( PDF ) Resistência de variedades de Citrus sp à Xanthomonas axonopodis pv citri em condições de campo na região noroeste do Estado do Paraná

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ROSA GABRIELLA VARGAS

Resistência de variedades de Citrus sp à Xanthomonas axonopodis pv.

citri em condições de campo na região Noroeste do Estado do Paraná.

MARINGÁ

PARANÁ – BRASIL

FEVEREIRO - 2008

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ROSA GABRIELLA VARGAS

Resistência de variedades de Citrus sp à Xanthomonas axonopodis pv.

citri em condições de campo na região Noroeste do Estado do Paraná.

Dissertação apresentada à

Universidade Estadual de Maringá,

como parte das exigências do

Programa de Pós-graduação em

Agronomia, área de concentração

em Proteção de Plantas para

obtenção do título de Mestre.

MARINGÁ

PARANÁ - BRASIL

FEVEREIRO – 2008

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iii

“Tudo tem seu tempo e até certas manifestações mais

vigorosas e originais entram em voga ou saem de moda.

Mas a sabedoria tem uma vantagem: é eterna."

Baltasar Gracián

À DEUS.

Aos meus pais Roberto (in memorian)

e Denira e meus irmãos Renata e

Roberto pelo apoio, incentivo, amor

dedicado e confiança em mim

depositada.

Ao Matheus.

DEDICO

AGRADECIMENTOS

A Deus, pela vida e por ter tornado tudo possível.

A todos que participaram direta e indiretamente para realização deste

trabalho.

Ao meu orientador, Professor Doutor William Mário de Carvalho Nunes,

pela orientação, incentivo, confiança e amizade ao longo destes anos.

Ao Dr. Sérgio Alves de Carvalho, pelo apoio, colaboração e atenção

demonstrados para o desenvolvimento deste trabalho.

Aos professores do Departamento de Fitopatologia (UEM), por

contribuírem para minha formação e aprendizado.

A CAPES, pela concessão de bolsa de estudos durante o curso.

Ao técnico José Alcides Remolli, funcionário do Núcleo de Pesquisa em

Biotecnologia Aplicada (NBA) da Universidade Estadual de Maringá, pela sua

colaboração em todo desenvolvimento do trabalho.

À querida amiga, Fernanda Meira pelo carinho e pela ajuda essencial na

realização deste trabalho.

Aos amigos de todos os dias, membros do NBA/UEM: Rúbia Molina,

Alexandre Zanutto, Alessandra Costa, Walter Temporal, Marilda Caixeta,

Rosângela, Inaiara, Clara Ueda, Akemi Yamamoto.

Aos amigos de Pós-graduação: Francielli Gasparotto, Ronilda Aguiar,

Bárbara Aguiar, Tatiane Albuquerque, Fernanda Marcuz, Andressa Mott e

Solange Bonaldo que estiveram sempre presentes com muita alegria não só

nos momentos de estudo, mas principalmente na minha vida.

Às amigas, Telma Pelizer e Taciane Zamperlini, pela amizade sincera e

constante.

Aos amigos, Marcos Rodovalho e Jefferson Fernandes, pela amizade,

apoio e disposição para ajudar a resolver dúvidas durante as análises.

Aos amigos conquistados ao longo do curso de mestrado, pela amizade

e companheirismo durante todo tempo.

Aos professores, funcionários e colegas da Pós-graduação do Centro de

Treinamento de Irrigação (CTI), pela harmoniosa convivência de todos os dias

de trabalhos.

A todos Muito Obrigada por tudo!

BIOGRAFIA

ROSA GABRIELLA VARGAS, filha de Roberto Vargas e Denira

Cavalheiro Vargas, nascida na cidade de Curitiba, Estado do Paraná, no dia

dezesseis de abril de 1980.

Graduada em Agronomia, pela Universidade Estadual de Maringá, em

maio de 2004.

Iniciou, em março de 2006, o curso de mestrado no programa de Pós-

Graduação em Agronomia, da Universidade Estadual de Maringá.

vii

ÍNDICE

RESUMO--------------------------------------------------------------------------------------------viii

ABSTRACT-------------------------------------------------------------------------------------------x

1. INTRODUÇÃO -----------------------------------------------------------------------------------1

2. REVISÃO DE LITERATURA------------------------------------------------------------------3

2.1. O Cancro Cítrico: Origem e distribuição-------------------------------------------------3

2.2. Etiologia e sintomatologia-------------------------------------------------------------------4

2.3. O cancro cítrico no Paraná -----------------------------------------------------------------6

2.4. Avaliação de doenças------------------------------------------------------------------------8

2.5. Epidemiologia -------------------------------------------------------------------------------10

2.6. Resistência Varietal-------------------------------------------------------------------------14

3. MATERIAL E MÉTODOS--------------------------------------------------------------------20

3.1. Instalação e condução do experimento------------------------------------------------ 20

3.2. Origem do material-------------------------------------------------------------------------- 21

3.3. Avaliação e análise dos dados-----------------------------------------------------------21

4. RESULTADOS E DISCUSSÃO------------------------------------------------------------ 26

4.1. Avaliação das variedades quanto à resistência ao cancro cítrico--------------26

4.2. Avaliação do comportamento das variedades em diferentes épocas de

avaliação --------------------------------------------------------------------------------------------33

5. CONCLUSÕES---------------------------------------------------------------------------------39

6. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS------------------------------------------------------- 40

viii

RESUMO

VARGAS, ROSA GABRIELLA, Universidade Estadual de Maringá, fevereiro de

2008. Resistência de variedades de Citrus sp à Xanthomonas axonopodis

pv. citri em condições de campo na região noroeste do Estado do Paraná.

Professor orientador: Dr. William Mário de Carvalho Nunes.

O cancro cítrico, causado pela bactéria Xanthomonas axonopodis pv. citri, é um

dos maiores problemas fitossanitários da produção de citros em todo o mundo.

Encontra-se distribuído em dezenas de países localizados nos continentes

oceânico, asiático e americano, infectando plantas da família Rutaceae. No

Paraná, foi introduzido em 1957, no município de Lupionópolis, mesmo ano da

primeira constatação da doença no País na região de Presidente Prudente, SP,

sendo rapidamente disseminado para as regiões Norte, Noroeste e Oeste do

Estado. A identificação de cultivares com características agronômicas e

comerciais desejáveis possuindo níveis de resistência ao cancro cítrico assume

grande importância para o manejo desta doença, tanto para áreas citrícolas

onde a erradicação de plantas não é a principal medida de controle, como no

Estado do Paraná, quanto para regiões onde a prática da erradicação vem

sendo adotada como principal medida de controle da doença, como no Estado

de São Paulo. Desenvolvido em pomar experimental no município de Maringá,

região Noroeste do Estado do Paraná, este trabalho buscou avaliar, em

condições de campo, variedades de laranjeiras doces, tangerineiras e seus

híbridos quanto à resistência ao cancro cítrico e o comportamento dessas

variedades em diferentes épocas de avaliação. O delineamento experimental foi

em blocos casualizados com duas repetições com 81 variedades de citros.

Realizou-se quatro avaliações mensais utilizando-se escala diagramática. Os

dados foram submetidos à análise de variância, sendo as médias comparadas

pelo teste de agrupamento de Scott-Knott (P=0,05). Foram constatadas

diferenças significativas entre os tratamentos para Severidade e a Área Abaixo

da Curva de Progresso da Doença (AACPD), sendo que o número de

agrupamentos de similaridade foi diferente conforme a variável. A severidade do

cancro cítrico variou de 0,25% a 4,88% e 49,80 a 742,65 para AACPD, sendo as

variedades distribuídas em três grupos de similaridade. Com base numa escala

de severidade para classificação da reação dos genótipos, cultivares foram

divididos em 5 grupos: Resistentes, Moderadamente Resistentes,

Moderadamente Suscetíveis, Suscetíveis e Altamente Suscetíveis. Dados

climáticos foram correlacionados com a doença. Observou-se que a severidade

da doença aumentou durante os meses de janeiro a abril, correspondente aos

períodos em que a temperatura média alcançou na maior parte dos dias 25°C a

30°C com decréscimo nos níveis de infecção nos meses de maio e junho

quando as temperaturas médias alcançaram valores abaixo de 20°C. O

percentual máximo de severidade foi alcançado entre os meses de março e

abril, reflexo das chuvas e elevação da temperatura nos meses de janeiro e

fevereiro. Durante os seis meses de avaliações foi possível observar diferentes

padrões de comportamento da doença entre as variedades. Aplicando-se o teste

de agrupamento Scott-Knott, foram constatadas diferenças significativas

(P=0,05) entre as variedades e o número de agrupamentos de similaridade

variou conforme a época. A menor variação foi encontrada no mês de janeiro

quando as variedades foram agrupadas em 5 grupos de similaridade enquanto a

maior variação foi observada no mês de fevereiro, com 9 grupos. Houve

variações nos níveis de resistência e no comportamento das variedades

conforme a época de avaliação. A tangerina Ponkan apresentou alta resistência

ao cancro cítrico e as variedades Rosehaugh Nartjee, Harris, De Wildt, Dekopon

e África do Sul comportaram-se como resistentes, apresentando baixos níveis

de doença em todas as avaliações.

Palavras chave: Citrus sinensis, cancro cítrico, resistência varietal.

ABSTRACT

VARGAS, ROSA GABRIELLA, Universidade Estadual de Maringá, fevereiro de

2008. Resistance of varieties of Citrus sp to Xanthomonas axonopodis pv.

Citri at field conditions in the northwest of State of Paraná. Professor

orientador: Dr. William Mário de Carvalho Nunes

The citrus canker caused by Xanthomonas axonopodis pv. citri, is one of the

higher phytosanitary problems of citrus production in the world. It is distributed

in several countries located in Oceanic, Asia and America continents, infecting

plants of the Rutaceaes family. In Paraná State it was introduced in 1957, in the

municipality of Lupionópolis, and quickly spread to the North, Northwest and

West of the state. The identification of cultivars with desirable agronomic and

commercial characteristics with levels of resistance to citrus canker its off great

importance for the management of the disease. This is observed for citrus areas

where plants eradication is not adapted as mesuare of control, which occurs in

the Paraná State, and to regions where the practice of eradication has been

adopted as the main measure of controlling the disease, what happens in the

São Paulo State. Developed in a experimental area of the county Maringa, in

the Northwest region of Parana State, this study seeked to evaluat, at field

conditions, varieties of sweet orange, tangerine tree and its hybrids on the

resistance to citrus canker and behaviour of these varieties at different times for

evaluation. The experimental design was randomized in blocks with two

replicates with 81 varieties of citrus. Six monthly assessments using a

diagrammatic scale. Were performed to the analysis of variance, with the

averages compared by test group of Scott-Knott (P=0,05). There were found

significant differences between treatments when considered as variables such

as severity and area under the disease progress curve (AUDPC), being the

number of clusters of similarity different according variable. The severity of the

citrus canker ranged from 0.25% to 4.88% and 49.80 to 742.65 for AUDPC

varieties being distributed in three groups of similarity. Basead on a scale of

severity for classification of the reaction to the disease, the varieties were

divided into 5 groups: Resistant, Moderately Resistant, Moderately Susceptible,

Susceptible and Highly Susceptible. Climatic data were correlated with the

disease. It was observed that the severity of the disease increased from of

period January to April, corresponding to the periods in which the average

temperature reached in most of the days to 25°C to 30°C with decrease in the

levels of infection in the months of May and June when average temperatures

reached values below 20°C. The maximum percentage of severity was reached

between the months of March and April, reflecting the increase in temperature

and rainfall in the months of January and February. During the six months of

evaluation was possible to observe different patterns of behavior of the disease

among varieties. Applying it is the test of grouping Scott-Knott, were found

significant differences between the varieties and the number of groups of

similarity varied according to age. The smallest variation was found in the

month of January where the varieties were grouped into 5 groups of similarity

as the largest variation was observed in the month of February, with 9 groups.

