( PDF ) Avaliação da citotoxicidade, genotoxicidade e dos efeitos protetores do extrato de Anacardium occidentale L. in vitro

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GUSTAVO RAFAEL MAZZARON BARCELOS

AVALIAÇÃO DA CITOTOXICIDADE,

GENOTOXICIDADE E DOS EFEITOS PROTETORES

DO EXTRATO DE Anacardium occidentale L. IN VITRO

Londrina

Universidade Estadual de Londrina

2007

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Universidade Estadual de Londrina

Instituto A

ronômico do Paraná

GUSTAVO RAFAEL MAZZARON BARCELOS

AVALIAÇÃO DA CITOTOXICIDADE,

GENOTOXICIDADE E DOS EFEITOS PROTETORES

DO EXTRATO DE Anacardium occidentale L. IN VITRO

Londrina

Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária

2007

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GUSTAVO RAFAEL MAZZARON BARCELOS

AVALIAÇÃO DA CITOTOXICIDADE,

GENOTOXICIDADE E DOS EFEITOS PROTETORES DO

EXTRATO DE Anacardium occidentale L. IN VITRO

Dissertação apresentada ao programa de

Pós–Graduação em Genética e Biologia

Molecular da Universidade Estadual de

Londrina como requisito parcial para a

obtenção do título de Mestre.

Orientadora: Profa. Dra. Ilce Mara de Syllos Cólus

Londrina

2007

GUSTAVO RAFAEL MAZZARON BARCELOS

AVALIAÇÃO DA CITOTOXICIDADE, GENOTOXICIDADE E DOS EFEITOS

PROTETORES DO EXTRATO DE Anacardium occidentale L. IN VITRO

Dissertação apresentada ao programa de Pós–

Graduação em Genética e Biologia Molecular da

Universidade Estadual de Londrina como

requisito parcial para a obtenção do título de

Mestre.

COMISSÃO EXAMINADORA

Profa. Dra. Ilce Mara de Syllos Cólus

Departamento de Biologia Geral

CCB-UEL

Profa. Dra. Denise Crispim Tavares

Universidade de Franca - SP

Profa. Dra. Berenice Quinzani Jordão

Departamento de Biologia Geral

CCB-UEL

Londrina, 16 de fevereiro de 2007.

APOIO FINANCEIRO

Universidade Estadual de Londrina

Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES)

Dedico este trabalho,

à minha mãe, Shirlei

“Podemos resistir a uma invasão de exércitos,

mas não a uma invasão de idéias” (Victor Hugo)

Agradecimentos

A Universidade Estadual de Londrina, ao Centro de Ciências Biológicas, ao

Departamento de Biologia Geral e ao Programa de Pós-Graduação em Genética e

Biologia Molecular;

A minha mãe, pelo apoio e sacrifício, os quais tornaram possível a realização

deste trabalho;

A minha orientadora e segunda mãe em Londrina, Ilce, pela orientação,

mostrando sempre o caminho correto, por me ensinar a “ordem lógica dos

parágrafos”, pela amizade, compreensão nos momentos difíceis e também pela

paciência pelos meus inúmeros esquecimentos;

A Karine, pela companhia, compreensão e ajuda nestes 2 anos de mestrado;

Aos meus irmãos Giuliano e Daniela, pelo carinho e apoio;

A profa. Dra. Maria Aparecida M. Maciel, pelo fornecimento do extrato do caju

utilizado neste trabalho;

A banca examinadora, pela contribuição na melhoria deste trabalho;

Ao meus amigos de laboratório: Zé, pelo enorme companheirismo em tudo, ajuda

com experimentos, artigos e pela amizade demonstrada nestes 2 anos; Ju, pela

amizade, paciência, ajuda nos experimentos e na correção do português; Mari,

pela amizade, pelos inúmeros conselhos e pragas, pela ajuda no slide da aula do

doutorado e pelos jantares; Iara, pela amizade, ajuda no laboratório e

companheira de “ataque”; Hellen, pela amizade, pela dança de salão e ajuda no

laboratório; Roberta pela explicação do artigo do meu exame de doutorado e pela

ajuda no laboratório. Ao Fernando, pela amizade e pelo certificado TRF. Aos

novas amigas de laboratório, Priscila, Priscilla e Natália pela ajuda e pelos

momentos agradáveis na mutagênese;

Ao Mateus e a Karina, pela grande ajuda nos trabalhos de aberrações

cromossômicas e micronúcleo;

A Fernanda, pela grande ajuda no laboratório, amizade e pelos muitos momentos

de descontração;

A Luciana, por me ensinar a técnica de sobrevivência celular;

Ao Marco e a Ana Carol, pela amizade, companheirismo, ajuda extra-laboratório

e traduções;

A Dona Cida e ao Sr. João, pela ajuda na moradia no final do mestrado e pelos

almoços de domingos;

Ao Dário e Melissa, pela ajuda com o material;

A Sueli, pelo cafezinho, bom humor e ajuda nestes dois anos;

A CAPES e a UEL pelo auxílio financeiro;

A todos que de alguma maneira contribuíram para que este trabalho tenha sido

realizado.

Muito obrigado!

BARCELOS, GUSTAVO RAFAEL MAZZARON. Avaliação da citotoxicidade,

genotoxicidade e dos efeitos protetores do extrato de Anacardium occidentale L. in

vitro. 2007. Dissertação (Mestrado em Genética e Biologia Molecular) – Universidade

Estadual de Londrina, Londrina - PR.

RESUMO

O uso de espécies vegetais para fins de tratamento e cura de doenças remonta o início da

civilização, desde o momento em que o homem começou um longo percurso de

manuseio, adaptação e modificação destes recursos naturais para seu próprio benefício.

Dentre as plantas que continuam a ser uma grande fonte de medicamentos para a

humanidade está a espécie Anacardium occidentale L., popularmente conhecida como

cajueiro, o qual possui indicações terapêuticas variadas, tais como: propriedade

cicatrizante, antihipertensivo, combate a distúrbios gástricos, controle do diabetes,

combate a asmas e bronquites. Contudo, alguns estudos demonstraram atividade

mutagênica para o extrato desta planta. Em faces às atividades já descritas para o

cajueiro e com o objetivo de contribuir para um melhor esclarecimento de suas

atividades biológicas, o presente trabalho teve por objetivo avaliar in vitro os possíveis

efeitos citotóxico, genotóxico, mutagênico e protetor do extrato da casca do cajueiro,

utilizando o ensaio do cometa e o teste de aberrações cromossômicas em cultura de

células V-79. O teste de sobrevivência celular avaliou a citotoxicidade de diferentes

concentrações do extrato da casca do caju (500, 1000, 2000, 3000, 4000, 5000 e 6000

µg/mL de meio de cultura) e permitiu a escolha de três (500 µg/mL, 1000 µg/mL e 2000

µg/mL de meio de cultura), as quais não apresentaram citotoxicidade, para a realização

dos testes de genotoxicidade e mutagenicidade. Nos testes de aberrações cromossômicas

e do cometa, foram utilizados, respectivamente, como agentes indutores de danos a

doxorrubicina (DXR) e o metilmetanosulfonato (MMS) e como controle negativo, PBS.

Nas avaliações das atividades protetoras utilizando o ensaio do cometa o extrato foi

associado ao MMS em pré, pós e tratamento simultâneo e sua ação antimutagênica

quando associado à DXR foi avaliada sobre a incidência de aberrações cromossômicas

em tratamento simultâneo contínuo e nas fases G1, S e G2 do ciclo celular. Os

resultados obtidos no teste de aberrações cromossômicas revelaram que nenhuma das

três concentrações utilizadas apresentou efeito mutagênico em todos os protocolos de

tratamentos utilizados e que, no teste de antimutagenicidade, o extrato da casca do

cajueiro proporcionou efeito antimutagênico em todas as fases do ciclo celular testadas.

Na fase G1 as concentrações de 500 e 2000 µg/mL, bem como, a concentração de 1000

µg/mL na fase S também apresentaram efeito protetor. O ensaio do cometa revelou que

as duas menores concentrações utilizadas não apresentaram atividade genotóxica e a

maior mostrou genotoxicidade baixa. Todas as concentrações apresentaram atividade

protetora de danos no DNA causados pelo MMS em tratamento simultâneo e pós-

tratamento, o que sugere que tal extrato possua possivelmente uma ação bio-

antimutagênica. O fato do extrato do cajueiro não ter apresentado genotoxicidade na

maioria das concentrações e protocolos avaliados e ter protegido as células V79 contra

danos causados por agentes alquilantes (MMS) e oxidantes (DXR) fornecem maior

segurança para a utilização terapêutica do mesmo e estimula a continuidade dos estudos

visando contribuir para a compreensão dos mecanismos envolvidos em seu efeito

protetor e identificação dos compostos bioativos encontrados neste extrato.

Palavras-chave: cajueiro, citotoxicidade, aberrações cromossômicas, ensaio do cometa,

antimutagenicidade.

BARCELOS, GUSTAVO RAFAEL MAZZARON. Evaluation of citotoxicity,

genotoxicity and of the protective effects of the extratct of Anacardium occidentale

L. in vitro.. 2007. Dissertation (Master in Genetics and Molecular Biology) –

Universidade Estadual de Londrina, Londrina - PR.

ABSTRACT

The use of vegetable species in order to treat and cure diseases leads us back to the

beginning of our civilization, to the moment in which man started a long journey of

handling, adaptation and modification of these natural resources for his own benefit.

Among the plants that continue to be a great source of medicine to the humanity is the

Anacardium occidentale L., popularly known as cashew tree, which has several

therapeutical indications, such as: scarred property, antihipertensive, gastric disturbance

combat, diabetes control, asthma and bronchitis combat. However, some studies showed

mutagenic activity for this plant’s extract. In the face of activities already described for

the cashew and having as an aim to contribute for a better clarifying of its biological

activities, the present work has as a goal to evaluate in vitro the possible citotoxity,

genotoxicity, mutagenicity and protective effects of the cashew’s stem bark, using the

comet assay and the cromossomic aberration test in cell V-79. The cell survival test

evaluated the citotoxicity of different cashew’s stem bark extract concentrations (500,

1000, 2000, 3000, 4000, 5000 and 6000 µg/mL of culture agent) and allowed the choice

of three (500 µg/mL, 1000 µg/mL and 2000 µg/mL of culture agent), which did not

present citotoxity for the fulfillment of the genotoxicity and mutagenicity tests. In the

cromossomic aberration and comet assays the doxorrubicine (DXR) and methyl

metanosulfonate (MMS) were respectively used as damage inductor agents and, as

negative control, PBS. In the protection activities using the comet assay, the extract was

associated to the MMS in pre, post and simultaneous treatment and its antimutagenic

action, when associated to DXR, was evaluated over the cromossomic aberrations

incidence in simultaneous continuous treatments and in the phases G1, S and G2 of the

cell cycle. The results obtained in the cromossomic aberration test revealed that none of

the three concentrations that were used has showed mutagenic effect in all the treatment

protocols used and that in the antimutagenicity test, the cashew’s stem bark provided

antimutagenic effect in all phases of the cell cycles tested. In the G1 phase, the 500 and

2000 µg/mL concentrations as well as the 1000 µg/mL concentration in the S phase also

presented protective effect. The comet assay revealed that the two minor concentrations

used did not present genotoxic activity and that the major one showed low genotoxicity.

