( PDF ) Condicionamento fisiológico em sementes de limão cravo e citrumelo "swingle"

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CONDICIONAMENTO FISIOLÓGICO EM

SEMENTES DE LIMÃO CRAVO E

CITRUMELO ‘SWINGLE’

ÍSIS BARRETO DANTAS

2009

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ÍSIS BARRETO DANTAS

CONDICIONAMENTO FISIOLÓGICO EM SEMENTES DE LIMÃO

CRAVO E CITRUMELO ‘SWINGLE’

Dissertação apresentada à Universidade Federal

de Lavras, como parte das exigências do

Programa de Pós-Graduação em Agronomia,

área de concentração Fitotecnia, para obtenção

do título de “Mestre”.

Orientador

Prof. Dr. Renato Mendes Guimarães

LAVRAS

MINAS GERAIS – BRASIL

2009

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Dantas, Ísis Barreto.

Condicinamento fisiológico em sementes de limão cravo e

citrumelo ‘Swingle’ / Ísis Barreto Dantas. – Lavras : UFLA, 2009.

123 p. : il.

Dissertação (Mestrado) – Universidade Federal de Lavras, 2009.

Orientador: Renato Mendes Guimarães.

Bibliografia.

1. Limão cravo. 2. Citrumelo ‘Swingle’. 3. Semente. 4.

Armazenamento. 5. Condicionamento fisiológico. I. Universidade

Federal de Lavras. II. Título.

CDD – 631.531

Ficha Catalográfica Preparada pela Divisão de Processos Técnicos da

Biblioteca Central da UFLA

ÍSIS BARRETO DANTAS

CONDICIONAMENTO FISIOLÓGICO EM SEMENTES DE LIMÃO

CRAVO E CITRUMELO ‘SWINGLE’

Dissertação apresentada à Universidade Federal

de Lavras, como parte das exigências do

Programa de Pós-Graduação em Agronomia,

área de concentração Fitotecnia, para obtenção

do título de “Mestre”.

APROVADA em 19 de Fevereiro de 2009

Prof. Dr. João Almir de Oliveira UFLA

Pesq. Antônio Rodrigues Vieira EPAMIG

Prof. Dr. Renato Mendes Guimarães

UFLA

(Orientador)

LAVRAS

MINAS GERAIS – BRASIL

A DEUS, por tudo.

Aos meus pais, Araken e Irene, por tanta dedicação e incentivo.

Aos meus irmãos Matheus e Clarissa, e meus cunhados Cristiane e

Allain, pelo apoio e amizade.

A minha madrinha, tia Yolanda, pelo exemplo de força e

superação.

Aos meus avós, Juca e Iracema, Manoel e Ubaldina (in

memorian).

A Frederico, pelo amor, carinho e paciência.

OFEREÇO.

Aos meus sobrinhos Arthur, Mariana e Pedro.

DEDICO.

AGRADECIMENTOS

À Universidade Federal de Lavras (UFLA) e seu Departamento de Agricultura,

pela oportunidade de realização do curso.

À Coordenadoria de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES),

ao Conselho Nacional de Pesquisa (CNPq) e à Fundação de Amparo à Pesquisa

do Estado de Minas Gerais (FAPEMIG) pela concessão de recursos para

execução do projeto.

À empresa CUTRALE e ao Antônio Ricardo, pela doação dos produtos

utilizados no experimento.

Ao Professor Renato Mendes Guimarães pela orientação, profissionalismo,

amizade e paciência.

Aos professores João Almir de Oliveira, Édila Vilela de Resende Von Pinho e

Maria Laene Moreira de Carvalho, pelos esclarecimentos e auxílio na execução

deste trabalho.

Ao pesquisador Antônio Vieira Rodrigues, pelos conselhos e amizade.

Aos funcionários do Laboratório de Sementes, Andréia, Elza, Dalva e Elenir,

pelo auxílio na execução dos experimentos e amizade.

Aos estagiários do Laboratório de Sementes e alunos da Iniciação Científica, em

especial a Michelle e Fernanda, por todo o auxílio e dedicação na execução do

experimento, além da amizade e do companheirismo.

Aos meus pais, Araken e Irene, pelo amor, incentivo e toda dedicação, e por

serem os meus exemplos de vida. Obrigada por tudo!

Aos meus irmãos e cunhados, Matheus e Cristiane e, Clarissa e Allain, pelo

carinho e pela motivação, além das grandes alegrias que me deram: Arthur,

Mariana e Pedro. Amo vocês!

A Frederico, pelo apoio, incentivo e ajuda, além de todo amor, carinho e

paciência.

A toda família Nani Guarieiro, por terem me recebido como parte da família,

torcendo sempre pelo meu sucesso, em especial a Getúlio e Elisabeth.

Aos meus eternos mestres e amigos, Renata, Marcelo e Arie, pelo incentivo,

dedicação, mas principalmente, pela amizade.

Aos amigos, que mesmo distante, torceram pela realização desse momento, em

especial Lara, Mimi, Allan, Nailson, Lucas, Lucrécio e Zezinho.

Aos amigos presentes, que fazem dos meus dias em Lavras mais alegres e

suaves, em especial Andréa, Dessa, Fran, Aline e Aline VIP.

Enfim, a todos que, direta ou indiretamente, contribuíram para a realização de

mais essa etapa.

MUITO OBRIGADA!

SUMÁRIO

Página

RESUMO ...................................................................................................... i

ABSTRACT .............................................................................................. iii

1 INTRODUÇÃO ...................................................................................... 01

2 REFERENCIAL TEÓRICO ................................................................... 03

2.1 Origem dos citros.................................................................................. 03

2.2 Porta-enxertos no Brasil........................................................................ 04

2.3 Qualidade de sementes.......................................................................... 06

2.4 Armazenamento de sementes................................................................ 08

2.5 Atividade enzimática e protéica............................................................ 11

2.6 Tecnologia de preparo de sementes em citros ...................................... 14

2.7 Condicionamento osmótico .................................................................. 17

2.8 Benefícios do condicionamento osmótico ............................................ 20

3 MATERIAL E MÉTODOS..................................................................... 22

3.1 Tratamento químico.............................................................................. 22

3.2 Determinação do teor de água .............................................................. 23

3.3 Condicionamento osmótico .................................................................. 23

3.4 Teste de germinação ............................................................................. 23

3.5 Teste de emergência em bandeja .......................................................... 24

3.6 Condutividade elétrica .......................................................................... 24

3.7 Avaliações moleculares ........................................................................ 25

3.7.1 Preparo do material para análise eletroforética.................................. 25

3.7.2 Extração de enzimas e análise eletroforética ..................................... 25

3.8 Procedimentos estatísticos .................................................................... 27

4 RESULTADOS E DISCUSSÃO............................................................. 27

4.1 Ensaio 1: Condicionamento osmótico em sementes armazenadas de

limão cravo. ................................................................................................ 27

4.1.1 Determinação do grau de umidade .................................................... 28

4.1.2 Teste de germinação .......................................................................... 30

4.1.3 Índice de velocidade de germinação (IVG) ....................................... 34

4.1.4 Teste de emergência em bandeja ....................................................... 38

4.1.5 Índice de velocidade de emergência .................................................. 42

4.1.6 Condutividade elétrica ....................................................................... 45

4.1.7 Análise da atividade enzimática......................................................... 50

4.2 Ensaio 2: Condicionamento osmótico em sementes armazenadas

citrumelo ‘Swingle’. ................................................................................... 60

4.2.1 Determinação do grau de umidade .................................................... 60

4.2.2 Teste de germinação .......................................................................... 62

4.2.3 Índice de velocidade de germinação (IVG) ....................................... 66

4.2.4 Teste de emergência em bandeja ....................................................... 70

4.2.5 Índice de velocidade de emergência .................................................. 73

4.2.6 Condutividade elétrica ....................................................................... 76

4.2.7 Análise da atividade enzimática......................................................... 80

5 CONSIDERAÇÕES FINAIS .................................................................. 90

6 CONCLUSÕES ....................................................................................... 91

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS ....................................................... 92

ANEXOS .................................................................................................. 105

RESUMO

DANTAS, Ísis Barreto. Condicionamento fisiológico em sementes de limão

cravo e citrumelo ‘Swingle’. 2009. 123 p. Dissertação (Mestrado em

Agronomia) – Universidade Federal de Lavras, Lavras, MG.

Vários mecanismos têm sido utilizados para que sementes de citros

possuam uma germinação rápida e tenham uniformidade de plantas, tais como a

embebição em água, condicionamento osmótico e beneficiamento de sementes.

Neste trabalho teve-se por objetivo avaliar metodologias de condicionamento

osmótico no desempenho fisiológico em sementes de limão cravo e citrumelo

‘Swingle’. O experimento foi conduzido no Laboratório de Análise de Sementes

do Departamento de Agricultura da Universidade Federal de Lavras, Minas

Gerais. Foram utilizadas sementes de limão cravo (Citrus limonia Osbeck) e

citrumelo ‘Swingle’ (Citrus paradisi Macfad. cv. Duncan x Poncirus trifoliata

(L.) Raf., adquiridas com produtores do Estado de São Paulo, através da empresa

CUTRALE

. As sementes foram tratadas com Captan+Tecto 600 (30g+10g/20l

de semente) e armazenadas em câmara fria (10 ºC e 50% UR), sem secagem, por

3, 6 e 9 meses. Após cada período de armazenamento, as sementes foram

submetidas ao condicionamento por imersão em solução aerada de

Polietilenoglicol (PEG 6000), nitrato de potássio (KNO

) e combinação de 70%

de PEG e 30% de KNO

, com potencial osmótico de -1,1MPa, nos períodos de

3, 6, 9 e 12 dias, com um tratamento controle (sementes secas). O

osmocondicionamento foi realizado em câmaras BOD, a 25ºC e na presença de

luz. Após cada período de embebição estabelecido, amostras foram retiradas,

lavadas em água corrente e avaliadas por meio dos testes de germinação, índice

de velocidade de germinação (IVG), emergência em bandeja, índice de

velocidade de emergência (IVE), condutividade elétrica e atividade enzimática e

protéica (ADH, MDH, SOD, PO, EST, CAT e LEA proteína). O

condicionamento fisiológico em solução aerada de PEG 6000, independente do

período de embebição, ou em solução de KNO

ou PEG 6000 + KNO

, por até 9

dias, é eficiente para melhorar o desempenho fisiológico de sementes de limão

cravo, armazenadas por até 3 meses. Condicionamento em solução contendo

PEG 6000 ou KNO

, por 6 dias, aumentou a porcentagem de germinação em

sementes não armazenadas de citrumelo ‘Swingle’. Já depois de armazenadas

por até 3 meses, os tratamentos mais eficientes foram condicionamento em PEG

6000, por 6 dias, ou em KNO

, com período de 6 a 12 dias de embebição.

_________________________

* Comitê Orientador: Dr. Renato Mendes Guimarães – UFLA (Orientador) e

Profª. Drª. Édila Vilela de Rezende Von Pinho – UFLA.

As enzimas superóxido dismutase (SOD), malato desidrogenase (MDH) e álcool

desidrogenase (ADH) são as mais eficientes para avaliar alterações devidas ao

condicionamento tanto em sementes de limão cravo, quanto de citrumelo

Swingle. Sendo assim, o condicionamento fisiológico de sementes é uma técnica

promissora para melhorar a qualidade fisiológica de sementes de limão cravo e

citrumelo ‘Swingle’.

iii

ABSTRACT

DANTAS, Ísis Barreto. Physiological conditioning in rangpur lemon and

citrumelo ‘Swingle’ seeds. 2009. 123 p. Dissertation (Master in Agronomy) -

Federal University of Lavras, Lavras, MG.

Many mechanisms have been used for that citrus seeds germinate faster

and with uniformity, such as water embibition, osmotic conditioning and seed

standardization. In this work the objective was evaluate osmotic conditioning

methodologies in physiological performance for rangpur lime and ‘Swingle’

citrumelo seeds. The experiment was lead in the Laboratory of Seeds Analysis

of the Department of Agriculture of the Federal University of Lavras, Minas

Gerais. Rangpur lemon (limonia Citrus Osbeck) and ‘Swingle’ citrumelo (Citrus

paradisi Macfad. cv. Duncan x Poncirus trifoliata (L.)) Raf. seeds, received from

the interprise CUTRALE

, were used. Seeds were treated with Captan+Tecto

600 (30g+10g/20l of seed) and stored in cold chamber (10 ºC e 50% UR),

without drying, for 3, 6 and 9 months. After each period of storage, seeds were

submitted to osmotic conditioning for immersion in airy solution of

Poliethylenoglicol (PEG 6000), potassium nitrate (KNO

) and combination of

70% of PEG and 30% of KNO

, with osmotic potential of -1,1MPa, in the

periods of 3, 6, 9 and 12 days, with a controlled treatment (dry seeds). The

osmoconditioning was carried through in chambers BOD, at 25ºC, in the light

presence. After each period of established embibition, samples were removed,

washed in current water and evaluated by germination tests, index of

germination speed (IVG), emergency in tray, index of emergency speed (IVE),

electrical condutivity and enzyme and proteic activity (ADH, MDH, SOD, PO,

EST, CAT and LEA protein). Physiological conditioning in airy PEG 6000

solution, independent of the embibition period, or in KNO

or PEG 6000 +

KNO

solution, for up to 9 days, is efficient to improve physiological seeds

performance, stored for until 3 months, of rangpur lemon. For citrumelo

‘Swingle’ seeds that were not stored, conditioning in solution containing PEG

6000 or KNO

, for 6 days, increased germination percentage. After 3 months

stores, the most efficient treatments were conditioning in PEG 6000, for 6 days,

or in KNO

, in a embibition period from 6 to 12 days.

___________________________

* Guidance Committee: Dr. Renato Mendes Guimarães – UFLA (Major

Professor) e Profª. Drª. Édila Vilela de Rezende Von

Pinho – UFLA.

The most eficcient enzymes used to evaluate changes due to conditioning were

superoxide dismutase, malate desidrogenase and alcohol desidrogenase, for

rangpur lemon such as for ‘Swingle’ citrumelo. Seeds physiological

conditioning is a promising technique to improve physiological quality of

rangpur lemon and citrumelo ‘Swingle’ seeds.

1 INTRODUÇÃO

Um dos focos principais da citricultura nacional é a obtenção de plantas

matrizes certificadas, que permitam aos citricultores dispor de material com

comprovada autenticidade varietal, isento de patógenos e produção de mudas

vigorosas e sadias. Para esses objetivos, busca-se atualmente a formação de

mudas em ambientes protegidos, utilizando sementes oriundas de plantas sadias

e borbulhas de origem conhecida (Jabur & Martins, 2002).

A produção mundial de citros é de aproximadamente 102 milhões t por

ano, e é oriunda de extensa área cultivada, com 7,3 milhões ha, que supera em

grande parte outras fruteiras tropicais e subtropicais como banana, maçã, manga,

pêra, pêssego e mamão. Os maiores produtores de laranjas são o Brasil e os

Estados Unidos, que juntos representam aproximadamente de 45% do total

mundial (Pompeu Júnior et al., 2005). Destacam-se ainda nesse panorama África

do Sul, Espanha e Israel, com a produção de laranjas para o mercado in natura e

tangerinas, e o México, com a lima ácida Tahiti, além dos novos parques

citrícolas emergentes na Ásia, como a China.

No Brasil, a produção de citros ocorre principalmente no Estado de São

Paulo, onde se encontram aproximadamente de 85% da produção brasileira de

laranjas (14,8 milhões t; 700 mil ha); também, na ordem de aproximadamente

1,5 milhão t, destaca-se a produção de Tahiti e tangerinas, como a Ponkan e o

tangor Murcott (Graf, 2008). Outros estados como Bahia, Minas Gerais, Pará,

Paraná e Rio Grande do Sul contribuem para o agronegócio dos citros com a

produção, principalmente, de laranjas, tangerinas e Tahiti.

Dentro do contexto atual, a utilização de mudas sadias e certificadas vem

tornando-se um fator obrigatório, em face da necessidade de formação de

pomares com altas tecnologias com potencial para produtividades e custos de

produção competitivos no mercado mundial. Na fase de produção da muda

cítrica, a produção de porta enxerto é responsável por cerca de 60% do tempo

demandado e entre os fatores responsáveis por essa demora, encontram-se o

período de germinação das sementes, que pode chegar a 60 dias ou mais,

dependendo do porta-enxerto usado, bem como a desuniformidade entre as

plântulas, que é atribuída à desuniformidade no vigor das sementes.

O híbrido citrumelo ‘Swingle’ atualmente ocupa a segunda posição na

utilização como porta enxerto de todas as plantas cítricas do país, perfazendo

pouco mais de 23% das propagações (Graf, 2008). O limão cravo, entretanto,

continua prevalecendo, com pouco mais de 57% das mudas produzidas.

Uma alternativa, que tem sido empregada para promover uma

germinação uniforme e rápida em sementes é o condicionamento osmótico em

sementes (Roveri José, 1999; Guimarães, 2000). Nesse tratamento as sementes

são hidratadas até uma fase anterior à protrusão das radículas, e em seguida,

secas e armazenadas sob condições para sua preservação. No entanto, para

citros, existem poucos relatos usando esta metodologia, que em termos de custo,

algumas vezes é mais barata que a utilização de certos hormônios como ácido

giberélico, que tem sido empregado visando reduzir o tempo de germinação. É

importante, portanto, o desenvolvimento de pesquisas no sentido de verificar a

possibilidade da adequação dessa técnica, que potencialmente pode contribuir

para a produção de mudas cítricas de alta qualidade.

Sendo assim, neste trabalho teve-se por objetivo avaliar metodologias de

condicionamento osmótico no desempenho fisiológico e mudanças bioquímicas

em sementes de limão cravo e citrumelo ‘Swingle’.

2 REFERENCIAL TEÓRICO

2.1 Origem dos citros

O gênero Citrus é nativo da região Sudeste do continente Asiático, com

ramos fitogenéticos que se estendem do centro da China até o Japão, e do Leste

da Índia à Nova Guiné, Austrália e África tropical (Swingle & Reece, 1967).

Os citros compreendem um grande grupo de plantas do gênero Citrus e

outros gêneros afins (Fortunella e Poncirus) ou híbridos, da família Rutaceae,

representado na maioria por laranjas, tangerinas, limões, limas (ácidas e doces),

pomelos, cidras e toranjas (Webber, 1967). São plantas perenes, com

características mesofíticas (gemas quase desnudas, folhas largas, pouco

espessas, com estômatos superficiais, ausência de pêlos e cutícula fina) e

perenifólia (tem folhas o ano todo, desenvolvendo fluxos de crescimento

vegetativo na primavera e verão). São cultivadas em várias regiões do mundo,

adaptando-se a diferentes condições edafoclimáticas, garantindo-se o manejo

adequado da irrigação e nutrição dos pomares (Spiegel-Roy & Goldschimidt,

1996).

O primeiro fruto a ser conhecido pelas civilizações européias foi a cidra

(C. medica L.), seguida pela laranja azeda (C. auritanium L.), limão (C. limon

Burmann) e laranja doce (C. sinensis Osbeck) (Webber et al., 1967). A

introdução do citros no restante do globo, incluindo as Américas, Sul da África e

Austrália, foi realizada pela expansão colonial européia. Todas as espécies de

Citrus economicamente importantes foram originadas no continente asiático,

com exceção do pomelo (C. paradisi Macfadyen), que provavelmente surgiu

como híbrido natural em Barbados, na América Central, após a introdução da

toranja e da laranja doce pelos colonizadores europeus (Alves & Melo, 2001).

As plantas cítricas são cultivadas em um faixa no globo compreendida

entre os paralelos 35º N e 35º S. Entretanto, as principais áreas produtoras

concentram-se em regiões subtropicais, em latitudes superiores a 20º N ou 20º S

(Davies & Albrigo, 1994).

2.2 Porta-enxertos no Brasil

De 1540, quando o citros foi introduzido no Brasil por colonizadores

portugueses até o final do século 19, as plantas eram propagadas por sementes

(Pompeu Júnior, 1991). Com o avanço da indústria cítrica, no início do século

20, começou-se a utilização de árvores enxertadas, sendo a mais utilizada a

laranja Caipira (Citrus sinensis L. Osbeck). Devido à baixa resistência à gomose

e à seca, a laranja Caipira foi substituída pela laranja Azeda (Citrus auritanium),

que se tornou o mais importante porta-enxerto até a década de 40, com 90% das

copas enxertadas (Pompeu Júnior, 2001).

Em 1937, com o vírus da tristeza dos citros (CTV) e a sua rápida

disseminação pelo pulgão preto (Toxoptera citricidus Kirk.), houve a morte de

árvores com porta-enxerto de laranja azeda e Lima da Pérsia, que eram

tolerantes ao vírus. Pesquisas realizadas no IAC (Instituto Agronômico de

Campinas), juntamente com a USDA (Departamento de Agricultura dos Estados

Unidos), permitiram a renovação da citricultura brasileira com os porta-enxertos

do limão Cravo (Citrus limonia Osbeck), da tangerina Cleópatra (C. reshni Hort.

Ex Tanaka), do limão Rugoso (Citrus jambhiri Lush.) e do citrange Troyer

(Poncirus trifoliata L. Rafinesque x Citrus sinensis L. Osbeck) (Pompeu Júnior,

1991; 2001).

Nos anos 60, o porta-enxerto mais utilizado foi o limão Cravo, por ser

tolerante ao vírus da tristeza e à seca. Na década de 70, o declínio dos citros,

doença de etiologia desconhecida, tornou-se um problema sério nos pomares

devido ao limão Cravo ser suscetível à doença (Grosser & Gmitter Junior, 1990).

