( PDF ) Aspectos gerais da fasciolose e das endoparasitoses em capivaras (Hidrochaeris hidrochaeris - linnaeus, 1766) e ratóes de banhado (Myocastor coypus ? molina, 1782) residentes em três parques do...

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MAYSA MOTTA AGOSTINI NUNES EL-KOUBA

ASPECTOS GERAIS DA FASCIOLOSE E DAS ENDOPARASITOSES EM

CAPIVARAS (Hidrochaeris hidrochaeris - LINNAEUS, 1766) E RATÓES DE

BANHADO (Myocastor coypus – MOLINA, 1782) RESIDENTES EM TRÊS

PARQUES DO ESTADO DO PARANÁ.

Dissertação apresentada como requisito

parcial à obtenção do grau de Mestre em

Ciências Veterinárias, Curso de Pós-

Graduação em Ciências Veterinárias,

Setor de Ciências Agrárias, Universidade

Federal do Paraná.

Orientador: Prof. Dr. Waldir Hamann.

CURITIBA

2005

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Aos meus filhos, Tarik e João Paulo,

razão maior de tudo em minha vida.

iii

AGRADECIMENTOS

Antonio Carlos Agostini Pinto Nunes (em memória), meu pai, por seu

exemplo, incentivo, amor, dedicação, por minha vida, e por estar sempre

vivo em meu coração.

Eloina Motta Pinto Nunes, minha mãe, por seu amor e dedicação.

Charbel El-Kouba, marido e amigo, pela força, apoio, cumplicidade,

compreensão, por todos os momentos de ausência, pelo seu amor.

Simone Pereira Branco, minha “norinha”, pelo apoio, cumplicidade,

amizade, amor.

Gebrael Boulos El-Kouba, meu sogro, por ser a força que move e

mantém toda a família, mas, principalmente, por ter consentido em se tornar

meu segundo pai.

Luiza El-Kouba, minha sogra, pelo carinho e compreensão.

Sumaia El-Kouba Miguel, minha cunhada, pela amizade e apoio. Por

estar sempre presente quando eu estava ausente, e pela ajuda nesta tese

de mestrado.

Simone El-Kouba Dequêch, minha cunhada, pela amizade e apoio.

Professor Doutor Waldir Hamman, meu orientador, por estar comigo

nesta etapa tão importante de minha vida.

Professor Doutor Célso Pilati, pelo exemplo, incentivo, amizade, pelo

apoio em todos os momentos.

Professor Renato Silva de Sousa, que, mesmo estando em um país

distante, sempre esteve presente com seu incentivo e amizade.

Professor Rogério Ribas Lange, pelos valiosos conhecimentos em

animais silvestres, e por ter sugerido este tema para o projeto de mestrado.

Professora Doutora Vanete Thomas Soccol, por ser a referência

segura, por ter o dom de mostrar o caminho certo, de iluminar este caminho.

Professor Doutor Ennio Luz, pela orientação e inestimável auxilio com

a fascíola e com os caramujos.

Professora Daniela Pedrassani Rech, da Universidade do Contestado

– campus Canoinhas, pelo auxílio nas horas de dúvida.

Professor Éderson Luiz Matos Mota, pela correção do texto.

Universidade do Contestado – campus Canoinhas, por

disponibilizarem suas instalações e equipamentos.

Éster Benda Thien, técnica do Laboratório de Parasitologia da

Universidade do Contestado – campus Canoinhas, pelo auxilio e amizade.

Centro de Diagnóstico “Marcos Enrieti” (CDME), por disponibilizarem

suas instalações e equipamentos para a realização dos exames necessários

à conclusão desta tese de mestrado.

Ana Beatriz de Oliveira, chefe do CDME, pelo auxílio na identificação

dos ovos dos parasitos.

Marielza Pipper, do laboratório de parasitologia do CDME, pela

amizade, apoio, auxílio nos exames coproparasitológicos e, principalmente,

pelo exemplo que representa em determinação, disposição para ensinar e

aprender, superar obstáculos, e pelo companheirismo.

Arlei Macedo, do CDME, pelo auxílio na medição dos ovos de

Fasciola hepatica.

Maria José Botelho Maeda, secretária do CPGCV, da UFPR, pela

presteza e carinho em atender e ajudar.

Setor de Parques e Praças da Prefeitura Municipal de Curitiba – PR,

pelas autorizações para coleta de material no Parque Barigüí.

Zoológico Municipal de Curitiba, por permitir a coleta de fezes da

capivara.

SIX – Petrobrás, São Mateus do Sul, por permitir a visitação e coleta

de fezes das capivaras.

Capivaras e ratões do banhado, por serem o motivo principal desta

tese.

. Agradecimento Especial:

Professora Doutora Itaíra Susko, mestra, mentora, exemplo, amiga.

Pessoa sem a qual nada disto seria possível. Obrigada por fazer a diferença,

por transformar sonhos em realidade, por enriquecer minha vida.

SUMÁRIO

LISTA DE TABELAS ................................................................................. viii

LISTA DE QUADROS ................................................................................ viii

LISTA DE GRÁFICOS ............................................................................... viii

LISTA DE FIGURAS ................................................................................... ix

RESUMO ..................................................................................................... x

ABSTRACT ................................................................................................. xi

1.INTRODUÇÃO ......................................................................................... 01

2.REVISÃO DE LITERATURA .................................................................... 03

2.1.CARACTERÍSTICAS DOS ROEDORES ESTUDADOS ....................... 03

2.1.1.Hiydrochaeris hydrochaeris – Capivara .............................................. 03

2.1.2.Myocastor coypus – Ratão Do Banhado ............................................ 06

2.2.FASCIOLOSE ........................................................................................ 07

2.2.1.Epidemiologia ..................................................................................... 09

2.2.2.Patologia da Fasciolose Animal .......................................................... 13

2.2.3.Características do Trematoda e seu Ciclo .......................................... 14

2.2.3.1.Fasciola hepatica (Linnaeus, 1758) ................................................. 14

2.2.4.Hospedeiro Invertebrado da Fasciola hepatica .................................. 16

2.2.5.Histórico da Fasciolose ....................................................................... 17

2.2.6.Fasciolose Humana ............................................................................ 19

2.2.7.Fasciolose em Animais Silvestres ...................................................... 21

2.2.8.Diagnóstico Clínico e Laboratorial da Fasciolose ............................... 24

2.2.8.1.Determinação de Enzimas no Sangue ............................................ 25

2.2.8.2.Provas Imunológicas ....................................................................... 25

2.2.8.3.Exame Coprológico ......................................................................... 25

2.2.8.4.Necropsia ......................................................................................... 26

2.2.9.Controle e Profilaxia ........................................................................... 26

3.MATERIAL E MÉTODOS ......................................................................... 29

3.1.POPULAÇÕES ESTUDADAS .............................................................. 29

3.1.1.Capivaras e Ratões do Banhado do Parque Barigüí – Curitiba ..........29

3.1.2.Capivara do Zoológico Municipal de Curitiba ..................................... 30

3.1.3.Capivaras do Projeto Lago Sul ........................................................... 31

3.2.COLETA E CONSERVAÇÃO DAS FEZES ........................................... 32

3.2.1.Coleta no Parque Barigüí ................................................................... 32

3.2.2.Coleta no Projeto Lago Sul, São Mateus do Sul ................................ 32

3.2.3.Coleta no Zoológico Municipal de Curitiba ......................................... 32

3.3.EXAMES COPROPARASITOLÓGICOS ............................................... 33

3.4.DIMENSIONAMENTO DOS OVOS DE Fasciola hepatica .................... 33

3.5.COLETA DOS MOLUSCOS ...... ........................................................... 34

vii

3.6.AVALIAÇÃO HISTOPATOLÓGICA DE LESÃO

HEPÁTICA PRODUZIDA POR Fasciola hepatica ................................. 35

4.RESULTADOS ......................................................................................... 36

4.1.INFECÇÃO PARASITÁRIA EM CAPIVARAS E RATÕES

DO BANHADO DO PARQUE BARIGÜÍ, CURITIBA ........................... 36

4.2.INFECÇÃO PARASITÁRIA EM CAPIVARAS DO PROJETO

LAGO SUL – SIX – PETROBRÁS –SÃO MATEUS DO SUL ................ 38

4.3.INFECÇÃO PARASITÁRIA NA CAPIVARA DO ZOOLÓGICO

MUNICIPAL DE CURITIBA ................................................................... 39

4.4.DIMENSIONAMENTO DOS OVOS ....................................................... 39

4.5.COLETA E IDENTIFICAÇÃO DOS MOLUSCOS .................................. 39

4.6.AVALIAÇÃO HISTOPATOLÓGICA DE LESÃO HEPÁTICA

PROVOCADA POR Fasciola hepatica .......................................... 41

5. DISCUSSÃO ........................................................................................... 43

6.CONCLUSÕES ........................................................................................ 52

7.REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS ........................................................ 53

8.APÊNDICES ............................................................................................. 59

9.ANEXOS ................................................................................................... 68

viii

LISTA DE TABELAS

TABELA 01 – COLETA DE MOLUSCOS NO PARQUE BARIGÜÍ –

CURITIBA ............................................................................. 40

TABELA 02 – EFEITO DE ANTIHELMÍNTICOS (%) E ESPECTRO

DE AÇÃO CONTRA DIFERENTES FASES DA

Fasciola hepatica ................................................................. 51

LISTA DE QUADROS

QUADRO 01 – ESCALA MICRONOMÉTRICA – MICROSCÓPIO ZEISS .. 33

LISTA DE GRÁFICOS

GRÁFICO 01 – PORCENTAGEM DE UM TOTAL DE 18 AMOSTRAS

FECAIS DE CAPIVARAS DO PARQUE BARIGÜÍ,

CURITIBA, APRESENTANDO OVOS DE Fasciola

hepatica, OOCISTOS DE EIMERIÍDAE, E OVOS DE

ASCARÍDAE ........................................................................ 36

GRÁFICO 02 – PORCENTAGEM DE UM TOTAL DE 16 AMOSTRAS

FECAIS DE RATÕES DO BANHADO DO PARQUE

BARIGÜÍ, CURITIBA, APRESENTANDO OVOS DE

CESTODA, OVOS DE Fasciola hepatica, OVOS DE

CAPILARIIDAE, OOCISTOS DE EIMERIIDAE, OVOS DE

STRONGYLIDAE, OVOS DE ÁCAROS E OVOS DE

TRICHOSTRONGYLIDAE ................................................. 37

GRÁFICO 03 – PORCENTAGEM DE UM TOTAL DE 14 AMOSTRAS

FECAIS DE CAPIVARAS DO PROJETO LAGO SUL,

SÃO MATEUS DO SUL, APRESENTANDO OOCISTOS

DE EIMERIIDAE, OVOS DE CESTODA, OVOS DE

TRICHOSTRONGYLIDAE, OVOS DE CAPILARIIDAE E

OVOS DE Fasciola hepatica .............................................. 38

LISTA DE FIGURAS

FIGURA 01 – CAPIVARA DO PARQUE BARIGÜÍ – CURITIBA – PR ....... 01

FIGURA 02 – CAPIVARA DO PARQUE BARIGÜÍ – CURITIBA – PR ....... 03

FIGURA 03 – RATÃO DO BANHADO ........................................................ 06

FIGURA 04 – CICLO BIOLÓGICO DA Fasciola hepatica .......................... 12

FIGURA 05 – Fasciola hepatica ................................................................. 14

FIGURA 06 – Lymnaea sp .......................................................................... 16

FIGURA 07 – CAPIVARA DO PARQUE BARIGÜÍ – CURITIBA – PR ....... 29

FIGURA 08 – CAPIVARA E RATÃO DO BANHADO – PARQUE

BARIGÜÍ - CURITIBA – PR.................................................. 30

FIGURA 09 – CAPIVARA DO ZOOLÓGICO MUNICIPAL DE CURITIBA

– PR ..................................................................................... 30

FIGURA 10 – CAPIVARA DO “GRUPO 1” DO PROJETO

LAGO SUL– SIX – PETROBRÁS ........................................... 31

FIGURA 11 – CAPIVARA DO “GRUPO 2” DO PROJETO LAGO –

SUL SIX – PETROBRÁS ...................................................... 31

FIGURA 12 – OVOS DE Fasciola hepatica OBSERVADOS EM

MICROSCÓPIO ZEISS, PARA TOMADA DE

MEDIDAS ............................................................................ 34

FIGURA 13 – Physa marmorata COLETADA NO PARQUE BARIGÜÍ ...... 40

FIGURA 14 – Biomphalaria tenagophyla COLETADA NO PARQUE

BARIGÜÍ .............................................................................. 41

FIGURA 15 – LESÃO DECORRENTE DA MIGRAÇÃO DA

Fasciola hepatica, EM FÍGADO DE CAPIVARA

DO PARQUE BARIGÜÍ,COM INTENSA EXSUDAÇÃO

CENTRAL, CIRCUNDADA POR TECIDO FIBROSO, ......... 42

FIGURA 16 – LESÃO EM FÍGADO DE CAPIVARA DO PARQUE

BARIGÜÍ, COM INTENSA HIPERPLASIA DE

DUCTOS BILIARES COM INFILTRADO

INFLAMATÓRIO .................................................................. 42

FIGURA 17 – CONCEITO DE CONTROLE INTEGRADO ......................... 51

RESUMO

A fasciolose é uma parasitose de distribuição mundial, causada pelo

trematoda Fasciola hepatica, que afeta principalmente ruminantes: bovinos e

ovinos, e tem sido encontrada acometendo diversas outras espécies,

inclusive o homem. Animais silvestres também são suscetíveis à fasciolose,

podendo, inclusive, funcionar como reservatórios e disseminadores. Foram

realizados exames coproparasitológicos em capivaras do Projeto Lago Sul –

SIX – Petrobrás, São Mateus do Sul, Paraná, e na única capivara residente

no Zoológico Municipal de Curitiba, Paraná, que resultaram negativos para

ovos de Fasciola hepatica. Nas capivaras do Parque Barigüí, Curitiba,

Paraná, entretanto, de 18 amostras coletadas, em diversas épocas do ano

de 2004, 100% resultaram positivas para ovos de Fasciola hepatica, quando

utilizado o método de Sedimentação Simples. As mesmas amostras foram

submetidas ao método dos Quatro Tamises, específico para pesquisa de

ovos de Fasciola hepatica, encontrando-se uma positividade de 83,33%. No

mesmo parque, coletaram-se fezes de ratão do banhado (Myocastor coypus)

que, examinadas pelos mesmos métodos, apresentaram uma positividade

de 56,25%. Os moluscos encontrados foram: Physa columella, Physa

marmorata e Biomphalaria sp, não tendo sido encontrados exemplares do

gênero Lymnaea, o que não descarta a possibilidade da fasciolose no

referido parque, significando, sim, que a infecção nestes animais é mais

antiga, e que, provavelmente, os filhotes da última ninhada estão livres da

fasciolose, pelo menos enquanto os Lymnaea não repovoarem a área, o que

pode ocorrer se diminuírem os níveis de poluição das águas do Parque

Barigüí, sob condições climáticas favoráveis. A releitura de lâminas de uma

capivara, fêmea, adulta, morta no Parque Barigüí em 2002, e diagnosticada

com fasciolose, encontrou lesões microscópicas semelhantes às

encontradas em bovinos e ovinos. O tratamento com fasciolicidas de última

geração, que atuam tanto sobre formas adultas como jovens do parasito, é

viável para capivaras. No caso dos ratões de banhado, requer um manejo

mais elaborado. O controle da fasciolose no Parque Barigüí, agora que os

Lymnaea não estão presentes, se resumiria a um adequado protocolo de

tratamento dos animais.

