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UFRRJ
INSTITUTO DE VETERINÁRIA
CURSO DE PÓS-GRADUAÇÃO EM MICROBIOLOGIA
VETERINÁRIA
Estudo Microbiológico e Citológico do Trato Genital de Gatas Domésticas
Juliana Braga de Andrade
2006
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2
UNIVERSIDADE FEDERAL RURAL DO RIO DE JANEIRO
INSTITUTO DE VETERINÁRIA
CURSO DE PÓSGRADUAÇÃO EM MICROBIOLOGIA VETERINÁRIA
ESTUDO MICROBIOLÓGICO E CITOLÓGICO DO TRATO GENITAL DE GATAS
DOMÉSTICAS
JULIANA BRAGA DE ANDRADE
Sob a Orientação da Professora
Vera Lúcia Teixeira de Jesus
Dissertação submetida como
requisito parcial para obtenção do
grau de Mestre em Ciências, no
Curso de Pós-Graduação em
Microbiologia Veterinária.
Seropédica, RJ
Fevereiro de 2006
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3
Andrade, Juliana Braga de
Estudo microbiológico e citológico do trato genital de gatas domésticas.
Dissertação. Seropédica, Rio de Janeiro. Universidade Federal Rural do Rio de
Janeiro. Instituto de Veterinária. 2006. 41 p.
Orientadora: Vera Lúcia Teixeira de Jesus.
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Zootecnia.
Doutora em Ciência Animal. Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro
4
UNIVERSIDADE FEDERAL RURAL DO RIO DE JANEIRO
INSTITUTO DE VETERINARIA
CURSO DE PÓS-GRADUAÇÃO EM MICROBIOLOGIA VETERINARIA
JULIANA BRAGA DE ANDRADE
Dissertação submetida como requisito parcial para obtenção do grau de Mestre em Ciências,
no Curso de Pós Graduação em Microbiologia Veterinária.
DISSERTAÇÃO APROVADA EM: 20/02/2006.
____________________________________________
Vera Lúcia Teixeira de Jesus - Dra. UFRRJ
(Orientadora)
_____________________________________________
Tânia Góes de Pinho - Dra. UFF
_____________________________________________
Marcelo Elias Fraga - Dr. UFRRJ
5
A Deus que permitiu que tudo isso fosse possível e aos
meus Pais Carlos Alberto e Sueli Braga,
pelo apoio, confiança e amor.
6
AGRADECIMENTOS
À Professora VERA LÚCIA TEIXEIRA DE JESUS, meu agradecimento e
reconhecimento pela orientação, apoio, compreensão, dedicação e paciência durante toda a
realização deste trabalho.
Á minha adorada amiga ADRIANA DA ROSA CHAVES, que sempre esteve ao meu
lado e me apoiou, não só neste trabalho, mas em todos os aspectos tanto pessoais como
profissionais.
À minha querida amiga ANDRÉA GONZAGA DOS SANTOS que me ajudou tanto
durante o mestrado, me passando tranqüilidade e me representando nos momentos em que não
poderia estar presente.
À Professora MILIANE MOREIRA, a amiga LÍGIA PORTUGAL e a todos do
Laboratório de Bacteriologia pelo ajuda na análise bacteriana, o meu reconhecimento e
gratidão.
Ao Professor Dr.MARCELO ELIAS FRAGA pela colaboração e orientação na
identificação e isolamento de fungos filamentosos.
Ao Professor FRANCISCO BARONI pela ajuda na identificação das leveduras.
Ao PEDRO AFONSO pela paciência e dedicação na parte estatística e elaboração
gráfica.
Ao professor WALTER TEIXEIRA FILHO pela coloração das lâminas para análise
citológica.
A estagiária CARLA BUENO pela coloração das lâminas para a citologia
vaginal.
A senhora REGINA GONZAGA DOS SANTOS pela atenção e presteza quando
solicitada.
Ao meu namorado SERGIO NOVATO pela compreensão durante a conclusão deste
trabalho.
À todos, que direta ou indiretamente me ajudaram, me oferecendo tranqüilidade nos
momentos onde pensei, pelas dificuldades que não fosse conseguir concluir o meu propósito,
o meu muito obrigado.
7
RESUMO
ANDRADE, Juliana Braga de. Estudo microbiológico e citológico do trato genital de gatas
domésticas. 2006. 31p. Dissertação (Mestrado em Microbiologia Veterinária). Instituto de
Veterinária, Departamento de Microbiologia Veterinária, Universidade Federal Rural do Rio
de Janeiro, Seropédica, RJ, 2006.
No presente estudo foi realizada a coleta de material vaginal para as avaliações
microbiológicas e citológicas em 39 gatas domésticas, divididas em dois grupos, sendo o
primeiro composto de 21 animais inteiros e outro com 18 fêmeas castradas, aparentemente
saudáveis, com idade variando de seis meses a 12 anos, de diferentes raças, provenientes de
criações domiciliares e particulares do município do Rio de Janeiro. Após a contenção
mecânica das fêmeas e limpeza da região vulvar, iniciou-se o procedimento para o isolamento
microbiológico, para tal foram necessários dois swabs pediátricos estéreis, previamente
umedecidos com solução salina estéril a 0,9%. O primeiro swab foi utilizado para o
isolamento bacteriano, sendo acondicionado em meio de transporte Agar Nutriente. O
segundo swab para o isolamento fúngico, transportado em Água Peptonada a 1%. Após a
coleta, ambos foram mantidos sob refrigeração e encaminhados para análise. Em seguida
procedeu-se a coleta para análise citológica com a utilização da escova interdental fina. Os
esfregaços foram fixados em álcool absoluto e corados pelo método de coloração rápida (Diff
Quick). Em relação aos dois grupos estudados observou-se diferenças quanto ao número e
as espécies bacterianas encontradas. O primeiro grupo teve maior freqüência de Edwardsiella
tarda (19,04%) seguido de Enterobacter spp e Streptococcus spp, ambos com 17 isolados
(16,19%). Em relação aos animais castrados do segundo grupo, houve maior predominância
de Enterobacter spp (16,88%) e de Escherichia coli e Pseudomonas aeruginosa com a mesma
proporção (14,28%). No isolamento e identificação fúngica, foi possível também observar
diferenças quanto aos isolados em relação aos grupos. No primeiro grupo houve 30,5% de
Candida spp, seguido de Aspergillus spp (18,64%) e Curvularia (11,86%). No segundo grupo
de animais castrados, houve maior freqüência de Penicillium spp (25%), Cladosporium
(18,75%) e Candida spp (16,66%). Sobre a associação entre os exames microbiológicos e
colpocitológicos, observou-se uma concordância entre os dois métodos auxiliares de
diagnóstico da microbiota vaginal de gatas somente em relação ao isolamento bacteriano, mas
não em relação à fúngica.
Palavras chave: gatas, microbiota vaginal, citologia vaginal
8
aBSTRACT
ANDRADE, Juliana Braga de. Microbiological and cytological study of the genital tract
of female domestic cats. 2006. 31p. Dissertation (Master Science in Veterinary
Microbiology) Instituto de Veterinária, Departamento de Microbiologia Veterinária,
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, RJ, 2006.
In this study vaginal material was collected for microbiological and cytological evaluation in
39 female domestic cats, divided into two groups. The first group consisted of 21 whole
animals, and the second of 18 neutered cats. All animals were apparently healthy, with ages
varying from six months to 12 years, and were of different breeds; they came from domestic
and county breeding centers in Rio de Janeiro. After mechanical containment, and cleansing
of vulvar area, the proceeding for the microbiological isolation begun, for this two sterile
pedriatic swabs previously embedded in a 0,9% saline solution were necessary. The first swab
was used for bacterial isolation and preserved in Nutrient Agar transportation medium. The
second swab was used for the fungal isolation and transported in Peptonated Water 1%.
Afterwards, the material of both collections was refrigerated and sent to analysis. After this,
the collection for cytological analysis was performed using a small interdental brush. The
smears were fixated in absolute alcohol and dyed by the quick dyeing method (Diff Quick ).
In both groups studied differences were observed as to the number and species of bacteria.
The first group had a higher frequency of Edwardsiella tarda (19,04%), followed by
Enterobacter spp and Streptococcus spp, both with 17 isolations (16,19%). In relation to the
neutered animals of the second group there was a higher predominance of Enterobacter spp
(16,88%) and of Escherichia coli and of aeroginous Pseudomonas in the same proportion (
14,28%). In the fungal isolation and identification it was also possible to observe differences
related to the isolated ones in relation to the groups. In the first group there were 30,5% of
Candida spp followed by Aspergillus spp (18,64%) and Curvularia spp (11,86%). Whereas
in the second group, with castrated animals, there was a higher frequency of Penicillium spp
(25%), Cladosporium (18,75%) and Candida spp (16,66%). As to the association between
the microbiological and colpocytological exams it was observed that there was an agreement
between the two auxiliary methods of diagnostic of vaginal microbiota of female cats only in
the bacterial isolation, but not in the fungal isolation.
Key words: cats, vaginal microbiota, vaginal cytology
9
LISTAS DE TABELAS
15 Tabela 1 Caracterização das 39 gatas domésticas que foram
submetidas à análise microbiológica e citológica vaginal.
17 Tabela 2 Freqüência absoluta e relativa dos isolamentos bacterianos
de acordo com estado reprodutivo das 39 gatas domésticas
submetidas à análise microbiológica e citológica vaginal.
19 Tabela 3 Freqüência absoluta e relativa dos isolamentos fúngicos de acordo
com estado reprodutivo das 39 gatas domésticas submetidas à
análise microbiológica e citológica vaginal.
