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UNIVERSIDADE FEDERAL DO RIO GRANDE DO SUL
INSTITUTO DE CIÊNCIAS BÁSICAS DA SAÚDE
PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM CIÊNCIAS BIOLÓGICAS:
BIOQUÍMICA
A enzima indol-3-glicerol fosfato sintase de
Mycobacterium tuberculosis H37Rv:
caracterização cinética e mecanismo químico
Clarissa Melo Czekster
Orientador: Prof. Dr. Luiz Augusto Basso
Porto Alegre, 2008
Dissertação apresentada ao Programa de
Pós-
Graduação em Ciências Biológicas:
Bioquímica, da Universidade
Federal do Rio
Grande do Sul, como pré-
requisito para
obtenção do grau de Mestre em Bioquímica
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2
Este trabalho é dedicado a Rafael.
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3
Este trabalho foi realizado no Centro de Pesquisas em Biologia Molecular e
Funcional da Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul, sob
orientação do Professor Luiz Augusto Basso.
4
Agradecimentos
Ao Professor Luiz A. Basso, pela orientação.
Ao Professor Diógenes S. Santos, pela oportunidade.
Ao professor Brenno A.D. Neto, pela colaboração e ajuda.
Aos colegas Isabel Fonseca, Cristopher Schneider, Eraldo Batista, Bruna
Selbach, Isabel Werlang, Rodrigo Ducati, Maria Martha Campos, Fernanda Ely,
Marcelo Pedroso e Ardala Breda, pelo convívio e ensinamentos.
A minha família, Elizabeth, Waldemar, Ricardo, Gustavo e Rafael, sem a qual
nada teria sentido.
Ao Programa de Pós-Graduação em Bioquímica, pela oportunidade de
desenvolver o mestrado.
Ao CNPq/MCT, pela bolsa de mestrado.
5
Índice
Parte I ...................................................................................................................................1
Resumo ......................................................................................................................2
Abstract ......................................................................................................................3
Lista de Abreviaturas .................................................................................................4
Introdução ..................................................................................................................5
Objetivos ..................................................................................................................18
Parte II ................................................................................................................................19
Capítulo I .................................................................................................................20
Capítulo II ................................................................................................................21
Parte III ...............................................................................................................................22
Discussão .................................................................................................................23
Referências ..............................................................................................................35
1
PARTE I
2
Resumo
A enzima indol-3-glicerol fosfato sintase (IGPS) catalisa a formação irreversível do anel do
composto 1-o-carboxifenilamino desoxiribulose-5-fosfato (CdRP), através de uma
decarboxilação e de uma desidratação, liberando o composto indol-3-glicerol fosfato (IGP),
o quinto passo na via de biossíntese do triptofano. Neste trabalho, é descrita a clonagem,
expressão, purificação e caracterização cinética da IGPS, além da identificação de um
intermediário reacional. Para a realização destes estudos, o substrato da enzima (CdRP)
3
Abstract
The enzyme indole-3-glycerol phosphate synthase (IGPS) catalyzes the irreversible ring
closure of 1-o-carboxyphenylamino deoxyribulose-5-phosphate (CdRP), through a
decarboxylation and a dehydration, releasing indole-3-glycerol phosphate (IGP), the fifth
step in the biosynthesis of tryptophan. In the present work, we describe cloning,
expression, purification, and kinetic characterization of IGPS. In order to perform kinetic
studies, CdRP was chemically synthesized, purified, and espectroscopically and
spectrometrically characterized. CdRP fluorescence was pH-dependent, probably owing to
excited-state intramolecular proton transfer (ESIPT) effect. Temperature effects were
analyzed, indicating an activation energy of 8.4 kcal mol
-1
for the IGPS catalyzed reaction.
Solvent isotope effects showed that a proton transfer is only modestly limiting for the
reaction, and proton inventory studies pointed to a single proton responsible for the
observed solvent isotope effect. pH-rate profiles were carried out to probe for acid/base
catalysis, showing that a deprotonated residue with an apparent pK
a
of 6.0 is required for
catalysis and a deprotonated residue with an apparent pK
a
of 6.8 is necessary for CdRP
binding. It was suggested that both apparent pK
a
report on the same residue, which might
be a glutamate conserved amongst all IGPS characterized so far. A model is proposed to
explain the ESIPT, and a kinetic sequence is suggested based on the pH-rate profiles. ESI-
MS was employed to identify possible chemical intermediates of the IGPS catalyzed
reaction, and one chemical intermediate was intercepted and characterized.
4
Lista de abreviaturas
WHO Organização Mundial da Saúde
TB Tuberculose
MDR-TB M. tuberculosis resistente a múltiplas drogas
XDR-TB M. tuberculosis extensivamente resistentes a drogas
PRAT fosforibosil antranilato transferase
PRAI fosforibosil antranilato isomerase
MtIGPS indol-3-glicerol fosfato sintase de Mycobacterium tuberculosis
CdRP 1-o-carboxifenilamino desoxiribulose-5-fosfate
IGP indol-3-glicerol fosfato
ESI-MS espectrometria de massas por ionização com spray de elétrons
ESIPT transferência intramolecular de prótons no estado excitado
RMN ressonância magnética nuclear
V Velocidade máxima
K Constante de Michaelis
k
cat
Constante catalítica
D
2
O
V Efeito isotópico de solvente em V
D
2
O
V/K Efeito isotópico de solvente em V/K
5
Introdução
"The Earth is suffocating... Swear to
make them cut me open, so that I won't
be buried alive."
- Frederic Chopin (1810-1849), compositor e pianista polonês, antes de sua morte
causada pela tuberculose.
Esta frase dita no leito de morte por Frederic Chopin ilustra o sofrimento de
experimentar algo semelhante à “morte em vida”: sentir-se permanentemente sufocado
pela tosse prolongada e hemoptise, além de sentir-se fraco e consumido pela dor no peito
e pelo cansaço fácil, apenas alguns dos males a que uma pessoa com tuberculose está
sujeita.
Esta doença também vitimou outros personagens famosos de nossa história, e
Simon Bolívar, Edgar Allan Poe, Eleanor Roosevelt, George Orwell, Vivien Leigh, Niccolò
Paganini, Alexander Graham Bell, Erwin Schrödinger, são apenas alguns exemplos.
Porém, simplesmente considerar personalidades mortas, muitas ainda em tenra idade,
subestima em muito a extensão da quantidade de vidas que a tuberculose já ceifou. De
acordo com estimativas da Organização mundial de saúde (OMS), apenas no período de
1990 a 2005, aproximadamente 26 milhões pessoas vieram a óbito devido à tuberculose,
nos 208 países monitorados pela OMS (TB, incidência global,
http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs104/en/index.html).
6
Histórico
A tuberculose não foi identificada como doença até a segunda década do século 19
e foi nomeada por Schoenlein em 1839. Apesar desta identificação bastante tardia, alguns
relatos demonstram que a tuberculose já havia sido identificada em humanos desde a
antiguidade, já que as origens da doença coincidem com o início da domesticação do
gado. Alguns esqueletos de humanos pré-históricos, que datam em torno de 4000 a.C., já
tinham tuberculose, assim como algumas múmias egípcias (Nerlich et. al, 1997). Os
primeiros trabalhos que identificaram a tuberculose nas Américas utilizaram múmias
peruvianas de 1000 anos de idade, identificando um caso de tuberculose pulmonar (Salo
et. al, 1994)
Apesar de possuir uma sintomatologia que já era amp
7
1921 na França, mas diversas questões impediram sua disseminação nos EUA, Reino
Unido ou Alemanha até o final da Segunda Guerra Mundial.
Em 1946, com a descoberta do antibiótico estreptomicina, o tratamento, e não
apenas a prevenção da TB, tornou-se possível. Antes disso, somente a intervenção
cirúrgica apresentava-se como tratamento (além dos sanatórios), incluindo a técnica do
pneumotórax: provocar o colapso de um pulmão infectado para deixá-lo "descansar" e
permitir a cicatrização das lesões, técnica muito habitual, porém pouco benéfica, sendo
posta de lado após 1946.
Durante o século 19 e início do século 20, a TB foi um motivo de grande
preocupação pública, principalmente entre as classes menos favorecidas. Desta forma,
após ter ficado claro que a TB era uma doença contagiosa, diversas medidas foram
tomadas, essencialmente por países europeus e nos Estados Unidos, para que a TB fosse
notificada e mesmo para que pessoas doentes fossem isolados, evitando a disseminação
da doença. Com essas medidas, juntamente com uma melhoria na saúde pública, as
mortes por TB diminuíram significativamente nestes países, mesmo antes do surgimento
de antibióticos.
Apesar da doença nunca ter sido controlada nos países em desenvolvimento,
principalmente devido à precariedade dos sistemas de saúde e à imunodepressão
causada tanto pelo vírus da imunodeficiência adquirida (HIV) quanto por subnutrição,
esperava-se que a doença pudesse ser controlada nos países desenvolvidos. Entretanto,
as elevadas taxas de cepas resistentes a drogas, a co-infecção com o HIV, as práticas
precárias de controle de infecções e os problemas causados por imigrações frustraram
esta expectativa (Fätkenheuer et al., 1999). Por exemplo, os casos de TB no Reino Unido,
que beiravam os 50.000 em 1955, caíram para cerca de 5.500 em 1987, mas, em 2001,
8
havia mais de 7.000 casos confirmados. Além disso, inúmeros pacientes interrompem seu
tratamento, originando ainda mais cepas resistentes a muitas das drogas normalmente
usadas. Devido à chamada “ressurgência” da doença, em 1993, a OMS declarou a TB
uma doença de emergência global.
Além das cepas multirresistentes a drogas (MDR-TB), o surgimento das cepas
extensivamente resistentes (XDR-TB), aumentou ainda mais a preocupação com a
disseminação desta doença, já que a infecção por XDR-TB é virtualmente incurável e tais
cepas já foram identificadas em 41 países, uma progressão bastante acelerada se
considerarmos que as primeiras notificações de XDR-TB ocorreram na década de 90
(CDC report 2000-2004).
