and rhabdome with the same above-mentioned characteristics (Fig. 6); anatriaenes
- cladome with uniform clads, cladome with a slight apical salience at their medium portion
(Fig. 7), rhabdome identical to the one of the protriaenes I; oxeas I - straight, acerate
extremities, some of them slightly blunt (Fig. 8); oxeas II - straight (Fig. 9), acerate
extremities (Fig. 10). Microscleres: spinispiras (Fig. 11) - often in “C”, a few in “S” form.
Measurements (Tab. I).
Remarks. C. antarctica is a circumantarctic distribution species, besides presenting
a great vertical distribution; its external morphologic aspect becomes it easily recognizable,
due to their long spicule bundles which protrude the surface.
BURTON (1929) inserted definitively the species in the genus Cinachyra,
considering Cinachyra vertex Lendenfeld, 1907 as synonym of C. antarctica, alleging that
the absence of spinispiras (cited as “sigmatas”) described by CARTER (1872) for the
holotype would not be true. KOLTUN (1964) includes in the synonymy the variety
monticularis, which had been proposed by KIRKPATRICK (1908) basing on observations in
103
different patterns of pores and oscules, which presented monticular elevations, but later
they had not been considered enough to establish itself as a distinct species.
The examined material for comparison is identical to studied material; all the
spicular elements bear the same features in both the material, like the general pattern of
triaenes (cladome and terminal portion of rhabdome), oxeas I and II (mainly the dimensions
of this latter) and spinispiras.
Distribution. Indic Ocean: Kerguelen I. (CARTER 1879). South America: South
Georgia (BURTON 1932). Antarctica: Ross Sea (CARTER 1872; SOLLAS 1888); Victoria
Land (KIRKPATRICK 1908; BROENDSTED 1926; BURTON 1929; KOLTUN 1964); Adelie Land
(BURTON 1938; VACELET & ARNAUD 1972); Wilhelm II Land (LENDENFELD 1907);
McRobertson Land (KOLTUN 1964); Enderby Land (KOLTUN 1976); Graham Land
(TOPSENT 1917; DESQUEYROUX 1972); Weddell Sea (BARTHEL et al. 1990; 1997; GUTT &
KOLTUN, 1995); South Shetland Is.: Low I. (DESQUEYROUX 1975); Bransfield Strait
(DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989; present study). Bathymetry: 18 m (KIRKPATRICK 1908) to
830 m (GUTT & KOLTUN 1995).
Cinachyra barbata Sollas, 1886
(Figs. 12-20; Tab. II)
Cinachyra barbata SOLLAS 1886: 183; BURTON 1932: 265; 1940: 98; KOLTUN 1976: 167;
DESQUEYROUX 1975: 55, pl. I, figs. 10–12; DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989: 103, pl. 1,
figs. 2a-e, pl. 6, figs. 32; BARTHEL et al. 1990: 122; 1997: 47; SARÀ et al. 1990: 252;
PANSINI et al. 1994: 68, fig. 4, pl. I, figs. 3a-d; GUTT & KOLTUN 1995: 230; CATTANEO-
VIETTI et al. 1999: 540.
104
Further synonym see DESQUEYROUX (1975; 1989).
Studied material. MCNPOR 1979, 2017, St. 4874, Bransfield Strait: 63º25' S - 62º19' W,
135 m, 14.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Examined material for comparison. Cinachyra barbata Sollas, 1886, collected by
Antarctic Discovery Expedition, no records from the place of collection, slide BMNH
1908.2.5.52g-x.
Description. (MCNPOR 1979) (Fig. 12) Globular specimen; dimensions, in cm: 2.5
height, 3.5 width, 3.2 thickness; hispid surface, due to their protruding long spicules;
oscules regularly distributed (0.1–0.25 cm in diameter), surrounded by brushes that reach
0.2 cm height, which are formed by concentrated spicules; pores not observed. Preserved
material slightly compressible consistency, colour grey with some cleared areas in beige.
Skeleton. (Fig. 13) Thick cortex, formed by oxeas II in palisade, perpendicular to
the surface. Choanosome constituted by spicular radial tracts formed by protriaenes,
anatriaenes and oxeas I (120–500 µm thickness), since the basal portion until the surface,
crossing the cortex and protruding the surface. Spinispiras and protriaenes II dispersed by
all over the skeleton.
Spicules. Megascleres: protriaenes I - cladome with clads of varied length (Fig. 14),
rhabdome long and straight; protriaenes II - cladome very similar to the one of protriaenes I
(Fig. 15), rhabdome generally filiform and sinuous since from the medium portion;
anatriaenes - cladome with clads lightly curved toward the rhabdome (Fig. 16), extremity
sinuous and filiform; oxeas I - slightly curved, acerate points, a few blunted (Fig. 17); oxeas
II - slightly curved (Fig. 18), acerate points (Fig. 19). Microscleres: spinispiras (Fig. 20) –
morphology varying from “C” form or similar forms. Measurements (Tab. II).
105
Remarks. SOLLAS (1888) presented an ample and detailed description of practically
all the morphologic characteristics and KIRKPATRICK (1905) still reinforced the knowledge
of the oscular aspects and related structures observed in this species.
C. barbata has a geographic and bathymetric distribution very similar in comparing
to C. antarctica; coincidently these two are the only valid species described until the
present for the genus. This latter observation does not corroborates with the diagnosis of the
genus proposed by VAN SOEST & RÜTZLER (2002), where only one species (in such case C.
barbata) is considered as valid. In the present study this affirmation is not corroborated; the
existence of samples from both the species in the material here studied made possible to
observe clearly the distinction of two groups, on the basis of the morphologic characters: C.
antarctica bears some great protruding spicules arranged in long brushes at the surface,
besides possessing bigger and thinner oxeas II, whereas C. barbata bears a slight spicule
protraction at the surface, together with smaller and thicker oxeas II.
Basing on the comparative material, the above-mentioned affirmation about the
existence of two species inside that genus is confirmed, with general morphology of the
spicules showing some differences which are enough to separate distinct groups. The
presence of oxeas II, identical to that ones observed in our material, is clearly distinguible
from the same spicules present in C. antarctica.
Distribution. Indic Ocean: Kerguelen I. (SOLLAS 1886; 1888; LENDENFELD 1907;
BOURY-ESNAULT & VAN BEVEREN 1982). South America: South Georgia (BURTON 1932;
1940). Antarctica: Victoria Land (KIRKPATRICK 1908; BURTON 1929; SARÀ et al. 1990;
PANSINI et al. 1994; CATTANEO-VIETTI et al. 1999); Wilhelm II Land (KOLTUN 1964);
McRobertson Land; Enderby Land (KOLTUN 1976); Weddell Sea (BARTHEL et al. 1990;
1997; GUTT & KOLTUN, 1995); South Shetland Is.: Robert I.; King George I.
106
(DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989); Bransfield Strait (present study); Deception I.
(DESQUEYROUX 1975). Bathymetry: 2 m (KOLTUN 1976) to 830 m (GUTT & KOLTUN,
1995).
Genus Craniella Schmidt, 1870
Craniella leptoderma (Sollas, 1886)
(Figs. 21-29; Tab. III)
Tetilla leptoderma SOLLAS 1886: 179; BURTON 1929: 418; KOLTUN 1976: 166;
DESQUEYROUX & MOYANO 1987: 47; DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989: 102, pl. I, figs.
1a-d, pl. V, figs. 26–28; SARÀ et al. 1990: 252; BARTHEL et al. 1990: 122; 1997: 47;
GUTT & KOLTUN 1995: 230; CATTANEO-VIETTI et al. 1999: 540.
Further synonym see BURTON (1929) and DESQUEYROUX-FAÚNDEZ (1989).
Studied material. MCNPOR 2000, St. 4861, Elephant I.: 61º02' S - 54º55' W, 362 m,
01.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.; MCNPOR 3143, St. 4860, Elephant I.:
61º08' S - 55º52' W, 112 m, 31.I.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Description. (MCNPOR 3143) (Fig. 21) Fragment; dimensions, in cm: 2.8 height,
2.2 width, 0.65 thickness; hispid surface, due to the spicule protraction; pores and oscules
not observed. Preserved material hard consistency, colour brown.
Skeleton. (Fig. 22) Cortical region composed by oxeas II in parchment; it was also
observed a little amount of foreign material. Choanosome made by thick longitudinal
multispicular tracts of oxeas I and anatriaenes (250–530 µm thickness), radially disposed,
107
originating from the basal portion until the surface, where it protrudes considerably.
Microscleres and protriaenes II dispersed along the choanosome, mainly between the tracts.
Spicules. Megascleres: protriaenes I - cladome often with unequal clads (Fig. 23),
rhabdome long, straight, extremity sharp-pointed and sinuous; protriaenes II - cladome
similar to protriaene I (Fig. 24), rhabdome thin and sinuous; anatriaenes - cladome with
uniform clads (Fig. 25), rhabdome identical to the ones of the protriaenes; oxeas I - straight,
conical and/or acerate extremities, but can be slightly curved and thus being finely hastate
(Fig. 26); oxeas II - straight or slightly curved (Fig. 27), acerate extremities (Fig. 28).
Microscleres: spinispiras (Fig. 29) - in “C” form, rare in “S”. Measurements (Tab. III).
Remarks. This species presents a very extended distribution in the southern
hemisphere, according to their occurrence in Antarctica, subantarctic islands from Indic
Ocean (BOURY-ESNAULT & VAN BEVEREN 1982; SOLLAS 1888) and also in South America,
at Atlantic coast, since off the mouth of the Rio de la Plata, Argentina (SOLLAS 1888) until
Falkland Is. (BURTON 1932), and at Pacific coast, Chile (DESQUEYROUX & MOYANO 1987).
Their vertical distribution is very extended, since shallow waters until great depths (more
than 2000 m) (KOLTUN 1976).
According to BURTON (1929), the following species Tetilla grandis Sollas, 1886,
Tetilla grandis var. alba Sollas, 1888, Tethya sagitta Lendenfeld, 1907, Tethya stylifera
Lendenfeld, 1907, Craniella sagitta var. microsigma and Craniella sagitta var.
pachyrrabdus, the last two ones described by KIRKPATRICK (1908), only differs in their
spicular measurements, and such difference would not be significant. However BURTON
(op. cit.) cited that there are between them some kind of variation in the external
characteristics which would not have to be ignored. DESQUEYROUX (1975) still added that
in the species C. leptoderma it can be observed a great variation in the habit, with spherical
108
individuals, villose surface without radicular brushes and other groups lacking these
characteristics.
Distribution. Indic Ocean: Kerguelen I. (BOURY-ESNAULT & VAN BEVEREN 1982);
Heard I.; Christmas I. (SOLLAS 1886; 1888). South America: Argentina (SOLLAS 1886;
1888); Chile (DESQUEYROUX & MOYANO 1987); Falkland Is.; South Georgia (BURTON
1932). Antarctica: Victoria Land (KIRKPATRICK 1908; BROENDSTED 1926; BURTON 1929;
SARÀ et al. 1990; CATTANEO-VIETTI et al. 1999); Wilhelm II Land (LENDENFELD 1907);
Adelie Land (BURTON 1938); McRobertson Land; Princess Elisabeth Land; Banzare Land;
Clarie Land (KOLTUN 1964); Enderby Land; Sabrina Land (KOLTUN 1976); Graham Land
(DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989); Weddell Sea (BARTHEL et al. 1990; 1997; GUTT &
KOLTUN, 1995); South Shetland Is.: Greenwich I. (DESQUEYROUX 1975); King George I.
(KOLTUN 1964); Clarence I. (BURTON 1932); Elephant I. (present study). Bathymetry: 4 to
2267 m (KOLTUN 1976).
Order Astrophorida Sollas, 1888
Family Ancorinidae Schmidt, 1870
Genus Tethyopsis Stewart, 1870
Tethyopsis longispinum (Lendenfeld, 1907)
(Figs. 30-37; Tab. IV)
Tribrachion longispinum LENDENFELD 1907: 322, pl. XXIV, figs, 1–13
Monosyringa longispinna; KOLTUN 1976: 166; BARTHEL et al 1990: 122; 1997: 47; GUTT
& KOLTUN 1995: 230.
Further synonym see KOLTUN (1976).
109
Studied material. MCNPOR 3164, St. Ferraz, King George I.: 62º05' S - 58º23' W, 20 m,
03.II.1985, PROANTAR III, “trap” coll.; MCNPOR 3123, St. 4743, Bransfield Strait:
62º30' S - 54º16' W, 412 m, 28.I.1985, PROANTAR III, “beam-trawl” coll.; MCNPOR
3121, Est. 4756, Estreito de Bransfield: 62º58' S - 57º10' W, 70 m, 02.II.1985,
PROANTAR III, “beam-trawl” coll.
Description. (MCNPOR 3123) (Fig. 30) Massive, amorphous fragment;
dimensions, in cm: 6.8 x 3.4, 1.7 thickness; hispid surface, due to their spicule protraction;
it was also observed the formation of small tubular cylindrical projections (0.2–0.8 cm
height), constituted in its interior by oscular openings (0.1 cm in diameter). Preserved
material firm consistency, colour pinkish with greyish regions.
Skeleton. (Fig. 31) Cortex composed by microscleres and cladomes of some
ortotriaenes, together with a great amount of exogenous material and little spongin.
Choanosome radial arrangement, with megascleres arranged in multispicular tracts,
perpendicular to the sponge surface (230–500 µm thickness). Cladomes of some
ortotriaenes were observed at cortical region. Between the megascleres there are abundant
microsclers and spongin. Oscular projections are formed exclusively by an arrangement of
ortodiaenes regularly overlapped (Fig. 32), involved in a fine membrane in which
microscleres are present.
Spicules. Megascleres: ortotriaenes - cladome with often sinuous clads (Fig. 33),
rhabdome with rounded apical extremity; ortodiaenes - cladome with varied opening angle,
straight to sinuous clads (Fig. 34), rhabdome straight or slightly curved; oxeas - straight,
slight to sharply curved; extremities varying from hastate to acerate (Fig. 35). Microscleres:
oxyasters (Fig. 36) - 05–10 rays, slightly microspined, concentrated at apical portion;
110
strongylasters (Fig. 37) - 04–07 rays, bearing microspines at the apical portion of the rays.
Measurements (Tab. IV).
Remarks. According to KOLTUN (1964), the species Monosyringa broendstedi
Burton, 1929 only differs in having some bifurcation in regard to the clads of triaenes and
diaenes; such characteristic does not have any taxonomic value, being this species only a
modified form of Tethyopsis longispinum.
T. longispinum has a tendency to live beneath the surface, totally embedded in the
substrate with only the papillae protruding, and between the same ones the sponge material
is covered by a great amount of sediment (BARTHEL et al. 1991). This species possess an
important ecological role, providing a special environment for sea stars, which sometimes
are concentrated over and between the papillae.
In the present study a better detailing of the illustrations is provided: for the first
time the microscleres were photographed in SEM, where it was possible to observe the
microspine pattern and the disposal of observed rays. The geographic distribution was
extended, being the species cited for the first time for the studied area and its adjacencies;
the bathymetry was also extended, with the present record in 20 m depth.
Distribution. Antarctica: Wilhelm II Land (LENDENFELD 1907); Victoria Land
(BURTON 1929); McRobertson Land; Knox Land; Banzare Land (KOLTUN 1964); Enderby
Land (KOLTUN 1976); Weddell Sea (BARTHEL et al. 1990; 1997; GUTT & KOLTUN 1995);
Bransfield Strait (present study); South Shetland Is.: King George I. (present study).
Bathymetry: 20 m (present study) to 1340 m (KOLTUN 1964).
Order Hadromerida Topsent, 1894
111
Family Polymastiidae Gray, 1867
Genus Polymastia Bowerbank, 1864
Polymastia invaginata Kirkpatrick, 1907
(Figs. 38-44)
Polymastia invaginata KIRKPATRICK 1907: 271; BURTON 1929: 446; 1932: 338; 1938: 19;
KOLTUN 1976: 168; VACELET & ARNAUD 1972: 14; DESQUEYROUX 1976: 95;
DESQUEYROUX & MOYANO 1987: 47; DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989: 106, pl. II, figs.
5a-d, pl. VI, figs. 36–37; BARTHEl et al. 1990: 122; 1997: 47; GUTT & KOLTUN 1995:
230; PANSINI & SARÀ 1999: 205.
Further synonym see DESQUEYROUX-FAÚNDEZ (1989).
Studied material. MCNPOR 1976, St. 4874, Bransfield Strait: 63º25' S - 62º19' W, 135 m,
14.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Examined material for comparison. Polymastia invaginata Kirkpatrick, 1907,
collected by Antarctic Discovery Expedition, no records from the place of collection, slide
BMNH 1908.2.5.76.
Description. (Fig. 38) Massive specimen; dimensions, in cm: 3.9 x 2.0, 1.7
thickness; hispid surface, bearing papillae (0.1–0.25 cm height); at the apex of the papillae
it was observed some oscular openings (0.1 cm in diameter). Preserved material firm and
little compressible consistency, colour beige in the cortex, darker internally.
Skeleton. (Fig. 39) Upper portion formed by the cortex, which is not easily
detachable, 580–980 µm thickness, composed by ectosomal tylostyles in palisade, often
with the apical extremity protruding the surface. Choanosome formed by a radial
112
arrangement of multispicular tracts, composed exclusively by choanosomal tylostyles;
tracts 270–360 µm thickness; between them it was observed a great amount of spongin and
free spicules. The spicular arrangement present in the papillae is composed by choanosomal
tylostyles, which are positioned perpendicularly to the surface (Fig. 40); basal extremities
of those spicules are projected to the outside of the sponge.
Spicules. Megascleres: ectosomal tylostyles - straight or slightly curved, lightly
swollen along the shaft (Fig. 41); head (tyle) well defined (Fig. 42). Measurements: 120–
369.2–660 / 3.8–13.1–25 µm, tyle width 5.0–9.4–12.5 µm; choanosomal tylostyles -
straight (Fig. 43), tyle poorly defined (Fig. 44); shaft little more swollen below the tyle.
Measurements: 880–1400–1860 / 12.5–21.3–27.5 µm, tyle width 10–13.4–16.3 µm.
Remarks. The species P. invaginata has an extended geographic and bathymetric
distribution at southern hemisphere, reaching greater latitudes in the Chilean coast
(DESQUEYROUX & MOYANO 1987), also present in oceanic islands of Indic Ocean (BOURY-
ESNAULT & VAN BEVEREN 1982) and diverse Antarctic localities (see geographic
distribution).
In regard to their spicular measurements, it was observed that both the ectosomal
and choanosomal tylostyles are smaller in comparison to previous records (KIRKPATRICK
1908; KOLTUN 1964; DESQUEYROUX 1976; BOURY-ESNAULT & VAN BEVEREN 1982 and
DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989). Only the measurements provided by HENTSCHEL (1914),
where the same proposed a new variety of the species (var. gaussi), is similar to the
measurements obtained in our sample. However BURTON (1929) considered that it should
be an intraspecific variation, being unnecessary the creation of a new variety.
About the papillae, KOLTUN (1976) observed that they can vary in respect to their
form and size, indeed being reduced in an almost even surface. Although with little
113
differences in regard to the size of the spicules, the comparative material is very similar to
the observed in the present study. Both the ectosomal and choanosomal tylostyles shows
the same detailing, together with the arrangement of the same ones in the skeleton.
Distribution. Indic Ocean: Kerguelen I.; Heard I. (BOURY-ESNAULT & VAN
BEVEREN 1982). South America: Chile (DESQUEYROUX 1976; DESQUEYROUX & MOYANO
1987); Magellan Strait (PANSINI & SARÀ 1999); South Georgia; South Orkney Is. (BURTON
1932; 1934). Antarctica: Graham Land (DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989); Victoria Land
(KIRKPATRICK 1907; 1908; BURTON 1929); Adelie Land (BURTON 1938; VACELET &
ARNAUD 1972); Wilhelm II Land (HENTSCHEL 1914); Knox Land (BURTON 1938); Princess
Ragnhild Land (KOLTUN 1964); Enderby Land; McRobertson Land (KOLTUN 1976);
Weddell Sea (BARTHEL et al. 1990; 1997; GUTT & KOLTUN 1995); Bransfield Strait
(BURTON 1932; present study). Bathymetry: 18 m (KIRKPATRICK 1907) to 1592 m
(BURTON 1938).
Family Suberitidae Schmidt, 1870
Genus Homaxinella Topsent, 1916
Homaxinella balfourensis (Ridley & Dendy, 1886)
(Figs. 45-49; Tab. V)
Axinella balfourensis RIDLEY & DENDY 1886: 480.
Homaxinella balfourensis; LÉVI 1964: 150, fig. 4, pl. I, fig. 4; KOLTUN 1964: 84, pl. XIII,
figs. 11–12; 1976: 190; VACELET & ARNAUD 1972: 15; BOURY-ESNAULT & VAN
BEVEREN 1982: 46, pl. VII, fig. 25, text-fig. 12a-b; DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989: 110,
114
pl. II, fig. 8, pl. VII, fig. 41–42; PANSINI et al. 1994: 70; BARTHEL et al. 1997: 48;
CATTANEO-VIETTI et al. 1999: 540.
Further synonym see KOLTUN (1964).
Studied material. MCNPOR 3132, St. 5062, Elephant I.: 61º12' S - 55º40' W, 98 m,
26.II.1987, PROANTAR V, “otter-trawl” coll.; MCNPOR 3130, St. `D`, King George I.:
62º05' S - 58º23' W, 20 m, 26.II.1988, PROANTAR VI, “scuba diving” coll.; MCNPOR
3369, St. `D`, King George I.: 62º05' S - 58º23' W, 25 m, 21.I.1991, PROANTAR IX,
“scuba diving” coll.; MCNPOR 3111, St. `C`, King George I.: 62º06' S - 58º22' W, 28 m,
06.III.1988, PROANTAR VI, “scuba diving” coll.
Examined material for comparison. Homaxinella balfourensis (Ridley & Dendy,
1886), colleted by Swedish Antarctic Expedition, place of collection: off Seymour Island,
Antarctic Peninsula, slide BMNH 1933.3.17.104.
Description. (MCNPOR 3132) (Fig. 45) Arborescent specimen, with several
ramifications; dimensions, in cm: 22.4 height, 16.8 in expansion, branches ranging from
0.2–0.45 in diameter; microhispid surface, with slight spicule protraction; oscules not
visualized. Preserved material lightly elastic but firm consistency, colour greyish beige.
Skeleton. In transversal section the ectosome is made by discrete bouquets,
composed by smaller spicules, characterizing the superficial hispidation (Fig. 46).
Choanosome in longitudinal section with a dense internal axial arrangement formed by
multispicular tracts, a great amount of sponging and free spicules (Fig. 47).
Spicules. Megascleres: styles - straight to slightly curved (Fig. 48), extremities
varying from acerate to hastate (Fig. 49). Measurements (Tab. V).
115
Remarks. H. balfourensis is a very conspicuous species in the Antarctic continent,
evidenced for its characteristic external form, with diverse cylindrical and microhispid
branches, often fixed to the substratum by means of a radicular system (detailed description
in VAN SOEST 2002).
BURTON (1934) affirmed that the original description of the species made by
RIDLEY & DENDY (1887) was not complete, lacking some important aspects of the
specimen on the illustrations for the holotype of A. balfourensis; for this reason the records
of this taxon were always cited as H. supratumescens, described by TOPSENT (1907) and
later assigned as type species of the genus by the same author in 1916. After to observe
other samples from both the species from Antarctica, BURTON (op. cit.) considered the
similarity and consequently synonymized the species, establishing for priority H.
balfourensis as type species of the genus.
H. balfourensis presents interesting chemical and ecological studies; SELDES et al.
(1986) analyzed the sterols composition in studies samples, detecting the existence of seven
specific chemical composites; WILKINS et al. (2002) had isolated an antifreeze peptide, a
very important substance for the adaptation of some organisms to low temperatures. In the
ecological field, DAYTON (1989) observed, basing on comparisons from data of different
decades, that such species oscillates significantly in regard to its population size, due to the
diverse environmental changes which can occur; CERRANO et al. (2000) highlighted the
feeding activity of sea stars over individuals from the species, probably due to H.
balfourensis being a very abundant sponge and bearing a great amount of sponging, ally to
the fact of their predator presents a non selective diet (MCCLINTOCK 1987).
Skeletal and spicular features observed in the studied material are in accordance
with comparative material. The axial arrangement of the choanosome and general features
116
of ectosomal region is identical in both the material, in the same way that the spicules
(remeasured: styles 247–423.9–598.5 / 3.5–7.2–13.8 µm).
Distribution. Indic Ocean: Kerguelen I. (RIDLEY & DENDY 1886; 1887; LÉVI 1964;
BOURY-ESNAULT & VAN BEVEREN 1982). South America: South Georgia (BURTON 1932;
1934). Antarctica: Graham Land (TOPSENT 1907; 1908; 1917); Victoria Land
(KIRKPATRICK 1908; BURTON 1929; PANSINI et al. 1994; CATTANEO-VIETTI et al. 1999);
Adelie Land (VACELET & ARNAUD 1972); Wilhelm II Land (HENTSCHEL 1914); Queen
Mary Land; Knox Land; Banzare Land; Princess Elisabeth Land (KOLTUN 1964); Enderby
Land (KOLTUN 1976); Weddell Sea (BARTHEL et al. 1997); South Shetland Is.: Deception I.
