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UNIVERSIDADE DE PASSO FUNDO
FACULDADE DE AGRONOMIA E MEDICINA VETERINÁRIA
PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM AGRONOMIA
CARACTERIZAÇÃO DO PADRÃO MOLECULAR E
DE VIRULÊNCIA DE ISOLADOS DE Pyricularia
grisea DO TRIGO
MARIA FERNANDA ANTUNES DA CRUZ
Dissertação apresentada ao Programa
de Pós-graduação em Agronomia da
Faculdade de Agronomia e Medicina
Veterinária da UPF, para obtenção do
título de Mestre em Agronomia-Área
de Concentração em Fitopatologia.
Passo Fundo, fevereiro de 2008.
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ii
UNIVERSIDADE DE PASSO FUNDO
FACULDADE DE AGRONOMIA E MEDICINA VETERINÁRIA
PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM AGRONOMIA
CARACTERIZAÇÃO DO PADRÃO MOLECULAR E
DE VIRULÊNCIA DE ISOLADOS DE Pyricularia
grisea DO TRIGO
MARIA FERNANDA ANTUNES DA CRUZ
Orientador: Prof. Dr. Ariano Morais Prestes
Co-orientador: Dr. João Leodato Nunes Maciel
Dissertação apresentada ao Programa
de Pós-graduação em Agronomia da
Faculdade de Agronomia e Medicina
Veterinária da UPF, para obtenção do
título de Mestre em Agronomia-Área
de Concentração em Fitopatologia.
Passo Fundo, fevereiro de 2008.
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iii
iv
ESTE TRABALHO É DEDICADO
• A minha mãe, Maria das Graças Antunes da Cruz, pelo
exemplo de coragem e determinação que norteia minha vida;
• A minha vovó, Lucinda A. da Cruz, pelo carinho, amor e
dedicação exclusiva todos esses anos.
v
AGRADECIMENTOS
• À Universidade de Passo Fundo pela formação acadêmica;
• À CAPES pela concessão da bolsa de estudos;
• À Embrapa Trigo pela disponibilização da infra-estrutura;
• Ao Dr. Ariano Morais Prestes, pela orientação, paciência e
carinho dispensado comigo todos esses anos;
• Ao Dr. João Leodato Nunes Maciel, pela co-orientação,
colaboração e empenho para a realização deste trabalho;
• A minha família, pelo incentivo;
• Aos meus amigos de verdade, com os quais posso contar em
todo o momento e que mesmo longe não deixam de fazer parte
da minha história, Andréia Caverzan, Clarissa Dalmagro,
Caroline Garcez, Geovana Wallendorff, Tatiana P. Rodrigues,
Felipe e Jordana Beux, Raquel Pirã e Vagner Albuquerque;
• Aos funcionários da Embrapa Trigo, que fizeram parte do meu
crescimento pessoal e profissional;
• E a todos aqueles que confiaram em mim, e acreditaram no
meu esforço e resignação para a realização do trabalho.
vi
SUMÁRIO
Página
Lista de Tabelas........................................................................... viii
Lista de Figuras........................................................................... x
RESUMO..................................................................................... 11
ABSTRACT................................................................................ 12
1 INTRODUÇÃO....................................................................... 14
2 REVISÃO DE LITERATURA................................................ 17
2.1 O Trigo................................................................................. 17
2.1.1 O Trigo no Brasil............................................................. 19
2.1.2 O Trigo sintético.............................................................. 22
2.2 O fungo Pyricularia grisea..................................................
vii
VIRULÊNCIA DE ISOLADOS DE Pyricularia grisea E
REAÇÃO DE GENÓTIPOS DE TRIGO À
BRUSONE....................................................................................
50
RESUMO..................................................................................... 50
ABSTRACT................................................................................. 51
1 INTRODUÇÃO........................................................................ 53
2 MATERIAL E MÉTODOS...................................................... 57
2.1 Isolados................................................................................ 57
2.2 Genótipos............................................................................. 58
2.3 Preparação do inóculo........................................................... 59
2.4 Inoculação............................................................................. 61
2.5 Avaliações............................................................................. 61
2.6 Análise estatística................................................................. 63
3 RESULTADOS E DISCUSSÃO.............................................. 65
4 CONCLUSÕES........................................................................ 84
CAPÍTULO II.............................................................................. 85
PADRÃO MOLECULAR E DE VIRULÊNCIA DE
ISOLADOS DE Pyricularia grisea DO TRIGO ........................
85
RESUMO.................................................................................... 85
ABSTRACT..................................................................................
86
1 INTRODUÇÃO........................................................................ 88
2 MATERIAL E MÉTODOS....................................................... 90
2.1 Isolados.................................................................................. 90
2.2 Cultivo de isolados para produção de micélio....................... 92
2.3 Extração do DNA...................................................................
92
2.4 Otimização da reação PCR de microssatélites.......................
93
2.5 Genotipagem dos isolados com marcadores microssatélites 95
2.6 Análise estatística.................................................................. 98
3 RESULTADOS E DISCUSSÃO............................................... 99
4 CONCLUSÕES........................................................................ 110
CONSIDERAÇÕES FINAIS....................................................... 111
REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS......................................... 112
viii
LISTA DE TABELAS
Tabela
CAPÍTULO I
Página
1 Relação de isolados monospóricos de Pyricularia
grisea utilizados no experimento. Embrapa Trigo,
Passo Fundo, RS. 2007
58
2
Relação de genótipos utilizados no experimento na
fase de planta jovem. Embrapa Trigo, Passo Fundo,
RS. 2007
60
3 Chave de identificação de patótipos de P. grisea a
partir da reação diferencial de 14 genótipos de
trigo. Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS. 2007
68
4 Agrupamento dos 70 genótipos de planta jovem de
acordo com a similaridade dos dados de severidade
para os 18 isolados testados. Embrapa Trigo, Passo
Fundo, RS. 2007
70
5
Severidade de brusone na espiga de 12 genótipos
de trigo, submetidos à inoculação com 18 isolados
monospóricos de Pyricularia grisea. Embrapa
Trigo, Passo Fundo, RS, 2007
73
6
Severidade de brusone na folha bandeira de 12
genótipos de trigo, submetidos à inoculação com
18 isolados monospóricos de Pyricularia grisea.
Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS. 2007
74
7
Coeficientes de determinação e correlação dos
dados de severidade na espiga e folha bandeira
por genótipo em relação a todos os isolados de
Pyricularia grisea testados. Embrapa Trigo,
Passo Fundo, RS. 2007
77
ix
8
Coeficientes de determinação e correlação dos
dados de severidade na espiga e folha bandeira
por isolado de Pyricularia grisea em relação a
todos os genótipos testados. Embrapa Trigo,
Passo Fundo, RS. 2007
77
CAPÍTULO II
1 Relação de isolados monospóricos de Pyricularia
grisea utilizados no experimento. Embrapa Trigo,
Passo Fundo, RS. 2007
91
2 Primers e suas respectivas seqüências utilizadas
para amplificação do DNA dos isolados de
Pyricularia grisea. Embrapa Trigo, Passo Fundo,
RS. 2007
94
3 Concentrações dos reagentes utilizados nos
diferentes mixes para reação de PCR de otimização
dos primers. Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS.
2007
95
4 Concentrações dos reagentes para as reações de
PCR analisados no seqüenciador automático.
Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS. 2007
97
5 Seqüências de DNA de Pyricularia grisea
amplificadas em seqüenciador automático a partir
de 8 primers microssatélites. Embrapa Trigo, Passo
Fundo, RS. 2007
102
x
LISTA DE FIGURAS
Figura Página
1 Conídios e conidióforos de Pyricularia grisea. 26
2 Ascas e ascósporos de Magnaporthe grisea. 27
CAPÍTULO I
1 Tipos de lesões de Pyricularia grisea em trigo.
(A) Lesões tipo 1 (a) e 2 (b), coloração
amarronzada e não esporulativas. (B) Lesão tipo
4, manchas elípticas com centro discernível
esporulativas. Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS.
2007.
62
2
Dendrograma baseado na reação de 70 genótipos
de trigo submetidos à inoculação com 18 isolados
monospóricos de Pyricularia grisea. Embrapa
Trigo, Passo Fundo, RS. 2007.
67
3
Dendrograma baseado na similaridade dos dados
de severidade dos 70 genótipos de trigo,
submetidos à inoculação com 18 isolados
monospóricos de Pyricularia grisea. Embrapa
Trigo, Passo Fundo, RS. 2007.
69
4 Severidade de brusone em folha jovem e espiga
de 12 genótipos de trigo submetidos à
inoculação com 18 isolados monospóricos de
Pyricularia grisea. Embrapa Trigo, Passo
Fundo, RS. 2007.
75
5 Severidade de brusone em folha bandeira e
folha jovem de 12 genótipos de trigo
submetidos à inoculação com 18 isolados
monospóricos de Pyricularia grisea. Embrapa
Trigo, Passo Fundo, RS. 2007.
76
xi
6 Severidade em folha bandeira e espiga de 12
genótipos de trigo submetidos à inoculação com
18 isolados monospóricos de Pyricularia grisea.
Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS. 2007.
78
CAPÍTULO II
1
Amplificação do DNA dos isolados: (1) Py 5001,
(2) Py 5002, (3) Py 5003, (4) Py 5005, com os
primers (A) MGM01, (B) MGM21 e (C) PG05.
Gel de agarose 3% corado com brometo de
etídio. Marcador molecular Ladder 100 pb (M).
Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS. 2007.
100
2 Análise do perfil de amplificação dos genótipos
(A) Py 5001,(B) Py 5020, e (C) Py 3.3.1 com os
primers MGM21 e M13F1 (marcado com 6-
FAM). O número ao lado de cada pico indica o
ta5208 Td(F)Tj6.25197 0 Td(A)Tj8.0(t)Tj3.1A
11
CARACTERIZAÇÃO DO PADRÃO MOLECULAR E DE
VIRULÊNCIA DE ISOLADOS DE Pyricularia grisea DO TRIGO
Maria Fernanda Antunes da Cruz
1
, Ariano Morais Prestes
2
&
João Leodato Nunes Maciel
3
RESUMO- A brusone do trigo causada pelo fungo Pyricularia grisea
(Cooke) Sacc., foi relatada no Brasil, na década de 80 no estado do
Paraná. Desde então, os programas de melhoramento de trigo buscam
a identificação de fontes de resistência à doença e estudar a
variabilidade do patógeno. Os objetivos do presente trabalho foram: a)
determinar o padrão de virulência de 18 isolados de P. grisea quando
inoculados sobre 70 genótipos de trigo em planta jovem; b) verificar o
grau de resistência de genótipos de trigo, comum e sintético, em dois
estádios de desenvolvimento; c) correlacionar os resultados dos dois
estádios de desenvolvimento; d) determinar o padrão molecular de 31
isolados de P. grisea do trigo. A análise do padrão molecular dos 31
isolados monospóricos de P. grisea a partir de 8 lócus microssatélite,
e o padrão de virulência de 18 desses isolados quando inoculados
sobre 70 genótipos de planta jovem de trigo, permitiram a formação
de 4 e 3 grupos de isolados com no mínimo 75% de similaridade entre
si. Os isolados se mostraram homogêneos para ambas as variáveis.
1
Bióloga, mestranda do Programa de Pós-graduação em Agronomia (PPGAgro) na
FAMV/UPF, área de concentração Fitopatologia
2
Orientador, Eng.-Agr., PhD., Professor do Programa de Pós-graduação em
Agronomia (PPGAgro) na FAMV/UPF
3
Co-orient
12
Com exceção do isolado Py 5002 que apresentou um padrão de
virulência diferente dos demais (32% de similaridade) em contraste ao
padrão molecular (95% de similaridade). Na fase de planta jovem
destacaram-se quanto a reação de resistência e menor área foliar
afetada os genótipos BRS 229, BRS 179, CNT 8, BRS 120, BRS
Buriti. Em planta adulta, o cultivar CNT 8 apresentou menor área de
espiga afetada (<10%), que não diferiu estatisticamente de PF 844001.
Já em folha bandeira, os genótipos de trigo sintético NE 20156-B, PF
844001, PF 964009, PF 804002 apresentaram menor área foliar
afetada, e não diferiram estatisticamente do cultivar CNT 8. A
correlação entre infecção na folha bandeira e na espiga foi de 54%. Os
dados obtidos indicam a existência de genes diferentes expressos nos
diferentes estádios de desenvolvimento e partes da planta.
Palavras-chave: variabilidade genética e fenotípica, resistência
planta jovem, resistência planta adulta, brusone
CHARACTERIZATION OF MOLECULAR PATTERN AND
VIRULENCE OF Pyricularia grisea ISOLATES WHEAT
ABSTRACT- Wheat blast caused by Pyricularia grisea, was
described in Brazil in the 80
th
, in Parana State. Since then, the wheat
breeding programs have searched for sources of resistance to blast,
and try to understand the pathogen variability. The gols of this work
were: a) to determine virulence pattern of 18 isolates of P. grisea
based on the inoculation reaction of 70 young wheat genotypes, b) to
verify the resistance level to blast of synthetic and common wheat
13
genotypes at young and adult plant stages, c) to relation the results of
both stages d) to determine the molecular pattern of 31 P. grisea
isolates. The molecular pattern of the 18 monosporic isolates of P.
grisea based on 8 loci microsatellites presented 75% of similarity
among isolates. The molecular and virulence pattern were similar
based on the results of 70 wheat seedling inoculation. Exception was
observed with Py 5002 isolate. This isolate molecular pattern didn’t
match with other isolates, presenting 32% of similarity. The genotypes
BRS 229, BRS 179, CNT 8, BRS 120, BRS Buriti, presented better
performance in young plant compared to the others genotypes. The
synthetic wheat adult genotypes (NE 20156-B, PF 844001, PF
964009, PF 804002) and cultivar CNT 8 presented less leaf and head
infected area by blast. There was 54% of correlation index between
flag leaf and head was 54%. The data obtained in this research
indicated the at existence different resistance genes are expressed in
different physiological stages of wheat the plant.
Key words: genetic and phenotypic variability, seedling resistance,
adult resistance, blast wheat
14
1 INTRODUÇÃO
A brusone causada pelo fungo Pyric1 0 Td(u)Tj5.6508276 62dp gse
15
caracterizados por loci quantitativos (QTL- Quantitative Trait Loci)
são capazes de tornar a resistência à brusone do arroz mais durável
(PRABHU & FILIPPI, 2006). Porém, em relação à brusone do trigo,
que ainda não houve a identificação de genes de resistência de efeito
maior nos cultivares disponíveis no mercado, a alternativa é trabalhar
com genes de efeito menor. A resistência raça não específica através
da identificação dos loci envolvidos na expressão desta característica,
e a recombinação entre os genótipos de trigo com algum nível de
resistência à doença, pode ser uma estratégia para os programas de
melhoramento de trigo que visam resistência à brusone.
A busca por genótipos que possuam diferentes genes de
resistência à brusone não deve se restringir a Triticum aestivum L.
Outras espécies afim ao trigo cultivado como por exemplo Triticum
tauschii (Aegilops squarrosa), doadora do genoma DD do trigo
hexaplóide, aparece como promissora fonte de resistência à doença. A
recombinação interespecífica entre Triticum tauschii (2n=14=DD) e
Triticum durum (2n=28=AABB) é capaz de gerar híbridos
hexaplóides sintéticos com a qualidade panificadora de T. aestivum e
com a resistência a doenças, do T. tauschii. Essa técnica permite a
reconstituição natural de espécies hexaplóides e é também uma forma
de transmitir características desejáveis de T. tauschii para o nível
hexaplóide do trigo. Além disso, os marcadores moleculares utilizados
com sucesso para identificação de populações de Pyricularia grisea
do arroz, também poderão ser úteis na caracterização e no
monitoramento do patógeno nas principais regiões tritícolas do País
que, invariavelmente sofrem com os danos provocados pela brusone.
Os objetivos do presente trabalho foram: a) determinar o padrão de
16
virulência de 18 isolados de Pyricularia grisea quando inoculados em
70 genótipos de trigo no estádio 14 (4 folhas) da escala de Zadoks et
al. (1974); b) verificar se há diferença entre genótipos de trigo comum
e sintético nos estádios 14 e 60,61 (início da antese) da escala de
Zadoks et al. (1974) quanto ao grau de resistência; c) correlacionar os
dados de ambos os estádios; d) determinar o padrão molecular de 31
isolados de P. grisea do trigo.
17
2 REVISÃO DE LITERATURA
2.1 O trigo
O trigo, Triticum aestivum L., pertence à família Poaceae,
tribo Triticeae, subtribo Triticinae. As diferentes espécies de
trigo,formam uma série poliplóide, com número básico de
cromossomos igual a sete e três níveis de ploidia: di, tetra e
hexaplóides com 14, 28 e 42 cromossomos, respectivamente. Estudos
indicam que as espécies diplóides tiveram uma origem única, já os
tetraplóides são anfiplóides, com dois conjuntos de cromossomos,
derivados de ancestrais diplóides diferentes. As espécies hexaplóides
com três conjuntos distintos de cromossomos, apresentam dois
derivados de um trigo tetraplóide (provavelmente T. turgidum) e um
derivado de um trigo diplóide (T. tauschii). O genoma A é proveniente
da espécie T. monococcum e o genoma D originário da espécie T.
tauschii, conforme diagrama:
?? BB x AA (Triticum monococcum)
↓
F1 AB
↓ ← duplicação do número de cromossomos
AABB (Triticum turgidum)
↓
AABB x DD (T. tauschii)
↓
F1 ABD
↓ ← duplicação de cromossomos
AABBDD (T. aestivum) Federizzi et al. (1999a)
18
A área geográfica de distribuição e domesticação do trigo
coincide com o local e tempo do início da civilização do homem e
início da agricultura As antigas cidades e civilizações, como
Babilônia, da Grécia, de Creta, do Egito e de Roma foram baseadas na
cultura do trigo (FEDERIZZI et al., 1999b). O trigo é um dos
principais cereais da alimentação humana, consumido direta ou
indiretamente por 35% da população humana. Estimativas revelam
que em 2020, sejam consumidas no mundo um bilhão de toneladas de
trigo, pois para atender essa procura pelo grão, seria necessário passar
de um rendimento em torno de 2,500 toneladas por hectare a 4,500
toneladas por hectare, sendo necessário para isso um aumento no
rendimento de 2,5% ao ano (BACALTCHUK & SILVA, 2001).
A agricultura propiciou tanto o desenvolvimento humano,
quanto de microrganismos patogênicos às diferentes culturas, ou seja,
um processo de co-evolução que gerou variabilidade nas populações
vegetais e de microrganismos. Dessa forma, as doenças
acompanharam a evolução do trigo e são responsáveis por
consideráveis perdas nessa cultura. Conforme Bacaltchuk & Silva
(2001), o homem com o cultivo da terra, provocou um desequilíbrio
ecológico, extensas áreas cultivadas com uma mesma espécie vegetal,
selecionaram espécies de patógenos especializados em atacar a
cultura, com o objetivo único de perpetuação da espécie.
Os fatores que costumam afetar o desenvolvimento das
doenças em trigo são: condições climáticas, a base genética do
cultivar e a virulência do patógeno. Em relação à base genética dos
19
genótipos de trigo utilizados, inúmeros são os esforços dos
melhoristas vegetais na construção de novos genótipos que agreguem
características agronômicas desejáveis ao mercado consumidor e que
apresentem alguma forma de resistência às principais doenças que
afetam a cultura.
2.1.1 Trigo no Brasil
No Brasil, o cultivo de trigo teve início em 1534 quando os
navegantes portugueses que aqui chegaram trouxeram sementes que
foram distribuídas na antiga Capitania de São Vicente, de onde a
cultura se espalhou por toda a capitania, da ilha de Marajó ao extremo
sul. Há quatrocentos anos, o trigo rústico dourou a região tropical e
quente do norte brasileiro, mais tarde, atingiu as colinas de
Piratininga, para se estender, finalmente até as serras e coxilhas
gaúchas (CUNHA, 2001).
