( PDF ) Avaliação da qualidade dos produtos cosméticos, protetores solares em uso no Brasil

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Ministério da Saúde

FIOCRUZ

SÔNIA RIBEIRO DORIA

AVALIAÇÃO DA QUALIDADE DOS PRODUTOS COSMÉTICOS,

PROTETORES SOLARES, EM USO NO BRASIL.

PGVS/INCQS

FIOCRUZ

2008

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AVALIAÇÃO DA QUALIDADE DOS PRODUTOS COSMÉTICOS,

PROTETORES SOLARES, EM USO NO BRASIL.

SÔNIA RIBEIRO DORIA

Programa de Pós-Graduação em Vigilância Sanitária

Instituto Nacional de Controle da Qualidade em Saúde

Fundação Oswaldo Cruz

Orientadora: Prof ª. Drª.

Therezinha Coelho Barbosa Tomassini.

Rio de Janeiro

2008

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iii

AVALIAÇÃO DA QUALIDADE DOS PRODUTOS COSMÉTICOS,

PROTETORES, SOLARES EM USO NO BRASIL.

SÔNIA RIBEIRO DORIA

Tese submetida à Comissão Examinadora composta pelo corpo docente do

Programa de Pós - Graduação em Vigilância Sanitária do Instituto Nacional de Controle de

Qualidade em Saúde da Fundação Oswaldo Cruz e por Professores convidados de outras

instituições, como parte dos requisitos necessários à obtenção do Grau de Doutor em

Vigilância Sanitária.

Aprovada:

______________________________________________________

Prof ª. Drª.

Therezinha C.B. Tomassini. (1º membro/ presidente)

FARMANGUINHOS / FIOCRUZ

______________________________________________________

Prof ª. Drª. Maritse Gerth Silveira (2º membro)

ANVISA /FIOCRUZ

______________________________________________________

Prof ª. Drª.Helena Pereira da Silva Zamith. (3º membro)

INCQS / FIOCRUZ

RIO DE JANEIRO

2008

The Quality Control of Cosmetic Products, Sunscreens used in Brazil

Doria, Sônia Ribeiro

Avaliação da qualidade dos produtos cosméticos,

protetores solares, em uso no Brasil/ Sônia Ribeiro Doria.

Rio de Janeiro: INCQS/FIOCRUZ, 2008.

117 p., il., tab.

Tese(Doutorado) – Fundação Oswaldo Cruz, Instituto

Nacio

nal de Controle da Qualidade em Saúde, Programa de

Pós-Graduação em Vigilância Sanitária, Rio de Janeiro, 2008.

Orientador:Therezinha Coelho Barbosa Tomassini.

1. Protetores de raios solares. 2. Cosméticos. 3. Controle

de qualidade. 4. Vigilância sanitária. I. Título.

AGRADECIMENTOS INSTITUCIONAIS

Ao Instituto Nacional de Controle da Qualidade em Saúde.

Ao Programa de Pós-Graduação em Vigilância Sanitária do Instituto Nacional de Controle da

Qualidade em Saúde da FIOCRUZ.

À Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES).

AGRADECIMENTOS PESSOAIS

Á Deus, agradeço por ter me guiado em todos os momentos da minha vida e, principalmente,

por me dar forças, para continuar caminhando.

Aos meus pais, irmãos, sobrinhos e cunhados, com todo o meu carinho.

Á minha querida orientadora Professora Dra Therezinha Coelho Barbosa Tomassini, pela

orientação, paciência e, principalmente pelas palavras de estímulo, fundamentais para a

conclusão desse trabalho de tese.

Aos membros da comissão examinadora, por aceitarem participar da banca.

À Mariete Ferreira Lemos, chefe de Setor de medicamentos, agradeço pelo apoio.

Aos meus amigos André Mazzei, José Luiz e Kátia Miriam pelo apoio, sugestões e presteza

em atender as minhas solicitações, contribuindo para a qualidade deste trabalho.

Às amigas Mara e Kátia Cristina pela grande amizade.

Aos amigos do grupo de Saneantes e Cosméticos, Leonardo, Adriana, Paulo e Tadeu, pela

amizade, dicas de informática e pelos momentos descontraídos.

Aos amigos do Departamento de Química do Instituto Nacional de Controle de Qualidade em

Saúde, agradeço, pelo enorme carinho e incentivo, em todos os momentos.

A Farmacêtica Layla Correa Oliveira por ter disponibilizado os protetores solares e o

estabelecimento comercial para a realização das análises das rotulagens dos protetores solares.

À Médico-Veterinária Eloísa Nunes Alves pela elaboração do roteiro de inspeção empregado

para a coleta de dados.

Ao Professor Armando Meyer pela análise dados no programa estatístico SPSS.

Aos funcionários da Biblioteca e das Secretarias do INCQS pela atenção.

Em especial, aos meus filhos, Vitor e Clara com todo o meu amor.

vii

“O valor das coisas não está no tempo em que elas duram,

mas na intensidade com que elas acontecem.

Por isso existem momentos inesquecíveis,

Coisas inexplicáveis e pessoas incomparáveis”.

Fernando Pessoa

viii

Dedico este trabalho tese ao meu querido Nilo Duarte Doria, in memoriam, que

sempre trabalhou com dedicação, visando à melhoria da Saúde em nosso País.

RESUMO

O câncer de pele é o mais freqüente entre os tumores diagnosticados, considerado atualmente

um grave problema de saúde pública. Responsável por importantes seqüelas decorrentes de

intervenções cirúrgicas que geralmente levam a mutilações e até mesmo a morte, quando não

são diagnosticados precocemente. A exposição à radiação solar, cujos danos são cumulativos,

é um dos principais fatores de risco para o seu desenvolvimento, portanto, a busca por uma

fotoproteção efetiva torna-se, desta forma, prioridade para diminuir os riscos à saúde.

Considerando as ações da Vigilância Sanitária de proteção à saúde da população, fica evidente

a necessidade de melhor entender a eficácia e a segurança dos protetores solares, avaliando a

qualidade destes produtos em uso no Brasil.

Para verificar, com base nas legislações vigentes, se os limites estabelecidos estão sendo

observados, foi desenvolvida e otimizada metodologia analítica para a determinação dos

teores dos principais princípios ativos presentes nas formulações que permitiu quantificar a

benzofenona-3, o octil metoxicinamato, e o octil salicilato simultaneamente. Através dos

parâmetros desenvolvidos para a otimização, a metodologia evidenciou-se adequada para a

finalidade pretendida.

Experimentos realizados para avaliar a estabilidade fotoquímica dos princípios ativos

presentes nos protetores solares demonstraram que o octil metoxicinamato, um dos princípios

ativos mais utilizados, foi degradado quando exposto a radiação em apenas 30 segundos de

exposição, transformando-se em uma nova substância. Ela foi isolada e identificada como o

isômero Z do octil metoxicinamato.

A rotulagem dos protetores solares é parte integrante do produto, fazendo parte da qualidade.

Através de um estudo seccional foram verificadas as informações contidas nas rotulagens dos

protetores solares mais comercializados no Brasil, de acordo com as legislações vigentes e por

meio de uma análise crítica, avaliadas se estas orientam o consumidor quanto à escolha e uso

adequado do produto. O estudo demonstrou que 76% dos produtos analisados não cumpriam

os requisitos técnicos estabelecidos pelas legislações e os dizeres contidos nas rotulagens não

eram suficientes nem adequados para orientar o consumidor de modo a obter a proteção solar

necessária.

Abstract

Regarding to Health Surveillance actions concerning to protect health population, it is to

understand the correct mechanism of sunscreens action and if they are efficient and secure.

The present work looked for the evaluation of the quality of such products used in Brazil.

To check the sunscreen quality according to Brazilian legislation procedures, in effect, if they

are in agreement to Health Surveillance parameters and topics, the present work optimized the

method and developped a new methodology envolveing calculation of quantities of the active

ingredients such as : benzophenone-3 , octyl-methoxycinnamate and octyl-salicilate.

The applied methodology show to be proper, and accomplished their main aim. Experiments

performed to evaluate the active ingredients (substances) photostability in the sunscreen

products reveal that the octyl-methoxycinnamate, most used substance in sunscreen products,

was degradated , after 30 seconds under exposition, changing to a new substance, isolated,

purified and identified in our laboratory as the Z isomer.The sunscreen label , side by side,

with other items must be analysed and controled to infer the plain quality of the consumed

product.

A seccional study, done by our group ,was applied to check the informations declared on

sunscreen label of those with large use in Brazil.They were assayed to verified if they were ii

agreement with legislation procedures.

Doing a critical analyses it was observed that the sunscreen label gave a perfect orientation to

the costumers to find out the best one and if they point out for the correct use.

This study proved that 76% of the analysed product did not obey and followed the technical

requirements proposed by the legislation.

The labels did not offer proper, secure and enough orientation to the user, and by those

reasons they could not feel properly protect from sun radiations.

SUMÁRIO

1.0) INTRODUÇÃO 19

1.1) VIGILÂNCIA SANITÁRIA 19

1.2) INSTITUTO NACIONAL DE CONTROLE DE QUALIDADE EM

SAÚDE

1.3) CÂNCER DE PELE 22

1.4) RADIAÇÃO SOLAR 28

1.5) EVIDÊNCIAS DOS EFEITOS CARCINOGÊNICOS DA RADIAÇÃO

ULTRAVIOLETA ( RUV)

1.6) PROTETOR SOLAR 33

2.0) OBJETIVO GERAL 41

2.1) OBJETIVOS ESPECÍFICOS 41

3.0) METODOLOGIA 41

3.1) EQUIPAMENTOS 41

3.2) REAGENTES E MATERIAIS 44

3.3) PADRÕES E MATERIAIS DE REFERÊNCIA 45

3.4) PROTETORES SOLARES UTILIZADOS 45

3.5) IDENTIFICAÇÃO DOS PROTETORES SOLARES MAIS

UTILIZADOS NO BRASIL E SEUS RESPECTIVOS PRINCÍPIOS

ATIVOS

PARTE I – MÉTODO PARA ANÁLISE DE ATIVOS DA

FORMULAÇÃO

3.6) DESENVOLVIMENTO DE METODOLOGIA PARA ANÁLISE

QUANTITATIVA

3.6.1) PREPARO DAS AMOSTRAS DE PROTETORES SOLARES 49

3.6.2) SEPARAÇÃO CROMATOGRÁFICA DO OCTIL METOXICINAMATO

E DO SALICILATO DE OCTILA

3.6.3) EXPERIMENTO PARA DETERMINAR A FAIXA DE

CONCENTRAÇ ÃO

3.6.4) DETERMINAÇÃO DA FAIXA LINEAR DE RESPOSTA 52

3.6.5) OTIMIZAÇÃO METODOLÓGICA 53

3.6.5.1) CONDIÇÕES CROMATOGRÁFICAS 53

3.6.5.2) CUIDADOS E MONITORAMENTO DAS CONDIÇÕES

CROMATOGRÁFICAS

3.6.6) ADEQUAÇÃO DO SISTEMA 54

3.6.7) DETERMINAÇÃO DA SELETIVIDADE 55

3.6.8) DETERMINAÇÃO DA FAIXA LINEAR DE TRABALHO 55

3.6.9) DETERMINAÇÃO DA LINEARIDADE 55

3.6.9.1) DELINEAMENTO EXPERIMENTAL 55

3.6.9.2) PREPARO DA SOLUÇÃO ESTOQUE (SE)DA BENZOFENONA-3 56

3.6.9.3) PREPARO DA SOLUÇÃO ESTOQUE (SE) DE

OCTILMETOXICINAMATO

3.6.9.4) PREPARO DA SOLUÇÃO ESTOQUE (SE) DE SALICILATO DE

OCTILA

xii

3.6.9.5) PREPARO DAS SOLUÇÕES DE TRABALHO DA BENZOFENONA-3;

OCTIL METOXICINAMATO E SALICILATO DE OCTILA

3.6.10) DETERMINAÇÃO DA EXATIDÃO 59

3.6.10.1)

PREPARO DAS SOLUÇÕES ESTOQUE (SE) DOS ANALITOS 59

3.6.10.2)

PREPARO DA SOLUÇÃO ESTOQUE DO PROTETOR SOLAR G-FPS

30 (SEP)

3.6.10.3)

PREPARO DAS SOLUÇÕES DE TRABALHO DA ADIÇÃO PADRÃO

DOS ANALITOS À SOLUÇÃO ORIGINADA DO PROTETOR SOLAR

G-FPS 30.

3.7) DOSEAMENTO DOS ATIVOS NO PROTETOR SOLAR G - FPS 30 60

4.0) RESULTADOS E DISCUSSÃO DA PARTE I 62

4.1) RESULTADOS DA ADEQUAÇÃO DO SISTEMA 62

4.2) RESULTADOS DA SELETIVIDADE PARA A BENZOFENONA-3,

OCTIL METOXICINAMATO E OCTIL SALICILATO.

4.3) RESULTADO DA AVALIAÇÃO DA CURVA ANALÍTICA DA

BENZOFENONA-3

4.4) AVALIAÇÃO DA LINEARIDADE DA CURVA ANALÍTICA DA

BENZOFENONA-3

4.5) RESULTADOS DA AVALIAÇÃO DA CURVA ANALÍTICA DO

OCTIL METOXICINAMATO

4.6) AVALIAÇÃO DA LINEARIDADE DA CURVA ANALÍTICA DO

OCTIL METOXICINAMATO

4.7) RESULTADOS DA AVALIAÇÃO DA CURVA ANALÍTICA DO

OCTIL SALICILATO

4.8) AVALIAÇÃO DA LINEARIDADE DA CURVA ANALÍTICA DO

OCTIL SALICILATO

4.9) DETERMINAÇÃO DA EXATIDÃO DA BENZOFENONA –3 75

4.10) DETERMINAÇÃO DA EXATIDÃO DO OCTIL METOXICINAMATO 76

4.11) DETERMINAÇÃO DA EXATIDÃO DO OCTIL SALICILATO 77

4.12) DETERMINAÇÃO DOS TEORES NA AMOSTRA DO PROTETOR

SOLAR G- FPS 30.

PARTE II – ESTUDO DA FOTODEGRADAÇÃO 79

5.0) ANALISE E AVALIAÇÃO DA FOTODEGRADAÇÃO DOS

PROTETORES SOLARES

5.1) EXPERIMENTO PARA AVALIAR A POSSÍVEL

FOTODEGRADAÇÃO DOS PROTETORES SOLARES,

COMERCIALIZADOS NO BRASIL.

5.2) IRRADIAÇÃO AO SOL 82

5.3) EXPERIMENTO VARIANDO O TEMPO DE IRRADIAÇÃO 83

5.4) SEPARAÇÃO CROMATOGRÁFICA DO PRODUTO DE

FOTODEGRADAÇÃO

5.5) EXPERIMENTO COM DETECTOR DE DIODE ARRAY 83

5.6) EXPERIMENTO DE FOTODEGRADAÇÃO COM OS PRINCÍPIOS

ATIVOS

5.7) PRODUTOS FPS 30 DE FABRICANTES DIFERENTES 84

5.8) EXPERIMENTO PARA ACOMPANHAR A FOTODEGRADAÇÃO DO

OMC QUANTITATIVAMENTE

5.9) EXPERIMENTO PARA ISOLAR E IDENTIFICAR O PRODUTO DA

FOTODEGRADAÇÃO

xiii

6.0) RESULTADOS E DISCUSSÂO DA PARTE II 86

6.1) EXPERIMENTO PARA AVALIAR A POSSÍVEL

FOTODEGRADAÇÃO DOS PROTETORES SOLARES,

COMERCIALIZADOS NO BRASIL.

6.2) IRRADIAÇÂO AO SOL 86

6.3) EXPERIMENTO VARIANDO O TEMPO DE IRRADIAÇÃO 87

6.4) SEPARAÇÃO CROMATOGRÁFICA DO PRODUTO DE

FOTODEGRADAÇÃO

6.5) EXPERIMENTO COM DIODE ARRAY 88

6.6) EXPERIMENTO DE FOTODEGRADAÇÃO COM OS PRINCÍPIOS

ATIVOS ISOLADOS

6.7) EXPERIMENTO PARA ACOMPANHAR A FOTODEGRADAÇÃO DO

OMC QUANTITATIVAMENTE

6.8) EXPERIMENTO PARA ISOLAR E IDENTIFICAR O PRODUTO DA

FOTODEGRADAÇÃO

PARTE III – ESTUDO DAS ROTULAGENS 106

7.0) AVALIAÇÃO DAS INFORMAÇÕES CONTIDAS NAS ROTULAGENS

DOS PROTETORES SOLARES MAIS COMERCIALIZADOS NO

BRASIL

107

8.0) MÉTODOS EMPREGADOS 107

9.0) RESULTADOS E DISCUSSÃO DA PARTE III 111

10.0) CONCLUSÕES 113

11.0) REFERÊNCIAS BIBLIOGRAFIAS 114

xiv

ÍNDICE DE FIGURAS

Figura 1 Foto de carcinoma basocelular 26

Figura 2 Foto de carcinoma espinocelular 27

Figura 3 Foto do carcinoma melanoma 27

Figura 4 Espectro da Radiação Eletromagnética 28

Figura 5 Cromatógrafo líquido (Shimadzu), utilizado para o desenvolvimento da

metodologia

Figura 6 Cromatógrafo líquido ( Shimadzu), usado em todos os requisitos da

otimização do método.

Figura 7 Simulador solar utilizado nos experimentos de fotodegradação 44

Figura 8 Cromatograma do protetor solar FPS 20 50

Figura 9

Cromatograma de produto contendo benzofenona-3, octil

metoxicinamato e salicilato de octila

Figura 10

Curva de calibração do octil metoxicinamato 53

Figura 11

Cromatograma do diluente utilizado (metanol) 62

Figura 12

Separação da benzofenona-3 (5,62 min), do octil metoxicinamato

(19,49 min) e do octil salicilato (22,58 min).