(TOPSENT 1917); Elephant I. (DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989; present study); King George
I. (present study). Bathymetry: 0 m (DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989) to 550 m (KOLTUN
1964).
Genus Suberites Nardo, 1833
Suberites montiniger Carter, 1880 sensu Topsent, 1915
(Figs. 50-53)
Suberites montiniger CARTER 1880: 256; KOLTUN 1964: 25; 1976: 169; GUTT & KOLTUN,
1995: 231; BARTHEL et al. 1997: 47; CATTANEO-VIETTI et al. 1999: 540.
Further synonym see KOLTUN (1964).
Studied material. MCNPOR 1988, St. 4872, Bransfield Strait: 63º28' S - 62º31' W, 168 m,
13.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
117
Description. (Fig. 50) Globular specimen, fixed to a rock fragment; dimensions, in
cm: 2.5 cm height, 2.2 cm in diameter; slightly hispid surface, with slightly protruded
spicules; only one oscule present (0.2 cm in diameter), at the apex of sponge body.
Preserved material hard consistency, colour brown.
Skeleton. (Fig. 51) Ectosome not specialized. Choanosome with spicules in
confusion, densely arranged and positioned at diverse angles, mixed with abundant
spongin. Several openings and canals could be observed along the choanosome.
Spicules. Megascleres: tylostyles - straights, slightly curved, sinuous or twisted
somewhat (Fig. 52). Head (tyle) ovalate, poorly developed, apical extremity varying from
conical to acerate (Fig. 53). Measurements: 330–364–410 / 7.5–8.8–10 µm, tyle width 7.5–
9.0–10 µm.
Remarks. S. montiniger presents some taxonomic problem which needs to be
corrected, in order to infer on its real occurrence and distribution; it was originally
described by CARTER (1880) for Barents Sea, Glacial Arctic Ocean, and TOPSENT (1915)
registered their occurrence for Antarctica.
The possibility of a sponge species have a disjunct distribution does not exists, due
to geographic (distance), hydrodynamics (current patterns) and biological factors (larva
survival, environmental conditions, etc.), besides the speciation events which could be
occur along some great displacement. KOLTUN (1970) alleged the hypothesis of bipolarity,
affirming that some species has a tendency to move itself in deep waters, or at least to
support more easily some great depth variations; however the occurrence of this species in
both polar regions is not here corroborated. VAN SOEST (2002) also pointed out that the
samples of the Arctic and Antarctica could be distinct species.
118
BURTON (1929), when describing Suberella topsenti for Antarctic waters, suggested
the same one as senior synonym of S. montiniger sensu Topsent, 1915, alleging that the
species described by CARTER (1880) presented some differences in the skeleton; BURTON
(1932) compared the sample with the one described by CARTER (op. cit.), considering both
as identical samples, as well as KOLTUN (1964) also shared such hypothesis. Probably the
lack of distinctive morphologic characters in that species has generated such conclusions,
once that their external morphology, skeletal architecture and spicules do not present
significant variations. To make use of molecular data is highly recommendable in this case,
in order to conclude definitively on the existence of two distinct populations.
The species is registered for the first time for the studied area.
Distribution. South America: Falkland Is. (BURTON 1932); Burdwood Bank
(TOPSENT 1915). Antarctica: Victoria Land (BURTON 1929; KOLTUN 1964; CATTANEO-
VIETTI et al. 1999); McRobertson Land (KOLTUN 1976); Weddell Sea (GUTT & KOLTUN
1995; BARTHEL et al. 1997); Bransfield Strait (present study). Bathymetry: 91 m (BURTON
1929) to 424 m (GUTT & KOLTUN 1995).
Order Haplosclerida Topsent, 1928
Suborder Haplosclerina Topsent, 1928
Family Niphatidae Van Soest, 1980
Genus Hemigellius Burton, 1932
Hemigellius bidens (Topsent, 1901)
(Figs. 54-59)
119
Gellius bidens TOPSENT 1901a: VII; 1908: 21, pl. I, fig. 1; 1917: 77; VACELET & ARNAUD
1972: 19; BARTHEL et al. 1990: 123; 1997: 49.
Haliclona bidens; KOLTUN 1964: 100.
Further synonym see KOLTUN (1964).
Studied material. MCNPOR 1981, 1989, St. 4869, Bransfield Strait: 63º33' S - 59º15' W,
240 m, 08.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Description. (MCNPOR 1989) (Fig. 54) Erect specimen; dimensions, in cm: 4.2 x
1.2, 0.3 thickness. Lightly rugose surface, hispid to the touch, due to protruding spicule
tracts. Pores and oscules not visualized. Preserved material friable consistency, colour light
brown with regions of clearer tonality.
Skeleton. (Fig. 55) Ectosome without specialization, with megascleres in confusion.
Choanosome a reticulation composed by paucispicular tracts (02–03 spicules, 38–54 µm
thickness), interconnected by 01–02 spicules, forming some isodictyal meshes (180–520
µm in diameter). Nodal spongin present, microscleres irregular or randomly occurring
between the tracts.
Spicules. Megascleres: oxeas - smooth, straight or slightly curved (Fig. 56), acerate
extremities (Fig. 57), measurements: 440–554.4–660 / 12.5–16.3–18.8 µm (MCNPOR
1981); 480–610.4–680 / 13.8–20.4–23.8 µm (MCNPOR 1989). Microscleres: sigmas -
smooth (Fig. 58), bearing bifid extremities (Fig. 59), measurements: 32.5–36.8–40 µm
(MCNPOR 1981); 30–35.1–40 µm (MCNPOR 1989).
Remarks. H. bidens presents until the moment restricted distribution to the
Antarctic continent, being the present record a new occurrence for the studied area.
120
Originally described for the genus Gellius, this species is now belonging to
Hemigellius, since from the combination of features of the oxeas and superficial skeleton,
and also by the presence of a peculiar sigma, which differs from the other species of
Haliclona (Gellius) (DESQUEYROUX-FAÚNDEZ & VALENTINE 2002). Such species had been
previously considered as type species of Plumocolumetta (DE LAUBENFELS loc. cit.),
however such genus is nowadays a junior synonym of Hemigellius (DESQUEYROUX-
FAÚNDEZ & VALENTINE op. cit.).
In comparing to the measurements provided by TOPSENT (1901) and KOLTUN
(1964), the samples here studied have thicker spicules. For the first time the spicules were
photographed by SEM, mainly detailing the extremity of the sigmas, which characterizes
the species.
KOLTUN (1976) considered Plumocolumella bidens as a new combination to H.
bidens, including in their synonym Desmacidon meandrina Kirkpatrick, 1907, affirming
that the diverse studied specimens were different forms from the same species. The referred
author observed the existence of two groups, “meandrina” and “bidens”, with the former
bearing 2–5 teeth sigmas, and the latter with 2–3 teeth sigmas, besides to observe discrete
variations on the oxeas and external morphology. The synonym proposed by KOLTUN (op.
cit.) is not here considered, until being carried through a complete revision, comparing the
greatest possible quantity of samples from both the taxa (H. bidens e D. meandrina).
Possibly the morphology of the sigmas shall be the preponderant factor in the taxonomic
decision, also considering the skeletal features once that the two putative species are
inserted in distinct Orders.
Distribution. Antarctica: Bellinghausen Sea (TOPSENT 1901a; 1901b); Graham
Land (TOPSENT 1908; 1917); Victoria Land (BURTON 1929; 1938); Wilhelm II Land
121
(HENTSCHEL 1914); Adelie Land (VACELET & ARNAUD 1972); Weddell Sea (BARTHEL et
al. 1990; 1997); Bransfield Strait (present study). Bathymetry: 30 m (TOPSENT 1908) to 550
m (TOPSENT 1901b).
Suborder Petrosina Boury-Esnault & Van Beveren, 1982
Family Phloeodictyidae Carter, 1882
Genus Calyx Vosmaer, 1885
Calyx arcuarius (Topsent, 1913)
(Figs. 60-65)
Gellius arcuarius TOPSENT 1913: 638, pl. VI, fig. 11.
Calyx arcuarius; BURTON 1938: 9; KOLTUN 1976: 196; DESQUEYROUX 1975: 71, pl. IV,
figs. 53–54; BARTHEL et al. 1990: 123; 1997: 49; SARÀ et al. 1990: 254; GUTT &
KOLTUN 1995: 231; CATTANEO-VIETTI et al. 1999: 540.
Further synonym see DESQUEYROUX (1975).
Studied material. MCNPOR 3135, St. “C”, Livingston I.: 62º40' S - 59º33' W, 270 m,
08.III.1987, PROANTAR V, “otter-trawl” coll.; MCNPOR 1964, St. 4871, Bransfield
Strait: 63º16' S - 59º55' W, 264 m, 08.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.;
MCNPOR 1954, St. 4875, Bransfield Strait: 63º17' S - 62º30' W, 157 m, 14.II.1986,
PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Description. (MCNPOR 1954) (Fig. 60) Flabellate sponge; dimensions, in cm: 27.5
height, 17.8 width, 0.5 thickness; optically smooth surface, on magnifying glass small
spicule tract projections were observed; oscules present in both sides of the sponge,
122
however more concentrated in basal region, in discrete stiffly volcanic projections, never
exceeding 0.1 cm in diameter. Preserved material elastic and compressible consistency,
colour beige with greyish regions.
Skeleton. Ectosome a dense tangential reticulation, which are forming triangular to
polygonal meshes (Fig. 61), 80–170 µm in diameter, unispicular tracts with nodal spongin.
Choanosome formed by longitudinal multispicular tracts (Fig. 62), 75–140 µm thickness,
which are interconnected by unispicular tracts bearing the same ectosomal features, only
differing in having a more dense reticulation; toxas occurring around the tracts.
Spicules. Megascleres: oxeas - smooth, slightly curved and swollen (Fig. 63);
acerate extremities (Fig. 64), measurements: 190–216.2–237.5 / 16.1–19.4–23 µm
(MCNPOR 1954); 209–250–294.5 / 11.5–17.2–19.6 µm (MCNPOR 1964); 190–225–256.5
/ 11.5–18.4–20.7 µm (MCNPOR 3135). Microscleres: toxas (Fig. 65) - smooth, of varied
opening angles, with sharp-pointed extremities, measurements: 78.2–115.2–147.2 / 1.2–
4.0–6.9 µm (MCNPOR 1954); 69–119.1–181.7 / 1.2–3.2–4.6 µm (MCNPOR 1964); 80.5–
129.8–174.8 / 1.2–3.7–5.8 µm (MCNPOR 3135).
Remarks. It is another conspicuous sponge in Antarctic waters, with several
bibliographic citations which reported a flabellate growth form (BURTON 1932; 1938;
DESQUEYROUX 1975; KOLTUN 1976), what it could be confirmed in the sample here
studied.
Synonym includes C. stipitatus Topsent, 1916, which does not bear toxas; BURTON
(1932) pointed out that such absence does not have taxonomic value, and in comparing
samples from both groups it was observed that some features presented a subtle variation,
in regard to spicules, external morphology and skeleton, however it was confirmed that C.
arcuarius and C. stipitatus are coespecific.
123
Distribution. South America: South Georgia; Shag Rocks (BURTON 1932; 1934).
Antarctica: South Orkneys Is. (TOPSENT 1913); Graham Land (TOPSENT 1916; 1917);
Victoria Land (BURTON 1929; SARÀ et al. 1990; CATTANEO-VIETTI et al. 1999); Queen
Mary Land (BURTON 1938); Knox Land; Banzare Land; Wilhelm II Land; McRobertson
Land; Adelie Land (KOLTUN 1964); Enderby Land; Princess Elisabeth Land (KOLTUN
1976); Weddell Sea (BARTHEL et al. 1990; 1997; GUTT & KOLTUN 1995); South Shetland
Is.: Deception I. (DESQUEYROUX 1975); Livingston I. (present study); King George I.
(KOLTUN 1964); Bransfield Strait (present study). Bathymetry: 18 m (BURTON 1929) to 900
m (KOLTUN 1964).
ACKNOWLEDGEMENTS
We thanks a lot to Prof. Dr. Edmundo Nonnato (Instituto Oceanográfico da Universidade
de São Paulo - IOUSP), for making possible the donation and direction of all Porifera
specimens collected by PROANTAR for inclusion in MCNPOR. We thank Clare Valentine
(BMNH) for the loan of comparative material; Dr. Eduardo Hajdu (Museu Nacional,
Universidade Federal do Rio de Janeiro, Brazil) and Dr. Ruth Desqueyroux-Faúndez
(Museum d’Histoire Naturelle de Genève, Geneva, Switzerland) for help in bibliography.
We also thank CAPES and CNPq (Brazil) for research grants.
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132
Table I. Cinachyra antarctica (Carter, 1872): spicules measurements, in µm:
Protriaene I Anatriaene
MCNPOR
cladome clad rhabdome
Protriaene
II
cladome clad rhabdome
Oxea I Oxea II Spinispira
1959 50–70–94
161–215–
274
/ 11.5–14–16
5773–9228–
13984 /
16–20–24
722–870–
988 / 2.5
159–198–
237
145–185–221
/ 21–28–35
7820–11526–
19757 /
28–35–38
4600–6665–
7958 /
41–62–77
560–696–
902
/ 16–20–23
14–16–18.5
/ < 1.0
1978 53–68–92
145–183–
244
/ 11.5–13–15
5383–8835–
13225 /
15–18–21
741–827–
931 / 2.5
80.5–97–
120
87–124–
145 /
15–19–23
7774–9871–
12926 /
23–26–31
3197–3969–
4761 /
32–39–47
655–771–
874
/ 17–20–24
13–15–17 /
< 1.0
1980 46–68–99
136–171–
207
/ 13–14.5–18
5980–9054–
13110 /
16–18–22
655–850–
1026 / 2.5
108–138–
198
128–157–
220
/ 20–26–32
8700–11237–
15575 /
30–32–35
4675–7414–
9125 /
44–55–66
630–772–9
10
/ 16–19–22
13–15–17 /
< 1.0
Table II. Cinachyra barbata Sollas, 1886: spicules measurements, in µm:
Protriaene I Anatriaene
MCNPOR
cladome clad rhabdome
Protriaene II
cladome clad rhabdome
Oxea I Oxea II Spinispira
1979 42–68–92
110–134–
182
/ 10–15–20
4060–4820–
5360 /
14–19–25
693–1079–
1463 / 2.5
100–123–
152
137–166–
207 / 22–28–
37
4800–7457–
11220 /
26–32–36
3160–5551–
7160 /
30–57–72
370–602–
900 / 29–
53–65
9.0–11.5–
14
/ < 1.0
2017 37–53–67
99–133–
156 /
8.0–11–18
2507–3323–
4324 /
14–15–16
750–980–
1216 / 2.5
145–168–
184
142–163–
191 / 21–25–
32
2392–3304–
4209 /
29–31–32
2001–2432–
3059 /
25–30–37
295–448–
617 / 25–
33–43
9.0–13–16
< 1.0
133
Table III. Craniella leptoderma (Sollas, 1886): spicules measurements, in µm:
Protriaene I Anatriaene
MCNPOR
cladome clad rhabdome
Protriaene II
cladome clad rhabdome
Oxea I Oxea II Spinispira
2000 35–59–80
103–150–
198
/ 4.5–10–15
5497–7187–
8602 /
9.0–14–20
741–936–
1254 / 2.5
76–120–
198
115–150–
232
/ 12–17–23
7084–10557–
13662 /
20–22–25
3726–6770–
9384 /
32–57–90
483–1090–
1728 /
12–21–33
10–13–16
/ < 1.0
3143
48–70–
110
120–161–
200
/ 6.0–10–15
4692–6311–
7912 /
10–14–18
790–916–
1010 / 2.5
110–141–
190
115–163–
192
/ 18–24–30
5440–9607–
13440 /
20–21–23
5865–7786–
9223 /
55–73–99
460–859–
1725 /
14–18–24
9.0–13–
16
/ < 1.0
Table IV. Tethyopsis longispinum (Lendenfeld, 1907): spicules measurements, in µm:
Ortotriaene Ortodiaene
MCNPOR
cladome clad rhabdome cladome clad rhabdome
Oxea Oxyaster Strongylaster
3121
1080–
1217–1360
490–600–700
/ 62–83–100
3680–4291–
4620 /
70–87–100
360–1214–
1800
130–589–
1020 / 16–
37–51
860–2400–
4700 /
18–34–52
1320–2240–
3920 /
14–26–45
25–34–45 10–12–15
3123
1220–
1342–1520
570–674–810
/ 78–88–97
2860–4092–
4780 /
75–87–100
540–1195–
1700
240–595–
910
/ 24–40–54
1420–3230–
4700 /
23–38–52
1100–2106–
3420 /
17–23–31
25.3–35–44 10–13–16
3164
820–956–
1160
310–465–560
/ 70–82–95
2400–3798–
4620 /
60–81–101
300–1144–
1560
160–564–
750
/ 19–37–47
1500–3271–
4160 /
29–40–45
1240–1936–
3080 /
15–24–32
25–36–45 10–13–16
134
Table V. Homaxinella balfourensis (Ridley & Dendy, 1886): spicules measurements, in
µm:
MCNPOR Styles
3111 152–326.7–550 / 2.5–6.4–10.4
3130 171–382.6–608 / 2.5–6.6–11.5
3132 114–324.7–522.5 / 2.5–7.0–11.5
3369 133–323.9–560.5 / 2.5–7.1–10.4
135
Figure 1. Map showing the collecting area.
136
137
Figures 2-11. Cinachyra antarctica (Carter, 1872). (2) preserved specimen; (3) ectosomal
arrangement of the skeleton; (4) choanosomal tracts; (5) protriaene I; (6) protriaene II; (7)
anatriaene; (8) oxea I; (9) oxea II; (10) detail of oxea II extremities; (11) spinispira. Scale
bars: (2) 1 cm; (3) 300 µm; (4) 750 µm; (5), (6), (7) 100 µm; (8), (9) 200 µm; (10) 50 µm;
(11) 5 µm.
138
139
Figures 12-20. Cinachyra barbata Sollas, 1886. (12) preserved specimen; (13) skeleton;
(14) protriaene I; (15) protriaene II; (16) anatriaene; (17) oxea I; (18) oxea II; (19) detail of
oxea II extremities; (20) spinispira. Scale bars: (12) 1 cm; (13) 500 µm; (14) 150 µm; (15)
75 µm; (16) 150 µm; (17) 100 µm; (18) 300 µm; (19) 100 µm; (20) 5 µm.
140
141
Figures 21-29. Craniella leptoderma (Sollas, 1886). (21) preserved specimen; (22)
skeleton; (23) protriaene I; (24) protriaene II; (25) anatriaene; (26) oxea I; (27) oxea II; (28)
detail of oxea II extremities; (29) spinispira. Scale bars: (21) 1 cm; (22) 750 µm; (23) 200
µm; (24) 50 µm; (25) 150 µm; (26), (27), (28) 300 µm; (29) 5 µm.
142
143
Figures 30-37. Tethyopsis longispinum (Lendenfeld, 1907). (30) preserved specimen; (31)
skeleton; (32) spicular arrangement of tubular projections; (33) ortotriaene; (34) ortodiaene;
(35) oxea; (36) oxyasters; (37) strongylasters. Scale bars: (30) 1 cm; (31), (32), (33) 500
µm; (34), (35) 300 µm; (36) 10 µm; (37) 5 µm.
144
145
Figures 38-44. Polymastia invaginata Kirkpatrick, 1907. (38) preserved specimen; (39)
skeleton; (40) spicules arrangement of papillae; (41) ectosomal tylostyles; (42) detail of
ectosomal tylostyles extremities; (43) choanosomal tylostyles; (44) detail of choanosomal
tylostyles extremities. Scale bars: (38) 1 cm; (39), (40) 500 µm; (41) 200 µm; (42) 20 µm;
(43) 75 µm; (44) 10 µm.
146
147
Figures 45-49. Homaxinella balfourensis (Ridley & Dendy, 1886). (45) preserved
specimen; (46) transversal section of skeleton; (47) longitudinal section of skeleton; (48)
styles; (49) detail of style extremities. Scale bars: (45) 3 cm; (46) 300 µm; (47) 500 µm;
(48) 100 µm; (49) 5 µm.
148
149
Figures 50-53. Suberites montiniger Carter, 1880 sensu Topsent, 1915. (50) preserved
specimen; (51) skeleton; (52) tylostyle; (53) detail of tylostyle extremities. Scale bars: (50)
1 cm; (51) 300 µm; (52) 100 µm; (53) 10 µm.
150
151
Figures 54-59. Hemigellius bidens (Topsent, 1901). (54) preserved specimen; (55) skeleton;
(56) oxea; (57) detail of oxea extremities; (58) sigma; (59) detail of sigma extremities.
Scale bars: (54) 1 cm; (55) 500 µm; (56) 100 µm; (57), (58) 10 µm; (59) 3 µm.
152
153
Figures 60-65. Calyx arcuarius (Topsent, 1913). (60) preserved specimen; (61) tangential
view of ectosome; (62) longitudinal section of choanosome; (63) oxea; (64) detail of oxea
extremities; (65) toxas. Scale bars: (60) 3 cm; (61), (62) 300 µm; (63) 50 µm; (64) 10 µm;
(65) 20 µm.
154
155
CAPÍTULO 6
Contribution to the knowledge of Antarctic sponges (Porifera,
Demospongiae). Part II. Poecilosclerida.
ARTIGO ENVIADO PARA PUBLICAÇÃO: REVISTA BRASILEIRA
DE ZOOLOGIA, PROTOCOLO Nº 220/2006
156
Contribution to the knowledge of Antarctic sponges (Porifera, Demospongiae). Part
II. Poecilosclerida.
Maurício Campos
1,2
, Beatriz Mothes
1
& Inga L. Veitenheimer Mendes
2
1 Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul. Rua Salvador
2 Programa de Pós-Graduação em Biologia Animal, Universidade Federal do Rio Grande
do Sul. Av. Bento Gonçalves 9500, 91501-970 Porto Alegre-RS, Brazil. E-mail:
ABSTRACT. In the present study 16 species are registered; amongst the identified species,
05 present new occurrences for the studied region, 03 extend the register for their
bathymetric limit and the others are confirmed for the current studied area.
KEY WORDS. Porifera, Demospongiae, taxonomy, Antarctica, PROANTAR.
RESUMO. Contribuição ao conhecimento de esponjas da Antártica (Porifera,
Demospongiae). Parte II. Poecilosclerida. No presente estudo são registradas 16 espécies;
dentre as espécies identificadas, 05 apresentam nova ocorrência para a região estudada, 03
ampliam o registro para o limite batimétrico e as demais são confirmadas para a presente
área de estudo.
PALAVRAS CHAVE. Porifera, Demospongiae, taxonomia, Antártica, PROANTAR.
157
The Order Poecilosclerida is the most representative amongst the species that until
then had been described and registered for antarctic and subantarctic regions. Most of the
described species in more recent works in the study region belongs to the above-mentioned
Order (MOTHES & LERNER 1995; CALCINAI & PANSINI 2000; RÍOS et al. 2004). In the
present study the knowledge of recorded species is extended, providing detailed
descriptions and complete illustrations, as well as new records for geographic and
bathymetric distribution of each species.
The aims of this work is to know about the species richness, extending the
descriptions with illustrations made by Scanning Electron Microscopy (SEM), which rarely
were presented in previous records.
MATERIAL AND METHODS
The samples were collected through Brazilian Antarctic Program, at South Shetland
Is. and Bransfield Strait (Fig. 1), by means of “beam-trawl” and “otter-trawl” dredges,
scuba diving and some kind of traps which had collected sponges indirectly, between
depths from 20 to 412 m. They are preserved in 96°
GL alcohol and deposited in the
Porifera Collection of Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande
do Sul, Porto Alegre, RS, Brazil.
The methodology employed for taxonomic study was made based on the spicules,
through spicule mounts and thick sections from the skeleton, following techniques
described respectively by MOTHES-DE-MORAES (1978) and MOTHES et al. (2004a).
Preparations for SEM study according to SILVA & MOTHES (1996). Spicule measurements
comprised minimum, mean, and maximum sizes, width after the bar (/), N=50.
158
Abbreviations used in the text are: BMNH (British Museum of Natural History,
London, England), MCNPOR (Porifera Collection, Museu de Ciências Naturais, Fundação
Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, RS, Brazil) and ZMB (Porifera
Collection, Zoologische Museum für Naturkunde an der Universität Humboldt zu Berlin,
Berlin, Germany).
RESULTS
Order Poecilosclerida Topsent, 1928
Suborder Microcionina Hajdu, Van Soest & Hooper, 1994
Family Acarnidae Dendy, 1922
Genus Acanthorhabdus Burton, 1929
Acanthorhabdus fragilis Burton, 1929
(Figs. 2–9)
Acanthorhabdus fragilis BURTON 1929: 432, pl. IV, fig. 2, text-fig. 5; 1932: 294; 1938: 11;
KOLTUN 1964: 58, pl. X, fig. 35–37; BARTHEL et al. 1990: 122; 1997: 48.
