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JOSÉ EVANDO AGUIAR BESERRA JÚNIOR
DETERMINANTES VIRAIS ASSOCIADOS ÀS DIFERENTES PROPRIEDADES
BIOLÓGICAS DE DOIS ISOLADOS DE Lettuce mosaic virus (LMV): CINÉTICA DA
INFECÇÃO VIRAL E INFECÇÃO DOS TECIDOS EMBRIONÁRIOS
Tese apresentada à Universidade
Federal de Viçosa, como parte das
exigências do Programa de Pós-
Graduação em Fitopatologia, para
obtenção do título de Doctor Scientiae
VIÇOSA
MINAS GERAIS - BRASIL
2008
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Ficha catalográfica preparada pela Seção de Catalogação e
Classificação da Biblioteca Central da UFV
T
Beserra Júnior, José Evando Aguiar, 1976-
B552d Determinantes virais associados às diferentes proprie-
2008 dades biológicas de dois isolados de Lettuce mosaic virus
(LMV) : cinética da infecção viral e infecção dos tecidos
embrionários / José Evando Aguiar Beserra Júnior.
– Viçosa, MG, 2008.
x, 78f. : il. (algumas col.) ; 29cm.
Orientador: Francisco Murilo Zerbini Júnior.
Tese (doutorado) - Universidade Federal de Viçosa.
Inclui bibliografia.
1. Lettuce mosaic virus. 2. Potyvirus. 3. Alface -
Doenças e pragas. 4. Alface - Doenças e pragas -
Resistência. I. Universidade Federal de Viçosa. II.Título.
CDD 22.ed. 635.5298
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JOSÉ EVANDO AGUIAR BESERRA JÚNIOR
DETERMINANTES VIRAIS ASSOCIADOS ÀS DIFERENTES PROPRIEDADES
BIOLÓGICAS DE DOIS ISOLADOS DE Lettuce mosaic virus (LMV): CINÉTICA DA
INFECÇÃO VIRAL E INFECÇÃO DOS TECIDOS EMBRIONÁRIOS
Tese apresentada à Universidade
Federal de Viçosa, como parte das
exigências do Programa de Pós-
Graduação em Fitopatologia, para
obtenção do título de Doctor Scientiae
APROVADA: 27 de maio de 2008.
Prof. Murilo Geraldo de Carvalho
(Co-orientador)
Prof. Maite Vaslin de Freitas Silva
Pesq. Poliane Alfenas Zerbini
Prof. Sérgio Oliveira de Paula
Prof. Francisco Murilo Zerbini Júnior
(Orientador)
iii
AGRADECIMENTOS
Apesar das dúvidas, é a Deus que sempre procuro nos momentos de aflição e de
agradecimento por tudo que tenho na vida. Aos meus pais Francisca e Evando e irmão
Anderson, dos quais sinto muita falta. Aos meus sobrinhos Ian e Ícaro, que vejo uma vez ao
ano e, que por isso dão um salto de crescimento cada vez que os vejo. À Beatriz, que sempre
esteve ao meu lado. À tia Maria, uma pessoa maravilhosa. À Universidade Federal de Viçosa
(UFV), pela oportunidade de realização desse curso. À Coordenação de Aperfeiçoamento de
Pessoal de Nível Superior (CAPES), pela concessão da bolsa de estudo. Ao professor Murilo
Zerbini, pelo exemplo de profissional dedicado, no qual tentarei me espelhar na minha vida
profissional. Aos professores Murilo Geraldo de Carvalho e Renate Krause-Sakate, pela co-
orientação, conversas e conselhos. À Anete, Poli e Juliana Ramos, pela ajuda nos
experimentos de PCR em tempo real. À Cláudia Vanetti, pela paciente ajuda com os
procedimentos de imunomarcação. Aos professores do curso de Pós-Graduação em
Fitopatologia, por seus ensinamentos. Aos amigos do Laboratório de Virologia Vegetal,
Alison, Álvaro, Ana Verônica, Antônio Wilson, Bruno Diboa, Carlos, Carlos d’Ocesano,
Carol, Dani, Eduardo, Fernanda, Fábio, Gloria, Joaquim, Jorge, Miguel, Poli, Renan, Riani,
Sávio e Tathiana pela amizade e pela contribuição em tornar, ainda mais, o ambiente de
trabalho um lugar agradável. A todos que me ajudaram e me apoiaram ao longo desses anos e
que, de alguma forma, contribuíram para a realização deste trabalho.
iv
BIOGRAFIA
José Evando Aguiar Beserra Júnior, filho de José Evando Aguiar Beserra e Francisca
de Melo Lima Beserra, nasceu na cidade do Rio de Janeiro-RJ, em 03 de dezembro de 1976,
onde viveu até os seis anos de idade.
Em seguida mudou-se para Fortaleza-CE, onde viveu até 2001. Lá se formou Biólogo
pela Universidade Federal do Ceará. Em 2002 inciou o curso de mestrado em Fitopatologia na
Universdade Federal de Lavras, Lavras-MG, sob a orientação da Profa. Antonia dos Reis
Figueira, onde estudou o controle genético de cultivares de melancia aos vírus PRSV e WMV.
Em março de 2004, iniciou o curso de pós-graduação em Fitopatologia em nível de
doutorado na Universidade Federal de Viçosa, Viçosa-MG sob a orientação do prof Francisco
Murilo Zerbini.
v
SUMÁRIO
RESUMO.................................................................................................................................vii
ABSTRACT.............................................................................................................................ix
Introdução Geral.......................................................................................................................1
Revisão de Literatura ...............................................................................................................8
1. A família Potyviridae......................................................................................................8
2. HC-Pro: supressora da resposta de defesa de plantas......................................................10
3. Determinantes de virulência............................................................................................12
4. Determinantes de patogenicidade....................................................................................17
5. Transmissão pela semente...............................................................................................19
6. Recombinação: geração de variabilidade........................................................................22
Literatura Citada.......................................................................................................................26
Capítulo 1. Imunolocalização de dois isolados de Lettuce mosaic virus em óvulos de
alface pré- e pós-fertilização....................................................................................................34
Resumo................................................................................................................................35
Introdução............................................................................................................................36
Material e Métodos..............................................................................................................38
Resultados e Discussão........................................................................................................40
Literatura Citada..................................................................................................................43
Capítulo 2. Adaptabilidade de dois isolados de Lettuce mosaic virus (LMV) e seus
recombinantes em alface e Nicotiana benthamiana.................................................................47
Resumo................................................................................................................................48
Introdução............................................................................................................................49
vi
Material e Métodos..............................................................................................................52
Resultados............................................................................................................................55
Discussão.............................................................................................................................59
Literatura Citada..................................................................................................................65
vii
RESUMO
Beserra Jr., José Evando Aguiar, D.Sc., Universidade Federal de Viçosa, maio de 2008.
Determinantes virais associados às diferentes propriedades biológicas de dois
isolados de Lettuce mosaic virus (LMV): cinética da infecção viral e infecção dos
tecidos embrionários. Orientador: Francisco Murilo Zerbini Júnior. Co-orientadores:
Renate Krause-Sakate e Murilo Geraldo de Carvalho.
O mosaico da alface, causado pelo potyvírus Lettuce mosaic virus (LMV), é uma das
principais doenças da cultura. A estirpe típica do vírus inclui isolados transmitidos pela
semente, mas que não infectam cultivares de alface contendo os alelos de resistência
recessivos mo1
1
e mo1
2
. A estirpe Most inclui isolados transmitidos pela semente e que
infectam tais cultivares. O isolado brasileiro “AF199” pertence à estirpe Most. A taxa de
transmissão pela semente desse isolado chega a 16,5%. Esse isolado induz sintomas mais
severos em Nicotiana benthamiana e possui período latente mais curto em comparação ao
isolado “E”, coletado na Espanha. Além disso, esse isolado é capaz de induzir necrose
sistêmica em certas cultivares de alface. O isolado E infecta cultivares contendo os genes de
resistência recessivos, mas não é transmitido pela semente nessas cultivares. O presente
trabalho teve como objetivos: (i) analisar os tecidos de óvulos e embriões de alface infectados
pelos isolados AF199 e E; (ii) estudar os mecanismos de adaptabilidade dos isolados AF199 e
E, e de três recombinantes obtidos entre eles, na cultivar de alface Salinas 88 e em N.
viii
benthamiana. O isolado AF199 foi detectado em todos os tecidos de óvulos coletados antes
ou após a fertilização. Já o isolado E não foi detectado em nenhum dos tecidos do óvulo, antes
ou após a fertilização. Esses resultados indicam que a não transmissão pela semente do
isolado E se deve ao fato das partículas virais não serem capazes de atingir o tecido
reprodutivo feminino, e sugerem que fatores relacionados ao movimento do vírus na planta
podem estar envolvidos no processo de transmissão do LMV pela semente. A cinética de
infecção viral foi analisada em plantas nas quais a folha inoculada foi destacada após
diferentes períodos de tempo. O acúmulo de RNA viral foi analisado em folhas inoculadas e
não-inoculadas. Os resultados indicam que o isolado AF199 atinge maior concentração nas
folhas inoculada e não-inoculada mais cedo que o isolado E, em ambos os hospedeiros. O
recombinante Rec1 induziu sintomas distintos dos parentais e acumulou mais em N.
benthamiana. O recombinante Rec4 apresentou menor acúmulo dentre todos os
isolados/recombinantes testados em N. benthamiana. Em alface, os recombinantes Rec3 e
Rec4 apresentaram acúmulo cerca de 10 vezes superior ao isolado AF199. Conclui-se que o
isolado AF199, e os recombinantes que possuem a região P1/HC-Pro desse isolado, são mais
adaptados do que isolados que possuem essa região do isolado E. Essa melhor adaptação
poderia estar relacionada à supressão do silenciamento gênico induzida por P1/HC-Pro.
ix
ABSTRACT
Beserra Jr., José Evando Aguiar, D.Sc., Universidade Federal de Viçosa, May 2008. Viral
determinants associated with the distinct biological properties of two isolates of
Lettuce mosaic virus (LMV): Kinetics of viral infection and infection of the
embrionary tissues. Adviser: Francisco Murilo Zerbini Júnior. Co-advisers: Renate
Krause-Sakate and Murilo Geraldo de Carvalho.
Lettuce mosaic, caused by the potyvirus Lettuce mosaic virus (LMV), is one of the main
diseases of lettuce. The type strain of the virus includes isolates which are seed borne in
lettuce, but which cannot infect lettuce cultivars harboring the recessive resistance aleles mo1
1
e mo1
2
. The Most strain includes isolates which are also seed borne and can infect cultivars
with the recessive resistance genes. The Brazilian isolate “AF199” belongs to the Most strain.
Its seed transmission rate can be as high as 16,5%. This isolate induces severe symptoms in
Nicotiana benthamiana and has a shorter latent period in comparison to isolate “E”, collected
in Spain. Furthermore, this isolate induces systemic necrosis in some lettuce cultivars. Isolate
E can infect cultivars with the recessive resistance genes, but it is not seed borne in these
cultivars. The objectives of this work were: (i) to analyze the tissues of ovules and embryos
from lettuce plants infected by isolates AF199 and E; (ii) to study the fitness mechanisms of
isolates AF199 and E, and of three recombinants obtained between these two isolates, in
lettuce ‘Salinas 88’ and N. benthamiana. Isolate AF199 was detected in all tissues of ovules
collected before and after fertilization. Conversely, isolate E was not detected in any ovule
x
tissues, before or after fertilization. These results suggest that the absence of seed
transmission of isolate E is due to the inability of viral particles in reaching the reproductive
tissues, and that viral factors related to movement within the plant could be involved in seed
transmission. The kinetics of systemic infection was analyzed in plants in which the
inoculated leaf was removed after different periods of time. Viral RNA accumulation was
analyzed in inoculated and non-inoculated leaves. The results indicate that isolate AF199
reaches a higher concentration in both inoculated and non-inoculated leaves, earlier than
isolate E, in both hosts. The recombinant Rec1 induced distinct symptoms and reached a
higher titer in N. benthamiana compared to the parental isolates. Rec4 reached the lowest
concentration among the isolates/recombinants tested in N. benthamiana. In lettuce, the
relative concentrations of the recombinants Rec3 and Rec4 was up to 10-fold higher in
comparison to the AF199 isolate. It is concluded that isolate AF199, and those recombinants
having the P1/HC-Pro coding region derived from this isolate, are better adapted than isolates
having the P1-HC/Pro region derived from isolate E. This better adaptability could be related
to the suppression of RNA silencing induced by P1/HC-Pro.
1
INTRODUÇÃO GERAL
A alface (Lactuca sativa L.) é uma das hortaliças de maior importância econômica
no mundo (Dinant e Lot, 1992). Na América do Sul, o maior produtor de alface é o Brasil,
sendo o estado de São Paulo o maior produtor nacional, com 21.587 toneladas em 2007
(Agrianual, 2007).
Diversas viroses já foram descritas infectando naturalmente plantas de alface. O
mosaico da alface, causado pelo Lettuce mosaic virus (LMV, família Potyviridae, gênero
Potyvirus), é a principal doença viral da cultura. O LMV foi relatado pela primeira vez na
Flórida (Jagger, 1921). No Brasil, o primeiro relato foi feito na década de 1940 (Kramer et al.,
1945). O LMV é um vírus de partícula alongada e flexuosa, com genoma composto por uma
única molécula de RNA de fita simples, sentido positivo, com 10.080 nucleotídeos. Seu RNA
possui uma proteína de origem viral (VPg) ligada covalentemente à extremidade 5’ e é
poliadenilado na extremidade 3’ (Revers et al., 1997b). O LMV apresenta uma ampla gama
de hospedeiros, infectando 121 espécies vegetais pertencentes a 17 famílias botânicas e 60
gêneros (Dinant e Lot, 1992). De distribuição cosmopolita, o LMV é transmitido por afídeos
de maneira não-circulativa e também pela semente (Dinant e Lot, 1992). Diversas espécies de
2
afídeos são capazes de transmitir o LMV, sendo a espécie Myzus persicae a mais eficiente
(Edwardson e Christie, 1991).
Os sintomas mais comuns induzidos pelo LMV em alface incluem mosaico, redução
de crescimento, clareamento de nervuras, distorção foliar, e necrose localizada ou sistêmica,
podendo eventualmente levar à morte da planta (Le Gall, 2003). Observa-se uma alta
variabilidade na indução de sintomas dependendo da cultivar e do isolado viral, especialmente
em termos de virulência (Revers et al., 1997a).
No Brasil e em muitos países europeus o LMV tem sido controlado por meio do uso
de cultivares resistentes, as quais perfazem a grande maioria das cultivares plantadas. Até o
final da década de 1960, dois genes de resistência haviam sido identificados: o gene recessivo
g, encontrado na cultivar argentina ‘Gallega de Invierno’ (Bannerot et al., 1969), e o gene
recessivo mo, encontrado em um acesso selvagem de Lactuca proveniente do Egito (Ryder,
1970). Posteriormente, foi demonstrado que os genes g e mo constituem, na verdade, dois
alelos do mesmo gene (Pink et al., 1992a; Pink et al., 1992b). O gene g passou a ser
denominado mo1
1
, e o gene mo passou a ser denominado mo1
2
(Le Gall, 2003). A maioria das
cultivares plantadas no Brasil possui o alelo mo1
1
(Stangarlin, 1995). Além dos dois alelos
recessivos, algumas cultivares de alface possuem o gene dominante Mo2, originalmente
presente em Lactuca virosa (Pink et al., 1992a). Os dois alelos do gene recessivo mo1
codificam isoformas do fator de tradução eucariótico eIF4E, que se liga ao “cap” de RNAs
mensageiros eucariotos e recruta fatores de tradução adicionais, resultando na circularização
do mRNA e início da tradução (Nicaise et al., 2003). Genes de resistência recessivos a outros
potyvírus também correspondem a isoformas do eIF4E (Lellis et al., 2002; Ruffel et al., 2002;
Leonard et al., 2004; revisado por Robaglia e Caranta, 2006). É sabido que o eIF4E interage
com a proteína VPg dos potyvírus, ligada covalentemente à extremidade 5’ do RNA viral (que
não é capeado), facilitando sua tradução (Robaglia e Caranta, 2006). Beauchemin et al. (2007)
sugerem que a associação entre a VPg e o fator de tradução deve ser necessária para executar
3
funções distintas, dependendo do precursor da VPg em questão. A interação de VPg-Pro com
o eIF(iso)4E pode afetar alguma função relacionada ao ciclo celular, enquanto que a interação
de 6k-VPg-Pro com o fator de tradução deve ser necessária para a tradução e/ou replicação do
RNA viral. Entretanto, a primeira evidência direta da participação da VPg na iniciação da
tradução foi o trabalho de Khan et al. (2008). Os autores mostraram que a interação eIF4F-
VPg reforça a tradução independente de “cap”, aumentando a afinidade do eIF4F pelo RNA
do Tobacco etch virus (TEV) em três vezes.