Figura 13

Sinais cromatográficos da benzofenona-3 (5,72 min), do octil

metoxicinamato (20,22 min) e do octil salicilato (23,22 min).

Figura 14

Espectros de varredura no ultravioleta antes do sinal (4,81min) e no

sinal da benzofenona-3 (5,72 min).

Figura 15

Espectros de varredura no ultravioleta antes do sinal (19,15min) e no

sinal do octil metoxicinamato (20,22 min).

Figura 16 Espectros de varredura no ultravioleta antes do sinal (22,71 min) e no

sinal do octil salicilato (23,37 min).

Figura 17 Sinal cromatográfico da benzofenona-3 (5,72 min) padrão. 66

Figura 18 Espectro de varredura no ultravioleta do padrão benzofenona-3. 66

Figura 19 Sinal cromatográfico do octil metoxicinamato (20,22 min) padrão. 67

Figura 20 Espectro de varredura no ultravioleta do padrão do octil

metoxicinamato.

Figura 21 Sinal cromatográfico do octil salicilato (23,22 min) padrão. 68

Figura 22 Espectro de varredura no ultravioleta do padrão do octil salicilato. 68

Figura 23 (a) E-octil metoxicinamato e (b) Z-octil metoxicinamato 81

Figura 24 Fotodegradação do octil metoxicinamato – (a) antes de irradiar e (b) e

Figura 25 Cromatogramas do protetor solar D-FPS 20 sem irradiar e após 30

minutos de irradiação

Figura 26 Cromatograma do protetor solar F - FPS 30 irradiado ao sol por 30

minutos

Figura 27

Cromatograma do protetor solar E-FPS 30 irradiado por 40 minutos. 87

Figura 28

Separação cromatográfica de produto fotodegradado. 88

Figura 29

protetor solar D-FPS 20 - não irradiado 89

Figura 30

protetor solar D-FPS 20 - não irradiado 90

Figura 31

Protetor solar D-FPS 20 – irradiado 91

Figura 32

Protetor solar D- FPS 20 – irradiado 92

Figura 33

Salicilato de octila – irradiado e não irradiado. 93

Figura 34

Octil metoxicinamato – irradiado e não irradiado 93

Figura 35

Octil metoxicinamato – irradiado por 30 segundos. 94

Figura 36

Octil metoxicinamato – irradiado por 5 minutos. 95

Figura 37

Octil metoxicinamato – irradiado por 10 minutos. 95

Figura 38

Octil metoxicinamato – irradiado por 30 minutos. 96

Figura 39

Octil metoxicinamato – irradia por 1 hora. 96

Figura 40

Octil metoxicinamato – irradiado ao Sol por 1 minuto. 97

Figura 41

Espectro de

C RMN do isômero E-octil metoxicinamato. 99

Figura 42

Espectro de

H RMN do isômero E-octil metoxicinamato. 100

Figura 43

Espectro expandido de

H RMN do isômero E-octil metoxicinamato. 101

Figura 44

Espectro de

C RMN do isômero Z-octil metoxicinamato. 102

Figura 45

Espectro de

H RMN do isômero Z-octil metoxicinamato. 103

Figura 46

Espectro expandido de

H RMN do isômero Z-octil metoxicinamato. 104

Figura 47

Instrumento para coleta dos dados 108

xvi

ÍNDICE DE GRÁFICOS

Gráfico 1 Tempo de irradiação x concentração do octil metoxicinamato

Gráfico 2 Percentual dos protetores solares por fabricante

112

Gráfico 3 Percentual dos protetores solares por FPS

112

xvii

ÍNDICE DE TABELAS

Tabela 1 Fototipos cutâneos 24

Tabela 2 Relação entre o efeito do comprimento de onda e a resposta deletéria à

luz solar.

Tabela 3 Resumo das observações históricas sobre o câncer de pele 32

Tabela 4 Lista de Filtros Ultravioletas Permitidos 37

Tabela 5 Quadro dos volumes tomados das soluções estoques e às concentrações

das soluções de trabalho da benzofenona-3

Tabela 6 Quadro dos volumes tomados das soluções estoques e às concentrações

das soluções de trabalho do octil metoxicinamato

Tabela 7 Quadro dos volumes tomados das soluções estoques e às concentrações

das soluções de trabalho do salicilato de octila

Tabela 8 Quadro dos volumes (mL) tomados da SE dos analitos sobre um nível

básico da solução do protetor solar G-FPS 30

Tabela 9 Parâmetros cromatográficos analisados para a adequação do sistema 63

Tabela 10

Concentrações das soluções para cada nível das curvas de calibração

(C.A)

Tabela 11

Curva analítica da benzofenona-3 70

Tabela 12

Concentrações das soluções para cada nível das curvas de calibração

(C.A)

Tabela 13

Curva analítica do OMC 72

Tabela 14

Concentrações das soluções para cada nível das curvas de

analíticas(C.A).

Tabela 15

Curva analítica do Octil salicilato 74

Tabela 16

Áreas medidas após injeção das soluções de trabalho de adição padrão da

benzofenona-3

Tabela 17

Áreas medidas após injeção das soluções de trabalho de adição padrão do

octil metoxicinamato.

Tabela 18

Áreas medidas após injeção das soluções de trabalho de adição padrão do

octil salicilato

Tabela 19

Recuperação dos analitos, calculada a partir das curvas de adição padrão

da benzofenona-3, octil metoxicinamato e do octil salicilato em um

produto de fotoproteção.

Tabela 20

Teores dos princípios ativos benzofenona-3, octil metoxicinamato e

salicilato de octila encontrados na análise da amostra do protetor solar G-

FPS 30 e os declarados na rotulagem

Tabela 21

Comparação dos deslocamentos químicos dos espectros de

C RMN dos

isômeros E e Z com os dados da literatura

105

xviii

LISTA DE SIGLAS E ABREVIATURAS

ABHIPEC – Associação Brasileira da Industria de Higiene Pessoal, Perfumaria e Comércio.

ANVISA – Agência Nacional de Vigilância Sanitária.

BENZ – Benzofenona-3.

CLAE – Cromatografia líquida de alta eficiência.

COLIPA – The Scientific Committee on Cosmetology of the Eupean Union.

DME – Dose mínima eritematosa.

FDA – Food and Drug Administration.

FIOCRUZ – Fundação Oswaldo Cruz.

FPS – Fator de proteção solar.

IC – Intervalo de confiança.

INCA – Instituto Nacional do Câncer.

INCQS – Instituto Nacional de Controle de Qualidade em Saúde.

LCCDMA – Laboratório Central de Controle Drogas, Medicamentos e Alimentos.

MMQO – Método dos mínimos quadrados ordinários.

OMC – Octil metoxicinamato.

OPAS – Organização Panamericana de Saúde.

OS – Octil salicilato.

USP – Farmacopéia Americana.

RDC – Resolução da Diretoria Colegiada.

H RMN – Ressonância Magnética Nuclear de Hidrogênio.

C RMN – Ressonância Magnética Nuclear de Carbono.

RUV – Radiação Ultravioleta.

SUS – Sistema Único de Saúde.

UV _ Ultravioleta.

WHO – Organização Mundial da Saúde.

1) INTRODUÇÃO

1.1) VIGILÂNCIA SANITÁRIA.

Tecnicamente compreendida como a área da saúde pública, dentro do Sistema Único

de Saúde (SUS) que trata das diversas formas de ameaça à saúde, oriunda de produtos,

insumos e serviços relacionados com a saúde, com o meio ambiente, com ambiente de

trabalho e com a circulação de transportes, cargas e pessoas.

De natureza eminentemente preventiva está fundamentada no conceito de risco,

atuando tipicamente mais no processo produtivo. A Vigilância Sanitária vai agir antes do

agravo à saúde, identificando condições que representem risco, com o objetivo de proteger à

saúde da população.

Definida pela Lei n 8.080, chamada Lei Orgânica da Saúde, a Vigilância Sanitária se

insere na área de promoção da Saúde, envolvendo práticas e conhecimentos os mais distintos.

Esse conceito denota a sua enorme abrangência, reforçando a necessidade de ações articuladas

com as demais Vigilâncias: Epidemiológica, Ambiental e Saúde do Trabalhador, na

construção de métodos e instrumentos de intervenção na política e gestão da Saúde no Brasil.

O conceito de promoção da saúde foi formulado na I Conferência Internacional sobre

Promoção da Saúde realizada no Canadá em 1986 e registrada no documento denominado

Carta de Ottawa: “A promoção da saúde consiste em proporcionar aos povos os meios

necessários para melhorar sua saúde e exercer um maior controle sobre a mesma. Para

alcançar um estado adequado de bem estar físico, mental e social, um grupo deve ser capaz de

identificar e realizar suas aspirações, satisfazer suas necessidades e mudar ou adaptar-se ao

meio ambiente”.

A Carta destaca as implicações de uma participação ativa na promoção da Saúde. Os

pontos principais passam a serem nomeados como estratégias de ação da promoção da Saúde:

a elaboração de uma política pública sadia, criação de ambientes favoráveis, reforço da ação

comunitária, desenvolvimento de aptidões pessoais, a reorganização dos serviços sanitários,

passando de enunciados à agenda política da Saúde.

As quatro importantes conferências internacionais sobre promoção da saúde: Ottawa

(WHO, 1986), Adelaide (WHO, 1988), Sundsvall (WHO, 1991) e Jacarta (WHO, 1997)

desenvolveram as bases conceituais e políticas da promoção da saúde. No contexto sub-

regional da América, realizou-se a Conferência Internacional da Promoção da Saúde (OPAS,

1992).

No Brasil a grande diversidade e especificidade local, a má distribuição de renda, o

analfabetismo, o baixo grau de escolaridade, as precárias condições de habitação e ambiente

determinam condições de vida e saúde altamente heterogêneas que constituem um fator

fundamental a ser considerado na formulação destas políticas.

O direito a saúde está explicitado na Constituição Federal de 1988 que a define como

direito de todos e dever do Estado e define também os princípios e diretrizes legais do SUS,

regulamentados na Lei Orgânica da Saúde (Leis nº 8.080 e nº 8.142/90), onde reafirmam o

dever de garantir a saúde como direito universal e fundamental do ser humano.

A cada quatro anos, os representantes do governo, a sociedade, a comunidade

científica, os trabalhadores e os prestadores de serviços em saúde se reúnem em uma

conferência nacional a fim de avaliar e traçar novos rumos para a saúde pública no Brasil.

A 12ª Conferência Nacional de Saúde Brasileira teve como principal tema “Saúde um

direito de todos e dever do Estado – a Saúde que temos e o SUS que queremos” onde foi

discutido, numa abordagem ampla dos princípios e diretrizes relevantes para a construção do

Sistema Único de Saúde.

A 13ª Conferência Nacional de Saúde (novembro de 2007), terá como tema central

“Saúde e Qualidade de Vida: Política de Estado e Desenvolvimento” que será subdividido em

três eixos de discussão:

•

Desafios para a efetivação do direito humano à Saúde no século XXI: Estado,

sociedade e padrões de desenvolvimento;

•

Políticas públicas para a Saúde e qualidade de vida: o SUS na Seguridade

Social.

• A participação da sociedade na efetivação do direito humano à Saúde.

O Brasil está entrando em um novo momento marcado pela democracia, a sociedade

começa a se organizar favorecendo o controle social. A Saúde conta com instrumentos

democráticos legitimados pelos princípios constitucionais e por leis que os regulamentam: os

Conselhos de Saúde e as Conferências Nacionais de Saúde, ambos com composição paritária

de representantes do Governo, dos prestadores de Serviço e da população com o objetivo de

avaliar as políticas e a gestão da Saúde, propondo encaminhamentos e diretrizes aos governos.

Estratégias promocionais como políticas públicas saudáveis, efetiva articulação

intersetorial do Poder Público e a mobilização da população irão contribuir para a qualidade

de vida de indivíduos e populações, tais estratégias se concretizarão, através de seus próprios

fundamentos e práticas.

1.2) INSTITUTO NACIONAL DE CONTROLE DE QUALIDADE EM SAÚDE

O Instituto Nacional de Controle de Qualidade em Saúde (INCQS), é uma unidade da

Fundação Oswaldo Cruz (Fiocruz) que atua com a Vigilância Sanitária como referência

nacional para as questões tecnológicas e normativas relativas ao controle da qualidade de

produtos, insumos, ambientes e serviços, no contexto do SUS.

Criado a partir do Laboratório Central de Controle de Drogas, Medicamentos e

Alimentos (LCCDMA), foi inaugurado em 4 de setembro 1981.

Com a criação da ANVISA, em 1999, o INCQS passou a ser referência nas ações

científicas e tecnológicas relativas ao controle da qualidade de produtos sujeitos à Vigilância

Sanitária. Coordenando com a Gerência Geral de Laboratórios de Saúde Pública, a Rede

Nacional de Laboratórios Oficiais de Controle da Qualidade em Saúde, formada pelos 27

Laboratórios Centrais dos estados.

1 e 4

São atividades do INCQS, dentre outras:

- Execução de análises laboratoriais previstas na legislação sanitária ou por demanda de

Órgãos do SUS, em suporte aos programas oficiais de saúde;

- Emissão de pareceres técnicos sobre questões técnico-científicas relacionadas à Vigilância

Sanitária;

- Elaboração de normas técnicas e procedimentos operacionais padronizados;

- Inspeção e avaliação de indústrias e laboratórios em conjunto com a ANVISA, com as

Vigilâncias Sanitárias Estaduais e Municipais e com o INMETRO;

- Avaliação técnica e pareceres sobre a petição de registros de produtos no Ministério da

Saúde;

- Desenvolvimento e implantação de metodologias analíticas;

- Distribuição de materiais de referência químicos e biológicos;

- Qualificação de recursos humanos, através de cursos, treinamentos e seminários;

- Atuação na elaboração de legislação sanitária.

1.3) CÂNCER DE PELE

O câncer mais freqüente em todo o mundo é o de pele, segundo o Instituto Nacional do

Câncer (INCA), no Brasil, ele corresponde a 25% de todos os tumores malignos registrados.

São responsáveis por importantes seqüelas decorrentes de intervenções cirúrgicas que

geralmente levam a mutilações nos casos dos carcinomas basocelulares e espinocelulares, bem

como elevada mortalidade nos melanomas.

Câncer de pele é o crescimento anormal e descontrolado das células que compõem a

pele. A pele é um tecido em que as células se dispõem formando camadas e, dependendo da

camada afetada, tem-se os diferentes tipos de câncer.

Os carcinomas basocelulares são os mais freqüentes, representam 70% dos casos. São

originários da epiderme e dos apêndices cutâneos acima da camada basal, sendo diagnosticado

através de uma lesão (ferida ou nódulo) com uma evolução lenta. É mais comum após os 40

anos, em pessoas de pele clara. Seu surgimento está diretamente ligado à exposição solar

acumulativa durante a vida. Apesar de não causar metástase, pode destruir os tecidos à sua

volta, atingindo até cartilagens e ossos.

Os carcinomas espinocelulares são o segundo tipo mais comum (25%), têm origem no

queratinócio da epiderme, podendo surgir no epitélio escamoso das mucosas, também surge

por meio de uma ferida, porém, com evolução rápida, apresentando secreção e coceira. Pode

se disseminar por meio de gânglios e provocar metástase. Entre suas causas, está a exposição

prolongada ao sol, principalmente sem a proteção adequada, tabagismo, exposição a

substâncias químicas como arsênio e alcatrão e alterações na imunidade.

O melanoma é o menos freqüente, representa 5% dos tumores diagnosticados, porém

sua letalidade é mais elevada, tem um alto potencial de produzir metástase podendo levar à

morte se não houver diagnóstico e tratamento precoce. Têm origem nos melanócitos, células

que produzem a melanina, substância que determina a cor da pele. Pode surgir a partir da pele

normal ou de uma lesão pigmentada.

5 e 6

Em estudo de caso controle realizado com pacientes do sul do Brasil, Bakos et al,

encontraram risco relativo para melanoma de 2,7 (IC 95% 1,3 – 5,6) em pacientes com

fototipos I e II quando comparados à pacientes com fototipos III e IV (Tabela 1). O mesmo

estudo mostrou que a cor dos cabelos e a cor dos olhos não são fatores de risco independentes

para o melanoma. Foi demonstrado também que o número de nevos (≥30) e a presença de

nevos displásicos constituem um fator de risco moderado. O fator de risco mais importante,

apontado naquele trabalho, foi o relato de numerosos (30 ou mais) episódios de queimadura

solar ao longo da vida.

Tabela 1: Fototipos cutâneos

Fototipos Descrição Sensibilidade ao Sol

I- branca queima com facilidade, nunca

bronzeia

muito sensível

II- branca queima com facilidade, bronzeia

muito pouco

sensível

III- morena clara queima moderadamente, bronzeia

moderadamente

normal

IV- morena moderada queima pouco, bronzeia com

facilidade

normal

V- morena escura queima raramente, bronzeia bastante pouco sensível

VI- negra nunca queima, não bronzeia insensível

O Brasil é um dos países mais ensolarados do mundo, com grande área intertropical. A

exposição à radiação solar, cujos danos são cumulativos, é um dos principais fatores de risco

para o seu desenvolvimento. Por outro lado, o câncer de pele é também um dos mais passíveis

de prevenção efetiva e de baixo custo. Para a prevenção é necessário evitar a exposição ao sol,

sem proteção, desde o período mais precoce da infância.

