Download PDF
ads:
ESTUDO DA ESTABILIDADE E DO EFEITO
FUNGITÓXICO DO ÓLEO ESSENCIAL DE
CAPIM-LIMÃO (Cymbopogon citratus (D.C.)
Stapf)
LUIZ GUSTAVO DE LIMA GUIMARÃES
2007
ads:
Livros Grátis
http://www.livrosgratis.com.br
Milhares de livros grátis para download.
LUIZ GUSTAVO DE LIMA GUIMARÃES
ESTUDO DA ESTABILIDADE E DO EFEITO FUNGITÓXICO DO
ÓLEO ESSENCIAL DE CAPIM-LIMÃO (Cymbopogon citratus (D.C.)
Stapf)
Dissertação apresentada à Universidade Federal
de Lavras, como parte das exigências do Curso de
Mestrado em Agroquímica e Agrobioquímica,
para obtenção do título de “Mestre”.
Orientadora
Profª. Drª. Maria das Graças Cardoso
LAVRAS
MINAS GERAIS – BRASIL
2007
ads:
Ficha Catalográfica Preparada pela Divisão de Processos Técnicos da
Biblioteca Central da UFLA
Guimarães, Luiz Gustavo de Lima
Estudo da estabilidade e do efeito fungitóxico do óleo essencial de capim-limão
(Cymbopogon citratus (D.C.) Stapf) / Luiz Gustavo de Lima Guimarães. -- Lavras:
UFLA, 2007.
72. : il.
Orientador: Maria das Graças Cardoso.
Dissertação (Mestrado) – UFLA.
Bibliografia.
1. Capim-limão. 2. óleo essencial. 3. Fungicida. I. Universidade Federal de
Lavras. II. Título.
CDD-630.24
-633.8849
LUIZ GUSTAVO DE LIMA GUIMARÃES
ESTUDO DA ESTABILIDADE E DO EFEITO FUNGITÓXICO DO
ÓLEO ESSENCIAL DE CAPIM-LIMÃO (Cymbopogon citratus (D.C.)
Stapf)
Dissertação apresentada à Universidade Federal
de Lavras, como parte das exigências do Curso de
Mestrado em Agroquímica e Agrobioquímica,
para obtenção do título de “Mestre”.
APROVADA em 16 de fevereiro de 2007.
Prof. Matheus Puggina de Freitas............................UFLA
Prof. Paulo Estevão de Souza..................................UFLA
Dra. Ana Paula Soares Pinto Salgado......................UFLA
Profª. Drª. Maria das Graças Cardoso
UFLA
(Orientadora)
LAVRAS
MINAS GERAIS – BRASIL
Aos meus pais,
Maria José e Nadir
Ao meu amor,
Tatiana
Ao meu irmão,
Thiago
À minha tia
Joana Maria
A Deus,
Por serem os alicerces de minha vida.
Amo vocês!
DEDICO E OFEREÇO
AGRADECIMENTOS
A Deus, por me dar a alegria de viver e conduzir a minha vida por caminhos
vitoriosos.
À professora Maria das Graças Cardoso, pela orientação, amizade e por ter
acreditado em mim, abrindo-me as portas do mundo da pesquisa. Sou-lhe
eternamente grato.
Ao professor Paulo Estevão de Souza, pela co-orientação e disponibilidade.
Ao professor Augusto Ramalho de Morais, pela grande ajuda com as análises
estatísticas.
Ao colega Flávio Pimentel, por sempre estar disposto a me ajudar e a
compartilhar seus conhecimentos.
Às colegas e amigas Ana Paula e Lidiany, por estarem sempre presente e por
terem me ajudado na condução do experimento.
Aos colegas de Laboratório, Fernando, Priscila, Annete, Fabiana, Milene, Ana
Elisa, Luciene, Rafaela, Juliana, Cleusa, Jean, Vanisse, Masson, Alcilene,
Reinier e Sara, pela convivência harmoniosa e por estarem sempre dispostos a
me ajudar.
Às funcionárias do Departamento de Fitopatologia Eloísa, Rute e Eliane, pela
atenção e valiosa ajuda.
Ao Paulo Moreto, por ser sempre prestativo e pela concessão do material
vegetal.
Às secretárias do Departamento de Química, Miriam e Lílian, pela atenção e
ajuda em qualquer momento.
A todos os professores do Departamento de Química, pela acessibilidade e
interesse em ajudar.
Aos meus primos Érico e Clarissa, pela ajuda, atenção e companheirismo e aos
meus tios Diva e Arlindo, por serem muito importantes em minha formação.
A todos os meus colegas de pós-graduação, pelas amizades e horas de estudo.
Ao Departamento de Fitopatologia, pelo espaço concedido para os ensaios
biológicos.
Ao prof. Dr. Luiz Cláudio de Almeida Barbosa, do Departamento de Química da
Universidade Federal de Viçosa – UFV, pela realização das análises
cromatográficas.
À Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de Minas Gerais (FAPEMIG),
pela concessão da bolsa de estudos.
À Universidade Federal de Lavras, em especial ao Departamento de Química,
pela oportunidade concedida.
E a todos que, de alguma forma, contribuíram para a realização deste trabalho,
meu muito obrigado.
SUMÁRIO
LISTA DE TABELAS...........................................................................................i
LISTA DE FIGURAS...........................................................................................ii
LISTA DE SÍMBOLOS........................................................................................v
RESUMO............................................................................................................vii
ABSTRACT ......................................................................................................viii
1 INTRODUCAO.................................................................................................1
2 REFERENCIAL TEÓRICO..............................................................................3
2.1 Plantas medicinais e aromáticas......................................................................3
2.2 Metabólitos secundários .................................................................................4
2.2.1 Óleos essenciais ...........................................................................................6
2.2.2 Atividade biológica dos óleos essenciais...................................................11
2.3 Espécie Cymbopogon citratus (capim-limão)...............................................15
2.3.1 Óleo essencial de Cymbopogon citratus....................................................17
2.4 Fitopatógenos................................................................................................21
2.4.1 Fusarium oxysporum .................................................................................21
2.4.2 Colletotrichum gloeosporioides.................................................................23
2.4.3 Rhizoctonia solani......................................................................................24
3 MATERIAL E MÉTODOS.............................................................................26
3.1 Material vegetal ............................................................................................26
3.2 Extração do óleo essencial............................................................................26
3.2.1 Identificação e quantificação dos constituintes químicos..........................26
3.2.2 Avaliação da estabilidade ..........................................................................28
3.2.2.1 Análise estatística ...................................................................................29
3.3 Atividade biológica.......................................................................................30
4 RESULTADOS E DISCUSSÃO.....................................................................32
4.1 Identificação e quantificação dos constituintes do óleo essencial ................32
4.2 Avaliação da estabilidade .............................................................................34
4.3 Atividade Biológica......................................................................................48
5 CONCLUSÕES ...............................................................................................56
6 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS.............................................................57
ANEXOS ............................................................................................................66
i
LISTA DE TABELAS
Página
TABELA 1 Constituintes do óleo essencial de Cymbopogon citratus
identificados por CG/EM e seus respectivos teores..........
33
TABELA 2 Resultados médios do teor de citral no óleo essencial de
Cymbopogon citratus, com relação ao tempo, submetido
à presença ou ausência de luz.............................................
35
TABELA 3 Resultados médios do teor de mirceno no óleo essencial
de Cymbopogon citratus, com relação ao tempo,
submetido à presença ou ausência de luz...........................
36
TABELA 4 Resultados médios do teor de citral no óleo essencial de
Cymbopogon citratus, com relação ao tempo e à
temperatura.........................................................................
38
TABELA 5 Resultados médios do teor de mirceno no óleo essencial
de Cymbopogon citratus, com relação ao tempo e à
temperatura.........................................................................
39
ii
LISTA DE FIGURAS
Página
FIGURA 1 Principais rotas de biossíntese de metabólitos
secundários.............................................................................
6
FIGURA 2 Representação básica de um fenilpropanóide.........................
8
FIGURA 3 Estrutura química do isopreno................................................ 8
FIGURA 4 Representação esquemática da biossíntese de terpenos, em
que as unidades pentacarbonadas são sintetizadas por duas
vias distintas (Adptado de Taiz et al., 2004)...........................
10
FIGURA 5 Representação da biossíntese dos terpenos pela via da 1-
deoxi-D-xilulose-5-fosfato (DXPS)........................................
11
FIGURA 6
Estruturas químicas do α-pineno (a), β-pineno (b), 3-careno
(c), limoneno (d) e α-terpineno (e).........................................
12
FIGURA 7 Estruturas do eugenol (a) e do carvacrol (b)...........................
13
FIGURA 8 Aspecto geral de uma touceira de Cymbopogon citratus
(Capim-limão).........................................................................
16
FIGURA 9 Estrututras químicas dos isômeros formadores do citral........ 19
FIGURA 10 Rota bioquímica de formação do citral (Adaptado de Iijima
et al., 2006)..............................................................................
20
FIGURA 11 Estrutura química do mirceno.................................................
20
FIGURA 12 Estrutura química do Tebuconazole (alfa-terc-butil-alfa-(p-
clorofenetil)-1 H – 1, 2, 4 – triazole – 1 – etanol)..................
30
FIGURA 13
Compostos identificados no óleo essencial de capim-limão
(Cymbopogon citratus)...........................................................
32
iii
FIGURA 14 Decréscimo dos teores de citral no óleo essencial de
Cymbopogon citratus em relação ao tempo e à presença
/ausência de luz.......................................................................
37
FIGURA 15 Decréscimo dos teores de mirceno no óleo essencial de
Cymbopogon citratus em relação ao tempo e à presença
/ausência de luz.....................................................................
37
FIGURA 16 Decréscimo dos teores de citral no óleo essencial de
Cymbopogon citratus em relação ao tempo e à presença
/ausência de luz......................................................................
40
FIGURA 17 Decréscimo dos teores de mirceno no óleo essencial de
Cymbopogon citratus em relação ao tempo e à presença
/ausência de luz......................................................................
40
FIGURA 18 Espectro no infravermelho do óleo essencial fresco de
Cymbopogon citratus.............................................................
42
FIGURA 19 Espectro no infravermelho do óleo essencial de
cymbopogon citratus submetido à luz...................................
43
FIGURA 20 Mecanismo da degradação do geranial via autoxidação....... 45
FIGURA 21 Decomposição do geranial na presença de luz...................... 46
FIGURA 22 Oxidação do geranial a peráxido........................................... 47
FIGURA 23 Efeito das concentrações do óleo essencial de C. citratus,
citral, mirceno e tebuconazole sobre a inibição do
crescimento micelial de Rhizoctonia solani..........................
48
FIGURA 24 Efeito das concentrações do óleo essencial de C. citratus,
citral, mirceno e tebuconazole sobre a inibição do
crescimento micelial de Fusarium oxysporum......................
49
FIGURA 25 Efeito das concentrações do óleo essencial de C. citratus,
citral, mirceno e tebuconazole sobre a inibição do
crescimento micelial de Colletotrichum gloeosporioides.....
49
iv
FIGURA 26 Bioensaio realizado com óleo essencial de Capim-limão
(Cymbopoogon citratus) sobre o crescimento e/ou inibição
micelial do fungo Colletotrichum gloeosporioides ..............
53
FIGURA 27 Bioensaios realizados com óleo essencial de Capim-limão
(Cymbopoogon citratus) sobre o crescimento e/ou inibição
micelial dos fungos Fusarium oxysporum ...........................
54
FIGURA 28 Bioensaio realizado com óleo essencial de Capim-limão
(Cymbopoogon citratus) sobre o crescimento e/ou inibição
micelial dos fungos Rhizoctonia solani.................................
55
v
LISTA DE SÍMBOLOS
BDA
Batata, dextrose, ágar
BOD
Incubadora com “biological oxygen demand”
C
5
Unidade isoprênica
CG
Cromatógrafo gasoso
CG/EM
Cromatografia gasosa acoplada à espectrometria de massa
DXPS
1-deoxi-D-xilulose-5-fosfato
EM
Espectrometria de massa
FID
Detector por Ionização de Chamas
FPP
Farnesil difosfato
GEDH1
Geraniol desidrogenase
GES
Geraniol sintase
GGPP
Geranilgeranil difosfato
GPP
Geranil difosfato
IPP
Isopentenil difosfato
ISO
International Standard Organization
IV
Espectrofotometria no infravermelho
MEP
Metilritrinol fosfato
OMS
Organização Mundial de Saúde
vii
RESUMO
GUIMARÃES, Luiz Gustavo de Lima. Estudo da estabilidade e do efeito
fungitóxico do óleo essencial de capim-limão (Cymbopogon citratus (D.C.)
Stapf). 2007. 72 p. Dissertação (Mestrado em Agronomia) – Universidade
Federal de Lavras, Lavras, MG.
*
Os óleos essenciais estão sendo cada vez mais utilizados nas áreas de alimentos
(condimentos e aromatizantes de alimentos e bebidas) e cosméticos (perfumes e
produtos de higiene). Muitos desses compostos possuem importantes ações
biológicas, fazendo-os objetos de estudos pela indústria de agroquímicos, na
busca de substâncias fungicidas, bactericidas e inseticidas naturais. O capim-
limão (Cymbopogon citratus) é uma planta aromática cultivada para produção
comercial de óleo essencial conhecido como “Lemongrass Oil”. Neste trabalho,
objetivou-se avaliar a constituição química, a estabilidade perante a luz e a
temperatura, e o efeito fungitóxico desse óleo sobre os fitopatógenos Fusarium
oxysporum, Colletotrichum gloeosporioides e Rhizoctonia solani. A
identificação dos constituintes químicos do óleo essencial foi feita por meio de
um cromatógrafo gasoso acoplado a um espectrômetro de massa. Para a
avaliação da estabilidade do óleo, esse foi submetido à presença e ausência de
luz, e a diferentes temperaturas. Os teores dos componentes majoritários citral e
mirceno foram avaliados a cada quinze dias em cromatógrafo gasoso com
detector FID por meio de curvas analíticas construídas com soluções-padrão. A
atividade fungitóxica foi realizada utilizando-se o método bioanalítico in vitro,
em que o óleo essencial, os padrões dos componentes majoritários e o fungicida
comercial (Tebuconazole) foram aplicados em várias concentrações sobre os
fitopatógenos citados. Os constituintes majoritários do óleo essencial de capim-
limão, “citral e mirceno” sofreram degradação em relação ao tempo, tanto na
presença quanto na ausência de luz; já a temperatura influenciou apenas a
degradação do mirceno. O óleo essencial inibiu completamente o crescimento
micelial dos fitopatógenos na concentração de 250 ppm para o Rhizoctonia
solani e de 500 ppm para o Fusarium oxysporum e Colletotrichum
gloeosporioides, inferindo que essa atividade pode ser devida à presença do
citral.