10
LISTAS DE FIGURAS
21 Figura 1 Quantidade de leveduras presentes nas lâminas avaliadas na
citologia vaginal.
22 Figura 2 Quantidade de fungos filamentosos presentes nas lâminas
avaliadas na citologia vaginal.
11
SUMÁRIO
1 1 INTRODUÇÃO
2 2 REVISÃO DE LITERATURA
2 2.1 Microbiota Bacteriana Vaginal
4 2.2 Microbiota Fúngica Vaginal
5 2.3 Citologia Vaginal
5 2.4 Associação entre o Isolamento Microbiano e Citologia Vaginal
6 2.5 Avaliação Microbiológica Vaginal
6 2.5.1 Material utilizado
6 2.5.2 Métodos de coleta
7 2.5.3 Conservação das amostras
7 2.5.4 Isolamento e identificação bacteriana
7 2.5.5 Isolamento e identificação fúngica
7 2.6 Avaliação Citológica
7 2.6.1 Métodos de coleta
8 2.6.2 Fixação do esfregaço
8 2.6.3 Coloração do esfregaço
9 3 MATERIAL E MÉTODOS
9 3.1 Animais
9 3.2 Preparo dos Animais
10 3.3 Avaliação Bacteriana Vaginal
10 3.3.1 Material para coleta
10 3.3.2 Procedimento de coleta
10 3.3.3 Isolamento e identificação bacteriana
11 3.4 Avaliação Fúngica Vaginal
11 3.4.1 Material para coleta
11 3.4.2 Procedimentos de coleta
11 3.4.3 Isolamento e identificação fúngica
12 3.5 Avaliação Citológica Vaginal
12 3.5.1 Material para coleta
12 3.5.2 Procedimento de coleta
12 3.5.3 Análise do esfregaço
12 3.6 Associação entre o Isolamento Microbiano e Citologia Vaginal
13 3.7 Análise Estatística
14 4 RESULTADOS E DISCUSSÃO
12
14
4.1 Caracterização dos Animais
14
4.1.1 Caracterização dos grupos 1 e 2
16
4.2 Avaliação Microbiológica Vaginal
16
4.2.1 Isolamento e identificação bacteriana
18
4.2.2 Associação das variáveis de caracterização dos animais com a microbiota
bacteriana
18
4.2.3 Isolamento e identificação fúngica
20
4.2.4 Associação entre as variáveis de caracterização dos animais com a microbiota
fúngica
20
4.2.5 Associação das variáveis de caracterização dos animais com o estado
reprodutivo e a microbiota vaginal
20
4.2.6 Associação entre a microbiota bacteriana e fúngica vaginal
21
4.3 Avaliação Citológica
23
5 CONCLUSÕES
24
6 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
29
ANEXOS
29
A- Ficha dos Animais
30
B- Coloração de Gram
31
C- Coloração de Panótico
13
1 INTRODUÇÃO
A reprodução de pequenos animais é um campo da Medicina Veterinária que muito
tem se desenvolvido, porém diversos aspectos reprodutivos ainda necessitam ser esclarecidos
para que as biotécnicas possam ser aplicadas com sucesso, ampliando assim o ganho
reprodutivo das espécies domésticas, principalmente cães e gatos.
O Brasil hoje é o segundo país no mundo em população de animais domésticos, o que
exige um crescente desenvolvimento da Medicina Veterinária em diversas áreas. O gato
doméstico além do seu valor afetivo, representa um interessante modelo para o estudo de uma
série de patologias humanas e constitui um modelo acessível para as investigações na
reprodução de felinos silvestres. Muitos estudos na medicina felina estão sendo realizados,
porém informações a respeito da reprodução nessa espécie ainda são escassas.
A microbiota naturalmente encontrada na vagina de gatas hígidas é um assunto que
merece destaque quando se trata da reprodução desses animais. O isolamento e a identificação
dos microrganismos normalmente encontrados no ambiente vaginal, é de extrema importância
para se efetuar uma correta identificação daqueles envolvidos em processos patológicos como
vaginite, abortamento, piometrite e morte neonatal. A interpretação dos resultados do
isolamento torna-se difícil, uma vez que a microbiota sofre alterações em função da idade,
estágio reprodutivo e fase do ciclo estral dos animais.
A citologia vaginal é um recurso amplamente utilizado na avaliação e no
acompanhamento de fêmeas nas diversas espécies, auxiliando na reprodução assistida e no
diagnóstico preventivo de processos infecciosos. A análise citológica possui diversas
aplicações, entre elas a de verificar a existência de agentes microbianos que podem ou não ter
relação com distúrbios reprodutivos. A associação da citologia vaginal com a microbiologia é
um assunto ainda pouco estudado na Medicina Veterinária e sua correlação é importante para
uma correta análise de resultados.
O objetivo deste trabalho foi de caracterizar a microbiota aeróbia vaginal de gatas
domésticas hígidas, fazendo a associação dos isolamentos bacterianos e fúngicos aos achados
colpocitológicos, permitindo que esta seja uma ferramenta a ser aplicada na Medicina
Veterinária Preventiva.
14
2 REVISÃO DE LITERATURA
2.1 Microbiota Bacteriana Vaginal
Sob condições normais, a microbiota vaginal apresenta composição e número variável.
Os microrganismos encontrados neste ambiente também podem estar presentes na pele, fezes
e cavidade oral (RAMASWAMY et al., 1991; SHARDA et al., 1991; BALASSU et al., 1992;
CAMPERO et al., 1992; KUNZ et al., 2002). No campo da microbiologia do trato reprodutivo
feminino, o conhecimento dos microrganismos saprófitas pode ser considerado um requisito
básico para se estabelecer diagnósticos apropriados e possibilitar indicações de tratamentos
para as patologias infecciosas (DOYLE et al., 1991).
Os microrganismos habituais da vagina protegem este ambiente contra bactérias
patogênicas e podem tornar-se patogênicos quando os animais apresentam o sistema
imunológico comprometido, em decorrência do estresse causado por fatores variados tais
como: súbitas mudanças de temperatura, nutrição deficiente, final de gestação, parto e
doenças infecciosas (VERMA et al., 1994; LIANJUAN et al., 1995).
O maior número de microrganismos freqüentemente isolados da mucosa vaginal
constitui-se de bastonetes gram-negativos provenientes do trato gastro-intestinal,
especialmente Escherichia coli e gram-positivos como Streptococcus spp (RAMASWAMY et
al., 1991; SHARDA et al., 1991; BALASSU et al., 1992; CAMPERO et al., 1992; KUNZ et
al., 2002).
Alguns autores analisaram a microbiota naturalmente encontrada na vagina de gatas
domésticas, como CLEMETSON & WARD (1990) que avaliaram 53 gatas saudáveis. Os
animais foram divididos em três grupos de acordo com a idade e procedência. Foi possível
verificar que 52 das 53 amostras vaginais houve crescimento bacteriano aeróbio. As bactérias
mais isoladas foram: Staphylococcus coagulase negativo, Streptococcus canis e Escherichia
coli (56,0%, 52,0% e 44,0%, respectivamente). Não houve diferença significativa em relação
à faixa etária dos animais, mas, quanto à procedência dos mesmos, obteve-se maior
freqüência de isolamento nos animais provenientes de diferentes localidades, em comparação
aos selecionados de um mesmo gatil. Segundo os autores, muitas bactérias encontradas no
estudo em animais hígidos podem desenvolver patologias reprodutivas se a imunidade desses
animais for alterada.
Outro estudo envolvendo fêmeas felinas foi desenvolvido por SCHOCKEN-
ITURRINO et al. (1992b), no qual os autores realizaram o isolamento e identificação de 80
swabs vaginais procedentes de gatas adultas e inteiras, a fim de avaliar a microbiota vaginal
normal nesta espécie. Entre os 223 isolados predominaram as bactérias gram negativas com
81/223 (36,32%), em segundo lugar os cocos gram positivos 70/223 (31,39%), depois
bastonetes gram positivos 54/223 (24,21%) e por último os fungos com 18/223 (8,07%).
Dentre as espécies bacterianas isoladas duas se destacaram, Escherichia coli isolada 67 vezes
(83,75%) e Streptococcus spp isolados 40 vezes (50%).
Sobre a avaliação da microbiota vaginal em gatas adultas e inteiras realizado por
JARDIM et al. (1992) em 12 animais saudáveis, os autores identificaram diversos gêneros
bacterianos principalmente Staphylococcus spp, Streptococcus spp, Lactobacillus spp e
15
Enterobactérias em todas as amostras, e só em algumas amostras foram isolados além das
anteriores: Corynebacterium spp, Bacillus spp e Leveduras.
No Brasil, NASCIMENTO & LOPES (1997) desenvolveram um trabalho sobre
microrganismos normalmente encontrados na vagina de 28 gatas clinicamente sadias, com
idades e raças variadas. A análise dos resultados obtidos demonstrou uma maior freqüência de
Streptococcus β hemolítico (30,4%), seguido de Escherichia coli (12,1%), Escherichia coli
hemolítica (12,1%) e Staphylococcus aureus (12,1%), entre outros microrganismos em menor
proporção.
Em estudo sobre a microbiota vaginal de felinos silvestres, GUIDO et al. (2000)
realizaram o isolamento de 15 fêmeas mantidas em cativeiro, sem distúrbios reprodutivos,
entre elas: três fêmeas de onça pintada, seis de gato do mato pequeno, quatro de jaguatirica e
duas de gato maracajás. Os resultados obtidos com relação a microbiota vaginal foram: 33,3%
de Bacillus spp, 33,3% de Staphylococcus spp em onças pintadas; 50% de Staphylococcus
spp, 16,7% de Escherichia coli, 16,7% de Proteus vulgaris em gata do mato pequeno; 100%
de Escherichia coli em jaguatiricas e 100% de Proteus vulgaris em gatas maracajás.
