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INSTITUTO NACIONAL DE PESQUISAS DA AMAZÔNIA -INPA
UNIVERSIDADE DO AMAZONAS - UFAM
Aprigio Mota Morais
Dissertação apresentado ao Programa de Pós-
graduação em Biologia Tropical e Recursos
Naturais do convênio INPA/UFAM, como
parte dos requisitos para a obtenção do título
de Mestre em Ciências Biológicas, área de
concentração em Biologia de Água Doce e
Pesca Interior.
Manaus – AM
2005
Estudos parasitológicos do tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum (Cuvier, 1818) (Osteichthyes:
Characiformes) criado em tanques-rede sob altas
densidades de estocagem no lago Paru, rio Solimões,
Amazônia Central, Brasil.
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INSTITUTO NACIONAL DE PESQUISAS DA AMAZÔNIA -INPA
UNIVERSIDADE DO AMAZONAS - UFAM
Aprigio Mota Morais
Orientador: Dr. José Celso de Oliveira Malta
Dissertação apresentado ao Programa de Pós-
graduação em Biologia Tropical e Recursos
Naturais do convênio INPA/UFAM, como
parte dos requisitos para a obtenção do título
de Mestre em Ciências Biológicas, área de
concentração em Biologia de Água Doce e
Pesca Interior.
Financiamento: CNPq/INPA PPI-1-35600/PTRA/IDAM/SEPROR/AGROAMAZON
Manaus – AM
2005
Estudos parasitológicos do tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum (Cuvier, 1818) (Osteichthyes:
Characiformes) criado em tanques-rede sob altas
densidades de estocagem no lago Paru, rio Solimões,
Amazônia Central, Brasil.
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Aos meus pais Francineide Mota Morais e José Gomes de Morais
DEDICATÓRIA
Dedico o presente trabalho à comunidade do lago
Paru, que o esforço e a dedicação para aprender se
tornem uma constante em suas vidas, para que, os
processos de produção da agricultura familiar se
tornem definitivamente uma realidade no Estado do
Amazonas.
AGRADECIMENTOS
A Deus, por tornar realidade todos os fatos e momentos que achamos impossíveis que
ocorram em nossas vidas.
Ao Dr. José Celso de Oliveira Malta pela orientação, plena confiança no trabalho,
paciência e amizade.
A Dra. Ângela Maria Bezerra Varella, pelo apoio ao estudo da parasitologia de peixes,
amizade e confiança que em muito facilitaram a execução desse trabalho.
A Dra. Marle Villacorta Correa, pelo símbolo de profissionalismo, amizade, ajuda e dicas
importantes para o trabalho.
Ao CNPq pela concessão da bolsa e ao INPA pela infraestrurura cedida.
A todo corpo docente do curso BADPI, pelo repasse de experiência importantíssimo em
minha formação profissional.
A Maria do Carmo (Carminha) e Elany Cristina, pelo auxílio prestado pela secretária do
curso BADPI.
A Gabriela e tia Enilde Azevedo, pelo grande apoio durante esse trabalho.
A todos meus grandes amigos da turma de 2003, por todo companheirismo e ajuda
prestativa, que fizeram desse período uma ótima lembrança de convívio, em especial a Ana
Maria, Ana Cristina, Alzira Miranda (Zizi), Gilberto Ambiental (Giba), Grace Leal, Karém
Lorena, Leocy Cutrim (Jabira), Maeda dos Anjos, Marcelo, Renato, Rafael Mendonça (Então),
Suelen Miranda, Vivien Van Roy.
Aos amigos do Laboratório de Parasitologia Alzerina, José Francalino, Daniel Brito e
Ana. Em especial agradeço ao técnico de laboratório Edílson e a estágiaria Ane Elvas, pelo
auxílio imprescindível na análise do material.
A Rafaela Vicentini a carioca mais manauara que existe, pelo seu amor, paciência
companheirismo e amizade que me inspiram e me fazem a cada dia trabalhar mais feliz.
A minha família, pelo apoio e confiança em toda minha carreira acadêmica em, especial
aos meus irmãos José Junior, Elória Gardênia, Iran Delis e Karla Mota. Aos meus pais
Francineide Mota e José Gomes, por sua eterna preocupação com meu futuro, e por sempre me
aconselharem em melhorar a cada dia como profissional e como ser humano.
E para todas as pessoas, que sempre me motivaram, e que da alguma forma ajudaram
nesse trabalho.
A todos o meu muito obrigado.
i
Morais, Aprigio Mota
Estudos parasitológicos do tambaqui “curumim” Colossoma macropomum (Cuvier, 1818)
(Osteichthyes: Characiformes) criado em tanques-rede, sob altas densidades de estocagem no
lago Paru, rio Solimões, Amazônia Central, Brasil/ Aprigio Mota Morais– Manaus:
INPA/UFAM, 2005.
47p.
Dissertação de Mestrado
1. Parasitas-peixes 2. Tambaqui 3. Piscicultura 4. Tanques-rede 5. Amazônia
CDD 19.ed. 597. 50423
Sinopse
Foi realizado um monitoramento parasitológico do tambaqui curumim Colossoma
macropomum (Cuvier, 1818) (Osteichthyes: Characiformes) criado em tanques-rede sob três
densidades de estocagem no lago Paru, Amazônia Central. Cinco espécies de parasitas foram
encontradas, todas pertencentes à classe Monogenoidea. Anacanthorus spatulathus foi à
espécie mais abundante com mais de 50% do total de monogenóides coletados.
Palavras–chave: Parasitas-peixes, Tambaqui Curumim, Monogenoidea, Piscicultura,
Colossoma macropomum, Tanques-rede, Densidades de estocagem.
RESUMO
Este trabalho monitorou a fauna parasitológica do tambaqui “curumim” (Colossoma
macropomum), criado em tanques-rede no lago Paru, município de Manacapuru, Estado do
Amazonas. Foram examinados 93 tambaquis no período de 22/09/2004 a 22/12/2004.
Inicialmente 30 peixes foram analisados, antes de serem introduzidos nos tanques-rede, medida
realizada para o conhecimento do estado de saúde, antes de iniciar o experimento. Em seguida
foram analisados 63 tambaquis que estavam condicionados em três diferentes densidades de
estocagem (50, 100 e 150 peixes /m
3
) em 9 tanques-rede com volume igual a 6 m
3
de área. Para
reposição das amostras retiradas foram colocados 30 peixes a mais em cada tanque, antes do
início do experimento. Sete peixes foram retirados mensalmente de cada densidade, totalizando
21 peixes em cada amostragem. Através de um sorteio realizado, antes da amostragem,
souberam-se quais os tanques seriam amostrados a cada mês, e nos sorteios não houve repetição
de tanques por plataforma. Os peixes foram transportados vivos para o laboratório onde foram
necropsiados. Os parasitas encontrados foram coletados, contados, fixados e identificados. Foram
encontradas parasitando a pele, brânquias e fossas nasais do tambaqui as seguintes espécies de
monogenóideos: Anacanthorus spathulatus, Notozothecium janauachensis, Linguadactyloides
brinckmanni, Gênero novo 1 e Gênero novo 2 . A análise estatística não revelou diferença
siguinificativa entre as densidades de estocagem e intensidade parasitária. Anacanthorus
spathulatus foi a espécie que apresentou os maiores índices parasitários e a mais abundante com
84,7% do total de parasitas coletados.
ii
ABSTRACT
The purpose of the present study is to monitor the parasite fauna of the tambaqui “curumim”
(Colossoma macropomum), farmed in net cages on lake Paru, in the township of Manacapuru,
Amazonas State. Ninety-three 93 tambaquis were examined from 22/09/2004 to 22/12/2004. At
first 30 fish were analysed before being put into the net cages, which was carried out in order to
get to know the health state of the animals before beginning the experiment. Then, 63 tambaquis
which were conditioned in three different stock densities (50, 100 and 150 fish /m
3
) were
examined in 9 net cages with a volumed equal to 6 m
3
of flooded area. For reposition of the
removed specimens 30 more fish were placed in every cage before starting the experiment. Seven
fish were taken out from each stock density every month totalling 21 fish in each sampling. A
drawing of lots was carried out before the sampling in order to determine which cages would be
sampled each month, and there was no cage being repeated in any set. Fish were hauled alive to
the laboratory where they underwent necropsies. The found parasites were collected, counted,
fixed and identified. The following monogenoid species: Anacanthorus spathulatus,
Notozothecium janauachensis, Linguadactyloides brinckmanni, New Genus 1 and New Genus 2
were found infesting the skin, gills, and nasal cavities of tambaqui. The statistical analysis
showed no significant difference between stock densities and parasite intensity. Anacanthorus
spathulatus was the species which presented the highest parasite indexes and the most abundant
one with 84.7% of all collected parasites.
iii
SUMÁRIO
I. Introdução ....................................................................................................... 01
II. Justificativa ..................................................................................................... 07
III. Objetivos ......................................................................................................... 09
IV. Metodologia .................................................................................................... 09
IV.1. Área de estudo ..................................................................................... 10
IV.2. Desenho experimental ........................................................................... 12
IV.2.1. Obtenção e estocagem dos peixes ............................................ 12
IV.2.2. Delineamento experimental....................................................... 13
IV.2.3 Transporte dos peixes................................................................. 13
IV.3.Monitoramento da parasitofauna ............................................................ 13
IV.3.1. Necrópsia dos peixes ............................................................... 14
IV.3.2. Coleta dos parasitas ................................................................. 16
IV.3.3 . Estudo e preparação dos parasitas ........................................... 16
IV.4. Análises estatísticas ............................................................................... 17
IV.4.1. Índices parasitários ................................................................... 17
V. Resultados........................................................................................................ 18
VI. Discussão......................................................................................................... 27
VII. Conclusões....................................................................................................... 39
V. Bibliografia citada .......................................................................................... 40
LISTA DE TABELAS
19
Tabela 1. Espécies e número total de parasitas encontradas no tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum (Cuvier, 1818), durante a criação em tanques-
rede no lago Paru município de Manacapuru, Estado do
Amazonas........................................................................................................
Tabela 2. Índices parasitários do tambaqui “curumim” Colossoma macropomum,
criados em tanques-rede no lago Paru, Município de Manacapuru-
AM..................................................................................................................
20
Tabela 3.
Peso, comprimento total médio e índices parasitários do tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum, parasitado por Anacanthorus spathulatus, criados
em tanques-rede no lago Paru, município de Manacapuru, Estado do
Amazonas............................................................................................................
21
Tabela 4.
Peso, comprimento total médio e índices parasitários do tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum, parasitado por Notozothecium janauachensis,
criados em tanques-rede no lago Paru, município de Manacapuru, Estado do
Amazonas............................................................................................................
