( PDF ) Estudo de seis gêneros Neotropicais de Chilocorini e revisão de Harpasus Mulsant, 1850 (Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorinae)

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Geovan Henrique Corrêa

Estudo de seis gêneros Neotropicais de Chilocorini

e revisão de Harpasus Mulsant, 1850

(Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorinae)

Dissertação apresentada à Coordenação do

Programa de Pós-Graduação em Ciências

Biológicas, Área de concentração em

Entomologia, da Universidade Federal do

Paraná, como requisito parcial para obtenção do

título de Mestre em Ciências Biológicas.

Orientadora: Profa. Dra. Lúcia Massutti de Almeida

Co-orientadora: Profa. Dra. Julianne Milléo

Curitiba, Paraná

2008

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iii

Dedico

àqueles que

sempre acreditaram

em mim.

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AGRADECIMENTOS

Aqui deixo meu eterno agradecimento a todos àqueles que de alguma maneira

contribuíram para o melhor desenvolvimento deste trabalho.

À Universidade Federal do Paraná, ao Programa de Pós-Graduação em Entomologia

e ao CAPES, pela concessão da bolsa que fez possível a realização deste trabalho.

Sou muito grato à minha orientadora Dra. Lúcia Massutti de Almeida, que com

grande carinho e amizade, acreditou em meu potencial na taxonomia e depositou toda

confiança, sempre me apoiando em minhas opiniões, me criticando quando estava errado e

me ensinando o que é certo em uma vida de pesquisa. Agradeço todos os dias por ter sido

apresentado e convivido ao lado de uma pessoa que tem uma luz imensa em seu coração.

Muito obrigado.

À minha amiga e co-orientadora Dra. Julianne Milléo, que me fez dar os primeiros

passos na vida acadêmica, mostrando quais os caminhos de uma carreira de sucesso,

contribuindo sempre com todo seu saber e alegria me apoiando sempre.

À “une grande amie,”Dra. Carla de Lima Bicho, que nestes dois anos de convivência

diária, pude reconhecer como pessoa sincera, alegre e que tem uma alma linda. Uma

verdadeira amiga que contribuiu em grande parte para o meu conhecimento dentro da

entomologia, do francês, e que sempre agradeço pelas gostosas conversas.

À Dra. Cibele Stramare Ribeiro-Costa, por sua animação e sabedoria, me auxiliando

com dicas valiosíssimas e me incentivando sempre.

Às minhas companheiras de almoço, de cantorias no gramado, de risadas e de

confidências divididas: Amanda Ciprandi Pires, Camila Borges da Cruz Martins, Jana

Magaly Tesserolli de Souza e Mariane Nickele, juntos formamos um grupo irmão.

À Lisiane de Castro Poncio, por ser uma pessoa e amiga incrível, sempre com seu

sorriso contagiante, obrigado sempre pelas conversas, “sorvetes” e confidências trocadas.

À minha amiga de apartamento e irmã por consideração, Anna Luiza Pereira

Andrade, com quem aprendi, ri, chorei e pude dividir grandes momentos, de minha vida.

Obrigado pelo apoio, amizade e compreensão... e pelas aulas particulares de botânica.

Á uma pessoa que me apóia, e me fez ser a pessoa que sou sempre seguindo meus

sonhos independentes das dificuldades encontradas, meu pai Josmil Marcio Corrêa.

Ao meu irmão Cleverson Marcel Corrêa, que me agüentou nos momentos de estresse,

não há briga que nos separe.

À minha amiga Mirian Nunes Morales, que com sua paciência me ensinou grande

parte do que sei sobre “como fazer pranchas”, no programa Adobe Photoshop.

Aos meus companheiros do Laboratório de Sistemática e Bioecologia de Coleoptera:

Adelita Maria Linzmeier, Daniel Pessoa de Moura, Edílson Caron, Kleber Makoto Mise,

Paschoal Coelho Grossi, Fernando Willyan Trevisan Leivas o meu sincero obrigado.

Ao “Projeto Táxon line Rede Paranaense de Coleções Biológicas”, através do qual

pude realizar as fotografias, principalmente à Lisiane Dilli Wendt, pela convivência, gostosas

risadas e amizade construída e concretizada.

Aos pesquisadores e instituições nacionais e estrangeiras, citados ao longo da

dissertação que contribuíram para que este trabalho fosse desenvolvido da melhor forma

possível. Especialmente ao Sr. Guillermo González, pelo convite para descrever a espécie

nova para o Peru.

Meu grande apreço à Monsieur Étienne Mulsant, que na sua grande obra “Species

des Coléoptères trimères sécuripalpes” nos brindou com seu conhecimento e paixão por estes

lindos insetos.

E aos nomes que não foram citados, não se sintam esquecidos, pois amigos eu sempre

os guardo em meu coração... eternamente.

SUMÁRIO

Resumo...................................................................................................................................... 1

Abstract..................................................................................................................................... 2

PREFÁCIO............................................................................................................................... 3

CAPÍTULO I: Estudo de seis gêneros Neotropicais de Chilocorini

(Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorinae)

Lista de figuras..................................................................................................................... viii

Lista de tabela........................................................................................................................... x

Resumo...................................................................................................................................... 6

Abstract..................................................................................................................................... 7

1. INTRODUÇÃO......................................................................................................................... 8

2. MATERIAL E MÉTODOS

2.1 Procedência e exame do material............................................................................. 8

2.2 Metodologia............................................................................................................. 9

3. RESULTADOS E DISCUSSÃO

3.1 Chilocorini Costa, 1849.......................................................................................... 11

3.2 Chave para seis gêneros Neotropicais de Chilocorini............................................ 12

3.3 Redescrição dos gêneros Neotropicais de Chilocorini

.......................................... 13

3.3.1 Chilocorus Leach, 1815................................................................................ 13

3.3.2 Cladis Mulsant, 1850.................................................................................... 17

3.3.3 Curinus Mulsant, 1850

................................................................................. 20

3.3.4 Egius Mulsant, 1850..................................................................................... 24

3.3.5 Harpasus Mulsant, 1850............................................................................... 27

3.3.6 Zagreus Mulsant, 1850

................................................................................. 30

3.4 Discussão................................................................................................................ 34

4. CONCLUSÕES............................................................................................................ 39

5. REFERÊNCIAS........................................................................................................... 40

6. ILUSTRAÇÕES........................................................................................................... 46

vii

CAPÍTULO II: Revisão do gênero Harpasus Mulsant, 1850

(Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorini)

Lista de figuras........................................................................................................................ xi

Lista de tabela........................................................................................................................ xii

Resumo.................................................................................................................................... 70

Abstract................................................................................................................................... 71

1. INTRODUÇÃO....................................................................................................................... 72

2. MATERIAL E MÉTODOS

2.1

Procedência e exame do material

...................................................................................... 73

2.2 Metodologia........................................................................................................... 73

3. RESULTADOS E DISCUSSÃO

3.1 Histórico................................................................................................................. 75

3.2 Redescrição de Harpasus Mulsant, 1850............................................................... 76

3.3 Discussão taxonômica............................................................................................ 79

3.4 Chave para as espécies de Harpasus Mulsant, 1850.............................................. 79

3.5 Diagnose das espécies de Harpasus Mulsant, 1850............................................... 81

3.5.1 Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006............................................... 81

3.5.2 Harpasus eversmanni (Mulsant, 1850)......................................................... 83

3.5.3 Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850)........................................................ 85

3.5.4 Harpasus zonatus (Mulsant, 1850)............................................................... 87

3.5.5 Harpasus sp. nov. A .................................................................................... 90

3.5.6 Harpasus sp. nov. B .................................................................................... 92

3.5.7 Harpasus sp.nov. C ………………………………………......................... 94

3.6 Aspectos biológicos

................................................................................................ 95

4. CONCLUSÕES............................................................................................................ 97

5. REFERÊNCIAS........................................................................................................... 98

6. ILUSTRAÇÕES......................................................................................................... 100

viii

Lista de figuras

CAPÍTULO I: Estudo de seis gêneros Neotropicais de Chilocorini

(Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorinae)

Figs. 1 - 12. Cabeça: (1-6) vista dorsal, (7-12) vista ventral (rg, região gular). Chilocorus

nigrita (1, 7); Cladis nitidula (2, 8); Curinus coeruleus (3, 9); Egius platycephalus (4, 10);

Harpasus pallidilabris (5, 11); Zagreus bimaculosus (6, 12).................................................. 46

Figs. 13 - 18. Antenas: Chilocorus nigrita (13); Cladis nitidula (14); Curinus coeruleus (15);

Egius platycephalus (16); Harpasus pallidilabris (17); Zagreus bimaculosus (18)................ 47

Figs. 19 - 30. Labro (pb, projeções basais; ac, anteclípeo): (19-24); Mandíbulas (di, dente

incisor; ml, mola; pt, prosteca): (25-30); Chilocorus nigrita (19, 25); Cladis nitidula (20, 26);

Curinus coeruleus (21, 27); Egius platycephalus (22, 28); Harpasus pallidilabris (23, 29);

Zagreus bimaculosus (24, 30).................................................................................................. 48

Figs. 31-42. Maxilas (cd, cardo; lc, lacínia; g, gálea; pmx, palpo maxilar): (31-36); Lábio (m,

mento; plb, palpo labial; lg, lígula): (37-42). Chilocorus nigrita (31, 37); Cladis nitidula (32,

38); Curinus coeruleus (33, 39); Egius platycephalus (34, 40); Harpasus pallidilabris (35,

41); Zagreus bimaculosus (36, 42).......................................................................................... 49

Figs. 43 - 60. Pronoto vista dorsal: (43-48); Pronoto vista ventral (h, hipomero; pp, processo

prosternal): (49-54); Proendosternito (bi, braço interno; be, braço externo): (55-60);

Chilocorus nigrita (43, 49, 55); Cladis nitidula (44, 50, 56); Curinus coeruleus (45, 51, 57);

Egius platycephalus (46, 52, 58); Harpasus pallidilabris (47, 53, 59); Zagreus bimaculosus

(48, 54, 60)............................................................................................................................... 50

Figs. 61 - 72. Escutelo: (61-66); Metendosternito (t, tendão; bl, braço lateral; lm, lâmina): (67-

72); Chilocorus nigrita (61, 67); Cladis nitidula (62, 68); Curinus coeruleus (63, 69); Egius

platycephalus (64, 70); Harpasus pallidilabris (65, 71); Zagreus bimaculosus (66, 72)........ 51

Figs. 73 - 78. Epipleura (ep) (fv, fóvea): (73-78); Chilocorus nigrita (73); Cladis nitidula

(74); Curinus coeruleus (75); Egius platycephalus (76); Harpasus pallidilabris (77); Zagreus

bimaculosus (78)...................................................................................................................... 52

Figs. 79 - 84. Asa posterior (C, costa; Sc, subcosta, R, radial; RP, radial posterior; Cu, cubital;

M, mediana; MP, mediana posterior; A, anais; Ea, Eb, empusais; P, plical): Chilocorus nigrita

(79); Cladis nitidula (80); Curinus coeruleus (81); Egius platycephalus (82); Harpasus

pallidilabris (83); Zagreus bimaculosus (84).......................................................................... 53

Figs. 85 - 90. Meso e metasterno (ms, mesepisterno; msp, mesoepímero; mt, metepisterno

mtp, metepímero; lmt, linha metasternal): Chilocorus nigrita (85); Cladis nitidula (86);

Curinus coeruleus (87); Egius platycephalus (88); Harpasus pallidilabris (89); Zagreus

bimaculosus (90)...................................................................................................................... 54

Figs. 91 - 96. Perna anterior: Chilocorus nigrita (91); Cladis nitidula (92); Curinus coeruleus

(93); Egius platycephalus (94); Harpasus pallidilabris (95); Zagreus bimaculosus (96)....... 55

Figs. 97 - 102.

Perna média: Chilocorus nigrita (97); Cladis nitidula (98); Curinus coeruleus

(99); Egius platycephalus (100); Harpasus pallidilabris (101); Zagreus bimaculosus

(102)......................................................................................................................................... 56

Figs. 103 - 108. Perna posterior: Chilocorus nigrita (103); Cladis nitidula (104); Curinus

coeruleus (105); Egius platycephalus (106); Harpasus pallidilabris (107); Zagreus

bimaculosus (108).................................................................................................................... 57

Figs. 109 - 120. Tarsos, (109-114); garra tarsal, (115-120): Chilocorus nigrita (109, 115);

Cladis nitidula (110, 116); Curinus coeruleus (111, 117); Egius platycephalus (112, 118);

Harpasus pallidilabris (113, 119); Zagreus bimaculosus (114, 120).

..................................... 58

Figs. 121 - 126. Abdome macho: Chilocorus nigrita (121); Cladis nitidula (122); Curinus

coeruleus (123); Egius platycephalus (124); Harpasus pallidilabris (125); Zagreus

bimaculosus (126).................................................................................................................... 59

Figs. 127 - 132. Abdome fêmea: Chilocorus nigrita (127); Cladis nitidula (128); Curinus

coeruleus (129); Egius platycephalus (130); Harpasus pallidilabris (131); Zagreus

bimaculosus (132).................................................................................................................... 60

Figs. 133 - 139.

Tégmen vista lateral (tv, trave; lm, lobo médio; p, parâmeros): Chilocorus

nigrita (133); Cladis nitidula (134); Curinus coeruleus (135); Egius platycephalus (136);

Harpasus pallidilabris (137); Zagreus bimaculosus (138), ápice do lobo médio (139).......... 61

Figs. 140 - 145. Tégmen vista frontal: Chilocorus nigrita (140); Cladis nitidula (141);

Curinus coeruleus (142); Egius platycephalus (143); Harpasus pallidilabris (144); Zagreus

bimaculosus (145).................................................................................................................... 62

Figs. 146 - 151. Sifão. Chilocorus nigrita (146); Cladis nitidula (147); Curinus coeruleus

(148); Egius platycephalus (149); Harpasus pallidilabris (150); Zagreus bimaculosus

(151)......................................................................................................................................... 63

Figs. 152 - 157. Ápice do sifão. Chilocorus nigrita (152); Cladis nitidula (153); Curinus

coeruleus (154); Egius platycephalus (155); Harpasus pallidilabris (156); Zagreus

bimaculosus (157).................................................................................................................... 64

Figs. 158 - 163. Espermateca. Chilocorus nigrita (158); Cladis nitidula (159); Curinus

coeruleus (160); Egius platycephalus (161); Harpasus pallidilabris (162); Zagreus

bimaculosus (163).................................................................................................................... 65

Figs. 164 - 169. Genitália feminina (cx, coxitos; bc, bursa copulatrix; inf, infundíbulo).

Chilocorus nigrita (164); Cladis nitidula (165); Curinus coeruleus (166); Egius platycephalus

(167); Harpasus pallidilabris (168); Zagreus bimaculosus (169)........................................... 66

Figs. 170 - 173. Infundíbulo. Cladis nitidula (170); Curinus coeruleus (171); Harpasus

pallidilabris (172); Zagreus bimaculosus (173)...................................................................... 67

Figs. 174 - 197. Vistas dorsal, ventral, lateral e frontal. Chilocorus nigrita (174-177); Cladis

nitidula (178-181); Curinus coeruleus (182-185); Egius platycephalus (186-189); Harpasus

pallidilabris (190-193); Zagreus bimaculosus (194-197).

....................................................... 68

TABELA

Tabela I: Gêneros, espécies de Chilocorini e total de exemplares estudados........................... 9

Lista de figuras

CAPÍTULO II: Revisão do gênero Harpasus Mulsant, 1850

(Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorini)

Figs. 1 - 10. Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850): (1) vista dorsal; (2) vista lateral; (3)

vista frontal; cabeça (4) vista dorsal; (5) vista ventral; (6) labro; (7) mandíbulas esquerda e

direita, vista ventral; (8) maxila; (9) lábio; (10) antena......................................................... 100

Figs. 11 - 18. Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850): Pronoto (11) vista dorsal; (12) vista

lateral; (13) proendosternito; (14) escutelo; (15) élitro com fóvea; (16) meso e metaesternito;

(17) metendosternito; (18) asa posterior (C. costa; Sc. subcosta; R. radial; Cu. Cubital; M.

mediana; A. anais; Ea. empusal a; Eb. empusal b)................................................................ 101

Figs. 19 - 23. Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850): Pernas (19) anterior; (20) média; (21)

posterior; (22) tarso, vista ventral; (23) garra tarsal............................................................... 102

Figs. 24 - 33. Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850). Abdome (24) macho, (25) fêmea;

genitália masculina: Tégmen (26) lateral, (27) frontal, (28) ápice do sifão, (29) sifão; genitália

feminina: (30) espermateca, (31) coxitos, bursa copulatrix e infundíbulo, (32) detalhe

infundíbulo, (33) ápice do coxito........................................................................................... 103

Figs. 34 - 42. Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006. Abdome (34) macho, (35) fêmea;

genitália masculina: Tégmen (36) lateral, (37) frontal, (38) ápice do sifão, (39) sifão; genitália

feminina: (40) espermateca, (41) coxitos, bursa copulatrix e infundíbulo, (42) detalhe

infundíbulo............................................................................................................................. 104

Figs. 43 - 45. Harpasus evermanni (Mulsant, 1850). (43) abdome fêmea; genitália feminina:

(44) espermateca, (45) coxitos, bursa copulatrix e infundíbulo............................................. 105

Figs. 46 - 54. Harpasus zonatus (Mulsant, 1850). Abdome (46) macho, (47) fêmea; genitália

masculina: Tégmen (48) lateral, (49) frontal, (50) ápice do sifão, (51) sifão; genitália

feminina: (52) espermateca, (53) coxitos, bursa copulatrix e infundíbulo, (54) detalhe

infundíbulo............................................................................................................................. 106

Figs. 55 - 63. Harpasus sp. nov. A. Abdome (55) macho, (56) fêmea; genitália masculina:

Tégmen (57) lateral, (58) frontal, (59) ápice do sifão, (60) sifão; genitália feminina: (61)

espermateca, (62) coxitos, bursa copulatrix e infundíbulo, (63) detalhe

infundíbulo............................................................................................................................. 107

Figs. 64 - 67. Harpasus sp. nov. B. (64) abdome fêmea; genitália feminina: (65) espermateca,

(66) coxitos, bursa copulatrix e infundíbulo, (67) detalhe infundíbulo................................. 108

Figs. 68 - 74. Harpasus sp. nov. C. Abdome (68) macho, (69) fêmea; genitália masculina:

Tégmen (70) lateral, (71) frontal, (72) sifão; genitália feminina: (73) coxitos, bursa copulatrix

e infundíbulo, (74) detalhe infundíbulo................................................................................. 109

Figs. 75 - 79. Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006: (75) vista dorsal; (76) vista

ventral; (77) vista frontal; (78) vista lateral; (79) etiquetas holótipo..................................... 110

xii

Figs. 80 - 84. Harpasus eversmanni (Mulsant, 1850): (80) vista dorsal; (81) vista ventral; (82)

vista frontal; (83) vista lateral; (84) etiquetas lectótipo......................................................... 111

Figs. 85 - 88. Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850): (85) vista dorsal; (86) vista ventral;

(87) vista frontal; (88) vista lateral........................................................................................ 112

Figs. 89 - 92. Harpasus zonatus (Mulsant, 1850): (89) vista dorsal; (90) vista ventral; (91)

vista frontal; (92) vista lateral................................................................................................ 113

Figs. 93 - 96.

Harpasus

sp. nov. A

: (93) vista dorsal; (94) vista ventral; (95) vista frontal;

(96) vista lateral..................................................................................................................... 114

Figs. 97 - 100. Harpasus sp. nov. B: (97) vista dorsal; (98) vista ventral; (99) vista frontal;

(100) vista lateral................................................................................................................... 115

Figs. 101 - 104. Harpasus sp. nov. C: (101) vista dorsal; (102) vista ventral; (103) vista

frontal; (104) vista lateral....................................................................................................... 116

Figs. 105 - 106. Distribuição geográfica das espécies de Harpasus Mulsant, 1850. (105)

Brasil; (106) Colômbia e Peru.

.............................................................................................. 117

TABELA

Tabela I: Espécies de Harpasus, número de exemplares e total de espécimes estudados..... 73

Estudo de seis gêneros Neotropicais de Chilocorini e revisão de Harpasus

Mulsant, 1850 (Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorinae)

RESUMO

Chilocorinae Mulsant, 1846 abrigou inicialmente os gêneros Chilocorus Leach, 1815 e

Exochomus Redtenbacher, 1843, é composta por três tribos Telsimiini Casey, 1899,

Platynaspidini Mulsant, 1846 e Chilocorini Costa, 1849. Foram estudados seis gêneros

Neotropicais de Chilocorini Costa, 1849: Chilocorus Leach, 1815, Cladis Mulsant, 1850,

Curinus Mulsant, 1850, Egius Mulsant, 1850, Zagreus Mulsant, 1850 e Harpasus Mulsant,

1850 e ainda revisado o último. A tribo foi diagnosticada por apresentar olhos emarginados

pelo clípeo; antenas com oito a dez artículos, inserção oculta; abdome com seis esternitos nos

machos e cinco ou seis nas fêmeas. Os gêneros mais semelhantes entre si, são Cladis,

Curinus, Harpasus e Zagreus por apresentarem esporões tibiais, os mesmos padrões de linha

pós-coxal e na genitália feminina pela forma dos coxitos. Cladis e Curinus são mais próximos

entre si por apresentarem o mesmo número de artículos nas antenas e padrão similar de

infundíbulo. Chilocorus e Egius apresentam caracteres semelhantes como, o número de

artículos antenais, tíbias com um dente na margem externa, forma da linha pós-coxal,

ausência de infundíbulo e espermateca com apêndice alongado. Para a revisão de Harpasus

Mulsant, 1850 foram examinados o holótipo e parátipos de Harpasus aureus Almeida &

Carvalho, 2006 e o homótipo de H. zonatus (Mulsant, 1850). O lectótipo de H. eversmanni

(Mulsant, 1850) foi designado. Três espécies novas foram descritas Harpasus sp. nov. A

(localidade tipo: Teresópolis, RJ, Brasil), Harpasus sp. nov. B (Puerto Carreño, Vichada,

Colômbia) e Harpasus sp. nov. C (Chanchamayo, Junín, Peru). O gênero Harpasus

apresenta: coloração castanha clara a escura ou azul-esverdeada, com ou sem máculas negras;

antenas com nove artículos; palpo maxilar com artículo terminal de lados paralelos; processo

prosternal largo com as regiões laterais fortemente escavadas; linha pós-coxal incompleta;

segundo e terceiro par de tíbias com dois esporões; genitália do macho com o ápice dos

parâmeros fortemente curvados. As espécies do gênero diferem entre si principalmente pelos

diferentes padrões de coloração e da genitália masculina e feminina. Os dados da literatura e

etiquetas indicam que as espécies alimentam-se de Hemiptera, Coccidae, Aphididae e

Psyllidae, as quais utilizam plantas hospedeiras das seguintes famílias Lytraceae, Malvaceae,

Myrtaceae, Poaceae, Rutaceae e Solanaceae.

Palavras-chave: Morfologia, Neotropical, revisão, taxonomia.

Study of six Neotropical genera of Chilocorini and revision of Harpasus

Mulsant, 1850 (Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorinae)

ABSTRACT

Chilocorinae Mulsant, 1846 accomodated inicially the genera Chilocorus Leach, 1815 and

Exochomus Redtenbacher, 1843, and is composed by three tribes Telsimiini Casey, 1899,

Platynaspidini Mulsant, 1846 e Chilocorini Costa, 1849. Six Neotropical genera of

Chilocorini Costa, 1849 were studied: Chilocorus Leach, 1815, Cladis Mulsant, 1850,

Curinus Mulsant, 1850, Egius Mulsant, 1850, Zagreus Mulsant, 1850 and Harpasus

Mulsant,1850 the last one was revised. The tribe was diagnosticated by the eyes emarginated

by the clypeus; antennae with eight to ten segments, insertion concealed; tarsal claws

appendiculate; abdomen with six sternites in male and five or six in female. The most similar

genera are Cladis, Curinus, Harpasus and Zagreus, by having the tibial spurs, the same

postcoxal line pattern and the form of coxites on female genitalia. Cladis and Curinus are the

most similar due to the presence of the same numbers of antenommeres and pattern of

infundibulum. Chilocorus and Egius present similar characters as the number of segments,

tibiae with tooth on the external margin, form of postcoxal line, infundibulum absent and the

elongated appendix on spermateca. For the revision of Harpasus Mulsant, 1850 were

examinated the holotype and paratypes of Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006 and

homotype of H. zonatus (Mulsant, 1850). The lectotype of H. eversmanni (Mulsant, 1850)

was designated. Three new species were described, Harpasus sp. nov. A (type locality:

Teresopolis, RJ, Brazil), Harpasus sp. nov. B (Puerto Carreño, Vichada, Colombia) and

Harpasus sp. nov. C (Chanchamayo, Junín, Peru). The genus Harpasus presents the

following characters: light to dark brown or bluish-green, with or without black maculae;

antennae with nine segments; maxillary palpi with the last article with parallel sides;

prosternal process broad, with lateral margins strongly grooved; postcoxal line incomplete;

tibial spurs present on second and third legs; male genitalia with apex of parameres strongly

curved. The species of the genus differs between themselves by the different patterns of color

and male and female genitalia. The literature and labels indicates that the species feed on

Hemiptera, Coccidae, Aphididae and Psyllidae, which one utilize the following host-plants,

Lytraceae, Malvaceae, Myrtaceae, Poaceae, Rutaceae and Solanaceae.

Key-words: Morphology, Neotropical, revision, taxonomy.

PREFÁCIO

Os coccinelídeos foram inicialmente descritos por Linnaeus em 1758, que incluiu 36

espécies no gênero Coccinella, porém a família só foi estabelecida por Latreille em 1807.

Desde então, numerosas espécies foram descritas e estima-se que, atualmente, existam cerca

de 6.000 espécies em 360 gêneros com distribuição mundial (Vandenberg 2001). Costa (1999,

2000) cita que para a região Neotropical, há cerca de 110 gêneros com 1.310 espécies, destas,

325 alocadas em 49 gêneros para o Brasil.

Seus representantes são facilmente reconhecidos por possuírem o corpo geralmente de

forma arredondada a levemente alongada, compactos, com a superfície dorsal moderadamente

a fortemente convexa, superfície ventral plana ou levemente côncava, medindo entre 0,8 a 18

mm de comprimento. As antenas são curtas, com 6 a 11 artículos, levemente clavadas; com

segmento terminal do palpo maxilar securiforme, de lados paralelos ou cônicos. Os esporões

tibiais podem estar presentes ou não; e os tarsos podem ser criptotêtrameros ou raramente

trímeros. Os élitros podem ser glabros ou pubescentes e o abdome com cinco ou seis

esternitos visíveis, apresenta no primeiro esternito a linha pós-coxal bem desenvolvida,

(Wickmam 1894, Sasaji 1971, White 1983, Booth et al. 1990, Kovář 1973 e 1996, Iablokoff-

Khnzorian 1982, Gordon 1985, Lawrence & Britton 1990 e 1994, Majerus 1994, Kuznetsov

1997, Vandenberg 2001).

