( PDF ) Benefícios da crotalária na nutrição e crescimento demangueira, gravioleira e neem e nas alterações decaracterísticas do solo em sistemas agroflorestais

Download PDF

ads:

BENEFÍCIOS DA CROTALÁRIA NA NUTRIÇÃO E CRESCIMENTO DE

MANGUEIRA, GRAVIOLEIRA E NEEM E NAS ALTERAÇÕES DE

CARACTERÍSTICAS DO SOLO EM SISTEMAS AGROFLORESTAIS

KELLY RIBEIRO LAMÔNICA

UNIVERSIDADE ESTADUAL DO NORTE FLUMINENSE DARCY

RIBEIRO – UENF

CAMPOS DOS GOYTACAZES - RJ

JULHO - 2008

ads:

Livros Grátis

http://www.livrosgratis.com.br

Milhares de livros grátis para download.

BENEFÍCIOS DA CROTALÁRIA NA NUTRIÇÃO E CRESCIMENTO DE

MANGUEIRA, GRAVIOLEIRA E NEEM E NAS ALTERAÇÕES DE

CARACTERÍSTICAS DO SOLO EM SISTEMAS AGROFLORESTAIS

KELLY RIBEIRO LAMÔNICA

“Tese apresentada ao Centro de Ciências e

Tecnologias Agropecuárias da Universidade

Estadual do Norte Fluminense Darcy Ribeiro,

como parte das exigências para obtenção do

título de Mestre em Produção Vegetal”

Orientadora: Prof

Deborah Guerra Barroso

CAMPOS DOS GOYTACAZES - RJ

JULHO – 2008

ads:

BENEFÍCIOS DA CROTALÁRIA NA NUTRIÇÃO E CRESCIMENTO DE

MANGUEIRA, GRAVIOLEIRA E NEEM E NAS ALTERAÇÕES DE

CARACTERÍSTICAS DO SOLO EM SISTEMAS AGROFLORESTAIS

KELLY RIBEIRO LAMÔNICA

“Tese apresentada ao Centro de Ciências e

Tecnologias Agropecuárias da Universidade

Estadual do Norte Fluminense Darcy Ribeiro,

como parte das exigências para obtenção do

título de Mestre em Produção Vegetal”

Aprovada em: 11 de julho de 2008

Comissão Examinadora:

____________________________________________________________________

Prof. Fábio Cunha Coelho (Dr.Fitotecnia) - UENF

____________________________________________________________________

Prof. José Geraldo de Araújo Carneiro (PhD. Silvicultura)

____________________________________________________________________

Prof

. Luciana Aparecida Rodrigues (Dra. Produção Vegetal) - ISTCA

____________________________________________________________________

Prof

. Deborah Guerra Barroso (Dra. Produção Vegetal) - UENF

(Orientadora)

A Deus;

À minha família e amigos, pelo incentivo e ajuda.

DEDICO

iii

AGRADECIMENTOS

A Deus que permitiu a realização deste trabalho;

Aos meus pais Antônio Carlos e Vânia Maria, aos meus irmãos Fabiano, Ana Paula e

Raphael, ao meu sobrinho Yan, à minha madrinha Lenilda e a toda minha família,

pelo incentivo e ajuda;

A UENF pela oportunidade de realização do curso e pela concessão da bolsa e a

FAPERJ pela aprovação do projeto que permitiu a realização do trabalho;

A RESPA (Indústria e comércio LTDA) por ceder o pomar para a realização dos

experimentos e pela colaboração na condução do experimento;

À professora Deborah pela paciência, confiança, orientação e amizade;

Ao professor José Geraldo, pelo apoio e amizade;

Aos professores Fábio, Gilmar e Luciana, pelas sugestões que contribuíram na

realização deste trabalho;

Ao professor Monnerat e ao técnico Acácio, pelo auxílio e paciência nas análises

químicas;

Aos professores;

Aos meus colegas e amigos do laboratório de Fitotecnia: Armando, Dani, Detony,

Fábio, Geisa, Isa, Jô, Marcela, Marcelo, Míriam, Patrícia, Renata, Silvio, Tátila, Tiago

(s), Teresa e Vanerson. Em especial agradeço Ernando e Tiago Ribeiro, pela

amizade e ajuda constante nos trabalhos, e a Gleicia, uma grande amiga, que

durante estes dois anos dividiu os trabalhos comigo, sempre com muita

determinação;

Aos meus amigos Cíntia, Karine, Marcos Vinícius e Rozana, entre outros pela

amizade e ajuda;

A todos aqueles que contribuíram de alguma maneira para realização deste trabalho.

SUMÁRIO

RESUMO....................................................................................................... vii

ABSTRACT....................................................................................................

1. INTRODUÇÃO...........................................................................................

2. OBJETIVOS ..............................................................................................

3. REVISÃO DE LITERATURA..................................................................... 04

3.1. Sistemas agroflorestais......................................................................... 04

3.2. Azadirachta indica A. Juss (neem).........................................................

3.3. Mangifera indica L. (mangueira).............................................................

3.4. Annona muricata L. (gravioleira)............................................................ 11

3.5. Adubação verde..................................................................................... 12

3.6. Crotalaria juncea (crotalária)..................................................................

3.7. Atividade microbiana..............................................................................

4. Material e Métodos.................................................................................... 20

4.1. Descrição da área.................................................................................. 20

4.2. Condução do experimento..................................................................... 22

4.3. Avaliações.............................................................................................. 25

4.3.1. Quantificação, avaliação da decomposição e qualidade nutricional

da fitomassa produzida pela parte aérea da crotalária................................. 25

4.3.2. Determinação da atividade enzimática microbiana do solo................ 27

4.3.3. Análises químicas e físicas do solo..................................................... 29

4.3.4. Avaliação do crescimento e estado nutricional das frutíferas e do

neem..............................................................................................................

5. RESULTADOS E DISCUSSÃO.................................................................

5.1. Quantificação e qualidade nutricional da fitomassa da parte aérea da

crotalária........................................................................................................

5.2. Decomposição e liberação de nutrientes da fitomassa da crotalária..... 37

5.3. Avaliação da atividade enzimática microbiana do solo.......................... 42

5.3.1. Atividade enzimática sob a copa das frutíferas durante a

decomposição da fitomassa da parte aérea da crotalária.............................

5.3.2. Atividade enzimática sob a copa do neem ......................................... 44

5.4. Análises químicas e físicas do solo........................................................

5.5.Crescimento e estado nutricional das frutíferas e do neem.................... 53

5.5.1.Crescimento e estado nutricional das mangueiras...............................

5.5.2.Crescimento e estado nutricional das gravioleiras............................... 56

5.5.3.Crescimento e estado nutricional do neem.......................................... 58

6. RESUMO E CONCLUSÕES..................................................................... 62

7. REFERÊNCIA BIBLIOGRÁFICA............................................................... 65

vii

RESUMO

LAMÔNICA, Kelly Ribeiro. Universidade

Estadual do Norte Fluminense Darcy

Ribeiro. Julho de 2008. Benefícios da crotalária na nutrição e crescimento de

mangueira, gravioleira e neem e nas alterações de características do solo em

sistemas agroflorestais.

Orientadora: Deborah Guerra Barroso. Co-orientador: José

Geraldo de Araújo Carneiro.

O objetivo deste trabalho foi avaliar sistemas agroflorestais com mangueira,

gravioleira, crotalária e neem, quanto ao benefício para estas culturas de interesse

econômico e às alterações nas características do solo. Em um pomar misto de

mangueira e gravioleira foram implantados quatro sistemas de produção: mangueira

e gravioleiras (testemunha - F); mangueira, gravioleira e neem (FN); mangueira,

gravioleira, neem e crotalária (FNC); mangueira, gravioleira e crotalária (FC). Para as

avaliações, cada sistema foi dividido em nove subáreas, sendo seis selecionadas, ao

acaso, para a realização das amostragens. O neem foi plantado um ano após as

frutíferas e a crotalária semeada dois anos após a implantação do pomar. A

crotalária foi submetida a dois cortes (74 e 128 dias). A fitomassa produzida foi

dividida e adicionada sob a copa das frutíferas no sistema FC e sob a copa das

frutíferas e do neem no sistema FNC. Para quantificação da fitomassa, foram

coletados, em ambos os cortes, três amostras de 1 m

por subárea selecionada. Foi

determinada a taxa de decomposição da crotalária em “litterbags” (0, 3, 6, 10, 15, 30,

60, 90, 120 e 150 dias após o corte). Nas mesmas épocas foram realizadas análises

viii

para determinação dos teores de N, P, K, Ca, Mg, S e C. Teores de lignina e celulose

foram determinados no dia do corte e aos 30, 60, 90, 120 e 150 dias após o corte.

Foi determinada a atividade enzimática microbiana sob a copa das frutíferas nos

sistemas F e FC (0, 10, 20, 40, 80, 100 e 120 dias após o corte da crotalária). Na

estação de seca e chuvosa foi determinada a atividade enzimática microbiana sob a

copa do neem nos sistemas FN e FNC. Foram feitas determinações de pH, N, P, K,

Ca, Mg, H+Al e C orgânico do solo, antes e depois dos cortes da crotalária. Em 2007,

determinaram-se a densidade do solo, porosidade total, micro e macroporosidade (0-

5 e 5-10 cm) dos diferentes sistemas. As frutíferas e o neem foram monitorados

quanto à altura (H) e ao diâmetro à altura do solo (DAS). A avaliação do estado

nutricional das frutíferas e do neem foi realizada dos 45 e 33 meses após o plantio,

respectivamente. A produção de fitomassa e teores de nutrientes da crotalária foram

elevados nos sistemas, com maior quantidade de nutrientes depositados no sistema

FC. A decomposição da fitomassa da crotalária e a liberação de nutrientes foram

rápidas. Não houve efeito da crotalária sobre a atividade enzimática microbiana do

solo durante o período de decomposição sob a copa das frutíferas. Houve aumento

da atividade enzimática microbiana do solo sob a copa do neem na estação chuvosa,

com relação à estação seca. Entretanto, só houve diferença entre os sistemas na

estação de seca, com maior atividade no sistema FNC. A adubação verde com a

crotalária aumentou o K e reduziu o H+Al do solo, colaborou na manutenção dos

níveis de Ca e Mg no sistema FC e aumentou os valores de soma de base na

camada de 0-5 cm do solo. As características físicas do solo não foram alteradas

pelos diferentes sistemas de produção. O sistema FC resultou em maior crescimento

de DAS das mangueiras em relação à testemunha. A adubação verde resultou em

maiores teores foliares de N nas mangueiras. O crescimento do neem foi beneficiado

pela presença da crotalária.

Palavras chaves: Azadirachta indica A. Juss, Mangifera indica L., Annona muricata

L., Crotalaria juncea, adubação verde

ABSTRACT

LAMÔNICA, Kelly Ribeiro. Universidade Estadual do Norte Fluminense Darcy

Ribeiro. July 2008. Agroforest systems with mango, soursup, crotalaria and neem.

Professor Advisor: Deborah Guerra Barroso. Co-advisor: José Geraldo de Araújo

Carneiro.

The objective of this work was to evaluate agroforest

systems constituted by mango,

soursup, crotalaria and neem, regarding for there benefit for the economical cultures

and changes in the characteristics of the soil. In a mango and soursup mixed orchard,

four mixed production systems were implanted: mango and soursup (control - F);

mango, soursup and neem (FN); mango, soursup, neem and crotalaria (FNC);

mango, soursup and crotalaria (FC). Each system was divided in nine plots, six of

them were to take samplings selected at random. The neem was planted one year

after the fruit trees and the crotalaria was sowed two years after the orchard

implantation. The crotalaria was submitted to two cuts (74 and 128 days). The

biomass produced was divided and added under the canopy of the fruit trees in the

FC system and under the canopy of the FC and neem in the FNC system. Three

samples of 1 m

in the selected plots, were collected, in both cuts, for the biomass

quantification. The decomposition rate of the crotalaria was determined in litterbags

(0, 3, 6, 10, 15, 30, 60, 90, 120 and 150 days after the cut). At the same times the N,

P, K, Ca, Mg, S and C content were determined. The lignin and cellulose content

were determined in the day and at 30, 60, 90, 120 and 150 days after the cut. The

microbial enzymatic activity under the canopy of the tree fruits was determined in the

systems F and FC (0, 10, 20, 40, 80, 100 and 120 days after the cut of the crotalaria).

In the drought and rainy season was determined the microbial enzymatic activity

under the canopy of the neem in the FN and FNC systems. Determinations of pH, N,

P, K, Ca, Mg, H+Al and organic C of the soil, were carried out before and after the

cuts of the crotalaria. In 2007 there the soil density, porosity, micro and macroporosity

(0-5 and 5-10 cm) of the different systems were determined. The tree fruits and the

neem were monitored regarding height (H) and diameter at the soil level (DAC). The

nutritional status of the tree fruits and neem was evaluated 45 and 33 months after

the planting, respectively. The biomass production and nutrients content of the

crotalária were high in the systems, with larger nutrients amount deposited in the

system FC. The biomass decomposition of the crotalaria and the nutrients liberation

were fast. There was not effect of the crotalaria on the microbial enzymatic activity of

the soil during the decomposition period under the canopy of the tree fruits. Increase

of the microbial enzymatic activity of the soil under the canopy of the neem was

observed in the rainy station, compared to the dry season. However there was only

difference among the systems in the dry season, with higher activity in the FNC

system. The green manure with crotalária increased the K and reduced H+Al of the

soil, sustaining the Ca and Mg levels in the FC system and increased the base sum

values at the 0-5 cm depth layer of the soil. Four production systems did not show

difference in the physical characteristics of the soil. The FC system resulted in higher

growth of DAS of the mango in relation to the control. The green manure resulted in

higher leaf content of N in the mango. The growth of the neem was stimulated by the

crotalaria.

Key words: Azadirachta indica A. Juss, Mangifera indica L., Annona muricata L.,

Crotalaria juncea, green manure

1. INTRODUÇÃO

O município de Campos dos Goytacazes-RJ tem sua atividade agrícola

baseada no monocultivo de cana-de-açúcar e na pecuária bovina, onde os solos

foram, ou são, intensamente explorados. A fruticultura vem destacando-se na região

como atividade agrícola bastante promissora, capaz de aumentar a renda do

produtor rural. Entretanto, o monocultivo de frutíferas pode acarretar maior exposição

do solo, com diminuição de sua fertilidade, pela redução da matéria orgânica e

aumento da lixiviação dos nutrientes, o que exige uma constante reposição com

adubos químicos, para a manutenção da produção e da fertilidade do solo.

A fruticultura orgânica constitui uma alternativa promissora, onde o manejo

menos impactante sobre o solo pode resultar em um sistema sustentável e

economicamente mais viável. Entretanto, neste sistema é necessária a utilização de

técnicas adequadas para manter a produtividade, tais como rotação de culturas,

adubação verde, compostagem, entre outros.

O manejo orgânico do suprimento de nutrientes para a planta é,

notoriamente, mais complexo que o fornecimento de nutrientes por meio de

fertilizantes sintéticos. Faz-se necessária à compreensão dos fatores que

determinam a decomposição dos materiais orgânicos e, conseqüentemente, se os

nutrientes liberados são retidos ou perdidos no sistema e se a velocidade de

decomposição pode ser manipulada para melhorar a eficiência do manejo (Gomes et

al., 2005).

Entre os benefícios trazidos pela adubação orgânica ao solo estão as

melhorias nas suas propriedades químicas, por meio de fornecimento de nutrientes,

aumento da capacidade de troca catiônica (CTC), aumento na estabilidade de

agregados e melhoria na estrutura do solo, que se traduz em melhor aeração,

permeabilidade, retenção de água e resistência à erosão, aumentando a atividade

biológica do solo.

Nos últimos anos, os sistemas agroflorestais (SAF’s) têm sido bastante

difundidos, atribuindo-se à combinação de espécies arbóreas com culturas agrícolas

e, ou, animais a melhoria nas propriedades físico-químicas dos solos, assim como a

atividade de microrganismos, devido ao aumento da matéria orgânica do solo e à

ciclagem de nutrientes. Estes sistemas podem ser, portanto, uma boa alternativa

para utilizar recursos que podem aumentar a produtividade, com um nível maior de

sustentabilidade na fruticultura.

Os SAF’s com cultivo intercalar de adubos verdes têm possibilitado aumento

da eficiência de utilização dos nutrientes no solo, uma vez que os sistemas

radiculares de diferentes culturas disponibilizam nutrientes perdidos por lixiviação

e/ou de pouca mobilidade no solo, tornando-os mais disponíveis à cultura de

interesse. Além disso, as raízes das plantas utilizadas na adubação verde aumentam

a aeração, a infiltração de água e a agregação do solo, diminuindo os riscos de

erosão. No entanto, mais pesquisas devem ser realizadas, visando, principalmente, o

desenvolvimento de sistemas de produção agroflorestais com frutíferas, buscando

melhor compreensão das interações existentes entre os componentes, para viabilizar

sua adoção entre os produtores.

Neste contexto, espera-se que o cultivo orgânico de frutíferas como

Mangifera indica L. (mangueira) e Annona muricata L. (gravioleira), em sistema

agroflorestal com a leguminosa Crotalaria juncea (crotalária) e a espécie florestal

Azadirachta indica (neem), proporcione aumento na eficiência do sistema de

produção, pelo fornecimento e ciclagem de nutrientes, aumento da diversidade do

sistema e agregação de valor às frutas que, conduzidas organicamente, apresentam

maior valor comercial.

2. OBJETIVOS

Avaliar sistemas agroflorestais em um pomar orgânico de mangueira e

gravioleira, em fase de formação, consorciadas com neem e crotalária, com base nos

seguintes parâmetros:

a) Acúmulo de fitomassa, taxa de decomposição e qualidade nutricional da parte

aérea da crotalária em dois sistemas de produção;

b) Alterações na atividade enzimática do solo com a adição da fitomassa da parte

aérea da crotalária na projeção da copa das frutíferas e no neem;

c) Potencial dos diferentes sistemas de produção na melhoria das características

químicas e físicas de solos de tabuleiro;

d) Crescimento e o estado nutricional das frutíferas em quatro sistemas de produção,

e do neem, em dois sistemas de produção.

3. REVISÃO DE LITERATURA

3.1. Sistemas agroflorestais

São muitas as definições sobre sistemas agroflorestais (SAF’s), dentre as

quais: “Um sistema de manejo sustentado da terra que aumenta o seu rendimento,

combinando a produção de plantas florestais com cultivos agrícolas e/ou animais,

simultânea ou consecutivamente, de forma deliberada, na mesma unidade de

terreno, envolvendo práticas de manejo em consonância com a população local“

(Medrado, 2000).

Segundo Campello et al. (2006), os sistemas integrados de produção, tais

como os sistemas agroflorestais, possibilitam a melhoria do ambiente e a promoção

socioeconômica do setor, possibilitando a redução de custos de produção e a

inserção de seus produtos em nichos de mercados altamente competitivos, que

valorizam a qualidade dos serviços sócio-ambientais.

A sustentabilidade é uma característica inerente aos sistemas agroflorestais,

pois estão alicerçados em princípios básicos que envolvem aspectos ecológicos,

econômicos e sociais. Todo método ou sistemas de uso da terra somente será

sustentável se for capaz de manter o seu potencial produtivo também para gerações

futuras. Além disso, os SAF’s para serem considerados sustentáveis devem ser

socialmente justos, economicamente viáveis e ecologicamente corretos (Siqueira et

al., 2006).

Os sistemas agroflorestais podem ser utilizados na recuperação de áreas

que foram degradadas pelas atividades agropecuárias, principalmente aquelas cujos

fatores de produção são ineficientes para recomposição natural de seu potencial

produtivo (Franco et al., 2002). Nas últimas décadas, sua utilização foi bastante

difundida como alternativa para recuperação destas áreas, atribuindo-se à

combinação de espécies arbóreas com culturas agrícolas e/ou animais a melhoria

nas propriedades físico-químicas de solos degradados, bem como na atividade de

microrganismos, considerando a possibilidade de um grande número de fontes de

matéria orgânica (Mendonça et al., 2001).

A ciclagem de nutrientes constitui-se em uma

das funções mais importantes

para a regulação do funcionamento e do desenvolvimento dos ecossistemas.

Contudo, a magnitude dos benefícios da ciclagem de nutrientes para a produção de

cultivos agrícolas nos sistemas agroflorestais carece de metodologias de pesquisas

apropriadas. Os sistemas agro florestais

podem ser auto-suficientes em N, pelo uso

de leguminosas; entretanto, para o P, especialmente no sistema de aléias, não são

capazes de suprir quantidades suficientes para manter a produção dos cultivos. Além

disso, há poucos dados experimentais sobre os demais nutrientes (Gama-Rodrigues,

2004).

Queiroz (2006) avaliou leguminosas como fontes de N para a cultura do

milho em sistema de aléias, com e sem adubação de P, por dois ciclos de cultivo,

constatando que para ter acréscimos de produtividade com leguminosas arbóreas, a

cultura do milho requer adubação de fósforo. No primeiro ano, independente da

aplicação de P, a maior produtividade de fitomassa seca da parte aérea foi obtida

pelo guandu, produzindo 102% a mais de fitomassa seca que canafístula (segundo

melhor tratamento), enquanto no experimento sem P, a diferença foi ainda maior,

pois essa produtividade foi 221% maior que a canafístula. No segundo ano, na

presença de P, a leucena e a canafístula assemelharam-se ao guandu na

produtividade de fitomassa, indicando resposta à adubação com este nutriente.