22
Tabela 5.
Peso, comprimento total médio e índices parasitários do tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum, parasitado por Gênero novo 1, criados em tanques-
rede no lago Paru, município de Manacapuru, Estado do
Amazonas............................................................................................................
23
Tabela 6.
Peso, comprimento total médio e índices parasitários do tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum, parasitado por Gênero novo 2, criados em tanques-
rede no lago Paru, município de Manacapuru, Estado do
Amazonas............................................................................................................
24
Tabela 7.
Peso, comprimento total médio e índices parasitários do tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum, parasitado por Linguadactyloides brinckmanni,
criados em tanques-rede no lago Paru, município de Manacapuru, Estado do
Amazonas............................................................................................................
25
LISTA DE FIGURAS
Figura 1.
Localização geográfica da área de estudo (imagem digitalizada ano base
1997) e localização dos pontos mais importantes do lago Paru,
Município de Manacapuru-AM (Brocki 2001).....................................
Figura 2.
Relação entre densidade de estocagem e intensidade parasitária, (1=50
peixes/m
3
; 2=100 peixes/m
3
; 3=150 peixes/m
3
).........................
26
11
1
I. Introdução
O meio ambiente aquático destaca-se como uma importante fonte de alimentos
para população mundial, no entanto, a velocidade atual de exploração dos recursos
pesqueiros reflete problemas de sobre-exploração para algumas espécies de peixes
(Batista, 1998; Romero et al., 2003).
A pesca na região Amazônica constitui a principal fonte de proteína da
população (Araújo-Lima & Goulding, 1998). O consumo de peixes corresponde à cerca
de 70% da proteína animal consumida pela população local, sendo o maior consumo
per capita do Brasil, 155g/dia contra 16g/dia de outras regiões (Batista, 1998).
Nos últimos anos a intensificação da pesca na Amazônia, levou espécies de
maior valor comercial como o pirarucu e o tambaqui a apresentarem uma diminuição
siguinificativa em suas populações naturais, o que contribuiu para o desequilíbrio de
seus estoques naturais (Petrere, 1985; Bittencourt, 1991; Isaac & Rufino, 1996).
O tambaqui Colossoma macropomum (Cuvier, 1818) pertence à família
Characidae e subfamília Serrasalminae é considerado o segundo maior peixe de
escamas de água doce do planeta (Goulding & Carvalho, 1982). Ocorre no Brasil,
Venezuela, Colômbia, Peru e Bolívia (Araújo-Lima & Goulding, 1998).
Devido à sobre-exploração dos estoques na Amazônia Central, o tambaqui faz
parte da lista de espécies protegidas e, durante o período de defeso (novembro a março)
sua pesca fica proibida. Esta medida visa ajudar na recuperação dos estoques (Araújo-
Lima & Goulding, 1998).
Sua importância para região é explicada por contribuir com aproximadamente
17% do pescado desembarcado no mercado de Manaus, e vem apresentando nos últimos
2
dez anos, uma tendência à diminuição de sua quantidade bruta capturada, indícios de
sobrepesca (Batista, 1998). Esta situação propiciou o desenvolvimento acelerado de
tecnologias nos sistemas aqüícolas para, tentar minimizar os impactos sobre a espécie
(Romero et al., 2003).
A aqüicultura apresenta-se como uma atividade promissora para a região
amazônica, tanto para aumentar a oferta de pescado, como para auxiliar a conservação
de espécies como o tambaqui (Thomé, 2000). Fatores como tendência ao aumento
natural da demanda por pescado, a redução dos estoques naturais e a necessidade de se
aumentar a produtividade nos sistemas aqüícolas, têm gerado um crescente interesse
pela produção de organismos aquáticos em tanques-rede (Borba et al., 1998). No
Amazonas a piscicultura começa a desempenhar um papel importante na oferta de
pescado, suprindo a carência desse produto principalmente na época de entressafra (Val
et al., 2000; Thomé, 2000).
A criação de peixes em tanques-rede é a forma mais intensiva de criação de
peixes atualmente praticada (Beveridge, 1996). Os tanques-rede são estruturas
flutuantes, que podem ser confeccionadas em diferentes formatos, tamanhos, materiais e
podem ser utilizados tanto em ambientes marinhos quanto de água doce, esta
modalidade de criação tem vantagens sobre as outras, pois na sua construção podem ser
utilizadas tecnologias simples e com baixos níveis de investimento (Andrade et al.,
1993; Beveridge, 1996).
Nesse sistema, os peixes são mantidos em um volume de água, que possibilita a
sua livre e constante circulação, fato que favorece a remoção de metabólitos e a aeração
do meio (Beveridge, 1996; Schimittou, 1997). A criação de peixes em tanques-rede
apresenta mais vantagens sobre o extrativismo e a piscicultura tradicional do ponto de
vista técnico, ecológico, social e econômico O investimento necessário para a produção
3
de uma tonelada de peixes em tanques-rede é 30 a 40% menor, quando comparado com
os viveiros convencionais. Este fato aliado às altas produtividades que o sistema pode
proporcionar, tem sido responsável pela grande expansão deste tipo de criação no
mundo (Schmittou, 1997).
Os tanques-rede são apropriados para produzir peixes, tanto em escala artesanal
como comercial. Uma das grandes vantagens é que podem ser utilizados em corpos de
água já existentes e ser implantado onde as pescarias estão em declínio (Schmittou,
1997). A criação de peixes em tanques-rede também pode desempenhar um papel
social, aumentando a fonte de renda das unidades familiares rurais, contribuindo para a
permanência do homem no campo (Villacorta-Correa comunicação pessoal).
Nuñez & Salaya (1984) recomendaram o tambaqui como uma espécie adequada
para a criação em tanques-rede pelos seguintes motivos: resistência à manipulação;
pouco exigente em relação à qualidade da água; rápido crescimento, fácil indução à
desova; hábito alimentar onívoro; aceita facilmente ração; suporta altas densidades de
estocagem e possui carne de excelente qualidade sendo de grande aceitação pela
população.
Apesar da grande área hidrográfica da região de várzea da bacia Amazônica, o
uso deste sistema, na Amazônia brasileira para a criação de peixes, ainda não é uma
prática muito utilizada. Principalmente devido à falta de conhecimentos técnicos e
científicos que permitam o estabelecimento racional e econômico da atividade. Porém,
esta pode vir a ser uma alternativa para a criação de algumas espécies (Varella et al.,
2003).
A densidade de estocagem dos peixes constitui uma das variáveis mais
importantes nas criações em tanques-rede, pois pode influenciar diretamente o custo de
produção bem como no estado de saúde dos animais (Beveridge, 1996; Andrade et al.,
4
1993; Huguenin,1997; Yi & Lin, 2001). Porém, a utilização de elevadas densidades de
estocagem promove ocorrência de estresse biológico (Chagas et al., 2003; Franmir et
al., 2004).
Há uma fauna de animais que utilizam o peixe como substrato e vivem em
equilíbrio com o hospedeiro. Peixes confinados estão sujeitos a grande estresse por
captura e manuseio inadequado; problemas com altas densidades de estocagem; água
com excesso de compostos tóxicos; baixa quantidade de oxigênio; pH e temperaturas
com grandes variações; escassez ou excesso de alimentação; instalações inadequadas
(Malta, 2001; Gomes et al., 2003). Estes fatores quebram a homeostase e o equilíbrio
que existiria entre o hospedeiro e sua fauna simbionte, dando lugar a epizootias, que são
de difícil controle e podem levar os peixes à morte em pouco tempo (Malta et al., 2001).
Merola & Souza (1988) mostraram que o tambaqui cresce bem em densidades
de 100 ind/m
3
e 150 ind./m
3
em tanques-rede mantidos em reservatório. Pouca diferença
nas taxas de crescimento foram encontradas entre as densidades de 100 ind/m
3
e 50
ind/m
3
(Bello & Rivas, 1989). Já Mendes & Vallejos (1987) concluíram que se pode
estocar até 60 peixes/m
3
durante 120 dias sem que esta densidade limite o crescimento
em peso e comprimento ou influa na taxa de sobrevivência do tambaqui. Entretanto não
pareceu existir uma relação entre a ocorrência de parasitas e o aumento das densidades
de estocagem de 25 ind/m
3
, 50 ind/m
3
e 75 ind/m
3
(Varella et al., 2003).
Os peixes são os vertebrados mais parasitados, sendo seus parasitas incluídos em
vários filos e com um grande número de espécies já descritas (Malta, 1984). São
conhecidas aproximadamente 10.000 espécies de parasitas, sendo 4.200 ectoparasitas de
peixes, possuindo distribuição mundial e afetando todas as espécies de peixes, em
praticamente todos os corpos d’ água (Moller & Anders 1986 apud Eiras, 1994).
5
Apesar do grande crescimento da piscicultura no Brasil, as doenças em peixes
ainda são pouco estudadas (Varella et al., 2003). Estudos relativos a parasitologia e
patologia de peixes cultivados devem ser incentivados, pois as enfermidades na
piscicultura são responsáveis por grandes prejuízos, como altas taxas de mortalidade,
redução de crescimento e perda do valor comercial (Eiras, 1994; Pavanelli et al., 1998;
Malta et al., 2001).
Outro problema na criação de peixes em tanques-rede está no controle das
injúrias mecânicas provocadas pelos materiais utilizados para a construção dos tanques
e no controle da eutrofização, situações estas que podem induzir o aparecimento de
doenças de diversas origens e de difícil controle (Beveridge, 1996). Um
acompanhamento das condições de saúde dos peixes confinados é primordial (Malta et
al., 2001), havendo para isso a necessidade de implantação de um programa preventivo
de saúde, onde a manutenção do bom estado imune dos peixes é essencial na defesa
contra bactérias, vírus, fungos e parasitas (Waagbo, 1997; Verlhac et al., 1998; Malta et
al., 2001).
A adoção de tal medida se faz necessária, pois se barreiras como escamas, pele e
muco, que constituem a primeira linha de defesa do peixe são penetradas por um
patógeno, então os outros componentes do sistema imune serão vencidos, e a supressão
da função imune em vários pontos deixará o peixe mais vulnerável a aquisição de
doenças (Waagbo, 1994). A alta ocorrência de parasitas nos peixes amazônicos é um
fato comprovado, e a maior dificuldade no controle de parasitoses destes peixes é o
relativo desconhecimento dos seus ciclos biológicos e das suas vias de transmissão
(Varella & Oliveira, 1981).
