( PDF ) Densidade de estocagem, níveis protéicos e lipídicos da dieta na produção e aceitabilidade do filé de jundiá

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UNIVERSIDADE FEDERAL DE SANTA MARIA

CENTRO DE CIÊNCIAS RURAIS

PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM ZOOTECNIA

DENSIDADE DE ESTOCAGEM, NÍVEIS PROTÉICOS

E LIPÍDICOS DA DIETA NA PRODUÇÃO E

ACEITABILIDADE DO FILÉ DE JUNDIÁ

TESE DE DOUTORADO

Rafael Lazzari

Santa Maria, RS, Brasil

2008

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DENSIDADE DE ESTOCAGEM, NÍVEIS PROTÉICOS E

LIPÍDICOS DA DIETA NA PRODUÇÃO E ACEITABILIDADE

DO FILÉ DE JUNDIÁ

por

Rafael Lazzari

Tese apresentada ao Curso de Doutorado do Programa de Pós-

Graduação em Zootecnia, Área de Concentração em Produção Animal –

Nutrição de Peixes, da Universidade Federal de Santa Maria (UFSM,

RS), como requisito parcial para obtenção do grau de

Doutor em Zootecnia.

Orientador: Prof. Dr. João Radünz Neto

Santa Maria, RS, Brasil

2008

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Universidade Federal de Santa Maria

Centro de Ciências Rurais

Programa de Pós-Graduação em Zootecnia

A Comissão Examinadora, abaixo assinada,

aprova a Tese de Doutorado

DENSIDADE DE ESTOCAGEM, NÍVEIS PROTÉICOS E LIPÍDICOS DA

DIETA NA PRODUÇÃO E ACEITABILIDADE DO FILÉ DE JUNDIÁ

elaborada por

Rafael Lazzari

como requisito parcial para obtenção do grau de

Doutor em Zootecnia

COMISSÃO EXAMINADORA:

________________________________________

João Radünz Neto, Dr. (UFSM)

(Presidente/Orientador)

________________________________________

Tatiana Emanuelli, Drª. (UFSM)

________________________________________

Irineo Zanella, Dr. (UFSM)

________________________________________

José Fernando Bibiano Melo, Dr. (UNEB)

________________________________________

Katia Padilha Barreto, Drª. (UFSM)

Santa Maria, 09 de Dezembro de 2008.

AGRADECIMENTOS

A minha namorada Cristiane Rosa Moreira, pelo apoio, carinho e

compreensão. Não tenho palavras para agradecer a sua ajuda.

Aos meus pais Nilo e Iraci e a minha irmã Fernanda Lazzari, pelo incentivo,

pela educação, pelo carinho e pelo exemplo de vida.

Ao professor, orientador e amigo João Radünz Neto, muito obrigado por

oportunizar este momento, por acreditar que a formação e o conhecimento são as

ferramentas imprescindíveis para o sucesso profissional. Sua conduta pessoal é um

exemplo a ser seguido, muito obrigado por tudo. Seus ensinamentos nunca serão

esquecidos.

A todo grupo do Laboratório de Piscicultura, em especial a Fabio, Viviani,

Cátia, Giovani, Suzete, Cristiano, Daniel, Suziane, Fernando Jonas, Maria e todos os

demais integrantes. Obrigado por todos os momentos de convivência, amizade e de

aprendizagem. Sem a ajuda de vocês certamente não conseguiria chegar até aqui.

Ao professor e amigo Diniz Fronza, obrigado pelo constante incentivo. Aos

professores Paulo Alberto Lovatto, Bernardo Baldisserotto, Irineo Zanella e José

Henrique Souza da Silva, pelos valiosos ensinamentos recebidos durante o curso.

Também a secretária do Programa, Olirta Giuliani, por todo o auxílio e paciência

durante o decorrer do curso.

A professora Tatiana Emanuelli, a Cristiane Portes Ribeiro e equipe do

NIDAL, pela organização e execução de análises dos peixes e dos filés. A equipe do

Laboratório de Bioquímica adaptativa, em especial a Alexandra Pretto e à professora

Vania Loro.

A CAPES pela concessão de bolsa de estudos, ao SEAP/MCT/FINEP/Fundo

Setorial Agronegócio/Fundo CT Hidro-Aqüicultura (processo n.3602/05) pelo auxílio

financeiro, ao CNPq pela bolsa de produtividade em pesquisa para o professor João

Radünz Neto, à FAPERGS pela bolsa de iniciação científica para as alunas Viviani

Corrêia e Suzete Rossato.

Às empresas Adisseo, Frigorífico Silva, Vitagri Nutrição Animal e ao

Laboratório de Análises Micotoxicológicas da UFSM, na pessoa do professor Carlos

Augusto Mallmann, pelo fornecimento de ingredientes e análises de dietas. Aos

amigos e colegas do CEFET – Unidade de Ensino de Santo Augusto, pela amizade

e incentivo. Enfim, a todos que de alguma forma contribuíram, muito obrigado.

RESUMO

Tese de Doutorado

Programa de Pós-Graduação em Zootecnia

Universidade Federal de Santa Maria

DENSIDADE DE ESTOCAGEM, NÍVEIS PROTÉICOS E LIPÍDICOS DA

DIETA NA PRODUÇÃO E ACEITABILIDADE DO FILÉ DE JUNDIÁ

AUTOR: RAFAEL

LAZZARI

ORIENTADOR: JOÃO RADÜNZ NETO

Data e Local da Defesa: Santa Maria, 09 de Dezembro de 2008.

Este trabalho foi conduzido para avaliar o crescimento, perfil lipídico,

metabolismo e aceitabilidade dos filés de jundiás. Para isso foram conduzidos quatro

experimentos delineados inteiramente ao acaso, onde jundiás de mesma origem

genética foram criados em sistemas com recirculação de água. No primeiro, foram

avaliados quatro densidades de estocagem (4,2, 6,4, 8,6 e 10,8 kg/m

) em jundiás

de ambos os sexos. Utilizou-se um total de 420 peixes (Pi=182,95 ± 2,96 g), que

foram alimentados durante 120 dias até a saciedade aparente. Verificou-se

diminuição no peso dos peixes com o aumento da densidade utilizada, com

elevação do cortisol plasmático. No segundo experimento, testou-se a influência do

sexo e do nível de proteína dietário. Em arranjo fatorial 2 X 3 (dois sexos e três

níveis protéicos: 24, 27 e 30% de PB), 270 peixes (Pi=207,02 ± 26,73 g) foram

alimentados controladamente durante 100 dias. As fêmeas apresentaram

crescimento superior, com exigência protéica menor (24% PB) que os machos (30%

PB), os quais apresentaram maior rendimento de filé. O aumento da proteína da

dieta proporcionou melhora no perfil lipídico dos filés. Foram conduzidos mais dois

experimentos separadamente avaliando a utilização do óleo de soja na dieta (0, 2, 4,

6, 8 e 10% de inclusão, alimentação até a saciedade). Os machos (234, Pi=193,32 ±

18,78 g – 120 dias de experimento) alimentados com 8% de óleo apresentaram

melhor desempenho. As fêmeas (144, Pi=237,75 ± 22,35 g – 80 dias de

experimento) alimentadas com 10% de óleo obtiveram maior peso final. O consumo

aparente de alimento foi maior nos machos. A maior inclusão de óleo de soja nas

dietas proporcionou diminuição na quantidade de ácidos graxos saturados e

aumento de poliinsaturados (PUFAS) nos filés dos jundiás. Não foram detectadas

diferenças pelo painel de provadores no sabor, textura e aparência dos filés de

jundiás de ambos os sexos.

Palavras-chaves: estresse, óleo de soja, proteína, qualidade, Rhamdia quelen.

ABSTRACT

Animal Science Doctorate Thesis

Post-Graduate Program in Animal Science

Federal University of Santa Maria

STOCKING DENSITY, DIET LIPID AND PROTEIN LEVELS IN

PRODUCTION AND FILLET ACEITABILITY OF JUNDIÁ

AUTHOR: RAFAEL LAZZARI

ADVISER: JOÃO RADÜNZ NETO

Date and Defense Place: Santa Maria, December, 09

, 2008.

This study was conducted to evaluate growth, lipid profile, metabolism and

fillet aceitability of jundiá. For this purpose four experiments were conducted in a

completely randomly design, where jundiás of the same genetic origin were reared in

water re-use system. In the first, it was evaluated four densities (4.2, 6.4, 8.6 and

10.8 kg/m

) in jundiás of both sexes. It was used a total of 420 fish (IW=182.95 ±

2.96 g), that were fed for 120 days until the apparent satiation. It was verified a

weight decrease of fish with the increase of the SD used, with elevation of the

plasmatic cortisol. In the second experiment, it was tested the sex and dietary protein

level influence. In factorial arrangement 2 X 3 (two sexes and three protein levels: 24,

27 and 30% of CP), 270 fish (IW=207.02 ± 26.73 g) were fed controlled during 100

days. The females showed higher growth, with lower protein requirement (24% CP)

than that of males (30% CP). These showed higher fillet yield. The increase of the

diet protein provided improvement in the fillet lipid profile. Two additional experiments

were conducted separately to evaluate the use of soybean oil in the diet (0, 2, 4, 6, 8

e 10% of inclusion, feeding until the satiation). The males (234, IW=193.32 ± 18.78 g

– 120 days experiment) fed with 8% soybean oil showed better performance. The

females (144, IW=237.75 ± 22.35 g – 80 days experiment) fed with 10% soybean oil

had obtained higher final weight. The feed apparent consumption was higher in

males. The higher soybean oil inclusion in the diets decreased the amount of

saturated fatty acids and increased polynsaturated fatty acids in jundiá fillets. No

differences were detected by the taste panel in the flavor, texture and appearance of

the fillets regardeless of fish sex.

Keywords: stress, soybean oil, protein, quality, Rhamdia quelen.

LISTA DE TABELAS

TABELA 1 – Formulação e composição (%) da dieta utilizada no experimento

1...........................................................................................................................

TABELA 2 - Valores dos parâmetros de qualidade da água analisados

durante o experimento.........................................................................................

TABELA 3 –

Comprimento total (cm), comprimento padrão (cm), conversão

alimentar aparente (CAA), coeficiente de variação do peso (%) e fator de

condição de jundiás submetidos a diferentes densidades de estocagem...........

TABELA 4 -

Rendimento de cortes de jundiás submetidos a diferentes

densidades de estocagem...................................................................................

TABELA 5 -

Composição (%) dos filés de jundiás submetidos a diferentes

densidades de estocagem...................................................................................

TABELA 6 –

Composição corporal (%) de jundiás submetidos a diferentes

densidades de estocagem...................................................................................

TABELA 7 -

Perfil lipídico corporal de jundiás criados em diferentes

densidades de estocagem...................................................................................

TABELA 8 -

Perfil lipídico dos filés de jundiás criados em diferentes

densidades..........................................................................................................

TABELA 9 -

Parâmetros hematológicos de jundiás em diferentes densidades

de estocagem......................................................................................................

TABELA 10 -

Parâmetros metabólicos do plasma de jundiás submetidos a

diferentes densidades..........................................................................................

TABELA 11 -

Composição das dietas experimentais (%) utilizadas no

experimento 2......................................................................................................

TABELA 12 -

Composição em aminoácidos essenciais (% da proteína) das

dietas experimentais............................................................................................

TABELA 13 -

Rendimentos de cortes e índices digestivos de jundiás

alimentados com diferentes níveis de proteína e separados por sexo................

TABELA 14 -

Composição centesimal dos filés e corporal de jundiás

alimentados com diferentes níveis de proteína na dieta e separados por sexo..

TABELA 15 -

Perfil lipídico corporal de jundiás alimentados com diferentes

níveis de proteína e separados por sexo.............................................................

TABELA 16 -

Perfil lipídico dos filés de jundiás alimentados com diferentes

níveis de proteína e separados por sexo.............................................................

TABELA 17 - Enzimas digestivas em jundiás alimentados com diferentes

níveis de proteína e separados por sexo.............................................................

TABELA 18 -

Parâmetros metabólicos em jundiás alimentados com diferentes

níveis de proteína e separados por sexo.............................................................

TABELA 19 –

Parâmetros hematológicos em jundiás alimentados com dietas

contendo diferentes níveis protéicos e separados por sexo................................

TABELA 20 -

Valores de volume corpuscular médio (VCM), hemoglobina

corpuscular média (HCM) e concentração de hemoglobina corpuscular média

(CHCM) em jundiás alimentados com dietas contendo diferentes níveis

protéicos e separados por sexo...........................................................................

TABELA 21 -

Composição das dietas experimentais para os machos (%).........

TABELA 22 -

Composição das dietas experimentais para as fêmeas (%)......... 85

TABELA 23 -

Valores dos parâmetros de qualidade da água analisados

durante os experimentos 3 e 4............................................................................

TABELA 24 -

Parâmetros produtivos de machos de jundiá alimentados com

dietas contendo óleo de soja...............................................................................

TABELA 25 - Parâmetros produtivos de fêmeas de jundiá alimentadas com

dietas contendo óleo de soja...............................................................................

TABELA 26 -

Composição centesimal de filés e peixe inteiro (%) de machos

de jundiá alimentados com dietas contendo óleo de soja...................................

TABELA 27 -

Perfil lipídico dos filés de machos de jundiás alimentados com

óleo de soja na dieta............................................................................................

TABELA 28 -

Perfil lipídico corporal de machos de jundiás alimentados com

óleo de soja na dieta............................................................................................

100

TABELA 29 -

Composição centesimal do peixe inteiro e de filés (%) de

fêmeas de jundiá alimentadas com dietas contendo óleo de soja......................

101

TABELA 30 -

Perfil lipídico corporal de fêmeas de jundiás alimentadas com

dietas contendo óleo de soja...............................................................................

102

TABELA 31 -

Perfil lipídico dos filés de fêmeas de jundiá alimentadas com

diferentes níveis de óleo de soja..........................................................................

103

TABELA 32 -

Escore sensorial de teste de ordenação de acordo com a

preferência de filés de machos de jundiás alimentados com diferentes níveis

de óleo de soja....................................................................................................

104

TABELA 33 -

Escore sensorial de teste de ordenação de acordo com a

preferência de filés de fêmeas de jundiás alimentados com diferentes níveis

de óleo de soja....................................................................................................

104

TABELA 34 -

Enzimas digestivas de machos de jundiá alimentados com

dietas contendo níveis de óleo de soja................................................................

105

TABELA 35 -

Metabólitos em machos de jundiá alimentados com dietas

contendo níveis de óleo de soja..........................................................................

106

TABELA 36 -

Enzimas digestivas em fêmeas de jundiá alimentados com

dietas contendo níveis de óleo de soja................................................................

107

TABELA 37 –

Parâmetros hematológicos em machos de jundiá alimentados

com dietas contendo níveis de óleo de soja........................................................

108

TABELA 38 – Metabólitos em fêmeas de jundiá alimentados com dietas

contendo níveis de óleo de soja..........................................................................

111

TABELA 39 – Parâmetros hematológicos em fêmeas de jundiá alimentadas

com dietas contendo níveis de óleo de soja........................................................

113

TABELA 40 – Composição analisada dos ingredientes utilizados nas dietas

dos experimentos 1 e 2 (%).................................................................................

144

TABELA 41 – Composição analisada dos ingredientes utilizados nas dietas

dos experimentos 3 e 4 (%).................................................................................

145

TABELA 42 – Composição analisada em aminoácidos totais (T) e digestíveis

(D) dos ingredientes utilizados nas dietas dos experimentos 1 e 2 (%)..............

146

TABELA 43 - Composição analisada em aminoácidos totais (T) e digestíveis

(D) dos ingredientes utilizados nas dietas dos experimentos 3 e 4 (%)..............

147

LISTA DE FIGURAS

FIGURA 1 - Variação da temperatura da água (ºC) durante o período

experimental........................................................................................................

FIGURA 2 - Peso de jundiás submetidos a diferentes densidades de

estocagem...........................................................................................................

FIGURA 3 – Biomassa total (g) de jundiás submetidos a diferentes

densidades de estocagem...................................................................................

FIGURA 4 - Consumo aparente diário dos jundiás submetidos a diferentes

densidades de estocagem...................................................................................

FIGURA 5 - Índice hepato-somático de jundiás criados em diferentes

densidades..........................................................................................................

FIGURA 6 - Índice digestivo-somático de jundiás criados em diferentes

densidades..........................................................................................................

FIGURA 7 – Valores ajustados de taxa de eficiência protéica em jundiás

submetidos a diferentes densidades de estocagem............................................

FIGURA 8 - Teores de glicose plasmática de juvenis de jundiá em diferentes

densidades de estocagem...................................................................................

FIGURA 9 - Valores de cortisol plasmático de jundiás submetidos a diferentes

densidades de estocagem..................................................................

FIGURA 10 - Peso médio individual dos jundiás separados por sexo................ 56

FIGURA 11 - Peso final de jundiás de acordo com o nível de proteína da

dieta....................................................................................................................

FIGURA 12 - Fator de condição de machos e fêmeas de jundiá alimentados

com diferentes níveis de proteína na dieta..........................................................

FIGURA 13 - Valores de quimiotripsina em jundiás alimentados com

diferentes níveis de proteína na dieta..................................................................

FIGURA 14 - Quantidade de plaquetas em jundiás de acordo com o sexo........ 67

FIGURA 15 - Teor de glicogênio hepático em jundiás de acordo com o sexo.... 68

FIGURA 16 – Proteína no fígado de jundiás separados por sexo.......................

FIGURA 17 – Quantidade de lactato no fígado de jundiás separados por sexo. 69

FIGURA 18 – Quantidade de glicose plasmática (mg/dL) em jundiás

separados por sexo.............................................................................................

FIGURA 19 – Quantidade de glicogênio no fígado (mg/dL) de jundiás

separados por sexo............................................................................................. 70

FIGURA 20 – Quantidade de triglicerídeos plasmáticos em jundiás

alimentados com dietas contendo diferentes níveis de proteína bruta................

FIGURA 21 – Valores médios de HDL em jundiás alimentados com dietas

contendo diferentes níveis de proteína bruta......................................................

FIGURA 22 - Peso médio ajustado ao consumo de alimento de jundiás

machos alimentados com dietas contendo óleo de soja.....................................

FIGURA 23 – Peso médio ajustado ao consumo de alimento de fêmeas de

jundiá alimentadas com dietas contendo óleo de soja........................................

FIGURA 24 - Valores de consumo diário aparente (CDA) em jundiás

alimentados com dietas contendo óleo de soja...................................................

FIGURA 25 – Valores de conversão alimentar aparente (CAA) em jundiás

alimentados com dietas contendo óleo de soja...................................................

FIGURA 26 – Biomassa total de machos e fêmeas de jundiá alimentadas com

dietas contendo óleo de soja...............................................................................

FIGURA 27 – Quantidade de plaquetas em machos de jundiá alimentados

com dietas contendo óleo de soja.......................................................................

109

FIGURA 28 – Valores de volume corpuscular médio (VCM) em machos de

jundiá alimentados com dietas contendo óleo de soja........................................

109

FIGURA 29 – Quantidade de proteína no fígado e rim de fêmeas de jundiá

alimentadas com dietas contendo óleo de soja...................................................

110

FIGURA 30 – Quantidade de colesterol total em jundiás alimentados com

dietas contendo óleo de soja...............................................................................

112

FIGURA 31 – Quantidade de triglicerídeos plasmáticos em jundiás

alimentados com dietas contendo óleo de soja...................................................

112

FIGURA 32 - Quantidade de hemoglobina em fêmeas de jundiá alimentadas

com dietas contendo óleo de soja.......................................................................

113

FIGURA 33 - Hematócrito de fêmeas de jundiá alimentadas com dietas

contendo óleo de soja..........................................................................................

114

LISTA DE ABREVIATURAS

ABNT – Associação Brasileira de Normas Técnicas

AGE – ácidos graxos essenciais r

– coeficiente de determinação

AGS – ácidos graxos RF – rendimento de filé

AST – aspartato aminotransferase SFA – ácidos graxos saturados

ALT – alanina aminotransferase TEP – taxa de eficiência protéica

BHT – butil-hidróxi-tolueno UFA – ácidos graxos insaturados

CAA – conversão alimentar aparente VCM – volume corpuscular médio

CDA – consumo diário aparente RC – rendimento de carcaça

CHCM – concentração de hemoglobina corpuscular média

CP – comprimento padrão Pi – peso inicial

CT – comprimento total

CV – coeficiente de variação

CVP - coeficiente de variação do peso

DE – densidade de estocagem

DIC – delineamento inteiramente ao acaso

Dpr – desvio padrão residual

ED – energia digestível

EB – energia bruta

FC – fator de condição

GI – gordura intraperitoneal

IDS – índice digestivo-somático

IHS – índice hepato-somático

HCM – hemoglobina corpuscular média

HDL – lipoproteína de alta densidade

HT - hematócrito

HB – hemoglobina

LDL – lipoproteína de baixa densidade

NS – não-significativo (P>0,05)

PB – proteína bruta

P/E – relação proteína/energia

PUFA – ácidos graxos poliinsaturados

PV – peso vivo

LISTA DE ANEXOS

ANEXO 1 – Protocolo da determinação da matéria seca total e matéria

mineral.................................................................................................................

139

ANEXO 2 - Protocolo da determinação da proteína bruta...................................

140

ANEXO 3 - Protocolo da determinação do extrato etéreo...................................

141

ANEXO 4 - Protocolo da determinação da fibra bruta.........................................

142

ANEXO 5 – Protocolo da determinação de lipídios (carcaça)............................. 143

ANEXO 6 - Tabela 40. Composição analisada dos ingredientes utilizados nas

dietas dos experimentos 1 e 2 (%)......................................................................

144

ANEXO 7 - Tabela 41. Composição analisada dos ingredientes utilizados nas

dietas dos experimentos 3 e 4 (%)......................................................................

145

ANEXO 8 - Tabela 42. Composição analisada em aminoácidos totais (T) e

digestíveis (D) dos ingredientes utilizados nas dietas dos experimentos 1 e 2

(%).......................................................................................................................

146

ANEXO 9 - Tabela 43. Composição analisada em aminoácidos totais (T) e

digestíveis (D) dos ingredientes utilizados nas dietas dos experimentos 3 e 4

(%).......................................................................................................................

147

ANEXO 10 - Questionário de recrutamento de painelistas para painel

sensorial..............................................................................................................

148

SUMÁRIO

1 INTRODUÇÃO GERAL....................................................................................

2 OBJETIVOS..................................................................................................... 17

3 PRIMEIRO CAPÍTULO: CRESCIMENTO, HEMATOLOGIA E

COMPOSIÇÃO CENTESIMAL DE JUNDIÁS CRIADOS EM DIFERENTES

DENSIDADES DE ESTOCAGEM.......................................................................

3.1 Introdução.................................................................................................... 18

3.2 Material e métodos...................................................................................... 20

3.2.1 Instalações e animais................................................................................. 20

3.2.2 Qualidade da água..................................................................................... 21

3.2.3 Manejo alimentar........................................................................................ 22

3.2.4 Coleta de dados e variáveis estimadas...................................................... 23

3.2.5 Análises laboratoriais..................................................................................

3.2.6 Análises estatísticas................................................................................... 26

3.3 Resultados................................................................................................... 27

3.3.1 Qualidade da água..................................................................................... 27

3.3.2 Desempenho e carcaça..............................................................................

3.3.3 Composição centesimal e perfil lipídico......................................................

3.3.4 Hematologia e metabolismo....................................................................... 38

3.4 Discussão.....................................................................................................

3.5 Conclusões.................................................................................................. 46

4 SEGUNDO CAPÍTULO: CRESCIMENTO E QUALIDADE DA CARNE DO

JUNDIÁ DE ACORDO COM O SEXO E O NÍVEL DE PROTEÍNA DA DIETA..

4.1 Introdução.................................................................................................... 47

4.2 Material e métodos...................................................................................... 48

4.2.1 Instalações e animais................................................................................. 48

4.2.2 Qualidade da água..................................................................................... 49

4.2.3 Manejo alimentar........................................................................................ 50

4.2.4 Coleta de dados e variáveis estimadas...................................................... 52

4.2.5 Análises laboratoriais..................................................................................

4.2.6 Análises estatísticas................................................................................... 55

4.3 Resultados................................................................................................... 56

4.3.1 Qualidade da água..................................................................................... 56

4.3.2 Desempenho e carcaça..............................................................................

4.3.3 Composição centesimal e perfil lipídico......................................................

4.3.4 Enzimas digestivas, metabolismo e hematologia....................................... 63

4.4 Discussão.....................................................................................................

4.5 Conclusões.................................................................................................. 78

5 TERCEIRO CAPÍTULO: DESEMPENHO, QUALIDADE E

ACEITABILIDADE DE FILÉS DE MACHOS E FÊMEAS DE JUNDIÁ

ALIMENTADOS COM ÓLEO DE SOJA NA DIETA...........................................

5.1 Introdução.................................................................................................... 79

5.2 Material e métodos...................................................................................... 81

5.2.1 Instalações e animais................................................................................. 81

5.2.2 Qualidade de água..................................................................................... 82

5.2.3 Manejo alimentar........................................................................................ 83

5.2.4 Coleta de dados e variáveis estimadas...................................................... 86

5.2.5 Análises laboratoriais..................................................................................

5.2.6 Painel sensorial.......................................................................................... 89

5.2.7 Análises estatísticas................................................................................... 90

5.3 Resultados................................................................................................... 91

5.3.1 Qualidade da água..................................................................................... 91

5.3.2 Desempenho e carcaça..............................................................................

5.3.3 Composição centesimal, perfil lipídico e aceitabilidade..............................

5.3.4 Enzimas, metabolismo e hematologia........................................................ 105

5.4 Discussão.....................................................................................................

115

5.5 Conclusões.................................................................................................. 123

6 DISCUSSÃO GERAL.......................................................................................

124

7 CONCLUSÕES GERAIS..................................................................................

126

8 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS................................................................ 127

9 ANEXOS...........................................................................................................

139

1. INTRODUÇÃO GERAL

A aqüicultura brasileira cresce a uma taxa superior a 20% ao ano, muito

maior que todas as demais atividades de produção animal no Brasil (Ostrensky et

al., 2008). Nosso país é o segundo produtor de organismos aquáticos da América do

Sul, atrás somente do Chile. Em relação à criação de peixes de água doce, 67% da

produção nacional está baseada na produção de carpas, tilápias e peixes redondos

(tambaquis e pacus).

A carência de tecnologias adequadas de criação para as espécies nativas é

um fator limitante na expansão da piscicultura brasileira. Esta se caracteriza pela

importação de modelos criatórios baseados em espécies exóticas mundialmente

difundidas (carpas, catfish, salmões), o que, muitas vezes, não proporciona a

mesma resposta pelas diferentes condições de criação.

O jundiá (Rhamdia quelen) é um bagre de hábito alimentar onívoro,

encontrado desde o sul do México até a Argentina. Apresenta carne de sabor

agradável, sendo bem aceita pelos consumidores. O peso final de abate pode variar

de 350 gramas a até 1 kg com um tempo de engorda de 6 meses a 1 ano (Barcellos

et al., 2004). A produção brasileira de jundiá é de 547 toneladas, representando

0,2% do total da aqüicola nacional (Boscardin et al., 2008). Para os próximos anos,

espera-se o aumento desta quantidade.

É uma espécie que exige adequado manejo alimentar desde os primeiros

dias de vida, sendo classificado como um onívoro exigente (Radünz Neto, 2004;

Meyer & Fracalossi, 2005). Alguns estudos foram realizados sobre a nutrição desta

espécie na fase de larvicultura (Piaia & Radünz Neto, 1997; Cardoso et al., 2004;

Lazzari et al., 2004), alevinagem (Coldebella & Radünz Neto, 2002; Meyer &

Fracalossi, 2004) e recria (Lazzari et al., 2008; Pedron et al., 2008). No entanto,

existe carência de trabalhos na fase de terminação, relacionados ao manejo criatório

e qualidade do pescado.

O conhecimento da digestão, das atividades enzimáticas e metabólicas é de

fundamental importância para o planejamento de um manejo nutricional adequado

para peixes. Os lipídios e as proteínas são os principais constituintes em dietas para

peixes, com os carboidratos sendo menos expressivos (De Silva & Anderson, 1995).

Para peixes, as dietas caracterizam-se pelos altos níveis de proteína.

As relações deste nutriente com os lipídios e carboidratos ocasionam

mecanismos metabólicos distintos que afetam diretamente o crescimento dos

animais. Neste aspecto, a utilização de rotas gliconeogênicas é de fundamental

importância, pois o peixe pode, a partir de fontes não-glicídicas, produzir glicose

para produção de energia.

No matrinxã (Brycon cephalus) observou-se redução no glicogênio hepático

de acordo com o aumento da proteína da dieta (Vieira et al., 2005). Para Gadus

morhua alimentados com dieta sem amido, esta espécie pode realizar

gliconeogênese a partir de aminoácidos e trglicerídeos para manter os teores de

glicogênio (Hemre et al., 1989). O pintado (Pseudoplatystoma coruscans) apresenta,

com base nos conteúdos metabólicos observados no rim e fígado, uma

caracterização de realizar gliconeogênese (Lundstedt et al., 2004).

Diante das informações existentes para a produção do jundiá, este estudo

visa aprofundar questões relacionadas ao manejo, composição do alimento,

alterações metabólicas e reflexos na qualidade da carne. O trabalho foi composto

por quatro experimentos, que estão organizados e descritos nos próximos três

capítulos deste texto.

2. OBJETIVOS

- Determinar a melhor densidade de estocagem para a engorda de jundiás

em sistema de recirculação de água;

- Estabelecer níveis de óleo de soja na dieta para a engorda de machos e

fêmeas de jundiá;

- Observar a composição química de filés de jundiá e sua relação com o

alimento;

- Verificar a aceitabilidade do filé de jundiá através de painel de provadores;

- Avaliar o efeito do sexo no crescimento e na qualidade da carne;

- Detectar alterações metabólicas e enzimáticas em jundiás alimentados

com diferentes concentrações energéticas;

- Mensurar o efeito da densidade de estocagem e composição da dieta

sobre o perfil hematológico do jundiá.

3. PRIMEIRO CAPÍTULO

Crescimento, hematologia e composição centesimal de jundiás criados em

diferentes densidades de estocagem

3.1 Introdução

Os sistemas de produção de peixes em cativeiro são eficientes à medida

que se estabelece um manejo padronizado para cada espécie. Um fator que afeta

muito a produtividade é a quantidade de animais utilizados por unidade de área ou

volume, representada pela densidade de estocagem (DE). A não adaptação a altas

DE pode limitar a criação de uma espécie de peixe em escala comercial (Montero et

al., 1999; Molnár et al., 2004).

O potencial de crescimento de um peixe depende de fatores ambientais, da

espécie e da DE utilizada na criação, onde se espera conseguir, em menor espaço e

tempo possíveis, maior produtividade (Ouattara et al., 2003). Até as exigências

nutricionais de uma espécie diferem de acordo com as instalações de cultivo e

densidades de estocagem (Webster et al., 1992).

A melhor DE para cada espécie varia de acordo com o sistema de criação,

alimentação, potencial de crescimento da espécie e tamanho ótimo no momento da

despesca. Por isso, é muito difícil estabelecer o que é uma alta ou baixa densidade.

A DE está condicionada ao estabelecimento de uma estrutura populacional, que

resulta em interações sociais entre os indivíduos dentro da unidade de criação.

Assim, alguns peixes tornam-se dominantes, ocasionando desuniformidade do lote e

redução da eficiência alimentar (Grand & Grant, 1994).