Devido às condições gerais de vida na sociedade moderna, caracterizada por uma

maior prática de esportes e outras atividades ao ar livre, além da preferência estética por uma

pele bronzeada, o aumento significativo do número de casos de câncer de pele observado, tem

sido correlacionado a maior exposição à radiação solar.

Há nove anos a Sociedade Brasileira de Dermatologia realiza ampla campanha a nível

nacional, orientando sobre a prevenção e detecção precoce da doença. Segundo a Campanha,

os brasileiros não se protegem adequadamente contra o Sol. Um grande número de

trabalhadores rurais e urbanos que exercem atividades ao ar livre como: guarda-vidas,

agricultores, pescadores, garis, catadores de papel, trabalhadores da construção civil, podem

adquirir câncer de pele. De acordo com o INCA a previsão para a ocorrência de novos casos

em 2006, no Brasil, foi de 55.480 casos em homens e de 61.160 em mulheres.

5 e 6

O diagnóstico precoce é muito importante. Assim como para detectar o câncer de

mama, o auto-exame também é fundamental para diagnosticar precocemente a doença. Com o

objetivo de facilitar o auto-exame o INCA criou um procedimento para sua execução.

“O que é o auto-exame da pele?

É um método simples para detectar precocemente o câncer de pele, incluindo o melanoma. Se

diagnosticado e tratado enquanto o tumor ainda não invadiu profundamente a pele, o câncer de

pele pode ser curado.

Quando fazer?

Ao fazer o auto-exame regularmente, você se familiarizará com a superfície normal da sua

pele. É útil anotar as datas e a aparência da pele em cada exame.

O que procurar?

• Manchas pruriginosas (que coçam), descamativas ou que sangram

• Sinais ou pintas que mudam de tamanho, forma ou cor

• Feridas que não cicatrizam em 4 semanas

Deve-se ter em mente o ABCD da transformação de uma pinta em melanoma, como descrito

abaixo:

• Assimetria - uma metade diferente da outra

• Bordas irregulares - contorno mal definido

• Cor variável - várias cores numa mesma lesão: preta, castanho, branca, avermelhada ou azul

• Diâmetro - maior que 6 mm

Como fazer?

1) Em frente a um espelho, com os braços levantados, examine seu corpo de frente, de costas

e os lados direito e esquerdo;

2) Dobre os cotovelos e observe cuidadosamente as mãos, antebraços, braços e axilas;

3) Examine as partes da frente, detrás e dos lados das pernas além da região genital;

4) Sentado, examine atentamente a planta e o peito dos pés, assim como os entre os dedos;

5) Com o auxílio de um espelho de mão e de uma escova ou secador, examine o couro

cabeludo, pescoço e orelhas;

6) Finalmente, ainda com auxílio do espelho de mão, examine as costas e as nádegas.

Atenção:

”Caso encontre qualquer diferença ou alteração, procure orientação médica.

Evite exposição ao sol das 10h às 16h e utilize sempre filtros solares com fator de

proteção 15 ou mais, além de chapéus, guarda-sóis e óculos escuros.”

Figura 1: Foto de carcinoma basocelular

Figura 2: Foto de carcinoma espinocelular

Figura 3: Foto do carcinoma melanoma

1.4) RADIAÇÃO SOLAR

O Sol emite energia na forma de radiação eletromagnética de vários comprimentos de

onda, sendo as mais nocivas aquelas na faixa do ultravioleta (200 a 400nm). Esta região está

conceitualmente dividida em três faixas:

Ultravioleta C (UV-C): de 200 a 290nm

Ultravioleta B (UV-B): de 290 a 320nm

Ultravioleta A (UV-A): de 320 a 400nm

A UV-C é completamente absorvida pela camada de ozônio da atmosfera, mas com a

degradação ambiental parte desta radiação também pode nos atingir. Portanto, a radiação UV

que consegue atravessar a atmosfera consiste principalmente em UV-B (cerca de 5%) e UV-A

(95% ou mais). Estas porcentagens, entretanto, são aproximações, uma vez que as respectivas

quantidades relativas variam com as estações do ano, hora do dia, latitude e muitos outros

fatores. A maior densidade da radiação UV é recebida nas 4 horas em torno do zênite solar,

isto é, quando o Sol está em seu ponto mais alto no céu. No Brasil isso acontece entre 11 e 15

horas em dias claros de verão. Nessas horas, o ângulo dos raios solares relativamente à

superfície da Terra é tal que a luz tem a menor distância para atravessar a atmosfera e,

portanto, menor oportunidade de ser absorvidos ou refletidos. Os níveis de UVB, em

particular, variam significantemente durante o dia, sendo mais suscetíveis aos fatores

atmosféricos do que a UVA e a luz visível.

8 e 9

Figura 4: Espectro da Radiação Eletromagnética

Fonte: http://www.geocities.com/planetscience/celular/espectro.jpg

O Sol é sem dúvida essencial a nossa vida, entretanto, a exposição prolongada a

radiação UV, tem efeitos deletérios, provocando além do câncer de pele, diversas alterações,

especialmente na pele, como: reações de fotossensibilização, eritema, edema, e dor.

• Fotossensibilização.

Existem fatores endógenos e exógenos.

As doenças causadas por fatores endógenos são: urticária solar, dermatite crônica

actínica e erupções polimorficas. Aquelas causadas por fatores exógenos podem ocorrer

quando uma pessoa inadvertidamente aplica um medicamento tópico sobre a pele ou toma

uma medicação. Esta medicação pode causar, na pele, uma resposta fototóxica ou fotoalérgica

toda vez que a pele sensibilizada for exposta à radiação solar.

• Eritema – vermelhidão da pele (queimadura solar)

A pele tem a fundamental habilidade de responder diretamente à radiação UV e a

inspeção visual é o método mais efetivo de detecção do eritema.

A vermelhidão é devida a um aumento do conteúdo de sangue da pele por dilatação

dos vasos sangüíneos superficiais.

A capacidade da radiação ultravioleta (RUV) de produzir eritema na pele humana é

altamente dependente do comprimento de onda da radiação e é expressa pelo espectro da ação

eritemal e tem sido objeto de interesse teórico e experimental por mais de 70 anos (Tabela 2).

Características da queimadura solar

Meia hora ao meio dia de um dia de sol de verão no Reino Unido, na pele não

climatizada, de uma pessoa caucasiana é normalmente suficiente para resultar numa

subseqüente vermelhidão branda da pele. Seguindo esse grau de exposição o eritema pode não

aparecer por aproximadamente 4 horas embora medidas usando um instrumento mais sensível

que o olho humano para detectar o eritema, mostre que a vasodilatação começa a ocorrer

muito mais rápido. O eritema atinge um máximo à aproximadamente 8-12 horas após a

exposição e desaparece dentro de 1-2 dias. Expondo a pele por períodos crescentes a forte luz

solar do verão progressivamente, encurta o tempo antes do aparecimento do eritema, prolonga

sua persistência e aumenta sua intensidade.

Fatores que influenciam a queimadura solar

A cor da pele é um importante fator na determinação da facilidade com que a mesma

será queimada pelo Sol. Embora pessoas de pele clara requeiram apenas 15-30 minutos ao

meio dia de um dia de sol de verão, para induzir a uma reação eritemal. Pessoas com a pele

moderadamente pigmentada podem requerer 1 a 2 horas de exposição e pessoas com a pele

mais escura (negros) normalmente não sofrerão queimadura solar. Outras características

fenótipicas que podem influenciar a suscetibilidade a queimadura solar são: cor do cabelo, cor

dos olhos e sardas. Baseado na história pessoal de resposta a exposição por 45 a 60 minutos ao

sol do meio dia de um dia de verão no início de junho os indivíduos podem ser agrupados em

seis tipos de pele sol reativos (Tabela 1).

Existem diferenças anatômicas na sensibilidade eritemal. A face, pescoço e tronco são

2 a 4 vezes mais sensíveis que os membros. Essas diferenças anatômicas são compostas pela

variação na exposição solar das diferentes partes do corpo. A superfície vertical de uma

pessoa em pé recebe aproximadamente metade da RUV ambiente enquanto que a superfície

horizontal tais como a região do ombro recebe mais do que 75%.

Não existem diferenças na susceptibilidade a queimadura solar entre os sexos, embora

a sensibilidade eritemal possa mudar com a idade - crianças e pessoas idosas são ditas serem

mais sensíveis. Contudo estudos mais recentes de sensibilidade eritemal em crianças e idosos,

não tem confirmado isso.

Tabela 2: Relação entre o efeito do comprimento de onda e a resposta deletéria à luz

solar.

Resposta deletéria a luz solar Comprimento de onda (nm) / valor do

efeito

queimadura 290 -320 maior; 320-400 menor

melanogenesis 290 -320 maior; 320-400 menor

câncer de pele não melanoma 290 -320 maior; ~ 370 menor

melanoma UVB (?) UVA (?)

elastosis 290 -320 maior; 320-400 menor

1.5) EVIDÊNCIAS DOS EFEITOS CARCINOGÊNICOS DA RADIAÇÃO

ULTRAVIOLETA (RUV)

a) Distribuição anatômica – Numerosos estudos têm demonstrado que

aproximadamente 90% dos Cânceres Basocelulares e mais de metade dos Cânceres

Espinocelulares ocorrem na cabeça e pescoço.

b) Diferenças raciais – Caucasianos são muito mais propensos a desenvolver NMSC

que raças com pigmentação da pele mais acentuada. Além disto, quando o câncer de pele

ocorre em raças mais pigmentadas ele não é encontrado predominantemente em áreas

expostas ao Sol.

c) Fenótipo – Fatores genéticos associados com a tendência para desenvolver câncer de

pele são: olhos claros, cabelos claros, tendência à queimadura solar e pequena capacidade de

bronzeamento.

d) Distribuição geográfica – Pesquisas da incidência de câncer de pele realizadas em

diversos Países produziram ampla evidência que existe um gradiente de latitude, apontando

que a incidência aproximadamente dobra a cada 10 graus que nos aproximamos do Equador.

e) Local de trabalho – Estudos epidemiológicos têm mostrado que trabalhadores em

áreas externas têm mais probabilidade a desenvolver câncer de pele que trabalhadores em

áreas internas. Dados coletados na Suécia indicam que os trabalhadores em áreas externas são

aproximadamente três vezes mais propensos a desenvolver câncer de pele.

10 e 11

A tabela 3 abaixo apresenta um resumo das observações sobre o câncer de pele.

Tabela 3: Resumo das observações históricas sobre o câncer de pele

OBSERVAÇÃO INVESTIGADOR ANO

Lesões pré-cancerosas de pele localizavam-se

predominantemente em áreas expostas à luz

P.G. Unna 1894

A pigmentação protege parcialmente contra o

câncer de pele

J.N. Hyde 1906

Encontrou-se câncer de pele mais freqüentemente

nas áreas do corpo expostas à luz solar

A.H. Roffo 1932

Raios UV com comprimentos de onda menores

que 320nm, são carcinogênicos

H.F. Blum 1940

Quanto maior a intensidade da luz solar, maior a

freqüência de câncer de pele em caucasianos

E.J. MacDonald 1948

Bantus, exceto os albinos, têm menos câncer de

pele que os brancos

M.P.Shapiro 1953

Irradiação por luz UV diminui o número de

células de Langerhans identificáveis

J. Fan 1959

A latitude e a cor da pele afetam a freqüência de

câncer de pele

J.C. Belisario 1962

A degeneração histopatológica da pele, ocorre

em menor proporção nos negros que nos brancos.

J.M. Knox 1962

A radiação UV lesa o DNA, “ in vivo”, no tecido

conectivo dérmico humano.

W.L. Epstein 1969

Radiação UVA é carcinogênica P.D.Forbes 1982

Lesão de pele por UV em animais protegidos e

não protegidos pelo uso de filtros solares

L.H.Kligman 1982

1.6) Protetor Solar

O câncer de pele é considerando, atualmente, um grave problema de saúde pública.

Como meio de prevenção e proteção, os profissionais da saúde têm orientado a população,

através das recomendações básicas:

-evitar a exposição nas horas de maior incidência da irradiação solar.

- usar sistematicamente os protetores solares.

Os protetores solares são preparações de uso tópico que reduzem os efeitos deletérios

da radiação ultravioleta. Estudos têm demonstrado que, além de oferecer proteção contra a

formação de eritema induzido por radiação ultravioleta em peles animal e humana, também

inibem a fotocarcinogênese em pele animal.

Como mecanismo de ação, os ativos presentes nos protetores solares, podem bloquear

ou absorver a radiação solar. Os absorvedores mais utilizados nas formulações são: os p-

aminobenzoatos, os salicilatos, os cinamatos e as benzofenonas. As substâncias bloqueadoras

mais empregadas são: dióxido de titânio, óxido de alumínio e óxido de zinco. Predominantes

nos filtros com alto fator de proteção solar, bloqueiam os raios UVA e UVB, mas costumam

ser menos aceitos pelos usuários por deixarem uma coloração esbranquiçada na pele. Para

conferir proteção equivalente sem conseqüências estéticas ou desconfortáveis e

abrangência

nos comprimentos de onda UVA e UVB muitos filtros utilizam, em altas concentrações,

misturas de substâncias absorvedoras da radiação,

no entanto, quanto maior a concentração

maior o potencial de irritação e sensibilização, bem como, o custo do produto final. Além

disso, cada vez mais crianças, idosos e pessoas de pele sensível utilizam filtros solares.

14 -17

A efetividade dos fotoprotetores vai depender, portanto, da disponibilidade de produtos

que abranjam a região UVA e UVB e sejam estáveis, isto é, tenham uma vida útil longa. Os

princípios ativos utilizados nas formulações devem, assim, ser química e fotoquimicamente

inertes. Se eles não são, ligações químicas podem ser rearranjadas, levando a novas moléculas

cuja absorvância UV pode ser modificada ou mesmo perdida e as propriedades toxicológicas

alteradas. Radicais podem reagir para formar espécies de oxigênios reativos, levando a dano

biológico. Além disso, fluorescência e fosforescência, embora não danosas, não são

desejáveis. Portanto, a energia luminosa absorvida pelos filtros UV, se não espalhada ou

refletida, deve apenas ser transformada em energia térmica inócua.

18 - 21

É importante que os fabricantes ao formularem seus produtos levem em conta que no

uso pretendido o produto estará necessariamente exposto a radiações com energia suficiente

para produzir reações fotoquímicas.

Com relação ao uso, a efetividade também depende de outros fatores, entre eles, a

escolha do produto adequado, uma distribuição homogênea sobre a pele, reaplicação sempre

que houver remoção física e respeito ao tempo máximo de permanência ao sol que o produto

permite.

Para calculá-lo, basta saber quanto tempo conseguimos permanecer ao sol, sem

nenhum protetor solar, até aparecer na pele uma leve vermelhidão (eritema) e multiplicar o

valor encontrado pelo FPS do produto. Por exemplo, se o tempo máximo de exposição ao sol,

sem filtro solar, for de seis minutos e o fator de proteção solar do produto utilizado for quinze,

o tempo máximo de exposição será de noventa minutos. A reaplicação do produto não

ampliará o tempo de permanência ao sol. Para um tempo maior deve-se utilizar um protetor

solar com FPS superior.

O FPS é calculado através de experimentos “in vivo”, definido como sendo a dose

mínima eritematosa (DME) na pele protegida dividida pela dose mínima eritematosa na pele

não protegida.

FPS = DME pele protegida/ DME pele não protegida

Dose mínima eritematosa (DME) é definida como a dose mínima de radiação

ultravioleta requerida para produzir a primeira reação eritematosa perceptível com bordas

claramente definidas, observadas entre 16 e 24 horas após sua exposição à radiação

ultravioleta. A escolha do FPS adequado dependerá principalmente do tipo de pele, bem

como, do tempo de exposição solar pretendido pelo consumidor.

Com relação à legislação brasileira os filtros solares são classificados como

cosméticos, submetidos ao sistema de Vigilância Sanitária, lei 6360/ 1976, sendo

regulamentados pelos Decretos 79.094/1977 e 83.239/1979 e complementados por Resoluções

da Diretoria Colegiada (RDC), através de regulamentos técnicos, harmonizados no âmbito do

Mercosul, que adotam definições, metodologias analíticas para a determinação do FPS,

resistência à água, estabelecem listas das substâncias permitidas e proibidas, suas

concentrações, critérios e procedimentos para o registro de produtos, dizeres obrigatórios que

devem figurar nas rotulagens.

23 -29

Os protetores solares são definidos como: “Produtos anti-solares destinados a proteger

a pele contra queimaduras e endurecimento provocado pelas radiações, diretas ou refletidas,

de origem solar ou não, dermatologicamente inócuos e isentos de substâncias irritantes ou

foto-sensibilizantes e nos quais as substâncias utilizadas como protetores sejam estáveis e não

se decomponham sob a ação das radiações ultravioletas, por tempo mínimo de duas horas.”

Estão incluídos na lista de cosméticos Grau 2, “produtos com risco potencial,

possuindo indicações específicas, cujas características exigem comprovação de segurança e

eficácia, bem como informações, cuidados, modo e restrições de uso”. Os produtos

cosméticos classificados Grau 1, devido às características intrínsecas do produto, não

necessitam comprovar segurança e eficácia e nem conter na rotulagem, informações

detalhadas quanto ao modo de uso e suas restrições.

O esclarecimento do público, a nível mundial, a respeito dos benefícios do uso de

filtros solares tem crescido nos últimos anos. Nesse meio tempo organizações normalizadoras

particulares e governamentais tem incrementado seus esforços no sentido de desenvolver

procedimentos de testes clínicos padronizados para efetivamente avaliar os filtros solares.

Apesar das tentativas de se padronizar as metodologias para se chegar a um índice de proteção

solar mundialmente válido, ainda permanecem diferenças entre os procedimentos de teste

utilizados.