*
Comitê Orientador: Maria das Graças Cardoso – UFLA (Orientadora) e Paulo
Estevão de Souza – UFLA (Co-orientador)
viii
ABSTRACT
GUIMARÃES, Luiz Gustavo de Lima. Study of stability and the fungitoxic
activity of the essential oil of lemongrass (Cymbopogon citratus (D.C.) Stapf)
essential oil. 2007. 72 p. Dissertation (Master Program in Agriculture) – Federal
University of Lavras, Minas Gerais, Brazil.
∗
Essential oils have been increasingly employed in the foods (aromas and spices
for food and beverages) and cosmetics (perfumes and hygiene products). Most
of these compounds have important biological action, making of them the
objective of research in the agrochemical industry, in the search for natural
fungicides, bactericides and insecticides. Lemongrass (Cymbopogon citratus), is
an aromatic plant raised for the commercial production of essential oil. The
present research was designed to evaluate the chemical composition, the stability
to light and temperature, and the antifungal activity of this oil on the plant
pathogens Fusarium oxysporum, Colletotrichum gloeosporioides and
Rhizoctonia solani. The identification of the chemical compounds of the
essential oil was performed on a gas chromatograph coupled to a mass
spectrometer. To evaluate the stability of the oil, it was submitted to the
presence and absence of light and to different temperatures. The yields of the
major compounds, citral and myrcene, were evaluated every fifteen days in a gas
chromatograph with a FID detector using analytical curves constructed with
standard solutions. The in vitro bioassay method was used to determine the
fungitoxic activity, in which the essential oil, the major compounds and the
commercial fungicide (Tebuconazole) were applied in several concentrations to
the plant pathogens. The major compounds of the essential oil of lemongrass,
citral and myrcene, were degraded with time in both the presence and absence of
light, but temperature only influenced the degradation of myrcene. The essential
oil completely inhibited the mycelial growth of the plant pathogens at the
concentration of 250 ppm for Rhizoctonia solani, and at 500 ppm for Fusarium
oxysporum and Colletotrichum gloeosporioides, suggesting that this activity can
be a result of the presence of citral.
∗
Orientation Committee: Maria das Graças Cardoso – UFLA (Orientator) e
Paulo Estevão de Souza – UFLA (Joint Orientator).
1
1 INTRODUCAO
Desde os tempos mais remotos, a humanidade utiliza as plantas com
finalidade terapêutica e, enquanto buscava alimentação para a sua sobrevivência,
descobriram-se suas propriedades tóxicas ou curativas. Essas substâncias,
sintetizadas pelas plantas e capazes de provocar reações nos organismos, são
denominadas de princípios ativos.
Além do metabolismo primário, responsável pela produção de
substâncias que realizam suas principais funções vitais, as plantas apresentam o
chamado metabolismo secundário, do qual resultam substâncias de baixo a alto
peso molecular, na maioria das vezes produzidas em pequenas quantidades.
Essas funcionam como agentes defensivos na luta contra predadores, a exemplo
de microrganismos patogênicos, insetos e animais herbívoros.
Entre os metabólicos secundários, há um destaque para os óleos
essenciais, devido à sua utilização crescente nas áreas de alimentos
(condimentos e aromatizantes de alimentos e bebidas) e cosméticos (perfumes e
produtos de higiene). Muitos desses óleos possuem importantes ações
biológicas, o que faz deles objetos de estudos, principalmente pela indústria de
agroquímicos, na busca de substâncias fungicidas, bactericidas e inseticidas
naturais.
O mercado para os produtos naturais tem sido promissor e sua demanda,
crescente; porém, a falta de qualidade da matéria-prima é um problema
freqüente em todos os segmentos da produção agrícola, a qual decorre
geralmente da atual forma de exploração das plantas medicinais e da falta de
controle de qualidade.
O capim-limão (Cymbopogon citratus), pertencente à família das
Poaceae, é uma planta aromática cultivada para produção comercial de óleo
2
essencial, conhecido internacionalmente como óleo de “Lemongrass”. Essa
essência é largamente empregada como agente aromatizante por determinadas
indústrias por seu forte odor de limão. O componente mais importante de seu
óleo é o citral, que é empregado na indústria farmacêutica para síntese de
iononas e vitamina A (Carvalho et al., 2005).
Perante a crescente demanda pela utilização de produtos naturais e a
importância do óleo essencial de capim-limão, objetivou-se avali
3
2 REFERENCIAL TEÓRICO
2.1 Plantas medicinais e aromáticas
O homem tem utilizado as plantas medicinais e aromáticas, desde os
primórdios, na alimentação, na cura de doenças e também na agricultura. Os
egípcios as utilizavam na cosmetologia, medicina e para mumificação de corpos.
Elas foram largamente empregadas também pelos chineses, indianos, hebreus,
árabes, gregos e romanos.
As plantas aromáticas são caracterizadas por possuírem aroma
agradável, capaz de sensibilizar nosso olfato, ao passo que as medicinais, por
sua vez, possuem princípio ativo que, dependendo da concentração, podem
possuir propriedades tóxicas ou curativas (Upnmoor, 2003).
A utilização das plantas medicinais e aromáticas tem sido feita por um
público cada vez maior, recebendo inclusive incentivos da própria OMS
(Organização Mundial de Saúde), que recomendou aos países membros que
desenvolvessem pesquisas visando ao uso da flora com propósitos terapêuticos.
São muitos os fatores que vêm colaborando no desenvolvimento de práticas de
saúde que incluem plantas medicinais, principalmente econômicos e sociais. O
principal fator a contribuir para o crescimento da prática terapêutica consiste no
desenvolvimento de estudos químicos e farmacológicos que comprovem a
eficácia dessas plantas (Castro et al., 2004).
Um aspecto relevante, de acordo com Cechinel Filho & Yunes (1998), é
a quantidade de plantas existentes no planeta; estima-se que haja entre 250-500
mil espécies, sendo a maioria desconhecida sob o ponto de vista científico.
Dessas, somente cerca de 5% têm sido estudadas fitoquimicamente e uma
porcentagem ainda menor avaliada com relação aos aspectos biológicos.
4
Atualmente, os estudos realizados com o intuito de descobrirem novas
substâncias naturais com atividades biológicas não se referem apenas ao
desenvolvimento de fármacos, mas também de substâncias com efeitos
fungitóxicos, inseticidas e bactericidas, podendo, assim, ser utilizadas não
apenas na medicina, mas também na agricultura. Entre esses estudos, há uma
crescente pesquisa com relação aos óleos essenciais, substâncias que possuem
várias ações biológicas comprovadas, destacando as microbiológicas,
principalmente no controle de fitopatógenos, sendo, portanto, compostos
promissores para uma agricultura sustentável e ambientalmente correta.
2.2 Metabólitos secundários
Metabolismo é definido como o conjunto total das transformações das
moléculas orgânicas, catalisadas por enzimas, que ocorre nas células vivas,
suprindo o organismo de energia, renovando suas moléculas e garantindo a
continuidade do estado organizado (Nelson & Cox, 2002). Essas reações
possuem uma certa direção devido à presença de enzimas específicas,
estabelecendo, assim, as rotas metabólicas. Os compostos químicos
transformados (formados ou degradados) são chamados de metabólitos, sendo as
reações envolvidas designadas como anabólicas, catabólicas ou de
biotransformação. Essas reações visam, primariamente, ao aproveitamento de
nutrientes para satisfazer as exigências fundamentais da célula (Santos, 2004).
Além do metabolismo primário, responsável pela síntese de celulose,
lignina, proteínas, lipídeos, açúcares e outras substâncias importantes para a
realização das funções vitais, as plantas também apresentam o chamado
metabolismo secundário (Alves, 2001). Os vegetais produzem uma grande
variedade de compostos orgânicos que não possuem ação direta conhecida em
seus processos vitais, como fotossíntese, respiração, transporte de solutos,
translocação, assimilação de nutrientes, diferenciação ou síntese de carboidratos,
5
proteínas e lipídeos. Tais substâncias são conhecidas como metabólitos
secundários (Taiz & Zeiger, 2004).
Durante muito tempo, os metabólitos secundários foram considerados
como produtos de excreção do vegetal, com estruturas químicas e propriedades
biológicas interessantes. No entanto, sabe-se que muitas dessas substâncias estão
diretamente envolvidas nos mecanismos que permitem a adequação do produtor
a seu meio, sendo reconhecidas várias funções de substâncias pertencentes aos
metabólitos secundários. De fato, várias funções de substâncias pertencentes a
essa classe já foram reconhecidas, como, por exemplo, a defesa contra
herbívoros e microrganismos, a proteção contra os raios UV, a atração de
polinizadores ou animais dispersores de sementes, bem como sua participação
em alelopatias (Santos, 2004; Taiz & Zeiger, 2004).
Segundo Alves (2001), os metabólitos secundários despertam grande
interesse, não só pelas atividades biológicas exercidas pelas plantas em resposta
aos estímulos do meio ambiente, mas também pela imensa atividade
farmacológica desses. Muitos são de importância comercial não apenas na área
farmacêutica, mas também nas áreas alimentar, agronômica, perfumaria e outras.
Entre os metabólitos secundários, os principais grupos de compostos
encontrados com atividade biológica são os alcalóides, flavonóides, cumarinas,
taninos, quinonas e óleos essenciais.
De acordo com Taiz & Zeiger (2004), os metabólitos secundários podem
ser divididos em três grupos distintos: terpenos, compostos fenólicos e
compostos nitrogenados. Porém, a origem de todos eles parte do metabolismo da
glicose, via dois compostos intermediários: o ácido chiquímico e o acetato
(Figura 1) (Santos, 2004).
Os primeiros estudos realizados na elucidação das estruturas
moleculares de metabólitos isolados de plantas foram feitos a partir do século
XX, com a determinação estrutural da morfina, quinina e cânfora, importantes
6
compostos para o tratamento de enfermidades. Com o desenvolvimento de novas
técnicas espectrométricas, como espectrofotometria de ultravioleta,
espectrofotometria no infravermelho, espectrometria de massa e espectrometria
de ressonância magnética nuclear, os químicos têm elucidado rapidamente
estruturas moleculares complexas, até há pouco tempo, praticamente impossíveis
de serem identificadas (Cechinel Filho & Yunes, 1998).
G
l
i
c
o
s
e
Ácido chiquímico
Acetil-Coa
Aminoácidos
aromáticos
Ciclo do ácido
tricarboxílico
Aminoácidos
alifáticos
Produtos
secundários
nitrogenados
Rota do ácid
o
mevalônico
Terpenos
Compostos
fenólicos
FIGURA 1 – Principais rotas de biossíntese de metabólitos secundários.
2.2.1 Óleos essenciais
Simões et al. (2004) definem os óleos essenciais, de acordo com a ISO
(International Standard Organization), como os produtos obtidos de partes de
plantas por meio de destilação por arraste com vapor d’água, bem como os
7
produtos obtidos por expressão dos pericarpos de frutos cítricos. De maneira
geral, são misturas de substâncias orgânicas voláteis, de consistência semelhante
ao óleo, definíveis por um conjunto de propriedades, entre as quais se destacam
volatilidade, aroma agradável, solubilidade em solventes orgânicos apolares,
entre outras. Assim diferem dos óleos fixos, que são misturas de substâncias
lipídicas, obtidos geralmente de sementes. São também denominados de
essências, óleos etéreos ou óleos voláteis. Quando recentemente extraídos são
incolores ou ligeiramente amarelados; porém, alguns podem apresentar
coloração intensa, como o óleo essencial de mil-folhas, de coloração azulada,
pelo seu alto teor em azulenos. Em geral, na presença de oxigênio, luz, calor,
umidade e metais, são muito instáveis, sofrendo inúmeras reações de
degradação; a maioria dos óleos essenciais possui índice de refração e são
opticamente ativos, propriedades essas usadas na sua identificação e controle de
qualidade.
Nos vegetais, os óleos essenciais desenvolvem funções relacionadas
com sua volatilidade, agindo na atração de polinizadores, na proteção contra
predadores, patógenos, perda de água, aumento de temperatura e também
desempenhando funções ecológicas, especialmente como inibidores de
germinação. Essas características tornam as plantas que os produzem poderosas
fontes de agentes biocidas, sendo largamente estudadas na agricultura,
principalmente devido às atividades bactericidas, inseticidas e fungicidas
(Craveiro & Machado, 1986; Harbone, 1993; citados por Simões et al., 2004).
Sua constituição química é muito variada, incluindo hidrocarbonetos
terpênicos, álcoois simples e terpênicos, aldeídos, cetonas, fenóis, ésteres, éteres,
óxidos, peróxidos, furanos, ácidos orgânicos, lactonas e cumarinas, até
compostos com enxofre. No entanto, a maioria é constituída de derivados de
fenilpropanóides ou de terpenóides, sendo esses últimos preponderantes na
8
forma de monoterpenos e sesquiterpenos (Simões et al., 2004; Taiz & Zeiger,
2004).
Os fenilpropanóides formam-se a partir do ácido chiquímico, que forma
as unidades básicas dos ácidos cinâmico e ρ-cumárico, sendo esses e seus
derivados compostos fenólicos simples, contendo um anel benzênico e uma
cadeia lateral de três carbonos de carbono como representado na Figura 2 (Taiz
& Zeiger, 2004).
HO
FIGURA 2 – Representação básica de um fenilpropanóide.
Os terpenóides constituem uma grande variedade de substâncias
vegetais, sendo esse termo empregado para designar todas as substâncias cuja
origem biossintética deriva de unidades do isopreno (2-metil-1,3-butadieno)
(Figura 3).
FIGURA 3 - Estrutura química do isopreno.
9
Os terpenos são classificados pelo número de unidades isoprênicas que
possuem. Os terpenos de 10 átomos de carbono, que têm duas unidades C
5
, são
classificados como monoterpenos; os de 15 átomos de carbono (três unidades
C
5
) são os sesquiterpenos e aqueles de 20 átomos de carbono (quatro unidades
C
5
) são os diterpenos. Os maiores terpenos incluem os triterpenos (30 átomos de
carbono), tetraterpenos (40 átomos de carbono) e os politerpenóides (com mais
de 40 átomos de carbono) (Simões et al., 2004; Taiz & Zeiger, 2004).
Os terpenos são biossintetizados a partir de metabólitos primários no
mínimo por duas rotas diferentes. Pela rota do ácido mevalônico (Figura 4), três
moléculas de acetil-Coa são ligadas por uma série de reações para formar o
ácido mevalônico; esse intermediário é pirofosforilado e desidratado para
produzir isopentenil difosfato (IPP). Esse é a unidade básica de formação dos
terpenos. O IPP também pode ser formado por meio de um conjunto de reações
denominadas rota do metilritrinol fosfato (MEP). Nessa, o isopentenil difosfato
(IPP) e o dimetilalil difosfato (DMAPP) unem-se para formar o geranil difosfato
(GPP), uma molécula de 10 carbonos, a qual dá origem aos monoterpenos. O
GPP, ligando-se a outra molécula de IPP, forma um composto de 15 carbonos,
farnesil difosfato (FPP), precursor da maioria dos sesquiterpenos. A adição de
mais uma molécula de IPP forma o geranilgeranil difosfato (GGPP), com 20
átomos de carbonos, que dá origem aos diterpenos. E a dimerização de FPP e
GGPP forma os triterpenos e os tetraterpenos, com 30 e 40 átomos de carbono,
respectivamente (Simões et al., 2004; Taiz & Zeiger, 2004).