Studied material. MCNPOR 1968, St. 4871, Bransfield Strait: 63º16' S - 59º55' W, 264 m,
08.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Examined material for comparison. Acanthorhabdus fragilis Burton, 1929 (slide
BMNH 1928.ii.15.379).
Description. (Fig. 2) Massive, amorphous specimen; dimensions, in cm: 8.6 x 3.4,
2.5 thickness; conulose surface, hispid to the touch; superficial membrane partially broken.
159
Oscules irregularly scattered over the surface, 0.3–0.5 cm diameter. Preserved material
friable consistency, colour dark brown with clearer regions.
Skeleton. Ectosome formed by a dense tangential arrangement of acanthorhabds
(Fig. 3), with loose anisochelas. Choanosome composed by thick tracts of anisoxeas, 10–15
spicules, 350–800 µm thickness (Fig. 4). Tracts are interconnected by the secondary ones,
07–10 spicules, 220–400 µm thickness. Acanthorhabds and anisochelas scattered along the
choanosome.
Spicules. Megascleres: anisoxeas - smooth, slight curvature (Fig. 5); with acerate
and conical/mucronate extremities (Fig. 6), in the latter the apical portion can be bifurcate
and/or lightly curved. Measurements: 380–463.2–500 / 25–37.1–50 µm; acanthorhabds -
spines slightly curved towards the center of the spicule (Fig. 7); both the extremities are
composed by 03–05 spines (Fig. 8). Measurements: 280–322.4–380 / 12.5–18.2–25 µm,
spines 3.8–5.2–7.5 µm height. Microscleres: anisochelas (Fig. 9) - palmate, with a spurred
extremity. Measurements: 20–22.8–27.5 µm.
Remarks. A. fragilis is endemic of Antarctic continent. For the area in which the
present study is concentrated, this is the first record for the species.
The genus Acanthorhabdus is atypical for the family Acarnidae, due to the
morphology of acanthorhabds and also for the reticulation formed by such spicules;
however the presence of spurred chelas, what is shared with genus Iophon, insert the taxon
in the above-mentioned family (HOOPER 2002).
Mensurements of the spicules from studied sample is very similar to the ones
provided by KOLTUN (1964), only differing on the presence of thicker anisoxeas.
Comparative material possesses a little more swollen anisoxeas, but in general spicules
confers with the material of the present study.
160
Distribution. Antarctica: Victoria Land (BURTON 1929; 1932; 1938); Wilhelm II
Land (KOLTUN 1964); Weddell Sea (BARTHEL et al. 1990; 1997); Bransfield Strait (present
study). Bathymetry: 72 to 560 m (KOLTUN 1964).
Genus Iophon Gray, 1867
Iophon unicornis Topsent, 1907
(Figs. 10-17; Tab. I)
Iophon unicornis TOPSENT 1907: 72; DESQUEYROUX & MOYANO 1987: 49; DESQUEYROUX-
FAÚNDEZ 1989: 120, pl. III, fig. 17a-d, pl. XII, figs. 68–70; PANSINI et al. 1994: 75;
GUTT & KOLTUN 1995: 231; CATTANEO-VIETTI et al. 1999: 540.
Iophon spatulatus KIRKPATRICK 1907: 276; KOLTUN 1976: 182; DESQUEYROUX 1975: 64,
pl. III, figs. 36–40; SARÀ et al. 1990: 254; BARTHEL et al. 1997: 48.
Further synonym see DESQUEYROUX (1975) and DESQUEYROUX-FAÚNDEZ (1989).
Studied material. MCNPOR 1974, St. 4860, Elephant I.: 61º08' S - 55º52' W, 112 m,
31.I.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.; MCNPOR 3125, St. `D`, King George I.:
62º05' S - 58º23' W, 21 m, 08.XII.1989, PROANTAR VIII, “scuba diving” coll.; MCNPOR
1991, 1994, St. 4871, Bransfield Strait: 63º16' S - 59º55' W, 264 m, 08.II.1986,
PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Description. (MCNPOR 3125) (Fig. 10) Fragment, partially broken; dimensions, in
cm: 2.3 length, 1.7 width, 0.8 height; slightly conulose surface, on magnifying glass it was
observed the formation of small protruding spicule tracts; at apical portion there is an
161
oscular opening (0.2 x 0.6 cm), in cylindrical form. Preserved material fragile consistency,
colour dark brown, with some regions in beige.
Skeleton. (Fig. 11) Ectosome without specialization. Choanosome formed by
irregular multispicular tracts; between the same ones megascleres are randomly distributed,
with loose microscleres and a little amount of spongin.
Spicules. Megascleres: styles - smooth, slightly curved, some straight (Fig. 12),
basal extremity mucronate, apical one acerate (Fig. 13); acanthostrongyles - slightly curved
(Fig. 14), one extremity with 07–11 small spines, other with a well developed spine (Fig.
15). Microscleres: anisochelas (Fig. 16) - palmate, spurred at one of their extremity;
bipocillas (Fig. 17) - generally in ‘C’ form, bearing curved spines in both the extremities.
Measurements (Tab. I).
Remarks. TOPSENT (1907), in describing I. unicornis, found no bipocillas. Such
spicule was observed by KIRKPATRICK (1908) for I. spatulatus, where their occurrence is
rare. Basing on the possibility of both the species would be very similar, TOPSENT (1913)
highlighted the hypothesis that they would be very seemed, what is corroborated by
DESQUEYROUX-FAÚNDEZ (1989), which considered that both are co-specific, and for
priority the name I. unicornis is preferential.
Certainly the species has an intraspecific variation; in the present study it was
observed the absence of bipocillas in one sample, besides some slight variation in the
extremities of the acanthostrongyles. In accordance with these informations, some revision
at generic level would be of extreme importance, in order to know the real limits of this
putative variation inside the species diagnosis.
Distribution. Indic Ocean: Heard I. (KOLTUN 1976). South America: Chile
(DESQUEYROUX & MOYANO 1987); South Orkney Is. (TOPSENT 1913). Antarctica: Graham
162
Land (TOPSENT 1907; 1908; DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989); Victoria Land (KIRKPATRICK
1907; 1908; SARÀ et al. 1990; PANSINI et al. 1994; CATTANEO-VIETTI et al. 1999);
Wilhelm II Land (HENTSCHEL 1914); Knox Land; Banzare Land; Princess Elisabeth Land;
McRobertson Land; Princess Astrid Land (KOLTUN 1964); Enderby Land; Adelie Land
(VACELET & ARNAUD 1972; KOLTUN 1976); Weddell Sea (GUTT & KOLTUN, 1995;
BARTHEL et al. 1997); South Shetland Is.: Deception I. (DESQUEYROUX 1975); King
George I. (KOLTUN 1964; present study); Elephant I. (present study); Bransfield Strait
(present study). Bathymetry: 0 m (DESQUEYROUX & MOYANO 1987) to 623 m (GUTT &
KOLTUN, 1995).
Family Microcionidae Carter, 1875
Subfamily Microcioninae Carter, 1875
Genus Clathria Schmidt, 1862
Subgenus Axosuberites Topsent, 1893
Clathria (Axosuberites) flabellata (Topsent, 1916)
(Figs. 18-25; Tab. II)
Ophlitaspongia flabellata TOPSENT 1916: 167.
Axociella flabellata; KOLTUN 1964: 70, pl. XII, figs. 12–14; BARTHEL et al. 1990: 123;
1997: 48; GUTT & KOLTUN 1995: 230.
Clathria (Axosuberites) flabellata; RÍOS et al. 2004:103, figs. 4a-j.
Further synonym see KOLTUN (1964).
163
Studied material. MCNPOR 3118, St. Ferraz, King George I.: 62º05' S - 58º23' W, 20 m,
03.II.1985, PROANTAR III, “trap” coll.; MCNPOR 1972, St. 4870, Bransfield Strait:
63º26' S - 59º32' W, 135 m, 14.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Description. (MCNPOR 1972) (Fig. 18) Flabellate specimen, partially unbroken,
with a longer and fine basal portion; dimensions, in cm: 11.2 height, 4.7 width, 0.4 width at
basal portion; surface hispid to the touch, where on magnifying glass it can be observed
some protruding spicules; only three oscular openings present (0.1 cm diameter). Preserved
material slightly elastic consistency, colour greyish beige.
Skeleton. (Fig. 19) Ectosome formed by a crust of styles II in confusion, crust 560–
800 µm thickness. In such region it was also observed toxas and some amount of
exogenous material. Choanosome made by styles I, condensed in an axial arrangement, in
some places perpendicularly positioned to the surface.
Spicules. Megascleres: styles I - smooth, curved, some sinuous (Fig. 20), apical
extremity acerate (Fig. 21); styles II - straight (Fig. 22), basal portion bearing small spines
(Fig. 23). Microscleres: toxas - opening angle varies slightly (Fig. 24); spined extremities
(Fig. 25). Measurements (Tab. II).
Remarks. Basing on the literature, the toxas presents some differences in regard to
their size classes. TOPSENT (1917) e KOLTUN (1964) recorded one only size class; by the
other hand RÍOS et al. (2004) presented toxas in three categories; in the present study it was
not possible to separate the same in such classes, even in a great size variation it does not
have a clear distinction of limits for categories. The presence of toxas in a greater size
variation in RÍOS et al. (2004) perhaps has made possible such differentiation.
Synonymy with C. nidificata (Kirkpatrick, 1907), proposed by KOLTUN (1976) and
DESQUEYROUX (1975), also including C. rameus Koltun, 1964, possibly does not be
164
confirmed with a more detailed analysis of the above-mentioned species. Spicules clearly
differ in regard to dimensions of the styles and mainly of the toxas; external morphology of
the three species also seems to characterize different groups: C. flabellata is flabellate, C.
nidificata is arborescent with coalescent branches and C. rameus is composed by a single
branch.
Distribution. South America: South Georgia (BURTON 1932; 1934). Antarctica:
Graham Land (TOPSENT 1916; 1917); Ross Sea (BURTON 1929); Clarie Land; McRobertson
Land; Victoria Land (KOLTUN 1964); Weddell Sea (BARTHEL et al. 1990; 1997; GUTT &
KOLTUN 1995); Bransfield Strait (present study); South Shetland Is.: Livingston I. (RÍOS et
al. 2004); King George I. (present study). Bathymetry: 20 m (RÍOS et al. 2004; present
study) to 700 m (KOLTUN 1964).
Clathria (Axosuberites) nidificata (Kirkpatrick, 1907)
(Figs. 26-35; Tab. III)
Ophlitaspongia nidificata KIRKPATRICK 1907: 274.
Axociella nidificata; BURTON 1940: 116; KOLTUN 1964: 70, pl. XII, figs. 7–11; 1976: 190;
DESQUEYROUX 1975: 67; SARÀ et al. 1990: 254; BARTHEL et al. 1990: 123; 1997: 48;
PANSINI & SARÀ 1999: 205; CATTANEO-VIETTI et al. 1999: 540.
Clathria (Axociella) nidificata; MOTHES & LERNER 1995: 159, figs. 22–27, 55.
Further synonym see BURTON (1940).
165
Studied material. MCNPOR 1969, St. 4874, Bransfield Strait: 63º25' S - 62º19' W, 135 m,
14.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.; MCNPOR 1993, St. 4872, Bransfield
Strait: 63º28' S - 62º31' W, 168 m, 13.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Examined material for comparison. Clathria (Axosuberites) nidificata
(Kirkpatrick, 1907), colleted at Joinville I., Antarctica (MCNPOR 1144 - det. B. Mothes &
C. B. Lerner).
Description. (MCN 1969) (Fig. 26) Palmate specimen, constituted by three main
branches, which two of them are bifurcated and anastomosed in terminal portion;
dimensions, in cm: 8.4 height, 6.2 width, branches ranging from 1.2–1.5 diameter; surface
hispid to the touch, with fine erect conules regularly distributed; oscules not visualized.
Preserved material slightly hard, incompressible consistency, colour beige with greyish
regions.
Skeleton. (Fig. 27) Ectosome without specialization, with a discrete agglomeration
of toxas I and II. Choanosome an axial condensation, originating from a ‘center’ where
megascleres are arranged in confusion; towards the surface it is initiated the formation of
multispicular tracts, 140–230 µm thickness. Between the tracts there are free spicules and a
little amount of spongin.
Spicules. Megascleres: styles I - smooth, curved (Fig. 28), slightly sharp-pointed at
basal portion; apical extremity acerate (Fig. 29); styles II - straight, tornote-like (Fig. 30),
with rounded spined extremities (Fig. 31). Microscleres: toxas I - some with a slight
deformation, microspined extremities (Figs. 32, 33); toxas II - similar to general
morphology of toxas I (Figs. 34, 35). Measurements (Tab. III).
Remarks. In the studied samples it was possible to observe two size classes of
toxas, mainly by some remarkable width and the presence of well developed spines at the
166
extremities of toxas I. Measurements of styles I are larger than the ones proposed in
previous records of the species (KOLTUN 1964; DESQUEYROUX 1975; MOTHES & LERNER
1995). However is correct to affirm that, considering just one valid taxon and not three (see
remarks of C. flabellata), some registers can not supply the characteristics that truly belong
to the species argued here.
Distribution. South America: Argentina (BURTON 1940); Magellan Strait (PANSINI
& SARÀ 1999); South Georgia (BURTON 1932). Antarctica: Victoria Land (KIRKPATRICK
1907; 1908; BURTON 1929; SARÀ et al. 1990; CATTANEO-VIETTI et al. 1999); Clarie Land,
McRobertson Land (KOLTUN 1964); Enderby Land (KOLTUN 1976); Weddell Sea
(BARTHEL et al. 1990; 1997); South Shetland Is.: Greenwich I. (DESQUEYROUX 1975);
Elephant I. (MOTHES & LERNER 1995), King George I. (KOLTUN 1964); Bransfield Strait
(present study); Joinville I. (MOTHES & LERNER 1995). Bathymetry: 84 m (BURTON 1940)
to 540 m (BURTON 1929).
Suborder Myxillina Hajdu, Van Soest & Hooper, 1994
Family Hymedesmiidae Topsent, 1928
Genus Kirkpatrickia Topsent, 1912
Kirkpatrickia variolosa (Kirkpatrick, 1907)
(Figs. 36-41)
Tedania variolosa KIRKPATRICK 1907: 279.
Kirkpatrickia variolosa; KOLTUN 1976: 182; BARTHEL et al. 1990: 122; 1997: 48.
Further synonym see KOLTUN (1976).
167
Studied material. MCNPOR 1947, St. 4870, Bransfield Strait: 63º26' S - 59º32' W, 135 m,
08.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.; MCNPOR 3140, St. 5254, Bransfield
Strait: 63º44' S - 60º25' W, 108 m, 25.I.1988, PROANTAR VI, “otter-trawl” coll.
Description. (MCNPOR 1947) (Fig. 36) Globular specimen, partially unbroken;
dimensions, in cm: 7.5 height, 10.2 length, 7.7 width; conulose surface, due to some
skeletal features presented by spicule tracts; oscules occurring between the conules (<0.1–
0.5 cm diameter). Preserved material compressible, lightly fragile consistency, colour
beige.
Skeleton. (Fig. 37) Ectosome with tornotes arranged in brushes, 12–18 spicules.
Choanosome formed by multispicular ascending tracts of styles, 80–220 µm thickness;
tracts are irregularly connected, both by spicules (in such case perpendicular to the surface)
and by the bifurcation of the tracts.
Spicules. Megascleres: styles - slightly curved, some straight or slightly sinuous
(Fig. 38); basal extremity sometimes with small lobular salience, apical extremity varying
from acerate to conical (Fig. 39). Measurements: 380–431.9–475 / 12.7–14.8–18.4 µm
(MCNPOR 1947), 323–397.7–446.5 / 11.5–15.7–18.4 µm (MCNPOR 3140); tornotes -
smooth, straight, some slightly curved (Fig. 40), one of the halves can be a little more
swelled; blunt extremities (Fig. 41). Measurements: 209–266.6–304 / 6.9–7.7–9.2 µm
(MCNPOR 1947), 199.5–249.5–285 / 5.8–7.2–8.1 µm (MCNPOR 3140).
Remarks. Spicules of this species nearly do not possess some morphological
variation, in comparing the measurements and other features of samples of the present
study with data from some authors which provided such informations (KIRKPATRICK 1908;
KOLTUN 1964).
168
K. variolosa has a chemical constitution which has supplied important studies in this
field. MCCLINTOCK & GAUTHIER (1992) had demonstrated that an extract of K. variolosa
inhibited the development of certain bacteria. PERRY et al. (1994) had isolated some
compound (variolin B), which present some antitumour and antiviral properties;
TRIMURTULU et al. (1994) had isolated other compounds (variolin A and N(3’)-methy
tetrahydrovariolin B), this latter presenting antifungal activity and moderate citotoxicity.
JAYATILAKE et al. (1995) had examined this conspicuous red sponge, isolating and
identifying a new stilbene derivative, which showed varied biological and pharmacological
activity.
Distribution. South America: South Georgia (BURTON 1932). Antarctica: Victoria
Land (KIRKPATRICK 1907; 1908); McRobertson Land (KOLTUN 1964); Adelie Land;
Wilhelm II Land; Enderby Land (KOLTUN 1976); Weddell Sea (BARTHEL et al. 1990;
1997); Bransfield Strait (BURTON 1932; present study). Bathymetry: 18 m (KIRKPATRICK
1907) to 640 m (KOLTUN 1976).
Genus Myxodoryx Burton, 1929
Myxodoryx hanitschi (Kirkpatrick, 1907)
(Figs. 42-49)
Lissomyxilla hanitschi KIRKPATRICK 1907: 336.
Myxodoryx hanitschi; KOLTUN 1964: 76; 1976: 182; DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989: 115,
pl. III, figs. 13a-d, pl. X, fig. 57; BARTHEL et al. 1990: 123; PANSINI et al. 1994: 76, pl.
VII, figs. 2a-c; CATTANEO-VIETTI et al. 1999: 540.
Further synonym see KOLTUN (1964).
169
Studied material. MCNPOR 1956, St. 4875, Bransfield Strait: 63º17' S - 62º30' W, 157 m,
14.I.1983, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Description. (Fig. 42) Flabellate specimen; dimensions, in cm: 12.6 length, 9.5
width, 2.2 height; smooth surface; rounded oscular openings, 0.1–0.4 cm diameter,
randomly distributed along the surface, some of them can be often obstructed by a fine
dermal membrane. Preserved material lightly compressible consistency, colour beige.
Skeleton. (Fig. 43) Ectosome without specialization. Choanosome a dense
arrangement of longitudinal multispicular tracts, irregularly connected by grouped spicules,
together with abundant spongin, forming some rounded openings. Tracts running until the
surface, where it causes the superficial hispidation, in the same way that free spicules.
Equination of the tracts by the acanthostyles was not observed.
Spicules. Megascleres: styles - slightly curved, some straight or sinuous (Fig. 44),
most of them without spination or scarcely spined, varying along the shaft, more
concentrated at apical portion; apical extremity acerate (Fig. 45). Measurements: 350–
398.4–460 / 15–17.9–21.3 µm; acanthostyles - straight or slightly curved (Fig. 46),
microspination more concentrated towards to both the extremities; some with few spines
(Fig. 47). Measurements: 128.8–182.6–225.4 / 4.6–6.9–9.2 µm; tornotes - straight, some
sinuous, central portion slightly swollen (Fig. 48); lightly unequal extremities, being one
acerate and the other mucronate (Fig. 49). Measurements: 260–292–330 / 7.5–8.3–10 µm.
Remarks. Until the present the species is endemic for Antarctica, with their
distribution extended in that continent with the present record for the studied area.
Spicules present subtle differences in regard to previous records for the species; the
three kinds of spicules have in this study inferior limits with lesser values in comparison
170
with bibliographic data (KIRKPATRICK 1908; HENTSCHEL 1914; TOPSENT 1917; BURTON
1938; KOLTUN 1976; DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989; PANSINI et al. 1994). On the
morphology of the spicules it was observed that some styles bear spines, however the most
possesses a totally smooth shaft. Some acanthostyles presents spines regularly distributed
along the shaft, even if the most is of acanthostyles bearing spines mainly at their
extremities; tornotes have slight unequal extremities but the mucronate pattern was also
observed. DESQUEYROUX-FAÚNDEZ (1989) observed a discrete spination near to the basal
extremity.
The supply in the present study of photographs of the spicules by SEM allows a
better observation on the details of the same, helping in the illustration of diagnosis of the
species. DESQUEYROUX-FAÚNDEZ (op. cit.) made use of the above-mentioned resource,
however not in the same way.
Distribution. Antarctica: Victoria Land (KIRKPATRICK 1907; 1908; PANSINI et al.
1994); Graham Land (TOPSENT 1917; DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989); Wilhelm II Land
(HENTSCHEL 1914); Queen Mary Land (BURTON 1938); Princess Elisabeth Land (KOLTUN
1976); Bransfield Strait (present study). Bathymetry: 20 m (DESQUEYROUX-FAÚNDEZ
1989) to 622 m (BURTON 1938).
Family Iotrochotidae Dendy, 1922
Genus Iotroata Ridley, 1884
Iotroata somovi (Koltun, 1964)
(Figs. 50-57)
171
Iotrochota somovi KOLTUN 1964: 52, text-fig. 12; BARTHEL et al, 1990: 122; GUTT &
KOLTUN 1995: 231.
Iotaota somovi; KOLTUN 1976: 182.
Studied material. MCNPOR 2018, St. 4861, Elephant I.: 61º02' S - 54º55' W, 362 m,
01.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Description. (Fig. 50) Fragment, dimensions, in cm: 1.7 length, 1.5 width, 1.0
height; slightly hispid surface, on magnifying glass can be seen some protruding spicules
and conules, this latter bonded by sponging fibres; pores and/or oscules distributed by all
over the surface, 0.1-0.3 cm diameter. Preserved material firm consistency, colour beige.
Skeleton. (Fig. 51) Ectosomal features were not observed. Choanosome with coarse
longitudinal multispicular tracts, 7–11 spicules, 250–370 µm thickness. The same ones are
interconnected by irregularly disposed spicules, only one or sometimes by compact
spicules, forming openings at diverse angles. Spongin present mainly between the tracts;
microscleres dispersed by the choanosome.
Spicules. Megascleres: styles - smooth, slightly curved, some straight or sinuous
(Fig. 52); apical extremity conical, some rounded (Fig. 53). Measurements: 610–662.6–730
/ 30–36.7–45 µm; tylotes - smooth, straight (Fig. 54), lightly swollen extremities,
presenting 05–08 small spines at their ends (Fig. 55). Measurements: 240–307–340 / 8.8–
10.2–12.5 µm. Microscleres: isochelas (Fig. 56) - anchorate, well developed free alae.
Measurements: 65–79.1–95 µm; birotulas (Fig. 57) - extremities bearing spines (05–07),
curved and acerate ends. Measurements: 22.5–29.9–40 µm.
Remarks. Until the moment the species is endemic of the Antarctic continent. I.
somovi does not present an ample geographic distribution, being this record the first one for
172
the area that encloses the present study; bathymetry has a great variation (details see
distribution below).
Illustrations by MEV make possible for the first time to observe a better detail of the
spicules, in special on the microscleres.
Citations of spicule measurements were only reported by KOLTUN (1964). The
sample of the present study has greater dimensions for the styles, birotulas and isochelas,
consequently extending the registers for the spicules.
Distribution. Antarctica: Banzare Land (KOLTUN 1964); Enderby Land; Sabrina
Land (KOLTUN 1976); Weddell Sea (BARTHEL et al. 1990; GUTT & KOLTUN 1995); South
Shetland Is.: Elephant I. (present study). Bathymetry: 208 m (GUTT & KOLTUN 1995) to
2267 m (KOLTUN 1976).
Family Tedaniidae Ridley & Dendy, 1886
Genus Tedania Gray, 1867
Subgenus Tedaniopsis Dendy, 1924
Tedania (Tedaniopsis) charcoti (Topsent, 1907)
(Figs. 58-68)
Tedania charcoti TOPSENT 1907: 69; BURTON 1940: 106; LÉVI 1964: 149, text-fig. 1, pl. I,
fig. 1; KOLTUN 1964: 60, pl. X, figs. 31–34; 1976: 184; DESQUEYROUX 1976: 103;
SARÀ 1978: 49; 1991: 233; CUARTAS 1986: 46; 1992: 79: DESQUEYROUX & MOYANO
1987: 49; DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989: 121, pl. III, figs. 18a-c, pl. XII, figs. 71;
BARTHEL et al. 1990: 122; PANSINI et al. 1994: 76; GUTT & KOLTUN 1995: 230;
173
DESQUEYROUX-FAÚNDEZ & VAN SOEST 1996: 55, figs. 105–110; CATTANEO-VIETTI et
al. 1999; RÍOS et al. 2004: 107, text-figs. 7A-J.
Tedania armata SARÀ 1978: 51, text-figs. 30–31; PANSINI & SARÀ 1999: 205.
Further synonym see KOLTUN (1964) and DESQUEYROUX-FAÚNDEZ (1989).
