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FUNGOS ASSOCIADOS ÀS PLANTAS ORNAMENTAIS TROPICAIS NO
DISTRITO FEDERAL
Caroline Rabelo Costa
Brasília - DF
2007
UNIVERSIDADE DE BRASÍLIA
INSTITUTO DE CIÊNCIAS BIOLÓGICAS
DEPARTAMENTO DE FITOPATOLOGIA
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UNIVERSIDADE DE BRASÍLIA
INSTITUTO DE CIÊNCIAS BIOLÓGICAS
DEPARTAMENTO DE FITOPATOLOGIA
FUNGOS ASSOCIADOS ÀS PLANTAS ORNAMENTAIS TROPICAIS NO
DISTRITO FEDERAL
CAROLINE RABELO COSTA
Dissertação apresentada ao
Departamento de fitopatologia,
Instituto de Ciências Biológicas
da Universidade de Brasília,
como requisito parcial para
obtenção de grau de Mestre em
Fitopatologia.
Brasília – DF
2007
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RESUMO
A floricultura tropical têm-se se destacado como uma rentável opção para o
agronegócio, em virtude da sua beleza, rusticidade e exoticidade. Existem hoje no
Brasil, vários pólos produtores, dentre eles se destaca o Distrito Federal, devido ao seu
consumo per capita e condições de cultivo, tais como altitude, localização e demanda.
Condições de cultivo associada à falta de informação e condições fitossanitárias
inadequadas, limitam a produção, causando danos e prejuízos. Em vista desses fatores,
o objetivo deste trabalho foi realizar um levantamento dos sintomas associados à
fitopatógenos de origem fúngica das famílias Heliconiaceae, Zingiberaceae, Costaceae,
Strelitziaceae e Musaceae. As coletas foram realizadas em dois núcleos produtores,
Planaltina e Brazlândia-DF, com técnicas de cultivo diferentes, e as amostras com
sintomas levadas para o laboratório de Fitopatologia da Universidade de Brasília para
análise. O material coletado foi submetido diretamente ao exame em microspcópio
estereoscópico e microscópio ótico, identificando suas estruturas, fotografados e parte
do material infestado foi prensado, para secagem. Posteriormente, as amostras foram
identificadas, numeradas, rotuladas e depositadas na Coleção Micológica do Herbário
da Universidade de Brasília. Vários tipos de sintomas foram encontrados, dentre eles,
uma maior freqüência de manchas foliares. Fungos do gênero Bipolaris, foram os
patógenos mais frenquentes. O fungo Colletotrichum gloeosporioides, foi identificado
causando doença juntamente com sua fase teleomórfica, Glomerella cingulata em
folhas de Etlingera elatior e houve em várias amostras uma associação de patógenos
numa mesma lesão ou mancha, sendo notado um complexo de doença nas plantas
analisadas.
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ABSTRACT
The tropical floricultura has been distinguished as an income-producing option for the
agribusiness, in virtue of its beauty, rusticidade and exoticidade. They exist today in
producing Brazil, some polar regions, teeth they if it detaches the District Federal, due
to its per capita consumption and conditions of culture, such as altitude, localization and
demand. Conditions of associated culture healthy plants lack of information and
inadequate conditions, limit the production, causing damages and damages. In sight of
these factors, the objective of this work was to carry through a survey of the symptoms
patogens of plants associates of the fungic origin of the families Heliconiaceae,
Zingiberaceae, Costaceae, Strelitziaceae and Musaceae. The collections had been
carried through in two producing nuclei, Planaltina and Brazlândia-DF, with different
techniques of culture, and has samples with taken symptoms for the laboratory of
Fitopatologia of the University of Brasilia for analysis. The collected material was
submitted directly to the examination in followed stereoscopic microscope and ótico
microscope, identifying its structures, photographed and part of the infested material
was pressed, for drying. Later, samples they had been identified, numbered, friction and
deposited in the Micológica Collection of the Herbário of the University of Brasilia.
Some types of symptoms, had been found, amongst them, a bigger frequency of foliares
spots. Fungi of the Bipolaris sort, had been the frequent patogens. Some fungos as
Colletotrichum gloeosporioides, were identified causing illness together with its
teleomorphic phase, Glomerella cingulata in leves of Etlingera elatior and had in some
samples an association of patogens in one same injury or spot, being noticed a complex
of illness in the analyzed plants.
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1 INTRODUÇÃO
No cenário mundial, o mercado de flores e plantas ornamentais encontra-se em
plena fase de expansão, movimentando anualmente US$ 49 bilhões de dólares desde a
produção até a entrega final, sendo o principal país exportador a Holanda. No Brasil,
desde 1988, a floricultura vem se firmando como um importante setor da economia
nacional.
A floricultura no Brasil iniciou-se como atividade econômica em maior escala a
partir dos meados dos anos 60. Em 1988, a Coopertiva Agroindustrial de Holambra –
SP começava um arrojado programa de reestruturação visando o mercado externo. Em
1994, foi criado o IBRAFLOR (Instituto Brasileiro de Floricultura), uma organização
não-governamental composta por representantes dos diversos segmentos envolvidos na
produção de flores, como ensino, extensão, atacado, varejo e paisagismo. Aos poucos
foi crescendo, visando principalmente os picos de maior demanda provocados pelo Dia
das Mães, Dia dos Namorados, Finados e Natal. Este setor apresenta uma performance
bastante satisfatória quando comparada com outros setores da agricultura brasileira, que
contam com incentivos governamentais e tem tradição no mercado.
No Brasil, menos de 5% dos produtores de flores exportam (Salignac, 2006).
Com as vendas praticamente estagnadas no mercado interno, o exterior se apresenta
como uma possibilidade de aumento de faturamento para os produtores brasileiros. O
consumo de flores no Brasil atualmente é de US$ 4,7 por habitante por ano, uma queda
em relação à estabilidade vivenciada no início do plano Real, quando as vendas
alcançaram US$ 6 per capita. Se comparado a outros países, o consumo brasileiro pode
ser considerado ínfimo. Na Argentina, as vendas são de US$ 25 per capita. Já em
alguns países da União Européia, este índice chega a US$ 160 por habitante (Gazeta
Mercantil, 2006).
A exportação gera aumentos de renda e trabalho, contribui para aperfeiçoar o
acesso às variedades melhoradas, além de estimular o melhoramento genético e as
tecnologias nacionais. Mas para ter esse acesso aos benefícios deve-se ter controle de
qualidade dos produtos, criação de embalagens adequadas e qualificação empresarial.
Na América Latina, os países que formam o Mercado Comum do Cone Sul
(Mercosul) criaram o Comitê de Sanidade Vegetal do Cone Sul (Cosave) para
6
harmonização das normas fitossanitárias utilizadas nesse mercado. Esses exames são
feitos para evitar que pragas e doenças típicas de cada país se espalhem pelo continente.
Para tanto, as empresas e os produtos devem ter registro no Ministério da Agricultura,
Pecuária e do Abastecimento (MAPA) ou na Secretaria da Agricultura do estado de
onde o produto será exportado (SEBRAE, 2007).
A floricultura brasileira está seguindo a tendência mundial de segmentação e
profissionalização, buscando a máxima especialização de cada elo da cadeia produtiva
(Motos, 2000), porém, a situação agroindustrial, como um todo, necessita de maior
organização. Há falta de integração entre os agentes de desenvolvimento da atividade
(Smorigo, 2000), como também ausência de uma política definida para o setor
(IBRAFLOR). Há, ainda, outro agravante, os produtores enfrentam problemas com o
alto custo de fretes, a deficiente estrutura nos portos e aeroportos e as restrições de
países importadores, principalmente quanto ao aspecto ambiental (Nogueira, 1999).
Além de um bom planejamento e análise de mercado, o produtor precisa estar atento aos
problemas fitossanitários que podem comprometer a sua produção. Para Coutinho
(2001) é necessário também ampliar pesquisas relativas ao levantamento dos problemas
e elaboração de metodologias nas áreas de melhoramento, produção e sanidade.
O mercado de flores do Distrito Federal vem crescendo. Um exemplo disto é o
consumo em volume de flores que era o 6
o
maior do país, subindo hoje, para a terceira
posição e o maior em consumo per capita do país. A produção de flores tomou impulso
a partir dos anos 90, com a criação de alguns pontos de produção de venda em algumas
cidades satélites.
Devido às condições de cultivo das flores ornamentais tropicais, relacionados
aos fatores precipitação, umidade, temperatura e densidade de plantio, tem-se observado
a ocorrência de diversos problemas fitossanitários que limitam a produção e
comprometem a qualidade dos produtos. Nos municípios produtores de Pernambuco,
por exemplo, foi constatada a ocorrência de várias doenças em flores tropicais causadas
por diversas classes de fitopatógenos, destacando-se aquelas causadas por fungos e
nematóides.
Considerando os fatores, mencionados acima, justifica-se este trabalho pela
importância de gerar informações sobre doenças fúngicas que ocorrem em flores
tropicais cultivados no Distrito Federal.
7
2 OBJETIVOS
O presente trabalho teve como objetivo, detectar e identificar fungos
fitopatogênicos associados a flores e plantas ornamentais cultivadas e introduzidas no
DF, contribuindo para ampliar o conhecimento sobre a microbiota a elas associada.
3 REVISÃO DE LITERATURA
As plantas que produzem flores tropicais são originárias das florestas úmidas das
regiões tropicais. Assim, os locais quentes e úmidos são os mais indicados para a
produção das mesmas e exploração das flores tropicais nativas destas áreas.
Os seus empregos mais comuns são como plantas de jardins ou flores de corte.
Com flores de corte, observa-se uma crescente comercialização nos mercados nacional e
internacional. As características que favorecem sua aceitação pelo consumidor são a
beleza e a exoticidade, decorrentes de brácteas que envolvem e protegem as flores, que
são muito vistosas, de intenso e exuberante colorido e, na maioria das vezes, com
tonalidades contrastantes, a rusticidade, a boa resistência ao transporte e a longa
durabilidade após a colheita (Castro, 1993, 1997).
Para o uso como flores de corte, devem ser cultivadas, preferencialmente, as
espécies com inflorescências pequenas, leves, eretas, de grande durabilidade e com
hastes florais de pequeno diâmetro, embora as inflorescências pendentes, apesar das
dificuldades de embalagem, também apresentam um grande valor de mercado (Watson
& Smith, 1979).
3.1 Aspectos taxonômicos da ordem Zingiberales: histórico e classificação das
famílias
Plantas tropicais abrangem hoje espécies de flores que pertencem à ordem
Zingiberales compondo as seguintes famílias e gêneros:
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Tabela 1: Características das famílias e gêneros da ordem Zingiberales
Família Gênero Observações
Espécies:
M.ornata,
M.velutina, M.
coccinea
Musa
Musaceae
Alpinia, Etlingera
elatior, Zingiber,
Hedychium e
Curcuma
Zingiberaceae
Possui três tribos
Com
aproximadamente
160 espécies
Costus e
Tapeinochilus
Costaceae
Marantaceae
Espécies:
C.burle marxii,
C.crotalifera e C.
luteae
Calathea
Heliconia, com
mais de 270
espécies e híbridos
Tipos, leve, mediano,
grande, ereto e
pendente
Heliconiaceae
Ravenala,
Phenakospermum
e Strelitzia
7 espécies
Strelitziaceae
Orchidantha
Com 6 espécies
Lowiaceae
Canna
Com 50 espécies na
América Tropical
Cannaceae
A ordem Zingiberales encontra-se reconhecidamente dentro das
monocotiledôneas. É essencialmente tropical e subtropical em sua distribuição,
encontrando-se dispersa nas zonas correspondentes em todo mundo. A ordem congrega
oito famílias, 89 gêneros e em torno de 1800 espécies. As famílias Marantaceae,
Heliconiaceae, Zingiberaceae, Lowiceae, Costaceae e Strelitziaceae são reconhecidas
pelo seu potencial ornamental. Cronquist (1981) estabeleceu cinco famílias dentro da
9
ordem, sendo elas Costaceae, Marantaceae, Heliconiaceae, Strelitziaceae e Zingiberaceae.
Filogeneticamente esta ordem é alvo de discussão, Dahlgren et al. (1985), classifica-a em
oito famílias sendo elas Musaceae, Strelitziaceae, Heliconiaceae, Zingiberaceae, Costaceae,
Cannaceae, Marantaceae
e Lowiaceae. Originalmente incluído na família Musaceae, o
gênero Heliconia, em função de suas características próprias de individualização,
passou a constituir a família Heliconiaceae como único representante (Nakai, 1941),
interpretação endossada por outros autores (Tomlinson, 1959, 1962; Cronquist, 1981).
3.2 Propagação
A forma mais utilizada na propagação das flores tropicais ocorre através de seus
rizomas-caules subterrâneos que brotam da planta-mãe e das gemas que emergem
formando touceiras e ampliando a produção de folhas e flores e por bulbos também.
(Ferreira, 2003). Estes rizomas plantados em saco plástico, com substrato leve, darão
origem às mudas que apresentam maior índice de pega após o transplante, pela emissão
de novos rizomas, o período que passam no telado representa uma quarentena
comprobatória de sua sanidade, pois as plantas debilitadas e doentes são descartadas,
sendo assim uma garantia fitossanitária (Aki, 2002). O plantio por sementes é evitado
para cultivos comerciais devido à grande variabilidade genética que pode ocorrer, fruto
da polinização cruzada feita por beija-flores, trazendo desuniformidade no padrão das
inflorescências.
Alguns produtores já produziram Bastão do Imperador (Etlingera elatior) e as
espécies de Musa ornata e Musa velutina, através de sementes, tendo ocorrido
variabilidade genética até certo ponto interessante pela raridade do material obtido (Aki,
2002).
No caso das helicônias, as sementes maduras apresentam uma cor azul intensa,
que podem ser trabalhadas pelos melhoristas na obtenção de novos cultivares híbridos.
Como exemplo, entre as mais conhecidas, temos as helicônias – Golden Torch e Golden
Torch Adrian, resultantes do cruzamento da Heliconia psittacorum com a Heliconia
spathocircinata (Aki, 2002).
Hoje, com o desenvolvimento da biotecnologia, a cultura
de tecidos se apresenta com grandes perspectivas para as flores tropicais, o que já ocorre
com as orquídeas e os antúrios. Além do aspecto quantitativo, consegue-se um grande
número de mudas de uma só planta, o espaço ocupado é mínimo e a sanidade é total, já
que no tecido meristemático as doenças não ocorrem abrigam. Algumas helicônias
como Heliconia psittacorum, Heliconia wagneriana e Heliconia latispatha, já foram
10
obtidas por culturas de tecidos e outras estão sendo investigadas para obtenção dos
protocolos que viabilizem o processo (Aki, 2002).
3.3 Descrição das famílias e gêneros mais cultivados
Família Heliconiaceae: Segundo
estudos de Kress (1990), apenas seis espécies ocorrem nas Ilhas do Sul do Pacífico,
Samoa e Indonésia. As demais estão distribuídas na América Tropical desde o sul do
México ao norte do estado de Santa Catarina região sul do Brasil. O gênero é
constituído por plantas herbáceas, eretas, de 0,5 a 10,0 metros de altura, conforme a
espécie, e com folhas de vários tamanhos,
multiplicação por bulbos. Quanto ao hábito
vegetativo, podem ser musóides, canóides ou zingiberóides. A inflorescência emerge do
ponto de crescimento terminal do pseudocaule e apresenta rápido desenvolvimento. Esta
consiste de um pedúnculo alongado, no qual se inserem as brácteas espatiformes de
variado tamanho, textura e cor (Daniels & Stiles, 1979). Desenvolvem-se em locais
sombreados ou a pleno sol, úmidos a levemente secos, em solos de argilosos a arenosos
(Andersson, 1989).