Surgimento e evolução
Os membros do complexo do M. tuberculosis (espécies M. tuberculosis, M. bovis,
M. microti, M. africanum, M. pinnipedii, e M. caprae), causadores da TB, estão entre os
patógenos humanos mais bem sucedidos. Ainda que os membros da MTBC possuam
características diversas e hospedeiros variáveis, eles possuem uma homogeneidade
genética surpreendente, com nenhum traço significante de troca gênica entre eles. Devido
a isto, acredita-se que os membros da MTBC sejam resultantes de um único ancestral
(Brosch, 2002).
Através da análise filogenética de alguns genes constitutivamente expressos,
estima-se que o M. tuberculosis tenha surgido há aproximadamente 3 milhões de anos, na
África, sofrendo uma expansão clonal posterior. Após esta primeira expansão, acredita-se
que um clone mais adaptado do bacilo tenha colonizado o resto do mundo, possivelmente
devido às ondas de migração humana para fora da África (Gutierrez et.al, 2005).
9
A doença
Transmissão e patogenicidade
A TB é uma doença contagiosa que se espalha pelo ar, quando indivíduos
contaminados manifestando a doença na sua forma ativa espirram, tossem ou falam, e, ao
fazê-lo, emitem aerossóis que contêm o bacilo. Estima-se que cada pessoa com TB ativa
possa contaminar 10 a 15 pessoas sadias a cada ano (OMS).
A probabilidade de transmissão depende do quão doente está o indivíduo com TB,
quantos bacilos foram expelidos, do grau de virulência do bacilo infectante e do tempo de
exposição ao contágio. De cada 10 pessoas que entram em contato com o bacilo, apenas
1 irá desenvolver a doença ativa durante sua vida, ainda que estes números variem
consideravelmente para indivíduos portadores de HIV, podendo chegar a 1 indivíduo
soropositivo desenvolvendo a TB a cada 10 infectados por ano (OMS; Gómez e McKinney,
2004). O bacilo também pode infectar o hospedeiro e ficar em uma condição de latência,
na qual o hospedeiro não desenvolve os sintomas da doença, mas ela permanece em seu
corpo, podendo, ou não, ser ativada ao longo da vida.
Algumas situações que aumentam a chance de desenvolver a doença ou de retirar
o bacilo de seu estado de latência são infecções recentes de tuberculose (últimos 2 anos),
lesões fibróticas e nódulos nos pulmões; diabetes mellitus, silicose, terapia prolongada
com corticosteróides e outras terapias imunossupressivas, câncer na cabeça ou pescoço,
doenças no sangue ou reticuloendoteliais (leucemia e doença de Hodgkin), doença renal
em estágio avançado, gastrectomia, síndromes crônicas de mal-absorção, ou baixo peso
corporal (10% ou mais de peso abaixo do ideal). Alguns estudos têm demonstrado a
10
importância de fatores genéticos no desenvolvimento da doença, sendo que a
susceptibilidade à TB é claramente poligênica (Rengarajan et. al, 2001; Marquet et. al,
2001; Meya e McAdam, 2007).
Infecção
A infecção pela TB ocorre quando o bacilo atinge os alvéolos pulmonares, de onde
ele pode se espalhar para os nódulos linfáticos e, conseqüentemente, para a corrente
sanguínea. Se penetrar na corrente sanguínea, o bacilo pode colonizar tecidos mais
distantes do pulmão, como a pleura, o sistema nervoso central (meninges), o sistema
linfático, o sistema genitourinário, ossos e juntas, ou pode ser disseminada pelo corpo
(tuberculose miliar - assim chamada porque as lesões que se formam parecem pequenas
sementes). Estas formas da doença são mais comuns em pessoas com supressão
imunológica e em crianças. Na maioria dos casos, porém, a tuberculose fica restrita aos
pulmões, sendo chamada tuberculose pulmonar (Myers, 2007; Meya e McAdam, 2007).
Os sintomas da doença incluem tosse prolongada com duração de mais de três
semanas, dor no peito e sangue no escarro (hemoptise). Outros sintomas são febre,
calafrios, suores noturnos, perda de apetite e de peso, e cansaço fácil. A palavra
consunção (consumpção, em Portugal) surgiu porque os doentes pareciam ter sido
"consumidos por dentro" pela doença (Daniel, 2006).
Na maior parte dos casos, ao entrar em contato com a doença, o bacilo será
eliminado pelo próprio sistema imune do hospedeiro, ocasionando a formação de um
granuloma. Os "tubérculos", ou nódulos de tuberculose são pequenas lesões que podem
consistir de tecidos mortos de cor acinzentada contendo a bactéria da tuberculose. No
11
entanto, têm-se um conhecimento restrito acerca do tipo de metabolismo o bacilo adota
neste microambiente particular.
Tratamento
O tratamento atualmente administrado para a tubercu
12
tempo prolongado. As drogas anti-tuberculose de segunda linha são o último recurso no
tratamento da TB crônica e MDR-TB.
O tratamento para casos de MDR-TB varia de acordo com o tipo de resistência que
o paciente possui, podendo chegar a seis meses de fase inicial com administração diária
de uma droga injetável, ciprofloxacina ou ofloxacina e mais 2 destas 3 drogas por via oral:
ácido p-aminosalicílico, etionamida, cicloserina. A fase de continuação consiste na
administração das mesmas drogas, exceto a injetável, por até 18 meses, totalizando um
tratamento de dois anos (Meya e McAdam, 2007).
Mycobacterium tuberculosis
O bacilo é um aeróbio obrigatório, motivo pelo qual o pulmão é preferencialmente
atacado e as infecções secundárias têm início nos ápices destes. O M. tuberculosis possui
um tempo de crescimento lento (próximo de 20 horas), e suas colônias só podem ser
visualizadas após várias semanas de crescimento.
Outra característica peculiar deste bacilo é a presença de lipídeos celulares únicos.
A parede celular do M. tuberculosis é única entre os procariotos e grande determinante de
sua virulência. Além de peptideoglicanos, a parede celular contém lipídeos complexos, o
que faz com que o bacilo seja resistente a muitos antibióticos e também a oxidações letais,
facilitando sua sobrevivência dentro de macrófagos (Keep, 2006).
O M. Tuberculosis é um patógeno intracelular facultativo, já que neutrófilos ou
macrófagos não são capazes de exterminá-lo. O bacilo previne a acidificação dos
fagolisossomos, resistindo aos mecanismos intracelulares de eliminação de micróbios
destas células. Porém, uma vez confinado ao fagossomo, o bacilo deve obter seus
13
nutrientes a partir deste, modificando seu próprio ambiente vacuolar para permitir a
aquisição de nutrientes (Desai et.al, 1993). O vacúolo das micobactérias parece ser um
compartimento relativamente pobre em nutrientes, no qual a disponibilidade de ferro,
magnésio, fosfato, purinas, cofatores e aminoácidos é limitada (Boshoff e Barry, 2005).
O seqüenciamento completo do genoma do M. tuberculosis (Cole et. al, 1998),
possibilitou identificar ORFs importantes para o crescimento e virulência do bacilo. O
acesso a esta informação facilitou o estudo de vários genes e proteínas de interesse,
assim como comparar a expressão e funcionalidade de diversas proteínas in vitro e in vivo.
Assim, alguns trabalhos realizados com camundongos infectados com M. tuberculosis
mutantes que eram incapazes de sintetizar certos nutrientes, como aminoácidos, purinas e
pantotenato, demonstraram que estas bactérias mutantes eram menos virulentas, e em
alguns casos avirulentas, em camundongos (Boshoff e Barry, 2005; Sampson et. al, 2004).
Para o presente trabalho, é particularmente relevante um estudo (Smith et. al, 2001) que
demonstrou que camundongos infectados com cepas de M. tuberculosis nocauteadas para
o gene trpD (que codifica a enzima PRAT, da via de biossíntese do triptofano) não
desenvolveram a doença. Este estudo foi extremamente importante, já que anteriormente
existia um impasse acerca de quão essencial para o bacilo, in vivo, seriam alguns
aminoácidos, já que o próprio macrófago infectado poderia fornecê-los para o M.
tuberculosis. Com este estudo, ficou evidente que, apesar da existência de concentrações
basais de certos nutrientes no fagossoma, a via de biossíntese do triptofano era essencial
para a virulência do bacilo. Até a data, esta via biossintética foi alvo de poucos estudos e
não se sabe ainda o porquê desta importância para a virulência.
14
Biossíntese de aminoácidos aromáticos
A via de biossíntese de aminoácidos aromáticos está presente em plantas, fungos,
bactérias e organismos do filo apicomplexa, estando ausente em mamíferos. Assim,
humanos necessitam ingerir os aminoácidos triptofano e fenilalanina para que possam
obtê-los e utilizá-los para a síntese protéica. A biossíntese destes aminoácidos tem início
com o precursor corismato, que é então convertido ou a prefenato (para iniciar a
biossíntese de fenilalanina e tirosina) ou a antranilato (para que o triptofano seja
sintetizado). (FIGURA 1)
Biossíntese do triptofano
A via de biossíntese do triptofano converte o precursor corismato em triptofano
através de cinco passos enzimáticos. Existem poucos estudos disponíveis sobre as
enzimas desta via enzimática, principalmente devido ao fato de que a maioria das enzimas
só é ativa quando faz parte de complexos com outras proteínas. Outra dificuldade para o
estudo desta via é a indisponibilidade comercial dos substratos das reações. O único
composto disponível no mercado é o antranilato, de modo que todos os outros
intermediários da via necessitam ser sintetizados química ou enzimaticamente. Assim,
quase todos os trabalhos realizados até a data sobre estas enzimas são estruturais, já
que, para realizá-los, não é necessário ter as enzimas em sua forma cataliticamente ativa.
15
16
Figura 1: Via de biossíntese dos aminoácidos aromáticos. O precursor comum corismato é
convertido a prefenato para dar origem aos aminoácidos tirosina e fenilalanina ou a
antranilato, dando origem ao triptofano. Modificada a partir de Pittard, 1996. 1, Antranilato
sintase; 2, Fosforibosil antranilato transferase; 3, Fosforibosil antranilato isomerase; 4,
Indol-3-glicerol fosfato sintase; 5, Triptofano sintase; 6, Corismato mutase; 7, Prefenato
desidrogenase; 8, Prefenato desidratase; 9, Transaminase; 10, Fenilalanina hidroxilase.