Segundo Mundstock (1999), a expansão do trigo no Brasil foi
dividida em etapas, merecendo destaque a terceira etapa que iniciou
em 1969, momento em que a área cultivada chegou a 4.000.000 ha, e
caracterizou-se por ser ordenada por alguns motivos como: criação de
variedades mais tolerantes às moléstias, menos sensíveis às variações
ambientais, melhor capacidade de produção, melhores informações
técnicas ao produtor, sementes de melhor qualidade, corretivos,
disponibilidade de fertilizantes e defensivos, ampliação do
maquinário, financiamento de custeio a taxas reduzidas e abertura de
novas áreas tritícolas, destacando-se São Paulo, Mato Grosso do Sul e
Paraná especialmente.
20
O Rio Grande do Sul até início de 1970 foi responsável pela
maior parte da produção tritícola nacional, mas a ampliação do cultivo
de trigo para a região Centro-Sul, possibilitou uma maior estabilidade
de rendimento. Visto que, uma vez ocorrendo diferentes épocas de
semeadura, os insucessos que poderiam ocorrer em um estado
poderiam ser menos intensos, ou não ocorrerem em outro.
Alguns fatores de produção se controlados, nesta etapa,
poderiam contribuir para o aumento da produtividade. Como exemplo
pode-se citar o efeito negativo das extensas áreas de cultivo que
facilitam a difusão e o aparecimento de novas raças de patógenos, a
falta de rotação cultural que também contribui para a difusão de
moléstias, além do uso de terras impróprias ao cultivo do trigo.
A quarta etapa faz referência à expansão das fronteiras do trigo
para o norte do Paraná, São Paulo e Mato Grosso do Sul. Nos últimos
anos o estado do Paraná vem se destacando no cultivo do trigo, pois
na década de 70, com a erradicação dos cafezais e entrada da soja em
solos de alta fertilidade, houve a expansão da lavoura de trigo.
A partir de 1971, São Paulo passou a integrar as estatísticas
como produtor de trigo, e em Mato Grosso do Sul onde também houve
um aumento de área cultivada após 1978.
Uma análise das safras revela que em 1971 a produção foi cerca
de 2 milhões de toneladas. Em 1972 pela interferência de fatores
naturais na lavoura, a produção caiu para 700 mil toneladas, em 1973
com o aumento da área plantada e o incentivo oficial do governo
colheu-se em 1976, 3,038 milhões de toneladas.
21
Para Mundstock (1999), a quinta etapa na expansão do trigo,
iniciou recentemente com a abertura de uma terceira região tritícola,
quando a cultura foi adaptada às zonas altas do Planalto Brasileiro, em
áreas situadas de 600 a 1000 m de altitude em latossolos de cerrado
com relevo relativamente plano em Goiás, Minas Gerais, Bahia e
Distrito Federal. Áreas em que o solo caracteriza-se por ser
intemperizado e de baixa fertilidade natural, apresentando teores
variáveis de alumínio.
Nessa etapa, o Cerrado Brasileiro desponta na triticultura
nacional por apresentar grande potencial para expansão da triticultura
nacional por possuir grande área viável e parque industrial instalado
com possibilidade de expansão. Entre as vantagens do cultivo do
cereal no Cerrado estão a estabilidade em termos de quantidade e
qualidade industrial, uma vez que em condições irrigadas as variações
em rendimento de grãos são pequenas, e o grão é colhido no período
seco e na entressafra. Além, da região ser capaz de funcionar como
reguladora de estoques e exportadora de trigo para outros estados e
países. Em 2006, a área de trigo irrigado foi de 45 mil hectares e a
produtividade média em torno de 5 toneladas por hectare (EMBRAPA
CERRADOS, 2008). Dessa forma, verifica-se que o Cerrado
Brasileiro possui potencial para produção de trigo em quantidade e
qualidade, desde que medidas essenciais como o uso de cultivares
adaptadas a região e
22
2.1.2 O Trigo sintético
A variabilidade genética existente dentro e entre as
espécies de plantas está intimamente relacionada com a sua evolução
(BERED et al., 2000). As espécies silvestres são adaptadas a vários
tipos de ambientes e, geralmente, possuem um reservatório de genes
úteis aos programas de melhoramento vegetal, em especial, aqueles
que garantem resistência a doenças. Essas espécies têm sido utilizadas
em cruzamentos interespecíficos que visam a introdução de
variabilidade genética e transferência de características desejáveis
para espécies cultivadas.
Espécies de trigo poliplóides, tanto selvagens quanto
cultivados, evoluíram através da anfidiploidia ou alopoliploidia, isto é,
seus cromossomos pareiam de uma forma diplóide e o modo de
herança das características é dissômico. Essa diploidização tem sido
crucial na evolução e domesticação dessas espécies, uma vez que a
diploidização genética leva à abundância e redundância de genes, que
podem divergir para assumir novas funções (HILU apud FREITAS,
1997).
Levando em consideração que a transferência de genes de
uma espécie doadora para uma espécie receptora, no qual o segmento
cromossomal deve ser o menor possível, para evitar a transferência de
características indesejáveis, surge como alternativa o cruzamento entre
espécies que possuem cromossomos homólogos como o trigo e
espécies do gênero Aegilops que possibilitam a recombinação
genética.
Segundo Prestes et al. (1994) existe ampla variabilidade
dentro da espécie de A. squarrosa (também conhecida como Triticum
23
tauschii) quanto à resistência a doenças foliares, uma vez que esta
espécie rústica parece ser a doadora dos genes de resistência
encontrados no trigo cultivado. Assim, A. squarrosa (T. tauschii),
torna-se uma promissora fonte de introdução de variabilidade genética
para Triticum aestivum.
Tendo conhecimento do histórico evolutivo do trigo,
pesquisadores trabalham na transferência de características de
resistência presentes em A. squarrosa para o trigo comum, por meio
de cruzamentos interespecíficos. Faz-se necessário para este processo
a transferência ao nível hexaplóide, através da cruza entre o diplóide
(DD) com uma espécie tetraplóide como Triticum durum, resultando
num híbrido ABD de 21 cromossomos. O embrião resultante deste
cruzamento é cultivado in vitro após a fertilização, para evitar a
degeneração do endosperma. Posteriormente, é feita a aclimatação da
plântula gerada, e o tratamento com colchicina duplicando o número
de cromossomos e dando origem ao que se denomina trigo sintético.
Com 42 cromossomos AABBDD e a fertilidade restaurada,
viabilizando o cruzamento direto com Triticum aestivum (MORAES-
FERNANDES, 1985).
O sucesso neste tipo de cruzamento é limitado, alguns
cruzamentos mostram-se incompatíveis, os embriões podem não
produzir plantas verdes e o desenvolvimento de plantas híbridas pode
ser anormal (PRESTES & GOULART, 1995). Entretanto, quando
viáveis os genótipos de trigo sintético podem apresentar novos genes
capazes de conferir resistência às moléstias que atingem a cultura do
trigo.
24
2.2 O fungo Pyricularia grisea
2.2.1 Identificação e denominação
Os fungos do gênero Pyricularia são descritos como
patógenos causadores de severas doenças em gramíneas, em especial
nas culturas do arroz e do trigo.
O fungo Pyricularia grisea foi identificado inicialmente
como Trichotchecium griseum Cooke (1879), mas o artigo escrito por
Cooke e Ellis não apresentava a descrição do fungo. Em 1880,
Saccardo descreveu o gênero Pyricularia grisea, isolado da erva
daninha Digitaria sanguinalis (L.) Scop, coletado na América do
Norte como espécie tipo. Em 1892, Cavara descreveu Pyricularia
oryzae, como patógeno isolado de plantas de arroz (HEBERT, 1971).
Mas, como o teleomorfo é indispensável para a determinação da
posição taxonômica dos isolados de P. grisea, Hebert em 1971 obteve
a fase teleomórfica de isolados de Pyricularia em laboratório,
constatando que esse ascomiceto se relacionava com a família
Diaporthaceae. Mas Yaegashi e Udagawa, em1978, discordaram de
Hebert que classificava o teleomorfo como Ceratosphaeria grisea,
que não se adequava ao “taxon” pelo habitat graminícola, peritécio
com pescoço mais largo, ascos unitunicados e presença de conídios do
tipo simpodial na forma imperfeita. Yaegashi e Neshihava, em 1976,
sugeriram que o teleomorfo de Pyricularia apresentava maiores
semelhanças ao gênero Magnaporthe. Assim, em 1977, Barr transferiu
C. grisea para Magnaporthe grisea, ascomiceto heterotálico
(PURCHIO-MUCHOVEJ & MUCHOVEJ, 1994).
25
De acordo com Rossman et al. (1990), trabalhos têm
sugerido que o nome destas duas espécies são sinônimos, mas a
literatura se mostra confusa quanto a isto. Por convenção determinou-
se que o fungo causador da brusone em arroz seria Pyricularia oryzae
Cavara e aquele possuidor de uma variada gama de hospedeiros, tanto
de espécies liliopsidas quanto de magnoliopsidas seria Pyricularia
grisea Saccardo. Porém, tem-se utilizado até o momento a
denominação Pyricularia grisea (Cooke) Sacc., tanto para isolados de
arroz quanto de outras espécies de gramíneas.
2.2.2 Taxonomia e morfologia
O fungo Pyricularia grisea, encontra-se, segundo a
classificação taxonômica de Worth et al. apud Putzke & Putzke
(1998), no Reino Fungi, Divisão Eumycota, Subdivisão
Deuteromycotina, Classe Hyphomycetes, Ordem Hyphomycetales,
Família Moniliaceae.
O gênero Pyricularia compreende um fungo de coloração
cinza clara, que entre outras características, apresenta conídios
piriformes, hialinos em conidióforos longos, delgados, livres e eretos.
Primeiramente os conídios são encontrados aderidos ao conidióforo
por uma pequena célula, uma vez o conídio amadurecido, esta
pequena célula se divide produzindo um pequeno dentículo na base do
conídio, e na lateral do conidióforo conforme a Figura 1 (PURCHIO-
MUCHOVEJ & MUCHOVEJ, 1994). Os conídios não apresentam
tamanho, nem morfologia únicos, pois ambos são influenciáveis pelo
hospedeiro, do qual o fungo foi isolado, assim como o meio de cultura
utilizado, a temperatura e a luminosidade disponíveis.
26
Figura 1 – Conídios e conidióforos de Pyricularia grisea.
Fonte: Purchio-Muchovej & Muchovej (1994)
Os isolados de Pyricularia de diversas espécies de
gramíneas revelaram variação na morfologia dos conídios. Os isolados
de arroz possuem dimensões de 13-46,1 x 6-12,5 µm em meio de
aveia; 16-39 x 5,5-13,5 µm em meio completo e 12,5-44 x 5,1-13 µm
em BDA. Isolados de outras gramíneas apresentaram dimensões que
variaram de 12,5-46,1 x 5,1-13,5 µm (PURCHIO-MUCHOVEJ &
MUCHOVEJ, 1994).
Em relação à textura da colônia Cárdenas & Hernández
(1997), isolaram o patógeno de folhas de arroz e repicaram em
diferentes meios. Obtiveram colônias de textura lisa, (esporulativa) e
algodonosas (não esporulativas), houve predomínio da coloração
verde oliva e o tamanho dos conídios variou conforme o meio.
O gênero monotípico Magnaporthe, criado por Krause e
Welster em 1972 caracteriza-se por apresentar peritécio escuro,
27
globoso, pescoço comprido, cilíndrico, ligeiramente projetado, acima
da bainha foliar, ascos unitunicados, parede fina, hastes curtas,
flutuando levemente dentro do peritécio e dissolvendo-se na
maturidade, ascosporos longos funiformes, curvos, tricelulares,
ligeiramente constritos no septo, hialinos ou marrom-amarelado na
maturidade, sem estroma como apresentado na Figura 2 (PURCHIO-
MUCHOVEJ & MUCHOVEJ, 1994).
Figura 2 – Ascas e ascosporos de Magnaporthe grisea.
Fonte: Purchio-Muchovej & Muchovej (1994)
28
2.2.3 Variabilidade patogênica de Pyricularia grisea
Os fungos filamentosos apresentam mecanismos de
variabilidade genética que lhes conferem uma maior adaptação a
ambientes e hospedeiros distintos. A variabilidade patogênica de
Pyricularia grisea do arroz foi demonstrada, entre outras formas, pela
diferenciação de raças originárias de uma mesma lesão (OU &
AYAD, 1968), ou ainda pelas mudanças de raças patogênicas em um
viveiro de brusone durante o período de um mês
(QUAMARUZZAMAN & OU, 1970).
O amplo espectro de virulência do fungo tem sido
evidenciado através de testes de virulência em uma série diferencial de
cultivares, que permite através de sua reação a identificação e
monitoramento das raças existentes no local. Ou ainda, testes em casa
de vegetação com isolados monospóricos provenientes de cultivares
suscetíveis em condições de campo (SILVA et al., 2007; ARAÚJO et
al., 2005). Além dos testes de virulência, que permitem o
agrupamento de isolados a partir das reações de resistência ou
suscetibilidade expressa pelos cultivares, o uso de marcadores
moleculares tendem a contribuir na identificação de genes de
patogenicidade associados à resistência à brusone, e na elucidação da
sua interação com o hospedeiro.
Urashima et al. (2004) analisando o espectro de virulência
de Magnaporthe grisea do trigo em planta jovem provenientes dos
estados do Paraná e Mato Grosso do Sul detectaram 30 modelos de
virulência entre 37 isolados do Mato Grosso do Sul e 25 modelos de
virulência de 35 isolados do Paraná. Nenhum dos cultivares de trigo
29
foram resistentes a todos os isolados, mas apresentaram diferentes
espectros de resistência. O trabalho também revelou um grupo comum
de isolados que foram hábeis em atacar todos os cultivares.
Em M. grisea do arroz, testes visando à elucidação da
herança de fertilidade e de patogenicidade do fungo foram realizados
por Valent et al. (1986). Esses autores através do cruzamento entre
linhas do fungo isolados de Eleusine coracana, Eragrostis curvularia
e Oryza sativa concluíram que os isolados do arroz são capazes de
cruzar com patógenos hermafroditas de outras gramíneas produzindo
ascosporos viáveis. E, que a especificidade da espécie hospedeira
entre isolados desse fungo pode ter tanto uma base genética complexa
como simples. No cruzamento entre os isolados das gramíneas
daninhas foi possível identificar um único gene que determina
patogenicidade em relação a Eragrostis curvula, e um segundo gene
diferente não ligado ao anterior que determina patogenicidade em
relação a Eleusine indica.
A análise genética da patogenicidade de M. grisea em trigo
foi detectada através de cruzamento de isolados compatíveis de M.
grisea do trigo e de capim marmelada. A segregação sugeriu que a
patogenicidade ao trigo era condicionada por um gene de efeito maior
na relação 1:1 e provavelmente o envolvimento de genes de efeito
menor, responsáveis pelas lesões intermediárias (URASHIMA, 1999).
Em relação a Pyricularia grisea do trigo, trabalhos têm evidenciado a
possível recombinação entre isolados de trigo e demais gramíneas,
sugerindo a possibilidade de uma possível recombinação entre esses
organismos na natureza, e que viria a explicar a agressividade desse
fungo (URASHIMA et al.,1993).
30
Urashima et al. (2001) analisando a segregação de
avirulência entre progênies obtidas de cruzamentos entre isolados de
M. grisea provenientes de trigo, que diferiam na reação de avirulência
e virulência observaram, uma relação de avirulência/virulência de 1:1
nos cultivares CNT 8, BR 17 e OR1. Evidenciou-se a segregação de
um gene de avirulência diferente para cada um dos cultivares. Já para
os cultivares BR 31 e Iapar 3 foi de 1:3 avirulência/ virulência. Além
disso, a recombinação sexual entre os isolados do fungo possibilitou a
produção de isolados virulentos a todos os cultivares, fato relacionado
à superação de resistência de cultivares ditas resistentes.
2.3 Brusone
2.3.1 Ocorrência
A ocorrência da brusone, doença que possui como agente
causal o fungo Pyricularia grisea em trigo, na região sul do Brasil foi
descrita pela primeira vez por Igarashi et al. (1986), no estado do
Paraná, nos municípios de Primeiro de Maio, Setanópolis, Rancho
Alegre, Londrina, Engenheiro Beltrão e São Pedro do Ivaí no ano de
1985, de forma esporádica. Já no ano de 1986 ocorreu uma maior
disseminação da doença nas regiões norte e oeste do Paraná, noroeste
de São Paulo e sul do Mato Grosso do Sul, acarretando prejuízos
consideráveis no norte do Paraná. A situação se agravou na safra de
1987, quando a doença tomou proporções epidêmicas nas regiões
mencionadas anteriormente e provocou perdas parciais ou totais em
muitas lavouras. Naquele ano em cerca de 70 municípios, houve
prejuízos, estimados em 10 a 12% (IGARASHI, 1988 ab; IGARASHI
31
et al., 1986). Conforme relatos de Igarashi (1988a), em 1988, a
manifestação da doença se deu cerca de 8 a 10 dias após a emergência,
devido a presença de sementes infectadas, cultivares suscetíveis,
inóculo da safra anterior e condições ambientais favoráveis ao
desenvolvimento da doença. Na época, a intensidade do ataque foi
maior nos Vales do Paranapanema, Ivaí e Tibagi, em especial notada
nos cultivares precoces, semeadas até a primeira quinzena de abril. De
1988 a 1992, no Mato Grosso do Sul, foi realizado um trabalho com o
objetivo de avaliar os danos causados por Pyricularia grisea em trigo,
através do qual foi verificado que a importância econômica da brusone
decorre das reduções no rendimento e na qualidade dos grãos.
Na safra 2004 a brusone voltou a causar graves prejuízos
principalmente no Cerrado brasileiro e no Mato Grosso do Sul, assim
como nas regiões Norte e Oeste do estado do Paraná, provocando um
alerta geral aos produtores de trigo e cevada nessas regiões.
2.3.2 Ciclo da doença
2.3.2.1 Fontes de inóculo e plantas hospedeiras
A dificuldade para determinar as espécies de Pyricularia é
motivada pela grande diversidade de plantas hospedeiras do patógeno.
O patógeno já foi verificado em mais de 80 gêneros de vegetais, em
especial aos da família Poaceae, entre os quais estão incluídas as
espécies de interesse agronômico, ou seja, aquelas cultivadas em
grandes áreas e de importante valor econômico, sem se esquecer das
plantas daninhas, que segundo alguns autores servem de fonte de
inóculo do patógeno, e também se fazem presentes nessas áreas.
Dentre as gramíneas infectadas por brusone, merecem destaque os
32
prejuízos causados nas culturas do arroz, trigo, centeio, cevada e
triticale (URASHIMA et al., 1993).
O fungo Pyricularia grisea já foi identificado em espécies
cultivadas e espontâneas das famílias Poaceae, Cannaceae,
Zingiberaceae, Musaceae, Ciperaceae e Commelineceae, Solanaceae,
Euphorbiaceae, Fabaceae, Polygonaceae, Lauraceae, Juncaceae e
Sterculiaceae. Ainda, na Grécia foram identificadas lesões por
Pyricularia em plantas ornamentais da família Marantaceae
(Ctenanthe oppinheimiana e C. setosa) (PAPPAS & PAPLOMATAS,
1998; PURCHIO-MUCHOVEJ & MUCHOVEJ, 1994).