Os mecanismos fisiológicos relacionados à DE no crescimento e utilização

do alimento pelos peixes são variados (Boujard et al., 2002). Em muitas situações,

alta DE é um fator estressante, ocasionando efeitos negativos no crescimento

(Pickering & Pottinger, 1987; Vijayan & Leatherland, 1988). Nestes casos, a glicose

sangüínea é um bom indicador de distúrbios fisiológicos, por ser a principal fonte de

energia utilizada para suportar situações metabólicas desfavoráveis (Brandão et al.,

2004). O aumento na concentração de glicose e posterior diminuição do crescimento

acontecem por que a energia é desviada para compensar uma situação de estresse

(Procarione et al., 1999). Outro indicador de estresse em peixes é o cortisol,

hormônio responsável por várias alterações fisiológicas, como o metabolismo

hepático e intermediário (Barcellos et al., 2000). Uma elevação do nível deste

hormônio indica uma condição de estresse.

Peixes criados em menores DE geralmente apresentam maior crescimento

individual e sobrevivência, entretanto, a produção por área é baixa (Gomes et al.,

2000). O surgimento de dominância e aumento da condição de estresse é

característico de altas DE (Cavero et al., 2003; Iguchi et al., 2003). Neste sentido,

espera-se que maiores DE apresentem grandes variações entre indivíduos, como

observado para o matrinxã (Brycon cephalus) e "black bass" (Micropterus salmoides)

(Gomes et al., 2000; Petit et al., 2001).

Para determinadas espécies de peixes, altas DE resultam em maior

sobrevivência, sem redução de crescimento, consumo e conversão alimentar

(Molnár et al., 2004). Em alguns estudos, foram demonstrados que, em maiores

densidades, os peixes são mais agressivos na busca e ingestão do alimento (Piaia &

Baldisserotto, 2000; Rowland et al., 2004). Em juvenis de “gilthead seabream”

(Sparus aurata), altas DE provocam alterações comportamentais, baixa utilização do

alimento, resultando em mortalidade e crescimento reduzido (Montero et al., 1999).

Para o tambaqui (Colossoma macropomum), menor densidade proporciona peixes

de maior tamanho e a sobrevivência não é afetada (Brandão et al., 2004). Para

jundiás criados em tanques-rede de pequeno volume, o aumento da DE proporciona

maior peso individual (Vaz et al., 2003). Segundo os autores, em baixas densidades

não ocorre competição por alimento, o que influencia na quantidade ingerida.

A piscicultura está evoluindo no sentido de intensificar e maximizar o uso da

água. Por isso, é importante realizar estudos sobre a criação e a influência da

densidade de estocagem no estresse e glicemia dos peixes nativos brasileiros. Para

o jundiá, é fundamental a determinação da melhor densidade de estocagem para

aperfeiçoar o manejo alimentar e verificar o potencial desta espécie em sistemas

intensivos de criação.

O presente estudo teve o objetivo de avaliar o crescimento, a composição

corporal, o perfil lipídico (filés e peixe inteiro) e a hematologia de jundiás em

diferentes densidades de estocagem.

3.2 Material e métodos

Para o estudo foi realizado um experimento com 120 dias de duração

(Janeiro a Maio de 2006), conduzido nas instalações experimentais do Laboratório

de Piscicultura da Universidade Federal de Santa Maria – RS (altitude 95m,

longitude 29°43’S, latitude 53°42’W). Os peixes utilizados foram adquiridos em

piscicultura comercial (Piscicultura Tramontini, Salto do Jacuí/RS), mantidos em

tanque de terra (1000m

) e alimentados com dieta comercial (32% PB) antes de

serem conduzidos para as instalações experimentais.

3.2.1 Instalações e animais

Utilizou-se para a criação dos peixes um sistema com recirculação de água

composto de 12 tanques (1000 L, 850 L de volume útil) de cimento-amianto

revestidos com fibra de vidro, dispostos em 3 fileiras com 4 unidades. Cada tanque

possuía entrada e saída individual de água, onde a vazão mantida em cada um foi

de 6 L/min. O sistema possuía também termostatos para controle da temperatura,

biofiltros contendo pedra britada para filtragem biológica e sistema de retrolavagem

para eliminação de resíduos (Radünz Neto et al., 1987).

Os peixes foram acondicionados nos tanques de criação uma semana antes

do início do experimento para adaptação ao manejo diário e às instalações. Neste

manejo, foi realizada uma aplicação individual preventiva de oxitetraciclina (20 mg/kg

peso vivo), via intramuscular (Brandão, 2004). Foram utilizados no experimento 420

jundiás de ambos os sexos (peso inicial=182,95 ± 2,96 g), distribuídos em um

delineamento experimental inteiramente casualizado (DIC), com 4 tratamentos e 3

repetições. Foram testadas 4 densidades de estocagem: 4,2, 6,4, 8,6 e 10,8 kg/m

(equivalentes a 20, 30, 40 e 50 peixes/tanque).

3.2.2 Qualidade da água

O controle da qualidade da água do sistema de criação foi realizado através

de limpeza dos encanamentos, sifonagem diária de resíduos, renovação diária (10%

do volume total) e monitoramento dos parâmetros físico-químicos: temperatura,

amônia total, nitrito, oxigênio dissolvido, alcalinidade total e pH. A água para todas

as análises foi coletada na entrada do primeiro filtro biológico, antes de cada

alimentação. Para medição da temperatura, utilizou-se termômetro (bulbo de

mercúrio) e para oxigênio oxímetro digital (YSI-Yellowsprings-EUA). Para as demais

análises foi utilizado kit colorimétrico (Alfakit

), onde: - a análise de amônia é

baseada no método Indotest, e a alcalinidade total no método de neutralização

(volumétrico), ambos descritos no manual da APHA (2005); o nitrito é analisado pelo

método da alfa-naftilamina (método proposto por Fries (1971)); e o pH pelo uso de

indicador seguindo AWWA (1970).

3.2.3 Manejo alimentar

A alimentação dos peixes foi realizada uma vez ao dia (10h - até a

saciedade aparente). A dieta experimental foi baseada em Lazzari et al. (2006),

conforme Tabela 1. Foi realizada a pesagem da quantidade de alimento fornecido

por unidade experimental para cálculo do consumo e demais índices produtivos.

Para o preparo da dieta experimental, os ingredientes foram moídos,

pesados e posteriormente misturados, através de amassadeira, até completa

homogeneização. Posteriormente a mistura foi umedecida, peletizada e levada a

estufa de circulação de ar forçado por 24 h a 55 ºC. Após foi acondicionada em

sacos plásticos e conservada em freezer (-18 ºC) até a utilização.

Tabela 1. Formulação e composição da dieta utilizada no experimento 1

Ingredientes Quantidade (%)

Farinha de carne e ossos bovina 23

Farelo de soja 24

Milho moído 23,99

Farelo de trigo 20

Óleo de soja 5

Sal comum 1

Fosfato bicálcico 1

Vitaminas e minerais 2

Antioxidante (BHT) 0,01

Composição analisada (%)

Umidade 5,90

Proteína Bruta 31,09

Matéria mineral 11,49

Extrato etéreo 9,42

Fibra bruta 3,80

Cálcio 2,52

Fósforo 1,57

Rancidez (reação de Kreiss) negativo

Composição da mistura vitamínica e mineral (SUPRE MAIS

/kg de produto): Ác. Fólico:

1200mg, Ác. Nicotínico: 24000mg, Ác. Pantotênico: 12000mg, Cobalto: 10mg, Cobre:

3000mg, Cloreto de colina: 108 g, Ferro: 50000mg, Biotina: 48 mg, Iodo: 100mg, Manganês:

20000mg, Selênio: 100mg, Vit.A: 1200000UI, Vit. B1: 4800mg, Vit. B2: 4800mg, Vit. B6:

4800mg, Vit. B12: 4800mcg, Vit. C: 48 g, Vit. D3: 200000UI, Vit. E: 12000 mg, Vit. K3:

2400mg, Zinco: 3000mg.

3.2.4 Coleta de dados e variáveis estimadas

Antes do início do experimento, uma amostra de 20 peixes foi separada

para análises iniciais de hematologia e composição química. A cada 60 dias, 6

peixes por tratamento foram capturados (2 por tanque), sendo 3 abatidos

(hipotermia) para a realização da análise de composição corporal (peixe inteiro

moído) e os demais para retirada de filé. Em todos os procedimentos, os peixes

passaram por jejum (24 horas) e foram previamente anestesiados com trifenóxi-

etanol (0,03%).

Foram realizadas 3 biometrias para coleta de dados de peso e comprimento,

uma inicial, na metade (60 dias) e ao término do experimento (120 dias). Utilizou-se

para este procedimento balança digital com 3 casas decimais e ictiômetro graduado.

Foram estimadas as seguintes variáveis:

Peso médio (g): medido nas biometrias, representa a média de peso

individual em cada densidade de estocagem testada.

Biomassa total (g): obtida a partir do peso médio individual dos peixes

multiplicado pelo número total de peixes em cada tanque.

Comprimento total (cm): medida que representa toda a extensão do peixe,

da cabeça ao final da cauda.

Comprimento padrão (cm): medido da cabeça até a inserção do pedúnculo

caudal.

Coeficiente de variação do peso: CVP=(desvio padrão/média peso)*100;

Fator de condição: calculado segundo a fórmula:

FC= ((Peso X 100) / (Comprimento total

)).

Conversão alimentar aparente: CAA= (consumo de alimento (g) / ganho em

peso (g)).

Consumo diário aparente: CDA= consumo no período (g)/{(peso final (g) +

peso inicial (g))/2}/ dias X 100.

Taxa de eficiência protéica: TEP= ganho em peso (g) / proteína ingerida (g).

Rendimento de carcaça: peso eviscerado, com brânquias, expresso em %

do peso inteiro.

Rendimento de filé: peso dos filés, expresso em % do peso inteiro.

Rendimento de couro: peso do couro, expresso em % do peso inteiro.

Gordura intraperitoneal: gordura separada das vísceras, expresso em % do

peso inteiro.

Índice hepato-somático: IHS= (peso fígado (g) / peso inteiro (g)) x 100.

Índice digestivo-somático: IDS= (peso trato digestório (g) / peso inteiro (g)) x

100.

3.2.5 Análises laboratoriais

As cinzas e umidade foram determinadas através da metodologia descrita

nas normas analíticas do Instituto Adolfo Lutz (1985). A gordura foi extraída e

quantificada pelo método de Bligh-Dyer (1959), extração com clorofórmio/metanol, a

frio. A proteína bruta foi quantificada pelo método de Kjeldahl (fator de

conversão=6,25) (AOAC, 1995).

Para determinação do perfil lipídico a gordura extraída foi metilada de acordo

com Hartman & Lago (1973) e analisada por cromatografia gasosa de alta resolução

(cromatógrafo Hewlett-Packard, modelo HP 6890, equipado com detector de

ionização de chama – FID), em coluna capilar DB-23 (Agilent – 60 m x 0,25 mm x

0,25 µm).

Após 60 dias e ao final do período de alimentação (120 dias), dois peixes

por tanques (6 por tratamento) foram capturados para coleta de sangue. Para este

procedimento, os peixes foram imobilizados, onde se retirou cerca de 2 mL de

sangue por peixe. As amostras foram acondicionadas em recipientes (5 mL) com

EDTA em gelo e imediatamente levados para análise. A análise do eritrograma

(contagem total de eritrócitos, hematócrito e hemoglobina) foi determinada a partir

da amostra coletada com EDTA, no contador eletrônico de células Pentra 120.

As enzimas alanina aminotransferase (ALT) e aspartato aminotransferase

(AST) foram determinadas por química seca, em analisador bioquímico Vitros 950

(Johnson & Johnson), pelo método enzimático. O cortisol foi analisado por um

ensaio imunométrico quimioluminescente em fase sólida de alta sensibilidade, no

equipamento Immulite 2000 (DPC).

O colesterol total foi determinado por química seca (Vitros, 1997), pelo

método enzimático similar ao proposto por Allain et al. (1974). O colesterol HDL foi

separado por precipitação de LDL e VLDL com sulfato de dextran e cloreto de

magnésio (Warnick et al., 1983). O HDL foi determinado por química seca pelo

método enzimático utilizando o mesmo reativo do colesterol total. O colesterol LDL

foi estimado pela equação de Friedewald et. al (1972). Os triglicerídeos foram

determinados por química seca, pelo método enzimático conforme descrito por

Spayd (1978).

3.2.6 Análises estatísticas

Os dados obtidos foram submetidos ao teste de Shapiro-Wilk para

verificação de normalidade. Os valores de glicose foram analisados por ANOVA de

Kruskall-Wallis e os de triglicerídeos foram transformados por logaritmo de base 10.

O procedimento MIXED do software SAS

(2001) foi aplicado para avaliar o efeito do

tempo (60 ou 120 dias) em cada variável resposta. Foram testados também os

coeficientes de correlação de Pearson (r) entre as variáveis. Para os valores de peso

e biomassa total, utilizou-se o consumo de ração como co-variável. O efeito da

densidade de estocagem em cada variável foi analisado por regressão polinomial.

As análises foram consideradas significativas quando a probabilidade (P) foi menor

que 0,05. O software SAS

(2001) foi utilizado para realizar as análises estatísticas e

o Sigma Plot

para a construção das figuras.

3.3 Resultados

3.3.1 Qualidade da água

Até os 80 dias de experimento, a temperatura da água do sistema de criação

manteve-se na faixa dos 22-26ºC (Figura 1). Após este período (outono no Sul do

Brasil), ocorreram oscilações, porém não afetaram o comportamento alimentar dos

peixes. Os demais parâmetros de qualidade de água estiveram em níveis

adequados para a criação da espécie (Tabela 2) e não apresentaram correlação

significativa com os resultados obtidos.

Figura 1. Variação da temperatura da água (ºC) durante o período experimental.

Tabela 2. Valores dos parâmetros de qualidade da água analisados durante

o experimento*

Parâmetro mínimo máximo média desvio

Oxigênio dissolvido (mg/L) 3,75 9,0 5,05 1,12

Amônia total (mg/L) 0,5 2,0 0,92 0,55

Nitrito (mg/L) 0,025 0,3 0,10 0,09

pH 6,0 7,0 6,72 0,29

Alcalinidade total (mg CaCO

/L) 20 44 31,95 6,05

*Amostras coletadas na entrada do primeiro filtro biológico.

3.3.2 Desempenho e carcaça

O peso individual dos peixes diminuiu de acordo com o incremento da DE

(Figura 2), nos dois períodos de avaliação (60 e 120 dias). Ao final do experimento,

os peixes da DE 4,2 kg/m

atingiram maior peso (315 g). Os resultados deste

trabalho evidenciam diminuição no crescimento do jundiá em densidades acima de

4,2kg/m

em sistema de recirculação de água. Em ambos os períodos, observaram-

se efeitos lineares decrescentes (60 dias: Y=279,48 – 6,40X, r

=0,67, P=0,001; 120

dias: Y=298,34 – 6,02X, r

=0,68, P=0,003).

Figura 2. Peso de jundiás submetidos a diferentes densidades de estocagem.

A elevação da DE implicou em maior biomassa total por tanque (Figura 3).

Tanto aos 60 (Y=1606,57 + 842,35X, r

=0,97, P=0,0001) como aos 120 dias

(Y=1560,53 + 951,29X, r

=0,96, P=0,0001), o efeito da DE sobre a biomassa foi

crescente e altamente significativo. Observou-se correlação negativa (-0,72,

P=0,007) entre o peso individual dos jundiás e a biomassa total. Aos 60 dias, a

conversão alimentar aparente dos peixes apresentou efeito quadrático (Y=-0,03 +

0,51X - 0,03X

, r

=0,45), onde os peixes submetidos à DE 8,6 kg/m

apresentaram

maior valor (Tabela 3). Já ao final do experimento, a CAA dos jundiás aumentou de

acordo com a DE (Y= 0,79 + 0,28X, r

=0,78, P=0,0001).

Figura 3. Biomassa total de jundiás submetidos a diferentes densidades de

estocagem.

Tabela 3. Comprimento total, comprimento padrão, conversão alimentar

aparente (CAA), coeficiente de variação do peso (CVP) e fator de

condição (FC) de jundiás submetidos a diferentes densidades de

estocagem

Densidade de estocagem (kg/m

)

Variáveis 4,2 6,4 8,6 10,8 dpr P

60 dias

Comprimento padrão (cm)

23,26 22,71 23,18 22,49 1,57

Comprimento total (cm) 27,78 27,37 27,23 27,20 0,79

CAA 1,65 1,78 2,35 1,90 0,26

CVP (%) 4,26 7,85 2,75 3,56 5,20

1,19 1,18 1,07 1,07 0,03

120 dias

Comprimento padrão (cm)

23,95 23,58 23,16 23,18 0,49

Comprimento total (cm) 28,62 28,33 27,81 28,08 0,96

CAA 1,69 3,08 3,30 3,72 0,32

***

CVP (%) 10,32 16,29 13,90 14,66 7,30

1,16 1,14 1,08 1,05 0,02

***

Y=1,28 – 0,02X, r

=0,68;

Y=1,24 – 0,01X, r

=0,91; *P<0,05; **P<0,01; ***P<0,0001.

Não ocoreu efeito da densidade de estocagem sobre os valores do

comprimento total e padrão dos jundiás (Tabela 3). Da mesma forma, o coeficiente

de variação do peso não foi afetado pelas diferentes DE testadas (P>0,05). Para o

fator de condição, verificou-se efeito linear decrescente nos dois períodos de

avaliação (60 dias – P<0,01 e 120 dias – P<0,0001). Não ocorreu mortalidade de

peixes durante o experimento.

O consumo aparente diário dos peixes (Figura 4) diminuiu de acordo com o

aumento da DE (60 dias: Y=2,10 – 0,09X, r

=0,93, P=0,0001; 120 dias Y=1,74 –

0,06X, r

=0,69, P=0,0008). Aos 60 dias, o consumo variou de 1,05%/dia para os

peixes da DE 10,8 kg/m

até 1,6 %/dia para os da DE 4,2 kg/m

. Observou-se

diminuição significativa dos valores de índice hepato-somático (P=0,04) ao final do

experimento em relação à amostragem dos 60 dias (Figura 5). Aos 120 dias,

verificou-se efeito quadrático (P=0,04) da DE sobre IHS, onde os peixes submetidos

a menor densidade (4,2 kg/m

) apresentaram menor valor (0,86).

Aos 60 dias, os valores de índice digestivo somático (Figura 6) não foram

afetados pelas DE testadas. Ao final do experimento, observou-se efeito quadrático

(P=0,02) para IDS, onde o máximo valor para esta variável foi obtido com a

densidade de 8,6 kg/m

Figura 4. Consumo aparente diário dos jundiás submetidos a diferentes densidades

de estocagem.

Figura 5. Índice hepato-somático de jundiás criados em diferentes densidades.

Figura 6. Índice digestivo-somático de jundiás criados em diferentes densidades.

Tabela 4. Rendimento de cortes (%) de jundiás submetidos a diferentes

densidades de estocagem

Densidade de estocagem (kg/m

)

Parâmetros 4,2 6,4 8,6 10,8 dpr P

60 dias

Rendimento de carcaça

82,26 81,68 84,57 81,43 4,59

Rendimento de filé 31,91 31,61 30,53 31,92 2,71

Couro 3,30 3,20 3,42 3,28 1,80

Gordura intraperitoneal 1,46 3,23 3,39 2,08 1,16

120 dias

Rendimento de carcaça

83,84 83,28 82,92 84,46 1,76

Rendimento de filé 33,37 33,77 33 34,54 1,47

Couro 3,61 3,16 3,34 3,30 0,64

Gordura intraperitoneal 3,92 3,30 2,57 1,88 1,68

NS: Não significativo (P>0,05). *P<0,05.

Não foi observado efeito da densidade sobre os valores de rendimento de

carcaça, couro e filé dos jundiás nos dois períodos de avaliação (Tabela 4). Foi

verificada correlação positiva e significativa entre os valores de rendimento de

carcaça e filé (r=0,73, P<0,0001).

Na coleta de dados aos 60 dias, observou-se maior quantidade de gordura

intraperitoneal (GI) nos peixes submetidos à DE 6,4 e 8,6 kg/m

(Tabela 4). Ao final

do experimento, a gordura intraperitoneal diminuiu proporcionalmente (Y=5,25 –

0,31X, r

=0,40, P<0,05) ao incremento da densidade de estocagem.

A taxa de eficiência protéica (TEP) apresentou alta correlação com as

densidades testadas. Assim, utilizou-se a DE como co-variável. A TEP ajustada foi

maior (P<0,05), nos dois períodos de avaliação, nos peixes submetidos a menor DE

testada (60 dias=1,13; 120 dias=1,08; Figura 7).

Figura 7. Valores ajustados da taxa de eficiência protéica em

jundiás submetidos a diferentes densidades de estocagem.

3.3.3 Composição centesimal e perfil lipídico

Aos 60 dias, a umidade dos filés (Y=69,72 + 0,51X, r

=0,71) aumentou de

acordo com as DE testadas, ocorrendo o inverso para os lipídios (Y=12,06 - 0,57X,

=0,76) (Tabela 5). Os teores de cinzas e proteínas, neste período, bem como a

composição total dos peixes ao final do experimento, não sofreu influência da DE.

Em relação ao peixe inteiro (Tabela 6), aos 60 dias, verificou-se aumento

linear dos teores de umidade (Y=65,65 + 0,29X, r

=0,40) e proteína (Y=12,99 +

0,41X, r

=0,61), enquanto que a gordura diminuiu (Y=19,20 - 0,79X, r

=0,61) de

acordo com o aumento da DE. Não ocorreu efeito significativo da DE no teor de

cinzas dos peixes. Aos 120 dias, observou-se efeito quadrático da DE (Y=25,72 -

2,68X+0,18x

=0,62) sobre os teores de proteína. Os demais componentes não

foram afetados pelas diferentes DE testadas.

Tabela 5. Composição (%) dos filés de jundiás submetidos a

diferentes densidades de estocagem

Densidade de estocagem (kg/m

)

4,2 6,4 8,6 10,8 dpr P

Composição (%)

60 dias

Umidade 72,02 72,74 74,24 75,27 0,87

Cinzas 1,39 1,44 1,37 1,40 0,09

Proteína 18,26 17,75 18,68 17,83 0,70

Lipídios 9,06 9,35 7,04 5,63 0,87

120 dias

Umidade 75,29 73,57 75,38 73,68 2,83

Cinzas 1,16 1,10 1,38 1,18 0,15

Proteína 19,39 19,67 18,78 19,80 0,88

Lipídios 6,04 8,73 6,37 7,35 2,41

**P=0,01. NS: Não significativo (P>0,05).

Quanto ao perfil lipídico corporal dos jundiás (Tabela 7), observou-se maior

quantidade de ácidos graxos saturados nos peixes submetidos a menor densidade

testada (4,2 kg/m

). À medida que se aumentou a DE, a quantidade de AG

saturados diminuiu linearmente (P<0,05). Dos AG insaturados, o único que foi

afetado pelas DE foi o C22:5n-3, ocorrendo em maior quantidade nas duas maiores

densidades testadas (P<0,01). Foi verificado aumento linear na quantidade de

ácidos graxos insaturados (P<0,05) de acordo com o incremento da densidade de

estocagem. A relação n-3/n-6 e também entre os AG insaturados/saturados também

foram maiores nas DE mais altas (P<0,05). A relação n-6/n-3 foi maior na DE 6,4

kg/m

Tabela 6. Composição corporal (%) de jundiás submetidos a

diferentes densidades de estocagem

Densidade de estocagem (kg/m

)

Composição (%)

4,2 6,4 8,6 10,8 dpr P

60 dias

Umidade 66,95 67,37 68,26 68,79 0,96

Cinzas 2,49 2,63 2,83 2,64 0,26

Proteína

14,72 15,88 16,10 17,67 0,88

Lipídios 16,76 12,76 12,56 11,05 1,37

120 dias

Umidade 69,30 67,60 70,55 68,80 1,94

Cinzas 2,49 2,90 2,75 3,16 0,46

Proteína 17,41 16,23 15,29 17,54 0,96

Lipídios 12,55 13,23 10,95 10,80 1,57

*P<0,05; **P<0,01. NS=não significativo (P>0,05).

Não ocorreu efeito (P>0,05) da densidade de estocagem sobre o perfil

lipídico e as relações entre ácidos graxos nos filés dos jundiás (Tabela 8).

Tabela 7. Perfil lipídico corporal de jundiás criados em diferentes

densidades de estocagem (% de ácidos graxos nos

lipídios totais)

Densidade de estocagem (kg/m

)

Ácidos graxos

4,2 6,4 8,6 10,8 dpr P

C14:0 1,48 1,54 1,45 1,30 0,11 **

C16:0 24,34

22,84

23,37

22,10

1,08 *

C18:0 8,57 8,14 7,93 8,12 0,44 NS

∑ Saturados 34,87

33,12

33,20

32,26

1,24 *

C16:1n-7c 5,69 6,40 6,30 5,61 0,78 NS

C18:1n-9c 35,47

35,53

35,75

36,48

0,79 NS

C20:1n-9 0,90 0,94 0,68 1,09 0,31 NS

∑ Mono 42,15

42,97

42,81

43,24

1,50 NS

C18:2n-6c 18,97

19,76

19,33

19,66

1,04 NS

C18:3n-3 1,34 1,32 1,35 1,61 0,27 NS

C20:4n-6 1,07 1,15 1,29 1,23 0,27 NS

C22:5n-3 0,29 0,33 0,44 0,39 0,07 **

C22:6n-3 1,29 1,32 1,55 1,57 0,20 NS

∑ PUFA 22,97

23,90

23,99

24,49

1,58 NS

∑ Insaturados

65,13

66,87

66,79

67,73

1,24 *

∑ n - 3 2,93 2,98 3,36 3,58 0,43 NS

∑ n – 6 20,04

20,91

20,63

20,90

1,24 NS

n-3/n-6 0,14 0,14 0,16 0,17 0,01 *

n-6/n-3 6,91 7,10 6,18 5,88 0,68 **

UFA/SFA 1,87 2,02 2,01 2,10 0,10 *

*=P<0,05; **=P<0,01; NS=não significativo (P>0,05).

Mono= AGS monoinsaturados; PUFA=AGS poliinsaturados;

UFA/SFA=Insaturados/saturados.

Tabela 8. Perfil lipídico dos filés de jundiás criados em diferentes DE

(% de ácidos graxos nos lipídios totais)

Densidade de estocagem (kg/m

)

Ácidos graxos

4,2 6,4 8,6 10,8 dpr P

C14:0 1,41 1,29 1,27 1,32 0,10

C16:0 22,45

21,65

22,68

22,66

1,01

C18:0 7,93 8,54 7,93 7,48 0,87

∑ Saturados 32,13

31,55

32,02

31,88

1,28

C16:1n-7c 6,25 5,14 5,42 6,30 1,13

C18:1n-9c 35,24

35,84

35,45

37,01

1,42

C20:1n-9 0,85 0,90 0,89 1,05 0,37

∑ Mono 42,35

41,90

41,77

44,37

2,37

C18:2n-6c 19,91

20,76

20,86

19,52

1,67

C18:3n-3 1,30 1,34 1,33 1,35 0,07

C20:4n-6 1,37 1,67 1,45 0,96 0,55

C22:5n-3 0,49 0,52 0,47 0,33 0,14

C22:6n-3 2,42 2,23 2,08 1,56 0,65

∑ PUFA 25,51

26,54

26,20

23,74

2,52

∑ Insaturados

67,86

68,44

67,98

68,11

1,28

∑ n - 3 4,23 4,10 3,88 3,25 0,80

∑ n – 6 21,28

22,43

22,31

20,48

1,94

n-3/n-6 0,19 0,18 0,17 0,16 0,02

n-6/n-3 5,13 5,72 5,90 6,32 0,84

UFA/SFA 2,11 2,18 2,12 2,13 0,13

NS=não significativo (P>0,05).

Mono= AGS monoinsaturados; PUFA=AGS poliinsaturados;

UFA/SFA=Insaturados/saturados.

3.3.4 Hematologia e metabolismo

Não ocorreu efeito da densidade de estocagem sobre os parâmetros

hematológicos testados, tanto aos 60 dias como ao final do experimento (120 dias)

(Tabela 9). Após a análise em relação ao tempo (60 ou 120 dias), verificou-se uma

diminuição significativa (P<0,05) do número de plaquetas ao final do experimento.

Tabela 9. Parâmetros hematológicos de jundiás em diferentes

densidades de estocagem

Densidade de estocagem (kg/m

)

4,2 6,4 8,6 10,8 dpr P

60 dias

Eritrócitos (10

/mm

)

2,40 2,33 2,73 2,89 0,60 NS

Hemoglobina (g/dL) 11,35 12,48 11,80 14,15 1,06 NS

Hematócrito (%) 35,40 38,16 40,00 40,35 6,19 NS

VCM (nm

) 157,15

162,20

169,60

156,75

14,27

HCM (pg) 48,30 46,14 44,40 48,85 5,22 NS

CHCM (g/dL) 29,10 28,34 26,90 31,15 2,35 NS

Plaquetas 106,00

101,25

114,00

109,00

11,46

120 dias

Eritrócitos (10

/mm

)

2,32 2,40 2,33 2,12 0,37 NS

Hemoglobina (g/dL) 11,02 11,45 11,57 11,50 1,06 NS

Hematócrito (%) 37,30 39,93 38,37 34,18 5,71 NS

VCM (nm

) 162,13

167,17

165,63

162,58

8,57 NS

HCM (pg) 47,90 47,88 49,83 48,85 2,37 NS

CHCM (g/dL) 29,57 28,68 30,05 30,30 1,29 NS

Plaquetas 78,20 74,00 76,75 80,00 4,50 NS

NS: Não significativo a um nível mínimo de 5% (P>0,05).

VCM: Volume corpuscular médio; HCM: Hemoglobina corpuscular média;

CHCM: Concentração de hemoglobina corpuscular média.

Valores iniciais: eritrócitos=2,73 (10

/mm

); hemoglobina=11,00 (g/dL);

hematócrito=41,3%; VCM=151,3 (nm

); HCM=40,3 (pg); CHCM= 26,6 (g/dL);

Plaquetas=104,00;

Não foi observado efeito da DE sobre os valores de triglicerídeos, glicose,

HDL, LDL e colesterol total (tabela 10 e figura 8). Entretanto, ocorreram diferenças

significativas (P<0,05) para todas as variáveis em relação ao tempo de coleta. Os

valores de colesterol total, HDL (P=0,0001), LDL (P=0,0001) e triglicerídeos

(P=0,008) foram significativamente maiores ao final do experimento. A glicose

plasmática foi inferior à coleta dos 60 dias. Aos 120 dias verificou-se efeito linear

decrescente (Y=45,82 – 0,41X, r

=0,67) nos valores de uréia de acordo com o

incremento das DE testadas (P=0,02).

Os valores de triglicerídeos dos jundiás não foram afetados pelas

densidades de estocagem testadas (P>0,05). Entretanto, ao final do experimento os

jundiás apresentaram maior concentração deste metabólito (P=0,008) em relação

aos 60 dias. Da mesma forma, os valores de HDL e LDL não foram influenciados

pelas DE testadas, porém aos 120 dias observou-se diferença altamente significativa

(P=0,0001) em relação à amostragem intermediária (60 dias).

Tabela 10. Parâmetros metabólicos do plasma de jundiás

submetidos a diferentes densidades

Densidade de estocagem (kg/m

)

4,2 6,4 8,6 10,8 dpr P

Uréia (mg/dL)

60 dias 39,20 31,20 40,40 44,00 1,43 NS

120 dias

43,75 43,50 42,75 41,00 0,72 0,02

Triglicerídeos (mg/dL)

60 dias 2,58 2,58 2,65 2,65 0,51 NS

120 dias 2,70 2,71 2,72 2,73 0,04 NS

HDL (mg/dL)

60 dias 81,00 84,00 89,00 87,00 9,22 NS

120 dias 110,0 127,25 109,50 122,0 13,55 NS

LDL (mg/dL)

60 dias 145,68 152,48 152,76 151,80 10,11 NS

120 dias 231,35 234,20 222,55 239,60 9,45 NS

Y=45,82 - 0,41X, r

=0,67. dpr= desvio padrão residual.

