( PDF ) Associação Beauveria bassiana (BALS.) Vuill. - Nematóides entomapatogênicos (Rhabditida) - Orius insidiosus (SAY) no controle de Tripes (Thysanoptera) em cultivo protegido

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ASSOCIAÇÃO Beauveria bassiana (BALS.)

VUILL. – NEMATÓIDES

ENTOMOPATOGÊNICOS (RHABDITIDA) –

Orius insidiosus (SAY) NO CONTROLE DE

TRIPES (THYSANOPTERA) EM CULTIVO

PROTEGIDO

RICARDO SOUSA CAVALCANTI

2006

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RICARDO SOUSA CAVALCANTI

ASSOCIAÇÃO Beauveria bassiana (BALS.) VUILL. – NEMATÓIDES

ENTOMOPATOGÊNICOS (RHABDITIDA) – Orius insidiosus (SAY) NO

CONTROLE DE TRIPES (THYSANOPTERA) EM CULTIVO

PROTEGIDO

Tese apresentada à Universidade Federal de

Lavras como parte das exigências do Programa

de Pós-graduação em Agronomia/Entomologia,

área de concentração em Entomologia Agrícola,

para a obtenção do título de "Doutor".

Orientador

Prof. Dr. Alcides Moino Junior

LAVRAS

MINAS GERAIS - BRASIL

2006

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Ficha Catalográfica Preparada pela Divisão de Processos Técnicos da

Biblioteca Central da UFLA

Cavalcanti, Ricardo Sousa

Associação Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. – nematóides

entomopatogênicos (Rhabditida) – Orius insidiosus (Say) no controle de tripes

(Thysanoptera) em cultivo protegido / Ricardo Sousa Cavalcanti. --

Lavras :

UFLA, 2006.

132 p. : il.

Orientador: Alcides Moino Junior

Tese (Doutorado) – UFLA.

Bibliografia.

1. Controle biológico. 2. Entomopatógeno. 3. Inseto praga. 4. Predador. I.

Universidade Federal de Lavras. II. Título.

CDD-632.96

RICARDO SOUSA CAVALCANTI

ASSOCIAÇÃO Beauveria bassiana (BALS.) VUILL. - NEMATÓIDES

ENTOMOPATOGÊNICOS (RHABDITIDA) – Orius insidiosus (SAY) NO

CONTROLE DE TRIPES (THYSANOPTERA) EM CULTIVO

PROTEGIDO

Tese apresentada à Universidade Federal de

Lavras como parte das exigências do Programa

de Pós-graduação em Agronomia/Entomologia,

área de concentração em Entomologia Agrícola,

para a obtenção do título de "Doutor".

APROVADA em 23 de Fevereiro de 2006

Profa. Dra. Claudia Dolinski UENF

Dr. Paulo Rebelles Reis EPAMIG

Dr. Rogério Biaggioni Lopes ITAFORTE

Profa. Dra. Vanda Helena Paes Bueno UFLA

Prof. Dr. Alcides Moino Junior

UFLA

(Orientador)

LAVRAS

MINAS GERAIS - BRASIL

DEDICATÓRIA

Aos

meus pais Severino e

Ivanilde (In memorian), que são para mim

exemplos de amor, carinho, honestidade e trabalho,

e que me guiaram da melhor maneira possível nos caminhos

para buscar meus objetivos e ideais.

A Maria da Conceição Araújo e Maria José Araújo Cavalcanti pela

inestimável dedicação, carinho e amor materno, acolhendo como filhos

a mim e meus irmãos.

Aos meus irmãos Júnior, Sérgio, Cláudio, Sueli e Leonardo, verdadeiros

exemplos de amor fraterno e honestidade, sem os quais seria impossível a

realização desta importante etapa da minha vida.

Às tias Margarida e Mundinha pelo inestimável carinho dedicado aos filhos de

Ivanilde, como sendo seus próprios filhos.

A toda minha família pelo apoio e incentivo sempre demonstrados e, em

especial, a meus sobrinhos Ivanilde, Amanda, Bruna Gabriela e Daniel e a

meu irmão Diego.

A Andréa Mara pelo carinho, amizade, compreensão e momentos de muita

alegria vividos no decorrer desta etapa da minha vida.

À minha filha Ingrid Maria Lima Cavalcanti por ser

minha maior conquista e de fundamental

importância na minha

vida.

Dedico

AGRADECIMENTOS

A Deus, por me proporcionar mais uma oportunidade de vida, para que

eu possa melhorar, servir, aprender e amar a cada dia.

À Universidade Federal de Lavras pela oportunidade concedida para a

realização deste curso.

À Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de Minas Gerais

(FAPEMIG) pela concessão da bolsa de estudo.

Ao professor Alcides Moino Junior pela orientação, ensinamentos,

confiança, carinho e amizade demonstrados de forma sincera e objetiva durante

toda a trajetória do curso.

A todos os professores do Departamento de Entomologia (DEN) pelos

ensinamentos transmitidos, estímulo, amizade e exemplos de profissionalismo

com relação à pesquisa e educação.

À pesquisadora da Empresa Pernambucana de Pesquisa Agropecuária

(IPA), Liane Maranhão, em nome do Laboratório de Produção de Bioinsumos,

pelo apoio, amizade, confiança, respeito, amor fraterno e vibrações de incentivo

que tanto me estimularam para a realização deste curso.

Ao professor e pesquisador Paulo Rebelles Reis (EPAMIG) pela

amizade, carinho, apoio, confiança e valiosa contribuição para este trabalho.

À professora Claudia Dolinski pela amizade, apoio e valiosas

considerações para a conclusão desta importante etapa da minha vida.

À professora Vanda Helena Paes Bueno pelos ensinamentos, a

convivência durante o curso e sua importante contribuição para este trabalho.

Ao pesquisador Rogério Biaggioni Lopes pela contribuição e pelas

importantes sugestões para este trabalho.

Aos amigos do Laboratório de Patologia de Insetos, Elisângela, André,

Giselle, Sandro, Vanessa, Juan Pablo, Aldomário, Carla, Viviane, Chistiane,

Marco Aurélio e Grazielle, que tanto auxiliaram para a condução dos

experimentos, pelo convívio salutar.

À família EPAMIG/EcoCentro, Zacarias, Paulo, Claudinha, Ester,

Bernardo, Thaiana, Renato, Marçal, Márcio, Daniel, Lenira, Rogério, Carol,

Zilma, Vanda, Vicente, Vicentina, Messias, Dula, Evaristo, Geraldo, Hugo,

Elifas, Adelson, Adauto, Sara, Gladston, Júlio, Fabiana, Marçal e Maritza por

me receberem de maneira acolhedora, pelo convívio e inestimável ajuda nos

experimentos.

Aos colegas de Pós-graduação em Entomologia, Luis Gustavo, Paulo

Henrique, Lúcia, Fabrícia, Lucas, Luiz Carlos, Alexandre, Renildo, Ronara,

Ronelza, Douglas, Tatiane, Sabrina, Letícia, Ana Paula, Eliana, Robson, Renato,

Danila, Alexa, Lívia e Simone, pela amizade e convivência durante o curso.

A Andréa Vieira, Alcides Moino e Alice pelo apoio, amizade e carinho.

Aos amigos de república, Flávio, Edson e Germano, pelo convívio

salutar e amizade durante esta etapa da minha vida.

Aos funcionários do DEN, Elaine, Fábio, Lisiane, Nazaré, Dico e

Julinho, e da Biblioteca Central da UFLA, Luiz Carlos, Márcia, Marcinho, Fábio

e Verner, pela paciência e amizade.

Aos amigos do Departamento de Fitopatologia, Ana, Tarlei, Dudu,

Vicente, Alessandra, Juliana, Emílio, Eloísa, Fred, Viviane, Mário Lúcio,

Amanda, Helen, Ruth, Ana Beatriz, Josimar, Daniel, João de Cássia, Edinho,

Ricardo, Anderson, Nina, Cristiano, Jean, Helena e Juliana, pela amizade e pelo

empréstimo dos equipamentos para a execução deste trabalho.

Aos alunos de graduação da UFLA, em especial a Luciano, Elisa,

Janaina, Érika, Lorena, Bruno, Beth, Jairo, Danielle, Henrique, Valéria e Denise,

pela amizade e convivência durante minha estadia em Lavras.

Aos amigos do futebol do Condomínio dos Flamboyants pela

convivência salutar durante os jogos de sábado.

Aos professores e funcionários da UNIFENAS, em especial a Paulão,

Juliano, Lismara, Édison, Benedito (Dito), José Mauro, Chico e José Carlos,

pela amizade e auxílio durante a execução do experimento de casa-de-vegetação.

Aos amigos Lavrenses, Jair, Lili, Liliane, Brígida, Marquinhos, Rafael,

Rodolfo, Eliana, Coquinho, Maria Clara, Andréa Mara e Marina, pelo

companheirismo, alegria e momentos felizes de convívio.

Aos amigos de Ideal Espírita, Angélica, Gilson, Maria José, Mariza,

Cléber, Marina, Renan, Sheila, Vaninho, Cristina, Augusto, Edinho, Lívia,

Iracema, Edson Camile, Paulinho, Túllio, Ana Cecília, Daniel, Nilmar, Leandro,

Marcelo, Ernani, Teresa, Pamela, Débora, Cinara, Neide, Abner, Messias, Ana,

Sônia, Leni, Alexandre, Fernanda, Cléo, Karina, Clara, Thais, Alyne, Marcus

Vinicius, Miriam, Mariana, Camila, Talita, Igor, Flávio, Gabriela, Fernando,

Sônia, Athanoel, Terezinha, Cidinha e Iolanda, pelos estudos de grande

aprendizado, amizade e vibrações salutares neste momento da minha vida.

Aos evangelizadores do Departamento de Infância e Juventude (DIJ) do

Centro Espírita Augusto Silva (CEAS), Michelle, Dudu, Cristina, Cynthya,

Débora, Áurea, Mônica, Fernanda, Etiene, Ana Carolina, Ciliane, Luiz Gustavo,

Silvana e Ricardo, pelo inestimável aprendizado na convivência durante este

importante período de minha vida, que foi uma verdadeira evangelização de

almas, conhecimento de si mesmo e aprendizado espiritual.

Aos amigos pernambucanos Catarina, Camila, Carina, Lery, Edjane,

Irene, Edleuza, Albaneide, Jane, Amanda, Daniel Gracinha, Lunga, Eutália,

Gilson Melo, Elton, Dema, Hélio Burity e Duda Ferraz pela amizade.

A todos que direta ou indiretamente colaboraram para a realização desta

importante etapa na minha vida.

Sinceramente Agradeço

SUMÁRIO

RESUMO.......................................................................................................... i

ABSTRACT .....................................................................................................ii

CAPÍTULO 1.................................................................................................... 1

1 Introdução Geral ............................................................................................1

2 Referencial Teórico........................................................................................4

2.1 Cultivos protegidos.....................................................................................5

2.2 A cultura do crisântemo Chrysanthemum sp. (Asteraceae) ........................7

2.3 Pragas..........................................................................................................9

2.3.1 Tripes (Thysanoptera: Thripidae) ............................................................10

2.3.1.1 Ciclo de vida......................................................................................... 10

2.3.1.2 Aspectos morfológicos e danos ............................................................11

2.3.1.3 Inimigos naturais...................................................................................14

2.3.1.3.1 Entomopatógenos...............................................................................15

2.3.1.3.1.1 Fungos entomopatogênicos (FEPs).................................................15

2.3.1.3.1.2 Nematóides entomopatogênicos (NEPs).........................................19

2.3.1.3.2 Predadores..........................................................................................23

2.4 Entomopatógenos x predadores..................................................................28

3 Referências Bibliográficas.............................................................................33

CAPÍTULO 2: Patogenicidade de isolados de Beauveria bassiana (Bals.)

Vuill. a Caliothrips phaseoli (Hood) (Thysanoptera: Thripidae) ......................57

1 Resumo ...........................................................................................................57

2 Abstract...........................................................................................................58

3 Introdução.......................................................................................................59

4 Material e Métodos .........................................................................................61

4.1 Isolados utilizados nos bioensaios ...............................................................61

4.2 Criação de Caliothrips phaseoli ..................................................................62

4.3 Bioensaios de patogenicidade......................................................................63

5 Resultados e Discussão...................................................................................65

6 Conclusões......................................................................................................70

7 Referências Bibliográficas..............................................................................71

CAPÍTULO 3: Patogenicidade de nematóides entomopatogênicos

(Rhabditida: Steinernematidae e Heterorhabditidae) a tripes em laboratório....74

1 Resumo ...........................................................................................................74

2 Abstract...........................................................................................................75

3 Introdução.......................................................................................................76

4 Material e Métodos .........................................................................................78

4.1 Nematóides entomopatogênicos utilizados nos bioensaios .........................78

4.2 Criação de Caliothrips phaseoli ..................................................................79

4.3 Bioensaios de patogenicidade......................................................................80

5 Resultados e Discussão...................................................................................82

6 Conclusões......................................................................................................86

7 Referências Bibliográficas..............................................................................87

CAPÍTULO 4: Efeito de nematóides entomopatogênicos (Rhabditida:

Steinernematidae e Heterorhabditidae) sobre o predador Orius insidiosus

(Say) (Hemiptera: Anthocoridae) ......................................................................89

1 Resumo ...........................................................................................................89

2 Abstract...........................................................................................................90

3 Introdução.......................................................................................................91

4 Material e Métodos .........................................................................................93

4.1 Material biológico utilizado nos bioensaios ................................................93

4.2 Bioensaios de patogenicidade......................................................................94

5 Resultados e Discussão...................................................................................97

6 Conclusões......................................................................................................109

7 Referências bibliográficas...............................................................................110

CAPÍTULO 5: Associação de agentes de controle biológico para o controle

de tripes no cultivo do crisântemo em casa-de-vegetação .................................114

1 Resumo ...........................................................................................................114

2 Abstract...........................................................................................................115

3 Introdução.......................................................................................................116

4 Material e Métodos .........................................................................................118

4.1 Material biológico utilizado nos experimentos............................................118

4.1.1 Fungo entomopatogênico..........................................................................118

4.1.2 Nematóide entomopatogênico ..................................................................119

4.1.3 Predador....................................................................................................119

4.2 Experimento em casa-de-vegetação.............................................................120

5 Resultados e Discussão...................................................................................124

6 Conclusões......................................................................................................130

7 Referências Bibliográficas..............................................................................131

RESUMO

CAVALCANTI, Ricardo Sousa. Associação Beauveria bassiana (Bals.) Vuill.

– nematóides entomopatogênicos (Rhabditida) – Orius insidiosus (Say) no

controle de tripes (Thysanoptera) em cultivo protegido. Lavras: UFLA,

2006. 132p. (Tese – Doutorado em Entomologia).

Os tripes são pragas importantes em cultivos protegidos pelos danos

diretos e indiretos que causam às plantas. O controle biológico é o principal

método de controle desta praga e dentre os agentes de controle biológico

promissores estão os fungos (FEPs) e nematóides entomopatogênicos (NEPs), os

quais, aliados ao principal predador de tripes, Orius insidiosus (Say)

(Hemiptera: Anthocoridae), podem aumentar a efetividade do controle biológico

em cultivos protegidos. Os objetivos deste trabalho foram avaliar: 1) a

patogenicidade de isolados do FEP Beauveria bassiana Bals. Vuill. sobre

Caliothrips phaseoli (Hood) (Thysanoptera: Thripidae) em laboratório; 2) a

patogenicidade de linhagens nativas e exóticas de NEPs sobre C. phaseoli em

condições de laboratório; 3) o efeito de linhagens nativas e exóticas de NEP

sobre o predador O. insidiosus em laboratório e 4) a combinação dos FEPs e

NEPs com O. insidiosus para controle de tripes em condições de casa-de-

vegetação. No 1º ensaio foram aplicadas suspensões fúngicas em placas de Petri

contendo meio de cultura Agar-Água + disco foliar de feijão-de-porco, para

onde foram transferidas ninfas e adultos de C. phaseoli, sendo avaliada a

mortalidade dos insetos. Os fungos UFLA 16 e IPA 202 foram os mais

patogênicos para ninfas e adultos de C. phaseoli, respectivamente, apresentando

uma porcentagem de mortalidade superior a 80%. No 2º ensaio, NEPs foram

inoculados em substrato contendo pré-pupas e/ou pupas de tripes, avaliando-se a

mortalidade desses estádios, a qual variou de 57,5 a 100%. A família

Heterorabditidae foi mais efetiva no controle do que Steinernematidae. No 3º

ensaio, ninfas e adultos de O. insidiosus foram inoculados com suspensões de

NEPs em arenas com areia. Os NEPs foram pouco patogênicos ao predador na

maioria dos tratamentos avaliados. O 4º ensaio foi realizado em casa-de-

vegetação (CV), sendo avaliado o nível populacional de tripes em crisântemo

após a aplicação de FEPs e NEPs associada com a liberação de O. insidiosus. A

combinação dos inimigos naturais em casa-de-vegetação (CV) foi efetiva no

controle de tripes. Nos tratamentos em que foram liberados O. insidiosus houve

redução dos níveis populacionais. As combinações entre os entomopatógenos

foram efetivas para tripes. O fungo B. bassiana isoladamente reduziu a

população de tripes nas duas primeiras semanas, diferindo dos outros

tratamentos, que mantiveram níveis populacionais mais baixos.

Orientador: Alcides Moino Junior – UFLA

ABSTRACT

CAVALCANTI, Ricardo Sousa. Association Beauveria bassiana (Bals.) Vuill.

- entomopathogenic nematodes (Rhabditida) - Orius insidiosus (Say) for

thrips (Thysanoptera) control in greenhouses. Lavras: UFLA, 2006. 132p.

(Thesis - Doctor in Entomology).

Thrips are important pests in greenhouses, because they cause direct and

indirect damages in plants. The biological control is the main method to control

this pest. Among the promising biological agents in this area are the

entomopathogenic fungi (EPF) and nematodes (EPN), which combined to the

main thrips predator, Orius insidiosus (Say) (Hemiptera: Anthocoridae), can

increase the biological control effectiveness in greenhouses. The purposes of this

study were to evaluate: 1) the pathogenicity of Beauveria bassiana Bals. Vuill.

strains (EPF) on Caliothrips phaseoli (Hood) (Thysanoptera: Thripidae) under

laboratory conditions; 2) the pathogenicity of EPN native and exotic populations

on C. phaseoli under laboratory conditions; 3) the effect of native and exotic

populations of NEP on the predator O. insidiosus in laboratory and 4) the

combination between EPF and EPN with O. insidiosus to control thrips in

greenhouses. In the first study, fungal suspensions were applied in Petri dish

containing agar-water culture + foliar disc of jack bean, where C. phaseoli

nymphs and adults had been transferred. The insects mortality was evaluated.

The fungi UFLA 16 and IPA 202 were the most pathogenic to C. phaseoli

nymphs and adults, respectively, showing mortality higher than 80%. At the

second study, different EPNs were inoculated in a substratum with thrips

prepupa and/or pupae, evaluating the insect’s mortality, which varied from 57.5

to 100%. The family Heterorabditidae was more effective to control than

Steinernematidae. At the third study, O. insidiosus nymphs and adults were

inoculated with EPNs suspensions in boxes with sand. The fourth study was

made in greenhouse, evaluating thrips population level on chrysanthemum, after

the application of EPFs and EPNs in association with O. insidiosus. The

interaction among natural enemies in greenhouse was effective to control thrips.