Arato et al. (2003) quantificaram a produção e decomposição de serapilheira

em um sistema agroflorestal

em Viçosa-MG, composto por espécies nativas e

frutíferas, comparando a produção de serapilheira com resultados obtidos em

florestas estacionais semideciduais da região sudeste do Brasil. A área do sistema

agroflorestal

apresenta distribuição das espécies de forma irregular e a regeneração

natural de espécies nativas foi mantida desde sua implantação, dez anos antes da

avaliação. A produção de serapilheira foi estimada em 10,16 Mg ha

-1

, valor este,

segundo os autores, situado dentro da faixa de valores obtidos em florestas

estacionais semideciduais, inferindo que o sistema vem se comportando como uma

floresta nativa em termos de dinâmica da serapilheira.

Nóbrega et al. (2002) avaliaram a biomassa vegetal depositada sobre o solo,

oriunda da poda periódica das árvores, em um sistema agroflorestal com base na

regeneração natural (SAFRA), composto por frutíferas e espécies florestais,

implantado em janeiro de 2000, em um planossolo degradado em Seropédica, RJ. O

sistema agroflorestal apresentava espaçamentos diferentes para as espécies

utilizadas, buscando minimizar a competição entre as mesmas. Foram realizadas

três podas durante o ano de 2001 e 2002, e em todas elas o material foi depositado

sobre o solo, sendo que as duas primeiras foram efetuadas para uniformização e a

terceira, cerca de 150 dias após a segunda foi utilizada para quantificação. As podas

adicionaram grandes quantidades de biomassa e aumentaram a disponibilidade de

nutrientes às culturas intercaladas. A análise dos nutrientes da biomassa vegetal

depositada representa um aporte total de 247,74 kg ha

-1

de N, 17,42 kg ha

-1

de P,

105,92 kg ha

-1

de K, 170,02 kg ha

-1

de Ca e 34,83 kg ha

-1

de Mg. Segundo os

autores, estes aportes de nutrientes são bem expressivos, principalmente no caso do

N e K. Contudo, como o sistema possui elevada densidade de frutíferas, constatou-

se a oferta insuficiente de nutrientes para algumas espécies, que apresentaram

sintomas de deficiência, especialmente o abacaxi.

A utilização de espécies frutíferas em sistemas agroflorestais é viável desde

que sejam manejadas corretamente. Essas espécies, desde que selecionadas

adequadamente, considerando sua integração com os demais componentes do

sistema, podem ser utilizadas em SAF’s de subsistência e em SAF’s comerciais. Na

subsistência, a diversificação é um imperativo, e no comercial devem ser priorizadas

duas ou, no máximo, três espécies frutíferas para que se tenha escala de produção

(Carvalho, 2006).

A definição de espécies frutíferas a serem utilizadas em SAF’s deve ser

considerada de forma abrangente, em função de diversos aspectos, dentre os quais

merecem destaque: integração entre espécies, sustentabilidade econômica, impacto

sobre a mão-de-obra, variedades, métodos de propagação, manejo, espaçamento,

logística de transporte e finalidade da produção, ou seja, se para o consumo familiar

ou para comercialização. Para os SAF’s comerciais, é imprescindível que se

considerem as perspectivas de mercado para as frutas que serão produzidas, sob

pena de frustração futura (Carvalho, 2006).

3.2. Azadirachta indica A. Juss (neem)

O neem (Azadirachta indica) é uma árvore que pertence à família Meliaceae.

É uma espécie de origem asiática, natural de Burma e das regiões áridas do

subcontinente indiano, onde existem, aproximadamente, 18 milhões de árvores

(Neves et al., 2003).

Seu plantio e uso têm se ampliado para outros locais, como Filipinas,

República Dominicana, Nicarágua, Estados Unidos, Austrália e países da África

(Martinez, 2002; Neves et al., 2003). Seu estudo no Brasil como inseticida foi iniciado

no Instituto Agronômico do Paraná (IAPAR), em 1986, quando se introduziu neem

proveniente das Filipinas (Martinez, 2002).

O neem é uma espécie muito resistente e de crescimento rápido, que

alcança, normalmente, de 10 a 15 m de altura e, dependendo do tipo de solo e das

condições climáticas, pode atingir até 25 m. Não apresenta exigências edáficas,

porém não tolera locais encharcados e salinos (Neves et al., 2003).

Quanto ao clima, é mais adaptada a climas tropicais e subtropicais, com

precipitação pluvial anual entre 400 e 800 mm e faixa ideal de temperatura de 21 a

C. É tolerante a altas temperaturas, inclusive acima de 44

C, por curtos

períodos, e resistente a longos períodos secos. Porém, não tolera geadas e, caso

ocorram temperaturas abaixo de 8

C, o crescimento é interrompido (Neves et al.,

2003).

Ao atingirem 50 cm, após três a cinco meses, as mudas estão prontas para

serem transplantadas. O espaçamento recomendado para o neem depende do

objetivo do plantio e das condições ambientais. No Brasil, recomenda-se de 5 a 8 m

entre árvores (Martinez, 2002).

Segundo Neves et al. (2003), o neem é uma espécie que pode ser utilizada

para diversas finalidades como no controle de insetos, nematóides, alguns fungos,

bactérias e vírus, na medicina humana e animal, no reflorestamento, na indústria de

cosméticos, no paisagismo, na adubação e a madeira, muito resistente, pode ser

utilizada na indústria moveleira, na construção civil e para fins energéticos.

Entretanto, somente extratos de folhas e óleos de sementes têm potencial no

controle de pragas.

Extratos e óleos de plantas com potencial inseticida representam uma

alternativa no controle de pragas, especialmente quando agroquímicos sintéticos não

são permitidos, como em cultivos orgânicos (Mourão et al., 2004). Prates et al.

(2003) avaliaram a atividade de extrato aquoso de folhas de neem sobre a lagarta-

do-cartucho (Spodoptera frugiperda) do milho, confirmando o potencial inseticida

natural do neem no controle dessa praga.

Mourão et al. (2004) também estudaram o efeito de extratos de neem no

controle do ácaro-vermelho-do-cafeeiro (Oligonychus ilicis), constatando que a taxa

instantânea de crescimento populacional de O. ilicis diminuiu, linearmente, com o

aumento da concentração dos extratos de óleos de torta, sementes e folhas de neem

até 0,075, 15 e 144 mg mL

-1

, respectivamente, a partir das quais as populações

foram extintas. A toxicidade crônica ocorreu segundo o autor pela atividade acaricida

da azadiractina e por outros compostos desses extratos, com efeitos irreversíveis e

progressivos em processos fisiológicos essenciais para o desenvolvimento de O.

ilicis.

A madeira do neem apresenta um poder calorífico de 4.088,5 (kcal kg

-1

rendimento em carvão de 38,20%, teor de cinzas de 2,11% e porcentagem de

carbono fixo de 81,82%, o que revela a qualidade desta espécie como material

energético. A densidade básica encontrada para a madeira pode ser relacionada à

idade do povoamento florestal utilizado. Assim, os povoamentos mais maduros

produzirão madeiras mais densas e com melhores características para fins

energéticos (Araújo et al., 2000).

O neem é uma espécie valiosa na Índia e na África e está se tornando

popular na América Central. Por ser uma espécie robusta, é ideal para programas de

reflorestamento e para recuperação de áreas degradadas, áridas e costeiras, sendo

também utilizada como quebra-vento. Em áreas de poucas chuvas e ventos fortes,

protege as culturas da dessecação (Neves et al., 2003).

3.3. Mangifera indica L. (mangueira)

O Brasil, segundo estimativas da FAO, vem se apresentando como um dos

maiores produtores mundiais de frutas, participando com cerca de 7% da produção

mundial, principalmente de mamão, manga, laranja, maracujá entre outras frutas

(Cavalcante et al., 2006). Dentre os principais produtos da fruticultura brasileira

encontra-se a manga, que é economicamente a mais importante fruta da família

Anarcardiacea (Mendonça et al., 2006).

A produção de manga do Brasil teve um significativo crescimento nos

últimos anos, principalmente nas áreas irrigadas. O maior rendimento por área, em

relação aos cultivos tradicionais, e a expansão dos mercados externos e internos

podem ser apontados como as principais causas desse crescimento (Silva e Lima,

2001; Carvalho et al., 2004; Fernandes, 2006). O Brasil produz manga de setembro a

março, época de entressafra dos principais países produtores e exportadores, o que

lhe confere vantagens comerciais, desfrutando de preços mais elevados, pela menor

concorrência no mercado na época de sua produção, o que explica, em grande

parte, o extraordinário desempenho das exportações brasileiras de manga (Almeida

et al., 2001). A adoção de técnicas de pós-colheita tem sido de fundamental

importância para adequar essa produção às exigências do mercado externo (Perosa

e Pierre, 2002).

Existe mais de 150 cultivares de manga produzidas no mundo, sendo o

gênero alimentício mais importante para os habitantes dos trópicos, depois da

banana (Mendonça et al., 2006). Os frutos da mangueira variam em seus tamanhos,

formatos, cores e sabores, sendo consumidos in natura ou processados (Cunha e

Neto, 2000b).

Devido à sua alta capacidade adaptativa, a mangueira pode ser cultivada

sob condições tropicais e subtropicais (Cunha e Neto, 2000a). As áreas que mais se

adaptam ao cultivo da mangueira são as que têm as estações secas e chuvosas bem

definidas. O período de estiagem deve ocorrer antes do florescimento, a fim de

permitir o repouso vegetativo da planta, e prolongar-se até a frutificação, para evitar

danos causados pela antracnose e oídio (Cunha, 2000).

A mangueira é uma espécie rústica que vegeta e frutifica tanto em solos

arenosos como argilosos, ligeiramente ácidos ou alcalinos (Cunha, 2000). No

entanto, desenvolve-se melhor em solos profundos (>2m), bem drenados e sem

problemas de salinidade (Magalhães e Borges, 2000). Segundo Cunha e Neto

(2000c), o espaçamento pode variar de 10 x 10 m a 7,0 x 4,5 m.

A floração da mangueira é um fenômeno complexo que se estende por um

período de 18 a 28 dias, embora a iniciação floral dure de 2 a 3 meses. O processo

de florescimento pode ser adiantado ou atrasado por meios naturais ou artificiais e é,

significativamente, influenciado pelas condições climáticas prevalecentes, pela

produtividade da safra anterior e por práticas culturais, como o uso de

fitorreguladores, poda, adubação nitrogenada, etc. (Cunha e Neto, 2000b).

Quanto à exportação média de nutrientes pelos frutos da mangueira (casca,

polpa e semente), segundo Magalhães e Borges (2000), são exportados 1,23 kg de

N; 0,15 Kg de P; 1,57 kg de K; 0,28 kg de Ca; 0,20 kg de Mg; 0,15 kg de S; 1,22 g de

B; 3,53 g de Cu; 4,19 g de Fe; 2,71 g de Mn e 3,27 g de Zn por Mg de frutos.

Medeiros et al. (2005) determinaram a composição mineral dos frutos de

mangueira, cv. Tommy Atkins, sob cultivo irrigado em três diferentes classes de solos

no Rio Grande do Norte, observando entre os plantios variação na composição

mineral que foram: 0,52 - 0,97 g kg

-1

de N; 0,14 - 0,30 g kg

-1

de P; 0,87 - 2,39 g kg

-1

de K; 0,56 - 3,09 g kg

-1

de Ca; 0,18 - 1,44 g kg

-1

de Mg; 5 - 13 mg kg

-1

de Zn; 22 - 33

mg kg

-1

de Cu; 130 - 316 mg kg

-1

de Fe e 6 - 21 mg kg

-1

de Mn. As diferenças nas

concentrações dos nutrientes entre os plantios foram atribuídas à fertilidade natural

do solo e às variações na produção dos frutos, que oscilou entre 130 e 240 frutos por

planta, com peso médio entre 377 - 496 g.

De acordo Ponciano et al. (2004), a cultura da manga apresenta viabilidade

econômica no Norte e Noroeste Fluminense.

3.4. Annona muricata L. (gravioleira)

A gravioleira é uma frutífera da família Annonaceae, que apresenta ótimo

potencial de comercialização no mercado interno e com grandes perspectivas para

exportação. Espécie bastante difundida em países subtropicais e tropicais, encontra

na região do nordeste brasileiro condições edafoclimáticas compatíveis com suas

exigências nutricionais e fisiológicas (Pinto e Silva, 1994; Cavalcante et al., 2001),

apresentando perspectivas de produção e mercado em quase todo território

brasileiro (Cavalcante et al., 2001).

Apesar da expansão da área cultivada, o Brasil importa graviola de países

como África do Sul e Venezuela (Nobre et al., 2003). Existe uma demanda crescente

dos frutos, cujas qualidades organolépticas possibilitam a utilização, tanto para

consumo “in natura” quanto para o aproveitamento pela agroindústria. A gravioleira

também possui propriedades utilizadas na medicina e na culinária caseira, sendo

aproveitada sob as mais diversas formas (Batista et al., 2003).

As pesquisas com gravioleira no Brasil são relativamente recentes e,

portanto, poucos resultados práticos foram efetivamente alcançados (Kitamura e

Lemos, 2004).

A propagação da gravioleira pode ser feita via semente ou via material

vegetativo como, por exemplo, borbulhas ou garfos (Pinto e Silva, 1994). Um dos

problemas da gravioleira é a germinação lenta, devido a um impedimento tegumentar

e à própria fisiologia da semente (Santos Filho et al., 2006).

Em geral, as gravioleiras produzidas de sementes iniciam a floração no

terceiro ou quarto ano do plantio, dependendo das condições climáticas da região.

As plantas enxertadas são mais precoces e, na maioria das vezes, iniciam a floração

antes mesmo de concluído seu primeiro ano de plantio (Pinto e Silva, 1994).

Ao estudar o estabelecimento de mudas de gravioleira inoculadas com

fungos micorrízicos arbusculares no campo, Samarão et al. (2006) constataram que

os fungos micorrízicos promoveram maior crescimento, produção de matéria seca e

conteúdo de P na parte aérea e raízes das mudas.

A baixa frutificação da gravioleira decorre de vários fatores, tais como a

presença de pragas e doenças, que provocam a queda prematura das flores, o clima

e os próprios tratos culturais. Estes fatores são também os responsáveis pela grande

diversidade de produção mencionada na literatura (Pinto e Silva, 1994). No Brasil

têm sido relatadas produtividades de 8 a 12 Mg ha

-1

(Sacramento et al., 2006).

Silva e Silva (1997), comparando dados de quantidades de alguns nutrientes

exportados pelos frutos de graviola na colheita, obtidos por diversos autores,

encontraram variações que foram: 2,70 - 3,12 kg Mg

-1

de N; 0,13 - 0,53 kg Mg

-1

de P;

2,53 - 3,60 kg Mg

-1

de K; 0,26 - 0,99 kg Mg

-1

de Ca e 0,15 - 0,24 kg Mg

-1

de Mg. As

diferenças verificadas entre estes resultados são justificadas segundo os autores

pelas condições de clima e solo, bem como aos efeitos genéticos.

Vários problemas fitossanitários limitam o cultivo da gravioleira. A broca-do-

fruto, Cerconota anonella (Sepp.) (Lepidoptera.: Oecophoridae) e a broca-da-

semente, Bephratelloides pomorum (Fab.) (Hymenoptera: Eurytomidae) são

consideradas as pragas mais importantes, pelos danos expressivos que causam à

cultura. A utilização de invólucros que não prejudiquem o desenvolvimento normal

dos frutos e garantam proteção contra as pragas tem sido incentivada. Esta prática é

considerada profilática e assegura bom controle, se for iniciada assim que os frutos

tiverem aproximadamente 2,5 cm de comprimento (Micheletti et al., 2001).

De acordo Ponciano et al. (2004), a cultura da graviola apresenta viabilidade

econômica no Norte e Noroeste Fluminense.

3.5. Adubação verde

Atualmente, a preocupação com o avanço do processo degradativo instalado

em grande parte dos solos brasileiros, e com a prevenção da degradação de novas

áreas, tem conduzido à necessidade do uso de práticas de adição de matéria

orgânica ao solo. Entre essas, destaca-se a adubação verde, reconhecida como uma

alternativa viável na busca da sustentabilidade para solos agrícolas (Alcântara et al.,

2000).

Calegari et al. (1993a) definiram adubação verde como a utilização de

plantas em rotação, sucessão ou consorciação com as culturas, incorporando-as ao

solo ou deixando-as na superfície, visando-se à proteção superficial, bem como à

manutenção e melhoria das características físicas, químicas e biológicas do solo,

inclusive a profundidades significativas.

A família das leguminosas (Fabeaceae) é a mais utilizada como adubo

verde. A principal vantagem do emprego de espécies leguminosas na adubação

verde é reduzir a aplicação de N via adubo químico, pois essas plantas fixam este

nutriente do ar, quando em simbiose com bactérias diazotróficas, enriquecendo o

solo (Silva et al., 2002).

Segundo Calegari et al. (1993a), entre os efeitos da adubação verde sobre a

fertilidade do solo estão o aumento do teor de matéria orgânica, da disponibilidade

de nutrientes, da capacidade de troca de cátions efetiva (t) do solo, o favorecimento

da produção de ácidos orgânicos, de fundamental importância para a solubilização

de minerais, a diminuição dos teores de alumínio trocável, através de sua

complexação, a diminuição da acidez do solo e o incremento da capacidade de

reciclagem e mobilização de nutrientes lixiviados ou pouco solúveis, que estejam nas

camadas mais profundas do perfil.

Segundo Alcântara et al. (2000), os efeitos promovidos pela adubação verde

nas propriedades químicas do solo são bastante variáveis, dependendo de fatores

como: a espécie utilizada, o manejo dado à biomassa, a época de plantio e corte do

adubo verde, o tempo de permanência dos resíduos no solo, as condições locais e a

interação entre esses fatores.

Castro et al. (2004) avaliaram a utilização de adubação verde como fonte de

N para a cultura da berinjela em sistema orgânico, constatando que o uso de

leguminosas em pré-cultivo e consórcio contribui para o fornecimento deste nutriente

sendo suficiente para compensar o N exportado pela colheita dos frutos. A maior

produção de matéria seca das plantas usadas na adubação verde foi da Crotalaria

juncea, que foi de 6,5 Mg ha

-1

, o que representou 126 kg ha

-1

de N.

Perin et al. (2004a) avaliaram o efeito residual do cultivo isolado e

consorciado dos adubos verdes Crotalaria juncea e Pennisetum americanum sobre a

transferência de nitrogênio (N) e produção de brócolo, em sucessão ao milho, na

ausência e presença da adubação de 150 kg ha

-1

de N. Não foi detectado efeito dos

adubos verdes sobre o diâmetro, peso da matéria seca das inflorescências e

produção de matéria seca do brócolo, tanto na ausência quanto na presença de N-

fertilizante. A crotalária isolada em pré-cultivo elevou o teor e acúmulo de N nas

folhas e inflorescências de brócolo, na ausência e na presença de N-fertilizante. O

aproveitamento do N proveniente da fixação biológica pela inflorescência de brócolo

foi de 9,15% para a crotalária isolada e de 8,48% quando consorciada, valores estes,

baixos segundo os autores.

A prática de adubação verde, embora apresente várias vantagens, é pouco

utilizada pelos agricultores, principalmente durante o verão, pois para eles o cultivo

de uma espécie de adubo verde não propicia retorno econômico imediato, ou seja,

ocupa o espaço de outra cultura de renda. Isto ocorre em função do

desconhecimento dos efeitos benéficos das plantas de cobertura nos sistemas de

produção (Dourado et al., 2001).

3.6. Crotalaria juncea (crotalária)

A crotalária é uma leguminosa subarbustiva, originária da Índia e Ásia

tropical, de porte alto (2 a 3 m), com caule ereto, semilenhoso, ramificado na parte

superior. É planta anual, de crescimento inicial rápido, com efeito alelopático e/ou

supressor de invasoras bastante expressivo. Quanto ao clima é uma planta de clima

tropical e subtropical, não resistindo a geadas, apresentando bom comportamento

nos solos argilosos e arenosos (Calegari et al., 1993b).

Dentre as diversas leguminosas usadas como adubo verde, a crotalária é

muito eficiente como produtora de massa vegetal e como fixadora de N (Salgado et

al.,1982). Segundo Souza e Pires (2002), esta espécie é uma das mais utilizadas

para adubação verde no Brasil.

A semeadura deve ser feita de setembro até dezembro, nos locais onde há

probabilidade de ocorrência de geadas nos meses de abril/maio. Onde não há

ocorrência de geadas pode ser semeada até março/abril (Calegari et al., 1993b).

O ciclo completo da cultura é em torno de 270 a 300 dias. O corte da

biomassa deve ser realizado na fase de pré-florescimento, ao redor de 100 dias, em

razão de apresentar posteriormente um elevado desenvolvimento do caule,

dificultando a operação (Calegari et al., 1993b).

Silva et al. (2002) avaliaram a produção de matéria verde e seca e

quantidade de nutrientes incorporados ao solo pelo cultivo intercalar de diversas

espécies para adubo verde em pomar de laranjeira-pêra, constatando que a C.

juncea foi a espécie que mais destacou-se como produtora de biomassa (13,1 Mg ha

de matéria seca) e incorporadora de nutrientes. Sendo as quantidades médias de

nutrientes incorporadas ao solo pelo cultivo da crotalária nos anos de 1989/90 a

1992/93 de 183,4 kg ha

-1

de N, 17,04 kg ha

-1

de P

170,33 kg ha

-1

de K, 104,8 kg ha

-1

de Ca, 52,4 kg ha

-1

de Mg e 13,1 kg ha

-1

de S.