Figura 8. Teores de glicose plasmática em juvenis de jundiá

criados em diferentes densidades de estocagem.

Figura 9. Valores de cortisol plasmático de jundiás submetidos a

diferentes densidades de estocagem após 120 dias de experimento.

Os valores de cortisol plasmático dos jundiás aumentaram de acordo com o

incremento da densidade de estocagem (Figura 9). Pela equação obtida, espera-se

um aumento de 0,38 mg/dL de cortisol a cada kg/m

a mais na densidade de

estocagem dos jundiás.

3.4 Discussão

Os resultados obtidos neste estudo não foram influenciados pela qualidade

da água avaliada no sistema de criação como um todo. Em relação ao oxigênio

dissolvido da água, o mínimo recomendado para o crescimento da espécie é 5,12

mg/L (Braun et al., 2006).

Os resultados deste trabalho evidenciam diminuição no crescimento do

jundiá em densidades de estocagem acima de 4,2 kg/m

A melhor DE varia de

acordo com a espécie e o sistema de criação. Para a tilápia (Oreochromis niloticus),

os valores variam de 5,98-12,0 kg/m

(Watanabe et al., 1990) e 14,1 - 30,7 kg/m

(Cruz & Ridha, 1989). Vaz et al. (2003) observaram que o aumento da densidade

não influenciou o peso individual de jundiás criados em tanques-rede. No entanto,

esses autores avaliaram densidades inferiores as do presente estudo (2 kg/m

- 0,68

kg/m

). Rowland et al. (2004) relatam que a variação de 50 para 200 peixes/m

(peso médio inicial de 2,3 g) não afeta o crescimento e sobrevivência da perca

prateada (Bidyanus bidyanus). Entretanto, quando se compara o sistema de criação,

os peixes mantidos em tanque-rede crescem mais em relação aos criados em

viveiros de terra.

Quanto maior a densidade de estocagem suportada, sem perda no ganho

em peso, mais apto o peixe está para ser submetido à criação intensiva (Saoud et

al., 2008). Isto melhora a eficiência da criação pela diminuição do período de cultivo,

independente do sistema de criação adotado.

Os valores de FC observados neste trabalho são superiores aos

encontrados por Lazzari et al. (2006), que para juvenis de jundiá com peso de 85 g

obtiveram FC de 0,8. No presente estudo, observou-se diminuição do fator de

condição dos jundiás de acordo com o incremento da DE.

A relação entre a quantidade de alimento consumido e o crescimento é um

fator importante na criação de peixes. Na menor DE testada neste estudo, a

conversão alimentar aparente (CAA) foi de 1,7:1, valor superior ao encontrado por

Lazzari et al. (2006) para jundiás com peso médio de 85 g (1,4:1). Para juvenis de

pintado criados a 27ºC com peso de 50 g, a CAA verificada foi de 2,5:1 (Lima &

Ribeiro, 2006). Estes autores salientam que a grande dificuldade para mensurar a

CAA está relacionada ao consumo real dos peixes no ambiente criatório. Além disso,

as variações na eficiência de retenção de nutrientes devem ser consideradas

(Boujard & Luquet, 1996).

Para bagres americanos como o catfish (Ictalurus punctatus), o valor de

conversão alimentar médio está entre 1,3 e 1,4:1 (Li & Lovell, 1992). Este valor de

conversão é obtido até o animal chegar com 500 gramas de peso final. Para o

catfish americano (Ictalurus punctatus), geralmente se utiliza uma dieta com 32% de

proteína bruta para a engorda em tanques de terra. Porém, se a densidade de

estocagem for aumentada, a exigência nutricional é maior (Li & Lovell, 1992). No

presente estudo, utilizou-se para os jundiás uma dieta contendo 31% de PB.

Seguindo esta tendência, poderia se esperar que com o aumento do nível de

proteína dietário para os peixes submetidos a maiores densidades (6,4, 8,6 e 10,8

kg/m

), o crescimento dos peixes seria maior.

Para algumas espécies de peixes, principalmente salmonídeos, o aumento

da DE resulta em diminuição da atividade alimentar, refletido em menor consumo de

ração (Baker & Ayles, 1990). Os jundiás criados nas densidades 8,6 e 10,8 kg/m

apresentaram consumo menor em relação aos demais. Isto pode estar relacionado

também ao comportamento da espécie. O fato da uniformidade dos peixes no

experimento não ter sido afetada pelas DE testadas sugere que não houve presença

de indivíduos dominantes nas unidades experimentais. A diminuição do consumo de

alimento em detrimento ao aumento da DE pode estar relacionada ao estresse

(Alanärä & Brännäs, 1996).

A elevação da DE pode ser um estressor para o peixe. Quando em situação

de estresse, as exigências metabólicas de mantença são maiores, levando a

redução do crescimento. Uma conseqüência muito comum nestas situações é a

utilização de rotas gliconeogênicas, ou seja, obter glicose a partir de fontes não

glicídicas. Os peixes gastam mais energia para apreensão do alimento e competição

por território, resultando em menor deposição lipídica.

A ação de um estressor crônico pode limitar o crescimento por uma maior

demanda metabólica para mantença, além de uma ação direta na ingestão,

absorção e utilização do alimento. Além disso, interações comportamentais ocorrem

principalmente em altas densidades, onde geralmente o peixe destina parte de suas

reservas para suportar uma situação desfavorável oriunda de alguma situação de

estresse (Irwin et al., 1999).

O estresse social geralmente induz agressividade nos peixes, resultando em

respostas fisiológicas e de comportamento (Volpato & Fernandes, 1994). No

presente estudo não se evidenciou diferença na uniformidade dos peixes entre as

densidades testadas. Entretanto, quando a DE foi elevada, o retardo no crescimento

foi evidente, atestando estresse. A grande dificuldade nestes casos é mensurar o

grau do efeito estressor e, principalmente, de adaptação dos peixes a esta condição.

Isto só seria possível se os peixes submetidos as maiores DE testadas fossem

colocados em um ambiente com DE menor com idêntico manejo alimentar.

Além do crescimento, a elevação da DE resultou em diminuição do consumo

e piora na conversão alimentar para o jundiá. O efeito estressante neste caso

prejudicou o desempenho dos peixes pela alteração metabólica, onde a energia

dispendida para compensar uma situação desfavoráel é maior. A variabilidade no

crescimento dentro das unidades experimentais pode ser considerada uma

estratégia adaptativa para otimizar a sobrevivência de uma população em um

espaço restrito (Volpato & Fernandes, 1994).

No presente estudo, observou-se elevação do cortisol plasmático de acordo

com o incremento da DE, da mesma forma que ocorreu diminuição do peso dos

peixes. Entretanto, Barton & Iwama (1991) citam que é difícil determinar se a queda

do desempenho é devida a mudanças no metabolismo induzidas pela resposta ao

estresse, pois outros fatores também podem determinar diminuição no ganho em

peso, como: redução da capacidade do peixe em obter alimento, interações sociais,

efeito direto de níveis hormonais, enzimas ou outros fatores de crescimento.

O cortisol é um hormônio muito utilizado como indicador de estresse em

peixes (Wendelaar Bonga, 1997; Barcellos et al., 2000). O estresse crônico afeta o

crescimento e o metabolismo pela ação do cortisol (Van Weerd & Komen, 1998).

Este por sua vez afeta negativamente os hormônios envolvidos no anabolismo,

inibindo a síntese protéica (Pickering, 1993). Além disso, estudos em peixes

mostram efeito do cortisol sobre rotas gliconeogênicas no organismo (Vijayan et al.,

1991; 1994).

Os jundiás criados nas maiores DE apresentaram menor acúmulo de

gordura corporal. Isto vem ao encontro do demonstrado por alguns autores que

citam que as primeiras enzimas estimuladas no processo de gliconeogênese em

situações de estresse são as responsáveis pela lipólise (Vijayan et al., 1991). Assim,

aumenta a concentração de glicerol e ácidos graxos livres na corrente sangüínea, o

aporte energético das reservas corporais é mobilizado em resposta ao estresse, e o

acúmulo corporal de gordura diminui.

Quanto ao perfil lipídico corporal, observou-se que a elevação da densidade

até 10,8 kg/m

proporcionou maior quantidade de AGS insaturados, maior valor da

relação n -3 / n – 6 e menor deposição de AGS saturados. Nos filés, não ocorreu

efeito da DE sobre o perfil lipídico. Um resultado que chamou a atenção foi a

ausência do AGS EPA (eicosapentanóico - 20:5n – 3) nas análises. Esperava-se

que este ácido graxo estivesse presente, pois o jundiá apresenta capacidade de

elongação e desaturação, principalmente a partir dos AGS linolênico (18:3n – 3) e

linoléico (18:2n – 6) (Vargas et al., 2008).

Por outro lado, a fonte lipídica utilizada na dieta dos peixes do presente

experimento (óleo de soja) apresenta maior quantidade de AGS do grupo n – 6 com

pequena proporção de AGS n - 3 (NRC, 1993). Neste caso, como a quantidade de n

– 3 na dieta seriam menores, proporcionando uma quantidade muito reduzida de

EPA que não foi detectado nas análises. Filés de jundiás criados em sistema de

recirculação de água (sem presença de alimentos naturais) também não

apresentaram EPA na sua composição (Weber et al., 2008).

Segundo Vargas et al. (2008), a alternativa para este problema seria

adicionar uma fonte de lipídios com melhor composição, como o óleo de peixe. Das

fontes vegetais, o óleo de linhaça seria o mais recomendado. Isto mostra que a

densidade de estocagem, no caso do perfil lipídico dos filés, não alterou a

composição de AGS do jundiá.

Apesar de não ter sido observada alteração no perfil lipídico dos filés de

jundiás nas diferentes DE testadas, a quantidade de AGS poliinsaturados (PUFAS)

variou de 23 a 26% dos lipídios totais. Estes valores são muito superiores aos

verificados em filés do bagre africano (Clarias gariepinus) alimentados com dietas

práticas, que apresentaram quantidade de PUFAS entre 13 e 14% (Matter et al.,

2004).

Os valores de composição centesimal encontrados neste estudo são

similares aos encontrados em outros trabalhos com a espécie, que demonstram que,

além da densidade, a composição da dieta é fator decisivo na variação dos

nutrientes corporais (Lazzari et al., 2006).

Para o jundiá, a alteração dos índices digestivos parece estar relacionada

mais com a composição da dieta do que com alterações de manejo.

Pelos resultados obtidos neste estudo, podemos verificar que o jundiá

apresenta grande potencial de produção de carne, pelos altos índices de rendimento

de carcaça e filé. Os valores de rendimento de carcaça observados neste estudo

(83-84%) foram superiores aos verificados por Lazzari et al. (2006), que obtiveram

rendimento de carcaça em torno de 80-82%. Entretanto, estes autores encontraram

valores de rendimento de filé superiores aos do presente trabalho, entre 37 e 40%.

Estas diferenças devem-se a fase de desenvolvimento, pois no caso do trabalho

citado os peixes foram abatidos com menor peso (65-80 g). Fatores como tipo de

alimento, sexo e condição de criação podem afetar os valores de rendimento de

cortes (Carneiro et al. 2003).

A hematologia é uma ferramenta para detectar alterações no metabolismo e

pode ser utilizada para monitorar a saúde dos peixes (Stoskopf, 1993). Um efeito

secundário do estresse em peixes pode ser indicado pelo aumento ou diminuição

em alguns parâmetros bioquímicos no sangue (Yavuzcan-Yildiz & Kirkagaç-Uzbilek,

2001).

Da mesma forma que no presente estudo para o jundiá, Ranzani-Paiva et al.

(2005) observaram correlação significativa (0,76) entre a contagem de eritrócitos e o

hematócrito do cachara (Pseudoplatystoma fasciatum).

A ação de um estressor crônico pode limitar o crescimento por uma maior

demanda metabólica para mantença, além de uma ação direta na ingestão,

absorção e utilização do alimento. O estresse crônico afeta o crescimento e o

metabolismo pela ação do cortisol (Van Weerd & Komen, 1998). Este por sua vez

afeta negativamente os hormônios envolvidos no anabolismo, inibindo a síntese

protéica (Pickering, 1993). Outra conseqüência muito comum nestas situações é a

utilização de rotas gliconeogênicas, ou seja, obter glicose a partir de fontes não

glicídicas (Vijayan et al., 1994).

Estudos adicionais envolvendo aspectos de metabolismo de jundiás

submetidos a diferentes densidades deverão ser conduzidos para elucidar melhor os

mecanismos que levam o jundiá a um menor crescimento em densidades maiores.

Além disso, muitos mercados preconizam a criação dos peixes em condição

de bem-estar, sendo a hematologia uma ferramenta importante para monitorar esta

condição. Os valores observados neste estudo refletem uma condição específica de

manejo com o jundiá.

3.5 Conclusões

- Jundiás criados em densidade de 4,2 kg/m

apresentam maior peso

individual.

- O aumento da densidade de estocagem provoca estresse no jundiá.

- A proteína e os lipídios corporais são afetados pela densidade de

estocagem.

- Os parâmetros hematológicos do jundiá não são alterados em densidades

de estocagem até 10,8 kg/m

- Em maiores densidades, o jundiá realiza gliconeogênese.

4. SEGUNDO CAPÍTULO

Crescimento e qualidade da carne do jundiá de acordo com o sexo e o nível de

proteína da dieta

4.1 Introdução

A piscicultura é a atividade de produção animal que mais cresce no Brasil.

Isto se deve a intensificação e tecnificação dos sistemas de cultivo e a diversidade

de espécies utilizadas nas criações. O jundiá (Rhamdia quelen) é um bagre de

hábito alimentar onívoro e com grandes aptidões para a criação comercial. Em sua

dieta é necessária a inclusão de pelo menos uma fonte de origem animal, pois é um

peixe exigente quanto à qualidade da proteína dietária (Meyer & Fracalossi, 2004;

Lazzari et al., 2006). A criação do jundiá está baseada na produção de peixes de

ambos os sexos no mesmo espaço de cultivo. Os animais recebem alimentação com

mesma composição, resultando, na maioria das vezes, em crescimento diferenciado

entre machos e fêmeas.

A proteína é o nutriente mais caro da dieta e importante para o crescimento

e metabolismo dos peixes, pois constitui a maioria dos tecidos. Para o jundiá,

trabalhos mostram a influência do nível de proteína da dieta no crescimento deste

peixe (Meyer & Fracalossi, 2004; Salhi et al., 2004; Piedras et al., 2006). A exigência

protéica encontrada para juvenis de jundiá alimentados com dietas semipurificadas é

de 32,6 e 37,3% de proteína bruta (PB) para concentrações energéticas de 3200 e

3650 kcal/kg de energia metabolizável, respectivamente (Meyer & Fracalossi, 2004).

Quando a concentração de energia digestível da dieta é de 3400 kcal/kg, a exigência

em proteína para este peixe é de 37% (Salhi et al., 2004).

A utilização de dietas práticas em experimentos com peixes é importante

por que demonstra uma condição na qual o animal terá que digerir um alimento

similar ao encontrado nas criações a campo. São escassos os estudos sobre a

exigência protéica de jundiás em fases mais avançadas de criação (acima de 50g).

Assim, este trabalho visa observar o crescimento, composição corporal e

dos filés, metabolismo, hematologia e perfil lipídico de jundiás alimentados com

diferentes níveis de proteína na dieta e separados por sexo.

4.2 Material e métodos

Para este trabalho foi conduzido um experimento de alimentação com 100

dias de duração, compreendidos entre os meses de Abril e Julho de 2006. As

instalações deste experimento também estavam localizadas no Laboratório de

Piscicultura do Departamento de Zootecnia da Universidade Federal de Santa Maria.

Os peixes utilizados no experimento são de mesma origem que os do experimento

1, com manejo de adaptação similar.

4.2.1 Instalações e animais

Este experimento foi delineado em um arranjo fatorial 3 X 2 (3 níveis de

proteína bruta - 24 27 e 30% PB; e 2 sexos), em triplicata. Utilizou-se como

instalação experimental um sistema com recirculação de água, com filtragem

biológica e sistema de aeração do tipo “Venturi”, composto por 18 tanques de

polipropileno (280 L), onde se distribuiu 15 peixes/tanque (9 tanques com machos e

9 com fêmeas). A vazão utilizada em cada tanque foi de aproximadamente 3,5

L/min. Utilizou-se ao todo 270 peixes (135 fêmeas e 135 machos, peso médio

inicial= 207,02 ± 26,73 g), que foram submetidos a um período de adaptação ao

sistema de sete dias antes do início do experimento.

4.2.2 Qualidade da água

Periodicamente foram aferidos os parâmetros físico-químicos da água do

sistema de criação: temperatura, amônia total, nitrito, alcalinidade, pH e oxigênio

dissolvido. A água para as análises foi coletada na entrada do primeiro filtro

biológico, antes de cada alimentação. Para medição da temperatura e oxigênio

dissolvido utilizou-se um oxímetro digital (YSI-Yellowsprings-EUA). Para as demais

análises foi utilizado kit colorimétrico (Alfakit, Florianópolis, SC). As metodologias de

análise utilizadas foram similares aos demais experimentos. Realizou-se também

limpeza dos encanamentos, sifonagem de resíduos e renovação diária de água

(10% do volume total).

4.2.3 Manejo alimentar

As dietas experimentais foram formuladas de acordo com Lazzari et al.

(2006), conforme Tabela 11. A composição em aminoácidos essenciais das dietas

encontra-se na Tabela 12. O alimento foi ofertado uma vez ao dia (9h). Nos

primeiros 20 e nos últimos 20 dias de experimento foi oferecida aos peixes a

quantidade referente a 1,5% do peso vivo/dia. Nos demais dias a oferta foi de 3

%PV/dia.

Para a fabricação das dietas, os ingredientes foram pesados, misturados,

através de misturador elétrico, até completa homogeneização. Posteriormente a

mistura foi umedecida, peletizada e levada a estufa de circulação de ar forçado por

24h a 53ºC. Após a secagem, a ração foi triturada, peneirada (grânulos com cinco

milímetros) e conservada em refrigerador (-4 ºC).

Tabela 11. Composição das dietas experimentais (%) utilizadas no experimento 2

Ingredientes 24 27 30

Farinha de carne e ossos bovina 16 20 24

Farelo de soja 20 22 24

Milho moído 23,99 23,99 23,99

Farelo de trigo 19 19 19

Óleo de soja 3 4 5

Sal comum 1 1 1

Inerte (areia fina) 14 7 0

Fosfato bicálcico 1 1 1

Vitaminas e minerais

2 2 2

Antioxidante (BHT) 0,01 0,01 0,01

Composição analisada (%)

Umidade 4,20 5,20 4,10

Proteína Bruta 24,68 27,04 30,41

Energia Digestível (kcal/kg)

2585 2833 2869

Energia (kcal ED) / proteína (g) 10,47 10,47 9,43

Matéria mineral 11,09 11,03 12,16

Extrato etéreo 6,21 7,59 9,04

Fibra bruta 3,80 4,14 4,41

Cálcio 1,98 2,35 2,72

Fósforo 1,25 1,52 1,67

Composição da mistura vitamínica e mineral (kg de produto/SUPRE MAIS

Ác. Fólico: 1200mg, Ác. Nicotínico: 24000mg, Ác. Pantotênico: 12000mg, Cobalto: 10mg; Cobre: 3000mg, Cloreto

de colina: 108 g, Ferro: 50000mg, Biotina: 48 mg, Iodo: 100mg, Manganês: 20000mg, Selênio: 100mg, Vit.A:

1200000UI, Vit. B1: 4800mg, Vit. B2: 4800mg, Vit. B6: 4800mg, Vit. B12: 4800mcg, Vit. C: 48 g, Vit. D3: 200000UI,

Vit. E: 12000 mg, Vit. K3: 2400mg, Zinco: 3000mg.

Energia digestível calculada a partir de valores utilizados por TOKO et al. (2008), considerando: Lipídio=9 kcal/g,

Proteína=5 kcal/g, Carboidratos=4 kcal/g, com digestibilidades de 85, 90 e 50%, respectivamente.

Tabela 12. Composição em aminoácidos essenciais

(% da proteína) das dietas experimentais*

Aminoácido 24 27 30

Arginina 6,21 6,53 6,57

Fenilalanina 3,91 4,01 3,97

Histidina 2,09 2,17 2,16

Isoleucina 3,34 3,44 3,41

Leucina 6,45 6,66 6,60

Lisina 4,70 4,92 4,94

Metionina 1,34 1,40 1,40

Treonina 3,17 3,30 3,30

Triptofano 0,95 0,96 0,94

Valina 4,47 4,65 4,63

*Valores calculados a partir da análise dos ingredientes que se

encontram nos Anexos.

4.2.4 Coleta de dados e variáveis estimadas

Antes do início do experimento, uma amostra de 20 peixes foi separada para

as análises iniciais de hematologia e composição química. Ao final do experimento,

6 peixes por tratamento foram capturados (2 por tanque), sendo 3 abatidos

(hipotermia) para a realização da análise de composição corporal (peixe inteiro

moído) e os demais para retirada de filé. Em todos os procedimentos, os peixes

passaram por jejum (24 horas) e foram previamente anestesiados com trifenóxi-

etanol (0,03%).

Foram realizadas 2 biometrias para coleta de dados de peso e comprimento,

uma inicial e outra ao término do experimento (100 dias). Utilizou-se para este

procedimento balança digital com 3 casas decimais e ictiômetro graduado.

Foram estimadas as seguintes variáveis:

Peso médio (g): medido nas biometrias, representa a média de peso

individual em cada densidade de estocagem testada.

Comprimento total (cm): medida que representa toda a extensão do peixe,

da cabeça ao final da cauda.

Comprimento padrão (cm): medido da cabeça até a inserção do pedúnculo

caudal.

Fator de condição: calculado segundo a fórmula:

FC= ((Peso X 100) / (Comprimento total

)).

Rendimento de carcaça: peso eviscerado, com brânquias, expresso em %

do peso inteiro.

Rendimento de filé: peso dos filés, expresso em % do peso inteiro.

Rendimento de couro: peso do couro, expresso em % do peso inteiro.

Gordura intraperitoneal: gordura separada das vísceras, expresso em % do

peso inteiro.

Índice hepato-somático: IHS= (peso fígado (g) / peso inteiro (g)) x 100.

Índice digestivo-somático: IDS= (peso trato digestório (g) / peso inteiro (g)) x

100.

4.2.5 Análises laboratoriais

Após o período de alimentação (100 dias), uma amostra de 3 peixes por

tanque (9 por tratamento) foi retirada ao acaso, sendo os animais submetidos a

jejum prévio de 24 horas e posteriormente sacrificados por hipotermia.

Ao final do período de alimentação, 2 peixes por tanque (6 por tratamento)

foram capturados aleatoriamente para coleta de sangue. A retirada foi realizada por

punção na veia caudal, com seringas heparinizadas (3 mL). Após a retirada as

amostras foram acondicionadas em tubos contendo EDTA imersos em gelo e foram

imediatamente enviadas para análise.

A umidade, cinzas e proteína (método de Kjeldahl, fator de conversão=6,25)

foram determinadas seguindo as metodologias descritas na AOAC (1995). A gordura

foi extraída e quantificada pelo método de Bligh-Dyer (1959). Para determinação do

perfil lipídico a gordura extraída foi metilada de acordo com Hartman & Lago (1973)

e analisada por cromatografia gasosa (cromatógrafo Hewlett-Packard modelo HP

6890 equipado com detector de ionização de chama – FID), em coluna capilar DB-

23 (Agilent – 60 m x 0,25 mm x 0,25 µm).

Foram determinados os valores de hematócrito, hemoglobina, eritrócitos,

volume corpuscular médio, hemoglobina corpuscular média, concentração de

hemoglobina corpuscular média e plaquetas. O hematócrito foi determinado por

centrifugação (microhematócrito) e a hemoglobina por espectrofotometria pelo

método de cianometahemoglobina.

No plasma foram dosados glicose (Kit Labtest), lactato (Harrower & Brown,

1972) e proteína (Bradford, 1976). Para as dosagens de glicose (Park & Johnson,

1949), lactato e amônia (Verdouw et al., 1978), os tecidos muscular e hepático

foram homogeneizados numa proporção de 50-100 mg/mL de TCA (ácido

tricloroacético) 10%, utilizando-se um homogeneizador tipo Potter-Elvejhem. Após,

foram centrifugados a 1000 g por 3 minutos e os sobrenadantes foram utilizados

para as determinações dos metabólitos. A dosagem de glicogênio no fígado e

músculo foi realizada de acordo com Bidinotto et al., (1998).

Para a análise de enzimas digestivas, o trato digestório foi retirado, sendo

posteriormente separado do estômago. Os tecidos então foram homogeneizados em

tampão (10 mM fosfato/20 mM tris - pH 7,0) durante 10 minutos (4ºC), utilizando um

homogenizador (Potter-Elvehijen). Os sobrenadantes obtidos foram utilizados nos

ensaios enzimáticos.

A atividade de tripsina foi determinada com α-ρ-toluenesulphonyl-L-arginine

methyl ester hydrochloride (TAME). Os extratos foram incubados por 2 minutos em

2ml de tampão Tris/CaCl

, em pH 8,1. A quimiotripsina foi determinada com benzoyl

tyrosine ethyl ester (BTEE). A incubação dos extratos foi realizada por 2 minutos

com tampão Tris/CaCl

(2ml), em pH 7,8. Para estas 2 enzimas as análises foram

realizadas em duplicata de cada peixe coletado, sendo as leituras realizadas em

espectrofotômetro (247 e 256 nm, respectivamente), seguindo o protocolo descrito

por Hummel (1959). Uma unidade de enzima foi definida como a quantidade de

enzima necessária para hidrolizar 1 µg de substrato (TAME ou BTEE) por min/mg

proteína.

A atividade de protease ácida foi determinada utilizando-se o método de

hidrólise da caseína modificado por Hidalgo et al. (1999). O ensaio foi conduzido

utilizando-se KCl 0,1 M em tampão pH 1,8. A reação enzimática consistia de 1% de

caseína em água (0,4 mL), tampão (1,6 mL) e 20 µl do homogeneizado. Em seguida

os tubos foram incubados no banho 30ºC durante 40 minutos. A reação foi

interrompida com 1 mL de TCA 15%. Após, as amostras foram centrifugadas e os

sobrenadantes foram lidos em 280 nm. A tirosina foi utilizada como padrão, sendo

uma unidade de enzima definida como a quantidade de enzima necessária para

catalizar a formação de 1µg de tirosina por 1 min por mg de proteína.

A atividade de amilase foi determinada em tampão fosfato-citrato (0,2M, pH

7,0, NaCl 0,5%) com concentração de amido de 2,5%. A reação foi interrompida com

a adição de Ba(OH)

(0,3 N e ZnSO

5%). O protocolo experimental foi modificado

de acordo com Bernfeld (1955). A determinação da hidrólise do amido foi segundo

metodologia de Park-Johnson (1949). A leitura foi realizada em 660 nm. Uma

unidade desta enzima foi definida como 1 µmol de glicose liberada do amido por

min/mg de proteína.

A maltase foi determinada também em tampão fosfato-citrato, com 5% de

concentração de maltose e 20 µl de extrato bruto. Estes foram incubados durante 60

minutos (25 ºC). A reação foi interrompida com PCA 0,6 N (0,1 mL) e adicionado 0,1

mL de KHCO

. As amostras foram centrifugadas a 3.000g por 5 minutos e a glicose

determinada a 500 nm, com glicose oxidase (Kit-Labtest). A proteína dos extratos

brutos para a medição da atividade enzimática foi determinada pelo método de

Lowry et al. (1951), utilizando albumina de soro bovino como padrão.

4.2.6 Análises estatísticas

Os dados foram submetidos ao teste de Shapiro-Wilk para verificação de

normalidade. Como não apresentaram distribuição normal, os dados de

concentração de hemoglobina corpuscular média foram submetidos à ANOVA de

Kruskall-Wallis (P<0,05). As demais variáveis foram submetidas à análise de

variância de duas vias (Two-way ANOVA), sendo que as diferenças entre os sexos

foram comparadas pelo teste "t" de Student e o efeito do nível protéico avaliado por

regressão polinomial (P<0,05). Realizaram-se também estudos de correlação de

Pearson (r) entre as variáveis estudadas. Para as análises estatísticas foi utilizado o

pacote estatístico "SAS" (2001).

4.3 Resultados

4.3.1 Qualidade da água

Os valores de qualidade da água verificados no experimento foram:

temperatura=20,07 ± 2,52 ºC; pH=6,95 ± 0,15; oxigênio dissolvido=5,9 ± 0,78 ppm;

amônia total=1,25 ± 0,80 ppm; nitrito=0,02 ± 0,003 ppm; alcalinidade total= 45,50 ±

11,45 mg CaCO

/L; dureza=54,67 ± 11,57 mg CaCO

/L.

4.3.2 Desempenho e carcaça

O peso dos peixes foi influenciado pelo sexo. Observou-se maior peso nas

fêmeas em relação aos machos (Figura 10). Quanto ao nível de proteína, os machos

aumentaram de peso (Y=151,69 + 3,90X, r

=0,57, P=0,01) de acordo com o

incremento do nível de proteína da dieta. No caso das fêmeas, não ocorreu efeito do

nível de proteína da dieta no peso (Figura 11).

Figura 10. Peso médio individual dos jundiás separados por sexo.

Coluna assinalada por * apresenta diferença significativa dos machos pelo teste “t” de Student

(P<0,05).

Os valores de comprimento total e padrão dos peixes não foram afetados

pelos níveis de proteína e pelo sexo dos peixes (Tabela 13). Verificou-se neste

estudo que o nível protéico da dieta não afetou o rendimento de cortes do jundiá

(IDS, GI e IHS). As fêmeas apresentaram menor rendimento de filé e maior valor de

índice digestivo-somático. Para rendimento de carcaça, couro, gordura

intraperitoneal e índice hepato-somático, não se verificaram diferenças entre sexos.

Figura 11. Peso final de jundiás de acordo com o nível de proteína da dieta.

Tabela 13. Rendimentos de cortes e índices digestivos de jundiás alimentados com

diferentes níveis de proteína e separados por sexo

CT CP RC RF COU IDS GI IHS

PB (%)

24 28,42 22,49 85,52 33,28 3,65 2,77 3,90 1,40

27 28,32 22,52 85,80 33,54 3,52 2,79 4,17 1,31

30 28,60 22,75 84,05 32,98 3,48 3,23 4,52 1,65

Sexo

Macho 28,22 22,35 85,86 34,37 3,51 2,50 4,09 1,29

Fêmea 28,73 22,89 84,59 32,16 3,59 3,36 4,30 1,61

ANOVA

Sexo NS NS NS ** NS ** NS NS

PB NS NS NS NS NS NS NS NS

Sexo x PB NS NS NS NS NS NS NS NS

CV 0,90 1,42 5,36 3,97 5,68 18,51 22,42 27,05

NS: Não-significativo (P>0,05). **P<0,01.

CT= comprimento total; CP= comprimento padrão; RC=rendimento de carcaça; RF=rendimento de

filé; COU=rendimento de couro; IDS=índice digestivo somático; GI= gordura intraperitoneal;

IHS=índice hepato-somático.

Figura 12. Fator de condição de machos e fêmeas de jundiá alimentados

com diferentes níveis de proteína na dieta.

O fator de condição verificado nos jundiás foi menor (P<0,05) nos machos

(1,12) que nas fêmeas (1,27). A proteína da dieta influenciou significativamente o

fator de condição nos machos (Figura 12), enquanto que para as fêmeas não foi

observado esse efeito.

4.3.3 Composição centesimal e perfil lipídico

A composição dos filés dos jundiás não foi influenciada pelo sexo do peixe

(P>0,05, Tabela 14). A umidade dos filés apresentou aumento linear crescente em

relação ao nível de proteína da dieta (Y=61,86 + 0,41X, r

=0,79). A quantidade de

cinzas, gordura e proteína dos filés não foram modificadas em função do nível

protéico da dieta (P>0,05).

