( PDF ) Controle da mosca-branca-do-cajueiro, Aleurodicus cocois (Curtis, 1846) (HEMIPTERA: ALEYRODIDAE), com fungos entomopatogênicos, detergente neutro e óleo vegetal

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CONTROLE DA MOSCA-BRANCA-DO-CAJUEIRO, Aleurodicus

cocois (Curtis, 1846) (HEMIPTERA: ALEYRODIDAE), COM FUNGOS

ENTOMOPATOGÊNICOS, DETERGENTE NEUTRO E ÓLEO

VEGETAL

LAERCIANA PEREIRA VIEIRA

UNIVERSIDADE ESTADUAL DO NORTE FLUMINENSE

DARCY RIBEIRO – UENF

CAMPOS DOS GOYTACAZES - RJ

DEZEMBRO – 2007

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CONTROLE DA MOSCA-BRANCA-DO-CAJUEIRO, Aleurodicus

cocois (Curtis, 1846) (HEMIPTERA: ALEYRODIDAE), COM FUNGOS

ENTOMOPATOGÊNICOS, DETERGENTE NEUTRO E ÓLEO

VEGETAL

LAERCIANA PEREIRA VIEIRA

Tese apresentada ao Centro de Ciências e

Tecnologias Agropecuárias da Universidade

Estadual do Norte Fluminense Darcy Ribeiro,

como parte das exigências para obtenção do título

de Mestre em Produção Vegetal

Orientador: Richard Ian Samuels

CAMPOS DOS GOYTACAZES - RJ

DEZEMBRO – 2007

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CONTROLE DA MOSCA-BRANCA-DO-CAJUEIRO, Aleurodicus

cocois (Curtis, 1846) (HEMIPTERA: ALEYRODIDAE), COM FUNGOS

ENTOMOPATOGÊNICOS, DETERGENTE NEUTRO E ÓLEO

VEGETAL

LAERCIANA PEREIRA VIEIRA

Tese apresentada ao Centro de Ciências e

Tecnologias Agropecuárias da Universidade

Estadual do Norte Fluminense Darcy Ribeiro,

como parte das exigências para obtenção do título

de Mestre em Produção Vegetal

Aprovada em 14 de dezembro de 2007

Comissão examinadora

Prof. Cláudio Luiz Melo de Souza (D.Sc., Produção Vegetal) – ISTCA/FAETEC

Prof. Milton Erthal Jr. (D.Sc., Produção Vegetal) – ISTCA/FAETEC

Prof. José Oscar Gomes de Lima (Ph.D., Entomologia) – UENF

Prof. Richard Ian Samuels (Ph.D., Patologia de Insetos) – UENF

(Orientador)

Ao meu pai, Laer Vieira, e irmão, Laerciano Pereira Vieira, pelo

incentivo, amor e paciência em todos os momentos.

Dedico

iii

AGRADECIMETOS

A Deus, meu amigo incondicional.

Ao meu pai, Laer Vieira, e irmão Laerciano Pereira Vieira.

A minha amiga e irmã, Josimar de Souza Andrade (Josi), pela paciência e sabedoria.

Ao meu amigão “Indiano”, Jatinder Singh Multani, pela identificação dos crisopídeos,

companheirismo e carinho.

Ao querido professor Richard Ian Samuels, pela orientação, paciência e incentivo.

À equipe do Laboratório de Patologia de Insetos, Adriano (Driiiiiiii), Eliane, Denise,

Milton, bolsistas e estagiários (Aline, Simone, Paulo César (PC), Wesley e Felipe)

pelo suporte no laboratório e apoio nos trabalhos de campo, além dos momentos

divertidos.

À turma do “Crisolabi”, professor Gilberto, Gilson, Patrícia, Gustavo e Zinha, pelo

apoio e alegria compartilhada.

À UENF, pela oportunidade de realizar o curso de Mestrado.

À FAPERJ, pela concessão da bolsa.

Aos servidores da UENF, Vilarinho, Rita e Luciana, pelos serviços prestados.

SUMÁRIO

RESUMO.........................................................................................................

ABSTRACT.....................................................................................................

viii

1. INTRODUÇÃO .............................................................................................

2. REVISÃO DE LITERATURA.......................................................................

2.1 A cultura do c aju, Anacardium occidentale L. ................................ 4

2.2 Aleurodicus cocois (Curtis, 1846)....................................................

2.2.1. Biologia.......................................................................................... 5

2.2.2. Distribuição.................................................................................... 6

2.3. Controle químico de A. cocois.........................................................

2.3.1. Alternativas dos inseticidas químicos convencionais.................... 9

2.4. Controle Biológico de A. cocois.......................................................

2.4.1.

Predadores e parasitóides...............................................................

2.4.2.

Controle microbiano........................................................................ 12

2.5. Formulações de fungos entomopatogênicos................................. 17

3. MATERIAL E MÉTODOS............................................................................

3.1. Produção de conídios em arroz..................................................... 19

3.2. Aplicação de diferentes agentes para o controle de ninfas de A.

cocois no campo..............................................................................

3.3. Efeito do Natur´oleo

no crescimento de Metarhizium

anisopliae........................................................................................

3.4. Interação entre M. anisopliae, A. cocois e o seu predador

Ceraeochrysa caligata ....................................................................

4. RESULTADOS E DISCUSSÃO..................................................................

4.1. Aplicação de diferentes agentes para o controle de ninfas de A.

cocois no campo..............................................................................

4.2. Efeito do Natur´oleo

no crescimento de Metarhizium

anisopliae........................................................................................

4.3. Interação entre M. anisopliae, A. cocois e o seu predador

Ceraeochrysa caligata ....................................................................

5. CONCLUSÕES............................................................................................

6. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS...........................................................

7. APÊNDICES................................................................................................

RESUMO

VIEIRA, L.P., Universidade Estadual do Norte Fluminense Darcy Ribeiro;

dezembro de 2007. Controle da mosca-branca-do-cajueiro, Aleurodicus cocois

(Curtis, 1846) (Hemiptera: Aleyrodidae), com fungos entomopatogênicos,

detergente neutro e óleo vegetal; Orientador. Prof. Richard Ian Samuels.

A mosca-branca Aleurodicus cocois, atualmente, é a principal praga do

cajueiro na região Norte Fluminense do estado do Rio de Janeiro, provocando

perdas de 100% na produção entre os anos de 2006 e 2007. Por ser uma cultura

extrativista na região, buscaram-se alternativas de controle não tóxicas e viáveis

economicamente como os fungos entomopatógenos, detergente neutro e óleo

vegetal. Este trabalho teve como objetivos testar a eficiência do detergente neutro

sobre A. cocois ; verificar a patogenicidade e virulência de isolados dos fungos

entomopatogênicos Metarhizium anisopliae, Beauveria bassiana e Paecilomyces sp.

sobre A.cocois; analisar a possível associação desses microorganismos com o óleo

vegetal no controle dos estádios imaturos da mosca-branca e verificar a

compatibilidade do islado CG 136 de M. anisopliae com o predador Ceraeochrysa

caligata. Foram realizados quatro testes em lavouras de cajueiros não comerciais.

No primeiro, foram avaliados os isolados do M.anisopliae (LPP45, LPP87 e ESALQ

818) sem e com óleo de soja (8%), óleo de soja 8% sem fungo, detergente neutro

(10%) e testemunha (Tween 0,05); no segundo teste, os isolados de B. bassiana

(CG 149) e Paecilomyces sp. (CG 399) e testemunha (Tween 0,05); no terceiro, foi

avaliado o isolado ESALQ 818 associado ao Natur´oleo

nas concentrações de 1 e

5% e testemunha (Tween 0,05); e no quarto, Natur´oleo

a 1 e 5% e testemunha

(água). As avaliações foram feitas aos três, sete, nove e 40 dias após as aplicações

vii

quando foi registrado o número de mortos. Todos os tratamentos foram repetidos

três vezes . Para os fungos , foram usados concentrações de 1x10

conídios/ml. No

teste 1, verificou-se que os tratamentos ESALQ 818 + óleo 8%, LPP45, LPP45 +

óleo 8% e detergente neutro 10% obtiveram mortalidade superior à testemunha,

variando entre 27 e 51,5%. No teste 2, não houve diferença significativa entre os

tratamentos. No teste 3, verificou-se que os tratamentos com Natur´oleo

1 e 5%

sem fungo não diferiram entre si, proporcionando 54 e 56% da mortalidade após três

dias. No teste 4, Natur´oleo

5% + ESALQ818 e Natur´oleo

1% + ESALQ818

apresentaram mortalidade superior à testemunha, com 51% e 38% de mortalidade

aos três dias. Entretanto, os resultados do teste 3 foram semelhantes aos

encontrados no teste 4, sugerindo que o efeito foi devido à ação do Natur´oleo

não à presença do fungo

O Natur´oleo

na concentração de 1% mostrou-se mais

eficiente no controle de A.cocois. Para o teste de compatibilidade entre o isolado CG

136 e C. caligata, foram oferecidos como alimento ninfas de A. cocois infectadas

com fungo e sem fungo. No tratamento com fungo, foram registrados 92% de

mortalidade do predador no 3° instar. No segundo experimento, o predador foi

exposto ao fungo inoculado nas folhas de caju. Os predadores foram alimentados

com ovos de Anagasta kuehniella contato com o fungo. Das larvas que estiveram em

contato com os conídios, apenas 16% sobreviveram. Para a testemunha, foram

registrados 64% de mortalidade. Isso indica, a incompatibilidade do isolado de M.

anisopliae CG136 com larvas C. caligata .

viii

ABSTRACT

VIEIRA, L.P., State University of North Fluminense; December 2007. Control of

the cashew whitefly, Aleurodicus cocois, Curtis 1846 (Hemiptera: Aleyrodidae),

with entomopathoenic fungi, neutral detergent and vegetable oil. Supervisor:

Richard Ian Samuels.

