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UNIVERSIDADE FEDERAL DO RIO GRANDE DO SUL
INSTITUTO DE CIÊNCIAS BÁSICAS DA SAÚDE
PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM CIÊNCIAS
BIOLÓGICAS: FISIOLOGIA
ESTUDO COMPARATIVO DA ATIVIDADE DA
ACETILCOLINESTERASE APÓS A SECÇÃO DO NERVO CIÁTICO EM
RATOS E RÃS
Adarly kroth
Porto Alegre-RS
2009
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UNIVERSIDADE FEDERAL DO RIO GRANDE DO SUL
INSTITUTO DE CIÊNCIAS BÁSICAS DA SAÚDE
PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM CIÊNCIAS
BIOLÓGICAS: FISIOLOGIA
ESTUDO COMPARATIVO DA ATIVIDADE DA
ACETILCOLINESTERASE APÓS A SECÇÃO DO NERVO CIÁTICO EM
RATOS E RÃS
Dissertação apresentada ao programa de Pós-
Graduação em ciências Biológicas—Fisiologia, da
Universidade Federal do Rio Grande do Sul, como
Requisito parcial para obtenção do título de Mestre
em Ciências Biológicas:Fisiologa.
Adarly Kroth
Orientadora: Profa Dra. Maria Flávia Marques Ribeiro
Co-orientadora: Profa. Dra. Wania Aparecida Partata
Porto Alegre-RS
2009
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II
“Aqueles que esperam no Senhor,
renovam as suas forças,
voam alto como águias,
correm e não ficam exaustos,
andam e não se cansam”. Is. 40:31
III
Dedico este trabalho...
Aos meus pais que acreditarem no meu esforço, e
sempre estiveram perto apesar de toda distância.
Ao meu irmão Alexsandro (in memorium).
Amo vocês .... Obrigada....
IV
Agradecimentos
Sempre é preciso saber quando uma etapa chega ao
final. Se insistirmos em permanecer nela mais do que o tempo
necessário, perdemos a alegria e o sentido das outras etapas que
precisamos viver. Encerrando ciclos, fechando portas, terminando
capítulos - não importa o nome que damos, importa é deixar no
passado os momentos da vida que já se acabaram.
Brahma Kumaris. In “Tempo de Germinar”
Agradeço, a Deus que nos momentos de maior aflição
nunca me faltou...
Aos meus pais que em todos os momentos de dúvida,
alegrias e tristezas sempre me apoiaram e incentivaram com todo
o seu amor e dedicação, aos quais devo toda minha dedicação e
zelo...
À minha orientadora, Maria Flávia Marques Ribeiro,
pela confiança, orientação, paciência, dedicação, incentivo e
amizade. Todo o meu agradecimento por todos os momentos que
esteve ao meu lado, passando seu conhecimento muito além da
teoria...
Minha co-orientadora Wania Partata que sempre esteve
presente durante toda esta fase de minha vida, agradeço pela sua
paciência, dedicação, ensinamento e principalmente pela
amizade...
À profa. Adriane Belló Klein, pela oportunidade de que
um sonho se tornasse realidade ...
V
Ao Amigo e prof. Jovani Steffani, um dos maiores
incentivadores para que este momento fosse conquistado, e por me
introduzir neste mundo fabuloso da fisiologia.
À minha querida amiga Susie muito mais que uma
colega uma irmã, que sempre esteve ao meu lado. Obrigada pela
Amizade...
Às colegas Daiane Janner, pela paciência e incentivo
durante todo o período experimental, Maria Helena Jacob , pela
amiga e incentivadora. As duas o meu agradecimento pelo apoio
em todos esses anos que estivemos juntas.
Às colegas Carolina Kolberg, Andréa Horst, Graziane
Antunes, Fabiana Rigon que estiveram sempre presentes nos
momentos de alegria e aflição, A cada uma meu agradecimento
pela amizade, carinho e compreensão...
A todos os colegas do departamento, pelos momentos
que compartilhamos durante esta etapa de minha vida...
Ao laboratório de Neuroproteção e Doença Metabólica
da Prof: Dra Angela Wyse, a todos o meu profundo
agradecimento, pelo colaboração para que este trabalho fosse
realizado.....
Aos meus amigos que estiveram ao meu lado em todos
os momentos de desespero e de alegrias, apoiando, auxiliando, e
principalmente se revelando grandes amigos...
Aos alunos de iniciação científica que tem um papel
importante para que este trabalho fosse realizado...
Ao programa de pós-graduação em ciências biológicas:
fisiologia...
À Capes, pela bolsa concedida, muito obrigada...
A Mel, minha companheira e amiga...
VI
SUMÁRIO
LISTA DE FIGURAS..................................................................................................
VII
LISTA DE TABELAS.................................................................................................
VIII
RESUMO....................................................................................................................
IX
INTRODUÇÃO...........................................................................................................
.
1
1.
Lesão nervosa periférica
..................................................................................
.
2
2.
Acetilcolinester
ase
...........................................................................................
..
6
OBJETIVOS..............................................................................................................
..
1
3
1.
Objetivos específicos ..
....................................................................................
.
14
MATERIAIS E MÉTODOS ........................................................................................
.
1
5
1.
Animais: Procedência e manutenção
.............
................................................
.
1
6
2.
Desnervação Periférica
....................................................................................
1
7
3.
Grupos experimentais
.................................................................
.....................
1
7
4.
Obtenção dos tecidos dos animais
.................................................................
1
8
5.
Determinação Bioquímica da Atividade da Colinesterase
............................
1
8
6.
Dosagem de proteínas
.............
........................................................................
.
19
7.
Homogeneização dos tecidos para Western Blot
.........................................
19
8.
Técnica de Western Blot
..........................................................
........................
.
2
0
9.
Análise Estatística
............................................................................................
.
2
2
RESULTADOS.............................................................................................
..............
2
4
1.
Efeito do tempo de desnervação na atividade e expressão da
acetilcolinesterase em rãs e rato.....................................................................
25
2.
Efeito da desnervação na atividade e na expressão da acetilcolin
esterase
na medula de rãs e ratos...................................................................................
27
3.
Efeito da desnervação na atividade e na expressão da acetilcolinesterase
nos músculos esqueléticos tibial posticus, de rã, e sóleo de
rato.......................................................................................................................
29
4.
Efeito da desnervação na atividade e na expressão da acetilcolinesterase
no músculo esquelético gastrocnêmio de rã e
rato......................................................................................................................
31
5.
Diferenças entre as espécies na atividade e expressão da
acetilcolinesterase na medula lombossacral de rã e rato.............................
33
6.
Diferenças entre os tipos de músculos esqueléticos de rã e rato
...............
35
DISCUSSÃO...............................................................................................................
38
CONCLUSÃO..............
...............................................................................................
46
PERSPECTIVAs...........................................................................................................
48
REFERÊNCIA
BIBLIOGRAFIA...
...............................................................................
50
VII
LISTA DE FIGURAS
Figura 01
Atividade (A) e expressão (B) da enzima acetilcolinesterase (AChE) em
medula espinal lombossacral de rã e rato submetidos à secção unilateral
completa do nervo ciático (desnervado) ou a manipulação deste nervo sem
a sua seção (Sham)..........................................................................................
28
Figura 02
Atividade (A) e expressão (B) da enzima acetilcolinesterase (AChE) em
músculo tibial posticus, de rã, e sóleo, de rato, submetidos à secção
unilateral completa do nervo ciático (desnervado) ou a manipulação deste
nervo sem a sua seção( Sham)........................................................................
30
Figura 03
Atividade (A) e expressão (B) da enzima acetilcolinesterase (AChE) em
músculo gastrocnêmio de rã e rato submetidos à secção unilateral completa
do nervo ciático (desnervado) ou a manipulação deste nervo sem a sua
seção (Sham)....................................................................................................
32
Figura 04
Atividade da enzima acetilcolinesterase (AChE) em medula espinal
lombossacral de rã e rato submetidos à secção unilateral completa do nervo
ciático (D) ou a manipulação deste nervo sem a sua seção
(S)......................................................................................................................
34
Figura 05
Atividade da enzima acetilcolinesterase (AChE) em músculo tibial posticus,
de rã, e sóleo, de rato, submetidos à secção unilateral completa do nervo
ciático (D) ou a manipulação deste nervo sem a sua seção
(S)......................................................................................................................
36
Figura 06
Atividade (A) e expressão (B) da enzima acetilcolinesterase (AChE) em
músculos esqueléticos com predomínio de fibras do tipo lenta (FL) e rápida
(FR) de rã e ratos..............................................................................................
37
VIII
LISTA DE TABELAS
Tabela 1
Atividade da acetilcolinesterase em medula espinal e músculos sóleo,
gastrocnêmio e tibial posticus de ratos e
rãs...........................................................................................................
25
Tabela 2
Expressão da acetilcolinesterase em medula espinal e músculos
sóleo, gastrocnêmio e tibial posticus de ratos e
rãs...........................................................................................................
26
IX
RESUMO
Em mamíferos, a secção de nervo periférico ocasiona alterações na
junção neuromuscular, a qual se caracteriza por redução na atividade da
enzima acetilcolinesterase (AChE) dessa região. Em pintos neonatos, esta
condição resulta em diminuição na expressão desta enzima na medula espinal.