Possuem diversificado hábito alimentar e, por este motivo, são considerados de grande

importância no controle biológico. A maioria dos adultos e larvas de Coccinellidae

alimentam-se, principalmente, de afídeos, cochonilhas e psilídios (Hemiptera) e

ocasionalmente de larvas de Chrysomelidae (Coleoptera) e de outros Coccinellidae. Alguns

são micófagos, consumindo fungos prejudiciais a várias plantas cultivadas, e há ainda os

representantes da subfamília Epilachninae que apresentam hábito fitófago, sendo

considerados pragas de algumas culturas (Hagen 1962, Majerus et al. 1990, Booth et al.

1990).

Coccinellidae pertence à superfamília Cucujoidea, seção Clavicornia (Crowson 1960,

Sasaji 1968 e 1971, Kovář 1973, Vandenberg 2001). Segundo Crowson (1960) a família é

intimamente relacionada à Cerylonidae, Endomychidae, Corylophidae, Discolomatidae

(=Discolomidae), Merophysiidae e Corticariidae (=Lathridiidae), porém Sasaji (1971)

comenta que este relacionamento é muito complexo, e que é difícil reconhecer a origem

evolutiva desta família. Pakaluk et al. (1994) e Tomaszewska (2000) comprovou através de

análise cladística que Endomychidae está intimamente relacionada à Coccinellidae.

A família é composta por seis subfamílias: Coccidulinae, Coccinellinae, Scymninae,

Chilocorinae, Sticholotidinae e Epilachninae (Booth et al. 1990, Lawrence & Britton 1990 e

1994, Pakaluk et al. 1994, Kuznetsov 1997). No entanto, alguns autores acrescentaram mais

três ou quatro subfamílias, porém não há um consenso sobre essa classificação (Vandenberg

2001).

A subfamília Chilocorinae foi criada por Mulsant em 1846, “familia Chilocoriens”,

para abrigar inicialmente, os gêneros Chilocorus Leach, 1815 e Exochomus Redtenbacher,

1843, que se diferenciavam dos demais representantes da família por apresentar uma forte

expansão lateral do clípeo, a qual oculta a inserção das antenas. Esta subfamília é composta

por três tribos Telsimiini Casey, 1899, Platynaspidini Mulsant, 1846 e Chilocorini Costa,

1849.

Tendo em vista que Chilocorini tem sido pouco estudada, principalmente em relação à

fauna Neotropical, este trabalho foi dividido em dois capítulos, onde o primeiro trata do

estudo comparado detalhado de seis gêneros Neotropicais e o segundo da revisão do gênero

Harpasus Mulsant, 1850.

CAPÍTULO

Estudo de seis gêneros

Neotropicais de Chilocorini

(Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorinae)

Estudo de seis gêneros Neotropicais de Chilocorini

(Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorinae)

RESUMO

Foram estudadas estruturas do exoesqueleto e genitália de seis gêneros Neotropicais de

Chilocorini Costa, 1849: Chilocorus Leach, 1815, Cladis Mulsant, 1850, Curinus Mulsant,

1850, Egius Mulsant, 1850, Harpasus Mulsant, 1850 e Zagreus Mulsant, 1850. Este estudo

possibilitou o conhecimento de novos caracteres taxonômicos. A tribo foi diagnosticada por

apresentar corpo glabro; olhos fortemente emarginados pela expansão do clípeo; antenas com

oito a dez artículos, inserção oculta; élitros com margem lateral pouco explanada; epipleura

alargada, com ou sem fóvea; pernas robustas, tíbias com ou sem dentes e esporões; garras

tarsais apendiculadas; abdome com seis esternitos nos machos e cinco ou seis nas fêmeas;

linha pós-coxal incompleta; genitália masculina, com lobo médio simétrico ou levemente

assimétrico; genitália feminina com espermateca robusta, ducto espermático longo; com ou

sem infundíbulo. Os seis gêneros neotropicais foram detalhadamente redescritos e uma chave

de identificação foi elaborada com base nas espécies estudadas. Os gêneros mais semelhantes

entre si, são Cladis, Curinus, Harpasus e Zagreus por apresentarem esporões tibiais, os

mesmos padrões de linha pós-coxal e na genitália feminina pela forma dos coxitos. Cladis e

Curinus são mais próximos entre si por apresentarem o mesmo número de artículos nas

antenas e padrão similar de infundíbulo na genitália feminina. Chilocorus e Egius apresentam

caracteres semelhantes como, o número de artículos antenais, tíbias com um dente na margem

externa, forma da linha pós-coxal, ausência de infundíbulo e espermateca com apêndice

alongado.

Study of six Neotropical genera of Chilocorini

(Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorinae)

ABSTRACT

There were studied structures of exoskeleton and genitalia of six Neotropical genera of

Chilocorini Costa, 1849: Chilocorus Leach, 1815, Cladis Mulsant, 1850, Curinus Mulsant,

1850, Egius Mulsant, 1850, Harpasus Mulsant, 1850 and Zagreus Mulsant, 1850. This study

has enabled the knowledge of new taxonomic characters. The tribe was diagnosticated by the

body glabrous; eyes strongly emarginated by the clypeus expansion; antennae with eight to

ten segments, insertion concealed; elytra with lateral margin lightly reflexed; epipleura broad,

with or without fovea; legs stout, tibiae with or without teeth and spurs; tarsal claws

appendiculate; abdomen with six sternites in male and five or six in female; postcoxal line

incomplete; male genitalia, with median lobe symmetrical or lightly asymmetrical; female

genitalia with a stout spermateca, long sperm duct; infundibulum present or absent. The six

Neotropical genera were redescribed and an identification key was presented, based on

studied species. The most similar genera are Cladis, Curinus, Harpasus and Zagreus, by

having the tibial spurs, the same postcoxal line pattern and the form of coxites on female

genitalia. Cladis and Curinus are the most similar due to the presence of the same numbers of

antenommeres and pattern of infundibulum. Chilocorus and Egius present similar characters

as the number of segments, tibiae with tooth on the external margin, form of postcoxal line,

infundibulum absent and the elongated appendix on spermateca.

3. INTRODUÇÃO

A tribo Chilocorini foi proposta por Costa (1849), e inclui a maioria dos representantes

da subfamília com, aproximadamente 250 espécies (Kovář 1995, Ślipiński & Giorgi 2006),

alocadas em 21 gêneros distribuídos em todo mundo, destes, somente seis são restritos a

região Neotropical.

A maioria dos Chilocorini alimenta-se de coccídeos, mas alguns se alimentam de

afídeos (Hemíptera). Este é um grupo economicamente importante, sendo que muitas espécies

são utilizadas no controle biológico (Drea & Gordon 1990).

Chapin (1965a) estudou alguns gêneros da tribo, onde propôs diagnoses, chave de

identificação e descrições, com ilustrações. Alguns outros trabalhos foram realizados para a

fauna do Japão e Arquipélago Ryukyus e Bonins (Sasaji 1971), América do Norte (Phuoc &

Stehr 1974, Gordon 1985), México (Gordon 1974), Canadá e Alaska (Belicek 1976), Espanha

(Plaza-Infante 1986), Região Paleártica (Kovář 1995, Kuznetsov 1997), Índia (Poorani 2002)

e Austrália (Ślipiński & Giorgi 2006, Ślipiński 2007).

Devido à escassez de dados a respeito da fauna de Chilocorini para a região

Neotropical, o presente estudo tem como principal objetivo redescrever detalhadamente a

morfologia externa e genitália de alguns dos gêneros desta tribo.

4. MATERIAL E MÉTODOS

4.1 Procedência e exame do material

Para o desenvolvimento deste estudo, foram obtidos por empréstimo, exemplares com

procedência de instituições nacionais e internacionais, listadas a seguir, com a respectiva sigla

e o nome do curador e/ou intermediário do empréstimo entre parênteses. A sigla dos museus

segue a proposta por Evenhuis & Samuelson (2006).

DZUP - Coleção de Entomologia Pe. Jesus Santiago Moure, Departamento de

Zoologia, Universidade Federal do Paraná, Curitiba, Paraná, Brasil (Lúcia

Massutti de Almeida).

IMLA - Fundación e Instituto Miguel Lillo, Universidad Nacional de Tucumán,

Tucumán, Argentina (Maria Virginia Colomo).

MLPA - Museo de La Plata, Universidad Nacional de La Plata, La Plata, Argentina

(Analía Lanteri).

MNCI

- Museu de Historia Natural Capão da Imbuia, Curitiba, Paraná, Brasil (Márcia

Arzua).

MNRJ - Museu Nacional do Rio de Janeiro, Universidade Federal do Rio de Janeiro,

Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, Brasil (Miguel Angel Monné).

MZSP - Museu de Zoologia da Universidade de São Paulo, São Paulo, Brasil (Sônia

Casari).

UEPG - Coleção Entomológica da Universidade Estadual de Ponta Grossa, Ponta

Grossa, Paraná, Brasil (Julianne Milléo).

USNM – Smithsonian Institution National Museum of Natural History, Washington,

DC, Estados Unidos (Natalia Vandenberg e David G. Furth).

ZMHB - Museum für Naturkunde der Humboldt - Universität, Berlin, Alemanha

(Manfred Uhlig e Bernd Jaeger).

Dos 21 gêneros da tribo, foram selecionados para estudo aqueles com distribuição

restrita a região Neotropical. Foram examinados 236 exemplares, pertencentes às espécies-

tipo dos gêneros, com exceção de Chilocorus, pois não foi possível a obtenção do material

(Tabela I).

Tabela I: Gêneros, espécies de Chilocorini e total de exemplares estudados.

Gêneros Espécies estudadas

Total de

exemplares

Chilocorus Leach, 1815

Chilocorus nigrita

(Fabricius, 1798)

Cladis Mulsant, 1850

Cladis nitidula

(Fabricius, 1792)

Curinus Mulsant, 1850

Curinus coeruleus

(Mulsant, 1850)

112

Egius Mulsant, 1850

Egius platycephalus Mulsant, 1850

Harpasus Mulsant, 1850

Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850)

Zagreus Mulsant, 1850

Zagreus bimaculosus (Mulsant, 1850)

Total

236

2.2 Metodologia

Para a realização do estudo morfológico detalhado dos gêneros, foram dissecados no

mínimo dois exemplares de cada espécie, de ambos os sexos, de acordo com a disponibilidade

do material. Inicialmente, os exemplares previamente selecionados e identificados, foram

fervidos em água destilada com algumas gotas de detergente líquido neutro, por

aproximadamente quatro minutos, para amolecimento do exoesqueleto e musculatura. Após

este procedimento, o espécime foi levado ao estereomicroscópio e dissecado com auxílio de

pinças de ponta fina e micro-estiletes. Para a remoção de restos de tecidos os exemplares

foram aquecidos em solução de hidróxido de potássio (KOH) a 10%, por aproximadamente

10 segundos.

As peças foram estudadas em placa-de-petri, com água destilada e para algumas

estruturas como peças bucais, antenas, pernas, asas posteriores, abdome e genitália, foi

utilizada montagem em lâmina, com uma ou duas gotas de glicerina e cobertas com lamínula.

O armazenamento dos espécimes dissecados foi feito em recipientes de vidro, com

capacidade para 15 mL, contendo glicerina e com as informações do exemplar. Quando

somente o abdome foi retirado, este era colado em um triângulo de papel e a genitália

armazenada em microtubo com tampa de polietileno, em glicerina para evitar o ressecamento,

ambos fixados no mesmo alfinete, logo abaixo do espécime.

Foram realizados 179 desenhos das seguintes estruturas: cápsula cefálica vista dorsal e

ventral, antena, mandíbulas, maxila, lábio, protórax vista dorsal e ventral, proendosternito,

élitro, metendosternito, pernas anterior, média e posterior, abdome, genitália masculina e

feminina. Em algumas estruturas relevantes, foram realizados desenhos em maior aumento

para a demonstração de detalhes.

O reconhecimento das estruturas e as ilustrações foram realizadas com auxílio de um

estereomicroscópio ZEISS Stemi SV6 e para estruturas muito pequenas, microscópio Standard

20, ambos com câmara-clara acoplada. Para a confecção dos desenhos foi estabelecido um

padrão de aumento para cada estrutura. A dimensão dos desenhos foi registrada através da

escala que os acompanham.

As fotos das espécies foram obtidas através da câmera Leica DFC 500, acoplada à

Lupa Leica MZ16, o alinhamento das imagens, realizado pelo Software Auto-Montage Pro

(Syncroscopy) do “Projeto Taxon line Rede Paranaense de Coleções Biológicas”, do

Departamento de Zoologia. A arte final dos desenhos e fotos foi realizada no programa

ADOBE PHOTOSHOP CS versão 8.0.

Na lista de material examinado, foi citado o país, estado, localidade, data de coleta,

coletor, sexo (representado pelos símbolos macho (♂) e fêmea (♀)) e a sigla da coleção à qual

o exemplar pertence.

A terminologia foi baseada, nos trabalhos de Almeida & Milléo (2000). Para a

interpretação da venação alar utilizou-se o trabalho de Marinoni & Almeida (1983) e

Kukalová-Peck & Lawrence (1993), do metendosternito os trabalhos de Crowson (1938 e

1944), de genitália, Plaza-Infante (1979-1980) e Bicho & Almeida (1998).

3. RESULTADOS E DISCUSSÃO

3.1 Chilocorini Costa, 1849

(Figs. 1 - 197)

Chilocorini: Costa, 1849: 9, 58; Weise,1885: 4; Casey, 1899: 104; Weise, 1904, 358;

Dimmock, 1906: 321; Leng, 1908: 33; Blatchley, 1910: 517; Jakobson, 1916: 990;

Leng, 1920: 217; Mader, 1926: 23; Korschefsky, 1932: 235; Blackwelder, 1945: 451;

Wingo, 1952: 24; Mader, 1955: 772, 773; Chapin, 1965a: 234; Miyatake, 1970: 303;

Sasaji, 1971: 42, 220; Chapin, 1974: 48; Phouc & Stehr, 1974: 12, 37; Belicek, 1976:

293; Hoang, 1983: 235; Iablokoff-Khnzorian, 1983: 132; Gordon, 1985: 602; Plaza-

Infante, 1986: 250, 252; Chazeu, Fürsch & Sasaji, 1989: 7; Fürsch, 1990: 5; Rees,

Anderson, Buok & Gordon, 1994: 396; Pakaluk, Ślipiński & Lawrence, 1994: 234, 249;

Fürsch, 1996: 5; Kuznetsov, 1997: 122; Vandenberg, 2001: 14; Poorani, 2002: 310;

Duverger, 2003: 59, 66; Ślipiński & Giorgi, 2006: 266; Ślipiński, 2007: 30, 71.

Chilocoriens: Mulsant, 1846: 166; Mulsant, 1850: 2, 451; Bouillon, 1858: 22.

Chilocoraires: Mulsant, 1850: 451.

Exochomaires: Mulsant, 1850: 451, 465.

Chilocorides: Thomson, 1866: 379; Crotch, 1873: 363, 376; Crotch, 1874: 182; Gorham,

1892: 174.

Chilocoridae: Berg, 1874: 290.

Chilocorites: Chapuis, 1876: 242.

Chilocorinae: Della Beffa, 1912: 167.

Chilocorina: Dobrzhansky, 1926: 1576.

Gênero-tipo: Chilocorus Leach, 1815

Diagnose

Corpo arredondado a ovalado, glabro, moderadamente a fortemente convexo, com

pontuação. Cabeça transversa, subquadrangular a sub-retangular, não visível em vista dorsal;

clípeo com emarginação na região mediana; expansão lateral do clípeo muito curta a longa,

com laterais levemente a fortemente arqueadas. Olhos finamente facetados, fortemente

emarginados pela expansão lateral do clípeo, parcialmente cobertos pela margem anterior do

pronoto. Antenas com inserção oculta pela expansão lateral do clípeo, com oito, nove ou dez

artículos, clava fusiforme. Labro transverso, trapezoidal a semicircular, parcialmente exposto

em vista frontal. Mandíbulas robustas, fortemente esclerotizadas, levemente a fortemente

assimétricas, com um dente incisor apical simples, bem evidente, margem interna levemente

denteada; prosteca com cerdas curtas e grossas. Maxilas com cardo transverso, sub-

arredondado a subtrapezoidal, com ou sem expansão lateral. Lábio com mento subtrapezoidal

a trapezoidal, laterais anteriores fortemente projetadas ou não.

Tórax com pronoto levemente convexo, transverso, com base larga sub-arredondada

ou arredondada, com emarginação na região anterior. Processo prosternal largo ou estreito,

com ápice subtriangular ou arredondado. Escutelo triangular ou subtriangular e plano.

Mesotórax estreito entre as cavidades mesocoxais, com uma placa saliente em forma de T.

Metendosternito subtrapezoidal. Metasterno sub-retangular mais largo que longo, com sulco

longitudinal mediano; cavidades metacoxais largas, transversas, pouco mais afastadas que as

mesocoxais. Élitro com calo umeral, margem lateral pouco explanada ou não; epipleura

moderadamente a fortemente alargada, estreitando-se em direção ao ápice do élitro, com

cerdas curtas, foveolada ou não para a recepção dos ápices femurais das pernas posteriores.

Pernas robustas ou delgadas, com ou sem dentes na região mediana da margem

externa, com ou sem esporões tibiais; tarsos criptotetrâmeros, garras tarsais apendiculadas.

Abdome com linha pós-coxal imcompleta, com seis esternitos nos machos e cinco ou

seis nas fêmeas.

Genitália masculina: lobo médio simétrico ou levemente assimétrico; sifão curvado;

cápsula sifonal desenvolvida e bolsa prepucial pouco ou bem desenvolvida.

Genitália feminina

: espermateca larga ou afilada, ducto espermático longo e frágil;

corno curto ou alongado; coxitos subtriangulares alongados a triangulares e curtos; bursa

copulatrix alongada ou não; com ou sem infundíbulo.

3. 2 Chave para seis gêneros Neotropicais de Chilocorini

1 - Antenas com dez artículos (Figs. 14, 15); epipleura levemente foveolada (Figs. 74, 75);

primeiro esternito abdominal com linha pós-coxal incompleta e curvada, terminando na

margem posterior, com ápice curvado em direção à margem anterior (Figs. 122, 123, 128,

129); com esporões tibiais (Figs. 98, 99, 104, 105)................................................................... 2

1’- Antenas com menos de dez artículos; epipleura foveolada ou não; linha pós-coxal

amplamente incompleta, curvada ou formando um semicírculo; com ou sem esporões

tibiais.......................................................................................................................................... 3

- Corpo ovalado em vista dorsal, tegumento liso brilhante (Fig. 178, 180); processo

prosternal longo, estreito e com ápice sub-arredondado (Fig. 50); garra tarsal com dente apical

afilado (Fig. 116)...................................................................................... Cladis Mulsant, 1850

2’- Corpo fortemente arredondado em vista dorsal, tegumento fosco (Fig. 182, 184); processo

prosternal curto, largo e triangular (Fig. 51), garra tarsal com dente apical arredondado (Fig.

117)........................................................................................................ Curinus Mulsant, 1850

3 - Antenas com oito artículos (Figs. 13, 16, 18)....................................................................... 4

3’- Antenas com nove artículos (Fig. 17)........................................... Harpasus Mulsant, 1850

4 - Tíbias com dente na margem externa do terço basal, sem esporões apicais (Figs. 91, 94,

97, 100, 103, 106); linha pós-coxal amplamente incompleta seguindo a margem posterior do

primeiro esternito abdominal terminando próxima a margem lateral (Figs. 121, 124, 127,

130)............................................................................................................................................ 5

4’- Tíbias sem dentes na margem externa, com esporões apicais (Figs. 96, 102, 108); linha

pós-coxal fortemente curvada em direção a base do primeiro esternito abdominal, formando

um semicírculo (Figs. 126, 132).............................................................Zagreus Mulsant, 1850

5 - Mento sem projeções (Fig. 37); processo prosternal largo, curto e triangular (Fig. 49);

epipleura moderadamente larga e fortemente foveolada (Fig. 73); linha pós-coxal metasternal

sinuosa (Fig. 85); garra tarsal com dente basal quadrangular (Fig.

115)....................................................................................................... Chilocorus Leach, 1815

5’- Mento com projeções (Fig. 40); processo prosternal longo, estreito e arredondado (Fig.

52); epipleura larga e não foveolada (Fig. 76); linha pós-coxal metasternal curvada (Fig.88);

garra tarsal com dente basal curto e anguloso (Fig. 118)...........................Egius Mulsant, 1850

3.3 Redescrição dos gêneros Neotropicais de Chilocorini

3.3.1 Chilocorus Leach, 1815

(

Figs. 1, 7, 13, 19, 25, 31, 37, 43, 49, 55, 61, 67, 73, 79, 85, 91, 97, 103, 109, 115, 121, 127,

133, 140, 146, 152, 158, 164, 174 -177)

Leach, 1815, in Brewster: 116; Redtenbacher, 1843: 6, 8, 11; Germar, 1844: 118; Mulsant,

1846: 168; Costa, 1849: 58; Mulsant, 1850: 452; Crotch, 1874: 183; Chapuis, 1876:

244; Gemminger & Harold, 1876: 3775; Gorham, 1892: 175; Korschefsky, 1932: 237;

Binaghi, 1941: 19, 20, 22; Blackwelder, 1945: 451; Wingo, 1952: 25; Djadechko, 1954:

56; Mader, 1955: 773, 774; Kamiya, 1959: 99; Chapin, 1965a: 235, 263; Sasaji, 1971:

220; Phouc & Stehr, 1974: 39; Gordon, 1985: 641; Plaza-Infante, 1986: 252; Fürsch,

1990: 5; Rees, Anderson, Bouk & Gordon, 1994: 398; Kuznetsov, 1992: 352;

Kuznetsov, 1997: 122, 124; Vandenberg, 2001: 5, 14; Poorani, 2002: 311; Duverger,

2003: 66; Ślipiński & Giorgi, 2006: 269; Ślipiński, 2007: 73.

Espécie-tipo: Coccinella cacti Linnaeus, 1767, por monotipia.

Redescrição

Macho. Corpo arredondado em vista dorsal, fortemente convexo, com pontuação fina

e esparsa, região dorsal e ventral brilhante (Fig. 174 - 177).

Cabeça subquadrangular; expansão lateral do clípeo, muito curta, com leve

emarginação na região mediana, margens laterais levemente arqueadas e arredondadas, região

fronto-clipeal com cerdas finas e longas. Fronte uma vez e meia mais larga que o maior

comprimento do olho. Olhos com margem interna fortemente côncava próxima do ápice, com

cerdas finas na margem latero-ventral. Região gular curta, larga, com as laterais oblíquas e

região mediana levemente côncava (Figs. 1, 7).

Antenas com oito artículos; primeiro alongado e subcilíndrico, levemente inclinado,

mais longo que largo; segundo mais largo na base, arredondado no terço apical; terceiro

triangular e alongado; quarto, quinto e sexto semelhantes no comprimento e forma, cada um

mais largo no ápice que na base; sétimo mais largo que longo; oitavo tão longo quanto o

sétimo, levemente estreitado, com ápice arredondado (Fig. 13).

Labro subtrapezoidal com cerdas curtas e finas distribuídas de maneira uniforme;

bordas basais e apicais angulosas, fortemente arredondadas posteriormente; anteclípeo reto na

margem basal e bisinuoso na margem apical; projeções basais curtas, grossas, levemente

inclinadas e com ápice arredondado (Fig. 19).

Mandíbulas subtriangulares alongadas, levemente assimétricas, margem externa

levemente côncava no terço basal, com cinco cerdas finas e curtas; terço apical convexo,

delgado, dente incisor com ápice agudo, mola afilada na mandíbula direta e subtriangular

arredondada na esquerda; região logo abaixo da mola com leve projeção membranosa com

cerdas longas (Fig. 25).

Maxila com cardo sub-arredondado, levemente expandido lateralmente; gálea e lacínia

com ápices arredondados cobertos com cerdas longas e grossas; último artículo do palpo

maxilar mais longo que largo de lados paralelos, ápice levemente oblíquo, com cerdas curtas

(Fig. 31).

Lábio com mento trapezoidal, laterais anteriores pouco projetadas, arredondadas,

margem apical levemente côncava, com uma fileira de cerdas longas; lígula sub-retangular

com cerdas curtas nas laterais; palpo labial com primeiro artículo curto e largo na base;

segundo alongado, alargado no ápice; terceiro afilado no ápice, este truncado (Fig. 37).

Tórax com pronoto levemente convexo, base fortemente projetada e arredondada na

região mediana, borda anterior com leve emarginação sinuosa, laterais largas e ligeiramente

arredondadas; ângulo obtuso na borda lateral interna e apical (Fig. 43). Hipômeros levemente

côncavos com forte escavação oblíqua; prosterno em forma de T, longo, processo prosternal

plano, largo e com ápice triangular (Fig. 49). Proendosternito com o braço interno e externo

com mesmo comprimento, o interno largo, com ápice agudo e o externo afilado (Fig. 55).

Escutelo com comprimento menor que a largura da base, laterais anteriores

arredondadas, ápice ligeiramente afilado (Fig. 61).

Metendosternito com região mediana em forma de U, com um par de tendões muito

curtos, arredondados e pouco projetados na margem anterior, furca com braços laterais

longos, espessos e curvados externamente, um par de lâminas curtas, inclinadas internamente

(Fig. 67).

Élitro com calo umeral projetado, margem pouco explanada; epipleura

moderadamente larga, com cerdas curtas, com fóvea profunda e larga para a recepção dos

ápices femurais das pernas posteriores (Figs. 73, 174, 177).

Asas membranosas com lobo anal subquadrado, veia Costa (C) moderadamente longa

estendendo-se cerca de pouco mais que 1/3 o comprimento da asa; Subcosta (Sc) subparalela

a margem anterior da asa, pouco mais longa que a C, Radial (R) larga na região apical da asa,

pouco mais longa que a Sc; Cubital (Cu) muito longa dirigindo-se a margem inferior da asa,

bifurcada na base e formando com a Mediana (M) uma célula levemente aberta; Anais (A)

formando uma célula fechada na base; Empusal b (Eb) não evidente; Empusal a (Ea), curvada

em direção a região anterior da asa e afilada no ápice; Plical evidente (P) (Fig. 79).