The treatments in which O. insidiosus was released, reduced the pest population

level. The interactions among entomopathogens were effective for thrips control,

but EPF alone didn’t reduce the thrips population, being different of the other

treatments.

Adviser: Alcides Moino Junior – UFLA

CAPÍTULO 1

1 INTRODUÇÃO GERAL

Os ambientes protegidos caracterizam-se pela proteção do local onde

são cultivadas as plantas, com condições adequadas de temperatura, umidade,

luminosidade, aeração, entre outros, podendo-se obter produção de plantas em

regiões temperadas e tropicais, sem que as mesmas sejam afetadas pelas

intempéries. Por outro lado, este ambiente se torna propício para o

desenvolvimento de pragas e doenças (van Lenteren, 2000a).

O crisântemo Chrysanthemum (Asteraceae) tem sua origem nos países

asiáticos, China e Japão, com mais de 200 espécies atualmente comercializadas,

sendo praticamente produzido em todo o mundo sob sistema protegido. Esta

planta pertence à família Compositae, sendo o formato da sua flor a

característica que diferencia suas variedades. A diversidade de cores e formas

faz desta flor uma das principais culturas ornamentais em casa-de-vegetação

(CV) (Barbosa, 2003; Imenes & Alexandre, 1996).

Os tripes (Thysanoptera: Thripidae) são insetos cosmopolitas e estão

entre as principais pragas de cultivos protegidos, sendo causadores de danos

diretos, através do processo de alimentação, e indiretos por serem vetores de

patógenos. É uma praga que se multiplica rapidamente, e quando em altas

infestações, podem atacar e danificar folhas, flores e frutos. Nas flores, uma

pequena infestação é considerada um sério problema, pois o produto comercial é

diretamente atacado e o aspecto das mesmas no momento da colheita é

importante para a sua comercialização (Bueno, 2005b; Monteiro, 2000; Mound,

2005; Parrella et al., 1999; van Lenteren, 2000a).

Para o controle de tripes em cultivos protegidos não existem produtos

químicos registrados e a aplicação indiscriminada dos mesmos pode afetar os

inimigos naturais desta praga, além dos aplicadores, que são expostos às

moléculas em um ambiente fechado, provocando doenças respiratórias, cutâneas

e neurológicas, podendo levar muitos agricultores à morte (Daughtrey et al.,

1997; Parrella et al., 1999; Sampaio & Guerra, 1991).

O controle biológico em cultivos protegidos é uma alternativa viável e

promissora no Brasil, principalmente por causa da utilização indiscriminada de

produtos químicos e a conseqüente resistência dos insetos às moléculas dos

inseticidas utilizados no controle das pragas. Os agentes de controle biológico

(parasitóides, predadores e entomopatógenos) podem ser utilizados de forma

inundativa, como inseticidas biológicos ou em aplicações inoculativas, que

visam liberar inimigos naturais periodicamente para manter as populações das

pragas abaixo do nível de dano econômico. Dentre os inimigos naturais

promissores para o controle de tripes em cultivos protegidos estão os fungos e

nematóides entomopatogênicos (FEPs e NEPs) e o predador Orius insidiosus

(Say) (Hemiptera: Anthocoridae), aliados aos ácaros predadores da família

Phytoseiidae (Bueno, 2005a; Mound, 2005).

Os FEPs são organismos patogênicos com largo espectro de ação a

insetos e ácaros, ocorrem naturalmente e podem ser produzidos massalmente

para serem aplicados no controle de pragas. Um dos mais utilizados no controle

microbiano é a espécie Beauveria bassiana (Bals.) Vuill., que se caracteriza pela

coloração branca sobre o corpo dos cadáveres dos hospedeiros (Alves, 1998).

As principais famílias de NEPs com grande potencial no controle

biológico são Heterorhabditidae e Steinernematidae, sendo estas muito

estudadas nas últimas décadas para o controle de pragas de solo ou com alguma

fase do seu ciclo neste hábitat. Os tripes, cujas pré-pupas e pupas utilizam este

substrato para completar seu ciclo de vida, são um alvo potencial dos NEPs, que

sobrevivem neste mesmo ambiente, além de poderem ser multiplicados in vivo e

in vitro (Chyzik et al., 1996; Ebssa et al., 2001).

O. insidiosus é um dos principais predadores de tripes, além de se

alimentar de fontes alternativas, como pólen, ovos de lepidópteros e outros

artrópodes, sendo muito utilizado em cultivos protegidos para o controle de

tripes (Bueno, 2005b). Desta forma, este trabalho teve os seguintes objetivos:

• Avaliar a patogenicidade de isolados do fungo entomopatogênico B.

bassiana sobre Caliothrips phaseoli (Hood) (Thysanoptera: Thripidae)

em condições de laboratório;

• Avaliar a patogenicidade de linhagens nativas e exóticas de NEPs sobre

C. phaseoli em condições de laboratório;

• Avaliar o efeito de linhagens nativas e exóticas de NEPs sobre o

predador O. insidiosus em laboratório;

• Avaliar a combinação dos FEPs e NEPs com O. insidiosus para controle

de tripes em condições de casa-de-vegetação.

2 REFERENCIAL TEÓRICO

No passado, a floricultura era julgada uma atividade supérflua, sendo

hoje considerada uma atividade agrícola rentável e que ajuda a manter o homem

no campo; o nosso país é contemplado pela natureza com valiosa flora

ornamental. A floricultura, em seu sentido amplo, abrange o cultivo de plantas

ornamentais, desde flores de corte e plantas em vasos, floríferas ou não, até a

produção de sementes, bulbos e mudas de árvores de grande porte. É um setor

altamente competitivo, que exige a utilização de tecnologias avançadas,

profundo conhecimento técnico pelo produtor e um sistema eficiente de

distribuição e comercialização (Kämpf, 2000; SBFPO, 2005).

A floricultura não só tem sua utilização para ornamentação de

cerimônias cívicas, civis e religiosas ou para diversas homenagens pessoais (dia

dos namorados, dia da secretária, dia internacional da mulher, entre outros), mas

também para o trabalho de preservação e divulgação de espécies nativas

próximas de serem extintas dos seus hábitats naturais (Kämpf, 2000).

Atualmente, as flores e plantas ornamentais são produzidas e

comercializadas em diversos países do mundo, principalmente após a

globalização. Dentre os maiores produtores e exportadores mundiais de flores e

plantas ornamentais destacam-se África do Sul, Brasil, Colômbia, Costa Rica,

Dinamarca, Equador, Espanha, Estados Unidos, Holanda, Israel, Itália, Japão e

Quênia (Sabugosa, 2004).

Na floricultura brasileira destacam-se, por ordem decrescente em

importância de produção, os estados de São Paulo, Minas Gerais, Rio de Janeiro,

Rio Grande do Sul, Santa Catarina, Pernambuco, Paraná e Goiás. Nas demais

unidades da federação, embora ocorram microclimas adequados ao

empreendimento, a floricultura ornamental é pouco desenvolvida, sendo a maior

parte das floríferas disponíveis no mercado provenientes de outras regiões,

devido à formação de pólos regionais de produção em vários estados, amparados

pelas novas tecnologias e conceitos internacionais de qualidade, padronização e

pós-colheita, favorecendo o consumidor brasileiro, que tem acesso a produtos de

melhor qualidade e com preços acessíveis (Sabugosa, 2004; SBFPO, 2005).

Vários fatores fazem do controle biológico uma ferramenta segura no

controle de muitas pragas em CV, tais como a exposição reduzida dos

produtores e aplicadores aos produtos químicos; a inexistência de resíduos sobre

os produtos comercializados; o baixo risco de poluição ambiental; a não

ocorrência de efeitos fitotóxicos em plantas jovens (o aborto prematuro de flores

e frutos não ocorre); a liberação dos inimigos naturais leva menos tempo e é

mais prazerosa do que a aplicação de produtos fitossanitários em ambiente de

CV, que normalmente é quente e úmido; não existe período de carência após

aplicação e é um controle duradouro, como também muito apreciado pelo

público em geral (van Lenteren, 2000b).

Na Europa são desenvolvidos programas de Manejo Integrado de Pragas

(MIP) em cultivos protegidos, através da aplicação de vários inimigos naturais,

isoladamente ou em associação com produtos químicos mais seletivos aos

mesmos, obtendo-se reduções drásticas na aplicação de produtos de maior

espectro de ação (Altena & Ravensberg, 1990).

2.1 Cultivos protegidos

Segundo Mastalerz (1977), a CV é uma estrutura coberta com material

transparente que utiliza a radiação solar para crescimento das plantas, com ou

sem aquecedores, ventiladores e resfriadores para controlar a temperatura

interna, podendo esta ser coberta com vidro, plástico ou fibra de vidro.

Existem vários tipos de CV, sendo mais encontradas as dos modelos em

arco, capela e londrina. O modelo da CV é fator importante a ser considerado, já

que a estrutura tipo arco confere maior resistência do plástico de cobertura ao

vento. Também o posicionamento da mesma e a colocação de quebra ventos é

importante para conferir resistência aos ventos com maior velocidade. O alto

custo dos modelos com estrutura de postes de cimento e arcos em ferro

galvanizado dificulta a adesão dos produtores ao uso do cultivo protegido.

Estruturas utilizando madeira, principalmente eucalipto, contribuem para a

redução dos custos neste setor (SNA, 2000).

O agricultor tenta, pela utilização das CV, melhorar as condições de

cultivo, modificando o clima local para satisfazer as necessidades das plantas

cultivadas sob este sistema, em qualquer estação do ano, o que nas regiões de

inverno rigoroso é extremamente necessário para produção de plantas, daí o

nome “estufa”, para aquecer o ambiente; já nas condições tropicais não seriam

necessários tais aquecimentos, apenas em algumas regiões mais frias, sendo que

o controle destes ambientes favorece o manuseio das práticas culturais durante o

período de cultivo das plantas (FAO, 2002; Goto, 2004).

Os cultivos protegidos fazem parte da história recente da agricultura

brasileira, sendo uma tecnologia inovadora das últimas décadas, promovendo

ambientes propícios ao desenvolvimento de culturas agrícolas, principalmente as

que têm grande valor agregado, produzindo alimentos e plantas ornamentais de

maneira competitiva e sustentável, sendo estimado, atualmente, que 10.000 ha

são plantados sob este sistema de cultivo no Brasil (Darezzo et al., 2004).

A área mundial total coberta por CV é de aproximadamente 300.000 ha,

sendo 50.000 ha destes cobertos com vidro e 250.000 há, com plástico. As

culturas hortícolas são produzidas em 195.000 ha e as ornamentais, em 105.000

ha. As CV oferecem uma excelente oportunidade ao crescimento de produtos de

alta qualidade em grandes quantidades sobre uma pequena área de superfície,

como também favorecem o desenvolvimento e reprodução das pragas por ser

este um ambiente protegido contra intempéries como geadas, ventos, seca e

chuvas, entre outras (Bueno, 2005a; Parrella et al., 1999; van Lenteren, 2000a).

O principal método de controle de pragas no sistema de cultivos

protegidos é o biológico, inserido no MIP, aliado a outros métodos, como o

cultural, a resistência de plantas e o químico com uso de inseticidas, os quais

devem ser sempre seletivos aos inimigos naturais, evitando que os mesmos

sejam eliminados (Pallini et al., 2004).

Segundo Oliveira (1995), o agricultor utiliza uma uniformidade genética

das plantas, o que torna o ambiente propício ao desenvolvimento das pragas

como cochonilhas, tripes, afídeos, moscas-brancas e ácaros, entre outras,

principalmente pela reprodução acelerada e o rápido desenvolvimento de

resistência aos produtos utilizados no controle químico.

2.2 A cultura do crisântemo Chrysanthemum sp. (Asteraceae)

Originário da Ásia, o crisântemo foi adotado como símbolo nacional

pelo Japão, sendo tão admirado que o imperador senta-se no trono do

crisântemo. Para a flor do crisântemo são dados vários significados, dependendo

de sua cor. Para crisântemos de cor vermelha, estar apaixonado (a); de cor

branca, sinceridade; e de coloração amarela, amor desdenhado. Esta última

também significa ouro, do grego Chrysos (ouro) + anthemon (uma flor), pois a

espécie original cultivada era a amarela (Pickles, 1990). A diversidade de cores

apresentada por esta planta é imensa após o melhoramento genético, o que a

tornou uma das principais plantas comercializadas (Arbos Lavila, 1992;

Barbosa, 2003; Motos & Oliveira, 199?).

Esta flor chegou à Europa por volta de 1700, onde foi melhorada

geneticamente. Atualmente destacam-se os tipos “margarida”, bastante comum

no Brasil e na Europa; o “spider”, com pétalas tipo alfinete; e o “pom pom”,

crespo e arredondado. Quanto ao tamanho, divide-se entre crisântemos largos,

médios e minis, dependendo da finalidade (corte ou vaso). As cores podem ser

as mais diversas possíveis, destacando-se o branco, o amarelo, o vermelho, o

lilás, o roxo, o salmão e a mistura dessas cores (Motos & Oliveira, 199?).

O crisântemo é uma planta classificada como de dia curto, exigente

quanto ao fotoperíodo. Para que ocorra a indução floral, precisa de

aproximadamente 13 horas de luminosidade para ocorrer o florescimento, sendo

que, em quantidades maiores de luz, ocorre o crescimento vegetativo, diferindo

esta sensibilidade entre as espécies e cultivares (Barbosa, 2003; Motos &

Oliveira, 199?).

A família Asteraceae (Compositae) compreende cerca de 1.100 gêneros,

com aproximadamente 25.000 espécies que ocorrem em regiões tropicais,

subtropicais e temperadas. No Brasil esta família está representada por cerca de

180 gêneros e, dentre os cultivados, destaca-se o Chrysanthemum (Lorenzi &

Souza, 2003).

O crisântemo é uma das maiores culturas da floricultura em todo o

mundo. Existe em aproximadamente 2.350 ha, sendo os maiores produtores, em

ordem decrescente Japão, Holanda, Alemanha, Colômbia e EUA (Parrella et al.,

1999).

No Brasil, os estados maiores produtores de crisântemo são São Paulo,

Rio de Janeiro e Minas Gerais, o qual foi introduzido a partir de cultivares

importados do Japão, Europa, EUA, Argentina e Uruguai. A grande diversidade

de formas e cores, a durabilidade e a resistência ao transporte e a precisão da

resposta de indução floral ao fotoperíodo tornam o crisântemo um dos principais

produtos comercializados na área da floricultura (Imenes & Alexandre, 1996).

Esta cultura ocupa um lugar de destaque na floricultura brasileira

juntamente com a roseira. A comercialização do crisântemo como flores frescas

se dá em maços, dúzias e pacotes, sendo também comercializado em vasos

(Barbosa, 2003).

O produtor de crisântemo é monocultor, embora possua diversidade

quanto às cultivares. O cultivo é efetuado em CV, que possibilita a obtenção de

três ciclos anuais, sendo usuais altas concentrações de mudas nos canteiros

(Imenes & Alexandre, 1996). Um outro aspecto muito importante na cultura do

crisântemo é o sócio-econômico, embasado na geração de empregos diretos e

indiretos, além da demanda por insumos agrícolas, distribuídos em mercados

regionalizados nos diferentes estados do Brasil (Barbosa, 2003).

2.3 Pragas

O aumento da área de produção intensiva da cultura do crisântemo

favorece o aparecimento de insetos em níveis populacionais capazes de provocar

prejuízos econômicos à cultura. A aplicação indiscriminada de produtos

fitossanitários e o crescente problema de resistência aos mesmos, principalmente

em CV, onde não existem produtos registrados, concederam aos tripes o “status”

de praga. Nas últimas décadas, os tripes tornaram-se pragas-chave em muitos

lugares no mundo, principalmente por serem vetores de vírus em várias culturas

de campo, como tomate, alface, pimenta e cebola, entre outras, e em cultivos

protegidos de hortaliças e flores, tais como tomate, pepino, crisântemo, rosas e

violeta africana (Daughtrey et al., 1997; Yudin et al., 1986). Os danos diretos

podem ser pequenos, mas não são irrelevantes, especialmente se a parte vegetal

danificada é o produto de comercialização (Monteiro, 2000).

As pragas que comumente ocorrem em cultivos protegidos são ácaros,

afídeos, cochonilhas, minadores de fohas, moscas-brancas, lepidópteros e tripes

(Informe Agropecuário, 2005).

2.3.1 Tripes (Thysanoptera: Thripidae)

2.3.1.1 Ciclo de vida

Em uma população de tripes, frequentemente as fêmeas são mais

abundantes que os machos, sendo estes desconhecidos em algumas espécies. As

fêmeas são diplóides e os machos, haplóides e derivados de ovos não

fertilizados. Na cópula, vários machos podem fertilizar um número grande de

fêmeas (Lewis, 1973).

Os ovos são cilíndricos, ligeiramente arredondados, delicados,

translúcidos esbranquiçados a amarelados, sendo ovipositados internamente nos

tecidos tenros (folhas, pétalas, sépalas, cotilédones, frutos, entre outros) das

plantas hospedeiras através de uma incisão feita com auxílio do ovipositor

(Lewis, 1973).

Os estágios biológicos apresentados pelos tripes são geralmente em

número de cinco: ovo, ninfa (I e II), pré-pupa, pupa e adulto. A duração do ciclo

biológico é muito influenciada pela temperatura. Parte de seu ciclo se

desenvolve principalmente nos tecidos foliares, exceto a pré-pupa e a pupa, que

se desenvolvem no solo e durante este período não se alimentam (Lewis, 1973).

O estágio de pré-pupa é imediatamente anterior à pupa propriamente

dita; ambos os estágios possuem tecas alares rudimentares e antenas com

indistinta segmentação. Neste período os indivíduos não se alimentam e nem

excretam qualquer tipo de dejeto do corpo, sendo diminuída também a taxa de

respiração. O corpo da pré-pupa possui tamanho menor do que o da fase adulta,

o que não ocorre no estágio pupal verdadeiro, em que o mesmo possui as

mesmas proporções de um indivíduo adulto. A pupa se diferencia da pré-pupa,

além do tamanho, por possuir tecas alares maiores e as antenas ficarem voltadas

para trás, diferentemente da pré-pupa, na qual são direcionadas para frente.

Ambos os estágios (pré-pupa e pupa) possuem sensibilidade à luminosidade, ao

contrário das ninfas e adultos, que são atraídos pela luz. Ainda no estágio de

ninfa II, saem da planta hospedeira e descem para o solo para o período de

pupação (Lewis, 1973).

Após a pupação emerge o adulto, muito característico pelas asas

franjadas, reproduzindo-se sexuadamente, existindo também espécies

partenogenéticas. As fêmeas adultas fazem suas posturas endofiticamente nas

plantas hospedeiras, onde se alimentam (Lewis, 1973).

2.3.1.2 Aspectos morfológicos e danos

Os tripes pertencem à ordem Thysanoptera, sendo a família Thripidae

constituída de aproximadamente 1700 espécies distribuídas em todo o mundo.