All concentrations presented damage protection activity in the DNA caused by the

MMS in simultaneous treatment and post-treatment, which suggests that such extract

possibly has a bio-antimutagenic action. The fact that the cashew’s stem bark extract did

not show genotoxicidade in the most of concentrations and protocols assessed and it has

protected the V79 cells against damages caused by alquilant (MMS) and oxidant (DXR)

agents gives us more security in its therapeutical usage and stimulates the continuity of

the studies aiming to contribute to the understanding of the mechanism involved in its

protective effect and identification of the bioactive compounds found in this extract.

Keywords: cashew, citotoxity, chromossomic aberration, comet assay,

antimutagenicity.

SUMÁRIO

INTRODUÇÃO......................................................................................12

1.1 MUTAGÊNESE E ANTIMUTAGÊNESE................................12

1.2 Anacardium occidentale L. ..........................................................15

1.3 SISTEMA DE CULTURA DE CÉLULAS DE MAMÍFERO IN

VITRO............................................................................................18

1.4 ENSAIOS IN VITRO ...................................................................20

1.4.1 TESTE DO COMETA ..................................................................................20

1.4.2 ABERRAÇÕES CROMOSSÔMICAS........................................................23

REFERÊNCIAS.....................................................................................26

2. OBJETIVO...................................................................................31

3. ARTIGO 1 ....................................................................................32

4. ARTIGO 2 ....................................................................................54

5. CONCLUSÕES............................................................................69

REFERÊNCIAS GERAIS.....................................................................71

INTRODUÇÃO

1.1 MUTAGÊNESE E ANTIMUTAGÊNESE

A informação genética de todos os organismos vivos está estocada em grandes

macromoléculas, os ácidos nucléicos chamadas de DNA, especificada pela seqüência de bases

nitrogenadas (SNUSTAD & SIMMONS, 2001). Esta informação genética tem de ser

transmitida fielmente de célula a célula durantes os diversos estágios de desenvolvimento do

indivíduo (BROWN, 1999).

Apesar do “repasse” de informação através da replicação do material genético ser feito

de forma precisa, ele está sujeito a erros, ou seja, eventualmente ocorrem mutações,

produzindo variabilidade genética, que fornece a matéria prima para a evolução (SNUSTAD

& SIMMONS, 2001; BURNS & BOTTINO, 1991).

Mutações são modificações súbitas e hereditárias no conjunto gênico de um

organismo que não são explicáveis pela recombinação da variabilidade genética pré-existente

(ZAHA, 1996). Danos ao DNA podem ser decorrentes de processos celulares normais ou da

exposição do organismo a agentes químicos, físicos ou biológicos. As manifestações das

mutações dependem do tipo celular atingido, ou seja, se é de natureza somática ou

germinativa. Quando o dano ocorre em células somáticas, pode gerar neoplasias, morte

celular, má formação e disfunção tecidual e abortos. Já em células germinativas, os danos no

material genético são transmissíveis, causando desordens genéticas, baixa fertilidade e

síndromes fetais (RABELLO-GAY, 1991).

Agentes mutagênicos são definidos como causadores de danos no DNA resultando em

mutações de ponto, deleções e inserções, recombinações, rearranjos, bem como outros tipos

de alterações cromossômicas (SUGIMURA, 2000). Dentre os inúmeros agentes mutagênicos

conhecidos, destacam-se os físicos, como a radiação ionizante; os endógenos, como os

radicais livres e os biológicos, como as infecções virais e bacterianas. Os agentes mutagênicos

podem estar presentes nos alimentos, medicamentos ou no ambiente em que o homem pode se

expor ocupacional ou acidentalmente, como por exemplo, as radiações ionizantes e não

ionizantes.

Os danos no material genético causados por esses agentes mutagênicos tendem a ser

reparados por enzimas de reparo, mas caso a célula se divida antes que o reparo ocorra, este

dano pode levar ao aparecimento de uma alteração permanente no DNA, que é dependente da

quantidade e tipo do agente mutagênico. Para o surgimento de um tumor, esta alteração deve

ocorrer em determinadas regiões de genes que estimulam (proto-oncogenes) e/ou inibam

(genes supressores tumorais) a proliferação celular, levando, assim, ao ganho ou perda de

função destes genes. Essas alterações, invariavelmente, fazem com que a célula afetada tenha

maior chance de adquirir novas alterações. Logo, os danos fixados no DNA além de serem

irreversíveis, são também cumulativos, e após um determinado número de alterações nesses

genes, que varia entre 5 a 7, a célula torna-se uma célula neoplásica (PINTO &

FELZENSZWALB, 2003). Portanto, entre a exposição a agentes mutagênicos e o início da

carcinogênese, existe uma tênue linha; logo, ao ultrapassar esta linha, estes agentes

mutagênicos passam a ser carcinogênicos, sendo relevantes os mais variados estudos sobre o

processo de mutagênese e carcinogênese (SUGIMURA, 2000).

Paralelamente, vários pesquisadores têm relatado os mecanismos de antimutagênese e

anticarcinogênese. Segundo Kada et al. (1982), os agentes antimutagênicos pertencem a duas

classes: desmutagênicos e bio-antimutagênicos. Agentes desmutagênicos são compostos

capazes de inativar química, física ou enzimaticamente um agente mutagênico. As inativações

química e física ocorrem por ligação direta com o agente mutagênico, impedindo sua ativação

por seqüestro ou adsorção de agentes mutagênicos e radicais livres, impossibilitando que os

mesmos estabeleçam contato com o material genético. A inativação enzimática de um

mutágeno pode ocorrer por dois mecanismos: a inativação de enzimas de fase I da

biotransformação, como as enzimas da família P450 ou a indução de enzimas de fase II, como

a glutationa S-transferase. Já os compostos bio-antimutagênicos, podem atuar como

moduladores do reparo e replicação do DNA, agindo em nível celular ao aumentar a

fidelidade na replicação do material genético, estimular o reparo livre de erro em danos no

material genético ou inibir os sistemas de reparo sujeitos a erro (KADA et al., 1982;

KURODA et al., 1992).

Outros autores classificam os mecanismos de antimutagênese e anticarcinogênese

como extracelulares e celulares. Entre os processos extracelulares, pode-se citar os físicos,

como a remoção mecânica dos agentes mutagênicos e/ou carcinogênicos e os químicos, tais

como a modificação da microbiota intestinal, complexação, diluição e desativação de

mutágenos e carcinógenos endógenos e exógenos (DE FLORA, 1998; GENTILE et al., 2001;

KNASMÜLLER et al., 2002). Os processos celulares compreendem a inibição de mutação e

iniciação do câncer, dos quais se pode citar: modificação do transporte transmembrana;

modulação do metabolismo; atividade antioxidante; controle da replicação celular; modulação

dos mecanismos de reparo do DNA; controle da expressão gênica e neutralização dos

produtos oncogênicos. Existem também mecanismos de anticarcinogênese que envolvem a

inibição da promoção e progressão tumoral, bem como bloqueio de metástases. Estes

mecanismos envolvem, basicamente, a ação de antioxidantes, bloqueio da angiogênese e

atividades hormonais (DE FLORA, 1998; HEO et al., 2001).

1.2 Anacardium occidentale L.

O uso de espécies vegetais para fins de tratamento e cura de doenças e sintomas

remontam ao início da civilização, desde o momento em que o homem começou um longo

percurso de manuseio, adaptação e modificação destes recursos para seu próprio benefício.

Atualmente, a natureza continua a ser uma grande fonte de medicamentos para a humanidade.

Nos últimos 20 anos, o interesse pelas plantas medicinais tem aumentado o volume de

investigações científicas sobre seus efeitos biológicos em seres humanos e animais (VEIGA

JR. et al., 2005).

Dentre estas plantas, está a espécie Anacardium occidentale L., pertencente à família

Anacardiaceae e popularmente conhecida como cajueiro. Caracteriza-se por ser uma árvore

frondosa, facilmente encontrada em todo o país, sendo mais abundante na região nordeste

(Figura 1). De indicações e utilizações terapêuticas variadas, o cajueiro é uma espécie vegetal

também utilizada em reflorestamentos, para fins ornamentais e para sombreamento, além de

servir como componente para fungicidas, inseticidas, vernizes, pinturas, adesivos e até

plásticos de lonas para freios (CORREA, 1978).

Existem vários relatos na literatura demonstrando o uso de folhas, cascas, caule e

frutos desta espécie na medicina popular. A casca do tronco é adstringente, rica em tanino, o

que justificaria sua indicação popular como cicatrizante. Também é indicada no combate à

hipertensão, no tratamento de distúrbios gástricos, como anti-inflamatório (MOTA et al.,

1985) e bactericida (AKINPELU, 2000).

A infusão das cascas do cajueiro apresenta propriedades analgésicas, afrodisíacas,

sendo também indicada para cólicas intestinais, úlceras gástricas, asmas e bronquites. A

castanha do fruto produz uma resina com propriedades anti-sépticas, vermífugas e vesicantes

(CORREA, 1978) e foi observada uma forte capacidade antioxidante contra a

hepatocarcinogenicidade induzida pela aflatoxina B1 em ratos Wistar (PREMALATHA &

SACHDANDAUM, 1999).

Figura 1: Anacardium occidentale L.

a. Cajueiro, b. pseudofruto do caju

Fonte: http://www.arbolesornamentales.com/Anacardiumoccidentale.htm

Estudos pré-clinicos realizados com metabólitos isolados da casca da árvore desta

espécie, demonstraram ação antibactericida e antipirética para o ácido anacárdico

(EICHBAUM, 1988) e a atividade anti-inflamatória foi correlacionada com extrato

metanólico, com frações hidro-alcoólicas obtidas de extrato etanólico e com taninos isolados

destas frações (MOTA et al.,

1985). A atividade contra leishmania foi verificada por França

et al. (1993). No entanto, quando testado em altas concentrações, extratos de A. humile e

óleos derivados de A. occidentale apresentaram-se citotóxicos no teste de Salmonella

typhimurium (SANTOS, F.V., comunicação pessoal; GEORGE & KUTTAN, 1997).