Todavia, ainda é desconhecido o efeito da lesão axonal sobre a atividade e/ou
expressão da AChE na medula espinal de mamíferos, bem como os efeitos
desta lesão na medula e junção neuromuscular de anfíbios, os primeiros
vertebrados terrestres. Com intuito de fornecer uma análise comparativa sobre
a atividade e expressão da AChE após secção do nervo ciático, este trabalho
teve como objetivo determinar, em medula espinal lombossacral e em
músculos gastrocnêmio e tibial posticus de rã, e gastrocnêmio e sóleo de rato,
se há diferença interespecífica na atividade e expressão da AChE nestes
tecidos. Além disso, verificar se o tipo de fibra muscular e o tempo de
desnervação influenciam estes parâmetros.
Para isso, foram utilizados rãs Rana catesbeiana e ratos Wistar,
adultos, machos, divididos em dois grupos: animais desnervados (nervo ciático
seccionado) e sham (nervo ciático isolado, mas não seccionado). Três ou dez
dias após este procedimento, os animais foram mortos para a obtenção da
medula espinal lombossacral e dos músculos gastrocnêmio e sóleo de rato e
gastrocnêmio e tibial posticus de rã. Após, os tecidos foram homogeneizados,
centrifugados e as proteínas quantificadas. A atividade da AChE foi avaliada
pelo método de Ellman e cols. (1961), modificado por Lassiter e cols. (2003), e
a expressão da proteína AChE foi determinada pela técnica de Western blot.
A secção do nervo ciático em rãs e ratos aumentou a atividade da
AChE, porém não alterou sua expressão na medula espinal lombossacral
destes animais. Na comparação entre as duas espécies, as rãs mostraram o
dobro da atividade neste tecido antes e após a desnervação em relação aos
ratos. A secção nervosa provocou ainda diminuição na atividade da AChE no
músculo sóleo de rato, enquanto que no músculo tibial posticus de rã esta
atividade não foi alterada, embora ambos sejam músculos compostos por fibras
do tipo lentas. Em relação à expressão da AChE nos músculos lentos, esta não
foi alterada pelo procedimento experimental em ambas as espécies. Quando
comparamos a atividade da AChE nos músculos lentos de rãs e ratos, o
músculo sóleo apresentou maior atividade que o músculo tibial posticus, antes
e após a desnervação. No músculo gastrocnêmio de rã e rato, tanto na
atividade como na expressão da AChE, não houve diferença significativa após
a lesão axonal periférica, nem entre as espécies.
Conclui-se, a partir destes resultados que há uma importante diferença
interespecífica na atividade da AChE após a secção do nervo ciático, tanto na
medula espinal como no músculo esquelético de fibra lenta, mas estes
parâmetros não foram influenciados pelo tempo de desnervação. Portanto, uma
abordagem funcional mais detalhada é necessária para melhor entendimento e
compreensão destas diferenças.
INTRODUÇÃO
2
1- Lesão nervosa periférica.
A dor tem sido tema de grande interesse para a humanidade desde o
início dos tempos, sendo alvo de enormes esforços para entendê-la e controlá-
la. Atualmente ela representa um dos principais problemas de saúde, tornando
muitos indivíduos incapacitados para o trabalho devido à dor crônica. Deste
modo, a dor torna-se também um problema no âmbito econômico (LOESER &
BONICA, 2001).
Quando se estuda o tema sensibilidade dolorosa é preciso inicialmente
diferenciar dor e nocicepção. A dor trata-se de uma experiência sensorial
desagradável, tem caráter subjetivo e, portanto, pode ser relacionada somente
aos seres humanos que possuem capacidade de verbalizá-la. A nocicepção,
por sua vez, é o mecanismo neural pelo qual estímulos nocivos, de origem
térmica, mecânica e/ou química, são transmitidos para o Sistema Nervoso
Central (SNC). Portanto, nos trabalhos referentes a esse tema, que utilizam
modelos animais, pode-se afirmar que o foco do estudo é a nocicepção
(WIESELER-FRANK et al., 2004; LOESER & BONICA, 2001; MILLAN, 1999).
Para a compreensão dos mecanismos envolvidos na codificação e na
transmissão nociceptiva são empregadas distintas abordagens experimentais,
dentre elas a secção de nervo periférico, a qual constitui um modelo de dor
neuropática. Em humanos, a lesão neuropática ou injuria axonal ocorre por
diferentes causas, como: acidentes automobilísticos, fraturas, doenças
degenerativas e diabetes mellitus. A lesão do nervo periférico não induz
somente à fraqueza muscular e perda da sensibilidade, mas também leva a
respostas adaptativas e à dor neuropática (STOLL, 1999).
3
As respostas comportamentais que podem ser desencadeadas após a
axotomia de nervos periféricos são hiperalgesia (sensibilidade aumentada a
estímulos nocivos), alodinia (resposta dolorosa a estímulos normalmente não
nocivos), parestesia (diminuição da sensibilidade), disestesia (perda da
sensibilidade) e dor espontânea (MILIAN, 1999).
A lesão neuropática é uma lesão mecânica induzida sobre o nervo
periférico. No segmento distal à lesão ocorre a interrupção da condução
elétrica nervosa, seguida de degeneração Walleriana. No segmento proximal à
lesão ocorre formação de cones de crescimento, os quais são formados pela
indução dos fatores de crescimento produzidos por diversos tipos celulares,
dentre os quais as células de Schwann. A função destas regiões
especializadas juntamente com as células de Schwann é de orientar o sentido
da regeneração da fibra (SCHRÖDER, 1975; NEITO e VERDÚ, 1998;
ZIMMERMANN, 2001). A regeneração nervosa funcional não requer somente o
crescimento e alongamento axonal, mas também a síntese mielínica
(AKASSOGLAU K, 2002).
Existem diversos modelos experimentais para o estudo das
modificações morfofisiológicas decorrentes de uma lesão de nervo periférico.
Dentre estes podem ser citadas as lesões nervosas por esmagamento (crush)
e a secção total do nervo (axotomia). Está demonstrado que a secção de nervo
periférico resulta em alterações neuroquímicas e neuroanatômicas importantes
em neurônios sensoriais primários, bem como em seus territórios de projeção
central (RYDH-RINDER et al., 1996; MA & BISBY, 1998; ZIMMERMANN,
2001). Essas mudanças podem estar envolvidas nos estados anormais de dor
subseqüentes à lesão nervosa (MA & BISBY, 1998). A desnervação também
4
ocasiona mudanças morfológicas, fisiológicas e bioquímicas nos tecidos
periféricos inervados por estas fibras, como por exemplo, o tecido muscular
esquelético (STOLL, 1999; MISULIS, 1985).
Nestes estudos os mamíferos ainda são os modelos mais
empregados. Embora não possuam capacidade de comunicação verbal
quando em contato com os estímulos nociceptivos, esses animais exibem
respostas motoras similares às dos humanos. Tais respostas permitem inferir
a existência de dor (KAVALIERS, 1988; DUBNER, 1983). Os animais não-
mamíferos também apresentam respostas comportamentais e fisiológicas aos
estímulos nociceptivos (KAVALIERS, 1988). Dessa forma, esses modelos
também podem ser empregados em estudos que buscam uma melhor
compreensão dos mecanismos envolvidos na lesão nervosa periférica. O
conhecimento obtido em vertebrados não-mamíferos permitirá esclarecer
aspectos evolutivos dessa condição (KAVALIERS, 1988).
Os anfíbios são utilizados em uma grande variedade de estudos
científicos. Um aspecto importante para a escolha desses animais como
modelos experimentais é a sua grande tolerância às diversas condições
ambientais (ROCHA & BRANCO, 1998). Outro ponto que motiva o uso de
anfíbios em abordagens experimentais é a similaridade de funcionamento de
seus sistemas corporais, inclusive o nervoso, com aqueles dos animais
superiores (GUEDES et al., 2004; PARTATA et al., 2002; ADDLI et al., 1988).
Uma espécie de anfíbio muito empregada como modelo experimental é
a rã Rana catesbeiana, conhecida como rã touro. Este anfíbio aquático,
resistente às baixas temperaturas, é típico da região norte dos Estados Unidos,
5
mas se adaptou às condições climáticas do Brasil, sendo o espécime
encontrado em criadouros locais (STARER et al., 1984).
Os axônios dos nervos destes animais, similar ao que é observado em
mamíferos, possuem ou não bainha de mielina. De acordo com sua morfologia,
velocidade de condução e latência de resposta, as fibras aferentes destes
nervos foram classificadas em três tipos: 1) as chamadas fibras do tipo A, que
possuem uma espessa bainha de mielina; 2) as chamadas fibras do tipo B, que
são envolvidas por uma bainha de mielina pouco espessa; e 3) as chamadas
fibras do tipo C, que não possuem envoltório de mielina (STEVENS, 2004).