The whitefly Aleurodicus cocois is currently the most important pest of cashew

is the region of North Fluminense in the State of Rio de Janeiro, causing 100% crop

losses during 2006 to 2007. This study was carried out to test the efficency of neutral

detergent against A. cocois; verify the pathogenicity and virulence of isolates of the

entomopathogenic fungi: Metarhizium anisopliae, Beauveria bassiana e

Paecilomyces sp. against A. cocois, analyze the possible association of these

microorganisms with vegetable oil for the control of immature stages of the whitefly

and verify the compatibility of M. anisopliae isolate CG 136 with the predator

Ceraeochrysa caligata. Four bioassays were carried out in non-commercial cashew

plantations. In the first bioassay M.anisopliae isolates (LPP45, LPP87 e ESALQ 818)

were evaluated by spraying with and without 8% soya oil, only 8% soya oil, 10%

neutral detergent and controls ((Tween 0.05%). In the second bioassay applications

of isolates of B. bassiana (CG 149) and Paecilomyces sp. (CG 399) and controls

(tween 0,05%) were evaluated. In the third bioassay, ESALQ 818 was applied in

association with Natur´oleo

(1 and 5%), Natur´oleo

1 and 5% without fungus and

controls (tween 0.05% and water). The evaluations were made 3, 7,9 and 40 days

after applications, when the number of dead insects was counted. Each bioassay

was carried out three times. The fungal concentration was 1x10

conidia /ml. The

results for bioassay 1 showed that treatments with ESALQ 818 + 8% soya oil,

LPP45, LPP45 + 8% soya oil and 10% detergent caused between 27% and 51.5%

mortality. In bioassy 2 there was no significant difference between treatments. In

bioassay 3 the results showed that applications of 1 and 5% Natur´oleo

without

fungus were not statistically different, causing 54 and 56% mortality respectively 3

days after application. In bioassay 4, 5% Natur´oleo

+ ESALQ818 e 1% Natur´oleo

+ ESALQ818 caused greater mortality than the controls, with 51% and 38% mortality

registered on the 3

day after application. However, when compared to results of

bioassay 3, it would appear that mortality is solely caused by Natur´oleo

and not the

fungus or a combination of the two agents. Natur´oleo

applied at a concentration of

1% was efficient and cost effective for the control of A.cocois. In order to test the

compatibility of M. anisopliae isolate CG 136 and C. caligata, larvae of the predator

were maintained on leaves with whitefly nymphs previously infected with CG 136

(controls, whiteflys without fungal treatment). Predator mortality was 92% by the time

the insects had reached the 3

instar. In the second compatibility experiment, the

predators were exposed to fungus impregnated cashew leaves. The predator larvae

were maintained on Anagasta kuehniella eggs, which had no contact with the fungus.

Only 16% of the C. caligata larvae survived following contact with the fungus. The

non-fungus treated larvae had a 64% survival rate. These results indicate that isolate

CG 136 is not compatable with the use of C. caligata in an integrated pest

management program.

1. INTRODUÇÃO

A mosca-branca é um inseto sugador, de importância econômica mundial,

pertencente à família Aleyrodidae, com cinco gêneros principais: Bemisia,

Aleurothrixus, Dialeurodes, Trialeurodes e Aleurodicus. É praga polífaga de alta

capacidade reprodutiva, presente em mais de 300 plantas hospedeiras e

manifesta alta resistência aos inseticidas tradicionais utilizados nas Américas

(Mizuno e Villas Bôas, 1997). As injúrias podem ser causadas por adultos e ninfas

por meio da sucção da seiva e, indiretamente, pela disseminação de vírus

fitopatogênicos e favorecimento do crescimento do fungo conhecido como

fumagina, que se desenvolve nas substâncias açucaradas (honeydew), excretada

pelo inseto (Byrne e Bellows, 1991).

No Brasil, dentre outras espécies, destaca-se Aleurodicus cocois (Curtis,

1846), conhecida popularmente como a mosca-branca-do-cajueiro ou “mosca-

branca-gigante”, pelo maior tamanho dentre outros gêneros dessa família (Byrne

e Bellows, 1991). Foi identificada como praga em potencial no ano de 1978 em

três municípios do estado do Piauí e, atualmente, encontra-se distribuída em

outras regiões, nos estados de Alagoas, Sergipe, Amazonas, Bahia, Ceará, Rio

de Janeiro, Minas Gerais, Mato Grosso, Pará, Paraíba, Pernambuco e Rio Grande

do Norte (Melo e Bleicher, 2002). Segundo Carneiro et al. (2006), nos anos de

2000 e 2001, ocorreram nos cajueiros infestações generalizadas provocando

queda na produtividade de 90% em relação a 1999 (350 kg/hectare). Além dessa

planta, outras culturas hospedam esse inseto (Apêndice: Quadro 1).

Apesar de a cultura do caju ser de padrão econômico influente nos

estados da região nordeste do país, no estado do Rio de Janeiro, essa atividade

tem se apresentado de forma extrativista. Esta cultura é adotada por famílias de

baixa renda, as quais, na maioria das vezes, não efetuam tratos culturais do tipo

nutricional e fitossanitário. Isso dificulta o controle da praga que atualmente tem

apresentado infestações alarmantes na região norte fluminense do estado.

No município de São João da Barra, as castanhas de caju geravam

normalmente 1.200 reais na renda familiar no período de safra, setembro a

março. Nos anos de 2004 e 2005 a produtividade sofreu redução de 70%, devido

ao ataque da A. cocois . A expectativa para o ano de 2007 é perda de 100% da

safra (Castro e Siqueira Filho, 2006).

Sem tradição na cultura do cajueiro, o estado do Rio de Janeiro ocupa as

colocações de quinto maior produtor de goiaba, oitavo de maracujá e coco-da-

baía no ranking nacional. Essa produção concentra-se atualmente no norte

fluminense, destacando-se o município de Campos dos Goytacazes como maior

produtor de maracujá da região, com área de 1.222 hectares e produção de

15.250 toneladas no ano de 2004 (IBGE, 2004). Essas culturas já foram

registradas como hospedeiras da praga em outras regiões. Isso faz da A. cocois

uma praga em potencial para a fruticultura do norte do estado.

Os fungos, parasitóides, vírus, bactérias e nematóides são responsáveis

pelo controle natural de inúmeras pragas. Dentre esses inimigos naturais, os

microorganismos representam atualmente um avanço ecológico na solução de

problemas ocasionados pelo emprego indiscriminado de inseticidas (Garcia,

2004). Segundo Faion (2004), as moscas-brancas não são suscetíveis a

patógenos, como bactérias e vírus, em razão de sua alimentação ser realizada

nos feixes vasculares das plantas. Levantamentos têm demonstrado que muitos

fungos entomopatogênicos estão entre os inimigos naturais mais importantes dos

aleirodídeos, devido à forma de infecção desse microorganismo ser realizada via

tegumento. Fungos como Paecilomyces fumosoroseus, Verticillium lecanii,

Aschersonia cf. goldiana, Beauveria bassiana, Metarhizium anisopliae infectam

diferentes instares de desenvolvimento de moscas-brancas como Bemisia tabaci

(Faria e Wraight, 2001) e Bemisia argentifolii (Saito e Sugiyama, 2005).

Entretanto, no caso de ninfas de mosca-branca, Garcia (2004) relata que a

cutícula produz lipídios de longas cadeias de ésteres, que formam uma barreira

física para os conídios, prejudicando assim os processos de adesão, germinação

e penetração dos fungos. Atualmente, a maioria dos testes com fungos foi

realizada na espécie Bemisia tabaci. O efeito desses microorganismos em A.

cocois ainda é desconhecido.

Os óleos emulsionáveis e vegetais corroboram a infectividade do fungo

(Alves et al. 1998) e promovem essa excelente adesão à cutícula hidrofóbica do

inseto (Prior e Jollands, 1988), quando associados com fungos. Lavor (2006)

indica detergentes e sabões como possíveis agentes de controle de diversos

insetos-pragas que possuem corpo pouco esclerotizado, como a mosca-branca.

Assim, os objetivos deste trabalho foram testar a eficiência de detergente

neutro sobre A. cocois; verificar a patogenicidade e virulência de isolados dos

fungos entomopatogênicos Metarhizium anisopliae, Beauveria bassiana e

Paecilomyces sp. sobre A.cocois ; analisar a possível associação desses

microorganismos com o óleo vegetal no controle dos estádios imaturos da mosca-

branca e verificar a compatibilidade do M. anisopliae com o predador

Ceraeochrysa caligata.

2.REVISÃO BIBLIOGRÁFICA

2.1 A cultura do caju, Anacardium occidentale L.

O cajueiro pertence à família Anacardiaceae, constituída por árvores e

arbustos tropicais e subtropicais, que apresentam ramos sempre providos de

canais resiníferos e folhas alternadas, coriáceas e sem estípulas. Dentre as 22

espécies de Anacardium já classificadas, A. occidentale L. destaca-se pelo seu

aproveitamento econômico. No nordeste do Brasil, vegeta no período das chuvas

(inverno) e frutifica no período de poucas chuvas (verão). As brotações podem

ocorrer durante todo o ano em regiões onde o regime pluvial é bem distribuído

(Melo & Bleicher, 1998). É uma planta brasileira nativa dos campos e das dunas

da costa norte do país, hoje espalhada por toda a América Tropical e Antilhas e,

até subespontânea, em várias zonas da África - Angola, Moçambique, Tanzânia -

e da Ásia, Índia, Ceilão (Lima,1988).

No Brasil, o cultivo do cajueiro concentra-se na região nordeste,

principalmente no Ceará, Piauí e Rio Grande do Norte. O principal objetivo da

exploração do cajueiro tem sido a amêndoa da castanha de caju, com altas

cotações no mercado internacional de nozes comestíveis. Segundo Cabral

(2002), o Brasil apresenta-se como o segundo maior produtor e exportador,

perdendo somente para a Índia e, apesar desta colocação, possui uma maior

eficiência produtiva e qualitativa no processamento de amêndoas.

Além da castanha, essa planta oferece o pseudofruto em aproveitamentos

diversos, destacando-se os sucos concentrado e integral, o refrigerante

gaseificado, a cajuína, doces e bebidas alcoólicas, totalizando mais de 50 tipos de

aproveitamento industrial e com tecnologia disponível para o uso imediato

(Carneiro et al., 2006). Apesar dos benefícios econômicos, a exploração dessa

cultura em forma de monocultivo tem, como uma das principais conseqüências, a

elevação das complicações de ordem fitossanitária, como doenças e pragas

(Melo e Bleicher, 2002).

No Brasil, os estados do Ceará, Piauí e Rio Grande do Norte produziram,

no ano de 2006, aproximadamente, 239 mil toneladas de castanha de caju, 100%

da produção nacional (Agrianual, 2007).

No município de São João da Barra, estado do Rio de Janeiro, a produção

média é de 250 toneladas de castanhas de caju por ano, visto que é uma cultura

nativa explorada de forma extrativista (Castro e Siqueira Filho, 2006).

2.2. Aleurodicus cocois (Curtis, 1846)

2.2.1.Biologia

A mosca-branca, A. cocois (Hemiptera: Aleyrodidae), é um inseto que

apresenta o hábito de sugar seiva dos feixes vasculares das plantas. Possui um

aparelho bucal do tipo sugador labial, com canal de sucção e de saliva formados

pela justaposição dos estiletes maxilares (Byrne e Bellows, 1991).

Este inseto apresenta metamorfose incompleta e sua reprodução ocorre de

forma sexuada por oviparidade ou partenogênese arrenótoca (Gallo, et al., 2002).