Sobre a caracterização da população bacteriana em gatas domésticas adultas, HOLST
et al. (2003) utilizaram 66 animais, havendo o crescimento de bactérias aeróbias em 51
amostras, principalmente Escherichia coli hemolítica (32,0%), Escherichia coli (17,0%),
Streptococcus canis (15,0%) e Staphylococcus spp (9,0%). Quanto à caracterização dos
animais, não foi verificada diferença significativa para animais que haviam cruzado pelo
menos uma vez. O fator idade influenciou no número de isolamentos, uma vez que o número
de bactérias se mostrou maior em gatas jovens do que nos animais adultos utilizados neste
estudo sem, no entanto, apresentar diferença significativa.
A vaginite representa uma importante doença com influência na reprodução, e o
conhecimento relativo aos agentes microbianos que habitam contínua ou ocasionalmente o
ambiente vaginal dos animais, é relevante para melhor entender essa patologia (MORAES,
2004). De uma maneira geral, observam-se poucos dados a respeito do impacto da vaginite e
outras afecções do sistema genital de felinos domésticos (HOLST et al., 2003). Assim, devido
ao risco potencial que os fungos e bactérias representam como fontes endógenas de infecções,
entende-se ser necessária a identificação destes microrganismos na microbiota vaginal,
contribuindo para o conhecimento de seu papel na vaginite e conseqüentemente na
reprodução animal (MORAES, 2004).
Processos infecciosos do trato reprodutivo são comuns em gatas e cadelas, estas
patologias são responsáveis por mortes de neonatos, representando um risco no processo de
reprodução. A associação da microbiota vaginal patogênica com processos de infertilidades e
septicemia neonatal já foi observada em cadelas, porém poucos são os dados sobre gatas
domésticas (CLEMETSON & WARD, 1990).
O papel de bactérias e fungos no desenvolvimento de doenças reprodutivas não está
totalmente elucidado, como conseqüência disso, gatas com distúrbios reprodutivos são
tratadas com antibióticos e antifúngicos, especialmente quando estes microrganismos são
encontrados em amostras vaginais, eliminando desta forma os agentes naturalmente
encontrados neste ambiente e favorecendo a proliferação de bactérias e fungos patogênicos
(HOLST et al., 2003).
Poucos são os dados a respeito da microbiota potencialmente patogênica em gatas.
SCHOCKEN-ITURRINO et al. (1992a) realizaram o isolamento da microbiota vaginal de 10
gatas adultas durante oito semanas e entre as 223 culturas isoladas foram identificados vários
16
tipos de bactérias consideradas patogênicas para as vias urogenitais, podendo ocasionar
doenças como endometrite, vaginite, cistite, pielonefrite, uretrite, entre outras, sendo elas:
Escherichia coli (30,0%), Streptococcus spp (17,9%), Staphylococcus aureus (7,2%),
Corynebacterium pyogenes (5,8%) e Proteus vulgaris (2,3%). Os autores concluíram que as
bactérias potencialmente patogênicas fazem parte da microbiota normalmente encontrada na
mucosa vaginal dessas gatas.
Alguns trabalhos sobre a microbiota vaginal em fêmeas de diversas espécies foram
descritos, porém a referência encontrada na literatura que descreve os microrganismos
isolados de acordo com o estado reprodutivo foi o realizado por LING & RUBY (1978), onde
houve a analise do material vaginal de 41 fêmeas caninas adultas divididas em dois grupos,
sendo 20 animais não castrados e 21 castrados. Foi verificado um maior isolamento de
Staphylococcus aureus e Streptococcus canis em todos os animais, sendo 70 e 35%,
respectivamente, para o primeiro grupo e 55 e 45 %, respectivamente, para o segundo grupo.
Analisando os resultados obtidos os autores observaram que não houve diferença significativa
na freqüência dos microrganismos encontrados entre os animais castrados e inteiros.
2.2 Microbiota Fúngica Vaginal
Os fungos têm sido encontrados no trato genital de animais desde 1920, quando
SMITH (1920) descreveu isolamentos a partir de membranas fetais de útero bovino. A partir
daí estes microrganismos têm sido descritos como habitantes naturais ou patogênicos dos
órgãos genitais de diferentes espécies (MORAES, 2004). Em caninos observa-se que os
fungos, principalmente as leveduras, fazem parte da microbiota vaginal normal, com
variações de acordo com as fases do ciclo estral, podendo assim constituir uma fonte
endógena de infecção (CLEFF et al., 2001).
Em relação aos achados fúngicos vaginais em gatas domésticas, SCHOCKEN-
ITURRINO et al. (1992a) realizaram avaliações em 10 animais adultos e hígidos encontrando
18 isolados fúngicos, o que corresponde a 8,07% do total de microrganismos. JARDIM et al
(1992), também no Brasil, isolaram leveduras do trato genital de 12 gatas consideradas
saudáveis.
Devido à escassez de trabalhos na espécie felina, foi feita uma citação dos resultados
encontrados nas outras espécies animais como observado por OLIVEIRA (1990) no Brasil,
que estudou a microbiota aeróbia de 90 fêmeas caninas hígidas de diversas raças e idade.
Dentre os isolados foi verificada a presença de fungos, sendo: 4,4% de Penicillium spp e 1,1%
de Mallassezia pachydermatis nas amostras vaginais.
Em um trabalho sobre a prevalência de leveduras na cavidade vaginal de fêmeas
caninas foram analisadas 299 amostras durante as diferentes fases do ciclo estral, de fêmeas
mantidas em ambiente controlado e fêmeas alojadas em canis particulares. Isolaram com
maior freqüência Candida spp, Rhodotorula spp e Malassezia pachydermatis com 33,3% de
freqüência nos animais com ambiente controlado e 65,4 % para os animais de canis
particulares, concluindo que estas leveduras fazem parte da microbiota vaginal de fêmeas
caninas hígidas (CLEFF et al., 2001).
No estudo realizado no Brasil sobre colpocitologia preventiva em cadelas, CHAVES
(2003), observou 162 exames citológicos de animais clinicamente saudáveis, provenientes de
criações comerciais e particulares, com idade variando de um a 14 anos. Com relação aos
achados micóticos vaginais, houve uma ocorrência de 17,4%, sendo identificadas pseudo-
17
hifas e conídeos nas lâminas da citologia, num total de 49 amostras que foram positivas para
pelo menos um microrganismo.
MORAES (2004), realizou investigações sobre a reprodução de 25 fêmeas de micos-
leões mantidas em cativeiro, com idade variando entre dois a 12 anos, sem histórico de
doenças reprodutivas e julgadas livres de vaginite. Foram obtidos isolamentos fúngicos em 16
animais (64%), sendo 70,6% dos isolados de leveduras identificadas como Candida sp,
principalmente Candida glabrata e 29,4% de fungos filamentosos pertencentes aos gêneros
Trichosporon, Aspergillus e Penicillium. Segundo o autor a colonização da vagina de fêmeas
de micos-leões por fungos é expressiva, e principalmente as leveduras podem ser
consideradas integrantes da microbiota residente, enquanto os fungos filamentosos são
colonizadores transitórios ou ocasionais.
As enfermidades fúngicas têm grande importância nos animais domésticos, tanto pela
dificuldade na prevenção como na obtenção de um tratamento adequado (GARCIA &
BLANCO, 2000). Poucos trabalhos são descritos na literatura sobre a microbiota vaginal
fúngica potencialmente patogênica que pode estar associada direta ou indiretamente a
distúrbios reprodutivos. O abortamento micótico por Aspergillus spp, Candida spp,
Zygomycetes spp e outras leveduras e fungos filamentosos já foram descritos em bovinos e
bubalinos (AINSWORTH & AUSTWICK, 1973), bem como casos de endometrites e
cervicites determinadas por fungos (COLLINS, 1964; BLUE, 1983; PUGH et al., 1986). Em
cadelas com alterações reprodutivas, MORENO et al. (1973), utilizaram 100 fêmeas e
obtiveram 5,0 % dos isolados de Candida albicans. Neste mesmo trabalho foi verificada a
associação entre os microrganismos bacterianos e fúngicos encontrados, constatando-se
16,0% para Escherichia coli, Staphylococcus aureus e Candida albicans, seguida de 8,0% de
Staphylococcus aureus, Aerobacter aerogenes e Candida albicans e 4,0% para associação de
Escherichia coli, Proteus mirabilis e Candida albicans.
2.3 Citologia Vaginal
A colpocitologia também conhecida como citologia vaginal ou citologia esfoliativa é o
estudo das células do aparelho genital a partir da esfoliação do epitélio vaginal, sendo um
método prático, seguro e barato para avaliação da saúde reprodutiva de cadelas e gatas,
avaliando qualitativamente alterações infecciosas e endócrinas (MELLO, 1997). O estudo da
citologia esfoliativa, introduzido por Papanicolaou (1942), possibilitou avaliações celulares,
uma vez que o epitélio vaginal sofre modificações em função de variações hormonais cíclicas
(SCHUTTE, 1967) durante o ciclo estral, sendo também muito utilizada no intuito de
diagnosticar precocemente patologias do trato genital de fêmeas (RAPOSO & SILVA, 1999).
A análise citológica vaginal apresenta várias aplicações práticas no caso da espécie
felina (HERRON, 1977). O exame auxilia no diagnóstico de doenças uterinas e vaginais
(HERRON, 1977; BANKS, 1992), além de revelar a ocorrência de determinadas disfunções
endócrinas (ARAGÃO, 2000), permitindo também a visualização de células esfoliadas,
leucócitos, bactérias, fungos, espermatozóides (HERRON, 1977), eritrócitos, restos celulares,
sujidades e estrias de muco (TONIOLLO et al., 1995).