Outra rota de biossíntese de terpenos é a 1-deoxi-D-xilulose-5-fosfato
(DXPS) (Figura 5). Por essa via, o piruvato e o gliceraldeído-3-fosfato formam o
1-deoxi-D-xilose-5-fosfato (DXPS) que, posteriormente, dá origem ao 2-C-
metil-D-eritritol-4-fosfato (MEP). Em seguida, são formados, por sucessivas
reações, o isopentenil-difosfato (IPP) e o dimetilalil-pirofosfato (DMAPP) e, em
seguida, dão origem aos terpenos (Wanke et al., 2001).
10
CH
3
C S CoA
O
CH
3
C
OH
CH
2
COOH
CH
2
CH
2
OH
C
O H
C OHH
CH
2
OP
CH
3
C
O
C
O
OH
C
H
3
C
CH
OH
H
2
C
OH
CH
2
OH
O P
3x Acetil CoA
Ácido mevalônico
Gliceraldeído-
3-fosfato
Piruvato
Metileritritol
fosfato (MEP)
CH
2
O PP
CH
2
O PP
Isopentenil difosfato (IPP, C
5
) Dimetialil difosfato
(DMAPP, C
5
)
Isopreno (C
5
)
Rota do metileritritol fosfatoRota do mevalonato
CH
2
O PP
Geranil difosfato (GPP, C
10
)
CH
2
O PP
Farnesil difosfato (FPP, C
15
)
CH
2
O PP
Geranilgeranil difosfato (GGPP, C
20
)
Monoterpenos (C
10
)
Sesquiterpenos (C
15
)
Triterpenos (C
30
)
Diterpenos (C
20
)
Tetraterpenos (C
40
)
2 x
2 x
Politerpenóides
FIGURA 4 – Representação esquemática da biossíntese de terpenos, tem que as
unidades pentacarbonadas são sintetizadas por duas vias distintas
(Adptado de Taiz & Zeiger, 2004).
11
Via DXPS
1-Deoxi-D-xilulose-5-fosfato
2-C-metil-D-eritritol-4-fosfato
4-(citidina-5-difosfo)-2-C-metil-
D-eritritol
2-C-metil-D-eritritol-2,4-ciclodifosf
a
2-fosfo-4-(citidina-5-di-fosfo)-
2-C-metil-D-eritritol
IPP
DMAP
Terpenos
FIGURA 5 – Representação da biossíntese dos terpenos pala via da 1-deoxi-D-
xilulose-5-fosfato (DXPS) (adaptado de Wanke et al., 2001).
2.2.2 Atividade biológica dos óleos essenciais
Os terpenos abrangem uma grande variedade de substâncias de origem
vegetal e são ecologicamente importantes como defensivos de plantas. Os
monoterpenos apresentados na Figura 6 foram isolados e avaliados quanto à
toxicidade para diferentes insetos. O α-pineno (a) e o β-pineno (b) causaram a
morte de 5% a 10% dos insetos da espécie Dendroctonus micans, o 3-careno (c)
foi testado contra Ips typographus, ocasionando a morte de 7-20% desses
insetos; o limoneno (d) não apresentou efeito inseticida quando avaliado contra
12
Rhyzophagus grandis e o α-terpineno (e), aplicado sobre Fórmica rupa, mostrou
ser um potencial inseticida, causando uma taxa de mortalidade de 100% (Viegas
Junior, 2003).
a
b c
d
e
FIGURA 6 – Estruturas químicas do α-pineno (a), β-pineno (b), 3-careno (c),
13
encontrado em uma concentração de 59,43% nesse óleo, sugerindo que esse
composto é o responsável por tal ação.
Nos trabalhos de Salgado et al. (2003) demonstrou-se o efeito fungicida
dos óleos essenciais de três espécies de eucalipto (Eucalyptus urophylla,
Eucalyptus citriodora e Eucalyptus camaldulensis) sobre os fitopatógenos
(Fusarium oxysporum, Botrytis cinerea e Bipolaris sorokiniana). Entre os óleos
estudados, o de Eucalyptus urophylla foi o que apresentou maior ação
fungitóxica, que foi atribuída ao globulol, composto majoritário desse óleo, não
detectado nos demais.
Avaliando o efeito fungitóxico de 37 óleos essenciais sobre Fusarium
verticillioides, F. proliferatum e F. graminearum, Velluti et al. (2004)
encontraram atividades fungitóxicas para os óleos de orégano, cinamomo e
cravo-da-índia. Essa atividade foi atribuída ao eugenol, composto majoritário
dos óleos essenciais de cravo-da-índia e cinamomo, e ao carvacrol (Figura 7),
composto majoritário do óleo essencial de orégano.
O
H
OCH
3
HO
a
b
FIGURA 7 – Estruturas do eugenol (a) e do carvacrol (b).
Em estudos feitos por Nguefack et al. (2004) verificou-se que os óleos
essenciais de Ocimum gratissimum, Thymus vulgaris e Cymbopogon citratus
14
apresentavam um grande potencial biológico como conservantes de alimentos,
pois foram testados contra Fusarium moniliforme, Aspergillus flavus e
Aspergillus fumigatus, apresentando alta toxicidade.
Al-Burtamani et al. (2005) demonstraram o efeito bactericida e
fungicida do óleo essencial de Haplophyllum tuberculatum sobre as bactérias
Escherichia coli, Staphylococus aureus, Salmonella choleraesuis, Candida
albicans e Bacillus subtilis; e os fungos Alternaria alternata, Bipolaris sp,
Curvularia lunta, Fusarium oxysporium e Stemphylium solani. O efeito
bactericida e fungitóxico desse óleo foi atribuído aos seus componentes
majoritártios β-felandreno (23,3%), limoneno (12,6%), (Z)-β-ocimeno (12,3%),
β-cariofileno (11,6%), mirceno (11,3%) e α-felandreno (10,9%).
Oxenham et al. (2005) demonstraram, com dois quimiotipos de óleos
essenciais de Ocimum basilicum, o efeito fungitóxico sobre Botrytis fabae dos
compostos metil chavicol, linalol, eugenol e eucalipitol, componentes
majoritários desses óleos essenciais.
Cakir et al. (2005) constataram efeito fungicida do óleo essencial de
Hypericum linarioides em seis espécies do gênero Fusarium (F. acuminatum, F.
culmorum, F. equiseti, F. oxysporum, F. sambucinum e F. solani); no entanto,
não identificaram o composto responsável por esse efeito, pois os compostos
presentes no óleo essencial encontravam-se em concentrações baixas e
semelhantes.
Pereira (2006) comprovou efeito inibitório dos óleos essenciais de
Cymbopogon citratus, Origanum vulgare e Syzygium aromaticum sobre as
bactérias Staphylococcus aureus e Escherichia coli, concluindo que o efeito foi
devido à presença dos compostos majoritários citral, terpen-4-ol e eugenol
encontrados nesses óleos, respectivamente.
Estudando a atividade fungitóxica dos óleos essenciais extraídos das
folhas, caule e frutos das seguintes espécies de pimentas: Piper aduncum, Piper
15
arboreum e Piper tuberculatum; sobre Cladosporium sphaerospermum e
Cladosporium cladosporioides, Navickiene et al. (2006) encontraram atividade
dos óleos essenciais extraídos dos frutos de Piper aduncum e Piper
tuberculatum contra os dois microrganismos, das folhas de Piper aduncum e do
caule de Piper tuberculatum contra Cladosporium sphaerospermum e não
constataram atividade alguma para os óleos essenciais extraídos das partes de
Piper arboreum.
Entretanto, há muitos estudos sobre os óleos essenciais, principalmente
quanto às suas atividades biológicas.
2.3 Espécie Cymbopogon citratus (capim-limão)
Cymbopogon citratus é conhecido popularmente no Brasil como capim-
limão, capim-cidró, capim-cheiroso, capim-cidreira, capim-cidrão, citronela-de-
java e erva-cidreira. É uma espécie da família das Gramíneas, subfamília
Panicoideae (Figura 8) (Abegaz & Yohannes, 1983).
Trata-se de uma planta herbácea, cespitosa, estolonífera, perene, que
cresce cerca de 1,0 m em altura, forma touceiras de perfilhos ao nível do solo,
apresentando rizomas semi-subterrâneos, acaule, de folhas longas, linear-
lanceoladas, ásperas nas duas faces, paralelinérveas, bordo liso, cortante, nervura
central grossa e caniculada, recobertas por uma fina camada de cera. (Castro &
Ramos, 2003; Correia, 1984)
16
FIGURA 8 – Aspecto geral de uma touceira de Cymbopogon citratus (capim-
limão).
É originária da Ásia, cultivada em todas as regiões dos trópicos,
preferindo climas quentes e úmidos, com chuvas bem distribuídas e temperatura
média elevada, não resistindo a regiões frias sujeitas a geadas. É cultivado a
pleno sol, cresce em qualquer solo, desde que bem drenado e fértil (Corrêa
Junior et al., 1994).
No Brasil, as folhas de capim-limão apresentam largo uso popular como
sedativo, sudorífero, carminativo, febrífugo, diurético, antipirético e anti-
reumático. Há também registro de seu uso caseiro para combater diversas
afecções das vias respiratórias e digestivas. Na Ásia, o chá de suas folhas possui
emprego popular como febrífugo e as raízes são usadas como goma de mascar
para a limpeza dos dentes (Figueiredo et al., 2002).
Os constituintes químicos do capim-limão são descritos em função dos
grupos químicos a que pertencem: hidrocarbonetos, álcoois, aldeídos, cetonas,
flavonóides e alcalóides. Entre os constituintes fixos da parte aérea, foram
17
encontrados flavonóides, substâncias alcalóidicas, uma saponina esterólica, β-
sitosterol, hexacosanol e triacontanol, triterpenóides, cimbopogonol e
cimbopagona (Silva Junior & Verona, 1997).
Essa planta produz óleo essencial com forte odor de limão, sendo
amplamente empregado na indústria farmacêutica e de perfumaria, conhecido
internacionalmente como “lemongrass”, sendo os principais países produtores a
Índia, Guatemala, Haiti, Madagascar, Indochina e Brasil (Leal et al., 2001).
2.3.1 Óleo essencial de Cymbopogon citratus
O óleo essencial de capim-limão possui forte odor de limão e é
largamente empregado como aromatizante em perfumaria e cosmética, na
preparação de colônias, sabonetes e desodorantes. Porém, seu maior emprego
tem sido na indústria farmacêutica, servindo de material de partida para síntese
de importantes compostos, como iononas, metil-iononas e vitamina A.
Sua composição química é relatada em diversos trabalhos, nos quais o
citral é citado como o constituinte principal, seguido por outros compostos, tais
como o mirceno, que pode ser encontrado em altos teores. Além desses,
encontram-se vários aldeídos, como o citronelal, isovaleraldeído e decilaldeído;
cetonas, álcoois como o geraniol, nerol, metil heptenol, farnesol. (Costa et al.,
2005; Lewinsohn et al., 1998; Pereira, 2006; Teske & Trentini, 1997).
Devido ao seu valor econômico, vários estudos sobre o rendimento do
óleo essencial e o processamento pós-colheita foram realizados. Martins et al.
(2002) encontraram teores de óleo essencial em relação à matéria seca que
variaram de 1,30% a 1,67%, dependendo da temperatura de secagem e da
velocidade do ar. Silva et al. (2005) correlacionaram vários métodos de secagem
com o rendimento do óleo essencial, constatando que a secagem em lona preta
ao sol foi o mais eficiente, encontrando um teor de 1,0622% de óleo essencial.
Costa et al. (2005) estudaram a influência da fragmentação das folhas secas no
18
rendimento do óleo essencial, encontrando rendimentos variáveis entre 8,148 a
14,525 g/kg de matéria seca, verificando que a matéria seca, quando reduzida a
pó, proporcionava um maior rendimento.
O citral, constituinte majoritário do óleo de capim-limão (Cymbopogon
citratus), é citado como sendo o responsável pelas muitas atividades atribuídas
ao seu óleo essencial, tais como germicidas, repelentes de insetos, aplicações na
indústria farmacêutica, entre outras. Dessa maneira, há uma grande importância
em avaliar o seu teor no óleo essencial. De acordo com Siqueira et al. (1986),
citado por Martins et al. (2002), o teor de citral no óleo essencial das plantações
brasileiras está em torno de 75% a 86%, valor bastante satisfatório para o
mercado internacional.
Leal et al. (2001) avaliaram o efeito da variação estacional e horário de
colheita sobre o teor foliar do óleo essencial, encontrando uma variação de
acordo com a época de colheita, o que evidencia a influência de variações
climáticas sazonais sobre o rendimento de óleo essencial.
Lewinsohn et al. (1998) demonstraram que o óleo essencial de
Cymbopogon citratus encontra-se em células parenquimáticas diferenciadas
presentes em suas folhas, e não em estruturas secretoras especializadas, tais
como pêlos ou tricomas glandulares, corpos oleíferos, bolsas lisígenas ou
)--dimetilncta-i
19
CHO OHC
Geranial
Neral
FIGURA 9 – Estruturas químicas dos isômeros formadores do citral.
Kikonyogo et al. (1999) revelaram a capacidade do citral de agir como
inibidor e substrato da enzima aldeído desidrogenase, impossibilitando a
biosíntese do ácido retinóico. Esses citam o geranial como o composto
responsável por tal ação. Nakamura et al. (2003), utilizando células de fígado de
ratos, verificaram a habilidade do citral em suprimir o estresse oxidativo,
possibilitando diretamente a indução da glutationa S-transferase, enzima capaz
de degradar hidrocarbonetos aromáticos policíclicos. Foi demonstrado também
que o geranial é o responsável por tal atividade do citral, devido à presença da
carbonila de aldeído, conjugada com dupla ligação na posição trans. Com isso, o
citral pode ser indicado como agente quimiopreventivo contra o câncer de pele.
A rota bioquímica para formação do citral (Figura 10), partindo do
geranil difosfato (GPP), foi proposta por Iijima et al. (2006); o GPP sofre uma
reação catalisada pela geraniol sintase (GES), sendo convertido em geraniol. O
geraniol é, então, oxidado pela ação da geraniol desidrogenase (GEDH1)
originando o geranial. Por meio de uma tautomerização ceto-enólica, que facilita
a rotação da ligação entre os carbonos dois e três, o geranial que possui a
configuração E é convertido em neral configuração Z.