There were variations in the levels of resistance and the behaviour of varieties

as the time of evaluation. The tangerine Ponkan be highly resistant to citrus

canker and the varieties Rosehaugh Nartjee, Harris, De Wildt, Dekopon and

South Africa behaved themselves as resistant, showing low levels of disease in

all assessments.

Keywords: Citrus sinensis, citrus canker, variety resistance

1. INTRODUÇÃO

Um dos setores mais competitivos e de maior potencial de crescimento do

agronegócio é a citricultura. O Brasil detém 30% da produção mundial de laranja

e 59% da de suco de laranja. São Paulo e Flórida dominam a oferta mundial e

um caso raro em se tratando de commodities agrícolas. O sistema agroindustrial

citrícola movimenta 9 bilhões por ano e gera mais de 400 mil empregos diretos e

indiretos. Inovações em pesquisas, tecnologia e logística estão na base da

eficiência e liderança do Brasil (NEVES, JANK, 2008)

Do ponto de vista fitossanitário, a vulnerabilidade da citricultura brasileira

é bastante grande, seja pelos fatores do meio, seja pela gama de pragas e

doenças que afetam sua produtividade. Dentre estes, destaca-se o cancro cítrico

causado pela bactéria Xanthomonas axonopodis pv. citri. Este encontra-se

distribuído em dezenas de países localizados nos continentes oceânico, asiático

e americano, infectando plantas da família Rutaceae (CIVEROLO, 1984). No

Brasil, a primeira constatação foi em 1957, no município de Presidente Prudente,

Estado de São Paulo (BITANCOURT, 1957). Atualmente, está presente nos

Estados de São Paulo, Paraná, Santa Catarina, Rio Grande do Sul e Roraima

(BARBOSA et al., 2001; FEICHTENBERGER et al., 2005; MACIEL et al., 1998;

NASCIMENTO et al., 2003).

Apesar do Estado do Paraná apresentar condições edafoclimáticas

adequadas para a produção de citros (IAPAR, 1987), as regiões Norte e

Noroeste do estado estiveram impedidas por mais de 30 anos de cultivar citros

em função da interdição das áreas devido à ocorrência de Cancro Cítrico

(CROCE-FILHO, 2005).

A implantação de pomares cítricos, em regiões de ocorrência de Cancro

Cítrico, foi viabilizada através da adoção de medidas de manejo integrado da

doença no final da década de 80 (IAPAR, 1992; LEITE JUNIOR, 1990).

Baseado nas primeiras pesquisas do IAPAR adotou-se um plano de ação que

consistiu em saneamento de imóveis rurais através da erradicação de focos da

doença. Essas ações seguiram as determinações das portarias ministeriais e a

implantação de pomares foi feita com variedades recomendadas pelo IAPAR,

através de resolução específica e adotando-se práticas culturais, tais como:

quebra-ventos e pulverizações preventivas com produtos cúpricos, visando

proteger brotações novas de infecções (KHUARA, 1978; LEITE JUNIOR,

MOHAN, 1990). No entanto essa doença ainda é fator limitante por ser

endêmica na região e, desse modo, exigir medidas adicionais de manejo para

obtenção de uma produção econômica evoluindo positivamente. Para maior

eficácia dessas ações, pesquisas com a finalidade de obter maiores

informações sobre a epidemiologia da doença e medidas alternativas de

controle ao Cancro Cítrico são necessárias. A utilização de variedades

resistentes é a alternativa mais econômica e de menor impacto ambiental.

Em estudos realizados por Croce-Filho (2005), para avaliar resistência ao

cancro cítrico em condições de campo, constatou-se que das 213 variedades de

Citrus sp. avaliadas, apenas 84 variedades apresentaram sintomas da doença

durante todo o período de avaliação (janeiro a novembro de 2004). Segundo

esse autor, mesmo em condições paranaenses onde o Cancro Cítrico é

considerado endêmico, o número de variedades suscetíveis foi baixo.

Nesse contexto, o objetivo desse trabalho foi avaliar em condições de

campo, variedades de laranjeiras doces, tangerineiras e seus híbridos quanto à

resistência ao Cancro Cítrico, a partir da quantificação da severidade da

doença com auxílio de escalas diagramáticas e o comportamento dessas

variedades em diferentes épocas de avaliação.

2. REVISÃO DE LITERATURA

2.1. O Cancro Cítrico: Origem e distribuição

O Cancro Cítrico é um dos maiores problemas fitossanitários da

produção mundial de citros. Encontra-se distribuído em dezenas de países

localizados nos continentes oceânico, asiático e americano, infectando plantas

da família Rutaceae (CIVEROLO,1984).

Originário do Sudoeste da Ásia, mesmo centro de origem dos citros, foi

disseminado principalmente pelo transporte de material propagativo

contaminado atingindo países como Japão, Austrália, Nova Zelândia, Ilhas do

Pacífico, sul e centro da África, América do Sul e EUA. Em muitas dessas

regiões, a doença ocorre endemicamente, como na Argentina, Paraguai e

Uruguai (LEITE JUNIOR, 1990).

A doença foi constatada pela primeira vez na Índia entre 1827 e 1831,

em folhas herbarizadas de cidra (Citrus medica) (BITANCOURT, 1957). Em

1910 foi feita a primeira constatação da bactéria, nos Estados Unidos, em

mudas de citros provenientes do Japão (STALL, SEYMOUR, 1983).

No Brasil, a doença foi constatada em 1957 na região de Presidente

Prudente, SP, em mudas provenientes de material importado por imigrantes

japoneses (AMARAL, 1957; BITENCOURT, 1957). Sendo disseminada

rapidamente para outras regiões do Estado de São Paulo e também para os

outros Estados como Mato Grosso do Sul, Paraná, Santa Catarina, Rio Grande

do Sul, Mato Grosso, Minas Gerais (AMARAL, 1957; BARBOSA et al., 2001;

FEICHTENBERGER et al., 2005; MACIEL et al., 1998) e mais recentemente

Roraima (NASCIMENTO et al., 2003).

2.2. Etiologia e sintomatologia

O agente causal do Cancro Cítrico é a bactéria Xanthomonas

axonopodis pv. citri, pertencente ao grupo das Xanthomonas, apresenta reação

gram-negativa, respiração aeróbica, formato baciliforme e motilidade por um

flagelo polar (monotríquia). A temperatura ótima para o desenvolvimento da

doença está em torno de 28 e 30° C (FEICHTENBERGER et al., 2005).

A bactéria cresce na maioria dos meios usados em laboratório e é

facilmente isolada de tecido cítrico infectado. Colônias da bactéria são visíveis

após 2-3 dias de incubação a 28°C em meio de cultura com agar (ROSSETTI,

1981). Sobrevive por poucos dias em materiais inertes e por até três meses em

solo ou em plantas invasoras, mas podem sobreviver por vários anos em

tecidos do hospedeiro, mesmo quando estes se encontram desidratados

(FEICHTENBERGER et al., 2005). Polissacarídeos extracelulares são

produzidos pelas células bacterianas, ajudando na sua dispersão e

sobrevivência (GOTO, HYODO, 1985).

Por existir outros patovares e variantes, X. axonopodis patogênicas ao

gênero Citrus foram classificados em cinco grupos diferenciados basicamente

pela patogenicidade e sintomatologia (GABRIEL et al., 1989;

FEICHTENBERGER et al., 2005). O Cancro Cítrico, também conhecido por

Cancro Cítrico Asiático ou Cancrose A é o grupo mais importante e severo,

afeta grande número de espécies da família Rutaceae (STALL, SEYMOUR,

1983) e está disseminado em muitas regiões da Ásia, África, Oceania e

América. No Paraná, somente esse tipo da doença já foi relatado (LEITE

JUNIOR, 1990). O Cancro Cítrico B ou Cancrose B, causada pela estirpe B de

X. axonopodis pv. citri, atualmente denominada como X. axonopodis pv.

aurantifolii, afeta um menor número de hospedeiros que a cancrose A. É mais

agressivo em limões verdadeiros (Citrus limon) e lima ácida ‘Galego’ (Citrus

aurantifolia) e sua distribuição está restrita à Argentina, Paraguai e Uruguai. A

Cancrose C ou Cancrose do limoeiro ‘Galego’ causada pela estirpe C de X.

axonopodis pv. citri, denominada atualmente como X. axonopodis pv.

aurantifolii, ocorre principalmente em lima ácida ‘Galego’ e está restrita a

algumas regiões do estado de São Paulo (FEICHTENBERGER et al., 2005).

A Cancrose D, causada pela estirpe D de X. axonopodis pv. citri,

denominada como X. axonopodis pv. aurantifolii não está muito bem

caracterizada e foi relatada somente no México, causando lesões em folhas e

ramos de lima ácida ‘Galego’. Por fim, a mancha bacteriana dos citros, causada

pela estirpe E de X. axonopodis pv. citri, atualmente classificada como X.

axonopodis pv. citrumelo tem patogenicidade limitada e ocorrência restrita à

Flórida, afetando principalmente porta-enxertos de citrumelo ‘Swingle’

(GABRIEL et al., 1989; SCHOUTIES et al., 1987)

A taxonomia relacionada ao gênero Xanthomonas apresenta bastante

controvérsia (SCHAAD et al., 2000). Novas propostas de reclassificação são

sugeridas (SCHAAD et al., 2000; BRUNINGS, GABRIEL, 2003) levantando

polêmicas e indefinições quanto à nomenclatura do agente causal do Cancro

Cítrico. O nome científico Xanthomonas axonopodis pv. citri ainda é aceito

sendo a doença do patógeno referida, na literatura mundial, como Cancro

Cítrico Asiático, enquanto que no Brasil, por ser a principal e a mais severa do

grupo cancro, é denominado como Cancro Cítrico.

O Cancro Cítrico apresenta sintomas característicos em toda parte aérea

da planta, incluindo folhas ramos e frutos, que podem variar em função do tipo e

idade do órgão afetado pela bactéria (LEITE JUNIOR, 1990). Os sintomas

constituem-se de lesões eruptivas, corticosas, levemente salientes, puntiformes,

de cor creme ou parda (FEICHTENBERGER et al., 2005). Nas folhas, a doença

aparece primeiramente como manchas claras que depois ficam com o centro

necrosado. Nos frutos, são de aspecto pardo, salientes; em estágio avançado,

parecem crostas escuras com fissuras, por onde exuda a bactéria (ROSSETTI,

2001). O tamanho das lesões nas folhas depende muito da suscetibilidade do

hospedeiro, podendo atingir até 10 mm de diâmetro em cultivares suscetíveis de

laranja e pomelo (LEITE JUNIOR, 1990; STALL, SEYMOUR, 1983).

