( PDF ) Assembléias de amebas testáceas (Amoebozoa: Rhizopoda) associadas a rizosfera de Eichhornia crassipes (Martius) solomons (Pontederiaceae) no rio cachoeira, Bahia

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UNIVERSIDADE ESTADUAL DE SANTA CRUZ

MÁRCIO BORBA DA SILVA

ASSEMBLÉIAS DE AMEBAS TESTÁCEAS (Amoebozoa:

Rhizopoda) ASSOCIADAS A RIZOSFERA DE Eichhornia

crassipes (Martius) Solomons (Pontederiaceae) NO RIO

CACHOEIRA, BAHIA.

ILHÉUS - BAHIA

2008

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MÁRCIO BORBA DA SILVA

ASSEMBLÉIAS DE AMEBAS TESTÁCEAS (Amoebozoa:

Rhizopoda) ASSOCIADAS A RIZOSFERA DE Eichhornia

crassipes (Martius) Solomons (Pontederiaceae) NO RIO

CACHOEIRA, BAHIA.

ILHÉUS - BAHIA

2008

Dissertação apresentada ao Programa de Pós-

Graduação em Sistemas Aquáticos Tropicais do

Departamento de Ciências Biológicas da

Universidade Estadual de Santa Cruz, para

obtenção do título de Mestre em Sistemas

Aquáticos Tropicais

Área de concentração: Ecologia de Ecossistemas

Orientador: Prof. Dra. Sylvia Maria Moreira Susini

Ribeiro

Co – orientador: Prof. Dra. Eli Ana Traversim

Gomes

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S586 Silva, Márcio Borba da.

Assembléias de amebas testáceas (Amoebozoa: Rhi- zopoda)

associadas a rizosfera de Eichhornia crassipes (Martius)

Solomons (Pontederiaceae) no Rio Cachoeira,

Bahia / Márcio Borba da Silva . – Ilhéus, BA: UESC, 2008.

[xiv], 115 f. : il.

Orientadora: Sylvia Maria Moreira Susini Ribeiro.

Co-orientadora: Eli Ana Traversim Gomes.

Dissertação (Mestrado) – Universidade Estadual de

Santa Cruz. Programa de Pós-graduação em Sistemas Aquáticos

Tropicais.

Inclui bibliografia e apêndice.

1. Ecossistemas aquáticos. 2. Amebas testáceas.

3. Macrófitas aquáticas. 4. Cachoeira, Rio (BA). I. Título.

CDD 579.432

MÁRCIO BORBA DA SILVA

ASSEMBLÉIAS DE AMEBAS TESTÁCEAS (Amoebozoa:

Rhizopoda) ASSOCIADAS A RIZOSFERA DE Eichhornia

crassipes (Martius) Solomons (Pontederiaceae) NO RIO

CACHOEIRA, BAHIA.

Ilhéus – BA, 30/05/2008

_______________________________________

Sylvia Maria Moreira Susini Ribeiro – Dr.

UESC/DCB

(Orientador)

_______________________________________

Guisla Boehs – Dr.

UESC/DCB

_______________________________________

Luiz Felipe Machado-Velho – Dr.

UEM / NUPELIA

DEDICATÓRIA

A minha mãe Maridalva Souza Borba por ter

acreditado no meu potencial, me apoiando

em todos os momentos da minha vida,

exemplo de determinação e perseverança,

afinal mostrou-me que não existe derrota que

derrote aquele que nasceu pra vencer.

AGRADECIMENTO

Todo trabalho de pesquisa é fruto da colaboração, em maior ou menor escala, de várias

pessoas das diversas áreas. Tal cooperação é crucial para a produção científica e, sobretudo

para o crescimento humano. Assim, nestas páginas gostaria de agradecer:

A Deus, pela vida concedida e por sempre estar presente nela!

A Professora Dra. Sylvia Maria Moreira Susini Ribeiro, pela orientação inestimável,

aceitando este desafio, com competência, seriedade, confiança e paciência;

A Professora Dra. Eli Ana Traversim Gomes (UNIGRANRIO), por acreditar em mim e

apoiar no início do mestrado.

Ao Professor Dr. Luís Felipe Machado-Velho (NUPELIA-UEM), pela orientação no

traçado da metodologia, na taxonomia das amebas testáceas, no envio de materiais cruciais

para o desenvolvimento deste trabalho, além da dedicação, competência, seriedade, confiança

e paciência que demonstrou, principalmente diante dos meus questionamentos tão primários

frente ao seu elevado grau de conhecimento, mas que sempre foram tratados com seriedade.

Obrigado professor, contribuístes significativamente para minha formação;

A UESC (Universidade Estadual de Santa Cruz), através do Programa de Pós-

Graduação em Sistemas Aquáticos Tropicais, na pessoa da sua coordenadora Dra. Erminda

Conceição Guerreiro Couto pelos infindáveis esforços pela melhoria na qualidade do curso,

apesar de todas as dificuldades;

A CAPES (Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Ensino Superior), pelo

auxílio através de Bolsa de Estudos;

A mestranda Márcia Emilia de Jesus Trindade, ao Biólogo Luis Alberto Vieira e a

graduanda Simone Oliveira Araújo pelo auxílio nas coletas e no processamento do material;

Ao Laboratório de Oceanografia Química da UESC, nas figuras dos Professores Drs.

Marcelo Friederichs Landim de Souza e Daniela Mariano Lopes da Silva, da Mestre Maria

Aparecida Macedo Silva e das mestrandas Gilmara Fernandes Eça e Ananda Marson Silva

pelo auxílio nas análises físico-químicas e na análise de Clorofila - a e feopigmentos;

Ao Laboratório de Micromorfologia Vegetal da UEFS, nas figuras dos Professores Drs.

Francisco de Assis Ribeiro dos Santos e Cláudia Elena Carneiro, pela acolhida durante

minhas análises biológicas e pelo clima sempre agradável neste laboratório;

Ao Mestrando Ricardo Landim (Programa de Pós-Graduação em Botânica, UEFS) pelo

auxílio na confecção das lâminas permanentes;

Ao Biólogo e mestrando Jaílson Novais (PPG Botânica - UEFS) pelo auxílio nas

fotomicrografias;

À Professora Dra. Marileide Dias Saba (UNEB) pelo apoio, carinho e compartilhamento

das minhas angústias nas análises biológicas desenvolvidas no LAMIV – UEFS;

Ao Biólogo do LAMIV – UEFS doutorando Paulino Pereira Oliveira pelo auxílio em

todos os momentos nas análises biológicas;

Ao Professor Esp. Paulo Tadeu Silva Costa (UEFS), pela amizade, profissionalismo e

acima de tudo por ter concedido a primeira oportunidade de conhecer e aprender sobre

protozoários, afinal foi a partir daí que tudo começou;

Aos Drs. Flávio França e Efigênia Mello, do Departamento de Ciências Biológicas

(UEFS) pelo apoio, atenção e identificação da macrófita aquática;

A EMASA (Empresa Municipal de Águas e Saneamento – Itabuna), na figura do

Economista Anderson Alves Santos, assessor econômico-ambiental da EMASA pelas

informações sobre os esgotos de Itabuna;

Ao Professor Dr. Neylor Calazans Rego (UESC) pelas médias históricas mensais dos

dados fluviométricos fornecidos acerca do Rio Cachoeira;

À ANA (Agência Nacional de Águas) pelos dados fornecidos acerca da vazão do rio

Cachoeira durante o período deste estudo;

A Secretaria Estadual de Recursos Hídricos (SRH) pelo fornecimento dos dados

metereológicos da região;

A Biblioteca Setorial do NUPELIA (Núcleo de Pesquisas em Limnologia, Ictiologia e

Aqüicultura) da Universidade Estadual de Maringá pelo auxílio no material bibliográfico;

A turma do Laboratório de Zooplâncton do NUPELIA (UEM) pela acolhida no

laboratório durante a confirmação da identificação das espécies de amebas testáceas;

A Doutoranda Geziele Mucio Alves (Programa de Pós-Graduação em Ecologia de

Ambientes Aquáticos Continentais - UEM) pelo auxílio e discussões na identificação da

“galerinha pequena” (amebas testáceas), muito obrigado;

A Banca Examinadora de Qualificação, Profª Dra. Sylvia Maria Moreira Sussini,

Ribeiro, Profº Dr. Alexandre Schiavetti e Profª. Dra. Ana Cristina Schilling, pelas

contribuições e valiosas sugestões;

A Banca Examinadora de Defesa Pública, Profª Dra. Sylvia Maria Moreira Susini,

Ribeiro, Profª Dra. Guisla Boehs e Profº Dr. Luiz Felipe Machado Velho, não só pela leitura

crítica do trabalho, mas também pelas sugestões;

A todos os professores que compuseram as bancas dos seminários em Sistemas

Aquáticos Tropicais I, II e III, e que acompanharam o meu trabalho em todas as fases, dando

sugestões valiosas;

Ao professor Dr. Vladimir Stolzenberg Torres (Universidade Estadual do Rio Grande do

Sul) pela atenção, sugestões e envio de material, muito obrigado;

Ao Professor Dr. Fábio Amoedo Lansac-Tôha (NUPELIA-UEM), pela atenção, carinho

em responder as minhas solicitações, sempre com eficiência e simplicidade;

A Professora Doutoranda Nanci Akemi Missawa (UNIVAG), pela atenção, carinho em

responder as minhas solicitações e envio de material bibliográfico;

A Professora Dra. Sigrid Neumann-Leitão (UFPE) pelo envio de material bibliográfico;

A Secretária do PPGSAT/UESC Lidiana Aires pelos serviços prestados e pela

colaboração;

À Professora Msc. Ana Paula Lima do Couto pela amizade e auxílio na secagem das

macrófitas;

Ao Herbário da Universidade Estadual de Feira de Santana, pelo apoio no

processamento das macrófitas;

A minha ex-orientadora Professora Dra. Flora Acuña Juncá (UEFS) pelo carinho,

amizade e atendimento sempre cordial durantes estes 07 anos, incluindo o mestrado;

A professora Dra. Maria da Glória Sampaio Gomes (UEFS) pela amizade, carinho e

conselhos sempre úteis e construtivos, exemplo de ser Humano;

Aos colegas e amigos do curso, Márcia Emília de Jesus Trindade, Pollianna Santos

Ferraz, Daniele Ramalho Serra, Carlos Alexandre Malta Oliveira, Paula de Pádua Moreira,

Joselene Badú de Brito Santos, Marcos Antônio Leati Pelaes, Viviane Souza Martins, Tiago

de Moraes Lenz e Marco Aurélio Munhoz por terem dividido comigo os bons e maus

momentos deste trabalho;

Ao setor de Transporte da UESC, por disponibilizar o carro para realização das coletas;

Aos meus amigos que deixaram essa jornada mais leve e interessante, me apoiando e

dando forças para prosseguir, em especial a Ana Paula Lima do Couto, Carla Ribeiro, Edlan,

Erivaldo Carneiro Júnior, Ivã Barbosa dos Santos, João Rodrigo Santos da Silva, Juliana

Almeida Torres Brito, Maria José Rocha Ribeiro, Nayara César, Rodrigo de Queiroz Oliveira,

Thiala Fernandes Paz e Vinina Ferreira da Silva pelo incentivo, companherismo, carinho e

amizade.

A minha avó Maria Júlia de Almeida in memorian por ter me possibilitado o

encantamento com os seres vivos desde criança, além de sempre me acompanhar mesmo que

em outro plano.

A minha família, pelo apoio, em especial os meus irmãos Rosana Borba de Almeida e

Deybson Borba de Almeida e a minha sobrinha Thaynara Borba de Almeida. A minha mãe

Maridalva Souza Borba por ter me presenteado com a oportunidade de chegar até aqui sempre

me apoiando, incentivando, acreditando em mim e acima de tudo me amando...

A meu pai Ronaldo Abreu da Silva, que conseguiu superar todas as dificuldades com

maestria.

A Manú, meu amor, pelo companherismo, amizade, ombro amigo, e carinho concedido

integralmente.

Gostaria ainda de agradecer a todas as pessoas, mesmo as não citadas, que direta ou

indiretamente contribuíram para que pudesse chegar até aqui, logo muito obrigado.

“... No ano de 1675, em meados de

Setembro... descobri criaturas vivas na água

da chuva que ficara estagnada por alguns

dias num novo barril... Isso encorajou-me a

investigar essa água mais atentamente, já que

esses animáculos me pareciam aos olhos

mais de dez mil vezes menores do que o

[animal]... de nome pulga-d'água, que se

pode ver em movimento na água à vista

desarmada”.

Antony Van Leeuwenhoek

“Não existem limites para aqueles que

possuem a capacidade de sonhar e, a

determinação de transformar seu sonho em

realidade”.

Autor desconhecido

ASSEMBLÉIAS DE AMEBAS TESTÁCEAS (Amoebozoa: Rhizopoda)

ASSOCIADAS A RIZOSFERA DE Eichhornia crassipes (Martius)

Solomons (Pontederiaceae) NO RIO CACHOEIRA, BAHIA.

Autor: MÁRCIO BORBA DA SILVA

Orientador: Profª. Dra. SYLVIA MARIA MOREIRA SUSINI RIBEIRO

Co-Orientador: Profª. Dra. ELI ANA TRAVERSIM GOMES

RESUMO

Estudos envolvendo microorganismos associados e/ou aderidos a macrófitas aquáticas

são escassos. Assim, considerando a importância das amebas testáceas (Amoebozoa:

Rhizopoda) no metabolismo de ambientes aquáticos e a escassez de informações sobre a

diversidade das tecamebas, este trabalho teve como objetivo determinar a composição,

abundância, biomassa e as variações sazonais das amebas testáceas associadas a estandes de

Eichhornia crassipes no rio Cachoeira, em dois períodos hidrológicos, correlacionando-as

com parâmetros ambientais. Foram inventariados 115 taxa de amebas testáceas associadas a

rizosfera de E. crassipes, pertencentes a 10 famílias, 14 gêneros, 96 espécies e 19 variedades,

distribuídos nas seguintes famílias: Difflugidae (42 taxa), Arcellidae (21 taxa), Centropyxidae

(14 taxa), Euglyphidae, Lesquereusiidae (11 taxa cada), Cryptodifflugiidae (7 taxa),

Cyphoderiidae (1 taxa), Hyalospheniidae (2 taxa), Trigonopyxidae e Trinematiidae (3 taxa

cada). As assembléias de amebas testáceas associadas a E. crassipes apresentaram variações

sazonais significativas somente em termos quantitativos (densidade e biomassa), ligadas a

sazonalidade hidrológica bem marcada (variação fluviométrica) do rio Cachoeira; entretanto,

em termos qualitativos, houve elevada similaridade na composição das assembléias (riqueza e

diversidade de espécies) observadas nos dois períodos. As menores densidades e biomassas

das tecamebas foram verificadas no período de maior vazão, devido ao efeito de diluição

causado pela redução do nível fluviométrico; e as maiores foram observadas no período de

menor vazão, devido à redução na velocidade da água e ao aumento da eutrofização

(biomassa fitoplanctônica) do meio. A principal forçante responsável pelas variações

observadas na estrutura das assembléias de amebas testáceas no rio Cachoeira foi o efeito

combinado da variação fluviométrica e do represamento e sua conseqüente eutrofização.

Palavras-Chaves: Amebas Testáceas; Eichhornia crassipes; rizosfera; rio Cachoeira;

Nordeste, Brasil.

ASSEMBLAGE OF TESTATE AMOEBAE (Amoebozoa: Rhizopoda)

ASSOCIATED WITH THE RIZOSPHERE OF Eichhornia crassipes

(Martius) Solomons (Pontederiaceae) IN THE CACHOEIRA RIVER,

BAHIA.

Author: MÁRCIO BORBA DA SILVA

Adviser: Profª. Dra. SYLVIA MARIA MOREIRA SUSINI RIBEIRO

Co-adviser: Profª. Dra. ELI ANA TRAVERSIM GOMES

ABSTRACT

Studies on microorganisms associated or adhered to aquatic macrophytes are scarce.

Due to the important role that testate amoebae (Amoebozoa: Rhizopoda) have in the

metabolism of inland waters and the scarcity of information about diversity of this group, the

objective of this study was to characterize the composition, abundance, biomass and the

sazonal variations of testate amoebae associated with Eichhornia crassipes stands in this

river, in two hydrologic periods, and to correlate them with environmental parameters. This

work registered 115 taxa of testate amoebae associated with the rizosphere of E. crassipes,

belonging to 10 families, 14 genera, 96 species and 19 varieties, distributed in Difflugidae (42

taxa), Arcellidae (21 taxa), Centropyxidae (14 taxa), Euglyphidae, Lesquereusiidae (11 taxa

each), Cryptodifflugiidae (7 taxa), Cyphoderiidae (1 taxa), Hyalospheniidae (2 taxa),

Trigonopyxidae and Trinematiidae (3 taxa each). Assemblages of testate amoebae associated

with E. crassipes showed significant quantitative sazonal variation (density and biomass)

associated with the strong hydrological sazonality (fluviometric variation) of the Cachoeira

river. However, in qualitative terms, high similarity was observed within the assemblage

composition (richness and species diversity) in the two hydrological periods. Lower densities

and biomass of testate amoebae were verified in the higher hydrological discharge period due

to dilution effect caused by the reduction of fluviometric level. Higher densities and biomass

were observed in the lower hydrological discharge period, due to the reduction in the water

speed and to the enhancement of the environmental eutrophication (phytoplanktonic biomass).

The main forces that explained the changes observed in the structure of the testate amoebae

assemblages were the combined effect of fluviometric variation, catchments and

eutrophication in the Cachoeira river.

KEYWORDS: Testate amoebae; Eichhornia crassipes; rizosphere; Cachoeira river;

Northeast Brazil.

LISTA DE FIGURAS

1. Mapa da área de estudo no rio Cachoeira - BA, evidenciando os pontos de coletas (A, B

e C)..................................................................................................................................29

2. Vista parcial do ponto A no Rio Cachoeira; A – Período de maior vazão; B – Período

de menor vazão. Notar a grande quantidade de Eichhornia crassipes no período de

menor vazão..................................................................................................................30

3. Vista parcial do ponto B no Rio Cachoeira; A – Período de maior vazão; B – Período

de menor vazão; C e D - Canalização de esgoto desembocando neste

ponto.............................................................................................................................31

4. Rio Cachoeira; A - Represamento do rio no centro da cidade de Itabuna; B – Lixo

jogado no rio.................................................................................................................31

5. Vista panorâmica do ponto C no Rio Cachoeira; A e B – Período de maior vazão; C e

D – Período de menor vazão.........................................................................................32

6. Valores médios mensais das vazões fluviais do rio Cachoeira - BA nos últimos 30

anos. (Dados fornecidos pela ANA - Agência Nacional de Águas).............................33

7. A e B - Coleta de Eichhornia crassipes no Rio Cachoeira.......... ................................35

8. Distribuição dos pontos amostrais da análise em componentes principais no plano

fatorial I-II, em função das variáveis ambientais..........................................................46

9. Densidade média (indv./gPS) das amebas testáceas associadas a rizosfera de E.

crassipes por ponto de coleta, para os períodos hidrológicos de maior (novembro de

2006 a janeiro de 2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão do rio Cachoeira –

BA.................................................................................................................................49

10. Espécies mais abundantes de amebas testáceas associadas a rizosfera de E. crassipes

por ponto de coleta, para os períodos de maior e menor vazão do rio Cachoeira -

BA.................................................................................................................................51

11. Biomassa (µgC/gPS) das amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes

por ponto de coleta, para os períodos hidrológicos de maior (novembro de 2006 a

janeiro de 2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão do rio Cachoeira –

BA.................................................................................................................................52

12. Espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes com maiores

biomassas por ponto de coleta, para os períodos hidrológicos de maior e menor vazão

do rio Cachoeira - BA...................................................................................................54

13. Curvas de Dominância (Whittaker plot) para as espécies de amebas testáceas

associadas as rizosferas de E. crassipes no rio Cachoeira, BA; A - Período de maior

vazão e B - Período de menor vazão fluviométrica......................................................57

14. Análise de cluster dos pontos amostrais em função da densidade das amebas testáceas

associadas as rizosferas de E. crassipes no rio Cachoeira - BA...................................59

15. Distribuição dos pontos amostrais no plano fatorial I-II da Análise de Componentes

Principais das variáveis bióticas das assembléias de amebas testáceas e as das

variáveis ambientais......................................................................................................62

LISTA DE TABELAS

1. Resumo dos dados de precipitação pluviométrica (mm) e vazão fluviométrica (m

/s)

para os meses de novembro de 2006 a janeiro de 2007 e de junho a agosto de

2007...............................................................................................................................43

2. Dados das variáveis ambientais nos pontos amostrados no rio Cachoeira - BA para os

meses de novembro de 2006 a janeiro de 2007 e de junho a agosto de

2007...............................................................................................................................44

3. Proporção das espécies por família das amebas testáceas nos períodos de maior

(novembro/2006 á janeiro/2007) e menor (junho á julho/2007) vazão do rio Cachoeira

– BA..............................................................................................................................47

4. Distribuição das espécies por família das amebas testáceas nos pontos A, B e C, no

período de maior (novembro/2006 a janeiro de 2007) e menor (junho a agosto/2007)

vazão do rio Cachoeira - BA. ........................................................................................48

5. Resultado da Análise de Variância para os dados de densidade (indv./gPS) das amebas

testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes registradas no período de maior

(novembro de 2006 a janeiro de 2007) e menor (junho á agosto a 2007) vazão do rio

Cachoeira - BA..............................................................................................................50

6. Resultado da Análise de Variância para os dados de biomassa (µgC/gPS) das amebas

testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes registradas no período de maior

(novembro de 2006 a janeiro de 2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão do rio

Cachoeira - BA..............................................................................................................53

7. Resultado do Teste de Tukey para os dados de biomassa (µgC/gPS) das amebas

testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes registradas nos pontos amostrais ao

longo do rio Cachoeira - BA.........................................................................................53

8. Índices Ecológicos da assembléia de amebas testáceas associadas as rizosferas de E.

crassipes por ponto amostral e por período hidrológico (maior e menor vazão) do rio

Cachoeira - BA

....................................................................................................................................

9. Resultado da Análise de Variância para os dados de riqueza de espécies de amebas

testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes, por período de maior (novembro de

2006 a janeiro de 2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão e por ponto de coleta

no rio Cachoeira - BA...................................................................................................56

10. Resultado da Análise de Variância para os dados de diversidade de espécies das

amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes, por período de maior

(novembro de 2006 a janeiro de 2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão e por

ponto de coleta no rio Cachoeira - BA..........................................................................56

11. Coeficiente de Similaridade de Sørensen, por ponto amostral, para as assembléias das

amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes no rio Cachoeira -

BA.................................................................................................................................58

12. Matriz de correlação entre as variáveis ambientais e a estrutura das assembléias de

amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes no rio Cachoeira - BA.......60

13. Escores das variáveis obtidos na Análise de Componentes Principais para os dados

bióticos da assembléia de amebas testáceas (densidade, biomassa, riqueza e

diversidade) e os dados ambientais...............................................................................61

14. Compilação dos trabalhos publicados envolvendo fauna de amebas testáceas

associadas a macrófitas aquáticas em ecossistemas brasileiros....................................71

SUMÁRIO

Resumo 11

Abstract 12

Lista de Figuras 13

Lista de Tabelas 15

1. INTRODUÇÃO 18

2. OBJETIVOS 26

3. ÁREA DE ESTUDO 27

3.1 Caracterização da área de estudo 27

3.2 Localização dos pontos amostrais 28

4. MATERIAL E MÉTODOS 33

4.1 Delineamento amostral 33

4.2 Variáveis ambientais 34

4.3 Assembléias de amebas testáceas 35

4.4 Análise da estrutura das assembléias de amebas testáceas 37

4.5 Análises dos dados 40

5. RESULTADOS 43

5.1 Dados ambientais 43

5.2 Assembléias de amebas testáceas 46

5.3 Estrutura das assembléias de amebas testáceas 55

5.4 Influência dos fatores ambientais sobre as assembléias de amebas testáceas 59

6. DISCUSSÃO 63

7. CONCLUSÕES 76

8. RECOMENDAÇÕES 77

REFERÊNCIAS 78

APÊNDICES 95

PRANCHAS 114

1. INTRODUÇÃO

A água doce, como fonte primária de recursos para a sociedade, tem sido primordial

para a sobrevivência humana, e o estabelecimento das civilizações no decorrer do tempo tem

ocorrido principalmente baseado na proximidade dos corpos d’ água (TUNDISI, 1999). Na

América do Sul muitas megalópoles encontram-se adjacentes aos rios de grande porte e mais

de 75% de toda a população concentra-se ao longo de suas margens (NEIFF, 1996). O Brasil,

por sua vez, apresenta a maior disponibilidade hídrica do mundo, por onde escoa cerca de

19,5% da água doce superficial do planeta (FREITAS, 2003).