Mesotórax com uma fóvea subtriangular profunda na margem anterior; mesepisterno

subtriangular-alongado, não atingindo as cavidades coxais; mesoepímero curto, subtriangular,

com margem lateral arredondada, ápice alcançando as cavidades mesocoxais. Metasterno com

linha metasternal sinuosa; metepisterno alongado com uma linha oblíqua na região mediana,

com uma projeção lateral basal e apical afiladas; metepímero pequeno, com base curvada e

ápice afilado (Fig. 85).

Pernas com coxas anteriores alongadas e transversas, base afilada, ápice arredondado;

coxa média globosa; posteriores oval-alongadas e transversas, trocânteres anteriores sub-

retangulares, médios e posteriores subtriangulares alongados. Fêmures robustos com cerdas

curtas distribuídas de maneira uniforme, com escavação profunda para a recepção das tíbias.

Tíbias alongadas, robustas, maior largura na região mediana, com um dente na margem

externa do terço basal, ápices margeados de cerdas curtas na margem interna e grossas no

ápice; com escavação profunda no terço apical da margem externa para a recepção dos

tarsômeros, ausência de esporões tibiais (Figs. 91, 97, 103). Primeiro tarsômero alongado,

afilado na base, margem anterior arredondada, com densa pilosidade; segundo subtriangular

com pilosidade longa apical; garras tarsais levemente alongadas, curvadas, com dente basal

quadrado, estreito e o apical com ápice arredondado (Figs. 109, 115).

Abdome com seis esternitos visíveis, o primeiro com linha pós-coxal amplamente

incompleta, seguindo a margem posterior do primeiro esternito e terminando na margem

lateral; segundo, terceiro e quarto esternitos, levemente estreitados na região mediana;

margem posterior do quinto esternito arredondada; sexto esternito curto, com margem

posterior com projeção mediana afilada; cerdas curtas distribuídas nos quatro primeiros

esternitos, nos dois últimos, cerdas pouco mais longas que as anteriores, ambas de coloração

amarelo-claro (Figs. 121, 175).

Genitália

: fortemente esclerotizada. Lobo médio assimétrico; parâmeros maiores que o

lobo médio, ápice alargado e arredondado; pubescência lisa na região apical e posterior, ou

ondulada nas margens laterais; trave alargando-se em direção ao ápice, este, torcido e curvado

posteriormente mais longos que os parâmeros (Figs. 133, 140). Sifão esclerotizado,

fortemente curvado, diâmetro uniforme em toda sua extensão; cápsula sifonal desenvolvida,

ápice do sifão curvado internamente, com bolsa prepucial projetada lateralmente (Figs. 146,

152).

Fêmea. Abdome com cinco esternitos visíveis, a base do quinto esternito fortemente

arqueada, margem posterior arredondada (Fig. 127).

Genitália: espermateca larga, com pregas conspícuas, sem diferenciação de nódulo e

ramo, corno curto com apêndice apical alongado e ápice arredondado; coxitos subtriangulares,

ápice arredondado; estilos pequenos, com cerdas longas e finas; bursa copulatrix alongada;

infundíbulo ausente (Figs. 158, 164).

Material examinado

Chilocorus nigrita (Fabricius, 1798)

BRASIL. Amapá. Macapá

. 3/II/2004, A. A. B. Barbosa leg., 1 espécime ♀(DZUP).

Pernambuco. Mamanguape

. 05/VIII/2006, C. B. C. Martins leg., 1 espécime ♀(DZUP); Feira

Nova, XI/1981, G. P. Arruda leg., 3 espécimes (1♀, 2 indet). Alagoas. Maceió. 25/I/1991, I,

M. M. Lima leg. 1 espécime ♀ (DZUP); 09/IX/1991, I. M. M. Lima leg. 3 espécimes ♀

(DZUP); 12/II/1991, I. M. M. Lima leg., 1 espécime ♀ (DZUP); 10/VI/1993, I. M. M. Lima

leg., 1 espécime ♀ (DZUP); 22/X/1993, I. M. M. Lima leg., 2 espécimes (1♀, 1 indet.)

(DZUP); 12/VI/1994, I. M. M. Lima leg., 1 espécime ♂ (DZUP); 11/III/1995, I. M. M. Lima

leg., 2 espécimes (1♂, 1 indet.) (DZUP); 31/III/1996, I. M. M. Lima leg., 3 espécime (1♀, 2

indet) (DZUP); 3/IX/1997, I. M. M. Lima leg., 1 espécime ♀ (DZUP). Bahia. Cruz das

Almas. 22/IX/1998, P. S. Ivani, 2 espécimes (1♀, 1 indet.) (DZUP). Rio de Janeiro. Rio de

Janeiro. V/1982, 1 espécime (DZUP). São Paulo. Jaboticabal. ?/I/1992, A. S. Pinto leg., 1

espécimes ♂ (DZUP). 8/IX/1993, A. S. Pinto leg., 3 espécimes (1♂, 2♀) (DZUP). Piracicaba

10/IV/2004, G. P. de Arruda Filho leg., 5 espécimes (1♀, 4 indet.) (DZUP).

3.3.2 Cladis Mulsant, 1850

(Figs. 2, 8, 14, 20, 26, 32, 38, 44, 50, 56, 62, 68, 74, 80, 86, 92, 98, 104, 110, 116, 122, 128,

134, 141, 147, 153, 159, 165, 170, 178-181)

Exochomus (Clanis): Mulsant,1850: 479.

Exochomus (Cladis): Mulsant,1850: 1033 (novo nome para Clanis Mulsant, nec Hübner

1819); Gemminger & Harold, 1876: 3777.

Cladis: Crotch, 1874: 192; Gorham, 1894: 179; Korschefsky, 1932: 264; Blackwelder, 1945:

451; Chazeau, Fürsch & Sasaji, 1989: 7; Fürsch, 1990: 5; Fürsch, 1996: 5; Chapin,

1965a: 235, 250; Gordon, 1987: 24; Duverger, 2003: 66.

Espécie-tipo: Coccinella nitidula Fabricius, 1792 [= Exochomus (Clanis) uva Mulsant, 1850]

por subseqüente designação de Crotch, 1874.

Redescrição

Macho. Corpo ovalado em vista dorsal, moderadamente convexo com pontuação fina

e esparsa, região dorsal e ventral brilhante (Figs. 178 - 181).

Cabeça sub-retangular; expansão lateral do clípeo longa, com forte emarginação na

região mediana, margens laterais fortemente arqueadas e afiladas, cerdas finas e longas na

fronte e clípeo. Fronte duas vezes mais larga que o maior comprimento do olho. Olhos

arredondados, largos com margem latero-interna em ponta com bordos arredondados. Região

gular curta, levemente alargada, com região mediana reta (Figs. 2, 8).

Antenas com dez artículos; primeiro alongado e subcilíndrico, levemente inclinado,

mais longo que largo; segundo largura semelhante ao primeiro; terceiro de largura semelhante

ao anterior, de lados quase paralelos; quarto tão largo quanto o terceiro, de lados paralelos; do

quinto ao oitavo semelhantes na forma, cada um levemente mais alargado no ápice que o

anterior; nono de largura semelhante, com ápice oblíquo; décimo muito curto, mais estreito

que o nono e encaixado neste (Fig. 14).

Labro subtrapezoidal com cerdas curtas e finas distribuídas de maneira uniforme,

cerdas longas e grossas nas laterais; borda basal reta e laterais levemente arredondadas e

divergentes; anteclípeo semi-reto na margem basal e apical; projeções basais longas, afiladas,

fortemente inclinadas internamente e com ápice afilado (Fig. 20).

Mandíbulas subtriangulares, assimétricas, margem externa levemente côncava no terço

basal com numerosas cerdas curtas; terço apical convexo, largo, dente incisor espesso, mola

afilada na mandíbula esquerda e arredondada na direita, com projeção alargada e com muitas

cerdas abaixo da mola (Fig. 26).

Maxila com cardo subtrapezoidal, fortemente expandido lateralmente; gálea com ápice

afilado e lacínia com ápice arredondado, cobertos com cerdas longas e grossas; último

artículo de lados levemente divergentes, com ápice fortemente oblíquo e truncado, coberto

com cerdas curtas (Fig. 32).

Lábio com mento subtrapezoidal, laterais anteriores projetadas, arredondadas, margem

apical fortemente côncava, com poucas cerdas curtas; lígula sub-retangular com cerdas curtas

nas laterais; palpo labial com primeiro artículo longo e largo na base; segundo alongado, com

mesmo diâmetro por toda sua extensão; terceiro afilando-se em direção ao ápice, este

arredondado (Fig. 38).

Tórax com pronoto de base sub-arredondada e projetada na região mediana, borda

anterior com forte emarginação, laterais estreitas e arredondadas; ângulo reto entre a borda

lateral e a apical interna (Fig. 44). Hipômeros levemente côncavos, largos; prosterno em

forma de Y, longo, processo prosternal plano, estreito e longo com ápice arredondado (Fig.

50). Proendosternito com o braço interno largo, curto e arredondado; externo longo e

inclinado externamente (Fig. 56).

Escutelo com comprimento semelhante à largura da base; laterais anteriores

arredondadas, ápice afilado (Fig. 62).

Metendosternito com região mediana em forma de V, com um par de tendões longos,

afilados e projetados na margem anterior, furca com braços laterais longos, afilados e

curvados externamente, um par de lâminas curtas, afiladas inclinadas externamente (Fig. 68).

Élitro com calo umeral projetado, margem pouco explanada; epipleura

moderadamente larga, com ampla fóvea pouco profunda para a recepção dos ápices femurais

das pernas posteriores (Figs. 74, 178, 181).

Asas membranosas com lobo anal estreito com ápice arredondado; veia Costa (C)

moderadamente longa, estendendo-se cerca de 1/3 o comprimento da asa; Subcosta (Sc)

subparalela à margem anterior da asa, pouco mais longa que a C, larga no ápice; Radial (R)

afilada na região apical da asa, mesmo comprimento que a Sc; Cubital (Cu) muito longa

dirigindo-se à margem inferior da asa, base paralela a R e formando com a Mediana (M) uma

célula moderadamente aberta; Anais (A) formando uma célula aberta na base; Empusal b (Eb)

duas vezes mais longa que a Empusal a (Ea), esta curvada em direção à região anterior da asa

e bifurcada no ápice; Plical pouco evidente (P) (Fig. 80).

Mesotórax com uma fóvea subtriangular profunda na margem anterior; mesepisterno

subtriangular-alongado, não atingindo as cavidades coxais; mesoepímero alongado,

subtriangular, com margem lateral arredondada, ápice alcançando as cavidades mesocoxais.

Metasterno com linha metasternal levemente oblíqua; metepisterno alongado, com leve

projeção no terço apical da margem externa; metepímero curto, com margem posterior

levemente oblíqua (Fig. 86).

Pernas com coxas anteriores alongadas e transversas, base afilada, ápice arredondado;

coxa média globosa; posteriores oval-alongadas e transversas; trocânteres anteriores sub-

retangulares, médios subtriangulares alongados e posteriores subtriangulares. Fêmures

delgados com cerdas curtas distribuídas de maneira uniforme, com escavação para a recepção

das tíbias. Tíbias alongadas, delgadas, maior largura no terço apical, ápices margeados de

cerdas curtas na margem interna e grossas no ápice; com escavação profunda no terço apical

da margem externa para a recepção do primeiro tarsômero, tíbias médias e posteriores com

esporões apicais (Figs. 92, 98, 104). Primeiro tarsômero alongado, fortemente afilado na base,

margem anterior amplamente arredondada, com densa pilosidade; segundo subtriangular com

pilosidade longa apical; garras tarsais levemente alongadas, fortemente curvadas, com dente

basal largo e quadrado, margem externa arredondada, dente apical com ápice afilado (Figs.

110, 116).

Abdome com seis esternitos visíveis, o primeiro com linha pós-coxal incompleta,

terminando no terço apical com ápice curvado para a região anterior; segundo, terceiro e

quarto esternitos, levemente estreitados na região mediana; margem posterior do quinto e

sexto esternitos com forte emarginação; sexto esternito curto; cerdas curtas distribuídas nos

quatro primeiros esternitos, nos dois últimos, cerdas longas (Figs. 122, 179).

Genitália

: fortemente esclerotizada. Lobo médio subtriangular, com ápice levemente

assimétrico; parâmeros fortemente comprimido no terço basal, ápice alargado e arredondado;

com densa e longa pubescência lisa. Parâmeros em vista lateral com ápices curvados para trás.

Trave levemente afilada na base, alargada no ápice, este torcido (Figs. 134, 141). Sifão

curvado, espesso em toda sua extensão; cápsula sifonal desenvolvida; ápice do sifão curvado

internamente, com bolsa prepucial pouco projetada (Figs. 147, 153).

Fêmea.

Abdome com cinco esternitos visíveis, a base do quinto levemente arqueada,

margem posterior afilando-se em direção ao ápice, este arredondado (Fig. 128).

Genitália:

Espermateca larga, com pregas conspícuas, com nódulo e ramo, corno

levemente alongado com ápice arredondado; ducto espermático longo; coxitos subtriangular-

alongados com ápice arredondado; estilos pequenos, com cerdas longas; bursa copulatrix

alongada; infundíbulo em forma de Y invertido (Figs. 159, 165, 170).

Material examinado

Cladis nitidula

(Fabricius, 1792)

PUERTO RICO. Mayaguez

, 28/VI/1939, K. A. Barlett leg., 21 espécimes (2♂, 3♀, 16

indet.). FRANÇA. Martinique. Basse-Pointe

. 11/VI/1952, Martorell. leg., 3 espécimes ♂

(DZUP). Fort-au-France

. 19/III/1955. M. Alvarenga leg. Coleção M. Alvarenga, 2 espécimes

(DZUP).

3.3.3 Curinus Mulsant, 1850

(Figs. 3, 9, 15, 21, 27, 33, 39, 45, 51, 57, 63, 69, 75, 81, 87, 93, 99, 105, 111, 117, 123, 129,

135, 142, 148, 154, 160, 166, 171, 182-185)

Orcus (Curinus) Mulsant, 1850: 472.

Curinus: Crotch, 1874: 190; Gemminger & Harold, 1876: 3777; Gorham, 1892: 176;

Korschefsky, 1932: 252; Blackwelder, 1945: 451; Chapin, 1965a: 235, 244; Gordon,

1987: 24; Chazeu, Fürsch & Sasaji, 1989: 7; Fürsch, 1990: 5; Poorani, 2002: 312;

Duverger, 2003: 66; Almeida & Carvalho, 2006: 31, 32, 33.

Espécie-tipo: Orcus (Curinus) coeruleus Mulsant, 1850, por designação subseqüente de

Crotch, 1874.

Redescrição

Macho. Corpo arredondado em vista dorsal, fortemente convexo, com brilho fosco e

região ventral brilhante, pontuação fina e densa.

Cabeça subquadrangular, com as laterais posteriores fortemente arredondadas; clípeo

com expansão lateral muito longa, região mediana com leve emarginação, margens laterais

levemente arqueadas e afiladas; cerdas finas e longas distribuídas na fronte e clípeo. Fronte

com largura cerca de duas vezes e meia o maior comprimento do olho. Olhos oblíquos com

margem latero-interna em ponta afilada. Região gular curta estreita e com a margem anterior

fortemente côncava (Figs. 3, 9).

Antenas com 10 artículos, primeiro fortemente curvado, duas vezes mais longo que

largo; segundo arredondado no terço apical, tão longo e largo quanto o primeiro;

subtriangular, ápice levemente inclinado; quarto levemente alargando no ápice; do quinto ao

décimo com uma clava fusiforme compacta; quinto quadrangular; sexto, sétimo e oitavo

quase semelhantes no comprimento, cada um com ápice mais largo que a base; nono quase

duas vezes mais longo que o anterior, ápice oblíquo; décimo curto e cônico, ápice

arredondado, na base mais larga que longa, encaixado no artículo anterior (Fig. 15).

Labro sub-arredondado com cerdas curtas e finas distribuídas de maneira uniforme;

borda basal e laterais arredondadas; anteclípeo curvado na margem basal e apical; projeções

basais moderadamente longas, levemente afiladas e retas, com ápice agudo (Fig. 21).

Mandíbulas subtriangulares arredondadas, levemente assimétricas, margem externa

levemente côncava no terço basal, terço apical fortemente curvado; dente incisor muito

afilado no ápice; molas afiladas e projetadas com região abaixo da mola com cerdas curtas

(Fig. 27).

Maxila com cardo subtrapezoidal, expandido lateralmente; gálea e lacínia com ápices

levemente afilados e arredondados, cobertos com longas e fortes cerdas; último artículo do

palpo maxilar de lados levemente divergentes em direção ao ápice, este oblíquo e truncado,

coberto com cerdas curtas (Fig. 33).

Lábio com mento trapezoidal alongado, laterais anteriores projetadas lateralmente,

arredondadas, margem basal levemente convexa; lígula sub-retangular, laterais arredondadas

com cerdas curtas, duas cerdas longas na região ventral mediana; palpo labial com primeiro

artículo curto, largo e levemente inclinado; segundo alongado, alargando-se gradativamente

em direção ao ápice; último artículo cilíndrico com a margem apical levemente curvada

internamente, ápice arredondado (Fig. 39).

Tórax com pronoto de base sub-arredondada, borda anterior fortemente emarginada,

laterais largas, oblíquas e ligeiramente arredondadas, ângulo levemente obtuso entre a

margem apical e a lateral (Fig. 45). Hipômeros amplos, levemente côncavos; prosterno em

forma de T, longo; processo prosternal plano, moderadamente largo, com ápice triangular

(Fig. 51). Proendosternito com braços internos largos e subquadrados, braço externo afilado,

mesmo comprimento que o interno, este inclinado ventralmente (Fig. 57).

Escutelo com comprimento semelhante a largura da base, laterais anteriores

arredondadas, ápice arredondado e largo (Fig. 63).

Metendosternito subtrapezoidal, com região mediana em forma de V amplamente

aberta, com um par de tendões curtos, afilados e projetados na margem anterior, furca com

braços laterais longos, moderadamente espessos, levemente curvados externamente, ápice

arredondado, um par de lâminas curtas, delgadas e inclinadas externamente (Fig. 69).

Élitro com calo umeral projetado, margem lateral pouco explanada (Figs. 182, 184,

185); epipleura moderadamente larga, com pequena fóvea pouco profunda para a recepção

dos ápices femurais das pernas posteriores (Fig. 75).

Asas membranosas com lobo anal estreito com ápice arredondado, veia Costa (C)

pouco mais curta que 1/3 o comprimento da asa; Subcosta (Sc) afilada, subparalela à margem

anterior da asa, pouco mais longa que a C; Radial (R) larga na região basal e afilada na região

apical da asa, pouco maior que a Sc; Cubital (Cu) muito longa dirigindo-se à margem inferior

da asa, base larga, muito próxima à R, formando com a Mediana (M) uma célula

moderadamente aberta; anais (A) formando uma célula fechada na base; Empusal b (Eb) duas

vezes mais longa que a Empusal a (Ea), esta larga e fortemente curvada em direção à região

inferior da asa; Plical pouco evidente (Fig. 81).

Mesotórax com pequena fóvea profunda e sub-arredondada na margem anterior;

mesepisterno alongado, não atingindo as cavidades coxais; mesoepímero subquadrangular,

com margem lateral arredondada, alcançando as cavidades coxais, região apical, larga e

curvada. Metasterno com linha metasternal com região interna curvada, seguindo em uma

linha ligeiramente reta, terminando na margem lateral; metepisterno com ápice mais afilado

que a base, margem lateral curvada externamente, com projeção afilada, metepímero pequeno

e subtriangular, com margem posterior obliqua (Figs. 87).

Pernas com coxas anteriores alongadas transversas, base levemente alargada, ápice

arredondado; coxa média globosa; posteriores oval-alongadas e transversas; trocânteres

anterior e médio sub-retangulares e posterior subtriangular. Fêmur robusto, 2,2 vezes mais

longo que a largura máxima; cerdas curtas distribuídas de maneira uniforme; com escavação

profunda para a recepção da tíbia. Tíbias alongadas, espessas, maior largura na região apical;

na tíbia anterior escavação na margem anterior para a recepção apenas do primeiro tarsômero,

e nas tíbias média e posterior encaixe de todos os tarsômeros; região apical com cerdas curtas

e grossas; ápice das tíbias média e posterior com esporões tibiais (Figs. 93, 99, 105). Primeiro

tarsômero afilado e alongado, com densa pilosidade e margem anterior arredondada; segundo

tarsômero subtriangular afilado, com pilosidade na margem anterior; garra tarsal curta, ápice

arredondado, curvado, com um dente basal quadrado (Figs. 111, 117).

Abdome com seis esternitos visíveis, o primeiro com linha pós-coxal incompleta,

terminando no terço apical do primeiro esternito, com ápice curvado em direção à margem

anterior; segundo, terceiro e quarto esternitos, semelhantes no comprimento, levemente

arqueados na região mediana e alargados nas laterais; o quinto mais longo que o anterior, com

margem apical levemente emarginada; sexto esternito curto, margem apical fortemente

emarginada, cerdas curtas do primeiro ao quarto e longas na região posterior do quinto e sexto

(Fig. 123).

Genitália

: fortemente esclerotizada. Lobo médio subtriangular, afilando-se

gradativamente em direção ao ápice, este arredondado e assimétrico, parâmeros fortemente

comprimidos no terço basal, com pubescência curta; em vista lateral o ápice é levemente

curvado posteriormente; trave moderadamente larga na base, ápice curvado e torcido, trave

mais longa que os parâmeros (Figs. 135, 142). Sifão curvado, delgado em toda sua extensão;

cápsula sifonal desenvolvida; ápice do sifão levemente alargado e inclinado internamente,

com espículas; bolsa prepucial pouco projetada (Figs. 148, 154).

Fêmea: Abdome com cinco esternitos visíveis, sendo o último subtriangular, mais

longo que o anterior longo, margem posterior arredondada (Fig. 129).

Genitália:

espermateca larga, sem nódulo e ramo bem definidos, com pregas

conspícuas, corno moderadamente alongado, curvado e ápice arredondado; ducto espermático

muito longo; coxitos subtriangulares, ápice arredondado; estilos pequenos com cerdas longas

e finas; bursa copulatrix alongada; infundíbulo em forma Y invertido (Figs. 160, 166, 171).

Material examinado

Curinus coeruleus (Mulsant, 1850)

MEXICO. Vera Cruz. Jalapa

. VIII/1960, G. Halppter leg. 1 espécime ♀ (DZUP);

COSTA RICA. Cartago. Turrialba

. Sem data, sem coletor, 1 espécime (DZUP).

GUATEMALA. La Aurora

. Sem data, sem coletor, 6 espécimes (4♂, 2♀) (DZUP).

TRINIDAD. Port of Spain

. 28/VIII/1937, K. A. Bartlett leg., 6 espécimes (DZUP).

COLÔMBIA. Valle. Cali

. 1/IX/1975, L. Stange leg., 1 espécime ♀ (IMLA). BRASIL. Minas

Gerais. Pouso Alegre

. IX/1962, F. S. Pereira leg. 1 espécime ♀ (DZUP); Sete Lagoas.

18/XII/98, Oleson leg., 1 espécime (ZMHB). Rio de Janeiro. Rio de Janeiro

. II/1924, D.

Mendes leg. 2 espécimes (1♂, 1♀) (DZUP). Corcovado, V/1963, Alvarenga & Seabra leg., 1

espécime (DZUP); XII/1966, Alvarenga & Seabra leg., 2 espécimes (1♂, 1 indet.) (DZUP).

Botafogo, X/1949, M. Alvarenga leg. 1 espécime ♀ (DZUP); I/1952, L. C. Alvarenga leg., 1

espécime (DZUP); 10/V/1952, M. Alvarenga leg., 1 espécime (DZUP); XII/1952, L. C.

Alvarenga leg., 1 espécime ♀ (DZUP). SÃO PAULO. Sem localidade, sem data, 3 espécimes

(MZSP). Atibaia

. 10/XII/1971, F. Halik leg., 1 espécime (DZUP); 26/XI/1971, F. Halik leg.,

3 espécimes ♀ (DZUP); 17/XII/1971, F. Halik leg., 6 espécimes (1♂, 1♀, 4 indet.) (DZUP).

Botucatu

. 11/VII/1996, W. B. Crocomo leg.,. 4 espécimes (2♂, 2♀) (DZUP). São Carlos.

27/VI/2004, F. M. Costa leg., 1 espécime ♂. São Paulo. XII/1916, Saude leg. 1 espécime

(DZUP). Paraná. Arapongas

. XI/1951, A, Maller leg. 4 espécimes (2♂, 1♀, 1 indet.)

(DZUP). Curitiba

. 23/VIII/2002, V. B. Silva leg., 1 espécime ♀ (DZUP); 18/I/2006, G. H.

Corrêa leg., 11 espécimes (5♂, 6♀) (DZUP); 20/XII/2006, R. Corrêa leg., 1 espécimes ♀

(DZUP); 8/I/2207, F. Fernandes leg. 1 espécime ♂ (DZUP); Jardim das Américas,

16/VII/2007, C. Kosmann leg., 1 espécime ♀ (DZUP). Foz do Iguaçu

. 12/XII/1966, Exp.

Depto. Zoo. UFPR, 1 espécime ♀ (DZUP). Guairá

. VIII/1982, A. M. Cordeiro leg., 1

espécime ♂ (MHNCI). Jussara. 12-15/X/1974, Exp. Depto. Zoo. UFPR, 1 espécime ♂

(DZUP). Ponta Grossa. 14/VII/2004, K. Campos, V.A. Feld & J, M, T. Souza, 1 espécime

(UEPG); 17/XI/2004, K. Campos, V.A. Feld & J, M, T. Souza, 2 espécimes (UEPG);

19/XI/2004, K. Campos, V.A. Feld & J, M, T. Souza, 4 espécimes (UEPG); 3/XII/2004, K.

Campos, V.A. Feld & J, M, T. Souza, 2 espécimes (UEPG); 15/XII/2004, K. Campos, V.A.

Feld & J, M, T. Souza, 4 espécimes (UEPG); 12/I/2005, K. Campos, V.A. Feld & J, M, T.

Souza, 1 espécime (UEPG); 26/I/2005, K. Campos, V.A. Feld & J, M, T. Souza, 2 espécime

(UEPG); 10/II/2005, K. Campos, V.A. Feld & J, M, T. Souza, 1 espécime (UEPG);

7/IV/2005, K. Campos, V.A. Feld & J, M, T. Souza, 1 espécime (UEPG); 20/V/2005, K.

Campos, V.A. Feld & J, M, T. Souza, 1 espécime (UEPG); 23/III/2006, K. Campos, V.A.

Feld & J, M, T. Souza, 2 espécimes (UEPG); 30/VI/2006, K. Campos, V.A. Feld & J, M, T.