Indol-3-glicerol fosfato sintase (IGPS)
A quarta reação da via de biossíntese do triptofano é catalisada pela enzima IGPS
(Creighton e Yanofsky, 1966).
Figura 2: Reação catalisada pela enzima IGPS.
Esta reação consiste de uma condensação intramolecular, liberando água e gás
carbônico, originando a porção pirrólica do triptofano. Em M. tuberculosis, esta proteína é
codificada pelo gene trpC, com 819 pb, no operon do triptofano, que codifica apenas a
cadeia polipeptídica da IGPS, com 272 aminoácidos por subunidade, diferentemente do
que ocorre em outros organismos. Por exemplo, em Escherichia coli, o gene trpC codifica
as cadeias polipeptídicas das enzimas PRAI e IGPS; em Archaeoglobus fulgidus, a
proteína IGPS e a proteína PRAT são codificadas pelo mesmo gene; em Aspergillus niger,
17
o gene trpC codifica as proteínas glutamina amidotransferase (componente 2 da
antranilato sintase), IGPS e PRAI.
O substrato da IGPS, 1-o-carboxifenilamino desoxiribulose 5-fosfato (CdRP), apesar
de sintetizado quimicamente por diversos grupos de pesquisa (Smith e Yanofsky, 1960;
Smith e Yanofsky, 1962; Doy, 1966; Kirschner et. al, 1987), não foi ainda caracterizado. A
única informação disponível é seu espectro de absorção (Kirschner et. al, 1987). Porém,
os protocolos sintéticos disponíveis possuem um rendimento relativamente baixo (10 % -
60 %), e a estabilidade do CdRP é bastante reduzida, o que dificulta ensaios enzimáticos.
Uma breve caracterização cinética aparente desta enzima foi recentemente
publicada, porém utilizando CdRP não purificado (Yang et. al, 2006). Além disto, os
estudos relatados por Yang et al. (2006) não possuem a profundidade experimental e
análise criteriosa apresentada nesta dissertação. Neste trabalho, uma caracterização
cinética mais ampla da IGPS de M. tuberculosis é descrita, bem como a identificação de
um intermediário reacional. Os resultados aqui descritos contribuem para a ampliação do
conhecimento desta via biossintética e, de forma mais ampla, a cerca da biologia do
bacilo, um passo importante para entender e conter a TB.
18
Objetivos
Os principais objetivos do presente trabalho dizem respeito a ampliar o
conhecimento existente sobre a enzima IGPS, que faz parte de uma via metabólica pouco
estudada em micobactérias, importante para a virulência do patógeno. A clonagem do
gene trpC de M. tuberculosis H37Rv e sua expressão em células de E. coli foram
realizadas durante meu trabalho de conclusão do curso de bacharel em Ciências
Biológicas. Os objetivos específicos deste trabalho consistem na purificação da enzima na
sua forma ativa, a determinação do K
M
e k
cat
da enzima, na obtenção de perfis de pH e
temperatura, na análise de efeitos isotópicos de solvente e identificação de possíveis
intermediários da reação.
Para que fosse possível realizar este trabalho com a enzima IGPS, seu substrato,
CdRP, foi sintetizado e caracterizado espectrometricamente e espectroscopicamente.
Foram utilizadas técnicas de UV-vis, espectrofluorimetria, titulação ácido-base,
espectrometria de massas, infravermelho e ressonância magnética nuclear para
caracterizar o composto.
19
PARTE II
20
Capítulo I
Kinetic characterization of indole-3-glycerol phosphate synthase from Mycobacterium
tuberculosis
Artigo a ser submetido para publicação no periódico Biochemistry em 2008.
1
Kinetic characterization of indole-3-glycerol phosphate synthase from Mycobacterium
tuberculosis
Clarissa M. Czekster
a,b
, Brenno A. D. Neto
c
, Alexandre A. M. Lapis
c
, Jairton Dupont
c
, Diogenes S.
Santos
a
, Luiz A. Basso
a
a
Centro de Pesquisas em Biologia Molecular e Funcional, Faculdade de Biociências e Faculdade de
Farmácia, Instituto de Pesquisas Biomédicas, PUCRS, Porto Alegre, RS, Brazil.
b
Programa de Pós-graduação em Ciências Biológicas: Bioquímica, Instituto de Ciências Básicas da
Saúde, UFRGS, Porto Alegre, RS, Brazil.
c
Laboratory of Molecular Catalysis - Institute of Chemistry - UFRGS.
Short title: Indole-3-glycerol phosphate synthase from M. tuberculosis
Corresponding authors: Luiz A. Basso or Diógenes S. Santos, Centro de Pesquisas em Biologia
Molecular e Funcional, Instituto de Pesquisas Biomédicas, Pontifícia Universidade Católica do Rio
Grande do Sul, 6681/92-A Av. Ipiranga, 90619-900, Porto Alegre, RS, Brazil. Phone/Fax: +55 51
33203629. E-mails: [email protected] or dio[email protected]
2
Abstract
Indol-3-glycerol phosphate synthase (IGPS) catalyzes the irreversible ring closure of 1-(o-
carboxyphenylamino)-1-deoxyribulose 5-phosphate (CdRP), through decarboxylation and
dehydration steps, releasing indol-3-glycerol phosphate (IGP), the fourth step in the biosynthesis of
tryptophan. Here we describe the cloning, expression, purification, and kinetic characterization of
IGPS from Mycobacterium tuberdulosis. To perform kinetic studies, CdRP was chemically
synthesized, purified, and espectroscopically and spectrometrically characterized. CdRP
fluorescence was pH-dependent, probably owing to excited-state intramolecular proton transfer. The
activation energy was calculated, and solvent isotope effects and proton inventory studies were
performed. pH-rate profiles were carried out to probe for acid/base catalysis, showing that a
deprotonated residue is necessary for CdRP binding and conversion to IGP. A glutamate conserved
in all IGPS characterized so far was proposed to play a role as a general base. A model is proposed
to explain the excited-state intramolecular proton transfer, and a kinetic sequence is suggested based
on the pH-rate profiles.
Keywords: Indole-3-glycerol phosphate synthase, kinetic characterization, 1-(o-
carboxyphenylamino)-1-deoxyribulose 5-phosphate, excited-state intramolecular proton transfer,
pH-rate profiles, solvent-kinetic isotope effects.
3
Introduction
Mycobacterium tuberculosis, the causative agent of tuberculosis (TB)
1
, is the most lethal
pathogen among all bacteria [1]. It is estimated that TB kills a person every 16 seconds around the
world. Although significant progress has been made to fight all types of bacterial diseases, TB
remains a challenge. For example, we still employ a one-hundred-year-old diagnostic test, a vaccine
invented 80 years ago, and drugs that are unspecific and remain unchanged for the past 40 years [2].
Even developed countries are now facing the threat of TB [3]. Our knowledge about TB’s
biochemical pathways need to be expanded so we can consider novel approaches to halt the growing
spreading of this disease.
The complete genome sequence determination of M. tuberculosis H37Rv (Cole et al., 1998)
allowed the identification by sequence homology of genes involved in metabolic pathways of the
pathogen. Accordingly, a number of pathways are being studied as promising new targets for TB
drugs and vaccines. More specifically, Smith et al. [4] demonstrated that the tryptophan biosynthesis
pathway is essential for the virulence of M. tuberculosis. Unfortunately, only a few studies on the M.
tuberculosis tryptophan biosynthesis pathway have been reported [5-7]. The biosynthesis of
tryptophan begins with chorismate, a common metabolic precursor, and, after five steps, generates
tryptophan. This work focuses on the fourth step of this pathway, catalyzed by the enzyme indol-3-
glycerol phosphate synthase (IGPS). IGPS catalyzes the irreversible ring closure of 1-(o-
carboxyphenylamino)-deoxyribulose 5-phosphate (CdRP), through decarboxylation and dehydration
steps, releasing indol-3-glycerol phosphate (IGP), which contains the indolic ring of tryptophan (Fig.
1) [8].
In this article, we describe the cloning, expression and purification of trpC-encoded MtIGPS.
In addition, we describe a modified protocol for the chemical synthesis and purification of CdRP,
4
and its characterization employing mass spectrometry, infra-red and
1
H NMR spectroscopy, UV-vis
and spectrofluorimetry. The MtIGPS-catalyzed reaction was characterized by initial velocity
experiments, pH-rate profiles, temperature effects, solvent kinetic isotope effects, and proton
inventory. It is hoped that the data presented here will contribute to further the knowledge on the
tryptophan biosynthesis pathway in M. tuberculosis.
Materials and Methods
Materials - All chemicals were of analytical or reagent grade and were used without further
purification. Deuterium oxide (99.9 atom % D) was purchased from Cambridge Isotope
Laboratories. Pfu DNA Polymerase was purchased from Stratagene. Restriction enzymes and T4
DNA ligase were purchased from Invitrogen.