PALAVRAS-CHAVE – Capivara, Fasciola hepatica, disseminação, controle,

tratamento.

ABSTRACT

Fasciolosis is a world widespread parasitosis, caused by the trematoda

Fasciola hepatica, which affects mainly ruminants: bovine and sheep, and

has been found in different species of animals, including men. Wild animals

are also fasciolosis susceptible, and could be reservoir and disseminators of

this disease. There were performed coproparasitologic tests of Projeto Lago

Sul’s capivaras, from “São Mateus do Sul”, “Paraná”, and of the only

capivara who lives in the “Zoológico Municipal de Curitiba”, “Paraná”, that

result negative for Fasciola hepatica’s eggs. However, for the capivara of

“Parque Barigüí”, “Paraná”, from the eighteen samples of faeces collected in

different seasons of 2004, 100% were positive for Fasciola hepatica’s eggs,

when tested under the “Método de Sedimentação Simples”. These samples

were also tested under the “Método dos Quatro Tamises” where 83,33% of

them were positive. In the same park, were collected ratão-do-banhado’s

faeces that, tested under the same methods, were 56,25% positive for

Fasciola hepatica’s eggs. The mollusks found in “Parque Barigüí” were:

Physa columella, Physa marmorata and Biomphalaria sp. Lymnaea

specimens were not found, what doesn’t mean that there is no fasciolosis in

the local, meaning, however, that these animals infection is older, and the

younger animals could be fasciolosis free, whereas the Lymnaea don’t

repopulate the area, what could happens if the park’s waters condition

improves and the weather be favorable. An adult, female, capivara’s

histopathological test were reviewed and the microscopic findings were

compatible with the ones that are usually find on bovine’s and sheep’s tests.

The treatment, with the newest fasciolicidas generation, which acts on young

and adult fascíolas, can be viable for capivaras. The control, while the

Lymnaea is not present, would simply be done with a fine fasciolicide

protocol.

Key words: Capivara, Fasciola hepatica, dissemination, control, treatment.

xii

xiii

1 - INTRODUÇÃO

A Parasitologia Veterinária engloba um vasto campo das ciências

biológicas, não se limitando unicamente ao estudo das doenças nos animais

domésticos, porém estendendo-se aos demais aspectos biológicos do

parasitismo, que envolvem o agente, seu ciclo e hospedeiro, bem como ao

estudo das zoonoses parasitárias, e de suas conseqüências na população

humana (HATSCHBACH, 1995).

Dentre as parasitoses consideradas zoonoses, a fasciolose encontra-

se muito bem estudada e conhecida em ruminantes (bovinos e ovinos),

porém muito pouco registrada em animais silvestres.

As capivaras e ratões do banhado são roedores silvestres de hábitos

semi- aquáticos suscetíveis a esta parasitose. Isto foi determinado após

exames parasitológicos realizados em amostras fecais colhidas em parques

de Curitiba, Paraná, as quais apresentaram-se positivas para ovos de

Fasciola hepatica.

Figura 01 – Capivara do Parque Barigüí – Curitiba – PR

A importância de estudar a fasciolose, neste grupo de animais

silvestres, vai além do interesse puramente acadêmico. Como estes animais

dispersam-se em diferentes grupos, por posse territorial, e viajam sempre

perto de cursos d’água, podem funcionar como disseminadores da

fasciolose em outras regiões. A importância se magnífica, caso, também,

pensarmos na fasciolose como uma zoonose em potencial.

Curitiba se orgulha de ser uma das cidades brasileiras com melhor

qualidade de vida. Seus parques, muito bem projetados e conservados, são

um grande atrativo para as pessoas que procuram um maior contato com a

natureza. Um local para relaxar, fazer caminhadas, levar seus filhos para

brincar, sentar à beira de um lago e esquecer da vida por alguns momentos.

No entanto, grupos de capivaras e ratões de banhado residem,

também, nesses parques, à margem do rio, no lago por ele formado, no

Parque Barigüí, e nas cavas do Parque Iguaçu.

Por ser esta uma comunidade de animais silvestres, que estão em

estreito convívio com seres humanos, a coleta de dados a respeito do nível

de infecção endoparasitária destes animais auxiliará na compreensão destas

parasitoses e sua dinâmica nestes animais. O controle das mesmas entre

seus indivíduos, visando sua sanidade e, conseqüentemente, a segurança

dos freqüentadores dos parques em questão será de suma importância e

exigirá metodologias de dosificação e aplicação de antiparasitários que

resultem em sua rápida descontaminação com o mínimo de stress.

2 - REVISÃO DE LITERATURA

2.1 – Características dos roedores estudados.

A ordem Rodentia é a mais extensa entre os mamíferos. Acima de

um terço entre todos os gêneros e mais da metade dos mamíferos a ela

pertencem (FOWLER, 1986).

Algumas espécies de roedores foram muito bem estudadas. Os

ratos (Rattus rattus), ratazanas (Rattus novergicus), camundongos (Mus

musculus), cobaios (Cavia porcellus) e os hamsters (Mesocricetus auratus)

são algumas destas, por serem espécies largamente utilizadas em

pesquisas científicas. Por razões econômicas, considerável número de

informações têm sido acumuladas sobre roedores criados para exploração

de peles, como castores (Castor canadensis), chinchilas (Chinchilla laniger),

e ratões do banhado ou nutrias (Myocastor coypus). No entanto, como

animais de exibição em zoológicos, os roedores têm recebido pouca

atenção. Geralmente, a maioria dos roedores é notívaga e,

conseqüentemente, vista com menor interesse por freqüentadores,

trabalhadores e administradores de zoológicos. Tais fatos resultam em

pouca informação publicada a respeito de certas espécies silvestres

(FOWLER, 1986).

2.1.1 - Hydrochaeris hydrochaeris (Linnaeus, 1766) – Capivara

Figura 02 – Capivara do Parque Barigüí – Curitiba, Paraná.

Classificação Taxonômica (The Encyclopaedia of Mammals, 1993).

Reino – Animalia

Filo – Chordata

Classe – Mammalia

Ordem – Rodentia

Sub-ordem – Hystricognathi

Família – Hydrochaeridae

Gênero – Hydrochaeris

Espécie – Hydrochaeris hidrochaeris

A capivara (Figura 02) é considerada o maior roedor do mundo. Com

peso variando de 30 a 70 Kg, sendo que, segundo OJASTI, 1993, os pesos

máximos observados foram de animais com 65 kg, na Venezuela; 73 kg, no

Uruguai, e 91 kg, no Brasil. Com 100 a 130 cm de comprimento e altura de

50 cm. Sendo as fêmeas maiores que os machos. Não possuem cauda, e

seu pêlo é longo, áspero e grosseiro. Apresentam coloração que vai de

marrom avermelhada à acinzentada, geralmente marrom amarelada na base

dos pêlos. Os membros são curtos, as orelhas são curtas e arredondadas, e

o focinho é pesado e forte. Os dedos são ligados por membranas natatórias,

possuindo fortes unhas. Os machos possuem uma pronunciada glândula

odorífera no topo do focinho (MONES & OJASTI, 1986).

Estes roedores gigantes são herbívoros. Selecionam forrageiras de

alto valor nutritivo, usando seus incisivos para apreensão. Aumentam a

absorção de nutrientes da alimentação, ampliando a eficiência de sua

digestão, que envolve mastigação intensiva e fermentação intestinal

(NOWAK & PARADISO, 1983).

Podem se reproduzir em qualquer época do ano, mas o fazem mais

freqüentemente na entrada da estação das chuvas. A gestação é de

aproximadamente 150 dias, e a fêmea tem, geralmente, de um a quatro

filhotes por ano. O peso médio dos filhotes ao nascer é de 1,5 Kg, e são

muito precoces – seus olhos estão abertos, são totalmente cobertos por

pêlos e têm a dentição completa. Podem seguir a mãe e se alimentar de

forrageiras pouco tempo após o nascimento. Apesar de se alimentarem de

forrageiras precocemente, são amamentados até aproximadamente quatro

meses de idade. A maturidade sexual se dá aos 15 meses, e a expectativa

de vida, na natureza, é de 10 anos (The Encyclopaedia of Mammals, 1993).

São animas sociais, vivendo em grupos de cinco a 14 indivíduos.

Estas unidades consistem de um macho dominante, várias fêmeas adultas

(com sua própria hierarquia de dominância), suas crias, e machos

subordinados na periferia do grupo. Os machos que não possuem seu

próprio grupo familiar podem viver solitários. Os grupos tendem a ser

maiores em áreas mais áridas, e durante estiagens centenas de indivíduos

podem se agregar em torno a água remanescente. Aparentemente se

comunicam por assobios e estalidos. São mais ativas pela manhã e ao

anoitecer. Durante as horas mais quentes do dia, espojam-se em áreas

úmidas, à sombra. Se perseguida ou assustada em terra firme, a capivara

procurará abrigo na água. Semiaquáticas, são excelentes nadadoras.

Podem nadar somente com os olhos, orelhas e narinas fora d’água (pela

conformação de sua cabeça), ou totalmente submersas. Podem, também,

esconder-se na vegetação aquática, deixando somente as narinas fora

d’água (NOWAK & PARADISO, 1983). Vivem entre a densa vegetação que

circunda lagos, rios, tanques, lagoas e pântanos. Usam a água como abrigo

do perigo, mas descansam em terra seca.

Essa espécie tem sido criada comercialmente por sua carne e couro,

e sua gordura é utilizada em farmacêutica. Grupos selvagens são, em

algumas áreas, considerados pragas, como em plantações de cana de

açúcar e milho. Podem competir por alimento com o gado e outros animais

domésticos em épocas de seca (MONES & OJASTI, 1986).

A caça indiscriminada tem causado redução na população de

capivaras em alguns países, mas, na maioria das áreas, as populações são

estáveis. Tendem a proliferar em áreas de criação de gado, onde estão

relativamente a salvo de predadores e a pastagem é periodicamente

melhorada. A criação comercial, em fazendas especializadas, apresenta

também um benefício ecológico, pois implica na preservação de áreas

alagadiças, impróprias para a criação de gado, que sempre exige sua

drenagem.

2.1.2 – Myocastor coypus (Molina, 1782) – Ratão do Banhado

Figura 03 – Ratão do Banhado – Fonte: www.saudeanimal.com.br

Classificação taxonômica (The Encyclopaedia of Mammals, 1993):

Reino – Animalia

Filo – Chordata

Classe – Mammalia

Ordem – Hystricognatha

Sub-ordem – Hytricognathi

Família – Echimyidae

Gênero – Myocastor

Espécie – Myocastor coypus

O Ratão–do-Banhado (Figura 03) é nativo da América do Sul,

distribuindo-se desde a Bolívia, sul do Brasil, até a Terra do Fogo. Tentativas

de criações comerciais tiveram como resultado fugas de fazendas de criação

para exploração de seus couros e peles, e, como conseqüência disso, hoje

em dia ocorrem populações desses animais em liberdade, na Europa, Ásia e

América do Norte (WOODS et al., 1992).

Habitam pântanos, margens de lagos e rios, especialmente onde se

encontra vegetação em abundância (NOWAK, 1991).

Esse roedor realmente se parece com um grande e robusto rato.

Seu corpo é arqueado e a cabeça larga e triangular. As orelhas e olhos são

pequenos e localizados na parte superior da cabeça. Os dentes incisivos são

largos, de coloração alaranjada na face anterior. Os pés são bem mais

longos que as mãos, e contêm cinco dígitos, sendo quatro deles conectados

por membrana e o quinto, livre. As mãos têm quatro dígitos longos, flexíveis

e livres. A cauda é longa e arredondada. Possui uma pelagem longa que

varia de marrom-amarelada à marrom-avermelhada e sob esta, uma

pelagem mais macia e densa de coloração acinzentada. As bochechas são

cobertas por pelos brancos e a cauda possui pelagem rala. Os machos são,

geralmente, maiores que as fêmeas (GOSLING, 1977; NOWAK, 1991;

WOODS et al., 1992).

O Ratão-do-Banhado é poliéstrico, apresentando uma gestação

longa, variando de 127 a 139 dias. As ninhadas variam de três a seis

filhotes, podendo, no entanto, variar de um a treze. Alcançam maturidade

sexual muito jovens, aos seis meses de idade. Os filhotes nascem

completamente cobertos de pelos e com os olhos abertos. O período de

lactação é de aproximadamente oito semanas (GOSLING, 1981; GOSLING

& BAKER, 1981; WOODS et al., 1992).

É semiaquático, podendo permanecer submersos por mais de dez

minutos. São mais ativos à noite, e utilizam este período para alimentação,

higiene e natação. Constroem abrigos, que podem ser simples túneis ou um

complexo sistema contendo passagens e câmaras, que se estende por 15

metros ou mais. São altamente gregários: os grupos consistem,

normalmente, de dois a 13 animais, composto por fêmeas adultas e suas

crias, e um macho dominante. Jovens machos adultos, ocasionalmente,

vivem solitários (NOWAK, 1991; DONCASTER & MICOL, 1989; WOODS et

al., 1992).