Aproximadamente 14% de todas as espécies do mundo são encontradas no Brasil

(LEWINSOHN & PRADO, 2002). Porém, apesar desta extraordinária riqueza de espécies e

de corpos aquáticos, a biodiversidade em ambientes continentais é pobremente conhecida

(NEVES et al., 2003). O número de espécies é impreciso e difícil de ser estimado devido ao

grande número de bacias hidrográficas jamais inventariadas, à insuficiência no número de

pesquisadores e na infra-estrutura necessária para as amostragens e análises, além do reduzido

número de inventários efetuados e da dispersão das informações, que freqüentemente são de

difícil acesso (AGOSTINHO et al., 2005).

Tal fato é especialmente preocupante quando se considera o ritmo atual de destruição

destes ecossistemas naturais promovidos, sobretudo, pelo desmatamento, poluição e

eutrofização, aliado as altas taxas de extinção de espécies (WILSON, 1997; COUCEIRO et

al., 2007).

A eutrofização (enriquecimento de nutrientes oriundos da entrada de efluentes não

tratados nos corpos aquáticos) tem como um dos seus principais efeitos, o aumento da

biomassa algal e de macrófitas aquáticas, podendo acarretar a geração de compostos nocivos

na água, afetando diretamente o componente social e econômico dos recursos hídricos

(MEHNER & BENNDORF, 1995). Além destas comunidades, organismos como bactérias e

protistas, também são afetados direta ou indiretamente por tais perturbações ambientais,

podendo responder até mesmo a baixos níveis de alterações físicas, químicas e biológicas do

ambiente, devido ao reduzido tamanho e a elevada taxa de crescimento (BETTEZ et al., 2002;

SAMUELSSON et al., 2002; PAERL et al., 2003; AUER et al., 2004; PEREIRA, 2005).

Auer e Arndt (2001) relataram que existe pouca informação sobre a influência do

estado trófico do ambiente na estrutura taxonômica e na distribuição dos protistas em sistemas

naturais.

Hwang & Heath (1997) observaram populações menos abundantes em águas

oligotróficas e mais abundantes em ambientes eutrofizados.

Os protistas possuem papel ecológico muito importante em sistemas naturais, pois

constituem um dos principais componentes dos ciclos biogeoquímicos globais, regulando o

suprimento e a demanda de carbono orgânico, a ciclagem de nutrientes e o balanço de gás

carbônico e oxigênio dentro e entre os ecossistemas. Estão ainda envolvidos na regeneração

dos principais constituintes orgânicos celulares (carbono, nitrogênio, enxofre e fósforo) e

podem mobilizar elementos essenciais, como vitaminas, para o crescimento e o metabolismo

(ARNDT, 1993; BROCK et al., 1994 apud GOMES & GODINHO, 2004).

Embora a bacterivoria possa ser realizada por metazoários (rotíferos e cladóceros),

estes possuem menor eficiência na captação de células picoplanctônicas do que os protistas.

Em ambientes aquáticos, os protistas têm papel fundamental na ligação entre as bactérias e os

níveis tróficos superiores (alça microbiana), uma vez que se alimentam de partículas de

reduzido tamanho (menores que 1 µm) não assimiladas pelo macrozooplâncton (copépodos e

cladóceros) (BEAVER & CRISMAN, 1982; GILBERT et al., 1998; FOISSNER, 1999;

GOMES & GODINHO, 2003, 2004; GODINHO & REGALI-SELEGHIM, 2005).

Em termos quantitativos, os protistas são importantes forrageadores de

microorganismos em ambientes aquáticos, controlando a abundância de bactérias, podendo

assim incrementar as taxas de decomposição de matéria orgânica (FINLAY & ESTEBAN,

1998; RIBBLETT et al., 2005) e redisponibilizar nitrogênio e fósforo para os outros

organismos da rede trófica (PORTER et al., 1985; CORLISS, 2002; RIBBLETT et al., 2005).

Dentre os protistas, o grupo das amebas testáceas pode regular a densidade fitoplanctônica em

alguns lagos eutróficos (ARNDT, 1993) podendo constituir mais de 30% da biomassa

microbiana nestes ambientes (GILBERT et al., 1998; MITCHELL et al., 2003).

As amebas testáceas (Amoebozoa: Rhizopoda) formam um grupo artificial,

heterogêneo e polifilético de amebóides envolvidos por uma testa apresentando uma abertura

pilomar (abertura na teca) por onde há a extrusão e o protraimento dos pseudópodes. A testa

pode apresentar grande variação de formas e dimensões conforme o táxon. Estas amebas

podem ser encontradas nos mais diferentes ambientes (solos, turfeiras, musgos terrestres,

folhas axilares de bromeliáceas e mesmo em áreas de influência marinha), desde que possuam

um mínimo de umidade (OGDEN & HEDLEY, 1980; TORRES & JEBRAM, 1993). Estes

organismos encontram-se preferencialmente associados à vegetação aquática litorânea e ao

sedimento dos ambientes dulcícolas, podendo também ocorrer no plâncton (VELHO et al.,

1999; FULONE et al., 2005).

A teca ou testa é secretada pelo próprio organismo. Quando compostas por partículas

autógenas (natureza protéica, silicosa ou calcária), estas partículas são denominadas de

idiossomas. Contudo, a maioria das espécies tem sua teca composta por partículas estranhas,

que podem ser grãos de areias ou frústulas de diatomáceas aglutinadas com cimento autógeno,

sendo estas partículas denominadas de xenossomas. Este cimento é um ácido

mucopolissacarídico com cálcio, ferro, manganês, fósforo e traços de cloro e potássio

(OGDEN & HEDLEY, 1980; MADRID, 2006).

Quanto à filogenia do grupo, há muita controvérsia sobre as relações filogenéticas das

amebas testáceas. Estudos recentes, baseados em genes e seqüências do RNAr sugerem que a

Subclasse Testacealobosea De Saedeleer, 1934 (= Ordem Arcellinida Kent, 1880) é

monofilética (NICOLAEV et al., 2005; SMIRNOV et al., 2005). Por outro lado, membros da

Subclasse Testaceafilosea De Saedeleer, 1934 agrupam-se de maneira polifilética (BOLIVAR

et al., 2001; SMIRNOV et al., 2005). Deste modo, devido à inexistência de um consenso

quanto às relações filogenéticas das Testaceofilosea e ao fato do presente estudo abordar

indivíduos de ambas as Subclasses, adotou-se a classificação apenas ao nível de famílias.

Estudos ecológicos de amebas testáceas são, muitas vezes, prejudicados pelas

dificuldades existentes na identificação taxonômica. Características morfológicas,

morfométricas e a composição das testas são freqüentemente utilizadas como caracteres

taxonômicos na identificação das espécies. Porém, de acordo com Wanner (1995), diferentes

condições abióticas podem conduzir a mudanças estruturais na testa destas amebas, o que, por

um lado, dificulta a identificação correta das espécies, podendo resultar em um grande

número de variedades e formas e, por outro, possibilita a sua utilização como bioindicadoras,

desde que sejam bem conhecidos os parâmetros influentes e as alterações decorrentes das

mudanças ambientais.

A grande abundância das amebas testáceas em ecossistemas aquáticos, aliada as

elevadas biomassas e taxas metabólicas, curto período de geração e ciclo de vida possibilitam

investigações sobre processos demográficos das amebas testáceas, tanto em escala espacial

quanto temporal, permitindo verificar as possíveis influências das perturbações ambientais na

estrutura e composição das assembléias destes microorganismos, e conseqüentemente, obter

subsídios para seu uso como indicadores de tais mudanças ambientais (SOMMER, 1994;

HARDOIM, 1997; FOISSNER, 1999; MATTHEEUSSEN et al., 2005).

Logo, pode-se utilizá-las como indicadoras de ambientes lacustres contaminados por

resíduos químicos de minas e indústrias, indicadoras de aporte fluvial em regiões estuarinas e

de mudanças nos parâmetros limnológicos em ambientes com diferentes níveis de poluição,

estado trófico e metais pesados. Apesar de algumas espécies serem extremamente resistentes a

ambientes contaminados, outras são muito sensíveis a mudanças naturais, tais como pequenas

alterações de pH, servindo como boas indicadoras deste parâmetro ambiental (MEDIOLI et

al., 1990; ASIOLI et al., 1996; PATTERSON et al., 1996; REINHARDT et al., 1998;

DALBY et al., 2000; KUMAR & PATTERSON, 2000; PATTERSON & KUMAR, 2000;

VINCKE et al., 2004; KAUPPILA et al., 2006; MADRID, 2006).

Estudos destes organismos foram realizados em diferentes hábitats aquáticos do Brasil

(sedimentos, fauna associada à vegetação aquática, plâncton e em Sphagnum de turfeiras),

porém essas pesquisas são limitadas às regiões Sul, Sudeste e Centro-Oeste do Brasil

(LANSAC-TÔHA et al., 2007).

Lansac-Tôha et al. (2000, 2001a, b, 2007) e Velho et al. (2000, 2001) realizaram uma

série de seis estudos sobre a ocorrência e distribuição das espécies de amebas testáceas em

águas continentais brasileiras. Registraram 346 taxa infragenéricos, distribuídos em 13

famílias e 41 gêneros, sendo encontrados 267 taxa para a região Centro-oeste, 188 para a

região sul, 129 para a região sudeste, 53 para a região Nordeste e 18 espécies para a região

Norte.

Para a região Nordeste, apesar de sua abundância em corpos d’água, existem poucos

registros destes organismos, devido à carência de estudos e pesquisadores especializados na

taxonomia desse grupo. Deste modo, foram realizados apenas seis trabalhos, registrando um

total de 53 espécies, sendo quatro trabalhos realizados com o plâncton, um no estado do Ceará

(CUNHA, 1913), outro para Bahia/Piauí (CUNHA, 1916), Bahia/Pernambuco (NEUMANN-

LEITÃO & NOGUEIRA-PARANHOS, 1987) e para o Maranhão (ROCHA et al., 1998), e

dois com sedimento, realizados em Sergipe (ZUCON & LOYOLA & SILVA, 1992;

SEMENSATTO-Jr., 2006).

Para o estado da Bahia, o primeiro registro de amebas testáceas foi realizado por

Cunha em 1916, no qual foram registradas duas espécies: Centropyxis aculeata Ehrenberg,

1988 e Trinema enchelys Ehrenberg, 1938, para o município de Remanso (Caatinga).

Neumann-Leitão e Nogueira-Paranhos (op cit.) estudaram o zooplâncton do rio São

Francisco, em um trecho que compreende o estado de Pernambuco e a região norte da Bahia e

registraram a presença de Arcella vulgaris Ehrenberg, 1830 para a localidade de Itaparica

(Caatinga).

A diversidade e a riqueza de organismos na zona litorânea de ambientes aquáticos

continentais são freqüentemente elevadas devido, principalmente, à presença de macrófitas

aquáticas em suas regiões litorâneas, que desempenham importante papel no metabolismo de

todo o sistema (WETZEL, 2001).

As macrófitas aquáticas são vegetais que habitam desde brejos até ambientes

verdadeiramente aquáticos (ESTEVES, 1998). A classificação ecológica aceita comumente

refere-se aos tipos de macrófitas aquáticas como emersas, flutuantes, submersas enraizadas,

submersas livres e com folhas flutuantes (POMPÊO & MOSCHINI-CARLOS, 2003).

Estes vegetais apresentam fundamental importância para a dinâmica dos ecossistemas

lacustres, podendo reduzir a turbulência da água, causando a sedimentação de grande parte do

material alóctone, além de serem cruciais para a ciclagem de nutrientes. Atuam também na

cadeia trófica aquática e terrestre, abrigando uma complexa comunidade de organismos

(bactérias, fungos, algas, protistas e animais) que vivem aderidos (Perifíton) ou associados

(Pseudoperifíton) em um microfilme sobre a superfície destes vegetais, além dos detritos

orgânicos e inorgânicos (WETZEL, 1983; 1990; ESTEVES, 1998).

As características morfológicas e estruturais destes vegetais, como o desenvolvimento

de caules, folhas e raízes, formam múltiplos nichos apropriados para a colonização de micro

fauna e flora (DIONI, 1974), propiciando maior heterogeneidade espacial, abrigo e alimento

para vários organismos, aumentando assim o número de nichos e interferindo,

conseqüentemente, na dinâmica das comunidades e do ecossistema lacustre como um todo

(MARGALEF 1983; CARMO & LACERDA, 1984; GREGG & ROSE, 1985; TRIVINHO-

STRIXINO & STRIXINO, 1993; DE MARCO & LATINI, 1998; ESTEVES, 1998;

THOMAZ & BINI, 1998; BECERRA-MUNOZ & SCHRAMM, 2007).

As amebas testáceas se beneficiam destes microhabitats, pois os processos de

decomposição dos detritos são intensos, havendo florescimento de perifíton, abrigo contra

invertebrados e proliferação de fungos, algas perifíticas, bactérias e ciliados, que podem servir

de alimento para as amebas (HARDOIM, 1997). Segundo Dioni (1967), macrófitas flutuantes

com abundante rizosfera apresentam grande diversidade de organismos associados, que

podem alcançar um número muito elevado por unidade de área.

Estudos envolvendo microorganismos associados e/ou aderidos a macrófitas aquáticas

são escassos. Hardoim e Heckman (1996) estudaram os protistas de vida livre (ciliados e

sarcodineos) no Pantanal do Mato Grosso, encontrando 36 espécies de amebas testáceas

durante todo o ciclo hidrológico (enchente, cheia, vazante e seca).

Hardoim (1997) estudou as comunidades de amebas testáceas associadas ao limbo de

Eichhornia azurea e E. crassipes e aos detritos vegetais no rio Bento Gomes e na vazante

Birici (Pantanal de Poconé - Mato Grosso), registrando 55 espécies, 3 variedades, distribuídas

em 17 gêneros e 07 famílias.

Dabés e Velho (2001) determinaram a composição e a abundância da assembléia de

amebas testáceas associadas as macrófitas aquáticas presentes em uma lagoa marginal das

planícies de inundação do rio São Francisco, em Minas Gerais. Os autores constataram uma

elevada abundância e riqueza de espécies de amebas testáceas entre as raízes e folhas das

macrófitas, com ótimos de abundância de determinadas espécies em distintos períodos

sazonais. Neste estudo, foram identificados 51 taxa de amebas testáceas, com cinco novos

registros para o Brasil.

Torres e Schwarzbold (2002) realizaram um inventário das amebas testáceas

associadas a Eichhornia crassipes (Martius) Solomons, na represa Lomba do Sabão em Porto

Alegre, Rio Grande do Sul, identificando 44 espécies de amebas testáceas, sendo quatro

novos taxa para a ciência.

Souza (2005) estudou a riqueza de tecamebas associadas as macrófitas aquáticas da

bacia do rio Jequitinhonha, no Parque Estadual do Rio Preto e no Parque Estadual do Grão

Mogol, na Serra do Espinhaço, em Minas Gerais, registrando 108 taxa, que pertencem a 17

gêneros, 13 sub-espécies e 17 morfo-espécies, apresentando 17 novos registros reportados

para o Brasil.

No que se refere à presença de macrófitas aquáticas no rio Cachoeira, são conhecidas

oito espécies. Sendo Eichhornia crassipes e Pistia stratiotes as mais freqüentes na porção

média e inferior do rio e Salvinia sp., Nymphaea sp., Hydrocotyle sp., Cyperus sp.,

Polygonum spectabilis e Myriophilulum dermesum, na porção superior do rio (BAHIA, 2001).

Eichhornia crassipes (Mart.) Solms, vulgarmente chamada de aguapé ou baronesa, é

uma planta nativa da América do Sul tropical, que foi introduzida em todos os continentes. É

abundante em rios, em áreas de inundação fluviais e em solos argilosos e siltosos orgânicos,

férteis. Aspectos da sua biologia reprodutiva tais como propagação vegetativa e produção de

sementes resistentes à seca, conferem a esta planta uma grande capacidade de colonização de

ambientes (POTT, 2000).

Esta macrófita aquática apresenta rizoma composto por nódulos que podem se tornar

raízes, pecíolos ou estolões. Possui geralmente 6 cm de diâmetro e mais de 30 de

comprimento. Pode ainda possuir aerênquima desenvolvido quando for o biótipo livre-

flutuante ou atrofiado quando for o biótipo fixo. A raiz é adventícia e fibrosa, com inúmeras

raízes mais finas laterais, o que faz com que as mesmas se assemelhem a penas, não

apresentando muita variação quanto à espessura (GOPAL, 1987).

E. crassipes é tolerante a flutuações extremas nos níveis de água, disponibilidade de

nutrientes, pH, temperatura e substâncias tóxicas (BATCHER, 2000), sendo capaz de

absorver metais pesados e retirar nutrientes da água, auxiliando a despoluição do corpo

hídrico através da translocação e acúmulo destes compostos em seus tecidos vegetais (TAIZ,

1998; POTT, 2000). Porém, quando em grande biomassa, podem constituir um problema de

saúde pública se houver decomposição num manancial que sirva para o abastecimento

humano, ocasionando a liberação destes compostos para a coluna de água.

O crescimento das macrófitas aquáticas no rio Cachoeira é resultado do intenso

processo de eutrofização na bacia hidrográfica, no qual este rio está inserido. Sendo que as

principais fontes são os despejos de efluentes urbanos (residenciais e industriais) não tratados

e o escoamento superficial dos insumos agrícolas utilizados principalmente no cultivo do

cacau (KLUMPP et al., 2002; SCHIAVETTI et al., 2005), comprometendo assim a qualidade

das águas do rio. Segundo Klumpp et al. (2002), foi observado um aumento de 100% nas

concentrações de nitrogênio e fósforo nas águas do rio Cachoeira após sua passagem por

Itabuna, o que demonstra o efeito das descargas de dejetos humanos neste ponto sobre o

estado trófico do rio.

Os rios são ambientes hidrologicamente dinâmicos que apresentam um contínuo de

gradientes físicos, que define a distribuição dos processos biológicos ao longo do seu eixo

longitudinal (VANNOTE et al., 1980). Além disso, são ecossistemas abertos em constante

interação com o ecossistema terrestre e a atmosfera circundante. Quaisquer flutuações nestes

compartimentos afetarão a dinâmica do rio e, consequentemente, seu estado trófico,

interferindo assim no desenvolvimento das macrófitas aquáticas e em sua biota associada.

Em rios tropicais, o pulso de inundação é o fator chave que origina e controla a

produtividade e o fluxo de energia nestes sistemas (JUNK et al., 1989). Deste modo, a

conexão lateral hidrológica e a dinâmica, de fluxos e refluxos hídricos, gera um aporte

dinâmico de nutrientes e matéria orgânica, que determina a conexão e as características dos

habitats existentes e respectivas condições tróficas (JUNK et al., 1989). Deste modo, a biota

aquática é fortemente influenciada pelos pulsos de inundação interferindo na produção de

biomassa e na ciclagem de nutrientes.

Por outro lado, no conceito da descontinuidade serial (WARD & STANFORD, 1983),

as descontinuidades são consideradas como áreas limites entre segmentos adjacentes do rio,

que diferem marcadamente em sua estrutura geomorfológica e na sua conectividade,

definindo manchas dinâmicas ao longo do rio. Assim, a disrupção das conectividades

longitudinais e laterais causadas pelas barragens, por exemplo, altera profundamente os

componentes envolvidos, com conseqüências nas populações de muitas espécies.

Tendo em vista a importância das amebas testáceas no metabolismo das águas

continentais, a escassez de estudos taxonômicos e ecológicos no Brasil e a grande abundância

de Eichhornia crassipes no rio Cachoeira, este trabalho visa estudar a estrutura das

assembléias de amebas testáceas associadas aos estandes desta macrófita aquática, em

períodos hidrológicos de maior e menor vazão do rio.

2. OBJETIVOS

Analisar a estrutura das assembléias de amebas testáceas associadas a Eichhornia

crassipes (Mart.) Solms. (Pontederiaceae) no rio Cachoeira, Bahia, em dois períodos

hidrológicos distintos (maior e menor vazão do rio).

Objetivos Específicos

 Inventariar as espécies de amebas testáceas associadas a Eichhornia crassipes em três

estandes no Rio Cachoeira.

 Determinar a biomassa das amebas testáceas em termos de mg C/ grama de peso seco

de raiz .

 Caracterizar a estrutura das assembléias das amebas testáceas.

 Verificar se existem diferenças significativas na estrutura das assembléias das amebas

testáceas nos dois períodos de estudo.

 Investigar possíveis influências das características tróficas do ambiente (biomassa

fitoplanctônica) e dos fatores abióticos sobre a estrutura das assembléias de amebas

testáceas.

3. ÁREA DE ESTUDO

3.1 Caracterização da área de estudo

A bacia hidrográfica do rio Cachoeira, Sul da Bahia, pertence às Bacias do Leste, de

acordo com a classificação da Superintendência Estadual de Recursos Hídricos (BAHIA,

1997). Localiza-se entre as coordenadas 14

42’/15º 20’ S e 39º01’/40º09’ W, apresentando

como limites as bacias dos rios de Contas e Almada, ao norte; e dos rios Pardo e Una, ao sul;

a bacia do rio Pardo, a oeste e o Oceano Atlântico, a leste. A área de drenagem da bacia

corresponde a 4.600 km

, perímetro de 370 km, extensão do rio principal de 181 km, desnível

de 720 m, declividade do rio principal de 3,98 m/km. Na bacia vivem aproximadamente

600.000 habitantes distribuídos em 12 municípios: Itororó, Itapetinga, Itajú do Colônia,

Firmino Alves, Santa Cruz da Vitória, Floresta Azul, Ibicaraí, Jussari, Itapé, São José da

Vitória, Itabuna e Ilhéus (BAHIA, 2001; FIGUEIRÊDO, 2005).

A bacia do rio Cachoeira encontra-se inserida nas faixas climáticas do tipo Af e Am,

segundo a classificação de Köppen. O clima Af é quente e úmido, sem estação seca definida.

A precipitação para o mês mais seco é superior a 60 mm, sendo que a precipitação anual

ultrapassa 1.300 mm (FROTA, 1972). O tipo Af predomina na porção da bacia próxima ao

litoral. Já a porção oeste é caracterizada pelo tipo Am, chuvoso, quente e úmido, sem estação

seca bem definida, sendo esta compensada pelos totais pluviométricos elevados (BAHIA,

1997).

O principal uso do solo corresponde à agropecuária, com destaque para o cultivo do

cacau nos municípios próximos ao litoral. A pecuária concentra-se nos municípios localizados

nas áreas mais interiores, como Itapetinga, Santa Cruz da Vitória, Itajú da Colônia, entre

outros (BAHIA, 2001).

O Rio Cachoeira banha três municípios sendo dois deles, Itabuna e Ilhéus, pólos de

desenvolvimento do estado da Bahia. A escolha deste rio para o estudo foi baseada não

somente na importância econômica, demográfica e social dos municípios que banha, mas

porque ele representa a síntese do que ocorre ao longo da bacia, pois todas as águas desta

bacia convergem para o rio Cachoeira, refletindo, assim, as condições ambientais da região.

Entretanto, durante períodos de maior vazão do rio, grande quantidade de biomassa de

macrófitas aquáticas, sobretudo E. crassipes, é transportada para a zona costeira afetando,

principalmente, os municípios de Itabuna e Ilhéus (BAHIA, 2001).

A qualidade das águas do rio Cachoeira está diretamente relacionada às características

naturais, à ocupação e aos usos da terra de sua bacia. Além das práticas agropecuárias

inadequadas, desmatamentos e atividades urbanas e industriais contribuem para a degradação

dos seus recursos hídricos (SCHIAVETTI et al., 2005).

Como exemplo, pode-se citar os dejetos orgânicos e inorgânicos espalhados ao longo

do Rio Cachoeira provenientes do lixão a céu aberto localizado às margens do rio Colônia,

que são arrastados na época das grandes chuvas (PINHO, 2001) Ao longo dos seus 50 km, do

ponto de vista antropológico, seu uso principal é como receptor de esgotos urbanos e

industriais. Na cidade de Itabuna a situação ainda é mais alarmante, pois segundo a EMASA

(Empresa Municipal de Águas e Saneamento), cerca de 64 % da população possui rede

coletora de esgoto (290 km), coletando 6.177.500.000/m³ de esgoto por ano, e apenas 14,1%

deste volume recebe algum tratamento antes de ser lançado no rio Cachoeira (informação

verbal).