Cloning, Expression, and Purification of MtIGPS - The forward primer sequence for
amplification of the trpC coding region was 5’-
CACATATGAGTCCGGCAACCGTGCTCGACTC-3’, having an NdeI restriction site (bold) at the
N-terminal end. The reverse primer sequence was 5’-
TGGATCCTCAGCGAGCCGGTTTCGGACAG- 3’, which introduced a BamHI restriction site
(bold) at the C-terminal end. All PCR reactions were carried out using pfu DNA polymerase
(Stratagene), using conditions recommended by the manufacturer, and were supplemented by the
addition of 10% (v/v) DMSO. The resultant PCR product, corresponding to 819 bp, was ligated into
the pCR
®
-Blunt (Invitrogen) vector, and transformed into E. coli DH10B. The recombinant plasmid
purified from these cells was cleaved with NdeI and BamHI restriction enzymes, and the resulting
fragment subcloned into the pET-23a(+) vector (Novagen) previously digested with the same
restriction enzymes. The plasmid was then transformed by electroporation into E.coli BL21(DE3)
5
STAR host cells (Novagen). Cells were grown in 4YT containing 50 µg mL
-1
carbenicillin, at 37ºC
and after the OD
600
reached 0.4-0.6, cells were allowed to grow for additional 9 hours and harvested
by centrifugation at 20,800g for 30 min. All purification procedures were carried out at 4 ºC. Cells
were resuspended in 50 mM Tris-HCl pH 7.3 containing 200 mM NaCl, 1mM EDTA and 0.1 mM
DTT (buffer A), incubated with 0.2 mg mL
-1
lysozyme, disrupted by sonication, and centrifuged at
48,000g for 30 min to remove cell debris. The supernatant was incubated with 20% (v/v) of
streptomycin sulphate for 30 min and cetrifugated at 48,000g for 30 min. After dialysis against
buffer A, a buffer containing 50 mM Tris-HCl pH 7.3, 200 mM NaCl, 1mM EDTA, 0.1 mM DTT
and 2 M (NH
4
)
2
SO
4
(buffer B) was used to bring the (NH
4
)
2
SO
4
concentration to 1 M, required for
the first chromatographic purification step. The resulting preparation was loaded on a Phenyl
Sepharose High Sub FF column (GE Healthcare) previously equilibrated with 50 mM Tris-HCl pH
7.3 containing 200 mM NaCl, 1mM EDTA, 0.1 mM DTT and 1 M of (NH
4
)
2
SO
4
. (buffer C). The
column was washed with 10 column volumes of buffer C, and the adsorbed material was removed
with a linear gradient of 0-100% of buffer A. The fractions containing MtIGPS were pooled and
concentrated in an Amicon ultrafiltration membrane [molecular weight cutoff (MWCO) of 10,000
Da], and loaded on a Sephacryl S-100 column (GE Healthcare) pre-equilibrated with buffer A. The
fractions containing MtIGPS were pooled and precipitated with buffer B (50% v/v). The pellet
(homogeneous MtIGPS) was removed by centrifugation at at 48,000g for 30 min and resuspended in
buffer A. To remove any residual traces of (NH
4
)
2
SO
4
, homogeneous MtIGPS was dialyzed against
buffer A prior to storage at -20ºC. Protein concentrations were determined by the method of
Bradford et al. [9] using the Bio-Rad protein assay kit and bovine serum albumin as standard.
Oligomeric state determination - The molecular mass of purified MtIGPS was estimated by
gel-filtration chromatography employing a Superdex 200 HR column (1.0 cm × 30 cm) (GE
6
Healthcare). All runs were at 0.4 mL min
-1
in buffer A, and the eluate was monitored at 215, 254 and
280 nm. Molecular mass standards (GE Healthcare) were used for a calibration curve [ribonuclease
A (13,700 Da) from bovine pancreas, chymotrypsinogen (25,000 Da) from bovine pancreas,
ovalbumin (43,000 Da) from hen egg, albumin (67,000 Da) from bovine serum, aldolase (158,000
Da) from rabbit muscle, catalase (232,000 Da) from bovine liver, and ferritin (440,000 Da) from
equine spleen]. Blue Dextran 2000 was used to calculate the void volume (V
0
).
Chemical Synthesis, purification, spectrometric and spectrophotometric characterization of
CdRP - Modifications to previously reported chemical synthesis protocols [10-13] were made, and
the protocol employed for CdRP synthesis is as follows: 2.11 mmols of anthranilic acid (AA)
(Sigma) were dissolved in 264 µL isopropanol (Merck) and mixed with 1.06 mmols of ribose-5-
phosphate (R5P) (Acros Organics) dissolved in 1.32 mL of water plus 2.64 mL of isopropanol. The
reaction mixture was kept in the dark, at room temperature overnight. Reaction was then cooled (4
ºC) for 10 minutes, after which two layers were formed. The aqueous phase, containing unreacted
AA and R5P, was removed, and the remnant dark yellow oil washed with isopropanol and ethyl
acetate. After the addition of 4 mmols of barium acetate (from a 2 M solution), CdRP precipitated as
a barium salt, being isolated by centrifugation. This precipitate was washed with water, isopropanol
and ethyl acetate. After desiccation, CdRP was kept at -20 ºC, protected from light. The stability of
the compound was estimated by UV-visible spectra measured at different times after the
solubilization of CdRP in water pH 4.8 [13], observing the maximum absorption peaks of CdRP
(350 and 254 nm) as compared with the absorption peaks of AA (maxima at 323 and 240 nm). For
these measurements, CdRP was kept on ice up to 4 hours, and spectra were evaluated at 30-721())4.00ct ted o(hegtieet -324 0 Td71443( )-222.876(()4.04036299( )-68.6742(p)6.508.1181(b)-362(y)16.84357R( )-78.9579(c)12.24382(p)6.5089(r)4.04257(o)-32(r)4.0436(d)6.56299(a)-8.317.0432(f)-6.23672(r)4.0432(o)-3.716932(a)1.9b-9.83821(t5( )-233.155(o)6.56299(f)4.01715((T)4.48492(h)[)4.0432.83)6.56299(m)240559(a)1.96388(s)n262(r)4.0432(e)1.9626D( 0.e (
7
solubility in D
2
O.
1
H NMR spectrum was recorded on a Varian Inova 300 MHz. Infrared spectrum
(KBr) was registered on a Bomem B-102 dectvt Eotctdr-18.592(ry)1368423(2)6.56299( e)1.963522(w)2.40434(a)1.96262(sa)1.2.43438a aed Indvosas u(p)6.5655(e)1.96262(c)1.96262(t)0.441715(r)-13.9969(a)3.27271(76 0 68T-368.848 -2w801 Tm[(e-7.87433(r6.23735(e-7.87433()-1222(M)](r6.23735(e-7.87433(c-4 147672o)6.562992(r6.23735(e)1.962666(r)4.04195(e)48.1181()-124 1592B)-1.19464(oa)3.7133(m)-1222(M)7 )-48.1181(a)124 1592BQ801 Tm4(B)-37.8375(sT6.248492B)-1.19464(of-1.19622(a)124 1592Be)1.96388(m)-48.1181()0.441715(s)0.441715(sa)12022377( )-68.678(s)-1.63761(p)-3.71568(e)1.96262(c)1.96262(t)06.23672o)6.56299(v)-13.947d)-3 14735(t)1201568( )-3 14735(a)1.96262(ra)124 159626.86.23672N)12.6855(g)6.56424(ic( E)-5.7950(o)-3.7801 Tm[(s)g7.676 0 6)2.40434(a)1.960434(a)1.194643a)1.96262(ra))7.00596( )12.6855(g)cera rasaea.56424(icn.56299( )-78.9566(o))12.6842( )-4 .23672orys6(q78.9566(o)u78.9566(o)a.96262(r)-6.23672(e)( E)-5.79u78.9566(o)48.11n)-W3-14.3231(n)l.96388( )0e442382( )1.96262(ra)124 15902o O.-g7.(76 68.6 0 6h.23735(e)1.96266( )x.23735(e)37.8376(w)p.23735(e)o442343(u)6.56362(i)0e7.87433(c)-1302.66( c7.8376(w)6.248492B)--5.7950(o)--5.7950(o)-i.96388( )012022377( ))12.6855(g)124 1592Boa37.8382(B)-3.71568(e1.63761(p)-5.7950(o)--596388( )0)-1302.665-.44238238oer e e2oa37.83832(r)4.0432(a)1.96262(r)1.960434(a)14.3231(n)l.96388( )0u4.3231(n)3.96388( )0g occeryo cgsa1z578.9566(o)6.59955165
8
Solvent kinetic isotope effects and proton inventory - Solvent kinetic isotope effects were
determined by measuring initial velocities with varying CdRP concentrations in either H
2
O or 87
atom% D
2
O. Solvent kinetic isotope effects were performed at pH(D) 8.0 because of the pH plateau
found in the pH-rate profiles, preventing the occurrence of any variations in velocity due to pH
fluctuations. To determine the number of protons responsible for the observed solvent kinetic isotope
effect, we conducted proton inventory studies with 0, 20, 40, 60 and 87 atom% D
2
O.
Data analysis - All data were fitted to the appropriate equations using the nonlinear
regression function of SigmaPlot 2000 (SPSS, Inc).
For the oligomeric state determination, the K
av
value was calculated for each protein using eq
1
K
av
= (V
e
−V
0
)/(V
t
−V
0
) (1)
where V
e
is the elution volume for the protein, V
t
is the total bed volume. K
av
was plotted against the
logarithm of standard molecular weights.
Initial velocity kinetic data for the hyperbolic increase upon substrate concentration was
fitted to eq 2.
v = VA/K+A (2)
The data for temperature effects were fitted to eq 3, where k is the maximal reaction rate, E
a
is the energy of activation, T is the temperature in Kelvin, R is the gas constant (1.98 cal mol
-1
), and
A is a pre-exponential factor that correlates collision frequency and the probability of the reaction
occurring when reactant molecules collide.
log k = (-E
a
/2.3R)(1/T) + log A (3)
9
pH-rate profiles were fitted to eq 4, where y is the kinetic parameter, C is the pH-independent
value of y, H is the proton concentration, and K
a
is the apparent acid dissociation constants for
ionizing groups.
logy = log[C/(1+H/K
a
)] (4)
The kinetic isotope effect data were fitted to eq 5, which describes the effects on both V/K
and on V. F
i
represents the fraction of isotopic label, and E
V/K
and E
V
are the isotope effects minus
one on V/K and on V, respectively.
v = VA/[K(1+F
i
E
V/K
) + A(1+F
i
E
V
) (5)
For eqs 2 and 5, A is the concentration of CdRP, K is the Michaelis constant for CdRP, and V
is the maximum velocity. The notation utilized to express isotope effects is that of Northrop [15].
10
Results and Discussion
Cloning, expression, purification and biophysical characterization of MtIGPS - A fragment
of the expected length for the trpC gene was amplified and successfully cloned into pET-23a(+).
Sequencing of the coding region of trpC proved the identity of the cloned fragment and that no
mutations were introduced by the amplification steps. MtIGPS was expressed in BL21(DE3) STAR,
after 9 hours of growth at 37 ºC without IPTG induction. Homogeneously purified MtIGPS was
obtained in three purification steps, yielding 5 mg of protein from 25 g of cell paste. The MtIGPS
obtained here lacks a His-tag, distinguishing it from the one previously reported [7]. N-terminal
sequencing confirmed the identity of purified MtIGPS, showing that the initial methionine was not
removed. A value of approximately 30,000 Da was estimated by gel-filtration, thereby showing that
MtIGPS is a monomer in solution, as all other monofunctionals IGPS characterized up to date [16-
18].
