( PDF ) Análise comparada das hemiceluloses de parede celular de frondes de samambaias e licófitas

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GIOVANNA BEZERRA DA SILVA

Análise comparada das hemiceluloses de parede

celular de frondes de samambaias e licófitas

Tese apresentada ao Instituto de

Botânica da Secretaria de Estado do

Meio Ambiente, como parte dos

requisitos para obtenção do título de

DOUTOR em BIODIVERSIDADE

VEGETAL E MEIO AMBIENTE, na

Área de Concentração em Plantas

Vasculares.

SÃO PAULO

2009

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GIOVANNA BEZERRA DA SILVA

Análise comparada das hemiceluloses de parede

celular de frondes de samambaias e licófitas

Tese apresentada ao Instituto de

Botânica da Secretaria de Estado do

Meio Ambiente, como parte dos

requisitos para obtenção do título de

DOUTOR em BIODIVERSIDADE

VEGETAL E MEIO AMBIENTE, na

Área de Concentração em Plantas

Vasculares.

ORIENTADOR: MARCOS SILVEIRA BUCKERIDGE

CO-ORIENTADOR: JEFFERSON PRADO

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SUMÁRIO

AGRADECIMENTOS: ..................................................................................................................... 4

RESUMO: ........................................................................................................................................... 5

ABSTRACT: ....................................................................................................................................... 6

INTRODUÇÃO: ................................................................................................................................. 7

A PAREDE CELULAR: ................................................................................................................................................. 7

LICÓFITAS E SAMAMBAIAS: ..................................................................................................................................... 11

PAREDES CELULARES, TAXONOMIA E EVOLUÇÃO: ................................................................................................... 12

OBJETIVOS: .................................................................................................................................... 18

MATERIAL E MÉTODOS: ........................................................................................................... 18

MATERIAL VEGETAL: ............................................................................................................................................. 18

FRACIONAMENTO DA PAREDE CELULAR: .............................................................................................................. 22

Extração de açúcares solúveis: .......................................................................................................................... 22

Extração de amido: ............................................................................................................................................ 23

Extração de pectinas: ......................................................................................................................................... 23

Fracionamento da parede celular com NaOH: .................................................................................................. 23

Hidrólise ácida: .................................................................................................................................................. 23

Análise de monossacarídeos em HPLC: ............................................................................................................. 24

METILAÇÃO: ........................................................................................................................................................... 24

ANÁLISES POR ESPECTROMETRIA DE MASSAS MALDI-TOF: ................................................................................. 25

ANÁLISE DE AGRUPAMENTO: ................................................................................................................................. 26

RESULTADOS & DISCUSSÃO: ................................................................................................... 26

PARTE I- ANÁLISES DA PAREDE CELULAR DE 17 ESPÉCIES SELECIONADAS: ........................................................ 26

Análises de monossacarídeos: ............................................................................................................................ 29

Análise estrutural dos polissacarídeos de parede celular de Adiantum raddianum: ......................................... 33

PARTE II - ANÁLISES DE XILOGLUCANOS DE 67 ESPÉCIES DE SAMAMBAIAS E LICÓFITAS POR ESPECTROMETRIA

DE MASSAS MALDI-TOF: ........................................................................................................................................ 36

Interação entre as hemiceluloses na parede celular e o acesso das enzimas aos polímeros: ............................ 49

Análises por regiões de origem da coleta: ......................................................................................................... 52

DISCUSSÃO GERAL E CONCLUSÕES: .................................................................................... 64

MANANOS E XILOGLUCANOS NAS PAREDES CELULARES DE SAMAMBAIAS E LICÓFITAS: .................................... 64

ANÁLISES POR AGRUPAMENTOS UTILIZANDO XILOGLUCANOS: ........................................................................... 66

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS: .......................................................................................... 70

ANEXOS: .......................................................................................................................................... 74

Agradecimentos:

À minha mãe, a pessoa mais importante da minha vida, pelo apoio e compreensão desde o

primeiro dia de faculdade, até o final dessa jornada acadêmica.

Ao meu noivo, João Henrique, por estar ao meu lado me apoiando e me ajudando o tempo

todo, tentando entender essa loucura que é a ciência.

Aos meus amigos, Mari, Marcelo, Andréa, Pinho e Aline que me ajudaram, me apoiaram,

tiraram dúvidas ou simplesmente me ouviram nos momentos mais difíceis.

A alguns amigos do grupo que sempre estiveram próximos dando grande apoio: Bruna,

Adriana Yepes, Maraba, Ivan, Leila, Adriana Grandis, Amanda, Paloma e Wanderley.

A todos da seção de Fisiologia e bioquímica da USP e do Botânico, pela amizade e

companheirismo, especialmente a Ana Maria por ter me ajudado na difícil transição para USP. E

também a todos da secretaria de pós-graduação.

Aos meus orientadores Marcos S. Buckeridge e Jefferson Prado e ao meu coorientador

Marco Aurélio Tiné, pela oportunidade e credibilidade, pelo apoio e orientação.

Ao professor Gregório Ceccantini pelo auxílio na coleta das plantas.

Ao Augusto Tomba, pela grande ajuda nas análises de agrupamento e ao professor Sérgio

Tadeu Meirelles pela ajuda na interpretação desses dados.

A todos os funcionários da Seção de Fisiologia e Bioquímica pela ajuda e pela amizade

que surgiu e que tornou mais agradável a rotina do laboratório.

À chefia do departamento pelo suporte.

Ao Prof. Marcus Pauly, pelas análises de Maldi-Tof, e a todos que conheci e que me

ajudaram na Michigan State University.

À Fapesp pelo suporte financeiro.

Resumo:

Todas as células vegetais possuem uma parede celular, cujos componentes principais são:

celulose, hemiceluloses e pectinas. A caracterização destes polímeros mostra que suas estruturas

são conservadas em Gimnospermae e Angiospermae. O objetivo deste trabalho foi analisar

comparativamente os polissacarídeos da parede celular de samambaias e licófitas e buscar

compreender o padrão de variação do xiloglucano nas plantas coletadas de acordo com a

filogenia mais recente para o grupo. Foram coletadas frondes estéreis de sessenta e sete espécies

de samambaias e licófitas em seis locais diferentes de coleta. Quinhentos miligramas de pó foram

extraídos com etanol, oxalato de amônio, NaOH 0,1M, 1M, 4M e 8M. As frações 4M e 8M

foram hidrolisadas com ácido sulfúrico e a composição de monossacarídeos determinada por

HPAEC-PAD (DIONEX). Com uma alíquota da fração NaOH 4M foi realizada uma metilação

de uma das espécies coletadas, em ambos os experimentos foram observadas porcentagens

significativas de manoses ligadas através dos carbonos 1 e 4 sugerindo que uma das

hemiceluloses presentes na parede celular dessas plantas seja um -1,4-manano. Quando as

paredes celulares intactas das espécies estudadas foram submetidas à hidrólise com xiloglucano

endoglucanase, não houve liberação de oligossacarídeos mesmo de parede de Adiantum

raddianum que apresentou comprovadamente xiloglucano. No entanto, oligossacarídeos de

xilolgucano foram liberados com celulase de Trichoderma. Com base nos dados, sugere-se que

mananos e xiloglucanos interajam entre si na parede celular de samambaias e licófitas, alterando

o padrão de ação das enzimas. Além dessa análise, foram utilizadas 10 mg do pó das frondes

estéreis para realização da análise de Maldi-Tof. O material foi previamente lavado com etanol e

clorofórmio:metanol (1:1) e submetido à digestão com celulase. Foi possível identificar picos

correspondentes aos oligossacarídeos de xiloglucano, além de outros picos que não puderam ser

identificados e que indicam a presença de outros polissacarídeos. A partir dos resultados obtidos

com a análise dos oligossacarídeos de xiloglucano através do Maldi-Tof, foi feita uma matriz de

correlações entre as sessenta e sete espécies além do padrão comparativo, jatobá, para obtenção

de um dendrograma que permitiu fazer uma análise de agrupamento das espécies estudadas.

Esses resultados mostram a presença de seis grandes grupos, de acordo com a presenças ou

ausência de oligossacarídeos em comum. Esses dados não são consistentes com a filogenia e por

este motivo concluiu-se que os oligossacarídeos de xiloglucano não são bons marcadores

taxonômicos, nos níveis hierárquicos de classe, ordem e famílias.

Abstract:

All plant cells are surrounded by a cell wall, whose main components are cellulose,

hemicelluloses and pectins. The characterization of these polymers shows that their structure is

conserved in Gimnospermae and Angiospermae. The objective of this work is to characterize

composition of the cell walls of ferns, and try to understand the structure of xylolgucan in plants

collected following the most recent phylogeny proposed for the group. Non reproductive leaves

were collected from 67 species in 6 different locations. Five hundred milligrams of powder from

these materials, was sequentially extracted with ethanol, ammonium oxalate, NaOH 0.1M, 1M,

4M and 8M, the 4M and 8M fractions were hydrolyzed with H

and the monosaccharide

composition was determined by HPAEC-PAD (DIONEX), with the 4M fraction a linkage

analysis was performed one of species. Both experiments presented significant percentage of

mannose, suggesting that one of the hemicelluloses present in the cell wall is a mannan. When

intact walls of ferns and licophytes were subjected to hydrolysis with a xylolgucan specific

enzyme (XEG- xyloglucan endoglucosidase) no release of oligosaccharides was observed.

However they were released after treatment with Trichoderma sp. cellulase, a less specific

enzyme that can release mannan oligosaccharides. Theses results suggest that xyloglucan and

mannan are probably interactivy in the corall composite, which profities the pattern of action of

these enzymes. In another experiment 10 mg of milled leaves were used to perform the Maldi-

Tof analyses. This material was washed with ethanol and chloroform:methanol (1:1). The

material was subjected to digestion with Trichoderma cellulase (Megazyme). Xyloglucan

oligosaccharides were identified in these samples and the composition of monosaccharides

showed that other polysaccharides were present. From the results obtained with the xylolgucan

analyses using Maldi-Tof, a dendogram was assembled with data from 67 species plus Hymenaea

courbaril (standard) with made possible the grouping analyses of all studied species. These

results show the presence of six groups, according with the presence or absence of

oligosaccharides. These data do not corroborate the phylogeny. Thus, xylolgucan seems not to be

makers for taxonomy of ferns and licophytes.

Introdução:

A Parede Celular:

Praticamente todas as células vegetais possuem uma parede celular. Esta estrutura é muito

dinâmica e complexa e está relacionada a diversos processos fisiológicos como dar forma e

tamanho às células, conferir resistência mecânica aos tecidos, controlar a expansão celular, atuar

sobre o transporte intercelular, participar da sinalização e do reconhecimento entre células,

armazenar compostos de reserva e moléculas reguladoras e sinalizadoras que controlam diversos

processos fisiológicos celulares, além de participar dos mecanismos de proteção contra

microorganismos (Darvill et al. 1992, Aldington & Fry 1993).

A composição dos monossacarídeos da parede é relativamente constante (Fry 1988; Brett

& Waldron 1996; Mc Neil et al. 1998). Eles são organizados em polissacarídeos como a celulose,

que é o principal composto das paredes celulares de plantas superiores. A celulose é um polímero

linear constituído por unidades de glucose, unidas entre si por ligações glicosídicas do tipo -

(1 4). As hemiceluloses são polímeros que interagem fortemente com a celulose. Dentre elas, as

mais comumente encontradas são os mananos, na maioria das vezes em tecidos de reserva, e

xiloglucanos, em paredes celulares primárias e também em tecidos de reserva.

Os xiloglucanos são polissacarídeos de reserva ou de parede primária (a parede que se

forma logo apos a divisão celular e ainda não se diferenciou em outro tipo de parede como as de

tecidos vasculares ou de reserva), que assim como a celulose, apresentam cadeia principal

composta de glucoses unidas entre si por ligações do tipo -(1 4), ramificada com ligações -

(1 6) por resíduos de xilose, ou ainda oligossacarídeos que contêm uma galactose ligada à

xilose. Os xiloglucanos de parede primária podem apresentar também resíduos de fucose ligados

a uma das galactoses. Porém, a fucosilação não ocorre no polissacarídeo de reserva (Buckeridge

et al. 2000 b). O xiloglucano apresenta ramificações em pontos específicos com a xilose -

(1 6), a qual se liga com a galactose -(1 2), e algumas galactoses no caso da parede primária

estão ligadas à fucose através de ligações glicosídicas do tipo -(1 6). As ramificações com

xilose são regulares, sendo que na maioria dos xiloglucanos uma a cada quatro ou cinco glucoses

não apresenta ramificações (Buckeridge et al. 2008 in ver anexo 4). Vale salientar que estes são

os únicos pontos na cadeia principal dos xiloglucanos que são acessíveis ao ataque de endo- -

glucanases, como as celulases.

Os mananos puros são polímeros constituídos por manoses, unidas através de ligações

glicosídicas do tipo -(1 4). Os mananos podem ser classificados como os galactomananos, que

possuem ramificações de galactose, ligadas à cadeia principal através de ligações glicosídicas do

tipo -(1 6), ou ainda os galactoglucomananos, que possuem a cadeia principal formada por

manoses intercaladas com glucose (geralmente duas moléculas de glucose para uma de manose),

ligadas através de ligações glicosídicas do tipo -(1 4), e ramificações de galactose com

ligações glicosídicas do tipo -(1 6).

A razão manose:galactose (que indica o grau de ramificação do galactomanano) e o

padrão de distribuição dos resíduos de galactose ao longo da cadeia de manose variam de espécie

para espécie em Angiospermas, sendo que estes são fatores que podem apresentar relevância

para estudos quimiotaxonômicos e evolutivos (Reid & Meier 1970; Buckeridge & Dietrich 1990;

Buckeridge et al. 1995).

Os glucuronoarabinoxilanos (GAX) são polímeros ácidos e possuem uma cadeia de

xiloses unidas por ligações do tipo -(1 4), ramificados com arabinose e com ácido

galacturônico. São característicos de monocotiledôneas e aparecem também na parede celular de

tecido vascular (xilema) (Buckeridge et al. 2008, anexo 4).

Outro grupo de polissacarídeos da parede celular é o das pectinas, que é constituído de

polímeros menos fortemente ligados à parede que as hemiceluloses e têm um caráter ácido. Além

desses polissacarídeos, a parede celular possui aproximadamente 10% de sua massa na forma de

proteínas, que podem ter a função estrutural (extensina, por exemplo) ou enzimática e estão

relacionadas com o metabolismo de polissacarídeos.

Em eudicotiledôneas e monocotiledôneas a composição da parede é relativamente

constante. As gramíneas (Poaceae) contêm os mesmos resíduos de monossacarídeos, mas tendem

a ter mais xilose e menos galactose, arabinose e fucose. Elas possuem duas importantes

modificações evolutivas. A primeira é a ocorrência dos glucuronoarabinoxilanos, que apresentam

ramificações com compostos fenólicos, os quais interagem com as microfibrilas de celulose,

compondo um dos domínios da parede. A segunda, característica das Poales, é a presença de

glucanos de cadeia mista do tipo -(1 3),(1 4), que aumentam durante alguns estágios

específicos do desenvolvimento (Carpita 1993), e ocorrem em toda a planta (Smith & Harris

1999, Buckeridge et al. 2004).