Como não há unanimidade quanto ao número de
hospedeiros de P. grisea nem sobre a especificidade de infecção,
estudos na área de orizicultura demonstraram que o fungo se perpetua
de um ano a outro em resíduos de cultivos infectados, em rebrotes de
arroz, e descrevem as sementes e as plantas daninhas como fontes de
inóculo primário para a brusone (GUTIÉRREZ et al., 2007). Estas
informações também devem ser levadas em consideração, para a
cultura do trigo.
No Rio Grande do Sul, já foram identificadas sementes de
azevém, gramínea de fácil dispersão nas culturas, em especial nas de
inverno, infectadas com P. grisea nas safras de 1995/96 e 1997/98
(LUCCA FILHO et al., 2000). Ao mesmo tempo em que as sementes
são consideradas fontes de disseminação de moléstias, podem servir
como fontes de inóculo para cultivos posteriores e constituir um
veículo para introdução de patógenos em áreas até então livres de
determinada doença. Em outubro de 2001, foi identificada a presença
33
de P.grisea em sementes de cevada provenientes do Distrito Federal,
sendo este, o primeiro relato da ocorrência deste fungo em sementes
de cevada em sistema irrigado por pivô central no cerrado brasileiro
(GOULART et al., 2003).
Bruno & Urashima (2001), utilizando isolados de
Magnaporthe grisea do Brasil, como parentais em estudos de
determinação do tipo compatível do fungo, evidenciaram que isolados
de brusone proveniente de Brachiaria plantaginea, Triticum aestivum
e Setaria geniculata, poderiam influenciar na alta variabilidade de M.
grisea.
Dados de patogenicidade obtidos em experimento de
Urashima & Kato (1998), confirmaram que o organismo causal da
brusone do trigo não foi originado do arroz, devido ao insucesso nas
inoculações cruzadas entre isolados de ambas as gramíneas. Porém, os
isolados de trigo foram compatíveis com os isolados obtidos de ervas
daninhas. Mesmo com o resultado desse experimento, não é possível
afirmar que gramíneas daninhas sirvam de inóculo para a brusone do
trigo.
2.3.2.2 Disseminação
As principais formas de disseminação de conídios de P.
grisea e de outros fungos que apresentam esporos são: vento, água e
restos culturais.
Em especial nas regiões temperadas, no inverno, a
sobrevivência do fungo se dá através da infecção de grãos e de palhas
dos restos culturais. Nos trópicos a densidade de conídios, no ar é alta,
34
uma vez que esses são facilmente transportados pelo vento e capazes
de introduzir o patógeno em áreas onde não há registro da doença, ou
até mesmo provocar a reinfecção em áreas livres de infecção
(MEHTA, 1993).
Pyricularia grisea é um fungo de grande esporulação, no
arroz estima-se que nas manchas típicas da folha sejam produzidos
2000 a 6000 conídios durante duas semanas, com maior produção à
noite até as 3 horas da manhã. Um dos fatores que pode auxiliar a
disseminação dos conídios é a chuva, uma vez que os conídios
emergem dos conidióforos por meio de pequenas células que quando
sofrem pressão hidráulica liberam os conídios para o ar. Justificando
as altas densidades de conídios de Pyricularia grisea durante a época
chuvosa (KRANZ et al., 1982).
2.3.2.3 Transmissão
Pesquisas que visam à confirmação da transmissibilidade
de patógenos das sementes para as plantas, freqüentemente são
realizadas e, geralmente, confirmam a infecção em plantas jovens
(MENTEN & MORAES, 1988).
A transmissão de Pyricularia grisea por sementes já foi
descrita em trabalhos com diferentes cereais. Conforme Goulart &
Paiva (1990), os patógenos presentes nas sementes são potencialmente
capazes de desencadear o processo de doença. Utilizando sementes de
trigo com 12% de contaminação e/ou infecção natural do fungo, foi
registrada a passagem do mesmo para o coleóptilo numa taxa de
transmissão de 4:1, em laboratório e confirmada no campo. Em
triticale, um experimento semelhante foi realizado e confirmou-se
35
novamente a transmissão do patógeno das sementes para plântula com
dois tipos de sintomas: morte de plântulas e sintomas nas folhas
primárias sem a morte de plântulas (MARTINS et al., 2004).
2.3.2.4 Sintomatologia
Na primeira detecção da brusone em trigo, houve o
entendimento que esta era uma doença específica da espiga, devido à
lesão provocada na ráquis e o branqueamento parcial ou total da
espiga, mas, posteriormente, sintomas nos demais órgãos da planta
foram evidenciados (IGARASHI, 1988b).
As lesões nas folhas na fase de plântula, são geralmente
elípticas, levemente arredondadas com bordas cloróticas, e dimensões
variando de 2 a 7 mm x 1 a 3 mm, com abundante frutificação
acinzentada na face inferior da folha. Já nas folhas adultas, as lesões
apresentam dimensões de 2 a 25 mm x 1 a 2 mm, o centro da lesão
varia de branco a castanho claro, com margens levemente escuras e
extremidades com prolongamentos castanho avermelhados. As lesões
na bainha são elípticas, e medem de 2 a 22 mm x 1 a 3 mm. Nas
glumas, as lesões elípticas são de coloração castanho claro a
acinzentado nas bordas, provocando a má formação de grãos
(IGARASHI, 1988b).
2.3.3 Danos à cultura do trigo causados pela brusone
No estado de Mato Grosso do Sul, Goulart et al. (1992),
constataram que as áreas experimentais com a cv. Anahuac, nos
municípios de Rio Brilhante, Dourados e Itaporã nos anos de 1988 a
1990, apresentaram perdas no rendimento de grãos de 174 kg/ha, ou
36
seja, 11% da produção total estimada em 1988, em Rio Brilhante, com
incidência média de 51% de espigas infectadas. No ano seguinte as
perdas foram menores, registrando 270 kg/ha ou 10% do rendimento,
com incidência média de 45% de espigas com brusone. Já em 1990,
no município de Dourados, as perdas chegaram a 892 kg/ha,
representando 40% da produção estimada, com incidência média de
93% de espigas com brusone. Os autores perceberam que em grande
número de espigas, ocorria o estrangulamento da ráquis; a produção
de grãos de tamanho maior que o normal, uma vez que a ação do
fungo na ráquis impediu a passagem da seiva para a parte superior da
espiga. Ocorre desta forma, uma compensação de produção por parte
da planta. Ainda foi possível constatar que quando a época de infecção
ocorria mais cedo, as perdas eram maiores.
Goulart (2004) relatou que nos anos de 1991 e 1992 em
Itaporã as perdas alcançaram, em média: 1,806 kg/ha ou 15% do
rendimento de grãos, com incidência média de 86% de espigas com
brusone. Durante os anos de avaliação foi possível verificar uma
redução no peso hectolitro das sementes em relação à época de
infecção das espigas por P. grisea, menor que 66,0 kg para a infecção
precoce, 66,8 kg para infecção tardia e 73,0 kg para as sementes
sadias.
Estudos para determinar a relação entre a incidência da
brusone em espigas de trigo e a presença de P. grisea nas sementes
colhidas no Mato Grosso do Sul possibilitaram a constatação dos
cultivares suscetíveis ao patógeno na região. Em dois anos de
avaliação Goulart et al. (1995), constataram que a menor incidência de
37
brusone foi observada no cultivar BH 1146, que apresentou baixas
percentagens de espigas infectadas (4,7 %); as maiores incidências
(85%) foram constatadas nos cultivares Iapar 6- Tapejara, Iapar 17-
Caeté, Iapar 28- Igapó, Iapar 29- Cacatu, Iac 13- Lorena, Iac 24-
Tucuruí, Inia 66, Anahuac, Cocoraque, Jupatico 73, Ocepar 7-
Batuíra, BR 10- Formosa e BR 31 Muriti. Além disso, foi possível
evidenciar uma relação direta entre a incidência de espigas
contaminadas e a presença de P. grisea nas sementes, proporcionando
perdas consideráveis na produção de grãos, conforme os níveis de
infecção no campo.
Quanto à escolha de cultivares que apresentem menor
percentagem de infecção em espiga, Goulart & Paiva (1992), em seus
experimentos relacionaram como resistentes os cultivares BH 1146,
BR 11-Guarani, BR 18-Terena e BR 21-Nhandeva. Uma possível
explicação para a relação desses cultivares está no ciclo vegetativo
mais longo ou intermediário, que pode ter ocorrido devido a um
escape, pois a época de espigamento pode ter ocorrido num período
desfavorável para o patógeno. Assim os cultivares de ciclo longo e
intermediário podem vir a contribuir na diminuição de perdas de grãos
pela brusone.
No ano de 2004, no Mato Grosso do Sul, a brusone
apareceu com muita intensidade, principalmente nas lavouras
plantadas em março e abril. Os levantamentos preliminares de
rendimento para a região foram de apenas 425 kg/ha e a produtividade
média na safra foi de 1,500-2,000 kg/ha.
38
No estado do Paraná no ano de 2004, a maior intensidade
da doença ocorreu nas regiões de Assaí e Maringá e de menor
intensidade em Sertanejo, Rolândia e Arapongas. Houve dificuldade
no controle da doença, pois no momento da visualização dos sintomas,
o fungo já estava instalado. As perdas foram estimadas entre 15 e 20%
nas lavouras do norte e 55 % nas lavouras do oeste do estado. Nessa
safra, a ocorrência da brusone em maior ou menor intensidade em
certas áreas do estado deu-se pela época de semeadura antecipada,
pela suscetibilidade dos cultivares plantados, pela falta de estudos que
identifiquem o melhor período para o início do tratamento fúngico e
pelos níveis variados de controle apresentados pelos novos produtos,
uma vez que até então não foram registrados produtos que apresentem
níveis de controle acima de 50% no controle da brusone (RIEDE,
2004).
2.3.4 Controle da doença
A cultura do trigo é atacada por uma variedade de
patógenos, responsáveis por perdas consideráveis. Para que haja o
controle eficiente da doença é necessário um conjunto de técnicas e
medidas que devem ser aplicadas conjuntamente. Ou seja, o manejo
integrado de doenças nada mais é que a integração de práticas
agronômicas com práticas de controle, que regulam a população do
patógeno a níveis toleráveis sem causar danos econômicos, porém o
seu sucesso depende da seleção de técnicas apropriadas para os
diferentes ecossistemas. Dentre esses estão o conhecimento sobre o
potencial do patógeno para causar danos; fatores que favorecem o
39
aumento e a diminuição da doença; práticas agronômicas da cultura e
aspectos socioeconômicos (PRABHU & FILIPPI, 2006).
De acordo com Maciel & Prestes (2005) o controle da
brusone do trigo requer medidas como o plantio de variedades com
maior nível de resistência, utilização de sementes sadias, tratamento
de sementes, escolha da melhor época de plantio, rotação de culturas,
eliminação de hospedeiros alternativos do patógeno, adubação
adequada e uso de fungicidas.
Os primeiros fungicidas utilizados para conter a doença
nos anos 80 eram à base de diticarbomatos associados aos
benzimidazóis e/ ou organo-estâmicos, aplicados no início do
espigamento (5 a 10 %) em intervalos de 12 dias e mostravam níveis
satisfatórios de controle na época (IGARASHI, 1988c). A
recomendação para o controle químico, baseando-se no potencial
produtivo da lavoura e na economia passou a ser realizado no início
do espigamento, complementada por outra aplicação em um intervalo
de 10 a 12 dias da primeira, quando houve condições propícias para a
infecção. Os produtos em forma de mistura de princípios ativos têm
apresentado níveis variados de controle, como é o caso de
Epoxiconazole + Pyraclostrobium, Azoxystrobin, Propiconazole +
Trifloxystrobin e Tebuconazole + Trifloxystrobin. O Tebuconazole e
Metconazole, já foram registrados e apresentam eficiência de 30 a 50
% (RIEDE, 2004)
Além da aplicação de fungicidas em plantas, pode-se
realizar o tratamento químico em sementes. Os melhores resultados no
controle de P. grisea, foram obtidos com thiram+ iprodione, carboxin,
40
triadimenol + anilazine, benomyl + mancozeb, mancoze, etiltranol,
iminoctadine, triflumizole + tiofanoto metílico e thiabendazol que
erradicaram o patógeno das sementes conforme dados de Goulart et
al. (1990). Embora o controle químico seja uma das medidas
utilizadas para o controle da brusone em trigo, é preciso avaliar os
custos que esta medida representa para o produtor e para o meio
ambiente. Desta forma, a melhor alternativa para o controle da
brusone está no uso de cultivares com algum grau de resistência à
doença.
2.4 Resistência
Ao longo do processo evolutivo, as espécies tanto
vegetais como animais desenvolveram diferentes mecanismos para
garantir a sua perpetuação no ambiente. Dessa forma os principais
mecanismos expressos pelas plantas consistem: no escape, na
resistência e na tolerância aos variados fatores bióticos a abióticos que
possuem a capacidade de causar doença (RIBEIRO DO VALE et al.,
2001).
A resistência consiste na capacidade que a planta
possui de resistir à penetração ou colonização por um microrganismo
parasita, através de mecanismos de defesa tanto estruturais (cutícula,
tricomas, estômatos) como bioquímicos (fenóis, alcalóides,
fitoalexinas).
Os tipos de resistência costumam ser divididos em:
resistência não específica e resistência específica. No caso da brusone
41
do arroz, a alta variabilidade do fungo costuma fazer com que
cultivares com resistência específica, tenham sua resistência superada
por novas raças do patógeno dois ou três anos após seu lançamento
(PRABHU & FILIPPI, 2006). A resistência específica geralmente é
governada por poucos genes de efeito maior, e é de fácil identificação
no campo, além disso, os cultivares que possuem esse tipo de
resistência não permitem a infecção e colonização de seus tecidos pelo
parasito e dessa forma contribuem para diminuição de inóculo do
patógeno.
A resistência não específica caracteriza-se por apresentar
uma graduação da doença, ou seja, apresenta diferentes níveis de
severidade quando exposta a um patógeno. Geralmente é composta
por vários genes de efeito menor e aditivo, e uma planta com
resistência não específica é resistente contra várias raças ou patótipos
de um microrganismo, ou seja, não há especificidade. É o tipo de
resistência mais comum de ser encontrada, mas de difícil exploração
pelos melhoristas, tendo em vista que, um número maior de genes
contribui para a maior diversidade de combinações gênicas em uma
população.
Para a brusone do arroz a herança da resistência
(específica) pode ser conferida por um a três pares de genes
independentes, sendo a resistência dominante, como encontrado por
Nunes et al. (2007) para os cultivares “Taim” e BRS Firmeza.
De acordo com Prabhu et al. (1996) os genótipos nativos
de arroz de sequeiro apresentam resistência não específica para
brusone em folha e foram correlacionadas positivamente com as
42
severidades médias de brusone no pescoço das panículas. A expressão
da resistência não específica é alterada pelo ambiente e pela população
do patógeno, e sua herdabilidade à brusone é baixa (WANG et al.,
1989).
A resistência de brusone nas folhas e na panícula, também
tem sido objeto de estudos na fitopatologia. Para alguns autores este
tipo de resistência provavelmente é controlada por genes distintos,
pois há cultivares que se mostram resistentes em uma fase e
suscetíveis em outra, além disso o nível de resistência quantitativa de
brusone no campo nem sempre coincide com os resultados em planta
jovem (PRABHU & FILIPI, 2006; HWANG et al.,1987; KOH et al.,
1987). A perda da correspondência entre os testes de resistência em
folha e panícula, pode ser atribuída parte às diferenças ambientais e à
diferença entre os cultivares em relação ao seu período de
florescimento (BONMAN, 1992). Prabhu et al. (1996) encontraram
correlação positiva entre a brusone nas folhas e nas panículas, sob
condições de campo. Resultados semelhantes foram encontrados no
patossistema Pyricularia grisea – trigo, no qual houve correlação
positiva entre suscetibilidade nas folhas no estádio vegetativo e nas
espigas (ARRUDA et al., 2005).
2.5 Marcadores moleculares-microssatélites
A manipulação assistida por marcadores moleculares é
uma das técnicas mais recentes utilizadas nos programas de
melhoramento vegetal, os quais visam maior eficiência na
transferência de fatores genéticos. Marcadores moleculares ligados a
43
características de importância econômica têm sido desenvolvidos para
diferentes culturas e permitem a seleção de características desejáveis
em populações segregantes. Dessa forma, os marcadores se tornam
úteis por reduzir o tempo e o trabalho de seleção por várias gerações,
antes necessárias no melhoramento tradicional para criação de um
cultivar por exemplo (CAIXETA et al., 2006).
Marcadores moleculares são características do DNA,
herdadas geneticamente, capazes de diferenciar indivíduos. Os
marcadores moleculares são diferenciados pela tecnologia utilizada
para revelar variabilidade em nível de DNA: hibridação ou
amplificação de DNA. Entre os identificados por hibridização estão os
marcadores RFLP (Restriction Fragment Length Polymorphism) e
Minissatélites ou locos VNTR (Variable Number of Tandem Repeats).
Os revelados por amplificação são: RAPD (Random Amplified
Polymorphic DNA); AFLP (Amplified Fragment Leght
Polymorphism) e Microssatélites (ou SSR- Simple Sequence Repeats)
(MILACH,1998).
Os marcadores RFLP surgiram no início dos anos 70 e
detectam a variação ou polimorfismo (diferentes alelos em um locus)
em seqüências de DNA de 4 a 8 pares de base, reconhecidas por
enzimas de restrição. O polimorfismo verificado por esse marcador
pode ser decorrente da criação ou eliminação de sítios de restrição,
devido à substituição ou modificação de pares de bases (mutações),
ou, rearranjo dos segmentos de DNA por deleções, inserções,
inversões ou translocações nas fitas de DNA. A técnica consiste na
extração do DNA; digestão com enzimas de restrição; separação dos
44
fragmentos por eletroforese, transferência do DNA para uma
membrana de nitrocelulose; hibridação da membrana com sonda
molecular radioativa; exposição da membrana a filme de raio x
(BRAMMER, 2005; MILACH, 1998). Entre as vantagens do uso
desses marcadores estão sua expressão co-dominante, e o fato de não
serem afetados por pleiotropia, epistasia ou variações ambientais. Os
resultados apresentado por esse marcador é altamente estável e
reproduzível. A técnica RFLP tem custo elevado e é laboriosa por
envolver a execução de muitas etapas, que requerem investimentos em
pessoal, equipamentos, químicos e cuidados especiais na utilização de
sondas radioativas (CAIXETA et al., 2006; CAVALLI, 2003).
Os marcadores identificados por amplificação de DNA
baseiam-se na reação em cadeia de polimerase ou PCR (Polymerase
Chain Reaction), técnica desenvolvida em meados dos anos 80. A
PCR é uma técnica usada para amplificar pequenas seqüências
específicas de nucleotídios, a partir de pequena quantidade de DNA
(BRAMMER, 2005). As etapas básicas do PCR são: desnaturação do
DNA; anelamento dos primers; extensão das cadeias de DNA que
estão sendo amplificadas. A técnica de RAPD utiliza primers de
seqüência arbitrária para a amplificação do DNA, os quais podem
encontrar várias regiões complementares à sua seqüência, distribuída
em diversos pontos do genoma e formar muitas bandas. A principal
característica desse tipo de marcador é a dominância, ou seja, não
permite distinguir indivíduos homozigotos dominantes de
heterozigotos em uma população. As vantagens desse marcador são:
simplicidade, rapidez na obtenção de dados, custo reduzido e
aplicabilidade a qualquer organismo. A principal limitação é o baixo
45
conteúdo de informações genéticas em cada loco, além da baixa
reprodutividade dos resultados entre laboratórios (CAIXETA et al.,
2006).