Estirpes do LMV capazes de infectar cultivares contendo os alelos mo1
1
ou mo1
2
já
foram detectadas na Europa, Oriente Médio e Brasil (Dinant e Lot, 1992; Pink et al., 1992a;
Pink et al., 1992b; Stangarlin et al., 2000). A classificação de isolados de LMV em patótipos
foi proposta com base na capacidade dos isolados em infectar cultivares contendo diferentes
genes de resistência (Pink et al., 1992a). Isolados pertencentes ao patótipo I infectam apenas
cultivares que não possuem genes de resistência. Isolados pertencentes ao patótipo II
(incluindo a estirpe típica) são capazes de infectar cultivares que possuem o gene Mo2, mas
não aquelas com os alelos mo1
1
e mo1
2
. Isolados pertencentes ao patótipo III superam a
resistência conferida pelo gene Mo2 e pelo alelo mo1
1
. Isolados pertencentes ao patótipo IV
são capazes de suplantar a resistência proporcionada pelo gene Mo2 e pelos alelos mo1
1
e
mo1
2
.
Um estudo mais recente, com base na análise filogenética de 73 isolados de LMV
com diferentes propriedades biológicas, indicou que o relacionamento entre isolados ocorre
inicialmente em termos da capacidade de transmissão pela semente, independente da
capacidade de infectar plantas contendo os alelos de resistência recessivos (Krause-Sakate et
al., 2002). Por sua vez, o grupo de isolados transmitidos pela semente é claramente dividido
em dois subgrupos, constituindo duas estirpes denominadas “Common” e “Most”. Os isolados
da estirpe Common não infectam plantas contendo os alelos de resistência recessivos. Os
isolados pertencentes à estirpe LMV-Most (“mo
1-breaking, seed-transmitted”) infectam
4
genótipos contendo os alelos de resistência recessivos, e são transmitidos pelas sementes
dessas plantas (Krause-Sakate et al., 2002). A capacidade de quebra de resistência aliada à
transmissão pela semente torna esses isolados uma séria ameaça para a cultura da alface, por
facilitar a disseminação à longa distância do vírus por meio do comércio internacional de
sementes. Até o presente não foram identificadas fontes naturais de resistência aos isolados da
estirpe Most.
Isolados pertencentes às estirpes Common e Most podem ser detectados
diferencialmente via RT-PCR com oligonucleotídeos específicos (Peypelut et al., 2004).
Utilizando essa estratégia, um levantamento de incidência de isolados de LMV pertencentes
às duas estirpes foi realizado nas principais regiões produtoras de alface do estado de São
Paulo entre 2003 e 2005. Um total de 1362 amostras de alface com sintomas típicos de
mosaico foram analisadas. Destas, 159 (11%) foram positivas para a estirpe Most, e 341
(25%) foram positivas para a estirpe Common (Firmino et al., 2005).
O isolado brasileiro LMV-AF199, coletado em plantas de alface no estado de São
Paulo (Stangarlin et al., 2000), pertence à estirpe Most (Krause-Sakate et al., 2002). A taxa de
transmissão pela semente desse isolado é bastante elevada, chegando a 16,5% em cultivares
de alface onde genes de resistência estão ausentes, e a 1,9% em genótipos contendo os alelos
recessivos mo1
1
e mo1
2
(Jadão et al., 2002). Além disso, esse isolado também é capaz de
induzir necrose sistêmica nas cultivares de alface Ithaca (que contém o gene dominante Mo2)
e Vanguard 75 (Mo2 e mo1
2
), levando à morte da planta (Krause-Sakate et al., 2005). Essas
propriedades o tornam interessante para o estudo dos mecanismos moleculares envolvidos na
interação LMV-alface.
O isolado LMV-E, obtido de plantas de alface na Espanha (Dinant e Lot, 1992), é
classificado como pertencente ao patótipo IV, uma vez que infecta plantas contendo os alelos
de resistência recessivos (Pink et al., 1992b). Entretanto, esse isolado não é transmitido pela
semente nessas plantas e, portanto não pertence à estirpe Most. Filogeneticamente, esse
5
isolado se agrupa em um ramo distinto dos isolados de LMV transmitidos pela semente
(Krause-Sakate et al., 2002), juntamente com outros isolados atípicos do vírus. A ausência de
transmissão pela semente desse isolado sugere a incapacidade de infectar o tecido
embrionário imaturo, o que é um pré-requisito para a transmissão pela semente para a maioria
dos vírus (Maule e Wang, 1996). Até o momento não existem estudos identificando os
determinantes de transmissão pela semente no patossistema LMV-alface, e não se sabe quais
os tecidos embrionários infectados por isolados transmitidos ou não pela semente. Nesse
sentido, o patossistema mais estudado é Pea seed-borne mosaic virus (PSbMV)-ervilha, onde
já foram mapeados os determinantes de transmissão pela semente (Johansen et al., 1996), e
determinados os tecidos do embrião que devem ser infectados pelo vírus para que a
transmissão pela semente ocorra (Wang e Maule, 1994).
Estudos sobre as interações moleculares dos potyvírus com seus hospedeiros
tornaram-se possíveis graças ao sequenciamento dos genomas virais, à construção de clones
infecciosos a partir de DNA complementar (cDNA), às técnicas de mutagênese e à construção
de vírus recombinantes. A obtenção de clones infecciosos de potyvírus possibilitou a
descoberta de funções de várias proteínas virais, e constitui um passo necessário no
mapeamento dos determinantes genéticos de propriedades biológicas. Até o momento,
cDNAs infecciosos de vários potyvírus já foram obtidos, incluindo Zucchini yellow mosaic
virus (ZYMV) (Lin et al., 2002), Plum pox virus (PPV) (López-Moya e García, 2000), Potato
virus Y (PVY) (Jakab et al., 1997), PSbMV (Johansen et al., 1996) e Potato virus A (PVA)
(Puurand et al., 1996), dentre outros. Um clone infeccioso do isolado LMV-E também foi
obtido (Yang et al., 1998). Embora o isolado AF199 tenha sido clonado e completamente
sequenciado (Krause-Sakate, 2001), um clone infeccioso não está disponível para esse
isolado.
Por meio da análise de vírus recombinantes entre LMV-AF199 e LMV-E, Krause-
Sakate et al. (2005) identificaram duas regiões do genoma viral, localizadas nas regiões
6
codificadoras das proteínas P1 e CI, como potenciais responsáveis pelo sintoma de necrose
sistêmica induzido por AF199 na cultivar Ithaca. Entretanto, a distinção entre qual dessas
regiões (ou ambas) é responsável pela necrose sistêmica não foi possível, pois os
recombinantes que poderiam fornecer essa informação não foram infecciosos. A inexistência
de um clone infeccioso do isolado AF199 impossibilitou a obtenção de recombinantes
recíprocos. Além disso, não foi possível identificar qualquer sequência relacionada ao
fenótipo de necrose sistêmica na cultivar Vanguard 75. Provavelmente outras regiões do
genoma do isolado AF199 estão envolvidas na severidade e cinética de desenvolvimento de
sintomas em alface.
Utilizando os mesmos recombinantes do estudo anterior, Krause-Sakate et al. (2007)
constataram que a presença de um fragmento de 1989 nucleotídeos correspondente à parte das
regiões codificadoras das proteínas P1 e HC-Pro do isolado E leva a um atraso de uma
semana no desenvolvimento dos sintomas após inoculação na cultivar Salinas 88 (mo1
2
).
Portanto, as proteínas P1 e HC-Pro do isolado AF199 devem ser importantes para a
adaptabilidade desse isolado. É possível que essa adaptabilidade esteja relacionada à
supressão do silenciamento gênico induzido pela proteína HC-Pro ou mesmo pela maior
capacidade de movimento sistêmico, já que os recombinantes que possuíam as sequências
P1/HC-Pro do isolado AF199 apresentaram cinéticas de desenvolvimento de sintomas
intermediárias entre os parentais, enquanto os recombinantes que possuíam a sequência
P1/HC-Pro do isolado E apresentaram cinéticas de desenvolvimento de sintomas semelhantes
a esse isolado (Krause-Sakate et al., 2007).
Embora esses recombinantes tenham sido obtidos in vitro, é frequente a ocorrência
de recombinação na natureza, a qual é uma forte força geradora de variabilidade (Chare e
Holmes, 2006). Dentre os recombinantes gerados, alguns podem apresentar maior adaptação
que os parentais e, portanto, podem prevalecer no campo a longo prazo.
7
A análise molecular poderá identificar determinantes virais responsáveis pela
virulência e adaptabilidade do isolado AF199, e quais os possíveis fatores do hospedeiro
envolvidos nessas características. Assim, os objetivos desse trabalho foram: (i) analisar os
tecidos de óvulos e embriões de alface infectados pelos isolados E e AF199; (ii) estudar os
mecanismos de adaptabilidade dos isolados AF199 e E, e de três recombinantes entre esses
dois isolados, na cultivar de alface Salinas 88 e em Nicotiana benthamiana.
8
REVISÃO DE LITERATURA
1. A família Potyviridae
Potyviridae é uma das maiores e economicamente mais importantes famílias de vírus
que infectam plantas, contendo cerca de 15% das espécies descritas (Fauquet et al., 2005). As
espécies dessa família estão agrupadas em seis gêneros (Bymovirus, Ipomovirus,
Macluravirus, Potyvirus, Rymovirus e Tritimovirus), que diferem quanto ao tipo de vetor e
organização do genoma (Berger et al., 2005). Os potyviridae são cosmopolitas, sendo
encontrados em todo o mundo infectando mais de 2.000 espécies de plantas pertencentes a 81
famílias e mais de 550 gêneros. Todos os potyviridae induzem a formação de inclusões
cilíndricas no citoplasma de células infectadas, também denominadas “cata-ventos”, sendo
esta uma característica determinante para a identificação de espécies pertencentes à família.
As espécies dessa família, em ampla maioria, são facilmente transmitidas experimentalmente
de plantas infetadas para plantas sadias pela inoculação via extrato vegetal tamponado ou via
preparações virais concentradas (Berger et al., 2005).
O gênero Potyvirus é o mais numeroso da família, com 91 espécies, incluindo o
Lettuce mosaic virus (LMV). Esses vírus são transmitidos de maneira não-circulativa por
afídeos, por intermédio da proteína HC-Pro (“Helper Component-Proteinase”) codificada pelo
9
vírus (Shukla et al., 1994). As partículas virais são alongadas e flexuosas, com 680-900 nm de
comprimento e 11-13 nm de diâmetro. O genoma é constituído por uma única molécula de
RNA de fita simples, sentido positivo, com aproximadamente 10.000 nucleotídeos. O RNA
genômico é envolto por um capsídeo formado por cerca de 2.000 cópias da proteína capsidial
(CP). A proteína capsidial dos potyvírus, com massa molecular de aproximadamente 34 kDa,
apresenta uma região amino-terminal altamente variável em tamanho e sequência, uma região
central conservada contendo de 215 a 227 aminoácidos, e uma região carboxi-terminal com
18-20 aminoácidos. As regiões amino- e carboxi-terminal estão voltadas para o exterior da
partícula viral, e são responsáveis pelas propriedades antigênicas do vírus (Shukla et al.,
1994).
Os potyvírus se assemelham aos picornavírus quanto à organização do genoma e
processamento da poliproteína (Bedard e Semler, 2004). O RNA em sua extremidade 5’ é
covalentemente ligado a uma proteína de origem viral (VPg), e possui uma cauda
poliadenilada na extremidade 3’ (Urcuqui-Inchima et al., 2001). A sequência de nucleotídeos
da região 5’-não traduzida (NTR), é essencial para a tradução do RNA viral por conter um
sítio de entrada interna de ribossomos (Basso et al., 1994). A região 3’NTR coopera com a
5’NTR para uma tradução eficiente (Gallie et al., 1995). O RNA genômico possui uma única
fase aberta de leitura (“open reading frame”, ORF), capaz de codificar uma poliproteína com
cerca de 350 kDa. A poliproteína é processada por três proteases virais (P1, HC-Pro e NIa),
originando de 8 a 10 produtos finais (Shukla et al., 1994). Uma característica das proteínas
sintetizadas pelos potyvírus é o seu caráter multifuncional. Cada proteína é geralmente
responsável por várias funções durante o ciclo de infecção (revisado por Urcuqui-Inchima et
al., 2001).
O nível de identidade entre as sequências dos genomas de espécies do gênero
Potyvirus é relativamente baixo. A análise de 187 genomas completos de espécies da família
Potyviridae por meio de comparações entre as sequências da ORF completa demonstrou que a
10
maioria das espécies em um mesmo gênero possui entre 50 e 55% de identidade, embora
existam alguns grupos de espécies mais relacionadas (Adams et al., 2005). O nível de
identidade para demarcação de espécies no gênero Potyvirus foi proposto em 76% para a
sequência de nucleotídeos, e 82% para a sequência de aminoácidos. A análise da região
codificadora de cada proteína em separado indicou níveis de demarcação de espécies
(nucleotídeos) de 58% (P1) ou de 74-78% (demais genes). Comparações utilizando a região
codificadora da proteína CI foram as que melhor representaram o genoma completo. A análise
com base em 1.220 sequências da proteína capsidial indicou um valor de 76-77% de
identidade de nucleotídeos para demarcação de espécies (Adams et al., 2005).
2. HC-Pro: supressora de respostas de defesa de plantas
Uma das proteínas liberadas após a clivagem da poliproteína dos potyvírus é a HC-
Pro. É uma proteína multifuncional que atua em diferentes etapas do ciclo de infecção viral:
transmissão por afídeos, atividade de auto-protease, fator auxiliar na replicação do genoma
viral, movimento célula-a-célula e a longa distância, transmissão pela semente, determinante
de patogenicidade, sinergismo viral, e inibição da resposta de defesa da planta (revisado por
Urcuqui-Inchima et al., 2001).
Estudos de mutagênese e alinhamentos de sequências identificaram três regiões
funcionais de HC-Pro: uma região amino-terminal essencial para a transmissão pelo vetor,
uma região central relacionada com a capacidade de ligação a RNA, envolvida na
amplificação do genoma viral e na supressão de silenciamento gênico, e uma região carboxi-
terminal onde está presente o sítio proteolítico. A região amino-terminal da HC-Pro do LMV
não é essencial para sua auto-interação, e a região carboxi-terminal é extremamente resistente
a proteólise (Plisson et al., 2003).
Anandalakshmi et al. (1998) demonstraram que HC-Pro age como uma supressora
do silenciamento de RNA. O silenciamento de RNA é uma defesa natural da planta contra o
11
ataque de vírus (Xie e Guo, 2006). O processo de replicação do RNA viral leva à formação de
um RNA de fita dupla (dsRNA), o qual é clivado por RNases tipo III (denominadas “Dicer-
like”, DCL, em Arabidopsis) em fragmentos de 21-24 nucleotídeos denominados siRNAs
(“small interfering RNAs”). Os siRNAs se associam a um complexo ribonucleoprotéico
denominado RISC (“R
NA-induced silencing complex”), direcionando a degradação
sequência-específica do RNA viral (revisado por Vaucheret, 2006). A supressão do
silenciamento de RNA é uma estratégia adotada por diferentes espécies de vírus para
contornar essa resposta de defesa.