São herbívoros, e sua dieta consiste de vegetação aquática. Podem

utilizar pedaços de madeira ou outros objetos flutuantes como plataformas

de alimentação (WOODS et al., 1992).

2.2 – Fasciolose

A fasciolose é uma enfermidade comum de ovinos, caprinos e

bovinos em muitas partes do mundo. As taxas de morbidade e mortalidade

variam de região a região, e em áreas endêmicas não é raro encontrar taxas

de infecção superiores a 50%. As perdas ocasionadas pela fasciolose, assim

como devido a outras enfermidades crônicas, são difíceis de calcular.

Segundo estimativas, a eficiência produtiva dos bovinos diminui em

aproximadamente 8% em infecções leves, podendo chegar a 20% ou mais

em infecções graves. Em ovinos, as perdas na produção de lã podem variar

de 20 a 39%. As perdas, de uma maneira geral, se devem a descarte de

fígados, diminuição no desenvolvimento corporal, e redução da produção de

lã, leite e carne (ACHA & SZYFRES,1986).

Em ensaio realizado na Austrália, foram infectados

experimentalmente, por via oral, cordeiros, com diferentes doses de

metacercárias. Mediante procedimentos de análise de regressão, foram

avaliados os danos ocasionados pela parasitose aos seis meses da

infecção. Em todos os grupos parasitados, comprovou-se um retardo no

crescimento, redução de peso e diminuição do crescimento da lã. Também

foi observada uma redução na eficiência da conversão alimentar (HAWKINS

& MORRIS, 1978).

Segundo BIAGI, 1974, pode-se distinguir duas formas clínicas da

fasciolose: uma aguda e uma crônica.

A forma aguda se apresenta, sobretudo, em ovinos jovens e se deve

à ingestão de um grande número de metacercárias (>10.000), com a

conseqüente invasão repentina e migração de inúmeras formas jovens pelo

parênquima hepático. Os parasitos migratórios, no órgão alvo, causam

hemorragias, hematomas e rupturas teciduais, inflamação da glândula, com

necrose e destruição do tecido hepático. Os ovinos afetados podem morrer

subitamente sem manifestações clínicas, ou estas podem se manifestar um

a dois dias antes da morte, com debilidade, inapetência e dor à palpação na

região hepática. Em casos menos agudos, pode haver perda de peso e

ascite. Também são freqüentes dados hematológicos de eosinofilia, anemia,

hipoalbuminemia e um alto nível de transaminase glutâmica oxalacética. Os

bovinos raramente sofrem desta forma aguda (BIAGI, 1974).

A forma crônica é de evolução lenta, e se caracteriza por perda de

peso, emaciação, edema sub mandibular, anemia, debilidade, diarréia e

ascite. A sintomatologia depende do número de parasitos presentes no

fígado dos animais infectados. Os ovinos que albergam um número

moderado de fascíolas denotam, a princípio, inapetência, pouco aumento de

peso e anemia progressiva. O estado dos animais piora em épocas de

escassez de pasto e melhora, quando estes melhoram, mas os animais não

se curam e a parasitose tem efeito cumulativo através dos anos. Na

sintomatologia, se incluem: colangite, estase biliar, destruição e fibrose do

tecido hepático. A anemia e a eosinofilia são persistentes. Os bovinos são

mais resistentes que os ovinos e podem suportar uma maior carga

parasitária sem manifestações clínicas importantes. Os bovinos jovens são

mais suscetíveis que os adultos (BIAGI, 1974).

2.2.1 – Epidemiologia

A ecologia da fasciolose está estreitamente ligada à dos moluscos

que lhe servem de hospedeiros intermediários. As características

geográficas, a composição do solo e os fatores climáticos determinam o

ritmo da reprodução dos moluscos do gênero Lymnaea e, por conseguinte, a

dinâmica epidemiológica. Os Lymnaea e as formas imaturas da fascíola

podem ser encontrados em pastagens nas mais diversas partes do mundo,

desde aquelas situadas ao nível do mar até aquelas situadas em vales

andinos a mais de 3700 m de altitude. Do ponto de vista ecológico, os

habitats dos Lymnaea podem dividir-se em dois grandes grupos: os

denominados de focos primários (reservatórios) e aqueles denominados de

áreas de disseminação. Os focos primários são locais permanentemente

úmidos, como rios de pouco curso, lagos, canais, áreas de campos

alagados, onde os moluscos se reproduzem de modo constante. Nestes

locais, a população de moluscos se mantém uniforme, em nível quase

sempre baixo. As áreas de disseminação são aquelas onde se alternam

inundações e secas, e são de especial interesse epidemiológico. São

ambientes de disseminação dos focos primários originais, e contêm grandes

concentrações de Lymnaea. Os moluscos podem proceder diretamente dos

focos primários, levados pelas águas de enchentes, ou procederem da

reativação dos moluscos que ficaram em latência durante os períodos de

seca. As chuvas (ou a irrigação), depois de um período seco, criam

condições favoráveis nestes campos para a reprodução dos mesmos. Os

habitats temporários ou de extensão são as pastagens alagadas, e estas

constituem áreas enzoóticas onde ocorrem surtos graves de fasciolose

animal. Os surtos de fasciolose aguda são raros no inverno em climas

temperados, mas podem ocorrer depois que as chuvas de fins de verão e

outono sucedem a um período seco. Pelo efeito da umidade e temperatura,

um grande número de cercárias abandona os moluscos e se encista sobre a

superfície dos vegetais que compõe as pastagens. Nestas condições, os

animais herbívoros podem se infectar com um grande número de

metacercárias e, aproximadamente de seis a oito semanas após, sofrer a

forma aguda da parasitose. A fasciolose crônica ocorre mais tarde, a partir

de fins do outono. Em anos chuvosos, pode haver metacercárias em

grandes extensões das pastagens.(ACHA & SZYFRES, 1986).

A ecologia do molusco também não é sempre uniforme. MAURE et al.

estudaram a dinâmica populacional do molusco Limnaea columella por um

período de seis anos na pastagem em fazendas de exploração leiteira

infectadas por Fasciola hepatica. A pesquisa foi desenvolvida nos municípios

de Piquete e Redenção da Serra, São Paulo. Os resultados obtidos foram

diferentes em cada fazenda, revelando que a dinâmica da população de

moluscos está estreitamente relacionada a fatores ecológicos e climáticos.

No município de Piquete, o aumento da variação da densidade populacional

flutuou em relação inversa à temperatura e à pluviosidade, encontrando

maior número de moluscos no período seco do ano (maio-outubro). No

município de Redenção da Serra, a grande quantidade de matéria orgânica

observada no biótopo foi responsável pela captura do maior número de

moluscos no período de altas temperaturas e alta densidade pluviométrica

(janeiro-março).

O hospedeiro definitivo mais importante desta parasitose é o ovino.

Segundo estimativas, um ovino que padece de uma infecção sub-clinica leve

pode contaminar diariamente o campo com mais de meio milhão de ovos, e,

em casos de infecção moderada, com 2,5 a três milhões de ovos por dia. O

bovino segue, em importância, ao ovino, mas a produção de ovos de

F.hepatica declina com rapidez. Muitas outras espécies de herbívoros

domésticos e silvestres, entre eles os lagomorfos, podem servir como

hospedeiros definitivos. De acordo com estudos realizados na Austrália,

alguns destes animais se limitam a representarem o papel de hospedeiros

temporários e, por esta razão, não mantêm o ciclo por muito tempo; tal seria

o caso dos coelhos silvestres, que contaminam as pastagens de modo

insignificante (BORAY, 1969).

O homem se infecta, sobretudo, pela ingestão de saladas de agrião

(Nasturtium officinale) que contêm metacercárias aderidas à superfície da

planta. Em certas ocasiões, podem servir como fonte de infecção humana a

alface e outras plantas contaminadas quando consumidas cruas, a água de

canais de irrigação e de outros receptáculos onde existam metacercárias

(FAIGUENBAUN et al., 1962).

Figura 04 – Ciclo Biológico da Fasciola hepatica. Adaptado do site

www.dpd.cpc.gov

2.2.2 - Patologia da fasciolose animal

et al., 2001;

CARLTO

Na fase aguda da doença em ovinos, o fígado pode apresentar-se

dilatado, com a cápsula espessada, coberto de exsudato fibrinoso e com o

lobo ventral hemorrágico. Há líquido sanguinolento na cavidade abdominal.

Ao corte, o parênquima hepático apresenta focos hemorrágicos difusos e

presença de formas jovens de Fasciola hepatica. A migração dos

trematódeos imaturos pelo tecido hepático produz trajetos hemorrágicos

formados por parênquima hepático necrótico. Tais trajetos são

macroscopicamente visíveis e vermelho-escuros. No entanto, com o passar

do tempo, tornam-se mais pálidos que o parênquima circunjacente. A

resolução freqüentemente ocorre por fibrose tecidual reparativa. Essas

migrações podem causar várias seqüelas, incluindo peritonite aguda,

abscessos hepáticos, proliferação de esporos de Clostridium haemolyticum

ou C.novyi tipo B no tecido necrótico com subseqüente desenvolvimento de

hemoglobinúria bacilar ou hepatite infecciosa necrosante, respectivamente.

Pode ocorrer, também, morte do hospedeiro em conseqüência de necrose

hepática aguda disseminada, causada pela migração de grande número de

trematódeos imaturos, em casos de infestações massivas. Na fase crônica,

o fígado apresenta-se pálido, com o lobo ventral reduzido de tamanho.

Trematódeos adultos habitam os grandes ductos biliares e causam colangite

e colangio-hepatite. A colangite crônica e a obstrução dos ductos biliares

levam à ectasia e estenose dos ductos e à fibrose periductal que espessa as

paredes dos ductos, tornando-os progressivamente conspícuos. A bile no

interior dos ductos distendidos é marrom. A obstrução dos ductos biliares

leva à colestase extra-hepática. Animais com fasciolose crônica

freqüentemente apresentam mau estado nutricional. As lesões histológicas

caracterizam-se por hepatite hemorrágica na fase aguda e colangite

hiperplásica e fibrose na fase crônica (RIET-CORREA

N & McGAVIN, 1998).

BORDIN (1995), descreve, no parênquima hepático, lesões

migratórias agudas, que tendem a ser traumáticas, apresentando também

um componente necrótico coagulativo importante. Mais comumente,

observam-se áreas sinuosas migratórias, as quais macroscopicamente

aparecem na forma de focos hemorrágicos de 2-3 mm de diâmetro.

Microscopicamente, estes túneis mostram hepatócitos degenerados e

preenchidos com sangue e detritos, além de pigmentos sangüíneos e

eosinófilos. Histologicamente, a forma crônica da fasciolose corresponde à

colangite ulcerativa, com exuberância fibrosa no nível das paredes dos

ductos.

para o pulmão, formando abscessos é comum (RIET-CORREA et al., 2001).

.2.3 – Características do Trematoda e seu Ciclo.

2.2.3.1 - Fasciola hepatica (Linnaeus, 1758)

Observam-se também, infiltrados mono e polimorfonucleares.

Em bovinos, a patologia é semelhante a de ovinos, porém o

engrossamento com calcificação dos ductos biliares e dilatação da vesícula

biliar são as lesões mais características. A migração errática do parasito

Figura 05 – Fasciola hepatica – Fonte: www.bioweb.uwlax.edu

Pertencente ao Filo Platyhelminthes, é o trematoda digenético dos

ductos biliares de herbívoros domésticos e silvestres, podendo

ocasionalmente ter como hospedeiro acidental o homem (Figura 05). É um

parasito de distribuição mundial, achatado, medindo de 2,5 a três cm de

comprimento por 1,3 cm de largura, de coloração pardacenta, de forma

similar a uma folha. Os parasitos adultos põem ovos não embrionados,

medindo de 130 a 145 μm de comprimento por 70 a 90 μm de largura, que

são levados pela bile ao intestino e eliminados com as fezes. Para sua

maturação, os ovos devem encontrar condições adequadas de umidade e

temperatura. No verão, a incubação é curta, e o miracídio (larva) emerge do

ovo em poucas semanas (10 a 12 dias à temperatura de 26

)

(NAHM, 1996),

enquanto que a baixas temperaturas, no inverno de regiões temperadas, a

eclosão pode demorar meses. Os ovos são resistentes a fatores ambientais,

e podem sobreviver em material fecal por cerca de um ano. Os miracídios,

por outro lado, são muito frágeis, e devem encontrar um hospedeiro

apropriado em aproximadamente oito horas (ACHA & SZYFRES, 1986). Os

hospedeiros intermediários são os moluscos anfíbios da família Lymnaeidae.

Na América do Sul, são encontradas as espécies L.viator (L.viatrix) e

L.diaphana. Ao penetrar no molusco, o miracídio se converte em esporocisto

e, em cerca de três semanas, produz rédias, que por sua vez podem gerar

rédias filhas (Segunda geração de rédias), ou diretamente cercárias. Se a

temperatura é favorável, as cercárias começam a emergir dos caracóis em

cerca de seis semanas. A menos de 10

C, os estadios larvais podem

sobreviver dentro dos caracóis por pelo menos 100 dias sem completar seu

desenvolvimento, para retomá-lo quando as condições forem mais

favoráveis (ACHA & SZYFRES, 1986).

As cercárias, ao abandonar o molusco, nadam ativamente e se

encistam sobre a superfície da vegetação, onde se transformam em

metacercárias, caracterizadas por sua ampla margem de sobrevivência em

ambientes úmidos e escassa resistência à dessecação. Já foi comprovado

que as cercárias têm preferência por encistar-se em certo tipo de plantas

para formar as metacercárias. Também podem se encistar na superfície da

água, encerrando em si pequenas bolhas de ar que lhe permitem a

flutuação. Os hospedeiros definitivos se infectam ao ingerir as plantas ou

água com metacercárias. No duodeno, as larvas se liberam de seus

envoltórios, atravessam a parede intestinal até a cavidade abdominal,

perfuram a cápsula do fígado e, através do parênquima hepático chegam

aos ductos biliares, onde ocorre a maturação. O período pré-patente (da

infecção até a aparição dos ovos nas fezes do hospedeiro) dura

aproximadamente dois meses, porém, nem todas as fascíolas jovens

alcançam a maturidade ao mesmo tempo, e o processo de maturação pode

se prolongar (SOULSBY, 1982). O ciclo se reinicia com a oviposição (Figura

04). A F.hepatica pode viver nos canais biliares por vários anos (ACHA &

SZYFRES, 1986).