20
OPP OH
C
O
H
C
OH
H
C
O
H
C
OH
H
GPP
GES
GEDH1
CAD1
Geraniol
Geranial
Neral
FIGURA 10 – Rota bioquímica de formação do citral (Adaptado de Iijima et al.,
2006).
O mirceno, outro composto majoritário encontrado no óleo essencial do
capim-limão, pode ser observado em ampla variedade de plantas. É um
monoterpeno acíclico, como observado na Figura 11, de nome sistemático 7-
metil-3-metileno-1,6-octadieno.
Mircen
o
FIGURA 11 – Estrutura química do mirceno.
21
Em vários estudos são demonstradas as atividades biológicas desse
composto; De-Oliveira et al. (1997a) avaliaram a capacidade desse em interferir
na atividade enzimática de algumas enzimas microssomais, principalmente
monooxigenases. Em outro trabalho, De-oliveira et al. (1997b) demonstraram
que o mirceno é um inibidor reversível da isoenzima CYP2B1, pertencente à
subfamilia de enzimas do citocromo P4502B, presente em mamíferos. Com isso
ele, é capaz de interferir na biotransformação de drogas, como ciclofosfamidas,
barbituratos, bromobenzeno e outras, que são substratos dessa enzima.
2.4 Fitopatógenos
Os fungos são organismos eucarióticos, aclorofilados (heterotróficos),
portadores de esporos, que podem reproduzir-se sexuadamente (forma
teleomórfica) ou assexuadamente (forma anamórfica). Suas características
sofrem grandes variações por causa das condições culturais, sendo diversificados
filogeneticamente. São conhecidas aproximadamente 60.000 espécies de fungos
que se diferem em aspectos físicos, químicos, fisiológicos, etc.
Os fungos exercem um papel de grande relevância nos diferentes
ecossistemas que integram. Do ponto de vista humano, os fungos podem ter um
lado positivo e outro negativo. Positivamente, são utilizados na indústria, na
medicina, na alimentação, entre outras áreas. Por outro lado, são maléficos,
podendo causar doenças em homens e animais. Além disso, são os principais
causadores de doenças em plantas, acarretando sérios prejuízos na agricultura
mundial (Bergamin Filho et al., 1995).
2.4.1 Fusarium oxysporum
Os fungos do gênero Fusarium são de grande importância
fitopatológica, podendo ser associados a podridões de raiz, murchas vasculares e
22
deterioração de sementes. Esse gênero apresenta também algumas espécies
produtoras de micotoxinas em grãos armazenados (Bergamin Filho et al. 1995).
Pertence ao reino Fungi, divisão: Eumycota, subdivisão: Deuteromycotina,
classe: Hyphomycetes, ordem: Moniliales, família: Moniliaceae e gênero:
Fusarium. Sua fase teleomórfica (sexual) pertence à ordem Hypocreales e
gênero Nectria. (Lacaz et al., 1998).
A maioria das espécies do gênero Fusarium habita as partes subterrâneas
e raízes das plantas, fragmentos vegetais e compostos orgânicos depositados até
100 cm de profundidade do solo. Esses fungos, parasitas ou saprófitos dispersam
seus propágulos por ação da água de chuva, ventos e insetos (Godoy &
Colombo, 2004).
De acordo com Guarro & Gene (1992), as culturas de Fusarium spp são
caracterizadas pelo crescimento rápido da colônia, com micélio aveludado e
levemente cotonoso, opaco ou discretamente brilhante. Após sete a dez dias de
incubação a 25ºC, o fungo pode apresentar características de pigmentação do
micélio de cor rosa, púrpuras, cinza ou amarelas, sendo essas características
importantes para identificação das espécies.
Os fungos do gênero Fusarium são considerados um dos mais
importantes fitopatógenos do mundo, tendo, nos últimos anos, em alguns países,
adquirido importância como produtores de micotoxinas responsáveis por
doenças em animais e humanos. O mal-do-panamá (fusariose ou murcha de
fusarium) é causado pelo fungo Fusarium oxysporum cubense, um fungo de solo
com alta capacidade de sobrevivência. Essa espécie está em todos os estados
brasileiros produtores de banana, uma das frutas de maior consumo in natura do
mundo. O controle químico, a rotação de culturas e a inundação, entre outras
medidas de controle, não têm sido eficientes (Ventura, 1999).
A maior parte das espécies do gênero parasita sementes de cereais e
outros frutos do campo, causando danos antes e depois da colheita, gerando
23
prejuízos à agricultura mundial. A variedade Fusarium oxysporum produz
doenças em tomate, batata-doce, pêra. Essa foi responsável pela doença das
bananas do Panamá, ocasionando o abandono de milhares de acres na América
Central (Alexaoupouos et al., 1996).
2.4.2 Colletotrichum gloeosporioides
É um fungo mitospórico, ordem Melanconiales, família Melancoiaceae.
O telomorfo (fase sexuada) é descrito como Glomerella conguladta, no filo
Ascomycota, classe Ascomycetes, ordem Phyllachorales e família
Glomerellaceae (Martins et al., 2005).
Várias espécies de Colletotrichum são responsáveis por causarem
antracnose em frutos, principal doença de pós-colheita, afetando frutas como a
banana, o caju, a manga, o mamão, o maracujá, nas regiões tropicais e
subtropicais do planeta. (Peres et al., 2002).
Segundo Lopez (2001), patógenos do gênero Colletotrichum, além de
causarem danos a frutos em período de pós-colheita, parasitam mais de uma
centena de angiospermas, sendo causadores de doenças economicamente
importantes em cereais, gramíneas, leguminosas, plantações perenes, afetando a
parte aérea das plantas hospedeiras em todos os estágios de desenvolvimento,
desde plantas adultas, até sementes.
A antracnose em frutos é caracterizada por apresentar lesões
arredondadas, grandes, necróticas e bordos ligeiramente elevados com o centro
dos tecidos deprimidos, onde são produzidas massas de conídios de coloração
alaranjada, ocorrendo uma podridão-mole nos frutos, prejudicando a sua
comercialização (Bailey et al., 1992; Lima et al., 1993).
Colletotrichum gloeosporioides possui vários hospedeiros que infectam
goiabeira, mangueira, mamoeiro, cajueiro, certas aonáeas, como pinha, biriba e
frutíferas do grupo das Spondias, como cajazeira, seriguela, entre outras
24
(Menezes, 2002). Segundo Junqueira et al. (2005), a antracnose no
maracujazeiro encontra-se disseminada em todas as regiões produtoras, não
apenas no Brasil, como também em outros países que exploram a cultura.
De acordo com Orozco (2003),
25
condições ambientais, como a temperatura, umidade, aeração, concentração de
CO
2
e pH do solo. O tipo de material orgânico presente no solo, a relação C:N e
o nível de decomposição também são importantes. (Sannazzaro et al., 2001).
26
3 MATERIAL E MÉTODOS
3.1 Material vegetal
O material vegetal (folhas frescas de Cymbopogon citratus) foi coletado
na Empresa de Produção de Sementes de Hortaliças “HORTIAGRO”, localizada
no município de Ijaci – MG. A coleta foi realizada no dia 25 de maio de 2006 no
período da manhã, em torno das 7 horas, com temperatura amena e ausência de
chuva. Foram coletadas folhas jovens, cortadas a uma altura de 35 cm do solo.
3.2 Extração do óleo essencial
O processo de extração do óleo essencial foi realizado no Laboratório de
Química Orgânica do Departamento de Química da Universidade Federal de
Lavras (UFLA) – Lavras – MG. O método empregado foi o de arraste a vapor,
utilizando-se o aparelho de Clevenger modificado adaptado a um balão de fundo
redondo com capacidade de 4 litros (Castro et al., 2006). As folhas frescas de
Cymbopogon citratus foram picadas para aumentar a superfície de contato e
favorecer a extração do óleo essencial. Em seguida, elas foram colocadas no
balão e recobertas com água. O processo de extração foi realizado em um
período de 2 horas, mantendo a solução em ebulição. Posteriormente, coletou-se
o hidrolato, que foi centrifugado em centrífuga de cruzeta horizontal a 965,36 x
G por 5 minutos. O óleo foi retirado com o auxílio de uma pipeta de Pasteur e
acondicionado em frasco de vidro.
3.2.1 Identificação e quantificação dos constituintes químicos
A análise qualitativa do óleo essencial foi realizada no Laboratório de
Análises e Sínteses de Agroquímicos do Departamento de Química da
27
Universidade Federal de Viçosa (UFV) – Viçosa – MG, por cromatografia
gasosa acoplada à espectrometria de massa CG/(EM). O cromatógrafo utilizado
foi o modelo Shimadzu CG-17A equipado com detector seletivo de massa
modelo QP 5000. O equipamento foi operado nas seguintes condições: coluna
capilar de sílica fundida (30m X 0,25mm) com fase ligada DB5 (0,25 µm de
espessura de filme); temperatura do injetor de 220ºC; programação da coluna
com temperatura inicial de 40ºC, sendo acrescidos 3ºC a cada minuto, até atingir
240ºC; gás carreador hélio (1mL min
-1
); pressão inicial na coluna de 100,2 KPa;
taxa de split 1:10 e volume injetado de 1 µL (1% de solução em diclorometano).
Para o espectrômetro de massas (EM), foram utilizadas as seguintes condições:
energia de impacto de 70 eV; velocidade de decomposição 1000; intervalo de
decomposição de 0,50; e fragmentos de 45 Da e 450 Da decompostos. Foi
injetada, nas mesmas condições da amostra, uma série de padrões de
hidrocarbonetos (C
9
H
20
....... C
26
H
54
). Os espectros obtidos foram comparados
com o banco de dados da biblioteca Wiley 229 e o índice Kovats calculado para
cada constituinte foi comparado com o tabelado, de acordo com Adams (1995).
A avaliação dos teores dos constituintes do óleo essencial foi feita no
Laboratório de Química Orgânica do Departamento de Química da Universidade
Federal de Lavras (UFLA) – Lavras – MG, utilizando um cromatógrafo gasoso
Shimadzu GC 17A equipado com detector por ionização de chamas (FID), nas
condições operacionais: coluna capilar DB5; programação da coluna com
temperatura inicial de 40ºC até 240ºC; temperatura do injetor de 220ºC;
temperatura de detector de 240ºC; gás carreador nitrogênio (2,2 mL min
-1
); taxa
de split 1:10 e volume injetado de 1 µL (1% de solução em diclorometano) e
pressão na coluna de 115 KPa, sendo a quantificação de cada constituinte obtida
por meio de normalização de áreas (%).
28
3.2.2 Avaliação da estabilidade
Os estudos para avaliação da estabilidade do óleo essencial foram feitos
no Laboratório de Química Orgânica do Departamento de Química da
Universidade Federal de Lavras (UFLA) – Lavras – MG, sendo avaliados de
acordo com a variação dos teores de citral e mirceno em relação ao tempo de
exposição do óleo a diferentes temperaturas e ausência / presença de luz.
Foram colocados 3 mL do óleo essencial em frascos de vidro
transparente com capacidade para 10 mL. Para a avaliação da temperatura em
relação ao tempo, os frascos foram envolvidos por papel-alumínio para proteção
contra a luz e devidamente vedados. Esses foram divididos em três lotes e
acondicionados nos seguintes ambientes: em geladeira cuja temperatura variou
de 5 a 7 ºC (temperatura baixa); em estufa com temperatura de 35 a 40°C
(temperatura alta) e em temperatura ambiente com média de temperatura de
18°C. Para a avaliação da luz, os frascos foram mantidos em temperatura
ambiente com média de 18 °C (mínima de 10,7e máxima de 28,3 °C) e divididos
em dois tratamentos, um com os frascos envolvidos por papel-alumínio e outro
com os frascos sem proteção alguma. Os teores de citral e mirceno foram
avaliados por cromatografia gasosa a cada 15 dias por um período de 120 dias, a
partir da data de extração.
As análises quantitativas de citral e mirceno foram efetuadas utilizando-
se cromatógrafo gasoso Shimadzu GC 17A equipado com detector por ionização
de chamas (FID), nas seguintes condições experimentais: coluna DB5;
temperatura do injetor de 220°C; temperatura do detector de 240°C;
programação da coluna com temperatura constante de 100°C; gás carreador
Nitrogênio (1 mL/min); taxa de split 1:20; e volume injetado de 1µL (1,5% de
solução em diclorometano). Para a calibração externa, prepararam-se soluções
com os padrões de citral e mirceno. A solução-padrão de citral foi preparada nas
concentrações de 4, 6, 8, 10, 12 mg.mL
-1
, sendo constituída dos dois
29
componentes, geranial e neral, utilizando diclorometano como solvente. Já a
solução-padrão de mirceno foi preparada nas concentrações de 0.5, 1.0, 1.5, 2.0,
2.5 mg.mL
-1
utilizando hexano como solvente. Por meio das curvas analíticas
(em anexo) construídas com as soluções-padrão, determinaram-se os teores dos
compostos analisados, transformando-se os valores de resposta registrados em
teor dos componentes. A determinação do teor de citral foi dada pela soma das
áreas do geranial e do neral (Martins et al., 2002).
Foram realizadas análises por espectrometria no infravermelho com o
óleo essencial fresco e para cada tratamento no fim de cada experimento, a fim
de verificar possíveis alterações nos grupos funcionais dos compostos presentes
no óleo essencial. Os espectros foram obtidos em espectrômetro Excalibur
Series Digilab FTS – 3000, utilizando-se a técnica de filme em janela de KBr.
3.2.2.1 Análise estatística
O delineamento experimental utilizado foi inteiramente casualizado,
com três repetições. Os tratamentos foram dispostos no esquema fatorial de 2 x 9
para avaliação quanto à luz, sendo constituído pelas combinações dos níveis de
luz (presença e ausência) com os tempos de exposição (0, 15, 30, 45, 60, 75, 90,
105, 120 dias) e 3 x 9, para avaliação quanto à temperatura, sendo construído
pelas combinações das diferentes temperaturas (baixa, ambiente e alta) com os
tempos de exposição (0, 15, 30, 45, 60, 75, 90, 105, 120 dias).
Ambas as análises de variância foram feitas de acordo com sugestão de
Pimentel-Gomes (2000) para os experimentos fatoriais, sendo utilizados a
análise de regressão para avaliar o comportamento dos constituintes em relação
ao tempo de exposição, o Teste T (5%) para comparar os efeitos médios, e o
Teste F para confirmar a variação nos teores dos compostos para os tratamentos
em cada tempo, e na média geral dos tempos.