Os marcadores AFLP baseiam-se na amplificação do DNA
via PCR para detectar diferenças em fragmentos selecionados e
digeridos com enzima de restrição. A metodologia envolve a digestão
do DNA com duas endonucleases de restrição; ligação de adaptadores
específicos; amplificação seletiva de fragmentos com primers
específicos e separação dos fragmentos por eletroforese em gel de
poliacrilamida. Dentre as principais características desses marcadores
está a habilidade de analisar grande número de locos polimórficos
com uma combinação de primers em um gel. Através do alto grau
informativo dos marcadores AFLP, os mesmos são utilizados
principalmente na construção de mapas de ligação e clonagem de
genes de interesse. Mas, a grade desvantagem dessa técnica está na
identificação de variantes alélicas em um loco específico, levando a
utilização do mesmo, como dominante (CAIXETA et al., 2006).
Os marcadores microssatélites são também conhecidos
como seqüências simples repetidas (SSR- Simple Sequence Repeats)
ou pequenas seqüências repetidas em cadeia (STR- Short Tandem
Repeats), são regiões repetidas de DNA não codificantes, compostas
por pequenas repetições de 1 a 6 nucleotídeos, os quais são
distribuídos no genoma de eucariotos e procariotos. As seqüências
microssatélites costumam ser relacionadas à variabilidade genética e
patogênica de microrganismos, e podem estar associadas com a
modulação da expressão de genes desses organismos. Essas
46
seqüências repetitivas são encontradas com freqüência em genes de
virulência em patógenos (OLIVEIRA et al., 2006).
As seqüências de DNA que flanqueiam os microssatélites
são conservadas entre os indivíduos de uma mesma espécie, que
permite a seleção de primers específicos para amplificação por PCR.
Os produtos da amplificação podem ser visualizados em géis de
poliacrilamida ou agarose corados com nitrato de prata ou brometo de
etídio, ou através do uso de primers fluorescentes em seqüenciador
semi- automático de DNA (CAIXETA et al., 2006; MILACH, 1998).
A constante substituição de outros marcadores moleculares
pelo uso de microssatélites está entre outras características pela sua
reprodutibilidade e simplicidade técnica; a pequena quantidade de
DNA requerida; ao baixo custo; ao grande poder de resolução e aos
altos níveis de polimorfismo. A variação no tamanho do produto de
amplificação por PCR, resulta da ocorrência de diferentes números de
unidades repetidas dentro da estrutura dos microssatélites, a qual pode
ser originada de crossing over desigual ou erro da DNA polimerase
durante a replicação, ou ainda, pela deleção e inserção de uma base ou
de fragmentos longos de DNA em regiões flanqueadoras. Porém
independente da origem da variação, os marcadores microssatéltes
destacam-se dos demais marcadores por constituir um loco genético
altamente variável, multialélico e informativo (CAIXETA et al., 2006;
CAVALLI, 2003).
Os microssatélites constituem uma das classes mais
polimórficas de marcadores moleculares. O alto nível de diversidade
alélica desses marcadores possibilita o uso dos mesmos no
47
mapeamento genético de populações segregantes. Além de propiciar a
ligação entre variações fenotípicas e genotípicas de diferentes
espécies. Os microssatélites apresentam vantagens sobre os demais
marcadores baseados no PCR por terem uma distribuição freqüente(e)Tj5.04967 0 Td(±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±3.12599 0 Td(p)Tj5.5301 0 Td(f)Tj3.84737 0 Td(r)Tj99 0 Td(b)Tj5.650Td( )Tj3.60691 0 j3.00576 0 Td(r)T±±±±±±±±±±±±±±±±3.1255.65082 9±±±±±±±±±3.1255.65082 Td±±±±±±±±±±±±±±66Tj3.60691 0 j3.00576 0 Td(r)T±±±±±±±650Td( )Tj3.60691 0 j3.00576 0 Td(r(n)Tj5.65082 0 Td(ã)Tj5.04967 0 Td(e)Tj5.04967 0 Td(n)T.00576 0 Td(r(m)Tj8.65658 0 Td(e)Tj8.77681 0 Td( )Tj3.72714 0 Td(r)Tj3.72714 0 Td(o)Tj1 0 j3.0057Td(±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±.65082 0 Td(t)Tj3.24622 0 Td(n)T.00576 0 Td(r(i)Tj3.12599 0 Td(s)T.00576 0 Td(r(s)Tj4.44852 0 Td(e)Tj5.04967 0 Td( )Tj5.29013 0 Td±±±±±±±.65082 0 Td( )Tj3.72714 0 TdTd(±±±±±±±±±±±±±±(ã)Tj5.04967 0 Td( )Tj3.72714 0 Td6 0 Td(r)T±±±±±±±6(n)T.00576 0 Td(r(i)Tj33.12599 0 Td(s)Tj4.20806 0 Td(m)Tj8.65658 0 Td(õ)Tj5.53059 0 Td(e)Tj5(r)T±±±±±±±6(n)T.00576 0 Td(r( )Tj3.72714 0 Td(n)Tj5.65082 0 Td e)Tj5(r)T±±±±±±±6(o)Tj5.65082 0 Td(t)Tj3.24622 0 Td(í)Tj3.12599 0 Td(p)Tj5.53059 0 Td(c)Tj4.92944 0 Td(a)Tj5.1699 0 Td(n)T.00576 0 Td(r(s)Tj4.32829 0 Td( )Tj5.53059 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td(m)Tj8.77681 0 Td( )Tj3.72714 0 Td(u)Tj53.12599 0 Td(s)Tj4.20806 0 Td(s)T.00576 0 Td(r(s)Tj4.44852 0 Td(e)Tj5.04967 0 Td-(f)Tj16.6863.72714 0 Td( )Tj3.72714 0 Td(n)Tj5.65082 0 Td(r)Tj3.72714 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(í)Tj3.12599 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td(g)Tj5.53059 0 Td(e)Tj5.04967 0 Td(f)Tj3.84737 0 Td(e)Tj5.1699 0 Td(A)Tj8.17566 0 Td(l)T9.01.7266 0 Td(m)Tj8.89704 0 Td(ã)Tj5.04967 0 Td(l)T9.01.7266 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td(m)Tj.00576 0 Td(rjõ)Tj5.53059 0 Td(e)Tj5(r)T±±±±±±±650Td( .88553 0 Td(l)T9.137082 0 Td( )Tj3.72714 0 Td(t)Tj3.12599 0 Td(e)Tj5.1699 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td(ã)Tj5.04967 0 Td(e)Tj53.12599 0 Td(s)Tj4.20806 0 Td(s)T9.137082 0 Td(a)Tj5.1699 0 Td(n)Tj3.72714 0 Td(s)Tj4.44852 0 Td(e)Tj5.1699 0 Td(s)Tj4.20806 0 Td(d)Tj5.65082 0 Td( )Tj8.65658 0 Td(o)Tj5.65082 0 Tdd(o)Tj5.65082 0 Td(d)Tj5.65082 0 Td(p)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(p)T9.01.7266 0 Td(d)Tj5.65082 0 Td(i)Tj3.12599 0 Td(f)T9.01.7266 0 Td(d)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td4 0 Td(a)Tj5.0496(i)Tj3.12599 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(í)Tj3.12599 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(ã)Tj5.04967 0 Td(o)Tj8.77681 0 Td(v)Tj5.53059 0 Td(s)T9.137082 0 Td(d)Tj5.65082 0 Td(e)Tj5.04967 0 Td(m)T(p)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(í)Tj3.12599 0 Td(t)Tj3.00576 0 Td(r)Tj3.72714 0 Td(t)Tj3.12599 0 Td(c)Tj5.1699 0 Td(t)Tj3.00576 0 Td(ã)Tj5.04967 0 Td(n)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td( )T5.4103j5.0496h( )Tj3.72714 0 Td(n)Tj5.65082 0 Td(r)Tj4.20806 0 Td(n)Tj5.65082 0 Tdz(i)Tj3.12599 0 Td(ç)Tj5.1699 0 Td(ã)Tj5.04967 0 Td(p)Tj5.53059 0 Td(i)Tj3.24622 0 Td(n)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5687582 0 Td( )T5.4103j5.0496( )Tj3.72714 0 Td(n)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td( )T5.4103j5.0496h( )Tj3.72714 0 Td(i)Tj3.12599 0 Td(.)Tj2.88553 0 Td( )Tj2.88553 0 Td(s)Tj4.32829 0 Td(a)Tj5.04967 0 Tdz(d)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(ã)Tj5.04967 0 Td(p)Tj5.53059 0 Td(i)Tj3.24622 0 Td(n)Tj5.65082 0 Td(o)Tj2.64506 0 Td(A)Tj8.17566 0 Td(l)T5.4103j5.0496(m)Tj8.89704 0 Td(l)T5.4103j5.0496g(n)Tj5.65082 0 Td( )Tj3.72714 0 Td6 0 Td(r)T±±±±±±±6(í)Tj3.12599 0 Td(t)Tj3.00576 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(p)T5.4103j5.0496(õ)Tj5.53059 0 Td(ç)Tj5.1699 0 Td(r)Tj4.20806 0 Td(ç)Tj5.1699 0 Td(e)Tj5.04967 0 Td(n)Tj5.65082 0 Tdç(d)Tj5.65082 0 Td(f)Tj3.84737 0 Td(r)Tj3.72714 0 Td(e)T5.4103j5.0496( )Tj3.72714 0 Td(n)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.04967 0 Td(m)T(p)Tj5.65082 0 Td(r)Tj3.72714 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(s)Tj4.44852 0 Td(s)Tj4.32829 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td(t)Tj3.12599 0 Td(é)Tj5.04967 0 Td(l)Tj3.00576 0 Td(i)Tj3.24622 0 Td(t)Tj3.12599 0 Td(e)Tj.53059 0 Td(ç)Tj5.1699 0 Td( )Tj5.1699 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td(p)Tj5.65082 0 Td(r)Tj3.04967 0 Td(t)Tj3.12599 0 Td(r)Tj3.04967 0 Td(a)Tj5.1699 0 Td(n)Tj5.04967 0 Td(s)Tj4.20806 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td(s)Tj4.44852 0 Td(m)Tj.00576 0 Td(r(t)Tj3.12599 0 Td(é)Tj3.12599 0 Td(o)Tj5.65082 0 Tdd(o)Tj3.12599 0 Td(a)Tj5.04967 0 Tdd(o)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(p)T5.3.12599 0 Td(t)Tj4.20806 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td(p)T5.3.12599 0 Td(d)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td( )Tj3.72714 0 Td(u)Tj53.12599 0 Td(s)Tj4.20806 0 Td(s)Tj3.00576 0 Td(r)Tj3.72714 0 Td(i)Tj3.72714 0 Td(e)Tj5.04967 0 Td(e)Tj5.04967 0 Td(a)Tj5.04967 0 Tdd(o)Tj5.65082 0 Td(n)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td( )T5.5.65082 0 Td(i)Tj3.12599 0 Td(f)Tj3.12599 0 Td(t)Tj3.00576 0 Td(o)Tj55.04967 0 Td(d)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(í)Tj3.12599 0 Td(t)Tj3.12599 0 Td(e)Tj5.04967 0 Td(e)Tj3.72714 0 Td(t)Tj3.12599 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td( )Tj3.72714 0 Td(n)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.04967 0 Td(m)T(p)Tj5.65082 0 Td(s)Tj4.20806 0 Td(d)T±±.65082 0 Td( )Tj3.72714 0 Td(d)Tj5.65082 0 Td( )Tj2.88553 0 Td( )Tj8.65658 0 Td(d)Tj5.04967 0 Tdd(o)Tj5.65082 0 Td(d)Tj5.65082 0 Td( )Tj3.00576 0 Td( )Tj5.04967 0 Td(p)Tj5.65082 0 Td(a)Tj4.92944 0 Tdé(d)Tj5.65082 0 Td( )Tj8.65658 0 Td(o)Tj5.65082 0 TdTd(p)Tj5.5301 0 Td(f)3.00576 0 Td( )Tj3.72714 0 Tdp)Tj5.65082 0 Td(m)Tj0554553 0 TdI )Tj3.72714 0 TdX(m)Tj0554553 0 TdE(m)T6.973599 0 TdT(m)T6.853122 0 Td(m)Tj8.89704 0 Td(l)T/R50 Td(a)Tjj8.17566 0 Td(i)Tj3.12599 0 Td(.)Tj5.65082 0 Td.44 Td(l)Tj3.24622 0 T4.92944 0 Tdl(l)T/R 0 Td(a)Tj3.00576 0 Td(A)Tj8.17566 0 Td50Td( .88553 0 Td(l)T3.00576 0 Td2s)Tj4.20806 0 Td0s)Tj4.20806 0 Td0s)Tj4.20806 0 Td6s)Tj4.20806 0 Td;(l)T3.00576 0 Td(l)T3.00576 0 TdM(l)T9.9791153 0 TdI )Tj3.72714 0 TdL(m)T6.853122 0 Td(m)Tj8.89704 0 Tdp)Tj5.65082 0 TdH(m)Tj8.89704 0 Td50Td( )Tj3.60691 0 j3( )Tj3.60691 1s)Tj4.20806 0 Td9s)Tj4.20806 0 Td9s)Tj4.20806 0 Td8s)Tj4.20806 0 Td) sas
48
combina a simplicidade do PCR com o polimorfismo detectado pelo
RFLP. A técnica foi denominada rep-PCR, reação da cadeia da
polimerase baseada em elementos repetitivos, a qual gera DNA
fingerprint por amplificação de seqüências entre cópias de elementos
dispersadas no genoma do fungo. Essa técnica usa os primers Pot2-1 e
Pot2-2, também é conhecida como Pot2 rep-PCR usada em
substituição à sonda MGR-586 para estudos da diversidade genética
em P. grisea do arroz (PRABHU et al., 2007; MACIEL et al., 2004;
PRABHU et al., 2002).
O Pot2 é um t tt , l é r
dae
49
da possibilidade da construção de novos primers que permi
50
CAPÍTULO I
VIRULÊNCIA DE ISOLADOS DE Pyricularia grisea E REAÇÃO
DE GENÓTIPOS DE TRIGO À BRUSONE
Maria Fernanda Antunes da Cruz
1
, Ariano Morais Prestes
2
&
João Leodato Nunes Maciel
3
RESUMO- A brusone do trigo, causada pelo fungo Pyricularia grisea
foi descrita no Brasil, no estado do Paraná, em 1985. Desde então,
busca-se em germoplasma disponível no País, cultivares resistentes à
doença, já que o controle químico não tem se mostrado
suficientemente eficaz. Os objetivos deste trabalho foram identificar
os padrões de virulência de isolados de P.grisea, verificar e
correlacionar o grau de resistência de genótipos de trigo comum e
sintético no estádio de planta jovem e planta adulta. O espectro de
virulência dos 18 isolados monospóricos, quando inoculados sobre 70
genótipos de trigo em planta jovem revelou homogeneidade entre os
mesmos (75% de similaridade entre si), com exceção dos isolados Py
5002 e Py 5038 que apresentaram um padrão de virulência
diferenciado dos demais. Entre os genótipos resistentes em planta
jovem (reação e severidade) destacaram-se BRS 229, BRS 179, CNT
1
Bióloga, mestranda do Programa de Pós-graduação em Agronomia (PPGAgro),
FAMV/UPF, área de concentração em Fitopatologia
2
Orientador, Eng.-Agr., PhD., Professor do PPGAgro, FAMV/UPF
3
Co-orientador, Eng.-Agr., Dr., Pesquisador da Embrapa Trigo
52
from the others. Among genotypes tested BRS 229, BRS 179, CNT 8,
BRS 120, BRS Buriti, in seedling, and CNT 8, NE 20156-B, PF
844001, PF 964009 and PF 804002 in adult plant showed less leaf and
head area affected by blast. There was not correlation between young
plant and adult plant. The correlation between flag leaf and heads was
54%. The dates indicate that blast resistance is controlled by genes
that are expressed according with growth stages and parts plant
affected.
Key-words: blast, resistance genes, seedling resistance, adult
resistance
53
1 INTRODUÇÃO
A brusone do trigo causada pelo fungo Pyricularia grisea
(Cooke) Sacc., foi diagnosticada no Brasil em 1985, no estado do
Paraná (IGARASHI et al.,1986) e atingiu níveis epidêmicos no
Cerrado brasileiro no ano de 2004 (GOULART, 2004). Entretanto, a
brusone em arroz é uma das principais doenças e tem sido
intensamente pesquisada nos últimos anos.
Na cultura do arroz, uma das principais medidas para o
controle da brusone é o uso de cultivares resistentes. Porém, o fungo
possui a capacidade de superar a resistência do cultivar, dois a três
anos após o seu lançamento. Segundo Levy et al. (1993) a superação
da resistência do cultivar se dá pela ocorrência de trocas genéticas
entre isolados do patógeno, que produz variantes de virulência, ou
pelo aumento da freqüência de patótipos de ocorrência rara. Dessa
forma, ensaios de inoculação têm sido realizados para identificação de
variantes do patógeno ao longo dos anos. O uso de uma série
diferencial de cultivares que quando submetida à inoculação,
apresenta reações distintas a isolados do fungo, permite a identificação
da raça fisiológica ou patótipos do patógeno (PRABHU & FILIPPI,
2006).
Alguns critérios têm sido propostos por diferentes autores
para o agrupamento de isolados geneticamente relacionados. Os
isolados de P. grisea do arroz que apresentam mais de 85% de
similaridade genética em testes moleculares têm sido denominados
linhagens (FILIPPI & PRABHU, 2001). Essa estratégia também tem
54
sido utilizada para caracterização do espectro de virulência da
população do fungo (MACIEL et al., 2004). É uma prática eficiente
no monitoramento da população do patógeno e, na identificação da
resistência de cultivares a serem lançadas a variantes do patógeno.
Eleger uma série de cultivares de trigo diferencial é um avanço
importante para determinar raças fisiológicas ou patótipos do
patógeno em trigo. No entanto, este avanço apenas será eficiente
mediante a identificação de cultivares resistentes aos isolados de P.
grisea.
A busca por cultivares de trigo resistentes à brusone, tem
sido feita desde o aparecimento da doença nas principais regiões
tritícolas do Brasil (GOULART et al., 1995; GOULART & PAIVA,
1993; GOULART & PAIVA, 1992; GOULART et al., 1992;
GOULART et al., 1990). Em condições de campo, os cultivares de
trigo comercial BH 1146, IAC 8, IAC 24, IAC 28, IAC 162 foram
considerados resistentes no estado de São Paulo (BARROS et al.,
1989). No Mato Grosso do Sul, destacou-se como resistente na safra
de 2004 o cultivar BR 18 com menos de 30% de espigas infectadas,
enquanto que os genótipos suscetíveis apresentaram mais de 80% de
espigas infectadas: Alcover, Ônix, Taurus, OR-1, IPR 85, BRS 208,
BRS 209, BRS 210 E BR 40 (GOULART, 2004). Nas inoculações em
casa-de-vegetação os cultivares: BR 18, BRS 120, BRS 220, BRS 49,
IAPAR 53, PF 980571, IA 0310 foram considerados resistentes com
menos de 25% da espiga infectada (PRESTES et al., 2007).
Entretanto, a reação desses cultivares não se confirma em diferentes
regiões geográficas, ou em, condições controladas.
55
De acordo com Urashima et al. (2004), as diferenças entre
os resultados obtidos nos experimentos conduzidos até hoje, podem
ser atribuídas à variabilidade do patógeno. Os autores responsáveis
por esses experimentos enfatizam a necessidade de submeter os
cultivares de trigo a inoculações com patótipos que representem
diferentes populações do patógeno, para que seja possível a
identificação de genótipos resistentes. Dessa forma, constata-se que as
informações inerentes aos cultivares resistentes ou possíveis fontes de
resistência à brusone em trigo ainda são insuficientes. Assim como, a
relação de resistência nos diferentes estádios de desenvolvimento da
planta, ambos carecem de estudos adicionais.