.2.4 - Hospedeiro Invertebrado da Fasciola hepatica

Figura 06 – Lymnaea sp – Fonte: www.bioweb.uwlax.edu

ordem

Basomm

O hospedeiro invertebrado da Fasciola hepatica pertence ao filo

Mollusca, classe Gastropoda, ordem Pulmonata, sub

atophora, família Lymnaeidae, gênero Lymnaea (Figura 06).

Os pulmonados são hermafroditas e apresentam concha desprovida

de opérculo. Os basomorfos têm um par de tentáculos muito móveis, não

retráteis; olhos sésseis são exclusivamente aquáticos (dulcícolas) ou

anfíbios. Os indivíduos da família Lymnaeidae possuem conchas

acuminadas, porém com enrolamento dextrógiro; aberturas anogenitais do

lado direito; tentáculos curtos e triangulares e dente central da rádula com

uma só cúspide, diferindo dos Physidae que apresentam conchas

helicoidais, sinistrógiras, aberturas anal e genital esquerda, tentáculos

cilíndric

a, São Paulo, Rio

de Jane

ranaense, e, mais recentemente, QUEIROZ & LUZ (2000)

registraram sua ocorrência nos municípios de Bocaiúva do Sul e Tunas do

Paraná.

e hepática bovina no Peru, e Tagle, em 1943,

os e dentes da rádula com filas transversais dispostas em “V” (REY,

1973).

No Brasil, REZENDE et al. (1973) registraram a ocorrência de

Lymnaea columella e Lymnaea cubensis no Rio de Janeiro. PARAENSE

(1982), assinalou Lymnaea viatrix no Rio Grande do Sul e Minas Gerais,

Lymnaea columella no Rio Grande do Sul, Santa Catarin

iro, Minas Gerais, Distrito Federal, Mato Grosso, Goiás, Mato Grosso

do Sul e Paraná e Lymnaea rupestris em Santa Catarina.

No Paraná, a Lymnaea columella foi descrita pela primeira vez por

MORRETES (1949) nas cidades de Curitiba e São José dos Pinhais.

PARAENSE (1982) assinalou sua presença em Curitiba e Morretes. LUZ et

al. (1994) registrou esta espécie em 10 municípios do Primeiro Planalto e no

litoral pa

2.2.5 – Histórico da Fasciolose

SERRA FREIRE (1999), em sua análise retrospectiva e prospectiva

da fasciolose hepática no Brasil, relata que a primeira citação da ocorrência

de Fasciola hepatica nas Américas foi realizada no Uruguai, por Walffugel

em 1916, tendo como hospedeiro vertebrado a capivara. Os registros

seguintes das primeiras ocorrências em países do continente americano dão

uma visão aproximada do caminho seguido pela parasitose para se difundir

no Novo Mundo. Segundo o autor, no Brasil, Lutz, em 1921, foi quem fez o

primeiro registro, assinalando o bovino como hospedeiro vertebrado no Rio

de Janeiro, mas considerou provável que o parasitismo ocorresse no Rio

Grande do Sul, próximo ao Rio da Prata. Pêcego, em 1925, confirmou a

ocorrência nesse estado sulino e registrou a alta freqüência com que o

helminto era encontrado em animais de matadouro. Seis anos depois, na

Argentina, Bacigalupo, em 1932, descreveu a participação de um hospedeiro

invertebrado, um molusco do gênero Lymnaea; Stiglic, em 1940, publicou

sobre casos de fasciolos

assinalo

Minas G

imais de zonas enzoóticas, ou mesmo de

outras r

aram 105 fígados de búfalos, dos

quais 21 (20%) apresentaram formas jovens e adultas do trematoda

(MARQUES & SCROFERNEKER, 2003).

u o envolvimento do molusco Limnaea viatrix no ciclo do

trematódeo, no Chile.

No Brasil, novas menções sobre o parasitismo por Fasciola hepatica

foram feitas na tentativa de catalogar as espécies brasileiras de

trematódeos, apontando a distribuição dos mesmos no Rio Grande do Sul,

tendo como hospedeiros vertebrados bovinos e ovinos, ocasião em que

também se levantou a possibilidade de acontecerem casos humanos. Mello

& Mello, em 1934, apontando problemas na suinocultura em São Paulo,

registraram o suíno como hospedeiro da Fasciola hepatica no estado. Silva,

em 1936, descreveu o parasitismo de bovinos por F.hepatica como já

estabelecido em animais criados no estado do Rio de Janeiro, e Carvalho,

em 1940, descreveu um caso de fasciolose hepática em touro nativo, em

erais. Giovannoni & Kubiak, em 1947, registraram a fasciolose

hepática em bovinos no Paraná, ao estudarem a fauna parasitária do estado.

Os registros desta parasitose em bovinos, em Santa Catarina, foram

bem mais tardios, realizados por: SOUZA & RABELLO (1981) e SERRA-

FREIRE & NUERNBERG (1992) (SERRA FREIRE, 1999). Em comunicação

pessoal, PILATI (2005) relata casos de fasciolose na região de Lages, Santa

Catarina, zona esta antes considerada livre da parasitose. Segundo o autor,

na região não são admitidos an

egiões sem o devido exame comprobatório de negatividade para a

fasciolose e outras parasitoses.

Registraram-se ocorrências de fasciolose em bubalinos criados

comercialmente no Litoral Paranaense, onde, de 70 animais abatidos em

frigoríficos, 75% tiveram seus fígados descartados por estarem parasitados

por Fasciola hepatica (BUSETTI et al, 1983). Na mesma região,

FERNANDES & HAMANN encontraram, em 1985, de 340 amostras de fezes

de bubalinos, 45 (12,23%) positivas para ovos de Fasciola hepatica. Em

Maricá, Rio de Janeiro, se examinaram 120 animais, dos quais três (2,5%)

se mostraram positivos para ovos de Fasciola hepatica nas fezes (PILE et al,

2001); e no Rio Grande do Sul, se examin

2.2.6 - Fasciolose Humana

O efeito da parasitose sobre a saúde humana depende do número

de trematodas no fígado e da duração da infecção. A migração das fascíolas

jovens através do parênquima hepático pode produzir lesões traumáticas e

necróticas. Nos ductos biliares, a fascíola adulta produz alterações

inflamatórias, adenomatosas e fibróticas. Em infecções graves, com grande

número de parasitos, pode haver estase biliar, atrofia do fígado e cirrose

periportal. Nos casos crônicos, ocorrem com certa freqüência colecistite e

colelitíase. Na fase inicial, que corresponde à migração das fascíolas jovens

através do parênquima hepático, o quadro clínico compreende: febre, mal

estar, hepatomegalia, dor na região costal direita, eosinofilia e alterações

nas provas funcionais do fígado. Na fase crônica, a sintomatologia é

variável, com manifestações hepatobiliares, febre irregular, anemia e

eosinofilia. Em um estudo de 47 pacientes chilenos, os sintomas principais

consistiram em dor abdominal, dispepsia, perda de peso, diarréia e febre.

Dez dos

odem

ocorrer

1957, com cerca de 200 pessoas. A fonte

comum

rurais praticamente todos os anos: de 1955 a

1979 oc

47 pacientes apresentaram icterícia. A eosinofilia foi normal em

nove e elevada em 38 casos (ACHA E SZYFRES, 1986).

Durante a migração das larvas na cavidade abdominal, p

localizações erráticas em diferentes partes do organismo, cuja

sintomatologia varia com o órgão afetado (ACHA & SZYFRES, 1986).

A fasciolose humana ocorre de forma esporádica ou em surtos, e se

tem registrado em numerosos países da América, Europa, África e Ásia. As

epidemias mais extensas ocorreram na França, como a de Ain, Jura, Rhone

e Saone que, em 1956-1957, afetaram cerca de 500 pessoas agrupadas em

famílias, ou a do vale de Lot, em

de infecção era o agrião (Nasturtium officinale) contaminado com

metacercárias (MALEK, 1980).

Em algumas regiões da França, como em Haute-Vienne, ocorrem

casos de fasciolose em áreas

orreram 121 casos, 49 deles em 24 famílias e 72 casos isolados

(RONDELAUD et al., 1982).

Além da França, a infecção é comum na Itália, Polônia e Inglaterra.

Neste último país, o maior surto afetou 40 pessoas em 1972 (MALEK, 1980).

Tem-se subestimado a freqüência da infecção na América Latina.

Somente em Cuba, foram registrados 100 casos até 1944 (aos quais de

devem adicionar os ocorridos posteriormente) e no Chile, 82 até 1959. Além

destas, ocorreram infecções humanas na Argentina, Uruguai, Peru,

Venezuela, Costa Rica, Porto Rico, República Dominicana e México. Em

1978, f

a, foi realizada uma pesquisa coproparasitológica. Em 12 dos

110 ind

sil. Coube então a REY (1958) o primeiro registro de um

caso a

laram um caso em homem adulto no município de Cornélio Procópio,

oram diagnosticados 42 casos clínicos em Turrialba, Costa Rica

(MORA et al., 1980).

Em uma área endêmica de Sierra Central do Peru, foi efetuado um

estudo sobre o problema. Durante 1968 e 1969, em 14 comunidades da

província de Jauja, foram realizados 1557 exames coproparasitológicos em

estudantes de 7 a 14 anos, e se acharam ovos do trematoda em 15,6% dos

examinados (BENDEZÚ, 1970). Na zona de Atlixco, estado de Puebla,

México, foi detectada fasciolose em 0,6% da população (BIAGI,1974). Na

região montanhosa de Corozal, Porto Rico, onde a fasciolose bovina é

hiperepidêmic

ivíduos foram encontrados ovos de F.hepatica nas fezes (BENDEZÚ

et al., 1982).

A primeira descrição de um caso humano de fasciolose hepática no

Brasil foi de ALTINO & COELHO (1944), em Belém, Pará; o paciente era um

imigrante português que, em seu ponto de origem, já apresentava história

clínica compatível com o quadro da parasitose, posteriormente confirmado

por exame coproparasitológico. Como o caso não era autóctone, este

registro não é comumente mencionado quando se aborda a fasciolose

hepática no Bra

utóctone, acontecido em uma criança de Campo Grande, Mato

Grosso do Sul.

Só anos depois (SANTOS & VIEIRA, 1965, 1967) aconteceram

outros registros de fasciolose hepática humana autóctone, desta feita em

pacientes da região do vale do rio Paraíba do Sul, São Paulo, e dois casos

em Uruçuca, Bahia; posteriormente, CORRÊA & FLEURY (1971)

assina

Paraná.

pio de Caçapava, São Paulo, e destacaram a necessidade de

se refle

fasciolose hepática humana em Curitiba.

BUSET

ulo, que

faz limit

região

metropolitana de Curitiba, Paraná, adicionam seis novos casos de fasciolose

humana aos já existentes, elevando o total de casos autóctones a 50.

relações entre hospedeiros e parasitas, e

novos

, podem ocorrer

zoono

LACAZ et al. (1972) apontaram 14 casos para o Brasil até aquele

ano.

AMATO NETO & SILVA (1977) descreveram mais um caso, agora

para o municí

tir sobre o aumento da incidência da parasitose no país; mas neste

mesmo ano.

BARANSKY et al. (1977) apontaram dois casos em Curitiba,

Paraná. Ainda neste estado, AMARAL & BUSETTI (1979) somaram mais

oito casos da incidência da

TI (1985) divulgou que já eram 25 os casos desta helmintose em

humanos no estado do Paraná.

SERRA-FREIRE (1999) assinalou o primeiro caso humano

comprovado e tratado, acontecido no município de Piquete, São Pa

e com o estado de Minas Gerais. Assim, já somavam 44 os casos

autóctones, comprovados, desta helmintose em humanos no Brasil.

ANDRADE NETO et al (1999), em estudo realizado na

2.2.7 – Fasciolose em Animais Silvestres

O avanço da agricultura e da pecuária próximo às áreas naturais

proporcionou um maior contato entre as populações humanas e de seus

animais domésticos com as populações de animais silvestres nos seus

habitats. Este estreito contato facilitou a disseminação de agentes

infecciosos e parasitários para novos hospedeiros e ambientes,

estabelecendo-se assim novas

os nichos ecológicos na cadeia de transmissão das doenças

(CORRÊA e PASSOS, 2001).

Como conseqüências dessas interações negativas

ses com expansão epizoótica em animais suscetíveis, aumentando

sua disseminação geográfica (BARLETT e JUDGE, 1997).

A própria definição de zoonoses como “doenças ou infecções que se

transmitem naturalmente, entre os animais vertebrados e o homem, ou vice-

versa”

possuí

u terrestres, que tenham

todo o

o, ou em residências de munícipes

(criado

ncipais condicionantes

para d

possib

mésticos e/ou homem em um foco natural;

pedeiros suscetíveis;

tórios a

translo

m na modificação dos ecossistemas;

já denota a possível e importante participação dos animais silvestres

na manutenção destas doenças na natureza (ACHA & SZYFRES, 1986).

Além disso, doenças que não eram conhecidas ou que já não

am importância epidemiológica, reapareceram em surtos ou

epidemias numa população e região, sendo denominadas de “emergentes”.

O Ministério do Meio Ambiente, dos Recursos Hídricos e da Amazônia

Legal, através do Instituto Brasileiro do Meio Ambiente e dos Recursos

Naturais Renováveis, define, em sua Lei nº 9.605, de 12 de fevereiro de

1998 (Lei De Crimes Ambientais), Capítulo V (dos Crimes contra o Meio

Ambiente),Seção I (dos Crimes Contra a Fauna), Art.29, § 3º: “ São

espécimes da fauna silvestre todos aqueles pertencentes às espécies

nativas, migratórias e quaisquer outras, aquáticas o

u parte de seu ciclo de vida ocorrendo dentro dos limites do território

brasileiro, ou em águas jurisdicionais brasileiras”.

Os animais silvestres da fauna brasileira estão localizados na

natureza (vida livre) ou no cativeiro, vivendo em parques zoológicos (zôos),

criadouros conservacionistas, científicos ou comerciais, institutos de

pesquisa, centros de triagem e reabilitaçã

s ilegalmente como animais de estimação), e podem servir como

reservatórios e portadores de zoonoses.

