ads:
UFRGS-UNIVERSIDADE FEDERAL DO RIO GRANDE DO SUL
INSTITUTO DE CIÊNCIAS BÁSICAS DA SAÚDE
PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM CIÊNCIAS BIOLÓGICAS: BIOQUÍMICA
Estresse oxidativo, conteúdo de S100B e ensaio Cometa no
sangue de pacientes com Transtorno do Humor Bipolar
Ana Cristina Andreazza
Orientador: Prof. Dr.Carlos Alberto Gonçalves
Co-orientador: Prof. Dr. Flávio Kapczinski
Dissertação apresentada ao Curso de Pós-Graduação em Ciências Biológicas:
Bioquímica da Universidade Federal do Rio Grande do Sul, como requisito parcial para
obtenção do grau de Mestre em Bioquímica.
2006
ads:
Livros Grátis
http://www.livrosgratis.com.br
Milhares de livros grátis para download.
II
... À minha família Armando, Marlês e Tatiane
pela dedicação, amor e compreenssão.
ads:
III
“Não há nenhum mar inavegável, nenhuma terra inabitável.”
Robert Thorne, Mercador e Geógrafo, (1527)
IV
Agradecimentos
Ao Prof. Carlos Alberto Gonçalves pela oportunidade, orientação e
dedicação ao trabalho. Muito obrigada!
Ao Prof. Flávio Kapczinski pela confiança, oportunidade, orientação e
presença em todos os momentos.
Á Profa. Mirian Salvador pela compreenssão, apoio, inspiração e
oportunidade.
Á Profa. Carmen Gotfrield pelo conhecimento passado e disposição
constante a ajudar.
Aos meus pais, Armando e Marles, pelo amor, carinho e apoio em todas as
etapas desse processo e da vida.
Á minha irmã, Tatiane, pelo companherismo e amor.
Aos meus avós por todo amor e orações que sempre dedicaram a mim.
Ao meu namorado, Daniel, que acompanhou o desenvolvimento desta
dissertação e esteve presente em todos os momentos me apoiando e
compreendendo a ausência e as longas horas em frente ao computador.
A todos os colegas do Laboratório 33 pelo carinho com que me acolheram e
pelos ensinamentos que me passaram, em especial a Pati por sua amizade e
companherismo em todos os momentos.
A todos os colegas do Laboratório de Psiquiatria Experimental pela amizade
e ajuda em todas as etapas desse trabalho, em especial a Keila e a Adri pela
constante amizade e ao Benício pela perseverança no trabalho e apoio.
V
A todos os colegas do Laboratório de Estresse Oxidativo e Antioxidantes
pela amizade de oito anos e por toda a paciência e carinho comigo, em especial a
Carina e a Fernanda fundamentais para a realização dos experimentos desta
dissertação.
A todos os Professores do Departamento de Bioquímica, pela oportunidade
de passeram seus conhecimentos nas aulas.
Ao Departamento de Bioquímica e a UFRGS pela oportunidade de
realizarmos este trabalho.
Aos órgãos finaciadores: CAPES e CNPq pelas bolsas cedidas ao longo da
iniciação cientifica e mestrado.
VI
SUMÁRIO
AGRADECIMENTOS ................................................................................................................... IV
LISTA DE FIGURAS.................................................................................................................... VII
LISTA DE TABELAS.................................................................................................................. VIII
PARTE I
Resumo...............................................................................................................................................1
Abstract ..............................................................................................................................................2
Lista de Abreviatruras.........................................................................................................................3
1. INTRODUÇÃO........................................................................................................................... 4
1.1TRANSTORNO DO HUMOR BIPOLAR......................................................................................................... 4
1.2 RADICAIS LIVRES E ESPÉCIES REATIVAS................................................................................................ 6
1.3 DEFESAS ANTIOXIDANTES .................................................................................................................... 10
1.3.1 Superóxido dismutase (Sod)........................................................................................................... 11
1.3.2 Catalase (Cat)................................................................................................................................ 12
1.3.3 Sistema Glutationa......................................................................................................................... 12
1.4 ESTRESSE OXIDATIVO E VULNERABILIDADE DO SNC.......................................................................... 13
1.5 DANO AO DNA E ENSAIO COMETA....................................................................................................... 16
1.6. A PROTEÍNA S100B ............................................................................................................................ 18
1.7 OBJETIVO GERAL .................................................................................................................................. 21
1.7.1 Objetivos Específicos ..................................................................................................................... 21
PARTE II
2. RESULTADOS ........................................................................................................................ 22
CAPITULO I ............................................................................................................................................... 23
CAPITULO II .............................................................................................................................................. 49
PARTE III
3. DISCUSSÃO ........................................................................................................................... 71
3.1 Conclusões.....................................................................................................................85
VII
LISTA DE FIGURAS
PARTE I
Figura 1. Geração de ERO a partir da redução do oxigênio (Halliwell 2001). ................................. 9
Figura 2. Estresse oxidativo e dano celular. (ERO) espécies reativas do oxigênio; (ONOO
•
)
peroxinitrito; (NOS) óxido nítrico sintase (adaptada de Halliwell & Gutteridge,
2000).........................................................................................................................................14
Figura 3. Possíveis vias de oxidação das catecolaminas. (OH
•
) radical hidroxila; (O
2
-
•
) radical
superóxido; (MAO) monoamino oxidase; (H
2
O
2
) peróxido de hidrogênio; (GSH) glutationa
reduzida; (GSSG) glutationa oxidada (adaptada de Obata, 2002 e Baez et al
1997).........................................................................................................................................17
PARTE II
CAPITULO I
Figure 1. Serum S100B concentraion in BD and controls. BD patients wereseperated in euthymic,
maniac and depressive groups. S100B was measured by ELISA. Demographic data are in
Table 1. Values are expressed in mean ± standard error. * Statistically different from control
(p<0.01 for depressed group and p<0.0 for maniac group)......................................................43
Figure 2. Serum TBARS in BD patients and controls. BD patients were separated in euthymic,
manic and depressive groups. Demographic data are in Table 1. Values are expressed in
mean ± standard error. * Statistically different from control (p < 0.01 for manic and euthymic
groups and p < 0.05 for depressive group)..............................................................................44
Figure 3. Serum superoxide dismutase (Sod) activity in BD patients. BD patients were separated in
euthymic, manic and depressive groups. Values are expressed in mean ± standard error. a
Statistically different from controls (p < 0.01); b Statistically different euthymic group (p <
0.05).........................................................................................................................................45
Figure 4. Serum glutathione peroxidase (GPx) activity in BD patients. BD patients were separated
in euthymic, manic and depressive groups. Values are expressed in mean ± standard error.
* Statistically different from control and other groups (p < 0.01)..............................................46
Figure 5. Serum catalase activity in BD patients. BD patients were separated in euthymic, manic
and depressive groups. Values are expressed in mean ± standard error. * Statistically
different from controls and depressed group (p < 0.01)..........................................................47
Figure 6. Sod/(GPx + catalase) ration in BD patients. BD patients were separated in euthymic,
manic and depressive groups. Values are expressed in mean ± standard error. a Statistically
different from control (p < 0.01 for depressive group and p < 0.05 from manic group). b
Statistically different from euthymic group (p < 0.05)...............................................................48
CAPITULO II
Figure 1. DNA damage assessed using the single cell gel electrophoresis (comet assay)............69
Figure 2. DNA damage index assessed im drugs used by patients................................................70
VIII
PARTE III
Figura 4. Efeito extracelular dependente da concentração de S100B. Adaptada de Van Eldik &
Wainwrigth, 2003................................................................................................................. 74
Figura 5. Diagramação dos resultados avaliados nos pacientes bipolares. Sod (superóxido
dismutase); TBARS (substâncias reativas do ácido tiobarbitúrico); GPx (Glutationa
peroxidase). .......................................................................................................................778
Figura 6. Caracterização do tipo de dano ao DNA verificado no ensaio Cometa. Dano 0 = célula
sem dano – Dano 4 = dano máximo ao DNA. ...................................................................... 81
LISTA DE TABELAS
PARTE I
Tabela 1: Principais espécies reativas do oxigênio, nitrogênio e outras. (Tabela baseada no livro
Radicas Livres de Halliwell & Gutteridge, 2000).................................................................................7
PARTE II
Capitulo I
Table 1: Demographics and clinical characteristics of BD patients and control group.....................42
Capitulo II
Table 1:Demographic factors of patients and controls......................................................................68
1
PARTE I
Resumo
O transtorno do humor bipolar (THB) é uma doença de curso recorrente, crônica e
altamente incapacitante e está associado com o aumento da morbidade e da
mortalidade por condições médicas gerais, como câncer e diabetes, as quais
podem estar associadas com o aumento do dano ao DNA. Marcadores periféricos
vêm sendo utilizados para verificarmos alterações bioquímicas que possam estar
associadas com o THB e/ou possivelmente associadas à patofisiologia do THB.
Diversos grupos têm proposto o envolvimento da S100B nos transtornos
psiquiátricos. Outros marcadores bioquímicos, particularmente os associados
como o dano oxidativo, também estão sendo estudados nesses trastornos. No
presente estudo, nós avaliamos marcadores de dano neuronal, estresse oxidativo
e dano ao DNA em pacientes com THB. As aterações astrocíticas foram
verificadas através dos níves séricos de S100B; espécies reativas do ácido
tiobarbitúrico (TBARS) e atividade das enzimas antioxidantes foram medidas para
verificar os níveis séricos de estresse oxidativo nos paciente com THB nas
diferentes fases da doença. O dano ao DNA foi avaliado utilizando-se o ensaio
Cometa em trinta e dois pacientes bipolares tipo-I. Nós encontramos um aumento
significativo dos níveis de S100B, atividade da Superóxido dismutase (Sod) e da
razão entre Sod/(glutationa peroxidase + catalase) nos pacientes maníacos e
deprimidos. Os pacientes bipolares tipo-I apresentaram elevação da freqüencia de
dano ao DNA em comparação ao grupo controle. Estes resultados sugerem um
potencial dano oxidativo nos pacientes bipolares. A variação oxidativa periférica
pode estar indicando que estas ocorram durante as fases ativas da doença
(depressão e mania) e estejam realcionadas ao aumento do dano ao DNA dos
pacientes. Além disso, alterações astrocíticas também foram relatadas pelas
alterações dos níveis de S100B.
2
Abstract
Bipolar disorder (BD) is a chronic, severe, and highly disabling psychiatric disorder
that is associated with increased morbidity and mortality due to general medical
conditions. There is an emerging body of evidence correlating chronic medical
conditions to DNA damage. Peripheral markers have been used to assess
biochemical alterations associated with BD and/or possibly involved in its
pathophysiology. Many groups have proposed the involvement of S100B in
psychiatric disorders. Other biochemical markers, particularly associated with
oxidative stress have been studied in this disorder. In the present study we
evaluated markers of brain injury, oxidative stress and DNA damage in patients
with BD. Brain injury was assessed using serum S100B content; oxidative stress
was assessed using serum thiobarbituric acid reactive substances (TBARS) and
activities of antioxidant enzymes in BD patients in different episodes of disease.
The DNA damage was assessed using Comet assay in thirty-two bipolar-I
outpatients. We found a significant increment of serum S100B during episodes of
mania and depression but not in euthymic patients. Superoxide dismutase (Sod)
activity, as well the Sod/glutathione peroxidase plus catalase ratio, was also
increased in manic and depressed patients. On the other hand, TBARS levels were
increased in BD patients regardless of the phase of the disorder. Bipolar-I
outpatientes present an increase frequency of DNA damage as compared to
controls. These findings suggest a potential oxidative damage in BD patients. This
peripheral oxidative imbalance indicates that systemic changes are taking place
during the active phases (depressive and mania) of the illness, and this may be
increases DNA damage in BD patients. Such changes seem to relate to astrocyte
function, as assessed using serum S100B.
3
LISTA DE ABREVIATURAS
DNA = ácido desoxiribonucleico
EO = Estresse Oxidativo
ERO= Espécies Reativas do Oxigênio
GPx = Glutationa peroxidase
GR = glutationa reductase
GSH = glutationa
GSSG = glutationa oxidada
GST = glutationa S-transferase
H
2
O
2
= Peróxido de hidrogênio
HNE = 4-hidroxi-2-trnas-nonenal
MDA = malondialdeido
NO
•
= oxido nítrico
NOS = oxido nítrico sintases
O
2
-•
= radical superóxido
O
2
1
= oxigênio singlet
OH
•
= radical hidroxil
ONOO
-
= peroxinitrito
RL = Radicais livres
RO
•
= radical peroxil
Sod = Superoxido dismutase
TBA = ácido tio-barbitúrico
TBARS = Espécies reativas do ácido tio-barbitúrico
THB = Transtorno do humor bipolar
4
1. Introdução
1.1Transtorno do Humor Bipolar
O transtorno bipolar do humor (THB) é uma doença de curso recorrente,
episódico, crônica e incapacitante (Belmaker 2004), caracterizado por episódios
recorrentes de mania, hipomania, depressão e estados mistos. (Sajatovic 2005).
Alguns estudos estimam que a prevalência do THB está entre 1% e 2% (Kessler et
al 1994; Belmaker 2004). Um estudo multicêntrico realizado no Brasil em 1992
estima que 1,1% da população de Porto Alegre, RS, é portadora de Transtorno do
Humor Bipolar (THB) (Almeida 1992); entretanto, quando são também
consideradas formas mais leves desse transtorno (espectro bipolar), estudos
indicam uma prevalência de até 6% na população em geral (Judd and Akiskal,
2003).
Segundo a Organização Mundial de Saúde o THB é a sexta causa de
incapacidade entre condições médicas e psiquiátricas entre pessoas com 15 a 44
anos (Murray & Lopez 1997). Estudos têm demonstrado que o gasto anual para a
sociedade, com pacientes Bipolares, varia entre 1,8 a 45 bilhões de dólares;
indiretamente causado devido a esses pacientes pararem de trabalhar (Wyatt and
Henter 1995; Das Gupta and Guest 2002; Hakkaart-van Roijen et al 2004). Além
disso, Morselli et al (2004) publicaram recentemente uma nova versão do
GAMIAN-Europe/BEAM survey, e demonstraram que menos da metade da
população estudada (n=968) possui um trabalho ativo (Morselli 2004). Alem disso,
5
comorbidades clínicas e psiquiátricas são comuns nos pacientes com THB
(Sajatovic 2005).
Alterações neuroquímicas induzidas pela mania estão associadas ao
surgimento de efeitos lesionais em células neurais (Post et al 1982; Friedman et al
1993; Johnston-Wilson et al 2000). Tem sido sugerida, nos últimos anos, em
estudos variados, a ocorrência de redução das células gliais em transtornos do
humor. Assim sendo, conceitualmente tem sido proposto que o THB é uma
patologia complexa, multifatorial e relacionada a alterações na plasticidade
estrutural cerebral em neurônio e glia (Ongur et al 1998; Johnston-Wilson et al
2000; Rajkowska et al 2001). Além disso, o THB está associado com o aumento
da morbidade e da mortalidade por condições médicas gerais, como doenças
cardiovasculares, obesidade e diabetes mellitus (Kupfer 2005).
As bases biológicas do THB incluem estudos relacionados à genética, às
vias neuro-hormonais, neurotransmissão, vias de transcrição de sinal, regulação
da expressão gênica, estresse oxidativo, entre outros. Estudos genéticos têm
sugerido, fortemente, que a patofisiologia pode ser explicada, pelo menos em
parte, por fatores genéticos (Lenox et al 2002). Existem diversas evidencias
mostrando o envolvimento das espécies reativas do oxigênio (ERO) em diversas
patologias, especialmente nos transtornos neurológicos e psiquiátricos devido a
vulnerabilidade do sistema nervoso central ao estresse oxidativo (Takuma et al
2004). Estudos recentes têm mostrado alterações nas enzimas antioxidantes nos
eritrócitos de pacientes com THB (Ozcan et al 2004; Rajenkar et al 2003; Kuloglu
et al 2002). Além disso, em um estudo piloto encontrou-se um aumento dos níveis
da proteína S100B durante episódios maníacos (Machado-Viera et al 2002).
6
1.2 Radicais livres e espécies reativas
O oxigênio constitui tanto um benefício quanto uma
ameaça aos organismos vivos e aqueles que se
capacitaram a usufruir seus benefícios tiveram, por
necessidade, de desenvolver uma serie de defesas
contra os seus perigos (Fridovich 1978).
De maneira simples, o termo radical livre refere-se a um átomo ou molécula
altamente reativo, que contêm número ímpar de elétrons em sua última camada
eletrônica (Halliwell and Guteridge 1990; Halliwell 2001). É este não-
emparelhamento de elétrons da última camada que confere alta reatividade a
esses átomos ou moléculas (Gutteridge & Halliwell 2000). Os principais radicais
livres e suas principais funções estão relacionados na Tabela 1.
Nos mamíferos são produzidos radicais livres de carbono, enxofre, nitrogênio e
oxigênio, mas os que ganham mais destaque devido a reatividade e aos danos
que podem causar são os radicais derivados do oxigênio. O termo espécies
reativas do oxigênio (ERO) inclui não somente radicais livres, mas também,
espécies não radicalares derivadas do oxigênio, como por exemplo, o peróxido de
hidrogênio, capaz de levar a formação do radical hidroxila, quando em presença
de metais (Halliwell 2000, Halliwell 2001, Shao et al 2002).
As ERO e outros RL podem ser produzidos por fontes exógenas ou
endógenas. Na célula, as ERO são produzidas como conseqüência do
metabolismo celular normal (Halliwell 2001). As principais fontes endógenas são a
cadeia de transporte de elétrons mitocondrial, a degradação de ácidos graxos nos
peroxissomos, os mecanismos de detoxificação mediados pelo complexo
7
enzimático citocromo P-450, o processo de fagocitose e a oxidação de pequenas
moléculas como hidroquinonas, ferrodoxinas reduzidas e catecolaminas, entre
outras (Salvador et al 2004; Andreazza et al 2004).
Tabela 1: Principais espécies reativas do oxigênio, nitrogênio e outras. (Tabela
baseada no livro Radicas Livres de Halliwell & Gutteridge 2000).
Principais Espécies Reativas
a
Espécies reativas do Oxigênio
b
Radical superóxido
O
2
¯ •
Radical mais abundante nas células, gerado por
reações de autoxidação, como a cadeia de
transporte de elétrons, algumas enzimas como a
xantina oxidase ou pode ser formado por ação das
células fagocitárias.
Peróxido de hidrogênio
(não-radicalar)
H
2
O
2
Gerado principalmente na matriz mitocôndrial
durante o processo de redução do O
2
a H
2
O. Atua
como segundo mensageiro intra e intercelular
ativando o fator de transcrição NF-ĸB em algumas
células.