O ambiente aquático facilita tanto o acesso quanto a penetração de agentes
patogênicos e, em circunstâncias de confinamento, favorece o aparecimento e a
6
transmissão de doenças (Thatcher, 1991; Martins & Romero, 1996). Esse quadro
agrava-se quando os peixes são submetidos à constantes situações estressantes, seja por
alterações ambientais ou pelo manejo inadequado no sistema de produção (Sniesko,
1974; Roberts, 1991;
Araújo-Lima & Goulding, 1998; Malta et al., 2001).
Já foram identificados no tambaqui parasitas pertencentes aos seguintes grupos:
Monera (bactérias); Fungi (fungos); Protozoa (Ciliophora e Sarcomastigophora);
Myxozoa; Platyhelminthes, (Monogenea, Digenea e Cestoda); Nematoda;
Acanthocephala e Arthropoda (Copepoda, Branchiura e Isopoda) (Kritsky et al., 1979;
Malta & Varella, 1983; 2000; Malta et al., 2001; Thatcher & Kritsky, 1983; Thatcher &
Borger, 1984; Thatcher & Paredes, 1985; Conroy, 1989; Thatcher, 1991; Molnar &
Bekesi, 1993; Eiras, 1994; Fischer et al., 2003; Silva, 2001).
Entre as doenças parasitárias mais comumente relatadas para o tambaqui estão as
causadas por acantocéfalos, Myxobolus sp. monogeneas; copépodos; branquiúros e
fungos (Benetton & Malta, 1999; Matsunae, 2000; Malta et al., 2001).
Em tambaquis criados em pequenas barragens na Amazônia, próximo a Manaus,
ocorreu grande mortalidade de peixes causada por uma alta infestação do acantocéfalo
Neoechinorhynchus buttnerae Golvan, 1956. A prevalência foi de 100% , a intensidade
de infecção variou de 30 a 406 e a intensidade média e abundância foi de 125,26. A
epizootia ocasionou a oclusão do trato intestinal, prejudicando a capacidade de absorção
de alimentos (Malta et al., 2001).
Varella et al. (2003) trabalhando com juvenis de tambaqui, criados em tanques-
rede em um lago de várzea da Amazônia Central, relacionaram os maiores índices
parasitários ao grupo dos Monogenóideos, sendo as espécies mais freqüentes
Anacanthorus spathulatus Kritsky, Thatcher & Kayton, 1979 e Linguadactyloides
brinckmanni Thatcher & Kritsky,1983.
7
Entretanto existe uma relativa escassez de informações sobre aspectos
parasitológicos de peixes criados em sistemas de tanques-rede na Amazônia. Os resultados
obtidos neste trabalho visam fornecer informações a serem utilizadas no controle e
prevenção dos patógenos para criações de tambaquis em tanques-rede na região.
II. Justificativa
O tambaqui “curumim”
Até pouco tempo o consumo de tambaqui, pela população amazônica, se
restringia a exemplares acima de 3kg, sendo de pouca aceitação pelo mercado
consumidor os exemplares abaixo deste peso popularmente denominados “ruelo”.
Com o intuito de incentivar a produção de peixes em tanques-rede, como uma
alternativa de produção de peixes pelas comunidades ribeirinhas, a Secretaria de
Produção Rural do Estado do Amazonas (SEPROR) instalou unidades de observação
para a criação de peixes em tanques-rede, em lagos selecionados para o cultivo:
Puraquequara localizado no município de Manaus; Limão, Calado e Paru localizados no
município de Manacapuru.
O projeto-piloto foi iniciado em 2003. Obteve-se uma produção média de 22,5 t
de tambaqui-”curumim” por safra, que recebeu este nome por ser criado em apenas três
meses com ração balanceada, e ter peso médio de 400 gramas e cerca de 31cm de
comprimento (Fonte: SEPROR). A produção experimental do tambaqui “curumim” será
comercializada através da Agência de Agronegócios do Amazonas (Agroamazon). Para
que isso se torne possível, o acompanhamento do estado de saúde dos animais se torna
essencial, contribuindo com o conjunto de informações que possibilitarão o fechamento
de um pacote tecnológico para a criação do tambaqui “curumim” em tanques-rede no
Estado do Amazonas.
8
III. Metodologia.
III.1. Área de estudo.
O estudo foi realizado no lago Paru, município de Manacapuru, Estado do
Amazonas (60
0
32' W; 30 17' S). O lago compreende uma área de aproximadamente 18
km
2
, situada às margens do rio Solimões, distante 20km cidade de Manacapuru e 100
km de Manaus
(Figura 1). A área de estudo está inserida no limite de um extinto projeto
de assentamento dirigido, originalmente denominado “Plano Integrado de Colonização
– PIC, Bela Vista” localizado entre os municípios de Iranduba e Manacapuru, Estado do
Amazonas (Barbosa 1977).
O lago Paru situa-se na margem esquerda do baixo rio Solimões onde são
encontradas duas ordens de paisagens distintas: as várzeas, ou terras alagadiças nas
imediações dos rios, e as “terras-firmes” (Brocki, 2001). O lago Paru recebe,
periodicamente, ao longo do ano, as águas do rio Solimões através de canais ou “furos”,
constituindo-se um vale alagável de rio, formando um corpo d'água similar aos lagos
propriamente ditos, que se estende até a terra-firme. Pode ser denominado “lago de
terra-firme” uma vez que apresenta ramificações dendríticas com as elevações de terra-
firme (Sioli, 1984; Irion et al., 1997).
Quanto a geomorfologia do lago Paru, trata-se a área de interflúvios tubulares
em “v”, com intensidade de aprofundamento da drenagem fraca, e ordem de grandeza
da forma de dissecação compreendida no limite entre 750m e 1.750m (Sioli, 1984; Irion
et al., 1997). Os solos da região são do tipo latossolo amarelo álico, apresentando um
alto grau de intemperismo, normalmente compostos por óxidos hidratados de ferro e
alumínio de baixa capacidade de troca de cátions e baixa saturação de bases
(RADAMBRASIL, 1978).
9
10
III. 2. Desenho experimental.
Foram instalados nove tanques-rede de médio volume (2,0 x 2,0 x 1,5m)
totalizando cada um volume de 6m
3
. Os tanques-rede foram construídos com telas de
alambrado revestidas de PVC. Como elemento flutuador foram utilizadas bombonas de
plástico de 20 litros. Os tanques-rede foram colocados em locais com profundidade igual
ou maior que seis metros, com o intuito de deixar uma distância de pelo menos dois metros
entre o fundo do tanque e o fundo do lago. Foi construída uma estrutura quadrada fixada
com cabos de aço e ancorada com doze poitas. A estrutura foi composta por três fileiras
(plataforma) de tanques com uma distância de 18m entre as fileiras e um espaçamento de
pelo menos dois metros em cada fileira.
A plataforma com os tanques-rede foi colocada na parte mais profunda do lago,
considerando o período da seca. Para isto foram obtidas informações dos moradores da
comunidade e verificada com a batimetria do local. Outros critérios utilizados para seleção
do local de ancoragem da estrutura dos tanques-rede foram: pouco fluxo de embarcações;
direção dos ventos; velocidade da correnteza e concentração de oxigênio dissolvido. As
rações foram estocadas em um flutuante próximo ao local do experimento, o mesmo
também servia para os moradores do lago vigiarem os tanques contra predadores naturais e
possíveis furtos.
III. 2.1. Obtenção e estocagem dos peixes.
Juvenis de tambaqui com 19,71± 18,3cm de comprimento total e pesando 87 ± 75g
oriundos da estação de piscicultura de Balbina, município de Presidente Figueredo, Estado
do Amazonas, foram estocados nos tanques-rede em três densidades de estocagem
diferentes: densidade 1=50 peixes/m
3
; densidade 2=100 peixes/m
3
; densidade 3=150
peixes/m
3
.
11
III. 2.2. Delineamento experimental.
Foram realizadas coletas mensais e retiradas amostras por um período de três
meses. A amostragem inicial (t
0
) ocorreu em 22/09/2004, quando foram retirados 30 peixes
antes de serem estocados nos tanques-rede. Posteriormente retirou-se aleatoriamente a cada
mês, sete peixes por tanque de cada densidade totalizando 21 indivíduos em cada
amostragem. Através de um sorteio definia-se quais os tanques de cada densidade seriam
amostrados a cada mês. Nos sorteios, não houve repetição de tanques por plataforma. Para
reposição das amostras retiradas foram colocados 30 peixes a mais em cada tanque antes
do início do experimento.
III. 2.3. Transporte dos peixes.
Os peixes foram transportados vivos dentro de sacos plásticos de 60 litros,
imediatamente transferidos para os tanques de concreto revestidos de azulejos no
laboratório úmido do INPA, permanecendo vivos, sem alimentação até o momento da
necrópsia.
III.3. Monitoramento da parasitofauna.
O número de peixes de cada amostra parasitológica foi calculado de acordo com a
Tabela da American Fisheries Society, modificada por Kabata (1985), com 95% de grau de
confiança e uma prevalência estimada em 10%.
III.3.1. Necrópsia dos peixes.
A necrópsia foi realizada seguindo o roteiro do Laboratório de Parasitologia e
Patologia de peixes do Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia (LPP/INPA).
12
1. Para cada peixe examinado foi aberta uma ficha de necrópsia preenchendo todos
os campos. Número do peixe a ser examinado, mais a data do dia em que foi examinado:
se for o primeiro peixe do dia 02/03/2004, seu numero de identificação será 01020304.
2. Foram retirados os dados biométricos, comprimento total (cm), comprimento
furcal (cm), comprimento padrão e peso total (g).
3. A necrópsia começou pelos tecidos externos e gradualmente avançou para os
mais internos, cada tecido foi examinado intacto, antes de qualquer interferência.
4. Com o auxílio de um estilete os peixes foram sacrificados através de perfuração
na região cefálica.
5. Foram examinadas macroscopicamente as superfícies externas dos peixes (pele,
nadadeiras, boca, olhos, opérculos, ânus), a procura de lesões, úlceras, hemorragias
subcutâneas, escamas levantadas ou perdidas, pústulas, cistos e descolorações.
6. Foi examinada a região perianal, procurando áreas vermelhas incomuns e
prolapsos do intestino.
5. Com auxílio de uma tesoura foram removidas as fossas nasais e colocadas em
placas de Petri sob o estereomicroscópio. Foram realizadas lavagens sucessivas com água
destilada para remoção de copépodos, monogeneas e protozoários.
6. Foram cortados os opérculos direito e esquerdo a procura de parasitas, lesões e
vascularização anormal.
7. Os arcos branquiais foram retirados e examinados individualmente em placa de
Petri. A brânquia foi segura com uma pinça e cada filamento examinado com auxilio de
um fino estilete sob microscópio estereoscópio.