Com relação à nocicepção, os estudos mostraram que os estímulos nocivos
térmicos, mecânicos e químicos são transmitidos para o sistema nervoso
central pelas fibras do tipo B e C (STEVENS, 2004), o que é semelhante ao
observado em mamíferos, já que estas fibras de anfíbios assemelham-se,
quanto às suas características morfológicas e fisiológicas, às fibras do tipo A
delta e C dos mamíferos (GARRY et al., 2004; HAMAMOTO & SIMONE, 2003).
Assim, as rãs também constituem bons modelos experimentais para o estudo
dos fenômenos morfofisiológicos decorrentes da secção de nervo periférico.
O laboratório de Neurobiologia Comparada desta Universidade vem já
há algum tempo empregando como modelo experimental rãs da espécie Rana
catesbeiana. Nos estudos deste grupo de pesquisa, a secção do nervo ciático
provocou alterações peculiares no SNC desta rã, muitas das quais foram
similares àquelas observadas em mamíferos (GUEDES, 2002; PARTATA et al.,
2002).
Há evidências de que uma das conseqüências da secção do nervo
periférico é uma alteração na junção neuromuscular, a qual se caracteriza por
6
uma redução da atividade da enzima acetilcolinesterase dessa região (LØMO,
1985; TRINKAUS, 2008). Estes estudos foram realizados utilizando
principalmente espécies de mamíferos como modelo experimental.
2- Acetilcolinesterase
A região especializada entre a terminação nervosa e a fibra muscular
denominada junção neuromuscular (JN) é composta pela membrana pré-
sináptica, fenda sináptica e membrana pós-sináptica. Após a chegada do
potencial de ação na membrana pré-sináptica, a acetilcolina (ACh) é liberada
ligando-se ao receptor colinérgico na membrana pós-sináptica. Esta ligação
gera despolarização da placa motora e o potencial de ação desenvolvido gera
a contração da fibra muscular.
A acetilcolina, neurotransmissor do SNC e sistema nervoso periférico
(SNP), é sintetizada pelos neurônios colinérgicos pela enzima colina-acetil-
transferase (ChAT) a partir da colina e do acetil-CoA, sendo armazenada no
terminal nervoso. Na presença de um estímulo elétrico, a ACh é liberada na
fenda sináptica por exocitose. No SNP, a ACh é o principal neurotransmissor
da junção neuromuscular, e sua ação é rápida, sendo rapidamente desligada
de seu receptor para a repolarização da membrana pós-sináptica e início de
uma nova transmissão do impulso nervoso (SOREQ, 2001; WRIGHT et al,
1993). Portanto, uma rápida eliminação da ACh liberada na fenda sináptica é
necessária após cada impulso nervoso. Para isto existe na fenda sináptica a
enzima acetilcolinesterase (AChE). Os receptores colinérgicos são divididos em
dois tipos: nicotínico e muscarínico. O receptor nicotínico é o principal na
7
junção neuromuscular. Este receptor é encontrado nos gânglios periféricos e
no músculo esquelético (TAYLOR, et al., 1998)
A AChE é uma importante enzima regulatória que controla a
transmissão do impulso nervoso colinérgico por meio da hidrólise o
neurotransmissor excitatório ACh, tanto nas sinapses colinérgicas do SNC
quanto nas neuromusculares (TAYLOR, 1994). Entretanto, o papel biológico da
AChE não está limitado à transmissão colinérgica, já que essa proteína foi
encontrada em altas concentrações em outros locais. Uma demonstração do
papel não-colinérgico dessa proteína é a sua presença em neurônios não-
colinérgicos (REISS et al., 1966).
Na junção neuromuscular, a AChE é uma grande glicoproteína
(MASSOULIE et al., 1982; BRIMIJOIN, 1983; ROTUNDO, 1987; MASSOULIÉ
et al., 1993; CRNE- FINDERLE, N. 2005). Esta enzima é sintetizada a partir de
um único gene, e, devido aos cortes alternativos em seu mRNA são produzidos
três diferentes isoformas, cada uma com uma porção C-terminal diferente: a
sináptica (S), a eritropoiética (E) e a read through (R) (SOREQ, 2001). Outra
nomenclatura que pode ser utilizada para a denominação das isoformas
sináptica e eritropoiética está baseada nas propriedades protéicas desta
molécula, sendo a mesma denominada em cauda (T) e hidrofóbica (H),
respectivamente. As isoformas AChE-T são também conhecidas como
globulares (G) e assimétricas (A), e são identificadas por subscritos, indicando
o número da subunidade catalítica (SOREQ, 2001). As isoformas globulares da
AChE são classificadas em monômeros (G1), dímeros (G2), e tetrâmeros (G4),
e estão associadas à membrana por um domínio hidrofóbico (INESTROSA et
al., 1987; MASSOULIÉ et al., 1993; TSIM, et al, 1992). Já as isoformas
8
assimétricas consistem em um (A4), dois (A8), ou três (A12) tetrâmeros
catalíticos, ligados a um elemento colágeno de um terminal específico
(MASSOULIÉ et al, 1982).
A isoforma assimétrica A
12
é predominante na junção neuromuscular
(HALL 1973; SKETELJ E BRZIN 1985). Ela possui uma subunidade colágeno
específica, denominada colágeno Q (ColQ) (MASSOULIÉ et al. 1993; KREJCI
et al.,1991, 1997; DANGER et al. 1999; TRINKAUS et al, 2008).
Atualmente, existe grande interesse no meio científico pelo papel não-
catalítico dessa proteína. Sabe-se hoje que a AChE também está envolvida em
funções não-colinérgicas, como proliferação e adesão celular, neurogênese
(GRISARU, 1999), regulação da apoptose (DAY, 2002; YANG et al, 2002),
participando na formação de apoptosomos (PARK, 2004), osteogênese
(LAYER, 1990), hematopoiese (LEV-LEHMEN, 1994), sinaptogênese (LAYER,
1991; ZHANG, 2008), além de processos patológicos associados ao estresse
(JIANG, 2007) e degeneração de neurônios colinérgicos (COYLE, 1983). As
isoformas da AChE participam seletivamente dos processos envolvidos na
promoção e atenuação da apoptose por meio de mudanças na expressão e
distribuição das isoformas desta enzima (JIANG, 2007).
A isoforma assimétrica tem tido especial atenção por ter um papel
importante na interação entre o nervo e o músculo, estando presente não
somente na junção neuromuscular, mas também ao longo de toda a fibra
muscular (SKETELJ e BRZIN, 1980; KOENIG e RIEGER, 1981). Porém, é
muito mais concentrada nas junções neuromusculares de ratos adultos, de
onde desaparecem após desnervação e reaparecem com a reinervação (HALL,
1973; VIGNY et al, 1976; COLLINS e YOUNKIN, 1982). A isoforma assimétrica
9
A
12
foi detectada em músculos de humanos adultos (CARSON et al., 1979;
LØMO, 1985).
Os músculos esqueléticos são heterogêneos em sua composição de
fibras. Eles apresentam diferentes tipos de fibras musculares, as quais podem
ser grosseiramente classificadas em fibras do tipo rápida (glicolíticas, brancas
ou do tipo II) e lentas (oxidativas, vermelhas ou do tipo I). Músculos compostos
predominantemente por fibras do tipo rápidas são chamados músculos rápidos
ou do tipo II, enquanto aqueles compostos principalmente por fibras lentas são
denominados músculos lentos ou do tipo I. As fibras musculares lentas são
ativadas tonicamente por impulsos nervosos de baixa frequência, enquanto as
fibras musculares rápidas são estimuladas por impulsos curtos e de alta
frequência (HENNIG e LØMO, 1985). Os diferentes padrões de impulsos
nervosos determinam diferentes características fenotípicas nas fibras
musculares rápidas e lentas (VRBOVA et al, 1992).
Na região extrajuncional, a expressão das isoformas assimétricas é
quase suprimida durante o amadurecimento dos músculos rápidos de rato,
enquanto nos músculos lentos este desaparecimento é apenas parcial
(SKETELJ, 1980; SKETELJ et al. 1992). Portanto, as isoformas assimétricas da
AChE permanecem presentes nas regiões extrajuncionais de músculos lentos
na idade adulta, enquanto sua expressão está restrita às junções
neuromusculares de músculos rápidos maduros (LAI et al. 1986; SKETELJ et
al. 1992).
Uma complexa regulação de todas as isoformas da AChE nas junções
neuromusculares levanta a questão de se, em diferentes estados fisiológicos,
esta enzima sináptica é produzida pelo músculo, pelo nervo, ou por ambos. A
10
produção da AChE aumenta durante o desenvolvimento do sistema nervoso de
aves e mamíferos (BETZ et al, 1980; GRISARU et al, 1999, regulada pelo fator
de crescimento neural (NGF) (SOREQ 2001). Sabe-se que as isoformas
assimétricas e globulares da AChE são sintetizadas em células musculares de
rato e de aves (KOENIG e VIGNY, 1978; DE LA PORTE et al., 1986;
ROTUNDO, 1990; VALLETTE e MASSOULIÉ, 1991; TSIM et al., 1992), e
também é sintetizada e secretada pelas terminações do nervo motor na junção
neuromuscular (TSIM et al., 1992).