A sua forma adulta assemelha-se a uma pequena mosca, de cor branca, daí seu

nome vulgar. São insetos alados, com quatro pares de asas membranosas

cobertas por uma secreção pulverulenta branca, medindo 2 mm de comprimento

e 4 mm de envergadura. Suas ninfas são achatadas, elípticas, ficam presas às

folhas e medem 1 mm de comprimento; possuem colorações amareladas,

semelhantes a cochonilhas e encontram-se envolvidas e rodeadas por uma

cerosidade branca, que pode recobrir toda a folha atacada (Melo e Bleicher,

1998). Localizam -se na parte inferior das folhas, onde são encontradas agrupadas

em colônias numerosas. Na face dorsal, desenvolvem-se colônias de fungos ,

exibindo um contraste de coloração negra, opaca, que confere à folha atacada um

aspecto característico.

Segundo Sales e Gondim (1984), a A. cocois apresenta período de

incubação do ovo de 8,83 ± 0,59 dias; período de adulto de 16,14 ± 1,96 dias;

período de pré-oviposição de 3,4 dias. A reprodução é sexuada e a proporção de

sexo foi de duas fêmeas para macho. A viabilidade da fase de ovo alcanç ou

níveis de 90,98 ± 5,96 . As durações dos instares varia de 5 a 8 dias como a

seguir: 1° (6,17 ± 0,60 dias); 2° (7,50 ± 2,83 dias); 3° (5,50 ± 0,73 dias); e 4° (8,50

± 2,83 dias).

2.2.2. Distribuição

A. cocois está presente em países da América do Norte, Estados Unidos

(Hawaii e Califórnia) e México; América Central, Trinidad e Tobago, Barbados,

Jamaica, República Dominicana, Costa Rica, Porto Rico, Panamá, Santa Lúcia e

El Salvador; e América do Sul, Honduras, Equador, Suriname, Venezuela, Peru,

Chile, Colômbia, Bolívia e Brasil. Segundo Vergara (2004), em alguns países é

descrita como uma nova espécie, sendo recentemente separada da espécie

Aleurodicus iridescens.

A. cocois , de ocorrência já constatada em cajueiro no Ceará, não era

considerada praga importante na cajucultura fluminense. Pequenos focos de

infestação eram observados, porém, sem atingir nível de dano econômico. Alguns

autores relacionavam-na como praga secundária do cajueiro (Parente e Santos,

1970).

Atualmente, ela ocorre com alta intensidade em outras áreas produtoras,

sendo considerada praga de importância ec onômica (Arruda, 1971; Dunham e

Andrade, 1971). A região compreendida desde a Bahia até o Rio Grande do Norte

era considerada a área de maior incidência desta praga, porém, atualmente,

encontra-se disseminada por todas as regiões produtoras e de atividade

extrativista do caju como o norte fluminense do estado do Rio de Janeiro.

2.3. Controle químico

Os agrotóxicos que têm sido mais utilizados para o controle da mosca-

branca são os organofosforados, carbamatos, piretróides e reguladores de

crescimento. Melo e Bleicher (2002) relatam que os produtos que controlam A.

cocois apresentam como princípio ativo os organofosforados: diazinon,

metidathion, fenthion, endosulfan, parathion metil, diometoato, monocrotophos.

Rashid et al. (2003), em um experimento utilizando dimetoato,

phosphamidon, malathion, diclovos e cypermethrin, para o controle de adultos e

ninfas de Aleurodicus dispersus , constatarm 100% de mortalidade com dimetoato

em 24 horas para adultos e ninfas.

Os organofosforados são considerados, dentre os outros grupos de

agroquímicos, os mais tóxicos aos vertebrados e quimicamente persistentes.

Estes funcionam inibindo algumas enzimas importantes do sistema nervoso,

particularmente a colinesterase (Ware e Whitacre, 2004).

Os neonicotinóides são um exemplo da nova geração de agroquímicos.

Eles atingem o sistema nervoso dos insetos causando bloqueios pós-sinápticos

irreversíveis aos receptores de acetilcolina (Palumbo et al., 2001).

As vantagens do uso desses produtos resumem-se ao fato de se

apresentarem menos tóxic os aos mamíferos, em relação a outros grupos de

inseticidas, e serem mais específicos (Wollweber e Tietjen, 1999). Os

neonicotinóides apresentam excelentes propriedades sistêmicas e atividade

residual prolongada, tornando-se particularmente efetivos contra insetos

sugadores (Kagabu, 1999).

O primeiro inseticida deste grupo, registrado para uso contra B. tabaci, foi o

imidacloprid, que é inicialmente tóxico aos adultos durante a alimentação, além de

repelir e impedir a alimentação e, conseqüentemente, o estabelecimento de

formas imaturas de moscas-brancas nas plantas devido à diminuição da

oviposição. Dentre os produtos comerciais com essa propriedade química, estão

Admire

, Confidor

, Gaucho

, Merit

, Marathon

e Provado

. Tais produtos têm

mostrado uma longa e eficaz atividade residual contra a espécie em várias

culturas, quando usados no tratamento de sementes de forma sistêmica e

aplicações foliares (Faion, 2004).

No entanto, em alguns sistemas agrícolas, o imidacloprid tem causado

fitotoxidade em ramos de plantas jovens, dependendo da taxa e tempo de

aplicação (Stansly et al., 1998). Em testes realizados por Marquini et al. (2003) na

cultura do feijão, nenhum efeito significativo foi observado sobre B. tabaci.

Atualmente, novos neonicotinóides são encontrados no mercado. Estão

incluídos, na segunda geração, o thiamethoxam (Platinum

, Actara

, Centric

Adage® e Cruiser

), acetamiprid (Mospilan

, Rescate

, Assail

), nitenpyram

(Bestguard

) e thiacloprid (Calypso

). Em geral, estes possuem o mesmo modo

de ação e parecem apresentar atividade translaminar maior quando aplicados na

folhagem (Palumbo, et al., 2001). Contudo, em testes realizados por Scarpellini et

al. (2002) na cultura do feijoeiro, nenhum dos tratamentos utilizados, com

imidacloprid, thiamethoxam e diafenthiuron, apresentaram eficiência satisfatória

no controle de adultos de B. tabaci biótipo B.

Além dos produtos citados acima, existe um grupo que não possui ação

neurotóxica, são os reguladores de crescimento de insetos (RCI). São citados na

literatura controlando a espécie B. tabaci em algumas culturas, como algodão,

melão e tomate.

Buprofezin foi o primeiro RCI seletivo introduzido para controle de B. tabaci

na cultura do algodão (Horowitz e Ishaaya, 1992). Esse componente atua

especificamente em estádios imaturos, causando mortalidade durante ecdise

(Yasui et al., 1987; Ishaaya et al., 1988). Apesar de não atuar na longevidade de

adultos e oviposição de B. tabaci, pode reduzir a fecundidade e a eclosão de

ninfas, quando as fêmeas são expostas a folhas tratadas sobre algumas

condições (Ishaaya et al., 1988; Beevi e Balasubramanian, 1991, 1995). Esse

produto não apresenta atividade sistêmica no solo e possui pouco movimento

translaminar em folhas de algodão (De Cock et al., 1990). Os produtos comerciais

que apresentam esse princípio ativo são NNI 750 e Applaud

. Em um

experimento realizado por Bleicher et al. (1999), buprofezin (Applaud

) causou

76% de mortalidade na população de B. argentifolii, e quando aplicado junto com

thiamethoxan apresentou 100% de mortalidade.

Pyriproxyfen é semelhante ao hormônio juvenil e é usado na cultura do

algodão desde 1991 (Horowitz et al., 1999). É um potente regulador de

crescimento com atividade persistente contra vários insetos, incluindo B. tabaci

(Schaefer et al., 1988; Ishaaya e Horowitz, 1992). Esse componente apresenta

atividade juvenóide por desequilibrar o hormônio juvenil (Dhadialla et al., 1998)

resultando na supressão de embriogênese, metamorfose e formação de adultos

(Ascher e Eliyahu, 1988; Ishaaya e Horowitz, 1992, 1995). Pyriproxyfen não

possui atividade tóxica direta sobre adultos de mosca-branca. Entretanto, possui

alta atividade translaminar na folha. Os produtos comerciais que apresentam esse

princípio ativo são S 9318, KnacK

, Tiger

, Admiral

, Distance

, Sumilarv

Epingle

2.3.1 Alternativas dos inseticidas sintéticos convencionais

Dentre os produtos de baixa toxidade a mamíferos, incluem-se os extratos

de plantas de diversas famílias botânicas, destacando-se as meliáceas. O nim,

Azadirachta indica, é a meliácea mais conhecida por ser tóxica a insetos e afetar,

além de várias pragas, todos os estádios da mosca-branca (Souza e Vendramim,

2005). Este produto apresenta muitos compostos úteis, inclusive Azadiractinas,

para o manejo ecológico de pragas. Essas substâncias causam diversos efeitos

sobre os insetos, agindo como inibidores de alimentação, reguladores de

crescimento e esterilizantes.

Silva,et al. (2003) utilizaram inseticida formulado à base de Azadiractina a

1% no controle de Bemisia argentifolii, na cultura do meloeiro, em condições de

campo, apresentando 67,8 e 70,1% de mortalidade dos adultos,e 87,7% das

ninfas. Sigueñas e Cámara (2002) registraram mortalidade de 74% sobre ninfas

de A. cocois na concentração de 0,5% de Neemix

. Em Bemisia tabaci, o extrato

aquoso de sementes de nim a 0,5% apresentou ação translaminar, sistêmica e de

contato, provocando 100% de mortalidade em ninfas desta espécie (Souza e

Vendramim, 2005). Tal resultado também foi encontrado por Pinheiro e Quintela

(2004), em que os produtos a base de óleo de nim em concentrações de até 1%

podem ser recomendados para o controle de ninfas, ao contrário dos extratos de

folhas de nim. Isso confirma que os extratos de folhas de nim e outras meliáceas

não apresentam o mesmo efeito inseticida sobre a mosca-branca que o óleo

extraído das sementes.

São encontrados ainda na literatura o uso do cinamomo, Melia azedarach,

no controle de ovos e ninfas de Bemisia tabaci (Souza e Vendramim, 2000),

extrato de Trichilia pallida, com efeito, ovicida, apresentando 52% de mortalidade

na concentração de 3% (Souza e Vendramim, 2000), e extratos de raiz de

açafrão, arruda e fumo, sendo este eficiente no controle de ninfas nas

concentrações acima de 2% (Pinheiro e Quintela, 2004).

Marques et al. (2004) avaliaram em laboratório a ação de várias

concentrações do óleo de nim sobre isolados de Beauveria bassiana, Metarhizium

anisopliae e Paecilomyces farinosus , visando à possibilidade do uso associado

destes no controle biológico de insetos. Eles concluíram que o óleo afetou o

crescimento e a esporulação de todos fungos testados, mas não afetou a

viabilidade dos conídios, sendo que M. anisopliae apresentou ser menos sensível

à ação do óleo de nim que os demais fungos. Além do óleo de nim, são

encontrados na literatura o uso de óleo de soja, algodão, milho, canola e girassol

no controle de Bemisia tabaci (Leal Junior et al., 2006).