A busca de fontes de resistência à brusone em trigo tem
sido apontada como prioritária em programas de melhoramento de
trigo para a região de Cerrados do Brasil e as espécies afins aparecem
como alternativa. Germoplasma de espécies afins ao trigo cultivado,
como Triticum tauschii (sinonímia Aegilops squarrosa, Aegilops
tauschii) já foi explorado como fonte de resistência a manchas foliares
(PRESTES et al., 1994) e apresentou resultados satisfatórios. Acessos
dessa espécie também apresentaram reação de resistência a isolados
de P. grisea, em ensaios conduzidos por Urashima & Kato (1994),
demonstrando a importância da utilização dessa espécie em programas
de melhoramento que visem resistência a doenças de trigo.
Além da busca de genótipos resistentes à brusone, a fase de
desenvolvimento da planta na qual a resistência é expressa, ainda é
uma incógnita para a cultura do trigo. Resultados obtidos com a
cultura do arroz mostram que a relação entre reação de resistência à
56
brusone em planta jovem e planta adulta têm sido discrepantes ao
longo dos vários anos de pesquisa. Genótipos de arroz que apresentam
resistência em folha de planta jovem, não manifestam resistência à
infecção nas panículas, mas a relação inversa também tem ocorrido
(BONMAN et al., 1989; HWANG, et al., 1987). De acordo com
Prabhu & Filippi (2006), a expressão da resistência nas panículas é
menos completa e mais complexa que nas folhas. A reação nas folhas
e nas panículas são controlados por diferentes genes herdados
independentemente. Entretanto, Arruda et al. (2005) evidenciaram
correlação positiva entre suscetibilidade de folhas no estádio
vegetativo e de espigas no estádio reprodutivo de trigo.
O esclarecimento dos mecanismos que controlam a
resistência de genótipos de trigo à brusone em folha e espiga e nos
diferentes estádios de desenvolvimento, certamente representa um
avanço significativo para programas de melhoramento. Tendo em
vista que, possibilitará a partir da resposta de diferentes genótipos, a
formulação de estratégias que visem aproveitar as peculiaridades de
cada um para a obtenção de germoplasma que apresente algum nível
de resistência à brusone. Além de possibilitar a determinação do
melhor momento para seleção de genótipos resistentes a essa doença.
Os objetivos deste trabalho foram identificar os padrões de
virulência de isolados de P.grisea do trigo, verificar o grau de
resistência de genótipos de trigo comum e sintético no estádio 14 e
60,61 da escala de Zadoks et al.(1974), e comparar a resposta dos
estádios.
57
2 MATERIAL E MÉTODOS
A pesquisa foi conduzida no Laboratório de Fitopatologia e
casa-de-vegetação na Embrapa Trigo, Passo Fundo.
2.1 Isolados
Utilizou-se 18 isolados monospóricos de Pyricularia
grisea de trigo, obtidos de amostras de plantas com sintomas de
brusone, provenientes dos estados do Rio Grande do Sul, Paraná,
Minas Gerais e Goiás (Tabela 1). Para a obtenção de isolados
monospóricos foram utilizados folhas, ráquis e glumas de trigo com
sintomas de brusone. Realizou-se a assepsia do material, que
permaneceu em câmara úmida por 24 horas. Em seguida, com o
auxílio de uma lupa procedeu-se o isolamento dos conídios. Os
conídios foram transferidos para o meio ágar-água e, após 15 horas,
apenas os conídios germinados foram transferidos para o meio aveia-
ágar até o desenvolvimento da colônia.
A preservação dos isolados foi realizada através do
preenchimento de placas de petri, contendo meio aveia-ágar, com
pedaços de papel filtro (1x1 cm). As colônias do fungo crescidas
foram raspadas com uma espátula, e o micélio transferido para placas
de petri contendo meio de cultura e pedaços de papel filtro. As placas
permaneceram em câmara de crescimento por 10 dias, à temperatura
de 23±2 ºC, e fotoperíodo 12 horas. Uma vez que, a colônia já estava
crescida sobre toda a superfície da placa, os pedaços de papel filtro
foram transferidos para uma placa de petri vazia, e permaneceram 4
58
dias em câmara de crescimento. Posteriormente foram transferidos
para envelopes de papel, previamente autoclavados e acondicionados
à temperatura de – 20 ºC.
Tabela 1- Relação de isolados monospóricos de Pyricularia grisea
utilizados no experimento. Embrapa Trigo, Passo Fundo,
RS. 2007
Nº
Designação
Origem Cultivar Segmento da planta¹ Ano
1
Py 5001
São Borja-RS BRS Angico Ráquis 2005
2
Py 5002
São Borja-RS BRS Angico Ráquis 2005
3
Py 5005
Londrina-PR BRS 248 Ráquis 2005
4
Py 5012
Londrina-PR BRS 229 Ráquis 2005
5 Py 5017 Londrina-PR BRS 193 Ráquis 2005
6
Py 5020
Londrina-PR BR 18 Ráquis 2005
7
Py 5021
Londrina-PR BR 18 Ráquis 2005
8
Py 5025
Londrina-PR BRS 249 Ráquis 2005
9
Py 5029
Londrina-PR CD 105 Ráquis 2005
10
Py 5038
Londrina-PR BRS 220 Ráquis 2005
11 Py 5039 Londrina-PR BRS 208 Ráquis 2005
12
Py 6001
Coromandel-MG BRS 208 Folha 2006
13
Py 6008
Coromandel-MG BRS 208 Folha 2006
14
Py 6010
Coromandel-MG BRS 208 Folha 2006
15
Py 6012
Coromandel-MG BRS 208 Gluma 2006
16 Py 6018 Coromandel-MG BRS 208 Ráquis 2006
17
Py 6025
Coromandel-MG BRS 208 Folha 2006
18
Py 6030
Goiânia-GO BRS 208 Ráquis 2006
2.2 Genótipos
Para a primeira etapa do trabalho foram escolhidos, no
Banco de Germoplasma (BAG) da Embrapa Trigo, 70 genótipos de
trigo, os quais foram utilizados nas inoculações no estádio de planta
jovem (estádio 14 da escala de ZADOKS et al., 1974). Desses, 50 são
cultivares comerciais e linhagens de trigo hexaplóide e 20 genótipos
¹ Estrutura vegetal da qual foi obtido o isolado
59
de trigo hexaplóide sintético, resultante do cruzamento entre Triticum
durum e Aegilops squarrosa. Os genótipos foram escolhidos através
de uma seleção que procurou estabelecer um grupo com ampla
diversidade genética (Tabela 2). Para a avaliação da reação de planta
adulta (estádio 60,61 da escala de ZADOKS et al., 1974) foram
selecionados 12 genótipos entre os 70 genótipos utilizados nas
inoculações no estádio de planta jovem. Sendo cinco desses de trigo
sintético (NE 20156-B; PF 844001; PF 844002; PF 964009; PF
804002) e sete cultivares de panificação (CNT8; BRS 120; BRS 194;
BRS Buriti; BR 18; BRS Camboatá e BRS Louro).
Para os testes em planta jovem, os genótipos utilizados
foram semeados em copos plásticos com capacidade de 0,5 Kg,
preenchidos com solo de lavoura, em três repetições com 8 plantas por
repetição. Na etapa de planta adulta os genótipos foram semeados em
vasos com capacidade de 3 Kg, preenchidos com solo de lavoura, em
quatro repetições com quatro plantas.
2.3 Preparação do inóculo
Os isolados mantidos em papel filtro foram repicados em
placas de petri com meio de aveia-ágar, e incubados em câmara de
crescimento à temperatura de 23 a 25 ºC por 12 dias. Para preparação
do inóculo, as placas foram lavadas com água destilada acrescida de
espalhante adesivo Tween 80. O volume de suspensão para cada
inoculação em planta jovem foi de 500 mL e para planta adulta, 300
mL, numa concentração de 2 x 10
5
conídios/mL.
60
Tabela 2- Relação de genótipos utilizados no experimento na fase de
planta jovem. Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS. 2007
Nº Origem Genótipos Nº Origem Genótipos
1* 2 NE 20156-B 36 65 EMBRAPA 40
2 5 NE 20157-X 37 66 FRONTANA
3 6 NE 20160-C 38 67 IAC 5
4 8 PF 844001 39 68 IAC 24
5 9 PF 844002 40 69 IAPAR 6
6 23 PF 964009 41 71 IAS 54
7 25 PF 804001 42 72 JACUÍ
8 26 PF 804002 43 73 KLEIN
9 31 NE 20158-X 44 74 LA 1549
10 32 NE 20159-B 45 75 OCEPAR 16
11 33 NE 20159-C 46 76 PELADINHO
12 34 NE 20159-X 47 77 PG 1
13 36 NE 20159-Z 48 79 TOROPI
14 37 NE 20160-A 49 80 OR 1
15 38 NE 20160-B 50 81 NOBRE
16 39 NE 20160-Y 51 82 ALIANÇA
17 40 NE 20160-Z 52 83 BRS 120
18 43 IPF 71404 53 84 BRS 177
19 102 SINTÉTICO 01 54 85 BRS 179
20 47 NE 20168-P 55 86 BRS 194
21 50 ANAHUAC 56 87 BRS 208
22 51 BH 1146 57 88 BRS 209
23 52 BR 12 58 89 BRS 210
24 53 BR 14 59 90 BRS 220
25 54 BR 18 60 91 BRS 229
26 55 BR 23 61 92 BURITI
27 56 BR 33 62 93 CAMBOATÁ
28 57 BR 35 63 94 GUABIJU
29 58 CEP 14 64 95 LOURO
30 59 CEP 19 65 96 TIMBAÚVA
31 60 CEP 24 66 97 BRILHANTE
32 61 CNT 8 67 98 IAPAR 53
33 62 CNT 10 68 99 IPR 85
34 63 EMBRAPA 16 69 100 PF 001102
35 64 EMBRAPA 27 70 101 BRS 49
* genótipos numerados de 1 a 20 são
trigo
sint
é
tico, os demais são genótipos de
trigo comum
61
2.4 Inoculação
Antes da inoculação, as plantas foram climatizadas por 24
horas à temperatura de 24 ºC. A inoculação em folha nas plantas
jovens foi executada de acordo com a escala de Zadoks et al. (1974)
no estádio 14, ou seja, no momento em que a planta apresentava
quatro folhas expandidas, e no estádio de planta adulta no estádio
60,61 da mesma escala, ou seja, no início da antese. Utilizou-se um
pulverizador De Vilbiss, ligado a um compressor de ar. Após a
inoculação as plantas foram incubadas por 24 horas em escuro total,
numa temperatura de 24 ºC sob nebulização de 120 s em intervalos de
60s. Após 24 horas, o fotoperíodo foi ajustado para 12 horas de luz e a
nebulização para 60 s a cada 1800 s.
2.5 Avaliações
A reação à doença, dos diferentes genótipos de planta
jovem foi avaliada cinco dias após a inoculação, de acordo com a
escala diagramática descrita por Urashima et al. (2004). Nessa escala
são considerados cinco tipos de infecção presentes na folha,
representados por notas que variam de 0 a 4. Zero significa ausência
de infecção; 1 (um), lesões escuras, pequeníssimas, denominadas de
“cabeça de alfinete”; 2 (dois) pequenas lesões, maiores que as do tipo
1, com coloração marrom a preta, sem o centro distinguível; 3 (três),
lesões arredondadas denominadas como “mancha ocular”, com o
centro cinza e, 4 (quatro), lesões típicas de suscetibilidade, elípticas e
com centro cinza. As reações correspondentes às notas 0, 1 e 2 foram
classificadas como de resistência e aquelas correspondentes a 3 e 4,
como de suscetibilidade conforme ilustrado na Figura 1.
62
Figura 1- Tipos de lesões de Pyricularia grisea em trigo. (A)
Lesões tipo 1 (a) e 2 (b), coloração amarronzada e não
esporulativas. (B) Lesão tipo 4, manchas elípticas
com centro discernível esporulativas. Embrapa Trigo,
Passo Fundo, RS. 2007.
A severidade da doença nas folhas de cada genótipo de
trigo, quando submetidos à inoculação nos estádios de planta jovem e
planta adulta foi avaliada com o auxílio da escala diagramática
preconizada pelo sistema internacional de avaliações de doenças do
arroz (INTERNATIONAL RICE RESEARCH INSTITUTE, 1996)
com algumas modificações. Zero significa ausência de sintomas; 1
(um), 0,1 a 4 % da área foliar infectada (AFI); 2 (dois), 5 a 10% AFI;
3 (três), 11 a 25% AFI; 4 (quatro), 26 a 50% AFI; 5 (cinco), 51 a
100% da área foliar afetada. Para a avaliação nas espigas, utilizou-se
A
B
a
b
63
a mesma escala, considerando simplesmente a área da espiga afetada
pela doença. No estádio de planta jovem foi 0 Td(f)Tj3.84737 0 Td(d)Tj5.65.04967 0 Td(t)Tj3.1I±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±9.44852 0 Td/±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±6±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±3.84737 0 Td(d)Tj5.65.04967a 3.7m(a)Tj5.1699 0 Td( )Tj3.84737 0 Td(m)c04967aa m dies
64
b= caráter presente em um dos objetos e ausente no outro;
c=caráter ausente em um objeto e presente no outro;
Para o agrupamento hierárquico dos isolados utilizou-se o
método UPGMA (Unweighted Pair Group method Using Arithmetic
Averages). Esse método não considera a estrutura de subdivisão do
grupo, atribui pesos iguais a cada indivíduo do grupo e calcula a
similaridade média de um indivíduo que pretende se juntar ao grupo
(MEYER, 2002).
Para o agrupamento dos 70 genótipos de acordo com a
severidade das lesões de suscetibilidade apresentado, pelos mesmos
no estádio de planta jovem, os dados utilizados foram as notas médias
da escala que cada genótipo apresentou quando inoculado com cada
um dos 18 isolados. Esses dados serviram para a construção de um
dendrograma, utilizando o método UPGMA e o programa
computacional Darwin (PERRIER & JACQUEMOUD-COLLET,
2006). Para a estimativa de dissimilaridade genética utilizou-se a
Distância Euclidiana (D). A Distância Euclidiana é considerada uma
medida de dissimilaridade, interpretada como
65
O programa SAS (Statistical Analysis System) foi utilizado
para análise dos dados de severidade em folha bandeira e espiga. Os
dados utilizados foram as n53059 0 Td(e)Tj5.04a
66
Urashima et al. (2004) os isolados de P. grisea devem possuir um
grande número de genes de virulência capazes de vencer os possíveis
genes de resistência dos genótipos.
O dendrograma baseado na análise hierárquica dos dados
de reação em planta jovem (Figura 2) permitiu classificar os isolados
em três linhagens, com número diferente de componentes,
identificados pelas letras a’, b’, c’, considerando a similaridade
mínima de 75% entre isolados (FILIPPI & PRABHU, 2001). Quinze
dos 18 isolados testados apresentaram mais de 85% de similaridade
entre si. Desse grupo, um conjunto de isolados com 100% de
similaridade destacou-se dos demais, por agrupar indivíduos de
diferentes origens, mas que propiciaram uma reação de suscetibilidade
em todos os genótipos testados. O isolado Py 5002 apresentou cerca
de 32% de similaridade com os demais isolados e destacou-se por ser
o menos virulento a todos os genótipos testados, embora possua a
mesma origem que Py 5001 (Tabela 1). O isolado Py 5038 (linhagem
b’) juntamente com o isolado Py 5002 apresentaram um padrão de
virulência diferente dos demais isolados, que compuseram a linhagem
a’. No grupo de virulência a’ encontram-se isolados de todas as
regiões geográficas amostradas, sendo que com exceção de Py 5020,
os demais isolados apresentaram no mínimo 85% de similaridade
entre si.
Embora, os isolados de P. grisea tenham apresentado
um estreito espectro de virulência por serem compatíveis com a
maioria dos cultivares testados; os cultivares resistentes diferiram
entre os isolados. A partir dessa reação diferencial dos cultivares foi
67
possível selecionar 14 genótipos de trigo sintético e comum (Tabela
3), o que sugere a diferenciação dos isolados em patótipos. Da mesma
forma que, na cultura do arroz as raças de P. grisea são identificadas a
partir da reação de uma série diferencial de cultivares, a série
diferencial de trigo proposta neste trabalho, permite a identificação de
13 patótipos a partir de 18 isolados testados. Com exceção dos
isolados que foram patogênicos a todos os cultivares e foram
denominados como pertencentes ao patótipo I, os demais isolados
foram pertencentes a patótipos distintos.
Figura 2- Dendrograma baseado na reação de 70 genótipos de trigo
submetidos à inoculação com 18 isolados monospóricos
de Pyricularia grisea. Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS.
2007.
Py6001
Py6018
Py6010
Py5039
Py5029
Py5025
Py5005
Py5001
Py5012
Py6025
Py6008
Py5021
Py5017
Py6012
Py6030
Py5020
Py5038
Py5002
a’
b’
c’
Py6001
Py6018
Py6010
Py5039
Py5029
Py5025
Py5005
Py5001
Py5012
Py6025
Py6008
Py5021
Py5017
Py6012
Py6030
Py5020
Py5038
Py5002
a’
b’
c’
0,00 0,25 0,50 0,75 1,00
Coeficiente de similaridade
68
Tabela 3- Chave de identificação de patótipos de P. grisea a partir da
reação diferencial de 14 genótipos de trigo. Embrapa
Trigo, Passo Fundo, RS. 2007
2* 5 8 23 34 39 50 55 61 68 91 92 93 101
Py 5001 S S S S S S S S S S S S S S I
Py 5005 S S S S S S S S S S S S S S I
Py 5025 S S S S S S S S S S S S S S I
Py 5029 S S S S S S S S S S S S S S I
Py 5039 S S S S S S S S S S S S S S I
Py 6010 S S S S S S S S S S S S S S I
Py 5002 R S R R R R S R R R R R S R II
Py 5012 S S S R S S S R S S S S S S III
Py 5017 S S S S S S S S R R S R S R IV
Py 5020 R S R R S S S S R S R S S S V
Py 5021 S S S S S S S S S S R R S R VI
Py 5038 S S R S R S S R R R R R R S VII
Py 6001 S S S S S R S S S S S S S S VIII
Py 6008 S R R S S S S S S S S R S S IX
Py 6012 R S S S S S S S S S R S S S X
Py 6018 S S S S S S S S S R R S S S XI
Py 6025 S S S S R S S S S S S S S S XII
Py 6030 S S S S S S S S S S S S R R XIII
Reação diferencial de variedade RRySR
69
severidade do grupo foi 27,53, com amplitude de 18, 92 a 36,25, e
desvio padrão de 7,83.
Figura 3-Dendrograma baseado na similaridade dos dados de severidade dos 70 genótipos
de trigo, submetidos à inoculação com 18 isolados monospóricos de
Pyricularia grisea. Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS. 2007.
70
Tabela 4- Agrupamento dos 70 genótipos de planta
jovem de acordo com a similaridade dos
dados de severidade para os 18 isolados
de P. grisea testados. Embrapa Trigo,
Passo Fundo, RS. 2007
Grupo de severidade Genótipos X1¹ X2²
CNT 10 28,77 2,90
Cep 24 22,27 2,70
Brs 220 29,68 2,79
Brs 210 26,07 2,70
Ias 54 24,38 2,39
Frontana 21,85 2,50
Cep 14 16,38 2,30
Iac 5 29,50 2,80
Embrapa 16 26,81 2,70
Br 35 21,12 2,34
Brilhante 22,02 2,43
PF 804002 16,07 2,20
PF 964009 17,27 2,20
PF 804001 21,34 2,30
Br 23 18,74 2,02
IAC 24 28,99 2,50
Jacuí 24,43 2,50
NE 20159-X 28,66 2,61
PF 844002 18,21 2,03
NE 20168-P 28,52 2,62
IPF 71404 25,45 2,47
Br 18 22,99 2,54
Ocepar 16 35,69 2,94
Embrapa 40 31,43 2,80
NE 20156-B 18,51 2,18
Br 14 38,85 3,20
Br 12 45,99 3,30
BH 1146 33,48 2,82
Sintético 01 31,29 2,87
Toropi 28,76 2,91
NE 20160-Z 36,90 3,06
NE 20160-C 44,12 3,20
NE 20159-B 34,32 2,79
PG 1 20,84 2,53
Peladinho 38,85 3,24
NE 20160-Y 31,66 2,91
NE 20159-C 25,61 2,71
NE 20160-B 42,16 3,18
NE 20160-A 38,08 3,01
NE 20159-Z 27,74 2,57
Brs Camboatá 32,39 2,76
Brs Guabijú 30,33 2,83
PF 001102 47,97 3,54
IPR 85 30,97 2,99
Brs Nobre 40,98 3,22
Iapar 6 53,99 3,50
LA 1549 50,64 3,34
Klein 31,59 2,83
Brs Aliança 61,55 4,01
Br 33 45,61 3,50
Anahuac 44,96 3,60
Brs 208 40,86 3,10
a
continua.