As gimnospermas tendem a ter paredes mais ricas em manose. As principais

hemiceluloses encontradas em parede celular secundária deste grupo de plantas são os

galactomananos e os arabinoxilanos ácidos (Bochicchio 2003). Em um trabalho realizado com

Araucaria angustifolia (Bertol.) Kuntze, uma gimnosperma, também foram encontradas

quantidades significativas de xiloglucano na parede primária, sendo as pectinas mais comuns os

homogalacturonanos. A parede celular de Araucaria angustifolia (Bertol.) Kuntze. tem

características típicas das paredes tipo I (Bochicchio 2003). Acebes, Moral & Zarra (1993)

investigaram um xiloglucano de hipocótilos de Pinus pinaster e sugeriram que essa hemicelulose

é mais próxima daquelas relatadas em dicotiledôneas do que em monocotiledôneas.

O primeiro modelo sugerindo um arranjo tridimensional desses polímeros foi proposto

pelo grupo de Peter Albersheim, em 1973 (Keesgtra et al. 1973) (Figura 1). Neste modelo, a

parede celular foi definida como uma rede de polímeros interligados covalentemente, formando

uma rede rígida que manteria as propriedades rígidas da parede celular. Nele, as microfibrilas de

celulose estariam em forte interação com o xiloglucano. Já se sabia naquela época que estes

polímeros eram similares à celulose, mas com cadeias laterais de xilose, galactose e/ou fucose.

No modelo de 1973, as proteínas foram colocadas como o centro de rigidez da parede e supunha-

se que a elas, todos os outros polímeros estariam ligados direta ou indiretamente, através de

ligações covalentes. O modelo permitiu aos fisiologistas inferirem explicações para o processo de

expansão celular e crescimento.

Figura 1. Modelo de parede celular proposto por

Keegstra et al. (1973). Note que no desenho os

autores mostram os componentes todos

interligados entre si.

Celulose

xiloglucano

Extensina com

cadeias laterais de

arabinose

Pectinas

Arabinano com cadeias

laterais de galactano

AGP tipo II ligado a serina

do HRGP

Seril não substituído

RG1

Nos 20 anos que se seguiram, vários autores buscaram encontrar as ligações covalentes

preconizadas pelo modelo, mas não foram encontradas evidências convincentes. Por este motivo,

o modelo de 1973 não sobreviveu, e em 1991, McCann & Roberts propuseram um novo modelo

(Figura 2). Nele, os autores aboliram a idéia de ligações covalentes e sugeriram que a parede

seria formada por três domínios estruturais independentes: o domínio celulose-hemicelulose, o

domínio das pectinas e o das proteínas. A idéia principal é que o domínio celulose-hemicelulose

estaria embebido em uma matriz péctica flexível. Alguns autores franceses sugeriram que a

parede celular seria uma superestrutura com propriedades de um cristal líquido (Roland & Vian

1979, Buckeridge, 2006). Nesse caso, grande parte das propriedades da parede seriam resultantes

da orientação espacial dos polímeros. Para chegar a este modelo McCann e Roberts (1991)

utilizaram um tipo de microscopia em que um contramolde de metal é feito sobre a superfície de

um bloco fraturado longitudinalmente através da parede celular. Os autores trataram os blocos

com carbonato de sódio e álcali diluído, e o exame microscópico das amostras assim tratadas

demonstrou que as pectinas podiam ser retiradas sem alterar a rede de polímeros formada pela

celulose e hemiceluloses. Isso foi usado como evidência de que as pectinas não apresentavam

ligações covalentes com o restante dos polímeros da parede celular. Com base nesses e outros

experimentos os autores propuseram que a parede seria um compósito descontínuo, formado por

três domínios estruturais independentes.

Parede

celular

Plasmalema

Lamela

média

Domínio de

pectinas

hemicelulose

fortemente

ligada à celulose

hemiceluloses

fracamente ligadas à

celulose

microfibrila de

celulose

Ligação cruzada entre

as microfibrilas

Figura 2. Modelo descontínuo da parede celular desenhado com base nas idéias propostas por

McCann & Roberts (1991), em que o domínio celulose-hemicelulose estaria embebido em uma

matriz péctica flexível.

Carpita & Gibeaut (1993) discutiram e aprofundaram a teoria dos três domínios (ou

matrizes) da parede celular. Os autores também propuseram que no reino vegetal as paredes

poderiam ser divididas em Tipos I e II. A divisão proposta nesse artigo foi baseada

principalmente na composição de hemiceluloses e na proporção entre as matrizes. Na parede

Tipo I o xiloglucano é a principal hemicelulose e as proporções de celulose, hemicelulose e

pectinas seriam de aproximadamente 30% cada, com cerca de 10% de proteínas. A parede do

Tipo II seria a parede característica das Poaceae. Esta parede, em contraposição à do tipo I,

apresenta um teor bem menor (quase zero em alguns casos) de pectinas e teores igualmente

baixos de xiloglucano. Nas paredes do Tipo II a principal hemicelulose é o arabinoxilano e há

também outro polissacarídeo chamado de -glucano ou glucano de ligação mista. Devido a essas

diferenças na proporção de polissacarídeos, as gramíneas (Poaceae) contêm os mesmos resíduos

de monossacarídeos, mas tendem a ter mais xilose e menos galactose, arabinose e fucose. As

gimnospermas tendem a ter paredes mais ricas em manose. As principais hemiceluloses

encontradas em parede celular secundárias desse grupo de plantas são os galactomananos e os

arabinoxilanos ácidos (Bochicchio 2003).

Licófitas e Samambaias:

As plantas vasculares estão divididas em duas grandes linhagens, representadas pelo clado

das licófitas e outro que inclui as eufilófitas, sendo este último subdividido em outros dois

grandes grupos, as monilófitas e as lignófitas. Acredita-se que esta divisão basal em licófita e

eufilófita ocorreu na metade do Devoniano, há cerca de 400 milhões de anos, sendo marcada por

uma variedade de aspectos morfológicos. Um dos mais relevantes é a presença de células

espermáticas multiflageladas nas eufilófitas, em oposição às células espermáticas biflageladas das

licófitas, com exceção de Isoetes e Phylloglossum (Raven et al. 2001).

As licófitas e samambaias atuais estão distribuídas nos clados das licófitas e monilófitas.

São dois grupos monofiléticos: Lycophyta (Lycopodiaceae, Selaginellaceae e Isoetaceae) e

Samambaias que inclui Psilotales (Psilotaceae), as Equisetales (Equisetaceae), Ophioglossales

(Ophioglossaceae), Marattiales (Marattiaceae), Marsileales (Salviniales e Marsileaceae) e

Salviniales (Salviniaceae) e as demais samambaias, (Pryer et al. 2001).

As samambaias são o primeiro grupo de plantas que conseguiu conquistar efetivamente o

ambiente terrestre devido a características como um sistema de fixação e absorção, presença de

rizomas; desenvolvimento de um sistema de condução, xilema e floema (neste a deposição de

lignina é de grande importância); presença de cutícula, que evita a dessecação excessiva,

presença de estômatos para as trocas gasosas; tecidos fotossintetizantes e esporos. Essas

características não surgiram necessariamente nas samambaias pela primeira vez, mas foram essas

características que possibilitaram que essas plantas dominassem o ambiente terrestre. A maioria

das samambaias e licófitas é homosporada, ou seja, produz apenas um tipo de esporo, que após

germinar dá origem a um gametófito bissexuado. O ciclo de vida dessas plantas apresenta uma

alternância de gerações (heteromorfas), na qual a geração esporofítica é a fase dominante e a

geração gametofítica é nutricionalmente independente da esporofítica (Raven et al. 2001).

As samambaias geralmente ocorrem em ambientes úmidos, ou sazonalmente úmidos, na

maioria das vezes em regiões tropicais, mas podem ocorrer ocasionalmente nas bordas de

desertos e também no ártico (algumas poucas espécies de Selaginella) (Judd at al. 2002).

Paredes celulares, taxonomia e evolução:

Existem relativamente poucos trabalhos que discutem a parede celular do ponto de vista

evolutivo. Os principais estudos foram feitos com sementes, que apresentam paredes enriquecidas

com um determinado polímero de reserva, o que simplifica sua estrutura. Bailey (1971) notou

que algumas leguminosas apresentavam galactomananos nas sementes e suas ramificações

pareciam ter um significado taxonômico.

A última avaliação dos galactomananos como marcadores taxonômicos e evolutivos foi

apresentada por Buckeridge et al. 2000b. Esses autores apresentaram uma separação de

subgrupos com base nos dados de Leguminosae que referendam a taxonomia do grupo baseada

em dados morfológicos. Espécies menos derivadas (Caesalpinioideae) apresentam

galactomananos com menor grau de ramificação com galactose do que espécies mais derivadas

em Faboideae. As Mimosoideae formam um grupo distinto das outras duas. Com base nesses

dados, Buckeridge et al. 2000b, propuseram que as paredes celulares das sementes de

Leguminosae teriam sido alteradas por mecanismos de transferência e intensificação de funções

nos moldes propostos por Darwin (1865) e posteriormente por Stebbins (1974).

Um trabalho de cunho taxonômico também foi publicado por Mayworm et al. (2000), que

examinaram polissacarídeos de paredes celulares de sementes de diversas espécies, os autores

mostraram que a composição dos polissacarídeos pode ser usada para separar espécies de

diferentes subfamílias de Vochysiaceae. Carpita (1996) e Smith & Harris (1999) utilizaram o

sistema de Dahlgren (1985) para comparar a composição e estrutura das paredes celulares de

monocotiledoneas. Utilizando parâmetros como a presença ou ausência de xiloglucano, de -

glucanos, proporção de pectinas e também presença ou não de autofluorescência, foi possível

mapear os polissacarídeos dos diferentes grupos de monocotiledôneas. Porém, pouco se sabe

sobre os fatores seletivos que provocaram as mudanças observadas.

Em relação aos estudos de paredes celulares primárias de plantas superiores, há um

número relativamente pequeno de estudos que contemplam a diversidade estrutural e funcional

dos polímeros. A maioria do que se sabe é derivada de estudos com plantas de importância

econômica, principalmente do ponto de vista do uso em agricultura. Ainda assim, o

conhecimento disponível permitiu agrupamentos que vêm possibilitando compreender melhor

como a parede celular das plantas foi moldada ao longo da evolução (Bailey, 1971).

Um ponto de vista é que as samambaias e licófitas tornaram-se relativamente menos

importantes no planeta devido ao grande sucesso das angiospermas durante o período Cretáceo

(cerca de 160 milhões de anos) (Niklas 1997). No entanto, descobertas recentes sugerem que as

samambaias atuais são o resultado de uma diversificação mais recente, que ocorreu ―à sombra‖

das angiospermas (Schneider et al. 2004). Apesar de possuírem ancestrais comuns no passado

longínquo a partir do Devoniano, há 400 milhões de anos, o principal período de diversificação

das samambaias e licófitas foi na segunda metade do Cretáceo, a partir de 100 milhões de anos e

ocorreu paralelamente à diversificação das angiospermas (Schneider et al. 2004).

A maior parcela do conhecimento existente sobre a composição das paredes celulares de

plantas vasculares está baseada nos grupos atuais de angiospermas, isto é, presentes no planeta

durante os últimos 100 milhões de anos. Perdem-se, com isso, informações importantes relativas

ao processo cumulativo que resultou nas paredes celulares das plantas vasculares durante cerca de

470 milhões de anos da história das plantas, durante os quais as samambaias e licófitas foram de

grande importância (Niklas 1997 e Schneider et al. 2004).

A tabela 1 mostra os principais componentes da parede celular conhecidos. Os

componentes foram distribuídos conforme os grandes grupos de organismos e nota-se que em

todos eles a celulose está presente. Este parece, portanto, ser um composto essencial para

qualquer tipo de parede. O que parece variar são as hemiceluloses e as pectinas. Em plantas

superiores, aparentemente, todas as células parecem apresentar algum xiloglucano, mas em

monocotiledôneas em proporção bem menor (Carpita, 1996).

Existem apenas alguns estudos com polissacarídeos de tecidos lignificados de

espermatófitas e poucos estudos sobre samambaias e licófitas, e briófitas (Bremner e Wilkie

1971, Fry 2003). Fry (2003) realizou um trabalho com algas e briófitas, tratando da evolução da

parede primária desses grupos e comparou seus resultados com os obtidos para plantas

vasculares. Ele encontrou xiloglucano, e detectou ácido galacturônico e manose em todas as

briófitas analisadas. Em outro trabalho realizado por Fry (2004), foi detectada em algumas algas,

briófitas e licófitas a presença de um açúcar incomum, identificado como 3-O-metil-ramnose. Em

um estudo feito com Pteridium aquilinum (L.) Kuhn, uma samambaia, o principal polissacarídeo

encontrado foi um galactomanano (Bremner & Wilkie 1971).

Tabela 1. Composição descrita da parede celular de diferentes grupos taxonômicos vegetais.

Grupos de organismos

Principais polissacarideos encontrados

Bactérias

Celulose, ácido teicoico e lipopolissacarídeos.

Fungos

Celulose, (1-3,1-6) beta-Glucanos, alfa (1,4) mananos, quitina,

quitosano.

Algas

Celulose, galactanos com diferentes graus de sulfatação (agar,

carragenano, furcelarano)

Briófitas

Celulose, açúcares incomuns como MeRha, RGII

Samambaias e licófitas*

Celulose, galactomanano e xiloglucano.

Eudicotiledôneas

Celulose, xiloglucanos, mananos, arabinogalactanos, ácido

poligalacturônico.

Monocotiledôneas

Celulose, arabinoxilanos, mananos, glucoarabinogalactanos e -

glucanos.

* Utilizando os dados de Silva, 2005.

Matsunaga et al. (2004), examinaram a presença de um dos componentes das pectinas

(Ramnogalacturonano II) na parede celular sob o ponto de vista da evolução em plantas

vasculares, incluindo samambaias e licófitas. Até então, havia uma lacuna no estudo da parede

celular dessas plantas sob o ponto de vista filogenético e/ou evolutivo e que, portanto,

comparasse várias espécies escolhidas por critérios taxonômicos.

De acordo com Pryer et al. (2001), a maioria dos 470 milhões de anos da história das

plantas em nosso planeta pertence às pteridófitas, que só cederam ao domínio das espermatófitas

há cerca de 90 milhões de anos. Apesar da sua importância, não foi possível encontrar trabalhos

em que as paredes celulares de samambaias e licófitas tenham sido analisadas com a coleta

sistemática de espécies conforme o que se conhece sobre a filogenia do grupo.

Recentemente, Silva (2005) examinou em detalhe, através de fracionamento com álcali e

análises de monossacarídeos, as paredes celulares de 11 espécies de samambaias e licófitas. Com

os dados de composição monossacarídica, foi feito um estudo de agrupamento visando comparar

as espécies, que haviam sido coletadas estrategicamente para tentar avaliar a possibilidade de que

a composição variasse conforme a filogenia. A autora verificou que os dados não corroboravam a

filogenia proposta por Pryer et al. (2001), mas que as espécies se agrupavam de acordo com

diferenças fundamentais na composição de suas paredes. Houve a separação de dois grupos, um

deles rico em mananos (H1) e outro rico em xiloglucanos (H2). Este trabalho levantou a hipótese

de que apesar de haver um agrupamento que possibilita distinguir as paredes das folhas de

diferentes espécies, este não referenda a classificação feita com base em dados morfológicos e

moleculares (Pryer et al. 2001-Figura 3) e que outros fatores, como pressões ambientais,

poderiam estar relacionados com estas diferenças. No entanto, como o número de espécies então

analisado era relativamente pequeno para ter certeza das conclusões, o presente trabalho foi

direcionado para examinar um dos grupos de hemiceluloses e tentar verificar se as alterações

estruturais poderiam ou não estar relacionadas à filogenia das samambaias e licófitas.