A umidade corporal não foi influenciada pelo sexo e pela proteína dietária.

Os peixes alimentados com a dieta contendo 30% de proteína apresentaram maior

quantidade de gordura corporal (15,75%, Tabela 14). As fêmeas apresentaram mais

proteína corporal que os machos (P<0,05). Ocorreu interação significativa entre sexo

e nível de proteína da dieta para as cinzas e para a gordura corporal (Tabela 14).

Isto mostra que a variação destes componentes, no peixe inteiro, é dependente dos

dois fatores testados no experimento.

Tabela 14. Composição centesimal dos filés e corporal (%) de jundiás

alimentados com diferentes níveis de proteína na dieta e

separados por sexo

Filé Inteiro

UM CZ GOR PRO UM CZ GOR PRO

PB (%)

24 72,55 1,22 6,50 20,47 67,81 2,85 13,68 16,46

27 73,54 1,29 7,87 19,39 67,77 3,10 13,00 18,13

30 74,79 1,34 6,08 18,47 67,15 2,88 15,75 16,99

Sexo

Macho 73,86 1,33 6,71 18,77 68,26 3,06 14,02 16,09

Fêmea 73,39 1,23 6,93 20,11 66,89 2,83 14,26 18,30

ANOVA

Sexo NS NS NS NS NS NS NS *

PB * NS NS NS NS NS * NS

Sexo x PB

NS NS NS NS NS * ** NS

CV 1,70 17,31 22,69 8,07 1,99 12,69 12,97 12,24

NS: Não-significativo (P>0,05). *P<0,05. **P<0,01.

UM = umidade; CZ = cinzas; GOR = gordura; PRO = proteína;

Umidade: Y=61,86 + 0,41X, r

=0,79.

Gordura: Y=-6,74 + 0,75X, r

=0,52.

O sexo e o nível de proteína na dieta influenciaram o perfil lipídico corporal e

dos filés dos jundiás (Tabelas 15 e 16). O aumento do nível de proteína da dieta

influenciou negativamente (P<0,05) a quantidade de ácidos graxos saturados

observados no peixe inteiro enquanto que para os AGS insaturados aconteceu o

inverso (Tabela 15).

Tabela 15. Perfil lipídico corporal de jundiás alimentados com diferentes

níveis de proteína e separados por sexo (% de ácidos graxos nos lipídios

totais)

PB (%) Sexo

Ácidos graxos 24 27 30 m f Efeito

C14:0 1,66 1,58 1,41 1,59 1,52 NP

C16:0

24,22 23,81 23,52 24,07

23,63 S, NP

C18:0

8,50 8,38 8,25 8,20

8,56 S

∑ saturados

35,12 34,54 34,00 34,59

34,50 NP

C16:1n-7c

5,85 5,68 5,27 5,83

5,37 S, NP, I

C18:1n-9c

34,10 34,37 34,93 34,61

34,32 NP

C20:1n-9

1,03 1,04 0,99 1,06

0,98 S

∑ Mono

41,18 41,28 41,37 41,70

40,86 S, I

C18:2n-6c

19,92 20,14 20,74 19,98

20,55 S, NP, I

C18:3n-3

1,34 1,43 1,44 1,38

1,43 S, NP, I

C20:4n-6

0,94 1,03 1,00 0,95

1,02 NS

C22:5n-3

0,31 0,33 0,29 0,28

0,34 S, NP

C22:6n-3

1,12 1,17 1,09 1,04

1,22 S

∑PUFA

23,69 24,17 24,62 23,69

24,62 S, NP, I

∑ Insaturados

64,87 65,46 66,00 65,40

65,49 NP

∑n -- 3

2,82 2,99 2,88 2,75

3,04 S, NP

∑n – 6

20,86 21,17 21,74 20,94

21,58 S, NP, I

n-3/n-6

0,13 0,14 0,13 0,13

0,14 S, NP

n-6/n-3

7,40 7,09 7,56 7,60

7,10 S, NP

UFA/SFA

1,84 1,89 1,94 1,89

1,89 NP

S=Sexo; NP=Nível de proteína; I=Interação estatística significativa (S*NP).

Mono= AGS monoinsaturados; PUFAS=AGS poliinsaturados;

UFA/SFA=AGS insaturados/saturados.

Os peixes alimentados com a dieta D24 apresentaram maior quantidade de

ácidos graxos saturados C14:0 e C16:0. Observou-se que os machos apresentaram

maior quantidade corporal de ácidos graxos monoinsaturados.

As fêmeas apresentaram maior quantidade de ácidos graxos poliinsaturados

(PUFAS) corporais em relação aos machos. A dieta contendo 30% de proteína bruta

proporcionou maior deposição de PUFAS corporais nos jundiás (Tabela 15). As

fêmeas apresentaram também maiores quantidades de ácidos graxos corporais dos

grupos ômega 3 (n – 3) e ômega 6 (n – 6). Os peixes alimentados com a dieta

contendo 27 % de PB apresentaram maiores quantidades de n – 3 e maior relação n

– 3/ n – 6. A relação entre os ácidos graxos insaturados e saturados apresentou

correlação positiva com a proteína dietária (Tabela 15).

Nos filés dos jundiás (Tabela 16), observou-se maior quantidade de AGS

saturados nas fêmeas. Verificou-se maior quantidade do AG C16:0 nos jundiás

alimentados com a dieta contendo 24% PB.

Da mesma forma que nos AGS corporais, a quantidade de PUFAS foi maior

nos peixes alimentados com a dieta D30. A maior quantidade do ácido graxo

linolênico (C18:3 n-3) foi observada nas fêmeas e nos peixes alimentados com a

dieta contendo 27% de PB. O total de AGS insaturados foi maior nos machos

(65,68%) e nos peixes submetidos a dietas com 27% de PB (66,23%).

Não ocorreram diferenças significativas entre sexos (P>0,05) na quantidade

de AGS do grupo ômega 3 nos filés dos jundiás (Tabela 16). Entretanto, verificou-se

efeito linear crescente do nível de proteína da dieta na incorporação destes AGS nos

filés dos jundiás. Este efeito também foi observado para os AGS do grupo n – 6

(ômega 6). As fêmeas apresentaram maior quantidade de n – 6 (21,97%) em relação

aos machos (21,31%).

A relação n – 3 / n – 6 foi maior nos machos (0,15), enquanto que a n – 3 / n

– 6 foi superior nas fêmeas (6,92). O nível de proteína da dieta não influenciou estas

relações.

A relação entre os ácidos graxos insaturados e saturados foi maior nos

peixes alimentados com a dieta contendo 27% de proteína bruta (1,96). Em relação

ao sexo, os machos apresentaram valor superior às fêmeas (Tabela 16).

Tabela 16. Perfil lipídico dos filés de jundiás alimentados com diferentes níveis

de proteína e separados por sexo (% de ácidos graxos nos lipídios

totais)

PB (%) Sexo

Acid. graxos 24 27 30 Macho Fêmea Efeito

C14:0 1,48 1,38 1,47 1,53 1,42 S

C16:0

25,29 23,17 23,88 23,93

24,21 NP

C18:0

8,40 8,53 8,49 8,17

8,55 S

∑ Saturados

35,86 33,76 34,54 34,31

34,89 S, NP

C16:1n-7c

5,75 5,20 5,24 5,85

5,21 S, NP, I

C18:1n-9c

33,66 34,99 33,06 34,14

33,64 NP, I

C20:1n-9

0,99 0,91 0,97 1,03

0,94 S

∑ Mono

40,57 41,28 39,36 41,12

39,94 S, NP, I

C18:2n-6c

19,67 20,48 21,57 20,35

20,90 NP

C18:3n-3

1,28 1,48 1,46 1,36

1,44 S, NP

C20:4n-6

1,00 0,96 1,11 0,95

1,06 S, NP

C22:5n-3

0,34 0,35 0,39 0,35

0,37 NP

C22:6n-3

1,25 1,29 1,54 1,51

1,37 S

∑PUFA

23,56 24,95 26,08 24,55

25,16 NP

∑Insaturados

64,13 66,23 65,45 65,68

65,10 S, NP

∑n - 3

2,88 3,13 3,40 3,24

3,19 NP, I

∑n – 6

20,67 21,81 22,68 21,31

21,97 S, NP

n-3/n-6

0,13 0,14 0,15 0,15

0,14 S, I

n-6/n-3

7,17 6,95 6,69 6,58

6,92 S, I

UFA/SFA

1,79 1,96 1,89 1,91

1,86 S, NP

S=Sexo; NP=Nível de proteína; I=Interação estatística significativa (S*NP).

Mono= AGS monoinsaturados; PUFAS=AGS poliinsaturados;

UFA/SFA=AGS insaturados/saturados.

4.3.4 Enzimas digestivas, metabolismo e hematologia

A atividade de protease ácida no estômago dos jundiás sofreu influência da

proteína dietária, onde os peixes alimentados com a dieta D30 apresentaram

maiores valores (Tabela 17).

As fêmeas apresentaram valor muito superior (P<0,0001) em relação aos

machos. Para tripsina, os peixes alimentados com 27% de PB apresentaram maior

atividade (5,08), onde os machos tiveram valores superiores às fêmeas. Não se

verificou diferenças na atividade de quimiotripsina entre sexos (P>0,05). Os jundiás

alimentados com a dieta D27 apresentaram maior atividade desta enzima (1833,66 –

Figura 13).

Figura 13. Valores de quimiotripsina em jundiás alimentados com

diferentes níveis de proteína na dieta.

As atividades das carboidrases amilase e maltase foram superiores nos

machos (P<0,0001). Para a maltase, observou-se efeito linear crescente em relação

ao aumento do nível de proteína da dieta (Y=-103,42 + 18,37X

, r

=0,48).

Tabela 17. Enzimas digestivas em jundiás alimentados com diferentes níveis de

proteína e separados por sexo

Amilase

(U/mg/prot)

Tripsina

(U/mg/prot)

Protease ácida

(µg tyr/min/mg/protein)

Maltase

(U/mg/prot)

PB (%)

24 0,05 4,67 10,35 335,35

27 0,04 5,08 11,18 409,08

30 0,04 4,35 13,25 488,88

Sexo

Macho 0,06 5,37 8,84 461,28

Fêmea 0,03 3,94 14,00 363,10

ANOVA

Sexo *** *** *** ***

PB NS ** *** **

Sexo x PB *** NS ** NS

CV 11,68 12,90 13,14 12,90

NS: não significativo *(P>0,05); **(P<0,01); ***(P<0,0001).

Os valores de amônia no fígado e lactato plasmático e muscular

apresentaram efeito linear crescente de acordo com o incremento de proteína na

dieta dos jundiás (Tabela 18). As fêmeas tiveram maior quantidade de lactato no

músculo (26,69) e amônia no fígado (147,53).

Os valores de glicogênio muscular apresentaram efeito quadrático (Y=-

50,36 + 3,99X – 0,07X

, r

=0,56). Pela equação obtida, estima-se que a maior

quantidade deste metabólito seria atingida com concentração na dieta de 28,5% de

proteína bruta.

Observou-se que os machos de jundiá apresentaram maiores valores

(Tabela 19) de eritrócitos, hematócrito (HT) e hemoglobina (HB) em relação às

fêmeas (P<0,01). O nível protéico da dieta e as interações com o sexo não afetaram

os valores hematológicos (Tabela 19). Foram observadas correlações significativas

entre hemoglobina e hematócrito (0,94, P<0,0001) e entre hematócrito e número

total de eritrócitos (0,83, P<0,0001).

Tabela 18. Parâmetros metabólicos em jundiás alimentados com diferentes níveis de

proteína e separados por sexo

Glicogênio

músculo

(µmol/ g tec)

Lactato

músculo

(µmol/ g tec)

Amônia

fígado

(µg/ g tec)

Lactato

plasma

(µmol/ g tec)

PB (%)

24 3,89 19,34 112,5 1,12

27 4,83 24,81 137,17 1,45

30 4,47 26,79 142,1 2,11

Sexo

Macho 4,54 20,61 113,66 1,57

Fêmea 4,25 26,69 147,53 1,55

ANOVA

Sexo NS *** *** NS

PB ** *** *** ***

Sexo x PB ** ** NS **

CV 11,67 9,95 9,09 15,57

NS: não significativo *(P>0,05); **(P<0,01); ***(P<0,0001).

Y=-50,36 + 3,99X – 0,07X

, r

=0,56.

Y=-9,86 + 1,24X, r

=0,65.

Y=-2,61 + 4,93X, r

=0,47.

Y=-0,89 + 0,16X, r

=0,63.

Os valores de volume corpuscular médio (VCM) e de hemoglobina

corpuscular média (HCM) não apresentaram diferenças entre sexos e não sofreram

influência do nível protéico da dieta (Tabela 20). Os peixes alimentados com a dieta

contendo 27% de proteína bruta apresentaram maior valor de concentração de

hemoglobina corpuscular média.

A quantidade de plaquetas (Figura 14) foi maior nas fêmeas (P<0,01) e

também nos peixes alimentados com o maior valor de proteína dietária testada (30%

PB).

Tabela 19. Parâmetros hematológicos em jundiás alimentados com dietas

contendo diferentes níveis protéicos e separados por sexo

Eritrócitos

(10

/mm

)

Hemoglobina (g/dL)

Hematócrito (%)

PB (%)

24 2,43 12,25 40,13

27 2,49 12,05 38,58

30 2,36 11,31 38,09

Sexo

Macho 2,60 12,41 41,38

Fêmea 2,22 11,05 36,05

ANOVA

PB NS NS NS

Sexo ** ** **

PB x Sexo

NS NS NS

CV (%) 9,13 8,37 8,85

Médias com letras diferentes, na coluna, apresentam diferença significativa pelo teste "t".

**P<0,01. NS=não significativo (P>0,05).

Tabela 20. Valores de volume corpuscular médio (VCM),

hemoglobina corpuscular média (HCM) e concentração de

hemoglobina corpuscular média (CHCM) em jundiás alimentados

com dietas contendo diferentes níveis protéicos e separados por

sexo

VCM (fL) HCM (pg) CHCM (g/dL)

PB (%)

24 165,30 50,48 30,53

27 154,73 48,48 31,35

30 162,04 48,16 29,73

Sexo

Macho 159,90 47,90 29,96

Fêmea 162,15 49,74 30,70

ANOVA

PB NS NS *

Sexo NS NS NS

PB x Sexo

NS NS NS

CV (%) 7,08 6,72 3,41

*P<0,05; NS=não significativo (P>0,05).

Figura 14. Quantidade de plaquetas em jundiás de acordo com o sexo.

Figura 15. Teor de glicogênio no fígado de jundiás de acordo com o sexo.

Figura 16. Teor de proteína no fígado de jundiás separados por sexo.

Os machos de jundiá apresentaram maiores quantidades (P<0,05) de

glicogênio no fígado (Figura 15) e também de proteína (P<0,01) neste mesmo órgão

(Figura 16). O teor de lactato no fígado (Figura 17) foi maior nas fêmeas. A

quantidade de glicose plasmática foi maior nos machos (P=0,01, Figura 18).

Figura 17. Quantidade de lactato no fígado de jundiás separados por sexo.

A quantidade de glicogênio hepático foi influenciada positivamente pelo

aumento da quantidade de proteína dietária (Figura 19). Ocorreu efeito linear

positivo (Y=-218,27 + 23,35X, r

=0,45, P=0,004) para esta variável. A quantidade de

triglicerídeos plasmáticos foi maior (P<0,0001) nos jundiás alimentados com a dieta

contendo 30% de proteína bruta (Figura 20).

A quantidade de HDL plasmático (Figura 21) foi superior também nos peixes

alimentados com a dieta contendo 30% PB. Após aplicação de ANOVA do tipo não

paramétrica (Kruskall-Wallis), verificou-se diferença significativa na quantidade de

HDL plasmático entre os peixes alimentados com a dieta contendo 30% de PB e a

27% PB.

Figura 18. Quantidade de glicose plasmática em jundiás

separados por sexo.

Figura 19. Quantidade de glicogênio no fígado de jundiás

alimentados com dietas contendo diferentes níveis de proteína

bruta.

Figura 20. Quantidade de triglicerídeos plasmáticos em jundiás

alimentados com dietas contendo diferentes níveis de proteína

bruta.

Figura 21. Valores médios de HDL plasmático em jundiás

alimentados com dietas contendo diferentes níveis de proteína bruta.

4.4 Discussão

Os valores de qualidade de água observados no estudo estão em uma faixa

aceitável para o crescimento da espécie (Gomes et al., 2000). Segundo Steffens

(1997), quando o teor de oxigênio dissolvido na água está abaixo do ideal, a

digestibilidade da proteína é afetada, refletindo em diminuição do crescimento dos

peixes.

Quando a qualidade e a quantidade de alimento não são limitantes, a taxa

de crescimento é influenciada pela taxa de alimentação e pelos níveis de proteína e

energia da dieta (Hung et al., 2004). A eficiência de uma dieta para peixes é

dependente de um balanço adequado em relação às exigências específicas de cada

espécie (Campos et al., 2006).

A proteína é um nutriente importante no crescimento dos peixes,

representando a porção mais cara da dieta (Cho et al., 2005). A utilização da

proteína está relacionada com a sua concentração na dieta e também com a

disponibilidade de fontes de energia não-protéicas, principalmente lipídios e

carboidratos (Borba et al., 2003).

O fator sexo influenciou significativamente os resultados de desempenho

dos peixes. As fêmeas apresentaram desempenho superior, porém com exigência

em proteína menor que os machos. Praticamente na totalidade das criações de

jundiá, os animais são criados em um mesmo espaço de criação, com ambos os

sexos. A separação por sexo pode ser uma alternativa para otimizar o padrão de

crescimento e o produto final. Além disso, de acordo com os resultados obtidos

neste estudo, a dieta para cada sexo deve ser diferenciada.

Em relação ao desempenho dos jundiás obtido no experimento, destaca-se

a importância de se estabelecer uma dieta diferenciada, quanto á proteína, de

acordo com o sexo do peixe. Pelos resultados do experimento, a quantidade de 24%

de PB pode ser utilizada em dietas para fêmeas de jundiá enquanto que para os

machos o mínimo é de 30% PB.

Para o jundiá, são poucos os estudos relativos à concentração protéica e

energética da dieta. Os trabalhos existentes destacam exigência em proteína em

fases jovens utilizando dietas purificadas e semi-purificadas (Meyer & Fracalossi,

2004; Salhi et al., 2004).

O excesso de componentes protéicos na dieta pode aumentar a excreção de

nitrogênio no meio de cultivo. Por isso é importante formular dietas que atendam a

exigência em proteína, para proporcionar máximo crescimento, menor custo por kg

de peixe produzido e redução da excreção (Sá et al., 2006). O bagre americano

criado em tanque de terra não tem seu crescimento modificado com dietas contendo

28 ou 32% de proteína bruta (Li et al., 2003).

A questão da proteína da dieta é fundamental não somente pela quantidade

em si, mas, principalmente, pelo equilíbrio de aminoácidos da dieta. Para bagres,

dietas acima de 32% de PB são consideradas altas. Isto também está relacionado

com as taxas de arraçoamento, sendo que esta relação ainda não está bem

esclarecida (Li & Lovell, 1992).

Para o onívoro pacu (Piaractus mesopotamicus), a utilização de dietas com

25, 35 ou 45% de proteína bruta não altera o crescimento dos peixes (Bechara et al.,

2005). Os autores verificaram que no menor nível de proteína testado para esta

espécie (25% PB), a conversão alimentar dos peixes foi melhor. No presente estudo

com jundiás, não foi possível realizar o cálculo da conversão, mesmo com valor

oferecido de alimento fixado por dia, pois em alguns tanques observou-se sobras em

dias alternados do experimento.

A qualidade protéica relacionada à composição em aminoácidos essenciais

da dieta é fundamental no desempenho dos peixes. O que deve ser estabelecido

para o jundiá é o equilíbrio entre os aminoácidos da dieta. Comparando o perfil em

aminoácidos das dietas utilizadas no presente estudo (Tabela 12) com trabalho de

Meyer & Fracalossi (2005), a lisina e a metionina são limitantes. Para o jundiá, a

lisina é o aminoácido mais limitante, com exigência variando entre 4,5 e 5,1% do

total de proteína dietária (Montes-Girao & Fracalossi, 2006).

Existe uma grande carência de estudos sobre exigências nutricionais para o

jundiá, tanto que ao realizar a mesma comparação citada anteriormente com o

estudo de Montes-Girao & Fracalossi (2006), os aminoácidos limitantes seriam a

leucina e a histidina. Alguns dos fatores que podem interferir na discrepância de

resultados é o tamanho dos peixes e o tipo de dieta utilizada (semi-purificada ou

dieta prática). Para o bagre africano, as exigências em aminoácidos essenciais são

altas, tendo a lisina um valor de 6,53 (Abdel-Warith et al., 2001).

A maior exigência em proteína para bagres também está relacionada ao

hábito alimentar carnívoro da maioria das espécies. Mesmo sendo um peixe onívoro,

o jundiá necessita de um bom aporte de aminoácidos essenciais. Além disso,

conforme observado neste experimento, a presença de enzimas digestivas

relacionadas à digestão de proteínas (protease ácida, tripsina e quimiotripsina) é

acentuada para o jundiá, em ambos os sexos.

A melhor eficiência de utilização da proteína está também relacionada com a

concentração da dieta e a disponibilidade de fontes não-protéicas de energia,

notadamente os lipídios e carboidratos (Nankervis et al, 2000). Quando se oferece

uma dieta com menor teor protéico, o aumento da quantidade diária é necessário

para compensar a demanda aminoacídica. Exemplo deste efeito é relatado na

criação da perca prateada (Bidyanus bidyanus), onde peixes alimentados com uma

dieta contendo 24,8% de PB na proporção diária de 4% do peso vivo apresentam o

mesmo desempenho que os alimentados a 2% do PV com dieta possuindo 40,6%

de PB (Harpaz et al., 2001).

Neste aspecto o aporte energético é fundamental, pois é fator limitante no

consumo dos peixes. Para os jundiás no experimento, a fixação de uma quantidade

limitada foi determinada para avaliar a resposta de crescimento. Para as fêmeas, o

menor valor de proteína testado não afetou o desempenho dos peixes,

diferentemente dos machos.

Outro aspecto na relação entre a proteína e a energia está relacionado com

a excreção de nutrientes, um sério problema ambiental nas pisciculturas. A excreção

de nitrogênio pode ser diminuída pelo aumento de fontes não protéicas na ração

(Santinha et al., 1999).

O aumento do peso das vísceras geralmente diminui o rendimento de

carcaça (Mathis et al., 2003). Isto não foi observado nos jundiás do presente estudo,

pois as fêmeas apesar de apresentar maior IDS, não apresentaram diferenças no

rendimento de carcaça em relação aos machos.

O nível de proteína da dieta não modificou o índice hepato-somático (IHS) e

a quantidade de gordura intraperitoneal (GI) dos jundiás. O bagre africano apresenta

redução nestas variáveis quando o nível de proteína da dieta é aumentado (Matter et

al., 2004).

Apesar da grande influência do tipo de lipídios na composição em AGS dos

peixes, no presente estudo observou-se incremento na quantidade de ácidos graxos

insaturados nos filés dos jundiás alimentados com maiores níveis de proteína (27 e

30% de PB). Para o bagre americano (Ictalurus punctatus), a composição em ácidos

graxos no filé, principalmente os saturados e monoinsaturados, sofre mais influência

do tamanho do peixe do que da fonte protéica utilizada na dieta (Hedrick et al.,

2005).

Para o bagre africano, a elevação da proteína dietária proporciona aumento

na quantidade de ácidos graxos poliinsaturados (PUFAS) e diminuição dos AGS

saturados no filé (Matter et al., 2004). No presente estudo observou-se igual relação

para os jundiás, inclusive para a concentração de PUFAS e AGS saturados

corporais (Tabelas 15 e 16). Este efeito do nível protéico da dieta sobre o

metabolismo lipídico do jundiá pode ser atribuído a ressíntese (síntese “de novo”) de

ácidos graxos, principalmente no fígado (Ng et al., 2003). Mas o nível lipídico da

dieta também interfere nesse efeito metabólico (Lim et al., 2001).

Ao contrário do efeito linear crescente observado para a protease ácida, as

enzimas proteolíticas alcalinas (tripsina e quimotripsina) não apresentaram este

efeito. Isto sugere que estas enzimas estão mais sujeitas a variação da composição

do alimento e substâncias inibitórias, principalmente presentes em fontes de origem

vegetal.

Os resultados obtidos em relação à atividade de proteases mostram

evidências que o equilíbrio de nutrientes da dieta, principalmente a relação

proteína/energia, influencia na secreção enzimática. Por isso, para uma avaliação

mais ampla, devem-se relacionar variáveis de desempenho como ganho em peso e

taxas de retenção tecidual. As enzimas amilase e maltase não apresentaram efeito

do nível de proteína na dieta. No tambaqui, estas enzimas respondem linearmente

ao aumento de amido na dieta (Corrêa et al., 2007).

Alterações na dieta e condições inadequadas de manejo podem afetar a

hematologia dos peixes (Klinger et al., 1996). Para o jundiá, alguns estudos mostram

que a hematologia desta espécie é influenciada pela composição da dieta (Camargo

et al., 2005), pelo estresse no confinamento (Barcellos et al., 2004) e por aflatoxinas

na dieta (Vieira et al., 2006).

Machos de cachara (Pseudoplatystoma fasciatum) capturados de cativeiro

apresentaram, da mesma forma que no presente estudo, maiores valores de

hematócrito, hemoglobina e eritrócitos (Ranzani-Paiva et al., 2005). Isto pode estar

associado a hormônios relacionados à reprodução, como a testosterona. Da mesma

forma, um aumento do número de eritrócitos influencia também a síntese de

hemoglobina.

Diferentemente do obtido no presente trabalho, jundiás alimentados com 3

níveis protéicos (30, 40 e 50% PB) apresentaram aumento linear nos valores de

eritrócitos, hematócrito e hemoglobina de acordo com o nível protéico da dieta

(Camargo et al., 2005). Segundo os autores, a proteína estimula a eritropoiese,

aumentando os teores de hemoglobina e mantendo a saúde dos peixes. Deve-se

ressaltar também que o peso dos peixes utilizados no presente trabalho é superior

aos encontrados em outros estudos. Além disso, a espécie, a idade, o sexo, a

qualidade de água e métodos de captura influenciam na variabilidade dos

parâmetros hematológicos em peixes (Camargo et al., 2006).

Pela hematologia é possível avaliar o estado de saúde dos peixes frente a

diversas alterações no processo criatório. Para machos de jundiá, Borges et al.

(2004) salientam que os valores normais de hematócrito e hemoglobina são,

respectivamente, 43% e 8,7 g/dL.

Jundiás com peso inicial de 137 g e alimentados com dietas contendo 36%

de proteína bruta apresentaram valores de 35% e 11 g/dL para HT e HB. Juvenis

desta espécie alimentados com dieta contendo 41 ppb de aflatoxinas/kg

apresentaram valores de hematócrito e hemoglobina de 13,16% e 8,2 g/dL,

respectivamente (Vieira et al., 2006). Estes valores são muito inferiores aos obtidos

no presente estudo e em outros trabalhos com o jundiá, mostrando uma condição de

anemia dos peixes.

Os valores de hematócrito (34-40%) observados por Greene & Selivonchik

(1990) em trutas alimentadas com diferentes fontes de lipídios são similares aos

observados para os jundiás no presente trabalho. Os autores salientam que

alterações nutricionais influenciam nos parâmetros hematológicos e também que os

valores observados para cada espécie de peixe devem estar dentro de uma faixa

considerada “normal”. Abaixo ou acima desta faixa, possivelmente o animal estará

em uma condição de saúde inadequada.

Corroborando com os resultados obtidos neste trabalho, juvenis de jundiá

(70-100 g) alimentados com quatro níveis de proteína na dieta (20, 27, 34 e 41% PB)

também não apresentaram variações nos parâmetros sangüíneos (Melo et al.,

2006). Para o cachara, Ranzani-Paiva et al. (2005) observaram altas correlações

(0,84 e 0,76) para as mesmas variáveis, respectivamente. Para trutas alimentadas

com diferentes fontes de lipídios, observou-se alta correlação entre hematócrito e

hemoglobina (Greene & Selivonchick, 1990).

Os valores de VCM verificados no presente estudo (154 - 165 fL) foram

superiores aos encontrados para jundiás alimentados com dieta contendo 34 %PB e

criados em tanque de terra (139 fL) (Tavares-Dias et al., 2002). Por outro lado, os

valores de concentração de hemoglobina corpuscular média foram similares.

As variações dos valores de parâmetros hematológicos em peixes são

grandes por que existem inúmeras causas, o que dificulta a comparação de

resultados mesmo em trabalhos com a mesma espécie. Trabalho de Tavares-Dias &

Sandrin (1998) demonstra que os valores de hematócrito e hemoglobina do sangue

heparinizado são superiores se comparados ao colhido com EDTA, em um mesmo

peixe.

Para o jundiá e outras espécies nativas brasileiras, é importante que mais

estudos sobre hematologia em diferentes condições nutricionais sejam conduzidos.

Isto por que geralmente se enfatiza exclusivamente o aspecto de ganho em peso,

sem levar em consideração o estado metabólico e de saúde dos peixes.

O aumento de glicogênio observado de acordo com a elevação da proteína

da dieta indica uma possível mobilização de nutrientes para a realização de

gliconegênese. Para o pacu, a elevação da proteína da dieta influenciou

negativamente na concentração de glicose plasmática (Bicudo et al., 2008). No

presente trabalho, não foi observado efeito da proteína sobre este metabólito.

Trabalhos com matrinxã e pacu mostram que o aumento da glicose plasmática

nestes peixes está associado à elevação da proteína da dieta (Vieira et al., 2005;

Abimorad et al., 2007).

A elevação da quantidade de amônia evidencia também um aumento na

excreção de nitrogênio. Esta maior perda provavelmente tenha ocorrido nas fêmeas

de jundiá, que com menor quantidade de proteína dietária (24%) apresentaram

mesmo desempenho comparado às outras dietas (27 e 30% PB). O aumento dos

triglicligerídeos pasmáticos indica uma possível lipogênese no jundiás.

Estudos associando níveis energéticos da dieta deverão ser conduzidos

para elucidar melhor os efeitos no metabolismo do jundiá. Percebe-se, pelos

resultados obtidos, que o jundiá apresenta efeito poupador de proteína (Meyer &

Fracalossi, 2004) e também realiza gliconeogênese quando a dieta não está

totalmente equilibrada.

4.5 Conclusões

- Fêmeas de jundiá apresentam crescimento superior aos machos na fase de

recria.

- A exigência protéica dos machos, com mesma idade, é maior que a das

fêmeas.

- A concentração de proteína da dieta afeta, além do crescimento, a

composição da carcaça e o perfil lipídico corporal e do filé de jundiás.

- O aumento de 24 para 30% de proteína bruta na dieta proporciona

aumento de ácidos graxos poliinsaturados e redução na quantidade de AGS

saturados corporais e nos filés de jundiás.

- Os níveis de proteína da dieta para o jundiá induzem a uma possível

gliconeogênese, catabolismo de aminoácidos, excreção nitrogenada e lipogênese.

- Os níveis de proteína testados produzem poucas alterações nas células

vermelhas e hemoglobina do jundiá.

5. TERCEIRO CAPÍTULO

Desempenho, qualidade e aceitabilidade de filés de machos e fêmeas de jundiá

alimentados com óleo de soja na dieta

5.1 Introdução

Os lipídios são as principais fontes de energia e ácidos graxos em uma dieta

para peixes, influenciando no crescimento e na excreção de compostos

nitrogenados. Os ácidos graxos essenciais (AGE) afetam a fluidez, a flexibilidade e

permeabilidade de membranas, além de serem precursores dos eicosanóides,

responsáveis pelo transporte e metabolismo do colesterol (Steffens, 1997).