Como evidência da ação supressora da HC-Pro, um mutante natural do Clover yellow
vein virus (CYVV) que possuía duas mutações pontuais nas posições 27 (T para I) e 193 (D
para Y) foi analisado em termos de sua infectividade (Yambao et al., 2007). Esse mutante
(MM) induz sintomas menos severos do que o isolado original (n.30), o qual induz necrose
generalizada em Vicia faba. A HC-Pro mutante foi avaliada por agroinfiltração em plantas de
Nicotina benthamiana 16c, uma linhagem homozigota para GFP (“g
reen fluorescent
protein”). A atividade supressora da HC-Pro mutante foi prejudicada por ambas as mutações.
Os resultados reforçam a função da HC-Pro como supressora do silenciamento gênico, e
como fator de virulência.
Uma segunda classe de pequenos RNAs conhecidos como miRNAs (“mi
croRNAs”)
derivam de RNAs transcritos a partir de genes endógenos não-traduzíveis e processados pela
DCL-1. Os miRNAs estão envolvidos na regulação de diversos genes relacionados ao
desenvolvimento da planta (revisado por Matranga e Zamore, 2007). A supressão do
silenciamento de RNA por HC-Pro também causa, provavelmente de forma inadvertida, a
supressão da via dos miRNAs (Dunoyer et al., 2004). A inibição do acúmulo de miRNAs
durante a infecção pelo Turnip mosaic virus (TuMV) induz uma série de anormalidades no
desenvolvimento de órgãos vegetativos e reprodutivos em Arabidopsis, indicando que os
12
sintomas induzidos por potyvírus podem ser devidos, pelo menos parcialmente, à interferência
na via dos miRNAs (Kasschau et al., 2003).
A região central da HC-Pro é responsável pela inibição do acúmulo dos miRNAs,
embora o mecanismo ainda não tenha sido determinado (Mallory et al., 2001). Uma possível
forma de ação seria o estímulo de reguladores negativos endógenos do silenciamento. Em
apoio a essa hipótese, foi demonstrado que HC-Pro interage com uma proteína da planta
relacionada a calmodulina, denominada rgsCaM, e que rgsCaM é capaz de suprimir o
silenciamento de RNA (Anandalakshmi et al., 2000). Outro mecanismo proposto para a ação
da HC-Pro é que a mesma teria a capacidade de sequestrar dsRNAs virais, inativando o
silenciamento gênico (Mérai et al., 2006). Entretanto, os autores não demonstram que a
interação existente entre a HC-Pro do TEV e os dsRNAs é de fato a base do mecanismo de
ação supressora dessa proteína. Fato curioso é que o mesmo resultado não foi observado para
a HC-Pro do PVY.
Além de sua função como supressora de silenciamento, HC-Pro atua também em
outra via de defesa da planta contra patógenos. Ballut et al. (2005) constataram a ação
supressora da HC-Pro do LMV sobre a atividade de RNase do proteossomo 20S, um
componente protéico envolvido na regulação do metabolismo celular e possivelmente
responsável pela degradação inespecífica de RNAs virais. A atividade de endonuclease do
proteossomo 20S foi associada à degradação do RNA genômico do LMV e do Tobacco
mosaic virus (TMV) (Ballut et al., 2003).
3. Determinantes de virulência
Alguns vírus podem infectar uma planta sem indução de sintomas macroscópicos.
Por outro lado, certos vírus podem levar a uma rápida indução de sintomas severos,
eventualmente ocasionando a morte de seu hospedeiro. Uma combinação de fatores
ambientais e genéticos é responsável pelas diferenças na severidade de sintomas causados por
13
diferentes isolados virais (Hull, 2002). Determinantes de sintomatologia já foram
caracterizados em diversas interações potyvírus-hospedeiro, e, dependendo da interação,
diferentes regiões do genoma viral estão envolvidas.
A classificação de isolados de Potato virus Y (PVY) é bastante complexa, levando-se
em consideração o hospedeiro, o tipo de sintoma induzido, sorologia e dados moleculares.
São conhecidos três grupos de estirpes infectando batata: PVY
N
, PVY
O
e PVY
C
. Os isolados
PVY
N
induzem necrose de nervuras em Nicotina tabacum ‘Xanthi’, enquanto os isolados
PVY
O
induzem apenas mosaico. Por meio da construção de vírus recombinantes entre
isolados do tipo PVY
N
e PVY
O
foram identificados dois resíduos (K
400
e D
419
) na região C-
terminal da HC-Pro do PVY
N
envolvidos no sintoma de necrose (Tribodet et al., 2005).
Os isolados de Potato virus A (PVA) B11 e U infectam plantas de Nicotiana
benthamiana sistemicamente, causando mosaico severo e distorção foliar. O isolado B11
difere de U por não ser capaz de infectar plantas de batata, provavelmente devido a sucessivas
passagens experimentais por N. benthamiana. Vírus recombinantes foram obtidos a partir dos
clones infecciosos de ambos os isolados. Curiosamente, um dos recombinantes induziu um
fenótipo atípico de clorose das nervuras sem causar distorção foliar em N. benthamiana.
Apesar da diferença fenotípica, a comparação dos genomas dos dois isolados revelou
identidade elevada. A região 3’-NTR é idêntica nos dois isolados, enquanto a região 5’-NTR e
a ORF apresentam 97,5% de identidade de nucleotídeos. A maior variabilidade foi encontrada
nas regiões codificadoras da proteína 6K
1
e da proteína capsidial, com 95,5 e 96,8% de
identidade, respectivamente. Aparentemente a recombinação de isolados semelhantes
originou um novo isolado viral capaz de induzir um fenótipo distinto, sugerindo que
diferentes partes do genoma agem coordenadamente favorecendo a adaptabilidade de novos
isolados (Paalme et al., 2004).
Isolados de Tobacco etch virus (TEV), quando inoculados em plantas de pimenta
(Capsicum frutescens ‘Tabasco’), causam tipicamente necrose do sistema radicular, seguida
14
de murcha e morte da planta. Utilizando vírus recombinantes entre a estirpe típica TEV-HAT,
que induz murcha, e o isolado TEV-NW (“non wilt”), que não causa murcha, identificaram-se
duas regiões do genoma viral responsáveis por esse fenótipo: a primeira região corresponde à
porção amino-terminal da proteína P3 e à porção carboxi-terminal de CI, e a segunda região
corresponde à sequência completa de 6K
2
e à porção amino-terminal da VPg (Chu et al.,
1997). Todas essas regiões são necessárias para que o fenótipo de murcha ocorra.
Uma sequência de 173 aminoácidos da porção carboxi-terminal da proteína P3+6K
1
do isolado PS do Plum pox virus (PPV) foi identificada como envolvida na diferença de
sintomas observados em plantas de Nicotiana clevelandii inoculadas com os isolados PS e R
(Saénz et al., 2000). Esse determinante de virulência também participa na indução de
sintomas em Pisum sativum, mas provavelmente uma sequência de apenas 74 aminoácidos
está relacionada com o fenótipo nesse hospedeiro. Subpopulações virais de PPV-PS foram
segregadas a partir de um único isolado (Sáenz et al., 2001). Alguns sub-isolados induziram
sintomas distintos daqueles induzidos pelo isolado original. A comparação das sequências
nucleotídicas entre os sub-isolados revelou uma identidade de 99,9%. A alteração de um
único aminoácido na HC-Pro foi suficiente para modificar os sintomas induzidos em
Nicotiana spp. e alterar a capacidade de infecção em plântulas de pêra.
Por meio da construção de vírus recombinantes e de mutagênese sítio-dirigida, o
aminoácido básico arginina na posição 180 foi substituído por um aminoácido hidrofóbico
(isoleucina) na sequência conservada FRNK da HC-Pro do Zucchini yellow mosaic virus
(ZYMV) (Gal-On, 2000). Essa substituição reduziu a severidade dos sintomas em abóbora e
levou à infecção latente (sem sintomas) em melão, melancia e pepino. Entretanto, apesar da
alteração na virulência, não houve redução no acúmulo de RNA viral quando comparado ao
isolado original. A sequência FRNK é totalmente conservada na proteína HC-Pro dos
potyvírus, estando presente em todas as espécies do gênero. Curiosamente, as plantas
15
infectadas com o ZYMV mutante tornaram-se “protegidas” contra uma posterior infecção
com isolados severos.
Uma mutação pontual na proteína P3 de isolados de ZYMV foi suficiente para
induzir “quebra” de tolerância, tornando o vírus mutante mais apto que o tipo selvagem
durante infecções mistas em cultivares tolerantes de Cucurbita pepo (Desbiez et al., 2003).
Procurando identificar determinantes de virulência, um fragmento de 953 nt
correspondente à região codificadora da HC-Pro do isolado LMV-E foi identificado como
responsável pela severidade de sintomas na cultivar de alface Trocadero, induzindo mosaico
severo e necrose (Redondo et al., 2001). Vírus recombinantes derivados do isolado LMV-0
(que induz sintomas suaves) contendo a sequência de 953 nt do isolado LMV-E adquiriram a
capacidade de induzir os mesmos sintomas severos. As sequências deduzidas de aminoácidos
dos dois isolados apresentam apenas sete diferenças nessa região, porém a sequência
conservada FRNK está presente em ambos os isolados.
Trabalho semelhante foi desenvolvido com os isolados AF199 e E do LMV (Krause-
Sakate et al., 2005). O isolado AF199 induz sintomas severos de murcha e necrose sistêmica
nas cultivares Ithaca e Vanguard 75. A análise de recombinantes entre AF199 e E identificou
duas regiões no genoma como responsáveis pelo fenótipo de necrose sistêmica. A região
compreendendo os nucleotídeos 112-386 (correspondente à região codificadora da proteína
P1) e, ou a região compreendendo os nucleotídeos 5496-5855 (correspondente à região
codificadora da proteína CI) são suficientes para indução de murcha e necrose sistêmica na
cultivar Ithaca, mas não em ‘Vanguard 75’, indicando que no genoma do isolado AF199 há
determinantes de virulência distintos para essas duas cultivares. Interessantemente, não
existem diferenças nas sequências deduzidas de aminoácidos entre os dois isolados nessas
regiões, sugerindo que o fenótipo observado pode estar relacionado com a estrutura primária
e/ou secundária do RNA viral.
16
Da mesma forma que regiões codificadoras, as regiões não codificadoras dos
genomas virais também estão relacionadas com a sintomatologia dos potyvírus. Trabalho com
o Tobacco vein mottling virus (TVMV) demonstrou o envolvimento de um segmento de 58
nucleotídeos rico em adenina e uracila da região 3’-NTR na atenuação dos sintomas do
TVMV sem, no entanto, causar uma redução no acúmulo de RNA viral (Rodriguez-Cerezo et
al., 1991). O mecanismo de atenuação dos sintomas não foi identificado, mas possivelmente
está relacionado com alterações na estrutura secundária da região 3’-NTR. Da mesma forma,
demonstrou-se que vírus contendo deleções nos nucleotídeos 127 a 145 da região 5’-NTR do
PPV induzem sintomas atenuados quando comparados ao isolado selvagem (Simón-Buela et
al., 1997).
Objetivando caracterizar fatores virais e do hospedeiro em interações moleculares
potyvírus-planta, 35 acessos e mutantes de Arabopsis thaliana foram inoculados com três
isolados de LMV (E, 0 e AF199), resultando numa ampla gama de fenótipos (Revers et al.,
2003). A análise de recombinantes entre os isolados 0 e E mapeou um determinante de
virulência responsável pela suscetibilidade do acesso Nd-1 ao isolado E entre os nucleotídeos
5855-6163, correspondentes à região codificadora da proteína VPg. A análise de populações
segregantes revelou três genes dominantes conferindo resistência a isolados de LMV. O gene
LLM1 foi responsável pela resistência local do acesso Columbia ao isolado 0, enquanto dois
genes dominantes inibiram o movimento sistêmico do isolado AF199. Esses resultados
demonstram a existência de diversos determinantes virais e do hospedeiro que interagem de
forma positiva ou negativa durante o processo de infecção, podendo levar a respostas
compatíveis (suscetibilidade) ou incompatíveis (resistência). Além disso, deixam claro que
estudos realizados com o objetivo de identificar e caracterizar determinantes de virulência
devem sempre considerar o isolado viral e a cultivar/genótipo do hospedeiro em questão, pois
diferentes combinações de isolado viral e cultivar do hospedeiro podem permitir a
identificação de certos determinantes, e impedir a identificação de outros.
17
4. Determinantes de patogenicidade
A resistência a vírus devido a genes recessivos é bastante comum, compreendendo
cerca de 40% de todos os casos conhecidos em relação a potyvírus (Provvidenti & Hampton,
1992, citado por Revers et al., 2003). O mecanismo de ação desses genes difere daquele dos
genes de resistência dominantes. Ao invés de acionar respostas de defesa da planta, como a
resistência sistêmica adquirida (SAR), a resposta de hipersensibilidade (HR) ou o
silenciamento de RNA, a maioria dos genes recessivos codifica fatores do metabolismo
celular, os quais frequentemente são necessários em algum estágio do ciclo de infecção e/ou
desenvolvimento da doença. A ausência de tais fatores, ou a presença de versões mutantes,
impede que a interação com fatores virais ocorra, e consequentemente confere à planta um
caráter de resistência. Geralmente os genes responsáveis por esse tipo de resistência ocorrem
em agrupamentos, com especificidade para diferentes espécies de potyvírus, ou para estirpes
de uma espécie de vírus (Provvidenti & Hampton, 1992, citado por Revers et al., 2003).
Algumas regiões do genoma dos potyvírus, particularmente a sequência codificadora
da VPg, estão diretamente relacionadas com a capacidade do vírus em suplantar genes de
resistência ou com a habilidade de infectar espécies hospedeiras específicas (Revers et al.,
1999). Variações de seis aminoácidos na VPg do isolado TVMV-S estão envolvidas na
capacidade de infectar plantas contendo o gene de resistência va, como a cultivar TN 86 de
fumo (Nicolas et al., 1997). A VPg provavelmente interage com um fator do hospedeiro
envolvido no movimento célula-a-célula do vírus, pois o isolado selvagem TVMV-WT,
incapaz de infectar sistemicamente essa cultivar, replica normalmente em protoplastos.
A VPg é uma proteína de origem viral que está covalentemente ligada à extremidade
5’ do RNA viral (Urcuqui-Inchima et al., 2001). Por meio do sistema duplo-híbrido de
levedura, foi demonstrada a interação da proteína precursora VPg-Pro do TEV com os fatores
de iniciação de tradução eucariotos eIF4E e eIFiso4E (Schaad et al., 2000). Posteriormente
confirmou-se que o gene pvr2 (“potyvirus resistance” 2), presente em plantas de pimentão e
18
que confere resistência contra algumas estirpes de PVY, codifica o fator eIF4E, por meio da
análise de segregação dos alelos de pvr2 e uma isoforma do eIF4E, levando a um estado de
incompatibilidade entre VPg e eIF4E em genótipos resistentes (Ruffel et al., 2002). O gene
pvr2 foi isolado e caracterizado, mostrando uma identidade elevada com os eIF4E de A.
thaliana e arroz (Ruffel et al., 2004). Em trabalho semelhante, identificou-se o gene lsp1
(“loss-of-susceptibility to potyviruses” 1) em mutantes de A. thaliana como o eIFiso4E,
conferindo resistência a isolados de TuMV e TEV (Lellis et al., 2002). A análise genética de
19 cultivares de alface em relação à infecção por diferentes isolados do LMV revelou uma
correlação perfeita entre três isoformas do eIF4E e os alelos recessivos mol
1
e mol
2
. Ambos,
eIF4E e mo1
1
,
co-segregaram na progênie obtida a partir de cruzamentos entre genótipos
suscetíveis com genótipos contendo o alelo mo1
1
, resultado confirmado pela expressão
ectópica do eIF4E (Nicaise et al., 2003). O modelo atualmente proposto para a interação entre
a VPg e o eIF4E sugere que a VPg teria função análoga ao “cap” encontrado em mRNAs
eucariotos, sendo reconhecida pelo eIF4E de forma a tornar possível a tradução do genoma
viral (Ruffel et al., 2005). Entretanto, essa hipótese ainda não foi comprovada
experimentalmente.