Esta família apresenta o maior número de espécies pragas das culturas de

importância agrícola, sendo a maioria pertencente aos gêneros Thrips e

Frankliniella. Os tripes são insetos pequenos, com asas franjadas, que pelo

tamanho diminuto muitas vezes passam despercebidos pela maioria dos

agricultores (Lewis, 1973; Mound, 1997).

Apresentam polimorfismo de cores, frequentemente com três diferentes

tipos de tonalidades, clara, escura e intermediária. A temperatura durante o

desenvolvimento do inseto pode alterar a coloração do corpo (Mound, 2005).

São insetos terrestres e cosmopolitas, que possuem um grande número

de plantas hospedeiras, das quais se alimentam de folhas, flores, frutos e brotos

jovens, danificam seus vasos, podendo também se alimentar de pequenos

artrópodes, pólen, néctar, fungos ou musgos, ovos de ácaros, tendo uma grande

atividade fitófaga, sendo praga em plantas de diversos estádios fenológicos e

muito encontrados em plantas daninhas, que podem servir como abrigos de

populações que logo se dispersam sobre as culturas agrícolas (Agrawal et al.,

1999; Lewis, 1973; Mound, 2005).

Childers (1997) relata a diversidade de plantas hospedeiras de tripes, tais

como abacate, algodão, amendoim, banana, cebola, citros, crisântemo, maçã,

mandioca, morango, ornamentais, pepino, pêssego, soja, tomate e uva, entre

outras.

Os tripes, quando atacam as flores em cultivos protegidos, afetam

diretamente o produto comercial, que perde valor para a comercialização.

Segundo Carrizo & Klasman (2002), o nível de controle de Frankliniella

occidentalis (Pergande) (Thysanoptera: Thripidae) recomendado para a cultura

do cravo é, em média, de um único inseto por flor.

Os sintomas de danos mais freqüentes desta praga em folhas e/ou

pétalas, e até mesmo em brotações novas, decorrentes da sua alimentação,

podem variar com a deformação até a destruição de folhas ou órgãos florais e

subseqüentes cicatrizes e deformações nos frutos. Várias flores ornamentais são

atacadas por tripes, como rosas, gérberas, crisântemo, cravo, gerânios e

margaridas, entre outras (Childers, 1997; Oetting et al., 1993).

No processo de alimentação nas plantas, os tripes não raspam as mesmas

para obterem o conteúdo celular, como anteriormente se pensava, mas o retiram

diretamente através da sucção individual das células das plantas. Os insetos

perfuram o substrato alimentar com a mandíbula esquerda, retraindo e

contraindo os estiletes maxilares, succionando o conteúdo celular das plantas e

reduzindo, conseqüentemente, a área fotossintetizadora da mesma (Mound,

2005; Ullman et al., 1997).

Outros autores fazem relatos discordantes, de que os tripes se alimentam

sobre as plantas após perfurarem os tecidos e extraírem a seiva com seu estilete

maxilar e mandíbulas. Os tecidos em volta da sua alimentação ficam ressecados,

por meio disso reduzem a área fotossintetizadora da folha (Parrella et al., 1999).

Estes insetos também podem, além de causar danos diretos às plantas,

transmitir bactérias do gênero Erwinia (Vries et al., 2001) e viroses para plantas.

A aquisição do vírus ocorre durante a alimentação em plantas infectadas pelo

patógeno, os quais permanecem com o mesmo por toda a vida, sem transmissão

para a progênie (Mound, 2005; Nagata et al., 2004; Sakurai, 2004; Sakurai et al.,

2004; Ullman et al., 1992, 1997). O crisântemo e outras plantas ornamentais

também são hospedeiros de viroses que têm os tripes como vetores

(Chatzivassiliou et al., 2000; Nagata & Ávila, 2000).

Em cultivo hidropônico de alface, a flutuação populacional dos tripes foi

acompanhada semanalmente durante o período de cultivo, sendo encontradas

com freqüência as espécies Frankliniella schultzei (Trybon) (Thysanoptera:

Thripidae) e C. phaseoli, observando-se, como fatores adversos às populações

das pragas, as baixas temperaturas e as pulverizações de produtos químicos

(Auad & Barbosa, 2000).

No Japão, Murai (2002) relata a importância de Thrips palmi Karny

(Thysanoptera: Thripidae) principalmente pelas características de baixa

sensibilidade aos inseticidas, a elevada taxa reprodutiva e a ampla gama de

hospedeiros, sendo necessária a utilização de vários métodos de controle da

praga, já que o inseto tornou-se resistente à maioria dos produtos químicos, os

quais são muito utilizados geralmente de forma inadequada.

Os tripes normalmente não estão associados com flores que abrem e

atraem outros insetos, como abelhas e moscas, produzem grande quantidade de

néctar e atraem pássaros e mamíferos como beija-flor e morcego, entre outros

(Mound, 2005).

Segundo Casey et al. (1999), os tripes, quando encontrados em uma

população média de um inseto por rosa, já devem ser controlados, pois o

crescimento populacional da praga em CV é elevado e pode causar injúrias

visíveis para a cultura.

Atualmente, nos EUA, um fator limitante para o desenvolvimento do

MIP em crisântemo é a carência de outras medidas de controle para o tripes F.

occidentalis que não sejam através de produtos químicos. Somente produtos

fitossanitários de amplo espectro são aplicados contra tripes, mas são

incompatíveis com a maioria dos agentes de controle biológico (Parrella et al.,

1999).

A resistência dos tripes aos produtos químicos é um fator limitante para

muitas culturas, já que aplicações indiscriminadas destes produtos reduzem as

populações dos inimigos naturais desta praga, sendo necessária a utilização de

produtos seletivos (Brodsgaard, 1994; Broadbent & Pree, 1997; Immaraju et al.,

1992; Zhao et al., 1995).

2.3.1.3 Inimigos naturais

Vários trabalhos mostram a diversidade de inimigos naturais

(predadores, parasitóides, parasitas e entomopatógenos) associados com tripes,

sendo muito importante o nematóide Thripinema nicklewoodi Siddiqui

(Tylenchida: Allantonematidae), que parasita uma grande parte da população

deste inseto, esterilizando grande número de fêmeas (Arthurs & Heinz, 2002a,b;

Brownbridge et al., 1999; Greene & Parrella, 1993; Goodwin & Steiner, 1996,

2002; Heinz et al., 1996; Izzo et al., 2002; Krauter et al., 2005; Lim et al., 2001;

Loomans et al., 1997; Loomans, 2003; Mason & Heinz, 1999, 2002; Murai et

al., 2000; Teulon et al., 1997; Tagashira & Hirose, 2001).

O parasitismo do nematóide Thripinema khrustalevi Chizov, Subbotin &

Zakharenkova (Tylenchida: Allantonematidae) em uma população de

Frankliniella australis (Morgan) (Thysanoptera: Thripidae) foi acompanhado

durante dois anos, por meio de coletas realizadas quinzenalmente, encontrando-

se taxas de parasitismo de 84% em fêmeas do inseto (Funderburk et al., 2002).

2.3.1.3.1 Entomopatógenos

2.3.1.3.1.1 Fungos entomopatogênicos (FEPs)

Dentre os patógenos de insetos, os FEPs possuem grande potencial para

serem utilizados em cultivos protegidos, nos quais podem ser controladas a

temperatura e a umidade, importantes para estes entomopatógenos (Inglis et al.,

2001). Os principais gêneros de fungos que causam doenças aos tripes são

Neozygites, Zoophthora, Entomophthora, Entomophaga, Coniodiobolus,

Lecanicillium, Beauveria, Aspergillus, Hirsutella, Cladosporium, Paecilomyces,

Metarhizium e Sporothrix (Butt & Brownbridge, 1997). Segundo Bueno

(2005b), os principais FEPs que controlam tripes são Lecanicillium sp. e os

pertencentes à ordem Entomophthorales. Ugine et al. (2005b) relataram que o

estágio de tripes mais difícil para exposição aos esporos de fungos é o segundo

instar ninfal, por advento da ecdise.

Segundo Malais & Ravensberg (1992), o fungo entomopatogênico

Lecanicillium lecanii (Zimm.) Zare & Gams é comumente encontrado atacando

tripes, podendo atacar outros artrópodes, além de controlar doenças causadas por

fungos fitopatogênicos, como é o caso do oídio no pepino (Askary et al., 1998;

Verhaar et al., 1996, 1998). Helyer (1993) avaliou o controle promovido pelo

entomopatógeno sobre F. occidentalis quando em ambiente úmido e um

tratamento com adição de óleo à suspensão do fungo, em que o mesmo provocou

uma maior mortalidade neste tratamento.

Aplicações de uma formulação comercial do fungo Lecanicillium sp.

foram realizadas em CV para controle de mosca-branca e tripes nas culturas do

tomateiro e pepineiro. A mortalidade de tripes foi próxima de 70% e da mosca-

branca, próxima de 100% (Ravensberg et al., 1990).

Os tripes ficam escondidos nas plantas hospedeiras, dificultando a

contaminação pelos produtos aplicados, já que os esporos dos fungos precisam

entrar em contato com o corpo do inseto para ocorrer a adesão. Desta forma,

Teerling et al. (1993) e Tschuch et al. (2002) identificaram feromônios de defesa

em F. occidentalis como forma de desalojar os insetos dos esconderijos nas

plantas, podendo esta técnica ser utilizada para que os insetos saiam dos locais

onde ficam abrigados e se contaminem com os esporos dos patógenos.

Eventos epizootiológicos em tripes causados pelo fungo Neozygites

parvispora (MacLeod, Tyrrell & Carl) Remaudiére & Keller são relatados em

culturas sob sistemas protegidos, reduzindo severamente a população de F.

occidentalis (Montserrat et al., 1998; Vacante et al., 1994).

Segundo Castineiras et al. (1996), os fungos B. bassiana e Paecilomyces

fumosoroseus (Wize) Brown & Smith foram efetivos no controle de T. palmi em

condições de CV quando aplicados no substrato contendo pupas da praga, mas

não quando aplicados em folhas.

Helyer et al. (1995) obtiveram resultados satisfatórios com o fungo

Metarhizium anisopliae (Metsch.) Sorok. quando este foi pulverizado no

composto em que as plantas eram cultivadas. Porém, Vestergaard et al. (1995)

observaram que nem todos os estágios desse inseto têm a mesma suscetibilidade

aos fungos, como insetos adultos de F. occidentalis, que foram mais suscetíveis

a Lecanicillium sp. do que ninfas da mesma espécie.

Para a espécie Megalurothrips sjostedti Trybom (Thysanoptera:

Thripidae), dados confirmam que os adultos foram mais suscetíveis a M.

anisopliae (Ekesi & Maniania, 2000).

A persistência dos FEPs no solo, seu hábitat natural, pode ser uma

vantagem destes patógenos no controle de pré-pupas e pupas de tripes, como

relatado por Parker et al. (1996) no controle de Taeniothrips inconsequens

(Uzel) (Thysanoptera: Thripidae) em florestas, segundo os quais as ninfas saem

das folhas para pupação no substrato.

Segundo Butt & Brownbridge (1997), os FEPs infectam os estágios dos

tripes que se desenvolvem na parte aérea da planta (ninfas e adulto) e as fases

que têm seu desenvolvimento no solo, pré-pupas e pupas, sendo que o inóculo

dos patógenos decresce rapidamente no solo pela presença de outros organismos

antagonistas.

O uso de FEPs foi inserido em cultivos protegidos comerciais na Itália,

durante os anos de 1995 e 1996, utilizando-se as práticas comerciais realizadas

pelos produtores com o intuito de introduzir este agente patogênico para controle

de diversas pragas, como afídeos, moscas-brancas e tripes em diversas culturas

(gérbera, pimentão, poinsétia, berinjela). Para tripes, em berinjela, os fungos M.

anisopliae e P. fumosoroseus limitaram a população de tripes a níveis abaixo do

dano econômico (Rovesti et al., 1997).

De acordo com Butt & Brownbridge (1997), o fungo Lecanicillium sp.

tem sido comercializado para o controle de tripes em CV e outras pragas. Uma

das vantagens apresentadas pelos FEPs é o fato de eles não serem afetados pelas

condições de luminosidade, o que pode ocorrer com alguns inimigos naturais,

como certos predadores, que entram em diapausa, em dias longos, limitando a

performance dos mesmos.

Em testes de laboratório e CV, Murphy et al. (1998) mostraram que uma

formulação comercial de B. bassiana linhagem GHA causou redução

significativa na população de F. occidentalis em ornamentais, demonstrando seu

potencial como produto alternativo aos produtos químicos comumente

utilizados.

Um teste para comparar a virulência de B. bassiana sobre F.

occidentalis foi conduzido em discos foliares em laboratório para posterior

aplicação em CV. Ocorreram diferenças significativas na suscetibilidade dos

tripes expostos a B. bassiana, não sendo conhecidos os mecanismos e/ou os

compostos metabólitos que causam estas diferenças (Ugine et al., 2005a).

Alguns trabalhos relatam o antagonismo causado por metabólitos secundários de

plantas que afetam FEPs (Costa & Gaugler, 1989; Lacey & Mercadier, 1998).

Vários FEPs promissores no controle biológico de F. occidentalis foram

selecionados por Lopes (1999), destacando-se como mais virulento o isolado

1104, da espécie M. anisopliae. Fry et al. (1999)

, citados por Shipp et al

(2002b), selecionaram, de 76 FEPs avaliados, 10 isolados virulentos a F.

occidentalis.

Na hidroponia em cultivos protegidos, os FEPs já estão sendo testados

para possíveis reduções das aplicações de produtos químicos, como avaliado por

Lopes et al. (2000) na cultura da alface, obtendo-se 60% de controle de F.

occidentalis nos tratamentos com M. anisopliae. A associação de produtos

químicos com FEPs é uma alternativa que pode ser utilizada para controle de

tripes, como realizada por Lopes et al. (2002) no controle de F. occidentalis.

A adição de produtos atraentes (açúcar, Lure

e Stirrup

) junto com a

suspensão do fungo B. bassiana foi utilizada para aumentar o controle de F.

occidentalis pelo patógeno em crisântemo sob cultivo protegido. Não houve

diferença entre os tratamentos aos quais se adicionaram os atrativos comparados

com B. bassiana isoladamente (Ludwig & Oetting, 2002).

O efeito da umidade relativa (UR) na CV foi avaliado sobre a

patogenicidade de B. bassiana a três pragas de cultivos protegidos. Para F.

occidentalis, aos sete dias após aplicação do fungo, com a UR de 77%, a

mortalidade dos insetos foi de 71%; quando a UR chegou a 91,65%, o controle

foi de 81,6% (Shipp et al., 2002a).

Em crisântemo de corte, o fungo M. anisopliae promoveu controle

satisfatório da população de F. occidentalis e reduziu o número de aplicações de

inseticidas, diminuindo, com isso, a resistência da praga pela diminuição das

aplicações. No tratamento associado do fungo + produto químico, o nível

FRY, K.M.; GOETTEL, M.S.; KEDDIE, B.A. Evaluation of the fungus

Beauveria

bassiana

for management of Western flower thrips on greenhouse ornamentals.

Alberta

Agricultural Institute Project 970766

, final report. 1999.

populacional foi drasticamente reduzido até o florescimento da cultura

(Maniania et al., 2002).

No Quênia, a utilização em campo de M. anisopliae para controle de T.

tabaci foi comparada com um tratamento inseticida, demonstrando que quando

se utilizou o entomopatógeno, os organismos não-alvo foram preservados,

aumentando a bodiversidade na cultura da cebola (Maniania et al., 2003).

Goodwin et al. (2005) realizaram testes para seleção de isolados dos

fungos B. bassiana e M. anisopliae para controle de F. occidentalis,

Trialeurodes vaporariorum (Westwood) (Hemiptera: Aleyrodidae) e Myzus

persicae (Sulzer) (Hemiptera: Aphididae), obtendo isolados que apresentaram

elevada mortalidade dos insetos. Para tripes, cinco isolados promoveram uma

mortalidade de adultos superior a 85%, sendo as ninfas menos suscetíveis aos

mesmos isolados testados.

2.3.1.3.1.2 Nematóides entomopatogênicos (NEPs)

Os nematóides entomopatogênicos (NEPs) têm evidenciado efetividade

em programas de controle biológico de insetos-praga. Dentre as famílias que

apresentam potencialidade como controladores biológicos se destacam

Steinernematidae e Heterorhabditidae, com base em características como alta

virulência, capacidade de produção, grande número de hospedeiros e por isso

apresentam maior perspectiva para serem incorporadas em programas de MIP,

especialmente para pragas do solo. Estas duas famílias se caracterizam por terem

uma relação simbiótica com bactérias (Xenorhabdus spp. para Steinernema e

Photorhabdus spp. para Heterorhabditis) que causam doença e matam os insetos

em menos de 48 horas. Por esta razão denominam-se NEPs (Gaugler, 1988;

Ferraz, 1998; Forst & Clarke, 2002; Georgis & Hom, 1992; Glazer & Lewis,

2000; Kaya & Gaugler, 1993; Ricci et al., 1996).

Os NEPs possuem um estádio livre no solo, chamado juvenil infectante

(JI); são promissores no controle biológico de pragas por terem mecanismos de

sobrevivência em condições adversas, como resistência a produtos químicos e

tolerância ao calor e ao frio, dentre outras. Quando saem dos seus hospedeiros,

os juvenis infectantes (JIs) carregam a bactéria simbionte e, como forma de

proteção aos organismos patogênicos, mantêm as regiões bucal e anal fechadas

até penetrarem em outro hospedeiro (Dowds & Peters, 2002; Glazer, 1996,

2002; Qiu & Bedding, 2000).

Os NEPs são utilizados como agentes de controle microbiano de grande

eficácia, especialmente para um amplo número de pragas que têm alguma fase

do seu ciclo no solo. Esses agentes de controle biológico podem ser utilizados de

forma inundativa, como inseticidas biológicos ou em aplicações inoculativas.

Tais formas de aplicação podem assegurar o estabelecimento dos NEPs,

reduzindo, assim, as populações das pragas através da interrupção do seu ciclo

de vida (Kaya & Gaugler, 1993). Segundo Georgis et al. (1991), os NEPs, além

de serem efetivos contra pragas agrícolas, geralmente não causam efeitos

adversos sobre artrópodes benéficos (Hazir et al., 2003).

Estes organismos podem ser aplicados em suspensões aquosas e também

introduzidos em sistemas de irrigação (Georgis, 1990; Kaya, 1985). Segundo

Jansson & Lecrone (1994), não ocorreram diferenças significativas na

mortalidade da praga da batata-doce Cylas formicarius (Fabricius) (Coleoptera:

Curculionidae) quando os NEPs foram aplicados em suspensão aquosa ou

liberados em cadáveres de Galleria mellonella L. (Lepidoptera: Pyralidae)

infectados pelo nematóide Heterorhabditis bacteriophora HP88 Poinar, sendo

esta mais uma forma de aplicação dos NEPs.

Segundo Grewal (2002), os equipamentos de aplicação dos NEPs não

devem estar com temperaturas altas, acima de 30ºC, no tanque de aplicação e

nos bicos dos pulverizadores, pois causam danos irreversíveis aos NEPs,

proporcionando efeitos negativos no controle das pragas.