Wutke (1993), citado por Dourado et al. (2001), diz que a C. Juncea pode

fixar 150 a 165 kg ha

-1

ano

-1

de N no solo, podendo chegar a 450 kg ha

-1

ano

-1

certas ocasiões, produzindo 10 a 15 Mg de matéria seca, o que corresponde a 41 e

217 kg ha

-1

de P

e K

O, respectivamente.

Em um experimento realizado por Menegucci et al. (1995), em um pomar de

citros, observaram-se modificações nos parâmetros de fertilidade analisados nas

profundidades de 0 a 20 cm e 20 a 40 cm em área com e sem C. juncea para

adubação verde. Na camada de 0-20 cm do solo, a C. juncea não promoveu

alterações aparentes nas variáveis e na camada de 20-40 cm, verificou-se que a C.

juncea aumentou a soma de bases, a capacidade de trocas de cátions efetiva, o teor

de C, os teores de Ca e Mg e reduziu a acidez potencial.

Perin et al. (2004b) avaliaram os efeitos dos cultivos isolados e consorciados

dos adubos verdes de verão crotalária (C. juncea) e milheto (Pennisetum

americanum) na produção de fitomassa, nos teores e acúmulos de nutrientes e na

fixação biológica de N (FBN), constatando que a crotalária apresentou maior

produção de fitomassa, 108% maior que a da vegetação espontânea e 31% superior

à do milheto. O acúmulo de P e Mg foi fortemente influenciado pela produção de

fitomassa, atingindo valores elevados com a presença da crotalária, ao passo que o

acúmulo de N e Ca resultou tanto dos maiores teores quanto da maior produção de

fitomassa nos tratamentos com a leguminosa. Do total de N acumulado, a FBN foi

responsável por 61% na leguminosa, quando consorciada, e 57% quando isolada,

sendo o restante proveniente do solo, incorporando ao solo, via FBN, 89 e 173 kg ha

, respectivamente, em função da diferença na produção de fitomassa dos sistemas,

constituído-se excelente estratégia de incremento de N ao solo.

Amabile et al. (2000) estudaram o comportamento de espécies de adubo

verde em diferentes épocas de semeadura e espaçamento na região dos cerrados,

constatando que o atraso da semeadura (janeiro e março) em relação à época

considerada como mais favorável (novembro) reduziu os rendimentos de fitomassa

verde e seca da crotalária, o que indica, possivelmente, que a espécie foi afetada

pelo fotoperíodo. Quanto aos espaçamentos de 0,40 m e 0,50 m, não alteraram a

idade do florescimento, nem a produção de fitomassa verde e seca.

Como a crotalária é uma planta usada para prática da adubação verde, não é

adotada pelo agricultor brasileiro que visa à implantação de culturas rentáveis.

Portanto, como opção de renda extra, pode-se cultivar a crotalária para fins de

produção de sementes, associando-se ainda a adubação fosfatada e a prática de

podas, para aumento dessa produção (Dourado et al., 2001).

3.7. Atividade microbiana

A atividade biológica pode ser definida como toda reação bioquímica

catalisada pelos organismos do solo, que pode resultar também em atividade física,

como no caso do efeito da excreção de polissacarídeos na agregação do solo. As

atividades microbianas podem ser divididas em dois tipos: as gerais e as específicas.

As atividades gerais são aquelas decorrentes de todos ou quase todos os

microrganismos do solo, como a respiração e a produção de calor, apresentando,

portanto, valor significativo como índice de atividade total no solo. As atividades

específicas são medidas por grupos específicos de microrganismos existentes no

solo, dentre os quais se podem citar os fixadores de N e os nitrificantes, entre outros.

Ambos os tipos podem ser medidos “ex situ” ou “in situ”. As atividades “in situ” são

feitas diretamente no campo, sob condições naturais, em amostras não pertubadas

(Moreira e Siqueira, 2002).

A manutenção e melhoria da qualidade do solo são características chave

para a estabilidade, sustentabilidade e produtividade de ecossistemas naturais e de

agroecossistemas. Para monitorar a qualidade do solo, torna-se necessário o uso de

indicadores apropriados (Marriel et al., 2005). A microbiota dos solos tem sido

preconizada como um dos indicadores mais sensíveis para detecção de

interferências em ecossistemas (Costa e Siqueira, 2004). O potencial do uso de

bioindicadores (indicadores microbianos) reside no fato de serem capazes de

detectar rapidamente alterações, em função das práticas de manejo, mesmo quando

os atributos químicos e físicos do solo ainda não tenham sido alterados (Marriel et

al., 2005).

Dentre os parâmetros utilizados para quantificar a atividade microbiana pode-

se citar a respiração, o ATP, a produção de calor e a atividade enzimática (Moreira e

Siqueira, 2002). Métodos para avaliar a atividade microbiana no solo são

fundamentais no monitoramento ambiental de áreas degradadas (Pereira et al.,

2004). Os microrganismos podem ocupar 5% do espaço poroso do solo e a

ocorrência de um microrganismo em determinado solo é a expressão de sua reação

às condições ambientais, dentro dos limites das características genéticas dos

mesmos (Silva et al., 2004b).

Costa e Siqueira (2004) realizaram análise do DNA e a atividade enzimática

como bioindicadores de diversidade microbiana do solo de diferentes sistemas,

constatando que ambos os bioendicadores foram eficientes na caracterização da

qualidade do solo. Dentre os sistemas de reflorestamentos avaliados, o solo com

espécies nativas apresentou maior atividade enzimática, 118,73 µg FDA hidrolisada

60min

-1

, o que ocorreu, provavelmente, por este apresentar maior acúmulo de

matéria orgânica. Quando comparado ao solo de mata atlântica este foi inferior

25,12% (158,56 µg FDA hidrolisada 60min

-1

). Já o solo não reflorestado

apresentou atividade próxima de zero. Maior diversidade genética também foi

observada nos solos de reflorestamento com espécies nativas e de mata atlântica, o

que indica que o solo deste reflorestamento está recuperando o equilíbrio entre os

diversos organismos e os domínios funcionais.

Silva et al. (2004a) avaliando

a atividade microbiana em função da

incorporação de resíduos vegetais adicionados ao solo, através da respiração

edáfica, concluíram que, dentre as espécies utilizadas, a maior e a menor produção

de CO

ocorreu, respectivamente, nos tratamentos com serrapilheira de angico

(Anadenanthera sp.) e algoroba (Carapa guianensis Aubl).

Silva et al. (2004c) avaliaram, em condições controladas, o efeito da

compactação sobre a atividade microbiana e mineralização de C orgânico do solo,

constatando que, com o aumento da compactação, houve redução da biomassa

microbiana e da mineralização do C orgânico, o que pode ser explicado pelo

aumento da percentagem de microporos onde os materiais orgânicos foram

encerrados e fisicamente protegidos do ataque microbiano.

Matsuoka et al. (2003) avaliaram o C da atividade microbiana (CBM) e a

atividade enzimática de microrganismos de solos, na camada de 0-5 cm, em

vegetação nativa (cerradão), de vinhedo na linha (VL) e na entrelinha (VE) e do

cultivo anual de soja (CA), sendo avaliadas as enzimas do solo associadas ao ciclo

do C, β-Glucosidase; ao ciclo do P, fosfatase ácida; e ao ciclo do S, arilsulfatase.

Observaram que, em relação ao cerradão, os sistemas VE, VL e CA apresentaram,

respectivamente, reduções de 68, 66 e 75%. O manejo diferenciado na VE, com a

utilização do capim como cobertura viva, proporcionou maior atividade da enzima β-

Glucosidase dentre os sistemas avaliados. No caso da fosfatase ácida foi observada

maior atividade no cerradão em relação a VE e CA, o que é justificado pela

importância dessa enzima na mineralização do P orgânico nas áreas sob vegetação

nativa, onde a matéria orgânica é a principal fonte de nutrientes para o crescimento

das plantas. Maior atividade da arilsulfatase também foi observada no cerradão,

evidenciando a importância da ciclagem do S orgânico nas áreas nativas. Os autores

concluíram que as atividades das enzimas são indicadores biológicos sensíveis para

identificar alterações no solo de acordo com os diferentes sistemas de uso da terra.

Paulucio et al. (2004) avaliaram a atividade microbiana em áreas degradadas

pela extração de argila, revegetadas com leguminosas e eucalipto, utilizando

hidrólise do diacetato de fluoresceína, concluindo que a revegetação da cava de

extração de argila aumentou a atividade enzimática no solo. Concluíram ainda que

esse indicador de qualidade biológica do solo pode ser utilizado para auxiliar nas

estratégias de manejo de recuperação dessas áreas. O método da hidrólise de

diacetato de fluoresceína (FDA) é um método que avalia a atividade hidrolítica, que é

realizado por várias enzimas (lípases, proteases e esterases) presentes nos

microrganismos e, por esse motivo, tem sido usado com sucesso para avaliar a

atividade microbiana nas amostras de solo, apresentando menor variação entre as

amostras (Silva et al., 2004b).

Ribeiro (2008) avaliou a influência da adubação verde sobre a atividade

microbiana do solo em um pomar de mangueiras e gravileiras conduzido

organicamente, utilizando o método de hidrólise de FDA, constatando que não houve

influência da adubação verde sobre a atividade microbiana.

Microbiologia

4. MATERIAL E MÉTODOS

4.1. Descrição da área

O experimento foi implantado em uma área de cinco hectares de pomar

orgânico de mangueira (Mangifera indica) e gravioleira (Annona muricata), situada

em Campos dos Goytacazes, RJ. A latitude local é de 21

36’49,6’’ (S) e longitude de

16’25,7’’ (W).

O solo é Argissolo amarelo com relevo plano, típico dos tabuleiros costeiros

(Costa et al., 2004). O clima é do tipo Awa, pela classificação de Köppen, com

predominância do clima quente e úmido, sem inverno pronunciado. O regime

pluviométrico apresenta chuvas no verão e estiagem no inverno, com precipitação

média anual em torno de 1095,03 mm, nos anos de 2005 a 2007. Na Figura 1, são

apresentados os dados de precipitação, temperatura máxima, média e mínima

mensal de novembro de 2004 a novembro de 2007, conforme dados obtidos na

PESAGRO-RIO (Laboratório de Engenharia Agrícola - LEAG/CCTA/UENF), em

Campos dos Goytacazes, RJ.

A área foi utilizada para cultivo da cana-de-açúcar por longo tempo e,

posteriormente, esta cultura foi eliminada, ocorrendo regeneração natural e mantida

sob pousio por dez anos, aproximadamente.

100

150

200

250

300

350

400

450

500

nov

an/05

ar/05

mai/05

set

/05

nov/05

an/06

mar/

ai/

set

/06

jan/

mar/

mai

jul/07

set/

Precipitação (mm)

Temperatura (ºC)

Precipitação Temp. mínima Temp. média Temp. máxima

Figura 1. Temperatura máxima, média e mínima e precipitação pluviométrica mensal

em Campos dos Goytacazes - RJ, segundo a estação climatológica da Pesagro-Rio.

No ano de 2002 foi plantado milho e nas entrelinhas foi semeanda crotalária.

A crotalária foi roçada 40 dias após o plantio, deixando-se os restos culturais na

superfície do solo como adubação verde. Com a rebrota, a crotalária permaneceu até

a produção de sementes. Após a colheita do milho, os restos culturais do milho e

crotalária foram incorporados por uma gradagem leve. Isto proporcionou a

germinação das sementes de crotalária, que cobriu completamente a área de plantio,

permanecendo até o plantio das frutíferas.

Com a finalidade de desenvolver um sistema agrícola de produção orgânica

na região com mangueira e gravioleira, em setembro de 2003, foram feitas covas na

dimensão de 0,5 x 0,5 m, com espaçamento de 8 x 8 m, sendo adubadas com

material de compostagem de casca de eucalipto e farinha de carne e ossos.

Também foram adicionados 300 g de calcário dolomítico por cova. O plantio foi

realizado em novembro de 2003 com mudas de mangueira, variedade Tommy

Atkins, e gravioleira, variedades Morada e Criola, dispostas em linhas homogêneas e

alternadas.

4.2. Condução do experimento

Na área do pomar implantado, conduzido de forma orgânica, com finalidade

comercial foram implantados os sistemas de cultivo apresentados na Tabela 1. Cada

sistema foi estabelecido em uma área de 4608 m

. Em novembro de 2004 foram

plantadas mudas de neem e em novembro de 2005 foi semeada a crotalária nos

respectivos sistemas de produção.

Tabela 1. Sistemas agroflorestais

implantados em um pomar de cultivo orgânico de

mangueira e gravioleira com crotalária e neem, em Campos dos Goytacazes - RJ

Sistemas de

produção

(Sigla)

Componentes Descrição

Frutíferas (testemunha) Entre as linhas das frutíferas foi mantida a

vegetação de ocorrência natural, com

roçadas periódicas (Figura 2)

FN Frutíferas + neem Uma linha de neem foi plantada entre as

linhas das frutíferas em quincôncio e nas

entrelinhas foi mantida a vegetação de

ocorrência natural, com roçadas periódicas

(Figura 3)

FNC Frutíferas + neem +

crotalária

Uma linha de neem foi plantada entre as

linhas das frutíferas em quincôncio e nas

entrelinhas das frutíferas e do neem foi

semeada crotalária (Figura 4)

FC Frutíferas + crotalária A crotalária foi semeada entre as linhas das

frutíferas (Figura 5)

Figura 2. Croqui do sistema de produção das frutíferas - testemunha

Figura 3. Croqui do sistema de produção frutíferas + neem

Figura 5. Croqui do sistema de produção frutíferas + crotalária

Figura 4. Croqui do sistema de produção frutíferas + neem + crotalária

Cada sistema de produção foi dividido em nove subáreas de 512 m

, cada

uma constituída de oito frutíferas (quatro gravioleiras e quatro mangueiras). Destas

nove subáreas, seis foram selecionadas, ao acaso, para a realização das

amostragens.

As mudas de neem foram produzidas a partir de sementes, de um

povoamento em Natividade - RJ, e o plantio foi realizado, em novembro de 2004,

entre as linhas das frutíferas, em quincôncio. As mudas foram plantadas em covas

de 30 x 30 x 30 cm que receberam cinco litros de composto orgânico.

A crotalária foi semeada em novembro de 2005, entre as linhas das frutíferas

e do neem, no sistema de produção FNC, e entre as linhas das frutíferas, no sistema

de produção FC, sendo mantida uma distância de 1,5 m das frutíferas e 1,0 m do

neem. A semeadura foi feita em covas com o auxílio de matraca, onde foram

colocadas aproximadamente cinco sementes por cova, com espaçamento de 0,5 m

nas entrelinhas e 0,2 m entre as covas na linha.

Em maio e novembro de 2006 (2,5 e 3 anos após o plantio das frutíferas), as

frutíferas foram adubadas com material de compostagem de casca de eucalipto,

esterco bovino, farinha de carne e ossos, cinza, restos de culturas e de madeira.

Foram aplicados aproximadamente 10 litros em cada frutífera em todos os sistemas

de produção.

A crotalária foi cortada no dia 10 de fevereiro de 2006, 74 dias após a

semeadura, no início do seu florescimento. Após a rebrota, realizou-se o segundo

corte no dia 05 de abril de 2006, 54 dias após o primeiro corte. Os cortes foram

efetuados a uma altura de cinco a dez cm de solo. A fitomassa foi dividida

equitativamente e adicionada sob a copa das fruteiras e do neem, nos tratamentos

correspondentes.

4.3. Avaliações

4.3.1. Quantificação, avaliação da decomposição e qualidade nutricional da

fitomassa produzida pela parte aérea da crotalária

Para quantificação, foram coletadas, em ambos os cortes, a fitomassa

produzida em três amostras de 1 m

por subárea, sendo avaliadas as seis subáreas

selecionadas por sistema de produção. Esta avaliação foi realizada no sistema de

produção FNC (frutíferas + neem + crotalária) e FC (frutíferas + crotalária).

As taxas de decomposição foram estimadas utilizando-se o método do

“litterbags”, que consiste no uso de sacos de decomposição, confeccionados com

tela de polietileno, com dimensões de 35 x 28 cm e malha de 1 mm, permitindo a

entrada da microfauna e parte da mesofauna. Cada saco de decomposição recebeu

50 gramas de fitomassa recém-cortada

(primeiro corte) e, posteriormente, foi

costurado nas laterais com linhas de nylon.

Foram distribuídos 48 sacos de decomposição no sistema de produção FC.

Os sacos, contendo o material da poda da crotalária, foram colocados sobre o solo e

misturados ao material proveniente do corte, que foi adicionado sob a copa das

frutíferas, sendo nove sacos de decomposição em cada subárea, um para cada

época de avaliação. Foi quantificada a massa seca residual e realizadas as análises

nutricionais. As amostragens foram simples, ao acaso, realizadas no dia do corte

(aos 74 dias após a semeadura), aos 3, 6, 10, 15, 30, 60, 90, 120 e 150 dias após o

corte. Em cada época foram coletados seis sacos de decomposição, correspondendo

a uma amostra por subárea selecionada.

Após cada coleta, o material foi limpo, para retirar o excesso de terra, e

levado para estufa de circulação forçada de ar seco, à temperatura de 65

C, por 72

horas. Após a secagem o material foi pesado, para estimar a massa seca, e triturado

em moinho (Tipo Wiley), com peneira de 20 mesh,

Posteriormente, as amostras foram submetidas às digestões sulfúrica e

nítrico-perclórica (Malavolta et al, 1997) e os extratos utilizados para a determinação

dos teores de P, K, Ca, Mg, S e C. O P foi determinado por colorimetria; o K, por

fotometria de chama; o Ca e Mg, por espectrofotometria de absorção atômica; o S,

por turbidimetria com cloreto de bário (Jones jr. et al., 1991; Malavolta et al., 1997); N

total (N

Total

) pela digestão Kjeldahl e o C, por oxidação com dicromato de potássio em

meio ácido (Anderson e Ingram, 1996).

Foram também determinados os teores de lignina e celulose no dia do corte,

aos 30, 60, 90, 120 e 150 dias após o corte, pelo método do fracionamento das fibras

em detergente ácido (FDA), descrito por Van Soest e Wine (1968).

As análises estatísticas dos dados da fitomassa produzida e adição de

nutrientes foram realizadas por média e intervalo de confiança (COCHRAN, 1955),

considerando o nível de significância α igual a 5 %, admitindo-se uma amostra

representativa de uma população infinita. Para taxa de decomposição da fitomassa

e liberação de nutrientes foram calculadas as médias e ajustados os modelos de

decaimento para o comportamento das variáveis ao longo do tempo, descrita por

uma equação exponencial simples: Y

= a e

–bt

. Onde, Y

= massa ou nutriente

remanescente no “litterbag”; t = tempo em dias; a = massa inicial ou nutriente inicial; -

b = taxa de decomposição. As curvas de decaimento e suas respectivas equações

matemáticas foram obtidas através de regressões, utilizando-se o programa

estatístico SigmaPlot (2001), que também foi utilizado para a confecção dos gráficos.

4.3.2. Determinação da atividade enzimática microbiana do solo

Foi avaliada a atividade enzimática do solo sob as frutíferas ao longo do

período de decomposição da crotalária, no sistema de produção F (frutíferas que não

receberam os resíduos da crotalária) e o sistema de produção FC (frutíferas que

receberam os resíduos da crotalária). As coletas das amostras de solo foram feitas

no momento do corte da crotalária e aos 10, 20, 40, 80, 100 e 120 dias após o corte.

A coleta das amostras de solo foi realizada na profundidade de 0-5 cm, a 50

cm do tronco das árvores. As amostras de solo recém-coletado

foram passadas em

uma peneira com malha de 2 mm e conservadas em câmara fria até a análise.

A amostragem foi realizada, retirando-se quatro amostras simples de solo

por subárea, para compor uma amostra composta (0,5 - 1 kg), sendo duas sob a

copa de mangueiras e duas sob a copa de gravioleiras, que foram escolhidas

aleatoriamente. Foram avaliadas seis subáreas por sistema de produção e sete

períodos de coleta, totalizando 42 amostras compostas por sistema de produção.

Também foi determinada a atividade enzimática do solo sob a copa do neem

nos sistemas de produção FN e FNC para avaliar a influência da crotalária sobre

atividade microbiana no solo em contato com o neem. No sistema de produção FN

as plantas de neem não receberam os resíduos de fitomassa da crotalária e no

sistema de produção FNC as plantas de neem receberam os resíduos da fitomassa

da crotalária proveniente do corte. Para isso, foram retiradas amostras pontuais no

início de agosto de 2006 (estação seca) e fevereiro de 2007 (estação chuvosa). Para

determinação da atividade enzimática, foram retiradas três amostras simples por

subárea para compor uma amostra composta (0,5 - 1 kg) e, como cada subárea

apresenta três plantas de neem, uma amostra simples foi retirada de cada planta.

Foram avaliadas seis subáreas por sistema de produção, totalizando seis amostras

compostas por sistema de produção. O procedimento de coleta das amostras de solo

sob a copa do neem foi o mesmo utilizado sob a copa das frutíferas.