Cavalcante et al. (2003) estudaram o suco de caju e verificaram, além de seu benefício

nutricional, potenciais bactericida e antimutagênica. Foram analisados tanto sucos naturais

como processados (cajuína) e estes foram caracterizados como sendo misturas complexas

contendo altas concentrações de vitamina C, diversos carotenóides e metais. Os testes

realizados indicaram que o A. occidentale possui atividade mutagênica, antimutagênica e

comutagênica e que estas propriedades podem estar relacionadas com os constituintes

químicos do suco. Polasa e Rukmini (1987) também realizaram testes mutagênicos com

alguns óleos vegetais e observaram que o derivado do cajueiro apresentou-se mutagênico,

com ou sem ativação da fração S-9.

Em face das atividades relacionadas ao cajueiro, muitos estudos relacionados ao A.

occidentale estão sendo realizados a fim de investigar seus efeitos benéficos nas mais diversas

áreas da ciência.

1.3 SISTEMA DE CULTURA DE CÉLULAS DE MAMÍFEROS IN VITRO

Sistemas testes de curta duração são amplamente utilizados na detecção de agentes

mutagênicos e antimutagênicos ambientais (KURODA et al., 1992). Entre esses sistemas,

destaca-se a cultura de células de mamíferos in vitro, como a cultura de linfócitos de sangue

periférico humano, as linhagens celulares provenientes de hamster Chinês, como por

exemplo, as células CHO (células de ovário) e células V79 (fibroblastos de pulmão)

(TAKAHASHI, 2003). Células que se aderem e se dividem em superfície sólida são mais

indicadas para experimentos de antimutagênese in vitro, pois facilitam a manipulação durante

a realização de estudos em condições de pré-tratamento, tratamento simultâneo e pós-

tratamento em relação ao agente mutagênico (KURODA et al., 1992) e de experimentos com

tratamentos nas diferentes fases do ciclo celular (PRESTON, 1981).

Entre as vantagens desse sistema-teste, destacam-se a facilidade na padronização das

condições experimentais (temperatura, pH, composição do meio de cultura, densidade

populacional) devido à uniformidade metabólica e comportamental do material; possibilidade

dos tratamentos das células serem realizados em várias fases do ciclo celular; rapidez;

economia; boa reprodutibilidade; organização dos cromossomos e de seu DNA igual às

células in vivo (RABELLO-GAY, 1991).

As linhagens de células de hamster, como a V79 e CHO, como outras linhagens

celulares, apresentam algumas vantagens e desvantagens. Dentre as desvantagens, podemos

citar que estas linhagens celulares apresentam cariótipo variável, freqüentemente formam

populações celulares não-sincrônicas, apresentam considerável heterogeneidade nos tempos

de ciclo celular, além de serem células transformadas. Contudo, tais desvantagens não

superam as vantagens tais como facilidade de crescimento em cultivo, fácil manutenção,

pequeno período de estabilização (15 a 30 h), pequeno número cromossômico, cromossomos

relativamente grandes e ciclo celular curto (10 a 14 horas) (PRESTON, 1997).

A maioria das linhagens celulares utilizadas em ensaios in vitro não têm capacidade de

metabolização de drogas, havendo a necessidade, portanto, da adição de sistemas de

metabolização, como o S9 (fração microssomal de fígado de ratos tratados com Aroclor 1254

(GALLOWAY et al., 1994; PRESTON, 1997). No entanto, o sistema in vitro tem se

mostrado eficiente na detecção de agentes ambientais mutagênicos e antimutagênicos, apesar

dos experimentos com animais vivos reproduzirem com maior semelhança as condições

humanas (KURODA et al., 1992).

Nem sempre o resultado positivo in vitro é garantia de positividade in vivo, mas serve

de alerta. O sistema in vitro é de grande importância por fornecer dados fundamentais sobre a

ação da substância testada, como clastogênica, aneugênica, ação direta ou indireta sobre o

DNA e nível de toxicidade (TAKAHASHI, 2003).

1.4 ENSAIOS IN VITRO

Ensaios de curta duração com células de mamíferos têm sido amplamente utilizados

tanto nos estudos de mutagenicidade como nos de antimutagenicidade.

A avaliação dos danos causados por diferentes xenobióticos é feita principalmente

através das técnicas do micronúcleo (JOHNSTON et al., 1997; MILLER et al., 1997), cometa

(OLIVE et al., 1992. FRIEAUFF et al., 2001), aberrações cromossômicas (SASAKI et al.,

1994; MATSUOKA et al., 1997; ALVES et al., 2000) e trocas entre cromátides irmãs

(CORTÉS et al., 1994). Tais testes são essencialmente comparativos. Assim, é sempre

necessária a presença simultânea de controles negativo e positivo para os experimentos

(GONTIJO & TICE, 2003).

Segundo Gebhart (1992), as metodologias citogenéticas clássicas para avaliar in vitro

a mutagenicidade de agentes químicos e físicos também podem ser utilizadas para a avaliação

e identificação de agentes antimutagênicos.

1.4.1 TESTE DO COMETA

O teste do cometa é proposto para estudos de toxicogenética devido às suas

peculiaridades e vantagens quando comparado a outros testes para detecção de substâncias

genotóxicas. Ele é utilizado para detectar lesões genômicas, que após serem processadas,

podem resultar em mutação. Diferente das mutações, as lesões detectadas pelo teste do

cometa são passíveis de correção. Uma vez que danos no DNA são freqüentemente célula e

tecido-específico, uma metodologia como o teste do cometa que permite a detecção de danos

e seu reparo em uma única célula, e conseqüentemente, em determinada sub-população

celular, é de extrema relevância para a avaliação de compostos genotóxicos (GONTIJO &

TICE, 2003).

O teste do cometa também conhecido como SCG (single cell gel assay) e MGE

(microgel electrophoresis) foi introduzido primeiramente por Östling e Johanson em 1984

como uma técnica micro-eletroforética para visualização direta de danos no DNA em células

individuais (FAIRBAIN et al, 1995).

O princípio básico do teste do cometa é a migração do DNA em uma matriz de

agarose sob condições eletroforéticas. Quando observadas em microscópio, as células têm a

aparência de um cometa, com cabeça (região nuclear) e uma cauda contendo os fragmentos de

DNA que migraram em direção ao pólo positivo (HARTMANN et al., 2003).

As células podem, portanto, serem classificadas visualmente de acordo com a

categoria de migração da cauda em quatro classes (0, 1, 2 e 3), sendo que a classe 0 representa

nenhum ou mínimo dano e a classe 3 representa máximo dano. É classificado em classe 0

quando não há migração de fragmentos de material genético (cauda); em classe 1 quando o

tamanho da cauda do cometa não excede o diâmetro da cabeça; em classe 2 quando o

tamanho da cauda é entre 1 a 2 vezes o tamanho da cabeça e em classe 3 quando o tamanho

da cauda é maior que 2 vezes o tamanho da cabeça (COLLINS et al. 1997)

(Figura 2).

Durante a última década, o teste tem sido muito utilizado na identificação de agentes

com atividades genotóxicas (FAIRBAIN et al., 1995). A versão alcalina (pH>13) pode ser

usada para detectar danos no DNA (MERK & SPEIT, 1999) do tipo quebra de fita simples e

dupla, as quais apresentam um importante papel na formação de aberrações cromossômicas e

também sítios apurínicos e apirimidínicos (chamados de sítios álcali lábeis), os quais são

provavelmente convertidos em quebras em altos pHs. Contudo, essas lesões primárias são

passíveis de reparo e podem não resultar em alterações genéticas (COLLINS et al., 1997).

Figura 2: Classes de cometa: a. classe 0, b. classe 1, c. classe 2, d. classe 3.

Várias pesquisas utilizam tal técnica em seus estudos. Em aplicações clínicas, por

exemplo, o método foi utilizado para analisar as células de pacientes com câncer, antes e após

a quimioterapia para verificar os danos no DNA; no monitoramento humano, a técnica é

usada para detectar as lesões no DNA de pessoas expostas a algum tipo de radiação, por

exemplo (ANDERSON & PLEWA, 1998). Ou seja, a versatilidade de aplicações do teste do

cometa indica sua utilidade em uma ampla área da biologia, medicina, toxicologia, entre

outros (FAIRBAIN et al., 1995).

O teste do cometa deve ser realizado em condições mínimas de toxicidade celular,

visto que o processo citotóxico leva, inevitavelmente, à formação de quebras no DNA. Então,

durante os experimentos, é necessária a condução de teste de citotoxicidade independente,

com alíquotas da mesma amostra (GONTIJO & TICE, 2003) ou de sobrevivência celular.

Enfim, o ensaio do cometa possui vantagens como simplicidade, rapidez e relativo

baixo custo, além de diferir de outros ensaios que detectam danos no DNA por requerer

células viáveis, mas não em divisão, permitindo assim, sua aplicação a qualquer tipo de tecido

dos quais células vivas possam ser obtidas. Além disso, o fato do ensaio possibilitar o acesso

às quebras do DNA de uma única célula, poucos milhares de células (de 1 a 10.000 células)

são suficientes para sua realização (GONTIJO & TICE, 2003).

1.4.2 ABERRAÇÕES CROMOSSÔMICAS

As aberrações cromossômicas (AC) são mudanças no número ou na estrutura normal

do cromossomo que podem ocorrer espontaneamente ou como resultado da exposição a

agentes genotóxicos físicos, químicos ou biológicos (RUSSEL, 2002).

Existem três níveis de mutações, as mutações gênicas, as aberrações cromossômicas

estruturais como as deleções, duplicações, inversões e translocações e as aberrações

cromossômicas em número, como as aneuploidias e euploidias, que contribuem para o grande

número de abortos, morte pré-natal e nascimento de pessoas com anormalidades estruturais,

fisiológicas e mentais (KIRSCH-VOLDERS et al., 2002).

As primeiras alterações cromossômicas foram analisadas na década de 30 por Sax e

colaboradores utilizando grãos de pólen de Tradescantia. O uso da hipotonização por Hsu em

1952, permitiu uma detalhada análise dos cromossomos humanos (TUCKER & PRESTON,

1996).

Em estudos epidemiológicos, foi demonstrado que pessoas com elevadas freqüências

de AC em linfócitos periféricos possuem um elevado risco de desenvolvimento de câncer

(BONASSI et al., 1995; HAGMAR et al., 1998). Desta forma, o teste de AC tem sido

utilizado tanto para avaliação de suscetibilidade individual como para o diagnóstico de alguns

tipos de neoplasias (SKJELBRED et al., 2006).