Souza, 1 espécime (UEPG); 22/II/2007, G. H. Corrêa leg., 3 espécimes ♀ (DZUP). Santa

Catarina. Nova Teutonia

. VII/1945, Fritz Plaumann leg., 1 espécime ♀(DZUP); XI/1945,

Fritz Plaumann leg., 1 espécime (DZUP); XI/1950, Fritz Plaumann leg., 2 espécimes (1♂,

1♀) (DZUP); III/1955, Fritz Plaumann leg., 1 espécime ♀(DZUP); XI/1980, Fritz Plaumann

leg., 1 espécime (DZUP). PARAGUAI. Guairá. Villarrica

. X/1929, Köller leg., 1 espécime

(ZMHB), X/1932, Köller leg., 1 espécime (ZMHB). ARGENTINA. Misiones. Sem

localidade, VI/1936, Hayward leg., 2 espécimes (MLPA). Cero Corá

. IX/1935, sem coletor, 3

espécimes (MLPA). Oro verde

. 17/XI/1951, A. Willink leg. 1 espécime ♀ (IMLA). Loreto.

sem data, Dr. A. A. Ogloblin, 4 espécimes (MLPA); 3/IV/1934, Dr. A. A. Ogloblin, 1

espécime (MZSP). San Javier

. 4/VII/37, sem coletor, 1 espécime (MLPA). Concepción. Santa

Maria. 20/VIII/1947, A. Martinez leg. 1 espécime (IMLA).

3.3.4 Egius Mulsant, 1850

(Figs. 4, 10, 16, 22, 28, 34, 40, 46, 52, 58, 64, 70, 76, 82, 88, 94, 100, 106, 112, 118, 124,

130, 136, 143, 149, 155, 161, 167, 186-189)

Egius: Mulsant, 1850: 452, 464; Chapuis, 1876: 244, 245; Gemminger & Harold, 1876: 3777;

Korschefsky, 1932: 252; Blackwelder, 1945: 451; Chapin, 1965a: 235, 265; Chazeu,

Fürsch & Sasaji, 1989: 7; Fürsch, 1990: 5; Fürsch, 1996: 5; Duverger, 2003: 66.

Espécie-tipo: Egius platycephalus Mulsant, 1850 por monotipia.

Redescrição

Macho. Corpo arredondado em vista dorsal, fortemente convexo com pontuação fina e

densa, região dorsal com reflexo fosco e ventral brilhante (Figs186 - 189).

Cabeça sub-retangular; expansão lateral do clípeo longa, com forte emarginação

arredondada na região mediana, margens laterais levemente arqueadas e afilada, cerdas finas e

longas distribuídas na fronte e clípeo. Fronte 1,8 vezes mais larga que o maior comprimento

do olho. Olhos largos, com margem latero-interna muito projetada e afilada. Região gular

longa, larga, com as laterais afiladas voltadas anteriormente, região mediana fortemente

côncava (Figs. 4, 10).

Antenas com oito artículos; primeiro subcilíndrico, levemente inclinado; segundo

pouco mais curto que o primeiro com largura semelhante, arredondado no terço médio;

terceiro triangular com ápice oblíquo; do quarto ao oitavo com clava fusiforme; quarto, quinto

e sexto semelhantes na forma, cada um pouco mais longo que o anterior no ápice; sétimo, o

mais largo e transverso; oitavo mais longo que o sétimo, levemente estreitado e com ápice

arredondado (Fig. 16).

Labro semi-circular com cerdas curtas e finas distribuídas de maneira uniforme;

bordas basal e laterais curvadas; anteclípeo arqueado na margem apical e interrompido na

região mediana da margem basal; projeções basais curtas, grossas, levemente inclinadas, com

ápice arredondado (Fig. 22).

Mandíbulas subtriangulares, com cerdas curtas, quase simétricas, margem externa

côncava no terço basal e em ângulo no terço apical, com dente delgado e ápice afilado, mola

mais afilada na mandíbula direta e subtriangular levemente arredondada na esquerda, com

projeção acentuada com cerdas abaixo da mola (Fig. 28).

Maxila com cardo subtrapezoidal, expandido lateralmente; gálea e lacínia com ápices

arredondados cobertos com cerdas longas e grossas; último artículo do palpo maxilar

subcilíndrico duas vezes mais longo que largo, lados convergentes em direção ao ápice, este

truncado, coberto com cerdas curtas (Fig. 34).

Lábio com mento subtrapezoidal muito curto, laterais anteriores fortemente projetadas

e arredondadas, margem apical fortemente côncava, com cerdas longas; lígula sub-retangular

com cerdas curtas nas laterais; palpo labial com primeiro artículo curto e largo na base;

segundo alongado, levemente curvado, maior largura no terço apical; terceiro pouco mais

curto que o anterior, com ápice afilado e truncado (Fig. 40).

Tórax com pronoto de base arredondada na região mediana, borda anterior com leve

emarginação, laterais afiladas e arredondadas; ângulo obtuso entre a borda apical e a interna

(Fig. 46). Hipômeros levemente côncavos; prosterno em forma de T, curto, processo

prosternal plano, estreito e ápice subtriangular (Fig. 52). Proendosternito com o braço interno

e externo com mesmo comprimento, braço interno afilado, levemente alargado e arredondado

no ápice (Fig. 58).

Escutelo com comprimento semelhante à largura da base, laterais anteriores

arredondadas, com forte curvatura nas margens laterais, ápice ligeiramente arredondado (Fig.

64).

Metendosternito subtrapezoidal, com região mediana em forma de U, um par de

tendões curtos, arredondados e projetados na margem anterior, furca com braços laterais

longos, delgados e curvados externamente, um par de lâminas curtas, voltadas externamente

(Fig. 70).

Élitro com calo umeral pouco projetado, levemente esclerotizado, margem não

explanada (Figs. 186, 189); epipleura larga, com cerdas curtas, não foveolada (Fig. 76).

Asas membranosas com lobo anal largo com ápice arredondado, veia Costa (C) pouco

mais curta que 1/3 o comprimento da asa; Subcosta (Sc) larga no ápice, subparalela a margem

anterior da asa, pouco mais longa que a C; Radial (R) moderadamente larga na região basal e

afilada na região apical da asa, pouco maior que a Sc; Cubital (Cu) longa dirigindo-se a

margem inferior da asa, base levemente bifurcada, forma com a Mediana (M) uma célula

moderadamente aberta na região subapical interna; Anais (A) formando uma célula semi-

aberta na base; Empusal b (Eb) e a (Ea), com comprimento semelhante, ambas com ápice

afilado; Plical (P) evidente (Fig. 82).

Mesotórax com uma fóvea arredondada profunda na margem anterior; mesepisterno

alongado, não atingindo as cavidades coxais; mesoepímero curto, subtriangular, com margem

lateral arredondada, ápice alcançando as cavidades mesocoxais. Metasterno com linha

metasternal arqueada; metepisterno alongado com leve projeção lateral no terço basal;

metepímero curto subquadrangular, com margem posterior arredondada (Fig. 88).

Pernas com coxas anteriores alongadas e transversas, base fortemente afilada, ápice

arredondado; coxa média globosa; posteriores oval-alongadas, trocânteres anteriores sub-

retangulares, médios e posteriores subtriangulares alongados. Fêmures delgados, 2,3 vezes

mais longos que largos; cerdas curtas distribuídas de maneira uniforme, levemente escavada

no anterior e fortemente escavadas nos fêmures médios e posteriores, para a recepção das

tíbias. Tíbias alongadas, delgadas, maior largura na região mediana, com um dente na margem

externa do terço basal, ápices margeados de cerdas curtas na margem interna e grossas no

ápice; com escavação profunda no terço apical da margem externa para a recepção de todos os

tarsômeros, ausência de esporões tibiais (Figs. 94, 100, 106). Primeiro tarsômero alongado,

afilado na base, margem anterior larga e arredondada, com densa pilosidade; segundo

subtriangular com pilosidade longa apical; garras tarsais curtas, levemente curvadas, com

dente basal anguloso e o apical com ápice arredondado (Figs. 112, 118).

Abdome com seis esternitos visíveis, primeiro com linha pós-coxal amplamente

incompleta, seguindo a margem posterior do primeiro esternito e terminando próximo à

margem lateral; terceiro e quarto esternitos, levemente arqueados na região mediana,

levemente alargados nas laterais; margem posterior do quinto e sexto esternitos com leve

emarginação; cerdas curtas distribuídas nos quatro primeiros esternitos, nos dois últimos,

cerdas pouco mais longas que as anteriores, ambas de coloração amarelo-claro (Figs. 124,

187).

Genitália

: levemente esclerotizada. Lobo médio levemente assimétrico, próximo ao

ápice, moderadamente largo, triangular, ápice curvado lateralmente e posteriormente;

parâmeros com largura semelhante em toda sua extensão, com ápice arredondado, em vista

lateral afilado; com densa e longa pubescência lisa. Trave afilada na base, ápice, este torcido e

curvado (Figs. 136, 143). Sifão, levemente curvado, diâmetro uniforme em toda sua extensão

(Fig. 149); cápsula sifonal desenvolvida, ápice do sifão fortemente curvado internamente,

torcido e com bolsa prepucial longa (Fig. 155).

Fêmea. Abdome com seis esternitos visíveis, margem posterior do último esternito

abdominal arredondada (Fig. 130).

Genitália: espermateca larga, com pregas conspícuas, sem diferenciação de nódulo e

ramo, corno muito curto com apêndice apical levemente alongado; ducto espermático longo

(Fig. 161); coxitos triangulares, curtos, ápice arredondado; estilos muito pequenos, com

cerdas longas e finas; bursa copulatrix curta; infundíbulo ausente (Fig.167).

Material examinado

Egius platycephalus Mulsant, 1850

Sem local. sem data, sem coletor, 6 espécimes (4♂, 1♀, 1 indet) (DZUP). CUBA.

Havana. Santiago de Las Vegas

. 1/IV/1938, J. F. leg., 2 espécimes (MNRJ).

3.3.5 Harpasus Mulsant, 1850

(Figs. 5, 11, 17, 23, 29, 35, 41, 47, 53, 59, 65, 71, 77, 83, 89, 95, 101, 107, 113, 119, 125,

131, 137, 144, 150, 156, 162, 168, 172, 190-193)

Orcus (Harpasus) Mulsant, 1850: 473.

Curinus (Harpasus): Crotch, 1874: 190; Gemminger & Harold, 1876: 3777; Korschefsky,

1932: 252.

Curinus: Blackwelder, 1945: 451.

Harpasus: Chapin, 1965a: 235 239; Gordon, 1987: 24; Chazeau, Fürsch & Sasaji, 1989: 7;

Fürsch, 1990: 5, 11; Fürsch, 1996: 5; Duverger, 2003: 66; Almeida & Carvalho, 2006:

32.

Espécie-tipo: Orcus (Harpasus) pallidilabris Mulsant, 1850, por designação subseqüente de

Crotch, 1874.

Redescrição

Macho. Corpo arredondado ou ovalado em vista dorsal, convexo. Superfície ventral

brilhante. Pontuação dorsal fina com pontos eqüidistantes, na lateral dos élitros pontuação

grossa (Figs. 190 – 193).

Cabeça subquadrangular; expansão lateral do clípeo curta, com leve emarginação reta

na região mediana, margens laterais fortemente arqueadas e afiladas, região fronto-clipeal

com cerdas finas e longas. Fronte duas vezes mais larga que o maior comprimento do olho.

Olhos pequenos, oblongos e oblíquos. Região gular levemente alongada, estreitando-se em

direção ao ápice, com região mediana côncava (Figs. 5, 11).

Antenas com nove antenômeros, primeiro trapezoidal inclinado, estreito na base;

segundo mais largo na base, base duas vezes mais larga que o ápice; o terceiro estreito na base

e largo no ápice; quarto, quinto e sexto transversais, de forma semelhante, mais largos no

ápice; sétimo e oitavo transversais; o oitavo duas vezes mais longo que o sétimo, nono curto e

triangular, encaixado no ápice do antenômero anterior, com grande quantidade de cerdas

distribuídas de maneira uniforme na margem apical (Fig. 17).

Labro sub-arredondado, com longas cerdas, anteclípeo levemente arqueado, estreito

na região central e alargado nas laterais; projeções basais curtas e estreitas, inclinadas

próximo ao ápice (Fig. 23).

Mandíbulas subtriangulares, quase simétricas, margem externa levemente côncava, no

terço basal, suavemente convexo no terço apical, com um incisor apical simples, bem

evidente, borda interna levemente denteada; mola sub-triangular na mandíbula esquerda e

afilada na direita; com região abaixo da mola com muitas cerdas (Fig. 29).

Maxila com cardo subtrapezoidal, expandido lateralmente; gálea com ápice

arredondado com inúmeras cerdas apicais e com duas cerdas medianas grossas; lacínia com

ápice afilado, com inúmeras cerdas apicais; último artículo do palpo maxilar, de lados

subparalelos, ápice fortemente oblíquo e truncado, coberto com cerdas curtas (Fig. 35).

Lábio com mento trapezoidal, laterais anteriores projetadas e arredondadas, margem

apical fortemente côncava; lígula sub-retangular, margem anterior arredondada, densamente

coberta com pequenos espinhos; palpo labial com primeiro artículo curto; segundo alongado,

com diâmetro semelhante em toda sua extensão; último artículo do palpo labial arredondado

com pequenas cerdas na margem apical (Fig. 41).

Tórax com pronoto de base projetada e sub-arredondada próxima à região mediana,

borda anterior com leve emarginação, translúcida, laterais oblíquas e arredondadas; ângulo

levemente obtuso entre base e a borda lateral interna (Fig. 47). Hipômeros levemente

côncavos com forte escavação oblíqua, para recepção do fêmur anterior; prosterno em forma

de T, curto, processo prosternal largo, margens laterais fortemente escavadas seguindo a

margem interna das coxas anteriores com ápice sub-triangular (Fig. 53). Proendosternito com

o braço interno longo, largo e com ápice arredondado e o externo curto e afilado (Fig. 59).

Escutelo com comprimento menor que a largura da base, esta levemente sinuosa na

margem anterior, com cantos levemente afilados voltados anteriormente, ápice longo e

afilado, margens laterais levemente rebaixadas, para encaixe dos élitros (Fig. 66).

Metendosternito com região mediana em forma de V, com um par de tendões curtos e

pouco projetados na margem anterior, furca com braço superior afilado, duas vezes mais

longo que a lâmina, esta levemente curvada externamente (Fig. 71).

Élitro com calo umeral pouco projetado, margem lateral levemente explanada (Figs.

190, 192, 193); epipleura moderadamente larga, com ampla fóvea pouco profunda para a

recepção dos ápices femurais das pernas posteriores (Fig. 77).

Asas membranosas com lobo anal subquadrado, veia Costa (C) curta, pouco evidente;

Subcosta (Sc) subparalela a margem anterior da asa, estendendo-se cerca de ¼ do

comprimento da asa, Radial (R) larga na região mediana da asa; Radial posterior mais longa,

com interrupção na sua região mediana; Cubital (Cu) longa dirigindo-se a margem inferior da

asa e formando com a Mediana (M) uma célula aberta na base; Anais (A) formando uma

célula fechada na base; Empusal b (Eb) duas vezes mais longa que a Empusal a (Ea); Plical

(P) não evidente (Fig. 83).

Mesotórax, com fóvea pequena, subtriangular e profunda, na margem anterior;

mesepisterno alongado, não atingindo as cavidades coxais; mesoepímero subquadrangular,

com margem lateral arredondada alcançando as cavidades coxais. Metasterno sub-retangular

cerca de duas vezes mais largo que longo, com sulco longitudinal mediano, linha metasternal

levemente arqueada; cavidades metacoxais largas, pouco mais afastadas que as mesocoxais;

metepisterno alongado com margem anterior arredondada, com leve projeção obtusa,

metepímero, pequeno, transverso, com margem posterior fortemente sinuosa (Fig. 89).

Pernas com coxas anteriores e posteriores transversas e alongadas, coxa média

globosa, fêmures robustos, duas vezes mais longos que largos; cerdas curtas distribuídas de

maneira uniforme, com escavação profunda para a recepção das tíbias. Tíbias alongadas com

ápices margeados de cerdas curtas e grossas; a anterior com escavação profunda na margem

externa para a recepção de todos os tarsômeros; média e a posterior com dois esporões apicais

e com escavação profunda para a recepção do primeiro tarsômero (Figs. 95, 101, 107).

Primeiro tarsômero alongado com margem anterior arredondada e densa pilosidade; segundo

subtriangular com pilosidade apical; garras tarsais curtas, fortemente curvadas, com dente

basal quadrangular, largo e o apical afilado (Figs. 113, 119).

Abdome com seis esternitos visíveis, com cerdas curtas; primeiro esternito com linha

pós-coxal levemente arqueada e incompleta, terminando em direção ao terço posterior do

primeiro esternito, segundo, terceiro e quarto esternitos levemente estreitados na região

mediana, quinto esternito, o mais largo, quinto e sexto esternitos emarginados, cerdas curtas

por todo o abdome (Fig. 125).

Genitália

: fortemente esclerotizadas. Lobo médio lanceolado, simétrico, maior largura

no terço basal; parâmeros fortemente comprimidos na metade basal, maior largura no terço

apical, longa e densa pubescência lisa; em vista lateral com o ápice fortemente curvado

posteriormente; trave larga, curvada, com ápice levemente torcido (Figs. 137, 144). Sifão

curvado, diâmetro uniforme em toda sua extensão; cápsula sifonal bem desenvolvida; ápice

curvado, com espículas, bolsa prepucial larga e curvada (Figs. 150, 156).

Fêmea. Abdome com cinco esternitos visíveis, a base do quinto esternito abdominal,

com a margem posterior arredondada (Fig. 131).

Genitália:

Espermateca robusta, corno bem desenvolvido, pouco curvado, ápice

afilado e com pregas conspícuas; com ramo e nódulo curto; ducto longo; coxitos

subtriangulares, alongados e afilados, ápice arredondado; estilos pequenos em forma de botão,

com cerdas longas e finas; bursa copulatrix alongada, infundíbulo evidente (Figs. 162, 168,

172).

Material examinado

Harpasus pallidilabris Mulsant, 1850

BRASIL. Alagoas. Maceió

. 12/II/1991, I. M. de M. Lima leg., 1 espécime ♂ (DZUP);

18/IV/1991, I. M. de M. Lima leg., 1 espécime ♀ (DZUP); 10/VI/1993, I. M. de M. Lima leg.,

1 espécime ♀ (DZUP); 12/VI/1994, I. M. de M. Lima leg., 2 espécimes (1♂, 1♀) (DZUP);

11/III/1995, I. M. de M. Lima leg., 1 espécime ♂ (DZUP); 03/XI/1997, I. M. de M. Lima leg.,

3 espécimes (2♂, 1♀) (DZUP). Bahia. Sem localidade, sem data, GeoCompere Coll., 4

espécimes (2♂, 2♀) (USNM); Sem localidade, data e coletor, 1 espécime ♀ (USNM). Cruz

das Almas. 01/IX/1998, P. S. Ivani leg., 2 espécimes (1♂, 1♀) (DZUP). Espírito Santo. Sem

localidade, sem data, sem coletor, 1 espécime ♂ (ZMHB).

3.3.6 Zagreus Mulsant, 1850

(Figs. 6, 12, 18, 24, 30, 36, 42, 48, 54, 60, 66, 72, 78, 84, 90, 96, 102, 108, 114, 120, 126,

132, 138, 139, 145, 151, 157, 163, 169, 173, 194-197)

Exochomus (Zagreus): Mulsant, 1850: 488; Gemminger & Harold, 1876: 3777; Korschefsky,

1932: 253.

Zagreus: Chapin, 1965a: 235, 240; Chapin, 1965b: 148, 149; Gordon, 1987: 24; Chazeau,

Fürsch & Sasaji, 1989: 7; Fürsch, 1990: 5; Fürsch, 1996: 5; Duverger, 2003: 67.

Espécie-tipo: Exochomus (Zagreus) bimaculosus Mulsant, 1850, por designação subseqüente

de Chapin, 1965a.

Redescrição

Macho. Corpo ovalado em vista dorsal, fortemente convexo, região dorsal fosca e

ventral brilhante; pontuação fina e densa (Figs. 194 - 197).

Cabeça sub-retangular; expansão lateral do clípeo moderadamente longa, com leve

emarginação na região mediana, margens laterais fortemente arqueadas e afiladas; região

fronto-clipeal com cerdas finas e longas amarelo-claras. Fronte 1,3 vezes mais larga que o

maior comprimento do olho. Olhos ovalados e longitudinais. Região gular curta,

moderadamente larga, com as laterais afiladas e região mediana levemente côncava (Figs. 6,

12).

Antenas com oito artículos; primeiro longo, levemente inclinado; segundo com base

de mesma largura que o anterior, arredondado no ápice; terceiro e quarto quase semelhantes,

triangulares, mais largos no ápice que na base; quinto ao oitavo formando uma clava

indistinta; sexto mais curto que o sétimo, este trapezoidal; oitavo subtriangular com ápice

arredondado, quase tão longo quanto largo (Fig. 18).

Labro sub-arredondado, com cerdas curtas e finas na região mediana e longas e

levemente espessas nas bordas laterais; borda basal levemente arqueada; bordas laterais

divergentes e fortemente curvadas; anteclípeo com margem basal e apical levemente

curvadas, laterais levemente alargadas e arredondadas; projeções basais alongadas, espessas,

ápice levemente inclinado e obtuso (Fig. 24).

Mandíbulas subtriangulares, levemente alongadas, fortemente esclerotizadas,

ligeiramente assimétricas, margem externa levemente côncava no terço basal, terço apical

suavemente convexo e alongado; dente incisor com ápice afilado; mola subtriangular, afilada

na mandíbula direta e subtriangular com ápice levemente arredondado na esquerda, com

região projetada e larga com cerdas abaixo da mola (Fig. 30).

Maxila com cardo subtrapezoidal, expandido lateralmente; gálea e lacínia com ápices

arredondados cobertos com cerdas longas e grossas; último artículo do palpo maxilar de lados

subparalelos, ápice oblíquo e truncado, coberto com cerdas curtas (Fig. 36).

Lábio com mento trapezoidal, laterais anteriores levemente arredondadas, pouco

projetadas, margem apical levemente côncava; lígula sub-retangular com cerdas curtas nas

laterais; palpo labial com primeiro artículo curto, largo e inclinado; segundo alongado,

alargando-se gradativamente em direção ao ápice; último artículo com largura pouco menor

que o anterior, ápice arredondado (Fig. 42).

Tórax com pronoto de base fortemente arredondada e projetada, borda apical

fortemente emarginada, laterais largas e arredondadas; ângulo reto entre a borda lateral

interna e a apical (Fig. 48). Hipômeros levemente côncavos; prosterno em forma de T, longo,

na região anterior as coxas; processo prosternal plano, estreito e curto (Fig. 54).

Proendosternito com braços interno e externo de mesmo comprimento, com ápices afilados,

braço interno duas vezes mais largo que o externo (Fig. 60).

Escutelo com comprimento semelhante à largura da base, laterais anteriores e ápice

levemente afilados (Fig. 66).

Metendosternito com região mediana em forma de V amplamente aberta, com um par

de tendões curtos, sub-arredondados e pouco projetados, furca com braços laterais longos e

delgados, fortemente voltados para cima, um par de lâminas curtas e delgadas, inclinadas

internamente, região mediana da base com linha oblíqua (Fig. 72).

Élitro com calo umeral pouco projetado, margem lateral explanada (Figs. 194, 196,

197); epipleura moderadamente larga, com cerdas curtas, não foveolada (Fig. 78).

Asas membranosas com lobo anal muito estreito e afilado, veia Costa (C) longa

estendendo-se cerca de pouco mais que 2/3 o comprimento da asa; Subcosta (Sc) subparalela

a margem anterior da asa, pouco mais curta que a C, Radial (R) afilada na região apical da

asa, cerca de duas vezes mais longa que a Sc; Cubital (Cu) muito longa dirigindo-se a margem

inferior da asa, na base é unida com a R, forma com a Mediana (M) uma célula ligeiramente

aberta na região proximal; Anais (A) formando uma célula aberta na região lateral interna;

Empusal b (Eb) e Empusal a (Ea) e Plical (P) não evidentes (Fig. 84).

Mesotórax com uma fosseta triangular profunda, na margem anterior; mesepisterno

largo e alongado, não atingindo as cavidades coxais; mesoepímero subtriangular alongado,

com margem lateral arredondada, alcançando as cavidades coxais. Metasterno com linha pós-

coxal metasternal oblíqua; metepisterno alongado, com margem interna levemente côncava,

metepímero pouco evidente (Fig. 90).

Pernas com coxas anteriores transversas e alongadas, base arredondada; coxas médias

globosas; posteriores transversas, oval-alongadas; trocânteres anteriores e médios

retangulares, posteriores subtriangulares, com margem posterior alongada e arredondada.

Fêmures robustos, 2,3 vezes mais longo que a largura máxima; cerdas curtas distribuídas de

maneira uniforme; com escavação profunda para a recepção das tíbias. Tíbias alongadas,

espessas, levemente anguladas externamente, maiores largura no terço apical, com escavação

na margem anterior para a recepção dos tarsômeros na tíbia anterior e do primeiro tarsômero

nas tíbias média e posterior, estas com esporão tibial; margem da escavação bordeada com

cerdas curtas e grossas (Figs. 96, 102, 108). Primeiro tarsômero alongado, fortemente afilado,

margem anterior arredondada, com densa pilosidade; segundo tarsômero subtriangular

alongado, com pilosidade na borda anterior (Fig. 114); garra tarsal longa, afilada, fortemente

curvada, com um dente basal subquadrado curto (Fig. 120).

Abdome com seis esternitos visíveis, o primeiro com linha pós-coxal formando um

semicírculo incompleto, terminando próxima a base; segundo, terceiro e quarto esternitos, de

comprimento semelhante, levemente arqueados e laterais pouco alargadas; quinto esternito

com margem posterior fortemente emarginada; sexto esternito curto, margem posterior

levemente emarginada; cerdas longas nos dois últimos esternitos (Figs. 126, 195).

Genitália

: fortemente esclerotizada. Lobo médio subtriangular alongado, simétrico,

com projeção apical, em vista lateral o lobo médio é curvado posteriormente; parâmeros

delgados, com ápice arredondado, com longa pubescência lisa. Trave fortemente torcida e

curvada (Figs. 138, 139, 145). Sifão curvado; cápsula sifonal desenvolvida; ápice torcido e

com espículas, bolsa prepucial levemente alargada (Figs. 151, 157).

Fêmea. Abdome com cinco esternitos visíveis, o quinto subtriangular, com base

ligeiramente arqueada e margem posterior arredondada (Fig. 132).