Studied material. MCNPOR 3134, St. 5062, Elephant I.: 61º12' S - 55º40' W, 98 m,
26.II.1987, PROANTAR V, “otter-trawl” coll.
Examined material for comparison. Tedania (Tedaniopsis) charcoti (Topsent,
1907), colleted at Joinville I., Antarctica (MCNPOR 1136 - det. B. Mothes & C. B. Lerner).
Description. (Fig. 58) Massive, amorphous specimen, partially unbroken;
dimensions, in cm: 8.2 length, 4.9 width, 3.8 height; smooth surface, characterized by a fine
membrane, which are absent in some regions, but some ridges and grooves occurs over the
surface; only one oscule observed (0.15 cm diameter). Preserved material compressible
consistency, colour beige.
Skeleton. Ectosome formed by a palisade of tornotes, sometimes forming discrete
bouquets (Fig. 59). Choanosome bearing a confuse reticulation, with irregular tracts made
by styles, connected by isolated spicules at diverse angles (Fig. 60); spongin abundant.
Onychaetes dispersed along the choanosome.
Spicules. Megascleres: styles - of varied curvature and/or sinuous (Fig. 61); apical
extremity acerate or slightly mucronate (Fig. 62). Measurements: 380–457.2–520 / 10–
12.8–15 µm; tornotes - straight or lightly curved (Fig. 63); conical to acerate extremities,
lightly swollen at terminal portion (Fig. 64). Measurements: 300–348.4–390 / 6.3–7.6–8.8
µm. Microscleras: onychaetes I - poorly developed spines (Fig. 65), sharp-pointed
extremities (Fig. 66). Measurements: 200–228.6–310 / 1.0-1.8-2.5 µm; onychaetes II - well
174
developed spines, thicker towards to basal extremity (Fig. 67); asymmetrical ends (Fig. 68).
Measurements: 75–90.1–115 / <1.0 µm.
Remarks. Spicules measurements of the studied material are very alike to what it
was previously related for the species, with the exception of DESQUEYROUX-FAÚNDEZ
(1989) and SARÀ (1978), which reported smaller styles. Another important citation in
regard to the spicules is concentrated on the onychaetes; DESQUEYROUX-FAÚNDEZ (op. cit.)
and SARÀ (op. cit.) had cited only one category of such spicule, instead of two ones as
described in the present study.
GAINO et al. (1994) had supplied an important ecological information, when
observing a constant association of samples of the species with diatoms, supporting the
notion that diatoms could be responsible for the presence of chlorophyll pigments and thus
suggesting the existence of a different trophic strategy linked to the Antarctic environment.
CAPON et al. (1993) had observed the occurrence of a high natural concentration of
cadmium and zinc, with their extract being able to modulate some protein phosphorylation
and to inhibit the growth of several bacteria.
Distribution. Indic Ocean: Kerguelen I. (LÉVI 1964; BOURY-ESNAULT & VAN
BEVEREN 1982). South America: Chile (DESQUEYROUX 1976; DESQUEYROUX & MOYANO
1987; DESQUEYROUX-FAÚNDEZ & VAN SOEST 1996); Argentina (CUARTAS 1992);
Magellan Strait (SARÀ 1991; PANSINI & SARÀ 1999); Tierra del Fuego (SARÀ 1978);
Falkland Is. (CUARTAS 1986); South Georgia; Shag Rocks (BURTON 1932); Burdwood
Bank (TOPSENT 1913; BURTON 1934). Antarctica: South Orkney Is. (BURTON 1940);
Graham Land (TOPSENT 1907; 1908); Queen Mary Land; Adelie Land (BURTON 1938);
Wilhelm II Land (KOLTUN 1964); Enderby Land; McRobertson Land (KOLTUN 1976);
Victoria Land (PANSINI et al. 1994; CATTANEO-VIETTI et al. 1999); Weddell Sea (BARTHEL
175
et al. 1990; GUTT & KOLTUN 1995); South Shetland Is.: Greenwich I. (DESQUEYROUX
1975); Livingston I. (RÍOS et al. 2004); Elephant I. (DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989; present
study). Bathymetry: 0 m (DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989) to 728 m (BURTON 1932).
Tedania (Tedaniopsis) vanhoffeni (Hentschel, 1914)
(Figs. 69-78; Tab. IV)
Tedania vanhoffeni HENTSCHEL 1914: 90, pl. VI, fig. 13; KOLTUN 1964: 60; BOURY-
ESNAULT & VAN BEVEREN 1982: 96, pl. XVI, fig. 62, text-figs. 27a-f; BARTHEL et al.
1990: 122; 1997: 48.
Studied material. MCNPOR 3108, St. 4871, Bransfield Strait: 63º16' S - 59º55' W, 264 m,
08.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Examined material for comparison. Tedania (Tedaniopsis) vanhoffeni Hentschel
1914, collected at Gauss Station, Wilhelm II Land, Antarctica (slide ZMB 4844
(holotype)). Additional material: T. vanhoffeni, collected off Rio Grande do Sul State coast,
Brazil (slide MCNPOR 3694).
Description. (Fig. 69) Fragment; dimensions, in cm: 0.9 length, 0.7 width, 0.3
height; hispid surface, with protruding spicules; oscules and/or pores not observed.
Preserved material (?) stiff consistency, colour beige.
Skeleton. (Fig. 70) Ectosome absent (broken). Choanosome constituted by
multispicular tracts, reinforced by certain amount of spongin and also a great number of
free spicules. Other detailings of the skeletal architecture was not possible of being
analyzed, due to fragment degree of the sample.
176
Spicules. Megascleres: styles - straight, slightly curved or sinuous (Fig. 71); apical
extremity blunt, some conical or stepped (Fig. 72); tornotes - straight (Fig. 73), unequal
extremities (acerate and mucronate) (Fig. 74). Microscleres: onychaetes I - asymmetrical
extremities; one of them acerate and microspined, other a little more swelled with a well
developed terminal spine (Figs. 75, 76); onychaetes II (Figs. 77-78) - similar in
morphology to onychaetes I, one extremity blunt with terminal spines and the other acerate
with a larger spine. Measurements (Tab. IV).
Remarks. This is a species with few records; present study provides a new
occurrence of T. vanhoffeni. Illustration of spicules is improved by using SEM analysis,
mainly providing a detailed visualization of the general morphology of onychaetes.
Comparison with holotype confirmed the identification of the sample (remeasured:
Tab. IV). Subtle differences had been noticed in the holotype: thinner styles and onychaetes
I besides tornotes of swollen extremities with a slight microspination; by the other hand it
was observed that both the material shares some characteristics, as the sinuosity present in
some styles and mainly for the detailing on the extremities of the two categories of
onychaetes.
BARTHEL (1995) affirmed that this species presents soft-bodied individuals of large
dimensions, which exude copious quantities of slime when disturbed. In addition, BARTHEL
& GUTT (1992) pointed out T. vanhoffeni as a very soft species, which is easily damaged in
the trawls.
Distribution. Indic Ocean: Kerguelen I. (BOURY-ESNAULT & VAN BEVEREN 1982).
South America: off Rio Grande do Sul State coast, Brazil (MOTHES et al. 2004b).
Antarctica: Wilhelm II Land (HENTSCHEL 1914; KOLTUN 1964); Weddell Sea (BARTHEL et
177
al. 1990; 1997); Bransfield Strait (present study). Bathymetry: 46 m (HENTSCHEL 1914) to
499 m (KOLTUN 1964).
Tedania (Tedaniopsis) oxeata (Topsent, 1916)
(Figs. 79-88; Tab. V)
Tedania oxeata TOPSENT 1916: 169; BURTON 1938: 15; VACELET & ARNAUD 1972: 18;
DESQUEYROUX 1975: 65; BARTHEL et al. 1990: 122; 1997: 48; GUTT & KOLTUN 1995:
230; MOTHES & LERNER 1995: 161, figs. 33–41, 57.
Further synonym see DESQUEYROUX (1975).
Studied material. MCNPOR 1566, St. 4381, Bransfield Strait: 62º48' S - 54º20' W, 280 m,
18.I.1983, PROANTAR I, “beam-trawl” coll.; MCNPOR 2008, St. 4873, Bransfield Strait:
63º25' S - 62º05' W, 66 m, 13.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Examined material for comparison. Tedania (Tedaniopsis) oxeata (Topsent,
1916), colleted at Joinville I., Antarctica (MCNPOR 1134 - det. B. Mothes & C. B. Lerner).
Description. MCNPOR 1566 (Fig. 79) Fragment, infested with briozoan and small
coralline plates; dimensions, in cm: 1.7 length, 1.2 width, 0.7 height; due to their
conservation state, it was not possible to characterize surface, consistency and presence of
oscules. Preserved material fragile consistency, colour beige.
Skeleton. (Fig. 80) Ectosome absent, due to the fragment state of the sample.
Choanosome with a dense and confuse reticulation, where it was observed some
multispicular tracts; spongin present. In the remain of the skeleton the spicules are
dispersed, sometimes grouped in little amount.
178
Spicules. Megascleres: oxeas - straight or slightly curved (Fig. 81), some sinuous or
twisted, rares style-like; extremities varying from conical to acerate, or lightly mucronate
(Fig. 82); tornotes - straight or slightly curved (Fig. 83); extremities vary between conical,
hastate, acerate or mucronate forms (Fig. 84). Microscleres: onychaetes I - with reduced but
well distributed spines along the shaft (Fig. 85); acerate extremities, one of them bearing
larger spines (Fig. 86); onychaetes II - well developed spines (Fig. 87); extremities differ
significantly, one acerate and other blunt with terminal spines (Fig. 88). Measurements
(Tab. V).
Remarks. T. oxeata is very conspicuous in subgenus Tedaniopsis, because it is until
the present the only species of the above-mentioned group that presents oxeas, and not
styles, in its spicules. In regard to this one, measurements provided by TOPSENT (1917) and
KOLTUN (1964) presented larger and thicker styles and tornotes. The material here studied
has spicules with similar dimensions to those cited by MOTHES & LERNER (1995).
Our samples are very fragmented, being impossible to compare it in respect to
external features. BARTHEL (1995) adds that T. oxeata have a hard, almost brittle
consistency, in accordance with TOPSENT (1917), which described a sample of firm but
fragile consistency.
In the present study is provided a new limit for bathymetric distribution.
Distribution. Antarctica: Graham Land (TOPSENT 1916; 1917); Victoria Land
(BURTON 1929); Queen Mary Land; Knox Land; Clarie Land; McRobertson Land; Banzare
Land (KOLTUN 1964); Adelie Land (VACELET & ARNAUD 1972); Weddell Sea (BARTHEL et
al. 1990; 1997; GUTT & KOLTUN 1995); Joinville I. (MOTHES & LERNER 1995); Bransfield
Strait (present study); South Shetland Is.: Greenwich I. (DESQUEYROUX 1975); Clarence I.
(BURTON 1932). Bathymetry: 66 m (present study) to 920 m (KOLTUN 1964).
179
Suborder Mycalina Hajdu, Van Soest & Hooper, 1994
Family Isodictyidae Dendy, 1924
Genus Isodictya Bowerbank, 1864
Isodictya kerguelenensis (Ridley & Dendy, 1886)
(Figs. 89-93)
Homoeodictya kerguelenensis RIDLEY & DENDY 1886: 346.
Isodictya kerguelenensis; LÉVI 1956: 27, text-fig. 2–3; KOLTUN 1976: 175; VACELET &
ARNAUD 1972: 16; DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989: 113, pl. III, figs. 11a-b, pl. IX, fig.
52; BARTHEL et al. 1990: 122; CUARTAS 1992: 75, text-figs. 5, 6, 62; RÍOS et al. 2004:
114, figs. 14a-d.
Isodictya antarctica; KOLTUN 1964: 42, pl. VIII, figs. 17–18; 1976: 175; DESQUEYROUX
1972: 51; VACELET & ARNAUD 1972: 16, figs. 3–4; BARTHEL et al. 1990: 122.
Further synonym see KOLTUN (1964) and DESQUEYROUX-FAÚNDEZ (1989).
Studied material. MCNPOR 1952, St. 4862, Elephant I.: 61º08' S - 54º34' W, 240 m,
01.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.; MCNPOR 3122, St. 4874, Bransfield
Strait: 63º25' S - 62º19' W, 135 m, 14.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Examined material for comparison. Isodictya kerguelenensis (Ridley & Dendy,
1886) (slide BMNH 1887.5.2.166a). Additional material: Isodictya antarctica (Kirkpatrick,
1908) (slide BMNH 1928.ii.15.348a).
Description. (MCNPOR 1952) (Fig. 89) Massive, amorphous specimen;
dimensions, in cm: 11.8 length, 8.2 width, 1.8 height; conulose surface; oscules randomly
180
scattered, at one side of the surface, in general at the apex of the conules, 0.1–0.4 cm
diameter. Preserved material fragile but incompressible consistency, colour beige.
Skeleton. (Fig. 90) Ectosome without specialization. Choanosome formed by a
dense and confuse reticulation, where it observes multispicular tracts of oxeas and a great
amount of spongin (05–08 spicules, 100–150 µm thickness), transversed by free spicules
(including microscleres). Such tracts tend to be finer towards the surface.
Spicules. Megascleres: oxeas - straight to slightly curved (Fig. 91); acerate
extremities (Fig. 92). Measurements: 400–479.4–560 / 22.5–27.4–32.5 µm (MCNPOR
1952); 550–658.2–770 / 15–21.6–30 µm (MCNPOR 3122). Megascleres: isochelas (Fig.
93) - palmate, lateral alae well developed. Measurements: 20–23.8–25 µm (MCNPOR
1952); 16.3–19.9–22.5 µm (MCNPOR 3122).
Remarks. BOURY-ESNAULT & VAN BEVEREN (1982) and RÍOS et al. (2004)
consider I. antarctica as a junior synonym of I. kerguelenensis, what had been previously
observed by KOLTUN (1976). In the synonymy of I. antarctica are inserted two variations
of I. kerguelenensis (simillima e cactoides), both proposed by HENTSCHEL (1914).
DESQUEYROUX-FAÚNDEZ (1989) affirmed that I. kerguelenensis is a polymorphic
species, in regard to their external morphology and spicules. A great morphological
difference can be observed in the form of the isochelas, mainly in the alae contour; RÍOS et
al. (2004) had observed some different growth stages in such spicule. In the samples of the
present study certain variation in the dimensions of the oxeas was noticed, while the
isochelas are identical. Comparative material corroborates with such information, being
possible to observe the variations related to the species.
Distribution. Indic Ocean: Kerguelen I. (RIDLEY & DENDY 1886; 1887; LÉVI 1956;
KOLTUN 1964; BOURY-ESNAULT & VAN BEVEREN 1982); Heard I. (KOLTUN 1976; BOURY-
181
ESNAULT & VAN BEVEREN 1982). South America: Argentina (CUARTAS 1992); Falkland
Is.; South Georgia (BURTON 1932). Antarctica: Graham Land (TOPSENT 1908; 1917);
Victoria Land (KIRKPATRICK 1908; BURTON 1929; 1938); Queen Mary Land (BURTON
1938); Wilhelm II Land (HENTSCHEL 1914); Adelie Land (BURTON 1938; VACELET &
ARNAUD 1972); Queen Mary Land; Knox Land; Princess Elisabeth Land (KOLTUN 1964);
Enderby Land; McRobertson Land (KOLTUN 1976); Weddell Sea (BARTHEL et al. 1990);
South Shetland Is.: Deception I. (DESQUEYROUX 1975); Livingston I. (RÍOS et al. 2004);
Greenwich I. (DESQUEYROUX 1972); Elephant I. (DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989; present
study); Bransfield Strait (DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989; present study). Bathymetry: 2 m
(TOPSENT 1908) to 1266 m (KOLTUN 1976).
Isodictya lankesteri (Kirkpatrick, 1907)
(Figs. 94-98; Tab. VI)
Cercidochela lankesteri KIRKPATRICK 1907: 284; BURTON 1932: 287; 1934: 21;
DESQUEYROUX 1975: 61, pl. II, figs. 21–22; BARTHEL et al. 1990: 122; 1997: 48; GUTT
& KOLTUN 1995: 231.
Further synonym see DESQUEYROUX (1975).
Studied material. MCNPOR 3161, St. Ferraz, King George I.: 62º05' S - 58º23' W, 20 m,
03.II.1985, PROANTAR III, “scuba diving” coll.; MCNPOR 3133, 3137, 3142, St. 4743,
Bransfield Strait: 62º30' S - 54º16' W, 412 m, 28.I.1985, PROANTAR III, “beam-trawl”
coll.
182
Examined material for comparison. Isodictya lankesteri (Kirkpatrick, 1907),
(slide BMNH 1926.10.26.151a).
Description. (MCNPOR 3142) (Fig. 94) Massive, amorphous specimen;
dimensions, in cm: 12.5 length, 5.0 width, 2.0 height; smooth surface, hispid to the touch;
oscules in both the surfaces (larger 0.7 cm diameter), slightly elliptical. On magnifying
glass it was observed at the surface the ends of spicule tracts, between the same ones occurs
several rounded pores, 0.1-0.2 cm diameter, randomly distributed along the surface.
Preserved material extremely friable consistency, colour white with marooned regions.
Skeleton. (Fig. 95) Ectosome without specialization. Choanosome with longitudinal
multispicular tracts of oxeas, 170–300 µm thickness, which running towards the surface
and are responsible for the superficial hispidation. Between the tracts also occurs free oxeas
and little spongin. Microscleres abundant along the choanosome.
Spicules. Megascleres: oxeas - slightly curved, some straight (Fig. 96), acerate
extremities (Fig. 97). Microscleres: canonochelas (Fig. 98) - some with swollen central
salience, alae can be lightly twisted, overlapped or even fused. Measurements (Tab. VI).
Remarks. The presence of a very conspicuous spicule (canonochela) allows to I.
lankesteri to be well differentiated among the species of Isodictya from studied area.
In the present study the referring description to the openings of the surface is also
extended, because BURTON (1929; 1934) only cited the presence of openings in one of the
sides of the sponge. Details from spicules and skeletal architecture are identical to the
material examined for comparison. Bathymetric limit of the species is here extended.
Distribution. South America: Shag Rocks (BURTON 1934). Antarctica: Victoria
Land (KIRKPATRICK 1907; 1908; BURTON 1929); Palmer Archipelago (BURTON 1932);
Wilhelm II Land (HENTSCHEL 1914); Knox Land (KOLTUN 1964); Enderby Land;
183
McRobertson Land (KOLTUN 1976); Weddell Sea (BARTHEL et al. 1990; 1997; GUTT &
KOLTUN 1995); Graham Land (DESQUEYROUX 1972); South Shetland Is.: Greenwich I.
(DESQUEYROUX 1975); King George I. (present study); Bransfield Strait (present study).
Bathymetry: 20 m (present study) to 840 m (KOLTUN 1964).
Isodictya toxophila Burton, 1932
(Figs. 99-104)
Isodictya toxophila BURTON 1932: 286, pl. LII, figs. 2–3, pl. LIII, figs. 1–2, text-fig. 18;
KOLTUN 1964: 43, pl. VIII, figs. 19–22; BARTHEL et al. 1990: 122; 1997: 48; GUTT &
KOLTUN 1995: 231.
Studied material. MCNPOR 2016, St. 4874, Bransfield Strait: 63º25' S - 62º19' W, 135 m,
14.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Examined material for comparison. Isodictya toxophila Burton, 1932, collected at
South Georgia (slide BMNH 1936.1.13.23a).
Description. (Fig. 99) Conical erect specimen, fixed to a rock fragment;
dimensions, in cm: 4.2 height, 1.9 width, 1.3 thickness; surface hispid to the touch, on
magnifying glass it was observed the formation of conules with spicules protraction;
abundant oscules, <0.1–0.4 cm diameter. Preserved material firm consistency, colour
greyish beige.
Skeleton. (Fig. 100) Ectosome apparently without a distinct spicule arrangement,
with abundant spongin and exogenous material. Choanosome composed by coarse
184
multispicular tracts, 180–400 µm thickness. Between the tracts spicules are irregularly
distributed, in varied angles and positions without an evident orientation.
Spicules. Megascleres: oxeas - slightly curved, rarely straight (Fig. 101),
extremities varying from acerate to conical (Fig. 102). Measurements: 530–599.2–660 /
18.8–27.9–35 µm. Microscleres: isochelas (Fig. 103) - palmate, alae with remarkably
curved contour, overlapping the axis. Measurements: 60–67.1–75 µm; toxas (Fig. 104) -
reduced angle of opening, some almost straight. Measurements: 170–207.3–237.5 µm.
Remarks. Until the present I. toxophila has a restricted geographic distribution, at
South Georgia, South Shetland Is. and in some places at Weddell Sea, reaching an area with
geographic continuity.
In the original diagnosis of the species, BURTON (1932) supplied only the spicules
dimensions, illustrating the same ones in a simple form; in this way the present record
provides better information in regard to the spicules and consequently to diagnosis of the
species, from the accomplishment of photographs by MEV.
The description of the studied sample is similar with the one cited by BURTON
(1932), as well as the skeletal architecture. Spicules are also very alike in comparing with
descriptions and measurements proposed by BURTON (1932) and KOLTUN (1964).
Occurrence of toxas did not reveal constant; BURTON (1932) registered that the presence of
the same ones can vary, even though to be rare or absent. The specimen from present study
is identical to compared material.
Distribution. South America: South Georgia (BURTON 1932). Antarctica: Palmer
Archipelago (BURTON 1932); Weddell Sea (BARTHEL et al. 1990; 1997; GUTT & KOLTUN
1995); South Shetland Is.: King George I. (KOLTUN 1964); Bransfield Strait (BURTON
185
1932; present study). Bathymetry: 93 m (BURTON 1932) to 661 m (GUTT & KOLTUN
1995).
Isodictya bentarti Ríos, Cristobo & Urgorri, 2004
(Figs. 105-109; Tab. VII)
Isodictya bentarti RÍOS et al 2004: 111.
Studied material. MCNPOR 1942, 1945, 1953, St. 4873, Bransfield Strait: 63º25' S -
62º05' W, 66 m, 13.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Description. (MCNPOR 1945) (Fig. 105) Flabellate specimen, partially unbroken;
dimensions, in cm: 15 length, 10 width, 1.8 thickness; surface hispid to the touch; oscules
aligned on the edges (0.1–0.6 cm diameter, equidistant 0.3–0.6 cm), elliptical contour.
Dermis is broken in some areas; in one of the sides small elevations can be observed.
Preserved material very compressible consistency, colour beige, darker internally.
Skeleton. (Fig. 106) Ectosome formed by terminal portion of the tracts, organized
in discrete brushes which causes the superficial hispidation. Choanosome formed by a
dense reticulation, composed by longitudinal multispicular tracts. Between the tracts oxeas
and isochelas are present, together with certain amount of spongin, in an arrangement
without a clear orientation.
Spicules. Megascleres: oxeas - slightly curved, some straight (Fig. 107), acerate
extremities (Fig. 108). Microscleres: isochelas (Fig. 109) - palmate, lateral alae well
developed; at terminal portion of each alae there is a rounded protuberance. Measurements
(Tab. VII).
186
Remarks. The species is endemic for South Shetland Is.; originally described for
Livingston I., and by now has its confirmation for Bransfield Strait, in a place near to Low
I., which belongs to South Shetland Is. In the present the bathymetric distribution of the
species is extended.
Both the characteristics of the external morphology as the details of the spicules
registered in the original description (RÍOS et al. 2004) are here corroborated.
According to RÍOS et al. (2004), another sympatric species of Isodictya which
presents similar characteristics to I. bentarti would be I. grandis (Ridley & Dendy, 1886),
however this latter bears a different oscular pattern, besides differing in regard to the
morphology of oxeas and isochelas.
Distribution. Antarctica: South Shetland Is.: Livingston I. (RÍOS et al. 2004);
Bransfield Strait (present study). Bathymetry: 24 m (RÍOS et al. 2004) to 66 m (present
study).
Suborder Latrunculina Kelly & Samaai, 2002
Family Latrunculiidae Topsent, 1922
Genus Latrunculia Du Bocage, 1869
Subgenus Latrunculia Du Bocage, 1869
Latrunculia (Latrunculia) brevis Ridley & Dendy, 1886
(Figs. 110-115)
Latrunculia brevis RIDLEY & DENDY 1886: 492; TOPSENT 1915: 40, text-fig. 5
Further synonym see SAMAAI et al. (2006).
187
Studied material. MCNPOR 1985, St. 4861, Elephant I.: 61º02' S - 54º55' W, 362 m,
01.II.1986, PROANTAR IV, “beam-trawl” coll.
Examined material for comparison. Latrunculia (Latrunculia) brevis Ridley &
Dendy, 1886, collected off Rio de la Plata, Argentina (slide BMNH 1887.5.2.269
(holotype)).
Description. (Fig. 110) Massive, amorphous specimen, partially unbroken,
dimensions, in cm: 6.9 x 3.5, 1.3 thickness; surface densely areolated, with its circular areas
measuring 0.2–0.8 cm diameter; in some areas the surface smooth, with a slight spicule
protraction. Some oscular openings are visible (0.1–0.2 cm in diameter), inside the circular
areas. Preserved material extremely fragile consistency, colour dark brown.