Os óleos emulsionáveis são boa alternativa de utilização como adjuvante

na calda de pulveriz ação, pois se misturam à água, permitindo a aplicação do

inseticida microbiano com equipamentos convencionais já utilizados pelos

produtores rurais (Alves et al. 2000), além da possibilidade em aumentar a

infectividade do fungo (Alves et al. 1998). Os óleos também têm a vantagem de

promover excelente adesão à cutícula hidrofóbica do inseto (Prior e Jollands,

1988).

Lavor (2006) relata o uso de detergentes e sabões como possíveis

candidatos ao controle de diversos insetos-pragas que possuem corpo pouco

esclerotizado como as moscas -brancas. Embora o mecanismo de ação destes

produtos não tenha sido totalmente esclarecido, acredita-se que cause injúrias à

película de cera sobre a cutícula dos insetos e que interfira no metabolismo da

respiração, além de causar repelência. Na Índia, Ramani et al. (2002) relataram

que a adição de detergentes a inseticidas tem apresentando excelentes

resultados no controle da mosca-branca Aleurodicus dispersus.

2.4 Controle biológico

O uso intensivo de agroquímicos tem causado diversos problemas, entre

eles, pode-se citar a resistência de pragas a inseticidas, exigindo um aumento da

concentração e do número de aplicações (Garcia, 2004). Esses problemas se

intensificam quando a praga apresenta características morfológicas e ecológicas ,

como as da mosca-branca - substâncias cerosas compondo a cutícula, hábito de

colonizar a parte inferior das folhas e rápido desenvolvimento - (Osborne e Landa,

1992). Situações como essa estimulam pesquisas sobre o uso dos agroquímicos

e seus efeitos e reforçam a importância de se ter, como aliado, agentes de

controle biológico, como predadores, parasitóides e microorganismos.

2.4.1 Parasitóides e predadores

Muitos inimigos naturais são encontrados associados atacando moscas -

brancas do gênero Aleurodicus (Kairo et al., 2001). Dentre estes, os parasitóides

e predadores são relatados na literatura contribuindo para o equilíbrio das

espécies desse gênero em países como Índia e Trinidad e Tobago (Ramani, et

al., 2002; Kairo et al., 2001).

Segundo Vergara (2004), espécies dos gêneros Encarsia e Encarsiella

(Aphelinidae) são relatados como inimigos naturais em potencial de A. cocois .

Oito espécies foram registradas, sendo cinco da família citada anteriormente,

dentre estas, Encarsiella noyesi Hayat, Encarsia guadeloupae Viggiani e

Encarsia. sp. nr meritória Gahan sp., consideradas mais importantes, por

apresentarem níveis de controle sobre Aleurodicus satisfatórios, alcançando

índice de 95% em Trinidad e Tobago, e por serem incluíd as em programa de

controle biológico em Barbados . Os outros parasitóides são dois do gênero

Metaphycus (Encyrtidae) e um do gênero Signiphora spp. (Signiphoridae),

possivelmente um hiperparasitóide (Kairo et al., 2001).

Ramani et al. (2002) registraram que na Índia as espécies Encarsia. sp. nr

meritória e E. quadeloupae foram introduzidas acidentalmente nos anos de 1998

e 1999. Essa introdução “acidental” rendeu níveis de controle de 70 a 80% de

Aleurodicus pulvinatus na cultura da goiaba por E.. sp. nr meritória (Beevi et al.,

1999) e sucesso de 60 a 92% de parasitismo em diferentes culturas por E.

quadeloupae (Ramani, 2002).

Entre os predadores de Aleurodicus , estão algumas espécies de

coccinelídeos, a maioria registrada na Índia, dos gêneros Nephaspis (Kairo et al.,

2001), Scymnus, Anegleis, Axinoscymnus, Cheilomenes, Chilocorus,

Cryptolaemus, Curinus, Horniolus, Jauravia, Nephus, Pseudaspidimerus,

Pseudoscymnus, Rodolia, Serangium (Ramani, et al., 2002) e a espécie

Cryptognatha nodiceps, registrada em laboratório por Lopez et al. (2004),

alimentando-se de adultos de A. cocois. Também são relatados predadores das

famílias Chrysopidae (Apertochrysa sp. Chrysoperla carnea (Stephens), Mallada

astur (Banks), M. boninensis (Okamoto) e Nobilinus sp.), Hemerobiidae

(Hemerobius sp.), Nitidulidae (Cybocephalus sp.), Cecidomyiidae (Triommata

coccidivora) na Índia (Ramani, et al., 2002) e Syrfidae em Trinidad e Tobago

(Lopez et al., 1997).

2.4.2 Controle microbiano

O uso de microorganismo para o controle de pragas representa atualmente

um avanço ecológico para solucionar problemas ocasionados pelo emprego

indiscriminado de inseticidas. Os grupos mais importantes são os fungos,

bactérias, vírus, protozoários e nematóides. Conforme Faion (2004), as moscas -

brancas não são susceptíveis a vários destes patógenos, como bactérias e vírus,

devido à sua alimentação ser realizada diretamente nos feixes vasculares das

plantas.

Entretanto, segundo Hunter et al. (2001), um tipo de iridovírus foi isolado de

células de Bemisia tabaci biótipo B, coletadas do campo, e foi denominado de

“Insect Iridescent Vírus 6”. Outros tipos de iridoviroses em insetos têm sido

relatados como de grande importância econômica quando infectam pragas.

Apesar disso, o modo de transmissão e a persistência de iridoviroses em moscas -

brancas ainda não são conhecidos.

São encontrados na literatura relatos de alguns fungos entomopatogênicos ,

causando infecções naturais em alguns aleirodideos. Dentre estes, foram

registradas espécies de hyphomycetes, especialmente, Paecilomyces,

Verticillium, Aschersonia, Beauveria bassiana e Metarhizium anisopliae. Outros

fungos como Entomophthorales são relatados atacando B. tabaci e espécies dos

gêneros Acremonium, Cladosporium, Aspergillus e Fusarium, que vivem

associadas, apresentando hábito s aprófito (Faria e Wraight, 2001).

Dentre os fungos entomopatogênicos mais comuns dessa praga, estão os

do gênero Aschersonia, que possuem um reduzido número de hospedeiros,

limitando-se a mosca-branca e aos coccídeos (Faion, 2004). São encontrados

aproximadamente 50 representantes desse gênero, dentre estes, Aschersonia

aleyrodis, A. flava, A. flavocitrina, A. goldiana, A. placenta e A. viridaus, além do

grupo Aleyrodiicolae, no qual estão incluídos patógenos específicos de mocas -

brancas (Osborne e Landa, 1992).

A. aleyrodis ocorre naturalmente como patógeno específico de várias

espécies de moscas-brancas na região subtropical e hemisfério ocidental.

Epizootias naturais foram relatadas em populações de Aleuxocanthus woglumi

Ashby, Aleurothrixus floccosus (Maskel), B. tabaci, B. giffardi (Kotinsky),

Dialeurodes citri (Ashmead), D. citrifolii (Morgan), Tetraleurodes acaciae

(Quaintance), Trialeurodes abutiloneus (Haldeman) e T. vaporariorum (Osborne &

Landa, 1992). Os ovos dos aleirodídeos não são susceptíveis à infecção desse

fungo e sim os 1°, 2° e 3° instares, sendo o 4° instar pouco susceptível. Após a

infecção, o hospedeiro apresenta coloração amarela, ao contrário de um indivíduo

saudável, que apresenta uma coloração translúcida (Fransen, 1987).

Apesar de Aschersonia apresentar relevante importância como agente de

controle biológico, Fransen (1987) e Lourenção et al. (1999) relatam, em seus

trabalhos, a grande necessidade de alta umidade (100% RH) para germinação de

esporos e temperatura adequada. Faion (2004) relata que esse microorganismo

possui longa persistência sobre as folhas e é compatível com o parasitóide

Encarsia formosa.

A interação entre o fungo e o parasitóide foi estudada, introduzindo ambos,

inimigos naturais, para controle de mosca-branca. Observações concluíram que o

parasitóide é capaz de distinguir os hospedeiros infectados dos não infectados

com A. aleyrodis. O parasitóide foi capaz também de transmitir o fungo através do

ovipositor contaminado para outras ninfas em um processo designado de “prova”,

no qual o inimigo natural seleciona o hospedeiro para ovipositar (Fransen, 1987).

A. aleyrodis é um entomopatógeno representativo em lavouras de citrus em

regiões tropicais e subtropicais , porém, segundo Osborne e Landa (1992), a

natureza de sua epizootia ainda não é compreendida.

Lourenção et al. (1999) registraram a epizootia natural da espécie A.

goldiana, no estado de São Paulo, sobre B. tabaci. Segundo esse autor, foram

encontradas no país algumas espécies desse fungo infectando aleirodídeos, tais

como, A. andropogonis P.Henn, A. blumenaviensis P. Henn e A. brunnea Petch.

Outro entomopatógeno que ataca espécies de moscas-brancas é o fungo

Paecilomyces fumosoroseus . É uma espécie cosmopolita registrada como

patógeno de diversos insetos, dentre estes, lepidópteros e coleópteros. Foi

registrada pela primeira vez como inimigo natural dos aleirodídeos na China,

sendo isolado da espécie Trialeurodes vaporariorum após causar epizootia

natural em casa de vegetação. Além desse gênero, este fungo foi relatado em

Aleurodicus no Brasil e Índia (Ramani et al., 2002), e em espécies de Bemisia em

vários países, sendo considerado mundialmente um dos mais importantes

inimigos naturais dessas espécies (Faria e Wraight, 2001).

O sucesso do fungo P. fumosoroseus deve-se ao fato de esse

microorganismo ser capaz de infectar todos os estádios de desenvolvimento da

mosca-branca (Faion, 2004). Segundo Saito e Sugiyama (2005), tal fungo causou

uma mortalidade de 98% nas ninfas de B. argentifolii. Esse fungo apres enta bom

desenvolvimento entre as temperaturas de 15 e 30°C (Osborne e Landa, 1992).

Porém, comprovaram-se o desenvolvimento mais rápido e o aumento nos índices

de valores de crescimento quando colocado a 30°C e mais lento a 12°C. A

umidade relativa apresenta-se como um dos fatores limitantes, promovendo a

inibição da germinação do microorganismo (Faion, 2004). No hospedeiro,

apresenta infecção rápida dentre 24 a 48 horas após o contato.