No Brasil, são conhecidas por diversos nomes, conforme a região:
bananeira-de-jardim,
bananeirinha-de-jardim, bico-de-guará, falsa-ave-do-paraíso
(Heliconia brasiliensis - Heliconia angusta),
paquevira (Heliconia angustifolia), flor-
papagaio, tracoá, planta-papagaio (Heliconia psittacorum), bananeira do brejo,
bananeira-ornamental (Heliconia rostrata),
pássaro de fogo, caeté-vermelho (Heliconia
bihai); helicônia-asa-de-arara (Heliconia latispatha), caetê-sanguíneo (Heliconia
stricta) (Lorenzi et al.,2001).
Embora o gênero Heliconia venha sendo objeto de recentes revisões
taxonômicas, este é ainda pouco estudado, existindo confusões e incertezas sobre
correta classificação e o número de espécies existentes. No Index Kewensis, no período
de 1895-1995, foram registradas 253 espécies, mas muitas, com certeza, são sinonímias.
11
As helicônias, como são conhecidas as inúmeras espécies do gênero Heliconia L., são
plantas de origem neotropical, com ampla distribuição na América Central e na América
do Sul. A taxa de diversidade atual sugere como o centro de origem do gênero, o
noroeste da América do Sul, região caracterizada pelo alto índice pluviométrico e solos
ricos em nutrientes (Andersson, 1989).
Família Zingiberaceae: Com três gêneros representantes, são assim descritas:
Eltingera elatior: Conhecido como bastão
do imperador, esta espécie, apresenta cerca de quatro cultivares produzida
comercialmente. Características de clima, similar às helicônias.
Mutiplicação por bulbos
e rebentos foliares (Alonso, 2004).
Alpinia purpurata: As Alpinias são
classificadas quanto ao tamanho e qualidade das inflorescências, muito sensíveis ao
corte sob sol forte, o que acarreta murcha da inflorescência (Alonso, 2004).
Zingiber spectabile: É chamada de gengibre-magnífico ou
colméia, pois faz lembrar uma colméia.
Tanto Z.spectabile quanto Tapeinochilus
ananassae,
são cultivados principalmente na faixa litorânea de Santa Catarina, do
12
Paraná e no sul de São Paulo, em razão das condições de clima e de solo mais
adequadas. Multiplica-se por bulbos
(Flores na web, 2007).
Família Musaceae: apresenta os seguintes gêneros e espécies:
Musa coccinea: Porte de 1,50 a 2,00 metros de altura. Produção
de primavera-verão. Cultivada preferencialmente em grupos à pleno-sol ou meia sombra
e em regiões de clima tropical, tipo quente e úmido. Solo rico em matéria orgânica.
Flores formadas na primavera-verão
(Lorenzi et al.,(2001).
Musa ornata: Sol pleno apenas, sem sombra. Apresenta
inflorescência ereta e poucas flores em cada bráctea; apresenta brácteas rosa-violeta
(Geocities, 2007).
Família Costaceae: apresenta dois gêneros, Costus e Tapeinochilus
Costus spiralis: Nativa, encontrada em áreas úmidas da América
Latina e, no Brasil, Amazônia e Nordeste. Comumente utilizada como plantas
ornamentais, vulgarmente conhecida como cana-de-macaco, tem destaque nos jardins
de todo o Brasil
(Ceplac, 2007).
13
Tapeinochilus ananassae: Conhecida como gengibre-abacaxi por
apresentar sua inflorescência semelhante ao Ananas sp. ou abacaxi. Inflorescência
formada no verão. Solos ricos em matéria orgânica e mantidos úmidos são
recomendados (Lorenzi et al., 2001).
Família Strelitziaceae: Com três gêneros, sendo que o gênero Strelitzia tem destaque.
Strelitzia sp.: Apresenta grande potencial produtivo para cultivo,
devido à rusticidade da planta, por ser resistente a pragas e doenças, possue alta
durabilidade pós-colheita, tamanho longo das hastes e cores fortes das flores (Wood,
1995).
3.4 Distribuição geográfica
Atualmente, a produção de flores se proliferou por quase todos os estados
brasileiros. São Paulo, representado pelos pólos de produção de Atibaia e Holambra,
que detinha 90% da produção nacional há dez anos, hoje responde por 70%. Isso se
deve a iniciativa de vários estados de buscar a auto-suficiência na produção de flores
(Gazeta Mercantil, 2006). Além dos estados que tiveram as experiências pioneiras (AL,
RS e PE), o mesmo ocorre no Amazonas, Bahia, Ceará, Distrito Federal, Goiás, Minas
Gerais, Pará, Paraná, Paraíba, Piauí, Rio Grande do Norte, Santa Catarina, Mato Grosso,
Maranhão, Sergipe, São Paulo e Espírito Santo. Essa expansão justifica-se pelas
potencialidades do mercado consumidor brasileiro. Diferentemente de outros
produtores, a exemplo da Colômbia, Costa Rica e alguns países da África, o Brasil tem
um mercado potencial de mais de 150 milhões de consumidores e possui também, terras
14
cultiváveis, boa oferta de água e sol, empreendedores com garra, excelência em
pesquisas agropecuárias, todos fatores capazes de assegurar qualidade internacional e
alta produtividade no agronegócio. Para conquistar esse mercado, os produtores
investem, não só na qualidade da produção, mas também na profissionalização da
atividade e na mudança de hábitos do consumidor brasileiro (SEBRAE, 2007).
3.5 Mercado
Desde 2003, o Brasil vem se destacando na conquista de mercados não
tradicionais na importação de flores e plantas nacionais. Entre esses, sobressaem a
França e a China, com aquisições de mudas de plantas ornamentais; Grécia, Hungria e
Polônia, adquirindo folhagens secas; bulbos para Venezuela, além de Uruguai e Angola
com a importação de mudas de plantas. Porém, muito mais importante do que a entrada
de novos países compradores, tem sido a abertura de mercados para novos produtos em
países já tradicionais parceiros comerciais. Assim, o Reino Unido e EUA importam
mudas de orquídeas, musgos e líquens, e a Suíça começa a abrir o seu mercado para as
flores frescas brasileiras (IBRAFLOR, 2006).
Outro movimento de destaque na performance exportadora do Brasil tem sido a
recuperação de antigos parceiros compradores, com especial destaque para a Argentina.
Frente ao início da recuperação econômica daquele país, as exportações brasileiras de
flores voltaram a crescer, principalmente de flores frescas, flores e folhagens secas.
Também retornaram as vendas para os mercados do Uruguai, Canadá e Bélgica
(IBRAFLOR, 2006).
Esta atividade, em termos de retorno de investimento, supera em muito qualquer
outro tipo de produção agrícola. Enquanto a produção de milho, arroz, ou soja, gera, em
média, de US$ 200 a US$ 300 por hectare, na floricultura esse rendimento varia de US$
10 mil a US$ 50 mil (Ascom, 2006). No aspecto social, segundo Castro, citado por
Salignac (2006), a floricultura, quer seja de corte ou para plantio, gera mais de 200.000
empregos diretos e 150.000 indiretos, absorvendo em média 15 trabalhadores por
hectare, empregando inclusive mulheres e adolescentes, contribuindo para a
permanência do homem no campo.
Os principais países consumidores das flores e plantas brasileiras são Holanda,
Inglaterra, Estados Unidos, Itália, Alemanha, França, Japão e Argentina. As rosas ainda
15
são as espécies preferidas por esses países, mas o exotismo, a diversidade e a beleza das
flores tropicais estão abrindo novos mercados. De olho nessa tendência, vários
produtores, principalmente da região nordeste, estão investindo cada vez mais nas flores
tropicais, com foco para o exigente mercado europeu e americano.
O maior volume de exportação é de flores secas, sementes e flores tropicais
(bromélias, helicônias e abacaxi ornamental), que resistem bem às condições do
transporte (SEBRAE, 2007).
A atenção dos produtores também está voltada pra o mercado internacional de
flores, que movimenta US$ 9 bilhões por ano, embora a participação brasileira seja
ainda tímida. As exportações brasileiras correspondem a apenas 0,22% do comércio
mundial. Nos últimos cinco anos, porém, as vendas para o exterior cresceram. Em 2004,
as exportações foram de 21%. A exportação gera o aumento de renda e trabalho,
contribui para aperfeiçoar o processo produtivo e permite o acesso às variedades
melhoradas, além de estimular o melhoramento genético e as tecnologias nacionais
(SEBRAE, 2007).
Dados apresentados pelo IBRAFLOR e pela Flortec Consultoria e Treinamento,
responsáveis pela coordenação das atividades de capacitação e treinamento do programa
FloraBrasilis, indicam que o mercado mundial de flores e plantas ornamentais
movimenta US$ 25 bilhões/ano. Este valor gera um fluxo de cerca de US$ 9 bilhões/ano
no comércio internacional, concentrado em países como Holanda, Colômbia, Itália,
Dinamarca, Bélgica, Quênia, Zimbabwe, Costa Rica, Equador, Austrália, Malásia,
Tailândia, Israel e EUA, entre outros (Salignac, 2006). Entre os países da América
Latina que produzem plantas ornamentais, destaca-se a Colômbia, segunda maior
produtora mundial, contribuindo com 13% de toda produção, perdendo apenas para a
Holanda, a qual tem uma participação em torno de 45% de toda produção mundial de
plantas ornamentais. Os países exportadores são Equador, Chile e Bolívia.
Nas unidades da federação brasileira, embora ocorram microclimas adequados à
atividade, a horticultura ornamental é pouco desenvolvida sendo a maior parte das
espécies disponíveis no mercado procedente de outras regiões. O Distrito Federal
desponta, atualmente, como o mais promissor mercado consumidor de flores e plantas
ornamentais de todo país, destacando-se como o terceiro mercado em volumes globais
de consumo de flores e plantas ornamentais gastando mensalmente R$ 3 milhões na
aquisição desse produto, boa parte importada de São Paulo e do Rio de Janeiro
(Junqueira, 2005). Brasília possui todas as condições de tornar-se o maior pólo de
16
floricultura do país, pois, apresenta clima, umidade, altitude e posição geográfica
privilegiada.
Apesar de todo potencial, poucos são ainda, os produtores tecnificados para este
tipo de atividade. Falta muitas vezes, informação, disponibilidade de mão de obra,
incentivo governamental e condições fitossanitárias adequadas. A produção local de
flores do DF alcança no máximo 15% do consumo local e ocupa uma área de 100
hectares, distribuídos por 40 pequenos produtores (Ascom, 2006).
3.6 Doenças
A produção de flores constitui um grande potencial no agronegócio brasileiro,
mas sua expansão ainda necessita vencer barreiras, uma delas é a deficiência na
produção de mudas sadias. Santa Catarina foi o primeiro estado brasileiro a criar um
certificado para atestar que seus produtos florícolas obedecem aos padrões
internacionais de controle de qualidade na produção agrícola (SEBRAE, 2007). Em
várias regiões produtoras, têm-se o cultivo associado a climas quentes e úmidos, o que
favorece a ocorrência de doenças que ainda não foram estudadas nem tão pouco
relatadas, acarretando em falta de informação ao produtor associada a perdas no campo.
No Brasil, a questão fitossanitária de plantas ornamentais tem sido objeto de alguns
trabalhos (Pitta, 1995; Almeida et al., 1997). Estudos realizados por pesquisadores
paulistas, nos últimos cinco anos, permitiram identificar 20 novas ocorrências de
bactérias fitopatogênicas em ornamentais no Brasil. Em bulbos de Amaryllis e gladíolos,
nas produções comerciais do Estado de São Paulo, foram detectados vírus dos gêneros
Carlavirus e Tospovirus, espécies de Potyviridae; fungos como Uromyces transversalis
e Stagonospora curtisii (APTA 2006). Os trabalhos de Alexandre et al., (2001),
relataram de 45 doenças em espécies de ornamentais. A Embrapa Agro-indústria
Tropical (Fortaleza-CE) iniciou pesquisas para a identificação e controle de fungos,
bactérias, vírus e nematóides; doenças em flores e plantas ornamentais encontradas no
Ceará em produtos vindos de outros estados. Assis et al., (2000), relataram a ocorrência
de Cylindrocladium spathiphylli Schoulties, El-Gholl & Alfieri, Bipolaris sp. Shoem e
Oidium sp. causando danos em Heliconia spp. Vários resumos e artigos sobre doenças
em ornamentais vêem sendo publicados. Uma recente publicação é o livro sobre
doenças com diversos agentes etiológicos em Heliconia no estado de Pernambuco, de
Assis et al., (2002),
tratando de fungos importantes tais como ferrugens e oídios. Lins
17
& Coelho (2004) realizaram levantamento de doenças em plantas ornamentais tropicais,
abrangendo as causadas por fungos, nematóides e vírus. Com referência às doenças
fúngicas, os autores diagnosticaram antracnose, (Colletotrichum gloeosporioides Penz.
& Sacc. In Penz.) em Heliconia spp. Etlingera elatior, Tapeinochilus ananassae,
causando lesões em folhas e inflorescências; manchas foliares (Bipolaris spp.
Cercospora sp., Curvularia lunata, Glomerella cingulata (Stonem.) Spauld & Schrenk,
Guignardia sp. e Deigthoniella torulosa) em Heliconia spp., Calathea burle marx e
Musa coccinea; podridão de rizomas e raízes (Rhizoctonia solani e Fusarium
oxysporum Schlechtend.: f. sp. cubense (E. F. Smith ) Snyder & Hansen em E. elatior e
Heliconia chartacea cv. Sex Pink.
Rhizoctonia solani foi relatada causando queima das folhas em Heliconia bihai,
por Benchimol et. al. (2005).
E o mais novo artigo relatando doenças em Heliconia é de
Serra et al., (2007) caracterizando a doença e potencial de inóculo de Pestalotiopsis
puciseta causando mancha foliar em Heliconia Golden Torch. A introdução de novas
variedades ou cultivares vem sendo feito de maneira acelerada empregando-se
principalmente sementes, mudas e outros propágulos importados, muitas vezes
contaminados com patógenos já existentes ou exóticos no país (APTA 2006). O
conhecimento dos patógenos fúngicos que ocorrem ou que venham ocorrer nessas
plantas pode permitir a indicação de métodos de controle mais eficientes, pois a
presença desses afeta a produção causando danos e prejuízos além de inviabilizar a
exportação desse material. Algumas pesquisas com indutores de resistência e resistência
de espécies contra patógenos de expressão econômica vêem sendo realizados. Oliveira
et al., (2002) observaram eficiência de fungicidas no controle de antracnose em
Heliconia psittacorum cv. Golden Torch e exploraram fontes de resistência de
diferentes espécies de Heliconia contra Colletotrichum gloeosporioides (Oliveira, et al.,
2002).
Existem hoje no Brasil, alguns centros de estudo de plantas ornamentais
tropicais, tais como: Instituto Biológico de São Paulo com disponibilização de livros,
CDs e compêndios sobre o assunto, Universidade Federal de Lavras, realizando um
levantamento de doenças em Araceae, Lacerda (2006) e com outros trabalhos
publicados, CNPH - Embrapa com estudo de doenças causadas por vírus, Centro de
flores de Pernambuco, com pesquisas voltadas para doenças, com atenção
especialmente em flores de corte. A Universidade de Brasília iniciou em 2003, pesquisa
18
com doenças fúngicas em plantas herbáceas, arbustivas e arbóreas, dentro de um projeto
piloto que abrange o DF e Entorno.