Os JIs dos NEPs podem ser introduzidos para o controle de insetos em

diferentes locais do solo, mais profunda ou superficialmente, no perfil, porque os

JIs possuem diferentes estratégias de busca pelo hospedeiro, seguindo

principalmente os compostos voláteis liberados pelos insetos. Uma estratégia é

denominada “ambusher”, na qual os nematóides têm a capacidade de esperar a

praga ou inseto hospedeiro. Já na estratégia “cruiser”, os NEPs vão ao encontro

do hospedeiro ou ainda são atraídos pelos produtos excretados pelos insetos

(Campbell et al., 2003; Grewal et al., 1993, 1994; Lewis, 2002).

A combinação de NEPs de diferentes estratégias pode ser utilizada no

controle de pragas agrícolas em CV. Kaya et al. (1993) utilizaram duas espécies

de NEPs no controle de duas pragas que ocorriam no solo em duas temperaturas

(16 e 22ºC), fatores que afetam os NEPs. A primeira praga é uma larva que vive

em camadas mais próximas das raízes das plantas, Otiorhynchus sulcatus

(Fabricius) (Coleoptera: Curculionidae), e a segunda, Agrotis ipsilon (Hufnagel)

(Lepidoptera: Noctuidae), sobrevive na parte mais superficial do solo. Os JIs

utilizados foram H. bacteriophora (“cruiser”) e Steinernema carpocapsae

Weiser (“ambusher”). Na temperatura de 16ºC, S. carpocapsae foi mais efetivo

do que H. bacteriophora, e a 22ºC, ambos controlaram seus hospedeiros.

Segundo Ebssa et al. (2001), os NEPs testados sobre estágios imaturos

de F. occidentalis controlam os estágios de desenvolvimento do inseto no solo.

Borgemeister et al. (2002) avaliaram a combinação de NEPs com o ácaro

predador Hypoaspis aculeifer (Canestrini) (Acari: Laelapidae) no controle de

estágios de desenvolvimento no solo (pré-pupa e pupa) de F. occidentalis,

observando significativo controle desta praga, com grande redução na

emergência de insetos adultos.

Seis linhagens de NEPs, duas H. bacteriophora (HK3 e HB Brecan), três

Steinernema feltiae (Sylt, OBSIII e CR) e uma S. carpocapsae (DD136), foram

utilizadas no controle de pré-pupas e/ou pupas de F. occidentalis. Os insetos

foram suscetíveis às linhagens de NEPs e, quando utilizadas concentrações

elevadas (400 JI/cm

), a mortalidade de pré-pupas e/ou pupas atingiu 80%

(Berndt, 2003).

A aplicação de duas espécies de NEPs, H. bacteriophora e S. feltiae

(400 JI/cm

), combinadas com o ácaro H. aculeifer (10 ácaros/vaso), foi avaliada

em plântulas de feijoeiro em vasos, em condições de CV. A redução na

emergência dos tripes causada pelo tratamento com o ácaro isoladamente foi de

46%, mesmo valor do NEP S. feltiae. No tratamento H. bacteriophora, 61% dos

tripes não emergiram, ocorrendo elevada mortalidade de pré-pupas e/ou pupas

da praga. O melhor tratamento avaliado foi a combinação dos NEPs com o

ácaro, diferindo dos outros tratamentos, com 5% de tripes emergidos para H.

bacteriophora + H. aculeifer e 10% para S. feltiae + ácaro, sendo estas

associações de grande potencial para uso no controle dos estágios dos tripes que

se desenvolvem no solo (Premachandra et al., 2003).

A suscetibilidade de estágios de F. occidentalis desenvolvidos no solo

(pré-pupa e pupa) e nas folhas de crisântemo [ninfas (I e II) e adultos (fêmea e

macho)] ao nematóide S. feltiae foi avaliada por Buitenhuis & Shipp (2005a).

Apenas os estágios de pré-pupa e pupa foram suscetíveis ao entomopatógeno,

mostrando que as folhas e flores são locais críticos para aplicação dos NEPs,

sendo necessária, na maioria das vezes, a utilização de mais de um inimigo

natural (Brodsgaard et al., 1996).

A eficácia de S. feltiae no controle de F. occidentalis foi avaliada em

condições de laboratório e de CV, na cultura do crisântemo, sendo o NEP

aplicado nas folhas e substrato. Foi demonstrado que as ninfas e os adultos da

praga não foram afetados pelo entomopatógeno, sendo efetivo no controle dos

estágios de pré-pupa e pupa, os quais descem para o substrato após o término do

período ninfal (Buitenhuis & Shipp, 2005b).

2.3.1.3.2 Predadores

Segundo MccFrey & Horsburgh (1986a,b), os mais importantes

predadores de tripes estão inseridos no gênero Orius, que é um gênero

cosmopolita, com cerca de 70 espécies (Herring, 1966), constituído de

predadores vorazes. Shipp et al. (2002b) relataram que para o controle de tripes

estes predadores são muito efetivos, mas não atuam nos estágios de

desenvolvimento no solo, as pré-pupas e pupas.

Dos predadores mais conhecidos e estudados estão aqueles pertencentes

ao gênero Orius. As ninfas e adultos são predadoras de ninfas de 1º e 2º instar e

adultos de tripes. A espécie Orius minutus L. (Hemiptera: Anthocoridae) foi

encontrada se alimentando também de ovos de F. occidentalis (Sabelis & van

Rijn, 1997).

Riudavets et al. (1993) e van Lenteren & Loomans (1999) relataram, em

condições de CV, a diversidade de inimigos naturais de tripes, demonstrando a

importância dos mesmos no manejo desta praga.

Vários trabalhos relatam a importância dos ácaros da principal família

de predadores, Phytoseiidae, e outras famílias no controle biológico, em

associação com antocorídeos do gênero Orius, para aumentar a eficiência no

controle de tripes em CV em diversas culturas (Bennison et al., 2002;

Brodsgaard & Enkegaard, 2005; Bueno, 2005b; Castineiras et al., 1997;

Gilkeson et al., 1990; Higgins, 1992; Jacobson et al., 2001b; Messelink et al.,

2005; Parrella & Murphy, 1996; Parrella et al., 1999; Ramakers & Maaswinkel,

2002; Sanchez et al., 1997; Sánchez et al., 2000; Steiner & Goodwin, 2002a,b;

Steiner & Tellier, 1990; Steiner, 2002; Tellier & Steiner, 1990; van Houten et

al., 2005; van Houten, 1996; Vänninen & Linnamäki, 2002; Williams, 2001;

Wittmann & Leather, 1997; Xu et al., 2006). A competição entre insetos e

ácaros predadores de tripes também ocorre (Cloutier & Johnson, 1993;

Ramakers, 1993; Gillespie & Quiring, 1992; Sanderson et al., 2005); porém,

Sabelis & van Rijn (1997) relatam que a predação intraguilda é avaliada

normalmente em pequenas arenas, em condições de laboratório, o que, em

campo, pode não ocorrer.

Os predadores do gênero Orius apresentam uma grande vantagem para

criações massais por se alimentarem de outras presas alternativas, como é o caso

de ovos de lepidópteros, que são produzidos em criações de laboratório

(Tommasini & Nicoli, 1993).

A espécie O. insidiosus é encontrada naturalmente em várias culturas,

como algodoeiro, milho, alfafa, soja e crisântemo, onde se alimentam de vários

artrópodes, como tripes, pulgões, ácaros, mosca-branca e ovos de lepidópteros

(Isenhor & Yeargan, 1981; Kiman & Yeargan, 1985; Lattin, 2000), possuindo

excelente comportamento de busca pelas presas, sendo capaz de se multiplicar

rapidamente em alta densidade de presas, além de se manter em baixas

densidades destas e ter outros alimentos alternativos, como o pólen. A espécie

O. insidiosus é a mais freqüentemente encontrada em cultivos protegidos no

Brasil, como também em condições de campo (Bueno, 2000; 2005b).

O. insidiosus é predador voraz em todos os estágios de desenvolvimento,

descobrindo suas presas pelo tato e visão, sendo a antena a região mais sensorial

do corpo. Possui uma ampla distribuição geográfica; apresenta os estágios de

ovo, cinco estádios ninfais predadoras e o estágio adulto também predador; e faz

a postura endofítica em tecidos tenros das plantas em que normalmente se

encontram suas presas ou existem fontes alimentares como pólen, néctar e

exsudados, entre outros, mostrando uma forte preferência alimentar pelos tripes

(Bueno, 2005b; Lattin, 1999; Malais & Ravensberg, 1992; van den Meiracker &

Sabelis, 1993; Salas, 1995).

A fase ninfal de O. insidiosus é composta por cinco estádios, dos quais o

primeiro é inicialmente brilhante e incolor, tornando-se amarelado com o

desenvolvimento em curto espaço de tempo até atingir a coloração marrom

escura em todo o corpo da ninfa. Todos os estádios ninfais são predadores, mas a

forma mais comum de liberação no controle biológico é o estágio adulto (Bueno,

2000, 2005b; Malais & Ravensberg, 1992; Mendes & Bueno, 2001).

A fase adulta apresenta a coloração escurecida com hemiélitros marrons-

amarelados. A diferenciação das fêmeas e machos se dá pela genitália, pois os

mesmos são muito semelhantes, sendo a fêmea um pouco maior que o macho,

ambos com formato ovalado, achatados e de tamanho pequeno. São bons

voadores, possuem grande capacidade de dispersão e se escondem entre as

folhagens e flores das plantas, mesmo hábitat das suas presas, dentre as

principais, os tripes (Bueno, 2000, 2005b; Malais & Ravensberg, 1992; van den

Meiracker & Sabelis, 1993; Salas, 1995; Tommasini, 2003).

A eficiência do predador O. insidiosus no controle de F. occidentalis em

pimentão foi avaliada em CV por duas técnicas: armadilha adesiva de coloração

azul e amostragem nas flores. Os predadores controlaram eficientemente a praga

quando o seu nível populacional atingiu um nível elevado, reduzindo em três

semanas para níveis próximos de zero (Veire & Degheele, 1993). Outros

trabalhos relatam a importância de várias espécies pertencentes ao gênero Orius

no controle populacional de tripes em cultivos protegidos (Bueno, 2005b;

Carnero et al., 1994; Yano, 1996).

A seletividade dos produtos químicos aplicados para o controle de tripes

aos predadores é um fator importante, pois os não seletivos causam efeitos

negativos a estes inimigos naturais, favorecendo a população da praga (Nagai,

1993; Peter, 2005; Silveira, 2003; Tommasini & Maini, 2002; Tommasini,

2003).

Um dos fatores mais importantes na utilização dos predadores do gênero

Orius na cultura do crisântemo está na redução dos produtos químicos aplicados,

que em cultivos comerciais pode chegar até 10 aplicações durante a produção da

cultura, além da aplicação de inseticidas seletivos aos inimigos naturais com

menor espectro de ação (Bene, 1994).

A aplicação do produto químico spinosad foi realizada juntamente com

O. insidiosus para manejo de F. occidentalis na cultura do crisântemo em vaso,

sendo encontradas baixas populações do tripes nos tratamentos que associaram o

controle biológico com o químico (Ludwig & Oetting, 2001).

Riudavets (1995) avaliou a população de predadores de F. occidentalis

em culturas hortícolas na Espanha. Dentre os mais encontrados estavam os

mirídeos Dicyphus tamaninii Wagner (Heteroptera: Miridae) e Macrolophus

caliginosus Wagner (Heteroptera: Miridae) e os antocorídeos Orius laevigatus

(Fieb.) (Heteroptera: Anthocoridae) e Orius majusculus (Reuter) (Hemiptera:

Anthocoridae).

A utilização de ácaros predadores para controle de tripes também pode

ser realizada através de “plantas banqueiras” (banker plants), utilizando plantas

de mamona Ricinus communis L., por exemplo, para manutenção dos predadores

na CV enquanto as populações das pragas estiverem ausentes (Ramakers &

Voet, 1996).

Em algumas espécies de Orius, como O. laevigatus e O. insidiosus, foi

observada a ocorrência de um período de diapausa, que ocorre principalmente

nos países de clima temperado, na época do inverno, principalmente em dias

curtos, tendo, nesta época, ocorrido um elevado crescimento populacional do

tripes F. occidentalis (Hirose et al, 1999; Rubin et al., 1996; Ruberson et al.,

2000).

O controle integrado de F. occidentalis foi realizado através de

armadilhas adesivas azuis com os predadores O. insidiosus e O. laevigatus,

comparando-se os resultados com inseticidas recomendados para a cultura do

pepino, obtendo-se melhores resultados nesta associação (Michelakis & Amri,

1997).

Predadores do gênero Orius foram utilizados juntamente com outros

inimigos naturais (predadores e parasitóides) e o inseticida natural à base de nim

Azadirachta indica A. Juss. (Meliaceae) no MIP na cultura do crisântemo,

reduzindo em 80% o número de aplicações de produtos químicos (Albert, 1999).

Loomans & Vierbergen (1999) avaliaram a distribuição geográfica das

espécies do tripes predador pertencente ao gênero Franklinothrips Back, além de

suas presas associadas, sendo que 13 espécies deste predador foram encontradas

em cultivos protegidos. Na Holanda, em cultivos protegidos, Franklinothrips

vespiformis Crawford (Thysanoptera: Aeolothripidae) mantém a população de F.

occidentalis em níveis populacionais aceitáveis (Mulder et al., 1999).

A utilização do percevejo predador D. tamaninii no controle de tripes e

mosca-branca foi realizada com sucesso em CV por Castañé et al. (2000),

obtendo grande redução populacional destas pragas quando comparado com o

tratamento controle, sem a liberação do predador. Este inimigo natural necessita

ser liberado juntamente com outro agente biológico, pois ocorreu uma elevação

da população de afídeos durante o período de liberação do inseto, que não é

efetivo para este tipo de praga.

A abundância populacional do tripes F. occidentalis foi suprimida pelo

predador O. insidiosus no Vale do Aconcágua, Chile, sendo que os predadores

ficaram abrigados em plantas invasoras exóticas da região, mesmo local em que

estavam abrigadas as populações dos tripes (Ripa et al., 2002). As plantas

invasoras são consideradas reservatórios naturais para predadores do gênero

Orius, servindo de hábitat, abrigo e alimento para esses inimigos naturais

(Silveira et al., 2003).

De acordo com Berndt (2003), os predadores dos estágios dos tripes que

têm seu refúgio no solo (pré-pupa e pupa) contribuem para reduzir a população

desta praga, mas devem estar associados a outros inimigos naturais que atuem

no controle da praga nas folhagens, aumentando a chance de sucesso do controle

biológico e evitando a competição entre ambos inimigos naturais.

van Schelt et al. (2002) testaram 10 predadores para controle de

Echinothrips americanus Morgan (Thysanoptera: Thripidae) e, dentre os

predadores avaliados, M. caliginosus apresentou o maior e mais duradouro

controle da praga.

A criação de O. laevigatus foi desenvolvida com ovos de Musca

domestica L. (Diptera: Muscidae), como alimento alternativo, para posterior

liberação dos predadores em CV para o controle de F. occidentalis (Shchenikova

& Stepanycheva, 2005).

2.4 Entomopatógenos x predadores

Vários estudos recentes relatam as relações existentes entre

entomopatógenos e predadores (Flexner et al., 1986) e a importância da

avaliação do impacto de entomopatógenos sobre organismos não-alvo (Bathon,

1996; Campbell et al., 1995; Ehlers & Hokkanen, 1996; Georgis et al., 1991;

Peters, 1996), como também o efeito dos predadores sobre entomopatógenos

(Pell et al., 1997; Roy et al., 1998).

Os patógenos podem interferir diretamente sobre os predadores através

da infecção ou indiretamente, pela diminuição das suas presas (Rosenheim et al.,

1995). Segundo Magalhães et al. (1998), os predadores podem se infectar com

os propágulos dos patógenos durante as aplicações dos produtos ao entrarem em

contato através de plantas contaminadas ou ao se alimentarem de insetos

hospedeiros dos patógenos já infectados, mas que podem ainda atuar como

agentes de dispersão dos propágulos dos entomopatógenos.

Magalhães et al. (1988) avaliaram a patogenicidade de B. bassiana e

Zoophthora radicans (Brefeld) Batko aos predadores coccinelídeos

Coleomegilla maculata De Geer e Eriopis connexa (Germar) (Coleoptera:

Coccinelidae), sendo estes insetos suscetíveis aos entomopatógenos.

Butt & Brownbridge (1997) relatam que testes de suscetibilidade de

organismos não-alvo em laboratório são importantes para selecionar FEPs

“candidatos” a bons inimigos naturais de pragas, para serem utilizados no MIP

de tripes e outras pragas, mas todos os testes devem ser cautelosos,

principalmente durante as liberações e aplicações dos inimigos naturais.

Segundo Kaya (2002), a competição resulta freqüentemente em uma

relação antagonista que reduz a adaptação ou desloca a outra espécie, sendo que,

nas competições interespecíficas com NEPs, estes competem com os outros

inimigos naturais pelo mesmo recurso, o inseto.

Trabalhos em laboratório demonstram que os predadores são expostos

aos patógenos nas suas condições extremas, o que em geral pode não ocorrer no

campo (Roy & Pell, 2000).

Condições de estresses nutricionais podem aumentar a suscetibilidade

dos inimigos naturais aos entomopatógenos, como observado no predador

Chrysoperla carnea (Stephens) (Neuroptera: Chrysopidae) quando infectado por

B. bassiana, aumentando a mortalidade nos insetos que passaram por períodos

de inanição (Donegan & Lighthart, 1989), diferentemente do predador

Chrysoperla externa (Hagen) (Neuroptera: Chrysopidae) sob boas condições

nutricionais (Pessoa et al., 2005).

O predador Hippodamia convergens Guérin-Menéville (Coleoptera:

Coccinellidae), quando exposto aos FEPs B. bassiana, M. anisopliae e P.

fumosoroseus, foi extremamente afetado, ocorrendo altos níveis de mortalidade

em laboratório (James & Lighthart, 1994), confirmando estes resultados em

campo para B. bassiana, que causou 93% de mortalidade de H. convergens

(James et al., 1995) apenas em um período mais favorável ao fungo, sendo

demonstrado por James et al. (1998) que este predador é afetado pelo patógeno

em condições de umidade e temperatura favoráveis ao FEPs.

A interação do fungo pertencente à ordem Entomophthorales Erynia

neoaphidis Remaudière & Hennebert com a joaninha Coccinella septempunctata

L. (Coleoptera: Coccinellidae) foi avaliada através do fornecimento de afídeos

em diferentes estágios de infecção pelo patógeno. Com 48 horas de inanição, os

predadores se comportam de maneira diferente dos outros insetos com 24 h de

inanição e dos que não tiveram períodos de inanição (Pell et al., 1997).

Um importante predador da mosca-branca, o coccinelídeo Serangium

parcesetosum Sicard (Coleoptera: Coccinellidae), foi suscetível ao fungo B.

bassiana em ensaios de laboratório, não ocorrendo efeitos negativos causados

pelo entomopatógeno P. fumosoroseus nas mesmas condições (Poprawski et al.,

1998).