Verticillium lecanii é uma espéc ie cosmopolita, registrada

predominantemente como patógeno de homópteros, particularmente de afídeos,

moscas -brancas e coccídeos. Podem ser encontrados com menor freqüência em

ortópteros, tisanópteros, coleopteros, lepidópteros e himenópteros. Assim como

P. fumosoroseus, V. lecanii causa infecções em todos os estádios de

desenvolvimento da mosca-branca e causa, em um período curto, infecção no

hospedeiro (Landa e Osborne, 1992). Porém, Gindin et al. (2000), em um teste de

patogenicidade realizado com 35 variedades desse fungo, originário de diferentes

hospedeiros e localizações geográficas, comprovou que os ovos de B. argentifolii

são imunes à infecção. Os adultos apresentaram 52% e as ninfas recém

emergidas 95 a 98% de mortalidade. Em testes realizados com B. tabaci em

feijão, V. lecanii causou mortalidade em 73% dos adultos (Quintela at al., 1991).

No estado do Maranhão, Lourenção et al. (2001) relataram a ocorrência de

epizootias de V. lecanii em campo, sobre ninfas de diferentes estádios de B.

tabaci biótipo B, reduzindo drasticamente as populações deste inseto na cultura

da soja. Segundo este autor, a umidade relativa foi um fator primordial para esse

fenômeno. A umidade média da região é de 45% e, no período da epizootia,

registraram-se 90%.

Sobre a interação entre o fungo e outros inimigos naturais como

predadores e parasitóides, Leite et al. (2005) relataram que o isolado CG 904 de

V. lecanii não foi infectivo aos inimigos naturais Cycloneda sanguinea, descrito

como um dos principais predadores de Cinara atlantica em pinus, e Xenostigmus

bifasciatus, parasitóide exótico introduzido para o controle dessa mesma praga.

Beauveria bassiana é uma espécie de ocorrência generalizada em todos os

países, sendo mais freqüente sobre insetos e em amostras de solo, onde pode

resistir por longo tempo em saprogênese. Em condições de laboratório, pode

colonizar a maioria dos insetos, sendo que, em campo, ocorre de forma enzoótica

e epizoótica em coleópteros, lepidópteros, hemípteros e em ocorrências

enzoóticas sobre dípteros, himenópteros e ortópteros (Alves, 1998). Apesar dessa

diversidade de hospedeiros, esse entomopatógeno não é considerado um

regulador natural de populações de mosca-branca (Faion, 2004). Contudo,

algumas pesquisas referem-se a indivíduos de Bemisia spp. infectados com este

fungo, quando contaminados diretamente por uma suspensão concentrada de

conídios (Wraight et al., 1998).

Maranhão et al. (2005) testaram a patogenicidade de 29 isolados e um

produto comercial de B. bassiana sobre ninfas do 3° e 4° instares de B. tabaci.

Dentre estes, destacaram-se dois isolados com 77% de mortalidade, enquanto o

produto comercial não ultrapassou 32%. Segundo Azevedo et al. (2005), o

produto comercial a base de B. bassiana apresentou-se menos eficiente no

controle desta praga em relação ao produto químico utilizado. Estes resultados

podem estar relacionados com as condições inadequadas de armazenagem do

produto comercial, concentração de conídios ou forma de aplicação.

Segundo Faria e Wraight (2001), os estádios ninfais de B. tabaci são

altamente susceptíveis à infecção de B. bassiana. Esta característica também foi

observada na espécie B. argentifolii para 1°, 2°, 3° e 4° instares, apresentando

mortalidade de 93,6% em experimentos realizados em laboratório (Liu & Stansly,

1996). Ainda para essa espécie, Saito e Sugiyama (2005) constaram 60% de

mortalidade das ninfas de 3° instar usando B. bassiana.

São encontrados na literatura relatos da utilização desse fungo em outros

hemípteros. Reinert et al. (1999) obtiveram índices de 100% de mortalidade dos

percevejos Boisea trivittatus e Jadera haematoloma aos oito dias após a

aplicação de B. bassina. Oliveira et al. (2001) registraram a eficiência desse fungo

no controle do percevejo-de-renda da mandioca (Vatiga illudens), com índice de

100% de mortalidade.

De acordo com Alves (1998), as condições favoráveis para o

desenvolvimento desse microorganismo são a umidade relativa em torno de 90%

e a temperatura na faixa de 23 a 28°C, sendo os limites mínimo e máximo de

crescimento de 5 e 35°C, respectivamente.

Em relação à capacidade de integrá-lo em um programa de controle

biológico com outros inimigos naturais, Santos Jr. et al (2006) concluíram que dois

isolados de fungos, B. bassina e M. anisopliae, não reduzem a longevidade média

do parasitóide Oomyzus sokolowskii. Nos ovos e larvas do predador Chrysoperla

externa, Pessoa et al. (2005) constataram uma atividade entomopatógena de B.

bassina apenas sobre as larvas do 3° instar. Além disso, apresentou baixa

suscetibilidade ao entomopatógeno, sendo recomendado em aplicação conjunta

com esse microorganismo em programas de controle biológico.

O fungo M. anisopliae é caracterizado por atacar um grande número de

espécies de insetos. Amplamente distribuído na natureza, pode ser encontrado

facilmente nos solos, onde sobrevive por longos períodos (Alves, 1998). Segundo

Faria e Wraight (2001) isolados desse fungo são altamente virulentos a todos

instares de ninfas de B. tabaci.

A partir do terceiro dia após a inoculação, M. anisopliae ocasionou

aproximadamente 30% de mortalidade em B. tabaci, sendo o pico da mortalidade

observado no quinto dia. A suscetibilidade das ninfas aos isolados de M.

anisopliae foi evidente nos experimentos, sendo o seu uso promissor para o

controle de ninfas (Ramos, 2001). Azevedo, et al. (2005) relataram em um teste

realizado na cultura do meloeiro, mortalidade de apenas 30% de B. tabaci biótipo

B, quando aplicado M. anisopliae.

Em relação ao desempenho desse patógeno em outros hemípteros,

Loureiro et al. (2005), após testarem em 79 isolados de M. anisopliae sobre

Mahanarva fimbriolata, constataram uma variação de 66 a 100% de mortalidade.

Oliveira et al. (2001) registraram mortalidade de 74% do percevejo-de-renda,

Vatiga illudens, na cultura da mandioca, após a aplicação do M. anisopliae, no

Distrito Federal.

2.5 Formulações com fungos entomopatogênicos

Geralmente, os fungos entomopatogênicos requerem um ambiente próximo

à saturação por água, para a ocorrência da germinação e esporulação. O tipo de

formulação empregada deve atender às fases de produção do organismo, bem

como otimizar sua ação sobre a praga-alvo, em condições adversas de campo,

tais como, temperaturas elevadas, umidade relativa baixa e radiação ultravioleta,

além de permitir fácil aplicação por meio de métodos relativamente simples e

economicamente viáveis. O produto final deve também ter um maior tempo de

prateleira, permitindo sua estocagem sem perdas efetivas no seu potencial, ou

seja, manter suas propriedades ao longo do tempo compreendido desde a

produção até sua utilização no campo (Batista Filho et al., 2001).

Um fator que limita a padronização de um biopesticida refere-se ao seu

modo de infecção, que ocorre principalmente por contato, dificultando assim a

determinação da quantidade de esporos envolvidos no processo infeccioso, além

de ser difícil garantir que a suspensão fúngica permaneça aderida sobre o

tegumento do inseto tratado (Habib et al., 1998). O reflexo dessa característica

pode ser encontrada em insetos como a mosca-branca. Substâncias cerosas

compondo a cutícula dessa praga têm diminuído a efetividade de alguns

inseticidas e até mesmo a atividade de entomopatógenos. Segundo Byrne e

Bellows (1991), a cera que reveste externamente as espécies de mosca-branca

como B. tabaci e T. vaporariorum consiste primariamente de triacilgliceróis (65 –

75%) com vestígio de esteres, ácidos graxos livres, álcoois e hidrocarbonos. Essa

camada funciona como uma barreira protetora.

O uso de óleos como componentes das formulações fúngicas tem

demonstrado aumento na eficiência de fungos entomopatógenos em condições

adversas como baixa umidade relativa, facilitando a aderência dos esporos do

fungo ao tegumento do inseto, mostrando-se mais viável que as formulações

convencionais à base de água (Prior et al.,1988; Batta, 2003). Além dessas

vantagens, as formulações oleosas são compatíveis à aplicação em ultrabaixo

volume (UBV), tornando-a mais prática e econômica (Thomas et al., 1996;

Bateman, 1997). As formulações fúngicas à base de óleos vêm sendo testadas

com sucesso pelo programa LUBILOSA substituindo os pesticidas químicos no

controle de gafanhotos (Lomer et al., 1999). Formulações à base de óleo vegetal

possibilitam o uso do fungo em condições secas, pois o óleo propicia um

microambiente favorável aos conídeos, reduzindo a dependência da umidade do

ambiente para a rápida germinação e infecção, além de melhorar a fixação destes

nos insetos. Também, as formulações em óleo facilitam as pulverizações em

ultrabaixo volume (Thomas et al. 1996).

3. MATERIAL E MÉTODOS

Os trabalhos de laboratório foram realizados no setor de Patologia de

Insetos do Laboratório de Entomologia e Fitopatologia (LEF) da Universidade

Estadual do Norte Fluminense Darcy Ribeiro (UENF), em Campos dos

Goytacazes, estado do Rio de Janeiro, no período julho de 2006 a agosto de

2007. Os testes de campo foram conduzidos em áreas de cajucultura extrativista

no distrito de Campo Novo, município de São João da Barra, nos meses de março

a agosto de 2007, quando foram coletados os dados climáticos de temperatura,

umidade e radiação.

3.1 Produção de conídios em arroz

Para a produção em arroz de conídios dos fungos entomopatogênicos (B.

bassiana, M. anisopliae e Paecilomyces sp.), foram utilizados: Erlemeyers de 250

ml contendo 25 g de arroz parboilizado cru + 10 ml de água destilada, fechados

com algodão e autoclavados durante 15 minutos, a 1 atm (120

C). A inoculação

foi feita com a adição de 1,25 ml da suspensão de conídios dos isolados de B.

bassiana, M. anisopliae e Paecilomyces sp., na concentração de 5 x 10

conídios/

ml de Triton (0,05%) em cada erlemeyer, com o auxílio de uma pipeta estéril,

fazendo movimentos circulares de forma a obter uma distribuição uniforme do

inóculo entre os grãos de arroz. Os frascos foram mantidos em câmara BOD ( 27

C) e a produção de conídios foi determinada aos 5, 10 e 15 dias após a

inoculação, retirando-se cinco amostras (1g de arroz) de cada isolado, colocadas

em tubos de ensaio contendo 5 ml de água destilada estéril + Triton X (0,05%),

para posterior quantificação em câmara de Neubauer.

Para o teste de patogenicidade, suspensões de conídios em câmera de

fluxo, previamente esterilizada com álcool 70% e 15 minutos de luz UV, com

auxílio de uma alça de platina mergulhada em álcool 100% e, posteriormente,

flambada. Os conídios foram transportados para o tubo de plástico (eppendoff

contendo Tween 80 (0,05%).