19
Tabela 2. Espécies fúngicas encontradas entre os gêneros mais cultivados de Heliconiaceae, Musaceae, Zingiberaceae, Costaceae e Strelitziaceae 1
___________________________________________________________________________________________ 2
Espécies fúngicas
Heliconia sp.
H. bihai
H. caribaea
H. indica Costus sp. Costus spiralis
Anthostomella minor X
Anthostomella palmicola X
Ascochyta sp. X
Bipolaris sp.* X
Cladosporium sp* X
Coniothyrium fuckelii X
Corynespora cassiicola X
Curvularia sp.* X X
Cercospora sp.* X X
Cercospora heliconiaceae X
Deightoniella torulosa X
Eudarluca sp. X
Fusarium semitectum X
Fusarium sp. * X
Glomerella cingulata X
Guignardia heliconiae X
Pseudocercospora costina X
Xenosporella berkeleyi X
20
Tabela 2(cont.).
Espécies fúngicas encontradas entre os gêneros mais cultivados de Heliconiaceae, Musaceae, Zingiberaceae, Costaceae e
Strelitziaceae
_________________________________________________________________________________________
Espécies fúngicas Heliconia sp. H. bihai H. caribaea Costus sp.
Costus spiralis
Acanthostigmella thaxteri X
Asteridiella costi X
Asteridiella parasitica X
Hansfordia ovalispora X
Helminthosporium sp X
Hendersonia sp. X
Dictyopeltis costi X
Dictyothyriella guianensis X
Heptaster hughesii X
Irenina costi X
Irenina parasítica X
Leptothyrium cylindricum X
Limaciniella luzonensis X
Macrophominia phaseolina X
Mycosphaerella sp. X
Meliola heliconiae X X
Meliola macrospora X
21
Tabela 2(co
nt.).
Espécies fúngicas encontradas entre os gêneros mais cultivados de Heliconiaceae, Musaceae, Zingiberaceae, Costaceae e
Strelitziaceae
______________________________________________________________________________________________
Espécies fúngicas Heliconia sp. H. bihai H. caribaea H.mariae Costus sp.
Costus spiralis
Meliola longistipitata X
Meliola longistipitata var. wakefieldiae X
Metasphaeria heliconiae X
Myrothecium cinctum X
Micropeltidium costi X
Parastigmatea asiática X
Nectria heliconiaceae X
Oxydothis grisea X
Rebentischia costi X
Peltaster bertholletiae X
Pestalotiopsis sp. X
Phaeoisariopsis cercoporoides X
Scolecopeltidium costi X
Spegazziniella costi X
Trichothyrium dubiosum X
Xenosporium thaxteri X
22
Ta
bela 2(cont.).
Espécies fúngicas encontradas entre os gêneros mais cultivados de Heliconiaceae, Musaceae, Zingiberaceae, Costaceae e
Strelitziaceae.
____________________________________________________________________________________
Espécies fúngicas Heliconia sp. H. angustifolia H. caribaea H.psitacorum H.rostrata
Calonectria spathiphylli X
Colletotrichum gloesporioides* X
Exserohilum rostratum X
Cylindrocladium sp.* X
Deigthoniella torulosa X
Drecheslera musae-sapientum X
Myrothecium renaudii X
Phaeoseptoria musae X
Phyllosticta heliconiae X
Phyllosticta dardanoi X X
Phyllosticta heliconiicola X
Phomopsis sp. X
Pseudorhynchia polyrhyncha X
Rhizoctonia solani X
Septoria sp. X X
Sphaeromma mazosiae X
Terriera latiascus X
Verticillium theobromae X
23
Tabela 2(Cont.). Espécies fúngicas encontradas entre os gêneros mais cultivados de Heliconiaceae, Musaceae, Zingiberaceae, Costaceae e
Strelitziaceae
__________________________________________________________________________________________________________________
Espécies fúngicas Musa coccinea M .ornata Srelitizia sp. Tapeinochilus sp. Etlingera elatior Alpinia sp.
Botrytis cinerea X
Deigthoniella torulosa X X
Drecheslera musae-sapientum X
Colletotrichum gloeosporioides X
Cercospora alpiniae X
Phyllosticta sp. X
Rhizoctonia solani X
Calonectria theae X
Phyllachora sp.
X
Hyphodontia breviseta X
Marasmiellus palmivorus X
Fonte:
SBML, 2006, 2007
*Relatados por (Assis, 2002)
24
4 MATERIAIS E MÉTODOS
O trabalho foi iniciado com a realização de um levantamento junto a Associação
Brasiliense de Produtores de Flores e Plantas do DF, CENTRAL FLORES-DF, que
dispõe de um cadastro de produtores. A produção é destinada ao abastecimento de todo
o DF no setor de flores e mudas segundo a demanda.
Em núcleos rurais de produtores de espécies tropicais foram realizadas coletas
no período de março a dezembro de 2006.
4.1 Coleta do material
O trabalho foi realizado na Empresa Trópica, localizada no Núcleo Rural da
Rajadinha em Planaltina, DF e no Rancho Paraná, localizado em Brazlândia, DF.
As coletas foram divididas em duas etapas, de acordo com a forma de cultivo.
Na empresa Trópica as coletas iniciaram em março de 2006 (período chuvoso) se
estendendo até meados de julho (período seco), Foram coletadas partes vegetais de
espécies da família Heliconiaceae, Musaceae, Zingiberaceae.
As coletas no Rancho Paraná, iniciaram em agosto de 2006 (período seco) se
estendendo até dezembro de 2006 (pleno período chuvoso). Foram consideradas partes
vegetais de espécies das famílias, Heliconiaceae, Musaceae, Zingiberaceae, Costaceae e
Strelitziaceae.
As amostras com sintomas de injúrias foram separadas por espécie e
devidamente identificadas, colocadas em sacos plásticos e submetidas às analises no
Laboratório de Fitopatologia da UnB.
4.2 Diagnose
Partes das plantas (folhas, ramos, raízes e flores) apresentando sintomas de
clorose, manchas foliares, murchas e partes apodrecidas, foram coletadas.
Amostras apresentando sintomas e sinais evidentes de fungos foram submetidas
25
diretamente ao exame em microscópio estereoscópico. Em seguida procedeu-se o
preparo de lâminas para observação em microscópio óptico.
Parte do material infectado foi prensado permanecendo por 3-4 dias a 50-60ºC,
para secagem. Posteriormente, o material foi identificado, numerado, rotulado e
depositado na Coleção Micológica do Herbário da Universidade de Brasília, com
exceção do material de Heliconia red opol.
4.3 Câmara úmida e isolamentos
Uma parte das amostras que não apresentava sinais de fungos foi colocada em
câmara úmida, em placas de Petri, com papel de filtro esterilizado, umedecido com água
destilada e esterilizada. O material foi incubado a temperatura ambiente, por um período
de 24 a 36 horas de incubação, para observação de sinais, confecção de lâminas e
posterior observação em microscópio ótico. Todo procedimento foi realizado
assepticamente em câmara de fluxo laminar e o material previamente desinfectado
superficialmente com hipoclorito de sódio 1% e lavado com água destilada esterilizada.
Fragmentos das amostras de aproximadamente 10 cm com porções necróticas e
partes sadias, foram previamente desinfectados com solução de etanol 50%, por 2
minutos; em seguida as amostras foram transferidas para solução de hipoclorito de
sódio a 1%, permanecendo por 1 minuto. Posteriormente efetuou-se três lavagens das
amostras com água destilada esterilizada. Para o isolamento em meio de cultura, as
estruturas fúngicas foram retiradas com estilete flambado e colocadas em placas de
Petri, contendo o meio de BDA (batata, dextrose e ágar). Em seguida, incubou-se por 7
a 10 dias, a 25ºC e com fotoperíodo de 12 horas.
4.4 Análise do material coletado
As amostras foram colocadas sobre lâminas de vidro com corantes à base de azul
de algodão em lacto-glicerol ou floxina-KOH, para serem observados ao microscópio
ótico. As melhores lâminas foram lacradas com esmalte e fotografadas em microscópio
ótico.
Cortes histológicos transversais de aproximadamente 15 µm foram feitos
utilizando-se lâminas. Posteriormente, os cortes do tecido foram transferidos para
lâminas contendo corantes apropriados, cobertos com lamínulas e lacrados com esmalte.
As lâminas foram observadas em microscópio ótico e fotografadas em 40 e 100 x.
26
Estruturas rígidas como picnídios, peritécios e outros, foram fragmentadas
comprimindo-se suavemente o material sob a lamínula.
As medidas das estruturas fúngicas foram feitas empregando-se ocular
micrométrica, obtendo-se aproximadamente 50 medições das estruturas vegetativas e/ou
reprodutivas.
Para identificação dos fungos, empregou-se literatura pertinente.
27
5 RESULTADOS E DISCUSSÃO
5.1 Descrição dos fungos e sintomas associados
Os fungos detectados e identificados nas plantas da ordem Zingiberales são
apresentados na Tabela 3. Observa-se no gráfico 1 a freqüência com que os fungos
foram detectados nas plantas analisadas, calculado de acordo com a freqüência com que
o fungo apresentou por número de espécies de plantas.
Tabela 3: Espécies fúngicas encontradas associadas às plantas ornamentais tropicais no
Distrito Federal.
Planta Hospedeira Fungo
Heliconia. psittacorum
Alternaria alternata
Ascochyta sp.
Bipolaris cynodontis
Cladosporium musae
Curvularia lunata
Pestalotiopsis sp.
Phoma tropica
Heliconia Golden Torch
Alternaria sp.
Bipolaris setarie
Bipolaris buchloes
Bipolaris cynodontis
Fusarium sp.
Periconia cookei
Pestalotiopsis sp.
Heliconia rostrata
Bipolaris cynodontis
Periconia cookei
Pestalotiopsis sp.
Heliconia angusta laranja
Bipolaris sp.
Phoma leveillei
Septoria sp.
H. pseudoaemygdiana
Fusarium sp.
Periconia cookei
28
Heliconia red gold Alternaria alternata
Tabela 4 (cont.): Espécies fúngicas encontradas associadas às plantas ornamentais
tropicais no Distrito Federal.
Planta Hospedeira Fungo
Heliconia bihai
Nigrospora khuskia oryzae
Colletotrichum sp.
Fusarium sp.
Heliconia tagami Bipolaris tripogonis
Musa coccinea
Ascochyta sp.
Corynespora cassiicola
Cladosporium musae
Epicoccum purpurascens
Fusarium sp.
Musa ornata Fusarium sp.
Etlingera elatior var.
vermelho
Curvularia pallescens
Chaetochalara sp.
Cladosporium sp.
Pestalotiopsis sp.
Etlingera elatior var.rosa
Colletotrichum gloeosporioides
Cladosporium sp.
Fusarium sp.
Zingiber spectabile
Alternaria tenuissima
Bipolaris cynodontis
Cercospora sp.
Colletotrichum sp.
Periconia cookei
Phoma sp.
Alpinia purpurata var.rosa
Alternaria tenuissima
Fusarium sp.
Periconia cookei
Pestalotiopsis sp.
29
Tabela 4 (cont.): Espécies fúngicas encontradas associadas às plantas ornamentais tropicais
no Distrito Federal.
Planta Hospedeira Fungo
Strelitzia sp.
Ascochyta sp.
Colletotrichum gloeosporiodes
Epicoccum purpurascens
Glomerella cingulata
Costus spiralis Alternaria tenuissima
Bipolaris cynodontis
Tapeinochilus ananasse Bipolaris sp.
(A)
(B) Gráfico 1: Frequência de patógenos encontrados em plantas ornamentais
no DF
30
Os fungos encontrados e sintomas associados nas hospedeiras estão descritos abaixo:
1- Alternaria alternata Ness ex. Fr.; Nees, 1861. Syst. Pilze Schwãmne: 72.; Fries,
1821, Syst. Mycol.1:XLVI
Os sintomas encontrados foram descritos como pequenas manchas concêntricas
de tamanho variável (Fig.1 A), de coloração clara e formato circular. Com a
evolução da doença notou-se um coalescimento da mancha, dando um aspecto de
queima por toda superfície da mesma, circundada por um halo de coloração pardo
que delimitava a mancha (Fig. 1 B e C).
A espécie encontrada possuiu as seguintes características: Conidióforo com
cicatriz evidente e com proliferação simpodial (Fig. 2 F e G). Conidiogênese trética.
Conídios com 21,6 – 43,2 x 7,2 – 12 µm de dimensão, coloração marrom claro a
dourado, lisos, de três a quatro septos transversais evidente, sem septo longitudinal
ou raro (Fig. 2 A, B e C), em cadeias longas, rostro pequeno (Fig. 2 D e E). Pelas
características encontradas tais como formato, tamanho e coloração dos conídios e
presença de cadeia de acordo com Ellis (1971), concluiu-se que se tratava de
Alternaria alternata.
Espécime examinado 1: Em folhas vivas de Heliconia psittacorum, Empresa Trópica
Planaltina e Rancho Paraná, Brazlândia DF, 13. Jul. 2006 e 10. Out. 2006. Leg.
Caroline Rabelo Costa, números de coleta: 30 e 45. UB (coleção micológica) 20431
e 20446.
Espécime examinado 2: Em folhas de Heliconia red gold, Empresa Rancho Paraná,
Brazlândia DF, 31. Ago. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 38.
UB (coleção micológica) 20439.
31
Figura 1: Sintoma associado à Alternaria alternata em folhas de Heliconia
psittacorum e Heliconia red gold. A- Sintoma no seu estágio inicial, mancha
pequena de coloração amarelo-esbranquiçada. B e C- Coalescimento da mancha
com aspecto de queima, circundada por um halo de coloração pardo.
32
Figura 2: Estruturas de Alternaria alternata em folhas de Heliconia psittacorum e
Heliconia red gold. A e B - Conídios jovens em cadeia. C e D – Conídios maduros de
coloração marrom dourado e septação dos conídios. E - Detalhe do conídio germinando.
F e G – Conidióforos com cicatriz evidente.
Barras: A- 10 µm. B- 100 µm. C- 10 µm. D- 10 µm. E- 5 µm. F- 10 µm
33
2- Alternaria tenuissima (Kunze ex. Pers.) Wiltshire, 1933, Trans. Mycol. Soc. 18:157
Os sintomas observados nas folhas foram manchas circulares esbranquiçadas,
concêntricas (Fig. 3 B), com alo marrom, medindo de 2 a 4 cm (Fig. 3 C) que
coalescendo tornaram-se necróticas (Fig. 3 D). Sob condições favoráveis de temperatura
e umidade, desenvolvem rapidamente atingindo as flores, levando a perdas. Com o
passar do tempo, essas lesões se espalham por toda folha, comprometendo assim sua
comercialização.
O fungo encontrado possuía micélio superficial na folha, observado facilmente
através de microscópio estereoscópio (Fig. 3 A). Conidióforos macronemáticos,
mononemáticos, lisos, septados, simples ou ramificados, retos ou flexuosos, as vezes
geniculados, em pequenos grupos, com uma ou várias cicatrizes conidiais (Fig. 4 D).