Skeleton. (Fig. 111) Ectosome formed by a palisade of microscleres, with certain
amount of spongin between them. Subectosomal region composed by a compact layer of
megascleres in confusion. Choanosome bearing a dense arrangement of megascleres,
disposed in irregular multispicular tracts, forming irregular meshes. Free spicules was also
observed.
Spicules. Megascleres: anisostyles - smooth, straight to sinuous (Fig. 112); apical
extremity varying from conical to acerate (Fig. 113). Measurements: 427.5–475–503.5 /
6.9–10.3–11.5 µm. Microscleres: anisodiscorhabds (Fig. 114) - between manubrium and
median whorl the shaft is slightly swollen. Such spicules in growth stage also occurs (Fig.
115). Measurements: total length: 50.6–60–64.4 µm; manubrium: 13.8–18.7–23 µm
diameter; shaft: 16.1–18–20.7 / 4.6–5.7–6.9 µm diameter; median whorl: 27.6–32.7–36.8
µm diameter; subsidiary whorl: 24.2–29–32.2 µm diameter; apical whorl: 16.1–21.2–23
µm diameter.
188
Remarks. SAMAAI et al. (2006) carried out a complete revision of the genus
Latrunculia, designating what are the correct identifications for L. brevis and its respective
synonymy, informing the geographic and bathymetric distribution for the species.
The description of some features, such as external morphology, details of the
skeleton and microscleres, presented for the above-mentioned author, confer with the
material here studied, which is quite similar to the holotype.
Distribution. South America: Uruguay (BURTON 1940); Argentina (RIDLEY &
DENDY 1886; 1887); Falkland Is. (BURTON 1932); Burdwood Bank (TOPSENT 1915).
Antarctica: SAMAAI et al. (2006) (unknown locality); South Shetland Is.: Elephant I.
(present study). Bathymetry: 46 m to 1500 m (SAMAAI et al. 2006).
Latrunculia (Latrunculia) biformis (Kirkpatrick, 1908)
(Figs. 116-121)
Latrunculia apicalis var. biformis KIRKPATRICK 1908: 14, pl. XV, figs. 1–7
Latrunculia biformis; PANSINI et al. 1994: 69; CATTANEO-VIETTI et al. 1999: 540; RÍOS et
al. 2004: 117, text-fig. 15A-J.
Further synonym see SAMAAI et al. (2006).
Studied material. MCNPOR 3128, St. ‘D’, King George I.: 62º05' S - 58º23' W, 25 m,
05.I.1990, PROANTAR VIII, “scuba diving” coll.
Examined material for comparison. Latrunculia (Latrunculia) biformis
(Kirkpatrick, 1908) (slide BMNH 1910.26.154a).
189
Description. (Fig. 116) Small fragment dimensions, in cm: 0.9 x 0.6, 0.4 thickness;
smooth surface, oscules not observed. Preserved material compressible but fragile
consistency, colour light brown at the surface, being darker internally.
Skeleton. (Fig. 117) Characteristics of ectosome, choanosome and subectosomal
region identical to ones described for another Latrunculia species present in this work (L.
brevis).
Spicules. Megascleres: anisostyles - smooth, straight to sinuous (Fig. 118); apical
extremity conical/acerate (Fig. 119). Measurements: 484.5–541.9–579.5 / 10.4–12.3–13.8
µm. Microscleres: anisodiscorhabds (Fig. 120) - presenting the same characteristics
observed in L. brevis. Measurements: total length: 62.1–67.1–78.2 µm; manubrium: 16.1–
18.8–23 µm diameter; shaft: 15–17.8–21.9 / 6.9–7.3–8.1 µm diameter; median whorl: 35.7–
40.9–46 µm diameter; subsidiary whorl: 29.9–33.9–39.1 µm diameter; apical whorl: 16.1–
19.4–23 µm diameter. Aciculodiscorhabds (Fig. 121) - in general very similar to
anisodiscorhabds, only differs in having a well developed spined apical projection.
Measurement: total length: 105.8–120–133.4 µm; manubrium: 17.3–21–25.3 µm diameter;
shaft: 20.7–23.4–26.5 / 6.9–7.4–9.2 µm diameter; median whorl: 36.8–41.6–46 µm
diameter; subsidiary whorl: 29.9–35.8–39.1 µm diameter; apical whorl: 18.4–22.4–25.3 µm
diameter; spined apical projection: 39.1–51.2–64.4 / 5.8–6.8–8.1 µm (width at the base).
Remarks. SAMAAI et al. (2006) had carried through a complete revision of the
genus, becoming unnecessary to make some comments about the synonymy of the species
and the corresponding identifications to the same one.
In regard to the external morphology cited by SAMAAI et al. (2006), it was not
possible to compare because the studied sample is not entire. Other morphological features
of the species, like the skeletal patterns and spicules, confer with the sample here studied.
190
Nevertheless it is important to stand out that for this species is considered an ample
variation in the dimensions and structure of the discorhabds. Analysis of the comparative
material confirms such affirmation, where it can be observed aciculodiscorhabds with a
reduced apical projection.
Currently is valid for the Antarctic Faunistic Complex the following species: L.
bocagei, L. apicalis, L. biformis, L. basilis and L. brevis (SAMAAI et al. 2006). Probably the
morphology of the discorhabds is the character that better distinguishes such species.
Distribution. Indic Ocean: Kerguelen I. (BOURY-ESNAULT & VAN BEVEREN 1982).
Africa: South Africa (SAMAAI et al. 2003). South America: Argentina (RIDLEY & DENDY
1886; 1887). Antarctica: Victoria Land (KIRKPATRICK 1908; BURTON 1929; PANSINI et al.
1994; CATTANEO-VIETTI et al. 1999); Princess Astrid Land; Queen Mary Land (KOLTUN
1964); South Shetland Is.: Livingston I. (RÍOS et al. 2004); King George I. (present study).
Bathymetry: 18 m (SAMAAI et al. 2003) to 1097 m (RIDLEY & DENDY 1886).
ACKNOWLEDGEMENTS
We thanks a lot to Prof. Dr. Edmundo Nonnato (Instituto Oceanográfico da Universidade
de São Paulo - IOUSP), for making possible the donation and direction of all Porifera
specimens collected by PROANTAR for inclusion in MCNPOR. We thank Clare Valentine
(BMNH) and Dr. Carsten Lüter (ZMB) for the loan of comparative material; Dr. Eduardo
Hajdu (Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Brazil) and Ruth
Desqueyroux-Faúndez (Museum d’Histoire Naturelle de Genève, Geneva, Switzerland) for
help in bibliography. We also thank CAPES and CNPq (Brazil) for research grants.
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Table I. Iophon unicornis Topsent, 1907: spicules measurements.
MCNPOR
Styles Acanthostrongyles
Anisochelas Bipocillas
1974
480–535–610 /
15–20.6–22.5
270–310.8–350 /
7.5–11–12.5
15–19.6–22.5 -----
1991
450–561.4–620 /
12.5–24.5–27.5
260–311–380 /
8.8–12.2–15
16.3–19.6–23.8
8.8–11.2–12.5
1994
480–553–630 /
17.5–24.9–35
230–250–280 /
5.0–7.6–10
16.3–18.6–21.3
10–11.4–13.8
3125
390–472.4–540 /
11.3–18.6–22.5
250–287.8–330 /
5.0–8.8–11.3
18.8–20.6–23.8
10–12.3–13.8
Table II. Clathria (Axosuberites) flabellata (Topsent, 1916): spicules measurements.
MCNPOR
Styles I Styles II Toxas
1972
420–688.4–1050 /
25–36.2–53.8
380–579–750 /
2.5–7.4–12.5
80–153.4–220 / < 2.5
3118
470–740.2–1250 /
17.5–32.1–57.5
340–579.4–850 /
2.5–7.9–13.8
75–133.6–247.5 / < 2.5
Table III. Clathria (Axosuberites) nidificata (Kirkpatrick, 1907): spicules measurements.
MCNPOR
Styles I Styles II Toxas I Toxas II
1969
520–1173.6–2240
/ 22.5–37.5–47.5
280–392.8–570 /
3.8–6.0–8.8
310–564.2–810 /
3.8–5.7–8.8
95–164–275
/ < 2.5
1993
580–1276.4–2740
/ 27.5–40.6–53.8
280–411–600 /
3.8–6.4–8.8
285–455.2–712.5 /
2.5–5.3–9.2
78.2–144.2–
230 / < 2.5
199
Table IV. Tedania (Tedaniopsis) vanhoffeni (Hentschel, 1914): spicules measurements.
Styles Tornotes Onychaetes I Onychaetes II
MCNPOR
3108
590–649.6–720 /
26.3–32.9–40
290–343.4–390 /
6.3–7.9–10
389.5–440.9–513 /
3.5–4.7–5.8
87.4–115.5–
154.1 / 2.5
MCNPOR
3694
418–471.4–532 /
16.3–20.3–23.8
250–269–290 /
3.8–5.3–6.3
290–338.2–370 /
2.5
107.5–138.6–155
/ 2.5–3.5–5.0
ZMB 3108
570–639–779 /
15–20.4–26.5
275.5–329.7–361
/ 4.6–5.8–6.9
427.5–510.7–570 /
2.5
66.7–90.1–110.4
/ 2.5
Table V. Tedania (Tedaniopsis) oxeata (Topsent, 1916): spicules measurements.
MCNPOR Oxeas Tornotes Onychaetes I Onychaetes II
1566
541.5–596.2–655.5
/ 20.7–25.1–29.9
380–458.9–532 /
6.9–11.7–16.1
332.5–377.5–418 55.2–71.5–92
2008
541.5–595.8–655.5
/ 27.6–32.2–36.8
418–477.1–541.5 /
11.5–15.3–17.3
323–368.2–418 59.8–71–98.9
Table VI. Isodictya lankesteri (Kirkpatrick, 1907): spicules measurements.
MCNPOR
Oxeas Canonochelas
3133 280–382–490 / 15–21.1–27.5 57.5–63.1–67.5
3137 270–374.8–500 / 15–23.2–35 55–60.9–67.5
3142 300–396.6–520 / 12.5–22.5–30 55–61.6–67.5
3161 290–385.2–520 / 17.5–23.6–30 57.5–64.2–70
200
Table VII. Isodictya bentarti Ríos, Cristobo & Urgorri, 2004: spicules measurements.
MCNPOR
Oxeas Isochelas
1942 370–481.6–580 / 17.5–24.3–33.8 55–66.9–77.5
1945 380–472–550 / 15–26–32.5 57.5–65.1–70
1953 370–471.8–560 / 17.5–26–32.5 55–66.4–77.5
201
Figure 1. Map showing the collecting area.
202
203
Figures 2-9. Acanthorhabdus fragilis Burton, 1929. (2) preserved specimen; (3) ectosomal
arrangement of the skeleton; (4) choanosomal skeleton; (5) anisoxea; (6) detail of anisoxea
extremities; (7) acanthorhabd; (8) detail of acanthorhabd extremities; (9) anisochelas. Scale
bars: (2) 1 cm; (3), (4) 500 µm; (5) 100 µm; (6) 30 µm; (7) 80 µm; (8) 10 µm; (9) 5 µm.
204
205
Figures 10-17. Iophon unicornis Topsent, 1907. (10) preserved specimen; (11) skeleton;
(12) style; (13) detail of style extremities; (14) acanthostrongyle; (15) detail of
acanthostrongyle extremities; (16) anisochelas; (17) bipocillas. Scale bars: (10) 0.5 cm;
(11) 500 µm; (12) 100 µm; (13) 5 µm; (14) 50 µm; (15), (16), (17) 5 µm.
206
207
Figures 18-25. Clathria (Axosuberites) flabellata (Topsent, 1916). (18) preserved
specimen; (19) skeleton; (20) style I; (21) detail of style I extremities; (22) style II; (23)
detail of style II extremities; (24) toxa; (25) detail of toxa extremity. Scale bars: (18) 2 cm;
(19) 500 µm; (20) 100 µm; (21) 20 µm; (22) 100 µm; (23), 5 µm; (24), 20 µm; (25) 5 µm.
208
209
Figures 26-35. Clathria (Axosuberites) nidificata (Kirkpatrick, 1907). (26) preserved
specimen; (27) skeleton; (28) style I; (29) detail of style I extremities; (30) style II; (31)
detail of style II extremities; (32) toxa I; (33) detail of toxa I extremity; (34) toxa II; (35)
detail of toxa II extremity. Scale bars: (26) 2 cm; (27) 500 µm; (28) 300 µm; (29) 20 µm;
(30) 75 µm; (31) 7 µm; (32) 120 µm; (33) 10 µm; (34) 25 µm; (35) 5 µm.
210
211
Figures 36-41. Kirkpatrickia variolosa (Kirkpatrick, 1907). (36) preserved specimen; (37)
skeleton; (38) style; (39) detail of style extremities; (40) tornote; (41) detail of style
extremities. Scale bars: (36) 2 cm; (37) 500 µm; (38) 100 µm; (39) 10 µm; (40) 50 µm;
(41) 5 µm.
212
213
Figures 42-49. Myxodoryx hanitschi (Kirkpatrick, 1907). (42) preserved specimen; (43)
skeleton; (44) style; (45) detail of style extremities; (46) acanthostyle; (47) detail of
acanthostyle extremities; (48) tornote; (49) detail of tornote extremities. Scale bars: (42) 2
cm; (43) 500 µm; (44) 100 µm; (45) 10 µm; (46) 50 µm; (47) 5 µm; (48) 50 µm; (49) 5 µm.
214
215
Figures 50-57. Iotroata somovi (Koltun, 1964). (50) preserved specimen; (51) skeleton;
(52) style; (53) detail of style extremities; (54) tylotes; (55) detail of tylote extremities; (56)
isochelas; (57) birotulas. Scale bars: (50) 0.5 cm; (51) 500 µm; (52) 150 µm; (53) 50 µm;
(54) 75 µm; (55) 10 µm; (56) 20 µm; (57) 5 µm.
216
217
Figures 58-68. Tedania (Tedaniopsis) charcoti (Topsent, 1907). (58) preserved specimen;
(59) ectosomal arrangement of the skeleton; (60) choanosomal skeleton; (61) style; (62)
detail of style extremities; (63) tornote; (64) detail of tornote extremities; (65) onychaete I;
(66) detail of onychaete I extremities; (67) onychaete II; (68) detail of onychaete II
extremities. Scale bars: (58) 2 cm; (59), (60) 500 µm; (61) 100 µm; (62) 15 µm; (63) 100
µm; (64) 10 µm; (65) 50 µm; (66) 3 µm; (67) 20 µm; (68) 2 µm.
218
219
Figures 69-78. Tedania (Tedaniopsis) vanhoffeni (Hentschel, 1914). (69) preserved
specimen; (70) skeleton; (71) style; (72) detail of style extremities; (73) tornote; (74) detail
of tornote extremities; (75) onychaete I; (76) detail of onychaete I extremities; (77)
onychaete II; (78) detail of onychaete II extremities. Scale bars: (69) 0.3 cm; (70) 500 µm;
(71) 150 µm; (72) 15 µm; (73) 50 µm; (74) 5 µm; (75) 100 µm; (76) 5 µm; (77) 50 µm;
(78) 5 µm.
220
221
Figures 79-88. Tedania (Tedaniopsis) oxeata (Topsent, 1916). (79) preserved specimen;
(80) skeleton; (81) oxea; (82) detail of oxea extremities; (83) tornote; (84) detail of tornote
extremities; (85) onychaete I; (86) detail of onychaete I extremities; (87) onychaete II; (88)
detail of onychaete II extremities. Scale bars: (79) 0.3 cm; (80) 500 µm; (81) 100 µm; (82)
5 µm; (83) 100 µm; (84) 5 µm; (85) 75 µm; (86) 5 µm; (87) 15 µm; (88) 5 µm.
222
223
Figures 89-93. Isodictya kerguelenensis (Ridley & Dendy, 1886). (89) preserved specimen;
(90) skeleton; (91) oxea; (92) detail of oxea extremities; (83) isochela. Scale bars: (89) 2
cm; (90) 500 µm; (91) 150 µm; (92) 15 µm; (93) 5 µm.
224
225
Figures 94-98. Isodictya lankesteri (Kirkpatrick, 1907). (94) preserved specimen; (95)
skeleton; (96) oxea; (97) detail of oxea extremities; (98) canonochelas. Scale bars: (94) 2
cm; (95) 500 µm; (96) 75 µm; (97) 7 µm; (98) 15 µm.
226
227
Figures 99-104. Isodictya toxophila Burton, 1932. (99) preserved specimen; (100) skeleton;
(101) oxea; (102) detail of oxea extremities; (103) isochelas; (104) toxas. Scale bars: (99) 1
cm; (100) 500 µm; (101) 100 µm; (102) 5 µm; (103) 10 µm; (104) 40 µm.
228
229
Figures 105-109. Isodictya bentarti Ríos, Cristobo & Urgorri, 2004. (105) preserved
specimen; (106) skeleton; (107) oxea; (108) detail of oxea extremities; (109) isochelas.
Scale bars: (105) 2 cm; (106) 500 µm; (107) 75 µm; (108) 5 µm; (109) 15 µm.
230
231
Figures 110-115. Latrunculia (Latrunculia) brevis Ridley & Dendy, 1886. (110) preserved
specimen; (111) skeleton; (112) anisostyle; (113) detail of anisostyle extremities; (114)
anisodiscorhabd; (115) anisodiscorhabd in growth stage. Scale bars: (110) 1 cm; (111) 500
µm; (112) 100 µm; (113) 15 µm; (114) 20 µm; (115) 15 µm.
232
233
Figures 116-121. Latrunculia (Latrunculia) biformis (Kirkpatrick, 1908). (116) preserved
specimen; (117) skeleton; (118) anisostyle; (119) detail of anisostyle extremities; (120)
anisodiscorhabd; (121) Aciculodiscorhabd. Scale bars: (116) 0.2 cm; (117) 500 µm; (118)
100 µm; (119) 5 µm; (120), (121) 20 µm.
234
235
CAPÍTULO 7
CONCLUSÕES
Considerações zoogeográficas
A fauna de esponjas presente na Antártica apresenta características bem
estabelecidas em relação à distribuição geográfica das espécies. As primeiras observações
realizadas foram abordadas por BURTON (1932) e corroboradas por KOLTUN (1970), que
constataram uma similaridade entre a fauna antártica e a da porção mais austral da América
do Sul. Conforme BARNES (2005) esta similaridade entre as faunas antártica e magelânica
seria pela existência de uma conexão geológica entre a região Magelânica e a Península
Antártica, o Arco de Scotia, uma cadeia de montanhas representada superficialmente por
arquipélagos como Geórgia do Sul, Is. Sandwich do Sul, Is. Órcades do Sul e Is. Shetland
do Sul. Observações mais completas e detalhadas sobre a conexão entre essas duas áreas
encontram-se em ARNTZ et al. (2005).
SARÀ et al. (1992) a partir de uma investigação mais abrangente e amplificada,
forneceram uma listagem com a distribuição de todas as espécies assinaladas para as
regiões antártica e subantártica até o momento. Com base nesse estudo os autores
verificaram, através de uma análise de correspondência entre a ausência e presença das
espécies, a ocorrência de uma área denominada “Complexo Antártico Faunístico”,
inserindo-se nesta a região continental da Antártica, ilhas antárticas e circumantárticas e a
região Magelânica.
236
No presente estudo três espécies constituem-se em novos registros para a Antártica:
Hymedesmia (Hymedesmia) laevis Thiele, 1905, Halichondria (Eumastia) attenuata
(Topsent, 1915) e Haliclona (Soestella) chilensis (Thiele, 1905), todas com distribuição
restrita à área compreendida entre a porção extrema da Península Antártica (Is. Shetland do
Sul) e o extremo sul da América do Sul (Fig. 1).
Figura 1. Locais de ocorrência de Hymedesmia (Hymedesmia) laevis Thiele, 1905 (
●
),
Halichondria (Eumastia) attenuata (Topsent, 1915) (
●
) e Haliclona (Soestella) chilensis
(Thiele, 1905) (
●
). Localidades: 1. Chile, 2. Is. Malvinas, 3. Geórgia do Sul, 4. Is. Shetland
do Sul.
237
Algumas das espécies estudadas apresentam distribuição geográfica ampla, desde a
região antártica até ambas as costas da América do Sul – Atlântico e Pacífico. As espécies
conhecidas com sua distribuição mais setentrional no oceano Pacífico junto à costa chilena
são: Craniella leptoderma (Sollas, 1886), Polymastia invaginata Kirkpatrick, 1907, Myxilla
(Myxilla) mollis Ridley & Dendy, 1886, Tedania (Tedaniopsis) charcoti Topsent, 1913 e
Mycale (Oxymycale) acerata Kirkpatrick, 1907 (DESQUEYROUX & MOYANO 1987). Por
outro lado há um elenco de espécies que atingem a costa argentina: Craniella leptoderma
(Sollas, 1886), Myxilla (Myxilla) mollis Ridley & Dendy, 1886, Tedania (Tedaniopsis)
charcoti Topsent, 1913, Mycale (Oxymycale) acerata Kirkpatrick, 1907 e Isodictya
kerguelenensis (Ridley & Dendy, 1886) (LÓPEZ-GAPPA & LANDONI 2005). A espécie
Tedania (Tedaniopsis) vanhoeffeni Hentschel, 1914 tem seu registro mais setentrional na
costa do Rio Grande do Sul (MOTHES et al. 2004). Em contrapartida à afinidade
supracitada, a espécie Latrunculia (Latrunculia) biformis (Kirkpatrick, 1907) foi
identificada para o extremo sul da costa africana (SAMAAI et al. 2006).
Figura 2. Locais de ocorrência de Craniella leptoderma (Sollas, 1886) (
●
) e Polymastia
invaginata Kirkpatrick, 1907 (
●
).
238
Figura 3. Mapa indicando locais de ocorrência de Myxilla (Myxilla) mollis Ridley &
Dendy, 1886 (
●
) e Tedania (Tedaniopsis) charcoti Topsent, 1913 (
●
).
Figura 4. Mapa indicando locais de ocorrência de Mycale (Oxymycale) acerata Kirkpatrick,
1907 (
●
) e Isodictya kerguelenensis (Ridley & Dendy, 1886) (
●
).
239
Figura 5. Mapa indicando locais de ocorrência de Latrunculia (Latrunculia) biformis
(Kirkpatrick, 1907) (
●
) e Tedania (Tedaniopsis) vanhoeffeni Hentschel, 1914 (
●
).
Uma alta porcentagem de espécies endêmicas é típica para a espongofauna antártica,
considerando que um significativo número de espécies tem sua distribuição limitada a esse
continente (SARÀ et al. 1992).
Conforme SARÀ et al. (op. cit.) o nível de endemismo conhecido é alto; de um total
de 361 espécies, até então registradas para a fauna da região, 76 apresentam distribuição
restrita ao continente antártico (21%). Poucas espécies são restritas a um local específico
(KOLTUN 1970). No elenco estudado esta afirmação foi observada apenas com I. bentarti,
que possui distribuição provisoriamente endêmica para as Is. Shetland do Sul.
Considerando todas as espécies inventariadas até o momento, apenas 7.5% (27 espécies)
são restritas a um setor específico do continente.
Tabela I. Distribuição na Antártica (Is. Shetland do Sul, I. Joinville e Estreito de Bransfield)
dos poríferos (Demospongiae). (IS) Is. Shetland do Sul; (IJ) I. Joinville; (EB) Estreito de
Bransfield; [1] BURTON 1932; [2] KOLTUN 1964; [3] DESQUEYROUX 1972; [4]
240
DESQUEYROUX 1975; [5] DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989; [6], MOTHES & LERNER 1995;
[7], RÍOS et al. 2004; [8] presente estudo.