A intolerância do limão Cravo ao declínio causou uma pequena diversificação

de porta-enxertos utilizados no Brasil. A tangerina Cleópatra, o limão

Volkameriano (C. volkameriana Tan. e Pasq.), a tangerina Sunky (C. sunky

Hort.) e, no início dos anos 90, o citrumelo Swingle (C. paradisi Marc. x

Poncirus trifoliata L. Raf.) se mostraram boas alternativas para essa

diversificação (Pompeu Júnior, 2001).

Com o surgimento da morte súbita dos citros (MSC), anomalia que afeta

principalmente combinações de laranjeiras doces com o limoeiro Cravo, faz-se

necessário o uso de outros porta-enxertos, que toleram o problema, tais como as

tangerinas Cleópatra e Sunki, o citrumelo Swingle, o Poncirus trifoliata

(trifoliata) e o limão Volkameriano. Outros porta-enxertos, ainda em fase de

avaliação experimental, poderão se constituir em alternativas ao Cravo (Sutchi,

2002).

Sutchi (2002) reuniu resultados sobre resistência à seca dos porta-

enxertos de citros e verificou que o limão Cravo, entre os porta-enxertos

avaliados, apresentou-se mais resistentes à seca, seguido pelo limão

Volkameriano, tangerina Sunki, Citrumelo ‘Swingle’ e tangerina Cleópatra,

respectivamente.

O híbrido citrumelo ‘Swingle’, cuja denominação inicial era CPB 4475,

obtido na Flórida no ano de 1907 pelo cientista W. T. Swingle, não apresentou

qualquer qualidade do fruto para o consumo humano e a partir dos anos 40

começou a ser testado como porta-enxerto pelos pesquisadores. É tolerante a

doenças como, a tristeza, exocorte, xiloporose e também a gomose. Pode

apresentar incompatibilidade com algumas copas, mas os frutos das copas nele

enxertadas, quando compatíveis são de ótima qualidade (Rose, 1990). Os frutos

de citrumelo ’Swingle’ têm em média 20 sementes/fruto com alta taxa de

embrionia nucelar e apenas 10 a 15% de plantas zigóticas (Grant et al., 1961).

As cultivares enxertadas em citrumelo ‘Swingle’ produzem frutos de

qualidade superior àqueles obtidos sobre os limões cravo e volkameriano

(Pompeu Júnior, 2005). A escolha de um porta-enxerto adequado pode propiciar

frutos de melhor qualidade, que atendam às exigências internacionais para

exportação de frutas frescas, propiciar frutos de tamanho maior ou em épocas

em que geralmente os preços no mercado interno são melhores e, finalmente

pode ainda colaborar com as indústrias processadoras de suco, com frutos com

maiores teores de suco e sólidos solúveis totais (Carlos et al., 1997).

2.3 Qualidade das sementes

A obtenção de sementes de alta qualidade representa a meta prioritária

dentro do processo de produção, pois de um modo geral, a germinação e a

emergência das plântulas são reflexos da qualidade fisiológica. A causa das

falhas de germinação, ou mesmo da redução da velocidade de emergência,

freqüentemente é atribuída ao baixo vigor, associado ao processo de

deterioração (Rossetto, 1997 ).

O desempenho das sementes é determinado rotineiramente pelo teste

padrão de germinação. Porém, nota-se que há algum tempo, pesquisadores,

produtores de sementes e agricultores, não têm se mostrado satisfeitos com o uso

exclusivo de informações fornecidas por esse teste que identifica o potencial

fisiológico das sementes, sob condições determinadas. As condições ambientais

exercem influência acentuada sobre a manifestação do potencial fisiológico das

sementes e, portanto, se a semeadura for realizada em condições ambientais

desfavoráveis, a emergência de plântulas normais pode ser inferior à

determinada em laboratório (Miguel et al., 2002).

A temperatura e umidade relativa do ar são os principais fatores que

influenciam na qualidade fisiológica da semente, em particular o vigor, durante

o armazenamento. A umidade relativa do ar tem relação com o teor de umidade

das sementes, além de controlar a ocorrência dos diferentes processos

metabólicos que ela pode sofrer, enquanto a temperatura influencia a velocidade

dos processos bioquímicos e interfere indiretamente no teor de água das

sementes. Dessa forma, as melhores condições para a manutenção da qualidade

da semente são baixa umidade relativa do ar e baixa temperatura, em que se

mantêm o embrião em sua mais baixa atividade metabólica (Carvalho &

Nakagawa, 2000).

Portanto, há necessidade da inclusão de testes, em programas de controle

de qualidade, que permitam, pelo menos, identificar diferenças no potencial

fisiológico de lotes com alta germinação e/ou viabilidade, além de detectar

possíveis diferenças no potencial de desempenho entre lotes com germinação ou

viabilidade semelhantes. Nesse sentido, os testes de vigor, têm se constituído em

ferramentas de usos cada vez mais rotineiros, pela indústria de sementes e por

pesquisadores (Miguel et al., 2002).

Segundo Eira & Marcos Filho (1990), um dos sintomas do declínio da

qualidade fisiológica é a redução da velocidade de germinação, representada

pelo aumento do período decorrido entre a germinação da primeira e da última

semente de um lote, e consequentemente, pela desuniformidade de

desenvolvimento entre as plântulas.

A semeadura sob condições ambientais adversas, como altas

temperaturas e déficit hídrico do solo, somadas a baixa qualidade de sementes

utilizadas no plantio, pode resultar em baixa porcentagem de germinação e

menor velocidade de emergência das plântulas, permanecendo as sementes por

mais tempo expostas as condições desfavoráveis (Bewley & Black, 1994).

Para espécies de ciclo curto, o período compreendido entre a semeadura

e a emergência das plântulas representa uma fase crítica para o cultivo, de modo

que, a uniformidade e a porcentagem de emergência de plântulas assumem

importância na produção e na qualidade do produto obtido (Eira & Marcos

Filho, 1990).

Um dos fatores que pode constituir em causa adicional à redução da

emergência das plântulas, é a embebição rápida das sementes, pois é a

velocidade de reorganização do sistema de membranas que reflete o vigor das

mesmas (Tilden & West, 1995, citado por Rossetto, 1997 ).

A qualidade fisiológica das sementes exerce fundamental importância na

germinação e na emergência em solo. A condutividade elétrica tem sido

proposta como um teste para avaliar o vigor das sementes, visto que o valor

desta é função da quantidade de lixiviados liberados durante a embebição das

sementes, estando diretamente relacionada com a integridade das membranas

celulares (Matheus & Powel, 1981; AOSA, 1983; Marcos Filho et al., 1987,

citados por Voll et al., 2003).

Os resultados da condutividade elétrica podem ser influenciados por

vários fatores, como: presença de danos físicos, tamanho da semente, genótipo

de uma mesma espécie, teor de água inicial das sementes, período de embebição

e temperatura de embebição (Vieira, 2002).

Dentre os fatores citados, o teor de água das sementes por ocasião da

realização da condutividade elétrica é de extrema importância na padronização

do teste, bem como, na obtenção de resultados uniformes entre laboratórios e

dentro de um mesmo laboratório. Dependendo da espécie, da região de

produção, da época de colheita, da eficiência da secagem e do ambiente, pode

ser encontrada uma amplitude de variação muito grande entre os valores (Vieira,

2002).

2.4 Armazenamento de sementes

Nas espécies recalcitrantes é muito difícil manter a qualidade das

sementes durante o armazenamento, pois as próprias sementes são muito

variáveis em umidade, tamanho e viabilidade, além da falta de conhecimento de

mecanismos básicos de comportamento desse grupo de sementes (Basra, 1995)

Segundo Delouche & Baskin (1973), a deterioração de sementes pode

ser caracterizada como um processo inevitável, sendo, no entanto, possível

retardar a taxa de deterioração por meio de práticas que conduzam a um ótimo

armazenamento.

O armazenamento engloba vários procedimentos voltados à preservação

da qualidade das sementes, no intuito de proporcionar um ambiente nos quais

mudanças fisiológicas e bioquímicas sejam mantidas em um nível aceitável.

Entretanto, uma das principais dificuldades mesmo em períodos curtos, é que a

condição de alta umidade relativa necessária para prolongar a vida de

armazenamento das sementes recalcitrantes são também favoráveis à

proliferação de microrganismos (Berjak & Pammenter, 1996).

Vale ressaltar que o processo de deterioração é inevitável, mesmo em

condições artificialmente adequadas e que a qualidade das sementes não melhora

durante o armazenamento, sendo fundamental a qualidade inicial do lote.

O comportamento das sementes durante o armazenamento varia em

função da temperatura, umidade relativa do ar, grau de umidade das sementes e

o tipo de embalagem utilizada.

As técnicas de armazenagem naturalmente usadas para sementes

recalcitrantes podem ser agrupadas em quatro tipos principais, armazenagem

úmida ou embebida, técnicas de dessecação parcial, armazenagem em atmosfera

controlada e armazenagem criogênica. Salienta-se ainda que a conservação das

sementes pós-colheita é influenciada pela sua qualidade inicial, pelo ambiente

do armazém (Carvalho & Nakagawa, 2000), pelo teor de água da semente

(Delouche & Baskin, 1973) e pela presença de microrganismos.

Mesmo quando a umidade for mantida em nível adequado durante o

armazenamento, a longevidade da semente é curta, variando de acordo com a

espécie, podendo ser de algumas semanas até alguns meses (King & Roberts,

1980).

A longevidade corresponde ao período em que as sementes se mantêm

vivas sendo capazes de germinar quando colocadas em condições favoráveis

(Toledo & Marcos Filho, 1977). A curta longevidade das sementes recalcitrantes

restringe o período de sua utilização, sendo necessária a semeadura

imediatamente após seu desprendimento da planta mãe.

A respiração é um processo que continua mesmo após as sementes terem

sido colhidas. Esse fenômeno é necessário para que a semente se mantenha viva.

Quando armazenadas o processo respiratório deve ser mantido a um nível tão

baixo quanto possível para que haja uma melhor conservação, sendo impossível

em sementes recalcitrantes uma vez que não toleram dessecação e devem ser

mantidas com alto teor de água.

Nas sementes úmidas, a respiração que ocorre é devido principalmente

aos fungos presentes (Castro et al., 1998), pois esse alto teor de água, favorece o

aparecimento de microrganismos, provocando a deterioração durante o

armazenamento a qual envolve uma série de alterações fisiológicas, bioquímicas

e físicas que eventualmente causam a morte das sementes.

A qualidade fisiológica é adquirida durante os processos de

desenvolvimento e pode ser perdida por processos deteriorativos, que podem

iniciar ainda nessa fase. Quando as sementes deterioram, elas perdem vigor

progressivamente, apresentando redução na velocidade e uniformidade de

emergência, menor resistência a condições adversas, decréscimo na proporção

de plântulas normais e, finalmente, perdem a viabilidade ou capacidade de

germinar (Halmer & Bewley, 1984).

Dentre as principais alterações envolvidas na deterioração, destacam-se o

esgotamento das reservas; a alteração da composição química, como oxidação

dos lipídios, das enzimas envolvidas na deterioração de sementes e a quebra

parcial das proteínas; a alteração nas membranas celulares, com redução da

integridade, aumento da permeabilidade e desorganização das membranas

celulares. Embora a deterioração progrida com a elevação do grau de umidade

das sementes, os mecanismos celulares funcionais de reparo são mantidos pelo

metabolismo durante a respiração aeróbica (Ibrahim & Roberts, 1983).

A perda da viabilidade das sementes no processo de deterioração é

precedida por redução na capacidade de sintetizar proteínas devido ao declínio

de componentes como ribossomos, RNA mensageiro e alterações em nível de

transcrição e tradução com o envelhecimento das sementes (Vieira, 2002) e à

degradação de macromoléculas, tais como: proteínas, lipídios, ácidos nucléicos

e, consequentemente, à diminuição de atividades bioquímicas de sementes

(Coolbear, 1995).

Com o envelhecimento das sementes, as membranas se tornam fracas, as

enzimas perdem a atividade catalítica e os cromossomos acumulam mutações.

Muitas mudanças bioquímicas ocorrem nas sementes que estão deteriorando,

sendo difícil discriminar entre os eventos primários e secundários.

2.5 Atividade enzimática e protéica

O mecanismo de degradação de membranas e macromoléculas durante o

envelhecimento tem sido objeto de pesquisas nas últimas décadas. Uma

variedade de oxidações enzimáticas e espontâneas pode ocorrer para gerar

radicais livres, que podem causar a destruição de grandes polímeros, incluindo

os lipídios de membranas.

Pesquisadores têm demonstrado que proteínas e enzimas podem ser bons

marcadores do estádio de deterioração em sementes por meio das variações

eletroforéticas.

As superóxidos dismutase são um grupo de enzimas encontradas no

citoplasma celular e matriz mitocondrial. Catalisam a reação de dismutação de

radicais superóxidos livres (O

) produzidos em diferentes locais na célula, para

oxigênio molecular (O

) e peróxido de hidrogênio (H

) (Scandálios 1993). De

acordo com Halliwell & Gutteridge (1989), a SOD exerce um importante papel

em proteger a célula contra os efeitos deletérios de radicais superóxidos livres,

sendo considerada chave na regulação de concentrações intracelulares de

radicais superóxidos e peróxidos.

O principal papel da SOD é transformar o superóxido em peróxido de

hidrogênio cujo composto é muito menos reativo, porém o acúmulo de peróxido

na célula também é tóxico a ela, podendo levá-la a morte, principalmente na

presença de ferro (Eaton, 1991).

Para reduzir e efeito fitotóxico do peróxido de hidrogênio na célula, as

enzimas catalase e peroxidase começam a atuar. A catalase é uma enzima capaz

de realizar a desintoxicação de (O

) e H

(McDonald, 1999; Bailly et al.,

1996). Está presente nos peroxissomas das células, decompondo o peróxido de

hidrogênio em oxigênio molecular e água sem a produção de radicais livres. Em

outros compartimentos como no citosol e na matriz mitocondrial o peróxido de

hidrogênio é removido pelas peroxidases (McDonald, 1999).

Existem estudos que demonstram a correlação entre a perda da

viabilidade das sementes e queda na atividade dessa enzima.

A enzima esterase está envolvida em reações de hidrólise de ésteres. Este

grupo de enzimas hidrolíticas libera ácidos graxos dos lipídios, os quais são

usados na β-oxidação, como fonte de energia para os eventos germinativos.

Enquanto muitos desses lipídios são provenientes de lipossomos, alguns são

constituintes de membranas, cuja degradação aumenta com a deterioração.

Santos et al., (2004) observaram aumento na atividade de esterase durante o

armazenamento de sementes de feijão, sendo o aumento mais expressivo na

cultivar de menor qualidade fisiológica.

Aung & McDonald (1995), avaliando a atividade de esterase durante a

deterioração de sementes de amendoim, observaram um decréscimo na sua

atividade total, com o aumento de deterioração tanto em sementes embebidas

como nas não embebidas.

A enzima malato desidrogenase (MDH) apresenta importantes funções

fisiológicas dentro da célula, como enzima do ciclo de Krebs, além de atuar

como papel central na maioria das rotas bioquímicas da célula. A enzima MDH

exibe poucas mudanças qualitativas durante o curso de desenvolvimento de um

organismo. Essas enzimas são encontradas em associação a uma grande

quantidade de organelas subcelulares apresentando diferenças na regulação da

atividade em vários sítios (Scandalios, 1974). Por se tratar de uma enzima

importante na respiração, o aumento do número e ou intensidade de coloração de

bandas em sementes submetidas a períodos longos de armazenamento, pode ser

em função do aumento da respiração que ocorre em sementes que se encontram

em processo de deterioração avançado, uma vez que enzimas envolvidas na

respiração podem ser ativadas em sementes de qualidade reduzida (Shatters et

al., 1994).

Embora a função de proteínas lea ainda não esteja bem esclarecida, sua

estabilidade, afinidade com moléculas de água e abundância em organismos que

toleram a desidratação, sugerem a importância de seu papel para a aquisição de

tolerância à dessecação (Blackman et al., 1991). Proteínas lea, moduladas por

ácido abscísico, acumulam em embriões de sementes de milho e cevada, durante

os estádios mais tardios do desenvolvimento, em fase correspondente à

aquisição de tolerância à dessecação (Bostock & Quatrano, citados por Leprince

et al., 1993), e a sua expressão cessa rapidamente após embebição (Blackman et

al., 1991). Segundo Thomann et al. (1992), proteínas lea, moduladas por ABA,

acumulam em embriões de sementes de milho, durante a secagem lenta, em fase

correspondente à aquisição de tolerância à dessecação. Wolkers et al. (1998)

observaram que embriões imaturos de milho, tolerantes à dessecação,

submetidos à secagem lenta, apresentam padrões de proteínas semelhantes aos

das proteinas lea presentes em sementes maduras e tolerantes à dessecação.

Primeiramente descobertas em embriões de algodão, as proteínas lea

foram detectadas em várias outras espécies, como ervilha, soja, colza, cenoura,

mamona, Arabdopsis, beterraba (Blackman et al., 1995), em estádios tolerantes à

dessecação, durante o desenvolvimento das sementes ou após o início de

embebição.

Sementes de milho apresentam redução gradativa da sensibilidade à

dessecação após a maturidade e, quando submetidas a uma secagem prévia em

baixa temperatura (35ºC), adquirem tolerância à secagem a 50ºC (Rosa, 2000).

Nessas sementes ocorreu indução de tolerância à alta temperatura, em

decorrência da ativação de mecanismos de defesa contra os efeitos danosos da

retirada de água. Mao et al. (1995) verificaram que mutantes de milho,

intolerantes à dessecação e que não produzem ácido abscísico e nem proteínas

lea após a imposição do estresse de água, o fazem em resposta à aplicação

exógena do ácido abscísico.

2.6 Tecnologia de preparo de sementes em citros

A formação de porta-enxertos cítricos, em sua grande maioria é feita

através da propagação por sementes. Devido ao longo período de germinação,

durando de 15 até 60 dias ou mais, a depender da espécie, as plântulas no viveiro

possuem variação no seu tamanho (Cohen, 1956; Monselise, 1962; Platt &

Optiz, 1973; Fucik, 1978; Mobayen, 1980). Esta variação é indesejável,

complicando e aumentando a quantidade de operações de manuseio requeridas

pelas plântulas no viveiro, fatores estes que aumentam os custos de produção.

Comercialmente, variações entre tamanho de plântulas são usualmente reduzidas

com transplante para a bandeja, havendo um descarte de 50% das plântulas

(Chilembwe et al., 1992).

A semente cítrica possui elevado conteúdo lipídico sendo sensível à

secagem excessiva. Morfologicamente possui 2 camadas protetoras, a mais

externa, denominada testa, é rígida e lenhosa, de coloração branco-creme. A

camada mais interna denominada tegumento (tegma) constitui-se de uma fina

membrana cuja formação é originária essencialmente do integumento

intermediário do óvulo e também contém tecidos remanescentes do nucelo sendo

que a cor varia de vermelho púrpuro ao marrom (Queiroz et al., 2005).

Das 9 espécies de citrus cultivados, sete são poliembriônicas, e

apresentam apomixia facultativa ou seja as sementes possuem tanto embriões

zigóticos ou sexual diferentes da planta mãe como apomíticos ou nucelares,

idênticos a planta mãe (Queiroz et al., 2005). Essa poliembrionia é um fenômeno

comum em muitas espécies cítricas, sendo a maioria desses embriões de origem

nucelar (apogâmicos).

O número de embriões contidos numa semente é influenciado também

pela cultivar, pelo estado nutritivo do fruto, pelos fatores ambientais e pelo clone

polinizador (Soares Filho et al., 1995). Nos programas de melhoramento

genético de citros têm-se a poliembrionia como um obstáculo à criação

intencional de novas variedades (Soares Filho et al., 2000).

A germinação das sementes é do tipo hipógea (Spiegel Roy &

Goldschmidt, 1996), é lenta podendo chegar até 60 dias para a estabilização do

estande em viveiro.

Para se alcançar uma germinação rápida e uniformidade das sementes,

vários tratamentos têm sido utilizados, sendo a técnica de remoção do tegumento

a mais promissora (Cohen, 1956; Monselise, 1959; 1962). Contudo, esta técnica

usada por empresas produtoras de mudas é muito onerosa.

Além das sementes de citros germinarem lentamente e da necessidade de

extração dos tegumentos, a maioria das sementes de espécies cítricas é

considerada recalcitrante. Para que as sementes possuam uma germinação rápida

e tenham uniformidade de plantas, vários tratamentos têm sido utilizados, com

sucesso em várias espécies, como a embebição em água (Kidd & West, 1918;

Elze, 1949), condicionamento osmótico (Heydecker, 1978; Heydecker &

Gibbins, 1978; Khan et al., 1978;) e padronização de sementes (Hunter &

Kannerberg, 1972; Lahiri et al., 1982) tendo obtido melhoras na germinação de

sementes, uniformidade de plântulas e aumento na produção.

O tratamento de sementes envolve a aplicação de diversos processos e

substâncias às sementes com o objetivo de preservar ou aperfeiçoar seu

desempenho, possibilitando um aumento de produtividade da cultura (Menten,

1996). De uma maneira geral pode ser definido como qualquer operação que

envolva as sementes, seja através de seu manejo ou incorporação de produtos

químicos ou biológicos, à sua superfície ou interior, ou aplicação de agentes

físicos, visando à melhoria ou garantia do seu desempenho em condições de

cultivo (Machado, 2000).

O uso de fungicidas para tratamento químico de sementes é um dos

métodos de mais baixo custo no controle integrado de doenças de plantas. Não

só com o interesse de eliminar os patógenos associados às sementes, mas

também proteger as sementes e as plântulas durante sua fase inicial de

desenvolvimento contra agentes patogênicos presentes na semente e no solo

(Ruano et al., 1989).