A atividade enzimática foi determinada pelo método de hidrólise do diacetato

de fluoresceína, descrito por Chen et al. (1988), que se baseia em estimar a

fluoresceína produzida no solo tratado com solução de diacetato de fluoresceína e

incubado a 24

Foram pesados 5 g da amostra úmida do solo (peso A) que, posteriormente,

foi seca em estufa a 60

C por, aproximadamente, 12 horas, obtendo-se o peso seco

do solo (peso B). Foi pesado solo úmido, equivalente a 5 g de solo seco, em

erlenmeyer de 125 mL, com quatro repetições por amostra. Em cada erlenmeyer

foram colocados 20 mL de solução tampão (fosfato de sódio 60 mM, pH 7,6) e

depois 200 µL (0,2 mL) da solução de diacetato a 2 mg mL

-1

, sendo fechados com

folha de alumínio. A mistura foi incubada em agitador a 150 rpm, a 24

C, por 20

minutos. Após este período de incubação a reação foi interrompida e foram

adicionados 20 mL de acetona. Foi feita a leitura do sobrenadante no

espectrofotômetro para a determinação da absorbância.

A curva foi feita colocando cinco gramas de solo em cada erlenmeyer, com

duas repetições para cada ponto da curva, sendo os pontos da curva as

concentrações 0, 100, 200, 300 e 400 µg de FDA, correspondendo respectivamente

a 0, 50, 100, 150 e 200 µL de solução de diacetato de fluoresceína. Foram colocados

5 mL de solução tampão em tubos fechados e adicionados 0, 50, 100, 150 e 200 µL

de solução de diacetato em cada tubo. Os tubos foram tampados, fervidos a 100

por cinco minutos em banho-maria

e resfriados em um banho com gelo. Depois

foram colocadas em cada erlenmeyer as respectivas concentrações preparadas nos

tubos fechados e adicionados 15 mL de solução tampão. Os erlenmeyers foram

agitados por 20 minutos e após este período a reação foi interrompida, sendo

adicionados 20 mL de acetona.

Durante duas horas as amostras foram deixadas em repouso, ocorrendo à

deposição do solo no fundo do erlenmeyer, foi retirado então o sobrenadante para

centrifugação por 10 minutos. Foi feita a leitura do sobrenadante em

espectrofotômetro para a determinação da concentração de fluoresceína, estimando-

se assim a atividade microbiana no solo que foi determinada diretamente na curva ou

pela equação da curva padrão.

As análises estatísticas dos dados da atividade enzimática das amostras

pontuais sob o neem e das amostras sob as frutíferas foram realizadas por média e

intervalo de confiança (COCHRAN, 1955), considerando o nível de significância α

igual a 5 %, admitindo-se uma amostra representativa de uma população infinita.

4.3.3. Análises químicas e físicas do solo

Em outubro de 2005 e 2006 foram coletadas amostras de solo nas seis

subáreas selecionadas em cada sistema de produção. Foi retirada, em cada

subárea, uma amostra composta de quatro subamostras, nas profundidades de 0-5,

5-10 e 10-20 cm. A amostragem do solo foi feita, ao acaso, sob a copa das frutíferas

a aproximadamente 80 cm do tronco das frutíferas.

Foram feitas as seguintes determinações, conforme os métodos descritos

por EMBRAPA (1999): pH em água; P e K extraíveis por Mehlich

-1

determinados,

respectivamente, por colorimetria e fotometria de chama; Ca e Mg extraíveis por KCl

1 mol L

-1

, determinados por espectrofotometria de absorção atômica; H + Al, por

acetato de cálcio 0,5 mol L

-1

a pH 7,0; N total, pelo método Kjeldahl e C-orgânico, por

oxidação com K

1,25 mol

-1

em meio ácido (Anderson & Ingram, 1996).

Determinaram-se ainda, nas amostras de solo coletadas em outubro de

2005, a densidade de partículas e a composição granulométrica, conforme

procedimentos descritos por EMBRAPA (1997). A composição granulométrica e a

classe textural são apresentadas na Tabela 2.

Em setembro de 2007, foram coletadas, em cada subárea selecionada, seis

amostras indeformadas de solo por profundidade (0-5 e 5-10 cm), sendo três sob a

copa de mangueiras e três sob a copa de gravioleiras para determinação da

densidade do solo, porosidade total, micro e macroporosidade. As análises destas

características foram realizadas conforme procedimentos descritos por EMBRAPA

(1997).

As análises estatísticas dos dados das análises químicas e físicas foram

realizadas por média e intervalo de confiança (COCHRAN, 1955), considerando o

nível de significância α igual a 5 %, admitindo-se uma amostra representativa de uma

população infinita.

Tabela 2. Análise granulométrica e classe textural de solos de

diferentes sistemas

agroflorestais

coletadas em outubro de 2005, em Campos do Goytacazes - RJ

Sistema de

Profundidade

Areia Silte Argila

Classe textural

produção (cm) ------------g kg

-1

-----------

0-5cm 726,48

75,57 197,95

Franco arenosa

5-10 cm 693,78

84,63 221,58

Franco argilo arenosa

Frutíferas

(testemunha)

10-20 cm 702,71

85,57 211,72

Franco argilo arenosa

0-5cm 719,69

75,71 204,60

Franco arenosa

5-10 cm 671,77

85,37 242,87

Franco argilo arenosa

Frutíferas +

Neem

10-20 cm 652,43

86,33 261,24

Franco argilo arenosa

0-5cm 740,51

70,70 188,79

Franco arenosa

5-10 cm 719,64

73,38 206,99

Franco arenosa

Frutíferas +

Neem +

Crotalária

10-20 cm 729,92

69,72 200,36

Franco arenosa

0-5cm 761,06

86,18 152,76

Franco argilo arenosa

5-10 cm 768,33

81,51 150,15

Franco argilo arenosa

Frutíferas +

Crotalária

10-20 cm 762,35

81,84 155,82

Franco argilo arenosa

4.3.4. Avaliação do crescimento e estado nutricional das frutíferas e do neem

As frutíferas das seis subáreas selecionadas em cada sistema de produção

foram medidas aos 13, 22, 26, 31, 39 e 45 meses após o plantio, quanto à altura e

diâmetro à altura do solo (DAS).

As plantas de neem dos sistemas de produção FN e FNC foram medidas aos

3, 6, 12, 18, 24 e 30 meses após o plantio, quanto à altura e DAS.

A avaliação do estado nutricional da mangueira e gravioleira foi realizada aos

45 meses após o plantio, sendo retiradas quatro amostras simples por subárea para

compor uma amostra composta, para cada uma das espécies. A amostra simples da

mangueira foi realizada segundo Magalhães e Borges (2000), consistindo na retirada

de quatro folhas adultas por planta, em todos os quadrantes, a uma altura mediana

da copa, em todas as plantas da subárea. Para formar as amostras simples da

gravioleira, foram retiradas quatro folhas adultas, coletadas com pecíolo, da porção

mediana da copa e do ramo, uma de cada quadrante da planta (Pinto et al., 2001).

Foram avaliadas seis subáreas por sistema de produção, sendo duas amostras

compostas (uma para cada fruteira) por subárea, totalizando seis amostras

compostas por espécie, em cada sistema de produção.

A avaliação do estado nutricional das plantas de neem foi realizada aos 33

meses após o plantio. Foram retiradas três amostras simples por subárea para

compor uma amostra composta. A amostra simples foi realizada retirando-se quatro

folhas compostas por planta, um em cada quadrante, a uma altura mediana da copa,

nas três plantas da subárea, sendo uma amostra simples por planta. Na amostragem

retiraram-se folhas na parte mediana dos ramos. Foram avaliadas seis subáreas por

sistema de produção (FN e FNC), sendo uma amostra composta por subárea,

totalizando seis amostras compostas por sistema de produção.

As amostras foram acondicionadas em sacos de papel e colocadas em

estufa de circulação forçada de ar, à temperatura constante de 65

C, por 72 horas e,

posteriormente, este material foi analisado para determinação dos teores de N, P, K,

S, Ca, Mg, Fe, Mn e Zn. O N foi determinado pelo método de Nessler (Jackson,

1965); o P, por colorimetria; o K, por fotometria de chama; Ca, Mg, Fe, Zn e Mn, por

espectofotometria de absorção atômica e o S, por turbidimetria com cloreto de bário,

segundo Jones Jr. et al. (1991) e Malavolta et al. (1997).

As análises estatísticas dos dados do crescimento em altura e DAC e dos

teores dos nutrientes nas frutíferas e no neem foram realizadas por média e intervalo

de confiança (COCHRAN, 1955), considerando o nível de significância α igual a 5 %,

admitindo-se uma amostra representativa de uma população infinita.

5. RESULTADOS E DISCUSSÃO

5.1. Quantificação e qualidade nutricional da fitomassa da parte aérea da

crotalária

Com o manejo dos dois cortes da crotalária foi adicionado ao solo no sistema

de produção FNC, aproximadamente, 9,62 Mg ha

-1

de fitomassa fresca,

correspondente à cerca de 2,79 Mg ha

-1

de fitomassa seca. No sistema de produção

FC, a produção foi de 15,31 Mg ha

-1

de fitomassa fresca, o que correspondente a,

aproximadamente, 4,59 Mg ha

-1

de fitomassa seca (Tabela 3). O sistema de

produção FNC produziu menos fitomassa seca, nos dois cortes, em comparação ao

sistema de produção FC. Uma possível explicação é a presença do neem, que

representa mais uma espécie no sistema de produção, reduzindo a área de plantio

da crotalária.

No segundo corte a produção de fitomassa foi maior, para os dois sistemas

de produção, o que se deve, provavelmente, ao maior volume de sistema radicular e

ao aumento da umidade do solo, com as chuvas dos meses de dezembro e janeiro

(Tabela 3).

Cada frutífera recebeu com o manejo dos dois cortes no sistema de

produção FNC e FC um total de, aproximadamente, 44,78 kg e 97,98 kg de

fitomassa fresca, respectivamente. No sistema de produção FNC a produção de

fitomassa da crotalária foi dividida por 99 plantas, sendo 27 plantas de neem, 36

mangueiras e 36 gravioleiras e no sistema de produção FC a produção foi dividida

pelas 72 frutíferas.

Tabela 3: Produção de fitomassa fresca e seca da parte aérea da Crotalaria juncea

em dois sistemas de produção nos dois cortes após a semeadura, em Campos dos

Goytacazes - RJ

Fitomassa fresca Fitomassa seca

frutíferas +

neem+crotalária

frutíferas +

crotalária

frutíferas +

neem+crotalária

frutíferas +

crotalária

Corte

(DAS

)

---------------------------Mg ha

-1

------------------------

3,14 ± 0,56 Ba

4,85 ± 1,28 Ba

1,00 ± 0,15 Bb 1,71 ± 0,36 Ba

128

6,48 ± 1,42 Ab 10,46 ± 1,64 Aa 1,79 ± 0,38 Ab 2,88 ± 0,50 Aa

Médias seguidas da mesma letra, minúscula na mesma linha e variável e maiúscula na coluna, não

diferem entre

si pelo intervalo de confiança, em nível de 5% de probabilidade;

DAS = Dias após a semeadura.

Silva et al. (2002) ao avaliarem a produção de fitomassa de crotalária

semeada entre as linhas de um pomar de laranjeira-pêra (50% da área total),

obtiveram uma produção média de 3,6 Mg ha

-1

de fitomassa seca no primeiro ano,

efetuando-se o corte aos 113 dias após a semeadura. Ao continuar a avaliação nos

três anos seguintes, os valores de produção de fitomassa aumentaram, o que,

segundo os autores, é justificado pela melhoria na fertilidade do solo e das condições

para o desenvolvimento da crotalária semeada posteriormente. Comparando a

produção de 3,6 Mg ha

-1

de fitomassa seca com as produções obtidas no presente

trabalho, observa-se que o sistema FNC apresentou produção 23% menor.

Entretanto, a produção do sistema FC foi 21% maior, o que demonstra adaptação

similar da espécie no sistema, considerando que a área de semeadura neste sistema

foi de 62,5% da área total.

Amabile et al. (2000), em Senador Canedo - GO, avaliaram a semeadura de

crotalária no início, meado e final da estação chuvosa, com corte das plantas ao

atingirem 50% de florescimento, que ocorreu aos 118, 88 e 67 dias após a

semeadura. A produção de fitomassa seca foi de 17,27, 7,99 e 6,00 Mg ha

-1

respectivamente. Tais resultados foram maiores em comparação com as produções

obtidas no presente trabalho, o que pode ser justificado pelo manejo diferenciado no

qual a semeadura foi mecanizada e após dez dias da emergência, executou-se o

desbaste, estabelecendo uma lotação de 25 plantas por metro. A semeadura foi

realizada em toda área de produção, diferente dos sistemas FNC e FC, que tiveram

suas áreas de semeadura reduzidas para 50% e 62,5%, respectivamente.

Em Viçosa - MG, Perin et al. (2004b) obtiveram uma produção de fitomassa

seca de crotalária de 9,34 Mg ha

-1

, aos 68 dias após a semeadura, produção esta

maior que as observadas nos sistemas de produção FNC e FC, tanto em função da

semeadura ter sido realizada em toda área de produção, quanto pela boa adaptação

da espécie às condições edafoclimáticas.

Entretanto, Torres et al. (2005) obtiveram resultados de produção de

fitomassa seca de crotalária de 3,9 e 3,7 Mg ha

-1

(corte aos 110 dias após a

semeadura) em Uberaba - MG, em 2000 e 2001, respectivamente, produções estas

similares às observadas no presente trabalho.

Em Campos dos Goytacazes - RJ, Queiroz et al. (2007) avaliaram a

produtividade de fitomassa seca de albízia, canafístula, gliricídia, guandu, leucena,

sabiá e sesbânia no sistema de aléias, sem adubação de P, verificando médias de

0,19 a 5,37 e 0,463 a 4,49 Mg ha

-1

, no ano de 2004 e 2005, respectivamente, médias

estas resultantes da soma de duas podas a 1,5 m de altura. Os resultados obtidos

por estes autores são menores que os obtidos nos dois manejos da crotalária nos

sistemas de produção FNC e FC, com exceção do guandu, que apresentou a maior

produção nos dois anos. O manejo da poda parcial das copas, o porte e as

características das espécies explicam tais resultados.

Na Tabela 4, são apresentados os valores médios dos teores de nutrientes

na fitomassa da parte aérea da crotalária no sistema de produção FNC e FC,

verifica-se que não houve diferença estatística nos resultados de N, P, S e C entre os

sistemas. Os teores de K e Mg foram maiores e o de Ca menor no sistema FC.

Tabela 4: Valores médios dos teores de nutrientes na fitomassa da parte aérea da

Crotalaria juncea, em Campos dos Goytacazes - RJ

Nutriente

Frutíferas + neem +

crotalária

Frutíferas + crotalária

N (g kg

-1

)

32,13 ± 5,10 a 32,54 ± 4,03 a

P (g kg

-1

)

1,33 ± 0,16 a 1,41 ± 0,07 a

K (g kg

-1

)

9,56 ± 1,14 b 14,74 ± 1,34 a

Ca (g kg

-1

)

18,15 ± 0,93 a 12,87 ± 1,73 b

Mg (g kg

-1

)

4,43 ± 0,25 b 5,53 ± 0,75 a

S (g kg

-1

)

1,74 ± 0,31a 1,70 ± 0,24 a

C (%)

41,86 ± 0,87 a 40,55 ± 0,73 a

Médias seguidas da mesma letra na linha não diferem significativamente entre si pelo intervalo de

confiança (IC), em nível de 5% de probabilidade.

Em Bebedouro - SP, Silva et al (2002) obtiveram, em quatro anos de

avaliação, os teores médios de 14 g kg

-1

de N, 1,3 g kg

-1

de P, 13 g kg

-1

de K, 8 g kg

de Ca, 4 g kg

-1

de Mg e 1,0 g kg

-1

de S, na fitomassa da parte aérea da crotalária

consorciada com laranja-pêra. Verifica-se que para todos os nutrientes foram obtidos

valores inferiores aos sistemas de produção FNC e FC, exceto para o K, no sistema

de produção FNC. Sabe-se que concentrações mais elevadas de Ca e Mg no solo

podem acarretar em menor absorção de K pelo sistema radicular, o que,

possivelmente, justifica a menor concentração de K, uma vez que os teores de Ca

foram muito maiores no presente trabalho.

De posse dos resultados de produção média de fitomassa seca (Tabela 3) e

teores médios de nutrientes (Tabela 4) calculou-se a quantidade de nutrientes

depositados ao solo para os dois sistemas de produção, nos dois cortes da parte

aérea (Tabela 5). Assim, constata-se que a crotalária incorporou quantidades

expressivas de nutrientes, pela ciclagem e fixação e proporcionou a disponibilização

destes para as frutíferas, uma vez que sistema radicular desta espécie traz para

parte aérea nutrientes perdidos por lixiviação e/ou de pouca mobilidade no solo.

Tabela 5: Quantidade de nutrientes depositados ao solo, em dois cortes da parte

aérea da Crotalaria juncea, em dois sistemas de produção, em Campos dos

Goytacazes - RJ

Frutíferas + neem + crotalária

Frutíferas + crotalária

Nutriente

Corte

(DAS

)

--------------------------kg ha

-1

------------------------

32,13 ± 5,10 Bb 55,64 ± 6,89 Ba

128 57,51 ± 9,13 Ab 93,72 ± 11,61 Aa

1,33 ± 0,16 Bb 2,41 ± 0,12 Ba

128 2,38 ± 0,28 Ab 4,06 ± 0,20 Aa

9,56 ± 1,14 Bb 25,21 ± 2,29 Ba

128 17,11 ± 2,04 Ab 42,45 ± 3,86 Aa

18,15 ± 0,93 Ba 22,01 ± 2,96 Ba

128 32,49 ± 1,66 Aa 37,07 ± 4,98 Aa

4,43 ± 0,25 Bb 9,46 ± 1,28 Ba

128 7,93 ± 0,45 Ab 15,93 ± 2,16 Aa

1,74 ± 0,31 Bb 2,91 ± 0,41 Ba

128 3,11 ± 0,55 Ab 4,90 ± 0,69 Aa

418,60 ± 8,70 Bb 693,41 ± 12,48 Ba

128 749,29 ± 15,57 Ab 1167,84 ± 21,02 Aa

Médias seguidas da mesma letra, minúscula na linha e maiúscula na mesma coluna e variável, não

diferem e entre si pelo intervalo de confiança, em nível de 5% de probabilidade;

DAS =

Dias após a semeadura.

A quantidade de nutrientes incorporados nos dois sistemas seria suficiente

para repor a exportação de nutrientes pelos frutos de mangueira em fase inicial de

produção, segundo os dados de quantidade de nutrientes exportados em média por

tonelada de frutos de manga, variedade Tommy Atkins, apresentados por Magalhães

e Borges (2000) que foram de 1,09 kg de N, 0,12 kg de P, 0,91 kg de K, 0,25 kg de

Ca, 0,24 kg de Mg e 0,12 kg de S por tonelada de frutos.

Na Tabela 5, verifica-se que, no segundo corte, houve maior deposição de

nutrientes nos dois sistemas de produção, devido à maior produção de fitomassa

(Tabela 3). Quanto às diferenças entre os sistemas de produção, verificou-se que

todos os nutrientes, nos dois cortes, foram significativamente superiores no sistema

de produção FC, devido à maior produção de fitomassa neste sistema, com exceção

do Ca, nos dois cortes, que não diferiu entre os sistemas de produção.

Silva et al. (2002) verificaram que a quantidade média de nutrientes

incorporados ao solo pelo cultivo da crotalária, em quatro anos de cultivo foi de 91,70

kg ha

-1

de N, 8,52 kg ha

-1

de P, 85,17 kg ha

-1

de K, 52,40 kg ha

-1

de Ca, 26,20 kg ha

-1

de Mg e 6,55 kg ha

-1

de S. Comparando as quantidades de nutrientes depositados

nos sistemas do presente trabalho com estas médias, verifica-se que apenas as

quantidades de N, Ca e S do sistema FC foram maiores, o que é justificado pelas

maiores produções de fitomassa obtidas por estes autores, durante os quatro anos

do experimento.

As médias estimadas da produção de fitomassa no manejo dos dois cortes

da crotalária e a adição de nutrientes mostram que a espécie pode suprir uma boa

parte da demanda nutricional do pomar, especialmente quanto ao nitrogênio. Cada

frutífera recebeu, aproximadamente, nos sistemas de produção FNC e FC, 0,41 kg e

0,95 kg de N, respectivamente. No sistema FNC as plantas de neem também

receberam aproximadamente 0,41 kg de N, após os dois cortes.

Segundo Viégas e Frazão (2004), a recomendação para adubação da

graviola no terceiro e quarto ano é de 80 g de N por planta, o que confirma que a

adubação verde realizada nos dois sistemas neste presente trabalho foi suficiente

para suprir a exigências deste nutriente pelas plantas. Quanto ao K cada frutífera

recebeu 0,12 kg e 0,43 kg nos sistemas FNC e FC, respectivamente, resultados

estes maiores que os 0,13 kg de K

O recomendados para adubação, segundo os

mesmos autores.

5.2. Decomposição da fitomassa da parte aérea da crotalária

Os resultados de fitomassa seca remanescente da curva de decaimento da

crotalária apresentam uma perda de 17%, aproximadamente, nos primeiros 15 dias

e, posteriormente, de 50% aos 50 dias, o que demonstra uma decomposição rápida.

Em torno dos 50 dias de decomposição o processo de perda de fitomassa começa a

ficar mais lento devido à dificuldade dos microrganismos decompositores utilizarem a

fração mais recalcitrante da fitomassa, como alguns componentes da parede celular.

Outra explicação é a redução da temperatura e da precipitação que pode ser

observada na Figura 1, diminuindo a atividade dos microrganismos decompositores.

Ao final dos 150 dias o total de fitomassa perdida foi de aproximadamente 88%

(Figura 6).