O processo pelo qual as AC são formadas é muito complexo e não está totalmente

elucidado. Entretanto, Bender et al. (1973) propuseram um modelo para o mecanismo de

formação de AC por agentes mutagênicos, onde a maioria dos aspectos propostos ainda é

válida: (1) o cromossomo antes da replicação é monomérico e contém uma dupla hélice de

DNA; (2) AC é conseqüência de lesões no DNA; (3) lesões primárias no DNA são causadas

por agentes físico/químicos que quebram sua fita ou por danos nas suas bases nitrogenadas,

que são convertidas em quebras de fita de DNA; (4) as quebras nas fitas do DNA são

transformadas em diferentes tipos de AC seja por mecanismos ineficientes de reparo ou

replicação do DNA.

As aberrações cromossômicas podem ser classificadas em numéricas ou estruturais.

As aberrações numéricas originam-se pela ação de agentes aneugênicos, os quais interferem

nas fibras do fuso, gerando uma segregação errada dos cromossomos durante a anáfase e

originando perda ou ganho de cromossomos inteiros. As aberrações cromossômicas

estruturais são alterações na estrutura cromossômica, visíveis microscopicamente, que

envolvem quebras do cromossomo, seguidas por rearranjo anormal do cromossomo quebrado.

A quebra pode ser completa em uma única cromátide ou em ambas, resultando na perda ou

deleção de parte do material genético, translocação ou outro rearranjo. Os agentes capazes de

gerar aberrações estruturais são chamados de clastogênicos (SWIERENGA et al., 1991).

Os agentes químicos ou físicos que causam danos cromossômicos podem ser divididos

em duas classes distintas: S-independentes e S-dependentes. Os agentes S-independentes são

aqueles que causam dano no material genético sem que haja a necessidade da replicação do

DNA, por exemplo, Raios-x e alguns quimioterápicos radiomiméticos como a bleomicina. Já

os agentes S-dependentes são compostos que inserem, geralmente, aductos, radicais metil ou

etil ou geram um sítio apurínico no material genético, e, neste caso, o dano cromossômico só

será visualizado após a replicação do DNA (PALITTI, 1998).

O teste de AC em cultura de células de mamíferos é um dos métodos mais sensíveis

para a detecção de agentes mutagênicos e/ou carcinogênicos presentes no ambiente, sendo

complementar ao teste de Ames em Salmonella typhimurium. Ademais, além da utilização de

linfócitos de sangue periférico para a realização do teste, linhagens provenientes de hamster

Chinês (células V-79 - fibroblastos de pulmão e CHO – ovário, por exemplo) são indicadas

para a realização do ensaio de AC (TAKAHASHI, 2003).

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2. OBJETIVO

O presente trabalho teve por objetivo verificar os possíveis efeitos citotóxico,

genotóxico, mutagênico, bem como os possíveis efeitos protetores do extrato metanólico da

casca do cajueiro (Anacardium occidentale L.), utilizando como parâmetros o teste de

sobrevivência celular, o ensaio do cometa e o teste de aberrações cromossômicas em células

de mamífero in vitro.

3. ARTIGO 1

Genotoxicity and antigenotoxicity of Cashew (Anacardium occidentale L.) in V-79 cells

Gustavo Rafael Mazzaron Barcelos

, Fernanda Shimabukuro

, Maria Aparecida Medeiros

Maciel

, Ilce Mara de Syllos Cólus

Departamento de Biologia Geral, Centro de Ciências Biológicas, Universidade Estadual de

Londrina, Rodovia Celso Garcia Cid km 380, 86051-990, Londrina, Paraná, Brasil.

Departamento de Química, Centro de Ciências Exatas, Universidade Federal do Rio Grande

do Norte, Campus Universitário, 59078-970, Natal, Rio Grande do Norte, Brasil.

Running title: Antigenotoxicity of cashew

Corresponding author:

+55.43.3371-4527

e-mail:

[email protected]

Artigo a ser submetido ao periódico Toxicology In Vitro

Abstract

The use of plants for treatments of diseases has been occurring more and more by

people, although there are only a few studies that prove these effects. Among these plants is

the Anacardium occidentale, popularly known as cashew. The present study evaluated, in

vitro, the possible genotoxic and protective activities of the methanolic extract of the stem

bark of the cashew (Anacardium occidentale) using methyl methanesulfonate (MMS) as the

positive control, to compare the possible mechanisms of induction of DNA damages in the

Comet assay. The antigenotoxicity protocols used were pre, simultaneous and posttreatment

in relation to MMS. In the assessment of genotoxicity and antigenotoxicity, besides the MMS,

PBS was used as the negative control and three concentrations of the extract of A. occidentale

(500 µg/mL, 1000 µg/mL and 2000 µg/mL) were used in Chinese hamster lung fibroblasts –

V79 cells. The Comet assay revealed that the two lower concentrations tested did not present

genotoxic activity and the higher one presented genotoxicity. All of the concentrations

showed a protective activity in the simultaneous and post treatment in relation to MMS.

Future studies are necessary to identify the substances that compose the extract and to better

understand the antigenotoxic mechanism detected in this study.

1. Introduction

One of the major influences on cancer risk appears to be diet (Ferguson, 1999). In the

last decades, many compounds of the diet like vegetables, fruits and substances derived from

plants are being studied to identify the constituents that could have beneficial effects to

health (Paolini and Nestle, 2003; Knasmüller et al., 2002; Ferguson, 1999; DeMarini, 1998).

The specie Anacardium occidentale L., Anacardiaceae, it popularly known as cashew

and it is characterized as a leafy tree, easily found in Brazil, especially in the northeast region

(Correa, 1978). A. occidentale L. is indicate to therapeutic uses, like to combat to

hypertension, antidiareic and antiinflamatory activities (Mota et al., 1985). Pre-clinical studies

with isolated metabolites demonstrated bactericidal and antipyretic effects of the anacardic

acid, a compound present in high concentrations in the cashew (Eichbaum, 1988). The

activity against leishmania was verified by França et al. (1993) in extracts obtained of the

plant.

The cashew tree is used in the production of armatures for airplanes, floor tiles

laminates resins, besides serving as a component to varnishes, adhesives, paints and even to

plastic brake linings (Morton, 1961). Regarding its nutritional values, the pseudofruit

contributes to human nutrition by supplying vitamin C, averaging 269 mg/100 g of juice, five

times higher than that of orange juice (Maciel et al., 1986). It is also a rich source of

precursors of vitamins A (Cecchi and Rodriguez-Amaya, 1981).

Members of the family Anacardiaceae, including cashew are the most know sources

of resorcinolic lipids and phenolics, which they exhibit antioxidant properties (Kozubek et al.,

2001). The cashew nut presents high concentrations of tannins, mono and polyunsaturated

fatty acids, proteins and sugars (Venkatachalam and Sathe, 2006).

Some studies were done to evaluate the possible mutagenic or antimutagenic potential

of A. occidentale L. or its constituents. Cavalcante et al. (2003) studied the cashew juice and

verified, besides its nutritional benefits, bactericidal and antitumoral potentials. The tannic

acid, a compound present in the cashew, presented antimutagenic effect in Salmonella

thyphimurium TA 98 (Chen and Chung, 2000) and reduction in the frequency of sister

chromatid exchanges in Chinese hamster ovary (CHO) cells (Kuo et al., 1992).

In the present study, the methanolic extract obtained of the stem bark of the cashew

(Anacardium occidentale) was used to assess the possible genotoxic or protective effects

against DNA damages induced by methyl methanesulfonate (MMS) in mammalian culture

cells in vitro, using the Comet assay.

2. Materials and Methods

2.1 Cell line and culture conditions

Chinese hamster lung fibroblasts (V79) were kindly provided by Prof. Dr. Sakamoto-

Hojo (F.F.C.L. – Ribeirão Preto/USP). Cells were grown at 37º C in 10 mL DMEM/Ham-F-

10 (1:1) medium (Sigma) supplemented with 10% fetal calf serum (Gibco), antibiotics

(penicillin 0.06 g/L and streptomycin 0.12 g/L – Sigma) and HEPES (2.38 g/L – Sigma) in 25

culture flasks (Nunc).

2.2 Chemicals

As recommended by the International Workshop on Genotoxicity Test Procedures

(Tice et al., 2000), for the positive control we used the mutagenic alkylant agent methyl

methanesulfonate (MMS - CAS: 66-27-3, Aldrich) dissolved and diluted in phosphate-

buffered saline (PBS) in a final concentration in culture medium of 4x10

-4

M in all cases.

Agarose LMP (low melting point, CAS: 9012-36-6, Gibco) at 0.5% (w/v) and agarose

NMP (normal melting point, CAS: 9012-36-6, Gibco) at 1.5% (w/v) were dissolved in Ca

and Mg

free PBS.

2.3 Extract

The extract used was provided by the Chemistry Department of the Federal University

of Rio Grande do Norte (UFRN). The stem bark of Anacardium occidentale were collected in

Natal, Capital City of Rio Grande do Norte, were identified by Maria Iracema Bezerra Loiola.

A voucher specimen (number 1782) has been deposited in Herbarium of Universidade Federal

do Rio Grande do Norte (Natal- Brazil)

The adopted method in the phytochemical investigation involved the extraction of the

powdered bark (1.3 kg) with MeOH in a Soxhlet apparatus, affording 62.28g. The MeOH

extract was chromatography over silica gel column giving two different chemical-type

fractions of a fixed oil rich in apolar hydrocarbon constituents and a polar tannin fraction.

The methanolic extract of the stem bark of the cashew (Anacardium occidentale) was

diluted in water and used in three different concentrations at the genotoxicity and

antigenotoxicity protocols.

2.4 Cell viability assay

In the experiments of cell viability, the cell lineage was treated with the concentrations

of 500; 1000; 2000; 3000; 4000; 5000 and 6000 µg/mL of the cashew’s stem bark, besides the

positive (MMS) and negative (PBS) controls. The cultures were treated for two hours and

afterwards trypsinized and 300 cells were seeded per flask of cultivation (3 flasks per

concentration).The experiments lasted around 7 days, and the flasks were observed daily with

a microscope of inverted objective. The culture medium was then removed, and the cellular

colonies were washed with cold PBS and stained with Giemsa (1:20 phosphate buffer, pH

7.0) during 10 minutes. The colonies were counted with the assistance of a magnifying glass.

The results about cytotoxicity, determined the choice of three concentrations of the extract

(500 µg/mL; 1000 µg/mL and 2000 µg/mL) to be evaluated in the genotoxicity and

antigenotoxicity protocols.

2.5 Treatments

Three totally independent experiments were performed to determine the genotoxicity

and antigenotoxicity of the different concentrations of methanolic stem bark of the cashew.