Machado (2000) relata que a completa erradicação, ou redução a níveis

toleráveis de um patógeno associado às sementes, nem sempre é possível através

de um único método. Diversos fatores podem interferir na eficácia de um ou de

outro método, fazendo com que o uso combinado desses seja uma tática

necessária para o sucesso do tratamento de sementes.

Em citros, a combinação do tratamento térmico e o químico tem sido

uma necessidade para o tratamento das sementes, sendo o uso de fungicidas

protetores, como Thiram, Captan etc, quase sempre indispensável após o

tratamento à base de calor (Carvalho, 2001).

2.7 Condicionamento osmótico

Muitos estudos têm sido realizados com o intuito de reduzir o tempo

necessário entre a semeadura e a emergência das plântulas, bem como aumentar

a tolerância das sementes às condições adversas durante a germinação.

Tratamentos como o condicionamento osmótico ou “priming” têm apresentado

resultados bastante promissores (Taylor & Herman, 1990; Khan, 1992).

Quando uma semente se hidrata, uma série de mudanças fisiológicas e

bioquímicas ocorre no embrião. Uma embebição prolongada, particularmente

sob baixos potenciais hídricos, apresenta uma influência bastante acentuada na

velocidade, sincronia e porcentagem de germinação das sementes. Segundo

Khan (1992), vários procedimentos de hidratação das sementes têm sido

desenvolvidos para aumentar a taxa e a uniformidade de emergência das

plântulas. Um desses procedimentos tem sido a embebição das sementes com

quantidades limitadas de água, sob temperaturas baixas ou moderadas (pré-

hidratação).

Outro procedimento refere-se à pré-geminação das sementes em

condições ótimas de umidade e temperatura, e a semeadura com a utilização de

géis, os quais atuam como substâncias protetoras do eixo embrionário. Uma

terceira técnica tem sido a hidratação das sementes em umidades relativas do ar

elevadas (umidificação). A quarta e mais popular técnica seria a hidratação das

sementes em soluções de baixo potencial hídrico de solutos orgânicos e

inorgânicos por determinados períodos de tempo (condicionamento osmótico)

ou por meio da embebição das sementes em meio sólido (condicionamento

mátrico) (Khan, 1992).

Baseado em outros trabalhos, a técnica foi desenvolvida na Inglaterra

com sementes de olerícolas e flores, com o objetivo de promover após

semeadura, uma germinação mais rápida que a normal (Heydecker et al., 1975).

A técnica do condicionamento osmótico tem por objetivo reduzir o

tempo de emergência das plântulas, bem como sincronizar e melhorar a

porcentagem de germinação. Tal procedimento baseia-se no controle da

hidratação de sementes a um nível que permita que ela inicie a atividade

metabólica pré-germinativa, mas iniba a protrusão da radícula.

As sementes são colocadas em solução aquosa de um composto

quimicamente inerte, mas osmoticamente ativo. Assim, as sementes iniciam a

embebição de água normalmente, paralisando o processo assim que entram em

equilíbrio com o potencial osmótico da solução. O potencial osmótico é ajustado

de maneira a permitir a ocorrência de todos os processos preparatórios da

germinação, mas impedir o alongamento celular e, conseqüentemente, a

emergência da radícula, mesmo após semanas de contato entre as sementes e a

solução osmótica (Heydecker et al., 1975; Khan et al., 1978).

Sementes tratadas desta forma podem ser novamente desidratadas ao

conteúdo de umidade inicial sem perda significativa dos efeitos benéficos

promovidos pelo tratamento. Esse processo de secagem das sementes após o

tratamento de condicionamento osmótico tem sido comumente designado na

literatura como hidratação-desidratação (Peñaloza & Eira, 1985).

Durante o condicionamento osmótico a semente hidrata-se lentamente, o

que permite um maior tempo para a reparação ou reorganização das membranas

plasmáticas, possibilitando a formação dos tecidos de maneira mais ordenada e

reduzindo os riscos de danos ao eixo embrionário causados pela rápida

embebição. Várias mudanças fisiológicas e bioquímicas ocorrem nas sementes

durante o tratamento ou em conseqüência do condicionamento osmótico. Essas

mudanças incluem a síntese de macromoléculas, atividade de várias enzimas,

aumento no poder germinativo e vigor e superação da dormência (Khan, 1992).

O vigor das sementes, com freqüência, mostra-se elevado com o

condicionamento osmótico, bem como a taxa e porcentagem de emergência das

plântulas, revelando resultados superiores àqueles obtidos com sementes não

tratadas de várias espécies, particularmente sob condições adversas de plantio,

tais como: baixas e altas temperaturas, déficit hídrico ou salinidade (Cano et al.,

1991; Pill et al., 1991). O tratamento pode aumentar, também, a emergência das

plântulas e a produtividade de várias culturas, com destaque para a cenoura,

alface, tomate, pepino, cebola e alho (Dearman et al., 1987; Khan, 1992).

Além das sementes de espécies de hortaliças há relatos de que o

condicionamento osmótico pode aumentar o desempenho das sementes de

culturas como soja e milho doce. Segundo Tilden & West (1985), o

condicionamento osmótico reverteu os efeitos do envelhecimento em sementes

de soja, aumentando a porcentagem de germinação de sementes de baixo vigor e

reduzindo os valores de condutividade elétrica. Sung & Chang (1993)

verificaram que o condicionamento osmótico aumentou a porcentagem final e a

uniformidade de emergência de sementes de milho doce, especialmente em

baixas temperaturas.

Sementes que não receberam o tratamento do condicionamento

osmótico, durante a embebição, tiveram o volume de água absorvido

estabilizado antes da emergência da radícula. Em condições de estresse, com o

potencial hídrico reduzido, o conteúdo de água das sementes para atingir esse

equilíbrio é menor e, a depender do potencial, o início da germinação pode ser

retardado ou inibido (Silva, 2000).

A duração total dos eventos que ocorrem durante o condicionamento

osmótico, do início da embebição até a emergência da radícula, é de fato mais

longa que a da germinação convencional, já que as fases de embebição e

ativação de enzimas (fases I e II da germinação) são estendidas com o

tratamento. Porém, como é realizada antes da semeadura, há uma demanda

menor de tempo para emergência, já que esta fase é reduzida ou eliminada

(Silva, 2000).

2.8 Benefícios do condicionamento osmótico

Diversos benefícios do condicionamento osmótico têm sido relatados,

sendo um deles a maior probabilidade de se obter uma rápida emergência,

particularmente em condições de estresse, como déficit hídrico ou temperatura

inadequada (Eira, 1998).

Sabe-se que a temperatura exerce um importante papel durante a

germinação de sementes e que, a depender da espécie, cultivar ou lote,

temperaturas muito baixas ou muito elevadas afetarão a germinação. Tem-se

observado um melhor desempenho das sementes condicionadas quando

semeadas em temperaturas sub ou superótimas para diferentes espécies, como

alho poró, alface, beterraba, brassicas, cenoura, melão, milho doce, pimentão,

pimenta, tomate, no entanto, não foi relatada nenhuma pesquisa envolvendo

sementes de citros.

Devido à uniformidade de germinação e emergência observadas em

sementes condicionadas, tem-se obtido um planejamento da execução dos tratos

culturais e da colheita, além do que, um estabelecimento mais rápido de

plântulas no campo implicará em um menor ciclo da cultura e menor risco,

diminuindo a competição e controlando as plantas infestantes e obtendo uma

melhor eficiência de irrigação (Silva, 2000).

A técnica ainda possibilita a obtenção de uma maior porcentagem de

germinação para sementes sob baixa disponibilidade hídrica, níveis elevados de

salinidade e temperatura subótima ou supraótima (Guimarães, 2000). Dentre

estes fatores, a salinidade é outro fator que se tem tornado limitante para

produção agrícola, especialmente em regiões áridas ou semi-áridas. As sementes

sem tratamento, ao serem semeadas em solos com alta concentração de sais,

possuem uma tendência a retardar ou não germinar (Cano et al., 1991; Pill et al.,

1991). Jeller (2003), trabalhando com Cássia-do-nordeste (Cassia excelsa

Schrad) observou que na germinação as sementes condicionadas com PEG nos

potenciais de –0,4 e –0,6 MPa foram eficientes em superar o estresse salino do

meio germinativo de –1,0 e –1,4 da solução salina de NaCl a 27ºC.

A germinação das sementes e a emergência das plântulas podem ser

marcadamente reduzidas pela ação de microrganismos, especialmente por

fungos dos gêneros Pythium, Phytophtora, Rhizoctonia e Fusarium (Agrios,

1998). Sementes de hortaliças condicionadas têm sido utilizadas para minimizar

o efeito desses microrganismos, reduzindo assim a incidência de “damping off”

(Taylor et al., 1985; Osburn & Schroth, 1989; Rush, 1991).

Em hortaliças, problemas relacionados com a aderência do tegumento

(testa) aos cotilédones durante a emergência também têm sido minimizados pelo

condicionamento osmótico (Nascimento & West, 1998).

Tem-se sugerido que o período para maturação e colheita de algumas

olerícolas pode ser influenciado pelo tempo gasto por ocasião da germinação e

emergência (Currah, 1978). Entretanto, se esta rápida emergência proporcionada

pelo condicionamento osmótico é acompanhada pela taxa de crescimento das

plântulas, maturidade e finalmente produtividade é uma questão ainda não

totalmente elucidada. Estudos relacionados com o desenvolvimento de plântulas

após o condicionamento osmótico têm sido realizados em diferentes espécies

como alface, brócolos, coentro, pimentão, melão, tomate, dentre outras. Com

relação à produtividade, não se tem observado resposta positiva ao tratamento

em alface, aipo, tomate e outras (Silva, 2000).

Embora vários estudos tenham sido desenvolvidos com diversas espécies

olerícolas de interesse econômico, no caso das sementes de citros, a informação

disponível na literatura concernente à resposta da espécie ao condicionamento

osmótico ainda é esparsa e inconsistente.

3 MATERIAL E MÉTODOS

O experimento foi conduzido no Laboratório de Análise de Sementes do

Departamento de Agricultura da Universidade Federal de Lavras (UFLA), Minas

Gerais. Foram realizados dois ensaios, utilizando a mesma metodologia para

ambos, no entanto foram utilizadas espécies diferentes: no primeiro foram

utilizadas sementes de limão cravo (Citrus limonia Osbeck) e no segundo,

sementes do híbrido citrumelo ‘Swingle’ (Citrus paradisi Macfad. cv. Duncan x

Poncirus trifoliata (L.) Raf. e. As sementes foram adquiridas com produtores de

mudas cítricas do estado de São Paulo, através da empresa CUTRALE

3.1 Tratamento químico e armazenamento

As sementes foram colhidas em São Paulo e imediatamente trazidas para

Lavras, onde foram tratadas com Captan + Tecto 600 (30g+10g/20l de semente)

e foram armazenadas, sem secagem (com umidade de 62,8%), em embalagens

impermeáveis de polietileno em volume de 4,5 litros e envolvidas em sacos

plásticos de cor preta (Carvalho, 2001), por períodos de três, seis e nove meses

em câmara fria (10ºC e 50%UR), no setor de sementes da UFLA.

3.2 Determinação do teor de água

O teor de água das sementes foi avaliado durante todo o armazenamento

e determinado pelo método da estufa, 105ºC ± 3 durante 24 horas, conforme as

recomendações das Regras para Análise de Sementes (Brasil, 1992).

3.3 Condicionamento osmótico

Após cada período de armazenamento, as sementes foram submetidas ao

condicionamento osmótico por imersão em solução aerada de Polietilenoglicol

(PEG 6000), nitrato de potássio (KNO

) e combinação de 70% de PEG e 30% de

KNO

, com potencial osmótico de -1,1MPa, nos períodos de 3, 6, 9 e 12 dias,

com um tratamento adicional (sementes secas). O osmocondicionamento foi

realizado em câmaras BOD com temperatura de 25ºC e na presença de luz.

Após cada período de embebição estabelecido para o tratamento,

amostras das sementes submersas foram retiradas, lavadas em água corrente e

avaliadas por meio dos testes de germinação, índice de velocidade de

germinação (IVG), condutividade elétrica (CE), emergência em bandeja, índice

de velocidade de emergência (IVE) e caracterização isoenzimática.

3.4 Teste de germinação

O substrato para semeadura foi o papel do tipo germitest, umedecido

com água destilada em quantidade de 2,5 vezes o peso seco do papel. Foram

utilizadas 4 repetições de 50 sementes. As sementes intactas, ou seja, sem

destegumentação, foram colocadas em germinador regulado à temperatura de

25ºC, na presença de luz e a contagem das sementes germinadas de limão cravo

foi realizada aos 30 dias e para o citrumelo aos 40 dias após a semeadura. Foram

consideradas como plântulas normais aquelas que apresentarem o folíolo

exposto, presença de raízes primárias com no mínimo 3 cm. Os resultados foram

expressos em porcentagem.

Juntamente com o teste de germinação foi determinado o índice de

velocidade de germinação (IVG), através de contagens diárias das plântulas

germinadas a partir do primeiro dia de germinação, computando-se o número de

plântulas normais até a estabilização do estande aos 30 dias. O resultado

calculado pelo índice de velocidade de germinação foi determinado segundo

fórmula proposta por Maguire (1962).

3.5 Teste de emergência em bandeja

Foi realizado em bandeja plástica contendo como substrato a mistura de

areia e terra na proporção de 2:1. O substrato foi umedecido até a capacidade de

70% de retenção de água. Foram utilizadas 4 repetições com 50 sementes por

tratamento. Após a semeadura, as bandejas foram mantidas em câmara de

crescimento vegetal, previamente regulada à temperatura de 25ºC, em regime

alternado de luz e escuro (12 horas). A porcentagem de plântulas normais

emergidas foi computada após 30 dias da semeadura. Foram consideradas como

plântulas normais aquelas que apresentaram o folíolo exposto a, no mínimo, 3

cm do solo. Os resultados foram expressos em porcentagem.

Juntamente com o teste de emergência em bandeja foi determinado o

índice de velocidade de emergência (IVE), através de contagens diárias das

plântulas normais a partir do primeiro dia de emergência, computando-se o

número de plântulas emergidas até a estabilização do estande aos 40 dias. O

resultado calculado pelo índice de velocidade de emergência foi determinado

segundo fórmula proposta por Maguire (1962).

3.6 Condutividade elétrica

Foram utilizadas 50 sementes (4 repetições de 50 sementes). As

sementes foram previamente pesadas com precisão de centigramas e

acondicionadas em copos plásticos descartáveis (200 mL) e adicionado 75 mL

de água destilada, sendo levadas para uma câmara de germinação tipo BOD a

25º C por 24 horas (AOSA, 1983). Após este período, as amostras foram

retiradas e procedeu-se à leitura em µS/cm, em condutivímetro de massa da

marca Quimis Q145D e os resultados expressos com base no peso da amostra

(Vieira & Carvalho, 1994; Torres, 1996).

Fórmula para transformação:

Condutividade lida – Condutividade da água

Condutividade (µS/cm/g)=

Peso das 50 sementes (g)

3.7 Avaliações moleculares

3.7.1 Preparo do material para análise eletroforética

Na execução de cada teste em intervalos de 0, 3, 6 e 9 meses de

armazenamento, foram coletadas duas amostras de 50 sementes de cada

tratamento e armazenadas à temperatura de -86ºC em recipiente escuro.

Para análise eletroforética de isoenzimas, as sementes foram trituradas

na presença de PVP e nitrogênio líquido em cadinho sobre gelo e posteriormente

armazenadas à temperatura de -86ºC.

3.7.2 Extração de enzimas e análise eletroforética

Para a extração das enzimas foi utilizado o tampão Tris HCL 0,2M

pH8,0 + (0,1% de β Mercaptoetanol) na proporção de 250µL por 100mg de

sementes. O material foi homogeneizado em vortex e mantido durante a noite

em geladeira seguido de centrifugação a 16.000 x g por 60 minutos a 4ºC.

A corrida eletroforética foi em sistema de géis de poliacrilamida a 7,5%

(gel separador) e 4,5% (gel concentrador). O sistema gel/eletrodo utilizado foi o

Tris-glicina pH 8,9. Foram aplicados 15 µL do sobrenadante da amostras e as

corridas efetuadas a 150 V por 4 horas.

Terminada a corrida, os géis foram revelados para as enzimas álcool

desidrogenase (ADH), catalase (CAT), esterase (EST), peroxidase (PE), malato

desidrogenase (MDH), superóxido dismutase (SOD), conforme Alfenas et al.

(1991).

A análise eletroforética da proteína foi realizada pelo método SDS-

PAGE e os procedimentos de extração recomendados por Blackman et al.

(1991), com 100mg de eixos embrionários macerados em 1mL de tampão de

extração (50Mm de Tris-HCl pH 7,5; 500mM NaCl; 5mM de MgCl2; 1mM de

PMSF). As amostras foram centrifugadas a 16000 xg por 30 minutos a 4ºC, o

sobrenadante incubado em banho-Maria a 85ºC por 15 minutos e novamente

centrifugado como anteriormente; o sobrenadante foi vertido em tubos novos e o

pellet descartado; antes da aplicação no gel, 40mL de tampão da amostra (2,5mL

de glicerol; 0,46g de SDS; 20mg de azul de Bromofenol; Tris-HCl pH 7,5)

foram adicionados em 70mL de cada extrato, seguindo-se uma incubação em

banho-Maria com água em ebulição por cinco minutos. Em seguida foram

aplicados 50mL de cada amostra em gel de poliacrilamida 12,5% (gel separador)

e 6% (gel concentrador).

O tampão de corrida utilizado foi Tris-glicina + SDS pH 8,9 e a corrida

eletroforética foi realizada em sistema vertical, à temperatura ambiente e

voltagem constante de 150V por quatro horas.

Após a corrida, os géis foram corados em solução de Coomassie Brilliant

Blue a 0,05% por 24 horas e descorados em solução de etanol 5%, ácido acético

10% e água 85%, conforme Alfenas (1991).

A avaliação dos géis foi realizada sobre transluminador, sendo

considerada a variação de intensidade das bandas.

3.8 Procedimentos estatísticos

O delineamento experimental utilizado foi o inteiramente casualizado em

esquema fatorial (4 x 3 x 4) , sendo quatro épocas de armazenamento (0, 3, 6, 9

meses), três soluções (PEG, KNO

e combinação de 70 % de PEG + 30 % de

KNO

) e quatro períodos de condicionamento osmótico (3, 6, 9 e 12 dias), com

um tratamento adicional (sementes secas), para cada espécie. Foram utilizadas

quatro repetições de 50 sementes em cada teste, com exceção do teste de

umidade, no qual foram utilizadas 2 repetições.

Os dados foram interpretados estatisticamente por meio da análise de

variância, com exceção da análise eletroforética, e foram transformados em

√(x+1). A comparação das médias foi feita pelo teste de Scott-Knott, a 5% de

probabilidade (características qualitativas) e pela análise de regressão

(características quantitativas), por meio do programa estatístico SISVAR

(Ferreira, 2000).

4 RESULTADOS E DICUSSÃO

4.1 Ensaio 1: Condicionamento osmótico em sementes de limão cravo.

O resumo da análise de variância dos dados obtidos nos testes para

avaliar o efeito do condicionamento osmótico conduzido em diferentes períodos

de armazenamentos, solutos e períodos de condicionamento, sobre as sementes

de limão cravo, está registrado na Tabela 1A, havendo efeito significativo da

interação tripla para todas as características avaliadas.

As equações de regressão para todas as variáveis estudadas estão

representadas nas Tabelas 2A, 4A, 6A, 8A e 10A quando em função do período

de armazenamento (PA), e nas tabelas 3A, 5A, 7A, 9A e 11A, quando em

função do período de condicionamento (PC).

4.1.1 Determinação do grau de umidade

As médias dos resultados obtidos na determinação do grau de umidade

das sementes osmocondicionadas não foram submetidas à análise estatística e

estão apresentadas na Tabela 1.

De uma maneira geral, nas sementes submetidas ao condicionamento

com solução contendo KNO

o conteúdo de água foi inferior às demais, durante

todo o período de armazenamento (PA) e para todos os períodos de

condicionamento (PC). Esses resultados foram seguidos pelas sementes

condicionadas em solução contendo a mistura de PEG 6000 + KNO

. A restrição

hídrica exercida pelas soluções com o sal foi maior, provavelmente pela maior

facilidade de solubilização do KNO

. Observou-se também que o conteúdo de

água foi menor na testemunha em relação às sementes condicionadas em todas

as soluções, durante todo o período de armazenamento e para todos os períodos

de condicionamento.

Pode-se observar ainda, que houve uma tendência de redução na

embebição durante o condicionamento à medida que aumentou o tempo de

armazenamento das sementes, independente do soluto utilizado. Nesse trabalho

não foram levantados os motivos dessa redução na embebição, entretanto pode-

se supor que seja devido às modificações ocorridas na estrutura dos tegumentos

ou na composição química das sementes devido à deterioração.

Por serem recalcitrantes, é necessário que as sementes de limão cravo

sejam armazenadas com teores de água superiores a 35%. Mungomery et al.

(1966) mostraram que a viabilidade de sementes de tangerina Cleópatra (Citrus

reticulata Blanco) pode ser mantida durante o armazenamento, desde que

conservadas com teor de água acima de 40% e em temperaturas de 5 a 10ºC.

TABELA 1 Médias em porcentagem do grau de umidade de sementes

armazenadas de limão cravo, por diferentes períodos de

armazenamento (PA), submetidas ao condicionamento osmótico

em diferentes soluções (SOL) e períodos de condicionamento

(PC).