Não obstante, a população ribeirinha usa as águas do rio Cachoeira como fonte de

alimentação, renda (pesca e lavagem de roupa), cultivo de vegetais e também para o lazer,

constituindo assim um risco para a saúde desta população (KLUMPP et al., 2000;

SCHIAVETTI et al., 2005). Tal água ainda alimenta indústrias e é do seu leito que resulta o

comércio da areia lavada (PINHO, 2001).

3.2 Localização dos pontos de coleta

Foram selecionados três pontos fixos de coleta ao longo do rio Cachoeira (Figura 1).

Estes foram escolhidos com a finalidade de verificar o efeito do represamento e da

eutrofização sobre a estrutura das assembléias de amebas testáceas. Assim, foram

estabelecidos dois pontos no centro da cidade de Itabuna, a montante do represamento, onde o

despejo de efluentes é freqüente e o nível da água varia pouco, e um ponto a jusante do

represamento, na localidade de Vila Cachoeira, onde o nível da água oscila mais quando

comparado com os pontos anteriores, o despejo de efluentes é reduzido e a mata ciliar é mais

marcante.

Informação fornecida por Anderson Alves Santos na EMASA – Empresa Municipal de Águas e Saneamento,

em Itabuna, em outubro de 2006.

Figura 1: Mapa da área de estudo no rio Cachoeira: A - Brasil, B – Bahia com destaque para a Bacia hidrográfica

do rio Cachoeira e C - Pontos de coletas no rio Cachoeira (A, B e C).

Ponto A (Coordenadas: 14º 48’ 2,1” S e 39º 16’ 47,0” W; 189 m de altitude).

Ambiente localizado no bairro Bananeira em Itabuna. O rio neste ponto possui fluxo

de água pequeno e contínuo, ausência de corredeiras, margens com declividade acentuada

(>45º), onde há muito lixo, raízes e solos expostos, além do desmatamento em ambas as

margens do rio. A vegetação ripária encontra-se reduzida, presença moderada de material

alóctone (galhos e folhas), sendo o leito composto por sedimentos. No entorno da área

existem várias residências e avenida de grande fluxo de veículos, sendo a água do rio utilizada

para lavagem de roupa, construção de casas e pesca (Figura 2).

Figura 02: Vista parcial do ponto A no Rio Cachoeira; A - Período de maior vazão; B - Período de menor vazão.

Notar a grande quantidade de Eichhornia crassipes no período de menor vazão

Ponto B (Coordenadas: 14º 47’ 54,55” S e 39º 16’ 37,0” W; 186 m de altitude).

Ambiente localizado no centro da cidade de Itabuna, próximo ao “Shopping Center”

da cidade. O rio Cachoeira neste ponto apresenta fluxo de água pequeno e contínuo, ausência

de corredeiras, margens com declividade acentuada (>45º), com lixo e desmatamento,

apresenta algumas árvores que conferem pequeno sombreamento a área, contudo não há

vegetação ripária, mas há raízes expostas nas margens. Existe uma quantidade moderada de

material alóctone (galhos e folhas). O leito é composto por sedimentos finos. No entorno da

área existem vários estabelecimentos comerciais e avenida de grande fluxo de veículos. Há

várias tubulações de esgotos, galerias pluviais e canalizações desembocando no rio. Sua água

é utilizada para lavagem de roupas, animais, carros, recreação e pesca (Figura 3).

B A

Figura 3: Vista parcial do ponto B no Rio Cachoeira; A - Período de maior vazão; B - Período de menor vazão;

C e D - Canalização de esgoto desembocando neste ponto.

Após este ponto, há um represamento do rio na saída do centro da cidade de Itabuna

(Figura 4), assim os pontos de coleta A e B ficam antes do represamento e o C, após o

mesmo.

Figura 4: Rio Cachoeira; A - Represamento do rio no centro da cidade de Itabuna; B – Lixo jogado no rio.

C D

B A

Ponto C (Coordenadas: 14º 48’ 27,3” S e 39º 8’ 49,6” W; 40 m de altitude).

Esta área localiza-se na comunidade de Vila Cachoeira, no município de Ilhéus, possui

fluxo de água contínuo, moderado a rápido, havendo corredeiras e regiões de remanso

profundas. As margens apresentam pequena declividade (<45º), existindo pouca quantidade

de lixo e raízes expostas em ambas às margens. O desmatamento é moderado, sendo a

vegetação ripária esparsa, porém mais marcante que os pontos anteriores (Figura 5). O

material alóctone (galhos e folhas) também é moderado, já o leito é constituído por seixos e

rochas. Há desembocadura de córrego neste ponto amostral (Figura 5C). O entorno da área

possui algumas residências, onde as principais atividades desenvolvidas no rio são a pesca

(peixe e camarões), lavagem de roupas e de animais, além da recreação. A pesca do camarão é

feita com auxílio de peneiras, que são arrastadas entre as raízes da E. crassipes para a coleta

dos camarões.

Figura 5: Vista panorâmica do ponto C no Rio Cachoeira; A e C - Período de maior vazão; B e D - Período de

menor vazão. Observar a presença marcante da mata ciliar neste ponto e a grande abundância de E.

crassipes no período menor vazão. A seta na foto C evidencia a desembocadura de um córrego neste

local.

04. MATERIAL E MÉTODOS

4.1 Delineamento amostral

Para definição dos meses de coleta (período de maior e menor vazão fluvial) foram

utilizadas as médias históricas mensais das vazões dos últimos 30 anos do rio Cachoeira

(dados fornecidos pela ANA - Agência Nacional de Águas). Estes resultados mostram que o

período de maior escoamento do rio Cachoeira está compreendido entre os meses de

novembro a abril, e o de menor escoamento, de maio a outubro (Figura 6).

JAN FEV MAR ABR MAI JUN JUL AGO SET OUT NOV DEZ

Meses

Figura 6: Valores médios mensais das vazões fluviais do rio Cachoeira nos últimos 30 anos. (Dados fornecidos

pela ANA - Agência Nacional de Águas).

Com base nestes dados, foram realizadas três saídas de campo para cada período de

maior e menor vazão do rio: dias 22 de novembro, 06 de dezembro de 2006 e 30 de janeiro de

2007 (período de maior vazão) e nos dias 11 de junho, 26 de julho e 28 de agosto de 2007

(período de menor vazão). As coletas nos três pontos foram realizadas no mesmo dia, durante

o período matutino, das nove horas ao meio dia. Em novembro de 2006, devido às fortes

chuvas ocorridas na semana precedente à das coletas, não foi possível coletar macrófitas no

ponto C, porque estas haviam sido carreadas em direção ao estuário.

4.2 Variáveis ambientais

As seguintes variáveis ambientais foram consideradas neste trabalho: precipitação

pluviométrica total mensal, vazão fluvial média mensal, profundidade do rio no local de

coleta das macrófitas, temperatura, pH, condutividade elétrica e transparência da água, além

da estimativa da biomassa primária através da concentração de clorofila-a na água.

Precipitação pluviométrica total mensal

Os dados de precipitação pluviométrica mensais dos meses de coleta foram obtidos na

estação de meteorologia da Secretaria Estadual de Recursos Hídricos (SRH).

Vazão fluviométrica mensal

Os dados de vazão fluviométrica referentes aos meses de coleta foram obtidos através

da ANA (Agência Nacional de Águas), sendo estes dados provenientes da estação

fluviométrica em Ferradas (Bahia).

Profundidade do local de coleta (m)

A profundidade do local de coleta foi determinada através de um cabo graduado a cada

centímetro.

Temperatura da água (°C)

A temperatura da água foi obtida “in loco” utilizando-se um termômetro de mercúrio

(flutuante) com precisão de 0,1ºC.

pH e condutividade elétrica da água (µ

µµ

µS/cm)

O pH e a condutividade elétrica foram estimados através de uma sonda

multiparamétrica da marca WTW, modelo 340i/set.

Transparência da água (m)

A transparência da água foi estimada através da utilização do disco de Secchi.

Concentração de clorofila-a na água (mg/L)

A concentração de clorofila-a da água foi estimada segundo o método

espectrofotométrico de Strickland & Parson (1972), sendo utilizadas duas alíquotas de 20 mL

por amostra.

4.3 Assembléias de amebas testáceas

Procedimento de coleta das macrófitas

Foram coletados três exemplares de macrófitas em cada ponto amostral. Cada

macrófita foi coletada com um saco plástico (medindo 60 x 40 x 8 cm; capacidade para 15

litros de água) que foi colocado abaixo e/ou entre as macrófitas aquáticas, de modo a ensacar

somente um indivíduo inteiro (sem os estolões ou plantas-filhas e a parte aérea da planta)

sendo então seccionado a rizosfera da planta com auxílio de uma tesoura de poda. O saco

contendo a rizosfera foi preenchido com 5 litros de água do ambiente, conforme descrito por

Dioni (1967), e levado para o laboratório (Figura 7).

Figura 7: A e B - Coleta de Eichhornia crassipes no Rio Cachoeira.

No laboratório, foi feita a agitação dos sacos (30 inversões) contendo as raízes e a

água do local para remover os organismos associados às raízes (BICUDO, 1990;

SCHARZBOLD, 1990), e a água do saco foi colocada em balde de 5 L, onde as raízes foram

lavadas até que todo material aderido fosse desprendido (TORRES & JEBRAM, 1994;

HARDOIM, 1997). Posteriormente, as amostras foram cuidadosamente concentradas em rede

de 20 µm de abertura da malha, e acondicionadas em frascos de polietileno de 250 mL,

coradas com corante Rosa de Bengala e fixadas com solução de formalina (tamponada com

carbonato de cálcio) a 4% de concentração final na amostra (DABÉS & VELHO, 2001; BINI

et al., 2003).

A B

Identificação e contagem das amebas testáceas

As amostras foram agitadas delicadamente, com 30 inversões suaves do frasco, para

evitar o rompimento de suas carapaças, e as espécies foram identificadas e contadas em

câmaras com auxílio de microscópio marca Zeiss modelo AXIOSTAR PLUS.

A análise quantitativa foi realizada em câmara de Sedgwick-Rafter sob microscópio

óptico, segundo a metodologia de Bottrell et al. (1976). As contagens foram feitas em todo o

fundo da câmara, para que os resultados tivessem a maior confiabilidade estatística possível

(BRANCO,1986). Foram contadas somente as amebas testáceas que estavam com

protoplasma corado, indicando que estavam vivas no momento da coleta (VELHO et al.,

1999, 2004). Foram realizadas três subamostragens para cada amostra (macrófita), sendo

analisado 9 ml de cada amostra. Os resultados da densidade de amebas testáceas são as

médias aritméticas do total de amebas de cada uma das três macrófitas coletadas naquele

ponto, e foram expressos em número de indivíduos por grama de peso seco de raiz (ind./gPS).

Para a análise qualitativa, os exemplares foram pipetados e montados em lâminas com

glicerina para posterior identificação em maiores aumentos (200, 400 ou 1000 X). A

identificação das espécies foi baseada nas seguintes bibliografias: Deflandre (1928, 1929),

Gauthier Liévre & Thomaz (1958, 1960), Decloitre (1962), Vucetich (1973), Dioni (1974),

Ogden & Hedley (1980), Ogden & Zivkovic (1983), Ogden (1983; 1984), Torres (1996),

Hardoim (1997), Missawa (2000), Dabés & Velho (2001), Fulone et al., (2005), Snegovaya &

Alekperov (2005) e Tsyganov & Mazei (2007).

Estimativa do biovolume

Para o cálculo do volume celular foram medidas as dimensões das tecas de pelo menos

20 indivíduos de cada espécie presentes em cada amostra. As medidas foram feitas sob um

microscópio óptico marca Zeiss modelo AXIOSTAR PLUS, utilizando-se uma ocular

micrométrica. O volume médio de cada espécie foi calculado utilizando-se as equações

estereométricas (EDLER, 1979) baseadas na forma geométrica mais semelhante a do

organismo (GILBERT et al., 1998; GOMES & GODINHO, 2004).

Estimativa da biomassa

A estimativa da biomassa das amebas testáceas em termos de microgramas de carbono

por grama de peso seco de raiz foi calculada da seguinte maneira. Primeiramente, o

biovolume médio de cada espécie foi transformado em biomassa em termos de carbono,

utilizando-se o seguinte fator de conversão: 1 µm

= 0,11 x 10

–6

µg C (GILBERT et al.,

1998). Em seguida, estes valores foram multiplicados pela a abundância de cada uma das

espécies observadas na amostra. Finalmente, a somatória das biomassas de carbono de todas

as espécies presentes naquele ponto de coleta foi expressa em termos de grama de peso seco

da raiz, dividindo-se a biomassa total pelo peso seco da raiz daquela amostra. Diante dos

pequenos valores encontrados, optou-se por utilizar três casas decimais.

Estimativa do peso seco das raízes

As raízes foram acondicionadas, separadamente, em sacos de papel e levadas para

estufa de aeração forçada a 70ºC, por aproximadamente 96 horas, até obtenção de massa

constante (POMPÊO & MOSCHINI-CARLOS, 2003) e, em seguida, foram pesadas em

balança com precisão de três casas decimais.

Montagem de lâminas permanentes e fotografias

A conservação dos microorganismos foi feita através da confecção de lâminas

permanentes através de duas técnicas. Na primeira técnica, os indivíduos foram pipetados

com o auxílio de pipetas de Pasteur e colocados em lâminas até a secagem quase completa,

em seguida, adicionou-se uma gota de Bálsamo do Canadá, que se infiltrou na carapaça.

Finalizando com a colocação cuidadosa da lamínula, para não formar bolhas e não causar o

rompimento das carapaças (MISSAWA, 2000; TORRES, 1996).

Na segunda técnica, alíquotas de amostra (6 mL) foram colocadas em tubos de ensaio,

centrifugadas por 10 minutos a 1600 rpm. Em seguida, os sobrenadantes foram descartados e

foram adicionados 4 mL de glicerina a 50% em cada tubo. Após uma segunda centrifugação

nas mesmas condições especificadas, os sobrenadantes foram novamente descartados. As

lâminas foram então montadas com gelatina glicerinada e as lamínulas seladas com parafina.

Esta técnica foi adaptada da técnica da gelatina glicerinada (KAISER, 1880). As espécies

foram fotografadas em diversos aumentos com o auxílio de uma máquina fotográfica

Olympus acoplada ao microscópio Zeiss, modelo AXIOSTAR PLUS (Prancha 01 e 02).

4.4 Análise da estrutura das assembléias de amebas testáceas

A abundância de espécies, segundo Krebs (1989) pode ser estimada de diversas maneiras:

densidade e biomassa absoluta e relativa.

Densidade absoluta

A densidade absoluta é o número de organismos por unidade de área ou volume.

Assim, estimou-se a densidade absoluta das tecamebas considerando o número de organismos

por grama de peso seco da rizosfera da macrófita.

Densidade Relativa

A densidade relativa das espécies foi calculada considerando os números dos

indivíduos observados de cada espécie em relação ao total de indivíduos presente naquele

ponto amostral. Em função dos resultados observados, foram representadas no gráfico,

somente as espécies que exibiram densidades relativas maiores ou iguais a 5%.

Diante dos pequenos valores encontrados, adotou-se o seguinte critério para classificar

as espécies em relação a densidade: dominante (X > 50%); muito abundante (50% ≤ X

>20%); abundante (20% ≤ X >10%); pouco abundante (10% ≤ X >2%) e rara (X ≤ 2%).

Biomassa Relativa

A biomassa relativa das espécies foi calculada considerando a biomassa de cada

espécie em relação à biomassa total das espécies presentes naquela unidade amostral. Nas

figuras contendo as espécies que mais contribuíram em termos de biomassa de carbono, nos

período de maior e menor vazão do rio, foram consideradas somente as espécies com

biomassa relativas maiores ou iguais a 5 %.

Freqüência de Ocorrência

A freqüência de ocorrência das espécies é definida como a porcentagem das amostras

em que determinada espécie ocorreu com relação ao total de amostras. Para categorizar as

freqüências de ocorrência das espécies foi utilizado o critério de Dajoz (1973): espécies

constantes (aquelas que ocorreram em mais de 50% das amostras); espécies comuns (aquelas

com freqüência de ocorrência entre 25% e 50% das amostras) e espécies esporádicas (aquelas

presentes em menos de 25% das amostras).

Estimativas de riqueza e diversidade

A diversidade pode ser estimada em três escalas: diversidade gama refere-se ao

número de espécie encontrado em uma determinada região, já a alfa é o número de espécie

encontrado em cada local de estudo (riqueza regional) e a beta é o “turnover” de espécies

entre os diferentes habitats (MAGURRAN, 1988).

As medidas de diversidade de espécies podem ser divididas em três categorias: (i)

índice de riqueza de espécies, que medem o número de espécies em uma determinada

amostra; (ii) índices baseados na abundância proporcional das espécies, que trabalham com a

riqueza e equabilidade; e (iii) modelos de espécie-abundância, que descrevem a distribuição

da abundância das espécies.

Foram utilizados: a riqueza de espécies, os índice de diversidade de Shannon-Wiever,

o índice de Equabilidade de Pielou e as estimativas de riqueza de Jackknife, além das curvas

abundâncias relativas das espécies. Os índices e estimativas foram calculados utilizando os

dados agrupados por períodos de estudo de maior e menor vazão, em cada ponto amostral.

Riqueza de Espécies

A riqueza de espécies foi estimada considerando o número de espécies registrado em

cada unidade amostral.

Diversidade de Espécies

A diversidade de espécies tem sido utilizada como um indicador da qualidade

ambiental dos sistemas ecológicos, principalmente na área de monitoramento ambiental

(MAGURRAN, 1988). Para a estimativa da diversidade específica, foi utilizado o índice (H’)

de Shannon-Wiever (PIELOU, 1975). Este índice atribui menor peso as espécies raras do que

as comuns (RICKLEFS, 2003), sendo calculado pela seguinte expressão:

H’= - ∑ p

log p

;

Onde: p

= n

: probabilidade de que o indivíduo pertença a espécie e;

: Número de indivíduo da espécie e;

N: total de espécie;

Log: Logaritmo Neperiano.

Equabilidade

A equabilidade (J) foi calculada a partir do índice de Shannon-Wiener (H’) através da

fórmula de Pielou (1967) apud Magurran (1988) abaixo descrita:

E= H’/H

max

; onde: H’: Índice de Diversidade de Shannon Wiever

;

max

: Diversidade máxima.

Tal índice constitui um componente da diversidade, e mede a uniformidade da

distribuição das abundâncias das espécies de uma comunidade. Este índice varia entre 0 e 1.

Total de espécies observadas

Visando comparar o número de espécies observado no rio Cachoeira durante o estudo,

foram estimadas as riquezas através do estimador de riqueza Jackknife 1. O método Jackknife

estima a riqueza absoluta somando-se a riqueza observada a um parâmetro calculado a partir

do número de espécies raras e do número de amostras (MAGURRAN, 1988; SANTOS,

2003). Estas estimativas foram obtidas através do software EstimateS, versão 7.0

(COLWELL, 2004), seguindo a seguinte fórmula:

jack1

obs

+ Q

(m-1/m) onde:

jack1:

Riqueza estimada pelo método de Jackknife 1;

obs :

Riqueza observada;

: Número de espécies que ocorrem em “j” amostras;

m: Número de amostras.

Modelos de espécie-abundância

Diagramas de abundância relativa “Whittaker plot” das espécies descrevem a

distribuição das abundâncias entre as espécies (BEGON et al., 2007). Assim tais diagramas

foram realizados visando verificar graficamente a dominância numérica das espécies,

auxiliando assim no melhor entendimento da estrutura das assembléias de amebas testáceas

nos pontos amostrais. Para tanto foi realizada a ordenação no eixo das abscissas das espécies

de maior para menor abundância e, no eixo das ordenadas, a abundância relativa das espécies

(SANTOS et al., 2003).

4.5 Análise dos dados

Caracterização dos pontos amostrados

Visando caracterizar os ambientes amostrados, as variáveis ambientais (pluviosidade,

vazão, profundidade do local da coleta, temperatura, transparência, pH, condutividade e

concentração de clorofila-a da água) foram analisadas utilizando métodos descritivos básicos

(valores mínimo e máximo, média e desvio padrão).

A Análise de Componentes Principais (ACP) foi utilizada para a ordenação dos pontos

amostrais em relação às mesmas variáveis ambientais acima citadas. Visando homogeneizar

as variâncias, os dados foram transformados em Ln, com exceção do pH. Todas as análises

foram realizadas utilizando-se o pacote estatístico MVSP, versão 3.0.

Similaridade entre as assembléias

A similaridade entre as assembléias de amebas testáceas foi analisada através de

índices qualitativos e quantitativos estimados para todo o período de estudo e para cada ponto

amostral ao longo do tempo.

A análise qualitativa foi realizada utilizando os dados de presença e ausência das

espécies através do Coeficiente de Sørensen, que pondera mais as presenças do que as

ausências entre as amostras (KREBS, 1989). Tal coeficiente foi calculado de acordo com a

fórmula abaixo:

= 2a/2a+b+c, onde: S

: Coeficiente de Sørensen;

a: Número de espécies presentes somente na amostra a;

b: Número de espécies presentes somente na amostra b;

c: Número de espécies comuns a ambas as amostras;

A análise de agrupamentos ou de cluster tem como objetivo dividir os elementos da

amostra em grupos de forma que os elementos pertencentes a um mesmo grupo sejam

similares entre si, e os elementos em grupos diferentes sejam heterogêneos em relação a estas

mesmas características (MINGOTI, 2007).

Visando evidenciar as similaridades das assembléias das amebas testáceas (densidade

das tecamebas), entre os pontos amostrais (A, B e C) e os períodos hidrológicos (maior e

menor vazão do rio), foi realizada uma análise de agrupamento. Como medida de similaridade

foi utilizado o índice de similaridade de Morisita-Horn, que é independente do tamanho das

amostras (KREBS, 1989), e o método de ligação empregado foi o UPGMA. A análise foi

realizada utilizando o pacote estatístico MVSP, versão 3.0.

Para a aplicação dos testes estatísticos, foram analisados os pressupostos de

normalidade e homocedasticidade. Para verificar a normalidade das variáveis, foi utilizado o

teste de Kolmogorov-Smirnov, e para verificar a homocedasticidade, isto é, se a variância

entre os grupos pode ser considerada igual para todos eles, foi aplicado o teste de Levene

(NORUSIS, 1993). As variáveis seguiram uma distribuição normal, portanto foi utilizada a

Análise de Variância (ANOVA – Two way), com nível de significância α < 0,05 para

verificar se existem diferenças estatísticas significativas na diversidade, riqueza, densidade e

biomassa das espécies entre os pontos de coleta e os períodos de maior e menor vazão. No

caso em que o teste F (ANOVA) detectou diferenças significativas entre os pontos amostrais,

foi utilizado o teste de Tukey de comparação de médias a posteriori para apontar quais pontos

eram significativamente diferentes.

Influência das variáveis ambientais sobre a assembléia de amebas testáceas

Para verificar as tendências de variabilidade dos dados e expressar a complexidade das

relações existentes entre as densidades, biomassas, riquezas e diversidades das amebas

testáceas e os parâmetros ambientais, foi realizada uma análise de Componentes Principais

(ACP) utilizando uma matriz contendo além dos dados ambientais, os dados bióticos. Visando

homogeneizar as variâncias, os dados de densidade, biomassa, riqueza e diversidade das

tecamebas, foram transformados Ln (x+1) e os dados ambientais, com exceção do pH, foram

transformados em Ln. Todas as análises foram realizadas utilizando-se o pacote estatístico

MVSP, versão 3.0.

Foi realizada também uma análise de correlação de Pearson entre as variáveis

ambientais (todas) e os dados de densidade, biomassa, riqueza e diversidade da assembléia de

amebas testáceas para verificar que fatores apresentam correlações significativas. Novamente,

visando homogeneizar as variâncias, foram utilizados os dados ambientais e bióticos

previamente log transformados, como mencionado no parágrafo anterior.

5. RESULTADOS

5.1 Dados Ambientais

Os meses de maior precipitação pluviométrica durante o período de estudo foram

novembro de 2006, janeiro de 2007 e dezembro de 2006, e aqueles de menor precipitação,

junho, julho e agosto de 2007 (Tabela 01).

A vazão do rio Cachoeira apresentou o mesmo padrão observado para a pluviometria,

principalmente para os meses chuvosos, sendo que as maiores vazões foram observadas em

novembro de 2006 (69,4 ± 125,9 m

/s), seguida por janeiro de 2007 (25,2 ± 80,9 m

/s) e

dezembro de 2007 (7,9 ± 8,8 m

/s). Já para o período mais seco, os meses em ordem

decrescente de vazão fluviométrica foram: julho (3,7 ± 2,2 m

/s), junho (2,8 ± 0,7 m

/s) e

agosto de 2007 (2,7 ± 0,8 m

/s) (Tabela 01).