Radical hidroxila
OH
•
É extremamente reativo, podendo lesar DNA,
proteínas, carboidratos e lipídios. Possui uma meia
vida de 7x10
-4
s. A capacidade desse radical em
lesar as células aumente visto que o organismo não
possui uma defesa especifica para esse radical
Oxigênio Singlet
(não-radicalar)
O
2
1
Esse pode ser gerado por indução luminosa,
reações catalisadas por peroxidases ou por células
fagocíticas. Pode lesar o DNA diretamente.
8
Espécies Reativas do Nitrogênio
Oxido Nítrico (radical) NO
•
Possui um importante papel no cérebro na
vasoregulação e na neurotransmissão. Não possui
alta reatividade, porém quando em excesso pode
reagir com o O
2
-•
e formar o radical ONOO
-
.
Peroxinitrito
(não-radicalar)
ONOO
-
Esse radical pode causar a oxidação e a nitração de
lipídios, DNA e resíduos de aminoácidos de
proteínas.
Outras espécies ou radicais livres
Radicais do Enxofre S
•
Os radicais do enxofre são formados quando um
grupo tiol (-SH) reage com vários radicais do
oxigênio ou com metais de transição (Fe
3+
). A
homocisteína, por sua vez, é capaz de gerar
radicais tióis.
Radicais Lipídicos RO
•c
,
ROO
•
O radical alcoxil (RO
•
) e peroxil (ROO
•
) possuem
reatividade intermediária. O ROO
•
pode dar início a
reações em cadeias de RL, sendo particularmente
importante quando ocorrem em lipídios.
a
As espécies reativas envolve os radicais livre e os não-radicais.
b
As ERO são formadas principalmente na cadeia de transporte de elétrons,com exceção do
oxigênio singlet.
c
Utiliza-se o símbolo R para representar de modo geral qualquer grupo alquila.
Em condições fisiológicas do metabolismo celular aeróbio, o O
2
sofre redução
tetravalente, com aceitação de quatro elétrons, resultando na formação de H
2
O
(Figura 1). A formação mais freqüente das ERO ocorre no metabolismo incompleto
da redução do O
2
a H
2
O. O oxigênio recebe um elétron formando o O
2
-•
o qual
recebe mais elétron formando o H
2
O
2
esse por sua vez se reduz a OH
-
que
recebendo mais um elétron passa a H
2
O (Halliwell 2000; Andersen 2004).
9
As espécies reativas possuem um papel fisiológico importante como por
exemplo, o H
2
O
2
é um segundo mensageiro para a ativação do fator NF-ĸB em
alguns tipos celulares (Halliwell 2001; Bowie & O’Neill 2000), o NO atua como um
neurotransmissor e neuromodulador (Andersen 2004; Esplugues 2002; Hobbs
1999). Algumas espécies reativas possuem baixa reatividade química, por
exemplo, o radical O
2
-•
é gerado por reações de autoxidação, como a cadeia de
transporte de elétrons ou por enzimas como a xantina oxidase (Fridovich 1997;
Bolmann & Ulvik 1990).
Figura 1. Geração de ERO a partir da redução do oxigênio (Halliwell 2001).
O radical O
2
¯ •
participa na reação de Haber-Weiss (1) gerando oxigênio e ferro
reduzido, o qual catalisa a reação de Fenton (2) formando o radical hidroxila
(Halliwell & Gutteridge 1984).
(1) O
2
¯ •
+ Fe
3+
O
2
+ Fe
2
+
(2) Fe
2
+
+ H
2
O
2
OH
•
+ OH
¯
+ Fe
+
O radical hidroxila possui alta reatividade podendo atacar e lesar todas as
biomoléculas: carboidratos, lipídios, proteínas e DNA (Vonn Sonntag 1897). As
H
2
O
OH
•
••
•
O
2
O
2
-
•
••
•
H
2
O
2
e-
e-
2H
+
e-
OH
-
e-
H
+
10
bases purínicas e pirimidínicas e resíduos de desoxirribose do DNA ao serem
atacadas pelo radical OH
•
geram diversos produtos, a maioria deles mutagênicos
(Halliwell, 2001). Estes produtos incluem citosina glicol, 8-hidroxiadenina e 8-
hydroxiguanina (Droge 2002; Fujikawa et al 1998).
Os lipídios oxidados pelos RL iniciam uma cadeia de reações conhecida
como peroxidação lipídica (Halliwell & Gutteridge 2000). Na presença de ERO os
lipídios reagem com o oxigênio para produzir radicais alquila e peroxila que se
propagam por uma cadeia de radicais livres e formam hidroperóxidos como
produtos primários (Droge 2002). Os radicais alcoxil e peroxil podem causar danos
as membranas protéicas das células levando a modificação da estrutura e
diminuição da fluidez da membrana celular resultando na alteração das suas
propriedades fisiológicas. A destruição da membrana celular causa a perda da
função das organelas podendo levar à morte celular (Andersen 2004; Droge 2002;
Niki et al 1993). A peroxidação lipídica resulta em uma mistura complexa de
hidroperóxidos e produtos secundários de oxidação, incluindo peróxidos cíclicos
como o malondialdeído (MDA) e o 4-hidroxi-2-trans-nonenal (HNE) (Halliwell 2001;
Esterbauer et al 1991).
1.3 Defesas Antioxidantes
O nosso organismo dispõe de um sistema celular de defesa contra as ERO
produzidas no organismo (Bonnefoy et al 2002). São as chamadas defesas
antioxidantes primárias, que incluem as enzimas superóxido dismutase (Sod),
11
(1) 2O
2
¯ •
+ 2H
+
H
2
O
2
+ O
2
glutationa peroxidase (GPx), catalase (Cat), glutationa- S-transferase (GST)
1
e
outras que não participam diretamente do processo, mas fornecem suporte à GPx,
como a glicose-6-fosfato desidrogenase (G6PD) e a glutationa redutase (GR)
(Halliwell & Gutteridge, 2000; Droge, 2002). Além das defesas enzimáticas
existem ainda antioxidantes não enzimáticos, como a vitamina E (α-tocoferol),
vitamina C (ácido ascórbico), flavonóides e outras moléculas como β-caroteno, N-
acetilcisteína e glutationa (Borella & Varela 2004). Esses antioxidantes agem
principalmente bloqueando a cadeia de peroxidação lipídica, eliminando oxigênio
ou quelando íons metálicos (Sies 1993).
1.3.1 Superóxido dismutase (Sod)
Descoberta em 1969 por McCord e Fridovich, as Sod são metaloenzimas
abundantes nas células aeróbias, responsáveis pela dismutação do radical
superóxido a H
2
O
2
e O
2
(Reação 1) (Jhonson and Giulivi 2005). Em mamíferos,
foram identificadas três diferentes tipos de enzimas Sod: Sod1 ou SodCuZn, um
homodímero de cobre e zinco encontrada no citoplasma; Sod2 ou SodMn, um
tetrâmero contendo manganês em seu sítio ativo e encontrada exclusivamente na
mitocôndria e Sod3 ou SodEC, a mais recente Sod caracterizada, um tetrâmero de
cobre e zinco que apresenta um peptídeo sinalizador que a direciona
exclusivamente para o espaço extracelular (Fridovich 1998; Zelco et al 2002).
1
A GST pode não ser considerada uma defesa antioxidante por depletar os níveis de glutationa necessária para a formação
de GPx (Hayes et al 2005). O mecanismo da GST de conjugar-se com o-quinonas (composto que pode levar a formacao
de semi-quinonas, neurodegeneativas, explicado na secção 1.4.) é um dos mecanismos pelo qual a GST é considerada uma
defesa antioxidante (Baez et al, 1997).
12
(2) 2H
2
O
2
2H
2
O + O
2
(3) H
2
O
2
+ 2GSH GSSG + 2H
2
O
1.3.2 Catalase (Cat)
A enzima catalase é uma ferrihemoenzima formada por quatro unidades
idênticas, sendo que cada monômero contém um grupo prostético de heme no
centro catalítico, para a ativação dos tetrâmeros é requerido NADPH (Borella &
Varela 2004; Halliwell & Whitman 2004; Halliwell 2001). A principal fonte de
NADPH é reação catalisada pela enzima glicose-6-fosfato desidrogenase (G6PD),
a primeira reação da via das pentoses (Ursini et al., 1997). A catalase converte
peróxido de hidrogênio em água e oxigênio molecular, (ver reação 2) (Fridovich
1998). Em células eucarióticas, existem catalases citosólicas e perixossomais,
codificadas pelos genes CTT1 e CTA1, respectivamente (Speavak at al 1986),
estando presente principalmente nos peroxissomas (Halliwell 2001).
1.3.3 Sistema Glutationa
O H
2
O
2
também pode ser detoxificado por uma seleno-enzima a glutationa
peroxidase (GPx). A sua ação está baseada na oxidação de glutationa (GSH) ao
seu dissulfeto correspondente GSSG (reação 3) (Chance et al 1979; Baez et al
1997):
13
(4) GSSG + NADPH+H 2GSH + NADP+
A razão entre GSH e GSSG em células normais é alta, pois existe um
mecanismo de redução da GSSG que é catalisado pela enzima glutationa
redutase (GR) (Chance et al 1979):
A glutationa desempenha também um importante papel na detoxificação de
xenobióticos e vários compostos endógenos, como prostaglandinas, leucotrienos e
hidroperóxidos orgânicos, através de reações mediadas pela glutationa
transferase (Halliwell 2001).
1.4 Estresse oxidativo e vulnerabilidade do SNC
Os radicais livres formam-se em condições fisiológicas em proporções
controladas pelos mecanismos defensivos celulares. Entretanto em situações
patológicas, esta produção pode aumentar substancialmente. O estresse oxidativo
(EO) pode resultar de uma situação em que há uma diminuição nos níveis das
enzimas antioxidantes, uma elevada velocidade de produção de ERO, ou uma
combinação de ambas condições (Figura 2) (Pawlak et al 1998; Beckman & Ames
1998; Halliwell 2001).
14
DNA LIPÍDEOS
ALTERAÇÕES EM ÁCIDOS
GRAXOS POLIINSATURADOS E
FLUIDEZ DA MEMBRANA
↑
↑↑
↑ CÁLCIO
INTRACELULAR
ALTERAÇÃO DAS
FUNÇÕES DOS
RECEPTORES/ SINAIS
DE TRANDUÇÃO
ESTRESSE OXIDATIVO
DANO OXIDATIVO
↑
↑↑
↑ ERO E/OU
↓
↓↓
↓ DEFESAS ANTIOXIDANTES
DEPLEÇÃO
DE
GLUTATIONA
ATIVAÇÃO
DE NOS
FORMAÇÃO
DE ONOO
•
••
•
CARBOIDRATOS PROTEINAS
Figura 2. Estresse oxidativo e dano celular. (ERO) espécies reativas do oxigênio; (ONOO
•
)
peroxinitrito; (NOS) óxido nítrico sintase (adaptada de Halliwell & Gutteridge 2000).
15
Todos os tecidos são vulneráveis ao EO, porém o SNC é particularmente sensível
(Mahadik et al 2001). Esta situação pode ser desenvolvida por alguns fatores: (1)
alta taxa de consumo de oxigênio (Halliwell 2001); (2) elevados níveis de lipídios
poliinsaturados capazes de sofrer peroxidação lipídica (Mahadik et al 2001). (3)
uso extensivo do glutamato como neurotransmissor, o glutamato ao se ligar no
seu receptor (NMDA) libera Ca
2+
que estimula a ativada da oxido nítrico sintase
neuronal (NOSn), levando a produção de NO
-
(Schulz et al 1997; Schulz et al
1996); (4) auto-oxidação de alguns neurotransmissores podem levar a formação
de ERO (Obata 2002, Qureshi et al 2004).
Todos as regiões do SNC possuem CuZnSOD, MnSOD, GSH (em
quantidade milimolares) e GPx. Além dessas enzimas o cérebro possui a glutaiona
S- tranferase que promove a eliminação das o-quinonas formadas pela oxidação
das catecolaminas (Halliwell & Gutteridge 2000).
As catecolaminas (dopamina, epinefrina e norepinefria) podem ser oxidadas
através de uma via não-enzimática (auto-oxidação) e enzimatica, no caso da
dopamina (Figura 3) (Obata 2002; Halliwell 2001; Sagin et al 2004). A auto-
oxidação das catecolaminas ocorre em presença de íons Fe
2+
livres, originando as
respectivas o-quinonas, que podem reduzir-se a radical o-semiquinona, numa
reação mediada pela citocromo P-450 redutase com NADPH como cofator (Baez
1997). A glutationa S-transferase, utilizando a GSH, forma um complexo estável
com a o-quinona, com o objetivo de diminuir a formação de o-semiquinona, um
radical neurotóxico (Obata 2002; Baez 1997).
A dopamina pode ser oxidada na presença da enzima monoamino oxidase
(MAO), resultando na formação do ácido 3,4 diidroxifenilacético e H
2
O
2
, capaz de
16
gerar OH
•
. Essa via ocorre especialmente nos gânglios da base (putamen, núcleo
caudal e substantia nigra) onde existem altas concentrações de dopamina,
oxigênio e ferro (Qureshi et al 2004; Obata 2002).
O THB é marcado por episódios recorrente de mania e depressão os quais
estão acompanhados por alterações nos níveis das catecolaminas e indolaminas
(Schatzberg et al 1987; Machado-Vieira et al 2004), evidenciando uma provável
alteração nos níveis de estresse oxidativo.
1.5 Dano ao DNA e Ensaio Cometa
O dano ao DNA produzido por oxidação é considerado o mais significante
dano oriundo do metabolismo celular. Estima-se que aproximadamente 2x10
4
lesões oxidativas ao DNA ocorram no genoma humano por dia (Ames &
Shigenoga 1992). Acredita-se que desta maneira o reparo destas lesões possua
um papel central na prevenção do aumento de mutações nos organismos vivos
(Maluf, 2004). Muitas evidências sugerem que danos cumulativos ao DNA
causados pelas espécies reativas de oxigênio (ERO) contribuam para diversas
condições clínicas como câncer (Palyvoda et al 2003; Rajeswari et al 2000),
esquizofrenia (Psimadas et al 2004), Alzheimer (Migliore et al 2005). Porém,
devemos levar em consideração que o dano ao DNA pode ser induzido por
hábitos alimentares e estilo de vida (McCord & Edeas 2005). Alguns estudos têm
mostrado que o cigarro pode aumentar o dano ao DNA tanto em jovens como em
adultos (Piperakis et al 2004). Singh et al (1991) mostrou que o dano ao DNA
aumenta com o envelhecimento, além disso, está bem relatado que a freqüência
de mutações também aumenta com o envelhecimento causado pelo acúmulo de
17
Fe
3+
Fe
2+
+ MAO +
GSH GSSG
Fe
+2
Glutationa S-transferase
NADPH
CITP 450 redutase
NADP
+
o-quinona R
1
R
2
R
3
Dopamina Dopacromo
H
COO
H
H
Adrenalina Adenocromo OH H CH
3
Noradrenalina Noradenocro
mo
OH H H
DOPAMINA
O
2
-
•
••
•
H
2
O
2
ácido 3,4-diidroxifenilacético
OH
•
••
•
o- quinona
NEURODEGENERAÇÃO
Figura 3. Possíveis vias de oxidação das catecolaminas. (OH
•
) radical hidroxila; (O
2
-
•
) radical superóxido; (MAO) monoamino
oxidase; (H
2
O
2
) peróxido de hidrogênio; (GSH) glutationa reduzida; (GSSG) glutationa oxidada (adaptada de
Obata, 2002 e Baez
et al
1997).
NORADRENALINA
ADRENALINA
O
O
N
R
3
R
2
R
1
N
R
3
R
2
R
1
*O
HO
O
O
N
R
3
R
2
R
1
S
H
NHO
OO
NH
2
N
H
OH
O
O
glutationa o-quinona
18
danos e/ou pela diminuição capacidade de reparo ao DNA (Betti et al 1994;
McCord & Edeas 2005). Maluf (2004) relata influencia do exercício físico na
indução de dano ao DNA, porém até o momento nenhum trabalho demonstrou
alterações cromossomais em indivíduos praticantes de exercício físico intenso.
O ensaio Cometa é uma técnica simples e rápida para verificarmos de
modo quantitativo quebras simples e dupla ao DNA (Maluf & Erdtmann 2000;
Faust et al 2004). Östling e Johanson (1984) detectaram o dano ao DNA induzido
por radiação ionizante após eletroforese sob condições de pH neutro, verificando
apenas quebras duplas ao DNA. Singh et al (1988) propuseram proceder à técnica
sob condições alcalinas, assim podendo detectar quebras simples e duplas ao
DNA. Atualmente esta técnica sofreu pequenas modificações (Tice et al 2000) e
vem sendo amplamente utilizada para detecção de dano ao DNA.
1.6. A Proteína S100B
A Glia possui um papel ativo e vital no SNC, incluindo a regulação do
desenvolvimento neural, manutenção da homeostase celular e resposta reparativa
a danos neurológicos agudos e crônicos (Van Eldik & Wainwrigt 2003). No
entanto, em condições patológicas, a função glial pode ser desregulada levando a
um aumento da neuroinflamação e futuro dano neurológico (Laming et al 2000).
Em 1965, Moore isolou uma fração subcelular de um cérebro bovino, que
considerava conter proteínas específicas do SNC. Esta fração foi chamada de
S100, devido ao fato de seus constituintes serem 100% solúveis em uma solução
saturada de sulfato de amônia. Posteriormente verificou-se que este extrato
cerebral não continha somente uma, mas duas diferentes proteínas a S100A1 e a
19
S100B (Isobe & Okuyama 1981). As proteínas S100 apresentam estrutura do tipo
EF-hand, contendo dois sítios de ligação para Ca
+2
(Rothermundt et al 2003).
A S100B é uma proteína de cerca de 21kDa encontrada principalmente na
forma homodimérica, expressada abundantemente em astrócitos, podendo ser
considerada, juntamente coma GFAP, como uma marcadora destas células no
SNC (Van Eldik & Wainrigt 2003). Fora do SNC, a S100B foi identificada também
em adipócitos e melanomas (Donato 2001) e embora possa desempenhar funções
semelhantes às que realiza em astrócitos, seu papel nestas células não é
conhecido.
A S100B é produzida e secretada pelos astrócitos exercendo efeito
parácrinos e autócrinos sob neurônios e na própria glia de forma dependente da
concentração (Adami et al 2001; Rothermundt et al 2003). Em concentrações na
ordem de nM a S100B estimula a sobrevivência neuronal, o crescimento de
neuritos (Selinfreund et al 1990) e ativação da ERK (Gonçalves et al 2002). Em
concentrações µM a S100B está relacionada a efeitos tóxicos, podendo induzir
apoptose em astrócitos e neurônios (Van Eldik & Wrainwright 2003; Rothermundt
et al 2003), além disso nessas concentrações a S100B pode estimular a secreção
de óxido nítrico pelos astrócitos através da ativação da óxido nítrico sintase
induzível (iNOS).