Chemical Synthesis, purification, spectrometric and spectroscopic properties of CdRP - The
chemical synthesis yielded 76 % CdRP, the best reported so far. To improve CdRP yield, we focused
on solving the instability of CdRP and the incomplete reaction of R5P. To achieve this goal, AA in
excess was used, since the limiting reagent is R5P. Also, only the amount of water needed to
solubilize R5P in the reaction mixture was utilized, since water was a too reactive medium for CdRP
prior to the formation of its barium salt. Instead of ethanol [13], isopropanol was used to solubilize
AA. As described by Doy [12], the stability of CdRP is increased when a CdRP barium salt is
formed. The formation of the barium salt is also the most effective form of purifying CdRP, since
AA and R5P do not precipitate in the presence of barium acetate, and the longer the compound
remains in aqueous solution the more it hydrolyzes generating contaminants, consequently lowering
the yield of the reaction. Washings with three different solvents were employed to remove remaining
11
contaminants in the precipitate. When stored at -20 ºC, in the dark, CdRP showed no decomposition
for at least one year (tested by UV-vis scannings), attesting the stability of the barium salt. In
addition, spectrophotometric scannings showed that no significant decomposition up to 3 hours of
CdRP solubilized in water at pH 4.8 was observed, demonstrating that this chemical compound can
be employed during this time frame. Solutions of CdRP that were not used up to 3 hours were
discarded and fresh solutions were prepared.
Spectrometric studies using electrospray ionization tandem mass at pH 5 (HCl solution)
showed that [CdRP·H]
+
has a molecular mass of 350.0796, in agreement with the predicted
molecular mass of 349.0563 for CdRP, with characteristic fragmentation pattern of m/z of 234, 216,
198, 172, 150, 132. Solid state infrared spectrum showed a large band at 3412 cm
-1
, owing to
hydroxyl groups present in the molecule, and a very weak band at 1714 cm
-1
, indicating that the
more abundant tautomeric form in solid state is the enol rather than the keto form. This finding was
corroborated by the
1
H NMR spectrum recorded in D
2
O, which shows higher values of integration to
signs related to enol form. Hence, the enol tautomer might be considered the major isomeric form of
CdRP in solution under the tested conditions (D
2
O). The presence of an electronic delocalization
among the C-C double bond of the enol, the lone electron pair on the nitrogen and the benzoic ring
may account for this increased stability as compared with the keto tautomer, which has only the
benzoic ring under electronic delocalization (Fig. 2).
A previous work suggested that the CdRP undergoes an enzyme independent tautomerization
from the enol form to the more stable keto form, and this was the foundation for a proposed kinetic
sequence of E. coli phosphoribosyl anthranilate isomerase (PRAI) [19]. Those data should thus be
interpreted with caution, since the results presented here indicate that the enol form is favored in
solution.
12
To expand our knowledge on CdRP properties, spectrofluorimetric experiments were carried
out. Scannings of CdRP in water at different pH values (1.0 - 8.0) demonstrate that CdRP exhibits a
pH-dependent fluorescence change (Fig. 3). Not only the intensity of fluorescence varied, but also its
maximum wavelength emission showed a small hypsochromic shift. CdRP displayed an increasing
fluorescence intensity from pH 1.0 to 2.5 with λ
max
= 434 (Fig. 3A), and reached a plateau from pH
2.5 to 3.5. At pH values larger than 4.0 the fluorescence intensity decreased with a hypsochromic
shift, showing a λ
max
= 422 nm (Fig. 3B). Suspecting that this behavior of CdRP could be explained
by a change in intramolecular hydrogen bond among the carboxyl group and the hydrogen of the
secondary amine, we investigated the behavior of AA moiety of CdRP, conducting the same
spectrofluorimetric experiment with AA. According to these experiments, AA presented an increase
in fluorescence emission from pH 1.0 to 5.0, at which the fluorescence signal reached a plateau.
Southern et al. [20] demonstrated that AA exhibits excited state intramolecular proton transfer
(ESIPT), which could account for the change in fluorescence emission. Molecules that have acidic
and basic groups in close proximity (usually five and six members) and with a suitable geometry
may undergo ESIPT from the acidic moiety to the basic one as a result of a modification on the
acidity/basicity acquired by these groups in excited states [21, 22]. It is thus tempting to suggest that
the ESIPT observed occurs in the AA moiety of CdRP. Fig. 4 proposes a mechanism for CdRP
ESIPT. In more acidic pH (1.0 - 3.5), E
0
(fundamental state) is excited to E
1
(excited state 1), which
undergoes ESIPT generating E
2
(excited state 2), emitting fluorescence and returning to E
0
, which
tautomerizes to generate the ESIPT-sensitive molecule. In E
1
, the acidic character of nitrogen and
the basic character of carboxyl increase, facilitating the proton transfer that characterizes ESIPT
process. In more basic pH (> 3.5), protons are donated to the medium, leading to E
0
*
(a new ground
state), and ESIPT no longer takes place. The primary amine on the ortho position of AA, on the
13
other hand, does not donate its protons to the medium under the pH range analyzed, so the ESIPT
persists. Indeed, it is a common sense that the hydrogen of the secondary amine of CdRP displays an
acid character much higher than the related ones of the primary amine of AA.
Kinetic parameters - Fitting initial velocity data to eq 2 yielded a K
M
= 55.3 ± 9 µM, 10 times
lower than the value previously obtained for MtIGPS [7]. This significant difference in the K
M
value
can be attributed to the fact that, in the previous study, CdRP was not purified prior to enzymatic
assays, and the preparation may have been contaminated with enzyme inhibitors. The latter may be
derived either from unreacted substrates from the chemical synthesis or from hydrolysis of CdRP,
resulting in a larger apparent K
M
value for MtIGPS. E.coli IGPS (EcIGPS) has a K
M
= 1.2 µM [13],
45 times lower than the K
M
determined here for MtIGPS. In spite of the fact that E. coli IGPS is
covalently bound to the previous enzyme in the pathway, PRAI, subunit interaction was not
observed for neither of these enzymes [23], which shows that the low K
M
value cannot be explained
by known quaternary structure features. In agreement, Sulfolobus solfataricus IGPS (SsIGPS), which
is a monofunctional enzyme, has an even lower K
M
value of 0.05 µM [24].
The k
cat
found for MtIGPS was 0.16 ± 0.008 s
-1
, the lower value determined for IGPS as
compared with the values for the enzymes from E. coli (3.6 s
-1
) [23], and S. solfataricus (0.98 s
-1
at
60 °C, the SsIGPS optimum temperature, 0.03 s
-1
at 37 °C) [24]. In addition, the MtIGPS k
cat
/K
M
value of 2.9 × 10
3
M
-1
s
-1
is significantly smaller than those for EcIGPS (3.0 ×10
6
M
-1
s
-1
) and
SsIGPS enzymes (19.6 × 10
6
M
-1
s
-1
at 60 °C and 6.0 × 10
6
M
-1
s
-1
at 37 °C).
Temperature effects - The temperature dependence of k
cat
was evaluated, and fitting data to
equation 3 yielded an activation energy value of 8.4 kcal mol
-1
. Also, the linearity of the Arrhenius
plot demonstrated that there was no change in the rate-limiting step in the temperature range
employed (15-35ºC) (Fig. 5).
14
Solvent kinetic isotope effects and proton inventory - In order to probe for the rate limiting
nature of proton transfer in the MtIGPS-catalyzed reaction, solvent kinetic isotope effect analysis
was carried out (Fig. 6). The
D
2
O
V/K
CdRP
= 1.1 ± 0.1 is insignificant within experimental error, while
the value of
D
2
O
V
CdRP
= 1.6 ± 0.1 is significant, though small. The apparent classical limit for
primary deuterium kinetic isotope effects on the maximal velocity is around 8, although, in a less
rigorous practice, values as low as 2 have sometimes been accepted as evidence of a rate-
determining step. The value obtained here suggestes that any proton transfer occurring in the
reaction course is only modestly rate-limiting, since the
D
2
O
V
CdRP
is smaller than 2 [15]. In addition,
once
D
2
O
V/K
CdRP
is unit, any modestly rate-limiting protonation must be reporting on steps that
follow MtIGPS-CdRP complex formation, which include the chemical steps, possible
isomerizations, and product release. To gather information on the number of protons giving rise to
the observed solvent isotope effetct, a proton inventory on the maximum velocity was performed.
The linear shape of the plot (Fig. 6) indicates that only one proton transfer accounts for the observed
D
2
O
V
CdRP
.
The small solvent kinetic isotope effect observed here is in agreement with a proposed
mechanism for the IGPS reaction [17], which requires aromaticity loss in one of the chemical steps,
thought to be more rate limiting than a single proton transfer, not to mention the possible isotope-
independent steps such as enzyme conformational changes and product release. Furthermore, it
should be pointed out that the observed solvent isotope effect may have contributions from
additional secondary isotope effects, since hydrogens may be replaced by deuterons in acidic
positions of CdRP [14].
pH-Rate profiles - To probe for the role of general acid/base catalysis in the MtIGPS
catalyzed reaction, we investigated the pH-dependence of k
cat
and k
cat
/K
M
in the pH range of 5.5 -
15
8.5. Both pH-dependent parameters displayed a similar profile, with a decrease at the acidic limb
(Fig. 7). Fitting the data to eq 4 yielded an apparent pK
a
of 6.0 ± 0.3 for k
cat
(Fig. 7a) and 6.8 ± 0.6
for k
cat
/K
M
(Fig. 7b), with a slope of 1 for both curves indicating that a single group in each profile
needs to be deprotonated in order to render the enzyme with full activity and binding capacities. The
close apparent pK
a
values suggest that the same group may have been reported in both profiles.