Atualmente, a compreensão dos mecanismos responsáveis pela
regulação da AChE nos músculos é limitada e vários fatores devem ser
considerados. Primeiro, o contato do nervo motor com o músculo tem papel
importante na manutenção permanente das instruções para a síntese da AChE
na placa motora (KOENIG e VIGNY, 1978; LØMO e SLATER, 1980). Em
segundo lugar, a atividade muscular desempenha um papel essencial no
controle da AChE. A suspensão da atividade muscular pelo bloqueio da
transmissão neuromuscular ou da condução neural diminui a atividade desta
enzima (DRACHMAN, 1972; RUBIN et al. 1980; BUTLER et al., 1978;
CANGIANO et al, 1980). Em terceiro lugar, há fortes indícios de que
substâncias liberadas pelas terminações do nervo motor podem contribuir para
a regulação da AChE na junção neuromuscular (TSIM et al., 1992).
Os tipos de fibras musculares determinam a atividade da AChE, pois o
processo de recuperação da atividade desta enzima é dependente do tipo de
fibra que predomina naquele músculo (MISULIS, 1985). As fibras
rápidas/glicolíticas apresentam maior atividade da AChE do que as fibras
lentas/oxidativas (MISULIS, 1985). MISULIS (1985) realizou um estudo com
11
ratos desnervados em diferentes tempos e analisou dois músculos, o sóleo,
composto predominantemente por fibras do tipo lenta, e o extensor digitório
longo (EDL), composto principalmente por fibras do tipo rápida. O estudo
mostrou que nas duas primeiras semanas após a desnervação ambos os
músculos apresentaram diminuição da atividade da AChE, e após 15 dias de
desnervação o músculo sóleo apresentou rápida recuperação da atividade
quando comparado ao EDL. Esta recuperação foi de aproximadamente 250%
do valor obtido inicialmente, enquanto no EDL foi de apenas 80%.
WAN (1997) analisou a expressão da AChE em medula espinal
lombar de pintos neonatos em diferentes tempos após a secção do nervo
ciático, comparando os lados ipsilateral e contralateral da medula espinal. Após
4 dias de desnervação, houve uma diminuição de 50% na expressão da AChE
no lado ipsilateral à lesão. No entanto, após 10 dias houve recuperação da
expressão da AChE, a qual retornou ao valor controle. O lado contralateral não
apresentou alteração na expressão desta enzima.
A diminuição da expressão da AChE na medula espinal ipsilateral
pode ter resultado do trauma no nervo pré-sináptico ou da falta de influência
das células musculares alvo, pois fatores derivados dos músculos participam
na regulação da expressão gênica do neurônio motor da junção
neuromuscular. No entanto, a recuperação da expressão da AChE no neurônio
motor após 10 dias da desnervação indica que outros fatores induzidos pela
AChE também podem ser ativados nos neurônios lesionados e estes podem ter
contribuído para a expressão desta enzima (WAN, 1997).
Com base nestes conhecimentos fica claro que os estudos até agora
foram realizados, em sua maior parte, utilizando mamíferos como modelos
12
experimentais, limitando o conhecimento dos aspectos evolutivos envolvidos
nestes mecanismos. Assim, o presente trabalho empregou rãs para a
determinação dos efeitos da secção completa unilateral do nervo ciático sobre
a atividade e a expressão da enzima AChE em medula espinal e músculos
esqueléticos compostos por fibras rápidas e lentas. Com o intuito de trazer
subsídios ao conhecimento dos efeitos desta situação experimental em ratos,
estes animais também foram utilizados no presente estudo. O emprego de
ratos decorreu do fato de que os estudos da literatura usaram músculos sóleo e
extensor digitório longo, sendo ainda desconhecidos os efeitos da secção do
nervo ciático sobre o padrão de atividade e expressão da AChE no músculo
gastrocnêmio e medula espinal de ratos. Para a determinação dos possíveis
efeitos temporais na atividade e expressão desta enzima, os animais foram
mortos aos 3 e 10 dias após a secção nervosa periférica.
13
OBJETIVOS
14
Com intuito de ampliar o conhecimento, e fornecer uma análise
comparativa dos efeitos da secção nervosa periférica sobre a atividade e
expressão da AChE, este trabalho teve como objetivo determinar, em medula
espinal lombossacral e em músculos gastrocnêmio e tibial posticus de rã, e
gastrocnêmio e sóleo de rato, se há diferença interespecífica na atividade e
expressão da AChE nestes tecidos após esses animais serem submetidos à
secção do nervo ciático. Além disso, foi verificado se o tipo de fibra muscular e
o tempo de desnervação influenciam estes parâmetros.
1. Objetivos específicos:
1) Determinar a atividade e a expressão da acetilcolinesterase na
medula espinal de rã e rato submetidos à secção unilateral completa
do nervo ciático, nos intervalos de 3 e 10 dias após a lesão axonal.
2) Determinar a atividade e a expressão da acetilcolinesterase em
músculos esqueléticos compostos predominantemente por fibras
rápidas, gastrocnêmio de rã e rato, submetidos à secção unilateral
completa do nervo ciático, nos intervalos de 3 e 10 dias após a lesão
axonal.
3) Determinar a atividade e a expressão da acetilcolinesterase em
músculos esqueléticos compostos predominantemente por fibras
lentas, tibial posticus de rã e sóleo de rato, em animais submetidos à
secção unilateral completa do nervo ciático, nos intervalos de 3 e 10
dias após a lesão axonal.
15
MATERIAIS E MÉTODOS
16
1- Animais: Procedência e manutenção
Foram utilizadas rãs Rana catesbeiana, adultas, machos, com peso
médio de 200 a 250 g. Estes animais foram obtidos do ranário Ranasul
localizado em Imbé-RS. Os animais foram trazidos para o Biotério do Instituto
de Ciências Básicas da Saúde, UFRGS, onde permaneceram em tanques
especiais, localizados em ambiente aberto, contendo água constantemente
renovada e uma porção central de terra. Durante o período de permanência, os
animais foram alimentados ad libitum com ração apropriada. A limpeza dos
tanques foi efetuada diariamente.
No período experimental as rãs permaneceram em aquários no
laboratório de Neurobiologia Comparada, ICBS-UFRGS. Estes aquários
continham 2,0 cm de água, e a limpeza dos mesmos era efetuada todos os
dias. Durante todo o período experimental as rãs foram mantidas em
temperatura e fotoperíodo que oscilaram de acordo com a temperatura
ambiente.
Foram utilizados ratos Wistar, machos, adultos, com peso médio de
250g, provenientes do Biotério do Instituto de Ciências Básicas da Saúde,
UFRGS. Os animais foram separados em grupos de no máximo cinco ratos por
caixa, com livre acesso à ração e água. Os animais permaneceram em
ambiente controlado, sob ciclo claro/escuro de 12 horas (das 7 h às 19 h) e
temperatura ambiente de 20 ± 2
o
C.
Este projeto de pesquisa foi aprovado pelo Comitê de Ética em Pesquisa
da Universidade Federal do Rio Grande do Sul, pelo processo número
2007768.
17
2- Desnervação Periférica
Para o procedimento de desnervação periférica, as rãs foram
previamente anestesiadas com prilocaína 3% (DFL), na dose de 0,1 mL/kg, e
os ratos com solução de ketamina (80mg/kg, Agner União) e xilazina (2 mg/kg,
Vetbrands). Para a visualização do nervo ciático do animal, o membro
posterior direito foi fixado em uma superfície rígida mediante emprego de um
pedaço de esparadrapo, possibilitando a incisão e dissecação dos tecidos
moles.
Após a visualização do nervo, o mesmo foi afastado dos tecidos a sua
volta com o intuito de deixá-lo completamente isolado e, em seguida, um fio de
sutura de algodão foi colocado abaixo do nervo para segurá-lo. Um segmento
de aproximadamente 2 mm foi seccionado do nervo, e a incisão suturada com
fio de algodão. O tipo de sutura utilizada foi a de Wolff, a mais indicada nos
casos de maior tensão (LAZZERI, 1977). Ao final, as rãs foram colocadas em
aquários e os ratos em caixas moradias. Estes animais foram mantidos no
laboratório nas condições descritas anteriormente durante todo o período
experimental. Os ratos e as rãs dos grupos sham foram submetidos aos
procedimentos cirúrgicos anteriormente descritos, porém sem a secção do
nervo ciático.
3. Grupos experimentais
As rãs Rana catesbeiana e os ratos Wistar formam divididos nos
seguintes grupos experimentais:
Animais sham (S): animais onde o nervo ciático foi isolado, mas não
seccionado. Os animais foram divididos em subgrupos: sham 3 dias - mortos 3
18
dias após a cirurgia; sham 10 dias - mortos 10 dias após a cirurgia, sendo cada
grupo composto por 5 animais.
Animais desnervados (D): animais onde o nervo ciático foi isolado, e
seccionado. Os animais foram divididos em subgrupos: desnervados 3 dias -
mortos 3 dias após a cirurgia; desnervados 10dias - mortos 10 dias após a
cirurgia, sendo cada grupo composto por 5 animais.