Positive (MMS) and negative (PBS) control groups were also included in the analysis. All

experiments were carried out, in triplicate, using V79 cells between the 3

and 8

culture

passage after thawing. For the experiments, 10

cells were seeded into tissue-culture flasks,

incubaded for two cycles (24 h) in complete D-MEM/Ham-F-10 medium, washed with PBS

and then submitted to one of the following treatments in serum-free medium: a) PBS for 2 h

(negative control); b) MMS for 2 h (positive control); c) cashew extracts (500; 1000 and 2000

µg/mL) (extract treatment)for 2 h; d) extract plus MMS for 2 h (simultaneous-treatment); e)

cashew extracts (500; 1000 and 2000 µg/mL) for 2 h before washing the cells and adding

MMS for 2 h (pre-treatment with extracts); f) MMS for 2 h before washing the cells and

adding cashew extracts (500; 1000 and 2000 µg/mL) for 2 h (post-treatment with extracts).

Treatment “c” was the genotoxicity experiment and treatments “d”, “e” and “f” were the

antigenotoxicity experiments.

2.6 Comet Assay

The procedures reported by Singh et al. (1988) were used with minor modifications as

described by Speit and Hartmann (1999). Briefly, a base layer of 1.5% NMP agarose was

placed on a microscope slide and 10 µL of the V79 test cells suspended in 120 µL of 0.5%

LMP agarose at 37º C, were then spread on the base layer. A coverslip was added and the

agarose was allowed to solidify at 4º C for 15 min, after which the coverslip was gently

removed and the slide immersed in freshly made lysing solution composed by 89 mL a stock

solution (2.5 M NaCl, 100 mM EDTA, 10 mM Tris pH 10.0 and 1% sodium lauryl sarcosine)

plus 10 mL of DMSO, 1 mL of Triton X-100; pH 10.0 at 4º C for at least 1h, protected from

light. At the end of lysing period, slides were transferred to an electrophoresis box containing

a high pH (13.0) buffer (300 mM NaOH, 1 mM EDTA) and incubated at 4º C for 20 min to

allow the DNA to unwind. A current of 25 V (1.0 V/cm, 300 mA) was applied for 20 min,

after which, the slides were submerged in a neutralization buffer (0.4 M Tris HCl, pH 7.5) for

15 min, dried at room temperature and fixed in 100% ethanol for 10 min.

The slides were stored overnight, briefly rinsed in distilled water, stained with 20

mg/mL ethidium bromide and covered with a coverslip. The stained nucleoids were

immediately evaluated at 400X magnification using a Nikon fluorescence microscope fitted

with a 515-560 nm excitation filter and a 590 nm barrier filter.

2.7 Scoring procedures

For each treatment, the extent and distribution of DNA damage indicated by the

Comet assay were evaluated by examining 100 randomly selected and non-overlapping cells

on the slides (i.e. 300 cells per treatment).

On each slide, the cells were visually scored and allocated to one of four classes (0, 1,

2 and 3) according to the tail size as follows: class 0, undamaged, no tail; class 1, a short tail

with a length smaller than the diameter of the head (nucleus); class 2, tail length between 1

and 2 times the diameter of the head; and class 3, maximally damaged, with a long tail more

than twice the diameter of the head. The few comets observed with no head and those with

almost all the DNA in the tail, or with a very wide tail, were excluded from the analysis since

they could represent dead cells (Hartmann and Speit, 1997). The total score for 300 comets

was obtained according the formula of Manoharan and Banerjee (1985) with modifications:

Score = (1 X n

) + (2 X n

) + (3 X n

)

where n= number of cells in each class analyzed.

Thus, the total score could range from 0 to 300.

2.8 Statistical Analysis

The means for the cellular survival test were calculated from three independent

experiments. The ANOVA test (p<0,05) followed by the Dunett test were used to compare the

averages of each treatment with the negative control.

The mean scores were calculated from three independent experiments for each

treatment. The ANOVA (p<0.05) test followed by the Tukey test were used for comparing the

means of each treatment with their negative control to assess the genotoxicity and with the

positive control to assess the reduced genotoxicity.

3. Results

3.1 Cell viability assay

The cell viability assay was used to obtain a dose-effect curve of the survival of the

cells when exposed to different concentrations of the cashew’s stem bark extract. After the

analysis of variance test (ANOVA) and the Dunett test, it was observed that the cultures

treated with the concentrations of 500; 1000; 2000 and 3000 µg/mL of the extract and with

the positive (MMS) and negative (PBS) control did not present significant differences

between each other. Therefore, these concentrations did not present a cytotoxic effect

(P≤0.05). On the other hand, the cultures exposed to the concentrations of 4000; 5000 and

6000 µg/mL

of the extract did present significant difference when compared to the negative

control (PBS), presenting a toxic effect on the cells (P≤0.05). Thus, the concentrations of 500;

1000 and 2000 µg/mL were chosen for the genotoxic and antigenotoxic evaluations (Figure

1).

100

150

MMS (4x10

-4

PBS

500

1000

2000

3000

4000

5000

6000

Cashew (µg/mL)

Treatments

Number of colonies

Figure 1: Mean of the number of colonies formed after the exposure of the V79 cells to the

concentrations of 500 to 6000 µg/mL of the cashew’s stem bark extract. 300 cells were seeded per

flask of cultivation. * Statistically different (P<0.05).

3.2 Genotoxicity assessment

The concentrations of 500 µg/mL and 1000 µg/mL of the methanolic extract of the

stem bark of the A. occidentale did not demonstrate genotoxic effect in V79 cell culture in

vitro, since the means of scores obtained were statistically similar to the means of negative

control. The mean scores obtained with the concentration of 2000 µg/mL was statistically

different from that obtained with PBS treatment, what indicates a genotoxic activity (Table 1).

Table 1 – Number of cells observed in each comet class in a total of 300 analyzed cells per treatment

and their respective mean scores to assess the genotoxicity of three different concentrations of the

methanolic extract of the cashew’s stem bark in V79 cells in vitro.

Comet Class

Treatment 0 1 2 3

Number of

DC Score

Mean ± SD

92 8 0 0 8 8

PBS

91 9 0 0 9 9

19.33 ± 18.77

(20µL)

61 37 2 0 39 41

0 1 65 34 100 233

MMS

0 5 65 30 100 225 239 ± 17.77

(4 x 10

-4

0 0 41 59 100 259

Extract

(µg/mL)

87 13 0 0 13 13

500

90 10 0 0 10 10 25 ± 23.43

56 36 8 0 36 52

84 15 1 0 16 17

1000

71 22 7 0 29 36

51.33 ± 44.04

3 93 4 0 97 101

5 87 8 0 95 103

2000

5 89 5 1 95 99 108 ± 12.28

0 78 22 0 100 122

PBS: control; MMS: methyl methanesulfonate; SD: standard deviation; DC: damage cells.

Means with the same letter do not differ statistically (P≤0.05).

3.3 Antigenotoxicity assessment

In the pre-treatment, the only concentration that presented significative antigenotoxic

activity was the 1000 µg/mL. The values of scores obtained to other concentrations were

statistically similar to the positive control (Table 2).

The Comet assay indicated significative antigenotoxic activity of the methanolic

extract of the stem bark of the A. occidentale in the simultaneous treatment (Table 3) and in

post treatment (Table 4). All concentrations presented protective activity, that is, the results

were statistically different from that obtained in the MMS treatment alone, indicating a

reduction of DNA damage caused by MMS.

Table 2– Number of cells observed in each comet class in a total of 300 analyzed cells per treatment and

their respective mean scores to assess the antigenotoxicity regarding the MMS in the pre-treatment with

three different concentrations of the methanolic extract of the cashew’s stem bark in V79 cells in vitro.

Comet Class

Treatment 0 1 2 3

Number of

DC score

Mean ± SD

93 7 0 0 7 7

PBS

88 12 0 0

12 8.33 ± 3.21

(20µL)

94 6 0 0 6 6

0 0 73 27 100 227

MMS

0 0 89 11

100

211 217.66 ± 8.32

(4 x 10

-4

0 0 85 15

100

215

Extract (µg/mL) +

MMS

0 14 76 10 100 196

500

0 0 87 13

100

213 196.33 ± 16.50

0 25 70 5 100 180

0 82 18 0 100 118

1000

0 95 5 0

100

105 110.66 ± 6.65

0 91 9 0 100 109

0 14 75 11 100 197

2000

0 17 78 5

100

188 191.33 ± 4.93

0 18 75 7 100 189

PBS: control; MMS: methyl methanesulfonate; SD: standard deviation; DC: damage cells.

Means with the same letter do not differ statistically (P≤0.05).

Table 3– Number of cells observed in each comet class in a total of 300 analyzed cells per treatment and

their respective mean scores to assess the antigenotoxicity in the simultaneous treatment with three

different concentrations of the methanolic extract of the cashew’s stem bark and MMS in V79 cells in

vitro.

Comet Class

Treatment 0 1 2 3

Number of

DC score

Mean ± SD

92 8 0 0 8 8

PBS

91 9 0 0

9 19.33 ± 18.77

(20µL)

61 37 2 0 39 41

0 1 65 34 100 233

MMS

0 5 65 30

100

225 239 ± 17.77

(4 x 10

-4

0 0 41 59

100

259

Extract (µg/mL)

+ MMS

0 43 50 7 100 164

500

0 18 74 8

100

190 167 ± 21.65

0 53 47 0 100 147

0 88 12 0 100 112

1000

0 81 19 0

100

119 112.33 ± 6.50

0 94 6 0 100 106

0 92 8 0 100 108

2000

0 41 59 0

100

159 123.66 ± 30.66

0 96 4 0 100 104

PBS: control; MMS: methyl methanesulfonate; SD: standard deviation; DC: of damage cells.

Means with the same letter do not differ statistically (P≤0.05).

Table 4– Number of cells observed in each comet class in a total of 300 analyzed cells per treatment and

their respective mean scores to assess the antigenotoxicity regarding the MMS in the post-treatment with

three different concentrations of the methanolic extract of the cashew’s stem bark in V79 cells in vitro.

Comet Class

Treatment 0 1 2 3

Number of

DC score

Mean ± SD

93 7 0 0 7 7

PBS

88 12 0 0

12 8.33 ± 3.21

(20µL)

94 6 0 0 6 6

0 0 73 27 100 227

MMS

0 0 89 11

100

211 217.66 ± 8.32

(4 x 10

-4

0 0 85 15

100

215

MMS + Extract

(µg/mL)

14 83 3 0 86 89

500

4 93 3 0

99 84.66 ± 16.92

35 64 1 0 65 66

40 56 4 0 60 64

1000

7 89 4 0

97 77 ± 17.57

30 70 0 0 70 70

11 82 7 0 89 96

2000

4 91 5 0

101 99.66 ± 3.21

6 86 8 0 94 102

PBS: control; MMS: methyl methanesulfonate; SD: standard deviation; DC: damage cells.