Silva e Menezes (2007) obtiveram uma taxa de decomposição da fitomassa

seca da crotalária mais rápida inicialmente, sendo que, aos 7 dias, 22% já tinham

sido perdidas, enquanto no presente trabalho apenas 7%, neste intervalo de tempo.

Aos 82 dias esta diferença foi reduzida, apresentando valores aproximados de 73%

da fitomassa seca decomposta em comparação aos 69% no presente trabalho.

Tempo (dias)

0 20 40 60 80 100 120 140 160

Fitomassa seca remanescente (%)

100

120

Fitomassa seca remanescente

yt= 103,1298e

-0,0145 t

= 0,95 b

<0,0001

Figura 6. Fitomassa seca remanescente em resíduos da parte aérea de Crotalaria

juncea, no período de decomposição, em Campos dos Goytacazes - RJ

As curvas de decomposição do C e da celulose apresentaram tendência

semelhante. Isto porque a celulose representa a maior parte do C fixado pelas

plantas. A fitomassa apresentou, aos 30 dias de decomposição, uma perda de

aproximadamente 36% de C e 37% de celulose e ao final dos 150 dias somente

restavam 9% de C e 12% de celulose (Figuras 7 e 8).

Como a celulose representa boa parte dos resíduos vegetais, com maior

percentual de C, as curvas de taxa de decomposição de C e celulose foram

semelhantes à da decomposição de fitomassa seca, apresentando uma taxa de

decomposição maior nos primeiros 50 dias, dado que a fração mais prontamente

assimilável da fitomassa é rapidamente utilizada pelos microrganismos

decompositores. À medida que o substrato mais prontamente assimilável (celulose

entre outros substratos) é decomposto, o material mais recalcitrante (lignina entre

outros substratos), por ser de difícil assimilação pelos microrganismos

decompositores, permanece na fitomassa e a taxa de decomposição é desacelerada.

A curva de decomposição da lignina apresentou uma perda de

aproximadamente 10% aos 30 dias e de 47% aos 150 dias (Figura 7). Esta baixa

taxa de decomposição da lignina é explicada por Moreira e Siqueira (2002), que

mencionam a alta recalcitrância da lignina em função do seu alto peso molecular e

estrutura química tridimensional, que lhe conferem alta estabilidade, tornando a sua

degradação por microrganismos muito mais difícil.

Figura 7. Massa de lignina e celulose remanescente em resíduos da parte aérea de

Crotalaria juncea, no período de decomposição, em Campos dos Goytacazes - RJ

A curva ajustada para a taxa de liberação do N apresenta aproximadamente

aos 50 dias uma perda de 61% e aos 150 dias de 95% (Figura 8). A alta taxa de

liberação inicial ocorreu devido ao ataque de microrganismos decompositores, que

utilizam o N disponível para o crescimento da população microbiana que vai

Tempo (dias)

0 20 40 60 80 100 120 140 160

Lignina e celulose remanescentes (%)

100

120

Lignina remanescente (%)

Celulose remanescente (%)

= 103,5019 e

-0,0045 t

= 0,90 b

=0,0040

= 97,0132 e

-0,0142 t

= 0,95 b

=0,0016

degradar a fitomassa. Este nutriente parte de proteínas (maior parte), ácidos

nucléicos e muitos outros constituintes celulares, este se encontra mais prontamente

disponível à assimilação dos microrganismos, acelerando a taxa de decomposição

inicial. Logo que a parte mais assimilável é degradada, a taxa de liberação diminui.

Silva e Menezes (2007) obtiveram, assim como para fitomassa seca da

crotalária, uma taxa de liberação de N mais rápida inicialmente, sendo de 44% aos 7

dias, enquanto que, no presente trabalho, apenas 26%, aproximadamente, do N

tinha sido liberado no mesmo período. Aos 52 dias restavam, aproximadamente,

16% do N que permaneceu praticamente até o fim da avaliação, aos 82 dias, quando

os resultados se aproximaram aos do presente trabalho que foi de 20%.

Figura 8. Carbono e Nitrogênio remanescentes em resíduos da parte aérea de

Crotalaria juncea, ao longo do período de decomposição, em Campos dos

Goytacazes - RJ

A taxa de liberação do P foi mais lenta que a do N. Aos 30 dias,

aproximadamente, 25% do P havia sido liberado, enquanto o N apresentava 41% de

liberação (Figuras 8 e 9). Entre suas funções, o P é responsável pela estabilidade de

Tempo (dias)

0 20 40 60 80 100 120 140 160

C e N remanescente (%)

100

120

Carbono remanescente (%)

Nitrogênio remanescente (%)

= 104,7064 e

-0,0162 t

= 0,95 b

< 0,0001

= 107,0047 e

-0,0201 t

= 0,94 b

= 0,0002

membranas, o que pode dificultar sua liberação quando comparado ao N. Aos 150

dias, aproximadamente, 79% do P foi liberado.

A taxa de liberação do K foi acelerada, com liberação de 72% em 30 dias e

96% aos 80 dias (Figura 9). Esta rápida liberação ocorre porque o K não faz parte de

nenhuma estrutura ou molécula orgânica na planta. O K encontra-se,

predominantemente, como cátion livre e pode, facilmente, ser deslocado das células

ou dos tecidos da planta. Resultados similares de liberação de K foram obtidos por

Padovan et al. (2006) na decomposição de resíduos da soja cortada em diferentes

estádios de desenvolvimento e Silva e Menezes (2007) na decomposição de

crotalária.

Quanto à taxa de liberação do S, aos 60 dias foram liberados 51%. A maior

parte deste nutriente encontrado nas plantas está nas proteínas e estas, ao serem

degradadas por microrganismos, liberam o S (Taiz e Zeiger, 2004). Ao final dos 150

dias 85% do S foram liberados (Figura 9).

Tempo (dias)

0 20 40 60 80 100 120 140 160

P, K e S remanescente (%)

100

120

Fósforo remanescente (%)

Potássio remanescente (%)

Enxofre remanescente (%)

= 105,1738 e

-0,0129 t

=0,97 b

<0,0001

= 85,6172 e

-0,0482 t

=0,94 b

=0,0014

= 96,6159 e

-0,0108 t

=0,98 b

<0,0001

Figura 9. Fósforo, potássio e enxofre remanescentes em resíduos da parte aérea de

Crotalaria juncea, no período de decomposição, em Campos dos Goytacazes - RJ

As curvas ajustadas para taxa de liberação de Ca e Mg mostram que a perda

de Ca é mais lenta do que a do Mg. Ao longo de 60 dias 48% do Ca foi liberado,

enquanto que para Mg, no mesmo período, foram liberados 64% e ao término de 150

dias foram liberados 82% do Ca e 93% de Mg (Figura 10). A mineralização mais

lenta do Ca ocorre porque este se encontra, em sua maior parte, firmemente ligada à

parede celular e membrana plasmática, o que dificulta sua liberação. Já o Mg por ser

móvel na planta e devido às suas funções na ativação enzimática, regulação do pH e

balanço cátion-ânion, apresenta liberação mais rápida (Taiz e Zeiger, 2004).

Padovan et al. (2006) ao

avaliarem a decomposição de resíduos de soja, e

Boer et al. (2007), os de amaranto e milheto, obtiveram também uma liberação mais

lenta de Ca em relação ao Mg. Muitas funções do Ca estão ligadas à composição

estrutural de macromoléculas e relacionadas à sua capacidade de coordenação, o

que confere ligações intermoleculares estáveis, mas reversíveis, principalmente nas

paredes celulares e na membrana plasmática (Vitti et al., 2006).

Figura 10. Cálcio e magnésio remanescentes em resíduos da parte aérea de

Crotalária juncea, no período de decomposição, em Campos dos Goytacazes - RJ

5.3. Avaliação da atividade enzimática microbiana no solo

5.3.1. Atividade enzimática sob a copa das frutíferas, durante a decomposição

da fitomassa da parte aérea da crotalária

Tempo (dias)

0 20 40 60 80 100 120 140 160

Ca e Mg remanescentes (%)

100

120

Cálcio remanescente (%)

Magnésio remanescente (%)

= 102,0833 e

-0,0106 t

=0,98 b

< 0,0001

= 94,5961 e

-0,0181 t

=0,98 b

< 0,0001

Para subsidiar a interpretação dos resultados de atividade enzimática

durante a decomposição, são apresentados na Figura 11 os dados de temperatura

média e precipitação pluviométrica acumulada, durante os três dias anteriores à

coleta das amostras de solo.

Figura 11. Temperatura média e precipitação pluviométrica acumulada, durante os

três dias anteriores à amostragem do solo para análise da atividade enzimática, em

Campos dos Goytacazes - RJ, segundo a estação climatológica da Pesagro - Rio

Na Figura 12, observa-se que no momento do corte da crotalária a atividade

enzimática do solo sob a copa das frutíferas era maior na área do sistema F, e que,

aos 10 dias após a adição dos resíduos da crotalária, a atividade enzimática

aumentou nos dois sistemas. O sistema FC apresentou um aumento de 182%, e no

sistema F de 25%, embora não exista diferença entre os sistemas. Com relação à

precipitação e temperatura, não se observam mudanças que justifiquem o aumento

da atividade enzimática.

Diferenças de atividade enzimática sob a copa das frutíferas não foram

observadas entre os dois sistemas de produção nas demais coletas. Entretanto,

verifica-se uma tendência a maior atividade enzimática sob a copa das frutíferas que

0,0

5,0

10,0

15,0

20,0

25,0

0 10 20 40 80 100 120

Tempo após o corte (dias)

Temperatura (o C)

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00

30,00

Precipitação (mm)

Precipitação acumulada do período Temperatura média do período

receberam os resíduos de crotalária em todas as coletas de solo durante o período

de decomposição.

Aos 54 dias após a deposição dos resíduos de crotalária, provenientes do

primeiro corte, sob a copa das frutíferas, foram adicionados os resíduos do segundo

corte da crotalária. Na coleta, aos 80 dias após a primeira adição (26 dias após a

segunda adição de resíduos), observou-se aumento de, aproximadamente, 25% no

sistema de produção FC, enquanto no sistema F o aumento foi de 8%, não existindo

diferença entre as áreas.

0,00

50,00

100,00

150,00

200,00

250,00

0 10 20 40 80 100 120

Tempo (dias)

µg de FDA g

-1

solo

-1

Frutíferas Frutíferas + Crotalária

Figura 12. Atividade enzimática microbiana do solo sob a copa das frutíferas ao

longo do período de decomposição dos resíduos de Crotalaria juncea, em Campos

dos Goytacazes - RJ

5.3.2. Atividade enzimática sob a copa do neem

Na Figura 13 são apresentados os dados de atividade enzimática do solo, na

estação de seca e na estação chuvosa, sob a copa do neem no sistema FN (não

receberam resíduos da parte aérea da crotalária) e no sistema FNC (receberam

resíduos da parte aérea da crotalária).

Constatou-se que o sistema FNC apresentou maior atividade enzimática

microbiana do solo nas duas estações, sendo significativo apenas na estação seca.

Uma possível explicação é que a adição dos resíduos da crotalária tenha conservado

mais a umidade do solo e que este tenha apresentado condições ambientais

melhores à ação de microrganismos, mantendo a atividade enzimática durante o

período de seca.

Na estação chuvosa, apesar do incremento nos dois sistemas, a diferença na

atividade enzimática microbiana foi menor entre os manejos adotados, devido à

maior umidade do solo nos dois sistemas de produção e ao maior tempo após a

adição dos resíduos de crotalária (um ano após a adição).

0,00

50,00

100,00

150,00

200,00

250,00

Estação seca Estação chuvosa

µg de FDA g

-1

solo h

-1

Frutíferas + neem Frutíferas + neem + crotalária

Figura 13. Atividade enzimática microbiana do solo sob a copa de plantas de

Azadirachta indica em dois sistemas de produção agrícola, em Campos dos

Goytacazes - RJ

No município de Umbaúba, Costa e Siqueira (2004) estudaram a atividade

enzimática como bioindicadores de diversidade microbiana em solos reflorestados:

com 10 espécies nativas da mata atlântica; com nove espécies exóticas; com neem,

sucupira e pau-pombo; não reflorestado e sob mata atlântica nativa. Os autores

verificaram valores de 118,73; 112,40; 52,63; próximo de zero e 158,56 µg FDA

hidrolisada 60 min

-1

, respectivamente. Estes valores são menores que os

observados neste trabalho, nos dois sistemas de produção na estação chuvosa.

Quanto à estação de seca, somente o solo sob mata atlântica nativa apresentou

valores maiores de atividade enzimática microbiana que os dois sistemas

implantados neste trabalho. Entretanto, devem-se considerar as diferenças nas

condições edafoclimáticas entre os locais de avaliação.

Existem poucos trabalhos que utilizam o método de diacetado de

fluoresceína (FDA) para avaliar a atividade enzimática, o que dificulta comparações

dos resultados obtidos com outros trabalhos. Além disso, segundo Ribeiro (2008),

este método tem-se mostrado sensível a variações da precipitação pluviométrica.

5.4. Análises químicas e físicas do solo

Nas Tabelas 6, 7 e 8 são apresentados os dados referentes à química do

solo, nos quatro sistemas de produção, nos anos de 2005 e 2006, em três

profundidades. Houve aumento do pH do solo de um ano para o outro em todos os

sistemas de produção, nas profundidades de 0-5 e de 5-10 cm, com exceção do

sistema FN, onde não houve diferença entre os anos (Tabelas 6 e 7). Esta elevação

de pH não se relaciona com o manejo da crotalária, visto que a adubação realizada

com o composto orgânico contendo farinha de carne e osso, rica em Ca, que eleva o

pH do solo, colaborou para este aumento. Na camada de 10-20 cm houve aumento

de pH ao longo do tempo apenas no sistema FNC (Tabela 8). O sistema FN em 2006

apresentou pH menor do que a testemunha, nas camadas de 0-5 e 5-10 cm.

Com relação à diferença no tempo, observou-se redução do N nas

profundidades de 0-5 cm no sistema FC (Tabela 6), de 5-10 cm do sistema FN

(Tabela 7) e de 10-20 cm do sistema F (Tabela 8). Não foi observada variação de N

no solo em função dos tratamentos nas profundidades de 0-5 e de 5-10 cm, o que

possivelmente é justificado pela rápida liberação deste nutriente dos resíduos de

crotalária que foram adicionados em fevereiro e abril de 2006, com amostragem do

solo em outubro de 2006.

Tabela 6. Análise química do solo, na profundidade de 0 a 5 cm, em diferentes sistemas de produção agrícola, em solo de tabuleiro, no

município de Campos dos Goytacazes - RJ

Sistemas de Produção

Variável Ano

Testemunha - frutíferas

(F)

Frutíferas + neem

(FN)

Frutíferas + neem + crotalária

(FNC)

Frutíferas + crotalária

(FC)

2005

5,85 ± 0,14 b 5,47 ± 0,29 a 5,43 ± 0,17 b* 5,57 ± 0,19 b

2006

6,82 ± 0,24 a 5,69 ± 0,26 a* 6,87 ± 0,60 a 6,68 ± 0,36 a

2005

1,23 ± 0,09 a 1,30 ± 0,13 a 1,25 ± 0,22 a 1,48 ± 0,23 a

total

g kg

-1

2006

1,12 ± 0,09 a 1,10 ± 0,17 a 1,10 ± 0,11 a 1,07 ± 0,17 b

2005

15,14 ± 2,08 b 10,00 ± 0,81 b* 35,86 ± 6,30 b* 22,89 ± 3,53 b*

mg dm

-3

2006

132,99 ± 40,8 a 81,00 ± 12,41 a 93,81 ± 5,25 a 89,28 ± 8,49 a

2005

0,06 ± 0,01 b 0,14 ± 0,04 a* 0,07 ± 0,01 b 0,08 ± 0,02 b

cmol

-3

2006

0,12 ± 0,01 a 0,12 ± 0,02 a 0,16 ± 0,02 a* 0,20 ± 0,02 a*

2005

2,13 ± 0,33 a 2,66 ± 0,48 a 2,62 ± 0,24 a 1,53 ± 0,12 b*

cmol

-3

2006

2,34 ± 0,24 a 2,27 ± 0,14 a 2,68 ± 0,23 a 1,93 ± 0,19 a

2005

1,18 ± 0,05 a 1,24 ± 0,26 a 1,25 ± 0,24 a 0,96 ± 0,13 a*

cmol

-3

2006

0,68 ± 0,13 b 0,75 ± 0,05 b 0,87 ± 0,07 b 0,91 ± 0,10 a

2005

0,87 ± 0,10 a 2,43 ± 0,42 a* 2,28 ± 0,42 a* 1,27 ± 0,19 a* H + Al

cmol

-3

2006

0,36 ± 0,10 b 1,22 ± 0,13 b* 0,18 ± 0,07 b* 0,16 ± 0,05 b*

2005

2,09 ± 0,21 a 1,70 ± 0,30 a 2,12 ± 0,20 a 1,44 ± 0,11 a*

(%)

2006

1,61 ± 0,14 b 1,26 ± 0,15 a* 1,40 ± 0,11 b 1,25 ± 0,09 a*

2005

3,42 ± 0,33 a 4,02 ± 0,82 a 4,02 ± 0,39 a 2,64 ± 0,71 a

cmol

-3

2006

3,44 ± 0,34 a 3,31 ± 0,65 a 3,89 ± 1,31 a 3,44 ± 1,07 a

2005

4,29 ± 0,18 a 6,45 ± 0,98 a* 6,30 ± 1,13 a* 3,91 ± 0,74 a CTC

cmol

-3

2006

3,81 ± 0,27 b 4,52 ± 1,25 a 4,06 ± 0,33 b 3,60 ± 0,80 a

2005

79,64 ± 3,75 b 62,33 ± 6,84 b* 63,82 ± 5,32 b* 67,40 ± 15,94 b

V(%)

2006

90,50 ± 2,56 a 73,08 ± 2,98 a* 95,64 ± 1,39 a* 95,56 ± 2,12 a*

Médias seguidas de letras iguais, na mesma coluna e variável, não diferem entre si pelo intervalo de confiança, em

nível de 5% de probabilidade

(n = 6); * Média difere da média da testemunha, na mesma linha, em nível de 5% de probabilidade.

Tabela 7. Análise química do solo, na profundidade de 5 a 10 cm, em diferentes sistemas de produção agrícola, em solo de tabuleiro,

no município de Campos dos Goytacazes - RJ

Sistemas de Produção

Variável Ano

Testemunha - frutíferas

(F)

Frutíferas + neem

(FN)

Frutíferas + neem + crotalária

(FNC)

Testemunha - frutíferas

(F)

2005

5,59 ± 0,20 b 5,35 ± 0,25 a 5,32 ± 0,18 b 5,48 ± 0,21 b

2006

6,48 ± 0,27 a

5,46 ± 0,30 a*

6,63 ± 0,44 a 6,92 ± 0,47 a

2005

1,24 ± 0,20 a 1,24 ± 0,19 a 0,95 ± 0,20 a 1,24 ± 0,09 a

total

g kg

-1

2006

0,98 ± 0,09 a 0,82 ± 0,08 b 0,87 ± 0,13 a 1,03 ± 0,20 a

2005

15,45 ± 1,93 b

7,75 ± 0,67 b*

14,98 ± 3,83 b 15,31 ± 2,33 b

mg dm

-3

2006

59,02 ± 20,48 a 34,05 ± 8,53 a 90,38 ± 27,27 a 39,43 ± 5,05 a

2005

0,05 ± 0,01 a 0,04 ± 0,01 a 0,05 ± 0,01 b

0,08 ± 0,01 a* K

cmol

-3

2006

0,05 ± 0,02 a 0,05 ± 0,01 a

0,13 ± 0,03 a*

0,08 ± 0,02 a

2005

2,26

± 0,66 a 2,59 ± 0,54 a 2,87 ± 0,68 a 1,60 ± 0,23 a

cmol

-3

2006

2,09 ± 0,39 a 2,06 ± 0,15 a 2,51 ± 0,30 a 1,59 ± 0,20 a

2005

1,10 ± 0,07 a 1,00 ± 0,16 a 1,07 ± 0,20 a

0,84 ± 0,17 a*

cmol

-3

2006

0,61 ± 0,11 b 0,68 ± 0,05 b 0,66 ± 0,07 b 0,66 ± 0,07 a

2005

1,54

± 0,38 a 2,13 ± 0,26 a

2,26 ± 0,18 a*

1,36 ± 0,10 a H + Al

cmol

-3

2006

0,44 ± 0,08 b

1,00 ± 0,17 b* 0,61 ± 0,07 b*

0,55 ± 0,10 b

2005

2,14 ± 0,35 a

1,58 ± 0,14 a*

1,88 ± 0,43 a

1,57 ± 0,13 a* MO

(%)

2006

1,47 ± 0,14 b

1,22 ± 0,05 b* 1,18 ± 0,08 b* 1,17 ± 0,10 b*

2005

3,46 ± 0,40 a 3,72 ± 0,50 a 4,06 ± 0,51 a 2,58 ± 0,57 a

cmol

-3

2006

2,87 ± 0,46 b 2,91 ± 0,40 a 3,52 ± 0,22 a 2,61 ± 0,74 a

2005

5,00 ± 1,24 a 5,85 ± 0,74 a 6,32 ± 0,92 a 3,94 ± 0,92 a CTC

cmol

-3

2006

3,31 ± 0,41 b 3,90 ± 0,42 b

4,14 ± 0,29 b*

3,16 ± 0,63 a

2005

69,14 ± 16,78 b 63,57 ± 3,62 b 64,24 ± 3,94 b 65,46 ± 3,88 b

V(%)

2006

86,66 ± 5,48 a

74,46 ± 3,93 a*

85,14 ± 2,10 a 82,51 ±1,44 a

Médias seguidas de letras iguais, na mesma coluna e variável, não diferem entre si pelo intervalo de confiança, em

nível de 5% de probabilidade

(n = 6); * Média difere da média da testemunha, na mesma linha, em nível de 5% de probabilidade.