Nomuraea rileyi (Farlow) Samson, um fungo causador de epizootias em

muitos lepidópteros, quando inoculado em altas concentrações sobre os

predadores H. convergens, C. carnea e Podisus maculiventris (Say) (Hemiptera:

Pentatomidae), não foi prejudicial aos mesmos (Roy & Pell, 2000).

Dois produtos comerciais à base do fungo B. bassiana foram utilizados

para controle de F. occidentalis em condições de laboratório e CV, avaliando-se

seus efeitos sobre o ácaro predador Amblyseius cucumeris (Oudemans) (Acari:

Phytoseiidae). A população de ninfas foi reduzida em 75% e 87% em laboratório

e CV, respectivamente, sem ocorrer efeitos negativos sobre a população do

ácaro (Jacobson et al., 2001a).

A patogenicidade de FEPs foi mensurada sobre Prostephanus truncatus

(Horn) (Coleoptera: Bostrichidae), importante praga dos grãos armazenados, e

seu principal predador Teretriosoma nigrescens Lewis (Coleoptera: Histeridae),

para possível utilização da combinação dos inimigos naturais. A praga foi

altamente suscetível a B. bassiana e M. anisopliae, que causaram pequeno

impacto sobre o predador (Bourassa et al., 2001).

O efeito de FEPs sobre O. insidiosus foi avaliada em laboratório,

obtendo-se resultados compatíveis quando o inseto foi exposto a suspensões dos

entomopatógenos B. bassiana, M. anisopliae, P. fumosoroseus e L. lecanii

(Loureiro, 2001). Outros trabalhos demonstram a compatibilidade de FEPs com

ácaros predadores, mas, os quais foram incompatíveis com Orius spp. (Shipp et

al., 2002a).

Pell & Vandenberg (2002) demonstraram que a joaninha H. convergens,

quando pulverizada com propágulos do fungo P. fumosoroseus, tem os seus

hábitos alterados, ocorrendo estresse do predador em altas concentrações do

patógeno.

O predador generalista Dicyphus hesperus Knight (Hemiptera: Miridae)

está sendo utilizado no controle de insetos pequenos, inclusive tripes, sendo

avaliadas interações deste inseto com B. bassiana para aumentar a possibilidade

da utilização conjunta no controle de pragas (Labbé, 2005; Shipp et al., 2002b).

Com o objetivo de avaliar a suscetibilidade de joaninhas nativas e

exóticas ao fungo B. bassiana, Cottrel & Shapiro-Ilan (2003) testaram, em

laboratório, diferentes concentrações do fungo, obtendo maiores mortalidades

com o aumento das concentrações, ocorrendo de 36 a 100% de mortalidade dos

insetos.

Bathon (1996) relata que os NEPs S. carpocapsae, S. feltiae e H.

bacteriophora causaram impacto em populações dos insetos pragas Popillia

japonica (Newman) (Coleoptera: Scarabaeidae), Scapteriscus vicinus Scudder

(Orthoptera: Gryllotalpidae), Diabrotica virgifera LeConte (Coleoptera:

Chrysomelidae), Delia radicum (L.) (Diptera: Anthomyiidae) e O. sulcatus, mas

não foram prejudiciais aos ácaros (Actinedida, Gamasida e Oribatida), grilos

(Gryllidae) e Coleoptera (Carabidae, Histeridae e Staphylinidae).

A compatibilidade entre o predador de pupas de tripes Atheta coriaria

Kraatz (Coleoptera: Staphylinidae), o nematóide S. feltiae e os ácaros H. miles e

H. aculeifer foi avaliada em bioensaios laboratoriais e semi-campo. Os adultos

de A. coriaria não foram suscetíveis a S. feltiae. As larvas de terceiro instar do

inseto apresentaram uma baixa mortalidade pelo NEP. Os ácaros apresentaram

elevado consumo de larvas de primeiro instar de A. coriaria (Jandricic et al.,

2005).

Zwahlen et al. (2000) avaliaram a compatibilidade do Bacillus

thuringiensis var. kurstaki (Berliner) sobre o desenvolvimento de O. majusculus

através da alimentação da presa Anaphothrips obscurus (Müller) (Thysanoptera:

Thripidae), praga da cultura do milho, não sendo observado efeito negativo do

entomopatógeno sobre o predador.

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CAPÍTULO 2

1 RESUMO

CAVALCANTI, Ricardo Sousa. Patogenicidade de isolados de Beauveria

bassiana (Bals.) Vuill. a Caliothrips phaseoli (Hood) (Thysanoptera:

Thripidae). Lavras: UFLA, 2006. p.57-73 (Tese – Doutorado em

Entomologia).

O controle microbiano é uma ferramenta a ser utilizada para o controle

de tripes, importante praga em vários agroecossistemas. Dentre os organismos

usados, os fungos entomopatogênicos (FEPs) são os mais estudados, e dentre

eles, a espécie Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. tem mostrado eficiência no

controle de diversas pragas. Este trabalho teve como objetivo avaliar a

patogenicidade de cinco isolados de B. bassiana sobre Caliothrips phaseoli

(Hood) (Thysanoptera: Thripidae), em condições de laboratório. Foram

aplicadas suspensões fúngicas em placas de Petri contendo meio de cultura

Agar-Água + disco foliar de feijão-de-porco [Canavalia ensiformis (L.)], para

onde foram transferidas ninfas e adultos de C. phaseoli. Foi utilizado um

delineamento inteiramente casualizado com seis tratamentos e cinco repetições,

perfazendo 50 tripes/tratamento. No tratamento testemunha foi pulverizada água

destilada esterilizada. Para obtenção dos tempos letais médios (TL

), os dados

de mortalidade acumulada aos 10 dias foram submetidos à análise de Probit.

Todos os isolados foram patogênicos a ninfas e adultos de C. phaseoli em

condições de laboratório. O isolado UFLA 16 foi o mais virulento para ninfas de

C. phaseoli, causando mortalidade de 74%. Para adultos de C. phaseoli, os

isolados mais virulentos foram UFLA 13, UFLA 17 e IPA 202, promovendo

mortalidades de 73,2; 63,4 e 80,6%, respectivamente. O isolado UFLA 16

apresentou o menor TL

(6,98 dias) para ninfas de C. phaseoli, diferindo dos

outros isolados, que apresentaram TL

superiores a 11 dias. Os TL

para

adultos foram semelhantes para os isolados UFLA 13, UFLA 17 e IPA 2002,

sendo de 5,67; 4,10 e 5,38 dias, respectivamente.

Orientador: Alcides Moino Junior

2 ABSTRACT

CAVALCANTI, Ricardo Sousa. Patogenicidade de isolados de Beauveria

bassiana (Bals.) Vuill. a Caliothrips phaseoli (Hood) (Thysanoptera:

Thripidae). Lavras: UFLA, 2006. p.57-73 (Thesis – Doctor in Entomology).

The microbial control is a promising tool to be tested against thrips, an

important pest in several agricultural ecosystems. Among the organisms used in

the microbial control, the entomopathogenic fungi are the most studied, and the

species Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. has shown efficiency for application in

the control of several agricultural pests. The purpose of the present study was to

evaluate the pathogenicity of five B. bassiana strains against Caliothrips

phaseoli (Hood) (Thysanoptera: Thripidae) in laboratory conditions. Fungal

suspensions were applied in Petri dish containing agar-water culture + jack bean

foliar disc [Canavalia ensiformis (L.)], to where nymphs and adults of

Caliothrips phaseoli were transferred. It was used a completely randomized

design, with six treatments and five replicates, adding 50 thrips/treatment. In the

Petri dish control it was sprayed distilled and sterilized water. To obtain the

average lethal time (LT

), the 10 days-mortality data was submitted to Probit

analysis. All strains were pathogenic to nymphs and adults of C. phaseoli under

laboratory conditions. The strain UFLA 16 was the most virulent to nymphs of

C. phaseoli, causing 74% mortality. To C. phaseoli adults, the most virulent

were UFLA 13, UFLA 17 and IPA 202, resulting in mortalities of 73.2, 63.4 and

80.6%, respectively. The strain UFLA 16 showed the smaller LT

(6.98 days) to

C. phaseoli nymphs, different from the other strains that showed LT

higher

than 11 days. The LT

for adults were similar for the strains UFLA 13, UFLA

17 and IPA 2002, which were 5.67, 4.10 and 5.38 days, respectively.

Adviser: Alcides Moino Junior – UFLA

3 INTRODUÇÃO

Os tripes são insetos cosmopolitas que possuem diversas espécies de

plantas hospedeiras, desde culturas agrícolas, produzidas em campo e casa-de-

vegetação, a ervas daninhas. A espécie Caliothrips phaseoli (Hood)

(Thysanoptera: Thripidae) é encontrada em diversos agroecossistemas, como

alface, algodoeiro, amendoim, ervilha e feijoeiro, sendo principalmente

distribuída nas Américas e tem importância como praga por se alimentar de

plantas jovens, causando deformação e retardando o desenvolvimento das

culturas (Beltrán et al., 2004; Lima, 1968).

Segundo Parrella et al. (1999), os tripes se alimentam sobre as plantas

após perfurarem os tecidos e extraírem a seiva com seu estilete maxilar e

mandíbulas, sendo que os tecidos em volta ficam ressecados, reduzindo a área

fotossintetizadora da folha. Em anos recentes os tripes mudaram seu grau de

importância nas casas-de-vegetação, passando de não-praga (incidental) para

uma das principais pragas das culturas.

O aumento da área de produção intensiva em cultivos protegidos

favorece o aparecimento de pragas. Somando-se a isto, a aplicação

indiscriminada de produtos fitossanitários e o crescente problema de resistência

das pragas, principalmente em casas-de-vegetação, onde não existem produtos

registrados, permitiu que os tripes aumentassem de importância nestes

ambientes. Nas últimas décadas, os tripes tornaram-se pragas-chave em muitos

lugares no mundo, principalmente por serem vetores de vírus em várias culturas

de campo, como tomate, alface, pimenta e cebola, entre outras, e em culturas

protegidas de hortaliças e flores, tais como tomate, pepino, crisântemo, rosas e

violeta africana (Daughtrey et al., 1997; Yudin et al., 1986).

Os danos diretos podem ser pequenos, mas não são irrelevantes,

especialmente se a parte vegetal danificada é o produto de comercialização

(Monteiro, 2000).

Os produtos biológicos são uma alternativa para o controle de tripes,

principalmente em agroecossistemas de cultivos protegidos, porque além da

resistência das pragas aos mesmos, as excessivas aplicações dos produtos

químicos nestes ambientes podem causar sérios problemas de exposição dos

aplicadores aos mesmos. Dentre os agentes biológicos utilizados para o controle

dos tripes, os fungos entomopatogênicos se destacam pela grande variabilidade

genética e facilidade de aplicação. A espécie Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. é

a mais freqüente sobre insetos pragas, sendo muito utilizada para o controle de

tripes, principalmente em alface em cultivos protegidos (Alves, 1998; Bueno,

2005; Parrella et al., 1999; van Lenteren, 2000). Desta forma, este trabalho teve

como objetivo avaliar a patogenicidade de cinco isolados de B. bassiana sobre o

tripes C. phaseoli, em condições de laboratório.

4 MATERIAL E MÉTODOS

O trabalho foi desenvolvido nos Laboratórios de Patologia e de Biologia

de Insetos do Departamento de Entomologia da Universidade Federal de Lavras

- UFLA. Para realização dos bioensaios de patogenicidade foram utilizados

adultos e ninfas de tripes, oriundos da criação de manutenção de laboratório.

4.1 Isolados utilizados nos bioensaios

Foram utilizados cinco isolados de B. bassiana, provenientes do Banco

de Patógenos do Laboratório de Patologia de Insetos (Departamento de

Entomologia/UFLA) (Tabela 1).

TABELA 1. Hospedeiros e procedência dos isolados de Beauveria bassiana

utilizados nos experimentos.

Isolado Hospedeiro Procedência

UFLA 9 Solo Lavras - MG

UFLA 13

Hypothenemus hampei

Lavras – MG

UFLA 16 Solo Lavras – MG

UFLA 17

Cosmopolites sordidus

Lavras – MG

IPA 202

Cosmopolites sordidus

Recife - PE

Para reativação da virulência dos isolados de fungos entomopatogênicos,

suspensões fúngicas (10

conídios/mL) dos mesmos foram inoculadas em placas

de Petri (9 cm ∅) contendo papel filtro e larvas de Galleria mellonella (L.)

(Lepidoptera: Pyralidae), provenientes da criação do Laboratório de Biologia de

Insetos. As larvas foram alimentadas com dieta artificial a cada dois dias. As

placas foram mantidas em câmara climatizada a 25 ± 1°C, UR = 70 ± 10% e

fotofase de 12 horas. Após a mortalidade das larvas, estas foram desinfestadas

superficialmente em álcool 70%, hipoclorito de sódio 2% e água destilada, por

um período de 15 segundos. Foram transferidas, em seguida, para câmara úmida

para extrusão dos patógenos dos cadáveres dos insetos, segundo metodologia

adaptada de Bustillo & Marin (2002).

4.2 Criação de Caliothrips phaseoli

Foram realizadas coletas de tripes em plantas de picão-preto Bidens

pilosa L., em Lavras – MG, sendo em seguida preparadas lâminas para

identificação dos espécimes, conforme Monteiro (1994). Os insetos selecionados

foram criados em sala climatizada (25

± 3

C, UR = 60 ± 10% e fotofase = 12 h).

Grupos de insetos adultos de C. phaseoli foram individualizados e

transferidos para gaiolas de acrílico (50 x 40 x 80 cm) (Figura 1A), vedadas para

evitar a fuga dos mesmos. Para permitir aeração dentro da gaiola, foram feitas

aberturas circulares laterais cobertas com tecido organza, presas por parafusos

de aço, conforme adaptação de Lopes & Alves (2000).

FIGURA 1. Gaiola de criação de Caliothrips phaseoli (A) e vaso com plantas de

feijão-de-porco Canavalia ensiformis para alimentação dos tripes

(B).

Os tripes foram mantidos em plantas de feijão-de-porco Canavalia

ensiformis (L.) (Leguminosae), cultivadas em vasos (20 x 10 cm) contendo

substrato autoclavado. Quando atingiram 20 cm de altura, as plantas foram

transferidas para as gaiolas de criação (Figura 1B). As plantas foram renovadas a

cada semana, cortando-as e retirando apenas os vasos. Essas plantas foram

mantidas na gaiola para evitar a retirada dos ovos inseridos e/ou ninfas dos tripes

nas folhas senescentes. No fundo das gaiolas foi colocada vermiculita para

fornecer um local adequado para pupação dos tripes (Trichilo & Leigh, 1988).

Os tripes provenientes dessa criação foram utilizados nos bioensaios de

patogenicidade.

4.3 Bioensaios de patogenicidade

Após reativação da virulência dos isolados de B. bassiana, esses foram

inoculados em placas de Petri (9 cm Ø) contendo meio de batata-dextrose-ágar

(BDA) e incubados em câmara climatizada a 25 ± 1°C, fotofase de 12 horas e

UR de 70 ± 10%, por 15 dias, até a plena esporulação. Os esporos obtidos foram

utilizados durante os experimentos.

Para preparação das suspensões dos fungos, os seus esporos foram

raspados das placas de Petri, com auxílio de um bisturi devidamente flambado, e

em seguida transferidos para tubos de ensaio. Foram realizadas diluições

sucessivas para contagem em câmara de Neubauer e quantificação, sendo cada

suspensão concentrada em 10

esporos/mL + espalhante adesivo Tween 80



(5µL/L). A pulverização das suspensões dos esporos dos fungos foi realizada em

Torre de Potter, com pressão de 15 libras/pol

, utilizando-se 1,5 mL de

suspensão, em placas de Petri (5 cm Ø) contendo meio de cultura Agar-Água

(2%) sobreposto por disco foliar (3,5 cm Ø) de feijão-de-porco, para onde em

seguida foram transferidos os tripes. No tratamento testemunha foi pulverizada

água destilada esterilizada (ADE) + Tween 80



Para transferência dos tripes adultos, os mesmos foram coletados com

auxílio de sugador e transferidos para tubos de ensaio de fundo chato, tampados

com filme PVC, os quais receberam CO

para diminuição da atividade

metabólica dos insetos, sendo em seguida transferidos para as placas de Petri

pulverizadas com as suspensões fúngicas. A transferência das ninfas (1º ínstar)

de C. phaseoli foi realizada com o auxílio de pincel umedecido com água

destilada, sendo que a cada transferência, por tratamento, foi feita a

desinfestação do pincel em álcool a 70%, hipoclorito de sódio (2%) e água

destilada, evitando a contaminação dos insetos com diferentes isolados.

Foram transferidos 10 tripes por repetição, sendo o experimento

constituído de um delineamento inteiramente casualizado com seis tratamentos

(cinco isolados + testemunha) e cinco repetições, totalizando 50

tripes/tratamento. As placas foram mantidas em câmara climatizada a 25 ± 1ºC,

UR de 70% ± 10% e fotofase de 12 horas. As avaliações foram realizadas

diariamente, durante 10 dias. Após a mortalidade dos tripes, estes foram

desinfetados superficialmente, sendo imersos em álcool 70%, hipoclorito de

sódio 2% e água destilada por 10 segundos, e em seguida transferidos para

câmara úmida, para confirmação da mortalidade pelos patógenos, através da

esporulação dos fungos nos cadáveres.

A mortalidade corrigida foi calculada pela fórmula de Abbott (Abbott,

1925), a partir da mortalidade total e os dados obtidos de mortalidade

confirmada foram transformados por

100/arcsen x

e submetidos à análise de

variância e teste de Scott & Knott (P<0,05) para comparação entre as médias. Os

dados da mortalidade acumulada aos 10 dias foram submetidos à análise de

Probit, com auxílio do programa Mobae (Haddad et al., 1995), para

determinação dos tempos letais médios (TL

5 RESULTADOS E DISCUSSÃO

Os dados de mortalidade confirmada de ninfas de C. phaseoli pelos

isolados de fungos entomopatogênicos são apresentados na Tabela 2. O isolado

UFLA 16 foi o mais virulento dentre aqueles testados para ninfas, promovendo

mortalidade de 74%. Os tratamentos UFLA 9, UFLA 13, UFLA 17 e IPA 202

foram semelhantes e diferiram da testemunha quanto à mortalidade de ninfas de

C. phaseoli, apresentando menores porcentuais de mortalidade, variando de 32 a

46% (Tabela 2).

Pela análise de Probit para os tempos letais médios (TL

) de

mortalidade de ninfas de C. phaseoli nos diferentes tratamentos, o isolado UFLA

16 apresentou menor TL

(6,98 dias), o qual foi inferior ao TL

obtido nos

demais tratamentos (Tabela 3).

O tratamento com o isolado UFLA 9 apresentou o maior TL

(13,63

dias) e a menor porcentagem de mortalidade de ninfas de C. phaseoli (32%).

Com exceção do tratamento UFLA 16, todos os outros tratamentos testados

apresentaram TL

elevados para serem utilizados no controle de ninfas de C.

phaseoli, promovendo baixa mortalidade nesses estádios durante um tempo

relativamente longo (Tabelas 2 e 3).

A Tabela 4 apresenta os resultados da análise de variância do bioensaio

de patogenicidade dos isolados de B. bassiana sobre adultos de C. phaseoli.