PA (meses) SOL PC (dias) U%

0 PEG 6000 3 77,2

0 PEG 6000 6 71,8

0 PEG 6000 9 74,2

0 PEG 6000 12 74,4

0 KNO

3 67,5

0 KNO

6 69,7

0 KNO

9 64,6

0 KNO

12 69,3

0 PEG 6000 + KNO

3 69,4

0 PEG 6000 + KNO

6 70,8

0 PEG 6000 + KNO

9 66,7

0 PEG 6000 + KNO

12 72,5

Test 62,8

3 PEG 6000 3 75,0

3 PEG 6000 6 70,2

3 PEG 6000 9 71,8

3 PEG 6000 12 74,4

3 KNO

3 60,2

3 KNO

6 66,8

3 KNO

9 66,9

3 KNO

12 65,3

3 PEG 6000 + KNO

3 67,7

3 PEG 6000 + KNO

6 66,7

3 PEG 6000 + KNO

9 68,2

3 PEG 6000 + KNO

12 70,9

Test 62,2

6 PEG 6000 3 66,9

6 PEG 6000 6 69,7

6 PEG 6000 9 67,5

6 PEG 6000 12 63,2

6 KNO

3 66,6

6 KNO

6 70,5

6 KNO

9 69,3

6 KNO

12 69,6

6 PEG 6000 + KNO

3 67,3

6 PEG 6000 + KNO

6 66,4

6 PEG 6000 + KNO

9 65,4

6 PEG 6000 + KNO

12 66,3

Test 61,9

9 PEG 6000 3 66,2

9 PEG 6000 6 65,5

9 PEG 6000 9 64,2

9 PEG 6000 12 68,4

9 KNO

3 61,3

9 KNO

6 61,5

9 KNO

9 61,6

9 KNO

12 61,3

9 PEG 6000 + KNO

3 62,6

9 PEG 6000 + KNO

6 64,9

9 PEG 6000 + KNO

9 61,8

9 PEG 6000 + KNO

12 64,3

Test 61,3

4.1.2 Teste de germinação

As equações de regressão para o teste de germinação estão representadas

nas Tabelas 3A, quando em função do período de armazenamento (PA), e 4A,

quando em função do período de condicionamento (PC).

Na Figura 1 encontram-se as curvas respostas em função do período de

condicionamento (PC) e na Figura 2 encontram-se as curvas respostas em

função do período de armazenamento (PA).

A germinação de sementes de limão cravo ocorreu em sua maioria do

quinto ao trigésimo dia após o inicio do teste, mesmo sem ter sido realizada a

extração prévia dos tegumentos, como sugerido por Silva (2006), em sementes

de citrumelo ‘Swingle’. Resultados semelhantes foram encontrados por Oliveira

(2003) em sementes de Poncirus trifoliata. Soares Filho et al. (1995) sugere que

a germinação lenta de diversas sementes do gênero citros pode ser atribuída às

barreiras mecânicas determinadas pela presença da testa e do tegma. No entanto,

Ramos et al. (1991) não observou efeito da retirada do tegumento na germinação

de sementes de limão cravo e Trifoliata.

Observa-se uma tendência à constância da porcentagem de germinação

das sementes não armazenadas (Figura 1A). Não houve diferença significativa

na germinação de sementes não armazenadas, em função do soluto utilizado,

independente do período de condicionamento aos quais foram submetidas,

exceto quando foram condicionadas por 9 dias. Nesse caso a germinação das

sementes condicionadas em KNO

e PEG 6000 + KNO

foi maior que daquelas

condicionadas em solução contendo apenas o PEG 6000. Em relação às

sementes que não foram condicionadas não houve nenhuma diferença (Tabela

12A). No entanto, Chilembwe et al. (1992) observou menor porcentagem de

germinação em sementes de citrus submetidas ao condicionamento em soluções

contendo PEG 6000 de -0,6 a -1,2 MPa do que na testemunha.

Após 3 meses de armazenamento, as porcentagens de germinação não

diferiram, independentemente do soluto utilizado e do período de

condicionamento a que foram submetidas (Figura 1B). Entretanto, com exceção

dos tratamentos com KNO

ou PEG 6000 + KNO

, por 12 dias, os quais não

diferiram da testemunha, pôde-se observar maiores porcentagens de germinação

nos demais tratamentos. Utilizando-se o PEG 6000, como soluto, pode-se

observar que a porcentagem de germinação foi em torno de 85% de plântulas

normais, representando ganhos de 15% em relação à testemunha (Tabela 12A).

Sementes armazenadas pelo período de 6 meses, quando condicionadas

por 3 dias, apresentaram uma tendência a maior porcentagem de germinação

quando apenas na presença do KNO

, em seguida da combinação de PEG 6000

+ KNO

e por último do PEG 6000 apenas (Figura 1C). Já aos 6 e 9 dias de

condicionamento, a solução contendo apenas PEG 6000 apresentou a maior

porcentagem de germinação, seguido do KNO

e por último da combinação dos

dois. Aos 12 dias de condicionamento as soluções contendo apenas o KNO

e a

combinação do PEG 6000 + KNO

, voltaram a propiciar maiores porcentagens

de germinação das sementes. A porcentagem de germinação das sementes que

não foram condicionadas foi igual ou superior as porcentagens das sementes

condicionadas, evidenciando a ineficiência dos tratamentos em sementes de

limão cravo armazenadas nas condições do experimento durante 6 meses

(Tabela 12A).

Aos 9 meses de armazenamento houve uma tendência de aumento

crescente na porcentagem de germinação, em função do período de

condicionamento a que as sementes foram submetidas, independente do soluto

utilizado (Figura 1D). Sendo assim, o condicionamento osmótico reverteu os

efeitos do armazenamento, sendo evidente a reparação metabólica, já que houve

um incremento na porcentagem de germinação. Os melhores resultados foram

obtidos aos 6, 9 e 12 dias de condicionamento, independente do soluto utilizado,

Diferenças significativas entre os solutos em cada período de condicionamento estão discriminadas por letras.

FIGURA 1 Estimativa da porcentagem de germinação de sementes (%G) de limão cravo, armazenadas por 0, 3, 6 e 9

meses, em função do condicionamento osmótico em soluções contendo diferentes solutos (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 + KNO

) e do período de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias).

T -testemunha

0 meses

100

036912

PC (dias)

b a a

- T

3 meses

100

036912

PC (dias)

- T

6 meses

100

036912

PC (dias)

c a b

a b c

a b b

b a a

- T

9 meses

100

036912

PC (dias)

- T

(A)

(C)

(B)

(D)

PEG 6000

100

0369

PA (meses)

KNO3

100

0369

PA(meses)

PEG 6000 + KNO3

100

0369

PA (meses)

FIGURA 2 Estimativa da porcentagem de germinação (%G) de sementes de

limão cravo, submetidas ao condicionamento osmótico em

diferentes soluções (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 + KNO

) em

função do período de armazenamento (meses) e do período de

condicionamento (dias).

representando ganhos de até 44% em relação à testemunha (13% de sementes

germinadas) (Tabela 12A). Mas observa-se também, que nesse período foram

obtidas as menores porcentagens de germinação.

Pode-se observar que há uma tendência a redução na porcentagem de

germinação para todos os solutos utilizados ao longo do período de

armazenamento, independente do período de condicionamento a que as sementes

foram submetidas (Figura 2), confirmando a tendência acentuada da espécie em

perder qualidade no armazenamento. Pode-se observar que houve uma maior

redução na porcentagem de germinação a partir do 6º mês de armazenamento,

principalmente quando as sementes foram condicionadas em solução contendo

KNO

ou a combinação de PEG 6000 + KNO

, pelo período de 9 dias.

A redução da germinação das sementes, mesmo naquelas tratadas, pode

ser devida, em parte, ao grau de umidade dessas sementes, tendo sido observada

a condensação de água no interior das embalagens, ocorrendo um acentuado

processo deteriorativo, com consequente apodrecimento de parte dessas

sementes ao longo do período de armazenamento.

4.1.3 Índice de velocidade de germinação (IVG)

Nas sementes não armazenadas a tendência foi de leve aumento do

índice de velocidade de germinação à medida que aumentava o período de

condicionamento de 3 para 6 dias, quando as sementes foram condicionadas em

solução contendo PEG 6000 Figura (3A). Após esse período, observa-se uma

tendência de redução deste índice. Quando o condicionamento foi realizado em

solução contendo KNO

ou a combinação de PEG 6000 + KNO

, essa tendência

de aumento permaneceu até o 9º dia de condicionamento, havendo uma leve

redução aos 12 dias.

O condicionamento osmótico permite um aumento na velocidade e

uniformidade de germinação. Paixão (1998) observou que não houve incremento

na porcentagem final de germinação de sementes de pimentão condicionadas em

solução aerada de KNO

, mas houve aumento no índice de velocidade de

germinação e no desenvolvimento do hipocótilo das plântulas.

Pela comparação das médias, observa-se maior índice de velocidade de

germinação quando as sementes foram condicionadas por 9 dias em solução

contendo PEG 6000 + KNO

representando ganhos de até 22% em relação à

testemunha (Tabela 12A).

Vários trabalhos com sementes de hortaliças têm mostrado que os efeitos

do condicionamento osmótico resultam em uma resposta mais rápida quanto ao

tempo para a germinação, principalmente em lotes de sementes deterioradas ou

de baixo vigor (Brocklehurst & Dearman, 1984; Lopes et al., 1996),

principalmente nos testes de germinação e vigor, sob condições de laboratório,

em relação às sementes não condicionadas e/ou embebidas em água destilada

(Lopes et al.,1996).

Aos 3 meses de armazenamento não houve diferença significativa entre

os solutos utilizados e ainda pode-se observar pelas curvas de resposta que há

uma tendência de aumento deste índice, independente do soluto utilizado até o 9º

dia de condicionamento (Figura 3B). No 12º dia de condicionamento observa-se

uma tendência de redução quando foi utilizado o KNO

ou a combinação de

PEG 6000 + KNO

. Nesse período de armazenamento, todos os tratamentos

empregados mostraram-se eficientes na recuperação do vigor das sementes, visto

que foi observado um ganho mínimo de 5% (PEG 6000 + KNO

, por 12 dias) e

um ganho máximo de 23% (PEG 6000, por 9 dias) em relação à testemunha

(Tabela 12A).

Aos 6 meses de armazenamento, o condicionamento das sementes não se

mostrou eficiente, já que as sementes que não foram submetidas ao

condicionamento (testemunha) apresentaram índice maior do que as demais

Diferenças significativas entre os solutos em cada período de condicionamento estão discriminadas por letras.

FIGURA 3 Estimativa do índice de velocidade de germinação (IVG) de sementes de limão cravo, armazenadas por 0, 3,

6 e 9 meses, em função do condicionamento osmótico em soluções contendo diferentes solutos (PEG 6000,

KNO

e PEG 6000 + KNO

) e do período de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias).

testemunha

0 meses

0,5

1,5

2,5

036912

PC (dias)

a a b

a b b

c b a

- T

3 meses

0,5

1,5

2,5

036912

PC (dias)

- T

6 meses

0,5

1,5

2,5

036912

PC (dias)

IVG

b a a

a b c

a b b

c a b

- T

9 meses

0,5

1,5

2,5

036912

PC (dias)

a b a

a c b

a b b

- T

(A)

(C)

(B)

(D)

PEG 6000

0,5

1,5

2,5

0369

PA (meses)

IVG

KNO3

0,5

1,5

2,5

0369

PA (meses)

IVG

PEG 6000 + KNO3

0,5

1,5

2,5

0369

PA (meses)

IVG

FIGURA 4 Estimativa do índice de velocidade de germinação (IVG) de

sementes de limão cravo, submetidas ao condicionamento

osmótico em diferentes soluções (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 +

KNO

) em função do período de armazenamento (meses) e do

período de condicionamento (dias).

(Tabela 12A). Há uma tendência de redução deste índice, do 3º ao 9º dia de

condicionamento, seguido de um novo crescimento deste índice aos 12 dias de

condicionamento, quando as sementes foram condicionadas na presença de

KNO

ou de PEG 6000+KNO

(Figura 3C). Já as sementes que foram

condicionadas em solução contendo PEG 6000 apresentaram uma tendência de

aumento do 3º a 6º dia de condicionamento, seguido de uma redução aos 9 e 12

dias.

Aos 9 meses de armazenamento foram observados os menores índices de

velocidade de germinação (Figura 3D). Nesse período, pela comparação das

médias, quando as sementes foram condicionadas por 3 e 6 dias em solução

contendo PEG 6000 ou em PEG 6000 + KNO

por 3 dias, observou-se os

maiores índice de velocidade de germinação (Tabela 12A).

Pode-se observar nos resultados obtidos no índice de velocidade de

germinação (Figura 4) a mesma tendência de redução observada na germinação

(Figura 2) ao longo do armazenamento, sendo que houve uma redução mais

acentuada quando as sementes foram condicionadas por 9 dias, principalmente

na presença do KNO

e da combinação do PEG 6000 + KNO

4.1.4 Teste de emergência em bandeja

Para as sementes não armazenadas há uma tendência de aumento da

porcentagem de emergência até o 6º dia de condicionamento, para todos os

solutos utilizados (Figura 5A). A partir do 9º dia há uma redução dessa

porcentagem, principalmente quando as sementes foram condicionadas em

solução contendo PEG 6000 ou KNO

. Pela comparação das médias, aos 3, 6 e 9

dias de condicionamento, o KNO

e a combinação de PEG 6000 + KNO

, se

mostraram eficientes, apresentando porcentagem de emergência superior à

testemunha (Tabela 12A). Aos 12 dias de condicionamento, apenas a

combinação de PEG 6000 + KNO

, se mostrou eficiente em manter a

porcentagem de emergência das sementes (Tabela 12A).

Para as sementes de soja submetidas ao condicionamento osmótico em

PEG 6000, a -0,8 MPa por 4 dias a 25ºC, obteve-se melhores resultados de

emergência e índice de velocidade de emergência de plântulas (Del Giúdice,

1996).

Aos 3 meses, há uma tendência linear de constância da porcentagem de

germinação até o 9º dia de condicionamento para todos os solutos, sendo que aos

12 dias, observa-se uma tendência de redução, quando as sementes são

condicionadas na presença do PEG 6000 ou do KNO

(Figura 5B). Pode-se

observar que houve eficiência dos tratamentos empregados, pois porcentagens

de emergência superiores à da testemunha (77%), com exceção das sementes

que foram condicionadas por 12 dias na presença de KNO

(73%) ou em PEG

6000 + KNO

(74%) por 3 ou 12 dias, as quais não diferiram da mesma, foram

obtidas para os demais tratamentos (Tabela 12A).

Aos 6 e 9 meses de armazenamento, a testemunha se mostrou superior

aos demais tratamentos (Figuras 5C e 5D), não havendo, nesse caso, eficiência

do condicionamento osmótico em recuperar a capacidade de emergência das

sementes armazenadas por esses períodos.

No teste de emergência em bandeja, observa-se para todos os períodos

de condicionamento e para as sementes condicionadas em PEG 6000 ou KNO

uma tendência de aumento da porcentagem de emergência no 3º mês de

armazenamento (Figura 6), seguido de uma forte redução nos demais períodos.

Para a combinação de PEG 6000 + KNO

observa-se uma tendência de redução

já a partir do 3º mês de armazenamento, para todos os períodos de

condicionamento (Figura 6).

Diferenças significativas entre os solutos em cada período de condicionamento estão discriminadas por letras.

FIGURA 5 Estimativa da porcentagem de emergência (%E) de sementes de limão cravo, armazenadas por 0, 3, 6 e 9

meses, em função do condicionamento osmótico em soluções contendo diferentes solutos (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 + KNO

) e do período de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias).

T - testemunha

0 meses

100

036912

PC (dias)

b a a

b c a

- T

3 meses

100

036912

PC (dias)

- T

6 meses

100

036912

PC (dias)

c a b

c b a

a c b

b c a

- T

9 meses

100

036912

PC (dias)

a c b

b a b

a b c

- T

(A)

(C)

(B)

(D)

PEG 6000

100

0369

PA (meses)

KNO3

100

0369

PA (meses)

PEG 6000 + KNO3

100

0369

PA (meses)

FIGURA 6 Estimativa da porcentagem de emergência (%E) de sementes de

limão cravo, submetidas ao condicionamento osmótico em

diferentes soluções (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 + KNO

) em

função do período de armazenamento (meses) e do período de

condicionamento (dias).

4.1.5 Índice de velocidade de emergência

O condicionamento osmótico, independente do soluto utilizado,

mostrou-se eficiente para aumentar o vigor das sementes, até o 6º dia de

condicionamento, quando as sementes não foram armazenadas (Figura 7A).

Após esse período, somente a solução contendo a combinação de PEG 6000 +

KNO

conseguiu manter este índice elevado.

Sementes de tomate obtiveram menor tempo de emergência e aumento

na porcentagem de germinação com tratamento utilizando-se PEG 4000 na

concentração de -1,2 MPa, durante 8 dias à temperatura de 16ºC (Muhyaddin &

Wiebber, 1989 citado Por Paixão, 1998).

Pela comparação das médias, com exceção do condicionamento em PEG

6000 por 6 dias (0.9), ou em KNO

por 12 dias (0.3398), que foram iguais ou

inferiores à testemunha (0.9), os maiores índices de velocidade de emergência

foram observados nos demais tratamentos, sendo que o melhor deles foi o

condicionamento em PEG 6000 + KNO

por 12 dias (2.4864) (Tabela 12A).

Aos 3 meses de armazenamento, há uma tendência linear de aumento

deste índice, quando as sementes foram condicionadas em solução contendo

PEG 6000 ou a combinação de PEG 6000+ KNO

, e de redução quando

condicionadas com KNO

(Figura 7B). Pela comparação das médias (Tabela

12A), os maiores índices de velocidade de emergência foram obtidos na

testemunha (2.31) e nos tratamentos nos quais as sementes foram condicionadas

por 3 e 6 dias (2.40 e 2.30, respectivamente), em solução contendo KN0

, sendo

estes superiores aos demais tratamentos.

Observa-se uma redução acentuada deste índice a partir do 6º mês de

armazenamento (Figura 7C). A testemunha foi superior a todos os demais

tratamentos, exceto aos 12 dias de condicionamento, quando as sementes foram

condicionadas em PEG 6000 + KNO

(Tabela 12A).

Diferenças significativas entre os solutos em cada período de condicionamento estão discriminadas por letras.

FIGURA 7 Estimativa do índice de velocidade de emergência (IVE) de sementes de limão cravo, armazenadas por 0,

3, 6 e 9 meses, em função do condicionamento osmótico em soluções contendo diferentes solutos (PEG

6000, KNO

e PEG 6000 + KNO

) e do período de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias).

T - testemunha

0 meses

0,5

1,5

2,5

036912

PC (dias)

b a a

b b a

b c a

-T

3 meses

0,5

1,5

2,5

036912

PC (dias)

b a c

-T

6 meses

0,5

1,5

2,5

036912

PC (dias)

b a a

b b a

a c b

b c a

-T

9 meses

0,5

1,5

2,5

036912

PC (dias)

a b a

a c b

a b b

-T

(A)

(C)

(B)

(D)

PEG 6000

0,5

1,5

2,5

0369

PA (meses)

KNO3

0,5

1,5

2,5

0369

PA (meses)

PEG 6000 + KNO3

0,5

1,5

2,5

0369

PA (meses)

FIGURA 8 Estimativa do índice de velocidade de emergência (IVE) de

sementes de limão cravo, submetidas ao condicionamento

osmótico em diferentes soluções (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 +

KNO

) em função do período de armazenamento (meses) e do

período de condicionamento (dias).

No 9º mês de armazenamento, as sementes condicionadas em solução

contendo PEG 6000 ou PEG 6000 + KNO

e os índices observados nas sementes

sem condicionamento foram maiores que em KNO

até o 6º dia de

condicionamento (Figura 7D). Com 9 dias de condicionamento, houve redução

deste índice no tratamento com PEG 6000 ou PEG 6000 + KNO

e aumento no

tratamento com KNO

, no entanto não houve diferença significativa entre esses

tratamentos. Os maiores valores para esse índice foram obtidos quando as

sementes foram condicionadas por 3 e 6 dias (0.61 e 0.60, respectivamente) em

solução contendo PEG 6000, sendo estes superiores à testemunha (0.42), que foi

superior aos demais tratamentos (Tabela 12A).

Comportamento semelhante ao obtido no teste de emergência em

bandeja (Figura 6) foi obtido no índice de velocidade de emergência (Figura 8),

observando-se para todos os períodos de condicionamento e para as sementes

condicionadas em PEG 6000 ou KNO

, uma tendência de aumento da

porcentagem de emergência no 3º mês de armazenamento, seguido de uma forte

redução nos demais períodos. Para a combinação de PEG 6000 + KNO

observa-se uma tendência de redução já a partir do 3º mês de armazenamento,

para todos os períodos de condicionamento.

4.1.6 Condutividade elétrica

Nas sementes não armazenadas submetidas ao condicionamento em

solução contendo KNO

foram observados os maiores valores de condutividade

(66,3 µS/cm/g – 3 dias; 81,2 µS/cm/g – 6 dias; 92,4 µS/cm/g – 9 dias; 87,6

µS/cm/g – 12 dias) (Tabela 12A). A testemunha não diferiu significativamente

do tratamento que foi submetido a apenas 3 dias de condicionamento, tanto na

presença do soluto KNO

quanto da combinação PEG 6000 + KNO

. Em relação

aos demais tratamentos a condutividade elétrica foi sempre maior quando o

condicionamento foi realizado com KNO

e sempre menor com os outros

solutos.

