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UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA
“JÚLIO DE MESQUITA FILHO”
FACULDADE DE ODONTOLOGIA e CURSO DE MEDICINA VETERINÁRIA
CÂMPUS DE ARAÇATUBA
FATORES QUE AFETAM A VIABILIDADE E A PROPORÇÃO
DO SEXO DE EMBRIÕES BOVINOS PRODUZIDOS IN VITRO
EM PROGRAMA DE SEXAGEM COMERCIAL
Rodrigo Vitorio Alonso
Médico Veterinário
ARAÇATUBA – SP
2008
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UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA
“JÚLIO DE MESQUITA FILHO”
FACULDADE DE ODONTOLOGIA e CURSO DE MEDICINA VETERINÁRIA
CÂMPUS DE ARAÇATUBA
FATORES QUE AFETAM A VIABILIDADE E A PROPORÇÃO
DO SEXO DE EMBRIÕES BOVINOS PRODUZIDOS IN VITRO
EM PROGRAMA DE SEXAGEM COMERCIAL
ARAÇATUBA – SP
2008
Dissertação apresentada à Faculdade de
Odontologia Unesp, Campus de Araçatuba, como
parte das exigências para obtenção do título de
Mestre em Ciência Animal (Medicina Veterinária
Preventiva e Produção Animal).
Rodrigo Vitorio Alonso
Orientadora: Prof
a
. Dr
a
. Silvia Helena Venturoli Perri
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Catalogação-na-Publicação (CIP)
Serviço Técnico de Biblioteca e Documentação – FOA / UNESP
Alonso, Rodrigo Vitorio
A454f Fatores que afetam a viabilidade e a proporção do sexo de
embriões bovinos produzidos in vitro em programa de sexagem
comercial / Rodrigo Vitorio Alonso. - Araçatuba : [s.n.], 2008
57 f. : il. ; tab.
Dissertação (Mestrado) – Universidade Estadual Paulista,
Faculdade de Odontologia e Curso de Medicina Veterinária, 2008
Orientador: Profa. Silvia Helena Venturoli Perri
1. Micro-manipulação embrionária 2. Fertilização in vitro
3. Sexagem 4. Embrião 5. Bos taurus 6. DNA
CDD 636.0896
DADOS CURRICULARES DO AUTOR
Rodrigo Vitorio Alonso - nascido em Ribeirão Preto - SP, dia 06 de março
de 1981. Possui graduação em Medicina Veterinária pela Universidade Estadual
Paulista “Júlio de Mesquita Filho”, em 2003. Foi representante discente titular no
Departamento de Apoio, Produção e Saúde Animal em 2001, bolsista de iniciação
científica da FAPESP em 2001, orientado pelo Prof. Dr. Wilson Machado de
Souza, e em 2002 e 2003 orientado pelo Prof. Dr. José Fernando Garcia. Possui 5
trabalhos apresentados em congresso na área de reprodução animal. Foi finalista
do III Prêmio Santander de Empreendedorismo na área de biotecnologia, em
2007. Atualmente, é sócio-proprietário da Deoxi Biotecnnologia Ltda,
administrador científico da Transfix - Transplante de Embriões Ltda e coordenador
de projeto de inovação tecnológica em pequenas empresas (PIPE-FAPESP).
Membro da Diretoria da Sociedade Brasileira de Tecnologia de Embres (SBTE
2008 e 2009). Possui experiência na área de biologia molecular aplicada na
reprodução animal com ênfase em produção de embriões in vitro, micro-
manipulação embrionária e diagnóstico genético pré-implantacional.
EPÍGRAFE
“O temor do Senhor é o princípio da sabedoria; mas os
insensatos desprezam o conhecimento e a instrução.”
Provérbios 1:7
“...adquire pois a sabedoria, emprega tudo o que
possuis na aquisição de entendimento.”
Provérbios 4:7
AGRADECIMENTOS
A Deus, pela sua infinita graça e constante livramento;
Aos meus pais que nunca mediram esforços para que eu tivesse acesso ao
mais alto nível de educação e pelo constante incentivo;
A Profa. Dra. Silvia Helena Venturoli Perri, do Departamento de Apoio,
Produção e Saúde Animal, UNESP – Araçatuba, pela presente orientação e
prontidão em todas as etapas do desenvolvimento deste trabalho;
Ao Prof. Adj. José Fernando Garcia, do Departamento de Apoio, Produção
e Saúde Animal, UNESP – Araçatuba, pela orientação durante a graduação,
quando começamos a trabalhar com sexagem de embriões; pelos vários
momentos de conversa e reflexão; pelos conselhos e incentivos profissionais e
pessoais; pela confiança depositada e demonstrada em todo tempo.
A toda equipe da Transfix Transplante de embres Ltda, especialmente
ao médico veterinário José Abdo de Andrade Hellú, pela parceria e realização da
parte de campo deste trabalho e a Altair Martins do Carmo, pelo auxílio na
preparação do material e realização dos trabalhos laboratoriais.
Aos colegas do Laboratório de Bioquímica e Biologia Molecular Animal
(LBBMA) por me receberem e suportarem meus papéis esparramados por todos
os cantos.
A Profa Dra Gisele Zoccal Mingoti, do Departamento de Apoio, Produção e
Saúde Animal, UNESP – Araçatuba pela amizade e pelo constante incentivo.
A Dra. Yeda Fumie Watanabe, Diretora da Vitrogen Pesquisa e
Desenvolvimento em Biotecnologia da Reprodução S/C Ltda, pela colaboração e
apoio técnico.
Ao Prof. Dr. Joaquim Mansano Garcia, Diretor da Tec Gene Tecnologia e
Genética Animal, pela colaboração.
Ao Dr. Walt Yamazaki, diretor da Bioembryo Fertlização in vitro pela
colaboração.
A Fert Vitro, em nome do Prof. Halim Atique Netto.
A Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária (EMBRAPA), Cenargen,
em nome de Dr. Rodolfo Rumpf e Regivaldo Vieira de Souza, pelo fornecimento
do sistema de reagentes para a sexagem de embres.
A todos os criadores que colaboraram neste trabalho, pela confiança
depositada.
A Universidade Estadual Paulista “Júlio de Mesquita Filho”, especialmente
ao Programa de Pós-graduação em Ciência Animal do curso de Medicina
Veterinária, em nome de todos os professores e funcionários que direta ou
indiretamente contribuíram para a transmissão e consolidação dos diferentes
níveis de conhecimentos fundamentais para minha formação pessoal e
profissional.
SUMÁRIO
1. CAPÍTULO 1 – CONSIDERAÇÕES GERAIS..................................... 13
REFERÊNCIAS....................................................................................... 21
2. CAPÍTULO 2 - FATORES QUE AFETAM A VIABILIDADE E A
PROPORÇÃO DO SEXO DE EMBRIÕES BOVINOS PRODUZIDOS
IN VITRO EM PROGRAMA DE SEXAGEM COMERCIAL..................... 30
2.1 Resumo................................................................................... 31
2.2 Abstract................................................................................... 32
2.3 Introdução............................................................................... 33
2.4 Material e Métodos................................................................. 36
2.5 Resultados.............................................................................. 43
2.6 Discussão............................................................................... 46
2.7 Agradecimentos...................................................................... 49
2.8 Referências............................................................................ 50
2.9 Tabelas................................................................................... 56
2.10 Figuras.................................................................................. 59
3. IMPLICAÇÕES.................................................................................... 59
FATORES QUE AFETAM A VIABILIDADE E A PROPORÇÃO DO SEXO DE
EMBRIÕES BOVINOS PRODUZIDOS IN VITRO EM
PROGRAMA DE SEXAGEM COMERCIAL
RESUMO
O crescente avanço da produção in vitro de embres bovinos intensificou a
utilização de outras biotecnologias da reprodução tais como a micro-manipulação
embrionária e o diagnóstico genético pré-implantacional, sendo a identificação do
sexo embrionário utilizada na rotina comercial de laboratórios de produção in vitro.
O objetivo deste trabalho foi avaliar as interações de diferentes fatores sobre a
taxa de mortalidade embrionária e a proporção do sexo de embriões bovinos
submetidos ao processo de sexagem. Foi realizado levantamento no banco de
dados da Transfix Transplante de Embriões Ltda, Patrocínio Paulista / Brasil,
referente a 4.650 embriões produzidos in vitro e sexados entre 2005 e 2007. Os
embres foram submetidos à micro-manipulação pela técnica de micro-aspiração,
e as biópsias à reação em cadeia pela polimerase (PCR). Somente as meas
foram transferidas para receptoras previamente sincronizadas. O diagnóstico de
gestação e a determinação do sexo fetal foram realizados por ultra-sonografia. As
variáveis foram classificadas de acordo com o sexo dos embriões (macho, fêmea
e indeterminado), cinco laboratórios (A, B, C, D e E), seis raças bovinas (Nelore,
Brahman, Girolando, Simental, Holandês e Jersey), estágio embrionário (MO, BI,
BL, BX e BE), qualidade embrionária (1, 2 e 3) e qualidade da biópsia (“dentro do
padrão” e “fora do padrão”). As análises estatísticas foram realizadas pelos testes
2
de associação,
2
de aderência para proporção 1:1 e pela análise de regressão
logística com o método de Hosmer-Lameshow utilizando o procedimento logístico
(PROC LOGISTIC) programa computacional SAS. A PCR apresentou eficiência
de 93,3%, acurácia de 93,2% e taxa de machos e meas de 52,9% e 47,1%,
respectivamente. A taxa de mortalidade dos embres submetidos à biópsia foi de
10,3% e a taxa de gestação foi de 31,7%. Os embriões classificados como
“indeterminados” apresentaram maior taxa de mortalidade do que os embriões
machos e fêmeas, sendo que entre esses últimos, não houve diferença estatística.