2.4 Associação entre o Isolamento Microbiano e Citologia Vaginal
18
Vários autores estudaram a microbiota vaginal em cadelas, tanto a população normal,
quanto à patogênica, sendo que, na literatura, poucos trabalhos referem-se à associação destas
bactérias com a colpocitologia (CHAVES, 2003).
Freqüentemente, permanecem dúvidas aos clínicos da área de reprodução com relação
aos resultados obtidos de exames microbiológicos, os quais devem ser interpretados em
associação com a observação clínica e com exames citológicos (LANGONI et al., 1994). Em
relação à citologia microbiológica, alguns agentes entre fungos e bactérias podem ser
identificados direta ou indiretamente, baseados nas alterações causadas nas células epiteliais,
pois o exame não permite a classificação da espécie presente (NETO, 2004).
O exame microbiológico representa um teste indireto para o diagnóstico de doenças
infecciosas do aparelho reprodutor. O isolamento de determinado microrganismo não
constitui, necessariamente, indicativo de infecção, e o não isolamento deste não elimina o
indicativo de doença, desta forma o fato dele não ser isolado no material vaginal não elimina a
possibilidade de doenças da reprodução, uma vez que uma série de microrganismos necessita
de condições especiais para o seu isolamento (LANGONI et al., 1994).
As técnicas empregadas e a interpretação dos resultados são importantes para avaliar
se os microrganismos isolados podem ser incriminados como agentes de doenças
reprodutivas, causadores de vaginites, piometrites e endometrites ou contaminantes não
patogênicos (BAKER & KENNEY, 1980).
Analisando casos de endometrite causadas por Candida spp em éguas, PUGH et al.
(1986) demonstraram que a citologia vaginal é um exame tão preciso quanto à avaliação
microbiológica. LANGONI et al. (1994), em fêmeas eqüinas, observaram uma boa
concordância entre os achados bacteriológicos e citológicos, havendo desta forma uma
associação significativamente forte entre os dois tipos de exames. Os autores também
puderam concluir que o resultado dos exames citológicos é decisivo quanto ao diagnóstico das
endometrites, devendo ser levado em consideração para se evitar resultados falso positivos
que acabarão por induzir a tratamentos desnecessários, colocando em risco, inclusive, a
integridade da mucosa do trato reprodutivo, e significando gastos com medicamentos.
2.5 Avaliação Microbiológica Vaginal
2.5.1 Material utilizado
Para a coleta de material vaginal para análise microbiológica normalmente utiliza-se
swabs estéreis (hastes plásticas ou de madeira), com a ponta recoberta de algodão hidrófilo
(MORENO et al., 1973; NASCIMENTO & LOPES, 1997; CLEFF et al., 2001; HOLST et al.,
2003) e curetas estéreis (CLEFF et al., 2001). Antes da introdução do swab no ambiente
vaginal é realizada uma limpeza da vulva do animal com uma gaze seca ou úmida para
retirada de sujidades (MORENO et al., 1973; LANGONI et al., 1994).
O ambiente vaginal de gatas domésticas não contém muito material, desta forma
HOLST et al. (2003), observaram que o umedecimento destes swabs com solução fisiológica
auxilia na coleta do material.
2.5.2 Métodos de coleta
A coleta deve ser realizada em condições assépticas de modo a assegurar que a mesma
não se contamine com outros microrganismos (KONEMAN et al., 2001).
19
Qualquer que seja a amostra a coletar, o material utilizado deverá estar esterilizado e o
procedimento deverá ser realizado antes de qualquer tratamento com antibióticos e
antifúngicos. Se a amostra não puder ser trabalhada de imediato, deve ser utilizada uma
técnica de conservação, através de meios de transporte (KONEMAN et al., 2001).
2.5.3 Conservação das amostras
A conservação das amostras para diagnóstico microbiológico requer uma refrigeração
adequada. De um modo geral, se a amostra não puder ser encaminhada de imediato ao
laboratório, deve-se evitar variações importantes da temperatura, conservando-a em torno de
4-5° C, que pode ser obtido com o uso do gelo úmido e a utilização, se necessário, de meios
de transporte como o Agar Nutriente, Água peptonada e caldo B.H.I. (caldo infusão cérebro e
coração). O material acondicionado nos tubos de ensaio contendo meio de transporte deve ser
remetido para análise em caixas de isopor refrigerada (KONEMAN et al., 2001).
2.5.4 Isolamento e identificação bacteriana
Após a chegada do material a ser analisado ao laboratório é realizada a semeadura
direta estriando o material por toda placa. Os meios utilizados para o crescimento das colônias
devem abranger as exigências das bactérias mais comumente isoladas no ambiente vaginal.
As placas devem ser incubadas à 37º C em estufa bacteriológica por um período de 24, 48 e
72 horas, sendo observadas as morfologias das colônias isoladas. Depois da identificação
presuntiva das colônias, estas devem ser submetidas ao método de Gram, teste da catalase e
hidróxido de potássio a 30%, e depois aos testes bioquímicos pertinentes a espécie suspeita,
segundo KONEMAN et al (2001).
2.5.5 Isolamento e identificação fúngica
Após a chegada da amostra ao laboratório, cada swab é semeado em placas
contendo Agar Sabouraud a 2% para o crescimento de fungos filamentosos e leveduras. A
identificação é feita com base nas características macroscópica das colônias e característica
microscópica dos isolados, e quando necessária à utilização de testes bioquímicos. (ELLIS,
1971; ELLIS, 1976; DOMSCH et al., 1980; HOOG et al., 1995; DAVID, 1997; BARNETT et
al., 1999; PITT, 2000; KLICH, 2002).
2.6 Avaliação Citológica
2.6.1 Métodos de coleta
Várias técnicas de coleta do material vaginal são descritas (MICHELUZZI &
OSTROWSKI, 1976): na direta, a lâmina é pressionada sobre a mucosa vaginal, porém é
deficiente, já que a maioria dos preparos realizados mostra distorções celulares, conforme
descreveram EVANS & SAVAGE (1970) para cadelas. Na indireta, utilizam-se espátulas de
madeira ou metálicas, aspiração do conteúdo vaginal por meio de pipetas de vidro de
20
extremidade curva contendo solução salina isotônica e swab estéril (CHRISTIE et al.,1970;
LEIN, 1988).
Outros métodos também já foram descritos, entre eles: escova ginecológica
(ALVARENGA, 1996; CHAVES, 2003) lavado uterino (ALVARENGA, 1996) e escova
interdental (ARAGÃO, 2000).
O instrumento utilizado deve ser inserido no vestíbulo vaginal cerca de 1,0 cm a 1,5
cm de profundidade (TONIOLLO et al., 1995) havendo desta forma uma ligeira rotação na
mucosa, o instrumento com o exsudato coletado é retirado e rolado sobre a lâmina estéril de
microscopia (BANKS, 1992).
2.6.2 Fixação do esfregaço
A fixação do material deve ser feita imediatamente (LUCA, 1981). A lâmina deve ser
rapidamente colocada em um frasco com etanol a 95 % (LUCA, 1981) ou em uma solução de
partes iguais de éter e álcool a 90 ºGL (MILLS et al., 1979; TONIOLLO et al., 1995), ou em
álcool absoluto conforme recomendado por SOMRAK et al. (1990).
2.6.3 Coloração do esfregaço
Há vários métodos de coloração já descritos, como o método Shorr (LUCA, 1981;
TONIOLLO et al., 1995); o corante de Papanicolaou (MILLS et al., 1979; LUCA, 1981), o
corante de Wright (MILLS et al., 1979; OLSON et al., 1984) e coloração diferencial rápida ou
coloração de panótico (Diff Quick), este último de fácil execução, representando um
caminho alternativo para a citologia vaginal (NEVES et al., 2001).
21
3 MATERIAL E MÉTODOS
3.1 Animais
Para a realização do presente estudo foram utilizadas 39 gatas divididas em dois
grupos: Grupo 1: composto de 21 fêmeas inteiras e Grupo 2: composto de 18 fêmeas
castradas. Os animais utilizados apresentavam diferentes raças, com idade variando de seis
meses a 12 anos e eram provenientes de criações domiciliares (onde estes eram mantidos
isolados, sem contato com outros animais) e particulares (onde viviam aglomerados, sendo
denominado neste estudo de gatis) do Município do Rio de Janeiro. Após exame clínico geral,
os animais foram considerados saudáveis (de acordo com a temperatura corporal e aspecto
geral) e sem indícios de patologias reprodutivas (secreção vaginal, hiperemia e edema vulvar).
Por ser tratar de um estudo inicial nesta linha de pesquisa, se faz necessário um
acompanhamento do animal, por isto os procedimentos foram realizados juntamente ao exame
clínico e anamnese, onde foram colhidos dados referentes à identificação, manejo e histórico
clínico geral e reprodutivo dos animais (Anexo A). As variáveis analisadas foram idade, raça,
histórico geral, tipo de criação, histórico do ciclo, cruzamentos, amamentação e status
reprodutivo.