20 e 21

Aqui no Brasil, a determinação do fator de Proteção Solar (FPS), segundo a legislação

vigente (RDC 237), deverá realizar-se por uma das seguintes normas:

Federal Register – Norma FDA – Department of Health and Human Services –

Wednesday May 12, 1993 – Sunscreen Drug Product for Over the Counter Human Use; Final

Monograph; Final Rule; Subparte D Testing Procedure, seções 352.70 a 352.73.

Norma Colipa – Colipa Sun Protection Factor Test Method – The European Cosmetic

Toiletry and Perfumary Association ref. 94/289 October 1994 (Anexo II).

Os produtos cosméticos denominados multifuncionais, também são regulamentados,

mesmo não sendo classificados como protetores solares:

- “Os produtos de Higiene Pessoal, Cosméticos e Perfumes que proclamem um valor

de FPS ou atividade de proteção solar, mesmo que não sejam enquadrados como protetores

solares, deverão comprovar o declarado, que não deve ser menor que FPS 2, com uma das

metodologias indicadas anteriormente.

- Os produtos de Higiene Pessoal, Cosméticos e Perfumes que não proclamem um

valor de FPS em sua rotulagem, mas declararem na mesma que “contém filtro solar” deverão

comprovar proteção solar de no mínimo FPS 2 através de sua formulação ou ensaios “in vivo”

ou “in vitro” ou por trabalhos científicos.

- Os produtos de Higiene Pessoal, Cosméticos e Perfumes que contenham filtros

solares unicamente como coadjuvantes no cuidado da pele ou para proteção de sua formulação

e que não proclamem atividade como protetor solar nem mencionem um valor de FPS, não

necessitam adequar-se à esta normativa.”

A determinação do fator de proteção solar no que se refere à radiação UVA é também

uma importante questão a ser equacionada uma vez que os métodos “in vivo” existentes para

medir a proteção UVB, não são aplicáveis para avaliação da proteção frente aos raios UVA,

pois, em razão de sua menor energia, o tempo de exposição necessário para produzir o

primeiro eritema lesivo seria aproximadamente 1000 vezes maior, o que poderia inclusive

colocar em risco a saúde dos voluntários face às outras possíveis lesões já citadas.

À quantificação da proteção UVA, segundo a legislação vigente, deverá ser realizada

através de metodologias reconhecidas, devidamente validadas.

A Agência Nacional de Vigilância Sanitária publicou, em 2006, a Resolução RDC nº

47 que estabelece a Lista de Filtros Ultravioletas Permitidos para Produtos de Higiene

Pessoal, Cosméticos e Perfumes e suas Concentrações Máximas Permitidas (tabela 4).

Tabela 4: Lista de Filtros Ultravioletas Permitidos

Para verificar se os limites estabelecidos, pela legislação vigente, estão sendo

respeitados é necessário o desenvolvimento de metodologia analítica para quantificar e

identificar os princípios ativos presentes nos produtos comerciais.

Os conhecimentos adquiridos ao longo dos últimos 50 anos assinalam que a radiação

solar é um dos maiores efeitos ambientais deletérios a nossa saúde. A busca por uma

fotoproteção efetiva torna-se desta forma uma prioridade para diminuir os riscos a saúde. O

estimulo por todos os profissionais da saúde ao uso sistemático de protetores solares surge

como uma opção natural e direta de reduzir danos causados pela radiação solar.

5 e 6

Considerando as ações da vigilância sanitária de proteção à saúde da população, torna-

se evidente a necessidade de melhor entender a eficácia e segurança dos fotoprotetores de

modo a permitir uma avaliação crítica da qualidade dos produtos cosméticos, protetores

solares, em uso no Brasil. Baseando-se nas legislações vigentes, bem como verificando se os

parâmetros/limites estabelecidos estão sendo observados, avaliando a eficácia dos mesmos,

permitirão estes itens contribuir para a proteção necessária.

2) OBJETIVO GERAL

Avaliar a qualidade dos produtos de proteção solar mais comercializados no Brasil.

2.1) OBJETIVOS ESPECÍFICOS

3.1) Identificar os protetores solares mais comercializados no Brasil e seus respectivos

princípios ativos.

3.2) Desenvolver metodologia analítica para determinação dos teores destes princípios para o

controle da qualidade dos produtos, postos ao consumo, no mercado nacional.

3.3) Otimizar a metodologia analítica desenvolvida.

3.4) Avaliar e analisar a possível fotodegradação dos princípios ativos utilizados nas

formulações dos protetores solares.

3.5) Verificar se as informações contidas nos rótulos dos protetores solares estão de acordo

com as legislações vigentes e avaliar se elas orientam o consumidor quanto à escolha e uso do

produto.

3) METODOLOGIA

3.1) EQUIPAMENTOS

- Cromatógrafo líquido de alta eficiência (CLAE), fabricante Shimadzu com detector

ultravioleta-visível (espectrofotométrico) com conjunto de diodos SPD-M10A, forno CTO-

20A, bomba LC-10AD e injetor automático SIL-20A. Programa usado para aquisição de

dados Class-vp (Figura 6)

- Cromatógrafo líquido de alta eficiência (CLAE), fabricante Shimadzu, modelo SPD 10AV

com detector ultravioleta-visivel e bomba LC-10AD. Programa usado para aquisição de dados

Class-vp (Figura-5).

- Cromatógrafo líquido de alta eficiência (CLAE), fabricante Waters com detector

ultravioleta-visível óptico modelo 2487, forno ULSTD 3101-1, bomba modelo 515 e injetor

automático modelo 717 plus.

- Simulador solar – Suntest, fabricante Heraeus, potência 765w/m², lâmpada NXE 1500ª

(Figura 7)

- Centrífuga-Excelsa, fabricante Fanem, modelo 206.

- Aparelho de ultra-som, fabricante Branson, modelo 3210

- Balança analítica com resolução de 0,01 mg, fabricante Mettler Toledo AX 205

- Sistema de purificação de água Milli-Q, fabricante Milipore modelo A-10

Figura 5 - Cromatógrafo líquido de alta eficiência, fabricante Shimadzu, modelo SPD 10AV

com detector ultravioleta-visivel e bomba LC-10AD. Programa usado para aquisição de dados

Class-vp.

Figura 6 - Cromatógrafo líquido, fabricante Shimadzu com detector ultravioleta-visivel

(espectrofotométrico) com conjunto de diodos (DAD) completo.

Figura 7 - Simulador solar – Suntest, fabricante Heraeus, potência 765w/m², lâmpada NXE

1500A

3.2) REAGENTES E MATERIAIS

- Água grau CLAE (0,22 µm) purificada por meio do sistema de purificação Milli-Q-Millipore

- Acetonitrila grau CLAE – Merck

- Metanol grau CLAE – Merck

- Coluna Lichrospher® de fase reversa de sílica recoberta com octadecilsilano (C18) com

partícula de 5µm de tamanho e dimensões de 4 mm de diâmetro interno e 250 mm de

comprimento, fabricante Merck .

- Coluna Lichrospher® de fase reversa de sílica recoberta com octadecilsilano (C18) com

partícula de 5µm de tamanho e dimensões de 3,9 mm de diâmetro interno e 150 mm de

comprimento, fabricante Merck .

- Coluna Lichrospher® semi-preparativa de fase reversa de sílica recoberta com

octadecilsilano (C18) com partícula de 10,0µm de tamanho e dimensões de 7,0 mm de

diâmetro interno e 250 mm de comprimento, fabricante Merck .

3.3) PADRÕES E MATERIAIS DE REFERÊNCIA

octil salicilato- USP

- Benzofenona - 3 - USP

- octil metoxicinamato - USP

- Octil dimetil PABA - Sigma

- 3-(4-metilbenzilideno)-d-1-cânfora -Sigma

- Antranilato de mentila - Merck

- p-metoxicinamato de isoamila.- Sigma

3.4) PROTETORES SOLARES UTILIZADOS

PROTETOR SOLAR A - FPS 8

COMPONENTE Concentração (%)

Benzofenona 1,5

Metoxicinamato de octila 5,5

Salicilato de octila 1,0

PROTETOR SOLAR B - FPS 8

COMPONENTE Concentração (%)

Benzofenona-3 3 a 2

Metoxicinamato de octila 7,0

PROTETOR SOLAR C - FPS 15

COMPONENTE Concentração (%)

Benzofenona-3 3 a 4

Metoxicinamato de octila 7,5

PROTETOR SOLAR D - FPS 20

COMPONENTE Concentração (%)

Benzofenona 3,5

Metoxicinamato de octila 7,0

Salicilato de octila 1,0

PROTETOR SOLAR E - FPS 30

COMPONENTE Concentração (%)

Benzofenona-3 4,0

Metoxicinamato de octila 7,5

Salicilato de octila 2,0

PROTETOR SOLAR F - FPS 30

COMPONENTE Concentração (%)

Metoxicinamato de octila 7,5

Salicilato de octila 5,0

PROTETOR SOLAR G - FPS 30

COMPONENTE Concentração (%)

Benzofenona-3 4

Metoxicinamato de octila 7,5

Salicilato de octila 5

Homosalete 5

3.5) IDENTIFICAÇÃO DOS PROTETORES SOLARES MAIS

UTILIZADOS NO BRASIL E SEUS RESPECTIVOS PRINCÍPIOS

ATIVOS

Foram selecionados para este estudo, os protetores solares com fator de proteção solar

entre 8 e 30, mais comercializados, segundo os dados da Associação Brasileira da Industria

de Higiene Pessoal, Perfumaria e Comércio – ABHIPEC.

PARTE I – MÉTODO PARA ANÁLISE DE ATIVOS DA FORMULAÇÃO

3.6) DESENVOLVIMENTO DE METODOLOGIA PARA ANÁLISE

QUANTITATIVA.

Os produtos comerciais de proteção solar são matrizes muito complexas. Para garantir

alto fator de proteção solar e abrangência nos comprimentos de onda UV-A e UV-B estes

produtos apresentam nas suas formulações vários princípios ativos em elevadas

concentrações, além de outras substâncias, tornando cada um destes produtos um caso

bastante diferenciado.

A cromatografia líquida, dentre as diversas metodologias analíticas descritas na

literatura, evidencia-se como uma das mais versáteis e precisas para análise de misturas

altamente complexas. Os métodos de análise utilizando cromatografia líquida de alta

resolução (CLAE) por serem em sua essência métodos de separação apresentam a vantagem

de separar os componentes da mistura em análise antes da identificação e quantificação o que

reduz os problemas de interferência em amostras como as em questão.

31-35

Considerando que o método a ser desenvolvido destina-se à utilização no controle da

qualidade de rotina dos protetores solares, em uso no Brasil, a versatilidade, a abrangência e a

facilidade de operação são características essenciais que favorecem o uso na rotina

laboratorial, no controle da qualidade destes produtos. Para tanto foi desenvolvida

metodologia analítica por CLAE, para a identificação e quantificação dos princípios ativos,

mais empregados nas formulações.

3.6.1) PREPARO DAS AMOSTRAS DE PROTETORES SOLARES

Para avaliar a aplicabilidade do método foram selecionados cinco produtos

amplamente comercializados, abrangendo desde o FPS 8 até 30:

- PROTETOR SOLAR A - FPS 8

- PROTETOR SOLAR B - FPS 8

- PROTETOR SOLAR C - FPS 15

- PROTETOR SOLAR D - FPS 20

- PROTETOR SOLAR E - FPS 30

Amostras contendo 1g dos produtos comerciais foram pesadas em tubo de centrífuga.

Adicionou-se 500µL de uma solução 2M de ácido sulfúrico e 10mL de metanol. A mistura foi

levada ao ultrassom por 30min e logo em seguida centrifugada a 1000G por 10min. O

sobrenadante foi pipetado, filtrado com membrana Millipore 0,45 µm/25mm e em seguida

preparadas as soluções de trabalho por diluição. As soluções foram homogeneizadas e

injetadas no cromatógrafo.

CONDIÇÕES CROMATOGRÁFICAS

- Coluna cromatográfica ® C18 (5µm, 150 x 3,9 mm d.i.)

- Comprimento de onda 254 nm

- Fase móvel – mistura de 90 partes de acetronitrila e 10 partes de água

- Fluxo – 0,8 mL / minuto

- Volume de injeção - 5 µL

- Diluente - metanol

Figura 8: Cromatograma do protetor solar FPS 20 contendo benzofenona-3 (2,3 min), octil

metoxicinamato (5,2 min) e salicilato de octila (5,9 min).

Amostra D

3.6.2) SEPARAÇÃO CROMATOGRÁFICA DO OCTIL

METOXICINAMATO E DO SALICILATO DE OCTILA

Considerando que um grande número de produtos comerciais têm em suas formulações

octil metoxicinamato e salicilato de octila, de difícil separação cromatográfica, foram

avaliadas as alterações no fluxo e na composição da fase móvel, variando a proporção de

acetonitrila/água: 70:30; 75:25; 80:20 e 85:15. A proporção 80:20 demonstrou melhor

resolução entre os sinais cromatográficos, com fluxo de 1,0 mL/minuto.

Figura 9

: Cromatograma de produto FPS 30 contendo respectivamente: benzofenona-3, octil

metoxicinamato e salicilato de octila

CONDIÇÕES CROMATOGRÁFICAS :

- Coluna cromatográfica ® C18 (5µm, 150 x 3,9 mm d.i.)

- Comprimento de onda 254 nm

- Fase móvel – mistura de 80 partes de acetronitrila e 20 partes de água

- Fluxo - 1,0 mL/minuto

- Volume de injeção - 5 µL

- Diluente - metanol

3.6.3) EXPERIMENTO PARA DETERMINAR A FAIXA DE

CONCENTRAÇÂO

Para cada princípio ativo, lista abaixo, foi determinada a faixa de concentração de

interesse. A partir desses dados, foram preparadas as soluções de cada princípio ativo em

metanol, pesando acuradamente em balança analítica. A faixa de concentração determinada,

baseou-se nas respectivas absortividades molares.

 benzofenona-3,

 salicilato de octila,

 octil dimetil PABA,

 octilmetoxicinamato

 3-(4-metilbenzilideno)-d-1-cânfora,

 antranilato de mentila,

 p-metoxicinamato de isoamila

3.6.4) DETERMINAÇÃO DA FAIXA LINEAR DE RESPOSTA

As faixas de linearidade de resposta, para cada princípio ativo, foram determinadas

considerando a aplicação do método. A partir desses dados foram preparadas as curvas

analíticas, com soluções padrão, em cinco níveis de concentração.

Figura 10: Curva de calibração do octil metoxicinamato

3.6.5) OTIMIZAÇÃO METODOLÓGICA

3.6.5.1) CONDIÇÕES CROMATOGRÁFICAS

- Coluna cromatográfica ® C18 (5µm, 250 x 4,0 mm d.i.)

- Detector de absorção molecular na região do ultravioleta-visível com arranjo de diodos

- Comprimento de onda 254 nm

- Fase móvel – mistura de 80 partes de acetronitrila e 20 partes de água

- Fluxo - 1,0 mL/minuto

- Volume de injeção - 5 µL

- Diluente - metanol

3.6.5.2) CUIDADOS E MONITORAMENTO DAS CONDIÇÕES

CROMATOGRÁFICAS

Alguns cuidados durante todo o estudo foram tomados para que os sinais estudados

não fossem influenciados:

- As colunas utilizadas na otimização eram novas e dentro da validade.

- A água usada era deionizada de grau CLAE (0,22 µm); a acetonitrila e o metanol

empregados possuiam grau CLAE (fabricante Merck); os padrões eram certificados pela USP.

Os cromatógrafos líquidos, com procedimentos de verificação de desempenho de equipamento

realizado anualmente.

A pureza dos sinais, durante a otimização, foram acompanhadas com auxílio de um detector

de absorção molecular na região do ultravioleta-visível

(espectrofotométrico) com conjunto de

diodos (DAD) o que permitiu verificar através da varredura se existia alguma absorção

diferente na região do espectro.

A temperatura ambiente do laboratório, a temperatura de acondicionamento da coluna e a

pressão na coluna foram monitoradas durante todo o estudo.

3.6.6) ADEQUAÇÃO DO SISTEMA

Utilizando o cromatógrafo liquido, fabricado pela Shimadzu com detector de absorção

molecular na região do ultravioleta-visível com arranjo de diodos. Foram injetadas soluções

contendo: benzofenona-3, octil metoxicinamato e o salicilato de octila nas concentrações

(0,10mg/mL; 1,74mg/mL e 1,58mg/mL) respectivamente e metanol, utilizado como diluente,

para a determinação dos parâmetros relativos a adequação do sistema.

e 39

3.6.7) DETERMINAÇÃO DA SELETIVIDADE

Foram traçados os espectros de absorção molecular no ultravioleta dos sinais

cromatográficos referentes a benzofenona-3, octil metoxicinamato e salicilato de octila no

produto de fotoproteção e dos sinais referentes às substâncias padrões utilizadas. Foram feitas

comparações dos espectros antes e durante o tempo de retenção característico de cada

substância.

40 e 41

3.6.8) DETERMINAÇÃO DA FAIXA LINEAR DE TRABALHO

A faixa linear de trabalho foi definida conforme o estabelecido pela Agência Nacional

de Vigilância Sanitária no Guia de Validação de Métodos Analíticos.

Para a determinação quantitativa da benzofenona-3, octil metoxicinamato e o salicilato

de octila foi escolhida a faixa de 70 % a 130 % da concentração teórica do teste, faixa que

engloba tanto a faixa para o ensaio de teor (80 % a 120 %) quanto o ensaio de uniformidade

de conteúdo (70 % a 130 %) descrito na legislação.