Means with the same letter do not differ statistically (P≤0.05).

4. Discussion

Epidemiological studies suggest that over two-thirds of cancers might be prevented

through lifestyle modification (Ferguson, 1999). The dietary imbalance is one of the major

influences on cancer risk, especially the lack of sufficient amounts of dietary fruits and

vegetables (Ames and Gold, 1997).

In the present study, the concentrations of 500; 1000; 2000 e 3000 µg/mL of the

methanolic extract of stem bark of the cashew did not show cytotoxic effect when compared

to negative control while the concentrations of 4000; 5000 and 6000 µg/mL were cytotoxic.

Studies with different strains of S. typhimurium have indicated that extracts or oils obtained of

Anacardium genus have shown cytotoxicity in high concentrations (George and Kuttan, 1997;

Santos, F.V., personal communication).

In the face of the several benefits already described for the cashew’s stem bark, the

present study evaluated the genotoxic and antigenotoxic effects of three concentratios of the

methanolic extract of cashew’s stem bark (A. Occidentale L.) using the Comet assay.

The absence of genotoxicity was observed in V79 cells submitted to two

concentrations of the extract: 500 µg/mL and 1000 µg/mL. The concentration of 2000 µg/mL

presented a significant amount of cells with DNA damages when compared to the negative

control. However, the damage class predominant after the treatment of the cells with 2000

µg/mL is mainly class 1, considered with low amount of damage and thus, with possibility of

repair of the DNA damage. The mean score obtained for this treatment is 54,82% lower than

the positive control, so the genotoxic activity presented can be considered as light. In another

work done by our group using the concentration of 2000 µg/mL from the same extract in

chromosomic aberration in vitro test, this concentration did not show mutagenic activity.

Therefore, we can suggest that the lesion of genetic material observed in the Comet assay is

passible for correction, since the result of the chromosomic aberration test (which detects

already established lesions origined from DNA strand breaks) was negative.

Cavalcante et al. (2003) evaluated the fresh and processed (cajuina) cashew juice and

characterized as complex mixtures, containing high concentrations of vitamin C, various

carotenoids, phenolics compounds and metals. The tests with fresh and processed cashew

juice, in Salmonella typhimurium indicated that A. occidentale have shown mutagenic,

antimutagenic and co-mutagenic activity and these properties might be related with the

chemical compounds of the juice.

The low concentrations of the cashew’s stem bark methanolic extract seem to be the

most indicated for consumption, since George and Kuttan (1997) treated strains of S.

tyhimurium with different concentrations of extract of cashewnut shell and demonstrated

absence of mutagenicity in lowers doses, while the higher concentration have shown

cytotoxicity. Our results for citotoxicity and genotoxicity confirm these data.

In the present study, to assess the antigenotoxicity of the cashew’s stem bark extract,

different treatments were used: pre, simultaneous and post treatments in relation to the DNA

damage inducer agent, methyl methanesulfonate (MMS). MMS is a direct monofunctional

alkylating agent that has the ability to break the DNA strands directly; it is able to form

monoadducts in the DNA and crosslinks that are expressed as mutations involving different

substitutions of bases.

In pre-treatment experiments, effective antimutagenic agents are capable to induce

some metabolizing enzymes, which act as metabolic inactivaters chemical or enzimatics of

mutagenic agents or inhibit the activation of pro-mutagens (Kada et al., 1982; Kuroda et al.,

1992). In the present study was observed in pre-treatment that only the 1000 µg/mL

concentration had a protective effect, acting as a desmutagenic agent.

Desmutagenic agents are compounds that act directly on mutagens or on their

precursors to inactivate them; they can bind to the mutagenic compound in an irreversible

way, inactivating it chemically through a direct link or inhibiting the activation by the

modulation of the enzymes of phase I and II (Kada et al., 1982). However, in the present

study, it may be discharged the possibility of a modulation of these enzymes, because the

used cells (Chinese hamster lung fibroblasts – V79) practically do not present this active

metabolization system in vitro. Therefore, the methanolic extract of the stem bark of the

cashew did not present a relevant protective effect when the V-79 cells were treated with the

extract before of MMS treatment, that is, the extract used did not present a prominent

desmutagenic activity. Althought in the present study the protective activity have been

observed only with 1000 µg/mL, there is the possibility that in the same kind of protocol,

other times of exposition of the cells or other extract concentrations may also lead to

protecting effects.

When the simultaneous and post-treatments were used, the antigenotoxic activity was

observed in all extract’s concentrations evaluated. The three concentrations reduced the

damages caused by MMS. In these kinds of treatments when the protective action is observed,

generally it is by bio-antimutagenesis althought on simultaneous treatments can be occurring

desmutagenesis mechanisms. The bio-antimutagenic agents act on the physiologic

mechanisms of DNA protection and repair, reverting the mutagenic effects and not allowing

the fixation of mutations (Kada et al., 1982; De Flora, 1998). Therefore, the A. occidentale

stem bark’s methanolic extract probably acted as a bio-antimutagenic agent, because the

protective effect was observed in the simultaneous treatment and confirmed in the post-

treatment scheme, which showed a better efficient antimutagenic effect.

In the present study the dose of 2000 µg/mL showed genotoxicity and antigenotoxicity

activities. This indicates that some compounds of this extract can be acting as “Janus

carcinogens and mutagens” that, according von Borstel and Higgins (1998), are mutagenic

agents that, under differing conditions of cell type or exposure, also are antimutagenic.

Cavalcante et al. (2005) assessed cashew juices (fresh and processed) to verify its

inhibitory actions against mutations induced by Aflatoxin B

(AFB

), using the Ames test in

different treatment protocols. Both juices presented antioxidant potential and suppressed the

mutagenicity of hydrogen peroxide in simultaneous and post-treatments. According to the

authors, the analyzed juices were considered promissing candidates for control of

mutagenicity induced by AFB

and can be considered healthy food with anti-carcinogenic

potency.

The data of the present study in eukaryote cells in vitro summed to the Cavalcante et

al. (2005) with bacterias indicate the bio-antimutagenicity as the action mechanism most

probable of the compounds present in the Anacardium occidentale. Cavalcante et al. (2003)

suggest that this anti-mutagenic potential can be attributed to the natural compounds of

cashew, such as carotenoids, phenols, tannins, anacardic acid and ascorbic acid, all with

antioxidants and anti-mutagenic properties.

The chemistry analysis of the methanolic extract of the stem bark of the cashew used

in this work have shown a high concentration of tannins (Maciel, M.A.M. Personal

communication). Chen and Chung (2000) evidenced that the tannin acid and its hydrolyzed

compounds did not present mutagenic effect in Salmonella typhimurium TA 98 and TA 100,

in the absence or in the presence of S9 fraction. The tannic acid presented antimutagenic

effect in S. typhimurium TA 98 in the presence of S9 fraction against benzidine, 4-

aminobiphenyl, 3,3’-4,4’-tetraaminobiphenyl and N,N-N’,N’-tetramethylbenzidine (Chen and

Chung, 2000); 1-nitropyrene (1-NP) and 1.6 dinitropyrene (1.6-DNP) and reduced the

frequency of sister chromatid exchanges and the cytotoxicity induced by 1-NP and 1.6-DNP

in CHO cells (Kuo et al., 1992).

According to Inyang et al. (1997), the cashew juice presents high concentrations of

vitamin C (VitC), so it can be considered a natural source of this nutrient. Franke et al. (2005)

investigated the genotoxic effect of two doses of VitC associated with direct and indirect

mutagens in cells of mice in vivo, using the comet assay. DNA damage caused by MMS was

significantly reduced by the lower dose, but not by the higher dose of VitC. In the present

study, the two lowers concentrations of cashew’s stem bark extract assessed in V79 cells,

were the ones that did not induce primary lesions in the DNA. These results and a lot of

others related to A. occidentale L. or its constituints suggest beneficial effects from this

extract, especially if used in low concentrations which they can be used for prevention of

some diseases. However, there is still the need to carry out future studies that might elucidate

the antigenotoxic mechanism of the cashew observed in this work.

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4. ARTIGO 2

Avaliação da mutagenicidade e antimutagenicidade do extrato da casca do cajueiro in

vitro

Gustavo Rafael Mazzaron Barcelos

, Fernanda Shimabukuro

, .Mateus Pratis Mori

, Maria

Aparecida Medeiros Maciel

, Ilce Mara de Syllos Cólus

Departamento de Biologia Geral, Centro de Ciências Biológicas, Universidade Estadual de

Londrina, Rodovia Celso Garcia Cid km 380, 86051-990, Londrina, Paraná, Brasil.

Departamento de Química, Centro de Ciências Exatas, Universidade Federal do Rio Grande

do Norte, Campus Universitário, 59078-970, Natal, Rio Grande do Norte, Brasil.

Corresponding author:

+55.43.3371-4527

e-mail:

[email protected]

Artigo a ser submetido ao periódico Journal of Ethnopharmacology

Resumo

As plantas continuam a ser uma grande fonte de medicamentos para a humanidade.

Dentre elas, está a espécie Anacardium occidentale L., popularmente conhecida como

cajueiro, o qual possui indicações terapêuticas variadas, tais como: cicatrizante,

antihipertensivo, hipoglicêmico e antitumoral. O presente trabalho teve por objetivo avaliar a

mutagenicidade e a antimutagenicidade do extrato metanólico da casca do cajueiro em

culturas de células de fibroblastos de pulmão de hamster chinês (V79). As culturas foram

tratadas com diferentes concentrações do extrato (500; 1000 e 2000 µg/ml) ou com os extratos

associados com doxorrubicina (DXR) (0,75 µg/mL), nas fases G1, S e G2 do ciclo celular e

também em tratamento contínuo. Além destes tratamentos, culturas de células foram tratadas

com PBS (controle-negativo) e DXR (controle-positivo). Os dados obtidos no teste de

aberrações cromossômicas (AC) mostraram uma significativa redução na freqüência de AC

nas culturas tratadas com o extrato e DXR em relação àquelas que receberam somente DXR,

nas fases G1 e S do ciclo celular e em todo o ciclo, bem como ausência de mutagenicidade em

todos os tratamentos realizados. O efeito antimutagênico observado neste trabalho reforça as

propriedades terapêuticas já descritas para o caju e sinaliza um uso mais seguro deste extrato.

1. Introdução

Nos últimos 20 anos, o interesse pelas plantas medicinais tem aumentado o volume de

investigações sobre seus efeitos biológicos em seres humanos e animais (Veiga Jr. e Maciel,

2005). Dentre as plantas utilizadas para fins terapêuticos, está a espécie Anacardium

occidentale L., pertencente à família Anacardiaceae e popularmente conhecida como cajueiro.