8. A cavidade abdominal foi aberta com uma tesoura fina, foi efetuada uma
perfuração na linha média ventral da parede abdominal, em seguida foram retirados os
13
órgãos internos (intestino, fígado, estômago, bexiga natatória e baço), examinando cada
um verificando a presença de parasitas.
9. O canal alimentar e órgãos associados como unidade, foram inteiramente
removidos, foi feito um corte transversal no esôfago, próximo a cavidade bucal e cortes no
ligamento hepático e no reto próximo ao ânus. O complexo inteiro foi colocado em uma
placa de Petri grande, separando os seguintes componentes: trato intestinal, fígado, bexiga
natatória, pâncreas (se identificado) e baço.
10. O fígado e a bexiga natatória foram os primeiros órgãos a serem examinados. O
fígado foi separado da bexiga, registrado sua coloração e logo após foi cortado em finos
pedaços examinando isoladamente as superfícies.
11. A bexiga natatória foi removida, examinando sua parede externa, em seguida
foi aberta sua superfície interna e examinada.
12. Foram feitos esfregaços de baço e fígado a procura de parasitas.
13. Posteriormente um pedaço de aproximadamente 5cm foi retirado de cada órgão,
colocado entre lâmina e lamínula e observado no microscópio óptico.
14. Foram feitas lâminas temporárias do intestino, estômago e bexiga natatória para
verificar a presença de protozoários.
15. Os olhos foram examinados cuidadosamente verificando se havia rotação e se
as membranas estavam elásticas e bem visíveis. Foi feito um corte em torno da órbita, bem
como um corte dos músculos do olho e do nervo óptico. Dessa forma os olhos foram
removidos e colocados em placa de Petri com água destilada para verificar a presença de
metacercárias.
14
III.3.2. Coleta dos parasitas.
Os parasitas encontrados foram coletados, contados, fixados, rotulados e
armazenados em frascos com formol a 5% para posteriores tratamentos e preparações.
III.3.3. Estudo e preparação dos parasitas.
O estudo das estruturas esclerotizadas de Monogenoidea e de Copepoda foi feito
através do método de Gray & Wess.
a) Método de Gray & Wess
1º) Preparação da solução de Gray & Wess:
2g de álcool polivinílico em pó
7ml de acetona a 70%
5ml de ácido láctico
5ml de glicerina
10ml de água destilada
Após misturar todos esse materiais, mexer com a ajuda de uma espátula até o
álcool polivinílico dissolver por completo e transformar-se numa solução homogênea e
transparente.
2º) Montagem do espécime na lâmina :
Cada indivíduo foi retirado da solução aquosa de formol 5% em que se encontrava
e colocados em placas de Petri contendo água destilada por 1 a 5 minutos, sendo em seguida
transferidos para uma pequena gota de Gray & Wess sobre uma lâmina, e cobertos com uma
lamínula.
15
III.4. Análises estatísticas.
Para cada densidade foi realizada uma Análise de Variância (ANOVA/One-Way)
(F= 0,05) como recomendado por Gill 1986, apud Costa (1991). Os dados foram
logaritimizados para obter as premissas de homocedasticidade, linearidade e normalidade.
Em caso de diferenças entre as densidades, foi aplicado o teste Tukey (α= 0,05). Os dados
foram analisados através do pacote estatístico STATISTICA versão 6.0.
III.4.1. Índices parasitários.
Os índices parasitários foram analisados de acordo com Bush et al. (1997):
1. Prevalência (%) = n
o
de peixes parasitados por uma determinada espécie de parasita
n
o
de peixes examinados
2. Intensidade = Expresso como variação numérica (número de parasitas encontrados).
3. Intensidade média = n
o
total de parasitas encontrados de uma determinada espécie
n
o
de peixes parasitados por determinada espécie
4. Abundância = n
o
total de parasitas
n
o
de peixes examinados
As amostras de material testemunho e as novas espécies de parasitas encontradas
foram depositadas na Coleção de Invertebrados do Instituto Nacional de Pesquisa da
Amazônia – INPA, em Manaus, Estado do Amazonas, Brasil.
X 100
16
IV. Resultados
Foram examinados 93 tambaquis no período de 22/09/2004 a 22/12/2004. Os
peixes apresentaram peso e comprimento padrão iniciais de 87 ± 75g e 19,71± 18,3cm na
primeira coleta (tempo 0) e 419,0 ± 328,36g e 30,42 ± 27,84cm ao final do experimento.
Cinco espécies de monogenóideos foram encontradas parasitando as brânquias,
uma espécie as fossas nasais e uma a pele. Foram encontradas parasitando a pele e
brânquias do tambaqui Anacanthorus spathulatus Kritsky, Thatcher & Kayton, 1979
família Dactylogyridae subfamília Anacanthorinae Price, 1967; Brânquias e fossas nasais
Notozothecium janauachensis Belmont-Jégu, Domingues & Martins 2004 subfamília
Ancyrocephalinae Bychowsky, 1937 e Linguadactyloides brinckmanni Thatcher &
Kritsky, 1983 familia Dactylogyridae subfamília Linguadactyloidinae; Gênero novo 1 e
Gênero novo 2 subfamília Ancyrocephalinae Bychowsky 1.937 ocorreram parasitando as
brânquias.
Foi coletado, um total de 7.974 monogenóideos, dos quais 84,7% eram
Anacanthorus spathulatus; 10,12% Notozothecium janauachensis; 3,21% Gênero novo 1;
1,75% Gênero Novo 2 e apenas 0,21% Linguadactyloides brinckmanni. A Tabela 1
mostra a lista das espécies encontradas no tambaqui “curumim”, o total de parasitas
encontrados e seus locais de fixação no hospedeiro.
17
Tabela 1. Espécies e número total de parasitas encontrados no tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum (Cuvier, 1818), criados em tanques-rede no lago Paru,
município de Manacapuru, Estado do Amazonas.
Espécie de parasita
Total de
parasitas
Locais de Fixação
Anacanthorus spathulatus
6.754 Pele e brânquias
Notozothecium janauachensis
807 Brânquias e fossas nasais
Gênero novo 1 256 Brânquias
Gênero novo 2 140 Brânquias
Linguadactyloides brinckmanni
17 Brânquias
Total 7.974 93 Tambaquis
A Tabela 2 mostra os índices parasitários do tambaqui “curumim” durante todo o
experimento. Com exceção dos peixes que foram coletados antes da estocagem nos
tanques-rede (tempo 0) que apresentaram uma prevalência de 93,33%, em todas as
densidades de estocagem a prevalência foi de 100%. A maior intensidade parasitária
apareceu no 2
0
e 3
0
meses na densidade de 50 peixes/m
3
. No 2
0
mês com peixes
apresentando peso e comprimento padrão igual a 263,10 ± 204,63g e comprimento padrão
27,01± 24,21cm, a intensidade variou de 36 a 2.092 parasitas por peixe, com total de 2.272
parasitas coletados. A intensidade média e abundância parasitária foram de 324,57. No 3
0
mês
os peixes apresentavam peso e comprimento padrão médio igual a 419,11± 317,71g e
30,42 ± 27,84 cm, a intensidade variou de 5 a 1.760 parasitas por peixe, com total de 2.092
parasitas coletados (Tabela 2).
18
Tabela 2. Índices parasitários do tambaqui “curumim” Colossoma macropomum, criados em
tanques-rede no lago Paru, Município de Manacapuru Estado do Amazonas.
Densidade de
estocagem
Peso
médio
Com.total
médio PP/PE P Intensidade Intensidade Abundância
(peixes/m³)
(g) (cm) %
Nº de parasitas
média
Tempo 0
Antes da
estocagem
86,70 19,71 28/30 93,33 32-161 (225) 8,03 7,50
mês 1 50 146,04 23,24 7/7 100 1-59(73) 10,42 10,42
100 138,90 22,75 7/7 100 2-35(37) 5,28 5,28
150 147,27 23,42 7/7 100 12-144(194) 27,71 27,71
mês 2 50 263,10 27,01 7/7 100 36-2092(2,272) 324,57 324,57
100 204,73 24,21 7/7 100 44-957(1,363) 194,71 194,71
150 209,43 25,38 7/7 100 7-125(161) 23,00 23,00
mês 3 50 419,11 30,42 7/7 100 5-1.760(2,035) 290,71 290,71
100 317,71 28,71 7/7 100 7-1.016(1,084) 154,85 154,85
150 328,36 27,84 7/7 100 2-405(463) 66,14 66,14
PP: peixes parasitados; PE: peixes examinados; P: prevalência.
Anacanthorus spathulatus
Anacanthorus spathulatus foi a espécie que apresentou os maiores índices
parasitários em todo o experimento. Foi encontrado parasitando a pele e, principalmente as
brânquias do tambaqui. A Amostra analisada antes da estocagem (tempo 0) apresentou
uma prevalência de 83,33%. Durante 1
0
mês de experimento, nas densidades de 50 e 150
peixes/m
3
,
as prevalências foram de 71,42 e 85,71% respectivamente. No 2
0
mês, na
densidade de 150 peixes/m
3
, também alcançou 85,71% e em todas as outras densidades de
estocagem a prevalência foi 100% (Tabela 3).
A maior intensidade parasitária de A. spathulatus ocorreu no 2
0
e 3
0
meses nas
densidades de 50 peixes/m
3
. No 2
0
mês os peixes apresentaram peso e comprimento padrão
médio variando de 263,10± 204g 73 e 27,01± 24,21cm, a intensidade variou de 150 a 655
19
parasitas por peixe, sendo coletados um total de 2.092 indivíduos. A intensidade média e
abundância foram de 298,85.
No 3
o
mês
os peixes apresentaram peso e comprimento padrão igual a 419,11±
317,71g e 30,42 ± 27,84cm, a intensidade variou de 76 a 500 A. spathulatus por peixe, com
total de 1.760 parasitas coletados. A intensidade média e abundância foram de 251,42.
PP: peixes parasitados; PE: peixes examinados; P: prevalência.
Notozothecium janauachensis
Notozothecium janauachensis foi a espécie que apresentou os segundos maiores
índices parasitários. Foi encontrado nas fossas nasais e brânquias do tambaqui. Os maiores
índices parasitários de N. janauachensis ocorreram no 2
0
e 3
0
meses, com prevalências de
Tabela 3. Peso, comprimento total médio e índices parasitários do tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum, parasitado por Anacanthorus spathulatus, criados em
tanques-rede no lago Paru, município de Manacapuru, Estado do Amazonas.