Pelos resultados de teste de condutividade elétrica observa-se uma

reduzida lixiviação de solutos de sementes de cebola osmocondicionadas,

comparadas com as não tratadas, suportando a teoria do “reparo”, já que a

lixiviação de solutos das células é, em parte, resultante de danos às membranas

celulares. Entretanto, não há evidências de que a lixiviação de solutos seja um

parâmetro apropriado para medir a integridade de membranas em sementes de

cebola (Dearman et al., 1987).

Observa-se que há uma tendência de menores valores de condutividade

em função do período de condicionamento, na presença do PEG 6000 e da

combinação PEG 6000 + KNO

(Figura 9A).

Aos 3 meses de armazenamento, houve um aumento brusco nos valores

de condutividade para todas as soluções e em todos os períodos de

condicionamento, havendo uma tendência de redução ao longo do período de

condicionamento, quando as sementes foram condicionadas em solução

contendo KNO

, e de aumento, quando as sementes foram condicionadas em

PEG 6000 e PEG 6000 + KNO

(Figura 9B). Resultados de condutividade

elétrica inferior aos demais tratamentos foram obtidos quando as sementes não

foram submetidas ao condicionamento (55,2 µS/cm/g). Entre os tratamentos, as

sementes condicionadas em solução contendo PEG 6000 apresentaram sempre

menores valores de condutividade (Tabela 12A).

No 6º mês de armazenamento observa-se que há uma tendência de

redução da condutividade até o 9º dia de condicionamento para o soluto KNO

voltando a aumentar no 12º dia de condicionamento (Figura 9C). Para a

combinação de PEG 6000 + KNO

, os valores permaneceram estáveis até o 6º

dia e em seguida voltaram a aumentar. Os menores valores foram observados

para a solução contendo PEG 6000 no 6º (36,04 µS/cm/g) e 9º (33,18 µS/cm/g)

dias. Os valores obtidos na testemunha foram intermediários aos obtidos das

sementes que foram condicionadas na presença de KNO

e aos demais (Tabela

12A).

Aos 9 meses de armazenamento, para os solutos KNO

e PEG 6000 +

KNO

há uma tendência de estabilidade da condutividade até o 9º dia de

condicionamento, enquanto que para o PEG 6000 há uma tendência de aumento

(Figura 9D). Aos 12 dias o soluto KNO

tende a reduzir a condutividade,

enquanto que o PEG 6000 e a combinação de PEG 6000 + KNO

aumentam.

Há uma tendência de aumento nos valores da condutividade no 3º mês

seguido de uma redução no 6º mês de armazenamento, para todos os solutos e

em todos os períodos de condicionamento. No 9º mês há uma tendência de

aumento para todos os solutos, nos períodos de 3, 6 e 9 dias de

condicionamento, enquanto que nos tratamentos com KNO

e PEG 6000 +

KNO

, aos 12 dias, tende a reduzir (Figura 10).

De uma maneira geral os valores da condutividade nos tratamento com

KNO

são acentuadamente maiores e os valores com PEG + KNO

moderadamente maiores em ralação ao tratamento com PEG. Isso ocorre porque

o sal remanescente no tegumento ou no interior das sementes após o

condicionamento é lixiviado para a água onde as sementes são embebidas,

aumentando de forma desproporcional aqueles valores. Por isso, devem-se

considerar apenas os efeitos dos tratamentos com cada um dos solutos e evitar a

comparação dos efeitos entre os solutos para efeito de inferir o vigor das

sementes.

O teste de condutividade elétrica tem sido proposto para a avaliação do

vigor das sementes, sendo relacionado com a integridade das membranas

celulares. Porém, existem muitos fatores que interferem nos resultados, podendo

se restringir somente à quantidade de lixiviados detectada na solução de

embebição (Roveri José, 1999).

Diferenças significativas entre os solutos em cada período de condicionamento estão discriminadas por letras.

FIGURA 9 Estimativa da condutividade elétrica (CE) de sementes de limão cravo, armazenadas por 0, 3, 6 e 9 meses,

em função do condicionamento osmótico em soluções contendo diferentes solutos (PEG 6000, KNO

PEG 6000 + KNO

) e do período de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias).

T - testemunha

0 meses

100

036912

PC (dias)

CE (mS/cm/g)

c a b

-T

3 meses

100

200

300

400

500

600

036912

PC (dias)

CE (mS/cm/g)

c a b

-T

6 meses

100

150

200

036912

PC (dias)

CE (mS/cm/g)

b a b

c a b

-T

9 meses

100

150

200

036912

PC (dias)

CE (mS/cm/g)

b a b

-T

(A)

(C)

(B)

(D)

PEG 6000

100

150

200

0369

PA (meses)

CE (mS/cm/g)

KNO3

100

200

300

400

500

600

0369

PA (meses)

CE (mS/cm/g)

PEG 6000 + KNO3

100

150

200

250

300

0369

PA (meses)

CE (mS/cm/g)

FIGURA 10 Estimativa da condutividade elétrica (CE) de sementes de limão

cravo, submetidas ao condicionamento osmótico em diferentes

soluções (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 + KNO

) em função do

período de armazenamento (meses) e do período de

condicionamento (dias).

4.1.7 Análise da atividade enzimática

Não foi observada atividade da enzima catalase (CAT), enzima do

sistema de defesa antioxidante nas células, em sementes de limão cravo,

sugerindo assim, que estas estejam mais susceptíveis aos efeitos deletérios do O

e radicais livres sobre os ácidos graxos insaturados de membrana,

comprometendo o seu vigor, como citado por Brandão Júnior et al. (1996).

Maior atividade da enzima esterase (EST) foi observada em sementes

não armazenadas, submetidas ao condicionamento em solução contendo PEG

6000 por 3 e 6 dias. Neste período, uma menor atividade foi observada para as

sementes não condicionadas (Figura 11). Esse fato demonstra a maior

peroxidação de lipídios, nos tratamentos onde a atividade da enzima foi maior,

uma vez que esta enzima está envolvida em reações de hidrólise de ésteres,

estando diretamente ligada ao metabolismo de lipídios (Santos et al., 2004).

Nos demais períodos de armazenamento, não foram observadas

diferenças na atividade dessa enzima para nenhum dos tratamentos empregados.

Fessel (2005) detectou uma diminuição da atividade da esterase com o

aumento do período de envelhecimento das sementes de milho. Resultados

semelhantes foram encontrados por Aung & McDonald (1995) em sementes de

amendoim, tanto em sementes embebidas como não embebidas. Segundo esses

autores as esterases são o grupo de enzimas mais importantes na germinação de

amendoim. Este grupo de enzimas hidrolíticas libera ácido graxo dos lipídios, os

quais são usados na beta oxidação, como fonte de energia para os eventos

germinativos. Muitos desses lipídios são constituintes de membranas, cuja

degradação aumenta com a deterioração. Por outro lado essa maior atividade em

sementes condicionadas pode ser devida ao aumento de atividades metabólicas

hidrolíticas, típicas da aceleração do processo de germinação.

A alta atividade da enzima superóxido dismutase (SOD) observada em

todos os períodos de armazenamento e condicionamento e, para todos os solutos

FIGURA 11 Padrões isoenzimáticos de sementes de limão cravo armazenadas por 0 (A), 3 (B), 6 (C) e 9 (D) meses, submetidas ao

condicionamento osmótico em soluções aeradas de PEG, KNO

e PEG + KNO

(T - testemunha) por diferentes

períodos de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias), reveladas para a esterase (EST).

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

(A)

(B)

(C)

(D)

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

utilizados, demonstra a eficiência do sistema antioxidante das sementes de limão

cravo (Figura 12). Maior atividade foi observada quando as sementes foram

condicionadas em KNO

e a menor atividade foi observada nas sementes que

não foram condicionadas (testemunha), principalmente quando estas não haviam

sido armazenadas.

O estresse causado pelo condicionamento na presença de KNO

aumenta

os danos de membrana, havendo aumento na atividade dessa enzima quando o

condicionamento é feito na presença deste.

Segundo McDonald (1999), o “priming” parece reverter os efeitos

deletérios da deterioração de sementes. Esse tratamento parece aumentar a

atividade de enzimas, bem como neutralizar os efeitos da peroxidação lipídica.

Smith & Cobb (1992) reportaram maior síntese protéica e atividade de aldolase e

isocitrato liase, em sementes de pimentão condicionadas. Em outras pesquisas

tem sido observado que o “priming” reverte a perda de enzimas desintoxicantes

da peroxidação lipídica. Bailly et al. (1996) encontraram que as enzimas

superóxido dismutase (SOD), catalase (CAT) e glutationa redutase (GR)

estavam presentes em sementes envelhecidas e condicionadas no mesmo nível

que encontrado em sementes não envelhecidas de girassol.

Atividades de enzimas antioxidantes são relacionadas à aquisição de

tolerância à dessecação. Essas enzimas podem prevenir dano oxidativo, que

pode ocorrer em conseqüência de acúmulo de espécies tóxicas de oxigênio

ativado durante a dessecação (Bailly et al., 2001).

Durante o condicionamento, injúrias devido à anoxia podem ocorrer,

prejudicando a qualidade das sementes. Nas situações em que o suprimento de

oxigênio é deficiente ou a sua absorção é dificultada devido à maior

concentração de soluto osmótico, a respiração anaeróbica toma lugar e as

enzimas envolvidas nessa rota passam a apresentar maior atividade.

FIGURA 12 Padrões isoenzimáticos de sementes de limão cravo armazenadas por 0 (A), 3 (B), 6 (C) e 9 (D) meses, submetidas ao

condicionamento osmótico em soluções aeradas de PEG, KNO

e PEG + KNO

(T - testemunha) por diferentes

períodos de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias), reveladas para a superóxido dismutase (SOD).

(A)

(B)

(C)

(D)

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

T PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

A MDH catalisa a conversão de malato a oxalacetato e, além da

importante função dentro do ciclo de Krebs, participa do movimento de malato

através da membrana mitocondrial e da fixação de CO

nas plantas (Taiz &

Zeiger, 2004).

Menor atividade da enzima malato desidrogenase (MDH) foi observada

em sementes não condicionadas, independente do período de armazenamento

(Figura 13).

Aos 3 e 9 meses de armazenamento, foi observado o surgimentos de

novas bandas quando as sementes foram condicionadas por 3 dias, independente

do soluto utilizado. Parece nesse caso, ter havido efeito positivo do

condicionamento levando ao aumento do nível da respiração aeróbica,

necessário aos reparos esperados. É importante ressaltar que esse fato é

coincidente com benefícios á qualidade das sementes, observados em avaliações

fisiológicas.

Pôde-se observar um aumento da atividade enzimática da ADH em

sementes condicionadas em solução contendo PEG 6000, à medida que

aumentava o período de armazenamento (Figura 14). Essa solução possui uma

viscosidade maior que as demais, o que dificulta a aeração durante o

condicionamento, fazendo com que a respiração passe a ser anaeróbica e a

enzima passe a apresentar maior atividade. Nota-se que há também uma

tendência de redução da porcentagem de germinação para esse tratamento em

função do aumento do período de armazenamento, que provavelmente deriva da

intensificação da via anaeróbica de produção de energia. Sabe-se que o aumento

da atividade da via anaeróbica além de reduzir drasticamente a eficiência para a

produção de energia metabólica nas células, produz resíduos tóxicos à semente

(Lehninger, 1995).

FIGURA 13 Padrões isoenzimáticos de sementes de limão cravo armazenadas por 0 (A), 3 (B), 6 (C) e 9 (D) meses,

submetidas ao condicionamento osmótico em soluções aeradas de PEG, KNO

e PEG + KNO

(T -

testemunha) por diferentes períodos de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias), reveladas para a malato

desidrogenase (MDH).

(A)

(B)

(C)

(D)

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

Camargo (1998) observou aumento na intensidade de bandas dessa

enzima com a elevação das concentrações de PEG 6000, as quais também

correlacionaram aos piores desempenhos das sementes.

Aos 9 meses de armazenamento nenhuma atividade desta enzima foi

detectada, independente do soluto utilizado e do período de condicionamento a

que foram submetidas, sugerindo a morte das sementes.

Foi observada uma redução da atividade da enzima peroxidase (PO) em

função do aumento do período de armazenamento, para todos os tratamentos

empregados, inclusive nas sementes não condicionadas (testemunha), indicando

a perda de viabilidade das sementes, como constatado pelo índice de velocidade

de germinação (Figura 15).

As peroxidases desempenham um papel crítico no metabolismo das

plantas e na oxidação por peróxidos, como aceptores de hidrogênio, sendo

importante nos mecanismo de defesa. Em sementes, a perda da atividade dessa

enzima pode torná-las mais sensíveis aos efeitos do O

, dos radicais livres sobre

ácidos graxos insaturados de membranas e à formação de peróxido nas células,

tornando as sementes mais sujeitas à perda de viabilidade (Faria et al., 2003).

A perda de tolerância à dessecação em sementes está associada à

degradação de “late embryogenesis abundant” (LEA) proteínas. Yeoung et al.

(1996) encontraram que proteínas LEA diminuíram simultaneamente com a

protrusão da radícula e perda de tolerância à dessecação.

Na análise dessa proteína pôde-se observar uma menor definição das

bandas em função do aumento do período de armazenamento, indicando a perda

da tolerância à dessecação (Figura 16), confirmando os dados obtidos na

germinação das sementes (Tabela 12A).

FIGURA 14 Perfis enzimáticos da enzima Álcool Desidrogenase (ADH) de

sementes não armazenadas (A) e sementes armazenadas por 3 (B)

e 6 (C), em função do soluto utilizado (PEG, KNO

e PEG +

KNO

; T - testemunha) e do período de condicionamento (3, 6, 9 e

12 dias).

(A)

(B)

(C)

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

FIGURA 15 Padrões isoenzimáticos de sementes de limão cravo armazenadas por 0 (A), 3 (B), 6 (C) e 9 (D) meses,

submetidas ao condicionamento osmótico em soluções aeradas de PEG, KNO

e PEG + KNO

(T -

testemunha) por diferentes períodos de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias), reveladas para a peroxidase

(PO).

(A) (B)

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

FIGURA 16 Padrões protéicos de sementes de limão cravo armazenadas por 0 (A), 3 (B), 6 (C) e 9 (D) meses,

submetidas ao condicionamento osmótico em soluções aeradas de PEG, KNO

e PEG + KNO

(T -

testemunha) por diferentes períodos de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias), reveladas para a proteína de

resistência ao calor (LEA).

(A)

(B)

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

4.2 Ensaio 2: Condicionamento osmótico em sementes armazenadas de

citrumelo ‘Swingle’.

Neste ensaio, os dados obtidos, quando as sementes foram armazenadas

por 9 meses, foram descartados devido à nulidade dos mesmos.

O resumo da análise de variância dos dados obtidos nos testes para

avaliar o efeito do condicionamento osmótico conduzido em diferentes períodos

de armazenamentos, solutos e períodos de condicionamento, sobre as sementes

de citrumelo ‘Swingle’, está registrado na Tabela 13A, havendo efeito

significativo da interação tripla para todas as características avaliadas.

As equações de regressão para todas as variáveis estudadas estão

representadas nas Tabelas 14A, 16A, 18A e 20A, quando em função do período

de armazenamento (PA), e nas tabelas 15A, 17A, 19A, 21A e 23A, quando em

função do período de condicionamento (PC).

4.2.1 Determinação do grau de umidade

As médias dos resultados obtidos na determinação do grau de umidade

das sementes osmocondicionadas não foram submetidas à análise estatística e

estão apresentadas na Tabela 2.

Para as sementes de citrumelo ‘Swingle’ foi observado o mesmo

comportamento das sementes de limão cravo, quanto ao conteúdo de água nas

sementes em função do soluto utilizado. No entanto, de uma maneira geral,

verifica-se que o conteúdo de água nas testemunhas, quando armazenadas por 3

e 6 meses, foi menor que nas sementes condicionadas nas soluções contendo

PEG 6000 e a mistura de PEG 6000 + KNO

, sendo este conteúdo superior

apenas às sementes condicionadas em solução contendo KNO

Por serem recalcitrantes, é necessário que as sementes de citrumelo

‘Swingle’ sejam armazenadas com teores de água superiores a 35%. Von Pinho

et al. (2005) citam que sementes de citrumelo ‘Swingle’, para um conservação

TABELA 2 Médias em porcentagem do grau de umidade de sementes

armazenadas de citrumelo ‘Swingle’, por diferentes períodos de

armazenamento (PA), submetidas ao condicionamento osmótico

em diferentes soluções (SOL) e períodos de condicionamento

(PC).

PA (meses) SOL PC (dias) U%

0 PEG 6000 3 63,49

0 PEG 6000 6 63,71

0 PEG 6000 9 66,87

0 PEG 6000 12 69,63

0 KNO

3 61,16

0 KNO

6 61,22

0 KNO

9 60,53

0 KNO

12 60,05

0 PEG 6000 + KNO

3 62,29

0 PEG 6000 + KNO

6 62,03

0 PEG 6000 + KNO

9 57,17

0 PEG 6000 + KNO

12 64,52

Test 57,13

3 PEG 6000 3 64,88

3 PEG 6000 6 63,43

3 PEG 6000 9 60,74

3 PEG 6000 12 62,60

3 KNO

3 60,72

3 KNO

6 58,54

3 KNO

9 56,20

3 KNO

12 60,78

3 PEG 6000 + KNO

3 65,21

3 PEG 6000 + KNO

6 59,00

3 PEG 6000 + KNO

9 60,22

3 PEG 6000 + KNO

12 63,33

Test 61,15

6 PEG 6000 3 59,69

6 PEG 6000 6 61,53

6 PEG 6000 9 58,13

6 PEG 6000 12 59,22

6 KNO

3 57,74

6 KNO

6 55,76

6 KNO

9 52,73

6 KNO

12 50,42

6 PEG 6000 + KNO

3 59,72

6 PEG 6000 + KNO

6 58,23

6 PEG 6000 + KNO

9 54,98

6 PEG 6000 + KNO

12 58,89

Test 56,93

adequada sejam armazenadas com teor de água em torno de 40%, em

embalagem impermeável e em ambiente refrigerado. Esses resultados reforçam

os resultados de Mungomery et al. (1966), os quais mostraram que a viabilidade

de sementes de tangerina Cleópatra (Citrus reticulata Blanco) pode ser mantida

durante o armazenamento, desde que conservadas com teor de água acima de

40% e em temperaturas de 5 a 10ºC.

4.2.2 Teste de germinação

A germinação das sementes de citrumelo ‘Swingle’ ocorreu entre o 10º e

40º dia após a semeadura, evidenciando também sua lenta germinação. Silva

(2006) observou, nessa mesma espécie, germinação entre o 5º e 30º dia após a

semeadura, no entanto, foi realizada previamente a extração do tegumento. Além

de essa estrutura ser uma barreira mecânica à germinação, agentes aleloquímicos

presentes na mesma podem também inibir a germinação. Ketring (1973)

identificou em frutos de Citrus limon o inibidor Citral.

Em testes preliminares realizados com sementes de alface, semeadas em

substrato umedecido com extrato triturado provenientes da testa e do tegma de

sementes de citrumelo ‘Swingle’, Carvalho, 2001 observaram reduções de 88%

nos valores de germinação das sementes de alface semeadas em substrato

contendo testa e de 100% quando foram semeadas em substrato com tegma.

Souza et al. (2006) também verificaram uma redução na porcentagem de

germinação em sementes de alface semeadas em substrato de tegma a 5%, e a

ausência de pelos absorventes nas radículas das mesmas.

No entanto, neste trabalho, obteve-se alta porcentagem de germinação,

em sementes não armazenadas, mesmo não havendo sido realizada a extração

prévia dos tegumentos.

Na Figura 17 encontram-se as curvas respostas em função do período de

condicionamento (PC) e na Figura 18 encontram-se as curvas respostas em

função do período de armazenamento (PA).

Quando as sementes não foram armazenadas, pode-se observar uma

tendência de aumento na porcentagem de germinação quando as sementes foram

condicionadas por até 6 dias, em PEG 6000 ou em KNO

, seguido de uma

redução nos maiores períodos de condicionamento (Figura 17A). Os maiores

incrementos na germinação foram obtidos quando as sementes foram

condicionadas por 6 dias em soluções contendo PEG 6000 ou KNO

, com

porcentagem em torno de 80% de germinação, representando ganhos de 8% em

relação à testemunha (Tabela 24A).

Posse et al. (2001), observou maior eficiência na germinação de

sementes de pimentão, quando estas foram condicionadas durante 21 dias em

solução de PEG 6000 a -0,5 MPa, quando comparado aos tratamentos com

potenciais de -1,0 e -1,5 MPa durante 7, 14 e 21 dias. Soluções salinas com

potencial osmótico mais negativo, que previnem a germinação durante o

tratamento, resultaram em menores reduções no T50 (tempo médio para

ocorrência de 50% de germinação).

Aos 3 meses de armazenamento, quando as sementes foram

condicionadas em solução contendo PEG 6000, observa-se que o houve uma

tendência de estabilidade dos valores da porcentagem de germinação até o 6º dia

de condicionamento, seguida de redução nesses valores nos demais períodos

(Figura 17B). Nesse caso os maiores valores superaram a testemunha em até 23

pontos percentuais. Quando o soluto utilizado foi KNO

houve uma tendência de

aumento da porcentagem de germinação, com valores máximos alcançados

quando o condicionamento foi por 12 dias com ganhos de 30% em relação à

testemunha (Tabela 24A).

Diferenças significativas entre os solutos em cada período de condicionamento estão discriminadas por letras.