TÁXONS / REFERÊNCIAS LOCAL DE COLETA
TETILLIDAE
[1], [4], [5], [8] Cinachyra antarctica (Carter, 1872) IS (63º17' S - 59º48' W / 63º26' S - 62º10' W)
EB (63º25' S - 62º05' W / 63º25' S - 62º19' W)
EB (64º20' S - 63º00' W)
EB (64º53' S - 62º51' W)
[1], [4], [5], [8] Cinachyra barbata Sollas, 1886 IS (61º25' S - 53º46' W)
IS (62º13' S - 58º54' W / 62º23' S - 59º40' W)
IS (63º02' S - 62º42' W)
IS (63º17' S - 59º48' W)
EB (63º25' S - 62º19' W)
[1], [2], [4], [8] Craniella leptoderma (Sollas, 1886)
IS (sem registro de coordenadas)
IS (61º25' S - 53º46' W)
IS (62º27' S - 59º39' W)
ANCORINIDAE
[8] Tethyopsis longispinum (Lendenfeld, 1907) IS (62º05' S - 58º23' W)
EB (62º30' S - 54º16' W / 62º58' S - 57º10' W)
POLYMASTIIDAE
[1], [8] Polymastia invaginata Kirkpatrick, 1907 EB (63º17' S - 61º17' W)
EB (63º25' S - 62º19' W)
SUBERITIDAE
[5], [8] Homaxinella balfourensis (Ridley & Dendy, 1886) IS (sem registro de coordenadas)
IS (61º07' S - 55º03' W)
IS (61º12' S - 55º40' W)
IS (62º05' S - 58º23' W / 62º06' S - 58º22' W)
[8] Suberites montiniger Carter, 1880 sensu Topsent, 1915 EB (63º28' S - 62º31' W)
Continua
241
TÁXONS / REFERÊNCIAS LOCAL DE COLETA
ACARNIDAE
[8] Acanthorhabdus fragilis Burton, 1929 EB (63º16' S - 59º55' W)
[2], [4], [8] Iophon unicornis Topsent, 1907 IS (sem registro de coordenadas)
IS (61º08' S - 55º52' W / 62º05' S - 58º23' W)
IS (62º55' S - 60º47' W / 63º00' S - 60º31' W)
EB (63º16' S - 59º55' W)
[8] Iophon terranovae Calcinai & Pansini, 2000 IJ (62º55' S - 55º16' W)
EB (63º26' S - 59º32' W)
MICROCIONIDAE
[7], [8] Clathria (Axosuberites) flabellata (Topsent, 1916) IS (62º05' S - 58º23' W)
IS (62°39' S - 60º23' W)
EB (63º26' S - 59º32' W)
[2], [4], [6], [8] Clathria (Axosuberites) nidificata (Kirkpatrick, 1907)
IS (61º16' S - 55º05' W)
IS (62º28' S - 59º39' W)
[4], [5], [7], [8] Artemisina apollinis (Ridley & Dendy, 1886)
EB (63º25' S - 62º19' W / 63º28' S - 62º31' W)
IS (62°39' S - 60º23' W)
IJ (62º53' S - 56º27' W)
EB (63º18' S - 57º55' W / 64º52' S - 63º36' W)
IS (63º24' S - 62º14' W)
EB (63º25' S - 62º19' W)
HYMEDESMIIDAE
[8] Hymedesmia (Hymedesmia) laevis (Thiele, 1905) EB (63º25' S - 62º19' W)
[1], [8] Kirkpatrickia variolosa (Kirkpatrick, 1907) IS (63º17' S - 59º48' W)
EB (63º26' S - 59º32' W / 63º44' S - 60º25' W)
[8] Myxodoryx hanitschi (Kirkpatrick, 1907) EB (63º17' S - 62º30' W)
[8] Phorbas areolata (Thiele, 1905) IS (62º23' S - 59º40' W)
IJ (62º53' S - 56º27' W)
IOTROCHOTIDAE
[8] Iotroata somovi (Koltun, 1964) IS (61º02' S - 54º55' W)
Continua
242
TÁXONS / REFERÊNCIAS LOCAL DE COLETA
MYXILLIDAE
[4], [6], [8] Myxilla (Myxilla) mollis (Ridley & Dendy, 1886) IS (62º05' S - 58º23' W / 62º40' S - 59º33' W)
IJ (62º48' S - 54º20' W)
IJ (62º57' S - 56º50' W)
IS (63º17' S - 59º48' W)
IS (63º48' S - 61º45' W)
[8] Myxilla (Ectyomyxilla) mariana Ridley & Dendy, 1886 IJ (62º55' S - 55º16' W)
TEDANIIDAE
[4], [5], [7], [8] Tedania (Tedaniopsis) charcoti (Topsent, 1907) IS (60º33' S - 62º40' W / 62°39' S - 60º42' W)
IS (61º07' S - 55º03' W)
IS (61º12' S - 55º40' W)
IS (62º23' S - 59º37' W)
[8] Tedania (Tedaniopsis) vanhoffeni (Hentschel, 1914) EB (63º16' S - 59º55' W)
IS (61º25' S - 53º46' W)
[1], [4], [6], [8] Tedania (Tedaniopsis) oxeata (Topsent, 1916) IS (62º23' S - 59º37' W)
IJ (62º48' S - 54º20' W)
EB (63º25' S - 62º05' W)
[1], [2], [4], [7], [8] Mycale (Oxymycale) acerata (Kirkpatrick, 1907)
IS (sem registro de coordenadas)
IS (61º08' S - 55º52' W / 62º05' S - 58º23' W)
IS (62°23' S - 60º42' W)
IS (62º55' S - 60º47' W)
IJ (63º01' S - 54º49' W)
EB (63º16' S - 59º55' W / 62º30' S - 54º16' W)
EB (63º17' S - 59º48' W)
ISODICTYIDAE
[3], [4], [5], [7], [8] Isodictya kerguelenensis (Ridley & Dendy, 1886)
IS (61º07' S - 55º03' W)
IS (61º08' S - 54º34' W)
IS (62°39' S - 60º23' W / 62°43' S - 60º26' W)
IS (62º30' S - 59º55' W)
IS (62º55' S - 60º47' W / 62º59' S - 60º28' W)
Continua
243
TÁXONS / REFERÊNCIAS LOCAL DE COLETA
EB (63º18' S - 57º54' W)
EB (63º25' S - 62º19' W)
[4], [8] Isodictya lankesteri (Kirkpatrick, 1907) IS (62º05' S - 58º23' W)
IS (62º28' S - 59º39' W)
EB (62º30' S - 54º16' W)
[2], [3], [4], [7], [8] Isodictya erinacea (Topsent, 1916) IS (sem registro de coordenadas)
IS (62º05' S - 58º23' W)
IS (62º23' S - 59º36' W / 62º55' S - 60º47' W)
IS (62°43' S - 60º26' W)
IJ (62º55' S - 55º16' W)
EB (63º16' S - 59º55' W / 63º17' S - 62º30' W)
EB (63º25' S - 62º05' W / 63º26' S - 59º32' W)
[1], [2], [8] Isodictya toxophila Burton, 1932 IS (sem registro de coordenadas)
EB (63º17' S - 59º48' W)
[7], [8] Isodictya bentarti Ríos, Cristobo & Urgorri, 2004 IS (62°24' S - 60º15' W / 62°24' S - 60º24' W)
IS (63º25' S - 62º05' W)
LATRUNCULIIDAE
[8] Latrunculia (Latrunculia) brevis Ridley & Dendy, 1886 IS (61º02' S - 54º55' W)
[7], [8] Latrunculia (Latrunculia) biformis (Kirkpatrick, 1908) IS (62º05' S - 58º23' W)
IS (62°39' S - 60º23' W)
HALICHONDRIIDAE
[8] Halichondria (Eumastia) attenuata (Topsent, 1915) EB (63º25' S - 62º19' W)
CHALINIDAE
[5], [8] Haliclona (Gellius) rudis (Topsent, 1901) IS (61º02' S - 54º55' W)
IJ (62º53' S - 56º27' W)
EB (63º25' S - 62º05' W)
[8] Haliclona (Rhizoniera) dancoi (Topsent, 1901) IS (62º05' S - 58º23' W)
IJ (62º57' S - 56º50' W)
[8] Haliclona (Soestella) chilensis (Thiele, 1905) IS (62º06' S - 58º22' W)
Continua
244
TÁXONS / REFERÊNCIAS LOCAL DE COLETA
NIPHATIDAE
[3], [8] Haliclonissa verrucosa Burton, 1932 IS (62º05' S - 58º23' W)
IJ (62º53' S - 56º27' W)
IS (62º59' S - 60º33' W)
[8] Hemigellius bidens (Topsent, 1901) EB (63º33' S - 59º15' W)
[2], [4], [8] Microxina benedeni Topsent, 1901 IJ (62º53' S - 56º27' W)
IS (sem registro de coordenadas)
IS (63º02' S - 62º42' W)
[8] Microxina phakelloides (Kirkpatrick, 1907) IJ (62º55' S - 55º16' W)
EB (63º25' S - 62º05' W)
PHLOEODICTYIDAE
[2], [4], [8] Calyx arcuarius (Topsent, 1913) IS (62º40' S - 59º33' W)
IS (62º55' S - 60º47' W)
IS (sem registro de coordenadas)
EB (63º16' S - 59º55' W / 63º17' S - 62º30' W)
Das espécies inventariadas foram recoletadas 24 (60%), confirmando-se a
ocorrência das mesmas na região.
Tabela II. Distribuição batimétrica (mínima-máxima) das espécies estudadas, com as
respectivas referências, destacando em negrito os novos limites.
TÁXON
BATIMETRIA
(m)
REFERÊNCIA
Acanthorhabdus fragilis Burton, 1929
72-560 KOLTUN 1964
Artemisina apollinis (Ridley & Dendy, 1886) 7-380 BOURY-ESNAULT & VAN BEVEREN 1982;
HENTSCHEL 1914
Calyx arcuarius (Topsent, 1913)
18-900 BURTON 1929; KOLTUN 1964
Cinachyra antarctica (Carter, 1872)
18-830 KIRKPATRICK 1908; GUTT & KOLTUN 1995
Continua
245
TÁXON
BATIMETRIA
(m)
REFERÊNCIA
Cinachyra barbata Sollas, 1886
2-830 KOLTUN 1976; GUTT & KOLTUN, 1995
Clathria (Axosuberites) flabellata (Topsent, 1916)
20-700 RÍOS et al. 2004; KOLTUN 1964
Clathria (Axosuberites) nidificata (Kirkpatrick, 1907)
84-540 BURTON 1940; BURTON 1929
Craniella leptoderma (Sollas, 1886)
4-2267 KOLTUN 1976
Halichondria (Eumastia) attenuata (Topsent, 1915)
0-135 BURTON 1932; presente estudo
Haliclona (Gellius) rudis (Topsent, 1901) 20-500 DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989; TOPSENT
1901
Haliclona (Rhizoniera) dancoi (Topsent, 1901)
18-2267 KOLTUN 1964; KOLTUN 1976
Haliclona (Soestella) chilensis (Thiele, 1905)
15-75 BURTON 1934; BURTON 1932
Haliclonissa verrucosa Burton, 1932
25-194
presente estudo
Hemigellius bidens (Topsent, 1901)
30-550 TOPSENT 1908; TOPSENT 1901
Homaxinella balfourensis (Ridley & Dendy, 1886) 0-550
DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989; KOLTUN 1964
Hymedesmia (Hymedesmia) laevis Thiele, 1905
1-135 BURTON 1932; presente estudo
Iophon terranovae Calcinai & Pansini, 2000
82-135
presente estudo
Iophon unicornis Topsent, 1907 0-623 DESQUEYROUX & MOYANO 1987; GUTT &
KOLTUN 1995
Iotroata somovi (Koltun, 1964)
208-2267 GUTT & KOLTUN 1995; KOLTUN 1976
Isodictya bentarti Ríos, Cristobo & Urgorri, 2004
24-66 RÍOS et al. 2004; presente estudo
Isodictya erinacea (Topsent, 1916)
20-920 DESQUEYROUX 1972; KOLTUN 1964
Continua
246
TÁXON
BATIMETRIA
(m)
REFERÊNCIA
Isodictya kerguelenensis (Ridley & Dendy, 1886)
2-1266 TOPSENT 1908; KOLTUN 1976
Isodictya lankesteri (Kirkpatrick, 1907)
20-840 presente estudo; KOLTUN 1964
Isodictya toxophila Burton, 1932
93-661 BURTON 1932; GUTT & KOLTUN 1995
Kirkpatrickia variolosa (Kirkpatrick, 1907)
18-640 KIRKPATRICK 1908; KOLTUN 1976
Latrunculia (Latrunculia) biformis (Kirkpatrick, 1907)
18-1097 SAMAAI et al. 2006
Latrunculia (Latrunculia) brevis (Ridley & Dendy, 1886)
46-1500 SAMAAI et al. 2003; RIDLEY & DENDY
1886
Microxina benedeni (Topsent, 1901)
81-1266 BURTON 1932; KOLTUN 1976
Microxina phakellioides (Kirkpatrick, 1907)
66-550 presente estudo; KOLTUN 1964
Mycale (Oxymycale) acerata Kirkpatrick, 1907
0-731 DESQUEYROUX & MOYANO 1987; GUTT &
KOLTUN 1995
Myxilla (Ectyomyxilla) mariana Ridley & Dendy, 1886
82-385 presente estudo; HENTSCHEL 1914
Myxilla (Myxilla) mollis Ridley & Dendy, 1886
7-1098 KIRKPATRICK 1908; RIDLEY & DENDY
1886
Myxodoryx hanitschi (Kirkpatrick, 1907)
20-622 DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989; BURTON
1938
Phorbas areolata (Thiele, 1905)
19-970
DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989; BURTON 1932
Polymastia invaginata Kirkpatrick, 1907 18-1592 KIRKPATRICK 1908; BURTON 1938
Suberites montiniger Carter, 1880 sensu Topsent, 1915
91-424 BURTON 1929; GUTT & KOLTUN 1995
Tedania (Tedaniopsis) charcoti Topsent, 1913
0-728 DESQUEYROUX-FAÚNDEZ 1989; BURTON
1932
Continua
247
TÁXON
BATIMETRIA
(m)
REFERÊNCIA
Tedania (Tedaniopsis) oxeata Topsent, 1916
66-920 presente estudo; KOLTUN 1964
Tedania (Tedaniopsis) vanhoeffeni Hentschel, 1914
46-499 HENTSCHEL 1914; KOLTUN 1964
Tethyopsis longispinum (Lendenfeld, 1907)
20-1340 presente estudo; KOLTUN 1964
Das espécies estudadas, 25% apresentam novos limites batimétricos.
248
Considerações Finais
• O estudo da fauna de demospongias na área estudada (Is. Shetland do Sul, Estreito de
Bransfield e I. Joinville) coletadas pelo PROANTAR constitui-se no primeiro trabalho de
cunho taxonômico abrangente para a área estudada.
• Foram identificadas 40 espécies, distribuídas em 26 gêneros, 17 famílias e seis
ordens. Dentre as espécies identificadas, três constituem-se em novos registros para a
Antártica: Hymedesmia (Hymedesmia) laevis (Thiele, 1905), Halichondria (Eumastia)
attenuata (Topsent, 1915) e Haliclona (Soestella) chilensis (Thiele, 1905).
• Ampliou-se o conhecimento da diversidade bentônica local com os registros dos
poríferos: das famílias Ancorinidae Schmidt, 1870 e Iotrochotidae Dendy, 1922; dos
gêneros Tethyopsis Stewart, 1870 e Iotroata Ridley, 1884; e das espécies Tethyopsis
longispinum (Lendenfeld, 1907), Suberites montiniger Carter, 1880 sensu Topsent, 1915,
Acanthorhabdus fragilis Burton, 1929, Iophon terranovae Calcinai & Pansini, 2000,
Iotroata somovi (Koltun, 1964), Myxilla (Ectyomyxilla) mariana (Ridley & Dendy,
1886), Tedania (Tedaniopsis) vanhoffeni (Hentschel, 1914) e Latrunculia (Latrunculia)
brevis Ridley & Dendy, 1886. Dentre as espécies registradas, duas apresentam
distribuição disjunta: S. montiniger, descrita para o Mar de Barents, Oceano Glacial
Ártico, e Artemisina apollinis (Ridley & Dendy, 1886), descrita para a porção norte do
Oceano Atlântico (Groenlândia). Esta situação talvez não se sustente; à medida que
análises de biologia molecular forem realizadas com exemplares dessas espécies, é
possível que se confirme a existência de espécies crípticas.
249
• Das espécies inventariadas no presente estudo, foram recoletadas 24 (60%),
confirmando-se a ocorrência das mesmas na região.
• Verificou-se que a distribuição setentrional das espécies em geral estendeu-se pelas
costas do Chile e Argentina, Is. Malvinas, região Magelânica e I. Kerguelen. Um número
reduzido de espécies foram registradas também em ilhas dos três oceanos no Hemisfério
Sul.
• Duas espécies apresentaram distribuição horizontal mais ampla: T. (T.) vanhoffeni -
presente na costa do Rio Grande do Sul, e L. (L.) brevis - identificada para a África do
Sul.
• Em relação às espécies identificadas através de material comparativo, todas
confirmaram a identidade das amostras; porém é importante salientar que algumas
apresentaram características morfológicas diferenciadas, ainda que muito sutis. Esta
condição é aqui aceita como variação intraespecífica.
• Ampliaram-se as ilustrações e diagnoses de cada espécie em relação ao conhecido na
literatura até o momento, com fotografias da arquitetura esqueletal e principalmente de
escleras microfotografadas em Microscopia Eletrônica de Varredura.
• Dentre as espécies identificadas, 10 (25%) possuem novos limites de distribuição
batimétrica. I. terranovae e H. verrucosa fornecem novos limites inferiores e superiores
de batimetria. As espécies T. longispinum, M. (E.) mariana, T. (T.) oxeata, I. lankesteri e
M. phakellioides têm seus limites inferiores ampliados, enquanto os limites superiores de
batimetria são ampliados para H. (H.) laevis, I. bentarti e H. (E.) attenuata
• A distribuição vertical de muitas espécies pode variar bastante. Na área estudada
algumas espécies concentram-se entre 20 a 82 m, mas em outras regiões foram
registradas para grandes profundidades, podendo ultrapassar 2000 m.
250
• Corrobora-se neste estudo a coespecificidade da espongofauna presente nesta região
do continente antártico com a de áreas ao sul da costa do Chile e da Argentina, região
Magelânica e ilhas que compõem o Arco de Scotia (Geórgia do Sul, Órcades do Sul e
Sandwich do Sul), confirmando que a continuidade da fauna antártica na região seja
justificada pela conexão geológica existente entre os continentes.
• O maior esforço de coletas ocorreu próximo à I. Low, no Estreito de Bransfield, o que
explica um maior número de amostras provenientes deste local e conseqüentemente um
maior número de registros.
251
REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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255
NORMAS PARA PUBLICAÇÃO NA
REVISTA BRASILEIRA DE ZOOLOGIA
256
NORMAS PARA PUBLICAÇÃO
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forma: SMITH (1990), SMITH (1990: 128), LENT & JURBERG (1965), GUIMARÃES et al. (1983), artigos
de um mesmo autor ou seqüências de citações devem ser arrolados em ordem cronológica.
ILUSTRAÇÕES E TABELAS
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misturadas com desenhos. A relação de tamanho da figura, quando necessária, deve ser
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proporcionalidade do espelho (17,0 x 21,0 cm) ou da coluna (8,3 x 21,0 cm) com reserva para a
legenda.
257
Legendas de figuras devem ser digitadas logo após à última referência bibliográfica da seção
Referências Bibliográficas, sendo para cada conjunto um parágrafo distinto.
Gráficos gerados por programas de computador, devem ser inseridos como figura no final do
texto, após as tabelas, ou enviados em arquivo em separado. Na composição dos gráficos usar
fonte Arial. Não utilizar caixas de texto.
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resolução: 300 ppp para fotos coloridas ou em tons de cinza; 600 ppp para desenhos a traço. Não
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REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
As Referências Bibliográficas, mencionadas no texto, devem ser arroladas no final do
trabalho, como nos exemplos abaixo.
Periódicos devem ser citados com o nome completo, por extenso, indicando a cidade onde
foi editado.
Não serão aceitas referências de artigos não publicados (ICZN, Art. 9).
Periódicos
NOGUEIRA, M.R.; A.L. PERACCHI & A. POL. 2002. Notes on the lesser white-lined bat, Saccopteryx
leptura (Schreber) (Chiroptera, Emballonuridae), from southeastern Brazil. Revista Brasileira de
Zoologia, Curitiba, 19 (4): 1123-1130.
LENT, H. & J. JURBERG. 1980. Comentários sobre a genitália externa masculina em Triatoma
Laporte, 1832 (Hemiptera, Reduviidae). Revista Brasileira de Biologia, Rio de Janeiro, 40 (3):
611-627.
SMITH, D.R. 1990. A synopsis of the sawflies (Hymenoptera, Symphita) of America South of the
United States: Pergidae. Revista Brasileira de Entomologia, São Paulo, 34 (1): 7-200.
258
Livros
HENNIG, W. 1981. Insect phylogeny. Chichester, John Wiley, XX+514p.
Capítulo de livro
HULL, D.L. 1974. Darwinism and historiography, p. 388-402. In: T.F. GLICK (Ed.). The comparative
reception of Darwinism. Austin, University of Texas, IV+505p.
Publicações eletrônicas
MARINONI, L. 1997. Sciomyzidae. In: A. SOLIS (Ed.). Las Familias de insectos de Costa Rica.
Available in the World Wide Web at: http://www.inbio.ac.cr/papers/insectoscr/Texto630.html [data
de acesso].
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259
NORMAS PARA PUBLICAÇÃO NO “PROCEEDINGS OF
THE 7
TH
INTERNATIONAL SPONGE CONFERENCE”
260
261
262
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GLOSSÁRIO
264
As definições apresentadas seguem MOTHES (1996) e LERNER (2001), complementadas por
VOS et al. (1991) e NONNATO et al. (1992).
ACANTO - prefixo que indica a presença de espinhos.
ACICULO - prefixo que indica a presença de uma estrutura serrilhada e pontiaguda.
ALA - diminuta estrutura semelhante a uma asa ou espátula presente nas porções
recurvadas de uma quela; a ala anterior (a que aponta para a haste) chama-se frontal, as
demais são as chamadas laterais.
ANATRIENA - triena na qual os clados encontram-se fortemente curvados em sentido
contrário, em direção ao rabdoma.
ANISO - prefixo significando desigual, geralmente referindo-se às extremidades de uma
esclera.
ARRANJO EM BUQUÊ - organização ectossomal de escleras, perpendiculares à superfície
da esponja, com as extremidades apicais em direção ao exterior.
ARÉOLA - estrutura presente na superfície da esponja, em formato circular.
ARMADILHA - aparelho fixo para coleta de material; de dois tipos: circular, com 60 cm
diâmetro, e outra retangular, com 60 x 40 cm abertura.
BEAM-TRAWL - aparelho tipo draga para coleta de material, medindo 1.55 m largura e
0.5 m altura, com 110 kg peso, dotada de rede com malha de 5 mm; realiza arrastos de
curta duração (5-10 minutos).
BIPOCILA - anisoquela modificada, com alas fusionadas conectadas por uma curta haste
curvava.
BIROTULA - tipo de microsclera com uma haste reta e terminações semelhantes a um
guarda-chuva.
CANONOQUELA - isoquela elipsóide modificada com extensões aladas em um dos lados
(na “base”).
CLADO - um raio ou ramificação axial contendo um eixo ou canal axial confluente com o
do protoclado ou protorabdo de qualquer tipo de esclera; termo utilizado
principalmente para escleras tetractinais.
CLADOMA - clados de uma triena, ou uma esclera derivada de uma triena.
COANOSSOMA - área do corpo da esponja onde se localizam as câmaras coanocitárias.
265
CONSISTÊNCIA COMPRESSÍVEL - facilmente comprimida.
CONSISTÊNCIA DURA - não cede à pressão.
CONSISTÊNCIA ELÁSTICA (= ESPONJOSA, RESILIENTE, FLEXÍVEL) - macia,
porém não frágil. Esponja que depois de comprimida volta à forma original.
CONSISTÊNCIA FIRME (= RESISTENTE) - sólida, requer considerável pressão para
deformar.
CONSISTÊNCIA FRÁGIL (= QUEBRADIÇA) - facilmente quebradiça.
CONSISTÊNCIA FRIÁVEL - facilmente quebradiça, delicada, frágil.
CONSISTÊNCIA INCOMPRESSÍVEL - que não se comprime facilmente.
CÔNULO - elevação da membrana superficial da esponja.
CÓRTEX - uma região do ectossoma consolidada por um esqueleto distinto; o esqueleto
cortical pode ser exclusivamente orgânico ou mais frequentemente orgânico e mineral.
CROSTA SUPERFICIAL - ver CÓRTEX.
DISCORABDO - microsclera em forma de bastão com vários discos lisos ou serreados ao
longo de um eixo, produzindo um aspecto verticilado.
ECTOSSOMA - região superficial da esponja não sustentada por algum esqueleto especial.
ECTOSSOMA DESTACÁVEL - que se desprende facilmente do corpo da esponja.
EQUINANTE (EQUINAÇÃO) - esclera que protraem de uma placa de espongina, fibra ou
feixe espicular.
ESCLERA (= ESPÍCULA) - elemento do esqueleto mineral composto por sílica ou
carbonato de cálcio.
ESPINISPIRA - microsclera de forma espiral/sigmóide, dotada de espinhos por todo o
eixo.
ESPONGINA - material colagenoso depositado sob a forma de fibras homogêneas ou
placas, as quais são normalmente de grande tamanho ou depositado nos nós de uma
reticulação.
ESQUELETO AXIAL - esqueleto com um tipo de organização onde alguns componentes
estão condensados, formando uma região central ou eixo.
ESQUELETO COANOSSOMAL - esqueleto da porção principal do corpo, contendo um
sistema de canais e responsável pela forma da esponja.
ESQUELETO ECTOSSOMAL - esqueleto localizado na região superficial da esponja,
distinto do coanossoma, pode estar ausente.
266
ESQUELETO PLUMORETICULADO - esqueleto com um tipo de arquitetura plumosa,
onde ocorrem ligações entre si.