3.6.9) DETERMINAÇÃO DA LINEARIDADE

3.6.9.1) Delineamento experimental

Foram seguidos os procedimentos experimentais para a avaliação da linearidade, para

a benzofenona-3, octil metoxicinamato e salicilato de octila: determinação da faixa de

concentração de interesse considerando a aplicação do método e que as concentrações

esperadas nas amostras devam estar próximas do centro desta faixa; preparo de curva analítica

com soluções padrão com sete níveis de concentração, igualmente espaçados, preparados

separadamente, com três réplicas independentes de cada nível e injeções das soluções em

ordem aleatória.

Em seguida foi aplicado o método dos mínimos quadrados ordinários (MMQO),

incluindo estimativa dos parâmetros da regressão e tratamento dos valores extremos: aquisição

dos dados experimentais (cromatogramas); estimativa da inclinação, interseção, resíduos da

regressão, respectivas variâncias e R

; inspeção visual dos dados; construção e inspeção visual

do gráfico x-y das respostas versus à concentração do analito e investigação e exclusão de

valores extremos pelo método dos resíduos padronizados por Jacknife e por fim a validação

do uso do MMQO por meio da verificação das premissas relativas aos resíduos da regressão e

ajuste ao modelo linear: normalidade dos resíduos pelo teste de Ryan-Joiner; independência

dos resíduos pelo teste de Durbin-Watson; homocedasticidade dos resíduos pelo teste de

Brown-Forsythe e verificação da significância da regressão e do ajuste ao modelo linear por

análise de variância.

42; 43; 44; 45; 46; 47 e 48

3.6.9.2) Preparo da solução estoque (SE)da benzofenona-3

Pesou-se três massas de benzofenona-3 padrão USP, estas massas foram diluídas com

metanol e transferidas para balão volumétrico de 100 mL. Alíquota de 20mL foi retirada e

transferida para balão volumétrico de 200mL. Considerando a pureza da benzofenona-3 de

100 %, o procedimento resultou em três soluções com concentrações de:

1ª Pesada = → Concentração 1ª SE = 0,2015 mg/mL

2ª Pesada = → Concentração 2ª SE = 0,2036 mg/mL

3ª Pesada = → Concentração 3ª SE = 0,2078 mg/mL

3.6.9.3) Preparo da solução estoque (SE) de octil metoxicinamato

Pesou-se três massas de octimetoxicinamato padrão USP, estas massas foram diluídas

com metanol e transferidas para balão volumétrico de 100 mL. Alíquota de 20mL foi retirada

e transferida para balão de 200mL. Considerando a pureza da benzofenona-3 de 99,6 %, o

procedimento resultou em três soluções com concentrações de:

1ª Pesada = → Concentração 1ª SE = 0,5075 mg / mL

2ª Pesada = → Concentração 2ª SE = 0,5162 mg / mL

3ª Pesada = → Concentração 3ª SE = 0,5143 mg / mL

3.6.9.4) Preparo da solução estoque (SE) de salicilato de octila

Pesou-se três massas do salicilato de octila

padrão USP, estas massas foram diluídas

com metanol e transferidas para balão volumétrico de 100 mL. Alíquota de 20mL foi retirada

e transferida para balão de 200mL. Considerando a pureza do salicilato de octila de 99,5 %, o

procedimento resultou em três soluções com concentrações de:

1ª Pesada = → Concentração 1ª SE = 1,556 mg / mL

2ª Pesada = → Concentração 2ª SE = 1,609 mg / mL

3ª Pesada = → Concentração 3ª SE = 1,590 mg / mL

3.6.9.5) Preparo das soluções de trabalho da benzofenona-3; octil

metoxicinamato e salicilato de octila

Foram tomadas alíquotas das soluções estoques para o preparo das soluções de

trabalho, conforme as Tabelas (5, 6,e 7), todas as alíquotas foram retiradas com micropipetas

automáticas e transferidas para balão volumétrico de 10 mL, todos os balões sendo

completados com diluente e em seguida as soluções homogeneizadas e injetadas no

cromatografo líquido.

Tabela 5 - Quadro dos volumes tomados das soluções estoques e às concentrações das

soluções de trabalho da benzofenona-3

Alíquota (mL) 3,500 4,000 4,500 5,000 5,500 6,000 6,500

1ªConc. (mg/mL)

0,07052 0,08060 0,09067 0,1007 0,1108 0,1209 0,1310

2ªConc. (mg/mL)

0,07126 0,08144 0,09162 0,1018 0,1120 0,1222 0,1323

3ªC.Conc.(mg/mL)

0,07273 0,08312 0,09351 0,1039 0,1143 0,1247 0,1351

Tabela 6 - Quadro dos volumes tomados das soluções estoques e às concentrações das

soluções de trabalho do octil metoxicinamato

Alíquota (mL) 3,500 4,000 4,500 5,000 5,500 6,000 6,500

1ªConc. (mg/mL)

0,1776 0,2029 0,2283 0,2537 0,2790 0,3044 0,3297

2ªConc. (mg/mL)

0,1807 0,2065 0,2323 0,2581 0,2839 0,3097 0,3355

3ªC.Conc.(mg/mL)

0,1801 0,2057 0,2314 0,2572 0,2829 0,3086 0,3343

Tabela 7 - Quadro dos volumes tomados das soluções estoques e às concentrações das

soluções de trabalho do salicilato de octila

Alíquota (mL) 3,500 4,000 4,500 5,000 5,500 6,000 6,500

1ªConc. (mg/mL)

0,5448 0,6226 0,7004 0,7783 0,8561 0,9339 1,012

2ªConc. (mg/mL)

0,5633 0,6438 0,7243 0,8048 0,8852 0,9657 1,046

3ªC.Conc.(mg/mL)

0,5567 0,6362 0,7157 0,7953 0,8748 0,9543 1,034

3.6.10) DETERMINAÇÃO DA EXATIDÃO

Como a matriz do produto de fotoproteção não estava disponível, o método empregado

para a determinação da exatidão foi o método de adição padrão, já que a exatidão pode ser

expressa como a % de recuperação do analito.

42; 49 e 50

Foram preparadas as curvas analíticas, cada uma com sete níveis, com adição padrão

em solução do protetor solar G-FPS 30 para cada analito: benzofenona-3, octil

metoxicinamato e salicilato de octila.

A Exatidão foi comprovada pelo cálculo da recuperação

de cada analito.

3.6.10.1) Preparo das soluções estoque (SE) dos analitos

Pesou-se 0,2061g de benzofena-3, 0,5167g do octil metoxicinamato e 0,3181g do

salicilato de octila. Essas massas foram diluídas com metanol e transferidas com o diluente

para balão volumétrico de 100 mL, resultando nas soluções:

-benzofenona-3 (2,061mg/mL)-(SE 1)

-octil metoxicinamato (5,167mg/mL)-(SE 2)

-salicilato de octila (3,181mg/mL)-(SE 3)

3.6.10.2) Preparo da solução estoque do protetor solar G-FPS 30 (SEP)

Pesou-se 1,6037g da amostra do produto em tubo de ensaio. Adicionou-se 1mL de

ácido sulfúrico 2M e 10 mL de metanol. Levou-se ao ultrassom por 30 min e logo após,

centrifugadou-se por 30 min. O sobrenadante foi pipetado e filtrado em membrana Millipore

de 45µm, sendo transferido para balão volumétrico de 100mL.

3.6.10.3) Preparo das soluções de trabalho da adição padrão dos analitos à

solução originada do protetor solar G-FPS 30.

Foram preparadas curvas de adição padrão para cada analito. Alíquotas das soluções

estoques foram tomadas (SE 1, SE 2 e SE 3) de cada analito e adicionadas a 0,5 mL da

solução da amostra do protetor solar G-FPS 30 (SEP), conforme o Tabela 8. As alíquotas

foram retiradas com pipetas automáticas e transferidas para balão volumétrico de 10 mL, os

volumes foram completados com metanol e em seguida as soluções homogeneizadas e as

amostras injetadas no cromatógrafo.

Tabela 8 - Quadro dos volumes (mL) tomados da SE dos analitos sobre um nível básico da

solução do protetor solar G-FPS 30

SEP (mL)

0,5 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5

SE 1 (mL) SE 2 (mL) SE 3 (mL)

0 4,0 4,5 5,0 5,5 6,0 6,5

SEP (solução estoque do produto)

- SE1 (solução estoque padrão da benzofenona-3)

- SE2 (solução estoque padrão de octil metoxicinamato)

- SE3 (solução estoque padrão de salicilato de octila)

3.7) DOSEAMENTO DOS ATIVOS NO PROTETOR SOLAR G - FPS 30

Amostra contendo 1,5988g do protetor solar G-FPS 30 foi pesada em tubo de

centrifuga. Adicionou-se 1mL de uma solução 2M de ácido sulfúrico e 10mL de metanol. A

mistura foi levada ao ultrassom por 30min e logo em seguida centrifugada a 1000G por

30min. O sobrenadante foi pipetado, filtrado com membrana Millipore 0,45µm/25mm, sendo

transferido para balão volumétrico de 100mL e completado com metanol. Em seguida foram

preparadas às soluções para serem injetadas no cromatógrafo líquido:

- Octil metoxicinamato e salicilato de octila - foram injetados sem diluição.

- Benzofenona-3- alíquota de 1,6mL foram pipetados e transferidos para balão volumétrico de

10mL, sendo completando com metanol.

Após as injeções das soluções, foram obtidas as áreas dos sinais correspondentes, para

o doseamento dos ativos a partir das curvas analíticas.

4.0) RESULTADOS E DISCUSSÃO DA PARTE I

4.1) RESULTADOS DA ADEQUAÇÃO DO SISTEMA

Os sinais cromatográficos da benzofenona-3; do octil metoxicinamato e do octil

salicilato apresentaram completa separação em linha de base (Figura 11). A Figura 12

representa o cromatograma desta separação.

Minutes

0.0 2.5 5.0 7.5 10.0 12.5 15.0 17.5 20.0 22.5 25.0 27.5 30.0

mAU

100

200

mAU

100

200

DAD-254 nm

Adequabilidade

Diluente-Rep1

Name

Retention Time

Resolution

Theoretical plates

Asymmetry

Figura 11: Cromatograma do diluente utilizado (metanol)

Minutes

0.0 2.5 5.0 7.5 10.0 12.5 15.0 17.5 20.0 22.5 25.0 27.5 30.0

mAU

100

200

mAU

100

200

2.379 0.00 98.16 0.55

5.621 2.26 138.37 4.09

19.488 9.41 5672.21 1.04

22.581 2.91 6832.17 1.24

DAD-254 nm

Adequabilidade

Adequabilidade-Rep2

Name

Retention Time

Resolution

Theoretical plates

Asymmetry

Figura 12 -Separação da benzofenona-3 (5,62 min), do octil metoxicinamato (19,49 min) e do

octil salicilato (22,58 min). Condições: coluna C18 (5µm, 250 x 4,0 mm d.i.), fase móvel

mistura de 80 partes de acetonitrilade e 20 partes de água, fluxo 1,0 mL/min, detecção 254nm,

temperatura 30

C, volume injetado 5 µL

Na tabela 9 estão descritos os valores encontrados para os parâmetros: resolução, fator

de assimetria, fator de retenção e número de pratos teóricos das áreas dos sinais

correspondentes a benzofenona-3, octil metoxicinamato e octil salicilato.

Tabela 9 –Parâmetros cromatográficos analisados para a adequação do sistema

Parâmetro cromatográfico BZ OMC OS

Resolução

2,3 - 2,4 - 2,1 9,4 - 9,9 - 8,9 2,9 - 2,9 - 2,9

Fator de assimetria

4,1 - 3,9 - 4,2

1,0 - 1,0 - 1,0 1,2 - 1,2 - 1,2

Fator de retencão

2,6 - 2,6 - 2,6 11,4 - 11,4 - 11,4 13,4 - 13,4 - 13,4

Número de pratos teóricos

138 - 162 - 118 5672 - 5673 - 5679 6832 - 6842 - 6845

4.2) RESULTADOS DA SELETIVIDADE PARA A BENZOFENONA-3,

OCTIL METOXICINAMATO E OCTIL SALICILATO.

Para o monitoramento da pureza dos sinais cromatográficos, foram traçados os

espectros de absorção molecular, no ultravioleta, antes e nos tempos de retenção dos sinais

cromatográficos na amostra do produto de fotoproteção (Figura 13), e nos sinais

cromatográficos das substâncias padrão utilizadas (Figuras 14, 15 e 16). Os espectros de

absorção se sobrepuseram às respectivas substâncias (padrão), demonstrando desta forma a

pureza e a seletividade dos

sinais(Figuras 17 até 22).

A figura 13 - corresponde ao cromatograma da amostra do protetor solar G-FPS 30

Minutes

0 5 10 15 20 25 30

mAU

200

400

mAU

200

400

DAD-254 nm

Amostra FPS 30 2Ķ P - Diluiēćo da Benzofenona

Amostra FPS 30 2 P D 6,25x A3-Rep1

Figura 13 - Sinais cromatográficos da benzofenona-3 (5,72 min), do octil metoxicinamato

(20,22 min) e do octil salicilato (23,22 min). Condições: coluna C18 (5µm, 250 x 4,0 mm

d.i.), fase móvel mistura de 80 partes de acetonitrila e 20 partes de água, fluxo 1,0 mL/min,

detecção 254nm, temperatura 30

C, volume injetado 5 µL

A Figura 14 demonstra o monitoramento da pureza do sinal da benzofenona-3. Antes

do sinal em 4,81 min, há somente o ruído de linha de base. Em 5,72 min o espectro de

varredura de absorção molecular no ultravioleta da substância.

Figura 14 – Espectros de varredura no ultravioleta antes do sinal (4,81min) e no sinal da

benzofenona-3 (5,72 min). Condições: coluna C18 (5µm, 250 x 4,0 mm d.i.), fase móvel

mistura de 80 partes de acetonitrila e 20 partes de água, fluxo 1,0 mL/min, detecção 254nm,

temperatura 30

C, volume injetado 5 µL

A Figura 15 demonstra o monitoramento da pureza do sinal do octil metoxicinamato.

Antes do sinal em 19,15 min, há somente o ruído de linha de base. Em 20,22 min o espectro

de varredura de absorção molecular no ultravioleta da substância.

Spectrum at time 4.81 min.

250 300 350

mAU

0.0

0.5

1.0

1.5

mAU

0.0

0.5

1.0

1.5

4.81 min

Spectrum at time 5.72 min.

250 300 350

mAU

500

1000

mAU

500

1000

5.72 min

Lambda max : 197 200 287 241 323

Lambda min : 199 310 230 262

Figura 15 – Espectros de varredura no ultravioleta antes do sinal (19,15min) e no sinal do

octil metoxicinamato (20,22 min). Condições: coluna C18 (5µm, 250 x 4,0 mm d.i.), fase

móvel mistura de 80 partes de acetonitrila e 20 partes de água, fluxo 1,0 mL/min, detecção

254nm, temperatura 30

C, volume injetado 5 µL

A Figura 16 demonstra o monitoramento da pureza do sinal do octil salicilato. Antes

do sinal em 22,71 min, há somente o ruído de linha de base. Em 23,37 min espectro de

varredura de absorção molecular no ultravioleta da substância.

Figura 16 – Espectros de varredura no ultravioleta antes do sinal (22,71 min) e no sinal do

octil salicilato (23,37 min). Condições: coluna C18 (5µm, 250 x 4,0 mm d.i.), fase móvel

mistura de 80 partes de acetonitrila e 20 partes de água, fluxo 1,0 mL/min, detecção 254 nm,

temperatura 30

C, volume injetado 5 µL

Spectrum at time 19.15 min.

250 300 350

mAU

-0.25

0.00

0.25

0.50

0.75

mAU

-0.25

0.00

0.25

0.50

0.75

19.15 min

Spectrum at time 20.22 min.

250 300 350

mAU

500

1000

mAU

500

1000

20.22 min

Lambda max : 308 192 225 211

Lambda min : 216 200 246

Spectrum at time 22.71 min.

250 300 350

mAU

0.00

0.25

0.50

0.75

mAU

0.00

0.25

0.50

0.75

22.71 min

Spectrum at time 23.37 min.

250 300 350

mAU

100

150

mAU

100

150

23.37 min

Lambda max : 205 238 304 353 367

Lambda min : 192 220 261 352 365

Minutes

0.0 2.5 5.0 7.5 10.0 12.5 15.0 17.5 20.0 22.5 25.0 27.5 30.0

mAU

200

400

mAU

200

400

DAD-254 nm

Seletividade - adiēćo padrćo de Benzofenon 3

Seletividade Benzofenona 3 - Nivel 1-Rep2

Figura 17 - Sinal cromatográfico da benzofenona-3 (5,72 min) padrão. Condições: coluna

C18 (5µm, 250 x 4,0 mm d.i.), fase móvel mistura de 80 partes de acetonitrilade e 20 partes de

água, fluxo 1,0 mL/min, detecção 254 nm, temperatura 30

C, volume injetado 5 µL

Spectrum at time 5.72 min.

250 300 350

mAU

500

1000

mAU

500

1000

5.72 min

Lambda max : 194 287 241 322

Lambda min : 310 230 262

Figura 18– Espectro de varredura no ultravioleta do padrão benzofenona-3. Condições:

coluna C18 (5µm, 250 x 4,0 mm d.i.), fase móvel mistura de 80 partes de acetonitrila e 20

partes de água, fluxo 1,0 mL/min, detecção 254 nm, temperatura 30

C, volume injetado 5 µL

Minutes

0 5 10 15 20 25 30

mAU

200

400

mAU

200

400

DAD-254 nm

Seletividade - adiēćo padrćo de OMS

Seletividade do OMS - Nivel 1-Rep1

Figura 19 - Sinal cromatográfico do octil metoxicinamato (21,66 min) padrão.Condições:

coluna C18 (5µm, 250 x 4,0 mm d.i.), fase móvel mistura de 80 partes de acetonitrila e 20

partes de água, fluxo 1,0 mL/min, detecção 254nm, temperatura 30

C, volume injetado 5 µL

Spectrum at time 21.66 min.