2.3. O Cancro Cítrico no Paraná

O Cancro Cítrico foi relatado no Paraná em 1957, no município de

Lupionópolis (AMARAL, 1957), mesmo ano da primeira constatação da doença

no país, sendo rapidamente disseminado para as regiões Norte, Noroeste e

Oeste do Estado. Em 1961, sua presença já havia sido constatada em 12

municípios paranaenses, e apesar dos esforços para conter a doença, em

1980, o número de municípios afetados já havia saltado para 182. Neste

período, a disseminação da bactéria ocorreu em direção às regiões Central e

Sudoeste do Estado, seguindo basicamente as principais direções de

colonização durante as décadas de 50 e 60 (LEITE JUNIOR, 1990; LEITE

JUNIOR, MOHAN, 1990).

Visando conter o rápido avanço da doença, em 1972 foi regulamentada

a Campanha Nacional de Erradicação do Cancro Cítrico (CANECC), que

estabeleceu a adoção de medidas de exclusão e erradicação como medidas

básicas para o controle da doença. Além disso, foi estabelecida a interdição

para cultivo de plantas cítricas durante vários anos em áreas localizadas nas

Regiões Norte, Noroeste, e Oeste do Estado do Paraná devido à ocorrência da

doença (IAPAR, 1987; SILVA, 1990).

Em 1978, foi iniciado um programa de pesquisa no Estado, com o

objetivo de estudar o Cancro Cítrico nas condições paranaenses e, assim,

desenvolver e avaliar medidas apropriadas para a sua prevenção e controle.

Baseado nos resultados obtidos em pesquisas conduzidas no Instituto

Agronômico do Paraná (IAPAR) e também em informações adicionais

provenientes de outros países foi desenvolvido um programa de manejo

integrado para efetivamente prevenir a ocorrência e controlar a doença em

novos plantios de citros (LEITE JUNIOR, 1990; LEITE JUNIOR, MOHAN,

1990).

Até o inicio da década de 80, as medidas regulatórias de quarentena

eram aplicadas ao nível de município, onde a constatação do Cancro Cítrico

em pomares de uma única propriedade implicava na interdição de todas as

outras propriedades do município para o cultivo de citros (LEITE JUNIOR,

1990). No entanto, no final dos anos 80, os critérios adotados pela campanha

de erradicação foram revisados e as medidas regulatórias de quarentena e de

erradicação passaram a ser aplicadas ao nível de propriedade (LEITE JUNIOR,

MOHAN, 1990). Conforme esses autores, essas medidas foram consideradas

para todas as plantas cítricas, doentes ou não. Posteriormente, com o

estabelecimento de modificações dos critérios de erradicação, somente as

plantas doentes e aquelas adjacentes num raio de até um quilômetro passaram

a ser eliminadas. Após a erradicação, a propriedade deveria ficar em

quarentena por no mínimo um ano; período em que ficava proibido o cultivo ou

a propagação de plantas cítricas na área. Foi a partir de então que somente

implantações de pomares com cultivares de citros recomendados para o

Estado passaram a ser permitidas (LEITE JUNIOR, MOHAN, 1990).

Em 1994, através da resolução n°198/94 da SEAB, as únicas variedades

permitidas ao cultivo foram as laranjeiras doces (Citrus sinensis Osbeck): Lima

verde, Sanguínea de Mombuca, Pêra, Folha Murcha, Moro, Valência, Navelina,

Double Cálice, Iapar 73; as tangerineiras (Citrus reticulata): Dancy, Ponkan,

Satsuma, Mexerica, Loose Jaket, Batangas e Tankan; Fortunella sp.;

Calamondim e Limeira ácida (Citrus latifolia) Tahiti (SEAB,1994). Essas

medidas, juntamente com a adoção de práticas culturais adicionais como

quebra-ventos e pulverizações preventivas com produtos cúpricos, visando

proteger brotações novas de infecções, têm propiciado um crescimento

gradativo no cultivo de citros nas regiões Norte e Noroeste do Estado

(KHUARA, 1978; LEITE JUNIOR, MOHAN, 1990).

Em 1990, com pouco mais de 4 mil hectares cultivados, o Estado

apresentou uma produção de aproximadamente 1,7 milhões de caixas de 40,8

kg (FNP CONSULTORIA & COMÉRCIO, 1997). Em 2004, foram colhidas dos

pomares paranaenses, cerca de 14,5 mil hectares cultivados,

aproximadamente 9 milhões de caixas de laranja (FNP CONSULTORIA &

COMÉRCIO, 2005). Paralelamente, o surgimento de indústrias extratoras de

suco também colaborou para a ascendência da cultura no Estado. A superação

das restrições de ordem fitossanitária e a eficiência apresentada pelas medidas

integradas de controle do Cancro Cítrico foram os principais fatores que

alavancaram a citricultura paranaense a partir do início da década de 90

(BEHLAU, 2006).

Em 1994, foi instalada a primeira indústria extratora de suco do Paraná

no município de Paranavaí. Acompanhando a expansão da cultura, em 2001,

mais duas indústrias foram construídas, uma no município de Rolândia e outra

em Paranavaí. Atualmente, essas indústrias possuem em conjunto uma

capacidade instalada para o esmagamento de mais de 10 milhões de caixas de

laranja por ano. Assim, considerando que a produção do Estado está próxima

de atingir nove milhões de caixas produzidas (FNP CONSULTORIA &

COMÉRCIO, 2005), a expansão da cultura deve continuar nos próximos anos.

Embora o Paraná tenha grande potencial para a produção de citros,

problemas fitossanitários são fatores limitantes para a citricultura. Dessa forma,

estudos sobre o patógeno e a epidemiologia da doença são essenciais para a

definição de medidas de controle mais eficientes.

2.4. Avaliação de doenças

A quantificação de doenças é fundamental para estudos epidemiológicos

e para avaliação de estratégias de controle. A quantificação de uma variável que

expresse a intensidade de doença é necessária, tanto para descrever o

progresso da epidemia e sua relação com o clima ou com medidas de controle,

quanto para validação de modelos de previsão ou para aplicação do manejo

integrado. Portanto, erros na quantificação da doença podem ser magnificados

na análise epidemiológica subseqüente, interferindo em maior ou menor grau,

nas conclusões alcançadas (CAMPBELL, MADDEN, 1990).

A fitopatometria é uma das mais importantes áreas da fitopatologia. Sua

importância pode ser comparada até mesmo à etiologia, uma vez que conhecer

o agente causal, mas não quantificar a extensão dos seus danos no hospedeiro,

não faz muito sentido (AMORIM, 1995). Os termos mais comumente utilizados

nas avaliações da intensidade da doença são incidência e severidade. O

primeiro refere-se à porcentagem de plantas doentes ou partes de plantas

doentes em uma amostra ou população. O segundo refere-se à proporção do

volume ou área do tecido com sintomas (NUTTER, SCHULTZ, 1995).

Várias técnicas modernas podem ser usadas para avaliar a severidade da

doença com precisão: imagens de vídeo, fotografia infravermelha, termógrafo

infravermelho, reflectância espectral de copa e imagem de ressonância

magnética nuclear. Tais técnicas requerem equipamentos sofisticados e caros.

Devido a essas inconveniências, a severidade de doenças foliares é avaliada,

em geral, visualmente, gerando assim, estimativas subjetivas da severidade.

Neste caso, escalas diagramáticas se tornaram a principal ferramenta de

avaliação, pois contribuem para reduzir a subjetividade de cada avaliação

(NORONHA, 2002).

A estimativa da severidade consiste em um método direto de avaliação de

doenças, sobretudo doenças foliares, onde a porcentagem da área de tecido

foliar coberta por sintomas retrata melhor a intensidade da doença que a

incidência (AMORIM, 1995). Embora a estimativa da severidade da doença seja

um método subjetivo de avaliação de doença, esta variável é a que melhor se

relaciona ao dano causado pelos patógenos. Dentre as várias estratégias

propostas para facilitar a avaliação da severidade de doenças, diversas escalas

diagramáticas têm sido adotadas como padrões de comparação, representativos

da área foliar lesionada (ANDRADE et al., 2005).

A primeira escala diagramática descrita na literatura foi proposta por

Cobb, em 1892, para avaliação da ferrugem do trigo. Hoje, já existem escalas

para avaliação da severidade de doenças em várias culturas agronômicas, como

feijoeiro (Phaseolus vulgaris L.) (DÍAZ et al., 2001), inhame (Discorea

cayennensis Lam.) (MICHEREFF et al.,2000), cana-de-açúcar (Saccharum

officinarum L.) (AMORIM et al.,1997), tomateiro (Lycopersicum esculentum)

(BOFF et al., 1991), abacaxi (Ananas comosus) (ROHRBACH, SCHIMITT,

1994), alface (Latuca sativa L.) (O’ BRIEN, VAN BRUGGEN, 1992), cereais

(DUVEILLER,1994) entre outras.

Para a cultura dos citros (Citrus spp) várias escalas já foram

desenvolvidas para avaliação da severidade de diversas doenças como da

Clorose Variegada dos Citros (AMORIM et al. ,1993), da Mancha Preta em

folhas (NORONHA, 2002) e frutos cítricos (SPÓSITO et al., 2004), da Leprose

dos Citros (RODRIGUES et al., 2002) e, destacando-se, a escala diagramática

para avaliação da severidade do Cancro Cítrico desenvolvida por Belasque

Junior et al. (2005).

Escalas diagramáticas são representações ilustradas de uma série de

plantas ou parte de plantas com sintomas em diferentes níveis de severidade

(AMORIM, 1995). Sua elaboração deve levar em consideração os seguintes

aspectos: as quantidades mínima e máxima de doença observadas no campo e

representadas na escala, a representação dos sintomas da maneira mais

próxima possível da realidade e os níveis de severidade respeitando as

limitações da acuidade da vista humana, definidas pelas leis de estímulo-

resposta de Weber e de Fechner, também conhecidas como lei de Weber-

Fechner (NUTTER, SCHULTZ, 1995). Além da boa qualidade de uma escala

diagramática, as estimativas de severidade dependem da percepção visual e da

experiência de cada indivíduo na avaliação de doenças (SPÓSITO et al., 2004).

Escalas diagramáticas devem ser de fácil uso, aplicáveis a uma ampla

série de diferentes condições, e devem produzir resultados reprodutíveis, além

de apresentar níveis suficientes que representem todos os estágios de

desenvolvimento de escalas diagramáticas, o sucesso na sua utilização

depende também da experiência e percepção visual de cada indivíduo

(BERGAMIN FILHO, AMORIM, 1996).

Devido à estimativa direta da área lesionada ser subjetiva, variações

quanto à precisão e acurácia, normalmente são comuns, sendo necessário

proceder às análises estatísticas de regressão linear simples para mensurá-la.

Acurácia descreve o quanto a média de uma estimativa é próxima do valor real

da quantidade de doença avaliada. Precisão descreve a repetibilidade ou

variações associadas com uma estimativa, desconsiderando a média do valor.

A acurácia e precisão na avaliação de doenças são requeridas para avaliar

corretamente estratégias de manejo da doença, para quantificar e modelar

progresso da doença no tempo e no espaço, para predizer quantidades futuras

de doenças, elucidar a relação entre injúria e dano (NORONHA, 2002).