Quanto à idade, os animais foram separados em quatro intervalos segundo a faixa
etária em meses (6 a 24 meses, 25 a 48 meses, 49 a 72 meses e > 73 meses), segundo a raça os
animais selecionados foram separados em Persa, Siamês ou SRD (sem raça definida). Sobre
o histórico geral foi verificado se os animais eram vacinados e/ou vermifugados. Quanto ao
tipo de criação, as gatas foram divididas em criação com aglomerado de felinos (gatis) ou
criação domiciliar. Com relação ao histórico reprodutivo, foram verificadas as variáveis
cruzamento, amamentação e status reprodutivo. Na variável cruzamento, os proprietários das
fêmeas inteiras foram questionados se os animais já haviam cruzado pelo menos uma vez, já o
das fêmeas castradas foram questionados se estas gatas haviam cruzado pelo menos uma vez
antes da castração. Quanto à amamentação, somente os proprietário das fêmeas inteiras foram
questionados se estes animais estavam amamentando no momento do estudo. Sobre o status
reprodutivo, as fêmeas foram classificadas em nulíparas (fêmeas que nunca haviam parido) ou
paridas (se já haviam parido pelo menos uma vez).
As coletas para avaliação microbiológica e citológica foram realizadas entre os meses
de março e maio de 2005.
3.2 Preparo dos Animais
Antes da realização dos procedimentos de coleta, os animais foram contidos de forma
segura (contenção mecânica realizada por dois auxiliares) e mantidos em decúbito dorsal
conforme descrito por ARAGÃO (2000). Logo depois, a vulva das gatas foi limpa com gaze
umedecida com soro fisiológico estéril para retirada de sujidades, conforme procedimento
utilizado por MORENO et al. (1973).
Os animais receberam um número seqüencial referente à ordem em que eles foram
sendo pegos para a coleta. Esta numeração foi adicionada no formulário (Anexo A).
3.3 Avaliação Bacteriana Vaginal
22
3.3.1 Material para coleta
Foram utilizados swabs estéreis pediátricos
1
com haste flexível de polipropileno
medindo 180 mm de comprimento e 2,2 mm de diâmetro, com ponta de algodão hidrófilo
(NASCIMENTO & LOPES, 1997; HOLST et al., 2003), tubos de ensaio contendo meio de
transporte sólido Agar Nutriente para o acondicionamento dos swabs, soro fisiológico estéril e
luvas descartáveis.
3.3.2 Procedimento de coleta
Para a coleta de material vaginal nas gatas, foi realizado o afastamento manual dos
lábios vulvares evitando assim a contaminação externa (BJURSTRÖM & FORSBERG-
LINDE, 1993), e com as mãos enluvadas foi introduzido o swab umedecido com soro
fisiológico estéril por cerca de 1,0 cm de profundidade no vestíbulo vaginal, havendo então
rotações por toda mucosa vaginal interna (HOLST et al., 2003).
O swab foi colocado dentro de um tubo de ensaio estéril, contendo meio de transporte
Agar Nutriente, identificado com o número do animal e imediatamente tamponado com
algodão hidrófobo. O material foi mantido sob refrigeração com gelo úmido (5 °C) por um
período máximo de 24 horas (BJURSTRÖM & FORSBERG-LINDE, 1993).
3.3.3 Isolamento e identificação bacteriana
No laboratório de Bacteriologia, localizado no Instituto de Veterinária da Universidade
Federal Rural do Rio de Janeiro, foi realizada a semeadura direta em placas de Petri
descartáveis através da alça de platina por esgotamento. Os meios utilizados foram: Agar
Sangue, Agar Azida, Agar Manitol Vermelho de Fenol, Agar Mac Conkey e Agar E.M.B.
(Eosina de Azul de Metileno). As placas foram incubadas a 37 º C em condições de aerobiose
na estufa bacteriológica por um período de 24, 48 e 72 horas, procedendo-se em seguida a
observação morfológica e tintorial das colônias isoladas.
Após a identificação presuntiva das colônias, estas foram submetidas ao método de
Gram (Anexo B), teste da catalase e hidróxido de potássio a 30 %. A partir daí, estabeleceu-se
metodologia de identificação pertinente ao microrganismo suspeito. Para as amostras
suspeitas de enterobactérias, as seguintes provas de identificação foram realizadas:
comportamento em Ágar Tríplice Açúcar-ferro, motilidade em tubo, produção do Indol,
produção de ácidos a partir da glicose, fermentação de açúcares, redução do nitrato, produção
de gelatinase, produção de urease, degradação do citrato e do malonato, prova de Voges-
Proskaeur e Vermelho de Metila, de acordo com o microrganismo envolvido. A identificação
dos isolados de Streptococcus spp foi efetuada através da inoculação em leite adicionado de
azul de metileno, e das provas de hidrólise de esculina e do hipurato. Para a identificação do
gênero Staphylococcus spp, estes eram submetidos à prova da coagulase livre, resistência a
bacitracina, redução de nitratos, Voges-Proskauer, fermentação de maltose ( KONEMAN et
al., 2001).
__________________________________________________________________
1
Marca W-L Imunoquímica
23
3.4 Avaliação Fúngica Vaginal
3.4.1 Material para coleta
Foram utilizados swabs estéreis pediátricos com haste flexível de polipropileno
medindo 180 mm de comprimento e 2,2 mm de diâmetro, com ponta de algodão hidrófilo
(MORENO et al., 1973; CLEFF et al., 2001), tubos de ensaio contendo meio de transporte
líquido Água Peptonada a 1% para o acondicionamento dos swabs, soro fisiológico estéril e
luvas descartáveis.
3.4.2 Procedimento de coleta
As gatas foram mantidas em decúbito dorsal para o procedimento. Procedeu-se o
afastamento dos lábios vulvares manualmente evitando assim a contaminação externa
(BJURSTRÖM & FORSBERG-LINDE, 1993), e com as mãos enluvadas foi introduzido o
swab estéril umedecido com soro fisiológico estéril por cerca de 1,0 cm de profundidade no
vestíbulo vaginal, havendo então rotações por toda mucosa vaginal interna. O swab foi
colocado dentro de um tubo de ensaio estéril contendo meio de transporte Água peptonada a
1%, identificado com o número do animal e tamponado imediatamente com rosca. O material
foi mantido sob refrigeração com gelo úmido (5°C) por um período máximo de 24 horas
(BJURSTRÖM & FORSBERG-LINDE, 1993).
3.4.3 Isolamento e identificação fúngica
O material foi encaminhado ao laboratório de Micologia do Departamento de
Microbiologia e Imunologia Veterinária da Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro,
localizado no Projeto de Sanidade Animal, para a semeadura em placas de Petri com a
utilização do próprio swab. As placas continham os meios de cultura Agar Sabouraud
Dextrose com cloranfenicol levógeno (0,05 g/L), Agar Sangue com cloranfenicol levógeno
(0,05 g/L) e Agar Sabouraud Dextrose, todas foram incubadas por 7 dias em incubadora
B.O.D. Posteriormente foram feitas as provas iniciais de identificação com azul de algodão,
para o reconhecimento de fungos filamentosos, leveduras e bactérias.
As amostras
bacterianas foram imediatamente descartadas e o material fúngico foi armazenado em tubos
de ensaio contendo o meio Agar Sabouraud Dextrose inclinado e incubados novamente à
temperatura de 25 °C por cinco a sete dias. Depois da cultura dos fungos filamentosos, estes
foram identificados com base na taxonomia clássica, através do estudo morfológico
(macroscópico e microscópico) e quando necessário realizou-se testes bioquímicos.
Para o estudo macroscópico, foram observados a superfície e reverso da colônia,
quanto ao diâmetro, cor dos esporos e micélio, textura, presença de exudatos e
pigmentos solúveis. As estruturas microscópicas (conidióforos, células
conidiogênicas e conídios) foram comparadas às apresentadas por critérios
adotados por literaturas especificas (ELLIS, 1971; ELLIS, 1976; DOMSCH et al., 1980;
HOOG et al., 1995; DAVID, 1997; BARNETT et al., 1999; PITT, 2000; KLICH, 2002).
Os isolados de leveduras foram caracterizados com a utilização de métodos
tradicionais de assimilação e fermentação de açúcares e estudos fisiológicos complementares,
de acordo com as chaves de identificação propostas por KURTZMAN e FELL (1998)
24
3.5 Avaliação Citológica Vaginal
3.5.1 Material para coleta
Foram utilizadas escovas interdentais finas
2
que possuem uma série de pequenas
cerdas de nylon, e medem cerca de 6,0 cm de comprimento e 4,0 mm de diâmetro. As escovas
foram previamente desinfetadas com vapor de formol, sendo colocadas em uma caixa com
pastilhas de formalina envoltas em gaze por no mínimo de 48 horas.
Foi utilizado também álcool absoluto, lâmina de vidro lisa
3
com borda fosca, lamínula
para microscopia
4
, corante Diff Quick® - Panótico Rápido (Anexo C) e microscópio óptico
biocular
5
.
3.5.2 Procedimento de coleta
Logo depois das coletas para as análises microbiológicas, foi feita a introdução da
escova interdental
2
no vestíbulo vaginal. A escova penetra cerca de 1,0 a 1,5 cm de
profundidade, havendo uma leve rotação na mucosa vaginal. Depois da introdução, o
instrumento é deslizado sobre duas lâminas de vidro estéreis devidamente identificadas com o
nome e numeração do animal, procedendo-se então a confecção do esfregaço. Em seguida, as
lâminas foram fixadas imediatamente no álcool absoluto em um recipiente próprio para
acondicionamento das mesmas, por 20 a 30 minutos no mínimo, até ser efetuado a coloração,
como recomendado por SOMRAK et al. (1990). As 78 lâminas obtidas foram encaminhadas
ao Laboratório de Fisiopatologia da Reprodução da Universidade Federal Rural do Rio de
Janeiro e coradas através da técnica do Panótico, com o corante Diff Quick (Anexo C).