ESQUELETO RADIAL - esqueleto caracterizado por megascleras orientadas radialmente a
partir de um centro da esponja, e comumente pela ausência de espongina.
ESQUELETO SUBECTOSSOMAL - esqueleto posicionado entre o ectossoma e o
coanossoma, com um arranjo distinto dos mesmos.
ESQUELETO TANGENCIAL - esqueleto onde as escleras ectossomais estão dispostas
paralelamente à superfície.
ESTILO - megasclera monaxônica monactinal, com uma extremidade pontiaguda e outra
(cabeça ou base) arredondada.
ESTRÔNGILO - megasclera monaxônica diactinal, arredondada em ambas as
extremidades.
ESTRONGILÓXEA - óxea fusiforme com uma das extremidades arredondadas.
EXTREMIDADE ACERADA - extremidade pontiaguda.
EXTREMIDADE ARREDONDADA - extremidade de contorno redondo.
EXTREMIDADE CÔNICA - extremidade cônica, em forma de ‘V’.
EXTREMIDADE HASTADA - extremidade mais longa e pontiaguda.
EXTREMIDADE MUCRONADA - extremidade com uma espécie de bico arredondado.
EXTREMIDADE TELESCÓPICA - extremidade dotada de “degraus”, geralmente com a
terminação arredondada.
FEIXE (= TRACTO) - coluna ou raramente fila única de megascleras monaxônicas
aglomeradas, sobrepostas ou alinhadas, com ou sem espongina cimentante.
FEIXE ASCENDENTE - feixe primário que se termina em um ângulo reto à superfície.
FEIXE MULTISPICULAR - feixe composto de seis ou mais escleras adjacentes umas às
outras.
FEIXE LONGITUDINAL - ver FEIXE ASCENDENTE.
FEIXE PAUCISPICULAR - feixe composto de duas a cinco escleras adjacentes umas às
outras.
FEIXE UNISPICULAR - uma simples fileira de escleras alinhadas.
FIBRA - coluna de espongina formando um esqueleto dendrítico ou reticulado, preenchida
ou não por escleras ou detritos exógenos.
267
FIBRA PRIMÁRIA - fibra maior, estendendo-se até a superfície com uma orientação
vertical.
FIBRA SECUNDÁRIA - fibra que conecta as fibras primárias, com orientação transversal.
FORMA ARBORESCENTE - ereta e ramificada, semelhante aos ramos de uma árvore.
FORMA CILÍNDRICA - em forma de cilindro.
FORMA ERETA - tipo de crescimento vertical a partir de um substrato.
FORMA FINAMENTE INCRUSTANTE - fina camada que cobre o substrato.
FORMA FLABELADA (= FLABELIFORME) - em forma de um leque.
FORMA GLOBULAR (= ESFÉRICA) - em forma de bola, redonda.
FORMA MASSIVA - estrutura compacta sem forma especial.
FORMA OVAL - em formato elíptico..
ISOQUELA - quela com terminações iguais.
MALHA - abertura do retículo.
MANÚBRIO - extremidade basal de uma esclera onde o eixo principal apresenta uma
coroação de espinhos.
MEGASCLERA - normalmente o maior e mais robusto dos tipos espiculares. Esclera
geralmente de grande importância estrutural.
MICROESPINHADURA - presença de discreta ornamentação de espinhos em uma esclera.
MICROSCLERA - esclera pequena, muitas vezes ornamentada.
MICRÓXEA - microsclera semelhante a uma óxea.
ONIQUETA - microsclera assimétrica, longa, fina e transparente.
ORTOTRIENA - megasclera do tipo triena na qual os clados estão dispostos em ângulo
reto em relação ao rabdoma.
ORTIDIENA - megasclera semelhante a uma ortotriena, porém com o cladoma constituído
por dois clados.
ÓSCULO - abertura exalante através da qual a água sai da esponja, não necessariamente
limitado ao número de um por individuo.
OTTER-TRAWL - rede de arrasto para coleta de material, com boca de 14 m e malha do
ensacador de 45 mm.
ÓXEA - megasclera monaxônica, diactinal, pontiaguda em ambas as extremidades.
ÓXEA FUSIFORME - óxea reta.
268
OXIÁSTER - euáster com raios pontiagudos e um pequeno centro (menos de 1/3 do
diâmetro total da esclera).
PALIÇADA - arranjo perpendicular de escleras ectossomais, com as extremidades
protraindo na superfície da esponja.
PAPILA - protuberância semelhante a um mamilo que se projeta da superfície da esponja e
apresentando óstios, ósculos ou ambos.
PORO (= ÓSTIO) - Abertura inalante através da qual a água penetra na esponja.
PROTRAÇÃO - quando a arquitetura esqueletal de uma esponja possui no seu arranjo
escleras que atravessam a membrana superficial, muitas vezes causando a hispidação
superficial.
PROTRIENA - triena em que os clados são discreta ou acentuadamente encurvados para
dentro e para cima, em direção oposta ao rabdoma.
QUELA - microsclera com um eixo encurvado e “dentes” ou “alas” encurvadas, algumas
vezes se agrupando em forma de roseta.
QUELA ANCORADA - isoquela com três ou mais alas livres; com duas alas laterais
incipientes fusionadas à haste sobre toda a sua extensão, e uma haste levemente
curvada, não abruptamente arqueada.
QUELA PALMADA - quela onde as alas laterais coalescem com o eixo em toda sua
porção interna. Alas frontais bastante desenvolvidas.
RABDOMA - raio de uma tetractina que é distinto dos outros três principalmente no
comprimento.
RÁFIDE - microsclera muito fina, semelhante a um fio de cabelo, muitas vezes inserida em
feixes denominados tricodragmas.
RETICULAÇÃO - qualquer tipo de estrutura reticulada, determinada pelo arranjo espacial
das escleras.
RETICULAÇÃO DENSA - reticulação composta de uma grande quantidade de escleras,
arranjadas ou não com espongina formando grossos feixes, às vezes sem uma clara
orientação.
RETICULAÇÃO ‘CRISS-CROSS’ - reticulação na qual as escleras não se apresentam de
forma organizada, muitas vezes confusa, com uma grande quantidade de escleras
sobrepostas umas às outras.
ROSETA - ver QUELA.
269
SIGMA - microsclera em forma de ‘C’ ou ‘S’.
SUBECTOSSOMA - região do corpo da esponja posicionada entre o ectossoma e o
coanossoma.
SUBSTRATO - qualquer superfície dura e/ou firme na qual uma esponja pode se fixar e se
desenvolver.
SUPERFÍCIE CONULOSA - superfície com pequenas projeções em forma de cones ou
cônulos.
SUPERFÍCIE ESPINHOSA - superfície com projeções fibrosas ou espiculares,
endurecidas e pontiagudas.
SUPERFÍCIE HÍSPIDA - superfície com abundantes perfurações espiculares; áspera ao
tato.
SUPERFÍCIE IRREGULAR - superfície com inúmeras elevações e depressões, não plana e
sem estruturas características.
SUPERFÍCIE RUGOSA - superfície áspera dotada de saliências.
SUPERFÍCIE TUBERCULADA - ver SUPERFÍCIE VERRUCOSA.
SUPERFÍCIE VERRUCOSA - superfície apresentando saliências de formato geralmente
arredondado.
TILO - qualquer inchamento arredondado localizado no eixo ou nas extremidades de uma
esclera
TILÓSTILO - estilo dotado de ou tilo na base.
TILOTO - megasclera diactinal com ambas as extremidades infladas.
TORNOTO - megasclera diactinal reta, isodiamétrica, com extremidades cônicas ou
mucronadas.
TOXA - microsclera em forma de arco ou discretamente flexionada na porção mediana.
TRIENA - termo utilizado para megasclera tetractinal com um raio desigual denominado
rabdo, comumente maior do que os outros três, denominados clados, formando o
cladoma.
TUFOS - conjunto de escleras dispostas de forma divergente.
VERTICILO - ornamentação presente em uma esclera, formada por espinhos organizados
em anéis e/ou coroas ao longo do eixo, usualmente regularmente espaçados.
VERTICILO APICAL - verticilo presente no ápice de uma esclera.
VERTICILO BASAL - verticilo presente na base de uma esclera
270
VERTICILO MEDIANO - verticilo presente no ponto médio uma esclera
VERTICILO SUBSIDIÁRIO - verticilo presente entre o verticilo mediano e o apical.
271
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272
ESPÉCIES DE DEMOSPONGIAE PRESENTES NO COMPLEXO
ANTÁRTICO FAUNÍSTICO
273
Demospongiae (taxonomia conforme SOEST et al. 2005) presentes no Complexo Antártico Faunístico, ampliadas de SARÀ et al. (1992) [S] e acrescidas de
CUARTAS (1994) [C], MOTHES & LERNER (1995) [M], DESQUEYROUX-FAÚNDEZ & VAN SOEST (1996) [D], CALCINAI & PANSINI (2000) [Ca], RÍOS et al. (2004) e
SAMAAI et al. (2006) [Sm]. S: Setores continentais (somente naqueles com registros); S1: área compreendida entre Terra Nova Suábia até Terra Princesa
Ragnhild; S2: Terra Príncipe Harald até Terra Enderby; S3: Terra de McRobertson até Terra Queen Mary; S4: Terra Knox até Terra Adélia; S5: Terra Victoria até
Mar de Ross (até 0°); S6: Mar de Ross (a partir de 0°) até Terra Marie Byrd; S8: Mar de Bellinghausen até Península Antártica (Terra de Graham, Terra de
Palmer e Is. Shetland do Sul); S9: Mar de Weddell e Mar de Lazarev; GS: Geórgia do Sul; OS: Is. Órcades do Sul; SS: Is. Sandwich do Sul; MA: Is. Malvinas;
MG: Região Magelânica; AR: Argentina; CH: Chile; CR: I. Croizat; KE: I. Kerguelen; HE: I. Heard; MR: I. Edward-Marion; GO: I. Gough; TC: Tristão da
Cunha; MQ: I. Macquarie; BR: Brasil; CA: I. Campbell; NZ: Nova Zelândia; TA: I. Tasmânia; AF: África do Sul.
Região faunística antártica
Setores continentais Entidades não-continentais
Entidades extra-
antárticas
Espécies
S1
S2 S3 S4 S5 S6
S8 S9 GS
OS
SS
MA
MG
AR
CH
CR
KE
HE
MR
GO
TC
MQ
BR
CA
NZ
TA
AF
Ref.
Ordem Homosclerophorida
1.
Oscarella lobularis (Schmidt, 1862) ...................................................
- -
- - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
2.
Plakina monolopha Schulze, 1880 ......................................................
-
-
- -
- - - - - - - - - - - -
- - -
- -
S
3.
Plakina trilopha Schulze, 1880 ...........................................................
-
-
-
- -
-
-
- - - - - -
- -
S
Ordem Spirophorida
4.
Cinachyra antarctica (Carter, 1872) ...................................................
-
- - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
5.
Cinachyra barbata Sollas, 1886 .........................................................
-
-
-
- - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
6.
Craniella coactifera (Lendenfeld, 197) ..............................................
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
7.
Craniella leptoderma (Sollas, 1886) ...................................................
-
-
- -
-
-
- - - - - - - - -
S
8.
Craniella metaclada (Lendenfeld, 1907) ............................................
- -
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
9.
Tetilla coronida Sollas, 1888 ..............................................................
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - -
S
Ordem Astrophorida
10.
Stelletta crater Dendy, 1924 ...............................................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
-
-
S
274
11.
Stelletta maori Dendy, 1924 ...............................................................
- -
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
- -
S
12.
Stelletta phrissens Sollas, 1886 ...........................................................
- - - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - -
S
13.
Stelletta purpurea Ridley, 1884 ..........................................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
14.
Tethyopsis longispinum (Lendenfeld, 1907) .......................................
-
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
15.
Jaspis novaezelandiae Dendy, 1924 ...................................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
- -
S
16.
Penares tylotaster Dendy, 1924 ..........................................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
- -
S
17.
Cladothenea andriashevi Koltun, 1964 ..............................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
18.
Pachastrella monilifera Schmidt, 1868 ..............................................
- - -
- - - - - - - - - - - - - - -
- - - - -
S
19.
Poecillastra compressa (Bowerbank, 1866) .......................................
- - -
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - -
S
20.
Poecillastra schulzii (Sollas, 1886) .....................................................
- - - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - -
S
21.
Thenea delicata (Sollas, 1886) ............................................................
- - - -
- - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
22.
Geodia magellani (Sollas, 1886) .........................................................
- - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - -
S
23.
Geodia vestigifera (Dendy, 1924) .......................................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
- -
S
Ordem Hadromerida
24.
Acanthopolymastia acanthoxa Koltun, 1964 ......................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
25.
Cliona diversityla Sarà, 1978 ..............................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
26.
Cliona euryphylla Topsent, 1888 ........................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - -
- -
S
27.
Clionaopsis platei (Thiele, 1905) ........................................................
- - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - -
S
28.
Cliothosa hancocki (Topsent, 1888) ...................................................
- - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - -
S
29.
Hemiasterella digitata Burton, 1929 ...................................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
30.
Homaxinella balfourensis (Ridley & Dendy, 1886) ...........................
-
-
- - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
31.
Plicatellopsis arborescens Burton, 1932 ............................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - -
S
32.
Plicatellopsis flabellata Burton, 1932 .................................................
- - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - -
S
33.
Plicatellopsis fragilis Koltun, 1964 ....................................................
- -
-
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
34.
Polymastia invaginata Kirkpatrick, 1907 ...........................................
-
- -
-
-
- - - - - - - - -
S
35.
Polymastia isidis Thiele, 1905 ............................................................
- -
- - -
- - -
- - -
- - - - - - - -
S
36.
Proteleia burtoni Koltun, 1964 ...........................................................
- - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
37.
Pseudosuberites antarcticus (Carter, 1876) ........................................
-
- - - - - - - -
- - - - - - - -
S
38.
Pseudosuberites digitatus (Thiele, 1905) ............................................
- - - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - -
S
39.
Pseudosuberites hyalinus (Ridley & Dendy, 1886) ............................
-
-
- - -
-
- - - - - - - - - - -
S
40.
Pseudosuberites nudus Koltun, 1964 ..................................................
-
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
41.
Pseudosuberites sulcatus Thiele, 1905 ...............................................
- - - -
-
- -
-
-
- -
- - -
- -
S
42.
Rhizaxinella australiensis Hentschel, 1909 ........................................
- - - -
-
-
- -
- - - - - - - - - - -
-
S
43.
Sphaerotylus antarcticus Kirkpatrick, 1907 .......................................
-
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
44.
Sphaerotylus capitatus (Vosmaer, 1885) ...........................................
-
- -
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
-
S
275
Região faunística antártica
Setores continentais Entidades não-continentais
Entidades extra-
antárticas
Espécies
S1
S2 S3 S4 S5 S6
S8 S9 GS
OS
SS
MA
MG
AR
CH
CR
KE
HE
MR
GO
TC
MQ
BR
CA
NZ
TA
AF
Ref.
45.
Sphaerotylus vanhoffeni (Hentschel, 1914) ........................................
- -
-
- -
- - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
46.
Stylocordyla borealis (Loven, 1868) ...................................................
-
-
- - - - - -
-
- - - - - - - -
S
47.
Suberites caminatus Ridley & Dendy, 1886 .......................................
- - - -
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
48.
Suberites carnosus (Johnston, 1842) ...................................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - -
S
49.
Suberites microstomus Ridley & Dendy, 1886 ...................................
-
- - - - -
- - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
50.
Suberites montiniger Carter, 1880 ......................................................
- -
-
-
- - -
- - - - - - - - - - - - - - -
S
51.
Suberites ruber Thiele, 1905 ...............................................................
- - - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - -
S
52.
Suberites strongylatus Sarà, 1978 .......................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
53.
Tentorium papillatum (Kirkpatrick, 1907) ..........................................
- - - -
-
- - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
54.
Tentorium semisuberites (Schmidt, 1870) ..........................................
-
- -
- - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
55.
Volzia azzaroliae (Sarà, 1978) ............................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
Ordem Poecilosclerida
Subrdem Microcionina
56.
Acanthorhabdus abnormalis (Ridley & Dendy, 1886) .......................
- - - - - - -
- - - - - - - - - -
- - - - - - - -
S
57.
Acanthorhabdus fragilis Burton, 1929 ................................................
- -
-
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
58.
Dolichacantha macrodon Hentschel, 1914 .........................................
- -
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
59.
Iophon aceratus Hentschel, 1914 ........................................................
- -
- - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
60.
Iophon cheliferum Ridley & Dendy, 1886 ..........................................
- - - - - - - - - - - - -
-
-
- - - - - - - -
S
61.
Iophon chilense Desqueyroux-Faúndez & van Soest, 1996 ................
- - - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - -
D
62.
Iophon flabello-digitatus Kirkpatrick, 1907 .......................................
- -
-
- -
- - - - - -
- - - - - - - - - -
S
63.
Iophon hesperidesi Ríos, Cristobo & Urgorri, 2004 ...........................
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
R
64.
Iophon laevistylus Dendy, 1924 ..........................................................
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
- -
- -
S
65.
Iophon laminalis Ridley & Dendy, 1886 ............................................
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - -
S
66.
Iophon proximum (Ridley, 1881) ........................................................
- - - - - -
-
- -
-
- -
- -
-
S
67.
Iophon radiatus Topsent, 1901 ...........................................................
-
-
- -
-
-
-
- -
- - - - - - - - - -
S
68.
Iophon spatulatus Kirkpatrick, 1907 ...................................................
- - - -
- -
- - - - -
- - - -
- - - - -
S
69.
Iophon terranovae Calcinai & Pansini, 2000 ......................................
- - - -
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
Ca
70.
Iophon timidum Desqueyroux-Faúndez & van Soest, 1996 ................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
D
71.
Iophon tubiforme Desqueyroux-Faúndez & van Soest, 1996 .............
- - - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - -
D
72.
Iophon unicornis Topsent, 1907 .........................................................
-
- - -
- -
- -
- - - - - - - - -
S
73.
Megaciella pilosa (Ridley & Dendy, 1886) ........................................
- - - - - - -
- - - - - - - -
-
- - - - - - - -
S
74.
Megaciella topsenti (Burton, 1932) ....................................................
- - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - -
-
S
276
75.
Clathria (Clathria) discreta (Thiele, 1905) ........................................
- - - - - - - - - - -
-
- -
- - - - - - -
S
76.
Clathria (Clathria) lipochela Burton, 1932 ........................................
- - - -
- - -
- -
- - - - - - - - - - - -
S
77.
Clathria (Clathria) papillosa (Thiele, 1905) ......................................
- - - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - -
S
78.
Clathria (Clathria) pauper Broendsted, 1926 ....................................
- -
- -
- - - -
- - - - - - - - - - - - -
S
79.
Clathria (Clathria) sarai Hooper, 1996 ..............................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
H
80.
Clathria (Clathria) saraspinifera Hooper, 1996 .................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
H
81.
Clathria (Clathria) terraenovae Dendy, 1924 ....................................
- - - - - - - -
- -
-
- -
- - - - - - -
- -
S
82.
Clathria (Clathria) toxipraedita Topsent, 1913 ..................................
- -
-
-
-
- - - - - - - - - - - - - -
S
83.
Clathria (Microciona) antarctica (Topsent, 1917) .............................
-
- -
-
- -
-
- -
- - - -
- -
S
84.
Clathria (Microciona) toxifera (Topsent, 1913) .................................
- -
-
-
- -
- - - - -
- - - - - - -
S
85.
Clathria (Axosuberites) flabellata (Topsent, 1916) ............................
- -
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
86.
Clathria (Axosuberites) georgiaensis Hooper, 1996 ..........................
- - -
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
H
87.
Clathria (Axosuberites) nidificata (Kirkpatrick, 1907) ......................
-
- -
- - -
- - - - - - - - - - - - -
S
88.
Clathria (Axosuberites) rameus Koltun, 1964 ....................................
- -
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
89.
Clathria (Thalysias) amabilis (Thiele, 1905) ......................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - -
S
90.
Clathria (Thalysias) koltuni Hooper, 1996 .........................................
- - -
- - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
H
91.
Clathria (Thalysias) lissocladus (Burton, 1934) .................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
92.
Clathria (Thalysias) membranacea (Thiele, 1905) .............................
- - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - -
S
93.
Clathria (Thalysias) paucispicula (Burton, 1932) ..............................
- -
- - -
-
- -
- - - - - - - - - - - - -
S
94.
Echinoclathria atlantica Sarà, 1978 ...................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
95.
Echinoclathria contexta Sarà, 1978 ....................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
96.
Artemisina apollinis (Ridley & Dendy, 1886) ....................................
- -
-
-
-
- - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
97.
Artemisina jovis Dendy, 1924 .............................................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
- -
S
98.
Artemisina plumosa (Hentschel, 1914) ...............................................
-
-
- - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
99.
Artemisina tubulosa Koltun, 1964 ......................................................
- -
-
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
100.
Raspailia (Raspaxilla) mariana (Ridley & Dendy, 1886) ..................
- - - - - - -
- - - - - - - -
-
- - - - - - - -
S
101.
Raspailia (Raspaxilla) phakellina (Topsent, 1913) ............................
- - - - - - - - - - -
- - - -
- - - - - - - - - -
S
102.
Raspailia (Clathriodendron) fueguensis Cuartas, 1994 ......................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
C
103.
Raspailia (Clathriodendron) levis Cuartas, 1994 ...............................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
C
104.
Raspailia (Hymeraphiopsis) irregularis (Hentschel, 1914) ................
- -
-
- - - - - - -
- - - - - - - - -
S
105.
Raspailia (?) flagelliformis (Ridley & Dendy, 1886) .........................
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - -
S
106.
Eurypon miniaceum Thiele, 1905 .......................................................
- - - -
- - - - - - - -
- - - - - - - - - - -
S
107.
Rhabderemia coralloides Dendy, 1924 ...............................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
- -
S
Subordem Myxillina
277
Região faunística antártica
Setores continentais Entidades não-continentais
Entidades extra-
antárticas
Espécies
S1
S2 S3 S4 S5 S6
S8 S9 GS
OS
SS
MA
MG
AR
CH
CR
KE
HE
MR
GO
TC
MQ
BR
CA
NZ
TA
AF
Ref.
108.
Chondropsis chaliniformis Lendenfeld, 1889 .....................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
-
S
109.
Coelosphaera (Coelosphaera) antarctica Koltun, 1976 .....................
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
110.
Coelosphaera (Coelosphaera) globosa Bergquist, 1961 ....................
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
- -
S
111.
Inflatella belli (Kirkpatrick, 1907) ......................................................
-
- -
- - -
- - - -
- - - - - - -
-
S
112.
Inflatella coelosphaeroides Koltun, 1964 ...........................................
-
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
113.
Lissodendoryx (Lissodendoryx) buchanani Topsent, 1913 .................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - -
S
114.
Lissodendoryx (Lissodendoryx) complicata (Hansen, 1885) ..............
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
115.
Lissodendoryx (Lissodendoryx) flabellata Burton, 1929 ....................
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
116.
Lissodendoryx (Lissodendoryx) fusca (Ridley & Dendy, 1886) .........
- - - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - -
S
117.
Lissodendoryx (Lissodendoryx) innominata Burton, 1929 .................
- - - -
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
118.
Lissodendoryx (Lissodendoryx) paucispinata Ridley & Dendy, 1886
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
119.
Lissodendoryx (Lissodendoryx) styloderma Hentschel, 1914 .............
- -
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
120.
Lissodendoryx (Ectyodoryx) anacantha (Hentschel, 1914) ................
-
- - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
121.
Lissodendoryx (Ectyodoryx) antarctica Hentschel, 1914 ...................
- -
-
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
122.
Lissodendoryx (Ectyodoryx) minuta (Calcinai & Pansini, 2000) ........
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
Ca
123.
Lissodendoryx (Ectyodoryx) nobilis (Ridley & Dendy, 1886) ............
- - - -
- -
- -
-
-
- - - - - - - - - -
S
124.
Lissodendoryx (Ectyodoryx) patagonica (Ridley & Dendy, 1886) ....
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
125.
Lissodendoryx (Ectyodoryx) plumosa (Hentschel, 1914) ...................
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
126.
Lissodendoryx (Ectyodoryx) ramilobosa (Topsent, 1916) ..................
- -
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
127.
Crella (Crella) tubifex (Hentschel, 1914) ...........................................
-
- - -
- - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
128.
Crella (Grayella) crassa Hentschel, 1914 ..........................................
- -
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
129.
Crella (?) stylifera Hentschel, 1914 ....................................................
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
130.
Fibulia cribriporosa (Burton, 1929) ...................................................
- - - -
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
131.
Fibulia meandrina (Kirkpatrick, 1907) ...............................................
- - -
- - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
132.
Fibulia myxillioides (Burton, 1932) ....................................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
133.
Pyloderma latrunculioides (Ridley & Dendy, 1886) ..........................
-
-
- -
- - - - -
- - - - - - - - - - - - -
S
134.
Desmacidon fruticosum (Montagu, 1818) ...........................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
135.
Desmacidon nebulosum Boury-Esnault & Van Beveren, 1982 ..........
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
136.