2.5. Epidemiologia

Existem poucos estudos em relação ao comportamento epidemiológico

do Cancro Cítrico em condições naturais de epidemia devido às restrições dos

grandes países produtores a pesquisas de campo com a doença em seu

território. Os aspectos temporal e espacial de epidemias de Cancro Cítrico

foram investigados na Argentina, na década passada, em viveiros de mudas

(GOTTWALD et al., 1988). Os resultados conseguidos, apesar de únicos,

guardam pouca relação com o que acontece em plantios comerciais,

especialmente quando a disseminação da bactéria é considerada. Os trabalhos

de Danós et al. (1984), Gottwald et al. (1992), Gottwald e Timmer (1995) e

Pruvost et al. (1999) também não são esclarecedores. Informações precisas

sobre esse aspecto do ciclo da doença são indispensáveis para que uma

estratégia racional de controle da doença possa ser proposta, seja para tornar

a erradicação mais eficiente, seja para tornar o convívio com o patógeno

menos oneroso ao produtor (AMORIM, BERGAMIN FILHO, 2001).

A principal fonte de inóculo de X. axonopodis pv. citri (Xac) são plantas

de citros infectadas pela bactéria, que sobrevive de uma estação para outra em

lesões nos ramos e nas folhas da planta hospedeira. A viabilidade das lesões

dependerá da longevidade das células hospedeiras. Lesões de Cancro em

ramos podem ser fontes de inóculo durante vários anos (LEITE JUNIOR,

1990). Na ausência de citros, a Xac possui um período relativamente curto de

sobrevivência. Em materiais de metal, de plástico, tecido ou madeira, a bactéria

sobrevive no máximo até 72 horas (GRAHAM et al., 2000). No solo, Xac pode

persistir por meses na rizosfera de gramíneas (GOTO et al., 1975) e de 1 a 2

meses em folhas e frutos em decomposição (GRAHAM et al., 1989; LEITE

JUNIOR, 1990).

Segundo Timmer et al. (1991), em condições de alta umidade, as lesões

de Cancro Cítrico exsudam bactérias na superfície. Em lesões novas, na

presença de filme de água, a exsudação é instantânea, liberando de 10

a 10

UFC/mL. Com o tempo, as lesões tornam-se suberizadas e a liberação de Xac

ocorre lentamente.

Células bacterianas são disseminadas principalmente através da água

de chuva para plantas mais próximas. As gotas de água quando se chocam

com lesões de Cancro dispersam o inóculo para ramos e plantas ao redor por

meio de gotículas, as quais podem atingir maiores distâncias na presença de

vento (GOTTWALD et al, 1988; GOTTWALD, TIMMER, 1995).

A doença normalmente adquire proporções severas quando as chuvas

são acompanhadas por ventos com velocidade média superior a 8 m.s

-1

(STALL, SEYMOUR, 1983). A longas distâncias, além da disseminação por

meio de aerossóis, durante a ocorrência simultânea de chuva e vento, a

bactéria também pode ser levada a outras áreas por meio de materiais vegetais

infectados, como frutos, material propagativo e mudas, assim como por meio

de ferramentas, caixas de colheita e veículos (LEITE JUNIOR, 1990).

A infecção da parte aérea da planta cítrica não ocorre uniformemente

durante todo o ano, estando associada com as fases de crescimento das

plantas (STALL, SEYMOUR, 1983). A infecção pelo patógeno ocorre

normalmente em tecidos imaturos, sob condições climáticas favoráveis,

principalmente na primavera e início de verão, durante períodos chuvosos. O

Cancro Cítrico é normalmente mais severo no início do verão, quando a

temperatura e chuvas são comumente ótimas para a infecção e

desenvolvimento da doença (LEITE JUNIOR, 1990). No Brasil, o verão

favorece a disseminação e a severidade do Cancro Cítrico, devido a altas

temperaturas associadas com chuvas intensas e ventos durante o fluxo de

brotações dos pomares. Na ocorrência simultânea de chuva e vento, aerossóis

podem ser formados levando células bacterianas a longas distancias

(PALAZZO et al., 1984).

A bactéria penetra no hospedeiro por aberturas naturais, principalmente

estômatos, e por ferimentos causados por espinhos, grão de areia, pelo

homem ou por insetos. A penetração natural por estômatos normalmente é

mais freqüente na face abaxial das folhas. Isso ocorre porque a concentração

destas aberturas é maior na face abaxial do que na adaxial (GRAHAM et al.,

1992). A concentração do inóculo para causar infecção varia de acordo com a

via de penetração, sendo suficiente às concentrações de 10

a 10

UFC/mL e

UFC/mL para infecções via estômato e ferimento, respectivamente

(ZUBRZYCKI, ZUBRZYCKI, 1987). Porém, duas células de Xac são suficientes

para causar infecção quando inoculadas no interior da câmara sub-estomática

(GOTTWALD, GRAHAM, 1992).

A colonização por Xac é restrita à área infectada. As lesões são

formadas por hipertrofia e hiperplasia de células do hospedeiro, resultando em

calos salientes sobre a superfície foliar. Geralmente halos cloróticos contornam

as lesões. A taxa de expansão de lesões em folhas é aproximadamente de 1

mm por mês até 6 a 8 meses. Em ferimento mecânico (agulha histológica) as

lesões crescem rapidamente até os 30 dias após a inoculação. Dos 30 aos 40

dias, as lesões expandem-se lentamente e a partir dos 40 dias a taxa de

expansão decresce a próximo de zero (GRAHAM et al., 1990).

A infecção natural em folhas e ramos ocorre até seis semanas após o

início do desenvolvimento desses órgãos e os frutos são suscetíveis, de um

modo geral, de seis a oito semanas após o florescimento, podendo ser mais

prolongado na ocorrência de ferimentos. Folhas são mais suscetíveis até

atingirem aproximadamente 85 % do tamanho normal (LEITE JUNIOR, 1990) e

tornam-se mais resistentes quando completam total expansão. A maior

suscetibilidade dos frutos ocorre quando estes apresentam de 2 a 4 cm de

diâmetro e se prolonga, porém de forma menos acentuada, até o seu completo

crescimento (GRAHAM, GOTTWALD, 1991).

A distribuição espacial do Cancro Cítrico, nas condições brasileiras,

desde 1957, era altamente agregada devido ao seu mecanismo de

disseminação por respingos de chuva e ventos (BERGAMIN FILHO et al.,

2001). A partir de 1997, constatou-se dramática mudança no número de focos

e no padrão espacial do Cancro Cítrico em São Paulo. O número de focos da

doença aumentou drasticamente de 25 focos em 1995 para 4180 em 1999

(FUNDECITRUS, 2007). A acentuada agregação de plantas afetadas, típica

para os anos anteriores de 1996, deu lugar a padrões de agregação

intermediários e distribuição ao acaso, como demonstrado pela análise

espacial em diferentes regiões do Estado de São Paulo (BERGAMIN FILHO et

al., 2001).

Essa mudança na distribuição espacial do Cancro Cítrico está

provavelmente relacionada com a introdução no país, em 1996, da lagarta

minadora dos citros (Phyllocnistis citrella). O patossistema citros -

Xanthomonas – Phyllocnistis apresenta características epidemiológicas

bastante diferentes do patossistema que existiu no Brasil de 1957 a 1996

(ZAMBOLIM et al., 2002). Estudos realizados por Croce-Filho (2005) quanto à

epidemiologia do Cancro Cítrico em condições de campo no Noroeste

paranaense, confirmam o proposto por Zambolim et al. (2002), no qual o

padrão espacial do Cancro Cítrico dentro da área do experimento apresentou

distribuição ao acaso em função dos ferimentos causados pela larva minadora

dos citros e onde os aerossóis, atuando como mecanismos de disseminação

mais eficientes, distribuíram aleatoriamente na área o patógeno oriundo das

áreas perifocais ao experimento.

Durante a alimentação as larvas rompem a cutícula e a epiderme e

expõem o mesófilo foliar, tornando-o mais predisposto a infecção pela bactéria

causadora do Cancro Cítrico (GOTTWALD et al.; 1997; SCHUBERT et al.,

2001). Desta forma, apesar de não ser vetor da bactéria, este inseto facilita a

infecção e o desenvolvimento do patógeno nas plantas.

2.6. Resistência Varietal

No estudo das doenças de plantas, um dos princípios de entendimento

do fenômeno é o de que a instalação e a multiplicação de um patógeno em um

hospedeiro qualquer, ou seja, a ocorrência da moléstia é limitada a uma série

de fatores que devem ser considerados conjuntamente para que ocorra

infecção. É preciso que haja a interação entre a suscetibilidade da planta, a

capacidade do microrganismo em infectá-la e condições ambientais que

favoreçam a colonização do tecido vegetal por esse patógeno (AMARAL,

2004). A resistência de plantas a patógenos é considerada uma regra dentro do

complexo das interações patógeno-hospedeiro, enquanto que a suscetibilidade

é uma exceção (BALARDIN, 2008).

Resistência pode ser conceituada como a capacidade da planta em

alterar o curso normal da patogênese, ou seja, sua capacidade em evitar ou

atrasar o estabelecimento do patógeno nos seus tecidos. É um processo

extremamente dinâmico composto de diversos sistemas capazes de atuar

integrada ou isoladamente. O nível de resistência é uma conseqüência da

velocidade e eficácia da ativação destes sistemas. Neste sentido destaca-se a

variabilidade genética das plantas como um reservatório de genes envolvidos

na resistência específica ou na resistência geral. Mudanças ontogênicas na

resistência observadas entre diferentes tecidos ou entre partes de plantas

geneticamente idênticas, porém com idades diferentes, constituem-se em fonte

adicional de resistência das plantas. Os patógenos apresentam-se igualmente

diversos quanto a suas características morfo-genético-fisiológicas. Raças,

espécies, isolados ou mutantes, com níveis variáveis de virulência,

demonstram claramente a habilidade que os patógenos possuem em adaptar-

se aos diversos componentes da resistência expressas pelas plantas

(BALARDIN, 2008).

No caso do Cancro Cítrico, para que a bactéria possa expressar a sua

capacidade e, com isso, causar danos à planta, precisa utilizar várias

ferramentas durante o seu ciclo de vida. Além disso, até onde se conhece, ela

coloniza unicamente os citros, ou seja, a sua capacidade de causar danos a

uma planta é limitada a um hospedeiro apenas. E, finalmente, para que a sua

capacidade possa se expressar em citros é preciso que haja uma série de

circunstâncias ambientais propícias e que irão favorecer ou limitar a

manifestação de sua virulência (AMARAL, 2004).

A resistência ao Cancro Cítrico é mencionada como sendo poligênica,

sendo a reação das plantas um mecanismo complexo e condicionado por

diferentes fatores. Em condições de campo, estudos mostraram que a

resistência depende da freqüência e intensidade das brotações, caracteres

fisiológicos e, portanto relacionados com o caráter epidemiológico da doença, o

que sugere que o mecanismo de resistência possa ser do tipo horizontal

(ZUBRZYCKI, ZURBRZYCHI, 1986). Apesar do controle genético da

resistência à doença não ser bem conhecida, o grande número de caracteres

envolvidos na resistência pode indicar a ação de vários genes, mas o possível

efeito de um simples gene não pode ser totalmente descartado (DUAN et al.,

1999)

A expressão de um gene simples e específico de hospedeiros

suscetíveis estimula a divisão, aumento no tamanho e morte da célula (DUAN

et al., 1999). Dentre os genes encontrados no genoma da bactéria X.

axonopodis pv. citri, a partir do seqüenciamento, e que são potencialmente

envolvidos com virulência, destacam-se os que podem codificar para proteínas

de avirulência, hipersensibilidade e patogenicidade, produção de toxinas e para

desintoxicação, degradação de parede celular, produção de

exopolissacarídeos, para adaptação em condições ambientais atípicas

(AMARAL, 2004). Entre as proteínas de avirulência mais descritas está a PthA,

uma molécula específica para atuação em citros que induz a divisão celular e

está diretamente relacionada à ocorrência de doença, pois a sua “inativação”

leva à ausência de lesão (SWARUP et al., 1991, 1992). O PthA é também

responsável pela necrose da epiderme abaxial adjacente à área de infecção

(DUAN et al., 1999).