Figura 3 – Relações filogenéticas para todas as principais linhagens de plantas vasculares

inferidas através de análise de máxima verossimilhança com base nos segmentos dos genes rbcL,

atpB, rps4 e rRNA (adaptado de Pryer et al. 2001).

O grupo escolhido foi o dos xiloglucanos. Esta escolha foi norteada pelo fato de que os

xiloglucanos apresentam características estruturais bastante peculiares e relativamente bem

conhecidas. Ao serem hidrolisados com celulase, eles formam oligossacarídeos característicos,

compostos por 4 ou 5 glucoses na cadeia principal (ver detalhes sobre as ligações glicosídicas

acima). Um sistema de classificação dos oligossacarídeos de xiloglucano foi proposto por Fry et

al. (1993). Os nomes atualmente utilizados são listados abaixo:

- Glucoses sem ramificaçãos: G

- Glucoses ramificadas com xilose: X

- Glucoses ramificadas com xilose e galactose: L

- Glucoses ramificadas com xilose, galactose e fucose: F.

Outros tipos de ramificações têm outros códigos, mas estes são os que serão relevantes

neste trabalho.

Os xiloglucanos possuem uma combinação destes motivos estruturais bastante

característicos. Em eudicotiledoneas, em geral a hidrólise do xiloglucano leva à produção de

misturas de oligossacarídeos como XXXG, XLXG, XXLG, XLLG, XXFG. Eles ocorrem em

diferentes proporções, dependendo da planta e do tecido vegetal que se examina. A combinação

de oligossacarídeos que são encontrados em um dado tecido ou espécie é chamada de estrutura

fina do xiloglucano.

Em tecidos de reserva, por exemplo, não se observa a presença de fucose e em espécies

como Tropaeolum majus, Tamarindus indica e Copaifera langsdorffii, a hidrólise com celulase

fúngica leva à produção de uma mistura de XXXG, XLXG, XXLG e XLLG apenas (Buckeridge

et al. 1992). Nesse trabalho, os autores analisaram os xiloglucanos de sementes provenientes de

diferentes populações de C. langsdorffii (da mata e do cerrado) e verificaram que a estrutura fina

do xiloglucano de reserva das sementes desses dois biomas é distinta, denotando que variações

ambientais poderiam influenciar nas características estruturais do xiloglucano.

Em 1997, Buckeridge e colaboradores encontraram em sementes de jatobá (Hymenaea

courbaril) uma nova família de oligossacarídeos que tem como base o XXXXG, ou seja, com

cinco, ao invés de quatro glucoses na cadeia principal. A estrutura fina do xiloglucano de jatobá

tem sido estudada em profundidade (Tiné et al. 2006), sendo inclusive proposto que os

xiloglucanos tenham combinações de oligossacarídeos que codifiquem suas funções na parede.

Até o presente apenas espécies do gênero Hymenaea apresentaram estes oligossacarídeos,

podendo assim ser utilizado para caracterizar o grupo taxonômico dentro de Leguminosae.

Em paredes celulares de tecidos vegetativos, como folhas e hipocótilos, os xiloglucanos

geralmente apresentam fucose em sua composição. A presença de fucose leva à detecção dos

oligossacarídeos XXFG, XLFG principalmente (Vincken et al. 1997). Os autores mencionam que

xiloglucanos que não tenham sido extraídos com álcali podem revelar acetilação nas posições 2, 3

e 6 da galactose do XXFG e do XLFG.

Objetivos:

Estudar a composição e estrutura das hemiceluloses da parede celular de samambaias e

licófitas coletadas de acordo com a filogenia mais recente para o grupo proposta por Pryer et al.

2001 e Smith et al. 2006 com vistas a correlacionar este padrão com a filogenia e/ou com

características ambientais e funcionais.

Material e Métodos:

Material vegetal:

Tendo como base a filogenia de samambaias apresentada no trabalho de Pryer et al.

(2001) (Figura 3), foram selecionadas as espécies para o presente estudo sobre a parede celular.

As espécies são provenientes das seguintes localidades: Parque Estadual das Fontes do Ipiranga,

PEFI (São Paulo, SP); mata nativa do Jardim Botânico de Bauru (Bauru, SP); da Reserva de

Cauaia, Lapa do Santo e Fazenda Castelo da Jaguara (Matozinhos, MG); da Reserva Particular do

Patrimônio Natural ―El Nagnal‖, RPPN (Magé, RJ); do Parque Natural dos Aparados da Serra

(Cambará do Sul, RS); da região de São José do Rio Preto, SP e Sorocaba, SP. As espécies, com

suas respectivas famílias e número de coletor, estão listadas na tabela 2-7, abaixo. Os espécimes

testemunhos estão depositados nos Herbários do Instituto de Botânica (SP) e no Departamento de

Botânica da USP (SPF). A identificação do material coletado foi realizada com base nos

trabalhos de Prado (2004 a, b, c) e Tryon & Stolze (1989 a, b).

Tabela 2 - Primeira coleta de frondes estéreis de samambaiase licófitas, realizada no PEFI

(Parque Estadual das Fontes do Ipiranga), reserva de Mata Atlântica.

Plantas

coletadas

Nome e N. de

Coletor

Família

Espécie

Prado 1604

Gleicheniaceae

Gleichenella pectinata (Willd.) Ching

Prado 1605

Gleicheniaceae

Sticherus bifidus (Willd.) Ching

Prado 1606

Polypodiaceae

Serpocaulon catharinae (Langsd. & Fisch.) A. R. Sm.

Prado 1607

Cyatheaceae

Cyathea delgadii Sternb.

Prado 1608

Blechnaceae

Blechnum brasiliense Desv.

Prado 1609

Cyatheaceae

Cyathea corcovadensis (Raddi) Domin

Prado 1610

Dryopteridaceae

Lomagramma guianensis (Aubl.) Ching

Prado 1611

Dicksoniaceae

Lophosoria quadripinnata (J. F. Gmel) C. Chr.

Prado 1612

Pteridaceae

Pteris decurrens C. Presl

Prado 1613

Dryopteridaceae

Polybotrya cylindrica Kaulf.

Prado 1614

Woodsiaceae

Deparia petersenii (Kunze) M. Kato

Prado 1615

Pteridaceae

Pteris splendens Kaulf.

Prado 1616

Dryopteridaceae

Megalastrum connexum (Kaulf.) A. R. Sm & R. C. Moran

Prado 1617

Dryopteridaceae

Ctenitis aspidioides (C. Presl) Copel.

Prado 1618

Polypodiaceae

Campyloneurum major (Hieron. ex Hicken) Lellinger

Prado 1619

Aspleniaceae

Asplenium gastonis Fée

Prado 1620

Dryopteridaceae

Lastreopsis amplissima (C. Presl) Tindale

Prado 1621

Blechnaceae

Blechnum binervatum subsp. acutum (Desv.) R. M. Tryon

& Stolze

Prado 1622

Blechnaceae

Blechnum occidentale L.

Prado 1623

Dennstaedtiaceae

Pteridium arachnoideum (Kaulf.) Maxon

Prado 1624

Polypodiaceae

Microgramma vacciniifolia (Langsd. & Fisco.) Copel.

Prado 1625

Polypodiaceae

Pleopeltis hirsutissima (Raddi) de la Sota

Prado 1626

Blechnaceae

Salpichlaena volubilis (Kaulf.) Hook.

Tabela 3 - Segunda coleta de frondes estéreis de samambaias e licófitas, realizada na região do

Jardim Botânico de Bauru. Reserva de mata de cerrado e mata pluvial decídua.

Tabela 4 - Terceira coleta de frondes estéreis de samambaias e licófitas, realizada em

Matozinhos, MG. Reserva Cauaia, Lapa do Santo e Fazenda Castelo da Jaguara. Reserva de

mata ciliar e cerrado.

Plantas

coletadas

Nome e N. de

coletor

Família

Espécie

Ceccantini 2953

Lygodiaceae

Lygodium venustum Sw.

Ceccantini 2959

Thelypteridaceae

Macrothelypteris torresiana (Gaudich.) Ching

Ceccantini 2960

Pteridaceae

Adiantum deflectens Mart.

Ceccantini 3010

Pteridaceae

Adiantopsis chlorophylla (Sw.) Fée

Ceccantini 3011

Pteridaceae

Pteris vittata L.

Ceccantini 3014

Pteridaceae

Pteris denticulata Sw.

Ceccantini 3015

Pteridaceae

Hemionitis tomentosa (Lam.) Raddi

Ceccantini 3022

Polypodiaceae

Pecluma plumula (Humb. & Bonpl. ex Willd.) M.G. Price

Plantas

coletadas

Nome e N. de

coletor

Família

Espécie

Prado 1632

Polypodiaceae

Serpocaulon latipes (Langsd. & Fisch.) A. R. Sm.

Prado 1633

Polypodiaceae

Pleopeltis polypodioides (L.) E. G. Andrews & Windham

Prado 1634

Thelypteridaceae

Thelypteris interrupta (Willd.) K. Iwats.

Prado 1635

Thelypteridaceae

Thelypteris conspersa (Schrad.) A. R. Sm.

Prado 1636

Thelypteridaceae

Thelypteris opposita (Vahl) Ching

Prado 1638

Dryopteridaceae

Polybotrya goyazensis Brade

Prado 1639

Polypodiaceae

Microgramma lindbergii (Mett.) de la Sota

Prado 1640

Pteridaceae

Adiantum serratodentatum Willd.

Prado 1641

Polypodiaceae

Pecluma paradiseae (Langsd. & Fisch.) M. G. Price

Prado 1642

Dryopteridaceae

Cyclodium meniscioides (Willd.) C. Presl

Prado 1643

Thelypteridaceae

Thelypteris biformata (Rosenst.) R. M. Tryon

Prado 1644

Thelypteridaceae

Thelypteris longifolia (Desv.) R. M. Tryon

Prado 1647

Pteridaceae

Doryopteris lomariacea Klotzsch

Prado 1650

Blechnaceae

Blechnum imperiale (Fée & Glaziou) H. Christ

Prado 1651

Blechnaceae

Blechnum regnellianum (Kunze) C. Chr.

Prado 1652

Pteridaceae

Doryopteris concolor (Langsd. & Fisch.) J. Sm.

Tabela 5 - Quarta coleta de frondes estéreis de samambaias e licófitas, realizada em Magé, RJ.

RPPN (Reserva Particular do Patrimônio Natural ―El Nagnal‖). Reserva de Mata Atlântica.

Tabela 6 - Quinta coleta de frondes estéreis de samambaias e licófitas, realizada em Cambará do

Sul, RS no Parque Natural dos Aparados da Serra. Reserva de Floresta de Araucária, campos e

floresta pluvial atlântica.

Plantas

coletadas

Nome e N. de

coletor

Família

Espécie

Ceccantini 3067

Pteridaceae

Acrostichum danaeifolium Langsd. & Fisch.

Ceccantini 3075

Polypodiaceae

Serpocaulon meniscifolium (Langsd. & Fisch.) A. R. Sm.

Ceccantini 3082

Dryopteridaceae

Elaphoglossum iguapense Brade

Ceccantini 3083

Dryopteridaceae

Bolbitis serratifolia Schott

Ceccantini 3084

Dryopteridaceae

Olfersia cervina (L.) Kunze

Ceccantini 3085

Anemiaceae

Anemia mandioccana Raddi

Ceccantini 3086

Tectariaceae

Tectaria incisa Cav.

Ceccantini 3088

Hymenophyllaceae

Hymenophyllum polyanthos (Sw.) Sw.

Ceccantini 3089

Hymenophyllaceae

Trichomanes rigidum Sw.

Ceccantini 3090

Selaginellaceae

Selaginella valida Alston

Ceccantini 3091

Selaginellaceae

Selaginella decomposita Spring

Ceccantini 3092

Aspleniaceae

Asplenium triquetum N. Murak & R. C. Moran

Plantas

coletadas

Nome e N. de

coletor

Família

Espécie

Bezerra da Silva 1

Gleicheniaceae

Dicranopteris linearis (Burm. f.) Underw.

Bezerra da Silva 2

Lycopodiaceae

Lycopodium clavatum L.

Bezerra da Silva 3

Dryopteridaceae

Rumohra adiantiformis (G. Forst.) Ching

Tabela 7 - Sexta coleta de frondes estéreis de samambaias e licófitas, realizada na região de São

José do Rio Preto, SP, com exceção de Alsophila setosa, coletada em Sorocaba. Reservas de mata

seca semi-decídua.

As frondes foram lavadas com água corrente, secas com papel absorvente, pesadas,

congeladas em nitrogênio líquidas, e secas em liofilizador, antes da obtenção do pó em moinho

manual de facas IKA A11 basic. As fibras das nervuras foram separadas para que fosse extraído o

material mais rico em parede celular primária do mesofilo, evitando ao máximo utilizar material

dos tecidos vasculares. O material pulverizado foi passado por uma peneira para minimizar a

interferência das fibras.

Fracionamento da parede celular:

A metodologia de fracionamento foi desenvolvida a partir do procedimento de

Gorshkova et al. (1996). O acerto do procedimento foi feito inicialmente com algumas espécies

para a melhor adaptação possível aos materiais de samambaias e licófitas. O fracionamento da

parede celular foi feito a partir de 500 mg de material vegetal seco e moído.

Extração de açúcares solúveis:

Foram pesados os tubos vazios e neles colocados os pós das frondes. Foram feitas quatro

extrações sucessivas de açúcares solúveis com etanol 80% por 20 minutos sob agitação. O

material foi centrifugado a 1000g durante 40 min a 15° C (centrífuga Sorvall e rotor HS-4), o

sobrenadante foi descartado e o precipitado foi lavado três vezes com água destilada, seco no

liofilizador e pesado.

Plantas

coletadas

Nome e N. de

coletor

Família

Espécie

Prado 1689

Cyatheaceae

Alsophila setosa Kaulf.

Prado 1712

Dennstaedtaceae

Dennstaedtia obtusifolia (Willd.) T. Moore.

Prado 1721

Pteridaceae

Adiantum abscissum Schrad.

Prado 1763

Pteridaceae

Adiantopsis radiata (L.) Fee

Prado 1767

Aspleniaceae

Asplenium otites Link

Extração de amido:

Trinta e cinco mililitros de DMSO 90% foram adicionados ao material vegetal

previamente submetido à extração de açúcares. Foram feitas duas extrações com DMSO 90%, a

primeira durante cinco horas e a segunda, overnight, sempre sob agitação constante. Após essa

extração o material foi centrifugado nas mesmas condições descritas acima, os sobrenadantes

foram descartados e o precipitado lavado três vezes com água destilada. Novamente o

precipitado foi seco em liofilizador e pesado.

Extração de pectinas:

Essa extração foi feita adicionando-se 40 mL de oxalato de amônio 0,5% (p/v) para os

500 mg iniciais de pó. O material foi incubado por 1h com agitação constante a 80° C (quatro

vezes). Terminada a extração foi levado à centrífuga, o sobrenadante foi descartado e o resíduo

lavado três vezes com água destilada, seco e pesado.