30
3.3 Atividade biológica
Os experimentos foram realizados no Laboratório de Epidemiologia e
Manejo do Departamento de Fitopatologia da Universidade Federal de Lavras
(UFLA) – Lavras – MG. As culturas dos fungos foram obtidas da micoteca do
Departamento de Fitopatologia e identificadas como Fusarium oxysporum,
Colletotrichum gloeosporioides e Rhizoctonia solani. O método utilizado foi o
bioanalítico “in vitro”, por meio do qual avaliaram-se os efeitos do óleo
essencial (fresco) de Cymbopogon citratus, dos compostos citral e mirceno, e do
fungicida comercial Folicur® (Tebuconazole 20% m/v, composto pertencente ao
grupo dos triazóis Figura 12) em diferentes concentrações, sobre o crescimento
e/ou inibição micelial das culturas fúngicas.
CH
2
CH
2
Cl C
OH
CH
2
N
N
N
C(CH
3
)
3
FIGURA 12 – Estrutura química do Tebuconazole (alfa-terc-butil-alfa-(p-
clorofenetil)-1 H – 1, 2, 4 – triazole – 1 – etanol).
O óleo essencial foi diluído em éter etílico e em uma capela asséptica de
fluxo laminar, sendo incorporado ao meio de cultura BDA (batata, dextrose,
agar) previamente esterilizados e fundidos a uma temperatura de 45–50°C,
obtendo-se as concentrações de 100, 250, 500, 1000 e 1500 ppm. Preparou-se
31
um tratamento-controle com o BDA puro (testemunha absoluta) e outro com
BDA mais éter etílico (testemunha relativa), para avaliação do efeito desse sobre
os fitopatógenos.
Em placas de Petri de 9 cm de diâmetro, previamente esterilizadas em
forno específico por 90 minutos, foram adicionados aproximadamente 25 mL de
meio de cultura com a concentração de óleo essencial correspondente. Após a
solidificação, discos de aproximadamente 9 mm de diâmetros contendo micélios
dos fungos (retirados de colônia com 15 dias em BDA) foram repicados para o
centro das placas, as quais foram vedadas com filme plástico e colocadas em
incubadora com “biological oxygen demand” (BOD) a 25 °C para os
fitopatógenos Fusarium oxysporum e Colletotrichum gloeosporioides e a 21 °C
para Rhizoctonia solani e fotoperíodo de 12 horas. A medição do crescimento
micelial das culturas de Fusarium oxysporum e Colletotrichum gloeosporioides
foi realizada no décimo dia após a inoculação dos fungos, e no sexto dia para
Rhizoctonia solani. Para tal, foram traçadas duas retas pela placa de Petri
passando pelo centro do disco de 9 mm: uma perpendicular à outra; as leituras
foram realizadas pela medição do diâmetro de crescimento das colônias (médias
de duas medidas diametralmente opostas) (Balbi-Peña et al., 2006). A
porcentagem de inibição do crescimento micelial foi calculada para cada
dosagem em relação à testemunha absoluta.
Para aplicação dos padrões de citral e mirceno, foi empregada a mesma
metodologia utilizada na aplicação do óleo essencial, ao passo que, para a
aplicação do Tebuconazole, as alterações ocorreram nas concentrações
utilizadas, 1, 5, 10, 25, 50 e 100 ppm, e a diluição desse, feita em água destilada
e esterilizada, não havendo, assim, a preparação de testemunhas relativas.
32
4 RESULTADOS E DISCUSSÃO
4.1 Identificação e quantificação dos constituintes do óleo essencial
O óleo essencial de Cymbopogon citratus apresentou, entre outros
compostos, o citral, constituído pela mistura isomérica de geranial (a) e neral
(b), mirceno (c), (Z)-β-ocimeno (d), (E)- β-ocimeno (e), linalol (f) e 2-
undecanona (g) conforme mostrado na Figura 13.
CHO
OHC
OH
CH
3
C
O
(CH
2
)
8
CH
3
a
b
c
d
e
f
g
FIGURA 13 – Compostos identificados no óleo essencial de capim-limão
(Cymbopogon citratus).
Esses compostos foram identificados por meio da comparação do índice
de Kovat`s (IK), calculados com os tabelados de acordo com Adams (1995), e
dos espectros de massa obtidos, com os do banco de dados da biblioteca Wiley
33
229. Seus teores e seus índices de Kovat`s calculados estão representados na
Tabela 1.
Os componentes majoritários encontrados no óleo essencial de
Cymbopogon citratus (Tabela 1) e quantificados por normalização de áreas pela
análise do cromatograma (em anexo) obtido por CG com detector FID foram o
neral (31.89%) e geranial (37,42%), seguidos pelo mirceno (23.77%). Esses
resultados estão de acordo com diversos autores, que afirmam a presença do
citral como componente majoritário do óleo essencial de Cymbopogon citratus.
TABELA 1 - Constituintes do óleo essencial de Cymbopogon citratus
identificados por CG/EM e seus respectivos teores.
Constiuintes IK calculado Teor (%)
Mirceno 991 23.77
(Z)-β-ocimeno
1040 0.50
(E)- β-ocimeno
1051 0.28
Linalol 1199 0.82
Neral 1244 31.89
Geranial 1273 37.42
2-undecanona 1292 0.27
Outros _ 5.87
Total 100
Rauber et al. (2001) mostraram que, de acordo com o período de
colheita, ocorria variação nas concentrações dos constituintes encontrados no
óleo essencial de Cymbopogon citratus. O citral manteve-se como composto
majoritário, com concentração de 74,7 a 80,9%, o mirceno, com teor de 8,7% a
34
13,1%; e o geraniol, com 1,7% a 3,7%; Concluíram que essas variações se
devem não apenas às características genéticas das plantas, mas também às
condições ambientais e características de cultivo.
Cimanga et al. (2002) trabalharam com óleo essencial de Cymbopogon
citratus, cultivado na República Democrática do Congo, e encontraram teores
consideráveis de limoneno (3,1%) e nerol (12,5%), compostos que não foram
identificados no óleo estudado. Nesse mesmo período, Martins et al. (2002)
estudaram o efeito da secagem sobre o teor de citral e encontraram uma
proporção de 61,5% desse no óleo.
Kanko et al. (2004) avaliaram as propriedades físico-químicas do óleo
essencial de plantas de Cymbopogon citratus cultivadas em Abidjan (Costa do
Marfim), e encontraram o mirceno como componente principal na concentração
de 67%. Costa et al. (2005) estudaram o rendimento do óleo essencial de
Cymbopogon citratus e identificaram por CG/EM vários compostos não
identificados no óleo estudado, tais como 6-metil-5-hepten-2-ona, geraniol,
epóxido linalolóxido e tridecanona; esses pesquisadores não detectaram a
presença de mirceno, (Z)-β-ocimeno e (E)-β-ocimeno, entretanto, citam o citral
como constituinte majoritário.
4.2 Avaliação da estabilidade
Pelos resultados obtidos na avaliação da estabilidade do óleo essencial
de capim-limão (C. Citratus), verificou-se que houve efeito significativo dos
fatores luz e tempo e também da interação desses fatores sobre as porcentagens
de citral e mirceno. Por meio dessa interação, observou-se a existência da
variação do teor de citral e mirceno, dependendo da presença ou ausência de luz
e do tempo de exposição. Constatou-se uma redução no teor médio de mirceno e
citral com o decorrer do tempo, variando em relação à presença/ausência da luz.
35
Observando os dados descritos na Tabela 2, verifica-se que não houve
variação significativa no teor de citral entre os tratamentos nos primeiros quinze
dias; a diferença pode ser observada a partir de trinta a sessenta dias, não sendo
observada com setenta e cinco dias, voltando a ser observada novamente no
período de noventa até cento e vinte dias.
Entretanto, analisando os teores de mirceno apresentados na Tabela 3,
constata-se uma variação significativa com quinze dias de exposição até setenta
e cinco dias; após esse período não houve variação, sendo essa observada
novamente no período entre noventa e cento e vinte dias.
TABELA 2 - Resultados médios do teor de citral no óleo essencial de
Cymbopogon citratus, com relação ao tempo, submetido à
presença ou ausência de luz.
Tratamentos Tempo
(dias)
Presença Ausência
0 74,72 a 74,72 a
15 68,73 a 69,67 a
30 63,02 a 67,23 b
45 61,36 a 65,04 b
60 59,53 a 62,56 b
75 56,67 a 58,89 a
90 51,88 a 55,41 b
105 43,96 a 52,62 b
120 40,42 a 50,59 b
Médias seguidas pela mesma letra na linha não diferem entre si pelo teste de
Tukey a 5%
36
TABELA 3 - Resultados médios do teor de mirceno no óleo essencial de
Cymbopogon citratus, com relação ao tempo, submetido à
presença ou ausência de luz.
Tratamentos Tempo
(dias)
Presença Ausência
0 18,76 a 18,76 a
15 14,47 a 16,13 b
30 13,80 a 15,40 b
45 12,51 a 14,51 b
60 11,65 a 13,81 b
75 9,89 a 11,78 a
90 8,37 a 11,31 b
105 6,30 a 9,34 b
120 5,08 a 8,91 b
Médias seguidas pela mesma letra na linha não diferem entre si pelo teste de
Tukey a 5%
Nas Figuras 14 e 15 observa-se, pela análise de regressão, o decréscimo
dos teores de citral e mirceno no óleo essencial em relação ao tempo e na
presença /ausência de luz. Analisando os coeficientes angulares das equações
para o decréscimo do teor de citral e mirceno, observou-se que, para os dois
compostos, os coeficientes angulares na presença de luz foram maiores (0,265
para o citral e 0,103 para o mirceno), o que evidencia uma maior taxa de
degradação dos compostos na presença de luz.
37
FIGURA 14 - Decréscimo dos teores de citral no óleo essencial de Cymbopogon
citratus em relação ao tempo e à presença /ausência de luz.
FIGURA 15 - Decréscimo dos teores de mirceno no óleo essencial de
Cymbopogon citratus em relação ao tempo e à presença
/ausência de luz.
35
40
45
50
55
60
65
70
75
0 50 100 150
Tempo (dias)
Teor de citral (%)
Presença de luz Ausência de luz
Ypresença = -0,265X + 73,708
R
2
= 0,9685
Yausência = -0,197X + 73,693
R
2
= 0,9929
4
9
14
19
0 50 100 150
Tempo (dias)
Teor de mirceno (%)
Presença de luz Ausência de luz
Yausência = -0,078X + 18,044
R
2
= 0,9775
Ypresença = -0,103X + 17,389
R
2
= 0,9698
38
Na avaliação da estabilidade dos constituintes majoritários do óleo
essencial em relação à temperatura, observou-se uma variação significativa para
as variáveis temperatura e tempo, para os dois compostos analisados; no entanto,
a interação entre o tempo e a temperatura não foi significativa para o citral.
Não se observou variação significativa para a degradação do citral entre
as temperaturas alta e baixa, ambiente e alta; no entanto, observou-se variação
apenas entre as temperaturas baixa e ambiente. No entanto para o mirceno,
observou-se variação significativa entre todas as temperaturas.
Analisando os dados da Tabela 4, constatou-se que o teor de citral
decresceu com o tempo; porém, não houve diferença em relação às
temperaturas.
TABELA 4 - Resultados médios do teor de citral no óleo essencial de
Cymbopogon citratus, com relação ao tempo e à temperatura.
Temperatura Tempo
(dias)
Baixa Ambiente Alta
0 74,72 a 74,72 a 74,72 a
15 73,69 a 69,67 a b 72,75 b
30 68,46 a b 67,23 a 71,19 b
45 63,94 a 65,04 a 65,16 a
60 61,84 a 62,56 a 61,54
a
75 60,13 a 58,89 a 57,24 a
90 58,00 a 55,41 a 55,96 a
105 56,54 b 52,62 a 54,10 a b
120 55,35 b 50,59 a 51,70 a b
Médias seguidas pela mesma letra na linha não diferem entre si pelo teste de
Tukey a 5%.
De acordo com os dados da Tabela 5, o teor de mirceno decresceu em
relação ao tempo e apresentou variação significativa em relação às temperaturas
39
no período de quinze a sessenta dias e de noventa a cento e vinte dias. No
entanto, não houve variação entre as temperaturas baixa e ambiente no período
entre sessenta e setenta e cinco dias.
Avaliando a análise de regressão representada na Figura 16 para os
teores de citral em relação ao tempo e à temperatura, observou-se uma
proximidade nos valores dos coeficientes angulares das equações, representadas
para cada temperatura, mostrando que o decréscimo no teor de citral foi similar
para todas as temperaturas. A variação do teor de mirceno em relação às
temperaturas pode ser observada na Figura 17, na qual constata-se uma diferença
nos coeficientes angulares, observando-se um maior valor para alta temperatura
(0,111), seguido da temperatura ambiente (0,078) e da temperatura baixa
(0,066).
TABELA 5 - Resultados médios do teor de mirceno no óleo essencial de
Cymbopogon citratus, com relação ao tempo e à temperatura.
Temperatura Tempo
(dias)
Baixa Ambiente Alta
0 18,76 a 18,76 a 18,76 a
15 17,64 c 16,13 b 15,03 a
30 16,93 c 15,40 b 13,52 a
45 16,06 c 14,50 b 12,27 a
60 61,84 b 13,81 b 10,40 a
75 12,85 b 11,78 b 8,61 a
90 12,65 c 11,31 b 6,76 a
105 12,05 c 9,34 b 5,92 a
120 10,92 c 8,91 b 4,83 a
Médias seguidas pela mesma letra na linha não diferem entre si pelo teste de
Tukey a 5%.
40
50
55
60
65
70
75
0 50 100 150
Dias
Teor de citral (%)
T. Alta
T. Ambiente
T. Baixa
Yt. alta = -0,207X + 75,137
R
2
= 0,9730
Y t. ambiente = -0,197 + 73,693
R
2
= 0,9929
Yt. Baixa = -0,170X + 73,874
R
2
= 0,9514
FIGURA 16 - Decréscimo dos teores de citral no óleo essencial de Cymbopogon
citratus em relação à temperatura.
FIGURA 17 - Decréscimo dos teores de mirceno no óleo essencial de
Cymbopogon citratus em relação à temperatura.
0
5
10
15
20
0 50 100 150
Dias
Teor de mirceno (%)
T. Baixa T.Ambiente T. Alta
Yt. Alta = -0,111X + 17,363
R
2
= 0,9767
Yt.ambiente = - 0,078X + 18,044
R
2
= 0,9775
Yt. Baixa = -0,066X + 8,619
R
2
= 0,9676
41
Considerando os resultados apresentados acima, pode-se inferir que os
compostos mirceno e citral sofreram degradação em relação ao tempo. No
entanto, essa degradação ocorreu tanto na ausência quanto na presença de luz,
sendo em maior intensidade quando em presença de luz. Em relação à
temperatura, observou-se influência dessa apenas sobre a degradação do
mirceno. Apesar de ter ocorrido degradação, não se observou variação para o
citral, revelando a estabilidade desse perante essas temperaturas.