Densidade de
estocagem
Peso
médio
Com.total
médio PP/PE P Intensidade Intensidade Abundância
(peixes/m³)
(g) (cm) %
Nº de parasitas
média
Tempo 0
Antes da
estocagem
86,70 19,71 25/30 83,33 1-29 (161) 6,44 5,36
mês 1 50 146,04 23,24 5/7 71,42 3-29(59) 11,80 8,40
100
138,90 22,75 7/7 100 2-14(35) 5,00 5,00
150
147,27 23,42 6/7 85,71 4-34(144) 24,00 20,57
mês 2 50 263,10 27,01 7/7 100 150-655(2.092) 298,85 298,85
100 204,73 24,21 7/7 100 60-210(957) 136,71 136,71
150 209,43 25,38 6/7 85,71 1-19(125) 20,83 17,85
mês 3 50 419,11 30,42 7/7 100 76-500(1.760) 251,42 251,42
100 317,71 28,71 7/7 100 63-203(1.016) 145,14 145,14
150 328,36 27,80 7/7 100 6-67(405) 57,85 57,85
20
85,71%, nas densidades de 100 e 50 peixes /m
3
. No 2
0
mês, a intensidade variou de 1 a 200
(254 total), a intensidade média foi 42,33 e a abundância de 36,28. No 3
0
mês, na
densidade de 50 peixes /m
3
, a intensidade variou de 1
a 210 (227 total), a intensidade
média foi de 37,83 e a abundância de 32,42. A Tabela 4 mostra os índices parasitários de
N. janauachensis.
Tabela 4. Peso, comprimento total médio e índices parasitários do tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum, parasitados por Notozothecium janauachensis, criados
em tanques-rede no lago Paru, município de Manacapuru, Estado do Amazonas.
Densidade de estocagem
Peso
médio
Com.total
médio PP/PE P Intensidade Intensidade Abundância
(peixes/m³)
(g) (cm) %
Nº de parasitas
média
Tempo 0
Antes da
estocagem
86,70 19,71 23/30 76,66 1-19(127) 5,52 4,23
mês 1 50 146,04 23,24 1/7 14,28 1,00 1,00 0,14
100
138,90 22,75 0/7 0,00 0,00 0,00 0,00
150
147,27 23,42 7/7 100 1-5(25) 3,57 3,57
mês 2 50 263,10 27,01 7/7 100 1-27(91) 13,00 13,00
100 204,73 24,21 6/7 85,71 1-200(254) 42,33 36,28
150 209,43 25,38 2/7 28,57 1-20(21) 10,50 3,00
mês 3 50 419,11 30,42 6/7 85,71 1-210(227) 37,83 32,42
100 317,71 28,71 7/7 100 1-10(26) 3,71 3,71
150 328,36 27,80 6/7 85,71 1-10(35) 5,83 5,00
PP: peixes parasitados; PE: peixes examinados; P: prevalência.
Gênero novo 1
Os indivíduos do Gênero novo 1 apresentaram baixa representatividade nas
ocorrências parasitárias, foi encontrado somente nos filamentos branquiais. Os maiores
índices parasitários ocorreram no 2
o,
mês na densidade de 100 peixes/m
3
. A prevalência foi
21
de 100% e a intensidade variou de 3 a 24 (108 total), a intensidade média e abundância
foram de 14,42 (Tabela 5).
Tabela 5. Peso, comprimento total médio e índices parasitários do tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum, parasitados por Gênero novo 1, criados em tanques-
rede no lago Paru, município de Manacapuru, Estado do Amazonas.
Densidade de estocagem
Peso
médio
Com,total
médio PP/PE P Intensidade Intensidade Abundância
(peixes/m³)
(g) (cm) %
Nº de parasitas
média
Tempo 0
Antes da
estocagem
86,70 19,71 8/30 14,28 1-23 (34) 4,25 1,13
mês 1 50 146,04 23,24 1/7 14,28 1-7(8) 8,00 1,14
100
138,90 22,75 0/7 0,00 0,00 0,00 0,00
150
147,27 23,42 2/7 28,57 2-5(13) 6,50 1,85
mês 2 50 263,10 27,01 7/7 100 17-2 (53) 7,57 7,57
100 204,73 24,21 7/7 100 3-24(108) 15,42 15,42
150 209,43 25,38 2/7 28,57 3-5(8) 4,00 1,14
mês 3 50 419,11 30,42 6/7 85,71 1-10(20) 3,33 2,85
100 317,71 28,71 6/7 85,71 1-9(25) 4,16 3,57
150 328,36 27,80 5/7 71,42 1-7(17) 3,40 2,42
PP: peixes parasitados; PE: peixes examinados; P: prevalência.
Gênero novo 2
Os indivíduos do Gênero novo 2 parasitavam apenas os filamentos branquiais. O
maiores índices parasitários ocorreram no 2
0
mês, na densidade de 100 peixes/m
3
. A
prevalência foi de 85,71%, a intensidade variou de 5 a 15 (44 total), a intensidade média
foi 7,33 e a abundância de 6,28 (Tabela 6).
22
Linguadactyloides brinckmanni
Linguadactyloides brinckmanni ocorreu apenas no 3
0
mês de coleta. Foi encontrada
parasitando somente as brânquias de um dos sete tambaquis analisados de cada densidade
de estocagem. Os maiores índices parasitários ocorreram no 3
0
mês na densidade de 100
peixes /m
3
. A prevalência foi de 14,28%, a intensidade e intensidade média foram iguais a
10 e a abundância 1,42 (Tabela 7).
Tabela 6. Peso, comprimento total médio e índices parasitários do tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum, parasitados por indivíduos do Gênero novo 2,
criados em tanques-rede no lago Paru, município de Manacapuru, Estado do
Amazonas.
Densidade de estocagem
Peso
médio
Com.total
médio PP/PE P Intensidade Intensidade Abundância
(peixes/m
³)
(g) (cm) %
Nº de
parasitas
média
Tempo 0
Antes da
estocagem
86,70 19,71 0/7 0,00 0,00 0,00 0,00
mês 1 50 146,04 23,24 2/7 28,57 3-2(5) 2,50 0,71
100
138,90 22,75 2/7 28,57 1-1(2) 1,00 0,28
150
147,27 23,42 4/7 57,14 1-8(12) 3,00 1,71
mês 2 50 263,10 27,01 6/7 85,71 16-3(36) 6,00 5,14
100 204,73 24,21 6/7 85,71 5-15(44) 7,33 6,28
150 209,43 25,38 2/7 28,57 3-7(7) 3,50 1,00
mês 3 50 419,11 30,42 5/7 71,42 (1-9)23 4,60 3,28
100 317,71 28,71 2/7 28,57 2-5(7) 3,50 1,00
150 328,36 27,80 5/7 71,42 1-2(7) 1,40 1,00
23
Tabela 7. Peso, comprimento total médio e índices parasitários do tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum, parasitados por Linguadactyloides brinckmanni,
criados em tanques-rede no lago Paru, município de Manacapuru, Estado do
Amazonas.
Densidade de estocagem
Peso
médio
Com,total
médio PP/PE P Intensidade Intensidade Abundância
(peixes/m³)
(g) (cm) %
Nº de parasitas
média
Tempo 0
Antes da
estocagem
86,70 19,71 0/7 0 0 0 0
mês 1 50 146,04 23,24 0/7 0 0 0 0
100
138,90 22,75 0/7 0 0 0 0
150
147,27 23,42 0/7 0 0 0 0
mês 2 50 263,10 27,01 0/7 0 0 0 0
100 204,73 24,21 0/7 0 0 0 0
150 209,43 25,38 0/7 0 0 0 0
mês 3 50 419,11 30,42 1/7 14,28 5 5 0,71
100 317,71 28,71 1/7 14,28 10 10 1,42
150 326,36 27,80 1/7 14,28 2 2 0,28
PP: peixes parasitados; PE: peixes examinados; P: prevalência.
Apesar das intensidades parasitárias oscilarem de acordo com as densidades de
estocagem, não houve diferenças significativas entre as densidades de estocagem e as
intensidades (p> 0,05), e todas se sobrepõem (Figura 2).
24
Média
±Erro Padrão
±Desvio Padrão
123
Densidade de estocagem (peixes / m
3
)
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
Intensidade parasitária (número de parasitas)
Figura 2. Relação entre densidade de estocagem e intensidade parasitária, (1=50
peixes/m
3
; 2=100 peixes/m
3
; 3=150 peixes/m
3
) do tambaqui “curumim”
Colossoma macropomum criados em tanques-rede no lago Paru, município
de Manacapuru, Estado do Amazonas (p> 0,05).
25
V. Discussão
A piscicultura assim como outras formas de criação animal, necessita de um
constante acompanhamento técnico nas condutas de manejo, principalmente do ponto de
vista sanitário, evitando assim perdas significativas durante o processo de produção (Eiras,
1994; Malta et al., 2004).
Uma análise da parasitofauna branquial de 98 tambaquis com tamanhos que
variaram de 1,7 a 35,0 cm provenientes de três localidades da bacia Amazônica (lagos
Janauacá e Camaçari e lagos da ilha da Marchantaria), revelou a existência de seis espécies
de monogenóideos, três já conhecidas para a ciência, Anacanthorus spathulatus;
Linguadactyloides brinckmanni e Notozothecium janauachensis, e outras três ainda não
descritas: Gênero novo 1; Gênero Novo 2 e Gyrodactlus sp. (Belmont-Jégu, 1998).
Estudando a fauna parasitológica de juvenis de tambaqui, pesando em média 3,85g
e medindo cerca de 43mm, criados em barragens de igarapés de terra-firme, Matsunae
(2000) encontrou as seguintes espécies: Henneguya sp.; Myxobulus sp.; N. janauachensis;
A. spathulatus; Gênero novo 1; Gênero Novo 2 e Gyrodactlus sp.
Para monitorar a fauna parasitária do tambaqui em um trabalho de repovoamento
em lagos de várzea da Amazônia Central, 83 peixes foram amostrados: 26 da estação de
piscicultura de Balbina, pesando em média 9,66±8,17g e comprimento padrão de
5,86±2,11cm; 12 de tanques-rede pesando 4,75±3,41g e medindo 4,70±1,32cm; 25 de
lagos repovoados, com 218,88±114,23g e 17,16±2,86cm e 20 de lagos não repovoados,
com 503,58±131,26g e 23,06±2,38cm. Foram encontrados sete grupos de parasitas:
Epystilis sp. e Myxobulus sp. (Protozoa); A. spathulatus e L. brinckmanni
(Monogenoidea); Spirocamallanus sp. (Nematoda); N. buttnerae (Acantocephala);
26
Myracetyma sp. (Copepoda), Dolops geayi (Bouvier, 1897) (Branchiura); e Braga
patagonica Schiödte & Meinert, 1884 (Isopoda) (Aquino-Pereira, 2001).