Células conidiogênicas integradas, terminais, politréticas ou monotréticas, simpodiais,
cicatrizadas evidentes. Conídios 28-60 x 7,2-17 µm, solitários, secos, retos ou
levemente curvados, obclavados, obpririformes, ovóides ou elipsoidais, levemente
constrictos nos septos, cicatrizados, 4 septos, podendo ter até 7 septos transversais, e
poucos septos longitudinais, rostro observado com facilidade no conídio (Fig. 4 A, B e
C). Após estudo das estruturas, como conídios e conidióforos, sintoma causado, o fungo
foi identificado como Alternaria tenuissima de acordo com Ellis (1971).
Espécimes examinado 1: Folhas de Alpinia purpurata (Vieill) K. Shum. Empresa
Trópica, Planaltina, DF 23. Mai. 2006 Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta:
21 UB (coleção micológica) 20260.
Espécimes examinado 2: Folhas vivas de Zingiber spectabile Griff. Empresa Trópica,
Planaltina, DF 13. Jul. 2006 número de coleta: 35 UB (coleção micológica) 20436.
Espécimes examinado 3: Em folhas de Costus spiralis (Jacq.) Roscoe, Rancho Paraná,
Brazlândia, DF, 31. Ago. 2006; Leg. Caroline Rabelo Costa, números de coleta: 41 UB
(coleção micológica) 20442.
34
Figura 3: Sinais e sintomas de Alternaria tenuissima. A - Sinais do patógeno em folhas
de Costus spiralis observado em microscópio estereoscópico. B – Sintoma em folha de
Zingiber spectabile associado ao fungo; mancha de formato circular esbranquiçada e
halo marrom – escuro. C – Evolução da doença em folhas de Costus spiralis; sintoma
mais avançado. D – Folha de Alpinia purpurata severamente atacada em toda sua
extensão.
35
Figura 4: Estruturas de Alternaria tenuissima em folhas de Alpinia purpurata,
Costus spiralis e Zingiber spectabile. A e B- Conídios solitários, constrictos na base
e no ápice. C e D- Conídios com rostro evidente e com germinação lateral. E-
Conidióforo levemente flexuoso e cicatrizado. F- Detalhe do conidióforo com célula
conidiogênica terminal cicatrizada.
Barras: A- 15 µm. B- 5 µm. C- 5 µm.
3- Alternaria sp. Ness ex. Fr.; Nees, 1861, Syst. Pilze Schwãmne: 72: Fries, 1821, Syst.
Mycol., 1: XLVI
Nas plantas de Heliconia Golden Torch, os sintomas iniciaram-se como manchas
concêntricas, de coloração esbranquiçada, com halo marrom, de tamanho pequeno
esparsas pela folha (Fig. 5 A). Com a evolução da doença estas manchas se estenderam
por toda folha, em pontuações esbranquiçadas.
36
O fungo se apresentou com Conidióforos lisos, septados, simples ou
ramificados, retos ou flexuosos, ás vezes geniculados, marrom-pálidos, com uma ou
várias cicatrizes conidiais. Conídios grandes e largos, medindo 55,2- 84 x 12- 24 µm,
solitários, marrons-escuros, retos, obclavados, com até sete septos transversais e dois
septos longitudinais evidentes (Fig. 5 B, C e D). Após examinar a literatura, pelas
descrições desse fungo, como tamanho do conídio, coloração, solitários, constrictos em
toda extensão do conídio, verificou-se ser uma espécie do gênero Alternaria sp. Nees ex
Fr., Nees conforme descrições contidas em Ellis (1971).
Espécime examinado: Folhas de Heliconia Golden Torch, Rancho Paraná, Brazlândia,
DF, 31. Ago.2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 39 UB (coleção
micológica) 20440.
Figura 5: Sintoma e estutura de Alternaria sp. em Heliconia Golden Torch. A-
Sintoma em folha de H. Golden Torch; lesões esparsas, com coloração
esbranquiçada. B e C - Conídio preso ao conidióforo, marrom escuro. D- Detalhe
do conídio dictiospórico. Barras: B- 20 µm. C- 10 µm. D- 10 µm.
37
4- Ascochyta sp. Lib., Pl. Crypt. Ard. Fasc. 1:8 (1830)
Uma única espécie de Ascohyta sp. foi encontrada em associação com Epicoccum
purpurascens, causando manchas em três espécies de plantas, ocasionando assim um
complexo de patógenos que atacam toda a planta podendo prejudicar a comercialização
destas. Os sintomas descritos posteriormente, se referem aos causados também por
Ascohyta sp.
O fungo possuiu um micélio imerso no tecido da planta. Conidioma picnidial,
anfígeno, globoso, marrom, normalmente imerso no substrato natural, unilocular, com
textura angularis e parede grossa (Fig. 6 A e B). Ostíolo central, circular, papilado.
Células conidiogênicas subglobosas, ampuliformes a doliformes, hialinas (Fig. 6 C). Os
conídios do fungo estudado apresentaram hialinos, elipsóides ou de formato variável,
asseptados e gutulados com 12- 17 x 2-2,4 µm (Fig. 6 D).
Boerema & Bollen (1975) separaram Phoma Sacc. e Ascochyta usando
microscopia eletrônica de transmissão. A maior distinção entre ambas é o tipo de célula
conidiogênica, sendo fialídica para Phoma e anelídica para Ascochyta. No entanto,
Buchanan (1987) sugeriu que a célula conidiogênica de Ascochyta seria também
fialídica, porém com algum espessamento periclinal composto por camadas
concêntricas de parede.
Espécime examinado 1: Em folhas vivas de Musa coccinea Andreus, Empresa Trópica,
Planaltina, DF, 03. Mai. 2006. Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 07 UB
(coleção micológica) 20244.
Espécime examinado 2: Em folhas vivas de Heliconia psittacorum L. F., Empresa
Trópica, Planaltina, DF, 03. Mai. 2006. Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta:
09 UB (coleção micológica) 20246.
Espécime examinado 3: Em folhas vivas de Strelitzia sp. Rancho Paraná, Brazlândia,
DF, 10. Out.2006. Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 47 UB (coleção
micológica) 20448.
38
Figura 6: Ascochyta sp. associado às folhas de Musa coccinea, Heliconia psittacorum e
Strelitzia sp. A e B- Conidioma picnidial, globoso, com textura angularis. C- Célula
conidiogênica enteroblástica, liberando conídios. D- Detalhe dos conídios gutulados,
hialinos.
Barras: C- 10 µm. D- 10 µm.
39
5- Bipolaris buchloes (Lefebvre & A. G. Fohnson) Shoem., Can, J. Bot. 37:882 (1959)
Heliconia Golden Torch apresentou dois sintomas típicos causados por fungos
do gênero Bipolaris, manchas esbraquiçadas com halo marrom. No primeiro sintoma
observado, manchas necróticas de coloração pardo-esbranquiçadas, com halo marrom
escuro, espalhavam - se pela folha (Fig, 7 A e B), e com a evolução da doença se
tornaram grandes ocupando quase toda a folha e posteriormente perfurando a mesma
(Fig. 7 C). Essas manchas deram o aspecto de queima por toda folha, estendendo-se até
as flores (Fig. 7 D).
Na descrição morfológica, o fungo apresentou colônias cinza escura de aspecto
cotonoso (Fig. 8 A). Conidióforos pequenos e solitários ou em grupos pequenos,
estroma sobrepondo frequentemente de coloração clara ou pálida, septado, os nós lisos
(Fig. 8 D). Conidiogênese com os conídios distintos das cicatrizes. Conídios de marrom
claro ou marrom oliváceo, medindo 38,4-65 x 9,6-15 µm, de 2 a 9 distoseptos, retos ou
curvados afilando-se ligeiramente ou com o ápice arredondado, com um hilo
inconspícuo introduzido e germinando nas extremidades polares (Fig. 8 B e C). Pelas
características o fungo em estudo foi acomodado na espécie Bipolaris buchloes
(Lefebvre & A. G. Fohnson), de acordo com chave de identificação e descrições em
Sivanesan (1987).
Espécime examinado: Folhas de Heliconia Golden Torch, Rancho Paraná, Brazlândia
DF, 31. Ago. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 39, UB (coleção
micológica) 20440.
40
Figura 7: Sintomas causados por Bipolaris buchloes em Heliconia Golden Torch. A -
Sintoma inicial nas folhas, manchas de formato irregular, coloração pardo
esbranquiçada. B – Sintoma avançado, manchas maiores e em maior quantidade na
folha. Coalescimento das manchas, com aspecto de queima e perfuração da folha. C-
Sintoma na inflorescência.
41
Figura 8: Estruturas de Bipolaris buchloes em folhas de Heliconia Golden Torch. A -
Colônia de coloração cinza com aspecto cotonosa, em placa de Petri. B e C-
Conídios arredondados na bordas, levemente curvados e vários distoseptos. D-
Conidióforo pequeno, levemente geniculado.
Barras: B- 10 µm. C- 10 µm. D- 5 µm
42
6- Bipolaris cynodontis (Marignoni) Shoem., Can. J. Bot. 37:883 (1959)
Os sintomas foram caracterizados como manchas cloróticas, por toda superfície
foliar inicialmente (Fig. 9 A), tornando-se de coloração marrom-escura e com bordos
necróticos, de formato irregular e tamanho variável, com um halo amarelado e o centro
acinzentado (Fig. 9 B e C). As manchas se iniciaram mais nas bordas das folhas (Fig. 9
B, C e D).
Descrição morfológica do fungo: Conidióforos grandes, solitários ou em grupos
pequenos, flexuosos, pálidos a marrons, simples, lisos, cilíndricos, septados,
cicatrizados, com até 170 µm (Fig, 10 A, B e C). Os nós conidiogênicos e a superfície
da parede abaixo deles são verrugosos. Conídios terminais, lisos, pálidos, marrom
dourado, as vezes cilíndricos, com germinação bipolar, normalmente mais largos no
centro, afilando-se em direção das extremidades, ligeiramente encurvados, medindo 39-
77 x 10-21µm, com 3 a 9 distoseptos (Fig. 10 D). Pelas características acima, esse fungo
foi classificado como Bipolaris cynodontis Shoem. conforme chave de identificação de
Muchovej (1988) e descrições em Sivanesan (1987).
Espécime examinado 1: Em folhas de Heliconia psittacorum L. F., Empresa Trópica,
Planaltina DF, 03 Mai. 2006 Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 9, UB
(coleção micológica) 20246
Espécime examinado 2: Folhas de Heliconia Golden Torch, Empresa Trópica,
Planaltina DF, 03 Mai. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 10, UB
(coleção micológica) 20247.
Espécime examinado 3: Em folhas de Heliconia rostrata Ruiz e Pav., Empresa
Trópica, Planaltina DF, 03 Mai. 2006 Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 12
UB (coleção micológica) 20249.
Espécime examinado 4: Em folhas de Zingiber spetabile Griff, Empresa Trópica,
Planaltina DF, 03 Mai. 2006 Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 14, UB
(coleção micológica) 20251.
Espécime examinado 5: Em folhas de Costus spiralis (Jacq. ) Roscoe, Rancho Paraná,
Brazlândia, DF, 31. Ago. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 41, UB
(coleção micológica) 20442.
43
Assis et al., (2002) relataram Bipolaris cynodontis colonizando folhas de
Heliconia sp. em Pernambuco, com os mesmos sintomas. Este é possivelmente o
primeiro relato no DF.
Fi
gura 9: Sintoma causado por Bipolaris cynodontis em folhas de Heliconia Golden
Torch. A- Sintoma inicial, manchas pequenas marrons. B - Sintoma avançado, folha
necrosada. C, D e E – Mancha com centro acinzentado e com halo amarelado.
44
Figura 10: Estruturas de Bipolaris cynodontis em folhas de Heliconia psittacorum,
Heliconia Golden Torch, Heliconia rostrata, Zingiber spetabile, e Costus spiralis. A e C-
Conídios e conidióforos característicos do fungo. D- Detalhe dos conídios, marrons
dourados afilando-se levemente nas bases. B- Detalhe do conidióforo, flexuoso e
cicatrizado.
Barras: A- 30 µm. C- 10 µm. D- 20 µm
45
7- Bipolaris setarie (Saw) Shoem. Can. J. Bot. 37: 884 (1959)
Uma outra espécie de Bipolaris foi encontrada em folhas de Heliconia Golden
Torch, causando manchas necróticas ovais, de colorações claras ou brancas, tornando-se
bronzeadas ou cinzas nos centros das lesões, halos amarelados (Fig. 11 A).
Posteriormente as lesões progridem, coalescem provocando queima de toda folha (Fig,
11 B), variando em tamanho de acordo com hospedeiro e condição ambiental.
As descrições morfológicas do fungo são apresentadas como: Conidióforos
únicos ou em grupos pequenos, retos mais acima são flexuosos, septados, pálidos, lisos,
as vezes geniculados, marrom ou oliváceos, mais pálido para o ápice (Fig. 11C e E),
Conídios curvados raramente retos, fusiformes ou naviculares, pálidos ao marrom
dourado, liso, medindo 55-72 x 12-17 µm, com 5-10 distoseptos (Fig. 11 D, F e G). De
acordo com as características acima esse fungo foi classificado como Bipolaris setarie
Shoem. conforme chave de identificação de Muchovej (1988) e descrições em
Sivanesan (1987).
Espécime examinado: Folhas de Heliconia Golden Torch, Rancho Paraná, Brazlândia
DF, 31. Ago. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 39, UB (coleção
micológica) 20440.
Bipolaris setarie foi relatado em Heliconia sp. Assis et al., (2002), causando
manchas foliares no Estado do Pernambuco, sendo o primeiro relato no Distrito Federal
de B. setarie em Heliconia Golden Torch.
46
Figu
ra 11: Sintoma associado e característica de Bipolaris setarie em folhas de Heliconia
Golden Torch. A e B - Manchas necróticas esparsas pela folha. coloração clara ou
branca, ovais, ou formato irregular. C e E- Conidióforo ramificado, flexuoso e pálido. D
e F- Conídios marrons claros, curvados fusiformes ou naviculares. G- Detalhe da
germinação bipolar do conídio.
Barras: C- 10 µm. D- 10 µm. F- 10 µm. G- 5 µm.
47
8- Bipolaris tripogonis (A. S. Patil & V. G. Rao) Alcorn, Mycotaxon 13: 344 (1981)
Os sintomas encontrados em folhas de Heliconia tagami típicos são manchas
grandes, compridas, espalhadas pela folha (Fig. 12 B e C), atingindo muitas vezes as
inflorescências (Fig. 12 D) ovais, de coloração esbranquiçada, com um pequeno halo
marrom, circundando a mancha (Fig. 12 E).
O fungo detectado apresentou micélio sobre o tecido foliar, (Fig. 12 A),
Conidióforo, marrons, pálidos e na maioria ramificados, geniculados, com cicatrizes
proeminentes (Fig, 13 A, C e D). Conidiogênese com nós verruculosos. Conídios
ligeiramente curvados, podendo ser retos, cilíndricos a fusiformes, marrom a oliváceos
pálidos e lisos, medindo de 81-90 x 19-24 µm (Fig. 13 B e C). De acordo com as
características acima esse fungo foi classificado como Bipolaris tripogonis Shoem.
conforme chave de identificação e descrições em Sivanesan (1987).
Espécime examinado: Folhas de Heliconia tagami, Rancho Paraná, Brazlândia, DF, 31.
Ago. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 40 UB (coleção micológica)
20441.
Trata-se possivelmente do primeiro relato de Bipolaris tripogonis em Heliconia
tagami.
48
Figura 12: Sinais de Bipolaris tripogonis e sintomas em folhas de Heliconia
tagami. A- Sinais do patógeno na superfície foliar. B e C- Manchas circulares
acinzentada, circundadas por um halo amarronzado. D- Inflorescência com
sintoma em toda sua extensão. E - Manchas coalescidas e necrosadas.