O espectro no infravermelho, obtido da análise do óleo essencial fresco
(Figura 18), apresentou bandas características dos grupos funcionais que
caracterizam o óleo essencial de capim-limão: uma banda forte entre 3000-
2800cm
-1
característica dos grupos metílicos (CH
3
), metilênicos (CH
2
) e
metínicos (CH), podendo ser confirmados pela presença de um dubleto em 1380
e 1360 cm
-1
equivalente a sinais de deformação angular desses grupos e que
propõem a presença de ramificações alquilas; entre 1700-1600 cm
-1
, observa-se
uma banda forte característica do grupo carbonila; e uma pequena banda
próxima a 1850 cm
-1
característica dos alquenos conjugados; uma banda
próxima a 1650 cm
-1
, característica de alquenos cis-dissubstituídos e com grupos
vinilideno (Silverstein & Webster, 2000).
Comparando o espectro do óleo essencial fresco com os espectros do
óleo essencial submetido aos tratamentos, observaram-se as seguintes
modificações: o aumento significativo da banda próxima a 3400cm
-1
,
evidenciando o aparecimento de grupos OH; um aumento no número de bandas
próximas a 1700 cm
-1
, que pode ser devido à presença de ligações duplas
carbono-oxigênio de ácidos carboxílicos, e de peróxidos de acila; um
alargamento das bandas próximas a 1250 cm
-1
e 1400 cm
-1
, em decorrência da
deformação axial e angular de carbono-oxigênio, respectivamente (Silverstein &
Webster, 2000).
42
O espectro do óleo essencial submetido à luz está apresentado na Figura
19, e os espectros do óleo submetido às diferentes temperaturas encontram-se no
Anexo B.
.
4000 3500 3000 2500 2000 1500 1000 500
0
20
40
60
80
100
% Transmitância
Número de onda (cm
-1
)
FIGURA 18 - Espectro no infravermelho do óleo essencial fresco de
Cymbopogon citratus.
43
4000 3500 3000 2500 2000 1500 1000 500
0
20
40
60
80
100
% Transmitância
Número de onda (cm
-1
)
FIGURA 19 - Espectro no infravermelho do óleo essencial de Cymbopogon
citratus submetido à luz.
Compostos orgânicos quando, na presença de energia (que pode ser por
aquecimento ou pela irradiação de luz), podem gerar radicais em decorrência da
quebra homolítica de ligações químicas. Esses radicais podem reagir com outras
moléculas, gerando novos radicais, e com o oxigênio atmosférico, gerando
peróxidos, hidroperóxidos, que são compostos instáveis capazes de ser
quebrados em novos radicais ainda mais reativos (Solomons, 2001).
Na presença de radicais livres, o oxigênio pode atacar estruturas
carbônicas insaturadas, especialmente na posição alílica (Hendrickson et al.,
1970). Os compostos citral e mirceno possuem em suas estruturas carbonos
alílicos.
De acordo com Barbosa (2004), reações de origem radicalar ocorrem em
compostos que possuem carbono alílico, por meio da perda de um hidrogênio
desse carbono, pois o radical alílico é estabilizado por estruturas de ressonância
desse com a ligação dupla presente no carbono vizinho. Assim, a degradação
44
observada para os compostos estudados, mesmo na ausência de luz e em baixas
temperaturas, pode ter ocorrido por processos radicalares, derivados da perda de
um hidrogênio alílico.
O processo de autoxidação desses compostos pode ser semelhante ao
apresentado por Ramalho & Jorge (2006) para a autoxidação de ácidos graxos,
que se inicia com a retirada de um hidrogênio alílico do composto, em condições
favorecidas por luz e calor, gerando um radical alílico. Em seguida, esses
radicais podem reagir com oxigênio do ar atmosférico e formar radicais
peróxidos que, posteriormente, podem ser convertidos em hidroperóxidos, que
vão atuar como propagadores da reação, que terá o seu fim com a combinação
desses para a formação de produtos estáveis. O mecanismo para a degradação do
geranial via autoxidação está representado na Figura 20.
45
C
H CHO
C
H CHO
+ H
C
H CHO
+
O
2
C
H CHO
OO
C
CHOH
OO
+
C
CHOH
C
H CHO
OOH
+
C
H CHO
Geranial
Radical alílico
Radical peróxido
Hidroperóxido
FIGURA 20 - Mecanismo da degradação do geranial via autoxidação.
Compostos carbonílicos podem sofrer reações de fotólise quando
expostos à luz, dando origem a vários produtos, inclusive radicais livres
(Hendrickson et al., 1970; Pryor, 1966). Essa afirmação é coerente com o fato
de o citral apresentar uma maior taxa de degradação quando na presença de luz.
46
Duas das diversas reações de decomposição possíveis para o geranial estão
apresentadas na Figura 21.
CHOH
C
H
+
CHO
H CHO
HH
+
CO
luz
luz
FIGURA 21 - Decomposição do geranial na presença de luz.
O grupo carbonílico de aldeídos é facilmente oxidado, mesmo à
temperatura ambiente. Dessa forma, aldeídos podem ser oxidados pelo oxigênio
do ar a ácidos carboxílicos e perácidos (Figura 22) (Allinger et al., 1976; Ege,
1994).
Segundo Hendrickson et al. (1970), compostos carbonílicos, quando na
presença de luz, podem adicionar-se a alquenos, originando oxetanos. Esse
processo pode ter ocorrido entre o citral e o mirceno.
De acordo com Barbosa (2004), os alquenos que possuem ligações
duplas pouco substituídas podem se polimerizar na presença de radicais, pois
esses se adicionam ao alqueno formando um novo radical alquila, reagindo esse
47
com outras moléculas de alqueno, originando um radical polimérico; esta etapa é
denominada de etapa de propagação. O término dessa etapa ocorre quando esses
radicais reagem de maneira a formar compostos estáveis. Compostos insaturados
também podem sofrer reações fotoquímicas de cicloadição, sendo essas reações
observadas em muitos dienos conjugados, resultando na formação de diversos
produtos (Hendrickson et al., 1970)
C
O
H
R
RH
C
O
C
O
+
O
2
C
O
OO
C
O
OO
+
C
O
H
C
O
OOH
+
C
O
Perácido
+
FIGURA 22 - Oxidação do geranial a peráxido.
48
Essas reações provavelmente estão envolvidas no processo de
decomposição do mirceno, pois de Virmani et al. (1979) afirmam que o mirceno
se polimeriza quando exposto ao ar e à luz.
4.3 Atividade Biológica
As propriedades fungitóxicas do óleo essencial de capim-limão
(Cymbopogon citratus) e de seus constituintes majoritários, citral e mirceno,
foram avaliadas e comparadas com o fungicida comercial Folicur®, sobre o
crescimento e/ou inibição micelial dos fitopatógenos Rhizoctonia solani,
Colletotrichum gloeosporioides e Fusarium oxysporum. A inibição micelial das
três espécies fúngicas foi calculada em relação ao crescimento micelial da
testemunha absoluta de cada espécie. O crescimento micelial da testemunha
relativa de cada espécie não diferenciou significativamente de sua testemunha
absoluta. Os resultados estão apresentados nas Figuras 23, 24 e 25.
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
110
0 250 500 750 1000 1250 1500
Concentração (ppm)
Inibição (%)
Fungicida
Óleo essencial
Citral
Mirceno
FIGURA 23 - Efeito das concentrações do óleo essencial de C. citratus, citral,
mirceno e tebuconazole, sobre a inibição do crescimento micelial
de Rhizoctonia solani
49
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
110
0 250 500 750 1000 1250 1500
Concentração (ppm)
Inibição (%)
Fungicida
Óleo essencial
Citral
Mirceno
FIGURA 24 - Efeito das concentrações do óleo essencial de C. citratus, citral,
mirceno e tebuconazole sobre a inibição do crescimento micelial
de Fusarium oxysporum
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
110
0 250 500 750 1000 1250 1500
Concentração (ppm)
Inibição (%)
Fungicida
Óleo essencial
Citral
Mirceno
FIGURA 25 - Efeito das concentrações do óleo essencial de C. citratus, citral,
mirceno e tebuconazole sobre a inibição do crescimento micelial
de Colletotrichum gloeosporioides
50
O óleo essencial apresentou efeito inibitório de 29,32%, 18,28% e
6,57% na concentração de 100 ppm, sobre o crescimento micelial de
Rhizoctonia solani, Colletotrichum gloeosporioides e Fusarium oxysporum
respectivamente. A concentração mínima inibitória encontrada foi 250 ppm para
o fungo Rhizoctonia solani, e de 500 ppm para os demais.
Fiori et al. (2000) demonstraram o efeito fungitóxico do óleo essencial
de Cymbopogon citratus sobre o crescimento micelial de Didymella bryoniae.
Esses pesquisadores observaram que a concentração de 1% do óleo no meio de
cultura foi capaz de inibir totalmente o crescimento desse. Paranagama et al.
(2003) estudaram o efeito biológico do óleo essencial de Cymbopogon citratus,
e encontraram efeitos fungistático e fungicida sobre Aspergillus flavus nas
concentrações de 0,6 e 1,0 mg. mL
-1
. Observaram que o efeito sobre a
esporulação do fungo causou a completa inibição na concentração de 2,8
mg.mL
-1
.
Fandohan et al. (2004) avaliaram a atividade antifúngica “in vitro” e “in
vivo” do óleo essencial de Cymbopogon citratus sobre Fusarium verticillioides,
e constataram uma concentração mínima inibitória para o crescimento micelial
do fungo de 1,3 µL/mL. Para o teste “in vivo”, após 21 dias, observaram uma
redução significativa da incidência do fungo (<20%) na concentração de 4,0
µL/mL, ocorrendo completa inibição na concentração de 8,0 µL/mL.
Pelos resultados encontrados para o padrão de citral sobre os fungos
Rhizoctonia solani e Colletotrichum gloeosporioides, verificou-se um maior
efeito fungitóxico em comparação ao óleo essencial nas concentrações de 100
ppm para ambos e 250 ppm para o Colletotrichum gloeosporioides. No entanto,
a concentração mínima inibitória encontrada para o citral foi a mesma
encontrada para o óleo essencial sobre os dois fitopatógenos.
Quanto ao mirceno, não houve atividade inibitória sobre Rhizoctonia
solani. No entanto, verificou-se uma baixa atividade na concentração de 100
51
ppm sobre Colletotrichum gloeosporioides, havendo um aumento de sua
atividade inibitória até a concentração de 500 ppm, apresentando 22,17% de
inibição micelial. Para as concentrações de 100 e 1500 ppm, o composto
apresentou uma pequena atividade inibitória, ou seja apenas 6% do crescimento
micelial.
O citral nas concentrações de 100 ppm e 250 ppm apresentou menor
atividade em comparação ao óleo essencial nessas mesmas concentrações sobre
F. oxysporum, já o mirceno apresentou uma pequena inibição (7,26%) apenas
quando presente na concentração de 250 ppm. No entanto, a concentração
mínima inibitória encontrada para o citral foi a mesma do óleo essencial (500
ppm).
Considerando esses resultados, pode-se inferir que o citral é o composto
responsável pela atividade fungitóxica do óleo essencial de C. citratus sobre
Rhizoctonia solani e Colletotrichum gloeosporioides.
Esses resultados corroboram com vários trabalhos nos quais se verifica a
atividade biológica do citral. Ming et al. (1996) atribuíram ao citral atividade
germicida contra 22 microrganismos, além de poder ser utilizado como larvicida
e repelente de insetos. Oyedele et al. (2002) observaram a ação repelente do
citral contra Aedes aegypti L.. Estudos feitos por Matsura et al. (2006)
afirmaram que o citral apresentou atividade inibitória sobre a tironsinase, enzima
largamente encontrada em microrganismos, animais e vegetais, e importante na
síntese de o-difenouis e o-quinonas.
O mecanismo de ação do citral ainda não está completamente
esclarecido. Estudos de Kurita et al. (1981) citam que a atividade fungicida do
citral é devida à sua capacidade de receber elétrons provenientes da célula do
fungo, por meio de uma transferência de carga com um elétron doador presente
nessa célula, resultando, assim, na morte do fungo. De acordo com Piper et al.
(2001), determinados terpenos presentes nos óleos essenciais são capazes de
52
tornarem a membrana celular do fungo permeável, causando o vazamento de seu
conteúdo.
Na comparação do efeito fungitóxico do fungicida comercial
(tebuconazole), com o óleo essencial e seus principais constituintes, observa-se
que são necessárias concentrações muito maiores do óleo essencial e do citral
para causarem efeito semelhante ao do tebuconazole, para os três fitopatógenos.
Concomitantemente, para que o óleo essencial de Cymbopogon citratus e o seu
constituinte majoritário possam ser utilizados como fungicidas comerciais, são
necessários mais estudos, tais como avaliar os seus efeitos sobre a inibição de
germinação e produção de esporos, suas atividades em campo, entre outros.
Os bioensaios realizados com o óleo essencial sobre as espécies fúngicas
estudadas estão ilustrados nas Figuras 26, 27 e 28.
53
FIGURA 26 – Bioensaio realizado com óleo essencial de capim-limão
(Cymbopoogon citratus) sobre o crescimento e/ou inibição
micelial do fungo Colletotrichum gloeosporioides
T. Absoluta
T. Relativa 100 ppm 250 ppm
500 ppm 1000 ppm
1500 ppm
T. Absoluta
T. Relativa 100 ppm 250 ppm
500 ppm 1000 ppm
1500 ppm
54
FIGURA 27 – Bioensaio realizado com óleo essencial de capim-limão
(Cymbopoogon citratus) sobre o crescimento e/ou inibição
micelial do fungo Fusarium oxysporum
T. Absoluta
T. Relativa 100 ppm 250 ppm
500 ppm 1000 ppm 1500 ppm
T. Absoluta
T. Relativa 100 ppm 250 ppm
500 ppm 1000 ppm 1500 ppm
55
T. Absoluta
T. Relativa 100 ppm
250 ppm
500 ppm 1000 ppm 1500 ppm
T. Absoluta
T. Relativa 100 ppm
250 ppm
500 ppm 1000 ppm 1500 ppm
FIGURA 28 – Bioensaio realizado com óleo essencial de capim-limão
(Cymbopoogon citratus) sobre o crescimento e/ou inibição
micelial do fungo Rhizoctonia solani
56
5 CONCLUSÕES
Os constituintes majoritários do óleo essencial de capim-limão
(Cymbopogon citratus) foram o citral e o mirceno. Esses sofreram degradação
em relação ao tempo, tanto na presença quanto na ausência de luz. Em relação à
temperatura, observou-se influência dessa apenas sobre a degradação do
mirceno. Apesar de ter ocorrido degradação, não se observou variação para o
citral, revelando a estabilidade desse constituinte nessas temperaturas.
O crescimento micelial do fungo Rhizoctonia solani foi totalmente
inibido na concentração de 250 ppm e dos fungos Colletotrichum
gloeosporioides e Fusarium oxysporum na concentração de 500 ppm, inferindo
que o citral seja o responsável por tal ação sobre os fungos Rhizoctonia solani e
Colletotrichum gloeosporioides, já que não foi observada atividade fungitóxica
significante para o mirceno.