Analisando a dinâmica das infestações de Monogenoidea em 38 tambaquis, 6 deles
coletados na natureza e 32 de estações de piscicultura da Amazônia Central, com
comprimento padrão de 8,7±11,8cm e o peso de 23,9±44,4g, Vital (2003) encontrou as
seguintes espécies: L. brinkmanni, A. spathulatus e N. janauachensis.
Na parasitofauna de tambaquis capturados em duas localidades na Amazônia, a
primeira próxima ao município de Tefé/Coari, no médio rio Solimões, Estado do
Amazonas e a segunda nas proximidades de Santarém, no baixo rio Amazonas no Estado
do Pará, foram encontradas nove espécies de parasitas: três da classe Monogenoidea, A.
spathulatus, L. brinkmanni e N. janauachensis; uma larva de Trematoda da família
Paramphistomidae; uma de Ancanthocephala, N. buttnerae; duas de Nematoda,
Spirocamallanus sp. e Procamallanus sp. e duas da subclasse Copepoda, Gamidactylus
jaraquensis Thatcher & Boeger, 1984 e Perulernaea gamitanae Thatcher & Paredes, 1985
(Fischer et al., 2003).
Varella et al. (2003) estudando a fauna parasitária de juvenis de tambaquis, criados
em tanques-rede de 6m
3
, sob três densidades de estocagem (25, 50 e 75 peixes/m
3
),
pesando 21,9g e medindo 10,9cm na primeira coleta e 772g e 36,1cm ao final do
experimento, em um lago de várzea da Amazônia Central, encontrou duas espécies de
monogenóideos: A. spathulatus e L. brinkmanni; duas de protozoários: Myxobulus sp. e
Henneguya sp.; uma espécie de acantocéfalo N. buttnerae e duas de copépodos: G.
jaraquensis e Ergasilus sp.
No presente trabalho foi encontrado parasitando o tambaqui somente espécies da
classe Monogenoidea: A. spathulatus; N. janauachensis; L. brinkmanni e as espécies ainda
não descritas do Gênero novo 1 e Gênero Novo 2.
27
A relação existente entre as brânquias e as ocorrências parasitárias pode ser
explicada pelo fato do órgão estar em contato direto com o ambiente externo, ou também
efetuarem uma ligação estreita entre ambientes interno e externo (Gutierrez & Martorelli,
1999). Os monogenóideos do tambaqui parasitavam principalmente os filamentos
branquiais, com preferência pelo primeiro e quinto arcos branquiais (Matsunae, 2000;
Malta et al., 2004; Vital, 2003).
Em tambaquis criados em tanques-rede no lago Ariauzinho, município de Iranduba,
os monogenóideos representaram 99,0 % dos parasitas encontrados. Todos parasitavam as
brânquias. Os maiores valores de intensidade média ocorreram na segunda coleta (60 dias),
nas densidades de 50 e 75 peixes/ m
3
(Varella et al., 2003).
Tambaquis criados em tanques-rede de 1,5m
3
no lago Catalão, Estado do
Amazonas com peso médio de 4,75±3,41g e com comprimento padrão de 4,70±1,32cm,
apresentaram uma prevalência de 100% nas brânquias. A intensidade média foi de 76,2
parasitas por peixe e a intensidade variou de 17 a 146 indivíduos (Aquino-Pereira, 2001).
Nesse trabalho as brânquias foram o local de maior infestação parasitária. Foram
responsáveis por mais de 90% das infestações, resultados inferiores aos encontrados por
Aquino-Pereira (2001) com 100% de prevalência e Varella et al. (2003) com 99,9%.
Os monogenóideos também podem se fixar em outras áreas do corpo de seus
hospedeiros, como a pele (Belmont-Jégu, 1998). Além das brânquias, Aquino-Pereira
(2001) registrou a presença de monogêneas parasitando a pele do tambaqui; esses
parasitas estavam no muco. Em uma criação de tambaquis em pequenas represas nas
proximidades de Manaus, foram encontradas parasitando a pele de tambaquis: A.
spathulatus e L. brinkmanni (Malta et al., 2001). Nesse estudo, apenas A. spatulathus foi
encontrado em raspados de pele e também inseridas no muco, similar ao descrito por
Aquino-Pereira (2001).
28
Fischer et al. (2003) analisando fossas nasais de tambaquis adultos coletados nas
regiões de Tefé, Coari e Santarém, registraram que 62,18% estavam parasitadas pelo
lerneídeo Perulernaea gamitane. Matsunae (2000) encontrou o copépodo Gamidactylus
jaraquensis e o monogenoideo N. janauachensis parasitando as fossas nasais do tambaqui.
No presente trabalho apenas a espécie N. janauachensis foi encontrada nas fossas nasais do
tambaqui como no trabalho de Matsunae (2000).
Sessenta e uma espécies do gênero Anacanthorus ocorrem na região Neotropical,
destas, 34 parasitam peixes da família Serrasalmidae e 27 da Characidae. Na bacia
Amazônica ocorrem sessenta espécies do gênero Anacanthorus (Kohn & Cohen, 1998). O
dactilogirídeo A. spathulatus é considerado o ectoparasita branquial mais importante em
tambaquis criados na Bolívia, Brasil, Peru e Venezuela (Conroy & Conroy, 1998). A.
spathulatus pode ser considerado um grande problema na piscicultura, pois em condições
ambientais satisfatórias, proliferam em alta velocidade acarretando grandes perdas
(Thatcher, 1991; Bemont-Jégu, 1998).
Tambaquis coletados na natureza e de criações, com o tamanho médio de 9,7cm
pesando aproximadamente 36,7g, estavam parasitados com 6.946 monogêneas, destas
3.959 eram A. spathulatus, e a prevalência foi de 56,99% (Vital, 2003). Em juvenis de
tambaqui da estação de piscicultura de Balbina, Estado do Amazonas, foram encontrados
larvas de A. spathulathus nas brânquias e na pele de peixes com 20, 40 e 60 dias de vida
(25 a 48mm de comprimento padrão). Os peixes de 40 dias estavam parasitados por
indivíduos adultos Thomé (2000).
Juvenis de tambaquis criados em barragem de igarapé de terra firme, no município
de Iranduba, Estado do Amazonas, com peso 3,85g e com comprimento padrão médio de
43mm, estavam parasitados por A. spathulatus e a prevalência foi de 82,35%. Nesse
trabalho A. spathulathus foi também a espécie com maior prevalência. De um total de
29
7.974 monogenóideos, 6.754 (84,7%) pertenciam a essa espécie, resultado superior quando
comparado aos demais trabalhos. Ao final da recria (tempo 0), A. spathulathus apresentou
uma prevalência de 83,33%. No 1
o
mês de experimento as prevalências foram 71,42% na
densidade de 50 peixes/m
3
, e 85,71% na densidade de 150 peixes /m
3
. No segundo mês a
prevalência também foi 85,71% na densidade de 150 peixes /m
3
. Nos meses restantes a
prevalência foi de 100%.
As espécies do gênero Notozothecium são consideradas endêmicas da região
Neotropical, sete espécies são conhecidas. Parasitam peixes de seis gêneros da subfamília
Serrasalminae (Belmont-Jégu, 1998). Fischer et al. (2003) trabalhando com tambaquis
adultos (25 a 105cm de comprimento total) da região Tefé/Coari, encontraram N.
janauachensis com baixos índices parasitários. A prevalência foi de 26,9%, a intensidade
média foi de 1,7 parasita/hospedeiro, a intensidade variou de 1 a 40 indivíduos e a
abundância foi 0,46.
Em juvenis de tambaquis criados em barragem de igarapé de terra firme, no
município de Iranduba, Estado do Amazonas, N. janauachensis apresentou a prevalência
de 100%. A intensidade variou de 8 a 1.804 parasitas por hospedeiro, e estes parasitavam
todos os arcos branquiais e fossas nasais (Matsunae, 2000). Nesse trabalho N.
janauachensis foi a espécie que apresentou o segundo maior índice parasitário. Parasitava
as fossas nasais e brânquias do tambaqui. Os maiores índices de infestação ocorreram no 3
o
mês, na densidade de 100 peixes/m
3
; a intensidade variou de 1 a 210 (227 total).
Em tambaquis pesando em média 36,7g e medindo 9,7cm de comprimento padrão,
provenientes de estações de piscicultura da Amazônia Central, (Vital, 2003) encontrou 932
exemplares do Gênero novo 1, com prevalência de 13,42%. Em brânquias de tambaquis
jovens criados em barragens, indivíduos do Gênero novo 1 tiveram prevalência de 100%,
30
intensidade de 2 a 1250, intensidade média 263,44 e abundância média 263,44 (Matsunae,
2000).
Neste trabalho os indivíduos do Gênero novo 1 apresentaram prevalência de 1,75%,
resultado bem inferior quando comparado com A. spatulathus (84,7%) e N. janauachensis
(10,12%). Gênero Novo 1 ocorreu parasitando somente brânquias, e seu maior índice
parasitário ocorreu no 2
o
mês na densidade de 100 peixes/m
3
, com prevalência de 100% e
intensidade de 3 a 24 (108 total), índices menores que aqueles descritos por Vital (2003) e
Matsunae (2000).
Matsunae (2000), observou brânquias de tambaquis jovens criados em barragens,
parasitadas por indivíduos do Gênero novo 2. A prevalência foi de 67,64%, a intensidade
de 1 a 410, a intensidade média 101,69 e abundância média 68,69. Nesse trabalho os
indivíduos do Gênero novo 2 apresentaram baixa intensidade parasitária, variando de 5 a
15 (44 total). A maior intensidade ocorreu no 2
o
mês, na densidade de 100 peixes/m
3
.
Neste mês, sua prevalência foi de 85,71%. Essa espécie parasitava somente as brânquias.
Apesar de estar presente na maioria dos peixes analisados sua intensidade foi mais baixa
que a de outras espécies. Estes índices parasitários são relativamente superiores aos
descritos por Matsunae (2000).
Fischer et al. (2003) analisando tambaquis adultos com comprimento padrão de
40,0 a 105,0cm de duas localidades na Amazônia: Tefé/Coari e Santarém, encontrou para
L. brinckmanni os seguintes índices parasitários: na primeira localidade a prevalência foi
de 61,5%, a intensidade variou de 1 a 146 indivíduos e a abundância foi de 12
monogenóideos por hospedeiro. Na região de Santarém a prevalência de 77%, a
intensidade variou de 1 a 78 e a abundância foi de 26,6.
Varella et al. (2003) estudando a fauna parasitária do tambaqui criado em tanques-
rede, em três diferentes densidades de estocagem, em um lago de várzea no Estado do
31
Amazonas, encontrou L. brinkmanni, porém os índices parasitários foram calculados para
todo grupo Monogenea e não para cada espécie. A ocorrência de L. brinkmanni aconteceu
somente na densidade de 75 peixes/m³, com 180 dias de criação. No presente trabalho L.
brinckmanni apresentou os menores índices parasitários, quando comparado às outras
espécies, foi encontrado no último mês de coleta nas três densidades testadas e sua maior
intensidade parasitária ocorreu na densidade de 100 peixes/m
3
.