Outras regiões do genoma de potyvírus também estão envolvidas na interação com
genes de resistência. Duas mutações pontuais fora do motivo associado diretamente com a
ação de helicase da proteína CI do TuMV foram suficientes para suplantar a resistência em
plantas de nabo (Brassica napus) contendo o gene dominante TuRB01 (Jenner et al., 2000).
Trabalho posterior demonstrou que a alteração de um único aminoácido na proteína P3 do
TuMV determina a capacidade de infectar plantas contendo o gene TuRB03. Além disso, a
região C-terminal da proteína P3 foi identificada como responsável pelas diferenças de
sintomas em Brassica juncea (Jenner et al., 2003). O peptídeo 6K
2
, que possui função de
ancoragem do complexo de replicação viral à membrana do retículo endoplasmático, foi
identificado como determinante de infecção sistêmica e indução de sintomas em N.
19
benthamiana e determinante de infecção sistêmica em N. tabacum durante a interação com o
PVA (Spetz e Valkonen, 2004).
Alguns genes de resistência recessivos para potyvírus interferem no movimento
célula-a-célula ou à longa distância, limitando o vírus à célula inicialmente infectada. O alelo
recessivo ra, que pode estar ligado ou mesmo ser um alelo do gene dominante Ry
adg
,
bloqueia
o transporte vascular do PVA (Hamalainen et al., 2000).
5. Transmissão pela semente
O impacto epidemiológico de uma doença é altamente influenciado pelo inóculo
primário, ou seja, o número de plantas infectadas no primeiro ciclo da doença. Portanto,
torna-se evidente a importância da transmissão vertical de vírus por meio de sementes (Hull,
2002). Cerca de 20% dos vírus de plantas são transmitidos por sementes. Entretanto, pouco se
sabe sobre os mecanismos envolvidos.
A transmissão pela semente pode ocorrer de forma direta ou indireta. A transmissão
direta se dá pela invasão do embrião após a fertilização, enquanto a indireta é mediada pela
infecção de gametas antes da fertilização. Em alguns casos, ambos os processos podem
ocorrer simultaneamente, embora a contribuição de cada processo dependa de diversos fatores
(Maule e Wang, 1996). Para que a invasão direta do embrião imaturo ocorra, as partículas
virais precisam atravessar o limite entre os tecidos maternos da progênie (embrião). Somente
após os primeiros estudos de transmissão pela semente no patossistema Pea seed-borne
mosaic virus (PSbMV)-ervilha foi possível propor um modelo que explicasse esse processo.
Em estudos de transmissão de PSbMV em ervilha, o vírus foi detectado em tecidos
florais (sépalas, pétalas, anteras e carpelos) em duas cultivares de ervilha, antes da fertilização
(Wang e Maule, 1992). Todavia, não foram encontradas partículas virais nos grãos de pólen,
nem nos óvulos. Apenas nos primeiros estágios do desenvolvimento da semente, após a
fertilização, foram encontradas partículas virais no embrião. Foi proposto que um tecido
20
conectivo transiente, denominado suspensor, possibilitaria o acesso do vírus ao embrião
(Wang e Maule, 1994). O suspensor, que surge entre os tecidos da planta-mãe e do óvulo após
a fertilização, e que provavelmente está relacionado com o desenvolvimento e nutrição do
embrião, atuaria como uma ponte para que as partículas virais atingissem o embrião, e sua
degeneração “fecharia a janela” para a transmissão do vírus pela semente. Entretanto, é sabido
que embora haja continuidade simplástica (presença de plasmodemas) entre o suspensor e o
embrião em dicotiledôneas, não há conexão simplástica entre as células do suspensor e as
células da testa de semente, impossibilitando o estabelecimento do vírus nos tecidos do
embrião.
Roberts et al. (2003) propuseram uma nova rota para a invasão do embrião. As
partículas virais alcançariam o embrião via suspensor, por meio de sua ligação com a região
micropolar, e desta com a testa de semente. Entretanto, não se tem conhecimento da
existência de plasmodesmas entre esses tecidos. Os autores, por meio de análises
ultraestruturais, sugerem que há conexão simplástica entre as células da testa e da região
micropolar, pois observaram a presença tanto de partículas virais como da proteína CI na
parede das células entre os tecidos. Não foram observadas quaisquer estruturas semelhantes a
plasmodemas em tecidos de plantas infectadas ou sadias. A constatação indireta da presença
de plasmodesmas entre os limites desses tecidos poderia explicar o processo de infecção
direto do embrião.
Embora o modelo proposto por Wang e Maule (1994) sugira que a infecção do
embrião de ervilha pelo PSbMV não ocorre antes da fertilização, outros autores, trabalhando
com patossistemas distintos, encontraram resultados diferentes. Alta taxa de infecção (80%)
de óvulos de Phaseolus vulgaris L. pelo Bean commom mosaic virus (BCMV) foi detectada
antes da fertilização (Schippers, 1963). Porém, a taxa de transmissão desse vírus pela semente
é de apenas 15%. Estudos com o Soybean mosaic virus (SMV) demonstraram que embriões
infectados de cultivares nas quais não ocorre transmissão pela semente apresentam
21
progressiva redução no acúmulo de partículas virais ao longo do processo de desenvolvimento
do embrião, levando à ausência de sementes infectadas (Bowers e Goodman, 1979). Já em
plantas de ervilha infectadas pelo PSbMV a taxa de infecção de embriões permanece
inalterada ao longo do desenvolvimento da semente (Wang e Maule, 1994). Em conjunto,
esses resultados indicam que a simples presença do vírus no embrião imaturo não é suficiente
para assegurar a transmissão pela semente, pois em alguns casos o vírus pode ser inativado
durante o desenvolvimento, ou embriões infectados podem se tornar inviáveis, de forma que
apenas sementes livres de vírus sejam produzidas.
O mecanismo de transmissão do nepovírus Tobacco ringspot virus (TRSV) pela
semente de soja foi estudado em óvulos coletados um dia antes do florescimento. Foram
encontradas partículas virais no embrião, demonstrando um processo direto de transmissão
via óvulo antes da polinização. Os autores realizaram experimentos de polinização cruzada, os
quais sugeriram que a infecção dos megagametófitos é o principal fator de transmissão pela
semente (Yang e Hamilton, 1974).
Poucos trabalhos foram realizados visando elucidar o mecanismo de transmissão de
LMV pela semente de alface. Por meio de cruzamentos entre plantas sadias e infectadas
utilizando plantas com esterelidade masculina, foi evidenciada a capacidade de transmissão
via óvulo, alcançando taxas de transmissão superiores a 5%, enquanto a taxa de transmissão
via pólen foi inferior a 0,5% (Ryder, 1964). A localização do LMV em embriões imaturos de
alface em secções ultrafinas foi investigada por meio de imunomarcação (Hunter e Bowyer,
1994). Os autores encontraram partículas virais em todos os tecidos do óvulo, exceto no saco
embrionário. Contudo, não é sabido se partículas de LMV presentes em tecidos não-
embrionários necessariamente tornam a semente infectada. Os autores sugerem que a
combinação isolado/cultivar utilizada pode não ter sido adequada para a infecção do tecido
embrionário.
22
6. Recombinação: geração de variabilidade
Para um vírus infectar seu hospedeiro sistemicamente, ele deve ser capaz de se
disseminar a partir do foco inicial de infecção para o resto da planta. Evidentemente, isso
implica que os processos virais básicos, tais como replicação, movimento célula-a-célula e a
longa distância, devem ser eficientes. Esses processos são mediados por proteínas codificadas
pelo vírus, as quais requerem interações específicas com fatores do hospedeiro. Alterações
nessas proteínas que resultem em interações incompatíveis ou sub-ótimas podem impedir ou
dificultar o estabelecimento de uma infecção sistêmica. Consequentemente, a composição
genética de um vírus é moldada por seu hospedeiro. Contudo, uma espécie de vírus não é
constituída por uma única sequência genômica, mas por um conjunto de variantes e mutantes
denominados quasispecies (Hull, 2002). A existência de variantes dentro de uma população
de vírus aumenta a probabilidade de sobrevivência e a habilidade do vírus em se adaptar a
diferentes hospedeiros. O processo de adaptação é totalmente dependente de fenômenos como
mutação, pseudo-recombinação e recombinação (Culver e Padmanabhan, 2007).
Eventos naturais de recombinação, envolvendo a troca de material genético entre
duas moléculas de ácido nucléico com sequências semelhantes (recombinação homóloga) ou
distintas (recombinação não-homóloga), gerando moléculas híbridas, têm sido relatados para
vários vírus de plantas, inclusive para potyvírus, incluindo o PPV (Cervera et al., 1993), Yam
mosaic virus (YMV) (Bousalem et al., 2000) e LMV (Krause-Sakate et al., 2004). No caso do
TuMV, foi sugerido que eventos de recombinação que ocorreram em um determinado
hospedeiro podem ter capacitado alguns recombinantes a infectar novos hospedeiros
(Ohshima et al., 2002). A análise de sequências de populações de vários vírus de DNA e
RNA indica que a recombinação pode ser a principal causa de variação evolutiva (Garcia-
Arenal et al., 2001), com diferentes estimativas obtidas quando diferentes genes são
analisados (Roossinck, 1997). Em escala populacional, eventos de recombinação podem
resultar em fortes mudanças nas propriedades dos vírus, com importantes consequências
23
epidemiológicas, incluindo o surgimento de variantes capazes de infectar plantas contendo
genes de resistência. Um exemplo drástico foi o surgimento de uma nova estirpe do vírus da
gripe por meio de recombinação envolvendo o gene da hemaglutinina, o qual é um forte
determinante de virulência. Esse novo variante tornou-se muito mais agressivo que os
parentais, ocasionando a morte de milhões de pessoas durante a epidemia que ficou conhecida
como “Gripe Espanhola” (Gibbs et al., 2001).
Muitos estudos têm se concentrado na variabilidade genética entre isolados da
mesma espécie. Esses estudos indicam que certas regiões do genoma de potyvírus são
flexíveis, permitindo uma elevada diversidade molecular. Exemplos incluem partes da
5’NTR, a proteína P1 e a região amino-terminal da CP (Tordo et al., 1995; Wisler et al.,
1995; Aleman-Verdaguer et al., 1997; Kekarainen et al., 1999).
Adaptabilidade em vírus é frequentemente definida como habilidade replicativa, ou
seja, maior acúmulo de partículas virais nas células e tecidos infectados. Porém, em um
sentido mais amplo, adaptabilidade pode também ser definida como a capacidade de causar
infecção sistêmica, a habilidade de ser transmitido a novos hospedeiros, e provavelmente a
habilidade de causar menos danos ao hospedeiro (Roossinck, 2005).
A competição direta entre isolados de uma mesma espécie de vírus dentro de uma
planta hospedeira pode afetar o sucesso de determinado isolado. Geralmente a competição
entre isolados ocorre em termos de nicho de replicação. Entretanto, o isolado que é um
competidor mais eficiente na planta hospedeira não é necessariamente aquele que será mais
prevalente no campo. Alguns autores têm relatado interferência na competição entre os vírus
Barley yellow dwarf virus (BYDV)-MAV e BYDV-PAV, duas espécies distintas, porém
altamente relacionadas, do gênero Luteovirus (Wen et al., 1991). A época de inoculação foi
importante para determinar a interferência mútua entre eles. Se o hospedeiro adquire os dois
vírus ao mesmo tempo, o BYDV-PAV interfere com a replicação do BYDV-MAV, levando a
menores concentrações de BYDV-MAV. Isso sugere que em termos de competição no
24
hospedeiro, o BYDV-PAV é um forte competidor. Entretanto, se a planta adquire um vírus 15
dias antes do outro, não há interferência do segundo vírus sobre a replicação do primeiro.
Embora existam diversos trabalhos com vírus animais estudando a competição entre
isolados virais da mesma espécie, bem como a diferença de adaptabilidade entre eles, poucos
trabalhos tem medido a adaptabilidade com vírus de plantas. Análises de recombinação com o
cucumovírus Cucumber mosaic virus (CMV) revelaram que a adição de sequências na
extremidade 3’ dos RNAs 2 e 3 do genoma provavelmente resultou de eventos de
recombinação intra- e intermolecular, aumentando a adaptabilidade de isolados de CMV em
Alstroemeria (Chen et al., 2002). Entretanto, em experimentos de competição, os mesmos
recombinantes apresentaram menor adaptabilidade em tabaco, mesmo quando inoculados em
concentrações até 10 vezes superiores.
Em experimentos de competição, plantas de Chenopodium quinoa foram inoculadas
com dois isolados do bromovírus Brome mosaic virus (BMV), verificando-se a ocorrência de
recombinação a partir de lesões locais cloróticas induzidas pelos isolados (Bruyere et al.,
2000). Foi observada uma ocorrência frequente de recombinação homóloga entre as
moléculas de RNA3 dos isolados. Cerca de 18% das lesões continham moléculas
recombinantes, valor elevado quando se considera que foi realizado apenas um procedimento
de inoculação.
Um recombinante de PPV com um fragmento correspondente à região codificadora
da CP e parte da 3’NTR de um isolado não transmitido por afídeo (PPV-NAT), e o restante do
genoma do isolado PPV-SoC, causou sintomas severos em N. benthamiana, semelhante ao
parental PPV-NAT (Dietrich et al., 2007). Porém, em experimentos de competição, o
recombinante foi menos competitivo que seus parentais quando avaliado por RT-PCR. Para
que os vírus recombinantes prevaleçam, estes devem competir com os parentais logo após os
eventos de recombinação a partir dos quais foram gerados, caso contrário serão
provavelmente extintos.
25
Devido a sua elevada especificidade, sensibilidade e rapidez, a PCR em tempo real
passou a ser utilizada em experimentos de competição entre isolados de uma mesma espécie.
Essa técnica foi usada para quantificar a adaptabilidade de isolados de TEV em tabaco
(Carrasco et al., 2007). Os autores avaliaram a reprodutibilidade da técnica por meio de vários
experimentos de competição com o mesmo par de isolados competidores. A sensibilidade do
método foi avaliada pela diferenciação de isolados que diferiam em mutações pontuais. Os
resultados sugerem que essa técnica pode ser usada para potyvírus, e também para vírus
pertencentes a outros gêneros.
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33
insertion on their viability in Escherichia coli and on their infectivity to plants. Archives of
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34
CAPÍTULO 1
IMUNOLOCALIZAÇÃO DE DOIS ISOLADOS DE Lettuce mosaic virus EM ÓVULOS
DE ALFACE PRÉ- E PÓS-FERTILIZAÇÃO
Beserra Jr, J.E.A., Vanetti, C.A., Krause-Sakate, R., Carvalho, M.G. & Zerbini, F.M.
Imunolocalização de dois isolados de Lettuce mosaic virus em óvulos de alface pré- e
pós-fertilização.
35
RESUMO
O relacionamento filogenético entre isolados de Lettuce mosaic virus (LMV) ocorre
inicialmente em termos da capacidade de transmissão pela semente. O grupo de isolados
transmitidos pela semente é dividido em dois subgrupos, constituindo duas estirpes
denominadas “Common” e “Most”. Os isolados pertencentes à estirpe LMV-Most (“mo1-
breaking, seed-transmitted”) infectam genótipos de alface contendo alelos de resistência
recessivos, e são transmitidos pelas sementes dessas cultivares. Com o objetivo de investigar
o mecanismo de transmissão pela semente, foram realizados ensaios de imunolocalização de
dois isolados de LMV em óvulos de alface. O isolado LMV-AF199, pertencente à estirpe
Most, foi detectado em todos os tecidos do óvulo coletado antes e após a fertilização. Já o
isolado LMV-E (não-transmitido pela semente) não foi detectado em nenhum dos tecidos do
óvulo, antes ou após a fertilização. Esses resultados indicam que a não transmissão pela
semente do isolado LMV-E se deve ao fato das partículas virais não serem capazes de atingir
o tecido embrionário, e sugerem que fatores virais envolvidos no movimento do vírus na
planta estão envolvidos no processo de transmissão do LMV pela semente de alface.