Comparando os dados de vazão fluviométrica registrados durante o período deste

estudo, percebe-se que a variação observada no regime hidrológico do rio Cachoeira seguiu o

padrão detectado nos dados históricos registrados dos últimos 30 anos.

Tabela 01 – Resumo dos dados de precipitação pluviométrica (mm) e vazão fluviométrica (m

/s) para os meses

de novembro de 2006 a janeiro de 2007 e de junho a agosto de 2007. DP: Desvio Padrão.

Vazão Fluviométrica (m

/s) Precipitação (mm)

Mês

Mínimo Máximo Média DP Total mensal

nov/06 3,1 540,0 69,4 125,9 6.449

dez/06 1,6 48,1 7,9 8,8 4.449

jan/07 0,2 558,0 25,2 80,8 4.617

jun/07 1,9 4,4 2,8 0,7 3.847

jul/07 1,9 11,6 3,7 2,2 3.956

ago/07 1,7 4,5 2,7 0,8 3.950

A Tabela 02 apresenta os dados das variáveis ambientais e o resumo de cada uma

delas para todo o período de estudo.

Tabela 02: Dados das variáveis ambientais nos pontos amostrados no rio Cachoeira - BA para os meses de

novembro de 2006 a janeiro de 2007 e de junho a agosto de 2007. Máx: Valor máximo; Min: Valor

mínimo; Méd: Média e DP: Desvio padrão.

Meses Ponto

Prof.

(m)

Temp

(ºC)

Cond.

(µ

µµ

µS/cm)

Transp.

(m)

Chl-a

(mg/L)

nov/06 A

0,10 29,0 7,35 413 0,10 9,10

0,19 29,5 7,20 410 0,13 21,80

dez/06 A

0,56 32,0 7,18 453 0,15 40,30

0,51 31,0 7,09 449 0,18 61,30

0,80 29,0 7,42 115 0,70 39,80

jan/07 A

0,33 25,0 7,46 613 0,33 69,90

1,00 31,0 7,15 636 1,00 122,10

0,74 33,0 8,34 489 0,74 25,90

jun/07 A

0,48 25,0 7,42 655 0,20 57,00

0,10 25,0 7,37 586 0,50 85,20

0,08 28,0 8,48 510 0,16 43,10

jul/07 A

0,38 29,0 7,15 576 0,35 41,70

0,56 28,0 6,97 567 0,25 103,10

0,40 27,0 7,63 443 0,40 40,60

ago/07 A

0,70 27,0 6,98 542 0,50 73,30

0,53 26,0 7,01 553 0,53 146,40

0,32 25,5 7,48 463 0,32 35,00

Máx

1,00 33,0 8,48 655 1,00 146,40

Min

0,08 25,0 6,97 115 0,10 9,10

Méd

0,46 28,2 7,39 498 0,38 59,70

0,26 2,5 0,43 125 0,25 36,80

A profundidade do local de coleta no rio Cachoeira variou de 8 centímetros a 1 metro,

considerando os três pontos amostrais. O ponto A foi o que apresentou, em média, a menor

profundidade local (0,43 ± 0,21 m); os pontos B e C os valores observados foram pouco mais

elevados (0,48 ± 0,31 m e 0,47 ± 0,30 m, respectivamente) (Tabela 02).

A temperatura da água variou de 25º a 33ºC, com pouca variação entre os pontos

amostrados: A (27,8 ± 2,7º C); e B e C (28,4 ± 2,5º e 28,5 ± 2,8º C, respectivamente) (Tabela

02).

O pH apresentou valores que variaram entre 6,97 e 8,48. O ponto C apresentou os

maiores valores de pH (7,87 ± 0,50), enquanto os pontos A e B apresentaram valores muito

similares desta variável (7,20 ± 0,18 e 7,13 ± 0,14, respectivamente) (Tabela 02).

A condutividade elétrica apresentou valores elevados durante todo o período

analisado, variando entre 115 e 655 (µS/cm). O ponto C exibiu as menores concentrações de

sais (404 ± 163,5 µS/cm), já os pontos A e B apresentaram concentrações elevadas, porém

similares entre si (542 ± 93,3 e 533 ± 86,2 µS/cm, respectivamente) (Tabela 02).

A transparência da água registrada durante o período de estudo variou de 10

centímetros a 1 metro. No ponto A foram observadas as menores transparências na coluna de

água (0,27 ± 0,15 m), enquanto nos pontos B e C os valores foram muito similares (0,43 ±

0,32 e 0,46 ± 0,25 m, respectivamente) (Tabela 02).

A biomassa primária estimada através da concentração de clorofila-a variou de 9,08 a

146,3 mg/L. O ponto B apresentou os maiores valores de clorofila-a (89,98 ± 44,45 mg/L),

seguido pelo ponto A (48,53 ± 23,70 mg/L) e C (36,89 ± 6,82 mg/L) (Tabela 02).

O resultado da Análise de Componentes Principais (ACP) para os dados ambientais

extraiu dois eixos que explicaram 77,5% da variabilidade total dos dados. O primeiro eixo

explicou 51,4% da variabilidade dos dados e o segundo, 26,1%.

As variáveis ambientais que apresentaram correlações significativas com o eixo I

foram: vazão fluviométrica do rio (0,844*) e pluviometria (0,125*) positivamente

correlacionadas com este eixo; e clorofila-a (-0,403*), transparência da água (-0,241*) e

profundidade (-0,209*), negativamente correlacionadas. O eixo II foi formado, no lado

positivo, pela profundidade (0,702*), transparência (0,488*), vazão (0,431*) e clorofila–a

(0,242*) e, no lado negativo, pelo pH (-0,137*).

Em relação à dispersão dos pontos amostrais no plano fatorial I-II (Figura 8), observa-

se que as amostras referentes ao período de maior vazão do rio estão concentradas no lado

positivo do eixo I, e aquelas do período de menor vazão, no lado negativo deste mesmo eixo;

portanto, este eixo representa a vazão fluvial. Os mesmos pontos amostrados foram ordenados

na vertical (eixo II) em função da profundidade do local de coleta, transparência da água e da

clorofila; assim, este eixo parece refletir o efeito combinado do represamento da água e da

eutrofização. Este efeito pode ser observado através da localização vertical dos pontos A, B e

C nos meses de maior e menor vazão. O ponto C, não represado, apresentou as maiores

variações na profundidade local ao longo do período estudado, valores mais baixos no período

de menor vazão e elevados no período de maior vazão, além das menores concentrações de

clorofila-a; enquanto os pontos A e B (represados) apresentaram menores variações na

profundidade, alternando-se ao longo dos meses de coleta e, com relação à eutrofização, o

ponto B apresentou concentrações de clorofila-a sempre mais elevadas do que as do ponto A,

para todo o período de estudo.

Figura 8: Distribuição dos pontos amostrais da análise em componentes principais no plano fatorial I-II, em

função das variáveis ambientais. Os autovetores representados pelas setas (Prof.: Profundidade do local

de coleta, pH: pH, Temp: Temperatura da água, Cond: Condutividade elétrica, Pluv: Pluviometria,

Transp: Transparência da água, Vazão: Vazão fluviométrica e Chl: Clorofila-a).

5..2 Assembléias de Amebas Testáceas

Composição da Assembléia

Um total de 115 espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de Eichhornia

crassipes foram encontradas no rio Cachoeira, durante este estudo (Apêndice 01). A

estimativa de riqueza calculada (n= 51 amostras) utilizando o estimador Jackknife foi de 131

± 6 espécies. Os valores de riqueza estimados são próximos ao observado para o rio

Cachoeira.

Os 115 taxa de amebas testáceas inventariados pertencem a 10 famílias, 14 gêneros,

96 espécies e 19 variedades. As famílias com os maiores números de espécies foram

Difflugidae (42 taxa), Arcellidae (21 taxa), Centropyxidae (14 taxa), Euglyphidae e

Lesquereusiidae (11 taxa cada) e Cryptodifflugiidae (7 taxa) (Apêndice 1).

Nos meses de maior vazão (novembro/2006 a janeiro/2007) foram registrados 105

taxa de amebas e as famílias mais representadas foram Difflugidae (36,2%), Arcellidae

(18,1%) e Centropyxidae (13,3%) (Tabela 03). Neste período, o ponto C apresentou maior

riqueza de espécies (87 taxa), seguido pelo A (83 taxa) e pelo B (82 taxa) (Tabela 04).

Tabela 03: Proporção das espécies de amebas testáceas por família nos períodos de maior (novembro/2006 a

janeiro/2007) e menor (junho a julho/2007) vazão do rio Cachoeira – BA.

Maior vazão Menor vazão

Família

Nº spp. % Nº spp. %

Arcellidae 19 18.1 20 22.2

Centropyxidae 14 13.3 11 12.2

Trigonopyxidae 3 2.9 2 2.2

Cyphoderiidae 1 1.0 0 0.0

Difflugidae 38 36.2 35 38.9

Cryptodifflugiidae 7 6.7 3 3.3

Euglyphidae 8 7.6 9 10.0

Lesquereusiidae 10 9.5 9 10.0

Hyalospheniidae 2 1.9 0 0.0

Trinematiidae 3 2.9 1 1.1

Total 105 90

Tabela 04: Distribuição das espécies de amebas testáceas por família nos pontos A, B e C, no período de maior

(novembro/2006 a janeiro de 2007) e menor (junho a agosto/2007) vazão do rio Cachoeira - BA.

Maior vazão Menor vazão

Família

A B C A B C

Arcellidae 16 15 16 14 15 17

Centropyxidae 12 10 12 7 9 9

Trigonopyxidae 2 3 2 1 2 1

Cyphoderiidae 0 0 1 0 0 0

Difflugidae 33 31 32 27 26 25

Cryptodifflugiidae 5 7 6 1 2 2

Euglyphidae 6 7 7 6 7 6

Lesquereusiidae 8 7 6 7 6 5

Hyalospheniidae 0 0 2 0 0 0

Trinematiidae 1 2 3 1 1 1

Total 83 82 87 64 68 66

O período de menor vazão do rio (junho a agosto de 2007), por sua vez, apresentou um

menor número de espécies, sendo inventariados 90 taxa. As famílias Difflugidae (38,9%),

Arcellidae (22,2%), Centropyxidae (12,2%), Euglyphidae e Lesquereusiidae (10% cada)

foram as mais representadas (Tabela 03). Para este período, o ponto B apresentou maior

riqueza de espécies (68 taxa), seguido pelo C (66 taxa) e pelo A (64 taxa) (Tabela 04).

Considerando a Freqüência de Ocorrência dos taxa registrados por ponto de coleta

para todo o período de estudo (Apêndice 02), percebe-se que cerca de 35% das espécies são

constantes, 22% esporádicas e 43% comuns. Espécies como Centropyxis aculeata, C. hirsuta,

Difflugia gramen, D. lobostoma e D. schuurmani ocorreram com mais de 50% de freqüência

em cada ponto durante todo o período de estudo.

Os taxa Arcella nordestina, Centropyxis marsupiformis, C. constricta, C. orbicularis,

Cyclopyxis sp., Cyphoderia ampulla, Curcubitella mespiliformis, Difllugia bacilifera, D.

bicornis, D. brevicola, D. difficilis, D. gramen caudata, Difflugiella angusta, D. crenulata, D.

horrida, D. patinata, Euglypha ciliata, E. cristata, Lesquereusia gibbosa, L. modesta caudata,

Nebela lageniformis, N. tubulosa, Trinema complanatum e T. lineare ocorreram apenas no

período de maior vazão do rio (Apêndice 3). Neste período, as espécies Difflugia bicornis e

Lesquereusia gibbosa ocorreram exclusivamente no ponto A, Euglypha ciliata no ponto B e

Cyphoderia ampulla, Euglypha cristata, Nebela tubulosa e N. lageniformis no ponto C.

Para o período de menor vazão fluvial, taxa como Arcella sp., A. arenaria, A.

polypora, Difflugia corona ecornis, D. elegans teres, D. lobostoma cornuta,

Protocurcubitella coriniformis, Euglypha cristata major, E. filifera magna, E. mucronata e

Lesquereusia sp. foram exclusivos deste período (Apêndice 3). A espécie Euglypha filifera

magna ocorreu apenas no ponto A e Arcella arenaria e Difflugia elegans teres no ponto C

(Apêndice 03).

Densidade

A densidade das amebas testáceas associada as rizosferas de Eichhornia crassipes, no

rio Cachoeira, variou de 657 a 41.252 indivíduos por grama de peso seco de raiz. Em média,

as maiores densidades foram observadas no ponto B (12.618 ± 14.574 ind/gPS), seguidos

pelos pontos A (8.328 ± 4.399 ind/gPS) e C (3.885 ± 2.949 ind/gPS) (Apêndice 04).

Considerando os dados de densidade médias das espécies das amebas testáceas nos

pontos A, B e C, agrupados por período hidrológico observa-se que para o período de maior

vazão do rio, as densidades foram sempre inferiores às observadas no de menor vazão (Figura

09).

Figura 09: Densidade média (indv./gPS) das amebas testáceas associadas a rizosfera de E. crassipes por ponto

de coleta, para os períodos hidrológicos de maior (novembro de 2006 a janeiro de 2007) e menor

(junho a agosto de 2007) vazão do rio Cachoeira – BA. O numero 1 refere-se ao período de maior

vazão e o 2 representa o período de menor vazão fluviométrica.

O resultado da análise de variância (Two way) comparando os dados de densidades

das espécies ao longo dos períodos hidrológicos mostrou que houve diferença significativa

entre as densidades em função dos períodos de maior e menor vazão do rio (p= 0,04).

Entretanto, entre os pontos amostrais, apesar de o ponto B (em ambos os períodos) ter

apresentado as maiores densidades de organismos e o ponto C, as menores, as diferenças

observadas nas densidades das amebas testáceas não foram significativas (p > 0,05) (Tabela

05).

Tabela 05: Resultado da Análise de Variância para os dados de densidade (indv./gPS) das amebas testáceas

associadas a rizosfera de E. crassipes registradas no período de maior (novembro de 2006 a janeiro de

2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão do rio Cachoeira - BA.

Fonte da variação SQ gl MQ F valor-P F crítico

Períodos 17,487 1 17,487 4,845 0,048 4,747

Pontos 19,161 2 9,580 2,654 0,111 3,885

Pontos e Períodos 6,164 2 3,082 0,854 0,450 3,885

Erro 43,312 12 3,609

Total 86,123 17

As espécies mais abundantes no ponto A variaram ao longo dos meses amostrados:

Centropyxis aculeata e Difflugia schuurmani alternaram-se em abundância em novembro e

dezembro de 2006; Difflugia gramen foi mais representada em janeiro e junho de 2007;

Arcella discoides pseudovulgaris e Centropyxis hirsuta em julho de 2007; e Centropyxis

aculeata e Arcella hemisphaerica undulata em agosto de 2007 (Apêndice 04).

No ponto B as espécies Difflugia schuurmani, Centropyxis aculeata e Arcella

discoides foram as mais abundantes em novembro de 2006; em dezembro, D. schuurmani

continuou sendo a mais abundante, seguida por Arcella hemisphaerica; em janeiro de 2007,

Difflugia gramen e Difflugiella oviformis foram numericamente mais representadas; em

junho, Difflugia angulostoma e Arcella discoides pseudovulgaris; em julho, Arcella

hemisphaerica undulata e Euglypha acanthophora; e em agosto, A. discoides pseudovulgaris,

C. aculeata e E. acanthophora (Apêndice 04).

As maiores variações na dominância das espécies foram observadas no ponto C. Em

dezembro de 2006, Centropyxis platystoma e Difflugia schuurmani foram as espécies melhor

representadas; em janeiro de 2007, Difflugiella oviformis e Difflugia gramen predominaram

numericamente; em junho, Centropyxis aculeata e C. hirsuta foram as mais abundantes; em

julho, C. hirsuta e Arcella lobostoma; e em agosto de 2007, C. hirsuta, Arcella discoides

pseudovulgaris e C. aculeata (Apêndice 04).

No que se refere às espécies mais abundantes por ponto de coleta e por período

hidrológico (Figura 10), percebe-se que para o período de maior vazão do rio, as espécies

mais abundantes foram Centropyxis aculeata e Difflugia schuurmani. Para o período de

menor vazão, C. aculeata e Arcella discoides pseudovulgaris foram abundantes em todo o

período, exceto no ponto B, onde Arcella hemiphaerica undulata e Euglypha acanthophora

possuíram maiores densidades do que estas duas espécies. No ponto C, Centropyxis hirsuta

quase se igualou em abundância relativa às duas espécies já citadas.

Figura 10: Espécies mais abundantes de amebas testáceas associadas à rizosfera de E. crassipes por ponto de

coleta, para os períodos de maior e menor vazão do rio Cachoeira - BA.

Biomassa

A biomassa das amebas testáceas, em termos de carbono, associada as rizosferas de

Eichhornia crassipes variou de 63 a 11.556 µgC/gPS. Em média, as maiores biomassas das

amebas (3.938,51 ± 4.639,12 µgC/gPS) foram registradas no ponto A, seguida pelos pontos B

(2.785,67 ± 2.270,19 µgC/gPS) e C (1.285,25 ± 2.431,21 µgC/gPS) (Apêndice 05).

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100%

Ponto A Ponto B Ponto C Ponto A Ponto B Ponto C

Maior vazão Menor vazão

Densidade relativa

Euglypha acanthophora

Difflugia lobostoma

Difflugia schuurmani

Difflugia gramen

Difflugia angulostoma

Centropyxis platystoma

Centropyxis hirsuta

Centropyxis aculeata

Arcella vulgaris

Arcella hemisphaerica undulata

Arcella hemisphaerica

Arcella gibbosa

Arcella discoides pseudovulgaris

Arcella discoides

Outras

Os dados de biomassa das amebas testáceas nos pontos A, B e C, agrupados por

períodos hidrológicos são apresentados na Figura 11. A mesma tendência observada para os

dados de densidade, foi repetida em termos de biomassa, com valores mais elevados no

período de menor vazão. Novamente, o ponto C apresentou os menores valores e o ponto A,

os maiores valores de biomassa, em ambos os períodos.

Figura 11: Biomassa (µgC/gPS) das amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes por ponto de

coleta, para os períodos hidrológicos de maior (novembro de 2006 a janeiro de 2007) e menor (junho

a agosto de 2007) vazão do rio Cachoeira – BA. O número 1 refere-se ao período de maior vazão e o

2, representa o período de menor vazão fluviométrica.

O resultado da análise de variância (Two way) comparando os dados de biomassa das

espécies nos dois períodos hidrológicos mostrou que as diferenças observadas nas biomassas

nos períodos de maior e menor vazão do rio, estão no limite de significância (p= 0,05) (Tabela

06). As diferenças observadas entre os pontos amostrais também estão no limite de

significância (p= 0,049).

Biomassa (

gC/gPS)

Tabela 06: Resultado da Análise de Variância para os dados de biomassa (µgC/gPS) das amebas testáceas

associadas as rizosferas de E. crassipes registradas nos períodos de maior (novembro de 2006 a

janeiro de 2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão do rio Cachoeira - BA

Fonte da variação SQ gl MQ F valor-P F crítico

Períodos 16,194 1 16,194 4,695 0,051 4,747

Pontos 26,940 2 13,470 3,905 0,049 3,885

Pontos e Períodos 2,667 2 1,334 0,387 0,688 3,885

Erro 41,391 12 3,449

Total 87,191 17

Dentre os pontos amostrais, aplicou-se um teste Tukey de comparação de médias a

posteriori para verificar quais pontos exibiram diferenças estatísticas significativas, sendo que

a diferença observada entre os pontos B (represado) e C (não-represado) foi significativa

(p<0,05) (Tabela 07).

Tabela 07: Resultado do Teste de Tukey para os dados de biomassa (µgC/gPS) das amebas testáceas associadas

as rizosferas de E. crassipes registradas nos pontos amostrais ao longo do rio Cachoeira - BA.

No ponto A, as espécies que dominaram em biomassa nos primeiros meses de estudo

(novembro de 2006 a janeiro de 2007) foram Centropyxis discoides e Arcella megastoma, que

se alternaram em dominância. No segundo período, nos meses de junho e julho, A.

megastoma e Arcella discoides pseudovulgaris alternaram em dominância, sendo que a

primeira alcançou cerca de 44% da biomassa em junho e, a segunda, cerca de 55% em julho.

Em agosto, Protocurcubitella coroniformis representou a maior biomassa, seguida por Arcella

discoides pseudovulgaris e A. megastoma (Apêndice 05).

O ponto B apresentou Arcella megastoma e A. discoides como as espécies com

maiores biomassas em novembro de 2006; e em dezembro, A. megastoma foi seguida em

biomassa por Centropyxis discoides, Arcella gibbosa mitriformis e A. dentata; em janeiro de

2007, Arcella discoides pseudovulgaris e Difflugia corona ultrapassaram A. megastoma em

biomassa; em junho e julho de 2007, predominaram A. megastoma e A. discoides

Tukey Q (p)

Médias (A e B) 0.5130 ns

Médias (A e C) 3.5909 ns

Médias (B e C) 4.1039 < 0.05

pseudovulgaris; e, em agosto, A. discoides pseudovulgaris foi seguida por C. discoides e D.

corona (Apêndice 05).

No ponto C, a espécie Arcella megastoma foi a que apresentou as maiores biomassas

durante todo o período de estudo; seguida por Arcella discoides pseudovulgaris, que foi a

segunda maior em biomassa, exceto em janeiro de 2006, quando Arcella vulgaris ultrapassou

A. discoides (Apêndice 05).

No que se refere às espécies com maiores biomassas por ponto de coleta, agrupadas

por períodos hidrológicos, percebe-se que, de maneira geral, não houve mudanças nas

espécies mais representadas entre os períodos de maior e menor vazão (Figura 12). Assim,

Arcella discoides pseudovulgaris e Arcella megastoma alternaram em dominância durante

todo o período de estudo, exceto no ponto A, no período de maior vazão, no qual a biomassa

de Centropyxis discoides foi superior à de A. discoides pseudovulgaris.

Figura 12: Espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes com maiores biomassas por

ponto de coleta, para os períodos hidrológicos de maior e menor vazão do rio Cachoeira - BA.

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100%

Ponto A Ponto B Ponto C Ponto A Ponto B Ponto C

Maior vazão Menor vazão

Biomassa relativa

Protocurcubitella coriniformis

Difflugia oblonga

Difflugia gramen

Difflugia corona

Centropyxis discoides

Arcella vulgaris

Arcella megastoma

Arcella discoides pseudovulgaris

Arcella discoides

Outras

5.3 Estrutura das assembléias de amebas testáceas

A Tabela 08 apresenta os valores dos índices e estimativas de diversidade, analisados

por ponto amostral para os períodos de maior e menor vazão do rio Cachoeira.

A riqueza de espécies de amebas testáceas apresentou valores um pouco mais elevados

no período de maior vazão quando comparados aos de menor vazão. Considerando os pontos

amostrais, os valores médios mais elevados (todo o período de estudo) foram encontrados no

ponto C, ambiente mais lótico, seguidos pelos pontos B e A (Tabela 08).

Tabela 08: Índices Ecológicos da assembléia de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes por

ponto amostral e por período hidrológico (maior e menor vazão) do rio Cachoeira - BA.

Maior vazão Menor vazão

Índices Ecológicos

Ponto A

Ponto B

Ponto C

Ponto A

Ponto B

Ponto C

Riqueza (Número de espécies) 83 82 87 64 68 66

Diversidade Shannon -Wiener 3,33 3,54 3,88 3,19 3,21 3,47

Equabilidade 0,75 0,80 0,87 0,77 0.76 0,83

Os valores de diversidade específica de Shannon-Wiener (H’) apresentaram o mesmo

padrão de variação temporal detectado acima, sendo que os maiores valores foram registrados

no período de maior vazão e os menores, no de menor vazão do rio. Espacialmente, o ponto C

apresentou maior diversidade de espécies, seguido pelos pontos B e A (Tabela 10).

Os valores de equabilidade (J) mostram uma menor dominância de espécies no

ambiente lótico (Ponto C), ou seja, uma distribuição mais uniforme dos indivíduos por

espécie.