57
6 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ABEGAZ, B.; YOHANNES, P. G. Constituents of the essential oil of Ethiopian
Cymbopogon citratus. Journal of Natural Products, Cincinate, v. 46, n. 3. p.
424-426. 1983.
ADAMS, R. P. Identification of Essential Oils Components by Gas
Chromatography/ Mass Spectroscopy. Carol Stream: Allured, 1995. 469 p.
AL-BURTAMANI, S. K. S.; FATOPE, M. O.; MARWAH, R. G.; ONIFADE,
A. K.; AL-SAIDI, S. H. Chemical composition, antibacterial and antifungal
activities of the essential oil of Haplophyllum tuberculatum from Oman.
Journal of Ethnopharmacology, Clare, v. 96, n. 1/2, p. 107-112, Jan. 2005.
ALEXOUPOULOS, C. J.; MILMS, C. W.; BLACKWEEL, W. Introductory
mycology. 4. ed. New York: Jolm Weeley & Sans, 1996.
ALLINGER, N. L.; CAVA, M. P.; JONGH, D. C.; JOHNSON, C. R.; LEBEL,
N. A.; STEVENS, C. L. Química orgânica. 2. ed. Rio de Janeiro: Editora
Livros Técnicos e Científicos, 1976. 961 p.
ALVES, H. M. A diversidade química das plantas como fonte de fitofármacos.
Caderno Temático de Química Nova na Escola, São Paulo, n 3, Mar. 2001.
BAILEY, J. A.; O’CONNELL, R. J.; PRING, R. J.; NASH, C. Infection
strategies of Colletotrichum species. In: BAILEY, J. A.; JEGER, M. J. (Ed.)
Colletotrichum: biology, pathology and control. Wallingford: CAB
International, 1992. p. 88-120.
BALBI-PEÑA, M. I.; BECKER, A.; STANGARLIN, J. R.; FRANZENER, G.;
LOPES, M. C.; SCHWAN-ESTRADA, K. R. F. Controle de Alternaria solani
em tomateiro por extratos de Curcuma longa e Curcumina – I. avaliação in vitro.
Fitopatologia Brasileira, Brasília, v. 31, n. 3, p. 310-314, maio/jun. 2006.
BARBOSA, L. C. A. Introdução à Química Orgânica. São Paulo: Ed. Prentice
Hall, 2004. 311 p.
BERGAMIN FILHO, A.; KIMATI, H.; AMORIM, L. Manual de
Fitopatologia: princípios e conceitos. 3. ed. São Paulo: Agronômica Ceres,
1995. v. 1, 919 p.
58
BOTELHO, S. A.; RAVA, C. A.; LEANDRO, W. M.; COSTA, J. L. S.
Supressividade natural de solos da região centro-oeste a Rhizoctonia solani
Kuhn. Pesquisa Agrapecuaria Tropical, Goianio, v. 31, n. 2. p. 105-110,
jul./dez. 2001.
CAKIR, A.; KORDALI, S.; KILIC, H.; KAYA, E. Antifungal properties of
essential oil and crude extracts of Hypericum linarioides Bosse. Biochemical
Systematics and Ecology, Oxford, v. 33, n. 3, p. 245-256, Mar. 2005.
CARVALHO, C. M.; COSTA, C. P. M.; SOUSA, J. S.; SILVA, R. H. D.;
OLIVEIRA, C. L.; PAIXÃO, F. J. R. Rendimento da produção de óleo essencial
de Capim-santo submetido a diferentes tipos de adubação. Revista da Biologia
e Ciências da Terra, Campina Grande, v. 5, n. 2, p. 1-8, 2005.
CASTRO, D. P.; CARDOSO, M. G.; MORAES. J. C.; SANTOS, N. M.;
BALIZA, D. P. Não-preferência de Spodoptera frugiperda (Lepidóptera:
Noctuidae) por óleos essenciais de Achillea millefolium L. e Thymus vulgaris L.
Revista Brasileira de Plantas Medicinais, Botucatu, v. 8, n. 4, p. 27-32, 2006.
CASTRO, H. G. de; FERREIRA, F. A. A; SILVA, D. J. H.; MOSQUIM, P. R.
Metabólitos Secundários – Contribuição ao Estudo das Plantas Medicinais. 2
a
ed. Visconde do rio Branco: SUPREMA, 2004. 113 p.
CASTRO, L. O. de; RAMOS, R. L. D. Principais Gramíneas Produtoras de
Óleos Essenciais: capim-cidró, Cymbopogon martinii (Rox.) J. F. Watson,
palma-rosa, Cymbopogon nardus (L.) rendle, citronela, Elyonurus candidus
(Trin.) Hack., capim-limão, Vetiveria zizanioides (L.) Nash, vetiver. Porto
Alegre: FEPAGRO, 2003. 32 p. (Boletim FEPAGRO, 11).
CASTRO, N. E. A. Caracterização Fitoquímica de Óleos Essenciais de
Eucalipto e seu Efeito Sobre o Protozoário Tripanosomatídeo
Herpetomonas samuelpessoai. 2006. 82 p. Tese (Doutorado em Fitotecnia) –
Universidade Federal de Lavras, Lavras, MG.
CECHINEL FILHO, V.; YUNES, R. A. Estratégias para a obtenção de
compostos farmacologicamente ativos a partir de plantas medicinais. Conceitos
sobre modificação estrutural para otimização da atividade. Química Nova, São
Paulo, v. 27, n. 1, p. 99-105, jan./fev. 1998.
59
CIMANGA, K.; KAMBU, K.; TONA, L.; APERS, S.; BRUYNE, T.;
HERMANS, N.; TOTTÉ, J.; PIETERS, L.; VLIETINCK, A. J. Correlation
between chemical composition and antibacterial activity of essential oils of some
aromatic medicinal plants growing in the Democratic Republic of Congo.
Journal of Ethnopharmacology, Clare, v. 79, n. 2, p. 213-220, Feb. 2002.
COSTA, L. C. do B.; CORRÊA, R. M.; CARDOSO, J. C. W.; PINTO, J. E. B.
P.; BERTOLUCCI, S. K. V.; FERRI, P. H. Secagem e fragmentação da matéria
seca no rendimento e composição do óleo essencial de capim-limão.
Horticultura Brasileira, Brasília, v. 23, n. 4, p. 956-959, dez. 2005.
CORRÊA JUNIOR, C.; MING, L. L.; SCHEFFER, M. C. Cultivo de plantas
medicinais, condimentares e aromáticas. 2. ed. Jaboticabal: FUNEP, 1994.
CORREIA, M. P. Dicionário das plantas úteis do Brasil. Rio de Janeiro:
Instituto Brasileiro de Desenvolvimento Florestal, 1984. 747 p.
DE-OLIVEIRA, A. C. A. X.; RIBEIRO-PINTO, L. F.; OTTO, S. S.;
GONÇALVES, A.; PAUMGARTTEN, F. J. R. Induction of liver
monooxygenases by β-myrcene. Toxicology, Clare, v. 124, n. 2, p. 135-140,
Dec. 1997a.
DE-OLIVEIRA, A. C. A. X.; RIBEIRO-PINTO, L. F.; PAUMGARTTEN, F. J.
R. In vitro inhibition of CYP2B1 monooxygenase by β-myrcene and other
monoterpenoid compounds. Toxicology Letters, Clare, v. 92, n. 1, p. 39-46,
June 1997b.
EGE, S. Organic chemistry. 3. ed. D. C. Heath and Company, 1994. 1355 p.
EL FATTAH, M. A.; EL ZAHWEY; HARIDY, I. M.; EL DEEB, S. A. Effect of
drying on the physicochemical properties and chemposition of lemongrass oil.
Menofiya Journal Agricultural Research, v. 17, n. 3, p. 1211-1230, 1992.
FANDOHAN, P.; GBENOU, J. D.; GNONLONFIN, B.; HELL, K.;
MARASAS, W. F. O.; WINGFIELD, M. J. Effect of essential oils on the growth
of Fusarium verticillioides and Fumonisin contamination in corn. Journal of
Agricultural and Food Chemistry, Washington, v. 52, n. 22, p. 6824-6829,
Nov. 2004.
FIGUEIREDO, R. O. de; DELACHIAVE, M. E. A.; MING, L. C. Effect of
growth regulators in citral content in lemongrass in different seasons. Acta
Horticulturae, Amsterdam, v. 569, n. 22, p. 47-49, Nov. 2002.
60
FIORI, A. C. G.; SCHWAN-ESTRADA, K. R. F.; STANGARLIN, J. R.;
VIDA, J. B.; SCAPIM, C. A.; CRUZ, M. E. S.; PASCHOLATI, S. F. Antifungal
activity of leaf extracts and essential oils of some medicinal plants against
Didymella bryoniae. Journal of the Phytopathology, Berlin, v. 148, n. 7-8, p.
483-487, Aug. 2000.
GODOY, P.; COLOMBO, A. L. Biologia e Relevância Clínica das espécies do
Gênero Fusarium spp. Prática Hospitalar, São Paulo, v. 11, n. 34, p. 136-140,
2004.
GUARRO, J.; GENE, J. Fusarium infections criteria for the identification of the
responsible species. Mycoses, Berlin, v. 35, n. 5/6, p. 109-114, May/June 1992.
HENDRICKSON, J. B.; CRAM, D. J.; HAMMOND, G. S. Organic chemistry.
3. ed. New York: Mcgraw-Hill Book Company, 1970. 1279 p.
IIJIMA, Y.; WANG, G.; FRIDMAN, E.; PICHERSKY, E. Analysis of the
enzymatic formation of citral in the glands of sweet basil. Archives of
Biochemistry and Biophysics, New York, v, 44, n. 448, p. 141-149, Apr. 2006.
JUNQUEIRA, N. T. V.; ANJOS, J. R. N.; JUNQUEIRA, L. P.; SHARMA, R.
D. Principais doenças e pragas. In: MANICA, I. Maracujá doce. Porto Alegre:
Cinco Continentes, 2005. p. 113-144.
KANKO, C.; SAWALIHO, B. E.; KONE, S.; KOUKOUA, G.; N’GUESSAN,
T. Ètude dês propiétés physico-chimiques dês huiles essentielles de Lippia
multiflora, Cymbopogon citratus, Cymbopogon nardus, Cymbopogon giganteus.
Comptes Rendus Chimie, Paris, v. 7, p. 1039-1042, Oct./Nov. 2004.
KIKONYOGO, A.; ABRIOLA, D. P.; DRYJANSKI, M.; PIETRUSZKO, R.
Mechanism of inhibition of aldehyde dehydrogenase by citral, a retinoid
antagonist. European Journal of Biochemistry, Oxford, v. 262, n. 3, p. 704-
712, June 1999.
KURITA, N.; MIYAJI, M.; KURANE, R.; TAKAHARA, Y. Antifungal activity
of components of essential oils. Agricultural and Biological Chemistry,
Tokyo, v. 45, n. 4, p. 945-952, Apr. 1981.
LACAZ, C. S.; PORTO, C.; MARTINS, J. E. C. Guia para identificação:
fungos Actinomicetos e Algas. São Paulo: Sarvier, 1998.
61
LEAL, T. C. A. de B.; FREITAS, S. P.; SILVA, J. F.; CARVALHO, A. J. C.
Avaliação do efeito da variação estacional e horário de colheita sobre o teor
foliar de óleo essencial de capim-cidreira (Cymbopogon citratus (DC) Stapf).
Revista Ceres, Viçosa, v. 48, n. 278, p. 445-453, jul./ago. 2001.
LEWINSOHN, E.; DUDAI, N.; TADMOR, Y.; KATZIR, I.; RAVID, U.;
PUTIEVSKY, E.; JOEL, D. M. Histochemical localization of citral
accumulation in lemongrass leaves (Cymbopogon citrates (DC) Stapf., Poaceae).
Annals of Botany, London, v. 81, n. 1, p. 35-39, Jan. 1998.
LIMA, M. I. PM.; GASPOROTO, L.; SANTOS, A. Controle químico da
antracnose do Maracujazeiro. Manaus: EMBRAPA-MARA, 1993.
(Comunicado técnico, 05).
LINS, S. R. O. Estudos Histopatológicos da Mancha Manteigosa em
Cafeeiro (Coffea arábica L.) e Comportamento de Isolados de
Colletotrichum spp. em Plantas Obtidas por Cultura de Embrião. 2006. 104
p. Dissertação (Mestrado em Fitopatologia) – Universidade Federal de Lavras,
Lavras, MG.
LOPEZ, A. M. Q. Taxonomia patogênese e controle de espécies do gênero
Colletotrichum. Revisão Anual de Patologia de Plantas, Passo fundo, v. 9. p.
291-338, 2001.
MARTINS, I.; MELLO, S. C. M.; ÁVILA, Z. R.; PÁDUA, R. R.; PEIXOTO, J.
R. Produção de Colletotrichum gloeosporioides em meios líquidos.
EMBRAPA, 2005. (Circular Técnica, n. 45).
MARTINS, P. M.; MELO, E. C.; BARBOSA, L. C. A.; SANTOS, H. S.;
MACHADO, M. C. influência da temperatura e velocidade do ar de secagem no
teor e composição química do óleo essencial de capim-limão. Acta
Horticulture, Amsterdam, v. 569, p. 155-160, 2002.
MATSURA, R.; UKEDA, H.; SAWAMURA, M. Tyrosinase inhibitory activity
of citrus essential oils. Journal of Agricultural and Food Chemistry,
Washington, v. 54, n. 6, p. 2309-2313, Mar. 2006.
MENEZES, M. Aspectos biológicos e taxonômicos de espécies do gênero
Colletotrichum. Fitopatologia Brasileira, Brasília, v. 27, p. 23-24, 2002.
Suplemento.
62
MING, L. C.; FIGUEIREDO, R. O.; MACHADO, S. R.; ANDRADE, R. M. C.
Yield of essential oil of and citral content in different parts of lemongrass leaves
(Cymbopogon citratus (D. C.) Stapf.) Poaceae. Acta Horticulturae,
Amsterdam, v. 426, p. 555-559, 1996.
NAKAMURA, Y.; MIYAMOTO, M.; MURAKAMI, A.; OHIGASHI, H.;
OSAWA, T.; UCHIDA, K. Aphase II detoxification enzyme inducer from
lemongrass: identification of citral and involvement of electrophilic reaction in
the enzyme induction. Biochemical and Biophysical Reserch
Communications, San Diego, v. 302, n. 3, p. 593-600, Mar. 2003.
NAVICKIENE, H. M. D.; MORANDIM, A. A.; MARQUES, M. O. M.;
YOUNG, M. C. M.; KATO, M. J. Composition and antifungal activity of
essential oils from Piper aduncum, Piper arboreum e Piper tuberculatum.
Química Nova, São Paulo, v. 29, n. 3, p. 467-470, maio/jun. 2006.