49
Figura 13: Estruturas de Bipolaris tripogonis em folhas de Heliconia tagami. A
e C- Conídios e conidióforos. B- Detalhe do conídio, levemente curvado,
marrom escuro, cilíndricos a fusiformes. D- Detalhe do conidióforo flexuoso e
cicatrizado.
Barras: A- 30 µm. B- 5 µm. C- 30 µm.
9- Bipolaris sp. Shoem.
Sintomas em Heliconia angusta laranja se iniciaram como pequenas manchas
marrons espalhadas pela folha (Fig. 14 A). Com o desenvolvimento da doença, tornam-
se grandes, ovais, claras e com halo marcante amarronzado (Fig. 14 B).
O gênero Bipolaris se caracteriza por possuir conidióforos retos ou flexuosos,
multiseptados, pequenos, macronemáticos, geniculados e cilíndricos. Células
conidiogênicas politétricas, integrada, cicatrizada, com proliferação simpodial. Conídios
50
fusiformes, obpiriformes, navicular, cilíndricos, obclavados, clavados, ovóides,
solitários, curvados ou retos, raramente equinulado, de 2 ou mais distospetos, marrom
claro, escuro, oliváceos, com germinação bipolar, com primeiro septo formado
medianamente e com o segundo sendo formado delimitando a célula basal. Raramente
com hilo protumberante (Sivanesan, 1987).
O fungo observado apresentou conidióforo pálido, flexuoso, com ramificações
laterais (Fig. 14 F), medindo de 127-216 x 7,2 µm. Conídios marrons claro pálidos,
curvados, em formato navicular, afilando nas extremidades, medindo de 81-105 x 24
µm (Fig. 14 C, D e E). De acordo com Sivanesan (1987), nenhuma espécie se enquadra
na descrita acima, não sendo possível, portanto, identificar uma espécie para o gênero
encontrado em Heliconia angusta laranja.
Espécime examinado: Folhas de Heliconia angusta laranja Vell, Rancho Paraná,
Brazlândia, DF, 10. Out. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 43 UB
(coleção micológica) 20444.
51
Figura 14: Sintomas associados e características de Bipolaris sp. em Heliconia
angusta laranja. A e B- Manchas ovais, marrom clara, com halo marrom
escuro. C, D e E- Conídios marrom pálido, curvados e afilados nas
extremidades. F- Conidióforo geniculado, marrom pálido, ramificado.
Barras: C- 20 µm. D- 10 µm. E- 30 µm. F- 30 µm.
10- Bipolaris sp. Shoem.
Os sintomas foram descritos como manchas esbranquiçadas distribuídas no
centro da folha, de formato irregular, com um halo discreto circundando a lesão, que
coalesceu com aspecto de queima (Fig. 15 A).
52
Esta espécie não se enquadrou em nenhuma já descrita por Sivanesan (1987) ou
por outro autor, pois os conídios são pequenos, medindo 17-62 x 6-17 µm, de 4 a 9
distoseptos, com o centro do conídio mais largo que a base, porém de forma discreta
(Fig. 15 B) e com hilo protumberante, se comparado a outras espécies (Fig. 15 C).
Espécime examinado: Folhas de Tapeinochilus ananasse (Hassk) K. Schum, Rancho
Paraná, Brazlândia, DF, 10. Out. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta:
44. UB (coleção micológica) 20445.
Figura 15: Sintoma associado e conídios de Bipolaris sp. em folhas de
Tapeinochilus ananasse. A- Manchas que se dispõem no centro da folha, de
coloração clara e com halo discreto. B- Conídios levemente retos, com
pseudoseptos bem formados. C- Detalhe do hilo protuberante.
Barras: B- 10 µm. C- 5 µm.
11- Cercospora sp. Fresen. (1863)
Os sintomas observados em Zingiber spectabile ocorreram em folhas como
lesões pequenas, marrons, em grande número, podendo ser confundidas com problemas
fisiológicos ou nutricionais. De acordo com Swake & Uchida (1995), após vários meses
os sintomas podem evoluir para grandes manchas marrons ou queima da folha. Podem
causar manchas foliares ou lesões (Fig. 16 A).
53
Através da pesquisa de sinais em folhas sintomáticas, foram observados a
presença de estroma pequeno (Fig. 16 B), conidióforos agrupados em esporodóquios, de
coloração castanho-escura (Fig. 16 D), com cicatrizes e de crescimento simpodial (Fig.
16 E). Conídios hialinos, filiformes, multisseptados, lisos e com ápice afilado (Fig. 16
C). As características das estruturas fúngicas nas plantas investigadas, no presente
trabalho, correspondem àquelas descritas para o gênero Cercospora sp., em associação
às manchas em Zingiber. A ocorrência dessa cercosporiose pode representar um
problema ao cultivo em tropicais, em escala comercial, devido à alta incidência e
severidade com que a doença é observada. Assis et al., (2002) relataram Cercospora sp.
em Heliconia psittacorum cv. Lady Di e de acordo com SBML (2006), existem relatos
de Cercopora sp. em Heliconia sp. Heliconia caribaeae e Alpinia sp. o que remete, a
severidade e a ampla gama de hospedeiros de Cercospora em plantas tropicais.
Espécime examinado: Folhas de Zingiber spectabile Griff, Empresa Trópica, Planaltina
DF, 03 Mai. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 31 UB (coleção
micológica) 20432.
54
Figura 16: Sintoma, sinais e características de Cercospora sp. em folhas de Zingiber
spectabile. A- Lesões pequenas e marrons nas nervuras da folha. B - Sinais do patógeno
na superfície foliar, micélio superficial. C- Conídios hialinos, filiformes, multiseptados.
D. Conidióforos em esporodóquios. E- Detalhe do conidióforo; cicatrizado e com
proliferação simpodial.
55
12- Colletotrichum gloeosporioides (Penz.) Penz. & Sacc. Atti Inst. Veneto Sci. Lett.,
ed. Art, Série 62:670 (1884).
A antracnose é comum em todo Brasil em várias hospedeiras e durante o ano
todo, severa em termos de danos e prejuízos provocados em flores tropicais. Lesões
necróticas são observadas em toda parte vegetal da planta, iniciando-se pela folha,
estendendo-se pela flor tornando-se uma doença importante de pós-colheita. As
manchas foliares são deprimidas, de forma circular ou elíptica, podendo se tornar
alongadas e irregulares com o tempo (Fig. 17 A), de coloração que varia em vários tons
de marrom, de acordo com a hospedeira.
O Gênero Colletotrichum é bastante amplo no parasitismo de hospedeiros, sendo
muito frequente como patógeno de manchas foliares. O resultado do presente trabalho é
semelhante, ao encontrado por Assis et al., (2002), Lins & Coelho et al., (2003) e
Oliveira & Coelho (2005), que relataram ocorrência de Colletotrichum gloeosporioides
em folhas de Heliconia sp. e em Etlingera elatior em Pernambuco, causando antracnose
em folhas e inflorescências.
O fungo encontrado apresentou as seguintes características: Acérvulos
superficiais, de coloração escura, ocorreu nas duas faces da folha, abaxial e adaxial (Fig.
17 B e C). Setas septadas, ornamentadas, marrons escuras, dispostas em cachos,
medindo 55-72 x 2,4-5 µm, com base dilatada (Fig. 17 B, C e D). Conídios hialinos,
sem septos, retos, com parede fina, arredondados, medindo de 12-14,5 x 2,4-5 µm (Fig.
17 E). Meio de cultura: colônias crescem com aspecto marrom devido a presença dos
acérvulos. Ao comparar o fungo estudado com a espécie C. gloeosporioides descrita por
Sutton (1980) e Cannon (1998) foi observado que as características morfológicas e
morfométricas dos respectivos espécimes são muito semelhantes. De acordo com o
SBML (2006), C. gloeosporioides foi descrito em Heliconia psittacorum e em Strelitzia
sp. Este é, portanto o primeiro relato de C. gloeosporioides em folhas de Etlingera
elatior no Distrito Federal.
Espécime examinado 1: Em folhas de Etlingera elatior (Jack) R. M. Sn, Central Flores
de Brasília, CEASA, Sobradinho, DF 02. Jun. 2006. Leg. Denise Vilela Rezende. UB
(coleção micológica) 20256
Espécime examinado 2: Em folhas de Strelitzia sp. Rancho Paraná, Brazlândia, DF, 10.
Out. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 47 UB (coleção micológica)
20448.
56
Figura 17: Sintoma e características de Colletotrichum gloeosporioides
em Etlingera elatior. A- Mancha deprimida elíptica, de coloração
marrom escura. B e C- Acérvulos de coloração escura contendo setas
com base dilatada. D- Detalhe da seta ornamentada (verrugosa),
coloração marrom escura. E- Conídios hialinos, cilíndricos,
arredondadosnas extremidades.
Barras: B- 100 µm. C- 50 µm. D- 30 µm. E- 20 µm
57
13- Colletotrichum sp. Penz. & Sacc
Foram encontradas manchas foliares deprimidas, grandes na extensão de folhas de
Heliconia bihai e em Zingiber spectabile. Os sintomas foram os mesmos descritos para
a antracnose, doença agressiva, tanto no campo como em pós-colheita.
Na descrição morfológica do fungo foi observado conidioma superficial, presença
de setas lisas, sem ornamentação, marrom clara (Fig. 18 A, C e D), conídios
arredondados de um lado e pontiagudo na outra extremidade, medindo 9,6-15 x 2,4-5
µm, hialinos, asseptados (Fig. 18 B). Ao comparar o fungo estudado com espécies de
Colletotrichum descritas por Sutton (1980) e Cannon (1998) foi observado que as
características morfológicas e morfométricas da espécie encontrada não se encaixavam
em nenhuma espécie já descrita.
Espécime examinado 1: Em folhas Zingiber spectabile Griff, Empresa Trópica
Planaltina, Brazlândia, DF, 03. Mai. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de
coleta: 14, UB (coleção micológica) 20251.
Espécime examinado 2: Em folhas de Heliconia bihai, Empresa Trópica Planaltina,
DF, 03. Mai. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 17, UB (coleção
micológica) 20254.
58
Figura 18: Colletotrichum sp. em folhas Zingiber spectabile e de Heliconia bihai.
A- Acérvulo setoso. B- Conídios hialinos, sem septos, levemente pontiagudos. C e
D- Detalhe das setas, sem ornamentação e de coloração marrom clara.
Barras: A- 30 µm. B- 30 µm. C- 20 µm. D- 20 µm
14- Corynespora cassiicola (Berk. & Curt.) Wei, 1950, Mycol. Pap., 34:5.
O fungo foi encontrado em lesões associadas com outros patógenos, tais como
Fusarium sp. e Epicoccum purpurascens. Os sintomas iniciaram como manchas
marrons escuras, de formato circular, no sentido da nervura da folha, que deram aspecto
de queima das folhas com a evolução da doença.
59
Corynespora cassiicola é um patógeno comum nos trópicos, onde é encontrada
abundantemente, e que afeta, além da seringueira, dezenas de outros hospedeiros
(Ferreira et al., 1989). Causa pontos na folha e é reconhecido frequentemente como um
patógeno em caupi, curcubitáceas, melão, feijão e outros. Outras plantas de importância
econômica também são hospedeiras frequentemente, incluindo a mandioca, o mamão, a
borracha e o tomate.
A espécie C. cassiicola possui conidióforos que vistos sob microscópio
binocular, mostram-se frágeis e nítidos, marrons escuros, com ápice em forma de
“taça”, característico do gênero, terminais e macronemáticos (Fig. 19 B). Conídios
solitários, variáveis na forma, obclavados a cilíndricos, levemente curvados, subhialinos
a marrons oliváceos, pálidos, lisos, de 4 a 10 pseudosepto, medindo de 55-80 x 15-17
µm (Fig. 19 A, C e D). As características morfológicas analisadas de acordo com Ellis
(1971) levaram à Corynespora cassiicola.
Espécime examinado: Em folhas de Musa coccinea Andreus, Empresa Trópica,
Planaltina DF, 23. Mai. 2006. Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 07 UB
(coleção micológica) 20244.
60
Figura 19: Corynespora cassiicola em Musa coccinea A- Conídios solitários,
muito variáveis na forma, obclavados, pálidos, ligeiramente curvados. B-
Conidióforo marrom, flexuoso, com detalhe no ápice em forma de “taça”. C-
Conídios presos ao conidióforo. D- Conídio longo e solitário.
Barras: A- 10 µm. B- 20 µm. C- 100 µm. D- 60 µm
15- Chaetochalara sp. Sutton & Pirozynski, 1965, Trans. Br. Mycol. Soc., 48: 350-354
Os sintomas surgiram inicialmente como pequenas manchas avermelhadas que
tardiamente aumentavam de tamanho formando manchas de cor palha ocupando uma
grande extensão das brácteas.
O fungo apresentou micélio imerso em partes, sem estroma e hifas agregadas,
frequentemente subestomatal. Conidióforo liso, marrom-escuro clareando nas pontas
(Fig. 20 A, B e C), Célula conidiogênica fialídica (Fig. 20 E e F). Conídios endógenos,
catenulados, oblongos, truncados ou arredondados nas extremidades, hialino e liso,
medindo de 12,4-19 x 2,4-5 µm (Fig. 20 C e D). As características analisadas estavam
de acordo com a descrição do gênero de Chaetochalara sp. de Ellis (1971).
61
Espécime examinado: Em folhas de Etlingera elatior, (Jack) R. M. Sn var. vermelho,
Central Flores de Brasília, CEASA, Sobradinho, DF 02. Jun. 2006. Leg. Denise Vilela
Rezende. UB (coleção micológica) 20257.
Figura 20: Chaetochalara sp. em folhas de Etlingera elatior var. vermelho.
A – Conidióforo e conídios. B e C: Conidióforo septado, com base
prolongada e ápice claro em crescimento. D - Conídios hialinos, formando
gútulas e pontiagudos. E e F- Célula conidiogênica enteroblástica fialídica,
detalhe do conídio sendo liberado.
Barras: A- 10 µm; D- 30 µm; E= 30 µm; F- 10 µm.
62
16- Cladosporium musae Mason, 1945, apud Martyn in Mycol. Pap., 13: 2 – 3
Os sintomas foram observados em folhas formando manchas necróticas, de
formato irregular medindo entre 1-2 mm, coloração escura com halos amarelados,
coalescendo com o avanço da doença (Fig. 21 B e C). Na face abaxial das folhas,
observaram-se facilmente os sinais do patógeno em abundância.
O Gênero Cladosporium foi encontrado em associação com outros patógenos em
plantas em estágio avançado de senescência, nos diversos hospedeiros citados abaixo
(Fig. 22 A). Despoulian et al., (1990) encontraram C. herbarum associado a Puccinia
poarum em pústulas de ferrugem atuando apenas como saprófita. O fungo, pode às
vezes atuar como antagonista, e sob condições favoráveis, tornar-se patógeno (De Vries,
1952). É um patógeno de ampla distribuição, sendo já relatado por Assis et al., (2002)
C. herbarum em Heliconia sp. causando mancha foliar necrótica no Estado de
Pernambuco.
O fungo encontrado caracterizou-se por apresentar conidióforos
macronemáticos, oliváceos a marrons, lisos (Fig. 22 C e D). Setas e hifopódio ausentes.