Em resumo, a análise dos índices ecológicos da assembléia de amebas testáceas

associadas a E. crassipes do rio Cachoeira, revelou: (i) que os maiores valores de riqueza,

diversidade e equabilidade foram observados no ponto C, quando comparados aos outros

pontos amostrais; (ii) que a maior riqueza, diversidade e equabilidade de espécies foram

observadas no período de maior vazão do rio Cachoeira. Contudo, as diferenças observadas

nos valores de riqueza e diversidade, entre os pontos amostrados e entre os períodos de maior

e menor vazão, não foram estatisticamente significativas (p> 0,05) (Tabelas 09 e 10).

Tabela 09: Resultado da Análise de Variância para os dados de riqueza de espécies de amebas testáceas

associadas as rizosferas de E. crassipes, por período de maior (novembro de 2006 a janeiro de 2007)

e menor (junho a agosto de 2007) vazão e por ponto de coleta no rio Cachoeira - BA.

Tabela 10: Resultado da Análise de Variância para os dados de diversidades de espécies de amebas testáceas

associadas as rizosferas de E. crassipes, por período de maior (novembro de 2006 a janeiro de 2007)

e menor (junho a agosto de 2007) vazão e por ponto de coleta no rio Cachoeira - BA.

Fonte da variação SQ gl MQ F valor-P F crítico

Períodos 0,900 1 0,900 1,302 0,276 4,747

Pontos 2,408 2 1,204 1,742 0,217 3,885

Pontos e Períodos 2,668 2 1,334 1,930 0,188 3,885

Erro 8,295 12 0,691

Total 14,271 17

As curvas de dominância de Whittaker Plot demonstram que há uma pequena

dominância de espécies nos pontos amostrados entre os períodos de maior e menor vazão

(Figura 13). Deste modo, verificou-se que a estrutura das assembléias das amebas testáceas no

rio Cachoeira apresentou um padrão similar em ambos os períodos amostrais e em todos os

pontos estudados, sendo formadas principalmente pelas espécies raras.

Fonte da variação SQ gl MQ F valor-P F crítico

Períodos 0,091 1 0,091 0,092 0,767 4,747

Pontos 1,791 2 0,896 0,903 0,431 3,885

Pontos e Períodos 1,360 2 0,680 0,686 0,522 3,885

Erro 11,897 12 0,991

Total 15,139 17

Figura 13: Curvas de Dominância (Whittaker plot) para as espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas

de E. crassipes no rio Cachoeira, BA; A - Período de maior vazão e B - Período de menor vazão fluviométrica.

0,02

0,04

0,06

0,08

0,1

0,12

0,14

0,16

0,18

0,2

1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 31 33 35 37 39 41 43 45 47 49 51 53 55 57 59 61 63 65 67 69 71 73 75 77

Espécies por ordem de importância

Abundância relativa

A B C

0,02

0,04

0,06

0,08

0,1

0,12

0,14

0,16

0,18

0,2

1 4 7 10 13 16 19 22 25 28 31 34 37 40 43 46 49 52 55 58 61 64 67 70 73 76 79 82 85 88

Espécies por ordem de abundância

Abundância relativa

A B C

Similaridades entre os pontos e os períodos amostrais

A análise da similaridade, através do coeficiente de Sørensen (dados qualitativos)

indicou que houve 82% de similaridade entre as assembléias das amebas testáceas presentes

no rio Cachoeira entre os períodos de maior e menor vazão do rio. Contudo, considerando os

dados quantitativos (Índice de Morisita-Horn), a similaridade entre tais assembléias foi de

56,3 %.

Considerando o coeficiente de similaridade de Sørensen para as assembléias de

amebas por ponto amostral e por períodos de maior e menor vazão (Tabela 11), observou-se

que o ponto C foi o que apresentou menor similaridade entre os dois períodos (68%).

Entretanto, quando os dados quantitativos foram considerados, o índice de similaridade de

Morisita – Horn (Figura 14) agrupou os pontos amostrais em 8 grupos, sendo o Grupo I

composto pela amostra do ponto C em julho, o II pelas amostras obtidas no mês de julho e

agosto (período de menor vazão), III amostra coletada no ponto C em dezembro, IV amostras

dos pontos A e B em junho, V amostras dos três pontos coletadas em janeiro (período de

maior vazão), VI amostras dos pontos A e B obtidas em dezembro e o agrupamento VII

envolve as amostras dos pontos A e B obtidas em novembro de 2006.

Assim, a análise de cluster agrupou os pontos em função das densidades das espécies

de tecamebas, que foi influenciada pela variação da vazão fluviométrica.

Tabela 11: Coeficiente de Similaridade de Sørensen, por ponto amostral, para as assembléias de amebas

testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes no rio Cachoeira - BA.

Menor vazão

Maior vazão

A B C

A 0.707

0.755 0.711

0.726

0.733

0.689

0.675 0.71

0.68

Figura 14: Análise de cluster dos pontos amostrais em função da densidade das amebas testáceas associadas as

rizosferas de E. crassipes no rio Cachoeira - BA. Os números 1, 2, 3, 4, 5 e 6 referem-se aos meses de

coleta (novembro, dezembro de 2006, janeiro, junho, julho e agosto de 2007, respectivamente).

5.4 Influência dos fatores ambientais sobre as assembléias das amebas testáceas

Os resultados das análises de correlação de Pearson entre os fatores ambientais e os

dados de densidade, biomassa, riqueza e diversidade das amebas testáceas (Tabela 12)

mostraram que a biomassa das amebas testáceas esteve positivamente correlacionada com

densidade das amebas (r= 0,51; p= 0,0348) e com a biomassa fitoplanctônica, estimada pela

concentração de clorofila-a, (r= 0,5; p= 0,0245); a densidade das amebas testáceas esteve

negativamente correlacionada com a vazão do rio (r= -0,53; p= 0,0273). A riqueza de espécies

esteve negativamente correlacionada com a condutividade elétrica (r=-0,54; p=0,0252)

(Tabela 12).

0,4 0,5 0,6 0,7 0,8 0,9 1

Média não ponderada (UPGMA)

III

VII

Índice de similaridade de Morisita-Horn

Tabela 12: Matriz de correlação entre as variáveis ambientais e a estrutura das assembléias de amebas testáceas

associadas a rizosfera de E. crassipes no rio Cachoeira - BA. (Prof: Profundidade do local de coleta,

Temp: Temperatura da água, pH: pH, Cond: Condutividade elétrica, Transp: Transparência da água,

Chl: Clorofila – a, Dens.: Densidade das tecamebas, Biom: Biomassa das amebas testáceas, Vazão:

Vazão fluviométrica, Pluv: Pluviometria, H’: Diversidade e S: Riqueza). Valores em negritos são as

correlações que foram significativas (p<0,05).

Entre as variáveis ambientais, houve correlações positivas entre a profundidade e a

transparência da água (r= 0,5697; p= 0,0169), temperatura e vazão fluviométrica do rio (r=

0,4873; p= 0,0472), transparência e clorofila-a (r= 0,5222; p= 0,0315), vazão do rio e

pluviometria (r= 0,9170; p< 0,0001) e, negativas, entre a clorofila-a e a vazão do rio (r= -

0,5349; p= 0,0269) e clorofila-a e a pluviometria (r= -0,674; p= 0,003).

O resultado da Análise de Componentes Principais (ACP) para os dados de densidade,

biomassa, riqueza e diversidade das amebas testáceas e as variáveis ambientais extraiu três

eixos que explicam 85,7% da variabilidade total dos dados. O primeiro eixo explica 50,9%, o

segundo 18,2% e o terceiro 16,6% da variabilidade dos dados.

As variáveis que apresentaram correlações significativas com o eixo I foram:

biomassa, densidade das amebas testáceas e clorofila-a, positivamente correlacionadas com

este eixo; e vazão fluviométrica, negativamente correlacionada. O eixo II foi formado no lado

positivo pela vazão fluvial, biomassa das tecamebas, pluviometria e, no lado negativo, pela

profundidade do local de coleta, transparência da água, clorofila-a e a diversidade de amebas.

O eixo III, por sua vez, foi formado pelas variáveis: transparência da água, vazão

fluviométrica, biomassa das tecamebas, profundidade e clorofila-a em seu lado positivo, e

pela densidade das amebas testáceas, em seu lado negativo (Tabela 13).

Variáveis Prof.

Temp.

pH Cond.

Transp.

Clor - a

Dens.

Biom.

Vazão

Pluv.

H' S

Profundidade

1,00

Temperatura

0,31

1,00

-0,34 0,12

1,00

Condutividade

-0,14 -0,24 -0,06

1,00

Transparência

0,57

-0,03 0,02 -0,09

1,00

Clorofila - a

0,42 -0,32 -0,36

0,35

0,52 1,00

Densidade

-0,23 -0,41 -0,45

0,21 -0,44 0,27

1,00

Biomassa

-0,13 -0,30 -0,33

0,34 0,14

0,58 0,51 1,00

Vazão

-0,08

0,49

0,04 -0,15 -0,20

-0,54 -0,53

-0,33

1,00

Pluviometria

-0,30 0,38 -0,04

-0,21 -0,44

-0,67

-0,31 -0,32

0,92 1,00

Diversidade

0,30 0,24 0,36 -0,36 0,41 0,27 -0,42 -0,22 -0,06 -0,23

1,00

Riqueza

0,12 0,40 -0,02

-0,52

0,05 0,05

-0,53

0,01 0,21 0,18 0,73

1,00

Tabela 13: Escores das variáveis obtidos na Análise de Componentes Principais para os dados bióticos da

assembléia de amebas testáceas (densidade, biomassa, riqueza e diversidade) e os dados ambientais.

Valores em negrito indicam correlações significativas.

Variáveis Eixo I Eixo II Eixo III

Profundidade -0,033

-0,426 0,341

Temperatura -0,021 0,008 0,024

pH -0,085 -0,016 -0,028

Condutividade 0,075 0,04 -0,001

Transparência 0,038

-0,337 0,447

Clorofila - a

0,245 -0,272 0,23

Densidade

0,376

0,083

-0,553

Biomassa

0,793 0,37 0,385

Vazão

-0,388 0,676 0,402

Pluviometria -0,05

0,114

0,012

Diversidade -0,035

-0,125

0,098

Riqueza -0,013 0,014 0,071

Em relação à dispersão dos pontos amostrais no plano fatorial I-II (Figura 15),

observa-se que as amostras referentes ao ponto C (não represado) estão concentradas no

terceiro quadrante (lados negativos do eixo I e II), exceto o ponto C4 que apresentou elevados

valores de biomassa e densidade; enquanto as amostras referentes dos pontos represados (A e

B) estão dispersas no primeiro, segundo e quarto quadrantes. Os pontos amostrais

concentrados no lado positivos do eixo I, são principalmente aqueles referentes aos pontos A

e B (represados) nos meses de menor vazão do rio (pontos = 4, 5 e 6, referentes aos meses de

junho, julho e agosto, respectivamente), que apresentaram valores mais elevados de biomassa

e densidade. Portanto, o eixo I parece representar o efeito do represamento e da eutrofização

sobre a biomassa das amebas testáceas. O eixo II parece refletir a influência da vazão fluvial

sobre o estado trófico do rio, negativamente correlacionados. Os pontos A1 e B1 (A e B =

pontos represados; 1 = mês de novembro) apesar de represados, apresentaram baixas

concentrações de clorofila-a na água decorrente da elevada vazão do rio em novembro,

diluindo o seu estado trófico. O eixo III, não apresentado, sugere o efeito da vazão do rio

sobre a densidade das amebas testáceas, também negativamente correlacionados. As maiores

densidades de amebas testáceas foram registradas nos pontos amostrados no período de menor

vazão do rio, que pode ser inferido através da distribuição dos pontos no plano fatorial I-III

(não apresentado).

Figura 15: Distribuição dos pontos amostrais no plano fatorial I-II da Análise de Componentes Principais das

variáveis bióticas das assembléias de amebas testáceas e as das variáveis ambientais.

Pontos amostrais: A, B (pontos represados) e C (não represado). Os números são referentes aos meses

de estudo (1= novembro/2006; 2= dezembro/2006; 3= janeiro/2007; 4= junho/2007; 5= julho/2007 e

6= agosto/2007).

Vetores: Prof= Profundidade do local de coleta; pH= pH; Temp= Temperatura da água; Cond=

Condutividade elétrica; Pluv= Pluviometria; Transp= Transparência da água; Vazão= Vazão

fluviométrica; Chl= Clorofila-a; Biom= Biomassa das amebas testáceas; Dens= Densidade das

tecamebas; H’= Diversidade; e S= Riqueza de espécies.

C5 C6

Eixo I

(50,9%)

Eixo II (18,2%)

Nãorepresados

Represados

6. DISCUSSÃO

A qualidade das águas fluviais resulta, em parte, do ecossistema no qual a bacia

hidrográfica está inserida e, também, das ações intervenientes neste sistema (PINHO, 2001).

Deste modo, as características químicas destas águas são influenciadas pela composição das

águas da chuva que caem na área de drenagem, das formações geológicas, e das reações que

ocorrem entre a água e o solo (e/ou sedimentos orgânicos e inorgânicos) durante o seu

escoamento. Por outro lado, ações antrópicas como o uso de pesticidas, insumos agrícolas, os

despejos de efluentes não tratados e de lixo agravam ainda mais a qualidade das águas, sendo

tais impactos freqüentes na bacia hidrográfica do rio Cachoeira (KLUMPP et al, 2002;

SCHIAVETTI et al., 2005). Assim, as águas do rio Cachoeira representam a síntese do que

ocorre ao longo de sua bacia hidrográfica, refletindo, portanto, as condições ambientais da

região como um todo, uma vez que toda a água desta bacia converge para este rio.

Dentre as variáveis climatológicas, a precipitação tem papel fundamental na vazão dos

rios. Quando a precipitação torna-se maior, a vazão do rio tende a crescer, promovendo uma

maior diluição dos efluentes domésticos e industriais, levando a uma diminuição da

intensidade da poluição nos sistemas naturais. Para Branco (1986), todas as variações nas

condições hidrológicas e climáticas produzem flutuações nas características das águas.

Os dados pretéritos de vazão fluvial do rio Cachoeira nos últimos trinta anos,

demonstram a existência de dois períodos distintos de vazão ao longo do ano para esta região

(Figura 6). O período de estudo não diferiu dos anos anteriores, já que os maiores

escoamentos ocorreram nos meses de novembro a dezembro, dentro do período compreendido

de novembro a abril e os menores, de junho a agosto, também compreendido no período de

menor vazão histórico, de maio a outubro (Tabela 01).

As temperaturas da água mais elevadas observadas nos meses de verão (novembro,

dezembro e janeiro) na região, coincidem com o período de maior vazão do rio, uma vez que

esta estação do ano é caracterizada pelas elevadas temperaturas e pluviosidades.

O pH no rio Cachoeira varia de neutro a básico. Segundo Sandes (1990), os ambientes

aquáticos que não sofrem grandes variações de pH (entre 7 e 8) são sistemas em equilíbrio,

onde há o predomínio dos íons bicarbonatos, principal mecanismo de tamponamento das

águas doces.

Segundo Esteves (1998), há uma estreita interdependência entre as comunidades

aquáticas e o pH. As comunidades interferem no pH, através dos processos metabólicos, tais

como a produção primária e a respiração, assim como o pH interfere de diferentes maneiras

no metabolismo destas comunidades, como nos processos de permeabilidade da membrana

celular, interferindo no transporte iônico intra e extracelular assim como entre os organismos

e o meio.

A bacia hidrográfica do rio Cachoeira, em especial, apresenta elevados valores de

condutividade em suas águas, variando de 200 µS/cm a 1.400 µS/cm (PINHO, 2001;

SCHIAVETTI et al., 2005). Os valores encontrados neste trabalho, dentro da faixa de 115

µS/cm a 655 µS/cm, apesar de elevados, estão de acordo com o observado preteritamente para

a região. Estes elevados valores refletem as características geológicas do solo no qual a bacia

está inserida, onde na sua porção média existem registros de solos do tipo brunizem, os quais

apresentam grande capacidade de troca catiônica, carreando assim grandes quantidades de

sais para o sistema (NACIF, 2000 apud SCHIAVETTI et al., 2005). Além disto, devem-se

considerar as contribuições oriundas do rio Salgado, que desemboca no rio Cachoeira e que

apresenta valores de condutividades extremamente elevados, e dos despejos de esgotos

freqüentes na região (PINHO, 2001; SCHIAVETTI et al., 2005). Locais onde são lançados

poluentes orgânicos apresentam elevadas concentrações de sais e, ao longo do rio, estas

concentrações vão decrescendo suavemente até atingir valores normais para a região

(HYNES, 1971).

Normalmente os ecossistemas aquáticos tropicais são muito turvos em terrenos

geologicamente recentes, devido ao arrasto de matéria proporcionado pela alta lixiviação que

ocorre principalmente no período das chuvas. O período de chuvas coincidiu com os menores

registros de transparência das águas do rio Cachoeira. Comparando-se os pontos amostrados,

o ponto C apresentou a água mais transparente, e isto pode estar ligado ao represamento

localizado a montante deste ponto, que pode estar funcionando como armadilha de sedimentos

e nutrientes, retendo-os a montante do represamento. Situações semelhantes foram relatadas

por Agostinho et al. (2005) em outros sistemas aquáticos brasileiros.

Concentrações de clorofila-a superiores a 10 mg/L registradas em todo o período de

estudo, sugerem que o rio Cachoeira tem características de ambiente eutrófico, segundo a

classificação proposta por Wetzel et al. (2001). Os maiores teores de clorofila-a foram

observados nos pontos B e A, a montante do represamento, mostrando claramente o papel

eutrofizante do represamento, fazendo com que haja uma diminuição no fluxo e um aumento

no tempo de resiliência da água e dos nutrientes, e consequentemente o aumento da biomassa

fitoplanctônica.

Klumpp et al. (2002) estudaram as variações de nutrientes e metais pesados em

macrófitas aquáticas (Pistia stratiotes e Eichhornia crassipes) em sete pontos amostrais no

Rio Cachoeira. Estes autores encontraram elevadas concentrações de metais pesados (Cobre,

Alumínio e Cromo) e nutrientes (Nitrogênio e Fósforo) nos tecidos vegetais das macrófitas e

principalmente nas raízes de E. crassipes. Foram também detectados aumentos expressivos

nas concentrações de N e P na água e nos tecidos vegetais, principalmente nos pontos após a

cidade de Itabuna. Os acréscimos de metais pesados e a eutrofização do rio Cachoeira são

oriundos de resíduos da agricultura, indústria e dos efluentes urbanos da região. A intensa

proliferação de E. crassipes diagnosticada atualmente no rio Cachoeira, acompanhada pelo

forte odor observado durante as coletas, fornecem subsídios sobre o grau de eutrofização a

que este corpo aquático está submetido.

A análise de componentes principais revelou que a vazão fluviométrica do rio foi a

principal responsável pela diferenciação dos pontos amostrais ao longo do gradiente

ambiental, indicando, assim, o efeito da variação do nível fluviométrico sobre as variáveis

ambientais.

Para Junk et al. (1989) o pulso de inundação é a maior força controladora da biota em

sistemas rio-planície de inundação, pois possibilita um maior intercâmbio entre a planície de

inundação e o canal principal do rio, influenciando assim na ciclagem de nutrientes e tendo

impacto direto na biota. Em regiões tropicais, as áreas alagáveis dos rios, principalmente nos

de pequeno porte, são de grande importância por incorporarem grande parte da matéria

orgânica particulada fina, degradada por organismos terrestres, no período de pulso (cheias).

A conexão lateral hidrológica e a dinâmica do fluxo e refluxo hídricos geram um aporte

dinâmico de nutrientes e matéria orgânica viva ou morta, que determina as conexões e as

características dos habitats existentes e suas respectivas condições tróficas. A disrupção destas

trocas laterais complexas de água e materiais altera profundamente os sub-componentes

ecossistêmicos envolvidos, com conseqüências nas populações de diversas espécies (JUNK et

al., 1989). Deste modo, a dinâmica de cheia e seca é crucial para a estruturação dos habitats.

O segundo fator responsável pela explicação dos dados ambientais na análise de

componentes principais foi o efeito combinado do represamento e da eutrofização refletido no

eixo II. O represamento a montante do ponto C, fez com que este ponto exibisse os menores

teores de clorofila-a e maiores variações na profundidade do local de coleta quando

comparado com os demais pontos.

O represamento de um segmento fluvial rompe o gradiente longitudinal das condições

ambientais de um rio, produzindo mudanças abruptas. Assim, segundo a teoria da

descontinuidade serial, proposta por Ward e Stanford (1983, 1995), o represamento provoca

mudanças, tanto a jusante como a montante, nos processos bióticos e abióticos do rio. A

barragem interrompe o contínuo fluvial (fragmentação de habitats) alterando a ciclagem de

nutrientes e atuando de forma diferenciada em cada segmento fluvial.

As densidades de amebas testáceas associadas a rizosfera de E. crassipes no rio

Cachoeira variaram de 647 indv./gPS a 41.252 indv./gPS de raiz. Estes valores são maiores do

que os encontrados por Torres (1996) (51 a 9.001 indv./gPS), que estudou as tecamebas

associadas à E. crassipes na represa Lomba do Sabão, no Rio Grande do Sul.

Espacialmente, as maiores densidades e as menores riquezas de amebas foram

registradas nos pontos (B e A), a montante do represamento. Como já mencionado

anteriormente, o represamento acarreta um aumento na eutrofização e uma redução na

velocidade da corrente. Segundo Wellnitz e Poff (2006), a redução no fluxo da corrente pode

influenciar no acúmulo do perifíton, o que poderia explicar as maiores densidades de amebas

observadas nestes dois pontos quando comparados ao ponto C, que exibiu maior riqueza de

espécies.

Segundo CUNICO et al. (2006) e Xu et al. (2005), locais com grandes interferências

antrópicas, tais como influxo de grandes quantidades de poluentes oriundos de despejos de

esgotos e represamentos que alteram a hidrodinâmica do ambiente, exibem comunidades

menos ricas em espécies. Assim, condições de elevado estresse ambiental conduzem a uma

redução no número de espécies e um aumento na densidade daquelas tolerantes a esta

perturbação ambiental.

Temporalmente, as densidades das amebas testáceas observadas nos períodos de maior e

de menor vazão do rio Cachoeira diferiram estatisticamente, sendo registradas as maiores

densidades no período de menor vazão. Este padrão de variação temporal da densidade das

amebas, correlacionado negativamente com a vazão fluviométrica, demonstra claramente o

efeito variação fluviométrica e da eutrofização sobre este atributo da assembléia. Neiff e

Carignan (1997) afirmam que poucos estudos examinaram o efeito do regime hidrológico

sobre a comunidade de invertebrados em planícies de inundação de rios, onde o pulso de

inundação é mais marcante (JUNK et al., 1989; JUNK & WELCOMME, 1990).

No período de maior vazão do rio, a maior quantidade e fluxo de água reduzem a

densidade dos organismos planctônicos, ao mesmo tempo, que carreiam espécies litorâneas de

tributários (córregos), planícies de inundação e macrófitas aquáticas para o meio do canal,

incrementando assim a riqueza de espécies (KOBAYASHI et al., 1998; WARD, 1998;

CARDOSO & MARQUES, 2004; VELHO et al., 2004) e diluindo a carga eutrofizante do rio,

que influi negativamente na densidade das tecamebas (efeito de diluição). Já no período de

menor vazão, a maior quantidade de macrófitas no rio, associada ao aumento da eutrofização

(maior disponibilidade de recursos alimentares), pode estar causando o aumento nas

densidades por incrementar o número de habitat a serem colonizados pelas tecamebas,

fazendo com que as diferenças observadas nos dois períodos fossem significativas.

Embora estes organismos tenham um amplo padrão de tolerância para as variações das

condições existentes na água, flutuações na densidade populacional de protozoários estão

diretamente relacionadas a fatores físicos e químicos. A influência de outros requerimentos

biológicos, tais como alimento, proteção e reprodução, também deve ser considerada

(BARBIERI & ORLANDI, 1989).

Segundo Pereira et al, (2005) a influência dos recursos alimentares (mecanismo bottom-

up) e da predação (mecanismo top-down) sobre a distribuição da abundância das diferentes

comunidades aquáticas, tem sido alvo de diversas pesquisas envolvendo comunidades

microbianas. Os resultados obtidos no presente estudo evidenciaram o predomínio de

mecanismos do tipo bottom-up na determinação da distribuição das abundâncias e biomassas

das tecamebas, visto que o incremento na disponibilidade de nutrientes, determinou um

aumento da biomassa primária (estimada pela clorofila-a) que provavelmente propiciou

condições para o incremento da densidade e biomassa das tecamebas.

Este padrão de variação temporal significativa da densidade das amebas testáceas

também foi detectado por Velho et al. (2004) para as tecamebas planctônicas da planície de

inundação do alto rio Paraná.