ACHA e SZYFRES (1986) descreveram os pri

ifusão dos fatores de risco existentes nos focos naturais, com

ilidades de estabelecer processos zoonóticos:

a) introdução de animais do

b) translocação de um hospedeiro infectado a um novo biótipo, donde

existam hos

c) modificação da dinâmica dos hospedeiros ou alteração do equilíbrio

ecológico;

d) falta de alimento, o que obriga os animais reserva

car-se a outras biocenoses;

e) intervenção do home

f) mutações positivas no processo epidêmico do agente etiológico,

facilita

, constituindo-se importantes fontes de infecção para os

anima

água e da vegetação aquática com as cercárias saídas dos

molusco

a, Portugal, foram examinadas fezes de 13 gamos, das quais dois

apresen

zes foram

examina

l (1992 - 1993) (MAIA, 2001).

ndo sua disseminação;

g) intervenção das aves migratórias e dos vetores.

Com relação ao ambiente em cativeiro, apesar dos esforços dos

profissionais na manutenção de um rigoroso manejo sanitário, este continua

sendo propício à disseminação de uma gama de doenças, muitas delas

zoonóticas (FOWLER, 1993). Isto também pode ser aplicado aos outros

estabelecimentos que possuem animais silvestres. Vale a pena salientar que

estes animais, em quase totalidade, mascaram os sinais clínicos mesmo

estando infectados

is domésticos, homens ou vice-versa (ACHA e SZYFRES, 1986;

FOWLER, 1986).

Existem inúmeras espécies silvestres que podem ser hospedeiros da

Fasciola hepatica, tornando muito difícil, senão impossível, a erradicação da

fasciolose nos animais domésticos, visto que as fezes dos animais

silvestres, contendo ovos do parasito, contaminam o ambiente.

Conseqüentemente, o molusco hospedeiro intermediário, sofrerá a invasão

das formas imaturas da Fasciola hepatica. Por sua vez, ocorrerá a

contaminação da

s que, a serem consumidas por animais domésticos ou silvestres,

fecham o ciclo.

Dentre as espécies silvestres infectadas pela Fasciola hepatica,

tem-se como exemplo a ocorrência em ruminantes como:

Gamo (Dama dama - cervídeo) : na Espanha, de 32 gamos

necropsiados em 1997, 2 apresentavam exemplares adultos de F.hepatica

no fígado (Colégio Oficial de Veterinários de Burgos). E na Tapada Nacional

de Mafr

tavam-se positivas para ovos de F.hepatica (1992 - 1993) (MAIA,

2001).

Veado (Cervus elaphus L.): de 12 animais cujas fe

das, 4 apresentaram-se positivos para ovos de F.hepatica na

Tapada Nacional de Mafra, Portuga

Alpacas: o caso de fasciolose foi descrito em um criatório de 200

alpacas no Peru (PUENTE, 1997).

Ocorre, também, em Marsupiais, como Wallabies de pescoço

vermelho (Macropus rufogriseus): a fasciolose é comum nestes animais do

norte da Tasmânia, e produz colangiohepatite eosinofílica acompanhada de

anemia

cirrose hepática e morte de

um tapi

laio (FOWLER, 1993).

) foram positivos para

fasciolos

necropsiados no

municíp

que vive

no Parque Barigüí, em Curitiba, apresentou um total de 84,2% de amostras

de fezes positivas para ovos de F.hepatica (ROCCO & LUZ, 2002).

om outras doenças, tornando

necessário o diagnóstico laboratorial (ECHEVARRIA, 1985). Este pode ser

feito com a utilização de diversas técnicas.

severa (infecções massivas); e Phalangers, também infectados

(FOWLER, 1993).

Tapir: a fasciolose tem sido associada à

r na América do Sul. Trematodas em ducto biliar foram achados

acidentais em um tapir ma

Ornitorrinco: ovos de trematoda foram encontrados nas fezes deste

animal (FOWLER, 1993).

Em roedores, como coelhos silvestres: nas províncias de Curicó e

Talca, no Chile, de 1045 coelhos silvestres, 64 (6,1%

e. Verificou-se, também, que coelhos silvestres de mais idade eram

mais suscetíveis à parasitose (ALCAINO et al, 1992).

Ratões de Banhado: de 103 animais capturados e

io de Dom Pedrito, Rio Grande do Sul, cinco (4,85%) apresentaram

Fasciola hepatica no fígado (SILVA SANTOS et al, 1992).

Capivara (Hidrochaeris hidrochaeris): o grupo de animais

2.2.8 – Diagnóstico clínico e laboratorial da fasciolose.

O diagnóstico clínico é difícil, pois os sinais não são específicos da

fasciolose, que pode ser confundida c

2.2.8.1 – Determinação de enzimas no sangue.

Os níveis plasmáticos das enzimas Glutamato Desidrogenase

(GLDH) e Gama Glutamil Transpeptidase (GGT) apresentam-se

aumentados. GLDH sete a 14 dias pós-infecção pela destruição dos

hepatócitos, e GGT seis a oito semanas, devido à lesão das células epiteliais

dos can QUART et al., 1990).

, qualitativa e quantitativamente, antígenos de

Fasciola hepatica nas fezes, incluindo as formas jovens do trematoda

(MORIE

ções, com os de Paramphistomum sp que são incolores ou

ais biliares (ACOSTA, 1994; UR

2.2.8.2 – Provas Imunológicas.

Vários métodos foram desenvolvidos com o objetivo de diagnosticar

a fasciolose a partir da detecção de anticorpos contra componentes do

parasito. O maior problema desta metodologia é o aparecimento de reações

cruzadas. Os testes recomendados, pela especificidade, são os de ELISA,

FAST-ELISA e DOT-ELISA (RIET-CORREA et al., 2001). Um método

completamente diferente utiliza o ELISA para detectar coproantígenos de

Fasciola hepática nas fezes por meio de um anticorpo monoclonal

específico. A vantagem fundamental deste método imunoenzimático está na

capacidade de detectar

NA et al., 1999).

2.2.8.3 – Exame Coprológico.

Determina a presença de ovos nas fezes, durante a fase crônica da

doença. As técnicas mais utilizadas baseiam-se na sedimentação e

tamisação progressiva, ambas com objetivo de diagnóstico qualitativo e

quantitativo. As fezes devem, preferencialmente, ser coletadas diretamente

do reto. O material deve ser colocado em recipientes individualizados,

identificados, e mantidos sob refrigeração, em caixa de isopor com gelo,

para o transporte ao laboratório. Na identificação, deve-se ter o cuidado de

não confundir os ovos de Fasciola hepatica, que são amarelados, cheios de

granula

esbranq

tites agudas, levando-se em consideração os

anteced

pacientes com problemas hepáticos, devido a

que, no diagnóstico diferencial, não se levou em conta a fasciolose

(DUMEN

ctos biliares encontram-se

engrossados, salientes e com calcificações (no caso de bovinos) e as formas

adultas estão presentes (ECHEVARRIA, 1985).

tegração das

c) manejo.

uiçados, com poucas granulações graúdas (RIET-CORREA et al.,

2001).

Durante a fase aguda da fasciolose humana, não é possível efetuar

o diagnóstico laboratorial através do exame coprológico, visto que não há

eliminação fecal de ovos. Nesta fase, deve-se realizar o diagnóstico

diferencial de outras hepa

entes epidemiológicos e a presença, no hemograma, de eosinofilia

(DUMENIGO et al., 1996).

O consumo, pelo homem, de fígado bovino ou ovino pode acarretar

a presença de ovos em materiais fecais e, por conseguinte, induzir a um

resultado falso positivo ao exame coprológico. Em caso de dúvida da

ocorrência da parasitose, exclui-se o fígado da dieta do paciente por vários

dias, o que permite chegar ao diagnóstico correto. Na América Latina, já se

realizaram longas e desnecessárias internações hospitalares, assim como

intervenções cirúrgicas em

IGO et al., 1996).

2.2.8.4 – Necropsia.

É a análise mais precisa na fase aguda da doença animal,

permitindo visualizar as lesões típicas no parênquima hepático (causadas

pela migração das formas imaturas e sua presença) e demais lesões

descritas na patologia. Na fase crônica, os du

2.2.9 – Controle e Profilaxia.

A eficiência do controle da fasciolose resulta da in

seguintes medidas: a) reduzir as infecções nos hospedeiros definitivos; b)

reduzir a população de hospedeiros intermediários;

a) Os fasciolicidas ideais são os de fácil aplicação, baixo custo,

atóxicos e eficazes contra forma jovens e adultas.

raticamente impossível. O controle pode ser

feito atr

mpos

alagado

(Sciomyzidae), caramujos terrestres ou aquáticos e

anelídeo ster limnaei); e fungos, plantas e algas tóxicas (RIET-

CORRE

s métodos em prática visa principalmente animais de

produçã

mentos podem

requere

RREA et al. (2001),

sugerem

b) Redução da população de hospedeiros intermediários (combate

ao molusco).

Controle químico. Os moluscos apresentam alto poder biótico,

tornando a sua erradicação p

avés de molusquicidas que, infelizmente, são tóxicos e representam

perigo para o meio ambiente.

Controle físico. Realiza-se através da drenagem de ca

s, isolamento ou cerco de áreas pantanosas e limpeza de canais de

irrigação, dificultando o acesso dos animais aos locais contaminados.

Controle biológico. Podem utilizar-se: predadores como marrecos,

patos, peixes, moscas

(Chaetoga

A et al., 2001).

c) Manejo.

Um manejo bem estruturado é base para todo programa de controle.

Existem inúmeros meios para se manter a sanidade de rebanhos, mas, a

imensa maioria do

o, o que não impede a realização de adaptações, quando se trata de

animais silvestres.

O conhecimento da biologia do parasito e do molusco permite

estabelecer um tratamento estratégico do gado ovino e bovino. A época do

ano, ou mais precisamente, os meses em que se deve administrar o

tratamento preventivo variam com as condições ecológicas, em especial

climatológicas, de cada região. Além disto, estes trata

r dosificações táticas quando as condições climatológicas (umidade

e calor) favoreçam uma rápida multiplicação dos moluscos.

No que diz respeito à fasciolose, RIET-CO

, para ovinos e bovinos, a seguinte técnica de manejo, que se

baseia em evitar a coincidência hospedeiro-parasito:

É necessário identificar os potreiros potencialmente contaminados,

pela procura do molusco ou utilização de ovinos rastreadores. Estes são

animais que, após serem tratados com fasciolicidas, são colocados nos

diferentes potreiros. O exame do fígado, após o abate para consumo no

estabelecimento, indicará os potreiros onde ocorre a parasitose. Os potreiros

contaminados devem ser pastoreados por períodos de dois meses, com

vacas secas (bovino de leite) ou bovinos de corte com mais de dois anos.

Posteriormente, esses animais passam para campos limpos (sem

hospedeiros intermediários), fazendo com que, quando os parasitos

adquiridos cheguem à maturidade sexual, os ovos por eles produzidos não

sejam eliminados em áreas úmidas onde existe o molusco. Três meses após

a saída dos potreiros contaminados, os animais poderão ser tratados para

matar os parasitos adultos. Posteriormente, podem voltar aos potreiros

contaminados para iniciar um novo período de pastoreio. Dependendo das

condições e grau de contaminação de cada estabelecimento, os ovinos, por

serem mais suscetíveis, devem ter maior atenção com relação ao pastoreio

em área

desaparecimento do parasito em dois anos. Atualmente, está sendo

mpregado em diversas propriedades de três departamentos franceses.

s contaminadas e freqüência do tratamento, devendo ser utilizados,

ocasionalmente, fasciolicidas que atuem nas formas imaturas.

XIMENES et al. (1995) descreveram métodos de controle biológico

da Limnaea truncatula que foram aplicados em áreas centrais da França,

sob o conceito de controle integrado da fasciolose. Conforme o método

utilizado, foram necessários de um a três anos para eliminar a Limnaea

truncatula de seus habitats. Este tipo de controle não está generalizado

naquele país, mas seus princípios são ainda empregados por diversos

criadores. Foi desenvolvido um programa de controle integrado que inclui

medidas contra o adulto jovem da Fasciola hepatica e seus hospedeiros

intermediários. O método aplicado em uma fazenda de Corrèze levou

3 - MATERIAL E MÉTODOS

ara do Zoológico, ambos

ituados no município de Curitiba, Paraná; e as capivaras do Projeto Lago

Sul, no

.1.1 – Capivaras e Ratões do Banhado do Parque Barigüí –

Curitib

s do

Banha tima-se a

presença de aproximadamente 20 destes animais vivendo no parque.

O Parque Barigüí localiza-se em área urbana do município.

3.1 – Populações estudadas

Foram selecionadas, para este estudo, a população de capivaras e

ratões do banhado do Parque Barigüí e a capiv

município de São Mateus do Sul, Paraná.

No início de 2003, o grupo de capivaras residente neste local contava

com sete amimais: um macho, duas fêmeas e quatro filhotes. No início de

2005, houve aumento populacional, passando a contar com 12 animais

(Figuras 07 e 08): os anteriores e mais cinco filhotes. São animais criados

soltos na área, não recebendo, por parte dos encarregados pela

manutenção do Parque, alimentação de qualquer espécie. Os Ratõe

do são animais esquivos, de difícil observação, porém, es

Figura 07 – Capivaras do Parque Barigüí – Curitiba – PR

Figura 08 – Capivara e Ratão do Banhado – Parque Barigüí – Curitiba – PR.

3.1.2 - Capivara do Zoológico Municipal de Curitiba

O Zoológico Municipal de Curitiba possui um único exemplar de

capivara (Fig.09) residindo em amplo recinto, que divide com cervos-nobres

(Cervus elaphus). Além da pastagem, ela recebe frutas e verduras da

estação.

O Zoológico Municipal de Curitiba localiza-se em área urbana do

município.

Figura 09 – Capivara do Zoológico Municipal de Curitiba – Pr

3.1.3 - Capivaras do Projeto Lago Sul

No Projeto Lago Sul, estima-se a presença de mais de trezentas

capivaras residentes. Foram observados dois grandes grupos (Fig. 10 e Fig.

11), com aproximadamente trinta animais cada um. Três vezes por semana,

são oferecidos alimentos aos animais: uma mistura de frutas e verduras da

estação.

O Projeto Lago Sul localiza-se em área rural do município de São

Mateus do Sul.

Figura 10 – Capivaras do “Grupo 1” do Projeto Lago Sul – Six – Petrobrás.