A taxa de mortalidade embrionária foi significativamente influenciada pelos
laboratórios de produção in vitro. Nos embriões de qualidade 2 e 3 a chance de
ocorrer morte embrionária após a realização da biópsia foi 3,19 e 11,37 vezes
maior, respectivamente, do que nos embres de qualidade 1. Nos embriões cuja
biópsia foi classificada como “fora de padrão”, a chance de ocorrer mortalidade
embrionária foi 3,6 vezes maior do que na biópsia “dentro do padrão”. A taxa de
mortalidade não foi influenciada pelo estágio do embrião no momento da biópsia
(P>0,05). Apesar da proporção do sexo ter apresentado desvio significante a favor
dos machos, não foram observadas diferenças entre laboratórios (P>0,05) e raças
(P>0,05) na taxa do sexo de embriões bovinos PIV. Em conclusão, a sexagem de
embres bovinos PIV pode ser utilizada em larga escala, salientando-se que a
viabilidade dos embriões submetidos à biópsia foi influenciada pela qualidade do
embro e pelo padrão da biópsia e que não houve influencia dos laboratórios e
das raças bovinas sobre a proporção do sexo de embriões bovinos produzidos in
vitro.
Palavras-chave: Sexagem embrionária, Micro-manipulação; Fertilização in vitro,
Embrião, Bovino, DNA.
FACTORS AFFECTING THE VIABILITY AND SEX RATIO OF IN VITRO
PRODUCED BOVINE EMBRYOS UNDER COMMERCIAL SEXING PROGRAM
SUMMARY
Crescent progress of in vitro bovine embryo production has improved the
use of other reproductive biotechnologies, as embryo micromanipulation and
preimplantation genetic diagnosis, being embryo sexing used in commercial
routine of in vitro embryo production laboratories. The present study aimed to
evaluate the interactions among different factors on the mortality rate and sex ratio
of in vitro produced bovine embryos. A survey was performed in the Transfix
Transplante de Embriões Ltda, Patrocínio Paulista / Brazil data base, referring to
4.650 in vitro produced bovine embryos sexed during years 2005/2007. Embryos
were submited to the biopsy by the microaspiration technique, and biopsies to the
polymerase chain reaction (PCR). Only female embryos were transferred to
synchronized recipients. Pregnancy diagnosis and fetal sex determination were
carried out by ultrasound. The variables were classified according embryo sex
(male, female and indeterminate), five laboratories (A, B, C, D and E), six bovine
breeds (Nellore, Brahman, Girolando, Simmental, Holstein and Jersey), embryo
stage (MO, EB, BL, XB and HB), embryo quality (1, 2, and 3) and biopsy quality
(“standard” and “non standard”). The statistical analysis was carried out by
association
2
test,
2
for 1:1 ratio and logistic regression analysis with Hosmer-
Lameshow method using logistic procedure (PROC LOGISTIC) of SAS package.
The PCR showed 93.3% efficiency, 93.2% accuracy and male and female ratio of
52.9% and 47.1%, respectively. Mortality rate of biopsied embryos was 10.3% and
pregnancy rate was 31.7%. Although no significant differences were observed
between male and female ratio, indeterminate embryos possess greater possibility
to die after micromanipulation. For quality 2 and 3 embryo mortality rate after
biopsy was 3.19 and 11.37 fold higher, respectively, than for quality 1 embryo. For
those whose biopsy was classified “non standard” embryonic mortality rate was 3.6
fold higher than “standard”. Mortality rate not was affected by embryo stage at
biopsy moment (P>0.05). Although sex ratio was significantly skewed to male
embryos, differences were not observed among laboratories (P>0.05) and breeds
(P>0.05) on sex ratio of IVP bovine embryos. In conclusion, IVP bovine embryo
sexing can be utilized in large escale, accentuating that embryo viability after
micromanipulation was influenced by embryo quality and biopsy procedure quality,
with laboratories and bovine breeds not affecting sex ratio.
Keywords: Embryo sexing, Micromanipulation, In vitro fertilization, Embryo,
Bovine, DNA.
13
1. CONSIDERAÇÕES GERAIS
O Brasil ocupa atualmente posição destacada entre os países que aplicam
comercialmente e em larga escala as diversas biotecnologias da reprodução
animal. Desde a década de 70, quando a transferência de embriões (TE) foi
iniciada, esta tecnologia foi progressivamente propagada, passando a ser cada
vez mais utilizada pelos técnicos atuantes neste setor. Entretanto, foi a partir do
ano 2.000 que se observou o expressivo crescimento da produção de embriões in
vitro, o que fez com que o Brasil passasse a ser reconhecido como referência
mundial na área de tecnologias de embriões. Nos últimos quatro anos, o Brasil foi
responsável por aproximadamente 25% da produção total e 50% da produção in
vitro de embriões bovinos no mundo (1).
O crescente desenvolvimento da produção de embriões in vitro
proporcionou o avanço de biotecnologias paralelas à indústria de transferência de
embres. Neste contexto, as técnicas de micro-manipulação embrionária e de
diagnóstico genético pré-implantacional passaram a ser utilizadas como
importantes ferramentas, permitindo intensificar e acelerar ainda mais os
processos de melhoramento genético dos animais de produção (2,3).
A identificação do sexo embrionário tem sido alvo de estudo de diversos
grupos de pesquisadores desde os anos 80, período em diferentes métodos foram
descritos, tais como: 1) utilização de antígeno H-Y no meio de cultivo embrionário
14
(4,5,8); 2) análises citogenéticas (6,7,9) e 3) hibridação in situ (FISH) (4,6).
Entretanto, foi com o advento da técnica de reação em cadeia pela polimerase
(PCR) que o procedimento de sexagem de embriões bovinos tornou-se viável e
passou a ser utilizado por diferentes grupos.
Apesar da utilização da sexagem de embriões possuir grande aplicação na
área da produção e reprodução de bovinos e, conseqüentemente, a maioria dos
trabalhos terem sido desenvolvidos nesta espécie (4-36), existem alguns artigos
científicos descrevendo o método de identificação do sexo embrionário em ovinos
(37), caprinos (38), bubalinos (34,39,40), suínos (41), eqüinos (42) e felinos (43).
A metodologia de sexagem embrionária pode ser dividida basicamente em
duas etapas: 1) micro-manipulação embrionária e 2) análise de DNA.
Nas ultimas décadas, diversos autores avaliaram as técnicas de micro-
secção e micro-aspiração, utilizadas para a realização da biópsia de embriões
bovinos (7,10-37), tanto em embriões produzidos in vivo e in vitro. Bredbacka (20)
descreveu as duas principais técnicas para obtenção da biópsia embrionária,
concluindo que apesar da micro-aspiração causar menores danos ao embrião e à
zona pelúcida, a técnica de micro-secção é mais cil de ser empregada pelos
veterinários de campo.
Herr e Reed (10) relataram que a micro-manipulação embrionária para
obtenção da biópsia não afetou o potencial de desenvolvimento dos embriões,
indicando sua utilização a campo.
15
Thibier e Nibart (11), descreveram os aspectos logísticos e técnicos da
aplicação da sexagem de embriões bovinos inserida em programa de
transferência de embriões convencional na França. Os autores relataram baixa
eficiência na identificação do sexo utilizando a técnica de micro-aspiração (51,0%)
quando comparada com biópsias obtidas por micro-secção (94,7%) e acurácia de
98%. Deve-se tomar os devidos cuidados para evitar a contaminação por DNA
bovino, salientaram os autores, lembrando que podem ocorrer falhas de
amplificação da reação de PCR devido ao desequilíbrio dos componentes da
reação (causado por grande volume de meio de micro-manipulação adicionado
junto com a biópsia) ou devido à inativação da enzima “Taq polymerase” (causada
por aumento da temperatura durante o transporte dos reagentes de PCR ao
campo). Segundo os autores, a taxa do sexo embrionário foi significativamente
desviada a favor dos machos (54,0%), mas não foi influenciada pelo estágio
embrionário. A taxa de gestação de 833 embriões transferidos foi de 45,3%,
salientando a diferença significativa entre embriões de qualidade 1 (53,0%) e de
qualidade 2 (34,0%). Os autores finalizam o artigo destacando que a sexagem
embrionária é importante para acelerar a obtenção de gerações com sexo
desejado e diminuir despesas com receptoras, e apontando para a futura
aplicação no contexto da produção de embriões in vitro.
Roschlau et al. (16) relataram a sexagem de 7.826 embriões bovinos
produzidos in vivo durante 5 anos, na rotina de TE convencional na Alemanha. Os
16
resultados referentes a 1,5 anos apontaram 51,4% de machos e 48,6% de
fêmeas, taxa de gestação de 55,6% e alta taxa de embres grau 3
indeterminados (25,5%)
Shea (18) apresentou a aplicação em larga escala da sexagem de
embres inseridas no programa de TE em rebanhos leiteiros do Canadá de 1992
a 1997. Foram analisados 4.183 embriões, submetidos a três diferentes métodos
de micro-manipulação, em que de 10 a 20% da massa celular de cada embrião foi
removida. Maiores taxas de gestação foram obtidas com o método de micro-
aspiração (50,0%), quando comparado com o realizado com micro-agulha de vidro
(‘needle”) (45,0%) e com a micro-secção (44,0%). A taxa de embriões fêmeas foi
de 46,0%, sendo observada diferenças significativas entre os anos (1992-1997),
períodos (abril setembro versus outubro março), touros e qualidade
embrionária. O estágio embrionário e os dados referentes à fêmea doadora não
afetaram a taxa do sexo.
No Brasil, Garcia et al. (14) relataram taxa de gestação de 45,8% com
embres obtidos por coleta convencional e congelados em etileno glicol, após a
realização de biópsia pela cnica de micro-aspiração, evidenciando a
possibilidade de congelar embriões após o procedimento de sexagem, facilitando
o manejo de receptoras em programas de TE.
Todos os trabalhos citados até esse período histórico foram realizados com
embres produzidos in vivo e obtidos por coleta convencional. Entretanto, em um
17
dos primeiros estudos visando avaliar a viabilidade de embriões bovinos
produzidos in vitro e submetidos à biópsia, Carbonneau et al. (15) submeteram
embres com sete dias de cultivo (blastocistos) à técnica de micro-secção (MS) e
embres com cinco dias de cultivo (12 a 16 blastômeros) à de micro-aspiração
(MA). As duas cnicas (MS e MA) foram avaliadas quanto ao desenvolvimento
embrionário após a biópsia (93,8% e 77,3%, respectivamente), à taxa de gestação
(66,2% e 44,7%, respectivamente) e a eficiência da PCR (85,3% e 95,7%,
respectivamente). Os autores concluíram que a micro-manipulação embrionária
não alterou o desenvolvimento de embriões bovinos produzidos in vitro,
observando ser possível obter boas taxas de gestação, especialmente com a
utilização da técnica de micro-secção em blastocistos.