A biomassa reflete a quantidade de matéria orgânica viva quantificada em uma

determinada unidade de área. Constitui uma medida para analisar a estrutura de um

ecossistema independente da composição taxonômica (BONECKER et al., 2007).

Os valores de biomassa das tecamebas em termos de carbono apresentaram as mesmas

tendências observadas nas densidades das tecamebas, com valores mais elevados nos pontos

represados (A e B) e valores inferiores no ponto C. A diferença observada nos valores de

biomassa entre os períodos hidrológicos também foi significativa, assim como a encontrada

para a densidade, evidenciando assim o papel do pulso de inundação, represamento e

eutrofização sobre a biomassa da assembléia.

Entretanto, como a biomassa em termos de carbono é calculada com base no volume

celular, as espécies com grandes dimensões celulares, tais como Arcella dentata, A. discoides,

A. discoides pseudovulgaris, A. gibbosa mitriformis, A. megastoma, A. vulgaris, Centropyxis

discoides, Protocurcubitella coroniformis e Difflugia corona, apresentaram uma maior

contribuição relativa em termos de biomassa do que em termos de número de indivíduos. Esta

mesma tendência foi verificada por Gilbert et al. (1998), que encontraram maiores valores de

biomassa de amebas testáceas associadas à Sphagnum na França, onde predominaram as

espécies maiores. Esta maior contribuição em termos de biomassa relativa, das espécies de

grande porte, fez com que não fossem observadas diferenças significativas entre as biomassas

das espécies dominantes de tecamebas, observadas nos dois períodos hidrológicos do rio

Cachoeira diferindo dos resultados de densidade.

Amebas testáceas podem ser consideradas, segundo Deflandre (1953) e Gilbert et al.

(2000), como polífagas, ou seja, se alimentam de vários grupos de organismos,

principalmente de bactérias e microalgas. Em ambientes eutróficos que apresentam grandes

populações de bactérias (em virtude da grande quantidade de matéria orgânica a ser

decomposta) e de microalgas (face ao aumento das concentrações de nutrientes na água,

principalmente N e P), o recurso alimentar é abundante para as tecamebas (BARBIERI &

GODINHO-ORLANDI, 1989), podendo algumas espécies controlar a abundância de

cianobactérias (Microcystis sp.) durante florações algais (NISHIBE et al., 2004). Portanto,

aumentos na concentração da biomassa fitoplanctônica (clorofila-a) podem propiciar

aumentos na biomassa das tecamebas. O que explicaria a correlação positiva significativa

observada entre a biomassa das amebas testáceas e do fitoplâncton observado neste estudo

(Tabela 12), sugerindo indiretamente relações tróficas entre as tecamebas e as algas

perifíticas. Correlações semelhantes foram encontradas por Gilbert et al. (2000).

Espacialmente, considerando os pontos amostrais no rio Cachoeira, também houve

diferença estatística significativa entre os valores de biomassas registrados nos pontos B e C.

Isto provavelmente deve-se ao represamento do rio que potencializa o efeito da eutrofização

sobre as comunidades biológicas. O ponto B é represado, exibindo maiores teores de

clorofila-a e, consequentemente, maiores biomassas das tecamebas, ao passo que o ponto C

não é represado, apresentando, assim, menores teores de clorofila-a e, consequentemente,

menores biomassas das amebas testáceas.

Poucos trabalhos versam sobre a biomassa das amebas testáceas em ambientes aquáticos

continentais. Mitchell et al. (2000) determinaram os padrões de distribuição horizontal de 21

amebas testáceas presentes em Sphagnum magellanicum. Das espécies registradas por estes

autores, apenas duas também foram registradas no rio Cachoeira: Euglypha laevis, que

apresentou biomassa mais elevada no rio Cachoeira; e Euglypha strigosa, que não exibiu

valores muito discrepantes entre os dois estudos, apesar das unidades amostrais serem

diferentes entre ambos os estudos.

No estudo de Gilbert et al. (1998), a biomassa das amebas testáceas constituiu 48% da

biomassa total microbiana registrada em Sphagnum e as amebas estiveram presentes durante

todo o ano. Segundo estes autores, a diversidade de comportamentos tróficos e a capacidade

de se encistar frente às modificações ambientais, conferem a estes protistas a capacidade de

permanecer nos ambientes por longos períodos. Assim, a habilidade de algumas amebas

testáceas em ingerir vários tamanhos e tipos de partículas alimentares (0,2 a 1.000 µm)

representa uma vantagem competitiva para resistir a ambientes impactados (GILBERT et al.,

2000), possibilitando uma maximização na ocupação de nichos tróficos, exibindo, portanto,

uma grande diversidade de espécies.

Em resumo, verificou-se que a abundância (densidade) e a biomassa das espécies de

amebas testáceas variaram ao longo do tempo, tendo sido influenciadas pela variação do nível

fluviométrico e pelo represamento do rio e, consequentemente, pela eutrofização

(disponibilidade de recursos), e que as maiores densidades de tecamebas e biomassas, tanto de

tecamebas quanto fitoplanctônica foram registradas no período de menor vazão. Diversos

estudos demonstram que a estrutura e composição das assembléias de protistas são

significativamente alteradas com o aumento da eutrofização, onde a abundância e biomassa

destes organismos são maiores em ambientes eutróficos quando comparados a ambientes

oligotróficos (BARBIERI & GODINHO-ORLANDI, 1989; MATHES & ARNDT, 1994;

GASOL et al., 1995; JANSSON et al., 1996; HWANG & HEATH, 1997; BURNS &

SCHALLENBERG, 1998; BIYU, 2000; AUER & ARNDT, 2001; BETTEZ et al., 2002;

SAMUELSSON et al., 2002; GOMES & GODINHO, 2003; AUER et al., 2004;

KALINOWSKA, 2004; PEREIRA et al., 2005; VELHO et al., 2005; XU et al., 2005).

O grande número de espécies (115 taxa) encontrado no rio Cachoeira pode estar

relacionado à abundância de macrófitas, pois ambientes com densos estandes de macrófitas

aquáticas, de modo geral, possuem elevadas riquezas de protistas (ciliados e amebas

testáceas).

Biyu (2000) estudou a composição e a distribuição dos ciliados planctônicos presentes

em dois lagos mesotróficos rasos na China, sendo um coberto por macrófitas e outro sem. O

autor encontrou elevado número de espécies, porém menores abundâncias e biomassas no

lago onde havia grande densidade de macrófitas. Assim, a elevada riqueza de espécies

observada neste trabalho, parece estar relacionada à heterogeneidade espacial e à grande

disponibilidade de recursos alimentares conferidos pela presença das macrófitas aquáticas,

sustentando assim comunidades de protistas mais diversas. Deste modo, as assembléias de

macrófitas aquáticas têm um papel importante na estruturação de ecossistemas aquáticos, por

conferir maior heterogeneidade ambiental nestes ecossistemas, possibilitando, assim, elevadas

diversidades de organismos vivendo nestes habitats.

Os gêneros de amebas testáceas com maiores riquezas de espécies no rio Cachoeira não

diferiram dos observados em outros trabalhos envolvendo tecamebas (HARDOIM &

HECKMAN, 1996; TORRES, 1996; HARDOIM, 1997; VELHO et al., 1999; DABÉS &

VELHO, 2001; SOUZA, 2005;). O predomínio das famílias Difflugiidae, Arcellidae e

Centropyxidae encontrado neste trabalho é comum em outros sistemas aquáticos, sendo que

estes organismos ocorrem em ambientes com elevada disponibilidade hídrica, apresentando

carapaças duras e resistentes, exibindo forma e composição apropriada para resistir ao fluxo

de água, permanecendo assim nos ambientes lóticos (LAMPERT & SOMMER, 1997;

LANSAC-TÔHA et al., 2007).

As espécies de amebas testáceas mais abundantes no rio Cachoeira não diferiram das

observadas em trabalhos anteriores com fauna perifítica, conforme revisão de Lansac-Tôha et

al. (2007). A espécie Centropyxis aculeata foi a mais abundante durante todo o estudo, em

ambos os períodos de maior e menor vazão, no rio Cachoeira. Espécies do gênero Centropyxis

podem ser consideradas como tolerantes aos estresses ambientais, sendo muito comuns em

ambientes aquáticos poluídos e/ou perturbados (BONETTI, 1995; OLIVEIRA, 1999).

Foram registradas apenas duas espécies do gênero Nebela no rio Cachoeira, ocorrendo

apenas no ponto C (não represado). Segundo Souza (2005) espécies deste gênero são típicas

de ambientes lóticos e são utilizadas como bioindicadoras de águas de boa qualidade, pois

estes organismos são sensíveis ao aumento da carga orgânica, sendo que a maioria destas

espécies são estenoiônicas, não ocorrendo assim em pH acima de 7,0. Portanto, tal

característica explicaria a baixa riqueza de espécies deste gênero observada neste trabalho.

Algumas espécies de amebas (36 taxa) só ocorreram em um determinado período

hidrológico (maior ou menor vazão) do rio Cachoeira. Vale considerar que a sazonalidade de

espécies pode estar relacionada com a disponibilidade de alimentos, fator que pode também

estar associado ao maior ou menor grau de eutrofização. Em geral, espécies de pequenas

dimensões (como Difflugiella e Trinema) comumente se alimentam de bactérias, fungos e

pequenos protistas, enquanto espécies maiores consomem algas filamentosas, pequenos

rotíferos e outras amebas testáceas (LAMINGER, 1973; HARDOIM, 1997).

No Brasil, existem 11 trabalhos sobre o inventário da fauna de amebas testáceas

associadas a macrófitas aquáticas, sendo 10 compilados em Lansac-Tôha et al. (2007) e um

recentemente publicado por Souza (2008). Contudo, estes trabalhos foram praticamente

restritos associados às regiões Sul (6), Sudeste (3) e Centro-Oeste (2) do país, e envolvem

diferentes métodos de amostragem e de análise (Tabela 14).

A fauna de tecamebas associadas à macrófitas aquáticas em ambientes brasileiros era

composta por 166 taxa. Todavia, o presente estudo registra 42 novas ocorrências de amebas

testáceas associados a este tipo de habitat, totalizando, assim, 208 taxa.

Tabela 14: Compilação dos trabalhos publicados sobre a fauna de amebas testáceas associadas às macrófitas

aquáticas em ecossistemas brasileiros

Autor

Nº de

espécies

Ambiente Local Método de amostragem

Torres (1996a) 44 Represa

Rio Grande do

Sul

Pipetagem e cultivo

Torres (1996b) 6

Arroios,

nascentes e

banhados

Rio Grande do

Sul

Pipetagem e cultivo

Torres (1996c) 1

Arroios,

nascentes e

banhados

Rio Grande do

Sul

Pipetagem e cultivo

Torres (1998) 12

Arroios,

nascentes e

banhados

Rio Grande do

Sul

Pipetagem e cultivo

Torres & Jebram

(1994) 7

Arroios,

nascentes e

banhados

Rio Grande do

Sul Pipetagem e cultivo

Torres &

Schwarzbold (2000) 19

Arroios,

nascentes e

banhados

Rio Grande do

Sul Pipetagem e cultivo

Hardoim (1997) 46 Rios e vazantes Mato Grosso Lavagem* e triagem com pipeta

Hardoim & Heckman

(1996) 16 Rios e charcos Mato Grosso Triagem com pipeta

Dabés & Velho

(2001)

51 Lagoa marginal Minas Gerais

Lavagem* e filtração em rede

(35 µm)

Souza (2005) 108 Rios Minas Gerais

Lavagem* e filtração em rede

(20 µm)

Souza (2008) 121 Rios Minas Gerais

Coleta de água** e filtração em

rede (20 µm)

Presente trabalho 115 Rio Bahia

Lavagem* e filtração em rede

(20 µm)

(* = das macrófitas; ** = próximo às macrófitas)

Trabalhos que envolvem triagem com pipetas capilarizadas e cultivos em meio de

cultura, geralmente registram menor riqueza de espécies. Torres (1996) encontrou 44 taxa de

amebas testáceas associadas a rizosfera de E. crassipes em dois pontos da represa Lomba do

Sabão, Porto Alegre, Rio Grande do Sul. Entretanto, o menor número de espécies observado

nesta represa quando comparado ao encontrado no rio Cachoeira, pode estar relacionado ao

estado trófico da represa, que é oligotrófica, além da metodologia utilizada para extração das

amebas da rizosfera, utilizando pipetagem e cultivo dos protistas, o que difere totalmente da

metodologia adotada neste trabalho, explicando assim a diferença observada no número de

espécies nos dois trabalhos.

Cultivos de tecamebas apresentam algumas desvantagens. É muito difícil reproduzir em

cultura todas as condições necessárias para o desenvolvimento e sobrevivência das espécies

de amebas testáceas presentes em uma assembléia. Portanto, as amebas registradas pelos

trabalhos de Torres provavelmente eram aquelas espécies que melhor se adaptavam às

condições ambientais fornecidas nas culturas. Entretanto, esta técnica possibilita a análise

morfológica mais apurada das espécies, através de estudos morfo-citométricos em amostras

populacionais, o que pode contribuir significativamente para melhorar a delimitação

taxonômica de vários taxa.

De um modo geral, os trabalhos que utilizaram em sua metodologia a lavagem das

macrófitas e filtração do material desprendido do vegetal em rede de plâncton apresentaram

maiores quantidades de espécies, quando comparados aos que empregaram outras técnicas. A

filtração retém todos os organismos que são maiores ou iguais ao tamanho de malha da rede,

possibilitando assim uma amostragem mais significativa da microfauna aí presente.

Souza (2008) realizou um levantamento das tecamebas na bacia do rio Peruaçu, em

Minas Gerais, com o objetivo de coletar informações sobre estes organismos visando

subsidiar a conservação e o monitoramento da bacia do rio São Francisco. Neste levantamento

foi diagnosticada elevada riqueza de tecamebas, contudo as amebas foram coletadas no

plâncton da calha principal do rio e em amostras de águas da região litorânea, abrangendo

assim o compartimento das macrófitas. Portanto, fica difícil comparar os resultados deste

trabalho com os do presente estudo, pois a autora não específica de qual compartimento

(plâncton ou macrófitas) foi coletada cada espécie.

Este mesmo autor propôs a utilização de “táxons referências” como espécies típicas de

ambientes mais preservados ou mais impactados na bacia estudada, baseado na ocorência das

espécies nos diversos habitats estudados. Assim, espécies como Arcella discoides, A.

hemisphaerica, Centropyxis aculeata, C. cassis, C. minuta, Difflugia corona, D. gramen, D.

lobostoma, D. oblonga, Euglypha laevis e Trinema enchelys, consideradas por Souza (op. cit.)

como táxons “referências” de ambientes pouco preservados na bacia do rio Peruaçu (MG),

também foram registradas no rio Cachoeira. Por outro lado, as espécies Arcella brasiliensis,

Cyclopyxis eurystoma, Euglypha rotunda, E. strigosa e Lesquereusia minor foram

consideradas pela mesma autora como “referências” de ambientes mais preservados na bacia

do rio Peruaçu. Entretanto, estas mesmas espécies ocorreram também no rio Cachoeira. Estes

resultados sugerem que a inclusão destes últimos taxa nesta categoria deve ser analisada com

parcimônia, pois tais organismos ocorreram tanto em ambientes impactados (rio Cachoeira)

como pouco impactados (trecho alto e médio da bacia do rio Peruaçu), o que os caracteriza

como generalistas para as condições ambientais ocorrendo, assim, em vários tipos de

ambientes.

Para a região Nordeste, existem seis trabalhos sobre inventários de tecamebas em

diferentes habitats: dois em sedimentos (ZUCON et al., 1992; SEMENSATTO-Jr., 2006) e

quatro com plâncton (CUNHA, 1913, 1916; NEUMANN-LEITÃO & NOGUEIRA-

PARANHOS, 1987; ROCHA et al., 1998); porém nenhum deles associados a macrófitas

aquáticas. Contabilizando as espécies inventariadas nestes seis trabalhos (53 espécies) com as

observadas neste trabalho, totalizam 137 taxa com ocorrência para a região Nordeste.

As espécies registradas por Cunha em 1916 (Centropyxis aculeata e Trinema enchelys)

e por Neumann-Leitão e Nogueira-Paranhos em 1987 (Arcella vulgaris) para o estado da

Bahia, foram encontradas neste estudo, totalizando 112 novas ocorrências de taxa de amebas

testáceas para o Estado.

Pequena variação temporal na riqueza e diversidade foi observada no presente estudo,

havendo assim assembléias pouco mais ricas e mais diversas no período de maior vazão do

rio, apesar de não ter sido detectada diferenças significativas entre os dois períodos.

Entretanto, vários autores encontraram diferenças estatísticas significativas nas riquezas e

diversidades de diversos organismos aquáticos, entre eles nanoflagelados heterotróficos,

amebas testáceas, rotíferos, cladóceros, copépodos e ostrácodes (BONECKER & LANSAC-

TÔHA, 1996; TELESH, 1996; LANSAC-TÔHA et al., 1997; VELHO et al., 2004;

BONECKER et al., 2005; PEREIRA et al., 2005; LEITÃO et al., 2006; HIGUTI et al., 2007),

demonstrando, assim, o efeito da variação do nível fluviométrico e do estado trófico da água

sobre estes atributos das comunidades aquáticas.

Comparando os resultados de riqueza e diversidade das amebas associadas à rizosfera

de E. crassipes no rio Cachoeira com aqueles observados por Torres (1996) na represa Lomba

do Sabão e por Velho et al. (2004) para as tecamebas planctônicas residentes no rio Paraná,

observa-se maiores valores de riqueza e diversidade no rio Cachoeira.

Espacialmente, o ponto C, que se localizou a jusante do represamento, apresentou

maiores riquezas, diversidades e equabilidade de espécies quando comparado com os demais

pontos represados em ambos os períodos hidrológicos. A relação entre diversidade e distúrbio

foi inferida por Connel (1978), baseado no princípio de exclusão competitiva. Assim, a

hipótese do distúrbio intermediário prediz que em condições de intensidades e freqüências

intermediárias dos distúrbios, um máximo de diversidade pode ser alcançado e mantido, se as

intensidades e freqüências forem tais que interfiram na exclusão competitiva.

Assim, a dinâmica do fluxo de águas no rio Cachoeira (pulsos de cheia e seca) constitui

uma perturbação no ambiente. Por outro lado, o represamento do rio atenua a variação do

nível fluviométrico nos locais a montante do represamento, por fragmentar o gradiente

longitudinal das condições ambientais do sistema. Deste modo, o ponto C é mais afetado

pelos distúrbios hidrológicos, o que poderia estar mantendo um maior número de espécies

neste ponto. Resultados semelhantes a este foram também observados por Velho (2000) para

as tecamebas planctônicas da planície de inundação do alto rio Paraná.

Contudo, deve-se considerar que este trecho médio-inferior (ponto C) do rio Cachoeira

deve exibir matéria orgânica particulada fina, o que possibilita uma maior oferta de nichos

tróficos (maior variedade de tamanhos de partículas alimentares) para as espécies de

tecamebas, interferindo, assim, positivamente na riqueza e diversidade destas espécies. Deve-

se ainda ponderar as contribuições do influxo de espécies de tecamebas oriundas dos córregos

adjacentes a este ponto, incrementando assim a fauna de amebas testáceas. Resultados

semelhantes também foram observados por BINI et al. (2003) para as amebas testáceas de

duas lagoas da planície de inundação do alto rio Paraná e por HIGUTI et al. (2007) para a

comunidade pleustônica de ostrácodes presentes na planície de inundação do rio Paraná.

As curvas de dominância plotadas para a abundância das espécies de amebas testáceas

ao longo dos períodos hidrológicos do rio Cachoeira demonstraram uma pequena dominância

na abundância das espécies. Tais curvas segundo Whittaker (1972) e Odum (1985) ilustram os

dois principais componentes da diversidade (H’ e J) indicando as tendências de diversidade e,

em termos gerais, a dominância de uma ou mais espécies, explicando também como o nicho é

repartido.

Assim, o modelo de relação espécie – abundância que mais se assemelha ao padrão

plotado no Whittaker plot, é o de Fração Aleatória (random fraction model). Este modelo,

segundo Begon et al. (2007), apresenta uma distribuição um pouco mais equitativa, onde

sucessivas espécies invadem e ocupam uma porção arbitrária do espaço de nicho de qualquer

espécie já presente, assim todas as espécies têm a mesma probabilidade de dividir o nicho.

As similaridades entre as assembléias de amebas testáceas observadas nos três pontos

amostrais no rio Cachoeira foram elevadas, demonstrando que não houve diferenças muito

marcante na composição das espécies nestes locais.

Na maioria dos trabalhos, sobre a fauna de tecamebas associadas as macrófitas

aquáticas, de modo geral, não é apresentado dados de variáveis ambientais, o que dificulta

avaliação da influência das características limnológicas na estrutura da comunidade estudada,

bem como comparações com os resultados obtidos em outros trabalhos.

Analisando a influência dos fatores ambientais sobre a estrutura da assembléia das

amebas testáceas no rio Cachoeira, observa-se que as biomassas das amebas estiveram

correlacionadas com a biomassa fitoplanctônica, sugerindo, indiretamente, possíveis relações

tróficas entre as algas perifíticas e as tecamebas. Bonecker et al. (2007) encontraram

resultados semelhantes para a biomassa das espécies zooplanctônicas (rotíferos, copépodos e

cladóceros) oriundas dos reservatórios Segredo, Iraí e Mourão no Paraná, onde suas

biomassas estiveram correlacionadas com a biomassa fitoplanctônica e com concentrações de

fósforo.

A correlação negativa registrada entre a riqueza de espécies de amebas testáceas e a

condutividade do rio evidencia, claramente, o efeito do despejo de esgotos e da eutrofização

sobre tais comunidades, uma vez que o ponto que exibiu menor condutividade estava a

jusante do represamento e do despejo de efluentes urbanos, e consequentemente apresentou

menores teores de clorofila-a.

As correlações negativamente significativas entre densidade das tecamebas e a vazão

fluviométrica do rio Cachoeira demonstram o efeito da variação do nível fluviométrico sobre

as assembléias destes protistas. Resultados semelhantes foram observados por e Kobayashi et

al. (2000) para o zooplâncton (amebas testáceas, ciliados, rotíferos, cladóceros e copépodos)

em segmentos represados no rio Hawkesbury, no Nepal.

Em resumo, o rio Cachoeira apresentou sazonalidade hidrológica bem marcada

(variação fluviométrica), o qual refletiu sobre seus pulsos de energia e matéria, definindo

variações sazonais na densidade e na biomassa das assembléias de amebas testáceas

associadas a Eichhornia crassipes. As principais forçantes responsáveis pelas variações

observadas na estrutura das assembléias de amebas testáceas ao longo deste estudo, foram: (i)

a vazão fluviométrica do rio; e (ii) o represamento e sua conseqüente eutrofização.

7. CONCLUSÕES

 115 taxa de amebas testáceas foram inventariados no rio Cachoeira,

pertencentes a 10 famílias, 14 gêneros, 96 espécies e 19 variedades. As

famílias com o maior número de espécies foram Difflugidae, Arcellidae,

Centropyxidae, Euglyphidae, Lesquereusiidae e Cryptodifflugiidae;

 Nos meses de maior vazão foram registrados 105 taxa de amebas e as famílias

mais representadas foram Difflugidae, Arcellidae e Centropyxidae; já no

período de menor vazão foram inventariados 90 taxa e as famílias Difflugidae,

Arcellidae, Centropyxidae, Euglyphidae e Lesquereusiidae foram as mais

representadas;

 As assembléias de amebas testáceas associadas a Eichhornia crassipes no rio

Cachoeira apresentaram variações sazonais significativas, somente em termos

quantitativos (densidade e biomassa), ligadas a sazonalidade hidrológica bem

marcada (variação fluviométrica) do rio Cachoeira; entretanto em termos

qualitativos (composição, riqueza e diversidade de espécies), não foram

observadas variações sazonais significativas;

 Espacialmente, não foram verificadas diferenças significativas nas densidades

das amebas testáceas registradas nos diferentes pontos amostrais, entretanto em

termos de biomassa, o ponto B (represado) diferiu significativamente do ponto

C (não represado); em termos qualitativos, houve elevada similaridade na

composição das assembléias observadas nos diferentes pontos amostrais;

 A densidade das amebas testáceas foi negativamente correlacionada com a

vazão do rio, assim as maiores densidades de amebas foram observadas no

período de menor vazão do rio, evidenciando o papel da variação do nível

fluviométrico sobre este atributo;

 A biomassa das amebas testáceas foi correlacionada positivamente com a sua

densidade e com a biomassa fitoplanctônica (clorofila-a), mostrando a

influência do estado trófico do rio sobre o aumento da biomassa e densidade

das amebas, sugerindo relações tróficas entre estes dois grupos de organismos;

 Assim, as principais forçantes responsáveis pelas variações observadas na

estrutura (biomassa e densidade) das assembléias de amebas testáceas ao longo

deste estudo, foram: (i) a vazão fluviométrica do rio; e (ii) o represamento e

sua conseqüente eutrofização.