Níveis extracelulares elevados de S100B estão associados ao dano
neuronal e parecem estar envolvidos na patogênese de doenças
neurodegenerativas como a doença de Alzheimer (Grifin et al 1998) e mal de
Parkinson (Schaf et al 2005), transtornos psiquiátricos como esquizofrenia
20
(Schmitt et al 2005) e THB (Machado-Vieira et al 2002; Schroeter et al 2003)
também apresentaram níveis elevado de S100B.
21
1.7 Objetivo Geral
O objetivo geral desta dissertação consiste na avaliação dos níveis séricos
de S100B, enzimas antioxidantes, peroxidação lipídica e dano ao DNA em
pacientes com Transtorno do Humor Bipolar durante as fases de eutimia, mania e
depressão em comparação com controles voluntários não portadores de THB.
1.7.1 Objetivos Específicos
1) Avaliar os níveis séricos de S100B nos pacientes bipolares durantes os
episódios de mania e depressão e fase eutímica e comparar a controles
saudáveis;
2) Verificar a atividade enzimática da superóxido dismutase, catalase e
glutationa peroxidase no soro dos pacientes e controles;
3) Avaliar os níveis de peroxidação lípidica (TBARS) dos pacientes e
controles.
4) Caracterizar o dano ao DNA, através do ensaio Cometa, de pacientes
bipolares Tipo 1, não fumantes e que não possuam comorbidades clínicas em
comparação a controles não fumantes e que não utilizem medicações.
22
PARTE II
2. Resultados
Os objetivos desta dissertação estão distribuídos em dois capítulos:
2.1 Capítulo 1
Serum S100B and antioxidant enzymes in bipolar patients. Ana Cristina
Andreazza, Carina Cassini, Adriane Ribeiro Rosa, Marina Leite, Lucia MV
Almeida, Patrícia Nardin, Keila Maria Ceresér, Angelo Cunha, Aida Santin,
Carmem Gottfried , Mirian Salvador, Flavio Kapczinski, Carlos Alberto Gonçalves.
Artigo submetido à Biological Psychiatry
(Objetivos 1, 2, e 3)
2.2 Capítulo 2
DNA damage in Bipolar disorder. Ana Cristina Andreazza, Benicio Frey,
Fernanda Rombaldi, Bernardo Erdtaman, Mirian Salvador, Carlos Alberto
Gonçalves, Flavio Kapczinski.
Artigo Submetidos à Psychiatry Research
(Objetivo 4)
23
CAPITULO I
Serum S100B and antioxidant enzymes in bipolar patients
Ana Cristina Andreazza, Carina Cassini, Adriane Ribeiro Rosa, Marina Leite, Lucia
MV Almeida, Patrícia Nardin, Keila Maria Ceresér, Angelo Cunha, Aida Santin,
Carmem Gottfried , Mirian Salvador, Flavio Kapczinski, Carlos Alberto Gonçalves
ARTIGO SUBMETIDO AO
Biological Psychiatry
24
Serum S100B and antioxidant enzymes in bipolar patients
Ana Cristina Andreazza
a,b
, Carina Cassini
c
, Adriane Ribeiro Rosa
b
, Marina Leite
a
, Lucia
MV Almeida
a
, Patrícia Nardin
a
, Keila Maria Ceresér
b
, Aida Santin
b
, Carmem Gottfried
a
,
Mirian Salvador
c
, Flavio Kapczinski
a, b
, Carlos Alberto Gonçalves
a
a
Department of Biochemistry, Instituto de Ciências Básicas da Saúde, Universidade
Federal do Rio Grande do Sul, Ramiro Barcelos, 2600- Anexo, 90035-003, Porto Alegre,
RS, Brazil;
b
Bipolar Disorders Program, Centro de Pesquisas, Hospital de Clínicas de Porto Alegre,
Ramiro Barcelos, 2350, 90035-003, Porto Alegre, RS, Brazil;
c
Institute of Biotecnology,
Universidade de Caxias do Sul, Francisco Getúlio Vargas, 1130, 95070-560, Caxias do
Sul, RS, Brazil
c
Institute of Biotecnology, Universidade de Caxias do Sul. Rua Francisco Getúlio Vargas,
1130. Zip code: 95070-560. Caxias do Sul, Brazil
Corresponding author: Carlos-Alberto Gonçalves
Depto Bioquímica, ICBS, UFRGS
Ramiro Barcelos, 2600-anexo
90035-003 Porto Alegre, RS Brazil
E-mail: casg@ufrgs.br
Fax: 55-51-3316 5535
Abstract: 255 words; Text: 2,456; Number of figures: 06; Table: 01
25
Abstract
Bipolar disorder (BD) is a chronic, severe, and highly disabling psychiatric disorder;
peripheral markers have been used to assess biochemical alterations associated
with BD and/or possibly involved in its pathophysiology. Many groups have
proposed the involvement of S100B in psychiatric disorders. Other biochemical
markers, particularly associated with oxidative stress have been studied in this
disorder. In the present study we evaluated markers of brain injury and oxidative
stress in patients with BD. Brain injury was assessed using serum S100B content;
oxidative stress was assessed using serum thiobarbituric acid reactive substances
(TBARS) and activities of antioxidant enzymes in BD patients in different episodes
of disease. We found a significant increment of serum S100B during episodes of
mania and depression but not in euthymic patients. Superoxide dismutase (Sod)
activity, as well the Sod/glutathione peroxidase plus catalase ratio, was also
increased in manic and depressed patients. On the other hand, TBARS levels were
increased in BD patients regardless of the phase of the disorder. These findings
suggest a potential oxidative damage in BD patients. This peripheral oxidative
imbalance indicates that systemic changes are taking place during the active
phases of the illness. Such changes seem to relate to astrocyte function, as
assessed using serum S100B.
Key Words: bipolar disorder; catalase; glutathione peroxidase; oxidative stress;
superoxide dismutase; S100B.
26
Introduction
Bipolar disorder (BD) is a chronic, severe, and highly disabling psychiatric
disorder which is estimated to affect 1% of the world population (Belmaker 2004).
According to the World Health Organization, BD is considered the sixth leading
cause of disability amongst all medical and psychiatric conditions (Murray and
Lopez 1997). Moreover, BD is associated with increased morbidity and mortality
due to other general medical conditions, such as cardiovascular disease, obesity
and diabetes mellitus (Kupfer 2005). Peripheral markers have been used to assess
biochemical alterations associated with BD and/or possibly involved in its
pathophysiology.
S100B is a calcium-binding protein produced and secreted by astrocytes
that exert paracrine and autocrine effects on neurons and glia (Donato 2001).
Extracellular S100B levels may play trophic and/or toxic roles depending on its
concentration. Increased extracellular levels of this protein are associated to brain
damage and its persistent elevation appears to be involved in neurodegeneratives
disorders (Rothermundt et al 2003). Previous studies have reported alterations of
glial cells and particularly astrocytes in mood disorders (Ongur et al 1998;
Johnston-Wilson et al 2000; Schroeter et al 2002). A pilot study showed that BD
patients exhibit elevated levels of serum S100B during manic episodes (Machado-
Viera et al 2002). Moreover, it has been put forward the involvement of S100B in
the pathophysiology of schizophrenia (Wiesmann et al 1999; Lara et al 2001;
Rothermundt 2001), reinforcing the importance of this astrocyte marker in
psychiatric disorders.
27
There is evidence that reactive oxygen species (ROS) play an important role
in the pathogenesis of many diseases, particularly in neurological and psychiatric
diseases due to the central nervous system vulnerability to oxidative stress
(Takuma et al 2004). Recent studies have reported alterations of antioxidant
enzymes in red blood cells from BD patients (Ozcan et al 2004; Rajenkar et al
2003; Kuloglu et al 2002). The content of plasma thiobarbituric acid reactive
substances (TBARS) and erythrocyte superoxide dismutase (Sod) activity have
been reported to be increased in BD patients (Kuloglu et al 2002). On the other
hand, no changes in TBARS or SOD activity were observed in another study with
patients with BD (Ranjekar et al 2003). Independently, another group described a
decrease in catalase activity in BD patients; this decrease was accompanied, by an
increase of plasma TBARS and a decrease of glutathione peroxidase (GPx)
activity (Ozcan et al 2004). More recently, Machado-Vieira (2005) observed
elevated levels of TBARS and Sod activity during manic episodes in BD patients.
Regardless methodological differences in these works, the available evidence
suggests that oxidative stress may play a role in he pathophysiology of Bipolar
Disorder. We have hypothesized, a priori, that some of the inconsistencies found in
these studies are due to state changes induced by differential phases of the illness.
The present study was designed to evaluate brain injury, using the serum
S100B contend, and oxidative stress, using serum TBARS and activities of
antioxidant enzymes (Sod, GPx and catalase) in BD patients during the differential
phases of the illness.
28
Material and Methods
Subjects
This was a case-control study of 84 patients with BD (21 depressed 32
manic and 31 euthymic) matched to 32 healthy volunteers. Patients were 18 years
or older, consecutively assessed from December 2003 to May 2005. All patients
were recruited from the Bipolar Disorders Program - Federal University of Rio
Grande do Sul, Porto Alegre, Brazil. Patients were non-smokers, did not present
active medical conditions and were not on medication, apart from those prescribed
for their psychiatric disorder. BD diagnose was carried out using the Structured
Clinical Interview for DSM-IV – Axis I (SCID-I) (First et al 1998). Manic and
depressive symptoms were assessed using the Young Mania Rating Scale
(YMRS) (Young et al 1978) and the Hamilton Depression Rating Scale (HDRS)
(Hamilton 1960), respectively. The normal subjects consisted of healthy volunteers
(n=32), who manifested interesting in participated of the study. In addition, controls
did not have history of major psychiatric disorders, dementia, mental retardation,
cancer or tumor in their first-degree relatives. Control subjects were no smokers
and were not on medication. Healthy subjects were matched for age and gender.
This study was approved in the local ethical committee, and all subjects signed the
informed consent before entering in the study.
Procedure
Collection and processing of blood samples
29
Each subject had 5 ml blood samples collected by venipuncture without
anticoagulants and serum was obtained by centrifugation at 3,000 xg for 5 minutes
and kept frozen at -70°C for up to 6 months until the biochemical assay.
Superoxide Dismutase activity
Superoxide dismutase activity was determined spectrophotometrically in
serum samples by measuring the inhibition of the ratio of autocatalytic
adrenochrome formation at 480nm in a reaction medium containing 1 mmol/l
adrenaline (pH 2) and 50 mmol/l glycine (pH 10.2). This reaction was conducted at
a constant temperature of 30ºC during 3 minutes. Enzyme activity is expressed as
superoxide dismutase units per g of protein. One unit is defined as the amount of
enzyme that inhibits the ratio of adrenochrome formation to 50% (Mirsa et al 1972).
Catalase activity
Catalase activity was assayed by the method of Chance and Machley
(1954). Briefly, first 2 ml quartz cuvette contained in 1,980ml phosphate buffer
(pH=7.0, 50 mM) and 20 µL of serum were added and the spectrophotometer was
adjusted to auto zero. After, was added 2 µL of H
2
O
2
(3 mM freshly diluted). One
unit of catalase decomposing 1 µmol of hydrogen peroxide per mg of protein per
minute at pH 7.4.
Glutathione peroxidase activity
30
The reaction was carried out at 25
o
C in 600 µL of solution containing 100
mM potassium phosphate buffer pH 7.7, 1 mM EDTA, 0.4 mM sodium azide, 2 mM
GSH, 0.1 mM NADPH, 0.62 U GSH reductase. The activity of selenium-dependent
GPx was measured taking tert-butyl-hydroperoxide as the substrate at 340 nm.
The contribution of spontaneous NADPH oxidation was always subtracted from the
overall reaction ratio. GPx activity was expressed as nmol NADPH oxidized per
minute per mg protein (Wendel 1981).
Analysis of serum TBARS (Tiobarbituric acid reactive substances)
The levels of oxidative stress were measured using the thiobarbituric acid
(TBARS) method described by Wills (1966). In this method, when the free radicals
react with a lipid production MDA, which in combination with TBARS forms a pink
chromogen, i.e., compound, whose absorbance at 530 nm was measured. MDA
results were expressed as nmol/ml.
S100B protein measurement
Serum S100B was measured by ELISA, as described previously
(Tramontina et al 2000) with some modifications. The standard S100B curve
ranged from 0.025 to 2.5 ng/mL. Briefly, 50 µL of serum plus 50 µL of barbital
buffer were incubated for 3 h on a microtiter plate previously coated with
monoclonal anti-S100B (SH-B1, from Sigma). The plate was then incubated with
rabbit polyclonal anti-S100 (from DAKO) and peroxidase-conjugated anti-rabbit
immunoglobulin for 1 h. Color reaction with o-phenylenediamine was measured at
31
492 nm. Samples were measured in triplicate and those with a coefficient of
variation > 5 % were repeated; the interassay coefficient of variation in our sample
was < 6 %.
Statistical Analysis
Statistical Product and Service Solutions 12.0 Version (SPSS) performed
analysis. The Kolmogorov-Smirnov Test was used for compares an observed
cumulative distribution function to a theoretical cumulative distribution. Patients
were divided according clinical scale (depressive and manic episode or euthymic)
this were compared to control group. The outcome measures of the three groups
were compared using the ANOVA test and Tukey post test. In order to adequately
adjust for confounders, a linear regression model was used, having each
biochemical procedure as the outcomes. The confounders analyzed were sex, age,
years of schooling and number of medication. Other variables, such as number of
suicides attempts, number of hospitalizations and rapid cycling, were not
associated with biochemical procedure, and therefore, were not included in the
regression model.
Results
Demographic characteristics of BD patients and controls are included in
table 1. The mean age and gender of controls (N=32) matched to depressed
(N=21), manic (N=32) and euthymic patients and did not present significantly
difference. Because serum S100B content is dependent on age we separated BD
patients and controls in two age groups. No difference between in serum S100B
32
between BD patients and controls could be due to age between them. All patients
were medicated and more than 2/3 of them were using lithium, alone or together
with other medication.
Fig 1 shows a significant increment of serum S100B in depressive (p=0.004)
and manic (p=0.011) episodes. No changes were observed in euthymic patients
(p=0.263). Differently, TBARS levels were increased in BD patients (Fig 2),
independently of psychiatric phase of the disease: euthymic (p=0.001), depressed
(p=0.022) or manic (p=0.001).
Serum Sod activity (Fig 3) was strongly increased in manic and depressed
BD patients (about 3 times) (p=0.001), but not in euthymic patients (p=0.550). This
Sod activity increment in manic and depressive episodes also was significant when
compared to euthymic patients. On the contrary, serum GPx activity (Fig 4) was
significantly increased in euthymic patients (p=0.001), but not in depressed
(p=0.997) or manic patients (p= 0.448). Interestingly, serum catalase activity (Fig
5) was reduced in manic (p=0.010) andeuthymic (p=0.001) patients, but not in
depressive patients (p=0.898).
Another interesting view was obtained analyzing the Sod/(GPx + catalase)
ratio (Fig 6). An elevated ratio was observed in manic (p=0.001) and depressive
(p=0.023) BD patients, when they were compared to controls. Like serum SOD
activity, this ratio was elevated in manic and depressive patients also when they
compared to euthymic patients.
33
Discussion
Many evidence have suggested that neurodegeneration might be a
pathogenetic factor in the development of psychiatric disorders, mainly
schizophrenia and major depression, in which elevated serum S100B is a common
finding (Rothermundt et al 2003). Bipolar disorder is not recognized as
neurodegenerative disease, but there is evidence that lithium, the quintessential
mood stabilizer, has a protective role in neurodegeneratives disorders (Chuang et
al 2004). Here we found a significant increment of serum S100B in depressive and
manic episodes. This increment in manic episode is in accordance with our
previous pilot study (Machado-Vieira et al 2002).
Two-third of BD patients were using lithium alone or combined with
valproate or carrbamazepine. This suggest that the changes observed in serum
S100B and oxidative stress are not related to a possible effect of lithium.
Interestingly, cerebrospinal fluid S100B is increased in rats chronically treated with
lithium (E. Rocha, unpublished data). However, the effect of lithium and other
medications per se need more investigation.
It is important to mention that adipocytes also contribute to the serum
content of S100B (Netto et al 2005), but we did not find any body weight difference
among BD patients (data not shown) that could explain, at least in part, a specific
increase in depressive and manic episodes. In fact, the serum increment in S100B
content represents an alteration in astrocyte activity. This alteration and other
reported alterations of glial cells in mood disorders (Ongur et al 1998; Johnston-
Wilson et al 2000; Schroeter et al 2002) reinforce the involvement of astrocytes in
the pathogenesis of BD.
34
Astrocytes play a central role in the antioxidant defense in central nervous
system (Takuma et al 2004), which is especially vulnerable to ROS because it is a
highly oxygenated organ that use 20% of the total oxygen required by the body.
Based on this it is possible to conceive that the imbalance between production of
reactive species and antioxidant defense observed in periphery (e.g. red blood
cells) is still more serious in brain tissue. Persistent elevated levels of ROS are
putatively involved in several neurodegeneratives disorders (Floyd 1999).
We found significant changes in serum TBARS and activity of antioxidant
enzymes in BD patients. The peripheral imbalance (i.e. oxidative stress) observed
in BD patients is possibly due to disease itself, but is strongly affected by
medications, co-morbidities, diet and lifestyle and together are responsible by the
heterogeneity and discrepancy observed in the literature concerning to the activity
of antioxidant enzymes (Kuloglu et al 2002; Ranjekar et al 2003; Ozcan et al 2004).
In previous studies involving BD patients was not taking in care the phase of
disease, even because the number of patients was small and they were
predominantly in manic episode (Ranjekar et al 2003; Ozcan et al 2004). In
according to Kuloglu et al (2002) and Oscan et al (2004) we found an increment in
serum TBARS.
In addition, we found elevated serum Sod activity in depressive and manic
episodes, as observed by Kuloglu et al (2002) in erythrocyte from BD patients. No
significant changes in SO activity were observed in euthymic patients. Ranjekar et
al (2003) and Ozcan et al (2004) did no found any changes in erythrocyte SOD
activity, in BD patients (predominately in manic episodes). SOD is a member of a
family of metalloenzymes, widely distributed in mammalian tissue, which plays a
35
major role in protecting the cells against toxic oxygen derivatives, converting
superoxide anion into H
2
O
2
(Johnson and Giulivi 2005).