NELSON, D. L.; COX, M. M. Lehninger principios de bioquímica. 3. ed. São
Paulo: Sarvier, 2002.
NGUEFACK, J.; LETH, V.; ZOLLO, P. H. A.; MATHUR, S. B. Evaluation of
essential oils from aromatic plants of Cameroon for controlling food spoilage
and mycotoxin producing fungi. International Journal of Food Microbiology,
Amsterdam, v. 94, n. 3, p. 329-334, Aug. 2004.
OROZCO, M. E. F. Caracterização Morfológica, Molecular, Bioquímica e
Patogênica de Isolados de Colletotrichum spp. Associados ao Cafeeiro em
Minas Gerais e Comparação com Colletotrichum Kahawae. 2003. 147 p.
Tese (Doutorado em Fitopatologia) – Universidade Federal de Lavras, Lavras-
MG.
OXENHAM, S. K.; SVOBODA, K. P.; WALTERS, D. R. Antifungal activity of
the essential oil of basil (Ocimum basilicum). Journal Phytopathology, Berlin,
v. 153, n. 3, p. 174-180, Mar. 2005.
OYEDELE, A. O.; GBOLADE, A. A.; SOSAN, M. B.; ADEWOYIN, F. B.;
SOYELU, O. L. Formulation of na effective mosquito-repellent topical product
from lemongrass oil. Phytomedicine, Jena, v. 9, n. 3, p. 259-262, Apr. 2002.
63
PARANAGAMA, P. A.; ABEYSEKERA, K. H. T.; ABEYWICKRAMA, K.;
NUGALIYADDE, L. Fungicidal and anti-aflatoxigenic effects of the essential
oil of Cymbopogon citratus (DC.) Stapf. (lemongrass) against Aspergillus flavus
Link. Isolated from stored rice. Letters in Applied Microbiology, Oxford, v.
37, n. 1, p. 86-90, 2003.
PEREIRA, A. A. Efeito inibitório de óleos essenciais sobre o crescimento de
bactérias e fungos. 2006. 58 p. Dissertação (Mestrado em Ciências dos
alimentos) – Universidade Federal de Lavras, Lavras, MG.
PERES, N. A. R.; KURAMAE, E. E.; DIAS, M. S. C.; SOUZA, N. L. de.
Identification and characterization of Colletotrichum spp. Affecting fruit after
harvest in Brazil. Journal of Phytopathology, Berlin, v. 150, n. 3, p. 128-134,
Mar. 2002.
PIMENTEL-GOMES, F. Curso de estatística experimental. Piracicaba:
Editora do Autor, 2000. 477 p.
PIPER, P.; CALDERON, C. O.; HATZIXANTHIS, K.; MOLLAPOUR, M.;
Weak acid adaptation: the stress response that confers resistance to organic acid
food preservatives. Microbiology, Reading, v. 147, n. 10, p. 2635-2642, Oct.
2001.
PRYOR, W. A. Introduction to free radical chemistry. Ed. Prentice-Hall,
1966. 110 p.
RAMALHO, V. C.; JORGE, N. Antioxidantes utilizados em óleos, gorduras e
alimentos gordurosos. Química Nova, São Paulo, v. 29, n. 4, p. 755-760,
jul./ago. 2006.
RAUBER, C. S.; PALMA, E. C.; HENRIQUES, A.; SCHAPOVAL, E. S.
Avaliação da estabilidade do óleo volátil de Cymbopogon citratus: atividade
antifúngica e análise cromatográfica. Revista Brasileira de Farmácia, Rio de
Janeiro, v. 82, n. 1, p. 69-72, 2001.
SALGADO, A. P. S. P.; CARDOSO, M. G.; SOUZA, P. E.; SOUZA, J. A.;
ABREU, C. M. P.; PINTO, J. E. B. P.; Avaliação da atividade fungitóxica de
óleos essenciais de folhas de Eucalyptus sobre Fusarium oxysporum, Botrytis
cinérea e Bipolaris sorokiniana. Ciência e Agrotecnologia, Lavras, v. 27, n. 2.
p. 249-254, mar./abr. 2003.
64
SANNAZZARO, A. M.; FENILLE, R. C.; SOUZA, N. L. Saprofitismo e
patogenicidade de Rhizoctonia solani Kuhn AG-4 em solo incorporado com
farelo de mamona. Acta Scientiarum, Maringá, V. 23, n. 5. p. 1211-1214, out.
2001.
SANTOS, R. I. Metabolismo Básico e Origem dos Metabólitos Secundários. In:
SIMÕES, C. M. O.; SCHENKEL, E. P.; GOSMANN, G.; MELLO, J. C. P.;
MENTZ, L. A.; PETROVICK, P. R. Farmacognosia: da planta ao
medicamento. 5. ed. Porto Alegre, RS: Ed. da UFSC, 2004. 1102 p.
SILVA, V. F.; CARDOSO, M. G.; GUIMARÃES, L. G. L.; MUNIZ, F. R.;
SALGADO, A. P. S. P.; MORETTO, P.; MALUF, W. R.; SILVA, V. A.;
ANDRADE, M. L. Rendimento do óleo essencial de capim-limão (Cymbopogon
citratus (D. C.) Stapf.) submetidos a diferentes métodos de cortes e secagens.
Magistra, Cruz das Almas, v. 17, n. 3, p. 107-153, set./dez. 2005.
SILVA JUNIOR, A. A.; VERONA, M. L. F. Plantas medicinais e aromáticas.
Itajaí, SC: Ministério de Meio Ambiente, Fundo Nacional do Meio Ambiente,
1997. 456 p.
SILVERSTEIN, R. M.; WEBSTER, F. X. Identificação espectrométrica de
compostos orgânicos. 6. ed. Rio de janeiro: Editora Livros Técnicos e
Científicos, 2000. 460 p.
SIMÕES, C. M. O.; SCHENKEL, E. P.; GOSMANN, G.; MELLO, J. C. P.;
MENTZ, L. A.; PETROVICK, P. R. Farmacognosia: da planta ao
medicamento. 5. ed. Porto Alegre, RS: Ed. da UFSC, 2004. 1102 p.
SOLOMONS, T. W. G. Química orgánica 1. 7. ed. Rio de Janeiro: Editora
Livros técnicos e científicos, 2001. 644 p.
TAIZ, L.; ZEIGER, E. Fisiologia vegetal. 3. ed. Porto Alegre, RS: Artmed,
2004. 719 p.
TESKE, M.; TRENTINI, A. M. M. Herbarium Compêndio de Fitoterapia. 3.
ed. Curitiba, 1997. 317 p.
UPNMOOR, I. Cultivo de plantas medicinais, aromáticas e condimentares.
Guaíba: Agropecuária, 2003. 56 p.
65
VIEGAS JÚNIOR, C. Terpenos com atividade inseticida: Uma alternativa para
o controle químico de insetos. Química Nova, São Paulo, v. 26, n. 3, p. 390-
400, maio/jun. 2003.
VELLUTI, A.; MARÍM, S.; GONZALEZ, P.; RAMOS, A. J.; SANCHIS, V.
Initial screening for inibitory activity of essential oils on growth of Fusarium
verticillioides, f. proliferatum and F. graminearum on maize-based agar media.
Food Microbiology, London, v. 21, n. 6, p. 649-656, Dec. 2004.
VENTURA, J. A. Taxonomia de Fusarium e seus segregados I – História, meios
e procedimentos de cultivo. Revisão Anual de Patologia de Plantas, Passo
Fundo, v. 7, p. 271-298, 1999.
VIRMANI, O. P.; SRIVASTAVA, R.; DATTA, S. G. Oil of lemongrass Part 2:
West Indian. World Crops, Surrey, v. 31, n. 3, p. 120-121, 1979.
WANKE, M.; SKORUPINSKA-TUDEK, K.; SWIEZEWSKA, E. Isoprenoid
biosynthesis via 1-deoxy-D-xylulose-5-phosphate/2-C-methyl-D-erythritol-4-
phosphate (DOXP/MEP) pathway. Acta Biochimica Polonica, Warsow, v. 48,
n. 3, p. 66-672, 2001.
66
ANEXOS
ANEXO A
Página
TABELA 1A Análise de variância com aplicação do teste F (1%)
para os valores observados do teor de citral e de
mirceno em relação à luz no óleo essencial de
Cymbopogon citratus......................................................
68
TABELA 2A Médias dos teores de citral e mirceno no óleo essencial
Cymbopogon citratus, avaliados com relação ao tempo,
e à presença/ausência de luz............................................
68
TABELA 3A Análise de variância com aplicação do teste F (1%)
para os valores do teor de citral e de mirceno em
relação à temperatura no óleo essencial de
Cymbopogon citratus......................................................
69
TABELA 4A Médias dos teores de citral e mirceno no óleo essencial
Cymbopogon citratus, avaliados com relação ao tempo,
e à presença/ausência de luz............................................
69
67
ANEXO B
Página
FIGURA 1B Curva analítica do padrão mirceno em função da
concentração (mg/mL) pela área........................................
70
FIGURA 2B Curva analítica do padrão de citral (geranial e neral) em
função da concentração (mg/mL) e da soma das áreas
individuais..........................................................................
70
FIGURA 3B Espectro no infravermelho do óleo essencial de
Cymbopogon citratus submetido à temperatura
ambiente..............................................................................
71
FIGURA 4B Espectro no infravermelho do óleo essencial de
Cymbopogon citratus submetido à temperatura baixa........
71
FIGURA 5B Espectro no infravermelho do óleo essencial de
Cymbopogon citratus submetido à temperatura alta...........
72
FIGURA 6B Cromatograma do óleo essencial obtido das folhas frescas
do capim-limão...................................................................
72
68
ANEXO A
TABELA 1A - Análise de variância com aplicação do teste F (1%) para os
valores observados do teor de citral e de mirceno em relação à
luz no óleo essencial de Cymbopogon citratus.
FV GL QM
citral
QM
Miirceno
Luz 1 221,31** 60,96**
Dias 8 548,27** 85,58**
Luz*Dias 8 16,78** 1,77**
Erro 36 3,19 0,35
C. de variação (%) 2,99 4,88
Média geral 59,84 12,27
** Significativo a 1% pelo teste F
TABELA 2A - Médias dos teores de citral e mirceno no óleo essencial
Cymbopogon citratus, avaliados com relação ao tempo e à
presença/ausência de luz.
Compostos Tratamentos
citral mirceno
Ausência 61,81 a 13,33 a
Presença 57,81 b 11,21 b
Médias seguidas por letras diferentes na mesma coluna não diferem entre si pelo
teste de Tukey a 5%
69
TABELA 3A - Análise de variância com aplicação do teste F (1%) para os
valores do teor de citral e de mirceno em relação à temperatura
no óleo essencial de Cymbopogon citratus.
FV GL QM
citrl
QM
mirceno
Temperatura 2 21,18** 109,13**
Dias 8 564,17** 112,53**
Temperatura*Dias 16 6,11 NS 3,43**
Erro 54 3,68 0,299
C. de variação (%) 3,06 4,25
Média geral 62,73 12,88
**Significativo a 1% pelo teste F
TABELA 4A - Médias dos teores de citral e mirceno no óleo essencial
Cymbopogon citratus, avaliados com relação ao tempo, e à
presença/ausência de luz.
Médias
Temperatura
citral mirceno
Ambiente 61,863 a 13,33 a
Alta 62,71 a b 10,68 b
Baixa 63,63 b 14,62 c
Médias seguidas por letras diferentes na mesma coluna não diferem entre si pelo
teste de Tukey a 5%
70
ANEXO B
y = 78558x - 14246
R
2
= 0,9905
0,00
20000,00
40000,00
60000,00
80000,00
100000,00
120000,00
140000,00
160000,00
180000,00
200000,00
0,00 0,50 1,00 1,50 2,00 2,50 3,00
concentração mg/mL
área
FIGURA 1B - Curva analítica do padrão mirceno em função da concentração
(mg/mL) pela área
y = 48397x + 13080
R
2
= 0,9951
0,00
150000,00
300000,00
450000,00
600000,00
750000,00
0,00 2,00 4,00 6,00 8,00 10,00 12,00 14,00
concentração (mg/mL)
área
FIGURA 2B - Curva analítica do padrão de citral (geranial e neral) em função da
concentração (mg/mL) e da soma das áreas individuais
71
4000 3500 3000 2500 2000 1500 1000 500
0
20
40
60
80
100
% Transmitância
Número de onda (cm
-1
)
FIGURA 3B - Espectro no infravermelho do óleo essencial de Cymbopogon
citratus submetido à temperatura ambiente
4000 3500 3000 2500 2000 1500 1000 500
0
20
40
60
80
100
% Transmitância
Número de onda (cm
-1
)
FIGURA 4B - Espectro no infravermelho do óleo essencial de Cymbopogon
citratus submetido à temperatura baixa
72
4000 3500 3000 2500 2000 1500 1000 500
0
20
40
60
80
100
% Transmitância
Número de onda (cm
-1
)
FIGURA 5B - Espectro no infravermelho do óleo essencial de Cymbopogon
citratus submetido à temperatura alta
FIGURA 6B - Cromatograma do óleo essencial obtido das folhas frescas do
apim-limão.
15,68
33,41
35,61
Livros Grátis
( http://www.livrosgratis.com.br )
Milhares de Livros para Download:
Baixar livros de Administração
Baixar livros de Agronomia
Baixar livros de Arquitetura
Baixar livros de Artes
Baixar livros de Astronomia
Baixar livros de Biologia Geral
Baixar livros de Ciência da Computação
Baixar livros de Ciência da Informação
Baixar livros de Ciência Política
Baixar livros de Ciências da Saúde
Baixar livros de Comunicação
Baixar livros do Conselho Nacional de Educação - CNE
Baixar livros de Defesa civil
Baixar livros de Direito
Baixar livros de Direitos humanos
Baixar livros de Economia
Baixar livros de Economia Doméstica
Baixar livros de Educação
Baixar livros de Educação - Trânsito
Baixar livros de Educação Física
Baixar livros de Engenharia Aeroespacial
Baixar livros de Farmácia
Baixar livros de Filosofia
Baixar livros de Física
Baixar livros de Geociências
Baixar livros de Geografia
Baixar livros de História
Baixar livros de Línguas
Baixar livros de Literatura
Baixar livros de Literatura de Cordel
Baixar livros de Literatura Infantil
Baixar livros de Matemática
Baixar livros de Medicina
Baixar livros de Medicina Veterinária
Baixar livros de Meio Ambiente
Baixar livros de Meteorologia
Baixar Monografias e TCC
Baixar livros Multidisciplinar
Baixar livros de Música
Baixar livros de Psicologia
Baixar livros de Química
Baixar livros de Saúde Coletiva
Baixar livros de Serviço Social
Baixar livros de Sociologia
Baixar livros de Teologia
Baixar livros de Trabalho
Baixar livros de Turismo