36
INTRODUÇÃO
O mosaico da alface, causado pelo Lettuce mosaic virus (LMV, família Potyviridae,
gênero Potyvirus), é a principal doença viral da cultura. O LMV é um vírus de partícula
alongada e flexuosa, com genoma composto por uma única molécula de RNA de fita simples,
sentido positivo, com 10.080 nucleotídeos. Seu RNA possui uma proteína de origem viral
(VPg) ligada covalentemente à extremidade 5’ e é poliadenilado na extremidade 3’ (Revers et
al., 1997). De distribuição cosmopolita, o LMV é transmitido por afídeos de maneira não-
circulativa e também pela semente (Dinant e Lot, 1992).
O relacionamento filogenético entre isolados de LMV ocorre inicialmente em termos
de capacidade de transmissão pela semente (Krause-Sakate et al., 2002). O grupo de isolados
não transmitido pela semente é diverso, sem relacionamento aparente entre os diferentes
isolados. Os isolados transmitidos pela semente podem ser agrupados em duas estirpes,
“Commom” e “Most”. Os isolados pertencentes a estirpe Most (“mo1-breaking, seed-
transmitted”) infectam genótipos contendo os alelos de resistência recessivos mo1
1
e mo1
2
(Krause-Sakate et al., 2002).
O impacto epidemiológico do mosaico da alface é altamente influenciado pela
quantidade de inóculo primário, ou seja, a quantidade de inóculo existente para que se inicie o
primeiro ciclo da doença. Portanto, torna-se evidente a importância da transmissão vertical do
vírus por meio das sementes (Hull, 2002).
A transmissão pela semente pode ocorrer de forma direta ou indireta. A transmissão
direta se dá pela invasão do embrião após a fertilização, enquanto a indireta é mediada pela
infecção de gametas antes da fertilização. Em alguns casos, ambos os processos podem
ocorrer simultaneamente (Maule e Wang, 1996). Para que a invasão direta do embrião
imaturo ocorra, as partículas virais precisam atravessar o limite entre os tecidos maternos e os
da progênie (embrião).
37
Os mecanismos de transmissão pela semente de vírus do gênero Potyvirus vêm sendo
estudados principalmente no patossistema Pea seed-borne mosaic virus (PSbMV)-ervilha,
onde já foram mapeados os determinantes de transmissão pela semente (Johansen et al.,
1996), e determinados os tecidos do embrião que devem ser infectados pelo vírus para que a
transmissão pela semente ocorra (Wang e Maule, 1994). Entretanto, são escassos os estudos
sobre os mecanismos de transmissão de LMV pela semente de alface.
O isolado brasileiro LMV-AF199, obtido de plantas de alface no estado de São Paulo
(Stangarlin et al., 2000), pertence à estirpe Most (Krause-Sakate et al., 2002). A taxa de
transmissão pela semente desse isolado é bastante elevada, chegando a 16,5% em cultivares
de alface onde genes de resistência estão ausentes, e a 1,9% em genótipos contendo os alelos
recessivos mo1
1
e mo1
2
(Jadão et al., 2002).
O isolado LMV-E, obtido de plantas de alface na Espanha (Dinant e Lot, 1992), é
capaz de infectar plantas contendo os alelos de resistência recessivos mo1
1
e mo1
2
. Entretanto,
esse isolado não é transmitido pela semente nessas plantas e, portanto não pertence à estirpe
Most. Filogeneticamente, esse isolado se agrupa em um ramo distinto dos demais isolados de
LMV transmitidos pela semente (Krause-Sakate et al., 2002).
Ambos os isolados infectam os tecidos vegetativos da cultivar de alface Salinas 88,
que possui o alelo recessivo mo1
2
. Entretanto, não se sabe com precisão quais os tecidos
reprodutivos infectados por esses isolados. Este trabalho teve como objetivo analisar os
tecidos de óvulos de plantas de alface da cultivar Salinas 88 infectadas pelos isolados E e
AF199, antes e logo após a fertilização. A análise de secções semi-finas indicou que o isolado
AF199 é capaz de invadir todos os tecidos do óvulo mesmo antes da fertilização do embrião,
enquanto que o isolado E não foi encontrado em nenhum dos tecidos, tanto em óvulos não
fertilizados como após a polinização.
38
MATERIAL E MÉTODOS
Isolados virais e material vegetal. Os isolados virais utilizados nesse estudo foram obtidos a
partir de plantas de alface infectadas em São Paulo, Brasil (isolado AF199) e Espanha
(isolado E), ambos já caracterizados (Dinant e Lot, 1992; Stangarlin et al., 2000). Os isolados
foram mantidos em plantas de Nicotiana benthamiana em casa de vegetação.
Inoculações. Folhas de N. benthamiana infectadas foram homogeinizadas em tampão fosfato
de potássio 0,01M pH 7,2, contendo 0,1% (p/v) de sulfito de sódio usando carburundum 400
mesh como abrasivo. Plantas de alface, cultivar Salinas 88, foram inoculadas quando
apresentavam o quarto par de folhas. As plantas foram mantidas em casa de vegetação até a
fase de florescimento. A infecção viral foi comprovada por ELISA indireto, utilizando anti-
soro policlonal produzido a partir do isolado AF199 (Krause-Sakate et al., 2001).
Coleta dos óvulos. As flores foram coletadas quando as plantas tinham aproximadamente 4
meses de idade. As flores foram coletadas em dois estádios: 1 a 2 dias antes da antese, e 3 a 5
dias após a polinização. Foram coletadas 10 flores/planta para cada isolado, totalizando 50
flores em cada estádio. Também foram coletadas flores de plantas sadias. Os óvulos foram
cuidadosamente removidos usando-se agulha de 0,33 mm e armazenados em microtubos de 2
ml.
Preparo das secções semi-finas. Os óvulos foram fixados em solução de paraformaldeído
4% em tampão fosfato de potássio 0,05M pH 7,0 por 12 horas a 4ºC. Em seguida foram
lavados (3 x 10 min) em etanol 10%, desidratados em série alcoólica (10-100%), e infiltrados
em resina Spurr por 24 horas, com polimerização a 70ºC por 24 horas. Também foram
emblocados, da mesma forma, tecidos foliares de plantas sadias e infectadas de Chenopodium
quinoa. Os blocos foram cortados com lâminas de vidro em ultramicrótomo em secções de
0,3 μm.
39
Imunolocalização. Os cortes foram inicialmente incubados em solução de albumina sérica
bovina (BSA) 0,5% em tampão Tris-salina pH 7,2 (TBSB) por 10 min. Em seguida foram
pré-incubados com soro pré-imune de coelho por 20 min e pré-imune de cabra por 20 min,
ambos na diluição 1:30. Os cortes foram então incubados por 12 horas a 4ºC com anti-soro
policlonal anti-LMV na diluição 1:100 e lavados com tampão TBSB (5 x 10 min). Em
seguida foram incubados com anti-soro de cabra anti-IgG de coelho conjugado a isotiocianato
de fluoresceína (FITC) (diluição 1:50) por 1 hora a temperatura ambiente no escuro. Por fim,
os cortes foram novamente lavados em TBSB (5 x 10 min). A fluorescência foi visualizada
por microscopia confocal (LSM 510, Carl Zeiss Inc., Oberkochen, Alemanha) com laser no
comprimento de onda 488 nm. As imagens foram capturadas e armazenadas utilizando-se o
programa LSM Image (Carl Zeiss).
40
RESULTADOS E DISCUSSÃO
A localização do vírus em óvulos de alface pré- e pós-fertilzação foi analisada por
imunofluorescência indireta. Em óvulos de plantas sadias, ou em óvulos de plantas infectadas
porém incubados com soro pré-imune como anticorpo primário, foi observada fraca
fluorescência de “background”. Portanto, qualquer fluorescência mais intensa que o
“background” nos tecidos avaliados indica a presença do vírus.
Todas as plantas foram testadas por ELISA para confirmação da infecção viral.
Folhas de plantas de C. quinoa sadias ou infectadas com o isolado AF199 foram usadas como
controles da imunomarcação. A presença das partículas virais pode ser observada na forma de
fluorescência intensa nas margens da célula, enquanto a presença de cloroplastos foi
percebida como pontuações auto-fluorescentes nas células de tecidos sadios e infectados (Fig.
1, A e B).
Foram examinados 120 óvulos de 10 plantas infectadas com os isolados AF199 e E,
e 20 óvulos de plantas sadias. Foram analisados 30 óvulos para cada isolado em cada estádio
(pré- e pós-fertilização). Isso se fez necessário uma vez que não é sabido se a infecção do
embrião em sementes de alface ocorre antes ou após a fertilização. A análise das secções
revelou a presença do isolado AF199 em 20% dos óvulos coletados antes da fertilização
(Tabela 1). Valor inferior (13%) foi obtido para os óvulos coletados após a fertilização. Esses
valores refletem a fertilização indireta do embrião via óvulo, visto a baixa probabilidade de
infeção via pólen, que é inferior a 0,5% (Ryder, 1964).
O isolado AF199 foi encontrado infectando todos os tecidos: parede do óvulo,
tegumento, nucelo e saco embrionário (Fig. 1, E, I e K). Não se sabe se partículas virais
presentes em tecidos não-embrionários necessariamente tornam a semente infectada.
Entretanto, a presença de vírus no saco embrionário é uma indicação segura de que a
transmissão pela semente ocorrerá. Resultado diferente foi obtido por Hunter e Bowyer
41
(1994). Estes autores estudaram a localização de um isolado de LMV transmitido pela
semente em ovários maduros de alface, encontrando partículas virais em todos os tecidos do
óvulo, exceto no saco embrionário. É possível que a combinação isolado/cultivar utilizada
pode não ter sido adequada para a infecção do saco embrionário.
Nenhum dos óvulos de plantas infectadas com o isolado LMV-E apresentou
marcação, embora todas as plantas estivessem infectadas. Da mesma forma, não foram
detectadas partículas virais do isolado LMV-E em tecidos do óvulo após a fertilização.
Portanto, a não-transmissão desse isolado pela semente aparentemente se deve ao fato das
partículas virais não conseguirem atingir o embrião imaturo. No modelo PSbMV-ervilha, não
se detectaram partículas virais nos óvulos de ervilha antes da fertilização, embora tenham sido
encontradas em outros tecidos florais (sépalas, pétalas, anteras e carpelos) (Wang e Maule,
1992). Apenas nos primeiros estágios do desenvolvimento da semente, após a fertilização,
foram encontradas partículas virais no embrião. No caso do LMV-E a não transmissão pela
semente se deve provavelmente a fatores virais, enquanto no caso do PSbMV a ausência de
transmissão está relacionada a fatores do hospedeiro, pois foram utilizadas duas cultivares,
uma na qual a transmissão pela semente ocorre, e outra na qual não ocorre. Embora existam
diferenças no mecanismo de resistência entre os patossistemas citados, ambos os resultados
indicam um controle da transmissão pela semente em nível de óvulo.
Wang e Maule (1994) propuseram que um tecido conectivo transiente, denominado
suspensor, possibilitaria o acesso do vírus ao embrião. O suspensor, que surge entre os tecidos
da planta-mãe e do embrião após a fertilização, e que está relacionado com o desenvolvimento
e nutrição do embrião, atuaria como uma ponte para que as partículas virais atingissem o
embrião, e sua degeneração “fecharia a janela” para a transmissão do vírus. De acordo com
esse modelo, não ocorre infecção viral dos tecidos que formarão o embrião antes da
fertilização. Entretanto, outros autores, trabalhando com patossistemas distintos, encontraram
resultados diferentes. Schippers (1963) detectou alta taxa de infecção (80%) de óvulos de
42
Phaseolus vulgaris L. cv. Beka, pelo Bean commom mosaic virus (BCMV) antes da
fertilização. Porém, a taxa de transmissão desse vírus pela semente foi de apenas 15%. O
mecanismo de transmissão do nepovírus Tobacco ringspot virus (TRSV) pela semente de soja
foi estudado em óvulos coletados um dia antes do florescimento. Foram encontradas
partículas virais no embrião, demonstrando um processo indireto de transmissão via óvulo
antes da polinização. Os autores realizaram experimentos de polinização cruzada, os quais
sugeriram que a infecção dos megagametófitos é o principal fator de transmissão pela semente
(Yang e Hamilton, 1974).
No patossitema LMV-alface, comparados os isolados AF199 e E, a capacidade de
transmissão pela semente parece estar relacionada com a capacidade de o vírus infectar os
tecidos do óvulo antes da fertilização. Essa capacidade pode estar relacionada a fatores virais
envolvidos no movimento célula-a-célula ou sistêmico do vírus na planta. A comparação das
sequências de aminoácidos das poliproteínas codificadas pelos dois isolados não é capaz de
indicar diferenças a ponto de sugerir qual proteína viral pode ser a responsável. A análise da
transmissão pela semente dos recombinantes produzidos por Krause-Sakate et al. (2005), bem
como de recombinantes adicionais contendo sequências do isolado AF199 correspondentes à
extremidade 3’ do genoma, é o caminho lógico a ser seguido a fim de identificar os
determinantes virais envolvidos na transmissão do LMV pela semente de alface.
43
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Yang, A.F. e Hamilton, R.I. The mechanism of seed transmission of tobacco ringspot virus in
soybean. Virology, v.62, p.26-37. 1974.
44
Tabela 1. Número de óvulos infectados pelos isolados de LMV-[AF199] e -[E], com base na
análise por imunolocalização de secções semi-finas obtidas de plantas de alface infectadas.
Pré-fertilização Pós- fertilização
LMV-[AF199] 6/30* 4/30
LMV-[E] 0/30 0/30
Sadia 0/10 0/10
*número de óvulos infectados/número de óvulos analisados.
45
Legenda da figura
Figura 1. Imunomarcação de partículas de Lettuce mosaic virus (LMV) em secções semi-
finas de óvulos de alface coletados de plantas infectadas antes e após a fertilização. A e B.
Imagens de fluorescência de tecido foliar de Chenopodium quinoa sadia (A) ou infectada (B)
com o isolado AF199. Pontos auto-fluorescentes nas células correspondem a cloroplastos.
Barra = 100 µm. C, D, E, F, G, H, I e J. Microscopia confocal com luz ultra-violeta e em luz
visível de óvulos de alface pré-fertilização em secções transversais. Óvulo de planta sadia (C
e D), óvulo infectado com o isolado AF199 (E e F), óvulo de planta infectada com o isolado
E (G e H), saco embrionário de óvulo infectado com o isolado AF199 (I e J). Barra = 50 µm.
K e L, óvulo pós-fertilização infectado com o isolado AF199 em secção transversal. Xy =
xilema; OW = parede do óvulo; IN = integumento; NU = nucelo, ES = saco embrionário.
Barra = 100 µm.
46
Figura 1
47
CAPÍTULO 2
ADAPTABILIDADE DE DOIS ISOLADOS DE Lettuce mosaic virus (LMV) E SEUS
RECOMBINANTES EM ALFACE E Nicotiana benthamiana
Beserra Jr, J.E.A., Zerbini, P.A., Krause-Sakate, R., Le Gall, O. & Zerbini, F.M.
Adaptabilidade de dois isolados de Lettuce mosaic virus (LMV) e seus recombinantes em
alface e Nicotiana benthamiana.