Alonso et al. (27) avaliaram a capacidade de desenvolvimento de mórulas e
blastocistos bovinos produzidos in vitro, submetidos à piezo-micromanipulação,
observando que a taxa de eclosão dos blastocistos de qualidade 1 (98,0%) e de
qualidade 2 (83,0%) foi significativamente maior do que das mórulas de qualidade
1 (65%) e de qualidade 2 (38,0%), concluindo que tanto o estágio quanto a
qualidade embrionária podem influenciar a viabilidade dos embriões PIV
submetidos à biópsia por micro-aspiração.
A aplicação da sexagem comercial de embriões bovinos PIV em larga
escala foi reportada por Hasler et al. (25). Foram submetidos ao processo de
sexagem 1.181 embriões, obtendo-se taxa de 53,0% de embriões machos. A taxa
18
de gestação com embriões de qualidade 1 foi de 48,8% e de qualidade 2 de
27,8%. A taxa de prenhez dos embriões biopsiados no estágio de mórula (3,6%)
foi significativamente menor do que com blastocistos (52,5%).
Recentemente, variações tecnológicas ligadas a PCR m sido
desenvolvidas com a finalidade de otimizar e/ou simplificar o método tradicional.
Com objetivo de facilitar a utilização da sexagem embrionária a campo,
Bredbacka et al. (12) desenvolveram a metodologia em que o resultado do teste
de DNA pode ser visualizado com trans-iluminador ultravioleta diretamente nos
tubos onde as amostras foram amplificadas, sem a utilização de eletroforese.
Recentemente, Virta et al. (26) descreveram a metodologia para identificação do
sexo de embriões por ensaio de discriminação alélica, utilizando sonda de DNA
fluorogênica sexo específica.
Hirayama et al. (30,39) desenvolveram a técnica para sexagem de
embres bovinos e bubalinos através da amplificação de região Y-específica em
condição isotermal denominada “Loop-mediated Isotermal Amplification” (LAMP).
O artigo publicado por Badr et al. (34) descreve o método para
determinação do sexo de embriões bovinos e bubalinos por PCR em tempo real.
Chrenek et al. (22) utilizaram a técnica denominada Primer Extension
Preamplification” (PEP-PCR) com objetivo de pré-amplificar o DNA obtido na
biópsia embrionária e possibilitar a realização de múltiplas análises genéticas.
19
Neste contexto, diversos trabalhos científicos têm apontado para as
técnicas de amplificação total do genoma (do inglês: Whole Genome
Amplification“ - WGA) como um método revolucionário no diagnóstico genético
pré-implantacional (44-48). Segundo Spits et al. [45] a limitada quantidade de DNA
genômico (gDNA) obtido na biópsia embrionária é um fator que restringe a
aplicação de múltiplos testes moleculares.
Barker et al. (47) reportaram a utilização de dois métodos de WGA:
amplificação por deslocamento múltiplo e a tecnologia “OmniPlex”, seguidas pela
análise de painel composto por 2.320 marcadores do tipo “Single Nucleotide
Polimorphism (SNP), observando aproximadamente 99,8% de concordância no
resultado da genotipagem com gDNA e DNA amplificado.
Conforme Dekkers (49), nos últimos anos, os avanços na área da genética
molecular proporcionaram a identificação de múltiplos genes ou marcadores
genéticos associados a diversas características de interesse nos animais de
produção, tais como precocidade sexual, ganho de peso, qualidade de carne,
produção e qualidade de leite, resistência a parasitas, entre outras. Essas
informações genéticas têm sido utilizadas em programas de seleção assistida por
marcadores.
Com o objetivo de desenvolver metodologia que possibilite a aplicação da
seleção assistida por marcadores em fases embrionárias, Alonso et al. (48)
avaliaram a tecnologia “OmniPlex” aplicada em biópsias de embriões bovinos
20
produzidos in vitro como método de escolha para amplificação do gDNA. Após o
procedimento de pré-amplificação, obteve-se concentração média final de 5,7 ±
1,9 g de gDNA, concluindo que esta técnica pode ser utilizada em análises
envolvendo pequena quantidade de material genético, como no diagnóstico
genético pré-implantacional de embriões bovinos produzidos in vitro.
Os recentes avanços referentes às tecnologias de reprodução assistida
(produção de embriões in vitro), acopladas às técnicas de diagnóstico genético
pré-implantacional (micro-manipulação embrionária e WGA) e à seleção assistida
por marcadores moleculares, constituirão importantes ferramentas para que em
futuro próximo o processo de seleção genética seja aplicado em fases
embrionárias precoces. De acordo com Chrenek et al. (22), a caracterização
genética de embriões é o caminho mais rápido para obtenção de gerações com o
genótipo desejado, possibilitando a redução entre intervalos de gerações e a
diminuição de custos nos processos de melhoramento genético.
O objetivo desta dissertação foi avaliar a interferência de diferentes fatores
(sexo, laboratório de produção in vitro, raça, estágio e qualidade embrionária e
padrão da biópsia) sobre a viabilidade e a proporção do sexo de embriões bovinos
produzidos in vitro, descrevendo a metodologia e o processo empregado na
aplicação da sexagem embrionária em larga escala, no Brasil.
21
REFERÊNCIAS
[1] VIANA, J.H.M.; CAMARGO, L.S.A. Bovine embryo production in Brazil: a new
cenario. Acta Scientiae Veterinarie, Porto Alegre, v.35, n.3, p.920-924,
2007.
[2] BAVISTER, B.D. Early history of in vitro fertilisation. Reproduction, New
York, v.124, n.2, p.181-196, 2002.
[3] FABER, D.C.; MOLINA, J.A.; OHLRICHS, C.L.; VANDER ZWAAG, D.F.;
FERRE, L.B. Commercialization of animal biotechnology. Theriogenology,
Hanover, v.59, n.X, p.125-138, 2003.
[4] BETTERIDGE, K.J.; HARE, W.C.D.; SINGH, E.L. Approaches to sex
selection in farm animals. In: Brackett BG, Seidel GE Jr., Seidel SM, (Eds),
New technologies in animal breeding. New York: Academic Press 1981;109-
125.
[5] WACHTEL, S.S.; H-Y antigen in the study of sex determination and control of
sex ratio. Theriogenology, v.21, n.1, p.19-28, 1984.
[6] VAN VLIET, R.A.; VERRINDER GIBBINS, A.M.; WALTON, J.S. Lifestock
embryo sexing: A review of current methods with emphasis on Y-specific
DNA probes. Theriogenology, v.32, n.1, p.421-438, 1989.
22
[7] SCHRÖDER, A.; MILLER, J.R.; THOMSEN, P.D.; ROSCHLAU, K.; AVERY,
B.; POULSEN, P.H.; SCHMIDT, M.; SCHWERIN, M.; Sex determination of
bovine embryos using the polymerase chain reaction. Animal
Biotechnology, v.1, n.2, p.121-133, 1990.
[8] RAMALHO, M.F.P.D-T.; GARCIA, J.M.; ESPER, C.R.; VANTINI, R.; ALVES,
B.C.A.; ALMEIDA JUNIOR, I.L.; HOSSEPIAN DE LIMA, V.F.M.; MOREIRA-
FILHO, C.A. Sexing of murine and bovine embryos by developmental arrest
induced by high-titer antisera. Theriogenology, v.62, n.2, p.1569-1576,
2004.
[9] KING, W.A. Sexing embryos by cytological methods. Theriogenology, v.21,
n.1, p.7-17, 1984.
[10] HERR, C.M.; REED, K.C.; Micromanipulation of bovine embryos for sex
determination. Theriogenology, Hanover v.35, n.1p.45-54, 1991.
[11] THIBIER, M.; NIBART, M. The sexing of bovine embryos in the field.
Theriogenology, v.43, n.1, p.71-80, 1995.
[12] BREDBACKA, P.; KANKAANPÄÄ, A.; PEIPPO, J. PCR-Sexing of bovine
embryos: a simplified protocol. Theriogenology, v.44, n.1, p.176-176, 1995.
[13] HOCHMAN, D.; ZARON, Y.; DEKEL, I.; FELDMESSER, E.; MEDRANO, J.F.;
SHANI, M.; RON, M. Multiple genotype analysis and sexing of ivf bovine
embryos. Theriogenology, v.46, n.1, p.1063-1075, 1996.
23
[14] GARCIA, J.F.; NOGUEIRA, M.F.G.; PUPIM, F.; PANTANO, T.; VISINTIN, JA.
Pregnancy rates of blastomere biopsied bovine embryos frozen in ethylene
glycol. Theriogenology, v.47, n.1, p.268, 1997.
[15] CARBONNEAU, G.; MORIN, N.; DUROCHER, J.; BOUSQUET, D. Viability of
bovine IVF embryos biopsied with microsection or microaspiration technique
for sexing. Theriogenology, v.47, n.1, p.266, 1997.
[16] ROSCHLAU, K.; ROSCHLAU, D.; ROSELIUS, R.; DEXNE, U.; MICHAELIS,
U.; STREHL, R.; UNICKI, P.; RINK, N. Over 5 years experience in sexing of
bovine morulae and blastocysts during routine embryo transfer.
Theriogenology, v.47, n.1, p.273, 1997.
[17] AGCA, Y.; MONSON, R.L.; NORTHEY, D.L.; PESCHEL, D.E.; SCHAEFER,
D.M.; RUTLEDGE, J.J. Normal calves from transfer of biopsied, sexed and
vitrified ivp bovine embryos. Theriogenology, v.50, n.1, p.129-145, 1998.
[18] SHEA, B.F. Determining the sex of bovine embryos using polymerase chain
reaction results: a six-year retrospective study. Theriogenology, v.51, n.1,
p.841-854, 1999.
[19] HASSUN, P.A.; MELLO, M.R.B.; PORTO, L.P.C.; GARCIA, J.F. Bovine
embryo sexing by primer extension preamplification polymerase chain
reaction (PEP – PCR). Theriogenology, v.51, n.1, p.398, 1999.