4. Obtenção dos tecidos dos animais
Ao final dos diferentes períodos experimentais considerados neste
estudo, os animais foram mortos por decapitação entre 08 e 10 horas da
manhã. A medula espinal lombossacral e os músculos gastrocnêmio e sóleo de
rato, e gastrocnêmio e tibial posticus de rã, foram rapidamente retirados e
imediatamente congelados em gelo seco para posteriormente serem
homogeneizados, de acordo com as técnicas para a determinação da atividade
da acetilcolinesterase e avaliação da expressão desta enzima pela técnica de
Western Blot.
5. Determinação Bioquímica da Atividade da Achetilcolinesterase.
As amostras foram homogeneizadas, na proporção de 1:10 m/v, com
tampão fosfato de potássio na concentração de 150 mM e pH 7,5, o qual
continha triton 1% e NaCl 0,5 M. Os homogeneizados foram centrifugados a
1.000 x g, por 10 min, a 4° C. O sobrenadante foi c oletado e diluído em tampão
de homogeneização na seguinte proporção: músculos gastrocnêmio, sóleo e
tibial posticus: 1:2 v/v, medula espinal lombossacral: 1:4 v/v. As amostras foram
armazenadas a -80° C para posterior determinação da atividade da
19
acetilcolinesterase pelo método descrito por Ellman e cols (1961), e modificado
por Lassiter e cols (2003), o qual é brevemente descrito a seguir.
Após a quantificação das proteínas, as amostras foram utilizadas para
determinação da atividade acetilcolinesterase. O meio de incubação, com
volume final de 1 mL, continha tampão fosfato de potássio 150 mM, DTNB 1
mM, pH 7,5. Neste meio foi acrescentado 50 µL de amostra é feita pré-
incubação por 3 min, a 25° C, em banho-maria. Logo após, ocorreu adição de
acetiltiocolina na concentração de 0,8 mM, iniciada a reação de hidrólise que
foi acompanhada em espectrofotômetro com comprimento de onda de 412 nm,
durante 2 min (30/30 s). As análises foram realizadas em duplicatas. A
atividade da acetilcolinesterase foi expressa em µmol da hidrólise da
acetiltiocolina por hora e por miligrama de proteína (µmol ACSCh/h.mg de
proteína).
6. Dosagem de proteínas
Para a dosagem das proteínas dos tecidos usados na determinação
bioquímica da atividade da acetilcolinesterase, utilizou-se o método descrito por
Lowry e colaboradores (1951). Para a técnica de Western Blot, a dosagem de
proteínas foi realizada pelo emprego da técnica descrita por Bradford (1976).
7. Homogeneização dos tecidos para Western Blot
A medula espinal lombossacral e os músculos gastrocnêmio e sóleo
de rato, e gastrocnêmio e tibial posticus de rã foram homogeneizados em
tampão de lise (NaCl 150 mM; Tris 20 mM; EDTA 5mM, Glicerol 10%, NP40
20
1%) e inibidor de proteases PMSF (fluoreto de fenil metil sulfonila) na
concentração de 1mM em isopropanol.
Em seguida, os homogeneizados foram centrifugados por 10 min a
3.000 x g a 4° C (Sorval RC 5B-rotor, SS-34, Du Pon t Instruments, EUA) e o
sobrenadante foi retirado e congelado em freezer a –70° C para posterior
análise..
8. Técnica de Western Blot
Após a quantificação de proteínas pelo método de Bradford (1976), foi
utilizado o sistema mini-protein (Bio-Rad) para a separação das proteínas por
eletroforese em gel SDS-PAGE a 10% (gel de poliacrilamida com dodecil
sulfato de sódio). As amostras foram preparadas com tampão de carga (Tris 65
mM, SDS 10%, glicerol 50%, azul de bromofenol 0,01%) na concentração de
80µg de proteína /50µL de amostra. Para a identificação do peso molecular das
proteínas de interesse, utilizou-se marcador de peso molecular RPN800
(Amersham Pharmacia). Antes de serem submetidas à eletroforese a 120 v por
3 horas, as amostras foram aquecidas a 100° C duran te 2 minutos em banho
seco (modelo 330-3D, Nova Ética). A eletroforese foi efetuada na presença de
tampão de corrida, contendo glicina 192 mM, Tris 25 mM e SDS 0,1%, pH 8,3.
A separação das proteínas foi monitorada pelo azul de bromofenol, presente no
tampão de amostra, e pelo marcador de peso molecular. A seguir, o gel de
poliacrilamida foi retirado das placas de vidro e colocado no módulo de
eletrotransferência em contato com a membrana de nitrocelulose (Hybond,
Amersham) e coberto com tampão de transferência (Tris 25 mM, glicina
21
192mM e metanol a 20%, pH 8,3). A transferência foi efetuada a 250 mA por
aproximadamente 60 minutos.
Para o bloqueio das ligações a proteínas inespecíficas, as membranas
foram incubadas com albumina bovina (Sigma) a 1% em TTBS (Tris 20 mM,
NaCl 140 mM e Tween 20 a 0,05%) por 60 minutos. Após o bloqueio, as
membranas foram incubadas a 4° C, por no mínimo 12 horas, sob agitação
constante, com o anticorpo primário policlonal anti-acetilcolinesterase (Santa
Cruz Biotechnology), na diluição de 1:250 em TTBS, contendo BSA 2,5% e
azida sódica a 1%.
A seguir, as membranas foram lavadas em TTBS (três vezes de 10
minutos cada lavagem) e incubadas com o segundo anticorpo. Este anticorpo
era do tipo peroxidado desenvolvido em coelho e usado na diluição de 1:5000
em TTBS. Esta incubação teve duração de duas horas e ocorreu sob agitação
constante em temperatura ambiente. Antes de proceder à revelação por
quimiluminescência, as membranas foram lavadas 3 vezes com TBS (Tris 20
mM e NaCl 140 mM).
A reação de quimiluminescência ocorreu por meio de sistema de
detecção baseado em substratos luminescentes (luminol e ácido p-cumárico),
com exposição das membranas a filme radiográfico Hyperfilm (Amersham) por
aproximadamente 1 minuto, seguido das incubações nas soluções de
revelação: revelador, ácido acético (10%) e fixador (1 minuto cada incubação).
Todos os procedimentos de revelação foram realizados em câmara escura.
A autorradiografia gerada foi analisada por meio de analisador de
imagem (Image Master VDS, Pharmacia Biotech). A densitometria obtida para
as bandas da acetilcolinesterase foi corrigida por uma banda inespecífica
22
obtida pela coloração com Red Ponceau S, sendo os resultados expressos em
unidades arbitrárias.
9. Análise Estatística
Os resultados são apresentados como média ± desvio padrão da
média. Os grupos usados na medida de atividade da acetilcolinesterase tinham
5 animais. Na expressão o número de animais variou de 4 a 5. O cálculo do
tamanho da amostra foi baseado nos resultados de um estudo (VUKOVA,
2005), utilizando o programa PEPI 3.0 que indicou 5 animais em cada grupo
experimental considerando-se a probabilidade de erro beta de 0,05 (poder
estatístico 90%) e nível de significância (erro alfa) de 0,05.
Os resultados da atividade e da expressão da acetilcolinesterase, na
medula espinal lombossacral e nos músculos gastrocnêmio e tibial posticus de
rã (Rana catesbeiana) e gastrocnêmio e sóleo de rato (Wistar) que sofreram
secção do nervo ciático 3 e 10 dias, foram analisados utilizando análise de
variância (ANOVA) de duas vias. Devido ao fato dos diferentes tempos de
desnervação não alterar a atividade e a expressão da acetilcolinesterase, os
grupos de três e dez dias foram unidos para a análise dos dados. Quando feito
isto, o número de animais em cada grupo foi de 9 a 10, e os resultados foram
analisados por análise de variância (ANOVA) de uma via. O nível de
significância (α) adotado foi 0,05. Foi utilizado o programa software SigmaStat
2.0, e o teste post hoc de comparações múltiplas de Student-Newmann-Keuls
(SNK) sempre que apropriado.
23
RESULTADOS
24
1.0 Efeito do tempo de desnervação na atividade e expressão da
acetilcolinesterase em rãs e rato.
Na medula espinal lombossacral de rã e rato, os diferentes tempos de
desnervação não alteraram a atividade (Tabela 01) e a expressão (Tabela 02)
da acetilcolinesterase. Este mesmo resultado foi encontrado na atividade e
expressão dessa enzima localizada nos músculos sóleo, gastrocnêmio e tibial
posticus dessas espécies de animais, demonstrando que o tempo de
desnervação não influenciou esses parâmetros da acetilcolinesterase nos
tecidos analisados (Tabelas 01 e 02).
25
Tabela 01: Atividade da acetilcolinesterase em medula espinal e músculos
sóleo, gastrocnêmio e tibial posticus de ratos e rãs.