FIGURA 17 Estimativa da porcentagem de germinação (%G) de sementes de

citrumelo ‘Swingle’, armazenadas por 0, 3, 6 e 9 meses, em

função do condicionamento osmótico em soluções contendo

diferentes solutos (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 + KNO

) e do

período de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias).

testemunha

0 meses

100

036912

PC (dias)

b a c

c a b

-T

3 meses

100

036912

PC (dias)

a b b

a a b

b a c

-T

6 meses

100

036912

PC (dias)

a b b

-T

(A)

(B)

(C)

PEG 6000

100

036

PA (meses)

KNO3

100

036

PA (meses)

PEG 6000 + KNO3

100

036

PA (meses)

FIGURA 18 Estimativa da porcentagem de germinação (%G) de sementes de

citrumelo ‘Swingle’, submetidas ao condicionamento osmótico

em diferentes soluções (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 + KNO

)

em função do período de armazenamento (meses) e do período de

condicionamento (dias).

Também foi observada uma tendência de aumento da porcentagem de

germinação, quando na presença da combinação de PEG 6000 + KNO

, até o 6º

dia de condicionamento, seguido de uma redução nos períodos seguintes (Figura

17B).

Ao 6º mês de armazenamento, observa-se uma baixa porcentagem de

germinação para todos os tratamentos (Figura 17C), exceto quando no 6º dia de

condicionamento, houve uma tendência de aumento da germinação quando as

sementes foram condicionadas em PEG 6000, quando houve o ganho de 35%

em relação à testemunha (Tabela 24A).

Ribeiro et al. (2002) observaram que a exposição das sementes de

algodão em soluções com maior concentração de PEG 6000 (-12 atm)

proporcionou maiores valores de germinação das sementes. No entanto, no

período de 30 horas, foi observada a protrusão radicular de grande parte das

sementes, indicando, dessa forma, a necessidade de menores períodos para o

reparo das membranas.

Há uma tendência linear de redução da porcentagem de germinação,

independente do soluto utilizado e em todos os períodos de condicionamento, ao

longo do período de armazenamento, exceto aos 12 dias de condicionamento na

presença de PEG 6000 e aos 9 dias na presença de PEG 6000 + KNO

, havendo

nesses casos uma tendência de aumento quando as sementes foram armazenadas

por 3 meses, seguido de uma redução aos 6 meses (Figura 18).

4.2.3 Índice de velocidade de germinação (IVG)

Na Figura 19 encontram-se as curvas respostas do índice de velocidade

de germinação em função do período de condicionamento (PC) e na Figura 20

encontram-se as curvas respostas em função do período de armazenamento

(PA).

O condicionamento em sementes não armazenadas propiciou maiores

índices de velocidade de germinação quando se utilizou KNO

independente do

período de condicionamento (Figura 19A). O ganho médio desses tratamentos

em relação à testemunha foi de 30% (Tabela 24A).

Existem, na literatura, controvérsias com respeito aos efeitos dos

tratamentos e à qualidade inicial das sementes. Woodstock & Tao (1981)

observaram que a embebição de sementes de soja em solução de 30% de PEG,

não só evita injúrias provocadas pela rápida absorção de água, como também

aumenta o desempenho germinativo de sementes de baixo vigor. Também Fu et

al. (1998) verificaram que o condicionamento fisiológico aumentou a

germinação e o vigor de sementes de amendoim deterioradas. Sementes de baixo

vigor, embebidas em PEG ou em água, apresentam melhoria na germinação de

acordo com Burgass & Powell (1984). Entretanto, Parera & Cantliffe (1994)

sugeriram o uso de sementes de alto vigor como pré-requisito para se obter bom

resultado no condicionamento osmótico.

Aos 3 meses de armazenamento, há uma tendência de aumento deste

índice para sementes condicionadas em KNO

(Figura 19B), com ganhos de

48% em relação à testemunha quando o condicionamento foi de 12 dias (Tabela

24A). Quando se utilizou o soluto PEG 6000 + KNO

a tendência também foi de

aumento do IVG até o 9º dia de condicionamento, sendo que valores superiores

ao da testemunha foram obtidos aos 6 e 9 dias de condicionamento. Com o

soluto PEG 6000 não foram observados valores de IVG maiores que da

testemunha (Tabela 24A).

Aos 6 meses, apenas o condicionamento com PEG 6000, pelo período de

condicionamento de 6 dias, foi eficiente para recuperar o vigor das sementes,

quando foram obtidos ganhos de até 27% em relação à testemunha (Tabela

24A).

Diferenças significativas entre os solutos em cada período de condicionamento estão discriminadas por letras.

FIGURA 19 Estimativa do índice de velocidade de germinação (IVG) de

sementes de citrumelo ‘Swingle’, armazenadas por 0, 3, 6 e 9

meses, em função do condicionamento osmótico em soluções

contendo diferentes solutos (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 +

KNO

) e do período de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias).

testemunha

0 meses

0,5

1,5

2,5

036912

PC (dias)

b a a

b a b

b a c

c a b

-T

3 meses

0,5

1,5

2,5

036912

PC (dias)

a b b

b a b

b a a

b a c

-T

6 meses

0,5

1,5

2,5

036912

PC (dias)

a b b

b a a

-T

(A)

(B)

(C)

PEG 6000

0,5

1,5

2,5

036

PA (meses)

KNO3

0,5

1,5

2,5

036

PA (meses)

PEG 6000 + KNO3

0,5

1,5

2,5

036

PA (meses)

FIGURA 20 Estimativa do índice de velocidade de germinação (IVG) de

sementes de citrumelo ‘Swingle’, submetidas ao condicionamento

osmótico em diferentes soluções (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 +

KNO

) em função do período de armazenamento (meses) e do

período de condicionamento (dias).

Observa-se uma tendência geral de redução da velocidade de germinação

ao longo de todo o armazenamento, para todos os tratamentos, independente do

soluto e do período de condicionamento utilizado (Figura 20).

4.2.4 Teste de emergência em bandeja

Na Figura 21 encontram-se as curvas respostas em função do período de

condicionamento (PC) e na Figura 22 encontram-se as curvas respostas em

função do período de armazenamento (PA).

A porcentagem de emergência das sementes não armazenadas manteve-

se constante até o 9º dia de condicionamento, quando este foi realizado em PEG

6000 ou KNO

e, aos 6 e 9 dias de condicionamento, quando em combinação de

PEG 6000 + KNO

, apresentando resultados superiores à testemunha (Figura

21A). No entanto, após as sementes terem sido armazenadas por 3 meses (Figura

21B), diminuindo assim sua capacidade de emergência, apenas o

condicionamento em PEG 6000, pelo período de 3 dias, se mostrou eficiente,

apresentando ganhos de 17% em relação à testemunha (Tabela 24A).

Já aos 6 meses de armazenamento (Figura 21C), maior valor de

porcentagem de emergência (60%) foi obtido quando as sementes foram

condicionadas por 6 dias em solução contendo PEG 6000, apresentando ganho

de 48% em relação à testemunha (Tabela 24A).

Bramlage et al. (1978) obtiveram sucesso no revigoramento de sementes

de soja com cinco minutos de exposição em solução contendo PEG 6000 a -12

atm. Por outro lado, Shioga (1990), trabalhando com sementes de feijão, defende

os períodos mais longos de condicionamento como os melhores tratamentos.

Ribeiro et al. (2002) verificaram uma superioridade dos lotes de

sementes de algodão condicionados sob concentração mais negativa de PEG,

mas, no entanto, dentro dessa concentração, não houve diferença com relação ao

período de embebição.

Diferenças significativas entre os solutos em cada período de condicionamento estão discriminadas por letras.

FIGURA 21 Estimativa da porcentagem de emergência (%E) de sementes de

citrumelo ‘Swingle’, armazenadas por 0, 3, 6 e 9 meses, em

função do condicionamento osmótico em soluções contendo

diferentes solutos (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 + KNO

) e do

período de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias).

testemunha

3 meses

100

036912

PC (dias)

a b c

b a a

a b c

-T

6 meses

100

036912

PC (dias)

a b c

-T

0 meses

100

036912

PC (dias)

-T

(A)

(B)

(C)

PEG 6000

100

036

PA (meses)

KNO3

100

036

PA (meses)

PEG 6000 + KNO3

100

036

PA (meses)

FIGURA 22 Estimativa da porcentagem de emergência (%E) de sementes de

citrumelo ‘Swingle’, submetidas ao condicionamento osmótico

em diferentes soluções (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 + KNO

)

em função do período de armazenamento (meses) e do período de

condicionamento (dias).

Há uma tendência de redução da porcentagem de emergência ao longo

do armazenamento, independente do soluto utilizado e do período de

condicionamento a que as sementes foram submetidas (Figura 22).

4.2.5 Índice de velocidade de emergência

Na Figura 23 encontram-se as curvas respostas em função do período de

condicionamento (PC) e na Figura 24 encontram-se as curvas respostas em

função do período de armazenamento (PA).

O índice de velocidade de emergência das sementes não armazenadas

manteve-se constante durante todo o período de condicionamento, independente

do soluto, não apresentando resultados superiores à testemunha (Figura 23A).

No entanto, após as sementes terem sido armazenadas, diminuindo assim seu

vigor, foram observados ganhos de até 30% e 80% em relação à testemunha

(Tabela 24A), quando as sementes foram condicionadas na presença de PEG

6000 por 3 dias após terem sido armazenadas por 3 meses e 6 dias após terem

sido armazenadas por 6 meses, respectivamente (Figura 23A).

Ribeiro et al. (2002) concluiram que soluções de PEG 6000 mais

negativas (-12 atm) são mais indicadas para o condicionamento fisiológico de

sementes de algodão e que, nessa concentração, o período de embebição não

influi nos resultados.

Há uma tendência de redução do índice de velocidade de emergência ao

longo do armazenamento, independente do soluto utilizado e do período de

condicionamento a que as sementes foram submetidas, exceto quando as

sementes foram condicionadas em solução contendo PEG 6000, durante 6 dias,

havendo uma tendência de aumento aos 6 meses de armazenamento (Figura 24).

Diferenças significativas entre os solutos em cada período de condicionamento estão discriminadas por letras.

FIGURA 23 Estimativa do índice de velocidade de emergência (IVE) de

sementes de citrumelo ‘Swingle’, armazenadas por 0, 3, 6 e 9

meses, em função do condicionamento osmótico em soluções

contendo diferentes solutos (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 +

KNO

) e do período de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias).

testemunha

0 meses

0,5

1,5

2,5

3,5

036912

PC (dias)

b a b

-T

3 meses

0,5

1,5

2,5

3,5

036912

PC (dias)

a b b

b a b

a a b

-T

6 meses

0,5

1,5

2,5

3,5

036912

PC (dias)

a b b

-T

(A)

(B)

(C)

PEG 6000

0,5

1,5

2,5

3,5

036

PA (meses)

IVE

KNO3

0,5

1,5

2,5

3,5

036

PA (meses)

PEG 6000 + KNO3

0,5

1,5

2,5

3,5

036

PA (meses)

FIGURA 24 Estimativa do índice de velocidade de emergência (IVE) de

sementes de citrumelo ‘Swingle’, submetidas ao condicionamento

osmótico em diferentes soluções (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 +

KNO

) em função do período de armazenamento (meses) e do

período de condicionamento (dias).

4.2.6 Condutividade elétrica

Na Figura 25 encontram-se as curvas respostas em função do período de

condicionamento (PC) e na Figura 26 encontram-se as curvas respostas em

função do período de armazenamento (PA).

Há uma tendência linear constante da condutividade elétrica das

sementes não armazenadas de citrumelo ‘Swingle’, sendo que os maiores

valores foram obtidos quando o condicionamento foi feito na presença do KNO

durante todo o período de condicionamento, seguido da solução contendo PEG

6000 + KNO

e por último, apenas o PEG 6000 (Figura 25A).

Pelo teste de condutividade elétrica foi possível detectar diferença

estatística entre os solutos utilizados. Os menores valores de condutividade

foram obtidos quando as sementes não armazenadas foram condicionadas em

solução contendo apenas PEG 6000, durante todo o período (3, 6, 9 e 12 dias) de

condicionamento (13.23, 12.19, 13.36 e 18,62 µS/cm/g), respectivamente. Os

maiores valores foram obtidos quando na presença do KNO

(55.78, 54.59,

58.38 e 62.71 µS/cm/g), sendo estes superiores inclusive à testemunha (37.58

µS/cm/g), seguidos pelas sementes condicionadas em PEG 6000 + KNO

(23.19,

30.12, 26.90 e 29.31 µS/cm/g), nos mesmos períodos (Tabela 24A).

Nos condicionamentos realizados após o 3º mês de armazenamento, com

o soluto KNO

os resultados foram inconsistentes, mas em todos os casos com

condutividade elétrica superior a da testemunha, ou seja, indicando ineficiência

do tratamento (Figura 25B). Quando se utilizou o soluto PEG 6000+ KNO

valores da condutividade foram decrescentes em relação ao tempo de

condicionamento, com valores mais baixos no tempo de 6 dias e crescentes até

12 dias. Em relação à testemunha esses valores foram sempre mais altos (Tabela

24A). Com o soluto PEG 6000, as variações dos valores da condutividade foram

constantes até 9 dias de condicionamento, aumentando em seguida. Neste caso

os valores foram iguais ou superiores à testemunha.

Nos condicionamentos após 6 meses de armazenamento, quando se

utilizou o soluto KNO

, houve uma tendência linear crescente (Figura 25C). Aos

3 dias de condicionamento com valores abaixo dos observados para a

testemunha e a partir do período de 6 dias com valores superiores ao do controle.

Quando o soluto utilizado foi o PEG 6000+KNO

houve uma tendência linear

decrescente dos valores. Valores maiores de condutividade elétrica que da

testemunha foram obtidos quando o condicionamento foi realizado por 3 dias.

Quando se utilizou o soluto PEG

6000, os valores da condutividade

foram decrescentes em relação ao tempo de condicionamento, com valores mais

baixos no tempo de 9 dias e constantes até 12 dias (Figura 25C). Os valores

obtidos aos 3 dias de condicionamento foram superiores aos da testemunha, com

um aumento de 50%, não diferindo dessas aos 6 dias e, inferiores a partir do 9º

dia, reduzindo até 62% (Tabela 24A).

A variação dos resultados de condutividade elétrica relativa a tempos de

condicionamento, em função dos diferentes solutos, provavelmente ocorreu por

ser o controle da embebição das sementes um fator limitante. A embebição em

água parece ter contribuído para ocasionar danos de membrana, o que propiciou

aumento de lixiviação de solutos com o aumento do tempo de embebição.

Woodstock & Tao (1981) mencionam que a embebição muito rápida pode

aumentar a lixiviação de solutos, em conseqüência dos danos de membrana.

Há uma tendência de aumento da condutividade elétrica ao longo do

período de armazenamento, independente do soluto utilizado e do período de

condicionamento a que foram submetidas, exceto quando as sementes foram

condicionadas por 6 e 12 dias em KNO

e, por 9 e 12 dias em PEG 6000 +

KNO

, havendo uma tendência de redução após o 3º mês de armazenamento

(Figura 26).

0 meses

100

150

200

250

300

036912

PC (dias)

CE (mS/ cm/ g

)

c a b c a b c a b

c a b

-T

Diferenças significativas entre os solutos em cada período de condicionamento estão discriminadas por letras.

FIGURA 25 Estimativa da condutividade elétrica (CE) de sementes de

citrumelo ‘Swingle’, armazenadas por 0, 3, 6 e 9 meses, em

função do condicionamento osmótico em soluções contendo

diferentes solutos (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 + KNO

) e do

período de condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias).

testemunha

3 meses

100

150

200

250

300

036912

PC (dias)

CE (mS/cm/g

)

c b a

c a b

c b a

-T

6 meses

100

150

200

250

300

036912

PC (dias)

CE (mS/cm/g

)

a c b

b c a

b a b c a b

-T

(A)

(B)

(C)

PEG 6000

100

150

200

250

300

036

PA (meses)

CE (mS/cm/g)

KNO3

100

150

200

250

300

036

PA (meses)

CE (mS/cm/g)

PEG 6000 + KNO3

100

150

200

250

300

036

PA (meses)

CE (mS/cm/g)

FIGURA 26 Estimativa da condutividade elétrica (CE) de sementes de

citrumelo ‘Swingle’, submetidas ao condicionamento osmótico

em diferentes soluções (PEG 6000, KNO

e PEG 6000 + KNO

)

em função do período de armazenamento (meses) e do período de

condicionamento (dias).

4.2.7 Análise da atividade enzimática

O estresse causado pelo condicionamento ativou o metabolismo das

sementes, induzindo a processos oxidativos e produção de radicais livres,

levando assim ao aparecimento da atividade da enzima superóxido dismutase

(SOD), nos períodos de armazenamento de 0 e 3 meses, para todos os solutos

(Figura27), sendo que não foi observada atividade desta enzima nas sementes

não condicionadas (testemunha). Aos 6 meses de armazenamento, houve um

aumento na intensidade das bandas e surgiram novas bandas, nas sementes

condicionadas. Foi observada também a presença de bandas nas sementes não

condicionadas nesse período, indicando assim que houve deterioração das

sementes.

As superóxidos dismutases são um grupo de enzimas, encontrados no

citoplasma celular e matriz mitocondrial, que catalisam a reação de dismutação

de radicais superóxidos livres (O

) produzidos em diferentes locais na célula

para oxigênio molecular (O

) e peróxido de hidrogênio (H

Pôde-se observar uma redução na definição das bandas no perfil

enzimático da malato desidrogenase (MDH) à medida que se aumentou o

período de armazenamento, havendo um maior arraste e maior intensidade de

coloração aos 6 meses de armazenamento, para todos os tratamentos, inclusive

na testemunha (Figura 28), indicando que houve uma intensificação na

respiração das sementes.

O aumento no número e/ou intensidade de coloração de bandas dessa

enzima, em sementes submetidas a períodos mais longos de envelhecimento,

pode ser em função do aumento da respiração que ocorre em sementes que se

encontram em processo de deterioração avançado, uma vez que enzimas

envolvidas na respiração podem ser ativadas em sementes de qualidade reduzida

(Shatters, 1994).

FIGURA 27 Padrões isoenzimáticos de sementes de citrumelo ‘Swingle’

armazenadas por 0 (A), 3 (B) e 6 (C) meses, submetidas ao

condicionamento osmótico em soluções aeradas de PEG, KNO

PEG + KNO

(T - testemunha) por diferentes períodos de

condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias), reveladas para a superóxido

dismutase (SOD).

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

(A)

(B)

(C)

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

PEG

3 6 9 12

KNO

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG + KNO

Vieira (1996) afirma que enzimas envolvidas na respiração podem

apresentar alta atividade em sementes de qualidade reduzida e ser um possível

marcador molecular para deterioração.

As esterases compõem o grupo de enzimas hidrolíticas que liberam

ácidos graxos dos lipídios, os quais são usados na β-oxidação, como fonte de

energia para os eventos germinativos. Enquanto muitos desses lipídios são

provenientes de lipossomos, alguns são constituintes de membranas, cuja

degradação aumenta com a deterioração.

A atividade da enzima esterase nas sementes de citrumelo ‘Swingle’

decresceu em função do aumento do período de armazenamento, sugerindo

ocorrência de deterioração da semente, independente do soluto utilizado e do

período de condicionamento a que foram submetidas (Figura 29).

Aung & McDonald (1995) avaliaram a atividade de esterases durante a

deterioração de sementes de amendoim, encontrando decréscimos na sua

atividade total, com o aumento da deterioração tanto em sementes embebidas

como não embebidas.

Pode-se observar ausência de atividade da enzima catalase (CAT) em

sementes não armazenadas de citrumelo ‘Swingle’, que não foram submetidas

ao condicionamento, sugerindo que o condicionamento empregado nos demais

tratamentos tenha causado estresse, ativando o metabolismo dessas enzimas,

ocorrendo o surgimento de bandas (Figura 30). Houve uma menor intensidade

destas bandas quando as sementes foram condicionadas por 3 dias em solução

contendo PEG 6000, quando as sementes não foram armazenadas e aos 3 meses

de armazenamento. Aos 6 meses de armazenamento foi observada maior

intensidade de coloração das bandas para todos os tratamentos empregados.

FIGURA 28 Padrões isoenzimáticos de sementes de citrumelo ‘Swingle’

armazenadas por 0 (A), 3 (B) e 6 (C) meses, submetidas ao

condicionamento osmótico em soluções aeradas de PEG, KNO

PEG + KNO

(T - testemunha) por diferentes períodos de

condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias), reveladas para a malato

desidrogenase (MDH).

(A)

(B)

(C)

3 6 9 12 3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

FIGURA 29 Padrões isoenzimáticos de sementes de citrumelo ‘Swingle’

armazenadas por 0 (A), 3 (B) e 6 (C) meses, submetidas ao

condicionamento osmótico em soluções aeradas de PEG, KNO

PEG + KNO

(T - testemunha) por diferentes períodos de

condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias), reveladas para a esterase

(EST).

(A)

(B)

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

(C)

As peroxidases desempenham um papel crítico no metabolismo das

plantas e na oxidação por peróxidos, como aceptores de hidrogênio, sendo

importante nos mecanismos de defesa. A perda da sua atividade pode tornar as

sementes mais sensíveis aos efeitos do O

, tornando as sementes mais sujeitas à

perda de viabilidade (Faria et al., 2003).

Foi observado que quando as sementes foram armazenadas por período

de tempo mais longos, independente do soluto utilizado, houve uma menor

intensidade de coloração das bandas dessa enzima (Figura 31), sugerindo assim

a perda de viabilidade das sementes em função do maior período de

armazenamento.