24
[20] BREDBACKA, P. Progress on methods of gene detection in preimplantation
embryos. Theriogenology, v.55, n.1, p.23-34, 2001.
[21] LOPES, R.F.F.; FORELL, F.; OLIVEIRA, A.T.D.; RODRIGUES, J.L. Splitting
and biopsy for bovine embryo sexing under field conditions.
Theriogenology, v.56, n.1, p.1383-1392, 2001.
[22] CHRENCK, P.; BOULANGER, L.; HEYMAN, Y.; UHRIN, P.; LAURINCIK, J.;
BULLA, J.; RENARD, J.P. Sexing and multiple genotype analysis from a
single cell of bovine embryo. Theriogenology, v.55, n.1, p.1071-1081, 2001.
[23] PARK, J.H.; LEE, J.H.; CHOI, K.M.; JOUNG, S.Y.; KIM, J.Y.; CHUNG, G.M.;
JIN, DI.; IM, K.S. Rapid sexing of preimplantation bovine embryo using
consecutive and multiplex polymerase chain reaction (PCR) with biopsied
single blastomere. Theriogenology, v.55, n.1, p.1843-1853, 2001.
[24] GARCIA, J.F. Pratical consideratios of embryo manipulation preimplatation
genetic typing. Theriogenology, v.56, n.1, p.1393-1399, 2001.
[25] HASLER, J.F.; CARDEY, E.; STOKES, J.E.; BREDBACKA, P.
Nonelectrophoretic PCR- sexing of bovine embryos in a commercial
environment. Theriogenology, v.58, n.2, p.1457-1469, 2002.
[26] VIRTA, J.; MARKOLA, J.; PEIPPO, J.; MARKKULA, M.; VILKKI, J. Sex
determination of bovine embryo blastomeres by fluorogenic probes.
Theriogenology, v.57, n.2, p.2229-2236, 2002.
25
[27] ALONSO, R.V.; WEPPERT, M.; GARCIA, J.F.; REICHENBACH, H.D. Effect
of biopsy by piezo-micromanipulation on developmental capacity of in vitro
produced bovine morulae and blastocysts. Acta Scientiae Veterinarie, v.31,
n.1, p.215, 2003.
[28] ALVES, B.C.A.; HOSSEPIAN DE LIMA, V.F.M.; TEIXEIRA, C.M.; MOREIRA-
FILHO, C.A. Use of primers derived from a new sequence of the bovine y
chromosome for sexing bos taurus and bos indicus embryos.
Theriogenology, v.59, n.2, p.1415-1419, 2003.
[29] TOMINAGA, K. Cryopreservation and sexing of in vivo- and in vitro-produced
bovine embryos for their pratical use. Journal of Reproduction and
Development, v.50, n.2, p.29-38, 2004.
[30] HIRAYAMA, H.; KAGEYAMA, S.; MORIYASU, S.; SAWAI, K.; ONOE, S.;
TAKAHASHI, Y. Rapid sexing of bovine preimplantation embryos using loop-
mediated isothermal amplification. Theriogenology, v.62, n.2, p.887-896,
2004.
[31] KAGEYAMA, S.; YOSHIDA, I.; KAWAKURA, K.; CHIKUNI, K.; A novel
repeated sequence located on the bovine y chromosome: its application to
rapid and precise embryo sexing by PCR. Journal Veterinary Medical
Science, v.66, n.1, p.509-514, 2004.
26
[32] ALMODIN, C.G.; MORON, A.F.; KULAY, L.; MINGUETTI-CÂMARA, V.C.;
MORAES, A.C.; TORLONI, M.R. A bovine protocol for training professionals
in preimplantation genetic diagnosis using pulymerase chain reaction.
Fertility and Sterility, v.84, n.2, p.895-899, 2005.
[33] KAGEYAMA, S.; HIRAYAMA, H.; MORIYASU, S.; INABA, M.; ITO, D.; OHTA,
H.; SAWAI, K.; MINAMIHASHI, A.; ONOE, S. Genetic diagnosis of band 3
deficiency and sexing in bovine preimplantation embryos. Journal
Veterinary Medical Science, v.68, n.1, p.319-323, 2006.
[34] BADR, H.; PUGLISI, R.; BONGIONI, G. A rapid method for sex
determination of bovine and buffalo embryos by one step real-time PCR. Atti
41° Congr. SIPZOO “From genome to proteome in animal science”,
Lodi, 2006.
[35] LU, W.; RAWLINGS, N.; ZHAO, J.; WANG, H. Amplification and application of
the HMG box of bovine SRY gene for sex determination. Animal
Reproduction Science 2006; doi: 10.1016/j.anireprosci.2006.08.023
[36] KUBISCH, H.M.; JOHNSON, K.M. The effects of blastomere biopsy and
oxygen tension on bovine embryo development, rate of apoptosis and
interferon- secretion. Reproduction Dommestical Animals., v.42, n. 1,
p.509-515, 2007.
27
[37] MARA, L.; PILICHI, S.; ANNA, A.; ACCARDO, C.; CHESSA, B.; DATTENA,
M.; BOMBOI, G.; CAPPAI, P. Sexing of in vitro produced ovine embryos by
duplex PCR. Molecular Reproduction and Development, v.69, n.2, p.35-
42, 2004.
[38] SHI, L.; YUE, W.; REN, Y.; LEI, F.; ZHAO, J. Sex determination in goat by
amplification of the HMG box using duplex PCR . Animal Reproduction
Science, v.105, n.3-4, p.398-403, 2008.
[39] HIRAYAMA, H.; KAGEYAMA, S.; TAKAHASHI, Y.; MORIYASU, S.; SAWAI,
K.; ONOE, S.; WATANABE, K.; KOJIYA, S.; NOTOMI, T.; MINAMIHASHI, A.
Rapid sexing of water buffalo (Bubalus bubalis) embryos using loop-mediated
isothermal amplification. Theriogenology, v.66, n.2, p.1249-1256, 2006.
[40] FU, Q.; ZHANG, M.; QIN, W.S.; LU, Y.Q.; ZHENG, H.Y.; MENG, B.; LU, S.S.;
LU, K.H. Cloning the swamp buffalo SRY gene for embryo sexing with
multiplex-nested PCR. Theriogenology, v.68, n.2, p.1211-1218, 2007.
[41] FONTANESI, L.; SCOTTI, E.; RUSSO, V. Differences of the porcine
amelogenin X and Y chromosome genes (AMELX and AMELY) and their
application for sex determination in pigs. Molecular Reproduction and
Development 2008 (in press).
[42] PEIPPO, J.; HUHTINEN, M.; KOTILAINEN, T. Sex diagnosis of equine
preimplantation embryos using the polymerase chain reaction.
Theriogenology, v.44, n.1, p.619-627, 1995.
28
[43] CIANI, F.; COCCHIA, N.; RIZZO, M.; PONZIO, P.; TORTORA, G.;
AVALLONE, L.; LORIZIO, R. Sex determining of cat embryo and some feline
species. Zygote, v.16, n.1, p.169-177, 2008.
[44] HOLBROOK, J.F.; STABLEY, D.; SOL-CHURCH, K. Exploring Whole
Genome Amplification as a DNA recovery tool for molecular genetic studies.
Journal of Biomolecular Techniques, v.16, n.1, p.125-133, 2005.
[45] SPITS, C.; LE CAIGNEC, C.; DE RYCKE, M.; VAN HAUTE, L.; VAN
STEIRTEGHEM, A.; LIEBAERS, I.; SERMON, K. Optimization and
evaluation of single-cell whole genome multiple displacement amplification.
Human Mutation, v.27, n.5, p.496-503, 2006.
[46] COSKUN, S.; ALSMADI, O. Whole genome amplification from a single cell: a
new era for preimplantion genetic diagnosis. Prenatal diagnosis, v. 27,n.1,
p.297-302, 2007.
[47] BARKER, D.L.; HANSEN, M. S. T.; FARUQI, A. F.; GIANNOLA, D.;
IRSULA, O. R.; LASKEN, M. L.; MAKAROV, A.; OLIPHANT, A.; PINTER, J.
H.; SHEN, R.; SLEPTSOVA, I.; ZIEHLER, W.; LAI, ERIC. Genotyping across
a 2320-SNP linkage panel two methods of Whole-Genome Amplification
enable accurace. Genome Research. v. 14, n.1, p. 901-907, 2004.
29
[48] ALONSO, R.V.; PERRI, S.H.V.; GARCIA, J.F. Preimplantation genetic
diagnosis of bovine embryos using wrole genome amplification. Jornal
Venomous Animals Toxins including Tropical Diseases, v.13, n.4, p.951,
2007.
[49] DEKKERS, J.C.M. Commercial application of marker- and gene-assisted
selection in livestock: Strategies and lessons. Journal Animal Science, v.82,
n.2, p.313-328, 2004.
30
2. CAPÍTULO 2 - FATORES QUE AFETAM A VIABILIDADE E A
PROPORÇÃO DO SEXO DE EMBRIÕES BOVINOS PRODUZIDOS IN VITRO
EM PROGRAMA DE SEXAGEM COMERCIAL
Fatores que afetam a viabilidade e a proporção do sexo de embriões bovinos
produzidos in vitro em programa de sexagem comercial.
Factors affecting the viability and sex ratio of in vitro produced bovine embryos in
commercial sexing program.
R.V. Alonso
ab
, J.A.A. Hel
bc
, S.H.V. Perri
a
, J.A. Visintin
d
, J.F. Garcia
a
.
a
Universidade Estadual Paulista - UNESP, Araçatuba, São Paulo, Brasil.
b
Transfix – Transplante de Embres Ltda, Patrocínio Paulista, São Paulo, Brasil.
c
Universidade de Franca, UNIFRAN, Franca, São Paulo, Brasil.
d
Universidade de São Paulo - USP, São Paulo, Brasil.
Endereços:
a
Universidade Estadual Paulista “Júlio de Mesquita Filho Departamento
de Apoio, Produção e Saúde Animal, Laboratório de Bioquímica e Biologia
Molecular Animal, Rua Clóvis Pestana, 793, Jd. Dona Amélia, CEP: 16050-680,
Araçatuba, São Paulo, Brasil.