A quantificação de conídios foi feita em câmera de Neubauer e, uma vez

estabelecida, foi realizada a diluição consecutiva até a obtenção da concentração

desejada, em um volume de 30 mL.

3.2 Aplicação de diferentes agentes para o controle de ninfas de A. cocois

no campo

Em áreas de cajucultura extrativista foram selecionados cajueiros

infestados por A. cocois para a realização dos bioensaios de campo. Foram

testados cinco isolados de fungos, sendo três da espécie Metarhizium anisopliae,

um de Beauveria bassiana e outro de Paecilomyces sp. (Tabela 1), óleo de soja,

sabão neutro e o produto comercial Natur´oleo

. Por questão de

operacionalidade, o trabalho foi conduzido em quatro etapas.

Tabela 1- Isolados de Metarhizium anisopliae e Beauveria bassiana usados nos

Testes de patogenecidade e virulência em Aleurodicus cocois .

N° do acesso

Espécies

Hospedeiro original

Origem geográfica

LPP 87 M. anisopliae Diatraea saccharalis

(Lepidóptera: Cambidae)

Goiânia –GO

ESALQ 818 M. anisopliae Isolado do solo Piracicaba – SP

LPP 45 M. anisopliae Isolado do solo Monte Negro- RO

CG 136 M. anisopliae Hemiptera: Cercopidae

EMBRAPA/CERNAGEN - DF

CG 149 B. bassiana Deois flavopicta

(Cercopidae)

EMBRAPA/CERNAGEN - DF

CG 399 Paecilomyces sp. -

EMBRAPA/CERNAGEN - DF

Teste 1. Utilizaram-se três isolados de M. anisopliae (LPP 45, LPP87 e

ESALQ 818), pertencentes à coleção de isolados do Laboratório de Entomologia

e Fitopatologia da UENF, óleo de soja 8% (Sadia

) e detergente neutro . Cada

isolado foi testado com e sem óleo de soja na mesma concentração, totalizando

nove tratamentos: LPP 87, LPP87+ óleo 8%, LPP45, LPP45+ óleo 8%,

ESALQ818, ESALQ818+ óleo 8%, óleo 8%, detergente 10 % e, como

testemunha, Tween 0,05%. As formulações com fungo continham uma

concentração de 1x10

conídeos/ml em Tween (0,05%). Cada tratamento constou

de três repetições.

Teste 2. Utilizaram-se os isolados de Paecilomyces sp. (CG399) e

Beauveria bassiana (CG149), fornecidos pela EMBRAPA/CERNAGE N. Os

isolados foram testados na concentração de 1x10

conídeos/ml e Tween (0,05%).

Não foram feitos tratamentos com óleo de soja. Cada tratamento constou de três

repetições.

Teste 3. Utilizou-se o óleo vegetal comercial Natur´oleo

nas

concentrações de 1 e 5%. Cada tratamento constou de três repetições.

Teste 4. Foi testado o isolado ESALQ 818 de M. anisopliae em

combinação com Natur´oleo

a 1% e 5%. Cada tratamento constou de três

repetições. Foram utilizados nas formulações concentração de 1x10

conídeos/ml

e Tween (0,05%).

Os testes foram realizados em árvores de caju não comerciais, localizadas

em Campo Novo, distrito de São João da Barra.

As formulações foram aplicadas com o pulverizador ultrabaixo volume,

ULVA+

(Micron, Inglaterra). Após determinar o pomar de caju a ser trabalhado,

selecionou-se aleatoriamente, em cada árvore, um galho/repetição, infestado com

ninfas de A. cocois. Foram aplicados 200 ml de cada formulação após 16 horas,

devido à baixa radiação. Utilizou-se uma árvore por tratamento. As avaliações

foram realizadas aos três, sete, nove e 40 dias, exceto para o bioensaio 3,

quando não houve avaliação com 40 dias. Em cada avaliação, foram escolhidas

quatro folhas do galho pulverizado e levadas ao Laboratório (LEF/UENF) para

contagem das ninfas mortas.

Em cada folha, foram selecionados três pontos aleatoriamente com 1 cm de

diâmetro cada. Com auxílio de um alfinete e microscópio esterioscópio (aumento

de 40x), foram feitas as contagens das ninfas sadias e não sadias, considerando-

se a turgidez do inseto, movimento do aparelho bucal e, para as formulações à

base de fungo, considerou-se, também, a coloração e a presença de estruturas

fúngicas do patógeno.

Para confirmação da presença do fungo, foi retirado, com auxílio de um

perfurador, 1 cm de diâmetro de cada folha, totalizando 4 cm por tratamento, e

expostos por 20 segundos à luz UV, a uma distância de 90 cm, para eliminação

de possíveis contaminantes. Após a esterilização superficial, os cadáveres foram

acondicionados em placas de Petri forradas com papel-filtro úmido e mantidos em

câmara úmida para promover a conidiogênese. Foram feitas observações diárias

durante seis dias. A infecção ou não do inseto foi confirmada pela observação das

estruturas fúngicas do patógeno nas ninfas que também foram quantificadas e

comparadas com os resultados encontrados no campo. Os resultados foram

analisados pela ANOVA e as porcentagens de mortalidade foram comparadas

pelo Teste de Duncan (P=0,05).

3.3 Efeito do NATUR´OLEO no crescimento de M. anisopliae

Nesse teste, foram preparadas duas suspensões fúngicas nas

concentrações de 1x10

conídeos/ml e Tween (0,05%) do isolado ESALQ818 e

acrescidas de Natur´oleo

1 e 5% cada, para inoculação no meio de cultura SDA,

sendo três placas de Petri por tratamento. Com o auxílio de uma micropipeta, foi

aplicada, sobre o meio de cultura uma alíquota de 10 µl da suspensão no centro da

placa, sendo posteriormente acomodada em câmara BOD a 25±1°C e fosfatase de

12 horas durante seis dias. O diâmetro das colônias foi medido com o auxílio de

uma régua, os dados foram submetidos à análise de variância sob delineamento

estatístico inteiramente casualizado com três tratamentos e três repetições. O

crescimento médio das colônias foi avaliado pelo Teste de Duncan (P=0,05).

3.4 Interação entre M. anisopliae, A. cocois e o seu predador Ceraeochrysa

caligata

Para verificar a compatibilidade dos fungos entomopatogênnicos e

predadores, como crisopídeos, foram montados dois testes .

Foram realizadas coletas de crisopídeos nos pomares de caju, no período de

maio a agosto de 2007, para verificar a espécie de maior freqüência para os

testes 1 e 2. Todas as larvas encontradas nas folhas dos testes anteriores a estes

foram coletadas, registradas e acondicionadas em tubos de ensaio de 40 ml,

vedados com algodão, para evitar o canibalismo enquanto larvas, e alimentadas

com ovos de Anagasta kuehniella, para , posteriormente, serem identificadas.

Teste 1 - Os adultos de Ceraeochrysa caligata foram coletados no cajueiro e

transferidos para o laboratório, onde foram mantidos em gaiolas plásticas de 340

ml, com tampa telada na parte superior e tubo de vidro com água destilada,

tampado com algodão, inserido em orifício na lateral da gaiola, para obtenção dos

ovos que deram início ao experimento. Os adultos foram alimentados com dieta à

base de levedo de cerveja, frutose e mel (proporção de 1:1:1) e mantidos em

câmaras de germinação do tipo B.O.D. à temperatura de 24 ± 1ºC e fotoperíodo

de 16hL:8hE.

As larvas foram criadas individualmente em tubos de ensaio de 40 ml,

vedados com algodão, para evitar o canibalismo. Estas foram alimentadas com

ninfas de mosca-branca, Aleurodicus cocois, durante todo o seu desenvolvimento.

Após a mudança de estádio de pré-pupa para pupa, foi colocado uma tira de

papelão dentro de cada tubo para auxiliar na fixação do adulto farado, para que

este possa efetuar a muda final para o estádio adulto propriamente dito.

O estudo foi conduzido em delineamento inteiramente casualizado, com dois

tratamentos: ninfas de mosca-branca, A. cocois com e sem fungo

entomopatogênico a 24 ± 1ºC e 16 horas-luz/dia de fotofase, em câmaras de

germinação do tipo B.O.D.

Para obtenção de ninfas de mosca-branca doentes, foi selecionada uma

árvore onde foi aplicada diariamente, em 10 folhas, a concentração do fungo de

1x10

conídeos/ml. O entomopatógeno utilizado no presente trabalho foi o isolado

CG136, Metarhizium anisopliae. As ninfas sadias foram coletadas em outras

árvores.

Os testes tiveram inicio com 25 ovos de crisopídeos por tratamento. Foram

feitas observações diárias em cada tubo de ensaio, a fim de determinar a

influência do isolado CG136 na duração dos estádios de desenvolvimento e na

mortalidade.

Os insetos mortos foram expostos por 20 segundos à luz UV, a uma distância

de 90 cm, para eliminação de possíveis contaminantes. Após a esterilização

superficial os cadáveres foram acondicionados em placas contendo em seu

interior papel filtro úmidos e encaminhados para câmara úmida para promover a

conidiogênese.

Teste 2 - Nesse experimento, as larvas foram alimentadas com ovos de

Anagasta kuehniella durante todo o seu desenvolvimento. Após a mudança de

estádio de pré-pupa para pupa, foi colocada uma tira de papelão dentro de cada

tubo para auxiliar na fixação do adulto farado, para que este possa efetuar a

muda final para o estádio adulto propriamente dito.

O estudo foi conduzido em delineamento inteiramente casualizado, com dois

tratamentos. As larvas foram acomodadas em tubos contendo em seu interior um

pedaço de folha sadia de caju, tratada com isolado CG136, na concentração

1x10

conídeos/ml e Tween (0,05%). O procedimento repetiu-se no segundo

tratamento, com exceção de a folha não ter recebido suspensão fúngica. Esses

tubos foram mantidos a 24 ± 1ºC e 16 horas-luz/dia de fotofase, 100% de

umidade em câmaras de germinação do tipo B.O.D. Para evitar o contado com o

fungo, os ovos de A. kuehniella foram acondicionados em pequenos pedaços de

papel alumínio e trocados diariamente, assim como as folhas de caju.

Os testes tiveram inicio com 25 ovos de crisopídeos por tratamento. Foram

feitas observações diárias, para verificar a patogenicidade do fungo e a sua

influência na duração dos estádios de desenvolvimento e na mortalidade.

Os insetos mortos foram expostos por 20 segundos à luz UV, a uma distância

de 90 cm, para eliminação de possíveis contaminantes. Após a esterilização

superficial, os cadáveres foram acondicionados em placas de petri, forradas com

papel-filtro e mantidas em câmara úmida para promover a conidiogênese.

4. RESULTADOS E DISCUSSÃO

4.1 Aplicação de diferentes agentes para o controle de ninfas de A. cocois

no campo

No teste 1, os tratamentos ESALQ 818 + óleo 8%, LPP45, LPP45 + óleo

8% e detergente neutro 10% resultaram em mortalidade superior à da

testemunha, variando entre 27 e 51,5% (Tabela 2). Os períodos de avaliação não

diferiram entre si.