Observa-se uma redução da atividade da enzima álcool desidrogenase

nas sementes de citrumelo ‘Swingle’ em função do aumento do período de

armazenamento, independente do soluto utilizado e do período de

condicionamento (Figura 32). Essa redução foi ainda mais evidente quando as

sementes foram condicionadas em solução contendo KNO

ou PEG 6000 +

KNO

. Quando as sementes foram armazenadas por 9 meses não houve

atividade dessa enzima para nenhum dos tratamentos empregados, inclusive para

a testemunha, sugerindo completa deterioração dessas sementes.

Não foi possível estabelecer correlações consistentes entre os resultados

observados nos perfis eletroforéticos das proteínas resistentes ao calor (LEA

proteína) e os resultados fisiológicos observados para sementes de citrumelo

‘Swingle’ (Figura 33). Entretanto, a redução do número e intensidade de bandas

observadas pode ser atribuída à hidrólise das proteínas quando o processo de

germinação atingiu estádios mais avançados por causa do condicionamento.

FIGURA 30 Padrões isoenzimáticos de sementes de citrumelo ‘Swingle’

armazenadas por 0 (A), 3 (B) e 6 (C) meses, submetidas ao

condicionamento osmótico em soluções aeradas de PEG, KNO

PEG + KNO

(T - testemunha) por diferentes períodos de

condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias), reveladas para a catalase

(CAT).

(A)

(B)

(C)

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

FIGURA 31 Padrões isoenzimáticos de sementes de citrumelo ‘Swingle’

armazenadas por 0 (A), 3 (B) e 6 (C) meses, submetidas ao

condicionamento osmótico em soluções aeradas de PEG, KNO

PEG + KNO

(T - testemunha) por diferentes períodos de

condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias), reveladas para a peroxidase

(PO).

(A)

(B)

(C)

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

FIGURA 32 Padrões isoenzimáticos de sementes de citrumelo ‘Swingle’

armazenadas por 0 (A) e 3 (B) meses, submetidas ao

condicionamento osmótico em soluções aeradas de PEG, KNO

PEG + KNO

(T - testemunha) por diferentes períodos de

condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias), reveladas para a álcool

desidrogenase (ADH).

(A)

(B)

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

FIGURA 33 Padrões protéicos de sementes de citrumelo ‘Swingle’,

armazenadas por 0 (A), 3 (B) e 6 (C) meses, submetidas ao

condicionamento osmótico em soluções aeradas de PEG, KNO

PEG + KNO

(T - testemunha) por diferentes períodos de

condicionamento (3, 6, 9 e 12 dias), reveladas para a proteína de

resistência ao calor (LEA).

(A)

(B)

(C)

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

3 6 9 12

3 6 9 12 3 6 9 12

PEG

KNO

PEG + KNO

5 CONSIDERAÇÕES FINAIS

Apesar de o tegumento ser considerado uma barreira mecânica à

germinação das sementes, neste trabalho, não se verificou a redução desta

característica, em sementes não armazenadas, mesmo não tendo sido realizada a

remoção desta estrutura nas sementes, tanto para limão cravo quanto para o

citrumelo ‘Swingle’. No entanto, a emergência das plântulas foi

expressivamente maior quando as sementes foram condicionadas.

Esse resultado representa um ganho expressivo para as empresas

produtoras de mudas cítricas, visto que possibilita a redução de mão-de-obra

para realizar a destegumentação das sementes, principalmente as de limão cravo.

Outro ponto importante a ser observado refere-se à recuperação do

desempenho fisiológico em lotes de sementes armazenadas. Sementes de limão

cravo e, principalmente as de citrumelo ‘Swingle’, perdem rapidamente a sua

qualidade com o aumento do período de armazenamento, no entanto, com a

utilização da técnica do condicionamento osmótico, foi possível manter, por três

meses desempenho semelhante ao observado nas sementes que não foram

armazenadas.

Nas sementes de citrumelo ‘Swingle’, esta observação é ainda mais

evidente, pois quando as sementes foram armazenadas por até 6 meses,

apresentando baixo vigor, pôde-se observar recuperação de todas as

características avaliadas quando as sementes foram condicionadas em PEG

6000, confirmando a eficiência desta técnica quando as sementes possuem baixo

vigor, como observado em outras pesquisas.

6 CONCLUSÕES

O condicionamento fisiológico de sementes é uma técnica promissora

para melhorar a qualidade fisiológica de sementes de limão cravo e citrumelo

‘Swingle’.

O condicionamento fisiológico em solução aerada de PEG 6000,

independente do período de embebição, ou em solução de KNO

ou PEG 6000 +

KNO

, por até 9 dias, é eficiente para recuperar a viabilidade de sementes de

limão cravo armazenadas por até 3 meses.

Condicionamento em solução contendo PEG 6000 ou KNO

, por 6 dias,

aumenta a porcentagem de germinação em sementes não armazenadas de

citrumelo ‘Swingle’.

Em sementes armazenadas por até 3 meses, independente da espécie, os

tratamentos mais eficientes foram condicionamento em PEG 6000, por 6 dias,

ou em KNO

, com período de 6 a 12 dias de embebição.

As enzimas superóxido dismutase (SOD), malato desidrogenase (MDH)

e álcool desidrogenase (ADH) são mais eficientes para avaliar alterações devidas

ao condicionamento tanto em sementes de limão cravo, quanto de citrumelo

Swingle.

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105

ANEXOS

Página

TABELA 1A Análise de variância de sementes armazenadas de limão

cravo submetidas ao condicionamento osmótico em

diferentes solutos, por diferentes períodos de

condicionamento. ................................................................ 108

TABELA 2A Equações de regressão ajustadas do teste de germinação

(G) em função do período de armazenamento (PA) de

sementes osmocondicionadas de limão cravo. ................... 108

TABELA 3A Equações de regressão ajustadas do teste de germinação

(G) em função do período de condicionamento (PC) de

sementes armazenadas de limão cravo. .............................. 109

TABELA 4A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade

de germinação (IVG) em função do período de

armazenamento (PA) de sementes osmocondicionadas de

limão cravo. ........................................................................ 109

TABELA 5A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade

de germinação (IVG) em função do período de

condicionamento (PC) de sementes armazenadas de limão

cravo. ................................................................................... 110

TABELA 6A Equações de regressão ajustadas do teste de emergência

(E) em função do período de armazenamento (PA) de

sementes osmocondicionadas de limão cravo. ................... 110

TABELA 7A Equações de regressão ajustadas do teste de emergência

(E) em função do período de condicionamento (PC) de

sementes armazenadas de limão cravo. .............................. 111

TABELA 8A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade

de emergência (IVE) em função do período de

armazenamento (PA) de sementes osmocondicionadas de

limão cravo. . ....................................................................... 111

106

TABELA 9A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade

de emergência (IVE) em função do período de

condicionamento (PC) de sementes armazenadas de limão

cravo. .................................................................................. 112

TABELA 10A Equações de regressão ajustadas da condutividade elétrica

(CE) em função do período de armazenamento (PA) de

sementes osmocondicionadas de limão cravo. ................... 112

TABELA 11A Equações de regressão ajustadas da condutividade elétrica

(CE) em função do período de armazenamento (PA) de

sementes osmocondicionadas de limão cravo. ................... 113

TABELA 12A Resultados médios de germinação (%G), índice de

velocidade de germinação (IVG), emergência (%E), índice

de velocidade de emergência (IVE) e condutividade

elétrica (CE) de sementes armazenadas de limão cravo em

diferentes períodos (PA – 0, 3, 6 e 9 meses), submetidas ao

condicionamento osmótico em diferentes solutos (PEG,

KNO

e PEG + KNO

), por diferentes períodos (PC – 3, 6,

9 e 12 dias; Test - testemunha). .......................................... 114

TABELA 13A Análise de variância de sementes armazenadas de

citrumelo ‘Swingle’ submetidas ao condicionamento

osmótico em diferentes solutos, por diferentes períodos de

condicionamento. ................................................................ 116

TABELA 14A Equações de regressão ajustadas do teste de germinação

(G) em função do período de armazenamento (PA) de

sementes osmocondicionadas de citrumelo ‘Swingle’. ...... 116

TABELA 15A Equações de regressão ajustadas do teste de germinação

(G) em função do período de condicionamento (PC) de

sementes armazenadas de citrumelo ‘Swingle’. ................. 117

TABELA 16A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade

de germinação (IVG) em função do período de

armazenamento (PA) de sementes osmocondicionadas de

citrumelo ‘Swingle’. ........................................................... 117

107

TABELA 17A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade

de germinação (IVG) em função do período de

condicionamento (PC) de sementes osmocondicionadas de

citrumelo ‘Swingle’. ........................................................... 118

TABELA 18A Equações de regressão ajustadas do teste de emergência

(E) em função do período de armazenamento (PA) de

sementes osmocondicionadas de citrumelo ‘Swingle’. ...... 118

TABELA 19A Equações de regressão ajustadas do teste de emergência

(E) em função do período de condicionamento (PC) de

sementes armazenadas de citrumelo ‘Swingle’. ................. 119

TABELA 20A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade

de emergência (IVE) em função do período de

armazenamento (PA) de sementes osmocondicionadas de

citrumelo ‘Swingle’. ........................................................... 119

TABELA 21A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade

de emergência (IVE) em função do período de

condicionamento (PC) de sementes armazenadas de

citrumelo ‘Swingle’. ........................................................... 120

TABELA 22A Equações de regressão ajustadas da condutividade elétrica

(CE) em função dos períodos de armazenamento (PA) de

sementes osmocondicionadas de citrumelo ‘Swingle’. ...... 120

TABELA 23A Equações de regressão ajustadas da condutividade elétrica

(CE) em função do período de condicionamento (PC) de

sementes armazenadas de citrumelo ‘Swingle’. ................. 121

TABELA 24A Resultados médios de germinação (%G), índice de

velocidade de germinação (IVG), emergência (%E), índice

de velocidade de emergência (IVE) e condutividade

elétrica (CE) de sementes armazenadas de citrumelo

‘Swingle’ em diferentes períodos (PA – 0, 3, 6 e 9 meses),

submetidas ao condicionamento osmótico em diferentes

solutos (PEG, KNO

e PEG + KNO

), por diferentes

períodos (PC – 3, 6, 9 e 12 dias; Test - testemunha). . ....... 122

108

TABELA 1A Análise de variância de sementes armazenadas de limão cravo

submetidas ao condicionamento osmótico em diferentes solutos,

por diferentes períodos de condicionamento.

FV GL G IVG E IVE CE

ARM 3 168,000

4,677

346,596

4,219

861,031

SOL 2 0,1328

n.s

0,035

10,564

0,176*

488,398

PC 3 1,865

0,013

8,093

0,052

6,471

ARM*SOL 6 0,858

0,016

10,484

0,093

20,104

ARM*PC 9 4,117

0,055

11,764

0,095

7,810

SOL*PC 6 0,788

0,013

4,431

0,087

3,944

ARM*SOL*PC 18 1,236

0,039

7,051

0,063

3,366

ERRO 144 0,089 0,001 0,066 0,001 0,207

CV (%) 3,82 2,10 4,04 2,65 4,49

* Teste F significativo a 5% de probabilidade

TABELA 2A Equações de regressão ajustadas do teste de germinação (G) em

função do período de armazenamento (PA) de sementes

osmocondicionadas de limão cravo.

Variáveis Equações de regressão r²

Y(PEG)= 0,4962x² - 4,2702x + 96,681 0,4868

Y(KNO

)= -0,9566x² + 3,3435x + 92,594 0,7443

0 meses

Y(PEG + KNO

)= -0,2425x² + 0,4115x + 95,521 0,6527

Y(PEG) = -0,354x² + 0,5245x + 87,434 0,1045

Y(KNO

)= -4,0037x² + 16,83x + 67,688 0,8650

3 meses

Y(PEG + KNO

)= -1,6278x² + 4,6186x + 76,677 0,8768

Y(PEG)= -11,305x² + 57,127x - 9,4337 0,9100

Y(KNO

)= 7,5936x² - 38,089x + 86,778 0,3194

6 meses

Y(PEG + KNO

)= 7,6405x² - 34,549x + 72,406 0,3901

Y(PEG)= 6,0091x + 14,933 1,0000

Y(KNO

)= 6,809x + 12,934 0,8376

9 meses

Y(PEG + KNO

)= 6,0069x + 18,945 1,0000

109

TABELA 3A Equações de regressão ajustadas do teste de germinação (G) em

função do período de condicionamento (PC) de sementes

armazenadas de limão cravo.

Variáveis Equações de regressão r²

Y (3 d)= -26,775x + 126,23 0,8851

Y (6 d)= -21,507x + 120,2 0,9283

Y (9 d)= -19,364x + 114,75 0,8402

PEG 6000

Y (12 d)= -19,075x + 110 0,8564

Y (3 d)= -24,771x + 124,73 0,9784

Y (6 d)= -22,172x + 120,75 0,9722

Y (9 d)= -24,057x + 120,5 0,7891

KNO3

Y (12 d)= -17,252x + 109,95 0,9711

Y (3 d)= -25,286x + 123,71 0,9650

Y (6 d)= -21,938x + 117,62 0,9891

Y (9 d)= -23,747x + 119,45 0,7459

PEG 6000 + KNO3

Y (12 d)= -15,713x + 105,7 0,9602

TABELA 4A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade de

germinação (IVG) em função do período de armazenamento

(PA) de sementes osmocondicionadas de limão cravo.

Variáveis Equações de regressão r²

Y(PEG)= -0,0788x² + 0,3727x + 1,9034 0,3022

Y(KNO

)= -0,0102x² + 0,1307x + 1,9651 0,7008

0 meses

Y(PEG + KNO

)= -0,1121x² + 0,8192x + 1,0398 0,7887

Y(PEG)= 0,0026x² + 0,0399x + 2,2848 0,4919

Y(KNO

)= -0,1398x² + 0,5845x + 1,8681 0,9684

3 meses

Y(PEG + KNO

)= -0,1233x² + 0,5638x + 1,7524 0,9750

Y(PEG)= -0,2722x² + 1,2533x + 0,3566 0,9410

Y(KNO

)= 0,2519x² - 1,3047x + 2,8154 0,4371

6 meses

Y(PEG + KNO

)= 0,3897x² - 1,8618x + 3,1366 0,6462

Y(PEG)= -0,11x + 0,7539 0,7169

Y(KNO

)= -0,0656x² + 0,3516x - 0,2218 0,4784

IVG

9 meses

Y(PEG + KNO

)= -0,1622x + 0,7291 0,9082

110

TABELA 5A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade de

germinação (IVG) em função do período de condicionamento

(PC) de sementes armazenadas de limão cravo.

Variáveis Equações de regressão r²

Y (3 d)= -0,5534x + 2,9952 0,8242

Y (6 d)= -0,6145x + 3,3519 0,8592

Y (9 d)= -0,6486x + 3,2508 0,7461

PEG 6000

Y (12 d)= -0,6843x + 3,2297 0,8199

Y (3 d)= -0,6739x + 3,2271 0,7475

Y (6 d)= -0,6789x + 3,2632 0,7350

Y (9 d)= -0,7637x + 3,3772 0,8581

KNO3

Y (12 d)= -0,6784x + 3,224 0,8046

Y (3 d)= -0,424x + 2,6054 0,6675

Y (6 d)= -0,6088x + 3,0361 0,7651

Y (9 d)= -0,9107x + 3,7675 0,9220

IVG

PEG 6000 + KNO3

Y (12 d)= -0,6979x + 3,4065 0,7365

TABELA 6A Equações de regressão ajustadas do teste de emergência (E) em

função do período de armazenamento (PA) de sementes

osmocondicionadas de limão cravo.

Variáveis Equações de regressão r²

Y(PEG)= -8,3954x² + 29,801x + 42,302 0,9075

Y(KNO

)= -15,159x² + 54,184x + 40,053 0,9385

0 meses

Y(PEG + KNO

)= -1,6338x² + 8,1106x + 73,318 0,8363

Y(PEG)= -0,099x² + 0,0535x + 83,14 0,5457

Y(KNO

)= -2,6204x² + 9,3453x + 78,143 0,9251

3 meses

Y(PEG + KNO

)= -2,7456x² + 12,763x + 67,625 0,9639

Y(PEG)= -1,1135x² + 17,503x - 12,071 0,9972

Y(KNO

)= 7,3407x² - 47,1x + 93,49 0,7618

6 meses

Y(PEG + KNO

)= 21,575x³ - 149,94x² + 303,8x - 131,46 1,0000

Y(PEG)= 1,6408x² - 12,165x + 33,91 0,8421

Y(KNO

)= -5,723x³ + 41,529x² - 87,463x + 54,593 1,0000

9 meses

Y(PEG + KNO

)= 0,26x² - 7,1821x + 25,214 0,9542

111

TABELA 7A Equações de regressão ajustadas do teste de emergência (E) em

função do período de condicionamento (PC) de sementes

armazenadas de limão cravo.

Variáveis Equações de regressão r²

Y (3 d)= -4,4116x² + 3,0344x + 74,143 0,6728

Y (6 d)= -5,6372x² + 9,0075x + 65,576 0,6376

Y (9 d)= -9,705x² + 27,223x + 50,65 0,8318

PEG 6000

Y (12 d)= -21,277x² + 98,49x - 46,711 0,7716

Y (3 d)= -12,627x² + 35,795x + 60,487 0,9922

Y (6 d)= -11,361x² + 28,86x + 63,412 0,9627

Y (9 d)= -1,2523x² - 20,751x + 106,23 0,7284

KNO3

Y (12 d)= -21,259x² + 99,182x - 60,299 0,6999

Y (3 d)= -5,8663x² + 7,7794x + 79,62 0,9666

Y (6 d)= -9,1113x² + 20,108x + 74,142 0,9925

Y (9 d)= -1,2578x² - 22,819x + 112,7 0,8277

PEG 6000 + KNO3

Y (12 d)= -14,999x² + 50,108x + 42,194 0,9663

TABELA 8A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade de

emergência (IVE) em função do período de armazenamento

(PA) de sementes osmocondicionadas de limão cravo.

Variáveis Equações de regressão r²

Y(PEG)= -0,1858x² + 0,6618x + 1,397 0,7284

Y(KNO

)= -0,3276x² + 1,1156x + 1,2803 0,7760

0 meses

Y(PEG + KNO

)= 0,103x² - 0,4218x + 2,5315 0,9905

Y(PEG)= 0,0109x² - 0,043x + 2,1398 0,2653

Y(KNO

)= -0,0219x² - 0,063x + 2,5004 0,9949

3 meses

Y(PEG + KNO

)= -0,0844x² + 0,439x + 1,5716 0,8636

Y(PEG)= -0,1512x² + 0,9934x - 0,7609 0,9713

Y(KNO

)= 0,1393x² - 0,8823x + 1,7404 0,9534

6 meses

Y(PEG + KNO

)= 0,3437x² - 1,4625x + 2,1547 0,6530

Y(PEG)= 0,0231x² - 0,2212x + 0,8482 0,7218

Y(KNO

)= -0,1721x³ + 1,2529x² - 2,654x + 1,6726 1,0000

IVE

9 meses

Y(PEG + KNO

)= 0,0068x² - 0,2245x + 0,8101 0,9525

112

TABELA 9A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade de

emergência (IVE) em função do período de condicionamento

(PC) de sementes armazenadas de limão cravo.

Variáveis Equações de regressão r²

Y (3 d)= 0,0902x² - 1,0583x + 3,1718 0,6301

Y (6 d)= -0,0808x² - 0,0743x + 2,0162 0,6644

Y (9 d)= -0,196x² + 0,3466x + 1,9451 0,9195

PEG 6000

Y (12 d)= -0,3893x² + 1,6282x - 0,09 0,6492

Y (3 d)= -0,2633x² + 0,5338x + 2,0677 0,9336

Y (6 d)= -0,2985x² + 0,8072x + 1,3783 0,8260

Y (9 d)= 0,0338x² - 0,8971x + 3,207 0,7996

KNO3

Y (12 d)= -0,4838x² + 2,201x - 1,1738 0,5864

Y (3 d)= 0,008x² - 0,6237x + 2,9077 0,9414

Y (6 d)= -0,1986x² + 0,3547x + 2,0043 0,9454

Y (9 d)= -0,0078x² - 0,7121x + 3,084 0,8602

IVE

PEG 6000 + KNO3

Y (12 d)= -0,3639x² + 1,0692x + 1,6632 0,9233

TABELA 10A Equações de regressão ajustadas da condutividade elétrica (CE)

em função do período de armazenamento (PA) de sementes

osmocondicionadas de limão cravo.

Variáveis Equações de regressão r²

Y(PEG)= -1,3461x² + 7,2097x + 13,921 0,3951

Y(KNO

)= -4,9272x² + 32,125x + 38,528 0,9805

0 meses

Y(PEG + KNO

)= 4,5171x² - 27,196x + 77,534 0,9425

Y(PEG)= -20,022x³ + 153,06x² - 348,42x + 377,11 1,0000

Y(KNO

)= 5,78x² - 71,45x + 567,6 0,8511

3 meses

Y(PEG + KNO

)= 4,6154x² - 15,575x + 254,44 0,8363

Y(PEG)= 8,6501x² - 42,269x + 84,062 0,9739

Y(KNO

)= 30,329x² - 143,45x + 283,52 0,9773

6 meses

Y(PEG + KNO

)= 23,351x² - 85,812x + 110,82 0,9706

Y(PEG)= 18,262x2 - 85,251x + 136,97 0,8807

Y(KNO

)= -15,844x2 + 63,173x + 59,466 0,7764

9 meses

Y(PEG + KNO

)= 5,4211x2 - 12,067x + 55,99 0,9992

113

TABELA 11A Equações de regressão ajustadas da condutividade elétrica (CE)

em função do período de armazenamento (PA) de sementes

osmocondicionadas de limão cravo.