Ramo-conídio presente (Fig. 22 A). Conídios catenulados, frequentemente em correntes
ramificadas, acropleurógenous, simples, cilíndrico, doliformes, em elipsoidal, em
fusiformes, ovóides, esféricos, frequentemente com uma cicatriz distintamente
protuberante em cada extremidade ou apenas na base, marrons oliváceos ou marrom
escuro, rugosos, de 0 a 3 septos ocasionalmente (Fig. 22 A e B).
A espécie em questão, possuiu conidióforos eretos, flexuosos, marrons e lisos,
conídios cilíndricos, elipsoidais, hialinos, lisos, de 0 a 1 septo, tratando-se de
Cladosporium musae, segundo Ellis (1971).
Espécimes examinados 1: Em folhas vivas de Musa coccinea, Andreus, Empresa
Trópica, Planaltina DF, 03. Mai. 2006; Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta:
07 UB (coleção micológica) 20244.
Espécimes examinados 2: Em folhas vivas de Etlingera elatior (Jack) R. M. Sn, var.
vermelho. Empresa Trópica, Planaltina DF, 13. Jul. 2006; Leg. Caroline Rabelo Costa,
número de coleta: 33 UB (coleção micológica) 20434.
Espécimes examinados 3: Em folhas vivas de Heliconia psittacorum L. F.: Brasília,
Empresa Trópica Planaltina e Rancho Paraná, Brazlândia DF, 13. Jul e 10. Out. 2006;
Leg. Caroline Rabelo Costa, números de coleta: 30 e 45 UB (coleção micológica) 20431
e 20446.
63
Figura 21: Sintoma associado à Cladosporium musae em folhas de Etlingera
elatior, Musa coccinea e Heliconia psittacorum. A- Manchas necróticas, de
formato irregular em Etlingera elatior. B e C- Manchas de coloração escura,
coalescidas com o avanço da doença em Musa coccinea (B) e em Heliconia
psittacorum (C).
64
Figura 22: Estruturas de Cladosporium musae em folhas de Musa coccinea, Etlingera
elatior e Heliconia psittacorum. A e B- Conídios catenulados, ovóides, esféricos,
marrons oliváceos, detalhe do destaque da presença de ramo conídio. D e E-
Conidióforos oliváceos a marrons e lisos.
Barras: D- 10 µm. E= 40 µm. F- 20 µm G- 30 µm.
65
17- Curvularia lunata (Wakker) Boedijn, Bull. Jard. Bot. Buitenz. III, 13: 127 (1933)
Sintomas observados foram manchas necróticas foliares, de formato irregular,
marrom, que coalesceram formando uma área necrosada, com aspecto de queima nas
folhas, atingindo posteriormente as inflorescências (Fig. 23 A).
O fungo apresentou colônias efusas marrom-escuras, cotonosas (Fig. 23 B).
Micélio imerso no substrato natural, ramificado, septado, marrom claro a escuro, parede
lisa. Conidióforos até 650 µm de comprimento, solitários, flexuosos, ocasionalmente
geniculados, marrom-escuros tornando claros próximos do ápice, paredes lisas, septados
e cicatrizados. (Fig. 23 C).
Células conidiogênicas politréticas, integradas, terminais,
simpodiais. Conídios medindo 18 – 23 x 7,5 – 10,5 µm, acropleurógenos, solitários,
lisos, geralmente curvados, geniculados, fusiformes, com hilo relativamente saliente, 3
distoseptos, células finais subhialinas ou marrom-escuras, célula Huck de coloração
uniforme com as demais células (Fig. 23 E e F). Pelas características encontradas, o
fungo pertence a espécie Curvularia lunata (Wakker) Boedijn de acordo com Sivanesan
(1987). Lins et al., (2004) relataram Curvularia lunata em folhas Heliconia
psittacorum, causando manchas foliares, comprovando assim a associação do agente
causal para com esta espécie de planta.
Espécime examinado: Em folhas de Heliconia psittacorum, Empresa Trópica, Planaltina
DF, 13. Jul. 2006; Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 30 UB (coleção
micológica) 20431.
66
Figura 23: Estruturas de Curvularia lunata em folhas de Heliconia psittacorum.
A- Manchas necróticas foliares, de formato irregular, marrom. B- Colônia
enegrecida, cotonosa de aspecto pulverulento C e D- Detalhe do conidióforo
ramificado, com cicatriz e conídios jovens sendo formados. E e F- Conídios
com três septos, com hilo protuberante e célula roque uniforme com as demais
células.
Barras: C- 15 µm. D= 20 µm. E- 15 µm F- 5 µm.
67
18- Curvularia pallescens Boedijn, Bull. Jard. Bot. Buitenz. III, 13: 127 (1933)
O fungo foi encontrado em associação com Cladosporium musae em folhas de
Etlingera elatior var. vermelho, associado as manchas marrons, necróticas, de formato
variável, como já descrito anteriormente, não sendo possível descrever qual é o agente
causal das manchas, devido não ter sido realizado teste de patogenicidade .
Foi observado como características morfológicas, conidióforos até 650 µm de
comprimento, solitários ou em grupos, geralmente simples ou ramificados, retos ou
flexuosos, ocasionalmente geniculados, marrom-avermelhados a marrom-escuros
tornando claros próximos do ápice, parede lisa, septados.
Conídios 19 – 28,5 x 8,55 –
9,5 µm, solitários, lisos, pouco curvado (Fig. 24 A e B), geniculados, fusiformes, com
hilo relativamente proeminente (Fig. 24 D), 3 a 4 distoseptos (Fig. 24 C), células finais
subhialinas ou marrom-escuro, célula Huck com a mesma coloração das demais células
(Fig. 24 B e C). Pelas características encontradas, o fungo pertence a espécie Curvularia
pallescens Boedijn de acordo com Sivanesan (1987).
O gênero Curvularia foi descrito em folhas de Heliconia sp. por Assis et al.,
(2002), causando sintomas semelhantes, no estado de Pernambuco, porém a espécie
relatada foi Curvularia brachyspora, que não se enquadra na espécie encontrada, por
possuir conídios maiores e septo mediano mais espesso e escuro que os outros o que não
foi observado na espécie encontrada no trabalho. Foi relatado em Heliconia sp. de
acordo com SBML (2006), porém em Etlingera elatior não há relatos e no DF é o
primeiro relato.
Espécime examinado: Em folhas de Etlingera elatior (Jack) R. M. Sn var. vermelho,
Empresa Trópica, Planaltina DF, 13. Jul. 2006; Leg. Caroline Rabelo Costa, número de
coleta: 33 UB (coleção micológica) 20434.
68
Figura 24: Estruturas de Curvularia pallescens em folhas de Etlingera elatior.
var. vermelho. A e B – Conídios solitários, lisos. C e D - Conídios ligeiramente
curvados com hilo proeminente. Células Huck uniforme em coloração com as
demais células. Detalhe do hilo proeminente.
Barras: A- 250 µm. B- 20 µm C- 10 µm D-5 µm.
69
19- Epicoccum purpurascens Link ex. Schlecht.; Link 1815, Magazin Ges. Naturf.
Freunde Berl. 7: 32; Schletendal, 1824, Synop. Pl. Crypt.: 136
O fungo em questão foi observado associado à outros fungos, encontrado na
mesma lesão, em folhas de Musa coccineae e Strelitzia sp., formando portanto uma
associação de patógenos em espécies tropicais.
Morfologicamente o fungo não possuía hifopódio e setas. Conidióforos
frequentemente solitários ou em conjunto densos, ramificados, ocasionalmente, curtos,
flexuosos, incolor, terminais, lisos (Fig. 25 C). Células conidiogênicas monoblásticas,
integradas, terminais, determinadas, cilíndricas (Fig. 25 D). Conídios solitários, secos,
acropleurógenos, subesféricos a periformes, células que se tornam escurecidas em
conídios maduros (Fig. 25 A e B). De acordo com Ellis (1971), a espécie em questão foi
identificada como Epicoccum purpurascens Link.
O fungo pode ser encontrado em folhas ou qualquer superfície morta, ou
associado a outros patógenos, como invasor secundário, como foi o observado.
Espécime examinado: Em folhas de Musa coccinea Andreus, Empresa Trópica,
Planaltina DF, 13. Jul. 2006; Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 29. UB
(coleção micológica) 20430.
70
Figura 25: Epicoccum purpurascens associado às manchas em folhas de Musa
coccinea. A e B- Meio de cultura de aspecto gelatinoso, com pontuações enegrecidas
ao centro. C e D- Conídios subesféricos a periformes, marrons escuros. E-
Conidóforos curtos, flexuosos, ramificados. F- Detalhe da célula conidiogênica
cilíndrica, terminal, integrada e conídios preso a ela.
71
20- Fusarium sp. Link ex. Fr.
Fusarium sp. foi encontrado associado a plantas tropicais, com sintomas de
apodrecimento de rizoma e inflorescência (Fig. 26).
Os fungos do gênero Fusarium Link ex Fr. têm ampla distribuição geográfica,
espécies cosmopolitas e outras com ocorrência restrita a determinados ambientes.
Ocorrem, predominantemente, nas regiões tropicais e subtropicais ou em condições de
clima frio das regiões temperadas, algumas espécies tem íntima associação com os
hospedeiros (Booth, 1994).
Foram observados no isolado estudado microconídios abundantes, unicelulares,
ovais a reniformes, hialinos (Fig. 27 H). Macroconídios formados em abundância,
hialinos, fusiformes, falcados, isolados e multicelulares (Fig. 27 F e G). Célula
conidiogênica fialídica (Fig. 27 I), Formação de clamidósporos esféricos, intercalados
nos conidióforos (Fig. 27 J e L).
Fusarium sp. foi descrito por Assis et al., (2002) e em SBML (2006), causando
amarelecimento das folhas, devido ser um fungo de solo. Quando realizado corte
transversal ou longitudinal no rizoma, observa-se a coloração marrom-avermelhada no
tecido vascular (Fig. E), caracterizando podridão seca, típica do gênero. Em
inflorescências, ocorre podridão (Fig. 26 A, B e C), Castro et al., (2005), relataram
Fusarium causando murcha em Heliconia psittacorum cv. Alan Carle.
Espécime examinado 1: Em inflorescência de Heliconia pseudoaemygdiana Emygdio &
E. Santos. Empresa Trópica, Planaltina DF, 03 Mai. 2006; Leg. Caroline Rabelo Costa,
número de coleta: 05 UB (coleção micológica) 20242.
Espécime examinado 2: Em inflorescência de Heliconia bihai, Empresa Trópica,
Planaltina DF, 03. Mai. 2006; Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 17 UB
(coleção micológica) 20254.
Espécime examinado 3: Em inflorescência de Alpinia purpurata (Vieill) K. Shum,
Empresa Trópica, Planaltina DF, 23. Mai. 2006; Leg. Caroline Rabelo Costa, número de
coleta: 21 UB (coleção micológica) 20260.
Espécime examinado 4: Em inflorescência de Heliconia Golden Torch, Empresa
Trópica, Planaltina DF, 23. Mai. 2006; Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta:
23 UB (coleção micológica) 20262.
72
Espécime examinado 5: Em inflorescência de Musa coccinea Andreus, Empresa
Trópica, Planaltina DF, 23. Mai. 2006; Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta:
24 UB (coleção micológica) 20263.
Espécime examinado 6 Em inflorescência de Etlingera elatior (Jack) R. M. Sn,
Empresa Trópica, Planaltina DF, 30. Ago. 2006; Leg. Caroline Rabelo Costa, número
de coleta: 37 UB (coleção micológica) 20438.
Espécime examinado 7: Raiz de Musa ornata Roscb Empresa Trópica, Planaltina DF,
20. Ago. 2006; Leg. Caroline Rabelo Costa.
Em Musa ornata, após assepsia do material coletado (álcool 50%, hipoclorito de sódio e
água destilada esterilizada), cortes transversais do rizoma, foi verificado se tratar de
Fusarium sp. pois o sintoma na raíz da planta, coloração marrom-avermelhada no tecido
vascular é tipicamente do patógeno.
73
Figura 26: Sintomas associados à Fusarium sp. em inflorescência de
Etlingera elatior, Alpinia purpurata, Heliconia bihai, e em raiz e
inflorescência de Musa ornata, A B C e D- Apodrecimento da
inflorescência causando manchas e necroses em Etlingera elatior,
Alpinia purpurata, Heliconia bihai, Musa ornata, respectivamente. E-
Coloração marrom-avermelhada no tecido vascular em Musa ornata.
74
Figura 27: Estruturas de Fusarium sp. associados ao podridão de inflorescências em
Heliconia bihai. A e B- Macroconídios filiormes, falcados, hialinos, multicelulares.
C- Microconídios ovais hialinos, unicelulares. D- Célula conidiogênica fialídica. E e
F- Clamidósporos intercalados no conidióforo.
75
21- Glomerella cingulata (Stoneman) Spald. & H. Schrenk
Glomerella cingulata foi encontrado associado à seu anamorfo Colletotrichum
gloeosporioides em folhas de Etlingera elatior (Bastão do imperador) var. rosa e
Strelitzia sp., causando antracnose. O fungo em questão já foi relatado em Heliconia
caribeae (SBML, 2006), sendo o primeiro relato do mesmo em Etlingera elatior e
Strelitzia sp.
O fungo possuiu Ascoma em peritécio ostiolado, obpiriforme a subgloboso,
pêlos em torno do ostíolo (Fig. 28 A). Ascoma imerso parcialmente ou completamente
no tecido da hospedeira. Parede do ascoma pseudoparenquimática, pigmentada, espessa.
Asco unitunicado, cilíndrico ligeiramente clavado ou elipsóide, com ápice arredondado,
não amilóide, com 4-6 ou 8 esporos (Fig. 28 B e C). Ascósporos unicelulares, hialinos,
elipsoidais ou subcilíndricos, levemente curvados. De acordo com as características
analisadas (Fig. 28 D), o fungo foi identificado como Glomerella cingulata, de acordo
com Hanlin (1992).
Espécime examinado 1: Em folhas de Etlingera elatior (Jack) R. M. Sn. Empresa
Trópica, Planaltina DF, 23. Mai. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta:
26 UB (coleção micológica) 20265.
Espécime examinado 2: Em folhas de Strelitzia sp. Rancho Paraná, Brazlândia DF, 10
Out. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 47 UB (coleção micológica)
20448.
76
Figura 28: Estruturas de Glomerella cingulata em folhas de Etlingera elatior var.
rosa e Strelitzia sp. A- Peritécio ostiolado. B- Ascósporos unicelulares, hialinos,
elipsoidais. C- Ascos unitunicados, não amilóide. D- Ascósporos ao longo do
asco.
Barras: C- 15 µm. D= 20 µm. E- 15 µm F- 5 µm.
77
22- Leptosphaeria sp. Ces. & De Not., Comm. Soc. crittog. Ital. 1: 234 (1863)
Lesões circulares, pequenas, foram observadas em folhas de Heliconia red
owpol. O fungo apresentou ascoma escuro, profundo na planta, formato arredondado
com a base mais larga tipo doliforme.
O fungo apresentou um peritécio membranoso, com ostíolo irrompente,
paráfises presentes (Fig. 29 A e B). Ascos cilíndricos, alongados, bitunicados,
nascendo
de uma camada himenial e se dispõem em paliçada
contendo 8 ascósporos cada (Fig. 29
C)
. Ascóporos escuros e septados constritos nos septos e com forma oblonga, com 4
células (hialoframos) (Fig. 29 D). É o telemorfo de diversos fungos, tais como,
Coniothryium, que possui um picnídio preto, globoso e muito pequeno (Horst, 1990),
Phoma e
Phyllosticta sp.