Tabela 2- Mortalidade (%) de Aleurodicus cocois após aplicação de fungos

entomopatogênicos em combinação óleo de soja, Campos dos

Goytacazes, 2008.

Mortalidade (%)

Tratamentos

3 DAP 7 DAP 9 DAP 40 DAP

Testemunha (Tween) 24,0 A

25,7 A 25,3 A 20,9 A

O. S. 8% 33,1 A ab 25,2 A 26,4 A x

Detergente 10% 44,0 A b 43,0 A 40,0 A x

LPP 87 24,4 A ab 25,7 A 36,4 A 37,2 A

LPP 87 + O.S. 8% 29,7 A ab 23,2 A 31,9 A 37,3 A

ESALQ 818 37,1 A ab 44,5 A 30,8 A 23,6 A

ESALQ 818 + O.S. 8% 35,8 A b 31,9 A 32,6 A 51,5 A

LPP 45 38,9 A b 27,7 A 42,6 A 38,2 A

LPP 45+ O.S.8% 43,0 A b 29,4 A 35,1 A 36,4 A

O. S.: Óleo de soja; x= não avaliado; DAP: Dias após a aplicação;

Valores seguidos de letras diferentes diferem estatisticamente pelo teste de Duncan (P=0,05)

letras maiúsculas = dias de avaliação;

Letras minúsculas = tratamentos.

*O teste estatístico de comparação de tratamentos foi igual a todos os dias após aplicação, sendo

somente mostrado na primeira coluna. Os resultados foram iguais para todos os dias de aplicação.

No teste 4, Natur´oleo

5% + ESALQ 818 e Natur´oleo

1% + ESALQ818

apresentaram mortalidade superior à da testemunha com 50,6% e 37,5% aos três

dias, respectivamente. Entretanto os resultados do teste 3 mostraram

porcentagens de mortalidade semelhantes aos encontrados no teste 4, sugerindo

que o efeito foi devido à ação do Natur´oleo

e não à do fungo (Tabela 3)

Tabela 3 - Mortalidade (%) de Aleurodicus cocois submetidos a dois tratamentos

dos testes 3 e 4.

% Mortalidade

Tratamentos

3 DAP 7 DAP 9 DAP 40 DAP

Teste 3

Testemunha (água) 31,0 A

15,6 AB 15,2 B x

Nat 1% 54,0 A b 34,7AB 35,5 B x

Nat 5% 56,1 A b 50,9 AB 28,7 B x

Teste 4

Testemunha (Tween) 29,6 A a 29,7A 18,8 A 36,4 A

Nat 1% + ESALQ 818 37,5 A ab 47,9 A 40,6 A 23,7 A

Nat 5% + ESALQ 818 50,6 A b 42,1 A 41,1 A 32,5 A

Nat: Natur´oleo

; x= não avaliado; DAP: Dias após a aplicação;

Valores seguidos de letras diferentes, diferem estatisticamente pelo teste de Duncan no nível de

5% de probabilidade.

letras maiúsculas = dias de avaliação;

Letras minúsculas = tratamentos.

*O teste estatístico de comparação de tratamentos foi igual a todos os dias após aplicação, sendo

somente mostrado na primeira coluna.

A eficiência dos tratamentos ESALQ 818, LPP87, LPP45, CG 149 e CG

399 mostraram-se coerentes ao relato de Garcia (2004). No caso de ninfas de

mosca-branca, a cutícula produz lipídios de longas cadeias de ésteres, que

formam uma barreira física para os conídios. Tal fato prejudica os processos de

adesão, germinação e penetração dos fungos, o que justifica a eficiência dos

isolados na mortalidade das ninfas de A. cocois , já que, em relação a outras

espécies, esta produz uma camada de cera significativamente espessa.

O isolado CG 149 de B. bassiana apresentou média de 19% de

mortalidade, considerando-se todos os dias avaliados. A maior mortalidade

registrada foi de 28%, nove dias após a aplicação. Vicentini et al. (2001)

registraram, para o mesmo isolado em ninfas de B. tabaci Biotipo B, o índice de

90% de mortalidade, 14 dias após a aplicação em laboratório. Apesar de não

serem da mesma espécie, elas apresentam características semelhantes, porém

em situações ambientais distintas.

O Paecilomyces sp., isolado CG 399, comportou-se de forma contrária ao

relatado por Faion (2004). Segundo a qual, essa espécie de fungo é capaz de

infectar todos os estádios de desenvolvimento da mosca-branca Bemisia tabaci a

temperaturas variando entre 15 a 30

C. Esse foi o único isolado que não

apresentou estruturas fúngicas durante as avaliações, além da baixa mortalidade.

O caráter hidrofóbico dos conídios dos fungos reforça a necessidade da

associação com produtos que venham proporcionar melhor adesão à praga a ser

controlada. Os óleos, por exemplo, melhoram a adesão e a dispersão dos

esporos sobre a cutícula hidrofóbica dos insetos. Os esporos podem ser

carregados pelos óleos a micro habitats encontrados no corpo do inseto

hospedeiro ou da planta hospedeira, sendo assim protegidos do vento, radiação e

de outros estresses ambientais (Faria et al., 2001). Apesar de oferecer benefícios,

o óleo de soja e o Natur´oleo

não aumentaram a virulência dos isolados nos

bioensaios 1 e 3, embora os tratamentos ESALQ 818 + óleo 8%, LPP45 + óleo

8%, ESALQ 818 + N 1% e ESALQ 818 + N 5% tenham apresentado diferença

significativa da testemunha. Resultado diferente foi encontrado para as ninfas que

receberam óleo emulsionável Natur´oleo

nas concentrações de 1 e 5% sem

fungo. Neste caso, o produto mostrou eficiência de 56% três dias após aplicação.

Não foi significativa mortalidade apresentada pelo óleo de soja 8% sem

fungo. Resultado semelhante ao de Leal Junior et al. (2006), cujos estudos não

apresentaram diferença estatística em relação à testemunha, após aplicarem

óleos de soja, milho, girassol e canola na concentração de 1%, para o controle da

mosca-branca B.tabaci em plantas de feijão.

Em relação às observações feitas na câmara úmida, após as coletas, foi

constatado que os tratamentos não diferiram entre si estatisticamente em relação

à persistência no campo. Nas avaliações realizadas três, sete e nove dias após as

aplicações, todas as amostras, com exceção do isolado CG 399, apresentaram

ninfas de A. cocois com estruturas fúngicas. No entanto, tais resultados foram

estatisticamente diferentes da avaliação realizada 40 dias após as aplicações,

quando não foi encontrado vestígio do fungo, o que sugere a não persistência do

microorganismo no campo (Figura.1).

A baixa eficiência dos isolados do bioensaio 2, CG399 e CG149, podem

estar relacionado ao alto índice, no campo, de radiação no período da aplicação

(Apêndice: Quadro 2). Para os demais testes, foram registradas médias

relativamente favoráveis aos microorganismos.

Os detergentes e os sabões apresentam, geralmente, eficiência de 40 a

50% de mortalidade, com ação de contato sem efeitos residuais (Lavor, 2006).

No teste 1, o tratamento à base de detergente neutro 10% apresentou 43% de

mortalidade após sete dias. Isso contradiz os resultados encontrados por Koehler

et al. (1983) para mosca-branca Trialeurodes vaporariorum. Imenes et al. (2002)

encontraram para a concentração de 5% de detergente, 87 % de mortalidade da

cochonilha Protopulvinaria pyriformis (Hemíptera, Coccidae) após 12 dias.

Curkovic e Araya (2004) encontraram, para concentração de 1% de detergente,

82% de mortalidade do ácaro Panonychus ulmi ( Tetranychidae). Lavor (2006)

registrou 96% de mortalidade do pulgão Aphis craccivora (Hemíptera, Aphididae),

quando aplicou o detergente na concentração de 4%.

A concentração de detergente utilizada no teste 1 não contribuiu

suficientemente para o controle da mosca-branca A. cocois . Segundo a literatura,

esse produto causa a morte pela excessiva perda de água do inseto, o que não

ocorreu com a praga em questão.

3 7 9 40

Dias após aplicação

% indivíduos com conidiogênese

LPP 87

LPP87 + ÓLEO

ESALQ 818

ESALQ 818 + ÓLEO

LPP45

LPP 45 + ÓLEO

N 1% + 818

N 5% + 818

CG 149

CG 399

Figura 1 - Persistência dos isolados de M. anisopliae, B. bassiana e

Paecilomyces sp. após aplicação no pomar de caju.

Lavor (2006) relata que altas concentrações de sabão e detergente podem

ser tóxicos também à planta. Serão necessários novos testes, talvez com

concentrações menores, porém com número maior de aplicações, ou associação

com doses menores de inseticidas. Medeiros et al. (2001) usaram 0,5% de

detergente neutro associado com dimethoato no controle da mosca-branca B.

tabaci Biótipo B. Esta formulação apresentou 64% de eficiência.

Um dos fatores que talvez não tenha contribuído para o sucesso dos

bioensaios com fungos é a forma de pulverização. O aparelho ULVA+

apresenta

a vantagem de aplicação ultrabaixo volume e é econômico ao disseminar o

produto, criando uma nuvem de gotículas. Nos experimentos, foram utilizados

somente 200 ml de solução a cada pulverização.

Apesar das vantagens, este aparelho não imprime impacto sobre as folhas

infestadas com a densa massa pulverulenta da A. cocois. Talvez sejam

necessários testes com o pulverizador costal. Apesar de não ser econômico e de

difícil manuseio, poderia apresentar um melhor resultado.

4.2 Efeito do NATUR´OLEO no crescimento de M. anisopliae

O teste mostrou que as concentrações de Natur´oleo

1 e 5% não diferiram

estatisticamente entre si em relação ao crescimento. Foi observado que, além de

não prejudicar o desenvolvimento da colônia, o produto contribuiu para o

crescimento durante os seis dias de avaliação (Figura-2)

Os resultados, obtidos no laboratório condizem com os resultados

encontrados por Zappelini et al. (2006) e Silva et al. (2006), nos quais, ao

avaliarem efeitos tóxicos de alguns emulsificantes, dentre eles, Natur´oleo

nas

concentrações de 1,5 , 5 e 10% sobre conídios dos fungos B. bassiana, M.

anisopliae e Paecilomyces sp., concluíram não haver efeito inibitório sobre a

germinação dos conídios. Nos bioensaios 3 e 4, pode-se observar o efeito

contrário. Em condições de campo, o Natur´oleo

não favoreceu o

desenvolvimento dos isolados. Este resultado pode estar relacionado às

condições ambientais ou a forma de aplicação.