Desmacidon ramosum Ridley & Dendy, 1886 ...................................
- - - - - - -
- - - - - - - - - -
- - - - - - -
S
137.
Hymedesmia (Hymedesmia) antarctica Boury & Beveren, 1982 .......
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
138.
Hymedesmia (Hymedesmia) decepta (Kirkpatrick, 1907) ..................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
139.
Hymedesmia (Hymedesmia) gaussiana Hentschel, 1914 ....................
- -
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
140.
Hymedesmia (Hymedesmia) laevis Thiele, 1905 ...............................
- - - - - -
- - - -
- -
- - - - - - - - - - -
-
S
278
141.
Hymedesmia (Hymedesmia) longurioides Burton, 1932 ....................
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
142.
Hymedesmia (Hymedesmia) mariondufresni Boury & Beveren, 1982
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
143.
Hymedesmia (Hymedesmia) unguifera Burton, 1929 .........................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
144.
Hymedesmia (Stylopus) antarctica Hentschel, 1914 ..........................
-
- - - - -
- -
-
- -
- - - - - - - - - -
S
145.
Hymedesmia (Stylopus) fristedti Topsent, 1916 ..................................
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
146.
Kirkpatrickia coulmani (Kirkpatrick, 1907) .......................................
- - -
- - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
147.
Kirkpatrickia variolosa (Kirkpatrick, 1907) .......................................
-
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
148.
Myxodoryx hanitschi (Kirkpatrick, 1907) ...........................................
- -
-
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
149.
Phorbas acanthochela (Koltun, 1964) ................................................
- -
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
150.
Phorbas areolata (Thiele, 1905) .........................................................
- -
-
- - - -
- - - - - - - - - - - -
S
151.
Phorbas domini (Boury-Esnault & Van Beveren, 1982) ....................
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
152.
Phorbas glaberrima (Topsent, 1917) ..................................................
- -
- - - - - - - - - - - - - - - -
- -
S
153.
Phorbas leptochela (Hentschel, 1914) ................................................
-
- - - - -
- - - -
- -
- - - - - - - - - -
S
154.
Phorbas nexus (Koltun, 1964) ............................................................
- -
- - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
155.
Phorbas pustulosa (Carter, 1882) .......................................................
- - - - - - - - -
- -
- - - - - - - - - - - - -
S
156.
Phorbas tuberculata (Burton, 1934) ...................................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - -
S
157.
Plocamionida gaussiana (Hentschel, 1914) .......................................
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
158.
Spanioplon werthi (Hentschel, 1914) ..................................................
-
- - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
159.
Iotroata somovi (Koltun, 1964) ...........................................................
-
-
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
160.
Ectyonopsis panis (Boury-Esnault & van Beveren, 1982) ..................
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
161.
Ectyonopsis ruthae (Mothes & Lerner, 1995) .....................................
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
M
162.
Hymenancora exigua (Kirkpatrick, 1907) ..........................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
163.
Hymenancora rhaphidophora Hentschel, 1914 ..................................
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
164.
Hymenancora rufa (Kirkpatrick, 1907) ..............................................
- - - -
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
165.
Myxilla (Myxilla) asigmata (Topsent, 1901) ......................................
-
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
166.
Myxilla (Myxilla) australis (Topsent, 1901) .......................................
-
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
167.
Myxilla (Myxilla) basimucronata Burton, 1932 ..................................
- - - - - - - -
- - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
168.
Myxilla (Myxilla) caliciformis Sarà, 1978 ..........................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
169.
Myxilla (Myxilla) elongata Topsent, 1917 ..........................................
- - - -
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
170.
Myxilla (Myxilla) insolens Koltun, 1964 ............................................
- - -
- - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
171.
Myxilla (Myxilla) mollis Ridley & Dendy, 1886 ................................
-
-
- -
-
-
- - - - - - - - - -
S
172.
Myxilla (Myxilla) nodaspera (Topsent, 1913) ....................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - -
S
173.
Myxilla (Myxilla) novaezealandiae Dendy, 1924 ...............................
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
- -
- -
S
174.
Myxilla (Burtonanchora) pistillaris Topsent, 1916 ............................
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
175.
Myxilla (Ectyomyxilla) chilensis Thiele, 1905 ....................................
- - - - - -
- - - -
-
- - -
- -
-
S
176.
Myxilla (Ectyomyxilla) kerguelensis (Hentschel, 1914) .....................
- - - -
- - - - - - - - - - -
- - - -
- -
-
S
279
Região faunística antártica
Setores continentais Entidades não-continentais
Entidades extra-
antárticas
Espécies
S1
S2 S3 S4 S5 S6
S8 S9 GS
OS
SS
MA
MG
AR
CH
CR
KE
HE
MR
GO
TC
MQ
BR
CA
NZ
TA
AF
Ref.
177.
Myxilla (Ectyomyxilla) mariana Ridley & Dendy, 1886 ....................
- -
- - -
- - - - - - -
- - -
- - - - - - - -
S
178.
Stelodoryx cribrigera (Ridley & Dendy, 1886) ..................................
- - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - -
S
179.
Stelodoryx lissostyla (Burton, 1938) ...................................................
- -
- - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
180.
Stelodoryx multidentata (Boury-Esnault & Van Beveren, 1982) .......
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
181.
Phelloderma radiatum Ridley & Dendy, 1886 ...................................
- -
- - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - -
S
182.
Tedania (Tedania) lanceta Koltun, 1964 ............................................
- - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - -
S
183.
Tedania (Tedania) trirhaphis Koltun, 1964 ........................................
-
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
184.
Tedania (Tedaniopsis) charcoti Topsent, 1913 ..................................
-
-
-
-
- - - - - - - - - -
S
185.
Tedania (Tedaniopsis) gracilis Hentschel, 1914 ................................
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
186.
Tedania (Tedaniopsis) massa Ridley & Dendy, 1886 ........................
-
-
- -
- - - - - - - - - - - - -
S
187.
Tedania (Tedaniopsis) oxeata Topsent, 1916 .....................................
- -
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
188.
Tedania (Tedaniopsis) tenuicapitata Ridley, 1881..............................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - -
S
189.
Tedania (Tedaniopsis) vanhoeffeni Hentschel, 1914 ..........................
- -
- - -
- - - - - - - -
- - - - -
- - - -
S
190.
Tedania (Trachytedania) mucosa Thiele, 1905 ..................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - -
S
191.
Tedania (Trachytedania) patagonica Ridley & Dendy, 1886 ............
- - - - - - - - - - - -
- -
- - - - - - - - - -
S
192.
Tedania (Trachytedania) spinata Ridley, 1881 ..................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - -
S
Subordem Mycalina
193.
Asbestopluma belgicae (Topsent, 1901) .............................................
-
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
194.
Asbestopluma callithrix Hentschel, 1914 ............................................
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
195.
Asbestopluma calyx Hentschel, 1914 ..................................................
- -
- - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
196.
Chondrocladia antarctica Hentschel, 1914 ........................................
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
197.
Chondrocladia clavata (Ridley & Dendy, 1886) ................................
-
- -
- - - - - - - - - - -
- - - - - - -
- -
S
198.
Chondrocladia stipitata (Ridley & Dendy, 1886) ..............................
- - - - - - - - - - - - - - -
- -
- - - - - - - -
S
199.
Cladorhiza mani Koltun, 1964 ............................................................
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - -
S
200.
Cladorhiza moruliformis Ridley & Dendy, 1886 ...............................
- - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
-
S
201.
Cladorhiza tridentata Ridley & Dendy, 1886 .....................................
- - - - - - - - - - - - - - -
- -
- - - - - - - -
S
202.
Biemna chilensis Thiele, 1905 ............................................................
-
- - -
- - -
-
-
- - - - - - - - - -
S
203.
Biemna polyphylla Lévi, 1963 ............................................................
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
204.
Desmacella alba (Wilson, 1904) .........................................................
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
205.
Desmacella vestibularis (Wilson, 1904) .............................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
206.
Guitarra antarctica Hentschel, 1914 ..................................................
- -
-
- -
- -
-
- - - - - - - - - -
- -
S
207.
Guitarra dendyi (Kirkpatrick, 1907) ...................................................
-
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
-
S
280
208.
Guitarra fimbriata Carter, 1874 ..........................................................
- - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - -
-
S
209.
Amphilectus flabellata Burton, 1932 ...................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
210.
Esperiopsis fucorum (Esper, 1874) .....................................................
- - - - - - - -
- -
-
-
- - -
-
-
S
211.
Esperiopsis heardi Boury-Esnault & van Beveren, 1982 ...................
- - - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - -
S
212.
Esperiopsis informis Stephens, 1915 ..................................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
213.
Esperiopsis profunda Ridley & Dendy, 1886 .....................................
- - - - - - - - - - - - - - -
- -
- - - - - - - -
S
214.
Esperiopsis rugosus Thiele, 1905 .......................................................
- -
- -
- - -
-
- - -
- - - - -
S
215.
Esperiopsis scotiae Topsent, 1915 ......................................................
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
216.
Esperiopsis symmetrica Ridley & Dendy, 1886 .................................
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - -
S
217.
Esperiopsis varia Sarà, 1978 ...............................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
218.
Esperiopsis villosa (Carter, 1874) .......................................................
-
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
- -
S
219.
Ulosa plana Cuartas, 1995 ..................................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
C
220.
Mycale (Mycale) doellojuradoi Burton, 1940 .....................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - -
S
221.
Mycale (Mycale) lapidiformis (Ridley & Dendy, 1886) .....................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - -
S
222.
Mycale (Mycale) macrochela Burton, 1932 ........................................
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
223.
Mycale (Mycale) magellanica (Ridley, 1881) ....................................
-
- -
- -
- -
- - - - - - - - -
S
224.
Mycale (Mycale) tridens Hentschel, 1914 ..........................................
- -
- -
- - - - -
- - - - - - - - - - - -
S
225.
Mycale (Anomomycale) titubans (Schmidt, 1870) ..............................
- - - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - -
S
226.
Mycale (Carmia) diminuta Sarà, 1978 ................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
227.
Mycale (Carmia) gaussiana Hentschel, 1914 .....................................
-
- -
- - - - - -
- - - - - - - - - - - -
S
228.
Mycale (Oxymycale) acerata Kirkpatrick, 1907 .................................
-
-
- -
-
- - - -
- - - - -
S
229.
Mycale (?) fibrosa Boury-Esnault & Van Beveren, 1982 ...................
- - - -
-
- - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
230.
Mycale (?) mammiformis (Ridley & Dendy, 1886) ............................
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - -
S
231.
Mycale (?) profunda Koltun, 1964 ......................................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
232.
Mycale (?) tenuis Sarà, 1978 ...............................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
233.
Mycale (?) tylotornota Koltun, 1964 ..................................................
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
234.
Sigmosceptrella carlinae (Boury-Esnault & Van Beveren, 1982) ......
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
235.
Isodictya bentarti Ríos, Cristobo & Urgorri, 2004 .............................
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
R
236.
Isodictya cavicornuta Dendy, 1924 ....................................................
- - - -
- -
- - - - - - - - - - - - - - - -
- -
S
237.
Isodictya conulosa (Ridley & Dendy, 1886) .......................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
238.
Isodictya delicata (Thiele, 1905) ........................................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
239.
Isodictya delicata megachela Burton, 1934 ........................................
- - -
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
240.
Isodictya dufresni Boury-Esnault & Van Beveren, 1982 ....................
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
241.
Isodictya erinacea (Topsent, 1916) .....................................................
-
-
- -
- - - - - - - - - - - - - - -
S
242.
Isodictya kerguelenensis (Ridley & Dendy, 1886) .............................
-
-
- -
-
- -
- - - - - - - - -
S
243.
Isodictya lankesteri (Kirkpatrick, 1907) .............................................
-
-
- -
- - - - - - - - - - - - - -
-
S
281
Região faunística antártica
Setores continentais Entidades não-continentais
Entidades extra-
antárticas
Espécies
S1
S2 S3 S4 S5 S6
S8 S9 GS
OS
SS
MA
MG
AR
CH
CR
KE
HE
MR
GO
TC
MQ
BR
CA
NZ
TA
AF
Ref.
244.
Isodictya microchela (Topsent, 1915) .................................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - -
- -
- -
S
245.
Isodictya obliquidens (Hentschel, 1914) .............................................
- -
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
246.
Isodictya setifera (Topsent, 1901) ......................................................
-
-
- - - - - - - - - - -
- -
S
247.
Isodictya toxophila Burton, 1932 ........................................................
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
248.
Isodictya verrucosa (Topsent, 1913) ...................................................
- - - -
-
- - - -
- - - -
- - - - - - - - - -
S
Subordem Latrunculina
249.
Latrunculia (Latrunculia) apicalis (Ridley & Dendy, 1886) ..............
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
Sm
250.
Latrunculia (Latrunculia) basalis (Kirkpatrick, 1908) .......................
-
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
Sm
251.
Latrunculia (Latrunculia) biformis (Kirkpatrick, 1907) .....................
-
- - - - - - - -
- -
- - - - - - - - -
Sm
252.
Latrunculia (Latrunculia) bocagei (Ridley & Dendy, 1886) ..............
- -
- - - - - - - -
- - - -
- - - - - - - - - -
Sm
253.
Latrunculia (Latrunculia) brevis (Ridley & Dendy, 1886) ................
- - - -
- - - - - - - -
- -
- - - - - - - - - -
Sm
Ordem Halichondrida
254.
Axinella antarctica (Koltun, 1964) .....................................................
- -
- - -
- - - - - -
- - - - - - - - - - - -
S
255.
Axinella crinita Thiele, 1905 ...............................................................
- - - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - -
S
256.
Dragmacidon egregium (Ridley, 1881) ..............................................
- - - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - -
S
257.
Dragmacidon fibrosum (Ridley & Dendy, 1886) ...............................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
258.
Dragmacidon mutans (Sarà, 1978) ....................................................
- - - - - - - - - - - -
- - -
-
-
- - -
- -
S
259.
Bubaris vermiculata (Bowerbank, 1866) ............................................
- - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - -
S
260.
Halicnemia papillosa (Thiele, 1905) ..................................................
- - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - -
S
261.
Halichondria (Halichondria) cristata Sarà, 1978 ..............................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - -
S
262.
Halichondria (Halichondria) flexuosa (Sarà, 1978) ..........................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
263.
Halichondria (Halichondria) membranacea (Sarà, 1978) .................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
264.
Halichondria (Halichondria) oxiparva (Sarà, 1978) ..........................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
265.
Halichondria (Halichondria) panicea (Pallas, 1766) ........................
-
- - - - -
- -
- -
-
- - - - -
-
S
266.
Halichondria (Halichondria) hentscheli Koltun, 1964 .......................
- -
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
267.
Halichondria (Eumastia) attenuata (Topsent, 1915) ..........................
- - - - - -
-
- -
- - - - - - - - - - - - - - -
S
268.
Hymeniacidon agminata Ridley, 1884 ................................................
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - -
- -
-
S
269.
Hymeniacidon centrotyla Hentschel, 1914 .........................................
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
270.
Hymeniacidon dubia Burton, 1932 .....................................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - -
S
271.
Hymeniacidon fernandezi Thiele, 1905 ..............................................
- - - - - - - -
- -
-
- - - - - - - - -
S
272.
Hymeniacidon insutus Koltun, 1964 ...................................................
- - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
-
S
282
273.
Hymeniacidon kerguelensis Hentschel, 1914 .....................................
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - -
- - - -
S
274.
Hymeniacidon longistylus Desqueyroux, 1972 ...................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
275.
Hymeniacidon rubiginosa Thiele, 1905 ..............................................
- - -
- - - -
- - - -
-
- - - - - - - - - -
S
276.
Hymeniacidon torquata Topsent, 1916 ...............................................
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
277.
Spongosorites incisa Sarà, 1978 .........................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
278.
Topsentia compacta (Sarà, 1978) .......................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
Ordem Haplosclerida
Subordem Haplosclerina
279.
Callyspongia (Callyspongia) ramosa (Gray, 1843) ............................
- - -
- - - - - - -
-
- - - - - - - - - -
-
S
280.
Callyspongia (Toxochalina) robusta (Ridley, 1884) ..........................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - -
-
S
281.
Callyspongia (?) conica (Broendsted, 1924) ......................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - -
- -
S
282.
Callyspongia (?) flabellata Burton, 1932 ...........................................
- - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - - -
S
283.
Callyspongia (?) fortis (Ridley, 1881) ................................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - -
S
284.
Callyspongia (?) fusifera (Thiele, 1905) .............................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - -
S
285.
Chalinula variabilis (Thiele, 1905) .....................................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
286.
Cladocroce gaussiana (Hentschel, 1914) ...........................................
-
- - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
287.
Haliclona (Gellius) borzatii (Sarà, 1978) ...........................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
288.
Haliclona (Gellius) carduus (Ridley & Dendy, 1886) ........................
- -
- - -
-
- -
- -
-
- - - - - - - -
S
289.
Haliclona (Gellius) constans (Boury-Esnault & Beveren, 1982) .......
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
290.
Haliclona (Gellius) cucurbitiformis (Kirkpatrick, 1907) ....................
- -
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
291.
Haliclona (Gellius) flabelliformis (Ridley & Dendy, 1886) ...............
- - - - - - - - - - - - -
- -
- - - - - - - - -
S
292.
Haliclona (Gellius) flagellifer (Ridley & Dendy, 1886) .....................
- -
-
- -
- - - -
- - -
-
- -
- -
-
S
293.
Haliclona (Gellius) glacialis (Ridley & Dendy, 1886) .......................
- -
-
- -
- -
-
- - - - -
-
S
294.
Haliclona (Gellius) latisigmae (Boury-Esnault & Beveren, 1982) .....
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
295.
Haliclona (Gellius) pilosus (Kirkpatrick, 1907) .................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
296.
Haliclona (Gellius) rudis (Topsent, 1901) ..........................................
- - - -
-
- - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
297.
Haliclona (Gellius) tenella (Topsent, 1916) .......................................
- -
- - -
- - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
298.
Haliclona (Gellius) tubuloramosus (Dendy, 1924) ............................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - -
- -
S
299.
Haliclona (Gellius) tylotoxa (Hentschel, 1914) ..................................
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
300.
Haliclona (Halichoclona) conica (Thiele, 1905) ................................
- - - - - - - - - - -
- - - - -
- - - - - - - -
S
301.
Haliclona (Haliclona) bifacialis Sarà, 1978 .......................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
302.
Haliclona (Haliclona) domingoi (Sarà, 1978) ....................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
303.
Haliclona (Reniera) altera (Topsent, 1901) .......................................
- - - -
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
304.
Haliclona (Reniera) delicata (Sarà, 1978) ..........................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
305.
Haliclona (Reniera) topsenti (Thiele, 1905) .......................................
- - - -
-
- - - -
- - -
- - -
- - - -
S
283
Região faunística antártica
Setores continentais Entidades não-continentais
Entidades extra-
antárticas
Espécies
S1
S2 S3 S4 S5 S6
S8 S9 GS
OS
SS
MA
MG
AR
CH
CR
KE
HE
MR
GO
TC
MQ
BR
CA
NZ
TA
AF
Ref.
306.
Haliclona (Rhizoniera) dancoi (Topsent, 1901) .................................
-
-
-
- - - - - - - - - - - - - - - - -
S
307.
Haliclona (Soestella) chilensis (Thiele, 1905) ....................................
- - - - - - - - - - -
- -
- - - - - - - - - - - -
S
308.
Haliclona (?) algicola (Thiele, 1905) .................................................
- - - - - - - - - - -
- -
- - - - - - - - - - - -
S
309.
Haliclona (?) bilamellata Burton, 1932 ..............................................
- - - - - -
- -
- - - - - - - - - - - - -
S
310.
Haliclona (?) divulgata Koltun, 1964 .................................................
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
311.
Haliclona (?) eterospiculata (Sarà, 1978) ..........................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
312.
Haliclona (?) gemina Sarà, 1978 ........................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
313.
Haliclona (?) ignobilis (Thiele, 1905) ................................................
- - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - -
S
314.
Haliclona (?) nodosa (Thiele, 1905) ...................................................
- - - - - - - -
- - - - -
- - - - - - - - - - - -
S
315.
Haliclona (?) pedunculata (Ridley & Dendy, 1886) ..........................
- - -
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
316.
Haliclona (?) penicillata Topsent, 1908 .............................................
- - - -
-
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - -
S
317.
Haliclona (?) proletaria (Topsent, 1908) ...........................................
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
318.
Haliclona (?) spongiosissima Topsent, 1908 ......................................
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
319.
Haliclona (?) texta Sarà, 1978 ............................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
320.
Haliclona (?) virens (Topsent, 1908) ..................................................
- - - -
-
- - - - - - -
- - - - - - - - - - - -
S
321.
Amphimedon anomala (Sarà, 1978) ....................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
322.
Amphimedon decurtata (Sarà, 1978) ...................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
323.
Amphimedon maresi (Sarà, 1978) .......................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
324.
Amphimedon paradisus Desqueyroux-Faúndez, 1989 ........................
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
325.
Dasychalina magellanica (Thiele, 1905) ............................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - -
S
326.
Dasychalina validissima (Thiele, 1905) .............................................
- - - - - - - -
- -
- - - - - - - - - - - -
S
327.
Gelliodes spongiosa Topsent, 1916 ....................................................
-
-
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
328.
Haliclonissa sacciformis Burton, 1932 ...............................................
- - - - - - - - - - -
-
- -
- - - - - - - -
S
329.
Haliclonissa verrucosa Burton, 1932 .................................................
- - - -
-
- - - - -
- - - - - - - - - - - - -
S
330.
Hemigellius bidens (Topsent, 1901) ...................................................
- -
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
331.
Hemigellius calyx (Ridley & Dendy, 1886) ........................................
-
- - -
- - - - -
- - - - - - - - - - - - -
S
332.
Hemigellius fimbriatus (Kirkpatrick, 1907) ........................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
333.
Hemigellius pachyderma Burton, 1932 ...............................................
- -
-
-
- - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
334.
Microxina benedeni (Topsent, 1901) ..................................................
-
-
- -
- - - - - - - - - - - - - - -
S
335.
Microxina lanceolata Calcinai & Pansini, 2000 .................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
Ca
336.
Microxina phakellioides (Kirkpatrick, 1907) ......................................
- -
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
337.
Microxina sarai Calcinai & Pansini, 2000 ..........................................
- - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
Ca
338.
Microxina simplex (Topsent, 1916) ....................................................
- - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - - - - -
-
S
284
339.
Pachychalina glacialis (Burton, 1934) ...............................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - - -
S
Subordem Petrosina
340.
Calyx arcuarius (Topsent, 1913) ........................................................
-
-
- - - - - - - - - - - - - - - - -
S
341.
Calyx kerguelensis (Hentschel, 1914) .................................................
- - - - - - -
- -
- - -
- - - - - - - - -
S
342.
Oceanapia enigmatica (Sarà, 1978) ....................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
343.
Pachypellina fistulata (Kirkpatrick, 1907) .........................................
- - - -
- -
- - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
344.
Xestospongia hispida (Ridley & Dendy, 1886) ..................................
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - -
S
345.
Xestospongia variabilis (Ridley, 1884) ...............................................
- - - - - - -
- - -
- - -
- - - - - - -
S
Ordem Dictyoceratida
346.
Ircinia variabilis (Schmidt, 1862) .......................................................
- - - -
- - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
-
S
347.
Hyrtios arenosa (Thiele, 1905) ...........................................................
- - - - - - - -
- - - - -
- - - - - - - -
- - -
S
348.
Hyrtios vinciguerrae (Sarà, 1978) .......................................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
349.
Spongia (Spongia) hispida Lamarck, 1813 .........................................
- - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - -
-
S
350.
Spongia (Spongia) magellanica Thiele, 1905 .....................................
- - - - - - - -
- -
- - - - - - - - - - - -
S
351.
Dysidea chilensis (Thiele, 1905) .........................................................
- - - - - - - - - - -
-
- - - - - - - - - - - -
S
352.
Dysidea fragilis (Montagu, 1818) .......................................................
- - - - - - - - - - - -
- - -
- - - - - - -
S
353.
Dysidea oculata (Burton, 1929) ..........................................................
- -
-
- - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -
S
354.
Dysidea tenuifibra (Burton, 1932) ......................................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - - -
S
Ordem Dendroceratida
355.
Aplysilla rosea (Barrois, 1876) ...........................................................
- - - - - - - -
- - -
- - -
- - - - - - - -
S
356.
Dendrilla antarctica Topsent, 1905 ....................................................
- - - - - -
- - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
357.
Dendrilla membranosa (Pallas, 1766) ................................................
- -
-
- -
- - -
- - - -
-
- - - - - -
-
S
358.
Spongionella pulchella (Sowerby, 1804) ............................................
- - - - - - - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - -
S
Ordem Halisarcida
359.
Halisarca magellanica Topsent, 1901 ................................................
- - - - - - - - - - -
- - - - - - - - - - - - -
S
360.
Halisarca dujardini Johnston, 1842 ....................................................
- -
-
-
- - - -
- - -
- - - - - - - - -
S
Ordem Verongida
361.
Aplysina minima Hentschel, 1914 .......................................................
-
-
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S
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