Lepstosphaeria sp. foi descrita causando cancro do ramo em roseira levando à
morte da haste a partir do local da poda, onde o fungo penetra quando o tecido é exposto
pelo ferimento (UFRGS, 2007).
Espécime examinado: Em folhas de Heliconia red opal. Rancho Paraná. Brazlândia DF,
05. Dez. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa.
78
Figura 29. Estruturas de Leptosphaeria sp. em folhas de Heliconia red opal. A e
B- Ascoma peritecióide, ostiolado. C - Ascos cilíndricos, alongados. D -
A
scóporos escuros e septados constritos nos septos e com forma oblonga.
Barras: C- 15 µm. D- 20 µm. E- 15 µm F- 5 µm.
79
23- Nigrospora khushia oryzae Hudson, 1963, Trans. Br. Mycol. Soc., 46: 355-360
Observou-se manchas que expandiram, tornando-se necróticas, de coloração
parda, com halo delimitando a área atacada, sem lesões, porém com escurecimento no
local (Fig. 30 A). O gênero foi encontrado associado à outros fungos na mesma lesão,
favorecendo um complexo de patógenos nas folhas de Heliconia bihai.
Atualmente o gênero Nigrospora (Zimmerm.) abriga aproximadamente quinze
espécies que se diferenciam basicamente pelo tamanho do conídio, sendo a espécie tipo
Nigrospora panici (Zimm). A maioria das espécies possui hábito saprofítico, mas há
relatos do fungo causando doença na família Bromeliaceae (Tomé, 2005) relatou
Nigrospora sphaerica causando doença em folhas de Neoregelia van durme e
Neoregelia sp.
Observaram-se colônias inicialmente claras com pequenos conídios brilhantes
(Fig. 30 B e C). Posteriormente, as colônias foram escurecendo, após a intensa
esporulação do fungo. Conidióforos marrons, lisos, ligeiramente flexuosos, terminais
(Fig. 30 D). Célula conidiogênica, poliblástica (Fig. 30 E). Conídios 12,3 – 14,2 µm de
diâmetro, solitários, acrógenos, simples, esféricos, pretos, brilhantes, lisos e asseptados
(Fig. 30 F). De acordo com as características examinadas, no presente trabalho, tratou-
se, portanto, de Nigrospora khushia oryzae, segundo Ellis (1971).
A espécie em questão foi comparada à espécie mais próxima Nigrospora
sphaerica (Sacc.), diferenciada pela dimensão dos conídios, que possuem 14 – 20 µm
de diâmetro, e o fungo estudado possui 12,3 – 14,2 µm de diâmetro, o que permitiu ser
classificado na espécie Nigrospora khuskia oryzae, a qual possui conídios que variam
de 10 – 16 µm de diâmetro.
Este é o primeiro registro de uma espécie do gênero Nigrospora em Heliconia.
Espécime examinado: Em folhas vivas de Heliconia bihai. Empresa Trópica, Planaltina
DF; 23. Mai. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta: 19, UB (coleção
micológica), 20258.
80
Figura 30: Nigrospora khushia oryzae associada às manchas em folhas
de Heliconia bihai. A- Manchas foliares necróticas de coloração parda. B
e C- Colônia clara, de aspecto cotonosa. D – Conidióforos flexuosos,
lisos, terminais. FIG. E- Conídios solitários, acrógenos, simples,
esféricos, pretos. F- Célula conídiogênica poliblástica.
Barras: D- 30µm. E- 20 µm. F- 15 µm
81
24- Periconia cookei Mason & M. B. Ellis, 1953, Mycol. Pap., 56: 72-77
Periconia cookei foi encontrada causando manchas em folhas de Zingiber
spectabile, Alpinia purpurata, Heliconia rostrata, Heliconia Golden Torch, Heliconia
pseudoaemygdiana (amarela), com expansões de manchas, circundada por halo marrom
e com esporulação abundante do fungo e fácil visualização em lupa (Fig. 31 A).
Os sinais do patógenos foram observados em folhas, em forma de pequenas
“árvores” em tufos de coloração escura sobre as folhas.
O gênero Periconia é vasto com aproximadamente sessenta e cinco espécies e
catorze variedades, com características bem diferenciadas uma das outras. A presença
de uma cabeça bem definida, a verrugosidade do conídio e seu diâmetro 5-6 µm
constituem-se em importantes características para identificação dessa espécie e a sua
inclusão no táxon descrito por Ellis (1971) e Morgan-Jones (1974). Conidióforos retos,
não flexuosos e solitários (Fig. 31 B e C). Conídios esféricos, marrons, verrugosos, com
10,45 – 15,2 µm (Fig. 31 D).
O fungo descrito é muito comum e amplamente distribuído na natureza, muitas
vezes saprófita, porém a espécie Periconia manihoticola Vicens foi relatada como
patógeno em seringueira (Hevea sp.) causando manchas concêntricas em folíolos
maduros (Ferreira, 1989; Gasporotto, 1990).
Espécime examinado 1: Heliconia Golden Torch, Empresa Trópica, Planaltina DF, 13.
Jul. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, números de coletas: 27 UB (coleção
micológica), 20428.
Espécime examinado 2: Em folhas de Heliconia rostrata Ruiz e Pav., Empresa Trópica,
Planaltina DF, 13. Jul. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, números de coletas: 28 UB
(coleção micológica), 20429.
Espécime examinado 3: Em folhas de Heliconia pseudoaemygdiana Emygdio & E.
Santos. Empresa Trópica, Planaltina DF, 13. Jul. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa,
números de coletas: 32, UB (coleção micológica), 20433.
Espécime examinado 4: Em folhas de Zingiber spectabile Griff, Empresa Trópica,
Planaltina DF, 13. Jul. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, números de coletas: 35 UB
(coleção micológica), 20436.
Espécime examinado 5: Em folhas de Alpinia purpurata (Vieill) K. Shum, Empresa
Trópica, Planaltina DF, 13. Jul. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, números de coletas:
36 UB (coleção micológica), 20437.
82
Figura 31: Periconia cookei associado às manchas em Zingiber spectabile. A-
Mancha pequena, esbranquiçada, circundada por halo marrom. B e C-
Conidióforos lisos, solitários reproduzindo conídios em cachos. D- Conídios
globosos, escuros, levemente equinulados.
Barras: B- 30µm. C- 10 µm. D- 15 µm
83
25- Pestalotiopsis sp. Steyaert, Bull. Jard. Bot. État 19: 300 (1949)
Pestalotiopsis sp. foi encontrado associado às lesões foliares que se iniciaram
como manchas pretas que se estenderam formando lesões maiores, posteriormente
podendo se tornar branca com bordos pretos (Fig. 32 A, B e C).
Conidiomas picnidióides, dispersos ou agregados, deiscência irregular (Fig. 33
A e B). Conidióforos hialinos, reduzidos à células conidiogências. Conídios fusiformes,
retos, com 3 septos; célula basal hialina, com 1 apêndice endógeno, celular e simples;
células medianas cilíndricas, todas com mesma coloração, lisas; célula apical cônica,
hialina, com 2 - 3 apêndices simples (Fig. 33 C e D). Em meio de cultura BDA foi
observado micélio branco com formação de conidiomas de coloração preta, aspecto de
gotas úmidas (Fig. 32 D, E e F).
Espécime examinado 1: Em folhas vivas de Heliconia rostrata Ruiz e Pav. Empresa
Trópica, Planaltina DF. 03. Mai. 2006, leg. Caroline Rabelo Costa, números de coleta:
04 UB (coleção micológica) 20241.
Espécime examinado 2: Em folhas vivas de Heliconia psittacorum L. F, Empresa
Trópica, Planaltina DF. 03. Mai. 2006, leg. Caroline Rabelo Costa, números de coleta:
09 UB (coleção micológica) 20246.
Espécime examinado 3: Em folhas vivas de Heliconia Golden Torch,, Empresa Trópica,
Planaltina DF. 03. Mai. 2006, leg. Caroline Rabelo Costa, números de coleta: 10 UB
(coleção micológica) 20247.
Espécime examinado 4: Em folhas vivas de Etlingera elatior, var. vermelho (Jack) R.
M. Sn. Empresa Trópica, Planaltina DF. 03. Mai. 2006, leg. Caroline Rabelo Costa,
números de coleta: 11 UB (coleção micológica), 20248.
Espécime examinado 5: Em folhas vivas de Alpinia purpurata (Vieill) K. Schum
Empresa Trópica, Planaltina DF. 03. Mai. 2006, leg. Caroline Rabelo Costa, números de
coleta: 13 UB (coleção micológica), 20250.
84
Figura 32: Sintoma e colônia de Pestalotiopsis sp. A, B e C- Lesões foliares
que se iniciaram como manchas pretas e progrediram para coalescimento da
área afetada em Etlingera elatior, Heliconia psittacorum e . D, E- Colônia
branca com pontuações pretas. F - Detalhe da colônia; estruturas redondas
pretas de aspecto encharcado.
85
Figura 33: Pestalotiopsis sp. em folhas de Heliconia rostrata, Heliconia
psittacorum, Heliconia Golden Torch, Etlingera elatior, var. vermelho, Alpinia
purpurata.. A- Conidioma liberando conídios. B- Conidioma picnidióide ainda
sem ser rompido. C e D- Conídios fusiformes, retos, com 2 apêndices.
Barras: C- 20µm. D- 5 µm.
26- Phoma leveillei Boerema & Bollen nom. nov., Persoonia 8: 115 (1975).
A espécie Phoma leveillei foi encontrada associada às lesões causadas por
Septoria sp. em plantas de Heliconia angusta laranja.
Foi observado no fungo, micélio aéreo em zonas concêntricas. Picnídio em
abundância e setoso. Conídios medindo 3 x 1.5 µm, cilíndricos, bigutulados, curvados.
Espécies de Pyrenochaeta estão descritas com conidiogênese simples do tipo doliforme
ou ampuliforme, confirmando eventualmente muitas sinonímias entre os gêneros.
86
Sutton, (1980), descreveu o fungo como Phoma leveillei, de acordo com as
características morfológicas apresentadas.
Phoma e Pyrenochaeta criado por Notaris em 1894 são dois gêneros similares,
ambos possuindo picnídio escuro com papilas e um único ostíolo, porém no segundo
gênero o picnídio possui setas septadas.
Phoma leveillei foi descrito em crisântemo, causando doença, porém em
Heliconia angusta laranja não foi relatado, o fungo pode crescer na planta
saprofiticamente, como invasor secundário, talvez se alimentando de fungos saprofíticos
ou de patógenos de tecidos doentes (Sutton, 1980; Sullivan & White, 2000; White &
Morgan-Jones, 1987).
Espécime examinado: Em folhas vivas de Heliconia angusta laranja Vell. Rancho
Paraná, DF. 10. Out. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta 43, UB
(coleção micológica) 20444.
87
Figura 34: Phoma leveillei associada às lesões em Heliconia angusta laranja. A-
Lesões pequenas, de coloração marrom. B e C- Picnídio setoso, com parede fina,
textura angularis. FIG. D- Ostíolo evidente no picnídio. E- Conídios cilíndricos,
bigutulados e curvados.
Barras: B- 10µm. C- 10 µm. E- 10 µm
88
27- Phoma tropica Schneider & Boerema, Phytopath. Z. 83: 361 (1975)
Os sintomas foram encontrados associados às manchas necróticas, com halo
preto, redondas ou levemente ovais, que com a evolução do quadro da doença se
tornaram necrosadas por toda folha (Fig. 35 A).
Phoma tropica foi encontrado associada às manchas encontradas em Heliconia
psittacorum. As características observadas foram: Conidioma não setoso, parade
pseudoparenquimatoso (Fig. 35 B e C). Seus conídios possuem 3-4x 1.5 µm, de
dimensão, retos, elipsóides, indistintamente gutulados, unicelular (Fig. 35 D). De
acordo com as características acima esse fungo, se enquadrou melhor no gênero Phoma
tropica, segundo Sutton (1980).
Esta espécie de Phoma já foi descrita em Heliconia sp. (Sutton, 1980). Este é
possivelmente o primeiro relato deste gênero no Distrito Federal.
Espécime examinado: Em folhas vivas de Heliconia psittacorum L. F. Rancho Paraná,
Brazlândia DF. 10. Out. 2006, leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta 45, UB
(coleção micológica) 20446.
89
Figura 35: Sintoma e características de Phoma tropica em folhas Heliconia
psittacorum. A- Folha necrosada, em sintoma avançado da doença. B e C-
Conidioma livres de setas, parede fina. D Conídios pequenos, unicelulares.
Barras: B- 20µm. D- 20 µm.
90
28- Phoma sp. Sacc. nom. cons., Michelia 2:4 (1880)
O fungo foi encontrado associado às manchas arredondadas esparsas de
coloração escura internamente nas folhas.
O micélio do gênero Phoma é imerso, ramificado, septado, hialino ou marrom
claro. Conidioma picnidial, imerso ou semi-imerso, às vezes torna-se irrompente,
unilocular, marrom bronze, separado ou agregado, ocasionalmente confluente, sem setas
e sem rostro. Ostíolos marrom-claros, de textura angularis, não papilado. Célula
conidiogênica enteroblástica, fialídica, integrada ou discreta, ampuliforme a doliforme,
lisa hialina, lisa, abertura de colarete e parece do espaçamento periclinal bem marcante.
Conídios hialinos, asseptados, ou ocasionalmente com um septo, frequentemente
gutulado, elipsóide, cilíndrico, fusiforme, piriforme ou globoso medindo de 4-5 x 1-2
µm, pequenos. A descrição para o gênero encontrado é, segundo Sutton (1980):
Conidioma imerso no tecido da hospedeira; Ostíolos marrom-escuros, conídios
pequenos, hialinos, de fusiformes, a quase globosos. A espécie encontrada não possui
nenhuma característica que se enquadrou em alguma espécie de Phoma de acordo com
chave de identificação de Sutton (1980).
Espécime examinado: Em folhas vivas de Zingiber spectabile Griff. Rancho Paraná,
Brazlândia DF. 10. Out. 2006, leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta 46, UB
(coleção micológica) 20447.
Figura 36: Sinais e Sintomas de Phoma sp. em Zingiber spectabile.
FIG. A e B - Conidioma preto e mancha acinzentada.
91
Figura 37: Estruturas de Phoma sp. em folhas de Zingiber spectabile. A- Conidioma
picnidial, imerso. B- Conídio sendo liberados pelo picnídio. C- Ostíolo marrom escuro.
D- Conídios hialinos, pequenos e unicelulares.
Barras: E- 20µm. F- 20 µm.
29- Septoria sp. Sacc. Syll. fung. (Abellini) 3: 474 (1884)
Os sintomas observados em Heliconia angusta foram lesões com halo
arredondado e com pontos ao centro, de coloração acinzentada com aspecto de ‘olho”,
onde foi detectado em Septoria sp. Ocorreu em associação com Phoma leveillei (Fig. 38
A e B).
No fungo foi observado um picnídio obscuro, globoso, ostiolado, irrompente,
coloração marrom (Fig. 38 C e D),
conídios hialinos, estreitos, alongados a filiformes,
com vários septos (Fig. 38 E, F e G). Septoria sp. é parasita de plantas, causando
92
sintomas típicos como pontos com centro de coloração acinzentados distintos,
espalhados nas folhas. Possui aproximadamente mil espécies. Relatado em Heliconia
sp. de acordo com SBML (2006).