Nonetheless, the apparent pK
a
found for the k
cat
/K
M
profile is close to the value expected for the
phosphate moiety of CdRP [25]. It is unlikely that the apparent pK
a
found in the k
cat
profile be
reporting on the deprotonation of the phosphate moiety of the substrate, since the phosphate group of
CdRP is not thought to play any role in the chemical mechanism of this reaction [17, 26].
Mutagenesis studies [27] carried out with EcIGPS identified amino acid residues essential for
catalysis, and crystal structure determination of EcIGPS and SsIGPS [16, 17] identified the residues
positioned to contact CdRP. One of these residues is Glu163 [27], which is also conserved in SsIGPS
(Glu159) and MtIGPS (Glu168). The deprotonated side chain of this glutamate residue has been
proposed to act as a general base in SsIGPS both for CdRP binding and its conversion to IGP [17].
According to Argyrou and Blanchard [28], the presence of some groups, such as carboxylate groups,
in close proximity may result in an increase of their pK
a
values. Thus, even though the calculated
apparent pK
a
value found in the k
cat
profile (6.0) do not lie in the normal range for ionization of
glutamic acids in the active sites of many enzymes [29], it is tempting to suggest that the pH-rate
profiles presented here might be reflecting the ionization of Glu168 in MtIGPS. Still, more
experiments are required to unambiguously assign which amino acid plays the general base role in
the MtIGPS catalyzed reaction.
A model is proposed to describe a kinetic sequence for MtIGPS (Fig. 8), based on both
experimental data presented here and theoretical assumptions by Cook and Cleland [14], with K
1
=
1.65 × 10
-7
M, representing the acid dissociation constant for E-H, and k
1
CdRP and k
3
representing
16
the pH-dependent association and catalytic rates, respectively, where k
1
= 2.9 × 10
3
M
-1
s
-1
and k
3
=
0.16 s
-1
for MtIGPS in the steady-state conditions employed here.
Summary - In the present work, we described a more efficient chemical synthesis of CdRP, as
well as its spectroscopic and spectrometric characterization. Also, a model for ESIPT was proposed
to explain the pH-dependent fluorescence behavior of CdRP. K
M
and k
cat
values were determined for
MtIGPS, and its substrate specificity was calculated. Solvent kinetic isotope effects and proton
inventory suggested that transfer of a single proton is modestly rate limiting. Accordingly, other
chemical steps, possible conformational changes or product release must account for the energy
barrier of 8.4 kcal mol
-1
determined by the Arrhenius plot. In addition, the existence of acid-base
catalysis was probed by pH-rate profiles on MtIGPS k
cat
and k
cat
/K
M
,
which suggested Glu168 as a
general base that must be deprotonated for binding and catalysis. A model to describe a steady-state
kinetic sequence for MtIGPS was presented. These results are expected to contribute to the
understanding of the role of the tryptophan biosynthesis pathway in the metabolism and biology of
M. tuberculosis.
17
Acknowledgements
This work was supported by Millennium Initiative Program MCT-CNPq, Ministry of Health
– Secretary of Science, Technology and Strategic Materials (SCTIE/DECIT),
PRONEX/FAPERGS/CNPq (Brazil) to DSS and LAB. DSS (304051/1975-06) and LAB
(520182/99-5) are Research Career Awardees from CNPq. CMC is an MSc fellow from CNPq. We
are grateful to Dr. Cristopher Z. Schneider for providing us with genomic DNA of M. tuberculosis
H37Rv, Dr. Gunter Ebeling for his help with CdRP synthesis, Rafael G. Silva, Isabel O. Fonseca and
Marcelo M. Pedroso for insightful contributions.
18
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Switzerland, (2005) WHO/HTM/TB/2005.349.
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Figure legends
Fig. 1. MtbIGPS-catalyzed reaction
20
Fig. 2. Tautomerization of CdRP.
Fig. 3. pH-dependent fluorescence of CdRP. (A) CdRP was solubilized in water from pH 1.0-3.5.
(B) CdRP was solubilized in water from pH 4.0-7.5. All samples had 480 µM of CdRP and were
excited at 350 nm.
Fig. 4. Proposed ESIPT mechanism for CdRP.
Fig. 5. Temperature-dependence of log k
cat
. Varying concentrations of CdRP were employed to
determine k
cat
at each temperature. The line is a fit to equation 3.
Fig. 6. : Solvent isotope effects for MtIGPS. Reaction mix contained either 0 (●) or 87 (■) atom %
D
2
O. Inset represents the proton inventory measured with CdRP at saturating concentrations.
Fig. 7. Dependence of kinetic parameters on pH. (A) pH-dependence of log k
cat
(B) pH-dependence
of log k
cat
/K
m
; both lines are fits to equation 4.
Fig. 8. Proposed kinetic sequence for MtIGPS
1
Abbreviations: TB, tuberculosis; MDR-TB, multi-drug resistant tuberculosis; MtIGPS, indole-3-
glycerol phosphate synthase from Mycobacterium tuberculosis H37Rv; CdRP, 1-(o-
carboxyphenylamino)-1-deoxyribulose 5-phosphate; IGP, indole-3-glycerol phosphate; AA,
anthranilic acid; R5P, Ribose-5-phosphate; EcIGPS, E.coli IGPS; SsIGPS, Sulfolobus solfataricus
21
IGPS; ESI-MS, electronspray-ionization mass spectrometry; ESIPT, excited-state intramolecular
proton transfer; NMR, nuclear magnetic resonance.
21
Capítulo II
The Catalytic Mechanism of Indole-3-Glycerol Phosphate Synthase (IGPS) Investigated by
Electrospray Ionization (Tandem) Mass Spectrometry
Artigo submetido para publicação no periódico Chemical communications em 2007.
1
Tryptophan biosynthesis: mechanism of indole ring closure promoted by indole-3-glycerol
phosphate synthase (IGPS) enzyme
Clarissa M. Czekster,
a
Alexandre A. M. Lapis,*
a,b
Gustavo H. M. F. Souza,
c
Marcos N. Eberlin,
c
Luiz A. Basso,
a
Diógenes S. Santos,
a
Jaïrton Dupont
b
and Brenno A. D. Neto
a
*
a
Centro de Pesquisas em Biotecnologia Molecular e Funcional, Tecnopuc – Pharmacy Department and Pós-graduação em Medicina (Farmacologia
Bioquímica e Molecular) PUCRS – Porto Alegre, RS, Brazil,
b
Laboratory of Molecular Catalysis, IQ-UFRGS – Porto Alegre, RS, Brazil
c
ThoMSon
Mass Spectrometry Laboratory, IQ-UNICAMP – Campinas, SP, Brazil.
Summary. An enzymatic reaction mechanism has been monitored by on-line direct infusion electrospray ionization
(tandem) mass spectrometry. Using this fast and sensitive technique, a key and transient intermediate of Mycobacterium
tuberculosis indole-3-glycerol phosphate synthase (IGPS)-catalyzed reaction has been trapped. The reaction catalyzed by
indole-3-glycerol phosphate synthase is part of the tryptophan biosynthetic pathway, and is not present in mammals,
including humans. This peculiarity renders this enzyme a potential target for the development of biospecific agents with
potential anti-TB activity. Besides, the results indicate the presence of two intermediates instead of one.
Keywords. IGPS, tryptophan, biosynthesis, enzyme, ESI
Introduction
Tuberculosis (TB), caused by Mycobacterium tuberculosis, is the most lethal disease caused by a
bacterium, being a major threat to human health worldwide.
i
Actually, is the most lethal pathogen
among all bacteria.
ii
This bacillus leads to near two million deaths and over eight million cases of
tuberculosis per year.
iii,iv
The only current administered vaccine, BCG, is unable to reduce the
transmission of TB and the protection conferred is in many cases ineffective.
v
TB chemotherapy is
also long-term and has several side-effects.
vi
The understanding of M. tuberculosis key metabolism
by assessing the kinetic and chemical mechanism of specific enzymatic reactions is therefore
important to decipher the mechanisms of virulence and resistance of TB, and to develop new rational
strategies to kill or halt the bacillus.
vii
Enzymes involved in the biosynthetic pathways of the
bacillus, those not used by mammals and whose function is relevant for the pathogen’s life or for
their ability to cause disease, may be excellent targets to new anti-TB agents.
viii
The tryptophan biosynthetic pathway was shown to be essential to the virulence of the pathogen.
iii
The current work investigates the mechanism of the reaction catalyzed by indole-3-glycerol
phosphate synthase (IGPS), the fifth committed step in the biosynthesis of tryptophan in M.
*
Corresponding author. Tel.: 55 51 3320 3512; fax: 55 51 3320 3612; e-mail: brenno.ipi@gmail.com or brenno.neto@pucrs.br.
2
tuberculosis. IGPS is absent in mammals, including humans; hence, this enzyme constitutes a
3
4
substrate 1 (pure and fresh synthesized compound)
xv
via ESI-MS/MS from an aqueous HCl solution
at pH 5 (Figure 2).
132
150
172
198
216
234
332
350
OH O
N
H O
O P O
OH
OH
OH
OH
H
.
- H
2
O
- H
3
PO
4
- H
2
O
- H
2
O
- H
2
O
HO
2
C-Ph-NH=CH
2
+
- CO
2
100 150 200 250 300 350
m/z
Figure 2. ESI(+)-MS/MS of the protonated and pure fresh synthesized IGPS substrate [1+H]
+
. Selected ion of m/z = 350
from ESI(+)-MS experiment.
The tandem mass spectrum of [1+H]
+
shows that the gaseous protonated molecule dissociates by
sequential loses of H
2
O (m/z 332), H
3
PO
4
(m/z 234), H
2
O (m/z 216) and a second H
2
O (m/z 198)
whereas the fragment of m/z 216 loses in turn CO
2
to form the ion of m/z 172. A fragment of m/z 150
attributed to [HO
2
C-Ph-NHCH
2
]
+
is also formed, which loses H
2
O to form the fragment of m/z 132.
ESI(+)-MS monitoring of the chemically mimicked intramolecular cyclization process of 1 to 2 was
then performed (Figure 3). The online monitoring shows that the reaction occurs rapidly at pH 1
(HCl addition), allowing us to try to intercept and characterize by ESI-MS the chemically promoted
Int1 (Figure 3, B), despite severe degradation that was observed at this drastic condition. Above pH
1, the acid promoted reaction fails to occur or was too slow to be monitored on-line by ESI-MS.