Genitália:

espermateca delgada, com pregas conspícuas, nódulo distinto do corpo,

corno muito longo, com ápice arredondado e fortemente curvado; ducto espermático longo;

coxitos subtriangulares; estilos pequenos, com cerdas longas e finas; bursa copulatrix

alongada; infundíbulo evidente com base arredondada (Figs. 163, 169, 173).

Material examinado

Zagreus bimaculosus (Mulsant, 1850)

BRASIL. Pará. Belém

. IX/1964, E. Dente leg., 1 espécime (DZUP). Rio Grande do

Norte. Natal

. III/1954, P. Melo leg., 2 espécimes (1♂, 1 ♀) (DZUP). 8/X/1954, P. Melo leg.,

1 espécime ♂ (DZUP). Alagoas. Maceió

. IX/1998, I. M. M. Lima leg., 1 espécime ♀

(DZUP). Bahia. Cruz das Almas

. 25/VI/1998, Edimilson S. S. leg., 2 espécimes ♀ (DZUP).

Mato Grosso. Ribeirão Cascalheira

. 22/VIII/1997, H. Cabette leg., 1 espécime ♀ (DZUP).

Goiás. Jataí

. Faz. Aceiro, X/1962, Exp. Dep. Zool., 2 espécimes (1♂, 1♀) (DZUP). Minas

Gerais. Mar de Espanha

. 1-2/III/1962, J. Bechyné leg., 1 espécime (DZUP). Ponte Nova.

25/II/1962, J. Bechyné leg., 1 espécime ♂ (DZUP).Espírito Santo. Nova Almeida

. 20/2-

3/III/1967, C. & C. T. Elias leg., 1 espécime ♀ (DZUP). Rio de Janeiro. Seropédica

20/VIII/2003, E. L. Aguiar-Menezes leg., 1 espécime ♂ (DZUP); 10/X/2003, E. L. Aguiar-

Menezes leg., 1 espécime ♀ (DZUP). São Paulo. Sem localidade, sem data, sem coletor, 1

espécime (MZSP). Araçatuba

. 7/IX/1988, M. T. Hiodo, 1 espécime ♀ (UNESP). Barueri.

12/II/1961, K. Lenko leg., 1 espécime ♀ (DZUP). Botucatu

. 11/VII/1996, W. B. Crocomo

leg. 2 espécimes (1♂, 1♀) (DZUP). Jaboticabal

. XI/1989, D. A. Silveira leg., 1 espécime ♀

(UNESP). Nova Campina

. 6/XII/2001, N. C. Oliveira leg., 1 espécime ♂ (DZUP). Ribeirão

Preto. sem data, sem coletor, 1 espécime ♀ (DZUP). Rio Claro. XII/1940, Claretiano leg., 1

espécime ♀ (MNCI). São José do Rio Preto

. XI/1989, R. Nasironi leg., 1 espécime ♀

(UNESP). São Roque

. IV/1937, F. C. Camargo leg., 1 espécime (DZUP). Paraná. Curitiba.

10/X/1984, E. Costa leg., 1 espécime ♂ (DZUP); I/1989, R. Marinoni leg., 1 espécime ♂

(DZUP); Parque Iguaçu, 6/XI/1993, I. M. M. Lima leg. 1 espécime ♂ (DZUP); 26/III/1997,

V. Hoffmann & J. Milléo leg. 1 espécime ♀ (DZUP); 15/III/2007, C. B. C. Martins leg., 1

espécime ♂ (DZUP); Jardim das Américas, 13/IX/2007, A. A. dos Santos leg, 1 espécime ♂

(DZUP). Palmeira

. 13/XII/1984, A. Lara leg., 2 espécimes ♀ (DZUP); 13/XII/1984, J. T.

Motta leg., 2 espécimes ♂ (DZUP). Ponta Grossa

. 22/II/2007, G. H. Corrêa leg., 1 espécime

♀ (DZUP); Vila Velha, 21/III/2007, P. C. Grossi leg., 1 espécime ♂ (DZUP). Porto

Amazonas. 3/II/1982, S. Malkowski leg, 1 espécime ♂ (DZUP). Santa Catarina. São Bento

do Sul. 12/X/1981, I. Rank leg., 1 espécime ♀ (DZUP); 18/XI/1980, I. Rank leg., 1 espécime

♀ (DZUP).

3.4 Discussão

Formato do corpo

Os gêneros Cladis e Zagreus (Figs. 178, 194) possuem o corpo ovalado, enquanto que

em Chilocorus, Curinus e Egius (Figs. 174, 182, 186) o corpo é fortemente arredondado. Em

Harpasus (Fig. 190) o corpo das espécies varia de ovalado a arredondado. A convexidade é

acentuada em Zagreus, Curinus, Chilocorus e moderada em Cladis, Harpasus e Egius.

A pontuação distribui-se por toda a região dorsal, modificando o brilho, que pode ser

fosco, quando a pontuação é fina e densa como em Curinus, Egius, Harpasus e Zagreus, ou

brilhante quando a pontuação é fina e esparsa como em Chilocorus e Cladis. A região ventral

em todos os gêneros é brilhante.

Cabeça

O formato da cabeça pode variar de sub-retangular como em Chilocorus, Cladis, Egius

e Zagreus (Figs. 1, 2, 4, 6) a subquadrangular como em Harpasus e Curinus (Figs. 3, 5).

Os representantes da subfamília Chilocorinae, são facilmente reconhecidos, por

possuírem os olhos fortemente emarginados pela expansão lateral do clípeo, o qual varia no

comprimento, podendo ser curta em Chilocorus e Harpasus, e longa nos demais gêneros.

A largura da fronte é maior em Curinus e Egius. Chilocorus é o único gênero que

possui a margem interna dos olhos fortemente côncava, sendo que nos demais, esta é oblíqua

ou arredondada.

A região gular é longa somente em Egius e Harpasus, sendo que a margem anterior

varia principalmente quanto à curvatura.

Antenas

Em Chilocorus, Egius e Zagreus as antenas apresentam oito artículos (Figs. 13, 16,

18); em Cladis e Curinus 10 artículos (Figs. 14, 15), e Harpasus nove artículos (Fig. 17). O

primeiro artículo pode ser alongado ou curto, fortemente a levemente inclinado. Apresentam

uma clava indistinta fusiforme, variando na largura, entre os gêneros. O último artículo

encontra-se encaixado no artículo anterior e varia desde curto e triangular em Harpasus a

longo e arredondado em Chilocorus e Egius.

Labro

Em Chilocorus e Cladis o labro tem formato subtrapezoidal, sendo mais truncado em

Chilocorus (Figs. 19, 20), em Curinus, Harpasus e Zagreus o labro é sub-arredondado (Figs.

21, 23, 24), enquanto que em Egius este se apresenta semi-circular (Fig. 22). As projeções

basais são longas com ápices afilados ou obtusos em Cladis, Curinus e Zagreus, enquanto que

nos demais gêneros, estas são curtas com ápices arredondados.

Mandíbulas

Chilocorus é o único gênero, que apresenta as mandíbulas subtriangulares alongadas,

enquanto os demais possuem as mandíbulas subtriangulares levemente ou fortemente

arredondadas. Podem variar de quase simétricas em Chilocorus, Curinus (Figs. 25, 26), quase

simétricas em Egius e Harpasus (Figs. 28, 29), e assimétricas Cladis e Zagreus (Figs. 27, 30).

Maxilas

Em Chilocorus o cardo da maxila tem a forma sub-arredondado (Fig. 31), com leve

expansão lateral, enquanto que nos demais gêneros, é subtrapezoidal e expandido

lateralmente.

Os artículos apicais dos palpos maxilares podem ser de lados paralelos em Chilocorus,

levemente divergentes em Cladis e Curinus (Figs. 32, 33), subparalelos em Harpasus e

Zagreus (Figs. 35, 36), e em Egius de lados convergentes em direção ao ápice (Fig. 34).

Lábio

A forma do mento pode variar de trapezoidal em Chilocorus, Harpasus e Zagreus

(Figs. 37, 41, 42), trapezoidal-alongada em Curinus (Fig. 39) e subtrapezoidal em Cladis e

Egius (Figs. 38, 40), sendo que as laterais anteriores podem ser fortemente projetadas como

em Egius, projetadas em Cladis, Curinus e pouco projetadas em Chilocorus e Zagreus.

Pronoto

A emarginação na região anterior pode ser leve como em Chilocorus, Egius e

Harpasus (Figs. 43, 46, 47), ou forte nos demais. O ângulo formado entre a lateral interna do

pronoto e o ápice pode variar desde levemente obtuso até reto. As laterais podem ser largas e

sub-arredondadas ou estreitas, afiladas e arredondadas.

Os hipômeros podem ser foveolados como em Chilocorus e Harpasus (Figs. 49, 53).

O processo prosternal pode ser largo e curto, como em Chilocorus e Curinus (Fig. 51), largo e

longo, com as laterais fortemente escavadas em Harpasus, estreitos e alongados em Cladis e

Egius (Figs. 50, 52) e curtos em Zagreus (Fig. 54).

Quanto ao proendosternito, Egius é o único gênero que apresenta somente o braço

interno (Fig. 58), sendo que os demais gêneros possuem os braços interno e externo, além

disso, a forma, comprimento e largura apresentam grande variação entre os gêneros.

Escutelo

Os escutelos são subtriangulares, com comprimento semelhante a largura da base, ou

ligeiramente mais alongados, posteriormente. As laterais anteriores são arredondadas em

Chilocorus, Cladis, Curinus (Figs. 61, 62, 63), levemente afiladas em Harpasus e Zagreus

(Figs. 65, 66), ou com forte curvatura próxima a base em Egius (Fig. 64). O ápice é afilado

somente em Cladis, nos demais é ligeiramente ou fortemente arredondado.

Metendosternito

Chilocorus e Egius são os únicos gêneros que apresentam a região anterior mediana do

metendosternito, em forma de U (Figs. 67, 70), nos demais gêneros a forma é de V

amplamente aberto. Todos possuem um par de tendões que podem ser longos e afilados em

Cladis (Fig. 68), ou curtos e arredondados ou afilados nos demais. Os braços laterais são em

geral afilados com lâminas voltadas externamente, exceto em Chilocorus, que possui os

braços laterais espessos e as lâminas curvadas internamente.

Élitros

Os élitros são fortemente esclerotizados com epipleura moderadamente larga, exceto

em Egius, que são levemente esclerotizados e com a epipleura larga (Fig. 76). Esta pode ser

fortemente foveolada como em Chilocorus (Fig. 73), levemente foveolada como em Cladis,

Curinus e Harpasus (Figs. 74, 75, 77) ou não foveolada nos demais.

O calo umeral é pouco projetado em Harpasus e Zagreus. A margem pode ser

explanada, como em Zagreus ou pouco explanada, no caso dos demais.

Asas posteriores

Nas asas posteriores os lobos anais podem variar, de subquadrados em Chilocorus e

Harpasus (Figs. 79, 83), estreito com ápice arredondado em Cladis e Curinus (Figs. 80, 81),

largo e ápice arredondado em Egius (Fig. 82) e muito estreito e afilado em Zagreus (Fig. 84).

As veias Anais formam célula fechada, na base das asas, somente em Chilocorus,

Curinus e Harpasus, nos demais podem ser pouco ou muito abertas. A abertura se dá do lado

da anal interna, podendo ser na região proximal, mediana ou distal.

A Plical está ausente em Harpasus e Zagreus, nos demais pode ser evidente ou pouco

evidente. As Empusais estão ausentes em Zagreus e em Chilocorus somente a Empusal a (Ea)

está presente.

Parte distal da Radial posterior, ausente apenas em Egius (Fig. 81), e bifurcada na

região proximal em Curinus. Mediana posterior com bifurcação proximal em Cladis, Curinus

e Harpasus.

Mesotórax

No mesotórax os gêneros apresentam uma fóvea profunda, na margem anterior que

pode ser triangular como em Chilocorus, Cladis e Zagreus (Figs. 85, 86, 90), subtriangular

em Harpasus (Fig. 89), sub-arredondada em Curinus (Figs. 86), e circular em Egius (Fig. 88).

A linha metasternal é sinuosa em Chilocorus, nos demais gêneros pode ser oblíqua, arqueada

ou ligeiramente reta.

Pernas

A forma das coxas varia muito pouco entre os gêneros sendo que as anteriores são

alongadas, as médias globosas e as posteriores oval-alongadas. Os fêmures podem ser

delgados como em Cladis e Egius (Figs. 92, 94, 98, 100, 104, 106) ou robustos como nos

demais.

As tíbias de Chilocorus e Egius apresentam um dente, na margem externa do terço

basal, estando ausentes os esporões apicais.

Os tarsos são criptotetrâmeros, e os tarsômeros, podem ser afilados e alongados com

ápice arredondado como em Chilocorus, Curinus e Zagreus, ou com a margem anterior

amplamente arredondada como em Cladis, Egius e Harpasus.

As garras tarsais apresentam um dente basal, porém em Egius este, é curto e inclinado

(Fig. 118), sendo que nos demais gêneros o dente basal é quadrangular, variando no

comprimento e largura. Em relação ao dente apical este pode ser levemente a fortemente

curvado.

Abdome

O abdome dos machos apresenta seis esternitos abdominais. Em Chilocorus o quinto

esternito é arredondado na margem posterior, e o último com uma projeção mediana afilada

(Fig. 121), enquanto que nos demais gêneros estes dois últimos esternitos são levemente ou

fortemente emarginados.

Nas fêmeas o abdome apresenta cinco esternitos, exceto em Egius que apresenta seis

(Fig. 130). Chilocorus possui o último esternito abdominal amplamente arredondado e curto

(Fig. 127), enquanto que em Cladis, Curinus, Harpasus e Zagreus é subtriangular (Figs. 128,

129, 131, 132).

A linha pós-coxal nos primeiros esternitos abdominais é incompleta, sendo que em

Chilocorus e Egius é amplamente incompleta, seguindo a margem posterior do primeiro

esternito, terminando próxima a margem lateral. Em Cladis, Curinus e Harpasus é levemente

curvada, terminando na lateral posterior, enquanto em Zagreus, a linha forma um semicírculo,

quase completo, distante da margem posterior.

Genitália masculina

A genitália masculina é fortemente esclerotizada, exceto em Egius. O lobo médio pode

ser assimétrico em Chilocorus, Curinus e Egius (Figs. 140, 142, 143) ou simétrico nos

demais. Os parâmeros são mais curtos em Chilocorus, Egius e Zagreus (Figs. 133, 136, 138).

Em vista lateral o lobo médio possui uma projeção apical, em Egius é afilada e em Zagreus

alargada (Fig. 139).

Os parâmeros podem ser comprimidos no terço basal e alargados no ápice em

Chilocorus, Cladis, Curinus e Harpasus (Figs. 140, 141, 142, 144). Quanto à pubescência em

Chilocorus é ondulada na região anterior e apical dos parâmeros, enquanto que na região

posterior e nos demais gêneros a pubescência é lisa. O ápice dos parâmeros em vista lateral

pode ser levemente curvado em Curinus (Fig. 135), curvado em Cladis (Fig. 134), ou

fortemente curvado em Harpasus (Fig. 137). Nos demais gêneros podem ser arredondados ou

afilados. As traves são espessas ou fortemente afiladas.

Quanto ao sifão podem ser levemente a fortemente curvados, a bolsa prepucial e a

cápsula sifonal podem ser bem desenvolvidas como em Chilocorus (Fig. 146), ou levemente

alargadas e com o braço interno bem desenvolvido e inclinado internamente, nos demais.

Genitália feminina

A espermateca pode ser larga ou afilada, com pregas, em Chilocorus e Egius o corno é

curto e com um apêndice alongado, de ápice arredondado ou afilado (Figs. 158, 161).

Os coxitos são subtriangulares e alongados em Cladis, Curinus, Harpasus e Zagreus

(Figs. 165, 166, 168, 169) e subtriangulares pequenos em Chilocorus e Egius (Figs. 164, 167),

estes dois gêneros não possuem infundíbulo.

4. CONCLUSÕES

A comparação dos seis gêneros Neotropicais de Chilocorini possibilitou um maior

conhecimento de estruturas que auxiliam na sua identificação, sendo que alguns caracteres

estudados foram observados pela primeira vez, como asas, cabeça, metendosternito, entre

outros, estes se mostraram significativos para diagnosticar a tribo. Com base nesse estudo, a

tribo passa a ser caracterizada por apresentar, corpo glabro; olhos fortemente emarginados

pela expansão do clípeo; antenas com oito a dez artículos e com inserção oculta; élitros com a

margem lateral pouco explanada; epipleura alargada, com ou sem fóveas; pernas robustas com

tíbias munidas ou não de dentes e esporões; garras tarsais apendiculadas; abdome nos machos

sempre com seis esternitos e nas fêmeas com cinco ou seis; linha pós-coxal incompleta;

genitália masculina, com lobo médio simétrico ou pouco assimétrico; genitália feminina com

espermateca robusta, ducto espermático longo.

Os gêneros aparentemente mais semelhantes entre si, são Cladis, Curinus, Harpasus e

Zagreus por apresentarem esporões tibiais, os mesmos padrões de linha pós-coxal e pela

forma dos coxitos, na genitália feminina, presença de infundíbulo e também labros de forma

semelhante com presença de cerdas.

Cladis e Curinus parecem ser os mais próximos uma vez que apresentam o mesmo

número de artículos nas antenas e pelo padrão do infundíbulo e coxitos.

Chilocorus e Egius apresentam caracteres semelhantes como, por exemplo, número de

artículos antenais, tíbias com um dente na margem externa, forma da linha pós-coxal similar,

ausência de infundíbulo e pelo apêndice alongado na espermateca.

5. REFERÊNCIAS

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Obs. Referências e citações elaboradas seguindo orientações da Revista Brasileira de

Entomologia.

Figs. 1 - 12. Cabeça: (1-6) vista dorsal, (7-12) vista ventral (rg, região gular). Chilocorus

nigrita (1, 7); Cladis nitidula (2, 8); Curinus coeruleus (3, 9); Egius platycephalus (4, 10);

Harpasus pallidilabris (5, 11); Zagreus bimaculosus (6, 12).

Figs. 13 - 18. Antenas: Chilocorus nigrita (13); Cladis nitidula (14); Curinus coeruleus (15);

Egius platycephalus (16); Harpasus pallidilabris (17); Zagreus bimaculosus (18).

Figs. 19 - 30. Labro (pb, projeções basais; ac, anteclípeo): (19-24); Mandíbulas (di, dente

incisor; ml, mola; pt, prosteca): (25-30); Chilocorus nigrita (19, 25); Cladis nitidula (20, 26);

Curinus coeruleus (21, 27); Egius platycephalus (22, 28); Harpasus pallidilabris (23, 29);

Zagreus bimaculosus (24, 30).

Figs. 31-42. Maxilas (cd, cardo; lc, lacínia; g, gálea; pmx, palpo maxilar): (31-36); Lábio (m,

mento; plb, palpo labial; lg, lígula): (37-42). Chilocorus nigrita (31, 37); Cladis nitidula (32,

38); Curinus coeruleus (33, 39); Egius platycephalus (34, 40); Harpasus pallidilabris (35,

41); Zagreus bimaculosus (36, 42).

Figs. 43 - 60. Pronoto vista dorsal: (43-48); Pronoto vista ventral (h, hipomero; pp, processo

prosternal): (49-54); Proendosternito (bi, braço interno; be, braço externo): (55-60);

Chilocorus nigrita (43, 49, 55); Cladis nitidula (44, 50, 56); Curinus coeruleus (45, 51, 57);

Egius platycephalus (46, 52, 58); Harpasus pallidilabris (47, 53, 59); Zagreus bimaculosus

(48, 54, 60).

Figs. 61 - 72. Escutelo: (61-66); Metendosternito (t, tendão; bl, braço lateral; lm, lâmina): (67-

72); Chilocorus nigrita (61, 67); Cladis nitidula (62, 68); Curinus coeruleus (63, 69); Egius

platycephalus (64, 70); Harpasus pallidilabris (65, 71); Zagreus bimaculosus (66, 72).

Figs. 73 - 78. Epipleura (ep) (fv, fóvea): (73-78); Chilocorus nigrita (73); Cladis nitidula

(74); Curinus coeruleus (75); Egius platycephalus (76); Harpasus pallidilabris (77); Zagreus

bimaculosus (78).

Figs. 79 - 84. Asa posterior (C, costa; Sc, subcosta, R, radial; RP, radial posterior; Cu, cubital;

M, mediana; MP, mediana posterior; A, anais; Ea, Eb, empusais; P, plical): Chilocorus nigrita

(79); Cladis nitidula (80); Curinus coeruleus (81); Egius platycephalus (82); Harpasus

pallidilabris (83); Zagreus bimaculosus (84).

Figs. 85 - 90. Meso e metasterno (ms, mesepisterno; msp, mesoepímero; mt, metepisterno

mtp, metepímero; lmt, linha metasternal): Chilocorus nigrita (85); Cladis nitidula (86);

Curinus coeruleus (87); Egius platycephalus (88); Harpasus pallidilabris (89); Zagreus

bimaculosus (90).

Figs. 91 - 96.

Perna anterior: Chilocorus nigrita (91); Cladis nitidula (92); Curinus coeruleus

(93); Egius platycephalus (94); Harpasus pallidilabris (95); Zagreus bimaculosus (96).

Figs. 97 - 102. Perna média: Chilocorus nigrita (97); Cladis nitidula (98); Curinus coeruleus

(99); Egius platycephalus (100); Harpasus pallidilabris (101); Zagreus bimaculosus (102).

Figs. 103 - 108. Perna posterior: Chilocorus nigrita (103); Cladis nitidula (104); Curinus

coeruleus (105); Egius platycephalus (106); Harpasus pallidilabris (107); Zagreus

bimaculosus (108).

Figs. 109 - 120. Tarsos, (109-114); garra tarsal, (115-120): Chilocorus nigrita (109, 115);

Cladis nitidula (110, 116); Curinus coeruleus (111, 117); Egius platycephalus (112, 118);

Harpasus pallidilabris (113, 119); Zagreus bimaculosus (114, 120).

Figs. 121 - 126. Abdome macho: Chilocorus nigrita (121); Cladis nitidula (122); Curinus

coeruleus (123); Egius platycephalus (124); Harpasus pallidilabris (125); Zagreus

bimaculosus (126).

Figs. 127 - 132. Abdome fêmea: Chilocorus nigrita (127); Cladis nitidula (128); Curinus

coeruleus (129); Egius platycephalus (130); Harpasus pallidilabris (131); Zagreus

bimaculosus (132).

Figs. 133 - 139. Tégmen vista lateral (tv, trave; lm, lobo médio; p, parâmeros): Chilocorus

nigrita (133); Cladis nitidula (134); Curinus coeruleus (135); Egius platycephalus (136);

Harpasus pallidilabris (137); Zagreus bimaculosus (138), ápice do lobo médio (139).

Figs. 140 - 145. Tégmen vista frontal: Chilocorus nigrita (140); Cladis nitidula (141);

Curinus coeruleus (142); Egius platycephalus (143); Harpasus pallidilabris (144); Zagreus

bimaculosus (145).

Figs. 146 - 151. Sifão. Chilocorus nigrita (146); Cladis nitidula (147); Curinus coeruleus

(148); Egius platycephalus (149); Harpasus pallidilabris (150); Zagreus bimaculosus (151).

Figs. 152 - 157. Ápice do sifão. Chilocorus nigrita (152); Cladis nitidula (153); Curinus

coeruleus (154); Egius platycephalus (155); Harpasus pallidilabris (156); Zagreus

bimaculosus (157).

Figs. 158 - 163. Espermateca. Chilocorus nigrita (158); Cladis nitidula (159); Curinus

coeruleus (160); Egius platycephalus (161); Harpasus pallidilabris (162); Zagreus

bimaculosus (163).

Figs. 164 - 169. Genitália feminina (cx, coxitos; bc, bursa copulatrix; inf, infundíbulo).

Chilocorus nigrita (164); Cladis nitidula (165); Curinus coeruleus (166); Egius platycephalus

(167); Harpasus pallidilabris (168); Zagreus bimaculosus (169).

Figs. 170 - 173. Infundíbulo. Cladis nitidula (170); Curinus coeruleus (171); Harpasus

pallidilabris (172); Zagreus bimaculosus (173).

Figs. 174 - 197. Vistas dorsal, ventral, lateral e frontal. Chilocorus nigrita (174-177); Cladis

nitidula (178-181); Curinus coeruleus (182-185); Egius platycephalus (186-189); Harpasus

pallidilabris (190-193); Zagreus bimaculosus (194-197).

CAPÍTULO

Revisão do gênero

Harpasus Mulsant, 1850

(Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorini)

Revisão do gênero Harpasus Mulsant, 1850

(Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorini)

RESUMO

As espécies do gênero Harpasus Mulsant, 1850 foram revisadas através do estudo

morfológico do exoesqueleto e genitália. Foi possível examinar o holótipo e parátipos de

Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006 e o homótipo de H. zonatus (Mulsant, 1850). O

lectótipo de H. eversmanni (Mulsant, 1850) foi designado. Três espécies novas foram

descritas Harpasus sp. nov. A (localidade tipo: Teresópolis, RJ, Brasil), Harpasus sp. nov. B

(Puerto Carreño, Vichada, Colômbia) e

Harpasus

sp. nov. C

(Chanchamayo, Junín, Peru).

São apresentadas diagnoses detalhadas para o gênero e suas sete espécies, chave de

identificação, além de mapas de distribuição e aspectos biológicos. O gênero Harpasus

apresenta os seguintes caracteres: corpo arredondado a ovalado; glabro; coloração castanha

clara a escura ou azul-esverdeada, com ou sem máculas negras, comprimento variando de

2,52 a 3,92 mm; antenas com nove artículos; palpo maxilar com artículo terminal de lados

paralelos; processo prosternal largo com as regiões laterais fortemente escavadas; linha pós-

coxal incompleta; segundo e terceiro par de tíbias com dois esporões; genitália do macho com

o ápice dos parâmeros fortemente curvados; genitália da fêmea com coxitos e bursa copulatrix

alongados, infundíbulo presente. As espécies do gênero diferem entre si principalmente pelos

diferentes padrões de coloração e da genitália masculina e feminina. Os dados da literatura e

etiquetas indicam que as espécies alimentam-se de Hemiptera, Coccidae, Aphididae e

Psyllidae, as quais utilizam plantas hospedeiras das seguintes famílias Lytraceae, Malvaceae,

Myrtaceae, Poaceae, Rutaceae e Solanaceae.

Revision of the genus Harpasus Mulsant, 1850

(Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorinae)

ABSTRACT

Species of the genus Harpasus Mulsant, 1850 were revised through a morphological study of

exoskeleton and genitalia. It was possible to examine the holotype and paratypes of Harpasus

aureus Almeida & Carvalho, 2006 and homotype of H. zonatus (Mulsant, 1850). The

lectotype of H. eversmanni (Mulsant, 1850) was designated. Three new species were

described, Harpasus sp. nov. A (type locality: Teresopolis, RJ, Brazil), Harpasus nov. B

(Puerto Carreño, Vichada, Colombia) and Harpasus sp. nov. C (Chanchamayo, Junín, Peru).