Fracionamento da parede celular com NaOH:

Foram adicionados aos tubos 20 mL de solução NaOH 0,1M com NaBH

(3 mg/ml). As

amostras permaneceram em agitação por 1h à temperatura ambiente. Esse procedimento foi

repetido mais duas vezes. O precitado foi lavado de três a quatro vezes em água destilada, seco

no liofilizador e pesado. Posteriormente essa extração foi feita da mesma maneira com NaOH

1M, 4M e 8M. Para análise de hemiceluloses os sobrenadantes das frações 4M e 8M foram,

neutralizados, e dialisados contra água corrente durante 24 horas e depois foram efetuadas de

três a cinco trocas com água destilada. Esse sobrenadante das frações 4 e 8M foram secos em

liofilizador para posterior análise em HPLC.

Ao final desse procedimento apenas as frações NaOH 4M e NaOH 8M foram reservadas

para posterior análise.

Hidrólise ácida:

O polissacarídeo obtido com esse fracionamento descrito acima foi submetido a uma

diálise e liofilização.

Cinco miligramas do material liofilizado das extrações NaOH 4M e NaOH 8M foram

retiradas para hidrólise. Esse material foi colocado em tubos de ensaio de vidro com 100 L de

72% p/p e levado ao banho-maria por 45 minutos a 30° C para pré-hidrólise.

Posteriormente foi acrescentado 1 mL de água destilada e levado para autoclave por 1 hora.

Ao final desse processo as amostras foram neutralizadas e passadas em coluna de troca

iônica Dowex.

Análise de monossacarídeos em HPLC:

Os monossacarídeos resultantes da hidrólise ácida foram analisados por cromatografia de

troca iônica com detector de pulso amperométrico (DIONEX, USA) em coluna Carbo Pac PA-1.

A separação foi feita em 60 minutos, com água, tendo um pulso, nos primeiros 2 minutos, de

NaOH 20 mM e um fluxo de 1mL/min. Foi utilizada pós-coluna com NaOH 500 mM e fluxo de

0,5 mL/min.

Metilação:

Uma alíquota da fração NAOH 4M de 5mg do pó liofilizado da fração extraída com

NaOH 4M de Adiantum raddianum foi solubilizada em 1mL de Na

100 mM pH 4,6 com

agitação por 1 hora. Após este período, 0,3 g de 1-Ciclohexil-3-(2-morfolinoetil) carbodiimida

meta-p-toluenosulfonato 95% (Aldrich C106402) foram adicionados e a solução foi incubada por

mais 1 hora a temperatura ambiente. A amostra foi então resfriada e o pH conferido (4,75). Com

este procedimento, as carboxilas das pectinas foram reduzidas a álcool, transformando assim as

unidades de ácido galacturônico e glucurônico das pectinas em galactose e glucose

respectivamente. O material foi dialisado por 24 horas com água destilada e, em seguida,

liofilizado. O polissacarídeo duplamente reduzido e seco foi armazenado à vácuo com pentóxido

de fósforo em um dessecador em tubos Corex de borosilicato por 3 horas. Em seguida, o material

seco foi incubado com 1 mL de DMSO (dimetil sulfóxido) por 1 hora. Um mL de butilítio foi

adicionado cuidadosamente mantendo-se uma atmosfera de argônio em sistema aberto em cada

um dos tubos. Este é um íon forte que promove a ionização das hidroxilas livres dos carboidratos.

Estas hidroxilas foram metiladas com a adição de 1 mL de iodeto de metila (CH

I) (Gibeaut &

Carpita 1991).

Após esse procedimento o material foi hidrolisado com ácido trifluoracético (TFA) 1M

por 2h e em seguida reduzido com boroidreto de sódio (NaBH

). O excesso de boroidreto de

sódio foi retirado com adição de ácido acético glacial que forma acetato de sódio e gás

hidrogênio. Finalmente, o material foi acetilado por incubação com anidrido acético (1 mL) e

Piridina (0,1 mL), tornando os compostos em alditois acetatos metilados, os quais são compostos

voláteis que foram analisados por Cromatografia Gás-Líquido com detecção por espectrometria

de massas GC-MS da Agilent (Carpita & Shea 1989). As fragmentações obtidas na

espectrometria de massas e os tempos de retenção foram interpretados com auxílio do Prof. Nick

Carpita do Department of Botany and Plant Pathology da Universidade de Purdue.

Além disso, 1 mg do mesmo material foi submetido à hidrólise ácida com TFA 1M por 3

horas e os monossacarídeos livres foram acetilados como descrito acima. Este procedimento

permitiu avaliar a composição de monossacarídeos.

Análises por espectrometria de massas Maldi-Tof:

Amostras de pó de folhas (10 mg) foram submetidas à extração com 1 mL etanol 70% a

temperatura ambiente (3 vezes) seguido de lavagens com uma mistura de clorofórmio metanol

(1:1) até que toda a pigmentação fosse retirada (em média de seis a oito lavagens). O precipitado

foi seco por liofilização em Speedvac.

Alíquotas de 1mg de cada amostra foram submetidas à lavagem com 50 L de tampão

acetato de amônio 1M, pH 4,5 + 950 l de água milli-Q. A mistura foi fervida por 15 minutos, o

sobrenadante foi descartado e o precipitado foi lavado com o mesmo tampão, sem fervura. Ao

precipitado foi adicionada a enzima xiloglucano endo-glucanase, em um primeiro teste e

posteriormente, num segundo teste, foi adicionada celulase Megazyme (4 L contendo 0,2U), 5

L de acetato de amônio 1M pH 4,5, 5 L de azida sódica e 86 L de água deionizada (milli-Q).

A incubação foi feita a 37

C por 15 horas com agitação constante. Após centrifugação a 14000g,

20 L do sobrenadante da reação foram retirados e submetidos a um tratamento com resina de

troca aniônica para que somente os cátions ficassem presentes, ionizando os oligossacarídeos.

Após contato com a resina durante 15 minutos, a placa de Maldi-Tof foi preparada através da

aplicação de 2 L de ácido 2,5-dihidroxi benzóico. Após secagem a vácuo, 2 L dos

oligossacarídeos obtidos pela ação enzimática e tratamento com a resina aniônica, foram

aplicados em placa sobre os mesmos pontos na matriz. Todo o processo de aplicação dos

oligossacarídeos nunca excedeu 3 minutos e após este período foi seco à vácuo por 2 minutos. A

matriz foi analisada em um espectrômetro da Shimadzu Biotech Axima CFRPlus.

Após a fragmentação, os dados foram analisados em software da Shimadzu Biotech

MALDI-MS. Os dados quantitativos relativos às massas relevantes para a estrutura do

xiloglucano foram transferidos para o programa MS Excel e expressos em gráficos de barra.

Os oligossacarídeos são detectados por intensidade medida em Milivolt. Apesar de o

equipamento ter detectado vários outros picos, que não foi possível identificar, consideramos a

soma das intensidades correspondentes aos picos dos oligossacarídeos citados, como 100%. É

importante lembrar que a composição da parede celular dessas plantas possui outros picos

correspondentes a outras substâncias, dando margem à continuidade desse estudo sobre

polissacarídeos de samambaias e licófitas.

Análise de agrupamento:

Para o tratamento dos dados foi desenvolvida uma matriz de correlações entre as 67

espécies e o padrão comparativo, jatobá (Hymenaea courbaril), que foram investigadas quanto à

composição dos polissacarídeos de parede celular primária, utilizando os dados de

oligossacarídeos obtidos com a análise de Maldi-tof.

As análises de agrupamento foram conduzidas por meio da construção de uma matriz

binária, onde o ―0‖ atesta ausência dos oligossacarídeos e o ―1‖ atesta a presença, tendo sido

construído um dendograma a partir do cálculo dos coeficientes de Jaccard, fazendo uso do

algoritmo do vizinho mais distante, a partir disso, procedeu-se com uma análise de agrupamento,

fazendo uso do pacote estatístico R project.

As matrizes geradas e as linhas de comando estão disponíveis à consulta na seção de

anexos desta tese.

Resultados & Discussão:

Parte I- Análises da parede celular de 17 espécies selecionadas:

Foram estudadas 67 espécies de samambaias e licófitas. Das espécies coletadas, 17 (ca.

25%) foram selecionadas para extração completa de parede celular.

Para interpretar os resultados obtidos, partiu-se do princípio que na parede celular de

samambaias e licófitas temos os mesmos padrões de ligações glicosídicas encontrados em

polissacarídeos que ocorrem em Spermatophyta. De fato, nossos dados do trabalho anterior a este

(Silva et al. submetido Anexo) dão suporte a esta hipótese. Além disso, tal observação tem sido

confirmada pela literatura (ver introdução) e agora também confirmada para as hemiceluloses de

Adiantum raddianum (Silva et al, submetido – anexo 3 – tabela 10).

Na Tabela 8, observam-se os rendimentos expressos em miligramas e em porcentagem, da

parede celular obtida com o fracionamento completo. Como o objetivo do projeto é também

investigar mais profundamente as hemiceluloses, somente as frações 4 e 8M foram dialisadas e

liofilizadas para posterior análise em HPAEC.

Tabela 8 - Rendimento expresso em miligramas e em porcentagem. Os números destacados em

vermelho mostram as espécies que possuem praticamente o dobro do rendimento na fração 4M,

em azul as espécies que possuem o rendimento da fração 8M com praticamente o dobro do

rendimento em relação à 4M, e as em preto espécies com rendimentos semelhantes.

Espécies

NaOH 4M

NaOH 8M

razão

4M/8M

Cyathea delgadii

26,8

8,85

7,8

2,58

3,43

Cyclodium meniscioides

14,9

4,64

8,4

2,62

1,77

Hemionitis tomentosa

9,2

6,28

7,6

5,19

1,21

Hymenophyllum polyanthos

9,2

5,70

7,6

4,45

1,28

Lastreopsis amplíssima

24,5

7,65

22,8

7,12

1,07

Lomagramma guianensis

36,2

12,44

4,1

1,41

8,82

Lophosoria quadripinnata

17,1

4,97

8,4

2,44

2,04

Lygodium venustum

21,0

6,43

10,3

3,15

2,04

Pecluma plúmula

22,3

9,26

12,0

4,98

1,86

Polybotyia goyazensis

14,3

4,60

16,9

5,43

0,85

Serpocaulon catharinae

24,4

7,47

15,7

4,80

1,56

Pteris splendens

27,1

8,05

7,6

2,26

3,56

Sticherus bifidus

13,6

4,71

11,2

3,87

1,22

Tectaria incisa

21,0

8,17

10,3

8,17

1,00

Thelypteris longifolia

29,0

10,16

5,4

1,89

5,38

Thelypteris opposita

23,4

9,17

4,3

1,68

5,46

Trichomanes rigidum

22,3

4,24

12,0

9,04

0,47

MÉDIA

7,2

10,1

4,2

1,73

Máximo

36,2

12,4

22,8

9,1

8,82

Mínimo

9,2

4,2

4,1

1,4

0,47

DESVIO PADRÃO

7,2

2,3

4,8

2,3

2.2

O rendimento das hemiceluloses mostrado na Tabela 8 foi obtido a partir do peso após as

extrações de açúcares solúveis e amido, ou seja, foram considerados 100% de parede celular,

apenas os rendimentos de pectinas, hemiceluloses e celulose.

Até o momento, 17 espécies foram analisadas e os rendimentos após fracionamento com

NaOH deram resultados cujas médias se aproximam de 7 e 4% de rendimento para NaOH 4 e 8M

respectivamente. Estes dados contêm um alto nível de variação quando analisados

comparativamente, mas através dos valores máximos observados pode-se concluir que as

hemiceluloses podem chegar a cerca de 20% da parede celular no máximo e cerca de 5%, em

média, no mínimo. Das 17 espécies analisadas 6 (ca. 35% - em preto na coluna 4M/8M da Tabela

8) apresentaram o rendimento em NaOH 8M similar ao de 4M. Pode-se observar ainda que a

fração NaOH 4M apresentou um rendimento relativamente maior do que em NaOH 8M, sendo a

primeira, em média, o dobro da segunda. Isto provavelmente significa que a maior parte das

hemiceluloses é extraída nessa etapa do fracionamento, com exceção de Lastreopsis amplissima,

que teve os rendimentos das frações 4 e 8M muito semelhantes.

Análises de monossacarídeos:

A Tabela 9 mostra as análises de monossacarídeos das espécies selecionadas e cujas

paredes celulares foram fracionadas com NaOH. Os dados analisados foram os das frações 4M e

8M que constituem as hemiceluloses. Tentamos encontrar correlações entre os rendimentos e a

composição de monossacarídeos. Isto foi feito porque inicialmente levantamos a hipótese de que

os 35% (em negrito na Tabela 8) das espécies em que se encontraram proporções relativamente

maiores de hemiceluloses na fração 8M poderia se correlacionar com a presença de vasos

condutores, que segundo se aceita amplamente, deveria apresentar maior teor de xilose, uma vez

que os xilanos são os polímeros que são detectados em células do xilema e fibras juntamente com

altos teores de celulose.

No entanto, não foi encontrada correlação clara entre os teores de xilose na fração 4M e as

razões 4M/8M de rendimento para as espécies. Testes para correlações com os demais açúcares

foram efetuados. Porém somente um deles se mostrou com uma tendência digna de nota.

A Figura 4 mostra uma proposta hipotética de correlações entre os teores de manose na

fração 4M e as razões 4M/8M dos rendimentos. O significado destas razões é que quanto

menores elas são, maior seria a força com que o polissacarídeo que contém o monossacarídeo

analisado (neste caso a manose) se liga à celulose. Em outras palavras, maior é a dificuldade de

extraí-lo. Uma outra forma de ver é que as razões 4M/8M mais altas significam que uma

concentração menor (4M) de NaOH já foi suficiente para solubilizá-lo. Na figura 4, os pontos

foram artificialmente divididos, pois é possível observar que em algumas amostras com baixo

teor de manose, as razões são baixas enquanto para um outro grupo de 11 espécies, é possível

observar que quanto maior o teor de manose na fração 4M, menor a razão 4M/8M (ou seja, maior

a força de ligação à celulose, ou menor a solubilidade). Uma hipótese que poderia explicar esta

diferença na solubilidade em álcali e interação dos mananos com a celulose é que o grau de

ramificação com galactose poderia ser distinto conforme a interação. Em outras palavras, o maior

nível de ramificação com galactose tornaria o manano menos interativo. Esta hipótese foi testada

através da análise da correlação entre as proporções de manose e galactose nas mesmas frações

(4M) (Figura 4B). Observamos que não há uma correlação geral quando se observam todas as

espécies, mas que a parte do gráfico que agrupou as espécies cuja correlação é negativa na Figura

4A, é formada por várias das espécies que apresentaram correlação negativa entre galactose e

manose. Esta observação sugere que nas espécies com maior teor de manose provavelmente

apresentam mananos menos ramificados que se ligam mais fortemente à celulose.

De todas as correlações analisadas entre os monossacarídeos encontrados nas 17 espécies

analisadas e seus respectivos rendimentos de hemiceluloses nas frações 4 e 8M, aquelas

mostradas na Figura 4 foram as únicas que mostraram algum sentido e permitiram especulações.

Tabela 9. Composição em monossacarídeos das frações NaOH 4M e 8M das espécies listadas na Tabela 8. Para efeito de

comparação, são mostrados novamente os dados das razões 4M/8M dos rendimentos que dão uma estimativa do quão fortemente as

hemiceluloses estão aderidas à celulose.