5
50
100 150 200 250 300 350
6
100 150 200 250 300 350
149
177
198
216
234
255
332
333
350
m/z
Figure 4. ESI(+)-MS/MS of Int1 during the enzymatic biotransformation promoted by IGPS enzyme at pH 6. Note that
at this pH value no chemically mimicked intramolecular cyclization process take place.
Figure 4 shows the same set of fragments detected for [1+H]
+
, that is, those of m/z 332, 234, 216,
198 (as seen in Figure 2), but new fragment ions that are now predominate, mainly those of m/z 333,
332, 255, 177 and 149. The chemically mimicked reaction showed the same predominant ions. This
drastic change in ESI-MS/MS shows that a new isomeric species is now without doubt present in the
reaction solution; that is, that 1 has been biotransformed, in the presence of IGPS enzyme (at pH 6),
to an isomeric intermediate, most likely Int1. Other important aspect is the detection of substrate 1
now at pH 6, which indicates that the enzyme environment allows easy protonation and further
detection.
The very contrasting set of fragment ions shows that a new isomeric species has been trapped. A lot
of effort trying to rationalize main fragments, particularly that of m/z 255, were performed and we
could not find a reasonable explanation for this intractable ion. It might be a component of the
enzyme preparation or reaction mixture component, however it remains elusive. A complete
rationalization of the fragmentation chemistry of these species was not straightforward, but some key
and very important fragment ions such as those of m/z 177 and 149 clearly show the presence of the
new formed indole ring (Scheme 2). The presence of the indole ring is a very consistence evidence
of Int1 formation during the biotransformation. The ion of m/z 333 is not present in ESI-MS/MS of
compound 1 (Figure 2), likewise NH
3
loss is most likely in Int1.
7
Int 1
N
HO
2
C
O P O
OH
OH
OH
O
H
OH
H
+
m/z 350
m/z 333
m/z 332
m/z 177
m/z 149
- NH
3
- H
2
O
- CO
N
HO
2
C
OH
+
.
Scheme 2. Major fragments of the trapped isomeric specie of m/z 350 during the biotransformation promoted by IGPS.
Note the presence of the indole ring fragment in Figure 4.
In summary, the drastic fragmentation change observed for the protonated molecules of m/z 350 in
the enzymatic experiment points firmly to the on-line interception of the putative enzymatic
intermediate Int1 or another unknown isomeric species that contains an indole ring. This evidence
indicates that the enzymatic biotransformation occurs indeed via a two step mechanism as proposed
herein (Scheme 1). For the first time, therefore, a key information for the mechanism of a major
enzymatic bioreaction has been provided by on-line ESI-MS(/MS) monitoring. As exemplified
herein, for anti-TB agents, the use of this fast and sensitive technique opens up a new avenue for
investigating the mechanism of enzymes biotransformations and hence for the more rational design
of new agents with higher biospecificity. Due to our interest in mass spectrometry
xvii
and biological
systems,
xviii
further studies aiming the elucidation of the kinetic and mechanism of the IGPS
biocatalysis are underway.
Materials and Methods
ESI mass and tandem mass spectra in positive ion modes were acquired using a Micromass
(Manchester – UK) QTof instrument of ESI-QqTof configuration with 7.000 mass resolving power
in the TOF mass analyzer. The following typical operating conditions were used: 3kV capillary
voltage, 20 V cone voltage, dessolvation gas temperature of 100 °C. UV–vis absorption spectra were
taken on a Shimadzu Model UV-1601PC.
8
Acknowledgment
CNPq, FAPESP, CAPES for partial financial support. We also thank Prof. Roxane Sudo (USA) for
the critical reading of the manuscript.
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2006, 47, 6775. (b) Santos, L. S.; Neto, B. A. D.; Consorti, C. S.; Pavam, C. H.; Almeida, W. P.; Coelho, F.; Eberlin
M. N. Dupont, J. J. Phys. Org. Chem. 2006, 19, 731.
(
18
) (a) Neto, B. A. D.; Lapis, A. A. M.; Mancilha, F. S.; Vasconcelos, I. B.; Thum, C.; Basso, L. A.; Santos, D. S.;
Dupont, J. Org. Lett. 2007, 9, 4001. (b) Russowsky, D.; Neto, B. A. D. Tetrahedron Lett. 2003, 44, 2923. (c) Russowsky,
D.; Neto, B. A. D. Tetrahedron Lett. 2004, 45, 1437-1440.
22
PARTE III
23
Discussão
Os resultados discutidos a seguir são relativos ao Capítulo I, que tem o título
“Kinetic characterization of indole-3-glycerol phosphate synthase from Mycobacterium
tuberculosis”, que trata principalmente da caracterização cinética da enzima IGPS e de seu
substrato, o composto CdRP.
Síntese e caracterização do CdRP
Conforme descrito na introdução, um outro grupo de pesquisa realizou uma breve
caracterização da enzima em questão (Yang et. al, 2006), utilizando o composto CdRP
sem prévia purificação. Desejando obter dados cinéticos com uma amostra mais estável e
pura do substrato da enzima, iniciamos nosso trabalho pela síntese e purificação do
substrato. Para tanto, analisamos os protocolos de síntese orgânica já publicados para
este composto e fizemos uma nova combinação de procedimentos. Assim, a reação entre
ácido antranílico e ribose-5-fosfato utilizou o mínimo de água possível, e o restante do
meio reacional foi composto de isopropanol. Após resfriar a reação a 4 ºC, o CdRP foi
isolado em uma fase mais densa, que foi lavada com diferentes solventes para retirar
possíveis contaminantes do meio reacional. Esta fração, após a lavagem, foi precipitada
com acetato de bário já que, conforme descrito por
24
Após a obtenção de um sal estável do composto, realizamos sua caracterização
espectroscópica e espectrométrica. Utilizando o CdRP em pó, analisamos seu espectro de
infravermelho, podendo concluir que o tautômero mais estável nestas condições é o enol
(FIGURA 3).
CETO ENOL
Figura 3: Tautômeros do composto CdRP.
Para que pudéssemos obter o espectro de 1H RMN do CdRP, foi necessário torná-
lo um sal de sódio, que possui uma solubilidade significativamente maior do que a do sal
de bário, pois era necessário obter uma solução bastante concentrada de CdRP em D
2
O.
O espectro obtido também demonstrou que a forma tautomérica predominante em solução
é o enol, evidenciado pela ausência de picos característicos de hidrogênios próximos a
cetonas.
A maior estabilidade do enol já era esperada, tendo em vista que esta forma possui
uma deslocalização eletrônica mais elevada, o que lhe confere maior estabilidade. No
enol, temos um sistema π estendido mais significativo do que no tautômero ceto, pois o
sistema de elétrons do benzeno está em ressonância com o par de elétrons não-ligantes
do nitrogênio e com a ligação dupla C=C do enol. Na forma ceto, no entanto, só estão
deslocalizados os elétrons do benzeno (Vollhardt e Schore, 2005).
HO O
N
H O
O P
O
OH
O
OH
OH
HO O
N
H OH
O P
O
OH
O
OH
OH
25
A análise espectrométrica utilizando espectrometria de massas em tandem com
ionização por spray de elétrons (electrospray ionization tandem mass), em pH 5 (ajustado
com HCl) demonstrou que [CdRP·H]
+
possui um peso molecular de 350.0796, de acordo
com a massa molécula prevista de 349.0563 do CdRP, com um padrão de fragmentações
características.
Com a realização da titulação ácido-base do CdRP, identificamos um pK
a
próximo a
6.4, que pode ser atribuído a um dos hidrogênios do grupamento fosfato do CdRP
(Petrucci e Harwood, 1993).
Para expandir o conhecimento disponível sobre o substrato da IGPS, realizamos
experimentos de espectrofluorimetria. Nossos resultados indicam que o CdRP possui uma
fluorescência dependente do pH (Figura 1, artigo). Esta fluorescência foi atribuída à
transferência de prótons no estado excitado, ESIPT (excited state intramolecular proton
transfer) apresentada pela molécula em pH abaixo de 4.0. Quando o ESIPT ocorre, a
molécula no estado fundamental (E
0
), absorve energia, gerando o primeiro estado excitado
(E
1
). E
1
, por sua vez, sofre o ESIPT gerando o segundo estado excitado (E
2
), que emite
fluorescência. E
2
sofre uma tautomerização e regenera E
1
, para que o processo possa se
repetir.
Em pH mais básicos do que 3.5, a ponte de hidrogênio intramolecular existente
entre a carboxila e o hidrogênio da amina secundária deixa de existir, de modo que o
ESIPT não mais ocorre (E
0
*). A não ocorrência do ESIPT explica a alteração na
intensidade e comprimento de onda de emissão máximo da molécula. O esquema 1
apresenta uma proposição de como o ESIPT pode afetar a emissão de fluorescência do
CdRP.
26
HO O
N
H
2
C
H
O
O P
OH
OH
O
OH
OH
R =
R
E
0
E
1
E
2
E
2
HO O
N
H
R
Absorption
Fluorescence
Emission
HO O
N
R
H
HO O
N
R
H
ESIPT
Excited
State
Tautomerization
Fundamental
State
Larger pH values
(no fluorescence)
N
R
E
0
*
OO
Esquema 1: Mecanismo do ESIPT sofrido por CdRP. E
0
, estado fundamental; E
1
, primeiro
estado excitado; E
2
, segundo estado excitado; E
0
* molécula no estado fundamental que
não pode sofrer ESIPT.
27
Purificação e caracterização biofísica da enzima
O protocolo de purificação utilizado aqui difere daquele já publicado para esta
enzima (Yang et. al, 2006), e a diferença de rendimento pode ser atribuída à ausência de
cauda de histidina no presente estudo. A enzima purificada foi submetida ao
seqüenciamento N-terminal, que demonstrou a identidade da proteína além de mostrar
que a metionina inicial não havia sido removida.
A análise do estado oligomérico indicou que a MtIGPS é um monômero em solução,
nas condições empregadas, de forma análoga a todas as demais IGPS caracterizadas até
a data.