Figura 11 – Capivaras do “Grupo 2” do Projeto Lago Sul – Six - Petrobrás

3.2 - COLETA E CONSERVAÇÃO DAS FEZES

3.2.1 – Coleta no Parque Barigüí – Curitiba

As fezes de capivaras (Hidrochaeris hidrochaeris) foram coletadas do

ambiente, em quatro pontos pré-determinados, devido à grande extensão do

lago, pontos estes onde as capivaras permaneciam com maior freqüência.

As amostras coletadas foram acondicionadas em frascos plásticos contendo

formol acético (conservante), especiais para a coleta de fezes em humanos,

numerados e identificados com o local, data, horário e ponto de coleta.

As coletas foram realizadas no ano de 2003, nos meses de Abril

(quatro amostras), Julho (seis amostras), Outubro (quatro amostras) e

Dezembro (quatro amostras), correspondendo às quatro estações do ano.

As fezes de Ratão do Banhado (Myocastor coypus) foram também

coletadas, nos meses de Outubro (sete amostras) e Dezembro (nove

amostras), nos mesmos pontos de coleta já referenciados.

3.2.2 – Coleta no Projeto Lago Sul – São Mateus do Sul

As fezes foram coletadas do ambiente, de maneira semelhante à da

metodologia utilizada para coleta no Parque Barigüí, Curitiba, no mês de

Novembro de 2003, em dois pontos: ponto 01 – seis amostras, e ponto 02 –

oito amostras, correspondendo cada um ao território individual dos dois

grupos de capivaras.

3.2.3 – Coleta no Zoológico Municipal de Curitiba

As fezes foram coletadas do ambiente, em Abril de 2005, em um

único ponto, acondicionadas em saco plástico, de onde foram transferidas

para recipiente de vidro esterilizado contendo formol acético para

conservação até a realização dos exames coproparasitológicos.

3.3 - EXAMES COPROPARASITOLÓGICOS

Os exames coproparasitológicos foram realizados no setor de

Parasitologia do “Centro de Diagnóstico Marcos Enrietti”, utilizando as

técnicas de WILLIS-MOLLAY, Sedimentação Simples e Quatro Tamises

(Anexo 02).

3.4 - DIMENSIONAMENTO DOS OVOS DE Fasciola hepatica.

Os ovos com morfologia compatível com os ovos da espécie Fasciola

hepatica foram obtidos pelo método dos Quatro Tamises, utilizando, como

corante, o azul de metileno, e transferidos da placa de Petri para a lâmina

(sem lamínula) por meio de uma pipeta de Pasteur.

As medidas foram tomadas segundo Escala Ocular Micronométrica,

em Microscópio Zeiss, objetiva 10X (Figura 12), utilizando-se o fator de

correção, conforme quadro 01, abaixo:

Escala Ocular Micronométrica – Microscópio Zeiss

Objetiva 1 unidade ocular[I I] Fator

2,5X " 0,375

10X

0,1027

40X " 0,0250

Quadro 01 – Escala Micronométrica – Microscópio Zeiss

A fórmula utilizada para o cálculo das medidas foi:

Comprimento/largura X fator = medida em milímetros

Medida em milímetros / 0,001 = medida em micrômetros.

Em seguida, foi calculada a média geral das dimensões obtidas.

Figura 12 – Ovos de Fasciola Hepatica, observados em Microscópio Zeiss para

tomada de medidas.

3.5 - COLETA DOS MOLUSCOS

Foi realizada nos mesmos pontos delimitados para a coleta de fezes,

procedendo-se do seguinte modo, preconizado por ROCCO & LUZ, 2002:

raspou-se a vegetação aquática e as margens do lago, revolvendo-se,

também, o lodo sob a água perto das margens, com peneira modelo

SUCAM, visando coletar em seu interior os moluscos existentes no local.

Retirou-se da água plantas e objetos flutuantes (galhos, latas, recipientes

plásticos) que foram cuidadosamente observados para a verificação da

presença de moluscos aderidos a estes substratos.

Os moluscos coletados foram colocados em potes plásticos tampados

e identificados (ponto de coleta, data e horário). O material foi transportado

para o Laboratório de Parasitologia Veterinária do Departamento de

Patologia Básica da Universidade Federal do Paraná, para os procedimentos

de identificação taxonômica.

3.6 – AVALIAÇÃO HISTOPATOLÓGICA DE LESÃO HEPÁTICA

PROVOCADA POR Fasciola hepatica.

Foi realizada uma segunda leitura de lâminas de um caso de

fasciolose em capivaras do Parque Barigüí, cuja necropsia foi realizada dia

sete de Outubro de 2002, no Laboratório de Patologia Animal da

Universidade Federal do Paraná. A segunda leitura foi realizada em

microscópio ótico, no Laboratório de Histologia da Universidade do

Contestado, campus Canoinhas.

4 – RESULTADOS

4.1. Infecção parasitária em capivaras e ratões do banhado do

Parque Barigüí, Curitiba.

Nos exames coproparasitológicos, realizados nas amostras fecais de

capivaras residentes no Parque Barigüí, em Curitiba (Apêndice 01), foram

encontrados ovos de Fasciola hepatica em 100% dessas amostras, quando

examinadas pelo método de Sedimentação Simples (LUTZ, 1919). Com

relação aos demais parasitos, verificou-se a presença de ovos de Ascaridae

em 22% das amostras e 28% apresentaram oocistos de Eimeriidae (Gráfico

01).

100

Capivaras - Parque Barigüí

Ovos Fasciola

Oocistos Eimeriidae

Ovos Ascaridae

Gráfico 01 – Porcentagem de um total de 18 amostras fecais de capivaras do

Parque Barigüí, Curitiba

, apresentando de ovos de Fasciola hepatica,

oocistos de Eimeriidae e ovos de Ascaridae

Das 16 amostras de fezes de ratão do banhado, nove (56,25%)

apresentaram ovos de Fasciola hepatica, tanto pelo método de

Sedimentação Simles (LUTZ, 1919), quanto sob o método dos Quatro

Tamises (SANTIAGO GIRÃO). Quanto aos demais parasitos, verificou-se

nas 16 amostras fecais (Apêndice 02) a porcentagem de 88% das amostras

apresentando ovos de Cestoda; 56%, ovos de Ascaridae; 50%, oocistos de

Eimeriidae; 50%, ovos de Strongylidae; 31%, ovos de Ácaros, e, 6%, ovos

de Trichostrongylidae (Gráfico 02)

56 56

50 50

Ratões do Banhado - Parque Barigüí

Ovos Cestoda

Ovos Fasciola

Ovos Capilariidae

Oocistos Eimeriidae

Ovos Strongylidae

Ovos Ácaros

Ovos Trichostrongylidae

Gráfico 02 – Porcentagem de um total de 16 amostras fecais de ratões do banhado

do Parque Barigüí, Curitiba, apresentando ovos de Cestoda, ovos de

Fasciola hepatica, ovos de Capilariidae, oocistos de Eimeriidae, ovos

de Strongylidae, ovos de Ácaros e ovos de Trichostrongylidae.

4.2 – Infecção parasitária em capivaras do Projeto Lago Sul – SIX

– Petrobrás – São Mateus do Sul.

Nos exames coproparasitológicos, realizados nas 14 amostras fecais

de capivaras residentes na área do Projeto Lago Sul (São Mateus do Sul),

não foram encontrados ovos de Fasciola hepatica em 100% destas amostras

examinadas pelo método de Sedimentação Simples (LUTZ, 1919) e pelo

método dos Quatro Tamises (SANTIAGO GIRÃO). Com relação aos demais

parasitos (Apêndice 03), verificou-se a presença de oocistos de Eimeriidae

em 100% das amostras examinadas, em 86%, ovos de Cestoda; 71%, ovos

de Trichostrongylidae, e 36%, ovos de Capilariidae.

100

Capivaras - Projeto Lago Sul

Oocistos Eimeriidae

Ovos Cestoda

Ovos Trichostrongylidae

Ovos Capilariidae

Ovos Fasciola

Gráfico 03 – Porcentagem de um total de 14 amostras fecais de capivaras do

Projeto Lago Sul, São Mateus do Sul, apresentando oocistos de

Eimeriidae, ovos de Cestoda, ovos de Trichostrongylidae, ovos de

Capilariidae e ovos de

Fasciola hepatica.

4.3 – Infecção parasitária na capivara do Zoológico Municipal de

Curitiba.

Os exames da amostra fecal da capivara do Zoológico Municipal de

Curitiba resultaram negativos, tanto para ovos de Fasciola hepatica, como

para ovos de outros parasitos.

4.4 – Dimensionamento dos ovos

Os ovos de Fasciola hepatica, coletados de fezes de capivaras do

Parque Barigüí, ao serem dimensionados (Apêndice 04), apresentaram uma

média de 138,567 μm de comprimento por 72,960 μm de largura.

4.5 – Coleta e Identificação dos Moluscos

As coletas de moluscos foram realizadas nos três parques, sendo que

no Zoológico Municipal de Curitiba e no Projeto Lago Sul – São Mateus do

Sul não foram encontrados exemplares de moluscos. No Parque Barigüí, por

outro lado, os moluscos foram encontrados em grande quantidade, durante

todo o período deste estudo (Tabela 01) .

Os moluscos, no Parque Barigüí, foram coletados no ano de 2003,

meses de Abril, Julho, Outubro e Dezembro; e no ano de 2004, meses de

Março, Maio, Julho, Outubro e Dezembro, sendo que, a cada mês, dez

indivíduos de conchas acuminadas foram selecionados dos diversos pontos

de coleta para identificação perfazendo um total de 110 (cento e dez)

moluscos, pertencentes às espécies: Physa cubensis (51 exemplares),

Physa marmoratta (Figura 13) (39 exemplares) e Biomphalaria tenagophila

(Figura 14) (20 exemplares).

Coleta de moluscos no Parque Barigüí - Curitiba

Ano Meses Espécies Coletadas

Physa cubensis Physa marmoratta Biomphalaria tenagophila

2003 Abril 10

Julho 10 2

Outubro 10 5

Dezembro 10 3

2004 Março 7 3 1

Maio 4 6 3

Julho 10 2

Outubro 10 1

Dezembro 10 3

Tabela 01 - Coleta de moluscos no Parque Barigüí – Curitiba.

Figura 13 – Physa marmorata coletada no Parque Barigüí

Figura 14 – Biomphalaria tenagophyla coletada no Parque Barigüí

4.6 – Avaliação Histopatologica de lesão hepática provocada por

Fasciola hepatica.

Durante o experimento (2003-2005), não houve mortes entre os

roedores examinados, optando-se, então, pela avaliação de fragmento

hepático de uma capivara, fêmea, adulta, encontrada morta no Parque

Barigüí, e enviada para necropsia e histopatologia no Laboratório de

Patologia Animal da Universidade Federal do Paraná. A necropsia foi

realizada no dia sete de Outubro de 2002, na qual foram coletados parasitos

do fígado do animal, enviados para identificação no Laboratório de

Parasitologia Veterinária da Universidade Federal do Paraná. Os parasitos

foram identificados como Fasciola hepatica (LANGE, R.R., comunicação

pessoal). As lesões observadas no fígado foram compatíveis com as da

fasciolose (SOUSA, R.S., comunicação pessoal).

Realizou-se, então, para fins deste estudo, uma segunda leitura das

lâminas, como se segue:

Figura 15 – Lesão decorrente da migração de larvas de Fasciola hepatica em

fígado de Capivara do Parque Barigüí, com intensa exsudação

central, circundada por tecido fibroso. H&E.

Objetiva 10.

Fígado apresentando focos de necrose com restos celulares,

circundados por reação inflamatória mononuclear leve a moderada e

pequena quantidade de eosinófilos. Focos com intenso infiltrado

polimorfonuclear, alguns com predominância de eosinófilos, circundados por

tecido conjuntivo. (Fig.15).

Figura 16 –Fígado de Capivara do Parque Barigüí com intensa hiperplasia de

ductos biliares com infiltrado inflamatório. H & E. Objetiva 10.

Alguns segmentos apresentam intensa hiperplasia de ductos biliares,

com inflamação predominantemente mononuclear moderada. Presença de

quantidade variável de eosinófilos. Fibrose difusa nas áreas com hiperplasia

de ductos biliares. (Fig. 16).

5. DISCUSSÃO

Muito se tem pesquisado, avaliado e publicado a respeito da

fasciolose em animais domésticos, em especial ruminantes. Do mesmo

modo, a Fasciola hepatica, considerada a mais importante entre os

trematodas, por ser a maior causa de descarte de fígados em abatedouros,

e pelo prejuízo econômico que causa (baixo ganho de peso, queda na

produção leiteira, prejuízos com a lã, para citar alguns), também tem sua

biologia muito bem conhecida.

Porém, quando se fala em fasciolose em silvestres, pouco se sabe.

Os dados a respeito desta parasitose para animais silvestres são poucos e,

os que existem, carecem de continuidade. Existem registros da fasciolose

em inúmeras espécies destes animais, como ratões de banhado, wallabies e

búfalos, anteriormente citados neste trabalho, entre outros. Tais dados

ficam, normalmente, restritos à comunidade acadêmica. Vale citar

novamente a primeira descrição da Fasciola hepatica na América do Sul,

Uruguai, por Walffugel em 1916, tendo como hospedeiro vertebrado a

capivara (SERRA FREIRE, 1999).

Os resultados dos exames coproparasitológicos, utilizando os

métodos de WILLIS-MOLLAY (1921); de Sedimentação Simples (LUTZ,

1919), e dos Quatro Tamises (SANTIAGO GIRÃO), para a capivara do

Zoológico Municipal de Curitiba não apresentou ovos de Fasciola hepatica

nas fezes. Os exames coproparasitológicos deste animal não apresentaram

sinais de parasitose.

Nos exames coproparasitológicos, realizados nas capivaras do grupo

residente no Parque Barigüí, em Curitiba, foram encontrados ovos de

Fasciola hepatica em 100% das amostras, quando se utilizou o método de

Sedimentação Simples (LUTZ, 1919), e em 83,33% das mesmas amostras

submetidas ao método dos Quatro Tamises (SANTIAGO GIRÃO), método

este específico para a pesquisa de ovos de Fasciola hepatica. ROCCO &

LUZ (2002) encontraram, em 38 amostras de fezes de capivaras do mesmo

parque, 36 positivas (84,2%) para ovos de Fasciola hepatica, utilizando o

método de Sedimentação Simples (LUTZ, 1919).