NaOH 4M

NaOH 8M

Solubilidade

Espécies

Fuc

Ram

Ara

Gal

Glc

Xil

Man

Fuc

Ram

Ara

Gal

Glc

Xil

Man

Razão 4M/8M

Cyathea delgadii

0,0

7,3

19,7

37,9

15,1

20,1

0,0

15,1

19,6

37,2

9,9

18,2

3,4

Cyclodium meniscioides

0,0

11,8

38,9

24,3

25,0

0,0

6,6

9,6

41,2

37,2

5,5

1,8

Hemionitis tomentosa

0,9

4,4

7,3

16,6

27,6

11,0

32,3

0,9

6,0

8,3

19,6

25,1

6,7

33,4

1,2

Hymenophyllum polyanthos

0,6

12,5

7,7

14,6

16,6

7,3

40,7

6,6

9,3

13,9

11,8

22,6

5,5

30,3

1,3

Lastreopsis amplissima

0,0

15,6

19,7

43,9

14,5

6,4

0,0

11,4

12,8

55,3

16,7

3,9

1,1

Lomagramma guianensis

0,0

12,2

18,7

48,6

13,7

6,9

0,0

17,0

21,0

49,0

8,4

4,6

8,8

Lophosoria quadripinata

0,2

5,7

0,7

16,7

23,3

24,1

29,5

0,0

5,9

0,8

13,0

21,1

17,6

41,7

2,0

Lygodium venustum

0,3

1,9

58,0

8,7

10,6

9,0

11,5

1,2

4,4

8,2

16,7

19,5

11,4

38,5

2,0

Pecluma plúmula

1,4

3,6

22,5

11,7

42,9

9,0

8,9

1,6

7,6

31,7

14,5

25,5

8,8

10,4

1,9

Polybotrya goyazensis

0,0

8,7

17,1

41,4

28,0

4,8

0,0

8,7

17,1

41,4

28,0

4,8

0,9

Pteris splendens

0,0

8,6

13,0

60,1

7,4

10,9

0,0

11,1

11,9

55,0

5,7

16,3

1,6

Serpocaulon catharinae

0,0

10,8

17,2

34,3

7,9

29,9

0,0

3,6

9,8

53,8

5,5

27,3

3,6

Sticherus bifudus

1,7

0,0

8,5

18,9

38,0

12,1

20,8

1,3

0,0

11,6

19,5

41,4

7,8

18,5

1,2

Tectaria incisa

3,5

0,0

26,8

16,6

29,4

17,7

6,1

4,1

10,3

20,2

12,7

29,6

21,4

1,6

1,0

Thelypteris longifolia

1,6

2,8

8,3

14,0

44,4

16,8

12,1

1,2

0,0

33,0

12,7

30,2

16,4

6,5

5,4

Thelypteris opposita

0,0

6,1

9,4

52,2

13,8

18,6

0,0

3,4

6,4

10,6

46,1

6,3

27,1

5,5

Trichomanes rigidum

1,2

1,5

5,8

10,6

27,5

13,6

39,8

1,6

5,8

11,2

15,0

30,0

17,9

18,6

0,5

Média

0,7

1,9

12,6

15,0

36,3

14,4

19,1

1,1

3,1

12,9

14,6

36,7

13,6

18,1

1,7

Desvio Padrão

1,0

3,3

13,5

3,6

12,7

6,2

12,0

1,8

3,7

8,7

3,7

12,3

8,9

13,0

2,2

Máximo

3,5

12,5

58,0

19,7

60,1

28,0

40,7

6,6

10,3

33,0

21,0

55,3

37,2

41,7

8,8

Mínimo

0,0

8,7

10,6

7,3

4,8

0,0

0,8

9,6

19,5

5,5

1,6

0,5

Figura 4. Possíveis correlações entre os teores de manose na fração NaOH 4M e as

razões 4M/8M para os rendimentos das frações. (A) Relação entre as razões 4M/8M e a % de

manose na fração 4M e (B) relação entre as % de manose e de galactose nas mesmas frações

(4M)

0,0

1,0

2,0

3,0

4,0

5,0

6,0

7,0

8,0

9,0

10,0

0,0 10,0 20,0 30,0 40,0 50,0

% de manose na fraçao 4M

Razão 4M/8M

0,0

5,0

10,0

15,0

20,0

25,0

30,0

35,0

40,0

45,0

7,0 12,0 17,0 22,0

% de galactose

% de manose

Análise estrutural dos polissacarídeos de parede celular de Adiantum raddianum:

Na Tabela 10 a primeira coluna mostra os resíduos de açúcares encontrados na

metilação, os números indicam qual o carbono está ligado na cadeia. A segunda coluna

mostra a porcentagem encontrada desses açúcares. Nas colunas das pectinas, xiloglucanos,

mananos e xilanos são colocadas as porcentagens de modo que seja possível somar a

porcentagem encontrada de cada açúcar, em cada polissacarídeo, de acordo com os carbonos

ligados. Esta é uma sugestão hipotética, já que a ocorrência dos açúcares metilados pode

variar.

Os números indicados antes do resíduo de açúcar significam qual o número do

carbono ligado, no caso dos açúcares precedidos por uma letra ―t‖, indica que é um açúcar

terminal, ou seja, ligado pelo carbono 1. Analisando-se o número do carbono ligado é possível

determinar a qual cadeia ele pertence e assim, pode-se concluir qual a hemicelulose presente

na amostra.

Tabela 10- Porcentagem dos açúcares ligados (metilação) da fração NaOH 4M de Adiantum

raddianum C. Presl.

Açúcar ligado

Pectinas

Xiloglucano

Manano

Xilano

Rhamnose

t-Rham

0,43

2-Rham

0,5

2,4-Rham

0,63

Arabinose

t-Arap

t-Ara

0,38

2-Ara

0,5

3-Araf

0,6

5-Ara

0,55

2,5-Ara

0,32

Ácido Galacturônico

t-GalA

4-GalA

1,73

3,4-GalA

0,52

Ácido Glucurônico

t-GlcA

0,59

Fucose

t-Fuc

1,38

Galactose

t-Gal

5,47

2-Gal

4,59

3-Gal

1,06

4-Gal

0,72

6-Gal

0,82

2,4-Gal

0,72

3,6-Gal

0,97

Manose

t-Man

0,51

4-Man

18,31

4,6-Man

1,16

Xilose

t-Xyl

3,38

2-Xyl

6,10

4-Xyl

3,99

2,4-Xyl

0,94

3,4-Xyl

0,16

2,3-Xyl

0,32

Glucose

t-Glc

1,33

2-Glc

0,51

4-Glc

12,64

2,4-Glc

0,49

3,4-Glc

0,49

4,6-Glc

26,25

TOTAL

14,22

58,35

20,49

Observou-se um rendimento aproximado de 14,22% de pectinas, com muitos resíduos

de galactose em suas ramificações (2-Gal; 3-Gal; 3,6-Gal), que corroboram a hipótese de que

as pectinas, nessa espécie, são muito ramificadas e, portanto, muito solúveis, o que explica

seu alto rendimento (ver tabela 2 do manuscrito anexo 3).

A maior proporção (58,35%) dos resíduos de açúcares ligados são característicos de

xiloglucano, hemicelulose mais abundante na parede celular tipo I (ver introdução). A

porcentagem elevada do fragmento 4-Glc indica glucose 4 ligada, que é encontrada no

xiloglucano, o qual possui sua cadeia principal formada por resíduos de glucose ligados entre

si através de ligações do tipo 1-4. A ocorrência de 6-Gal, pode ser explicada pelas

ramificações do xiloglucano, que possui uma galactose ligada a um resíduo de glucose da

cadeia principal. Esta galactose pode ainda estar ligada a uma unidade de fucose, através de

seu carbono 6 que no caso de parede primária pode ser explicada pela ocorrência de t-Fuc

(fucose terminal). Já o resíduo t-Gal (galactose terminal) explica as ramificações de galactoses

ligadas à xilose.

Em contrapartida, 20,49 % de açúcares típicos de mananos, como 4-Man, indicam a

presença de uma cadeia de manano 1,4 ligado (provavelmente beta). Essa porcentagem de

20,49 pode ser considerada muito elevada em comparação aos aproximadamente 2%

encontrados em paredes tipo I (Shiga et al. 2006; Reard et al. 1993). Esse dado corrobora

nossa proposta de que as paredes celulares de algumas espécies de samambaias (Grupo H1 do

anexo 3, Figura 3) podem ter um terceiro tipo de parede celular.

Também foi possível detectar 6% de resíduos de açúcares com ligações típicas de

xilano. A ocorrência de 4-Xyl indica a presença de um xilano 1,4 ligado (provavelmente beta)

que é típico das paredes celulares de tecidos vasculares (xilema e fibras). A contaminação

com este tipo de polímero é relativamente pequena, mas sempre ocorre. Mesmo após uma

seleção do material, que foi peneirado para exclusão de fibras, não foi possível elimina-las

completamente.

A composição de monossacarídeos da fração submetida à análise estrutural foi

analisada também por hidrólise ácida e acetilação. Os dados são mostrados na tabela 11 e

estão expressos em porcentagem de monossacarídeos obtidos com a hidrólise de TFA (ácido

trifluoracético) ao valores de alguns monossacarídeos são semelhantes aos obtidos após a

hidrólise feita com ácido sulfúrico (ver tabela do anexo 2).

Estes resultados mostram claramente que o procedimento de metilação foi bastante

eficiente e com poucas perdas durante o processo, pois as composições pelas duas

metodologias são bastante próximas.

Tabela 11- Porcentagem dos monossacarídeos obtidos através da hidrólise com TFA (ácido

trifluoracético) para realização da metilação. E porcentagem total dos monossacarídeos

encontrados após a metilação. Legenda: Rha- ramnose, Fuc-fucose, Ara-arabinose, Xyl-

xilose, Man-manose, Gal-galactose, Glc-glucose, GalA-ácido galacturônico.

Adiantum raddianum

Monossacarídeos

Rha

Fuc

Ara

Xyl

Man

Gal

Glc

GalA

TFA

2,53

3,42

3,88

18,85

21,92

11,34

34,78

3,28

Metilação

1,57

1,38

2,35

14,89

19,99

14,95

42,03

2,25

Parte II - Análises de xiloglucanos de 67 espécies de samambaias e licófitas por

espectrometria de massas Maldi-Tof:

A seguir são mostrados os resultados correspondentes às composições de

oligossacarídeos de xiloglucanos nas espécies estudadas. Das 67 espécies utilizadas neste

estudo, apenas 6 delas (8,9%) não apresentaram fragmentos (oligossacarídeos) que atestassem

suscetibilidade ao ataque da celulase de Trichoderma sp. Porém, é importante salientar que a

ausência de produção de oligossacarídeos não significa que não exista xiloglucano nas

paredes celulares, mas que estes não estão acessíveis ao ataque da enzima e podem ou ter

estrutura fina diferente ou então estarem em interação com outro polímero de forma a impedir

o acesso da celulase.

Para realizar as análises por espectrometria de massas Maldi-tof os primeiros testes

foram realizados com uma xiloglucanase específica (xiloglucano endo glucosidase – XEG),

que ataca as paredes de folhas de arabidopsis e produz os oligossacarídeos de xiloglucano

nela existentes (Pauly et al. 1999). No entanto, a despeito de inúmeros testes, as espécies de

samambaias e licófitas, não foram suscetíveis ao ataque desta enzima, mas somente ao da

celulase de Trichoderma. Esta diferença não pode ser atribuída à acetilação presente na

galactose, uma vez que observamos, pela primeira vez, que o xiloglucano de folhas de jatobá

(Hymenaea courbaril) é acetilado e mesmo assim suscetível ao ataque daquela enzima. Na

literatura encontram-se informações de que a acetilação da glucose pode modificar a ação das

celulases, mas além de não termos encontrado fragmentos compatíveis com a presença desses

oligosacarídeos, o fato de a celulase de Trichoderma atacar o xiloglucano de samambaias e

licófitas indica que este não seria o fator que difere a sucetibilidade dos xiloglucanos das

espécies desse grupo às duas enzimas utilizadas. Por isto, uma investigação mais acurada

comparando o ataque de diversas celulases foi efetuada para compreender melhor este

fenômeno.

Os resultados a seguir mostram as porcentagens de oligossacarídeos de xiloglucano

que foram liberados a partir das paredes celulares das espécies estudadas.

Foram considerados com oligossacarídeos de xiloglucano os compostos com massas

correspondentes a: XXG, GXXG, XXXG, XXLG, XXLG+Ac, XXFG, XLLG, XXFG+Ac,

XLFG e XLFG+Ac.

Jatobá

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

40,00

45,00

50,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

porcentagem

Figura 5: Porcentagem dos oligossacarídeos provenientes da digestão com celulase de folhas

de Jatobá.

A seguir são apresentadas as distribuições de oligossacarídeos nas paredes celulares

Plantas coletadas no PEFI, reserva de Mata Atlântica:

Gleichenella pectinata

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

80,00

90,00

100,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Sticherus bifudus

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

80,00

90,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 6: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Gleichenella pectinata.

Figura 7: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Sticherus bifidus.

Serpocaulon catharinae

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Cyathea delgadii

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 8: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Serpocaulon catharinae

Figura 9: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Cyathea delgadii.

Blechnum brasiliense

100

120

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Cyathea corcovadensis

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 10: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Blechnum brasiliense.

Figura 11: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Cyathea corcovadensis.

Lophosoria quadripinnata

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Pteris decurrens

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 12: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Lophosoria quadripinnata.

Figura 13: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Pteris decurrens.

Polybotrya cylindrica

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

40,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Deparia petersenii

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 14: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Polybotrya cylindrica.

Figura 15: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Deparia petersenii.

Pteris splendens

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

40,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Megalastrum connexum

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 16: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis Pteris splendens.

Figura 17: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis Megalastrum connexum.

Ctenitis aspidioides

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

80,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Campyloneurum major

100

120

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 18: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis Ctenitis aspidioides.

Figura 19: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis Campyloneurum major.

Asplenium gastonis

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Lastreopsis amplissima

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 20: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis Asplenium gastonis.

Figura 21: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis Lastreopsis amplissima.

Blechnum binervatum subsp acutum

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

80,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Blechnum occidentale

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 22: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis Blechnum binervatum subsp

acutum.

Figura 23: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis Blechnum occidentale.

Pteridium arachnoideum

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Microgramma vacciniifolia

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

40,00

45,00

50,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 24: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis Pteridium arachnoideum.

Figura 25: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis Microgramma vacciniifolia.

Pleopeltis hirsutissima

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

40,00

45,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Salpichlaena volubilis

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 26: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis Pleopeltis hirsutissima.

Figura 27: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis Salpichlaena volubilis.

Em Lomagramma guianensis, planta também coletada no Pefi, não foram encontrados

oligossacarídeos de xiloglucano.

Plantas coletadas na região do Jardim Botânico de Bauru:

Pleopeltis polypodioides

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Thelypteris interrupta

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

80,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 28: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Pleopeltis polypodioides.

Figura 29: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Thelypteris interrupta.

Thelypteris conspersa

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Polybotrya goyazensis

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 30: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Thelypteris conspersa.

Figura 31: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Polybotrya goyasensis.

Microgramma lindbergii

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Adiantum serratodentatum

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

80,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 32: Porcentagem dos

oligossacarídeos provenientes da digestão

com celulase de folhas estéreis de

Microgramma lindbergii.

Figura 33: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Adiantum serratodentatum.

Pecluma paradisiae

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Cyclodium meniscioides

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 34: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Pecluma paradiseae.

Figura 35: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Cyclodium meniscioides.