Parâmetros cinéticos
O valor de K
M
encontrado neste trabalho (55 µM) difere consideravelmente daquele
disponível na literatura (500 µM; Yang et. al, 2006), possivelmente devido ao fato de que,
naquele estudo, o substrato da enzima foi utilizado sem prévia purificação e contaminantes
presentes podem ter superextimado o valor do K
M
.
O k
cat
encontrado aqui também é menor do que o das outras enzimas
caracterizadas até então; a constante de especificidade da MtIGPS também foi menor em
comparação a outras IGPS mostrando que a MtIGPS é menos específica para o substrato
CdRP do que estas enzimas.
Efeitos de temperatura
Para determinar a energia de ativação da reação catalisada pela MtIGPS,
determinamos a dependência do k
cat
em diferentes temperaturas. Após a elaboração de
28
um gráfico de Arrhenius (Figura 2 do artigo), foi possível calcular uma energia de ativação
de 8.4 kcal.mol
-1
e verificar que não houve mudança de etapa lenta da reação na faixa de
temperatura investigada.
Efeitos isotópicos cinéticos de solvente e inventário de prótons
Para verificar se alguma etapa de transferência de prótons é limitante para a
velocidade, estudos de efeitos isotópicos de solvente foram realizados. O inventário de
prótons determinou quantos prótons estavam originando o efeito isotópico encontrado.
Com estes estudos, verificamos que a transferência de um único próton do solvente é
modestamente limitante nas etapas que se seguem à formação do complexo MtIGPS-
CdRP, que incluem a etapa química, possíveis isomerizações e liberação dos produtos
(Figura 3 do artigo).
Perfis de pH
Desejando investigar a presença de catálise ácido-base na reação catalisada pela
IGPS, analisamos os perfis de pH para a constante catalítica (k
cat
) e para a constante de
especificidade (k
cat
/K
M
). Nossos resultados indicam que um único resíduo deve estar
desprotonado tanto para que a formação do complexo CdRP-IGPS (pK
a
encontrado no
perfil de k
cat
/K
M
, Figura 4B do artigo), quanto para que a reação ocorra (pK
a
encontrado
perfil de k
cat
, Figura 4A do artigo). Como os pK
a
aparentes encontrados em ambos os
perfis são bastante próximos, nós sugerimos que eles sejam relativos ao mesmo resíduo
de aminoácido da enzima.
Apesar do CdRP possuir um pK
a
próximo ao encontrado por nós (6.4) para seu
grupamento fosfato, é bastante improvável que nossos perfis de pH sejam relativos à
29
desprotonação do CdRP. Esta conclusão pode ser tirada se analisarmos o perfil de pH na
constante catalítica, que reflete os eventos que ocorrem após a formação do complexo
binário, até a primeira etapa irreversível (que pode ou não ser a liberação do produto,
IGP). Os trabalhos até hoje descritos sobre a reação catalisada por esta enzima
corroboram esta conclusão, pois não fazem nenhuma menção de que o grupamento
fosfato possua qualquer importância catalítica. Assim, podemos concluir que um
grupamento da enzima deva estar desprotonado para que a enzima possua total atividade
e capacidade de ligação.
Reunindo os dados obtidos aqui com informações da literatura (Darimont et.al,
1998; Hennig et.al, 2002), sugerimos que o resíduo de aminoácido que deva estar
desprotonado para que a enzima possua total atividade e capacidade de ligação possa ser
o Glu168 da MtIGPS, já que em outros trabalhos este resíduo foi apontado como agindo
como uma base geral, necessitando estar desprotonado tanto para a ligação do CdRP
quanto para a ocorrência de catálise.
Propomos uma seqüência cinética (Esquema 2) baseada nos dados experimentais
apresentados aqui e em proposições teóricas de Cook e Cleland (2007).
E-H E E-CdRP
H/K
1
k
1
CdRP
k
2
k
3
Esquema 2: Modelo proposto para descrever uma seqüência cinética plausível para
MtIGPS, onde K
1
= 1.65 × 10
-7
M, representa a constante de dissociação ácida para EH, e
k
1
CdRP e k
3
representam as taxas de associação e dissociação dependentes do pH,
respectivamente.
30
Os resultados discutidos a seguir são relativos ao Capítulo II, que tem o título “The
Catalytic Mechanism of Indole-3-Glycerol Phosphate Synthase (IGPS) Investigated by
Electrospray Ionization (Tandem) Mass Spectrometry”, que trata da identificação de um
intermediário na reação catalisada pela MtIGPS.
Mecanismo químico da IGPS
Os trabalhos cinéticos experimentais disponíveis sobre a reação catalisada pela IGPS
foram realizados em E. coli. Valendo-se de dados estruturais, um mecanismo catalítico foi
proposto para a IGPS de Sulfolobus solfataricus (Hennig et.al, 2002; Parry, 1972)
propondo a existência de dois intermediários no mecanismo químico da reação (FIGURA 4
A). Um estudo in silico sugeriu a presença de apenas um intermediário para a reação
(Mazumder-Shivakumar, Kahn e Bruice, 2004; FIGURA 4 B), de modo que estabeleceu-se
um impasse sobre a natureza dos intermediários.
Figura 4: Intermediários propostos para a reação catalisada pela IGPS. (A) Conforme
proposto por Hennig et.al (2002), a reação passa por dois intermediários, sendo que para
OPO
3
OH
OH
R =
A
N
H
O O
O R
CO
2
IGP
H
2
O
N
H
R
CdRP
Intermediário 1
Intermediário 2
CdRP
Intermediário 2
IGP
N
H
O O
O R
H
CO
2
N
H
OH
R
H
H
H
2
O
N
H
R
B
N
OH
R
H
H
H
N
OH
R
H
H
H
C
OO
31
a formação do intermediário 1 é necessária a perda da aromaticidade da molécula
(Intermediário 1), que é restituída com a saída do CO
2
. Porém, de acordo com Mazumder-
Shivakumar e Bruice (B), as etapas que antecedem a perda do CO
2
ocorrem de forma
concertada, originando apenas o Intermediário 2.
Experimentos de espectrofotometria
Quando monitoramos a reação catalisada pela MtIGPS realizando varreduras
compreendendo a faixa de 230 – 500 nm, no espectrofotômetro, foi possível visualizar o
consumo do substrato, CdRP e a formação do produto da reação, o IGP (Figura 1A,
artigo). Porém, ao deconvoluirmos os picos, para relacionarmos o quanto de substrato
estava sendo consumido e o quanto de IGP estava sendo formado, notou-se uma
diferença entre as taxas (Figura 1B, artigo). Enquanto no primeiro minuto de reação o
substrato estava sendo consumido a uma velocidade perceptível, não foi observada
formação de produto. Isso nos permite sugerir que, neste intervalo de tempo, alguma
estrutura que não o substrato nem o produto estaria se formando, e esta poderia ser
identificada como um intermediário de reação. Porém, estes dados espectrofotométricos
são apenas qualitativos, ou seja, eles indicam a existência de um intermediário reacional,
mas não é possível inferir nenhuma estrutura a partir desses dados. Para que uma
identificação estrutural deste possível intermediário ocorresse, outra técnica teve de ser
utilizada: a espectrometria de massas.
Determinação de intermediários reacionais por espectrometria de massas
Inúmeros trabalhos sobre a identificação de intermediários reacionais por
espectrometria de massas estão disponíveis na literatura (Eberlin, 2007). No entanto,
32
quando a reação envolve catálise enzimática, apenas um trabalho, realizado com a enzima
EPSP sintase foi realizado (Paiva et.al, 1997).
Diversos obstáculos se apresentam quando a presença de uma enzima faz-se
necessária. Por exemplo, é necessário que a reação seja realizada em água ou em um
tampão volátil, situação nem sempre passível de realização. Além disso, a enzima deve
ser estável o suficiente para permitir a realização dos ensaios, e não pode degradar-se
antes de ser injetada no aparelho. Também os intermediários devem possuir algumas
características, como serem carregados e estáveis o suficiente para permitirem sua
identificação.
Assim, neste trabalho, fizemos uso da técnica de espectrometria de massas para
interceptar um dos intermediários da reação catalisada (o)11.1634( )-3.71693(a)83(s)6.564.040(ã)-9.396M aloc çãotçega dttrr
Ao nc éco asrm e.al d ho a 0.441715a cão
33
Figura 5: Espectros de ESI-MS/MS obtidos para (A) CdRP, (B) IGP, (C) Intermediário 1.
Tendo obtido estes resultados, foi possível identificar, na figura 5C, o sinal de m/z =
177, referente a uma fragmentação bastante característica do Intermediário 1. O esquema
3 indica como as fragmentações observadas tiveram origem, corroborando nossa
conclusão de que ocorreu a formação do intermediário 1.
Int 1
N
HO
2
C
O P O
OH
OH
OH
O
H
OH
H
+
m/z 350
m/z 333
m/z 332
m/z 255
m/z 177
m/z 149
- NH
3
- H
2
O
- CO
2
- NH
2
OH
- CO
N
HO
2
C
OH
+
.
Esquema 3: Seqüência de fragmentações sofridas pelo Intermediário 1.
132
150
172
198
216
234
332
350
OH O
N
H O
O P O
OH
OH
OH
OH
H
.
- H
2
O
- H
3
PO
4
- H
2
O
- H
2
O
- H
2
O
HO
2
C-Ph-NH=CH
2
+
- CO
2
100 150 200 250 300 350
m/z
111
199
287
269
182
217
232
100 150 200 250 300 350
149
177
198
216
234
255
332
333
350
m/z
A
B
C
m/z
34
Com a realização deste experimento, foi possível concluir que a reação catalisada
pela MtIGPS segue o mecanismo químico proposto por Parry (1972), que envolve a
formação do Intermediário 1, identificado no presente trabalho.
Os resultados apresentados e interpretados aqui possibilitaram aumentar o
conhecimento sobre a reação catalisada pela MtIGPS, seu mecanismo químico e
catalítico, etapas fundamentais para um entendimento mais amplo a cerca da via de
biossíntese do triptofano em M. tuberculosis. Estes resultados também representam um
passo relevante para a compreensão da biologia deste bacilo e de uma de suas vias
anapleróticas.
35
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