Varella et al. (2003) só encontrou L. brinckmanni parasitando peixes com mais de
36,1cm. Fischer et al. (2003) em peixes cujo comprimento total variava de 25 a 100,0cm.
Matsunae (2000) não encontrou L. brinckmanni, porque só trabalhou com peixes de até
15cm de comprimento. Nesse trabalho L. brinckmanni foi encontrado somente em peixes
maiores que 27,80cm de comprimento padrão. Segundo os dados acima, L. brinckmanni só
começa a parasitar o tambaqui a partir de 25,0cm de comprimento total.
O modo de fixação das espécies do gênero Linguadactyloides difere dos demais
monogenóides. Normalmente esses parasitas fixam-se no epitélio da brânquia através das
âncoras, ganchos do haptor e podem mudar de mudar do local de fixação. No caso de L.
brinckmanni há uma ativa penetração no tecido do hospedeiro pelo haptor. Quando a parte
posterior do parasita alcança a cartilagem, que suporta o filamento branquial prende-se a
essa estrutura. Com o tempo o tecido cartilaginoso cobre pontos da âncora fixando o
monogênea permanentemente naquele local. As respostas do hospedeiro à penetração de L.
brinckmann sãoi: reações inflamatórias, hemorragia, hiperplasia (Thatcher & Kritski,
1983). Nesee trabalho não foram observadas as respostas à penetração de L. brinckmanni
ao hospedeiro, porque o ataque do parasita aos tambaquis ainda estava a no início do
processo.
Não houve diferenças entre a ocorrência de parasitas e o aumento das densidades de
estocagem (25, 50 e 75 peixes/m
3
) em criações de tambaquis em tanques-rede (Varella et
32
al., 2003). Nesse trabalho a relação entre intensidade parasitária e a densidade de
estocagem utilizadas, também não mostrou diferença (p> 0,05) entre as densidades de
estocagem testadas e as intensidades parasitárias, como no trabalho de Varella et al.
(2003).
As enfermidades e os parasitas do tambaqui representam um fator limitante para a
sua criação na Amazônia (Varella et al., 2003). Com o aumento das criações em regime
intensivo e semi-intensivo de tambaquis e outros peixes, na região Amazônica, cuidados
devem ser tomados na prevenção das doenças. Peixes mantidos em confinamento são
submetidos a grandes estresses, resultantes da captura, transporte, manuseio, alta
intensidade, qualidade da água, baixa quantidade de oxigênio, pH e temperaturas com
grandes variações, falta, deficiência, excesso ou alimentação inadequada, instalações
ineficientes, desinfecções, reprodução artificial e mão-de-obra sem preparo. Esse conjunto
de fatores leva ao surgimento das epizootias, que são de difícil controle e normalmente
levam os peixes à morte em pouco tempo (Malta et al., 2001)
Com a expectativa de implantação de mais 1.700 tanques-rede já para o ano de
2005, em lagos da Amazônia, torna-se de extrema importância o acompanhamento
ictiosanitário. Cada lago apresenta características distintas, que podem apresentar
problemas parasitológicos, e somente através de medidas preventivas constantes, pode-se
evitar prejuízos econômicos, viabilizando a atividade no Estado do Amazonas.
33
VI. Conclusões
1. Somente trematódeos da classe Monogenoidea parasitavam os tambaquis criados
em tanques-rede no lago Paru.
2. Anacanthorus spathulatus foi a espécie que apresentou os maiores índices
parasitários.
3. A análise estatística não mostrou diferenças significativas entre as densidades de
estocagem e as intensidades parasitárias.
4. Os tambaquis criados na densidade de 50 peixes/m
3
apresentaram as maiores
infestações parasitárias.
5. Linguadactyloides brinckmanni só parasita tambaquis maiores que 25cm.
34
VII. Bibliografia citada.
Andrade, P.C.M.; Tolentino, A.S.; Freitas, C.E.C. 1993. Desenvolvimento de juvenis de
tambaqui, Colossoma macropomum (Cuvier, 1818) em gaiolas. Revista da
Universidade Federal do Amazonas, 28(1): 26-42.
Aquino-Pereira, S.L. 2001. Acompanhamento da fauna parasitária do tambaqui
Colossoma macropomum (Cuvier, 1818), em repovoamento de lagos de várzea da
Amazônia Central. Dissertação de mestrado. Instituto Nacional de Pesquisas da
Amazônia/ Universidade Federal do Amazonas, Manaus. 63p.
Araújo-Lima, C.A.R.; Goulding, M. 1998. Os frutos do tambaqui: ecologia, conservação e
cultivo na Amazônia. Sociedade Civil Mamirauá,CNPq, Tefé, Amazonas. 186p.
Batista, V.S. 1998. Distribuição, dinâmica da frota e dos recursos pesqueiros da
Amazônia Central. Tese de doutorado. Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia/
Universidade Federal do Amazonas, Manaus. 290p.
Barrbosa, R.P. 1977. Situação do PIC Bela Vista. INCRA. Manaus, 190p.
Belmont-Jégu, E.; Domingues, M.V. ; Martins, M.L. 2004. Notozothecium janauachensis
n. sp. (Monogenoidea: Dactylogyridae) from wild and cultured tambaqui, Colossoma
macropomum (Teleostei: Characidae: Serraselminae) in Brazil. Zootaxa, 736: 1-8.
35
Belmont-Jégu, E. 1998. Estudo da dinâmica das infestações de Monogenoidea
(Platyhelminthes) de Colossoma macropomum (Teleostei: Characidae). Relatório
Final de Atividades apresentado ao PDIRH/INPA. INPA, Manaus. 52p.
Bello, R.A.; Rivas, W.G. 1989. Evaluación y aprovechiamento de la cachama, Colossoma
macropomum cultivada, como fuente de alimento. FAO, Proyecto AquilaII,
GCP/RLA/075/ITA. Documento de Campo N
o
2, México. 113p.
Benetton, M.L.F.N.; Malta, J.C.O. 1999. Morfologia dos estágios de náuplios e copepodito
I de Perulernaea gamitanae Thatcher & Paredes, 1985 (Crustacea: Cyclopoida:
Lernaeidae), parasita de tambaqui Colossoma macropomum (Cuvier, 1818),
(Osteichthyes: Characidae), cultivados em laboratório. Acta Amazonica, 29(1): 97-
121.
Beveridge, M.C.M. 1996. Cage aquaculture. 2 ed. Fishing News Books, Oxford. England.
346p.
Bittencourt, M.M. 1991. Exploração dos recursos pesqueiros na Amazônia Central:
situação do conhecimento atual. In: Val, A.L.; Figliuolo, R.; Feldberg. E (Eds). Bases
científicas para estratégias de preservação e desenvolvimento da Amazônia: fatos e
perspectivas. Vol 1. Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia, Manaus. 97p.
Borba, M.G.; Tompson, M.M.; Silva, A.L.N. 1998. Influência do emprego de tanques-rede
sobre a qualidade da água em um viveiro de piscicultura. In: Anais do X Simpósio
Brasileiro de Aqüicultura 2, Recife, 449-461.
36
Brocki, E. 2001. Sistemas agroflorestais de cultivo e pousio: etnoconhecimento de
agriculturas familiares do lago Paru (Manacapuru, AM). Tese de doutorado. Instituto
Nacional de Pesquisas da Amazônia/Universidade Federal do Amazonas, Manaus.
168p.
Bush, A.O.; Lafferty, K.D.; Lotz, J.M; Shotask, A.W. 1997 Parasitology meets ecology on
its own terms: Margolis et al. Revisited. American Society of Parasitologists. Journal
of Parasitology, 83(4) : 575-583
Chagas, E.C.; Lourenço, J.N.P.; Gomes, L.C., Val, A.L. 2003. Desempenho e estado de
saúde de tambaquis cultivados em tanques-rede sob diferentes densidades de
estocagem. In: Urbinati, E.C.; Cyrino, J.E.P. (Eds.). Anais do Simpósio Brasileiro de
Aqüicultura 12, Jaboticabal, 2: 83-90.
Conroy, D.A. 1989. Reseña sobre las principales enfermedades infecto-contagiosas y
parasitosis de peces del genero “ Colossoma”. In: Cultivo de Colossoma. Vol. 2,
Editora Guadalupe, Bogotá, Colômbia. p. 93-111.
Conroy, G.; Conroy, D.A. 1998. Enfermedades y parasitos de cachamas, pacus tilapias .
Documento técnico n.3. UDATPA, Pharma-Fish S.R.L. Maracay, Venezuela, 72p.
Costa, S.S. 1991. Estatística e experimentação agronômica. Dissertação de Mestrado,
Escola Superior de Agricultura Luis de Queiroz - ESALQ/USP, Piracicaba,São Paulo,
Brasil. 71p.
37
Eiras, J.C. 1994. Elementos de Parasitologia. Fundação Eng. Antônio de Almeida, Porto,
Portugal. 339p.
Fischer, C.; Malta, J.C.O.; Varella, A.M.B. 2003. A fauna de parasitas do tambaqui,
Colossoma macropomum (Cuvier, 1818) (Characiformes: Characidae) do médio rio
Solimões (AM) e do baixo rio Amazonas (PA) e seu potencial como indicadores
biológicos. Acta Amazonica, 33(4): 651-662.
Franmir, R.B; Gomes, L.C.; Chagas, E.C.; Araújo, L.D. 2004. Densidade de estocagem de
juvenis de tambaqui durante a recria em tanques-rede. Pesquisa Agropecuária
Brasileira, 39: 357-362.
Goulding, M.; Carvalho, M.L. 1982. Life history and management of the tambaqui
(Colossoma macropomum, Characidae): an important amazonian food fish. Revista
Brasileira Zoologia, 1(2): 107-133.
Gomes, L.C.; Monteiro, C.A.R. ; Araujo-Lima, C.R.M.; Roubach, R.; Elisabeth Urbinati,
E.C. 2003. Avaliação dos efeitos da adição de sal e da densidade no transporte de
tambaqui. Pesquisa. Agropecuária Brasileira, 38(2): 462-431.
Gutiérrez, P.A.; Martorelli, S.R. 1999. Seasonality, distribution and preferences sites of
Demidospermus valenciennesi (Monogenea: Ancyrocephalidae). Folia Parasitogica, 54:
259-261.
38
Huguenim, J. 1997. The design, operations and economics of cage culture systems.