Herein are presented detailed diagnosis for the genus and seven species, identification key,

beside of distribution maps and biological aspects. The genus Harpasus presents the

following characters: body rounded to oval, convex; glabrous; light to dark brown or bluish-

green, with or without black maculae, body length: 2,52 to 3,92 mm; antennae with nine

segments; maxillary palpi with the last article with parallel sides; prosternal process broad,

with lateral margins strongly grooved; postcoxal line incomplete; tibial spurs present on

second and third legs; male genitalia with apex of parameres strongly curved; female genitalia

with coxites and bursa copulatrix long; infundibulum present. The species of the genus differs

between themselves by the different patterns of color and male and female genitalia. The

literature and labels indicates that the species feed on Hemiptera, Coccidae, Aphididae and

Psyllidae, which one utilize the following host-plants, Lytraceae, Malvaceae, Myrtaceae,

Poaceae, Rutaceae and Solanaceae.

1. INTRODUÇÃO

O gênero Harpasus Mulsant pertence a tribo Chilocorini, e foi indicado pela primeira

vez por Mulsant em 1850, como subgênero de Orcus, incluindo três novas espécies: Orcus

(Harpasus) pallidilabris, O. (Harpasus) eversmanni e O. (Harpasus) zonatus. Em 1874,

Crotch sinonimizou Harpasus com Curinus, e designou O. (Harpasus) pallidilabris como

espécie-tipo.

Chapin (1965) estudou alguns gêneros de Chilocorini e revalidou o gênero Harpasus.

Gordon (1987) no “Catalogue of the Crotch collection of Coccinellidae”, concordou com

Chapin (1965) e manteve as três espécies no gênero. Fürsch (1996) reconheceu Harpasus

como um gênero válido na subfamília Chilocorinae, tribo Chilocorini.

O gênero contém quatro espécies, incluindo a última espécie descrita recentemente,

Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006.

De acordo com Chapin (1965) Harpasus pode ser reconhecido pelos seguintes

caracteres corpo arredondado, convexo, superfície dorsal glabra; antena curta, com nove

artículos; processo prosternal largo, com as margens laterais fortemente escavadas; pernas

delgadas, esporões tibiais presentes nas pernas medias e posteriores, garras tarsais

apendiculadas, com dente basal largo e quadrado; margem elitral pouco explanada, epipleura

foveolada para a recepção dos ápices femurais das pernas posteriores. Abdome com seis

esternitos visíveis nos machos e cinco nas fêmeas; linha pós-coxal incompleta; genitália

masculina com ápice dos parâmeros fortemente curvados para trás e genitália feminina com

coxitos longos e delgados, com infundíbulo.

Poucos trabalhos abordam os aspectos bioecológicos deste gênero, o qual é constituído

por espécies predadoras com potencial para o controle biológico. Dentre as espécies do

gênero se conhece apenas os hábitos alimentares de duas delas. Harpasus zonatus foi coletada

sobre duas famílias de plantas, Rutaceae e Poaceae, alimentando-se de Coccidae (Hemiptera)

(Wille 1926). Harpasus aureus alimenta-se de Tinocallis kahawaluokalani (Kirkaldy, 1907)

(Hemiptera, Aphididae), afídeos que infestam Largerstroemia indica L. (Lythraceae). Esses

afídeos causam sérios danos nas árvores, pois excretam o “honeydew” que propiciam o

crescimento de fungos, que tornam as folhas e tronco escuros (Almeida & Carvalho 2006).

Tendo em vista que depois da década de 1960 o gênero não foi estudado, o objetivo

deste trabalho éo de revisar as espécies de Harpasus, buscando acrescentar novos caracteres

diagnósticos, elaborar chave de identificação, mapas de distribuição e incluir informações

adicionais sobre aspectos biológicos, com intuito de gerar um maior conhecimento sobre este

grupo, que apresenta grande potencial como agente de controle biológico.

2. MATERIAL E MÉTODOS

2.1 Procedência e exame do material

O material utilizado para o estudo foi obtido de algumas instituições citadas no capítulo I,

e as incluídas abaixo:

MCNZ - Museu de Ciências Naturais da Fundação Zoobotânica do Rio Grande do

Sul, Porto Alegre, Rio Grande do Sul, Brasil (Maria Helena Galileo)

MNHN - Muséum National d’Histoire Naturelle, Paris, França (Nicole Berti).

UNALM - Museo de Entomología Klaus Raven Büller, Unidad Nacional Agraria La

Molina, Lima, Peru (Clorinda Vergara)

Foram examinados 180 exemplares, incluindo as espécies consideradas novas (Tabela I).

Tabela I: Espécies de Harpasus, número de exemplares e total de espécimes

estudados.

Espécies N.o de espécimes

Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006 43

Harpasus eversmanni (Mulsant, 1850) 3

Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850) 17

Harpasus zonatus (Mulsant, 1850) 103

Harpasus sp. nov. A

Harpasus sp. nov. B

Harpasus sp. nov. C

Total

180

Das espécies listadas no item anterior, foi possível examinar o material-tipo de três

delas: Harpasus aureus Holótipo (1♂), Parátipos (4♂, 8♀); Harpasus eversmanni Lectótipo

(1♀); Harpasus sp. nov. C Holótipo (1♂), Parátipos (3♀).

2.2 Metodologia

Para a dissecção dos espécimes foi utilizada a mesma metodologia do capítulo I.

Foram realizados 116 desenhos das seguintes estruturas: cápsula cefálica vista dorsal e

ventral, antena, mandíbulas, maxila, lábio, protórax vista dorsal e ventral, proendosternito,

élitro, metendosternito, pernas anterior, média e posterior, abdome, genitália masculina e

feminina. Em algumas estruturas relevantes, foram feitos desenhos em maior aumento para a

demonstração de detalhes.

As espécies foram fotografadas com câmera Leica DFC 500, acoplada ao

estereomicroscópio Leica MZ16, o alinhamento das imagens, realizado pelo Software Auto-

Montage Pro (Syncroscopy) pertencente ao “Projeto Taxon line Rede Paranaense de Coleções

Biológicas”, exceto a do Lectótipo de Harpasus eversmanni, obtida com câmera digital Sony,

Cyber-Shot DSC – S57, acoplada a estereomicroscópio Zeiss Stemi 2000-c, do Laboratório de

Sistemática e Bioecologia de Coleoptera, do Departamento de Zoologia. A arte final dos

desenhos e fotos foi realizada no programa ADOBE PHOTOSHOP CS versão 8.0.

Cada exemplar foi sexado e mensurado utilizando-se uma ocular milimetrada, acoplada

a um estereomicroscópio WILD-M5. Os resultados obtidos foram anotados em planilhas, para

posterior cáculo da média dos espécimes.

O padrão seguido para as mensurações foi o proposto por Slipinski & Giorgi (2006), e

adaptado de acordo com os exemplares: comprimento Total (CT), tendo sua origem na

margem apical do pronoto ao ápice do élitro; comprimento pronotal (CP), região mediana da

margem anterior até o ínicio do escutelo; comprimento do élitro (CE), ao longo da sutura

incluindo o escutelo; largura pronotal (LP), região mais larga; largura elitral (LE), largura de

ambos os élitros na região mais larga.

Para distribuição geográfica das espécies de Harpasus, foi elaborado um banco de

dados no programa MICROSOFT OFFICE EXCEL versão 2003

e para isso, cada espécime

recebeu uma codificação facilitando assim o processo de inclusão das informações no banco

de dados. Foram registrados os seguintes dados: gênero, espécie, país, estado, localidade,

coordenadas geográficas, quantidade de exemplares por alfinete, codificação do exemplar,

coletor, data de coleta, observação, sexo, planta hospedeira e possível presa.

As coordenadas geográficas foram retiradas dos sites, GLOBAL GAZETTEER,

version 2.1 e FUZZY GAZETTEER, v 2.1. Os mapas de distribuição geográfica foram

elaborados no programa ArcView Gis 3.2a (Esri 1999).

Na lista de material examinado, foi citado o país, estado, localidade, data de coleta,

coletor, sexo representado pelos símbolos macho (♂) e fêmea (♀) e a sigla da coleção à qual o

exemplar pertence.

Para algumas espécies do gênero Harpasus, foi possível obter informações sobre os

aspectos biológicos a partir dos dados das etiquetas de coleta e da bibliografia.

A terminologia adotada foi baseada nos mesmos trabalhos utilizados no capítulo I.

3. RESULTADOS E DISCUSSÃO

Foram redescritas quatro espécies, Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006, H.

eversmanni (Mulsant, 1850), H. pallidilabris (Mulsant, 1850), H. zonatus (Mulsant, 1850) e

descritas três novas, as quais serão a seguir apresentadas.

Harpasus Mulsant, 1850

Orcus (Harpasus) Mulsant, 1850: 473.

Curinus (Harpasus): Crotch, 1874: 190 (sistemática); Gemminger & Harold, 1876: 3777

(catálogo); Korschefsky, 1932: 252 (catálogo).

Curinus: Blackwelder, 1945: 451 (checklist).

Harpasus: Chapin, 1965: 235 239 (sistemática); Gordon, 1987: 24 (catálogo); Chazeau,

Fürsch & Sasaji, 1989: 7 (checklist); Fürsch, 1990: 5, 11 (checklist); Fürsch, 1996: 5,

11 (checklist); Duverger, 2003: 66 (sistemática); Almeida & Carvalho, 2006: 32

(descrição).

Espécie-tipo: Orcus (Harpasus) pallidilabris Mulsant, 1850, por designação subseqüente de

Crotch, 1874.

3.1 Histórico

O gênero Harpasus foi mencionado pela primeira vez por Mulsant (1850), como

subgênero de Orcus ao final da descrição de Orcus coeruleus, para evidenciar a existência de

uma fóvea na lateral interna do pronoto “repli prothoracique creusé d’une fossette très-

marquée (G. Harpasus)”, e sugere que este caráter poderia separar algumas espécies dentro do

gênero Orcus.

Em 1874, Crotch elevou Curinus a gênero, realizou uma breve redescrição, colocando

neste cinco espécies, C. coeruleus, C. pallidilabris, C. peleus, C. eversmanni e C. zonatus e

fez um breve comentário de que a existência da fóvea no protórax não era um caráter válido

para gênero. Colocou então Harpasus como subgênero de Curinus e designou Orcus

(Harpasus) pallidilabris Mulsant 1850, como espécie tipo.

Gemminger & Harold (1876) concordaram com Crotch e mantiveram as cinco

espécies neste gênero.

Em 1924, Brèthes descreveu Curinus ruizi, aumentando para seis as espécies do

gênero.

Em 1926, Wille publicou um trabalho completo sobre a espécie Curinus (Orcus)

zonatus, descrevendo aspectos morfológicos de larvas e adultos, aspectos biológicos,

possíveis presas e plantas, as quais esta espécie estava associada.

Em 1932, Korschefsky sinonimizou Harpasus com Curinus e designou Curinus

coeruleus Mulsant, como espécie tipo do gênero.

Blackwelder (1945) em seu checklist manteve as seis espécies neste gênero e

evidenciou que Curinus têm distribuição restrita à região Neotropical.

Chapin (1965) estudou alguns gêneros da tribo e revalidou o gênero Harpasus,

propondo novas combinações. Transferiu Curinus peleus para Exochomus e C. pallidilabris,

C. eversmani e C. zonatus para Harpasus, deixando Curinus apenas com a espécie tipo.

Quanto a C. ruizi comenta que a mesma deve ter sido confundida por um erro no desenho do

número de antenômeros e que esta espécie deveria pertencer a Harpasus.

Gordon em seu catálogo de 1987, manteve Harpasus eversmanni, H. pallidilabris e H.

zonatus no gênero.

Chazeau et al. (1989) e Fürsch (1990, 1996) em seu checklist, colocaram Harpasus

como gênero válido dentre os Chilocorini e corroboraram H. pallidilabris como espécie-tipo.

Em 2006, Almeida & Carvalho apresentaram uma breve diagnose para o gênero e

descreveram mais uma espécie, Harpasus aureus, coletada em Curitiba, Paraná.

3.2 Redescrição de Harpasus

Macho. Corpo arredondado ou ovalado em vista dorsal (Fig. 1), moderadamente

convexo (Fig. 2), superfície dorsal glabra. Tegumento com coloração variando desde castanho

claro a avermelhado, até azul-esverdeado, com ou sem máculas ou faixas; superfície ventral

brilhante. Pontuação dorsal fina com pontos eqüidistantes e na lateral dos élitros com

pontuação grossa.

Cabeça subquadrangular de coloração castanho-dourado brilhante a avermelhado ou

azul-esverdeado; região fronto-clipeal com numerosas cerdas finas longas; expansão lateral

do clípeo curta, com leve emarginação na região mediana e margens laterais fortemente

arqueadas. Fronte duas vezes mais larga que o maior comprimento do olho, este oblongo e

oblíquo (Figs. 4, 5). Antenas curtas com nove antenômeros (Fig. 10). Labro transverso,

subarredondado, com longas cerdas (Fig. 6), parcialmente exposto em vista frontal.

Mandíbulas robustas, subtriangulares, quase simétricas, margem externa levemente côncava,

no terço basal, suavemente convexo no terço apical, borda interna levemente denteada; mola

subtriangular na mandíbula esquerda e afilada na direita (Fig. 7). Maxila com gálea com

inúmeras cerdas apicais e com duas cerdas grossas medianas; lacínia com inúmeras cerdas

apicais; último segmento do palpo maxilar mais longo que os segmentos anteriores, com lados

subparalelos, ápice fortemente oblíquo e truncado, coberto com cerdas curtas (Fig. 8). Lábio

com mento trapezoidal; lígula sub-retangular, margem anterior arredondada, densamente

coberta com pequenos espinhos; último artículo do palpo labial arredondado com pequenas

cerdas na margem apical (Fig. 9).

Tórax com pronoto transverso, levemente convexo, base larga e subarredondada

próxima à região mediana, borda anterior com leve emarginação, translúcida, laterais oblíquas

e arredondadas (Fig. 11). Hipômeros levemente côncavos com forte escavação oblíqua, para

recepção do fêmur anterior; processo prosternal largo, margens laterais fortemente escavadas

seguindo a margem interna das coxas anteriores (Fig. 12). Proendosternito com o braço

interno longo, largo e com ápice arredondado e o externo curto e afilado (Fig. 13).

Escutelo subtriangular, achatado, com o ápice longo e afilado, margens laterais

levemente rebaixadas, para encaixe dos élitros (Fig. 14). Mesotórax com uma fóvea pequena,

subtriangular e profunda na margem anterior; mesepisterno alongado, não atingindo as

cavidades coxais; mesoepímero subquadrangular, com margem lateral arredondada

alcançando as cavidades coxais. Metasterno sub-retangular, com sulco longitudinal mediano,

linha pós-coxal metasternal levemente arqueada; cavidades metacoxais largas, pouco mais

afastadas que as mesocoxais; metepisterno alongado com margem anterior arredondada, com

leve projeção obtusa, metepímero, pequeno, transverso, com margem posterior fortemente

sinuosa (Fig. 16). Metendosternito subtrapezoidal com um par de tendões curtos e pouco

projetados na margem anterior, furca com braço lateral duas vezes mais longo que a lâmina

(Fig. 17).

Élitro com calo umeral pouco projetado, margem lateral levemente explanada, com ou

sem ornamentação (Figs. 75, 80, 85, 89, 93, 97 e 101); epipleura moderadamente larga,

estreitando-se em direção ao ápice do élitro, com curtas cerdas, levemente foveolada para a

recepção dos ápices femurais das pernas posteriores (Fig. 15).

Asas membranosas com lobo anal arredondado, veia Costa (C) curta, pouco evidente;

Subcosta (Sc) subparalela a margem anterior da asa, estendendo-se cerca de ¼ do

comprimento da asa, Radial (R) larga na região mediana da asa; Radial Posterior (RP) com

interrupção na parte central; Cubital (Cu) longa dirigindo-se a margem inferior da asa e

formando com a Mediana (M) uma célula aberta; Anais (A) formando uma célula fechada na

base; Empusal b (Eb) duas vezes mais longa que a Empusal a (Ea); Plical não evidente (Fig.

18).

Pernas com coxas anteriores e posteriores transversas e alongadas, coxa média

globosa, fêmures robustos, duas vezes mais longos que largos; cerdas curtas distribuídas de

maneira uniforme, com escavação profunda para a recepção das tíbias. Tíbias alongadas com

ápices margeados de cerdas curtas e grossas; a anterior com escavação profunda na margem

externa para a recepção de todos os tarsômeros (Fig. 19), média e posterior com escavação

profunda para a recepção do primeiro tarsômero e com dois esporões apicais (Figs. 20 e 21).

Primeiro tarsômero alongado com margem anterior arredondada, com densa pilosidade;

segundo subtriangular com pilosidade apical (Fig. 22); garras tarsais curtas, fortemente

curvadas, com dente basal quadrangular, largo e o apical afilado (Fig. 23).

Abdome do macho com seis esternitos visíveis, com cerdas curtas; primeiro esternito

com linha pós-coxal levemente arqueada e incompleta, terminando em direção ao terço

posterior do primeiro esternito, segundo, terceiro e quarto esternitos levemente estreitados na

região mediana, quinto esternito, o mais largo, quinto e sexto esternitos emarginados (Figs.

24, 34, 46, 55 e 68). Abdome da fêmea com cinco esternitos visíveis, base do quinto esternito

abdominal, com a margem posterior arredondada (Figs. 25, 35, 43, 47, 56, 64 e 69).

Genitália masculina

: Lobo médio lanceolado, simétrico, maior largura no terço basal,

afilando-se gradativamente em direção ao ápice, este agudo, com curtos espinhos por toda a

superfície; parâmeros com ápice alargado, fortemente comprimido na metade basal, maior

largura no terço apical, longa e densa pubescência lisa nas margens laterais, posteriores e

apicais; em vista lateral com o ápice fortemente curvado posteriormente; trave larga, curvada,

com ápice levemente torcido. Sifão fortemente esclerotizado, moderadamente curvado,

diâmetro uniforme em toda sua extensão; cápsula sifonal bem desenvolvida, braço interno

alongado e inclinado internamente; ápice curvado interna ou externamente, com seis a dez

espículas, bolsa prepucial alargada, torcida e curvada externamente (Figs. 26 - 29).

Genitália feminina:

Coxitos subtriangulares, alongados e afilados, com cerdas laterais,

ápice arredondado; estilos pequenos em forma de botão, com três cerdas longas e finas

espermateca em forma de C, robusta, corno bem desenvolvido, pouco curvado, ápice afilado e

com pregas conspícuas; ramo evidente ou pouco evidente; nódulo curto; ducto longo; bursa

copulatrix e infundíbulos evidentes (Figs. 30 - 33).

Dimensões (mm).

Macho: Comprimento total: 2,83 - 3,67; Largura elitral: 2,17 - 3,50.

Fêmea: Comprimento total: 2,52 - 3,92; Largura elitral: 2,42 - 3,50.

Distribuição Geográfica do gênero Harpasus

As espécies do gênero Harpasus são restritas à região Neotropical, sendo encontradas

nas seguintes localidades:

Colômbia

(Departamento del Vichada);

Peru

(Departamento de

Junín) (Fig. 106) e

Brasil

(Estado de Alagoas, Bahia, Espírito Santo, Goiás, Minas Gerais,

Paraná, Rio de Janeiro, Rio Grande do Sul, Santa Catarina, São Paulo) (Fig. 105).

3.3 Discussão taxonômica

As principais características diagnósticas que diferenciam Harpasus dos demais

gêneros da tribo são: antenas compactas e com nove artículos; maxilas com último artículo do

palpo curto e com lados paralelos; processo prosternal com forte escavação nas margens

laterais; proendosternito com braços internos arredondados; escutelo com ápice longo e

afilado; genitália masculina com parâmeros fortemente curvados para trás.

Harpasus assemelha-se muito à Cladis, Curinus e Zagreus, por apresentar a linha pós-

coxal abdominal incompleta e curvada, tíbias sem dentes na margem externa e presença de

esporões apicais nas tíbias médias e posteriores.

Quanto ao padrão da genitália masculina se aproxima de Cladis e Curinus, por

apresentar os parâmeros fortemente comprimidos no terço basal, com ápices curvados para

trás; sifão com bolsa prepucial pouco projetada no ápice e braço interno da cápsula sifonal

fortemente desenvolvido e curvado internamente. Em relação ao padrão de genitália da fêmea

assemelha-se com Cladis, Curinus e Zagreus pela presença de infundíbulo na base da bursa

copulatrix, por apresentar coxitos subtriangulares alongados e espermateca sem apêndices

apicais no corno.

Difere de Chilocorus e Egius pela forma da linha pós-coxal, forma e largura dos

parâmeros e padrão e comprimento do lobo médio; em relação à genitália feminina pela

presença de infundíbulo e coxitos alongados.

3.4 Chave para as espécies de Harpasus Mulsant, 1850

1 - Tegumento castanho-dourado, castanho-avermelhado a negro, élitros com máculas ou

faixas longitudinais ................................................................................................................... 2

1’- Tegumento castanho-dourado brilhante, castanho-alaranjado ou azul-esverdeado, faixas e

máculas ausentes ....................................................................................................................... 5

2 - Tegumento castanho dourado-claro a castanho-avermelhado, presença de uma ou duas

faixas longitudinais em cada élitro ............................................................................................ 3

’ - Tegumento negro ou castanho avermelhado com uma mácula arredondada na região

mediana, ou duas máculas subtriangulares em cada élitro ........................................................ 4

3 - Tegumento de coloração castanho dourado-claro; mancha na região mediana do pronoto

castanha; uma faixa castanho-escura em cada élitro paralela a linha sutural; oito espículas no

ápice do sifão (Fig. 59); coxitos 4,3 vezes mais longo que largo; infundíbulo com base

obliqua (Fig. 62); Comprimento: 3,00 - 3,92 mm. BRASIL: (BA, RJ, SP, SC)

.................................................................................................................... Harpasus sp. nov. A

3’- Tegumento castanho-amarelado ou castanho-avermelhado, mancha castanho-avermelhada

na região mediana do pronoto, este com laterais castanho-amarelada; duas faixas castanho-

escuras longitudinais em cada élitro. Ápice do sifão com dez espículas (Fig. 50). Coxitos 4,5

vezes mais longo que largo; infundíbulo com ápice 2,1 vezes mais largo que a base, esta

oblíqua (Fig. 53 e 54). Comprimento: 2,52 - 3,83 mm. BRASIL (MG, RJ, SP, SC, RS)

............................................................................................ Harpasus zonatus (Mulsant, 1850)

4 - Tegumento castanho-avermelhado, pronoto e élitros com uma mácula azul metálica,

arredondada na região mediana de tamanho variado; coxitos 5,6 vezes mais longo que largo;

infundíbulo alongado com ápice e base de mesmo diâmetro (Fig. 45). Comprimento: 2,92 -

3,17 mm. BRASIL (SP, MG, GO) .............................. Harpasus eversmanni (Mulsant, 1850)

4’- Tegumento negro; pronoto com margens laterais castanho-claras. Élitro com margem

externa castanho-clara, presença de duas máculas subtriangulares castanho-claras em cada

élitro. Coxitos 3,8 vezes mais longo que largo; infundíbulo longo, base dilatada, ápice pouco

mais alargado que a base (Figs. 73, 74). Comprimento: 3,00 mm. PERU (Dep. Junín)

.................................................................................................................... Harpasus sp. nov. C

5 - Tegumento azul-esverdeado, bordas laterais do pronoto castanho-avermelhadas, com uma

fina faixa castanho-avermelhada na borda externa do élitro; sifão com seis espículas (Figs.

28); coxitos cerca de 4,6 vezes mais que largo; infundíbulo longo base arredondada (Figs. 31

e 32). Comprimento: 3,00 - 3,42 mm. BRASIL (BA, AL, ES)

..................................................................................... Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850)

5’ - Tegumento de coloração diferente do item anterior, pronoto, sifão, coxitos e infundíbulo

diferindo do anterior................................................................................................................... 6

6 - Tegumento castanho-alaranjado, esternos torácicos e abdominais castanho-alaranjados

escuros; coxitos cerca de 3,1 vezes mais longo que largo; infundíbulo com oito projeções

espiniformes na base (Figs. 66 e 67). Comprimento: 2,75 - 2,92 mm. COLÔMBIA (Vichada)

................................................................................................................... Harpasus sp. nov . B

6’- Tegumento castanho dourado-brilhante, margem lateral do élitro amarelada, esternos

torácicos e abdominais castanho-escuros; coxitos cerca de 4,9 vezes mais longo que largo,

infundíbulo de base alargada subarredondada, leve depressão na região mediana (Figs. 41 e

42). Comprimento: 3,00 - 3,83 mm. BRASIL (SP, PR)

........................................................................... Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006

3.5 Diagnose das espécies de Harpasus

3.5.1 Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006

(Figs. 34 - 42, 75 - 79, 105)

Harpasus aureus: Almeida & Carvalho, 2006: 33 (descrição); Milléo et al. 2007: 73 - 74

(levantamento).

Diagnose

Macho. Corpo arredondado a ovalado, castanho-dourado brilhante, ausência de faixas

e máculas (Fig. 75), comprimento total médio: 3,43 mm. Cabeça castanho-dourada (Fig. 77);

antenas, labro, lábio e maxilas, castanho-claros; ápice do palpo maxilar castanho-escuro.

Pronoto e élitros com uma fina linha castanho-escura na borda da margem lateral (Fig. 78),

comprimento médio do pronoto: 0,90 mm (variando de 0,75 a 1,00 mm), largura média: 1,81

mm (variando de 1,67 a 1,92 mm). Escutelo castanho-claro. Élitros com comprimento médio:

2,84 mm (variando de 2,50 a 3,25 mm), largura média: 3,06 mm, calo umeral projetado,

margem lateral amarelada e estreitamente explanada. Epipleura amarelo-dourado brilhante,

com cerdas curtas. Pro, meso e maetaesternito e região mediana dos três primeiros esternitos

abdominais castanho-escuros, laterais dos três primeiros esternitos e demais segmentos

abdominais e pernas castanho-claros. Cerdas de coloração amarelo-claro, distribuídas por

todo o abdome (Figs. 34 e 76).

Genitália:

Lobo médio largo na base, estreitando-se gradativamente em direção ao

ápice, cerca de 4,2 vezes mais longo que a largura máxima; parâmeros cerca de 1,2 vezes

mais longos que o lobo médio. Trave cerca de 1,3 vezes mais longa que os parâmeros. Sifão

com ápice levemente alargado, curvado internamente, com bolsa prepucial levemente

alargada, curvada posteriormente, com sete espículas, três longas e grossas, duas longas e

finas, duas últimas com comprimento cerca de um terço das duas espículas anteriores, uma

projeção espiniforme afilada, próximo ao ápice (Figs. 36 - 39).