250 300 350

mAU

1000

2000

mAU

1000

2000

21.66 min

Lambda max : 308 300 193 211 225

Lambda min : 301 216 201 246

Figura 20 – Espectro de varredura no ultravioleta do padrão do octil metoxicinamato.

Condições: coluna C18 (5µm, 250 x 4,0 mm d.i.), fase móvel mistura de 80 partes de

acetonitrila e 20 partes de água, fluxo 1,0 mL/min, detecção 254 nm, temperatura 30

volume injetado 5 µL

Minutes

0 5 10 15 20 25 30

mAU

200

400

mAU

200

400

DAD-254 nm

Seletividade - adiēćo padrćo de OS

Seletividade do OS - Nivel 1-Rep1

Figura 21 - Sinal cromatográfico do octil salicilato (23,46 min) padrão. Condições: coluna

C18 (5µm, 250 x 4,0 mm d.i.), fase móvel mistura de 80 partes de acetonitrila e 20 partes de

água, fluxo 1,0 mL/min, detecção 254 nm, temperatura 30

C, volume injetado 5 µL

Spectrum at time 23.46 min.

250 300 350

mAU

1000

2000

mAU

1000

2000

23.46 min

Lambda max : 197 211 213 205 208

Lambda min : 212 206 210 202 220

Figura 22 – Espectro de varredura no ultravioleta do padrão do octil salicilato. Condições:

coluna C18 (5µm, 250 x 4,0 mm d.i.), fase móvel mistura de 80 partes de acetonitrila e 20

partes de água, fluxo 1,0 mL/min, detecção 254 nm, temperatura 30

C, volume injetado 5 µL

4.3) RESULTADO DA AVALIAÇÃO DA CURVA ANALÍTICA DA

BENZOFENONA-3

Foram preparadas três curvas analíticas com as soluções estoque padrão da

benzofenona-3 (SE), contendo sete níveis de concentrações, com três replicatas independentes

de cada nível. Após as injeções das soluções, foram obtidas as áreas do sinal correspondente.

Tabela 10 - Concentrações das soluções para cada nível das curvas de calibração (C.A)

Primeira

C.A

Segunda

C.A

Terceira

C.A

mg/mL mg/mL mg/mL

Nível 1

0,07053

0,07126 0,07273

Nível 2

0,08060

0,08144 0,08312

Nível 3

0,09068

0,09162 0,09351

Nível 4

0,1008

0,1018 0,1039

Nível 5

0,1108

0,1120 0,1143

Nível 6

0,1209

0,1222 0,1247

Nível 7

0,1310

0,1323 0,1351

4.4) AVALIAÇÃO DA LINEARIDADE DA CURVA ANALÍTICA DA

BENZOFENONA-3

Foi confirmada a linearidade da curva analítica da benzofenona-3, na faixa de

concentração estudada. Os valores extremos foram confirmados e retirados pelo teste Jacknife

(em preto na Tabela 11). A premissa de que os resíduos devem seguir a distribuição normal

foi confirmada pelo teste Ryan-Joiner. A variabilidade dos resíduos da regressão ao longo dos

níveis de concentração estudados foi constante, demonstrando homocedasticidade, a estatística

t de Levene não foi significativa (p > 0,05). A independência dos resíduos da regressão foi

evidenciado pelo teste de Durbin-Watson. Alta significância da regressão (p < 0,001) com

desvio da linearidade não significativo (p > 0,05) foi observado. O método esta livre de

tendência (valor p do intercepto > 0,05).

Tabela 11 – Curva analítica da benzofenona-3

Fonte: (SOUZA & JUNQUEIRA, 2005)

Dados da Curva Analítica

Tabela de dados originais

Conc. Resposta

Avaliação de Valores Extremos

mg/mL area

(Teste de Jack-Knife para avaliação de valores extremos)

01 7,01E-02 4,34E+06

02 7,01E-02 4,43E+06

7,01E-02

4,43E+06

04 8,07E-02 5,13E+06

05 8,07E-02 5,15E+06

8,07E-02

5,06E+06

07 9,07E-02 5,87E+06

08 9,07E-02 5,86E+06

9,07E-02

5,83E+06

10 1,01E-01 6,63E+06

11 1,01E-01 6,69E+06

12 1,01E-01 6,67E+06

13 1,11E-01 7,43E+06

14 1,11E-01 7,41E+06

15 1,11E-01 7,39E+06

16 1,21E-01 8,18E+06

17 1,21E-01 8,14E+06

18 1,21E-01 8,11E+06

19 1,31E-01 8,91E+06

20 1,31E-01 8,93E+06

1,31E-01

9,01E+06

Normalidade dos Resíduos

(Teste de Ryan-Joiner)

0,98

0,94

Autocorrelação dos Resíduos

(Teste de Durbin-Watson)

1,96

1,13

Análise de Regressão Linear (Modelo: Y = a + bX)

1,38

Estatísticas da Regressão

7,46E+07 -8,67E+05

Homogeneidade da Variância dos Resíduos

0,9998 0,9996

(Teste de Brown-Forsythe)

17 15

1,15E+09

3,75E-01

ANOVA da Regressão e Teste de Desvio de Linearidade (Falta de Ajuste)

2,13E+00

fonte G.L. SQ MQ F p

7,13E-01 regressão 1 3,45E+13 3,45E+13 3,55E+04 1,00E-26

resíduos 15 1,46E+10 9,72E+08

Resumo da Avaliação

Ajuste 4 5,08E+09 1,27E+09 1,47E+00 2,76E-01

erro puro 11 9,50E+09 8,63E+08

p > 0,05 total 16 3,45E+13

p < 0,001

Observações

p > 0,05

d > dU

Req > Rcrit

Responsável:________________________ Data: ___/___/___ Verificado por:________________________ Data: ___/___/___

Os dados da tabela marcados em vermelho foram avaliados e retirados do

conjunto de dados por se tratarem de valores extremos (outliers). Estes

dados não serão considerados na avaliação das premissas.

Replicatas por Nível (k): N° de Níveis (n):

Análise:

Shimadzu

Data de Confecção da Curva: Curva N°:

Variância Combinada

calculado

r R

Ministério da Saúde

FUNDAÇÃO OSWALDO CRUZ

Instituto Nacional de Controle de Qualidade em Saúde

AVALIAÇÃO DE LINEARIDADE DE CURVA ANALÍTICA

Primeira curva anlitica da benzofenona-3

Equipamento: Responsável: Sonia

Nível

(k)

AVALIAÇÃO DE LINEARIDADE DE CURVA ANALÍTICA

Pág.:1/1

tabelado

(α = 0,05)

A regressão é significativa

Teste de Normalidade (

= 0,05)

Não há desvio de Linearidade

Não há autocorrelação

Segue a Normal

Homogeneidade de variância

Regressão e Teste de Desvio de Linearidade

Autocorrelação dos Resíduos (

= 0,05)

Há Homocedasticidade

area

Concentração (mg/mL)

Coeficiente Angular (b):

Coeficiente Linear (a):

Graus de Liberdade

Concentração (mg/mL)

Req

Rcrit (

= 0,05)

dL (Limite Inferior)

= 0,05

dU (Limite Superior)

= 0,05

d (calculado)

Curva Analítica Final

2000000

4000000

6000000

8000000

10000000

0 0,02 0,04 0,06 0,08 0,1 0,12 0,14

Gráfico de Resíduos

-100000

-50000

50000

100000

0 0,02 0,04 0,06 0,08 0,1 0,12 0,14

4.5) RESULTADOS DA AVALIAÇÃO DA CURVA ANALÍTICA DO

OCTIL METOXICINAMATO

Foram preparadas três curvas analíticas com as soluções estoque padrão do octil

metoxicinamato (SE), contendo sete níveis de concentrações, com três replicatas

independentes de cada nível. Após as injeções das soluções, foram obtidas as áreas do sinal

correspondente.

Tabela 12 - Concentrações das soluções para cada nível das curvas de calibração (C.A)

Primeira

C.A

Segunda

C.A

Terceira

C.A

mg/mL mg/mL mg/mL

Nível 1

0,1776

0,1807

0,1800

Nível 2

0,2029

0,2065

0,2057

Nível 3

0,2283

0,2323

0,2314

Nível 4

0,2537

0,2581

0,2572

Nível 5

0,2790

0,2839

0,2829

Nível 6

0,3044

0,3097

0,3086

Nível 7

0,3297

0,3355

0,3343

4.6) AVALIAÇÃO DA LINEARIDADE DA CURVA ANALÍTICA DO

OCTIL METOXICINAMATO.

Foi confirmada a linearidade da curva analítica do octil metoxicinamato, na faixa de

concentração estudada. Os valores extremos foram confirmados e retirados pelo teste Jacknife

(em preto na Tabela 13). A premissa de que os resíduos devem seguir a distribuição normal

foi confirmada pelo teste Ryan-Joiner. A variabilidade dos resíduos da regressão ao longo dos

níveis de concentração estudados foi constante, demonstrando homocedasticidade, a estatística

t de Levene não foi significativa (p > 0,05). A independência dos resíduos da regressão foi

evidenciado pelo teste de Durbin-Watson. Alta significância da regressão (p < 0,001) com

desvio da linearidade não significativo (p > 0,05) foi observado. O método esta livre de

tendência (valor p do intercepto > 0,05).

Tabela 13 – Curva analítica do OMC

Dados da Curva Analítica

Tabela de dados originais

Conc. Resposta

Avaliação de Valores Extrem os

mg/m L área

(Teste de Jack-Knife para avaliação de valores extrem os)

01 1,76E-01 4,42E+06

02 1,76E-01 4,43E+06

03 1,76E-01 4,43E+06

04 2,03E-01 4,99E+06

2,03E-01

4,98E+06

2,03E-01

4,99E+06

07 2,28E-01 5,60E+06

08 2,28E-01 5,62E+06

09 2,28E-01 5,59E+06

10 2,54E-01 6,24E+06

11 2,54E-01 6,17E+06

12 2,54E-01 6,22E+06

13 2,79E-01 6,83E+06

14 2,79E-01 6,78E+06

15 2,79E-01 6,81E+06

16 3,04E-01 7,41E+06

17 3,04E-01 7,41E+06

18 3,04E-01 7,34E+06

19 3,30E-01 7,92E+06

3,30E-01

7,91E+06

3,30E-01

7,82E+06

Norm alidade dos Resíduos

(Teste de Ryan-Joiner)

0,96

0,94

Autocorrelação dos Resíduos

(Teste de Durbin-W atson)

1,81

1,13

Análise de Regressão Linear (M od elo: Y = a + bX)

1,38

Estatísticas da R egres são

2,30E+07 3,66E+05

Hom ogeneidade da Variância dos Resíduos

0,9996 0,9992

(Teste de Brown-Forsythe)

17 15

1,16E+09

-1,10E-01

ANOV A da Regressão e Teste de D esvio de Linearidade (Falta de Ajuste)

2,13E+00

fonte G .L. SQ MQ F p

9,14E-01 regressão 1 2,02E+13 2,02E+13 1,88E+04 1,16E-24

resíduos 15 1,61E+10 1,07E+09

Resum o da Avaliação

Ajuste 4 8,22E+09 2,06E+09 2,87E+00 7,44E-02

erro puro 11 7,86E+09 7,15E+08

p > 0,05 total 16 2,02E+13

p < 0,001

Observaçõ es

p > 0,05

d > dU

Req > Rcrit

Responsável:________________________ Data: ___/___/___ Verificado por:________________________ Data: ___/___/___

Req

Rcrit (

= 0,05)

dL (Lim ite Inferior)

= 0,05

dU (Lim ite Superior)

= 0,05

d (calculado)

área

Concentração (m g/mL)

Coeficiente Angular (b):

Coeficiente Linear (a):

Graus de Liberdade

Concentração (m g/mL)

Teste de Norm alidade (

= 0,05)

Não há desvio de Linearidade

Não há autocorrelação

Segue a Norm al

Hom ogeneidade de variância

Regressão e Teste de Desvio de Linearidade

Autocorrelação dos Resíduos (

= 0,05)

Há Hom ocedasticidade

Nível

(k)

AVALIAÇÃO DE LINEARIDADE DE C URVA AN ALÍTICA

Pág.:1/1

tabe lado

(

= 0,05)

A regressão é significativa

Equipam ento: Responsável: Sônia

Ministério da Saúde

FUNDAÇÃO OSW ALDO CRUZ

Instituto Nacional de Controle de Q ualidade em Saúde

AVALIAÇÃO DE LINEARIDADE DE C URVA ANALÍTICA

Prim eira curva analítica do O MC

Variância Com binada

calculado

r R

Os dados da tabela m arcados em verm elho foram avaliados e retirados do

conjunto de dados por se tratarem de valores extrem os (outliers). Estes

dados não serão considerados na avaliação das prem issas.

Replicatas por Nível (k): N° de Níveis (n):

Análise:

Shim adzu

Data de Confecção da Curva: Curva N°:

Curva Analítica Final

1000000

2000000

3000000

4000000

5000000

6000000

7000000

8000000

9000000

0 0,05 0,1 0,15 0,2 0,25 0,3 0,35

Gráfico de Resíduos

-100000

-50000

50000

100000

0 0,05 0,1 0,15 0,2 0,25 0,3 0,35

4.7) RESULTADOS DA AVALIAÇÃO DA CURVA ANALÍTICA DO

OCTIL SALICILATO

Foram preparadas três curvas analíticas com as soluções estoque padrão do octil

salicilato (SE), contendo sete níveis de concentrações, com três replicatas independentes de

cada nível. Após as injeções das soluções, foram obtidas as áreas do sinal correspondente.

Tabela 14 - Concentrações das soluções para cada nível das curvas de analíticas(C.A).

Primeira Segunda Terceira

C.A C.A C.A

mg/mL mg/mL mg/mL

Nível 1

0,5448

0,5633

0,5567

Nível 2

0,6226

0,6438

0,6362

Nível 3

0,7004

0,7243

0,7157

Nível 4

0,7783

0,8048

0,7953

Nível 5

0,8561

0,8852

0,8748

Nível 6

0,9339

0,9657

0,9543

Nível 7

1,012

1,046

1,034

4.8) AVALIAÇÃO DA LINEARIDADE DA CURVA ANALÍTICA DO

OCTIL SALICILATO.

Foi encontrado um pequeno desvio da linearidade da curva analítica do octil salicilato,

na faixa de concentração estudada. A premissa de que os resíduos devem seguir a distribuição

normal foi confirmada pelo teste Ryan-Joiner. A variabilidade dos resíduos da regressão ao

longo dos níveis de concentração estudados foi constante, demonstrando homocedasticidade, a

estatística t de Levene não foi significativa (p > 0,05). Foi evidenciado pelo teste de Durbin-

Watson autocorrelação dos resíduos da regressão.

Tabela 15 – Curva analítica do Octil salicilato

Dados da Curva Analítica

Tabela de dados originais

Conc. Resposta

Avaliação de Valores Extremos

mg/mL área

(Teste de Jack-Knife para avaliação de valores extremos)

01 5,57E-01 3,61E+06

02 5,57E-01 3,62E+06

03 5,57E-01 3,63E+06

04 6,36E-01 4,18E+06

05 6,36E-01 4,18E+06

06 6,36E-01 4,20E+06

07 7,16E-01 4,72E+06

08 7,16E-01 4,65E+06

09 7,16E-01 4,70E+06

10 7,95E-01 5,22E+06

11 7,95E-01 5,22E+06

12 7,95E-01 5,22E+06

13 8,75E-01 5,72E+06

14 8,75E-01 5,73E+06

15 8,75E-01 5,71E+06

16 9,54E-01 6,13E+06

17 9,54E-01 6,19E+06

18 9,54E-01 6,15E+06

19 1,03E+00 6,69E+06

20 1,03E+00 6,72E+06

21 1,03E+00 6,73E+06

Normalidade dos Resíduos

(Teste de Ryan-Joiner)

0,96

0,95

Autocorrelação dos Resíduos

(Teste de Durbin-W atson)

1,10

1,22

Análise de Regressão Linear (Modelo: Y = a + bX)

1,42

Estatísticas da Regressão

6,40E+06 9,55E+04

Homogeneidade da Variância dos Resíduos

0,9995

0,9990

(Teste de Brown-Forsythe)

21 19

1,31E+09

-8,82E-02

ANOVA da Regressão e Teste de Desvio de Linearidade (Falta de Ajuste)

2,09E+00

fonte G.L. SQ MQ F p

9,31E-01 regressão 1 2,18E+13 2,18E+13 1,87E+04 6,42E-30

resíduos 19 2,21E+10 1,16E+09

Resumo da Avaliação

Ajuste 4 1,61E+10 4,02E+09 1,00E+01 3,73E-04

erro puro 15 6,01E+09 4,00E+08

p > 0,05 total 20 2,18E+13

p < 0,001

Observações

p < 0,05

d < dL

Req > Rcrit

Responsável:________________________ Data: ___/___/___ Verificado por:________________________ Data: ___/___/___

Req

Rcrit (

= 0,05)

dL (Lim ite Inferior)

= 0,05

dU (Limite Superior)

= 0,05

d (calculado)

área

Concentração (mg/m L)

Coeficiente Angular (b):

Coeficiente Linear (a):

Graus de Liberdade

Concentração (mg/m L)

Teste de Norm alidade (

= 0,05)

Há desvio de linearidade

Há autocorrelação

Segue a Normal

Hom ogeneidade de variância

Regressão e Teste de Desvio de Linearidade

Autocorrelação dos Resíduos (

= 0,05)

Há Homocedasticidade

Nível

(k)

AVALIAÇÃO DE LINEARIDADE DE CURVA ANALÍTICA

Pág.:1/1

tabelado

(

= 0,05)

A regressão é significativa

Equipam ento: Responsável: Sônia

Ministério da Saúde

FUNDAÇÃO OSW ALDO CRUZ

Instituto Nacional de Controle de Qualidade em Saúde

AVALIAÇÃO DE LINEARIDADE DE CURVA ANALÍTICA

Terceira curva analítica do OS

Variância Combinada

calculado

r R

Os dados da tabela marcados em vermelho foram avaliados e retirados do

conjunto de dados por se tratarem de valores extremos (outliers). Estes

dados não serão considerados na avaliação das prem issas.