Interferem diretamente na eficiência de utilização da proteína, sendo que o

adequado suprimento lipídico da dieta não ultrapassa 25% do custo total da

formulação (Martins et al., 2007).

Uma dieta deficiente em lipídios resulta no catabolismo de proteínas para a

produção de energia. Além disso, o excesso de energia pode suprimir o apetite,

reduzir o crescimento e aumentar a deposição de gordura corporal (NRC, 1993;

Webster et al., 1995).

Os óleos vegetais como o de soja, canola ou arroz, em igual nível de

inclusão, apresentam a mesma eficiência no crescimento do jundiá (Losekann et al.,

2008). Por este motivo, em virtude do óleo de soja apresentar geralmente menor

custo em relação aos demais, este foi escolhido como fonte lipídica nas dietas dos

experimentos. No Brasil, o óleo de soja é uma fonte disponível pela grande produção

do cereal no país. A diferença desta fonte para outras é a composição em ácidos

graxos essenciais.

A melhor fonte de lipídios a ser utilizada em dietas na piscicultura é o óleo de

peixe. Entretanto, devido ao seu alto custo, disponibilidade limitada e dificuldade de

conservação, esta fonte está sendo substituída por fontes de origem vegetal,

notadamente aqueles oriundos de vegetais produzidos para alimentação humana ou

animal. Podemos citar como exemplo os óleos de soja, girassol, arroz, canola,

linhaça, entre outros. Destes, o óleo de soja é que possui maior disponibilidade no

Brasil, pela grande produção existente da oleaginosa.

A maioria dos trabalhos existentes com Rhamdia quelen estudou as

exigências em proteína, enquanto que para lipídios testaram-se somente fontes

como óleos vegetais, óleo de fígado de bacalhau e banha suína (Melo et al., 2002;

Losekann et al., 2008).

Em face das escassas informações sobre as exigências nutricionais desta

espécie, o objetivo deste trabalho foi avaliar o crescimento, a composição corporal, o

perfil lipídico e a aceitabilidade de filés de machos e fêmeas de jundiá alimentadas

com diferentes níveis de óleo de soja.

5.2 Material e métodos

Para este trabalho foram conduzidos dois experimentos com jundiás, um

com 120 dias (somente machos, entre os meses de Novembro de 2006 e Março de

2007) e outro com 80 dias (somente fêmeas, entre os meses de Fevereiro e Maio de

2007) de duração, nas instalações do Laboratório de Piscicultura da UFSM – RS.

5.2.1 Instalações e animais

Em cada experimento, os peixes foram acondicionados em sistemas com

recirculação de água. Cada um possuía 18 tanques de polipropileno (280 litros de

volume útil), com filtragem biológica e aeração do tipo “Venturi”. No experimento dos

machos foram utilizados 234 peixes (peso inicial=193,32 ± 18,78 g – 13

peixes/tanque) e das fêmeas 144 animais (peso inicial=237,75 ± 22,35 g – 8

peixes/tanque).

A vazão utilizada em cada tanque foi de aproximadamente 3,5 L/min para os

machos e 2,8 L/min para as fêmeas. O período de adaptação e demais manejos

foram similares aos demais experimentos.

Foram testados, em cada experimento, 6 tratamentos (com três repetições),

correspondentes a inclusão de óleo de soja na dieta de 2, 4, 6, 8 e 10%, mais a dieta

controle (sem inclusão de óleo).

5.2.2 Qualidade da água

Periodicamente foram aferidos os parâmetros físico-químicos da água do

sistema de criação: temperatura, amônia total, nitrito, alcalinidade, pH e oxigênio

dissolvido. A água para as análises foi coletada na entrada do primeiro filtro

biológico, antes de cada alimentação. Para medição da temperatura e oxigênio

dissolvido utilizou-se um oxímetro digital (YSI-Yellowsprings-EUA). Para as demais

análises foi utilizado kit colorimétrico (Alfakit, Florianópolis, SC). As metodologias de

análise e manejos de limpeza e manutenção de encanamentos foram similares aos

demais experimentos.

5.2.3 Manejo alimentar

Os peixes foram alimentados uma vez ao dia (9 horas), até a saciedade

aparente, nos dois experimentos (machos e fêmeas). Os resíduos de fezes foram

retirados por sifonagem antes do fornecimento de alimento, pela manhã. A

formulação das dietas experimentais foi baseada nos resultados obtidos no

experimento 2 (Tabelas 21 e 22). Foi estabelecido que para os machos o teor

protéico mínimo seria de 30% de PB (a análise das dietas mostrou variação entre 32

e 33%) e para fêmeas um mínimo de 24% de PB (a análise das dietas mostrou

variação entre 25 e 26%).

Tabela 21. Composição das dietas experimentais (D) para os machos (%)

Ingredientes D0 D2 D4 D6 D8 D10

Farinha de carne e ossos 27 27 27 27 27 27

Farelo de soja 27 27 27 27 27 27

Milho moído 18,99

18,99

Farelo de trigo 13 13 13 13 13 13

Óleo de soja 0 2 4 6 8 10

Inerte (areia fina) 10 8 6 4 2 0

Sal comum 1 1 1 1 1 1

Fosfato bicálcico 1 1 1 1 1 1

Vitaminas e minerais

2 2 2 2 2 2

Antioxidante (BHT) 0,01 0,01 0,01 0,01 0,01 0,01

Composição analisada

Umidade 6,35 6,15 6,37 6,40 6,14 6,40

Proteína Bruta 32,86

32,78

33,11

33,65

33,51

33,22

Energia digestível (kcal/kg)

2728 2854 2984 2997 3166 3178

Energia (kcal ED) / proteína (g)

8,30 8,70 9,01 8,91 9,45 9,56

Matéria mineral 12,67

11,82

11,34

14,02

12,75

12,80

Extrato etéreo 6,13 8,04 9,92 10,98

13,52

14,18

Fibra bruta 2,99 3,03 2,76 2,80 2,87 3,48

Cálcio 3,24 3,03 3,01 2,87 3,09 3,05

Fósforo 1,76 1,69 1,85 1,61 1,80 1,79

Composição da mistura vitamínica e mineral (kg de produto/SUPRE MAIS

): Ác. Fólico: 1200mg,

Ác. Nicotínico: 24000mg, Ác. Pantotênico: 12000mg, Cobalto: 10mg Cobre: 3000mg, Cloreto de

colina: 108 g, Ferro: 50000mg, Biotina: 48 mg, Iodo: 100mg, Manganês: 20000mg, Selênio: 100mg,

Vit.A: 1200000UI, Vit. B1: 4800mg, Vit. B2: 4800mg, Vit. B6: 4800mg, Vit. B12: 4800mcg, Vit. C: 48

g, Vit. D3: 200000UI, Vit. E: 12000 mg, Vit. K3: 2400mg, Zinco: 3000mg.

Energia digestível calculada a partir de valores utilizados por TOKO et al. (2008), considerando:

Lipídio=9 kcal/g, Proteína=5 kcal/g, Carboidratos=4 kcal/g, com digestibilidades de 85, 90 e 50%,

respectivamente.

Tabela 22. Composição das dietas experimentais (D) para as fêmeas (%)

Ingredientes D0 D2 D4 D6 D8 D10

Farinha de carne e ossos 16 16 16 16 16 16

Farelo de soja 22 22 22 22 22 22

Milho moído 25,99

25,99

Farelo de trigo 22 22 22 22 22 22

Óleo de soja 0 2 4 6 8 10

Inerte (areia fina) 10 8 6 4 2 0

Sal comum 1 1 1 1 1 1

Fosfato bicálcico 1 1 1 1 1 1

Vitaminas e minerais

2 2 2 2 2 2

Antioxidante (BHT) 0,01 0,01 0,01 0,01 0,01 0,01

Composição analisada

Umidade 5,22 5,09 5,13 5,13 5,24 5,07

Proteína Bruta 26,28

26,31

26,99

25,36

26,23

25,52

Energia digestível (kcal/kg)

2491 2635 2784 2845 2974 3046

Energia (kcal ED) / proteína (g)

9,47 10,01

10,31

11,21

11,33

11,93

Matéria mineral 11,10

10,11

10,00

9,91 9,56 9,84

Extrato etéreo 4,09 6,09 8,56 10,31

12,17

13,68

Fibra bruta 3,53 3,13 3,59 3,52 3,65 3,34

Cálcio 2,27 2,30 2,15 2,25 2,02 2,22

Fósforo 1,43 1,41 1,41 1,37 1,38 1,45

Composição da mistura vitamínica e mineral (kg de produto/SUPRE MAIS

): Ác.Fólico: 1200mg, Ác.

Nicotínico: 24000mg, Ác. Pantotênico: 12000mg, Cobalto: 10mg, Cobre: 3000mg, Cloreto de colina: 108

g, Ferro: 50000mg, Biotina: 48 mg, Iodo: 100mg, Manganês: 20000mg, Selênio: 100mg, Vit.A:

1200000UI, Vit. B1: 4800mg, Vit. B2: 4800mg, Vit. B6: 4800mg, Vit. B12: 4800mcg, Vit. C: 48 g, Vit. D3:

200000UI, Vit. E: 12000 mg, Vit. K3: 2400mg, Zinco: 3000mg.

Energia digestível calculada a partir de valores utilizados por TOKO et al. (2008), considerando:

Lipídio=9 kcal/g, Proteína=5 kcal/g, Carboidratos=4 kcal/g, com digestibilidades de 85, 90 e 50%,

respectivamente.

5.2.4 Coleta de dados e variáveis estimadas

Antes do início do experimento, uma amostra de 20 peixes foi separada para

análises iniciais de hematologia e composição química. Ao final do experimento, 6

peixes por tratamento foram capturados (2 por tanque), sendo 3 abatidos

(hipotermia) para a realização da análise de composição corporal (peixe inteiro

moído) e os demais para retirada de filé. Em todos os procedimentos, os peixes

passaram por jejum (24 horas) e foram previamente anestesiados com trifenóxi-

etanol (0,03%).

Foram realizadas 2 biometrias para coleta de dados de peso e comprimento,

uma inicial e outra ao término de cada experimento. Utilizou-se para este

procedimento balança digital com 3 casas decimais e ictiômetro graduado.

Foram estimadas as seguintes variáveis:

Peso médio (g): medido nas biometrias, representa a média de peso

individual em cada densidade de estocagem testada.

Comprimento total (cm): medida que representa toda a extensão do peixe,

da cabeça ao final da cauda.

Comprimento padrão (cm): medido da cabeça até a inserção do pedúnculo

caudal.

Fator de condição: calculado segundo a fórmula:

FC= ((Peso X 100) / (Comprimento total

)).

Rendimento de carcaça: peso eviscerado, com brânquias, expresso em %

do peso inteiro.

Rendimento de filé: peso dos filés, expresso em % do peso inteiro.

Rendimento de couro: peso do couro, expresso em % do peso inteiro.

Gordura intraperitoneal: gordura separada das vísceras, expresso em % do

peso inteiro.

Índice hepato-somático: IHS= (peso fígado (g) / peso inteiro (g)) x 100.

Índice digestivo-somático: IDS= (peso trato digestório (g) / peso inteiro (g)) x

100.

5.2.5 Análises laboratoriais

A umidade, cinzas e proteína (método de Kjeldahl, fator de conversão=6,25)

foram determinadas seguindo as metodologias descritas na AOAC (1995). A gordura

foi extraída e quantificada pelo método de Bligh & Dyer (1959). Para determinação

do perfil lipídico a gordura extraída foi metilada de acordo com Hartman & Lago

(1973) e analisada por cromatografia gasosa (cromatógrafo Hewlett-Packard modelo

HP 6890 equipado com detector de ionização de chama – FID), em coluna capilar

DB-23 (Agilent – 60 m x 0,25 mm x 0,25 µm).

Após a retirada do trato digestório, este foi separado do estômago. Os

tecidos então foram homogeneizados em tampão (10 mM fosfato/20 mM tris - pH

7,0) durante 10 minutos (4 ºC), utilizando um homogenizador (Potter-Elvehijen). Os

sobrenadantes obtidos foram utilizados nos ensaios enzimáticos.

A atividade de tripsina foi realizada com α-ρ-toluenesulphonyl-L-arginine

methyl ester hydrochloride (TAME). Os extratos foram incubados por 2 minutos em 2

ml de tampão Tris/CaCl

, em pH 8,1. A quimiotripsina foi determinada com benzoyl

tyrosine ethyl ester (BTEE). A incubação dos extratos foi realizada por 2 minutos

com tampão Tris/CaCl

(2 mL), em pH 7,8. Para estas 2 enzimas as análises foram

realizadas em duplicata de cada peixe coletado, sendo as leituras realizadas em

espectrofotômetro (247 e 256 nm, respectivamente), seguindo o protocolo descrito

por Hummel (1959). Uma unidade de enzima foi definida como a quantidade de

enzima necessária para hidrolizar 1 µg de substrato (TAME ou BTEE) por min/mg

proteína.

A atividade de protease ácida foi realizada utilizando-se o método de

hidrólise da caseína modificado por Hidalgo et al. (1999). O ensaio foi conduzido

utilizando-se KCl 0,1 M em tampão pH 1,8. A reação enzimática consistia de 1% de

caseína em água (0,4 mL), tampão (1,6 mL) e 20 µl do homogeneizado. Em seguida

os tubos foram incubados no banho 30 ºC durante 40 minutos. A reação foi

interrompida com 1 mL de TCA 15%. Após, as amostras foram centrifugadas e os

sobrenadantes foram lidos em 280 nm. A tirosina foi utilizada como padrão, sendo

uma unidade de enzima definida como a quantidade de enzima necessária para

catalizar a formação de 1 µg de tirosina por 1 min por mg de proteína.

A atividade de amilase foi determinada em tampão fosfato-citrato (0,2 M, pH

7,0, NaCl 0,5%) com concentração de amido de 2,5%. A reação foi interrompida com

a adição de Ba(OH)

(0,3 N e ZnSO

5%). O protocolo experimental foi modificado

de acordo com Bernfeld (1955). A determinação da hidrólise do amido foi segundo

metodologia de Park-Johnson (1949). A leitura foi realizada em 660 nm. Uma

unidade desta enzima foi definida como 1 µmol de glicose liberada do amido por

min/mg de proteína.

A maltase foi determinada também em tampão fosfato-citrato, com 5% de

concentração de maltose e 20 µl de extrato bruto. Estes foram incubados durante 60

minutos (25 ºC). A reação foi interrompida com PCA 0,6 N (0,1 mL) e adicionado 0,1

mL de KHCO

. As amostras foram centrifugadas a 3.000 g por 5 minutos e a glicose

determinada a 500 nm, com glicose oxidase (Kit-Labtest).

A proteína dos extratos brutos foi determinada pelo método de Lowry et al.

(1951), utilizando albumina de soro bovino como padrão.

No plasma foram dosados glicose (Kit Labtest), lactato (Harrower & Brown,

1972) e proteína (Bradford, 1976). Para as dosagens de glicose (Park & Johnson,

1949), lactato (Harrower & Brown, 1972) e amônia (Verdouw et al., 1978), os tecidos

muscular e hepático foram homogeneizados numa proporção de 50-100 mg/mL de

TCA (ácido tricloroacético) 10%, utilizando-se um homogeneizador tipo Potter-

Elvejhem. Após, foram centrifugados a 1000 g por 3 minutos e os sobrenadantes

foram utilizados para as determinações dos metabólitos. A dosagem de glicogênio

no fígado e músculo foi realizada de acordo com Bidinotto et al, (1998). Para a

dosagem de proteína tecidual utilizou-se o método de Bradford (1976), com

albumina bovina como padrão. Os aminoácidos totais foram determinados de acordo

com Spies (1957) em fígado e músculo.

5.2.6 Painel sensorial

O painel sensorial foi composto por painelistas não treinados, selecionados

entre docentes e alunos do Centro de Ciências Rurais da UFSM, através de um

questionário para a determinação do interesse dos participantes e possíveis fatores

de exclusão como problemas alérgicos e hábito de fumar. As amostras de filés

provenientes de jundiás (fêmeas e machos, separados após cada experimento)

submetidos a dietas contendo óleo de soja em diferentes níveis, foram assadas em

forno elétrico, a 250 °C, durante 30 minutos.

As diferenças sensoriais entre as amostras foram avaliadas usando teste de

ordenação para preferência segundo ABNT-NBR 13170 (1994). Os painelistas

receberam seis amostras de filés de jundiás codificadas com números aleatórios e

foram orientados a ordenar as amostras de acordo com a sua preferência, em ordem

decrescente, em relação aos atributos de aparência, sabor e textura. Dessa forma, a

amostra preferida recebia o menor escore na avaliação. Os resultados obtidos em

cada avaliação foram submetidos ao teste de Friedman (ABNT-NBR 13170, 1994).

5.2.7 Análises estatísticas

Os dados obtidos foram submetidos a teste de normalidade, posteriormente

à análise de variância e regressão polinomial. Os dados obtidos nos diferentes

níveis foram comparados à dieta controle pelo teste de Dunnett (P<0,05). Quando

uma variável resposta apresentou mais de 60% de correlação com o consumo de

alimento, este foi utilizado como co-variável no modelo. Para a comparação de

médias ajustadas, utilizou-se o teste Pdiff. O software SAS

(2001) foi utilizado para

realizar as análises estatísticas e o Sigma Plot

para a construção das figuras.

5.3 Resultados

5.3.1 Qualidade da água

Os valores de qualidade da água observados nos experimentos (Tabela 23)

apresentaram algumas diferenças entre os sistemas de criação. No experimento dos

machos, a temperatura média da água de criação foi maior (25,88 ºC). No

experimento com fêmeas, a temperatura média obtida no sistema de criação foi de

22,4 ºC.

Os resulatados dos parâmetros de qualidade de água devem ser

considerados isoladamente para avaliação dentro de cada experimento, pois os

sistemas de recirculação, apesar do mesmo princípio de funcionamento,

apresentavam estruturas diferentes.

Tabela 23. Valores dos parâmetros de qualidade da água analisados

durante os experimentos 3 e 4*

Parâmetro Experimento machos

mínimo máximo média desvio

Temperatura (ºC) 19 30 25,88 1,90

Oxigênio dissolvido (mg/L) 3,8 5,7 4,90 0,59

Amônia total (mg/L) 0,25 1,00 0,24 0,07

Nitrito (mg/L) 0,01 0,1 0,05 0,02

pH 6,5 7,2 7,0 0,38

Alcalinidade total (mg CaCO

/L) 16 60 29,69 12,34

Dureza (mg CaCO

/L) 38 92 68,5 25,4

Experimento fêmeas

Temperatura (ºC) 19,5 25,5 22,4 1,97

Oxigênio dissolvido (mg/L) 4,3 5,4 4,74 0,43

Amônia total (mg/L) 0,25 1,5 0,42 0,11

Nitrito (mg/L) 0,05 0,3 0,13 0,04

pH 6,5 7,0 6,8 0,56

Alcalinidade total (mg CaCO

/L) 24 48 36,3 8,98

Dureza (mg CaCO

/L) 40 140 88,5 36,1

*Amostras coletadas na entrada do primeiro filtro biológico.

5.3.2 Desempenho e carcaça

Os valores de peso de machos e fêmeas de jundiá foram influenciados pela

adição de óleo de soja como fonte lipídica na dieta (Figuras 22 e 23).

Figura 22. Peso médio ajustado ao consumo de alimento de

jundiás machos alimentados com dietas contendo óleo de

soja.

Figura 23. Peso médio ajustado ao consumo de alimento de

fêmeas de jundiá alimentadas com dietas contendo óleo de soja.

No experimento com machos, os peixes alimentados com a dieta contendo

8% de óleo de soja apresentaram maior peso (295,28 g). Esse valor foi

estatisticamente superior ao peso dos peixes alimentados sem a inclusão e com 2 e

10% de óleo de soja (Figura 22), de acordo com o teste Pdiff (P<0,05).

Os três menores níveis testados para as fêmeas (0, 2, 4% de óleo de soja)

porporcionaram os menores valores de peso (teste Pdiff, P<0,05) para os peixes. O

melhor desempenho em peso (373,82 g) foi obtido nas fêmeas alimentadas com

dietas contendo 10% de óleo de soja como fonte lipídica (Figura 23).

A inclusão de óleo de soja não influenciou os valores de comprimento total e

padrão dos machos de jundiá (Tabela 24). O fator de condição apresentou efeito

linear positivo (P<0,01) pela inclusão de óleo de soja. Pela equação obtida, espera-

se um aumento de 0,004 unidades no FC dos peixes a cada 1% a mais de óleo de

soja na dieta.

Os valores de rendimento de cortes (carcaça, filé, couro), índice hepato-

somático e percentagem de gônada dos machos não foram influenciados pela

adição de óleo de soja na dieta (Tabela 24).

Tabela 24. Parâmetros produtivos de machos de jundiá alimentados

com dietas contendo óleo de soja

Óleo de soja (%)

0 2 4 6 8 10 dpr P

CT (cm) 28,51

28,28

28,79

28,53

29,02

28,52

0,46

CP (cm) 23,79

23,93

24,27

24,01

24,14

23,82

0,38

1,03 1,01 1,04 1,06 1,06 1,06 0,02

RC (%) 85,95

84,53

85,59

84,52

85,26

85,12

1,21

RF (%) 34,49

32,13

34,17

32,61

33,48

33,54

1,64

RCOU (%)

3,74 3,57 3,79 3,96 3,30 3,69 0,42

IHS (%) 1,06 1,33 0,97 1,05 1,09 1,06 0,21

IDS (%) 2,45 2,26 1,75 1,95 1,83 2,11 0,20

GI (%) 1,86 1,62 2,37 2,22 3,42 3,42 0,88

GON (%) 4,86 5,69 4,83 5,48 4,44 4,16 1,07

Y=1,02 + 0,004X, r

=0,42. *P<0,01.

CT: comprimento total; CP: comprimento padrão; FC: fator de condição; RC:

rendimento de carcaça; RF: rendimento de filé; RCOU: rendimento de couro; IHS:

índice hepato-somático; GON: percentagem de gônada.

Dpr: desvio padrão residual; NS: não-significativo (P>0,05).

Figura 24. Valores de consumo diário aparente (CDA) em

jundiás alimentados com dietas contendo óleo de soja.

O consumo diário aparente (CDA) de ração foi maior nos machos (Figura

24). No experimento com machos, não se observou efeito do óleo de soja no

consumo dos peixes (P>0,05). Para as fêmeas, o consumo de alimento decresceu de

acordo com a inclusão de óleo de soja (P=0,04, Y=3,11 – 0,04X, r

=0,44).

Os valores de conversão alimentar aparente dos jundiás (Figura 25)

diminuíram de acordo com o aumento da inclusão de óleo de soja na dieta (machos –

Y=3,26 – 0,12X, r

=0,52, P<0,01; fêmeas – Y=3,02 – 0,13X, r

=0,41, P=0,004).

A biomassa total no experimento das fêmeas (Figura 26) aumentou

linearmente de acordo com a inclusão de óleo de soja na dieta (Y=2561,75 + 79,84X,

=0,49, P=0,001). Os machos de jundiá alimentados com a dieta contendo 8% de

óleo de soja apresentaram maior desempenho.

Os valores de comprimento total, padrão e fator de condição das fêmeas não

apresentaram efeito significativo pela inclusão de óleo de soja na dieta (Tabela 25). A

sobrevivência diminuiu de acordo com o aumento da inclusão de óleo (P<0,01).

O rendimento de carcaça, nas fêmeas, foi maior nos peixes alimentados com

a inclusão de 6% de óleo de soja na dieta (88,25%). Os demais valores de

rendimento de cortes das fêmeas não apresentaram variação entre os tratamentos.

Figura 25. Valores de conversão alimentar aparente (CAA) em

jundiás alimentados com dietas contendo óleo de soja.

Figura 26. Biomassa total de machos e fêmeas de jundiá

alimentados com dietas contendo óleo de soja.

A inclusão de óleo de soja em dietas para fêmeas não implicou em efeito

significativo para o índice digestivo-somático (Tabela 25). Nos machos, os dados

desta variável apresentaram comportamento quadrático (Y=2,49 – 0,21X + 0,01X

=0,45, P<0,05, Tabela 24).

Nos machos, observou-se aumento linear (Y=1,55 + 0,19X, r

=0,40) da

quantidade de gordura intraperitoneal (Tabela 24).

Tabela 25. Parâmetros produtivos de fêmeas de jundiá alimentadas

com dietas contendo óleo de soja

Óleo de soja (%)

0 2 4 6 8 10 dpr P

CT (cm) 32,03

31,74

31,70

32,02

31,59

31,86

0,78

CP (cm) 27,21

26,74

26,72

27,03

26,84

27,17

0,60

FC 1,04 0,98 1,03 0,98 1,03 1,06 0,04

SOB (%)

100 97,22

91,67

88,89

91,66

86,11

8,04

RC (%)

81,16

88,20

84,77

88,25

86,11

83,06

2,92

RF (%) 30,70

32,06

31,41

31,56

30,64

29,76

2,35

RCOU (%)

3,47 3,95 4,11 4,06 4,35 3,93 0,46

IHS (%) 1,29 1,66 1,53 1,38 1,15 1,35 0,33

IDS (%) 2,59 2,39 2,41 2,56 1,83 2,66 0,85

GI (%) 0,85 0,68 1,48 0,75 1,29 2,27 1,80

GON (%) 5,68 2,75 4,25 2,02 4,66 5,60 2,78

Y=98,94 – 1,26X, r

=0,34;

Y=82,08 + 2,11X – 0,20X

, r

=0,46. *P<0,01.

CT: comprimento total; CP: comprimento padrão; FC: fator de condição; SOB:

sobrevivência; RC: rendimento de carcaça; RF: rendimento de filé; RCOU:

rendimento de couro; IHS: índice hepato-somático; GON: percentagem de gônada.

Dpr: desvio padrão residual; NS: não-significativo (P>0,05).

5.3.3 Composição centesimal, perfil lipídico e aceitabilidade

A umidade nos filés dos machos foi maior (P=0,006) nos peixes alimentados

com a dieta contendo 2% de óleo de soja (Tabela 26). A quantidade de cinzas e de

lipídios no filé dos machos não foi afetada pela inclusão de óleo na dieta. A proteína

do filé apresentou efeito linear (P=0,009), com um incremento estimado de 0,23% de

proteína no filé a cada 1% de inclusão de óleo na dieta.

Tabela 26. Composição centesimal de filés e peixe inteiro (%) de machos

de jundiá alimentados com dietas contendo óleo de soja

Óleo de soja (%)

0 2 4 6 8 10

Filés dpr P

Umidade

77,88

79,47

77,97

76,46

75,57

74,00

1,44

0,0006

Cinzas 1,09 1,13 1,30 1,14 1,15 1,15 0,14

Lipídios 4,53 3,44 4,29 5,68 6,44 4,88 1,20

Proteína

16,73

17,27

17,11

18,46

17,79

19,49

1,17

0,009

Peixe inteiro

Umidade

66,66

69,55

71,83

71,07

66,41

68,28

2,03

0,02

Cinzas 3,96 2,47 3,65 3,56 2,90 2,95 0,77

Lipídios

8,32 9,90 9,85 8,58 12,40

12,44

2,15

0,02

Proteína 17,77

18,50

17,63

19,11

18,29

17,04

1,20

Y=78,43 + 0,12X – 0,05X

, r

=0,62;

Y=16,62 + 0,23X, r

=0,35;

Y=67,16 + 1,43X – 0,14X

, r

=0,38;

Y=8,34 + 0,38X, r

=0,29;

No peixe inteiro, a quantidade de cinzas e proteína não foi afetada pelas

diferentes dietas. A umidade foi maior nos machos alimentados com dietas contendo

4 e 6% de óleo de soja (71,83 e 71,07%, respectivamente). Os lipídios corporais

aumentaram linearmente com o incremento de óleo de soja na dieta dos peixes

(Y=8,34 + 0,38X, r

=0,29). Apesar do coeficiente de determinação do modelo para

esta variável ter apresentado um baixo valor (29%), a aplicação do teste de Dunnett

nos dados demonstrou diferença significativa (P<0,05) entre as dietas com maior

inclusão de óleo em relação à dieta controle (sem inclusão de óleo).

Tabela 27. Perfil lipídico dos filés de machos de jundiás alimentados com óleo de

soja na dieta (% de ácidos graxos nos lipídios totais)

Óleo de soja (%)

AG 0 2 4 6 8 10 P

C14:0 1,82 1,50 1,73 1,60 1,50 1,44 **

C16:0 25,97 25,16 26,17 24,45 23,90 23,48 ***

C18:0 10,08 9,32 8,33 8,87 9,16 8,56 *

∑Saturados

37,98 36,19 36,35 35,09 34,77 33,73 ***

C16:1n-7c 5,76 5,90 7,18 6,53 5,30 5,55 NS

C18:1n-9c 34,91 31,83 32,43 32,92 32,70 32,26 **

C20:1n-9 1,28 1,29 1,16 1,01 1,01 0,94 ***

∑Monoins 41,96 39,02 40,78 40,47 39,02 38,76 NS

C18:2n-6c 16,39 18,82 17,73 20,34 21,86 22,76 ***

C18:3n-3 1,01 1,12 1,07 1,45 1,55 1,69 ***

C20:4n-6 0,85 1,60 1,29 0,91 0,92 1,06 ***

C22:5n-3 0,43 0,79 0,59 0,48 0,53 0,49 **

C22:6n-3 1,36 2,43 2,16 1,26 1,33 1,49 **

∑PUFA 20,04 24,78 22,85 24,42 26,21 27,50 ***

∑Insat 62,01 63,80 63,64 64,90 65,23 66,26 ***

∑n - 3 2,80 4,35 3,82 3,18 3,41 3,67 **

∑n – 6 17,24 20,42 19,03 21,24 22,79 23,82 ***

n-3/n-6 0,16 0,21 0,20 0,14 0,15 0,16 ***

n-6/n-3 6,38 4,78 5,00 6,74 6,75 6,49 **

UFA/SFA 1,63 1,76 1,75 1,85 1,87 1,97 ***

*P<0,05; **P<0,01; ***P<0,001.

Mono= AGS monoinsaturados; PUFAS=AGS poliinsaturados;

UFA/SFA=AGS insaturados/saturados.

Quanto ao perfil lipídico dos filés dos machos (Tabela 27), a utilização de

óleo de soja proporcionou diferenças significativas em praticamente todos os ácidos

graxos mensurados, com exceção do C16:1n-7c e da quantidade total de AGS

monoinsaturados.

A adição de óleo de soja na dieta resultou em diminuição na quantidade de

AGS saturados nos filés. A quantidade de PUFAS e o total de AGS insaturados nos

filés dos machos de jundiá foram maiores nos peixes alimentados com a dieta

contendo 10% de óleo de soja.

Os peixes alimentados com a dieta contendo 2% de óleo de soja

apresentaram maior quantidade de AGS do grupo n – 3 nos filés. Maior quantidade

de ômega 6 e relação entre AGS insaturados e saturados foi verificada nos filés dos

machos alimentados com a dieta D10 (Tabela 27).

Os maiores valores da relação n – 3 / n – 6 foram obtidos nos filés dos

machos de jundiás alimentados com dietas com a inclusão de 2 e 4% de óleo de

soja (0,21 e 0,20, respectivamente). Os peixes alimentados com as dietas D6 e D8

apresentaram maiores valores da relação n – 6 / n – 3 nos filés (6,74 e 6,75,

respectivamente).

O perfil lipídico corporal (Tabela 28) dos machos também mostrou influência

da adição de óleo de soja na dieta. A quantidade total de AGS saturados corporais

foi maior nos peixes alimentados com a dieta contendo 2% de óleo.

Os AGS C14:0, C16:1n-7c, C20:4n-6, C22:5n-3 e C22:6n-3 não

apresentaram diferenças entre as dietas testadas (P>0,05).