Tel: 55 18 3636-1365 - e-mail: jfgarcia@terra.com.br
b
Transfix Transplante de Embriões Ltda, Rua Lourival Faleiros, 1006,
Centro, CEP: 14415-000, Caixa Postal 97, Patrocínio Paulista, São Paulo, Brasil.
Tel/Fax: 55 16 3145-1359 / 55 16 8135-5590 - e-mail: [email protected].br
31
c
Universidade de Franca, Av. Dr. Armando Salles de Oliveira, 201, Caixa
Postal 82, Parque Universitário, CEP: 14.404-600, Franca, SP, Brasil.
d
Universidade de São Paulo, Departamento de Reprodução Animal, Av.
Prof. Dr. Orlando Marques de Paiva, 87, CEP: 05508-270, Cidade Universitária,
São Paulo, SP, Brasil. Tel/Fax: 55 11 818-7015/818-7412 e-mail:
2.1 Resumo
O objetivo deste trabalho foi avaliar as interações de diferentes fatores
(sexo, laboratório de produção in vitro, raça, estágio e qualidade embrionária e
padrão da biópsia) sobre a taxa de mortalidade e a proporção do sexo de
embres bovinos produzidos in vitro (PIV) submetidos ao processo de sexagem,
em larga escala. Foi utilizado banco de dados referente a 4.650 embriões bovinos
PIV, submetidos à biópsia pela técnica de micro-aspiração e o DNA à reação em
cadeia pela polimerase (PCR). Somente as meas foram transferidas para
receptoras sincronizadas. O diagnóstico de gestação e a sexagem fetal foram
realizados por ultra-sonografia. A taxa de mortalidade após a biópsia foi de 10,3%
e a taxa de gestação foi de 31,7%. A PCR revelou eficiência de 93,3%, acurácia
de 93,2% e desvio da taxa de sexo a favor dos machos (52,9%) (P0,05). De
acordo com os valores do odds ratio, nos embriões de qualidade 2 e 3 a chance
de ocorrer morte embrionária após a realização da biópsia foi 3,19 e 11,37 vezes
maior, respectivamente, do que nos embres de qualidade 1. Nos embriões cuja
32
biópsia foi classificada como “fora de padrão”, a chance de ocorrer mortalidade
embrionária foi 3,6 vezes maior do que na biópsia “padrão”. A taxa de mortalidade
não foi influenciada pelo estágio do embrião no momento da biópsia (P>0,05).
Não foram observadas influências de laboratórios (P>0,05) e raças (P>0,05) sobre
a taxa do sexo de embres bovinos PIV. Em conclusão, a sexagem de embriões
bovinos PIV pode ser utilizada em larga escala, salientando-se que a viabilidade
embrionária é influenciada pela qualidade do embrião e pelo padrão de execução
da biópsia.
Palavras-chave: Sexagem embrionária; Micro-manipulação; Fertilização in vitro;
Bovino; DNA.
2.2 Abstract
The present study aimed to evaluate the interactions among different factors
(sex, in vitro produce laboratory, breed, stage and quality embryo and biopsy
standard) on the viability and sex ratio of in vitro produced (IVP) bovine embryos,
submitted to a large scale sexing program. A survey referring to 4.650 IVP bovine
embryos submitted to the biopsy procedure by microaspiration technique, and
DNA to the polymerase chain reaction (PCR). Only female embryos were
transferred to synchronized recipients. Pregnancy diagnosis and fetal sex
determination were carried out by ultrasound. Mortality rate of biopsied embryos
33
was 10.3% and pregnancy rate was 31.7%. The PCR showed 93.3% efficiency,
93.1% accuracy and sex rate skewed to male embryos 52.9% (P0,05). According
odds raio value, for quality 2 and 3 embryo the mortality rate after biopsy was 3.19
and 11.37 fold higher, respectively, than for quality 1 embryo. Embryos whose
biopsy was classified non standard” the embryonic mortality rate was 3.6 fold
higher than “standard”. Mortality rate not was affected by embryo stage at biopsy
moment (P>0.05). Differences were not observed among laboratories (P>0.05)
and breeds (P>0.05) on the sex ratio of IVP bovine embryos. In conclusion, IVP
bovine embryo sexing can be utilized in large escale, accentuating that embryo
viability after micromanipulation was influenced by embryo quality and biopsy
procedure quality, with laboratories and bovine breeds not affecting the sex ratio.
Keywords: Embryo sexing; Micromanipulation; In vitro fertilization; Bovine; DNA.
2.3 Introdução
Segundo relatório apresentado pela “International Embryo Transfer Society”
(IETS), o Brasil ocupa posição destacada entre os países que aplicam
comercialmente e em larga escala as diversas biotecnologias da reprodução
animal, tendo sido responsável por cerca de 200.000 transferências de embriões
bovinos produzidos in vitro (PIV) em 2006, o equivalente a aproximadamente
50%% de todo movimento mundial [1]. Este crescente desenvolvimento da
34
produção de embriões in vitro proporcionou o avanço de biotecnologias paralelas
à indústria de transferência de embriões a campo. Neste contexto, as cnicas de
micromanipulação embrionária e de diagnóstico genético pré-implantacional são
ferramentas importantes que permitem intensificar e acelerar o melhoramento
genético de animais com alto valor zootécnico [2,3].
Nas ultimas décadas, diversos autores avaliaram as técnicas de micro-
secção e micro-aspiração, utilizadas para realização da biópsia de embriões
produzidos in vivo e in vitro [4-25]. Herr e Reed [5] relataram que a micro-
manipulação embrionária para obtenção da biópsia não afetou o potencial de
desenvolvimento dos embres, indicando sua utilização a campo. Thibier e Nibart
[5], Garcia et al. [8], Roschlau et al. [10] e Shea [11] apresentaram a aplicação a
campo da tecnologia de micro-manipulação para sexagem de embres
produzidos in vivo.
Bredbacka [13] descreveu as duas principais técnicas utilizadas para
obtenção da biópsia embrionária, concluindo que apesar da micro-aspiração
causar menores danos ao embrião e à zona pelúcida, a cnica de micro-secção é
mais fácil de ser empregada pelos veterinários de campo.
Carbonneau et al. [9] avaliaram a viabilidade de embriões bovinos
produzidos in vitro e submetidos à biópsia pela a técnica de micro-secção e de
micro-aspiração, obtendo melhores resultados com a primeira.
35
Quanto aos diferentes métodos utilizados para a identificação do sexo de
embres bovinos, técnicas como a utilização de antígeno H-Y no meio de cultivo
embrionário [26-29], análises citogenéticas [4,28,30] e hibridação in situ (FISH)
[4,28] foram desenvolvidas. Entretanto, foi com o advento da técnica de reação
em cadeia pela polimerase (PCR) que o procedimento de sexagem embrionária
tornou-se viável e passou a ser utilizado por diversos grupos tanto na espécie
bovina [4,6-17,19-22,24-28,30-37] quanto em outras espécies como ovinos [38],
caprinos [18], bubalinos [37,39,43], suínos [40], eqüinos [41] e felinos [42].
Recentemente, novas tecnologias ligadas a PCR têm sido desenvolvidas
com a finalidade de otimizar e/ou simplificar o método tradicional, tais como
“Primer Extension Preamplification” (PEP-PCR) [12,20], PCR com sondas
flourogênicas [35], “Loop-mediated Isotermal Amplification” (LAMP) [36-37] e PCR
em tempo real [43].
Embora a sexagem de embriões seja um tema bastante explorado
cientificamente, existem poucas publicações abordando a inserção desta
tecnologia em programa comercial de transferência de embriões PIV, em larga
escala [9,15].
Este estudo foi conduzido com o objetivo de avaliar a influência de
diferentes fatores sobre a viabilidade e a proporção do sexo de embriões bovinos
PIV submetidos à micro-manipulação para a sexagem pela cnica de PCR,
apresentando a metodologia e processo empregado na implantação desta
36
biotecnologia na rotina comercial de cinco laboratórios de produção in vitro no
Brasil.
2.4 Material e Métodos
2.4.1 Banco de dados
Este trabalho foi desenvolvido a partir da análise do banco de dados da
Transfix Transplante de Embriões Ltda, Patrocínio Paulista, São Paulo, Brasil,
empresa especializada na prestação de serviços em biotecnologia da reprodução
animal. Foram avaliados 96 procedimentos de sexagem de embriões bovinos PIV,
realizados em cinco diferentes laboratórios de produção in vitro (A, B, C, D e E) e
seis raças bovinas (origem/aptidão): Nelore (Bos indicus/corte), Brahman (Bos
indicus/corte), Girolando Bos taurus / ½ Bos indicus/leite), Simental (Bos
taurus/corte), Jersey (Bos taurus/leite) e Holandês (Bos taurus/leite), no período
de março de 2005 a dezembro de 2007. Além dos laboratórios e das raças, foram
considerados neste trabalho as variáveis relacionadas ao sexo embrionário
(macho, fêmea e indeterminado), estágio embrionário no momento da realização
da biópsia (mórula, blastocisto inicial, blastocisto, blastocisto expandido e
blastocisto eclodido), qualidade embrionária (1, 2 e 3) e o padrão na execussão da
biópsia.
37
2.4.2 Aspiração folicular e produção in vitro
Os embriões foram produzidos in vitro a partir de oocitos obtidos por
sistema de aspiração folicular trans-vaginal, guiado por ultra-sonografia. Os
oocitos aspirados foram avaliados e transportados até o laboratório, onde realizou-
se as etapas de maturação, fertilização e cultivo embrionário in vitro de acordo
com protocolo de cada laboratório.
2.4.3 Micro-manipulação embrionária
A micro-manipulação embrionária foi realizada nos mesmos locais onde os
embres foram produzidos. Os embriões com desenvolvimento mais adiantado
(blastocistos) foram biopsiados no sexto dia (D6) após a fertilização in vitro,
enquanto que os embriões com desenvolvimento tardio (mórulas) foram mantidos
no cultivo e biopsiadas no dia seguinte (D7).