ATIVIDADE
DA AChE
(
µmol ACSCh/
h.mg de proteína
)
3 dias
10 dias
(P
< 0,05)
Sham
Desnervado
Sham
Desnervado
Rã
Medula
6,4 ± 0,66
6,62 ± 0,56
5,94 ± 0,20
6,82 ± 0,19
N S
m. tibial posticus 0,26 ± 0,03 0,22 ± 0,03 0,22 ± 0,04 0,20 ± 0,03 N S
m. gastrocnêmio 0,30 0,04 0,30 ± 0,04 0,25 ± 0,02 0,23 ± 0,19 N S
Rato
Medula 3,51 ± 0,52 4,05 ± 0,33 3,23 ± 0,41 3,62 ± 0,67 N S
m. sóleo 0,52 ± 0,20 0,46 ± 0,16 0,49 ± 0,04 0,38 ± 0,06 N S
m. gastrocnêmio 0,21 ± 0,04 0,24 ± 0,03 0,27 ± 0,04 0,25 ± 0,01 N S
Os animais submetidos à secção completa unilateral do nervo ciático
(Desnervado) ou à manipulação deste nervo sem sua secção (Sham) 3 e 10
dias após esta intervenção cirúrgica. N= 5 por grupo. Valores representam a
média ± Desvio Padrão da média. p<0,05, ANOVA de duas vias. N S: não
significativo.
26
Tabela 02: Expressão da acetilcolinesterase em medula espinal e músculos
sóleo, gastrocnêmio e tibial posticus de ratos e rãs.
EXPRESSÃO AChE/Ponceau (unidades arbitrárias)
3 dias 10 dias
(P< 0,05)
Sham
Desnervad
o
Sham
Desnervado
Rã
Medula
116,93 ± 32,87
105,40 ± 15,84
98,81 ± 13,99
111,40 ± 26,11
N S
m. tibial posticus 105,77 ± 13,73
90,57 ± 2,91 104,41 ± 10,15 94,71 ± 6,01 N S
m. gastrocnêmio 130,3 ± 41,07 90,78 ± 18,65 95,63 ± 19,09 103,61 ± 17,47 N S
Rato
Medula
115,03 ± 15,24
107,71 ± 20,12
97,47 ± 9,28
105,51 ± 14,04
N S
m. sóleo 91,04 ± 25,74 115,27 ± 16,43 105,69 ± 18,94 89,75 ± 12,33 N S
m. gastrocnêmio 133,2 ± 33,43 95,23 ± 20,62 71,66 ± 10,83 81,12 ± 14,83 N S
Os animais submetidos à secção completa unilateral do nervo ciático
(Desnervado) ou à manipulação deste nervo sem sua secção (Sham) 3 e 10
dias após esta intervenção cirúrgica. N= 5 por grupo. Valores representam a
média ± Desvio Padrão da média. p<0,05, ANOVA de duas vias. N S: não
significativo.
27
2.0 Efeito da desnervação na atividade e na expressão da
acetilcolinesterase na medula de rãs e ratos.
A secção unilateral completa do nervo ciático de rãs ocasionou
aumento estatisticamente significativo da atividade da acetilcolinesterase na
medula espinal lombossacral destes animais (Fig 01A). Este mesmo efeito
ocorreu na medula espinal lombossacral de ratos submetidos a esta mesma
condição experimental (Fig 01A) (F
3,36
=114,919, p< 0,001).
Diferentemente, a expressão da AChE na medula espinal
lombossacral de rã e rato não foi alterada significativamente após o mesmo
procedimento experimental (Fig 01B) (F
3,28
=0,0374, p=0,990).
28
A)
B)
Fig 01. Atividade (A) e expressão (B) da enzima acetilcolinesterase (AChE) em
medula espinal lombossacral de rã e rato submetidos à secção unilateral
completa do nervo ciático (desnervado) ou à manipulação deste nervo sem a
sua secção (Sham). Os histogramas representam a média ± Desvio Padrão da
média, e o número entre parêntese correspondem ao número de animais. *
representa diferença significativa quando comparados os grupos desnervado e
sham de uma mesma espécie (p< 0,001, ANOVA de uma via). N= 10 por grupo
(atividade da AchE), N=4 a 9 por grupo (expressão da AchE).
Atividade da AChE na medula espinal de rato e ra
0
2
4
6
8
Rato Rã
Grupos experimentais
Atividade AChE µmol
ACSCh/h.mg de proteína
Sham
Desnervado
*
*
Expressão da AchE na medula espinal de
rato e rã
0
20
40
60
80
100
120
140
160
Rato Rã
Grupos experimentais
AchE/Ponceau
unidades arbitrárias
Sham
Desnervado
29
3.0 Efeito da desnervação na atividade e na expressão da
acetilcolinesterase nos músculos esqueléticos tibial posticus de rã, e
sóleo de rato.
Em rãs, a secção unilateral completa do nervo ciático não provocou
modificações significativas na atividade da AChE no músculo tibial posticus (Fig
02A). Em ratos, por sua vez, esta condição experimental ocasionou diminuição
significativa da atividade da AChE, e esta redução foi de aproximadamente
22% quando comparada ao grupo de ratos sham (Fig 02A) (F
3,34
=34,004, p<
0,001).
A expressão da AChE nos músculos tibial posticus de rã e sóleo de
rato não foi alterada significativamente após o procedimento experimental (Fig.
02B) (F
3,25
=1,285, p= 0,301).
30
A)
B)
Fig 02.
Atividade (A) e expressão (B) da enzima acetilcolinesterase (AChE) em
músculo tibial posticus, de rã, e sóleo, de rato, submetidos à secção unilateral
completa do nervo ciático (desnervado) ou a manipulação deste nervo sem a
sua secção (Sham). Os histogramas representam a média ± Desvio Padrão da
média, e o número entre parêntese correspondem ao número de animais. *
representa diferença significativa quando comparados os grupos desnervado e
sham para uma mesma espécie (p< 0,001, ANOVA de uma via). N= 10 por
grupo (atividade da AchE), N=4 a 9 por grupo (expressão da AchE).
Expressão da AchE nos músculos esqueléticos
sóleo e tibial posticus
0
20
40
60
80
100
120
140
160
Rato Rã
Grupos experimentais
AchE/Ponceau
unidades arbitrárias
Sham
Desnervado
Atividade da AchE nos músculos esqueléticos
sóleo e tibiual postiucus
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
Rato Rã
grupos experimetais
Atividade AChE µmol
ACSCh/h.mg de proteína
Sham
Desnervado
*
31
4.0 Efeito da desnervação na atividade e na expressão da
acetilcolinesterase no músculo esquelético gastrocnêmio de rã e rato.
A atividade da acetilcolinesterase no músculo gastrocnêmio de rã com
secção unilateral completa do nervo ciático não foi alterada significativamente
(Fig 03A). Este mesmo resultado foi observado no músculo gastrocnêmio de
rato (Fig 03A) (F
3,35
=1,312, p=0,286).
A expressão desta enzima no músculo gastrocnêmio de rã e rato,
similar ao que foi encontrado na atividade da AChE neste tecido, não mostrou
mudanças estatisticamente significativas após a secção unilateral completa do
nervo ciático (Fig 03B) (F
3,20
=1,113, p=0,367).
32
A)
B)
Fig 03.
Atividade (A) e expressão (B) da enzima acetilcolinesterase (AChE) em
músculo gastrocnêmio de rã e rato submetidos à secção unilateral completa do
nervo ciático (desnervado) ou a manipulação deste nervo sem a sua secção
(Sham). Os histogramas representam a média ± Desvio Padrão da média, e o
número entre parêntese correspondem ao número de animais. Não houve
diferença significativa quando comparados os grupos sham e desnervado de
uma mesma espécie (p< 0,001, ANOVA de uma via). N= 10 por grupo
(atividade da AchE), N=4 a 9 por grupo (expressão da AchE).
Atividade da AChE nos músculos esqueléticos
gastrocnêmio de rato e rã.
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
Rato Rã
Grupos experimentais
Atividade AChE µmol
ACSCh/h.mg de proteína
Sham
Desnervado
Expressão da AchE nos músculos esqueléticos
gastrocnêmio de rato e rã
0
20
40
60
80
100
120
140
160
Rato Rã
Grupos experimentais
AchE/Ponceau
unidades arbitrárias
Sham
Desnervado
33
5.0 Diferenças entre as espécies na atividade e expressão da
acetilcolinesterase na medula lombossacral de rã e rato.
A comparação dos resultados da atividade da AChE entre as duas
espécies estudadas mostrou que a secção completa unilateral do nervo ciático
resultou em acréscimo de aproximadamente 15% na atividade dessa enzima
em ambas as espécies (Fig 04).
Um resultado interessante, e que merece ser destacado, é que os
valores da atividade da acetilcolinesterase no segmento lombossacral da
medula espinal de rãs foi sempre superior aquele obtido nos ratos. Nesses
animais, os valores da atividade da AChE foram em torno de 50% menores do
que aqueles encontrados nas rãs. Este valor mais elevado das rãs ocorreu
tanto nos grupos sham como nos animais desnervados (Fig 04). Todavia, não
se observa esta diferença de valores entre rãs e ratos quando se compara os
resultados obtidos na expressão da AChE (Fig 01B).
34
Fig 04.
Atividade da enzima acetilcolinesterase (AChE) em medula espinal
lombossacral de rã e rato submetidos à secção unilateral completa do nervo
ciático (D) ou à manipulação deste nervo sem a sua secção (S). Note que os
valores obtidos em rãs foram sempre superiores àqueles observados nos ratos.