Three types of Sod are
known in humans, with the most abundant being the cytosolic Sod-1, characterized
by its dependence on Cu/Zn. Serum Sod activity, like erythocyte Sod activity, is
predominately SOD-1 and its upregulation observed in BD patients (manic and
depressive episodes) strongly suggests an oxidative stress condition. However, the
eventual oxidative damage will depend also on other associated antioxidant
systems (including GPx and catalase activities). In the same vein, we found a
normal serum GPx activity and reduced activity of serum catalase in manic episode
suggesting a higher possibility of oxidative damage. In depressive episode no
changes were observed in GPx and catalase. Although it is possible to assume a
compensatory balance between GPx and catalase, it is unclear at present the
mechanism involved in the elevation of GPx and decrease of catalase in euthymic
BD patients. Based on Sod/(GPx + catalase) ratio it is conceivable that a stress
oxidative and eventually oxidative damage is ongoing in manic and depressive
episodes of BD patients.
It is important to mention that some evidence suggest an antioxidant effect
by mood stabilizers on cultured neural cells in excitotoxic conditions, particularly
lithium and valproate (Shao et al 2005). On the other hand lithium was not able to
protected oxidative stress induced by beta-amyloid peptide in rabbit hippocampus
(Ghribi et al 2003). Our data indicate that the potential oxidative damage in manic
and depressive episodes of BD patients was not prevented (maybe attenuated) by
mood stabilizers.
36
In summary, our data indicate a possible oxidative damage in BD patients,
particularly more accentuated during manic episodes. This damage could due to
the disorder itself, but we cannot rule out the effect and consequences of
medications, co-morbidities, diet and lifestyle. This peripheral oxidative imbalance
indicates that brain is possibly affected (and maybe in a more serious manner).
Confirming the glial involvement, we have found an increment of serum S100B, in
depressive and manic episodes, possibly due to the astrocyte activation.
References
Belmaker RH (2004): Medical progress: bipolar disorder. N Eng J Med 351:476-
486.
Chance B, Machley AL (1954): Assay of catalases and peroxidases. Meth Enzimol
2:764-775.
Chuang DM (2004): Neuroprotective and neurotrophic actions of the mood
stabilizer lithium: can it be used to treat neurodegenerative diseases? Crit Rev
Neurobiol 16:83-90.
Donato R (2001): S100: a multigenic family of calcium-modulated proteins of the
EF-hand type with intracellular and extracellular functional roles. Int J Biochem Cell
Biol 33:637-668.
37
First MB, Spitzer RL, Gibbon M, Williams JB (1998): Structured Clinical Interview
for DSM-IV (SCID-I). New York: Biomedics Research Department.
Floyd RA (1999): Antioxidants, oxidative stress, and degenerative neurological
disorders. Proc Soc Exp Biol Med 222:236-245.
Ghribi O, Herman MM, Savory J (2003): Lithium inhibits Abeta-induced stress in
endoplasmic reticulum of rabbit hippocampus but does not prevent oxidative
damage and tau phosphorylation. J Neurosci Res 71:853-862.
Hamilton M (1960): A rating scale for depression. J Neurol Neurosurg Psych 23:
56–62.
Johnson F, Giulivi C (2005): Superoxide dismutases and their impact upon human
health.
Mol Aspects Med 26:340-352.
Johnston-Wilson NL, Sims CD, Hofmann JP, Anderson L, Shore AD, Torrey EF,
Yolken RH (2000): Disease-specific alterations in frontal cortex brain proteins in
schizophrenia, bipolar disorder, and major depressive disorder. The Stanley
Neuropathology Consortium. Mol Psychiatry 5:142-149.
Kuloglu M, Ustundag B, Atmaca M, Canatan H, Tezcan E, Cinkilinc N (2002): Lipid
peroxidation and antioxidant enzyme levels in patients with schizophrenia and
38
bipolar desorder. Cell Biochem Funct 20: 171-175.
Kupfer DJ (2005): The increasing medical burden in bipolar disorder. JAMA 293:
2528-2530.
Lara DR, Gama CS, Belmonte-de-Abreu P, Portela LV, Goncalves CA, Fonseca M,
Hauck S, Souza DO (2001): Increased serum S100B protein in schizophrenia: a
study in medication-free patients. J Psychiatr Res 35:11-14.
Machado-Vieira R, Lara DR, Portela LV, Goncalves CA, Soares JC, Kapczinski F,
Souza DO (2002): Elevated serum S100B protein in drug-free bipolar patients
during first manic episode: a pilot study. Eur Neuropsychopharmacol 12:269-272.
Machado-Vieira R. (2005): Avaliação neuroquímica de alterações tróficas e/ou
dano neurônio – glial durante episódios maníacos. PhD Thesis. University of São
Paulo.
Mirsa HP, Fridovich I (1972): The role of superoxide anion in the antioxidation of
epinephrine and a simple assay for superoxide dismutase. J Biol Chem 217:3170-
3175.
Murray CJ, Lopez AD (1997): The utility of DALYs for public health policy and
research: a reply. Bull World Health Organ 75:377-381.
39
Netto CB, Portela LV, Ferreira CT, Kieling C, Matte U, Felix T, da Silveira TR,
Souza DO, Goncalves CA, Giugliani R (2005): Ontogenetic changes in serum
S100B in Down syndrome patients. Clin Biochem 38:433-435.
Ongur D, Drevets WC, Price JL (1998): Glial reduction in the subgenual prefrontal
cortex in mood disorders. Proc Natl Acad Sci U S A 95:13290-295.
Ozcan ME, Gulec M, Ozerol E, Polat R, Akyol O (2004): Antioxidant enzyme
activities and oxidative stress in affective disorders. Int Clin Psychopharmacol
19:89-95
Ranjekar, PK, Hinge, A, Hegde, MV, Ghate, M, Kale, A, Sitasawad, S, Wagh, UV,
Debsikdar, VB, Mahadik, SP (2003): Decreased antioxidant enzymes and
membrane essential polyunsaturatiod fatty acids in schizophrenic and bipolar
mood disorder patients. Psychiatry Research 121:109-122.
Rothermundt M, Arolt V, Wiesmann M, Missler U, Peters M, Rudolf S, Kirchner H
(2001): S-100B is increased in melancholic but not in non-melancholic major
depression. J Affect Disord 66:89-93.
Rothermundt M, Peters M, Prehn JH, Arolt V (2003): S100B in brain damage and
neurodegeneration. Microsc Res Tech 60:614-632.
Shao L, Young LT, Wang JF (2005): Chronic Treatment with Mood Stabilizers
40
Lithium and Valproate Prevents Excitotoxicity by Inhibiting Oxidative Stress in Rat
Cerebral Cortical Cells. Biol Psychiatry [In Press]
Schroeter ML, Abdul-Khaliq H, Diefenbacher A, Blasig IE (2002): S100B is
increased in mood disorders and may be reduced by antidepressive treatment.
Neuroreport 13:1675-8.
Takuma K, Baba A, Matsuda T (2004): Astrocyte apoptosis: implications for
neuroprotection. Prog Neurobiol 72:111-127.
Tramontina F, Conte S, Goncalves D, Gottfried C, Portela LV, Vinade L, Salbego
C, Goncalves CA (2002): Developmental changes in S100B content in brain tissue,
cerebrospinal fluid, and astrocyte cultures of rats. Cell Mol Neurobiol 22:373-378.
Wendel A (1981): Glutathione peroxidase. Methods Enzymol 77:325-333.
Wiesmann M, Wandinger KP, Missler U, Eckhoff D, Rothermundt M, Arolt Kirchner
H (1999): Elevated plasma levels of S-100b protein in schizophrenic patients. Biol
Psychiatry 45:1508-1511.
Wills ED (1966): Mechanism of lipid peroxide formation in animal tissues. Biochem
J 99:667-676.
41
Young RC, Biggs JT, Ziegler VE, Meyer DA (1978): A rating scale for mania:
reliability, validity, and sensitivity. Br J Psychiatry 133: 429–435.
42
Table 1: Demographics and clinical characteristics of BD patients and control
group.
Bipolar Patients
Depresse
d
(n=21)
Manic
(n=32)
Euthymics
(n=32)
Control Group
(n=32)
P value
Gender
Female
Male
5
16
18
14
12
20
11
21
0.260*
Age (Years)
20-40
40-60
43.42
9
12
40.13
15
17
40.28
17
15
40.69
20
12
0.771**
0.755*
Year of schooling 8.68 9.94 7.69 7.81 0.128**
Age of onset 21.32 27.19 23.13 - 0.276**
#
Years of illness 22.11 12.78 17.34 - 0.075**
#
HAM-D 19.69 5.16 4.28 - 0.001**
#
YMRS 5.16 34.47 3.16 - 0.001**
#
Medications
Lithium
Valproate
Lithium+Valproate
Carbamazepine
Lithium+Carbamazepine
Valproate+Carbamazepine
7
6
1
1
5
1
22
4
0
6
0
0
14
5
9
2
1
1
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
All values are means (S.D.); * Chi Square Test , ** ANOVA test for heterogeneity,
#
Analyzed between , depressive, manic and euthymic group
43
Figure and legends
Figure 1. Serum S100B concentration in BD patients and controls. BD patients
were separated in euthymic, manic and depressive groups. S100B was measured
by ELISA. Demographic data are in Table 1. Values are expressed in mean ±
standard error. * Statistically different from control (p < 0.01 for depressed group
and p < 0.05 for manic group).
44
Figure 2. Serum TBARS in BD patients and controls. BD patients were separated
in euthymic, manic and depressive groups. Demographic data are in Table 1.
Values are expressed in mean ± standard error. * Statistically different from
control (p < 0.01 for manic and euthymic groups and p < 0.05 for depressive
group).
45
Figure 3. Serum superoxide dismutase (Sod) activity in BD patients. BD patients
were separated in euthymic, manic and depressive groups. Values are expressed
in mean ± standard error.
a
Statistically different from controls (p < 0.01);
b
Statistically different euthymic group (p < 0.05).
46
Figure 4. Serum glutathione peroxidase (GPx) activity in BD patients. BD patients
were separated in euthymic, manic and depressive groups. Values are expressed
in mean ± standard error. * Statistically different from control and other groups (p <
0.01).
47
Figure 5. Serum catalase activity in BD patients. BD patients were separated in
euthymic, manic and depressive groups. Values are expressed in mean ±
standard error. * Statistically different from controls and depressed group (p <
0.01).
48
Figure 6. Sod/(GPx + catalase) ration in BD patients. BD patients were separated
in euthymic, manic and depressive groups. Values are expressed in mean ±
standard error.
a
Statistically different from control (p < 0.01 for depressive group
and p < 0.05 from manic group).
b
Statistically different from euthymic group (p <
0.05).
49
CAPITULO II
DNA Damage in Bipolar Disorder
Ana Cristina Andreazza, Benicio Frey, Fernanda Rombaldi, Bernardo Erdtaman,
Mirian Salvador, Carlos Alberto Gonçalves, Flavio Kapczinski
ARTIGO SUBMETIDO À
Psychiatry Research
50
DNA damage in bipolar disorder
Ana Cristina Andreazza a,b
Benicio Noronha Frey a,b
Bernardo Erdtmann c
Mirian Salvador c
Fernanda Rombaldi c
Aida Santin b
Carlos Alberto Gonçalves a
Flavio Kapczinski, b*
a
Department of Biochemistry, Instituto de Ciências Básicas da Saúde,
Universidade Federal do Rio Grande do Sul. Rua Ramiro Barcelos, 2600 /Anexo.
Zip code: 90035-003. Porto Alegre, Brazil
b
Bipolar Disorders Program, Centro de Pesquisas, Hospital de Clínicas de Porto
Alegre. Rua Ramiro Barcelos, 2350. Zip code: 90035-003. Porto Alegre, Brazil
c
Institute of Biotecnology, Universidade de Caxias do Sul. Rua Francisco Getúlio
Vargas, 1130. Zip code: 95070-560. Caxias do Sul, Brazil
* Corresponding author. Flávio Kapczinski, Bipolar Disorders Program, Centro de
Pesquisa, Hospital de Clínicas de Porto Alegre. Rua Ramiro Barcelos, 2350. Zip
code: 90035-003. Porto Alegre, RS, Brazil. Phone: + 55 51 32227309. Fax: + 55
51 21018846. E-mail: [email protected]
51
Abstract
Bipolar disorder (BD) is a prevalent, chronic, severe, and highly disabling
psychiatric disorder that is associated with increased morbidity and mortality due to
general medical conditions. There is an emerging body of evidence correlating
chronic medical conditions to DNA damage. The present study was designed to
assess DNA damage in BD patients using the comet assay (CA). Thirty-two
bipolar-I outpatients diagnosed using the Structured Clinical Interview for DSM-IV
were matched to 32 healthy volunteers. Manic and depressive symptoms were
assessed using the Young Mania Rating Scale (YMRS) and the Hamilton
Depression Rating Scale (HDRS), respectively. Peripheral blood samples were
collected and a standard protocol for CA preparation and analysis was performed.
The present study showed that BD outpatients present an increased frequency of
DNA damage as compared to controls. The frequency of DNA damage correlated
with the severity of symptoms of depression and mania.
Key Words: bipolar disorder, comet assay, DNA damage, oxidative stress, mania,
depression
52
1. Introduction
Bipolar disorder (BD) is a prevalent, chronic, severe, and highly disabling
psychiatric disorder (Belmaker, 2004). BD is considered one of the leading causes
of disability amongst all medical and psychiatric conditions (Murray and Lopez,
1997), and studies have demonstrated that the annual costs of BD range between
1.8-45 billion US dollars, mainly due to indirect costs because of work loss (Das
Gupta and Guest, 2002; Hakkaart-van Roijen et al 2004). Moreover, BD is
associated with increased morbidity and mortality due to general medical
conditions, such as cardiovascular disease, obesity and diabetes mellitus (Kupfer,
2005).
There is an emerging body of evidence correlating chronic medical
conditions to DNA damage (Faust et al 2004). The single cell gel electrophoresis
technique, also called the Comet assay (CA), is a rapid method for assessing DNA
damage quantitatively in single cells (Maluf and Erdtmann, 2000). Under alkaline
conditions, the CA detects DNA double- and single-strand breaks and alkali-labile
sites (Tice et al 2000). The CA technique has been increasingly used for human
biomonitoring studies (Kassie et al 2000). As a biomarker of genotoxicity, the CA
may identify groups of individuals at higher risk to develop degenerative diseases
(Migliore et al 2005).
Free radicals (especially HO
-•
) may initiate DNA damage (Cooke et al 2005;
Culmsee and Mattson, 2005), which under certain circumstances may lead to DNA
mutation. Multiple systems exist to prevent lesion formation, and should damage
occur, ensure rapid lesion removal (Cooke et al 2005). DNA damage may initiate
53
signaling pathways been identified by several kinases and through p53
phosphorylation at serine or threonine residues, leading to cell apoptosis (Evan
and Littlewood, 1998; Culmsee and Mattson, 2005). In the only study to date that
directly evaluated DNA fragmentation in BD subjects, no changes in single-
stranded DNA breaks were found in the anterior cingulate cortex in a postmortem
study (Benes et al 2003). Benes et al. (2003) suggested that changes in the
intracellular signaling pathways within the mitochondria may be associated with
apoptotic cells death in response to oxidative stress.
The present study was designed to assess DNA damage in BD patients
using the Comet assay (CA), as compared to healthy volunteers.
2. Material and Methods
2.1 Bipolar Patients
This was a case-control study of 32 patients with BD, 18 years or older
(43.28±12.72), consecutively assessed from December 2003 to May 2005. All
patients were recruited from the Bipolar Disorders Program - Federal University of
Rio Grande do Sul, Porto Alegre, Brazil. Patients were non-smokers, did not
present active medical conditions and were not on medication, apart from those
prescribed for their psychiatric disorder. BD diagnose was carried out using the
Structured Clinical Interview for DSM-IV – Axis I (SCID-I) (Spitzer et al 1992).
Manic and depressive symptoms were assessed using the Young Mania Rating
Scale (YMRS) (Young et al 1978) and the Hamilton Depression Rating Scale
54
(HDRS) (Hamilton, 1960), respectively. This study was approved in the local
ethical committee, and all subjects signed the informed consent before entering in
the study.
2.2 Control Group
The control group was composed of healthy subjects (n=32) who manifested an
interest in participating of the study. In addition, controls did not have history of
major psychiatric disorders, dementia, mental retardation or cancer in their first-
degree relatives. Control subjects were non-smokers and were not on medication.
All subjects were advised about the procedure and signed the informed consent
before entering in the study.
2.3 Comet Assay
A standard protocol for CA preparation and analysis was adopted (Singh et al
1988 and Tice et al 2001). The slides were prepared by mixing 5µl whole blood
whit 90 µllow melting point agarose (0.75%). The mixture (cells/agarose) was
added to a fully frosted microscope slide coated with a layer of 300 µl of normal
melting agarose (1%). After solidification, the cover slip was gently removed and
the slides were placed in lyses solution (2.5M NaCl, 100mM EDTA and 10mM Tris,
pH 10.0 – 10.5, with freshly added 1% Triton X-100 and 10% dimethyl sulfoxide
[DMSO]) for a minimum of 1hr and a maximum of 7 days. Subsequently, the slides
were incubated in freshly made alkaline buffer (300mM NaOH and 1mM EDTA, ph
12.6) for 30min. The DNA was electrophoresed 30min at 25 V (0.90 V/cm) and
55
300mA, the buffer was neutralized with 0.4 M Tris (pH 7.5). Finally, the DNA was
stained with nitrate of silver. The slides were coded for blind analysis.
Negative and positive controls were used for each electrophoresis assay in
order to ensure the reliability of the procedure. Images of 100 randomly selected
cells (50 cells from of two replicated slides) were analyzed from each patient. Cells
were also scored visually according to tails size into five classes, from no tails (0),
to maximally (4), resulting in a single DNA damage score for each subject, and
consequently for each study group. Therefore, a group damage index could range
from 0 (all cells no tail, 100 cells x 0) to 400 (all cells with maximally long tails, 100
cells x 4) (Collins et al. 1996; Collins et al. 1997) (Figure 1). The damage index
was calculated based on the number of cells with tails vs those without.
2.4 In Vitro Assay
An in vitro analyzes was carried out in order to assess whether the drugs used by
the patients could induce DNA damage. Drugs were incubated with peripheral
blood (provided by a healthy volunteer) for 30min, 37ºC. Drugs were diluted in
water (lithium, valproate, amytriptiline, lamotrigine, sertraline, sulpiride,
levomepromazine) or alcohol 99% (carbamazepine, fluoxetine, haloperidol,
diazepam, clonazepam). The assay was carried out using the described
therapeutical levels (British Pharmacopeia, 1999). Peripheral boold was used as
negative control. DNA damage was evaluated using a Comet Assay as described
previously. The samples were analyzed in duplicate.
56
2.3 Statistical Analysis
The analysis was carried out using the Statistical Product and Service Solutions
12.0 Version (SPSS). The Kolmogorov-Smirnov Test was used to compare the
observed cumulative distribution function to a theoretical cumulative distribution.