Depois da coloração, as lâminas foram devidamente montadas com lamínula para microscopia
para preservação do material, sendo avaliadas em microscópio, através das objetivas de 10 e
40.
3.5.3 Análise do esfregaço
Foram realizadas buscas por toda a lâmina a procura de qualquer agente bacteriano ou
fúngico, para que pudesse ser feita a associação entre citologia e microbiologia. Os
microrganismos encontrados foram identificados como bactérias (cocos, bacilos), leveduras
(esporos e hifas) e fungos filamentosos. O critério para a avaliação foi feito segundo ALLEN
(1985), que quantificou as estruturas observadas em raras (+), freqüentes (++), abundantes
(+++) e incontáveis (++++).
3.6 Associação entre o Isolamento Microbiano e Citologia Vaginal
Os achados do isolamento microbiano e da citologia vaginal foram analisados para que
pudesse ser estabelecido ou não uma associação entre os dois exames quanto à presença de
bactérias e fungos nas lâminas, e crescimento positivo na microbiologia para o mesmo animal.
__________________________________________________________
2
Marca Odontologic
3
Lâmina 24Χ76 mm - Perfecta
4
Lamínula 24Χ50 mm - Perfecta
5
Leintz
25
3.7 Análise Estatística
As variáveis de identificação, manejo geral e histórico reprodutivo foram associadas
ao isolamento bacteriano, fúngico e a citologia vaginal, e cada uma das variáveis consideradas
explicativas foi testada pelo Qui-quadrado, usando a correção de Yates, quando necessária o
teste Fisher exato, utilizando-se o procedimento de tabelas do programa EpiInfo versão 3.2.2
(CDC, 2004).
26
4 RESULTADOS E DISCUSSÃO
4.1 Caracterização dos Animais
4.1.1 Caracterização dos grupos 1 e 2
Para o estudo foram utilizadas 39 gatas entre inteiras e castradas, nas quais foram
realizadas três avaliações para cada animal. A primeira foi visando o isolamento bacteriano,
seguido do isolamento fúngico e finalizando pela colpocitologia da mucosa vaginal. Todos os
dados relacionados aos dois grupos estudados foram obtidos nas entrevistas com os
proprietários dos animais e estão representados na Tabela 1.
Dentre os 21 animais inteiros pertencentes ao Grupo 1, observou-se que a maioria das
gatas domésticas utilizadas tinha idade variando de seis a 48 meses (95,2%), sendo que os
intervalos de seis a 24 meses e 25 a 48 meses apresentaram a mesma freqüência (47,6 %). Em
relação ao Grupo 2, a maior freqüência foi no intervalo de 25 a 48 meses (39%),
correspondendo ao período de maior atividade reprodutiva das fêmeas dessa espécie.
Verificou-se também que os animais castrados apresentavam uma faixa de idade maior
principalmente no intervalo superior ou igual a 73 meses, este fato pode ser explicado pois, o
procedimento de castração normalmente ocorre quando as gatas são mais jovens.
Com relação às raças estudadas, foi verificado que a maior parte dos animais não
apresentavam raça definida (SRD) para ambos os grupos com (81,0 %) para o primeiro e
(94,5 %) para o segundo grupo.
Quanto ao controle profilático de viroses e verminoses nota-se que ambos os grupos
apresentaram maior freqüência para animais não vacinados e não vermifugados. Estes dados
demonstram que os proprietários das fêmeas selecionadas na sua maior parte não adotavam as
medidas profiláticas adequadas.
Foi observado durante as coletas, o local de permanência dos animais. Verificou-se
que a grande maioria era proveniente de criações particulares (gatis), este dado se refere a
ambos os grupos, sendo: Grupo 1 (80,9%) e Grupo 2 (83,3%).
Quanto ao histórico reprodutivo, nenhum proprietário foi capaz de informar a data do
último cio do animal e se a fêmea no momento da seleção para o estudo estava ciclando ou
não. Em relação ao estado reprodutivo dos animais, estes foram separados em dois grupos,
sendo: Grupo 1 composto de 21 fêmeas equivalendo a 53,8 %, enquanto o Grupo 2 continha
18 gatas, correspondendo a 46,2 % do total de animais. Na literatura consultada não há
menção sobre a caracterização das gatas, principalmente quanto ao estado reprodutivo. Este
dado só foi descrito em cadelas por LING & RUBY, (1978) que dividiram as fêmeas em dois
grupos entre castradas e inteiras.
27
Tabela 1. Caracterização das 39 gatas domésticas que foram submetidas à análise microbiológica
e citológica vaginal.
Variáveis Grupo 1 % Grupo 2 %
Gatas Inteiras Gatas castradas
Faixa etária (meses)
06 a 24 10 47,6 02 11,1
25 a 48 10 47,6 07 39,0
49 a 72 01 4,8 04 22,2
> 73 00 00 05 27,7
Raças
Persa 02 9,5 00 00
Siames 02 9,5 01 5,5
Sem Raça Definida (SRD) 17 81,0 17 94,5
Vacinação e Vermifugação
Sim 05 23,8 09 50,0
Não 14 66,6 07 39,0
Somente Vacinadas 01 4,8 01 5,5
Somente Vermifugadas 01 4,8 01 5,5
Tipo de criação
Gatis (aglomerado) 17 80,9 15 83,3
Casa 04 19,1 03 16,7
Cruzamento
Sim 13 62,0 09 50,0
Não 08 38,0 09 50,0
Status reprodutivo
Nulipara 11 52,3 10 55,5
Parida 10 47,7 08 44,5
Amamentação
Sim 09 42,8 00 00
Não 12 57,2 18 100
As informações sobre o histórico de cruzamentos, prenhez e amamentação foram
obtidas do formulário preenchido juntamente ao proprietário. A respeito do histórico de
cruzamento, os dois grupos foram verificados.
28
Quanto a ocorrência de cruzamento no Grupo 1 observou-se que 62,0 % dos animais
já haviam cruzado pelo menos uma vez, no Grupo 2 verificou-se proporção semelhante (50,0
%) para animais que tinham histórico de cruzamento e animais que nunca haviam cruzado
antes da cirurgia de castração.
Nos animais inteiros e castrados observou-se que a maior parte era nulípara, sendo
52,3 % e 55,5 %, respectivamente. No que se refere a variável amamentação, somente as
fêmeas inteiras tiveram este dado analisado. Verificou-se que entre as 21 gatas inteiras do
primeiro grupo, 12 animais não estavam no período de amamentação no momento da coleta.
Estes dados podem ser confirmados pela Tabela 1.
4.2 Avaliação Microbiológica Vaginal
4.2.1 Isolamento e identificação bacteriana
A microbiota vaginal de fêmeas hígidas da espécie felina é um assunto ainda pouco
estudado. Raros são os dados a respeito da população bacteriana encontrada neste ambiente,
principalmente em animais com e sem atividade reprodutiva. Neste trabalho foram realizadas
avaliações qualitativas das bactérias isoladas. Dos exames microbiológicos realizados nas 39
fêmeas obteve-se o crescimento bacteriano em todas as placas semeadas. Na análise dos
microrganismos das amostras vaginais observou-se o isolamento de 12 espécies bacterianas,
com um total de 182 isolados. As fêmeas do Grupo 1 apresentaram 105 isolados enquanto as
fêmeas do Grupo 2 obtiveram 77 isolados. As fêmeas estudadas apresentaram freqüentes
isolados de bactérias da família Enterobacteriacea no ambiente vaginal. Com relação ao
Grupo 1, verificou-se uma maior freqüência de Edwardsiella tarda (19,04 %), com 20
isolados, seguido de Enterobacter spp e Streptococcus spp na mesma proporção (16,19 %),
com 17 isolados. Quanto ao Grupo 2, foi possível verificar uma maior freqüência de
Enterobacter spp (16,88 %), depois de Escherichia coli e Pseudomonas aeruginosa em igual
proporção com 11 isolados correspondendo a 15,88 %, conforme a Tabela 2.
Com base nos dados obtidos, foi observado que o estado reprodutivo dos animais
influenciou o crescimento de algumas bactérias. No Grupo 1, além das enterobactérias houve
o isolamento de Lactobacillus spp em 16 animais (15,23 %), não havendo, no entanto, o seu
isolamento no grupo das fêmeas castradas. Outras bactérias também tiveram seu crescimento
influenciado pelo estado reprodutivo, Streptococcus spp foi encontrada em 17 isolados de
animais inteiros (16,19 %) e em somente três animais castrados (3,89 %), Citrobacter
diversus obteve 7,61 % de freqüência no Grupo 1, não apresentando crescimento no Grupo 2.
Edwardsiella tarda obteve 19,04% no Grupo 1 e 3,89 % no Grupo 2.
Seguindo esta mesma relação verificou-se que no grupo sem atividade reprodutiva
(Grupo 2), houve maior freqüência para algumas espécies bacterianas como Pseudomonas
aeruginosa que obteve o seu isolamento somente nos animais castrados (14,28 %).
Escherichia coli, que foi isolada com uma freqüência de 14,28 % nos animais castrados
correspondendo a 11 isolados, enquanto apenas 1,90 % da freqüência foi observada nos
animais do Grupo 1. Corynebacterium spp também teve seu crescimento diferenciado entre os
grupos, onde obteve 12,91 % de freqüência para animais do Grupo 2, sem, no entanto, não
apresentar isolamento no Grupo 1. Serratia spp e Enterococcus spp apresentaram
respectivamente cinco (6,49%) e quatro isolados (5,19%) em gatas castradas, não
apresentando crescimento em gatas inteiras.
29
Tabela 2. Freqüência absoluta e relativa dos isolamentos bacterianos de acordo com estado
reprodutivo das 39 gatas domésticas submetidas à avaliação microbiológica e
citológica vaginal.