Fêmea. Cabeça e pernas, castanho-avermelhadas escuras; comprimento total médio:

3,46 mm; comprimento médio do pronoto: 0,86 mm (variando de 0,75 a 1,00 mm); largura

média do pronoto: 1,77 (variando de 1,58 a 2,00 mm); comprimento médio do élitro: 2,85 mm

(variando de 2,50 a 3,25 mm); largura média do élitro: 3,01 mm.

Genitália: Espermateca robusta, corno bem desenvolvido, ápice oblíquo, fortemente

curvado, ramo pouco evidente; nódulo estreito. Coxitos com comprimento cerca de 4,9 vezes

mais longa que a largura máxima. Bursa copulatrix alongada, base afilada e subarredondada,

ápice alargado; infundíbulo ápice largo cerca de 2,2 vezes mais larga que a base, com uma

leve constrição, base alongada e levemente alargada subarredondada com leve depressão na

região mediana (Fig. 40 - 42).

Dimensões (em mm)

Macho: Comprimento total: 3,17 – 3,58; Largura elitral: 2,92 – 3,33.

Fêmea:

Comprimento total: 3,00 – 3,83; Largura elitral: 2,58 – 3,33.

Distribuição Geográfica

Brasil: São Paulo, Paraná (Fig. 105).

Material-tipo

O Holótipo ♂, com as seguintes etiquetas: branca: [Curitiba, PR, CCA/UFPR,

30.IV.2001, RCZ Carvalho]; branca: [Predador de Tinocallis kahawaluokalani (Hem.,

Aphididae), praga de Lagerstroemia indica L. (Lythraceae)]; vermelha: [HOLÓTIPO,

Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006] (Fig. 79); e 10 Parátipos (2 ♂ e 8 ♀), com

etiqueta amarela: [PARÁTIPO, Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006], e as demais

com os dados citados no material examinado encontram-se na Coleção de Entomologia Pe. J.

S. Moure - Departamento de Zoologia, Universidade Federal do Paraná, Curitiba, Brasil

(DZUP). Os outros dois Parátipos ♀ estão depositados no Museu de Zoologia da

Universidade de São Paulo, São Paulo, Brasil (MZSP).

Material examinado

BRASIL. São Paulo. Barueri. 24/IX/1960, K. Lenko col., 1 espécime ♀ (Parátipo,

MZSP). Paraná. Colombo. Embrapa BR 476, Km20, 25/VIII/1986, Lev. Ent. Profaupar, 3

espécimes (2♂, 1♀) (DZUP); Embrapa Sede, 14/X/?, Y. R. Muller, 1 espécime ♂ (DZUP);

21/X/?, Y. R. Muller, 1 espécime ♀ (DZUP); 26/X/?, Y. R. Muller, 2 espécimes ♂, (DZUP);

11/XI/?, Y. R. Muller, 1 espécime ♀ (DZUP). Curitiba

. 17/II/2001, R. C. Z. Carvalho, 3

espécimes ♀ (Parátipos, DZUP); 16//III/2001, R. C. Z. Carvalho, 4 espécimes ♀, (Parátipos,

DZUP); 30/IV/2001, R. C. Z. Carvalho, 4 espécimes, (1♂), Holótipo, (2♂ e 1♀) (Parátipos,

DZUP); 1 espécime ♀, (Parátipo, MZSP). Ponta Grossa

. Col. Agrícola, UEPG, 14/VII/2004,

K. A. Campos, V. Field & J. M. T. Souza col., 2 espécimes ♀ (UEPG); 22/VII/2004, K. A.

Campos, V. Field & J. M. T. Souza col., 1 espécime ♀ (UEPG); 19/XI/2004, K. A. Campos &

J. M. T. Souza col., 1 espécime ♂ (UEPG); 19/XI/2004, K. Campos & J. M. T. Souza col., 1

espécime ♂ (UEPG); 03/XII/2004, K. A. Campos, V. Field & J. M. T. Souza col., 1 espécime

♂ (UEPG); 15/XII/2004, K. A. Campos, V. Field & J. M. T. Souza col., 2 espécimes ♀

(UEPG); 29/XII/2004, K. A. Campos, V. Field & J. M. T. Souza col., 1 espécimes ♀ (UEPG);

10/II/2005, K. A. Campos, V. Field & J. M. T. Souza col., 1 espécime ♀ (UEPG); 23/II/2005,

K. A. Campos, V. Field & J. M. T. Souza col., 1 espécime ♂ (UEPG); 23/II/2005, K. A.

Campos & J. M. T. Souza leg., 1 espécime ♂ (UEPG); 09/III/2005, K. A. Campos & J. M. T.

Souza leg., 1 espécime ♂ (UEPG); 09/III/2005, K. A. Campos, V. Field & J. M. T. Souza

col., 2 espécimes ♀ (UEPG); 19/IV/2005, Equipe do lab. M-34 - UEPG, 1 espécime ♂

(UEPG); 23/V/2005, Equipe do lab. M-34 - UEPG, 1 espécime ♂ (UEPG); 01/VII/2005,

Equipe do lab. M-34 - UEPG, 1 espécime ♀ (UEPG); 21/XI/2005, 2 espécimes (1♀, 1 sexo

indet.), (UEPG); 10/I/2006, 1 espécime ♀, (UEPG); 14/VI/2006, 1 espécime ♀,(UEPG). Vila

Velha, XII/1943, 2 espécimes ♀, (DZUP).

Discussão taxonômica

Harpasus aureus assemelha-se a Harpasus sp. nov. B, por apresentar o tegumento

com coloração única sem máculas ou faixas longitudinais nos élitros. Harpasus. aureus

apresenta o tegumento castanho-dourado brilhante enquanto que Harpasus sp. nov. B

apresenta coloração castanho-alaranjada, além disso é cerca de 1,2 vezes maior. Quanto ao

padrão de genitália da fêmea H. aureus apresenta a base do infundíbulo levemente alargada e

o ápice subarredondado, com leve depressão na região mediana, sendo que em Harpasus sp.

nov. B, a base apresenta projeções espiniformes.

Difere das demais espécies do gênero pelo padrão de coloração e da genitália.

3.5.2 Harpasus eversmanni (Mulsant, 1850)

(Figs. 43 - 45, 80 - 84, 105)

Orcus (Harpasus) eversmanni Mulsant, 1850: 474 (descrição).

Curinus (Harpasus) eversmanni: Crotch, 1874: 190 (sistemática); Gemminger & Harold,

1876: 3777 (catálogo); Korschefsky, 1932: 252 (catálogo).

Curinus eversmanni: Blackwelder, 1945: 451 (checklist).

Harpasus eversmanni: Gordon, 1987: 24 (catálogo); Almeida & Carvalho, 2006: 32-34

(sistemática).

Diagnose

Macho. Não estudado.

Fêmea. Corpo arredondado, em vista dorsal (Fig. 80), comprimento médio: 3,06 mm.

Cabeça, antenas e peças bucais castanho-avermelhadas escuras (Figs. 82, 83). Pronoto com

laterais castanho-avermelhadas, região mediana com mácula azul metálica escura,

acinzentada, estreitando-se fracamente em direção à margem anterior, comprimento médio do

pronoto: 0,79 mm (variando de 0,75 a 0,83 mm), largura média: 1,59 mm (variando de 1,50 a

1,67 mm), (Fig. 82). Escutelo azul metálico. Élitros com comprimento médio: 2,50 mm

(variando de 2,42 a 2,58 mm), largura média: 2,75 mm; com calo umeral projetado; margem

do élitro levemente explanada, avermelhado ou castanho-avermelhado, com uma mácula

arredondada azul metálica acinzentada sobre a região mediana de tamanho variado; a região

avermelhada forma uma borda externa, cobrindo grande parte do disco elitral; podendo ou

não alcançar o calo umeral; margem elitral com uma fina linha castanho-avermelhada em toda

sua extensão (Fig. 80). Epipleura castanho-avermelhada clara. Pernas de coloração castanho-

avermelhada. Meso, metatórax e região mediana dos três primeiros esternitos abdominais

castanho-avermelhados ou castanho-azulados (Fig. 81).

Genitália.

Espermateca robusta, corno bem desenvolvido, afilado, fortemente curvado,

com ramo pouco evidente; coxitos muito longos e afilados, cerca de 5,6 vezes mais longo que

largo; infundíbulo estriado e alongado com ápice e base de mesmo diâmetro, esta oblíqua

(Figs. 44 e 45).

Dimensões

(em mm)

Fêmea: Comprimento total: 2,92 – 3,17; Largura: 2,50 – 2,92.

Distribuição Geográfica

Brasil: São Paulo. Minas Gerais (?), Goiás (?). A etiqueta do Lectótipo indica [Minas

Geraes à Goyaz] (Fig. 105).

Material-tipo

O material recebido do Museum National d’Histoire Naturelle, Paris, França,

apresenta uma etiqueta de Lectótipo, a qual foi colocada por Gordon em 1971, conforme

descrito a seguir. Trata-se de um único exemplar ♀, com as seguintes etiquetas: verde claro

[Museum Paris, Brésil, Minas Geraes à Goyaz, DE CASTELNAU 19-47]; uma etiqueta

redonda, verde clara [19 47]; uma etiqueta amarela [132]; uma branca manuscrita [Orcus

eversmanni Muls. auct. det.], uma etiqueta branca com borda vermelha [LECTOTYPE, Orcus

eversmanni Mulsant Gordon 1971] (Fig. 84).

Tendo em vista que o referido autor não publicou essa designação, este exemplar está

sendo aqui designado como lectótipo.

Material examinado

BRASIL. [Minas Gerais a Goiás], sem data, sem coletor, 1 espécime ♀, Lectótipo

(MNHN). São Paulo. Monte Alegre

. 14-27/X/1942, 2 espécimes ♀. L. Trav F. & Almeida

(MZSP).

Discussão taxonômica

Harpasus eversmanni assemelha-se a Harpasus sp. nov. A, pelo padrão dos coxitos e

do infundíbulo, porém difere das demais espécies pela coloração, pois apresenta uma única

mácula azul metálica na região mediana do élitro, pela forma dos coxitos que são mais

alongados e afilados e pelo infundíbulo estriado e oblíquo na base.

3.5.3 Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850)

(Figs. 1 - 33, 85 - 88, 105)

Orcus (Harpasus) pallidilabris Mulsant, 1850: 473.

Curinus (Harpasus) pallidilabris: Crotch, 1874: 190 (sistemática); Gemminger & Harold,

1876: 3777 (catálogo); Korschefsky, 1932: 252 (catálogo).

Curinus pallidilabris: Blackwelder, 1945: 451 (checklist).

Harpasus pallidilabris: Chapin, 1965: 239,240 (sistemática); Gordon, 1987: 24 (catálogo);

Chazeau, Fürsch & Sasaji, 1989: 14 (checklist); Fürsch, 1990: 11 (checklist); Fürsch,

1996: 11 (checklist); Duverger, 2003:66 (sistemática); Almeida & Carvalho, 2006: 32,

34 (sistemática).

Diagnose

Macho. Corpo oval, coloração verde-azulada ou azul-esverdeada escura, comprimento

médio 3,24 mm. Cabeça com região fronto-clípeal, castanho avermelhado e vértice de

coloração verde-azulada; antenas, labro, lábio e maxilas, castanho-avermelhados; ápice do

palpo maxilar castanho-escuro (Fig. 86). Bordas laterais do pronoto castanho-avermelhado.

Comprimento médio do pronoto 0,85 mm (variando de 0,75 a 0,92 mm); largura 1,68 mm

(variando de 1,58 a 1,75 mm). Escutelo verde-azulado. Calo umeral pouco projetado; margem

externa do élitro estreitamente explanada, com estreita faixa castanho-avermelhada;

comprimento médio do élitro 2,60 mm (variando de 2,42 a 2,92 mm); largura média 2,83 mm.

Epipleura castanho-avermelhada clara a escura, com cerdas curtas. Pernas robustas, castanho-

amareladas a castanho-avermelhadas. Pro, meso, metaesternito castanho-avermelhados

escuros.

Genitália.

Lobo médio largo afilando-se gradativamente em direção ao ápice, este

obtuso, comprimento cerca de 4,8 vezes mais longo que a largura máxima; parâmeros cerca

de 1,2 vezes mais longos que o lobo médio; comprimento da trave cerca de 1,3 vezes maior

que os parâmeros. Sifão com ápice alargado, ápice com bolsa prepucial levemente alargadas,

com seis espículas, duas longas e grossas e quatro curtas e finas, sendo as quatro últimas,

cerca de um terço o comprimento das anteriores (Figs. 26 - 29).

Fêmea. Cabeça verde-azulada escura; comprimento total médio 3,24 mm;

comprimento médio do pronoto 0,86 mm (variando de 0,83 a 0,92 mm), largura média 1,70

mm (variando de 1,58 a 1,75mm); comprimento médio do élitro 2,71 mm (variando de 2,50 a

2,83mm), largura média 2,82 mm; fêmures e tíbias castanhas avermelhado-escuras a negras;

tarsos castanho-amarelados. Meso e metasterno negros.

Genitália.

Espermateca robusta, corno bem desenvolvido e fortemente curvado, ramo

pouco evidente; ducto longo. Coxitos cerca de 4,6 vezes mais longos que a largura máxima.

Bursa copulatrix com base fortemente alargada e arredondada e ápice afilado; infundíbulo

longo, base arredondada, levemente alargada e ápice com dois ganchos convergentes, ápice

cerca de 4,2 vezes mais larga que a base (Figs. 30 – 33).

Dimensões (em mm)

Macho: Comprimento total: 3,00 – 3,42; Largura elitral: 2,67 – 3,08.

Fêmea:

Comprimento total: 3,08 – 3,42; Largura elitral: 2,75 – 2,83.

Distribuição Geográfica

Brasil: Bahia, Alagoas, Espírito Santo (Fig. 105).

Material-tipo

Mulsant (1850), na descrição da espécie, indica que o material estudado pertence à

Coleção Chevrolat. Gordon (1987) indicou que o material encontra-se no “Department of

Zoology, University of Cambridge”, Cambridge, Inglaterra (DZUC), porém o mesmo não

pode ser estudado.

Material examinado

BRASIL. Alagoas. Maceió

. 12/II/1991, I. M. de M. Lima leg., 1 espécime ♂ (DZUP);

18/IV/1991, I. M. de M. Lima leg., 1 espécime ♀ (DZUP); 10/VI/1993, I. M. de M. Lima leg.,

1 espécime ♀ (DZUP); 12/VI/1994, I. M. de M. Lima leg., 2 espécimes (1♂, 1♀) (DZUP);

11/III/1995, I. M. de M. Lima leg., 1 espécime ♂ (DZUP); 03/XI/1997, I. M. de M. Lima leg.,

3 espécimes (2♂, 1♀) (DZUP). Bahia. Sem localidade, sem data, GeoCompere Coll., 4

espécimes (2♂, 2♀) (USNM); Sem localidade, data e coletor, 1 espécime ♀ (USNM). Cruz

das Almas. 01/IX/1998, Ivani, P. S. leg., 2 espécimes (1♂, 1♀) (DZUP). Espírito Santo. Sem

localidade, sem data, sem coletor, 1 espécime ♂ (ZMHB).

Discussão taxonômica

Harpasus pallidilabris assemelha-se a H. zonatus pelo padrão dos coxitos, porém

difere desta, pois a forma do infundíbulo é mais afilada e longa que em H. zonatus.

Difere das demais espécies por apresentar uma coloração azul-esverdeada. Quanto à

genitália do macho a principal diferença está no sifão que apresenta seis espículas e pela

forma do infundíbulo da fêmea.

3.5.4 Harpasus zonatus (Mulsant, 1850)

(Figs. 46 - 54, 89 - 92, 105)

Orcus (Harpasus) zonatus Mulsant, 1850: 475, 476.

Curinus (Harpasus) zonatus: Crotch, 1874: 190 (sistemática); Gemminger & Harold, 1876:

3777 (catálogo); Korschefsky, 1932: 252 (catálogo).

Curinus (Orcus) zonatus: Wille, 1926: 357-375 (morfologia e aspectos biológicos).

Curinus zonatus: Blackwelder, 1945: 451 (checklist).

Harpasus zonatus: Chapin, 1965: 239, 240 (sistemática); Gordon, 1987: 24 (catálogo);

Almeida & Carvalho, 2006: 32-34 (sistemática).

Diagnose

Macho. Corpo arredondado a oval, em vista dorsal, castanho-amarelado ou castanho-

avermelhado, comprimento total médio: 3,25 mm e largura média: 2,89 mm. Cabeça

castanho-amarelada a castanho-avermelhada; antenas, lábio e maxilas, castanho-avermelhado.

Pronoto com comprimento médio 0,86 mm (variando de 0,60 a 1,00 mm) e largura média

1,76 mm (variando de 1,58 a 1,92 mm), margens laterais castanho-amarelado; mancha

castanho-avermelhada, na região mediana da base, fracamente estendendo-se próximo da

margem anterior; margem lateral interna do pronoto castanho-amarelado. Escutelo castanho-

escuro ou castanho com margens laterais castanho-escuro. Élitros com comprimento médio

2,62 mm (variando de 2,17 a 3,00 mm), calo umeral projetado, castanho-escuro; cada élitro

com duas faixas castanho-escuras, a primeira acompanhando a sutura elitral, levemente

alargada na região mediana; a segunda, longitudinalmente arqueada, com início na metade na

base do élitro e prolongando-se paralelamente à margem externa de forma mais afilada e

conspícua ou evanescente próximo da sutura elitral; margem externa com uma fina linha

castanho-escura, levemente explanada. Epipleura castanha a castanho-amarelada. Pernas de

coloração castanho-clara a castanho-avermelhada. Meso, metatórax e região mediana dos três

primeiros esternitos abdominais castanho-avermelhados, cerdas curtas amarelo-claras

distribuídas por todo o abdome.

Genitália.

Lobo médio largo afilando-se gradativamente para o ápice, cerca de 3,8

vezes mais longo que a largura máxima; ápice do lobo médio obtuso; trave com comprimento

cerca de 1,4 vezes mais longo que os parâmeros; parâmeros cerca de 1,1 vez mais longo que o

lobo médio. Sifão com ápice alargado, levemente curvado, este com bolsa prepucial alargada,

com dez espículas, duas longas e grossas, três curtas e as cinco últimas, cerca de dois terços

do comprimento das anteriores (Figs. 48 - 51).

Fêmea. Comprimento total médio: 3,50 mm; comprimento médio do pronoto 0,87 mm

(variando de 0,72 a 1,08 mm); largura média 1,74 mm (variando de 1,50 a 2,08 mm);

comprimento médio do élitro 2,73 mm (variando de 2,25 a 3,25 mm) e largura média: 2,90

mm.

Genitália.

Espermateca em forma de C, robusta, corno bem desenvolvido e fortemente

curvado; coxitos subtriangulares, com comprimento cerca de 4,5 vezes mais longo que a

largura máxima. Bursa copulatrix com base larga e arredondada, ápice afilado; infundíbulo

com ápice 2,1 vezes mais largo que a base, esta oblíqua (Figs. 52 - 54).

Dimensões (em mm)

Macho: Comprimento total: 2,83 - 3,67; Largura: 2,17 - 3,50.

Fêmea:

Comprimento total: 2,52 - 3,83; Largura: 2,42 - 3,50.

Distribuição Geográfica

Brasil: Minas Gerais, Rio de Janeiro, São Paulo, Santa Catarina, Rio Grande do Sul

(Fig. 105).

Material-tipo

Mulsant (1850) indicou que o material estudado pertence às Coleções Dejean, Buquet

e Trobert. Gordon (1984) indicou, com dúvida, que o material-tipo deve estar depositado no

Muséum D´Histoire Naturelle de Lyon (MNHL), ou no Natural History Museum, Londres,

Inglaterra (BMHN). O material foi solicitado ao Muséum D´Histoire Naturelle de Lyon

(MNHL), Lyon, França, porém não foi encontrado.

Material examinado

Sem localidade, sem data, sem coletor, 1 espécime ♀ (DZUP). BRASIL. Sem

localidade, sem data, sem coletor, 1 espécime ♂ (ZMHB). Minas Gerais. Viçosa

. 11/XI/1985,

T. Henry leg., 1 espécime ♀ (USNM); 2006, A. A. Semeão leg, 10 espécimes (5♂, 5♀)

(DZUP). Rio de janeiro. Campo Grande

. 31/VII/1957, P. A. Berry Coll., 5 espécimes (2♂,

3♀) (USNM). Rio de Janeiro

. 1939, Coll. F. C. Camargo, 1 espécime ♂ (DZUP); 28/V/1939,

Coll. F. C. Camargo, 1 espécime ♂ (USNM); 14/IV/1949, P. A. Berry leg. 2 espécimes (1♂,

1♀ - Homótipo) (USNM); 28/V/1939, Coll. F. C. Camargo, 2 espécimes (1♂, 1♀) (MLPA).

1905.100, Fry Coll. 1 espécime ♀ (MNRJ). Botafogo, X/1949, M. Alvarenga leg., Coleção

M. Alvarenga, 1 espécime ♀ (DZUP); 1/I/1952, L. C. Alvarenga, espécime ♂ (DZUP);

IV/1952, L. C. Alvarenga leg., 1 espécime ♀ (DZUP); 22/IX/1956, L. C. Alvarenga leg., 2

espécimes (1♂, 1♀) (MNRJ). Corcovado, 1/VIII/1915, P. G. Russel, 1 espécime ♀ (USNM);

XII/1957, Seabra e Alvarenga leg., 1 espécime ♀ (DZUP); VIII/1960, Seabra e Alvarenga

leg., 1 espécime ♀ (DZUP); IX/1961, Seabra e Alvarenga leg., 1 espécime ♀ (DZUP);

X/1961, Seabra e Alvarenga leg., 3 espécimes (2♂, 1♀) (DZUP); 1/XII/1966, Moure &

Seabra leg., 2 espécimes ♀ (DZUP); X/1961, M. Alvarenga leg., ex- coleção M. Alvarenga, 2

espécimes ♀ (DZUP); XI/1961, M. Alvarenga leg., ex- coleção M. Alvarenga, 2 espécimes

(1♂, 1♀) (DZUP); 15/IX/1961, J. S. Moure, Alvarenga e Seabra leg., 3 espécimes (1♂, 2♀)

(DZUP); 18/IX/1961, J. S. Moure, Alvarenga e Seabra leg., 5 espécimes (3♂, 2♀) (DZUP);

X/1957, Alvarenga e Seabra leg., 2 espécimes ♀ (DZUP); IX/1958, Alvarenga e Seabra leg.,

3 espécimes (1♂, 2♀) (MNRJ); XI/1961, Alvarenga e Seabra leg., 1 espécime ♂ (MNRJ);

VI/1963, Alvarenga e Seabra leg., 4 espécimes (1♂, 3♀) (DZUP); VII/1963, Alvarenga e

Seabra leg., 3 espécimes (2♂, 1♀) (DZUP); IX/1966, Alvarenga e Seabra leg., 1 espécime ♀

(DZUP); X/1966, Alvarenga e Seabra leg., 1 espécime ♂ (DZUP); I/1967, Alvarenga e

Seabra leg., Coleção M. Alvarenga, 2 espécimes ♂ (DZUP); VI/1967, Alvarenga e Seabra

leg., Coleção M. Alvarenga, 2 espécimes (1♂, 1♀) (DZUP); VIII/1967, Alvarenga e Seabra

leg., Coleção M. Alvarenga, 1 espécime ♂ (DZUP); IX/1967, Alvarenga e Seabra leg.,

Coleção M. Alvarenga, 2 espécimes (1♂, 1♀) (DZUP); X/1967, Alvarenga e Seabra leg.,

Coleção M. Alvarenga, 4 espécimes (3♂, 1♀) (DZUP); XI/1967, Alvarenga e Seabra leg.,

Coleção M. Alvarenga, 1 espécime ♀ (DZUP); IX/1968, Alvarenga e Seabra leg., Coleção M.

Alvarenga, 1 espécime ♀ (DZUP); IX/1969, Alvarenga e Seabra leg., Coleção M. Alvarenga,

1 espécime ♀ (DZUP). Floresta da Tijuca, VIII/1957, M. Alvarenga, 1 espécime ♂ (DZUP);

I/1961, C. A. Campos Seabra. Coleção M. Alvarenga, 1 espécime ♂ (DZUP); 15/I/1961, F.

M. Oliveira leg., 1 espécime ♀ (DZUP). Guanabara, IV/1952, M. Alvarenga. Ex-coleção M.

Alvarenga, 1 espécime ♀ (DZUP). Jardim Botânico, 1940, F. C. Camargo, 1 espécime ♂

(DZUP). III/1937, sem coletor, lâminas: (107/FCC-244, 1 espécime ♀), (113/FCC-250, 1

espécime ♂) (MNRJ). Realengo, 9/X/1949, L. C. Alvarenga, 1 espécime ♂ (MNRJ). Represa

Rio Grande, XI/1960, F. M. Oliveira, Coleção M. Alvarenga, 1 espécime ♂ (DZUP);

XII/1960, F. M. Oliveira, Coleção M. Alvarenga, 1 espécime ♀ (DZUP). Quinta da Boa

Vista, (lâmina: 223 - FCC-378) 1 espécime ♂ (MNRJ); 31/VIII/1937, (227/FCC-381), 1

espécime ♂, (228 - FCC-382, sexo indet) (MNRJ). Teresópolis

. XII/1955, B. Pohl, 1

espécime ♀ (MNRJ). São Paulo. Sem localidade, sem data, sem coletor, 8 espécimes (3♂,

5♀) (MLPA). Caraguatatuba

. (Res. Flor- 40 m), 02/IV/1962, Martins, Reichardt & Silva leg.,

1 espécime ♀ (DZUP). São Roque

. Sem data, sem coletor, (170/FCC-320) 1 espécime ♂

(MNRJ); 18/VI/1937, sem coletor, (190/FCC-346), 1 espécime ♂ (MNRJ); VIII/1938, Seabra

leg., (749/FCC-1042) 1 espécime ♂ (MNRJ). Santa Catarina. São Bento do Sul.

Rio

Vermelho, XII/1952, Dirings leg., 2 espécimes ♂ (DZUP). Rio Grande do Sul. Deodoro

13/II/1935, 1 espécime ♀ (MCNZ).

Discussão taxonômica

Harpasus zonatus assemelha-se a Harpasus sp. nov. A, tanto no tamanho, quanto no

padrão de coloração, porém difere desta por apresentar duas faixas longitudinais castanho-

escuras em cada élitro, enquanto que a Harpasus sp. nov. A apresenta somente uma faixa

longitudinal castanho-escura, próxima a sutura elitral.