Thelypteris biformata

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Thelypteris longifolia

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 36: Porcentagem dos

oligossacarídeos provenientes da digestão

com celulase de folhas estéreis de Thelypteris

biformata.

Figura 37: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Thelypteris longifolia.

Doryopteris lomariacea

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Blechnum regnellianum

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 38: Porcentagem dos

oligossacarídeos provenientes da digestão

com celulase de folhas estéreis de

Doryopteris lomariacea.

Figura 39: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Blechnum regnellianum.

Blechnum imperiale, Doryopteris concolor, Serpocaulon latipes e Thelypteris

opposita, coletadas no Jardim Botânico de Bauru, não apresentaram oligossacarídeos de

xiloglucano.

Plantas coletadas na Fazenda Castelo da Jaguara e Fazenda Cauaia, Lapa do Santo,

Matozinhos, MG:

Lygodium venustum

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Adiantum deflectens

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 40: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Lygodium venustum.

Figura 41: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Adiantum deflectens.

Adiantopsis chlorophylla

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Pteris vittata

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 42: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Adiantopsis chlorophylla.

Figura 43: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Pteris vittata.

Pteris denticulata

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Hemionitis tomentosa

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 44: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Pteris denticulata.

Figura 45: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Hemionitis tomentosa.

Pecluma plumula

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 46: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Pecluma plumula.

Macrothelypteris torresiana, coletada em Matozinhos, MG, não apresentou

oligossacarídeos de xiloglucano.

Plantas coletadas na RPPN (Reserva Particular do Patrimônio Natural ―El Nagnal‖), em

Magé, RJ:

Acrostichum danaefolium

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Serpocaulon meniscifolium

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 47: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Acrostichum danaefolium.

Figura 48: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Serpocaulon meniscifolium.

Elaphoglossum iguapense

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Bolbitis serratifolia

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 49: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Elaphoglossum iguapense.

Figura 50: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Bolbitis serratifolia.

Olfersia cervina

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Anemia mandioccana

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

80,00

90,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 51: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Olfersia cervina.

Figura 52: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Anemia mandioccana.

Tectaria incisa

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

80,00

90,00

100,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Hymenophyllum polyanthos

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 53: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Tectaria incisa.

Figura 54: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Hymenophyllum polyanthos.

Selaginella valida

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

40,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Selaginella decomposita

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 55: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Selaginella valida.

Figura 56: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Selaginella decomposita.

Asplenium triquetum

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 57: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Asplenium triquetum.

Trichomanes rigidum, coletada em Magé, RJ, não apresentou oligossacarídeos de

xiloglucano.

Plantas coletadas no Parque Natural dos Aparados da Serra em Cambará do Sul, RS. Floresta

de Araucária, campos e floresta pluvial atlântica:

Dicranopteris linearis

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Lycopodium clavatum

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 58: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Dicranopteris linearis.

Figura 59: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Lycopodium clavatum.

Rumohra adiantiformis

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

80,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 60: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas Rumohra adiantiformis.

Plantas coletadas em São José do Rio Preto, SP e em Sorocaba, SP. Mata seca semi-decídua:

Alsophila setosa

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Dennstaedtia obtusifolia

100

120

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 61: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Alsophila setosa. (Planta

coletada na região de Sorocaba).

Figura 62: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Dennstaedtia obtusifolia.

Adiantum abscissum

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

35,00

40,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Adiantopsis radiata

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 63: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Adiantum abscissum.

Figura 64: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de folhas

estéreis de Adiantopsis radiata.

Asplenium otites

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 65: Porcentagem dos oligossacarídeos

provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Asplenium otites.

Interação entre as hemiceluloses na parede celular e o acesso das enzimas aos polímeros:

Os resíduos de açúcar encontrados na análise de ligação de Adiantum raddianum, uma

espécie coletada durante a dissertação de mestrado e que continuou sendo investigada durante

o doutorado, confirmam a presença de um xiloglucano. Continuando a investigação dos

oligossacarídeos presentes nessa espécie, o pó das frondes de Adiantum raddianum, também

foi levado para análise em Maldi-Tof.

Adiantum raddianum

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

oligos

intensidade em %

Figura 66: Porcentagem dos oligossacarídeos provenientes da digestão com celulase de

folhas estéreis de Adiantum raddianum.

Foi efetuado um teste com o objetivo de comparar os dados obtidos com a técnica de

Maldi-tof e metilação, utilizando a espécie Adiantum raddianum. Para isto, folhas estéreis de

A. raddianum foram submetidas ao mesmo tratamento utilizado as 67 espécies utilizadas neste

estudo, ou seja extração inicial dos açúcares solúveis seguido de hidrólise com celulase e

subseqüente análise por Maldi-Tof. De acordo com os resultados encontrados nestas análises,

observamos que foi possível detectar a presença de apenas um oligossacarídeo de xiloglucano,

XXXG. Esse resultado corrobora, de certa maneira, os resultados encontrados com a análise

de ligação, onde foram encontrados resíduos dos açúcares xilose e glucose, os mesmos

açúcares encontrados na composição desse oligossacarídeo, encontrado na análise por Maldi-

Tof. Como a enzima utilizada nessa metodologia foi a celulase de Trichoderma, não foi

possível detectar a presença de oligossacarídeos de mananos, pois os padrões ainda não são

conhecidos.

No entanto, a análise estrutural do xiloglucano da mesma espécie revelou

características compatíveis com a existência de outros oligossacarídeos além do XXXG. Nas

análises por metilação, carboidratos que diagnosticam a presença de xiloglucano fucosilado

(4-glc, 4,6-glc, t-xil, 2-xil, t-gal e t-fuc), ao utilizar a celulase de Trichoderma para hidrolisar

a parede celular intacta, apenas XXXG foi obtido.

Estes dados mostram que o uso da celulase diretamente sobre a parede celular, que

ainda preserva, pelo menos em parte, a sua arquitetura original, não revela a estrutura fina do

xiloglucano na parede, mas somente as partes da molécula que são acessíveis à enzima. É

possível que a interação entre os diferentes polissacarídeos que formam o compósito original

da parede tenha interferido na ação da celulase, o que não acontece quando se faz o

fracionamento com álcali e se separam as frações da parede. A comparação entre os padrões

de oligossacarídeos obtidos por procedimentos diferentes, como metilação e HPAEC-PAD,

gera compostos completamente diferentes.

Esses dados sugerem que a interação com outros polissacarídeos, o que é maior na

parede intacta, parece ser importante na manutenção do acesso ao xiloglucano na parede

celular das samambaias e licófitas. Porém, a presença de maiores ou menores teores de

manose (de mananos) e glucose e xilose (xiloglucanos) não parece se correlacionar com o

padrão de hidrólise de materiais obtidos por métodos.

Algumas espécies não apresentaram oligossacarídeos de xiloglucano, pelo menos

aqueles mais comumente encontrados em dicotiledôneas, ou seja, pertencentes à família

XXXG. Um dos resultados que chamou atenção durante as análises de Maldi-tof foi a

ausência de atividade da XEG (Xiloglucano-endo-glucanase), uma enzima específica para a

digestão de xiloglucano (Pauly et al. 1999). Mesmo após várias tentativas e adaptações na

metodologia, a XEG continuava sem atividade e não foi possível observar oligossacarídeos de

xiloglucano utilizando essa enzima. Após a digestão com celulase de Trichoderma, uma

enzima menos especifica para xiloglucano, e que é capaz de atacar outros polissacarídeos

como os mananos (McCleary, 1986, Macarrón et al. 1996), foi possível observar

oligossacarídeos de xiloglucano que parecem pertencer à família XXXG.

Uma possível explicação para a ausência de atividade de XEG e presença de atividade

de celulase é que como a última é menos específica ela pode ter hidrolisado alguma outra

hemicelulose presente na parede celular dessas plantas (mananos? beta-glucanos?) e que

quando em interação com o xiloglucano impedem o ataque pela XEG. Para avançar nesses

estudos e produzir evidências em favor ou contra esta hipótese, será necessário realizar

estudos que enfoquem as outras hemiceluloses através do uso de mananases e liquenase (que

ataca o beta-glucano).

Observando-se os espectros gerados pelo Maldi-Tof, notamos que todas as espécies

analisadas apresentam picos que não puderam ser identificados e que apresentaram massa

molecular menor do que os oligossacarídeos da família XXXG.

Figura 67: Espectro de Maldi-Tof de Lygodium venustum. Picos destacados com círculo não

puderam ser identificados, quadro destaca a região em que foram encontrados os

oligossacarídeos de xiloglucano.

O espectro mostrado na Figura 67 é de Lygodium venustum, uma das espécies

coletadas em Matozinhos, MG. Alguns dos picos destacados com um círculo são

oligossacarídeos que não puderam ser identificados, pois o Maldi-tof utilizado não possuía

biblioteca para outros oligossacarídeos como os mananos, por exemplo. Porém, alguns picos

correspondentes a xiloglucanos podem ser identificados m/z 773=XL, m/z 660=LG e estão

presentes quando xiloglucanos de reserva são hidrolisados com celulase, como por exemplo

m/z = 821 e 936, que são provavelmente LG acetilado e XLX respectivamente (Tiné et al.

2006).

Na análise dos dados obtidos com os diversos experimentos realizados, em quatro

espécies particularmente, foi possível confrontar os resultados e observar as correlações. São

elas: Lygodium venustum (Matozinhos, MG), Lophosoria quadripinnata (São Paulo, SP),

Thelypteris opposita (Bauru, SP) e Trichomanes rigidum (Magé, RJ), sendo que cada uma de

um local de coleta diferente.

Lygodium venustum apresentou uma quantidade significativa de manose na análise de

monossacarídeos feita em HPAEC-PAD, na fração NaOH 8M, (38,51%) e quando essa

espécie foi analisada em Maldi-tof, foi possível identificar apenas um oligossacarídeo de

xiloglucano (XLFG + Ac). Lophosoria quadripinnata apresentou 29,46% de manose na

fração 4M e 41,70% de manose na fração 8M, na análise de Maldi-tof apresentou apenas um

oligossacarídeo de xiloglucano (XXFG). Nessas duas espécies as evidências sugerem a

presença de um tipo de manano como principal hemicelulose da parede celular e apesar da

presença de um oligossacarídeo de xiloglucano, o fato de ter sido possível observar apenas um

membro da família XXXG é um forte indício de uma presença menos relevante de um

xiloglucano na parede celular dessas plantas.

Já em Thelypteris opposita a porcentagem de manose na fração 4M foi de 18,60%,

apesar de não ser tão elevada como as anteriores, ainda assim é mais elevada que o padrão

comparativo (jatobá). Na fração 8M essa porcentagem aumentou para 27,14, e na análise de

Maldi-tof não foram detectados oligossacarídeos de xiloglucano, assim como em

Trichomanes rigidum, porém nessa espécie a porcentagem de manose na fração 4M foi

bastante elevada (39,83%), e na fração 8M foi menor porém ainda significativa (18,56%).

Essas duas últimas espécies possuem fortes indícios de que a principal hemicelulose da parede

celular é um manano.

Não se pode descartar a hipótese de que os xiloglucanos em espécies em que

coexistem com mananos, o acesso da celulase ao xiloglucano seja restrito. Uma evidência de

que isto pode ocorrer é a comparação entre os resultados obtidos com Adiantum raddianum

pelos métodos de fracionamento e Maldi-tof, mencionados e discutidos acima.

Uma conclusão que se pode tirar até aqui é que a metodologia de espectrometria de

Maldi-tof combinada com o ataque enzimático direto (sem fracionamento) à parede celular,

permite apenas uma visão parcial da estrutura dos polímeros da parede, notadamente o

xiloglucano.

Com isto, o que se avalia quando se examinam dados como os que serão discutidos a

seguir sobre um grande numero de espécies submetidas à hidrólise enzimática seguida de

análise espectrométrica por Maldi-tof, são características mais relacionadas à arquitetura da

parede e da relação entre os polímeros hemicelulósicos. Não se deve deduzir, neste caso, a

estrutura de polímeros com estes dados.

Análises por regiões de origem da coleta:

Como as coletas de plantas foram efetuadas em diferentes regiões, pode-se efetuar

uma comparação do que foi encontrado em termos de estrutura fina dos xiloglucanos,

conforme a coleta realizada. A figura abaixo mostra os pontos aproximados onde tais coletas

foram realizadas.

Figura 68: Locais das coletas realizadas.

Analisando as coletas separadamente (ver figuras 6 a 65), nota-se que na coleta feita

no PEFI (Parque Estadual das Fontes do Ipiranga), uma espécie, Lomagramma guianensis da

família Dryopteridaceae, não apresentou oligossacarídeos de xiloglucano. Nenhuma espécie

dessa coleta apresentou todos os oligossacarídeos de xiloglucano e a maioria delas possui os

oligossacarídeos que possuem pesos moleculares menores, como XXG, GXXG, XXXG e

XXLG. Os oligossacarídeos fucosilados e acetilados como XXFG+Ac e XLFG+Ac foram os

menos encontrados nessas espécies.

Na coleta feita em Bauru, três espécies tiveram em comum a ausência de

oligossacarídeos de xiloglucano, Serpocaulon latipes, Thelypteris opposita e Doryopteris

concolor, porém essas espécies pertencem a famílias diferentes, não atestando qualquer

tendência devida a um agrupamento taxonômico. A maioria dos oligossacarídeos encontrados

na análise por Maldi-Tof nessas plantas, também foi de menor peso molecular, mas entre elas,

o oligossacarídeo XLFG+Ac foi mais encontrado, quando comparado com a coleta realizada

no PEFI.

As plantas coletadas em Matozinhos, MG, estavam distribuídas em quatro famílias. Da

família Lygodiaceae, Lygodium venustum apresentou apenas um oligo (XLFG+Ac).

Mata ciliar e cerrado

(Reserva Cauaia, Lapa

do Santo e Fazenda

Castelo da Jaguara)-

Matozinhos

Mata Atlântica

(PEFI)- São Paulo

Sorocaba-Mata seca

semi-decídua

São José do Rio Preto-

Mata seca semi-decídua

Jardim Botânico

de Bauru-

cerrado e mata

pluvial decídua

Reserva Particular

do Patrimônio

Natural ―El

Nagnal‖, Magé -

Mata Atlântica

Parque Natural dos Aparados da Serra, Cambará do

Sul-Floresta de Araucária, campos e floresta pluvial

atlântica.

Macrothelypteris torresiana não apresentou oligossacarídeos de xiloglucano. Pecluma

plumula apresentou seis oligossacarídeos de xiloglucano, sendo que nenhum deles eram

acetilados. Adiantum deflectens, Adiantopsis chlorophylla, Pteris vittata, Pteris denticulata e

Hemionitis tomentosa, todas da família Pteridaceae, não apresentaram nenhuma similaridade

na distribuição dos oligossacarídeos de xiloglucano, Adiantum deflectens e Adiantopsis

chlorophylla apresentaram três oligos de xiloglucano, porém não eram os mesmo, Pteris

denticulata foi a espécie que apresentou o maior número de oligossacarídeos de xiloglucano,

seguida de Hemionitis tomentosa, enquanto Pteris denticulata apresentou apenas um

fragmento compatível com a presença de oligossacarídeo de xiloglucano (XXXG).