Todos os isolados de B. bassiana avaliados apresentaram diferenças do

tratamento testemunha.

Os tratamentos UFLA 9 e UFLA 16 foram patogênicos a C. phaseoli,

mas causaram baixa mortalidade a adultos do tripes (31,2%), com diferença

significativa dos isolados UFLA 13, UFLA 17 e IPA 202, que promoveram as

maiores porcentagens médias de mortalidade do tripes, 73,2%, 63,4% e 80,6%,

respectivamente (Tabela 4).

TABELA 2. Porcentagem média de mortalidade confirmada (± EP) de ninfas de

Caliothrips phaseoli inoculados com fungos entomopatogênicos.

Tratamentos Mortalidade (%)

Testemunha 0 ± 00 a

UFLA 9 32,00 ± 5,83 b

IPA 202 40,00 ± 3,16 b

UFLA 13 42,00 ± 2,00 b

UFLA 17 46,00 ± 2,45 b

UFLA 16 74,00 ± 6,78 c

CV (%) 25,43

Médias seguidas por letras distintas diferem entre si pelo teste de Scott & Knott

(P<0,05).

TABELA 3. Tempos letais médios (TL

) (dias), intervalos de confiança (IC)

(P<0,05), equações de regressão linear e valores de

obtidos pela

análise de Probit para isolados de Beauveria bassiana sobre ninfas

de Caliothrips phaseoli.

Tratamentos TL

IC Equação

UFLA 9 13,63 (11,03; 16,85) Y=0,27981 + 4,1603 . log X 1,16

UFLA 13 11,19 (9,54; 13,13) Y=1,29987 + 3,5275 . log X 3,33

UFLA 16 6,98 (6,59; 7,39) Y=2,13672 + 3,3934 . log X 1,90

UFLA 17 12,52 (9,45; 16,59) Y=1,36703 + 3,3096 . log X 4,02

IPA 202 12,14 (8,80; 16,74) Y= - 0,18640 + 4,7834 . log X 2,43

Mediante análise de Probit para os TL

de mortalidade de adultos de

tripes pelos diferentes isolados (Tabela 5), observa-se menor TL

para o

tratamento com o isolado UFLA 17 (4,1 dias), seguido por IPA 202, UFLA 13,

UFLA 16 e UFLA 9. Os dados do isolado UFLA 17 apresentaram um

significativo, não se ajustando ao modelo. Os tratamentos com o isolados UFLA

13 e IPA 202 foram semelhantes quanto à mortalidade de adultos de tripes e aos

valores de TL

(Tabelas 4 e 5).

TABELA 4. Porcentagem média de mortalidade confirmada (± EP) de adultos

de Caliothrips phaseoli inoculados com fungos entomopatogênicos.

Tratamentos Mortalidade (%)

Testemunha 0 ± 00 a

UFLA 16 31,20 ± 10,27 b

UFLA 9 31,20 ± 9,52 b

UFLA 17 63,40 ± 10,20 c

UFLA 13 73,20 ± 9,76 c

IPA 202 80,60 ± 9,13 c

CV (%) 29,84%

Médias seguidas por letras distintas diferem entre si pelo teste de Scott & Knott

(P<0,05).

TABELA 5. Tempos letais médios (TL

) (dias), intervalos de confiança (IC)

(P<0,05), equações de regressão linear e valores de

obtidos pela

análise de Probit para isolados de Beauveria bassiana sobre adultos de

Caliothrips phaseoli.

Tratamentos TL

IC Equação

UFLA 9 9,10 (5,97; 13,89) Y=2, 95626 + 2,13086 . log X 1,15

UFLA 13 5,67 (5,12; 6,29) Y= - 0,05757 + 6,70863 . log X 6,60

UFLA 16 8,19 (5,90; 11,38) Y=1,27189 + 4,08107 . log X 5,06

UFLA 17 4,10 (2,78; 6,06) Y=3,73230 + 2,06736 . log X 11,49*

IPA 202 5,38 (4,81; 6,02) Y= - 1,74641 + 4,45155 . log X 4,79

significativo (P<0,05).

Os fungos testados promoveram mortalidades diferentes para ninfas e

adultos do tripes (Tabelas 2 e 4). Os isolados UFLA 16, UFLA 17 e IPA 202

levaram a 74, 46 e 40% de mortalidade de ninfas, enquanto, para adultos, a

mortalidade foi de 31, 63 e 80%, respectivamente. Vestergaard et al. (1995)

observaram que nem todos os estágios de um inseto têm a mesma

suscetibilidade aos fungos, mostrando que adultos de F. occidentalis foram mais

suscetíveis a Lecanicillium sp. do que as ninfas da mesma espécie. Outros dados

apresentaram resultados semelhantes sobre a espécie Megalurothrips sjostedti

Trybom (Thysanoptera: Thripidae), em que os adultos foram mais suscetíveis a

M. anisopliae (Metsch) Sorok. (Ekesi & Maniania, 2000); enquanto, para F.

occidentalis, as ninfas de segundo instar foram mais suscetíveis do que os

adultos aos FEPs B. bassiana e M. anisopliae (Goodwin et al., 2005).

UFLA 9 foi o isolado que promoveu a menor mortalidade de ninfas e

adultos de C. phaseoli, sendo estas bastante próximas. Observou-se mortalidade

de ninfas de C. phaseoli próxima de 50% e uma alta mortalidade de adultos

(73%) para o tratamento UFLA 13 (Tabelas 2 e 4).

A associação de produtos químicos ou uma mistura de FEPs é uma

alternativa que pode ser utilizada para o controle de tripes, como neste estudo,

em que ocorreram mortalidades diferentes tanto para ninfas como para adultos

com a maioria dos isolados testados.

Vários estudos relatam interações entre entomopatógenos (Barbercheck

& Kaya, 1991; Inglis et al., 1999; Malakar et al., 1999; Shapiro-Ilan et al.,

2004), as quais podem ser sinérgicas ou antagônicas.

Na combinação de FEPs, Thomas et al. (2003) avaliaram a interação dos

fungos B. bassiana e M. anisopliae para o controle do gafanhoto Schistocerca

gregaria (Forskal) (Orthoptera: Acrididae), obtendo altas mortalidades desta

praga, associação que pode ser seguida no controle de tripes.

Na combinação com produtos químicos, Lopes et al. (2002) realizaram

associações de M. anisopliae com inseticidas no controle de F. occidentalis,

sendo a associação com o produto methiocarb (Mesurol



) eficiente no controle

desta praga em cultivos de uva de mesa. A combinação com produtos químicos

pode ser uma alternativa para controlar pragas de difícil controle, como é o caso

dos tripes, principalmente por causa da resistência na população da praga.

Muitos produtos químicos são compatíveis com entomopatógenos, como

relatado por Cavalcanti et al. (2002) em condições de laboratório, em que os

patógenos são mais expostos aos efeitos das moléculas dos produtos químicos.

6 CONCLUSÕES

1. Os cinco isolados fúngicos testados são patogênicos a ninfas e adultos de C.

phaseoli.

2. UFLA 16 causa maior mortalidade de ninfas de C. phaseoli em laboratório.

3. Os isolados UFLA 13, UFLA 17 e IPA 202 são os mais virulentos para

adultos de C. phaseoli em condições de laboratório.

4. O isolado UFLA 16 apresenta o menor TL

para ninfas de C. phaseoli.

5. Os menores TL50 para adultos de C. phaseoli são apresentados pelos

isolados UFLA 13, UFLA 17 e IPA 202.

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CAPÍTULO 3

1 RESUMO

CAVALCANTI, Ricardo Sousa. Patogenicidade de nematóides

entomopatogênicos (Rhabditida: Steinernematidae e Heterorhabditidae) a

tripes em laboratório. Lavras: UFLA, 2006. p.74-88 (Tese – Doutorado em

Entomologia).

O controle biológico é uma alternativa viável para a regulação de

populações de tripes, sendo os nematóides entomopatogênicos (NEPs) parasitas

obrigatórios que podem controlar pragas com alguma fase do ciclo no solo, seu

habitat natural. Este trabalho teve como objetivo avaliar a patogenicidade de

NEPs (Steinernematidae e Heterorhabditidae) sobre pré-pupas e/ou pupas de

Caliothrips phaseoli (Hood) (Thysanoptera: Thripidae) em condições de

laboratório. O experimento foi desenvolvido em placas de Petri contendo

substrato + suspensões dos NEPs (100 JI/inseto) + pré-pupas e/ou pupas de

tripes mantidas em câmara climatizada. O experimento foi constituído de um

DIC com 15 tratamentos e quatro repetições, sendo 10 pré-pupas e/ou pupas por

repetição, totalizando 40 pré-pupas e/ou pupas/tratamento. Os dados obtidos de

mortalidade foram submetidos à análise de variância e ao teste de Scott & Knott

(P<0,05) para comparação entre as médias. Os NEP pertencentes à família

Heterorabditidae promoveram maiores mortalidades de tripes que aqueles da

família Steinernematidae. Para as 14 linhagens avaliadas neste trabalho, a

mortalidade de tripes variou de 57,5 a 100%. As linhagens Heterorhabditis spp.

PI, CCA, JPM4, RSC01, RSC03, RSC04 e Heterorhabditis bacteriophora HP88

Poinar (Rhabditida: Heterorhabditidae) diferiram das outras linhagens avaliadas,

apresentando mortalidade de pupas superior a 87%. A maior mortalidade

ocorreu no tratamento Heterorhabditis sp. PI (100%) e a menor mortalidade foi

apresentada pela espécie Steinernema feltiae (Filipjev) (Rhabditida:

Steinernematidae), sendo esta superior a 50%.

Orientador: Alcides Moino Junior – UFLA

2 ABSTRACT

CAVALCANTI, Ricardo Sousa. Patogenicity of entomopathogenic

nematodes (Rhabditida: Steinernematidae e Heterorhabditidae) to thrips in

laboratory. Lavras: UFLA, 2006. p.74-88 (Thesis - Doctor in Entomology).

Biological control is a feasible alternative for controlling thrips

populations. Entomopathogenic nematodes (EPNs) are obligated parasites

indicated to control pests that have some phase of their cycle in the ground, their

natural habitat. The purpose of this study was to evaluate the pathogenicity of

EPNs to pre pupae and pupae of Caliothrips phaseoli (Hood) (Thysanoptera:

Thripidae), in laboratory conditions. The experiment was carried in Petri dishes

containing soil + suspensions of EPNs (100 IJs/insect) + pre pupae and/or pupae,

being kept under controlled conditions in a germination chamber. The

experiment was conducted in a completely randomized design with 15

treatments and 4 replicates, using 10 prepupae and/or pupae per replicate, with a

total of 40 prepupae and/or pupae per treatment. The average mortality data was

submitted to variance analyses and Scott & Knott (P<0,05) test. EPNs from

Heterorabditidae family showed higher mortality to thrips than those from

Steinernematidae. Out of 14 strains tested in this study, the thrips mortality

varied from 5.5 to 100%. The strains Heterorhabditis spp. PI, CCA, JPM4,

RSC01, RSC03, RSC04 and Heterorhabditis bacteriophora HP88 Poinar

(Rhabditida: Heterorhabditidae) differ from the others strains evaluated,

showing pupae mortality higher than 87%. The highest mortality happened in

the treatment Heterorhabditis sp. PI (100%) and the smallest in Steinernema

feltiae (Filipjev) (Rhabditida: Steinernematidae), in which the mortality was a

bit higher than 50%.

Adviser: Alcides Moino Junior – UFLA

3 INTRODUÇÃO

Os tripes são insetos-praga que causam grandes perdas econômicas, uma

vez que atacam diferentes culturas de importância agrícola, principalmente em

cultivos protegidos, destacando-se o pimentão, beringela, pepino, melancia,

melão, tomate e gérbera, entre outros. Segundo Parrella et al. (1999), várias

espécies de tripes vêm causando sérios prejuízos devido à sua alimentação sobre

as plantas, após perfurarem os tecidos e extraírem a seiva com seu estilete

maxilar e mandíbulas. Os tecidos em volta do local de alimentação ficam

dissecados, reduzindo a área fotossintetizadora da folha.

No sistema de agricultura atual, que utiliza em grande parte produtos

químicos, principalmente em culturas em casas-de-vegetação, para as quais não

existem produtos registrados para os tripes, estes insetos tornaram-se pragas de

difícil controle, agravando o problema da resistência do inseto aos produtos

químicos utilizados e a eliminação dos seus inimigos naturais, como ácaros e

insetos predadores (Parrella et al., 1999).

Como o controle químico tem se mostrado pouco efetivo, aliado à alta

capacidade de multiplicação desta praga, torna-se necessário encontrar

alternativas de controle, como é o caso dos nematóides entomopatogênicos

(NEPs), que podem ser utilizados para o controle dos estágios de pré-pupa e

pupa dos tripes, que se encontram no solo para completar seu ciclo.

Os NEPs são patógenos que têm a capacidade de colonizar insetos por

possuírem uma relação simbiôntica com bactérias dos gêneros Xenorhabdus

(Steinernema) e Photorhabdus (Heterorhabditis). Os juvenis infectantes (JIs)

dos NEPs ao emergirem dos insetos para colonizar novos hospedeiros, carregam

a bactéria simbionte dentro do corpo e penetram nos hospedeiros pelas aberturas

naturais (boca, ânus e espiráculos). Os JIs pertencentes à família

Heterorhabditidae penetram também através da cutícula do hospedeiro por

possuírem um “dente” na região anterior do corpo, o que não ocorre em JIs da

família Steinernematidae (Forst & Clarke, 2002; Lewis, 2002).

Os JIs dos NEPs possuem uma segunda cutícula de proteção às

adversidades do meio ambiente, já que este é o único estágio que se desenvolve

fora do hospedeiro (Glazer, 2002). Podem ser então utilizados para estágios

imaturos de tripes no solo. Este trabalho teve como objetivo avaliar a

patogenicidade de NEPs sobre pré-pupas e/ou pupas de C. phaseoli em

condições de laboratório.

4 MATERIAL E MÉTODOS

O trabalho foi desenvolvido nos Laboratórios de Patologia e de Biologia

de Insetos do Departamento de Entomologia da Universidade Federal de Lavras

- UFLA. Para realização dos bioensaios de patogenicidade foram utilizadas

linhagens nativas e exóticas de NEPs armazenadas no Banco de Patógenos do

Laboratório de Patologia de Insetos e pré-pupas e pupas dos tripes oriundas da

criação de manutenção de laboratório.

Para multiplicação e manutenção dos nematóides entomopatogênicos em

laboratório, foram utilizadas larvas de Galleria mellonella L. (Lepidoptera:

Pyralidae) oriundas da criação à base de dieta artificial em marmitas metálicas

teladas, de acordo com metodologia modificada de Parra (1998).

4.1 Nematóides entomopatogênicos utilizados nos bioensaios

Foram utilizadas seis linhagens exóticas e oito linhagens nativas de

NEPs (Rhabditida: Heterorhabditidae e Steinernematidae) (Tabela 1).

Foram utilizados juvenis infectantes (JIs) dos NEPs coletados nos quatro

primeiros dias em armadilhas de White modificadas (White, 1927). Para

preparação das suspensões, foram inoculados com auxílio de micropipetas, 20

JIs por larva de G. mellonella, em placas de Petri (9 cm ∅) contendo papel filtro

+ cinco larvas do inseto. Após a morte das larvas, estas foram transferidas para

câmara seca (Molina & López, 2001) por seis dias, e posteriormente, as larvas

mortas foram colocadas em armadilhas de White modificadas, nas quais foram

realizadas as coletas e a quantificação das suspensões de JIs.

TABELA 1. Linhagens nativas e exóticas de nematóides entomopatogênicos

(Rhabditida: Heterorhabditidae e Steinernematidae) utilizadas nos

experimentos.

Linhagem Sigla Local de origem

Steinernema (= anomali) arenarium Sa Voronezh/Rússia

Steinernema carpocapsae All Sc Carolina do Norte/USA

Steinernema feltiae Sn Sf Flórida/USA

Steinernema glaseri NA Sg Flórida/USA

Steinernema riobrave 355 Sr Texas/ USA

Heterorhabditis bacteriophora HP88 HP88 New Jersey/ USA

Heterorhabditis sp. CCA CCA Araras/SP/Brasil

Heterorhabditis sp. JPM4 JPM4 Lavras/MG/Brasil

Heterorhabditis sp. PI PI Teresina/Piauí/Brasil

Heterorhabditis sp. RSC 01 RSC 01 Benjamin Constant/AM/Brasil

Heterorhabditis sp. RSC 02 RSC 02 Benjamin Constant/AM/Brasil

Heterorhabditis sp. RSC 03 RSC 03 Benjamin Constant/AM/Brasil

Heterorhabditis sp. RSC 04 RSC 04 Benjamin Constant/AM/Brasil

Heterorhabditis sp. RSC 05 RSC 05 Benjamin Constant/AM/Brasil

4.2 Criação de Caliothrips phaseoli

Foram realizadas coletas de tripes em plantas de picão-preto Bidens

pilosa L. oriundas de Lavras – MG, sendo em seguida preparadas lâminas para

identificação dos espécimes. Os insetos selecionados foram criados em sala

climatizada (T = 25

± 3

C; UR = 60 ± 10%; fotofase = 12 h).

Grupos de insetos adultos de C. phaseoli foram individualizados e

transferidos para gaiolas de acrílico de (80 x 40 x 50 cm), sendo estas vedadas

para evitar a fuga dos mesmos. Para permitir aeração dentro da gaiola, foram

feitas aberturas laterais cobertas com tecido organza, presas por parafusos de

aço, conforme adaptação de Lopes & Alves (2000).

Os tripes foram mantidos em plantas de feijão-de-porco Canavalia

ensiformis (L.), cultivadas em vasos (20 x 10 cm) contendo substrato

autoclavado. Quando atingiram 20 cm de altura, as plantas foram transferidas

para as gaiolas de criação (Figura 1A e B, Capítulo 2, página 62), as quais foram

renovadas a cada semana, cortando-as e retirando apenas os vasos. Essas plantas

foram mantidas na gaiola para evitar a retirada dos ovos dos tripes inseridos nas

folhas antigas e outros estágios do inseto presentes nas mesmas.

No fundo das gaiolas foi colocada vermiculita para fornecer um local

adequado para pupação dos tripes (Trichilo & Leigh, 1988). Os tripes

provenientes dessa criação foram utilizados nos bioensaios de patogenicidade

com linhagens nativas e exóticas de NEPs.

4.3 Bioensaios de patogenicidade

Foram transferidos 10 tripes (pré-pupas e/ou pupas) oriundos da criação

de C. phaseoli, com auxílio de um pincel umedecido, para placa de Petri (5 cm

∅) contendo 5 g de substrato Plantmax Hortaliças HT



autoclavado (Figura 1) +

2 mL de água destilada contendo suspensão de juvenis infectantes (JIs). As

suspensões (100 JIs/pré-pupa e/ou pupa) das linhagens de NEPs foram

inoculadas com auxílio de micropipetas. No tratamento testemunha foram

aplicados 2 mL de água destilada. As placas foram vedadas com parafilme e

mantidas em câmara climatizada a 25 ± 1ºC, UR de 70% ± 10% e fotofase de 12

horas.