Foram, também, encontrados oocistos de Eimeriidae. Segundo

FOWLER (1986), os roedores, em geral, são conhecidos por albergarem

uma grande variedade de coccidios do gênero Eimeria. Os ovos de

Ascarídeos, bem como de diversos outros nematodas são também, segundo

FOWLER (1986), achados comuns em exames coproparasitológicos de

roedores.

Das 16 amostras de fezes de ratão do banhado coletadas, nove, ou

seja, 56,25% apresentaram ovos de Fasciola hepatica, tanto quando

examinadas sob o método de Sedimentação Simples (LUTZ, 1919), quanto

sob o método dos Quatro Tamises (SANTIAGO GIRÃO). Existem várias

referências a fasciolose em ratões de banhado (FOWLER, 1986), e

pesquisadores como SILVA SANTOS et al. (1992) atribuem a este animal o

status de reservatório silvestre da Fasciola hepatica, pois suas fezes são, via

de regra, disseminadas na água ou em ambientes alagadiços,

proporcionando assim um habitat perfeito para o desenvolvimento do ciclo

evolutivo do trematoda.

Os oocistos de Eimeriidae e ovos de nematodas são achados comuns

em exames coproparasitológicos de roedores, e ácaros são apenas um dos

muitos ectoparasitos que comumente infestam os roedores. Os ovos de

cestoda encontrados merecem maior atenção, pois as larvas de espécies

como Taenia pisiformis e Echinococcus multilocularis, já referenciados em

diversas espécies de roedores, podem destruir o tecido hepático, levando o

hospedeiro à morte (FOWLER, 1986).

Os ovos de Fasciola hepatica coletados de fezes de capivaras do

Parque Barigüí, Curitiba, ao serem medidos, apresentaram uma dimensão

média de 138,567 μm de comprimento por 72,960 μm de largura, ou seja,

dentro dos parâmetros de normalidade para ovos deste trematoda que,

segundo TATCHER (1993), são de 130 a 145 μm de comprimento por 70 a

90 μm de largura.

As amostras de fezes de capivaras e ratões do banhado, coletadas no

Parque Barigüí, demonstraram que a fasciolose é uma realidade naquele

local.

Tanto os ratões do banhado como as capivaras atuam, também,

como disseminadores desta parasitose no parque em questão e a outros,

pois existe a política de permuta de animais entre os diversos parques de

Curitiba, e também a outros territórios, sendo ambos animais de hábitos

migratórios, pelo fato de suas fezes distribuírem-se ao longo de cursos

d’água.

Diferente das capivaras, que foram introduzidas no Parque pela

Secretaria do Meio Ambiente, em 1990 (ONGARO, 2000), se desconhece de

onde vieram os ratões do banhado, podendo alguns desses animais terem

migrado para o Parque Barigüí, provenientes de áreas enzoóticas para a

fasciolose. Existe também o fato de que, em 1988, um grupo de ovinos foi

introduzido no Parque, com o objetivo de “manter a grama permanentemente

aparada e adubada” (NAKAMURA, 1989). Os ovinos são considerados os

mais importantes hospedeiros vertebrados da fasciolose, e não se sabe se

este grupo era ou não portador da parasitose. Independente disto, esta se

apresenta como a hipótese mais provável de contaminação ambiental por

ovos de Fasciola hepatica.

Assim sendo, é importante o potencial zoonótico da fasciolose no

Parque Barigüí, pois os freqüentadores têm acesso às margens do lago,

onde deitam para relaxar, brincam, se alimentam, podendo, assim, levar à

boca alguma vegetação, ingerindo metacercárias. Existem ainda pessoas

que se alimentam do agrião silvestre que ali cresce, além de indivíduos que

se banham no lago.

As fezes das capivaras do grande grupo residente no Projeto Lago

Sul da SIX – Petrobrás, em São Mateus do Sul, Paraná, também foram

examinadas, porém, com resultado negativo para fasciolose. Estes animais

foram examinados, pois, havia a probabilidade da ocorrência de fasciolose

neste grupo, devido às características hidrográficas da área: o rio Iguaçu

corta as duas cidades (Anexo 03), e seus afluentes banham tanto o Parque

Barigüí como o Projeto Lago Sul, formando, em ambos, lagos à beira dos

quais as capivaras vivem. Como os grupos, quando se tornam muito

numerosos, tendem a se dividir, e uma destas divisões, o novo grupo, vai

procurar um território para si, viajando sempre próximo aos rios, havia a

possibilidade de: ou o grupo do Parque Barigüí, que se dividiu em meados

de 2002, ter enviado animais na direção do Projeto Lago Sul, ou vice-versa.

Como no caso das capivaras e ratões do banhado do Parque Barigüí,

os ovos de nematodas e cestodas e os oocistos de Eimeriidae, encontrados

nos exames coproparasitológicos destes animais, são achados comuns para

roedores (FOWLER, 1986).

Os exames coproparasitológicos pelo método dos Quatro Tamises,

para as capivaras do Projeto Lago Sul, foram todos negativos para ovos de

Fasciola hepatica.

Os achados histopatológicos da fasciolose em capivaras coincidem as

descrições de lesões de fasciolose em ovinos e bovinos de BORDIN (1995),

RIET-CORREA et al (2001) e CARLTON & McGAVIN (1998), já citadas

neste trabalho.

A coleta dos moluscos, no Parque Barigüí, durante todo o período em

que o presente estudo foi realizado, se deu em locais escolhidos

aleatoriamente ao redor do lago e não só nos pontos de coleta pré-

determinados. Não foi encontrado nenhum exemplar de molusco Limnaea.

ROCCO & LUZ (2002) já haviam reportado uma diminuição na população

dos Limnaea no Parque Barigüí. Os níveis de poluição das águas do lago

possivelmente tenham contribuído para a diminuição e desaparecimento

desta espécie no local. A carga de poluentes no rio e lago do Parque

Barigüí, em 2001/2002, era muito alta. Em 2001, houve uma significativa

mortandade de carpas (estimada em sete toneladas), devida, segundo

RIBAS (2001), ao acúmulo de matéria orgânica, composta basicamente de

lixo e esgotos residenciais e industriais clandestinos, que são despejados no

rio Barigüí, que alimenta o lago, o que contribuiu, junto com a pouca

circulação de água e a superpopulação de carpas, para uma drástica queda

de oxigênio. Não se tem, hoje em dia, uma estimativa do nível de qualidade

da água do parque. O último relatório de monitoramento do IAP – Instituto

Ambiental do Paraná é de 2002, e classifica as águas do Parque Barigüí

como “classe IV – criticamente degradado a poluído”, que caracteriza corpos

de água com entrada de matéria orgânica, capaz de produzir uma depleção

crítica nos teores de oxigênio dissolvido da coluna d’água, aporte de

consideráveis cargas de nutrientes, alta tendência a eutrofização,

ocasionalmente com desenvolvimento maciço de populações de algas e/ou

cianobactérias, ocorrência de reciclagem de nutrientes, baixa transparência

das águas associada principalmente à alta turbidez biogênica. A partir desta

classe é possível a ocorrência de mortandade de peixes em determinados

períodos de acentuado déficit de oxigênio dissolvido (IAP, 2002).

As espécies de moluscos, encontradas no Parque Barigüí, no período

deste estudo, foram: Physa cubensis, Physa marmorata e Biomphalaria

tenagophyla.

A população de Physa cubensis, encontrada em 2003, diminuiu, vindo

a desaparecer, e dando lugar a uma população de Physa marmorata

(espécie esta considerada indicativo de poluição por muitos autores), a partir

de Junho de 2004. A população de Biomphalaria tenagophyla se manteve

baixa, mas constante em todo o período de coletas (Tabela 01).

A ausência de exemplares do gênero Limnaea não exclui a

possibilidade da ocorrência da fasciolose, pois foram coletadas no local

grande número de amostras fecais de capivaras e ratões do banhado

positivas para ovos de Fasciola hepatica. É, sim, um indicativo de que a

parasitose que acomete estes animais é mais antiga e que os filhotes da

última ninhada possivelmente estarão livres da fasciolose, se os Limnaea

não repovoarem a área.

Os moluscos do gênero Limnaea já foram descritos em diversas

cidades do Paraná, inclusive em Curitiba. São suscetíveis a mudanças

climáticas e a altos níveis de poluição. Quando o nível de poluentes das

águas do Parque Barigüí diminuir, e as condições climáticas favorecerem, é

alta a probabilidade de repovoamento do rio e lago do parque pelos

Limnaea.

Para diagnosticar a fasciolose em animais são utilizados métodos de

coprologia quantitativa, ou seja, o método de Sedimentação Simples (LUTZ,

1919) e o método dos Quatro Tamises (SANTIAGO GIRÃO). Ambos os

exames detectam ovos nas fezes, o que ocorre quando existem parasitos

adultos nos ductos biliares do hospedeiro vertebrado. Protocolos têm sido

padronizados para a utilização do método de ELISA para coproantígenos em

bovinos e ovinos.

O diagnóstico da fasciolose em capivaras e ratões do banhado é

viável pelos exames coproparasitológicos. As provas imunológicas

sorológicas são de difícil realização, pois, além de reações cruzadas, a

licenças para manipulação de animais silvestres em nossa região leva, por

vezes, até mais de um ano para ser expedida, o que prejudica tanto os

exames, como o tratamento, como o controle desta ou qualquer outra

parasitose. Desenvolver um protocolo para ELISA, coproantígenos, seria de

grande utilidade. A determinação de enzimas sangüíneas apresenta os

mesmos entraves, além da falta de especificidade. A necropsia também

seria de utilidade, se os animais que morressem fossem enviados a

laboratórios de Patologia para o exame, pois, no Parque Barigüí, eles são

enterrados no local onde são encontrados.

A profilaxia da fasciolose deve levar em conta que o objetivo maior do

tratamento estratégico é o de prevenir que o hospedeiro final dissemine ovos

do trematoda nas pastagens. Para tanto, o primeiro requisito seria que a

droga que será utilizada em programa de controle da fasciolose ter o poder

de eliminar todos os trematodas adultos (ovipositores). Entretanto, a

utilização de um fasciolicida efetivo contra o parasito na forma adulta

determinará a repetição de tratamentos a intervalos muito curtos, à medida

em que as formas jovens amadureçam e comecem a oviposição. Drogas

que também são efetivas contra formas jovens da Fasciola hepatica

apresentam o benefício de poder estender o intervalo de tratamento sem o

risco de contaminação dos pastos neste intervalo ampliado. Quanto mais

jovem for o parasito eliminado pela droga, maior o intervalo entre

tratamentos. Por exemplo, considerando que uma droga mostre-se efetiva

contra trematodas de seis semanas de idade, o tratamento terá de se repetir

a cada duas semanas de modo a prevenir que qualquer jovem se torne

adulto. Por outro lado, utilizando uma droga efetiva contra todos os estágios

da Fasciola hepatica, o intervalo de tratamento pode ser o mesmo do

período pré-patente do parasito, isto é, oito semanas. Neste caso,

relativamente poucos tratamentos serão necessários anualmente para

prevenir a contaminação das pastagens. Hoje em dia, o triclabendazole é o

único fasciolicida que oferece este potencial (WEHRLE & RICHARDS,

1989).

A Tabela 01 relaciona o efeito de anti-helmínticos, em percentagem,

e espectro de ação contra diferentes fases da Fasciola hepatica (RIET-

CORREA et al, 2001).

Fascíolas (idade em semanas)

Fasciolicidas jovens

adultas

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14

Bithionol

90 a 99%

Niclofolan

Albendazole

95 a 100%

Ivermectin +

98 a 100%

Clorsulon

Nitroxinil

50 a 90% 91 a 99%

Closantel

Clorsulon

50 a 90% 91 a 99%

Rafoxanide

Triclabendazole٭ 90 a 99% 99 a 100%

Tabela 02 – Efeito de Anti-Helmínticos (%) e Espectro de ação contra diferentes fases da

Fasciola Hepatica.Adaptado de RIET-COREA et al., 2001.

O tratamento da fasciolose nas capivaras seria viável, respeitando-se

as regras de extrapolação alométrica para medicamentos (Anexo 01), pois

os animais são relativamente dóceis, acostumados à presença humana, o

que facilitaria seu manejo. O problema são os ratões de banhado, que são

esquivos e de difícil aproximação. Não se tem nem uma estimativa do

número destes animais no parque. A implantação de uma ceva, especial

para os ratões (que impedisse a entrada de capivaras) onde se administraria

o antihelmíntico junto aos alimentos seria uma alternativa para o problema,

já que os níveis tóxicos desta substância, para roedores, são altos, o que

amenizaria a superdosagem, que certamente ocorreria em alguns

indivíduos.

O controle dos moluscos por meios químicos já provou ser inviável,

por representar perigo para o ambiente por seus níveis tóxicos. O controle

físico, no tocante ao Parque Barigüí, também é de difícil implantação: a

drenagem, o isolamento de áreas e a limitação do acesso dos animais a

certas partes do parque é impraticável, devido à sua extensão e política de

funcionamento; porém, a limpeza regular das margens auxilia no controle. O

controle biológico, utilizando gansos, pode ser de alguma valia, se não

esquecermos que estes animais também são suscetíveis à fasciolose. O

látex da “coroa-de-cristo” seria uma alternativa como molusquicida, não

fosse a grande extensão do lago e rio que o forma.

Face à bibliografia consultada, torna-se essencial na implementação

um programa de controle da fasciolose, projetos com duração de no mínimo

dois anos.

O controle integrado, proposto por XIMENES et al (1995),

devidamente adaptado para a realidade do Parque Barigüí (Figura 17),

apresenta alta probabilidade de sucesso se implantado na área em questão.

São procedimentos simples, muitos dos quais já são executados no referido

parque, como a limpeza das margens do lago (devendo apenas esta limpeza

se estender às margens do rio, onde porventura se encontrarem os

moluscos) e a utilização de gansos como controle biológico. Os exames

coproparasitológicos nas amostras fecais das capivaras e ratões do banhado

residentes são de fácil execução, para o monitoramento do nível de infecção

dos animais. O tratamento se torna viável com fasciolicidas que atuam tanto

em formas jovens como adultas do parasito, respeitando-se as regras de

extrapolação alométrica (Anexo 01), e a implantação de um sistema de

cevas, que devem ser diferenciadas para capivaras e ratões do banhado.