Replicatas por Nível (k): N° de Níveis (n):

Análise:

Shim adzu

Data de Confecção da Curva: Curva N°:

Curva Analítica Final

1000000

2000000

3000000

4000000

5000000

6000000

7000000

8000000

0 0,2 0,4 0,6 0,8 1 1,2

Gráfico de Resíduos

-100000

-50000

50000

100000

0 0,2 0,4 0,6 0,8 1 1,2

4.9) DETERMINAÇÃO DA EXATIDÃO DA BENZOFENONA –3

Após as injeções das soluções de trabalho das curvas de adição padrão da

benzofenona-3, foram obtidas as áreas do sinal correspondente. A Tabela 16 apresenta as

respostas.

Tabela 16 - Áreas medidas após injeção das soluções de trabalho de adição padrão da

benzofenona-3

Conc. Resposta

Nível

(k)

mg/mL área

01 8.30E-01 6.27E+06

02 8.30E-01 6.30E+06

03 8.30E-01 6.28E+06

04 9.33E-01 7.11E+06

05 9.33E-01 7.10E+06

06 9.33E-01 7.07E+06

07 10.40E-01 7.86E+06

08 10.40E-01 7.76E+06

09 10.40E-01 7.89E+06

10 11.40E-01 8.78E+06

11 11.40E-01 8.73E+06

12 11.40E-01 8.76E+06

13 12.40E-01 9.58E+06

14 12.40E-01 9.54E+06

15 12.40E-01 9.55E+06

16 13.40E-01 1.05E+07

17 13.40E-01 1.05E+07

18 13.40E-01 1.03E+07

4.10) DETERMINAÇÃO DA EXATIDÃO DO OCTIL

METOXICINAMATO

Após as injeções das soluções de trabalho das curvas de adição padrão do octil

metoxicinamato, foram obtidas as áreas do sinal correspondente. A Tabela 17 apresenta as

respostas.

Conc. Resposta

Nível

(k)

mg/mL área

01 2.13E+00 6.01E+06

02 2.13E+00 6.00E+06

03 2.13E+00 6.00E+06

04 2.39E+00 6.63E+06

05 2.39E+00 6.63E+06

06 2.39E+00 6.64E+06

07 2.64E+00 7.29E+06

08 2.64E+00 7.28E+06

09 2.64E+00 7.31E+06

10 2.90E+00 7.94E+06

11 2.90E+00 7.91E+06

12 2.90E+00 7.89E+06

13 3.16E+00 8.58E+06

14 3.16E+00 8.59E+06

15 3.16E+00 8.57E+06

16 3.42E+00 9.02E+06

17 3.42E+00 9.13E+06

18 3.42E+00 9.15E+06

Tabela 17

Áreas

medidas após injeção das soluções de trabalho de adição padrão do

octil metoxicinamato.

4.11) DETERMINAÇÃO DA EXATIDÃO DO OCTIL SALICILATO

Após as injeções das soluções de trabalho das curvas de adição padrão octil salicilato,

foram obtidas as áreas do sinal correspondente. A Tabela 18 apresenta as respostas.

Tabela 18 - Áreas medidas após injeção das soluções de trabalho de adição padrão do octil

salicilato

Conc. Resposta

Nível

(k)

mg/mL área

01 1.31E+00 6.01E+06

02 1.31E+00 6.04E+06

03 1.31E+00 6.03E+06

04 1.47E+00 6.78E+06

05 1.47E+00 6.76E+06

06 1.47E+00 6.78E+06

07 1.63E+00 7.43E+06

08 1.63E+00 7.40E+06

09 1.63E+00 7.35E+06

10 1.79E+00 8.18E+06

11 1.79E+00 8.18E+06

12 1.79E+00 8.15E+06

13 1.95E+00 8.84E+06

14 1.95E+00 8.75E+06

15 1.95E+00 8.68E+06

16 2.11E+00 9.36E+06

17 2.11E+00 9.28E+06

18 2.11E+00 9.27E+06

Tabela 19 – Recuperação dos analitos, calculada a partir das curvas de adição padrão da

benzofenona-3, octil metoxicinamato e do octil salicilato no protetor solar G – FPS 30.

Analitos Recuperação(%)

Benzofenona-3 96,9

Octil metoxicinamato 96,4

Octil salicilato 102,2

Verifica-se, conforme a Tabela 19, que a recuperação dos analitos na curva de adição

padrão do produto de fotoproteção, ficaram entre os limites estabelecidos de 90% a 107%,

para a razão do nível de concentração dos analitos estudados, comprovando assim adequada

exatidão do método para estas substâncias.

4.12) DETERMINAÇÃO DOS TEORES NA AMOSTRA DO PROTETOR

SOLAR G - FPS 30.

Tabela 20 – Teores dos princípios ativos benzofenona-3, octil metoxicinamato e salicilato de

octila encontrados na análise da amostra do protetor solar G-FPS 30 e os declarados na

rotulagem

Teor – BZ Teor – OMC Teor – OS

ENCONTRADO

(3,19 ± 0,04) g/100g

(2,55 ± 0,04) g/100g

(1,9 ± 0,6) g/100g

DECLARADO

4,0

g/100g

7,5

g/100g

5,0

g/100g

Os teores dos princípios ativos encontrados na análise da amostra do protetor solar G

FPS-30 estão abaixo dos teores declarado pelo fabricante, na rotulagem do produto:

benzofenona-3, ↔ 3,19g/100g encontrado, correspondem a 78,9 % do valor declarado.

Octil metoxicinamato

↔

2,55g/100g encontrado, correspondem a 34,0 % do valor declarado.

salicilato de octila

↔

1,9g/100g encontrado, correspondem a 38,0% do valor declarado.

PARTE II – ESTUDO DA FOTODEGRADAÇÃO

5.0) ANALISAR E AVALIAR A FOTODEGRADAÇÃO DOS

PROTETORES SOLARES.

Devido ao seu elevado coeficiente de extinção molar na região UV-B, o octil

metoxicinamato é um dos princípios ativos mais utilizados nas formulações dos protetores

solares.

Existem, entretanto, na literatura estudos que indicam que ele pode sofrer

fotodegradação, quando exposto à luz solar.

52 e 53

Pattanaargson e Limphong (2001), utilizando CLAE semi-preparativa e ressonância

magnética nuclear, isolaram e identificaram, o isômero Z do octil metoxicinamato, como o

único produto de fotodegradação.

No experimento, soluções de 1000 ppm de OMC em metanol, foram expostas à luz

solar a temperatura ambiente. Depois de um dia, sob luz solar, aproximadamente metade da

concentração da solução, havia se transformado em uma outra substância (figura 24).

Nenhuma fotodegradação foi encontrada, em experimento, com as soluções mantidas

ao abrigo da luz, nas temperaturas de 4, 25, 32 e 60° C, por um mês.

Figura 23: (a) E-octilmetoxicinamato e (b) Z-octilmetoxicinamato

Figura 24: Fotodegradação do octil metoxicinamato – (a) antes de irradiar e (b) e (c) após.

5.1) EXPERIMENTO PARA AVALIAR A POSSÍVEL

FOTODEGRADAÇÃO DOS PROTETORES SOLARES,

COMERCIALIZADOS NO BRASIL.

Com o objetivo de verificar se a fotodegradação poderia também ocorrer com os

produtos, comercializados aqui no Brasil, que apresentavam em suas formulações o octil

metoxicinamato, amostras dos protetores solares D-FPS 20 e F-FPS 30, contendo em torno de

1g, foram aplicadas sobre placas de vidro e expostas a um simulador solar, por 30min.

Amostras nas mesmas condições foram preparadas e colocadas ao abrigo da luz.

Após a irradiação, observou-se uma mudança na coloração do produto, de branco para

amarelado. Não houve mudança de coloração nas amostras não irradiadas.

O material foi removido da placa de vidro e adicionado a 500µL de uma solução 2M

de ácido sulfúrico e 10mL de metanol. A mistura foi levada ao ultrassom por 30min e logo em

seguida centrifugada a 1000G por 10min. O sobrenadante foi pipetado, filtrado com

membrana Millipore 0,45µm/25mm e em seguida preparadas às soluções por diluição. As

soluções foram homogeneizadas e injetadas, sendo então analisadas por CLAE com detector

de UV/visível.

5.2) IRRADIAÇÃO AO SOL

Em teste paralelo, amostras nas mesmas condições experimentais foram expostas à

radiação solar, para verificar se também apresentariam mudança de coloração. As amostras

foram expostas à radiação solar, nos intervalos de tempo de 10minutos e 30 minutos. O

material foi removido, extraídos os componentes ativos e analisado em CLAE.

5.3) EXPERIMENTO VARIANDO O TEMPO DE IRRADIAÇÃO

Para acompanhar a formação do produto de fotodegradação, amostras do protetor solar

foram irradiadas nos intervalos de tempo: 15, 20, 40 e 60 minutos.

5.4) SEPARAÇÃO CROMATOGRÁFICA DO PRODUTO DE

FOTODEGRADAÇÃO.

Como o tempo de retenção do produto de fotodegradação é bem próximo do octil

metoxicinamato foram testadas misturas de acetonitrila e água: 70:30; 60:40 e 65:35, com o

objetivo de melhor separar as substâncias para poder quantificar o produto de fotodegradação.

5.5) EXPERIMENTO COM DETECTOR DE DIODE ARRAY.

Foram pesadas em balança analítica duas amostras do protetor solar D-FPS 20,

contendo em torno de 1g cada e espalhadas em placas de vidro. Uma delas foi irradiada

durante trinta minutos em simulador solar e a outra colocada ao abrigo da luz.

Elas foram submetidas aos procedimentos de solubilização e extração, sendo

analisadas por CLAE, com detector de UV-Visível, com arranjo diodos, para a obtenção dos

espectros de absorção molecular, no ultravioleta, dos sinais cromatográficos referentes aos

princípios ativos presentes no protetor solar D-FPS 20 e no sinal cromatográfico referente ao

produto de fotodegradação.

5.6) EXPERIMENTO DE FOTODEGRADAÇÃO COM OS PRINCÍPIOS

ATIVOS.

Com o objetivo de verificar se a fotodegradação também ocorria com os princípios

ativos isolados, foram preparadas soluções em torno de 100 mg/mL em metanol dos ativos:

benzofenona-3, octil metoxicinamato e salicilato de octila.

Alíquotas de 5mL das soluções foram colocadas em placas de vidro e irradiadas no

simulador solar por 30 minutos e amostras nas mesmas condições foram colocadas ao abrigo

da luz. Após a irradiação o material foi removido, solubilizado com metanol e analisado por

CLAE.

5.7) PRODUTOS FPS 30 DE FABRICANTES DIFERENTES.

Amostras contendo em torno de 1g foram espalhadas em placas de vidro e irradiadas

no simulador durante 30min. Após a irradiação observou-se que o produto havia se tornado

amarelado na superfície, mas não na camada inferior, indicando que a espessura da camada do

produto espalhado tem importância significativa na realização do ensaio.

5.8) EXPERIMENTO PARA ACOMPANHAR A FOTODEGRADAÇÃO

DO OMC QUANTITATIVAMENTE.

Como os produtos de fotoproteção são geralmente emulsões, o espalhamento do

produto sobre a placa de vidro é ponto crítico para o experimento de fotodegradação, deste

modo foram preparadas soluções do octil metoxicinamato em metanol para contornar este

problema.

Alíquotas de 1mL da solução 0,2mg/mL do octil metoxicinamato em metanol foram

colocadas em placas e expostas ao simulador solar nos intervalos de tempo: 30seg; 1min;

5min; 10min; 30min e 60min. Após irradiação o material foi retirado quantitativamente,

avolumado em balão de 5mL e analisado por CLAE, sendo obtida, deste modo, a curva de

calibração para quantificar o produto de fotodegradação, através do metoxicinamato de octila

degradado.

Em ensaio paralelo, na mesma condição experimental, amostras de 1mL da solução

foram expostas ao sol durante 1min, sendo removida quantitativamente e analisada em

seguida por CLAE.

5.9) EXPERIMENTO PARA ISOLAR E IDENTIFICAR O PRODUTO DA

FOTODEGRADAÇÃO.

Uma solução 0,2mg/mL do octil metoxicinamato padrão foi colocada em placa de

vidro e irradiada em um simulador solar por 10 minutos. Após a irradiação a solução foi

removida quantitativamente com metanol, homogeneizada e injetada, utilizando CLAE semi-

preparativa. As substâncias foram isoladas, liofilizadas e através da ressonância magnética

nuclear, analisadas.

6.0) RESULTADOS E DISCUSSÃO DA PARTE II

6.1) EXPERIMENTO PARA AVALIAR A POSSÍVEL

FOTODEGRADAÇÃO DOS PROTETORES SOLARES,

COMERCIALIZADOS NO BRASIL.

Os cromatogramas das amostras de filtros solares irradiadas apresentaram mudanças

com o surgimento de um novo sinal cromatográfico, comparativamente as amostras colocadas

ao abrigo da luz.

Figura 25: Cromatogramas do protetor solar D-FPS 20 sem irradiar e após 30 minutos de

irradiação.

Minutes

0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50

mAU

500

1000

1500

2000

2500

mAU

500

1000

1500

2000

2500

1: 254 nm, 8 nm

Produto Sem Irrad.20

SemIrrad30FPS20A

Retention Time

Area

1: 254 nm, 8 nm

Produto Irradiado 30min.FPS20

Irrad30fps20

6.2) IRRADIAÇÃO AO SOL

Amostras nas mesmas condições experimentais, expostas à radiação solar, também

apresentaram mudança de coloração. A analise por CLAE, apresentou mudança no perfil

cromatográfico com o aparecimento de um novo sinal cromatográfico, com tempo de retenção

menor que o sinal cromatográfico referente ao octil metoxicinamato

Figura 26: Cromatograma do protetor solar F - FPS 30 irradiado ao sol por 30 minutos

6.3) EXPERIMENTO VARIANDO O TEMPO DE IRRADIAÇÃO.

Em todos os intervalos de tempo observou-se a formação de um novo sinal

cromatográfico.

Figura 27: Cromatograma do protetor solar E-FPS 30 irradiado por 40 minutos.

6.4) SEPARAÇÃO CROMATOGRÁFICA DO PRODUTO DE

FOTODEGRADAÇÃO.

Das misturas de acetonitrila e água testadas, a proporção 65:35 foi a que melhor

separou os sinais cromatográficos referentes ao produto de fotodegradação e do octil

metoxicinamato,

Figura 28: Separação cromatográfica de produto fotodegradado.

6.5) EXPERIMENTO COM DIODE ARRAY.

Através das análises por CLAE, com detector de UV-Visível, com arranjo

diodos, foram obtidos os espectros de absorção molecular, no ultravioleta, dos sinais

cromatográficos referentes aos princípios ativos, presentes nas amostras do protetor solar D-

FPS 20 irradiado e do não irradiado.

Figura 29: protetor solar D-FPS 20 - não irradiado

Cromatograma e espectro tridimensional de varredura no UV referente a cada sinal

cromatográfico de benzofenona-3 (6,42 min), octil metoxicinamato (37,32 min) e do octil

salicilato (40,80 min).

Figura 30: protetor solar D-FPS 20 - não irradiado

Cromatogramas e espectros de absorção referentes a cada sinal cromatográfico.

benzofenona-3 (6,42 min), octil metoxicinamato (37,32 min) e do octil salicilato (40,80 min).

Figura 31: Protetor solar D-FPS 20 - irradiado

Cromatograma e espectro tridimensional de varredura no UV referente a cada sinal

cromatográfico de benzofenona-3 (6,42 min), produto de fotodegradação (34,20), octil

metoxicinamato (37,32 min) e do octil salicilato (40,80 min).

Figura 32: Protetor solar D- FPS 20 - irradiado

Cromatograma e espectros referentes a cada sinal cromatográfico de benzofenona-3 (6,42

min), produto de fotodegradação (34,20), octil metoxicinamato (37,32 min) e do octil

salicilato (40,80 min).

6.6) EXPERIMENTO DE FOTODEGRADAÇÃO COM OS PRINCÍPIOS

ATIVOS ISOLADOS.

Entre as amostras irradiadas dos princípios ativos somente a referente ao octil

metoxicinamato apresentou um novo sinal, quando comparada a não irradiada.

Figura 33: Salicilato de octila – irradiado e não irradiado.