8. RECOMENDAÇÕES

Os resultados obtidos neste trabalho proporcionam um melhor entendimento da dinâmica

ecológica envolvendo as amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes no rio

Cachoeira, Bahia, tornando-se pertinente algumas recomendações:

 Implantação de Estações de Tratamento de Esgotos nas cidades que compõem a

Bacia Hidrográfica do Rio Cachoeira, para reduzir o aporte de matéria orgânica e

de poluentes lançados no rio;

 Implantação de um programa de biomonitoramento da Bacia Hidrográfica do Rio

Cachoeira, visando formação de uma base de dados consistente e histórica sobre as

comunidades biológicas aí existentes, além de dados limnológicos;

 Efetuar um estudo de longa duração a fim de investigar as espécies presentes na

Bacia Hidrográfica do Rio Cachoeira, visando detectar possíveis espécies

indicadoras de poluição orgânica ao longo de toda a bacia;

 Promover a conscientização ambiental acerca da importância, não só do rio

Cachoeira, mas também de toda a bacia hidrográfica para a sustentabilidade da

população humana, além da manutenção da diversidade biológica.

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APÊNDICE 01 - Lista dos taxa das amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes no rio Cachoeira -

BA no período de 2006 a 2007.

(continua)

Arcellidae Ehrenberg, 1830

Arcella arenaria Greeff, 1866

A. bathystoma Deflandre, 1928

A. brasiliensis Cunha, 1913

A. catinus Penard, 1880

A. conica (Playfair, 1917)

A. dentata Ehrenberg, 1838

A. discoides Ehrenberg, 1843

A. discoides pseudovulgaris Deflandre, 1928

A. gibbosa mitriformis Deflandre, 1928

A. gibbosa laevis Deflandre, 1928

A. gibbosa Pénard, 1890

A. hemisphaerica Deflandre, 1928

A. hemisphaerica f. undulata Deflandre, 1929

A. intermedia

A. lobostoma Deflandre, 1928

A. megastoma Pénard, 1902

A. nordestina Vucetich, 1973

A. polypora Penard, 1980

A. rotundata Playfair, 1917

Arcella sp

A. vulgaris Ehrenberg, 1830

Centropyxidae Jung, 1984

Centropyxis aculeata (Ehrenberg, 1838)

C. aerophila Deflandre, 1929

C. cassis (Wallich, 1864)

C. cassis var spinifera (Playfair, 1918)

C. constricta (Ehrenberg, 1841)

C. discoides (Pénard, 1890)

C. ecornis (Ehrenberg, 1841)

C. hemisphaerica (Bannard, 1918)

C. hirsuta Deflandre, 1929

C. marsupiformis (Wallich, 1864)

C. minuta Deflandre, 1929

C. orbicularis Deflandre, 1929

C. platystoma (Pénard, 1902)

Centropyxis sp.

Cryptodifflugiidae, Jung, 1942

Difflugiella angusta Schonborn, 1965

D. crenulata (Playfair, 1917)

D. horrida Schonborn, 1965

D. oviformis (Pénard, 1890)

D. patinata Schonborn, 1965

Difflugiella sp.

D.voigli Schimidt, 1926

APÊNDICE 01 - Lista dos taxa das amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes no rio Cachoeira -

BA no período de 2006 a 2007.

(continua)

Cyphoderiidae Saedeler, 1934

Cyphoderia ampulla (Ehrenberg, 1840)

Difflugidae Awerintzew, 1906

Curcubitella dentata Gauthier-Lièvre & Thomas, 1960

C. madagascariensis Gauthier-Lièvre & Thomas, 1960

C. mespiliformis Pénard, 1901

Difflugia achlora (Penard, 1902)

D.acuminata Ehrenberg, 1838

D. angulostoma Gauthier-Lièvre & Thomas, 1958

D. avellana Pénard, 1890

D. bacillifera Pénard, 1890

D. bicornis Pénard, 1890

D. brevicolla Cash, 1809

D. corona Wallich, 1864

D. corona ecornis Gauthier-Lièvre & Thomas, 1960

D. corona tuberculata Vucetich, 1973

D. decloitrei Godeanu, 1972

D. difficilis Thomas, 1955

D. elegans Pénard, 1890

D. elegans angustata Gauthier-Liévre & Thomas, 1958

D. elegans teres Pénard, 1899

D. globularis (Wallich, 1864)

D. globulosa Dujardim, 1837

D. gramen caudata Gauthier-Lièvre & Thomas, 1960

D. gramen Pénard, 1902

D. lanceolata Pénard, 1890

D. lithophila Pénard, 1902

D. lobostoma Leidy, 1879

D. lobostoma var. cornuta Gauthier-Lièvre & Thomas, 1958

D. lobostoma var. multilobata Gauthier-Lièvre & Thomas, 1958

D. lobostoma var. tuberosa Gauthier-Lièvre & Thomas, 1958

D. manicata Pénard, 1902

D. minuta Rampi, 1956

D. mitriformis Wallich, 1864

D. oblonga Ehrenberg, 1838

D. penardi Hopkinson, 1909

D. pleustonica Dioni, 1970

D. pristis (Pénard, 1902)

D. schuurmani Van Oye, 1932

Difflugia sp

D. urceolata Carter, 1864

Difflugia urceolata lageniformis Gauthier-Lièvre & Thomas, 1960

Difflugia urceolata minor Deflandre, 1926

Pentagonia maroccana Gauthier-Lievre et Thomas, 1905

Protocurcubitella coroniformis Gauthier-Lièvre & Thomas, 1960

APÊNDICE 01 - Lista dos taxa das amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes no rio Cachoeira -

BA no período de 2006 a 2007.

(conclusão)

Euglyphidae Wallich, 1864

Euglypha acanthophora (Ehrenberg, 1841)

E. ciliata (Ehrenberg, 1848)

E. cristata Leidy, 1874

E. cristata major Wailes

E. filifera Pénard, 1880

E. filifera magna Van Oye

E. laevis (Ehrenberg, 1845)

E. mucronata Leidy, 1878

E. rotunda Wailes, 1911

E. strigosa (Ehrenberg, 1872)

E. tuberculata Dujardin, 1841

Hyalospheniidae Schulze, 1877

Nebela lageniformis Penard, 1980

Nebela tubulosa Penard, 1890

Lesquereusiidae Jung, 1942

Lesquereusia epistomium Pénard, 1902

L. gibbosa Gauthier-Lièvre & Thomas, 1960

L. minor Walton, 1930

L. modesta Rhumbler, 1896

L. modesta caudata (Playfair, 1917)

L. ovalis Gauthier-Lièvre & Thomas, 1960

Lesquereusia sp.

L. spiralis (Ehrenberg, 1840)

L. spiralis arcuata Gauthier-Lièvre & Thomas, 1960

Netzelia tuberculata (Wallich, 1864)

N. wailesi (Ogden, 1980)

Trigonopyxidae Loeblich e Trappan, 1964

Cyclopyxis eurystoma (Deflandre, 1929)

C. khali (Deflandre, 1929)

Cyclopyxis sp.

Trinematiidae Hoogenraad e Groot, 1940

Trinema cf. complanatum Penard, 1890

T. enchelys (Ehrenberg, 1838)

T. lineare Pénard, 1890

APÊNDICE 02 - Freqüência de ocorrência das espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de E.

crassipes por ponto de coleta no rio Cachoeira - BA, para todo período de estudo. (***

constante, ** comum e * esporádica).

continua

A B C

Arcella arenaria 0 0 20*

Arcella bathystoma 33** 17* 0

Arcella brasiliensis 50*** 33** 40**

Arcella catinus 83*** 83*** 60***

Arcella conica 67*** 33** 20*

Arcella dentata 17* 17* 20*

Arcella discoides 67*** 83*** 100***

Arcella discoides pseudovulgaris 83*** 67*** 100***

Arcella gibbosa 83*** 83*** 80***

Arcella gibbosa laevis 83*** 83*** 80***

Arcella gibbosa mitriformis 67 33** 60***

Arcella hemisphaerica 83*** 83*** 100***

Arcella hemisphaerica undulata 100*** 100*** 40**

Arcella intermedia 67*** 17* 60***

Arcella lobostoma 33** 0 60***

Arcella megastoma 100*** 100*** 80***

Arcella nordestina 17* 17* 20*

Arcella polypora 0 17* 20*

Arcella rotundata 50*** 83*** 100***

Arcella sp.

0 0 20*

Arcella vulgaris 100*** 100*** 20*

Centropyxis aculeata 100*** 100*** 100***

Centropyxis aerophila 17* 17* 0

Centropyxis cassis 33** 67*** 80***

Centropyxis cassis spinifera 50*** 33** 40**

Centropyxis marsupiformis 0 0 20*

Centropyxis constricta 17* 33** 20*

Centropyxis discoides 83*** 83*** 60***

Centropyxis ecornis 50*** 83*** 60***

Lista de Espécies

Pontos

APÊNDICE 02 - Freqüência de ocorrência das espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de E.

crassipes por ponto de coleta no rio Cachoeira - BA, para todo período de estudo. (***

constante, ** comum e * esporádica).

ontinua)

A B C

Centropyxis hemisphaerica 0 0 40**

Centropyxis hirsuta 100*** 100*** 100***

Centropyxis minuta 67*** 50*** 80***

Centropyxis orbicularis 33** 17* 0

Centropyxis platystoma 67*** 50*** 100***

Centropyxis sp.

33** 17* 0

Cyclopyxis eurystoma 50*** 67*** 80***

Cyclopyxis kahli 33** 50*** 20*

Cyclopyxis sp.

0 17* 0

Cyphoderia ampulla 0 0 20*

Curcubitella madagascariensis 33** 50*** 20*

Curcubitella mespiliformis 33** 17* 60***

Difflugia achlora 33** 17* 20*

Difflugia acuminata 67 33 20*

Difflugia angulostoma 83*** 100 100***

Difflugia avellana 17* 50*** 40**

Difflugia bacilifera 33** 17* 0

Difflugia bicornis 17* 0 0

Difflugia brevicola 17* 33** 20*

Difflugia corona 100*** 100*** 60***

Difflugia corona ecornis 17* 33** 20*

Difflugia corona tuberculata 50*** 67*** 60***

Difflugia decloitrei 50*** 83*** 80***

Difflugia difficilis 17* 0 20*

Difflugia elegans 33** 33** 20*

Difflugia elegans angustata 17* 0 40**

Difflugia elegans teres 0 0 20*

Difflugia globularis 67*** 67*** 80***

Lista de Espécies

Pontos

100

APÊNDICE 02 - Freqüência de ocorrência das espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de E.

crassipes por ponto de coleta no rio Cachoeira - BA, para todo período de estudo. (***

constante, ** comum e * esporádica).

ontinua)

A B C

Difflugia globulosa 33** 50 60***

Difflugia gramen 100*** 100*** 100***

Difflugia gramen caudata 17* 0 20*

Difflugia lanceolata 50*** 83*** 80***

Difflugia lithophila 83*** 100*** 100***

Difflugia lobostoma 100*** 100*** 100***

Difflugia lobostoma cornuta 17* 33** 0

Difflugia lobostoma multilobata 17* 17* 20*

Difflugia lobostoma tuberosa 17* 67*** 0

Difflugia manicata 100*** 83*** 100***

Difflugia minuta 67*** 83*** 80***

Difflugia mitriformis 100*** 67*** 100***

Difflugia oblonga 33** 33** 20*

Difflugia penardi 50*** 67*** 60***

Difflugia pleustônica 17* 67*** 20*

Difflugia pristis 17* 17* 40**

Difflugia schuurmani 100*** 100*** 100***

Difflugia sp.

0 0 20*

Difflugia urceolata 67*** 17* 0

Difflugia urceolata lageniformis 17* 0 20*

Difflugia urceolata minor 17* 33** 20*

Pentagonia marrocanna 50*** 33** 60***

Protocurcubitela coriniformis 50*** 33** 20*

Difflugiella angusta 0 33** 20*

Difflugiella crenulata 17** 50*** 20*

Difflugiella horrida 0 17* 20*

Difflugiella oviformis 67*** 83*** 80***

Difflugiella patinata 17** 33** 40**

Difflugiella sp.

33** 50*** 40**

Lista de Espécies

Pontos

101

APÊNDICE 02 - Freqüência de ocorrência das espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de E.

crassipes por ponto de coleta no rio Cachoeira - BA, para todo período de estudo. (***

constante, ** comum e * esporádica).

(conclusão)

A B C

Difflugiella voigli 17* 17* 20*

Euglypha acanthophora 83*** 100*** 100***

Euglypha ciliata 0 17* 0

Euglypha cristata 0 0 20*

Euglypha cristata major 0 17* 20*

Euglypha filifera 67*** 100*** 80***

Euglypha filifera magna 17* 0 0

Euglypha laevis 17* 33** 40**

Euglypha mucronata 0 17* 20*

Euglypha rotunda 83 67*** 40**

Euglypha strigosa 33** 67*** 40**

Euglypha tuberculata 67*** 33** 60***

Lesquereusia epistomium 33** 17** 20*

Lesquereusia gibbosa 17* 0 0

Lesquereusia minor 33** 50*** 20*

Lesquereusia modesta 67*** 67*** 60

Lesquereusia modesta caudata 17* 33** 20*

Lesquereusia ovalis 0 33** 20*

Lesquereusia sp.

17* 0 0

Lesquereusia spiralis 17* 33** 40**

Lesquereusia spiralis arcuata 17* 67*** 0

Netzelia wailesi 67*** 67*** 40**

Netzelia tuberculata 33** 50*** 40**

Nebela lageniformis 0 0 20*

Nebela tubulosa 0 0 20*

Trinema cf. complanatum

0 17* 20*

Trinema enchelys 100*** 100*** 80***

Trinema lineare 33** 17* 20*

Lista de Espécies

Pontos

102

APÊNDICE 03 - Presença e ausência dos taxa de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes por

pontos de coletas nos períodos de maior (novembro de 2006 a janeiro de 2007) e menor vazão

(junho a agosto de 2007) do rio Cachoeira - BA. (+) presente; (-) ausente.

ontinua)

A B C A B C

Arcella arenaria - - - - - +

Arcella bathystoma + + - + - -

Arcella brasiliensis + + + + + +

Arcella catinus + + + + + +

Arcella conica + + + + +

Arcella dentata - + - - - +

Arcella discoides + + + + + +

Arcella discoides pseudovulgaris + + + + + +

Arcella gibbosa + + + + + +

Arcella gibbosa laevis - - + + +

Arcella gibbosa mitriformis + + + - + +

Arcella hemisphaerica + + + + + +

Arcella hemisphaerica undulata + + + + + +

Arcella intermedia + + + + + +

Arcella lobostoma + + + - - +

Arcella megastoma + + + + + +

Arcella nordestina + + + - - -

Arcella polypora - - - - + +

Arcella rotundata - + + + + +

Arcella sp.

- - - - - +

Arcella vulgaris + + + + + +

Centropyxis aculeata + + + + + +

Centropyxis aerophila + - - - +

Centropyxis cassis + + + - + +

Centropyxis cassis spinifera + - + + + +

Centropyxis constricta + + + - - -

Centropyxis discoides + + + + + +

Centropyxis ecornis + + + - + +

Maior vazão Menor vazão

Espécies

103

APÊNDICE 03 - Presença e ausência dos taxa de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes por

pontos de coletas nos períodos de maior (novembro de 2006 a janeiro de 2007) e menor vazão

(junho a agosto de 2007) do rio Cachoeira - BA. (+) presente; (-) ausente.

ontinua)

A B C A B C

Centropyxis hemisphaerica - - + - + +

Centropyxis hirsuta + + + + + +

Centropyxis marsupiformis - - + - - -

Centropyxis minuta + + + + + +

Centropyxis orbicularis + + + - - -

Centropyxis platystoma + + + + + +

Centropyxis sp.

+ + - + - -

Cyclopyxis eurystoma + + + + + +

Cyclopyxis kahli + + + - + -

Cyclopyxis sp.

- + - - - -

Cyphoderia ampulla - - + - - -

Curcubitella madagascariensis + + + + + -

Curcubitella mespiliformis + + + - - -

Difflugia achlora + + + - + -

Difflugia acuminata + + + + - -

Difflugia angulostoma + + + + + +

Difflugia avellana + + + - + +

Difflugia bacilifera + + - - - -

Difflugia bicornis + - - - - -

Difflugia brevicola + + + - - -

Difflugia corona + + + + + +

Difflugia corona ecornis - - - + + +

Difflugia corona tuberculata + + - + + +

Difflugia decloitrei + + + + + +

Difflugia difficilis + - + - - -

Difflugia elegans + + + + - -

Difflugia elegans angustata - - + + - +

Difflugia elegans teres - - - - - +

Difflugia globularis + + + + + +

Espécies

Maior vazão Menor vazão

104

APÊNDICE 03 - Presença e ausência dos taxa de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes por

pontos de coletas nos períodos de maior (novembro de 2006 a janeiro de 2007) e menor vazão

(junho a agosto de 2007) do rio Cachoeira - BA. (+) presente; (-) ausente.

ontinua)

A B C A B C

Difflugia globulosa + + + - + +

Difflugia gramen + + + + + +

Difflugia gramen caudata + + + - - -

Difflugia lanceolata + + + + + +

Difflugia lithophila + + + + + +

Difflugia lobostoma + + + + + +

Difflugia lobostoma cornuta - - - + + -

Difflugia lobostoma multilobata - + + + - -

Difflugia lobostoma tuberosa + + - - + -

Difflugia manicata + + + + + +

Difflugia minuta + + + + + +

Difflugia mitriformis + + + + + +

Difflugia oblonga + + + + + +

Difflugia penardi + + + + + +

Difflugia pleustônica + + + - + -

Difflugia pristis + + + - - +

Difflugia schuurmani + + + + + +

Difflugia sp.

- - + - - -

Difflugia urceolata + + - + - -

Difflugia urceolata lageniformis - - + + - -

Difflugia urceolata minor - + - + + +

Pentagonia marrocanna + + + + - +

Protocurcubitela coriniformis - - - + + +

Difflugiella angusta - + + - - -

Difflugiella crenulata + + + - - -

Difflugiella horrida - + + - - -

Difflugiella oviformis + + + - + +

Difflugiella patinata + + + - - -

Difflugiella sp. + + + - + -

Espécies

Maior vazão Menor vazão

105

APÊNDICE 03 - Presença e ausência dos taxa de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes por

pontos de coletas nos períodos de maior (novembro de 2006 a janeiro de 2007) e menor vazão

(junho a agosto de 2007) do rio Cachoeira - BA. (+) presente; (-) ausente.

onclusão)

A B C A B C

Difflugiella voigli + + - - - +

Euglypha acanthophora + + + + + +

Euglypha ciliata - + - - - -

Euglypha cristata - - + - - -

Euglypha cristata major - - - - + +

Euglypha filifera + + + + + +

Euglypha filifera magna - - - + - -

Euglypha laevis + + + - + -

Euglypha mucronata - - - - + +

Euglypha rotunda + + + + + +

Euglypha strigosa + + + + + -

Euglypha tuberculata + + + + - +

Lesquereusia epistomium + + + + - -

Lesquereusia gibbosa + - - - - -

Lesquereusia minor + + - + + +

Lesquereusia modesta + + + + + +

Lesquereusia modesta caudata + + + - - -

Lesquereusia ovalis - + + - + -

Lesquereusia sp.

- - - + - -

Lesquereusia spiralis + + + - - +

Lesquereusia spiralis arcuata - + - + +

Netzelia wailesi + + + + + +

Netzelia tuberculata + + - + + +

Nebela lageniformis - - + - - -

Nebela tubulosa - - + - - -

Trinema cf. complanatum

- + + - - -

Trinema enchelys + + + + + +

Trinema lineare + + + - - -

Espécies

Maior vazão Menor vazão

106

APÊNDICE 04 - Densidade (Indíviduos/grama de peso seco - indv./gPS) das espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes registradas no período de

maior (novembro de 2006 a janeiro de 2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão do rio Cachoeira - BA.

(continua)

A B A B C A B C A B C A B C A B C

Arcella arenaria 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 44 0 0 0 0 0 0

Arcella bathystoma 0 0 16 8 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 248 0 0

Arcella brasiliensis 7 0 0 2 4 0 0 0 244 41 0 0 0 34 144 0 0

Arcella catinus 0 0 4 33 20 69 29 10 207 21 114 175 352 0 124 49 0

Arcella conica 0 0 46 0 57 6 4 0 5 0 0 0 90 0 6 0 0

Arcella dentata 0 0 0 172 0 0 0 0 0 0 0 0 0 46 0 0 0

Arcella discoides 494 489 155 630 97 12 29 25 191 120 523 0 1021 27 0 0 16

Arcella discoides pseudovulgaris 0 0 117 0 73 106 27 7 676 533 772 2161 3695 288 1313 1500 530

Arcella gibbosa 5 0 0 102 8 33 23 11 244 257 287 143 3390 0 248 35 81

Arcella gibbosa laevis 0 0 0 0 0 0 0 10 16 0 0 0 0 0 0 50 0

Arcella gibbosa mitriformis 0 0 0 316 91 71 6 15 0 0 61 0 402 0 0 150 0

Arcella hemisfaerica 134 317 30 780 89 131 18 15 94 55 138 0 0 52 279 208 85

Arcella hemisfaerica undulata 8 3 74 28 70 38 6 0 357 146 271 1254 5799 0 1669 1140 0

Arcella intermedia 0 0 68 0 12 0 0 2 409 41 92 162 0 0 62 0 0

Arcella lobostoma 51 0 2 0 3 0 0 0 0 0 0 0 0 333 0 0 0

Arcella megastoma 56 169 66 131 54 40 2 12 383 118 179 65 596 0 224 64 109

Arcella nordestina 35 0 0 100 6 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Arcella polypora 0 0 0 0 0 0 0 0 0 3 38 0 0 0 0 0 0

Arcella rotundata 0 0 0 106 42 0 1 17 422 274 152 139 527 46 461 139 21

Arcella sp.

0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 34 0 0 0

Arcella vulgaris 588 418 152 534 64 92 10 32 304 254 207 79 1223 0 243 104 70

Centropyxis aculeata 2003 511 402 504 172 181 35 17 460 311 972 808 1941 173 2945 1288 442

Centropyxis aerophila 0 0 51 0 0 0 0 0 0 5 0 0 0 0 0 0 0

Centropyxis cassis 0 0 9 247 57 11 2 5 0 194 69 0 0 139 0 35 0

Centropyxis cassis spinifera 0 0 9 0 18 0 0 0 38 197 68 0 0 0 248 90 0

Centropyxis marsupiformis 0 0 0 0 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Centropyxis constricta 0 14 5 37 107 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Centropyxis discoides 54 15 56 297 28 48 1 0 0 17 38 18 0 0 35 93 16

Centropyxis ecornis 27 0 8 16 58 13 1 0 0 14 55 0 60 0 0 49 16

Lista de Espécies

novembro/2006 dezembro/2006 janeiro/2007 junho/2007 julho/2007 agosto/2007

107

APÊNDICE 04 - Densidade (Indíviduos/grama de peso seco - indv./gPS) das espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes registradas no período de

maior (novembro de 2006 a janeiro de 2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão do rio Cachoeira - BA.

(continua)

A B A B C A B C A B C A B C A B C

Centropyxis hemisphaerica 0 0 0 0 4 0 0 0 0 0 40 0 0 0 0 0 0

Centropyxis hirsuta 54 9 14 163 41 51 37 17 597 241 807 1436 2774 354 1443 365 564

Centropyxis minuta 0 0 0 106 23 77 27 7 207 137 135 23 0 202 102 0 100

Centropyxis orbicularis 72 35 0 0 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Centropyxis platystoma 48 0 2 16 236 4 3 25 202 0 0 0 0 18 0 44 119

Centropyxis sp.

5 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 62 0 0

Cyclopyxis eurystoma 0 0 207 58 10 39 1 7 0 9 24 0 34 0 124 0 16

Cyclopyxis kahli 0 0 49 70 20 5 5 0 0 0 0 0 0 0 0 56 0

Cyclopyxis sp.