Na coleta realizada em Magé RJ, uma reserva de Mata Atlântica, como a reserva do

PEFI, foram coletadas plantas de oito famílias diferentes, Anemiaceae, Aspleniaceae,

Dryopteridaceae, Hymenophyllaceae, Pteridaceae, Polypodiaceae, Selaginellaceae e

Tectariaceae. Acrostichum danaeifolium da família Pteridaceae, apresentou quatro

oligossacarídeos de xiloglucano, Serpocaulon meniscifolium, da família Polypodiaceae,

apresentou seis oligossacarídeos de xiloglucano, Elaphoglossum iguapense, Bolbitis

serratifolia e Olfersia cervina, todas da família Dryopteridaceae, não tiveram similaridade

entre os oligossacarídeos encontrados, dos dez analisados, apenas três eram comuns às três

espécies, XXG, GXXG e XLFG. Hymenophyllum polyanthos e Trichomanes rigidum, ambas

da família Hymenophyllaceae, apresentaram resultados completamente diferentes,

Trichomanes rigidum, não apresentou oligossacarídeos de xiloglucano enquanto

Hymenophyllum polyanthos, tem seis oligossacarídeos de xiloglucano. Selaginella valida e

Selaginella decomposita, da família Selaginellaceae, tiveram seis oligossacarídeos em

comum, XXG, GXXG, XXXG, XXLG, XXLG+Ac e XXFG.

As plantas coletadas no Rio Grande do Sul pertencem a famílias diferentes. Mesmo

assim é possível observar uma similaridade entre elas, ou seja, as três apresentaram

oligossacarídeos de menor peso molecular.

As últimas plantas analisadas foram coletadas na região de São José do Rio Preto e

uma delas (Alsophila setosa) foi coletada na região de Sorocaba. Adiantum abscissum e

Adiantopsis radiata, ambas da família Pteridaceae não apresentaram similaridade entre os

oligossacarídeos observados, elas possuíam apenas XXG em comum, sendo que esse

oligossacarídeo foi o mais encontrado em todas as espécies analisadas.

Esta análise por origem mostrou que não houve tendências claras de agrupamentos

relacionados à região geográfica onde estas espécies ocorrem ou em agrupamentos

taxonômicos como famílias.

Estes dados confirmaram aqueles obtidos por Silva et al. (submetido – Anexo 3) de

que não parece haver uma correlação entre a composição da parede celular e a taxonomia de

samambaias e licófitas.

Além de tais tendências não serem observadas em relação à composição geral da

parede celular, observou-se, mais especificamente, que a estrutura fina do xiloglucano

também não reflete os agrupamentos taxonômicos atualmente aceitos para samambaias e

licófitas (Pryer et al. 2001).

Para compreender melhor como as 67 espécies estudadas se agrupam de acordo com a

estrutura fina de seus xiloglucanos, foi efetuado um estudo usando o pacote estatístico R para

obter os coeficientes de Jaccard. Um dendrograma foi produzido em que houve agrupamentos

de acordo com a similaridade estrutural dos xiloglucanos (Figura 69).

Figura 69: Dendograma obtido a partir dos resultados das análises de Maldi-tof, utilizando o

pacote estatístico R project, os números indicados referem-se aos grupos formados.

Os resultados desta análise revelaram a presença de seis grupos:

Asplenium otites

Thelypteris longifolia

Pecluma paradiseae

Adiantum deflectens

Olfersia cervina

Thelypteris conspersa

Pteris decurrens

Blechnum occidentale

Thelypteris interrupta

Cyathea corcovadensis

Polybotrya goyasensis

Lycopodium clavatum

Acrostichum danaeifolium

Adiantopsis chlorophylla

Pleopeltis polypodioides

Hemionitis tomentosa

Salpichlaena volubilis

Serpocaulon meniscifolium

Polybotrya cylindrica

Adiantopsis radiata

Lastreopsis amplissima

Cyclodium meniscioides

Doryopteris lomariacea

Serpocaulon catharinae

Elaphoglossum iguapense

Blechnum binervatum acutum

Tectaria incisa

Adiantum serratodentatum

Dennstaedtia obtusifolia

Campyloneurum major

Blechnum brasiliense

Microgramma vacciniifolia

Pteridium arachnoideum

Microgramma lindbergii

Blechnum regnellianum

Alsophila setosa

Hymenophyllum polyanthos

Pecluma plumula

Deparia petersenii

Selaginella decomposita

Pteris vittata

Pleopeltis hirsutissima

Asplenium gastonis

Pteris splendens

Selaginella valida

Jatobá

Sticherus bifudus

Gleichenella pectinata

Lophosoria quadripinata

Pteris denticulata

Asplenium triquetum

Thelypteris biformata

Lygodium venustum

Megalastrum connexum

Ctenitis aspidioides

Anemia mandiocana

Cyathea delgadii

Dicranopteris linearis

Rumohra adiantiformis

Grupo 1: formado por Lycopodium clavatum, Lygodium venustum, Megalastrum

connexum;

Grupo 2: formado por Asplenium otites, Polybotrya goyazensis, Acrostichum

danaeifolium, Adiantopsis chlorophylla, Pleopeltis polypodioides, Hemionitis tomentosa,

Thelypteris longifolia, Salpichlaena volubilis, Serpocaulon meniscifolium, Polybotrya

cylindrica;

Grupo 3:formado por Pecluma paradiseae, Adiantum deflectens, Olfersia cervina,

Thelypteris conspersa, Pteris decurrens;

Grupo 4: formado por Lophosoria quadripinnata, Adiantum raddianum, Blechnum

occidentale, Lastreopsis amplissima, Thelypteris interrupta, Cyathea corcovadensis;

Grupo 5: formado por Pteris denticulata, Cyclodium meniscioides, Doryopteris

lomariacea, Serpocaulon catharinae;

Grupo 6: o maior grupo formado por: Asplenium triquetum, Elaphoglossum

iguapense, Thelypteris biformata, Blechnum binervatum subsp. acutum, Tectaria incisa,

Adiantum serratodentatum, Ctenitis aspidioides, Dennstaedtia obtusifolia, Adiantopsis

radiata, Campyloneurum major, Blechnum brasiliense, Sticherus bifidus, Gleichenella

pectinata, Anemia mandioccana, Microgramma vacciniifolia, Dicranopteris linearis,

Rumohra adiantiformis, Pteridium arachnoideum, Microgramma lindbergii, Blechnum

regnellianum, Alsophila setosa, Cyathea delgadii, Hymenophyllum polyanthos, Pecluma

plumula, Deparia petersenii, Selaginella decomposita, Pteris vittata, Pleopeltis hirsutissima,

Asplenium gastonis, Pteris splendens, Selaginella valida além do Jatobá (Hymenaea

courbaril), utilizado como padrão. As espécies que não apresentaram oligossacarídeos não

entraram nessa análise de agrupamento, nessa análise foi levada em consideração a

semelhança entre as espécies utilizando os oligossacarídeos de xiloglucano obtidos com a

análise de Maldi-tof.

Para facilitar a visualização dos diferentes tipos de oligossacarídeos que geraram os

agrupamentos, foi construída uma tabela com todos os dados e à direita foram adicionados os

detalhes relacionados aos grupos taxonômicos, bioma e porte das espécies.

A seguir (tabela 12) os resultados são mostrados em uma tabela que reúne todos os

dados obtidos com a análise feita em Maldi-Tof. As diferentes coletas foram destacadas em

cores diferentes.

Tabela 12- Dados obtidos com a análise dos oligossacarídeos de xiloglucano em MALDI-TOF das 68 espécies . As diferentes cores representam as diferentes coletas.

Espécies

Oligos de xiloglucano

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

1- Gleichenella pectinata

91,2%

8,7%

2- Sticherus bifudus

79,4%

20,5%

3-Serpocaulon catharinae

14,5%

19,7%

50,0%

15,7%

4-Cyathea delgadii

59,4%

12,7%

10,9%

16,8%

5-Blechnum brasiliense

100%

6-Cyathea corcovadensis

23,7%

26,2%

7-Lomagramma guianensis

8-Lophosoria quadripinnata

50,0%

9-Pteris decurrens

44,3%

17,3%

14,2%

24,1%

10-Polybotrya cylindrical

10,7%

14,0%

14,8%

26,1%

23,8%

10,3%

11-Deparia petersenii

22,3%

31,7%

17,4%

11,0%

5,9%

7,6%

3,8%

12-Pteris splendens

33,2%

37,0%

10,0%

7,9%

6,8%

3,0%

1,8%

13-Megalastrum connexum

50,0%

14-Ctenitis aspidioides

72,1%

17,6%

10,1%

15-Campyloneurum major

100%

16-Asplenium gastonis

28,0%

32,2%

9,2%

7,9%

7,2%

7,9%

7,2%

17-Lastreopsis amplissima

14,7%

22,6%

62,5%

18-Blechnum binervatum subsp acutum

67,2%

19,4%

5,8%

7,4%

19-Blechnum occidentale

41,1%

50,0%

8,9%

20-Pteridium arachnoideum

27,9%

22,0%

21-Microgramma vacciniifolia

43,4%

33,3%

11,5%

11,6%

22-Pleopeltis hirsitissima

41,7%

32,0%

14,7%

3,6%

2,8%

2,1%

23-Salpichlaena volubilis

7,3%

45,4%

35,7%

11,3%

24-Serpocaulon latipes

25-Pleopeltis polypodioides

51,1%

17,0%

10,10%

12,18%

9,54

26-Thelypteris interrupta

73,7%

26,24

27-Thelypteris conspersa

15,8%

34,1%

10,3%

2,2%

10,19%

8,05%

10,70%

8,56%

28-Thelypteris opposite

29-Polybotrya goyazensis

50,0%

30-Microgramma lindibergii

28,8%

29,8%

23,4%

9,3%

8,5%

31-Adiantum serratodentatum

24,8%

75,1%

32-Pecluma paradiseae

50,0%

33-Cyclodium meniscioides

24,1%

50,0%

25,8%

34-Thelypteris biformata

21,7%

56,7%

21,4%

Espécies

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

35-Thelypteris longifolia

8,9%

15,2%

30,9%

31,5%

13,2%

36-Doryopteris lomariacea

21,2%

15,8%

12,9%

37-Blechnum imperiale

38-Blechnum regnellianum

32,5%

26,5%

8,9%

12,9%

18,9%

39-Doryopteris concolor

40-Lygodium venustum

50,0%

41-Macrothelypteris torresiana

42-Adiantum deflectens

25,3%

24,6%

50,0%

43-Adiantopsis chlorophylla

29,3%

9,8%

10,7%

44-Pteris vittata

23,2%

19,6%

23,3%

15,3%

4,8%

7,9%

3,0%

2,6%

45-Pteris denticulate

50,0%

46-Hemionitis tomentosa

22,6%

30,8%

24,2%

22,2%

47-Pecluma plumula

21,2%

22,3%

13,7%

10,3%

22,7%

9,5%

48-Acrostichum danaeifolium

15,0%

16,3%

33,7%

34,8%

49-Serpocaulon meniscifolium

13,5%

25,9%

18,9%

17,4%

12,2%

11,7%

50-Elaphoglossum iguapense

32,0%

57,6%

10,3%

51-Bolbitis serratifolia

12,3%

17,8%

12,4%

12,9%

32,1%

12,1%

52-Olfersia cervina

6,6%

7,4%

6,7%

26,6%

30,9%

7,4%

7,1%

6,9%

53-Anemia mandioccana

81,0%

10,7%

8,2%

54-Tectaria incise

93,3%

6,6%

55-Hymenophyllum polyanthus

4,6%

33,0%

23,5%

15,7%

12,6%

10,3%

56-Trichomanes rigidum

57-Selaginella valida

6,5%

19,2%

34,2%

16,7%

5,5%

8,2%

2,3%

4,6%

2,4%

58-Selaginella decomposita

5,5%

7,1%

63,9%

8,0%

3,5%

7,3%

4,4%

59-Asplenium triquetum

29,5%

20,4%

60-Dicranopteris linearis

55,8%

33,0%

11,1%

61-Lycopodium clavatum

24,8%

25,2%

62-Rumohra adiantiformis

74,8%

25,1%

63-Alsophila setosa

15,4%

48,6%

11,0%

24,8%

64-Dennstaedtia obtusifolia

100%

65-Adiantum abscissum

30,5%

34,7%

24,1%

5,3%

5,2%

66-Adiantopsis radiate

21,5%

15,5%

50,0%

12,8%

67-Asplenium otites

24,5%

50,0%

25,5%

Legenda: As diferentes cores representam as diferentes coletas.

Para poder visualizar possíveis correlações entre as características das paredes

celulares das 67 espécies estudadas neste trabalho, foi construída a Tabela 13 em que se pode

visualizar ao mesmo tempo os oligossacarídeos detectados a partir da ação da celulase seguida

de espectrometria de massas e outros dados relacionados às características das espécies. Além

disso, a seqüência das espécies foi arranjada na mesma ordem de formação dos grupos que

têm similaridade (Figura 69). Foram adicionados dados sobre a taxonomia, habitat, hábito e

ainda as proporções dos monossacarídeos manose e glucose nas frações 4M e 8M de NaOH

obtidas por fracionamento completo.

Em uma primeira análise, não se pode ver relações claras entre os diferentes

parâmetros adicionados à tabela e os padrões de oligossacarídeos de xiloglucanos obtidos. O

que mais chama a atenção é o fato de que não há qualquer correlação entre estes padrões e a

taxonomia de samambaias e licófitas. No caso do hábito, pouco pode ser dito, pois a grande

maioria das espécies coletadas têm hábido herbáceo. Já no caso do bioma de origem, parece

haver uma certa tendência para que grupos contendo maiores teores de XXFG+Ac, XLFG,

XLFG+AC, ou seja, xiloglucanos mais fucosilados, ocorram no cerrado. Por outro lado, os

xiloglucanos menos fucosilados, que apresentaram XXG, GXXG XXLG, mostraram uma

tendência a ocorrer em espécies provenientes de ambiente de mata.

Tabela 13: Análise comparativa das espécies agrupadas, segundo a ordem gerada pela análise estatística, mostrando os

oligosacarídeos detectados pelo Maldi-tof, família, hábito, ambiente e pocentagem de manose e glucose.