Tabela 8. Análise química do solo, na profundidade de 10 a 20 cm, em diferentes sistemas de produção agrícola, em solo de tabuleiro,

no município de Campos dos Goytacazes - RJ

Sistemas de Produção

Variável Ano

Testemunha - frutíferas

(F)

Frutíferas + neem

(FN)

Frutíferas + neem + crotalária

(FNC)

Frutíferas + crotalária

(FC)

2005

5,48 ± 0,22 a 5,18 ± 0,25 a 5,46 ± 0,09 b 5,91 ± 0,30 a

2006

5,68 ± 0,50 a 4,97 ± 0,35 a 6,11 ± 0,54 a 5,98 ± 0,29 a

2005

1,27 ± 0,04 a

0,95 ± 0,20 a* 1,00 ± 0,19 a* 1,04 ± 0,12 a* N

total

g kg

-1

2006

0,82 ± 0,08 b

1,20 ± 0,21 a*

0,92 ± 0,08 a 0,84 ± 0,09 a

2005

14,90 ± 2,26 b

8,40 ± 1,27 b* 10,30 ± 2,07 b*

18,53 ± 3,66 b

mg dm

-3

2006

27,60 ± 8,82 a 15,96 ± 3,24 a

57,49 ± 13,38 a*

28,48 ± 4,87 a

2005

0,06 ± 0,00 a

0,04 ± 0,01 a* 0,03 ± 0,01 b*

0,07 ± 0,01 a

cmol

-3

2006

0,02 ± 0,00 b

0,04 ± 0,01 a* 0,06 ± 0,01 a* 0,05 ± 0,01 a*

2005

2,05 ± 0,79 a 1,71 ± 0,33 a 2,40 ± 0,29 a 1,65 ± 0,25 a

cmol

-3

2006

1,90 ± 0,32 a 1,93 ± 0,24 a 2,45 ± 0,28 a

1,30 ± 0,08 b*

2005

1,10 ± 0,10 a

0,84 ± 0,15 a*

1,05 ± 0,10 b

0,86 ± 0,16 a*

cmol

-3

2006

0,86

± 0,10 b 1,04 ± 0,13 a

1,36 ± 0,08 a*

0,66 ± 0,07 a

2005

1,72 ± 0,33 a 2,18 ± 0,31 a

2,95 ± 0,38 a*

1,24 ± 0,21 a H + Al

cmol

-3

2006

0,96 ± 0,18 b 1,15 ± 0,16 b 0,67 ± 0,16 b 0,86 ± 0,15 b

2005

1,86 ± 0,32 a

1,65 ± 0,19 a*

1,72 ± 0,16 a 1,56 ± 0,05 a

(%)

2006

1,24 ± 0,14 b

1,05 ± 0,03 b*

1,18 ± 0,07 b 1,07 ± 0,07 b

2005

3,26 ± 0,23 a 2,68 ± 0,46 a 3,55 ± 0,36 a 2,65 ± 0,41 a

cmol

-3

2006

2,58 ± 0,33 b 2,71 ± 0,32 a

3,19 ± 0,27 a* 2,05 ± 0,11 b*

2005

4,98 ± 0,27a 4,85 ± 0,58 a 6,50 ± 1,77 a 3,89 ± 1,02 a CTC

cmol

-3

2006

3,53 ± 0,20 b 3,86 ± 0,90 a

3,86 ± 0,11 b* 2,90 ± 0,35 a*

2005

65,46 ± 4,63 a

55,19 ± 4,43 a* 54,61 ± 4,90 b*

68,09 ± 16,45 a

V(%)

2006

72,91 ± 8,73 a 70,15 ± 14,99 a 82,69 ± 4,63 a 70,45 ± 4,86 a

Médias seguidas de letras iguais, na mesma coluna e variável, não diferem entre si pelo intervalo de confiança, em

nível de 5% de probabilidade

(n = 6); * Média difere da média da testemunha, na mesma linha, em nível de 5% de probabilidade.

Na profundidade de 10-20 cm, em 2005, todos os sistemas apresentaram

teores de N menores ao da testemunha, mas em 2006, após o cultivo da crotalária

os valores igualaram-se aos da testemunha, contudo o sistema FN, sem crotalária,

apresentou valores maiores que a testemunha, devido tanto ao aumento do N

observado neste sistema, quanto à redução na testemunha, neste período.

A quantidade de P aumentou de 2005 para 2006 em todos os sistemas de

produção devido à aplicação do composto rico neste nutriente, com redução das

médias na medida em que a profundidade aumenta, devido a pouca mobilidade

deste nutriente no solo. Em 2005 o sistema FN apresentava valores menores que a

testemunha em todas as profundidades, e os sistemas FNC e FC valores maiores na

profundidade de 0-5 cm, entretanto com o aumento do P no ano de 2006 tais

diferenças não foram observadas (Tabelas 6, 7 e 8).

Quanto aos valores médios de K, observou-se aumento de 2005 para 2006,

em todas as profundidades no sistema FNC e na profundidade de 0-5 cm do sistema

F (testemunha) e FC. Quando comparado à testemunha, o sistema FNC em todas as

profundidades e o sistema FC nas profundidades de 0-5 e 10-20 cm foram

significativamente maiores em 2006, o que possivelmente ocorreu devido à

adubação verde com crotalária. Alcântara et al. (2000) também verificaram aumento

do K no solo que recebeu adubação verde com crotalária, em comparação a uma

área de pastagem degradada.

Com relação ao Ca não foi observada variação significativa nos sistemas de

2005 para 2006, exceto para o sistema FC que apresentou aumento na profundidade

de 0-5 cm e redução na de 10-20 cm. Em comparação com a testemunha, somente o

sistema FC diferiu, sendo menor na profundidade de 0-5 cm em 2005, antes do

plantio da crotalária (Tabela 6), o que não foi observado em 2006, em função do

aumento deste nutriente ao longo do tempo. Esse aumento foi observado apenas no

sistema com maior deposição de fitomassa.

Do ano de 2005 para 2006 verificou-se redução de Mg nos sistemas de

produção nas três profundidades (Tabelas 6, 7 e 8), com exceção do sistema FC.

As médias de Mg no sistema FC em 2005 foram significativamente menores

em comparação à testemunha em todas as profundidades e, em 2006, estas não

diferiram. Observa-se que a alta produção de fitomassa colaborou na manutenção

dos níveis deste nutriente. Menegucci et al. (1995) e Alcântara el al. (2000)

verificaram aumento de Mg no solo, após adubação verde com crotalária.

Verificou-se que a acidez potencial (H+Al) foi reduzida em todos os sistemas

de produção de 2005 para 2006, que condiz com os resultados de elevação do pH.

Como H+Al do solo foi reduzido em todos os sistemas de produção nestes períodos,

a CTC foi influenciada e reduzida também. Os sistemas FNC e FC apresentavam

valores maiores de H+Al que a testemunha em 2005 e no ano seguinte esses valores

foram menores, como resultado da adubação verde. A redução da H+Al do solo após

adubação verde com crotalária também foi observado por Menegucci et al. (1995).

Com relação à matéria orgânica (MO), observou-se redução em todos os

sistemas de produção de 2005 para 2006, o que contribuiu para redução da CTC do

solo nos sistemas. Entretanto, a redução não foi significativa nos sistemas FN e FC

na profundidade de 0-5 cm do solo.

Na comparação dos sistemas com a testemunha, nenhum dos manejos

adotados elevou a MO em comparação com a testemunha e o sistema FC, que já

apresentava menor quantidade de MO em 2005, mesmo com elevada deposição de

fitomassa, manteve-se com valores inferiores à área da testemunha em 2006.

Menegucci et al. (1995) verificaram que a CTC e a MO do solo aumentaram após a

adubação verde com a crotalária, resultados não observados no presente trabalho.

Entretanto, Mendonça et al. (2001) mencionam que as quantificações das

mudanças ocorridas em alguns nutrientes no solo, como o C orgânico, utilizado para

calcular a MO do solo, não devem ser feitas precocemente, visto que é considerada

improvável a percepção de modificações em um prazo inferior a três anos.

A soma de bases (SB) não diferiu nos sistemas entre 2005 e 2006, exceto

para o sistema F (testemunha) que apresentou redução nas profundidades de 05-10

e 10-20 cm, e no sistema FC de 10-20 cm. Os sistemas consorciados contribuíram

com a manutenção da SB ao longo do tempo. Na comparação dos sistemas com a

testemunha, não houve efeito dos tratamentos nas profundidades de 0-5 e de 5-10

cm (Tabela 8).

Como percentagem de saturação de bases (V) é a SB expressa como

percentagem de CTC, esta aumentou com a redução do CTC do solo de 2005 para

2006, com resultados não significativos nos sistemas F, FN e FC na profundidade de

10-20 cm. Os valores dos sistemas FNC e FC foram maiores que os da testemunha

na profundidade de 0-5 cm em 2006, o que mostra o efeito da adubação verde

nestas áreas (Tabelas 6, 7 e 8). Alcântara et al. (2000) também verificaram aumento

da saturação de bases com adubação verde de crotalária em relação a uma área

degradada com Brachiaria decumbens Stapf.

De forma geral, foram poucas as alterações nas características químicas do

solo em função dos diferentes sistemas de produção implantados no pomar, o que é

explicado pelo pouco tempo de manejo dos sistemas. Entretanto, pode-se inferir que

adubação verde com a crotalária aumentou o K e reduziu o H+Al nos dois sistemas

de produção, colaborou na manutenção dos níveis de Ca e Mg no sistema FC e

aumentou os valores de V na profundidade de 0-5 cm nos dois sistemas.

Os sistemas de produção avaliados não diferiram com relação à densidade

do solo, porosidade total, microporosidade e macroporosidade nas profundidades de

0-5 e 5-10 cm (Tabela 9). Resultados estes esperados, já que o tempo de manejo

dos sistemas foi curto e atributos físicos do solo não são facilmente alterados.

Tabela 9. Propriedades físicas

do solo em diferentes sistemas de produção

agrícola, aos 46 meses após o plantio das frutíferas, em Campos dos Goytacazes -

Densidade

partícula

Densidade

solo

Porosidade

total

Microporosidade

Macroporosidade

Sistema de

produção

Prof.

(cm)

--------mg m

-3

--------- -----------------------m

-3

----------------------

0-5 2,475

1,56 ± 0,07 0,37 ± 0,03

0,23 ± 0,02 0,14 ± 0,04

Frutíferas

(testemunha)

5-10 2,471

1,64 ± 0,06 0,34 ± 0,02

0,22 ± 0,01 0,11 ± 0,03

0-5 2,561

1,53 ± 0,11 0,40 ± 0,04

0,21 ± 0,01 0,19 ± 0,05

Frutíferas +

Neem

5-10 2,426

1,65 ± 0,06 0,32 ± 0,02

0,22 ± 0,01 0,10 ± 0,02

0-5 2,492

1,47 ± 0,14 0,41 ± 0,06

0,20 ± 0,04 0,21 ± 0,06

Frutíferas +

Neem

+ Crotalária

5-10 2,476

1,62 ± 0,06 0,35 ± 0,02

0,21 ± 0,03 0,14 ± 0,04

0-5 2,495

1,46 ± 0,13 0,41 ± 0,05

0,21 ± 0,02 0,22 ± 0,05

Frutíferas

+ Crotalária

5-10 2,466

1,64 ± 0,11 0,34 ± 0,05

0,20 ± 0,02 0,15 ± 0,04

5.5. Crescimento e estado nutricional das frutíferas e do neem

5.5.1. Crescimento e estado nutricional das mangueiras

O crescimento em altura das mangueiras não diferiu entre os sistemas de

produção estudados em nenhuma medição (Figura 14). Entretanto, apesar de não

significativo observou-se que o sistema de produção F apresentou valores médios de

altura menores que os demais sistemas a partir da medição aos 31 meses após o

plantio.

0,00

0,50

1,00

1,50

2,00

2,50

3,00

3,50

13 22 26 31 39 45

Meses após o plantio

Altura (m) das mangueiras

Frutíferas Frutíferas + Neem

Frutíferas + Neem + Crotalária Frutíferas + Crotalária

Figura 14. Altura de Mangifera Indica L. em diferentes sistemas de produção, em

Campos dos Goytacazes - RJ

Com relação ao crescimento em diâmetro à altura do solo (DAS), observou-se

que, inicialmente, as plantas não apresentavam diferenças entre os sistemas e que

aos 22 e 26 meses após o plantio, as mangueiras, dos sistemas F apresentaram

médias menores que o sistema FN e FNC (Figura 15).

Nas medições realizadas após a adubação verde constatou-se crescimento

maior em DAC nas mangueiras do sistema FNC e, principalmente, nas do sistema FC

(Figura 15). Na última avaliação as mangueiras do sistema FC apresentaram médias

maiores do que a testemunha, não diferindo dos demais sistemas. As frutíferas deste

sistema receberam quantidades maiores de nutrientes na adubação verde, o que,

possivelmente, influenciou no maior crescimento das mangueiras.

0,00

2,00

4,00

6,00

8,00

10,00

12,00

14,00

13 22 26 31 39 45

Meses após o plantio

DAS (cm) das mangueiras

Frutíferas Frutíferas + Neem

Frutíferas + Neem + Crotalária Frutíferas + Crotalária

Figura 15. Diâmetro à altura do solo de Mangifera Indica L. em diferentes sistemas

de produção, em Campos dos Goytacazes - RJ

Na Tabela 10, são apresentadas as análises nutricionais das mangueiras dos

quatro sistemas de produção. A faixa dos teores adequados de nutrientes nas folhas

desta frutífera, segundo Assis (2004), são de 12 a 14 g kg

-1

de N; 0,8 a 1,6 g kg

-1

P; 5 a 10 g kg

-1

de K; 20 a 35 g kg

-1

de Ca; 2,5 a 5,0 g kg

-1

de Mg; 0,8 a 1,8 g kg

-1

S; 50 a 200 mg kg

-1

de Fe; 50 a 200 mg kg

-1

de Mn e 20 a 40 mg kg

-1

de Zn.

Comparando os teores médios dos nutrientes dos sistemas de produção do presente

trabalho com os resultados deste autor, observa-se que o N e o Zn encontram-se

abaixo e que todos os demais nutrientes estão dentro da faixa adequada.

Medeiro et al. (2005) avaliaram a concentração de nutrientes nas folhas de

mangueiras ‘Tommy Atkins’ em três plantios, na fase de pré-floração, a mesma fase

de avaliação do presente trabalho, também observando maiores teores de N e Zn, na

faixa de 11,5 a 12,9 g kg

-1

e 18 a 96 mg kg

-1

, respectivamente. Ainda comparando os

teores de nutrientes destes autores, observa-se que os demais nutrientes do

presente trabalho estão dentro das faixas de teores observados.

Tabela 10. Análise nutricional foliar de Mangifera Indica L., em diferentes sistemas

de produção agrícola, aos 45 meses após o plantio, em Campos dos Goytacazes -

Sistema de produção

Nutriente

Testemunha -

frutíferas

(F)

Frutíferas +

neem

(FN)

Frutíferas + neem

+ crotalária

(FNC)

Frutíferas +

crotalária

(FC)

N (g kg

-1

)

9,62 ± 0,23 9,32 ± 0,83 10,94 ± 0,52* 10,85 ± 0,53*

P (g kg

-1

)

1,09 ± 0,11 1,05 ± 0,06 1,58 ± 0,17* 1,14 ± 0,08

K (g kg

-1

)

9,93 ± 0,69 10,63 ± 0,46 7,49 ± 0,99* 6,49 ± 0,59

Ca (g kg

-1

)

24,08 ± 1,59 22,95 ± 1,37 25,45 ± 1,36 24,32 ± 1,87

Mg (g kg

-1

)

3,23 ± 0,36 3,11 ± 0,46 3,32 ± 0,30 3,50 ± 0,23

S (g kg

-1

)

1,79 ± 0,09 1,78 ± 0,15 1,96 ± 0,14 1,74 ± 0,07

Fe (mg kg

-1

)

136,63 ± 11,29 135,15 ±11,25 203,20 ± 20,79* 182,37 ± 15,70*

Mn (mg kg

-1

)

102,18 ± 16,40 142,10 ± 12,24* 129,10 ± 17,75 97,47 ± 13,60

Zn (mg kg

-1

)

13,89 ± 1,38 14,32 ± 1,84 15,94 ± 1,51 14,60 ± 0,90

* Média difere da média da testemunha, na mesma linha, em nível de 5% de probabilidade.

Nos sistemas FNC e FC os teores médios de N foram significativamente

maiores do que os da testemunha, o que possivelmente ocorreu em função da

adubação verde nestes sistemas, que aumentou a disponibilidade deste nutriente

para plantas, apesar da análise de solo não ter indicado maior quantidade deste

nutriente nestes sistemas, o que pode ser justificado pela alta mobilidade no solo.

Estes teores médios mais elevados de N, possivelmente, justificam o maior

incremento em altura e DAC (Figuras 14 e 15) das mangueiras após a adubação

verde nestes sistemas.

Observou-se que as mangueiras do sistema de produção FNC e FC

apresentaram teores médios menores de K em comparação com o teor médio da

testemunha, entretanto estas médias encontram-se dentro da faixa adequada deste

nutriente em mangueiras. Esperava-se que os teores fossem maiores nestes

sistemas, já que receberam adubação verde e a análise química do solo de 2006

apresentou quantidades maiores de K em relação à testemunha (Tabela 6).

Com relação aos teores de Ca, Mg, S e Zn, não foram observadas diferenças

entre os sistemas de produção. Para os teores de Fe observaram-se maiores valores

nos sistemas que receberam adubação verde em comparação aos demais sistemas

(Tabela 10).

5.5.2. Crescimento e estado nutricional das gravioleiras

O crescimento em altura das gravioleiras nos diferentes sistemas de

produção apresentou resultados semelhantes ao observado nas mangueiras, não

diferindo entre os sistemas de produção em nenhuma das seis medições (Figura 16).

0,00

0,50

1,00

1,50

2,00

2,50

3,00

13 22 26 31 39 45

Meses após o plantio

Altura (m) das gravioleiras

Frutíferas Frutíferas + Neem

Frutíferas + Neem + Crotalária Frutíferas + Crotalária

Figura 16. Altura de Annona muricata L. em diferentes sistemas de produção, em

Campos dos Goytacazes – RJ

Com relação ao DAS, foram observadas diferenças apenas nas medições

aos 22 e 26 meses, quando as gravioleiras do sistema FNC apresentavam maior

diâmetro que as gravioleiras da testemunha (Figura 17). As gravioleiras dos sistemas

FNC e FC apresentaram tendência a maior crescimento em altura e diâmetro após a

adubação verde, sendo os valores médios maiores do que os demais sistemas aos

39 e 45 meses, entretanto estes resultados não diferiram entre os sistemas.

Na Tabela 11 são apresentados as análises nutricionais das gravioleiras nos

diferentes sistemas de produção, verificando-se que não houve diferença entre os

teores foliares de macronutrientes entre os sistemas de produção, exceto para o Mg,

cujo teor foi maior no sistema FC. Quanto aos micronutrientes, foram observados

maiores teores de Fe e Zn no sistema FC, e de Mn no sistema FNC em relação à

testemunha.

0,00

1,00

2,00

3,00

4,00

5,00

6,00

7,00

8,00

9,00

10,00

13 22 26 31 39 45

Meses após o plantio

DAS(cm) das gravioleiras

Frutíferas Frutíferas + Neem

Frutíferas + Neem + Crotalária Frutíferas + Crotalária

Figura 17. Diâmetro à altura do solo de Annona muricata L. em diferentes sistemas

de produção, em Campos dos Goytacazes - RJ

Tabela 11. Análise nutricional foliar de Annona muricata L. em diferentes sistemas

de produção agrícola, aos 45 meses após o plantio, em Campos dos Goytacazes -

Sistema de produção

Nutriente

Testemunha -

frutíferas

(F)

Frutíferas +

neem

(FN)

Frutíferas +

neem + crotalária

(FNC)

Frutíferas +

crotalária

(FC)

N (g kg

-1

)

13,40 ± 1,36 13,84 ± 0,40 13,76 ± 0,52 13,06 ± 1,44

P (g kg

-1

)

1,49 ± 0,15 1,58 ± 0,12 1,77 ± 0,20 1,66 ± 0,18

K (g kg

-1

)

7,74 ± 0,92 9,46 ± 1,60 9,15 ± 1,25 8,51 ± 0,86

Ca (g kg

-1

)

23,00 ± 2,30 21,67 ± 1,01 24,85 ± 2,59 23,64 ± 2,02

Mg (g kg

-1

)

3,39 ± 0,32 3,21 ± 0,22 3,30 ± 0,23 4,13 ± 0,28*

S (g kg

-1

)

1,73 ± 0,10 1,74 ± 0,09 1,81 ± 0,10 1,66 ± 0,05

Fe (mg kg

-1

)

160,21±32,81 151,95 ± 18,23 229,72 ± 42,45 234,49 ± 15,20*

Mn (mg kg

-1

)

19,54 ± 2,93 22,22 ± 3,02 27,01 ± 4,20* 23,92 ± 4,70

Zn (mg kg

-1

)

10,25 ± 0,72 9,84 ± 0,42 11,08 ± 0,62 11,52 ± 0,22*

* Média difere da média da testemunha, na mesma linha, em nível de 5% de probabilidade.