M in u te s

0 5 1 0 1 5 2 0 2 5 3 0 3 5 4 0 4 5 5 0

mAU

2 5 0

5 0 0

7 5 0

1 0 0 0

1 2 5 0

1 5 0 0

mAU

2 5 0

5 0 0

7 5 0

1 0 00

1 2 50

1 5 00

1 : 2 5 4 n m , 8 n m

O ctil sa lic ila to Irra dia d o P a d rã o

O S Irr a d iad o P ad rã o

R e te n tio n T im e

1 : 2 5 4 n m , 8 n m

O c til sa lic ila to P a d rã o

O S P a d rão

Figura 34: octil metoxicinamato – irradiado e não irradiado

Minutes

0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50

mAU

500

1000

1500

2000

2500

3000

mAU

500

1000

1500

2000

2500

3000

1: 254 nm, 8 nm

Octil metoxicinamato Padrão

OMC Padrão

Retention Time

1: 254 nm, 8 nm

Octil metoxicinamato Irradiado 30min

OMC Irrad 30

6.7) EXPERIMENTO PARA ACOMPANHAR A FOTODEGRADAÇÃO

DO OMC QUANTITATIVAMENTE.

Os cromatogramas das amostras das soluções do octil metoxicinamato em metanol,

expostas ao simulador solar, nos intervalos de tempo: 30seg; 1min; 5min; 10min; 30min e

60min, apresentaram mudança no perfil cromatográfico com o aparecimento do sinal

cromatográfico referente ao produto de fotodegradação (Figuras 35 a 40).

O cromatograma da amostra, exposta ao sol durante 1min, também apresentou

mudança no perfil cromatográfico com o aparecimento do sinal cromatográfico referente ao

produto de fotodegradação. O Gráfico 1 apresenta a curva de fotodegradação do OMC.

Figura 35: Octil metoxicinamato irradiado por 30 segundos.

Figura 36: Octil metoxicinamato irradiado por 5 minutos.

Figura 37: Octil metoxicinamato irradiado por 10 minutos.

Figura 38: Octil metoxicinamato irradiado por 30 minutos.

Figura 39: Octil metoxicinamato irradiado por 1 hora.

Figura 40: Octil metoxicinamato irradiado ao Sol por 1 minuto.

DADOS DO GRÁFICO 1

TEMPO DE IRRADIAÇÃO x CONCENTRAÇÃO DO OMC

Tempo (min)

Conc. (mg/mL)

Percentual do

OMC convertido

Cálculos:

0,5 0,253259

6,78 %

Eq. Curva:

y = 24521682x + 2556,17

5 0,215403

20,69 %

10 0,202216

25,55 %

Tempo de

exposição

Área Conc. (mg/mL)

30 0,160495

40,91 % 0,5min 6212887 0,253258762

60 0,156793

42,27 % 5min 5284590 0,215402591

10min 4961229 0,202215865

30min 3938175 0,160495495

60min 3847396 0,156793491

22,44 % 1min (sol) 5168117,667

0,210652821

Gráfico1: Tempo de irradiação x concentração do octil metoxicinamato

Tempo de fotodegradação

Metoxicinamato de octila

0,1

0,2

0,3

0 10 20 30 40 50 60 70

Tempo de Irradiação (min)

Conc. (mg/mL)

Octil metoxicinamato

6.8) EXPERIMENTO PARA ISOLAR E IDENTIFICAR O PRODUTO DA

FOTODEGRADAÇÃO.

As substâncias isoladas, utilizando CLAE semi-preparativa foram identificadas,

através de seus espectros de ressonância magnética nuclear como: Z-octil metoxicinamato e

E-octil metoxicinamato.

Figura 41 – Espectro de

C RMN do isômero E-octil metoxicinamato.

100

Figura 42 – Espectro de

H RMN do isômero E-octil metoxicinamato.

101

Figura 43 – Espectro expandido de

H RMN do isômero E-octil metoxicinamato.

102

Figura 44 – Espectro de

C RMN do isômero Z-octil metoxicinamato.

103

Figura 45 – Espectro de

H RMN do isômero Z-octil metoxicinamato.

104

Figura 46 – Espectro expandido de

H RMN do isômero Z-octil metoxicinamato.

Embora haja uma diferença nos deslocamentos químicos dos carbonos 6 ( 143,1 e

144,1 ppm) e 7 (115,9 e 117,4 ppm) dos isômeros E e Z OMC (Tabela 21), a constante de

105

acoplamento (J) dos hidrogênios nos carbonos 6 e 7 (J

6,7

= 16 e J

6,7

= 12,4 Hz) é o dado

determinante para confirmar as estruturas, tendo em vista o valor de J trans ser maior que o de

Jcis,.

Tabela 21 – Comparação dos deslocamentos químicos dos espectros de

C RMN dos

isômeros E e Z com os dados da literatura

Carbono

Isômero E

Isômero Z Isômero Z

1 167,5 167,6 166,8 167,5

2 162,1 161,3 160,4 161,0

3 143,1 144,2 143,0 144,2

4 129,7 129,7 132,0 132,0

5 127,2 127,3 127,5 127,2

6 115,8 115,9 117,4 117,5

7 114,3 114,3 113,4 113,3

8 66,8 66,8 66,7 66,7

9 55,3 55,4 55,3 55,3

10 38,9 38,9 38,8 38,8

11 30,5 30,5 30,4 30,5

12 28,9 29,0 29,0 28,9

13 23,8 23,9 23,8 23,7

14 23,0 23,0 23,0 23,0

15 14,1 14,1 14,0 14,1

16 11,0 11,0 11,0 11,0

Adicionalmente, além dos dados qualitativos e quantitativos das composições

(formulações) destes produtos cosméticos que estão diretamente ligados ao cumprimento de

suas funções quando em uso, algumas informações que devem constar em seus rótulos

também têm parcela importante de contribuição.

106

PARTE III – ESTUDO DAS ROTULAGENS

107

7.0) AVALIAÇÃO DAS INFORMAÇÕES CONTIDAS NAS

ROTULAGENS DOS PROTETORES SOLARES MAIS

COMERCIALIZADOS NO BRASIL.

A rotulagem é parte integrante do produto, sendo um instrumento de informação para o

consumidor, como também, para o sistema de Vigilância Sanitária, devendo conter

informações sobre a fabricação, origem, modo de uso e atributos dos produtos de forma clara

e objetiva, seguindo as exigências legais.

Foi verificado se as informações contidas nos rótulos dos protetores solares estão de

acordo com as legislações vigentes e avaliar se elas orientam o consumidor quanto à escolha e

uso do produto.

8) MÉTODOS EMPREGADOS

Este estudo foi realizado em duas etapas: uma qualitativa e outra quantitativa. Para a

etapa qualitativa foi realizada uma análise crítica da rotulagem, avaliando as informações

concernentes à escolha e utilização do produto.

A etapa quantitativa constitui um estudo Seccional. Os dados foram coletados em um

estabelecimento comercial pertencente a uma grande rede de drogarias no Estado do Rio de

Janeiro – RJ, no Bairro do Catete, em dezembro de 2006.

54-57

A amostra estudada foi escolhida por conveniência, com tamanho amostra

considerando uma estimativa de 95% de confiança. Para tanto, foram selecionados 38

produtos de 13 fabricantes, os mais comercializados no Brasil, com FPS variando de 2 a 100

Como instrumento de coleta de dados, foi utilizado o roteiro de inspeção para análise

da rotulagem dos produtos de fotoproteção, elaborado e empregado pelo INCQS, com base

nas normas, (figura 47) (Lei 6360/1976; Decretos 79.094/1977 e 83.239/1979 e RDC nº

211/2005, nº 237/2005, nº 48/2006 e nº 47/2006).

23-29

Os dados obtidos foram processados e

analisados pelo programa estatístico SPSS, versão 12.0. O teste estatístico empregado foi o X

108

(p>0,05). Para manter a identidade dos fabricantes preservadas e facilitar a apresentação dos

dados, os mesmos foram codificados por números (Gráficos 2 e 3).

Figura 47: Instrumento para coleta dos dados

ROTEIRO PARA ANÁLISE DE RÓTULO DE PROTETORES SOLARES

Produto:..............................................................................................................................

Decreto nº 79.094/1977

1. Data de fabricação............................................................................................................

2. Responsável técnico/nº de inscrição/sigla da autarquia profissional...............................

Resolução – RDC nº 211/2005

3. Nome do produto e grupo / tipo a que pertence no caso de não estar implícito no nome

(embalagens primária e secundária).....................................................................................

4. Marca (embalagens primária e secundária)......................................................................

5. Nº de registro....................................................................................................................

6. Lote ou partida..................................................................................................................

7. Prazo de validade..............................................................................................................

8. Conteúdo (volume/peso)..................................................................................................

9. Fabricante / Importador / Titular......................................................................................

10. Domicílio do Fabricante / Importador / Titular..............................................................

11. País de Origem................................................................................................................

12. Modo de Uso...................................................................................................................

13. Ingredientes / Composição..............................................................................................

Resolução – RDC nº 237/2005

14. Texto de rotulagem para produtos que:

14.1. Não satisfaçam os requisitos de “Resistente à Água” ou “Muito Resistente à Água”:

109

14.1.a) Número de Proteção Solar precedido da sigla SPF ou FPS, ou das palavras “Fator

de Proteção Solar” (em destaque nas embalagens primária e secundária).........................

14.1.b) Expressões orientativas quanto a explicação dos Fatores de Proteção Solar..........

14.1.c) Frases obrigatórias

“É necessária a reaplicação do produto para manter a sua efetividade”............................

“Ajuda a prevenir as queimaduras solares”........................................................................

14.1.d) Frases obrigatórias somente para produtos de uso infantil

“Para crianças menores de (6) seis meses, consultar um médico”....................................

“Este produto não oferece nenhuma proteção contra insolação”......................................

“Evitar exposição prolongada das crianças ao sol”..........................................................

“Aplique generosamente ou livremente antes da exposição ao sol e sempre que

necessário”, incluindo tempo determinado pelo fabricante, caso seja requerido período

de espera.............................................................................................................................

14.2. Satisfaçam os requisitos de “Resistente à Água” ou “Muito Resistente à Água”:

14.2.a) Número de Proteção Solar precedido da sigla SPF ou FPS, ou das palavras

“Fator de Proteção Solar” (em destaque nas embalagens primária e secundária)............

14.2.b) Expressões orientativas quanto a explicação dos Fatores de Proteção Solar...............

14.2.c) Frases obrigatórias

“É necessária a reaplicação do produto para manter a sua efetividade”...........................

“Ajuda a previnir as queimaduras solares”.......................................................................

Baixa (FPS ≥ 2 < 6)

Pele pouco sensível “Oferece Baixa proteção contra queimaduras solares”

Moderada (FPS ≥ 6 < 12

Pele sensível “Oferece Moderada proteção contra queimaduras

solares”

Alta (FPS ≥ 12 < 20

Pele muito sensível “Oferece Alta proteção contra queimaduras solares”

Alta (FPS ≥ 20

Pele extremamente

sensível

“Oferece Muito Alta proteção contra queimaduras

solares”

Baixa (FPS ≥ 2 < 6)

Pele pouco sensível “Oferece Baixa proteção contra queimaduras solares”

Moderada (FPS ≥ 6 < 12

Pele sensível “Oferece Moderada proteção contra queimaduras

solares”

Alta (FPS ≥ 12 < 20

Pele muito sensível “Oferece Alta proteção contra queimaduras solares”

Alta (FPS ≥ 20

Pele extremamente

sensível

“Oferece Muito Alta proteção contra queimaduras

solares”

110

“Resistente à Água”, “Resistente à Água/suor” ou “Resistente à Água/transpiração”.....

“Aplicar tão freqüentemente quanto necessário após nadar, secar com toalha, sudorese

intensa ou tempo de exposição prolongada ao sol”........................................................

14.2.d) Frases obrigatórias somente para produtos de uso infantil

“Para crianças menores de (6) seis meses, consultar um médico”....................................

“Este produto não oferece nenhuma proteção contra insolação”......................................

“Evitar exposição prolongada das crianças ao sol”...........................................................

“Aplique generosamente ou livremente antes da exposição ao sol e sempre que

necessário”, incluindo tempo determinado pelo fabricante, caso seja requerido período

de espera.............................................................................................................................

Resolução – RDC nº 48/2006

15. Substâncias proibidas...................................................................................................

Resolução – RDC nº 47/2006

16. Filtros ultravioletas permitidos....................................................................................

16.1. Concentração autorizada........................................................................................

17. Frase de advertência

Contém oxibenzona ( concentração acima de 0,5% de benzofenona-3).......................

Analista:.................................................................................. Data:.........................................

Revisor:................................................................................... Data:.........................................

111

9) RESULTADOS E DISCUSSÃO

Análise qualitativa: em todos o produtos analisados verificou-se a insuficiência de

informações necessárias para a escolha e uso. Sugere-se em adição às recomendações exigidas

pelas legislações, à utilização de embalagem secundária (caixa) contendo uma tabela com

todos os fototipos de pele e os fatores de proteção solar correspondentes. Estes dados

permitirão ao consumidor classificar o seu tipo de pele e fazer a escolha do produto adequado.

O fabricante deve declarar o tempo máximo de proteção solar que aquele produto oferece ao

consumidor, incluindo também a descrição quantitativa dos componentes ativos na

formulação, facilitando assim, o monitoramento dos produtos postos ao consumo pelos órgãos

de Vigilância Sanitária.

O produto deve conter instruções de uso com tamanho de letra que possibilite a fácil

leitura, redigido de forma objetiva, descrevendo a quantidade do produto que deverá ser usado

para garantir a proteção e as regiões do corpo onde devem também ser aplicado, como por

exemplo, orelhas, pescoço, nariz, pés, mão, couro cabeludo e lábios (depende do tipo de

produto). Estes locais mais expostos ao sol são os mais pré-dispostos ao desenvolvimento do

câncer de pele. Deverá conter a recomendação para reaplicar o produto, toda a vez que houver

remoção, informando que a reaplicação não ampliará o tempo máximo de exposição solar.

Análise quantitativa: foram avaliados 33 requisitos nas rotulagens dos protetores

solares dos 38 produtos analisados. Verificou-se que (76,3%) não estavam em conformidade

com a legislação. Em (63,2%) não constava a data de fabricação do produto, dado importante

para a determinação do cumprimento das legislações vigentes, visto que, o produto está sujeito

às legislações pertinentes a data em que foi fabricado. (27%) não apresentaram o nome do

responsável técnico com o número de inscrição e a sigla da autarquia profissional. Este

profissional é habilitado junto à autoridade sanitária para a atividade que a empresa realiza,

sendo responsável pela fabricação dos produtos sob sua direção técnica e elaboração de

relatórios ao órgão de vigilância. (36,8%) não continham os esclarecimentos obrigatórios,

como as frases de orientação, advertência e indicação específica do produto. Foram

112

encontrados produtos com até 4 diferentes não conformidades. Apenas 23,7% estavam em

conformidade com as legislações vigentes.

GRÁFICO 2. Percentual dos protetores

solares por fabricante

GRÁFICO 3 Percentual dos protetores solares por

FPS

113

10) CONCLUSÕES:

A análise dos resultados obtidos nos permite concluir que:

•

O método desenvolvido para a determinação dos teores dos principais princípios

ativos, presentes nas formulações dos protetores solares, permitiu quantificar a benzofenona-3,

o octil metoxicinamato, e o octil salicilato, simultaneamente. Demonstrando abrangência,

versatilidade e facilidade operacional, características essenciais para um método destinado ao

controle de qualidade;

•

Através da determinação dos parâmetros de desempenho analítico, o método

evidenciou-se apropriado para a determinação quantitativa destes princípios ativos,

conduzindo a resultados confiáveis e adequados;

•

O octil metoxicinamato é um dos princípios ativos mais utilizados. Quando foi

exposto à radiação solar e artificial, sofreu degradação. Em apenas 30 segundos exposto à

radiação, 7 % do octil metoxicinamato havia se transformado em uma nova substância. Ela foi

isolada e identificada como o isômero Z do octil metoxicinamato.

•

O estudo das informações contidas nas rotulagens dos protetores solares mais

comercializados, no Brasil, demonstrou que (76%) dos produtos analisados não cumpriam os

requisitos técnicos estabelecidos pelas legislações e nem eram suficientes e adequadas para

orientar o consumidor de modo a obter a proteção solar necessária. Essas informações são

fundamentais para a segurança, eficácia e para o controle de qualidade destes produtos,

necessitando com urgência de uma revisão criteriosa. A omissão dos requisitos técnicos

estabelecidos, além de constituir infração sanitária, acarreta prejuízo para as ações

correspondentes de vigilância.

114

11) REFERÊNCIAS BIBLIOGRAFIAS

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ROSENFELD, S (org.) Fundamentos de Vigilância Sanitária. Rio de Janeiro: Editora

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24) BRASIL. Lei 6360, de 23 de setembro de 1976. Submete ao sistema de vigilância os

medicamentos, insumos farmacêuticos, drogas, correlatos, produtos de higiene, saneantes e

outros. D.O.U. Poder Executivo, Brasília, de 24 de setembro de 1976.

25) BRASIL. Decreto n. 79.094, de 05 de janeiro de 1977, D.O.U. Poder Executivo, Brasília,

de 05 de janeiro de 1977.

26) BRASIL. Decreto n. 83.239, de 06 de março de 1979. D.O.U.Poder Executivo, Brasília,

de 07 de março de 1979.

27) BRASIL. ANVISA/MS. RDC nº47, de 16 de março de 2006. Aprova o regulamento

técnico “Lista de filtros ultravioleta permitidos para produtos de higiene pessoal, cosméticos e

perfumes”. D.O.U. Poder Executivo, Brasília, de 17 de março de 2006.

28) BRASIL. ANVISA/MS nº 211, de 14 de julho de 2005. Estabelece as definições e a

classificação de produtos de higiene pessoal. D.O.U. Poder Executivo, Brasília, de 18 de julho

2005.

29) BRASIL. ANVISA/MS nº 48, de 16 de março de 2006. D.O.U. Poder Executivo, Brasília.

Aprova o regulamento técnico ”Lista de substâncias que não podem ser utilizadas em produtos

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Chromatography, J. Chromatography v.408 p.409-415, 1987.

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