Os embriões foram avaliados e selecionados de acordo com o estágio e
qualidade, segundo as recomendações da IETS [44], e posteriormente
transferidos isoladamente para gotas de micro-manipulação devidamente
identificadas em placa de Petri (60 mm, Corning, NY, USA), formadas com 70 L
do mesmo meio de cultura que fora utilizado, entretanto ajustando-se a
concentração de macromoléculas (soro fetal bovino ou albumina sérica bovina)
para 10%, quando necessário.
38
A biópsia foi realizada utilizando-se dois micro-manipuladores e dois micro-
injetores mecânicos (MM Micromanipulator, NY, USA) adaptados a microscópio
invertido (CK2, Olimpus, Tokyo, Japan), sob aumento de 100 X. A cnica
empregada foi a de micro-aspiração de células embrionárias, com auxílio de duas
micropipetas: “holding” e micro-aspiração, fabricadas com capilares de borosilicato
utilizando equipamento de estiramento computadorizado (Puller 773, Campden
Instrument Limit, USA), Microforja (MF-9, Narishige, Tokyo, Japan) e esmerilhador
(EG-40, Narishige). A micropipeta “holding” foi utilizada para posicionamento e
imobilização do embrião, enquanto que a de micro-aspiração (diâmetro externo
30 m e diâmetro interno 25 m, ângulo da extremidade 30) foi utilizada para
aspiração de células embrionárias viáveis. Quando foi possível a identificação e
diferenciação do trofoblasto e do embrioblasto, o embrião foi posicionado de tal
forma que fossem aspiradas lulas do trofoblasto (Figura 1). As micropipetas de
micro-aspiração foram substituídas a cada biópsia, evitando o risco de
contaminação.
Considerou-se “biópsia padrão” a micro-aspiração de 5 a 15% da massa
celular embrionária viável (desprezando-se material proveniente de lulas
extrusas e/ou degeneradas) e “fora do padrão” biópsia em que ocorreu micro-
aspiração de mais de 15% da massa embrionária viável, comprometendo a
qualidade morfológica do embrião.
39
Após realização da biópsia, as células aspiradas foram transferidas para
tubo de polipropileno de 0,2 mL, (Axygen, Union city, USA) devidamente
identificado, contendo 2 µL de água ultrapura (Sigma).
Cada lote de embres transferidos para placa de micro-manipulação foi
composto por no máximo 10 embriões, evitando a permanência destes fora da
estufa de CO
2
por mais de 30 min. Após a realização das biópsias, os embriões
foram transferidos para gotas isoladas e identificadas com 50 µl do mesmo meio
de cultura utilizado anteriormente, cobertas com óleo mineral (Sigma Chemical,
MO, USA) em placas de Petri (25mm, Corning). As placas foram retornadas para
estufa de CO
2
, onde os embriões biopsiados foram cultivados durante 6 a 12 h,
até o momento da reavaliação e envasamento para transferência.
2.4.4 Reação em cadeia pela polimerase
Em cada amostra de biópsia embrionária foram adicionadas 20 µg de
proteinase K (USB, Cleveland, Ohio, USA), e após centrifugação foram incubadas
a 56 C por 10 min, para lise das membranas celulares, seguida de 95 C por 10
min, para inativação da proteinase K (USB). Os tubos foram resfriados a 4 C no
final do procedimento de lise, e então foram adicionados 20 µL da solução de
PCR do sistema de sexagem de embriões bovinos fornecidos pela Empresa
Brasileira de Pesquisa Agropecuária (EMBRAPA - Cenargen, Brasília, Distrito
Federal, Brasil), totalizando volume final de 25 µL. Este sistema é constituído por
40
dois pares de oligonucleotídeos, sendo um responsável pela amplificação de
região Y-específica ( 220 pb) e outro pela região autossômica ( 280 pb).
A PCR foi realizada em termociclador (MJ-96+, Biocycler) com 5 min de
desnaturação a 95 C, seguidos por 35 ciclos de desnaturação a 95 C (30 seg),
anelamento a 57 C (1 min), extensão a 72 C (30 seg) e extensão final a 72 C
por 5 min, sendo o tempo total de amplificação de aproximadamente 2,5 h. Para
cada reação, foram incluídos: controle negativo sem amostra de DNA, uma
amostra contendo DNA conhecido de macho e uma com DNA de fêmea (controle
positivo).
2.4.5 Eletroforese
Finalizada a amplificação, 10 µL da amostra foram homogeneizados com 2
µL de azul de bromofenol (Sigma) e depositados dentro do poço do gel de
agarose a 2% (Pronadisa, Madrid, Spain) preparado com TBE (Tris-borate/EDTA
electroforesis bufer) incluindo 0,5 µg/ml de brometo de etídeo (Gibco, NY, USA). O
tempo de corrida da eletroforese horizontal foi de 30 min e a visualização do gel
foi realizada com trans-iluminador ultravioleta (ECX-20.M, Vilber Lourmat, Marne
La Vallee, France). A amplificação dos dois fragmentos na mesma amostra revela
embro macho, enquanto a amplificação de um único fragmento autossômico
(280pb) representa embro fêmea. As amostras com ausência de amplificação
foram classificadas como “indeterminado” (Figura 2). A eficiência da PCR foi
41
avaliada pela proporção dos embriões devidamente sexados (machos + meas)
em relação ao total submetido ao processo de sexagem.
2.4.6 Viabilidade embrionária após a biópsia
Após identificação do sexo e antes do envasamento para transferência,
todos os embriões micro-manipulados foram reavaliados quanto ao estágio e
qualidade de acordo com o manual da IETS [44], possibilitando a avaliação da
viabilidade embrionária pela taxa de mortalidade dos embriões bovinos PIV
submetidos à biópsia.
2..4.7 Transferência dos embriões
Como este trabalho foi desenvolvido na rotina comercial dos laboratórios de
produção in vitro no Brasil, por interesses econômicos somente os embriões
diagnosticados fêmeas foram envasados individualmente em palhetas de 250 L e
transferidos para receptoras previamente sincronizadas. A avaliação da qualidade
das receptoras foi baseada no escore corporal e qualidade do corpo lúteo,
avaliado por palpação trans-retal e/ou ultra-sonografia.
2.4.8 Diagnóstico de gestação e determinação do sexo fetal
A taxa de gestação foi observada por meio de diagnóstico realizado por
palpação trans-retal e/ou exame ultra-sonográfico (US) entre 40 e 60 d após a TE.
42
O diagnóstico do sexo embrionário obtido pela técnica de PCR foi comparado com
a sexagem fetal realizada por ultra-sonografia entre 55 e 70 d, permitindo avaliar a
acurácia da sexagem embrionária.
2.4.9 Análises estatísticas
A interferência dos fatores (sexo, laboratório de produção in vitro, estágio e
qualidade embrionária e padrão da biópsia) sobre a taxa de mortalidade de
embres PIV submetidos à biópsia por micro-aspiração foi avaliada utilizando-se
análise de regressão de acordo com o método de Hosmer-Lemeshow [45] com o
procedimento logístico (PROC LOGISTIC) do programa computacional SAS [46].
Basicamente este método envolve cinco etapas: inicialmente análise univariada
utilizando o teste qui-quadrado para verificar a associação entre cada uma das
variáveis estudadas com a variável dependente; construção de um modelo
completo utilizando todas as variáveis significativas na análise univariada;
eliminação das variáveis não significativas do modelo completo e comparação do
modelo reduzido com o modelo precedente para o ajuste do modelo (“backward
elimination procedure”); avaliação das possíveis interações duplas de variáveis e
avaliação do ajuste do modelo usando a estatística Hosmer-Lemeshow. As
variáveis que apresentaram valor de P menor que 25% (P0,25) na primeira etapa
foram incluídas no modelo inicial. A modelagem continuou até que todos os efeitos
43
principais ou termos da interação fossem significativos de acordo com a estatística
de Wald (P0,05).
A interferência dos laboratórios de produção in vitro e das raças bovinas
sobre a proporção do sexo foi avaliada pelo teste qui-quadrado de associação,
considerando-as estatisticamente significativas quando P0,05.
O teste qi-quadrado
para proporção 1:1 foi utilizado para verificar a
ocorrência de desvio na proporção do sexo encontrado com relação ao esperado.
3. Resultados
Foram sexados 4.650 embriões produzidos in vitro, dos quais foram
transferidos 1.826 embriões sexados de fêmea, apresentando 579 prenhezes
(31,7%). A taxa de mortalidade nos embriões PIV submetidos à biópsia foi de
10,4% e a sexagem evidenciou desvio do sexo a favor dos machos (52,9%
machos : 47,1% fêmeas) (P 0,05). Dos 4.650 embriões PIV submetidos à
sexagem, 312 (6,7%) foram classificados como “indeterminados”, pois não foi
possível identificar o sexo destes embriões. Desta forma, a eficiência da técnica
de sexagem por PCR foi de 93,3%.
A comparação do sexo embrionário obtido pela PCR com o sexo fetal por
ultra-som (US) revelou a confirmação de 93,1% fêmeas (539/579 onde PCR=US)
e 6,9% machos (40/579 onde PCR≠US). Desta forma, a acurácia da sexagem de
embres bovinos PIV pela técnica de PCR foi de 93,1%.
44
O modelo múltiplo de regressão logística mostrou que a taxa de
mortalidade dos embriões bovinos PIV submetidos à biópsia para sexagem pode
ser influenciada pelo sexo embrionário, por diferentes protocolos laboratoriais
usados na produção in vitro e, principalmente, pela qualidade embrionária e pelo
padrão na execussão da biópsia (Tabela 1).
Não foi observada influência do sexo sobre a taxa de mortalidade entre
embres machos e meas (P>0,05), entretanto a taxa de mortalidade dos
embres indeterminados foi maior (P0,01).
Os resultados indicaram que o laboratório de produção de embres in vitro
pode exercer influência (P0,01) sobre a taxa de mortalidade embrionária, sendo
o laboratório D o que resultou em menor taxa de mortalidade. A taxa de
mortalidade embrionária do laboratório A foi escolhida como referência devido ao
grande número de embriões sexados (2.722) em relação aos demais laboratórios.
A qualidade embrionária no momento da execução da biópsia influenciou
(P0,001) a taxa de mortalidade de embriões PIV submetidos à micro-aspiração,
pois de acordo com o valor odds ratio, nos embres de qualidade 2 e 3 a chance
de ocorrer mortalidade embrionária após a realização da biópsia foi 3,19 e 11,37
vezes maior, respectivamente, do que nos embriões de qualidade 1.