Figura 17 – Conceito de Controle Integrado. Adaptado de XIMENES et al, 1995.

6 – CONCLUSÕES

Os exames das fezes coletadas no Parque Barigüí resultaram

positivos para ovos de Fasciola hepatica em 100% das amostras de

capivaras e 56,25% de ratões do banhado.

A provável origem da contaminação da área do Parque Barigüí foram

os ovinos trazidos para o local.

Foram encontrados, no Parque Barigüí, moluscos das espécies:

Physa cubensis, Physa marmorata e Biomphalaria tenagophyla. Não foram

encontrados moluscos do gênero Lymnaea no referido parque.

As lesões hepáticas produzidas pela Fasciola hepatica em capivaras

são semelhantes às observadas em ovinos e bovinos.

O método de maior viabilidade para o diagnóstico da fasciolose em

capivaras e ratões do banhado ainda é a coproparasitologia.

O tratamento dos animais infectados é viável e necessário.

O papel disseminador da fasciolose à população humana,

freqüentadora do Parque Barigüí, deve ser levado em consideração.

7 – REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

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H.P. Myocastor coypus. In: Mammalian species, n. 398. 1992.

XIMENES, T.; Rondelaud, D.; MAGE, C.; CHERMETTE, R. A eliminação da

Lymnaea truncatula das pastagens: controle biológico integrado contra a

fasciolose. A Hora Veterinária, ed extra (1). 1995.

8. APÊNDICES

APÊNDICE 01

Tabelas de resultados de exames coproparasitológicos de capivaras

do Parque Barigüí – Curitiba.

Parque Barigüí – Capivara

Método de WILLIS-MOLLAY (1921)

Amostra n. oocistos Eimeriidae

1 (-)

2 N

3 N

4 N

5 N

6 (-)

7 (+)

8 (-)

9 (-)

10 (+)

11 (-)

12 (-)

13 (+)

14 (+)

15 (-)

16 (+)

17 (-)

18 (-)

Positivos 28%

Parque Barigüí – Capivara

Método de SEDIMENTAÇÃO SIMPLES

Amostra n. ovos Fasciola ovos Ascarídeos

1 (+) (-)

2 (+) (-)

3 (+) (-)

4 (+) (+)

5 (+) (+)

6 (+) (-)

7 (+) (-)

8 (+) (-)

9 (+) (-)

10 (+) (-)

11 (+) (+)

12 (+) (-)

13 (+) (-)

14 (+) (-)

15 (+) (-)

16 (+) (+)

17 (+) (-)

18 (+) (-)

Positivos 100% 22%

Parque Barigüí – Capivara

Método dos QUATRO TAMISES

Amostra n.

Fasciola hepatica

1 (-)

2 (-)

3 (-)

4 (+)

5 (+)

6 (+)

7 (+)

8 (+)

9 (+)

10 (+)

11 (+)

12 (+)

13 (+)

14 (+)

15 (+)

16 (+)

17 (+)

18 (+)

Positivos 83%

APÊNDICE 02

Tabelas de resultados dos exames coproparasitológicos de ratões do

banhado do Parque Barigüí – Curitiba.

Parque Barigüí - Ratão do Banhado

Método de WILLIS-MOLLAY (1921)

Amostra n. oocistos Eimeriidae ovos Cestoda ovos Strongylídeos

1 (-) (-) (-)

2 (-) (+) (-)

3 (-) (+) (-)

4 (-) (+) (-)

5 (-) (+) (+)

6 (-) (+) (+)

7 (-) (+) (-)

8 (-) (+) (-)

9 (-) (+) (-)

10 (+) (+) (-)

11 (+) (+) (-)

12 (+) (+) (+)

13 (+) (-) (-)

14 (-) (+) (-)

15 (-) (+) (-)

16 (+) (+) (-)

Positivos 31% 88% 19%

Parque Barigüí - Ratão do Banhado

Método de SEDIMENTAÇÃO SIMPLES

Amostra n. ovos ovos oocistos Ovos ovos ovos ovos

Fasciola

Cestoda Eimeriídae Strongylídeos Strongyloides

Capillaria sp Ácaros

1 (-) (-) (-) (+) (-) (+) (-)

2 (+) (-) (-) (-) (-) (-) (-)

3 (+) (-) (+) (-) (-) (+) (-)

4 (+) (-) (-) (-) (-) (-) (+)

5 (-) (-) (+) (+) (-) (+) (-)

6 (-) (-) (+) (+) (-) (+) (-)

7 (-) (-) (+) (+) (-) (+) (-)

8 (-) (-) (+) (+) (-) (+) (-)

9 (-) (-) (+) (+) (+) (+) (-)

10 (+) (+) (+) (+) (-) (-) (+)

11 (+) (+) (-) (-) (-) (-) (-)

12 (+) (+) (-) (-) (-) (-) (-)

13 (-) (-) (+) (-) (-) (-) (+)

14 (+) (-) (-) (-) (-) (-) (-)

15 (+) (+) (-) (-) (-) (+) (+)

16 (+) (+) (-) (+) (-) (+) (+)

Positivos 56% 31% 50% 50% 6% 56%

31%

Parque Barigüí - Ratão do Banhado

Método dos QUATRO TAMISES

Amostra n.

Fasciola hepatica

1 (-)

2 (+)

3 (+)

4 (+)

5 (-)

6 (-)

7 (-)

8 (-)

9 (-)

10 (+)

11 (+)

12 (+)

13 (-)

14 (+)

15 (+)

16 (+)

Positivos 56%

APÊNDICE 03

Tabelas de resultados dos exames coproparasitológicos em capivaras

do Projeto Lago Sul – São Mateus do Sul.

Projeto Lago Sul – Capivara

Método de WILLIS-MOLLAY (1921)

Amostra n. oocistos Eimeriidae ovos Cestoda ovos Strongylídeos

Grupo 1

1 (+) (-) (-)

2 (+) (+) (+)

3 (+) (+) (-)

4 (+) (+) (-)

5 (+) (+) (-)

6 (+) (+) (-)

Grupo 2

7 (+) (+) (-)

8 (+) (+) (-)

9 (+) (+) (+)

10 (+) (+) (+)

11 (+) (+) (+)

12 (+) (+) (+)

13 (+) (-) (+)

14 (+) (+) (+)

Positivos 100% 86% 50%

Projeto Lago Sul - Capivara

Método de SEDIMENTAÇÃO SIMPLES

Amostra n. ovos Strongylídeos ovos Capillaria oocistos Eimeriídae

Bando 1

1 (-) (-) (+)

2 (+) (+) (-)

3 (-) (+) (-)

4 (+) (-) (-)

5 (-) (-) (+)

6 (+) (-) (+)

Bando 2

7 (+) (+) (-)

8 (-) (+) (-)

9 (+) (-) (-)

10 (+) (-) (+)

11 (+) (+) (+)

12 (+) (-) (-)

13 (+) (-) (-)

14 (+) (-) (-)

Positivos 71% 36% 36%

APÊNDICE 04

Tabela de medidas dos ovos de Fasciola hepatica obtidos de fezes de

capivaras do Parque Barigüí – Curitiba.

Medidas dos ovos de Fasciola hepatica

Ovo n. medida (μm)

Comprimento Largura

1 123,24 77,025

2 154,05 82,16

3 133,51 71,89

4 131,645 71,89

5 133,51 71,89

6 133,51 77,025

7 143,78 71,89

8 143,78 71,89

9 133,51 71,89

10 138,645 71,89

11 143,78 71,89

12 143,78 71,89

13 143,78 77,025

14 133,51 71,89

15 133,51 77,025

15 154,05 71,89

16 138,645 71,89

17 138,645 71,89

18 128,375 71,89

19 143,78 71,89

20 133,51 77,025

21 133,51 71,89

22 143,78 71,89

23 143,78 61,62

9. ANEXOS

ANEXO 01

*Extrapolação alométrica – convencionalmente, as doses de

medicamentos são calculadas e expressas como quantidade por unidade de

peso corporal (mg/kg). O método de extrapolação alométrica, entretanto,

calcula e expressa doses utilizando a quantidade do medicamento (mg) por

energia (kcal) consumida por um determinado animal em situação de

metabolismo basal (mg/kcal). Uma vez que a absorção, a distribuição e a

eliminação de todos os medicamentos ocorrem em função da taxa

metabólica basal, uma dose em mg/kg só poderá ser usada para animais

que absorvam, metabolizem e distribuam o medicamento da mesma

maneira. A Taxa Metabólica Basal (TMB) pode, portanto, ser utilizada para

calcular a dose de determinado medicamento para um determinado animal,

com base na dose estabelecida para outro, considerando e ajustando as

diferenças metabólicas entre os dois animais.

Os princípios de extrapolação alométrica pressupõem que a

variação dos parâmetros fisiológicos observados entre diferentes animais

apresente a mesma proporcionalidade da variação dos parâmetros

farmacocinéticos. Partindo dessa premissa e utilizando dados disponíveis de

uma determinada espécie em que tenham sido efetuados estudos

farmacocinéticos e farmacodinâmicos, ou em que existem doses

medicamentosas estabelecidas empiricamente, e compatibilizando-se as

diferenças através de fórmulas matemáticas, pode-se determinar doses para

o “animal alvo” a partir de doses utilizadas em “animais modelo”.

A extrapolação alométrica de doses farmacológicas utiliza como

base a tabela abaixo, de valores constantes:

Grupo

Animal Constante

Temperatura

corporal

(K) média

Aves passeriformes 129 42 C

não passeriformes 78 40 C

Mamíferos placentados 70 37 C

marsupiais* 49 35 C

Répteis 10 37 C

*Também para Xenarthra (edentata=tatus, tamanduás, preguiças) e

Monotrêmata (ornitorrinco/equidna).

Tabela de valores constantes para cálculo de extrapolação

alométrica.

Com base em inúmeras investigações, em diferentes espécies

animais, comparando a massa corporal com a taxa metabólica (curva “do

rato ao elefante”), observou-se que o valor 0,75 se repetia como inclinação

da equação da reta em diferentes taxons.

O método de cálculo para extrapolação alométrica interespecífica de

doses de medicamentos é:

1. Calcula-se a TMB para o animal modelo e para o animal

alvo (TMB

modelo

e TMB

alvo

2. Divide-se a dose total indicada para o modelo por sua

TMB.

3. Multiplica-se o resultado pela TMB do animal alvo.

O resultado assim obtido é a dose total para o animal alvo.

O método para o cálculo da freqüência de aplicações é:

1. Calcula-se a TME (TME = K.M

0,75

/M, onde M = massa

corporal) para o animal modelo e para o animal alvo

(TME

modelo

e TME

alvo

2. Multiplica-se a TME do animal modelo pelo intervalo de

administração do medicamento no animal modelo (em

horas).

3. Divide-se o resultado pela TME do animal alvo.

O resultado obtido será o intervalo de administração (horas) para o

animal alvo (LANGE, 2004).

ANEXO 02

TÉCNICAS DE EXAMES COPROPARASITOLÓGICOS

WILLIS-MOLLAY (1921)

. Princípio – flutuação.

. Material:

2g fezes

Solução Saturada de NaCl (sal grosso)

Peneira

Copo

Bastão de Vidro

Lâmina

. Técnica:

Homogeneizar a amostra de fezes

Misturar as fezes com 20 ml da Solução Saturada de NaCl com

auxílio do bastão

Filtrar a suspensão de fezes através da peneira recoberta com gaze

Colocar a suspensão filtrada em copo até formar um menisco

convexo

Colocar a lâmina sobre o copo, procurando que a lâmina entre em

contato com o menisco convexo. Não deverá haver bolhas de ar entre a

lâmina e o líquido

Deixar em repouso pelo tempo de 15 minutos

Remover a lâmina, que trará em sua face inferior uma gota pendente,

invertendo rapidamente sua posição, para evitar a queda da gota

Examinar ao microscópio toda a lâmina em ziguezague.

SEDIMENTAÇÃO SIMPLES

HOFFMANN, PONS E JANER, 1934

LUTZ, 1919

. Princípio – sedimentação de ovos.

. Material:

5g de fezes

400 ml de água

Lâmina e lamínula

Bastão de Vidro

Peneira

Becker com capacidade de 500 ml

Cálice de Sedimentação (500 ml)

Pipeta de Pasteur

. Técnica:

Diluir as fezes em 200 ml de água

Peneirar a suspensão diretamente no cálice de sedimentação

Deixar em repouso por 20 minutos

Decantar o líquido sobrenadante e adicionar ao sedimento 200 ml de

água

Agitar a mistura, deixando descansar por 20 minutos

Decantar o sobrenadante

Coletar com pipeta algumas gotas do sedimento

Colocar entre lâmina e lamínula

Observar ao microscópio.

TÉCNICA DOS QUATRO TAMISES

SANTIAGO GIRÃO

. Objetivo – pesquisa de ovos de Fasciola hepática em fezes.

. Princípio – lavagem e sedimentação.

. Material:

5g de fezes

Tamises com telas 100, 180, 200, 250 malhas/polegada, com

abertura de 174, 96, 87 e 65 μm, respectivamente

Bastão de vidro

Cálice de sedimentação

Placa de Petri

Pipeta de Pasteur

Corante (verde de metila a 0,5%, ou azul de metileno)

. Técnica:

Utilizar a mesma diluição do Método de Sedimentação Simples, até o

último repouso

Homogeneizar o conteúdo, agitando bem por 1 a 2 minutos

Passar a mistura lentamente no conjunto de tamises dispostos uns

sobre os outros (de cima para baixo: 100, 180, 200 e 250)

Lavar em água corrente lentamente, descartando-se, um por um, os

três primeiros tamises, recolhendo-se o material retido no último tamis (250

malhas/polegada) em uma placa de Petri, utilizando-se um fino jato de água

no sentido inverso deste tamis

Repousar por 2 minutos

Retirar, sem agitar o sedimento, o excesso de água da placa com

uma pipeta de Pasteur

Adicionar 1 a 2 gotas de corante

Examinar em estereomicroscópio.

ANEXO 03

Mapas: político e hidrográfico do Estado do Paraná, evidenciando os

municípios de Curitiba e São Mateus do Sul.

Mapa do Estado do Paraná

Mapa Hidrográfico do Estado do Paraná, evidenciando as Cidades de Curitiba e

São Mateus Do Sul, e o Rio Iguaçú

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