ESPÉCIES

XXG

GXXG

XXXG

XXLG

XXLG+Ac

XXFG

XLLG

XXFG+Ac

XLFG

XLFG+Ac

família

hábito

ambiente

% man 4M

% man 8M

% Glc 4M

% Glc 8M

Lycopodium clavatum

Lygodium venustum 11,51 38,51 10,61 25,11

Megalastrum connexum

Asplenium otites

Polybotrya goyazensis 12,42 4,78 52,15 41,42

Acrostichum danaeifolium

Adiantopsis chlorophylla

Pleopeltis polypodioides

Hemionitis tomentosa 32,25 33,44 27,57 25,11

Thelypteris longifolia 12,08 6,49 44,39 30,19

Salpichlaena volubilis

Serpocaulon meniscifolium

Polybotrya cylindrica

Pecluma paradiseae

Adiantum deflectens

Olfersia cervina

Thelypteris conspersa

Pteris decurrens

Lophosoria quadripinnata 29,46 41,70 23,29 21,11

Adiantopsis radiata

Blechnum occidentale

Lastreopsis amplissima 6,36 3,87 43,86 55,26

Thelypteris interrupta

Cyathea corcovadensis

Pteris denticulata

Cyclodium meniscioides 24,99 5,46 38,88 41,15

Doryopteris lomariacea

Serpocaulon catharinae

29,89 27,31 34,29 53,82

Asplenium triquetum

Elaphoglossum iguapense

Thelypteris biformata

Blechnum binervatum subsp acutum

Tectaria incisa 6,14 1,63 29,36 29,58

Adiantum serratodentatum

Ctenitis aspidioides

Dennstaedtia obtusifolia

Campyloneurum major

Blechnum brasiliense

Sticherus bifudus 20,81 18,50 38,03 41,40

Gleichenella pectinata

Anemia mandioccana

Microgramma vacciniifolia

Dicranopteris linearis

Rumohra adiantiformis

Pteridium arachnoideum

Microgramma lindbergii

Blechnum regnellianum

Alsophila setosa

Cyathea delgadii 20,09 18,15 37,86 37,21

Hymenophyllum polyanthos 40,68 30,31 16,55 22,60

Pecluma plumula 8,87 10,38 42,86 25,46

Deparia petersenii

Selaginella decomposita

Pteris vittata

Pleopeltis hirsutissima

Asplenium gastonis

Pteris splendens 10,85 16,34 60,09 54,95

Selaginella valida

JATOBÁ

FAMÍLIA COR COR COR

POLYPODIACEAE

TECTARIACEAE

DRYOPTERIDACEAE

BLECHNACEAE

THELYPTERIDACEAE

WOODSIACEAE

ASPLENIACEAE

PTERIDACEAE

DENNSTAEDTIACEAE

DICKSONIACEAE

CYATHEACEAE

ANEMIACEAE

LYGODIACEAE

GLEICHENIACEAE

HYMENOPHYLLACEAE

LYCOPODIACEAE

SELAGINELLACEAE

LEGUMINOSAE

subarbustivo

arbustivo

herbácea

HÁBITO

AMBIENTE

mata

cerrado

arborescente

Discussão Geral e Conclusões:

Mananos e xiloglucanos nas paredes celulares de samambaias e licófitas:

Em um trabalho anterior (Silva, 2005), foi levantada a hipótese de que na parede

celular de folhas de samambaias e licófitas, um grupo se apresenta com uma grande

quantidade de manano. Tal observação realça o fato de que paredes com mananos, que são

normalmente encontrados em tecidos de reserva (Buckeridge et al. 2000b), ocorrem também

em paredes celulares de samambaias, denotando um padrão único para paredes celulares

primárias de folhas de plantas.

No presente trabalho, após a coleta de 67 espécies de samambaias e licófitas nativas

brasileiras, 17 delas foram analisadas por fracionamento da parede celular com concentrações

crescentes de NaOH. As proporções de monossacarídeos foram obtidas por análise por

HPAEC-PAD e os resultados confirmaram observações anteriores de que a composição das

paredes em samambaias e licófitas não corrobora a filogenia ou tem um relacionamento com a

taxonomia dos grupos estudados (Silva et al. – Anexo 3).

Para compreender melhor a estrutura dos polissacarídeos de samambaias, tecidos de

folhas estéreis da espécie Adiantum raddianum foram submetidas a fracionamento da parede e

as frações foram analisadas por metilação. Os resultados confirmaram a presença de estruturas

químicas similares às espermatófitas, com pectinas compostas de ácido galacturônico com

ramificações neutras com galactanos altamente ramificados. Estes galactanos, porém,

apresentam ligações predominantemente no carbono 2, o que é distinto do que tem sido

encontrado para pectinas de eudicotiledôneas, os quais são geralmente do tipo 4- e 3,6-

ligados.

No caso das hemiceluloses houve predomínio de alditois acetatos metilados

compatíveis com a existência de beta-1,4-mananos e xiloglucanos com estrutura bastante

ortodoxa no que se refere às ligações glicosídicas. Apesar de beta-glucanos já terem sido

encontrados em espécies de Equisetum (Fry et al. 2008), no caso de A. raddiannum não há

beta-glucanos, uma vez que não foi detectada a presença de 3-glc.

De fato, muitas das samambaias analisadas têm apresentado quantidades significativas

de mananos (acima de 30%), como foi encontrado em Adiantum raddianum, uma espécie

estudada anteriormente (Silva et al. Submetido – Anexo 3), e que continuou sendo investigada

neste trabalho. Foram efetuados alguns experimentos com esta espécie que parecem confirmar

a presença atípica de mananos em paredes celulares de algumas samambaias. Também foi

levado em consideração o padrão comparativo utilizado até o momento, a leguminosa

Hymenaea courbaril, (jatobá), uma espécie que tem uma parede celular tipo I e que foi

amplamente estudada. Nela a quantidade de manano encontrada, em média, no fracionamento

feito com NaOH 4M é de aproximadamente 9%.

O foco principal deste trabalho foi nas hemiceluloses, moléculas que têm sido

utilizadas para caracterizar as paredes celulares como tipo I ou II (Carpita & Gibeaut, 1993).

No caso de Adiantum raddianum, bem como de diversas outras espécies (ver tabela 9)

observou-se proporções relativamente altas de manose, um padrão que diferenciou dois

grupos distintos (H1 e H2, Silva et al. Submetido – Anexo 3). Mananos e xiloglucanos

parecem se alternar conforme a espécie, já que nas frações 4M das 17 espécies estudadas no

presente trabalho o teor de manose é inversamente proporcional ao teor de glucose.

Por outro lado, não foi possível observar qualquer tendência que correlacione a

presença ou ausência de monossacarídeos na parede celular com a filogenia ou com a

classificação das espécies em diferentes grupos taxonômicos. Com isto, este trabalho estende

as análises e corrobora a hipótese, levantada anteriormente por Silva et al. (submetido –

Anexo 3), de que a composição da parede celular não se mostra adequada para a utilização em

filogenia. Por outro lado, nossos dados sugerem que as paredes celulares de várias espécies de

samambaias e licófitas são únicas, uma vez que apresentam proporções relativamente altas de

mananos. As que chamaram maior atenção, com proporções em torno de 30%, vêm

confirmando a hipótese de que as paredes celulares de algumas espécies de samambaias

possuam uma parede diferenciada do que se conhece até o momento. Considerando a

classificação proposta por Carpita & Gibeaut em 1993, que dividiram as paredes em Tipo I e

II com base na presença de xiloglucanos e arabinoxilanos/beta-glucanos respectivamente, as

samambaias e licófitas parecem possuir muitas espécies com parede do Tipo I, com

xiloglucano como principal componente e um outro grupo, denominado H2 por Silva et al.

(Anexo 3), que contém um terceiro tipo de parede (Tipo III), cuja principal hemicelulose não

seria nem um xiloglucano, nem um -glucano, mas sim um manano. Existem poucos

trabalhos que tratam da parede celular de samambaias e licófitas, porém existem alguns

trabalhos que apontam para mudanças na composição das paredes celulares dessas plantas,

relacionadas com a evolução e diversificação das plantas (Popper et al. 2008; Fry et al. 2008).

Como as samambaias atuais derivam de um grupo bastante antigo, a existência de

múltiplos grupos com paredes celulares ora contendo xiloglucano, ora xiloglucano e mananos

e ora beta-glucanos (Fry et al. 2008) sugere que a formação e manutenção da parede celular

nos vegetais possa funcionar de uma forma modular, sendo que as espécies teriam o potencial

para sintetizar todas as hemiceluloses conhecidas (mananos, xiloglucanos, arabinoxilanos,

beta-glucanos e etc), mas que o controle de qual polímero será colocado em que posição na

parede e no tecido depende mais de controles relacionados ao metabolismo vegetal e

finalmente aos padrões de expressão dos genes ligados ao metabolismo da parede celular.

A ocorrência de mananos na parede primária é intrigante. Estes polímeros, quando

menos ramificados, normalmente conferem dureza à parede e têm sido vistos como

componentes importantes em tecidos onde a rigidez é importante, como no caule em

desenvolvimento de araucária (Bocchichio, 2003) e em sementes de várias espécies de mono

e eudicotiledôneas (Buckeridge et al. 2000a).

No caso das folhas de samambaias e licófitas, observamos que ao tentar hidrolisar as

paredes diretamente com XEG (xiloglucano-endo-glucosidase), uma enzima altamente

específica para xiloglucanos (Pauly et al. 1999), não houve ataque da enzima, ainda que

outros substratos, como paredes de folhas de arabidopsis e jatobá (ambas eudicotiledôneas)

tenham sido hidrolisados por esta enzima. Por outro lado, a hidrólise com celulase de

Trichoderma sp. produziu oligossacarídeos cujas massas puderam ser identificadas como de

compostos provenientes do xiloglucano, mostrando que esta hemicelulose está presente em

paredes de samambaias e licófitas, mas que o acesso da enzima aos polímeros é restrito. No

caso de A. raddianum e várias outras espécies, ficou nítido que os monossacarídeos

produzidos a partir de hemicelulose obtida por fracionamento alcalino ou por hidrólise direta

da parede rendem monossacarídeos que podem constituir oligossacarídeos bem diferentes, o

que sugere que o acesso ao xiloglucano poderia ser limitado pela presença de manano na

parede celular.

Pode-se especular que a combinação dos dois polímeros, gerando restrição à hidrólise,

constitui uma ferramenta extremamente útil como mecanismo de defesa ao ataque de

patógenos que utilizam a hidrólise da parede para obter acesso ao tecido vegetal. Uma

predição desta hipótese é que as espécies que possuem mananos na parede celular

apresentariam maior resistência ao ataque de patógenos. Porém, para comprovar ou não esta

hipótese ainda serão necessários muitos estudos sobre a fisiologia da parede celular de

samambaias e licófitas.

Análises por agrupamentos utilizando xiloglucanos:

Com a análise desses resultados obtidos com o Maldi-tof, além dos dados obtidos com

o fracionamento de parede celular e análise dos monossacarídeos resultantes, para 67 espécies

de samambaias e licófitas, já é possível afirmar com maior embasamento que esse grupo

possui uma parede celular diferente.

Confrontando os resultados da análise de monossacarídeos por HPAEC-PAD com os

resultados obtidos com Maldi-tof, por mais que não tenha sido possível fazer ambas análises

para todas as espécies, pode-se afirmar que todas elas possuem uma mistura de hemiceluloses

na parede celular. Com a análise de monossacarídeos observou-se que algumas espécies

apresentavam uma quantidade bastante significativa de manose, e outras apresentavam

quantidades menores, porém, todas elas apresentaram alguma manose. Outras espécies

apresentaram quantidades mais significativas de xilose e galactose, monossacarídeos que

constituem o xiloglucano, mas nem todas as espécies que apresentaram proporções elevadas

de xilose e galactose têm fucose em suas composições. Esta última é um monossacarídeo

constituinte do xiloglucano de parede primária, mas sabe-se que alguns xiloglucanos não

apresentam fucose, mesmo em paredes primárias (Braccini et al. 1995).

Nas samambaias e licófitas, embora essas proporções variassem de acordo com a

espécie, todas apresentaram manose, galactose e xilose, um forte indício de que há uma

mistura de hemiceluloses na parede celular dessas plantas. Outros dados que corroboram essa

hipótese são os obtidos com Maldi-tof que, como foi explicado nos resultados, apresentaram

uma baixa proporção de oligossacarídeos de xiloglucano.

Esses dados indicam fortemente que existe um tipo de manano nas paredes celulares

das samambaias e licófitas estudadas. Um trabalho realizado em 2000 com

galactoglucomananos, afirma que essas hemiceluloses são componentes estruturais

abundantes em paredes secundárias de gimnospermas e angiospermas, porém também têm

sido encontradas em musgos e samambaias (Capek et al. 2000).

Finalmente, observando-se a análise de agrupamento, que utilizou os resultados

obtidos com a análise de Maldi-Tof, que analisou apenas os oligossacarídeos de xiloglucano,

constatou-se que esses dados não referendam a filogenia proposta por Pryer et al. (2001) e

Smith et al. (2006), uma vez que os agrupamentos gerados pela análise de monossacarídeos

formam grupos de táxons distintos daqueles resultantes nessas análises filogenéticas.

Uma das justificativas para esse fato é que os oligossacarídeos de xiloglucano talvez

não sejam bons marcadores taxonômicos, nos níveis hierárquicos de classe, ordem e família.

Mas talvez possam ser utilizados em níveis hierárquicos superiores, para separar samambaias

e licófitas dos demais grupos de plantas vasculares, uma vez que a presença dos mananos em

grandes quantidades na parede de samambaias seja algo realmente distintivo para o grupo.

Abaixo se pode observar a classificação recente para as samambaias atuais, um

trabalho realizado por Smith et al. (2006). Neste trabalho foi dada maior ênfase às famílias de

samambaias e a classificação foi feita utilizando-se dados morfológicos além de dados

moleculares de seqüenciamentos gênicos dos cloroplastos e do núcleo. Com essa nova

classificação foram reconhecidas quatro classes, onze ordens e trinta e sete famílias.

Comparando-se o dendrograma obtido com os dados de oligossacarídeos (Figura 69)

com a classificação proposta para as samambaias atuais (figura 70), foi possível constatar que

os dados utilizados não corroboram a filogenia.

Figura 70: Filogenia das samambaias atuais, com ênfase para famílias, ordens e classes

(copiado de Smith et al. 2006).

Na tabela 13, os dados foram agrupados de acordo com a ordem dada pelo

dendograma obtido com as análises de Maldi-Tof (figura 69), para melhor visualização dos

oligossacarídeos presentes em cada espécie. A coluna ―Família‖ mostra que a presença dos

oligossacarídeos é aleatória e não referenda a filogenia neste nível hierárquico. Um dos

motivos pelos quais os oligossacarídeos de xiloglucano não terem corroborado a filogenia

atual do grupo pode estar relacionado à possibilidade desse caráter ter evoluído

independentemente diversas vezes nos diferentes grupos, aparecendo em grupos basais e

tornando a aparecer em grupos derivados (Crayn et al. 2004). Essa hipótese ainda está sob

investigação e o estudo da evolução dos polissacarídeos de parede celular ainda precisa ser

mais aprofundado.

O significado funcional e evolutivo de tais descobertas ainda não é claro e levanta uma

série de questões importantes a serem investigadas que, ao serem respondidas, auxiliarão

substancialmente a compreensão dos padrões evolutivos das paredes celulares nas plantas

vasculares. Como os mananos e suas variações moleculares estão normalmente envolvidos

com fatores relacionados à resistência mecânica dos tecidos ou com o controle das relações

hídricas, estas serão pistas importantes para investigações futuras com espécies de

samambaias.

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Cyatheaceae. Fieldiana, Botany, new series 20: 1-145.

Tryon, R.M. & Stolze, R.G. 1989b. Pteridophyta of Peru. Part II. 13. Pteridaceae-15.

Dennstaedtiaceae. Fieldiana, Botany, new series 22: 1-128.

Vincken, J.P., York, W.S, Beldman, G. & Voragen A.G.J. 1997. Two general branching

patterns of xyloglucan, XXXG and XXGG. Plant Physiology, 114: 9-13.

Anexos:

Anexo 1: Tabela binária para obtenção do dendograma através do software estatístico

livre R project.

Anexo 2: Tabela da proporção de monossacarídeos na fração 4M de NaOH de

Adiantum raddianum. Os dados foram obtidos por cromatografia líquida de alto desempenho

com detecção por pulso amperométrico. Os dados são expressos em porcentagem do total de

monossacarídeos detectados.

monossacarídeos

Adiantum raddianum

Fucose

1,7

Ramnose

1,6

Arabinose

3,9

Galactose

10,4

Glucose

26,2

Xilose

17,4

Manose

38,8

Anexo 3: Artigo submetido, Silva et al.

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