Variáveis Equações de regressão r²

Y (3 d)= 63,664x

- 508,52x

+ 1221,1x - 755,63 1,0000

Y (6 d)= 52,916x

- 421,55x

+ 1006x - 616,84 1,0000

Y (9 d)= 69,499x³ - 556,3x² + 1325,4x - 812,73 1,0000

PEG 6000

Y (12 d)= 60,317x³ - 475,69x² + 1135,5x - 699,66 1,0000

Y (3 d)= -120,58x

+ 584,3x - 346,36 0,5350

Y (6 d)= -103,17x

+ 488,02x - 249,88 0,4457

Y (9 d)= -70,507x

+ 336,03x - 132,76 0,3946

KNO3

Y (12 d)= -109,98x

+ 520,87x - 297,14 0,7932

Y (3 d)= -45,378x

+ 205,43x - 75,268 0,3825

Y (6 d)= -49,49x

+ 231,13x - 111,24 0,3599

Y (9 d)= -47,312x

+ 226,69x - 110,52 0,3443

PEG 6000 +

KNO3

Y (12 d)= -69,453x

+ 351,11x - 220,18 0,6827

114

TABELA 12A Resultados médios de germinação (%G), índice de velocidade

de germinação (IVG), emergência (%E), índice de velocidade

de emergência (IVE) e condutividade elétrica (CE) de

sementes armazenadas de limão cravo em diferentes períodos

(PA – 0, 3, 6 e 9 meses), submetidas ao condicionamento

osmótico em diferentes solutos (PEG, KNO

e PEG + KNO

por diferentes períodos (PC – 3, 6, 9 e 12 dias; Test -

testemunha).

PA SOL PC %G

IVG

IVE

(µS/cm/g)

3 92,0 a 2,141 d 66,0 c 1,9691 c 20,5862 a

6 93,0 a 2,501 b 61,5 c 1,6893 d 20,5509 a

9 85,5 b 2,145 d 63,0 c 1,9984 c 25,8407 a

PEG

12 88,5 a 2,189 d 25,0 e 0,9754 e 20,4212 a

3 95,5 a 2,112 d 82,5 a 2,2292 b 66,3384 d

6 94,0 a 2,107 d 78,0 b 1,7182 d 81,2304 e

9 95,5 a 2,343 c 76,0 b 2,1613 b 92,3968 e

KNO3

12 95,5 a 2,298 c 11,0 g 0,3398 g 87,5801 e

3 96,0 a 1,819 e 79,5 b 2,2192 b 55,6121 c

6 94,5 a 2,014 d 84,0 a 2,0807 b 38,9399 b

9 95,5 a 2,704 a 82,0 a 2,2127 b 38,8716 b

PEG +

KNO3

12 93,0 a 2,451 b 80,0 a 2,4864 a 40,2678 b

Test 95,5 a 2,10 d 60,0 c 0,9000 e 59,2127 c

3 89,5 a 2,354 c 83,0 a 2,1202 b 161,7359 h

6 81,5 b 2,294 c 83,5 a 2,0601 b 132,3471 g

9 91,5 a 2,509 b 82,0 a 2,1460 b 168,8174 h

PEG

12 82,0 b 2,460 b 82,0 a 2,1294 b 151,0166 h

3 81,5 b 2,328 c 85,5 a 2,4092 a 492,9640 o

6 82,5 b 2,432 c 84,5 a 2,3051 a 474,7056 n

9 85,0 b 2,410 c 84,5 a 2,0951 b 378,3769 m

KNO3

12 70,0 c 1,955 e 73,0 b 1,9033 c 383,2384 m

3 80,5 b 2,203 d 78,0 b 1,9108 c 241,5837 j

6 77,5 b 2,357 c 81,5 a 2,1581 b 247,4312 j

9 85,0 b 2,363 c 82,0 a 2,0828 b 243,5689 j

PEG +

KNO3

12 68,5 c 2,024 e 74,5 b 1,9926 c 267,8780 l

Test 70,0 c 1,93 e 77,0 b 2,3100 a 55,2415 c

“... continua...”

115

“TABELA 12, Cont.”

PA SOL PC %G

IVG

IVE

(µS/cm/g)

3 35,0 g 1,304 g 4,0 i 0,1048 h 49,8041 c

6 64,5 c 1,874 e 19,5 g 0,5508 f 36,0406 b

9 55,5 e 1,567 f 29,5 f 0,9290 e 33,1897 b

PEG

12 40,0 g 1,048 h 40,5 e 0,7702 f 54,0267 c

3 51,5 f 1,632 f 50,5 d 0,9726 e 168,2445 h

6 56,0 e 1,605 f 39,0 e 0,6071 f 124,4131 f

9 26,0 h 0,777 i 8,0 i 0,2726 g 119,6680 f

KNO3

12 61,0 d 1,757 e 26,0 f 0,4641 g 197,1535 i

3 41,0 g 1,532 f 44,0 e 0,8901 e 45,1041 c

6 48,5 f 1,370 g 49,0 d 1,0418 e 42,3517 c

9 23,0 h 0,660 i 13,0 h 0,4230 g 53,7881 c

PEG

KNO3

12 61,5 d 2,057 d 65,5 c 1,9495 c 144,4412 g

Test 65,6 d 2,06 d 64,5 c 1,9500 c 82,7900 e

3 21,0 i 0,647 i 22,5 f 0,6167 f 47,2840 c

6 27,0 i 0,593 i 19,0 g 0,5985 f 66,8300 d

9 33,0 h 0,297 j 9,5 h 0,2925 g 49,2935 c

PEG

12 39,0 h 0,379 j 12,5 h 0,3668 g 35,9865 b

3 23,0 i 0,097 l 3,0 j 0,0996 h 91,6305 e

6 21,0 i 0,120 l 0,0 j 0,0000 h 112,5930 f

9 35,0 h 0,342 j 11,5 h 0,3417 g 105,2022 f

KNO3

12 41,0 h 0,102 l 3,0 j 0,0922 h 123,7462 f

3 25,0 h 0,629 i 19,0 g 0,6137 f 53,0335 c

6 31,0 h 0,314 j 10,0 h 0,3246 g 49,6760 c

9 37,0 h 0,236 j 8,0 i 0,2618 g 52,9345 c

PEG

KNO3

12 43,0 h 0,114 l 0,0 j 0,0000 h 69,2377 d

Test

13,5 i 0,4 j 13,0 h 0,4200 g 94,2750 f

Médias seguidas da mesma letra não diferem entre si pelo teste de Scott-Knott a 5% de

probabilidade.

116

TABELA 13A Análise de variância de sementes armazenadas de citrumelo

‘Swingle’ submetidas ao condicionamento osmótico em

diferentes solutos, por diferentes períodos de

condicionamento.

FV GL G IVG E IVE CE

ARM 2 567,59

4,81

569,14

7,87

153,41

SOL 2 11,93

0,151

17,89

0,301

70,78

PC 3 25,52

0,156

26,30

0,226

36,70

ARM*SOL 4 6,79

0,078

5,32

0,093

30,65

ARM*PC 6 3,74

0,032

7,30

0,082

24,05

SOL*PC 6 8,94

0,082

4,82

0,051

8,47

ARM*SOL*PC 12 8,84

0,073

9,42

0,156

13,26

ERRO 108 0,08 0,002 0,11 0,004 0,07

CV (%) 5,03 3,15 5,45 4,37 3,76

* Teste F significativo a 5% de probabilidade

TABELA 14A Equações de regressão ajustadas do teste de germinação (G) em

função do período de armazenamento (PA) de sementes

osmocondicionadas de citrumelo ‘Swingle’.

Variáveis Equações de regressão r²

Y(PEG)= -0,2163x² + 0,8415x + 1,0864 0,9905

Y(KNO

)= -0,0415x² + 0,1295x + 2,1112 0,7104

0 meses

Y(PEG + KNO

)= 0,0807x² - 0,645x + 2,6796 0,9121

Y(PEG)= 0,0325x² - 0,2704x + 1,8566 0,5709

Y(KNO

)= -0,1025x² + 0,8438x + 0,407 0,8361

3 meses

Y(PEG + KNO

)= -0,4502x² + 2,0273x - 0,5391 0,9187

Y(PEG)= -0,2799x² + 1,2966x - 0,8622 0,4343

Y(KNO

)= -0,11x² + 0,594x - 0,55 0,4000

6 meses

Y(PEG + KNO

)= -0,1024x² + 0,5527x - 0,5118 0,4000

117

TABELA 15A Equações de regressão ajustadas do teste de germinação (G) em

função do período de condicionamento (PC) de sementes

armazenadas de citrumelo ‘Swingle’.

Variáveis Equações de regressão r²

Y (3 d)= -34,228x + 115,27 0,7113

Y (6 d)= -17,938x + 102,17 0,8525

Y (9 d)= -30,016x + 103,43 0,6573

PEG 6000

Y (12 d)= -39,245x² + 139,34x - 64,82 1,0000

Y (3 d)= -35,997x + 106,81 0,9968

Y (6 d)= -38,99x + 129,3 0,7692

Y (9 d)= -30,963x + 114,51 0,7385

KNO

Y (12 d)= -33,237x + 115,28 0,6029

Y (3 d)= -36,232x + 107,1 0,9942

Y (6 d)= -35,949x + 117,67 0,8170

Y (9 d)= -39,278x² + 135,88x - 44,694 1,0000

PEG 6000 + KNO

Y (12 d)= -27,498x + 76,121 0,8612

TABELA 16A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade de

germinação (IVG) em função do período de armazenamento

(PA) de sementes osmocondicionadas de citrumelo ‘Swingle’.

Variáveis Equações de regressão r²

Y(PEG)= -0,7457x² + 2,4108x + 81,2 0,9989

Y(KNO

)= -2,7473x² + 11,159x + 73,15 0,8104

0 meses

Y(PEG + KNO

)= -3,3861x² + 16,733x + 61,86 0,9930

Y(PEG)= 7,2558x² - 43,62x + 113,01 0,9956

Y(KNO

)= -7,7229x² + 38,434x + 15,841 0,9515

3 meses

Y(PEG + KNO

)= -21,251x² + 97,125x - 44,327 0,9868

Y(PEG)= -17,841x² + 84,356x - 59,245 0,5681

Y(KNO

)= -3,4363x² + 17,798x - 15,286 0,7419

IVG

6 meses

Y(PEG + KNO

)= -3,1117x² + 16,803x - 15,559 0,4000

118

TABELA 17A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade de

germinação (IVG) em função do período de condicionamento

(PC) de sementes osmocondicionadas de citrumelo ‘Swingle’.

Variáveis Equações de regressão r²

Y (3 d)= -0,8482x + 2,7854 0,8055

Y (6 d)= -0,4374x + 2,4132 0,9892

Y (9 d)= -0,7868x + 2,5257 0,9345

PEG 6000

Y (12 d)= -0,5031x + 1,7894 0,5182

Y (3 d)= -1,0858x + 3,2529 0,9999

Y (6 d)= -1,1435x + 3,6868 0,8690

Y (9 d)= -0,8016x + 3,0268 0,8662

KNO

Y (12 d)= -0,9963x + 3,3959 0,6630

Y (3 d)= -1,0381x + 3,1371 0,9986

Y (6 d)= -0,9149x + 2,9429 0,8766

Y (9 d)= -0,472x + 2,0973 0,5013

IVG

PEG 6000 + KNO

Y (12 d)= -0,7149x + 2,0061 0,8986

TABELA 18A Equações de regressão ajustadas do teste de emergência (E) em

função do período de armazenamento (PA) de sementes

osmocondicionadas de citrumelo ‘Swingle’.

Variáveis Equações de regressão r²

Y(PEG)= -0,7457x² + 2,4108x + 81,2 0,9989

Y(KNO

)= -2,7473x² + 11,159x + 73,15 0,8104

0 meses

Y(PEG + KNO

)= -3,3861x² + 16,733x + 61,86 0,9930

Y(PEG)= 7,2558x² - 43,62x + 113,01 0,9956

Y(KNO

)= -7,7229x² + 38,434x + 15,841 0,9515

3 meses

Y(PEG + KNO

)= -21,251x² + 97,125x - 44,327 0,9868

Y(PEG)= -17,841x² + 84,356x - 59,245 0,5681

Y(KNO

)= -3,4363x² + 17,798x - 15,286 0,7419

6 meses

Y(PEG + KNO

)= -3,1117x² + 16,803x - 15,559 0,4000

119

TABELA 19A Equações de regressão ajustadas do teste de emergência (E) em

função do período de condicionamento (PC) de sementes

armazenadas de citrumelo ‘Swingle’.

Variáveis Equações de regressão r²

Y (3 d)= -41,445x + 136,18 0,8033

Y (6 d)= -11,525x + 88,616 0,5619

Y (9 d)= -35,174x + 117,57 0,9991

PEG 6000

Y (12 d)= -39,444x + 123,28 0,9549

Y (3 d)= -41,211x + 125,67 0,9927

Y (6 d)= -39,052x + 126,49 0,9430

Y (9 d)= -37,265x + 127,34 0,9369

KNO

Y (12 d)= -36,484x + 112,37 0,9812

Y (3 d)= -37,668x + 111,37 0,9944

Y (6 d)= -40,701x + 128,96 0,9216

Y (9 d)= -34,761x + 120,81 0,9603

PEG 6000 + KNO

Y (12 d)= -37,245x + 100,3 0,7795

TABELA 20A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade de

emergência (IVE) em função do período de armazenamento

(PA) de sementes osmocondicionadas de citrumelo ‘Swingle’.

Variáveis Equações de regressão r²

Y(PEG)= -0,1171x³ + 0,8971x² - 2,0463x + 3,9572 1,0000

Y(KNO

)= -0,019x² - 0,1078x + 3,1365 0,9707

0 meses

Y(PEG + KNO

)= -0,1039x² + 0,5093x + 2,1016 0,8367

Y(PEG)= 0,4239x² - 2,577x + 5,1975 0,9635

Y(KNO

)= -0,2293x² + 1,188x + 0,3247 0,9570

3 meses

Y(PEG + KNO

)= -0,5541x² + 2,4787x - 0,921 0,9893

Y(PEG)= -0,6208x² + 2,9201x - 2,0232 0,5288

Y(KNO

)= -0,1005x² + 0,5192x - 0,4441 0,7656

IVE

6 meses

Y(PEG + KNO

)= -0,0784x² + 0,4233x - 0,3919 0,4000

120

TABELA 21A Equações de regressão ajustadas do índice de velocidade de

emergência (IVE) em função do período de condicionamento

(PC) de sementes armazenadas de citrumelo ‘Swingle’.

Variáveis Equações de regressão r²

Y (3 d)= -1,3455x + 4,6221 0,6377

Y (6 d)= 0,7734x² - 3,2709x + 5,0138 1,0000

Y (9 d)= -1,2047x + 3,9117 0,9988

PEG 6000

Y (12 d)= -1,3157x + 4,0465 0,9831

Y (3 d)= -1,496x + 4,4245 0,9946

Y (6 d)= -1,3906x + 4,3584 0,9925

Y (9 d)= -1,1517x + 3,8919 0,9507

KNO

Y (12 d)= -1,2092x + 3,6864 0,9930

Y (3 d)= -1,2432x + 3,6597 0,9906

Y (6 d)= -1,3834x + 4,2656 0,9795

Y (9 d)= -1,1596x + 3,8406 0,9949

IVE

PEG 6000 + KNO

Y (12 d)= -1,2488x + 3,3628 0,7793

TABELA 22A Equações de regressão ajustadas da condutividade elétrica (CE)

em função dos períodos de armazenamento (PA) de sementes

osmocondicionadas de citrumelo ‘Swingle’.

Variáveis Equações de regressão r²

Y(PEG)= 1,7356x + 10,015 0,5983

Y(KNO

)= 2,4565x + 51,727 0,7781

0 meses

Y(PEG + KNO

)= -1,1321x² + 7,1729x + 17,943 0,5709

Y(PEG)= 15,028x² - 62,982x + 93,649 0,5507

Y(KNO

)= 71,257x³ - 557,96x² + 1300,2x - 739,8 1,0000

3 meses

Y(PEG + KNO

)= 41,811x² - 179,56x + 255,53 0,7222

Y(PEG)= 16,033x² - 109,87x + 208,51 0,9988

Y(KNO

)= 10,33x + 17,82 0,9718

6 meses

Y(PEG + KNO

)= -0,1017x² - 21,563x + 115,82 0,5550

121

TABELA 23A Equações de regressão ajustadas da condutividade elétrica (CE)

em função do período de condicionamento (PC) de sementes

armazenadas de citrumelo ‘Swingle’.

Variáveis Equações de regressão r²

Y (3 d)= 50,437x - 45,925 0,9177

Y (6 d)= 21,193x - 2,6766 0,7892

Y (9 d)= 4,0686x + 8,6169 0,9233

PEG 6000

Y (12 d)= -67,991x² + 275,7x - 189,09 1,0000

Y (3 d)= -14,064x + 80,506 0,3673

Y (6 d)= -152,72x² + 602,35x - 395,04 1,0000

Y (9 d)= -7,8196x² + 28,139x + 38,063 1,0000

KNO

Y (12 d)= -34,047x² + 133,46x - 36,698 1,0000

Y (3 d)= 30,542x + 9,076 0,5355

Y (6 d)= 35,905x + 8,1971 0,6875

Y (9 d)= -25,085x² + 97,175x - 45,184 1,0000

PEG 6000 + KNO

Y (12 d)= -187,45x² + 754,06x - 537,3 1,0000

122

TABELA 24A Resultados médios de germinação (%G), índice de velocidade

de germinação (IVG), emergência (%E), índice de velocidade

de emergência (IVE) e condutividade elétrica (CE) de

sementes armazenadas de citrumelo ‘Swingle’ em diferentes

períodos (PA – 0, 3, 6 e 9 meses), submetidas ao

condicionamento osmótico em diferentes solutos (PEG, KNO

e PEG + KNO

), por diferentes períodos (PC – 3, 6, 9 e 12

dias; Test - testemunha).

PA SOL PC %G IVG %E IVE

(µS/cm/g)

3 68,5 b 1,696 c 83,0 a 2,6910 b 13,2318 a

6 80,0 a 1,949 c 83,0 a 2,5164 b 12,1936 a

9 61,0 c 1,619 d 82,0 a 2,7307 a 13,3626 a

PEG

12 35,5 f 1,006 f 79,0 b 2,6313 b 18,6276 b

3 72,0 b 2,172 a 82,5 a 2,9920 a 55,7853 e

6 78,0 a 2,287 a 82,0 a 2,8979 a 54,5934 e

9 72,9 b 2,043 b 84,5 a 2,5888 b 58,3824 f

KNO

12 66,5 b 1,993 b 73,0 b 2,4184 b 62,7107 f

3 72,5 b 2,076 b 75,5 b 2,4864 b 23,1946 b

6 72,0 b 1,830 c 81,5 a 2,7667 a 30,1275 c

9 52,0 d 1,353 e 82,0 a 2,6328 b 26,9059 c

PEG +

KNO

12 55,0 c 1,430 e 74,5 b 2,4976 b 29,3105 c

Test 72,0 b 1,57 d 77,0 b 3,1060 a 37,5875 d

3 72,0 b 1,570 d 77,0 b 3,1022 a 37,5095 d

6 75,0 a 1,591 d 54,0 d 1,5658 c 52,3557 e

9 68,5 b 1,192 f 48,5 e 1,4552 c 15,4001 a

PEG

12 57,0 c 1,343 e 54,5 d 1,6144 c 90,3592 i

3 32,5 f 1,072 f 47,5 e 1,3055 c 73,6911 g

6 76,0 a 1,912 c 59,5 c 1,7169 c 198,7982 m

9 74,0 a 1,787 c 64,0 c 1,8914 c 63,0624 f

KNO

12 80,0 a 2,217 a 45,5 e 1,3855 c 94,0255 i

3 31,5 f 1,107 f 33,0 f 1,0335 d 103,0053 i

6 65,5 b 1,509 d 61,5 c 1,7301 c 107,9560 l

9 70,0 b 1,697 c 59,5 c 1,6176 c 48,8252 e

PEG +

KNO

12 8,5 g 0,299 g 3,0 h 0,0977 e 221,0189 n

Test 49,5 d 1,14 f 60,0 c 2,2060 b 49,8600 e

“...continua...”

123

“TABELA 24, Cont.“

PA SOL PC %G

IVG

IVE

(µS/cm/g)

3 0,0 h 0,000 h 0,0 h 0,0000 e 114,1050 l

6 44,0 e 1,075 f 60,0 c 2,1620 b 54,5800 e

9 1,0 h 0,045 h 11,5 g 0,3214 e 21,4998 b

PEG

12 0,0 h 0,000 h 0,0 h 0,0000 e 26,1087 c

3 0,0 h 0,000 h 0,0 h 0,0000 e 27,6568 c

6 0,0 h 0,000 h 4,0 h 0,1166 e 37,5728 d

9 11,0 g 0,440 g 10,0 g 0,2853 e 52,1033 e

KNO

12 0,0 h 0,000 h 0,0 h 0,0000 e 57,2459 e

3 0,0 h 0,000 h 0,0 h 0,0000 e 84,2778 h

6 0,0 h 0,000 h 0,0 h 0,0000 e 101,9373 j

9 9,5 g 0,409 g 12,5 g 0,3135 e 20,5742 b

PEG +

KNO

12 0,0 h 0,000 h 0,0 h 0,0000 e 37,8266 d

Test 6,0 g 0,25 g 12,50 g 0,3635 e 56,2427 e

Médias seguidas da mesma letra não diferem entre si pelo teste de Scott-Knott a 5% de

probabilidade.

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