...
71
Continuação...
Grupo de severidade Genótipos X1¹ X2²
Iapar 53 13,03 1,91
CNT 8 10,64 1,76
PF 844002 18,88 2,20
PF 844001 20,97 2,20
NE 20157-X 21,41 2,25
Brs 179 10,48 2,20
NE 20158-X 10,49 1,73
Brs 229 9,15 1,50
Brs Buriti 11,91 1,56
Brs 177 24,02 2,30
Embrapa 27 13,44 1,90
Brs 120 11,47 1,73
Brs 194 18,36 2,39
Brs Timbaúva 24,87 2,49
Brs Louro 18,92 2,20
Brs 49 22,30 2,34
Brs 209 35,33 2,90
OR 1 36,25 3,00
c
b
Na análise dos dados de severidade em espiga o isolado
mais virulento foi Py 5005, que não diferiu estatisticamente de Py
6001, Py 6008, Py 6030 (Tabela 5). Quanto aos genótipos, o que
apresentou menor área afetada foi CNT 8 que não diferiu do genótipo
sintético PF 844001 (Tabela 5). Em folha bandeira os isolados mais
virulentos foram Py 6001, Py 5002, Py 6030 e Py 5039. As menores
médias de severidade foram observadas nos genótipos de trigo
sintético: NE 20156-B, PF 844001, PF 964009, PF 804002, os quais
não diferiram estatisticamente do cultivar CNT 8 (Tabela 6). Em
comparação com as inoculações em fase vegetativa, merece destaque
o isolado Py 5002 que na fase de planta jovem foi o menos virulento,
já na fase de planta adulta comportou-se como o mais virulento. Não
foi possível diferenciar os isolados quanto a sua agressividade pela
¹ Dados da severidade média da área foliar afetada sem transformação
² Dados da severidade média da área foliar afetada transformados para escala
preconizada pelo IRRI com algumas alterações
72
região geográfica da qual foram coletadas as amostras, muito menos
fazer alguma relação com a porção da planta da qual o isolado foi
obtido para nenhuma das avaliações.
73
Tabela 5- Severidade de brusone na espiga de 12 genótipos de trigo, submetidos à inoculação
com 18 isolados monospóricos de Pyricularia grisea. Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS.
2007
Isolados 2 8 9 23 26 54 61 83 86 92 93 95 Média
Py 5001 2,0¹ 2,0 5,0 2,9 4,3 2,6 2,1 2,9 2,8 1,1 4,7 2,7 2,9f²
Py 5002 2,3 4,2 5,0 5,0 3,9 4,8 0,3 4,3 3,7 4,2 5,0 4,6 3,9bc
Py 5005 4,8 4,8 5,0 5,0 4,5 5,0 3,1 5,0 4,4 4,3 5,0 5,0 4,6a
Py 5012 4,1 2,5 4,5 3,2 1,3 2,6 1,9 1,1 2,1 3,5 4,9 5,0 3,0ef
Py 5017 2,3 1,3 3,5 3,3 3,5 4,0 3,6 3,0 0,3 4,7 4,6 3,9 3,1def
Py 5020 4,5 2,8 4,9 3,3 3,2 3,4 2,0 1,7 4,2 4,1 3,6 4,6 3,5cde
Py 5021 3,0 2,1 5,0 2,1 2,0 3,8 3,5 5,0 3,2 4,8 2,9 4,8 3,5cde
Py 5025 3,4 2,6 5,0 3,6 3,5 5,0 2,2 4,1 4,2 2,6 4,6 3,6 3,8bc
Py 5029 3,3 3,0 4,6 3,0 1,6 4,0 3,3 4,5 3,5 4,0 4,7 3,8 3,6cd
Py 5038 0,8 0,1 4,7 0,0 0,1 1,0 0,1 0,0 1,2 2,1 0,7 1,0 1,0h
Py 5039 2,3 2,7 2,4 1,4 2,1 5,0 3,0 4,8 2,0 5,0 5,0 5,0 3,4cdef
Py 6001
4,7
4,5
5,0
3,4
4,0
4,0
2,7
4,6
5,0
3,8
5,0
4,8
4,3ab
Py 6008
4,4
4,0
4,6
4,5
3,8
4,6
3,3
4,8
4,6
3,8
4,3
4,5
4,3ab
Py 6010 0,5 1,6 4,7 0,2 0,1 1,3 0,8 3,8 0,2 4,3 3,6 4,2 2,1g
Py 6012 0,1 0,6 1,8 1,2 1,5 0,6 0,3 2,0 0,8 1,5 0,6 1,0 1,0h
Py 6018 0,0 1,0 0,9 0,0 2,1 0,5 1,3 3,2 1,5 2,5 1,7 2,4 1,4h
Py 6025 1,3 0,3 4,8 0,0 0,7 0,5 0,9 2,5 0,9 1,4 2,7 0,5 1,3h
Py 6030 4,8 3,0 4,6 3,1 4,5 5,0 1,8 4,8 4,4 4,9 5,0 4,7 4,2ab
Média 2,7D² 2,4DE 4,2A 2,5D 2,6D 3,2C 2,0E 3,4BC 2,7D 3,5BC 3,8AB 3,7B
Genótipos*
*Numeração correspondente à origem dos genótipos (Tabela 2)
¹ Valores correspondentes a s notas da escala utilizadas para classificar a severidade da doença nos diferentes genótipos de trigo
² Valores seguidos da mesma letra maiúscula na linha e minúscula na coluna não diferiram estatisticamente pelo testes de Tukey a 5%
74
Tabela 6- Severidade de brusone na folha bandeira de 12 genótipos de trigo, submetidos a inoculação com
18 isolados monospóricos de Pyricularia grisea. Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS. 2007
Isolados 2 8 9 23 26 54 61 83 86 92 93 95 Média
Py 5001 3,2¹ 1,7 2,2 2,7 4,8 2,0 1,8 4,4 5,0 4,6 1,0 3,5 3,0 b²
Py 5002 3,0 4,0 5,0 5,0 4,1 5,0 2,8 3,7 4,0 4,8 5,0 5,0 4,3 a
Py 5005 2,2 2,8 3,8 2,5 2,1 2,5 1,8 5,0 0,7 2,3 3,5 3,3 2,7 b
Py 5012 3,6 0,1 0,4 3,5 1,4 0,1 2,9 0,7 4,0 0,2 2,7 2,9 1,8 c
Py 5017 0,4 0,0 1,5 1,1 1,7 0,1 2,6 1,5 1,8 2,3 2,3 0,0 1,2 cde
Py 5020 1,0 0,4 1,3 1,7 1,1 0,4 0,2 0,1 4,2 0,3 1,2 2,1 1,1 de
Py 5021 0,6 2,8 4,6 1,5 1,5 4,4 3,9 4,1 0,4 4,8 2,9 4,5 3,0 b
Py 5025 1,5 3,3 1,6 1,3 2,5 2,6 2,6 3,9 1,7 3,5 2,8 4,8 2,7 b
Py 5029 2,4 3,8 4,7 1,0 1,0 2,5 2,7 4,6 2,1 4,0 3,2 3,0 2,8 b
Py 5038 0,1 0,2 0,4 0,0 0,0 1,9 2,7 1,7 2,8 3,2 0,4 0,1 1,1 de
Py 5039 4,1 3,7 4,6 0,4 0,2 5,0 4,7 5,0 5,0 5,0 5,0 5,0 3,9 a
Py 6001
4,5
3,9
3,8
3,1
4,7
4,8
2,8
4,8
4,3
4,0
4,8
4,4
4,1 a
Py 6008
2,0
3,1
2,7
3,6
2,4
1,7
3,6
5,0
0,8
2,7
1,7
1,9
2,6 b
Py 6010 0,1 1,2 3,0 0,5 0,0 0,3 0,0 1,6 0,2 0,5 2,3 0,2 0,8 e
Py 6012 0,0 0,8 1,5 0,1 0,0 3,3 0,1 1,9 0,4 0,2 0,3 1,2 0,8 e
Py 6018 0,0 1,5 3,0 0,0 2,5 3,0 0,2 1,7 0,6 0,2 1,6 0,0 1,2 de
Py 6025 2,8 0,6 1,2 0,0 0,1 1,1 1,5 3,4 4,4 2,2 0,2 0,1 1,4 cd
Py 6030 4,6 2,2 4,2 4,0 4,8 5,0 3,2 5,0 4,1 4,6 5,0 4,8 4,3 a
Média 2,0 D² 1,9 D 2,7 B 1,8 D 1,9 D 2,5 BC 2,2 CD 3,2 A 2,6 BC 2,7 B 2,5 BC 2,6 BC
Genótipos*
*Numeração correspondente à origem dos genótipos (Tabela 2)
¹ Valores correspondentes as notas da escala utilizadas para classificar a severidade da doença nos diferentes genótipos de trigo testados
² Valores seguidos da mesma letra maiúscula na linha e minúscula na coluna não diferiram estatisticamente pelo testes de Tukey a 5%
75
Os dados de severidade média em planta jovem e adulta
foram expostos na forma de gráficos. Através da disposição dos
pontos nos mesmos foi possível constatar a inexistência de correlação
entre as variáveis: espiga x folha jovem e folha jovem x folha bandeira
(Figuras 4 e 5). Embora não seja indicado realizar uma correlação
entre a reação dos genótipos em planta jovem e planta adulta,
observou-se uma tendência dos genótipos resistentes em planta jovem
apresentarem suscetibilidade em planta adulta. A ocorrência da reação
inversa foi menos freqüente.
y = 0,0377x + 15,3
R
2
= 0,0035
r = 0,0591
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100
% brusone na espiga
% brusone em folha jovem
Figura 4- Severidade de brusone em folha jovem e espiga de 12
genótipos de trigo submetidos à inoculação com 18
isolados monospóricos de Pyricularia grisea.
Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS. 2007.
76
y = -0,05x + 38,652
R
2
= 0,0009
r = 0,030
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100
% brusone em folha bandeira
% brusone em folha jovem
Figura 5– Severidade de brusone em folha bandeira e folha
jovem de 12 genótipos de trigo submetidos à
inoculação com 18 isolados monospóricos de
Pyricularia grisea. Embrapa Trigo, Passo Fundo,
RS. 2007.
A análise dos coeficientes de correlação e de determinação,
obtidos através da comparação dos graus de severidade da doença
observados na espiga e na folha bandeira dos genótipos testados,
evidenciou que o genótipo PF 804002 (Tabela 7) apresenta maior
compatibilidade nas suas respostas às inoculações nos dois tipos de
avaliações realizadas. Uma análise similar à anterior, mas para os 18
isolados utilizados no trabalho indicou que a maior compatibilidade
entre as respostas foi promovida pelo isolado Py 6010 (Tabela 8).
Porém, os valores de correlação variam entre genótipos e isolados.
Esse fato explica o baixo valor da correlação verificado no
experimento, através da comparação de severidade na folha bandeira e
espiga de todos os genótipos e isolados 54% (Figura 6).
77
Tabela 7- Coeficientes de determinação e correlação dos dados de
severidade de brusone na espiga e folha bandeira por
genótipo de trigo em relação a todos os isolados de
Pyricularia grisea testados. Embrapa Trigo, Passo
Fundo, RS. 2007
Genótipos R² r Genótipos R² r
NE 20156-B 0,38 0,62 CNT 8 0,33 0,58
PF 844001 0,18 0,42 BRS 120 0,52 0,72
PF 844002 0,35 0,59 BRS 194 0,49 0,70
PF 964009 0,02 0,15 BURITI 0,04 0,20
PF 804002 0,60 0,77 CAMBOATÁ 0,14 0,37
BR 18 0,46 0,67 LOURO 0,51 0,71
Tabela 8- Coeficientes de determinação e correlação dos dados de
severidade de brusone na espiga e folha bandeira por
isolado de Pyricularia grisea em relação a todos os
genótipos de trigo testados. Embrapa Trigo, Passo
Fundo, RS. 2007
Isolados R² r Isolados R² r
Py 5001 0,00 0,05 Py 5038 0,29 0,54
Py 5002 0,51 0,71 Py 5039 0,27 0,52
Py 5005 0,22 0,47 Py 6001 0,39 0,62
Py 5012 0,03 0,18 Py 6008 0,05 0,23
Py 5017 0,04 0,20 Py 6010 0,77 0,88
Py 5020 0,04 0,22 Py 6012 0,64 0,80
Py 5021 0,67 0,81 Py 6018 0,37 0,61
Py 5025 0,09 -0,30 Py 6025 0,00 -0,06
Py 5029 0,75 0,86 Py 6030 0,85 0,92
78
y = 0,5841x + 11,455
R
2
= 0,2969 r =0,5449
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100
% brusone na espiga
% brusone na folha bandeira
Figura 6– Severidade de brusone em folha bandeira e
espiga de 12 genótipos de trigo submetidos à
inoculação com 18 isolados monospóricos de
Pyricularia grisea. Embrapa Trigo, Passo
Fundo, RS. 2007.
A similaridade de 75% entre os isolados de Pyricularia
grisea no espectro de virulência, mesmo com o uso de 70 genótipos de
trigo escolhidos para o trabalho pela sua suposta diversidade, revelou
uma baixa variabilidade fenotípica entre os isolados amostrados. Em
contraste, ampla variabilidade genética é verificada em P. grisea na
cultura do arroz, responsável pela constante superação da resistência
dos cultivares de arroz após seu lançamento (PRABHU & FILIPPI,
2006). Essa estreita variabilidade no patógeno do trigo já foi relatada
por Urashima & Kato (1994) e Urashima et al. (1999) entre isolados
obtidos do Paraná e Mato Grosso do Sul.
Os dados obtidos sobre o espectro de virulência
evidenciaram uma estreita similaridade fenotípica entre os isolados,
79
embora os mesmos tenham sido obtidos em diferentes circunstâncias.
Os isolados obtidos no Paraná foram originários de diferentes
cultivares diferentes em um mesmo campo, no ano de 2005. Já, os
isolados de Minas Gerais e Goiás foram obtidos do cultivar BRS 208
no ano de 2006. Dessa forma, os isolados testados fazem parte de uma
pequena amostra representativa de um importante segmento da
população de P. grisea existente em pelo menos quatro estados
brasileiros, em um determinado período de tempo. A divisão dos
isolados de acordo com o critério utilizado por Filippi & Prabhu
(2001), permitiu identificar três linhagens do fungo: a’, b’ e c’ com
respectivamente 16; 1; 1 isolados. Porém, não foi possível estabelecer
uma tendência do espectro de virulência dessas linhagens em relação
aos genótipos utilizados no experimento, devido ao número reduzido
de isolados nas linhagens b’ e c’, e na reação similar apresentada pela
maioria dos genótipos para os isolados pertencentes à linhagem a’.
Mesmo sabendo que, para a identificação de raças de um
patógeno é necessário que os genes de resistência na planta sejam
conhecidos a sugestão de alguns genótipos utilizados no presente
trabalho, como cultivares diferenciais de trigo é um primeiro passo
para a identificação de patótipos de P. grisea nessa cultura. A estreita
base genética apresentada pelo trigo hexaplóide cultivado (BERED et
al., 2000) torna a possibilidade de existência de genes de resistência à
brusone rara, levando-se em consideração os relatos de cultivares
suscetíveis nas principais regiões tritícolas do Brasil (GOULART,
2004). Dessa forma a resposta apresentada pelos genótipos sintéticos à
doença os torna promissoras fontes de resistência à doença. Os
genótipos sintéticos são originários de diferentes acessos de T.
80
tauschii que são geneticamente distintos e apresentam diferentes graus
de resistência a doenças foliares (ALMEIDA, 2006; PRESTES et al.,
1994), e são capazes de herdar genes de resistência do parental
diplóide (COX et al., 1995). A identificação de patótipos de P. grisea
será extremamente útil no monitoramento da diversidade de patótipos
em uma região, e na constatação do surgimento de novas raças, as
quais são informações importantes para os programas de
melhoramento de trigo, visando resistência à brusone.
No presente trabalho, as avaliações em planta jovem não
confirmaram a resistência dos cultivares BR 18 e BH 1146
(TRINDADE et al., 2006; ARRUDA et al., 2005) que se
comportaram como suscetíveis para a maioria dos isolados testados.
Porém os cultivares BRS 229 (BRUNETTA et al., 2006) e BRS 120
(PRESTES et al., 2007) considerados moderadamente resistentes em
planta adulta, também foram considerados na presente pesquisa
resistentes em planta jovem.
A variação no grau de suscetibilidade apresentado pelos
genótipos de 9,15% a 61,55% da área foliar afetada (Tabela 4) é um
indicativo da presença de resistência parcial entre os genótipos
testados. Embora a resistência qualitativa tenha sido o objetivo da
maioria dos programas de melhoramento ao longo dos anos, essa
prática não é duradoura para a brusone do arroz, devido à capacidade
do patógeno em superar a resistência de cultivares dois a três anos
após seu lançamento. Dessa forma, a não confirmação da resistência
qualitativa para os genótipos componentes desta pesquisa sugere a
resistência parcial que envolve muitos genes de pequeno efeito, e que
81
supostamente é mais durável do que a resistência qualitativa, como
um dos melhores métodos para aumentar a diversidade ao nível de
genótipo (PRABHU & FILIPPI, 2006; RIBEIRO DO VALE et al.,
2001).
Não houve confirmação
82
P. grisea varia conforme o estádio de desenvolvimento da planta.
Porém Arruda et al., (2005) verificaram correlação positiva entre
suscetibilidade nas folhas no estádio vegetativo e na espiga.
A discordância em relação à resposta dos genótipos
conforme o estádio de desenvolvimento da planta já foi relatada por
inúmeros autores, especialmente para brusone do arroz (PRABHU &
FILIPPI, 2006; PRABHU & BENDENDO, 1991; VILLAREAL et al.,
1980). De acordo com Ou (1985) linhagens de arroz, resistentes em
planta jovem, seriam resistentes em planta adulta. Mas, a perda da
correspondência em alguns cultivares foi atribuída entre outros fatores
às diferenças ambientais e período de florescimento dos genótipos
(BONMAN, 1992). Roumen (1992 ab), Hwang et al. (1987) e Koh et
al. (1987), constataram que as plantas tornavam-se resistentes com o
aumento da idade da planta. À medida que a idade da planta aumenta,
o número e tamanho das lesões são reduzidos, ou seja, o fungo acaba
por diminuir sua capacidade de penetração na cutícula da planta
(MURAKAMI et al., 2006).
A não correspondência da reação dos genótipos à brusone
em folha e ráquis foi verificada, entre outros, por Bonman et al.