Com relação à genitália masculina, esta difere das demais pelo comprimento do lobo

médio e pela presença de 10 espículas no ápice do sifão. Quanto à genitália feminina, esta

difere pela forma e tamanho do infundíbulo.

3.5.5 Harpasus sp. nov. A

(Figs. 55 - 63, 93 - 96, 105)

Diagnose

Macho. Corpo arredondado, tegumento de coloração castanho dourado-claro,

comprimento médio 3,50 mm. Cabeça e peças bucais de mesma coloração, ápice do palpo

maxilar castanho-escuro; antenas castanho-claras. Pronoto com comprimento médio 0,97 mm

(variando de 0,92 a 1,00 mm) e largura média 1,83 mm (variando de 1,75 a 1,92 mm), com

mancha castanha, na região mediana da base, fracamente estendendo-se próximo à margem

anterior; prosterno com margem anterior e posterior castanho-escuro. Escutelo castanho-

escuro. Élitros com comprimento médio 2,92 mm (variando de 2,67 a 3,17 mm), com calo

umeral projetado, levemente escurecido ou castanho-escuro; cada élitro com uma faixa

acompanhando a linha sutural, de coloração castanho-escura, levemente ou fortemente

alargada na região mediana; laterais do élitro com pontuação grossa castanho-escuras;

margem externa com uma fina linha castanho-escura, levemente explanada. Epipleura glabra,

castanho-dourada, com bordas levemente alaranjadas. Pernas, fortes castanho-douradas clara.

Meso, metatórax e região mediana dos três primeiros esternitos abdominais castanho-escuros,

laterais do segundo, terceiro, quarto e os dois últimos esternitos castanho-dourados; cerdas

curtas amarelo-claras distribuídas por todo o abdome.

Genitália.

Lobo médio largo e levemente assimétrico no terço basal, afilando-se

gradativamente para o ápice, este levemente arredondado, comprimento cerca de 3,3 vezes

mais longo que a largura máxima; parâmeros cerca de 1,1 vezes mais longos que o lobo

médio; comprimento da trave cerca de 1,4 vezes maior que os parâmeros. Sifão com ápice

levemente alargado, ápice com bolsa prepucial com ápice voltado posteriormente, com oito

espículas, uma delgada e longa, duas curtas e delgadas, duas curtas e grossas, uma grossa com

cerca de duas vezes o comprimento da anterior, uma inclinada com ápice agudo, a última

grossa e distintamente separada das demais o longas e grossas e quatro curtas e finas, sendo as

quatro últimas, cerca de um terço o comprimento das anteriores (Figs. 57 - 60).

Fêmea. Cabeça castanho-dourada levemente escura à fortemente escura; comprimento

total médio 3,37 mm; comprimento médio do pronoto 0,85 mm (variando de 0,75 a 1,00 mm),

largura média 1,75 mm (variando de 1,58 a 1,92 mm); comprimento médio do élitro 2,85 mm

(variando de 2,42 a 3,17mm), largura média do élitro 2,85 mm; fêmur e tíbia castanho-

avermelhados claros a escuros; tarsos castanho-amarelados. Meso e metasterno castanho-

escuros.

Genitália.

Espermateca robusta, corno largo e com ápice arredondado, curvado, ramo

pouco evidente; coxitos cerca de 4,3 vezes mais longos que a largura máxima; bursa

copulatrix com base arredondada e ápice afilado; infundíbulo com base obliqua, levemente

alargada, cerca de 1,5 vezes mais longo que a largura do ápice, este com dois ganchos

espessos convergentes, ápice cerca de 2,4 vezes mais larga que a base (Figs. 61 - 63).

Dimensões (em mm)

Macho: Comprimento total: 3,42 – 3,67; Largura elitral: 3,08 – 3,25.

Fêmea:

Comprimento total: 3,00 – 3,92; Largura elitral: 2,58 – 3,17.

Distribuição Geográfica

Brasil: Bahia, Rio de Janeiro, São Paulo, Santa Catarina (Fig. 105).

Material-tipo

Holótipo e Parátipos depositados na Coleção Entomológica Pe. J. S. Moure,

Departamento de Zoologia, Universidade Federal do Paraná, Curitiba, (DZUP). O holótipo

possui as seguintes etiquetas: [Rio de Janeiro, Teresópolis, XII/1955, B. Pohl leg.], 1

espécime ♂. Os Parátipos conforme indicados no material examinado.

Material examinado

BRASIL. Rio de Janeiro. Teresópolis, XII/1955, B. Pohl leg. 1 espécime ♂, holótipo,

(DZUP). Bahia.

Japú, Ilhéus, Fazenda Sta. Thereza, XI/1958, Dirings Col. 1 espécime ♀. Rio

de Janeiro. Teresópolis, XII/1955, B. Pohl leg., 5 espécimes (3 ♂, 2 ♀). São Paulo. Ilha dos

Búzios, 16/X – 4/XI/1963, Exp. Dep. Zool., 1 espécime ♀. Santa Catarina.

São Bento do Sul,

(R. Natal), 8/VIII/1981, I. Rank leg, 1 espécime ♀, (DZUP), todos parátipos.

Discussão taxonômica

Harpasus sp. nov. A assemelha-se a Harpasus zonatus, pela coloração castanha e

presença de faixa longitudinal nos élitros, diferenciando-se desta por apresentar somente uma

faixa paralela à sutura elitral. Difere também pela forma do infundíbulo no macho, o qual tem

o ápice torcido e pelos coxitos nas fêmeas serem levemente mais afilados que os de H.

zonatus. Aproxima-se a H. eversmanni pelo padrão dos coxitos e do infundíbulo, deferindo

desta pelas faixas longitudinais.

A estrutura da genitália masculina é a principal diferença entre as espécies,

principalmente em relação ao lobo médio e no ápice do sifão, o qual apresenta oito espículas.

O infundíbulo difere na forma da base e tamanho.

3.5.6 Harpasus sp. nov. B

(Figs. 64 - 67, 97 - 100, 106)

Diagnose

Macho. Não estudado.

Fêmea. Corpo moderadamente convexo, arredondado, integumento de coloração

castanho-alaranjado, ausência de máculas nos élitros e pronoto; comprimento total médio 2,84

mm. Cabeça castanha alaranjada escura, antenas e peças bucais de mesma coloração.

Comprimento do pronoto 0,75 mm, largura do pronoto 1,50 mm. Escutelo castanho-

alaranjado escuro. Élitros com calo umeral pouco projetado, margem lateral levemente

explanada, com estreita faixa castanho-avermelhado na borda. Comprimento médio do élitro

2,29 mm (variando de 2,25 a 2,33 mm); largura 2,58 mm. Pro, meso e metasterno castanhos

alaranjados escuros. Pernas robustas, castanhas alaranjadas claras, tarsos com pubescência

amarelo-clara. Epipleura, pernas e esternitos abdominais castanhos alaranjados claros.

Abdome com cinco esternitos visíveis, o quinto maior que os anteriores, margem posterior

arredondada.

Genitália.

Espermateca em forma de C, robusta, corno bem desenvolvido e fortemente

curvado, ápice com pregas, conspícuas, com ramo pouco evidente; coxitos subtriangulares,

com comprimento cerca de 3,1 vezes mais longo que a largura máxima, com cerdas nas

laterais, com tamanho variado, ápice arredondado; estilos pequenos, forma de botão, com três

cerdas longas e finas; bursa copulatrix alongada, com mesma largura por toda sua extensão,

base subarredondada; infundíbulo com base larga, curvada, com oito projeções espiniformes

curtas e largas, ápice levemente menor que a base (Figs. 65 - 67).

Dimensões (em mm)

Fêmea: Comprimento total: 2,75 - 2,92; Largura: 2,58.

Distribuição Geográfica

Colômbia:

Vichada (Fig. 106).

Material tipo

O Holótipo e o Parátipo possuem as seguintes etiquetas: [COLOMBIA. Vichada.

Puerto Carreño

(6°11'16'' N, 62°28'23'' W), 23/VI/1966, bambu]. Os dois espécimes ♀ estão

depositados na Coleção Entomológica Pe. J. S. Moure, Departamento de Zoologia,

Universidade Federal do Paraná, Curitiba (holótipo) e no Museu Nacional do Rio de Janeiro,

Universidade Federal do Rio de Janeiro, Rio de Janeiro (parátipo).

Material examinado

COLOMBIA. Vichada. Puerto Carreño

(6°11'16'' N, 62°28'23'' W), 23/VI/1966,

bambu, 2 espécimes ♀, (DZUP e MNRJ).

Discussão taxonômica

Harpasus sp. nov. B assemelha-se a H. aureus pela ausência de faixas e máculas nos

élitros e a Harpasus sp. nov. C pela forma dos coxitos. Porém difere de H. aureus pelos

coxitos largos e de Harpasus sp. nov. C, pelo infundíbulo levemente curvado e com espículas

na base.

Difere das demais espécies principalmente pela estrutura dos coxitos e infundíbulo

com espículas.

3.5.7 Harpasus sp. nov. C

(Figs. 68 - 74, 101 - 104, 106)

Diagnose

Macho. Corpo arredondado, convexo. Cabeça castanho-escura, antena e peças bucais

castanho-claras a escuras. Pronoto preto, com as margens antero-laterais castanhas claras.

Escutelo preto. Élitros com calo umeral projetado preto, margem lateral levemente explanada,

castanhas claras. Cada élitro com duas máculas castanhas claraso: a primeira, subtriangular

próxima à sutura elitral e à base do élitro, com emarginação acima da calosidade humeral; a

segunda, pouco menor que a primeira, subtriangular, próximo à sutura e à margem externa do

élitro. Epipleura e esternos abdominais castanhos claros. A área central do pró, meso e

metatórax castanhas escuras. Pernas robustas, castanhas escuras.

Genitália.

Lobo médio simétrico lanceolado, largo no terço basal, estreitando-se no

ápice, mais curtos que os parâmeros; trave larga, pouco mais longa que o lobo médio e mais

curta que os parâmeros. Sifão longo, diâmetro uniforme por toda extensão, fortemente

esclerotizado, curvado, com bolsa prepucial torcida (Figs. 70 - 72)

Fêmea. Comprimento do élitro 2,33 mm; largura do pronoto 1,58 mm; comprimento

do pronoto 0,83 mm.

Genitália.

Coxitos longos, subtriangulares, comprimento com cerca de 3,8 vezes mais

longa que a largura máxima, delgado, ápice arredondado. Infundíbulo longo, com base

dilatada e ápice pouco mais alargado que a base; bursa copulatrix larga (Figs. 73 e 74).

Espermateca não observada.

Dimensões

(em mm)

Macho: Comprimento total: 3,00; Largura elitral: 2,70.

Fêmea:

Comprimento total: 3,00; Largura elitral: 2,50.

Distribuição Geográfica

Peru: Departamento de Junín (Fig. 106)

Material-tipo

O Holótipo ♂ e dois parátipos ♀ com as seguintes etiquetas: [Chanchamayo,

07/I/1986, Arellano Coll.], [UA 2005-86] estão depositados no Museo de Entomología Klaus

Raven Büller, Universidad Nacional Agraria La Molina, Lima, Perú (UNALM). Um Parátipo

♀, com os mesmos dados está depositado na Coleção Entomológica Pe. J. S. Moure,

Departamento de Zoologia, Universidade Federal do Paraná, Curitiba, Brasil (DZUP).

Material examinado

PERU. Departamento de Júnin. Chanchamayo. 07/I/1986, Arellano Coll., 1 espécime

♀ (DZUP); 3 espécimes (1♂, holótipo e 2♀) (UNALM).

Discussão taxonômica

Harpasus sp. nov. C é semelhante a Harpasus sp. nov. B e a H. pallidilabris pelos

coxitos largos e pela forma e tamanho do infundíbulo, porém difere destas pois apresenta os

coxitos mais largos que Harpasus sp. nov. B e possui infundíbulo com diâmetro semelhante

em toda sua extensão, com o ápice levemente alargado e inclinado, sendo que em H.

pallidilabris a base é afilada e alongada.

Quanto ao padrão de genitália masculina difere pelo ápice do sifão torcido

externamente e os parâmeros são mais afilados que nas demais espécies.

Em relação a coloração a Harpasus sp. nov. C, difere das demais espécies por

apresentar um padrão de máculas castanhas nos élitros e pelo tegumento negro.

3.6 Aspectos biológicos

Com os dados contidos na literatura e etiquetas de coleta, foi possível fazer um

levantamento das informações a respeito de possíveis plantas hospedeiras e presas, para

algumas espécies do gênero.

Harpasus aureus: Almeida & Carvalho (2006) ao descrevê-la relatam que foi

coletada sobre extremosa Lagerstroemia indica, (Lytraceae), planta ornamental exótica

oriunda da China, muito utilizada no paisagismo urbano, principalmente em cidades do sul do

Brasil. É predador de Tinocallis kahawaluokalani (Kirkaldy, 1907) (Hemiptera, Aphididae)

espécie detectada recentemente no Brasil (Peronti & Sousa-Silva 2002). Este afídeo causa

sérios danos às plantas cultivadas, pois excreta grande quantidade de “honeydew”, uma

substância açucarada, que propicia o crescimento de fungos fazendo o tronco e as folhagens

das plantas adquirirem uma coloração negra, causando queda prematura das folhas (La Rossa

et al. 1997).

Entre 2004 e 2006, foram coletados no pomar do Colégio Estadual Agrícola Augusto

Ribas (UEPG) no município de Ponta Grossa, Paraná, 22 indivíduos de H. aureus, todos

associados às árvores cítricas como: Mexeriqueira, Laranjeira e Poncãzeira, porém não havia

dados sobre possíveis presas. Provavelmente esta espécie alimentava-se de afídeos ou

cochonilhas, espécies comuns nesse tipo de planta.

Em coletas realizadas sobre hortaliças Milléo et al. (2007), notificaram a presença de

um espécime em cultura de pimentão, Capsicum annuum L. (Solanaceae), porém sem relato

da presa.

Harpasus pallidilabris: esta espécie foi coletada no Estado de Alagoas sobre Hibiscus

sp. (Malvaceae) infestada com cochonilhas e em Lagerstroemia speciosa, (Lythraceae),

infestada com afídeos. Na Bahia foram coletados sobre algodão (Malvaceae) e Citrus sp.

(Rutaceae), porém estas não apresentavam nenhuma menção a possíveis presas.

Harpasus zonatus: Wille (1926), em seu minucioso trabalho publicado em alemão,

descreveu a morfologia dos imaturos e adultos, apresentando uma tabela de medidas dos

diferentes estágios larvais e sua duração em duas estações o ano, além de uma tabela com

possíveis plantas hospedeiras e presas associadas. Em Citrus sp. foram identificados pelo

autor 10 espécies de cochonilhas, pertencentes à 3 subfamílias; Dactylopiinae: Pseudococcus

citri (Risso) Fern; Lecaniinae: Lecanium hesperidum (L.) Burm, L. hemisphaericum Targ. e

L. perlatum Ckll.; Diaspinae: Chionaspis citri Comst., Chrysomphalus fícus Ashm., C.

aurantii Ckll., Aspidiotus hederae (Vall.) Sign., Lepidosaphes pinniformis (Bché.) Kirk., L.

gloceri (Pack.). Em bambu, as possíveis presas estavam associadas a duas subfamílias;

Asterolecaniinae: Asteroleocanium bambusae Boisd. e Diaspinae: Odonaspis secreta (Ckll.)

Fern.

Semeão (2006) relata que na cultura de goiaba, Psidium guajava L. (Myrtaceae), em

Viçosa, Minas Gerais, foram encontradas algumas espécies de Coccinellidae: H. zonatus,

Harmonia axyridis (Pallas, 1773), Scymnus (Pullus) sp., Hyperaspis (Hyperaspis) festiva

Mulsant, 1850, Pentilia sp. e Pseudoazya nana Marshall, 1912 todas formando um grupo

muito importante na predação de Triozoida limbata (Enderlein, 1918) (Hemiptera,

Sternorrhyncha, Psyllidae), espécie considerada grande praga dessa cultura.

Harpasus

sp. nov. B

, foi coletada sobre Bambu (Poaceae) sem nenhum registro de

presa.

As espécies H. eversmanni, Harpasus sp. nov. A e Harpasus sp. nov. C, não

apresentam quaisquer dados de planta hospedeira ou de possíveis presas.

4. CONCLUSÕES

Foram redescritas quatro espécies: Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006,

Harpasus eversmanni (Mulsant, 1850), Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850) e Harpasus

zonatus (Mulsant, 1850) e descritas três novas, Harpasus sp. nov. A, Harpasus sp. nov. B e

Harpasus sp. nov. C.

O gênero Harpasus Mulsant, 1850, foi redescrito com os seguintes caracteres

diagnósticos: corpo arredondado a ovalado, convexo; glabro; coloração castanha clara a

escura ou azul-esverdeada, com ou sem máculas negras; comprimento variando de 2,52 a 3,92

mm; antenas com nove artículos; palpo maxilar com último artículo de lados paralelos;

processo prosternal largo com as laterais fortemente escavadas, seguindo a margem das

cavidades coxais; linha pós-coxal incompleta no primeiro esternito abdominal; segundo e

terceiro par de tíbias com dois esporões; genitália do macho com o ápice dos parâmeros

fortemente curvado para trás; genitália da fêmea com coxitos subtriangulares alongados, bursa

copulatrix alongada, infundíbulo pequeno com lados paralelos e curtos ou alongados.

Com este trabalho o gênero Harpasus passa a conter sete espécies, com distribuição

restrita à região Neotropical, cinco delas com registro para o Brasil: H. aureus, H.

eversmanni, H. pallidilabris, H. zonatus e Harpasus sp. nov. A, uma da Colômbia, Harpasus

sp. nov. B e outra no Peru, Harpasus sp. nov. C. A principal diferença entre elas está no

padrão de coloração do tegumento, na ornamentação do pronoto e élitros e na estrutura da

genitália masculina e feminina.

Também foi possível levantar as presas: Hemiptera (Coccidae, Aphididae e Psyllidae),

além das possíveis plantas hospedeiras, das famílias Lytraceae, Malvaceae, Myrtaceae,

Poaceae, Rutaceae e Solanaceae.

5. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Almeida, L.M. & R. C. Z. de Carvalho. 2006. A new brazilian species of Harpasus Mulsant

(Coleoptera, Coccinellidae, Chilocorinae), a predator of Tinocallis kahawaluokalani

(Kirkaldy) (Hemiptera, Aphididae). Zootaxa 1195: 31-37.

Blackwelder, R. E. 1945. Checklist of the Coleopterous Insects of Mexico, Central America,

the West Indies, and South America. Bulletin United States National Museum 185(3):

343-550.

Brèthes, J. 1924. Description de deux nouveaux Coléopteres du Chili. Revista Chilena de

Historia Natural 27: 39 - 42.

Chapin, E. A. 1965. The genera of Chilocorini (Coleoptera, Coccinellidae). Bulletin of the

Museum of Comparative Zoology 133 (4): 227-271.

Chazeau, J; H. Fürsch; H. Sasaji. 1989. Taxonomy of Coccinellids. Coccinella (1): 6-8.

Crotch, G. R. 1874. A revision of the Coleopterous Family Coccinellidae. London: E. W.

Janson, 311 p.

Duverger, C. 2003. Phylogénie des Coccinellidae. Bulletin de la Société Linnéenne de

Bordeaux 31 (2): 57-76.

ESRI, 1999. ArcView®GIS 3.2a. Environmental Systems Research Institute, Inc. New York.

Fürsch, H. 1990. Taxonomy of Coccinellids. Coccinella 2 (1): 4-6.

Fürsch, H. 1996. Taxonomy of Coccinellids. Coccinella 6. última atualização: 9/10/2007.

Disponível em: <http://www.phil.uni-passau.de/didaktik_natw/fuersch/fuersch.html

Acesso em 11 de novembro de 2007.

Gemminger, M & E. Harold. 1876. Catalogus Coleopterorum hucusque descriptorum

synonymicus et systematicus 12: 3740-3818.

Global Gazetteer Version 2.1. Disponível em <http://www.fallingrain.com/world/>

. Acesso em

27 de outubro de 2007.

Gordon, R. D. 1987. A catalogue of the Crotch collection of Coccinellidae (Coleoptera).

Occasional Papers on Systematic Entomology 3:1-46.

Kohlschütter, C.

FuzzyG - Fuzzy Gazetteer, v2.1

. 2002-2005. Disponível em <http://tomcat-

dmaweb1.jrc.it/fuzzyg/query/>. Acesso em 27 de outubro de 2007.

Korschefsky, R. 1932. Coccinellidae I. In Coleopterorum Catalogus. Part 120. Berlin, W.

Junk, p. 225-659.

La Rossa, F. R.; A. L. Vasicek; A. Noriega. 1997. Presencia de Sarucallis kahawaluokalani

sobre “crepón” (Lagerstroemia indica) en la Argentina (Homoptera: Aphidoidea).

Revista de la Sociedad Entomológica Argentina 56

(1-4): 97-100.

Milléo, J.; J. M. T. Souza; J. P. Castro; G. H. Corrêa. 2007. Coccínelídeos (Insecta,

Coleoptera) presentes em hortaliças (Ponta Grossa – PR). Publicatio UEPG Ciências

Exatas e da Terra, Ciência Agrárias e Engenharia 13 (2): 71-80.

Mulsant, E. 1850. Species des Coléoptères trimères sécuripalpes. Annales des Sciences

Physique et Naturelles d’Agriculture et d’Industrie 2: 1-1104.

Peronti, A. L. B. G.; C. R. Sousa-Silva. 2002. Aphids (Hemiptera: Aphidoidea) of ornamental

plants from São Carlos, São Paulo state, Brazil. Revista de Biologia Tropical 50 (1):

137-144.

Semeão, A. A. 2006. Controle natural de Triozoida limbata em goiabeira. Programa de

Pós-graduação em Entomologia, Universidade Federal de Viçosa, MG. (Dissertação de

mestrado), 48 p.

Wille, J. 1926. Curinus (Orcus) zonatus Muls. (Coccinellidae), ein Feind der Schildläuse an

Orangenbaumen. Beiträge zu seiner morphologie, biologie und bekämpfungs-

technischen Bedeutung. Zeitschrift für Angewandte Entomologie 12: 357–375.

Obs. Referências e citações elaboradas seguindo orientações da Revista Brasileira de

Entomologia.

100

Figs. 1 - 10. Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850): (1) vista dorsal; (2) vista lateral; (3)

vista frontal; cabeça (4) vista dorsal; (5) vista ventral; (6) labro; (7) mandíbulas esquerda e

direita, vista ventral; (8) maxila; (9) lábio; (10) antena.

101

Figs. 11 - 18. Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850): Pronoto (11) vista dorsal; (12) vista

lateral; (13) proendosternito; (14) escutelo; (15) élitro com fóvea; (16) meso e metaesternito;

(17) metendosternito; (18) asa posterior (C. costa; Sc. subcosta; R. radial; Cu. Cubital; M.

mediana; A. anais; Ea. empusal a; Eb. empusal b).

102

Figs. 19 - 23. Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850): Pernas (19) anterior; (20) média; (21)

posterior; (22) tarso, vista ventral; (23) garra tarsal.

103

Figs. 24 - 33. Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850). Abdome (24) macho, (25) fêmea;

genitália masculina: Tégmen (26) lateral, (27) frontal, (28) ápice do sifão, (29) sifão; genitália

feminina: (30) espermateca, (31) coxitos, bursa copulatrix e infundíbulo, (32) detalhe

infundíbulo, (33) ápice do coxito.

104

Figs. 34 - 42. Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006. Abdome (34) macho, (35) fêmea;

genitália masculina: Tégmen (36) lateral, (37) frontal, (38) ápice do sifão, (39) sifão; genitália

feminina: (40) espermateca, (41) coxitos, bursa copulatrix e infundíbulo, (42) detalhe

infundíbulo.

105

Figs. 43 - 45. Harpasus evermanni (Mulsant, 1850). (43) abdome da fêmea; genitália

feminina: (44) espermateca, (45) coxitos, bursa copulatrix e infundíbulo.

106

Figs. 46 - 54. Harpasus zonatus (Mulsant, 1850). Abdome (46) macho, (47) fêmea; genitália

masculina: Tégmen (48) lateral, (49) frontal, (50) ápice do sifão, (51) sifão; genitália

feminina: (52) espermateca, (53) coxitos, bursa copulatrix e infundíbulo, (54) detalhe

infundíbulo.

107

Figs. 55 - 63. Harpasus sp. nov. A. Abdome (55) macho, (56) fêmea; genitália masculina:

Tégmen (57) lateral, (58) frontal, (59) ápice do sifão, (60) sifão; genitália feminina: (61)

espermateca, (62) coxitos, bursa copulatrix e infundíbulo, (63) detalhe infundíbulo.

108

Figs. 64 - 67. Harpasus sp. nov. B. (64) abdome fêmea; genitália feminina: (65) espermateca,

(66) coxitos, bursa copulatrix e infundíbulo, (67) detalhe infundíbulo.

109

Figs. 68 - 74. Harpasus sp. nov. C. Abdome (68) macho, (69) fêmea; genitália masculina:

Tégmen (70) lateral, (71) frontal, (72) sifão; genitália feminina: (73) coxitos, bursa copulatrix

e infundíbulo, (74) detalhe infundíbulo.

110

Figs. 75 - 79. Harpasus aureus Almeida & Carvalho, 2006: (75) vista dorsal; (76) vista

ventral; (77) vista frontal; (78) vista lateral; (79) etiquetas holótipo.

111

Figs. 80 - 84. Harpasus eversmanni (Mulsant, 1850): (80) vista dorsal; (81) vista ventral; (82)

vista frontal; (83) vista lateral; (84) etiquetas lectótipo.

112

Figs. 85 - 88. Harpasus pallidilabris (Mulsant, 1850): (85) vista dorsal; (86) vista ventral;

(87) vista frontal; (88) vista lateral.

113

Figs. 89 - 92.

Harpasus zonatus (Mulsant, 1850): (89) vista dorsal; (90) vista ventral; (91)

vista frontal; (92) vista lateral.

114

Figs. 93 - 96.

Harpasus

sp. nov. A

: (93) vista dorsal; (94) vista ventral; (95) vista frontal;

(96) vista lateral.

115

Figs. 97 - 100. Harpasus sp. nov. B: (97) vista dorsal; (98) vista ventral; (99) vista frontal;

(100) vista lateral.

116

Figs. 101 - 104. Harpasus sp. nov. C: (101) vista dorsal; (102) vista ventral; (103) vista

frontal; (104) vista lateral.

117

Figs. 105 - 106. Distribuição geográfica das espécies de Harpasus Mulsant, 1850.

(105) Brasil; (106) Colômbia e Peru.

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