Statistical differences between controls and treated samples were determined by
the nonparametric Mann-Whitney U-test based on the score each subject received
in the Comet assay. Relationships between variables were assessed using
Spearman’s product-moment correlation coefficient. Data were presented as
means ± S.D.
3. Results
BD patients and the control group did not differ in terms of demographic data
(Table 1). Bipolar patients were current using of medication, mainly lithium and/or
valproate. DNA damage was markedly increased in BD patients. The frequency of
DNA damage type-I, II, III and IV was higher in patients than controls and the
control group presented a higher frequency of undamaged DNA (Figure 1). Gender
did not influence the amount of DNA damage within the patients group (Mann-
Whitney U-test Test= 102.50, Z= -0.042, P(2-taild)=0.967). Depressive (r=0.45,
P=0,010) and manic (r=0.62, P=0.001) symptoms correlated with the index of DNA
damage in BD patients. A post hoc analysis showed that the index of DNA damage
in BD patients did not correlate with the number of medications, number of
hospitalizations, number of suicide attempts, length of illness and number of years
undiagnosed. The patients used an average of 2.65(1.15) medications. Drugs used
included: lithium, valproate, carbamazepine, fluoxetine, amytriptiline, sertraline,
57
lamotrigine, haloperidol, levomepromazine, sulpiride, diazepam and clonazepam.
These drugs did not induce DNA damage (ANOVA test; F=0.789; p=0.425)
(Figure 2).
4. Discussion
The present study showed that BD outpatients differ from controls in terms
of the frequency of DNA damage in peripheral cells. As far as we are aware, this is
the first study to report these findings. These results add to the notion that BD
patients are exposed to deleterious systemic changes (Kupfer, 2005).
Chronic illnesses such as obesity, diabetes mellitus and cancer have been
shown to be associated with increased DNA damage (Faust et al 2004). BD is
known to be a combination of manic and depressive episodes, which can alternate
or even occur simultaneously. In outpatient samples, alongside with euthymic
subjects, an array of depressive and manic symptoms is likely to occur in a
significant proportion of cases of BD (Belmaker, 2004). In the present study, the
severity of manic and depressive symptoms was found to be associated to
increased DNA damage. All patients studied were on medication, which may
hamper the comparisons between patients and controls. However, the correlation
between the depressive and manic symptoms and severity of DNA damage is
unlikely to be solely explained by the use of medication. Moreover, the drugs used
by patients did not induce DNA damage in the in vitro assay carried out to assess
this issue. These findings were consistent with the literature (Frötschl et al 2005;
58
Singh et al 2005; Gaziorowski and Brokos, 2001; Spanova et al 1997; Saxena and
Ahuja, 1988). In two studies using the CA method, chlorpromazine had no effects
on DNA damage (Frötschl et al 2005), whereas fluphenazine was found to
enhance DNA repair after hydrogen peroxide damage (Gaziorowski and Brokos,
2001). Amytriptiline has been described as non genotoxic using chromosome
aberrations (Saxena and Ahuja, 1988) and TUNEL test for verify apoptotic DNA
breaks (Spanova et al 1997). Valproate, has been found to exert an
antiproliferative effect on certain cancer cell lines both in vitro and in vivo (Singh et
al 2005). Therefore, the findings of the present study are more likely to be related
to the severity of symptoms rather than a by-product of the exposure to medication.
Actually, mood stabilizers seem to act in the opposite way. A recent study
has demonstrated that lithium and valproate decreased glutamate-induced lipid
peroxidation and protein carbonyl oxidation (markers of oxidative stress) and
inhibited glutamate-induced DNA fragmentation in cerebral cortical neurons (Shao
et al 2005). Moreover, both mood stabilizers increased glutatione S-transferase
expression in cultured neurons (Wang et al 2004). Interestingly, King and Jope
(2005) demonstrated that lithium decreased caspase-3 activity induced by
rotenone and H
2
O
2
and may promote upregulation in Bcl-2, which may relate to its
neuroprotective actions (Mora et al 1999; Mora et al 2002; Chuang et al 2004).
The use of valproate or lithium (chronic administration) can stimulate bcl-2
expression as well as inhibit GSK-3β activity, which renders a cell less susceptible
to apoptosis. Thus, mood stabilizers may act to restore the balance among
aberrant signaling pathways in specific areas of the brain and prevent
59
degeneration (Brunello, 2004). Moreover, the neuroprotective role of mood
stabilizers has been reported to be related to the inhibittion of N-methyl-D-
aspartate receptors and activation of PI3 Kinase/ AKT signaling pathways
(Chuang, 2005). Using a CA protocol, Psimadas et al. (2004) showed that
schizophrenics and matched controls were not different regarding DNA damage
and repair capacity. They have also demonstrated that high levels of antipsychotics
did not increased DNA damage in peripheral cells (Psimadas et al 2004).
The role of DNA damage in BD may be related to the fact that these patients
present increased morbidity and mortality due to general medical conditions.
Chronic medical disorders such as cardiovascular disease (Demirbag et al 2005),
obesity (Gao et al 2004) and diabetes mellitus (Blasiak et al 2004) are associated
with increased rates of DNA damage. Such disorders are more prevalent in BD
patients than in the general population (Kupfer 2005). It has been suggested that
DNA fragmentation detected using the CA is caused by increased oxidative stress
(Migliore et al 2005, Faust et al 2004). In a recent study, lower levels of two
antioxidant enzymes (superoxide dismutase and catalase) and raised lipid
peroxidation (TBARS) were demonstrated in patients with BD, indicating an
increased oxidative stress status (Rajenkar et al 2003).
Some limitations of the present study should be taken into consideration,
such as the fact that CA provides information about recent DNA fragmentation, but
does not tell about mechanisms of DNA repair. Studies assessing the DNA repair
capacity in patients with BD are warranted to further investigate the impact of BD
on DNA strand breaks. The comet assay has been put forward as a biomarker in
60
populations exposed to hazardous conditions (e.g. radiation and pollutants) (Faust
et al 2004). However, results of CA can be influenced by non specific factors such
diet, use of medication and lifestyle. At the present stage, it is not possible to
determine whether DNA damage in BD patients is a correlate of state or trait. An
interesting development of the present findings may be the use of augmentation
strategies tailored to prevent DNA damage in BD patients.
Acknowledgements
This work was supported by Fundação de Amparo a Pesquisa do Rio Grande do
Sul (FAPERGS), Conselho Nacional de Pesquisa (CNPq), Grupo de Pesquisa e
Pos- Graduação from Hospital da Clinicas de Porto Alegre, Departament of
Biochemistry of the Federal University of the Rio Grande do Sul (UFRGS) and
Laboratory of Oxidative Stress and Antioxidants of the University of Caxias do Sul
(UCS).
References
Belmaker, R.H., 2004. Medical progress: bipolar disorder. New England Journal of
Medicine 351, 476-486.
Benes, F.M., Walsh, J., Bhattacharyya, S., Sheth, A., Berretta, S., 2003. DNA
fragmentation decreased in schizophrenia but not bipolar disorder. Archives of
General Psychiatry 60, 359-64.
61
Blasiak, J., Arabski, M., Krupa, R., Wozniak, K., Zadrozny, M., Kasznicki, J.,
Zurawska, M., Drzewoski, J., 2004. DNA damage and repair in type 2 diabetes
mellitus. Mutation Research. 554, 297-304.
Brunello, N., 2004. Mood stabilizers: protecting the mood...protecting the brain.
Journal of Affective Disorders. 79, 15-20.
British Pharmacopoeia, 1999. London . Her Majesty’s Stationery Office.
Chuang, D.M., 2004. Neuroprotective and neurotrophic actions of the mood
stabilizer lithium: can it be used to treat neurodegenerative diseases? Critical
Reviews in Neurobiology. 16, 83-90.
Chuang, D.M., 2005. The Antiapoptotic Actions of Mood Stabilizers: Molecular
Mechanisms and Therapeutic Potentials. Annals of the New York Academy of
Sciences. 1053, 195-204.
Cooke, M.S., Olinski, R., Evans, M.D., 2005. Does measurement of oxidative
damage to DNA have clinical significance? Clinica Chimica Acta; international
journal of clinical chemistry, in press.
Collins, A., Dusinska, M., Franklin, M., Somorovska, M., Petrovska, H., Duthie, S.,
Fillion, L., Panayiotidis, M., Raslova, K., Vaughan, N., 1997. Comet assay in
62
human biomonitoring studies: reliability, validation, and applications. Environmental
Molecular Mutagenic 30, 139-146.
Collins, A.R., Dusinska, M., Gedik, C.M., Stetina, R., 1996. Oxidative damage to
DNA: do we have a reliable biomarker? Environmental Health Perspectives 104,
465-469.
Culmsee, C., Mattson M.P., 2005. p53 in neuronal apoptosis. Biochemical and
Biophysical Research Communications. 331,761-777.
Das Gupta, R., Guest, J.F., 2002. A model to estimate the cost benefit of an
occupational vaccination programme for influenza in the UK. Pharmacoeconomics
20, 475-484.
Demirbag, R., Yilmaz, R., Kocyigit, A., 2005. Relationship between DNA damage,
total antioxidant capacity and coronary artery disease. Mutation Research 570,197-
203.
Dotan, Y., Lichtenberg, D., Pinchuk, I., 2004. Lipid peroxidation cannot be used as
a universal criterion of oxidative stress. Progress in Lipid Research 43, 200-27.
Emerit, J., Edeas, M., Bricaire, F., 2004. Neurodegenerative diseases and
oxidative stress. Biomedicine & Pharmacotherapy. 58, 39-46.
63
Evan, G., Littlewood, T., 1998. A matter of life and cell death. Science. 281, 1317-
1322.
Faust, F., Kassie, F., Knasmüller, S., Boedecker, R.H., Mann, M., Mersch-
Sundermann, V., 2004. The use of the alkaline comet assay with lymphocytes in
human biomonitoring studies. Mutation Research 566, 209-229.
Frotschl, R., Weickardt, S., Staszewski, S., Kaufmann, G., Kasper, P., 2005.
Effects of chlorpromazine with and without UV irradiation on gene expression of
HepG2 cells. Mutation Research 575, 47-60.
Gao, D., Wei, C., Chen, L., Huang, J., Yang, S., Diehl, A.M., 2004. Oxidative DNA
damage and DNA repair enzyme expression are inversely related in murine
models of fatty liver disease. America Journal Physiology. Gastrointestinal and
Liver Physiology 5, 1070-1077.
Gasiorowski, K., Brokos, B., 2001. DNA repair of hydrogen peroxide-induced
damage in human lymphocytes in the presence of four antimutagens. A study with
alkaline single cell gel electrophoresis (comet assay). 6, 897-911.
Hakkaart-van Roijen, L., Hoeijenbos, M.B., Regeer, E.J., Tem-have, M., Nolen,
W.A., Veraart, C.P., Rutten, F.F., 2004. The societal costs and quality of life of
patients suffering from bipolar disorder in the Netherlands. Acta Psychiatrica
Scandinavia 110, 383-392.
64
Halliwell, B., 2001. Role of free radicals in the neurodegenerative diseases:
therapeutic implications for antioxidant treatment. Drugs Aging. 18, 685-716.
Hamilton, M., 1960. A rating scale for depression. Journal of Neurology,
Neurosurgery, and Psychiatry 23, 56–62.
Kassie, F., Parzefall, W., Knasmuller, S., 2000. Single cell gel electrophoresis
assay: a new technique for human biomonitoring studies. Mutation Research
463, 13-31.
King, T.D., Jope, R.S., 2005. Inhibition of glycogen synthase kinase-3 protects
cells from intrinsic but not extrinsic oxidative stress. Neuroreport 16, 597-601.
Kupfer, D.J., 2005. The increasing medical burden in bipolar disorder. JAMA: The
Journal of American Medical Association 293, 2528-2530.
Maluf, S.W., Erdtmann, B., 2000. Follow-up study of the genetic damage in
lymphocytes of pharmacists and nurses handling antineoplastic drugs evaluated by
cytokinesis-block micronuclei analysis and single cell gel electrophoresis assay.
Mutation Research 471, 21-27.
65
Mora, A., Rosa, A., Fuentes, J.M., Soler, G., Centeno, F., 1999. Different
mechanisms of protection against by valproate and of lithium. European Journal of
Biochemistry 266, 886–891.
Mora, A., Sabio, G., Soler, G., Centeno, F., 2002. Different dependence of lithium
and valproate on PI3K/PKB pathway. Bipolar Disorder 4, 195–200.
Migliore, L., Fontana, I., Colognato, R., Coppede, F., Siciliano, G., Murri, L., 2005.
Searching for the role and the most suitable biomarkers of oxidative stress in
Alzheimer's disease and in other neurodegenerative diseases. Neurobiology of
Aging 26, 587-595.
Murray, C.J., Lopez, A.D., 1997. The utility of DALYs for public health policy and
research: a reply. Bulletin World Health Organization 75(4), 377-381.
Psimadas, D., Messini-Nikolaki, N., Zafiropoulou, M., Fortos, A., Tsilimigaki, S.,
Piperakis, S.M., 2004. DNA damage and repair efficiency in lymphocytes from
schizophrenic patients. Cancer Letters 204(1), 33-40.
Ranjekar, P.K., Hinge, A., Hegde, M.V., Ghate, M., Kale, A., Sitasawad, S., Wagh,
U.V., Debsikdar, V.B., Mahadik, S.P., 2003. Decreased antioxidant enzymes and
membrane essential polyunsaturated fatty acids in schizophrenic and bipolar mood
disorder patients. Psychiatry Research 121, 109-122.
66
Saxena R., Ahuja Y.R., 1988. Genotoxicity evaluation of the tricyclic
antidepressants amitriptyline and imipramine using human lymphocyte cultures.
Environmental and Molecular Mutagenesis. 12, 421-430.
Spanova A., Kovaru H., Lisa V., Lukasova E., Rittich B., 1997 Estimation of
apoptosis in C6 glioma cells treated with antidepressants. Physiological Research
46, 161-164.
Singh G., Driever P.H., Sander J.W., 2005. Cancer risk in people with epilepsy: the
role of antiepileptic drugs. Brain 128, 7-17.
Shao, L., Young, L.T., Wang, J.F., 2005. Chronic Treatment with Mood Stabilizers
Lithium and Valproate Prevents Excitotoxicity by Inhibiting Oxidative Stress in Rat
Cerebral Cortical Cells. Biological Psychiatry [in press].
Spitzer, R.L., Williams, J.B., Gibbon, M., First, M.B., 1992. The Structured Clinical
Interview for DSM-III-R (SCID). I: History, rationale, and description. Archives of
General Psychiatry 49, 624-629.
Tice, R.R., Agurell, E., Anderson, D., Burlinson, B., Hartmann, A., Kobayashi, H.,
Miyamae, Y., Rojas, E., Ryu, J.C., Sasaki, Y.F., 2000. Single cell gel/comet assay:
guidelines for in vitro and in vivo genetic toxicology testing. Environmental
Molecular Mutagenesis 35, 206-221.
67
Wang, J.F., Shao, L., Sun, X., Young, L.T., 2004. Glutathione S-transferase is a
novel target for mood stabilizing drugs in primary cultured neurons. Journal of
Neurochemistry 88, 1477-1484.
Young, R.C., Biggs, J.T., Ziegler, V.E., Meyer, D.A., 1978. A rating scale for mania:
reliability, validity, and sensitivity. British Journal of Psychiatry 133, 429–435.
68
Table 1. Demographic factors of patients and controls.
VARIABLE
Bipolar Patients
(n=32)
Controls
(n=32)
P
Sex
Men
Women
28.1 %
71.9 %
40.6 %
59.4 %
0.292*
Age (years)
Mean (SD)
<40
40-59
≥60
43.28 (12.72)
41.6 %
52.8 %
5.6 %
43.47 (14.24)
42.0 %
51.5 %
6.5 %
0.956**
0.523*
Family income (US$)
Median
1
st
tercile
2
nd
tercile
3
rd
tercile
610
16.2 %
53.0 %
30.8 %
538
13.2 %
50.0 %
36.8 %
0.994***
0.854*
Year of Schooling
Mean (SD)
9.15 (4.86)
9.16 (3.30)
0.992**
Hamilton Depression Scale
Mean (SD)
6.31(7.38)
-
Young Mania Rating Scale
Mean (SD)
3.62 (3.01)
-
69
0
20
40
60
80
100
Undamaged
Damage 1
Damage 2
Damage 3
Damage 4
Frequency of Damage (%)
Bipolar Patients
Control Group
0.0001*
0.0001*
0.0001*
0.0001*
0.0001*
0
40
80
120
160
Bipolar Patients
Control Group
Damage Index
(arbitrary units)
0.0001*
106,9 (28,7)
10,4 (5,4)
A
C
B
Figure 1. DNA damage assessed using the single cell gel electrophoresis comet
assay
Legend to Figure 1
* Mann-Whitney U-test, for compare Bipolar Patients and Control group , P<0.001
A: Index of DNA damage in patients and controls.
B: Frequency of type of DNA damage in patients and controls.
C: Evaluation of DNA damage using silver nitrate (200X). The cells are assessed
visually and received scores from 0 (undamaged) to 4 (maximally damaged),
according to the size and shape of the tail. Scores were obtained using the mean
score of two independent, blind evaluators.
70
0
5
10
15
20
25
30
35
40
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16
Sample
Index of DNA Damage (%)
1. Peripheral blood
2. Peripheral blood 30min
3. Alcohol 0,1%
4. Alcohol 0,5%
5. Lithium
6.
Carbamazepine
7.
Valproate
8.
Amyitriptiline
9.
Fluoxetine
10.
Lamotrigine
11.
Sertaline
12.
Haloperidol
13.
Sulpiride
14. Levomepromazine
15. Diazepam
16.
Clonazepam
Figure 2. DNA damage index assessed in drugs used by patients.
Legend to Figure 2
The peripheral blood was incubated with diferents drugs in therapeutical levels or
alcohol, used as duluted. Pheripheral blood was used as negative control.
71
PARTE III
3. Discussão
Sumário dos Resultados
1. Os pacientes bipolares apresentaram uma elevação na concentração sérica
de S100B durante a mania (p=0.05) e a depressão (p=0.01) quando
comparados ao grupo controle.
2. Os pacientes Bipolares em episódio depressivo e maníaco e durante a fase
de eutimia apresentaram níveis elevados de TBARS (p <0.05).
3. As enzimas antioxidantes demonstraram perfis diferenciados: (1) A Sod
mostrou-se aumentada nos depressivos (p <0.01) e nos maníacos (p <0.05)
diferenciando do controle e dos eutímicos. (2) A GPx apresentou atividade
aumentada somente nos pacientes eutímicos (p =0.01), os pacientes
deprimidos e maníacos apresentaram níveis iguais ao controle. (3) A Cat
apresentou atividade diminuída nos eutímicos (p<0.01) e nos maníacos
(p<0.01) quando comparados ao controle.