Após cinco dias da inoculação foram realizadas as avaliações. Devido à

dificuldade de contagem das pré-pupas e pupas, foram contados, com auxílio de

microscópio estereoscópico, os adultos emergidos que se direcionaram para a

luz, sendo a mortalidade calculada por diferença entre o número de pupas e pré-

pupas inicial (10) e os adultos emergidos.

O experimento foi constituído de um delineamento inteiramente

casualizado com 15 tratamentos e quatro repetições, sendo 10 pré-pupas e/ou

pupas por repetição, totalizando 40 pré-pupas e/ou pupas/tratamento. Os dados

de mortalidade foram transformados por 100/arcsen x

e submetidos à análise

de variância e ao teste de Scott & Knott (P<0,05) para comparação entre as

médias.

FIGURA 1. Placa de Petri (5 cm ∅) contendo substrato para inoculação dos

nematóides entomopatogênicos e pupação dos tripes.

5 RESULTADOS E DISCUSSÃO

Os dados obtidos de mortalidade de pré-pupas e/ou pupas de C. phaseoli

pelas 14 linhagens de NEP são mostrados na Tabela 2. Todas as linhagens

testadas diferiram da testemunha. Os NEPs pertencentes à família

Heterorabditidae causaram maiores mortalidades de C. phaseoli do que as

linhagens pertencentes à família Steinernematidae (Tabela 2; Figura 2A e B).

A diferença de mortalidade entre as famílias pode ter ocorrido pela

forma distinta com que os JIs da família Heterorhabditidae penetram seu

hospedeiro, pela cutícula, através de perfuração, com o auxílio do dente

localizado na região anterior, o que não ocorre nos JIs da família Steinermatidae,

que penetram somente pelas aberturas naturais (ânus, boca e espiráculos).

Outro fator a ser considerado para diferença de mortalidade entre as

famílias de NEPs (Figura 2) é o tamanho dos JIs, que na família

Heterorhabditidae são menores do que em Steinernematidae, o que os tornam

mais ágeis, facilitando seu deslocamento até o hospedeiro e posterior penetração

no mesmo.

As linhagens Heterorhabditis spp. PI, CCA, JPM4, RSC01, RSC03,

RSC04 e H. bacteriophora HP88 diferiram das outras linhagens avaliadas,

causando mortalidade de pré-pupas e/ou pupas superior a 87%. A maior

mortalidade do tripes ocorreu com Heterorhabditis spp. PI (100%) e a menor

mortalidade foi promovida pela linhagem S. feltiae (57,5%), a qual apresenta JIs

maiores, como outras linhagens do gênero Steinernema (Tabela 2).

Das 14 linhagens utilizadas neste estudo, ocorreram mortalidades

diferentes nas pré-pupas e/ou pupas de C. phaseoli com variação de 57,5 a

100%. Chyzik et al. (1996) verificaram que a mortalidade de Frankliniella

occidentalis (Pergande) (Thysanoptera: Thripidae) ocorreu somente em altas

concentrações de NEPs (S. feltiae, Steinernema riobrave e H. bacteriophora) e

com grandes variações. Os autores observaram que as maiores mortalidades

ocorreram com o aumento das concentrações. Ebssa et al. (2004) encontraram

variações na mortalidade de F. occidentalis quando testaram 16 linhagens de

NEPs em laboratório.

TABELA 2. Porcentagem média de mortalidade (± EP) de pré-pupas e/ou pupas

de Caliothrips phaseoli inoculados com nematóides

entomopatogênicos.

Tratamentos Mortalidade

(%)

Testemunha 0,00 ± 0,00 a

Steinernema feltiae Sn 57,50 ± 2,50 b

Steinernema (= anomali) arenarium 62,50 ± 12,50 b

Steinernema glaseri NA 67,50 ± 6,29 b

Steinernema carpocapsae All 70,00 ± 10,80 b

Steinernema riobrave 355 72,50 ± 8,54 b

Heterorhabditis spp. RSC02 75,00 ± 2,89 b

Heterorhabditis spp. RSC05 82,50 ± 4,78 b

Heterorhabditis spp. RSC04 87,50 ± 4,78 c

Heterorhabditis spp. JPM4 92,50 ± 2,50 c

Heterorhabditis bacteriophora HP88 92,50 ± 4,78 c

Heterorhabditis spp. RSC03 92,50 ± 2,50 c

Heterorhabditis spp. RSC01 92,50 ± 2,50 c

Heterorhabditis spp. CCA 97,50 ± 2,50 c

Heterorhabditis spp. PI 100,00 ± 0,00 c

CV (%) 25,54

Médias seguidas por letras distintas diferem entre si pelo teste de Scott & Knott

(P<0,05).

Steinernematidae

S. r S. c S. g S. a S. f

% Mortalidade

100

Heterorhabditidae

PI CCA HP88 JPM4 RSC 01 RSC 03 RSC 04 RSC 05 RSC 02

% Mortalidade

100

FIGURA 2. Mortalidade de pré-pupas e/ou pupas de Caliothrips phaseoli

causada por juvenis infectantes das famílias Steinernematidae (A)

e Heterorhabditidae (B).

Em testes de laboratório, Ebssa et al. (2001) avaliaram a eficácia de seis

linhagens de NEPs sobre os estágios de pré-pupa e pupa de F. occidentalis,

obtendo um controle satisfatório na concentração de 400 JI/cm

; porém, quando

utilizaram concentrações mais baixas (100 – 200 JIs/cm

), o controle foi apenas

de 50%. No presente estudo, com uma concentração de 100 JIs/mL (≈ 50

JIs/cm

), todas as linhagens foram bastante efetivas, causando uma mortalidade

de pré-pupas e pupas de C. phaseoli superior a 50%. Segundo Berndt (2003), a

mortalidade de pré-pupas e pupas causada pelos NEPs atingiu 80% quando se

utilizou uma concentração de 400 JIs/ cm

, muito acima daquela empregada no

presente estudo.

Alguns estudos têm associado outros inimigos naturais para a obtenção

de maiores mortalidades em tripes que se desenvolvem no solo, como relatado

por Borgemeister et al. (2002) e Premachandra et al. (2003). Estes autores

observaram efetivo controle de pré-pupas e pupas de F. occidentalis pelos NEPs,

ocorrendo baixo porcentual de emergência de adultos, principalmente quando

estes foram associados a ácaros predadores da família Laelapidae, que atacam os

estágios dos tripes que sobrevivem e se desenvolvem no mesmo hábitat

(substrato).

Para aumentar a efetividade do controle biológico dos tripes, é

necessária a utilização de agentes que ataquem a praga em seus diversos

estágios, tanto ninfas como adultos, que se desenvolvem na parte aérea, até as

pré-pupas e pupas que se desenvolvem no substrato de plantio.

As associações de vários agentes biológicos que possam atuar em

diferentes locais para o controle de tripes foram relatadas por Brodsgaard et al.

(1996) e Buitenhuis & Shipp (2005a,b). Segundo estes autores, apenas os

estágios de pré-pupa e pupa foram suscetíveis aos NEPs. Quando pulverizados

sobre a parte aérea das plantas, não tiveram efeito sobre ninfas e adultos do

tripes, pois estes NEPs sofrem com a dessecação.

6 CONCLUSÕES

1. Todas as linhagens avaliadas são patogênicas a pré-pupas e pupas de C.

phaseoli.

2. Os NEPs da família Heterorhabditidae são mais virulentos a C. phaseoli do

que os da família Steinernematidae.

3. A linhagem Heterorhabditis sp. PI causa a maior mortalidade de pré-pupas

e/ou pupas de C. phaseoli em laboratório.

4. Steinernema feltiae provoca a menor mortalidade de estágios de C. phaseoli

que se desenvolvem no solo (pré-pupas e pupas) em laboratório.

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CAPÍTULO 4

1 RESUMO

CAVALCANTI, Ricardo Sousa. Efeito de nematóides entomopatogênicos

(Rhabditida: Steinernematidae e Heterorhabditidae) sobre o predador

Orius insidiosus (Say) (Hemiptera: Anthocoridae). Lavras: UFLA, 2006.

p.89-113 (Tese – Doutorado em Entomologia).

A combinação entre agentes de controle biológico é uma forma de

utilização e aumento do potencial do controle no Manejo Integrado de Pragas

(MIP). A avaliação do efeito de entomopatógenos sobre organismos não-alvo

deve ser feita para que estes sejam utilizados de forma racional e não afetem

outros agentes de controle biológico. Desta forma, este trabalho teve como

objetivo avaliar o efeito de espécies de nematóides entomopatogênicos (NEPs)

sobre o percevejo predador Orius insidiosus (Say) (Hemiptera: Anthocoridae).

Foram utilizadas seis espécies exóticas e oito nativas de NEPs. Ninfas (4º e 5º

instares) e adultos de O. insidiosus foram expostos a suspensões dos NEPs (20

JI/inseto) em placas de Petri contendo areia + água destilada. Foram colocados

10 predadores (ninfa/adulto), por repetição, sendo o experimento constituído de

um DIC com 15 tratamentos e três repetições, totalizando 30 insetos/tratamento.

Os dados obtidos de mortalidade confirmada foram submetidos à análise de

variância e ao teste de Scott & Knott (P<0,05) para comparação entre as médias.

Os NEP avaliados foram pouco virulentos aos adultos de O. insidiosus, sendo a

maior mortalidade causada por Steinernema riobrave (Cabanillas, Poinar &

Raulston) (Rhabditida: Steinernematidae) (51,73%). Os tratamentos Steinernema

glaseri Steiner, Steinernema feltiae (Filipjev) (Rhabditida: Steinernematidae),

Heterorhabditis bacteriophora HP88 Poinar (Rhabditida: Heterorhabditidae) e

Heterorhabditis spp. CCA, RSC02, RSC03, RSC04 e RSC05 promoveram

baixos valores de mortalidade (2,3 a 14,10%), sendo, portanto, considerados

seletivos ao predador e podendo ser utilizados conjuntamente com O. insidiosus

como ferramentas do MIP. Para ninfas do predador, Steinernema anomali

(Kozodoi), Steinernema carpocapsae (Weiser) (Rhabditida: Steinernematidae),

S. feltiae, S. glaseri, H. bacteriophora e Heterorhabditis spp. CCA, JPM4, PI,

RSC03, RSC04 e RSC05 não diferiram da testemunha. Os NEPs S. riobrave e

Heterorhabditis spp. RSC01 e RSC02 foram os mais virulentos para as ninfas do

percevejo predador O. insidiosus. Metade das espécies testadas apresentou-se

semelhante ao tratamento testemunha, para ninfas e adultos, dentre elas quatro

espécies nativas (Heterorhabditis spp. CCA, RSC 03, RSC 04 e RSC 05) e três

exóticas (H. bacteriophora, S. feltiae e S. glaseri).

Orientador: Alcides Moino Junior – UFLA

2 ABSTRACT

CAVALCANTI, Ricardo Sousa. Effect of entomopathogenic nematodes

(Rhabditida: Steinernematidae and Heterorhabditidae) on the insect-

predator Orius insidiosus (Say) (Hemiptera: Anthocoridae). Lavras: UFLA,

2006. p.89-113 (Tesis - Doctor in Entomology).

The use of combined different biological control agents is a way to

increase the potential of the biological control in the integrated pest management

(IPM). The effect of different entomopathogenic agents on non-target organisms

must be known, so they can be used in a rational way. With this in mind, the

purpose of this study was to evaluate the effect of entomopathogenic nematodes

strains (EPNs) on the insect-predator, Orius insidiosus (Say) (Hemiptera:

Anthocoridae). Six exotic and eight natives NEPs strains were tested. Orius

insidiosus nymphs (4º and 5º instars) and adults were exposed to EPNs

suspensions (20 IJs/insect) in Petri dishes containing sand + distilled water. Ten

predators (nymph/adult) were used per replicate. The experiment was conducted

in a completely randomized design with 15 treatments and three replicates, in a

total of 30 insects/treatment. The confirmed average mortality data was

compared by variance analysis and Scott & Knott (P<0,05) test. The EPNs

evaluated were little virulent to the adults of O. insidiosus, and the highest

mortality was caused by Steinernema riobrave (Cabanillas, Poinar & Raulston)

(Rhabditida: Steinernematidae) (51.73%). The strains Steinernema glaseri

Steiner, Steinernema feltiae (Filipjev) (Rhabditida: Steinernematidae),

Heterorhabditis bacteriophora HP88 Poinar (Rhabditida: Heterorhabditidae)

and Heterorhabditis spp. CCA, RSC02, RSC03, RSC04 e RSC05 caused low

mortality (2.3 to 14.10%), being considered selective and able to be used with O.

insidiosus as tools of IPM. For predator nymphs, Steinernema anomali

(Kozodoi), Steinernema carpocapsae (Weiser) (Rhabditida: Steinernematidae),

S. feltiae, S. glaseri, H. bacteriophora and Heterorhabditis sp. CCA, JPM4, PI,

RSC03, RSC04 and RSC05 strains didn’t differed from the treatment control.

The EPNs S. riobrave and Heterorhabditis sp. RSC01 and RSC02 strains were

the most virulent for Minute Pirate Bug nymphs. Half of the tested species

showed similar results to the control, for nymphs and adults, among them four

native strains (Heterorhabditis spp. CCA, RSC 03, RSC 04 and RSC 05) and

three exotic (H. bacteriophora, S. feltiae e S. glaseri).

Adviser: Alcides Moino Junior – UFLA

3 INTRODUÇÃO

A utilização conjunta de agentes biológicos para o controle de pragas

pode aumentar o sucesso do controle biológico, principalmente em sistemas de

cultivos protegidos, nos quais as condições do ambiente podem ser controladas.

As casas-de-vegetação oferecem excelente condição para o crescimento de

produtos de alta qualidade e em grande quantidade sobre uma pequena área de

superfície, como também favorecem o desenvolvimento e reprodução das pragas

por serem ambientes protegidos contra intempéries como geadas, ventos, seca e

chuvas fortes, entre outras.

Vários fatores fazem do controle biológico uma ferramenta segura no

controle de muitas pragas em casas-de-vegetação, tais como a exposição

reduzida de produtores e aplicadores aos produtos químicos; a ausência de

resíduos sobre os produtos comercializados; o baixo risco de poluição ambiental;

a não ocorrência de efeitos fitotóxicos em plantas jovens e a não ocorrência do

aborto prematuro de flores e frutos. A liberação dos inimigos naturais é mais

prazerosa do que a aplicação de produtos fitossanitários no ambiente de casa-de-

vegetação (CV), que normalmente é quente e úmido; não existe período de

carência após aplicação e é um controle duradouro, como também muito

apreciado pelo público em geral (van Lenteren, 2000).

Os predadores da espécie Orius insidiosus (Say) (Hemiptera:

Anthocoridae) são muito utilizados em programas de controle biológico em

cultivos protegidos e campo. Esses antocorídeos são predadores vorazes em

todos os estágios de desenvolvimento, além de possuírem uma ampla

distribuição geográfica. Apresentam os estágios de ovo, cinco estádios ninfais

predadores e o estágio adulto, também predador (Lattin, 1999; Malais &

Ravensberg, 1992). A espécie O. insidiosus está presente em várias culturas,

como algodoeiro, milho, alfafa, soja e crisântemo, nas quais se alimentam de

vários artrópodes-praga como tripes, pulgões, ácaros, moscas brancas e ovos de

lepidópteros (Isenhor & Yeargan, 1981; Kiman & Yeargan, 1985).

A interação entre entomopatógenos e predadores para o controle de

pragas deve ser uma das principais estratégias do MIP, já que hoje em dia o setor

de produção orgânica tem crescido e se modernizado, valorizando a agricultura

sem uso de agrotóxicos e com grandes produções. Desta forma, este trabalho

teve como objetivo avaliar o efeito de linhagens de nematóides

entomopatogênicos (NEPs) sobre o predador O. insidiosus, para o possível uso

associado dos dois agentes de controle biológico no controle de pragas em

cultivos protegidos.

4 MATERIAL E MÉTODOS

O trabalho foi desenvolvido nos Laboratórios de Patologia e de Biologia

de Insetos do Departamento de Entomologia da Universidade Federal de Lavras

– UFLA, Minas Gerais, Brasil. Para a realização dos bioensaios de

compatibilidade entre os dois agentes biológicos, foram utilizadas linhagens

nativas e exóticas de NEPs armazenadas no Banco de Patógenos do Laboratório

de Patologia de Insetos; e adultos e ninfas do predador, oriundos da criação do

Laboratório de Controle Biológico.

Para multiplicação e manutenção dos NEPs em laboratório, foram

utilizadas larvas de Galleria mellonella (L.) (Lepidoptera: Pyralidae) oriundas

de criação à base de dieta artificial em marmitas metálicas teladas, de acordo

com metodologia modificada de Parra (1998).

4.1 Material biológico utilizado nos bioensaios

Foram utilizadas 14 linhagens de NEPs, sendo seis exóticas e oito

nativas (Tabela 1). Suspensões [20 juvenis infectantes (JIs)/larva] das linhagens

de NEPs foram inoculadas, com auxílio de micropipetas, em placas de Petri (9

cm ∅) contendo papel filtro + cinco larvas de G. mellonella. Após mortalidade

das larvas, estas foram transferidas para câmara seca (Molina & López, 2001)

por seis dias, sendo, após este período, colocadas em armadilhas de White

modificadas (White, 1927), em que foram coletados os JIs nos quatro primeiros

dias, após emergência, para utilização durante os experimentos.

A criação de O. insidiosus foi desenvolvida no Laboratório de Controle

Biológico, em condições controladas (temperatura de 25 ± 2ºC, umidade relativa

de 70 ± 10% e fotofase 12 horas), sendo as ninfas e adultos alimentados com

ovos de Anagasta kuehniella (Zeller) (Lepidoptera: Pyralidae), de acordo com

metodologia descrita por Mendes & Bueno (2001).

TABELA 1. Linhagens nativas e exóticas de nematóides entomopatogênicos

(Rhabditida: Heterorhabditidae e Steinernematidae) utilizadas

nos experimentos.

Linhagem Sigla Local de origem

Steinernema (= anomali) arenarium Sa Voronezh/Rússia

Steinernema carpocapsae All Sc Carolina do Norte/USA

Steinernema feltiae Sn Sf Flórida/USA

Steinernema glaseri NA Sg Flórida/USA

Steinernema riobrave 355 Sr Texas/ USA

Heterorhabditis bacteriophora HP88 HP88 New Jersey/ USA

Heterorhabditis sp. CCA CCA Araras/SP/Brasil

Heterorhabditis sp. JPM4 JPM4 Lavras/MG/Brasil

Heterorhabditis sp. PI PI Teresina/Piauí/Brasil

Heterorhabditis sp. RSC 01 RSC 01 Benjamin Constant/AM/Brasil

Heterorhabditis sp. RSC 02 RSC 02 Benjamin Constant/AM/Brasil

Heterorhabditis sp. RSC 03 RSC 03 Benjamin Constant/AM/Brasil

Heterorhabditis sp. RSC 04 RSC 04 Benjamin Constant/AM/Brasil

Heterorhabditis sp. RSC 05 RSC 05 Benjamin Constant/AM/Brasil

4.2 Bioensaios de patogenicidade

Foram aplicadas suspensões dos NEPs (20 JIs/inseto) em placa de Petri

plástica (6 cm ∅) contendo 15 g de areia de diferentes granulometrias (Tabela 2)

+ 3 mL de água destilada e depois transferidos os estádios 4º e 5º ínstares e

adulto de O. insidiosus (Figura 1). No tratamento testemunha foram aplicados 3

mL de água destilada. Foram colocados 10 predadores (ninfa/adulto), por

repetição, sendo o experimento constituído de um delineamento inteiramente

casualizado com 15 tratamentos e três repetições, totalizando 30

insetos/tratamento. Para alimentação dos insetos, foram colocados ovos de A.

kuehniella em cima de lamínulas (18 x 18 mm) dispostas sobre a areia. As

placas foram mantidas em câmara climatizada a 25 ± 1ºC, UR de 70% ± 10% e

fotofase de 12 horas. As avaliações foram realizadas 72 horas após a inoculação.