Os histogramas representam a média ± Desvio Padrão da média, e o número
entre parêntese correspondem ao número de animais. * representa diferença
significativa quando comparados os grupos desnervado e sham de rã e rato
(p< 0,001, ANOVA de uma via). N= 10 por grupo (atividade da AchE).
Atividade da AChE na medula espinal de rato e rã
0
2
4
6
8
S D
Grupos experimentais
Atividade AChE µmol
ACSCh/h.mg de proteína
Rato
Rã
*
*
35
6.0 Diferenças entre os tipos de músculos esqueléticos de rã e rato.
A comparação dos resultados obtidos para a atividade da AChE nos
músculos tibial posticus, de rã, e sóleo, de rato, os quais são compostos
predominantemente por fibras do tipo lenta, mostrou que a atividade dessa
enzima no músculo sóleo foi sempre maior do que aquela observada no
músculo tibial posticus (Fig 06A). Esta diferença esteve sempre em torno de
50% e foi encontrada tanto nos animais do grupo sham como nos desnervados
(Fig 05). Deve ser lembrado, neste momento, que apenas o músculo sóleo
apresentou redução significativa de sua atividade após a secção unilateral
completa do nervo ciático (Fig 02A). Enquanto uma diferença foi encontrada na
atividade da AChE quando comparados os valores de sua atividade em rãs e
ratos, isto não ocorreu com a expressão dessa enzima nestes músculos, cujos
valores foram similares entre as duas espécies (Fig 06).
No músculo gastrocnêmio de rã e rato, composto predominantemente
por fibras do tipo rápida, a comparação dos resultados entre as duas espécies
não revelou a existência de diferenças estatisticamente significativas tanto na
atividade como na expressão da AChE, sendo os valores observados similares
entre si nos diferentes grupos de animais (Fig 06).
36
Fig 05.
Atividade da enzima acetilcolinesterase (AChE) em músculo tibial
posticus, de rã, e sóleo, de rato, submetidos à secção unilateral completa do
nervo ciático (D) ou à manipulação deste nervo sem a sua secção (S). Os
histogramas representam a média ± Desvio Padrão da média, e o número entre
parêntese correspondem ao número de animais. * representa diferença
significativa quando comparados rãs e ratos (p< 0,001, ANOVA de uma via).
N= 10 por grupo (atividade da AchE).
Atividade da AChE nos músculos esqueléticos
sóleo e tibial posticus
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
S D
Grupos experimentais
Atividade AChE µmol
ACSCh/h.mg de proteína
Rato
Rã
*
*
37
A)
B)
Fig 06.
Atividade (A) e expressão (B) da enzima acetilcolinesterase (AChE) em
músculos esqueléticos com predomínio de fibras do tipo lenta (FL) e rápida
(FR) de rã e ratos. Os histogramas representam a média ± Desvio Padrão da
média, e o número entre parêntese correspondem ao número de animais. *
representa diferença significativa entre os tipos de fibras de uma mesma
espécie (p< 0,001, ANOVA de uma via). N= 10 por grupo (atividade da AchE),
N=4 a 9 por grupo (expressão da AchE).
Atividade da AChE nos músculos esqueléticos com
diferentes tipos de fibra musular
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
Rato Rã
Grupos experimantais
Atividade AChE µmol
ACSCh/h.mg de proteína
FL
FR
*
Expressão da AchE nos músculos esqueléticos
com diferentes tipos de fibra musular
0
20
40
60
80
100
120
140
160
RATO RA
Grupos experimentais
AchE/Ponceau
unidades arbitrárias
F L
FR
38
DISCUSSÃO
39
O presente estudo mostrou que a secção do nervo ciático ocasionou
aumento na atividade da AChE na medula espinal lombossacral de rãs e ratos,
não ocorrendo alterações significativas na expressão desta enzima. Em medula
espinal de pintos neonatos, a injúria axonal periférica provocou redução na
expressão da AChE apenas no lado ipsilateral à lesão (WAN, 1997). É possível
que a expressão inalterada demonstrada em nosso estudo tenha decorrido do
fato de que foi utilizado todo o segmento lombossacral da medula espinal de
rãs e ratos, não tendo sido feita a separação dos lados ipsilateral e
contralateral à lesão. É possível que isto tenha impossibilitado a detecção das
possíveis modificações na expressão desta enzima.
Provavelmente o acréscimo da atividade da AChE na medula espinal
de rãs e ratos esteja relacionado a uma maior liberação de ACh nesta região
induzida pela injúria axonal periférica. Está demonstrado que o transporte
axonal de ACh está aumentado na extremidade proximal do nervo após a
secção ou o esmagamento do mesmo (O’BRIEN, 1978). Segundo O’BRIEN,
(1978), este acréscimo na ACh não seria resultado apenas de síntese local, o
que sugere maior atividade na medula espinal. É sabido ainda que vias
colinérgicas que finalizam na medula espinal possuem efeito antinociceptivo
(FÜRST, 2008; DUSSOR et al., 2004). Estes mecanismos, estando ativados,
poderiam contribuir para uma maior atividade da AChE na medula espinal, já
que esta enzima é a responsável pela degradação da ACh liberada na fenda
sináptica. Isto poderia explicar o aumento da atividade da AChE demonstrada
no presente estudo. Contudo, é interessante o fato de que a compressão de
nervo periférico induziu menor liberação de ACh no corno dorsal de ratos
(SCHECHTMANN et al., 2008). Porém, muitas das respostas oriundas de lesão
40
nervosa periférica dependem do tipo de modelo que está sendo utilizado
(LOESER & BONICA, 2001). Assim, parece interessante determinar o efeito da
secção completa de nervo periférico sobre a atividade da ACh na medula
espinal.
Em gânglio cardíaco de Rana pipens, a desnervação periférica
ocasionou aumento na atividade da AChE (STREICHERT e SARGENT, 1990),
o que é similar aos resultados do presente estudo. Contudo, esta condição
experimental reduziu significativamente a atividade desta enzima em gânglio
lombar desta espécie de rã (STREICHERT e SARGENT, 1990). Em nosso
estudo foi utilizado segmento lombossacral de medula espinal de Rana
catesbeiana. Se a diminuição da atividade da AChE fosse característica da
região lombar, deveria ter sido observado um resultado similar na medula
espinal lombossacral, o que não ocorreu. Assim, a resposta da AChE diante de
injúria axonal periférica parece ser específica de cada tipo de tecido, uma vez
que os gânglios cardíaco e lombar mostraram respostas diferentes frente a
esta condição experimental. Neste contexto, parece plausível sugerir a
determinação da atividade desta enzima em outros segmentos da medula
espinal, bem como em gânglio da raiz dorsal, para melhor entendimento da
atividade regional da AChE frente à lesão axonal periférica.
No presente estudo, a atividade da AChE em medula espinal de rãs foi
praticamente 50% superior àquela de ratos. Apesar desta diferença na
atividade, a expressão desta enzima foi similar nestas duas espécies. Estudos
histoquímicos prévios mostraram que a distribuição da ChAT foi maior em
medula espinal de rã do que em ratos (MUÑOZ, 2000). Nestes anfíbios, a
reação histoquímica presente no corno ventral foi similar entre rã e rato, porém
41
aquela do corno dorsal de rã se mostrou mais intensa do que a de rato
(MUÑOZ, 2000). É possível que esta diferença seja a responsável pela maior
atividade da AChE na medula espinal de rãs. Todavia, estudos
complementares são necessários para o esclarecimento desta questão.
Um resultado interessante do presente estudo é que a secção do
nervo ciático provocou redução da atividade da AChE no músculo sóleo de
rato, mas não ocasionou esta diminuição no músculo tibial posticus de rã, o
qual também é predominantemente um músculo do tipo lento e exerce funções
similares àquela do sóleo de rato (UNDERHILL, 1978). Apesar desta diferença
na atividade, a expressão da AChE não foi alterada significativamente após a
lesão axonal periférica nestas duas espécies de vertebrados. A redução
observada no músculo sóleo de rato é característica deste músculo e foi
mostrada em outros estudos onde o mesmo foi submetido a uma desnervação
(TRINKAUS, 2008; MISULIS,1985; LØMO, 1985). Até o presente momento não
é possível explicar a diferença ocorrida na atividade da AChE no músculo lento
de rã e rato, sendo necessária a realização de estudos complementares para o
esclarecimento desta questão. Todavia, é interessante que o músculo sóleo de
rato mostrou atividade da AChE superior àquela do músculo tibial posticus de
rã tanto antes como após a lesão axonal. Uma hipótese a ser considerada é a
possível diferença na proporção dos tipos de fibras destes músculos. O
músculo sóleo apresenta apenas fibras do tipo lentas (ARIANO,1973). Não se
sabe se o músculo tibial posticus possui composição similar. É necessário
considerar a possibilidade de ocorrência de diferenças na proporção dos tipos
de fibras. Em músculo gastrocnêmio, a porcentagem de fibras rápidas no rato é
de 58% (ARIANO, 1973), enquanto em rãs este valor é de 71% (SWEENEY,
42
2004). No entanto, mesmo tendo percentuais diferentes, a secção completa do
nervo ciático não provocou respostas diferentes na atividade e expressão da
AChE no músculo gastrocnêmio de rãs e ratos. Tendo este músculo
predomínio de fibras rápidas, se esperaria resposta similar àquela do músculo
extensor digitório longo (EDL), no qual a secção nervosa periférica ocasionou
diminuição na atividade da AChE, sendo esta recuperada após 6 semanas da
lesão (MISULIS, 1985). Sabe-se que o músculo EDL apresenta apenas 38% de
fibras do tipo rápidas e uma alta proporção de fibras intermediárias (ARIANO,
1973). Assim, é possível que essa heterogeneidade nestes músculos do tipo
rápido de rato esteja relacionada com as diferenças encontradas na atividade
da AChE.