4. A razão entre Sod/ (GPx + Cat) mostrou-se aumentada nos pacientes
maníacos (p<0.01) e deprimidos (p<0.05), os pacientes eutímicos não
diferiram do grupo controle.
5. Os pacientes bipolares tipo 1 apresentaram dano ao DNA 10 vezes
aumentado em relação ao grupo controle. Sendo que este dano
correlaciona-se positivamente (r= 0.62) com a escala YMRS que quantifica
os sintomas maníacos.
72
De acordo com a Organização Mundial de Saúde o THB é a sexta causa de
incapacidade entre as condições médicas e psiquiátricas. Além disso, o THB está
associado com o aumento da morbidade e mortalidade por diversas condições
médicas gerais, como doenças cardiovasculares, obesidade e diabetes mellitus. O
THB não é reconhecido como um transtorno neurodegenerativo, porém estudos
demonstram alterações nas células gliais, principalmente nos astrócitos, de
pacientes com transtornos do humor (Ongur et al 1998; Johnston-Wilson et al
2000; Schoroeter et al 2002). Outros estudos também têm resaltado alterações
estruturais de substância branca em área pré-frontal (Drevets et al 1998; Jhonson-
Wilson et al 2000), diminuição do número total de células gliais (Drevets et al
1998) e alterações nos níveis de GFAP de pacientes bipolares (Jhonson-Wilson et
al 2000).
A neurodegeneração pode ser um fator patogenético no desenvolvimento
dos transtornos psiquiátricos, principalmente da esquizofrenia e depressão maior,
nas quais níveis elevados de S100B são um resultado recorrente (Rothermundt et
al 2003). No nosso estudo encontramos um aumento nos níveis de S100B nos
pacientes deprimidos e maníacos. Os resultados encontrados nos pacientes
maníacos estão de acordo com os resultados mostrados por Machado-Vieria
(2002) com pacientes em primeiro episódio maníaco e Schroeter et al (2002) com
pacientes maníacos. Não foram encontrados trabalhos na literatura que
relatassem os níveis de S100B na depressão bipolar e na fase de eutimia desses
pacientes.
73
A S100B tem ampla distribuição dentro do astrócito. Podendo ser
encontrada no citoplasma, em associação com membranas ou proteínas do
citoesqueleto (Bianchi et al 1996; Garbuglia et al 1996; Bianchi et al 2003), assim
como no núcleo da célula, participando de eventos de apoptose e regulação do
ciclo celular (Baudier et al 1992; Rustandi at al, 1998). Além disso, a S100B está
envolvida na regulação do metabolismo energético nas células neuronais podendo
modular a proliferação e diferenciação dos neurônios e células gliais (Rothermundt
et al 2003). Algumas proteínas já foram descritas como alvos da S100B entre elas
podemos citar: (1) a inibição da fosforilação da MARCKS e da p53, que protege da
desnaturação agregação térmica, estimula a apoptose e inibe o ciclo celular
(Donato 2001); (2) o estimulo da frutose-1,6-bifosfato aldolase e da
fosfoglicomutase regulando o metabolismo energético (Zimer and Van Eldik 1986);
(3) estimulação da guanilato ciclase ligada a membrana responsável por regular a
adaptação de fotoreceptores ao escuro (Donato 2001); (4) inibe a fosforilação da
GAP 43.
Além de sua ação intracelular a S100B possui ação extracelular
dependente da concentração (Figura 4). Como já mencionado anteriormente, em
concentrações nM a S100B estimula a sobrevivência neuronal e o crescimentos
de neuritos, já em concentrações uM a S100B pode ter efeitos tóxicos.
A S100B, em concentrações micromolar, induz apoptose em células PC12,
células de neuroblastoma B104 e cultura embrionária de neurônios (Mariggio et al
1994; Arcuri et al 2005) sendo relacionada a um aumento na condutância de
canais de Ca
+2
tipo L (Mariggio et al 1994) e um regulação positiva de genes
implicado na apoptose (c-fos, c-jun, bax, p-15 e p-21) (Fulle et al 2000).
74
S100B
Trófico Tóxico
pM - nM µM
Sobrevivência neuronal
Crescimento de neuritos
Modulação sináptica
Regulação de fatores de transcrição
Proliferação celular
Indução de apoptose em astrócitos e
neurônios
Ativação da iNOS
Ativação de citosinas pro - inflamatórias:
interleucina-1β (IL-1 β), fator de necrose
tumoral (TNF-α) e interleucina-6 (IL-6)
S100B
Trófico Tóxico
pM - nM µM
Sobrevivência neuronal
Crescimento de neuritos
Modulação sináptica
Regulação de fatores de transcrição
Proliferação celular
Indução de apoptose em astrócitos e
neurônios
Ativação da iNOS
Ativação de citosinas pro - inflamatórias:
interleucina-1β (IL-1 β), fator de necrose
tumoral (TNF-α) e interleucina-6 (IL-6)
Figura 4. Efeito extracelular dependente da concentração de S100B. Adaptada de
Van Eldik & Wainwrigth, 2003.
A ativação da glia estimula também a expressão de enzimas relacionadas
ao estresse oxidativo como a iNOS (óxido nítrico sintase induzível) a qual gera
oxido nítrico (NO) (Van Eldik & Wainwrigth 2003; Adami et al 2004). Quando o NO
está presente em altas concentrações pode reagir com o radical superóxido (O
2
-•
)
formando o peroxinitrito (ONOO
-
) que reage rapidamente com diversas
biomoléculas levando a modificações importantes (Van Eldik & Wainwrigth 2003),
contribuindo para o dano neuronal (Smith et al 1997). No THB tem sido relatado o
75
aumento dos níveis séricos de NO (Ozcan et al 2004; Yanik et al 2004) e de Sod,
sugerindo o aumento na produção do radical superóxido (Kuluoglu et al 2002;
Rajenkar et al 2003; Ozcan et al 2004). Ainda não existem estudos mostrando o
aumento de ONOO
-
no THB, porém este pode ser esperado pelos relatos de
aumento nos níveis de NO e O
2
-•
. Existem evidencias neuropatológicas que o
peroxinitrito pode mediar o dano neuronal (Smith et al 1997), fato importante no
THB, como dito anteriormente, o número de células totais gliais está diminuído
indicando um possível dano neuronal (Drevets et al 1998).
Os astrócitos desempenham um papel importante na defesa antioxidante
no SNC (Takuma et al 2004), o qual é especialmente vulnerável às ERO. O
cérebro consome 20% do oxigênio total consumido pelo organismo e é
responsável por 25% do consumo de glicose assimilada pelo organismo (Floyd
1999).
Níveis elevados de ERO estão envolvidos em diversos transtornos
neurodegenerativos (Floyd 1999). Nós encontramos significantes alterações nos
níveis séricos de TBARS e das enzimas antioxidantes nos pacientes com THB.
Devemos levar em consideração que estas alterações encontradas nos pacientes
podem ser devido a própria doença, mas com certeza sofrem grande influência
das medicações, comorbidades clínicas e psiquiátricas, hábitos alimentares e
estilo de vida estes junto podem ser responsáveis pelas discrepâncias dos
resultados encontrados na literatura (Kuloglu et al 2002; Rajenkar et al 2003;
Ozcan et al 2004).
É importante salientar que os estabilizadores do humor podem exercer um
efeito antioxidante, dados atuais mostraram que o lítio e o valproato possuem
76
efeitos antioxidante em células neuronais tratadas sob condições excitotóxicas
(Shao et al 2005). Porém, em outro estudo o lítio não foi capaz de proteger contra
o estresse oxidativo gerado por peptídeos beta-amiloide em hipocampo de coelho
(Ghribi et al 2003).
Nos estudos realizados por Kuloglu et al (2002), Rajenkar et al (2003) e
Ozcan et al (2004) os pacientes não foram separados nas diferentes fases da
doença (eutimina, mania e depressão), provavelmente pelo número pequeno de
pacientes, assim os pacientes nesses estudos estão predominantemente em
episódio maníaco. Encontramos níveis aumentados de TBARS tanto nos
pacientes eutímicos, maníacos e deprimidos, o que está de acordo com os
estudos de Kuloglu et al (2002) e Ozcan et al (2004). O dano oxidativo aos
lipídeos pode ocorrer nos ácidos graxos polinsaturados das bicamadas lipídicas
podendo levar a alteração na fluidez da mesma.
Em adição, nós encontramos atividade sérica da Sod aumentada nos
pacientes em episódio depressivo e maníaco, como observado por Kuloglu et al
(2002) nos eritrócitos dos pacientes com THB. Rajenkar et al (2003) e Ozcan et al
(2004) não encontraram alterações na atividade da Sod nos pacientes Bipolares.
A Sod é um membro da família das metaloenzimas, amplamente distribuída nos
tecidos humanos, e desenpenha um papel fundamental papel na detoxificação da
ERO, a Sod é responsável pela dismutação do radical superóxido em peróxido de
hidrogênio (H
2
O
2
)(Johnson & Giulivi, 2005). Existem três tipos de Sod: a CuZnSod
(Sod1), a MnSod (Sod2), e a EC-Sod (Sod3). Oury et al (1996) propôs que a Sod3
poderia desenvolver um papel fundamental na remoção de superóxido do meio
extracelular prevenindo a formação de ONOO
-
. No entanto, Carlsson et al (1995)
77
já havia mostrado que ratos sem EC-Sod pareciam ter um desenvolvimento
normal, porém esses se tornaram mais sensíveis a hiperoxia sob certas condições
experimentais. Ratos com superexpressão de EC-Sod mostraram defeitos na
potenciação de longa duração do hipocampo (Thiels & Klann 2002). A Sod
mitocôndrial (Sod2) também exerce um importante papel na diminuição da
formação de ONOO
-
, pois esse se apresenta em grande quantidade na
mitocôndria (Halliwell 2001).
De um modo geral a ação da Sod é gerar H
2
O
2
o qual pode ser removido
pela catalase uma enzima exclusiva dos peroxissomos estando presente em
diversos tecidos (Halliwell & Gutteridge 2000). Além da catalase o H
2
O
2
pode ser
detoxificado por selenoproteinas como a glutationa peroxidase (Chance & Boveris
1979). Existem outros sistemas que podem remover o H
2
O
2
incluindo peroxidases
que usam proteínas tioredoxinas ligadas a um grupo ditiol (reação 6) (Mustacich &
Powis 2000). Os resultados encontrados neste trabalho mostraram que os
pacientes maníacos não apresentam alterações na atividade sérica da GPx e
reduzem a atividade da catalase quando comparados ao grupo controle, sugerindo
um possível dano oxidativo. Nos pacientes deprimidos não verificamos variação
nas atividades séricas nem da GPx e nem da catalase o que pode representar um
mecanismo compensatório entre a catalase e GPx, porém ainda não está claro
porque os pacientes eutímicos apresentam uma elevação da atividade da GPx e
diminuição da atividade da catalase. Para tentarmos esclarecer melhor o que
estava acontecendo com as enzimas antioxidantes nos pacientes e controles,
calculamos o balanço do estresse oxidativo inferido pela razão entre
Sod/(catalase+ GPx) os dados mostraram um aumento dessa proporção nos
78
pacientes deprimidos e maníacos. Em resumo, nossos resultados indicam que os
pacientes bipolares em episódio de mania ou depressão apresentam um potencial
dano oxidativo que não parece estar sendo prevenido pelos estabilizadores do
humor. A figura 7 ilustra os resultados encontrados com os pacientes bipolares
para os parâmetros S100B, Sod, Cat, GPx e TBARS.
Figura 5. Diagramação dos resultados avaliados nos pacientes bipolares. Sod
(superóxido dismutase); TBARS (substâncias reativas do ácido tiobarbitúrico);
GPx (Glutationa peroxidase).
Mania
Depressão
Eutimia
↑S100B
↑TBARS
↑Sod
↓Catalase
* Gpx não alterada
* S100B não alterada
↑TBARS
* Sod não alterada
↓Catalase
↑Gpx
↑S100B
↑TBARS
↑ Sod
* Catalase não alterada
* Gpx não alterada
Mania
Depressão
Eutimia
↑S100B
↑TBARS
↑Sod
↓Catalase
* Gpx não alterada
* S100B não alterada
↑TBARS
* Sod não alterada
↓Catalase
↑Gpx
↑S100B
↑TBARS
↑ Sod
* Catalase não alterada
* Gpx não alterada
79
Embora a etiologia do THB ainda não esteja completamente esclarecida,
existem algumas teorias que propõem bases biológicas para o THB. As teorias
monoaminérgicas (catecolaminas e indolaminas) sugerem que durante os
episódios de mania ocorre um aumento das catecolaminas (especialmente a
norepinefrina) e sua diminuição durante os episódios depressivos. Existem
evidências de que a dopamina está aumentada em pacientes deprimidos com
psicose. De acordo com a chamada hipótese permissiva da função
serotoninérgica, tanto na depressão quanto na mania, haveria uma função
serotoninérgica diminuída (Schatzberg et al 1987; Shansis & Grevet, 2002;
Machado-Vieira et al 2004). Essas alterações nas catecolaminas e indolaminas
parecem influenciar na formação do quadro de estresse oxidativo, uma vez que a
oxidação das mesmas pode levar a formação de ERO (Obata 2002). Diversos
fármacos com ação antioxidante vêm sendo patenteados, entre eles análogos da
vitamina E, inibidores da peroxidação lipídica, agentes quelantes de íons,
inibidores da NOS e compostos que aumentam os níveis de GSH no cérebro
(Halliwell 1991; Floyd 1999; Dorey et al 2000; Marshall 2001; Molina et al 2004).
Estudos futuros serão necessários para verificarmos se os antioxidantes podem
diminuir o estresse oxidativo nos pacientes bipolares.
O segundo artigo desta dissertação versa sobre o dano ao DNA, verificado
através do ensaio Cometa em 32 pacientes bipolares tipo I, não fumantes e que
não possuam comorbidades clínicas, esses foram comparados a um grupo
controle composto por 32 voluntários pareados por sexo, idade e renda familiar.
Foi utilizado como critério de inclusão ao grupo controle não ser fumante, não usar
medicações e não sofrer condições médicas gerais. Os resultados mostraram que
80
os pacientes possuem um dano ao DNA muito elevado (10 vezes aumentado) em
relação ao controle (p<0.01).
Como já descrito anteriormente o THB é considerada a sexta causa de
incapacidade pela Organização Mundial de Saúde (Murray and Lopez, 1997) e
está associado ao aumento da morbidade e mortalidade por condições médicas
gerais, como doenças cardiovasculares, diabetes mellitus e obesidade (Kupfer,
2005). Estas doenças, bem como o câncer, estão associadas com o aumento do
dano ao DNA (Faust et al 2004).
O dano ao DNA pode ser avaliado através da verificação de alterações
cromossômicas que são detectadas por uma técnica chamada Micronúcleos, essa
é uma técnica demorada e cara (Maluf 2004). Os micronúcleos são fragmentos
acêntricos ou cromossomos completos que não se ligaram durante o processo da
divisão celular (Tucker & Preston 1996). Diferentes mecanismos estão envolvidos
na formação dos micronúcleos, incluindo quebras cromossômicas (clastogênese)
ou ausência do fuso acromático (aneuplogênese) (Heddle et al 1983). A vantagem
de desse método é verificarmos o dano permanente ao DNA das células (Fenech
1997). O dano recente ao DNA pode ser avaliado através do ensaio Cometa, que
é um método é simples, rápido e de baixo custo (Ross et al 1995; Maluf &
Erdtmann 2000) e além de estar sendo muito utilizado para biomonitorar
trabalhadores expostos a condições genotóxicas (Maluf 2004). Para realizamos
essa técnica é necessário utilizarmos células integras, porém não necessitam
estar em crescimento, podendo ser aplicado a diversos tipos celulares (Maluf
2004). Singh et al (1988) modificaram o método inicialmente descrito por Ostling &
Johanson (1984) permitindo avaliamos os danos ao DNA em células individuais
81
sob condições alcalinas. Primeiramente ocorre uma desnaturação do DNA
permitindo verificarmos quebras simples e duplas e sítios álcali-labeis, estas
regiões são quebradas quando incubamos o DNA em pH alto. O dano ao DNA é
quantificado analizando-se 100 células por indivíduo, as células recebem um
escore que varia de 0 (célula sem dano) à 4 (dano máximo) de acordo com a
intensidade da cauda (Figura 8), ou seja quanto maior a cauda mais dano ao DNA
como em pH alcalino esse dano vai ser quebrado quanto menor os pedaços mais
rápida a migração e maior a cauda (Maluf 2004).
Figura 6. Caracterização do tipo de dano ao DNA verificado no ensaio Cometa.
Dano 0 = célula sem dano – Dano 4 = dano máximo ao DNA.
Da mesma maneira que o estresse oxidativo, os ensaios que avaliam o
dano ao DNA sofrem a influência de fatores como estilo de vida, hábitos
alimentares, medicações e fatores associados ao genótipo (Piperakis et al 1998;
Hartmann et al 1998). Os fatores biológicos, na maioria das vezes, não podem ser
controlados para isso busca-se selecionar indivíduos controles pareados por sexo
e idade e se possível que se assemelhem no estilo de vida e ao interpretarmos os
resultados procuramos levar em consideração esses fatores (Maluf 2004)
Os pacientes avaliados pelo nosso estudo estavam usando medicações
psiquiátricas em especial estabilizadores do humor. A fim de verificarmos se as
Célula sem dano
Dano 1 Dano 2
Dano 3
Dano 4
Célula sem dano
Dano 1 Dano 2
Dano 3
Dano 4
82
medicações podiam causar dano ao DNA procedemos a um ensaio in vitro onde
incubamos as medicações (lítio, carbamazepina, ácido valpróico, fluoxetina,
amitriptilina, lamotrigina, sertralina, levomepromazina, sulpirida, haloperidol,
diazepam e clonazepam) com o sangue por 30 minutos à 37ºC. As medicações
testadas não apresentaram, nessas condições, capacidade de induzirem dano ao
DNA superior ao encontrado no controle (sangue puro), com exceção do
haloperidol que apresentou um aumento não significativo em relação ao controle.
A maioria dos estudos tem mostrado um efeito protetor dos estabilizadores
do humor e de alguns antidepressivos (Shao et al 2005; King e Jope 2005; Wang
et al 2004). Recentemente um estudo mostrou que o lítio e o ácido valpróico
diminuem a peroxidação lipídica induzida pelo glutamato e os níveis de
carbonilação das proteínas além de inibirem a fragmentação do DNA induzida pelo
glutamato em neurônios corticais (Shao et al 2005). Além disso, ambos os
estabilizadores do humor (lítio e ácido valpróico) aumentam a expressão do
glutationa-S-transferase em cultura de neurônios corticais (Wang et al 2004).