Após a mortalidade dos insetos, estes foram desinfestados superficialmente por

imersão em álcool a 70%, hipoclorito de sódio a 2% e água destilada, por 10

segundos, sendo em seguida transferidos para câmara seca, durante cinco dias.

Após este período foram dissecados com auxílio de estilete ao microscópio

estereoscópio para observação da confirmação da mortalidade pelos NEPs

(Figura 2).

A mortalidade corrigida foi calculada pela fórmula de Abbott (Abbott,

1925), a partir da mortalidade total, e os dados obtidos de mortalidade

confirmada foram transformados por

100/arcsen x

e submetidos à análise de

variância e ao teste de Scott & Knott (P<0,05) para comparação entre as médias.

TABELA 2. Classificação em função dos diferentes teores de frações da areia

utilizada nos bioensaios.

Classificação

Granulometria (mm) Teor (%)

Areia muito fina 0,05-0,10 9,7

Areia fina 0,10-0,25 66,8

Areia média 0,25-0,50 22,0

Areia grossa 0,5-1,0 1,4

Areia muito grossa 1,0-2,0 0,1

Segundo a Sociedade Brasileira de Ciência do Solo.

FIGURA 1. Arena em placa de Petri para avaliação da patogenicidade de

nematóides entomopatogênicos sobre Orius insidiosus.

FIGURA 2. Orius insidiosus dissecado para confirmação da mortalidade

causada por nematóides entomopatogênicos; setas - juvenis

infectantes de Steinernema riobrave emergidos.

5 RESULTADOS E DISCUSSÃO

Os resultados da análise de variância do bioensaio de patogenicidade de

linhagens nativas e exóticas de NEPs sobre adultos de O. insidiosus mostraram

que a maioria das linhagens de NEPs avaliadas foram pouco virulentas aos

adultos de O. insidiosus (Tabela 3) A maior porcentagem de mortalidade

(51,73%) foi verificada no tratamento com a linhagem S. riobrave.

TABELA 3. Porcentagem média de mortalidade confirmada (± EP) de adultos

de Orius insidiosus inoculados com nematóides

entomopatogênicos.

Tratamentos Mortalidade (%)

Testemunha 0 ± 00 a

Steinernema glaseri NA 2,30 ± 2,30 a

Heterorhabditis bacteriophora HP88 2,30 ± 2,30 a

Steinernema feltiae Sn 2,56 ± 2,56 a

Heterorhabditis sp. RSC05 6,67 ± 3,33 a

Heterorhabditis sp. CCA 8,05 ± 5,01 a

Heterorhabditis sp. RSC02 8,97 ± 5,59 a

Heterorhabditis sp. RSC04 10,26 ± 10,26 a

Heterorhabditis sp. RSC03 14,10 ± 14,10 a

Heterorhabditis sp. RSC01 20,51 ± 12,23 b

Heterorhabditis sp. PI 20,69 ± 3,45 b

Steinernema (= anomali) arenarium 20,69 ± 6,90 b

Steinernema carpocapsae All 24,14 ± 9,12 b

Heterorhabditis sp. JPM4 31,04 ± 3,45 b

Steinernema riobrave 355 51,73 ± 12,43 c

CV (%) 28,38

Médias seguidas por letras distintas diferem entre si pelo teste de Scott & Knott

(P<0,05).

As linhagens S. glaseri, S. feltiae, H. bacteriophora, Heterorhabditis sp.

CCA, RSC02, RSC03, RSC04 e RSC05 não diferiram do tratamento testemunha

quanto à mortalidade de adultos, apresentando valores de porcentagem média

entre 2,3 e 14%. Pode-se afirmar que estas linhagens mostraram boa seletividade

para utilização conjunta com o predador O. insidiosus em programas de controle

biológico de pragas, já que em condições de laboratório o inseto é exposto às

maiores concentrações dos NEPs e, em condições de cultivo protegido e campo,

isto pode não ocorrer (Roy & Pell, 2000). O predador O. insidiosus é um inseto

que habita a parte aérea das plantas, onde busca as suas presas, e os NEPs se

encontram no substrato, podendo, entretanto, ocorrer o encontro destes inimigos

naturais.

A importância de trabalhos como este está na verificação do possível

impacto negativo causado ao outro agente de controle biológico e também na

utilização conjunta destes inimigos naturais, aumentando, assim, a possibilidade

de efetividade do controle biológico de pragas. Vários estudos ratificam a

importância da avaliação do impacto de entomopatógenos sobre organismos

não-alvo e vice-versa (Campbell et al., 1995; Bathon, 1996; Ehlers & Hokkanen,

1996; Georgis et al., 1991; Pell et al., 1997; Peters, 1996; Roy et al., 1998).

Os patógenos podem interferir de forma direta sobre os predadores

(infecção) ou de forma indireta (redução e eliminação das presas) (Rosenheim et

al., 1995). Outros autores relatam que a combinação de mais de um inimigo

natural para o controle da mesma praga é uma alternativa promissora no MIP,

como no estudo desenvolvido por Borgemeister et al. (2002), que avaliaram a

combinação do ácaro Hypoaspis aculeifer (Canestrini) (Acari: Laelapidae) com

NEPs para o controle de pré-pupas e pupas de F. occidentalis, efetuando um

ótimo controle e reduzindo drasticamente a emergência de adultos da praga.

Segundo Magalhães et al. (1998), a exposição dos predadores aos

patógenos ocorre nas aplicações dos produtos, por contato com plantas

contaminadas pelos mesmos ou ao se alimentarem de insetos infectados, mas

estes podem ser considerados, muitas vezes, agentes dispersantes dos

entomopatógenos.

Ocorreram diferenças entre os tratamentos com os NEPs

Heterorhabditis sp. (JPM4, PI e RSC01), S. anomali, S. carpocapsae e o

tratamento testemunha quanto à mortalidade de adultos do predador, o qual

apresentou mortalidade entre 20 e 31%. A maior mortalidade foi observada no

tratamento S. riobrave (51,73%), sendo que esta linhagem diferiu dos outros

tratamentos e da testemunha (Tabela 3).

Jandricic et al. (2005) avaliaram o efeito do NEP S. feltiae sobre o

predador de pupas de tripes Atheta coriaria Kraatz (Coleoptera: Staphylinidae)

em condições de laboratório e semi-campo e observaram que o nematóide não

causou efeitos prejudiciais aos adultos e às larvas de terceiro ínstar, as quais

apresentaram baixa suscetibilidade ao NEP. Este resultado foi semelhante ao

encontrado para O. insidiosus no presente estudo, para a maioria das espécies de

NEPs.

Entre os tratamentos avaliados em adultos, daqueles seis que diferiram

da testemunha, três linhagens são exóticas do gênero Steinernema e três

linhagens, nativas do gênero Heterorhabditis. Destas linhagens nativas e

exóticas, ambas apresentaram baixa patogenicidade aos adultos de O. insidiosus,

destacando-se apenas a mortalidade causada pelo nematóide exótico S. riobrave

(Tabela 3; Figura 3A e B). Esses resultados corroboram aqueles apresentados

por Bathon (1996) sobre a mortalidade de ácaros predadores e coleópteros.

Dentre as linhagens mais virulentas a adultos de O. insidiosus, S.

carpocapsae e S. riobrave possuem estratégias de buscas conhecidas por

“ambusher” e “intermediária”, respectivamente, que se caracterizam pela espera

pelo hospedeiro e pela combinação de duas estratégias “ambusher” e “cruiser”.

Essa combinação permite que a primeira estratégia seja utilizada para pragas

100

com grande movimentação e a segunda tenha a característica de esperar pelo

hospedeiro e se locomover ao seu encontro. Portanto, ambas as linhagens têm

estratégias de busca que propiciam uma maior probabilidade de encontrar

insetos de grande mobilidade, como é o caso de O. insidiosus.

S. riobrave promoveu uma mortalidade maior que 50%, diferindo de

todos os outros tratamentos avaliados. Esta linhagem combina as duas

estratégias de busca utilizadas pelos NEPs, sendo também uma linhagem muito

utilizada no controle de pragas; entretanto, em condições de laboratório, foi

prejudicial ao predador O. insidiosus. Isto indica a não utilização conjunta

desses dois inimigos naturais e a preferência por linhagens que foram inócuas ao

predador, ou seja, aquelas oito linhagens que foram compatíveis com O.

insidiosus (CCA, RSC 02, RSC03, RSC04, RSC05, H. bacteriophora, S. feltiae

e S. glaseri).

101

Linhagens Exóticas

S. r S. c S. a S. f S. g HP88

% Mortalidade

100

Linhagens Nativas

JPM4 PI RSC 01 RSC 03 RSC 04 RSC 02 CCA RSC 05

% Mortalidade

100

FIGURA 3. Mortalidade de adultos de Orius insidiosus causada pelas linhagens

exóticas (A) e nativas (B) de nematóides entomopatogênicos.

102

Steinernematidae

S. r S. c S. a S. f S. g

% Mortalidade

100

Heterorhabditidae

JPM4 PI RSC 01 RSC 03 RSC 04 RSC 02 CCA RSC 05 HP88

% Mortalidade

100

FIGURA 4. Mortalidade de adultos de Orius insidiosus causada pelos

nematóides entomopatogênicos das famílias Steinernematidae (A)

e Heterorhabditidae (B).

103

Para ninfas de O. insidiosus, os tratamentos S. anomali, S. carpocapsae,

S. feltiae, S. glaseri, H. bacteriophora, Heterorhabditis sp. CCA, JPM4, PI,

RSC03, RSC04 e RSC05 não diferiram do tratamento testemunha. Apenas três

tratamentos apresentaram diferenças com relação à testemunha, S. riobrave,

Heterorhabditis sp. RSC01 e RSC02 (Tabela 4).

A linhagem S. riobrave causou grande mortalidade de ninfas de O.

insidiosus (53,33%), semelhantemente ao que foi constatado com a mortalidade

de adultos do antocorídeo, sendo, desta forma, uma linhagem que tem uma

grande capacidade de infectar insetos que se deslocam rapidamente, como é o

caso de O. insidiosus. Este NEP combina as duas estratégias de busca, o que

facilita a espera de insetos que se dispersam pelo caminhamento e quando o

inseto se locomove lentamente ou tem comportamento séssil.

Alguns fatores a serem levados em consideração para a utilização

conjunta de inimigos naturais devem ser a cultura, a época de aplicação e em

qual estágio da praga os entomopatógenos, predadores ou parasitóides, irão ser

utilizados. Os NEPs são utilizados para controle da fase de pré-pupa e pupa que

se desenvolve no solo, enquanto o predador O. insidiosus é utilizado para

controle dos estágios de ninfa e adulto de tripes. Estudos relatam a interação

sinérgica entre duas linhagens de NEPs (H. bacteriophora e S. feltiae) e o ácaro

predador H. aculeifer para o controle de F. occidentalis encontrados no solo

(pré-pupas e pupas) (Premachandra et al., 2003).

As linhagens exóticas e nativas causaram baixas mortalidades de O.

insidiosus nos estágios imaturos avaliados (Figura 6A e B). S. riobrave teve um

comportamento similar tanto para ninfas quanto para adultos de O. insidiosus,

demonstrando ser um NEP com boa capacidade de emboscar e buscar o

hospedeiro, mas que, quando utilizado em associação com outros inimigos

naturais, deve ser avaliado seu impacto sobre os mesmos.

104

TABELA 4. Porcentagem média de mortalidade confirmada (± EP) de ninfas (4º

e 5º instares) de Orius insidiosus inoculados com nematóides

entomopatogênicos.

Tratamentos Mortalidade (%)

Testemunha 0 ± 00 a

Heterorhabditis sp. RSC04 0 ± 00 a

Heterorhabditis sp. PI 0 ± 00 a

Heterorhabditis sp. RSC03 3,33 ± 3,33 a

Steinernema glaseri NA 6,67 ± 3,33 a

Heterorhabditis sp. JPM4 6,67 ± 3,33 a

Heterorhabditis sp. CCA 10,00 ± 10,00 a

Steinernema (= anomali) arenarium 13,33 ± 13,33 a

Heterorhabditis sp. RSC05 13,33 ± 6,67 a

Heterorhabditis bacteriophora HP88 13,33 ± 6,67 a

Steinernema feltiae Sn 16,67 ± 12,02 a

Steinernema carpocapsae All 26,67 ± 13,33 a

Heterorhabditis sp. RSC02 43,33 ± 3,33 b

Heterorhabditis sp. RSC01 46,67 ± 13,33 b

Steinernema riobrave 355 53,33 ± 3,33 b

CV (%) 17,72

Médias seguidas por letras distintas diferem entre si pelo teste de Scott & Knott

(P<0,05).

Das linhagens de NEPs avaliadas sobre ninfas, 11 foram semelhantes à

testemunha (Tabela 4), um número maior de tratamentos do que comparado com

os adultos, que tiveram apenas oito tratamentos semelhantes à testemunha

(Tabela 3).

Metade das linhagens testadas apresentou-se semelhante ao tratamento

testemunha para ninfas e adultos de O. insidiosus; dentre elas, quatro linhagens

105

nativas (Heterorhabditis sp. CCA, RSC 03, RSC 04 e RSC 05) e três exóticas

(H. bacteriophora, S. feltiae e S. glaseri). As linhagens Heterorhabditis sp.

JPM4 e PI e S. anomali foram mais seletivas para as ninfas de O. insidiosus do

que para adultos do predador. Já a linhagem Heterorhabditis sp. RSC 02 foi

mais seletiva para a fase adulta do que para os estádios ninfais de 4º e 5º ínstares

de O. insidiosus, quando comparadas com a testemunha (Tabelas 3 e 4).

A linhagem Heterorhabditis sp. (PI) foi a melhor no controle de tripes,

causando 100% de mortalidade para pré-pupas e/ou pupas (Tabela 2, Capítulo 3,

Página 83), mas quando utilizada sobre O. insidiosus, diferenciou-se da

testemunha, podendo resultar em risco para o predador e favorecimento à

população da praga se estes forem aplicados conjuntamente em condições de

campo. Por outro lado, esta linhagem não causou mortalidade às ninfas de O.

insidiosus (Tabela 4).

Quando comparados os resultados referentes às famílias dos NEPs para

ninfas e adultos de O. insidiosus, verificou-se que Steinernematidae

promoveram maiores mortalidades do que Heterorhabditidae [Figuras 4 e 5 (A e

B)]. Por outro lado, muitos estudos mostram que a patogenicidade está

relacionada à família dos NEPs e à associação bactéria-NEP, aliadas à

capacidade de penetração + estratégia de busca pelo hospedeiro e à infecção

causada pela bactéria ao inseto hospedeiro. A atração dos NEPs pelos seus

hospedeiros é determinada principalmente pelos gradientes de CO

, habilidade

presente nos JIs e atribuída a uma orientação cinética-tátil, à qual os NEPs

respondem com movimentos de locomoções iniciais, interrompidas por

movimentos “nictatórios” até chegar aos hospedeiros. Outros autores afirmam

que a atração é induzida por compostos cuticulares e substâncias voláteis, como

cairomônios liberados pelos hospedeiros, podendo ocorrer também a infecção

pelos NEPs em outros inimigos naturais (Campbell et al., 2003; Forst & Clarke,

2002; Gaugler et al., 1980; Kung et al., 1990; Lewis et al., 1996; Lewis, 2002).

106

Steinernematidae

S. r S. c S. f S. a S. g

% Mortalidade

100

Heterorhabditidae

RSC 01 RSC 02 RSC 05 HP88 CCA JPM4 RSC 03 RSC 04 PI

% Mortalidade

100

FIGURA 5. Mortalidade de ninfas de Orius insidiosus causada pelos nematóides

entomopatogênicos das famílias Steinernematidae (A) e

Heterorhabditidae (B).

107

Linhagens Exóticas

S. r S. c S. f S. a HP88 S. g

% Mortalidade

100

Linhagens Nativas

RSC 01 RSC 02 RSC 05 CCA JPM4 RSC 03 RSC 04 PI

% Mortalidade

100

FIGURA 6. Mortalidade de ninfas de Orius insidiosus causada pelas linhagens

exóticas (A) e nativas (B) de nematóides entomopatogênicos.

108

A maioria dos trabalhos encontrados na literatura são relacionados com

o efeito de fungos entomopatogênicos sobre artrópodes predadores (James et al.,

1994; James et al., 1998; Magalhães et al., 1988; Pingel & Lewis, 1996;

Poprawski et al., 1998) e inseticidas à base de bactérias entomopatogênicas

causando mortalidade de inimigos naturais (Giroux et al., 1994). Loureiro

(2001) avaliou o efeito dos FEPs Beauveria bassiana (Bals.) Vuill.,

Lecanicillium sp., Metarhizium anisopliae (Metsch) Sorok.

e Paecilomyces

fumosoroseus (Wize) Brown & Smith ao predador O. insidiosus, segundo o qual

todos os entomopatógenos foram patogênicos a este inseto, o que não foi

avaliado neste trabalho, já que este resultado já havia sido encontrado em testes

realizados no mesmo laboratório.

Com o aumento dos trabalhos para utilização destes agentes biológicos

no controle de pragas, aumenta também o número de informações sobre seu

efeito sobre organismos não-alvo, já que a utilização conjunta de inimigos

naturais é uma realidade no controle biológico.

Com isso, devem ser utilizadas linhagens nativas para evitar a

introdução de linhagens exóticas, evitando, assim, a possível extinção das

linhagens encontradas em nosso país. Além da utilização de linhagens nativas de

NEPs, estas também devem ser menos agressivas aos outros inimigos naturais,

como é o caso de O. insidiosus, uma vez que tanto o predador como os NEPs

são efetivos inimigos naturais de tripes, justificando a importância de estudos de

patogenicidade de NEPs sobre O. insidiosus. Estes estudos poderão servir como

indicadores da possibilidade de uso conjunto desses inimigos naturais em

programas de MIP para incrementar a efetividade do controle biológico de

pragas.

109

6 CONCLUSÕES

1. A maioria das linhagens de NEPs testadas é seletiva a ninfas (4º e 5º instares)

e adultos de O. insidiosus.

2. Os NEPs Heterorhabditis sp. PI e RSC04 são inócuos às ninfas de O.

insidiosus.

3. Steinernema riobrave é a linhagem mais virulenta a ninfas (4º e 5º instares) e

adultos do predador O. insidiosus em laboratório.

110

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