(1989) e Puri et al. (2006) para os quais linhagens classificadas como
intermediárias ou suscetíveis em folhas comportavam-se como
resistentes à infecção do ráquis da panícula do arroz. Dessa forma, as
informações indicam que a resistência à brusone na panícula pode ser
expressa, em alguns genótipos de arroz, independentemente da
brusone em folha, da mesma forma que foi verificado no presente
experimento para brusone do trigo, quando se considera
83
individualmente a resposta dos genótipos por isolado para as duas
variáveis analisadas (severidade em folha bandeira e espiga). De
acordo com Hashiota apud Prabhu & Filippi (2006), a reação da
brusone nas folhas e no pescoço de panículas é controlada
independentemente por genes diferentes. A identificação de QTLs
(Quantitative Trait Loci) localizados em cromossomos diferentes em
arroz, associados a resistência de brusone nas folhas e pescoço da
panícula indica a complexidade da doença e do controle genético
(SIRITHUNYA et al., 2002). No Brasil não há relatos de altos índices
de severidade de brusone em folhas jovens de trigo, dessa forma a
importância epidemiológica da suscetibilidade em folha para um
possível dano na espiga ainda não foi constatada. Pois, como foi
relatado no trabalho, há uma diferença de reação conforme o órgão
atacado pelo fungo.
A correlação de 65% r5%
84
como fontes de resistência à brusone, e auxiliem na elaboração de
diferentes estratégias de melhoramento em programas de
melhoramento de trigo que visem resistência à brusone.
4 CONCLUSÕES
Nas condições em que a pesquisa foi desenvolvida, os
resultados obtidos permitem concluir que:
a) o padrão de virulência da maioria dos isolados de Pyricularia
grisea do trigo testados é homogêneo (75% de similaridade);
b) os genótipos BRS 229, BRS 179, CNT 8, BRS 120 e BRS Buriti,
NE 20158-X apresentam resistência à brusone em planta jovem;
c) os genótipos sintéticos: NE 20156-B, PF 844001, PF 964009, PF
804002 e o cultivar CNT 8 apresentam resistência em planta adulta à
brusone;
d) há baixa correlação de resistência à brusone entre espigas e folha de
trigo.
85
CAPÍTULO II
PADRÃO MOLECULAR E DE VIRULÊNCIA DE ISOLADOS
DE Pyricularia grisea DO TRIGO
Maria Fernanda Antunes da Cruz
1
, Ariano Morais Prestes
2
&
João Leodato Nunes Maciel
3
RESUMO- O uso de ferramentas moleculares e avaliações da
virulência de Pyricularia grisea, agente causal da brusone do arroz e
do trigo, tem permitido identificar variantes do patógeno,
especialmente aqueles que ocorrem na cultura do arroz. Nesse sentido,
os marcadores microssatélites já demonstraram que são eficientes para
classificar isolados de P. grisea em grupos geneticamente
relacionados. Os objetivos deste trabalho foram: caracterizar a
diversidade genética de 31 isolados de P. grisea do trigo com o
auxílio de 8 primers de microssatélites e relacionar os dados da
análise molecular com os dados do espectro de virulência de 18 desses
isolados, inoculados em plantas jovens de 70 genótipos de trigo. Dos
8 loci analisados, o primer mais informativo foi PG 5, que apresentou
5 alelos. Além disso, os primers MGM 21 e PG 12 permitiram separar
os isolados Py 5020 e Py 5038 em um grupo bastante distinto, com
1
Bióloga, mestranda do Programa de Pós-graduação em Agronomia (PPGAgro),
FAMV/UPF, área de concentração em Fitopatologia
2
Orientador, Eng.-Agr., PhD., professor do PPGAgro, FAMV/UPF
3
Co-orientador, Eng.-Agr., Dr., Pesquisador da Embrapa Trigo
86
menos de 50% de similaridade em relação aos demais isolados. A
similaridade genética variou de 14% (isolado de arroz) a 100%, sendo
que a maioria dos isolados apresentou mais de 75% de similaridade
entre si. Não foi possível agrupar os isolados conforme sua origem
geográfica. Na análise de virulência, 15 dos 18 isolados testados
apresentaram mais de 85% de similaridade entre si. O agrupamento
dos isolados de acordo com o grau de similaridade que os mesmos
apresentaram entre si foi muito semelhante nos dois critérios
utilizados nesta pesquisa, com exceção do isolado Py 5002, que
apresentou uma relação distinta dos demais isolados de acordo com o
critério adotado para classificá-los, o padrão molecular ou de
virulência.
Palavras-chave: marcadores moleculares, alelo, resistência, brusone
MOLECULAR PATTERN AND VIRULENCE OF ISOLATES
Pyricularia grisea WHEAT
ABSTRACT- The use of molecular tools and virulence evaluations of
Pyricularia grisea, causal agent of rice and wheat blast, permitted to
identify strains of the pathogen, especially those occuring in the rice
crop. Microsatellites already demonstrated efficiency to classify P.
grisea isolates by the genetic similarity groups. The objectives of this
work were: to characterizer the genetic diversity of 31 isolates of P.
grisea collected from wheat appling 8 primers microsatellites; and to
compare the molecular and virulence results of 18 isolates, when
87
inoculated in seedlings of 70 wheat genotypes. The most informative
primer was PG 05 with 5 alleles. The primers MGM21 and PG 12
permitted separate the Py 5020 and Py 5038 in distinct groups, with
less than 50% similarity in relation to others. The genetic similarity
varied from 14% (rice isolate) to 100%, but most of isolates presented
more than 75% similarity among them. It was not possible to cluster
the isolates according to geographic source. In the virulence analysis,
fifteen among eighteen tested isolates showed more that 85% of
similarity. The molecular pattern and virulence were similar for the
isolates, except for Py 5002 isolate, which presented a distinct
relationship with the others isolates, according to the criteria adapted
by classification.
Key-words: microsatellites markers, allele, resistance, blast
88
1 INTRODUÇÃO
O fungo Pyricularia grisea (Cooke) Sacc., agente causal
da brusone caracteriza-se por apresentar uma ampla gama de
hospedeiros, dentre estes estão o arroz no qual o fungo foi descrito
inicialmente, além de outras espécies de gramíneas de interesse
econômico como trigo, cevada, triticale (ZEIGLER, 1998; PURCHIO-
MUCHOVEJ & MUCHOVEJ, 1994).
Até o momento não foram identificados genótipos de trigo
que apresentassem reações diferenciadoras a ponto de permitir o
agrupamento do fungo em raças fisiológicas ou patótipos. Urashima &
Kato (1994), sugeriram a existência de diferentes raças fisiológicas de
Pyricularia grisea, devido às reações diferenciais de cultivares
originárias de regiões geográficas distintas para vários isolados do
fungo. A busca por genótipos de trigo que apresentassem uma
resposta diferencial à doença, também foi objeto de pesquisa de
Urashima et al. (2004). Vinte genótipos de trigo foram submetidos à
inoculação com 72 isolados originários dos estados do Paraná e Mato
Grosso do Sul, produziram 54 padrões distintos de virulência.
Nenhum cultivar foi resistente a todos os isolados, mas o cultivar BR
18 destacou-se por apresentar um amplo espectro de resistência.
Há pelo menos 15 anos, a variabilidade de Pyricularia
grisea tem sido avaliada com o uso de marcadores moleculares
(LEVY et al., 1991). Foram desenvolvidas estratégias como as sondas
de DNA que detectavam seqüências repetitivas no genoma do fungo
como MGR-586; retrotrasposon grasshopper (grh); transposon
invertido Pot-2 e o retrotrasposon MAGGY (Magnaporthe Gypsy
89
element) os quais permitiram a revelação de extensivo polimorfismo
entre isolados de P. grisea de arroz e baixo número de cópias dessas
repetições em isolados do fungo de outros hospedeiros (ZEIGLER,
1998). Em 1994 foi desenvolvido, a partir da seqüência Pot-2 um
marcador, que permite caracterizar de forma eficiente a variabilidade
do fungo do arroz (KACHROO et al., 1994). Entretanto, esta
estratégia não demonstrou a mesma eficiência quando utilizada para
estabelecer análises comparativas entre isolado de P. grisea, que não
sejam obtidos de plantas de arroz devido à pequena quantidade de
bandas geradas.
A partir do final dos anos 90, os marcadores moleculares
têm sido utilizados de forma mais intensa na caracterização de
isolados de P. grisea de espécies diferentes do arroz. Dentre os
marcadores moleculares empregados para avaliação da variabilidade
genética, entre isolados de P. grisea, obtidos de cereais de inverno
está: RAPD (Random Amplified Polymorphism DNA) em trigo e
triticale (BUSSO, 2005), RFLP (Restriction Fragment Length
Polymorphism) em triticale (URASHIMA et al. 2007) e SSR (Simple
Sequence Repeats) ou também conhecidos como microssatélites, em
trigo (GARRIDO, 2001; BRONDANI et al., 2000). Entre essas
alternativas, os marcadores microssatélites merecem destaque pela
eficiência em detectar polimorfismo entre espécies e dentre espécies.
Nesse sentido, Brondani et al. (2000) e Garrido (2001) verificaram
que o polimorfismo gerado pelos marcadores microssatélites foi mais
elucidativo para caracterizar a variabilidade de P. grisea do arroz do
que marcadores baseados nas seqüências MGR-586 e Pot-2. A
expectativa é a de que para estudos de população de P. grisea obtidos
90
de outros hospedeiros como o trigo, por exemplo, o nível de eficiência
dos marcadores microssatélites também seja superior.
Os marcadores microssatélites são seqüências repetidas,
que consistem de um a seis nucleotídeos repetidos em tandem
(CAIXETA et al., 2006; OLIVEIRA et al., 2006). Esses marcadores
apresentam algumas vantagens em relação aos demais marcadores
moleculares: são co-dominantes, específicos para um determinado
locus no cromossomo, e revelam elevado polimorfismo, fato que os
torna uma das técnicas mais utilizadas para detecção de baixa
variabilidade genética (MILACH, 1998).
Os objetivos deste trabalho foram: caracterizar a
variabilidade genética de isolados de P. grisea do trigo originários de
quatro estados brasileiros através do uso de marcadores moleculares
microssatélites, e relacionar o padrão molecular obtido com a reação
promovida por esses isolados quando utilizados em procedimentos de
inoculação de genótipos de trigo na fase de planta jovem.
2 MATERIAL E MÉTODOS
O trabalho foi desenvolvido nos Laboratórios de
Fitopatologia e Biologia Molecular da Embrapa Trigo.
2.1 Isolados
Os isolados monospóricos foram obtidos de ráquis, folhas
e glumas de espigas de trigo com sintomas de brusone nos anos de
2005 e 2006. As amostras foram obtidas de cultivares originárias de
lavouras de diferentes regiões geográficas brasileiras (Tabela 1), os
91
quais passaram a fazer parte da Coleção de isolados monospóricos de
Pyricularia grisea da Embrapa Trigo.
Tabela 1- Relação de isolados monospóricos de Pyricularia grisea
utilizados no experimento. Embrapa Trigo, Passo Fundo,
RS. 2007
Nº
Designação
Origem
Cultivar
Segmento da planta
2
Ano
1
Py 5001*
São Borja-RS
BRS Angico
Ráquis
2005
2
Py 5002*
São Borja-RS
BRS Angico
Ráquis
2005
3
Py 5003
Londrina-PR
BRS 248
Ráquis
2005
4
Py 5005*
Londrina-PR
BRS 248
Ráquis
2005
5
Py 5012*
Londrina-PR
BRS 229
Ráquis
2005
6
Py 5015
Londrina-PR
BRS 230
Ráquis
2005
7
Py 5017*
Londrina-PR
BRS 193
Ráquis
2005
8
Py 5020*
Londrina-PR
BR 18
Ráquis
2005
9
Py 5021*
Londrina-PR
BR 18
Ráquis
2005
10
Py 5022
Londrina-PR
BR 18
Ráquis
2005
11
Py 5025*
Londrina-PR
BRS 249
Ráquis
2005
12
Py 5029*
Londrina-PR
CD 105
Ráquis
2005
13
Py 5031
Londrina-PR
CD 105
Ráquis
2005
14
Py 5034
Londrina-PR
BRS 220
Ráquis
2005
15
Py 5038*
Londrina-PR
BRS 220
Ráquis
2005
16
Py 5039*
Londrina-PR
BRS 208
Ráquis
2005
17
Py 5042
Londrina-PR
BRS 208
Ráquis
2005
18
Py 5047
Londrina-PR
BRS 208
Ráquis
2005
19
Py 6001*
Coromandel-MG
BRS 208
Folha
2006
20
Py 6008*
Coromandel-MG BRS 208 Folha 2006
21
Py 6010*
Coromandel-MG BRS 208 Folha 2006
22
Py 6012*
Coromandel-MG BRS 208 Gluma 2006
23
Py 6015
Coromandel-MG BRS 208 Gluma 2006
24
Py 6018*
Coromandel-MG BRS 208 Ráquis 2006
25
Py 6025*
Coromandel-MG BRS 208 Folha 2006
26
Py 6028
Goiânia-GO BRS 208 Ráquis 2006
27
Py 6030*
Goiânia-GO BRS 208 Ráquis 2006
28
Py 6032
Goiânia-GO BRS 208 Ráquis 2006
29
Py 6041
Goiânia-GO BRS 208 Ráquis 2006
30
Py 6044
Goiânia-GO BRS 208 Ráquis 2006
31
Py 6048
Goiânia-GO BRS 208 Ráquis 2006
32
Py 3.3.1
1
Cachoeirinha-RS
Dular-arroz
Folha
1996
1
Isolado gentilmente cedido pelo Instituto Rio-Grandense do Arroz
2
Refere-se à parte da planta da qual o isolado foi obtido
* Isolados utilizados nos testes de avaliação da virulência
92
2.2 Cultivo de isolados para produção de micélio
Os isolados foram repicados para 70 mL de meio líquido
completo (PONTECORVO et al. 1953, modificado por AZEVEDO &
COSTA, 1973), (NaNO
3
6 g, KH
2
PO4 1,5 g, KCl 0,5 g, MgSO
4
.
7H
2
O 0,5 g, NH
4
Cl 3 g, FeSO
4
0,01 g, ZnSO
4
0,01 g, glicose 10 g,
sacarose 5 g, peptona 2 g, extrato de levedura 0,5 g, caseína
hidrolisada 1,5 g, água destilada 1L). O pH do meio líquido foi
ajustado para 6,8, e os meios de cultivo nos Erlenmeyers de 250 mL
foram autoclavados a 121 ºC por 20 minutos (min). No momento da
repicagem foi acrescido a cada Erlenmeyer 70 µL do antibiótico
ampicilina na concentração de 100 mg/mL. Após a repicagem do
fungo os Erlenmeyers foram incubados durante cinco dias a 25 ºC, sob
agitação de 130 rpm. Após esse período o micélio foi filtrado,
congelado em nitrogênio líquido e armazenado a - 80 ºC até o
momento da extração do DNA.
2.3 Extração do DNA
Para extração do DNA foi utilizado o protocolo de Specht et
al. (1982), com algumas modificações. O micélio do fungo foi
triturado em nitrogênio líquido e transferido para tubos Eppendorf de
2 mL, e suspenso em 800 µL de tampão de extração (Tris-HCl 50
mM pH 8.0; EDTA 20 mM pH 8.0; SDS 2%; = 5 mL de Tris-HCl 1
M pH 8.0 + 4 mL de EDTA 0,5 M pH 8.0 + 10 mL de SDS 20% + 81
mL de água milli-Q) por 30 minutos a 70 ºC. Em seguida adicionou-se
400 µL de acetato de potássio 5 M (29,44 g de acetato de potássio +
11,5 mL de ácido acético glacial + completar o volume para 100 mL
com água milli-Q) e incubou-se em gelo por 30 minutos. A solução
93
foi centrifugada a 12.000 rpm por 10 minutos a 4 ºC e o sobrenadante
transferido para um tubo Eppendorf. Adicionou-se 500 µL de fenol-
clorofórmio e por cinco minutos alternou-se temperatura ambiente e
gelo. Em seguida o material foi centrifugado a 12.000 rpm por 10
minutos a 4 ºC. A fase aquosa foi transferida e acrescida de 600 µL de
clorofórmio-álcool isoamílico (24:1), alternando temperatura ambiente
e gelo. Posteriormente a solução foi novamente centrifugada e a fase
aquosa transferida para outro Eppendorf e acrescida de 250 µL de
acetato de amônio 7,5 M e 550 µL de isopropanol e incubada a menos
20 ºC por 2 horas para formação do grumo de DNA. Passado esse
período o material foi centrifugado a 5.000 rpm por 10 minutos a 4 ºC,
o sobrenadante foi descartado e adicionou-se ao precipitado 500 µL de
etanol 70% gelado, e realizou-se a última centrifugação de 5.000 rpm
por 5 minutos a 4 ºC. O sobrenadante foi descartado e o precipitado
seco a temperatura ambiente. Por fim, adicionou-se 50 µL de solução
de TE (Tris-HCl 10 mM pH 8,0 + EDTA 1 mM pH 8,0) + RNase A
(46 µL de TE + 4 µL de RNase A 10 mg/mL) e incubou-se o material
a 37 °C por 30 minutos, para posterior checagem e quantificação de
DNA em gel de agarose 0,8%.
2.4 Otimização da reação PCR de microssatélites
O DNA dos isolados foi amplificado utilizando os primers
dos marcadores PG3, PG5, PG12, PG20, PG15, PG21, desenvolvidos
por Garrido (2001), e os primers MG1 e MG21 (BRONDANI et al.,
1998). A reação de amplificação foi composta de: DNA 25ng/µL,
Tampão 10x, MgCl
2
20 mM, dNTP 10 mM, primer 5 µM, Taq
polimerase 5 U/mL e H
2
O. O programa utilizado no termociclador
94
PTC-100 Perner Thermal Cycler foi: 94 ºC por 3 minutos, seguido de
25 ciclos de 94 ºC por 30 segundos (s), 60 ºC/ 30s, 72 ºC/ 30 s e
extensão final de 72 ºC/ 3 min. Após a amplificação as reações
permaneceram a 4 ºC até a utilização. A seqüência de cada primer e o
mix utilizado para cada reação estão registrados nas Tabelas 2 e 3
respectivamente. As seqüências “Forward” receberam uma cauda com
a seqüência complementar reversa do oligonucleotídeo M13 para que
posteriormente, as reações de PCR fossem acrescidas do M13
marcado com fluoróforo e seus produtos discriminados no
seqüenciador.
Tabela 2-Primers e suas respectivas seqüências utilizadas para
amplificação do DNA dos isolados de Pyricularia grisea.
Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS. 2007
Primers Seqüência (5'-3') Tamanho (pb) Mix
M13-20F TGTAAAACGACGGCCAGT 18 -
MGM 01F TGTAAAACGACGGCCAGTGCGACAATGTCTTTTTTTTT 38
MGM 01R TTTCGTACAATCCCGATG 18
MGM 21F TGTAAAACGACGGCCAGTATATCTCGTGCAGGCCGGT 37
MGM 21R GCAGGTGAGCAAACAGCAAGA 21
PG 03F TGTAAAACGACGGCCAGTGGTTCGAGTGTCAGTCTGTCAGT 41
PG 03R AACACATGGCGGCCGTATCC 20
PG 05F TGTAAAACGACGGCCAGTATGCTGTGCTGCGACGTGGT 38
PG 05R ACTGGTCCGCTTGTCCGCTT 20
PG 12F TGTAAAACGACGGCCAGTCACAGTATTTGCTCTCTCTC 38
PG 12R CAGAGTCAGAAAGTGTGTGT 20
PG 15F TGTAAAACGACGGCCAGTGCGGAGGACATCCCAGAGTT 37
PG 15R CTTGACACGCCCATGTTTTA 20
PG 20F TGTAAAACGACGGCCAGTCCTGTGAGTTGGGTTCGAGT 38
PG 20R TCAAACACATGGTCGGTCAG 20
PG 21F TGTAAAACGACGGCCAGTGAGGTGACGAGGGGGAATAG 38
PG 21R AGCATATTCACCAGGCGTTC 20
PG 42F TGTAAAACGACGGCCAGTGCTTCTTTCTCCTGCGCATA 38
PG 42R GGGTGTCAGCCTTTTTCATT 20
D
C
C
B
A
A
D
C
B
95
Tabela 3- Concentrações dos reagentes utilizados nos diferentes
mixes para reação de PCR de otimização dos primers.
Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS. 2007
MIX A Concentração final Volume por reação (µL)
H
2
O
14,525
Tampão (10X) 1x 2,5
Mg (20mM) 1,5 mM 1,875
dNTP's (10 mM) 0,2 mM cada 2
Primer F(5µM)
0,2 mM 1
Primer R(5
µ
M)
0,2 mM 1
Taq polimerase (5U/mL) 0,5 U 0,1
DNA (ng/
µ
L)
50 ng 2
MIX B
Concentração final
Volume por reação (µL)
H
2
O
12,975
Tampão (10X) 1x 2,5
Mg (20mM) 1,5 mM 1,875
dNTP's (10 mM) 0,35 mM cada 3,5
Primer F(5µM)
0,2 mM 1
Primer R(5
µ
M)
0,2 mM 1
Taq polimerase (5U/mL) 0,75 U 0,15
DNA (ng/µL)
50 ng 2
MIX C
Concentração final
Volume por reação (µL)
H
2
O
13,225
Tampão (10X) 1x 2,5
Mg (20mM) 2,5 mM 3,125
dNTP's (10 mM) 0,2 mM cada 2
Primer F(5µM)
0,2 mM 1
Primer R(5
µ
M)
0,2 mM 1
Taq polimerase (5U/mL) 0,75 U 0,15
DNA (ng/µL)
50 ng 2
MIX D
Concentração final
Volume por reação (µL)
H
2
O
15,3
Tampão (10X) 1x 2,5
Mg (20mM) 1,5 mM 2
dNTP's (10 mM) 0,2 mM cada 1
Primer F(5
µ
M)
0,2 mM 1
Primer R(5
µ
M)
0,2 mM 1
Taq polimerase (5U/mL) 1 U 0,2
DNA (ng/µL)
50 ng 2
2.5 Genotipagem dos isolados com marcadores microssatélites
Para a genotipagem dos isolados de Pyricularia grisea em
seqüenciador automático foram feitas as seguintes modificações na
reação de PCR: o mix de cada reação foi diminuído de 1µL no volume
96
de água para o acréscimo de 1 µL do primer M13F1 ou M13F2
(marcado com 6-FAM ou NED); e o primer F foi utilizado na
concentração de 0,5 µM (diluição 1:10) ao invés da concentração de 5
µM (Tabela 4).
O programa no termociclador para as reações de PCR que
foram submetidas ao seqüenciador foi: 94 ºC/ 3 min, 30 ciclos de 94
ºC/ 30 s, 60 ºC/ 30 s, 72 ºC/ 30 s, extensão final de 72 ºC/ 3 min, e 4
ºC. Após a termociclagem, as reações de PCR foram diluídas com
água milli-Q na proporção de 1:40, considerando-se o seguinte
protocolo: (i) 5 µL de duas reações de PCR foram misturados (uma
das reações era feita com o oligonucleotídeo M13-6FAM e outra com
M13-NED); (ii) 5 µL da mistura foi diluído em 95 µL de água milli-
Q; e (iii) 3 µL da diluição foram misturados a 6,8 µL de Formamida
Hi-Di e 0,2 µL do marcador LIZ500. As amostras foram desnaturadas
em termociclador a 95
o
C por 5 minutos e colocadas imediatamente
em banho de gelo.
A eletroforese e a detecção dos fragmentos de PCR
marcados foram feitas no seqüenciador ABI 3100 Genetic Analyser
(Applied Biosystems) e a análise dos fragmentos no programa
GeneMapper
TM
v3.5.
97
Tabela 4- Concentrações dos reagentes para as reações de PCR
analisadas no seqüenciador automático. Embrapa Trigo,
Passo Fundo, RS. 2007
MIX A Concentração final Volume por reação (µL)
H
2
O
15,025
Tampão (10X) 1x 2,5
Mg (20mM) 1,5 mM 1,875
dNTP's (10 mM) 0,2 mM cada 2
Primer F(0,5µM) 0,01 µM
0,5
Primer R(5
µ
M)
0,1
µ
M
0,5
Primer M13-20F(5µM) 0,1 µM 0,5
Taq polimerase (5U/
µL
)
0,5 U 0,1
DNA (25ng/µL)
50 ng 2
MIX B
Concentração final
Volume por reação (µL)
H
2
O
13,475
Tampão (10X) 1x 2,5
Mg (20mM) 1,5 mM 1,875
dNTP's (10 mM) 0,35 mM cada 3,5
Primer F(0,5µM) 0,01 µM
0,5
Primer R(5
µ
M)
0,1
µ
M
0,5
Primer M13-20F(5µM) 0,1 µM 0,5
Taq polimerase (5U/
µ
L)
0,75 U 0,15
DNA (25ng/
µ
L)
50 ng 2
MIX C
Concentração final
Volume por reação (µL)
H
2
O
13,725
Tampão (10X) 1x 2,5
Mg (20mM) 2,5 mM 3,125
dNTP's (10 mM) 0,2 mM cada 2
Primer F(0,5
µ
M)
0,01
µ
M
0,5
Primer R(5
µ
M)
0,1
µ
M
0,5
Primer M13-20F(5µM) 0,1 µM 0,5
Taq polimerase (5U/
µ
L)
0,75 U 0,15
DNA (25ng/
µ
L)
50 ng 2
MIX D
Concentração final
Volume por reação (µL)
H
2
O
15,8
Tampão (10X) 1x 2,5
Mg (20mM) 2,5 mM 2
dNTP's (10 mM) 0,2 mM cada 1
Primer F(0,5
µ
M)
0,01
µ
M
0,5
Primer R(5µM) 0,1 µM
0,5
Primer M13-20F(5µM) 0,1 µM 0,5
Taq polimerase (5U/µL)
1 U 0,2
DNA (25ng/
µ
L)
50 ng 2
98
2.6 Análise estatística
Os dados de polimorfismo de DNA dos isolados do fungo
detectados via marcadores microssatélites foram analisados
empregando-se a estimativa de similaridade genética entre os isolados.
Desta forma foi necessária a construção de uma matriz de similaridade
contendo dados binários para cada primer utilizado. Atribuiu-se o
valor 0 para ausência do alelo e valor 1 para presença do alelo. A
ausência de amplificação de bandas por um isolado foi considerada
como alelo nulo, e isolados que amplificaram bandas em gel de
agarose, mas não apresentaram amplificação no seqüenciador foram
considerados como dado perdido. A partir da matriz de similaridade
genética foi possível gerar dois dendrogramas com base na análise
molecular. Um terceiro dendrograma foi gerado a partir dos dados de
virulência de 18 desses isolados quando inoculados sobre 70
genótipos de plantas jovens de trigo conforme descrito no Capí5082 0 Td(f)Tj3.8473.65082 0 Td( )Tj3.60691 0 Td(C)Tj7.45427 0 Td(a)Tj5.1699 0 Td(p)Tj5.65082 0 Tj3.12599 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(r)65082 0 Td( )Tj360 Td(i)Tj3.12599 0 Td(lTj2.885512599 0 Td(lTj2.88551229 0 Td(i)Tj3.24622 0 Td(m)TP(i)g)Tj5.53059 0)Tj5.1699 0 Td(m)Tj8.77681 0 Td(p)Tj5.65082 0 Td(lTj3.129 09 0 Td(d)Tj5.3059 0 Td(e)Tj5.04967 0 Td(r)Tj3.72714 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td( )Tj3.60691 0 Td(c)Tj5.04967 0 Td()Tj5.65082 0 Td(le)Tj5.04967 0 Td( )Tj4.56875 0 Td(s)Tj4.32829 0 Td(e)Tj5.08789 0 Td(m)Tj8.77681 0 Td(m)Tj8.77681 0 Td(o)Tj5.53059 0 Td( )Tj4.08789 0 Td(m)Tj8.65082 0 Td(e)Tj5.04967 0 Td( )Tj3.65082 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td(m)Tj8.89704 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td( )Tj3.)Tj5.1699 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(n)4737 0 Td(i)Tj3.00576 0 Td(r)Tj3.72714 0 Td( )Tj4.68898 0 Td(u)Tj5.08789 0 Td(99 0 Td(o)Tj5.650 )Tj3.60691 0 Td(d)Tj5.4622 0 Td(r)Tj13.1051 0 Td(f)Tj3.84737 0 Td(os)Tj4.32829 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td(o)Tj5.53059 0 Td( )Tj-320.293 -19.44 Td(v)Tj5.53059 0 Td3.72714 0 Td(i)Tj3.08789 0 Td(Td( )Tj360 Td(i)Tj3.129 09 0 Td(n)Tj5.65082 0 Td(t)Tj3.12599 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td( )Tj3.)Tj5.1699 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(n)65082 0 Td(i)Tj3.24622 0 Td( )Tj3.60691 0 Td(g)Tj3.08789 0 Td(s)Tj4.44852 0 Td(T(i)g)97332 0 Td(S(i)g)Tj5.53059 0YS(i)g d(i)Tj3.24622 0 Td(m)Tnáan Tj13.1051 0 Td(f(Td(o)Tj5.65082 0R3.65085752 0 Td(d)Tj5.65082 0 Td(H)Tj4.44852 0 Td(L(i)g)8531 0 Td(fF(i)g)53059 0 Td(,)Tj5.65082 0 Td( Tj13.1051 0 Td(fs)Tj4.44852 0 Td(9)Tj4.44852 0 Td(9)Tj4.44852 0 Td( Td(n)Tj5.65082 0)Td(o)Tj5.65082 0á)Tj5.65082 0 Td( Tj13.1051 0 Td(fP(i)g)Tj5.53059 0)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(i)Tj3.104967 0 Td(r)Tj3.44852 0 Td()Tj3.104967 0 Td(r)Tj3.65082 0 Td(u)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(r)Tj3.72714 0 Td(v)Tj5.53059 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td( )Tj3.00576 0 Td(d)Tj5.60691 0 Td(d)Tj5.65082 0 Td( )Tj2.88553 0 Td(s)Tj4.44852 0 Td(i)Tj3.44852 0 Td(t)Tj3.12599 0 Td(r)Tj3.72714 0 Td(i)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.04967 0 Td(r)Tj3.72714 0 Td(i)Tj3.24622 0 Td(d)Tj5.65082 0 Td(a)Tj5.5082 0 Td(v)Tj5.53059 0 Td( )Tj3.60691 0 Td( )Tj-320.293 -19.56 Td(g)Tj5.53059 0 Td(e)Tj5.1699 0 Td(n)12599 0 Td(g)Tj5.53059 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td( )Tj3.48668 0 Td(a)Tj5.04967 0 Td( )Tj5.8553 0 Td(d)Tj5.65082 0 Td(o)Tj5.65082 0 Td( )Tj4.8553 0 Td(s)Tj4.32829 0 Td(t)Tj3.65082 0 Td(a)Tj5.1699 0 Td(m)Tj8.77681 0 Td( )Tj4.360691 0 Td(c)Tj5.8553 0 Td(i)Tj3é)Tj5.04967 0 Td(t)Tj3.12599 0 Td(im)Tj8.77681 0 Td(o)Tj5.53059 0 Td( )Tj4.)Tj5.65082 dos.que ansi oç fosob e.samm aorlegoas ncie, Tj14. ian n al ltdeicncio se
99
c=caráter ausente em um objeto e presente no outro;
Para o agrupamento hierárquico dos isolados utilizou-se o
método UPGMA (Unweighted Pair Group Method Using Arithmetic
Averages). Nos métodos de agrupamento com base na média
aritmética, os coeficientes de similaridade (ou dissimilaridade) médios
entre o indivíduo que se pretende agrupar e os indivíduos do grupo já
existente são calculados. O método UPGMA não considera a estrutura
de subdivisão do grupo, dá pesos iguais a cada indivíduo do grupo e
calcula a similaridade média de um indivíduo que pretende se juntar
ao grupo já existente (MEYER, 2002).
3 RESULTADOS E DISCUSSÃO
Em géis de agarose verificou-se que os primers
utilizados no experimento formaram tanto bandas polimórficas
(Figuras 1a e c) quanto monomórficas (Figura 1b), para todos os
isolados, inclusive o do arroz.
A amplificação do DNA dos isolados através do
seqüenciador também confirmou a formação de fragmentos
polimórficos e monomórficos. Nesse sentido, na Figura 2, é possível
verificar o polimorfismo gerado pelo primer MGM 21 para os
isolados Py 5001, Py 5020 e Py 3.3.1. Conforme pode ser observado
na Tabela 5, considerando todos os isolados utilizados no experimento
isto é, incluindo o isolado obtido do arroz, os únicos primers
monomórficos foram o PG 03a e o PG 20. Os demais foram
polimórficos.
100
Figura 1- Amplificação do DNA dos isolados: (1) Py 5001, (2) Py
5002, (3) Py 5003, (4) Py 5005, com os primers (A)
MGM01, (B) MGM21 e (C) PG05. Gel24622 0 Td(m)Tj8.1699 0 Td(G)Tj8 Td(P)Tj6.25197 0(m)Tj8.89704 0 Td17 0(m)Tj8.8)082 0 436 -12.96 Td(M)Tj10.0993 0 Td(G)Tj8.175i
101
produção de um fragmento maior que o existente e serve de base para
futuros escorregamentos (GARRIDO, 2001).
Figura 2- Análise do perfil de amplificação dos genótipos (A) Py
5001,(B) Py 5020, e (C) Py 3.3.1 com os primers
MGM21 e M13F1 (marcado com 6-FAM). O número ao
lado de cada pico indica o tamanho do produto
amplificado em pares de base (pb). Embrapa Trigo,
Passo Fundo, RS. 2007.
A-)
B-)
C-)
168 pb
151 pb
170 pb
102
Tabela 5- Seqüências de DNA de Pyricularia grisea amplificadas
em seqüenciador automático a partir de 8 primers
microssatélites. Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS. 2007
MGM01 MGM21 PG03a PG03b PG05 PG12 PG15 PG20 PG21
Py 5001 97 168 113 127 149 107 126 144 205
Py 5002 97 168 113 127 149 107 126 144 205
Py 5003 100 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 5005 100 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 5012 100 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 5015 97 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 5017 97 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 5020 97 151 113 127 185 101 126 144 205
Py 5021 97 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 5022 97 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 5025 97 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 5029 97 168 113 127 197 107 126 144 235
Py 5031 97 168 113 127 197 107 126 144 235
Py 5034 97 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 5038 97 151 113 127 185 101 126 144 205
Py 5039 100 168 113 126 AN 107 126 144 205
Py 5042 97 168 113 127 195 107 126 144 AN
Py 5047 100 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 6001 97 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 6008 97 168 113 127 DP 107 126 144 205
Py 6010 97 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 6012 97 168 113 127 DP 107 126 144 205
Py 6015 97 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 6018 97 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 6025 97 168 113 126 195 107 126 144 205
Py 6028 97 168 113 127 195 107 126 144 AN
Py 6030 DP 168 113 127 AN 107 126 144 AN
Py 6032 97 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 6041 97 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 6044 97 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 6048 97 168 113 127 195 107 126 144 205
Py 3.3.1 144 170 113 126 183 121 121 144 226
Isolados
Primers
DP= dado perdido; AN= alelo nulo
103
O primer mais polimórfico foi o PG 05, o único que
permitiu a diferenciação dos isolados do Rio Grande do Sul dos
demais. Esse primer apresentou 5 padrões de bandas (197, 195, 185,
183, 149 pb). Os isolados Py 5029 e Py 5031 oriundos do mesmo
cultivar puderam ser distinguidos dos demais pelos primers PG 05 e
PG 21. Os isolados Py 5020 e Py 5038 foram diferenciados dos
demais isolados pela eficiência dos primers: MGM 21, PG 05 e PG
12. Os loci MGM 01, MGM 21, PG 03a, PG 03b, PG 05, PG 12, PG
15, PG 20, PG 21, apresentaram respectivamente: 3, 3, 1, 2, 5, 3, 2, 1
e 3 alelos. O isolado do arroz com exceção dos loci PG 03a e PG 20
apresentou um padrão de bandas diferente dos isolados de trigo
(Tabela 5; Figura 2). Este resultado demonstra a sensibilidade que os
primers utilizados apresentaram na análise da variabilidade dos
isolados testados.
Todos os primers utilizados foram desenvolvidos com
base no seqüênciamento do genoma de P. grisea do arroz, mas já
haviam sido úteis na discriminação de isolados de P. grisea de outros
hospedeiros como trigo, triticale e espécies daninhas. Esse fato
evidenciou a conservação dos loci testados em isolados de diferentes
hospedeiros, obtidos de regiões geográficas distintas (BRONDANI et
al., 2000; GARRIDO, 2001). A presença ou ausência de locais para o
anelamento dos primers também pode ser usado na discriminação dos
isolados. No trabalho, houve a presença de alelos nulos nos isolados
originários do cultivar BRS 208 dos estados do Paraná e Goiás para os
primers PG 05 e PG 21. O locus PG 03 apresentou mais que uma
banda, fato não esperado para um organismo haplóide. Isso pode ser o
104
reflexo do anelamento inespecífico durante a PCR ou a presença de
locus duplicado no genoma (BRONDANI et al., 2000).
A análise hierárquica dos dados de amplificação 5745 0 Td(R)Tj7.5745 0d(o)Tj5.53059 0 Td( )Tj4.32829 Td( )Tj4.3±±±±±±±±±±±±±±±±±±±±j5.53059 0 Td( )Tj4.32829 0 Td(a)Tj4.92944 0 Td(mE0 11.28 Tf-3( )3.12599 0 Td(c)Tj5.1699 0 Td(o)Tj5.64967 0 Td(n)Tj5.65082 0 Td(s)Tj4.3±±±±±±±j5.53059 0 5082 0 Td(a)Tj5.0±±±±±±±j5.53059 0 5082 0 Td(á)Tj5.1699 0 Td(r)Tj3.70576 0 366(R)Tj7.5082 0 Td(u)Tj5.64967 0 Td(m)Tj8.64967 0 Td(a)Tj5.04967 3.48668)Tj5.65082 0 Td(s)Tj4.3i082 0 Td(l)Tj3.2
105
Um segundo dendrograma (Figura 4) foi construído para
avaliar separadamente as relações de similaridade dos 18 isolados que
foram utilizados em inoculações e fizeram parte do Capítulo I desta
dissertação. De maneira geral não foi observada diferença acentuada
em relação à distribuição dos isolados e no próprio formato do novo
dendrograma. Entre os 18 isolados também foi possível formar quatro
grupos (a, b, c, d) com no mínimo 75% de similaridade entre si
(Figura 4). Os isolados que apresentaram menor similaridade genética
em relação ao resto do grupo foram Py 5020 e Py 5038 (47%).
Py5001
Py5002
Py6008
Py6012
Py6030
Py5025
Py5015
Py5021
Py5022
Py5034
Py5042
Py6001
Py6010
Py6028
Py6032
Py6041
Py6044
Py6048
Py5017
Py6025
Py6015
Py6018
Py5003
Py5005
Py5012
Py5047
Py5039
Py5029
Py5031
Py5020
Py5038
Py3.3.1
0,00 0,25 0,50 0,75 1,00
Coeficiente de similaridade
A
B
C
D
Figura 3
-
Dendrograma
baseado no perfil de amplificação do
DNA de 32 isolados monospóricos de
Pyricularia
grisea utilizando 8 primers
microssatélites.
Embrapa Trigo, Passo Fundo, RS. 2007.
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