Segundo Viégas e Frazão (2004), os teores foliares adequados de nutrientes

em gravioleiras encontram-se acima de 14,30 g kg

-1

para o N; de 0,8 a 1,0 g kg

-1

para

o P; de 11,90 a 13,10 g kg

-1

para o K; de 12,85 a 15,71 g kg

-1

para o Ca; de 3,23 a

3,96 g kg

-1

para o Mg; de 3,88 a 5,96 g kg

-1

para o S. Os teores de N, K e S das

gravioleiras nos quatro sistemas foram menores, os de P e Ca foram maiores e os de

Mg encontram-se dentro da faixa adequada descrita pelos autores. Entretanto,

somente os teores de S indicam deficiência nutricional, segundo os mesmos autores.

Ao comparar os teores de S das gravioleiras do presente trabalho com os

teores foliares obtidos no trabalho de Batista et al. (2003), que foram de 5,32 g Kg

-1

no tratamento com todos os nutrientes e 2,30 g Kg

-1

no tratamento com omissão

deste nutriente, observa-se que os teores do presente trabalho foram mais baixos do

que o tratamento com omissão de S, indicando uma possível carência deste

nutriente em todos os sistemas de produção. Entretanto, Filho et al. (2006)

observaram teores foliares de 1,6 a 2,5 g Kg

-1

de S e sem a presença de sintomas de

deficiência deste nutriente.

Segundo Filho et al. (2006), as gravioleiras absorvem nutrientes na seguinte

ordem decrescente: N, K, Ca, Mg, S e P, ordem esta que tem a posição do Mg e S

invertidas nos trabalhos de Batista et al. (2003) e Viégas e Frazão (2004). No

presente trabalho, observou-se ordem semelhante dos teores foliares das

gravioleiras para todos os sistemas de produção, sendo o Ca o nutriente de maior

teor, seguido, em ordem decrescente, pelo N, K, Mg, S e P.

Ao comparar os teores foliares de gravioleira, variedade morada, obtidos por

Gazel Filho et al. (1997), cujos teores foram de 22,1 g kg

-1

de N, 1,3 g kg

-1

de P, 15,2

de K, 15,2 g kg

-1

de Ca, 2,1 g kg

-1

de Mg, 215,18 mg kg

-1

de Fe, 12,32 mg kg

-1

de Zn

e 21,46 g kg

-1

de Mn, observa-se que o presente trabalho apresentou valores mais

baixos de N, K, Fe, Mn e Zn. Os menores teores de K nos sistemas, possivelmente,

ocorreram devido à maior concentração de Ca e Mg no solo (Tabelas 7, 8 e 9), que

diminuem a absorção do K.

5.5.3. Crescimento e estado nutricional do neem

A altura média das plantas de neem do sistema de produção FN foi superior,

quando comparada à média obtida no sistema de produção FNC, até os 12 meses

de idade. A partir dos 24 meses o sistema de produção FNC se destacou,

apresentando plantas com maior altura, diferença esta que aumentou aos 30 meses

(Figura 18).

Como a semeadura e a posterior decomposição da fitomassa da crotalária

ocorreram entre os 12 e 18 meses após o plantio do neem, possivelmente as plantas

do sistema de produção FNC se beneficiaram da maior disponibilidade de nutrientes

(Tabela 5), o que acarretou em maior crescimento em altura após os 24 meses

(Figura 18). Entretanto, não se observaram alterações entre os solos dos dois

sistemas quanto ao N (Tabelas 6, 7 e 8).

0,00

0,50

1,00

1,50

2,00

2,50

3,00

3,50

4,00

4,50

3 6 12 18 24 30

Meses após o plantio

Altura (m) do neem

Frutíferas + Neem Frutíferas + Neem + Crotalária

Figura 18. Altura de Azadirachta indica A. Juss em diferentes sistemas de produção

em Campos dos Goytacazes - RJ

Em relação ao diâmetro à altura do solo (DAS) das plantas de neem,

comportamento semelhante ao observado na altura foi obtido, verificando-se que,

nas medições a partir dos 18 meses, o sistema FNC apresentou gravioleiras com

tendência a maior crescimento em diâmetro, comparadas às do sistema FN. As

diferenças entre os dois sistemas também aumentaram ao longo do tempo, sendo

maiores 20% aos 18 meses, 32% aos 24 meses e 66% aos 30 meses, com diferença

significativa somente aos 30 meses (Figura 19). O manejo de adubação verde com

crotalária beneficiou o crescimento inicial das plantas de neem no campo.

Deve-se ressaltar a carência de trabalhos que informem a altura e o DAS em

plantas de neem ao longo do seu crescimento. Neves et al. (2003) mencionaram que

a planta chega a atingir 1,5 m em um ano, valor este compatível com os dois

sistemas de produção do presente trabalho (Tabela 18).

0,00

2,00

4,00

6,00

8,00

10,00

12,00

14,00

3 6 12 18 24 30

Meses após o plantio

DAS (cm) do neem

Frutíferas + Neem Frutíferas + Neem + Crotalária

Figura 19. Diâmetro à altura do solo de Azadirachta indica A. Juss, em diferentes

sistemas de produção, em Campos dos Goytacazes - RJ

Na Tabela 12 é apresentada à análise nutricional das plantas de neem aos

33 meses após o plantio nos sistemas de produção FN e FNC. Observou-se que os

teores de N, P e Mn foram mais elevados no sistema de produção FNC. Os teores

mais elevados de N refletem a adubação verde com a crotalária no sistema FNC,

apesar da análise química de solo não ter indicado diferenças entre os sistemas,

quanto ao N (Tabelas 7, 8 e 9), o que possivelmente é justificado pela rápida

liberação deste nutriente pela biomassa da crotalária (Figura 8).

Com relação aos teores de P, os valores mais elevados nas plantas do

sistema de produção FNC são justificados pela análise de solo que apresenta

médias mais elevadas em todas as profundidades em 2005 e 2006 neste sistema

(Tabelas 6, 7 e 8). Isto também pode ter contribuído para o crescimento em altura e

DAS que foram maiores neste sistema (Figuras 18 e 19).

O sistema de produção FN apresentou plantas com teores mais elevados de

K e Mg em relação ao sistema FNC, sendo que os teores de Mg não diferiram entre

os sistemas (Tabela 12).

Observou-se que os teores foliares de Ca, Fe e Zn nas plantas de neem não

diferiram entre os sistemas de produção.

Tabela 12. Análise nutricional foliar de Azadirachta indica A. Juss, aos 33 meses

após o plantio, em dois sistemas de produção, em Campos dos Goytacazes, RJ

Sistema de produção

Nutriente

Frutíferas + neem

(FN)

Frutíferas + neem + crotalária

(FNC)

N (g

-1

)

11,86 ± 2,06 b 15,36 ± 1,08 a

P (g

-1

)

1,07 ± 0,08 b 1,61 ± 0,25 a

K (g

-1

)

5,65 ± 0,97 a 4,06 ± 0,58 b

Ca (g

-1

)

27,81 ± 3,62 a 32,04 ± 1,27 a

Mg (g

-1

)

7,74 ± 1,20 a 6,78 ± 0,61 a

S (g

-1

)

2,63 ± 0,23 a 2,23 ± 0,22 a

Fe (mg

-1

)

260,90 ± 28,87 a 305,82 ± 78,24 a

Mn (mg

-1

)

23,05 ± 2,45 b 32,69 ± 2,72 a

Zn (mg

-1

)

17,41 ± 1,31 a 19,09 ± 2,50 a

Médias seguidas da mesma letra na linha, não diferem pelo intervalo de confiança, em nível de 5%

de probabilidade.

Assim como para o crescimento em altura e DAS, também não foram

encontrados trabalhos na revisão de literatura que forneçam dados sobre os teores

de nutrientes em plantas de neem. Oliveira et al. (2005) mencionaram a falta na

literatura mundial de estudos sobre adubação e nutrição mineral do neem. Estes

mesmos autores descreveram os sintomas visuais de deficiência dos macro e

micronutrientes, entretanto não informaram as faixas de teores adequados, o que

impede a comparação com os teores apresentados neste trabalho. Com relação aos

sintomas de deficiência nutricional observados no trabalho de Oliveira et al. (2005),

não foram observados nos dois sistemas de produção deste trabalho.

Os resultados de altura, DAS e análise

nutricional foliar das plantas de neem

apresentados mostram que a espécie se adaptou bem nos dois sistemas de

produção, entretanto a adubação verde com crotalária favoreceu o crescimento das

plantas.

6. RESUMO E CONCLUSÕES

O objetivo deste trabalho foi avaliar sistemas agroflorestais

com mangueira,

gravioleira, crotalária e neem, quanto ao benefício para as culturas de interesse

econômico e alterações nas características do solo. Em um pomar misto de

mangueira e gravioleira foram implantados quatro sistemas de produção: mangueira

e gravioleiras (testemunha - F); mangueira, gravioleira e neem (FN); mangueira,

gravioleira, neem e crotalária (FNC); mangueira, gravioleira e crotalária (FC). Para as

avaliações, cada sistema foi dividido em nove subáreas e, destas, seis foram

selecionadas, ao acaso, para a realização das amostragens. As mudas das frutíferas

e o neem foram plantas em novembro de 2003 e 2004, respectivamente. Em

novembro de 2005, foi feita a semeadura da crotalária e esta foi cortada aos 74 dias

após a semeadura. Após a rebrota, realizou-se o segundo corte aos 54 dias após o

primeiro. As fitomassas produzidas foram divididas e adicionadas sob a copa das

frutíferas no sistema FC e sob a copa das frutíferas e do neem no sistema FNC. Para

quantificação da fitomassa, foram coletados, em ambos os cortes, 3 amostras de 1

por subárea selecionada. A fitomassa da crotalária foi introduzida em “litterbags”,

para avaliação da taxa de decomposição, que foram colocados sobre o solo,

misturados ao material proveniente do corte. Os mesmos foram coletados aos 0, 3,

6, 10, 15, 30, 60, 90, 120 e 150 dias após o corte, para quantificação da massa seca

residual. Nas mesmas épocas foram determinados

os teores de N, P, K, Ca, Mg, S e

C, e os teores de lignina e celulose no dia e aos 30, 60, 90, 120 e 150 dias após o

corte. Foi coletada uma amostra composta de solo por subárea sob a copa das

frutíferas no sistema F e FC no dia do corte e aos 10, 20, 40, 80, 100 e 120 dias após

o corte da crotalária para determinação da atividade enzimática microbiana, ao longo

do período de decomposição da crotalária. Na estação de seca e chuvosa foi

avaliada a influência da crotalária sobre atividade microbiana no solo em contato com

o neem nos sistemas FN e FNC. Em outubro de 2005 e 2006 foram determinados

pH, N, P, K, Ca, Mg, H+Al e C orgânico do solo, nas profundidades de 0-5, 5-10 e 10-

20 cm. Determinou-se, ainda, nas amostras do ano de 2005 a densidade de partícula

e a composição granulométrica. Em setembro de 2007, foram determinadas a

densidade do solo, porosidade total, micro e macroporosidade (0-5 e 5-10 cm). As

frutíferas foram medidas aos 13, 22, 26, 31, 39 e 45 meses após o plantio, quanto à

altura (H) e diâmetro à altura do solo (DAS). As plantas de neem foram medidas aos

3, 6, 12, 18, 24 e 30 meses após o plantio, quanto à altura e DAS. A avaliação do

estado nutricional das frutíferas e do neem foram realizadas aos 45 meses e 33

meses após o plantio. Para análise da taxa de decomposição da fitomassa da

crotalária foi calculada a média e foram ajustados modelos de decaimento para o

comportamento das variáveis ao longo do tempo e os demais dados foram

analisados por média e intervalo de confiança. As conclusões foram as seguintes:

• A produção de fitomassa e teores de nutrientes da crotalária foram elevados

nos dois sistemas de produção, com maior quantidade de nutrientes

depositados no sistema de frutíferas + crotalária (FC). Houve rápida

decomposição da croltalária e liberação de nutrientes nas condições do

experimento;

• Não houve efeito da crotalária sobre a atividade enzimática microbiana do solo

durante o período de decomposição dos resíduos, no sistema FC;

• Houve aumento da atividade enzimática microbiana do solo sob a copa do

neem na estação chuvosa, com relação à estação seca, entretanto só houve

diferença entre os sistemas na estação de seca, com maior atividade no

sistema de frutíferas + neem + crotalária (FNC);

• A adubação verde com a crotalária aumentou o potássio e diminuiu o H+Al do

solo, colaborou na manutenção dos níveis de Ca e Mg no sistema FC e

aumentou os valores de saturação de bases na camada de 0-5 cm do solo;

• As características físicas do solo não foram alteradas pelos diferentes

sistemas de produção;

• Não houve efeito dos consórcios sobre a altura e diâmetro à altura do solo

(DAS) das gravioleiras. O sistema FC resultou em maior crescimento de DAS

das mangueiras em relação ao plantio somente com as frutífera (F) ;

• A adubação verde resultou em maiores teores foliares de N nas mangueiras;

• O crescimento do neem foi beneficiado pelo consórcio com a crotalária.

7. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Alcântara, F.A. de., Furtino Neto, A.E., Paula, M.B. de., Mesquita, H.A., Muniz, J.A.

(2000) Adubação verde na recuperação da fertilidade de um latossolo vermelho-

escuro degradado. Pesq. Agropec. Bras., Brasília, 35 (2): 277-288.

Almeida, C.O., Souza, J.S., Mendes, L.D. (2001) Tendências no mercado

internacional da manga. Revista Econômica do Nordeste, Fortaleza - CE, 32 (1):

112-120.

Amabile, R.F., Fancelli, A.L., Carvalho, A.M. (2000) Comportamento de espécies de

adubos verdes em diferentes épocas de semeadura e espaçamentos na região

dos cerrados. Pesq. Agropec. Bras., Brasília, 35 (1): 47-54.

Anderson, J.D.; Ingram, J.S.I. (1996) Tropical soil biology and fertility: a handbook of

methods. 2. ed. Wallingford: UK CAB International, 199, 171.

Arato, H.D., Martins, S.V., Ferrari, S.H.S. (2003) Produção e decomposição de

serapilheira em um sistema agroflorestal implantado para recuperação de áreas

degradadas em Viçosa-MG. Revista Árvore, Viçosa - MG, 27 (5):715-721.

Araújo, L.V.C., Rodrigues, L.C.E., Paes, J.B. (2000) Características físicas - químicas

e energéticas da madeira de nim indiano. Scientia Forestalis, n. 57: 153-159.

Assis, J.S. de., Silva, D.J., Moraes, P.L.D. de. (2004) Equilíbrio nutricional e

distúrbios fisiológicos em manga ‘Tommy Athins’. Rev. Bras. Frutic., Jaboticabal,

SP, 26 (2): 326-329.

Batista, M.M.F., Viégas, I. de J.M., Fraizão, D.A.C., Thomaz, M.A.A., Silva, R. de C.L.

da. (2003) Efeito da omissão de macronutrientes no crescimento, nos sintomas

de deficiência nutricional e na composição mineral em gravioleira (Annona

muricata). Rev. Bras. Frutic., Jaboticabal - SP, 25 (2): 315-318.

Boer, C.A., Assis, R.L., Silva, G.P., Braz, A.J.B.P., Barrroso, A.L. de L., Cargnelutti

Filho, A., Pires, F.R. (2007) Ciclegram de nutrientes por plantas de corbertura na

entresafra em solo de cerrado. Pesq. Agrop. Bras., Brasília, 42(9): 1269-1276.

Calegari, A., Mondardo, A., Bulisani, E.A., Wildner, L. do P., Costa, M.B.B. da.,

Miyasaka, S., Amado, J.T. (1993a) Aspectos gerais da adubação verde. In:

Calegari, A., Mondardo, A., Bulisani, E.A., Wildner, L. do P., Costa, M.B.B. da.,

Alcântara, P.B., Miyasaka, S., Amado, J.T. Adubação verde no sul do Brasil. 2.

ed. Rio de Janeiro: AS-PTA, p. 1-55.

Calegari, A., Alcântara, P.B., Miyasaka, S., Amado, J.T. (1993b) Caracterização das

principais espécies de adubo verde. In: Calegari, A., Mondardo, A., Bulisani, E.A.,

Wildner, L. do P., Costa, M.B.B. da., Alcântara, P.B., Miyasaka, S., Amado, J.T.

Adubação verde no sul do Brasil. 2. ed. Rio de Janeiro: AS-PTA, p. 207-327.

Campello, E.F.C., Silva, G.T.A., Nóbrega, P.O., Vieira, A.L.M., Franco, A.A.,

Resende, A.S. (2006) Implantação e Manejo de SAF’s na Mata Atlântica: A

experiência da Embrapa Agrobiologia. In: Gama-Rodrigues, A.C.; Barros, N.F.;

Gama-Rodrigues, E.F.; Freitas, M.S.M.; Viana, A.P.; Jasmin, J.M.; Marciano,

C.R.; Carneiro, J.G. de A. (eds) Sistemas agroflorestais: bases científicas para o

desenvolvimento sustentável. Campos dos Goytacazes, RJ: Universidade

Estadual do Norte Fluminense, p. 33-42.

Carvalho, C.L., Rossetto, C.J., Mantovani, D.M.B., Morgano, M.A., Castro, J.V. de.,

Bortoletto, N. (2004) Avaliação de cultivares de mangueira selecionadas pelo

Instituto Agronômico de Campinas comparadas a outras de importância

comercial. Rev. Bras. Frutic., Jaboticabal - SP, 26 (2): 264-271.

Carvalho, J.E.U. (2006) Utilização de espécies frutíferas em sistemas agroflorestais

na Amazônia. In: Gama-Rodrigues, A.C.; Barros, N.F.; Gama-Rodrigues, E.F.;

Freitas, M.S.M.; Viana, A.P.; Jasmin, J.M.; Marciano, C.R.; Carneiro, J.G. de A.

(eds) Sistemas agroflorestais: bases científicas para o desenvolvimento

sustentável. Campos dos Goytacazes, RJ: Universidade Estadual do Norte

Fluminense, p. 169-176.

Castro, C.M. de., Alves, B.J.R., Almeida, D.L. de., Ribeiro, R. de L.D. (2004)

Adubação verde como fonte de nitrogênio para a cultura da berinjela em sistema

orgânico. Pesq. Agropec. Bras., Brasília, 39 (8): 779-785.

Cavalcante, A.L., Alves, J.M., Pires, M.M. (2006) Análise estacional e tendência do

preço da manga tommy athins em nível de atacado no estado da Bahia. In:

Carvalho, A. J. C. de; Vasconcellos, M. A. da S.; Marinho, C. S.; Campostrini, E.

(eds) Frutas do Brasil: saúde para o mundo. Palestras e Resumos. Congresso

Brasileiro de Fruticultura, 19. Cabo Frio-RJ: SBF/UENF/UFRuralRJ, p. 555.

Cavalcante, L.F., Carvalho, S.S. de., Lima, E.M. de, Feitosa Filho, J.C.; Silva, D.A.

da. (2001) Desenvolvimento inicial da gravioleira sob fontes e níveis de salinidade

da água. Rev. Bras. Frutic., Jaboticabal, SP, 23(2): 455-459.

Chen, W., Hoiting, A.J., Schmitthenner, A.F., Tuovinen, O.H. (1988) The role of

microbial activity in suppression of damping off caused by Pythium ultimun.

Phytophatology, 78: 314-322.

Cochran, W.G. (1955) Técnicas de amostragem. Rio de Janeiro. Fundo de Cultura.

555p.

Costa, G.S., Espindola, J.A.A., Barroso, D.G., Thomé, M.P., Souza, C.L.M. de,

Paulino, G.M., Ribeiro, G., Barreto, A.J.R., Jorge, M.E. de S. (2004) Manejo do

solo para produção orgânica de gravioleira e mangueira no Norte Fluminense.

XVIII Congresso Brasileiro de Fruticultura, Florianópolis, SC (CD-ROM)

Costa, J.L., Siqueira, E.R. (2004) Análise de DNA dos solos e atividade enzimática

como bioindicadores de diversidade microbiana em sistemas de restauração

florestal na Mata Atlântica. Anais do II Seminário de Pesquisa FAP-SE.

Cunha, G.A.P. da. (2000) Exigências edafoclimáticas. In: MATOS, A.P. (org) Manga.

Produção: aspectos técnicos. Embrapa Mandioca e Fruticultura (Cruz das Almas,

BA), Brasília: Embrapa Comunicação para Transferência de Tecnologia, p. 16.

Cunha, G.A.P. da., Neto, M.T.C. (2000a) Introdução. In: MATOS, A.P. (org) Manga.

Produção: aspectos técnicos. Embrapa Mandioca e Fruticultura (Cruz das Almas,

BA), Brasília: Embrapa Comunicação para Transferência de Tecnologia, p. 9-10.

Cunha, G.A.P. da., Neto, M.T.C. (2000b) Fenologia. In: MATOS, A.P. (org) Manga.

Produção: aspectos técnicos. Embrapa Mandioca e Fruticultura (Cruz das Almas,

BA), Brasília: Embrapa Comunicação para Transferência de Tecnologia, p. 17-18.

Cunha, G.A.P. da., Neto, M.T.C. (2000c) Instalação do mangueiral – preparo do solo

e operações de plantio. In: MATOS, A.P. (org) Manga. Produção: aspectos

técnicos. Embrapa Mandioca e Fruticultura (Cruz das Almas, BA), Brasília:

Embrapa Comunicação para Transferência de Tecnologia, p. 29-30.