Caracteriza-se por ser uma árvore frondosa, facilmente encontrada em todo o Brasil, sendo

mais abundante na região nordeste (Correa, 1978).

Existem vários relatos na literatura demonstrando o uso de folhas, cascas, caule e

frutos desta espécie na medicina popular. A casca do tronco é adstringente, rica em tanino, o

que justificaria sua indicação popular como cicatrizante. Também é indicada no combate à

hipertensão, no tratamento de distúrbios gástricos, como anti-inflamatório (Mota et al., 1985)

e bactericida (Akinpelu, 2000). A infusão das cascas do cajueiro apresenta propriedades

analgésicas, afrodisíacas, sendo também indicada para cólicas intestinais, úlceras gástricas,

asmas e bronquites. A castanha do fruto produz uma resina com propriedades anti-sépticas,

vermífugas e vesicantes (Correa, 1978) e foi observada uma forte capacidade antioxidante

contra a hepatocarcinogênese induzida pela aflatoxina B1 em ratos Wistar (Premalatha e

Sachdandaum, 1999).

Estudos pré-clinicos realizados com metabólitos isolados da casca da árvore desta

espécie demonstraram ação antipirética para o ácido anacárdico (Eichbaum, 1988) e a

atividade antiinflamatória foi correlacionada com o extrato metanólico, com frações

hidroalcoólicas obtidas de extrato etanólico e com taninos isolados destas frações (Mota et al.,

1985). A atividade contra leishmania foi verificada por França et al. (1993).

Polasa e Rukmini (1987) realizaram testes mutagênicos com óleo vegetal da castanha

do caju e este apresentou-se mutagênico, com ou sem ativação da fração S-9 em Salmonella

thyphimurium. Entretanto, Chen and Chung (2000) demonstraram que o ácido tanínico,

composto presente no caju (Venkatachalaman e Sathe, 2006), apresentou efeito

antimutagênico em Salmonella typhimurium linhagem TA 98. Kuo et al. (1992) também

realizaram estudos com o ácido tanínico e observaram uma redução na freqüência de trocas

entre cromátides irmãs em células de ovário de hamster Chinês (CHO). Cavalcante et al.

(2003) verificaram que o suco do caju, além de seu benefício nutricional, apresentou

atividades bactericida e antimutagênica.

Diante do grande consumo do caju na alimentação da população brasileira, seja em

forma de suco ou in natura, dos proeminentes potenciais terapêuticos atribuídos à casca do

tronco do cajueiro e dos poucos estudos para compreensão de seu mecanismo de ação, o

presente trabalho, teve como objetivo avaliar a possível mutagenicidade ou

antimutagenicidade do extrato metanólico da casca do cajueiro (EMCC) contra danos no

material genético de células V79 induzidos pelo quimioterápico doxorrubicina (DXR),

utilizando o teste de aberrações cromossômicas (AC).

2. Material e métodos

2.1 Extrato

O EMCC foi gentilmente fornecido pelo Departamento de Química da Universidade

Federal do Rio Grande do Norte (UFRN). O método adotado na investigação fitoquímica

envolveu a extração da casca triturada (pó) (1.3 kg) com metanol em um aparato Soxhlet. O

extrato metanólico passou por separação cromatográfica em coluna de gel de silica,

originando dois diferentes tipos de frações químicas, uma rica em óleo (constituintes apolares)

e uma fração polar rica em taninos.

O extrato metanólico da casca do cajueiro (Anacardium occidentale) foi diluído em

água. As concentrações de 500; 1000 e 2000 µg/mL de meio de cultura foram utilizadas para

a avaliação das atividades mutagênicas e antimutagênicas deste extrato e foram determinadas

previamente a partir de experimentos de citotoxicidade (Barcelos et al., dados não

publicados).

2.2 Linhagem celular e cultivo

As células de fibroblastos de pulmão de hamster Chinês (V79) foram gentilmente

fornecidas pela Profa. Dra. Sakamoto-Hojo (F.F.C.L. – Ribeirão Preto/USP). As células

foram cultivadas em frascos plásticos de cultura (25 cm

, Nunc) em meio de cultura HAM-

F10 (Gibco) e DMEM (Gibco) (1:1), suplementado com 10% de soro bovino fetal,

antibióticos (0,01 mg/mL streptomicina e 0,005 mg/mL de penicilina; Sigma) e 2,38 mg/mL

de HEPES (Sigma) em estufa BOD a 37º C.

2.3 Tratamentos

As células foram cultivadas durante o período de 20 horas em meio de cultura

completo, lavadas duas vezes com PBS e incubadas em meio novo sem soro para a realização

dos seguintes tratamentos: controle negativo (PBS, 10µL/mL); controle positivo (DXR, 0,75

µg/mL); tratamentos com o EMCC em três concentrações (500; 1000 e 2000 µg/mL) e

tratamentos simultâneos, onde o EMCC foi adicionado à cultura concomitantemente com a

DXR. Todos os experimentos foram realizados em triplicata e as células foram expostas pelo

período de uma hora nas fases G1, S e G2 do ciclo celular, 12, 8 e 3 horas antes da fixação,

respectivamente (Preston et al., 1981). Foi realizado também tratamento simultâneo contínuo,

onde as células permaneceram expostas ao EMCC e DXR pelo período de 12 horas

(aproximadamente 1 ciclo de divisão celular) em meio de cultura completo. Visando a

obtenção de células metafásicas, empregou-se a técnica de Preston et al. (1981)

onde

Colcemide (Demecolcine, 5µg/mL – Sigma) foi adicionado às culturas duas horas antes da

fixação. As preparações citológicas foram coradas com Giemsa 3% por 5 minutos.

2.4 Análise das lâminas

Para a avaliação de AC, foram analisadas 100 células por repetição, totalizando 300

metáfases por tratamento, as quais foram observadas em microscópio óptico (Nikon, com

amplificação de 1000 X). As AC foram classificadas de acordo com Savage (1975)

e o índice

mitótico (número de metáfases dentre 1000 células analisadas, para cada repetição) foi

calculado. A capacidade do EMCC reduzir danos promovidos pela DXR foi calculada pela

fórmula (Waters et al., 1990):

%R =

A – B

A – C

onde: %R = Porcentagem de Redução

A: Freqüência de AC após o tratamento com DXR

B: Freqüência de AC após o tratamento com EMCC e DXR

C: Freqüência de AC após o tratamento com PBS

2.5 Análise estatística

As freqüências médias de aberrações cromossômicas e índice mitótico foram

calculadas a partir de dados obtidos em três experimentos independentes. Os testes de

Kruskal-Wallis (P≤0.05) seguido pelo teste de Dum foram usados para a comparação das

médias entre si.

3. Resultados

1. Mutagenicidade

As freqüências médias de AC observadas após o uso das concentrações de 500; 1000 e

2000 µg/mL do EMCC em todos os tratamentos simultâneos realizados (tratamento contínuo

e nas fases G1, S e G2 do ciclo celular) em culturas de células V79 in vitro foram

estatisticamente semelhantes àquelas obtidas no grupo controle negativo (PBS), ou seja, não

apresentaram efeito mutagênico (Tabelas I, II, III e IV). Os valores obtidos para os índices

mitóticos de todos os tratamentos realizados em todas as fases do ciclo celular não

apresentaram diferenças significativas entre si (Tabelas I, II, III e IV).

2. Antimutagenicidade

Todas as concentrações do EMCC em tratamento simultâneo com a DXR durante

tratamento contínuo apresentaram efeito antimutagênico, pois freqüências médias de AC

foram estatisticamente diferentes daquelas obtidas no grupo controle-positivo (DXR), sendo

que a concentração de 500 µg/mL reduziu os danos aos níveis do controle-negativo (Tabela I).

No tratamento realizado durante a fase G1 do ciclo celular, foi observado efeito

antimutagênico das concentrações de 500 e 2000 µg/mL. A concentração de 1000 µg/mL não

apresentou redução de danos cromossômicos quando comparados os dados com os do grupo

positivo (DXR) (Tabela II). No tratamento realizado durante a fase S do ciclo celular,

somente a concentração de 500 µg/mL exerceu efeito antimutagênico. As médias das

freqüências de AC obtidas com as demais concentrações (1000 e 2000 µg/mL) apresentaram-

se estatisticamente semelhantes às do controle positivo (Tabela III). Já no tratamento

realizado na fase G2 do ciclo celular, nenhuma concentração exerceu efeito protetor aos danos

causados pela DXR (Tabela IV).

Os valores de índices mitóticos de todos os tratamentos realizados em todas as fases

do ciclo celular não apresentaram diferenças estatisticamente significativas entre si (Tabelas I,

II, III e IV).

Tabela I: Freqüências de aberrações cromossômicas (AC), porcentagem de redução de danos (% R) e índices

mitóticos (IM) observados em culturas de células V79 submetidas ao tratamento simultâneo contínuo com

diferentes concentrações do extrato metanólico da casca do cajueiro (EMCC), associado ou não com o

quimioterápico doxorrubicina (DXR) e seus respectivos controles.

Tratamentos Aberrações Cromossômicas % R IM (X ± DP)

QC Fr Ex Di Fi Média ± DP

PBS (10µL/mL) 3 0 0 0 0 1,00 ± 1,00

7,20 ± 0,75

DXR (0,75 µg/mL) 18 12 2 5 3 13,33 ± 0,58

5,80 ± 0,60

EMCC (µg/mL)

500 3 1 0 0 0 1,33 ± 1,15

7,80 ± 1,73

1000 1 0 0 1 0 0,67 ± 0,58

8,83 ± 2,05

2000 3 1 0 3 1 2,67 ± 1,53

7,43 ± 2,66

EMCC + DXR

500 + 0,75 7 3 1 4 1 5,33 ± 2,52

a c

68,57 7,57 ± 1,32

1000 + 0,75 9 8 1 5 1 8,00 ± 2,00

45,71 7,37 ± 1,59

2000 + 0,75 11 2 0 0 4 6,33 ± 3,05

60 6,37 ± 1,20

QC, quebras cromossômicas; Fr, fragmentos; Ex, “exchange”; Di, dicêntrico; Fi: figuras tri e quadrirradiais.

Letras iguais são semelhante estatisticamente entre si (P≤0.05).

Tabela II: Freqüências de aberrações cromossômicas (AC), porcentagem de redução de danos (% R) e índices

mitóticos (IM) observados em culturas de células V79 submetidas ao tratamento simultâneo na fase G1 do ciclo

celular com diferentes concentrações do extrato metanólico da casca do cajueiro (EMCC), associado ou não com

o quimioterápico doxorrubicina (DXR) e seus respectivos controles.