Fêmeas
Inteiras % Castradas %
Espécies bacterianas
isoladas
(Grupo 1) (Grupo 2)
Edwardsiella tarda
20 19,04 03 3,89
Streptococcus spp 17 16,19 03 3,89
Enterobacter spp
17 16,19 13 16,88
Lactobacillus spp
16 15,23 00 0,00
Micrococcus spp
15 14,28 10 12,91
Hafnia alveo
10 9,52 07 9,09
Corynebacterium spp
00 0,00 10 12,91
Serratia spp
00 0,00 05 6,49
Enterococcus spp
00 0,00 04 5,19
Pseudomonas aeruginosa
00 0,00 11 14,28
Escherichia coli
02 1,90 11 14,28
Citrobacter diversus
08 7,61 00 0,00
Total
105 100,00 77 100,00
Com base nesses resultados foi possível verificar que os dois grupos apresentaram
diferenças significativas quanto ao isolamento e as espécies de bactérias isoladas. O Grupo 1
continha animais mais jovens e em atividade reprodutiva o qual segundo HOLST et al. (2003)
explica o fato do maior número de isolamentos quando comparado ao Grupo 2.
Com referência às bactérias encontradas neste estudo, verificou-se maior
freqüência de isolados da família Enterobacteriacea em ambos os grupos, resultado
semelhante foi encontrado por JARDIM et al. (1992), que descreveram esta família de
bactérias como freqüentemente encontrada na microbiota vaginal de gatas hígidas, divergindo
parcialmente dos outros autores citados na literatura que encontraram predominantemente três
espécies de bactérias: Escherichia coli, Streptococcus spp e Staphylococcus spp
(CLEMENSTON & WARD, 1990; SCHOCKER-ITURRINO et al., 1992b; NASCIMENTO
& LOPES, 1997; HOLST et al., 2003).
As bactérias Escherichia coli e Streptococcus spp foram isolados e tiveram grande
freqüência dependendo do grupo analisado, sendo que no Grupo 1 houve maior frequência
para Streptococcus spp (16,19 %) e no grupo 2 para Escherichia coli (14,28 %). A maior
divergência está relacionada ao isolamento de Staphylococcus spp, uma vez que no trabalho
em questão não houve o crescimento da bactéria citada, o que confronta com dados da
literatura que a descrevem como predominante na microbiota de gatas domésticas
(CLEMENSTON e WARD, 1990; SCHOCKER-ITURRINO et al., 1992b; NASCIMENTO
& LOPES, 1997; HOLST et al., 2003).
30
Quanto à diferença estatística observada no crescimento de algumas espécies
bacterianas com relação ao estado reprodutivo, nenhum trabalho relacionado a gatas
domésticas foi relatado na literatura e, portanto nenhuma comparação pode ser realizada.
Relacionou-se esta diferença a um trabalho semelhante desenvolvido em cadelas (LING &
RUBY, 1978), onde os autores observaram diferença somente na freqüência quantitativa das
bactérias quanto aos grupos, mas não nas espécies isoladas.
Analisando as bactérias isoladas quanto ao estado reprodutivo, verificou-se que
algumas bactérias encontradas com mais freqüência nas gatas castradas são descritas na
literatura como microrganismos potencialmente patogênicos e que podem causar alterações
nas vias urogenitais conforme relatado por SCHOCKER-ITURRINO et al. (1992
a). No
presente estudo houve o isolamento e identificação bacteriana, porém os microrganismos não
foram analisados quanto a sua patogenicidade, uma vez que eles podem representar a
microbiota naturalmente encontrada na mucosa vaginal desses animais sem, no entanto,
causar patologias ligadas ao trato reprodutivo, necessitando de fatores predisponentes ligados
ao hospedeiro (VERMA et al., 1994; LIANJUAN et al., 1995).
4.2.2 Associação das variáveis de caracterização dos animais com a microbiota
bacteriana
Após a caracterização das variáveis houve a associação destas com a microbiota
vaginal desses animais, observando as diferenças de significância pelo testes do Qui-
quadrado, ou de Fisher exato quando recomendado.
Em relação à faixa etária de seis a 24 meses e o isolamento bacteriano observou-se
significância ao nível de 95 % com a espécie Corynebacterium spp (p=0,04), Serratia spp
(p=0,02) e Edwardsiella tarda (p=0,03).
Ao analisar os dados com referência ao estado reprodutivo (inteiras e castradas) e o
isolamento bacteriano, constatou-se significância com a espécie Enterobacter spp (p=0,03)
nas gatas castradas. Resultado semelhante (p=0,03) foi também observado em relação ao tipo
de criação (gatos aglomerados - Gatis) com a mesma bactéria.
Observou-se uma alta significância (p<0,001) entre a variável castração e as bactérias:
Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa e Corynebacterium spp. Nas gatas inteiras, a
associação altamente significativa (p<0,001) foi observada para Lactobacillus spp,
Streptococcus spp e Edwardsiella tarda. Verificou-se também uma significância (p<0,05)
com as bactérias Serratia spp e Enterococcus spp e o Grupo 2 e para Citrobacter diversus no
Grupo 1.
4.2.3 Isolamento e identificação fúngica
Com relação ao isolamento e identificação fúngica no presente estudo, foi observado
um crescimento tanto de fungos filamentosos como de leveduras. Leveduras têm sido
descritas no ambiente vaginal de diversas espécies principalmente em mulheres e cadelas
(CLEFF et al., 2001). Os fungos filamentosos são achados mais raros e na sua maior parte não
estão associados a problemas reprodutivos (MORAES, 2004). No presente trabalho
verificou-se um total de 107 isolados entre leveduras e fungos filamentosos. Os fungos
filamentosos apresentaram o maior número de isolados com 68 (63,55 %) e leveduras com 39
(36,44 %).
31
Poucos são os achados na literatura sobre a colonização fúngica no ambiente vaginal
em gatas domésticas. Nenhum autor realizou o isolamento e identificação somente da
microbiota fúngica nesses animais, os dados descritos em alguns trabalhos demonstram
achados que foram observados na realização do isolamento bacteriano. Portanto, há a
necessidade de mais trabalhos que descrevam e avaliem a população fúngica encontrada na
vagina de gatas saudáveis como também com distúrbios reprodutivos, correlacionando e
diferenciando quando possível esta microbiota presente, aliando estes resultados ao estado
reprodutivo.
Com relação aos fungos isolados nos dois grupos distintos, houve diferença na
freqüência entre os gêneros. No Grupo1, verificou-se alta freqüência de Candida spp (30,5
%), Aspergillus spp (18,64 %) e Curvularia spp (11,86 %). No Grupo 2, observou-se maior
incidência de Penicillium spp (25,0 %), Cladosporium spp (18,75 %) e Candida spp (16,66
%), dados estes demonstrados na Tabela 3.
Tabela 3. Freqüência absoluta e relativa dos isolamentos fúngicos de acordo com estado
reprodutivo das 39 gatas domésticas submetidas à avaliação microbiológica e
citológica vaginal.
Espécies fúngicas
isoladas Fêmeas
Inteiras % Castradas %
(Grupo 1) (Grupo 2)
Candida spp
18 30,50 08 16,66
Aspergillus spp
11 18,64 06 12,50
Curvularia spp
07 11,86 05 10,41
Rhodotorula spp
06 10,16 07 14,58
Cladosporium spp
05 8,47 09 18,75
Penicillium spp
05 8,47 12 25,00
Monocyllium spp
03 5,08 00 0,00
Torula spp
03 5,08 00 0,00
Dematiaceo
01 1,69 00 0,00
Fusarium spp
00 0,00 01 2,08
Total
59 100 48 100
Pela dificuldade de comparação desses resultados com outros estudos em gatas,
principalmente quanto ao estado reprodutivo, realizou-se a associação com outras espécies
animais. Sobre a freqüência fúngica encontrada na literatura consultada, os valores variam de
4,4 % em cadelas (OLIVEIRA., 1990) a 29,4 % em fêmeas primatas (MORAES, 2004). Os
fungos filamentosos também foram descritos por MORAES (2004) em Mico-Leão, que
observou o isolamento de 29,4% desses microrganismos no ambiente vaginal, sendo
principalmente Trichosporon spp, Aspergilus spp e Penicillium spp. Em outro estudo
realizado por OLIVEIRA (1990) em cadelas foi descrito o isolamento de Penicillium spp,
com pequena frequência entre os microrganismos encontrados (4,4 %).
32
Somente dois trabalhos foram citados em gatas domésticas adultas e hígidas,
SCHOCKER-ITURRINO et al. (1992b) observaram 18 isolados fúngicos, não especificando
se estes eram filamentosos ou possuíam características leveduriformes. Este achado se difere
do presente estudo, onde encontrou-se 107 isolados fúngicos, sendo 39 de leveduras e 68
fungos filamentosos. JARDIM et al. (1992) descreveram que dentre a microbiota vaginal
encontrada em animais saudáveis houve o isolamento de leveduras, porém os autores não
citaram as porcentagens e nem as espécies encontradas.
A respeito das leveduras encontradas na vagina das gatas aparentemente saudáveis,
selecionadas para o estudo observou-se que somente duas espécies foram isoladas Candida
spp e Rhodothorula spp. Estas leveduras já foram descritas por CLEFF et al. (2001) em
fêmeas caninas, onde os autores acharam 65,4 % de crescimento para as leveduras
Rhodothorula spp, Candida spp e Malassezia pachydermatis. MORENO et al. (1973)
isolaram 5,0 % de Candida spp em cadelas. MORAES (2004), relatou o isolamento de
Candida spp (70,6 %) em Micos-leões.