0 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Cyphoderia ampulla 0 0 0 0 10 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Curcubitella dentata 0 0 8 0 6 0 0 0 0 206 0 0 0 0 0 0 15

Curcubitella madagascariensis 0 12 21 78 13 0 0 0 38 9 0 0 0 0 0 0 0

Curcubitella mespiliformis 0 28 4 59 6 20 0 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Difflugia achlora 0 0 42 0 4 4 19 0 0 0 0 0 0 0 0 25 0

Difflugia acuminata 48 24 13 14 1 4 0 0 0 0 0 0 0 0 4 0 0

Difflugia angulostoma 516 68 351 677 23 142 37 42 185 667 343 158 60 18 0 88 16

Difflugia avellana 13 12 0 14 0 0 0 11 0 55 0 0 0 51 0 0 0

Difflugia bacilifera 4 7 8 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Difflugia bicornis 24 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Difflugia brevicola 0 5 4 72 12 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Difflugia corona 14 115 85 267 8 167 40 0 452 367 153 620 2736 0 259 529 111

Difflugia corona ecornis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 75 15 18 0 0 0 92 0

Difflugia corona tuberculata 0 18 34 49 0 0 32 0 0 0 0 145 2515 18 562 236 49

Difflugia decloitrei 0 21 0 45 14 33 7 5 244 256 54 25 101 18 0 0 0

Difflugia difficilis 0 0 12 0 21 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Difflugia elegans 0 18 14 67 0 0 0 2 0 0 0 53 0 0 0 0 0

Difflugia elegans angustata 0 0 0 0 28 0 0 0 0 0 0 0 0 0 37 0 34

Difflugia elegans teres 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 15 0 0 0 0 0 0

Difflugia globularis 34 0 36 76 14 48 1 5 0 34 0 12 0 34 0 83 35

junho/2007 julho/2007 agosto/2007

Lista de Espécies

novembro/2006 dezembro/2006 janeiro/2007

108

APÊNDICE 04 - Densidade (Indíviduos/grama de peso seco - indv./gPS) das espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes registradas no período de

maior (novembro de 2006 a janeiro de 2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão do rio Cachoeira - BA.

(continua)

A B A B C A B C A B C A B C A B C

Difflugia globulosa 126 8 17 21 7 0 0 0 0 0 30 0 200 0 0 0 35

Difflugia gramen 104 135 264 471 110 579 109 56 831 428 451 634 1152 179 1098 584 171

Difflugia gramen caudata 0 0 137 0 0 0 0 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Difflugia lanceolata 82 18 42 14 13 0 2 21 0 0 0 0 294 17 31 14 23

Difflugia lithophila 217 37 65 303 76 89 16 8 301 300 128 45 60 252 0 106 98

Difflugia lobostoma 88 37 57 257 20 60 33 25 333 332 331 192 2694 61 186 340 221

Difflugia lobostoma cornuta 0 0 0 0 0 0 0 0 8 137 0 0 0 0 0 35 0

Difflugia lobostoma multilobata 0 0 0 21 0 0 0 3 0 0 0 6 0 0 0 0 0

Difflugia lobostoma tuberosa 0 0 5 49 0 0 3 0 0 21 0 0 151 0 0 0 0

Difflugia manicata 136 8 130 288 55 232 26 30 75 465 122 41 0 211 155 155 145

Difflugia minuta 0 0 46 58 38 0 6 19 174 425 182 139 846 0 266 220 194

Difflugia mitriformis 193 43 48 184 5 129 0 7 67 79 104 52 0 252 45 94 15

Difflugia oblonga 77 63 20 47 9 7 3 7 0 5 15 0 0 0 420 0 10

Difflugia penardi 3 5 30 0 8 0 0 0 0 0 15 0 400 0 248 0 0

Difflugia pleustônica 0 0 4 43 4 0 0 0 0 21 0 0 51 0 0 104 0

Difflugia pristis 0 0 38 82 2 0 0 0 0 0 74 0 0 0 0 0 0

Difflugia schuurmani 707 543 1001 1196 231 354 53 29 640 123 164 387 494 140 897 134 80

Difflugia sp.

0 0 0 0 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Difflugia urceolata 79 11 13 0 0 7 0 0 0 0 0 0 0 0 7 0 0

Difflugia urceolata lageniformis 0 0 0 0 10 0 0 0 0 0 0 0 0 0 14 0 0

Difflugia urceolata minor 0 0 0 0 0 0 4 0 0 7 0 0 0 0 4 0 23

Pentagonia marrocanna 0 0 60 16 16 2 0 20 56 0 59 0 0 0 0 0 0

Protocurcubitela coriniformis 0 0 0 0 0 0 0 0 5 0 0 52 234 0 124 110 21

Difflugiella angusta 0 25 0 0 3 0 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Difflugiella crenulata 24 9 0 269 7 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Difflugiella horrida 0 12 0 0 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Difflugiella oviformis 202 85 105 620 15 346 84 57 8 431 531 0 591 223 0 0 0

Difflugiella patinata 0 4 4 25 4 0 0 6 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Difflugiella sp.

14 8 2 8 4 0 0 4 0 21 0 0 0 0 0 0 0

Lista de Espécies

novembro/2006 dezembro/2006 janeiro/2007 junho/2007 julho/2007 agosto/2007

109

APÊNDICE 04 - Densidade (Indíviduos/grama de peso seco - indv./gPS) das espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes registradas no período de

maior (novembro de 2006 a janeiro de 2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão do rio Cachoeira - BA.

(conclusão)

A B A B C A B C A B C A B C A B C

Difflugiella voigli 0 0 8 14 0 0 0 0 0 0 23 0 0 0 0 0 0

Euglypha acanthophora 0 78 179 481 55 100 41 7 8 77 243 268 5437 129 178 1227 229

Euglypha ciliata 0 0 0 43 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Euglypha cristata 0 0 0 0 24 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Euglypha cristata major 0 0 0 0 0 0 0 0 0 3 32 0 0 0 0 0 0

Euglypha filifera 32 72 38 162 37 43 57 10 67 5 216 0 496 0 0 390 10

Euglypha filifera magna 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 12 0 0 0 0 0

Euglypha laevis 0 0 0 0 5 80 38 5 0 3 0 0 0 0 0 0 0

Euglypha mucronata 0 0 0 0 0 0 0 0 0 23 48 0 0 0 0 0 0

Euglypha rotunda 0 0 5 33 31 16 13 0 8 26 30 56 0 0 21 310 0

Euglypha strigosa 5 0 5 0 0 20 2 13 0 9 0 29 135 0 0 140 0

Euglypha tuberculata 3 7 25 43 11 22 0 4 0 0 59 0 0 0 4 0 0

Lesquereusia epistomium 3 0 30 68 18 0 0 0 38 0 0 0 0 0 0 0 0

Lesquereusia gibbosa 0 0 22 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Lesquereusia minor 0 0 0 0 0 44 1 0 0 0 16 0 200 0 186 29 0

Lesquereusia modesta 0 29 173 110 118 45 8 8 0 0 0 267 0 0 374 90 233

Lesquereusia modesta caudata 0 0 12 25 0 0 4 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Lesquereusia ovalis 0 0 0 0 4 0 1 0 0 62 0 0 0 0 0 0 0

Lesquereusia sp.

0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 6 0 0

Lesquereusia spiralis 0 0 0 4 53 31 2 0 0 0 16 0 0 0 0 0 0

Lesquereusia spiralis arcuata 0 0 0 20 0 0 2 0 0 45 0 0 0 0 73 44 0

Netzelia wailesi 0 252 140 86 5 0 0 0 527 137 0 44 0 0 612 58 35

Netzelia tuberculata 0 33 5 115 0 0 0 0 0 0 84 0 0 18 93 21 0

Nebela lageniformis 0 0 0 0 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Nebela tubulosa 0 0 0 0 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Trinema cf. complanatum

0 4 0 0 6 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Trinema enchelys 8 12 14 16 48 55 7 5 168 14 16 41 501 63 4 44 0

Trinema lineare 8 0 0 0 0 6 1 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 6401 3854 4918 11068 2698 3712 922 657 9291 7855 8653 9758 41252 3430 15888 10756 3987

junho/2007 julho/2007 agosto/2007

Lista de Espécies

novembro/2006 dezembro/2006 janeiro/2007

110

APÊNDICE 05 - Biomassa (

gC/gPS) das espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes registradas no período de maior (novembro de 2006 a

janeiro de 2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão do rio Cachoeira -BA.

(continua)

A B A B C A B C A B C A B C

Arcella arenaria 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 1,31 0,00 0,00 0,00

Arcella bathystoma 0,00 0,00 0,68 0,23 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Arcella brasiliensis 0,23 0,00 0,00 4,00 0,32 0,00 0,00 0,00 3,45 2,66 0,00 0,00 0,00 0,55

Arcella catinus 0,00 0,00 0,07 1,80 11,21 36,60 71,93 0,51 1,27 2,93 22,69 211,01 28,92 0,00

Arcella conica 0,00 0,00 2,01 0,00 2,04 0,12 10,91 0,00 0,13 0,00 0,00 0,00 5,52 0,00

Arcella dentata 0,00 0,00 0,04 53,52 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,92

Arcella discoides 71,55 122,95 55,93 21,76 31,71 0,18 120,08 4,20 5,67 29,71 672,88 0,00 64,13 0,55

Arcella discoides pseudovulgaris 0,00 0,00 65,78 0,00 53,22 328,68 634,15 4,68 45,63 821,86 1325,45 4028,55 737,39 16,35

Arcella gibbosa 0,17 0,00 0,00 2,88 0,42 27,27 107,39 0,40 3,40 103,51 66,71 28,95 215,17 0,00

Arcella gibbosa laevis 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,37 0,88 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Arcella gibbosa mitriformis 0,00 0,00 0,00 55,48 8,99 165,91 99,18 2,11 0,00 0,00 23,41 0,00 7,52 0,00

Arcella hemisfaerica 2,38 2,64 0,35 5,32 3,11 29,36 19,44 0,87 0,33 5,33 41,42 0,00 0,00 0,23

Arcella hemisfaerica undulata 0,10 0,06 2,91 0,24 1,67 9,32 6,66 0,00 5,70 18,81 102,40 169,84 130,79 0,00

Arcella intermedia 0,00 0,00 1,45 0,00 0,49 0,00 0,00 0,05 4,75 5,82 5,65 11,98 0,00 0,00

Arcella lobostoma 1,33 0,00 0,23 0,00 0,09 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 124,01

Arcella megastoma 96,42 201,81 146,11 65,77 148,08 881,03 220,92 13,02 95,95 1497,09 1731,55 738,28 556,28 0,00

Arcella nordestina 1,11 0,00 0,00 0,47 0,16 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Arcella polypora 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,07 162,40 0,00 0,00 0,00

Arcella rotundata 0,00 0,00 0,00 4,33 2,29 0,00 3,51 0,90 3,74 60,92 21,52 37,81 19,41 0,07

Arcella sp.

0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 7,31

Arcella vulgaris 15,79 17,40 11,49 14,27 13,93 62,27 40,04 11,00 7,05 204,58 390,16 20,46 208,38 0,00

Centropyxis aculeata 2,76 0,75 1,22 0,63 0,59 3,67 4,14 0,07 0,24 3,04 15,18 9,20 2,84 0,04

Centropyxis aerophila 0,00 0,00 0,02 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Centropyxis cassis 0,00 0,00 0,01 0,11 0,07 0,30 0,05 0,00 0,00 0,37 0,16 0,00 0,00 0,00

Centropyxis cassis spinifera 0,00 0,00 0,01 0,00 0,01 0,00 0,00 0,00 0,01 0,54 0,14 0,00 0,00 0,00

CentropyxIs marsupiformis 0,00 0,00 0,00 0,00 0,05 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Centropyxis constricta 0,00 0,01 0,01 0,02 0,22 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Centropyxis discoides 119,92 13,09 95,51 60,65 47,46 754,32 49,64 0,00 0,00 147,50 263,47 6,68 0,00 0,00

Centropyxis ecornis 0,02 0,00 0,01 0,02 0,10 0,48 0,30 0,00 0,00 0,26 1,06 0,00 0,43 0,00

Lista de Espécies

novembro/2006 dezembro/2006 janeiro/2007 junho/2007 julho/2007

111

APÊNDICE 05 - Biomassa (

gC/gPS) das espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes registradas no período de maior (novembro de 2006 a

janeiro de 2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão do rio Cachoeira -BA.

(continua)

A B A B C A B C A B C A B C

Centropyxis hemisphaerica 0,00 0,00 0,00 0,00 0,02 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,47 0,00 0,00 0,00

Centropyxis hirsuta 0,02 0,01 0,01 0,15 0,09 0,96 0,63 0,01 0,13 1,48 3,61 9,98 1,34 0,08

Centropyxis minuta 0,00 0,00 0,00 0,02 0,02 0,21 0,35 0,01 0,02 0,53 0,06 0,12 0,00 0,02

Centropyxis orbicularis 2,07 5,68 0,00 0,00 0,01 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Centropyxis platystoma 0,01 0,00 0,01 0,01 0,32 0,00 0,07 0,02 0,02 0,00 0,00 0,00 0,00 0,01

Centropyxis sp.

0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Cyclopyxis eurystoma 0,00 0,00 0,06 0,02 0,01 0,10 0,03 0,01 0,00 0,00 0,06 0,00 0,00 0,00

Cyclopyxis kahli 0,00 0,00 0,03 0,02 0,02 0,00 0,12 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Cyclopyxis sp.

0,00 0,01 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Cyphoderia ampulla 0,00 0,00 0,00 0,00 0,02 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Curcubitella dentata 0,00 0,00 0,10 0,00 3,87 0,00 0,00 0,00 0,00 26,85 0,00 0,00 0,00 0,00

Curcubitella madagascariensis 0,00 0,84 0,47 2,16 1,50 0,00 0,00 0,00 0,29 0,14 0,00 0,00 0,00 0,00

Curcubitella mespiliformis 0,00 9,89 0,80 4,98 1,07 46,41 0,00 0,27 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugia acuminata 1,51 1,28 4,22 0,85 0,00 8,79 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

D. gramen 2,37 1,32 7,38 19,06 10,53 187,12 172,94 1,92 3,84 144,75 78,93 633,86 35,41 1,10

Difflugia achlora 0,00 0,00 0,02 0,00 0,01 0,07 1,31 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugia angulostoma 5,85 1,25 5,39 7,88 0,47 25,38 34,66 1,39 1,68 55,20 32,71 36,22 2,13 0,23

Difflugia avellana 0,49 0,16 0,00 0,15 0,00 0,00 0,00 3,00 0,00 51,10 0,00 0,00 0,00 0,46

Difflugia bacilifera 0,05 0,52 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugia bicornis 0,14 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugia brevicola 0,00 1,67 0,09 0,77 1,83 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugia corona 3,23 30,73 34,38 35,01 1,69 312,60 354,58 0,00 15,23 310,40 309,38 703,89 327,20 0,00

Difflugia corona ecornis 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 150,35 3,73 2,91 0,00 0,00

Difflugia corona tuberculata 0,00 0,61 42,04 8,51 0,00 0,00 47,46 0,00 0,00 0,00 0,00 0,95 267,88 0,96

Difflugia decloitrei 0,00 0,01 0,00 0,01 0,01 0,15 0,21 0,00 0,02 0,54 0,16 0,00 0,02 0,00

Difflugia difficilis 0,00 0,00 0,02 0,00 0,04 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugia elegans 0,00 1,05 2,95 1,37 0,00 0,00 0,00 0,01 0,00 0,00 0,00 0,37 0,00 0,00

Difflugia elegans angustata 0,00 0,00 0,00 0,00 0,07 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugia elegans teres 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,04 0,00 0,00 0,00

Difflugia globularis 5,55 0,00 15,89 7,75 2,00 90,27 18,41 3,01 0,00 27,27 0,00 0,71 0,00 4,91

Lista de Espécies

novembro/2006 dezembro/2006 janeiro/2007 junho/2007 julho/2007

112

APÊNDICE 05 - Biomassa (

gC/gPS) das espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes registradas no período de maior (novembro de 2006 a

janeiro de 2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão do rio Cachoeira -BA.

(continua)

A B A B C A B C A B C A B C

Difflugia globulosa 1,88 0,02 0,01 0,04 0,03 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,03 0,00 0,11 0,00

Difflugia gramen caudata 0,00 0,00 0,07 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugia lanceolata 7,13 2,56 8,00 0,24 2,85 0,00 28,94 1,63 0,00 0,00 0,00 0,00 99,97 2,00

Difflugia lithophila 0,05 0,05 0,08 0,30 0,15 1,55 0,68 0,65 4,46 1,62 1,15 0,33 0,11 1,89

Difflugia lobostoma 1,37 0,94 4,04 2,88 2,18 38,30 54,90 1,61 6,85 131,58 175,11 71,11 143,40 1,19

Difflugia lobostoma cornuta 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 2,08 34,15 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugia lobostoma multilobata 0,00 0,00 0,00 2,93 0,00 0,00 0,00 0,64 0,00 0,00 0,00 34,36 0,00 0,00

Difflugia lobostoma tuberosa 0,00 0,00 4,14 2,07 0,00 0,00 46,02 0,00 0,00 35,16 0,00 0,00 85,91 0,00

Difflugia manicata 1,33 0,38 7,90 17,60 9,07 182,43 0,58 3,91 0,94 77,60 7,36 11,72 0,00 1,17

Difflugia minuta 0,00 0,00 0,02 0,03 8,89 0,00 0,08 0,01 0,07 27,62 15,47 0,80 25,98 0,00

Difflugia mitriformis 9,20 12,85 19,03 13,08 0,00 269,10 0,00 3,11 1,68 25,52 48,95 177,18 0,00 5,03

Difflugia oblonga 8,36 12,27 7,79 4,23 5,62 28,50 67,16 1,35 0,00 0,71 5,53 0,00 0,00 0,00

Difflugia penardi 0,06 0,15 1,15 0,00 0,18 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 4,79 0,00 3,27 0,00

Difflugia pleustônica 0,00 0,00 0,00 0,02 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,18 0,00 0,00 0,05 0,00

Difflugia pristis 0,00 0,00 0,00 0,01 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,01 0,00 0,00 0,00

Difflugia schuurmani 0,28 0,35 0,73 0,40 0,25 3,07 1,84 0,01 0,10 0,61 0,33 1,39 0,21 0,02

Difflugia sp.

0,00 0,00 0,00 0,00 5,54 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugia urceolata 4,39 2,90 2,23 0,12 0,00 13,04 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugia urceolata lageniformis 0,00 0,00 0,00 0,00 7,73 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugia urceolata minor 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 36,92 0,00 0,00 10,23 0,00 0,00 0,00 0,00

Pentagonia marrocanna 0,00 0,00 0,04 0,01 0,01 0,00 0,00 0,02 0,01 0,00 0,01 0,00 0,00 0,00

Protocurcubitela coriniformis 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 2,15 0,00 0,00 184,68 41,01 0,00

Difflugiella angusta 0,00 0,47 0,00 0,00 0,01 0,00 0,13 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugiella crenulata 0,03 0,31 0,00 0,95 0,13 0,00 0,23 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugiella horrida 0,00 0,17 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugiella oviformis 0,46 0,27 0,98 1,08 0,22 23,10 19,45 0,57 0,06 7,32 20,05 0,00 2,45 0,34

Difflugiella patinata 0,00 0,02 0,02 0,03 0,09 0,00 0,00 0,40 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Difflugiella sp.

0,26 0,04 0,23 0,01 0,04 0,00 0,00 0,05 0,00 2,05 0,00 0,00 0,00 0,00

Lista de Espécies

novembro/2006 dezembro/2006 janeiro/2007 junho/2007 julho/2007

113

APÊNDICE 05 - Biomassa (

gC/gPS) das espécies de amebas testáceas associadas as rizosferas de E. crassipes registradas no período de maior (novembro de 2006 a

janeiro de 2007) e menor (junho a agosto de 2007) vazão do rio Cachoeira -BA.

(conclusão)

A B A B C A B C A B C A B C

Difflugiella voigli 0,00 0,00 0,05 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 1,17 0,00 0,00 0,00

Euglypha acanthophora 0,00 0,47 2,88 1,88 0,83 10,40 10,93 0,17 0,05 1,90 13,35 13,34 23,02 0,10

Euglypha ciliata 0,00 0,00 0,00 0,20 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Euglypha cristata 0,00 0,00 0,00 0,00 0,20 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Euglypha cristata major 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,02 2,13 0,00 0,00 0,00

Euglypha filifera 0,10 0,49 0,15 0,23 0,41 2,00 18,12 0,21 0,14 0,00 8,99 0,00 2,33 0,00

Euglypha filifera magna 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,02 0,00 0,00

Euglypha laevis 0,00 0,00 0,00 0,00 0,05 5,75 11,64 0,08 0,00 0,01 0,00 0,00 0,00 0,00

Euglypha mucronata 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,15 2,88 0,00 0,00 0,00

Euglypha rotunda 0,00 0,00 0,08 0,23 0,32 0,01 3,41 0,00 0,05 1,74 0,09 8,74 0,00 0,00

Euglypha strigosa 0,07 0,00 0,02 0,00 0,00 3,58 0,48 0,16 0,00 0,02 0,00 1,36 0,28 0,00

Euglypha tuberculata 0,02 0,16 0,17 0,14 0,54 2,30 0,00 0,07 0,00 0,00 0,18 0,00 0,00 0,00

Lesquereusia epistomium 0,01 0,00 0,06 0,06 0,22 0,00 0,00 0,00 0,01 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Lesquereusia gibbosa 0,00 0,00 8,53 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Lesquereusia minor 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,40 0,04 0,00 0,00 0,00 0,10 0,00 0,08 0,00

Lesquereusia modesta 0,00 1,33 12,02 1,00 0,21 0,92 0,49 0,10 0,00 0,00 0,00 36,82 0,00 0,00

Lesquereusia modesta caudata 0,00 0,00 0,08 1,41 0,00 0,00 18,41 0,01 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Lesquereusia ovalis 0,00 0,00 0,00 0,00 0,02 0,00 10,65 0,00 0,00 0,35 0,00 0,00 0,00 0,00

Lesquereusia sp.

0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Lesquereusia spiralis 0,00 0,00 0,00 0,04 0,13 0,52 0,38 0,00 0,00 0,56 0,21 0,00 0,00 0,00

Lesquereusia spiralis arcuata 0,00 0,00 0,00 0,03 0,00 0,00 0,21 0,00 0,00 0,56 0,00 0,00 0,00 0,00

Netzelia wailesi 0,00 7,69 2,25 0,60 0,10 0,00 0,00 0,00 0,46 31,96 0,00 146,97 0,00 0,00

Netzelia tuberculata 0,00 2,38 0,10 1,28 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 42,19 0,00 0,00 0,29

Nebela lageniformis 0,00 0,00 0,00 0,00 0,14 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Nebela tubulosa 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Trinema cf. complanatum

0,00 0,43 0,00 0,00 0,04 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Trinema enchelys 0,62 0,12 0,15 0,06 0,31 6,09 3,75 0,01 0,25 0,61 2,01 3,27 3,76 0,09

Trinema lineare 0,04 0,00 0,00 0,00 0,00 0,30 0,24 0,03 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00

Total 369 461 581 433 396 3563 2355 63 219 4066 5629 7344 3043 170

Lista de Espécies

novembro/2006 dezembro/2006 janeiro/2007 junho/2007 julho/2007

114

Prancha 01: A: Arcella braziliensis; B: Arcella megastoma; C: Arcella discoides

pseudovulgaris; D: Arcella hemisphaerica; E: Arcella catinus; F: Arcella vulgaris; G: Arcella

hemisphaerica undulada; H: Arcella gibbosa; I: Centropyxis aculeata; J: Centropyxis cassis

spinifera; K: Centropyxis platystoma; L: Centropyxis minuta; M: Centropyxis spinosa; N:

Centropyxis discoides; O: Cyphoderia ampulla; P: Euglypha filifera; Q: Euglypha laevis; R:

Euglypha rotunda; S: Lesquereusia spirallis e T: Lesquereusia modesta. (Escala = 50 µm)

115

Prancha 02: A: Lesquereusia spirallis decloitrei; B: Netzelia tuberculata; C: Netzelia

waillesi; D: Difflugia acuminata; E: Difflugia corona; F: Difflugia difficilis; G: Difflugia

lithophila; H: Difflugia lobostoma; I: Difflugia mitriformis; J: Difflugia pleustonica; K:

Difflugia schuurmani; L: Difflugia schuurmani; M: Difflugia urceolata; N: Difflugia

urceolata minor; O: Difflugia urceolata lageniformis; P: Difflugia oblonga. (Escalas: Barra

preta = 50 µm; Barra azul: 100 µm)

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