Tratamentos Aberrações Cromossômicas % R IM (X ± DP)

QC Fr Ex Di Fi Média ± DP

PBS (10µL/mL) 3 2 0 1 0 2,00 ± 1,73

8,60 ± 1,40

DXR (0,75 µg/mL) 18 8 2 7 5 14,00 ± 2,00

8,10 ± 2,90

EMCC (mg/mL)

500 2 2 0 2 3 3,00 ± 2,00

8,60 ± 0,92

1000 9 6 0 0 0 5,00 ± 1,00

a c

9,00 ± 0,25

2000 9 5 0 2 1 5,00 ± 1,00

a c

8,70 ± 1,57

EMCC + DXR

500 + 0,75 11 9 1 2 2 8,33 ± 1,15

48,57 8,13 ± 0,85

1000 + 0,75 14 5 3 5 1 9,33 ± 2,89

b c

6,77 ± 0,51

2000 + 0,75 10 7 1 8 1 9,00 ± 1,00

42,86 8,80 ± 0,10

QC, quebras cromossômicas; Fr, fragmentos; Ex, “exchange”; Di, dicêntrico; Fi: figuras tri e quadrirradiais.

Letras iguais são semelhante estatisticamente entre si (P≤0.05).

Tabela III: Freqüências de aberrações cromossômicas (AC), porcentagem de redução de danos (% R) e índices

mitóticos (IM) observados em culturas de células V79 submetidas ao tratamento simultâneo na fase S do ciclo

celular com diferentes concentrações do extrato metanólico da casca do cajueiro (EMCC), associado ou não com

o quimioterápico doxorrubicina (DXR) e seus respectivos controles.

Tratamentos Aberrações Cromossômicas % R IM (X ± DP)

QC Fr Ex Di Fi Média ± DP

PBS (10µL/mL) 5 0 0 0 0 1,67 ± 0,58

7,73 ± 2,05

DXR (0,75 µg/mL) 11 14 1 7 3 12,33 ± 1,53

8,37 ± 3,31

EMCC (mg/mL)

500 3 2 0 1 0 1,33 ± 1,52

8,80 ± 3,12

1000 5 1 0 1 1 2,67 ± 0,58

8,10 ± 2,01

2000 6 7 1 0 0 4,67 ± 0,58

a c

6,73 ± 2,06

EMCC + DXR

500 + 0,75 9 19 2 4 2 7,67 ± 1,52

c d

43,75 7,70 ± 2,31

1000 + 0,75 18 7 1 3 2 9,00 ± 2,00

b d

8,90 ± 1,81

2000 + 0,75 21 4 0 3 1 10,33 ± 1,53

b d

8,33 ± 1,96

QC, quebras cromossômicas; Fr, fragmentos; Ex, “exchange”; Di, dicêntrico; Fi: figuras tri e quadrirradiais.

Letras iguais são semelhante estatisticamente entre si (P≤0.05).

Tabela IV: Freqüências de aberrações cromossômicas (AC), porcentagem de redução de dano (% R) e índices

mitóticos (IM) observados em culturas de células V79 submetidas ao tratamento simultâneo na fase G2 do ciclo

celular com diferentes concentrações do extrato metanólico da casca do cajueiro (EMCC), associado ou não com

o quimioterápico doxorrubicina (DXR) e seus respectivos controles.

Tratamentos Aberrações Cromossômicas IM (X ± DP)

QC Fr Ex Di Fi Média ± DP

4. Discussão

A utilização de plantas com fins medicinais, para tratamento, cura e prevenção de

doenças é uma das mais antigas formas de prática medicinal da humanidade. No início da

década de 1990, a Organização Mundial de Saúde (OMS) divulgou que 65 a 80% da

população dos países em desenvolvimento dependiam das plantas medicinais como única

forma de acesso aos cuidados básicos de saúde (Akerele, 1993).

O presente trabalho avaliou a possível mutagenicidade e citotoxicidade do EMCC,

bem como sua influência sobre os danos cromossômicos causados pelo quimioterápico

doxorrubicina nas fases do ciclo

promover aductos, gerar inúmeras espécies de radicais livres e bloquear a replicação do

material genético (Quiles et al., 2002).

A análise química do EMCC utilizado no presente estudo mostrou que este é um

composto rico em taninos hidrossolúveis e não-hidrossolúveis (dados não publicados). Chen

e Chung (2000) relataram que o ácido tanínico não apresentou efeito mutagênico em

Samonella typhimurium TA 98 e 100, tanto na presença como na ausência da fração S9. No

entanto, o ácido tanínico, na presenca da fração S9, mostrou atividade antimutagênica contra

danos causados por 4-aminobiphenyl, 3,3’-4,4’-tetraaminopiphenyl e N,N-N’,N’-

tetramethylbenzidine. Kuo et al. (1992) também relataram uma redução significativa na

freqüência de trocas entre cromátides irmãs inducidas por nitropirenos em células de ovário

de hamster chinês (CHO) submetidas ao ácido tanínico.

Estudos realizados com o pseudofruto do caju mostraram que este apresenta

aproximadamente 5 vezes mais ácido ascórbico (vitamina C) que a quantidade encontrada em

laranjas (Cavalcante et al.; 2003; Inyang et al., 1997). O ácido ascórbico atua como um

potente antioxidante hidrosolúvel em fluídos biológicos (Frei et al., 1989; Frei et al., 1990).

Franke et al. (2005) demonstraram que a vitamina C atua como um modulador das enzimas

de reparo em células do sangue periférico de camundongos tratadas com

metilmetanosulfonato (MMS) no ensaio do cometa e Cooke et al. (1998) observaram uma

redução dos níveis plasmáticos de 8-oxo-2’-deoxiguanosina em células mononucleares de

sangue periférico humano quando comparado àqueles que receberam somente placebo.

Em trabalho anteriormente realizado por nosso grupo (em preparação), também foi

utilizado o MMS como agente indutor de danos em células V79 e observado que o EMCC

reduziu os danos primários causados pelo MMS. Foi sugerido que o EMCC atuou como um

agente bio-antimutagênico, pois foi mais eficiente em células tratadas simultaneamente com o

extrato e o MMS e em células tratadas com o EMCC após 2 horas do tratamento com o MMS.

Em tratamentos simultâneos, agentes antimutagênicos efetivos são capazes de induzir

algumas enzimas metabolizadoras, as quais atuam inativando física ou quimicamente o

mutágeno, antes que este entre em contato com o DNA ou inibindo a ação de prómutágenos

(modulação de enzimas de fase I e fase II), propriedades denominadas de desmutagênicas.

Estes agentes podem também aumentar a fidelidade de replicação do DNA e ativar algumas

enzimas de reparo e, neste caso, são denominados bio-antimutagênicos (Kada et al., 1982;

Kuroda et al., 1992).

A redução das freqüências médias de AC obtidas no presente estudo em tratamentos

realizados durante todo o ciclo e nas fase G1 e S do ciclo celular corroboram os dados obtidos

no ensaio do cometa, anteriormente realizado por nosso grupo com células V-79 expostas ao

EMCC e MMS (dados não publicados). Portanto, o mecanismo pelo qual os compostos

presentes no EMCC protegem o DNA, possivelmente seja do tipo bio-antimutagênese, ou

seja, os compostos presentes no extrato provavelmente atuam aumentando a fidelidade de

replicação do DNA (Kada et al., 1982).

De acordo com Ferguson (2001), há evidências indicando que alguns compostos

podem tanto induzir como prevenir danos no DNA. Por esta razão, antes de estabelecer

qualquer tipo de estratégia quimiopreventiva, faz-se necessário saber sob quais condições tal

composto promove benefícios e previne danos no genoma. O presente estudo mostrou que

baixas concentrações do EMCC são mais recomendáveis para a sua utilização, já que a menor

dose apresentou uma maior redução na freqüência média de AC e nenhuma das concentrações

avaliadas apresentaram atividade mutagênica.

Portanto, nossos resultados indicam que o EMCC poderia ser utilizado na prevenção

de danos contra inúmeros compostos com potenciais mutagênicos, os quais apresentam o

mesmo mecanismo de ação da DXR. Estudos futuros in vitro e in vivo são necessários para

uma melhor compreensão das propriedades protetoras atribuídas ao extrato metanólico da

casca do tronco do cajueiro e seus componentes, bem como para sua utilização mais segura na

medicina popular.

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5. CONCLUSÕES

A partir dos resultados obtidos com os ensaios cometa e de aberrações cromossômicas

em sistema-teste de células de mamíferos in vitro (células V79), realizados com o extrato

metanólico da casca do cajueiro, podemos concluir que:

1) O extrato metanólico da casca do cajueiro apresentou citotoxicidade nas

maiores concentrações avaliadas: 4000, 5000 e 6000 µg/mL de meio de

cultura;

2) A avaliação da genotoxicidade de três concentrações do extrato (500, 1000

e 2000 µg/mL) utilizando o ensaio do cometa indicou que somente a

concentração de 2000 µg/mL apresentou genotoxicidade;

3) Os resultados dos experimentos de antigenotoxicidade indicaram que

somente a concentração de 1000 µg/mL exerceu atividade antigenotóxica

em pré tratamento e que as três concentrações utilizadas em tratamento

simultâneo e em pós tratamento tiveram efeito protetor contra danos

causados pelo metilmetanosulfonato (MMS);

4) Na avaliação da mutagenicidade do extrato da casca do cajueiro, utilizando

o teste de aberrações cromossômicas, não foi observado efeito mutagênico

de nenhuma das três concentrações avaliadas;

5) Quanto à sua antimutagenicidade em relação aos danos causados pela

doxorrubicina (DXR), as três concentrações do extrato da casca do cajueiro

apresentaram efeito protetor quando avaliadas em tratamento simultâneo

durante todo o ciclo celular;

6) Quando as células foram submetidas ao tratamento com o extrato da casca

do cajueiro associado à DXR em diferentes fases do ciclo celular, foi

observado efeito antimutagênico nas fases G1 e S do ciclo celular, porém,

isso não ocorreu na fase G2 do ciclo.

7) O mecanismo pelo qual o extrato metanólico da casca do cajueiro exerceu

atividade antimutagênica é provavelmente do tipo bio-antimutagênese.

Entretanto, a ocorrência de mecanismos de desmutagênese não pode ser

descartada diante dos resultados obtidos em pré-tratamento no ensaio do

cometa.

8) Os resultados do presente estudo indicam que as menores concentrações do

extrato metanólico da casca do cajueiro são as mais adequadas para o

consumo popular e que este extrato pode ser um candidato promissor para

futuros usos terapêuticos.

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