A maior quantidade de AGS corporais dos grupos ômega 3 e 6 foram

verificadas nos machos alimentados com 6% de óleo de soja na dieta. No total de

AGS insaturados, os peixes alimentados com 8% de soja, que também proporcionou

a maior relação entre os AGS insaturados e saturados (P<0,01).

A composição corporal das fêmeas (Tabela 29) não foi alterada pela

inclusão de óleo de soja da dieta (P>0,05).

A umidade nos filés das fêmeas foi maior (P=0,04) nos peixes alimentados

com a dieta contendo 6% de óleo de soja (79,31%). A quantidade de lipídios

(P=0,02) e proteína (P=0,009) nos filés apresentou comportamento quadrático.

O perfil lipídico corporal das fêmeas foi influenciado pela adição de óleo de

soja nas dietas (Tabela 30). A quantidade de AGS corporais saturados foi menor de

acordo com o aumento da inclusão de óleo de soja nas dietas.

As fêmeas alimentadas com a dieta contendo 8% de óleo de soja

apresentaram maior quantidade (P<0,0001) de PUFAS (25,52%), AGS insaturados

totais (65,64%) e AGS do grupo n – 6 (22,10%).

O maior valor da relação entre os AGS n – 3 / n – 6 corporais foi obtido nas

fêmeas de jundiá alimentadas com a dieta D2 (P<0,01). Os peixes alimentados com

10% de óleo de soja apresentaram o maior valor da relação n – 6 / n – 3 (P<0,01).

100

Tabela 28. Perfil lipídico corporal de machos de jundiás alimentados com óleo de

soja na dieta (% de ácidos graxos nos lipídios totais)

Óleo de soja (%)

AG 0 2 4 6 8 10 P

C14:0 1,61 1,79 1,58 1,57 1,49 1,59 NS

C16:0 23,71 24,71 22,55 23,04 22,41 22,95 **

C18:0 9,23 8,91 9,95 8,66 8,60 7,96 **

∑ Saturados

35,75 36,35 34,96 34,25 33,38 33,50 **

C16:1n-7c 5,90 6,63 4,79 5,71 5,23 6,45 NS

C18:1n-9c 35,36 34,78 33,31 32,57 34,68 34,85 **

C20:1n-9 1,28 1,12 0,96 0,97 1,03 1,05 **

∑ Monoins 42,68 42,63 39,16 39,30 41,06 42,50 **

C18:2n-6c 17,77 17,58 21,71 22,05 21,59 20,18 **

C18:3n-3 1,18 1,25 1,84 1,75 1,76 1,59 ***

C20:4n-6 0,85 0,76 0,77 0,85 0,70 0,65 NS

C22:5n-3 0,41 0,37 0,45 0,49 0,42 0,41 NS

C22:6n-3 1,22 1,01 0,98 1,23 0,96 1,00 NS

∑ PUFA 21,55 21,02 25,86 26,44 25,54 23,99 **

∑ Insat 64,24 63,65 65,03 65,74 66,61 66,49 **

∑ n – 3 2,93 2,68 3,39 3,53 3,25 3,16 **

∑ n – 6 18,63 18,34 22,47 22,91 22,30 20,83 **

n-3/n-6 0,16 0,15 0,15 0,15 0,14 0,15 NS

n-6/n-3 6,35 6,87 6,62 6,55 6,86 6,54 NS

UFA/SFA 1,79 1,75 1,86 1,92 1,99 1,98 **

*P<0,05; **P<0,01; ***P<0,001.

Mono= AGS monoinsaturados; PUFAS=AGS poliinsaturados;

UFA/SFA=AGS insaturados/saturados.

101

Tabela 29. Composição centesimal do peixe inteiro e de filés (%) de

fêmeas de jundiá alimentadas com dietas contendo óleo de soja

Óleo de soja (%)

0 2 4 6 8 10

Filés dpr P

Umidade

75,43

76,38

77,25

79,31

76,18

74,65

1,99

0,04

Cinzas 1,08 1,18 1,20 0,94 1,11 1,15 0,10

Lipídios

6,63 5,10 4,55 4,44 4,73 6,19 1,24

0,02

Proteína

20,82

20,41

19,45

16,71

20,60

20,57

1,20

0,009

Peixe inteiro

Umidade 68,55

68,60

70,75

67,67

66,06

67,71

2,45

Cinzas 4,04 3,81 3,09 2,79 3,26 3,60 0,80

Lipídios 11,21

12,96

10,85

12,04

16,09

14,35

3,18

Proteína 17,87

17,24

17,41

18,70

18,19

17,13

1,56

Y=75,02 + 1,23X – 0,12X

, r

=0,33;

Y=6,61 – 0,86X + 0,08X

, r

=0,39;

Y=21,28 + 1,00X – 0,09X

, r

=0,31.

A composição em ácidos graxos dos filés das fêmeas de jundiá foi alterada

pela adição de óleo de soja nas dietas (Tabela 31).

Da mesma forma que o perfil lipídico corporal, a quantidade de AGS

saturados nos filés dos peixes foi menor de acordo com o aumento da inclusão de

óleo de soja na dieta (P<0,0001). A quantidade de AGS monoinsaturados (40,87%)

foi maior nos filés dos peixes alimentados com a dieta sem inclusão de óleo de soja.

Os peixes alimentados com a dieta contendo 8% de óleo apresentaram

maior quantidade de PUFAS nos filés (30,71%, P<0,0001). Ocorreu um aumento

linear na concentração de AGS insaturados (Tabela 31) de acordo com a inclusão

de óleo de soja na dieta.

A maior quantidade de AGS do tipo ômega 3 foi obtida nos filés das fêmeas

alimentadas com a dieta D4 (P<0,01), enquanto que nos filés dos peixes

submetidos à dieta com 8% de óleo ocorreu maior deposição de AGS do grupo

ômega 6 (P<0,0001).

102

Tabela 30. Perfil lipídico corporal de fêmeas de jundiás alimentadas com dietas

contendo óleo de soja (% de ácidos graxos nos lipídios totais)

Óleo de soja (%)

AG 0 2 4 6 8 10 P

C14:0 1,53 1,73 1,53 1,68 1,50 1,34 ***

C16:0 25,07 25,57 24,51 23,79 24,05 24,08 **

C18:0 9,35 8,96 9,12 8,32 8,39 8,47 ***

∑SFA 36,78 37,82 36,23 34,91 34,35 34,38 ***

C16:1n-7c 5,25 5,41 5,28 5,84 5,39 5,28 NS

C18:1n-9c 35,56 33,20 33,80 34,11 33,76 34,49 **

C20:1n-9 1,22 1,02 1,03 0,87 0,88 0,90 ***

∑Mono 42,03 39,67 40,17 40,93 40,11 40,67 NS

C18:2n-6c 16,75 17,73 19,16 19,60 21,54 20,81 ***

C18:3n-3 1,10 1,29 1,36 1,54 1,76 1,51 ***

C20:4n-6 1,31 1,16 1,19 1,14 0,56 0,98 ***

C22:5n-3 0,52 0,55 0,55 0,55 0,48 0,47 NS

C22:6n-3 1,48 1,68 1,31 1,23 1,15 1,13 NS

∑PUFA 21,17 22,50 23,59 24,15 25,52 24,94 ***

∑INS 63,21 62,17 63,76 65,08 65,64 65,61 ***

∑n - 3 3,11 3,60 3,23 3,40 3,42 3,15 NS

∑n – 6 18,06 18,89 20,35 20,75 22,10 21,79 ***

n-3/n-6 0,17 0,19 0,15 0,16 0,15 0,14 **

n-6/n-3 5,91 5,40 6,30 6,12 6,46 7,00 **

UFA/SFA 1,72 1,64 1,76 1,86 1,91 1,90 ***

*P<0,05; **P<0,01; ***P<0,001.

Mono= AGS monoinsaturados; PUFAS=AGS poliinsaturados;

UFA/SFA=AGS insaturados/saturados.

O maior valor para a relação n – 3 / n – 6 nos filés das fêmeas foi onde os

peixes foram alimentados com a dieta contendo 4% de óleo de soja (Tabela 31). No

caso da relação n – 6 / n – 3, verificou-se maior valor nos filés das fêmeas

alimentadas com a dieta D6 (6% de inclusão de óleo de soja).

Observou-se aumento linear crescente (P<0,0001) na relação entre AGS

insaturados e saturados.

103

Tabela 31. Perfil lipídico dos filés de fêmeas de jundiá

alimentadas com diferentes níveis de óleo de soja (% de ácidos

graxos nos lipídios totais)

Óleo de soja (%)

AGS 0 2 4 6 8 10 P

C14:0 1,55

1,38

1,48

1,42

1,25

1,40

C16:0 26,31

25,00

24,81

25,26

23,11

23,41

***

C18:0 8,80

9,11

8,95

8,69

8,98

8,40

∑SFA 37,06

35,84

35,73

35,57

33,41

33,23

***

C16:1n-7c

5,93

5,14

4,10

5,29

3,74

5,08

C18:1n-9c

33,94

33,56

32,17

33,34

31,41

33,73

C20:1n-9 0,99

0,99

0,98

1,02

0,71

0,87

∑Mono 40,87

39,71

37,25

39,67

35,86

39,69

***

C18:2n-6c

17,46

18,84

20,48

19,57

24,81

22,13

***

C18:3n-3 1,15

1,29

1,46

1,30

2,05

1,73

***

C20:4n-6 1,28

1,58

1,74

1,39

1,31

1,21

C22:5n-3 0,57

0,64

0,79

0,59

0,62

0,60

C22:6n-3 1,57

2,04

2,51

1,89

1,91

1,39

∑PUFA 22,05

24,44

27,01

24,75

30,71

27,07

***

∑INS 62,93

64,15

64,27

64,42

66,58

66,76

***

∑n - 3 3,30

4,01

4,78

3,79

4,58

3,73

∑n – 6 18,75

20,42

22,23

20,96

26,13

23,33

***

n-3/n-6 0,17

0,19

0,21

0,18

0,17

0,16

n-6/n-3 5,71

5,13

4,66

5,75

5,72

6,24

UFA/SFA 1,70

1,79

1,81

1,99

2,01

***

*P<0,05; **P<0,01; ***P<0,001.

Mono= AGS monoinsaturados; PUFAS=AGS poliinsaturados;

UFA/SFA=AGS insaturados/saturados.

104

Tabela 32. Escore sensorial de teste de ordenação de acordo com a

preferência de filés de machos de jundiás alimentados com diferentes

níveis de óleo de soja

Óleo de soja (%)

Aparência Sabor Textura

0 87 83 90

2 79 70 71

4 73 85 79

6 81 83 83

8 78 86 80

10 85 76 80

Os resultados são referentes à análise realizada por 23 provadores. O valor crítico para 23

provadores e 6 amostras é 37, com significância de 5%, de acordo com tabela da ABNT –

NBR 13170 (1994).

O teste de ordenação realizado por painel sensorial não revelou diferenças

significativas na aparência, sabor ou textura entre as amostras de filés de machos

(Tabela 32) e fêmeas de jundiá (Tabela 33), pois as diferenças entre os escores das

amostras não atingiram os valores críticos de 37 e 38, respectivamente. Cabe

ressaltar que este valor crítico foi estabelecido em função da significância mínima

pré-determinada (P<0,05).

Os resultados obtidos indicam que a variação dos níveis de óleo de soja da

dieta entre 0 e 10% não afeta a qualidade sensorial dos filés de jundiás,

independente do sexo dos peixes.

Tabela 33. Escore sensorial de teste de ordenação de acordo com

a preferência de filés de fêmeas de jundiás alimentados com

diferentes níveis de óleo

Óleo de soja (%)

Aparência Sabor Textura

76 83 85

78 77 77

89 85 82

89 100 92

103 92 91

90 88 98

Os resultados são referentes à análise realizada por 25 provadores. O valor

crítico para 25 provadores e 6 amostras é 38, com significância de 5% (ABNT –

NBR 13170, 1994).

105

5.3.4 Enzimas, metabolismo e hematologia

A utilização de óleo de soja em diferentes níveis afetou a atividade de

enzimas digestivas dos jundiás (machos e fêmeas).

Nos machos (Tabela 34), a razão entre tripsina e quimiotripsina e a

quantidade de proteína do estômago não mostraram variação significativa entre os

tratamentos (P>0,05).

Em relação às carboidrases mensuradas no intestino dos machos de jundiás

(Tabela 34), observou-se maior quantidade de amilase nos peixes alimentados com

dietas sem a inclusão de óleo de soja (D0). Os peixes alimentados com a dieta D8

apresentaram maior atividade de maltase (P<0,0001).

A atividade de tripsina foi maior (P<0,01) nos machos alimentados com as

dietas D4 e D10 (5,07 e 5,02, respectivamente). A menor atividade de quimiotripsina

foi verificada nos machos alimentados com 2% de óleo de soja na dieta (P<0,0001).

A atividade de protease ácida no estômago foi maior nos peixes alimentados

com a dieta D6 (32,20, P<0,0001). Os machos alimentados com esta mesma dieta

(6% de inclusão de óleo) apresentaram a menor quantidade de proteína no intestino

(0,08).

Tabela 34. Enzimas digestivas de machos de jundiá alimentados com dietas

contendo diferentes níveis de óleo de soja

Óleo de soja (%)

0 2 4 6 8 10 dpr

Amilase

(U/mg/prot)

0,33 0,20 0,29 0,22 0,27 0,20 0,03

***

Maltase

(U/mg/prot)

0,41 0,44 0,62 0,38 0,74 0,41 0,11

***

Tripsina

(U/mg/prot)

3,91 3,38 5,07 4,01 4,70 5,02 0,79

Quimiotripsina

(U/mg/prot)

(N)

2,40 1,89 2,76 2,31 2,56 2,61 0,31

***

Tripsina/quimiotripsina 1,64 1,76 1,85 1,76 1,80 1,98 0,36

Protease (N) 22,50

20,98

25,75

32,20

26,10

29,58

4,95

***

**P<0,01; ***P<0,001. NS= não-significativo (P>0,05).

(N): estas variáveis foram submetidas a ANOVA não-paramétrica (Kruskall – Wallis), pois não

apresentaram distribuição normal.

106

Tabela 35. Metabólitos em machos de jundiá alimentados com dietas

contendo diferentes níveis de óleo de soja

Óleo de soja (%)

0 2 4 6 8 10 dpr P

Aminoácidos totais (µg/g tec)

Fígado 46,11 46,74 47,16 50,04 39,56 52,38 7,60 NS

Músculo

15,33 13,75 15,26 14,60 16,87 16,11 2,03 *

Rim 12,36 12,44 14,80 12,40 16,13 13,49 2,28 NS

Amônia (µg/g tec)

Fígado 48,26 42,82 50,73 45,96 32,13 43,54 7,15 NS

Músculo

33,15 29,89 27,87 25,36 26,12 26,19 4,19 **

Rim 25,48 29,59 30,25 21,85 29,11 32,55 4,43 NS

Glicose (µmol/g tec)

Fígado 83,35 83,99 67,02 72,86 79,94 80,40 7,64 *

Músculo

7,75 7,39 7,40 6,59 7,16 6,88 0,80 NS

Rim 11,00 13,50 12,37 12,53 12,80 12,57 1,08 NS

Proteína (µg/g tec)

Fígado 140,12

145,04

149,95

140,12

147,50

149,95

15,82

Músculo

107,18

145,43

133,49

133,24

124,88

118,88

12,87

Rim 132,75

121,44

135,20

126,35

125,38

132,75

13,47

Glicogênio (µmol/g tec)

Fígado 184,20

195,40

271,40

234,60

245,00

231,60

33,15

Músculo

12,30 12,73 12,08 12,72 14,72 13,52 3,68 NS

Rim 31,20 28,53 28,80 27,46 28,53 27,46 5,11 NS

Lactato (µmol/g tec)

Fígado 9,16 7,84 8,54 10,47 10,26 13,21 1,03 ***

Músculo

38,77 29,07 44,17 35,03 38,58 37,72 6,48 NS

Rim 4,14 5,32 4,24 7,04 9,39 12,24 1,18 ***

*P<0,05; **P<0,01; ***P<0,001.

Os machos alimentados com as dietas contendo 8 ou 10% de óleo de soja

apresentaram maiores valores (P<0,05) de aminoácidos totais no músculo (Tabela

35). No fígado e no rim dos peixes não ocorreu efeito significativo da inclusão de

óleo nas dietas sobre a quantidade de aminonoácidos totais, amônia e proteína.

107

A produção de amônia muscular foi significativamente maior nos machos

alimentados com a dieta sem a inclusão de óleo de soja como fonte lipídica (33,15).

No fígado, o menor valor de glicose verificado foi de 67,02 mg/dL nos peixes

alimentados com a dieta D4 e o maior valor nos machos submetidos a dieta D10

(80,4 mg/dL). No tecido muscular e nos rins não ocorreu diferença entre os

tratamentos testados (Tabela 35).

Os valores de proteína no músculo dos machos de jundiá apresentaram

tendência quadrática (Y=117,35 + 8,65X – 0,95X

, r

=0,35, P<0,01), sendo que os

peixes alimentados com a dieta D2 apresentaram maior valor para este constituinte

(145,43 mg/dL).

Os teores de glicogênio muscular e renal não foram afetados pela inclusão

de óleo de soja na dieta (P>0,05, Tabela 35). No fígado, ocorreu efeito quadrático

(Y=175,7 + 23,68X – 1,76X

, r

=0,45, P=0,008).

Ocorreu efeito linear positivo (Y=7,85 + 0,40X, r

=0,58) sobre os valores de

lactato no fígado de machos de jundiá. No rim, a quantidade de lactato diminuiu

(Y=3,19 – 0,78X, r

=0,77) de acordo com o aumento de óleo de soja na dieta dos

peixes. No músculo, a quantidade de lactato não se alterou em função dos níveis de

óleo de soja testados (Tabela 35).

Tabela 36. Enzimas digestivas em fêmeas de jundiá alimentados com

dietas contendo diferentes níveis de óleo de soja

Óleo de soja (%)

0 2 4 6 8 10 dpr

Amilase

(U/mg/prot)

0,04 0,09 0,09 0,06 0,06 0,09 0,01

***

Maltase

(U/mg/prot)

0,66 0,84 1,01 0,41 0,63 0,95 0,14

***

Tripsina

(U/mg/prot)

6,17 6,36 5,75 6,21 6,59 7,29 0,86

Quimiotripsina

(U/mg/prot)

3,02 3,11 2,75 3,02 3,38 3,73 0,28

***

Trip/quimiotr 2,05 2,06 2,08 2,05 1,96 1,96 0,26

Protease 22,51

23,89

24,82

14,72

22,00

21,32

2,60

***

*P<0,05; **P<0,01; ***P<0,0001.

108

Não se verificou efeito (P>0,05) da utilização de óleo de soja na atividade

da enzima tripsina e a sua razão com a quimiotripsina em fêmeas de jundiá (Tabela

36).

A atividade da enzima amilase foi menor nas fêmeas alimentadas sem óleo

de soja na dieta (D0) enquanto que a maltase apresentou maior atividade nos

peixes submetidos à dieta D4.

Verificou-se maior atividade de quimiotripsina nas fêmeas alimentadas com

a dieta contendo o maior nível de óleo testado (10%). A protease ácida do

estômago das fêmeas foi significativamente menor no tratamento D6 (6% de óleo

de soja).

A utilização de óleo de soja na dieta não interferiu (P>0,05) nos valores de

hemoglobina, número de eritrócitos, hematócrito, hemoglobina corpuscular média e

concentração de hemoglobina corpuscular média no sangue dos machos de jundiá

(Tabela 37).

Tabela 37. Parâmetros hematológicos em machos de jundiá alimentados com

dietas contendo diferentes níveis de óleo de soja

Óleo de soja (%)

0 2 4 6 8 10 dpr P

Eritrócitos 2,64 2,62 2,46 2,76 2,70 2,76 0,27

Hemoglobina (g/dL)

13,30

13,40

13,20

13,36

14,56

12,70

1,45

Hematócrito (%) 38,36

41,10

37,43

40,96

41,66

37,65

4,50

HCM 50,40

51,16

53,70

48,63

53,90

46,10

3,84

CHCM 35,00

32,63

35,30

32,90

34,90

33,70

2,37

NS: não significativo (P>0,05).

HCM: hemoglobina corpuscular média;

CHCM: concentração de hemoglobina corpuscular média.

A quantidade de plaquetas foi maior nos machos de jundiá alimentados com

a dieta contendo 6% de óleo de soja (Figura 27). Para esta variável, verificou-se

efeito quadrático (P=0,05).

O volume corpuscular médio dos peixes foi inferior nos machos de jundiás

alimentados com a dieta D10, diferindo significativamente dos demais tratamentos

(Figura 28).

109

Figura 27. Quantidade de plaquetas em machos de jundiá

alimentados com dietas contendo óleo de soja.

Figura 28. Valores de volume corpuscular médio (VCM) em machos de

jundiá alimentados com dietas contendo óleo de soja.

110

Figura 29. Quantidade de proteína no fígado e rim de fêmeas de

jundiá alimentadas com dietas contendo óleo de soja.

No experimento com as fêmeas de jundiá, observou-se efeito linear positivo

na quantidade de proteína (mg proteína/mg tecido) no fígado (Y=143,09 + 3,66X,

=0,56, P<0,0001) e nos rins (Y=120,15 + 4,18X, r

=0,45, P<0,0001), conforme

figura 29.

As fêmeas de jundiá alimentadas com a dieta D6 apresentaram maior

quantidade de aminoácidos totais no fígado enquanto que as com a D8 tiveram

mais nos rins (Tabela 38). A quantidade de amônia nestes órgãos também mostrou

efeito significativo da inclusão de óleo de soja na dieta, onde as fêmeas dos

tratamentos D4 e D10 apresentaram maiores valores no fígado e nos rins,

respectivamente.

Os valores de glicose encontrados nas fêmeas de jundiá apresentaram

efeito significativo de ordem 3 (função cúbica) tanto no fígado (Y=74,20 – 18,05X +

5,73X

– 0,38X

, r

=0,86) quanto nos rins (Y=3,52 + 1,90X – 0,42X

+ 0,03X

=0,61).

O glicogênio hepático das fêmeas apresentou efeito linear crescente

(Y=170,33 + 13,53X, r

=0,70). A quantidade de lactato no fígado (Tabela 38)

apresentou tendência quadrática (Y=6,39 + 0,26X – 0,03X

, r

=0,47) e nos rins

efeito cúbico (Y=5,88 + 1,36X – 0,23X

+ 0,01X

, r

= 0,53).

111

Tabela 38. Metabólitos em fêmeas de jundiá alimentados com dietas

contendo níveis de óleo de soja

Óleo de soja (%)

0 2 4 6 8 10 dpr P

Aminoácidos totais (µmol/g tec)

Fígado

54,38 55,18 57,98 62,14 40,70 56,48 8,29 **

Rim 14,85 15,17 18,42 14,86 20,93 15,28 2,61 **

Amônia (µg/g tec)

Fígado

63,61 55,26 65,53 57,91 42,09 56,25 7,36 ***

Rim 32,91 39,13 38,90 28,22 37,60 42,04 4,86 **

Glicose (µmol/g tec)

Fígado

73,31 60,22 68,99 84,89 104,21

81,23 5,36 ***

Rim 3,82 4,84 7,01 5,69 4,75 7,25 0,60 ***

Glicogênio (µmol/g tec)

Fígado

177,28

189,62

241,13

237,23

253,51

329,18

27,29

Rim 28,59 34,05 28,63 27,05 30,14 30,49 4,79 NS

Lactato (µmol/g tec)

Fígado

6,71 6,36 6,28 7,53 5,86 5,05 0,37 ***

Rim 5,81 8,14 7,46 8,85 7,07 7,43 0,53 ***

NS: não significativo (P>0,05).

*P<0,05; **P<0,01; ***P<0,0001.

A quantidade de colesterol plasmático nas fêmeas de jundiá (Figura 30)

aumentou (P<0,05) de acordo com o incremento de óleo de soja na dieta (Y=147,11

+ 6,96X, r

=0,45). Nos machos, verificou-se efeito quadrático (Y=175,25 - 16,62X +

1,79X

, r

=0,38, P<0,05).

Os machos de jundiá tiveram aumento significativo na quantidade de

triglicerídeos plasmáticos (Y=167,00 + 9,3X, r

=0,43) com a adição de óleo de soja

como fonte lipídica (Figura 31). Nas fêmeas, os dados obtidos mostraram efeito

quadrático (Y=160,95 + 39,78X – 2,01X

, r

=0,43).

112

Figura 30. Quantidade de colesterol total no plasma de jundiás

alimentados com dietas contendo óleo de soja.

Figura 31. Quantidade de triglicerídeos plasmáticos em jundiás

alimentados com dietas contendo óleo de soja.

113

A quantidade de hemoglobina nas fêmeas (Figura 32) apresentou efeito

linear crescente (P=0,02). Pela equação calculada para esta variável, espera-se um

aumento de 0,53 g/dL de hemoglobina a cada 1% a mais de óleo de soja

adicionado na dieta.

Os valores de hematócrito das fêmeas mostraram efeito quadrático, onde

os peixes alimentados com a dieta D8 apresentaram maiores valores (Figura 33).

Figura 32. Quantidade de hemoglobina em fêmeas de jundiá

alimentadas com dietas contendo óleo de soja.

Tabela 39. Parâmetros hematológicos em fêmeas de jundiá alimentadas

com dietas contendo níveis de óleo de soja

Óleo de soja (%)

0 2 4 6 8 10 dpr P

Eritrócitos

1,49 1,43 1,73 2,15 2,26 1,69 0,49

VCM 154,03

156,40

155,86

155,90

158,90

164,96

6,55

HCM

57,20 54,53 57,06 54,10 61,76 66,43 5,19

0,02

CHCM

37,13 35,00 36,63 34,45 38,70 40,26 2,37

0,03

Plaquetas

23,00 25,33 27,33 24,00 21,00 22,66 5,32

Y=57,26 – 1,42X + 0,23X

, r

=0,43.

Y=36,99 – 0,82X +0,11X

, r

=0,40.

114

Figura 33. Valores de hematócrito em fêmeas de jundiá

alimentadas com dietas contendo óleo de soja.

Não se verificaram efeitos da utilização de óleo de soja na dieta sobre a

contagem total de eritrócitos, o volume corpuscular médio (VCM) e a quantidade de

plaquetas no sangue das fêmeas de jundiá (Tabela 39).

Os valores de hemoglobina corpuscular média (HCM) e a concentração de

de hemoglobina corpuscular média (CHCM) foram maiores nas fêmeas alimentadas

com dietas contendo 10% de óleo de soja (Tabela 39).

115

5.4 Discussão

Os melhores resultados obtidos para peso nos machos (8% de óleo de soja)

e fêmeas de jundiá (10% de óleo soja) evidenciam que o aumento do nível lipídico

da dieta proporciona efeito poupador de proteína (protein sparring effect),

potencializando este nutriente para o ganho em peso dos peixes. Este efeito é muito

conhecido na nutrição de peixes, inclusive para o jundiá (Meyer & Fracalossi, 2004;

Salhi et al., 2004; Kim & Lee, 2005).

Para o surubim (Pseudoplatystoma coruscans), a adição de 12% de óleo de

soja na dieta proporciona excelente desempenho para juvenis desta espécie, com

melhora na deposição de proteína corporal (Martino et al., 2002a). Para alevinos de

carpa comum, a utilização de 13% de inclusão de óleo de soja na dieta não

compromete o desempenho dos peixes (Cho et al., 2001).

Além disso, a criação do jundiá com separação por sexo proposta neste

estudo evidencia que as exigências nutricionais deste peixe são diferenciadas. Isto

mostra que a utilização de dieta única na engorda do jundiá para ambos os sexos

pode resultar em menor aproveitameto do alimento e redução no desempenho.

Na parte lipídica da dieta, está comprovado que para a maioria das espécies

de peixes em cultivo a utilização de óleos vegetais (soja, canola, arroz, linhaça) não

compromete o crescimento dos peixes, entretanto modifica a composição dos ácidos

graxos corporais (Regost et al. 2003a, b). Um incremento no nível de lipídio aumenta

a retenção de energia, potencializando a utilização da proteína para crescimento

(Kaushik & Oliva-Teles, 1985). Este efeito poupador de proteína resulta da

combinação das fontes de energia não-protéica do alimento. Para o jundiá, Meyer &

Fracalossi (2004) observaram este efeito, demonstrando que a exigência protéica de

alevinos desta espécie varia de acordo com a concentração energética da dieta.

Para o surubim, a alternância de fontes lipídicas como o óleo de soja, de

milho, de linhaça e banha suína não afeta o crescimento dos peixes (Martino et al.,

2002b). Juvenis de jundiá alimentados com 5% de inclusão de óleo de canola, de

fígado de bacalhau ou banha suína na dieta não diferem no ganho em peso (Melo et

al., 2002). Para os bagres Clarias gariepinus e Heterobranchus longifilis, a utilização

de óleos vegetais proporciona bom desempenho produtivo (Ng et al., 2003).

A partir destes resultados de pesquisa, devem-se levar em consideração,

além do desempenho, outras características no peixe que possam diferenciar a

116

utilização de uma ou outra fonte. Entre elas estão as alterações na composição

corporal, incluindo o perfil lipídico corporal e dos filés.

Uma grande demanda na nutrição do jundiá é estabelecer níveis lipídicos

adequados nas diferentes fases de criação, de forma a evitar a utilização de proteína

para fins energéticos. Em relação à quantidade de alimento oferecido, deve-se

ressaltar que a fixação de uma quantidade diária evita que o peixe tente compensar

a demanda energética quando alimentado com rações contendo baixa energia.

Neste caso, a proteína é destinada a atender esta necessidade, diminuindo a

eficiência alimentar.

A energia do alimento afeta o consumo e a deposição lipídica na carcaça

(Kaushik & Médale, 1994). Peixes alimentados com níveis mais elevados de lipídios

diminuem o consumo voluntário de ração (Brauge et al., 1994; Skalli et al., 2004).

Isto foi observado para as fêmeas de jundiá, que reduziram o consumo diário

aparente (CDA) de alimento com o aumento do óleo de soja na dieta. Ao contrário,

os machos não modificaram o consumo em função do aumento do nível energético

da dieta.

Os valores de consumo diário de alimento observados nos experimentos

com jundiás (figura 31), entre 3 e 5% do peso vivo por dia, são similares aos

encontrados para o bagre africano alimentados com dietas similares, entre 3,8 a

4,0% PV (Fagbenro & Davies, 2001).

A proteína e os lipídios são nutrientes importantes na mobilização e

formação de tecido corporal, sendo os principais responsáveis pelo crescimento e

ganho em peso nos peixes (Cyrino et al., 2000). A relação proteína/energia (P/E) em

dietas para peixes é de grande importância.

Se a relação P/E está desbalanceada, com proteína em excesso, esta é

catabolizada e usada como fonte de energia para as necessidades de mantença

antes do crescimento (NRC, 1993). Ao contrário, se houver excesso de energia, o

consumo de alimento e a proteína ingerida podem ser limitados. Na prática, uma

dieta desbalanceada ocasiona perda no resultado econômico da criação, pela

diminuição da eficiência alimentar. Para o jundiá, esta relação deverá ser estuda em

diferentes fases.

Para alevinos de jundiá, a melhor relação entre energia e proteína é de 10,2

kcal EM /g proteína (Lopes et al., 2006). Para os machos de jundiá, a relação

observada na dieta que proporcionou maior desempenho foi de 9,45 kcal ED / g

117

proteína e para as fêmeas foi de 11,94 kcal ED / g proteína. Essa diferença é

atribuída a maior idade dos peixes desse estudo e também pela dificuldade de se

estimar a energia metabolizável.

O aumento do nível lipídico melhora também a taxa de eficiência protéica e o

crescimento (Takeuchi et al., 1991; Vergara et al., 1999; Meyer & Fracalossi, 2004;

Skalli et al., 2004). No presente estudo, observou-se que para o jundiá de ambos os

sexos os maiores níveis de lipídios da dieta proporcionaram maior crescimento. Para

peixes marinhos carnívoros como o “Red drum” (Sciaenops ocellatus), a elevação

dos teores de proteína e energia da dieta proporciona efeitos positivos nas taxas de

crescimento, retenção de nutrientes e na qualidade da água (Thoman et al., 1999).