Curiosamente, King e Jope (2005) demonstraram que o lítio é capaz de diminuir a
atividade da caspase-3 quando o estresse oxidativo foi induzido por rotenona ou
H
2
O
2
. Em resumo, o uso crônico de ácido valpróico ou lítio podem estimular a
expressão de bcl-2, bem como a inibir a atividade da GSK-3β e reduzir a atividade
da caspase-3 fazendo com que a célula perca a suscetibilidade à apoptose (Mora
et al 1999; Mora et al 2002; Gould & Manji 2002; Chuan et al 2004). O papel
neuroprotetor dos estabilizadores do humor está bem reportado e pode estar
83
relacionado, além dos fatores já mencionados, com a inibição dos receptores de
N-metil-D-aspartato e ativação da rota de sinalização PI3 quinase/ AKT.
Em dois estudos que usaram o ensaio Cometa, a clorpromazina não
demostrou potencial lesivo ao DNA (Frotschl et al 2005), enquanto a flufenazina
aumentou o reparo ao DNA após as células sofrem dano ao DNA induzido por
H
2
O
2
(Gaziorowski and Brokos, 2001). A amitriptilina tem sido descrita como não –
genotóxica (Spanova et al 1997; Saxena & Ahuja 1998), o valproato tem mostrado
um efeito antiproliferativo em certas linhagens de câncer in vivo e in vitro (Singh et
al 2005). Psimadas et al (2004) estudou o envolvimento do dano ao DNA na
esquizofrenia mostrando que os pacientes esquizofrênicos não diferem do controle
quando ao dano ao DNA e capacidade de reparo. Eles também demonstraram
que altos níveis de antipsicóticos não aumentam o dano ao DNA.
Um resultado interessante encontrado nesse estudo foi a correlação positiva
entre o índice de dano ao DNA e os sintomas maníacos (r=0.620; P=0.001) e
deprimidos (r=0.450; P=0.001), quando analisamos num modelo de regressão
linear múltipla o número de medicações não influenciou os resultados. Portanto,
as evidências sugerem que o uso de medicações psiquiátricas pode atuar como
um fator protetor e não lesivo. Seguindo essa linha, os achados do nosso estudo
podem estar mais relacionados à gravidade dos sintomas do que a exposição a
medicações.
Os radicais livres (especialmente o OH
-•
) podem causar dano ao DNA
(Cooke et al 2005; Culmsee and Mattson, 2005), o qual em certas circunstâncias
pode levar a mutação ao DNA. Existem múltiplo sistemas para prevenir a
formação de lesão, e se o dano ocorrer poderá rapidamente ser removido (Cooke
84
et al 2005). O dano ao DNA pode levar fosforilação do p53 nos resíduos serina ou
treonina favorecendo a apoptose celular (Evan and Littlewood, 1998; Culmsee and
Mattson, 2005). Benes et al 2003, em um estudo post mortem, avaliaram a
fragmentação ao DNA de pessoas portadores de THB, porém eles não
encontraram um aumento da fragmentação do DNA no córtex cingular.
O papel do dano ao DNA no THB pode estar relacionado ao fato que estes
pacientes apresentam aumento da morbidade e da mortalidade por condições
médicas gerais. Doença cardiovacular (Demirbag et al 2005), obesidade (Gao et al
2004) e diabetes mellitus (Blasiak et al 2004) estão associadas com o aumento do
dano ao DNA. Sendo que, essas condições médicas são mais prevalentes em
pacientes bipolares do que na população em geral (Kupfer 2005). Além disso,
existem fortes evidências mostrando que o estresse oxidativo pode estar
aumentado no THB (Kuloglu et al 2000; Rajenkar et al 2002; Ozcan et al 2004)
como mencionados anteriormente os radicais livres podem induzir o dano ao DNA.
Devemos considerar que verificamos o dano recente ao DNA nos pacientes
bipolares e um futuro estudo envolvendo a avaliação do dano permanente às
células será necessário para compreendermos se o sistema de reparo foi capaz
de eliminar o dano. Além disso, é importante salientar, novamente, que o dano ao
DNA pode ser causado por diversos fatores como hábitos alimentares e estilo de
vida, mais uma vez demonstrando a necessidade novos estudos na área.
85
3.1 Conclusões
Os resultados encontrados nessa dissertação mostram que no THB, em
especial nos episódios de depressão e mania, está ocorrendo um aumento na
proporção Sod/(catalase+GPx), ou seja a defesa primária (Sod) está aumentada e
as enzimas catalase e GPx sofrem um balanço entre elas para eliminar o H
2
O
2
formado na ação da Sod (objetivo 2, desta dissertação), porém a elevação da
atividade das enzimas antioxidates não foram suficientes para previnir a
peroxidação lipídica (TBARS) aumentada nas três fases da doença (objetivo 3).
Além disso, verificamos um aumento do dano recente ao DNA nos pacientes
bipolares tipo I, como é de conhecimento os radicais livres, entre outros fatores,
podem causar dano ao DNA assim, fica evidente que pelo menos em parte essa
elevação do dano ao DNA nos pacientes bipolares pode ser explicada pelo
estresse oxidativo (objetivo 4). O aumento dos níveis de estresse oxidativo
periférico pode estar indicando que o SNC esteja parcialmente afetado e talvez de
uma maneira mais grave. O envolvimento cerebral, particularmente dos astrócitos,
foi confirmado pelo aumento da S100B sérica (objetivo 1).
86
Referências Bibliográficas
Adami C, Sorci G, Blasi E, Agneletti AL, Bistoni F, Donato R. (2001): S100B
expression in and effects on microglia. Glia. 33(2):131-42.
Almeida N, Mari JJ, Coutinho E, Andreolli SB, Busnello ED. (1992): Estudo
multicêntrico de morbidade psiquiátrica em áreas urbanas de Porto Alegre. Revista
ABP-APAL 14(3):93-104.
Adami C, Bianchi R, Pula G, Donato R. (2004): S100B-stimulated NO production
by BV-2 microglia is independent of RAGE transducing activity but dependent on
RAGE extracellular domain. Biochim Biophys Acta. 1742(1-3):169-77.
Andreazza AC, Soares DG, Kehl LF, Borella MLL, Salvador M. (2004): Transtorno
Neuropsiquiátricos e estresse oxidativo. In: Kapczinskli F, Quevedo J, Isquierdo I.
(2004): Bases Biológicas dos Trnstornos Psiquiátricos, ed. 2ª, Artmed, Porto
Alegre.
Arcuri C, Bianchi R, Brozzi F, Donato R. (2005): S100B increases proliferation in
PC12 neuronal cells and reduces their responsiveness to nerve growth factor via
Akt activation. J Biol Chem. 280(6):4402-14
87
Baez S, Segura-Aguilar J, Widersten M, Johansson AS, Mannervik B. (1997):
Glutathione transferases catalyse the detoxication of oxidized metabolites (o-
quinones) of catecholamines and may serve as an antioxidant system preventing
degenerative cellular processes. Biochem J. 324 ( Pt 1):25-8.
Baudier J, Delphin C, Grunwald D, Khochbin S, Lawrence JJ. (1992):
Characterization of the tumor suppressor protein p53 as a protein kinase C
substrate and a S100b-binding protein. Proc Natl Acad Sci U S A. 89(23):11627-
31.
Beckman KB, Ames BN. (1998): The free radical theory of aging matures. Physiol
Rev. 78(2):547-81.
Belmaker RH. (2004): Medical progress: bipolar disorder. N Eng J Med 351:476-
486.
Benes FM, Walsh J, Bhattacharyya S, Sheth A, Berretta S. (2003): DNA
fragmentation decreased in schizophrenia but not bipolar disorder. Archives of
General Psychiatry 60, 359-64.
Betti C, Davini T, Giannessi L, Loprieno N, Barale R. (1994): Microgel
electrophoresis assay (comet test) and SCE analysis in human lymphocytes from
100 normal subjects. Mutat Res. 307(1):323-33.
88
Bianchi R, Giambanco I, Arcuri C, Donato R. (2003): Subcellular localization of
S100A11 (S100C) in LLC-PK1 renal cells: Calcium- and protein kinase c-
dependent association of S100A11 with S100B and vimentin intermediate
filaments. Microsc Res Tech. 60(6):639-51.
Bianchi R, Garbuglia M, Verzini M, Giambanco I, Ivanenkov VV, Dimlich RV,
Jamieson GA Jr, Donato R. (1996): S-100 (alpha and beta) binding peptide (TRTK-
12) blocks S-100/GFAP interaction: identification of a putative S-100 target epitope
within the head domain of GFAP. Biochim Biophys Acta. 13(3):258-67.
Blasiak J, Arabski M, Krupa R, Wozniak K, Zadrozny M, Kasznicki J, Zurawska M,
Drzewoski J. (2004): DNA damage and repair in type 2 diabetes mellitus. Mutation
Research. 554, 297-304.
Bowie A, O'Neill LA. (2000): Oxidative stress and nuclear factor-kappaB activation:
a reassessment of the evidence in the light of recent discoveries.Biochem
Pharmacol. 59(1):13-23.
Bonnefoy M, Drai J, Kostka T. (2002): Antioxidants to slow aging, facts and
perspectives. Presse Med. 27;31(25):1174-84.
Bolann BJ, Ulvik RJ. (1990): On the limited ability of superoxide to release iron
from ferritin. ur J Biochem. 193(3):899-904.
89
Borela L & Varela Q. (2004): Antioxidantes enzimáticos. In: Salvador M &
Henriques JAP (2004): Radicais livres e a resposta celular ao estresse oxidativo.
Ed. Ulbra, 1° ed., Porto Alegre.
British Pharmacopoeia (1999) London . Her Majesty’s Stationery Office.
Brunello N. (2004) Mood stabilizers: protecting the mood...protecting the brain.
Journal of Affective Disorders. 79, 15-20.
Carlsson LM, Jonsson J, Edlund T, Marklund SL. (1995): Mice lacking extracellular
superoxide dismutase are more sensitive to hyperoxia. Proc Natl Acad Sci USA.
92(14):6264-8.
Chance B, Machley AL (1954): Assay of catalases and peroxidases. Meth Enzimol
2:764-775.
Chance B, Sies H, Boveris A. (1979): Hydroperoxide metabolism in mammalian
organs. Physiol Rev. 59(3):527-605.
Chuang DM (2004): Neuroprotective and neurotrophic actions of the mood
stabilizer lithium: can it be used to treat neurodegenerative diseases? Crit Rev
Neurobiol 16:83-90.
90
Chuang DM. (2004): Neuroprotective and neurotrophic actions of the mood
stabilizer lithium: can it be used to treat neurodegenerative diseases? Critical
Reviews in Neurobiology. 16, 83-90.
Chuang DM (2005): The Antiapoptotic Actions of Mood Stabilizers: Molecular
Mechanisms and Therapeutic Potentials. Annals of the New York Academy of
Sciences. 1053, 195-204.
Collins A, Dusinska M, Franklin M, Somorovska M, Petrovska H, Duthie S, Fillion
L, Panayiotidis M, Raslova K, Vaughan N. (1997): Comet assay in human
biomonitoring studies: reliability, validation, and applications. Environmental
Molecular Mutagenic 30, 139-146.
Collins AR, Dusinska M, Gedik CM, Stetina R. (1996): Oxidative damage to DNA:
do we have a reliable biomarker? Environmental Health Perspectives 104, 465-
469.
Cooke MS, Olinski R, Evans MD. (2005): Does measurement of oxidative damage
to DNA have clinical significance? Clinica Chimica Acta; international journal of
clinical chemistry, in press.
Culmsee C, Mattson MP. (2005): p53 in neuronal apoptosis. Biochemical and
Biophysical Research Communications. 331,761-777.
91
Das Gupta R, Guest JF. (2002): A model to estimate the cost benefit of an
occupational vaccination programme for influenza in the UK. Pharmacoeconomics
20, 475-484.
Demirbag R, Yilmaz R, Kocyigit A. (2005): Relationship between DNA damage,
total antioxidant capacity and coronary artery disease. Mutation Research 570,197-
203.
Donato R (2001): S100: a multigenic family of calcium-modulated proteins of the
EF-hand type with intracellular and extracellular functional roles. Int J Biochem Cell
Biol 33:637-668.
Dorey G, Lockhart B, Lestage P, Casara P. (2000): New quinolinic derivatives as
centrally active antioxidants.Bioorg Med Chem Lett. 2000 May 1;10(9):935-9.
Dotan Y, Lichtenberg D, Pinchuk I. (2004): Lipid peroxidation cannot be used as a
universal criterion of oxidative stress. Progress in Lipid Research. 43, 200-27.
Drevets WC, Ongur D, Price JL. (1998): Neuroimaging abnormalities in the
subgenual prefrontal cortex: implications for the pathophysiology of familial mood
disorders. Mol Psychiatry. 3(3):220-6, 190-1.
Droge W. (2002): Free radicals in the physiological control of cell function. Physiol
Rev. 82(1):47-95.
92
Emerit J, Edeas M, Bricaire F. (2004): Neurodegenerative diseases and oxidative
stress. Biomedicine & Pharmacotherapy. 58, 39-46.
Esterbauer H, Schaur RJ, Zollner H. (1991): Chemistry and biochemistry of 4-
hydroxynonenal, malonaldehyde and related aldehydes. Free Radic Biol Med.
11(1):81-128.
Evan G, Littlewood T. (1998): A matter of life and cell death. Science. 281, 1317-
1322.
Esplugues JV. (2002): NO as a signalling molecule in the nervous system.
Br J Pharmacol. 135(5):1079-95
Faust F, Kassie F, Knasmüller S, Boedecker RH, Mann M, Mersch- Sundermann,
V. (2004): The use of the alkaline comet assay with lymphocytes in human
biomonitoring studies. Mutation Research 566, 209-229.
Fenech M. (1997): The advantages and disadvantages of the cytokinesis-block
micronucleus method. Mutat Res. 392(1-2):11-8.
First MB, Spitzer RL, Gibbon M, Williams JB (1998): Structured Clinical Interview
for DSM-IV (SCID-I). New York: Biomedics Research Department.
93
Floyd RA (1999): Antioxidants, oxidative stress, and degenerative neurological
disorders. Proc Soc Exp Biol Med 222:236-245.
Friedman E, Hoau-Yan-Wang, Levinson D, Connell TA, Singh H. (1993): Altered
platelet protein kinase C activity in bipolar affective disorder, manic episode. Biol
Psychiatry 33(7):520-5.
Fridovich I. (1978): Oxygen free radicals and tissue damage: chairman's
introduction. Ciba Found Symp. 6-8;(65):1-4.
Fridovich I. (1998): The trail to superoxide dismutase. Protein Sci. 7(12):2688-90
Frotschl R, Weickardt S, Staszewski S, Kaufmann G, Kasper P. (2005): Effects of
chlorpromazine with and without UV irradiation on gene expression of HepG2 cells.
Mutation Research 575, 47-60.
Fujikawa K, Kamiya H, Kassay H. (1998): The mutatojns induced by oxidatively
damage nucleotides, 5-formyl-dUTP and 5-hydroxil and 5-hydroxy-dCTP, in
Escherichia coli. Nucleic Acidis Res. 26: 4582-87.
Fulle S, Mariggio MA, Belia S, Petrelli C, Ballarini P, Guarnieri S, Fano G. (1999):
Rapid desensitization of PC12 cells stimulated with high concentrations of
extracellular S100. Neuroscience. 89(3):991-7.
94
Gao D, Wei C, Chen L, Huang J, Yang S, Diehl AM. (2004): Oxidative DNA
damage and DNA repair enzyme expression are inversely related in murine
models of fatty liver disease. America Journal Physiology. Gastrointestinal and
Liver Physiology 5, 1070-1077.
Gasiorowski K, Brokos B, (2001): DNA repair of hydrogen peroxide-induced
damage in human lymphocytes in the presence of four antimutagens. A study with
alkaline single cell gel electrophoresis (comet assay). 6, 897-911.
Garbuglia M, Verzini M, Dimlich RV, Jamieson GA Jr, Donato R. (1996):
Characterization of type III intermediate filament regulatory protein target epitopes:
S-100 (beta and/or alpha) binds the N-terminal head domain; annexin II2-p11(2)
binds the rod domain. Biochim Biophys Acta. 13(3):268-76.
Ghribi O, Herman MM, Savory J (2003): Lithium inhibits Abeta-induced stress in
endoplasmic reticulum of rabbit hippocampus but does not prevent oxidative
damage and tau phosphorylation. J Neurosci Res 71:853-862.
Goncalves DS, Lenz G, Karl J, Goncalves CA, Rodnight R. (2000): Extracellular
S100B protein modulates ERK in astrocyte cultures. Neuroreport. 20;11(4):807-9.
Gould TD, Manji HK. (2002): The Wnt signaling pathway in bipolar disorder.
Neuroscientist. 8(5):497-511.
95
Gutteridge JM, Halliwell B. (2000): Free radicals and antioxidants in the year 2000.
A historical look to the future. Ann N Y Acad Sci. 899:136
Selinfreud RH, Barger SW, Pledger WJ, Van Eldik L. (1991): Neurotrofic protein
S100B stimulates glial cell proliferation. Proc Natl Acd Sci USA . 88:3554-3558.
Hayes JD, Flanagan JU, Jowsey IR. (2005): Glutathione transferases. Annu Rev
Pharmacol Toxicol. 45:51-88.
Hakkaart-van Roijen L, Hoeijenbos MB, Releer EJ, Tem-have M, Nolen WA,
Veraart CP, Rutten FF. (2004): The societal costs and quality of life of patients
suffering from bipolar disorder in the Netherlands. Acta Psychiatrica Scandinavia
110, 383-392.
Halliwell B. & Guteridge (2000): Free radicals in biology and medicine, 3ed.
Clarendon, Oxford.
Halliwell B. (2001) Role of free radicals in the neurodegenerative diseases:
therapeutic implications for antioxidant treatment. Drugs Aging. 18, 685-716.
Hamilton M (1960): A rating scale for depression. J Neurol Neurosurg Psych 23:
56–62.
Halliwell B, Gutteridge JM. (1990): The antioxidants of human extracellular fluids.
Arch Biochem Biophys. 280(1):1-8.
96
Halliwell B, Gutteridge JM. (1984): Free radicals, lipid peroxidation, and cell
damage. Lancet. 10;2: 8411-1095.
Halliwell B, Whiteman M. (2004): Measuring reactive species and oxidative
damage in vivo and in cell culture: how should you do it and what do the results
mean? Br J Pharmacol. 142(2):231-55.
Hamilton M. (1960): A rating scale for depression. Journal of Neurology,
Neurosurgery, and Psychiatry 23, 56–62.
Hartmann A, Fender H, Speit G. (1998): Comparative biomonitoring study of
workers at a waste disposal site using cytogenetic tests and the comet (single-cell
gel) assay. Environ Mol Mutagen. 32(1):17-24.