48
RESUMO
O Lettuce mosaic virus (LMV) é o principal vírus da cultura da alface (Lactuca sativa). É um
vírus transmitido pela semente e por afídeos, distribuído ao redor do mundo provavelmente
devido ao comércio de sementes infectadas. Dois isolados de LMV capazes de suplantar a
resistência conferida pelo alelo mo1
2
em alface, AF199 e E, diferem quanto à indução de
sintomas e período latente. O isolado AF199 induz sintomas mais severos em N. benthamiana
e possui período latente mais curto em N. benthamiana e alface cv. Salinas 88 (mo1
2
). Foram
realizados experimentos para analisar a adaptabilidade diferencial desses isolados e de três
recombinantes obtidos entre eles. A cinética de estabelecimento da infecção sistêmica foi
analisada em plantas das quais a folha inoculada foi destacada a diferentes períodos de tempo
após a inoculação. O acúmulo de RNA viral dos isolados/recombinantes foi analisado por
PCR em tempo real em folhas inoculadas a 0, 6, 12, 24 e 48 horas após a inoculação (hpi), e
em folhas sistêmicas a 0, 5, 10, 15 e 20 dias após a inoculação (dpi). Os resultados indicam
que o isolado AF199, tanto em N. benthamiana como em alface, é mais rápido em estabelecer
uma infecção sistêmica, alcançando maior concentração na folha inoculada e na folha
sistêmica mais cedo em comparação ao isolado E. O recombinante Rec1 induziu sintomas
distintos dos parentais e acumulou mais em N. benthamiana. O recombinante Rec4
apresentou menor acúmulo dentre todos os isolados/recombinantes testados em N.
benthamiana. Em alface, os recombinantes Rec3 e Rec4 apresentaram acúmulo cerca de 10
vezes superior ao isolado AF199. Os resultados indicam que o isolado AF199 e os
recombinantes que possuem a região P1/HC-Pro desse isolado são melhor adaptados em
relação ao isolado E e àqueles recombinantes com a P1/HC-Pro derivada do isolado E.
49
INTRODUÇÃO
O mosaico da alface, causado pelo Lettuce mosaic virus (LMV, família Potyviridae,
gênero Potyvirus), é a principal doença viral da cultura. O LMV é transmitido por afídeos de
maneira não-circulativa e também pela semente (Dinant e Lot, 1992). A doença é de
distribuição cosmopolita, provavelmente devido ao intercâmbio de lotes de sementes
contaminadas.
O LMV é um vírus de partícula alongada e flexuosa, com genoma composto por
uma única molécula de RNA de fita simples, sentido positivo, com 10.080 nucleotídeos. Seu
RNA possui uma proteína de origem viral (VPg) ligada covalentemente à extremidade 5’ e é
poliadenilado na extremidade 3’. O RNA viral possui uma única fase aberta de leitura (“open
reading frame”, ORF) capaz de codificar uma poliproteína com massa molecular de
aproximadamente 350 kDa. Essa poliproteína sofre auto-clivagem, gerando de 8-10 proteínas
virais (Revers et al., 1997).
Dois genes de resistência ao LMV foram identificados em germoplasma de Lactuca:
dois alelos (mo1
1
e mo1
2
) do gene recessivo mo1, que codifica o fator de tradução eucariótico
eIF4E (Nicaise et al., 2003), e o gene dominante Mo2. Os alelos mo1
1
e mo1
2
foram
incorporados a diversas cultivares de alface em todos os principais países produtores
(incluindo o Brasil), e o plantio dessas cultivares representa a principal estratégia de controle
do mosaico da alface na maioria dos países (com exceção dos EUA, onde a doença é
controlada com o uso de sementes livres de vírus) (Dinant e Lot, 1992; Pink et al., 1992b;
Zerbini et al., 1995). Estirpes do LMV capazes de infectar cultivares contendo os alelos mo1
1
ou mo1
2
já foram detectadas na Europa, Oriente Médio e Brasil (Dinant e Lot, 1992; Pink et
al., 1992a; Pink et al., 1992b; Stangarlin et al., 2000).
A análise filogenética de 73 isolados de LMV com diferentes propriedades
biológicas indicou que o relacionamento entre isolados ocorre inicialmente em termos da
capacidade de transmissão pela semente, independente da capacidade de infectar plantas
50
contendo os alelos de resistência recessivos (Krause-Sakate et al., 2002). O grupo de isolados
transmitidos pela semente é dividido em dois subgrupos, constituindo duas estirpes
denominadas “Common” e “Most”. Isolados pertencentes a estirpe Common não são capazes
de infectar cultivares contendo os alelos de resistência recessivos. Já os isolados pertencentes
à estirpe Most infectam essas cultivares, o que, aliado à transmissão pela semente, torna-os
uma séria ameaça à cultura.
O isolado brasileiro LMV-AF199, obtido de plantas de alface no estado de São Paulo
(Stangarlin et al., 2000), pertence à estirpe Most (Krause-Sakate et al., 2002). Esse isolado
induz mosaico severo na cultivar de alface Salinas 88 (mo1
2
). Além disso, esse isolado
também é capaz de induzir murcha seguida de necrose sistêmica, levando à morte da planta,
nas cultivares de alface Ithaca (Mo2) e Vanguard 75 (Mo2 e mo1
2
) (Krause-Sakate et al.,
2005). O isolado LMV-E, obtido de plantas de alface na Espanha (Dinant e Lot, 1992), tem a
capacidade de infectar Salinas 88 e Vanguard 75, causando sintomas mais suaves e sem a
indução de necrose sistêmica. Esse isolado não é transmitido pela semente em cultivares
contendo alelos de resistência recessivos, e, portanto não pertence à estirpe Most (o que é
confirmado pela análise filogenética) (Krause-Sakate et al., 2002).
O período latente e a severidade dos sintomas induzidos pelos isolados AF199 e E
são distintos. A análise de vírus recombinantes entre esses isolados indicou que a presença de
um fragmento de 1989 nucleotídeos correspondente à parte das regiões codificadoras das
proteínas P1/HC-Pro do isolado E no “background” do isolado AF199 é suficiente para causar
um atraso de uma semana no desenvolvimento dos sintomas após inoculação da cultivar
Salinas 88, quando comparado ao isolado AF199 selvagem (Krause-Sakate et al., 2007). É
possível que as diferenças na cinética de indução de sintomas entre os isolados AF199 e E
estejam relacionadas a diferenças na capacidade das proteínas P1 e, ou HC-Pro desses
isolados de suprimir o silenciamento de RNA (Anandalakshmi et al., 1998), uma vez que os
recombinantes que possuíam as sequências P1/HC-Pro do isolado AF199 apresentaram
51
cinética de desenvolvimento de sintomas intermediária em relação aos isolados parentais
(Krause-Sakate et al., 2007).
Visando investigar os mecanismos de adaptabilidade de isolados de LMV, o presente
trabalho comparou a severidade dos sintomas, o período latente e a cinética de
estabelecimento de infecção sistêmica e de acúmulo do RNA dos isolados AF199 e E e de três
recombinantes entre esses dois isolados obtidos in vitro, em dois hospedeiros, alface e
Nicotiana benthamiana.
52
MATERIAL E MÉTODOS
Isolados virais e clones recombinantes. Os isolados virais utilizados foram obtidos a partir
de plantas de alface infectadas em São Paulo, Brasil (isolado AF199) e Espanha (isolado E),
ambos já caracterizados (Dinant e Lot, 1992; Stangarlin et al., 2000; Krause-Sakate et al.,
2002). Um clone infeccioso correspondente ao isolado E está disponível (Yang et al., 1998).
Embora um clone infeccioso para o isolado AF199 não esteja disponível, o genoma completo
desse isolado foi clonado como cDNA na forma de três fragmentos separados (Krause-Sakate
et al., 2002). Os recombinantes Rec1, Rec3 e Rec4 foram construídos a partir das sequências
dos isolados AF199 e E (Krause-Sakate et al., 2005) (Figura 1). O isolado AF199 foi mantido
em plantas de Nicotiana benthamiana por meio de inoculações sucessivas via extrato vegetal
tamponado em fosfato de potássio 0,01M pH 7,2 contendo sulfito de sódio a 0,01%. Os
clones infecciosos (LMV-E e recombinantes) foram inicialmente inoculados em plantas de N.
benthamiana via biobalística (Aragão et al., 1996) utilizando-se 2 μg de DNA. A partir dessas
plantas, foram mantidas por meio de inoculações sucessivas via extrato vegetal tamponado
conforme descrito para o isolado AF199.
Severidade de sintomas e período latente. Plantas de N. benthamiana e alface cv. Salinas 88
foram avaliadas visualmente quanto a severidade dos sintomas e período latente. Foram
inoculadas 12 plantas de cada hospedeira para cada um dos isolados (AF199 e E) e
recombinantes (Rec1, Rec3 e Re4), a partir das quais foram obtidas médias aritméticas do
número de dias entre a inoculação e o surgimento dos primeiros sintomas macroscópicos.
Cinética de estabelecimento da infecção sistêmica e de acúmulo de RNA viral. Para
inocular quantidades aproximadamente iguais dos isolados virais e dos três recombinantes,
folhas de N. benthamiana infectadas foram avaliadas por ELISA utilizando-se anti-soro
53
policlonal para o isolado AF199 (Krause-Sakate et al., 2001). A partir dos valores de
absorbância obtidos foram pesadas quantidades proporcionais de tecido vegetal infectados
para inoculação. Foram realizados três experimentos independentes. No primeiro e segundo
experimentos foram inoculadas apenas uma folha por planta, e as folhas inoculadas foram
coletadas a 0, 6, 12, 24 e 48 horas após a inoculação. No terceiro experimento foi coletada a
folha mais nova completamente expandida de cada planta inoculada com 0, 5, 10, 15 e 20 dias
após a inoculação (ou seja, foram coletadas folhas não-inoculadas). No primeiro e terceiro
experimentos foram inoculadas três plantas para cada tratamento (vírus x tempo); no segundo
experimento foram inoculadas seis plantas por tratamento. As plantas foram mantidas em
casa-de-vegetação com temperaturas diárias médias de 26±2ºC, observadas para o surgimento
de sintomas até os 15 dias após a inoculação e avaliadas por ELISA. As folhas coletadas
foram congeladas em nitrogênio líquido e armazenadas a -80ºC para posterior extração de
RNA e quantificação da concentração viral via PCR em tempo real.
Extração de RNA. O RNA total do material foliar de cada tratamento foi extraído utilizando-
se o reagente Brazol (LCC Biotecnologia), de acordo com as instruções do fabricante. A
concentração de RNA total foi determinada por espectrofotometria, e a integridade foi
avaliada por eletroforese em gel de agarose (1%). Os RNAs extraídos foram armazenados a
-80ºC.
PCR quantitativo em tempo real (qRT-PCR). Dois microgramas de RNA total de cada
tratamento foram tratados com DNAse (Promega) a 37ºC por 30 min, para garantir que os
produtos de qRT-PCR fossem amplificados somente a partir de RNA. A enzima foi inativada
com a adição de EDTA 25 mM e aquecimento a 65ºC por 10 min. A síntese da primeira fita
de cDNA foi realizada com a enzima SuperScript III (Invitrogen), conforme as instruções do
fabricante, utilizando oligo-dT a 50 μM. As análises quantitativas foram realizadas em um
54
termociclador ABI 7000 (Applied Biosystems), utilizando-se SYBR Green para monitorar a
síntese de DNA fita dupla. As reações foram preparadas em um volume final de 12,5 μl
utilizando-se “SYBR Green PCR Master Mix” (Applied Biosystems), de acordo com as
instruções do fabricante. As sequências dos oligonucleotídeos específicos para análise dos
genomas virais foram determinadas a partir das sequências dos isolados LMV-[AF199]
(AJ278854) e LMV-[E] (X97705), utilizando-se o software Primer Express 2.0 (Applied
Biosystems) (Tabela 1).
Quantificação relativa. Para determinar o melhor normalizador para os tratamentos foram
testados cinco genes com expressão constitutiva que, teoricamente, não devem ser afetados
pela infecção viral: actina 2 (ACT), adenosil-fosforibosil transferase 1 (APT1), fator de
elongação 1α (EF1), gliceraldeído-3-fosfato desidrogenase (G3PDH) e β-6-tubulina (TUB6).
Os oligonucleotídeos testados foram os mesmos utilizados na análise de tomateiros infectados
pelo potyvírus Pepper yellow mosaic virus (PepYMV) (Alfenas, 2006). O normalizador foi
utilizado como controle interno para ajustar o acúmulo de RNA dos isolados virais e
recombinantes entre os tratamentos. Todas as amostras foram analisadas em triplicatas. A
especificidade da amplificação foi determinada por meio da análise das curvas de dissociação.
Os valores de Ct dos tratamentos (vírus x tempo) foram comparados diretamente com o Ct do
normalizador e os resultados foram expressos como incremento da amplificação específica do
gene alvo em relação ao normalizador. O incremento no nível de expressão foi calculado
baseado no método (2
-ΔΔCt
) (Livak et al., 2001).
55
RESULTADOS
Severidade de sintomas e período latente dos isolados AF199 e E e seus recombinantes
em N. benthamiana e alface ‘Salinas 88’
O período latente (medido em dias) do surgimento dos sintomas foi avaliado para os
isolados AF199, E e os recombinantes após a inoculação em N. benthamiana e alface ‘Salinas
88’. Em N. benthamiana os sintomas surgiram em média aos 4 dias após a inoculação (dpi)
com o isolado AF199. Foram observados sintomas de mosaico severo, deformação foliar e
redução do crescimento da planta (Figura 2A). Sintomas mais suaves foram observados após
inoculação com o isolado E, e apenas aos 7 dpi (Figura 2B). Os vírus recombinantes
apresentaram períodos latentes intermediários entre os dois isolados parentais, com os
sintomas surgindo em média aos 5, 6 e 7 dpi para Rec1, Rec4 e Rec3, respectivamente. Os
sintomas observados para Rec1 foram tão severos quanto os observados para o isolado
AF199, com os acréscimos de clareamento das nervuras e epinastia foliar (sintomas
observados apenas para esse recombinante) (Figura 2C). Para os demais recombinantes os
sintomas se caracterizavam por mosaico, deformação foliar e redução do crescimento da
planta (Figura 2D, E).
Em alface cv. Salinas 88 os sintomas de mosaico, clorose das nervuras, deformação
foliar e redução do crescimento da planta foram observados para todos os
isolados/recombinantes, porém foram mais atenuados para o isolado E e o recombinante Rec3
(Figura 2G, I). Os períodos latentes em Salinas 88 foram mais longos em relação àqueles
observados em N. benthamiana: 7, 8, 9, 12 e 14 dpi para AF199, Rec1, Rec4, Rec3 e E,
respectivamente. Os recombinantes Rec1 e Rec4 apresentaram períodos latentes mais
próximos do isolado AF199. Ambos contêm a região do genoma que codifica as proteínas P1
e HC-Pro derivada do isolado AF199.
56
Cinética de estabelecimento da infecção sistêmica pelos isolados AF199 e E e seus
recombinantes em N. benthamiana e alface ‘Salinas 88’
As diferenças observadas entre AF199 e E e entre os recombinantes em relação ao
período latente, tanto em N. benthamiana e alface, sugerem que o isolado AF199 pode atingir
o sistema vascular mais rapidamente em relação ao isolado E, iniciando uma infecção
sistêmica mais precocemente. Essa hipótese foi confirmada nos experimentos em que cada
isolado/recombinante foi inoculado em uma única folha, e esta foi destacada da planta após
diferentes períodos de tempo (6, 12, 24 e 48 hpi) (Tabela 2). Em N. benthamiana, apenas duas
plantas inoculadas com o isolado AF199 e com o recombinante Rec1 foram infectadas
sistemicamente quando a folha inoculada foi destacada a 24 hpi. Após 48 hpi, todos os
isolados e recombinantes alcançaram o sistema vascular. Porém, AF199, Rec1 e Rec4 foram
os mais eficientes, infectando 5, 6 e 4 plantas, respectivamente. Em alface, todos os
isolados/recombinantes foram menos eficientes no estabelecimento da infecção sistêmica,
embora a maioria das plantas tenha sido infectada no tratamento em que a folha inoculada foi
destacada a 48 hpi (Tabela 2). Os resultados sugerem que as proteínas P1/HC-Pro do isolado
AF199 (cuja região codificadora, ou parte dela, está presente nos recombinantes Rec1 e Rec4)
conferem ao vírus maior eficiência no estabelecimento da infecção sistêmica, em comparação
à P1/HC-Pro do isolado E (cuja região codificadora está presente no recombinante Rec3).