A relação dos valores de conversão alimentar aparente de peixes com o

nível energético da dieta foi demonstrada por vários autores (Hassan et al., 1995;

Jantrarotai et al. 1998; Yamamoto et al., 2000). No presente estudo os valores de

conversão alimentar dos jundiás foram reduzidos de acordo com o incremento da

quantidade de óleo de soja na dieta, para machos e fêmeas.

Existe relação inversa entre gordura visceral e o índice víscero-somático

(peso vísceras/peso corporal), principalmente em níveis elevados de lipídios da

dieta. O fígado é o órgão que mais reflete as alterações dietárias. Esta compreensão

do metabolismo energético é fundamental na avaliação do desempenho, que deve

ser avaliada pela composição do ganho (proteínas, lipídios) e não só pelo ganho em

peso (Jobling et al., 1998).

Em peixes jovens, o crescimento da carcaça é superior às outras partes do

corpo, onde os órgãos internos, com exceção do lipídio visceral, tendem a aumentar

de peso em pequenas quantidades (Shearer, 1994). O órgão que pode ser alterado

via composição da dieta, é o fígado. No presente estudo, observou-se valores de

índice digestivo-somático (IHS) entre 1,2 e 1,6% para fêmeas e 1,0 a 1,3% para

machos de jundiá, sem efeito dos níveis de óleo de soja testados. Para o “turbot”

(Psetta maxima), observou-se valor de IHS de 1,8% para peixes alimentados com

dieta contendo óleo de soja (Regost et al., 2003a). Segundo estes autores, o

aumento do nível de lipídios da dieta aumenta o IHS dos peixes. Esperava-se este

resultado nos experimentos com machos e fêmeas de jundiá, o que não foi

verificado.

O excesso de gordura visceral diminui o rendimento de carcaça nos peixes.

Maiores quantidades de lipídios na ração provocam aumento no peso das vísceras,

118

diminuindo o rendimento de carcaça (Mathis et al., 2003). No presente estudo, a

gordura intraperitoneal aumentou de acordo com o aumento do óleo de soja na

dieta.

Lazzari et al. (2006) observaram valores de rendimento de carcaça para o

jundiá de 77-82% e de 34-40% para rendimento de filé. Estas variações são

atribuídas à composição do alimento, sendo o volume visceral o fator de maior

influência. A fase fisiológica também afeta o rendimento de cortes do jundiá. Fêmeas

adultas desta espécie apresentam menor rendimento de carcaça em detrimento aos

machos, pela formação de ovários (Carneiro et al., 2003). O rendimento de carcaça

verificados nos jundiás em ambos os experimentos demonstrou elevados valores

(acima de 80%), o que mostra a grande capacidade de produção de carne desta

espécie.

É bem conhecido que o crescimento e a composição química dos peixes são

influenciados pela manipulação da composição da dieta e dos regimes alimentares

(Jobling et al., 1998). Ao compararmos a composição corporal de peixes da mesma

espécie deve-se considerar a influência do tamanho corporal, pois o crescimento

tecidual é diferenciado de acordo com a fase de vida (Shearer, 1994).

Nos machos, observou-se um aumento significativo dos lipídios corporais,

sem influência no filé. Já nas fêmeas os lipídios corporais não foram modificados

pela inclusão de níveis de óleo de soja na dieta, com deposição maior de lipídios nos

filés dos peixes alimentados com a dieta D0 (sem óleo). Para bagres, espera-se que

o aumento de lipídios dietários proporcione aumento proporcional na carcaça (Abdel-

Warith et al., 2001).

Segundo Jobling et al. (1998), peixes com maior idade e tamanho corporal

tendem a depositar mais lipídios. No presente estudo, como os peixes dos dois

experimentos possuíam a mesma idade, fica difícil estabelecer quais as verdadeiras

causas destas diferenças nos resultados obtidos. Uma das possíveis causas desse

resultado pode ser justificada pelo metabolismo e sua relação com o equilíbrio da

dieta. Entretanto, o ideal seria mensurar corretamente a partição dos nutrientes dos

peixes, o que na prática é mais difícil (Jobling et al., 1998).

O conteúdo de proteínas encontradas no jundiá varia de 12,5-14,5% em

juvenis e 17% em adultos, valores próximos aos encontrados em outros bagres

(18% no músculo) (Kubota & Emanuelli, 2004). Como ocorre em quase todas as

119

espécies de peixe, o jundiá apresenta teores de lipídios variáveis em função do tipo

de dieta, em torno de 2,5 até 5,7%.

Jundiás alimentados com 5% de óleo de canola na dieta apresentaram

13,2% de proteína corporal e 3,8% de extrato etéreo (Melo et al., 2002). Os valores

de proteína corporal dos peixes submetidos a dietas com óleo de canola

proporcionaram maior acúmulo de proteína corporal do que peixes alimentados com

óleo de fígado de bacalhau e banha suína.

Os peixes dos presentes experimentos com machos e fêmeas de jundiás

apresentaram uma variação entre 17-18% de proteína e 6-12% de lipídios. Estas

diferenças de valores podem ser atribuídas ao tamanho e idade dos peixes, além da

composição da dieta.

Altas taxas de lipídios na dieta, além da diminuição da conversão alimentar,

aumentam a quantidade de gordura no organismo, principalmente nas vísceras.

Pelas altas taxas de oxidação, o excesso de lipídios pode afetar a saúde dos peixes

e provocar odores indesejáveis ao pescado (Chaiyapechara et al., 2003). A oxidação

de lipídios é um sério problema na qualidade dos filés, evidente após alguns dias de

conservação (Watanabe et al., 1996).

Muitos óleos vegetais são considerados fontes lipídicas alternativas ao óleo

de peixe em dietas para peixes de água doce, podendo ser utilizados nas dietas sem

afetar o crescimento e a conversão alimentar (Caballero et al., 2002). Estas fontes

lipídicas geralmente são ricas em ácidos graxos poliinsaturados (PUFAS),

notadamente o linoléico (18:2n – 6) e linolênico (18:3n – 3). Os peixes de água doce

podem converter estes AGE, por elongação e reações de desaturação dos

carbonos, para ácidos graxos de cadeia longa altamente insaturados, como o DHA

(docosahexaenóico - 22:6n – 3), EPA (eicosapentanóico - 20:5n – 3) e ARA

(araquidônico - 20:4n – 6), AGS essenciais para o crescimento dos peixes (Sargent

et al., 1995).

Na maioria das vezes, o perfil lipídico tecidual dos peixes reflete a

composição dietária em ácidos graxos (Martins et al., 2007). A utilização de óleos

vegetais não compromete o crescimento dos peixes, entretanto modifica a

composição em ácidos graxos corporais (Regost et al., 2003a).

O óleo de soja apresenta grande quantidade de ácidos graxos da série

ômega 6, enquanto que óleos de peixe, considerados fontes referenciais de

composição, apresentam maiores quantidades de ômega 3. Para a tilápia, dietas

120

contendo AGS n – 3 diminuem a capacidade lipogênica do fígado e gordura

corporal, reduz o catabolismo de aminoácidos e melhora a composição da carcaça

(Ribeiro et al., 2008).

O perfil lipídico (composição em ácidos graxos corporais e no filé) é

importante para avaliar a qualidade nutricional do pescado. Neste contexto, não só a

composição e a disponibilidade de AGS como o linolênico (18:3n – 3) e o linoléico

(18:2n – 6) são importantes, mas também seus produtos de elongação e

desaturação (Steffens, 1997).

A capacidade e os mecanismos de desaturação/elongação de precursores

como os AGS linolênico e linoléico são desconhecidos para o jundiá (Vargas et al.,

2008). Estes autores, em trabalhos com alevinos desta espécie mostram que o

jundiá apresenta alguma capacidade de desaturação e elongação, de forma a obter

AGS altamente insaturados.

Segundo a Organização Mundial da Saúde (OMS), o valor adequado para a

relação n – 3/n – 6 na dieta total deve ser igual ou superior a 0,25. Os resultados

obtidos nos filés de jundiás, observaram-se nos machos valores de 0,14 a 0,21 e

nas fêmeas de 0,16 a 0,21. Ou seja, nos tratamentos testados que obtiveram

maiores valores, com a simples ingestão deste peixe quase que completa a

necessidade diária para consumo humano.

Entretanto, deve-se ressaltar que a composição limitada em AGS do tipo

ômega 3 do óleo de soja. Uma alternativa para compensar este problema seria

adicionar alguma fonte de lipídios que contenha mais equilíbrio ou compense as

deficiências do óleo de soja. Dos óleos vegetais testados em dietas para peixes, o

que apresenta a melhor eficiência na qualidade de filés é o óleo de linhaça (Vargas

et al., 2008).

Os valores totais de AGS observados nos machos de jundiá (saturados= 34

a 37%; monoinsaturados= 38 a 40%; PUFAS=20 a 27%) são muito similares aos

valores encontrados por Matter et al. (2004) em filés de bagre africano alimentados

com dietas contendo 32% PB (saturados=37,5%; monoinsaturados=37,3%; PUFAS

=25,1%). Este nível protéico da dieta é muito próximo ao utilizado nas dietas

fornecidas aos machos de jundiá no terceiro experimento.

Para bagres, existe relação inversa entre a concentração lipídica e a

umidade da carne, principalmente em dietas com relação proteína/energia mais

121

extremas (alta energia, baixa proteína). O fígado apresenta maior teor lipídico e

deposição de glicogênio.

De nada adianta produzir peixe de maneira eficiente se a carne não for bem

aceita pelos consumidores. As propriedades sensoriais são decisivas para

determinar o interesse do consumidor e a demanda do mercado (Kubota &

Emanuelli, 2004). Pela grande diversidade de espécies de peixes, existem grandes

diferenças de composição. Em relação ao consumidor, a aceitabilidade e a

preferência pela carne de uma espécie se baseiam em 4 critérios: o odor, a textura,

a cor e o sabor (Alasalvar et al., 2001). Todos estes fatores podem ser alterados

pela via nutricional e constituem a explicação da satisfação do consumidor por

determinado produto.

Muitas vezes o sabor dos peixes selvagens (oriundos de rios e lagos

naturais) é mais aceito pelos consumidores. Esta diferença está atrelada à

composição do alimento nestes ambientes, onde ocorre abundância de fitoplâncton,

que é uma fonte riquíssima de ácidos graxos poliinsaturados (PUFAS),

proporcionando uma característica de gordura mais palatável (Steffens, 1997).

No presente estudo, não se verificou diferenças na preferência dos

consumidores em relação aos diferentes tratamentos, nos dois experimentos (para

machos e fêmeas). Estes resultados obtidos quanto à aceitabilidade podem também

estar atrelados com as limitações da metodologia empregada, por ser um painel

não-treinado.

Os métodos sensoriais, ao contrário dos não-sensoriais, proporcionam

melhor avaliação das características do pescado, pois as informações são

fidedignas do momento da análise (Alasalvar et al., 2001). Entretanto, com painel

não treinado, a subjetividade e individualidade são mais evidentes nos métodos.

Em salmonídeos, existe correlação positiva entre a composição química do

alimento e as características sensoriais (cor, sabor, odor, textura) do pescado

(Rasmussem et al., 2000). Além da composição centesimal, a composição em

aminoácidos, ácidos graxos e vitaminas afetam os atributos sensoriais do pescado

(Wagbo et al., 1993). Estes autores consideram que uma pequena variação na

composição química do pescado pode provocar grandes diferenças de preferência.

A quantidade e o tipo de lipídios empregados nas dietas é fator importante na

qualidade do pescado. A adição de óleos vegetais como o de soja não afeta as

características sensoriais dos filés de "Seabass" (Izquierdo et al., 2003). Entretanto,

122

níveis de 11% de óleo de soja podem provocar diminuição dos escores obtidos na

avaliação sensorial (Guillou et al., 1995).

Trabalhos com catfish demonstram que uma redução no lipídio dietário nos

últimos períodos de engorda (1-2 meses) pode melhorar sensivelmente a qualidade

e aceitabilidade do filé (Johnsen & Lioyd, 1992). Neste sentido, é necessário obter

mais informações sobre a aceitabilidade da carne do jundiá e sua relação com a

alimentação, sendo esta uma lacuna importante para implementar a valorização do

produto (filé).

A atividade enzimática dos jundiás foi fortemente afetada pela adição de óleo

de soja na dieta. Da mesma forma, observou-se elevação esperada de colesterol e

triglicerídeos plasmáticos de acordo com o aumento de óleo nas dietas.

Os parâmetros hematológicos foram superiores nos tratamentos com maior

inclusão de óleo na dieta. Com jundiás, são escassos os trabalhos que avaliem o

efeito da parte lipídica da dieta sobre o metabolismo. Melo et al. (2006) destaca que

o nível de proteína da dieta influencia no metabolismo do jundiá.

Para peixes, o aumento do lipídio da dieta provoca incremento dos

triglicerídeos (Regost et al., 2001). Esta relação foi observada tanto nas fêmeas

como nos machos de jundiá do presente estudo, evidenciando também a realização

de lipogênese. A elevação dos teores de glicose e glicogênio hepático pode indicar,

a utilização de gliconeogênese, um efeito poupador de proteína nos peixes

alimentados com maiores níveis de óleo de soja.

Deve-se ressaltar que os parâmetros de metabolismo são, antes da causa,

conseqüências das alterações de composição dietárias. Para o jundiá, em

experimentos futuros, deverão ser verificadas as exigências em ácidos graxos

essenciais na dieta nas diferentes fases de criação, de forma a potencializar a

utilização da proteína, resultando em maior crescimento e filé de maior qualidade

nutricional.

123

5.5 Conclusões

- Para machos de jundiá, recomenda-se a utilização de 8% de óleo de soja

na dieta, enquanto que para fêmeas o valor mínimo é de 10% de inclusão.

- A inclusão de até 10% de óleo de soja em dietas para machos e fêmeas

de jundiá não afeta a aceitabilidade dos filés.

- A adição de óleo de soja na dieta altera a atividade enzimática e os

parâmetros hematológicos de jundiás.

- A elevação da quantidade de óleo de soja na dieta de machos e fêmeas de

jundiá aumenta a quantidade de ácidos graxos poliinsaturados no filé.

124

6. DISCUSSÃO GERAL

Não é necessário enumerar os pontos positivos do jundiá como espécie de

peixe nativa para utilização na piscicultura brasileira. Para elaborar um consistente

pacote de produção deste peixe algumas questões devem ser mais bem estudadas.

Apesar do grande esforço na elaboração e condução de pesquisas com o jundiá, os

resultados existentes no que tange a nutrição são ainda incipientes. Destacam-se

principalmente estudos relativos às exigências nutricionais nas fases iniciais,

existindo uma demanda por trabalhos nas fases avançadas e, principalmente, em

diferentes sistemas criatórios como tanques escavados e tanques-rede.

Para o jundiá, antes mesmo de se pensar apenas na composição dos

ingredientes das dietas, deve-se estabelecer as exigências nutricionais para os

diferentes sistemas criatórios em cada fase. Pelos resultados obtidos neste estudo,

deve-se incluir o fator sexo como determinante na exigência desta espécie. O

próximo passo na nutrição do jundiá é determinar as exigências dietárias de

aminoácidos (AAE) e ácidos graxos essenciais (AGE), sendo estes componentes

extremamente limitantes para o crescimento. Exceto para o catfish americano

(Ictalurus punctatus), as informações existentes sobre as exigências nutricionais dos

outros bagres são limitadas (Wilson & Moreau, 1996).

A grande questão mundial na formulação de dietas para peixes é a

substituição da farinha e do óleo de peixe. A inclusão de fontes de origem animal

como a farinha de carne e ossos combinada com o farelo de soja vem

demonstrando ser uma boa alternativa para o jundiá (Lazzari et al., 2008). Uma

questão importante a ser pesquisada em futuros trabalhos com o jundiá é

estabelecer coeficientes de digestibilidade destas matérias-primas. A uniformidade

de composição é outro fator importante, principalmente em relação às farinhas de

origem animal.

Além das proteínas, os lipídios exercem função importante na alimentação

de peixes. O ingrediente mais utilizado mundialmente em dietas para atender as

exigências lipídicas dos peixes cultivados é o óleo de peixe, por possuir elevados

níveis de ácidos graxos essenciais, indispensáveis ao metabolismo e crescimento.

Entretanto, com a redução dos estoques pesqueiros e alto custo deste produto, têm

se buscado alternativas mais baratas e com maior disponibilidade que possam

substituir o ingrediente sem acarretar perda no desempenho dos peixes em cultivo.

125

A inclusão de fontes alternativas, notadamente as de origem vegetal (canola,

girassol, algodão), são alvos de estudos para a maioria das espécies de cultivo.

Entretanto, pelas limitações na quantidade de alguns aminoácidos essenciais, deve-

se suplementar com aminoácidos sintéticos, sendo esta outra demanda de estudos

para a espécie.

Associado com os fatores de desempenho, a relação custo/benefício dos

manejos nutricionais deve sempre ser considerada. Como critério inicial de avaliação

dos alimentos, a conversão alimentar sempre foi utilizada como fator principal.

Entretanto, a simples relação consumo/ganho em peso não é tão eficiente, pois não

se consegue diferenciar o ganho tecidual, notadamente o protéico e o lipídico.

Quando se fala em comercialização, a questão da densidade de estocagem

se torna importante. Dependendo do mercado, temos algumas variações no

tamanho ótimo para abate, que terão reflexo nas condições de criação que serão

necessárias para atingi-lo. A uniformidade do lote é outro fator importante,

principalmente em relação à padronização.

Se o mercado a ser atingido é a venda para pesque-pagues, o mais

importante é a biomassa total de peixes, e não o peso individual. Que DE deve ser

utilizada na criação do jundiá?

Pelos resultados obtidos no experimento, destaca-se que se o objetivo do

produtor é obter maior peso individual em menor tempo, recomenda-se utilizar a

menor DE testada (4,2 kg/m

). Se o objetivo for à venda em quantidades maiores por

área, pode-se então elevar a densidade, pois a uniformidade do lote não é afetada.

Deve-se ter claro que a modificação da densidade de criação varia em função das

condições criatórias, principalmente em relação à qualidade da água e composição

da dieta e sexo.

A validação dos resultados obtidos neste trabalho passa por uma escolha

criteriosa de ingredientes com boa qualidade para compor os alimentos e também

por peixes com bom potencial genético. Este é outro tema importantíssimo para

condução de pesquisas para a espécie. Padronizar o material genético é tão

importante quanto à qualidade do alimento e o manejo adequado de criação.

126

7. CONCLUSÕES GERAIS

- A densidade de estocagem de 4,2 kg/m

proporciona maior peso individual

em jundiás em sistemas de recirculação de água;

- O aumento da densidade de estocagem incrementa a quantidade de ácidos

graxos poliinsaturados em jundiás;

- Com mesma idade, as fêmeas de jundiá apresentam crescimento superior

aos machos;

- Para fêmeas de jundiá na fase de recria/engorda pode-se utilizar uma dieta

contendo 24% de PB com a inclusão de 10% de óleo de soja;

- Para machos de jundiá na fase de recria/engorda pode-se utilizar uma dieta

com 30% de PB com a inclusão de 8% de óleo de soja;

127

8. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

ABDEL-WARITH, A.A.; RUSSEL, P.M.; DAVIES, S.J. Inclusion of a commercial

poultry by-product meal as a protein replacement of fish meal in practical diets for

African catfish Clarias gariepinus (Burchell 1822). Aquaculture Research, v.32,

supl. 1, p.296-305, 2001.

ABIMORAD, E.G.; CARNEIRO, D.J.; URBINATI, E.C. Growth and metabolism of

pacu (Piaractus mesopotamicus Holmberg 1887) juveniles fed diets containing

different protein, lipid and carbohydrate levels. Aquaculture Research, v.38, p.36-

44, 2007.

ABNT. Associação Brasileira de Normas Técnicas. NBR 13170: teste de ordenação

em análise sensorial. Rio de Janeiro, 1994.

ALANÄRÄ, A.; BRÄNNÄS, E. Dominance in demand-feeding behavior in Arctic charr

and rainbow trout: the effect of stocking density. Journal of Fish Biology, v.48,

p.242-254, 1996.

ALASALVAR, C. et al. Freshness assessment of cultured sea bream (Sparus aurata)

by chemical, physical and sensory methods. Food Chemistry, v.72, p.33-40, 2001.

ALLAIN, S. et al. Enzymatic determination of total serum cholesterol. Clinical

Chemistry, v.20, p.470-475, 1974.

AOAC (Association of Official Analytical Chemists). Official Methods of Analysis of

AOAC, 16ª ed., Patricia Cunniff (editora), Washington, DC, 1141p., 1995.

APHA (American Public Health Association). Standard Methods for the

Examination of Water and Wastewater), 21ª ed., Eaton, A.D. et al. (Editores),

Washington, DC, 1368p., 2005.

AWWA (American Water Works Association). Processos simplificados para

exame e análise da água. São Paulo, 276p., 1970.

BAKER, R.F.; AYLES, G.B. The effects of varying density and loading level on the

growth of Arctic charr (Salvelinus alpinus) and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss).

World Aquaculture, v.21, p.58-63, 1990.

BARCELLOS, L.J.G.; SOUZA, S.M.G.; WOEHL, V.M. Estresse em peixes: fisiologia

da resposta ao estresse, causas e conseqüências (Revisão). Boletim do Instituto

de Pesca, v.26, p.99-111, 2000.

BARCELLOS, L.J.G. et al. Nursery rearing of jundiá, Rhamdia quelen (Quoy &

Gaimard) in cages: cage type, stocking density and stress response to confinement.

Aquaculture, v.232, p.383-394, 2004.

BARTON, B.A.; IWAMA, G.K. Physiological changes in fish from stress in

aquaculture wit emphasis on the response and effects of corticosteroids. Annual

Reviews of Fish Diseases, v.10, p.3-26, 1991.

128

BECHARA, J.A. et al. The effect of dietary protein level on pond water quality and

feed utilization efficiency of pacu Piaractus mesopotamicus (Holmberg, 1887).

Aquaculture Research, v.36, p.546-553, 2005.

BICUDO, A.J.A.; SADO, R.Y.; CYRINO, J.E.P. Growth and haematology of pacu,

Piaractus mesopotamicus, fed diets with varying protein to energy ratio. Aquaculture

Research, p.1-10, 2008.

BIDINOTTO, P.M.; SOUZA, R.H.S.; MORAES, G. Hepatic glycogen in eight tropical

freswater teleost fish: A procedure for field determinations of microsamples. Boletim

Técnico do CEPTA, v.10, p.53-60, 1998.

BLIGH, E.G.; DYER, W.J. A rapid method of total lipid extraction and purification.

Canadian Journal of Biochemistry and Physiology, v.37, n.8, p.911-917, 1959.

BORBA, M.R. et al. Growth, lipogenesis and body composition of piracanjuba

(Brycon orbignyanus) fingerlings fed different dietary protein and lipid concentrations.

Aquatic Living Resources, v.16, p.362-369, 2003.

BORGES, A. et al. Hematologic and serum biochemical values for jundiá (Rhamdia

quelen). Fish Physiology and Biochemistry, v.30, p.21-25, 2004.

BOSCARDIN, N.R. A produção aqüícola brasileira. p.27-72. In: OSTRENSKY, A.;

BORGHETTI, J.R.; SOTO, D. Aqüicultura no Brasil: O desafio é crescer.

SEAP/FAO, Brasília, DF, 2008, 276p.

BOUJARD, T.; LABBÉ, L.; AUPÉRIN, B. Feeding behavior, energy expenditure and

growth of rainbow trout in relation to stocking density and food accessibility.

Aquaculture Research, v.33, p.1233-1242, 2002.

BOUJARD, T.; LUQUET, P. Rythmes alimentaires et alimentation chez les Siluroidei.

Aquatic Living Resources, v.9, p.113-120, 1996.

BRADFORD, M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram

quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical

Biochemistry. v.72, p.248-254, 1976.

BRANDÃO, D.A. Profilaxia e doenças. In: BALDISSEROTTO, B. & RADÜNZ NETO,

J.: Criação do jundiá. Santa Maria: Ed. da UFSM, p.161-189, 2004.

BRANDÃO, F.R. et al. Densidade de estocagem de juvenis de tambaqui durante a

recria em tanques-rede. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.39, n.4, p.357-362,

2004.

BRAUGE, C.,; MÉDALE, F.; CORRAZE, G. Effect of dietary carbohydrate levels on

growth, body composition and glycaemia in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss,

reared in seawater. Aquaculture, v.123, p.109-120, 1994.

129

BRAUN, N. et al. Survival, growth and biochemical parameters of silver catfish,

Rhamdia quelen (Quoy & Gaimard, 1824), juveniles exposed to different dissolved

oxygen levels. Aquaculture Research, v.37, n.15, p.1524-1531, 2006.

CABALLERO, M.J. et al. Impact of different dietary lipid sources on growth, lipid

digestibility, tissue fatty acid composition and histology of rainbow trout,

Oncorhynchus mykiss. Aquaculture, v.214, p.253-271, 2002.

CAMARGO, S.O.; POUEY, J.L.; MARTINS, C. Parâmetros eritrocitários do jundiá

(Rhamdia quelen) submetido à dieta com diferentes níveis de proteína. Ciência

Rural, v.35, n.6, p.1406-1411, 2005.

CAMARGO, S.O.; POUEY, J.L.; VAZ, B.S. Efeito da salinidade nos parâmetros

hematológicos do jundiá (Rhamdia quelen – Quoy & Gaimard, 1824). Revista

Brasileira de Agrociência, v.12, n.4, p.453-460, 2006.

CARDOSO, A.P. et al. Criação de larvas de jundiá (Rhamdia quelen) alimentadas

com rações granuladas contendo fígados ou hidrolisados. Acta Scientiarum, v.26,

n.4, p.457-462, 2004.

CARNEIRO, P.C.F.; MIKOS, J.D.; BENHACK, F. Processamento: o jundiá como

matéria-prima. Panorama da Aqüicultura, v.13, n.78, p.17-21, 2003.

CAVERO, B.A.S. et al. Efeito da densidade de estocagem na homogeneidade do

crescimento de juvenis de pirarucu em ambiente confinado. Pesquisa

Agropecuária Brasileira, v.38, p.103-107, 2003.

CHAIYAPECHARA, S. et al. Fish performance, fillet characteristics, and health

assessment index of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed diets containing

adequate and high concentrations of lipid and vitamin E. Aquaculture, v.219, p.715-

738, 2003.

CHO, S.H.; JO, J.Y.; KIM, D.S. Effects of variable feed allowance with constant

energy and ratio of energy to protein in a diet for constant protein input on the growth

of common carp Cyprinus carpio L. Aquaculture Research, v.32, p.349-356, 2001.

COLDEBELLA, I.; RADÜNZ NETO, J. Farelo de soja na alimentação de alevinos de

jundiá (Rhamdia quelen). Ciência Rural, v.32, n.3, p.499-503, 2002.

CORRÊA, C.F. et al. Responses of digestive enzymes of tambaqui (Colossoma

macropomum) to dietary cornstarch changes and metabolic inferences.

Comparative Biochemistry and Physiology, A, v.147, p.857-862, 2007.

CRESTANI, M. et al. Effects of clomazone herbicide on hematological and some

parameters of protein and carbohydrate metabolism of silver catfish Rhamdia quelen.

Ecotoxicology and Environmental Safety, v.65, p.48-55, 2006.

CRUZ, E.M.; RIDHA, M. Preliminary study on the production of the tilapia,

Oreochromis spilurus (Gunther), cultured in sea water cages. Aquaculture Fisheries

Management, v.20, p.381-388, 1989.

130

CYRINO, J.E.P.; PORTZ, L.; MARTINO, R.C. Retenção de proteína e energia em

juvenis de black bass Micropterus salmoides. Scientia Agrícola, v.57, n.4, p.609-

616, 2000.

DE SILVA, S.S.; ANDERSON, T.A. Fish Nutrition in Aquaculture. Chapman & Hall,

London. 319p. 1995.

FAGBENRO, O.A.; DAVIES, S.J. Use of soybean flour (dehulled, solvent-extracted

soybean) as a fish meal substitute in practical diets for African catfish, Clarias

gariepinus (Burchell 1822): growth, feed utilization and digestibility. Journal Applied

Ichtyology, v.17, p.64-69, 2001.

FRIEDEWALD, W.T.; LEVY R.I.; FREDRICKSON D.S. Estimation of the

concentration of low-density lipoprotein cholesterol in plasma, without the use of

preparative ultracentrifuge. Clinical Chemistry, v.18, p.499-502, 1972.

FRIES, J. Análisis de trazas: métodos fotométricos comprobados. Darmstadt,

Ed. Merck, 184p. 1971.

GOMES, L.C.; BALDISSEROTTO, B.; SENHORINI, J.A. Effect of stocking density on

water quality, survival, and growth of larvae of matrinxã, Brycon cephalus

(Characidae), in ponds. Aquaculture, v.183, p.73-81, 2000a.

GOMES, L.C.; et al. Biologia do jundiá Rhamdia quelen (Teleostei, Pimelodidae).

Ciência Rural, v.30, n.1, p.179-185, 2000b.

GRAND, T.C.; GRANT, J.W.A. Spatial predictability of food influences its

monopolisation and defense by juvenile convict cichlids. Animal Behavior, v.47,

p.91-100, 1994.

GREENE, D.H.S.; SELIVONCHICK, D.P. Effects of dietary vegetable, animal and

marine lipids on muscle lipid and hematology of rainbow trout (Oncorhynchus

mykiss). Aquaculture, v.89, p.165-182, 1990.

GUILLOU, A. et al. Effects of dietary vegetable and marine lipid on growth, muscle

fatty acid composition and organoleptic quality of flesh of brrok charr (Salvelinus

fontinalis). Aquaculture, v.136, p.351-362, 1995.

HARPAZ, S.; JIANG, H.; SKLAN, D. Evaluation of silver perch (Bidyanus bidyanus,

Mitchell) nutritional requirements during grow-out with high and low protein diets at

two feeding levels. Aquaculture Research, v.32, p.57-64, 2001.

HARROWER, J.R.; BROWN, C.H. Blood lactic acid. A micromethod adapted to field

collection of microliter samples. Journal of Applied Physiolgy, v.32, n.5, p.224-228,

1972.

HARTMAN, L.; LAGO, B.C.N. A rapid preparation of fatty methyl esters from lipids.

Lab. Pract., v.22, p.475-477, 1973.

131

HASSAN, M.A. et al. Dietary energy and protein interaction – an approach to

optimizing energy:protein ratio in Indian major carp, Cirrhinus mrigala (Hamilton)

fingerling. Jornal de Aquacultura Tropical, v.10, p.183-191, 1995.

HEDRICK, R.L.; POPMA, T.J.; DAVIS, D.A. Pond production and fatty acid profiles of

the fillets of Channel catfish reared on diets with different protein sources. North

American Journal of Aquaculture, v.67, p.304-311, 2005.

HEMRE, G.I. et al. Starch as an energy source on feed for cod (Gadus norhua):

Digestibilityand retention. Aquaculture, v.80, p.261-270, 1989.

HIDALGO, M.C.; UREA, E.; SANZ, A. Comparative study of digestive enzymes in

fish with different nutritional habits: Proteolytic and amylase activities. Aquaculture,

v.170, p.267-283, 1999.

HUMMEL, B.C.W. A modified spectrophotometric determination of chymottypsin,

trypsin, and thrombin. Canadian Journal Biochemistry Physiology, v.37, n.12,

p.1393-1399, 1959.

HUNG, L.T. et al. Comparison of dietary protein and energy utilization in three Asian

catfishes (Pangasius bocourti, P. hypophthalmus and P. djambal). Aquaculture

Nutrition, v.10, p.317-326, 2004.