Espécime examinado: Em folhas vivas de Heliconia angusta laranja Vell. Rancho
Paraná, Brazlândia DF. 10. Out. 2006, Leg. Caroline Rabelo Costa, número de coleta
43, UB
coleção micológica 20444.
Figura 38: Septoria sp. em folhas de Heliconia angusta laranja. A e B-
Manchas esbranquiçadas com centro acinzentado, com aspecto de
“olho”, mas associadas à manchas causadas por Phoma leveillei. C e D-
Picnídio globoso, marrom. E, F e G. Conídios hialinos, multiseptados,
filiformes.
93
6 Bibliografia
AKI, A. Caminhos para o mercado de flores em Pernambuco. Floricultura em
Pernambuco. Ed. SEBRAE/PE, série agronegócio – 2002.
ALEXANDRE, M. A. V.; DUARTE, L.M.L.; RIVAS, E. B., COUTINHO, L. N.;
ALMEIDA, I. M. G. & FIGUEIREDO, M. B. Plantas Ornamentais - guia de
sintomas causados por bactérias, fungos e vírus, 24 p. 2001.
ALMEIDA, I. M. G.; MALAVOLTA JUNIOR, V. A.; IMENES, S. L. Problemas
fitossanitários em plantas ornamentais. Instituto Biológico de Campinas, 1997.
ALONSO, A. A.; Moraes-Dallaqua, M. A.; Menezes, N.L. Endoderme com
atividade meristemática em raiz de Canna edulis Kerr-Gawler (Cannaceae) Acta
Bot. Bras. vol.18 n.3 São Paulo July/Sept. 2004.
ANDERSSON, I. An evolutionary scenario for the genus HELICONIA. In: HOLM-
NIELSEN, L.B. NIELSEN, I.C.,BALSLEV, H. (Eds). Tropical forests; botanical
dynamics, speciation and diversity. London: Academic Press Limited.p173-184,
1989. In: CASTRO, C.E.F. & GRAZIANO, T.T. Espécies do gênero Heliconia
(Heliconiaceae) no Brasil. Revista Brasileira de Horticultura Ornamental,
Campinas, v.3 n.2 15-28 p. 1997.
APTA. Cadeia de Produção de Flores e Plantas Ornamentais. Disponível em:
http://www.apta.sp.gov.br/HorticulturadeMesa/cadeias%20horticultura%20de%de
%20mesa.htm. Consultado no dia 10 de dez. 2006.
ASSIS, S. M. P, ROSA, R. C. T. & MARIANO, R. L. R. Levantamento de doenças
foliares em Heliconia spp. no estado de Pernambuco, Brasil. Fitopatologia
Brasileira, Vol. 25 (Suplemento) 319, 2000.
94
ASSIS, S.M.P.; MARIANO, R.L.R.; JUNIOR, M.G.C.G.; MENEZES, R. & Da
ROSA, R.C.T. Doenças e Pragas das Helicônias. Diseases and Pest Of Heliconias.
Recife-UFRPE, PE. 102 p. 2002.
ASCOM, T. Brasiliense gasta R$ milhões mensais com plantas e flores, estimulando
investimentos. Jornal do Brasil (publicado no dia 05-08-2003.) Disponível em:
http://www.df. Sebrae.com.br/preview. Consultado no dia 10 de dez. 2006.
BENCHIMOL, R. L., PEREIRA, E.C.S., & Rogrigues, D. F. Queima ds folhas de
Heliconia bihai. Cv. Bobster Clow. Fitopatologia Brasileira, Vol. 30 (Suplemento)
555, 2005.
BOEREMA, D. H & BOLLEN, C. J. Conigiogenesis and conidial septation as
differentiating criteria between Phoma and Ascochyta. Persoonia 8:111-114. 1975.
BUCHANAN, P.K. A reappraisal of Ascochyta and Scochytella (Coelomycetes).
Mycol. Paper. 156:1-83. 1987.
BOOTH, C. The genus Fusarium. CMI, Kew. 237.1971.
CANNON, P. Colletotrichum. In: International Course on the Identification of
Fungi of Agricultural and Environmental Significance. CABI Bioscience, 1998.
CASTRO. C. E.F. Helicônias como flores de corte: adequação de espécies e
tecnologia pós-colheita. Tese de doutorado. Escola Superior de Agricultura Luiz de
Queiroz. Piracicaba, 19 p. 1993.
95
CASTRO, C.E.F. & GRAZIANO, T.T. Espécies do gênero Heliconia
(Heliconiaceae) no Brasil. Revista Brasileira de Horticultura Ornamental,
Campinas, v.3 n.2 15-28 p. 1997.
CASTRO, N. R. LARANJEIRA, D. & COELHO, R. S. B. Ocorrência da murcha
de Fusário em Heliconia em Pernambuco e avaliação de métodos de inoculação.
Fitopatologia Brasileira, Vol. 30 (Suplemento) 480, 2005.
COUTINHHO, L.N. Problemas de Introdução de doenças no país através da
aquisição de plantas ornamentais exótica. Biológico, São Paulo, v.63. n1/2. P.41-
44, 2001.
CRONQUIST, A. An integrated system of classification of flowering plants.
Columbia university Press, New York, 1981.
ELLIS M. B. Dematiaceous Hyphomycetes. Commonwealth Myeologieal Institute.
Kew. England. 608 p. 1971.
DANIELS, G.S. & STILES, F.G. The heliconia tax of Costa Rica. Keys &
Descriptions. Brenesia 15(1), 150p, 1979. In: CASTRO, C.E.F. & GRAZIANO,
T.T. Espécies do gênero Heliconia (Heliconiaceae) no Brasil. Revista Brasileira de
Horticultura Ornamental, Campinas, v.3 n.2 15-28 p. 1997.
DAHLGREN, R.M.T.; Clifford, H.T. & Yeo, P.F. The families of the
monocotyledons: Structure, evolution and taxonomy. Springer-Verlag, Berlin.
1985.
DESPOULIAN, B. SEIGLE-MURANDI, F. STEIMAN, R.; DE GIORGIS, L.
Fungal flora of corn white draff. Cryptogamie et Micologie, Paris, v.11, 1990 In:
ASSIS, S.M.P.; MARIANO, R.L.R.; JUNIOR, M.G.C.G.; MENEZES, R. &
96
ROSA, R.C.T. Doenças e Pragas das Helicônias. Diseases and Pest Of Heliconias.
Recife-UFRPE, PE. 102 p. 2002.
DE VRIES, G. A. Contribution to the knowlwdge of the genus Cladosporium Link.
ex. Fr. Dissertacion, University of Utrecht, Utrecht, 1952. In: ASSIS, S.M.P.;
MARIANO, R.L.R.; JUNIOR, M.G.C.G.; MENEZES, R. & ROSA, R.C.T.
Doenças e Pragas das Helicônias. Diseases and Pest Of Heliconias. Recife-UFRPE,
PE. 102 p. 2002.
FERREIRA, F. A. Patologia Florestal; Principais doenças florestais no Brasil.
Viçosa, Sociedade de Investigações florestais, 507 p. 1989.
FERREIRA, L.D.B. Estudo da adubação com NPK nos parâmentros de
crescimento, produtividade de inflorescências e estado nutricional de Heliconia sp.
em solo de cerrado. 73 p. 2003. Dissertação (mestrado em Ciências Agrárias).
UNB, Universidade de Brasília. DF
FLORES QUE PREMIAM - Edição SEBRAE- Agronegócios e Territórios
específicos. Brasília-DF. 2007.
GASPAROTTO, L. FERREIRA, F. A.; LIMA, M.I.P.M. PEREIRA, J.C.R. &
SANTOS, A. F. Enfermidade da seringueira no Brasil. Manaus: EMBRAPA -
CPAA, (Circular técnica, 3) 169 p. 1990.
GAZETA MERCANTIL. Exportação de flores cresce 30 % até agosto (publicado
em 29-09/2003). Disponível em: http://www.famasul.com.br. Consultado no dia 10
de dez. 2006.
HANLIN, R. T. Index to genera and species of ascomycetes described by A. P.
Viegas. Mycotaxon, v. 43, 207 - 230 p. 1992.
97
HORST, R.K. Westcott’s Plant Disease Handbook. 5
a
edição, Van Nostrand
Reinhold International Company Limited, London, England. 953 p. 1990.
IBRAFLOR. Release Set/2003: Saldo Da Balança Comercial Da Floricultura
Supera Us$ 10 Milhões. Disponível em: http://www.ibraflor.com.br. Consultado no
dia 10 de dez. 2006.
JUNQUEIRA, A. H. & PEETZ, M. S. Perfil da Cadeia Produtiva de Flores e
Plantas Ornamentais do Distrito Federal. . 1ª Edição SEBRAE. Brasília-DF, 121
p. 2005.
KRESS, J. The diversity and distribution of Heliconia (Heliconiaceae) in Brazil.
Acta Bot. Bras. v.4, n.1, p.159-167.1990. In: CASTRO, C.E.F. & GRAZIANO,
T.T. Espécies do gênero Heliconia (Heliconiaceae) no Brasil. Revista Brasileira
de Horticultura Ornamental, Campinas, v.3 n.2 15-28 p. 1997.
LACERDA, J. P. Doenças Fúngicas e Bacterianas em algumas espécies de
ARACEAE. Dissertação de mestrado em Fitopatologia. Universidade de Lavras -
MG. 2006.
LINS. S.R.O. & COELHO, R.S.B. Ocorrência de doenças em plantas ornamentais
tropicais no Estado de Pernambuco. Fitopatologia Brasileira. 29: 332-335.2004.
LORENZI, H. & SOUZA, H. M. de. Plantas ornamentais no Brasil: Arbustivas,
herbáceas e trepadeiras. 3
a
edição. Nova Odessa, São Paulo: Instituto Palntarum,
1120 p. 2001.
OLIVEIRA, S. M., & COELHO, R. S. Ocorrência de Colletotrichum
gloeosporioides em Heliconia chartacea cv. Sexy Pink. Fitopatologia Brasileira,
Vol. 30 (Suplemento) 485, 2005.
98
OLIVEIRA, A. C. C. & COELHO, R. S B. Eficiência de fungicidas e Indutor de
resistência no controle da Antracnose (Colletotrichun gloeosporioides) em
Heliconia psittacorum cv. golden torch. Fitopatologia Brasileira, Vol. 27
(Suplemento) 410, 2002.
OLIVEIRA, A. C. C., COELHO, R. S B E & LINS, S. R. O. Resistência de
espécies de Helicônia a antracnose (Colletotrichun gloeosporioides).
Fitopatologia Brasileira, Vol. 27 (Suplemento) 409, 2002.
MASON, E. W. & ELLIS, M.B. British species of Periconia. M Mycological
Papers, 1953.
MORGAN-JONES, G. Fungi of Alabama. I. Dematiaceous Hyphomycetes. The
Journal of Alabama Academy of Science. 45(2): 144-155.1974.
MOTOS, J.R. A importância dos materiais de propagação na qualidade das flores
e plantas. Informativo IBRAFLOR. Campinas. 4-5 p., jan/fev/mar. 2000.
MUCHOVEJ, J. J.; MUCHOVEJ, R. M. C. & NESIO-RIBEIRO, M. L.
Taxonomia de Dechslera, Bipolaris e Exserohilum. Fitopatologia Brasileira, v. 13,
n. 3, 1988.
NOGUEIRA, E. Panorama da Floricultura Brasileira. http:
www.alemdojardim.com.br/saibatxt8.htm acessado em 20 de ago de 2005.
NAKAI, T. Notulae and Plantas Asiae Orientalis XVI. Jounal Japanese of botany.
Tokio, 17 (4): 189-203, 1941.
PITTA, G.P.B. Aspectos fitossanitários de plantas ornamentais. In: Simpósio
brasileiro de floricultura ornamental. 1995. Maringá. Simpósio... Maringá, 128-
160 p. 1999.
99
SALIGNAC, C. Flores brasileiras conquistam países da Europa e os Estados
Unidos. Panorama Rural, a Revista do Agronegócio (on line.
Consultado no dia
10 de dez. 2006. Disponível em
www.panrural.com.br/ver_noticia.asp?news_id=76.
SBML Systematic of Botany and Mycology Laboratory. Disponível em:
<http://nt.arsgring.gov>. Acesso: Dez de 2006 a Mar 2007.
SERRA, I. M.R.S & COELHO, R. S.B. Mancha de Pestalotiopsis em Helicônia:
Caracterização da doença e Potenciais de Resistência. Fitopatologia brasileira
32(1), Jan-Fev 2007.
SEWAKE, K. T. & UCHIDA, J.Y. Diseases of Heliconia in Hawaii. Research
extension series. Honolulu: Institute of Tropical Agriculture and human
Resoucers, 18p. 1995.
SIVANESAN, A. Graminicolous species of Bipolaris, Curvularia, Drechslera,
Exserohilum and their teleomorphs. Wallingford. 1987. 261p. (Cab International
Mycological Institute Papers 158).
SMORIGO, J.N. Análise da eficiência dos sistemas de distribuição de flores e
plantas ornamentais no Estado de São Paulo. 132 p. 2000. Dissertação (mestrado
em economia aplicada). Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”:
Universidade de São Paulo, Piracicaba.
SULLIVAN, R. F & WHITE, J. F. JR. Mycoparasite of Powdery Mildew.
Applied and Environmental Microbioloy, 2000.
SUTTON, B.C. The Coelomycetes: Fungi Imperfect with Pycnidia Acervuli and
Stromata. Commonwealth Mycological Institute, London, 696 p. 1980.
TAVARES, G. M. & SOUZA. P. E. Efeito de fungicidas no controle in vitro de
Colletotrichum gloeosperioides, agente etiológico da Antracnose do Mamoeiro
100
(CARICA PAPAYA L.) Ciências Agrotécnicas, Lavras, v.29, n.1, p-52-59, jan/fev.
2005.
TOMÉ. T. A. Estudo de doenças fúngicas e seus agentes etiológicos em especies
de Plantas Ornamentais da família Bromeliaceae cultivadas do Distrito Federal.
Dissertação de mestrado em Fitopatologia- Universidade Brasília- Brasília DF.
2005.
TOMLINSON, P.B. An anatomical to the classification of the Musaceae. Journal
Linnean Society, London, 55 (364): 779-809, 1959.
TOMLINSON, P.B. Phylogeny of the Scitamineae morphological and anatomical
considerations. Evolution, Boulder, 16:192-213, 1962.
WATSON, D.P. & SMITH, R.R. Ornamental Heliconias Cooperative Extension
Service. University of Hawaii, Honolulu, circular 482. 12 p. 1979.
WHITE, J. F. JR. AND G. MORGAN-JONES. Studies in the genus Phoma.
Mycotaxon. 1987.
WOOD, T. ORNAMENTAL ZINGIBERACAE. Revista Brasileira de
Horticultura Ornamental, Campinas, v.1, n.1, 12- 13 p. 1995.
www.geocities.com/RainForest/Vines/ Musaceae acessado em 20 de jan de
2007.
www.floresnaweb.com/gengibre.html Zingiberaceae acessado em 20 de jan de
2007.
www.scielo.br/pdf/rbs/v27n1/25183.pdf Strelitziaceae acessado em 20 de jan de
2007.
www.enq.ufsc.br/labs/probio/disc_eng_bioq/trabalhos_pos2003/const_microorg/
fungos.htm acessado em 20 de jan de 2007.
www.ufrgs.br/agrofitossan/galeria/tipos_agentes.asp?id_agente=4 acessado em
15 de fev. de 2007.
101
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