Especificidade da PCR quantitativa em tempo real (qRT-PCR)
Dentre os genes candidatos a normalizadores, o gene EF1 foi o que apresentou a
menor variação de expressão entre os tratamentos (dados não mostrados) e, portanto, foi
utilizado como normalizador em todos os experimentos subsequentes. Os oligonucleotídeos
selecionados foram avaliados preliminarmente por RT-PCR, observando-se a presença de
amplicons do tamanho esperado em todos os casos (dados não mostrados). Nos ensaios de
qRT-PCR, as curvas de amplificação apresentaram boa reproducibilidade e cada
57
oligonucleotídeo conduziu a um único pico de amplificação nos ensaios de dissociação (dados
não mostrados).
Cinética de acúmulo de RNA dos isolados AF199 e E e seus recombinantes em N.
benthamiana e alface ‘Salinas 88’
Por meio da PCR em tempo real pôde-se estabelecer uma comparação de acúmulo
entre os isolados virais e seus recombinantes. Plantas de N. benthamiana e alface ‘Salinas 88’
inoculadas com o isolado AF199 exibiram sintomas aproximadamente aos 4 e 7 dpi
respectivamente, mais precocemente em relação às plantas inoculadas com o isolado E.
Entretanto, essa observação, isoladamente, não permite concluir a respeito da cinética do
acúmulo de RNA viral. Dessa forma, plantas inoculadas com AF199 ou E foram analisadas
em diferentes períodos de tempo para o acúmulo de RNA viral em folhas inoculadas e não-
inoculadas.
O isolado AF199 apresentou maior acúmulo em relação ao isolado E em folhas
inoculadas coletadas a 6, 12, 24 e 48 horas após a inoculação (hpi) (Figura 3), confirmando os
resultados de severidade de sintomas e período latente. Curiosamente, o recombinante Rec1
apresentou acúmulo superior ao dos dois isolados parentais e demais recombinantes em N.
benthamiana. O recombinante Rec4, apesar de ter apresentado um período latente mais curto
em relação ao Rec3, apresentou menor acúmulo dentre todos os isolados/recombinantes
testados em N. benthamiana (Figura 3).
Quando o acúmulo de RNA viral foi avaliado em folhas não-inoculadas aos 5, 10, 15
e 20 dpi houve um tendência semelhante de acúmulo de RNA viral ao longos dos dias para
AF199, E, Rec1 e Rec3 em N. benthamiana. Em todos esses tratamentos observou-se uma
redução no acúmulo aos 10 dpi, posterior elevação aos 15 dpi e nova queda aos 20 dpi (Figura
4), possivelmente refletindo uma resposta de defesa da planta e a subsequente resposta do
patógeno. Houve maior acúmulo do isolado AF199 em comparação ao isolado E aos 5 dpi,
58
porém o isolado E apresentou acúmulo semelhante a AF199 aos 15 dpi. Os recombinantes
Rec1 e Rec3 apresentaram um comportamento similar (Figura 4). O Rec1 manteve a
tendência de acúmulo superior aos demais, reforçando sua maior adaptabilidade em N.
benthamiana. Esse maior acúmulo coincide com a indução de sintomas de clareamento das
nervuras e epinastia, induzidos exclusivamente por esse recombinante. O Rec4 novamente
acumulou menos que os demais em N. benthamiana, e ao contrário dos outros, a concentração
de RNA viral aumentou gradativamente até os 15 dpi, reduzindo-se logo em seguida (Figura
4).
Em alface ‘Salinas 88’ houve maior acúmulo dos isolados virais e recombinantes do
que em N. benthamiana. O isolado AF199 apresentou maior acúmulo em relação ao isolado E
em folhas inoculadas coletadas a 6, 12, 24 e 48 hpi (Figura 5), confirmando os resultados de
severidade de sintomas e período latente. Ao contrário do que foi obervado em N.
benthamiana, o Rec4 apresentou maior acúmulo que os demais recombinantes (Figura 5).
O padrão de acúmulo de RNA viral em alface ‘Salinas 88’ foi distinto daquele
observado em N. benthamiana (Figura 6). Para os isolados AF199 e E observou-se maior
acúmulo aos 10 dpi, enquanto para os recombinantes o maior acúmulo ocorreu aos 5 dpi. Em
todos os casos houve forte redução do acúmulo de RNA viral logo em seguida ao pico de
acúmulo (Figura 6). Mais uma vez o isolado AF199 apresentou acúmulo superior em relação
ao isolado E. Entretanto, em Salinas 88 houve maior acúmulo dos recombinantes quando
comparados aos isolados parentais. Os recombinantes Rec3 e Rec4 apresentaram acúmulo
cerca de 10 vezes superior ao isolado AF199.
59
DISCUSSÃO
A adaptabilidade de populações virais é frequentemente definida em termos de
habilidade replicativa, ou seja, maior acúmulo de partículas virais em uma célula, um
determinado tipo de tecido ou em um órgão específico do hospedeiro (planta ou animal).
Porém, em um sentido mais amplo, adaptabilidade pode ser definida como a capacidade de
estabelecer uma infecção sistêmica mais rapidamente, e ao mesmo tempo prolongar a vida do
hospedeiro de forma a maximizar as chances de transmissão do vírus para novos indivíduos
(Roossinck, 2005).
Os sintomas do isolado AF199 surgiram a 3 e 7 dpi em N. benthamiana e alface,
respectivamente, e são mais severos do que aqueles induzidos pelo isolado E, que surgiram
aos 7 e 14 dpi, respectivamente. Portanto, o isolado AF199 pode ser considerado como
melhor adaptado a ambos os hospedeiros em comparação ao isolado E. Aparentemente, a
região do genoma compreendendo as regiões codificadoras das proteínas P1 e HC-Pro está
envolvida nas diferenças de cinética de desenvolvimento de sintomas observadas entre os dois
isolados, uma vez que aqueles recombinantes portadores da P1/HCPro do isolado AF199
(Rec1 e Rec4) apresentam menor período latente e maior severidade dos sintomas em
comparação ao Rec3, portador da P1/HC-Pro do isolado E. Essa região deve ser importante
para a adaptabilidade do isolado AF199, podendo torná-lo mais apto a replicar e/ou mover
sistemicamente do que o isolado E. Além disso, há resultados indicando que AF199 é mais
eficiente do que o E em suprimir o silenciamento de GFP na linhagam 16c de N.
benthamiana, homozigota para GFP (Krause-Sakate et al., 2007). A supressão do
silenciamento do Rec4 foi intermediária em relação aos parentais. Esses dados sugerem que a
proteína HC-Pro do isolado AF199 é mais eficiente em suprimir o silenciamento gênico do
que a HC-Pro do isolado E. Ensaios de supressão de silenciamento por meio de
agroinfiltração com clones das HC-Pros dos isolados AF199 e E demonstrariam de forma
60
inequívoca que a maior adaptabilidade do isolado AF199 se deve, pelo menos em parte, à
atividade supressora da proteína HC-Pro.
A importância da HC-Pro na indução de sintomas por Potyviridae já foi demonstrada
para diversas espécies dessa família. Pequenas substituições de nucleotídeos na região central
da HC-Pro do Wheat streak mosaic virus (WSMV) podem levar à atenuação dos sintomas ou
até mesmo à incapacidade de infecção sistêmica (Stenger et al., 2006). Resultados
semelhantes foram obtidos para o Plum pox virus (PPV) (Sáenz et al., 2001), embora nesse
caso a taxa de replicação do vírus não tenha sido afetada. Demonstrou-se também que
pequenas mutações no motivo conservado FRNK da HC-Pro do Zucchini yellow mosaic virus
(ZYMV) levam à atenuação dos sintomas, porém sem reduzir o acúmulo do vírus ou os níveis
de siRNAs (Shiboleth et al., 2007). Estes autores demonstraram que as mutações reduziram a
capacidade da HC-Pro de sequestrar miRNAs, levando à uma redução indireta dos sintomas.
De acordo com Krause-Sakate et al. (2007), o alelo mo1
2
, apesar de não impedir a
replicação do isolado E, causa um atraso no surgimento de sintomas, que são menos severos
em relação aos induzidos pelo isolado AF199. Isso não ocorre na cultivar Floribibb, que
possui o alelo mo1
1
. Entretanto, no presente trabalho, apesar de N. benthamiana não possuir o
alelo mo1
2
, o isolado E se comportou de forma semelhante, sugerindo que as diferenças de
período latente e severidade de sintomas dependem também de fatores virais.
O acúmulo de RNA do isolado AF199 ocorreu mais rapidamente do que o verificado
com o isolado E, tanto na folha inoculada (infecção local) quanto na folha não-inoculada
(infecção sistêmica), em N. benthamiana e em alface, o que está de acordo com as
observações de período latente e severidade de sintomas. O isolado AF199 pode replicar,
mover célula-à-célula/sistemicamente, e, ou suprimir as respostas de defesa da planta mais
eficientemente do que o isolado E.
A eficiência de um isolado viral em estabelecer infecção sistêmica, determinada com
base em um menor período latente, sintomas mais severos, e capacidade de se mover mais
61
rapidamente a partir da folha inoculada, pode refletir melhor interação entre as proteínas
virais e os fatores do hospedeiro, aumentando a adaptabilidade do isolado viral. Entretanto,
um determinado isolado viral pode ser mais eficiente em termos de replicação, e menos
eficiente em termos de movimento. Por exemplo, apesar do isolado Sny do cucumovírus
Cucumber mosaic virus (CMV) possuir maior taxa de replicação em protoplastos, o isolado
Fny move-se mais rapidamente, tanto célula-à-célula quanto sistemicamente, induzindo
sintomas 3 dias mais cedo do que o isolado Sny (Gal-On et al., 1994). Por meio de
experimentos com folhas destacadas, os autores demonstraram que Fny infecta
sistemicamente plantas de abobrinha a partir de 24 hpi, enquanto que Sny precisa de 48 horas
para estabelecer a infecção sistêmica.
Fato interessante foi observado no presente trabalho em N. benthamiana com o
recombinante Rec1. Constatou-se maior acúmulo de seu RNA em comparação aos demais.
Coincidentemente, nessa hospedeira Rec1 induz clareamento de nervuras e epinastia foliar,
sintomas não observados para nenhum dos isolados parentais ou recombinantes. É possível
que o maior acúmulo desse recombinante seja responsável pelos sintomas adicionais
induzidos nessa hospedeira.
Não é a primeira vez que um recombinante obtido in vitro entre parentais
semelhantes (199 e E possuem 94% de identidade de nucleotídeos) induz um fenótipo distinto
dos parentais. A partir dos isolados B11 e U do Potato virus A (PVA), que apresentam 97,5%
de identidade para a 5’-NTR e ORF, e 3’-NTR idêntica, e que induzem os mesmos sintomas
(mosaico severo e distorção foliar) em N. benthamiana, foram obtidos seis recombinantes que
variam quanto aos sintomas induzidos (Paalme et al., 2004). Quatro dos recombinantes
induziram sintomas distintos daqueles induzidos pelos parentais. Dentre todos, o
recombinante pBUI+II induziu os sintomas mais distintos (clareamento de nervuras e
nenhuma distorção foliar). A estrutura do genoma desses três recombinantes é bastante
distinta. O recombinante pBUI+II apresenta dois terços do genoma do parental U, a partir da
62
extremidade 5’. Os recombinantes pBUII e pBUIII possuem a região central e extremidade 3’
do parental U, respectivamente. Ambos induziram distorção foliar e mosaico severos. Já o
recombinante pBUI possui a extremidade 5’ do parental U, e induziu mosaico suave e
nenhuma distorção foliar. Esses resultados indicam que diferentes partes do genoma dos
potyvírus podem contribuir para a infectividade e indução de sintomas, de forma a tornar um
isolado viral melhor adaptado ao hospedeiro.
Apesar de Rec3 e Rec4 induzirem maiores períodos latentes e sintomas mais fracos,
ambos apresentaram os maiores valores de acúmulo de RNA em alface, indicando que nem
sempre há correlação positiva entre concentração viral e severidade de sintomas. Os
recombinantes de PVA mencionados anteriormente (Paalme et al., 2004), apesar de induzirem
sintomas mais severos em N. benthamiana quando comparados aos parentais, apresentavam
menor acúmulo. Resultados semelhantes foram obtidos com o PPV (Sáenz et al., 2001). Os
autores obtiveram “sub-isolados” de PPV a partir de um isolado original propagado por
passagens sucessivas em um hospedeiro de lesões locais. Foram obtidos vários sub-isolados
que, apesar de causarem sintomas severos, atingiam baixa concentração na planta, e vice-
versa, demonstrando mais uma vez que nem sempre existe correlação entre severidade de
sintomas e acúmulo viral.
A hipótese de que a região codificadora das proteínas P1 e HC-Pro do isolado AF199
seria a responsável pela maior adaptabilidade desse isolado não é apoiada pelos resultados de
acúmulo dos recombinantes Rec3 e Rec4 em N. benthamiana. Apesar de possuir a P1/HC-Pro
do AF199, o Rec4 acumulou menos nas folhas inoculadas e não-inoculadas do que o Rec3,
que possui a P1/HC-Pro do isolado E. Entretanto, am alface, acumulou mais do que o Rec3,
indicando que interações diferentes podem ocorrer em hospedeiro diferentes. Não deve ser
descartada a possibilidade de a região codificadora de P1/HC-Pro do isolado AF199 ser mais
eficiente na indução de movimento sistêmico. Isso explicaria porque Rec4 está associado a
menor período latente e ser mais eficiente no estabelecimento da infecção sistêmica do que o
63
Rec3, como foi evidenciado no ensaio de folha destacada, apesar de acumular menos em N.
benthamiana.
A comparação da sequência de nucleotídeos da HC-Pro dos isolados E e AF199
indica que existem 64 diferenças de nucleotídeos (Figura 7A). Entretanto, apenas 8
correspondem a substituições não-sinônimas (Figura 7B), indicando uma elevada conservação
da sequência de aminoácidos da HC-Pro desses isolados. A maioria das modificações (5/8)
está localizada na região central da proteína, região esta que está envolvida com diversas
funções, incluindo ligação a RNA, amplificação do genoma, supressão de silenciamento de
RNA e movimento sistêmico. Essas alterações poderiam explicar as diferenças de cinética da
infecção sistêmica observadas entre recombinantes que possuem a HC-Pro do isolado AF199
(Rec1 e Rec4), e o que possui a HC-Pro do isolado E (Rec3). A análise de mutagênese sítio-
dirigida das HC-Pros de clones infecciosos dos isolados revelaria o envolvimento dessa região
na capacidade de movimento sistêmico.
Outra possível causa de variação entre o acúmulo de Rec3 e Rec4 pode estar
relacionada com a presença de ORFs adicionais no genoma viral. Recentemente foi
demonstrada a existência de uma segunda ORF no genoma do potyvírus Turnip mosaic virus
(TuMV), denominada PIPO (“pretty interesting Potyviridae ORF”) (Chung et al., 2008). Essa
ORF está sobreposta à região codificadora da proteína P3, e codifica uma proteína de 66
aminoácidos. Os autores encontraram a ORF em 48 espécies de potyvírus, incluindo o isolado
LMV-[0], e no caso do TuMV comprovaram que a ORF é essencial para a infectividade do
vírus, pois mutações em sua sequência interferiram com a replicação e/ou movimento célula-
à-célula. A análise do genoma dos isolados AF199 e E confirma a presença dessa ORF, e
indica a existência de 9 diferenças de nucleotídeos (num total de 200) entre as sequências dos
dois isolados. Três dessas diferenças levam a substituições não-sinônimas. Portanto, é
possível que a ORF PIPO do isolado AF199 confira uma vantagem no processo infeccioso
maior do que a do isolado E. Isso explicaria o maior acúmulo do recombinante Rec3 em N.
64
benthamina, pois esse recombinante possui a região codificadora da proteína P3 (e
consequentemente da ORF PIPO) do isolado AF199.