Dourado, M.C., Silva, T.R.B. da., Bolonhezi, A.C. (2001) Matéria seca e produção de

grãos de Crotalaria juncea L. submetida à poda e adubação fosfatada. Scientia

Agrícola, 58 (2): 287-293.

EMBRAPA. (1997). Manual de métodos de análise de solo. Rio de Janeiro: Centro

Nacional de Pesquisa de Solos. 2. ed. rev. atual. Rio de Janeiro, 212p.

EMBRAPA. (1999) Manual de análises químicas de solos, plantas e fertilizantes.

Embrapa Comunicação para Transferência de Tecnologia. Brasília-DF, 370p.

Fernandes, M.S. (2006) Perspectivas de mercado da fruta brasileira. In: Carvalho,

A.J.C. de; Vasconcellos, M.A. da S.; Marinho, C.S.; Campostrini, E. (eds) Frutas

do Brasil: saúde para o mundo. Palestras e Resumos. Congresso Brasileiro de

Fruticultura, 19. Cabo Frio, RJ: SBF/UENF/UFRuralRJ, p. 4-12.

Filho, R.S.F. de H., Souza, V.F, de, Azevedo, B.M. de, Alcântara, R.M.C.M. de,

Ribeiro, V.Q., Eloi, W.M. (2006) Efeito da fertirrigação de N e K

O na absorção de

macronutrientes pela gravioleira. R. Bras. Eng. Agric. Ambiental, Campina

Grande, PB, 10 (1): 43-49.

Franco, F. S., Couto, L., Carvalho, A. F., Jucksch, I., Fernandes Filho, E. I., Silva, E.,

Meira Neto, J. A. A. (2002) Quantificação de erosão em sistemas agroflorestais e

convencionais na Zona da Mata de Minas Gerais. Revista Árvore, Viçosa, MG, 26

(6): 751-760.

Gama-Rodrigues, A.C. (2004) Ciclagem de nutrientes em sistemas agroflorestais na

região tropical: funcionalidade e sustentabilidade. In: Müller, M.W.; Gama-

Rodrigues, A.C.; Brandão, I.C.F.L.; Serôdio, M.H.C.F. (eds) Sistemas

agroflorestais, tendência da agricultura ecológica nos trópicos: sustento da vida e

sustento de vida. Ilhéus, BA: Sociedade Brasileira de Sistemas Agroflorestais:

Comissão Executiva do Plano da lavoura Cacaueira; Campos dos Goytacazes,

RJ: Universidade Estadual do Norte Fluminense, p. 67-87.

Gazel Filho, A.B., Menezes, A.J.E.A. de, Carvalho, A.C.A. de (1997) Teores de

macro e micronutrientes em folhas de graviola. In: José, A.R.S., Souza, I.V.B.,

Morais, O.M., Rebouças, T.N.H. (eds) Anonáceas, Produção e Mercado (Pinha,

Graviola, Atemóia e Cherimólia. Vitória da Conquista, Ba: DFZ/UESB, p. 118-137.

Gomes, T.C.A.; Silva, M.S.L.; Silva, J.A.M.; Carvalho, N.C.S.; Soares, E.M.B. (2005)

Padrão de decomposição e liberação de nutrientes de adubos verdes em cultivo

de uva e manga do submédio São Francisco. Embrapa – Boletim de Pesquisa e

Desenvolvimento 71, Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento,

Petrolina, PE (ISSN 1516-1641).

Jackson, M.L. (1965) Soil chemical analysis. New Jersey: Prentice Hall, 498p.

Jones Jr., J.B., Wolf, B., Mills, H.A. (1991) Plant analysis handbook: a pratical

sampling, preparation, analysis and interpretation guide. Athens (USA): Micro -

Macro Publishing. 213p.

Kitamura, M.C., Lemos, E.E.P. (2004) Enxertia precoce de graviola (Annona muricata

L.). Rev. Bras. Frutic., Jaboticabal, SP, 26(1): 186-188.

Magalhães, A.F.J., Borges, A.L. (2000) Calagem e adubação. In: MATOS, A.P. (org)

Manga. Produção: aspectos técnicos. Embrapa Mandioca e Fruticultura (Cruz das

Almas, BA), Brasília: Embrapa Comunicação para Transferência de Tecnologia,

p. 35-44.

Malavolta, E., Vitti, G.C., Oliveira, S.A. (1997) Avaliação do estado nutricional de

plantas: princípio e adaptações. 2. ed. Piracicaba, SP: Potafos, 319p.

Marriel, I.E., Oliveira, C.A. de., Utida, M.K., Monteiro, G.G., Alvarenga, R.C., Cruz,

J.C. (2005) Bioindicadores de qualidade do solo de cerrado sob sistemas de

manejo para a produção orgânica. Embrapa - Circular técnica 73, Ministério da

Agricultura, Pecuária e Abastecimento, Sete Lagoas, MG (ISSN 1679-1150).

Martinez, S.S. (2002) O nim - Azadirachta indica - Um inseticida natural (atualizado

em 31 de outubro de 2002). Disponível em: < http//www.iapar.br >. Acesso em 20

janeiro de 2007.

Matsuoka, M., Mendes, I.C., Loureiro, M.F. (2003) Biomassa microbiana e atividade

enzimática em solos sob vegetação nativa e sistemas agrícolas anuais e perenes

na região de primavera do leste (MT). Revista Brasileira de Ciências do Solo, 27:

425-433.

Medeiros, A.A. de., Amorim, J.R.A. de., Silva, D.J., Guedes, F.X., Guerra, A.G.,

Dantas, J.A. (2005) Composição mineral de folhas e exportação de nutrientes

pelos frutos de mangueira, em cultivo irrigado no Rio Grande do Norte. EMPARN

(Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento – ISSN 0101-2975), Natal-RN.

Medrado, M.J.S. (2000) Sistemas agroflorestais: aspectos básicos e indicações. In:

Galvão, A.P.M. (org.) Reflorestamento de propriedades rurais para fins produtivos

e ambientais: um guia para ações municipais e regionais. Brasília: Embrapa

Comunicações para Transferência de Tecnologias; Colombo, PR: Embrapa

Floresta, p. 269-312.

Mendonça, B.O., Martins, M.I.E.G., Borba, M.M.C. (2006) Características do

consumo de manga em Ribeirão Preto – SP. In: Carvalho, A.J.C. de;

Vasconcellos, M.A. da S.; Marinho, C.S.; Campostrini, E. (eds) Frutas do

Brasil:saúde para o mundo. Palestras e Resumos. Congresso Brasileiro de

Fruticultura, 19. Cabo Frio-RJ: SBF/UENF/UFRuralRJ, p. 566.

Mendonça, E.S., Leite, L.F.C., Ferreira Neto, P.S. (2001) Cultivo de café em sistema

agroflorestal: uma opção para recuperação de solos degradados. Revista Árvore,

Viçosa - MG, 25 (3): 375-383.

Mendonça, V., Ramos, J.D., Araújo Neto, S.E. de., Pio, R., Gontijo, T.C.A.,

Junqueira, K.P. (2002) Substrato e quebra de dormência da semente na formação

do porta-enxerto de gravioleira cv. RBR. Revista Ceres, 49(286): 657-668.

Menegucci, J.L., Amaral, A.M. do., Souza, M. de. (1995) Alterações das propriedades

químicas do solo na camada subsuperficial após adubação verde com crotalária.

Rev. Bras. Frutic., Cruz das Almas, 17 (3): 7-12.

Micheletti, S.M.F.B., Agra, A.G.S. de M., Barbosa, G.V.S., Gomes, F.L. (2001)

Controle de Cerconota anonella (SEPP.) (LEP.:Oecophoridae) e de

Bephratelloides pomorum (FAB.) (HYM.: Eurytomidae) em frutos de graviola

(Annona muricata L.). Rev. Bras. Frutic., Jaboticabal - SP, 23 (3): 722-725.

Moreira, F.M.S., Siqueira, J.O. (2002) Microbiologia e Bioquímica do solo, Lavras:

editora UFLA, 626p.

Mourão, S.A., Zanuncio, J.C., Pallini Filho, A., Guedes, R.N.C., Camargos, A.B.

(2004) Toxidade de extratos de nim (Azadirachta indica) ao ácaro-vermelho-do-

cafeeiro Oligonychus ilicis. Pesq. Agropec. Bras., Brasília, 39 (8): 827-830.

Neves, B.P., Oliveira, I.P., Nogueira, J.C.M. (2003) Cultivo e utilização do nim

indiano. Circular Técnica on line, 62, Goiás: Embrapa-CNPAF, ISSN 1678-9636.

Disponível em: <http//www.cnpaf.embrapa.br >Acesso em 20 janeiro de 2007.

Nobre, R.G., Fernandes, P.D., Gheyl, H.R., Santos, F.J. de S., Bezerra, I.L., Gurgel,

M.T. (2003) Germinação e formação de mudas enxertadas de gravioleira sob

estresse salino. Pesq. Agropec. Bras., Brasília, 38 (12): 1365-1371.

Nóbrega, P.O., Campello, E.F.C., Spinelli, B.M., Guerra, J.G.M., Franco, A.A. (2002)

Aporte de biomassa e nutrientes em sistema agroflorestal implantado em um

planossolo degradado no estado do Rio de Janeiro. Anais do V Simpósio

Nacional de Recuperação de Áreas Degradadas, Belo Horizonte: Sociedade

Brasileira de Recuperação de Áreas degradadas, p. 518-520.

Oliveira, I.P. de., Belmiro, P. das N., Moreira, F.P., Costa, K.A. de P. (2005) Manejo

sustentável e nutrição mineral do Nim. Embrapa (Comunicado Técnico – ISSN

1678-961) Goiás, GO.

Padovan, M.P., Almeida, D.L. de., Guerra, J.G.M., Ribeiro, R. de L.D., Oliveira, F.L.

de., Santos, L.A., Alves, B.J.R., Souto, S.M. (2006) Decomposição e liberação de

nutrientes de soja cortada em diferentes estádios de desenvolvimento. Pesq.

Agropec. Bras., Brasília, 41 (4):667-672.

Paulucio, V. de O., Schiavo, J.A., Martins, M.A., Rodrigues, L.A., Detmann, E. (2004)

Avaliação da atividade microbiológica como indicador da qualidade do solo em

áreas degradadas por extração de argila. FERTIBIO, Lages, SC (CD-ROM).

Pereira, S.V., Martinez, C.R., Porto, E.R., Oliveira, B.R.B, Leonor, C.M. (2004)

Atividade Microbiana em solo do semi-árido sob cultivo de Atriplex nummularia.

Pesq. Agropec. Bras., Brasília, 39 (8):757-762.

Perin, A., Guerra, J.G.M., Teixeira, M.G. (2003) Cobertura do solo e acumulação de

nutrientes pelo amendoim forrageiro. Pesq. Agropec. Bras., Brasília, 38 (7):791-

796.

Perin, A., Santos, R.H.S., Urquiara, S., Guerra, J.G.M., Cecon, P.R. (2004a) Efeito

residual da adubação verde no rendimento de Brócolo (Brassica oleraceae L. var.

Italica) cultivada em sucessão ao milho (Zea mays L.). Ciência Rural, Santa

Maria, 34 (6): 1739-1745.

Perin, A., Santos, R.H.S., Urquiaga, S., Guerra, J.G.M., Cecon, P.R. (2004b)

Produção de fitomassa, acúmulo de nutrientes e fixação biológica de nitrogênio

por adubos verdes em cultivo isolado e consorciado. Pesq. Agropec. Bras.,

Brasília, 39

(1):35-40.

Perosa, J.M.Y, Pierre, F.C. (2002) Técnicas de pós-colheita e expansão da cultura da

manga no estado de São Paulo. Rev. Bras. Frutic., Jaboticabal, SP, 24 (2): 381-

384.

Pinto, A.C. de Q., Silva, E.M. da. (1994) Graviola para exportação: aspectos técnicos

da produção. EMBRAPA – SPI, 41p.

Pinto, A.C. de Q., Ramos. V.H.V., Rodrigues, A A. (2001) In: Oliveira, M.A.S. (2001)

Graviola. Produção: Aspectos técnicos. Embrapa Cerrados. Planaltina, DF.

Brasília: Embrapa Informações Tecnológicas, p.78.

Ponciano, N.J.; Souza, P.M.; Mata, H.T.C.; Vieira, J.R.; Morgado, I.F. (2004) Análise

de viabilidade econômica e de risco da fruticultura na região Norte Fluminense.

Revista Economia Sociologia Rural, 42 (4): 615-635.

Prates, H.T., Viana, P.A., Waquil, J.M. (2003) Atividade de extrato de folhas de nim

(Azadirachta indica) sobre Spodoptera frugiperda. Pesq. Agropec. Bras., Brasília,

38 (3): 437-439.

Queiroz, L.R. (2006) Leguminosas como fonte de nitrogênio para a cultura do milho,

em Campos dos Goytacazes-RJ. Tese (Doutorado em Produção Vegetal) –

Campos dos Goytacazes-RJ, Universidade Estadual do Norte Fluminense Darcy

Ribeiro – UENF, 72p.

Queiroz, L.R. (2007) Avaliação da produtividade de fitomassa e acúmulo de N, P e K

em leguminosas arbóreas no sistema de aléias, em Campos dos Goytacazes, RJ.

Revista Árvore, 31(3): 383-390.

Ribeiro, T.S. (2008) Influência da adubação verde sobre o crescimento e nutrição de

gravioleira e mangueira e sobre a atividade microbiana do solo. Tese (Mestrado

em Produção Vegetal) – Campos dos Goytacazes – RJ, Universidade Estadual

do Norte Fluminense, 70p.

Sacramento, C.K., Gattward, J.N., Campos, V.P., Souza, I.V., Barretto, W.S., Faria,

J.C. (2006) Época de produção, produtividade e qualidade da graviola na região

sul do Bahia. In: Carvalho, A.J.C. de; Vasconcellos, M.A. da S.; Marinho, C.S.;

Campostrini, E. (eds) Frutas do Brasil: saúde para o mundo. Palestras e

Resumos. Congresso Brasileiro de Fruticultura, 19. Cabo Frio-RJ:

SBF/UENF/UFRuralRJ, p. 278.

Salgado, A.L.B., Azzini, A., Feitosa, C.T.; Petinelli, A.; Veiga, A.A. (1982) Efeito da

adubação NPK na cultura da crotalária. Bragantia, 41:21-33.

Samarão, S.S., Manhães, T.N., Rodrigues, L A. (2006) Estabelecimento de mudas de

gravioleira inoculadas com fungos micorrízicos arbusculares no campo. In:

Carvalho, A.J.C. de; Vasconcellos, M.A. da S.; Marinho, C.S.; Campostrini, E.

(eds) Frutas do Brasil: saúde para o mundo. Palestras e Resumos. Congresso

Brasileiro de Fruticultura, 19. Cabo Frio-RJ: SBF/UENF/UFRuralRJ, p. 546.

Santos Filho, A.L., Costa, M.A.P. de C., Lima, E.V., Nascimento, M.G. de A., Cunha,

E.C., Barros, T.F., Sacramento, C.K. do. (2006) Germinação de sementes de

graviola utilizando giberelina líquida (GA3). In: Carvalho, A.J.C. de; Vasconcellos,

M.A. da S.; Marinho, C.S.; Campostrini, E. (eds) Frutas do Brasil: saúde para o

mundo. Palestras e Resumos. Congresso Brasileiro de Fruticultura, 19. Cabo

Frio-RJ: SBF/UENF/UFRuralRJ, p. 179.

Silva, A.Q. da., Silva, H. (1997) Nutrição e adubação de anonáceas. In: José, A.R.S.,

Souza, I.V.B., Morais, O.M., Rebouças, T.N.H. (eds) Anonáceas, Produção e

Mercado (Pinha, Graviola, Atemóia e Cherimólia. Vitória da Conquista, Ba :

DFZ/UESB, p. 118-137.

Silva, D.J., Lima, M.F. (2001) Influência de húmus de minhoca e de esterco de gado

na concentração foliar de nutrientes e na produção de manga ‘Tommy Athins’.

Rev. Bras. Frutic., Jaboticabal, SP, 23 (3): 748-751.

Silva, J.A.A., Vitti, G.C., Stuchi, E.S., Sempionato, O.R. (2002) Reciclagem e

incorporação de nutrientes ao solo pelo cultivo intercalar de adubos verdes em

pomar de laranjeira -‘Pêra’. Rev. Bras. Frutic., Jaboticabal , SP, 24 (1): 225-230.

Silva, G.A., Souto, J.S., Araújo, J.L., Rodrigues, C.R.F., Alves, A.R. (2004a)

Avaliação da atividade microbiana em função da incorporação de resíduos

vegetais no solo. FERTIBIO, Lages, SC (CD-ROM).

Silva, M., Siqueira, E.R., Costa, J.L. da S. (2004b) Hidrólise de diacetato de

fluoresceína como bioindicador da atividade microbiológica de um solo submetido

a reflorestamento. Ciência Rural, Santa Maria, 34 (5): 1493:1496.

Silva, S.R., Barros, N.F. de., Boas, J.E.B.V., Mendonça, E. de S., Costa, L.M. da.

(2004c) Atividade microbiana afetada pela compactação do solo. FERTIBIO,

Lages, SC (CD-ROM).

Silva, T.O. da., Menezes, R.S.C. (2007) Adubação orgânica da batata com esterco e,

ou Crotalaria juncea. II- Disponibilidade de N, P e K no solo ao longo do ciclo de

cultivo. R. Bras. Ci. Solo, Viçosa, MG, 31: 51-61

Siqueira, E.R., Bolfe, E.L., Bolfe, A.P.F., Trindade Neto, I.Q., Tavares, E.D. (2006)

Estado da arte dos sistemas agroflorestais no nordeste do Brasil. In: Gama-

Rodrigues, A.C.; Barros, N.F.; Gama-Rodrigues, E.F.; Freitas, M.S.M.; Viana,

A.P.; Jasmin, J.M.; Marciano, C.R.; Carneiro, J.G. de A. (eds) Sistemas

agroflorestais: bases científicas para o desenvolvimento sustentável. Campos dos

Goytacazes, RJ: Universidade Estadual do Norte Fluminense, p. 53-64.

Souza, C.M. de., Pires, F.R. (2002) Adubação verde e rotação de culturas (caderno

didático), Viçosa - MG: Universidade Federal de Viçosa, 72p.

Taiz, L.; Zeiger, E. (2004) Fisiologia vegetal. Tradução: Eliane Romanato Santarém.

edição, Porto Alegre: Artmed. 720p.

Torres, J.L.R., Pereira, M.G., Andrioli, I., Polidoro, J.C., Fabian, A.J. (2005)

Decomposição e liberação de nitrogênio de resíduos de plantas de cobertura em um

solo de cerrado. Viçosa, MG, 29: 609-618.

Van Soest, P; Wine, R.H. (1968). Development of a comprehensive system of feed

analysis and its applications to forages. J. Assoc. Official Agr. Chem., Madison,

51:p.780-785.

Viegás, I. de J.M., Frazão D.A.C. (2004) Graviola: Nutrição, calagem e adubação.

Embrapa (Circular Técnica – ISSN 1517-211X) Belém, PA.

Vitti, G.C., Lima, E., Cicarone, F. (2006) Cálcio, magnésio e enxofre. In: Fernandes,

M. S. (ed.) Nutrição Mineral de Plantas, Viçosa, MG: Sociedade Brasileira de

Ciência do solo, p.299-325.

Wutke, E.B. (1993) Adubação verde, manejo de fitomassa e espécies utilizadas no

estado de São Paulo. In: Writke, E.B., Bulisani, E.A., Mascarenhas, H.A.A. Curso

de adubação verde no Instituto Agronômico, Campinas: Instituto Agronômico, p.

17-29.

Livros Grátis
( http://www.livrosgratis.com.br )
 
Milhares de Livros para Download:
 
Baixar livros de Administração
Baixar livros de Agronomia
Baixar livros de Arquitetura
Baixar livros de Artes
Baixar livros de Astronomia
Baixar livros de Biologia Geral
Baixar livros de Ciência da Computação
Baixar livros de Ciência da Informação
Baixar livros de Ciência Política
Baixar livros de Ciências da Saúde
Baixar livros de Comunicação
Baixar livros do Conselho Nacional de Educação - CNE
Baixar livros de Defesa civil
Baixar livros de Direito
Baixar livros de Direitos humanos
Baixar livros de Economia
Baixar livros de Economia Doméstica
Baixar livros de Educação
Baixar livros de Educação - Trânsito
Baixar livros de Educação Física
Baixar livros de Engenharia Aeroespacial
Baixar livros de Farmácia
Baixar livros de Filosofia
Baixar livros de Física
Baixar livros de Geociências
Baixar livros de Geografia
Baixar livros de História
Baixar livros de Línguas

Baixar livros de Literatura
Baixar livros de Literatura de Cordel
Baixar livros de Literatura Infantil
Baixar livros de Matemática
Baixar livros de Medicina
Baixar livros de Medicina Veterinária
Baixar livros de Meio Ambiente
Baixar livros de Meteorologia
Baixar Monografias e TCC
Baixar livros Multidisciplinar
Baixar livros de Música
Baixar livros de Psicologia
Baixar livros de Química
Baixar livros de Saúde Coletiva
Baixar livros de Serviço Social
Baixar livros de Sociologia
Baixar livros de Teologia
Baixar livros de Trabalho
Baixar livros de Turismo
 
 