Hartmann A, Agurell E, Beevers C, Brendler-Schwaab S, Burlinson B, Clay P,
Collins A, Smith A, Speit G, Thybaud V, Tice RR; 4th International Comet Assay
Workshop. (2003): Recommendations for conducting the in vivo alkaline Comet
assay. 4th International Comet Assay Workshop. Mutagenesis. 18(1):45-51.
Heddle JA, Hite M, Kirkhart B, Mavournin K, MacGregor JT, Newell GW, Salamone
MF. (1983): The induction of micronuclei as a measure of genotoxicity. A report of
the U.S. Environmental Protection Agency Gene-Tox Program. Mutat Res.
123(1):61-118.
97
Hobbs AJ, Higgs A, Moncada S. (1999): Inhibition of nitric oxide synthase as a
potential therapeutic target. Annu Rev Pharmacol Toxicol. 39:191-220.
Isobe T, Okuyama T. (1981): The amino acid sequence of the tryptophan-
containing subunit (alpha-subunit) of bovine brain S-100 protein. J Neurochem.
37(2):522-4.
Johnson F, Giulivi C. (2005): Superoxide dismutases and their impact upon human
health.
Johnston-Wilson NL, Sims CD, Hofmann JP, Anderson L, Shore AD, Torrey EF,
Yolken RH (2000): Disease-specific alterations in frontal cortex brain proteins in
schizophrenia, bipolar disorder, and major depressive disorder. The Stanley
Neuropathology Consortium. Mol Psychiatry 5:142-149.
Judd LL, Akiskal HS (2003): The prevalence and disability of bipolar spectrum
disorders in the US population: re-analysis of the ECA database taking in account
subthreshold cases. J Affect Disord. 73(1-2):123-31.
Kassie F, Parzefall W, Knasmuller S. (2000) : Single cell gel electrophoresis assay:
a new technique for human biomonitoring studies. Mutation Research. 463, 13-31.
98
Kessler RC, Stang P, Wittchen HU, Stein M. (1999): Walters Lifetime co-
morbidities between social phobia and mood disorders in the US National
Comorbidity Survey. Psychol Med 29(3):555-67.
King TD, Jope RS. (2005): Inhibition of glycogen synthase kinase-3 protects cells
from intrinsic but not extrinsic oxidative stress. Neuroreport 16, 597-601.
Kuloglu M, Ustundag B, Atmaca M, Canatan H, Tezcan E, Cinkilinc N (2002): Lipid
peroxidation and antioxidant enzyme levels in patients with schizophrenia and
bipolar desorder. Cell Biochem Funct 20: 171-175.
Kupfer DJ. (2005): The increasing medical burden in bipolar disorder. JAMA 293:
2528-2530.
Laming PR. (2000): Potassium signalling in the brain: its role in behaviour.
Neurochem Int. 36(4-5):271-90.
Lara DR, Gama CS, Belmonte-de-Abreu P, Portela LV, Goncalves CA, Fonseca M,
Hauck S, Souza DO (2001): Increased serum S100B protein in schizophrenia: a
study in medication-free patients. J Psychiatr Res 35:11-14.
Machado-Vieira R, Lara DR, Portela LV, Goncalves CA, Soares JC, Kapczinski F,
Souza DO (2002): Elevated serum S100B protein in drug-free bipolar patients
during first manic episode: a pilot study. Eur Neuropsychopharmacol 12:269-272.
99
Machado-Vieira R, Ceresér KMC, Frey BN , Soares JC (2004): Transtorno do
humor bipolar. In: Kpaczinski F, Quevedo J, Izquierdo I (2004): Bases Biológicas
dos Transtornos Pisquiátricos. Artmed, Porto Alegre, 2° ed.
Mahadik SP, Evans D, Lal H. (2001): Oxidative stress and role of antioxidant and
omega-3 essential fatty acid supplementation in schizophrenia. Prog
Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry. 25(3):463-93.
Maluf SW. (2004): Monitoring DNA damage following radiation exposure using
cytokinesis-block micronucleus method and alkaline single-cell gel electrophoresis.
Clin Chim Acta. 347(1-2):15-24.
Maluf SW, Erdtmann B. (2000): Follow-up study of the genetic damage in
lymphocytes of pharmacists and nurses handling antineoplastic drugs evaluated by
cytokinesis-block micronuclei analysis and single cell gel electrophoresis assay.
Mutation Research 471, 21-27.
Marshall JM. (2001): Roles of adenosine and nitric oxide in skeletal muscle in
acute and chronic hypoxia. Adv Exp Med Biol. 502:349-63.
Mariggio MA, Fulle S, Calissano P, Nicoletti I, Fano G. (1994): The brain protein S-
100ab induces apoptosis in PC12 cells. Neuroscience. 60(1):29-35.
100
McCord JM, Edeas MA. (2005): SOD, oxidative stress and human pathologies: a
brief history and a future vision. Biomed Pharmacother. 59(4):139-42. Medicine
351, 476-486.
Migliore L, Fontana I, Colognato R, Coppede F, Siciliano G, Murri L. (2005):
Searching for the role and the most suitable biomarkers of oxidative stress in
Alzheimer's disease and in other neurodegenerative diseases. Neurobiology of
Aging 26, 587-595.
Mirsa HP, Fridovich I (1972): The role of superoxide anion in the antioxidation of
epinephrine and a simple assay for superoxide dismutase. J Biol Chem 217:3170-
3175.
Molina MM, Belli G, de la Torre MA, Rodriguez-Manzaneque MT, Herrero E.
(2004): Nuclear monothiol glutaredoxins of Saccharomyces cerevisiae can function
as mitochondrial glutaredoxins. J Biol Chem. 2004 Dec 10;279(50):51923-30.
Morselli PL, Elgie R, Cesana BM. (2004): GAMIAN-Europe/BEAM survey II: cross-
national analysis of unemployment, family history, treatment satisfaction and
impact of the bipolar disorder on life style. Bipolar Disord. 6(6):487-97.
Mora A, Rosa A, Fuentes JM, Soler G, Centeno F. (1999): Different mechanisms of
protection against by valproate and of lithium. European Journal of Biochemistry
266, 886–891.
101
Mora A, Sabio G, Soler G, Centeno F. (2002): Different dependence of lithium and
valproate on PI3K/PKB pathway. Bipolar Disorder 4, 195–200.
Murray CJ, Lopez AD (1997): The utility of DALYs for public health policy and
research: a reply. Bull World Health Organ 75:377-381.
Mustacich D, Powis G. (2000): Thioredoxin reductase. Biochem J. 346:1-8.
Netto CB, Portela LV, Ferreira CT, Kieling C, Matte U, Felix T, da Silveira TR,
Souza DO, Goncalves CA, Giugliani R (2005): Ontogenetic changes in serum
S100B in Down syndrome patients. Clin Biochem 38:433-435.
Niki E, Noguchi N. (2004): Dynamics of antioxidant action of vitamin E. Acc Chem
Res. 37(1):45-51.
Obata T. (2002): Dopamine efflux by MPTP and hydroxyl radical generation. J
Neural Transm. 109(9):1159-80.
Ongur D, Drevets WC, Price JL. (1998): Glial reduction in the subgenual prefrontal
cortex in mood disorders. Proc Natl Acad Sci U S A 95:13290-295.
Ostling O, Johanson KJ. (1984): Microelectrophoretic study of radiation-induced
DNA damages in individual mammalian cells. Biochem Biophys Res Commun.
102
30;123(1):291-8.
Ozcan ME, Gulec M, Ozerol E, Polat R, Akyol O. (2004): Antioxidant enzyme
activities and oxidative stress in affective disorders. Int Clin Psychopharmacol
19:89-95
Pawlak W, Kedziora J, Zolynski K, Kedziora-Kornatowska K, Blaszczyk J,
Witkowski P. (1998): Free radicals generation by granulocytes from men during
bed rest. J Gravit Physiol. 5(1):P131-2.
Palyvoda O, Polanska J, Wygoda A, Rzeszowska-Wolny J. (2003): DNA damage
and repair in lymphocytes of normal individuals and cancer patients: studies by the
comet assay and micronucleus tests. Acta Biochim Pol. 50(1):181-90.
Piperakis SM, Petrakou E, Tsilimigaki S, Sagnou M, Monogiudis E, Haniotakis G,
Karkaseli H, Sarikaki E. (2003): Biomonitoring with the comet assay of Greek
greenhouse workers exposed to pesticides. Environ Mol Mutagen. (2):104-10.
Psimadas D, Messini-Nikolaki N, Zafiropoulou M, Fortos A, Tsilimigaki S, Piperakis
SM. (2004): DNA damage and repair efficiency in lymphocytes from schizophrenic
patients. Cancer Letters 204(1), 33-40.
103
Post RM, Ballenger JC, Uhde TW, Smith C, Rubinow DR, Bunney WE Jr. (1982):
Effect of carbamazepine on cyclic nucleotides in CSF of patients with affective
illness. Biol Psychiatry. 1982 (9):1037-45
Rajeswari N, Ahuja YR, Malini U, Chandrashekar S, Balakrishna N, Rao KV, Khar
A. (2000): Risk assessment in first degree female relatives of breast cancer
patients using the alkaline Comet assay. Carcinogenesis. 21(4):557-61.
Ranjekar, PK, Hinge, A, Hegde, MV, Ghate, M, Kale, A, Sitasawad, S, Wagh, UV,
Debsikdar, VB, Mahadik, SP (2003): Decreased antioxidant enzymes and
membrane essential polyunsaturatiod fatty acids in schizophrenic and bipolar
mood disorder patients. Psychiatry Research 121:109-122.
Ross GM, McMillan TJ, Wilcox P, Collins AR. (1995): The single cell microgel
electrophoresis assay (comet assay): technical aspects and applications. Report
on the 5th LH Gray Trust Workshop, Institute of Cancer Research, 1994. Mutat
Res. 337(1):57-60. No
Rothermundt M, Arolt V, Wiesmann M, Missler U, Peters M, Rudolf S, Kirchner H
(2001): S-100B is increased in melancholic but not in non-melancholic major
depression. J Affect Disord 66:89-93.
Rothermundt M, Peters M, Prehn JH, Arolt V (2003): S100B in brain damage and
104
neurodegeneration. Microsc Res Tech 60:614-632.
Rustandi RR, Drohat AC, Baldisseri DM, Wilder PT, Weber DJ. (1998): The
Ca(2+)-dependent interaction of S100B(beta beta) with a peptide derived from p53.
Biochemistry. 37(7):1951-60.
Salvador M, Poletto NP, Andreazza AC, Soares DG. (2004) Estresse oxidativo e
doenças. In: Radicais Livres e a resposta células ao estrese oxidativo.
Sajatovic M. (2005): Bipolar disorder: disease burden. Am J Manag Care. 11(3
Suppl):S80-4
Spanova A, Kovaru H, Lisa V, Lukasova E, Rittich B. (1997): Estimation of
apoptosis in C6 glioma cells treated with antidepressants. Physiol Res. 46(2):161-
4.
Saxena R, Ahuja YR. (1988): Genotoxicity evaluation of the tricyclic
antidepressants amitriptyline and imipramine using human lymphocyte cultures.
Schaf DV, Tort AB, Fricke D, Schestatsky P, Portela LV, Souza DO, Rieder CR.
(2005): S100B and NSE serum levels in patients with Parkinson's disease.
Parkinsonism Relat Disord. 11(1):39-43.
105
Schatzberg AF, Dessain E, O'Neil P, Katz DL, Cole JO. (1987): Recent studies on
selective serotonergic antidepressants: trazodone, fluoxetine, and fluvoxamine. J
Clin Psychopharmacol. 11:1-22.
Schmitt A, Bertsch T, Henning U, Tost H, Klimke A, Henn FA, Falkai P. (2005):
Increased serum S100B in elderly, chronic schizophrenic patients: Negative
correlation with deficit symptoms. Schizophr Res 15;80(2-3):305-13.
Schroeter ML, Abdul-Khaliq H, Diefenbacher A, Blasig IE (2002): S100B is
increased in mood disorders and may be reduced by antidepressive treatment.
Neuroreport 13:1675-8.
Shao L, Young LT, Wang JF (2005): Chronic Treatment with Mood Stabilizers
Lithium and Valproate Prevents Excitotoxicity by Inhibiting Oxidative Stress in Rat
Cerebral Cortical Cells. Biol Psychiatry [In Press]
Shansis F, Grevet E, Mattevi B, Berlim M, Maldonado G, Santin A, Fleck M,
Izquierdo I. (2003): Development and application of the mania rating guide (MRG).
Rev Bras Psiquiatr. 25(2):91-5.
Smith MA, Richey Harris PL, Sayre LM, Beckman JS, Perry G. (1997):
Widespread peroxynitrite-mediated damage in Alzheimer's disease. J Neurosci.
17(8):2653-7.
106
Schulz JB, Henshaw DR, MacGarvey U, Beal MF. (1996): Involvement of oxidative
stress in 3-nitropropionic acid neurotoxicity. Neurochem Int. 29(2):167-71.
Schulz JB, Matthews RT, Klockgether T, Dichgans J, Beal MF. (1997): The role of
mitochondrial dysfunction and neuronal nitric oxide in animal models of
neurodegenerative diseases. Mol Cell Biochem. 174(1-2):193-7.
Sies H. (1993): Strategies of antioxidant defense. Eur J Biochem. 15;215(2):213-9
Singh NP, McCoy MT, Tice RR, Schneider EL. (1988): A simple technique for
quantitation of low levels of DNA damage in individual cells. Exp Cell Res.
175(1):184-91.
Singh NP, Danner DB, Tice RR, Pearson JD, Brant LJ, Morrell CH, Schneider EL.
(1991): Basal DNA damage in individual human lymphocytes with age. Mutat Res.
256(1):1-6.
Singh G., Driever P.H., Sander J.W., (2005). Cancer risk in people with epilepsy:
the role of antiepileptic drugs. Brain 128, 7-17.
Spanova A., Kovaru H., Lisa V., Lukasova E., Rittich B., 1997 Estimation of
apoptosis in C6 glioma cells treated with antidepressants. Physiological Research
46, 161-164.
107
Spitzer RL, Williams JB, Gibbon M, First MB. (1992): The Structured Clinical
Interview for DSM-III-R (SCID). I: History, rationale, and description. Archives of
General Psychiatry 49, 624-629.
Takuma K, Baba A, Matsuda T (2004): Astrocyte apoptosis: implications for
neuroprotection. Prog Neurobiol 72:111-127.
Thiels E & Klann E. (2002): Hippocampal memory and plasticity in superoxide
dismutase mutant mice. Physiol Behav. 77(4-5):601-5.
Tice RR, Agurell E, Anderson D, Burlinson B, Hartmann A, Kobayashi H, Miyamae
Y, Rojas E, Ryu JC, Sasaki YF. (2000): Single cell gel/comet assay: guidelines for
in vitro and in vivo genetic toxicology testing. Environmental Molecular
Mutagenesis 35, 206-221.
Tramontina F, Conte S, Goncalves D, Gottfried C, Portela LV, Vinade L, Salbego
C, Goncalves CA. (2002): Developmental changes in S100B content in brain
tissue, cerebrospinal fluid, and astrocyte cultures of rats. Cell Mol Neurobiol
22:373-378.
Tucker JD, Preston RJ. (1996): Chromosome aberrations, micronuclei, aneuploidy,
sister chromatid exchanges, and cancer risk assessment. Mutat Res. 365(1-
3):147-59.
108
Van Eldik LJ, Wainwright MS. (2003): The Janus face of glial-derived S100B:
beneficial and detrimental functions in the brain. Restor Neurol Neurosci. 21(3-
4):97-108.
Von Sonntag C. (1987): The chemical basis of radiation biology. London: Taylor
and Francis.
Wang JF, Shao L, Sun X, Young,LT. (2004): Glutathione S-transferase is a novel
target for mood stabilizing drugs in primary cultured neurons. Journal of
Neurochemistry 88, 1477-1484.
Wyatt RJ, Henter I. (1995) An economic evaluation of manic-depressive illness--
1991. Soc Psychiatry Psychiatr Epidemiol. 30(5):213-9
Wendel A (1981): Glutathione peroxidase. Methods Enzymol 77:325-333.
Wiesmann M, Wandinger KP, Missler U, Eckhoff D, Rothermundt M, Arolt Kirchner
H (1999): Elevated plasma levels of S-100b protein in schizophrenic patients. Biol
Psychiatry 45:1508-1511.
Wills ED (1966): Mechanism of lipid peroxide formation in animal tissues. Biochem
J 99:667-676.
109
Yanik M, Vural H, Tutkun H, Zoroglu SS, Savas HA, Herken H, Kocyigit A, Keles H,
Akyol O. (2004): The role of the arginine-nitric oxide pathway in the pathogenesis
of bipolar affective disorder. Eur Arch Psychiatry Clin Neurosci. 254(1):43-7.
Young, R.C., Biggs, J.T., Ziegler, V.E., Meyer, D.A., 1978. A rating scale for mania:
reliability, validity, and sensitivity. British Journal of Psychiatry 133, 429–435.
Zelko IN, Mariani TJ, Folz RJ. (2002): Superoxide dismutase multigene family: a
comparison of the CuZn-SOD (SOD1), Mn-SOD (SOD2), and EC-SOD (SOD3)
gene structures, evolution, and expression. Free Radic Biol Med. 33(3):337-49.
Livros Grátis
( http://www.livrosgratis.com.br )
Milhares de Livros para Download:
Baixar livros de Administração
Baixar livros de Agronomia
Baixar livros de Arquitetura
Baixar livros de Artes
Baixar livros de Astronomia
Baixar livros de Biologia Geral
Baixar livros de Ciência da Computação
Baixar livros de Ciência da Informação
Baixar livros de Ciência Política
Baixar livros de Ciências da Saúde
Baixar livros de Comunicação
Baixar livros do Conselho Nacional de Educação - CNE
Baixar livros de Defesa civil
Baixar livros de Direito
Baixar livros de Direitos humanos
Baixar livros de Economia
Baixar livros de Economia Doméstica
Baixar livros de Educação
Baixar livros de Educação - Trânsito
Baixar livros de Educação Física
Baixar livros de Engenharia Aeroespacial
Baixar livros de Farmácia
Baixar livros de Filosofia
Baixar livros de Física
Baixar livros de Geociências
Baixar livros de Geografia
Baixar livros de História
Baixar livros de Línguas
Baixar livros de Literatura
Baixar livros de Literatura de Cordel
Baixar livros de Literatura Infantil
Baixar livros de Matemática
Baixar livros de Medicina
Baixar livros de Medicina Veterinária
Baixar livros de Meio Ambiente
Baixar livros de Meteorologia
Baixar Monografias e TCC
Baixar livros Multidisciplinar
Baixar livros de Música
Baixar livros de Psicologia
Baixar livros de Química
Baixar livros de Saúde Coletiva
Baixar livros de Serviço Social
Baixar livros de Sociologia
Baixar livros de Teologia
Baixar livros de Trabalho
Baixar livros de Turismo