Além disso, é preciso considerar a possibilidade de que a diferença
entre a atividade da AChE no músculo tibial posticus de rã e no sóleo de rato
decorra de pequenas modificações na junção neuromuscular destas espécies.
Está demonstrado que a inervação motora em músculos da laringe de rãs é
muito similar àquela de humanos, mas diferente daquela encontrada em ratos
(LIMA-RODRIGUES et al., 2006).
Outra hipótese que deve ser considerada é a de que as diferentes
respostas na atividade da AChE mostradas em nosso estudo sejam
decorrentes dos padrões de ativação dos músculos. É sabido que a regulação
da AChE em fibras musculares lentas e rápidas é regulada principalmente por
mecanismo dependente do padrão de ativação das fibras pelo nervo motor. Isto
ocorre tanto em ratos (TRINKAUS, 2008) com em rãs (RADZIUKEVICH, 1995).
Em músculo sóleo desnervado, a mudança do padrão de ativação tônico de
baixa freqüência para pulsos fásicos de alta freqüência provocou aumento no
43
mRNA da AChE (TRINKAUS et al., 2008), mostrando o caráter reversível deste
mecanismo em função do padrão de ativação neural. Em rãs, o padrão de
ativação de fibras musculares tônicas depende da influência do sistema motor
tônico (RADZIUKEVICH, 1995). Evidências clínicas e experimentais indicam
que em situações de lesão nervosa periférica ocorrem mudanças na expressão
de diversos canais iônicos, principalmente em canais de sódio dependentes de
voltagem, e estas alterações desempenham importante papel na patogênese
da dor neuropática. Estas modificações ocasionam aumento na excitabilidade
nervosa (CUMMINS et al., 2007; AMIR et al., 2006). Assim, é possível que esta
maior excitação esteja contribuindo para as modificações na atividade da
AChE.
É preciso considerar ainda a possibilidade de que os resultados do
presente estudo também tenham decorrido das ações extrajuncionais da
AChE. A expressão das isoformas assimétricas na região extrajuncional é
exclusiva dos músculos lentos, pois nos músculos rápidos ela desaparece logo
após o amadurecimento muscular (SKETELJ, 1992). No músculo sóleo, 40%
da atividade total da AChE é derivada da região extrajuncional, diferentemente
dos músculos rápidos. O que determina essa diferença é a transcrição do
ColQ, molécula que é ligada à isoforma assimétrica da AChE presente em toda
a extensão da fibra muscular. Possivelmente a atividade extrajuncional da
AChE no músculo tibial posticus de rã, pode ser um mecanismo compensatório
para as alterações sofridas na região da junção neuromuscular.
Está demonstrado que a AChE é necessária para o desenvolvimento
normal do principal trato longitudinal do telencéfalo de Xenopus, sendo
necessária para o crescimento de neuritos (ANDERSON & KEY, 1999;
44
STERNFELD et al, 1998). Ela também promove a expansão de neuritos em
ratos (SOREQ, 2001). A isoforma AChE-R participa na promoção da extensão
destes neuritos, e está também diretamente ligada aos mecanismos de
proteção celular em situação de estresse agudo (SOREQ, 2001).
Possivelmente a AChE-R pode estar ativada em ratos e rãs como uma via de
proteção e promoção da regeneração nervosa. Desta forma, é possível que o
aumento observado na medula espinal após a secção do nervo ciático seja
consequência do papel da AChE durante o processo de reinervação, uma vez
que não foi impedido ou dificultado o processo de regeneração no presente
estudo. A inexistência de mudanças significativas na expressão desta enzima
pode ter decorrido da utilização de anticorpo para apenas uma isoforma da
AChE. Assim, é necessária a utilização de anticorpos para as diferentes
isoformas para esclarecimento desta questão.
Outro importante regulador da atividade neural e muscular da AChE é
o peptídeo relacionado ao gene da calcitonina (CGRP) (TSIM et al,2008). Foi
demonstrado que a secção do nervo ciático ocasiona respostas diferentes
entre rãs e ratos quanto ao padrão de imunorreatividade deste peptídeo na
medula espinal. Em rãs não foi alterado o padrão de distribuição,
diferentemente do que se observa na medula espinal de ratos (GUEDES,
2002). É possível que as diferenças entre rãs e ratos mostradas no presente
estudo estejam relacionadas também com estas diferenças.
A desnervação em ratos e rãs mostrou um decréscimo significativo na
atividade da AChE no músculo sóleo de rato, o que não foi observado no
músculo tibial posticus de rã. Possivelmente esta diferença esteja ligada às
diferenças no processo regenerativo destes animais. Quando analisamos
45
macroscopicamente a região da lesão nervosa foram constatadas algumas
diferenças em relação ao padrão temporal do processo regenerativo. Após 3
dias de lesão nas rãs, o coto proximal apresentava um neuroma bem
desenvolvido com alguns prolongamentos estabelecidos, e nos ratos este
mesmo padrão se tornou mais evidente somente após 10 dias de lesão. Essa
diferença na recuperação entre as espécies possivelmente tenha relação com
a atividade da AChE.
É preciso considerar ainda que os resultados de nosso estudo sejam
decorrentes da ativação de vias intracelulares envolvidas no processo de
regeneração nervosa. Em ratos, está demonstrado que a secção do nervo
ciático ocasiona ativação da via de sinalização da Akt (GUEDES, 2002), a qual
é um importante regulador da atividade da AChE (JIANG, 2007). A ativação
desta via está diretamente ligada à proteção das células contra a apoptose,
outra possibilidade a ser considerada é a participação de fatores neurotróficos.
Após a lesão ocorre a liberação de fatores neurotróficos que possuem
diferentes funções no processo regenerativo. O NGF é um importante fator
neurotrófico liberado pelo nervo motor que age na recuperação do nervo após
lesão axonal (JIANG, 2007), e é ativado pela via de sinalização da Akt (JIANG,
2007). Pelo fato da via da Akt estar ativada em ratos, e provavelmente de
forma similar em rãs, é possível que o NGF tenha sido ativado e tenha
participação nos resultados aqui apresentados.
Com base em nossos resultados e de sua relação com os dados da
literatura, fica evidente a necessidade da realização de estudos comparativos
enfocando o papel da AChE na injúria axonal periférica para melhor
compreensão do papel desta enzima sob uma análise evolutiva.
46
CONCLUSÃO
47
Conclui-se, a partir deste estudo, que a secção do nervo ciático
ocasiona aumento na atividade da AChE da medula de rã e rato. Esta situação
experimental foi capaz de reduzir a atividade desta enzima no músculo sóleo
de rato, mas não no tibial posticus de rã e no músculo gastrocnêmio de rã e
rato. Além disso, a secção nervosa periférica não induziu mudanças
significativas na expressão da AChE da medula espinal e nos diferentes
músculos esqueléticos. E a necessidade de uma abordagem funcional mais
detalhada dos efeitos da secção do nervo ciático sobre a atividade e expressão
da enzima AChE em tecido nervoso e muscular de rã e rato. Isto não apenas
para o entendimento de suas peculiaridades, mas também para a
compreensão de muitas questões ainda especulativas nos mamíferos, as quais
analisadas numa perspectiva evolutiva poderão ser esclarecidas. É indiscutível
a posição estratégica dos anfíbios na filogenia dos vertebrados, já que estes
animais foram os primeiros vertebrados a ocuparem a terra. Na literatura há
inúmeros exemplos mostrando que a identificação de similaridades e
diferenças na estrutura e função entre as espécies permite constatar que
algumas delas, de acordo com certas peculiaridades, possam servir como
modelo ideal para o estudo de processos fisiológicos básicos.
48
PERSPECTIVAS
49
Diante do que foi apresentado, surge a importância de analisar o efeito
da secção de nervo periférico sobre o padrão de imunorreatividade à AChE em
medula espinal de rãs e ratos, pois assim poderemos verificar se a mudança é
bilateral ou ipsilateral neste tecido. Além disso, é necessário determinar se esta
condição experimental modifica diferencialmente os subtipos da AChE nestas
espécies, pois as diferenças entre rãs e ratos podem ter decorrido de
modificações no padrão de atividade e/ou expressão destes diferentes subtipos
nestes vertebrados. Outra questão a ser analisada é os efeitos da secção
nervosa periférica sobre a atividade e/ou expressão de fatores neurotróficos em
rãs, cujos efeitos ainda permanecem desconhecidos e possíveis diferenças
nestes fatores poderão estar contribuindo para os resultados demonstrados em
nosso estudo. Estes conhecimentos trarão subsídios para o entendimento
evolutivo dos diversos papéis da AChE.
50
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