O padrão de realização da biópsia tamm influenciou (P0,001) na taxa de
mortalidade embrionária, pois nos embriões cuja biópsia foi classificada fora de
45
padrão”, a chance de ocorrer mortalidade embrionária foi 3,6 vezes maior do que
na biópsia “dentro do padrão”.
A da taxa de mortalidade entre os diferentes estágios embrionários no
momento da biópsia foi de 13,3% mórula (35/265), 10,9% blastocisto inicial
(266/2450), 10,1% blastocisto (120/1191), 8,6% blastocisto expandido (61/706) e
7,9% blastocisto eclodido (3/38). Apesar do estágio embrionário ter sido incluído
no modelo de regressão logística inicial (P0,25), foi posteriormente excluído pelo
modelo, mostrando não influenciar a taxa de mortalidade (P>0,05).
A avaliação dos cinco laboratórios de produção in vitro analisados neste
trabalho sobre a taxa do sexo (machos) de embriões PIV apresentou: A 52.2%
(1341/2568), B 54,5% (417/765), C 54,3% (363/668), D 49,6% (128/258) e E
59,5% (47/79), indicando não haver influência do laboratório sobre a taxa de sexo
(P>0,05).
Com relação às seis raças bovinas avaliadas, as taxas de sexo (macho)
obtidas foram: Nelore 53,1% (2049/3944), Girolando 53,5% (76/142), Simental
50,0% (39/78), Holandês 46,0% (29/63), Brahman 57,9% (33/57) e Jersey 46,3%
(25/54), não havendo influência das raças sobre taxa de sexo (P>0,05).
46
4. Discussão
O expressivo mero de embriões PIV (4.650) e as diferentes variáveis
avaliadas neste trabalho possibilitaram a análise da influência de diversos fatores
ligados à implantação da sexagem embrionária na rotina comercial da produção in
vitro de embriões bovinos.
Embora a sexagem de embres seja utilizada a campo desde os anos 90,
a maioria dos trabalhos publicados trata de embriões obtidos por coleta in vivo
[6,8-11]. A aplicação a campo em larga escala da sexagem de embriões PIV foi
reportada por Carbonneau et al. [9] e por Hasler et al. [15].
A maioria dos autores que trabalharam com a sexagem de embres
obtidos in vivo optou pela técnica de micro-secção para realização da biópsia
embrionária [5,8-10,11]. Comparando as duas técnicas, Thibier e Nibart [5]
obtiveram menor eficiência na sexagem de embriões com a cnica de micro-
aspiração (51,0%) do que com a técnica de micro-secção (94,7%). A grande
diferença na eficiência entre os métodos pode ter ocorrido por falha durante o
procedimento de transferência da biópsia para o tubo de PCR no método de
micro-aspiração. A utilização de meio de micro-manipulação com baixa
concentração de macromoléculas pode favorecer a fixação das células aspiradas
no interior da micropipeta de vidro e, consequentemente, diminuir
significativamente a eficiÊncia do diagnóstico por PCR [5]. No presente estudo
optou-se pela técnica de micro-aspiração devido à habilidade e adaptação dos
47
técnicos para a fabricação das micropipetas (“holding” e biópsia) e execução da
biópsia embrionária com auxílio de micro-manipuladores mecânicos. Devido às
diferentes concentrações de soro fetal e BSA dos meios de cultura utilizados nos
diferentes protocolos laboratoriais, o meio de micromanipulação foi ajustado para
10% de soro fetal, obtendo-se eficiência de amplicação satisfatória (93,3%).
Independente da técnica de micro-manipulação escolhida a habilidade do
técnico na realização da biópsia determinará a destreza e velocidade com que o
trabalho será executado. Neste artigo, o tempo médio para a realização da biópsia
por micro-aspiração foi de 3 min, enquanto que com a técnica de micro-secção
outros autores relataram levar de 4 [8] a 10 min [5].
Confirmando os resultados apresentados por diversos autores [5,10,18], a
qualidade do embrião antes da realização da biópsia é um dos principais fatores
que influênciam a viabilidade embrionária, sendo que a taxa de mortalidade
aumenta progressivamente conforme piora a qualidade embrionária.
O estágio embrionário no momento da realização da biópsia não exerceu
influência sobre a taxa de mortalidade embrionária. Entretanto, a maioria dos
embres foi micro-manipulada durante o estágio de blastocisto inicial (2450) e
blastocisto (1191), pois relatos de maior sensibilidade à micro-manipulação das
mórulas quando comparadas aos blastocistos PIV [5,18].
Os dados apresentados revelaram que a biópsia executada fora do padrão
estabelecido aumenta 3,6 vezes a chance do embrião morrer, confirmando que a
48
habilidade do técnico responsável pela realização da biópsia influencia
significativamente a viabilidade do embro, como descrito anteriormente [5,8].
A influência dos laboratórios de produção in vitro sobre a taxa de
mortalidade dos embriões biopsiados pode estar relacionada com os diferentes
protocolos e meios de cultivo utilizados, que refletem na velocidade de
desenvolvimento, grau de compactação e qualidade dos embriões produzidos in
vitro.
Nas amostras em que houve falha de amplificação, não foi visualizada
nenhuma das duas bandas esperadas na eletroforese. Nestes casos os embriões
foram classificados como “indeterminados”. A inibição da amplificação do DNA
pode ocorrer devido à alteração da concentração dos componentes presentes na
reação de PCR, provocado pelo grande volume de meio de micro-manipulação
transferido para o tubo junto com a biópsia ou mesmo devido à qualidade da
enzima “Taq polymerase” [5]. Outro fator que pode causar problemas de
amplificação é a falha na transferência das células embrionárias para o tubo de
PCR, ou mesmo a transferência de células extrusas e/ou degeneradas, com
degradação de DNA. Este último caso normalmente ocorre quando embriões de
qualidade 2 e 3 são biopsiados, o que poderia justificar alta taxa de mortalidade
dos embriões indeterminados, quando comparado aos que tiveram o sexo
devidamente identificado (P0,01).
49
Apesar dos resultados deste trabalho não apontarem a interferência dos
laboratórios de produção in vitro e das raças bovinas sobre a taxa do sexo dos
embres PIV (P>0,05), o teste
2
de aderência para proporção 1:1 apresentou
desvio significativo a favor dos machos (52,9%), concordando com os dados
apresentados por Hasler et al. (53,0%) [10].
Em conclusão, a sexagem de embriões bovinos PIV pode ser utilizada em
larga escala na rotina dos laboratórios de produção in vitro, salientando-se que a
viabilidade dos embriões submetidos à biópsia foi influenciada pela qualidade do
embro e pelo padrão da execução da biópsia e que não houve influencia dos
laboratórios e das raças bovinas sobre a taxa do sexo de embriões bovinos
produzidos in vitro.
5. Agradecimentos
Os autores agradecem a Yeda Watanabe (Vitrogen), Joaquim Mansano
Garcia (TecGene), Walt Yamazaki (Bioembryo) e Hallin Bassit (FertVitro),
responsáveis técnicos dos laboratórios de fertilização in vitro pela parceria e
colaboração no desenvolvimento deste trabalho e a Altair Martins do Carmo pelo
auxílio na preparação do material e na realização dos trabalhos de campo.
50
6. Referências
[1] Viana, JHM, Camargo, LSA. Bovine embryo production in Brazil: a new
cenario. Acta Scientiae Veterinarie, 2007;3:920-924.
[2] Bavister BD. Early history of in vitro fertilisation. Reprod. 2002;124:181-196.
[3] Faber DC, Molina JA, Ohlrichs CL, Vander Zwaag DF, Ferre LB.
Commercialization of animal biotechnology. Theriogenology 2003;59:125-
138.
[4] Schröder A, Miller JR, Thomsen PD, Roschlau K, Avery B, Poulsen PH,
Schmidt M, Schwerin M. Sex determination of bovine embryos using the
polymerase chain reaction. Animal Biotechnology 1990;1:121-133.
[5] Thibier M, Nibart M. The sexing of bovine embryos in the field.
Theriogenology 1995;43:71-80.
[6] Garcia LF, Nogueira MFG, Pupim F, Pantano T, Visintin JA. Pregnancy rates
of blastomere biopsied bovine embryos frozen in ethylene glycol.
Theriogenology 1997;47:268 (abstract).
[7] Hassun PA, Mello MRB, Porto LPC, Garcia JF. Bovine embryo sexing by
primer extension preamplification polymerase chain reaction (PEP PCR).
Theriogenology 1999;51:398 (abstract).
[8] Bredbacka P, Progress on methods of gene detection in preimplantation
embryos. Theriogenology 2001;55:23-34.
51
[9] Lopes RFF, Forell F, Oliveira ATD, Rodrigues JL. Splitting and biopsy for
bovine embryo sexing under field conditions. Theriogenology 2001;56:1383-
1392.
[10] Hasler JF, Cardey E, Stokes JE, Bredbacka P. Nonelectrophoretic PCR-
sexing of bovine embryos in a commercial environment. Theriogenology
2002;58:1457-1469.
[11] Kageyama S, Yoshida I, Kawakura K, Chikuni K. A novel repeated sequence
located on the bovine y chromosome: its application to rapid and precise
embryo sexing by PCR. J. Vet. Med. Sci 2004;66:509-514.
[12] Kageyama S, Hirayama H, Moriyasu S, Inaba M, Ito D, Ohta H, Sawai K,
Minamihashi A, Onoe S. Genetic diagnosis of band 3 deficiency and sexing in
bovine preimplantation embryos. J. Vet. Med. Sci 2006;68:319-323.
[13] Shi L, Yue W, Ren Y, Lei F, Zhao J. Sex determination in goat by
amplification of the HMG box using duplex PCR . Animal Reproduction
Science 2007; doi: 10.1016/j.anireprosci.2007.11.004
[14] Agca Y, Monson RL, Northey DL, Peschel DE, Schaefer DM, Rutledge JJ.
Normal calves from transfer of biopsied, sexed and vitrified ivp bovine
embryos. Theriogenology 1998;50:129-145.