Aquacultural Enginneering, 16: 167-203.
Irion, G.; Junk, W.J.; De Mello, J.A.S.N. 1997. The large central Amazonian river
floodplains near Manaus: geological, climatological, hydrological and
geomorphological aspects. In: Junk, W.J (Ed). The central Amazon floodplain,
(Ecological Studies), 126: 23-46.
Isaac, V.J.; Ruffino, M.L. 1996. Population dynamics of tambaqui Colossoma
macropomum Cuvier, in the lower Amazon Brazil. Fisheries Management and
Ecology, 3: 315-333.
Kabata, Z. 1985. Parasites and diseases of fish cultured in the tropics. Taylor & Francis,
Londres, U.K. 318p.
Kohn, A.; Cohen, S.C. 1998. South American Monogenea, list of species, hosts and
geographical distribution. International Journal of Parasitology, 28: 1517-1554.
Kritsky, D.C.; Thatcher, V.E.; Kayton, R.J. 1979. Neotropical Monogenoidea. 2. The
Anacanthorinae Price, 1967, with the proposal of four new species os Anacanthorus
Mizelle & Price, 1965, from Amazonian fishes. Acta Amazonica, 9(2): 355-361.
Malta, J.C.O.; Varella, A.M.B. 1983. Os argulídeos (Crustacea: Argulidae) da Amazônia
Brasileira. Aspectos da ecologia de Dolops striata Bouvier, 1899 e D. carvalhoi
Lemos de Castro, 1949. Acta Amazonica, 13(2): 299-306.
39
Malta, J.C.O., 1984. Os peixes de um lago de várzea da Amazônia Central (Lago Janauacá,
Rio Solimões) e suas relações com os crustáceos ectoparasitas (Branchiura:
Argulidae). Acta Amazonica, 14(3-4): 355-372.
Malta, J.C.O.; Varella, A.M.B. 2000. Argulus chicomendesi sp. n. (Crustacea: Argulidae)
parasita de peixes da Amazônia brasileira. Acta Amazonica, 30(1): 481-498.
Malta, J.C.O.; Gomes, A.L.S.; Andrade, S.M.S.; Varella, A.M.B. 2001. Infestações
maciças por acantocéfalos, Neoechinorhynchus buttnerae Golvan, 1956,
(Eoacanthocephala: Neoechinorhynchidae) em tambaquis jovens, Colossoma
macropomum (Cuvier, 1818) cultivados na Amazônia Central. Acta Amazonica, 31(1):
133-143.
Malta, J.C.O.; Varella, A.M.B.; Souza, A.S.; Vital, J.F.; Porto, D.B.; Sousa, M.O. 2004.
Fauna of Monogenea (Plathyhelminthes: Monogenoidea) parasites in the gills of
juvenile tambaqui, Colossoma macropomum (Cuvier, 1818) (Osteichthyes:
Characidae) from cultures in Central Amazon, Brazil In: II Internationalon the
Biology Congresss of tropical fishes, 2004, Manaus, Amazonas, Brasil p. 139-141.
Matsunae, J. 2000. Monitoramento da parasitofauna de alevinos de tambaqui, Colossoma
macropomum (Cuvier, 1818), em barragem de igarapé de terra firme, Iranduba – AM.
Dissertação de mestrado, Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia/Universidade
Federal do Amazonas, Manaus. 71p.
40
Martins, M.L.; Romero, N.G. 1996. Efectos del parasitismo sobre el tejido branquial en
peces cultivados: estúdio parasitológico e histopatologico. Revista Brasileira de
Zoologia, 13(2): 489-500.
Mendes, C.A.B.; Vallejos, M. 1987. Efeitos da densidade de estocagem no crescimento do
Colossoma macropomum (Cuvier, 1818), em gaiolas. In: Anais do I Congresso
Brasileiro de Engenharia de Pesca. Associação dos Engenheiros de Pesca do Ceará,
Fortaleza, Ceará. p. 233-241.
Merola, N.; Souza, J.H. 1988. Preliminary studies on the culture of pacu (Colossoma
mitrei), in floating cages: effect of stocking density and feeding rate on growth
performace. Aquaculture, 68: 243-48p.
Molnar, K.; Bekesi, L. 1993. Descripition of a new Myxolobus especies, M. colossomatis
n. sp. from the teleost Colossoma macropomum of the Amazon River basin. Journal
of Apllied Ichthyology, 9: 57-63.
Mujica, M.E. 1982. Estudios preliminares sobre enfermedades que afectam a los peces de
água cálidas continentales aptos para el cultivo en la Estación Hidrobiológica de
Guanapito, Estado Guárico, Venezuela. Tesis al grado de Licenciada en Biología,
Escuela de Biología, Universidad Central de Venezuela, Caracas, Venezuela. 100p.
Nuñes D.; J. Salaya. 1984. Cultivo de cachama, C. macropomum en jaulas flotantes no
rígidas en la represa Guanapito, Venezuela. Asociación Latinoamericana de
Acuicultura, 5: 481-494.
41
Pavanelli, G.C.; Eiras, J.C.; Takemoto, R.M. 2002. Doenças de peixes: profilaxia,
diagnóstico e tratamento. EDUEM, Universidade Estadual de Maringá, Nupélia,
Maringá, Brasil. 264p.
Petrere Jr., M. 1985. A pesca comercial no rio Solimões - Amazonas e seus afluentes:
análise dos informes do pescado desembarcado no mercado municipal de Manaus
(1976 - 1978) Ciência e Cultura, 37(12): 1988-1999.
RADAMBRASIL. 1978. Levantamento de recursos naturais. Vol. 18. Folha As.20. IBGE.
Rio de Janeiro. 628p.
Roberts, R.J. 1991. Fish pathology. 2ª ed., Balliere Tindal, Philadelphia, USA. 318p.
Romero, F.R.; Esteban, M.A.; Messeguer, J.; Bravo, M.; Gómez, G.D.; Luna-Rojas, T.;
Jimenez, G.; Balcazar, J.L. 2003. Estrategias de control de enfermedades en
Acuicultura. CIVA 2003 (http://www.civa2003.org) . p. 624-654.
Schmittou, H.R. 1997. Produção de peixes em tanques-rede de pequeno volume.
Associação Americana de Soja. Mogiana Alimentos, Campinas, São Paulo. 78p.
Sioli, H. 1984. The Amazon and its main affluents. Hydrology, morphology of the river
courses, and river types. In: Sioli, H (Ed.). The Amazon: limnology and landscape
ecology of a mighty tropical river and is Basin. Junk Publishers, The Netherlands. p
127-165.
42
Silva, C.M.A. 2001. Bactérias Gram-negativas isoladas do tambaqui, Colossoma
macropomum (Cuvier, 1818) criado em cativeiro, Amazonas-Brasil. Dissertação de
Mestrado, Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia, Universidade Federal do
Amazonas, Manaus, Amazonas. 66p.
Sniesko, S.F. 1974. The effects of environmental stress on outbraks of infections diseases of
fishes. Journal of Fish Biology, 6: 197-208.
Thatcher, V.E; 1991. Amazon fish parasites. Amazoniana, 9(3/4): 263-572.
Thatcher, V.E.; Kritsky, D.C. 1983. Neotropical Monogenoidea. 4. Linguadactyloides
brinkmanni gen. et sp. n. (Dactylogyridae: Linguadactyloidinae subfam. n.) with
observations on its pathology in a Brazilian freshwater fish, Colossoma macropomum
(Cuvier). Proccedings of the Helminthological Society of Washington, 50(2): 305-
311.
Thatcher, V.E.; Boeger, W.A. 1984. The parasitic crustaceans of fishes of the Brazilian
Amazon, 13. Gamidactylus jaraquensis gen. et sp. nov. (Copepoda:
Poecilostomatoidea: Vaigamidae) from nasal fossae of Semaprochilodus insignis
(Schomburgki). Amazoniana, 8(3): 421-426.
Thatcher, V.E; Paredes, V. 1985. A parasitic copepod Perulernaea gamitanae gen. et sp.
nov. (Cyclopoida: Lernaeidae), from the nasal fossae of a Peruvian Amazon food
fish. Amazoniana, 9(2): 169-175.
43
Thomé, M.P.M. 2000. As condições sanitárias e o manejo na produção de alevinos de
tambaqui Colossoma macropomum (Cuvier, 1818) (Osteichthyes: Serrasalmidae) no
Estado do Amazonas. Dissertação de mestrado, Instituto Nacional de Pesquisas da
Amazônia/Universidade Federal do Amazonas, Manaus. 80p.
Val, A.L.; Rolim, P.R.; Rabelo, H. 2000. Situação atual da aqüicultura na região Norte. In:
Valente, W.C.; Poli, C.R.; Pereira, J.A.; Borghetti, J.R. (Eds.). Aqüicultura no Brasil:
bases para um desenvolvimento sustentável. CNPq, MCT, Brasília p. 247-266.
Varella, A.M.B.; Oliveira E.F. 1981. Algumas considerações sobre as relações entre os
ciclos biológicos e os hábitos alimentares dos peixes do arquipélago de Anavilhanas.
Relatório de Ecologia de Peixes. Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia. 11p.
Varella, A.M.B.; Peiro, S.N.; Malta, J.C.O. 2003. Monitoramento da parasitofauna de
Colossoma macropomum (Cuvier, 1818) (Osteichthyes: Characidae) cultivados em
tanques-rede em um lago de várzea na Amazônia, Brasil. In: Urbinati, E.C.; Cyrino,
J.E.P. (Eds). Anais do Simpósio Brasileiro de Aqüicultura 12, Jaboticabal, 2: 95-105.
Verlhac, V.; Obach, A.; Gabadaun, J.; Schuep, W.; Hole, R. 1998. Immunomodulation by
dietary vitamin C and glucan in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and
Sellfish Limnology, 8: 409-424.
44
Vital, J.F. 2003. Dinâmica das infestações de Monogenoidea (Platyyhelminthes) parasitas
do tambaqui, Colossoma macropomum (Cuvier, 1818) (Osteichtyes: Characidade) na
Amazônia Central. In: VIII Jornada de Iniciação Científica do INPA, 1999, Manaus -
AM. Anais da VIII Jornada de Iniciação Científica do INPA. Manaus - AM: Instituto
Nacional de Pesquisas da Amazônia, p.153-154.
Yi, Y.; Lin, C.K. 2001. Effects of biomass of caged Nile tilapia (Oreochromis niloticus)
and aerationon the growth and yelds in an integrated cage-cum-pond system.
Aquaculture, 195: 253-267.
Waagbo, R. 1994. The impact of nutritional factors on the immune system in Atlantic
salmon, Salmo salar L.: a review. Aquaculture Fish. Management, 25: 175-197.
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