Diversos cultivares de citros de importância econômica têm sido citados

por apresentar níveis adequados de resistência ao Cancro Cítrico

FEICHTENBERGER et. al, 1997; LEITE JUNIOR, 1990). Além disso, ampla

variação nos níveis de resistência ao Cancro Cítrico entre espécies, híbridos e

cultivares de Citrus spp. tem sido relatada em diversos trabalhos (KOIZUME,

KUHARA, 1982; LEITE, MOHAN, 1984; GOTO, 1992; GOTTWALD et al., 1993;

GRAHAM, 2001).

Variações nas observações dos níveis de resistência podem ser

atribuídos a vários fatores, entre eles clone da cultivar, idade da planta, época

de avaliação, porta-enxerto, clima e nutrição, bem como critérios adotados para

avaliação (LEITE JUNIOR, 1990). A variabilidade na suscetibilidade é

influenciada por diferenças na facilidade de penetração através dos estômatos

(GRAHAM et al., 1992). Entretanto mesmo sendo quebradas barreiras

externas, a reação de hospedeiros dentro dos citros e grupos afins ao Cancro

Cítrico é determinado pelo mesófilo foliar (GOTTWALD et al., 1993). Diferenças

quanto a mudanças ultraestruturais nas membranas e espaços extracelulares

são também mencionados como responsáveis por variações na resistência

entre variedades (ZUBRZYCKI, ZUBRZYCKI, 1986).

Stall et al. (1982) mencionam que a diminuição da suscetibilidade em

folha de citros ao longo de sua maturação está associada com a resistência do

mesofilo foliar à multiplicação de Xac. Entretanto cultivares de citros resistentes

ao cancro, como Mandarin, comportam-se como suscetíveis quando inoculadas

via ferimento. Aparentemente, a suscetibilidade do mesofilo foliar é semelhante

entre cultivares resistentes e suscetíveis quando a infecção ocorre via

ferimento, como demonstrado em diversos trabalhos (LEE, 1922; PELTIER,

1924; LEITE JUNIOR, MOHAN, 1984; AGOSTINI et al., 1985; MATSUMOTO,

OKUDAI, 1988; GOTTWALD et al., 1993). Segundo McLean e Lee (1921), o

ferimento permite o contato direto da bactéria com o mesofilo da folha,

quebrando qualquer eventual resistência estrutural da planta à infecção

bacteriana.

O aumento na intensidade de Cancro Cítrico está provavelmente

relacionado com o aumento do número de lesões em ramos (KOIZUMI,

KUHARA, 1982; LEITE JUNIOR, MOHAN, 1984), que favorece o crescimento e

a perpetuação do inóculo na planta e também no pomar, servindo como fonte

de disseminação do patógeno para outras plantas (LEITE JUNIOR, 1990).

Segundo Gottwald et.al, (1990), espécies de citros suscetíveis ao Cancro

Cítrico normalmente apresentam uma quantidade de lesões inferior às

espécies resistentes. Entretanto, materiais suscetíveis podem conter um

número de lesões semelhante ou menor que a resistente, porém a população

bacteriana por lesão é significativamente superior.

A diferença de suscetibilidade entre variedades pode ser também

explicada pela coincidência ou não de brotações em alta intensidade em

períodos críticos de infecção (ZUBRZYCKI, ZUBRZYCKI, 1986). Esses mesmos

autores relatam também que a diferença de suscetibilidade entre variedades não

é influenciada pela aplicação de produtos cúpricos. Assim, apesar do produto

diminuir a infecção em todos os casos, o efeito é menor em variedades mais

suscetíveis.

A severidade da infecção pela bactéria em cada espécie e variedade varia

também de acordo com as condições de clima predominantes. Em regiões

asiáticas a ordem decrescente de suscetibilidade é para limas ácidas, algumas

variedades de limões, pomelos e laranjas doces. Tangerinas e limões são

resistentes e kumquats comerciais imunes, podendo servir como fonte de genes

em trabalho de melhoramento. Entretanto, em algumas regiões variações entre

tangerinas foram observadas. Laranja ‘Washington Navel’ (‘Bahía’) é

severamente afetada, enquanto ‘Valência’ muito resistente (REEDY; MURTI,

1990).

Segundo Agostini et al. (1985); Leite Junior e Santos (1988), a

suscetibilidade das variedades pode variar também conforme o porta enxerto.

Leite Junior e Santos (1988) constataram que em limoeiro ‘Cravo’ a incidência

de sintomas da doença em folhas e frutos foi acima de 60%, enquanto para o

limoeiro ‘Rugoso da África’, a incidência foi de 97%. Os sintomas em folhas de

‘Trifoliata’, foram menores que 9%, enquanto em ‘Volkameriano’ e laranja

‘Azeda’ foram menores que 34%.

Existem métodos de avaliação de resistência varietal através de infecções

artificiais e outros que avaliam a infecção natural em campo. Em muitos casos o

grau de resistência em uma variedade, avaliado pelos dois sistemas, não é

coincidente. Esta diferença pode ser devido às diferenças na metodologia de

avaliação ou a variações ambientais que influenciam na relação patógeno-

hospedeiro, e também pela existência de dois tipos de resistência que atuariam

independentemente, uma ligada às células do mesofilo e outra ao ambiente mais

externo, mais relacionada com a infecção natural (ZUBRZYCKI, ZUBRZYCKI,

1988). Conforme estes autores, a avaliação de resistência em campo pode ser

realizada com plantas jovens no campo, mas uma das maiores dificuldades

deste tipo de trabalho é conhecer a quantidade, densidade e potencial de

inóculo do ambiente, que pode ser muito variável no tempo e no espaço.

Zubrzycki e Zubrzycki (1988) avaliaram a resistência em campo em

plantas de um ano de idade, utilizando-se quatro mudas de cada variedade,

todas plantadas ao redor de plantas adultas já estabelecidas em campo que

serviram como fonte de inóculo. As plantas foram podadas e a infecção foi

realizada através da análise de 10 folhas coletadas ao acaso, sendo

determinado o número de pústulas por cm

. Através dos resultados obtidos, os

autores constataram que a quantidade de inóculo necessária para produzir uma

pústula em folhas de variedades resistentes é muito maior do que para

variedades suscetíveis.

De acordo com avaliações realizadas no Japão, a classificação da

resistência de cultivares ao Cancro Cítrico em relação a intensidade e tipo de

lesões em campo indicam alta susceptibilidade, com número abundante de

lesões de grande tamanho em pomelo ‘Anseikan’, tangelos ‘Mineola’, ‘Clement

Yalaha’, ‘Orlando’, tangerinas ‘Kara’ e ‘Clementina’. Em plantas consideradas

moderadamente resistentes o número de lesões é menor e estas são também

de menor tamanho. Plantas consideradas resistentes, como algumas toranjas,

tangerina ‘Ponkan’, satsuma ‘Early’ e tangor ‘Kiyomi’ apresentam número muito

pequeno de lesões de médio e pequeno tamanho, enquanto que materiais

considerados altamente resistente não apresentam lesões, como foi observado

para citrangequat, ‘Calamondim’, e ‘Fortunela’, entre outros (MIYAKAWA;

YAMAGUCHI, 1981).

Desde 1979, estudos têm sido conduzidos para avaliar a resistência de

cultivares comercial de citros nas condições do Estado do Paraná e com estirpes

locais da bactéria (LEITE JUNIOR, MOHAN, 1984; MOHAN et al., 1985). Grande

variabilidade para resistência ao Cancro Cítrico foi observada entre os materiais

avaliados, especialmente entre cultivares de laranjas doces, tangerinas e limas

ácidas. Quando as laranjas doces (Citrus sinensis) são consideradas como um

grupo, os resultados mostram reação variando de altamente suscetível a

resistente, não permitindo uma generalização do comportamento do grupo como

um todo. O mesmo pode ser observado para as tangerinas, cujo comportamento

ao cancro variou de altamente suscetível à resistente (LEITE JUNIOR, 1988,

1989, LEITE JUNIOR, MOHAN, 1984, 1990). Segundo Leite Junior (1990), de

um modo geral, as laranjas ‘Folha Murcha’ e ‘Moro’ podem ser consideradas

resistentes e ‘Navelina’, ‘Pêra premunizada’ e ‘Valência’ como moderadamente

resistentes. Por outro lado, lima ácida ‘Galego’ e limão ‘Siciliano’ apresentam

alta suscetibilidade à doença.

3. MATERIAL E MÉTODOS

3.1. Instalação e condução do experimento

O experimento foi instalado em um pomar de 4 anos de idade

implantado na Fazenda Experimental de Iguatemi (FEI) localizada no distrito de

Iguatemi, Município de Maringá, na região Noroeste do Estado do Paraná

(Latitude: 23º 25’ S; Longitude: 52º 10’ W; Altitude: 554,9 m). Em uma área

experimental ocupada por aproximadamente 5,0 hectares com 2.130 plantas.

Segundo a classificação de Köppen, trata-se de uma região de clima tropical

modificado pela altitude, com verão quente e temperatura do mês mais quente

acima de 22°C. A temperatura média anual é de 16,7°C; a média das mínimas

de 10°C e a média das máximas de 33°C e umidade relativa do ar 66%. A

precipitação média anual é de 1.500mm. As geadas são pouco freqüentes,

concentradas no período de inverno. Os ventos são de Nordeste. O relevo é

bastante suave (CROCE-FILHO, 2005).

O delineamento experimental foi de blocos casualisados, com duas

repetições, sendo 4 plantas de cada variedade por parcela, com espaçamento

de 3,5 x 5,0cm. Como fonte de inóculo para as contaminações naturais das

demais plantas do experimento, a cada 4 plantas foi intercalada uma da

variedade Bahia inoculadas com suspensão bacteriana de X. Axonopodis pv.

citri.. na concentração de 10

UFC/ml.

Além do preparo e correção da acidez e fertilidade do solo, as práticas

de manejo adotadas foram as mesmas utilizadas na condução das plantas em

pomares comerciais de citros, como controle de plantas invasoras e pragas,

adubações, retirada de brotações e podas. Exceção para tratamentos

fitossanitários com produtos à base de cobre, que não foram realizados para

não mascarar os resultados.

3.2. Origem do material

As mudas foram produzidas em viveiro telado do setor de matrizes do

Centro APTA Citros Sylvio Moreira (CACSM-IAC), enxertadas em limoeiro

‘cravo’, cultivar ‘Limeira’ (Citrus limonia Osbeck).

Foram 2.130 mudas, sendo 1.704 de laranjeiras, tangerineiras e seus

híbridos e mais 426 mudas de laranjeira ‘Bahia’.

A enxertia de variedades de laranjeira doce (Citrus sinensis L. Osbeck),

tangerineiras (C. reticulata Blanco) e híbridos obtidos do Banco Ativo de

Germoplasma de Citros (Bag – Citros) do CACSM foi realizada com borbulhas

de ramos com resultado negativo para o agente causal da clorose variegada dos

citros (CVC), a bactéria Xylella fastidiosa.