4.3 Interação entre M. anisopliae, A. cocois e o seu predador Ceraeochrysa

caligata

Foram coletados 162 crisopídeos, dentre larvas e adultos, distribuídos em

três espécies, Ceraeochrysa caligata, Ceraeochrysa cincta e Ceraeochrysa

claveri, sendo a maioria dos indivíduos da primeira espécie (Figura 3).

1,9 %

12,3 %

85,8 %

C. caligata C. cincta C. claveri

Figura 3 – Espécies de crisopídeos coletados nos pomares de caju no período

de maio a agosto de 2007, em Campos dos Goytacazes, RJ.

0,0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

0,8

0,9

1 2 3 4 5 6

Dias

Crescimento (mm)

Testemunha

Nat 1%

Nat 5%

Figura 2 – Crescimento do isolado ESALQ 818, M. anisopliae, em diferentes

concentrações de Natur´oleo

em meio SDA.

No teste 1, o período de desenvolvimento das larvas nos dois tratamentos

foi semelhante até o terceiro instar. Nenhum dos indivíduos do tratamento com

fungo alcançou o estádio de pré-pupa. Na câmara úmida, foi observada a

presença de estruturas fúngicas nos indivíduos desse tratamento. A testemunha

resultou em dois adultos.

Neste teste, a sobrevivência foi baixa para a testemunha, significando

talvez que a A. cocois, como presa, tenha interferido no desenvolvimento dos

indivíduos (Figura 4). Apenas 14,3% dos indivíduos empuparam. De Bortoli e

Murata (2006) relataram que larvas de Ceraeochrysa paraguaia não se

desenvolveram como o relatado por De Bortoli et al. (2005), com a mesma presa

e o C. cincta. Esse resultado pode ser devido à grande quantidade de cera

apresentada pela presa, o que dificultaria a alimentação do predador.

Característica essa também encontrada na A.cocois.

No teste 2, foi observada semelhança entre o desenvolvimento dos

indivíduos nos dois tratamentos até o segundo instar. No estádio pré-pupa, os

indivíduos do tratamento com fungo apresentaram média de 5,2 dias de

desenvolvimento, enquanto a testemunha, 4,1 dias (Figura 5). Essa diferença

pode estar relacionada a uma interferência fisiologia do microorganismo na larva,

retardando seu desenvolvimento. Em relação à sobrevivência, apenas quatro

Ovo 1 instar 2 instar 3 instar Prépupa pupa

N° de indivíduos

Sem fungo

Com fungo

Figura 4 – Teste 1: Número de sobreviventes após se alimentarem de ninfas

de A. cocois infectadas com o isolado CG136, M. anisopliae.

indivíduos chegaram ao estádio adulto no tratamento com fungo, sendo dois

machos e duas fêmeas (Figura 6). Na testemunha, 16 chegaram ao estádio

adulto, ou seja, 64%, sendo oito fêmeas e oito machos. Provavelmente, a

sobrevivência da testemunha neste teste foi maior que no teste 1, em virtude de o

alimento oferecido ser ovos de A. kuehniella.

Ovo 1 instar 2 instar 3 instar Prépupa pupa

Médias dos dias de desenvolvimento

Testemunha T. fungo

Ovo 1 instar 2 instar 3 instar Prépupa pupa Adulto

N° de indivíduos

Sem fungo

Com fungo

Figura 6 – Teste 2: Número de sobreviventes após contado

com o isolado CG136, M. anisopliae.

Figura 5 – Teste 2: Media de dias dos estádios de desenvolvimento dos

indivíduos que estiveram em contato com o isolado CG136, M.

anisopliae.

Cardoso et al.,(2004) não observaram mortalidade em larvas do 1º instar

da espécie C. cincta, quando tratadas com 2,1x10

conídios/ml de M. anisopliae.

Resultado diferente foi observado nos testes 1 e 2, nos quais 40 e 16% das

larvas que estiveram em contato com o fungo morreram no 1º instar. Este

resultado pode estar relacionado com a alta concentração utilizada de 1x10

conídios/ml.

Ventura et al. (1996) observaram o efeito do fungo M. anisopliae sobre o 3º

instar de Chrysoperla kolthoffi (Navás, 1927), em laboratório, em concentrações

que variaram de 1,5x10

a 1,5x10

conídios/ml. As larvas apresentaram alta

suscetibilidade ao fungo testado, com 100% de mortalidade na maior

concentração.

Pessoa et al. (2005) registraram, em laboratório, mortalidade de 20% em

larvas de Chrysoperla externa, apenas para o 3º instar, quando tratadas com

1x10

conídios/ml de B. bassiana.

No teste 1, em que as larvas foram alimentadas com moscas-brancas

contaminadas com fungo, a mortalidade alcançou 92% no 3º instar, enquanto a

testemunha, 16%, o que pode indicar a ação da toxina do microorganismo no

alimento. Já no teste 2, no terceiro instar, foram registrados 28 e 60% de

mortalidade para a testemunha e com o tratamento com fungo, respectivamente,

mostrando a ação direta do patógeno. Os resultados foram coerentes aos relatos

dos outros trabalhos citados anteriormente com espécies de crisopídeos. Nestes

testes, o 3º instar apresentou maior suscetibilidade ao fungo que a dos estádios

anteriores.

O isolado CG136 mostrou-se patogênico e suas toxinas nocivas às larvas

do predador, ou seja, mesmo não se alimentando de uma presa contaminada,

este isolado está suscetível ao ataque do fungo. Isso indica, inicialmente, que o

isolado do M. aniaopliae CG136 não deve ser aplicado em programas de controle

biológico com C. caligata, na concentração de 1x10

conídios/ml. Novos testes

deverão ser realizados, com diferentes concentrações de conídios para confirmar

essa não compatibilidade entre os inimigos naturais.

5. CONCLUSOES

Os tratamentos com os isolados das espécies M. anisopliae, B. bassiana e

Paecilomyces sp., na concentração de 1x10

conídios/ml,

não alcançaram índices

de controle desejáveis sobre A. cocois. De modo geral, os isolados contribuíram

com 30% para o controle da mosca-branca. Talvez essa eficiência, em estudos

futuros, possa aumentar quando associados às pequenas doses de inseticidas

seletivos, favorecendo o manejo integrado de pragas ou com número maior de

aplicações com maiores concentrações de conídios/ml.

O óleo de soja a 8% não foi um fator determinante para o desempenho dos

isolados de M. anisoplae no campo. Estes apresentaram um desempenho geral

de 35% de controle sobre a mosca-branca. O mesmo foi observado para o isolado

ESALQ 818 associado ao óleo vegetal Natur´oleo

1 e 5%. O resultado

encontrado no laboratório mostrou que o Natur´oleo

não inibiu o crescimento do

isolado.

Resultado diferente foi encontrado para as concentrações de 1 e 5% de

Natur´oleo sem fungo. Somente a concentração desse produto a 1% mostrou

54% de mortalidade, evidenciando ser economicamente viável. Talvez, em testes

futuros, esse produto possa ser associado a pequenas doses de inseticidas,

fazendo com que a eficiência aumente.

O detergente neutro a 10% apresentou, no total, 42% de mortalidade sobre

a mosca-branca, o que demonstra seu potencial na associação com outros

produtos como inseticidas.

Os testes realizados com o isolado CG136 de M. anisopliae em larvas de

C. caligata indicaram a não compatibilidade entre estes dois agentes de controle

biológico.

6. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

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Arquivo do Instituto Biológico.

APÊNDICES

Quadro 1 - Plantas hospedeiras deAaleurodicus cocois

Espécie Família Nome comum País

Anacardium occidental L. Anacardiaceae Caju Brasil

Annona muricata L. Annonaceae Graviola Guiana

Annona reticulata L. Annonaceae Pinha, fruta-do-conde -

Annona squamosa L. Annonaceae Pinha, fruta-do-conde -

Brya ebenus (L.) DC. Fabaceae - -

Cercis canadensis L. Fabaceae Espécie lenhosa -

Chrysobalanus icaco L. Chrysobalanaceae Abajeru -

Citrus sp. Rutaceae - -

Coccoloba uvifera (L.) Polygonaceae - -

Cocos nucifera L. Palmaceae Coco-da-baía Barbados, Brasil, Caribe, Cuba, Guiana,

Nicarágua, Porto Rico,Trinidad, EUA, Ilhas

Virgens

Ficus sp. Moraceae Figueira -

Hevea brasiliensis (Willd. ex Adr. Juss.)

Muell. Arg.

Euphorbiaceae Seringueira -

Licania tomentosa Chrysobalanaceae Oiti -

Lycopersicon esculentum Mill. Solanaceae Tomate Peru

Mangifera sp. Anacardiaceae Manga América do Sul

Musa sp. Musaceae Banana -

Oncidium cavendishianum Orchidaceae Orquídea Interceptado no México

Passiflora sp. Passifloraceae Maracujá -

Persea americana P. Mill. Lauraceae Abacate Peru e Honduras

Piper sanctum Piperaceae - Interceptado no México

Piper sp. Piperaceae João-brandinho -

Platanus sp. Platanaceae Plátano -

Prunus armeniaca L. Rosaceae Damasco -

Psidium guajava L. Myrtaceae Goiaba Honduras e Trinidad

Ptychosperma macarthurii (H. Wendl.)

Nichols.

Palmaceae Marcaturi Grenada

Punica granatum L. Lythraceae Romã -

Richardia pacifica Rubiaceae - -

Theobroma cacao L. Sterculiaceae Cacau -

Veitchia merrillii (Becc.) H. E. Moore Palmaceae Palmeira Porto Rico e Trinidad

Washingtonia robusta H. Wendl. Palmaceae Palmeira -

Evans (2007)

Quadro 2 - Médias dos dados climáticos de cada teste durante o período de

avaliação.

Teste 1

Dia

aplicação

3 dias

7 dias

9 dias

40 dias

T°C 23,2 20,0 20,7 19,7 20,8

UR 65,9 78,5 77,9 82,0 80,8

Rad 79,0 68,8 73,7 80,1 71,1

V. vento 2,5 2,6 2,4 1,8 2,1

Teste 2

T°C 26,8 22,2 20,4 21,0 22,6

UR 48,5 78,6 85,2 80,8 73,28

Rad 248 94,8 94 70,8 126,9

V. vento 2,9 2,4 1,5 2,0 2,2

Teste 3

T°C 24,3 21,4 21,2 21,6 20,2

UR 57,3 78,0 83,4 77,5 78,0

Rad 87 66,0 64,9 74,6 59,2

V. vento 4,2 2,3 2,1 1,9 2,9

Teste 4

T°C 25,8 21,2 16,07 20,2 -

UR 48,7 83,4 70,0 78,0 -

Rad 101 64,9 77,5 59,2 -

V. vento 2,9 2,1 1,9 2,9 -

Fonte: Estação meteriológica da Universidade estadual do Norte Fluminense Darcy Ribeiro.

- T°C - temperatura

- UR – umidade relativa

- Rad – radiação

- V. vento – velocidade do vento

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