Vários são os autores que encontraram leveduras na mucosa vaginal, porém as
freqüências encontradas por eles se diferem dos achados do estudo em questão.
4.2.4 Associação entre as variáveis de caracterização dos animais com a microbiota
fúngica
Verificou-se a associação entre as diversas variáveis de caracterização dos animais
selecionados e o isolamento fúngico. Foram utilizadas as variáveis faixas etárias, status
reprodutivo, tipo de criação, histórico de cruzamento e amamentação, porém estas não
tiveram significância quando foram confrontadas aos fungos encontrados. Nos dados
relacionados ao estado reprodutivo constatou-se significância (p> 0,05) para Candida spp no
Grupo 1 e Penicillium spp no Grupo 2.
4.2.5 Associação das variáveis de caracterização dos animais com o estado reprodutivo e
a microbiota vaginal
Com relação às gatas inteiras, constatou-se que as bactérias Citrobacter diversus e
Corynebacterium sp apresentaram alta significância (p<0,001) no intervalo de idade de 6 a 24
meses e no intervalo de 25 a 48 meses respectivamente. Edwardsiella tarda e Hafnia alveo
apresentaram significância (p=0,04) na faixa de 25 a 48 meses nas fêmeas no mesmo grupo.
Já em relação às gatas castradas, Escherichia coli apresentou significância (p=0,04) no
intervalo de idade de 25 a 48 meses.
Verificou-se significância (p=0,02) para Candida spp em animais inteiros com idade
variando entre seis a 24 meses, correspondendo aos achados de CLEFF et al. (2001) em
fêmeas em atividade hormonal cíclica.
A variável amamentação apresentou significância com a bactéria Enterobacter spp
(p=0,02), e os fungos Candida spp (p=0,04), Cladosporium (p=0,04), Penicillium spp
(p=0,01) e Rhodothorula spp (p=0,02) nos animais inteiros.
4.2.6 Associação entre a microbiota bacteriana e fúngica vaginal
Isolamentos bacterianos e fúngicos também foram analisados quanto a sua
significância pelo teste do Qui-quadrado, sendo verificado que a bactéria Lactobacillus spp
33
apresentou uma associação altamente significativa (p<0,0001) com as bactérias Edwardsiella
tarda, Pseudomonas aeruginosa, Streptococcus spp e com a levedura Candida spp. A bactéria
Edwardsiella tarda também apresentou alta significância (p<0,0001) em associação a
Pseudomonas aeruginosa, Serratia spp, Streptococcus spp e Penicillium spp. Somente um
trabalho citado por MORENO et al., (1973) descreveram sobre a associação dos
microrganismos encontrados, porém os resultados obtidos pelo autor citado não se
assemelham com os obtidos no presente estudo.
4.3 Avaliação Citológica
A citologia vaginal é descrita em pequenos animais principalmente no
acompanhamento de gestação, reprodução assistida e também nos diagnósticos precoces de
distúrbios reprodutivos. No presente estudo, utilizou-se a citologia com o intuito de verificar a
presença de bactérias e fungos nas lâminas analisadas associando estes achados com os
resultados da microbiologia. Alguns trabalhos já foram descritos com esta finalidade e
constataram que a citologia é considerada um exame confiável (PUGH et al., 1986;
LANGONI et al., 1994; NETO, 2004).
Em relação à presença de leveduras, verificou-se que 79,0 % das lâminas analisadas
não apresentaram estes microrganismos no esfregaço. Estes resultados foram associados ao
isolamento fúngico, desta forma, a lâmina devidamente identificada com o nome e numeração
do animal é associada com os resultados do isolamento fúngico da amostra vaginal do mesmo
animal. Como foram isolados 36,44 % de leveduras e apenas 21,0% das lâminas apresentaram
estruturas leveduriformes, nota-se que não houve associação significativa entre os dois
exames (Figura 1).
não
79 %
raras
9 %
frequentes
9 %
abundante
3 %
Fig 1. Quantidade de leveduras presentes nas lâminas avaliadas na citologia vaginal
34
Quanto à associação da citologia vaginal com o isolamento de fungos filamentosos,
verificou-se que 88,0 % das lâminas não apresentaram indícios fúngicos, enquanto que na
análise microbiológica 63,55 % dos isolados fúngicos eram positivos. Com base nestes dados
verificou-se que a citologia não é um exame preciso no diagnóstico preventivo de
enfermidades fúngicas do aparelho reprodutivo, discordando dos achados de PUGH et al.
(1986). Os resultados estão demonstrados na Figura 3.
frequentes
3%
raras
9%
não
88%
Fig 2. Quantidade de fungos filamentosos presentes nas lâminas avaliadas na citologia
vaginal.
Analisando o isolamento bacteriano das amostras vaginais com as lâminas do
esfregaço foi verificada a presença de bactérias em todas as lâminas da citologia (100 %), este
resultado tem grande associação ao isolamento bacteriano que também obteve crescimento
positivo em todas as amostras analisadas. Desta forma é possível constatar que a citologia
vaginal é um exame tão preciso quanto a microbiologia em relação à constatação de bactérias,
resultado semelhante foi observado por LANGONI et al (1994).
35
5 CONCLUSÕES
A citologia vaginal teve associação significativa com o isolamento bacteriano,
observado pela presença de cocos e bacilos nas lâminas com crescimento bacteriano
positivo, porém a mesma associação não foi obtida no isolamento fúngico.
Quanto ao isolamento bacteriano observou-se que a família Enterobacteriacea foi
comum aos dois grupos de animais, diferindo apenas na presença de Lactobacillus spp
nas gatas inteiras e Pseudomonas aeruginosa nas gatas castradas.
Com referência ao isolamento fúngico, as gatas inteiras apresentaram maior freqüência
para o isolamento de Candida spp do que as castradas que obtiveram maior freqüência
para Penicillium spp.
36
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Animal Science, v. 32, n. 2, p. 125-129, 1995.
VERMA, H.K.; SHARMA, D.K.; KAUR, H.; DHABLAMA, D.C. A bacteriological study of
repeat breeders cows and their treatment. Indian veterinary Journal, v. 47, n. 6, p. 467-470,
1994.
41
ANEXO A - FICHA DOS ANIMAIS
Numeração do animal: --------
Identificação do animal e proprietário
Manejo geral
Histórico
Histórico reprodutivo
Proprietário: Tel:
Endereço:
N
ome do Animal:
Raça: ( ) SRD ( ) Persa ( ) Siamês
Idade
1. As gatas selecionadas convivem com outros animais?
( ) Sim ( ) Não
2. A gata passa a maior parte do tempo?
Casa. ( ) Rua ( ) Gatil ( )
3. As gatas têm acesso a rua?
( ) Sim ( ) Não
1. A gata é regularmente vacinada? Sim ( ) ou Não ( )
2. A gata é regularmente vermifugada? Sim ( ) ou Não ( )
3. O animal está fazendo a utilização de alguma medicação? Sim ( ) ou Não ( )
4. Seu animal atualmente está apresentando alguma patologia? Qual?
1. Sua gata está ciclando normalmente? Sim ( ) ou Não ( )
2. O animal é castrado? Sim ( ) ou Não ( )
3. Sua gata já cruzou? Sim ( ) ou Não ( )
4. Sua gata já teve filhotes? Sim ( ) ou Não ( )
5. A gata está amamentando no momento? Sim ( ) ou Não ( )
42
ANEXO B – COLORAÇÃO DE GRAM
Solução A
• Cristal violeta - 1 g
• álcool etílico 95% - 10 ml
Solução B
• Oxalato de amónio - 0,8 g
• água destilada - 80 ml
Misturar as duas soluções.
Nota:
• iodo - 1 g
• iodeto de potássio - 2 g
• água destilada - 300 ml
Nota:
• Safranina - 0,25 g (dissolvido em 10 ml de álcool etílico a 95%)
• Água destilada - 100 ml
Nota:
• Verde Malaquite - 5 g
• Água destilada - 100 ml
Procedimento:
1. Cobrir a lâmina com uma solução de cristal violeta. Deixar agir durante 1 minuto.
2. Escorrer o corante e lavar com jatos fracos de água corrente. Cobrir a preparação com
reagente de Lugol e deixar agir durante 1 minuto.
3. Escorrer a solução de Lugol, lavar com água.
4. Diferenciar pelo álcool a 90°, deixando cair a solução de álcool gota a gota sobre a
lâmina por aproximadamente 20 segundos.
5. Tornar a corar a preparação, durante 5 minutos, com uma solução de safranina
(fuccsina), deixando agir por 30 segundos.
6. Escorrer o corante, lavar com água e secar a lâmina na chama do bico de Bunsen.
43
ANEXO C - COLORAÇÃO DE PANÓTICO
SOLUÇÃO-PANÓTICO RÁPIDO
Fixador (Solução 1 )
Revelador (Solução 2 )
Corante (Solução 3 )
TÉCNICA DE COLORAÇÃO
- Imergir a lâmina já com o esfregaço seco por um (1) minuto no Fixador ou
Solução 1.
- Retirar a lâmina do Fixador, apoiar a mesma em papel toalha, retirando assim
o excesso do produto e em seguida, imergí-la no Revelador ou Solução 2 por
mais um (1) minuto.
- Após retirar do Revelador, tornar a apoiar a lâmina no papel toalha retirando
o excesso e agora, colocar no Corante ou Solução 3 por mais um (1) minuto.
- Após esse tempo, lavar as lâminas em água corrente, fluxo suave, evitando
jatos fortes e em seguida secá-las à temperatura ambiente.
- Levar ao microscópio, focalizar e examinar em imersão.
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