3.3. Avaliação e análise dos dados

Dentre as 213 variedades de citros (laranjeiras, tangerineiras e seus

híbridos) foram avaliadas 80 variedades (Quadro 1). Dentre os genótipos

avaliados, considerou-se a variedade Bahia como padrão de suscetibilidade

totalizando 81 tratamentos.

Para a avaliação de severidade do Cancro Cítrico foram considerados

quatro ramos por planta, amostrados em todos os quadrantes da porção

mediana da mesma. Notas de severidade foram atribuídas a dez folhas dos

ramos amostrados, utilizando quatro escalas diagramáticas com oito níveis que

levam em consideração a área percentual da folha afetada pelas lesões de

Cancro associadas ou não com galerias de larva minadora dos citros

(BELASQUE JUNIOR et al., 2005) (Figura 1). O processo de avaliação foi

realizado mensalmente no período de janeiro a junho de 2007.

Figura 1. Escalas diagramáticas para avaliação da severidade (%) de Cancro

Cítrico(Xanthomonas axonopodis pv. citri) em folhas para lesões pequenas (A), médias (B),

grandes (C) e associadas com o ataque da larva minadora dos citros (D).

As análises estatísticas foram feitas utilizando o programa Sisvar -

Sistema de Análise de Variância (FERREIRA, 2000). As médias foram

comparadas pelo teste de agrupamento de Scott-Knott adotando-se o nível de

5% de probabilidade. A área abaixo da curva de progresso da doença (AACPD)

foi calculada utilizando-se o programa AACPD (BELAN et al., 2005). Os dados

climáticos de temperatura máxima e mínima do ar (

C), umidade relativa do ar

(%) e precipitação pluviométrica (mm), foram fornecidos pela estação

meteorológica da Fazenda Experimental de Iguatemi (FEI), local do

experimento

Quadro 1. Relação das variedades de citros avaliadas

Ident. Var. no

campo

N° da variedade Variedade

1 EMPRESS

2 VALÊNCIA MUTAÇÃO

6 3 BAIA NAVELINA

9 4 TAROCCO#27

11 5 SALUSTIANA SPA 11

12 6 DEKOPON

14 7 SZWUINKON X SZZINKON – TIZON

16 8 BAIA LENG

20 9 PÊRA OVO

21 10 LIMA (TERMOTERAPIA ESTAB. 12451)

22 11 PÊRA IAC

23 12 KHAILILY WHITE

24 13 WASHINGTON NAVEL

27 14 SOLID SCARLET

29 15 ORANGE BARILE SRA 559

33 16 NATAL ÁFRICA DO SUL CV

34 17 PÊRA OLÍMPIA

35 18 EARLY OBLONG

40 19 ORTANIQUE

43 20 ORANGE HALL SRA 394

44 21 GARDNER CV

45 22 SANGUINO

46 23 VALÊNCIA F. MURCHA

47 24 PÊRA BIANCHI

48 25 OURO

53 26 VALÊNCIA PRECOCE

54 27 D.JOÃO PROC. 49/97

55 28 SETUBAL

56 29 MAPO

62 30 TAROCCO#23

63 31 HARRIS

64 32 ORANGE PETIT PIERRE 1/2 SANGUINE SRA 570

66 33 VALÊNCIA CAMPBELL

67 34 BLOOD RED

68 35 BIDWELLS BAR

Continuação Quadro1.

Ident. Var. no

campo

N° da variedade Variedade

69 36 DO CÉU

71 37 PÊRA COMPRIDA

74 38 ORANGE NAVELINA SRA 332

79 39 ORANGE BARLERIN SRA 568

88 40 VALÊNCIA PRECOCE

91 41 C. SINENSIS 1342

92 42 PÊRA EEL

93 43 BAHIA CABULA

94 44 PÊRA OVALE

95 45 OLIVELANDS

96 46 TELDE

97 47 NAVELINA

99 48 LEE

101 49 BEMA IVIA 43

105 50 TANGERINA PONKAN

108 51 DE WILDT

113 52 SHAMOUTI

116 53 PAULISTA

117 54 PÊRA OVALE SIRACUSA

118 55 NATAL MURCHA 2

127 56 BAHIA CARA CARA

130 57 BERNA IVIA - 43 - I

132 58 ROSEHAUGH NARTJEE

139 59 CLEMENTINA OROGRAND

150 60 PÊRA PERÃO

151 61 LIMA VERDE (ESTAB. 12456)

152 62 VALÊNCIA TAQUARI

153 63 BERNA

154 64 STRAND

155 65 VANILLA

157 66 NOVA

158 67 BERNA FERET IVIA 336

159 68 TAROCCO#12

162 69 TANGERINA SATSUMA MIYAKAWAWASE

164 70 PÊRA DIBBERN

167 71 DIVA

172 72 PÊRA PIRANGI

180 73 SATSUMA OKITSU SPA 29

187 74 KYOMI

Continuação Quadro 1.

Ident. Var. no

campo

N° da variedade Variedade

194 76 HIB. CAL. X KANG

196 77 PÊRA MEL

198 78 VALÊNCIA LATE

204 79 CRISTALINA

207 80 ÁFRICA DO SUL

208 81 BAHIA

4. RESULTADOS E DISCUSSÃO

4.1. Avaliação das variedades quanto à resistência ao cancro

cítrico.

A avaliação da resistência a doenças pode ser feita de vários modos.

Pode-se medir a incidência da doença, a severidade ou área abaixo da curva

de progresso da doença (AACPD) (PARLEVLIET, 1979). Vale salientar que a

utilização da AACPD tem sido recomendada por vários autores (BAILEY et al.,

1987; LEONARD, FRY, 1986) uma vez que, além de usar todos os dados

disponíveis das diferentes avaliações, a AACPD não é afetada por

transformações que podem influenciar a taxa de desenvolvimento da doença.

Foram constatadas diferenças significativas (P=0,05) entre os

tratamentos quando considerados as variáveis analisadas, tais como

Severidade e AACPD, sendo que o número de agrupamentos de similaridade

foi diferente conforme a variável (Tabela 1).

Tabela 1. Reação de variedades de citros ao cancro cítrico em relação à severidade

da doença e área abaixo da curva do progresso da severidade da doença (AACPSD).

Tratamento Variedade Severidade AACPD

50 Ponkan 0.25 a 49,80 a

58 Rosehaugh Nartjee 0.60 a 90,50 a

31 Harris 0.70 a 109,20 a

51 De Wildt 0.70 a 127,08 a

6 Dekopon 0.74 a 112,63 a

48 Lee 0.74 a 148,19 a

80 África do Sul 0.80 a 122,00 a

30 Tarocco#23 0.83 a 127,95 a

14 Solid Scarlet 0.86 a 136,03 a

73 Satsuma Oktsu SPA 29 0.91 a 144,21 a

79 Cristalina 0.94 a 144,34 a

52 Shamouti 0.99 a 151,85 a

17 Pêra Olímpia 1.06 a 162,23 a

68 Tarocco#12 1.10 a 185,86 a

16 Natal África do Sul cv 1.13 a 164,48 a

Continuação Tabela 1.

Tratamento Variedade Severidade AACPD

69 Satsuma Miyakawawase 1.15 a 175,95 a

9 Pêra Ovo 1.17 a 180,50 a

65 Vanilla 1.18 a 149,48 a

1 Empress 1.20 a 184,40 a

42 Pêra EEL 1.20 a 233,33 a

71 Diva 1.26 a 204,38 a

33 Valência Campbell 1.26 a 197,38 a

66 Nova 1.27 a 196,08 a

15 Orange Barile SRA 559 1.31 a 205,16 a

25 Ouro 1.31 a 208,75 a

36 Do Céu 1.33 a 185,55 a

11 Pêra IAC 1.36 a 212,29 a

44 Pêra Ovale 1.36 a 236,56 a

75 Moro 1.37 a 220,05 a

61 Lima Verde (Estab. 12456) 1.38 a 191,28 a

47 Navelina 1.38 a 197,94 a

53 Paulista 1.39 a 231,41 a

2 Bahia Navelina 1.40 a 219,42 a

45 Olivelands 1.43 a 376,03 a

12 Khilily Whaite 1.47 a 237,65 a

7 Szwuinkon x Szzinkon – Tizon 1.47 a 234,03 a

23 Valência Folha Murcha 1.48 a 236,00 a

Pêra Pirangi

1.50 a 249,91 a

Bahia Cara Cara

1.50 a 230,73 a

Ortanique

1.50 a 241,76 a

Orange P. Pierre ½ Sanguine

SRA 570

1.57 a 245,97 a

Valência Taquari

1.58 a 264,00 a

Pêra Dibbern

1.60 a 250,84 a

Sanguino

1.61 a 127,08 a

Pêra Comprida

1.61 a 320,41 a

Pêra Ovale Siracusa

1.62 a 148,19 a

Blood Red

1.62 a 260,67 a

Bidwells

1.65 a 247,71 a

Pêra Mel

1.66 a 257,21 a

Salustiana SPA 11

1.66 a 247,71 a

Pêra Bianchi

1.69 a 273,88 a

Natal Murcha 2

1.70 a 277,92 a

Bema Ivia 43

1.70 a 251,75 a

Orange Barlerin SRA 568

1.71 a 251,75 a

Mapo

1.72 a 263,95 a

Lima (Termot. Estab. 12451)

1.81 a 301,94 a

Valência Precoce

1.81 a 277,70 a

Berna Feret Ivia 336

1.83 a 278,49 a

Early Oblong

1.84 a 314,79 b

Gardner cv

1.87 a 314,79 b

Continuação Tabela 1.

Tratamento Variedade Severidade AACPD

Tarocco#27

1.87 a 292,89 b

Berna

1.91 a 305,79 b

Bahia Leng

1.92 a 305,24 b

Bahia Navelina

1.97 a 311,29 b

Bema Ivia- 43-I

1.97 a 303,99 b

Pêra Perão

2.05 b 333,50 b

Valência Late

2.13 b 331,09 b

Citrus sinensis 1342

2.17 b 312,51 b

Kyomi

2.26 b 376,03 b

Telde

2.33 b 329,55 b

Bahia Cabula

2.36 b 358,74 b

Hib. Cal. X Kang

2.44 b 401,50 b

Setúbal

2.46 b 410,45 b

D. João Proc. 49/97

2.50 b 401,75 b

Strand

2.68 b 429,31 b

Orange Hall SRA 394

2.68 b 419,15 b

Washington Navel

2.70 b 421,06 b

Clementina Orogrand

2.76 b 407,05 b

Valência Precoce

2.92 b 461,63 b

Orange Navelina SRA 332

2.95 b 454,90 b

Bahia

4.88 c 742,65 c

CV % 41.79 32.32

*Médias seguidas da mesma na coluna não diferem significativamente (P=0,05) entre si pelo

teste de Scott-Knott.