[15] Chrenck P, Boulanger L, Heyman Y, Uhrin P, Laurincik J, Bulla J, Renard JP.
Sexing and multiple genotype analysis from a single cell of bovine embryo.
Theriogenology 2001;55:1071-1081.
52
[16] Park JH, Lee JH, Choi KM, Joung SY, Kim JY, Chung GM, Jin DI, Im KS.
Rapid sexing of preimplantation bovine embryo using consecutive and
multiplex polymerase chain reaction (PCR) with biopsied single blastomere.
Theriogenology 2001;55:1843-1853.
[17] Garcia JF. Pratical consideratios of embryo manipulation preimplatation
genetic typing. Theriogenology 2001;56:1393-1399.
[18] Alonso RV, Weppert M, Garcia JF, Reichenbach HD. Effect of biopsy by
piezo-micromanipulation on developmental capacity of in vitro produced
bovine morulae and blastocysts. ACTA Scientiae Veterinarie 2003;31:215
(abstract).
[19] Almodin CG, Moron AF, Kulay L, Minguetti-Câmara VC, Moraes AC, Torloni
MR. A bovine protocol for training professionals in preimplantation genetic
diagnosis using pulymerase chain reaction. Fertility and Sterility 2005;84:895-
899
[20] Kubisch HM, Johnson KM. The effects of blastomere biopsy and oxygen
tension on bovine embryo development, rate of apoptosis and interferon-
secretion. Reprod. Dom. Anim. 2007;42:509-515.
[21] Betteridge KJ, Hare WCD, Singh EL,. Approaches to sex selection in farm
animals. In: Brackett BG, Seidel GE Jr., Seidel SM, (Eds), New technologies
in animal breeding. New York: Academic Press 1981;109-125.
53
[22] Wachtel SS, H-Y antigen in the study of sex determination and control of sex
ratio. Theriogenology 1984;21:19-28.
[23] Van Vliet RA, Verrinder Gibbins AM, Walton JS. Lifestock embryo sexing: A
review of current methods with emphasis on Y-specific DNA probes.
Theriogenology 1989;32:421-438.
[24] Ramalho MFPD-T, Garcia JM, Esper CR, Vantini R, Alves BCA, Almeida
Junior IL, Hossepian de Lima VFM, Moreira-Filho CA. Sexing of murine and
bovine embryos by developmental arrest induced by high-titer antisera.
Theriogenology 2004;62:1569-1576.
[25] King WA. Sexing embryos by cytological methods. Theriogenology
1984;21:7-17.
[26] Hochman D, Zaron Y, Dekel I, Feldmesser E, Medrano JF, Shani M, Ron M.
Multiple genotype analysis and sexing of ivf bovine embryos. Theriogenology
1996;46:1063-1075.
[27] Alves BCA, Hossepian de Lima VFM, Teixeira CM, Moreira-Filho CA. Use of
primers derived from a new sequence of the bovine y chromosome for sexing
bos taurus and bos indicus embryos. Theriogenology 2003;59:1415-1419.
[28] Tominaga K. Cryopreservation and sexing of in vivo- and in vitro-produced
bovine embryos for their pratical use. Journal of Reproduction and
Development 2004;50:29-38
54
[29] Lu W, Rawlings N, Zhao J, Wang H. Amplification and application of the
HMG box of bovine SRY gene for sex determination. Animal Reproduction
Science 2006; doi: 10.1016/j.anireprosci.2006.08.023
[30] Virta J, Markola J, Peippo J, Markkula M, Vilkki J. Sex determination of
bovine embryo blastomeres by fluorogenic probes. Theriogenology
2002;57:2229-2236.
[31] Hirayama H, Kageyama S, Takahashi Y, Moriyasu S, Sawai K, Onoe S,
Watanabe K, Kojiya S, Notomi T, Minamihashi A. Rapid sexing of water
buffalo (Bubalus bubalis) embryos using loop-mediated isothermal
amplification. Theriogenology 2006;66:1249-1256.
[32] Badr H, Puglisi R, Bongioni G. A rapid method for sex determination of
bovine and buffalo embryos by one step real-time PCR. Atti 41° Congr.
SIPZOO “From genome to proteome in animal science”, Lodi, 2006.
[33] Mara L, Pilichi S, Anna A, Accardo C, Chessa B, Dattena M, Bomboi G,
Cappai P. Sexing of in vitro produced ovine embryos by duplex PCR.
Molecular Reproduction and Development 2004;69:35-42.
[34] Fu Q, Zhang M, Qin WS, Lu YQ, Zheng HY, Meng B, Lu SS, Lu KH. Cloning
the swamp buffalo SRY gene for embryo sexing with multiplex-nested PCR.
Theriogenology 2007;68:1211-1218.
[35] Fontanesi L, Scotti E, Russo V. Differences of the porcine amelogenin X and
Y chromosome genes (AMELX and AMELY) and their application for sex
55
determination in pigs. Molecular Reproduction and Development 2008 (in
press).
[36] Peippo J, Huhtinen M, Kotilainen T. Sex diagnosis of equine preimplantation
embryos using the polymerase chain reaction. Theriogenology 1995;44:619-
627.
[37] Ciani F, Cocchia N, Rizzo M, Ponzio P, Tortora G, Avallone L, Lorizio R. Sex
determining of cat embryo and some feline species. Zygote 2008;16:169-177.
[38] Stringfellow DA, Seidel S. Manual of the International Embryo Transfer
Society, 3rd ed., USA: IETS, Savoy, Illinois; 1998.
[39] Hosmer DW, Lemeshow S. Applied logistic regression. New York, USA:
Wiley; 1989.
[40] SAS Institute Inc. SAS OnlineDoc® 9.1.3. Cary, NC: SAS Institute Inc., 2004.
56
7. Tabelas
Tabela 1
Efeito de diferentes fatores sobre a taxa de mortalidade de embriões bovinos produzidos in vitro
submetidos à biópsia por micro-aspiração.
Teste de razão de verosimilhanças = 212,5, 9 g.l., P0,0001
Teste de qualidade de ajuste de Hosmer-Lemeshow = 7,6, 7 d.f., P = 0,37 (modelo ajustado)
A, B, C, D e E – Diferentes laboratórios comerciais de produção de embriões bovinos in vitro
Dentro do Padrão = micro-aspiração de 5-15% da massa celular embrionária viável
Fora do Padrão = micro-aspiração de mais de 15% da massa celular embrionária viável,
comprometendo a qualidade do embrião .
Variável Categoria
Mortalidade
Embrionária (%)
Odds
ratio
95 intervalo de
confiança (%)
P
Sexo Macho 217/2296 (9,4) Referência 0,0002
Fêmea 215/2042 (10,5) 1,18 0,96-1,45
1,32-2,61 Indeterminado
53/312 (17,0) 1,86
A 274/2722 (10,1) Referência 0,0002
B 101/816 (12,4) 1,32 1,03-1,70
C 89/745 (11,9) 1,21 0,93-1,57
D 11/284 (3,9) 0,31 0,17-0,58
0,64-2,52
Laboratório
de produção de
embriões in vitro
E
10/83 (12,0) 1,26
1 308/3889 (7,9) Referência
0,0001
2 156/718 (21,7) 3,19 2,57-3,95
6,12-21,13
Qualidade
Embrionária
3
21/43 (48,9) 11,37
Dentro do
Padrão
448/4515 (9,9) Referência
0,0001
Qualidade da
biópsia
Fora de
Padrão
37/135 (27,4) 3,60 2,39-5,43
57
8. Figuras
A
B
C
D
Fig. 1. Seqüência de micromanipulação pela técnica de microaspiração de blastocisto
expandido bovino, produzido in vitro. Fixação e posicionamento do embrião através da
micropipeta “holding” (A). Perfuração da zona pelúcida (B). Aspiração de 5 a 15% da
massa celular viável, proveniente do trofoblasto (C). Embrião após realização da
biópsia (D).
58
3. IMPLICAÇÕES
O trabalho apresentado nesta dissertação é fruto da linha de pesquisa
iniciada pelo Prof. Dr. José Antônio Visintin durante orientação de doutorado do
Prof. Dr. Jo Fernando Garcia, concluído em 1995, com o título
“Micromanipulação, criopreservação e sexagem pela técnica de PCR (Polymerase
Chain Reaction) de embriões bovinos”. Posteriormente, foram desenvolvidos
outros trabalhos nesta mesma área de atuação, sob orientação de Garcia.
Rodrigo Vitório Alonso, autor desta dissertação, foi orientado de iniciação
científica pelo Prof. Garcia, de 2001 a 2003, com o trabalho Diagnóstico genético
pré-implantacional em embriões bovinos pela técnica de PEP-PCR (“Primer
Extension Preamplification - Polymerase Chain Reaction”). Durante estágio
curricular realizado sob a orientação do Dr. Horst-Dieter Reichenbach, Alonso
desenvolveu o trabalho “Effect of biopsy by piezo-micromanipulation on
developmental capacity of in vitro produced bovine morulae and blastocysts”.
P M F No 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13
Fig 2. Padrão do gel de agarose obtido na sexagem de embriões bovinos produzidos
in vitro, onde P indica o marcador de peso molecular (100bp, Gibco), M o controle
positivo de macho, F o controle positivo de fêmea e No o controle negativo (sem
amostra de DNA). Os embriões 1, 3, 5, 8, 11 e 13 foram sexados de macho e os
embriões 2, 6, 7, 9, 10 e 12 de fêmea. O embrião 4 foi classificado como indefinido.
59
De 2004 a 2007, Alonso passou a desenvolver os trabalhos de sexagem de
embres a campo, em parceria com a Transfix Tecnologia de Embriões Ltda,
que culminou com o banco de dados analisados nesta dissertação.
A descrição da metodologia e do processo utilizado para a inserção da
micro-manipulação embrionária na rotina dos laboratórios de produção de
embres in vitro, apresentados neste trabalho, abre recentes perspectivas para a
utilização da seleção assistida por marcadores no processo de produção de
embres in vitro.
Nosso atual objetivo é desenvolver a metodologia de identificação de
múltiplas características genéticas a partir da biópsia embrionária, disponibilizando
a seleção de embriões com características desejáveis a campo possibilitando a
transferência de embres sexados e genotipados..
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