Em resumo, os resultados dos experimentos de acúmulo de RNA viral em folha
inoculada e não-inoculada, da cinética de estabelecimento da infecção sistêmica e de período
latente indicam que o isolado AF199 é melhor adaptado em relação ao isolado E, tanto em N.
benthamiana quanto em alface ‘Salinas 88’. Sugere-se que a região codificadora das proteínas
P1/HC-Pro do isolado AF199 está envolvida nas diferenças de cinética de desenvolvimento
de sintomas. Ensaios de supressão do silenciamento gênico utilizando as HC-Pros dos
isolados AF199 e E poderiam relacionar a maior adaptabilidade do isolado AF199 com a
capacidade de supressão de silenciamento de RNA de sua HC-Pro, em relação à HC-Pro do
isolado E.
65
LITERATURA CITADA
Alfenas, P.F. Identificação de genes potencialmente envolvidos na interação tomateiro -
Potyvirus. (Tese D.S.). Dep. de Fitopatologia, Universidade Federal de Viçosa, Viçosa,
MG, 2006. 86 p.
Anandalakshmi, R., Pruss, G.J., Ge, X., Marathe, R., Mallory, A.C., Smith, T.H. e Vance,
V.B. A viral supressor of gene silencing in plants. Proceedings of the National Academy of
Sciences, USA, v.95, p.13079-13084. 1998.
Aragão, F.J.L., Barros, L.M.G., Brasileiro, A.C.M., Ribeiro, S.G., Smith, F.D., Sanford, J.C.,
Faria, J.C. e Rech, E.L. Inheritance of foreign genes in transgenic bean (Phaseolus vulgaris
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67
Tabela 1. Características (sequência, local de anelamento e tamanho do amplicon) dos
oligonucleotídeos utilizados nas análises de PCR quantitativo em tempo real.
Nome Oligonucleotídeos (5’-3’)* Tamanho do
amplicon (pb)
Específico
para
qCI/AF199 F: CATTTGCACAAGAAAGGAGGTGTAC
R: CCTGACTAGATCCAAACTTGCAAGA
145 LMV-[AF199]
qNIa/LMVE F: ACATCTTATTGATCCAGTTTCGAAAT
R: TGACTTGCGAACCACTCATCC
192 LMV-[E],
Rec1, Rec3 e
Rec4
* F e R indicam os oligonucleotídeos “forward” e “reverse”, respectivamente.
68
Tabela 2. Cinética do estabelecimento de infecção sistêmica em plantas de Nicotiana
benthamiana e alface ‘Salinas 88’ infectadas com os isolados AF199 e E e com os
recombinantes Rec1, Rec3 e Rec4, quando a folha inoculada foi destacada da planta a 6, 12,
24 e 48 horas após a inoculação.
AF199 E Rec1 Rec3 Rec4
N. benthamiana
6
a
0/6
b
0/6 0/6 0/6 0/6
12 0/6 0/6 0/6 0/6 0/6
24 2/6 0/6 2/6 0/6 0/6
48 5/6 3/6 6/6 2/6 4/6
C
c
6/6 6/6 6/6 6/6 6/6
Salinas 88
6 0/6 0/6 0/6 0/6 0/6
12 0/6 0/6 0/6 0/6 0/6
24 0/6 0/6 0/6 0/6 0/6
48 6/6 5/6 6/6 4/6 6/6
C
6/6 6/6 6/6 6/6 6/6
a
Horas após a inoculação em que a folha inoculada foi destacada da planta.
b
Número de plantas analisadas/número de plantas infectadas.
c
Plantas controle, nas quais a folha inoculada não foi destacada.
69
Legenda das figuras
Figura 1. Representação esquemática do genoma do Lettuce mosaic virus (LMV) e estrutura
dos recombinantes construídos entre os isolados AF199 e E. Os sítios de enzimas de restrição
utilizados para a construção dos recombinantes e suas posições em relação ao genoma viral
estão indicados. O genoma do isolado AF199 está representado em preto, e o genoma do
isolado E em branco.
Figura 2. Sintomas induzidos pelos isolados AF199 (A, B) e E (C, D) e pelos recombinantes
Rec1 (E, F), Rec3 (G, H) e Rec4 (I, J) em plantas de Nicotiana benthamiana e em alface cv.
Salinas 88, aos 15 e 20 dias após a inoculação, respectivamente.
Figura 3. Cinética de acúmulo de RNA viral dos isolados AF199 e E e dos recombinantes
Rec1, Rec3 e Rec4 em folhas inoculadas de Nicotiana benthamiana. O RNA foi extraído a
partir de folhas coletadas a 0, 6, 12, 24 e 48 horas pós-inoculação (hpi) e a concentração
relativa de RNA de cada isolado/recombinante foi determinada por meio de PCR quantitativo
em tempo real (qRT-PCR).
Figura 4. Cinética de acúmulo de RNA viral dos isolados AF199 e E e dos recombinantes
Rec1, Rec3 e Rec4 em folhas não-inoculadas de Nicotiana benthamiana. O RNA foi extraído
a partir de folhas coletadas a 0, 5, 10, 15 e 20 dias pós-inoculação (dpi) e a concentração
relativa de RNA de cada isolado/recombinante foi determinada por meio de PCR quantitativo
em tempo real (qRT-PCR).
Figura 5. Cinética de acúmulo de RNA viral dos isolados AF199 e E e dos recombinantes
Rec1, Rec3 e Rec4 em folhas inoculadas de alface ‘Salinas 88’. O RNA foi extraído a partir
de folhas coletadas a 0, 6, 12, 24 e 48 horas pós-inoculação (hpi) e a concentração relativa de
RNA de cada isolado/recombinante foi determinada por meio de PCR quantitativo em tempo
real (qRT-PCR).
70
Figura 6. Cinética de acúmulo de RNA viral dos isolados AF199 e E e dos recombinantes
Rec1, Rec3 e Rec4 em folhas não-inoculadas de alface ‘Salinas 88’. O RNA foi extraído a
partir de folhas coletadas a 0, 5, 10, 15 e 20 dias pós-inoculação (dpi) e a concentração
relativa de RNA de cada isolado/recombinante foi determinada por meio de PCR quantitativo
em tempo real (qRT-PCR).
Figura 7. Alinhamento de (A) nucleotídeos e (B) aminoácidos da região codificadora da
proteína HC-Pro dos isolados AF199 E.
71
Figura 1
72
Figura 2
73
Figura 3
74
Figura 4
75
Figura 5
76
Figura 6
77
Figura 7
A
LMVE AGCGACGTCGCACGAAACTTCTGGAACGGATACTCAACTTGTTTCATGCACAACACCCCA 60
LMVAF199 AGCGACGTCGCACGAAACTTCTGGAACGGGTACTCAACTTGTTTCATGCACAATACCCCA 60
***************************** *********************** ******
LMVE AAGGACATACTCCATACCTGCACATCAGATTTTGATGTTAAAGATTGCGGCACTGTCGCA 120
LMVAF199 AAGGACATACTCCATACCTGCACATCAGATTTTGATGTTAAAGAATGTGGCACTGTCGCA 120
******************************************** ** ************
LMVE GCACTTTTAACTCAAACACTGTTTCAATTTGGGAAAATCACCTGTGGAAAATGCGCAATC 180
LMVAF199 GCACTTTTAACTCAAACACTGTTTCAATTTGGGAAAATCACCTGTGAAAAGTGCGCAATC 180
********************************************** *** *********
LMVE GAGTACAAAAATCTAACGCGAGATGAGCTTGCCACGCGTGTTAATAAGGAGATCGATGGA 240
LMVAF199 GAGTACAAAAATCTAACGCGAGACGAGCTCGCTACGCGTGTTAATAAGGAGATTGATGGA 240
*********************** ***** ** ******************** ******
LMVE ACCATAATCAGTATTCAAACTCAGCATCCACGCTTCGTGCATGTACTCAACTTTCTCAGG 300
LMVAF199 ACCATAATCAGCATTCAAACTCAGCATCCACGCTTCGTGCATGTACTCAATTTTCTCAGG 300
*********** ************************************** *********
LMVE TTAATTAAACAAGTGCTCAATGCTAAGAATGGGAACTTTGGAGCATTTCAAGAGACGGAG 360
LMVAF199 TTAATTAAACAAGTACTCAATGCTAAGAATGAGAACTTTGGAGCATTTCAAGAGACGGAG 360
************** **************** ****************************
LMVE AGGATAATTGGGGATCGAATGGATGCACCTTTCTCACACGTAAATAAGTTGAATGCTATC 420
LMVAF199 AGGATAATTGGGGATCGAATGGATGCACCTTTCTCACACGTAAATAAGCTGAATGCTATC 420
************************************************ ***********
LMVE GTCATTAAAGGTAATCAAGCAACGTCCGATGAGATGGCACAAGCATCGAACCATGTCCTC 480
LMVAF199 GTCATTAAAGGTAATCAAGCAACATCTGATGAGATGGCACAAGCATCGAACCATGTCCTC 480
*********************** ** *********************************
LMVE GAAATCGCGCGATATTTCAAGAACCGGACTGAGAACATCCAAAAGGGCTCACTAAAGTCA 540
LMVAF199 GAAATCGCACGATATCTCAAGAACCGAACTGAGAACATCCAAAAGGGCTCACTAAAGTCA 540
******** ****** ********** *********************************
LMVE TTCAGGAACAAGATCTCCGGTAAGGCACACTTAAATCCGAGTCTTATGTGTGACAATCAA 600
LMVAF199 TTCAGGAACAAAATCTCCGGTAAGGCACACTTAAATCCGAGTCTTATGTGTGACAATCAA 600
*********** ************************************************
LMVE CTTGATAAGAATGGTGGGTTTGAATGGGGGCAGCGAAGTTACCATGCCAAAAGGTTTTTC 660
LMVAF199 CTTGATAAGAACGGCGGGTTTGAATGGGGGCAGCGAAGTTACCATGCTAAAAGGTTTTTC 660
*********** ** ******************************** ************
LMVE GACGGGTACTTCGAAACCATTGACCCTTCCGATGGCTACAGCAAATACACCATAAGACGC 720
LMVAF199 GACGGATACTTCGAAACCATTGACCCATCTGATGGCTATAGCAAATACACCATAAGACGC 720
***** ******************** ** ******** *********************
LMVE AATCCAAATGGGCATCGAAAGTTGGCAATTGGTAATTTGATCGTCTCCACAAACTTTGAA 780
LMVAF199 AATCCAAATGGACATCGAAAGTTGGCAATTGGTAATTTGATCGTCTCCACGAACTTTGAA 780
*********** ************************************** *********
LMVE TCACATAGAAGAAGTATGGTTGGAGAACCAATTGAAGACCCTGGTCTCACTAATCAGTGC 840
LMVAF199 TCACATAGAAGAAGCATGATTGGAGAATCAATCGAAGACCCTGGTCTCACTAACCAGTGC 840
************** *** ******** **** ******************** ******
LMVE GTAAGCAAAGAGGGAGGTGCCTTCATCTATCCATGCTGCTGTGTGACAGATGAATATGGT 900
LMVAF199 GTGAGCAAAGAGGGAGATGCCTTCATCTATCCATGCTGCTGTGTAACAGATGAATATGGT 900
** ************* *************************** ***************
LMVE AAACCAACATTATCTGAGATCAAAATGCCCACAAAGCATCATTTAGTCCTAGGAAATGCC 960
LMVAF199 AAACCAACATTATCTGAGATTAAAATGCCTACAAAGCATCATCTAGTCCTAGGAAATGCC 960
******************** ******** ************ *****************
LMVE GGTGACCCCAAATATGTGGATTTACCAAAGGAAGCGGAAGGAAAGATGTTCGTAGCAAAA 1020
LMVAF199 GGTGACCCCAAATATGTGGATTTACCAAAGGAAGCGGAAGGAAAGATGTTCGTAGCAAAA 1020
************************************************************
LMVE GATGGATATTGTTACATAAACATTTTCTTGGCTATGCTCGTCGACGTCCCAGAGGATCAG 1080
LMVAF199 GACGGATATTGTTACATAAACATCTTCTTGGCTATGCTTGTTGACGTCCCAGAGGATCAA 1080
** ******************** ************** ** *****************
78
Figura 7 (cont.)
LMVE GCTAAAGATTTCACGAAAATGGCACGCGAGATAGCAGTGAAACAGCTCGGGGAGTGGCCC 1140
LMVAF199 GCTAAAGATTTCACGAAGATGGCACGCGAGATAGCAGTGAAACAGCTCGGGGAGTGGCCC 1140
***************** ******************************************
LMVE TCAATGATGGATGTAGCAACGGCTTGTAATATACTGGCTACATTTCATCCAGACACCCGA 1200
LMVAF199 TCAATGATGGATGTAGCAACGGCTTGTAATATATTAGCTACATTTCATCCAGACACTCGA 1200
********************************* * ******************** ***
LMVE AGATCGGAATTACCCCGAATCTTAGTCGATCATGCAACGAAAACATTTCATGTTATTGAC 1260
LMVAF199 AGATCGGAGTTACCTCGAATCTTAGTCGACCACGCAACGAAAACATTCCATGTAATTGAT 1260
******** ***** ************** ** ************** ***** *****
LMVE TCATATGGTTCAATCACGACTGGATATCATATTCTGAAAGCCAATACCGTGACACAACTC 1320
LMVAF199 TCATATGGTTCAATCACGACTGGATTCCATATTCTGAAAGCCAACACCGTGACGCAACTC 1320
************************* ***************** ******** ******
LMVE GTCAAGTTCGCTCATGAATCACTAGAATCCGAGATGCAACACTACAGAGTCGGG 1374
LMVAF199 GTCAAGTTCGCGCATGAGTCACTAGAATCTGAGATGCAACACTACAGAGTAGGG 1374
*********** ***** *********** ******************** ***
B
LMVE SDVARNFWNGYSTCFMHNTPKDILHTCTSDFDVKDCGTVAALLTQTLFQFGKITCGKCAI 60
LMVAF199 SDVARNFWNGYSTCFMHNTPKDILHTCTSDFDVKECGTVAALLTQTLFQFGKITCEKCAI 60
********************************** ******************** ****
LMVE EYKNLTRDELATRVNKEIDGTIISIQTQHPRFVHVLNFLRLIKQVLNAKNGNFGAFQETE 120
LMVAF199 EYKNLTRDELATRVNKEIDGTIISIQTQHPRFVHVLNFLRLIKQVLNAKNENFGAFQETE 120
************************************************** *********
LMVE RIIGDRMDAPFSHVNKLNAIVIKGNQATSDEMAQASNHVLEIARYFKNRTENIQKGSLKS 180
LMVAF199 RIIGDRMDAPFSHVNKLNAIVIKGNQATSDEMAQASNHVLEIARYLKNRTENIQKGSLKS 180
********************************************* **************
LMVE FRNKISGKAHLNPSLMCDNQLDKNGGFEWGQRSYHAKRFFDGYFETIDPSDGYSKYTIRR 240
LMVAF199 FRNKISGKAHLNPSLMCDNQLDKNGGFEWGQRSYHAKRFFDGYFETIDPSDGYSKYTIRR 240
************************************************************
LMVE NPNGHRKLAIGNLIVSTNFESHRRSMVGEPIEDPGLTNQCVSKEGGAFIYPCCCVTDEYG 300
LMVAF199 NPNGHRKLAIGNLIVSTNFESHRRSMIGESIEDPGLTNQCVSKEGDAFIYPCCCVTDEYG 300
************************** ** *************** **************
LMVE KPTLSEIKMPTKHHLVLGNAGDPKYVDLPKEAEGKMFVAKDGYCYINIFLAMLVDVPEDQ 360
LMVAF199 KPTLSEIKMPTKHHLVLGNAGDPKYVDLPKEAEGKMFVAKDGYCYINIFLAMLVDVPEDQ 360
************************************************************
LMVE AKDFTKMAREIAVKQLGEWPSMMDVATACNILATFHPDTRRSELPRILVDHATKTFHVID 420
LMVAF199 AKDFTKMAREIAVKQLGEWPSMMDVATACNILATFHPDTRRSELPRILVDHATKTFHVID 420
************************************************************
LMVE SYGSITTGYHILKANTVTQLVKFAHESLESEMQHYRVG 458
LMVAF199 SYGSITTGFHILKANTVTQLVKFAHESLESEMQHYRVG 458
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