**Média de 6 avaliações

A severidade do cancro cítrico variou de 0,25% a 4,88% e as variedades

foram distribuídas em três grupos de similaridade (Tabela 1). O grupo A, com

severidade variando de 0,25% a 1,57%, incluiu as variedades Ponkan, De

Wildt, Shamouti, Dekopon, Roshaugh Nartjee, Satsuma Okitsu SPA 29,

Cristalina, África do Sul, Solid Scarlet, Tarocco #23, Harris, Lee, Empress,

Paulista, Pêra Ovale Siracusa, Baia Cara Cara, Szwuinko x Szzinkon – Tizon,

Lima Verde (Estab. 12456), Valência Taquari, Vanilla, Nova, Tarocco#12,

Satsuma, Miyakawawase, Pêra Dibbern, Diva, Pêra Pirangi, Pêra Ovo, Pêra

IAC, Khailily White, Orange Barile SRA 559, Valência Mutação, Natal África do

Sul cv, Pêra Olímpia, Ortanique, Sanguino, Valência F. murcha, Ouro, Do Céu,

Pêra EEL, Navelina, Salustiana, SPA 11, Natal Murcha 2, Berna, Berna Feret

Ivia 336, Bahia Leng, Kyomi, Hib. Cal. X Kang, Pêra Mel, Early Oblong, Pêra

Bianchi, Mapo, Orange Petit Pierre ½, Sanguine SRA 570, Valência Campbel,

Blood Red, Bidwells Bar, Orange Barlerin SR 568, Bahia Navelina, Tarocco#27,

Lima (Termoterapia Estab. 12451), Bahia Leng, Gardner cv, Moro 30, Pêra

Comprida, Bema Ivia 43. As variedades dos grupos B apresentaram

severidades variando de 2,05% a 2,95% compreendendo as variedades,

Washington Navel, Orange Hall SRA 394, Valência Precoce, D. João Proc.

49/97, Setúbal, Orange Navelina SRA 332, C. cinensis 1342, Bahia Cabula,

Olivelands, Teld, Pêra Perão, Clementina Orogrand, Strand, Valencia Late. O

grupo C incluiu a variedade Bahia que apresentou maior severidade da doença.

Os valores da área abaixo da curva do progresso da doença (AACPD)

variaram de 49,80 a 742,65, indicando diferenças de susceptibilidade entre as

variedades (Figura 1). Os menores valores foram apresentados pelas

variedades Ponkan e Roshaugh Nartjee, que formaram o grupo de similaridade

A, enquanto a variedade Bahia apresentou o valor mais elevado, constituindo

isoladamente o grupo C (Tabela 1). Esses dados confirmam a suscetibilidade

dessa variedade à doença demonstrada por Leite Junior (1989,1990).

Fig. 1- Área Abaixo da Curva de Progresso da Doença para o Cancro Cítrico (AACPD), em folhas de variedades de Citrus sp.

Observou-se acentuada variação do nível de resistência dos genótipos

de citros à X. axonopodis pv. citri. Tal variação já foi relatada por outros autores

em ensaios com o mesmo objetivo (LEITE, MOHAN, 1984; MOHAN et al.,

1985). Grande variabilidade para resistência ao Cancro Cítrico foi observada

entre os materiais avaliados, especialmente entre cultivares de laranjas doces,

tangerinas e limas ácidas cujo comportamento ao Cancro variou de altamente

suscetível à resistente (LEITE JUNIOR, 1989).

Os maiores níveis de resistência foram observados nas variedades

Ponkan, Roshaugh Nartjee, Harris, De Wildt, Dekopon, Bahia Leng, Tarocco

#23, Lee, Solid Scarlet, Cristalina, Satsuma Okitsu SPA 29 e Shamouti, que

apresentaram valores de AACPD variando de 49,80 a 151,85 e 0,25% a 0,99%

de severidade. Dentre essas variedades as que apresentaram os menores

valores foram as do grupo das tangerinas, o que confirma dados obtidos por

outros autores de que as tangerinas apresentam maior grau de resistência ao

Cancro Cítrico (NAMEKATA et al., 1992; BUSQUET et al., 1984; LEITE

JUNIOR, 1989,1990).

Com base na classificação do germoplasma de citros em relação à

resistência ao Cancro Cítrico por Leite Junior (1989), foi estabelecida uma

escala para classificação dos genótipos estudados onde as variedades foram

classificadas em 5 níveis de resistência (Quadro 2); as que apresentaram

severidade entre 0-1% foram classificadas como resistentes, de 1,1% a 1,5%

como moderadamente resistentes, de 1,51% a 2,0% moderadamente

suscetíveis, de 2,1% a 3,0% foram classificadas como suscetíveis e por fim

acima de 3,1% foram classificadas como muito suscetível.

Quadro 2. Classificação das variedades de citros em relação à resistência ao cancro

cítrico

Níveis de resistência Variedades

Resistentes

Tangerina ponkan, De Wildt, Shamouti, Dekopon, Roshaugh

Nartjee, Satsuma Okitsu SPA 29, Cristalina, África do Sul,

Solid Scarlet, Tarocco #23, Harris e Lee

Moderadamente resistente

Empress, Paulista, Pêra Ovale Siracusa, Baia Cara Cara,

Szwuinko x Szzinkon – Tizon, Lima Verde (Estab. 12456),

Valência Taquari, Vanilla, Nova, Tarocco#12, Satsuma,

Miyakawawase, Pêra Dibbern, Diva, Pêra Pirangi, Moro 30,

Pêra Ovo, Lima (Termot. Estab. 12451), Pêra IAC, Khailily

White, Orange Barile SRA 559, Valência Mutação, Natal África

do Sul cv, Pêra Olímpia, Ortanique, Sanguino, Valência F.

murcha, Ouro, Do Céu, Pêra EEL e Navelina

Moderadamente suscetível

Salustiana SPA 11, Natal Murcha 2, Bema Ivia 43, Pêra Perão,

Berna, Berna Feret Ivia 336, Bhaia Leng, Kyomi, Hib. Cal. X Kang,

Pêra Mel, Early Oblong, Gardner cv, Pêra Bianchi, Mapo, Orange

Petit Pierre ½, Sanguine SRA 570, Valência Campbel, Blood Red,

Bidwells Bar, Orange Barlerin SR 568, Valência precoce, C. cinensis

1342 e Tarocco#27

Suscetível

Clementina Orogrand, Strand, Valencia Late, Washington Navel,

Orange Hall SRA 394, Valência Precoce, D. João Proc. 49/97,

Setúbal, Orange Navelina SRA 332 , Bahia Cabula, Olivelands e

Teld.

Muito suscetível Bahia

Vale ressaltar que a variedade Lee, apresentou baixos níveis de

severidade e AACPD indicando grau de tolerância ao cancro cítrico. Esses

dados confrontam com dados obtidos por outros autores (MOHAN, et al., 1985;

LEITE JUNIOR, 1989,1990) que inclui essa variedade dentro do grupo das

variedades suscetíveis. Isso pode ser explicado devido à variabilidade do

patógeno em relação ao hospedeiro. Em estudos conduzidos por Mohan et al.

(1985), foi constatado discordância no comportamento da Tangerina

Clementina, onde o clone empregado no estudo mostrou-se resistente,

enquanto o clone da mesma cultivar avaliada por Leite e Mohan (1984)

comportou-se como suscetível. O autor relata que esta discordância pode ser

explicada pelo fato de que a cultivar Clementina foi introduzida no Brasil, na

forma de sementes e os clones precedentes desses materiais como a

tangerina Clementina não apresentam sementes com embriões nucelares,

acredita-se que exista grande variabilidade nos clones desta cultivar.

4.2. Avaliação do comportamento das variedades em diferentes

épocas de avaliação.

Os resultados de avaliação dos dados de severidade em função da época

mostraram que o modelo que melhor se ajustou foi o modelo Quadrático (Figura

2). Observa-se que a severidade da doença aumentou durante os meses de

janeiro a abril, correspondente aos períodos em que a temperatura média

alcançou na maior parte dos dias 25° a 30°C com a presença concomitante de

chuvas e umidade relativa do ar acima de 70% (Figura 2). Esse resultado

confirma o relatado por Bebendo (1995) que considera elevado teor de umidade

e temperaturas entre 25°C e 35°C, condições favoráveis para o desenvolvimento

da doença. Segundo Palazzo et al. (1987), temperaturas médias iguais ou

superiores a 25ºC, acompanhadas de precipitações regulares e presença

constante de ventos, favorecem a disseminação do patógeno, aumentando

gradativamente os níveis de infecção.

Nos meses de maio e junho, houve um decréscimo nos níveis de

infecção, pois as temperaturas médias alcançaram valores abaixo de 20°C e

precipitação entre 54,4mm e 7,2mm, respectivamente, mesmo com umidade

relativa do ar acima de 70%. Resultados semelhantes foram encontrados em

estudo feito por Palazzo et al. (1984). Estes autores relatam que nos meses

onde as temperaturas médias permaneceram abaixo de 20°C, o percentual de

folhas afetadas pelo Cancro Cítrico continuou baixo mesmo com a presença de

chuvas e umidade relativa do ar acima de 70%.

O percentual máximo de severidade foi alcançado entre os meses de

março e abril, reflexo das chuvas e elevação da temperatura. Fálico de Alcaraz

(1979) observou que quando a precipitação atinge valores acima de 100 mm e

as temperaturas elevam-se acima de 20°C, verifca-se um aumento nos índices

de infecção em frutos, que, na região de Corrientes, Argentina, atinge um valor

máximo no mês de março.

Modelo ajustado, para a fonte de variação época.

Fig. 2- Curva de progresso da doença dentro das seis épocas de avaliação.

Durante os seis meses em que o experimento foi conduzido foi possível

observar diferentes padrões de comportamento da doença entre as variedades.

Foram constatadas diferenças significativas (P=0,05) entre as variedades e o

número de agrupamentos de similaridade variou conforme a época (Tabela 2).

As oscilações na incidência e severidade da doença estão relacionadas às

estações do ano e conseqüentemente às condições climáticas de cada

período, tanto em relação ao efeito sobre o hospedeiro, quanto aos efeitos

sobre a disseminação do patógeno (KOIZUMI, 1977; GOTTWALD et al. 1988).

Tabela 2. Dados climáticos dos meses de janeiro a junho de 2007.

Mês Temp.máx Temp. mín URA manhã URA tarde Precipitação

janeiro 28,7 20,6 85,6 75,7 313,3

fevereiro 30,2 20,2 85,8 62,4 163,7

março 31,4 20,7 81,8 51,4 69

abril 29,5 19 82,8 58,4 67,1

maio 24,4 14,2 81,3 60,1 54,4

junho 25,6 14,1 76,2 49,2 7,2

*média de temperaturas máx. e mín., umidade relativa do ar (URA) e precipitação dos meses de

janeiro a junho de 2007.

? = -0.0705x

+ 0.5776x + 0.6729

= 95.84%

0.5

1.5

2.5

1 23456 7

= -0.0705x

+ 0.5776x + 0.6729

= 95.84%

1.5

2.5

1 23456

TEMPO

A menor variação foi encontrada no mês de janeiro, denominada época1,

onde as variedades foram agrupadas em 5 grupos de similaridade enquanto a

maior variação foi observada no mês de fevereiro, época 2, com 9 grupos,

conforme Tabela 3. Diferenças entre os tratamentos para cada época estudada

podem estar relacionadas com as condições climáticas de cada período e

também com a avaliação, uma vez que a estimativa da severidade da doença,

que é um método subjetivo e deste modo pode haver erros de avaliação. No

entanto, as maiores oscilações de agrupamento correspondem, na maior parte,

com as épocas onde as condições climáticas são mais favoráveis para

desenvolvimento da doença.