IGUCHI, K. et al. The influence of rearing density on stress response and disease

susceptibility of ayu (Plecoglossus altivelis). Aquaculture, v.202, p.515-523, 2003.

INSTITUTO ADOLFO LUTZ. Normas analíticas do Instituto Adolfo Lutz. V.1 –

Métodos químicos e físicos para análises de alimentos. São Paulo, 1985. 368p.

IRWIN, S.; O'HALLORAN, J.O.; FITZGERALD, R.D. Stocking density, growth and

growth variation in juvenile turbot, Scophthalmus maximus (Rafinesque).

Aquaculture, v.178, p.77-88, 1999.

IZQUIERDO, M.S. et al. Dietary lipid sources for seabream and seabass: growth

performance, tissue composition and flesh quality. Aquaculture Nutrition, v.9,

p.397-407, 2003.

JANTRAROTAI, W. et al. Protein and energy levels for maximum growth, diet

utilization, yield of edible flesh and protein sparing of hybrid Clarias catfish (Clarias

macrocephalus X Clarias gariepinus). Journal of the World Aquaculture Society,

v.29, p.281-289, 1998.

JOBLING, M.; KOSKELA, J.; SAVOLAINEN, R. Influence of dietary fat level and

increased adiposity on growth and fat deposition in rainbow trout, Oncorhynchus

mykiss (Walbaum). Aquaculture Research, v.29, p.601-607, 1998.

JOHNSEN, P.B.; LLOYD, S.W. Influence of fat content on uptake and depuration of

the off-flavor 2-methyl-isoborneol by channel catfish (Ictalurus punctatus). Canadian

Journal of Fish Aquatic Sciences, v.49, p.2406-2411, 1992.

132

KAUSHIK, S.J.; OLIVA-TELES, A. effect of digestible energy on nitrogen and energy

balance in rainbow trout. Aquaculture, v.50, p.89-101, 1985.

KAUSHIK, S.J.; MÉDALE, F. Energy requirements, utilization and dietary supply to

salmonids. Aquaculture, v.124, p.81-97, 1994.

KIM, L.O.; LEE, S.M. Effects of the dietary protein and lipid levels on growth and

body composition of bagrid catfish, Pseudobagrus fulvidraco. Aquaculture, v.243,

p.323-329, 2005.

KLINGER, R.C.; BLAZER, V.S.; ECHEVARRIA, C. Effects of dietary lipid on the

hematology of channel catfish, Ictalurus punctatus. Aquaculture, v.147, p.225-233,

1996.

KUBOTA, E.; EMANUELLI, T. 2004. Processamento do pescado. In:

BALDISSEROTTO, B.; RADÜNZ NETO, J. Criação de jundiá, Santa Maria, Ed. da

UFSM, 232p.

LAZZARI, R. et al. Efeito da freqüência de arraçoamento e da troca do tamanho de

partícula alimentar no desenvolvimento de pós-larvas de jundiá (Rhamdia quelen).

Revista Brasileira de Agrociência, v.10, n.2, p.231-234, 2004.

LAZZARI, R. et al. Diferentes fontes protéicas para a alimentação do jundiá

(Rhamdia quelen). Ciência Rural, v.36, n.1, p.240-246, 2006.

LAZZARI, R. et al. Desempenho e composição dos filés de jundiás (Rhamdia

quelen) submetidos a diferentes dietas na fase de recria. Arquivo Brasileiro de

Medicina Veterinária e Zootecnia, v.60, n.2, p.477-484, 2008.

LI, M.; LOVELL, R.T. Growth, feed efficiency and body composition of second- and

third-year channel catfish fed various concentrations of dietary protein to satiety in

production ponds. Aquaculture, v.103, p.153-163, 1992.

LI, M.H. et al. Effect of dietary protein concentration and stocking density on

production characteristics of pond-raised Channel catfish Ictalurus punctatus.

Journal of the World Aquaculture Society, v.34, n.2, p.147-155, 2003.

LIM, P.K.; BOEY, P.L.; NG, W.K. Dietary palm oil level affects growth performance,

protein retention and tissue vitamin E concentration of African catfish Clarias

gariepinus. Aquaculture, v.202, p.101-112, 2001.

LIMA, L.C.; RIBEIRO, L.P. Effects of temperature on performance characteristics and

the cortisol stress response of surubim Pseudoplatystoma sp. Journal of the World

Aquaculture Society, v.37, n.1, p.89-95, 2006.

LOPES, P.R.S. et al. Desempenho de alevinos de jundiá Rhamdia quelen

alimentados com diferentes níveis de energia na dieta. Biodiversidade Pampeana,

v.4, p.32-37, 2006.

133

LOSEKANN, M.E. et al. Alimentação do jundiá com dietas contendo óleos de arroz,

canola ou soja. Ciência Rural, v.38, n.1, p.225-230, 2008.

LOWRY, D.H. et al. Protein measurement with folin phenol reagent. J. Biol. Chem.

v.193, p.265-275, 1951.

LUNDSTEDT, L.M.; MELO, J.F.B.; MORAES, G. Digestive enzymes and metabolic

profile of Pseudoplatystoma corruscans (Teleostei:Siluriformes) in response to diet

composition. Comparative Biochemistry and Physiology Part B, v.137, p. 331-

339. 2004.

MARTINO, R.C. et al. Effect of dietary lipid level on nutritional performance of the

surubim, Pseudoplatystoma coruscans. Aquaculture, v.209, p.209-218, 2002a.

MARTINO, R.C. et al. Performance and fatty acid composition of surubim

(Pseudoplatystoma coruscans) fed diets with animal and plant lipids. Aquaculture,

v.209, p.233-246, 2002b.

MARTINS, D.A.; VALENTE, L.M.P.; LALL, S.P. Effects of dietary lipid level on growth

and lipid utilization by juvenile Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus, L.).

Aquaculture, v.263, p.150-158, 2007.

MATHIS, N.; FEIDT, C.; BRUN-BELLUT, J. Influence of protein/energy ratio on

carcass quality during the growing period of Eurasian perch (Perca fluviatilis).

Aquaculture, v.217, p.453-464, 2003.

MATTER, F.; PEGANOVA, S.; EDER, K. Lipid concentrations of fillets, liver, plasma

and lipoproteins of African catfish, Clarias gariepinus (Burchell 1822), fed diets with

varying protein concentrations. Journal Animal Physiology and Animal Nutrition,

v.88, p.275-287, 2004.

MELO, J.F.B. et al. Desenvolvimento e composição corporal de alevinos de jundiá

(Rhamdia quelen) alimentados com dietas contendo diferentes fontes de lipídios.

Ciência Rural, v.32, n.2, p.323-327, 2002.

MELO, J.F.B. et al. Efeito do conteúdo de proteína na dieta sobre os parâmetros

hematológicos e metabólicos do bagre sul americano Rhamdia quelen. Revista

Ciência Agroambiental, v.1, n.1, p.43-51, 2006a.

MELO, J.F.B. et al. Effects of dietary levels of protein on nitrogenous metabolism of

Rhamdia quelen (Teleostei:Pimelodidae). Comparative Biochemistry and

Physiology, A, v.145, p.181-187, 2006b.

MEYER, G.; FRACALOSSI, D.M. Estimation of jundiá (Rhamdia quelen) dietary

amino acid requirements based on muscle amino acid composition. Scientia

Agrícola, v.62, n.4, p.401-405, 2005.

MEYER, G.; FRACALOSSI, D.M. Protein requirement of jundia fingerlings, Rhamdia

quelen, at two dietary energy concentrations. Aquaculture, v.240, p.331-343, 2004.

134

MOLNÁR, T. et al. The effect of initial stocking density on growth and survival of pike-

perch fingerlings reared under intensive conditions. Aquaculture International, v.12,

p.181-189, 2004.

MONTERO, D. et al. High stocking density produces crowding stress altering some

physiological and biochemical parameters in gilthead seabream, Sparus aurata,

juveniles. Fish Physiology and Biochemistry, v.20, p.53-60, 1999.

MONTES-GIRAO, P.; FRACALOSSI, D.M. Dietary lysine requirement as basis to

estimate the essential dietary amino acid profile for jundiá, Rhamdia quelen. Journal

of the World Aquaculture Society, v.37, n.4, p.388-396, 2006.

NANKERVIS, L.; MATTHEWS, S.J.; APPLEFORD, P. Effect of dietary nonprotein

energy source on growth, nutrient retention and circulating insulin-like growth factor I

and triiodothyronine levels in juvenile barramundi, Lates calcarifer. Aquaculture,

v.191, p.323-335, 2000.

NG., W.K.; LIM, P.K.; BOEY, P.L. Dietary lipid palm oil source affects growth, fatty

acid composition and muscle α-tocopherol concentration of African catfish, Clarias

gariepinus. Aquaculture, 215, p.229-243, 2003.

NRC – National Research Council, Nutrients requirements of fish. National

Academy Press. 114 p., 1993.

OSTRENSKY, A.; BORGHETTI, J.R.; SOTO, D. Aqüicultura no Brasil: O desafio é

crescer. SEAP/FAO, Brasília, DF, 2008, 276p.

OUATTARA, N.I. et al. Aquaculture potential of the black-chinned tilapia,

Sarotherodon melanotheron (Cichlidae). Comparative study of the effect of stocking

density on growth performance of landlocked and natural populations under cage

culture conditions in Lake Ayame. Aquaculture Research, v.34, p.1223-1229, 2003.

PARK, J.T.; JOHNSON, M.J. Submicro determination of glucose. Journal Biological

Chemistry, v.249, p.149-151, 1949.

PEDRON, F.A. et al. Cultivo de jundiás alimentados com dietas com casca de soja

ou de algodão. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.43, n.1, p.93-98, 2008.

PETIT, G., BEAUCHAD, M., BUISSON, B. Density effects on food intake and growth

of largemouth bass (Micropterus salmoides). Aquaculture Research, v.32, p.492-

495, 2001.

PIAIA, R.; BALDISSEROTTO, B. Densidade de estocagem e crescimento de

alevinos de jundiá Rhamdia quelen (Quoy & Gaimard, 1824). Ciência Rural, v.30,

p.509-513, 2000.

PIAIA, R.; RADÜNZ NETO, J. Avaliação de diferentes fontes protéicas sobre o

desempenho inicial de larvas do jundiá Rhamdia quelen. Ciência Rural, v.27, n.2,

p.319-323, 1997.

135

PICKERING, A.D. Growth and stress in fish production. Aquaculture, v.111, p.51-

63, 1993.

PICKERING, A.D.; POTTINGER, T.G. Crowding causes prolonged leucopenia in

salmonid fish, despite interrenal acclimatation. Journal of Fish Biology, v.30, p.701-

712, 1987.

PIEDRAS, S.R.N.; POUEY, J.L.O.F.; MORAES, P.R.R. Resposta de alevinos de

jundiá (Rhamdia sp.) alimentados com diferentes níveis de proteína bruta e energia

digestível. Revista Brasileira de Agrociência, v.12, n.2, p.207-220, 2006.

PROCARIONE, L.S.; BARRY, T.P.; MALISON, J.A. Effects of high rearing density

and loading rates on the growth and stress responses of juvenile rainbow trout.

North American Journal of Aquaculture, v.61, p.91-96, 1999.

RADÜNZ NETO, J. Manejo alimentar – Nutrição. In: BALDISSEROTTO, B.,

RADÜNZ NETO, J. Criação de jundiá, Santa Maria: Ed. da UFSM, p.143-160, 232p.

2004.

RADÜNZ NETO, J., KOHLER, C.C., LEWIS, W.M. Water re-use system of fingerling

fishes in Brasil with emphasis on South American catfishes (Rhamdia quelen and R.

sapo). Tropical Agriculture, v.64, n.1, p.2-6, 1987.

RANZANI-PAIVA, M.J.; ROMAGOSA, E.; ISHIKAWA, C.M. Hematological

parameters of “Cachara”, Pseudoplatystoma fasciatum Linnaeus, 1766

(Osteichthyes, Pimelodidae), reared in captivity. Boletim do Instituto de Pesca,

v.37, n.1, p.47-53, 2005.

REGOST, C. et al. Dietary lipid level, hepatic lipogenesis and flesh quality in turbot

(Psetta maxima). Aquaculture, v.193, p.291-309, 2001.

REGOST, C. et al. Total replacement of fish oil by soybean or linseed oil with a return

to fish oil in Turbot (Psetta maxima) 1. Growth performance, flesh fatty acid profile,

and lipid metabolism. Aquaculture, v.217, p.465-482, 2003a.

REGOST, C. et al. Total replacement of fish oil by soybean or linseed oil with a return

to fish oil in Turbot (Psetta maxima) 2. Flesh quality properties. Aquaculture, v.220,

p.737-747, 2003b.

RIBEIRO, P.A.P. et al. Efeito do uso de óleo na dieta sobre a lipogênese e o perfil

lipídico de tilápias-do-Nilo. Revista Brasileira de Zootecnia, v.37, n.08, p.1331-

1337, 2008.

ROWLAND, S.J. et al. Production of silver perch (Bidyanus bidyanus) fingerlings at

three stocking densities in cages and tanks. Aquaculture, v.229, p.193-202, 2004.

SÁ, R.; POUSÃO-FERREIRA, P.; OLIVA-TELES, A. Effect of dietary protein and lipid

levels on growth and feed utilization of white sea bream (Diplodus sargus) juveniles.

Aquaculture Nutrition, v.12, p.310-321, 2006.

136

SALHI, M. et al. Growth, feed utilization and body composition of black catfish,

Rhamdia quelen, fry fed diets containing different protein and energy levels.

Aquaculture, v.231, p.435-444, 2004.

SANTINHA, P.J.M. et al. Effects of the dietary protein:lipid ration on growth and

nutrient utilization in gilthead seabream (Sparus aurata). Aquaculture Nutrition, v.5,

p.147-156, 1999.

SAOUD, I.P.; GHANAWI, E.J.; LEBBOS, N. Effects of stocking density on the

survival, growth, size variation and condition index of juvenile rabbitfish Siganus

rivulatus. Aquaculture International, v.16, p.109-116, 2008.

SARGENT, J.R. et al. Requirement criteria for essential fatty acids. Journal of

Applied Ichthyology, v.11, p.183-198, 1995.

SAS. Statistical Analysis System. User's Guide. Version 8.02. SAS INSTITUTE

INC. North Caroline, SAS, 2001. 3864p.

SHEARER, K.D. Factors affecting the proximate composition of cultured fishes with

emphasis on salmonids. Aquaculture, v.119, p.63-88, 1994.

SKALLI, A. et al. Effects of the dietary protein/lipid ratio on growth and nutrient

utilization in common dentex (Dentex dentex L.) at different growth stages.

Aquaculture, v.235, p.1-11, 2004.

SPAYD, R. Multilayer film elements for clinical analysis. Clinical Chemistry, v.24,

p.1348-1350, 1978.

STEFFENS, W. Effects of variation in essential fatty acids in fish feeds on nutritive

value of freshwater fish for humans. Aquaculture, v.151, p.97-119, 1997.

STOSKOPF, M.K. Fish Medicine. Philadelphia: WB Saunders Company. 882p.

1993.

TAKEUCHI, T.; SHIINA, Y.; WATANABE, T. Suitable protein and lipid levels in diet

for fingerlings of red sea bream, Pagrus major. Nippon Suisan Gakkaishi, v.44,

p.729-732, 1991.

TAVARES-DIAS, M.; SANDRIN, E.F.S. Influence of anticoagulants and blood

storage on hematological values in tambaqui, Colossoma macropomum. Acta

Scientiarum, v.20, n.2, p.151-155, 1998.

TAVARES-DIAS, M. et al. Características hematológicas de teleósteos brasileiros.

IV. Variáveis do jundiá Rhamdia quelen (Pimelodidae). Ciência Rural, v.32, p.693-

698, 2002.

THOMAN, E.S.; DAVIS, D.A.; ARNOLD, C.R. Evaluation of growout diets with

varying protein and energy levels for red drum (Sciaenops ocellatus). Aquaculture,

v.176, p.343-353, 1999.

137

TOKO, I.I.; FIOGBE, E.D.; KESTEMONT, P. Growth, feed efficiency and body

composition of juvenile vundu catfish (Heterobranchus longifilis, Valenciennes 1840)

in relation to various dietary levels of soybean or cottonseed meals. Aquaculture

Nutrition, v.14, p.193-203, 2008.

VAN WEERD, J.H.; KOMEN, J. The effects of chronic stress on growth in fish: a

critical appraisal. Comparative Biochemistry and Physiology, v.120A, p.107–112,

1998.

VARGAS, J.A. et al. Replacement of fish oil with vegetable oils in diets for jundiá

(Rhamdia quelen Quoy and Gaimard 1824): effects on performance and whole body

fatty acid composition. Aquaculture Research, v.39, p.657-665, 2008.

VAZ, B.S. et al. Produção de alevinos de jundiá (Rhamdia sp.) em tanques-rede de

pequeno volume. In: SIMPÓSIO BRASILEIRO DE AQÜICULTURA, 12, 2003,

Goiânia. Anais…….. Aquabio, 2003, p.33-38.

VERGARA, J.M. et al. Growth, fed utilization and body lipid content of gilthead

seabream (Sparus aurata) fed increasing lipid levels and fish meals of different

quality. Aquaculture, v.179, p.35-44, 1999.

VIEIRA, V.L.P.; INOUE, L.A.K.; MORAES, G. Metabolic responses of matrinxã

(Brycon cephalus) to dietary protein level. Comparative Biochemistry and

Physiology, A, v.140, p.337-342, 2005.

VIEIRA, V.L.P. et al. Alterações metabólicas e hematológicas em jundiás (Rhamdia

quelen) alimentados com rações contendo aflatoxinas. Ciência Animal Brasileira,

v.7, n.1, p.49-55, 2006.

VIJAYAN, M.M.; BALLANTYNE, J.S.; LEATHERLAND, J.F. Cortisol-induced

changes is some aspects of the intermediary metabolism of Slvelinus fontinalis.

General Comparative Endocrinology, v.82, p.476-486, 1991.

VIJAYAN, M. M.; PEREIRA, C.; MOON, T.W. Hormonal stimulation of hepatocyte

metabolism in rainbow trout following an acute handling stress. Comparative

Biochemistry and Physiology, v.108, p.321-329, 1994.

VIJAYAN, M.M. et al. The effects of cortisol on hepatocyte metabolism in rainbow

trout: a study using the steroid analogue RU486. General Comparative

Endocrinology, v.96, p.75-84, 1994.

VIJAYAN, M.M. et al. Metabolic responses associated with confinement stress in

tilapia: the role of cortisol. Comparative Biochemistry and Physiology C, v.116,

p.89-95, 1997.

VIJAYAN, M.M.; LEATHERLAND, J.F. Effect of stocking density on the growth and

stress-response in brook charr, Salvelinus fontinalis. Aquaculture, v.75, p.159-170,

1988.

138

VOLPATO, G.L.; FERNADES, M.O. Social control of growth in fish. Brazilian

Journal Medical Biological Research, v.27, p.797-810, 1994.

WAGBO, R. et al. Chemical and sensory evaluation of fillets from Atlantic salmon

(Salmo salar) fed three levels of n-3 polyunsaturated fatty acids at two levels of

vitamin E. Food Chemistry, v.46, p.361-366, 1993.

WATANABE, W.O. et al. Production of fingerling Florida red tilapia (Tilapia hornorum

X T. mossambica) in floating marine cages. Progressive Fish-Culturist, v.52, p.158-

161, 1990.

WATANABE, F. et al. Glutathione peroxidase activity during storage of fishs muscle.

Journal of Food Science, v.61, n.4, p.734-735, 1996.

WEBER, J. et al. Effect of different cooking methods on the oxidation, proximate and

fatty acid composition of silver catfish (Rhamdia quelen) fillets. Food Chemistry,

v.106, p.140-146, 2008.

WEBSTER, C.D., TIDWELL, J.H., YANCEY, D.H. Effect of protein level and feeding

frequency on growth and body composition of cage-reared channel catfish.

Progressive Fish-Culturist, v.54, p.92-96, 1992.

WEBSTER, C.D. et al. Effects of dietary protein and lipid levels on growth and body

composition of sunshine bass (Morone chrysops x Morone saxatilis) reared in cages.

Aquaculture, v.131, p.291-301, 1995.

WENDELAAR BONGA, S.E. The stress response in fish. Physiological Reviews,

v.77, p.591-625, 1997.

WILSON, R.P., MOREAU, Y. Nutrient requirements of catfishes (Siluroidei). Aquatic

Living Resources, v.9, p.103-111, 1996.

YAMAMOTO, T.; UNUMA, T.; AKIYAMA, T. The influence of dietary protein and fat

levels on tissue free amino acids levels of fingerling rainbow trout (Oncorhynchus

mykiss). Aquaculture, v.182, p.353-372, 2000.

YAVUZCAN-YILDIZ, H.; KIRKAGAÇ-UZBILEK, M. The evaluation of secondary

stress response of grass carp (Ctenopharyngodon idella, Val. 1844) after exposing to

the saline water. Fish Physiology and Biochemistry, v.25, p.287-290, 2001.

139

9. ANEXOS

ANEXO 1 - Protocolo da determinação da matéria seca total e matéria mineral

Laboratório de Nutrição Animal do Departamento de Zootecnia

Pesagem

Quantia em torno de 2,0g de amostra em

recipiente identificado e tarado

Secagem

Levar à estufa a 105 °C até peso constante

(foi deixado por no mínimo 12 horas)

Retirado da estufa, o recipiente + amostra é colocado

diretamente em dessecador para esfriar

Realizar a pesagem do material seco

Após a realização da matéria seca total, se utiliza a

mesma amostra para a realização da análise de matéria mineral

Incineração

A amostra é levada à mufla e incinerada a 600 °C

por 3 horas

Depois de incineradas as amostras são colocadas em dessecador

para esfriar

Depois de 20 a 30 min. realiza-se a pesagem

da matéria mineral

140

ANEXO 2 - Protocolo da determinação da proteína bruta

Método de Kjeldahl (Micro) adaptado ao Laboratório de Nutrição Animal do

Departamento de Zootecnia

Pesagem

0,2 g de amostra em duplicata

e colocado nos tubos de micro-Kiejdahl

Digestão

É incluido em cada tubo 0,5 g de reagente catalisador

(7 g de sulfato de cobre CuSO

+ 93 g de sulfato de sódio NaSO

)

Adicionado 2 ml de ácido sulfúrico concentrado por tubo

Realizar a digestão por cerca de 60 min. com a temperatura em torno de

150°C, e se aumenta gradativamente até atingir 300°C. A solução quente

apresenta coloração esverdeada e após esfriar, torna-se incolor.

Depois de esfriar, adicione 10 ml de água destilada em cada tubo e

misture bem para dissolver o sal amônia formado.

Destilação

Para cada tubo, preparo de um erlenmeyer de 50 ml contendo

5 ml da solução de ácido bórico como indicador.

Colocar o tubo no aparelho destilador e adicionar 10 ml

de hidróxido de sódio. Destilar até atingir 25 ml de solução

no erlenmeyer.

Titulação

Titular o conteúdo dos erlenmeyer com ácido sulfúrico 0,1 N padronizado,

até o ponto de viragem da coloração.

141

ANEXO 3 - Protocolo da determinação do extrato etéreo

Método de Sohxlet adaptado ao Laboratório de Nutrição Animal do Departamento

de Zootecnia

Pesar cerca de 2,0 g de amostra em um quadrado de papel

de filtro comum (cerca de 10 x 10 cm, previamente tarado)

fazer um envelope para reter a amostra

Pesar os béquers de gordura secos

Colocar os envelopes de papel com as amostras nos

tubos extratores

A quantidade de éter etílico a ser utilizado é duas vezes

o volume do tubo extrator

Acoplar os béquers sob os tubos no aparelho

Ligar a circulação da água (refrigeração) e

deixar extraindo por 8 horas

Após a extração recolher o éter e levar os

bequers com gordura para a estufa

Após 2 horas esfriar os bequers e realizar a pesagem

142

ANEXO 4 - Protocolo da determinação da fibra bruta

Laboratório de Nutrição Animal do Departamento de Zootecnia

Utilizar o resíduo desengordurado da amostra do extrato etéreo

(com o peso original da amostra antes de desengordurar)

Colocar a amostra no copo digestor

Adicionar 200ml de solução de ácido sulfúrico quente e colocar

no aquecedor pré aquecido e tampar com o condensador

Ferver por 30 minutos

Após, remover o copo e filtrar a amostra em pano de nylon

sobre um funil, lavar a amostra com água quente para remoção

total do ácido

Colocar a amostra novamente no copo digestor com 200ml

de solução de hidróxido de sódio quente e colocar no aquecedor

Ferver por 30 minutos

Após, remover o copo e filtrar a amostra em pano de nylon

como no procedimento anterior

Transferir a amostra para um cadinho e secar em estufa a

105°C até peso constante

Esfriar em dessecador, pesar e colocar no forno mufla a 600°C

por 2 horas, esfriar e pesar.

143

ANEXO 5 - Protocolo da determinação de lipídios (carcaça e filés)

Método de Bligh-Dyer adaptado ao Núcleo Integrado de Análises Laboratoriais

(NIDAL)

Pesar 2,8g de amostra e transferir para tubos plásticos

Adicionar 8ml de clorofórmio 0,02% BHT, 10ml de metanol e

4,3ml de água destilada

Homogeneizar completamente a amostra, lavando a haste do

homogeneizador com mais 6ml de metanol (total 16ml)

Colocar os tubos no agitador rotatório por 30 minutos

Adicionar exatamente 8ml de clorofórmio 0,02% BHT e 8ml de solução

de sulfato de sódio 1,5%

Tampar e agitar por mais 2 minutos

Centrifugar por 2 minutos para acelerar a separação

Retirar 10ml da camada inferior (clorofórmio+gordura) com seringa

e colocar em tubo com tampa contendo 1g de sulfato de sódio anidro

Filtrar em papel-filtro, medir 5ml e despejar em cápsula previamente pesada

Colocar a cápsula na estufa a 105°C, até evaporar o solvente.

Resfriar em dessecador e pesar

144

ANEXO 6

Tabela 40. Composição analisada dos ingredientes utilizados nas dietas dos

experimentos 1 e 2 (%)

Constituinte FCO FS FT M

Umidade - 11,26 11,85 11,19

Proteína Bruta 54,73 43,31 16,07 8,35

Matéria mineral 26,38 5,60 4,55 1,27

Extrato etéreo 9,86 1,05 2,50 3,16

Fibra bruta - 4,98 7,82 1,08

Cálcio 8,42 - - -

Fósforo 4,48 - - -

Rancidez negativo - - -

Proteína digestível 79,21 - - -

FCO: farinha de carne e ossos bovina; FS: farelo de soja; FT: farelo de trigo; M: milho em grão.

145

ANEXO 7

Tabela 41. Composição analisada dos ingredientes utilizados nas dietas dos

experimentos 3 e 4

Constituinte (%) FCO FS FT M

Umidade 4,05 12,05 11,83 12,00

Proteína Bruta 54,79 46,56 21,52 8,36

Matéria mineral 27,54 5,63 5,05 1,26

Extrato etéreo 8,68 1,2 2,10 2,97

Fibra bruta - 4,62 8,23 1,13

FCO: farinha de carne e ossos bovina; FS: farelo de soja; FT: farelo de trigo; M: milho em grão.

146

ANEXO 8

Tabela 42. Composição analisada em aminoácidos totais (T) e digestíveis (D) dos

ingredientes utilizados nas dietas dos experimentos 1 e 2 (em %)*

Aminoácido FCO FS FT M

Lisina T 2,94 2,66 0,53 0,24

Lisina D 1,94 2,4 0,45 0,21

Metionina T 0,92 0,55 0,19 0,16

Metionina D 0,7 0,47 0,16 0,15

Met + Cist T 1,51 1,22 0,57 0,33

Met + Cist D 0,93 0,97 0,45 0,29

Treonina T 1,9 1,69 0,39 0,28

Treonina D 1,33 1,38 0,29 0,23

Triptofano T 0,3 0,65 0,24 0,05

Triptofano D 0,23 0,56 0,20 0,04

Valina T 2,69 2,23 0,71 0,39

Valina D 2,01 1,78 0,57 0,33

Isoleucina T 1,62 2,06 0,48 0,26

Isoleucina D 1,27 1,81 0,41 0,23

Leucina T 3,56 3,19 0,86 0,93

Leucina D 2,82 2,72 0,72 0,89

Fenilalanina T 1,91 2,22 0,67 0,37

Fenilalanina D 1,53 1,93 0,61 0,35

Histidina T 1,15 1,18 0,22 0,23

Histidina D 0,84 1,05 0,19 0,21

Arginina T 4,23 3,14 0,71 0,39

Arginina D 3,49 2,83 0,58 0,36

*Análises realizadas através do NIRS (Near Infrared Spectrofotometry).

T: aminoácido total; D: aminoácido digestível.

FCO: farinha de carne e ossos bovina; FS: farelo de soja; FT: farelo de trigo; M: milho em grão.

147

ANEXO 9

Tabela 43. Composição analisada em aminoácidos totais (T) e digestíveis (D) dos

ingredientes utilizados nas dietas dos experimentos 3 e 4 (em %)*

Aminoácido FCO FS FT M

Lisina T 2,7 2,77 0,63 0,2

Lisina D 1,93 2,44 0,53 0,18

Metionina T 0,89 0,62 0,24 0,15

Metionina D 0,7 0,54 0,21 0,15

Met + Cist T 0,68 0,72 0,26 0,16

Met + Cist D 0,29 0,58 0,19 0,13

Treonina T 1,81 1,84 0,44 0,28

Treonina D 1,31 1,49 0,32 0,24

Triptofano T 0,34 0,68 0,25 0,05

Triptofano D 0,26 0,60 0,21 0,04

Valina T 2,55 2,32 0,69 0,34

Valina D 1,93 1,94 0,56 0,31

Isoleucina T 1,68 2,18 0,48 0,25

Isoleucina D 1,35 1,97 0,42 0,24

Leucina T 3,46 3,49 0,94 1,0

Leucina D 2,8 2,98 0,80 0,99

Fenilalanina T 1,9 2,32 0,61 0,36

Fenilalanina D 1,54 2,02 0,55 0,35

Histidina T 1,16 1,22 0,40 0,21

Histidina D 0,85 1,06 0,34 0,19

Arginina T 3,83 3,27 1,11 0,3

Arginina D 3,2 2,94 0,93 0,3

*Análises realizadas através do NIRS (Near Infrared Spectrofotometry).

T: aminoácido total; D: aminoácido digestível.

FCO: farinha de carne e ossos bovina; FS: farelo de soja; FT: farelo de trigo; M: milho em grão.

148

ANEXO 10

Questionário de recrutamento de painelistas para painel sensorial

Data:____/____/____

Nome Completo:_____________________________________________________

Telefone residencial: ( )____________ Cel.: ( )________________________

Endereço residencial: ________________________________________________

Sexo: ( ) M ( ) F Profissão:______________ Idade:_________________

Questionário:

1) Você costuma consumir peixe?

( ) Sim, diariamente.

( ) Sim, de vez em quando (com que freqüência?____________)

( ) Sim, raramente.

( ) Nunca.

2) Você gostaria de participar de uma análise sensorial de produtos a base

de carne de peixe? ( ) Sim ( ) Não

3) Você é fumante? ( ) Sim ( ) Não

4) Você tem resfriados constantes? ( ) Sim ( ) Não

5) Você tem algum tipo de alergia? ( ) Sim (Qual?__________) ( ) Não

6) Você tem doença celíaca (intolerância ao glúten)? ( )Sim ( ) Não

7) Dentre os dias em que você está na universidade, quais são os melhores

para a realização das análises?

8) Qual o melhor horário para a realização das análises?

Das________às_________.

9) Você estará na UFSM no mês de março de 2007?

( ) Sim ( ) Não

Agradecemos a atenção!!!

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