O grupo A compreende as variedades com menores taxas de severidade

da doença. Dentre estas, destacam-se as variedades Ponkan, Rosehaugh,

Nartjee, Harris, De Wildt, Dekopon e África do Sul (105, 132, 63, 108, 12, 207),

as quais apresentaram menores oscilações no comportamento da doença

durante as seis épocas de avaliação. A Tangerina Ponkan foi à única variedade

que se manteve durante todo o período de avaliação no grupo A, enquanto que

as variedades Rosehaugh, Nartjee e Harris permaneceram neste grupo durante

5 épocas e De Wildt Dekopon e África do Sul em 4 épocas de avaliação

(Tabela 3).

Tabela 3. Teste de Scott-Knott (1974) para o desdobramento de Tratamento (T) dentro

das épocas 1 a 6 (Jan a Jun).

Época 1 Época 2 Época 3 Época 4 Época 5 Época 6

g T

105 0.07 a 105 0.28 a 105 0.29 a 105 0.43 a 105 0.28 a 105 0.19 a

21 0.10 a 132 0.38 a 63 0.63 a 108 0.59 a 108 0.58 a 99 0.38 a

12 0.17 a 108 0.38 a 132 0.69 a 207 0.71 a 132 0.61 a 207 0.53 a

113 0.46 b 27 0.38 a 99 0.70 a 155 0.72 a 155 0.64 a 159 0.57 a

159 0.58 b 12 0.47 a 12 0.74 a 132 0.76 a 207 0.66 a 132 0.57 a

132 0.59 b 99 0.49 a 207 0.77 a 62 0.80 a 12 0.69 a 172 0.69 a

29 0.60 b 63 0.58 a 157 0.85 a 63 0.84 a 62 0.70 a 63 0.70 a

63 0.61 b 180 0.72 b 155 0.86 a 204 0.87 a 27 0.75 a 108 0.74 a

99 0.62 b 33 0.82 b 34 0.90 a 34 0.98 b 63 0.82 a 62 0.74 a

167 0.66 b 62 0.83 b 204 0.94 a 12 1.02 b 92 0.84 a 27 0.74 a

40 0.69 b 155 0.84 b 180 0.95 a 33 1.03 b 204 0.86 a 180 0.83 b

27 0.72 b 20 0.85 b 20 1.03 b 99 1.05 b 33 0.93 a 94 0.94 b

180 0.73 b 151 0.85 b 113 1.10 b 180 1.08 b 1 0.93 a 22 0.98 b

14 0.75 b 113 0.89 b 94 1.10 b 162 1.09 b 34 1.06 b 113 0.99 b

92 0.75 b 14 0.97 b 92 1.14 b 159 1.09 b 159 1.11 b 152 1.02 b

108 0.78 b 66 0.97 b 108 1.15 b 27 1.10 b 151 1.14 b 204 1.03 b

62 0.79 b 167 0.98 b 127 1.15 b 1 1.16 b 29 1.18 b 116 1.04 b

79 0.81 b 48 0.98 b 62 1.15 b 97 1.18 b 180 1.19 b 44 1.10 b

48 0.83 c 194 0.99 b 162 1.19 b 157 1.20 b 99 1.23 b 9 1.11 b

97 0.84 c 97 1.02 b 1 1.21 b 189 1.21 b 162 1.23 b 1 1.15 c

101 0.91 c 204 1.02 b 151 1.21 b 113 1.22 b 40 1.24 b 189 1.17 c

116 0.92 c 94 1.03 b 167 1.21 b 56 1.33 b 113 1.27 b 71 1.17 c

94 0.92 c 45 1.08 b 48 1.25 b 20 1.38 b 116 1.29 b 20 1.17 c

162 0.94 c 207 1.09 b 71 1.25 b 3 1.40 b 22 1.30 b 34 1.19 c

69 0.94 c 21 1.13 b 46 1.25 b 9 1.44 c 71 1.30 b 187 1.21 c

204 0.94 c 34 1.15 b 159 1.26 b 45 1.45 c 118 1.31 b 162 1.21 c

46 0.95 c 116 1.16 b 22 1.26 b 22 1.48 c 97 1.31 b 66 1.23 c

3 0.95 c 69 1.22 c 14 1.26 b 167 1.56 c 172 1.36 b 23 1.24 c

33 0.98 c 162 1.23 c 66 1.30 b 127 1.57 c 66 1.42 c 92 1.25 c

172 0.99 c 79 1.24 c 33 1.30 b 69 1.59 c 69 1.45 c 118 1.29 c

47 1.00 c 130 1.25 c 69 1.33 b 11 1.59 c 117 1.45 c 117 1.31 c

66 1.01 c 23 1.28 c 196 1.35 b 23 1.59 c 45 1.47 c 167 1.32 c

1 1.02 c 35 1.33 c 189 1.40 c 16 1.63 c 14 1.48 c 14 1.32 c

194 1.02 c 92 1.34 c 164 1.44 c 66 1.65 c 48 1.49 c 157 1.33 c

71 1.04 c 189 1.34 c 27 1.46 c 48 1.66 c 20 1.52 c 67 1.34 c

68 1.04 c 68 1.37 c 11 1.50 c 151 1.68 c 3 1.54 c 29 1.35 c

207 1.05 c 29 1.38 c 153 1.50 c 64 1.74 c 164 1.54 c 12 1.36 c

20 1.06 c 157 1.41 c 187 1.53 c 29 1.75 c 11 1.55 c 3 1.38 c

Continuação Tabela 2.

Época 1 Época 2 Época 3 Época 4 Época 5 Época 6

g T

157 1.07 c 187 1.44 c 64 1.53 c 187 1.75 c 127 1.58 c 40 1.43 c

155 1.07 c 164 1.44 c 68 1.54 c 172 1.78 c 189 1.60 c 69 1.45 c

34 1.09 c 46 1.44 c 3 1.57 c 101 1.79 c 88 1.63 c 16 1.45 c

151 1.10 c 152 1.45 c 29 1.59 c 35 1.85 d 9 1.64 c 46 1.46 c

67 1.10 c 6 1.46 c 47 1.62 c 92 1.90 d 16 1.67 c 47 1.46 c

23 1.10 c 88 1.56 d 23 1.62 c 46 1.97 d 64 1.70 c 164 1.48 c

45 1.12 c 3 1.59 d 117 1.63 c 196 1.97 d 157 1.77 c 45 1.50 c

152 1.15 c 67 1.60 d 79 1.66 c 67 2.00 d 196 1.81 d 68 1.51 c

164 1.15 c 117 1.60 d 158 1.68 c 158 2.00 d 56 1.83 d 153 1.54 c

35 1.16 c 64 1.60 d 116 1.73 d 94 2.02 d 46 1.83 d 101 1.58 d

95 1.20 c 22 1.61 d 67 1.77 d 40 2.07 d 167 1.84 d 6 1.63 d

196 1.21 c 44 1.62 d 152 1.81 d 198 2.07 d 21 1.89 d 64 1.65 d

150 1.22 c 127 1.64 d 43 1.82 d 130 2.08 d 150 1.91 d 48 1.69 d

64 1.24 c 40 1.65 d 95 1.84 d 152 2.09 d 67 1.93 d 55 1.71 d

88 1.25 c 91 1.65 d 56 1.85 d 68 2.10 d 152 1.97 d 127 1.72 d

24 1.29 d 96 1.69 d 118 1.88 d 88 2.12 d 23 1.97 d 158 1.73 d

44 1.30 d 158 1.72 d 198 1.88 d 47 2.17 d 44 2.05 d 33 1.74 d

91 1.33 d 1 1.72 d 44 1.89 d 116 2.19 d 6 2.06 d 54 1.77 d

127 1.35 d 47 1.73 d 88 1.90 d 117 2.23 d 35 2.08 d 97 1.79 d

56 1.35 d 95 1.75 d 35 1.92 d 79 2.28 e 101 2.11 d 196 1.80 d

117 1.43 d 11 1.81 d 91 1.92 d 118 2.31 e 187 2.13 d 21 1.82 d

153 1.47 d 196 1.82 d 40 1.94 d 6 2.37 e 153 2.15 d 11 1.90 d

130 1.48 d 101 1.84 d 45 1.95 d 93 2.40 e 79 2.16 d 150 1.91 d

189 1.51 d 118 1.86 d 101 1.96 d 55 2.41 e 94 2.18 d 194 1.92 d

158 1.53 d 172 1.93 e 9 2.05 d 150 2.51 e 47 2.19 d 56 1.95 d

22 1.53 d 153 1.95 e 93 2.06 d 164 2.53 e 54 2.31 e 198 2.11 e

96 1.54 d 159 1.97 e 130 2.18 e 21 2.65 e 158 2.33 e 79 2.11 e

118 1.54 d 71 1.99 e 97 2.18 e 96 2.70 e 68 2.35 e 96 2.17 e

55 1.58 d 56 2.03 e 172 2.22 e 153 2.88 f 91 2.41 e 130 2.27 e

43 1.61 d 43 2.16 e 53 2.25 e 95 2.89 f 130 2.61 e 151 2.28 e

11 1.62 d 198 2.18 e 16 2.42 f 71 2.91 f 194 2.70 f 93 2.29 e

187 1.67 d 150 2.29 e 24 2.47 f 54 2.94 f 93 2.81 f 91 2.38 e

198 1.71 d 55 2.34 e 150 2.49 f 139 2.97 f 198 2.83 f 88 2.45 f

74 1.75 d 16 2.35 e 6 2.53 f 14 3.04 f 154 2.94 f 154 2.52 f

6 1.76 d 93 2.35 e 54 2.61 f 43 3.18 f 139 2.98 f 95 2.58 f

53 1.83 e 139 2.39 e 96 2.61 f 74 3.18 f 24 3.03 f 35 2.71 f

154 1.95 e 24 2.49 f 74 2.63 f 44 3.28 f 53 3.25 g 53 2.77 f

54 2.02 e 154 2.54 f 139 2.68 f 154 3.30 f 55 3.28 g 74 2.92 g

16 2.03 e 9 2.82 g 154 2.83 f 91 3.33 f 96 3.29 g 155 2.99 g

Continuação Tabela 2.

Época 1 Época 2 Época 3 Época 4 Época 5 Época 6

g T

9 2.18 e 74 3.05 g 21 3.27 g 53 3.67 g 95 3.31 g 24 3.22 g

93 2.24 e 54 3.37 h 55 3.45 g 24 3.69 g 208 3.96 h 139 3.28 g

139 2.27 e 208 5.03 i 194 3.81 h 194 4.19 h 43 4.04 h 43 3.29 g

208 5.26 f 53 3.78 j 208 5.82 i 208 5.06 i 74 4.21 h 208 4.16 h

* Época 1: 17 de janeiro, época 2: 25 de fevereiro, época 3: 20 de março, época 4: 2 de abril,

época 5: 08 de maio, época 6: 12 de junho, ano de 2007.

5. CONCLUSÕES

• Houve variações nos níveis de resistência e no comportamento das

variedades conforme a época de avaliação.

• A tangerina Ponkan apresentou alta resistência ao cancro cítrico.

• As variedades Rosehaugh Nartjee, Harris, De Wildt, Dekopon e África do

Sul comportaram-se como resistentes, apresentando baixos níveis de

doença em todas as avaliações.

Os resultados obtidos mostram que muito desses materiais avaliados

têm grande potencial para utilização em programas de melhoramento

genético e de manejo integrado do Cancro Cítrico. Contudo, esses são

testes preliminares e deve-se dar continuidade a pesquisa para

confirmação dos dados.

6. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

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